(57)【要約】本発明は、葉酸リセプターα及び葉酸リセプターβに免疫学的に特異的に結合する抗体を提供することを目的とし、具体的には、重鎖可変領域（ＶＨ）のＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３のアミノ酸配列がそれぞれ配列番号２、配列番号４及び配列番号６のアミノ酸配列であり、並びに軽鎖可変領域（ＶＬ）のＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３のアミノ酸配列がそれぞれ配列番号１０、配列番号１２及び配列番号１４のアミノ酸配列である抗体又はそのフラグメントに関する。
2014104270.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
葉酸リセプターα及び葉酸リセプターβに免疫学的に特異的に結合する抗体。
【請求項２】
抗体がモノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、キメラ抗体、単鎖抗体、多重特異性抗体及びそれらのフラグメントから成る群より選択される、請求項１記載の抗体。
【請求項３】
ヒト抗体又はヒト化抗体である、請求項１又は２記載の抗体。
【請求項４】
重鎖可変領域（ＶＨ）のＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３のアミノ酸配列がそれぞれ配列番号２、配列番号４及び配列番号６のアミノ酸配列であり、並びに軽鎖可変領域（ＶＬ）のＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３のアミノ酸配列がそれぞれ配列番号１０、配列番号１２及び配列番号１４のアミノ酸配列である抗体又はそのフラグメントである、請求項１〜３のいずれか１項記載の抗体。
【請求項５】
請求項１〜４のいずれか１項記載の抗体を含むか、あるいは該抗体に薬剤を結合してなる抗癌性分子標的薬。
【請求項６】
薬剤が、トキシン、細胞障害剤、酵素、サイトカイン及び化学療法薬から成る群より選択される、請求項５記載の抗癌性分子標的薬。
【請求項７】
トキシンが細菌由来トキシンである、請求項６記載の抗癌性分子標的薬。
【請求項８】
細菌由来トキシンが、シュードモナス毒素、ジフテリア毒素又はブドウ球菌毒素である、請求項７記載の抗癌性分子標的薬。
【請求項９】
抗癌性分子標的薬がイムノトキシンである、請求項５〜８のいずれか１項記載の抗癌性分子標的薬。
【請求項１０】
細胞障害剤が、抗腫瘍剤、腫瘍増殖抑制剤、腫瘍細胞アポトーシス誘導剤及び放射性核種から成る群より選択される、請求項６記載の抗癌性分子標的薬。
【請求項１１】
請求項５〜１０のいずれか１項記載の抗癌性分子標的薬と薬学的に許容可能な担体とを含む癌治療用医薬組成物。
【請求項１２】
請求項１〜４のいずれか１項記載の抗体に標識を結合してなる癌診断薬。
【請求項１３】
標識が発蛍光団、色素又は放射性同位元素である、請求項１２記載の癌診断薬。
【請求項１４】
請求項１〜４のいずれか１項記載の抗体又は請求項１２若しくは１３記載の癌診断薬を含む癌診断キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、葉酸リセプターα及びβを認識する抗体、及び当該抗体を含有する癌診断薬及び癌治療薬に関する。
【背景技術】
【０００２】
葉酸リセプター（ＦＲ）は酸化型葉酸のリセプターであり、ヒト細胞ではＦＲα、ＦＲβ及びＦＲγのアイソフォームが存在することが知られている（非特許文献１）。
ＦＲαは、上皮細胞表面に発現し、種々の癌細胞で発現が増加する。最近では、卵巣癌患者において抗ＦＲα抗体を用いたフェーズＩＩ臨床試験が米国で行われ、その効果が確かめられた（非特許文献２）。また、特許文献１は、抗ＦＲα抗体を含む卵巣癌治療組成物を開示する。
一方、ＦＲβの発現は健常者組織では少なく、関節リウマチ滑膜、変形性関節症滑膜、肺線維症の肺組織等の炎症組織の活性化マクロファージ表面に発現がみられる（非特許文献３〜５）。さらに、本願発明者等は、抗ヒトＦＲβ抗体を作製し、種々の癌組織に存在する癌関連マクロファージの多くがＦＲβ発現マクロファージであること、及び膵臓癌においてＦＲβ発現マクロファージ数が増加した癌は生命予後が悪いことを示した（非特許文献６）。また、本願発明者等は、悪性グリオーマ移植モデルにおいて、抗ＦＲβ抗体イムノトキシンを用いてＦＲβマクロファージを除去することにより、悪性グリオーマの増殖が抑制されることを示した（非特許文献７）。さらに、特許文献２〜４は、ＦＲ−βに対する抗体及び該抗体とトキシンとを結合したＦＲ−β抗体イムノトキシン、並びにこれら抗体及びイムノトキシンを含有する治療剤を開示する。
以上のように、これまで抗ＦＲα抗体又は抗ＦＲβ抗体イムノトキシン等の抗ＦＲβ抗体結合物の単独使用による癌増殖抑制作用が知られている。しかしながら、抗ＦＲα抗体又はその結合物と抗ＦＲβ抗体又はその結合物とを用いた併用療法による癌増殖抑制効果は報告されていない。また、ＦＲαとＦＲβとは、アミノ酸レベルで約７０％の相同性を有するが、これまでにＦＲαとＦＲβの双方を認識する抗体は報告されていない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特許第４８０５８４８号公報
【特許文献２】特許第４９４３１４４号公報
【特許文献３】特開２０１０−７７０２６号公報
【特許文献４】国際公開第２０１２／１２８３７７号
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】Ｅｌｎａｋａｔ  Ｈ．，Ｒａｔｎａｍ  Ｍ．，Ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ，ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｉｔｙ  ａｎｄ  ｇｅｎｅ  ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｆｏｌａｔｅ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｉｓｏｆｏｒｍｓ：  ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ  ｉｎ  ｔａｒｇｅｔｅｄ  ｔｈｅｒａｐｙ．Ａｄｖ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖ  Ｒｅｖ．，２００４  Ａｐｒ  ２９；５６（８）：１０６７−８４
【非特許文献２】Ｊｅｌｏｖａｃ  Ｄ．，Ａｒｍｓｔｒｏｎｇ  ＤＫ．，Ｒｏｌｅ  ｏｆ  ｆａｒｌｅｔｕｚｕｍａｂ  ｉｎ  ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ  ｏｖａｒｉａｎ  ｃａｒｃｉｎｏｍａ．Ｃｕｒｒ  Ｐｈａｒｍ  Ｄｅｓ．，２０１２；１８（２５）：３８１２−５
【非特許文献３】Ｎａｋａｓｈｉｍａ−Ｍａｔｓｕｓｈｉｔａ  Ｎ．，Ｈｏｍｍａ  Ｔ．，Ｙｕ  Ｓ．，Ｍａｔｓｕｄａ  Ｔ．，Ｓｕｎａｈａｒａ  Ｎ．，Ｎａｋａｍｕｒａ  Ｔ．，Ｔｓｕｋａｎｏ  Ｍ．，Ｒａｔｎａｍ  Ｍ．，Ｍａｔｓｕｙａｍａ  Ｔ．，Ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｏｆ  ｆｏｌａｔｅ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｂｅｔａ  ａｎｄ  ｉｔｓ  ｐｏｓｓｉｂｌｅ  ｒｏｌｅ  ｉｎ  ｍｅｔｈｏｔｒｅｘａｔｅ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔ  ｉｎ  ｓｙｎｏｖｉａｌ  ｍａｃｒｏｐｈａｇｅｓ  ｆｒｏｍ  ｐａｔｉｅｎｔｓ  ｗｉｔｈ  ｒｈｅｕｍａｔｏｉｄ  ａｒｔｈｒｉｔｉｓ．Ａｒｔｈｒｉｔｉｓ  Ｒｈｅｕｍ．，１９９９  Ａｕｇ；４２（８）：１６０９−１６
【非特許文献４】Ｎａｇａｉ  Ｔ．，Ｔａｎａｋａ  Ｍ．，Ｈａｓｕｉ  Ｋ．，Ｓｈｉｒａｈａｍａ  Ｈ．，Ｋｉｔａｊｉｍａ  Ｓ．，Ｙｏｎｅｚａｗａ  Ｓ．，Ｘｕ  Ｂ．，Ｍａｔｓｕｙａｍａ  Ｔ．，Ｅｆｆｅｃｔ  ｏｆ  ａｎ  ｉｍｍｕｎｏｔｏｘｉｎ  ｔｏ  ｆｏｌａｔｅ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｂｅｔａ  ｏｎ  ｂｌｅｏｍｙｃｉｎ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ  ｐｕｌｍｏｎａｒｙ  ｆｉｂｒｏｓｉｓ．Ｃｌｉｎ  Ｅｘｐ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．，２０１０  Ａｕｇ；１６１（２）：３４８−５６
【非特許文献５】Ｔｓｕｎｅｙｏｓｈｉ  Ｙ．，Ｔａｎａｋａ  Ｍ．，Ｎａｇａｉ  Ｔ．，Ｓｕｎａｈａｒａ  Ｎ．，Ｍａｔｓｕｄａ  Ｔ．，Ｓｏｎｏｄａ  Ｔ．，Ｉｊｉｒｉ  Ｋ．，Ｋｏｍｉｙａ  Ｓ．，Ｍａｔｓｕｙａｍａ  Ｔ．，Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ  ｆｏｌａｔｅ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｂｅｔａ−ｅｘｐｒｅｓｓｉｎｇ  ｍａｃｒｏｐｈａｇｅｓ  ｉｎ  ｏｓｔｅｏａｒｔｈｒｉｔｉｓ  ｓｙｎｏｖｉｕｍ  ａｎｄ  ｔｈｅｉｒ  Ｍ１／Ｍ２  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｐｒｏｆｉｌｅｓ．Ｓｃａｎｄ  Ｊ  Ｒｈｅｕｍａｔｏｌ．，２０１２；４１（２）：１３２−４０
【非特許文献６】Ｋｕｒａｈａｒａ  Ｈ．，Ｔａｋａｏ  Ｓ．，Ｋｕｗａｈａｔａ  Ｔ．，Ｎａｇａｉ  Ｔ．，Ｄｉｎｇ  Ｑ．，Ｍａｅｄａ  Ｋ．，Ｓｈｉｎｃｈｉ  Ｈ．，Ｍａｔａｋｉ  Ｙ．，Ｍａｅｍｕｒａ  Ｋ．，Ｍａｔｓｕｙａｍａ  Ｔ．，Ｎａｔｓｕｇｏｅ  Ｓ．，Ｃｌｉｎｉｃａｌ  ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ  ｏｆ  ｆｏｌａｔｅ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  β−ｅｘｐｒｅｓｓｉｎｇ  ｔｕｍｏｒ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｍａｃｒｏｐｈａｇｅｓ  ｉｎ  ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  ｃａｎｃｅｒ．Ａｎｎ  Ｓｕｒｇ  Ｏｎｃｏｌ．，２０１２  Ｊｕｌ；１９（７）：２２６４−７１
【非特許文献７】Ｎａｇａｉ  Ｔ．，Ｔａｎａｋａ  Ｍ．，Ｔｓｕｎｅｙｏｓｈｉ  Ｙ．，Ｘｕ  Ｂ．，Ｍｉｃｈｉｅ  ＳＡ．，Ｈａｓｕｉ  Ｋ．，Ｈｉｒａｎｏ  Ｈ．，Ａｒｉｔａ  Ｋ．，Ｍａｔｓｕｙａｍａ  Ｔ．，Ｔａｒｇｅｔｉｎｇ  ｔｕｍｏｒ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｍａｃｒｏｐｈａｇｅｓ  ｉｎ  ａｎ  ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ  ｇｌｉｏｍａ  ｍｏｄｅｌ  ｗｉｔｈ  ａ  ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ  ｉｍｍｕｎｏｔｏｘｉｎ  ｔｏ  ｆｏｌａｔｅ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｂｅｔａ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒ．，２００９  Ｏｃｔ；５８（１０）：１５７７−８６
【発明の概要】
【０００５】
上述のように、抗ＦＲα抗体又はその結合物と抗ＦＲβ抗体又はその結合物とを用いた併用療法による癌増殖抑制効果は報告されていない。
