(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
Ｔｏｌｌ様受容体９（ＴＬＲ９）アゴニストと併用するがんの治療のための医薬であって、ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体を含み、該がんが、ＣＳＦ−１Ｒ発現又は過剰発現により更に特徴づけられ、且つＴＬＲ９アゴニストが、シトシン−ホスフェート−グアノシン（ＣｐＧ）モチーフを含むオリゴデオキシヌクレオチド（ＣｐＧ ＯＤＮ）であり、
該ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体が、
ａ）配列番号１のＣＤＲ３領域、配列番号２のＣＤＲ２領域、及び配列番号３のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号４のＣＤＲ３領域、配列番号５のＣＤＲ２領域、及び配列番号６のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｂ）配列番号９のＣＤＲ３領域、配列番号１０のＣＤＲ２領域、及び配列番号１１のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号１２のＣＤＲ３領域、配列番号１３のＣＤＲ２領域、及び配列番号１４のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｃ）配列番号１７のＣＤＲ３領域、配列番号１８のＣＤＲ２領域、及び配列番号１９のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号２０のＣＤＲ３領域、配列番号２１のＣＤＲ２領域、及び配列番号２２のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｄ）配列番号２５のＣＤＲ３領域、配列番号２６のＣＤＲ２領域、及び配列番号２７のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号２８のＣＤＲ３領域、配列番号２９のＣＤＲ２領域、及び配列番号３０のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｅ）配列番号３３のＣＤＲ３領域、配列番号３４のＣＤＲ２領域、及び配列番号３５のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号３６のＣＤＲ３領域、配列番号３７のＣＤＲ２領域、及び配列番号３８のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｆ）配列番号４１のＣＤＲ３領域、配列番号４２のＣＤＲ２領域、及び配列番号４３のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号４４のＣＤＲ３領域、配列番号４５のＣＤＲ２領域、及び配列番号４６のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｇ）配列番号４９のＣＤＲ３領域、配列番号５０のＣＤＲ２領域、及び配列番号５１のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号５２のＣＤＲ３領域、配列番号５３のＣＤＲ２領域、及び配列番号５４のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｈ）配列番号６９のＣＤＲ３領域、配列番号７０のＣＤＲ２領域、及び配列番号７１のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号７２のＣＤＲ３領域、配列番号７３のＣＤＲ２領域、及び配列番号７４のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｉ）配列番号７７のＣＤＲ３領域、配列番号７８のＣＤＲ２領域、及び配列番号７９のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号８０のＣＤＲ３領域、配列番号８１のＣＤＲ２領域、及び配列番号８２のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む
医薬。
【請求項２】
がんの治療における使用のための医薬の製造のための
ｉ）ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体、及び
ｉｉ）Ｔｏｌｌ様受容体９（ＴＬＲ９）アゴニスト
の組み合わせの使用であって、該がんが、ＣＳＦ−１Ｒ発現又は過剰発現により更に特徴づけられ、且つＴＬＲ９アゴニストが、シトシン−ホスフェート−グアノシン（ＣｐＧ）モチーフを含むオリゴデオキシヌクレオチド（ＣｐＧ ＯＤＮ）であり、
該ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体が、
ａ）配列番号１のＣＤＲ３領域、配列番号２のＣＤＲ２領域、及び配列番号３のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号４のＣＤＲ３領域、配列番号５のＣＤＲ２領域、及び配列番号６のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｂ）配列番号９のＣＤＲ３領域、配列番号１０のＣＤＲ２領域、及び配列番号１１のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号１２のＣＤＲ３領域、配列番号１３のＣＤＲ２領域、及び配列番号１４のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｃ）配列番号１７のＣＤＲ３領域、配列番号１８のＣＤＲ２領域、及び配列番号１９のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号２０のＣＤＲ３領域、配列番号２１のＣＤＲ２領域、及び配列番号２２のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｄ）配列番号２５のＣＤＲ３領域、配列番号２６のＣＤＲ２領域、及び配列番号２７のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号２８のＣＤＲ３領域、配列番号２９のＣＤＲ２領域、及び配列番号３０のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｅ）配列番号３３のＣＤＲ３領域、配列番号３４のＣＤＲ２領域、及び配列番号３５のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号３６のＣＤＲ３領域、配列番号３７のＣＤＲ２領域、及び配列番号３８のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｆ）配列番号４１のＣＤＲ３領域、配列番号４２のＣＤＲ２領域、及び配列番号４３のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号４４のＣＤＲ３領域、配列番号４５のＣＤＲ２領域、及び配列番号４６のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｇ）配列番号４９のＣＤＲ３領域、配列番号５０のＣＤＲ２領域、及び配列番号５１のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号５２のＣＤＲ３領域、配列番号５３のＣＤＲ２領域、及び配列番号５４のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｈ）配列番号６９のＣＤＲ３領域、配列番号７０のＣＤＲ２領域、及び配列番号７１のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号７２のＣＤＲ３領域、配列番号７３のＣＤＲ２領域、及び配列番号７４のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｉ）配列番号７７のＣＤＲ３領域、配列番号７８のＣＤＲ２領域、及び配列番号７９のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号８０のＣＤＲ３領域、配列番号８１のＣＤＲ２領域、及び配列番号８２のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む
使用。
【請求項３】
がんが、乳がん、結腸直腸がん、黒色腫、頭頸部がん、肺がん又は前立腺がんである、請求項１に記載の医薬。
【請求項４】
がんが、乳がん、結腸直腸がん、黒色腫、頭頸部がん、肺がん又は前立腺がんである、請求項２に記載の使用。
【請求項５】
ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体が、以下の一又は複数
ａ）ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性ＣＳＦ−１Ｒ発現腫瘍細胞における細胞増殖の阻害；
ｂ）ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性ＣＳＦ−１Ｒ発現マクロファージ浸潤物を含む腫瘍の細胞増殖の阻害；
ｃ）ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性ＣＳＦ−１Ｒ発現単球及びマクロファージにおける細胞生存の阻害；又は
ｄ）ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性ＣＳＦ−１Ｒ発現単球のマクロファージへの細胞分化の阻害；
における使用のための、ヒトＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメインの二量体化ドメインＤ４からＤ５（配列番号８５）への結合を特徴とし、該がんが、ＣＳＦ−１Ｒ発現又は過剰発現により更に特徴づけられ、且つＴＬＲ９アゴニストが、シトシン−ホスフェート−グアノシン（ＣｐＧ）モチーフを含むオリゴデオキシヌクレオチド（ＣｐＧ ＯＤＮ）である、請求項１又は３に記載の医薬。
【請求項６】
ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体が、ヒトＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメインの二量体化ドメインＤ４からＤ５（配列番号８５）への結合を特徴とし、
以下の一又は複数
ａ）ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性ＣＳＦ−１Ｒ発現腫瘍細胞における細胞増殖の阻害；
ｂ）ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性ＣＳＦ−１Ｒ発現マクロファージ浸潤物を含む腫瘍の細胞増殖の阻害；
ｃ）ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性ＣＳＦ−１Ｒ発現単球及びマクロファージにおける細胞生存の阻害；又は
ｄ）ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性ＣＳＦ−１Ｒ発現単球のマクロファージへの細胞分化の阻害；
における使用のための医薬の製造のための、使用であって、
該がんが、ＣＳＦ−１Ｒ発現又は過剰発現により更に特徴づけられ、且つＴＬＲ９アゴニストが、シトシン−ホスフェート−グアノシン（ＣｐＧ）モチーフを含むオリゴデオキシヌクレオチド（ＣｐＧ ＯＤＮ）である、請求項２又は４に記載の使用。
【請求項７】
Ｔｏｌｌ様受容体９（ＴＬＲ９）アゴニストと併用する、ＣＳＦ−１Ｒ発現腫瘍を有する又はＣＳＦ−１Ｒ発現マクロファージ浸潤物を含む腫瘍を有する患者におけるがんの治療のための医薬であって、ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体を含み、腫瘍がＣＳＦ−１Ｒリガンドの増加により特徴づけられ、且つＴＬＲ９アゴニストが、シトシン−ホスフェート−グアノシン（ＣｐＧ）モチーフを含むオリゴデオキシヌクレオチド（ＣｐＧ ＯＤＮ）であり、
該ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体が、
ａ）配列番号１のＣＤＲ３領域、配列番号２のＣＤＲ２領域、及び配列番号３のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号４のＣＤＲ３領域、配列番号５のＣＤＲ２領域、及び配列番号６のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｂ）配列番号９のＣＤＲ３領域、配列番号１０のＣＤＲ２領域、及び配列番号１１のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号１２のＣＤＲ３領域、配列番号１３のＣＤＲ２領域、及び配列番号１４のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｃ）配列番号１７のＣＤＲ３領域、配列番号１８のＣＤＲ２領域、及び配列番号１９のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号２０のＣＤＲ３領域、配列番号２１のＣＤＲ２領域、及び配列番号２２のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｄ）配列番号２５のＣＤＲ３領域、配列番号２６のＣＤＲ２領域、及び配列番号２７のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号２８のＣＤＲ３領域、配列番号２９のＣＤＲ２領域、及び配列番号３０のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｅ）配列番号３３のＣＤＲ３領域、配列番号３４のＣＤＲ２領域、及び配列番号３５のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号３６のＣＤＲ３領域、配列番号３７のＣＤＲ２領域、及び配列番号３８のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｆ）配列番号４１のＣＤＲ３領域、配列番号４２のＣＤＲ２領域、及び配列番号４３のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号４４のＣＤＲ３領域、配列番号４５のＣＤＲ２領域、及び配列番号４６のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｇ）配列番号４９のＣＤＲ３領域、配列番号５０のＣＤＲ２領域、及び配列番号５１のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号５２のＣＤＲ３領域、配列番号５３のＣＤＲ２領域、及び配列番号５４のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｈ）配列番号６９のＣＤＲ３領域、配列番号７０のＣＤＲ２領域、及び配列番号７１のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号７２のＣＤＲ３領域、配列番号７３のＣＤＲ２領域、及び配列番号７４のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｉ）配列番号７７のＣＤＲ３領域、配列番号７８のＣＤＲ２領域、及び配列番号７９のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号８０のＣＤＲ３領域、配列番号８１のＣＤＲ２領域、及び配列番号８２のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む
医薬。
【請求項８】
腫瘍がＣＳＦ−１Ｒリガンドの増加により特徴づけられる、ＣＳＦ−１Ｒ発現腫瘍を有する又はＣＳＦ−１Ｒ発現マクロファージ浸潤物を含む腫瘍を有する患者の治療における使用のための医薬の製造のための、
ｉ）ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体、及び
ｉｉ）Ｔｏｌｌ様受容体９（ＴＬＲ９）アゴニスト
の組み合わせの使用であって、ＴＬＲ９アゴニストが、シトシン−ホスフェート−グアノシン（ＣｐＧ）モチーフを含むオリゴデオキシヌクレオチド（ＣｐＧ ＯＤＮ）であり、
該ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体が、
ａ）配列番号１のＣＤＲ３領域、配列番号２のＣＤＲ２領域、及び配列番号３のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号４のＣＤＲ３領域、配列番号５のＣＤＲ２領域、及び配列番号６のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｂ）配列番号９のＣＤＲ３領域、配列番号１０のＣＤＲ２領域、及び配列番号１１のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号１２のＣＤＲ３領域、配列番号１３のＣＤＲ２領域、及び配列番号１４のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｃ）配列番号１７のＣＤＲ３領域、配列番号１８のＣＤＲ２領域、及び配列番号１９のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号２０のＣＤＲ３領域、配列番号２１のＣＤＲ２領域、及び配列番号２２のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｄ）配列番号２５のＣＤＲ３領域、配列番号２６のＣＤＲ２領域、及び配列番号２７のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号２８のＣＤＲ３領域、配列番号２９のＣＤＲ２領域、及び配列番号３０のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｅ）配列番号３３のＣＤＲ３領域、配列番号３４のＣＤＲ２領域、及び配列番号３５のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号３６のＣＤＲ３領域、配列番号３７のＣＤＲ２領域、及び配列番号３８のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｆ）配列番号４１のＣＤＲ３領域、配列番号４２のＣＤＲ２領域、及び配列番号４３のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号４４のＣＤＲ３領域、配列番号４５のＣＤＲ２領域、及び配列番号４６のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｇ）配列番号４９のＣＤＲ３領域、配列番号５０のＣＤＲ２領域、及び配列番号５１のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号５２のＣＤＲ３領域、配列番号５３のＣＤＲ２領域、及び配列番号５４のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｈ）配列番号６９のＣＤＲ３領域、配列番号７０のＣＤＲ２領域、及び配列番号７１のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号７２のＣＤＲ３領域、配列番号７３のＣＤＲ２領域、及び配列番号７４のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｉ）配列番号７７のＣＤＲ３領域、配列番号７８のＣＤＲ２領域、及び配列番号７９のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号８０のＣＤＲ３領域、配列番号８１のＣＤＲ２領域、及び配列番号８２のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む
