(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ＩＭＤＭ培地とＤｅｆｉｎｅｄ  Ｋｅｒａｔｉｎｏｃｙｔｅ−ＳＦＭとが１：０．２５〜３の混合比で混合された基本培地、Ｌ−アスコルビン酸２−リン酸、ウシ胎児血清、塩基性線維芽細胞成長因子（ｂ−ＦＧＦ）、インスリン、Ｎ−アセチル−Ｌ−システイン（Ｎ−ａｃｅｔｙｌ−Ｌ−ｃｙｓｔｅｉｎｅ）、塩化カルシウム、およびヒドロコルチゾンを含有する、ヒト脂肪由来間葉系幹細胞培養のための培地組成物。
【請求項２】
前記培地は、０．０５〜１ｍＭのアスコルビン酸２−リン酸、２〜２０％ウシ胎児血清、１０〜１ｎｇ／ｍｌの塩基性線維芽細胞成長因子（ｂ−ＦＧＦ）、０．１〜１００μｇ／ｍｌのインスリン、０．２〜２０ｍＭのＮ−アセチル−Ｌ−システイン（Ｎ−ａｃｅｔｙｌ−Ｌ−ｃｙｓｔｅｉｎｅ）、０．０１〜１ｍＭの塩化カルシウムおよび５ｎｇ／ｍｌ〜１μｇ／ｍｌのヒドロコルチゾンを含有することを特徴とする請求項１に記載の培地組成物。
【請求項３】
請求項１又は２に記載の培地組成物で間葉系幹細胞を培養する工程を含むことを特徴とする間葉系幹細胞の培養方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、幹細胞の培養のための培地組成物に関し、さらに詳しくは、様々な準完成培地（ＤＭＥＭ、ａ−ＭＥＭ、ＩＭＤＭ、Ｆ１２、ＤＭＥＭ／Ｆ１２）とＤｅｆｉｎｅｄ  Ｋｅｒａｔｉｎｏｃｙｔｅ−ＳＦＭを混合した基本培地、Ｌ−アスコルビン酸２−リン酸、ウシ胎児血清、塩基性線維芽細胞成長因子（ｂ−ＦＧＦ）、インスリン、Ｎ−アセチル−Ｌ−システイン（Ｎ−ａｃｅｔｙｌ−Ｌ−ｃｙｓｔｅｉｎｅ）、塩化カルシウム、およびヒドロコルチゾンを含有する間葉系の幹細胞培養のための培地組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
自己複製能力を維持しながら二つ以上の細胞に分化する能力を有する細胞を幹細胞（ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ）という。幹細胞は、大きく万能幹細胞（ｔｏｔｉｐｏｔｅｎｔ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ）、分化万能性幹細胞（ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ）、多能性幹細胞（ｍｕｌｔｉｐｏｔｅｎｔ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ）に分類することができて、この中で組織及び器官に特異的な細胞だけに分化できる幹細胞で、胎児期、新生児期及び成体期の各組織及び臓器の発達、成体組織の恒常性維持および組織損傷時再生を誘導する機能に関与する細胞を総称して成体幹細胞という。
【０００３】
近年、成体幹細胞は、各種病気や事故による機能障害や不調和に陥った生体組織及び臓器の再生及び機能回復など新しい再生医療治療手法の開発研究で注目を集めている。幹細胞を利用した治療法の開発研究は、従来の古典的な薬物治療や手術的治療方法を越えて、細胞・組織の代替治療法の開発への発展が予測されて、幹細胞の利用率はさらに高まるだろう。
【０００４】
したがって、現状は幹細胞の様々な機能が研究されており、その中でも間葉系幹細胞（ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ）を利用した細胞治療技術が脚光を浴び始め、人体から分離された間葉系幹細胞を治療に適するように改善するための技術が開発されている（ＷＯ２００６／０１９３５７、大韓民国登録特許第０７９５７０８号、大韓民国登録特許第０８１８２１４号）。
