(57)【要約】熱安定性に優れたＣＢＨＩを提供すること配列番号１に示されるアミノ酸配列、配列番号１に示されるアミノ酸配列と８５％以上の同一性を有するアミノ酸配列、或いは配列番号１に示されるアミノ酸配列において１又は数個のアミノ酸が置換、挿入、付加、及び／又は欠失されたアミノ酸配列において、下記（Ａ）及び／又は（Ｂ）の変異：（Ａ）Ｓ４２Ｑ、Ｔ４３Ｅ、Ｋ４５Ｔ、Ｓ４６Ａ、Ｇ４７Ｐ、Ｎ５３Ｑ、Ｓ５４Ｎ、Ｔ２６２Ｇ、Ｓ２９８Ｐ、Ａ４２６Ｐ、及びＶ４５１Ｆから成る群より選択される１種以上のアミノ酸置換；（Ｂ）配列番号１に示されるアミノ酸配列における第４１３位〜第４１６番目のアミノ酸領域の配列番号２で示されるアミノ酸配列との置換；を有し、且つ、セロビオハイドロラーゼ活性、及び改善された熱安定性、を有する、ポリペプチド。
2015182570.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
配列番号１に示されるアミノ酸配列、配列番号１に示されるアミノ酸配列と８５％以上の同一性を有するアミノ酸配列、或いは配列番号１に示されるアミノ酸配列において１又は数個のアミノ酸が置換、挿入、付加、及び／又は欠失されたアミノ酸配列において、下記（Ａ）及び／又は（Ｂ）の変異：
（Ａ）Ｓ４２Ｑ、Ｔ４３Ｅ、Ｋ４５Ｔ、Ｓ４６Ａ、Ｇ４７Ｐ、Ｎ５３Ｑ、Ｓ５４Ｎ、Ｔ２６２Ｇ、Ｓ２９８Ｐ、Ａ４２６Ｐ、及びＶ４５１Ｆから成る群より選択される１種以上のアミノ酸置換；
（Ｂ）配列番号１に示されるアミノ酸配列における第４１３位〜第４１６番目のアミノ酸領域の配列番号２で示されるアミノ酸配列との置換；
を有し、且つ、
セロビオハイドロラーゼ活性、及び
改善された熱安定性、
を有する、ポリペプチド。
【請求項２】
請求項１に記載のポリペプチドをコードするポリヌクレオチド。 
【請求項３】
請求項２に記載のポリヌクレオチドを組み込んだ発現ベクター。 
【請求項４】
請求項３に記載のベクターで形質転換された形質転換体。 
【請求項５】
請求項４に記載の形質転換体を培養する工程を含む、請求項１に記載のポリペプチドの製造方法。 
【請求項６】
請求項１に記載のポリペプチドをセルロースを含む試料に作用させる工程を含む、セロビオースを製造する方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、熱安定性が改善された熱安定性を有するセロビオハイドロラーゼ及びその応用技術等に関する。
【背景技術】
【０００２】
セルロースの糖化には様々な手法があるがエネルギー使用量が少なく、かつ糖収率の高い酵素糖化法が開発の主流となっている。セルロース分解酵素であるセルラーゼを大別すると、セルロースの結晶領域に作用するセロビオハイドラーゼ（本書では、「ＣＢＨ」とも称する）とセルロース分子鎖内部から作用して分子量を低減させるエンドグルカナーゼとに分けられる。またβグルコシダーゼは、水溶性オリゴ糖又はセロビオースに作用し、そのβ−グリコシド結合を加水分解する反応を触媒する酵素である。これらの中で、セロビオハイドラーゼはセルロースの結晶領域に作用してセルロースを末端から加水分解するため、効率的な糖化に最も重要であり、大量に使用される酵素である。ＣＢＨは作用様式の違いからＣＢＨＩとＣＢＨＩＩという２種類に分類される。ＣＢＨＩはＧＨ７に分類される酵素でセルロース鎖の還元性末端からセロビオース単位で切断し、活性部位及び基質結合部位を覆う4つの長いループを持つトンネル構造を形成している。そのため、 セルロース鎖はこのトンネルを通過し末端からセロビオース単位で切断される。ＣＢＨＩＩは、ＧＨ６に分類され、セルロース鎖の非還元性末端からセロビオース単位で切断する酵素であり、活性部位を覆う２つのループ構造が存在し、このループによって触媒部位がトンネル状の構造を形成する。【０００３】
これらの酵素群を用いたバイオマスの糖化反応は、その更なる効率化が望まれている。特に、酵素の熱安定性（耐熱性）を向上させることにより、雑菌汚染回避、反応効率の向上、及び酵素の再利用を通した効率化が可能になる。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特開2001-17180
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献１】Inoue et al., J.Ind. Microbiol. Biotechnol. 2013 Aug;40(8):823-30.
