(57)【要約】  本発明は、葉酸代謝拮抗剤を用いて、葉酸受容体α（ｆｏｌａｔｅ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  α、以下ＦＯＬＲ１と略記する）の発現を増加させることで、ヒトＦＯＬＲ１標的薬によるがんの治療方法、葉酸代謝拮抗剤を用いてＦＯＬＲ１の発現を増加させるための、ヒトＦＯＬＲ１標的薬を含むがんの医薬、及び葉酸代謝拮抗剤を用いてがん細胞のＦＯＬＲ１の発現を増加させることで、ヒトＦＯＬＲ１標的薬の治療効果を増強する方法を提供するものである。例えば、ＦＯＬＲ１の発現量が低く、ヒトＦＯＬＲ１標的薬の抗腫瘍活性が十分に発揮されないがん患者や、ＦＯＬＲ１を発現しているがんの治療を更に増強したいがん患者に対し、葉酸代謝拮抗剤とヒトＦＯＬＲ１標的薬とを併用することで、より有効な治療方法を提供するものである。【特許請求の範囲】
【請求項１】
葉酸代謝拮抗剤を用いて葉酸受容体α（ｆｏｌａｔｅ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  α、以下ＦＯＬＲ１と略記する）の発現を増加させ、ヒトＦＯＬＲ１標的薬を用いてがんを治療する方法。
【請求項２】
葉酸代謝拮抗剤が同時又は逐次に投与される、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
がんが、ＦＯＬＲ１を発現しているがんである請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
ヒトＦＯＬＲ１標的薬が、ＦＯＬＲ１阻害剤、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体及び抗ヒトＦＯＬＲ１抗体断片から選ばれるいずれか一つである請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項５】
ＦＯＬＲ１阻害剤が、葉酸誘導体である請求項４に記載の方法。
【請求項６】
抗ヒトＦＯＬＲ１抗体及び抗体断片が、配列番号１に記載のアミノ酸配列における５５番目〜６２番目のアミノ酸配列に含まれるエピトープに結合する抗体及び該抗体断片である請求項４に記載の方法。
【請求項７】
葉酸代謝拮抗剤を用いてがん細胞におけるＦＯＬＲ１の発現を増加させ、ヒトＦＯＬＲ１標的薬の治療効果を増強させる方法。
【請求項８】
葉酸代謝拮抗剤が同時又は逐次に投与される、請求項７に記載の方法。
【請求項９】
がんが、ＦＯＬＲ１を発現しているがんである請求項７または８に記載の方法。
【請求項１０】
ヒトＦＯＬＲ１標的薬が、ＦＯＬＲ１阻害剤、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体及び抗ヒトＦＯＬＲ１抗体断片から選ばれるいずれか一つである請求項７〜９のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１１】
ＦＯＬＲ１阻害剤が、葉酸誘導体である請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
抗ヒトＦＯＬＲ１抗体及び抗体断片が、配列番号１に記載のアミノ酸配列における５５番目〜６２番目のアミノ酸配列に含まれるエピトープに結合する抗体及び該抗体断片である請求項１０に記載の方法。
【請求項１３】
葉酸代謝拮抗剤を投与してがん細胞におけるＦＯＬＲ１の発現を増加させるための、ヒトＦＯＬＲ１標的薬を含むがんの医薬。
【請求項１４】
葉酸代謝拮抗剤が同時又は逐次に投与される、請求項１３に記載の医薬。
【請求項１５】
がんが、ＦＯＬＲ１を発現しているがんである請求項１３または１４に記載の医薬。
【請求項１６】
ヒトＦＯＬＲ１標的薬が、ＦＯＬＲ１阻害剤、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体及び抗ヒトＦＯＬＲ１抗体断片から選ばれるいずれか一つである請求項１３〜１５のいずれか１項に記載の医薬。
【請求項１７】
ＦＯＬＲ１阻害剤が、葉酸誘導体である請求項１６に記載の医薬。
【請求項１８】
抗ヒトＦＯＬＲ１抗体及び抗体断片が、配列番号１に記載のアミノ酸配列における５５番目〜６２番目のアミノ酸配列に含まれるエピトープに結合する抗体及び該抗体断片である請求項１６に記載の医薬。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、葉酸代謝拮抗剤により、葉酸受容体α（以下、ＦＯＬＲ１と記す）の発現を増加させることを特徴とする、ＦＯＬＲ１に結合し抗腫瘍活性を有するヒトＦＯＬＲ１標的薬を用いたがんの治療方法に関する。また、本発明は、葉酸代謝拮抗剤を同時又は逐次投与することでＦＯＬＲ１の発現を増加させることを特徴とする、ヒトＦＯＬＲ１標的薬の治療効果を増強させる方法に関する。さらに、本発明は、葉酸代謝拮抗剤により、ＦＯＬＲ１の発現を増加させることを特徴とする、ヒトＦＯＬＲ１標的薬を含むがんの医薬、及び、葉酸代謝拮抗剤を同時又は逐次投与することでＦＯＬＲ１の発現を増加させるための、ヒトＦＯＬＲ１標的薬を含むがんの医薬に関する。
【背景技術】
【０００２】
ＦＯＬＲ１は、葉酸に高親和性を有するＧＰＩアンカー型の膜タンパク質であり、細胞の増殖や生存に重要な機能を有する（非特許文献１）。正常組織においてＦＯＬＲ１は、腎臓、肺、腸など、限局して発現している（非特許文献２）。また、その発現部位は、管腔側とされている。【０００３】
一方、がん組織におけるＦＯＬＲ１発現は管腔側に限局せず、卵巣癌（非特許文献２、非特許文献３、非特許文献４）、腎臓癌（非特許文献２）、肺癌（非特許文献２、非特許文献３）、乳癌（非特許文献２）、中皮腫（非特許文献４）など多くの癌種で高発現している。特に卵巣癌では、ＦＯＬＲ１発現量は、悪性度、進行、予後に影響することが報告されている（非特許文献５、非特許文献６）。さらに、卵巣癌患者の血清中に含まれる可溶型ＦＯＬＲ１は、健常人に比べて有意に増加していることも知られている（非特許文献７）。【０００４】
ヒトＦＯＬＲ１標的薬としては、例えば、ＬＫ２６（特許文献１、特許文献２）をヒト化した抗体、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体ＭＯＲＡｂ−００３（ｆａｒｌｅｔｕｚｕｍａｂ）、葉酸−毒素コンジュゲートＥＣ−１４５などが挙げられる。これらは非小細胞肺癌（ｎｏｎ−ｓｍａｌｌ  ｃｅｌｌ  ｌｕｎｇ  ｃａｎｃｅｒ；ＮＳＣＬＣ）、卵巣癌等で開発が進められている。一方、ペメトレキセド（ｐｅｍｅｔｒｅｘｅｄ）は、中皮腫、ＮＳＣＬＣの治療薬として使われている。また、卵巣癌を適応とし、開発が進められている。【０００５】
ヒトＦＯＬＲ１標的薬のうち、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体ＭＯＲＡｂ−００３は、プラチナ感受性再発卵巣癌では一部の患者に薬効を示したとされる（非特許文献８）が、プラチナ耐性卵巣癌やＮＳＣＬＣでは有意な薬効が見られなかったため治験が中止されたと報告されている（非特許文献９、非特許文献１０）。葉酸−毒素コンジュゲートＥＣ−１４５は、ＦＯＬＲ１の発現量が十分に高く葉酸取り込み活性が顕著な患者に限定した場合に、卵巣癌ではドキシル(R)（リポソーム化ドキソルビシン）、ＮＳＣＬＣではドセタキセルとの併用で、それぞれ効果を示したと報告されている（非特許文献１１、非特許文献１２）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】欧州特許出願公開第０１９７４３５号明細書
【特許文献２】米国特許第５９５２４８４号明細書
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】Ｉｎｔ  Ｊ  Ｃａｎｃｅｒ，２００６．１１９（２）：ｐ．２４３−５０．
【非特許文献２】Ａｎａｌ  Ｂｉｏｃｈｅｍ，２００５．  ３３８（２）：ｐ．２８４−９３．
【非特許文献３】Ｊ  Ｔｈｏｒａｃ  Ｏｎｃｏｌ，２０１２．７（５）：ｐ．８３３−８４０．
【非特許文献４】Ｊ  Ｔｈｏｒａｃ  Ｃａｒｄｉｏｖａｓｃ  Ｓｕｒｇ，２００１．１２１（２）：ｐ．２２５−３３．
【非特許文献５】Ｉｎｔ  Ｊ  Ｃａｎｃｅｒ，１９９７．７４（２）：ｐ．１９３−８．
【非特許文献６】Ｉｎｔ  Ｊ  Ｃａｎｃｅｒ，１９９８．７９（２）：ｐ．１２１−６．
【非特許文献７】ＰＬｏＳ  Ｏｎｅ，２００９．４（７）：ｐ．ｅ６２９２．
【非特許文献８】Ｎｅｗｓ  Ｒｅｌｅａｓｅ，Ｎｏ．１３−０５，Ｊａｎ  １１，２０１３，Ｅｉｓａｉ  Ｃｏ．，Ｌｔｄ．（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｅｉｓａｉ．ｃｏｍ／ｎｅｗｓ／ｎｅｗｓ２０１３０５．ｈｔｍｌ）
【非特許文献９】Ｎｅｗｓ  Ｒｅｌｅａｓｅ，Ｄｅｃｅｍｂｅｒ  ２，２０１１，Ｍｏｒｐｈｏｔｅｋ  Ｉｎｃ．（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｍｏｒｐｈｏｔｅｋ．ｃｏｍ／ｎｅｗｓ−ｅｖｅｎｔｓ／Ｎｅｗｓ−Ａｒｃｈｉｖｅ／２０１１−Ｎｅｗｓ／Ｍｏｒｐｈｏｔｅｋ−Ｔｅｒｍｉｎａｔｅｓ−Ｆａｒｌｅｔｕｚｕｍａｂ−Ｓｔｕｄｙ−（ＦＡＲ−１２２）−．ａｓｐｘ）
【非特許文献１０】Ｍａｌｔｚｍａｎ，Ｊ．Ｄ．ｅｔ  ａｌ．１５ｔｈ  Ｗｏｒｌｄ  Ｃｏｎｆ  Ｌｕｎｇ  Ｃａｎｃｅｒ（Ｏｃｔ  ２７−３０，Ｓｙｄｎｅｙ）２０１３，Ａｂｓｔ  Ｐ１．１１−０１９
【非特許文献１１】Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｏｎｃｏｌ  ３１：４４００−４４０６（２０１３）