従来において、ＦＲαとＦＲβを介した診断薬又は治療薬として、種々の葉酸結合物が提案されている（Ｍｕｌｌｅｒ  Ｃ．，Ｆｏｌａｔｅ  ｂａｓｅｄ  ｒａｄｉｏｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ  ｆｏｒ  ｉｍａｇｉｎｇ  ａｎｄ  ｔｈｅｒａｐｙ  ｏｆ  ｃａｎｃｅｒ  ａｎｄ  ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ．Ｃｕｒｒ  Ｐｈａｒｍ  Ｄｅｓ．，２０１２；１８（８）：１０５８−８３；Ｃｌｉｆｔｏｎ  ＧＴ．，Ｓｅａｒｓ  ＡＫ．，Ｃｌｉｖｅ  ＫＳ．，Ｈｏｌｍｅｓ  ＪＰ．，Ｍｉｔｔｅｎｄｏｒｆ  ＥＡ．，Ｉｏａｎｎｉｄｅｓ  ＣＧ．，Ｐｏｎｎｉａｈ  Ｓ．，Ｐｅｏｐｌｅｓ  ＧＥ．，Ｆｏｌａｔｅ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  α：ａ  ｓｔｏｒｉｅｄ  ｐａｓｔ  ａｎｄ  ｐｒｏｍｉｓｉｎｇ  ｆｕｔｕｒｅ  ｉｎ  ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｙ．Ｈｕｍ  Ｖａｃｃｉｎ．，２０１１  Ｆｅｂ；７（２）：１８３−９０；及びＬｏｗ  ＰＳ．，Ｋｕｌａｒａｔｎｅ  ＳＡ．，Ｆｏｌａｔｅ−ｔａｒｇｅｔｅｄ  ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ  ａｎｄ  ｉｍａｇｉｎｇ  ａｇｅｎｔｓ  ｆｏｒ  ｃａｎｃｅｒ．Ｃｕｒｒ  Ｏｐｉｎ  Ｃｈｅｍ  Ｂｉｏｌ．，２００９  Ｊｕｎ；１３（３）：２５６−６２）。しかしながら、葉酸は低分子であるため非特異的に吸収されることや健常組織の多くの細胞に発現しているプロトン連結葉酸トランスポーターによっても細胞内に取り込まれるため、これら葉酸結合物の作用はＦＲα発現細胞やＦＲβ発現細胞に特異的とはいえない。また、葉酸結合物の細胞内吸収は血中の葉酸濃度により干渉される。
一方、癌細胞を標的とした抗ＦＲα抗体又は癌増殖を促進する癌関連マクロファージに向けられた抗ＦＲβ抗体単独の使用に比べて、ＦＲα及びＦＲβの双方に特異的な抗ＦＲα／β抗体やその化合物を得ることができれば、当該抗ＦＲα／β抗体やその化合物の使用により癌細胞と癌関連マクロファージを同時に傷害することにより、さらに癌を効果的に治療することができる。また、抗ＦＲα／β抗体やその化合物の使用に比べて、従来の抗ＦＲα抗体と抗ＦＲβ抗体の二者併用療法を行う場合、抗ＦＲα抗体とＦＲα発現癌細胞の結合と、抗ＦＲβ抗体とＦＲβ発現マクロファージの結合との間の差異に起因して、両者の適正な使用量の決定が困難であると考えられる。さらに、抗ＦＲα／β抗体は、抗ＦＲα抗体と抗ＦＲβ抗体の併用療法に比べて低用量で良く、経済的にも優位である。
そこで、本発明は、上述した実情に鑑み、癌診断薬及び癌治療薬に使用することができる、ＦＲα及びＦＲβの双方に特異的に結合する抗体を提供することを目的とする。
上記課題を解決するため鋭意研究を行った結果、ＦＲα及びＦＲβの双方に特異的に結合する抗体の作製に成功し、当該抗体が種々の癌組織における癌細胞と癌関連マクロファージに反応し、また当該抗体が補体存在下において、又は当該抗体に基づいて作製したイムノトキシンがＦＲα発現癌細胞及びＦＲβ発現細胞の双方に対して傷害能を有することを見出し、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は、以下を包含する。
（１）ＦＲα及びＦＲβに免疫学的に特異的に結合する抗体。
（２）抗体がモノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、キメラ抗体、単鎖抗体、多重特異性抗体及びそれらのフラグメントから成る群より選択される、（１）記載の抗体。
（３）ヒト抗体又はヒト化抗体である、（１）又は（２）記載の抗体。
（４）重鎖可変領域（ＶＨ）のＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３のアミノ酸配列がそれぞれ配列番号２、配列番号４及び配列番号６のアミノ酸配列であり、並びに軽鎖可変領域（ＶＬ）のＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３のアミノ酸配列がそれぞれ配列番号１０、配列番号１２及び配列番号１４のアミノ酸配列である抗体又はそのフラグメントである、（１）〜（３）のいずれか１記載の抗体。
（５）（１）〜（４）のいずれか１記載の抗体を含むか、あるいは該抗体に薬剤を結合してなる抗癌性分子標的薬。
（６）薬剤が、トキシン、細胞障害剤、酵素、サイトカイン及び化学療法薬から成る群より選択される、（５）記載の抗癌性分子標的薬。
（７）トキシンが細菌由来トキシンである、（６）記載の抗癌性分子標的薬。
（８）細菌由来トキシンが、シュードモナス毒素、ジフテリア毒素又はブドウ球菌毒素である、（７）記載の抗癌性分子標的薬。
（９）抗癌性分子標的薬がイムノトキシンである、（５）〜（８）のいずれか１記載の抗癌性分子標的薬。
（１０）細胞障害剤が、抗腫瘍剤、腫瘍増殖抑制剤、腫瘍細胞アポトーシス誘導剤及び放射性核種から成る群より選択される、（６）記載の抗癌性分子標的薬。
（１１）（５）〜（１０）のいずれか１記載の抗癌性分子標的薬と薬学的に許容可能な担体とを含む癌治療用医薬組成物。
（１２）（１）〜（４）のいずれか１記載の抗体に標識を結合してなる癌診断薬。
（１３）標識が発蛍光団、色素又は放射性同位元素である、（１２）記載の癌診断薬。
（１４）（１）〜（４）のいずれか１記載の抗体又は（１２）若しくは（１３）記載の癌診断薬を含む癌診断キット。
本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願２０１２−２８１５２５号の明細書及び／又は図面に記載される内容を包含する。
【図面の簡単な説明】
【０００６】
図１は、（Ａ）抗ヒトＦＲα／βラットモノクローナル抗体重鎖領域の塩基配列（配列番号７）及びアミノ酸配列（配列番号８）並びに（Ｂ）抗ヒトＦＲα／βラットモノクローナル抗体軽鎖領域の塩基配列（配列番号１５）及びアミノ酸配列（配列番号１６）を示す図である。
図２は、（Ａ）ヒトＦＲβ発現細胞及び（Ｂ）ヒトＦＲα発現細胞に対する抗ヒトＦＲα／βラットモノクローナル抗体の反応性を示すフローサイトメトリーの結果を示す図である。
図３は、ヒト卵巣癌細胞株に対する抗ヒトＦＲα／βラットモノクローナル抗体の反応性を示すフローサイトメトリーの結果を示す図である。
図４は、卵巣癌組織への抗ヒトＦＲα／βラットモノクローナル抗体の反応性を示す免疫染色の結果を示す図である。
図５は、抗ヒトＦＲα／βラットモノクローナル抗体の葉酸リセプター発現細胞に対する補体依存的細胞傷害能を示す図である。
図６は、ヒト卵巣癌細胞株（ＦＲα発現）及びヒトＦＲβ発現細胞に対する抗ヒトＦＲα／βイムノトキシンの増殖抑制効果を示すグラフである。
図７は、各固形癌の免疫染色における抗ヒトＦＲα／βラットモノクローナル抗体による染色パターンを示す。
図８は、マクロファージによる葉酸リセプターα発現癌細胞の貪食能を促進する抗ヒトＦＲα／βラットモノクローナル抗体の効果を示すフローサイトメトリーの結果を示す図である。
図９は、ＦＲα陽性ヒト癌細胞とＦＲβ陽性マウス浸潤マクロファージを標的とした抗体製剤による癌の治療に関する実験スケジュールと癌細胞移植後の追跡結果を示す。
【発明を実施するための形態】
【０００７】
以下、本発明を詳細に説明する。
＜定義＞
本明細書で使用される「葉酸リセプター（受容体）α」又は「ＦＲα」という用語は、被験者の癌細胞表面に発現される受容体タンパク質を意味する。
本明細書で使用される「葉酸リセプター（受容体）β」又は「ＦＲβ」という用語は、被験者の癌関連マクロファージの細胞表面に発現される受容体タンパク質を意味する。
本明細書で使用される「被験者」という用語には、ヒトを含む霊長類、ウシ、ブタ、ウマ、ヤギ、ヒツジ等の家畜動物、イヌ、ネコ等のペット動物等の哺乳動物が含まれる。好ましい被験者はヒトである。
本明細書で使用される「ＦＲα及びＦＲβに免疫学的に特異的に結合する抗体」又は「抗ＦＲα／β抗体」という用語は、抗体がＦＲαタンパク質及びＦＲβタンパク質又はそれらの天然変異体以外のタンパク質と結合しないか、又は、実質的に結合しないことを意味する。
＜抗ＦＲα／β抗体＞
本発明で使用される「抗ＦＲα／β抗体」は、ＦＲαタンパク質及びＦＲβタンパク質の双方を認識してこれらタンパク質に結合することができる抗体又はそのフラグメントであり、以下に述べるように、抗体の種類や形態は問わないものとする。これらの抗体は、癌細胞上の細胞表面ＦＲαタンパク質、及び癌増殖を促進する癌関連マクロファージ上の細胞表面ＦＲβタンパク質の双方に特異的に結合することを可能にする。
本発明において、上記抗体は、ＦＲα及びＦＲβと免疫学的反応により結合するが、ＦＲα及びＦＲβ又はそれらと９０％以上、好ましくは９５％以上、さらに好ましくは９８％以上の配列同一性を持つそれらの変異タンパク質以外のタンパク質とは実質的に結合しない。
本発明に係る抗ＦＲα／β抗体は、いずれの免疫グロブリン（Ｉｇ）クラス（ＩｇＡ、ＩｇＧ、ＩｇＥ、ＩｇＤ、ＩｇＭ、ＩｇＹ等）及びサブクラス（ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４、ＩｇＡ１、ＩｇＡ２等）のものであってもよい。また、免疫グロブリンの軽鎖は、κ鎖又はλ鎖のいずれであってもよい。
具体的には、本発明に係る抗ＦＲα／β抗体は、例えば、上記クラス又はサブクラスの完全構造を有する抗体又はそれらのフラグメント、組換え抗体、単鎖抗体（ｓｃＦｖ）、多重特異性抗体（例えば二重特異性抗体、ダイアボディ、トリアボディ、ＳｃＤｂ（ｓｉｎｇｌｅ  ｃｈａｉｎ  ｄｉａｂｏｄｙ）、ｄｓＦｖ−ｄｓＦｖ等）、キメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体等の抗体或いはそれらのフラグメントである。
本発明で使用可能な抗体のフラグメントは、７以上、より好ましくは８〜１２又はそれ以上の連続アミノ酸を有するＦＲαタンパク質抗原エピトープ及びＦＲβタンパク質抗原エピトープと結合可能である。
抗体フラグメントは、例えば、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、Ｆｄ、Ｆａｂｃ等を含む。このようなフラグメントの作製方法は当技術分野で公知であり、例えばパパイン、ペプシン等のプロテアーゼによる抗体分子の消化、或いは公知の遺伝子工学的手法により得ることができる。
以下、本発明において使用するための抗体の作製方法について詳述する。
本発明において使用可能な抗体を作製するにあたり、最初に免疫原（抗原）として使用するＦＲαタンパク質及びＦＲβタンパク質又はそれらの断片を調製する。
ここで、断片は、７〜１０又はそれ以上（例えば１１〜２５）の連続アミノ酸から成るアミノ酸配列を有するものである。免疫原として使用することができるＦＲαタンパク質及びＦＲβタンパク質の由来は、標的とするＦＲα及びＦＲβと特異的に結合することができる抗体を誘導できるものであるものであれば特に限定されない。
ＦＲα及びＦＲβと特異的に結合することができる抗体を誘導するために、ＦＲα（ＦＲβとアミノ酸レベルで約７０％の配列同一性を有する）とＦＲβとのアラインメントをとり、連続する約７〜２０アミノ酸から成る配列部分で互いに同一性の高い部分配列から成る（ポリ）ペプチドを免疫原として選択することができる。この場合、さらに、ＦＲαタンパク質及びＦＲβタンパク質の表面構造を、例えばＫｙｔｅ−Ｄｏｏｌｉｔｔｌｅの親水性−疎水性予測やＣｈｏｕ−Ｆａｓｍａｎのアミノ酸配列からの二次構造予測（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  １９７４，１３：２２２−２４４）を利用して予測し、これらタンパク質の表面に露出する上記（ポリ）ペプチド配列を免疫原として選択することが好ましい。