使用。
【請求項９】
ＴＬＲ９アゴニストが、形質細胞様樹状細胞（ｐＤＣ）における、ＩＦＮ−α、ＩＬ−６及び／又はＩＬ−１２の誘導により特徴づけられる、請求項１、３、５、及び７の何れか一項に記載の医薬。
【請求項１０】
ＴＬＲ９アゴニストが、形質細胞様樹状細胞（ｐＤＣ）における、ＩＦＮ−α、ＩＬ−６及び／又はＩＬ−１２の誘導により特徴づけられる、請求項２、４、６、及び８の何れか一項に記載の使用。
【請求項１１】
抗体が、ヒトＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメインのドメインＤ４からＤ５（配列番号８５）への結合を特徴とする、請求項１、３、５、７、及び９の何れか一項に記載の医薬。
【請求項１２】
抗体が、ヒトＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメインのドメインＤ４からＤ５（配列番号８５）への結合を特徴とする、請求項２、４、６、８、及び１０の何れか一項に記載の使用。
【請求項１３】
抗体が、ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４（配列番号６５）に結合しないことを特徴とする、請求項１、３、５、７、９、及び１１の何れか一項に記載の医薬。
【請求項１４】
ａ）重鎖可変ドメインは配列番号７の配列を含み、軽鎖可変ドメインは配列番号８の配列を含む；
ｂ）重鎖可変ドメインは配列番号１５の配列を含み、軽鎖可変ドメインは配列番号１６の配列を含む；
ｃ）重鎖可変ドメインは配列番号７５の配列を含み、軽鎖可変ドメインは配列番号７６の配列を含む；
ｄ）重鎖可変ドメインは配列番号８３の配列を含み、軽鎖可変ドメインは配列番号８４の配列を含む；
ｅ）重鎖可変ドメインは配列番号２３の配列を含み、軽鎖可変ドメインは配列番号２４の配列を含む、又は
ｆ）重鎖可変ドメインは配列番号３１の配列を含み、軽鎖可変ドメインは配列番号３２の配列を含む、又は
ｇ）重鎖可変ドメインは配列番号３９の配列を含み、軽鎖可変ドメインは配列番号４０の配列を含む、又は
ｈ）重鎖可変ドメインは配列番号４７の配列を含み、軽鎖可変ドメインは配列番号４８の配列を含む、又は
ｉ）重鎖可変ドメインは配列番号５５の配列を含み、軽鎖可変ドメインは配列番号５６の配列を含むことを特徴する、請求項１、３、５、７、９、１１、及び１３の何れか一項に記載の医薬。
【請求項１５】
抗体が、ヒトＩｇＧ１サブクラスのものであるか又はヒトＩｇＧ４サブクラスのものであることを特徴とする、請求項１、３、５、７、９、１１、１３及び１４の何れか一項に記載の医薬。
【請求項１６】
ＴＬＲ９アゴニストの有効量と併用する、ＣＳＦ−１Ｒ発現腫瘍を有する又はＣＳＦ−１Ｒ発現マクロファージ浸潤物を含む腫瘍を有する患者におけるがんの治療のための医薬であって、ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体の有効量を含み、腫瘍はＣＳＦ−１Ｒリガンドの増加により特徴づけられ、ＴＬＲ９アゴニストが、シトシン−ホスフェート−グアノシン（ＣｐＧ）モチーフを含むオリゴデオキシヌクレオチド（ＣｐＧ ＯＤＮ）であり、
該ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体が、
ａ）配列番号１のＣＤＲ３領域、配列番号２のＣＤＲ２領域、及び配列番号３のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号４のＣＤＲ３領域、配列番号５のＣＤＲ２領域、及び配列番号６のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｂ）配列番号９のＣＤＲ３領域、配列番号１０のＣＤＲ２領域、及び配列番号１１のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号１２のＣＤＲ３領域、配列番号１３のＣＤＲ２領域、及び配列番号１４のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｃ）配列番号１７のＣＤＲ３領域、配列番号１８のＣＤＲ２領域、及び配列番号１９のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号２０のＣＤＲ３領域、配列番号２１のＣＤＲ２領域、及び配列番号２２のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｄ）配列番号２５のＣＤＲ３領域、配列番号２６のＣＤＲ２領域、及び配列番号２７のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号２８のＣＤＲ３領域、配列番号２９のＣＤＲ２領域、及び配列番号３０のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｅ）配列番号３３のＣＤＲ３領域、配列番号３４のＣＤＲ２領域、及び配列番号３５のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号３６のＣＤＲ３領域、配列番号３７のＣＤＲ２領域、及び配列番号３８のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｆ）配列番号４１のＣＤＲ３領域、配列番号４２のＣＤＲ２領域、及び配列番号４３のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号４４のＣＤＲ３領域、配列番号４５のＣＤＲ２領域、及び配列番号４６のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｇ）配列番号４９のＣＤＲ３領域、配列番号５０のＣＤＲ２領域、及び配列番号５１のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号５２のＣＤＲ３領域、配列番号５３のＣＤＲ２領域、及び配列番号５４のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｈ）配列番号６９のＣＤＲ３領域、配列番号７０のＣＤＲ２領域、及び配列番号７１のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号７２のＣＤＲ３領域、配列番号７３のＣＤＲ２領域、及び配列番号７４のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む、又は
ｉ）配列番号７７のＣＤＲ３領域、配列番号７８のＣＤＲ２領域、及び配列番号７９のＣＤＲ１領域を含む重鎖可変ドメイン、及び配列番号８０のＣＤＲ３領域、配列番号８１のＣＤＲ２領域、及び配列番号８２のＣＤＲ１領域を含む軽鎖可変ドメインを含む
医薬。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ＴＬＲ９アゴニストを用いたヒトＣＳＦ−１Ｒに対する抗体の併用療法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ＣＳＦ−１Ｒ及びＣＳＦ−１Ｒ抗体
ヒトＣＳＦ−１受容体（ＣＳＦ−１Ｒ；コロニー刺激因子１受容体；同義語：Ｍ−ＣＳＦ受容体、マクロファージコロニー刺激因子１受容体、Ｆｍｓがん原遺伝子、ｃ−ｆｍｓ、配列番号６２）は、１９８６年から公知である（Coussens, L., et al., Nature 320 (1986) 277-280）。ＣＳＦ−１Ｒは増殖因子であり、ｃ−ｆｍｓがん原遺伝子によってコードされている（Roth, P., and Stanley, E.R., Curr. Top. Microbiol. Immunol. 181 (1992) 141-167に総説される）。
【０００３】
ＣＳＦ−１Ｒは、ＣＳＦ−１（コロニー刺激因子１、Ｍ−ＣＳＦ、マクロファージコロニー刺激因子とも呼ばれる）の受容体であり、このサイトカインの生物学的作用を媒介する（Sherr, C.J., et al., Cell 41 (1985) 665-676）。コロニー刺激因子−１受容体（ＣＳＦ−１Ｒ）（ｃ−ｆｍｓとも呼ばれる）のクローニングは、最初に、Roussel, M.F., et al., Nature 325 (1987) 549-552に記述された。この刊行物では、ＣＳＦ−１ＲはＣｂｌに結合し、それによって受容体のダウンレギュレーションを調節する抑制性チロシン９６９のリン酸化の欠損を含むタンパク質のＣ末端尾部の変化に依存した形質転換能を有する（Lee, P.S., et al., Embo J. 18 (1999) 3616-3628）ことが示された。最近、インターロイキン３４（ＩＬ−３４）と呼ばれるＣＳＦ−１Ｒの第二のリガンドが同定された（Lin, H., et al, Science 320 (2008) 807-811）。
【０００４】
現在、ＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメインに結合する２つのＣＳＦ−１Ｒリガンドが知られている。第一のものは、ＣＳＦ−１（コロニー刺激因子１、Ｍ−ＣＳＦ、マクロファージとも称される；配列番号８６）であり、ジスルフィド結合したホモ二量体として細胞外に見いだされる（Stanley, E.R. et al., Journal of Cellular Biochemistry 21 (1983) 151-159; Stanley, E.R. et al., Stem Cells 12 Suppl. 1 (1995) 15-24）。第二のものはＩＬ−３４である（ヒトＩＬ−３４；配列番号８７）（Hume, D. A. , et al, Blood 119 (2012) 1810-1820）。ＣＳＦ−１Ｒシグナル伝達の主な生物学的作用は、造血前駆細胞のマクロファージ系統（破骨細胞を含む）への分化、増殖、遊走、及び生存である。ＣＳＦ−１Ｒの活性化は、ＣＳＦ−１Ｒリガンド、ＣＳＦ−１（Ｍ−ＣＳＦ）、及びＩＬ−３４によって媒介される。ＣＳＦ−１ＲへのＣＳＦ−１（ＭＣＳＦ）の結合は、ホモ二量体の形成及びチロシンリン酸化によるキナーゼの活性化を誘導する（Li, W. et al, EMBO Journal.10 (1991) 277-288; Stanley, E.R., et al., Mol. Reprod. Dev. 46 (1997) 4-10）。
【０００５】
生物学的に活性なホモ二量体のＣＳＦ−１は、ＣＳＦ−１受容体の細胞外ドメイン（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）Ｄ１からＤ３内でＣＳＦ−１Ｒに特異的に結合する。ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤは５つの免疫グロブリン様サブドメイン（Ｄ１からＤ５と命名）を含む。細胞外ドメイン（ＣＳＦ１Ｒ−ＥＣＤ）のサブドメインＤ４からＤ５は、ＣＳＦ−１結合に関与していない（Wang, Z., et al Molecular and Cellular Biology 13 (1993) 5348-5359）。サブドメインＤ４は、二量体形成に関与している（Yeung, Y-G., et al Molecular & Cellular Proteomics 2 (2003) 1143-1155; Pixley, F. J., et al., Trends Cell Biol 14 (2004) 628-638）。
【０００６】
更なるシグナル伝達は、ＰＩ３Ｋのｐ８５サブユニット及びＰＩ３Ｋ／ＡＫＴ及びＲａｓ／ＭＡＰＫのそれぞれに連結するＧｒｂ２により媒介される。これらの二つの重要なシグナル伝達経路は、増殖、生存及びアポトーシスを調節することができる。ＣＳＦ−１Ｒのリン酸化細胞内ドメインに結合する他のシグナル伝達分子は、ＳＴＡＴ１、ＳＴＡＴ３、ＰＬＣｙ、及びＣｂｌを含む（Bourette, R.P. and Rohrschneider, L.R., Growth Factors 17 (2000) 155-166）。
【０００７】
ＣＳＦ−１Ｒシグナル伝達は、骨リモデリング及び生殖系における免疫応答において生理的役割を有する。ＣＳＦ１（Pollard, J.W., Mol. Reprod. Dev. 46 (1997) 54-61) 又はＣＳＦ−１Ｒ（Dai, X.M., et al., Blood 99 (2002) 111-120）の何れかについてのノックアウト動物は、大理石骨病、造血、組織マクロファージ及び各細胞型におけるＣＳＦ−１Ｒの役割と一致した生殖表現型を有することが示されている。
【０００８】
Sherr, C.J., et al., Blood 73 (1989) 1786-1793は、ＣＳＦ−１活性を阻害するＣＳＦ−１Ｒに対するいくつかの抗体に関する。Ashmun, R.A., et al., Blood 73 (1989) 827-837は、ＣＳＦ−１Ｒ抗体に関する。Lenda, D., et al., Journal of Immunology 170 (2003) 3254-3262は、腎臓の炎症時に尿細管のアポトーシスの減少を生じるＣＳＦ−１欠損マウスにおけるマクロファージの動員、増殖、及び活性化に関する。Kitaura, H., et al., Journal of Dental Research 87 (2008) 396-400は、歯の矯正移動を阻害する抗ＣＳＦ−１抗体を言及している。国際公開第２００１／０３０３８１号は、アンチセンスヌクレオチド及び抗体を含むＣＳＦ−１活性阻害剤を言及しているが、ＣＳＦ−１アンチセンスヌクレオチドのみを開示している。国際公開第２００４／０４５５３２号は、ＣＳＦ−１アンタゴニストによる
転移性がんの転移並びに骨量減少の予防及び治療に関し、アンタゴニストとして抗ＣＳＦ−１抗体のみを開示している。国際公開第２００５／０４６６５７号は、抗ＣＳＦ−１抗体による炎症性腸疾患の治療に関する。米国特許出願公開第２００２／０１４１９９４号は、コロニー刺激因子の阻害剤に関する。国際公開第２００６／０９６４８９号は、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体による関節リウマチの治療に関する。国際公開第２００９／０２６３０３号及び国際公開第２００９／１１２２４５号は、細胞外ドメイン（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）の最初の３つのサブドメイン（Ｄ１からＤ３）内でＣＳＦ−１Ｒに結合する所定の抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体に関する。国際公開第２０１１／１２３３８１（Ａ１）号は、ＣＳＦ−１Ｒに対する抗体に関する。国際公開第２０１１／０７００２４号は、二量体化ドメイン（Ｄ４からＤ５）内でＣＳＦ−１Ｒに結合する所定の抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体に関する。
【０００９】
ＴＬＲ、ＴＬＲ９及びＴＬＲ９アゴニスト
がん治療のための異なる実験用Ｔｏｌｌ様受容体アゴニストが記述されており（Galluzzi et al., OncoImmunology, 1:5, (2012) 699-716）、Ｔｏｌｌ様受容体（ＴＬＲ）は一般にリポ多糖及び二本鎖ＲＮＡなどの保存された微生物の成分に応答して自然免疫系を活性化する能力について最も知られているプロトタイプのパターン認識受容体（ＰＲＲ）である。証拠を蓄積すると、ＴＬＲの機能は、侵入してくる病原体に対する自然免疫応答の誘発に限定されるものではないことを示している。ＴＬＲは実際に、組織の修復及び損傷誘導性再生ならびにがんに対する適応免疫応答に関与することが示されている。具体的には、ＴＬＲ４シグナル伝達は、樹状細胞による効率的なプロセシング及び細胞関連腫瘍抗原の交差提示に必要であると思われ、このことは事実上幾つかの抗がん剤の最適な治療応答の基礎となる。従って、ＴＬＲは抗がん免疫応答の活性化／増感のための顕著な治療標的を構成する。この考えに沿って、コーリー毒素などの長期使用型調製物（死滅した化膿連鎖球菌及びセラチア菌の混合物）及びカルメット・ゲラン桿菌（ＢＣＧ、もともと結核に対するワクチンとして開発されたマイコバクテリウムボビスの弱毒株）は、それらの両方とも抗がん応答に関連しており、ＴＬＲ２及びＴＬＲ４シグナル伝達を強く活性化する。
【００１０】
現在受け入れられたモデルによると、ＴＬＲは、ホモ又はヘテロ二量体として作動し、細胞膜で（プロテオ脂質ＭＡＭＰ、すなわち、ＴＬＲ１、ＴＬＲ２、ＴＬＲ４、ＴＬＲ５、ＴＬＲ６及びＴＬＲ１０に主に結合するＴＬＲ）又はエンドソーム内（微生物の核酸を検出するＴＬＲ、すなわち、ＴＬＲ３、ＴＬＲ７、ＴＬＲ８、ＴＬＲ９）の何れかで発現される。ヒトのＴＬＲの中で唯一のオーファン受容体であるＴＬＲ１０はまた、ファゴソームでＴＬＲ２と共局在することが示されており、ＴＬＲ２とアシル化リポペプチドと結合する能力を共有することができることを示唆している。しかしながら、この問題に関する決定的なデータはまだ報告されていない。ＴＬＲ１１−１３は、ヒトのゲノムにコードされていない。マウスでは、ＴＬＲ１１−１３は、中枢神経系で恒常的に発現され、嚢虫症に反応して数倍の誘導を受ける。２１のＴＬＲ１１はトキソプラズマ原虫によって発現されるプロフィリン様タンパク質を認識し、小胞体に局在している。ＴＬＲ１３はまた、水疱性口内炎ウイルスを検出することになるであろう細胞内に局在化されるように見える。これまでのところ、ＴＬＲ１２のリガンド特異性及び細胞内局在化は未調査のままである。
【００１１】
要約すると、異なるＴｏｌｌ様受容体は、異なる機能、構造及び発現パターンを有する。その結果、それらのリガンド及びアゴニストは、異なる機能及び作用機序を有する。例えば、エンドトキシンとしても知られるＴＬＲ２及びＴＬＲ４の天然リガンドであるＬＰＳは、ＴＬＲの存在さえ疑われていない１９６０年代という早い時期に発見されている抗がん特性を有する。
【００１２】
ＴＬＲ９は、Ｂ細胞、単球、マクロファージ、及び形質細胞様樹状細胞ＤＣのエンドソーム区画に主に見出される（Galluzzi et al., OncoImmunology, 1:5, (2012) 699-716）。ＴＬＲ９の主なリガンドは、非メチル化ＣｐＧオリゴデオキシヌクレオチドの上昇頻度のために、その哺乳動物のカウンターパートとは異なり、細菌／ウイルスＤＮＡである。確かに、哺乳動物のＤＮＡは何らの免疫賦活活性を有していないが、細菌／ウイルスＤＮＡの投与は、ＴＬＲ９−／−にマウスにおいては完全に抑制されるインビボでの強力なＴｈ１免疫応答を誘導する。ＣｐＧオリゴデオキシヌクレオチド（又はＣｐＧ ＯＤＮ）は、シチジン三リン酸デオキシヌクレオチド（「Ｃ」）と続くグアニジン三リン酸デオキシヌクレオチド（「Ｇ」）を含有する短い一本鎖の合成ＤＮＡ分子である。幾つかのＯＤＮは代わりに修飾されたホスホロチオエート（ＰＳ）骨格を有するものの、「ｐ」は連続したヌクレオチドの間のホスホジエステル結合を指す。これらのＣｐＧモチーフがメチル化されていない場合、それらは免疫賦活剤として作用する（Weiner, GJ; et al, PNAS 94 (1997) 10833-7）。
【００１３】