【非特許文献２】Kishishita et al., Protein Expr Purif. 2014 Feb;94:40-5.
【非特許文献３】Grassick et al., European Journal of Biochemistry Volume 271, Issue 22, pages 4495-4506, November 2004
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
上記のような現状の下、本発明は、より熱安定性に優れたＣＢＨＩを提供することを一つの目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
上記課題等を解決すべく鋭意研究を重ね、本発明者らは、タラロマイセス・セルロィティカス由来のＣＢＨＩのアミノ酸配列の特定のアミノ酸を置換することにより、その酵素活性を維持しつつ、熱安定性を顕著の向上させることが可能であることを見出した。本発明者らは、斯かる知見を基に更なる研究を重ね、本発明を完成するに至った。代表的な本発明を下記に示す。
項１．
配列番号１に示されるアミノ酸配列、配列番号１に示されるアミノ酸配列と８５％以上の同一性を有するアミノ酸配列、或いは配列番号１に示されるアミノ酸配列において１又は数個のアミノ酸が置換、挿入、付加、及び／又は欠失されたアミノ酸配列において、下記（Ａ）及び／又は（Ｂ）の変異：
（Ａ）Ｓ４２Ｑ、Ｔ４３Ｅ、Ｋ４５Ｔ、Ｓ４６Ａ、Ｇ４７Ｐ、Ｎ５３Ｑ、Ｓ５４Ｎ、Ｔ２６２Ｇ、Ｓ２９８Ｐ、Ａ４２６Ｐ、及びＶ４５１Ｆから成る群より選択される１種以上のアミノ酸置換；
（Ｂ）配列番号１に示されるアミノ酸配列における第４１３位〜第４１６番目のアミノ酸領域の配列番号２で示されるアミノ酸配列との置換；
を有し、且つ、
セロビオハイドロラーゼ活性、及び
改善された熱安定性、
を有する、ポリペプチド。
項２．
項１に記載のポリペプチドをコードするポリヌクレオチド。
項３．
項２に記載のポリヌクレオチドを組み込んだ発現ベクター。
項４．
項３に記載のベクターで形質転換された形質転換体。
項５．
項４に記載の形質転換体を培養する工程を含む、項１に記載のポリペプチドの製造方法。項６．
項１に記載のポリペプチドをセルロースを含む試料に作用させる工程を含む、セロビオースを製造する方法。
【発明の効果】
【０００８】
本発明に従えば、熱安定性に優れたセロビオハイドロラーゼが提供される。よって、本発明を利用することにより、効率的にバイオマスの糖化を行うことができる。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】図１は、熱処理後のＣＢＨＩの残存活性を測定した結果を示す。
【図２】図２は、微結晶性セルロースを基質とした場合の変異体６及び野生型ＣＢＨＩの最適温度を調べた結果を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
配列番号１に示されるアミノ酸配列は、糸状菌であるタラロマイセス・セルロィティカス由来の野生型ＣＢＨＩを構成するアミノ酸配列であり、当該配列は公知である。
【００１１】
熱安定性が改善されたＣＢＨＩは、配列番号１に示されるアミノ酸配列、配列番号１に示されるアミノ酸配列と８５％以上の同一性を有するアミノ酸配列、或いは配列番号１に示されるアミノ酸配列において１又は数個のアミノ酸が置換、挿入、付加、及び／又は欠失されたアミノ酸配列において、後述する特定のアミノ酸置換を含むアミノ酸配列を有するポリペプチドであることが好ましい。本書において、「配列番号１に示されるアミノ酸配列と８５％以上の同一性を有するアミノ酸配列」、並びに、「配列番号１に示されるアミノ酸配列において１又は数個のアミノ酸が置換、挿入、付加、及び／又は欠失されたアミノ酸配列」を纏めて「配列番号１に相当するアミノ酸配列」と称する場合がある。