【０００５】
現在成体幹細胞を利用した細胞治療剤に関する研究開発の過程は、患者からの幹細胞、血液由来単核細胞あるいは骨髄由来単核細胞を収集して、試験管培養を介して細胞増殖および／または分化を誘導して未分化（幹細胞および／または前駆細胞）および／または分化細胞の着床を誘導することにより、患者自身の体に導入する一連の過程を経て進行されている。しかし、間葉系幹細胞の幹細胞性（ｓｔｅｍｎｅｓｓ）持続力、高い分裂能、コンパクトな形状（ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ）維持などに最適化されている現在使用されている間葉系の幹細胞培養培地は、高費用により、幹細胞治療剤の研究において、経済的な負担として作用しているのが実情である（大韓民国登録特許第０７９５７０８号）。
【０００６】
そこで、本発明者等は、間葉系幹細胞の産生コストを削減し、培養効率をより強化できる幹細胞培養用培地を開発しようと鋭意努力した結果、現在幹細胞培養に使用されている高費用、高効率のＫＳＦＭ−Ｐ培地を細胞培養に汎用的に使用される比較的低価の準完成品培地または完成品幹細胞培養培地と一定の割合で混合した培地を開発して、前記混合培地を利用して、間葉系幹細胞を培養した結果、幹細胞の培養効率が増加することを確認して、本発明の完成に至った。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明の目的は、高い増殖率を持ちながら分化能を維持できる経済的な幹細胞培養用培地組成物を提供するところにある。
本発明の他の目的は、前記培地組成物を利用した間葉系幹細胞の培養方法を提供するところにある。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
前記目的を達成するために、本発明は、ＤＭＥＭ、ａ−ＭＥＭ、ＩＭＤＭ、Ｆ１２およびＤＭＥＭ／Ｆ１２で構成された群から選択される培地とＤｅｆｉｎｅｄ  Ｋｅｒａｔｉｎｏｃｙｔｅ−ＳＦＭが混合された基本培地、Ｌ−アスコルビン酸２−リン酸、ウシ胎児血清、塩基性線維芽細胞成長因子（ｂ−ＦＧＦ）、インスリン、Ｎ−アセチル−Ｌ−システイン（Ｎ−ａｃｅｔｙｌ−Ｌ−ｃｙｓｔｅｉｎｅ）、塩化カルシウム、およびヒドロコルチゾンを含有する間葉系の幹細胞培養のための培地組成物を提供する。
【０００９】
本発明はまた、前記培地組成物で間葉系幹細胞を培養することを特徴とする間葉系幹細胞の培養方法を提供する。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】準完成培地であるＤＭＥＭとの混合培地で脂肪由来の間葉系幹細胞の形態変化を示したものである。
【図２】準完成培地であるａ−ＭＥＭとの混合培地で脂肪由来の間葉系幹細胞の形態変化を示したものである。
【図３】準完成培地であるＩＭＤＭの混合培地で脂肪由来の間葉系幹細胞の形態変化を示したものである。
【図４】準完成培地であるＦ１２との混合培地で脂肪由来の間葉系幹細胞の形態変化を示したものである。
【図５】準完成培地であるＤＭＥＭ／Ｆ１２との混合培地で脂肪由来の間葉系幹細胞の形態変化を示したものである。
【図６】準完成培地であるＤＭＥＭとの混合培地で脂肪由来の間葉系幹細胞の細胞取得率を示したものである。
【図７】準完成培地であるａ−ＭＥＭとの混合培地で脂肪由来の間葉系幹細胞の細胞取得率を示したものである。
【図８】準完成培地であるＩＭＤＭとの混合培地で脂肪由来の間葉系幹細胞の細胞取得率を示したものである。