本発明に係る抗体を作製するためのＦＲαタンパク質及びＦＲβタンパク質又はそれらの断片に関するヒトを含む哺乳動物ＦＲαタンパク質及びＦＲβタンパク質のアミノ酸又は塩基配列情報は、例えばＧｅｎＢａｎｋ（ＮＣＢＩ、米国）、ＥＭＢＬ（ＥＢＩ、欧州）等から入手可能である。ＧｅｎＢａｎｋに登録されたヒトＦＲαのアミノ酸配列及び塩基配列のアクセッション番号としては、例えばＮＭ＿０１６７２５（ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔ  ｖａｒｉａｎｔ  １）、ＮＭ＿００８０２（ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔ  ｖａｒｉａｎｔ  ２）、ＮＭ＿０１６７２９（ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔ  ｖａｒｉａｎｔ  ４）等が挙げられる。一方、ＧｅｎＢａｎｋに登録されたヒトＦＲβのアミノ酸配列及び塩基配列のアクセッション番号は、幾つかの公知のバリアント（ｖａｒｉａｎｔ）から成り、例えばＮＭ＿０００８０３（ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔ  ｖａｒｉａｎｔ  １）、ＮＭ＿００１１１３５３４（ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔ  ｖａｒｉａｎｔ  ２）、ＮＭ＿００１１１３５３５（ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔ  ｖａｒｉａｎｔ  ３）等である。ＦＲαタンパク質及びＦＲβタンパク質又はそれらの断片は、上記の配列情報に基づいて公知のペプチド合成技術や遺伝子組換え技術を利用して製造することができる。
同種又は異種動物におけるＦＲα及びＦＲβの変異体又はオーソログの検索は、例えばカーリン（Ｋａｒｌｉｎ）及びアルトシュル（Ａｌｔｓｃｈｕｌ）（１９９３）（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ９０：５８７３−５８７７）に記載されたアルゴリズムや、その改良法であるカーリン及びアルトシュル（１９９０）（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ８７：２２６４）のアルゴリズムを用いて行うことができる。この種のアルゴリズムは、アルトシュルら（１９９０）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５：４０３のＮＢＬＡＳＴ及びＸＢＬＡＳＴプログラムに組み込まれている。また、ギャップが導入されたアライメントを得るためには、アルトシュルら（１９９７）Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２５：３３８９に記載されたＧａｐｐｅｄ  ＢＬＡＳＴを用いることができる。
ペプチド合成技術には、液相法と固相法が含まれる。これらの方法は、固相を使用するか否かの違いだけであるが、固相法の方が生成物の回収が容易であるという利点を有する。そのため、固相法を有利に使用できる。いずれの方法でも、タンパク質を構成する約５〜１０個の（保護）アミノ酸から成る多数のペプチドを合成し、それらを段階的に伸長してポリペプチドを合成し、最後に保護基を除去して目的のタンパク質を生成し、精製することを含む。ペプチド合成法は、例えば日本生化学編、生化学実験講座１巻、タンパク質の化学ＩＶ−化学修飾とペプチド合成−東京化学同人に記載されている。
遺伝子組換え技術による方法は、例えば、ＦＲαタンパク質又はＦＲβタンパク質をコードするＤＮＡを適当なベクターに連結し、該ベクターを適当な宿主細胞に導入し形質転換し、適当な培地で宿主細胞を培養し、ＦＲαタンパク質又はＦＲβタンパク質を生産することができる。この手法は当業者に周知であり、使用するベクター、宿主細胞、形質転換法、培養法、タンパク質の精製法等の技術は、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，２版，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ（１９８９）、Ａｕｓｕｂｅｌら，Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ（１９９８）等に詳しく記載されている。
抗体産生細胞には、例えばＳｐｏｄｏｐｔｅｒａ  ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ細胞等の昆虫細胞、例えばＳａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ及びＳｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｐｏｍｂｅ等の酵母細胞、例えばチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）由来細胞、胎仔ハムスター腎細胞、ヒト胎児腎臓株２９３、正常イヌ腎臓細胞株、正常ネコ腎臓細胞株、サル腎細胞、アフリカミドリザル腎細胞、ＣＯＳ細胞、非腫瘍化マウス筋芽細胞Ｇ８細胞、線維芽細胞株、骨髄腫細胞株、マウスＮＩＨ／３Ｔ３細胞、ＬＭＴＫ細胞、マウスｓｅｒｔｏｌｉ細胞、ヒト子宮頸癌細胞、バッファローラット肝細胞、ヒト肺細胞、ヒト肝細胞、マウス乳癌細胞、ＴＲＩ細胞、ＭＲＣ５細胞、及びＦＳ４細胞等の哺乳類細胞が包含される。
上記のようにして製造したＦＲαタンパク質及びＦＲβタンパク質又はそれらの断片を免疫原として非ヒト動物を免疫し、以下に記載する方法によって本発明に係る抗体を製造することができる。また、ＦＲαタンパク質及びＦＲβタンパク質のうちの一方のタンパク質又はその断片を免疫原として調製し、得られた抗体について、免疫原が由来するタンパク質に加えて他方のタンパク質への結合性を調べ、ＦＲαタンパク質及びＦＲβタンパク質の双方に結合する抗体を本発明に係る抗ＦＲα／β抗体とすることもできる。或いは、該抗体をコードする重鎖及び軽鎖の可変領域をコードするＤＮＡを、免疫した非ヒト動物の脾臓細胞、リンパ系細胞等のｍＲＮＡから作製し、このＤＮＡを使用してキメラ抗体等の種々の形態の合成抗体をコードするＤＮＡを合成することができる。
本発明で使用しうる抗体類には、非限定的に、例えばポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、組換え抗体（例えば、キメラ抗体、単鎖抗体、多重特異性抗体、ヒト化抗体等）、ヒト抗体等が含まれる。
ポリクローナル抗体は、上記のようにして作製した免疫原を、哺乳動物（例えばウサギ、ラット、マウス等）に免疫して、抗血清を得ることによって製造することができる。具体的には、上記免疫原を、必要に応じて免疫原性を高めるためのアジュバントと共に、哺乳動物に静脈内、皮下又は腹腔内投与する。アジュバントとしては、市販の完全フロイントアジュバント、不完全フロイントアジュバント、水酸化アルミニウム等のアルミニウム塩（Ａｌｕｍ）、ムラミルペプチド（細菌細胞壁関連ペプチドの一種）等を使用することができる。その後、数日から数週間の間隔で、１〜７回の免疫を行い、最後の免疫日から１〜７日後に、ＥＬＩＳＡ等の酵素免疫測定法等によって抗体価を測定し、最大の抗体価を示した日に採血して抗血清を得ることができる。このようにして取得した抗血清は、そのまま使用してもよいし、或いは、ＦＲαタンパク質及びＦＲβタンパク質又はそれらの断片ペプチドを固定化した親和性カラム（例えばアガロースゲルカラム使用）に抗血清をアプライし、カラムに結合する抗体を回収することを含む精製処理を行った後に使用してもよい。
モノクローナル抗体は、以下のようにして作製することができる。すなわち、上記のようにして免疫感作した非ヒト哺乳動物から得た抗体産生細胞（例えば脾臓細胞、リンパ系細胞等）と不死化ミエローマ細胞（「骨髄腫細胞」ともいう）から融合法によってハイブリドーマを調製し、ハイブリドーマをクローン化し、免疫に用いたＦＲαタンパク質及びＦＲβタンパク質又はそれらの断片ペプチド抗原に対して特異的親和性を示すモノクローナル抗体を産生するクローンをヒポキサンチン、アミノプテリン及びチミジンを含む培地（「ＨＡＴ培地」）を用いて選択することによって製造することができる。ハイブリドーマの製造方法は、例えばＫｏｈｌｅｒ及びＭｉｌｓｔｅｉｎら（Ｎａｔｕｒｅ（１９７５）２５６：４９５−９６）の方法に準じて行うことができる。非ヒト哺乳動物の例は、マウス、ラット等のげっ歯類である。また、ミエローマ細胞としては、免疫感作した動物と同じ動物由来の細胞が好ましく使用され、例えばマウスミエローマ細胞、ラットミエローマ細胞等が挙げられる。特に、マウスミエローマ細胞株には、例えばＰ３−ＮＳ１／１−Ａｇ４−１株、Ｐ３−ｘ６３−Ａｇ８．６５３株、Ｓｐ２／０−Ａｇ１４株等が含まれる。抗体産生細胞とミエローマ細胞の融合は、平均分子量約１，５００のポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を使用するか、或いは電気的融合法を用いて行うことができる。
キメラ抗体、組換え抗体、単鎖抗体、ヒト化抗体等は、ＦＲαタンパク質及びＦＲβタンパク質又はそれらの断片ペプチドで免疫感作した非ヒト動物の脾臓細胞とミエローマ細胞から作製された特定のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ由来の該抗体をコードするＤＮＡから製造することができる。
具体的には、上記ハイブリドーマ細胞から全ＲＮＡを抽出し、オリゴｄＴカラムと親和的に結合するｍＲＮＡを全ＲＮＡから回収し、ｃＤＮＡを合成し、特定のモノクローナル抗体をコードするＤＮＡをクローニングするか、或いは、公知のイムノグロブリン遺伝子配列に基づいてＰＣＲ法で増幅的に、抗体をコードするＤＮＡを合成し、該ＤＮＡ配列を決定する。ヒト、マウス等の動物の抗体の重鎖（Ｈ鎖）と軽鎖（Ｌ鎖）における、可変領域並びに相補性決定領域（ＣＤＲｓ）及びフレームワーク領域（ＦＲｓ）の配列及び位置を、例えばＫａｂａｔのＥＵナンバリングインデックス（Ｋａｂａｔ  ＥＡ  ｅｔ  ａｌ．，Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ  ｏｆ  Ｐｒｏｔｅｉｎｓ  ｏｆ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｉｎｔｅｒｅｓｔ，５ｔｈ  ｅｄ．Ｖｏｌ．１，Ｂｅｔｈｅｓｄａ（ＭＤ）：ＮＩＨ，１９９１）に従って決定することができる。
遺伝子組換え技術を用いて組換え抗体の作製法をさらに具体的に説明する。
作製したハイブリドーマからモノクローナル抗体をコードする遺伝子をクローニングし、適当なベクターに組み込んで、これを例えばチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞等の哺乳類細胞株、大腸菌、酵母細胞、昆虫細胞、植物細胞といった宿主に導入して、宿主において組換え抗体を生産させることができる（Ｐ．Ｊ．Ｄｅｌｖｅｓ．，ＡＮＴＩＢＯＤＹ  ＰＲＯＤＵＣＴＩＯＮ  ＥＳＳＥＮＴＩＡＬ  ＴＥＣＨＮＩＱＵＥＳ．，１９９７  ＷＩＬＥＹ、Ｐ．Ｓｈｅｐｈｅｒｄ  ａｎｄ  Ｃ．Ｄｅａｎ．，Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ．，２０００  ＯＸＦＯＲＤ  ＵＮＩＶＥＲＳＩＴＹ  ＰＲＥＳＳ，Ｊ．Ｗ．Ｇｏｄｉｎｇ．，Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ  ａｎｄ  ｐｒａｃｔｉｃｅ．，１９９３  ＡＣＡＤＥＭＩＣＰＲＥＳＳ）。或いは、トランスジェニック動物作製技術を用いて目的抗体の遺伝子座が内在性遺伝子座の領域に置換的に組み込まれたトランスジェニックなマウス、ウシ、ヤギ、ヒツジ又はブタを作製し、ＦＲαタンパク質及びＦＲβタンパク質又はそれらの断片ペプチドを抗原として免疫した後、そのトランスジェニック動物の血液や乳汁等からその抗体遺伝子に由来する抗体を取得することも可能である。また、上記トランスジェニック動物のなかには、内因性抗体遺伝子を欠失し、且つヒト抗体遺伝子を保有するマウスやウシ等のヒト抗体産生動物も知られているので、このような動物を利用する場合には、ヒトＦＲα及びＦＲβに結合する完全ヒト抗体を得ることができる（例えばＷＯ９６／３４０９６、ＷＯ９６／３３７３５、ＷＯ９８／２４８９３等）。さらにまた、該動物の抗体産生細胞（例えばＢ細胞）とミエローマ細胞から作製したハイブリドーマをｉｎ  ｖｉｔｒｏで培養する場合には、上記のような手法で、モノクローナル抗体を産生することもできる。
作製されたモノクローナル抗体は、当技術分野において公知の方法、例えばプロテインＡあるいはプロテインＧカラムによるクロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィー、硫安塩析法、ゲル濾過、アフィニティクロマトグラフィー等を適宜組み合わせることにより精製することができる。