ＣｐＧモチーフは、脊椎動物のゲノムにその希少性に対し微生物ゲノムにおけるその存在量のため、病原体関連分子パターン（ＰＡＭＰ）と考えられる（Bauer, S; Current Topics in Microbiology and Immunology 270 (2002) 145-54）。ＣｐＧ ＰＡＭＰは、ヒト及び他の高等霊長類においてはＢ細胞及び形質細胞様樹状細胞（ｐＤＣ）においてのみ恒常的に発現される、パターン認識受容体（ＰＲＲ）Ｔｏｌｌ様受容体９（ＴＬＲ９）によって認識される（Rothenfusser, S; et al, Human immunology 63 (2002) 1111-9）。
【００１４】
合成ＣｐＧ ＯＤＮは、それらが、典型的なホスホジエステル骨格及び３´末端、５´末端、又はその両方でのポリＧテールの代わりに、部分的又は完全にホスホロチオエート（ＰＳ）骨格を有するという点で微生物のＤＮＡとは異なる。ＰＳ修飾は、体内のＤＮＡ分解酵素などのヌクレアーゼによって分解されることからＯＤＮを保護し、ポリＧテールは細胞取り込みを高める（Dalpke, AH et al, Immunology 106 (2002) 102-12）。ポリＧテールは、高分子量の凝集体を生じる分子間四分子を形成する。これらの凝集体は、配列それ自体なくポリＧ配列が付与する活性の増大の原因となる。
【００１５】
ＯＤＮ１８２６などの非メチル化ＣｐＧモチーフ（ＣｐＧ ＯＤＮ）を含むこれらの合成オリゴデオキシヌクレオチドは、アジュバントとして広く研究されている（Steinhagen F. et al., 2011; Vaccine 29(17):3341-55）。これらのＣｐＧモチーフは、哺乳動物のＤＮＡと比較して、細菌のＤＮＡにおいて２０倍高い頻度で存在している（Hemmi H. et al., 2000. Nature 408: 740-5）。ＣｐＧ ＯＤＮは、ヒトのＢ細胞及び形質細胞様樹状細胞（ｐＤＣ）上で発現されるＴＬＲ９を刺激し、それによってＴｈ１支配型免疫応答を誘導する（Coffman et al., 2010. Immunity 33(4):492-503）。げっ歯類及び非ヒト霊長類、及びヒト臨床試験で実施された前臨床研究は、ＣｐＧ ＯＤＮはワクチン特異的抗体応答を有意に向上させることができるということを実証した（Steinhagen F. et al., 2011; Vaccine 29(17):3341-55）。
【００１６】
ＣｐＧ二量体の数及び位置、並びにＣｐＧ二量体に隣接する正確な塩基配列にバリエーションを有する、多数の配列がＴＬＲ９を刺激することが示されている。このことは、配列、二次構造、及びヒト末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）に対する作用に基づいて全てＴＬＲ９アゴニストであるＣｐＧ ＯＤＮのクラス又はカテゴリの創出へと導いた。ＣｐＧ ＯＤＮの三つの主要なクラスは、クラスＡ、Ｂ及びＣであり、それらの免疫賦活活性は異なる（Krug A. et al., 2001, Eur J Immunol, 31(7): 2154-63）。更に、ＣｐＧ ＯＤＮは、種特異的にＴＬＲ９を活性化させる（Bauer, S. et al., 2001, PNAS, 98(16):9237-42）。第一のクラスＡ ＯＤＮの一つであるＯＤＮ ２２１６は、Ｋｒｕｇらによって２００１年に記載された（上を参照）。ＯＤＮのこのクラスは、最も重要なものはＩＦＮαであるＩ型インターフェロンの大量の産生を刺激し、ｐＤＣの成熟を誘導するという点で、前述のクラスＢ ＯＤＮ（２００６すなわち、ＯＤＮ）とは明らかに異なっていた。
【００１７】
クラスＡ ＯＤＮはまた、間接的なサイトカインシグナル伝達を介したＮＫ細胞の強力な活性化剤である。クラスＡ ＯＤＮは、典型的には、ヌクレアーゼによる分解に耐性で、ＯＤＮの寿命を延ばす、一方又は両方の末端に７から１０のＰＳ修飾された塩基を含む。上記の規則は、厳密にクラスを定義するが、これらの「規則」内における配列の可変は可能である。また、配列の変化は、応答の大きさに影響することに留意すべきである。例えば、内部のパリンドローム配列は、長さが４から８塩基対とすることができ、塩基の順序が異なるが、しかしながら、幾つかの他の配列と比較した場合、パターン、５´−Ｐｕ Ｐｕ ＣＧ Ｐｕ Ｐｙ ＣＧ Ｐｙ Ｐｙ−３´が、最も活性であることが見出された。ＤＮＡ鎖のどちらかの端に見られるポリＧテールは、長さ、更には数を変えることができるが、その存在は分子の活性に重要である。
【００１８】
クラスＢ ＯＤＮ（即ち、ＯＤＮ ２００７）は、ヒトＢ細胞及び単球の成熟の強力な刺激剤である。それらはまた、クラスＡ ＯＤＮより少ない程度であるがｐＤＣ及び非常に少量のＩＦＮαの成熟を刺激する。このクラスの最強のＯＤＮは３つの６−ｍｅｒ配列を有する。クラスＢのＯＤＮは、強力な体液性免疫応答を誘導し、ワクチンアジュバントとしてそれらを理想的にせしめるそれらの能力のため、治療薬として広く研究されている。
【００１９】
ＯＤＮ１８２６は、マウスＴＬＲ９に特異的なＢ型ＣｐＧ ＯＤＮである。Ｂ型ＣｐＧ ＯＤＮは、一以上のＣｐＧジヌクレオチドを有する完全なホスホロチオエート骨格を含み、Ｂ細胞を強力に活性化することができる（Krug A. et al., 2001, Eur J Immunol, 31(7): 2154-63）。ＯＤＮ１８２６、マウス反応性サロゲートＴＬＲ９アゴニストは、多くの動物モデルにおいて、アジュバントとして試験されている（Bauer, S. et al., 2001, PNAS, 98(16):9237-42）。マウスにおける研究は、ＯＤＮ１８２６の投与は、抗原提示細胞の活性化及びＴｈ１免疫応答の指標であるＩ型ＩＦＮの抗ウイルス活性８−９を誘導することができることを実証した（Longhi Mp. et al., 2009, J Exp Med 206: 1589-602）。
【００２０】
更に、担がんげっ歯類へのＢ型ＣｐＧオリゴヌクレオチドの投与は（単独で、又は化学療法剤又はペプチドワクチンと併用して）、伝えられるところによれば強力な抗がん効果を発揮する。腫瘍学的徴候に対するＣｐＧ−７９０９の安全性と有効性を試験する初期の第Ｉ／Ｉ層臨床試験は、２０００年４月に開始された。ほぼ同じ期間に、ＣｐＧ−７９０９は、重篤な副作用を示さず有効性を促す、がんに無関係な徴候に対するアジュバントとして広く検討され始めた（主に抗ウイルスワクチン）。
【００２１】
最後の十年の間に、ＣｐＧ−７９０９の安全性と抗がん作用の可能性が（独立した薬剤として、又は化学療法及び／又はワクチン接種アプローチと併用して）、白血病、リンパ腫、基底細胞癌、黒色腫、食道扁平上皮癌、ＮＳＣＬＣ、腎細胞癌、及び前立腺がん患者を対象にした研究を含む第Ｉ／ＩＩ層臨床試験の大多数において検討されている。幾つかのＴＬＲ９アゴニストが知られており、臨床試験中のＡｇａｔｏｌｉｍｏｄ（３つのＣｐＧモチーフを含む合成２４−ｍｅｒオリゴヌクレオチドのｔｒｉｃｏｓａｓｏｄｉｕｍ塩；Ｐｆｉｚｅｒ）、ＧＮＫＧ１６８（ＣｐＧ ＯＤＮ；ＳＢＩ Ｂｉｏｔｅｃｈ）、ＩＭＯ−２０５５（非メチル化ＣｐＧジヌクレオチドを含む合成オリゴヌクレオチド；Ｉｄｅｒａ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ）、ＭＧＮ−１７０３（Ｍｏｌｏｇｅｎ）で現在開発されている。典型的には、これらのＴＬＲ９アゴニストは、様々ながんの治療に使用される。
【００２２】
Schroder K et al, ( J Leukoc Biol. 81(6) (2007) 1577-90は、ＴＬＲアゴニスト（非メチル化ＣｐＧ含有ＤＮＡ（ＣＰＧ ＤＮＡ）に関する）マウスＴＬＲ９発現の調節に関し、ＩＦＮ−γがＣｐＧ ＤＮＡに対するマウスマクロファージの応答を増幅する分子メカニズムを定義する。
【発明の概要】
【００２３】
本発明は、ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体（ドメインＤ１−Ｄ３に結合する抗体及びドメインＤ４−Ｄ５に結合する抗体、好ましくは本明細書に記載されるようにドメインＤ４−Ｄ５に結合する抗体を含む）の、がんの治療に使用のためのＴｏｌｌ様受容体９（ＴＬＲ９）アゴニストとの併用療法を含む。
【００２４】
一実施態様は、
ａ）ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１リガンド非依存性ＣＳＦ−１Ｒ発現腫瘍細胞における細胞増殖の阻害；
ｂ）ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性ＣＳＦ−１Ｒ発現マクロファージ浸潤物を含む腫瘍の細胞増殖の阻害；
ｃ）（ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性）ＣＳＦ−１Ｒ発現単球及びマクロファージにおける細胞生存の阻害；及び／又は
ｄ）（ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性）ＣＳＦ−１Ｒ発現単球のマクロファージへの細胞分化の阻害；
において使用のための、ヒトＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメインの（二量体化）ドメインＤ４からＤ５（配列番号８５）への結合を特徴とするヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体であって、ここで、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体は、ＴＬＲ９アゴニストと併用して投与される。
【００２５】
一実施態様において、ＴＬＲ９アゴニストは、形質細胞様樹状細胞（ｐＤＣ）においてＩＦＮ−α、ＩＬ−６及び／又はＩＬ−１２を誘導する（ＩＦＮ−α、ＩＬ−６及び／又はＩＬ−１２のレベルを上昇させる）ことを特徴とする。一実施態様において、ＴＬＲ９アゴニストは、（サンドイッチＥＬＩＳＡにより測定される場合）ヒトの形質細胞様樹状細胞（ｐＤＣｓ）におけるＩＦＮ−αのレベルを上昇させることを特徴とする。
【００２６】
本発明の一実施態様において、本発明のＴＬＲ９アゴニストは、ａ）シトシン−ホスフェート−グアノシン（ＣｐＧ）モチーフ（ＣｐＧ ＯＤＮ）、ｂ）ピリミジン−ホスフェート−グアノシン（ＹｐＧ）モチーフ（ＹｐＧ ＯＤＮ）、又はｃ）シトシン−ホスフェート−プリン（ＣｐＲ）モチーフ（ＣｐＲ ＯＤＮ）を含むオリゴデオキシヌクレオチドである。
【００２７】
本発明の一実施態様において、本発明のＴＬＲ９アゴニストは、シトシン−ホスフェート−グアノシン（ＣｐＧ）モチーフ（ＣｐＧ ＯＤＮ）を含むオリゴデオキシヌクレオチドである。
【００２８】
ヒトのＣＳＦ−１ＲのドメインＤ１−Ｄ３に結合するＣＳＦ−１Ｒ抗体が記載されており、例えば、国際公開第２００９／０２６３０３号及び国際公開第２００９／１１２２４５号は、細胞外ドメイン（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）の最初の３つのサブドメイン（Ｄ１からＤ３）内でＣＳＦ−１Ｒに結合する所定の抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体に関する。国際公開第２０１１／１２３３８１（Ａ１）号は、ＣＳＦ−１Ｒに対する抗体に関し、Sherr, C.J., et al., Blood 73 (1989) 1786-1793（典型的には、これらの抗体は、ＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性でなくＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性ＣＳＦ−１Ｒ増殖及び／又はシグナル伝達を阻害することを特徴とする）。
【００２９】
ヒトＣＳＦ−１ＲのドメインＤ４−Ｄ５に結合するＣＳＦ−１Ｒ抗体が、例えば本発明において、国際公開第２０１１／０７００２４において、ＰＣＴ／ＥＰ２０１２／０７５２４１及びSherr, C.J., et al., Blood 73 (1989) 1786-1793において記載されている（典型的には、これらの抗体は、ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性ＣＳＦ−１Ｒ及びＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性増殖及び／又はシグナル伝達を阻害することを特徴とする）。
【００３０】
一実施態様は、ヒトＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメインの（二量体化）ドメインＤ４からＤ５（配列番号８５）に結合することを特徴とするヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体である。
【００３１】
本発明の一実施態様において、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体は、抗体がヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４（配列番号６５）、及びヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（配列番号６４）に１：５０又はそれ未満の比率で結合することを特徴とする。
【００３２】
本発明の一実施態様において、抗体がヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４（配列番号６５）に結合しないことを特徴とする。
【００３３】
本発明の一実施態様において、抗体は、
ａ）重鎖可変ドメインは配列番号７であり、軽鎖可変ドメインは配列番号８である；
ｂ）重鎖可変ドメインは配列番号１５であり、軽鎖可変ドメインは配列番号１６である；
ｃ）重鎖可変ドメインは配列番号７５であり、軽鎖可変ドメインは配列番号７６である；
ｄ）重鎖可変ドメインは配列番号８３であり、軽鎖可変ドメインは配列番号８４であることを特徴とする又はそのヒト化バージョンである。
【００３４】
本発明の一実施態様において、抗体は、
ａ）重鎖可変ドメインは配列番号７であり、軽鎖可変ドメインは配列番号８である；
ｂ）重鎖可変ドメインは配列番号１５であり、軽鎖可変ドメインは配列番号１６であることを特徴とする又はそのヒト化バージョンである。
【００３５】
本発明の一実施態様において、抗体は、
ａ）重鎖可変ドメインは配列番号２３であり、軽鎖可変ドメインは配列番号２４である、又は
ｂ）重鎖可変ドメインは配列番号３１であり、軽鎖可変ドメインは配列番号３２である、又は
ｃ）重鎖可変ドメインは配列番号３９であり、軽鎖可変ドメインは配列番号４０である、又は
ｄ）重鎖可変ドメインは配列番号４７であり、軽鎖可変ドメインは配列番号４８である、又は
ｅ）重鎖可変ドメインは配列番号５５であり、軽鎖可変ドメインは配列番号５６であることを特徴とする。
【００３６】
本発明の一実施態様において、抗体は、
ａ）重鎖可変ドメインは、配列番号１のＣＤＲ３領域、配列番号２のＣＤＲ２領域及び配列番号３のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号４のＣＤＲ３領域、配列番号５のＣＤＲ２領域及び配列番号６のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｂ）重鎖可変ドメインは、配列番号９のＣＤＲ３領域、配列番号１０のＣＤＲ２領域及び配列番号１１のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号１２のＣＤＲ３領域、配列番号１３のＣＤＲ２領域及び配列番号１４のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｃ）重鎖可変ドメインは、配列番号１７のＣＤＲ３領域、配列番号１８のＣＤＲ２領域及び配列番号１９のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２０のＣＤＲ３領域、配列番号２１のＣＤＲ２領域及び配列番号２２のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｄ）重鎖可変ドメインは、配列番号２５のＣＤＲ３領域、配列番号２６のＣＤＲ２領域及び配列番号２７のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２８のＣＤＲ３領域、配列番号２９のＣＤＲ２領域及び配列番号３０のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｅ）重鎖可変ドメインは、配列番号３３のＣＤＲ３領域、配列番号３４のＣＤＲ２領域及び配列番号３５のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号３６のＣＤＲ３領域、配列番号３７のＣＤＲ２領域及び配列番号３８のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｆ）重鎖可変ドメインは、配列番号４１のＣＤＲ３領域、配列番号４２のＣＤＲ２領域及び配列番号４３のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号４４のＣＤＲ３領域、配列番号４５のＣＤＲ２領域及び配列番号４６のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｇ）重鎖可変ドメインは、配列番号４９のＣＤＲ３領域、配列番号５０のＣＤＲ２領域及び配列番号５１のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号５２のＣＤＲ３領域、配列番号５３のＣＤＲ２領域及び配列番号５４のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｈ）重鎖可変ドメインは、配列番号６９のＣＤＲ３領域、配列番号７０のＣＤＲ２領域及び配列番号７１のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号７２のＣＤＲ３領域、配列番号７３のＣＤＲ２領域及び配列番号７４のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｉ）重鎖可変ドメインは、配列番号７７のＣＤＲ３領域、配列番号７８のＣＤＲ２領域及び配列番号７９のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号８０のＣＤＲ３領域、配列番号８１のＣＤＲ２領域及び配列番号８２のＣＤＲ１領域を含むことを特徴とする。
【００３７】
本発明の一実施態様は、ＣＳＦ−１Ｒ発現腫瘍を有する又はＣＳＦ−１Ｒ発現マクロファージ浸潤物を含む腫瘍を有する患者の治療において使用のためのヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体であり、ここで腫瘍はＣＳＦ−１Ｒリガンドの増加を特徴とし、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体はＴＬＲ９アゴニストと併用して投与される。
【００３８】
本発明の一実施態様において、抗体はヒトＩｇＧ１サブクラス又はヒトＩｇＧ４サブクラスのものである。
【００３９】
本発明は、ＴＬＲ９アゴニストを併用したＣＳＦ−１Ｒ媒介性疾患の治療のための医薬の製造のための、本発明によるＣＳＦ−１Ｒ抗体の使用を更に含む。
【００４０】
本発明は、ＴＬＲ９アゴニストを併用したがんの治療のための医薬の製造のための、本発明によるＣＳＦ−１Ｒ抗体の使用を更に含む。
【００４１】
本発明は、ＴＬＲ９アゴニストを併用した骨量減少の治療のための医薬の製造のための、本発明によるＣＳＦ−１Ｒ抗体の使用を更に含む。
