(57)【要約】  酵素化学的方法を用いて従来の方法より短時間でフッ素含有アミノ酸をペプチドやタンパク質に導入することのできる方法を提供する。フッ素含有アミノ酸を導入すべきペプチド又はタンパク質と、アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素とを混合し、前記ペプチド又はタンパク質と前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素との複合体を形成する工程と、前記複合体と、導入すべきフッ素含有アミノ酸、ｔＲＮＡ、及びアミノアシルｔＲＮＡ合成酵素を含む試薬溶液とを混合して、前記ペプチド又はタンパク質に前記フッ素含有アミノ酸を導入する工程とを含む、ペプチド又はタンパク質にフッ素含有アミノ酸を導入する方法。
2015045052.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
フッ素含有アミノ酸を導入すべきペプチド又はタンパク質と、アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素とを混合し、前記ペプチド又はタンパク質と前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素との複合体を形成する工程と、
前記複合体と、導入すべきフッ素含有アミノ酸、ｔＲＮＡ、及びアミノアシルｔＲＮＡ合成酵素を含む試薬溶液とを混合して、前記ペプチド又はタンパク質に前記フッ素含有アミノ酸を導入する工程とを含む、ペプチド又はタンパク質にフッ素含有アミノ酸を導入する方法。
【請求項２】
前記複合体の形成工程において、前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素に対して、過剰モル量の前記ペプチド又はタンパク質を用いる、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記複合体の形成工程において、前記ペプチド又はタンパク質を、前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素に対して、モル比で表して、２／１〜１０，０００／１の量で用いる、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素が、ロイシル／フェニルアラニルｔＲＮＡタンパク質転移酵素（Ｌ／Ｆ−Ｔ）である、請求項１〜３のいずれかに記載の方法。
【請求項５】
前記フッ素含有アミノ酸は、[18Ｆ]を含む、請求項１〜４のいずれかに記載の方法。
【請求項６】
前記フッ素含有アミノ酸が、２−アミノ−３−（４−[18Ｆ]フルオロメトキシフェニル）プロピオン酸（[18Ｆ]ＦＭＴ）及び２−アミノ−３−［４−（２−[18Ｆ]フルオロエトキシ）フェニル］プロピオン酸（[18Ｆ]ＦＥＴ）からなる群から選ばれる、請求項１〜５のいずれかに記載の方法。
【請求項７】
前記フッ素含有アミノ酸を導入すべきペプチド又はタンパク質のＮ末端残基が塩基性アミノ酸残基であり、前記フッ素含有アミノ酸が前記ペプチド又はタンパク質のＮ末端に導入される、請求項１〜６のいずれかに記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ＰＥＴ診断試薬、抗体型診断薬、及びペプチド型診断薬、並びにタンパク質型医薬品の体内分布測定に適用される技術に関する。より具体的には、本発明は、ペプチド又はタンパク質へのフッ素含有アミノ酸導入法（フッ素導入法）、とりわけペプチド又はタンパク質の18Ｆ含有アミノ酸導入法（18Ｆ標識法）に関する。
【背景技術】
【０００２】
フッ素の放射性同位体18Ｆ（半減期：１１０分）は、臨床分野ではＰＥＴプローブへの用途において最も有用な核種として知られている。【０００３】
現在、18Ｆ標識診断薬としてグルコース誘導体である[18Ｆ]ＦＤＧががん診断に用いられている。この診断薬は、がん組織での高い糖代謝活性により、[18Ｆ]ＦＤＧががん組織に集積することを利用したもので、がんの超早期診断や治療効果判定に用いられている。【０００４】
特開２００９−１０６２６８号公報（特許文献１）には、フッ素含有アミノ酸であるＦＭＴ（フルオロメチル−Ｌ−チロシン）やＦＥＴ（フルオロエチル−Ｌ−チロシン）を、酵素化学的手法によりone-potでペプチドやタンパク質のＮ末端に導入する方法（Ｎｅｘｔａ法）が記載されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特開２００９−１０６２６８号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