キメラ抗体は、Ｈ鎖及びＬ鎖における可変領域と定常領域がそれぞれ異なる動物由来のものである抗体を指す。例えば、Ｈ鎖及びＬ鎖における可変領域がマウス又はラット抗体由来である一方、定常領域がヒト抗体由来であるような抗体がキメラ抗体であり、この抗体をコードするＤＮＡは、マウス又はラット抗体をコードするＤＮＡ配列中の定常領域をコードするＤＮＡ配列を、ヒト定常領域をコードするＤＮＡ配列で置換した塩基配列を有する。キメラ抗体は、例えばＭｏｒｒｉｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９８４，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，８１：６８５１−６８５５；Ｎｅｕｂｅｒｇｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９８４，Ｎａｔｕｒｅ，３１２：６０４−６０８；Ｔａｋｅｄａ  ｅｔ  ａｌ．，１９８５，Ｎａｔｕｒｅ，３１４：４５２−４５４に記載される技術を用いて製造することができる。
ヒト化抗体は、Ｈ鎖及びＬ鎖における、ＣＤＲ領域が非ヒト動物由来のものである一方、定常領域及びフレームワーク領域がヒト由来のものである抗体を指す。例えば、Ｈ鎖及びＬ鎖におけるＣＤＲ領域（ＣＤＲ１、ＣＤＲ２及びＣＤＲ３）がマウス又はラット抗体由来である一方、定常（Ｃ）領域及びフレームワーク領域（ＦＲ１、ＦＲ２、ＦＲ３及びＦＲ４）がヒト抗体由来であるような抗体がヒト化抗体であり、この抗体をコードするＤＮＡは、マウス又はラット抗体をコードするＤＮＡ配列中の定常領域及びフレームワーク領域をコードするＤＮＡ配列を、ヒト定常領域及びフレームワーク領域をコードするＤＮＡ配列で置換した塩基配列を有する。ヒト化抗体を作製するための手法は、所謂、ＣＤＲ移植法と呼ばれるものであり、本発明で使用される抗体のうち特にヒトに投与可能な抗体は、ＣＤＲ移植法で作製されうるし（Ｊｏｎｅｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，３２１：５２２−５２５，１９８６；Ｒｅｉｃｈｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，３３２：３２３−３２９，１９８８；Ｐｒｅｓｔａ，Ｃｕｒｒ．Ｏｐ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏｌ．，２：５９３−５９６，１９９２；Ｖｅｒｈｏｅｙｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２３９：１５３４−１５３６，１９８８）、或いは、後述するように、ヒト抗体産生非ヒト動物（例えばマウス）の使用（上記）やファージディスプレイ法等を利用して完全ヒト抗体を作製することができる。
ファージディスプレイ法は、繊維状ファージＭ１３、Ｔ７ファージ等のファージを利用して、ファージコートタンパク質と外来ポリペプチド（例えば、組換え抗ＦＲα／β抗体）を融合した形で発現させることでファージ表面に提示させる方法である（Ｃ．Ｂａｒｂａｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｈａｇｅ  Ｄｉｓｐｌａｙ：Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ，２００１等）。ファージコートタンパク質としては、Ｍ１３ファージではｇ３ｐやｇ８ｐを外来ポリペプチドの提示のために利用しうるし、また、Ｔ７ファージではｇ１０ｐを利用しうる。組換え抗ＦＲα／β抗体として、Ｈ鎖可変領域（ＶＨ）とＬ鎖可変領域（ＶＬ）とをリンカー（例えば（ＧＧＧＧＳ）３）で結合した単鎖抗体（ｓｃＦｖ）、多重特異性抗体（２以上の異なるＶＨと２以上の異なるＶＬとの組み合わせを含む抗体）等の合成抗体、（ヒト）抗体の（組換え）Ｈ鎖（ＶＨとＣＨ）、Ｌ鎖（ＶＬとＣＬ）又はそれらの組み合わせ等が含まれる。
上記の方法で製造可能な本発明で使用されうる抗体の具体例として、以下のものが挙げられるが、それらに限定されない。また、以下の抗体類に加えて、該抗体類の重鎖可変領域及び軽鎖可変領域のそれぞれの相補性決定領域を含む、キメラ抗体、単鎖抗体、多重特異性抗体等の組換え抗体も本発明に係る組成物、キット、診断剤に有効成分として含めることができる。
図１に示す、下記の実施例における抗ヒトＦＲα／βラットモノクローナル抗体（クローン名：Ｎｏ．５）由来の重鎖可変領域（ＶＨ）のアミノ酸配列（配列番号８、対応する塩基配列：配列番号７）、並びに軽鎖可変領域（ＶＬ）のアミノ酸配列（配列番号１６、対応する塩基配列：配列番号１５）を含む抗体又はそのフラグメント。
抗ヒトＦＲα／βラットモノクローナル抗体（クローン名：Ｎｏ．５）由来の重鎖可変領域（ＶＨ）のＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３のアミノ酸配列（それぞれ配列番号２、配列番号４、配列番号６）、並びに軽鎖可変領域（ＶＬ）のＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３のアミノ酸配列（それぞれ配列番号１０、配列番号１２、配列番号１４）を含む抗体又はそのフラグメント。
上記抗体は、重鎖可変領域又は軽鎖可変領域、或いはフレームワーク領域又は定常領域に、１〜３個、好ましくは１又は２個のアミノ酸残基の置換、欠失又は付加（若しくは挿入）の変異を含むことができる。そのような具体例は、以下の通りである。
抗ヒトＦＲα／βラットモノクローナル抗体（クローン名：Ｎｏ．５）由来の重鎖可変領域（ＶＨ）のアミノ酸配列（配列番号８、対応する塩基配列：配列番号７）において４４番目のアミノ酸グリシンをシステインに変異させたアミノ酸配列（配列番号１８、その対応する塩基配列：配列番号１７）、並びに軽鎖可変領域（ＶＬ）のアミノ酸配列（配列番号１６、対応する塩基配列：配列番号１５）において１００番目のアミノ酸グリシンをシステインに変異させたアミノ酸配列（配列番号２０、その対応する塩基配列：配列番号１９）を含む抗体又はそのフラグメント。
ヒト化抗体は、例えば上記抗体のＨ鎖及びＬ鎖の各ＣＤＲ１〜ＣＤＲ３、並びに、ヒト由来のＨ鎖及びＬ鎖の各フレームワーク及び定常領域の配列を含む。該フレームワーク領域及び定常領域のそれぞれのアミノ酸配列は、ＦＲαタンパク質及びＦＲβタンパク質との結合特異性を変更することなく、１〜３個、好ましくは１又は２個のアミノ酸残基の置換、欠失又は付加（若しくは挿入）の変異を含むことができる。具体的なヒト化抗体の例を以下に記載する。
重鎖可変領域（ＶＨ）のＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２及びＣＤＲＨ３のアミノ酸配列（それぞれ配列番号２、配列番号４、配列番号６）、並びに軽鎖可変領域（ＶＬ）のＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２及びＣＤＲＬ３のアミノ酸配列（それぞれ配列番号１０、配列番号１２、配列番号１４）を含むヒト化抗体又はそのフラグメント。
後述の実施例に記載されるように、上記の抗ヒトＦＲα／βラットモノクローナル抗体（クローン名：Ｎｏ．５）にＣｙｓ置換変異を導入して変異型ＶＨ及び変異型ＶＬを作製し、変異型ＶＨにトキシンポリペプチド（例えば緑膿菌由来外毒素（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  Ｅｘｏｔｏｘｉｎ（ＰＥ））を融合させてイムノトキシンＶＨを作製し、さらに変異型ＶＬを結合して、イムノトキシンを作製することができる。
本発明に係る抗体類は、ＦＲαタンパク質及びＦＲβタンパク質と免疫学的に特異的に結合するものであり、解離定数（Ｋｄ）が、例えば１×１０−７Ｍ以下、１×１０−８Ｍ以下、１×１０−９Ｍ以下、１×１０−１０Ｍ以下、１×１０−１１Ｍ以下、１×１０−１２Ｍ以下、１×１０−１３Ｍ以下、１×１０−１４Ｍ以下、又は１×１０−１５Ｍ以下である。
＜抗癌性分子標的薬＞
本発明では、上記の抗体類に薬剤を結合してなる抗癌性分子標的薬が、癌治療薬として、又は癌治療薬の有効成分として、或いは癌治療薬の製造のために使用される。
あるいは、上記の抗体類が補体存在下においてＦＲα発現癌細胞及びＦＲβ発現細胞の双方に対して傷害能（補体依存的細胞傷害能）を有し、あるいはマクロファージによるＦＲα発現癌細胞の貪食能（抗体依存性細胞貪食作用ＡＤＣＰ（ａｎｔｉｂｏｄｙ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ  ｃｅｌｌ  ｍｅｄｉａｔｅｄ  ｐｈａｇｏｃｙｔｏｓｉｓ））を促進することから、上記の抗体類を含むか又はそれから成る抗癌性分子標的薬を、癌治療薬として、又は癌治療薬の有効成分として、或いは癌治療薬の製造のために使用できる。
ＦＲαは、様々な癌（例えば卵巣癌、乳癌、悪性中皮腫、肺癌、大腸癌、悪性黒色腫、グリオブラストーマ、腎臓癌、膵臓癌等）の癌細胞上で発現され、且つＦＲβは、当該癌増殖を促進する癌関連マクロファージ上で発現される（非特許文献６及び７；Ｄａｖｉｄｓｏｎ  Ｂ．，Ｔｈｅ  ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ  ａｎｄ  ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ  ｏｆ  ｍａｌｉｇｎａｎｔ  ｍｅｓｏｔｈｅｌｉｏｍａ  ａｎｄ  ｏｖａｒｉａｎ／ｐｅｒｉｔｏｎｅａｌ  ｓｅｒｏｕｓ  ｃａｒｃｉｎｏｍａ．Ｃｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ．，２０１１  Ｆｅｂ；２２（１）：５−２１．ｄｏｉ：１０．１１１１／ｊ．１３６５−２３０３；Ｐａｒｋｅｒ  Ｎ．，Ｔｕｒｋ  ＭＪ．，Ｗｅｓｔｒｉｃｋ  Ｅ．，Ｌｅｗｉｓ  ＪＤ．，Ｌｏｗ  ＰＳ．，Ｌｅａｍｏｎ  ＣＰ．，Ｆｏｌａｔｅ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｉｎ  ｃａｒｃｉｎｏｍａｓ  ａｎｄ  ｎｏｒｍａｌ  ｔｉｓｓｕｅｓ  ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ  ｂｙ  ａ  ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ  ｒａｄｉｏｌｉｇａｎｄ  ｂｉｎｄｉｎｇ  ａｓｓａｙ．Ａｎａｌ  Ｂｉｏｃｈｅｍ．，２００５  Ｍａｒ  １５；３３８（２）：２８４−９３；Ｓａｎｃｈｅｚ−ｄｅｌ−Ｃａｍｐｏ  Ｌ．，Ｍｏｎｔｅｎｅｇｒｏ  ＭＦ．，Ｃａｂｅｚａｓ−Ｈｅｒｒｅｒａ  Ｊ．，Ｒｏｄｒｉｇｕｅｚ−Ｌｏｐｅｚ  ＪＮ．，Ｔｈｅ  ｃｒｉｔｉｃａｌ  ｒｏｌｅ  ｏｆ  ａｌｐｈａ−ｆｏｌａｔｅ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ  ｏｆ  ｍｅｌａｎｏｍａ  ｔｏ  ｍｅｔｈｏｔｒｅｘａｔｅ．Ｐｉｇｍｅｎｔ  Ｃｅｌｌ  ＭｅｌａｎｏｍａＲｅｓ．，２００９  Ｏｃｔ；２２（５）：５８８−６００；Ｐｕｉｇ−Ｋｒｏｇｅｒ  Ａ．，Ｓｉｅｒｒａ−Ｆｉｌａｒｄｉ  Ｅ．，Ｄｏｍｉｎｇｕｅｚ−Ｓｏｔｏ  Ａ．，Ｓａｍａｎｉｅｇｏ  Ｒ．，Ｃｏｒｃｕｅｒａ  ＭＴ．，Ｇｏｍｅｚ−Ａｇｕａｄｏ  Ｆ．，Ｒａｔｎａｍ  Ｍ．，Ｓａｎｃｈｅｚ−Ｍａｔｅｏｓ  Ｐ．，Ｃｏｒｂｉ  ＡＬ．，Ｆｏｌａｔｅ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｂｅｔａ  ｉｓ  ｅｘｐｒｅｓｓｅｄ  ｂｙ  ｔｕｍｏｒ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｍａｃｒｏｐｈａｇｅｓ  ａｎｄ  ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｅｓ  ａ  ｍａｒｋｅｒ  ｆｏｒ  Ｍ２ａｎｔｉ−ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ／ｒｅｇｕｌａｔｏｒｙ  ｍａｃｒｏｐｈａｇｅｓ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．２００９  Ｄｅｃ１５；６９（２４）：９３９５−４０３）。また、癌関連マクロファージとしては、例えば浸潤先進部の膵臓癌細胞周囲に存在するＦＲβ発現マクロファージが挙げられる（特許文献４）。