【非特許文献１２】ＰＲＥＳＳ  ＲＥＬＥＡＳＥＳ，Ｍａｒ  ２１，２０１４，Ｅｎｄｏｃｙｔｅ，Ｉｎｃ．（ｈｔｔｐ：／／ｉｎｖｅｓｔｏｒ．ｅｎｄｏｃｙｔｅ．ｃｏｍ／ｒｅｌｅａｓｅｄｅｔａｉｌ．ｃｆｍ？ＲｅｌｅａｓｅＩＤ＝８３４４４４）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
固形癌に対する治療法と予後の改善は日進月歩している。しかしながら卵巣癌に関しては、１９８０年代にプラチナ製剤による治療法が登場して以降、顕著に予後が改善されたとは言えず［Ｎａｔ  Ｒｅｖ  Ｃａｎｃｅｒ，２０１１．１１（１０）：ｐ．７１９−２５．］、依然として、婦人科癌による死亡の主要な原因である。この理由は、卵巣癌に、プラチナ製剤に対する耐性が生じ、再発した結果、治療が困難になることにあると考えられている。即ち、プラチナ製剤などの化学療法による奏効から再発までの期間を延長すること、卵巣癌のプラチナ製剤に対する耐性化を阻止すること、プラチナ製剤に対して耐性化した卵巣癌への治療法を確立すること、が卵巣癌治療の課題となっている。【０００９】
卵巣癌の治療薬としてヒトＦＯＬＲ１標的薬の使用が試みられているが、抗腫瘍薬としてヒトＦＯＬＲ１標的薬の薬効が発揮されるためには、がん細胞にＦＯＬＲ１が十分発現していることが重要であると考えられる。即ち、がん細胞におけるＦＯＬＲ１の発現を増加させ、ヒトＦＯＬＲ１標的薬の抗腫瘍効果をより向上させる方法が求められている。【００１０】
本発明は、葉酸代謝拮抗剤により、がん細胞におけるＦＯＬＲ１の発現を増加させることで、ヒトＦＯＬＲ１標的薬の抗腫瘍効果を向上させる方法を提供するものである。例えば、ＦＯＬＲ１の発現量が低く、ヒトＦＯＬＲ１標的薬の抗腫瘍活性が十分に発揮されないがんに対して、葉酸代謝拮抗剤を同時又は逐次に投与してＦＯＬＲ１の発現を増加させ、ヒトＦＯＬＲ１標的薬のより高い治療効果をもたらすことができる。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
本発明は、（１）〜（１８）に関する。
（１）葉酸代謝拮抗剤を用いて葉酸受容体α（ｆｏｌａｔｅ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  α、以下ＦＯＬＲ１と略記する）の発現を増加させ、ヒトＦＯＬＲ１標的薬を用いてがんを治療する方法。
（２）葉酸代謝拮抗剤が同時又は逐次に投与される、（１）に記載の方法。
（３）がんが、ＦＯＬＲ１を発現しているがんである（１）または（２）に記載の方法。
（４）ヒトＦＯＬＲ１標的薬が、ＦＯＬＲ１阻害剤、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体及び抗ヒトＦＯＬＲ１抗体断片から選ばれるいずれか一つである（１）〜（３）のいずれか１に記載の方法。
（５）ＦＯＬＲ１阻害剤が、葉酸誘導体である（４）に記載の方法。
（６）抗ヒトＦＯＬＲ１抗体及び抗体断片が、配列番号１に記載のアミノ酸配列における５５番目〜６２番目のアミノ酸配列に含まれるエピトープに結合する抗体及び該抗体断片である（４）に記載の方法。
（７）葉酸代謝拮抗剤を用いてがん細胞におけるＦＯＬＲ１の発現を増加させ、ヒトＦＯＬＲ１標的薬の治療効果を増強させる方法。
（８）葉酸代謝拮抗剤が同時又は逐次に投与される、（７）に記載の方法。
（９）がんが、ＦＯＬＲ１を発現しているがんである（７）または（８）に記載の方法。
（１０）ヒトＦＯＬＲ１標的薬が、ＦＯＬＲ１阻害剤、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体及び抗ヒトＦＯＬＲ１抗体断片から選ばれるいずれか一つである（７）〜（９）のいずれか１に記載の方法。
（１１）ＦＯＬＲ１阻害剤が、葉酸誘導体である（１０）に記載の方法。
（１２）抗ヒトＦＯＬＲ１抗体及び抗体断片が、配列番号１に記載のアミノ酸配列における５５番目〜６２番目のアミノ酸配列に含まれるエピトープに結合する抗体及び該抗体断片である（１０）に記載の方法。
（１３）葉酸代謝拮抗剤を投与してがん細胞におけるＦＯＬＲ１の発現を増加させるための、ヒトＦＯＬＲ１標的薬を含むがんの医薬。
（１４）葉酸代謝拮抗剤が同時又は逐次に投与される、（１３）に記載の医薬。
（１５）がんが、ＦＯＬＲ１を発現しているがんである（１３）または（１４）に記載の医薬。
（１６）ヒトＦＯＬＲ１標的薬が、ＦＯＬＲ１阻害剤、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体及び抗ヒトＦＯＬＲ１抗体断片から選ばれるいずれか一つである（１３）〜（１５）のいずれか１に記載の医薬。
（１７）ＦＯＬＲ１阻害剤が、葉酸誘導体である（１６）に記載の医薬。
（１８）抗ヒトＦＯＬＲ１抗体及び抗体断片が、配列番号１に記載のアミノ酸配列における５５番目〜６２番目のアミノ酸配列に含まれるエピトープに結合する抗体及び該抗体断片である（１６）に記載の医薬。
【図面の簡単な説明】
【００１２】
【図１】図１（Ａ）〜図１（Ｄ）は、ＮＳＣＬＣ細胞株［ＮＣＩ−Ｈ１４３７〔図１（Ａ）〕、ＮＣＩ−Ｈ２２２８〔図１（Ｂ）〕、ＮＣＩ−Ｈ５２２〔図１（Ｃ）〕、及びＮＣＩ−Ｈ８３８〔図１（Ｄ）〕］におけるペメトレキセド添加培養後のＦＯＬＲ１発現量を示す。縦軸は、低葉酸培地（０ｎｍｏｌ／Ｌ  ペメトレキセド）で培養した条件を１００としたＦＯＬＲ１発現量相対値を示す。横軸は、低葉酸培地のペメトレキセド濃度（１０、１０００ｎｍｏｌ／Ｌ）を示す。
【図２】図２（Ａ）〜図２（Ｄ）は、卵巣癌細胞株［ＩＧＲ−ＯＶ１〔図２（Ａ）〕、ＳＫＯＶ−３〔図２（Ｂ）〕、ＯＶＣＡＲ−３〔図２（Ｃ）〕、及びＭＣＡＳ〔図２（Ｄ）〕］におけるペメトレキセド添加培養後のＦＯＬＲ１発現量を示す。縦軸は、培養培地（ＮＣ）で培養した条件を１００としたＦＯＬＲ１発現量相対値を示す。横軸は、培養条件を示し、培養培地（ＮＣ）、又は低葉酸培地のペメトレキセド濃度（０、１０、１０００ｎｍｏｌ／Ｌ）を示す。
【図３】図３（Ａ）および図３（Ｂ）は、それぞれ健常人ドナー１〔図３（Ａ）〕及びドナー２〔図３（Ｂ）〕由来のＰＢＭＣを用いた、ＭＣＡＳに対するＡＤＣＣ活性を示す。黒丸、白丸、黒三角、及び白三角は、それぞれ、２０ｎｍｏｌ／Ｌ  ペメトレキセド存在下で培養したＭＣＡＳに対するＨｕＲＡ１５−７ＣＴＡｃｃ抗体のＡＤＣＣ活性、ペメトレキセド非存在下で培養したＭＣＡＳに対するＨｕＲＡ１５−７ＣＴＡｃｃ抗体のＡＤＣＣ活性、２０ｎｍｏｌ／Ｌ  ペメトレキセド存在下で培養したＭＣＡＳに対するＭＯＲＡｂ−００３抗体のＡＤＣＣ活性、及びペメトレキセド非存在下で培養したＭＣＡＳに対するＭＯＲＡｂ−００３抗体のＡＤＣＣ活性を示す。縦軸はＡＤＣＣ活性（％）、横軸は抗体濃度（ｎｇ／ｍＬ）を示す。アスタリスク（＊）は白丸に対する黒丸が、また、アスタリスク２つ（＊＊）は白三角に対する黒三角が、それぞれの抗体濃度に置いて有意な値（Ｐ＜０．０５）であることを示す。有意差検定は、１−ｗａｙ  ＡＮＯＶＡ−Ｄｕｎｎｅｔｔ  ｔｅｓｔを用いた。
【図４】図４（Ａ）〜図４（Ｄ）は、ＳＣＩＤマウス卵巣癌細胞株ＭＣＡＳ皮下移植モデルに対するペメトレキセドと抗ヒトＦＯＬＲ１抗体との併用試験結果を示す。図４（Ａ）〜図４（Ｄ）の縦軸は、それぞれ腫瘍体積（ｍｍ３）、Ｖ／Ｖ０、Ｔ／Ｃ、体重（ｇ）を示す。図４（Ａ）〜図４（Ｄ）の横軸は、試験開始日からの経過日数を示す。白丸、黒丸、白三角、黒菱形、及び白四角は、それぞれ、溶媒投与群、ＨｕＲＡ１５−７ＣＴＡｃｃ抗体単独投与群、ペメトレキセド単独投与群、同時併用群、及びｓｅｑｕｅｎｔｉａｌ併用群を示す。
【図５】図５（Ａ）〜図５（Ｃ）は、子宮体癌細胞株［ＭＥＳ−ＳＡ〔図５（Ａ）〕、ＨＥＣ−１−Ａ〔図５（Ｂ）〕、及びＨＥＣ−１−Ｂ〔図５（Ｃ）〕］におけるペメトレキセド添加培養後のＦＯＬＲ１発現量を示す。縦軸は、培養培地（ＮＣ）で培養した条件を１００としたＦＯＬＲ１発現量相対値を示す。横軸は、培養条件を示し、培養培地（ＮＣ）、又は低葉酸培地のペメトレキセド濃度（０、１０、１０００ｎｍｏｌ／Ｌ）を示す。
【図６】図６（Ａ）および図６（Ｂ）は、健常人ドナー由来のＰＢＭＣを用いた、ＮＳＣＬＣ細胞株ＮＣＩ−Ｈ２２２８に対するＨｕＲＡ１５−７ＣＴＡｃｃ抗体〔図６（Ａ）〕及びＭＯＲＡｂ−００３〔図６（Ｂ）〕抗体のＡＤＣＣ活性を示す。白三角・破線、白丸・実線、及び黒丸・実線は、それぞれ、０、２０、及び１０００  ｎｍｏｌ／Ｌ  ペメトレキセド存在下で培養したＮＣＩ−Ｈ２２２８に対するＡＤＣＣ活性を示す。縦軸はＡＤＣＣ活性（％）、横軸は抗体濃度（ｎｇ／ｍＬ）を示す。アスタリスク（＊）は白三角・破線に対する黒丸・実線が、それぞれの抗体濃度に置いて有意な値（Ｐ＜０．０５）であることを示す。有意差検定は、１−ｗａｙ  ＡＮＯＶＡ−Ｄｕｎｎｅｔｔ  ｔｅｓｔを用いた。
【発明を実施するための形態】
【００１３】
本発明の治療方法としては、葉酸代謝拮抗剤を用いて、ＦＯＬＲ１の発現を増加させ、ヒトＦＯＬＲ１標的薬を用いるがんの治療方法、葉酸代謝拮抗剤とヒトＦＯＬＲ１標的薬とを同時又は逐次に投与することで、ＦＯＬＲ１の発現を増加させることを特徴とするがんの治療方法などが挙げられる。
【００１４】
本発明の治療効果を増強させる方法としては、葉酸代謝拮抗剤を用いて、がん細胞におけるＦＯＬＲ１の発現を増加させることで、ヒトＦＯＬＲ１標的薬の治療効果を増強させる方法、葉酸代謝拮抗剤とヒトＦＯＬＲ１標的薬とを同時又は逐次に投与することで、がん細胞におけるＦＯＬＲ１の発現を増加させることを特徴とする、ヒトＦＯＬＲ１標的薬の治療効果を増強する方法などが挙げられる。
【００１５】
また、本発明の医薬としては、葉酸代謝拮抗剤を用いて、ＦＯＬＲ１の発現を増加させるための、ヒトＦＯＬＲ１標的薬を含むがんの医薬、葉酸代謝拮抗剤とヒトＦＯＬＲ１標的薬とを同時又は逐次に投与することで、ＦＯＬＲ１の発現を増加させるための、ヒトＦＯＬＲ１標的薬を含むがんの医薬などが挙げられる。
【００１６】