糖代謝活性を利用する18Ｆ標識診断薬は臨床的に使用されているが、がん診断によっては適用できないものもある。一方で、がん以外の疾病診断におけるＰＥＴの利用も大いに期待されている。このため、がんの超早期診断、脳神経疾患及び循環器系疾患診断に用いる、[18Ｆ]ＦＤＧ以外の放射性診断薬のためのプローブが多数提案されてきた。しかし、それらの多種の新規プローブの合成のために、従来の自動合成装置をプローブごとに設計及び製作しなければならず、著しく非効率であった。この非効率さは、新規プローブの開発を妨げる原因となっていた。【０００７】
なお、従来から[18Ｆ]ＳＦＢ（Ｎ−スクシンイミジル−４−[18Ｆ] フルオロベンゾエート）が、ペプチド、タンパク質その他の高分子を18Ｆ標識する試薬として広く用いられてきた。しかしながら、[18Ｆ] ＳＦＢを用いてバッチ合成する場合、合成時間に１〜１．５時間もの長い時間を必要とする。また、操作も煩雑である。このため、[18Ｆ] ＳＦＢを用いた合成が可能な施設は一部に限られていた。さらに18Ｆ標識部位を選択的に指定できず、ペプチドやタンパク質の活性を損なう可能性があるため、18Ｆ標識可能なペプチド、タンパク質が限られていた。【０００８】
一方、18Ｆ標識アミノ酸をペプチドやタンパク質に導入する方法は、標識されるペプチドやタンパク質の機能を損なわない点で好ましい。18Ｆ標識アミノ酸の導入手法としては、ペプチド合成法、遺伝子工学的方法及び酵素化学的方法が挙げられる。しかしながら、ペプチド合成法ではアミノ酸１分子の導入に１日以上の時間がかかり、遺伝子工学的方法では手間が煩雑であり、酵素化学的方法では導入効率があまり良くないという問題があった。【０００９】
例えば、特開２００９−１０６２６８号公報に開示のＮｅｘｔａ法（酵素化学的方法）によれば、１）目的ペプチド又はタンパク質、２）導入すべきフッ素含有アミノ酸、３）ｔＲＮＡ、４）アミノアシルｔＲＮＡ合成酵素、及び５）アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素を含む混合溶液を用いて、前記目的ペプチド又はタンパク質に前記フッ素含有アミノ酸が導入される（請求項１）。ｔＲＮＡのアミノアシル化、アミノ酸の目的ペプチド又はタンパク質への転移反応が引き続いて起こり、アミノアシルｔＲＮＡは系中で自発的に作製され、また、ｔＲＮＡは、触媒として働き再利用される（［００１０］）。この方法では、２０分間で反応が完了する旨が開示されている（［００３１］）。【００１０】
しかしながら、導入すべきフッ素含有アミノ酸が[18Ｆ]含有アミノ酸の場合には、従来のＮｅｘｔａ法を用いることには問題があった。すなわち、まず、[18Ｆ]含有アミノ酸を調製（合成、精製、放射化学的純度の検査など）するために、２０〜３０分間程度は要する。続いて、調製された[18Ｆ]含有アミノ酸を従来のＮｅｘｔａ法に供すると、Ｎｅｘｔａ法自体で２０分間を要するので、18Ｆ標識アミノ酸をペプチドやタンパク質に導入するには、トータル時間として４０〜５０分間程度は要する。そうすると、放射性同位体18Ｆの半減期が１１０分であることから判断して、Ｎｅｘｔａ法の時間短縮が必要である。【００１１】
そこで、本発明の目的は、酵素化学的方法を用いて従来の方法より短時間でフッ素含有アミノ酸をペプチドやタンパク質に導入することのできる方法を提供することにある。とりわけ、本発明の目的は、酵素化学的方法を用いて従来の方法より短時間で[18Ｆ]含有アミノ酸をペプチドやタンパク質に導入することのできる方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
本発明者らは、鋭意検討の結果、フッ素含有アミノ酸を導入すべきペプチド又はタンパク質とアミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素との複合体を予め形成しておき、その後、Ｎｅｘｔａ法類似反応を行わせることによって、フッ素含有アミノ酸の導入反応の時間を大幅に短縮できることを見出し、本発明を完成するに至った。【００１３】
本発明は、以下の発明を含む。【００１４】
（１）  フッ素含有アミノ酸を導入すべきペプチド又はタンパク質と、アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素とを混合し、前記ペプチド又はタンパク質と前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素との複合体を形成する工程と、
前記複合体と、導入すべきフッ素含有アミノ酸、ｔＲＮＡ、及びアミノアシルｔＲＮＡ合成酵素を含む試薬溶液とを混合して、前記ペプチド又はタンパク質に前記フッ素含有アミノ酸を導入する工程とを含む、ペプチド又はタンパク質にフッ素含有アミノ酸を導入する方法。【００１５】