従って、抗ＦＲα／β抗体に薬剤を結合してなる抗癌性分子標的薬によれば、抗ＦＲα／β抗体がＦＲα発現癌細胞及びＦＲβ発現癌関連マクロファージに結合し、抗癌性分子標的薬中の薬剤が、ＦＲα発現癌細胞の増殖を抑制すると共に、ＦＲβ発現癌関連マクロファージの増殖を抑制することで、癌を治療することができる。あるいは、抗ＦＲα／β抗体を含むか又はそれから成る抗癌性分子標的薬によれば、ＦＲα発現癌細胞及びＦＲβ発現癌関連マクロファージに結合し、補体依存的細胞傷害によりＦＲα発現癌細胞の増殖を抑制すると共に、ＦＲβ発現癌関連マクロファージの増殖を抑制することで、癌を治療することができる。
抗癌性分子標的薬による治療対象の癌としては、癌細胞がＦＲαを発現し、癌関連マクロファージがＦＲβを発現する癌であれば、特に限定されるものではないが、例えば卵巣癌、乳癌、悪性中皮腫、肺癌、大腸癌、悪性黒色腫、グリオブラストーマ、腎臓癌、膵臓癌、口腔癌（口腔類表皮癌等）等が挙げられる。
抗ＦＲα／β抗体に結合させる薬剤としては、特に限定されるものではないが、例えばトキシン、細胞障害剤、酵素、サイトカイン及び化学療法薬等が挙げられる。
トキシン（「毒素」とも称する）には、非限定的に細菌由来毒素、植物由来毒素等の毒素を含み、また内毒素、外毒素等の毒素を含み、例えばジフテリア毒素、シュードモナス毒素、緑膿菌外毒素（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ  ｅｘｏｔｏｘｉｎ）リシンＡ鎖（ｒｉｃｉｎ  Ａ  ｃｈａｉｎ）又は脱糖鎖リシンＡ鎖（ｄｅｇｌｙｃｏｓｙｌａｔｅｄ  ｒｉｃｉｎ  Ａ  ｃｈａｉｎ）、緑膿菌外毒素ＰＥ３８、リボゾーム不活性化タンパク質（ｒｉｂｏｓｏｍｅ  ｉｎａｃｔｉｖａｔｉｎｇ  ｐｒｏｔｅｉｎ）、アブリンＡ鎖、モデシンＡ鎖、アルファサルシン（ａｌｐｈａ−ｓａｒｃｉｎ）、ゲロニン（ｇｅｌｏｎｉｎ）、アスペルギリン（ａｓｐｅｒｇｉｌｌｉｎ）、リストリクトシン（ｒｅｓｔｒｉｃｔｏｃｉｎ）、リボヌクレアーゼ（ｒｉｂｏｎｕｃｌｅａｓｅ）、エポドフィロトキシン（ｅｐｉｄｏｐｈｙｌｌｏｔｏｘｉｎ）、ジフテリアトキシン（ｄｉｐｈｔｈｅｒｉａ  ｔｏｘｉｎ）、ジフテリアＡ鎖、ブドウ球菌毒素（例えばブドウ球菌エンテロトキシン）等の細菌由来の毒素が含まれる。
腫瘍細胞に対する細胞障害剤には、抗腫瘍剤、腫瘍増殖抑制剤、細胞周期停止誘導剤、ＤＮＡ合成阻害剤、転写阻害剤、翻訳・タンパク質合成阻害剤、細胞分裂阻害剤、ミクロチューブル阻害剤、各種シグナル伝達阻害剤、ミクロＲＮＡ、ＳｉＲＮＡ、腫瘍細胞アポトーシス誘導剤、放射性核種等が含まれる。
細胞障害剤には、非限定的に、例えばヤマゴボウ抗ウイルス性タンパク質、アブリン、リシン及びそのＡ鎖、アルトレタミン、アクチノマイシンＤ、プリカマイシン、プロマイシン、グラミシジンＤ、ドキソルビシン、コルヒチン、サイトカラシンＢ、シクロホスファミド、エメチン、マイタンシン、アムサクリン、シスプラチン、エトポシド、エトポシドオルトキノン、テニポシド、ダウノルビシン、ゲムシタビン、ドキソルビシン、ミトキサントラオン（ｍｉｔｏｘａｎｔｒａｏｎｅ）、ビサントレン、ブレオマイシン、メトトレキセート、ビンデシン、ビノレルビン、ポドフィロトキシン、アドリアマイシン、ビンクリスチン、ビンブラスチン、ＢＣＮＵ、タキソール、タルセバ、アバスチン、マイトマイシン、修飾シュードモナスエンテロトキシンＡ、カリチェアミシン、５−フルオロウラシル、シクロホスファミド等が含まれる。
放射性核種には、非限定的に、例えば鉛−２１２、ビスマス−２１２、アスタチン−２１１、ヨウ素−１３１、スカンジウム−４７、レニウム−１８６、レニウム−１８８、サマリウム−１５３、イットリウム−９０、ヨウ素−１２３、ヨウ素−１２５、ヨウ素−１３１、臭素−７７、インジウム−１１１、リン−３２、及びホウ素−１０又はアクチニド等の核分裂性核種を含む放射性同位元素である。ラベル化は、例えばタンパク質のシステイン残基、リジン残基等のアミノ酸残基を介して行うことができる。ラベル化の手法については、例えばＭｏｎｏｃｌｏｎａｌ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ｉｎ  Ｉｍｍｕｎｏｓｃｉｎｔｉｇｒａｐｈｙ（Ｃｈａｔａｌ，ＣＲＣ  Ｐｒｅｓｓ  １９８９）に記載されている。
酵素としては、例えばＲＮＡ分解酵素、カスパーゼ等が挙げられる。
サイトカインとしては、例えばＩＬ−２、ＴＮＦ−α等が挙げられる。
化学療法薬としては、例えばマイタンシノイド、アウリスタチン、ペメトレゼート等が挙げられる。
本発明に係る抗癌性分子標的薬が上記抗体とトキシンから成る（すなわち、イムノトキシン）であるとき、これらの成分は融合タンパク質の形態をとることができる。この場合、トキシンは、抗体タンパク質の、例えば、可変領域のフレームワーク領域又はＣ末端領域、あるいは、定常領域のＣＨ３領域又はＣ末端領域に、必要に応じてリンカー（例えばペプチド）を介して、結合することができる。一方、本発明に係る抗癌性分子標的薬が上記抗体とトキシン又は細胞障害剤から成るとき、これらの成分は、結合のための官能基を介して共有結合又は非共有結合によって結合することができる。例えば、抗体分子中の反応性基、例えばアミノ基、カルボキシル基、水酸基、メルカプト基等の官能基を利用し、反応性基を有するトキシン又は細胞障害剤と反応させることによって分子標的薬を製造しうる。例えばＮ−スクシンイミジルエステル基、Ｎ−スルホスクシンイミジルエステル基、カルボキシル基、アミノ基、メルカプト基、ジスルフィド基等が含まれる。結合には、二官能性カップリング剤、活性エステル、アルデヒド類、ビスアジド、イソシアネート等のカップリング剤を利用しうる。
さらに、他の薬剤についても、抗体に対するトキシン又は細胞障害剤の結合方法に準じて、抗体に結合させ、本発明に係る抗癌性分子標的薬を作製することができる。
＜医薬組成物＞
本発明はまた、上記の抗癌性分子標的薬を、薬学的に許容可能な担体と共に含む、癌治療用医薬組成物を提供する。
本発明に係る抗癌性分子標的薬は、癌細胞及び癌関連マクロファージの増殖を抑制するのみならず、転移（特にリンパ節転移又は血行性転移）を抑制することが可能である。これらの転移を抑制することで、他の臓器への腫瘍転移を抑制することができる。
本発明に係る抗癌性分子標的薬は、例えば浸潤性膵臓癌の浸潤先進部に存在するＦＲβ発現マクロファージ（特許文献４）及び当該膵臓癌細胞と特異的に結合するため、膵臓癌を選択的に攻撃し、正常細胞に及ぼす影響を最小に抑えることができる。
薬学的に許容される担体（又は賦形剤）は、液体及び固体のいずれをも含み、経口製剤又は非経口製剤の種類に応じて適宜選択可能であり、例えば滅菌水、ＰＢＳ等の緩衝液、生理食塩水、リンゲル液、エタノール、グリセロール、植物油、ゼラチン、スクロース、ラクトース、アミロール、デンプン、脂肪酸エステル、ヒドロキシメチルセルロース等を含む。このような担体の他に、上記医薬組成物にはさらに、必要に応じて、滑沢剤、保存料、安定剤、湿潤剤、乳化剤、崩壊剤、可溶化剤、等張化剤、結合剤、緩衝剤、着色剤等の助剤を混合することができる。
本発明に係る医薬組成物は、経口投与、静脈内投与、動脈内投与、粘膜投与、筋肉内投与、皮下投与、頬投与、腹腔内投与、関節内投与、滑膜内投与、胸骨内投与、鼻腔内投与、ボーラス注射、連続注入、患部への直接投与等の投与経路で投与しうる。
該医薬組成物は、上記投与経路に応じて製剤化する。製剤には、非限定的に、例えば注射剤、溶液剤、懸濁剤、錠剤、顆粒剤、粉末剤、噴霧剤、カプセル剤、腸溶製剤、徐放製剤、多層製剤等の種々の剤型に処方しうる。
本発明に係る医薬組成物中の有効成分である抗癌性分子標的薬は、治療上有効量で単位剤型中に含有される。投与用量は、被験者の性別、年齢、体重、重篤度、投与経路、副作用等の様々な要因に応じて変化させうるが、有効成分量は、１日当たり約１μｇ以上、例えば５０〜１００μｇ又はそれ以上であるが、これらに限定されない。投与回数は、単回又は複数回のいずれでもよい。
本発明に係る医薬組成物は、癌の従来の治療剤を併用投与することも可能である。従来の治療剤には、例えばゲムシタビン、５−ＦＵ、シスプラチン、ジェムザール、ＴＳ−１等の医薬品が含まれる。これらの治療剤は、本発明に係る医薬組成物の投与の前、同時又は後に被験者に投与しうる。
また、本発明は、上述の本発明に係る抗ＦＲα／β抗体、抗癌性分子標的薬又は癌治療用医薬組成物の治療上有効量を癌患者に投与することを含む、癌の治療方法に関する。
＜癌の存在又は癌の悪性度の測定方法、癌治療の治療効果の判定方法、並びに、該測定又は判定のための癌診断薬及び癌診断キット＞
本発明はさらに、別の態様において、被験者由来の生物学的サンプル（例えば、組織又は細胞サンプル）を、本発明に係る抗ＦＲα／β抗体（発蛍光団、色素、放射性同位元素等のラベルで標識された抗体（癌診断薬）、或いは、非標識抗体）と接触させ、ＦＲα発現癌細胞及びＦＲβ発現癌関連マクロファージの存在を指標として、癌の存在又は癌の悪性度を測定（検査）する方法を提供する。
例えば、被験者由来の膵臓癌組織サンプルを、本発明に係る抗ＦＲα／β抗体（発蛍光団、色素、放射性同位元素等のラベルで標識された抗体（癌診断薬）、或いは、非標識抗体）と接触させて、ＦＲα発現膵臓癌細胞が存在するか否か、及び、ＦＲβ発現マクロファージが該組織中の先進部の膵臓癌細胞周囲に存在するか否かを調べ、ＦＲα発現膵臓癌細胞が存在し、且つＦＲβ発現マクロファージが該先進部の膵臓癌細胞周囲に分布するとき、該組織が浸潤性であり且つ転移性であると判定し、膵臓癌の悪性度又は浸潤性膵臓癌の存在を検査することができる。本明細書で使用される「浸潤」は、腫瘍の運動性の亢進に伴い、病巣組織の深部、そして組織を超えて原発巣からの離脱を意味する。腫瘍の浸潤性は、腫瘍が転移性となり悪性化したことを示す。特許文献４に記載されるように、膵臓癌の先進部が浸潤性となることと、ＦＲβ発現マクロファージが集積することとが相関しており、ＦＲα発現膵臓癌細胞の存在及びＦＲβ発現マクロファージの存在を上記抗体又はそのフラグメントを使用して検出することによって、膵臓癌が浸潤性及び転移性であると判定（決定又は同定又は分類又は評価）することができる。
あるいは、本発明は、癌治療を受けているか又は受けた被験者由来の癌組織サンプルを、本発明に係る抗ＦＲα／β抗体（発蛍光団、色素、放射性同位元素等のラベルで標識された抗体（癌診断薬）、或いは、非標識抗体）と接触させて、ＦＲα発現癌細胞及びＦＲＢ発現癌関連マクロファージの存在又は不在を指標として癌治療の治療効果を判定する方法を提供する。
本明細書で使用する「判定する」という用語は、医師の判断、すなわち医療行為を意図したものではなく、医師に検査結果の情報又はデータを提示し、医師の判断を助けるための手段を意味する。従って、「判定する」という用語は、「測定する」、「検査する」、「決定する」又は「評価する」等の用語で置き換えることができる。
本発明はさらに、上記測定又は判定方法等において使用するための癌診断薬又は癌診断キットも提供する。
画像診断の場合、癌診断薬又は癌診断キットに、上記抗体又はそのフラグメントと標識とを結合した複合体を含めることができる。標識には、上記で例示したような発蛍光団、色素、放射性同位元素等が含まれる。
抗体によるＦＲα発現癌細胞及びＦＲβ発現マクロファージの検出は、ＥＬＩＳＡ、蛍光抗体法、放射免疫法、サンドイッチ法、組織染色法等によって行うことができる。二次抗体に、例えば酵素（例えばペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ等）、発蛍光団（例えばＦＩＴＣ、テトラメチルローダミン、テキサスレッド等）、色素、放射性同位元素等のラベル（標識）を結合したものを使用して、癌細胞及びマクロファージに結合した抗体の複合体を検出する。ラベルの結合には、化学的結合法、ビオチン−（ストレプト）アビジン系を利用する結合法等が含まれる。
画像診断の場合には、薬学的に許容可能な放射性核種や発光体を抗体にラベルし、被験者に該抗体を投与し、ＰＥＴ／ＣＴ等の画像診断技術を使用して画像をとり、癌の存在を判定又は検査することができる。
本発明に係る癌診断キットには、上記（標識された、又は標識されない）抗体又はそのフラグメント或いはそれらを含む造影剤の他に、測定に使用するためのバッファー、ラベル化二次抗体等の試薬、測定手順を記載した使用説明書等を含めることができる。試薬は、別々の容器に密封される。
以上に説明する本発明に係る抗ＦＲα／β抗体又はその結合物によれば、従来の癌細胞を標的とした抗ＦＲα抗体又は癌増殖を促進する癌関連マクロファージに向けられた抗ＦＲβ抗体単独の使用に比べて、ＦＲα発現癌細胞、及びＦＲβ発現癌関連マクロファージを同時に傷害することにより癌を効果的に治療することができる。また様々な癌の存在、悪性度及び癌治療の治療効果を診断することができ、医薬産業上有用である。
