(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
野生型ＤＫＫ（Ｄｉｃｋｋｏｐｆ）２ポリペプチドのアミノ酸配列に比べ、１個以上のさらなる糖化部位を含み、配列番号３のアミノ酸配列のＮ末端から１１０番目のアミノ酸であるアスパラギン酸（Ａｓｐ、Ｄ）がアスパラギン（Ａｓｎ、Ｎ）に置換されているアミノ酸配列、及び
前記アミノ酸配列の一端に存在する、Ｆｃ（ｆｒａｇｍｅｎｔ  ｃｒｙｓｔａｌｌｉｚａｂｌｅ）領域で構成されたタグ
を含む、変異ＤＫＫ２ポリペプチド。
【請求項２】
前記野生型ＤＫＫ２ポリペプチドは配列番号３のアミノ酸配列を含むポリペプチドである、請求項１に記載の変異ＤＫＫ２ポリペプチド。
【請求項３】
前記糖化はＮ糖化である、請求項１に記載の変異ＤＫＫ２ポリペプチド。
【請求項４】
前記糖化部位はＡｓｎ−Ｘａａ−Ｓｅｒ／Ｔｈｒであり、Ｘａａはプロリンを除いたアミノ酸を意味する、請求項１に記載の変異ＤＫＫ２ポリペプチド。
【請求項５】
配列番号８のアミノ酸配列を含むポリペプチドである、請求項１に記載の変異ＤＫＫ２ポリペプチド。
【請求項６】
前記Ｆｃ領域で構成されたタグをＮ末端に含む、請求項１に記載の変異ＤＫＫ２ポリペプチド。
【請求項７】
Ｎ末端にシグナルペプチドをさらに含む、請求項１に記載の変異ＤＫＫ２ポリペプチド。
【請求項８】
前記野生型ＤＫＫ２ポリペプチドに比べ、グリコシル基が追加されているか、ＬＲＰ６（low-density lipoprotein receptor-related protein）結合親和度が上昇しているか、またはグリコシル基が追加されており且つＬＲＰ６結合親和度が上昇している、請求項１に記載の変異ＤＫＫ２ポリペプチド。
【請求項９】
請求項１に記載の変異ＤＫＫ２ポリペプチドをコードする核酸。
【請求項１０】
配列番号４６の核酸配列及び前記核酸配列の５’末端または３’末端に配置されたＦｃ領域で構成されたタグをコードする核酸配列を含む、請求項９に記載の核酸。
【請求項１１】
前記Ｆｃ領域で構成されたタグをコードする核酸配列を５’末端に含む、請求項９に記載の核酸。
【請求項１２】
５’末端に、シグナルペプチドをコードする核酸配列をさらに含む、請求項９に記載の核酸。
【請求項１３】
請求項９に記載の核酸を含むベクターが導入された細胞を培養培地の存在下で培養して培養物を得る段階と、
前記培養物から、請求項１に記載の変異ＤＫＫ２ポリペプチドを得る段階と、
を含む、変異ＤＫＫ２ポリペプチドを製造する方法。
【請求項１４】
前記細胞は、胎児腎臓細胞、卵巣細胞、骨髄腫細胞または網膜由来細胞である、請求項１３に記載の方法。
【請求項１５】
請求項１に記載の変異ＤＫＫ２ポリペプチド、または請求項９に記載の核酸；及び
薬学的に許容可能な担体
を含む、血管新生促進用薬学的組成物。
【請求項１６】
請求項１に記載の変異ＤＫＫ２ポリペプチド、または請求項９に記載の核酸；及び
薬学的に許容可能な担体
を含む、血管透過性関連疾患の予防用または治療用の薬学的組成物。
【請求項１７】
請求項１に記載の変異ＤＫＫ２ポリペプチド、または請求項９に記載の核酸を個体に投与する段階を含む、ヒト以外の哺乳動物である個体の血管新生を促進する方法。
【請求項１８】
請求項１に記載の変異ＤＫＫ２ポリペプチド、または請求項９に記載の核酸を個体に投与する段階を含む、ヒト以外の哺乳動物である個体の血管透過性関連疾患を予防または治療する方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、グリコシル基の追加されたり向上されたりする結合親和度を有する変形されたＤＫＫ２タンパク質、それをコーディングする核酸、その製造方法、及びその用途に関する。
【背景技術】
【０００２】
タンパク質に糖が付いていることを糖化（glycosylation）といい、大きく見て、Ｎ糖化とＯ糖化とに分けられる。糖化は、糖転移酵素（glycosyltransferase）によって触媒され、約２００種の糖転移酵素が報告された。糖の種類及び構造によって、タンパク質の折り畳み（folding）、安定性（stability）、溶解度（solubility）、及びプロテアーゼに対する敏感性、血中半減期（serum half-life）、抗原性（antigenicity）、活性上昇などに影響を及ぼす。
【０００３】
ＤＫＫ２は、Ｗｎｔの抑制タンパク質であるＤｉｃｋｋｏｐｆ類の一種であり、Ｗｎｔ信号伝達経路の阻害因子あるいは活性因子と作用すると報告されている（Wu W et al., Curr. Biol., 10(24), pp. 1611-1614, 2000）。ＤＫＫ２は、２つの特徴的なシステインが多い部位（ＣＲＤ：cysteine-rich domain）を有しており、多様な長さの連結部位に区分されている。システイン−２部分は、それらＤｉｃｋｋｏｐｆ類間に高度で保存されており、１０個の保存されたシステインアミノ酸を含んでいる（Krupnik VE et al., Gene, 238(2), pp. 301-313, 1999）。ＤＫＫ２は、動物細胞において、発現効率が低い難発現性タンパク質であるので、ＤＫＫ２を利用した治療剤の開発が遅れているという実情である。
【０００４】
従って、基質に対する結合親和度を維持したり向上させたりしながら、発現効率が上昇したＤＫＫ２を提供することが要求されている。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
一様相は、野生型ＤＫＫ２ポリペプチドのアミノ酸配列に比べ、１個以上の追加的な糖化部位を含む、変形されたＤＫＫ２ポリペプチドを提供する。
【０００６】
他の様相は、前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸を提供する。
【０００７】
他の様相は、前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドを製造する方法を提供する。
【０００８】
他の様相は、前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチド、または前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸、及び薬学的に許容可能な担体を含む血管新生促進用薬学的組成物を提供する。
【０００９】
他の様相は、前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチド、または前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸、及び薬学的に許容可能な担体を含む血管透過性関連疾患の予防用または治療用の薬学的組成物を提供する。
【００１０】
他の様相は、前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチド、または前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸を個体に投与する段階を含む、個体の血管新生を促進する方法を提供する。
【００１１】
他の様相は、前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチド、または前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸を個体に投与する段階を含む、個体の血管透過性関連疾患を予防または治療する方法を提供する。
【発明の効果】
【００１２】
一様相による変形されたＤＫＫ２ポリペプチド、それをコーディングする核酸、その製造方法、及びその用途によれば、グリコシル基の追加、または基質であるＬＲＰ６に対する向上した結合親和度を有する変形されたＤＫＫ２タンパク質を効率的に製造し、それによって、血管新生の促進、あるいは血管透過性関連疾患の予防または治療のために利用される。