（２）  前記複合体の形成工程において、前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素に対して、過剰モル量の前記ペプチド又はタンパク質を用いる、上記（１）に記載の方法。【００１６】
（３）  前記複合体の形成工程において、前記ペプチド又はタンパク質を、前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素に対して、モル比で表して、２／１〜１０，０００／１の量で用いる、上記（１）又は（２）に記載の方法。【００１７】
（４）  前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素が、ロイシル／フェニルアラニルｔＲＮＡタンパク質転移酵素（Ｌ／Ｆ−Ｔ）である、上記（１）〜（３）のいずれかに記載の方法。【００１８】
（５）  前記フッ素含有アミノ酸は、[18Ｆ]を含む、上記（１）〜（４）のいずれかに記載の方法。【００１９】
（６）  前記フッ素含有アミノ酸が、２−アミノ−３−（４−[18Ｆ]フルオロメトキシフェニル）プロピオン酸（[18Ｆ]ＦＭＴ）及び２−アミノ−３−［４−（２−[18Ｆ]フルオロエトキシ）フェニル］プロピオン酸（[18Ｆ]ＦＥＴ）からなる群から選ばれる、上記（１）〜（５）のいずれかに記載の方法。【００２０】
（７）  前記フッ素含有アミノ酸を導入すべきペプチド又はタンパク質のＮ末端残基が塩基性アミノ酸残基であり、前記フッ素含有アミノ酸が前記ペプチド又はタンパク質のＮ末端に導入される、上記（１）〜（６）のいずれかに記載の方法。【００２１】
本発明において「ペプチド」とは、２個以上のアミノ酸を含有するアミノ酸配列を有するものをいう。また、本発明において「タンパク質」とは、分子量５，０００以上のペプチドをいう。さらに、本発明におけるタンパク質は、例えば生体内で産生されたものである場合には、生体内で何らかの機能・活性を示し得るペプチドである。【００２２】
本発明における「アミノ酸」には、α−、β−、γ−アミノ酸が含まれる。【００２３】
本発明においては、「フッ素を導入する」ことはフッ素含有アミノ酸を導入することによって行うため、本明細書において、「フッ素導入」はフッ素含有アミノ酸の導入と同じ意味で用いる。【００２４】
さらに、本発明において、酵素化学的方法を用いてフッ素含有アミノ酸をペプチド又はタンパク質に、より効率よく導入するために、以下の（２−１）〜（２−１０）のようにしてもよい。すなわち、上記の方法において、18Ｆ標識アミノ酸を導入すべきペプチド又はタンパク質に、あらかじめ特定の配列を付加して活性化ペプチド又はタンパク質としておくことで、18Ｆ標識アミノ酸の導入効率が向上する。活性化配列の導入は、任意工程である。【００２５】
（２−１）
Ｎ末端アミノ酸残基として塩基性アミノ酸残基と、前記Ｎ末端アミノ酸残基に隣接するアミノ酸残基として、側鎖に水酸基を有するアミノ酸残基、側鎖に正電荷を有する親水性アミノ酸残基、若しくは側鎖が−Ｈ、−ＣＨ３又は−Ｃ（ＣＨ３）Ｃ２Ｈ５であるアミノ酸残基とを少なくとも有する活性化配列を、フッ素を導入すべきペプチド又はタンパク質に付加し、活性化ペプチド又はタンパク質を得る工程と、
得られた活性化ペプチド又はタンパク質と、アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素とを混合し、前記ペプチド又はタンパク質と前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素との複合体を形成する工程と、
前記複合体と、導入すべきフッ素含有アミノ酸、ｔＲＮＡ、及びアミノアシルｔＲＮＡ合成酵素を含む試薬溶液とを混合して、前記ペプチド又はタンパク質に前記フッ素含有アミノ酸を導入する工程とを含む、ペプチド又はタンパク質にフッ素含有アミノ酸を導入する方法。【００２６】
（２−２）
前記フッ素を導入すべきペプチド又はタンパク質のＮ末端残基が塩基性アミノ酸残基でない、上記（２−１）の方法。【００２７】
（２−３）
前記フッ素を導入すべきペプチド又はタンパク質のＮ末端から２番目のアミノ酸残基が、側鎖に水酸基を有するアミノ酸残基、側鎖に正電荷を有する親水性アミノ酸残基、及び側鎖が−Ｈ、−ＣＨ３、−Ｃ（ＣＨ３）Ｃ２Ｈ５及び−ＣＨ２ＣＯＮＨ２であるアミノ酸残基のいずれでもない、上記（２−２）の方法。【００２８】
（２−４）
前記活性化配列における前記水酸基を有するアミノ酸が、セリン又はトレオニンである、上記（２−１）〜（２−３）のいずれかの方法。【００２９】
（２−５）
前記活性化配列における前記正電荷を有する親水性アミノ酸残基が、リジン又はアルギニンである、上記（２−１）〜（２−４）のいずれかの方法。【００３０】