また、従来の抗ＦＲα抗体と抗ＦＲβ抗体の二者併用療法を行う場合、抗ＦＲα抗体とＦＲα発現癌細胞の結合と、抗ＦＲβ抗体とＦＲβ発現マクロファージの結合との間の差異に起因して、両者の適正な使用量の決定が困難である。一方、本発明に係る抗ＦＲα／β抗体又はその結合物は、抗ＦＲα抗体と抗ＦＲβ抗体の併用療法に比べて低用量で良く、経済的にも優位である。
以下、実施例を用いて本発明をより詳細に説明するが、本発明の技術的範囲はこれら実施例に限定されるものではない。
【実施例１】
【０００８】
抗ヒトＦＲα／βラットモノクローナル抗体（クローン名：Ｎｏ．５）の作製
［ヒトＦＲβ発現細胞の作製］
関節リウマチ滑膜からＴｒｉｚｏｌ（ＧｉｂｃｏＢＲＬ）、ｃＤＮＡ  ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ｋｉｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）にて添付説明書に従って全ＲＮＡを抽出後、ＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔ  ｐｌａｓｍｉｄ  Ｓｙｓｔｅｍ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）にて添付説明書に従ってｃＤＮＡを合成した。次に、１μｌのリウマチ滑膜ｃＤＮＡをＢｉｏｎｅｅｒ  ＰＣＲ  ｐｒｅｍｉｘ（Ｂｉｏｎｅｅｒ）に加え、１０ピコモル量に調整したセンスプライマー：ａｇａａａｇａｃａｔｇｇｇｔｃｔｇｇａａａｔｇｇａｔｇ（配列番号２１）；及びアンチセンスプライマー：ｃａｔａｔｇｇａｃｔｇａａｃｔｃａｇｃｃａａｇｇａｇｃｃａｇａｇｔｔ（配列番号２２）を加え、９４℃２０秒、５８℃３０秒、７２℃６０秒で３０サイクルＰＣＲを行い、その後７２℃５分で反応させることにより、ヒトＦＲβ遺伝子を増幅した。増幅したＦＲβ遺伝子のＰＣＲ産物をプラスミドＰＣＲ２．１−ＴＯＰＯ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）にライゲーションを行った。すなわち、ＰＣＲ産物２．５μｌにＮａＣｌ溶液を１μＬ、滅菌蒸留水１．５μｌ、ベクタープラスミド（ＰＣＲ２．１−ＴＯＰＯ）１μＬを加えて室温で５分間インキュベートし、その内の２μＬを大腸菌（ＴＯＰ１０Ｆ’）に加えて氷中で３０分反応後、４２℃３０秒の熱処理し、氷中で２分間静置し、２５０μＬのＳＯＣ培地を加えた後、３７℃で１時間シェーカー内で培養した。培養終了後、ＬＢ培地に捲き、３７℃で一晩培養した。
大腸菌培養の為、プレート上より採取した白いコロニーを、アンピシリン（５０ｍｇ／ｍＬ）含有ＬＢ液体培地に加えて３７℃一晩培養した。大腸菌内のプラスミドの精製はＱｉａｇｅｎプラスミド精製キット（Ｑｉａｇｅｎ）にて行った。組み込まれたＦＲβ遺伝子は、制限酵素ＥｃｏＲＩによる処理後、アガロース電気泳動に展開し、約０．８ｋｂ（７８２ｂｐ）のＦＲβ遺伝子産物を確認後、その部位を切り出し、遺伝子産物の抽出をＱｕｉａｇｅｎ  ＰＣＲ  ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｋｉｔ（Ｑｕｉａｇｅｎ）にて精製した。次に、予めＥｃｏＲＩ処理を行った哺乳細胞発現用ベクターｐＥＲ−ＢＯＳ（Ｍｉｚｕｓｈｉｍａ  ｅｔ  ａｌ．ｐＥＦ−ＢＯＳ，ａｐｏｗｅｒｆｕｌ  ｍａｍｍａｌｉａｎ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｖｅｃｔｏｒ．Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｒｅｓ．１９９０；１８（１７）：５３２２）と混和し、Ｔ４  ｌｉｇａｓｅ（Ｒｏｃｈｅ）を用いてライゲーションを行った。ライゲーション産物の大腸菌（ＴＯＰ１０Ｆ’）への遺伝子導入並びにＦＲβ遺伝子の確認は上記と同様の手法で行った。
ｐＥＦ−ＢＯＳに組み込まれたＦＲβ遺伝子を確認後、ヒトＦＲβ遺伝子を含むベクターはマウスＢ３００−１９細胞に遺伝子導入を行った。すなわち、予め１ｘ１０５個に調整した各細胞に、２０μＬのリポフェクタミン（ＧｉｂｃｏＢＲＬ）と混和したＦＲβ遺伝子含有ベクター１μｇを加え、細胞に添加した。遺伝子導入されたＢ３００−１９マウス細胞は抗生物質Ｇ４１８耐性を獲得するため、１ｍｇ／ｍＬの濃度のＧ４１８を含む培地にて遺伝子導入された細胞を選択培養した。遺伝子導入された細胞のＦＲβ遺伝子導入の確認はＰＣＲ法にて行った。すなわち、１ｘ１０７個に調整した各細胞をｃＤＮＡ  ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ｋｉｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）にてｃＤＮＡを合成し、１０ピコモル量に調整したセンスプライマー：ａｇａａａｇａｃａｔｇｇｇｔｃｔｇｇａａａｔｇｇａｔｇ（配列番号２１）；及びアンチセンスプライマー：ｃａｔａｔｇｇａｃｔｇａａｃｔｃａｇｃｃａａｇｇａｇｃｃａｇａｇｔｔ（配列番号２２）をＢｉｏｎｅｅｒ  ＰＣＲｐｒｅｍｉｘ（Ｂｉｏｎｅｅｒ）に加え、９４℃２０秒、５８℃３０秒、７２℃６０秒で３０サイクルＰＣＲを行い、その後７２℃５分で反応させることにより、ヒトＦＲβ遺伝子を増幅した。増幅後アガロース電気泳動を行い、ＦＲβ遺伝子が示すバンド０．８ｋｂを確認した。
［ヒトＦＲαとヒトＦＲβの双方に反応するモノクローナル抗体の作製］
ヒトＦＲβ発現マウスＢ３００−１９細胞を１ｘ１０７個に調整し、フロインド完全アジュバンドと混合し、Ｗｉｓｔｅｒ  Ｋｙｏｔｏラットの尾根部あるいは腹腔内に免疫した。この操作を１週間ごとに２〜４回繰り返した。
モノクローナル抗体の作製はＫｏｈｌｅｒの方法（Ｋｏｈｌｅｒ  ＆  Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｎａｔｕｒｅ（１９７５）２５６：４９５−９６）に従って行った。すなわち、脾臓あるいは腸骨リンパ節を取り出して単一細胞に解離させ、骨髄腫由来の細胞（ＮＳ−１）と細胞融合させてハイブリドーマを作製した。ハイブリドーマはＨＡＴ選択培地にて培養し、培養上清中に分泌された抗体の中で、先のＦＲβ発現細胞とＦＲα発現ＫＢ細胞株（Ｈｕｍａｎ  ｅｐｉｄｅｒｍｏｉｄ  ｃａｒｃｉｎｏｍａ）の双方に反応するものを選別した。
抗体産生が認められたハイブリドーマのクローン化は、９６穴プレートの各穴当たり１細胞となるように調整した限界希釈培養にて行った。
クローン化したハイブリドーマを用いた抗体の採取は、１０％ＦＣＳ、１０％ＮＣＴＣ−１０９メディウム（Ｇｉｂｃｏ）、１％ＨＴ  Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ（Ｇｉｂｃｏ）及び１％Ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃ／Ａｎｔｉｍｙｃｏｔｉｃ  Ｍｉｘｅｄ（Ｎａｋａｒａｉ）を含むＩＭＤＥＭメディウム（Ｇｉｂｃｏ）で培養し、ヤギ抗ラット免疫グロブリンアガロース（Ｒｏｃｋｌａｎｄ）で精製した。
このようにして、抗ヒトＦＲα／βラットモノクローナル抗体（クローン名：Ｎｏ．５）を得ることができた（以下、「抗体Ｎｏ．５」と称する）。
［抗体Ｎｏ．５のフローサイトメーター（ＦＡＣＳ）によるＦＲα及びＦＲβに対する反応の実験］
１ｘ１０５に調整したＦＲ−β発現Ｂ３００−１９細胞（図２（Ａ））とＦＲα発現ＫＢ細胞（図２（Ｂ））に、抗体Ｎｏ．５を反応させた。また、ＦＲβを認識する抗体（９４ｂ）（特許文献４）及びＦＲαを認識する抗体（Ｍｏｖ１８）（Ｍｉｏｔｔｉ  Ｓ，Ｃａｎｅｖａｒｉ  Ｓ，Ｍｅｎａｒｄ  Ｓ，Ｍｅｚｚａｎｚａｎｉｃａ  Ｄ，Ｐｏｒｒｏ  Ｇ，Ｐｕｐａ  ＳＭ，Ｒｅｇａｚｚｏｎｉ  Ｍ，Ｔａｇｌｉａｂｕｅ  Ｅ，Ｃｏｌｎａｇｈｉ  ＭＩ．，Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｏｖａｒｉａｎ  ｃａｒｃｉｎｏｍａ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ａｎｔｉｇｅｎｓ  ｄｅｆｉｎｅｄ  ｂｙ  ｎｏｖｅｌ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ｗｉｔｈ  ｔｕｍｏｒ−ｒｅｓｔｒｉｃｔｅｄ  ｓｐｅｃｉｆｉｃｉｔｙ．  Ｉｎｔ  Ｊ  Ｃａｎｃｅｒ．１９８７；３９（３）：２９７−３０３．）を陽性コントロールとして、ｉｓｏｔｙｐｅ  ｃｏｎｔｒｏｌ  ＲａｔＩｇＧ２ａ（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ  Ｂｉｏｔｅｃｈ）を陰性対照抗体として反応させた。更にＡＰＣでラベルした抗ラット抗体で更に反応させた。反応終了後の染色性をフローサイトメーターで測定した。
図２に示すように、抗体Ｎｏ．５はＦＲ−β発現Ｂ３００−１９細胞とＦＲα発現ＫＢ細胞のいずれにも反応した。
次いで、卵巣癌細胞株ＩＧＲＯＶ１、ＯＶＡＣＡＲ３及びＳＫＯＶ３に、抗体Ｎｏ．５を反応させた。ＦＲαを認識する抗体（Ｍｏｖ１８）を陽性コントロールとして、ｉｓｏｔｙｐｅ  ｃｏｎｔｒｏｌ  ＲａｔＩｇＧ２ａ（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ  Ｂｉｏｔｅｃｈ）を陰性対照抗体として反応させた。更にＡＰＣでラベルした抗ラット抗体で更に反応させた。反応終了後の染色性をフローサイトメーターで測定した。
図３に示すように、抗体Ｎｏ．５は、Ｍｏｖ１８抗体に比べてＩＧＲＯＶ１には強陽性であったが、Ｍｏｖ１８抗体が反応するＯＶＡＣＡＲ３では反応せず、これらの抗体のエピトープが異なることが示唆された。
［抗体Ｎｏ．５を用いた卵巣癌組織の免疫染色］
卵巣癌患者から得られた癌組織を、抗体Ｎｏ．５、抗ＦＲα抗体（Ｍｏｖ１８）、抗ＦＲβ抗体（９４ｂ）及び抗ＣＤ６８抗体と反応させ、ペルオキシダーゼ標識抗ラットＩｇＧ抗体あるいはペルオキシダーゼ標識抗マウスＩｇＧ抗体で反応させ、ＤＡＢ発色試薬（ＤＡＫＯ社）を用いて発色させた。
図４は同一標本におけるそれぞれの抗体による２箇所の染色パターンを示す。抗体Ｎｏ．５は、ＦＲα陽性癌細胞と癌組織に浸潤するＦＲβ（＋）マクロファージに反応することが示された。
［当該抗体Ｎｏ．５の葉酸リセプター発現細胞に対する補体依存的細胞傷害能］
９６穴プレートの各ウェルに、ＲＰＭＩ培地にて５ｘ１０４個／５０μＬに調整したＩＧＲＯＶ、ＥＳ−２及びヒトＦＲβ発現Ｂ３００−１９細胞を撒いた後、ＲＰＭＩ培地で１μｇ／２５μＬの濃度に調整した抗体Ｎｏ．５、陰性対照の抗ＧＦＰ抗体、或いは２５μＬのＲＰＭＩ培地を各ウェルに添加した。次に、ＲＰＭＩ培地で５０％に希釈したウサギ補体血清（シグマアルドリッチ）２５μＬ、或いはＲＰＭＩ培地２５μＬを添加した（各ウェル当たり５ｘ１０４個／１００μＬとなり、抗体の終濃度は１０μｇ／ｍＬ、補体の終濃度は１２．５％となる）。無添加対照群（ベースライン群）は、５０μＬのＲＰＭＩ培地を添加した細胞を用いた。さらにベースライン群は細胞数の希釈系列を作製した。陽性対照群（最大細胞障害群）は、５０μＬの２％Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００を含むＲＰＭＩ培地を添加した細胞を用いた。設定した各群につき４ウェルを使用し、ＣＯ２インキュベーター（３７℃）にて２時間培養を行った。培養終了後、ｃｅｌｌ  ｃｏｕｎｔｉｎｇ  ｋｉｔ−８（同仁化学）を各ウェルに加え、生存細胞が示す培養液中の吸光度（４５０ｎｍ）をマイクロプレートリーダー（Ｂｉｏｒａｄ社）にて計測した。ベースライン群の細胞数の希釈系列が示す吸光度の減少と、Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００添加群（最大細胞傷害群）が示す吸光度をプロットした後、各ウェルが示す吸光度から細胞傷害率を算出した。
図５に示すように抗ヒトＦＲα／β抗体は、補体存在においてＦＲα発現細胞株（上段）、ＦＲβ発現細胞株（下段）に細胞傷害能を示したが、ＦＲαとＦＲβのいずれも発現していない細胞株（中段）では、補体存在下においても細胞傷害能を示さなかった。当該結果は、補体の存在する生体内において、抗ヒトＦＲα／β抗体のＦＲα発現癌増殖抑制能を示唆する結果である。
【実施例２】