【図９】準完成培地であるＦ１２との混合培地で脂肪由来の間葉系幹細胞の細胞取得率を示したものである。
【図１０】準完成培地であるＤＭＥＭ／Ｆ１２との混合培地で脂肪由来の間葉系幹細胞の細胞取得率を示したものである。
【図１１】準完成培地であるＤＭＥＭとの混合培地で脂肪由来の間葉系幹細胞の培養後、細胞の大きさの変化を示したものである。
【図１２】各混合培地における脂肪由来の間葉系幹細胞の細胞取得率をＫＳＦＭ−Ｐ培地における細胞取得率に対して百分率で表示した結果を示したグラフである。
【図１３】混合培地で幹細胞の表面マーカーの発現を確認した結果を示したものである。
【図１４】混合培地で幹細胞の表面マーカーの発現を確認した結果を示したものである。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
他の方式で定義されない限り、本明細書において使用されたあらゆる技術的・科学的用語は、本発明が属する技術分野に熟練した専門家によって通常理解されるものと同じ意味を有する。通常、本明細書において使用された命名法及び以下で詳述する實驗方法は、本技術分野において周知であり、しかも汎用されるものである。
【００１２】
本発明では、従来の間葉系幹細胞培養に使用されてきたＫＳＦＭ−Ｐ培地（大韓民国登録特許０６７９６４２号）と準完成品の形で比較的安価で購入可能なＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｏ’ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｅａｇｌｅ’ｓ  Ｍｅｄｉｕｍ）、ＩＭＤＭ（Ｉｓｃｏｖｅ’ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  Ｍｅｄｉｕｍ）、ａ−ＭＥＭ（Ａｌｐｈａ  Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｅａｇｌｅ’ｓ  Ｍｅｄｉｕｍ）、Ｆ１２（Ｎｕｔｒｉｅｎｔ  Ｍｉｘｔｕｒｅ  Ｆ１２）およびＤＭＥＭ／Ｆ１２（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｅａｇｌｅ  Ｍｅｄｉｕｍ：Ｎｕｔｒｉｅｎｔ  Ｍｉｘｔｕｒｅ  Ｆ１２）培地を混合した各培地に、５％ＦＢＳを添加した環境で脂肪由来の間葉系幹細胞を培養した時、幹細胞の特性変化がほとんどなく、効果的に細胞が増殖されながらも、細胞の大きさを一定に維持させることができることを確認した。
【００１３】
従って、一観点において、本発明は、ＤＭＥＭ、ａ−ＭＥＭ、ＩＭＤＭ、Ｆ１２およびＤＭＥＭ／Ｆ１２で構成された群から選択される培地とＤｅｆｉｎｅｄ  Ｋｅｒａｔｉｎｏｃｙｔｅ−ＳＦＭが混合された基本培地、Ｌ−アスコルビン酸２−リン酸、ウシ胎児血清、塩基性線維芽細胞成長因子（ｂ−ＦＧＦ）、インスリン、Ｎ−アセチル−Ｌ−システイン（Ｎ−ａｃｅｔｙｌ−Ｌ−ｃｙｓｔｅｉｎｅ）、塩化カルシウム、およびヒドロコルチゾンを含有する間葉系の幹細胞培養のための培地組成物に関する。
【００１４】
本発明で用いる用語「幹細胞（ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ）」とは、自己複製能力を有すると共に、二つ以上の細胞に分化する能力を有する細胞をいう。また、「成体幹細胞」は、発生過程が進んで胚芽の各臓器が形成される工程或いは成体工程に現れる幹細胞を意味する。
【００１５】