（２−６）
前記活性化配列における前記２番目のアミノ酸残基が、グリシン、アラニン、イソロイシン、チロシン又はアスパラギンである、上記（２−１）〜（２−３）のいずれかの方法。【００３１】
（２−７）
前記活性化配列が、スペーサ基を含む、上記（２−１）〜（２−６）のいずれかの方法。【００３２】
（２−８）
前記スペーサ基がペプチドである、上記（２−７）の方法。【００３３】
（２−９）
前記スペーサ基が炭素数２〜６のアルキレンオキシド含有基である、上記（２−７）の方法。【００３４】
（２−１０）
前記塩基性アミノ酸残基がリジン残基又はアルギニン残基である、上記（２−１）〜（２−９）のいずれかの方法。
【発明の効果】
【００３５】
本発明において、フッ素含有アミノ酸を導入すべきペプチド又はタンパク質とアミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素との複合体を予め形成しておき、その後、Ｎｅｘｔａ法類似反応を行わせることによって、フッ素含有アミノ酸の導入反応の時間を大幅に短縮（例えば、１分以下の時間）できる。このため、本発明の方法は、放射性同位体18Ｆの半減期が１１０分であることから判断して、[18Ｆ]含有アミノ酸をペプチド又はタンパク質に導入するために非常に有用である。
【図面の簡単な説明】
【００３６】
【図１】実施例１において、初期０分、インキュベート１分、及びインキュベート１０分での蛍光検出ＨＰＬＣの測定結果を示す。
【発明を実施するための形態】
【００３７】
［１．フッ素を導入すべきタンパク質又はペプチド］
フッ素を導入すべきペプチド又はタンパク質は、天然のアミノ酸配列を有するもの及び非天然のアミノ酸配列を有するものを問わない。天然のアミノ酸配列を有するペプチド又はタンパク質は、例えば種々の生物の生体内からの単離により得られるものでありうる。あるいは、遺伝子工学的手法や有機合成などの公知の手法を用いて人工的に産生されたものでありうる。非天然のアミノ酸配列を有するペプチド又はタンパク質も、遺伝子工学的手法や有機合成などの公知の手法を用いて人工的に産生されたものでありうる。
【００３８】
フッ素を導入すべきペプチド又はタンパク質の配列に特に制限はないが、Ｎｅｘｔａ法進行のために、Ｎ末端残基は塩基性アミノ酸残基（例えばリジン残基やアルギニン残基）である。
【００３９】
ただし、［２．活性化配列］に説明するように、前記ペプチド又はタンパク質とアミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素との複合体形成の前に、予め、フッ素を導入すべきペプチド又はタンパク質に活性化配列を付加して、活性化ペプチド又はタンパク質としてもよい。
【００４０】
［２．活性化配列］
フッ素を導入すべきペプチド又はタンパク質は、任意に、複合体形成の前（フッ素導入前）に、活性化配列が付加されることによって、活性化ペプチド又はタンパク質に変換される。
【００４１】
活性化配列は、特定の２アミノ酸残基からなるペプチド配列を少なくとも含む。特定の２アミノ酸残基は、それぞれ、天然アミノ酸に由来する残基であってもよいし、非天然アミノ酸に由来する残基であってもよい。
【００４２】
活性化配列のＮ末端アミノ酸残基は、塩基性アミノ酸である。具体的には、リジン残基やアルギニン残基が挙げられる。
【００４３】
また、活性化配列のＮ末端アミノ酸残基に隣接するアミノ酸残基（すなわちＮ末端から２番目のアミノ酸残基）としては、以下が挙げられる。
・側鎖に水酸基を有するアミノ酸残基（水酸基は、通常の水酸基及びフェノール性水酸基を含む）
・側鎖に正電荷を有する親水性アミノ酸残基
・側鎖が−Ｈ、−ＣＨ３、−Ｃ（ＣＨ３）Ｃ２Ｈ５又は−ＣＨ２ＣＯＮＨ２であるアミノ酸残基
【００４４】
これらのアミノ酸残基のうち、フッ素導入反応の活性化効率の高さに鑑みると、側鎖に（フェノール性水酸基でない）通常の水酸基を有するアミノ酸残基、及び側鎖に正電荷を有する親水性アミノ酸残基がより好ましい。
【００４５】
側鎖に水酸基を有するアミノ酸の例としては、セリン、トレオニン及びチロシン等が挙げられる。側鎖に正電荷を有する親水性アミノ酸の例としては、リジン及びアルギニン等が挙げられる。側鎖が−Ｈであるアミノ酸の例としてはグリシン、側鎖が−ＣＨ３であるアミノ酸の例としてはアラニン、側鎖が−Ｃ（ＣＨ３）Ｃ２Ｈ５であるアミノ酸の例としてはイソロイシン、側鎖が−ＣＨ２ＣＯＮＨ２であるアミノ酸の例としてはアスパラギンが挙げられる。
【００４６】
２番目のアミノ残基が天然のα−アミノ酸のものである場合、活性化効率の高さは、おおよそ、セリン、アルギニン、トレオニン、リジン、グリシン、アラニン、イソロイシン、チロシン及びアスパラギンの順であることが本発明者らによって確認されている。
【００４７】
