(57)【要約】  本発明は、下記一般式（１）で表される飽和脂肪酸、及びその塩からなる群より選択される少なくとも１種を有効成分として含有する粘膜免疫賦活剤を提供する。  Ｒ−ＣＯＯＨ      （１）［一般式（１）中、Ｒは、１つのヒドロキシ基で置換された炭素数７〜１１のアルキル基を示す。］【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記一般式（１）で表される飽和脂肪酸、及びその塩からなる群より選択される少なくとも１種を有効成分として含有する粘膜免疫賦活剤。
Ｒ−ＣＯＯＨ      （１）
［一般式（１）中、Ｒは、１つのヒドロキシ基で置換された炭素数７〜１１のアルキル基を示す。］
【請求項２】
前記Ｒが、１つのヒドロキシ基で置換されたノニル基である、請求項１に記載の粘膜免疫賦活剤。
【請求項３】
前記飽和脂肪酸が、３−ヒドロキシデカン酸及び１０−ヒドロキシデカン酸である、請求項１に記載の粘膜免疫賦活剤。
【請求項４】
前記飽和脂肪酸が、１０−ヒドロキシデカン酸である、請求項１に記載の粘膜免疫賦活剤。
【請求項５】
Ｍ細胞の分化を誘導することに基づくものである、請求項１〜４のいずれか一項に記載の粘膜免疫賦活剤。
【請求項６】
請求項１〜５のいずれか一項に記載の粘膜免疫賦活剤を含む、粘膜免疫賦活用食品組成物。
【請求項７】
請求項１〜５のいずれか一項に記載の粘膜免疫賦活剤を含むアジュバント。
【請求項８】
請求項７に記載のアジュバントを含むワクチン製剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、新規な粘膜免疫賦活剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
外界と接する腸管及び呼吸器等の粘膜組織は初発感染部位となる場合が多いため、粘膜免疫機能を強化することは、予防医学的観点からみて、重要である。感染防御機構の第一線バリアとして、パイエル板及び鼻咽頭関連リンパ組織（ＮＡＬＴ）は、粘膜免疫応答の誘導及び制御に関して中心的な役割を担っている。小襞細胞（Ｍｉｃｒｏｆｏｌｄ細胞又はＭ細胞）は、パイエル板等の腸管関連リンパ組織、及びＮＡＬＴ等のリンパ濾胞を覆う濾胞関連上皮（ＦＡＥ）に見出される。Ｍ細胞は、腸管内の抗原の取り込み及びトランスサイトーシスを介して粘膜免疫応答の開始に関わっている（非特許文献１）。糖タンパク質２（ＧＰ２）は、Ｍ細胞特異的マーカーとして知られている（非特許文献２）。【０００３】
粘膜免疫賦活剤として、特許文献１には、ローヤルゼリー、プロポリス、花粉荷から選ばれる少なくともいずれか１つのミツバチ産品を有効成分として含有する粘膜免疫賦活剤が開示されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特開２０１１−８４５２５号公報
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献１】Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ  ｏｆ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｔａ，Ｆｏｏｄ  ａｎｄ  Ｈｅａｌｔｈ，２０１４年，３３巻（３号），ｐｐ．９１−９７
【非特許文献２】Ｍｕｃｏｓａｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，２０１３年，６巻（４号），ｐｐ．６６６−６７７
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
特許文献１に開示されるように粘膜免疫賦活剤はいくつか知られてはいるものの、需要者の多様なニーズを満たすためには、未だ充分な選択肢が存在するとは言えない。そこで、本発明は、新規な粘膜免疫賦活剤を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明は、下記一般式（１）で表される飽和脂肪酸、及びその塩からなる群より選択される少なくとも１種を有効成分として含有する粘膜免疫賦活剤に関する。
Ｒ−ＣＯＯＨ      （１）
［一般式（１）中、Ｒは、１つのヒドロキシ基で置換された炭素数７〜１１のアルキル基を示す。］【０００８】