【００４２】
本発明は、ＴＬＲ９アゴニストを併用した転移の治療のための医薬の製造のための、本発明によるＣＳＦ−１Ｒ抗体の使用を更に含む。
【００４３】
本発明は、ＴＬＲ９アゴニストを併用した炎症性疾患の治療のための医薬の製造のための、本発明によるＣＳＦ−１Ｒ抗体の使用を更に含む。
【００４４】
本発明は、ＴＬＲ９アゴニストを併用したＣＳＦ−１Ｒ媒介性疾患の治療のための、本発明によるＣＳＦ−１Ｒ抗体を更に含む。
【００４５】
本発明は、ＴＬＲ９アゴニストを併用したがんの治療のための、本発明によるＣＳＦ−１Ｒ抗体を更に含む。
【００４６】
本発明は、ＴＬＲ９アゴニストを併用した骨量減少の治療のための、本発明によるＣＳＦ−１Ｒ抗体を更に含む。
【００４７】
本発明は、ＴＬＲ９アゴニストを併用した転移の治療のための、本発明によるＣＳＦ−１Ｒ抗体を更に含む。
【００４８】
本発明は、ＴＬＲ９アゴニストを併用した炎症性疾患の治療のための、本発明によるＣＳＦ−１Ｒ抗体を更に含む。
【００４９】
本明細書に記載される抗体の併用療法は、ＣＳＦ−１Ｒ標的治療を必要とする患者のための利益を示す。
【００５０】
本発明による抗体は、リガンド非依存性及びリガンド依存性増殖に対する有効な抗増殖活性を示し、従って、ＴＬＲ９アゴニストを併用したがん及び転移の治療に特に有用である。
【００５１】
本発明は、がん疾患を有すると診断され（従って、そのような治療を必要としている）患者に、本発明のＣＳＦ−１Ｒ抗体の有効量を、ＴＬＲ９アゴニストと併用して投与することを含む、がんに罹患している患者を治療するための方法を更に提供する。
【００５２】
驚くべきことに、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体治療に対するＴＬＲ９アゴニストの付加は、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体単剤療法又はＴＬＲ９アゴニスト単剤療法と比較して、進行までの時間の中央値の統計学的に有意な相加作用以上の改善をもたらしたことが見いだされている（実施例１３及び図１を参照）。
【図面の簡単な説明】
【００５３】
【図１】インビボモデルにおけるＭＣ３８マウスＣＲＣにおける＜ＣＳＦ１Ｒ＞抗体のＴＬＲ９アゴニストとの組み合わせのインビボでの有効性−進行までの時間の中央値。抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体治療に対するＴＬＲ９アゴニストの付加は、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体単剤療法又はＴＬＲ９アゴニスト単剤療法と比較して、進行までの時間の中央値の統計学的に有意な相加作用以上の改善（４６日）をもたらした。
【図２】１０μｇ／ｍｌの異なる抗ＣＳＦ−１Ｒモノクローナル抗体による処置下で、３Ｄ培養中のＢｅＷｏ腫瘍細胞の増殖阻害。Ｘ軸：細胞のＡＴＰ含有量に対応する生存率正規化平均相対光単位（ＲＬＵ）（ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏアッセイ）。Ｙ軸：試験されたプローブ：最小培地（０．５％ＦＢＳ）、マウスＩｇＧ１（ｍＩｇＧ１、１０μｇ／ｍｌ）、マウスＩｇＧ２ａ（ｍＩｇＧ２ａ １０μｇ／ｍｌ）、ＣＳＦ−１のみ、Ｍａｂ ２Ｆ１１、Ｍａｂ ２Ｅ１０、Ｍａｂ２Ｈ７、Ｍａｂ１Ｇ１０及びＳＣ ２−４Ａ５。ＣＳＦ−１誘発性増殖の最も高い阻害は、本発明の抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体で観察された。
【図３ａ】異なる抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の、固定化ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４（細胞外サブドメインＤ１−Ｄ３及びＤ５を含む）（配列番号６５）に対する結合のビアコアセンソグラム（ｙ軸：応答単位（ＲＵ）での結合シグナル、ベースライン＝０ＲＵ、ｘ軸：時間（秒））：抗体Ｍａｂ３９２１及びｓｃ ２−４Ａ５は、このｄｅｌＤ４断片への結合を明らかに示すが、一方本発明による抗体、例えば、Ｍａｂ ２Ｆ１１及びＭａｂ ２Ｅ１０はＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４に結合しなかった。また対照の抗ＣＣＲ５抗体ｍ＜ＣＣＲ５＞Ｐｚ０３．１Ｃ５は、ＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４に結合しなかった。
【図３ｂ】異なる抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の、固定化ヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）（細胞外サブドメインＤ１−Ｄ５を含む）（配列番号６４）に対する結合のビアコアセンソグラム（ｙ軸：応答単位（ＲＵ）での結合シグナル、ベースライン＝０ＲＵ、ｘ軸：時間（秒））：全ての抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体は、ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤへの結合を示す。対照の抗ＣＣＲ５抗体ｍ＜ＣＣＲ５＞Ｐｚ０３．１Ｃ５は、ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤに結合しなかった。
【図３ｃ】異なる抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の、固定化ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４（細胞外サブドメインＤ１−Ｄ３及びＤ５を含む）（配列番号６５）に対する結合のビアコアセンソグラム（ｙ軸：応答単位（ＲＵ）での結合シグナル、ベースライン＝０ＲＵ、ｘ軸：時間（秒））：Ｍａｂ １Ｇ１０、Ｍａｂ ２Ｈ７及びヒト化ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７は、ＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４に結合しなかった。また対照の抗ＣＣＲ５抗体ｍ＜ＣＣＲ５＞Ｐｚ０３．１Ｃ５は、ＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４に結合しなかった。
【図３ｄ】異なる抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の、固定化ヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）（細胞外サブドメインＤ１−Ｄ５を含む）（配列番号６４）に対する結合のビアコアセンソグラム（ｙ軸：応答単位（ＲＵ）での結合シグナル、ベースライン＝０ＲＵ、ｘ軸：時間（秒））：全ての抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体Ｍａｂ １Ｇ１０、Ｍａｂ ２Ｈ７及びヒト化ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７は、ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤへの結合を示した。対照の抗ＣＣＲ５抗体ｍ＜ＣＣＲ５＞Ｐｚ０３．１Ｃ５は、ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤに結合しなかった。
【図３ｅ】異なる抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の、固定化ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４（細胞外サブドメインＤ１−Ｄ３及びＤ５を含む）（配列番号６５）に対する結合のビアコアセンソグラム（ｙ軸：応答単位（ＲＵ）での結合シグナル、ベースライン＝０ＲＵ、ｘ軸：時間（秒））：全ての抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体１．２．ＳＭ、ＣＸＩＩＧ６、ａｂ１０６７６及びＭＡＢ３２９１は、ＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４への結合を示す。また対照の抗ＣＣＲ５抗体ｍ＜ＣＣＲ５＞Ｐｚ０３．１Ｃ５は、ＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４に結合しなかった。
【図３ｆ】異なる抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の、固定化ヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）（細胞外サブドメインＤ１−Ｄ５を含む）（配列番号６４）に対する結合のビアコアセンソグラム（ｙ軸：応答単位（ＲＵ）での結合シグナル、ベースライン＝０ＲＵ、ｘ軸：時間（秒））：全ての抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体１．２．ＳＭ、ＣＸＩＩＧ６、ａｂ１０６７６及びＭＡＢ３２９１は、ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤへの結合を示す。対照の抗ＣＣＲ５抗体ｍ＜ＣＣＲ５＞Ｐｚ０３．１Ｃ５は、ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤに結合しなかった。
【図４ａ−ｄ】カニクイザルにおいて、本発明による抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の異なる投与量を適用後の、ＣＳＦ−１のレベル。
【図５ａ−ｂ】５ａ：ヒト単球は、ＧＭ−ＣＳＦ又はＣＳＦ−１（１００ｎｇ／ｍｌのリガンド）の共培養によりマクロファージへ分化した。分化の６日後、ＲＯ７１５５の添加。細胞生存率は、ＣＴＧ生存度アッセイ（ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏ（登録商標）Ｐｒｏｍｅｇａ）における抗体処置の７日目に測定した。細胞生存率（％）の計算：抗体無しの未処置対照からのＲＬＵシグナルで割った処置された細胞からのＲＬＵシグナル、（ｎ＝４）。５ｂ：７日間、ＧＭ−ＣＳＦ（Ｍ１）又はＭ−ＣＳＦ（Ｍ２）によりマクロファージに分化したヒト単球。間接蛍光分析により分析した表現型−抗ＣＤ１６３−ＰＥ、抗ＣＤ８０−ＰＥ、又は標識した抗ＨＬＡ−ＤＲ／ＤＱ／ＤＰ−ゼノン−Ａｌｅｘａ６４７による染色。各ヒストグラム内の数字は、平均蛍光強度比（ＭＲＦＩ）に対応する：選択された抗体で染色された細胞（空のヒストグラム）と対応するアイソタイプ対照（陰性対照；灰色で満たされたヒストグラム）の平均蛍光強度（ＭＦＩ）の間の計算された比（平均±ＳＤ；ｎ≧５）。
【００５４】
本発明の詳細な記述
多くの腫瘍は、マクロファージを含む、顕著な免疫細胞浸潤物によって特徴付けられる。最初は、免疫細胞は、腫瘍に対する防御機構の一部であると考えられたが、最近のデータは、マクロファージを含む幾つかの免疫細胞集団は、実際には、腫瘍の進行を促進し得るという考えを支持している。マクロファージは、その可塑性によって特徴付けられる。サイトカイン微小環境に応じて、マクロファージは、いわゆるＭ１又はＭ２−サブタイプを示すことができる。Ｍ２マクロファージは、腫瘍免疫の抑制に関与している。それらはまた、増殖を支援するために、腫瘍によって取り込まれる、血管新生及び組織リモデリングなどの組織修復機能に重要な役割を果たしている。腫瘍促進性Ｍ２マクロファージとは対照的に、Ｍ１マクロファージは、炎症性サイトカインの分泌を介する抗腫瘍活性及び抗原提示と食作用におけるそれらの関与を示している（Mantovani, A. et al., Curr. Opin. Immunol. 2 (2010) 231-237）。
【００５５】
コロニー刺激因子１（ＣＳＦ−１）及びＩＬ−１０などの様々なサイトカインを分泌することにより、腫瘍細胞は、マクロファージをを動員して、Ｍ２−サブタイプに成形することができるが、一方、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、ＩＦＮ−γなどのサイトカインは、Ｍ１サブタイプに向けてマクロファージをプログラミングする。免疫組織化学を使用して、ＣＤ６８及びＣＤ１６３を共発現するマクロファージの亜集団（Ｍ２マクロファージについて濃縮される可能性が高い）と、ＣＤ６８＋／ＭＨＣ ＩＩ＋、又はＣＤ６８＋／ＣＤ８０＋免疫表現型を示すサブセット（Ｍ１マクロファージが含まれる可能性が高い）とを区別することが可能である。細胞の形状、大きさ、そしてＣＤ６８及びＣＤ１６３陽性マクロファージの空間分布は、例えば、間質を交差する腫瘍における優先的位置、及び生存腫瘍領域によって、Ｍ２マクロファージの腫瘍促進の役割に関する公開仮説と一致している。対照的に、ＣＤ６８＋／ＭＨＣクラスＩＩ＋マクロファージは普遍的に見出される。食作用におけるそれらの仮想的な役割は、アポトーシス細胞と壊死腫瘍領域近傍の、ＣＤ１６３−を除くＣＤ６８＋／ＭＨＣクラスＩＩ＋の免疫表現型のクラスターにより反映される。
【００５６】
異なるマクロファージ集団のサブタイプとマーカー発現は、それらの機能状態と連結している。Ｍ２マクロファージは、
ａ）ＶＥＧＦやｂＦＧＦなどの血管新生因子の分泌を介して血管新生を増強し、
ｂ）マトリックスメタロプロテイナーゼ（ＭＭＰ）、増殖因子、及び血流に腫瘍細胞を導いて転移性ニッチを設定する遊走因子の分泌を介して転移形成を支援し（Wyckoff, J. et al., Cancer Res. 67 (2007) 2649-2656）、
ｃ）ＩＬ−４、ＩＬ−１３、ＩＬ−１ｒａ及びＩＬ−１０などの免疫抑制サイトカイン（それらは次にＴ調節細胞機能を調節する）を分泌することにより、免疫抑制環境を構築する役割を果たすことにより、腫瘍形成を支援することができ、逆に、ＣＤ４陽性Ｔ細胞は、前臨床モデルにおいて腫瘍促進性マクロファージの活性を増強することが示されている（Mantovani, A. et al., Eur. J. Cancer 40 (2004) 1660-1667; DeNardo, D. et al., Cancer Cell 16 (2009) 91-102）。
【００５７】
従って、がんの幾つかの型（例えば、乳がん、卵巣がん、ホジキンリンパ腫）において、Ｍ２サブタイプの腫瘍関連マクロファージ（ＴＡＭ）の蔓延は予後不良と関連している（Bingle, L. et al., J. Pathol. 3 (2002) 254-265; Orre, M., and Rogers, P.A., Gynecol. Oncol. 1 (1999) 47-50; Steidl, C. et al., N. Engl. J. Med. 10 (2010) 875-885）。最近のデータは、腫瘍におけるＣＤ１６３陽性マクロファージ浸潤物と腫瘍悪性度の相関を示している（Kawamura, K. et al., Pathol. Int. 59 (2009) 300-305）。患者の腫瘍から単離されたＴＡＭは耐性表現型を持っており、腫瘍細胞に対して細胞傷害性ではなかった（Mantovani, A. et al., Eur. J. Cancer 40 (2004) 1660-1667）。しかし、細胞傷害性Ｔ細胞の存在下でのＴＡＭの浸潤は、非小細胞肺がんにおける生存率の改善と相関し、従って、この腫瘍型においてより顕著なＭ１マクロファージ浸潤物を反映している（Kawai, O. et al., Cancer 6 (2008) 1387-1395）。
【００５８】
近年、細胞傷害性ＣＤ８陽性Ｔ細胞の数は少ないが、多数のマクロファージ及びＣＤ４陽性Ｔ細胞を含む、いわゆる免疫シグネチャは、乳がん患者における全生存（ＯＳ）の低下と相関し、独立した予後因子を表わすことが示された（DeNardo, D. et al., Cancer Discovery 1 (2011) 54-67）。
【００５９】
Ｍ２マクロファージの腫瘍形成促進機能の駆動におけるＣＳＦ−１の役割と一致して、ＣＳＦ−１遺伝子の転座に一部起因する、色素性絨毛結節性滑膜炎（ＰＶＮＳ）と腱鞘巨細胞腫（ＴＧＣＴ）などの希な肉腫或いは局所侵襲性結合組織腫瘍における高ＣＳＦ−１発現は、ＣＳＦ−１受容体、コロニー刺激因子１受容体（ＣＳＦ−１Ｒ）を発現し、腫瘍塊の大部分を形成する単球及びマクロファージの蓄積をもたらす（West, R.B. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 3 (2006) 690-695）。これらの腫瘍は、その後、遺伝子発現プロファイリングによるＣＳＦ−１依存性マクロファージシグネチャを定義するために用いられた。乳がん及び平滑筋肉腫の患者の腫瘍において、このＣＳＦ−１応答遺伝子シグネチャーは予後不良を予測する（Espinosa, I. et al., Am. J. Pathol. 6 (2009) 2347-2356; Beck, A. et al., Clin. Cancer Res. 3 (2009) 778-787）。
【００６０】
ＣＳＦ−１Ｒは、受容体チロシンキナーゼのクラスＩＩＩファミリーに属し、ｃ−ｆｍｓのがん原遺伝子によってコードされる。ＣＳＦ−１又はＩＬ−３４の結合は、受容体二量体化を誘導し、続いて自己リン酸化及び下流シグナル伝達カスケードを活性化する。ＣＳＦ−１Ｒの活性化は、単球及びマクロファージの生存、増殖及び分化を調節する（Xiong, Y. et al., J. Biol. Chem. 286 (2011) 952-960）。
【００６１】
マクロファージと同じ造血前駆体から派生する単球系統及び破骨細胞の細胞に加えて、ＣＳＦ−１Ｒ／ｃ−ｆｍｓはまた、マクロファージと比べて低い発現レベルではあるが、卵巣がん及び乳がんなどの幾つかのヒト上皮がんによって、及び及び平滑筋肉腫及びＴＧＣＴ／ＰＶＮＳにおいて発現することが見出されている。ＴＧＣＴ／ＰＶＮＳと同様に、ＣＳＦ−１ＲのリガンドであるＣＳＦ−１のレベルの上昇は、卵巣がん患者の血清ならびに腹水において、予後不良と相関している（Scholl, S. et al., Br. J. Cancer 62 (1994) 342-346; Price, F. et al., Am. J. Obstet. Gynecol. 168 (1993) 520-527）。更に、ＣＳＦ１Ｒの構成的に活性な変異体は、がん遺伝子の特性の一つである、ＮＩＨ３Ｔ３細胞を形質転換することができる（Chambers, S., Future Oncol 5 (2009) 1429-1440）。
【００６２】
前臨床モデルは、腫瘍学の標的として、ＣＳＦ−１Ｒの検証を提供する。ＣＳＦ−１並びにＣＳＦ−１Ｒ活性の遮断は、ＴＡＭの動員の減少をもたらす。化学療法は、ＴＡＭの動員強化につながる腫瘍細胞におけるＣＳＦ−１発現の上昇をもたらした。自発的トランスジェニック乳がんモデルにおいて、パクリタキセルを組み合わせたＣＳＦ−１Ｒの遮断は、腫瘍増殖及び転移負荷の減少につながるＣＤ８陽性細胞傷害性Ｔ細胞の活性化を生じた（DeNardo, D. et al., Cancer Discovery 1 (2011) 54-67）。
【００６３】
一実施態様において、本発明は、がんの治療において使用のために、抗体がＴＬＲ９アゴニストと組み合わせてヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（配列番号６４）に結合することを特徴とする、ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体の併用療法を含む。