活性化配列は、２番目のアミノ酸残基に結合したスペーサ基を含むことができる。スペーサ基は、後述のフッ素含有アミノ酸導入工程で用いられる酵素の基質結合ポケットに好ましく適合する構造を活性化配列に与えることができる。
【００４８】
スペーサ基は、ペプチド鎖であってもよいし、それ以外の構造であってもよい。ペプチド以外の構造の一例としては２価の有機基が挙げられる。２価の有機基としては、アルキレンオキシド含有基が挙げられる。アルキレンオキシド含有基におけるアルキレンオキシドとしては、炭素数２〜６のアルキレンオキシドであってよく、好ましくは、エチレンオキシドやプロピレンオキシドである。２価の有機基は、これらを繰り返し単位とするポリアルキレンオキシド含有基であってよい。また、スペーサ基には、本発明と組み合わされる種々の測定法や検出法等に応じて、当業者によって適宜、同位体標識や蛍光標識等がなされていてもよい。
【００４９】
［３．活性化配列の付加］
活性化配列は、任意に、フッ素を導入すべきペプチド又はタンパク質に付加される。好ましくは、活性化配列は、フッ素を導入すべきペプチド又はタンパク質のＮ末端に付加される。これにより、活性化されたペプチド又はタンパク質を得る。
【００５０】
活性化配列がＮ末端アミノ酸残基及びそれに隣接するアミノ酸残基（Ｎ末端から２番目のアミノ酸残基）のみからなる場合は、当該２番目のアミノ酸残基が、フッ素を導入すべきペプチド又はタンパク質に結合する。活性化配列がスペーサ基を有する場合は、スペーサ基が、フッ素を導入すべきペプチド又はタンパク質に結合する。
【００５１】
活性化配列を付加する手法は、活性化配列とフッ素を導入すべきペプチド又はタンパク質との結合様式に応じ、当業者が適宜選択することができる。
【００５２】
例えば、当該結合様式がペプチド結合である場合は、通常のペプチド合成法を用いることができる。より具体的には、ペプチド固相合成法などがある。表面をアミノ基で修飾した直径0.1mm程度のポリスチレン高分子ゲルのビーズなどを固相として用い、ここから脱水反応によって1つずつアミノ酸鎖を伸長していく。目的とするペプチドの配列が出来上がったら固相表面から切り出し、目的の物質を得る。また、タンパク質のＮ末を任意の配列にするためには、大腸菌を用いたタンパク合成の段階で、操作した遺伝子を使用し任意の配列に組み替えることが可能である。
【００５３】
結合様式がペプチド結合でない場合（ＰＥＧ鎖の場合等）は、対象となるリンカーの末端に活性エステル基（コハク酸イミド）等を用い、ペプチド・タンパク質のＮ末端のアミノ酸と反応させる方法で導入する。
【００５４】
［４．複合体の形成］
フッ素含有アミノ酸を導入すべきペプチド又はタンパク質と、アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素とを混合し、前記ペプチド又はタンパク質と前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素との複合体を形成する。活性化配列を任意に導入した場合には、得られた活性化ペプチド又はタンパク質と、アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素とを混合し、前記ペプチド又はタンパク質と前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素との複合体を形成する。
【００５５】
アミノアシルｔＲＮＡタンパク質合成転移酵素は、ｔＲＮＡの３‘末端に付加されたアミノ酸をタンパク質のアミノ末端（Ｎ末端）へ転移し、遺伝暗号を介することなくペプチド結合形成反応を触媒する酵素である。アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素としては、野生型であってもよいし、野生型と同様の機能を有する変異型であってもよい。アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素は、公知の方法（例えば遺伝子工学的手法）に従って当業者が適宜合成することにより、あるいは、市販のものを購入することにより用意することができる。
【００５６】
アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素の具体例として、ロイシル／フェニルアラニルｔＲＮＡタンパク質転移酵素（Ｌ／Ｆ転移酵素）を用いることができる。Ｌ／Ｆ転移酵素は大腸菌由来であり、ｔＲＮＡに結合しているフェニルアラニンや、ロイシン、メチオニンなどの疎水性アミノ酸を、Ｎ末端にリジンやアルギニンを有するペプチド又はタンパク質に転移させる反応を触媒する酵素である。
【００５７】