【図面の簡単な説明】
【００１３】
【図１Ａ】多くのタグを含んだ野生型ＤＫＫ２タンパク質及び突然変異ＤＫＫ２タンパク質の免疫ブロッティング結果を示すイメージである。
【図１Ｂ】多くのタグを含んだ野生型ＤＫＫ２タンパク質及び突然変異ＤＫＫ２タンパク質の免疫ブロッティング結果を示すイメージである。
【図１Ｃ】Ｆｃタグを含むＤＫＫ２ Ｎ−Ｇｌｙ４タンパク質とＤＫＫ２ Ｎ−Ｇｌｙ５タンパク質との免疫ブロッティング結果を示すイメージである。
【図１Ｄ】精製されたタンパク質を電気泳動した結果を示すイメージである。
【図２Ａ】２００ｎｇのｍＬＲＰ６に対して突然変異されたＤＫＫ２タンパク質について、４９０ｎｍの波長で測定された吸光度を示すグラフである。
【図２Ｂ】２００ｎｇのｈＬＲＰ６に対して突然変異されたＤＫＫ２タンパク質について、４９０ｎｍの波長で測定された吸光度を示すグラフである。
【図２Ｃ】１００ｎｇのｍＬＲＰ６に対するＤＫＫ２タンパク質について、４９０ｎｍの波長で測定された吸光度を示すグラフである。
【図２Ｄ】１００ｎｇのｈＬＲＰ６に対するＤＫＫ２タンパク質について、４９０ｎｍの波長で測定された吸光度を示すグラフである。
【図３Ａ】被検物質投与後、１４日目に突然変異ＤＫＫ２タンパク質投与による網膜蛍光強度（％）を示すグラフである。
【図３Ｂ】被検物質投与後、２１日目に突然変異ＤＫＫ２タンパク質投与による網膜蛍光強度（％）を示すグラフである。
【図４】ＤＫＫ２タンパク質投与によるEvans blue血管透過性（％）を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１４】
一様相は、野生型ＤＫＫ（Dickkopf）２ポリペプチドのアミノ酸配列に比べ、１個以上の追加的な糖化（glycosylation）部位を含む、変形されたＤＫＫ２ポリペプチドを提供する。
【００１５】
前記ＤＫＫ２は、ディックコップ（Dickkopf）タンパク質２を意味し、ディックコップ関連タンパク質（Dickkopf−related protein）２、システインリッチ分泌されたタンパク質（cyteine-rich secreted protein）２、ＣＲＳＰ２タンパク質、ＣＲＩＳＰＹ２タンパク質またはＣＲＳＰタンパク質２ともいう。ＤＫＫ２は、ヒトの場合、ＤＫＫ２遺伝子によってコーディングされるタンパク質である。該遺伝子は、ディックコップファミリの構成員であるタンパク質をコーディングする。ＤＫＫ２は、分泌されたタンパク質であり、２個のシステインリッチ領域を含み、Ｗｎｔ信号伝達経路との相互作用を介して、胚芽発生に関与すると知られている。また、ＤＫＫ２は、補助因子kremen ２及び細胞状態（context）によって、Ｗｎｔ／beta−catenin信号伝逹の促進剤または拮抗剤として作用する。前記ＤＫＫ２は、ＬＲＰ６（low-density lipoprotein receptor-related protein６）と結合することができる。
【００１６】
前記野生型ＤＫＫ２ポリペプチドは、野生型ＤＫＫ２前駆体ポリペプチドでもある。前記野生型ＤＫＫ２前駆体ポリペプチドは、ヒトにおいて、Genbank accession ｎｏ．ＮＰ＿０５５２３６．１のアミノ酸配列（配列番号１）を有するポリペプチド、またはマウスでGenbank accession ｎｏ．ＮＰ＿０６４６６１．２のアミノ酸配列を有するポリペプチドでもある。前記野生型ＤＫＫ２前駆体ポリペプチドは、信号ペプチド（signal peptide）を含み、該信号ペプチドは、翻訳中変形（co-translational modification）または翻訳後変形（post-translational modification）によって切断される。前記野生型ＤＫＫ２ポリペプチドは、成熟した（mature）ＤＫＫ２でもある。前記成熟したＤＫＫ２は、配列番号１のアミノ酸配列のＮ末端から最初ないし３３番目アミノ酸配列（信号ペプチドまたはリーダーペプチド）が除去されたアミノ酸配列を含むポリペプチドであるか、あるいは配列番号３のアミノ酸配列を含むポリペプチドでもある。前記野生型ＤＫＫ２前駆体ポリペプチドは、ヒトにおいて、Genbank accession ｎｏ．ＮＭ＿０１４４２１の核酸配列（配列番号４）を有する核酸、またはマウスにおいて、Genbank accession ｎｏ．ＮＭ＿０２０２６５の核酸配列を有する核酸によって暗号化される。
【００１７】
前記糖化は、グリコシル基をタンパク質に伝達する反応をいう。該糖化は、糖転移酵素（glycosyltransferase）によって触媒される。前記糖化は、Ｎ糖化、Ｏ糖化、ホスホ−セリン糖化、Ｃ−マンノシル化（mannosylation）、グリピエーション（glypiation）、またはそれらの組み合わせでもある。Ｎ糖化は、アスパラギンのアミド基に糖分子が付着することをいう。
【００１８】
前記糖化部位（glycosylation site）は、糖分子またはグリコシル基が付着することができる部位をいう。例えば、前記糖化部位は、Ｎ糖化部位である、Ａｓｎ−Ｘａａ−Ｓｅｒ／Ｔｈｒの共通配列（consensus sequence）において、アスパラギンでもある。Ａｓｎは、アスパラギンを意味し、Ｘａａは、プロリンを除いたアミノ酸を意味し、Ｓｅｒは、セリンを意味し、Ｔｈｒは、スレオニンを意味し、Ｓｅｒ／Ｔｈｒは、セリンまたはスレオニンを意味する。前記Ａｓｎ−Ｘａａ−Ｓｅｒ／Ｔｈｒは、Ｎ末端からアスパラギン−アミノ酸（プロリン除外）−セリンまたはアミノ酸からなるポリペプチドをいい、Ａｓｎ−Ｘａａ−Ｓｅｒ／Ｔｈｒのアスパラギンに糖分子が付着する。前記野生型ＤＫＫ２前駆体ポリペプチドは、Ｎ末端から３６番目アミノ酸に１個の糖化部位を含んでもよい。
【００１９】
前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドの糖化部位は、配列番号３のアミノ酸配列において、５Ｉ、３１Ｇ、９６Ｐ、１１０Ｄ、４４Ｐ、２Ｌ、４５Ｃ、５７Ｃ、６２Ｑ、６３Ｇ、８５Ｐ、６Ｋ、９８Ｔ、１０１Ｉ、１１Ｇ、１２１Ｈ、１３５Ｐ、１３８Ｋ、１５１Ｌ、１５２Ｒ、１６６Ｆ、１８７Ｋ、２０３Ｇ、２１１Ｄ、２１３Ｔ及び２１４Ｙからなる群から選択された１以上のアミノ酸を、アスパラギン（Ａｓｎ,Ｎ）で置換することによって導入されたことでもある。前記数字は、配列番号３のアミノ酸配列のＮ末端からのアミノ酸の番号を意味し、英文字は、アミノ酸の１文字（letter）コードを示す。例えば、「５Ｉ」は、配列番号３のアミノ酸配列において、Ｎ末端から５番目アミノ酸であるイソロイシンを意味する。
【００２０】
前記変形は、１以上のアミノ酸の置換でもある。
【００２１】
前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドは、糖化部位に導入され、グリコシル基が追加して導入されたＤＫＫ２ポリペプチドでもある。糖の結合方式、糖の構成、糖の構造（glycosyl structure）、またはそれらの組み合わせが異なってもよいが、前記ＤＫＫ２ポリペプチドのアミノ酸配列において、同一糖化部位に糖化される。その結果、細胞内発現効率が上昇する。例えば、前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドが発現された宿主細胞の種類によって、糖の結合方式（例えば、Ｎ糖化及びＯ糖化）、糖の構成（例えば、シアリル化（sialylation）レベル差）、及び糖の構造が異なってもよいが、前記ＤＫＫ２ポリペプチドの同一糖化部位に糖化される。
【００２２】