【００１２】
アミノ酸配列の同一性は、市販の又は電気通信回線（インターネット）を通じて利用可能な解析ツールを用いて算出することができ、例えば、ClustalW ver2.1 Pairwise Alignment（http://clustalw.ddbj.nig.ac.jp/index.php?lang=ja）を使用し、デフォルトのパラメータを用いて算出することができる。また、National Center for Biotechnology Information（NCBI）のBasic Local Alignment Search Tool（BLAST）においてデフォルト（初期設定）のパラメータを用いることにより、算出することができる。
【００１３】
一実施形態において、配列番号１に示されるアミノ酸配列と８５％以上の同一性を有するアミノ酸配列は、好ましくは配列番号１に示されるアミノ酸配列と９０％以上の同一性を有し、より好ましくは配列番号１に示されるアミノ酸配列と９５％以上の同一性を有し、更に好ましくは配列番号１に示されるアミノ酸配列と９８％以上の同一性を有し、より更に好ましくは配列番号１に示されるアミノ酸配列と９９％以上の同一性を有する。
【００１４】
上述する「配列番号１に示されるアミノ酸配列において１又は数個のアミノ酸が置換、挿入、付加、及び／又は欠失されたアミノ酸配列」における「数個」とは、CBHIがセロビオハイドロラーゼ活性及び改善した熱安定性を有する限り特に制限されず、例えば、５０個、４５個、３０個、２５個、２０個、１５個、１０個、５個、３個、又は２個である。尚、ここでいう「数個」には、後述する熱安定性を向上させるために加えられる置換されたアミノ酸の数は含まれない。
【００１５】
配列番号１に示されるアミノ酸配列において１又は数個のアミノ酸が置換されている場合、その置換の種類は、特に制限されないが、ポリペプチドの高次構造、表現形又は特性に顕著な負の影響を与えないという観点から保存的アミノ酸置換が好ましい。「保存的アミノ酸置換」とは、あるアミノ酸残基を、同様の性質の側鎖を有するアミノ酸残基に置換することをいう。アミノ酸残基はその側鎖によって塩基性側鎖（例えば、リシン、アルギニン、ヒスチジン）、酸性側鎖（例えば、アスパラギン酸、グルタミン酸）、非荷電極性側鎖（例えば、グリシン、アスパラギン、グルタミン、セリン、スレオニン、チロシン、システイン）、非極性側鎖（例えば、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、フェニルアラニン、メチオニン、トリプトファン）、β分岐側鎖（例えば、スレオニン、バリン、イソロイシン）、芳香族側鎖（例えば、チロシン、フェニルアラニン、トリプトファン、ヒスチジン）に分類することができる。よって、アミノ酸置換は、もとのアミノ酸配列に存在するアミノ酸と同一の上記カテゴリーに属する他のアミノ酸残基間で置換されることが好ましい。尚、ここでいう「置換」は、後述する熱安定性を向上させるために加えられる置換とは異なる。
【００１６】
アミノ酸の置換、欠失、挿入及び／又は付加等の変異は、ポリペプチドの高次構造に顕著に影響しない領域や触媒活性に直接的に関与しない領域（例えば、活性中心以外の領域）において成されることが好ましい。そのような領域としては、例えば、タンパク質の表面に露出している領域を挙げることができる。
【００１７】
１又は数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入若しくは付加といった変異を特定のアミノ酸配列に加える技術は当該技術分野において公知であり、任意の手法を用いて行うことができる。例えば、制限酵素処理、エキソヌクレアーゼやＤＮＡリガーゼ等による処理、位置指定突然変異導入法、ランダム突然変異導入法等を利用して行なうことができる。