本発明で用いられる用語「間葉系幹細胞」とは、ヒトまたは哺乳類の組織から分離した未分化幹細胞であり、多様な組織から由来してもよい。特に、臍帯由来間葉系幹細胞、臍帯血由来間葉系幹細胞、骨髄由来間葉系幹細胞、脂肪由来間葉系幹細胞、筋肉由来間葉系幹細胞、神経由来間葉系幹細胞、皮膚由来間葉系幹細胞、羊膜由来間葉系幹細胞及び胎盤由来間葉系幹細胞であってもよく、各組織から幹細胞を分離する技術は当業界にすでに公示されている。
【００１６】
本発明で用いられる用語「脂肪由来幹細胞」とは、脂肪組織から分離した未分化成体幹細胞であり、その分離方法は、例えば次のとおりである。即ち、脂肪吸入術から得られる生理食塩水に浮遊された脂肪含有懸濁液（ｓｕｓｐｅｎｓｉｏｎ）を培養した後、フラスコなど培養容器に付着した幹細胞層をトリプシンで処理した後回収したり、スクレーパーで掻いて少量の生理食塩水に浮遊されるものを直接回収したりする方法等を介して脂肪由来間葉系幹細胞を分離することができる。
【００１７】
本発明において、前記培地は、０．０５〜１ｍＭのアスコルビン酸２−リン酸、２〜２０％ウシ胎児血清、１０〜１ｎｇ／ｍｌの塩基性線維芽細胞成長因子（ｂ−ＦＧＦ）、０．１〜１００μｇ／ｍｌのインスリン、０．２〜２０ｍＭのＮ−アセチル−Ｌ−システイン（Ｎ−ａｃｅｔｙｌ−Ｌ−ｃｙｓｔｅｉｎｅ）、０．０１〜１ｍＭの塩化カルシウムおよび５ｎｇ／ｍｌ〜１μｇ／ｍｌのヒドロコルチゾンを含有することを特徴とする。
【００１８】
本発明において、前記準完成培地ＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｏ’ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｅａｇｌｅ’ｓ  Ｍｅｄｉｕｍ）、ＩＭＤＭ（Ｉｓｃｏｖｅ’ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  Ｍｅｄｉｕｍ）、ａ−ＭＥＭ（Ａｌｐｈａ  Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｅａｇｌｅ’ｓ  Ｍｅｄｉｕｍ）、Ｆ１２（Ｎｕｔｒｉｅｎｔ  Ｍｉｘｔｕｒｅ  Ｆ１２）およびＤＭＥＭ／Ｆ１２（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｅａｇｌｅ  Ｍｅｄｉｕｍ：Ｎｕｔｒｉｅｎｔ  Ｍｉｘｔｕｒｅ  Ｆ１２）培地とＤｅｆｉｎｅｄ  Ｋｅｒａｔｉｎｏｃｙｔｅ−ＳＦＭ培地の混合比は、１：０．１〜１０であることが好ましく、１：０．２５〜３であることがより好ましい。
【００１９】
本発明の一態様では、準完成培地ＤＭＥＭ、ＩＭＤＭ、ａ−ＭＥＭ、Ｆ１２およびＤＭＥＭ／Ｆ１２培地とＫＳＦＭ−Ｐ培地を１：０．５、１：１、１：２、１：３および１：４で混合した混合培地を使用した時、ＫＳＦＭ−Ｐ単独培地を使用して培養した場合と、類似の細胞形態が得られ、ＫＳＦＭ−Ｐ単独培地を使用した時より顕著に優れた細胞取得率を示した。
【００２０】
他の観点において、本発明は、前記培地組成物で間葉系幹細胞を培養することを特徴とする間葉系幹細胞の培養方法に関する。
【００２１】
本発明において、前記間葉系幹細胞は、ヒト脂肪由来であることを特徴とする。
【実施例】
【００２２】
以下、本発明を実施例を挙げて詳述する。これらの実施例は単に本発明をより具体的に説明するためのものであり、本発明の範囲がこれらの実施例に制限されないことは当業者において通常の知識を有する者にとって自明である。
【００２３】
実施例１：ヒト脂肪組織由来の間葉系幹細胞の分離