前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドは、配列番号５ないし３０からなる群から選択された１以上のアミノ酸配列を含むポリペプチドでもある。
【００２３】
前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドのＮ末端またはＣ末端に、タグ（tag）をさらに含んでもよい。前記タグは、発現、精製、検出などに一助となるべく、ＤＫＫ２ポリペプチドに付着させたポリペプチドでもある。前記タグは、例えば、Ｆｃ（fragment crystallizable）領域、ポリヒスチジンペプチド、またはそれらの組み合わせでもある。前記Ｆｃ領域は、ヒトＦｃ領域、マウスＦｃ領域などでもある。前記Ｆｃ領域は、配列番号４８のヌクレオチド配列によって暗号化されたポリペプチドでもある。前記Ｆｃ領域は、配列番号４９のアミノ酸配列からなるポリペプチドでもある。前記タグは、当業者に知られたものでもある。
【００２４】
前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドは、Ｎ末端に、信号ペプチド（signal peptide）をさらに含んでもよい。該信号ペプチドは、分泌経路として運命づけられた新たに合成される多数のタンパク質のＮ末端に存在する約５ないし３０個のアミノ酸からなるペプチドをいう。前記信号ペプチドは、配列番号１のアミノ酸配列のＮ末端から最初ないし３３番目アミノ酸配列でもあり、配列番号２のアミノ酸配列を含むポリペプチドでもある。
【００２５】
前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドは、野生型ＤＫＫ２ポリペプチドに比べ、グリコシル基の追加、ＬＲＰ６結合親和度の上昇、またはそれらの組み合わせを有するポリペプチドでもある。前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドのグリコシル基の追加は、対照群としての野生型ＤＫＫ２ポリペプチドのグリコシル基の量より増加する。グリコシル基の追加によって、前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドの量は、細胞において、野生型ＤＫＫ２ポリペプチドの量より増加する。細胞において変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする転写体の量が、野生型ＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする転写体の量より増加する。ポリペプチドの量または転写体の量が増加したということは、ポリペプチドの細胞内発現効率が上昇したということを意味する。ＬＲＰ６に対する前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドの結合親和度（binding affinity）は、野生型ＤＫＫ２ポリペプチドの結合親和度より上昇する。結合親和度が高いほど、解離定数（ＫＤ）は、低くなる。ＬＲＰ６に対する前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドの解離定数は、例えば、約０．１ｎＭないし約１００ｎＭ、約１ｎＭないし約５０ｎＭ、約２ｎＭないし約４０ｎＭ、約３ｎＭないし約３０ｎＭ、約４ｎＭないし約２０ｎＭ、約５ｎＭないし約１０ｎＭ、または約５．５ｎＭでもある。
【００２６】
他の様相は、前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸を提供する。
【００２７】
前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドは、前述の通りである。
【００２８】
前記核酸は、配列番号４３ないし４７からなる群から選択されたいずれか１つの核酸配列を含んでもよい。前記核酸は、変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸の５’末端または３’末端にタグをコーディングする核酸配列をさらに含んでもよい。前記核酸は、変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸の５’末端に、信号ペプチドをコーディングする核酸配列をさらに含んでもよい。前記核酸は、プローモーター、オペレーター、エンハンサー及び／または転写終結因子のような遺伝子発現調節因子と作動可能に連結されたものでもある。
【００２９】
他の様相は、前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸を含むベクターが導入された細胞を、培養培地の存在下で培養して培養物を得る段階、及び前記培養物から前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドを得る段階を含む、変形されたＤＫＫ２ポリペプチドを製造する方法を提供する。
【００３０】
前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチド、及び変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸は、前述の通りである。
【００３１】
前記細胞は、真核細胞（eukaryotic cell）でもある。例えば、前記細胞は、動物細胞でもある。前記細胞は、例えば、胎児腎臓細胞、卵巣細胞、骨髄腫細胞または網膜由来細胞でもある。前記胎児腎臓細胞は、ヒト胎児腎臓（ＨＥＫ：human embryonic kidney）２９３細胞またはベビーハムスター腎臓（ＢＨＫ：baby hamster kidney）細胞でもある。前記卵巣細胞は、中国ハムスター卵巣細胞（ＣＨＯ：Chinese hamster ovary cell）細胞でもある。前記骨髄腫細胞は、ＮＳ０細胞またはＳＰ２／０細胞でもある。前記網膜由来細胞は、ＰｅｒＣ６細胞でもある。前記細胞の種類によって、糖の結合方式（例えば、Ｎ糖化及びＯ糖化）、糖の構成（例えば、シアリル化レベル差）、及び糖の構造が異なるＤＫＫ２ポリペプチドが発現される。
【００３２】
前記方法は、前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸を含むベクターを細胞に導入させる段階をさらに含んでもよい。
【００３３】
前記ベクターは、例えば、プラスミド、ウイルスベクター、コスミド（cosmid）、人工染色体（artificial chromosome）でもある。前記ベクターは、プローモーター配列を含む発現ベクターでもある。前記ベクターは、真核細胞において、標的遺伝子を発現させることができるベクターでもある。
【００３４】
前記導入は、核酸を細胞内に導入させることをいう。前記導入は、例えば、形質転換（transformation）、形質注入（transjection）、形質導入（transduction）、接合（conjugation）、電気穿孔法（elctrophoration）による導入でもある。
【００３５】
前記方法は、導入された細胞を培養培地の存在下で培養して培養物を得る段階を含む。
【００３６】
前記培養培地は、細胞の生存または増殖に必要であったり、それらを促進させたりする機能をする成分を含む培地をいう。該培養培地は、細胞種類によって、当業者が選択することができる。
【００３７】
前記培養は、当業者に周知の方法によってインキュベーションすることによって行われる。例えば、約３７℃の温度において、５％ ＣＯ２の条件下で培養することができる。
【００３８】
前記方法は、培養物から変形されたＤＫＫ２ポリペプチドを得る段階を含む。前記培養物は、前記培養された細胞、または前記培養された細胞を除いた培養液でもある。
【００３９】