本発明の粘膜免疫賦活剤は、上記一般式（１）で表される飽和脂肪酸、及びその塩からなる群より選択される少なくとも１種を有効成分としているため、粘膜免疫を活性化することができる。【０００９】
上記飽和脂肪酸は、Ｒが１つのヒドロキシ基で置換されたノニル基であることが好ましい。また、上記飽和脂肪酸は、３−ヒドロキシデカン酸及び１０−ヒドロキシデカン酸であることがより好ましい。これにより、粘膜免疫をより一層活性化することができる。【００１０】
上記飽和脂肪酸は、１０−ヒドロキシデカン酸であることが更に好ましい。１０−ヒドロキシデカン酸は、ローヤルゼリーの構成成分としても知られており、生体への安全性が高く、長期間継続的に摂取することもできる。【００１１】
本発明の粘膜免疫賦活剤は、上記一般式（１）で表される飽和脂肪酸、及びその塩からなる群より選択される少なくとも１種を有効成分としていることにより、Ｍ細胞の分化を誘導することができる。本発明の粘膜免疫賦活剤による作用メカニズムの少なくとも一部は、このＭ細胞の分化誘導に基づくものである。【００１２】
本発明はまた、上記粘膜免疫賦活剤を含む、粘膜免疫賦活用食品組成物にも関する。当該食品組成物には、食品、健康食品、機能性表示食品、栄養補助食品、サプリメント及び特定保健用食品が含まれる。【００１３】
上記食品組成物は、本発明の粘膜免疫賦活剤を含んでいることから、粘膜免疫を活性化する機能を有しており、粘膜免疫賦活用として好適に使用される。【００１４】
本発明は更に、上記粘膜免疫賦活剤を含むアジュバントにも関する。上記粘膜免疫賦活剤は、粘膜免疫応答の開始に関わるＭ細胞の分化を誘導することができるため、アジュバントとして好適に使用することができる。【００１５】
本発明は更にまた、上記アジュバントを含むワクチン製剤にも関する。【００１６】
本発明は、粘膜免疫賦活に使用するための、上記一般式（１）で表される飽和脂肪酸、又はその塩と捉えることもできる。本発明はまた、粘膜免疫賦活に使用するための、上記一般式（１）で表される飽和脂肪酸、又はその塩からなる群より選択される少なくとも１種を有効成分として含有する剤と捉えることもできる。【００１７】
本発明は、粘膜免疫賦活剤の製造における、上記一般式（１）で表される飽和脂肪酸、又はその塩の使用と捉えることもできる。【００１８】
本発明は、上記一般式（１）で表される飽和脂肪酸、又はその塩からなる群より選択される少なくとも１種を有効成分として含有する粘膜免疫賦活剤の有効量を、それを必要とする対象に投与するステップを含む、粘膜免疫を賦活する方法と捉えることもできる。
【発明の効果】
【００１９】
本発明により、新規な粘膜免疫賦活剤が提供される。本発明の粘膜免疫賦活剤は、Ｍ細胞の分化を誘導することができるため、アジュバントとしても有用である。
【図面の簡単な説明】
【００２０】
【図１】Ｍ細胞分化誘導試験の結果を示すＦＡＣＳのヒストグラムである。
【図２】Ｍ細胞分化誘導試験の結果を示す電子顕微鏡写真である。
【図３】Ｍ細胞分化誘導試験の結果を示す蛍光免疫組織染色写真である。
【図４】免疫賦活試験の結果を示す蛍光免疫組織染色写真である。
【図５】抗体価の測定結果を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００２１】
以下、本発明を実施するための形態について詳細に説明する。ただし、本発明は以下の実施形態に限定されるものではない。
【００２２】
本発明の粘膜免疫賦活剤は、一般式（１）で表される飽和脂肪酸（以下、単に「飽和脂肪酸」ともいう。）、及びその塩からなる群より選択される少なくとも１種を有効成分として含有する。
Ｒ−ＣＯＯＨ      （１）
一般式（１）中、Ｒは、１つのヒドロキシ基で置換された炭素数７〜１１のアルキル基を示す。
【００２３】
Ｒ中の炭素数７〜１１のアルキル基としては、ヘプチル基、オクチル基、ノニル基、デシル基及びウンデシル基を挙げることができる。Ｒ中の１つのヒドロキシ基は、これらのアルキル基中の任意の水素原子と置換されていればよい。
【００２４】
Ｒは、１つのヒドロキシ基で置換されたノニル基であることが好ましい。この場合の飽和脂肪酸としては、２−ヒドロキシデカン酸、３−ヒドロキシデカン酸、４−ヒドロキシデカン酸、５−ヒドロキシデカン酸、６−ヒドロキシデカン酸、７−ヒドロキシデカン酸、８−ヒドロキシデカン酸、９−ヒドロキシデカン酸、１０−ヒドロキシデカン酸を挙げることができる。