脂肪吸引術（Ｌｉｐｏｓｕｃｔｉｏｎ）によって腹部の脂肪から得られたヒト脂肪組織を分離して、ＰＢＳで洗浄した。組織を細かく切った後、ｃｏｌｌａｇｅｎａｓｅ  ｔｙｐｅ１（１ｍｇ／ｍｌ）を添加したＤＭＥＭ  ｍｅｄｉａを利用して３７℃で２時間ｄｉｇｅｓｔｉｏｎした。ＰＢＳで洗浄後、１０００ｒｐｍで５分間遠心分離した。上澄み液は、ｓｕｃｔｉｏｎして、底に残ったペレットはＰＢＳで洗浄した後、１０００ｒｐｍで５分間遠心分離した。１００μｍ  ｍｅｓｈでフィルタリングしてｄｅｂｒｉｓを除去した後、ＰＢＳで洗浄した後、ＤＭＥＭ（１０％ＦＢＳ、２ｍＭ  ＮＡＣ、０．２ｍＭ  ａｓｃｏｒｂｉｃ  ａｃｉｄ）培地で培養した。
【００２４】
一晩経過した後付着されていない細胞は、ＰＢＳで洗浄して、５％ＦＢＳ、２ｍＭ  ＮＡＣ、０．２ｍＭ  ａｓｃｏｒｂｉｃ  ａｃｉｄ、０．０９ｍＭ  ｃａｌｃｉｕｍ、５ｎｇ／ｍｌ  ｒＥＧＦ、５μｇ／ｍｌ  インスリンおよび７４ｎｇ／ｍｌ  Ｈｙｄｒｏｃｏｒｔｉｓｏｎｅを含有したＫｅｒａｔｉｎｏｃｙｔｅ−ＳＦＭ  ｍｅｄｉａを２日ごとに交換しながら継代培養して４継代の脂肪組織由来多分化能の間葉系幹細胞を準備した。
【００２５】
実施例２：混合培地におけるヒト脂肪組織由来の間葉系幹細胞の培養
ＫＳＦＭ−Ｐ（表１）と準完成培地ＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｏ’ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｅａｇｌｅ’ｓ  Ｍｅｄｉｕｍ）、ＩＭＤＭ（Ｉｓｃｏｖｅ’ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  Ｍｅｄｉｕｍ、Ｇｉｂｃｏ、ＢＲＬ）、ａ−ＭＥＭ（Ａｌｐｈａ  Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｅａｇｌｅ’ｓ  Ｍｅｄｉｕｍ、Ｇｉｂｃｏ、ＢＲＬ）、Ｆ１２（Ｎｕｔｒｉｅｎｔ  Ｍｉｘｔｕｒｅ  Ｆ１２、Ｇｉｂｃｏ、ＢＲＬ）およびＤＭＥＭ／Ｆ１２（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｅａｇｌｅ  Ｍｅｄｉｕｍ：Ｎｕｔｒｉｅｎｔ  Ｍｉｘｔｕｒｅ  Ｆ１２、Ｇｉｂｃｏ、ＢＲＬ）培地単独または混合された培地で培養して、幹細胞の付着能、密度、形状、および取得率などを確認した。
【００２６】
【表１】
0006494756.tif 000002
【００２７】
（１）準完成培地としてＤＭＥＭを使用した場合
１．ＫＳＦＭ−Ｐ（１０％ＦＢＳ）
２．ＤＭＥＭ（１０％ＦＢＳ）
３．ＤＭＥＭ（１０％ＦＢＳ）＋ＫＳＦＭ−Ｐ（１０％ＦＢＳ）；混合比率１：１
４．ＤＭＥＭ（１０％ＦＢＳ）＋ＫＳＦＭ−Ｐ（１０％ＦＢＳ）；混合比率１：２
５．ＤＭＥＭ（１０％ＦＢＳ）＋ＫＳＦＭ−Ｐ（１０％ＦＢＳ）；混合比率１：３
６．ＤＭＥＭ（１０％ＦＢＳ）＋ＫＳＦＭ−Ｐ（１０％ＦＢＳ）；混合比率１：４
７．ＤＭＥＭ（１０％ＦＢＳ）＋ＫＳＦＭ−Ｐ（１０％ＦＢＳ）；混合比率２：１
Ｐ４の脂肪由来の間葉系幹細胞１ｘ１０４ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌを前記各培地が入っている６−ｗｅｌｌ  ｐｌａｔｅに接種、合計５日間培養し、培養２日と５日にわたって、各々幹細胞のｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙを測定した。培養５日後、培養された幹細胞をＤＰＢＳを使用して洗浄した後、ＴｒｉＰＬＥ溶液２００μｌを添加して、３７℃インキュベーターで５分間反応して細胞を脱着した。各ｗｅｌｌに８００μｌのＤＭＥＭ（１０％ＦＢＳ）を添加してＴｒｉＰＬＥ溶液を中和させた後、滅菌された１．５ｍｌ  ＥＰ  ｔｕｂｅに移し入れた後、８００ｒｐｍで３分間遠心分離した。遠心分離後、上澄み液を除去し、５００ｍｌのＤＰＢＳを添加して分離された細胞を再浮遊させた。１０μｌの細胞が浮遊されたＤＰＢＳと１０μｌのｔｒｙｐａｎ  ｂｌｕｅを混合した後、細胞数、生存率、細胞の大きさを測定した。