前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドを得る段階は、細胞を得ること及びその分解、ポリペプチドの精製または濾過を含んでもよい。ポリペプチドを得る方法は、当業者に知られたものでもある。
【００４０】
他の様相は、前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチド、または前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸、及び薬学的に許容可能な担体を含む血管新生促進用薬学的組成物を提供する。
【００４１】
前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチド、及び変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸は、前述の通りである。
【００４２】
前記血管新生（angiogenesis）は、新たな血管が形成される過程をいう。該血管新生は、既存血管（pre-existing vessels）から新たな血管が成長する過程を含む。該血管新生は、成長及び発生においてだけではなく、傷治癒及び肉芽組織（granulation tissue）においても、正常であって重要な過程である。また、血管新生は、潜伏状態から悪性状態への腫瘍の転移において基本的な段階である。
【００４３】
前記促進は、インビトロまたはインビボで行われる。前記促進は、虚血性血管疾患を有する個体において、新たな血管の発生または再生を誘導することでもある。
【００４４】
前記薬学的組成物は、虚血性血管疾患の予防用または治療用の薬学的組成物でもある。前記虚血性血管疾患は、例えば、火傷、乾癬、潰瘍、虚血、虚血性心臓疾患、虚血性脳血管疾患、勃起不全でもある。
【００４５】
他の様相は、前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチド、または前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸、及び薬学的に許容可能な担体を含む血管透過性関連疾患の予防用または治療用の薬学的組成物を提供する。
【００４６】
前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチド、及び変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸は、前述の通りである。
【００４７】
前記血管透過性関連疾患は、血管の透過性が上昇し、血管周辺組織において、体液の漏れが増加する症状を有する疾患をいう。前記血管透過性関連疾患は、例えば、糖尿性網膜病症（diabetic retinopathy）、糖尿性黄斑浮腫（diabetic macular edema）、網膜静脈閉鎖性黄斑浮腫（macular edema following retinal vein occlusion）、黄斑変性（例えば、新生血管性（湿性）年齢関連黄斑変性（neovascular (wet) age-related macular degeneration）、脈絡膜血管新生、緑内障性網膜色素変性（glaucoma retinitis pigmentosa）、未熟児網膜症（ＲＯＰ：retinopathy of prematurity）、緑内障、角膜ジストロフィー（corneal dystrophy）、網膜層間分離（retinoschises）、シュタルガルト病（Stargardt’s disease）、常染色体優性ドルーゼン（autosomal dominant druzen）、ベストの黄斑ジストロフィー（Best’s macular dystrophy）、嚢胞黄斑浮腫（cystoid macular edema）、虚血性網膜病症（ischemic retinopathy）、炎症誘導網膜退行性疾患（inflammation-induced retinal degenerative disease）、Ｘ染色体関連幼児期網膜層間分離（Ｘ−linked juvenile retinoschisis）、ＭＬ（Malattia Leventinese）またはDoyneハネカム網膜ジストロフィー（Doyne honeycomb retinal dystrophy）である。
【００４８】
本明細書において、用語「予防」は、前記薬学的組成物の投与によって、疾患を抑制したり、疾患の発病を遅延させたりする全ての行為をいう。用語「治療」は、前記薬学的組成物の投与によって、疾患の症状が好転したり、好ましく変更したりする全ての行為をいう。
【００４９】
前記薬学的組成物は、薬学的に許容可能な担体を含んでもよい。前記担体は、賦形剤、希釈剤または補助剤を含む意味で使用される。前記担体は、例えば、ラクトース、デキストロース、スクロース、ソルビトール、マニトールキシリトール、エリトリトール、マルチトール、澱粉、アカシアゴム、アルギネート、ゼラチン、リン酸カルシウム、ケイ酸カルシウム、セルロース、メチルセルロース、ポリビニルピロリドン、水、生理食塩水、ＰＢＳのようなバッファ、メチルヒドロキシベンゾエート、プロピルヒドロキシベンゾエート、タルク、マグネシウムステアレート及びミネラルオイルからなる群から選択されたものでもある。前記組成物は、充填剤、抗凝集剤、潤滑剤、湿潤剤、風味剤、乳化剤、保存剤などを含んでもよい。
【００５０】
前記薬学的組成物は、任意の剤形で準備される。前記組成物は、例えば、経口投与剤形（例えば、粉末、錠剤（tablet）、カプセル、シロップ、錠剤（pill）、顆粒）または非経口剤形（例えば、注射剤）に剤形化される。また、前記組成物は、全身剤形または局所剤形に製造される。
【００５１】
前記薬学的組成物は、前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチド、または前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸を有効な量で含んでもよい。前記有効な量は、当業者が、選択される細胞または個体によって適切に選択することができる。疾患の重症度、患者の年齢・体重・健康・性別、患者の薬物に対する敏感度、投与時間、投与経路及び排出比率、治療期間、使用された組成物と配合されたり同時使用されたりする薬物を含んだ要素、並びにその他医学分野に周知の要素によって決定される。前記有効な量は、前記薬学的組成物当たり、約０．５μｇないし約２ｇ、約１μｇないし約１ｇ、約１０μｇないし約５００ｍｇ、約１００μｇないし約１００ｍｇ、約１ｍｇないし約５０ｍｇでもある。
【００５２】
前記薬学的組成物の投与量は、例えば、成人基準で、約０．００１ｍｇ／ｋｇないし約１００ｍｇ／ｋｇ、約０．００１ｍｇ／ｋｇないし約１０ｍｇ／ｋｇ、約０．００１ｍｇ／ｋｇないし約１ｍｇ／ｋｇ、約０．００５ｍｇ／ｋｇないし約１ｍｇ／ｋｇ、約０．０１ｍｇ／ｋｇないし約１ｍｇ／ｋｇ、または約０．１ｍｇ／ｋｇないし約１ｍｇ／ｋｇの範囲内で、１日１回、１日多回、１週２回あるいは３回、１ヵ月に１回ないし４回、１年に１回ないし１２回投与される。
【００５３】
他の様相は、前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチド、または前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸を個体に投与する段階を含む、個体の血管新生を促進する方法を提供する。
【００５４】
他の様相は、前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチド、または前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸を個体に投与する段階を含む、個体の血管透過性関連疾患を予防または治療する方法を提供する。