【００１８】
ＣＢＨＩの熱安定性を改善させるために加えられる置換（上記「特定の置換」）とは、（Ａ）Ｓ４２Ｑ、Ｔ４３Ｅ、Ｋ４５Ｔ、Ｓ４６Ａ、Ｇ４７Ｐ、Ｎ５３Ｑ、Ｓ５４Ｎ、Ｔ２６２Ｇ、Ｓ２９８Ｐ、Ａ４２６Ｐ、及びＶ４５１Ｆから成る群より選択される１種以上のアミノ酸置換；及び／又は（Ｂ）配列番号１に示されるアミノ酸配列における第４１３位〜第４１６番目に相当するアミノ酸領域の配列番号２で示されるアミノ酸配列との置換である。ここで、前記（Ａ）の各置換を表す記号に関して、数字は、配列番号１のアミノ酸配列におけるアミノ酸の位置を意味する。また、数字の前のアルファベットは、その位置に本来存在するアミノ酸の種類を意味する。数字の後のアルファベットは、本来存在するアミノ酸を置換するアミノ酸の種類を意味する。よって、例えば、「Ｓ４２Ｑ」とは、配列番号１のアミノ酸配列における第４２番目のセリン（Ｓ）がグルタミン（Ｑ）に置換されることを意味する。他の置換を表す記号についても同様である。
【００１９】
前記（Ｂ）の置換に関し、配列番号１に示されるアミノ酸配列における第４１３位〜第４１６位のアミノ酸配列とは、ＮＡＴＧ(配列番号１１)であり、この領域を置換する配列番号２で示されるアミノ酸配列とは、ＤＡＤＰＴである。
【００２０】
上記特定のアミノ酸置換（Ａ）及び（Ｂ）は、１種だけが配列番号１のアミノ酸配列又はそれに相当するアミノ酸配列に加えられていてもよく、２種以上の組み合わせで配列番号１のアミノ酸配列又はそれに相当するアミノ酸配列に加えられていてもよい。２種以上のアミノ酸置換が組み合わせて配列番号１のアミノ酸配列又はそれに相当するアミノ酸配列に加えられる場合、その組み合わせは任意である。また、組み合わせられるアミノ酸置換の数も任意であり、例えば、２種以上、３種以上、４種以上、５種以上、６種以上、７種以上、８種以上、９種以上、１０種以上、１１種以上、又は１２種全てであり得る。
【００２１】
一実施形態において、好ましいアミノ酸置換の組み合わせは、Ｓ４２Ｑ、Ｔ４３Ｅ、Ｋ４５Ｔ、Ｓ４６Ａ、Ｇ４７Ｐ、Ｎ５３Ｑ、及びＳ５４Ｎである。一実施形態において好ましいアミノ酸置換の組み合わせは、一実施形態において、好ましいアミノ酸置換の組み合わせは、Ｔ２６２Ｇ、Ｓ２９８Ｐ、及びＡ４２６Ｐである。一実施形態において、好ましいアミノ酸置換の組み合わせは、Ｔ２６２Ｇ、Ｓ２９８Ｐ、Ａ４２６Ｐ、Ｎ４１３Ｄ、Ｔ４１５Ｄ、及びＧ４１６Ｐである。
【００２２】
上述の特定のアミノ酸置換を配列番号１に示されるアミノ酸配列又はそれに相当するアミノ酸配列に有することにより、ポリペプチドは、改善された熱安定性を有する。改善された熱安定性とは、配列番号１のアミノ酸配列を有する野生型のＣＢＨＩと比較して、高い熱安定性を有すること（即ち、同じ温度条件下において、野生型のＣＢＨＩよりも失活し難いこと）を意味する。
【００２３】
熱安定性は、任意の手法で測定することができる。例えば、後述する実施例で用いたprotein thermal shift assay（Kishishita et al., Protein Expr Purif. 2014 Feb;94:40-5.)で、タンパク質の立体構造が変化する温度を測定して熱安定性を求めることができる。この測定方法を採用する場合、野生型ＣＢＨＩの変性温度は６３℃であるため、熱安定性が改善されたＣＢＨＩは、６３℃よりも高い変性温度を有することが好ましい。そのような変性温度は、例えば、６４℃以上、６５℃以上、６６℃以上、６７℃以上、６８℃以上、６９℃以上、７０℃以上、７１℃以上、７２℃以上、７３℃以上、７４℃以上、７５℃以上である。
【００２４】