【００２５】
飽和脂肪酸としては、３−ヒドロキシデカン酸及び１０−ヒドロキシデカン酸がより好ましく、１０−ヒドロキシデカン酸が更に好ましい。
【００２６】
飽和脂肪酸は、光学異性体が存在する場合、Ｒ体及びＳ体のいずれであってもよい。
【００２７】
飽和脂肪酸は、食品用途又は医薬用途に許容されるアルカリ金属、アルカリ土類金属、その他の金属、アンモニウム等との塩であってもよい。具体的には、例えば、カリウム塩、ナトリウム塩、カルシウム塩、マグネシウム塩を挙げることができる。
【００２８】
上述した飽和脂肪酸及びその塩は、ひまし油（ｃａｓｔｏｒ  ｏｉｌ）に含まれるリシノール酸をアルカリ融解する方法（例えば、Ｅｕｒ．  Ｊ．  Ｌｉｐｉｄ  Ｓｃｉ．  Ｔｅｃｈｎｏｌ．，２０１０年，１１２（１），ｐｐ．１０−３０；Ｊ．  Ａｍ．  Ｏｉｌ  Ｃｈｅｍ．  Ｓｏｃ．，１９７４年，５１（３），ｐｐ．６５−７１）など、常法に従い製造することができる。また、市販されているものを使用してもよい。
【００２９】
本発明の粘膜免疫賦活剤は、上述した飽和脂肪酸及びその塩を１種単独で含有していてもよく、２種以上を組み合わせて含有していてもよい。
【００３０】
本発明の粘膜免疫賦活剤は、上記有効成分のみを含有するものであってもよく、本発明による効果を妨げない限り、他の成分を更に含有していてもよい。他の成分としては、例えば、薬学的に許容される成分（例えば、賦形剤、結合材、滑沢剤、崩壊剤、乳化剤、界面活性剤、基剤、溶解補助剤、懸濁化剤）、食品として許容される成分（例えば、ミネラル類、ビタミン類、フラボノイド類、キノン類、ポリフェノール類、アミノ酸、核酸、必須脂肪酸、清涼剤、結合剤、甘味料、崩壊剤、滑沢剤、着色料、香料、安定化剤、防腐剤、徐放調整剤、界面活性剤、溶解剤、湿潤剤）を挙げることができる。
【００３１】
本発明の粘膜免疫賦活剤は、有効成分量換算で、体重６０ｋｇの成人に一日当たり１ｍｇ以上１０ｇ以下の用量で用いることができ、５ｍｇ以上８ｇ以下の用量で用いることが好ましく、１０ｍｇ以上３ｇ以下の用量で用いることがより好ましく、１５ｍｇ以上１．５ｇ以下の用量で用いることが更に好ましく、２０ｍｇ以上１ｇ以下の用量で用いることが更により好ましく、２２ｍｇ以上５００ｍｇ以下の用量で用いることが更によりまた好ましく、２４ｍｇ以上２５０ｍｇ以下の用量で用いることが特に好ましい。本発明の粘膜免疫賦活剤を小児に用いる場合の用量は、例えば、６歳から１３歳未満では成人の３／５用量、１歳から６歳未満では成人の２／５用量、１歳未満では１／５用量としてもよい。当該用量は、摂取する人の健康状態、投与方法及び他の剤との組み合わせ等の因子に応じて、上記範囲内で適宜設定することができる。
【００３２】
本発明の粘膜免疫賦活剤は、経口投与（摂取）されてもよく、非経口投与（例えば、鼻腔内投与）されてもよい。本発明の粘膜免疫賦活剤は、一日当たりの有効成分量が上述した範囲内にあれば、一日一回投与されてもよいし、一日二回、一日三回等、複数回に分けて投与されてもよい。また、本発明の粘膜免疫賦活剤は、継続的に投与されるのが好ましい。継続的に投与されることにより、粘膜免疫賦活効果がより一層顕著に発揮される。
【００３３】
本発明の粘膜免疫賦活剤は、固体、液体、ペースト等のいずれの形状であってもよい。本発明の粘膜免疫賦活剤の形態は、例えば、素錠、糖衣錠、顆粒、粉末、タブレット、カプセル（ハードカプセル、ソフトカプセル、シームレスカプセル）であってもよい。本発明の粘膜免疫賦活剤は、例えば、有効成分である飽和脂肪酸、又はその塩と、必要に応じて他の成分とを混合して上記剤形に成形することによって調製することができる。
【００３４】
本発明の粘膜免疫賦活剤は、医薬品、医薬部外品及び食品組成物そのものとして、並びに医薬品、医薬部外品及び食品組成物に添加して使用することができる。食品組成物としては、食品の３次機能（体調調節機能）が強調された食品であることが好ましい。食品の３次機能が強調された食品としては、例えば、健康食品、機能性表示食品、栄養補助食品、サプリメント及び特定保健用食品を挙げることができる。
【００３５】