【００５５】
前記変形されたＤＫＫ２ポリペプチド、変形されたＤＫＫ２ポリペプチドをコーディングする核酸、血管新生、促進、血管透過性関連疾患、予防及び治療は、前述の通りである。
【００５６】
前記個体は、哺乳動物、例えば、ヒト、牛、馬、豚、犬、羊、山羊または猫でもある。前記個体は、虚血性疾患を病んだり、病む可能性が高かったりする個体でもある。前記個体は、個体の血管透過性関連疾患を病んだり、病む可能性が高かったりする個体でもある。
【００５７】
前記投与は、例えば、経口、静脈内、筋肉内、経皮（transdermal）、粘膜、鼻内（intranasal）、器官内（intratracheal）または皮下投与のような、任意の手段によって個体に直接に投与される。前記投与は、全身的または局所的に投与される。
【００５８】
ここで、例示的な実施例を詳細に参照し、その例は、添付の図面に示されており、同様の参照番号は、同様の要素を参照する。それについて、本実施形態は、異なる形態を有してもよく、本明細書に記載された説明に限定されると解釈されるものではない。従って、例示的な実施形態は、図面を参照し、側面についての説明するために、以下で単に説明されるのみである。本明細書で使用される場合、「および/または」という用語は、関連する列挙された項目の一つまたは複数の任意の全ての組み合わせを含む。
【００５９】
以下、本発明を実施例を介して、さらに詳細に説明する。しかし、それら実施例は、本発明について例示的に説明するためのものであり、本発明の範囲は、それら実施例に限定されるものではない。
【００６０】
実施例１．Ｎ糖化された突然変異ＤＫＫ２タンパク質の製造及び確認
１．ＤＫＫ２タンパク質Ｎ糖化位置の予測
野生型ＤＫＫ２タンパク質のアミノ酸配列（配列番号３）は、Ｎ末端から３番目アミノ酸にＮ糖化位置を有する。野生型ＤＫＫ２タンパク質からＮ糖化を人為的に生成させるため、ＮｅｔＮＧｌｙｃ１．０ server（www.cbs.dtu.dk/services/NetNGlyc/）を利用して、野生型ＤＫＫ２タンパク質のＮ糖化位置を予測した。
【００６１】
ＮｅｔＮＧｌｙｃ１．０ serverから、総２６種のＤＫＫ２タンパク質のＮ糖化位置を予測し、その結果を表１に記載した。表１においてアミノ酸は、野生型ＤＫＫ２タンパク質（配列番号３）のアミノ酸と、そこから突然変異されたアスパラギン（Ａｓｎ,Ｎ）とを示し、数字は、野生型ＤＫＫ２タンパク質のＮ末端から突然変異されたアミノ酸の位置を示す。
【００６２】
【表１】
0006467070.tif 000002
【００６３】
２６種のＤＫＫ２タンパク質のＮ糖化位置候補者のうち、ＮｅｔＮＧｌｙｃ１．０ serverにおいて、Ｎ糖化可能性（potential）数値が高い５種のＤＫＫ２突然変異タンパク質を選別し、タンパク質の生産効率を確認した。
【００６４】
選別された５種のＤＫＫ２突然変異タンパク質のＮ糖化可能性数値を下記表２に記載した。
【００６５】
【表２】
0006467070.tif 000003
【００６６】
２．選別されたＮ糖化ＤＫＫ２タンパク質の生産効率の確認
実施例１．１で選別された５種のＤＫＫ２タンパク質発現のために、高効率発現ベクターに挿入し、臨時発現システム（transient expression system）でタンパク質生産効率を確認した。
【００６７】
（１）重合酵素連鎖反応の遂行
野生型ＤＫＫ２自然型（Genbank accession ｎｏ．ＮＰ＿０５５２３６．１、配列番号３）（大韓民国、（株）medpacto提供）をテンプレートとして利用した。
【００６８】
ＤＫＫ２ Ｎ糖化のためにデザインしたプライマーの核酸配列を表３に示した。
【００６９】
【表３】
0006467070.tif 000004
【００７０】
重合酵素連鎖反応のために、下記組成の混合物を準備した。
１００ｎｇテンプレート
２．５ユニットｐｆｕ ＤＮＡ polymerase（ＳＰＸ１６−ＲＳ５００、（株）Solgent）
１０ｐｍｏｌフォワードプライマー
１０ｐｍｏｌリバースプライマー
１μｌ １０ｍＭｄ ＮＴＰ
５μｌ １０ｘ ｐｆｕ polymerase buffer
５０μｌ総体積
【００７１】
準備された混合物を、９５℃で２分間インキュベーションした後、９５℃で２０秒、６４℃で４０秒、及び７２℃で１分を１サイクルにし、３０サイクルを反復し、７２℃で１０分間インキュベーションし、増幅された突然変異ＤＫＫ２核酸を得た。
【００７２】
（２）増幅産物のクローニング、及び宿主細胞での一時的なタンパク質発現の確認
増幅された突然変異ＤＫＫ２核酸または野生型ＤＫＫ２核酸を、１０ユニットの制限酵素ＳｆｉＩ（Ｃａｔ．Ｎｏ．Ｒ０３３Ｓ、Enzynomics、韓国）及び１ｘ反応緩衝液の存在下で、５０℃で６時間インキュベーションした。反応物をアガロースゲルに電気泳動し、ベクターに挿入される核酸を、Gel Purification kit（Ｃａｔ．Ｎｏ．１０１４８７６、ＱＩＡＧＥＮ、米国）を使用して精製した。哺乳類発現ベクターであるＮ２９３Ｆ−ＦＣベクター（ＡＴＰ−１００、（株）ＡＮＲＴ）と、精製された核酸とを、質量比１：３の比率で混合し、１０ユニットのＴ４ ＤＮＡ連結酵素（Ｃａｔ．Ｎｏ．Ｍ００１Ｓ、Enzynomics、韓国）及び１ｘ反応バッファの存在下で、２２℃で４時間以上インキュベーションした。
【００７３】
反応物を大腸菌に形質転換させ、核酸配列分析を介して、ＤＫＫ２ Ｎ−Ｇｌｙ１、ＤＫＫ２ Ｎ−Ｇｌｙ２、ＤＫＫ２ Ｎ−Ｇｌｙ３、ＤＫＫ２ Ｎ−Ｇｌｙ４及びＤＫＫ２ Ｎ−Ｇｌｙ５をコーディングする核酸の核酸配列（それぞれ、配列番号４３ないし４７）を確認した。突然変異ＤＫＫ２核酸が導入されたＮ２９３Ｆ−ＦＣベクターを含むクローンを選別した。
【００７４】
選別されたクローンから、突然変異ＤＫＫ２核酸（ｍＤＫＫ２）が導入されたＮ２９３Ｆ−ＦＣ−ｍＤＫＫ２ベクターを得た。Ｆｃ核酸は、ヒト免疫グロブリンＧ１のＦｃ断片を暗号化する核酸（配列番号４８）を利用した。
【００７５】
哺乳類細胞であるＨＥＫ２９３Ｆ浮遊細胞を、５Ｘ１０５細胞／ｍｌで、Free style media（Ｃａｔ．Ｎｏ．１５０８０２７、Invitrogen、米国）に接種し、３７℃及び５％ ＣＯ２の条件下で培養した。細胞数が約１Ｘ１０６細胞／ｍｌに逹するまで（約２４時間）培養した。
【００７６】
２５μｇの突然変異ＤＫＫ２核酸が導入されたＮ２９３Ｆ−ＦＣベクター、５０μｇのポリエチレンイミン（ＰＥＩ：polyethylenimine）（Ｃａｔ．Ｎｏ．２３９６６、Polysciences、米国）、及び６００μｌのＰＭＩ培地（Ｃａｔ．Ｎｏ．ｓｈ３００２７．０１、Hiclone、米国）を混合し、室温で２０分間インキュベーションした。反応物を、培養されたＨＥＫ２９３Ｆ細胞に添加し、３７℃及び５％ ＣＯ２の条件下で約５日間培養した。その後、細胞から分泌された水溶性タンパク質を得るために、細胞を取り除き、培養溶液だけ回収した。
【００７７】
２００μｌの培養溶液を１０％ ＳＤＳ−ＰＡＧＥし、免疫ブロッティングを行った。得られた突然変異ＤＫＫ２タンパク質及び野生型ＤＫＫ２タンパク質は、そのＮ末端にＦＣ−ＴＡＧ、ＨＩＳ−ＴＡＧまたはｍＦｃ−ｔａｇを含むために、１：４，０００に希釈された抗Ｆｃ−ＨＲＰ（Ｃａｔ．Ｎｏ．３１４１４、PIERCE、米国）、１：２，０００に希釈された抗ＨＩＳ−ＨＲＰ（Ｃａｔ．Ｎｏ．Ａ７０５８、SIGMA、米国）、または１：２，０００に希釈された抗ｍＦｃ（Ｃａｔ．Ｎｏ．３１４３０、PIERCE、米国）を使用した。発色試薬として、ＥＣＬ ＫＩＴ（Ｃａｔ．Ｎｏ．００３４０７７ ＧＥ、米国）を使用してイメージを得た。
【００７８】