熱安定性は、ＣＢＨＩを一定の温度で所定の時間保持(熱処理)し、その前後の酵素活性を測定して熱処理後の残存活性に基づいて評価することもできる。残存活性が野生型のＣＢＨＩの残存活性と比較して高ければ、熱安定性が改善されていると評価することができる。例えば、後述する実施例に示すように、ＣＢＨＩは、６５℃で５分間保持した場合の残存活性が、５０％以上であることが好ましく、５５％以上であることがより好ましく、６０％以上であることが更に好ましく、７０％以上であることがより更に好ましい。
【００２５】
本書において、「活性」及び「酵素活性」とは、別段の表示をする場合を除いて、セロビオハイドロラーゼ活性を意味する。セロビオハイドロラーゼ活性の測定方法は公知であり、任意の方法を選択して測定することができる。例えば、後述する実施例で採用した、合成基質PNP-Lacを基質とし、遊離PNPを測定する方法を挙げることができる。
【００２６】
熱安定性が改善したＣＢＨＩであるポリペプチドは、それをコードするポリヌクレオチドを利用して遺伝子工学的手法で製造することができる。また、当該ポリペプチドは、配列番号１に示されるアミノ酸配列の情報に基づいて、一般的なタンパク質の化学合成法（例えば、液相法及び固相法）を用いて製造することも可能である。
【００２７】
熱安定性が改善したＣＢＨＩであるポリペプチドをコードするポリヌクレオチドは、配列番号１に示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列を基に、導入された置換及び他の変異の種類及び位置を考慮して設計し、化学的なＤＮＡの合成法（例えば、フォスフォアミダイト法）や遺伝子工学的手法を用いて容易に取得することができる。ポリヌクレオチドは、単離された状態で存在するポリヌクレオチドであることが好ましい。尚、配列番号１に示されるアミノ酸配列をコードする塩基配列は公知である。
【００２８】
上記ポリヌクレオチドを発現可能な状態で任意のベクターに取り込み、それを用いてベクターの種類に適合した宿主に導入し、発現させることにより、上記ポリペプチドを生産することができる。
【００２９】
ベクターの種類は、宿主細胞の種類を考慮して適宜選択することができる。例えば、プラスミドベクター、コスミドベクター、ファージベクター、ウイルスベクター（例えば、アデノウイルスベクター、レトロウイルスベクター、ヘルペスウイルスベクター等）等を挙げることができる。
【００３０】
発現ベクターの導入に使用される宿主細胞は、当該ポリペプチドを産生できる限り特に制限されず、原核細胞及び真核細胞のいずれでも良い。具体的には、エシェリヒア・コリ等のエシェリヒア・コリ属細菌（例えば、HB101、MC1061、JM109、CJ236、MV1184等）、コリネバクテリウム・グルタミカム等のコリネ型細菌、ストレプトミセス属細菌等の放線菌、バチルス・サブチリス等のバチルス属細菌、ストレプトコッカス属細菌、スタフィロコッカス属細菌等の原核細胞；サッカロミセス属、ピシア属及びクルイベロマイセス属等の酵母、アスペルギルス属、ペニシリウム属、トリコデルマ属及びアクレモニウム属等の真菌細胞；ドロソフィラS2、スポドプテラSf9、カイコ培養細胞等の昆虫細胞；並びに植物細胞等を挙げることができる。枯草菌、酵母、麹菌、放線菌等のタンパク質分泌能を利用して、ポリペプチドを培地中に生産させることもできる。
【００３１】
発現ベクターの宿主細胞内への導入方法は、従来の慣用的に用いられている方法により行うことができる。例えば、コンピテントセル法、プロトプラスト法、エレクトロポレーション法、マイクロインジェクション法、リポソーム融合法等の種々の方法が挙げられる。コリネ型細菌への導入方法としては、具体的には例えば、プロトプラスト法（Ｇｅｎｅ，  ３９，  ２８１−２８６（１９８５））、エレクトロポレーション法（Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，  ７，  １０６７−１０７０）（１９８９））等を使用することができるが、これらに限定されない。