【００６４】
一実施態様において、本発明は、がんの治療において使用のために、抗体がＴＬＲ９アゴニストと組み合わせてヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（配列番号６４）（ドメインＤ１からＤ５を含む）に結合し、ヒトＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメインのドメインＤ１からＤ３（配列番号６６）に結合しないことを特徴とする、ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体の併用療法を含む。
【００６５】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、
ａ）重鎖可変ドメインは配列番号７であり、軽鎖可変ドメインは配列番号８である；
ｂ）重鎖可変ドメインは配列番号１５であり、軽鎖可変ドメインは配列番号１６である；
ｃ）重鎖可変ドメインは配列番号７５であり、軽鎖可変ドメインは配列番号７６である；
ｄ）重鎖可変ドメインは配列番号８３であり、軽鎖可変ドメインは配列番号８４である；又はそのヒト化バージョンであることを特徴とする。
【００６６】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、
ａ）重鎖可変ドメインは配列番号２３であり、軽鎖可変ドメインは配列番号２４である、又は
ｂ）重鎖可変ドメインは配列番号３１であり、軽鎖可変ドメインは配列番号３２である、又は
ｃ）重鎖可変ドメインは配列番号３９であり、軽鎖可変ドメインは配列番号４０である、又は
ｄ）重鎖可変ドメインは配列番号４７であり、軽鎖可変ドメインは配列番号４８である、又は
ｅ）重鎖可変ドメインは配列番号５５であり、軽鎖可変ドメインは配列番号５６であることを特徴とする。
【００６７】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、
ａ）重鎖可変ドメインは配列番号２３であり、軽鎖可変ドメインは配列番号２４である、又は
ｂ）重鎖可変ドメインは配列番号３１であり、軽鎖可変ドメインは配列番号３２である、又は
ｃ）重鎖可変ドメインは配列番号３９であり、軽鎖可変ドメインは配列番号４０である、又は
ｄ）重鎖可変ドメインは配列番号４７、及び軽鎖可変ドメインは配列番号４８であることを特徴とする。
【００６８】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは配列番号２３、及び軽鎖可変ドメインは配列番号２４であることを特徴とする。
【００６９】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは配列番号３１、及び軽鎖可変ドメインは配列番号３２であることを特徴とする。
【００７０】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは配列番号３９、及び軽鎖可変ドメインは配列番号４０であることを特徴とする。
【００７１】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは配列番号４７、及び軽鎖可変ドメインは配列番号４８であることを特徴とする。
【００７２】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは配列番号１５、及び軽鎖可変ドメインは配列番号１６であることを特徴とする又はそれについてのヒト化バージョンである。
【００７３】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは配列番号７５、及び軽鎖可変ドメインは配列番号７６であることを特徴とする又はそのヒト化バージョンである。
【００７４】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは配列番号８３、及び軽鎖可変ドメインは配列番号８４であることを特徴とする又はそのヒト化バージョンである。
【００７５】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、
ａ）重鎖可変ドメインは、配列番号１のＣＤＲ３領域、配列番号２のＣＤＲ２領域、及び配列番号３のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号４のＣＤＲ３領域、配列番号５のＣＤＲ２領域、及び配列番号６のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｂ）重鎖可変ドメインは、配列番号９のＣＤＲ３領域、配列番号１０のＣＤＲ２領域及び配列番号１１のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号１２のＣＤＲ３領域、配列番号１３のＣＤＲ２領域及び配列番号１４のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｃ）重鎖可変ドメインは、配列番号１７のＣＤＲ３領域、配列番号１８のＣＤＲ２領域、及び配列番号１９のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２０のＣＤＲ３領域、配列番号２１のＣＤＲ２領域、及び配列番号２２のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｄ）重鎖可変ドメインは、配列番号２５のＣＤＲ３領域、配列番号２６のＣＤＲ２領域及び配列番号２７のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２８のＣＤＲ３領域、配列番号２９のＣＤＲ２領域及び配列番号３０のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｅ）重鎖可変ドメインは、配列番号３３のＣＤＲ３領域、配列番号３４のＣＤＲ２領域及び配列番号３５のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号３６のＣＤＲ３領域、配列番号３７のＣＤＲ２領域及び配列番号３８のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｆ）重鎖可変ドメインは、配列番号４１のＣＤＲ３領域、配列番号４２のＣＤＲ２領域、及び配列番号４３のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号４４のＣＤＲ３領域、配列番号４５のＣＤＲ２領域、及び配列番号４６のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｇ）重鎖可変ドメインは、配列番号４９のＣＤＲ３領域、配列番号５０のＣＤＲ２領域、及び配列番号５１のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号５２のＣＤＲ３領域、配列番号５３のＣＤＲ２領域、及び配列番号５４のＣＤＲ１領域を含むことを特徴とする。
【００７６】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、
ａ）重鎖可変ドメインは、配列番号１のＣＤＲ３領域、配列番号２のＣＤＲ２領域、及び配列番号３のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号４のＣＤＲ３領域、配列番号５のＣＤＲ２領域、及び配列番号６のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｂ）重鎖可変ドメインは、配列番号９のＣＤＲ３領域、配列番号１０のＣＤＲ２領域及び配列番号１１のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号１２のＣＤＲ３領域、配列番号１３のＣＤＲ２領域及び配列番号１４のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｃ）重鎖可変ドメインは、配列番号１７のＣＤＲ３領域、配列番号１８のＣＤＲ２領域及び配列番号１９のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２０のＣＤＲ３領域、配列番号２１のＣＤＲ２領域及び配列番号２２のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｄ）重鎖可変ドメインは、配列番号２５のＣＤＲ３領域、配列番号２６のＣＤＲ２領域及び配列番号２７のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２８のＣＤＲ３領域、配列番号２９のＣＤＲ２領域及び配列番号３０のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｅ）重鎖可変ドメインは、配列番号３３のＣＤＲ３領域、配列番号３４のＣＤＲ２領域及び配列番号３５のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号３６のＣＤＲ３領域、配列番号３７のＣＤＲ２領域及び配列番号３８のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｆ）重鎖可変ドメインは、配列番号４１のＣＤＲ３領域、配列番号４２のＣＤＲ２領域及び配列番号４３のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号４４のＣＤＲ３領域、配列番号４５のＣＤＲ２領域及び配列番号４６のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｇ）重鎖可変ドメインは、配列番号４９のＣＤＲ３領域、配列番号５０のＣＤＲ２領域及び配列番号５１のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号５２のＣＤＲ３領域、配列番号５３のＣＤＲ２領域及び配列番号５４のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｈ）重鎖可変ドメインは、配列番号６９のＣＤＲ３領域、配列番号７０のＣＤＲ２領域及び配列番号７１のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号７２のＣＤＲ３領域、配列番号７３のＣＤＲ２領域及び配列番号７４のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｉ）重鎖可変ドメインは、配列番号７７のＣＤＲ３領域、配列番号７８のＣＤＲ２領域及び配列番号７９のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号８０のＣＤＲ３領域、配列番号８１のＣＤＲ２領域及び配列番号８２のＣＤＲ１領域を含むことを特徴とする。
【００７７】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、
ａ）重鎖可変ドメインは、配列番号６９のＣＤＲ３領域、配列番号７０のＣＤＲ２領域、及び配列番号７１のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号７２のＣＤＲ３領域、配列番号７３のＣＤＲ２領域、及び配列番号７４のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｂ）重鎖可変ドメインは、配列番号７７のＣＤＲ３領域、配列番号７８のＣＤＲ２領域、及び配列番号７９のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号８０のＣＤＲ３領域、配列番号８１のＣＤＲ２領域、及び配列番号８２のＣＤＲ１領域を含むことを特徴とする。
【００７８】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、
ａ）重鎖可変ドメインは、配列番号１７のＣＤＲ３領域、配列番号１８のＣＤＲ２領域、及び配列番号１９のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２０のＣＤＲ３領域、配列番号２１のＣＤＲ２領域、及び配列番号２２のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｂ）重鎖可変ドメインは、配列番号２５のＣＤＲ３領域、配列番号２６のＣＤＲ２領域及び配列番号２７のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２８のＣＤＲ３領域、配列番号２９のＣＤＲ２領域及び配列番号３０のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｃ）重鎖可変ドメインは、配列番号３３のＣＤＲ３領域、配列番号３４のＣＤＲ２領域、及び配列番号３５のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号３６のＣＤＲ３領域、配列番号３７のＣＤＲ２領域、及び配列番号３８のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｄ）重鎖可変ドメインは、配列番号４１のＣＤＲ３領域、配列番号４２のＣＤＲ２領域、及び配列番号４３のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号４４のＣＤＲ３領域、配列番号４５のＣＤＲ２領域、及び配列番号４６のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｅ）重鎖可変ドメインは、配列番号４９のＣＤＲ３領域、配列番号５０のＣＤＲ２領域、及び配列番号５１のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号５２のＣＤＲ３領域、配列番号５３のＣＤＲ２領域、及び配列番号５４のＣＤＲ１領域を含むことを特徴とする。
【００７９】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、
ａ）重鎖可変ドメインは、配列番号１７のＣＤＲ３領域、配列番号１８のＣＤＲ２領域、及び配列番号１９のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２０のＣＤＲ３領域、配列番号２１のＣＤＲ２領域、及び配列番号２２のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｂ）重鎖可変ドメインは、配列番号２５のＣＤＲ３領域、配列番号２６のＣＤＲ２領域及び配列番号２７のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２８のＣＤＲ３領域、配列番号２９のＣＤＲ２領域及び配列番号３０のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｃ）重鎖可変ドメインは、配列番号３３のＣＤＲ３領域、配列番号３４のＣＤＲ２領域、及び配列番号３５のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号３６のＣＤＲ３領域、配列番号３７のＣＤＲ２領域、及び配列番号３８のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｄ）重鎖可変ドメインは、配列番号４１のＣＤＲ３領域、配列番号４２のＣＤＲ２領域、及び配列番号４３のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号４４のＣＤＲ３領域、配列番号４５のＣＤＲ２領域、及び配列番号４６のＣＤＲ１領域を含むことを特徴とする。
【００８０】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは、配列番号１７のＣＤＲ３領域、配列番号１８のＣＤＲ２領域、及び配列番号１９のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２０のＣＤＲ３領域、配列番号２１のＣＤＲ２領域、及び配列番号２２のＣＤＲ１領域を含むことを特徴とする。
【００８１】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは、配列番号２５のＣＤＲ３領域、配列番号２６のＣＤＲ２領域、及び配列番号２７のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２８のＣＤＲ３領域、配列番号２９のＣＤＲ２領域、及び配列番号３０のＣＤＲ１領域を含むことを特徴とする。
【００８２】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは、配列番号３３のＣＤＲ３領域、配列番号３４のＣＤＲ２領域、及び配列番号３５のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号３６のＣＤＲ３領域、配列番号３７のＣＤＲ２領域、及び配列番号３８のＣＤＲ１領域を含むことを特徴とする。
【００８３】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは、配列番号４１のＣＤＲ３領域、配列番号４２のＣＤＲ２領域、及び配列番号４３のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号４４のＣＤＲ３領域、配列番号４５のＣＤＲ２領域、及び配列番号４６のＣＤＲ１領域を含むことを特徴とする。
【００８４】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４（配列番号６５）及びヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（配列番号６４）に１：５０又はそれ未満の比率で結合することを特徴する、ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片Ｄ１−Ｄ３（配列番号６６）に結合しないことを更に特徴とする。
【００８５】
「抗体」なる用語は、様々な形態の抗体を包含し、限定するものではないが、完全抗体、抗体断片、ヒト化抗体、キメラ抗体、Ｔ細胞エピトープ欠失抗体、及び発明による特性が保持されるならば、更なる遺伝子組み換え抗体を含む。「抗体断片」とは、完全長抗体の一部を含み、好ましくはその可変ドメイン、又は少なくともその抗原結合部位を含む。抗体断片の例は、ダイアボディ、単鎖抗体分子、及び抗体断片から形成される多重特異性抗体を含む。ｓｃＦｖ抗体は、例えばHuston, J.S., Methods in Enzymol. 203 (1991) 46-88)に記載されている。更に、抗体断片は、機能的抗原結合部位に、ＣＳＦ−１Ｒに結合するＶＨドメインの特性（すなわちＶＬドメインと組み合わさることが可能）、又はＣＳＦ−１Ｒに結合するＶＬドメインの特性（すなわちＶＨドメインと組み合わさることが可能）を有する単鎖ポリペプチドを含み、これにより特性を与える。
【００８６】
本明細書で使用される用語「モノクローナル抗体」又は「モノクローナル抗体組成物」は、単一アミノ酸組成物の抗体分子の調製物を意味する。
【００８７】