図１Ａは、さまざまなタグを含んだ野生型ＤＫＫ２タンパク質の免疫ブロッティング結果を示す（露出時間：１分、Ｍ：マーカー（ＫＤａ）、１：Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２、２：Ｎ−Ｆｃ（ＩｇＧ４）−ＤＫＫ２、３：Ｎ−Ｈｉｓ−ＤＫＫ２、４：Ｎ−ｍＦｃ−ＤＫＫ２）。図１Ａに示されているように、露出を１分ほど行っても、野生型ＤＫＫ２タンパク質が検出されていない。従って、野生型ＤＫＫ２タンパク質は、ほぼ発現されないということを確認した。
【００７９】
図１Ｂは、さまざまなタグを含んだ突然変異ＤＫＫ２タンパク質の免疫ブロッティング結果を示す（露出時間：１分（左）または１秒（右）、Ｍ：マーカー（ＫＤａ）、１：Ｎ−ｍＦｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ１、２：Ｎ−ｍＦｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ２、３：Ｎ−ｍＦｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ３、４：Ｎ−Ｆｃ４−ＤＫＫ２−ｇｌｙ１、５：Ｎ−Ｈｉｓ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ１、６：Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ１、７：Ｎ−Ｈｉｓ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ２、８：Ｎ−Ｆｃ４−ＤＫＫ２−ｇｌｙ２、９：Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ２、１０：Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ３、１１：Ｎ−Ｈｉｓ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ３、１２：Ｎ−Ｆｃ４−ＤＫＫ２−ｇｌｙ３）。図１Ｂに示されているように、Ｆｃタグを含んだ突然変異ＤＫＫ２タンパク質は検出されたが、一方、Ｆｃ以外のタグを含んだ突然変異ＤＫＫ２タンパク質は、ほぼ検出されていない。従って、Ｆｃタグを含んだ突然変異ＤＫＫ２タンパク質の発現効率が優秀であるということを確認した。発現されたタンパク質を、ディスポーザブルオープンカラムを利用して精製し、濃度を測定した。
【００８０】
Ｆｃタグを含むタンパク質の発現効率にすぐれるので、Ｆｃタグを含むＤＫＫ２ Ｎ−Ｇｌｙ４タンパク質と、ＤＫＫ２ Ｎ−Ｇｌｙ５タンパク質とを得た。得られたタンパク質を免疫ブロッティングし、その結果を図１Ｃに示した（露出時間：１秒（左）または３０秒（右）、Ｍ：マーカー（ＫＤａ）、１：Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ４、２：Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ５）。図１Ｃに示されているように、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｎ−Ｇｌｙ４がＮ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｎ−Ｇｌｙ５より発現効率にさらにすぐれるということを確認した。
【００８１】
（３）タンパク質の大量生産及び精製
実施例１（２）に記載されているように、Ｆｃタグと突然変異ＤＫＫ２核酸とを含むベクターが形質導入された細胞を選別した。選別された細胞に対し、３７℃及び５％ ＣＯ２の条件下で約５日間培養した。細胞を除いた培養液を、室温で４，８００ｒｐｍの速度で２０分間遠心分離し、上澄み液を得た。０．２２μｍフィルタ（Ｃａｔ．Ｎｏ．ＰＲ０２８９０、Millipore、米国）を使用して濾過した。５ｍｌカラムに充填されたタンパク質Ａビード（Ｃａｔ．Ｎｏ．１７−１２７９−０３、ＧＥ healthcare、スウェーデン）を準備し、濾過液を４℃で一晩０．９ｍｌ／分の速度でビードに加えた。１００ｍｌ以上のＰＢＳ（phosphate buffered saline）（Ｃａｔ．Ｎｏ．７００１１、Gibco、米国）でビードを洗浄した。その後、ビードに、０．１Ｍグリシン−ＨＣｌ（Ｃａｔ．Ｎｏ．Ｇ７１２６、Sigma、米国）を加え、６個分画に分けて溶出させた。１Ｍ Tris（Ｃａｔ．Ｎｏ．Ｔ−１５０３−５ＫＧ、Sigma、米国）（ｐＨ９．０）を添加して分画物を中和させた。分画物中でタンパク質を定量し、タンパク質を含む分画を集めた。分画物をamicon ultra（Ｃａｔ．Ｎｏ．ＵＦＣ８０５０２４、Millipore、米国）に加え、製造社の指示に従って遠心分離した。濃縮物に１Ｘ ＰＢＳを添加して遠心分離する過程を３回反復して保管緩衝液をＰＢＳで交換した。
【００８２】
精製されたタンパク質の量を測定した。Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ１の量は、１３０μｇ／４０ｍｌ培養液であり、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ２の量は、８６０μｇ／４０ｍｌ培養液であり、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ３の量は、１５０μｇ／４０ｍｌ培養液でであり、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ４の量は、４６２μｇ／４０ｍｌ培養液でであり、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ５の濃度は、２７μｇ／４０ｍｌであった。Ｎ糖化位置を導入した突然変異ＤＫＫ２タンパク質のうち、最も発現効率が高いのは、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ２であり、その次は、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４であるということを確認した。従って、Ｎ糖化位置を導入した突然変異ＤＫＫ２タンパク質が、野生型ＤＫＫ２タンパク質に比べて高発現され、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ２及びＮ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４の発現効率が、野生型ＤＫＫ２の発現効率に比べ、それぞれ約８０倍及び約５０倍優秀であるということを確認した。
【００８３】
精製されたタンパク質の純度を確認するために、３μｇのタンパク質を１０％ＳＤＳ−ＰＡＧＥ方法で電気泳動し、その結果を図１Ｄに示した（Ｍ：マーカー（ＫＤａ）、１：Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ１、２：Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ２、３：Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ３、４：Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ４、５：Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ５）。図１Ｄに示されているように、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ２とＮ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−ｇｌｙ４との純度が類似していると確認された。
【００８４】