本発明の粘膜免疫賦活剤からなる医薬品、医薬部外品若しくは食品組成物、又は本発明の粘膜免疫賦活剤を含む医薬品、医薬部外品若しくは食品組成物は、粘膜免疫賦活用であってよく、「免疫力をアップする旨」、「ウイルスに負けない体を作る旨」、「免疫機能をサポートする旨」、「Ｍ細胞の増加に役立つ旨」、「免疫力を保つ旨」、「免疫力を維持する旨」、「風邪をひきやすい方に適する旨」、「免疫機能を良好にする旨」「弱った免疫系が衰弱するのを防ぐのに役立つ旨」「食中毒菌に負けない体をつくる旨」「粘膜の健康をサポートする旨」、「粘膜免疫をサポートする旨」、「鼻やのどの健康をサポートする旨」、「冬の健康維持に役立つ旨」、「寒い時期の健康維持に役立つ旨」、「寒い季節に負けない旨」等の表示が付されていてもよい。
【００３６】
医薬品、医薬部外品及び食品組成物における本発明の粘膜免疫賦活剤の含有量は、一日当たり摂取する有効成分量が上述した範囲内となるように、医薬品、医薬部外品及び食品組成物の種類等に応じて適宜設定すればよい。
【００３７】
本発明の粘膜免疫賦活剤を食品組成物そのものとして、又は食品組成物に添加して使用する場合、食品組成物の形態は特に限定されず、例えば、飲料類（コーヒー、ジュース、茶飲料等の清涼飲料、乳飲料、乳酸菌飲料、ヨーグルト飲料、炭酸飲料等）；スプレッド類（カスタードクリーム等）；ペースト類（フルーツペースト等）；洋菓子類（チョコレート、ドーナツ、パイ、シュークリーム、ガム、ゼリー、キャンデー、クッキー、ケーキ、プリン等）；和菓子類（大福、餅、饅頭、カステラ、あんみつ、羊羹等）；氷菓類（アイスクリーム、アイスキャンデー、シャーベット等）；食品類（カレー、牛丼、雑炊、味噌汁、スープ、ミートソース、パスタ、漬物、ジャム等）；調味料類（ドレッシング、ふりかけ、旨味調味料、スープの素等）であってもよい。
【００３８】
本発明の粘膜免疫賦活剤を食品の３次機能が強調された食品（例えば、健康食品、機能性表示食品、栄養補助食品、サプリメント又は特定保健用食品）そのものとして、又は食品の３次機能が強調された食品に添加して使用する場合、食品の３次機能が強調された食品の形態は、上述した食品の形態に加えて、例えば、素錠、糖衣錠、顆粒、粉末、タブレット、カプセル（ハードカプセル、ソフトカプセル、シームレスカプセル）であってもよい。
【００３９】
本発明の粘膜免疫賦活剤を医薬品若しくは医薬部外品そのものとして、又は医薬品若しくは医薬部外品に添加して使用する場合、医薬品又は医薬部外品の形態は特に限定されず、例えば、素錠、糖衣錠、顆粒、粉末、タブレット、カプセル（ハードカプセル、ソフトカプセル、シームレスカプセル）であってもよい。
【００４０】
本発明の粘膜免疫賦活剤を添加した医薬品、医薬部外品又は食品組成物の製法は特に限定されず、適宜公知の方法に従うことができる。例えば、医薬品、医薬部外品又は食品組成物の製造工程における中間製品又は最終製品に、本発明の粘膜免疫賦活剤を混合等して、上記の用途に用いられる医薬品、医薬部外品又は食品組成物を得ることができる。
【００４１】
上述した本発明は、粘膜免疫賦活に使用するための、上記一般式（１）で表される飽和脂肪酸、又はその塩と捉えることもできる。本発明はまた、粘膜免疫賦活に使用するための、上記一般式（１）で表される飽和脂肪酸、又はその塩からなる群より選択される少なくとも１種を有効成分として含有する剤と捉えることもできる。本発明は更に、粘膜免疫賦活剤の製造における、上記一般式（１）で表される飽和脂肪酸、又はその塩の使用と捉えることもできる。
【００４２】
上述した本発明はまた、上記一般式（１）で表される飽和脂肪酸、又はその塩からなる群より選択される少なくとも１種を有効成分として含有する粘膜免疫賦活剤の有効量を、それを必要とする対象に投与するステップを含む、粘膜免疫を賦活する方法と捉えることもできる。対象は、齧歯類、有蹄類、食肉類、有袋類、及び霊長類であってよい。対象は、カニクイザル及びヒト等の哺乳動物であることが好ましく、ヒトであることがより好ましい。
【００４３】
〔ワクチン製剤〕
本発明の粘膜免疫賦活剤は、アジュバントとしても使用できる。本発明のアジュバントによる作用メカニズムの少なくとも一部は、粘膜免疫応答の開始に関わるＭ細胞の分化を誘導することに基づくものである。本実施形態に係るアジュバントは、上記粘膜免疫賦活剤を含むものであってもよく、上記粘膜免疫賦活剤からなるものであってもよい。
【００４４】