「キメラ抗体」なる用語は、マウスからの可変領域、すなわち結合領域、及び異なる共有源又は種由来の定常領域の少なくとも一部を含んでなるモノクローナル抗体を指し、通常、組換えＤＮＡ技術によって調製される。マウス可変領域及びヒト定常領域を含んでなるキメラ抗体が特に好ましい。このようなラット／ヒトキメラ抗体は、ラット免疫グロブリン可変領域をコードするＤＮＡセグメント、及びヒト免疫グロブリン定常領域をコードするＤＮＡセグメントを含んでなる免疫グロブリン遺伝子の発現産物である。本発明に包含される「キメラ抗体」の他の形態は、クラス又はサブクラスが元の抗体の形態から修飾又は変更されたものである。このような「キメラ」抗体は、「クラススイッチ抗体」とも呼ばれる。キメラ抗体の生産方法は、一般的な組換えＤＮＡ及び現在当分野でよく知られている遺伝子トランスフェクション技術を含む。例えば、Morrison, S.L., et al., Proc. Natl. Acad Sci. USA 81 (1984) 6851-6855；米国特許第５２０２２３８号及び第５２０４２４４号を参照のこと。
【００８８】
用語「ヒト化抗体」は、フレームワーク又は「相補性決定領域」（ＣＤＲ）が、親免疫グロブリンのものと比較して、異なる特異性の免疫グロブリンのＣＤＲを含むように修飾された抗体を意味する。好ましい実施態様では、マウスＣＤＲが、「ヒト化抗体」を調製するためのヒト抗体のフレームワーク領域に移植される。例えば、Riechmann, L., et al., Nature 332 (1988) 323-327;及び Neuberger, M.S., et al., Nature 314 (1985) 268-270を参照。任意で、フレームワーク領域は、更なる突然変異によって改変することができる。また、ＣＤＲは、本発明による抗体を生成するために、例えば、Riechmann, L., et al., Nature 332 (1988) 323-327 及びQueen, C., et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86 (1989) 10029-10033、その他により記述されるように、分子モデリングに基づいた変異誘発により、一以上の変異により改変されうる。特に好ましいＣＤＲは、キメラ抗体について上記のように抗原を認識する配列を表すものに対応する。「本発明による抗体のヒト化バージョン」（例えば、マウス起源である）は、ＶＨ及びＶＬが標準的技術によりヒト化されたマウス抗体配列に基づいた（ＣＤＲ移植、及び任意でフレームワーク領域及びＣＤＲの所定のアミノ酸のその後の変異誘発を含む）抗体を意味する。好ましくは、そのヒト化バージョンは、ヒト定常領域とキメラ化される（例えば、配列の配列番号５７−６１を参照）。
【００８９】
本発明に包含される「ヒト化抗体」の別の形態は、特にＣ１ｑの結合及び／又はＦｃ受容体（ＦｃＲ）の結合に関して、本発明に係る特性を生成するために、定常領域が元の抗体のものから更に修飾又は変更されたものである。
【００９０】
以下の実施例においては、用語「Ｍａｂ」又は「ｍｕＭＡｂ」は、Ｍａｂ ２Ｆ１１又はＭａｂ ２Ｅ１０などのマウスモノクローナル抗体を指し、一方、用語「ｈＭＡｂ」は、Ｍａｂ ２Ｆ１１−ｃ１１、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｄ８、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｆ１２などのマウス抗体のヒト化モノクローナルバージョンを指す。
【００９１】
本明細書で使用される用語「ヒト抗体」は、ヒト生殖系列免疫グロブリン配列から由来する可変及び定常領域を有する抗体を含むことを意図している。ヒト抗体は当技術分野において周知である（van Dijk, M.A., and van de Winkel, J.G., Curr. Opin. Chem. Biol. 5 (2001) 368-374）。またヒト抗体は、免疫時に、内在性免疫グロブリン産生の欠損下において、ヒト抗体の選択、又は全レパートリーを生成可能なトランスジェニック動物（例えばマウス）で産生可能である。このような生殖系列変異マウスにおける、ヒト生殖系列免疫グロブリン遺伝子アレイの移動により、抗原曝露でヒト抗体が産生される（例えば、Jakobovits, A., et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90 (1993) 2551-2555; Jakobovits, A., et al., Nature 362 (1993) 255-258; Brueggemann, M., et al., Year Immunol. 7 (1993) 33-40を参照）。ヒト抗体は、ファージディスプレイライブラリーで産生することができる（Hoogenboom, H.R., and Winter, G., J. Mol. Biol. 227 (1992) 381-388; Marks, J.D., et al., J. Mol. Biol. 222 (1991) 581-597）。ヒトモノクローナル抗体の調製について、ＣｏｌｅらとＢｏｅｒｎｅｒらの技術も利用可能である（Cole, S.P.C., et al., Monoclonal Antibodies and Cancer Therapy, Alan R. Liss, p. 77 (1985)；及びBoerner, P., et al., J. Immunol. 147 (1991) 86-95）。本発明に係るキメラ及びヒト化抗体について既に述べたように、本発明で使用される「ヒト化抗体」はまた、とりわけＣ１ｑ結合及び／又はＦｃＲ結合に関して、例えば「クラススイッチ」即ちＦｃ部分の変化又は変異（例えばＩｇＧ１からＩｇＧ４及び／又はＩｇＧ１／ＩｇＧ４変異）によって、本発明に係る特性を生み出すために、定常領域で修飾された抗体を含む。
【００９２】
本発明で使用される場合、用語「組換えヒト抗体」は、宿主細胞に形質移入された組換え発現ベクターを使用して発現したヒト免疫グロブリン遺伝子又は抗体用にトランスジェニックである動物（例えばマウス）から、又はＮＳ０又はＣＨＯ細胞等の宿主細胞から単離された抗体等、組換え手段により調製、発現、生成又は単離された全てのヒト抗体を含むことを意図している。このような組換えヒト抗体は再配置された形態で可変及び定常領域を有する。本発明の組換えヒト抗体は、インビボで体細胞超変異にさらされている。よって、組換え抗体のＶＨ及びＶＬ領域のアミノ酸配列は、ヒト生殖系列ＶＨ及びＶＬ配列から誘導され、関連しているが、インビボでヒト抗体生殖系列レパートリー内に天然に存在しないであろう配列である。
【００９３】
本発明による抗体は更に、本発明による抗体の上記特性に影響しない又は変更しない「保存配列修飾」、ヌクレオチド及びアミノ酸配列修飾を有する抗体を含む。改変は当分野で知られている標準的な技術、例えば部位特異的変異誘発及びＰＣＲ変異誘発によって導入されることができる。保存アミノ酸置換は、アミノ酸残基が、類似な側鎖を有するアミノ酸残基で置換されるものを含む。類似な側鎖を有するアミノ酸残基のファミリーは当分野で定義されている。これらのファミリーは、塩基性側鎖（例えば、リシン、アルギニン、ヒスチジン）、酸性側鎖（例えば、アスパラギン酸、グルタミン酸）、非荷電極性側鎖（例えば、グリシン、アスパラギン、グルタミン、セリン、トレオニン、チロシン、システイン、トリプトファン）、非極性側鎖（例えばアラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、フェニルアラニン、メチオニン）、ベータ分岐側鎖（例えば、トレオニン、バリン、イソロイシン）及び芳香族側鎖（例えば、チロシン、フェニルアラニン、トリプトファン、ヒスチジン）を有するアミノ酸を含む。このように、ヒト抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体における予測非必須アミノ酸残基は、好ましくは同じ側鎖ファミリーからの別のアミノ酸残基で置換される。
【００９４】
アミノ酸置換は、Riechmann, L., et al., Nature 332 (1988) 323-327 及びQueen, C., et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86 (1989) 10029-10033に記載される分子モデリングに基づく変異誘発によって実施されうる。
【００９５】
ヒトＣＳＦ−１Ｒ（ＣＳＦ−１受容体；同義語：Ｍ−ＣＳＦ受容体；マクロファージコロニー刺激因子１受容体、Ｆｍｓがん原遺伝子、ｃ−ｆｍｓ、配列番号２２）は、１９８６年から公知である（Coussens, L., et al., Nature 320 (1986) 277-280）。ＣＳＦ−１Ｒは増殖因子であり、ｃ−ｆｍｓがん原遺伝子によってコードされている（例えばRoth, P. and Stanley, E.R., Curr. Top. Microbiol. Immunol. 181 (1992) 141-67に概説される）。
【００９６】
ＣＳＦ−１Ｒは、ＣＳＦ−１ＲリガンドのＣＳＦ−１（マクロファージコロニー刺激因子、ＣＳＦ−１とも呼ばれる）（配列番号８６）及びＩＬ−３４（配列番号８７）の受容体であり、このサイトカインの生物学的効果を媒介する（Sherr, C.J., et al., Cell 41 (1985) 665-676; Lin, H., et al., Science 320 (2008) 807-811）。コロニー刺激因子（ＣＳＦ−１Ｒ）（ｃ−ｆｍｓとも呼ばれる）のクローニングは、最初にRoussel, M.F., et al., Nature 325 (1987) 549-552に記載された。この刊行物では、ＣＳＦ−１ＲはＣｂｌに結合し、それによって受容体のダウンレギュレーションを調節する抑制性チロシン９６９のリン酸化の欠損を含むタンパク質のＣ末端尾部の変化に依存した形質転換能を有する（Lee, P.S., et al., Embo J. 18 (1999) 3616-3628）ことが示された。
【００９７】
ＣＳＦ−１Ｒは単鎖の、膜貫通受容体チロシンキナーゼ（ＲＴＫ）であり、受容体の細胞外部分における反復Ｉｇドメインによって特徴付けられるＲＴＫを有する免疫グロブリン（Ｉｇ）モチーフのファミリーのメンバーである（Wang, Z., et al Molecular and Cellular Biology 13 (1993) 5348-5359）。ヒトＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメイン（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）（配列番号６４）は、５つ全ての細胞外Ｉｇ様サブドメインＤ１−Ｄ５を含む。ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４（配列番号６５）は、細胞外Ｉｇ様サブドメインＤ１−Ｄ３及びＤ５を含むが、Ｄ４サブドメインが欠損している。ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片のＤ１−Ｄ３（配列番号６６）は、それぞれサブドメインＤ１−Ｄ３を含む。その配列は、シグナルペプチドＭＧＳＧＰＧＶＬＬＬＬＬＶＡＴＡＷＨＧＱＧを含まずに一覧される（配列番号６７）。ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片のＤ４−Ｄ３（配列番号８５）は、それぞれサブドメインＤ４−Ｄ３を含む。
【００９８】
現在、ＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメインに結合する２つのＣＳＦ−１Ｒリガンドが知られている。第一のものは、ＣＳＦ−１（コロニー刺激因子１、Ｍ−ＣＳＦ、マクロファージとも呼ばれる；ヒトＣＳＦ−１、配列番号８６）であり、ジスルフィド結合したホモ二量体として細胞外に見いだされる（Stanley, E.R. et al., Journal of Cellular Biochemistry 21 (1983) 151-159; Stanley, E.R. et al., Stem Cells 12 Suppl. 1 (1995) 15-24）。第二のものは、ＩＬ−３４である（ヒトＩＬ−３４；配列番号８７）（Hume, D. A. , et al, Blood 119 (2012) 1810-1820）。このように、一実施態様において、用語「ＣＳＦ−１Ｒリガンド」は、ヒトＣＳＦ−１（配列番号８６）及び／又はヒトＩＬ−３４（配列番号８７）を指す。
【００９９】
実験には、しばしば、ヒトＣＳＦ−１の活性な１４９アミノ酸（ａａ）断片（配列番号８６のａａ３３−１８１）が用いられる。ヒトＣＳＦ−１のこの活性な１４９ａａ断片（配列番号８６のａａ３３−１８１）は、ＣＳＦ−１の３つ全ての主要な形態に含まれる（Hume, D. A. , et al, Blood 119 (2012) 1810-1820）。
【０１００】
ＣＳＦ−１Ｒシグナル伝達の主な生物学的作用は、造血前駆細胞のマクロファージ系統（破骨細胞を含む）への分化、増殖、遊走、及び生存である。ＣＳＦ−１Ｒの活性化は、ＣＳＦ−１Ｒリガンド、ＣＳＦ−１（Ｍ−ＣＳＦ）、及びＩＬ−３４によって媒介される。ＣＳＦ−１ＲへのＣＳＦ−１（Ｍ−ＣＳＦ）の結合は、ホモ二量体の形成及びチロシンリン酸化によるキナーゼの活性化を誘導する（Li, W. et al, EMBO Journal.10 (1991) 277-288; Stanley, E.R., et al., Mol. Reprod. Dev. 46 (1997) 4-10）。
【０１０１】
細胞内タンパク質チロシンキナーゼドメインは、血小板由来増殖因子受容体（ＰＤＧＦＲ）、幹細胞増殖因子受容体（ｃ−Ｋｉｔ）及びｆｉｎｓ様サイトカイン受容体（ＦＬＴ３）を含む他の関連ＲＴＫクラスＩＩＩファミリーにも存在する特有な挿入ドメインを挟む。増殖因子受容体のこのファミリー間の構造的相同性にもかかわらず、それらは異なる組織特異的機能を有する。
【０１０２】
ＣＳＦ−１Ｒは、単球系の細胞上及び女性生殖器官及び胎盤に主に発現される。更に、ＣＳＦ−１Ｒの発現は、皮膚のランゲルハンス細胞、平滑筋細胞のサブセット（Inaba, T., et al., J. Biol. Chem. 267 (1992) 5693-5699）、Ｂ細胞（Baker, A.H., et al., Oncogene 8 (1993) 371-378）及びマイクログリア（Sawada, M., et al., Brain Res. 509 (1990) 119-124）において報告されている。変異体ヒトＣＳＦ−１Ｒ（配列番号２３）を含む細胞は、独立して、リガンド刺激を増殖することが知られている。
【０１０３】
本明細書で使用されるように、「ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する」若しくは「ヒトＣＳＦ−１Ｒに特異的に結合する」又は「ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する」若しくは「ヒトＣＳＦ−１Ｒに特異的に結合する」とは、ヒトＣＳＦ−１Ｒ抗原に対して、３５℃でＫＤ値が１．０×１０−８ ｍｏｌ／ｌ以下、一実施態様においては３５℃でＫＤ値が１．０×１０−９ｍｏｌ／ｌ以下の結合親和性で特異的に結合する抗体を言う。結合親和性は、３５℃で標準的な結合アッセイ、例えば表面プラズモン共鳴法（ＢＩＡｃｏｒｅ（登録商標）、ＧＥ−Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ Ｕｐｐｓａｌａ，Ｓｗｅｄｅｎ）により決定される。結合親和性のＫＤ−値を決定するための方法は、実施例４に記載されている。本明細書で使用される「ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体」は、ヒトＣＳＦ−１Ｒ抗原に対して、３５℃で、ＫＤが１．０×１０−８ｍｏｌ／ｌ以下（好ましくは１．０×１０−８ｍｏｌ／ｌ−１．０×１０−１２ｍｏｌ／ｌ））の結合親和性で、好ましくは３５℃でＫＤが１．０×１０−９ｍｏｌ／ｌ以下（好ましくは、１．０×１０−９ｍｏｌ／ｌ−１．０×１０−１２ｍｏｌ／ｌ）の結合親和性で、特異的に結合する抗体を言う。
【０１０４】
「ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４（配列番号６５）及びヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（配列番号６４）への結合」は、実施例４に記載されるように表面プラズモン共鳴アッセイ（Ｂｉａｃｏｒｅアッセイ）により測定される。ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４（配列番号６５）及びヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（配列番号６４）は、それぞれ、表面に（別の面にそれぞれ）捕獲され、そして試験抗体が加えられ（各々は別の測定で）、それぞれの結合シグナル（応答単位（ＲＵ））が決定された。参照シグナル（ブランク面）を差し引いた。非結合性試験抗体のシグナルが僅かに０未満である場合、値は０に設定された。次いで、それぞれの結合シグナルの比率（ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４への結合シグナル（ＲＵ）／ヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）への結合シグナル（ＲＵ））が決定される。本発明による抗体は、結合シグナルの比率（ＲＵ（ｄｅｌＤ４）／ＲＵ（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）が１：５０以下、好ましくは、１：１００以下を有する（含まれる下限は０である（例えば、ＲＵが０であれば、比率は０：５０又は０：１００）である）。
【０１０５】
これは、本発明によるその抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体は、ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４に結合せず（抗ＣＣＲ５抗体ｍ＜ＣＣＲ５＞Ｐｚ０３．１Ｃ５（ＤＳＭＺに２００４年８月１８日にＤＳＭ ＡＣＣ ２６８３として寄託）など）、実施例４に示すように、表面プラズモン共鳴（ビアコア）アッセイで２０ＲＵ（応答単位）未満、好ましくは１０ＲＵ未満である、抗ＣＣＲ５抗体ｍ＜ＣＣＲ５＞Ｐｚ０３．１Ｃ５の範囲内で、ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４に対する結合の結合シグナルを有している。
【０１０６】
用語「ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片Ｄ１−Ｄ３への結合」は、表面プラズモン共鳴アッセイ（ビアコアアッセイ）による結合親和性の決定を言う。試験抗体は、表面に捕獲され、ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片Ｄ１−Ｄ３（配列番号６６）が添加され、各結合親和性が決定された。用語「ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片Ｄ１−Ｄ３に結合しない」又は「ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片Ｄ１−Ｄ３に結合しない」は、そのアッセイで、検出されたシグナルが、バックグランドシグナルの僅か１．２倍の範囲であり、従って、有意な結合が検出できず、結合親和性を決定できなかった示している（実施例１０）。
【０１０７】
本明細書で使用される用語「リガンド依存性」は、細胞外ＥＣＤを介したリガンド非依存性シグナル伝達を意味する（細胞内キナーゼドメインにおける活性化点変異により媒介されるリガンド非依存性シグナル伝達を含まない）。
【０１０８】