本発明において、葉酸代謝拮抗剤に曝露されたがん細胞は、葉酸代謝機能が低下するために葉酸要求性が増加する。同様に、葉酸の濃度が低下、もしくは枯渇した環境にあるがん細胞は、細胞内葉酸濃度を維持するために、葉酸要求性が増加する。従って、葉酸代謝拮抗剤や、低濃度葉酸もしくは葉酸枯渇環境に曝露されたがん細胞では、葉酸取り込みを増加しようとする代償性の反応により、ＦＯＬＲ１のｍＲＮＡ転写、及び、タンパク質翻訳量増加に伴うＦＯＬＲ１発現の増加、もしくは、細胞内動態変化による細胞膜上のＦＯＬＲ１発現量の増加が誘導される。その結果、ヒトＦＯＬＲ１標的薬は、がん細胞膜上に発現が増加したＦＯＬＲ１に結合して、葉酸代謝拮抗剤の曝露前と比べて高い治療効果を発揮することができる。
【００１７】
葉酸受容体（ＦＲ）は、ｇｌｙｃｏｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌ  ｉｎｏｓｉｔｏｌ（ＧＰＩ）アンカー型の膜結合型糖タンパク質であり、ＦＯＬＲ１、ＦＯＬＲ２、ＦＯＬＲ３及びＦＯＬＲ４（ＦＲα、ＦＲβ、ＦＲγ及びＦＲδともいう）からなるファミリーを形成しており、酸化型葉酸の細胞内取り込みに関与している。同様に葉酸受容体として、還元型葉酸の取り込みに関与しているｒｅｄｕｃｅｄ  ｆｏｌａｔｅ  ｃａｒｒｉｅｒ（ＲＦＣ）と比べて高いアフィニティーで葉酸に結合することが知られている。
【００１８】
本発明におけるヒトＦＯＬＲ１としては、配列番号１又はＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＮＰ＿０５７９３７．１で示されるアミノ酸配列を含み、かつヒトＦＯＬＲ１の機能を有するポリペプチド、配列番号１又はＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＮＰ＿０５７９３７．１で示されるアミノ酸配列において、１以上のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列を含み、かつヒトＦＯＬＲ１の機能を有するポリペプチド、及び配列番号１又はＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＮＰ＿０５７９３７．１で示されるアミノ酸配列と６０％以上、好ましくは８０％以上、さらに好ましくは９０％以上の相同性を有するアミノ酸配列を有するポリペプチド、最も好ましくは９５％以上の相同性を有するアミノ酸配列を含み、かつヒトＦＯＬＲ１の機能を有するポリペプチド、配列番号１又はＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＮＰ＿０５７９３７．１で示されるアミノ酸配列の部分配列からなるアミノ酸配列を含み、かつヒトＦＯＬＲ１の機能を有するポリペプチドなどが挙げられる。
【００１９】
ヒトＦＯＬＲ１をコードする遺伝子としては、配列番号１２又はＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＮＭ＿０１６７２５で示される塩基配列が挙げられる。配列番号１２又はＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＮＭ＿０１６７２５で示される塩基配列において、１以上の塩基が欠失、置換又は付加された塩基配列からなり、かつヒトＦＯＬＲ１の機能を有するポリペプチドをコードするＤＮＡを含む遺伝子、配列番号１２又はＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＮＭ＿０１６７２５で示される塩基配列と少なくとも６０％以上の相同性を有する塩基配列、好ましくは８０％以上の相同性を有する塩基配列、さらに好ましくは９５％以上の相同性を有する塩基配列からなり、かつヒトＦＯＬＲ１の機能を有するポリペプチドをコードするＤＮＡを含む遺伝子、ならびに配列番号１２又はＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号ＮＭ＿０１６７２５で示される塩基配列を有するＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズするＤＮＡからなり、かつヒトＦＯＬＲ１の機能を有するポリペプチドをコードするＤＮＡを含む遺伝子なども本発明のヒトＦＯＬＲ１をコードする遺伝子に包含される。
【００２０】
本発明においてヒトＦＯＬＲ１の機能としては、リガンド（例えば、葉酸）との結合により、エンドサイトーシスを引き起こし、細胞内に葉酸を取り込む機能が挙げられる。
【００２１】
本発明において、ＦＯＬＲ１の発現が増加するとは、ＦＯＬＲ１の発現量が低い又は実質的に発現していないがん細胞において、葉酸代謝拮抗剤に曝露されることによってＦＯＬＲ１の発現量が増加すること、元々ＦＯＬＲ１を発現しているがん細胞において、葉酸代謝拮抗剤に曝露されることによって更にＦＯＬＲ１の発現量が増加すること、及び前記ＦＯＬＲ１発現細胞において、葉酸代謝拮抗剤に曝露されることによってＦＯＬＲ１の発現量が増加し、葉酸輸送機能が促進されることなどを意味する。
【００２２】
このようなＦＯＬＲ１の発現の増加は、ＦＯＬＲ１タンパク質をコードする遺伝子の発現の増加による場合や、ＦＯＬＲ１タンパク質の発現の増加によりＦＯＬＲ１タンパク質の細胞膜上の発現が増加する場合や、付加、欠失、置換などに伴う高機能性ＦＯＬＲ１タンパク質の発現の増加によりＦＯＬＲ１機能が促進する場合に引き起こされる。
【００２３】
本発明において、ＦＯＬＲ１の発現、及び発現の増加は、例えば、病変組織、又は、がん組織から分離、摘出した細胞に、標識化した葉酸、又は、抗ＦＯＬＲ１抗体を反応させ、フローサイトメーター（ＦＣＭ）等で測定することにより確認することができる。
【００２４】
また、免疫組織染色法（ＩＨＣ）等によって、組織におけるＦＯＬＲ１の発現、及び発現の増加を確認することができる。また、ラジオアイソトープがコンジュゲートされた葉酸などを患者体内へ投与して、葉酸の組織への取り込みを確認することで、組織におけるＦＯＬＲ１の発現、発現の増加、及びＦＯＬＲ１機能の促進を確認することができる。
【００２５】
本発明において用いられる葉酸代謝拮抗剤は、ｒｅｄｕｃｅｄ  ｆｏｌａｔｅ  ｃａｒｒｉｅｒ（ＲＦＣ）、葉酸受容体ファミリー（ＦＯＬＲ１、ＦＯＬＲ２、ＦＯＬＲ３、及びＦＯＬＲ４）、及びｐｒｏｔｏｎ−ｃｏｕｐｌｅｄ  ｆｏｌａｔｅ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔｅｒ（ＰＣＦＴ）などを介して細胞内に取り込まれる。
【００２６】
細胞内では、ｄｉｈｙｄｒｏｆｏｌａｔｅ  ｒｅｄｕｃｔａｓｅ（ＤＨＦＲ）、ｔｈｙｍｉｄｙｌａｔｅ  ｓｙｎｔｈａｓｅ（ＴＳ）、及びｇｌｙｃｉｎｅａｍｉｄｅ  ｒｉｂｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  ｔｒａｎｓｆｏｒｍｙｌａｓｅ（ＧＡＲＴＦ）などを阻害することで細胞の葉酸代謝系を阻害し、細胞増殖抑制活性、細胞傷害活性、アポトーシス活性及び／又は抗腫瘍活性を発揮する（Ｃａｎｃｅｒ  Ｍｅｔａｓｔａｓｉｓ  Ｒｅｖ（２００７）２６：１５３−１８１）。従って、本発明の治療方法及び医薬に用いられる葉酸代謝拮抗剤としては、前記葉酸代謝メカニズムに作用するものであればいずれの薬剤であってもよく、限定されない。
【００２７】
本発明において用いられる葉酸代謝拮抗剤として具体的には、例えば、ＣＡＳ  Ｎｏ．  ３５７１６６−２９−１で示される化合物であるペメトレキセド（Ｐｅｍｅｔｒｅｘｅｄ）［Ｄｒｕｇ  Ｍｅｔａｂ  Ｄｉｓｐｏｓ．１９９７  Ｊｕｎ；２５（６）：６９３−７００．］、メトトレキサート（Ｍｅｔｈｏｔｒｅｘａｔｅ）、ラルチトレキセド（Ｒａｌｔｉｒｅｘｅｄ）、エダトレキサート（Ｅｄａｔｏｒｅｘａｔｅ）、トリメトレキサート（Ｔｒｉｍｅｔｒｅｘａｔｅ）、プララトレキサート（Ｐｒａｌａｔｒｅｘａｔｅ）、アミノプテリン（Ａｍｉｎｏｐｔｅｒｉｎ）、ロメトレキソール（Ｌｏｍｅｔｒｅｘｏｌ）、ノラトレキセド（Ｎｏｌａｔｒｅｘｅｄ）及びＰＴ５２３などが挙げられる。
【００２８】
本発明において用いられるヒトＦＯＬＲ１標的薬としては、ヒトＦＯＬＲ１に結合し、かつ細胞増殖抑制活性、細胞傷害活性、アポトーシス活性及び／又は抗腫瘍活性などを有する薬剤であればよく、低分子、高分子いずれであってもよい。
【００２９】
本発明においてヒトＦＯＬＲ１標的薬がヒトＦＯＬＲ１に結合するとは、ヒトＦＯＬＲ１標的薬が、ヒトＦＯＬＲ１のアミノ酸配列又はその立体構造を認識し結合することを意味する。即ち、ヒトＦＯＬＲ１標的薬は、がん細胞の細胞膜上に発現している天然の立体構造を有するヒトＦＯＬＲ１を認識し結合することで作用する。
【００３０】
低分子のヒトＦＯＬＲ１標的薬としては、ＦＯＬＲ１阻害剤が挙げられる。ＦＯＬＲ１阻害剤としては、葉酸、ＦＯＬＲ１結合活性を有する葉酸誘導体、葉酸−トキシンコンジュゲート、葉酸−ラジオアイソトープコンジュゲートなど、ＦＯＬＲ１結合活性を有しかつ細胞増殖抑制活性、細胞傷害活性、アポトーシス活性および／または抗腫瘍活性を有していればいずれでもよい。
【００３１】
例えば、ｖｉｎｔａｆｏｌｉｄｅ（ＥＣ−１４５）、９９ｍＴｃ（ＣＯ）３−ｆｏｌａｔｅ、９９ｍＴｃ−ＥＣ２０（ｅｔａｒｆｏｌａｔｉｄｅ）、１１１Ｉｎ−ＤＴＰＡ−ｆｏｌａｔｅ、１１１Ｉｎ／１７７Ｌｕ−ＤＯＴＡ−ｃｌｉｃｋ−ｆｏｌａｔｅ、６７Ｇａ−ＤＯＴＡ−Ｂｚ−ｆｏｌａｔｅ（６７Ｇａ−ＥＣ０８００）および６７Ｇａ−ＮＯＤＡＧＡ−ｆｏｌａｔｅなどが挙げられる。
【００３２】
ＥＣ−１４５は、葉酸にチューブリン重合阻害剤（ｄｅｓａｃｅｔｙｌｖｉｎｂｌａｓｔｉｎｅ  ｍｏｎｏｈｙｄｒａｚｉｄｅ）を結合させた化合物であり［Ｃｕｒｒ  Ｏｐｉｎ  Ｉｎｖｅｓｔｉｇ  Ｄｒｕｇｓ．２０１０  Ｄｅｃ；１１（１２）：１４２４−３３．］、ヒトＦＯＬＲ１に結合し細胞増殖抑制活性及び抗腫瘍活性を有する。