【００３２】
発現ベクターを導入した宿主細胞（例えば、形質転換体）は、改善された熱安定性を有するＣＢＨＩであるポリペプチドを産生するために用いることが可能である。また形質転換体をそのままセルロースを含むバイオマスの糖化に使用することもできる。
【００３３】
上記形質転換体を用いたポリペプチドの製造は、形質転換体を培養し、培養物から当該ポリペプチドを回収することにより実施することができる。培養は、宿主に適した培地を用いて継代培養又はバッチ培養等を行うことができる。また、培養は、形質転換体の内外に生産されたポリペプチドの活性を指標にして、適当量得られるまで実施することができる。
【００３４】
培地としては、宿主細胞に応じて慣用される各種のものを適宜選択して利用でき、培養も宿主細胞の生育に適した条件下で実施できる。例えば、大腸菌の培養にはＬＢ培地などの栄養培地や、Ｍ９培地などの最少培地に炭素源、窒素源、ビタミン源等を添加した培地を用いることができる。
【００３５】
培養条件も宿主の種類に応じて適宜設定することができる。通常、１６〜４２℃、好ましくは２５〜３７℃で５〜１６８時間、好ましくは８〜７２時間培養される。宿主に依存して、振盪培養と静置培養のいずれも可能であるが、必要に応じて攪拌を行ってもよく、通気を行ってもよい。誘導型プロモーターを用いる場合は、培地にプロモーター誘導剤を添加して培養を行うこともできる。
【００３６】
培養物からのポリペプチドの精製又は単離は、公知の手法を適宜組み合わせて行うことができる。例えば、硫酸アンモニウム沈殿、エタノール等の溶媒沈殿、透析、限外濾過、酸抽出、及び各種クロマトグラフィー（例えば、ゲル濾過クロマトグラフィー、アニオン又はカチオン交換クロマトグラフィー、ホスホセルロースクロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、ハイドロキシアパタイトクロマトグラフィー及びレクチンクロマトグラフィー、高速液体クロマトグラフィー等）等を用いた手法が挙げられる。アフィニティークロマトグラフィーに用いる担体としては、例えば、当該ポリペプチドに対する抗体を結合させた担体や、当該ポリペプチドにタグを付加した場合は、そのタグに親和性のある物質を結合した担体を利用することもできる。
【００３７】
当該ポリペプチドが宿主の細胞内に蓄積される場合は、形質転換細胞を破砕し、破砕物の遠心上清から上記と同様にして精製又は単離することができる。例えば、培養終了後、遠心により集菌した菌体を菌体破砕用バッファー（２０〜１００  ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）、５ｍＭ  ＥＤＴＡ）に懸濁し、超音波破砕し、破砕処理液を１００００〜１５０００ｒｐｍで１０〜１５分間遠心して上清を得ることができる。遠心後の沈殿は、必要に応じて塩酸グアニジウム又は尿素などで可溶化したのち更に精製することもできる。
【００３８】
当該ポリペプチドを、セルロースを含む試料（例えば、セルロース系バイオマス資源）に接触させることにより、バイオマス資源を分解し、糖液を製造することができる。当該ポリペプチドを用いてバイオマス資源を糖化する場合、更に他のセルラーゼ等の酵素を併用することで、より効率的に糖液を製造することもできる。
【００３９】
セルロース系バイオマスの種類は、ＣＢＨＩによって分解可能である限り特に制限されないが、例えば、バガス、木材、ふすま、麦わら、稲わら、もみがら、大豆粕、大豆オカラ、コーヒー粕、コメ糠等を挙げることができる。
【００４０】