一実施態様において、これに関連したＣＳＦ−１Ｒリガンドは、ヒトＣＳＦ−１（配列番号８６）及びヒトＩＬ−３４（配列番号８７）から選択されるＣＳＦ−１Ｒリガンドを意味し；一実施態様において、ＣＳＦ−１ＲリガンドはヒトＣＳＦ−１（配列番号８６）であり；一実施態様において、ＣＳＦ−１ＲリガンドはヒトＩＬ−３４（配列番号８７）である。
【０１０９】
本発明は、ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体、ＣＳＦ−１Ｒ発現腫瘍を有する又はＣＳＦ−１Ｒ発現マクロファージ浸潤物を含む腫瘍を有する患者の治療において使用のための、ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体を含み、ここで腫瘍はＣＳＦ−１Ｒリガンドの増加により特徴づけられ（一実施態様において、ＣＳＦ−１ＲリガンドはヒトＣＳＦ−１（配列番号８６）及びヒトＩＬ−３４（配列番号８７）から選択され；一実施態様において、ＣＳＦ−１ＲリガンドはヒトＣＳＦ−１（配列番号８６）であり；一実施態様において、ＣＳＦ−１ＲリガンドはヒトＩＬ−３４（配列番号８７）であり（血清、尿又は腫瘍生検において検出可能）、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体は、ＴＬＲ９アゴニストと併用して投与される。（一実施態様において、ＣＳＦ−１Ｒ抗体は、ヒトＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメインの（二量体化）ドメインＤ４からＤ５（配列番号８５）に結合することを特徴とする。
【０１１０】
用語「ＣＳＦ−１Ｒリガンドの増加」は、（正常組織と比較して）治療前のヒトＣＳＦ−１Ｒリガンドの過剰発現を言及し（一実施態様において、ＣＳＦ−１ＲリガンドはヒトＣＳＦ−１（配列番号８６）及びヒトＩＬ−３４（配列番号８７）から選択され）；一実施態様において、ＣＳＦ−１ＲリガンドはヒトＣＳＦ−１（配列番号８６）であり；一実施態様において、ＣＳＦ−１ＲリガンドはヒトＩＬ−３４（配列番号８７）であり、又は（治療前の発現レベルと比較して）抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体による治療により誘導されるヒトＣＳＦ−１Ｒリガンドの過剰発現を言及する。ある実施態様において、用語「増加（ｉｎｃｒｅａｓｅ）」又は「上回る（ａｂｏｖｅ）」は、参照試料からのＣＳＦ−１Ｒリガンドのレベルに比較した場合に、本明細書に記載される方法により検出されるＣＳＦ−１Ｒリガンドのレベルにおいて、参照レベルを上回るレベルを言及するか、又は５％、１０％、２０％、２５％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、８５％、９０％、９５％、１００％又はそれ以上の全体的な増加を言及する。ある実施態様において、その用語は、ＣＳＦ−１Ｒリガンドのレベルの増加を言及し、ここで増加は、例えば参照試料から予め決定されたＣＳＦ−１Ｒリガンドのレベルと比較した場合に、少なくとも約１．５倍、約１．７５倍、約２倍、約３倍、約４倍、約５倍、約６倍、約７倍、約８倍、約９倍、約１０倍、約１５倍、約２０倍、約２５倍、約３０倍、約４０倍、約５０倍、約６０倍、約７０倍、約７５倍、約８０倍、約９０倍、又は約１００倍高い。好ましい一実施態様において、増加したレベルなる用語は、参照レベルでの値又は参照レベルを上回る値に関する。
【０１１１】
本発明の一実施態様において、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体は、該抗体がヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（配列番号６４）（ドメインＤ１からＤ５を含む）に結合し、ヒトＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメインのドメインＤ１からＤ３（配列番号６６）に結合することを特徴とする。
【０１１２】
本発明の一実施態様において、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体は、該抗体がヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（配列番号６４）（ドメインＤ１からＤ５を含む）に結合し、ヒトＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメインのドメインＤ１からＤ３（配列番号６６）に結合しないことを特徴とする。
【０１１３】
用語「Ｔｏｌｌ様受容体９」（ＴＬＲ９、ＣＤ２８９；配列番号８８）は、病原体認識及び自然免疫の活性化に重要な役割を果たしている、Ｔｏｌｌ様受容体（ＴＬＲ）ファミリーのタンパク質を指す。ＴＬＲはショウジョウバエからヒトまで高度に保存されており、構造的及び機能的類似性を共有している。それらは、感染病原体に発現される病原体関連分子パターン（ＰＡＭＰ）を認識し、効果的な免疫の発達のために必要なサイトカインの産生を媒介する。様々なＴＬＲが異なる発現パターンを示す。この遺伝子は、脾臓、リンパ節、骨髄及び末梢血白血球などの免疫細胞が豊富な組織で優先的に発現される。マウス及びヒトにおける研究は、この受容体が細菌ＤＮＡ中の非メチル化ＣｐＧジヌクレオチドに対する細胞応答を媒介し、自然免疫応答を開始することを示している。
【０１１４】
ＴＬＲ９は、Ｂ細胞、単球、マクロファージ、及び形質細胞様樹状細胞ＤＣのエンドソーム区画に主に見出される（Galluzzi et al., OncoImmunology, 1:5, (2012) 699-716）。ＴＬＲ９の主なリガンドは、非メチル化ＣｐＧオリゴデオキシヌクレオチドの上昇頻度のために、その哺乳動物のカウンターパートとは異なり、細菌／ウイルスＤＮＡである。確かに、哺乳動物のＤＮＡは何らの免疫賦活活性を有していないが、細菌／ウイルスＤＮＡの投与は、ＴＬＲ９−／−にマウスにおいては完全に抑制されるインビボでの強力なＴｈ１免疫応答を誘導する。ＣｐＧオリゴデオキシヌクレオチド（又はＣｐＧ ＯＤＮ）は、シチジン三リン酸デオキシヌクレオチド（「Ｃ」）と続くグアニジン三リン酸デオキシヌクレオチド（「Ｇ」）を含有する短い一本鎖の合成ＤＮＡ分子である。幾つかのＯＤＮは代わりに修飾されたホスホロチオエート（ＰＳ）骨格を有するものの、「ｐ」は連続したヌクレオチドの間のホスホジエステル結合を指す。これらのＣｐＧモチーフがメチル化されていない場合、それらは免疫賦活剤として作用する（Weiner, GJ; et al, PNAS 94 (1997) 10833-7）。従って、「Ｔｏｌｌ様受容体９アゴニスト」（ＴＬＲ９アゴニスト）は、Ｔｏｌｌ様受容体９への結合及びＴＬＲ９免疫応答を刺激することを特徴とする。例えば、一実施態様において、Ｔｏｌｌ様受容体９アゴニスト（ＴＬＲ９アゴニスト）は、ヒト形質細胞様樹状細胞（ｐＤＣ）上のＴｏｌｌ様受容体９に結合することによって、及びこれらの形質細胞様樹状細胞（ｐＤＣ）において、ＩＦＮ−α、ＩＬ−６及び／又はＩＬ−１２を誘導する（ＩＦＮ−α、ＩＬ−６及び／又はＩＬ−１２のレベルを上昇させる）ことによって特徴付けられる。
【０１１５】
ＣｐＧモチーフは、脊椎動物のゲノムにその希少性に対し微生物ゲノムにおけるその存在量のため、病原体関連分子パターン（ＰＡＭＰ）と考えられる（Bauer, S; Current Topics in Microbiology and Immunology 270 (2002) 145-54）。ＣｐＧ ＰＡＭＰは、ヒト及び他の高等霊長類においてはＢ細胞及び形質細胞様樹状細胞（ｐＤＣ）においてのみ恒常的に発現される、パターン認識受容体（ＰＲＲ）Ｔｏｌｌ様受容体９（ＴＬＲ９）によって認識される（Rothenfusser, S; et al, Human immunology 63 (2002) 1111-9）。
【０１１６】
合成ＣｐＧ ＯＤＮは、それらが、典型的なホスホジエステル骨格及び３´末端、５´末端、又はその両方でのポリＧテールの代わりに、部分的又は完全にホスホロチオエート（ＰＳ）骨格を有するという点で微生物のＤＮＡとは異なる。ＰＳ修飾は、体内のＤＮＡ分解酵素などのヌクレアーゼによって分解されることからＯＤＮを保護し、ポリＧテールは細胞取り込みを高める（Dalpke, AH et al, Immunology 106 (2002) 102-12）。ポリＧテールは、高分子量の凝集体を生じる分子間四分子を形成する。これらの凝集体は、配列それ自体なくポリＧ配列が付与する活性の増大の原因となる。
【０１１７】
ＯＤＮ１８２６などの非メチル化ＣｐＧモチーフ（ＣｐＧ ＯＤＮ）を含むこれらの合成オリゴデオキシヌクレオチドは、アジュバントとして広く研究されている（Steinhagen F. et al., 2011; Vaccine 29(17):3341-55）。これらのＣｐＧモチーフは、哺乳動物のＤＮＡと比較して、細菌のＤＮＡにおいて２０倍高い頻度で存在している（Hemmi H. et al., 2000. Nature 408: 740-5）。ＣｐＧ ＯＤＮは、ヒトのＢ細胞及び形質細胞様樹状細胞（ｐＤＣ）上で発現されるＴＬＲ９を刺激し、それによってＴｈ１支配型免疫応答を誘導する（Coffman et al., 2010. Immunity 33(4):492-503）。げっ歯類及び非ヒト霊長類、及びヒト臨床試験で実施された前臨床研究は、ＣｐＧ ＯＤＮはワクチン特異的抗体応答を有意に向上させることができるということを実証した（Steinhagen F. et al., 2011; Vaccine 29(17):3341-55）。
【０１１８】
ＣｐＧ二量体の数及び位置、並びにＣｐＧ二量体に隣接する正確な塩基配列にバリエーションを有する、多数の配列がＴＬＲ９を刺激することが示されている。このことは、配列、二次構造、及びヒト末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）に対する作用に基づいて全てＴＬＲ９アゴニストであるＣｐＧ ＯＤＮのクラス又はカテゴリの創出へと導いた。ＣｐＧ ＯＤＮの三つの主要なクラスは、クラスＡ、Ｂ及びＣであり、それらの免疫賦活活性は異なる（Krug A. et al., 2001, Eur J Immunol, 31(7): 2154-63）。更に、ＣｐＧ ＯＤＮは、種特異的にＴＬＲ９を活性化させる（Bauer, S. et al., 2001, PNAS, 98(16):9237-42）。第一のクラスＡ ＯＤＮの一つであるＯＤＮ ２２１６は、Ｋｒｕｇらによって２００１年に記載された（上を参照）。ＯＤＮのこのクラスは、最も重要なものはＩＦＮαであるＩ型インターフェロンの大量の産生を刺激し、ｐＤＣの成熟を誘導するという点で、前述のクラスＢ ＯＤＮ（２００６すなわち、ＯＤＮ）とは明らかに異なっていた。
【０１１９】
クラスＡ ＯＤＮはまた、間接的なサイトカインシグナル伝達を介したＮＫ細胞の強力な活性化剤である。クラスＡ ＯＤＮは、典型的には、ヌクレアーゼによる分解に耐性で、ＯＤＮの寿命を延ばす、一方又は両方の末端に７から１０のＰＳ修飾された塩基を含む。上記の規則は、厳密にクラスを定義するが、これらの「規則」内における配列の可変は可能である。また、配列の変化は、応答の大きさに影響することに留意すべきである。例えば、内部のパリンドローム配列は、長さが４から８塩基対とすることができ、塩基の順序が異なるが、しかしながら、幾つかの他の配列と比較した場合、パターン、５´−Ｐｕ Ｐｕ ＣＧ Ｐｕ Ｐｙ ＣＧ Ｐｙ Ｐｙ−３´が、最も活性であることが見出された。ＤＮＡ鎖のどちらかの端に見られるポリＧテールは、長さ、更には数を変えることができるが、その存在は分子の活性に重要である。
【０１２０】
クラスＢ ＯＤＮ（即ち、ＯＤＮ ２００７）は、ヒトＢ細胞及び単球の成熟の強力な刺激剤である。それらはまた、クラスＡ ＯＤＮより少ない程度であるがｐＤＣ及び非常に少量のＩＦＮαの成熟を刺激する。このクラスの最強のＯＤＮは３つの６−ｍｅｒ配列を有する。クラスＢのＯＤＮは、強力な体液性免疫応答を誘導し、ワクチンアジュバントとしてそれらを理想的にせしめるそれらの能力のため、治療薬として広く研究されている。
【０１２１】
ＯＤＮ１８２６は、マウスＴＬＲ９に特異的なＢ型ＣｐＧ ＯＤＮである。Ｂ型ＣｐＧ ＯＤＮは、一以上のＣｐＧジヌクレオチドを有する完全なホスホロチオエート骨格を含み、Ｂ細胞を強力に活性化することができる（Krug A. et al., 2001, Eur J Immunol, 31(7): 2154-63）。ＯＤＮ１８２６、マウス反応性サロゲートＴＬＲ９アゴニストは、多くの動物モデルにおいて、アジュバントとして試験されている（Bauer, S. et al., 2001, PNAS, 98(16):9237-42）。マウスにおける研究は、ＯＤＮ１８２６の投与は、抗原提示細胞の活性化及びＴｈ１免疫応答の指標であるＩ型ＩＦＮの抗ウイルス活性８−９を誘導することができることを実証した（Longhi Mp. et al., 2009, J Exp Med 206: 1589-602）。
【０１２２】
更に、担がんげっ歯類へのＢ型ＣｐＧオリゴヌクレオチドの投与は（単独で、又は化学療法剤又はペプチドワクチンと併用して）、伝えられるところによれば強力な抗がん効果を発揮する。腫瘍学的徴候に対するＣｐＧ−７９０９の安全性と有効性を試験する初期の第Ｉ／Ｉ層臨床試験は、２０００年４月に開始された。ほぼ同じ期間に、ＣｐＧ−７９０９は、重篤な副作用を示さず有効性を促す、がんに無関係な徴候に対するアジュバントとして広く検討され始めた（主に抗ウイルスワクチン）。
【０１２３】
最後の十年の間に、ＣｐＧ−７９０９の安全性と抗がん作用の可能性が（独立した薬剤として、又は化学療法及び／又はワクチン接種アプローチと併用して）、白血病、リンパ腫、基底細胞癌、黒色腫、食道扁平上皮癌、ＮＳＣＬＣ、腎細胞癌、及び前立腺がん患者を対象にした研究を含む第Ｉ／ＩＩ層臨床試験の大多数において検討されている。幾つかのＴＬＲ９アゴニストが知られており、臨床試験中のＡｇａｔｏｌｉｍｏｄ（３つのＣｐＧモチーフを含む合成２４−ｍｅｒオリゴヌクレオチドのｔｒｉｃｏｓａｓｏｄｉｕｍ塩；Ｐｆｉｚｅｒ）、ＧＮＫＧ１６８（ＣｐＧ ＯＤＮ；ＳＢＩ Ｂｉｏｔｅｃｈ）、ＩＭＯ−２０５５（非メチル化ＣｐＧジヌクレオチドを含む合成オリゴヌクレオチド；Ｉｄｅｒａ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ）、ＭＧＮ−１７０３（Ｍｏｌｏｇｅｎ）で現在開発されている。典型的には、これらのＴＬＲ９アゴニストは、様々ながんの治療に使用される。
【０１２４】
非メチル化ＣｐＧを含有する細菌及び合成ＤＮＡは、ＴＬＲ９のアゴニストとして作用し、Ｔｈ１型免疫応答プロファイルを誘導する。ＴＬＲ９アゴニストの免疫賦活効果は、多因子性であり、塩基配列、骨格の性質及び特定の構造モチーフの存在に依存する。誘導されたサイトカインプロファイルに基づいて、三つの異なる型のＴＬＲ９アゴニスト、クラスＡ、Ｂ及びＣが記載されている。ＴＬＲ９アゴニストの各クラスは、異なる免疫プロファイルを生成する構造の形成を可能にする（又は構造をとらない）異なる塩基配列からなる。
【０１２５】
ＴＬＲ９のアゴニストとして作用するオリゴヌクレオチドの構造活性相関が系統的に研究された（Kandimalla, E.R. and Agrawal, S. (2005) in Toll and Toll Receptors: An Immunologic Perspective (Rich, T., ed.), pp. 181-212, Kluwer Academic/Plenum Publishers, New York）。オリゴヌクレオチド中のＣｐＧモチーフの存在がＴＬＲ９刺激のために必要とされる。ホスホジエステル及びホスホロチオエート骨格を有するオリゴヌクレオチドは、ＴＬＲ９媒介性免疫応答を刺激する。ホスホロチオエート骨格オリゴヌクレオチドは、ホスホジエステルオリゴヌクレオチドよりも遍在性ヌクレアーゼによる分解を受けにくいため、ホスホロチオエート骨格オリゴヌクレオチドは、一般的に使用される。ヌクレオチド間ホスホジエステル結合上の硫黄原子の導入は、Ｒｐ及びＳｐジアステレオ異性体の形成を生じる；ホスホロチオエート結合のＲｐジアステレオマーは、Ｓｐジアステレオマーの場合よりも強くＴＬＲ９媒介性免疫応答を刺激する。シトシン（Ｃ）及びグアニン（Ｇ）の間及び隣接するリン酸の負電荷もまた、ＴＬＲ９媒介性活性のために必要とされる。これらの位置でのメチルホスホン酸結合の取り込みによる電荷の中和は、免疫賦活活性の損失をもたらす。また、ＴＬＲ９の活性化は、また、ＣｐＧジヌクレオチドに隣接する配列、ヌクレオチド骨格の性質及び二次構造に依存する。
【０１２６】
隣接配列は、ＴＬＲ９刺激に重要な役割を果たしている。
【０１２７】
ＣｐＧモチーフ中のＣ又はＧヌクレオチドの糖環の２位に導入された化学修飾は、ＴＬＲ９アゴニストの免疫賦活活性の損失をもたらす。加えて、隣接配列内のメチルホスホン酸結合、２´−アルキル又は３´−デオキシ又はアルキルリボヌクレオシド、非ヌクレオチドリンカー又は脱塩基ヌクレオチドなどの化学修飾を含むＴＬＲ９アゴニストの研究は、ＣｐＧジヌクレオチドの５´の４番目から６番目のヌクレオチド位置に組み込まれた置換は大幅に免疫賦活活性を高めることを示している。一般的には、ＣｐＧジヌクレオチドに対して末端の３´隣接配列に組み込まれた修飾は、修飾の性質に依存する効果を有する。
【０１２８】
ＴＬＲ９は、刺激のためにアゴニストの遊離５´末端を必要とする。
【０１２９】
それらの５´末端を介して連結された２つのＣｐＧオリゴヌクレオチドは、２つのＣｐＧモチーフの有効性にもかかわらず、免疫細胞を活性化しない。同一のオリゴヌクレオチドが、それらの３´末端を介して連結されている場合、それらは単一の５´末端を有する親ＣｐＧオリゴヌクレオチドよりも高くかつ異なるサイトカインプロファイルを生成する。ＴＬＲ９の活性化のために到達可能な又は遊離の５´末端の必要性及び受容体が５´末端から配列を読み取ることを実証する最初の研究がある。転写因子ＮＦ−κＢは、２つの５´末端を含むＴＬＲ９アゴニストによって迅速に活性化されるが、これらの化合物は、Ｊ７７４細胞におけるＭＡＰＫ（マイトジェン活性化タンパク質キナーゼ）経路上で、従来のＴＬＲ９アゴニストと同一の活性を有する。
【０１３０】
これらの研究は、２つの５´末端を含むアゴニストは、免疫応答の急速な活性化をもたらす、受容体の二量体化を促進することを示唆している。更に、ＴＬＲ９の活性化は、下流のサイトカイン誘導プロファイルの変化をもたらす、遊離５´末端及び合成免疫賦活モチーフの適切な提示を介して調節することができる。これらの結果と一致して、最近の研究は、ＴＬＲ９が二量体形態で存在し、一本鎖オリゴヌクレオチドに結合することが示されている。しかしながら、ＣｐＧモチーフを含むオリゴヌクレオチドのみが、免疫シグナル伝達経路の活性化をもたらす受容体の立体構造変化を引き起こす。
【０１３１】
それらの３´末端を介したオリゴヌクレオチドの付着は、ＴＬＲ９の最適な活性化のための２つの５´末端を提供するだけでなく、３´エキソヌクレアーゼに対する安定性を向上させる。ホスホジエステル骨格並びにそれらの３´末端を介して連結された５及び６という短いｎｔを有するオリゴヌクレオチドは、強力なＴＬＲ９アゴニストとして作用し、免疫応答を生成する。更に、ＴＬＲ９アゴニストを含む新規構造の投与は、強力な粘膜免疫応答を誘導し、抗原と共にアジュバントとして作用し、マウスモデルにおいては消化管でのより高い安定性のためピーナッツアレルギーを予防しかつ拮抗する。
【０１３２】
ＴＬＲ９刺激のために必要であるシトシン及びグアニンの官能基
【０１３３】
上述したように、構造及びコンフォメーションを変化させるＣｐＧジヌクレオチド内に導入された特定の化学修飾は、アゴニストの免疫賦活活性の損失をもたらす。かかる修飾の一つは、ＴＬＲ９アゴニストのＣｐＧモチーフ内のシトシンの５位のメチル基の置換である。脊椎動物は、より多くの非メチル化ＣｐＧモチーフを含んでいる細菌ＤＮＡから自己のＤＮＡを区別するために、この機能を用いる。