【００３３】
細胞増殖抑制活性とは、ＦＯＬＲ１陽性細胞の細胞増殖を抑制する活性をいい、葉酸、葉酸誘導体、及び、葉酸コンジュゲートがＦＯＬＲ１に特異的に結合することで、直接的に細胞増殖を抑制すること、アポトーシス活性を誘導すること、コンジュゲートさせたトキシンやラジオアイソトープなどによる細胞傷害活性等、種々のメカニズムによって引き起こされる。
【００３４】
抗腫瘍活性とは、ＦＯＬＲ１陽性腫瘍細胞の増殖を阻害する活性をいい、上述に記載のメカニズムによって引き起こされる。
【００３５】
アポトーシス活性とは、ＦＯＬＲ１陽性細胞に、葉酸、葉酸誘導体、及び、葉酸コンジュゲートが結合することによって、カスペース活性が増加した結果、プログラム細胞死が引き起こされることをいう。
【００３６】
高分子のヒトＦＯＬＲ１標的薬としては、例えば、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体及び抗ヒトＦＯＬＲ１抗体断片が挙げられる。
【００３７】
本発明の治療方法及び医薬に用いられる抗ヒトＦＯＬＲ１抗体としては、ヒトＦＯＬＲ１のアミノ酸配列又はアミノ酸配列からなる立体構造を認識し、かつ結合する抗体であれば、ポリクローナル抗体、オリゴクローナル抗体、モノクローナル抗体いずれであってもよいが、好ましくはモノクローナル抗体である。
【００３８】
モノクローナル抗体とは、単一クローンの抗体産生細胞が分泌する抗体であり、ただ一つのエピトープ（抗原決定基ともいう）を認識し、モノクローナル抗体を構成するアミノ酸配列（１次構造）が均一であることが特徴である。オリゴクローナル抗体は、モノクローナル抗体が複数含まれた抗体組成物であり、数個〜１０個程度のモノクローナル抗体を含む抗体である。ポリクローナル抗体は、複数のモノクローナル抗体から成る抗体組成物であり、抗原上の複数のエピトープに結合する抗体の混合物である。
【００３９】
本発明においてエピトープとは、モノクローナル抗体が認識し、結合する単一のアミノ酸配列、アミノ酸配列からなる立体構造、糖鎖が結合したアミノ酸配列及び糖鎖が結合したアミノ酸配列からなる立体構造などが挙げられる。従って、がん細胞の細胞膜上に発現しているヒトＦＯＬＲ１分子上に存在するエピトープであればいずれのエピトープであってもよいが、好ましくは配列番号１で表されるヒトＦＯＬＲ１のアミノ酸配列（ＮＣＢＩ  Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ  Ｓｅｑｕｅｎｃｅ：ＮＰ＿０５７９３７．１）のうち、５５番目〜６２番目のアミノ酸配列が挙げられる。
【００４０】
本発明において抗ヒトＦＯＬＲ１抗体が結合するエピトープとしてより好ましくは、配列番号１で表されるアミノ酸配列における５５番目〜６２番目のアミノ酸配列から選ばれる少なくとも１のアミノ酸残基を含むエピトープが挙げられ、より好ましくは、ヒトＦＯＬＲ１のアミノ酸配列のうち、配列番号１で表されるアミノ酸配列における５５番目〜６２番目のアミノ酸配列から選ばれる少なくとも連続した２以上のアミノ酸残基を含むエピトープが挙げられる。
【００４１】
本発明におけるヒトＦＯＬＲ１の立体構造としては、配列番号１で表されるアミノ酸配列の１番目から２５７番目のアミノ酸配列を含むヒトＦＯＬＲ１が天然状態で取り得る構造と同等の構造を有していればいずれの構造でもよい。ヒトＦＯＬＲ１が天然状態で取り得る立体構造とは、細胞膜上に発現したヒトＦＯＬＲ１が有する天然型の立体構造のことをいう。
【００４２】
本発明において用いられるモノクローナル抗体としては、ハイブリドーマにより生産される抗体、又は抗体遺伝子を含む発現ベクターで形質転換した形質転換体により生産される遺伝子組み換え抗体を挙げることができる。
【００４３】
ハイブリドーマは、例えば、ヒトＦＯＬＲ１タンパク質、ヒトＦＯＬＲ１タンパク質断片、ヒトＦＯＬＲ１のオリゴペプチド、又はヒトＦＯＬＲ１を発現した細胞などを抗原として調製し、該抗原を免疫した動物より抗原特異性を有する抗体生産細胞を誘導し、さらに、該抗体生産細胞と骨髄腫細胞とを融合させることにより、調製することができる。該ハイブリドーマを培養するか、又は該ハイブリドーマ細胞を動物に投与して該動物を腹水がん化させ、該培養液又は腹水を分離、精製することにより抗ＦＯＬＲ１モノクローナル抗体を取得することができる。
【００４４】
本発明において用いられる遺伝子組換え抗体としては、ヒト型キメラ抗体、ヒト型ＣＤＲ移植抗体（ヒト化抗体ともいう）、ヒト抗体又はそれらの抗体断片など、遺伝子組換えにより製造される抗体を包含する。遺伝子組換え抗体において、モノクローナル抗体の特徴を有し、抗原性が低く、血中半減期が延長されたものは、治療薬として好ましい。遺伝子組換え抗体は、例えば上記ハイブリドーマから産生されたモノクローナル抗体を遺伝子組換え技術を用いて改変したものが挙げられる。
【００４５】
ヒト型キメラ抗体は、ヒト以外の動物の抗体のＶＨ及びＶＬとヒト抗体の重鎖（以下、Ｈ鎖と略記する）定常領域（以下、ＣＨと記す）及び軽鎖（以下、Ｌ鎖と略記する）定常領域（以下、ＣＬと記す）とからなる抗体をいう。本発明のヒト型キメラ抗体は、ヒトＦＯＬＲ１のアミノ酸配列、又はその立体構造を特異的に認識し、かつ結合するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマより、ＶＨ及びＶＬをコードするｃＤＮＡを取得し、ヒト抗体のＣＨ及びＣＬをコードする遺伝子を有する動物細胞用発現ベクターにそれぞれ挿入してヒト型キメラ抗体発現ベクターを構築し、動物細胞へ導入することにより発現させ、製造することができる。
【００４６】
ヒト型キメラ抗体のＣＨとしては、ヒトイムノグロブリン（以下、ｈＩｇと表記する）に属すればいかなるものでもよいが、好ましくはｈＩｇＧクラスのものが用いられ、さらにｈＩｇＧクラスに属するｈＩｇＧ１、ｈＩｇＧ２、ｈＩｇＧ３又はｈＩｇＧ４といったサブクラスのいずれも用いることができる。また、ヒト型キメラ抗体のＣＬとしては、ｈＩｇに属すればいずれのものでもよく、κクラス又はλクラスのものを用いることができる。
【００４７】
本発明において用いられるヒト型キメラ抗体として具体的には、配列番号１０で表されるアミノ酸配列を含む抗体のＶＨを含み、かつ配列番号１１で表されるアミノ酸配列を含む抗体のＶＬを含むキメラ抗体が挙げられる。
【００４８】
さらに、本発明において用いられるキメラ抗体としては、前記モノクローナル抗体と競合して、ヒトＦＯＬＲ１のアミノ酸配列、又はその立体構造を特異的に認識し、結合するキメラ抗体、前記モノクローナル抗体が結合するヒトＦＯＬＲ１に存在するエピトープと同じエピトープに結合するキメラ抗体が挙げられる。
【００４９】
本発明において用いられるヒト型相補性決定領域（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ  ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ  ｒｅｇｉｏｎ、以下、ＣＤＲと略記する）移植抗体（ヒト化抗体ともいう）としては、ヒト以外の動物の抗体のＶＨ及びＶＬのＣＤＲのアミノ酸配列をヒト抗体のＶＨ及びＶＬの適切な位置に移植した抗体をいう。
【００５０】
本発明において用いられるヒト型ＣＤＲ移植抗体は、ヒトＦＯＬＲ１のアミノ酸配列、又はその立体構造を特異的に認識し、かつ結合するヒト以外の動物のモノクローナル抗体のＶＨ及びＶＬのＣＤＲのアミノ酸配列を、任意のヒト抗体のＶＨ及びＶＬのフレームワーク領域（以下、ＦＲと表記する）に移植したＶ領域をコードするｃＤＮＡを構築し、ヒト抗体のＣＨ及びＣＬをコードする遺伝子を有する動物細胞用発現ベクターにそれぞれ挿入してヒト型ＣＤＲ移植抗体発現ベクターを構築し、動物細胞へ導入することにより発現させ、製造することができる。
【００５１】
ヒト型ＣＤＲ移植抗体のＣＨとしては、ｈＩｇに属すればいかなるものでもよいが、好ましくはｈＩｇＧクラスのものが用いられ、さらにｈＩｇＧクラスに属するｈＩｇＧ１、ｈＩｇＧ２、ｈＩｇＧ３又はｈＩｇＧ４といったサブクラスのいずれも用いることができる。また、ヒト型ＣＤＲ移植抗体のＣＬとしては、ｈＩｇに属すればいずれのものでもよく、κクラス又はλクラスのものを用いることができる。
【００５２】
ヒト抗体は、元来、ヒト体内に天然に存在する抗体をいうが、最近の遺伝子工学的、細胞工学的、発生工学的な技術の進歩により作製されたヒト抗体ファージライブラリー及びヒト抗体産生トランスジェニック動物から得られる抗体なども含まれる。
【００５３】
本発明において用いられるヒト型ＣＤＲ移植抗体またはヒト抗体としては、具体的には、ＣＤＲ１〜３がそれぞれ配列番号２〜４で表されるアミノ酸配列を含む抗体のＶＨを含み、かつＣＤＲ１〜３がそれぞれ配列番号５〜７で表されるアミノ酸配列を含む抗体のＶＬを含むヒト化抗体、並びにＣＤＲ１〜３がそれぞれ配列番号２〜４で表されるアミノ酸配列を含む抗体のＨ鎖を含み、ＣＤＲ１〜３がそれぞれ配列番号５〜７で表されるアミノ酸配列を含む抗体のＬ鎖を含み、かつ配列番号４（抗体Ｈ鎖のＣＤＲ３）で表されるアミノ酸配列中のシステインがスレオニン、メチオニン、イソロイシン、バリン、フェニルアラニン、又はグルタミンに置換されたヒト化抗体、及び、ＣＤＲ１〜３がそれぞれ配列番号２、３、１３で表されるアミノ酸配列を含む抗体のＶＨを含み、かつＣＤＲ１〜３がそれぞれ配列番号５、６、７で表されるアミノ酸配列を含む抗体のＶＬを含むヒト化抗体が挙げられる。
【００５４】
また、本発明において用いられるヒト化抗体としてより具体的には、抗体のＶＨが配列番号８及び／又は抗体のＶＬが配列番号９で表されるアミノ酸配列を含むヒト化抗体（ＨｕＲＡ１５−７ＣＴＡｃｃ抗体）が挙げられる。