【０００９】
抗体Ｎｏ．５の抗体遺伝子からの抗ヒトＦＲα／βイムノトキシン（分子標的薬）の作製
［抗体Ｎｏ．５の抗体遺伝子の決定］
抗体Ｎｏ．５を産生するラットハイブリドーマクローンＮｏ．５を１ｘ１０７個にそれぞれ調整し、ｃＤＮＡ  ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ｋｉｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）にてｃＤＮＡを合成した。次に、Ｉｇ−Ｐｒｉｍｅ  Ｋｉｔ及びラット抗体重鎖領域のクローニング用にデザインしたプライマー：ｃａｃｃａｔｇｇａｇｔｔａｃｔｔｔｔｇａｇ（配列番号２３）を用い、重鎖（以後「ＶＨ」）及び軽鎖（以後「ＶＬ」）の遺伝子をＰＣＲにて増幅させた。
増幅したＶＨ遺伝子及びＶＬ遺伝子のＰＣＲ産物をプラスミドＰＣＲ２．１−ＴＯＰＯ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）にライゲーションし、大腸菌（ＴＯＰ１０Ｆ’）に遺伝子導入した。次に、大腸菌よりプラスミドを精製し、ＶＨ遺伝子及びＶＬ遺伝子の塩基配列を決定した。塩基配列の決定はＢｉｇＤｙｅ  Ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ  Ｖ３．１  ｃｙｃｌｅ  ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ  ｋｉｔ（ＡＢＩ）を用いてＰＣＲを行い、ＡＢＩ  ３１０  ＤＮＡ  ｓｅｑｕｅｎｃｅｒにて解析した。
このようにして、抗体Ｎｏ．５の抗体遺伝子として、ＶＨ遺伝子（塩基配列：配列番号７及びその対応アミノ酸配列：配列番号８）、ＣＤＲＨ１遺伝子（塩基配列：配列番号１及びその対応アミノ酸配列：配列番号２）、ＣＤＲＨ２遺伝子（塩基配列：配列番号３及びその対応アミノ酸配列：配列番号４）及びＣＤＲＨ３遺伝子（塩基配列：配列番号５及びその対応アミノ酸配列：配列番号６）、並びにＶＬ遺伝子（塩基配列：配列番号１５及びその対応アミノ酸配列：配列番号１６）、ＣＤＲＬ１遺伝子（塩基配列：配列番号９及びその対応アミノ酸配列：配列番号１０）、ＣＤＲＬ２遺伝子（塩基配列：配列番号１１及びその対応アミノ酸配列：配列番号１２）及びＣＤＲＬ３遺伝子（塩基配列：配列番号１３及びその対応アミノ酸配列：配列番号１４）を決定した（図１）。
［免疫グロブリン重鎖可変領域（ＶＨ）遺伝子にシステインの変異を導入］
抗体Ｎｏ．５の免疫グロブリン重鎖可変領域（ＶＨ）遺伝子（配列番号７）において、対応するアミノ酸配列（配列番号８）の４４番目のアミノ酸グリシンに対するコドン（塩基配列ｇｇｔ）をシステインに対するコドン（塩基配列ｔｇｔ）に変異させるようにデザインしたプライマーを作製し（センス：ａｇｃｃｔｃｃｇｇｇａａａｇｔｇｔｃｔｇｇａｇｔｇｇａｔｇ（配列番号２４）及びアンチセンス：ｃａｔｃｃａｃｔｃｃａｇａｃａｃｔｔｔｃｃｃｇｇａｇｇｃｔ（配列番号２５））、Ｑｕｉｃｋ  ｃｈａｎｇｅ  ｓｉｔｅ−ｄｉｒｅｃｔｅｄ  ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ  ｋｉｔ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）を用いて、抗体Ｎｏ．５のＶＨ遺伝子を含むプラスミドｐＣＲ２．１−ＴＯＰＯ  ＶＨに変異誘発処理を行った。このＰＣＲ反応は、反応液を９５℃３０秒、５５℃６０秒、６８℃４分のサイクルを１２回連続して行った。
次に、反応後のＤＮＡを大腸菌ＸＬ１−Ｂｌｕｅに遺伝子導入し、０．１ｍｇ／ｍＬのアンピシリンを含むＬＢ培地で選択培養した。選択した形質転換体のプラスミドをＱＩＡｐｒｅｐｓｐｉｎ  Ｍｉｎｉｐｒｅｐ  ＫＩＴ（Ｑｉａｇｅｎ）により精製した。さらに塩基配列をＢｉｇ  Ｄｙｅ  Ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ  ｖ３．１  ｃｙｃｌｅ  ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ  ｋｉｔ（ＡＢＩ）とＡＢＩ３１０シーケンサーにて決定し、抗体Ｎｏ．５のＶＨ（配列番号８）において４４番目のグリシンがシステイン（塩基配列ｔｇｔ）に変異したことを確認した。得られた変異ＶＨ遺伝子の塩基配列は配列番号１７の塩基配列であり、その対応アミノ酸配列は配列番号１８のアミノ酸配列である。
［タンパク質発現ベクターｐＲＫ７９ＰＥ３８に変異を導入したＶＨを挿入］
次に、ＰＥ３８遺伝子を含むｐＲＫ７９ベクターｐＲＫ７９ＰＥ３８（Ｋｒｅｉｔｍａｎ  ＲＪ，Ｂａｉｌｏｎ  Ｐ，Ｃｈａｕｄｈａｒｙ  ＶＫ，ＦｉｔｚＧｅｒａｌｄ  ＤＪ，Ｐａｓｔａｎ．，Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ  ｉｍｍｕｎｏｔｏｘｉｎｓ  ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇａｎｔｉ−Ｔａｃ（Ｆｖ）  ａｎｄ  ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓ  ｏｆ  Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ｅｘｏｔｏｘｉｎ  ｐｒｏｄｕｃｅ  ｃｏｍｐｌｅｔｅ  ｒｅｇｒｅｓｓｉｏｎ  ｉｎ  ｍｉｃｅ  ｏｆ  ａｎ  ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−２  ｒｅｃｅｐｔｏｒ−ｅｘｐｒｅｓｓｉｎｇ  ｈｕｍａｎ  ｃａｒｃｉｎｏｍａ．Ｂｌｏｏｄ．１９９４  Ｊａｎ  １５；８３（２）：４２６−３４．）への、抗体Ｎｏ．５のＶＨ遺伝子に変異を導入した変異ＶＨ遺伝子（配列番号１７）の挿入を以下の方法にて行った。
変異ＶＨ遺伝子の５’末端部と３’末端部のアニーリングプライマーとしてｃａｔａｔｇｃａｇｇｔｇｃａｇｃｔｇａａｇｇａｇ（配列番号２６）とｇｇａａｇｃｔｔｔｔｇａｇｇａｇａｃｔｇｔｇａｃｃａｔｇａ（配列番号２７）をそれぞれデザインした。アニーリングプライマーにはそれぞれ制限酵素であるＮｄｅＩがあり、この部位でのクローニングにより、ａｔｇを開始コドンとしたタンパク質の発現が可能である。また、もう片方のアニーリングプライマーにはＨｉｎｄＩＩＩ部位が挿入されており、この部位でのクローニングにより、変異ＶＨ遺伝子とＰＥ遺伝子が結合した融合タンパク質の発現が可能である。
これらのプライマーの組み合わせとｐｆｕ  ＤＮＡ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）を使って変異を導入したプラスミドのＰＣＲを行った。この反応は９４℃２０秒、５５℃３０秒、７２℃６０秒で３０サイクルＰＣＲを行い、その後７２℃５分で反応させた。次に、ＰＣＲ産物を精製し、精製産物に制限酵素ＮｄｅＩ（Ｎｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  Ｂｉｏｌａｂｓ）とＨｉｎｄＩＩＩ（Ｎｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  Ｂｉｏｌａｂｓ）を加えて反応後、電気泳動に展開し、ＱＩＡｑｕｉｃｋ  ｇｅｌ  ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ  ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いてゲルから目的の大きさのＤＮＡを回収した。回収したＤＮＡに、制限酵素処理した変異導入ＶＨ遺伝子と同様の制限酵素で処理したｐＲＫ７９ＰＥ３８を添加し、さらにＬｉｇａｔｉｏｎ  Ｈｉｇｈ（Ｔｏｙｏｂｏ）を用いて変異ＶＨ遺伝子とｐＲＫ７９ＰＥ３８のライゲーション反応を行った。ライゲーション反応終了、大腸菌ＴＯＰ１０Ｆ’（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）に遺伝子導入し、０．１ｍｇ／ｍＬのアンピシリンを含むＬＢ培地にて形質転換体を選択した。選択した形質転換体のプラスミドｐＲＫ７９−ＶＨＰＥをＱＩＡｐｒｅｐ  ｓｐｉｎ  Ｍｉｎｉｐｒｅｐ  ＫＩＴ（Ｑｉａｇｅｎ）により精製した。さらに塩基配列をＢｉｇ  Ｄｙｅ  Ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ  ｖ３．１  ｃｙｃｌｅ  ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ  ｋｉｔ（ＡＢＩ）とＡＢＩ３１０シーケンサーにて塩基配列を決定した（変異ＶＨ（配列番号１８）を含むラット抗ヒトＦＲα／βイムノトキシンＶＨＰＥ）。
［免疫グロブリン軽鎖可変領域遺伝子にシステイン変異を導入］
抗体Ｎｏ．５の免疫グロブリン軽鎖可変領域（ＶＬ）遺伝子（配列番号１５）において、対応するアミノ酸配列（配列番号１６）の１００番目のアミノ酸グリシンに対するコドン（塩基配列ｇｇａ）をシステインに対するコドン（塩基配列ｔｇｔ）に変異させるようにデザインしたプライマーを作製した（ｃａｔａｔｇｇａｃａｔｃｃａｇａｔｇａｃａｃａｇｔｃｔ（配列番号２８）及びｇａａｔｔｃｃｔａｔｔｔｃａａｔｔｃｃａｇｃｔｔｇｇｔｇｃｃａｃａａｃｃｇａａｃｇｔ（配列番号２９））。
これらのプライマーの組み合わせとｐｆｕ  ＤＮＡ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）を使って抗体Ｎｏ．５のＶＬ遺伝子を含むプラスミドのＰＣＲを行った。この反応は９４℃２０秒、５５℃３０秒、７２℃６０秒で３０サイクルＰＣＲを行い、その後７２℃５分で反応させた。
次に、ＰＣＲ産物を精製し、精製産物に制限酵素ＮｄｅＩ（Ｎｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  Ｂｉｏｌａｂｓ）とＥｃｏＲＩ（Ｎｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  Ｂｉｏｌａｂｓ）を加えて反応後、電気泳動に展開し、ＱＩＡｑｕｉｃｋ  ｇｅｌ  ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ  ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いてゲルから目的の大きさのＤＮＡを回収した。回収したＤＮＡに、制限酵素処理した変異導入ＶＬ遺伝子と同様の制限酵素で処理したｐＲＫ７９ＰＥ３８を添加し、さらにＬｉｇａｔｉｏｎ  Ｈｉｇｈ（Ｔｏｙｏｂｏ）を用いて変異ＶＬ遺伝子とｐＲＫ７９ＰＥ３８のライゲーション反応を行った。ライゲーション反応終了、大腸菌ＴＯＰ１０Ｆ’（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）に遺伝子導入し、０．１ｍｇ／ｍＬのアンピシリンを含むＬＢ培地にて形質転換体を選択した。選択した形質転換体のプラスミドｐＲＫ７９−ＶＬをＱＩＡｐｒｅｐ  ｓｐｉｎ  Ｍｉｎｉｐｒｅｐ  ＫＩＴ（Ｑｉａｇｅｎ）により精製した。さらに塩基配列をＢｉｇ  Ｄｙｅ  Ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ  ｖ３．１  ｃｙｃｌｅ  ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ  ｋｉｔ（ＡＢＩ）とＡＢＩ３１０シーケンサーにて決定し、抗体Ｎｏ．５のＶＬ（配列番号１６）において１００番目のアミノ酸がシステインに変異していることや、終始コドンｔａｇが配置されていることを確認した（変異ＶＬ（塩基配列：配列番号１９；その対応アミノ酸配列：配列番号２０）を含むラット抗ヒトＦＲα／βイムノトキシンＶＬ）。
［リコンビナントタンパク質封入体の調製］
上記の変異導入ＶＨ遺伝子を組み込んだプラスミドｐＲＫ７９−ＶＨＰＥ、変異導入ＶＬ遺伝子を組み込んだプラスミドｐＲＫ７９−ＶＬを５０ｎｇ調整し、タンパク質発現用大腸菌ＢＬ２１（ＤＥ３）に遺伝子導入した。遺伝子が導入された大腸菌の選抜は０．１ｍｇ／ｍＬのアンピシリンを含むＬＢ培地にて３７℃１５〜１８時間の培養で行った。