３．突然変異ＤＫＫ２タンパク質の結合親和度確認
ＤＫＫ２タンパク質が、マウスＬＲＰ６（ｍＬＲＰ６）と、ヒトＬＲＰ６（ｈＬＲＰ６）とに結合するということが知られているので、ＬＲＰ６に対する、野生型ＤＫＫ２タンパク質と突然変異ＤＫＫ２タンパク質との結合親和度を確認した。
【００８５】
具体的には、ＥＬＩＳＡプレート（Ｃａｔ．Ｎｏ．４３９４５４、Ｎｕｎｃ、デンマーク）にウェル（well）当たり２００ｎｇのｈＬＲＰ６タンパク質（Ｃａｔ．Ｎｏ．１５０５−ＬＲ−０２５、Ｒ＆Ｄ、米国）またはｍＬＲＰ６タンパク質（Ｃａｔ．Ｎｏ．２９６０−ＬＲ−０２５、Ｒ＆Ｄ、米国）を加え、４℃で一晩インキュベーションし、タンパク質をコーティングした。２００μｌの４％（ｗ／ｖ）脱脂粉乳（Ｃａｔ．Ｎｏ．２３２１００、Difco、フランス）／１ｘＰＢＳをＥＬＩＳＡプレートのウェルに加え、常温で約１時間インキュベーションしてブロッキング（blocking）させた。その後、ブロッキング溶液をＥＬＩＳＡプレートから除去した。
【００８６】
それぞれの精製されたＤＫＫ２タンパク質と、１００μｌの１％（ｗ／ｖ）脱脂粉乳／１ｘＰＢＳとを混合し、１００ｎＭのＤＫＫ２タンパク質を準備し、１００ｎＭのＤＫＫ２タンパク質を１／４の希釈濃度で順次希釈した。希釈されたタンパク質を、準備されたＥＬＩＳＡプレートに加え、常温で約２時間インキュベーションした。その後、２００μｌのＰＢＳＴでプレートを５回洗浄した。
【００８７】
２μｌの抗Human Ｆｃ−ＨＲＰ（Ｃａｔ．Ｎｏ．３１４１３、Thermo、米国）抗体を、１％（ｗ／ｖ）脱脂粉乳が含有された４ｍｌのＰＢＳと混合し、該混合物を、ＥＬＩＳＡプレートのウェル当たり２００μｌずつ添加し、常温で１時間インキュベーションした。その後、ＥＬＩＳＡプレートの二次抗体を除去し、２００μｌのＰＢＳで５回洗浄した。１０μｌのＨ２Ｏ２溶液（Ｃａｔ．Ｎｏ．Ｈ１００９−１００ＭＬ、Sigma、米国）、１０ｍｌのＰＣ緩衝液（５．１ｇクエン酸一水和物、７．３ｇリン酸ナトリウム／Ｌ（ｐＨ５．０））、１個のＯＰＤ錠剤（Ｃａｔ．Ｎｏ．Ｐ８７８７−１００ＴＡＢ、Sigma、米国）を混合した混合物を準備し、各ウェルに総１００μｌの混合物を加えた。常温の暗い状態で１０分間インキュベーションした後、発色を確認した。その後、ウェル当たり５０μｌの停止緩衝液を加え、発色反応を終了させた。ＥＬＩＳＡリーダ機（reader）を利用して、４９０ｎｍの波長で吸光度を測定し、測定された吸光度から解離定数ＫＤ値（Ｍ）を算出した。
【００８８】
図２Ａは、２００ｎｇのｍＬＲＰ６に対する、突然変異ＤＫＫ２タンパク質の４９０ｎｍの波長で測定された吸光度を示し、図２Ｂは、２００ｎｇのｈＬＲＰ６に対する、突然変異ＤＫＫ２タンパク質の４９０ｎｍの波長で測定された吸光度を示す（■：Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ１、▲：Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ２、▼：Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ３、◆：Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４、●：Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ５）。図２Ａ及び図２Ｂに示されているように、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４が、ｍＬＲＰ６とｈＬＲＰ６とに対する結合親和度が最も優秀であった。Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ２は、発現効率が最も高かったが、ｍＬＲＰ６とｈＬＲＰ６とに対する結合親和度は、高くないということを確認した。従って、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４が発現効率にすぐれ、ｍＬＲＰ６とｈＬＲＰ６とに対する結合親和度が高い突然変異ＤＫＫ２タンパク質であるということを確認した。
【００８９】
Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４と野生型ＤＫＫ２（Ｃａｔ．Ｎｏ．６６２８−ＤＫ−０１０、Ｒ＆Ｄ、米国）との、ｈＬＲＰ６とｍＬＲＰ６とに対する結合親和度を比較するために、前述のようにＥＬＩＳＡを行った。ただし、１００ｎｇのＬＲＰ６を使用した。
【００９０】
図２Ｃは、１００ｎｇのｍＬＲＰ６に対する、ＤＫＫ２タンパク質の４９０ｎｍの波長で測定された吸光度を示し、図２Ｄは、１００ｎｇのｈＬＲＰ６に対する、ＤＫＫ２タンパク質の４９０ｎｍの波長で測定された吸光度を示す（■：Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４、▲：野生型ＤＫＫ２）。測定された吸光度から算出された解離定数（ＫＤ）と、Ｒ２値とを表４に示した。
【００９１】
【表４】
0006467070.tif 000005
【００９２】
ｈＬＲＰ６とｍＬＲＰ６とに対して、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４の結合親和度が、野生型ＤＫＫ２の結合親和度より約５ないし約１０倍優秀であるといういことを確認した。
【００９３】
４．突然変異ＤＫＫ２タンパク質の新生血管形成の確認
突然変異ＤＫＫ２タンパク質が、新生血管を誘導することができるか否かということを確認するために、角膜ポケット分析法（ＣＰＡ：corneal pocket assay）を行った。
【００９４】
Ｃ５７ＢＬ／６マウス（雄、９週齢、体重２１．８１ｇ−２３．８１ｇ）を（株）オリエントバイオ（韓国）から入手し、入手後７日間、実験を実施する飼育室内で順化させた。
【００９５】
角膜内薬物を投与するために、薬物ペレットを製造した。具体的には、１０ｇのスクロースオクタスルフェート−アルミニウム複合体（Ｓ０６５２、Sigma−Aldrich）を１００ｍｌのＰＢＳに溶解させ、１０％（ｗ／ｖ）スクラルファート（sucralfate）溶液を準備した。１２ｇのポリ−２−ヒドロキシエチルメタクリレート（Ｐ３９３２、Sigma−Aldrich）を、１００ｍｌの無水エタノール（absolute ethanol）に溶解させ、１２％（ｗ／ｖ）ポリＨＥＭＡ溶液を準備した。ペトリ皿にパラフィルムを置き、ＵＶ中で１５分間放置した。５μｌの１２％（ｗ／ｖ）ポリＨＥＭＡ溶液、１μｌの１０％（ｗ／ｖ）スクラルファート溶液、及び４μｌの薬物を混合した。該混合物を０．２μｌずつパラフィルムに分注し、分注したペレットは、約１ないし２時間室温で乾燥させた。乾燥されたペレットは、使用前まで冷蔵保管した。
【００９６】
順化されたマウス（雄、１０週齢、体重２３．４３ｇ−２６．１１ｇ）を２個の群（それぞれｎ＝５）に分けた。４：１（ｖ／ｖ）のケタミンとキシラジン（xylazine（RompunＴＭ）、Bayer ＡＧ、ドイツ）との混合物をマウスに腹腔投与し、マウスに麻酔を施した。約１０分後０．５％プロパラカイン（proparacaine）を角膜に点眼した。顕微鏡下で、von Graefe cataract knifeを使用して、角膜内にマイクロポケット（micro pocket）を作った。準備したペレットを角膜マイクロポケットに挿入し（１日目）、感染を防ぐために、テラマイシン眼軟膏を目に投与した。被検物質として、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４を使用し、マウス当たり４７５ｎｇのＮ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４が投与された。陰性対照群としてＰＢＳを使用した。その後、顕微鏡で角膜を観察し、血管生成及び構造的特徴をイメージアナライザで観察した。陰性対照群は、新生血管が検出されない半面、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４投与群は、５日目から新生血管が検出された。Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４投与群において新生血管面積（ｍｍ２）を算出し、その結果を表５に示した。