【００２８】
（２）準完成培地としてａ−ＭＥＭ、ＩＭＤＭ、Ｆ１２とＤＭＥＭ／Ｆ１２を使用した場合
１．ＫＳＦＭ−Ｐ（５％ＦＢＳ）
２．準完成培地（５％ＦＢＳ）
３．準完成培地（５％ＦＢＳ）＋ＫＳＦＭ−Ｐ（５％ＦＢＳ）；混合比率１：１
４．準完成培地（５％ＦＢＳ）＋ＫＳＦＭ−Ｐ（５％ＦＢＳ）；混合比率１：２
５．準完成培地（５％ＦＢＳ）＋ＫＳＦＭ−Ｐ（５％ＦＢＳ）；混合比率１：３
６．準完成培地（５％ＦＢＳ）＋ＫＳＦＭ−Ｐ（５％ＦＢＳ）；混合比率１：４
７．準完成培地（５％ＦＢＳ）＋ＫＳＦＭ−Ｐ（５％ＦＢＳ）；混合比率２：１
Ｐ４の脂肪由来の間葉系幹細胞３ｘ１０５ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌを前記各培地が入っているＴ７５  ｐｌａｔｅに接種、９０％ｄｅｎｓｉｔｙを示すまで培養し、各々幹細胞のｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙを測定した。培養５日後、培養された幹細胞をＤＰＢＳを使用して洗浄した後、ＴｒｉＰＬＥ溶液２００μｌを添加し、３７℃インキュベーターで５分間反応して細胞を脱着した。各ｗｅｌｌに８００μｌのＤＭＥＭ（１０％ＦＢＳ）を添加してＴｒｉＰＬＥ溶液を中和させた後、滅菌された１．５ｍｌ  ＥＰ  ｔｕｂｅに移し入れた後、８００ｒｐｍで３分間遠心分離した。遠心分離後、上澄み液を除去し、５００ｍｌのＤＰＢＳを添加して分離された細胞を再浮遊させた。１０μｌの細胞が浮遊されたＤＰＢＳと１０μｌのｔｒｙｐａｎ  ｂｌｕｅを混合した後、細胞数、生存率、細胞の大きさを測定した。
【００２９】
（１）幹細胞の形態（ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ）
各培地で培養中の細胞の形態変化を培養中に撮影して観察した。その結果、図１に示すように、細胞の初期付着能（培養２日）は、ＫＳＦＭ−ＰやＤＭＥＭ培地に比べて二つの培養培地が混合されたグループ（グループ３、４）で優れることが確認されて、図２〜５に示すように、細胞の増殖能は、ＫＳＦＭ−Ｐや各準完成培地に比べて二つの培養培地が混合されたグループ（グループ３〜７）で優れることが確認された。
【００３０】
細胞の形態は、各準完成培地で培養した細胞が、他のグループの培地で培養した細胞に比べて細胞の大きさが比較的大きく、長くなる形で現れ、その他のグループでは、ＫＳＦＭ−Ｐ培地で培養された細胞と類似してに確認された。一方、ＫＳＦＭ−Ｐや各準完成培地単独培地で培養した場合に比べて、混合培地で培養した場合、細胞の密集度が大幅に増加するとの事実を確認した。したがって、ＫＳＦＭ−Ｐと準完成培地が混合された混合培地が細胞の大きさと生長により効果的であることを確認した。
【００３１】
（２）幹細胞の取得率（ｎｕｍｂｅｒ）と細胞の大きさ（ｓｉｚｅ）
脂肪由来の間葉系幹細胞を各培地で５日間培養した後、ＴｒｉＰＬＥ溶液を利用して、幹細胞を収集し、その数をｔｒｙｐａｎ  ｂｌｕｅを利用した手法で測定した。
培養した脂肪由来幹細胞の大きさは、幹細胞を収得した後、ＬｕｎａＴＭ  ａｕｔｏｍａｔｅｄ  ｃｅｌｌ  ｃｏｕｎｔｅｒ（Ｌｏｇｏｓ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．ＵＳＡ）を使用して、細胞の平均大きさを設定した。
その結果を表２〜４と図１１に示した。
【００３２】