前記複合体の形成工程において、前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素に対して、過剰モル量の前記ペプチド又はタンパク質を用いる。例えば、前記ペプチド又はタンパク質（Ｐ）を、前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素（Ｔ）に対して、モル比（Ｐ／Ｔ）で表して、例えば、２／１〜１０，０００／１の量で、好ましくは１０／１〜２，０００／１の量で、より好ましくは５０／１〜５００／１の量で用いるとよい。前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素に対して、過剰モル量の前記ペプチド又はタンパク質を用いることにより、ほぼ全ての前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素が、前記ペプチド又はタンパク質との複合体に変換される。予め複合体を形成しておき、その後、Ｎｅｘｔａ法類似反応を行わせることによって、反応サイクルが効率よく行われ、複合体へのフッ素含有アミノ酸の導入反応の時間を大幅に短縮（例えば、１分以下の時間）できる。前記フッ素含有アミノ酸が[18Ｆ] 含有アミノ酸の場合に大きな利点がある。
【００５８】
［５．フッ素を有するアミノ酸］
フッ素を有するアミノ酸は、アミノ酸の基本骨格（同一分子内にアミノ基とカルボキシル基とを有する構造）にフッ素が導入された分子である。例えば、基本骨格としての天然又は非天然アミノ酸に、フッ素置換によって、あるいはフッ素含有基による標識によってフッ素が導入された分子が挙げられる。フッ素の核種は問わないが、特に放射性同位体18Ｆは、ＰＥＴプローブへの用途において有用である点で好ましい。
【００５９】
フッ素を有するアミノ酸は、適宜、フッ素以外の標識や修飾をさらに有していることを許容する。標識の例としては、安定同位体標識や蛍光標識等が挙げられる。この場合、安定同位体による質量値や蛍光標識によるシグナルに基づいて測定や検出を行うことができる。修飾の例としては、酵素基質、抗原性物質による修飾等が挙げられる。この場合、酵素化学的手法又は酵素免疫科学的手法に基づいて検出や精製を行うことができる。
【００６０】
フッ素を有するアミノ酸の具体例としては、以下が挙げられる。
・２−アミノ−３−（２，３，４，５，６−ペンタフルオロフェニル）プロピオン酸
（すなわちペンタフルオロフェニルアラニン）
・２−アミノ−３−（４−フルオロメトキシフェニル）プロピオン酸
（すなわちフルオロメチルチロシン）
・２−アミノ−３−［４−（２−フルオロエトキシ）フェニル］プロピオン酸
（すなわちフルオロエチルチロシン）
【００６１】
この中でも、本発明においては、２−アミノ−３−（４−フルオロメトキシフェニル）プロピオン酸、及び２−アミノ−３−［４−（２−フルオロエトキシ）フェニル］プロピオン酸が好ましく、それらの放射性同位体標識体である２−アミノ−３−（４−[18Ｆ]フルオロメトキシフェニル）プロピオン酸、２−アミノ−３−［４−（２−[18Ｆ]フルオロエトキシ）フェニル］プロピオン酸がより好ましい。フッ素を有するアミノ酸は、後述のアミノアシルｔＲＮＡ合成酵素及びアミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素に応じて適宜選択される。
【００６２】
［６．フッ素を有するアミノ酸の導入］
前記ペプチド又はタンパク質（あるいは、任意に活性化されたペプチド又はタンパク質）と前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素との複合体に、フッ素を有するアミノ酸が導入される。この際、ｔＲＮＡ、及びアミノアシルｔＲＮＡ合成酵素（ａａＲＳ）を含む試薬溶液が用いられる。
【００６３】
ｔＲＮＡは、アミノアシルｔＲＮＡ合成酵素によるアミノアシル化でアミノアシルｔＲＮＡへ変換されることができ、且つアミノアシルｔＲＮＡのアミノアシル基がアミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素（本発明においては、前記複合体となっている）によりペプチド又はタンパク質に転移されることができるものであればよく、天然物及び非天然物を問わない。従って、ｔＲＮＡの構造としてクローバーリーフ二次構造を有しているか否かは限定されず、その大きさも限定されない。ｔＲＮＡは、公知の方法に従って当業者が適宜合成することにより、あるいは、市販のものを購入することにより用意することができる。具体的なｔＲＮＡの例としては、ｔＲＮＡPheやｔＲＮＡLeu等が挙げられる。
【００６４】