【００５５】
本発明において用いられる抗ヒトＦＯＬＲ１抗体には、上述したモノクローナル抗体、遺伝子組換え抗体などいずれかの抗体と競合して、ヒトＦＯＬＲ１のアミノ酸配列、又はその立体構造を特異的に認識し、結合する抗体及び該抗体断片、前記モノクローナル抗体が結合するヒトＦＯＬＲ１に存在するエピトープと同じエピトープに結合するモノクローナル抗体及び該抗体断片なども含まれる。
【００５６】
本発明において用いられる「モノクローナル抗体と競合する抗体」とは、本発明で用いられる抗ヒトＦＯＬＲ１抗体と同一又は部分的に同一のエピトープ（抗原決定基ともいう）をヒトＦＯＬＲ１に有し、該エピトープに結合する抗体をいう。本発明において用いられる「抗ヒトＦＯＬＲ１抗体が結合するエピトープと同じエピトープに結合する抗体」とは、本発明で用いられる抗ヒトＦＯＬＲ１抗体が認識するヒトＦＯＬＲ１のアミノ酸配列と同じ配列を認識し結合する抗体をいう。
【００５７】
本発明において用いられる抗体断片としては、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’、一本鎖抗体（ｓｃＦｖ）、二量体化Ｖ領域（ｄｉａｂｏｄｙ）、ジスルフィド安定化Ｖ領域（ｄｓＦｖ）、モノクローナル抗体のＨ鎖のＣＤＲ１−３及びＬ鎖のＣＤＲ１−３を含むペプチド、並びにＣＤＲを含むペプチドなどが挙げられる。 
【００５８】
また、本発明において用いられる抗体断片としては、抗体断片を含むバイスペシフィック抗体、トリスペシフィック抗体、テトラスペシフィック抗体、Ｆｃ融合ペプチド、Ｆｃ融合Ｌ鎖とＨ鎖からなる一価抗体など、ＦＯＬＲ１結合活性を有する抗体断片であればいずれのものも含まれる。
【００５９】
即ち、本発明において用いられる抗ヒトＦＯＬＲ１抗体としては、以下の（ｉ）〜（ｖｉｉｉ）の抗ＦＯＬＲ１抗体及び該抗体断片が挙げられる。
（ｉ）配列番号１で表されるアミノ酸配列の５５番目から６２番目のアミノ酸配列に含まれるエピトープに結合する抗体
（ｉｉ）配列番号１で表されるアミノ酸配列の５５番目から６２番目のアミノ酸配列に含まれる少なくとも連続する２以上のアミノ酸残基に結合する抗体
（ｉｉｉ）配列番号１で表されるアミノ酸配列の５５番目から６２番目のアミノ酸配列を含むエピトープに結合する抗体
（ｉｖ）ＣＤＲ１〜３がそれぞれ配列番号２、３、４で表されるアミノ酸配列を含む抗体のＨ鎖を含み、かつＣＤＲ１〜３がそれぞれ配列番号５、６、７で表されるアミノ酸配列を含む抗体のＬ鎖を含む抗体
（ｖ）ＣＤＲ１〜３がそれぞれ配列番号２、３、４で表されるアミノ酸配列を含む抗体のＨ鎖を含み、かつＣＤＲ１〜３がそれぞれ配列番号５、６、７で表されるアミノ酸配列を含む抗体のＬ鎖を含む抗体で、配列番号４（抗体Ｈ鎖のＣＤＲ３）で表されるアミノ酸配列中のシステインがスレオニン、メチオニン、イソロイシン、バリン、フェニルアラニン、又はグルタミンに置換された抗体
（ｖｉ）ＣＤＲ１〜３がそれぞれ配列番号２、３、１３で表されるアミノ酸配列を含む抗体のＨ鎖を含み、かつＣＤＲ１〜３がそれぞれ配列番号５、６、７で表されるアミノ酸配列を含む抗体のＬ鎖を含む抗体
（ｖｉｉ）（ｉ）〜（ｖｉ）の抗体又は該抗体断片と競合してヒトＦＯＬＲ１に結合する抗体
（ｖｉｉｉ）（ｉ）〜（ｖｉｉ）の抗体又は該抗体断片が認識するエピトープと同じエピトープに結合する抗体
【００６０】
このほか、本発明において用いられる抗ヒトＦＯＬＲ１抗体としては、ｆａｒｌｅｔｕｚｕｍａｂ（ＭＯＲＡｂ−００３）等が挙げられる。ＭＯＲＡｂ−００３は、抗ヒトＦＯＬＲ１ヒト化ＩｇＧ１抗体であり、主に抗体依存性細胞傷害活性（以下、ＡＤＣＣ活性と略記する）及び補体依存性細胞傷害活性（以下、ＣＤＣ活性と略記する）により、ＦＯＬＲ１陽性がんに対する抗腫瘍活性を有する（Ｃａｎｃｅｒ  Ｉｍｍｕｎ．２００７  Ｍａｒ  ９；７：６．）。
【００６１】
上述の抗体又は抗体断片を構成するアミノ酸配列において、１つ以上のアミノ酸が欠失、付加、置換又は挿入され、かつ上述の抗体又は該抗体断片と同様な活性を有する抗体又は該抗体断片も、本発明で用いられる抗ヒトＦＯＬＲ１抗体に包含される。
【００６２】
さらに、本発明において用いられる抗ヒトＦＯＬＲ１抗体としては、ヒトＦＯＬＲ１のアミノ酸配列又はその立体構造を特異的に認識しかつ結合するモノクローナル抗体又は該抗体断片に、６４Ｃｕ、６７Ｇａ、９０Ｙ、９９Ｔｃ、１１１Ｉｎ、１２５Ｉ、１３１Ｉ、１７７Ｌｕ及び２１１Ａｔなどの放射性同位元素、抗がん剤、トキシンなどの低分子の薬剤、高分子の薬剤、タンパク質、又は抗体医薬などを化学的又は遺伝子工学的に結合させた抗ヒトＦＯＬＲ１抗体の誘導体を用いることもできる。
【００６３】
本発明において、ヒトＦＯＬＲ１標的薬が、ヒトＦＯＬＲ１のアミノ酸配列、又はその立体構造を認識し、結合することは、ヒトＦＯＬＲ１を固相化したものを用いた酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）、ウエスタンブロット法、免疫組織染色（ＩＨＣ）法、ヒトＦＯＬＲ１を発現した細胞に対する公知の免疫学的検出法、蛍光細胞染色法等、特定の抗原と特定抗原に対する低分子化合物や抗体等の高分子化合物の結合性を調べる方法により確認することができる。具体的には、ＦＭＡＴ８１００ＨＴＳシステム（アプライドバイオシステム社製）などを用いる蛍光抗体染色法［Ｃａｎｃｅｒ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒ．、３６、３７３（１９９３）］、フローサイトメトリーを用いる蛍光細胞染色法、Ｂｉａｃｏｒｅシステム（ＧＥヘルスケア社製）などを用いた表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ）、ＩＴＣ（ＤＫＳＨ社製）などを用いた等温滴定カロリメトリーなどの方法が挙げられる。
【００６４】
例えば、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体が、ヒトＦＯＬＲ１のアミノ酸配列、又はその立体構造に結合することは、Ｂｉａｃｏｒｅシステム（ＧＥヘルスケア社製）などを用いた表面プラズモン共鳴で確認することができる。具体的には、抗ＩｇＧ抗体をセンサーチップＣＭ５にアミンカップリング法により固定した後、該抗体又は該抗体断片を流し、適当量結合させ、さらに濃度既知の複数濃度のＦＯＬＲ１またはその融合体を流し、結合、解離を測定することができる。
【００６５】
本発明において用いられる抗ヒトＦＯＬＲ１抗体としては、細胞増殖抑制活性、抗腫瘍活性、アポトーシス活性、並びにＡＤＣＣ活性、ＣＤＣ活性、及び、抗体依存性貪食活性（以下、ＡＤＰ活性と略記する）などのエフェクター活性などを有する抗体が挙げられる。
【００６６】
細胞増殖抑制活性とは、ＦＯＬＲ１陽性細胞の細胞増殖を抑制する活性をいい、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体がＦＯＬＲ１に特異的に結合することで、直接的に細胞増殖を抑制すること、ＡＤＣＣ活性、ＣＤＣ活性、ＡＤＰ活性、アポトーシス活性、抗体コンジュゲートによる細胞傷害活性等、種々のメカニズムによって引き起こされる。
【００６７】
抗腫瘍活性とは、ＦＯＬＲ１陽性腫瘍細胞の増殖を阻害する活性をいい、上述に記載のメカニズムによって引き起こされる。
【００６８】
アポトーシス活性とは、ＦＯＬＲ１陽性細胞に、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体、抗体断片、又は該抗体コンジュゲートが結合することによって、カスペース活性が増加した結果、プログラム細胞死が引き起こされることをいう。
【００６９】
ＡＤＣＣ活性とは、細胞表面のヒトＦＯＬＲ１に結合した抗体が、Ｆｃ部分を介して主にナチュラルキラー細胞（以下ＮＫ細胞と表記する）表面のＦｃγＲＩＩＩａに結合し、その結果、ＮＫ細胞から放出されるパーフォリン又はグランザイムなどの細胞傷害性分子によって生じる細胞融解反応である［Ｃｌａｒｋ  Ｍ、Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，６５，８８（１９９７）；Ｇｏｒｔｅｒ  Ａら、Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｔｏｄａｙ，２０，５７６（１９９９）］。
【００７０】
ＣＤＣ活性とは、細胞表面のヒトＦＯＬＲ１に結合した抗体が、Ｆｃ部分を介して補体系のＣ１の一成分であるＣ１ｑに結合し、その結果、Ｃ１からＣ９の各補体成分が活性化し、最終的にはＣ５からＣ９が膜侵襲複合体と呼ばれる孔形成重合体を細胞膜上で形成して細胞の溶解を引き起こす反応である［Ｉｍｍｕｎｏｌ  Ｔｏｄａｙ．１９９９  Ｄｅｃ；２０（１２）：５７６−８２．］。
【００７１】
本発明において用いられる抗ヒトＦＯＬＲ１抗体は、エフェクター活性を制御することができる。その方法としては、抗体のＦｃ領域の２９７番目のアスパラギン（Ａｓｎ）に結合するＮ結合複合型糖鎖の還元末端に存在するＮ−アセチルグルコサミン（ＧｌｃＮＡｃ）にα１，６結合するフコース（コアフコースともいう）の量を制御する方法（国際公開第２００５／０３５５８６号、国際公開第２００２／３１１４０号、国際公開第００／６１７３９号）、又は抗体のＦｃ領域のアミノ酸残基を改変することで制御する方法などが挙げられる。
【００７２】
抗体のエフェクター活性を増加又は低下させる方法としては、例えば、抗体のＦｃのＮ結合複合型糖鎖のコアフコースの含量を制御する方法が挙げられる。
【００７３】
抗体のＦｃに結合しているＮ結合複合型糖鎖に結合するフコースの含量を低下させる方法としては、例えば、α１，６−フコース転移酵素遺伝子が欠損したＣＨＯ細胞を用いて抗体を発現することで、フコースが結合していない抗体を取得する方法が挙げられる。フコースが結合していない抗体は高いＡＤＣＣ活性を有する。