当該ポリペプチドを水溶液中でセルロースに接触させる場合は、反応液のｐＨおよび温度を、ＣＢＨＩが失活しない範囲に設定することが好ましい。熱安定性が改善されているため、至適温度又はその付近の温度で反応を行うことが効率的に試料を分解し、糖液を得るという観点から好ましい。例えば、温度条件は、５〜９０℃、好ましくは１５〜８０℃、より好ましくは３０〜７５℃、より好ましくは５０〜７０℃又は５０〜６５℃に設定することができる。また、一実施形態において、温度条件は、６３℃以上、６４℃以上、６５℃以上、６６℃以上に設定することができる。ｐＨは、ｐＨ４〜９の条件で実施することができる。添加するポリペプチドの量は、特に制限されないが、例えば、０．１〜０．５％（ｗ／ｗ）の範囲とすることができる。
【実施例】
【００４１】
以下、実施例により本発明についてさらに詳細に説明するが、本発明はこれらに制限されるものではない。【００４２】
タラロマイセス・セルロィティカス由来のＣＢＨＩの活性ドメインの構造座標データを用いて、タラロマイセス・セルロィティカスＣＢＨＩの活性ドメインの立体構造を予測し、モデル構築を行った。次に、タラロマイセス・セルロィティカス由来のＣＢＨＩの活性ドメイン構造とタラロマイセス・エマルソーニ由来のＣＢＨＩの活性ドメイン構造を比較して、タラロマイセス・セルロィティカス由来のＣＢＨＩの安定性に影響していると思われる個所を探索した。得られた比較構造情報及びタンパク質安定化原理（例えば、疎水性相互作用、水素結合の強化、プロリンによるペプチドループ構造の安定化等）を利用して、タラロマイセス・セルロィティカス由来のＣＢＨＩのアミノ酸置換をタンパク質工学的に行った。具体的には、後述する変異を導入した。【００４３】
タラロマイセス・セルロィティカス由来のＣＢＨＩをコードする遺伝子（ポリヌクレオチド）をクローニングし、同生物由来のデンプン誘導性のグルコアミラーゼプロモーター及び該ＣＢＨＩのシグナル配列の下流に繋ぎ、発現プラスミドベクターを構築した（Inoue et al., J. Ind. Microbiol. Biotechnol., 2013, 40: 823-830）。この発現ベクターで大腸菌（ＤＨ５α）を形質転換した。得られたプラスミドを精製し、これをテンプレートとしてクイックチェンジ法により遺伝子に変異導入を行った。変異の導入には、下記表１に示すプライマーセットを単独又は組み合わせて用いて次の変異体を作製した：配列番号１で示されるアミノ酸配列において、第２６２位のトレオニンがグリシンに置換された変異体１；第２９８位のセリンがプロリンに置換された変異体２；第４２６位のアラニンがプロリンに置換された変異体３；第４１３位のアスパラギンがアスパラギン酸に置換され、第４１５位のトレオニンがアスパラギン酸に置換され、且つ、第４１６位のグリシンがプロリンに置換された変異体４；変異体１〜３の変異を組み合わせた変異体５；変異体１〜４の変異を組み合わせた変異体６；第４２位のセリンがグルタミンに置換され、第４３位のスレオニンがグルタミン酸に置換され、第４５位のリジンがスレオニンに置換され、第４６位のセリンがアラニンに置換され、第４７位のグリシンがプロリンに置換され、第５３位のアスパラギンがグルタミンに置換され、且つ、第５４位のセリンがアスパラギンに置換された変異体７；変異体１〜４及び変異体７を組み合わせた変異体８。【００４４】
【表１】
2015182570.tif 000003
【００４５】
変異体７の作成には、第４２位〜第４７位のアミノ酸の置換に対応するプライマーセット（F1及びF2）と第５３位及び５４位のアミノ酸の置換に対応するプライマーセット（F2及びF2）を用いた。【００４６】