本発明のワクチン製剤は、上記アジュバントを含むものである。本発明のアジュバントは、種々の免疫原と組み合わせてワクチン製剤とすることができる。本発明のワクチン製剤は、アジュバントと免疫原が混合されたものであってもよく、またアジュバントと免疫原がそれぞれ分離されており、投与時に混合されるか又は別々に投与されてもよい。本発明のワクチン製剤は、治療用であってもよく、予防用であってもよい。
【００４５】
本発明のアジュバントと組み合わせる免疫原としては、ヒト等の哺乳動物に対して免疫応答を惹起する抗原であれば特に制限されない。免疫原の具体例としては、インフルエンザウイルス、ロタウイルス、アデノウイルス、ノロウイルス、麻しんウイルス、風しんウイルス、おたふくかぜウイルス、エイズウイルス、肝炎ウイルス、ポリオウイルス、狂犬病ウイルス、百日せき菌、ジフテリア菌、ヘリコバクター・ピロリ菌、出血性大腸菌（ＥＨＥＣ）、クラミジア原虫、マイコプラズマ原虫、マラリア原虫、コクシジウム原虫、及び住血吸虫からなる群より選択される一種又は二種以上の病原微生物及びこれら由来の抗原、プリオンタンパク質等を挙げることができる。これらの免疫原は、不活化されたものであってもよく、不活化されていないものであってもよい。
【００４６】
本発明のワクチン製剤における免疫原とアジュバントの量比は、使用する免疫原の種類、ワクチン製剤の目的等に応じて適宜設定することができるが、例えば、１：０．０００１〜１：１０，０００（重量比）とすることができ、１：０．１〜１：１０（重量比）とすることが好ましい。
【００４７】
本発明のワクチン製剤の形状は、液状であってもよく、粉末状であってもよい。本発明のワクチン製剤の形態は特に限定されず、例えば、素錠、糖衣錠、顆粒、粉末、タブレット、カプセル（ハードカプセル、ソフトカプセル、シームレスカプセル）であってもよい。
【００４８】
本発明のワクチン製剤には、公知の安定剤及び防腐剤等を含ませてもよい。本発明のワクチン製剤は、公知の方法により製造することができる。本発明のワクチン製剤は、経口接種されてもよく、経鼻摂取されてもよい。
【００４９】
本発明のワクチン製剤は、対象にアジュバントを投与するステップと、当該対象に免疫原を投与するステップとを含む方法により投与することができる。アジュバントの投与と免疫原の投与は、同時に行ってもよいし、別々に行ってもよい。また、例えば、アジュバントの投与を先行して行い、次いで免疫原の投与を行うこともできる。さらに、アジュバントを継続的に投与しつつ、適時に免疫原の投与を行うこともできる。本発明のワクチン製剤は、例えば、アジュバントを継続的に投与した後、免疫原を投与するように用いられることが好ましい。これにより、免疫応答の誘導をより一層増強することができる。アジュバントを継続的に投与する態様の具体例としては、例えば、１日１回の有効量の投与を３日以上、好ましくは７日以上、より好ましくは１４日以上、更に好ましくは２１日以上、継続することが挙げられる。また、一日あたりの有効量の範囲内で、一日二回、一日三回等、複数回に分けて投与されてもよい。
【００５０】
アジュバントの有効量は、有効成分量換算で、体重６０ｋｇの成人に一日当たり１ｍｇ以上１０ｇ以下の用量であり、５ｍｇ以上８ｇ以下の用量であることが好ましく、１０ｍｇ以上３ｇ以下の用量であることがより好ましく、１５ｍｇ以上１．５ｇ以下の用量であることが更に好ましく、２０ｍｇ以上１ｇ以下の用量であることが更により好ましく、２２ｍｇ以上５００ｍｇ以下の用量であることが更によりまた好ましく、２４ｍｇ以上２５０ｍｇ以下の用量であることが特に好ましい。また、小児に用いる場合の有効量は、例えば、６歳から１３歳未満では成人の３／５用量、１歳から６歳未満では成人の２／５用量、１歳未満では１／５用量としてもよい。当該用量は、摂取する人の健康状態、投与方法及び他の剤との組み合わせ等の因子に応じて、上記範囲内で適宜設定することができる。
【実施例】
【００５１】
以下、実施例に基づいて本発明をより具体的に説明する。ただし、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。【００５２】
［試験例１：Ｍ細胞分化誘導試験−インビトロ試験］
〔細胞培養〕