選択終了後の大腸菌は１０００ｍＬのスーパーブロース培地で３７℃の条件で培養し、可視吸光度６００ｎｍで１．０−１．５に到達するまで培養した。培養後、ＩＰＴＧ（ｉｓｏｐｒｏｐｙｌ−ｂｅｔａ−Ｄ−ｔｈｉｏ−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ）を終濃度１ｍＭになるように培地に添加し、さらに９０分間３７℃で培養した。培養終了後、遠心分離にて大腸菌を回収後、５０ｍＭトリス緩衝液（ｐＨ７．４、２０ｍＭ  ＥＤＴＡを含む）を用いて２００ｍＬとなるまで懸濁した。懸濁後、卵白リゾチームを最終濃度０．２ｍｇ／ｍＬとなるように加え、室温で１時間反応させて大腸菌の破壊を行った。破壊後、２０，０００ｘｇで遠心分離を行い、沈殿を回収した。沈殿物はさらに５０ｍＭトリス緩衝液（ｐＨ７．４、２．５％のＴｒｉｔｏｎＸ−１００、０．５Ｍ  ＮａＣｌ、２０ｍＭ  ＥＤＴＡを含む）で２００ｍＬとなるまで懸濁し、卵白リゾチームを最終濃度０．２ｍｇ／ｍＬとなるように加え、室温で１時間反応させた。反応終了後、２０，０００ｘｇで遠心分離を行い、沈殿を回収した。沈殿はさらに５０ｍＭトリス緩衝液（ｐＨ７．４、２．５％のＴｒｉｔｏｎＸ−１００、０．５Ｍ  ＮａＣｌ、２０ｍＭ  ＥＤＴＡを含む）で２００ｍＬとなるまで懸濁し、十分混和させた後、２０，０００ｘｇで遠心分離を行い、沈殿を回収した。この操作を５回繰り返した後の沈殿物をリコンビナントイムノトキシン封入体とし、さらに０．１Ｍトリス緩衝液（ｐＨ８．０、６Ｍグアニジン塩酸塩、１ｍＭ  ＥＤＴＡを含む）で溶解させ、最終濃度１０ｍｇ／ｍＬとなるように調節した。
［可溶化したＶＨＰＥとＶＬのカップリングとリフォールディング、精製］
上記で調製したＶＨＰＥとＶＬを混和させ、リコンビナント二重鎖Ｆｖ抗ＦＲα／βイムノトキシンを作製した。
先ず、０．５ｍＬのＶＨＰＥ、０．２５ｍＬのＶＬを混和し、ジチオトレイトール（ＤＴＴ）を最終濃度１０ｍｇ／ｍＬとなるように加え、室温で４時間の還元処理を行った。処理後、７５ｍＬの０．１Ｍトリス緩衝液（ｐＨ８．０、０．５Ｍアルギニン、０．９ｍＭ酸化型グルタチオン、２ｍＭ  ＥＤＴＡを含む）に溶解させた。この溶液を１０℃で４０時間放置することによって、ＶＨとＶＬを結合させた。結合終了後、分子量１０，０００カットの遠心濃縮器（Ｃｅｎｔｒｉｃｏｎ  １０、Ａｍｉｃｏｎ）で５ｍＬまで濃縮し、さらに５０ｍＬのトリス緩衝液（ｐＨ７．４、０．１Ｍ尿素、１ｍＭ  ＥＤＴＡを含む）で希釈した。この希釈液をリコンビナントイムノトキシン精製の出発物質とした。
次に、トリス緩衝液（ｐＨ７．４、１ｍＭ  ＥＤＴＡを含む）で平衡化したイオン交換カラムＨｉ−Ｔｒａｐ  Ｑ（ＧＥ）に、３０ｍＬ／時間の流速で、上記出発物質を吸着させた後、トリス緩衝液（ｐＨ７．４、１ｍＭ  ＥＤＴＡを含む）で洗浄した。洗浄後、吸着したリコンビナントタイプイムノトキシンの溶出をトリス緩衝液（ｐＨ７．４、０．３Ｍ  ＮａＣｌ、１ｍＭ  ＥＤＴＡを含む）で行った。溶出サンプルはトリス緩衝液（ｐＨ７．４、１ｍＭ  ＥＤＴＡを含む）で透析した後、イオン交換カラムＰＯＲＯＳ  ＨＱ（ＰＯＲＯＳ）でさらに精製した。すなわち、透析した精製物質を１０ｍＬ／分の流速で吸着させ、トリス緩衝液（ｐＨ７．４、１ｍＭ  ＥＤＴＡを含む）で洗浄後、上記緩衝液に０Ｍから１．０ＭのＮａＣｌ勾配を設定することにより、リコンビナントタイプイムノトキシンの溶出を行った。精製リコンビナントタイプイムノトキシンの最終調製はＴＳＫ３００ＳＷ（Ｔｏｓｏｈ）ゲル濾過クロマトグラフィーにて行った。先ず、７５％の消毒用エタノールで４８時間洗浄することによってＴＳＫ３００ＳＷカラム中のエンドトキシン除去を行った。次に日本薬局方注射用蒸留水で洗浄し、その後日本薬局方生理食塩水でＴＳＫ３００ＳＷカラムの平衡化を行った。平衡化終了後、リコンビナントタイプイムノトキシンを投与し、流速０．２５ｍＬ／分でカラムからの溶出液を採取した。採取後、０．２２μｍの濾過滅菌機で処理し、純度をＳＤＳ−ＰＡＧＥにて確認後、−８０℃で保存した。
［ＳＤＳ−ＰＡＧＥによる純度検定］
ＳＤＳ−ＰＡＧＥ（ドデシル硫酸ナトリウムを含むポリアクリルアミド電気泳動）は０．１％のドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）を含む１２％ポリアクリルアミドの平板ゲルを用い、移動相には終濃度０．１％のＳＤＳ、１３０ｍＭグリシン、２５ｍＭトリスを含む水溶液を用いた。各サンプルは終濃度０．１％のＳＤＳを含む１００ｍＭトリス緩衝液ｐＨ６．５で調整し、５分間の煮沸処理を行った。煮沸終了後、平板ゲルにサンプルを投与し、３０ｍＡの定電流で電気泳動を展開させた。展開後、０．０５％のクマシーブリリアントブルーＲ溶液（ナカライテスク）でリコンビナントタイプイムノトキシンの染色を行った。
【実施例３】
【００１０】
組換えイムノトキシンの卵巣癌（ＩＧＲＯＶ１細胞株）及びＦＲβ発現細胞の増殖抑制
２４穴プレートの各ウェルに、２．５ｘ１０５個／ｍＬに調整したヒト卵巣癌ＩＧＲＯＶ１細胞株及びヒトＦＲβ発現Ｂ３００−１９細胞を撒き、さらに各ウェルに終濃度２０００−０ｎｇ／ｍＬの濃度となるように調整した実施例２で作製した組換え抗ヒトＦＲα／βイムノトキシン或いは陰性対照タンパク質ＶＨ−ＰＥを添加後、４８時間から９６時間の培養を行った。培養終了後、ｃｅｌｌ  ｃｏｕｎｔｉｎｇ  ｋｉｔ−８（同仁化学）を各ウェルに加え、培養液中の吸光度をマイクロプレートリーダー（Ｂｉｏｒａｄ社）にて計測した。
結果を図６に示す。図６に示すように、組換え抗ヒトＦＲα／βイムノトキシンはＦＲα発現細胞株、ＦＲβ発現細胞株のいずれに対しても細胞傷害能を示した。当該結果は、抗ヒトＦＲα／β抗体と細胞傷害能を持つ薬剤の結合物がＦＲα発現癌の分子標的薬として有用であることを示唆する結果である。
【実施例４】
【００１１】
抗体Ｎｏ．５を用いた肺癌、乳癌及び膵臓癌の免疫染色
肺癌、乳癌及び膵臓癌患者から得られた癌組織を、ＦＲαに対する抗体（癌細胞に反応）、抗体Ｎｏ．５、ＦＲβに対する抗体（マクロファージと反応）と反応させ、次いでペルオキシダーゼ標識抗ラットＩｇＧあるいはペルオキシダーゼ標識抗マウスＩｇＧ抗体で反応させ、ＤＡＢ発色試薬（ＤＡＫＯ）を用いて発色させた。
図７は、各固形癌の免疫染色におけるそれぞれの抗体による染色パターンを示す。抗体Ｎｏ．５は、肺癌では１９例中６例、乳癌では１４例中４例、膵臓癌３例中２例において癌細胞と浸潤マクロファージいずれにも反応することが示された。
【実施例５】
【００１２】
マクロファージによる葉酸リセプターα発現癌細胞の貪食能を促進する抗体Ｎｏ．５の評価（ＡＤＣＰ（ａｎｔｉｂｏｄｙ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ  ｃｅｌｌ  ｍｅｄｉａｔｅｄ  ｐｈａｇｏｃｙｔｏｓｉｓ）法による解析）
ヘパリン入り注射器で健常人から血液５０ｍｌを採血した。採血した血液をリン酸バッファー、ｐＨ７．４（ＰＢＳ）で３倍に希釈した後、希釈血液を５０ｍｌファルコンチューブ内の１５ｍｌのＬｙｍｐｈｏｐｒｅｐ液（Ｆｒｅｓｅｎｉｕｓ  Ｋａｂｉ  Ｎｏｒｇｅ  ＡＳ）上に重層させ、ブレーキ無しで２５００ｒｐｍで１５分間遠心した。次いで、単球及びリンパ球を含む層を集め、３倍量のＰＢＳを加え、１５００ｒｐｍで８分間遠心した。遠心後、上清を捨て、残ったペレットを崩し、ＰＢＳを５０ｍｌ加え、さらに８００ｒｐｍで５分間遠心した。遠心後、上清のＰＢＳを捨て、ペレットを崩し、１０％牛胎児血清（ＭＰ  Ｂｉｏｍｅｉｃａｌｓ）、１％Ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃ／Ａｎｔｉｍｙｃｏｔｉｃ  ｍｉｘｅｄ  ｓｏｌｕｔｉｏｎ（Ｎａｋａｒａｉ）を含むＩＭＤＭ培養液（Ｇｉｂｃｏ）を１０ｍｌ加え、この細胞浮遊液を１０ｍｌシャーレに移し、５％炭酸ガス下で３７℃培養装置内で３０分間静置し、単球を付着させた。次いで、ＰＢＳにてシャーレを５回洗浄し、再び付着単球に培養液を加えた。さらに、２５ｎｇ／ｍｌになるようにＭ−ＣＳＦ（ＰｅｐｒｏＴｅｃｈ）を加えた。Ｍ−ＣＳＦ入り培養液を、３日目及び６日目に交換した。７日目に付着細胞（単球からマクロファージに分化した細胞）を外し、１Ｘ１０６／ｍｌになるように培養液にて調整し、この細胞浮遊液１００μｌを９６穴の丸底プレートのウェルに加えた。
一方、ＫＢ細胞（ヒトロ腔類表皮癌由来；ＦＲα発現）のＰＥ標識はセルラベリングキット（シグマ）を用いた。簡単には、ＫＢ細胞１Ｘ１０７を含む１ｍｌのＰＢＳにＰＥ標識試薬３．７５μｌを１分間加えた。その後、２Ｘ１０５／ｍｌになるよう培養液にて調整し、上述のマクロファージを含むウェルに１００μｌ加え、さらに各ウェルに各種抗体を１０μｇ／ｍｌになるように加えた。実験はＴｒｉｐｌｉｃａｔｅで行った。
培養６時間後に、同じ操作を行ったウェルを混ぜ、ファルコンチューブに移し、ＦＩＴＣ標識抗ＣＤ１４抗体（マウスＩｇＧ１、Ｓｏｕｔｈ  Ｂｉｏｔｅｃｈ）とＦＩＴＣ標識抗ＣＤ１１ｂ抗体（マウスＩｇＧ１、Ｓｏｕｔｈ  Ｂｉｏｔｅｃｈ）あるいはネガティブコントロールとしてＦＩＴＣ標識抗体（マウスＩｇＧ１、Ｓｏｕｔｈ  Ｂｉｏｔｅｃｈ）で３０分間染色した。２重染色の解析はフローサイトメーター（ＣｙＡｎ、ベックマンコールター）にて行った。
図８は、その解析結果を示す。ＡのパネルはＰＥ標識したＫＢ細胞である。ＢのパネルはＦＩＴＣ標識抗ＣＤ１４抗体とＦＩＴＣ標識抗ＣＤ１１ｂ抗体に反応したマクロファージである。マクロファージがＫＢ細胞を貪食した場合は、ＰＥとＦＩＴＣで標識された細胞が存在することになる。コントロール抗体（ラットＩｇＧ２ａ、Ｓｏｕｔｈ  Ｂｉｏｔｅｃｈ）添加群（Ｃのパネル）に比べて抗体Ｎｏ．５添加群（Ｄのパネル）はＡＤＣＰ能（図のＲ９領域の増加）を示したが、抗体Ｎｏ．５のＦ（ａｂ’）２添加群（Ｅのパネル）ではＡＤＣＰ能は見られず、抗体Ｎｏ．５（抗ヒトＦＲα／βラットモノクローナル抗体）のＡＤＣＰ能はマクロファージのＦｃリセプター依存であることが示された。この結果は抗ヒトＦＲα／βラットモノクローナル抗体の投与がマクロファージによる葉酸リセプターα発現癌細胞の貪食を促進させ、癌細胞の増殖を抑制することを示唆している。
【実施例６】
【００１３】
ＦＲα陽性ヒト癌細胞とＦＲβ陽性マウス浸潤マクロファージを標的とした抗体製剤による癌の治療効果
９−１２週齢のＮＯＤ／ＳＣＩＤマウス（メス）に、１ｘ１０７個に調整したＩＧＲＯＶ−１ヒト癌細胞（卵巣癌由来；ＦＲα発現）を腹腔内に移植した（Ｄａｙ０）。癌細胞移植４日後に、０．５ｍＬの３％チオグリコレート培地を腹腔内に投与してマウスマクロファージ（ＦＲβ発現）を誘発させ、さらに８日、１５日、２２日後に、１００μｇに調整した各抗体を腹腔内に投与した。人道的エンドポイントを４５日とした死亡日を追跡した。
図９は、実験スケジュールと癌細胞移植後の追跡結果を示す。陰性対照群の生存率は０であったのに対して、抗体Ｎｏ．５（抗ヒトＦＲα／βラットモノクローナル抗体であり、この実験系ではヒト癌細胞にのみ反応し、マウスマクロファージには反応しない）及び抗マウスＦＲβ抗体の単独投与群では生存率の改善が認められた。さらに両者の併用によりエンドポイントまでの生存率は１００％を示した。この結果はＦＲα発現癌細胞とＦＲβ発現マクロファージの除去が、卵巣癌の治療に有効であることを示唆している。
【産業上の利用可能性】
【００１４】
本発明に係る抗癌性分子標的薬によれば、ＦＲαを発現する癌細胞、及びＦＲβを発現し、且つ癌増殖を促進する癌関連マクロファージを同時に傷害することにより、癌を効果的に治療することができる。また、本発明に係る抗ＦＲα／β抗体又は癌診断薬によれば、様々な癌の局在、悪性度及び癌治療の治療効果を診断することができる。
本明細書で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。
［配列表］
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【図１】
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【図６】
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【図８】
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【図９】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図７】
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【国際調査報告】
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