アミノアシルｔＲＮＡ合成酵素（ａａＲＳ）は、一般的にはリボソームでの遺伝暗号の翻訳における基質となるアミノアシルｔＲＮＡの合成を担う酵素である。ａａＲＳとしては、野生型及び変異型を問わない。ａａＲＳは、公知の方法（例えば遺伝子工学的手法）に従って当業者が適宜合成することにより、あるいは、市販のものを購入することにより用意することができる。
【００６５】
野生型ａａＲＳとしては、タンパク質を合成するのに使われる２０種のアミノ酸それぞれに対する基質特異性を有する２０種が存在し、例えば、リジンに対応するａａＲＳはリジルｔＲＮＡ合成酵素と呼ばれる。本発明においては、導入すべきフッ素含有アミノ酸におけるアミノ酸基本骨格に対応する（すなわちアミノ酸基本骨格に対し基質特異性を有する）ａａＲＳを用いることができる。
【００６６】
変異型ａａＲＳとしては、フッ素不含アミノ酸に対する基質特異性よりも、フッ素含有アミノ酸に対する基質特異性の方が高くなるような変異が生じているａａＲＳ変異体が用いられる。例えば、フェニルアラニンに対する基質特異性よりも、フルオロメチルチロシンやフルオロエチルチロシンに対する基質特異性の方が高い、大腸菌由来フェニルアラニルtRNA合成酵素変異体（Ala294→Gly）（Chembiochem, 2002, 02-03, 235-237）を用いることができる。
【００６７】
試薬溶液中には、フッ素含有アミノ酸の導入反応に好適な緩衝液、塩類、還元剤、ポリアミン、及びエネルギー源等を適宜含ませることができる。緩衝液としては、例えばＨｅｐｅｓ緩衝液、Ｔｒｉｓ−酢酸等が挙げられる。塩類としては、マグネシウム塩、カリウム塩等が挙げられる。還元剤としては、ＤＴＴ（ジチオトレイトール）等が挙げられる。ポリアミンとしては、スペルミジン等が挙げられる。エネルギー源としては、アデノシン三リン酸等が挙げられる。より具体的な例を挙げると、終濃度での組成が、１０ｍＭ  ＭｇＣｌ２、１ｍＭ  Ｓｐｅｒｍｉｄｉｎｅ、５０ｍＭ  Ｈｅｐｅｓ緩衝液（ｐＨ７．６）であるＡ液と、終濃度での組成が２．５ｍＭ  ＡＴＰ、２０ｍＭ  ＫＣｌ、２ｍＭ  ＤＴＴであるＢ液とを混合して用いることができる。
【００６８】
前記ペプチド又はタンパク質（あるいは、任意に活性化されたペプチド又はタンパク質）と前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素との複合体と、試薬溶液との混合液中における各成分の濃度は、任意に設定することができる。
例えば、混合液中における前記ペプチド又はタンパク質の複合体とｔＲＮＡとのモル比は、３０：１〜１：１、さらに好ましくは１０：１〜４：１である。本発明においては、ｔＲＮＡは系中で再利用されるため、使用量は少量でよい。混合液中における前記ペプチド又はタンパク質の複合体とアミノアシルｔＲＮＡ合成酵素とのモル比は、１００：１〜２：１、さらに好ましくは５０：１〜２０：１である。混合液中における前記ペプチド又はタンパク質の複合体とフッ素含有アミノ酸とのモル比は、１００：１〜１：１０００、より好ましくは２５：１〜１：４００、さらに好ましくは１：１〜１：１２０である。フッ素含有アミノ酸は、前記ペプチド又はタンパク質の複合体に比べて少量でも導入されることが可能である一方、前記ペプチド又はタンパク質の複合体に比べて過剰量であっても反応系を阻害することはないと考えられる。従って、放射性同位体フッ素含有アミノ酸のように貴重なフッ素含有アミノ酸を使用する場合は、前記ペプチド又はタンパク質の複合体に対してフッ素含有アミノ酸の使用量を少量に抑えることができ、反対に活性化ペプチド又はタンパク質の複合体の方がより貴重である場合は、フッ素含有アミノ酸に対して活性化ペプチド又はタンパク質の複合体の使用量を少量に抑えることができる。前記ペプチド又はタンパク質（任意に活性化されたペプチド又はタンパク質）と前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素との複合体が予め形成されているので、複合体に対してフッ素含有アミノ酸の導入反応は非常に早い。
【００６９】
温度およびｐＨなどの反応条件は、使用する酵素などに応じて任意の条件を選択できる。反応温度は、好ましくは０℃〜５０℃、さらに好ましくは４℃〜３７℃である。反応ｐＨは、好ましくは６〜９、さらに好ましくは７〜８である。反応時間は、１０分程度あれば十分であり、１分程度までで反応が完了する。前記フッ素含有アミノ酸が[18Ｆ] 含有アミノ酸の場合に大きな利点がある。
【００７０】
フッ素を有するアミノ酸の導入においては、前記ペプチド又はタンパク質（あるいは、任意に活性化されたペプチド又はタンパク質）と前記アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素との複合体と、導入すべきフッ素含有アミノ酸、ｔＲＮＡ、及びアミノアシルｔＲＮＡ合成酵素を含む試薬溶液とが混合された反応液を調製する。各成分は一度に混合されてもよいし、任意の順番で混合されてもよい。また、フッ素含有アミノ酸は１種又は複数種を用いることができる。