変異を導入した遺伝子の配列をシークエンシングで確認し、各遺伝子を組み込んだプラスミドでタラロマイセス・セルロィティカスを形質転換した。形質転換体をデンプン培地で培養し、菌体外に変異型ＣＢＨＩを分泌させた。培養液を回収し６０％飽和となるように硫酸アンモニウムを添加した。沈殿物を遠心分離器で回収し、２０ｍＭ  ＭＥＳ緩衝液（ｐＨ６．５）に溶解後、同緩衝液で平衡化した脱塩カラムＨｉＰｒｅｐ  ｄｅｓａｌｔｉｎｇ  ２６／１０を用いて脱塩処理を行った。脱塩されたサンプルは２０ｍＭ  ＭＥＳ緩衝液（ｐＨ６．５）で平衡化したイオン交換カラムＲｅｓｏｕｒｃｅＱにアプライされ、１Ｍ塩化ナトリウムを含む２０ｍＭ  ＭＥＳ緩衝液（ｐＨ６．５）で溶出された。ＣＢＨ１活性を示す溶出画分は１．２Ｍになるように硫酸アンモニウムを加えた後、１．２Ｍ硫酸アンモニウムを含む２０ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．５）で平衡化した疎水カラムＲｅｓｏｕｒｃｅ  Ｉｓｏにアプライされ、２０ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．５）によって、溶出し、活性を示す画分を濃縮した。当該か区分についてＳＤＳ−ＰＡＧＥで単一バンドを示すことを確認し、精製を完了した。このようにして精製した酵素について、耐熱性と活性を測定した。【００４７】
酵素活性の測定は、合成基質ＰＮＰ−Ｌａｃを用いて遊離するＰＮＰを測定することにより求めた。耐熱性は、Kishishita et al., (Protein Expr Purif. 2014 Feb;94:40-5.)に記載されるｐｒｏｔｅｉｎ  ｔｈｅｒｍａｌ  ｓｈｉｆｔ  ａｓｓａｙ（ＴＳＡ）を用いて酵素蛋白質の立体構造が変化する変性温度（Ｔｍ）を測定して評価した。ＴＳＡは、それぞれのＣＢＨＩ変異体酵素を２０ｍＭ  酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．０）に溶解させたものを用いて行った。測定結果を下記の表２に示す。【００４８】
【表２】
2015182570.tif 000004
【００４９】
表２に示される通り、変異体１〜８は、いずれも野生型の酵素と比較して耐熱性（熱安定性）が向上していた。特に、複数の変異を導入した変異体４〜６及び８では、熱安定性の向上が顕著であった。一方、変異体１〜８は、野生型と比較して酵素活性が若干低下しているが、改善された熱安定性を考慮すれば、無視できる程度である。【００５０】
次に、野生型ＣＢＨＩ及び変異体１〜８のいずれかを０．０２〜０．０５ｍｇ／ｍｌの濃度で含む20 mM 酢酸ナトリウム緩衝液（pH 5.0）を調製した。これを65℃の温度で維持し、１分後、５分後、１０分後、１５分後、３０分後、６０分後、及び９０分後に酵素溶液を一部取りだし、その残存活性を45℃で測定した。基質は、1mM PNP-Lactoseを用いて、上記と同様の測定方法で行った。残存活性は、６５℃での処理開始時（即ち、０分）の時の活性を１００％として算出した。結果を図１に示す。図１に示される通り、加熱5分後の残総活性は、野生型４０％であったが、変異体１は５５％、変異体２は８０％、変異体３と４は８０−９０％、変異体５、６及び８は１００％、変異体７は７３％であった。特に、変異体６及び８は６０分後も活性の低下は見られなかった。 【００５１】
更に、微結晶性セルロース（Ａｖｉｃｅｌ）を用いて、変異体６及び野生型ＣＢＨＩの最適温度を調べた（図２）。変異体６及び野生型ＣＢＨＩを微結晶性セルロース（Ａｖｉｃｅｌ）基質を含む緩衝液（pH5.0）中で、５０℃〜７５℃、2時間反応させて遊離する可溶化糖を還元力により定量した。その結果、図２に示される通り、変異体６は微結晶性セルロースを基質とした場合においても、野生型よりも高い最適温度を有することが確認された。同様の傾向が他の変異体にも期待される。
【図１】
2015182570.tif 000005
【図２】
2015182570.tif 000006
【配列表】
2015182570000001.app
【国際調査報告】
2015182570.tif 000007
2015182570.tif 000008
2015182570.tif 000009
2015182570.tif 000010