インビトロＭ細胞モデルとして、ヒト腸管上皮細胞由来のＣａｃｏ−２細胞を使用した。Ｃａｃｏ−２細胞は、ＥＭＥＭ培地（日水製薬株式会社製）に２％ウシ胎児血清（ＦＣＳ：ＣＡＮＳＥＲＡ  ＩＮＴＥＲＮＡＴＩＯＮＡＬ社製）、２ｍＭグルタミン（和光純薬株式会社製）、及び０．１ｍＭ非必須アミノ酸（Ｇｉｂｃｏ社製）を補充した培地を使用して、３７℃、５％ＣＯ２存在下で培養した。細胞は、対数増殖の範囲内（２．０×１０５〜１．０×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍＬ）で継代培養を行った。なお、細胞濃度はトリパンブルー染色法により、生細胞数と死細胞数とを力ウントして求めた。【００５３】
〔蛍光活性化細胞分類（ＦＡＣＳ）解析〕
各種脂肪酸（１０−ヒドロキシデカン酸、（＋／−）−３−ヒドロキシデカン酸、（９Ｒ）−９，１０−ジヒドロキシデカン酸、１０−ヒドロキシ−２−（Ｅ）−デセン酸）によるＭ細胞の分化誘導を、ＧＰ２を指標としてＦＡＣＳにより解析した。１０−ヒドロキシデカン酸（１０ＨＤＡＡ）は、ＳＩＧＭＡ−ＡＬＤＲＩＣＨ社製のものを、（＋／−）−３−ヒドロキシデカン酸（３ＨＤＡＡ）は、ＳＩＧＭＡ−ＡＬＤＲＩＣＨ社製のものを、１０−ヒドロキシ−２−（Ｅ）−デセン酸（１０−ＨＤＡ）は、和光純薬工業株式会社製のものを、それぞれ用いた。（９Ｒ）−９，１０−ジヒドロキシデカン酸（ＤＤＡ−１１）は、Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ：Ａｓｙｍｍｅｔｒｙ，２００９年，２０，ｐｐ４５７−４６０の方法を基に（４Ｒ）−４−（２−Ｈｙｄｒｏｘｙｅｔｈｙｌ）−２，２−ｄｉｍｅｔｈｙｌ−１，３−ｄｉｏｘｏｌａｎｅをトシル化し、Ｇｒｉｇｎａｒｄ反応により５−Ｂｒｏｍｏ−１−ｐｅｎｔｅｎｅで鎖を延長後、オゾン分解、Ｄｉｅｔｈｙｌｐｈｏｓｐｈｏｎｏｉｃａｃｉｄ  ｅｔｈｙｌｅｓｔｅｒとの  Ｗｉｔｔｉｇ反応、接触水素化反応による水素添加、酢酸処理によるアセトナイドの除去、水酸化カリウム処理によるエチル基の除去を経て合成し、用いた。【００５４】
上記各脂肪酸は、ＤＭＳＯ溶液として調製した（１０ｍＭ）。６ウェルプレートにＣａｃｏ−２細胞を播種し、単層膜を形成させた後、上記各脂肪酸を終濃度が１００μＭとなるよう添加した。また、対照として、同量のＤＭＳＯを添加した。培地は上述のとおりである。添加後、３７℃、５％ＣＯ２存在下で３日間培養した。培養後、１ｍＭ  ＥＤＴＡ・２Ｎａ／ＰＢＳ（−）（ｐＨ７．２）で細胞を回収し、ウサギ抗ＧＰ２抗体（ＩＭＧＥＮＥＸ社製）及びＡｌｅｘａ４８８標識抗ウサギ抗体（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｐｒｏｂｅｓ社製）で染色した。染色した細胞をＦＡＣＳ（ＢＥＣＫＭＡＮ  ＣＯＵＬＴＥＲ社製）で解析し、ＧＰ２発現量を定量した。【００５５】
ＦＡＣＳのヒストグラムを図１に示す。図１に示すように、１０−ヒドロキシデカン酸（図１（ａ））及び（＋／−）−３−ヒドロキシデカン酸（図１（ｂ））は、ＧＰ２の発現を誘導した。また、１０−ヒドロキシデカン酸の方がより強くＧＰ２の発現を誘導した。一方、（９Ｒ）−９，１０−ジヒドロキシデカン酸（図１（ｃ））及び１０−ヒドロキシ−２−（Ｅ）−デセン酸（図１（ｄ））はＧＰ２の発現を誘導しなかった。【００５６】
〔形態解析〕
トランズウェルインサート（６．５ｍｍ  Ｔｒａｎｓｗｅｌｌ，コーニング社製）にＣａｃｏ−２細胞を２×１０５ｃｅｌｌｓ播種し、単層膜を形成させた後、単層膜の頂端側から１０−ヒドロキシデカン酸（終濃度１００μＭ）を作用させ、３７℃、５％ＣＯ２存在下で３日間培養した。培養後、トランズウェルインサートの膜ごと切断し、電子顕微鏡（ＪＥＯＬ社製）で細胞形態を観察した。【００５７】
電子顕微鏡写真を図２に示す。一般的に、Ｍ細胞は形態学的に頂端側の微絨毛（ｍｉｃｒｏｖｉｌｌｉ）が近傍の上皮細胞よりも短くなるという特徴を有する。図２中矢印で示したとおり、１０−ヒドロキシデカン酸を作用させることにより、微絨毛が短い細胞が観察された。この結果から、１０−ヒドロキシデカン酸の作用により、Ｃａｃｏ−２細胞が形態的にＭ細胞様細胞に変化したことを示すと考えられる。【００５８】
［試験例２：Ｍ細胞分化誘導試験−インビボ試験］
〔試験方法〕