【００９７】
【表５】
0006467070.tif 000006
【００９８】
表５に示されているように、陰性対照群に比べ、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４投与群において、新生血管生成が確認された。
【００９９】
５．突然変異ＤＫＫ２タンパク質の糖尿性網膜病症改善の効果
突然変異ＤＫＫ２タンパク質が、糖尿性網膜病症（diabetic retinopathy）の症状を改善することができる否かということを確認した。
【０１００】
チンチラ（Chinchilla）兎（雄、１０−１１週齢、体重２．０ｋｇ−２．５ｋｇ）を（株）ドリームバイオ（韓国）から入手し、入手後７日間、実験を実施する飼育室内で順化させた。順化された兎に、糖尿誘発物質としてアロキサン一水和物（alloxan monohydrate）（Sigma−Aldrich Ｃｏ．）を耳静脈に投与し、投与後７日目（０日目）血糖を測定し、血糖３００ｍｇ／ｄＬである動物を選別した。選別された兎を各群の平均血糖が均一に分布するようにランダムに分配した。
【０１０１】
糖尿が誘発された兎に対して、ゾレチル（Zoletil）５０（ＶＩＲＢＡＣ、フランス）及びキシラジン（xylazine（RompunＴＭ）、Bayer ＡＧ、ドイツ）を静脈注射して麻酔を施した。被検物質として、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４（ＰＢＳ中）を、０日目（アロキサン投与後７日目及び７日目に１回／日、総２回、１０μｌ／目の量をガラス体内注射（intravitreal injection）で投与した。正常対照群として、アロキサンの代わりにＰＢＳを投与し、糖尿対照群として、アロキサンを投与し、陽性対照群として、ＥＹＬＥＡ（登録商標）（バイエルコリア（株））を、０日目に単回５０μｌ／目の量をガラス体内注射で投与した。投与された薬物を下記表６に示した。
【０１０２】
【表６】
0006467070.tif 000007
【０１０３】
０日目（被検物質投与開始日）、１４日目及び２１日目に、兎の眼球に散瞳剤（未スリーアシル１％点眼液）を点眼した後、ゾレチル５０（ＶＩＲＢＡＣ、フランス）及びキシラジン（xylazine（RompunＴＭ）、Bayer ＡＧ、ドイツ）を使用して麻酔を施した。その後、２％（ｗ／ｖ）フルオレセインナトリウム塩溶液（Sigma Aldrich）を、耳静脈を介して注入し、兎の目を、眼底カメラ（ＴＲＣ−５０ＩＸ、ＴＯＰＣＯＮ、日本）を使用して、２分以内撮影した。網膜確認及び薬効は、網膜蛍光眼底写真で評価した。イメージ分析は、ImageＪ software（ＮＩＨ、Bethesda、ＭＤ）を利用して、網膜血管周辺部の蛍光強度（fluorescein intensity in non-vascular regions of retina）を測定し、第１群（正常対照群）の平均値を基準（１００％）に、各個体別測定値の相対レベル（％）を算出した。算出された蛍光強度を図３Ａ及び図３Ｂに示した（図３Ａ：１４日目、図３Ｂ：２１日目；＊及び＊＊＊：第１群と比べ、それぞれｐ＜０．０５及びｐ＜０．００１；＃、＃＃及び＃＃＃：第２群と比べ、それぞれｐ＜０．０５、ｐ＜０．０１及びｐ＜０．００１；＄：第３群と比べ、ｐ＜０．０５）。図３Ａ及び図３Ｂに示されているように、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４投与群は、投与量によって、網膜の血管周辺部において、蛍光強度が有意に低くなった。従って、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４は、網膜血管周囲の血管漏れ（leakage）を阻害する効果があるということを確認した。
【０１０４】
また、２１日目に、ゾレチル５０及びキシラジンを使用して兎に麻酔を施した後、１％（ｖ／ｖ）Evans blue溶液（ａｂｃａｍ）を耳静脈に注射した。約１０分後、兎の眼球を摘出し、１０％（ｖ／ｖ）中性緩衝ホルマリン溶液に浸して固定した。約２４時間後、眼球から網膜を分離し、分離された網膜に、１ｍｌの蒸溜水を加えた後、約１０分間ボルテキシングした。該混合物を、１０，０００ｘｇで常温で約１０分間遠心分離した。０．３ｍｌの上澄み液を、９６ウェルマイクロプレートに移し、マイクロプレートリーダ（Versa Max Microplate reader、Molecular device、米国）を使用して、波長６２０ｎｍで吸光度を測定した。第１群（正常対照群）の平均値を基準（１００％）に、各個体別Evans blue血管透過性を算出した。算出された透過性を図４に示した（＊及び＊＊＊：第１群と比べ、それぞれｐ＜０．０５及びｐ＜０．００１；＃＃及び＃＃＃：第２群と比べ、それぞれｐ＜０．０１及びｐ＜０．００１；＄＄：第３群と比べ、ｐ＜０．０１）。図４に示されているように、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４投与群は、投与量によって、血管透過性が有意に低下した。従って、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４は、網膜血管の透過性を阻害する効果があるということを確認した。
【０１０５】
糖尿性網膜病症は網膜に、新生血管生成（angiogenesisまたはneovascularization）、ガラス体出血などが示されることを特徴とする。Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４は、新生血管生成を抑制し、ガラス体出血を阻害し、網膜血管の透過性を阻害するので、変形されたＤＫＫ２ポリペプチド、例えば、Ｎ−Ｆｃ−ＤＫＫ２−Ｇｌｙ４は、糖尿性網膜病症を予防または治療するのに効果があるということを確認した。
【０１０６】
本明細書に記載された例示的な実施形態は、説明的な意味でのみ考慮され、限定の目的で考慮されるものではないということが理解されねばならない。各例示的な実施形態における特徴、または態様の説明は、典型的には、他の例示的な実施形態における、他の同様の特徴または態様に利用可能であるとみなされる。
【０１０７】
1以上の例示的な実施形態について、図面を参照して説明したが、本発明の概念の精神および範囲から外れることなしに、形態および詳細におけるさなざまな変更は、特許請求の範囲によって定義されるようになされるということは、当業者に理解されるであろう。
【図１Ａ】
0006467070.tif 000008
【図１Ｂ】
0006467070.tif 000009
【図１Ｃ】
0006467070.tif 000010
【図１Ｄ】
0006467070.tif 000011
【図２Ａ】
0006467070.tif 000012
【図２Ｂ】
0006467070.tif 000013
【図２Ｃ】
0006467070.tif 000014
【図２Ｄ】
0006467070.tif 000015
【図３Ａ】
0006467070.tif 000016
【図３Ｂ】
0006467070.tif 000017
【図４】
0006467070.tif 000018
【配列表】
0006467070000001.app