【００７４】
一方、抗体のＦｃに結合しているＮ結合複合型糖鎖に結合するフコースの含量を増加させる方法としては、例えば、α１，６−フコース転移酵素遺伝子を導入した宿主細胞を用いて抗体を発現させることで、フコースが結合している抗体を取得する方法が挙げられる。フコースが結合している抗体は、フコースが結合していない抗体よりも低いＡＤＣＣ活性を有する。
【００７５】
また、抗体のＦｃ領域のアミノ酸残基を改変することでＡＤＣＣ活性又はＣＤＣ活性を増加又は低下させることができる。例えば、米国特許出願公開第２００７／０１４８１６５号明細書に記載のＦｃ領域のアミノ酸配列を用いることで、抗体のＣＤＣ活性を増加させることができる。また、米国特許第６，７３７，０５６号明細書、米国特許第７，２９７，７７５号明細書又は米国特許第７，３１７，０９１号明細書に記載のアミノ酸改変を行うことで、ＡＤＣＣ活性又はＣＤＣ活性を、増加させることも低下させることもできる。さらに、上述の方法を組み合わせて、一つの抗体に使用することにより、抗体のエフェクター活性が制御された抗体を取得することができる。
【００７６】
本発明のヒトＦＯＬＲ１標的薬の治療効果を増強させる方法としては、葉酸代謝拮抗剤とヒトＦＯＬＲ１標的薬とを同時又は逐次に投与した結果、ヒトＦＯＬＲ１標的薬による治療効果を増強する方法が挙げられる。葉酸代謝拮抗剤に曝露されたがん細胞の細胞膜上において、ＦＯＬＲ１の発現が増加した結果、ヒトＦＯＬＲ１標的薬は、がん細胞膜上の増加したＦＯＬＲ１に結合して薬効を示す。葉酸代謝拮抗剤を曝露した時のヒトＦＯＬＲ１標的薬の治療効果は、葉酸代謝拮抗剤を曝露しなかった時のヒトＦＬＯＲ１標的薬の治療効果と比べて、高くなる。
【００７７】
また本発明の併用方法としては、葉酸代謝拮抗剤を用いて、ＦＯＬＲ１の発現を増加させることを特徴とする葉酸代謝拮抗剤とヒトＦＯＬＲ１標的薬との併用方法、葉酸代謝拮抗剤と同時又は逐次に投与し、ＦＯＬＲ１の発現を増加させることを特徴とする葉酸代謝拮抗剤とヒトＦＯＬＲ１標的薬との併用方法が挙げられる。
【００７８】
本発明は、また、抗ヒトＦＬＯＲ１抗体のＡＤＣＣ活性及び／又は抗腫瘍活性を増加させる方法を含む。葉酸代謝拮抗剤に曝露されたがん細胞の細胞膜上にＦＯＬＲ１の発現が増加した結果、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体は、がん細胞膜上の増加したＦＯＬＲ１に結合して、高いＡＤＣＣ活性及び／又は高い抗腫瘍活性を発揮する。葉酸代謝拮抗剤を曝露した時のヒトＦＯＬＲ１標的薬のＡＤＣＣ活性及び／抗腫瘍活性は、葉酸代謝拮抗剤を曝露しなかった時のヒトＦＬＯＲ１標的薬のＡＤＣＣ活性及び／抗腫瘍活性と比べて、高くなる。
【００７９】
本発明のヒトＦＯＬＲ１標的薬を含む医薬としては、葉酸代謝拮抗剤を用いて、ＦＯＬＲ１の発現を増加させることを特徴とする、ヒトＦＯＬＲ１標的薬を含むがんの医薬、葉酸代謝拮抗剤とヒトＦＯＬＲ１標的薬とを同時又は逐次に投与することで、ＦＯＬＲ１の発現を増加させるための、ヒトＦＯＬＲ１標的薬を含むがんの医薬などが挙げられる。
【００８０】
従って、本発明の医薬は、葉酸代謝拮抗剤を用いて、ＦＯＬＲ１の発現を増加させることによって、ヒトＦＯＬＲ１標的薬の効果を高めたがんの医薬であり、ＦＯＬＲ１の発現を増加させることができれば、葉酸代謝拮抗剤、及び、ヒトＦＯＬＲ１標的薬を同時に投与するためのものでも、逐次に投与するためのものでもよい。
【００８１】
また、本発明の医薬は、葉酸代謝拮抗剤、及び、ヒトＦＯＬＲ１標的薬が、複数の製剤として別々の製剤に含まれるものであっても、１つの製剤として同一の製剤に含まれるものであってもよい。
【００８２】
さらに、本発明の医薬は、葉酸代謝拮抗剤、並びに／又は、ヒトＦＯＬＲ１標的薬、若しくは、その誘導体の他に、薬理学的に許容される１以上の担体を含有してもよい。
【００８３】
本発明の治療方法、治療効果の増強方法、及び、医薬において、同時に使用とは、ヒトＦＯＬＲ１標的薬、及び、葉酸代謝拮抗剤が実質的に同時に患者に投与される状態を示す。具体的には、ヒトＦＯＬＲ１標的薬、及び、葉酸代謝拮抗剤を１つの製剤とすること、２つ以上の製剤を順次投与することなどにより、実質的に同時に投与される場合などが挙げられる。
【００８４】
本発明における、逐次に使用とは、ヒトＦＯＬＲ１標的薬、及び、葉酸代謝拮抗剤が、任意の順番で患者に投与される状態を示し、ヒトＦＯＬＲ１標的薬、及び、葉酸代謝拮抗剤は、それらの投与が同一回数でも、異なる回数でもよい。具体的には、一方を先に投与した後、一定間隔で他方のみを複数回患者に投与する場合などが挙げられる。
【００８５】
本発明の治療方法、治療効果の増強方法、及び、医薬が標的とする疾患としては、ＦＯＬＲ１陽性細胞が関与する疾患であれば、良性腫瘍、悪性腫瘍、がん並びに原発がんに伴う連続性転移、血行性転移、リンパ行性転移及び播種性転移のいずれのものでもよい。
【００８６】
ＦＯＬＲ１陽性細胞が関与する疾患としては、ＦＯＬＲ１が発現している細胞が関与し、葉酸代謝異常、及び／又は、葉酸受容体異常が関与する疾患であればいかなるものでもよく、例えば、がんが挙げられる。
【００８７】
がんとしては、例えば、血液がん、乳癌、子宮癌、大腸癌、食道癌、胃癌、卵巣癌、肺癌、腎臓癌、直腸癌、甲状腺癌、子宮頸癌、小腸癌、前立腺癌、中皮腫又は膵臓癌などが挙げられ、好ましくは卵巣癌、腎臓癌、肺癌、乳癌、膵臓癌又は中皮種が挙げられる。また、これらのがん腫における転移、悪液質、癌性疼痛、癌性神経症状など、関連する症候群に対する症状改善にも本発明の治療法及び医薬を用いることができる。
【００８８】
本発明において、ＦＯＬＲ１陽性細胞が疾患に関与しているかどうかは、病変組織におけるＦＯＬＲ１陽性細胞を確認することにより、明らかにすることができる。病変組織、又は、がん組織から、分離、摘出した細胞に、標識化した葉酸、又は、抗ＦＯＬＲ１抗体を反応させ、フローサイトメーター（ＦＣＭ）等で測定することにより、ＦＯＬＲ１陽性細胞を観測することができる。また、免疫組織染色法（ＩＨＣ）によって、組織におけるＦＯＬＲ１の発現を観測することもできる。また、ラジオアイソトープがコンジュゲートされた葉酸９９ｍＴｃ−ＥＣ２０（ｅｔａｒｆｏｌａｔｉｄｅ）などを患者体内へ投与して、葉酸の組織への取り込みを観測することで、組織におけるＦＯＬＲ１の発現や機能を確認することもできる。
【００８９】
上述の方法は、本発明の治療方法、及び、本発明の治療効果の増強方法を実施する場合や、本発明の医薬を使用する場合に、投与前後の薬力学的効果の評価に用いることができ、有効かつ効率的に治療することができる。
【００９０】
本発明の治療方法、治療効果の増強方法、又は、医薬を使用するための、ヒトＦＯＬＲ１標的薬、及び、葉酸代謝拮抗剤の投与経路は、治療に際して最も効果的なものを使用するのが好ましく、経口投与、又は口腔内、気道内、直腸内、皮下、筋肉内、腹腔内、若しくは静脈内などの非経口投与が挙げられ、好ましくは静脈内投与が挙げられる。
【００９１】
本発明の医薬が、ヒトＦＯＬＲ１標的薬、及び、葉酸代謝拮抗剤を単独で含有する、２つ以上の製剤からなる場合、その投与経路としては、同一投与経路でもよいし、異なる投与経路でもよい。
【００９２】
投与形態としては、例えば、噴霧剤、カプセル剤、錠剤、散剤、顆粒剤、シロップ剤、乳剤、坐剤、注射剤、軟膏、又はテープ剤などが挙げられる。
本発明の併用剤が、ヒトＦＯＬＲ１標的薬、及び、葉酸代謝拮抗剤を単独で含有する、２つ以上の製剤からなる場合、その投与形態としては、同一投与形態でもよいし、異なる投与形態でもよい。
【００９３】
本発明の医薬の投与量又は投与回数は、目的とする治療効果、投与方法、治療期間、年齢、及び体重などにより異なるが、通常成人１日当たり、ヒトＦＯＬＲ１標的薬、及び、葉酸代謝拮抗剤、それぞれ、１μｇ／ｋｇ〜１０００ｍｇ／ｋｇである。
【００９４】
以下、本発明を実施例により具体的に説明するが、本発明は下記実施例に限定されるものではない。
【実施例】
【００９５】
［実施例１］【００９６】
（１）非小細胞肺癌（ＮＳＣＬＣ）細胞株に対するペメトレキセド添加培養
ＮＳＣＬＣ由来細胞株であるＮＣＩ−Ｈ５２２［Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（以下、ＡＴＣＣと記す）番号：ＣＲＬ−５８１０］、ＮＣＩ−Ｈ８３８（ＡＴＣＣ番号：ＣＲＬ−５８４４）、ＮＣＩ−Ｈ１４３７（ＡＴＣＣ番号：ＣＲＬ−５８７２）、及びＮＣＩ−Ｈ２２２８（ＡＴＣＣ番号：ＣＲＬ−５９３５）を培養培地［ＲＰＭＩ１６４０（ＧＩＢＣＯ）、１０％非働化済みウシ血清（ＦＣＳ、ＧＩＢＣＯ）］で培養した。【００９７】
次に、培養フラスコからＴｒｙｐＬＥ  Ｅｘｐｒｅｓｓ（ＧＩＢＣＯ）で細胞を剥離し、葉酸不含培地［ＲＰＭＩ  １６４０  ｆｏｌａｔｅ−ｆｒｅｅ（ＧＩＢＣＯ）、１０％非働化済み透析ＦＣＳ（ｄＦＣＳ、ＧＩＢＣＯ）］に懸濁した。２５ｃｍ２の組織培養用（ＴＣ）フラスコに対し、２．５×１０５ｃｅｌｌｓ／４ｍＬの条件で細胞を播種した。【００９８】
２４時間の培養後、３×低葉酸培地（葉酸不含培地に、培養培地を３３分の１量加えたもの）を２ｍＬ加え、最終葉酸濃度が約２２．７ｎｍｏｌ／Ｌである、低葉酸培地での培養に切り替えた。さらに、最終濃度が０、１０、もしくは１０００ｎｍｏｌ／Ｌとなる様にペメトレキセド（ｐｅｍｅｔｒｅｘｅｄ、イーライリリー）を添加し、７２時間培養した。【００９９】
（２）ＮＳＣＬＣ細胞株のＦＯＬＲ１発現量解析
それぞれの細胞株を上記条件で培養後、ＴｒｙｐＬＥ  Ｅｘｐｒｅｓｓで剥離し、ｐｈｏｓｐｈａｔｅ  ｂｕｆｆｕｒ  ｓａｌｉｎｅ（ＰＢＳ）で洗浄した後、ＦＣＭバッファー（１ｍｍｏｌ／Ｌ  ＥＤＴＡ、０．０５％アジ化ナトリウム、５％非働化済みＦＣＳを含む、ＰＢＳ）に懸濁した。【０１００】