１０−ヒドロキシデカン酸のＤＭＳＯ溶液（１０ｍＭ）を、ＰＢＳ（−）で１００倍希釈して試験液を調製した。カニクイザル（Ｍａｃａｃａ  ｆａｓｃｉｃｕｌａｒｉｓ）の雄３匹（試験開始時３〜４歳、試験開始時の体重３．５３〜４．３６ｋｇ）を被験動物とした。ファインアトマイザー（ネイザル）（商品番号：ＦＡＮ０２０，製造販売元：吉川化成株式会社）を用いて、上記試験液をカニクイザルの左右鼻腔に約０．１ｍＬずつ噴霧した。対照として、ＰＢＳ（−）を用いて同様の操作を行った。この操作を１日１回、３日間繰り返した後、４日目にカニクイザルを解剖し、咽頭扁桃部位の鼻咽頭粘膜を採取した。採取した鼻咽頭粘膜をＡｌｅｘａ５５５標識抗ＧＰ２抗体（ＩＭＧＥＮＥＸ社製）又はＡｌｅｘａ５５５標識抗ＧＰ２抗体（Ａｂｃａｍ社製）で蛍光免疫組織染色し、オールインワン蛍光顕微鏡  ＢＺ−９０００（キーエンス社製）で蛍光像を観察した。なお、蛍光像の観察にあたり、ＤＡＰＩ染色を併用している。【００５９】
蛍光免疫組織染色写真を図３に示す。なお、図３は視認性を高めるため、明暗を反転させている。図３に示すように、１０−ヒドロキシデカン酸を鼻腔内に３日間暴露させることで、ＧＰ２陽性細胞（図３中、矢印で例示した黒色の箇所）が鼻咽頭粘膜状に観察された。一方、対照では、このようなＧＰ２陽性細胞の増加は観察されなかった。【００６０】
［試験例３：免疫賦活試験−インビボ試験］
〔試験方法〕
（カプセル剤の調製）
１０−ヒドロキシデカン酸２．４ｍｇのみを腸溶カプセルに充填し、１０−ヒドロキシデカン酸入りカプセル剤（カプセルＡ錠）を調製した。１０−ヒドロキシデカン酸２．４ｍｇに加え、抗原としてＦｅｔｕｉｎ（３ｍｇ）、不活化ポリオウィルス抗原（１０６  ＴＣＩＤ５０）及び不活化インフルエンザウイルス抗原（２２０＿ＨＡ  Ｕｎｉｔｓ）を腸溶カプセルに充填し、１０−ヒドロキシデカン酸と上記３種の抗原を含有するカプセル剤（カプセルＢ錠）を調製した。また、抗原としてＦｅｔｕｉｎ（３ｍｇ）、不活化ポリオウィルス抗原（１０６  ＴＣＩＤ５０）及び不活化インフルエンザウイルス抗原（２２０＿ＨＡ  Ｕｎｉｔｓ）を腸溶カプセルに充填し、上記３種の抗原を含有するカプセル剤（カプセルＣ錠）を調製した。
【００６１】
（カプセル剤の投与）
カニクイザル（Ｍａｃａｃａ  ｆａｓｃｉｃｕｌａｒｉｓ）の雄３頭（試験開始時３〜６歳、試験開始時の体重３．０〜６．０ｋｇ）を被験動物とし、上記カプセルＡ錠及びカプセルＢ錠を下記表１に示すスケジュールに従って経口投与した（１日１回１錠）（以下、試験群）。対照として、カニクイザルの雄３頭（試験開始時３〜６歳、試験開始時の体重３．０〜６．０ｋｇ）にカプセルＣ錠のみを下記表１に示スケジュールに従って経口投与した（カプセルＡ錠及びカプセルＢ錠は投与せず）（以下、対象群）。２２日目にカニクイザルを解剖し、腸管粘膜を採取した。採取した腸管粘膜をＡｌｅｘａ５５５標識抗ＧＰ２抗体（ＩＭＧＥＮＥＸ社製）又はＡｌｅｘａ５５５標識抗ＧＰ２抗体（Ａｂｃａｍ社製）で蛍光免疫組織染色し、オールインワン蛍光顕微鏡  ＢＺ−９０００（キーエンス社製）で蛍光像を観察した。なお、蛍光像の観察に当たり、ＤＡＰＩ染色を併用している。
【表１】
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【００６２】
蛍光免疫組織染色写真の一例を図４に示す。なお、図４は視認性を高めるため、明暗を反転させている。図４に示すように、１０−ヒドロキシデカン酸を１日１回継続的に摂取しながら約３日おきに抗原で感作した試験群は、ＧＰ２陽性細胞（図４中、矢印で例示した黒色の箇所）が腸管粘膜上に観察された。一方、約３日おきに抗原のみで感作した対照群では、このようなＧＰ２陽性細胞の増加は観察されなかった。【００６３】
［試験例４：抗体価の測定］
〔試験方法〕
試験例３で飼育したカニクイザルの糞便を採取し、糞便中の抗Ｆｅｔｕｉｎ  ＩｇＡ抗体価、抗ポリオウィルスＩｇＡ抗体価、抗インフルエンザウイルスＩｇＡ抗体価を、ＥＬＩＳＡにより測定した。【００６４】
Ｆｅｔｕｉｎ抗原（シグマ社製）は、ａｎｔｉｇｅｎ  ｂｕｆｆｅｒ（５０ｍｍｏｌ／Ｌ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．０），１０ｍｍｏｌ／Ｌ  ＭｇＣｌ２，０．１％  Ｔｗｅｅｎ８０）で１００μｇ／ｍＬになるように溶解した。この抗原をＮｕｎｃ  ＭａｘｉＳｏｒｐ（登録商標）  ｆｌａｔ−ｂｏｔｔｏｍ  ９６ｗｅｌｌ  ｐｌａｔｅに加え、抗原プレートを作製した。インフルエンザウイルス  Ｈ１Ｎ１抗原（１１，０００  ＨＡ  Ｕｎｉｔ）及びポリオウイルス抗原ＩＩＩ型（０．６７×１０８  ＴＣＩＤ５０）は、２５ｍＬのａｎｔｉｇｅｎ  ｂｕｆｆｅｒで希釈し、同様に抗原プレートを作製した。なお、マスキングは２００μｌ／ｗｅｌｌ，４℃でｏｖｅｒ  ｎｉｇｈｔ反応させた。【００６５】