【００７１】
反応液がインキュベーション（例えば３７℃、６０分間）に供されることよりフッ素含有アミノ酸導入反応が進行する。前記フッ素含有アミノ酸が[18Ｆ] 含有アミノ酸の場合には、インキュベーションは短い時間、例えば１０分程度以下、好ましくは５分程度、より好ましくは１分程度までの時間とすべきである。
【００７２】
反応の停止は、例えばＴＦＡ（トリフルオロ酢酸）水溶液を混合することにより行うことができる。
【００７３】
反応停止後は、濃縮脱塩処理によりフッ素含有アミノ酸が導入されたペプチド又はタンパク質を目的物として回収する。例えばＺｉｐＴｉｐ処理により濃縮脱塩処理することにより、精製された目的物を精製することができる。
【００７４】
［７．ペプチド又はタンパク質のフッ素導入キット］
本発明において、上述のペプチド又はタンパク質にフッ素を導入する方法に使用することができるキットが提供される。アイテムとして、少なくとも、ｔＲＮＡ、アミノアシルｔＲＮＡ合成酵素、及びアミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素を含む。各アイテムは、それぞれ別々の容器中に存在する状態で提供されてもよいし、例えば、ｔＲＮＡ、及びアミノアシルｔＲＮＡ合成酵素が１個の容器中に共存する状態で提供されてもよい。アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素はそれ単独で容器に存在する。好ましくは、フッ素含有アミノ酸（例えば、フェニルアラニン及びその誘導体）が１種又は複数種含まれる。また、上述の緩衝液、塩類、還元剤、ポリアミン、及びエネルギー源等が含まれていてもよい。
【実施例】
【００７５】
以下に実施例を示し、本発明を具体的に説明するが、本発明は下記の実施例に制限されるものではない。【００７６】
［実施例１］
フッ素含有アミノ酸を導入すべきペプチドとして、Lys-Bradykinin を用いた。
フッ素含有アミノ酸として、コールド体の２−アミノ−３−［４−（２−フルオロエトキシ）フェニル］プロピオン酸（フルオロエチルチロシン：ＦＥＴ）を用いた。
アミノアシルｔＲＮＡタンパク質転移酵素として、ロイシル／フェニルアラニルｔＲＮＡタンパク質転移酵素（Ｌ／Ｆ−Ｔ）を用いた。【００７７】
アミノ酸導入工程における終濃度での組成が、
ＭｇＣｌ２ １０ｍＭ
Ｓｐｅｒｍｉｄｉｎｅ １ｍＭ
Ｈｅｐｅｓ緩衝液（ｐＨ  ７．６） ５０ｍＭ
Ｌ／Ｆ−Ｔ ２μＭ ea
Lys-Bradykinin  ０．１７ｍＭ ea
となるようにして、３７℃、５分間インキュベートして、全てのＬ／Ｆ−Ｔ分子を、Ｌ／Ｆ−Ｔ／Lys-Bradykinin複合体とした（複合体溶液Ａ）。【００７８】
別途、アミノ酸導入工程における終濃度での組成が、
ＭｇＣｌ２ １０ｍＭ
Ｓｐｅｒｍｉｄｉｎｅ １ｍＭ
Ｈｅｐｅｓ緩衝液（ｐＨ  ７．６） ５０ｍＭ
ｔＲＮＡ ６μＭ
ＦＥＴ  ２μＭ
ＡＲＳ  ２μＭ
となるようにして、３７℃、１０分間インキュベートして、アミノアシルｔＲＮＡを形成した（試薬溶液Ｂ）。【００７９】
Ｌ／Ｆ−Ｔ：ＡＲＳ：ＦＥＴのモル比は、１：１：１とした。【００８０】
複合体溶液Ａに、試薬溶液Ｂを加え、３７℃、１０分間インキュベートして、Lys-BradykininにＦＥＴを導入した。【００８１】
反応初期（０分、複合体溶液Ａと試薬溶液Ｂの混合時）、反応１分、反応１０分の各時点で、蛍光検出ＨＰＬＣ（日本分光社製、ＰＵ２０８５）により、反応効率を算出した。【００８２】
・蛍光検出条件：ｅｘ．２７４ｎｍ  ｅｍ．３００ｎｍ
（時間経過に伴うＦＥＴの減少量を蛍光検出することで、反応効率を算出した）
・展開条件：０．１％  ＴＦＡ（０−２ｍｉｎ）
０．１％  ＴＦＡ−ＡＮ（０−１００％；２−１２ｍｉｎ）【００８３】
初期０分、インキュベート１分、インキュベート１０分の各時点での蛍光検出ＨＰＬＣの測定結果を図１に示す。横軸：保持時間(Retention Time [min])，縦軸：強度 (Intensity)。【００８４】
図１から、インキュベート１分でＦＥＴ由来のピークは消失し、Lys-Bradykininと結合したＦＥＴのピークが検出された。さらに、インキュベート１０分においても反応効率に変化は見られなかった。このことから、Lys-BradykininへのＦＥＴ導入の反応時間は１分以下であると推測される。
【図１】
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【国際調査報告】
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