その結果、表２〜４に示すように、幹細胞の最適条件の培地であるＫＳＦＭ−Ｐ培地における細胞の取得率は、準完成培地に比べて約２倍増加したことが示され、これはＫＳＦＭ−Ｐ培地が幹細胞培養において、準完成培地に比べて適合することを確認することができる。
これと共に、ＫＳＦＭ−Ｐ培地と準完成培地を一定の割合で混合した培養培地で幹細胞を培養した結果、ＫＳＦＭ−Ｐ培地で回収された細胞数よりも２〜３倍程度大幅に増加した細胞取得率を示すとの事実を確認した。
【００３３】
また、ＫＳＦＭ−Ｐ培地と、各混合培地の幹細胞増殖能を比較した時、準完成培地であるＩＭＤＭ培地を混合した時に、他の培地で培養した幹細胞よりもはるかに高い細胞収得率を示すことが確認された。
したがって、ＫＳＦＭ−Ｐ培地と準完成培地を混合することにより、細胞の成長に必要な培養条件がＫＳＦＭ−Ｐ培地単独より効果的な結果を示すことが分かる。
その結果、表２〜３に示すように、各培養培地で培養された幹細胞の大きさには大きな差がなく、１５〜１７μｍ程度の平均を示した。つまり、各培養培地は、目視する細胞の性状とは異なるように取得した時の細胞の大きさに大きな影響を及ぼさないことを知ることができた。
【００３４】
【表２】
0006494756.tif 000003
【００３５】
【表３】
0006494756.tif 000004
【００３６】
【表４】
0006494756.tif 000005
【００３７】
（３）幹細胞の表面マーカー（ｓｕｒｆａｃｅ  ｍａｒｋｅｒ）の発現
脂肪由来の間葉系幹細胞を各培地で５日間培養した後、ＴｒｉＰＬＥ溶液を利用して幹細胞を収集した後、各表面マーカー抗体（ｎｅｇａｔｉｖｅ  ｍａｒｋｅｒ、ＣＤ３１、ＣＤ３４、ＣＤ４５；ｐｏｓｉｔｉｖｅ  ｍａｒｋｅｒ、ＣＤ９０、ＣＤ１０５、ＣＤ１６６）を利用して染色した。表面抗体は、ＦＩＴＣ  ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ二次抗体で標識した後、ＦＡＣｓ機器を使用して、表面抗体を発現する細胞の分布を測定した。
【００３８】
その結果、図１３及び図１４に示すように、ＫＳＦＭ−Ｐ培地で培養した幹細胞が示す幹細胞特異的な表面マーカーを発現する幹細胞の分布は、ｎｅｇａｔｉｖｅ  ｍａｒｋｅｒであるＣＤ３１、ＣＤ３４、ＣＤ４５は、ほとんどの場合０．５％以下の発現分布を示したのに対して、幹細胞ｐｏｓｉｔｉｖｅ  ｍａｒｋｅｒであるＣＤ９０、ＣＤ１０５、ＣＤ１６６の発現分布はほとんどの場合９９％以上示されることが確認された。
【００３９】
また、各混合条件（代表例として１：２の混合）でも、ＫＳＦＭ−Ｐ培地で培養した幹細胞と類似するように、幹細胞特異的な表面マーカーを発現する幹細胞の分布がｎｅｇａｔｉｖｅ  ｍａｒｋｅｒであるＣＤ３１、ＣＤ３４、ＣＤ４５は、０．５％以下と確認され、ｐｏｓｉｔｉｖｅ  ｍａｒｋｅｒであるＣＤ９０、ＣＤ１０５、ＣＤ１６６は、またほとんどの場合９９％以上の発現分布を示すことが確認された。すなわち、各混合培地における培養条件が、幹細胞の特異的な表面マーカーの発現には全く影響を与えず、幹細胞の分化や特性には影響を及ぼさないことが分かった。
【産業上の利用可能性】
【００４０】
本発明によると、間葉系幹細胞の分化能と増殖能を向上させることができ、従来の培養方法よりも安価で中葉幹細胞の培養が可能であり、それと同時に幹細胞性を維持して、間葉系幹細胞を利用した細胞治療剤をより経済的に産生することができる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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