糞便試料に対し、重量比で１：４になるようにｓａｍｐｌｅ  ｂｕｆｆｅｒ（０．１％  ｓｏｄｉｕｍ  ａｚｉｄｅ，１ｍｍｏｌ／Ｌ  ＥＤＴＡ・２Ｎａ，０．０５％  Ｔｗｅｅｎ２０，５％  ｎｏｎｆａｔ  ｓｋｉｍ  ｍｉｌｋ，１ｍｍｏｌ／Ｌ  ｐｈｅｎｙｌｍｅｔｈｙｌｓｕｌｆｏｎｙｌ  ｆｌｕｏｒｉｄｅ（ＰＭＳＦ）のＰＢＳ（−）（ｐＨ７．２）溶液）を添加した。これを１３，０００×ｇ、５分間、４℃で遠心分離した後、上清を回収し、ＥＬＩＳＡ用サンプルとした。ＥＬＩＳＡ用サンプルは、氷感フリーザーにて保存した。測定時にＥＬＩＳＡ用サンプルをＰＢＳ（−）で１０倍及び１００倍に希釈した。【００６６】
抗原プレートの各ｗｅｌｌに調製したサンプルを５０μｌずつ添加し、１．５時間、低温室で振盪させた。その後、ｗａｓｈｉｎｇ  ｂｕｆｆｅｒ（０．１％  Ｔｗｅｅｎ８０  ｉｎ  ＭｉｌｌｉＱ：２００μｌ／ｗｅｌｌ）で４回洗浄した。【００６７】
二次抗体は、二次抗体Ｂｕｆｆｅｒ（０．５Ｍ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ，１．７５％  ＮａＣｌ）に１％になるようにＢＳＡを溶解し、このｂｕｆｆｅｒで以下の（ａ）及び（ｂ）の抗体を５０００倍に希釈して調製した。
（ａ）Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ−Ｌａｂｅｌｅｄ  Ａｆｆｉｎｉｔｙ  Ｐｕｒｉｆｉｅｄ  ａｎｔｉｂｏｄｙ  ｔｏ  Ｍｏｎｋｅｙ  ＩｇＡ（ａｌｐｈａ）（Ｃａｔ．Ｎｏ．０７４−１１−０１１，ＫＰＬ）
（ｂ）Ｇｏａｔ  Ａｎｔｉ−ｍｏｎｋｅｙ  ＩｇＡ（ａｌｐｈａ−ｃｈａｉｎ  ｓｐｅｃｉｆｃ）−ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ（Ａｆｆｉｎｉｔｙ  ｐｕｒｉｆｉｅｄ）（Ｃａｔ．Ｎｏ．７００４１，Ａｌｐｈａ  ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ  ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ）【００６８】
二次抗体の溶液を各ｗｅｌｌに５０μｌずつ添加し、０．７５時間反応させた。反応後、ｗａｓｈｉｎｇ  ｂｕｆｆｅｒ（０．１％  Ｔｗｅｅｎ８０  ｉｎ  ＭｉｌｌｉＱ：２００μｌ／ｗｅｌｌ）で４回洗浄した。【００６９】
各ｗｅｌｌにｓｕｂｓｔｒａｔｅ  ｓｏｌｕｔｉｏｎ（２．６８ｍｇ  ＴＭＢＺ，１．０５μｌ  ３５％過酸化水素水、７ｍＬ  ＥＤＴＡ・２Ｎａ（２ｍＭ））を５０μｌずつ添加した。最後に各ｗｅｌｌに０．３Ｎ  Ｈ２ＳＯ４を５０μｌずつ添加して反応を停止した。その後、吸光度（４５０ｎｍ／６３０ｎｍ）を測定した。【００７０】
糞便中の抗Ｆｅｔｕｉｎ  ＩｇＡ抗体価、抗ポリオウィルスＩｇＡ抗体価、及び抗インフルエンザウイルスＩｇＡ抗体価を図５に示す。図５に示すように、１０−ヒドロキシデカン酸を１日１回継続的に摂取しながら約３日おきに抗原で感作した試験群では、抗Ｆｅｔｕｉｎ  ＩｇＡ抗体価、抗ポリオウィルスＩｇＡ抗体価、及び抗インフルエンザウイルスＩｇＡ抗体価の上昇が観察された。一方、約３日おきに抗原のみで感作した対照群ではこのような抗体価の増加は観察されなかった。この結果は、継続的に１０−ヒドロキシデカン酸を投与することで免疫応答が誘導されることを示すと考えられる。また、１０−ヒドロキシデカン酸による免疫応答の誘導は、抗原の種類に依らないこと、不活化された抗原でも認められることが示された。さらに、同時に複数の抗原で感作した場合でも免疫応答の誘導が可能であることが示された。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【国際調査報告】
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