次に、細胞を１ウェルあたり１×１０５個となるように９６ウェルプレートに播種し、１７００ｒｐｍで１分間の遠心分離を行った。上清を除いた後、細胞にＦＣＭバッファーで１０μｇ／ｍＬに調製した抗ヒトＦＯＬＲ１ヒト化抗体（ＨｕＲＡ１５−７ＣＴＡｃｃ抗体）（国際公開第２０１４／０８７８６３号）を添加し、４℃で３０分間、反応させた。【０１０１】
細胞を洗浄した後、ＦＣＭバッファーで１００倍に希釈したＡｎｔｉ−Ｈｕｍａｎ  ＩｇＧ−ＦＩＴＣ（Ｊａｃｋｓｏｎ）を添加し、４℃で３０分間、反応させた。再び細胞を洗浄した後、細胞をＦＣＭバッファーで懸濁し、蛍光強度をフローサイトメーター（ベックマンコールター社製、ＦＣ５００ＭＰＬ）で解析し、それぞれの細胞の平均蛍光強度（ＭＦＩ）値を求めた。【０１０２】
ＨｕＲＡ１５−７ＣＴＡｃｃ抗体は、国際公開第２００７／０１１０４１号及び国際公開第２０１１／１０８５０２号の報告を参考にｐＫＡＮＴＥＸ９３の抗体重鎖定常領域を改変し、このベクターに配列番号８及び配列番号９で表されるアミノ酸配列をコードする遺伝子を導入し、ｆｕｃｏｓｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ−８（ＦＵＴ８）遺伝子をノックアウトしたチャイニーズハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ／ＤＧ４４）を用いて発現させた。発現させた抗体は、精製した後、実験に供した。【０１０３】
その結果、ＮＣＩ−Ｈ１４３７及びＮＣＩ−Ｈ２２２８では、ペメトレキセドの最終濃度が０ｎｍｏｌ／Ｌである条件で培養した場合に比べて、ペメトレキセドの最終濃度が１０、１０００ｎｍｏｌ／Ｌである条件で培養した場合は、ＦＯＬＲ１の発現量がそれぞれ、約１．５倍、２倍に増加した［図１（Ａ）及び図１（Ｂ）］。ＮＣＩ−Ｈ５２２及びＮＣＩ−Ｈ８３８でも、ペメトレキセドの最終濃度が高いほど、ＦＯＬＲ１発現量が増加する傾向が見られた［図１（Ｃ）及び図１（Ｄ）］。【０１０４】
以上より、ＮＳＣＬＣ細胞に葉酸代謝拮抗剤であるペメトレキセドを添加して培養すると、ＦＯＬＲ１発現量が上昇することが示された。よって、葉酸代謝拮抗剤がＮＳＣＬＣ細胞のＦＯＬＲ１発現量を増加させることが明らかになった。【０１０５】
［実施例２］
卵巣癌細胞株に対するペメトレキセド添加培養及びＦＯＬＲ１発現量解析
実施例１と同様に、卵巣癌細胞株に対するペメトレキセド添加培養及びＦＯＬＲ１発現量解析を行った。まず、卵巣癌由来細胞株であるＳＫＯＶ−３［Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（以下、ＡＴＣＣと記す）番号：ＨＴＢ−７７］、ＭＣＡＳ（ＪＣＲＢ細胞番号：ＪＣＲＢ０２４０）、ＮＩＨ：ＯＶＣＡＲ−３（ＡＴＣＣ番号：ＨＴＢ−１６１）、及びＩＧＲ−ＯＶ１（Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｃａｎｃｅｒ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ）を培養培地で培養した。その後、剥離した細胞を葉酸不含培地に懸濁し、２５ｃｍ２のＴＣフラスコに対し、５×１０５ｃｅｌｌｓ／４ｍＬの条件で細胞を播種した。【０１０６】
実施例１と同様にペメトレキセド添加培養、及びＦＯＬＲ１発現量解析を行った結果、ＩＧＲ−ＯＶ１、ＳＫＯＶ−３及びＭＣＡＳでは、添加したペメトレキセド濃度が高いほど、ＦＯＬＲ１発現量が増加する傾向が見られた［図２（Ａ）、図２（Ｂ）、及び図２（Ｄ）］。【０１０７】
培養培地で培養（ＮＣ）した場合と比べて、低葉酸培地でペメトレキセドの最終濃度が１０００ｎｍｏｌ／Ｌである条件で培養した場合は、ＦＯＬＲ１の発現量が、それぞれ、ＩＧＲ−ＯＶ１で約２．５倍［図２（Ａ）］、ＳＫＯＶ−３で約２．５倍［図２（Ｂ）］、ＭＣＡＳで約７倍［図２（Ｄ）］となった。【０１０８】
さらに、ＳＫＯＶ−３及びＭＣＡＳでは、培養培地で培養した場合と比べて、低葉酸培地でペメトレキセドの最終濃度が０ｎｍｏｌ／Ｌである条件で培養した場合も、ＦＯＬＲ１発現量に増加がみられた［図２（Ｂ）及び図２（Ｄ）］。【０１０９】
一方で、培養培地で培養した場合と比べて、低葉酸培地で培養した場合、ペメトレキセドの最終濃度の条件に関わらず、ＦＯＬＲ１発現量が増加しない株も存在した［図２（Ｃ）］。【０１１０】
以上より、卵巣癌細胞をペメトレキセド存在下で培養する、または、低葉酸培地で培養すると、ＦＯＬＲ１発現量が上昇する株があることが示された。さらに、実施例１の結果と合わせると、ペメトレキセドによるＦＯＬＲ１発現量の増加効果は、ＮＳＣＬＣ細胞より卵巣癌細胞にて顕著であることが示された。従って、ＮＳＣＬＣだけでなく卵巣癌においても、葉酸代謝拮抗剤はＦＯＬＲ１の発現量を増加させることが明らかになった。【０１１１】
［実施例３］
ペメトレキセド添加培養細胞に対するＡＤＣＣ活性評価
実施例２と同様に、まず卵巣癌細胞株ＭＣＡＳを培養培地で培養した。その後、剥離した細胞を葉酸不含培地に懸濁し、１７５ｃｍ２のＴＣフラスコに対し、２５×１０５ｃｅｌｌｓ／２８ｍＬの条件で細胞を播種した。２４時間の培養後、３×低葉酸培地を１４ｍＬ加え、最終葉酸濃度を約２２．７ｎｍｏｌ／Ｌとした。さらに、最終濃度が０または２０ｎｍｏｌ／Ｌとなる様にペメトレキセドを添加し、７２時間培養した。【０１１２】
培養後の細胞を培養フラスコから０．０２％  ＥＤＴＡ溶液（ナカライ）で剥離し、Ｖｉ−ＣＥＬＬ  ＸＲ  ２．０１（ベックマンコールター）で細胞数及び生存率を計測した。その結果、０及び２０ｎｍｏｌ／Ｌ  ペメトレキセドを添加されたＭＣＡＳ細胞の細胞生存率は、それぞれ９８．０％及び９６．６％であった。【０１１３】
それらの細胞をそれぞれＡＤＣＣ測定培地［フェノールレッド不含ＲＰＭＩ１６４０（ＧＩＢＣＯ）、５％非働化済みｄＦＣＳ（ＧＩＢＣＯ）］で１×１０４ｃｅｌｌｓ／５０μＬに調製し、ターゲット細胞溶液とした。【０１１４】
次に、ヘパリン処理した健常人末梢血を、Ｌｙｍｐｈｏｐｒｅｐ（コスモバイオ）を充填したＬｅｕｃｏＳｅｐリンパ球分離チューブ（グライナー）に重層し、１０００×ｇで２０分間、室温で遠心分離を行った。【０１１５】
遠心分離後、血清画分を除去し、末梢血単核球（ＰＢＭＣ）層を回収し、ＡＤＣＣ測定培地で細胞を洗浄した。ＰＢＭＣを、ＡＤＣＣ測定培地で２．５×１０５ｃｅｌｌｓ／５０μＬに調製し、エフェクター細胞溶液とした。【０１１６】
抗ヒトＦＯＬＲ１抗体は、ＨｕＲＡ１５−７ＣＴＡｃｃ抗体及び抗ヒトＦＯＬＲ１ヒト化抗体ＭＯＲＡｂ−００３（ｆａｒｌｅｔｕｚｕｍａｂ）を用いた。抗体溶液は、ＡＤＣＣ測定培地で０．１、１、１０、１００、１０００ｎｇ／ｍＬに調製し、アッセイの最終濃度が０．０３３、０．３３、３．３、３３、３３３ｎｇ／ｍＬとなるようにした。【０１１７】
ＭＯＲＡｂ−００３は、国際公開第２００５／０８０４３１号に記載されている、重鎖及び軽鎖の配列をコードする遺伝子を組み込んだベクターを導入したチャイニーズハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ／ＤＧ４４）細胞を用いて発現させた。発現させた抗体は、精製した後、実験に供した。【０１１８】
上記の通りに調製したターゲット細胞溶液、エフェクター細胞溶液、そして抗体溶液を、Ｕ字底の９６ウェルプレートにそれぞれ５０μＬ／ウェルずつ混合し、全量で１５０μＬ／ウェルとした。それぞれのウェルをよく混合した後、５０×ｇ、５分間、室温の遠心分離により細胞を沈殿させ、３７℃で４時間反応させた。【０１１９】
次に、それぞれのウェルをよく撹拌し、再び遠心分離で細胞を沈殿させた後、ウェルの上清をそれぞれ５０μＬずつ新しい９６ウェルプレートに分取した。分取した上清中の乳酸デヒドロゲナーゼ（ＬＤＨ）活性をＣｙｔｏＴｏｘ  ９６  Ｎｏｎ−Ｒａｄｉｏａｃｔｉｖｅ  Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ  Ａｓｓａｙ（プロメガ）を用いて測定した。操作は添付書に従って行った。【０１２０】
ＡＤＣＣ活性の算出は、まず、各ウェルのＬＤＨ活性測定値からＡＤＣＣ測定培地のみのウェルのＬＤＨ活性測定値を引き、各ウェルのＬＤＨ活性測定補正値とした後、次の式で計算を行った。【０１２１】
【化１】
2015186823.tif 000002
【０１２２】
ここで、Ｅｘｐは各サンプルのＬＤＨ活性測定補正値、ＥＴ  ｓｐｏはエフェクター細胞溶液及びターゲット細胞溶液の混合ウェルのＬＤＨ活性測定補正値、Ｔ  ｔｏｔａｌはターゲット細胞とＣｙｔｏＴｏｘ  ９６  Ｎｏｎ−Ｒａｄｉｏａｃｔｉｖｅ  Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ  Ａｓｓａｙ添付のＬｙｓｉｓ  Ｓｏｌｕｔｉｏｎを混合したウェルのＬＤＨ活性測定補正値、ＤはＬｙｓｉｓ  ＳｏｌｕｔｉｏｎのＬＤＨ活性測定補正値、Ｔ  ｓｐｏはターゲット細胞のみのウェルのＬＤＨ活性測定補正値を示す。【０１２３】
健常人２名のＰＢＭＣを用いて、ＨｕＲＡ１５−７ＣＴＡｃｃ抗体のＡＤＣＣ活性試験を行った結果、抗体濃度の上昇に伴い、細胞傷害活性が認められた［図３（Ａ）及び図３（Ｂ）］。健常人ドナー１由来のＰＢＭＣを用いた結果［図３（Ａ）］の全ての抗体濃度、及び健常人ドナー２由来のＰＢＭＣを用いた結果［図３（Ｂ）］の０．０３３、０．３３ｎｇ／ｍＬの抗体濃度において、ペメトレキセド存在下で培養したＭＣＡＳに対するＨｕＲＡ１５−７ＣＴＡｃｃ抗体のＡＤＣＣ活性が、ペメトレキセド非存在下で培養したＭＣＡＳに対するＨｕＲＡ１５−７ＣＴＡｃｃ抗体のＡＤＣＣ活性を有意に上回っていた。【０１２４】
一方、既存の抗ヒトＦＯＬＲ１抗体であるＭＯＲＡｂ−００３抗体のＡＤＣＣ活性試験では、健常人ドナー２由来のＰＢＭＣを用いた結果［図３（Ｂ）］において、０．３３、３．３、３３、３３３ｎｇ／ｍＬの抗体濃度で、ペメトレキセド非存在下で培養したＭＣＡＳに対するＭＯＲＡｂ−００３抗体のＡＤＣＣ活性に対し、ペメトレキセド存在下で培養したＭＣＡＳに対するＭＯＲＡｂ−００３抗体のＡＤＣＣ活性が有意に上回っていた［図３（Ｂ）］。【０１２５】
以上より、ペメトレキセド存在下で培養した卵巣癌細胞株を標的とすることで、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体のＡＤＣＣ活性が増強されることが示された。よって、葉酸代謝拮抗剤によってＦＯＬＲ１発現が増加したがんにおいて、ヒトＦＯＬＲ１標的薬である抗ヒトＦＯＬＲ１抗体のＡＤＣＣ活性が増加することが明らかになった。【０１２６】
［実施例４］
ＳＣＩＤマウス卵巣癌細胞株ＭＣＡＳ皮下移植モデルに対するペメトレキセドと抗ヒトＦＯＬＲ１抗体との併用試験
ＰＢＳに懸濁した約２．５×１０６ｃｅｌｌｓの卵巣癌細胞株ＭＣＡＳを雌性ＳＣＩＤマウスの腹側皮下に移植した。移植１１日後、体重および腫瘍径を測定し、以下の式により腫瘍体積を算出後、各群の平均腫瘍体積が同等になるように５群（Ｎ＝５）に群分けを実施した。群分けには、Ｅ−ｗｏｒｋｂｏｏｋ  ｓｏｆｔｗａｒｅ（ＩＤ  Ｂｕｓｉｎｅｓｓ  Ｓｏｌｕｔｉｏｎｓ）を用いた。
［腫瘍体積（ｍｍ３）］＝［腫瘍の長径（ｍｍ）］×［腫瘍の短径（ｍｍ）］２×０．５【０１２７】
試験は溶媒投与群、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体（ＨｕＲＡ１５−７ＣＴＡｃｃ抗体）単独投与群、ペメトレキセド単独投与群、同時併用群、ｓｅｑｕｅｎｔｉａｌ併用群の５群で行った。溶媒群には、溶媒（生理食塩水）を投与した。抗ヒトＦＯＬＲ１抗体投与群には、生理食塩水を希釈液として、１ｍｇ／ｋｇを週に２回、２週間尾静脈投与した。ペメトレキセド投与群は、生理食塩水を希釈液として、１００ｍｇ／ｋｇ／ｄａｙを投与開始後５日間腹腔内投与した。同時併用群には、両方の薬剤を単剤群と同様に投与した。ｓｅｑｕｅｎｔｉａｌ併用群には、ペメトレキセドの５日間腹腔内投与終了３日後、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体１ｍｇ／ｋｇを週に２回１週間投与した。【０１２８】
試験開始後、体重および腫瘍径を週２回測定した。各測定日の腫瘍体積は、上記の式で算出した。腫瘍増殖率（以下、Ｖ／Ｖ０と記す）は、各測定日の腫瘍体積Ｖを試験開始日（ｄａｙ０）の腫瘍体積Ｖ０で割ることにより算出した。Ｔ／Ｃは、各群のＶ／Ｖ０の平均値（Ｔ）を溶媒投与群の平均値（Ｃ）で割ることにより算出した。【０１２９】
その結果、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体とペメトレキセド同時併用群及びｓｅｑｕｅｎｔｉａｌ併用群における腫瘍体積、腫瘍増殖率及びＴ／Ｃは、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体単独及びペメトレキセド単独投与群と比べて小さかった［図４（Ａ）、図４（Ｂ）及び図４（Ｃ）］。【０１３０】
即ち、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体とペメトレキセドの併用による抗腫瘍活性は、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体又はペメトレキセド単独による抗腫瘍活性を増強することが示唆された。一方で、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体とペメトレキセドの併用による体重減少はみられなかった［図４（Ｄ）］。【０１３１】
よって、葉酸代謝拮抗剤を同時又は逐次に投与することにより、ヒトＦＯＬＲ１標的薬の抗腫瘍活性が増強され、腫瘍体積及び腫瘍増殖率をより効果的に抑えることが明らかになった。【０１３２】
［実施例５］
子宮体癌細胞株に対するペメトレキセド添加培養及びＦＯＬＲ１発現量解析
子宮体癌由来細胞株であるＭＥＳ−ＳＡ（ＡＴＣＣ番号：ＣＲＬ−１９７６）及びＨＥＣ−１−Ａ（ＡＴＣＣ番号：ＨＴＢ−１１２）を１０％  ＦＣＳ（ＧＩＢＣＯ）を加えたＭｃＣｏｙ’ｓ５Ａ培地（ＡＴＣＣ）で、ＨＥＣ−１−Ｂ（ＡＴＣＣ番号：ＨＴＢ−１１３）を、１０％  ＦＣＳ（ＧＩＢＣＯ）を加えたＥａｇｌｅ’ｓ  Ｍｉｎｉｍｕｍ  Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  Ｍｅｄｉｕｍ（ＡＴＣＣ）で培養した。その後、実施例１と同様の方法で、剥離した細胞を葉酸不含培地に懸濁し、２５ｃｍ２のＴＣフラスコに対し、２．５×１０５ｃｅｌｌｓ／４ｍＬの条件で細胞を播種した。【０１３３】
２４時間の培養後、３×低葉酸培地（葉酸不含培地に、培養培地を３３分の１量加えたもの）を２ｍＬ加え、最終葉酸濃度が約２２．７ｎｍｏｌ／Ｌである、低葉酸培地での培養に切り替えた。さらに、最終濃度が０、１０、もしくは１０００ｎｍｏｌ／Ｌとなる様にペメトレキセド（ｐｅｍｅｔｒｅｘｅｄ、イーライリリー）を添加し、７２時間培養した。【０１３４】
次に実施例１と同様の方法で、ＦＯＬＲ１発現量解析を行った。ただし、標識抗体として、ＦＣＭバッファーで１００倍に希釈したＡｎｔｉ−Ｈｕｍａｎ  ＩｇＧ−ＦＩＴＣ（Ｊａｃｋｓｏｎ）の代わりに、ＦＣＭバッファーで１０倍に希釈したＡｎｔｉ−Ｈｕｍａｎ  ＩｇＧ−ＰＥ（ＢＤ）を用いた。また、フローサイトメーターには、ベックマンコールター社製（ＦＣ５００ＭＰＬ）の代わりにベクトンディッキンソン社製（ＦＡＣＳＶｅｒｓｅ）を用いた。【０１３５】
その結果、ＭＥＳ−ＳＡ、ＨＥＣ−１−Ａ及びＨＥＣ−１−Ｂでは、添加したペメトレキセド濃度が高いほど、ＦＯＬＲ１発現量が増加する傾向が見られた［図５（Ａ）、図５（Ｂ）、及び図５（Ｃ）］。培養培地で培養（ＮＣ）した場合と比べて、低葉酸培地でペメトレキセドの最終濃度が１０００  ｎｍｏｌ／Ｌである条件で培養した場合は、ＦＯＬＲ１の発現量が、それぞれ、ＭＥＳ−ＳＡで約３．５倍［図５（Ａ）］、ＨＥＣ−１−Ａで約３倍［図５（Ｂ）］、ＨＥＣ−１−Ｂで約２倍［図５（Ｃ）］となった。【０１３６】
以上より、子宮体癌細胞をペメトレキセド存在下で培養すると、ＦＯＬＲ１発現量が上昇することが示された。従って、ＮＳＣＬＣ及び卵巣癌だけでなく、子宮体癌においても、葉酸代謝拮抗剤はＦＯＬＲ１の発現量を増加させることが明らかになった。【０１３７】
［実施例６］
ペメトレキセド添加培養細胞（ＮＳＣＬＣ細胞株）に対するＡＤＣＣ活性評価
ＮＳＣＬＣ細胞株ＮＣＩ−Ｈ２２２８に対するＡＤＣＣ活性評価を実施例３と同様の方法で行った。ただし、培養時に添加するペメトレキセドは、最終濃度が０、２０、又は１０００ｎｍｏｌ／Ｌとなる様調製した。また、細胞数及び生存率はＶｉ−ＣＥＬＬ  ＸＲ  ２．０１ではなく、Ｃｏｕｎｔｅｓｓ（Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を用いて計測した。【０１３８】
健常人のＰＢＭＣを用いて、ＨｕＲＡ１５−７ＣＴＡｃｃ抗体のＡＤＣＣ活性試験を行った結果、抗体濃度の上昇に伴い、細胞傷害活性が認められた。また、全ての抗体濃度において、１０００ｎｍｏｌ／Ｌペメトレキセド存在下で培養したＮＣＩ−Ｈ２２２８に対するＨｕＲＡ１５−７ＣＴＡｃｃ抗体のＡＤＣＣ活性は、ペメトレキセド非存在下で培養したＮＣＩ−Ｈ２２２８に対するＨｕＲＡ１５−７ＣＴＡｃｃ抗体のＡＤＣＣ活性を有意に上回っていた［図６（Ａ）］。【０１３９】
既存の抗ヒトＦＯＬＲ１抗体であるＭＯＲＡｂ−００３抗体のＡＤＣＣ活性試験では、０．００３３、３．３、３３、３３３ｎｇ／ｍＬの抗体濃度において、１０００ｎｍｏｌ／Ｌペメトレキセド存在下で培養したＮＣＩ−Ｈ２２２８に対するＭＯＲＡｂ−００３抗体のＡＤＣＣ活性は、ペメトレキセド非存在下で培養したＮＣＩ−Ｈ２２２８に対するＭＯＲＡｂ−００３抗体のＡＤＣＣ活性を有意に上回っていた［図６（Ｂ）］。【０１４０】
以上より、ペメトレキセド存在下で培養したＮＳＣＬＣ細胞株を標的とすることで、抗ヒトＦＯＬＲ１抗体のＡＤＣＣ活性が増強されることが示された。よって、葉酸代謝拮抗剤によってＦＯＬＲ１発現が増加したがんにおいて、ヒトＦＯＬＲ１標的薬である抗ヒトＦＯＬＲ１抗体のＡＤＣＣ活性が増加することが明らかになった。【０１４１】
本発明を特定の態様を用いて詳細に説明したが、本発明の意図と範囲を離れることなく様々な変更および変形が可能であることは、当業者にとって明らかである。なお、本出願は、２０１４年６月６日付けで出願された米国仮出願（６２／００８，７２６号）に基づいており、その全体が引用により援用される。
【配列表フリーテキスト】
【０１４２】
配列番号１：ＦＯＬＲ１のアミノ酸配列
配列番号２：ＲＡ１５−７ＶＨＣＤＲ１＿ＡＡのアミノ酸配列
配列番号３：ＲＡ１５−７ＶＨＣＤＲ２＿ＡＡのアミノ酸配列
配列番号４：ＲＡ１５−７ＶＨＣＤＲ３＿ＡＡのアミノ酸配列
配列番号５：ＲＡ１５−７ＶＬＣＤＲ１＿ＡＡのアミノ酸配列
配列番号６：ＲＡ１５−７ＶＬＣＤＲ２＿ＡＡのアミノ酸配列
配列番号７：ＲＡ１５−７ＶＬＣＤＲ３＿ＡＡのアミノ酸配列
配列番号８：ｎｏｎＳ＿ＨｕＲＡ１５−７ＣＴＶＨ＿ＡＡのアミノ酸配列
配列番号９：ｎｏｎＳ＿ＨｕＲＡ１５−７ＬＶ３＿ＡＡのアミノ酸配列
配列番号１０：ｎｏｎＳ＿ＲＡ１５−７ＶＨ＿ＡＡのアミノ酸配列
配列番号１１：ｎｏｎＳ＿ＲＡ１５−７ＶＬ＿ＡＡのアミノ酸配列
配列番号１２：ＦＯＬＲ１  ＤＮＡの塩基配列
配列番号１３：ＨｕＲＡ１５−７ＣＴＡｃｃＶＨＣＤＲ３＿ＡＡのアミノ酸配列
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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