【０１３４】
シトシンの代わりに、５−ＯＨ−ｄＣ、ｄＵ、ｄＰ、１−（２´−デオキシ−β−Ｄ−リボフラノシル）−２−オキソ−７−デアザ−８−メチル−プリン、Ｎ３−Ｍｅ−ｄＣ及びＮ４−Ｅｔ−ｄＣなどの様々なピリミジン類似体（Ｙ）の効果（Kandimalla, E.R., et al (2001) Bioorg. Med. Chem. 9, 807-813; Kandimalla, E.R., et al, S. (2003) PNAS. 100, 14303-14308; or Putta, M.R., et al, S. (2006) Nucleic Acids Res. 34, 3231-3238）。ＴＬＲ９の認識におけるグアニンの異なる官能基の役割を理解するために、７−デアザｄＧ、Ｎ１−Ｍｅ−ｄＧ、２−アミノ−Ｄ−プリン、ネブラリン、２−アミノ−ｄＡ、７−デアザ−Ｄ−キサンチン、Ｋ−ベース及びｄＩなどの幾つかのプリン核酸塩基（Ｒ）が、ＣｐＧ中のグアニンの代わりに調べられた（Kandimalla, E.R., et al (2001) Bioorg. Med. Chem. 9, 807-813; Kandimalla, E.R., et al. (2003) PNAS. 100, 14303-14308; Putta, M.R., et al, (2006) Nucleic Acids Res. 34, 3231-3238; Kandimalla, E.R., et al (2003) Nucleic Acids Res. 31, 2393-2400；又はKandimalla, E.R., et al. (2005) PNAS. 102, 6925-6930）。これらの研究は、免疫調節のための別の合成ヌクレオチドモチーフ（ＹｐＧ、ＣｐＲ）の開発につながり、特定の複素環塩基変異体のＴＬＲ９による許容性を証明した。
【０１３５】
ＴＬＲ９の新規合成アゴニスト（S. Agrawal and E.R. Kandimalla, Biochemical Society Transactions (2007) 35, (1461-1467)）：上記の新規構造及び合成の免疫賦活モチーフの組み合わせは、ＴＬＲ９の新規合成アゴニストのコンビナトリアルライブラリーを生成するためのツールを我々に提供した。２つの５´末端を有しており、マウス、ヒト及びサルの系において異なるヌクレオチド組成物中に合成ＣｐＲジヌクレオチドを含む複数のＴＬＲ９アゴニストの系統的な研究は、ヌクレオチド配列及び二次構造が免疫応答の調節に役割を果たしていることを示唆している。これらの研究に基づいて、我々はＴＬＲ９の合成アゴニストの２つの異なるグループを同定した。
【０１３６】
一実施態様において、ＴＬＲ９アゴニストは、形質細胞様樹状細胞（ｐＤＣ）においてＩＦＮ−α、ＩＬ−６及び／又はＩＬ−１２を誘導する（ＩＦＮ−α、ＩＬ−６及び／又はＩＬ−１２のレベルを上昇させる）ことを特徴とする。一実施態様において、ＴＬＲ９アゴニストは、（下記に記載されるように又は例えば国際公開第２０１０／０８８３９５号に記載されるようにサンドイッチＥＬＩＳＡにより測定される場合）ヒトの形質細胞様樹状細胞（ｐＤＣｓ）におけるＩＦＮ−αのレベルを上昇させることを特徴とする。
【０１３７】
ヒトのｐＤＣにおける本発明のＴＬＲ９アゴニストによるＩＦＮ−αの誘導（ＩＦＮ−α、ＩＬ−６及び／又はＩＬ−１２のレベルを上昇させる）を測定するためのアッセイ：
ヒトＰＢＭＣの単離：新鮮に採取された健常ボランティアの血液からの末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）（ＣＢＲ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｂｏｓｔｏｎ，ＭＡ）はフィコール密度勾配遠心法によって単離される（Ｈｉｓｔｏｐａｑｕｅ−１０７７，Ｓｉｇｍａ）。
【０１３８】
ヒトｐＤＣの単離：ヒト形質細胞様樹状細胞（ｐＤＣ）は、製造業者の指示に従ってＢＤＣ Ａ４細胞単離キット（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ）を用いた正の選択によって、新鮮に得られた健康なヒトボランティアの血液のＰＢＭＣから単離される。
【０１３９】
ヒトｐＤＣは、１×１０６細胞／ｍｌを用いて９６ウェルの皿に播種される。表Ｉからの個々の免疫調節化合物を、ＤＰＢＳ（ｐＨ７．４；Ｍｅｄｉａｔｅｃｈ）中に溶解し、０、０．１、０．３、１．０、３．０、又は１０．０．ｍｉｃｒｏ．ｇ／ｍｌの用量で細胞培養物に添加される。次いで、細胞を２４時間３７℃でインキュベートし、上清をルミネックスマルチプレックス又はＥＬＩＳＡアッセイのために収集した。
【０１４０】
ＩＦＮ−α、ＩＬ−６、及び／又はＩＬ−１２のレベルがサンドイッチＥＬＩＳＡによって測定される。サイトカイン抗体及び標準を含む必要な試薬は、ＰｈａｒＭｉｎｇｅｎから購入することができる。
【０１４１】
ＩＦＮ−αは、長年にわたり抗ウイルスサイトカインとして知られている。従って、ＣＧ含有ＤＮＡ分子の効果を促進するＴｈ１細胞の発達を刺激する。ＩＦＮ−αは、マウス及びヒトの悪性腫瘍において抗腫瘍活性を示し、一部は細胞傷害性Ｔ細胞を活性化することによって移植された腫瘍細胞の腫瘍原性を減少させ、それにより腫瘍細胞の細胞溶解の可能性を高めることが可能である。またＮＫ細胞及びマクロファージ活性は、両方も抗腫瘍細胞毒性のために重要であり、ＩＦＮ−αにより増加する（Brassard et al., J. Leukoc. Biol. 2002 71: 565-81）。従って、本発明のＤＮＡ構築物による刺激の際にＩＦＮ−αの量を増加させることが、がんの治療のために有益であると期待される。
【０１４２】
本発明の一実施態様において、本発明のＴＬＲ９アゴニストは、ａ）シトシン−ホスフェート−グアノシン（ＣｐＧ）モチーフ（ＣｐＧ ＯＤＮ）、ｂ）ピリミジン−ホスフェート−グアノシン（ＹｐＧ）モチーフ（ＹｐＧ ＯＤＮ）、又はｃ）シトシン−ホスフェート−プリン（ＣｐＲ）モチーフ（ＣｐＲ ＯＤＮ）を含むオリゴデオキシヌクレオチドである。
【０１４３】
本発明の一実施態様において、本発明のＴＬＲ９アゴニストは、ａ）シトシン−ホスフェート−グアノシン（ＣｐＧ）モチーフ（ＣｐＧ ＯＤＮ）、ｂ）ピリミジン−ホスフェート−グアノシン（ＹｐＧ）モチーフ（ＹｐＧ ＯＤＮ）、又はｃ）プリン−ホスフェート−グアノシン（ＲｐＧ）モチーフ（ＲｐＧ ＯＤＮ）を含むオリゴデオキシヌクレオチドであり、ここでＴＬＲ９アゴニストはＴＬＲ９を刺激し（一実施態様において、ＴＬＲ９アゴニストは形質細胞様樹状細胞（ｐＤＣ）の成熟を誘導し；一実施態様において、ＴＬＲ９アゴニストはヒトＢ細胞の成熟によって特徴付けられる；一実施態様において）。
【０１４４】
本発明の一実施態様において、本発明のＴＬＲ９アゴニストは、シトシン−ホスフェート−グアノシン（ＣｐＧ）モチーフ（ＣｐＧ ＯＤＮ）を含むオリゴデオキシヌクレオチドである。
【０１４５】
本発明の一実施態様において、本発明のＴＬＲ９アゴニストは、クラスＡ ＣｐＧ ＯＤＮである。
【０１４６】
一実施態様において、本発明のＴＬＲ９アゴニストは、
ａ）５´末端若しくは３´末端又は両端にポリＧ配列
ｂ）内部パリンドローム配列；
ｃ）内部パリンドローム内に含まれるＧＣジヌクレオチド、及び
ｄ）部分的にＰＳ−修飾された骨格
を含むオリゴデオキシヌクレオチドである。
【０１４７】
クラスＡ ＣｐＧ ＯＤＮは、典型的には、ヌクレアーゼによる分解に耐性で、ＯＤＮの寿命を延ばす、一方又は両方の末端に７から１０のＰＳ修飾された塩基を含む。上記の規則は、厳密にクラスを定義するが、これらの「規則」内における配列の可変は可能である。内部のパリンドローム配列は、長さが４から８塩基対とすることができ、塩基の順序が異なるが、しかしながら、幾つかの他の配列と比較した場合、パターン、５´−Ｐｕ Ｐｕ ＣＧ Ｐｕ Ｐｙ ＣＧ Ｐｙ Ｐｙ−３´が、最も活性であることが見出された。ＤＮＡ鎖の両端に見られるポリＧテールの長さと数は変えることができる。
【０１４８】
一実施態様において、クラスＡ ＣｐＧ ＯＤＮ（Xueqing Liang,et al, Blood. 2010 June 17; 115(24): 5041-5052）が、ＣｐＧ ＯＤＮ ２２１６（５´−ｇｇＧＧＧＡＣＧＡＴＣＧＴＣｇｇｇｇｇＧ−３´）（配列番号８９）ＣｐＧ ＯＤＮ ＰＢ４（５´−ｔｃｇＧＡＣＧＡＴＣＧＴＣｇｇｇｇｇＧ−３´）（配列番号９０）；又はＣｐＧ ＯＤＮ １００２（５´−ｇｇＧＧＴＣＧＴＴＣＧＴＣＧＴＴｇｇｇｇｇＧ−３´）（配列番号９１）からなる群から選択される。
【０１４９】
本発明の一実施態様において、本発明のＴＬＲ９アゴニストは、クラスＢ ＣｐＧ ＯＤＮである。
【０１５０】
一実施態様において、本発明のＴＬＲ９アゴニストは、
ａ）一以上の６ｍｅｒ非メチル化シトシン−ホスフェート−グアノシン（ＣｐＧ）モチーフ５´−Ｐｕ Ｐｙ Ｃ Ｇ Ｐｙ Ｐｕ−３´（一以上の６ｍｅｒ ５´−ＲＹＣＧＹＲ−３´  ６−ｍｅｒｓ（Ｒ＝Ａ又はＧ；Ｙ＝Ｔ又はＣ））；
ｂ）完全にホスホロチオエート化された（ＰＳ−修飾された）骨格；及び
ｃ）長さが１８から２８のヌクレオチドを含むオリゴデオキシヌクレオチドである。
【０１５１】
一実施態様において、クラスＢ ＣＰＧ ＯＤＮは、ＣｐＧ−２８、ＣｐＧ−６８５（ＧＮＫＧ１６８；ＣｐＧ ＯＤＮ；ＳＢＩ Ｂｉｏｔｅｃｈ）、ＣｐＧ−６８４及びＣｐＧ−７９０９（ＣＰＧ−ＯＤＮ ２００６、ＰＦ−３５１２６７６、Ａｇａｔｏｌｉｍｏｄ）から選択される。
【０１５２】
ＣｐＧ−７９０９（ＣｐＧ ２００６、ＰＦ−３５１２６７６、Ａｇａｔｏｌｉｍｏｄ）は、複数のシトシン−ホスフェート−グアノシン（ＣｐＧ）モチーフ又はトリコサナトリウム（ｔｒｉｃｏｓａｓｏｄｉｕｍ）塩のようなその誘導体一つを含む、合成の２４−ｍｅｒのホスホチオエートオリゴデオキシヌクレオチド（ｄ（Ｐ−Ｔｈｉｏ）（Ｔ−Ｃ−Ｇ−Ｔ−Ｃ−Ｇ−Ｔ−Ｔ−Ｔ−Ｔ−Ｇ−Ｔ−Ｃ−Ｇ−Ｔ−Ｔ−Ｔ−Ｔ−Ｇ−Ｔ−Ｃ−Ｇ−Ｔ−Ｔ）ＤＮＡ）（５´−ｔｃｇｔｃｇｔｔｔｔｇｔｃｇｔｔｔｔｇｔｃｇｔｔ−３´）（配列番号９２）である。調製は国際公開第９８１８８１０号又は米国特許第７２２３７４１号に記載される。
【０１５３】
ＣｐＧ−６８５（ＧＮＫＧ１６８；ＣｐＧ ＯＤＮ；ＳＢＩ Ｂｉｏｔｅｃｈ）は、免疫賦活活性を有する、２１−ｍｅｒ、非メチル化ＣｐＧモチーフベースのオリゴデオキシヌクレオチド（ＯＤＮ）（６８５、５´−ｔｃｇｔｃｇａｃｇｔｃｇｔｔｃｇｔｔｃｔｃ−３´）（配列番号９３）である。ＣｐＧ６８５（ＧＮＫＧ１６８）は、Ｂ細胞における細胞応答を媒介するＴｏｌｌ様受容体９を直接標的にするように設計された２１−ｍｅｒの完全ホスホロチオエート化オリゴヌクレオチドであり、ＳＣＩＤマウスで抗腫瘍効果を示し、ＳＢＩ Ｂｉｏｔｅｃｈ Ｃｏ．によってヒト慢性リンパ性白血病（Ｂ−ＣＬＬ）の治療用に臨床開発中である。ここで、高感度で特異的なアッセイが、その前臨床薬理試験をサポートするために、血漿及び細胞溶解物において開発された。ＣｐＧオリゴデオキシヌクレオチドＧＮＫＧ１６８は、Ｔｏｌｌ様受容体９（ＴＬＲ９）に特異的に結合し活性化させ、エンドサイトーシスにより細胞内に取り込まれる；一度内部移行されると、免疫グロブリン（Ｉｇ）、インターフェロン（ＩＦＮ）、インターロイキン（ＩＬｓ）及び腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）などの複数のサイトカインの放出をもたらす多数のシグナル伝達経路を活性化することができる。
【０１５４】
ＣｐＧ−６８４は、合成の、２３ｍｅｒ、非メチル化ＣｐＧモチーフベースのオリゴデオキシヌクレオチド（ＯＤＮ）６８４、５´−ｔｃｇａｃｇｔｔｃｇｔｃｇｔｔｃｇｔｃｇｔｔｃ−３´（配列番号９４）である；
【０１５５】
ＣｐＧ−２８は、免疫賦活活性を有する非メチル化ＣｐＧモチーフ（ＣｐＧ ＯＤＮは）複数の反復を含む、合成非メチル化ＣｐＧモチーフベースのオリゴデオキシヌクレオチド（ＯＤＮ）であり（５´−ＴＡＡＡＣＧＴＴＡＴＡＡＣＧＴＴＡＴＧＡＣＧＴＣＡＴ−３´）（配列番号９５）、完全なホスホロチオエート骨格を有する（Carpentier AF, et al Front Biosci. 2003;8:e115-e127; Meng Y, et al, Int J Cancer. 2005;116:992-997；又はCarpentier A, et al. Neuro-Oncology 2006;8:60-66）。エンドサイトーシスを介して細胞に入ると、ＣｐＧ−２８は、複数のサイトカインの放出をもたらす多数のシグナル伝達経路を活性化する。ＣｐＧ−２８は、自然免疫及び抗体依存性細胞傷害（ＡＤＣＣ）の刺激をもたらす、Ｂリンパ球、樹状細胞及びＮＫ細胞を直接活性化する免疫調節特性を有する。更に、この薬剤は、サイトカイン（ＩＬ−１２及びＩＦＮγ）の放出を介してＴ細胞応答を間接的に調節し、Ｔｈ１（ヘルパー）表現型への優先的シフトを誘導し増強されたＣＤ８＋細胞性細胞傷害を生じる。
【０１５６】
本発明の一実施態様において、本発明のＴＬＲ９アゴニストは、ピリミジン−ホスフェート−グアノシン（ＹｐＧ）モチーフ（ＹｐＧ ＯＤＮ）を含むオリゴデオキシヌクレオチドである。
【０１５７】
本発明の一実施態様において、本発明のＴＬＲ９アゴニストは、シトシン−ホスフェート−プリン（ＣｐＲ）モチーフ（ＣｐＲ ＯＤＮ）を含むオリゴデオキシヌクレオチドである。
【０１５８】
本発明の一実施態様において、本発明のＴＬＲ９アゴニストは、ＩＭＯ−２０５５（Ｉｄｅｒａ）（３´−３´結合された構造及び合成ＣｐＲ（Ｒ＝２´−デオキシ−７−デアザグアノシン）モチーフからなるＯＤＮ）である。
【０１５９】
本発明の一実施態様において、本発明のＴＬＲ９アゴニストは、ａ）シトシン−ホスフェート−グアノシン（ＣｐＧ）モチーフ（ＣｐＧ ＯＤＮ）、ｂ）ピリミジン−ホスフェート−グアノシン（ＹｐＧ）モチーフ（ＹｐＧ ＯＤＮ）、又はｃ）シトシン−ホスフェート−プリン（ＣｐＲ）モチーフ（ＣｐＲ ＯＤＮ）を含むオリゴデオキシヌクレオチドである。
【０１６０】
本発明の一実施態様において、本発明のＴＬＲ９アゴニストは、ｄＳＬＩＭ（登録商標）技術（本技術は国際公開第２００１／０７０５５号に記載される）に基づくＣｐＧモチーフ含有環状ＯＤＮに基づくオリゴデオキシヌクレオチドである（例えば、国際公開第２０１２／０８５２９１号に記載されるＭｏｌｏｇｅｎからのＭＧＮ−１７０３）。
【０１６１】
本発明の一実施態様において、ＴＬＲ９アゴニストは、ＣｐＧ ＯＤＮ ２２１６ ＣｐＧ ＯＤＮ １００２ ＣｐＧ−２８、ＣｐＧ−６８５、ＣｐＧ−６８４、ＣｐＧ−７９０９、ＩＭＯ−２０５５又はＭＧＮ−１７０３．からなる群から選択される。本発明の一実施態様において、ＴＬＲ９アゴニストは、ＣｐＧ−６８５、ＣｐＧ−７９０９、ＩＭＯ−２０５５又はＭＧＮ−１７０３からなる群から選択される。本発明の一実施態様において、ＴＬＲ９アゴニストは、ＣｐＧ−７９０９、ＩＭＯ−２０５５又はＭＧＮ−１７０３からなる群から選択される。
【０１６２】
本発明の一実施態様において、ＣＳＦ−１Ｒ抗体は、国際公開第２００９／０２６３０３号、国際公開第２００９／１１２２４５号、国際公開第２０１１／１２３３８１号（Ａ１）に記載される抗体から選択され；ＴＬＲ９アゴニストは、ＣｐＧ−６８５、ＣｐＧ−７９０９、ＩＭＯ−２０５５又はＭＧＮ−１７０３からなる群から選択される。
【０１６３】
本発明の一実施態様において、ＣＳＦ−１Ｒ抗体は、
ａ）重鎖可変ドメインは、配列番号１のＣＤＲ３領域、配列番号２のＣＤＲ２領域及び配列番号３のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号４のＣＤＲ３領域、配列番号５のＣＤＲ２領域及び配列番号６のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｂ）重鎖可変ドメインは、配列番号９のＣＤＲ３領域、配列番号１０のＣＤＲ２領域、及び配列番号１１のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号１２のＣＤＲ３領域、配列番号１３のＣＤＲ２領域、及び配列番号１４のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｃ）重鎖可変ドメインは、配列番号１７のＣＤＲ３領域、配列番号１８のＣＤＲ２領域、及び配列番号１９のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２０のＣＤＲ３領域、配列番号２１のＣＤＲ２領域、及び配列番号２２のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｄ）重鎖可変ドメインは、配列番号２５のＣＤＲ３領域、配列番号２６のＣＤＲ２領域、及び配列番号２７のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２８のＣＤＲ３領域、配列番号２９のＣＤＲ２領域、及び配列番号３０のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｅ）重鎖可変ドメインは、配列番号３３のＣＤＲ３領域、配列番号３４のＣＤＲ２領域、及び配列番号３５のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号３６のＣＤＲ３領域、配列番号３７のＣＤＲ２領域、及び配列番号３８のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｆ）重鎖可変ドメインは、配列番号４１のＣＤＲ３領域、配列番号４２のＣＤＲ２領域、及び配列番号４３のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号４４のＣＤＲ３領域、配列番号４５のＣＤＲ２領域、及び配列番号４６のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｇ）重鎖可変ドメインは、配列番号４９のＣＤＲ３領域、配列番号５０のＣＤＲ２領域及び配列番号５１のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号５２のＣＤＲ３領域、配列番号５３のＣＤＲ２領域及び配列番号５４のＣＤＲ１領域を含むことを特徴とし、ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体から選択され、
ＴＬＲ９アゴニストは、ＣｐＧ−６８５、ＣｐＧ−７９０９、ＩＭＯ−２０５５又はＭＧＮ−１７０３からなる群から選択される。
【０１６４】
本発明の一実施態様において、ＣＳＦ−１Ｒ抗体は、
重鎖可変ドメインは配列番号３９、及び軽鎖可変ドメインは配列番号４０であることを特徴とする、ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体から選択され、
ＴＬＲ９アゴニストは、ＣｐＧ−６８５、ＣｐＧ−７９０９、ＩＭＯ−２０５５又はＭＧＮ−１７０３からなる群から選択される。
【０１６５】
一般的に、多くの適切なＴＬＲ９アゴニストが、当該分野で公知である。ＴＬＲ９アゴニストは、本発明の本併用療法に使用することが意図される。ＴＬＲ９は、非メチル化ＣｐＧ ＤＮＡを特異的に認識し、炎症性サイトカインの産生をもたらすシグナル伝達カスケードを開始する。ＣｐＧモチーフ内のシトシンのメチル化は、ＴＬＲ９の親和性を強力に減少させる。二本鎖（ｄｓ）ＣｐＧ ＤＮＡは、その一本鎖（ｓｓ）対応物と比較して、ＴＬＲ９の弱い刺激因子である。
【０１６６】
ＴＬＲ９の天然に生じるアゴニストは、Smith & Wickstrom (1998) J. Natl. Cancer Inst. 90:1146-1154)に記載され、がんにおけるそれらの役割は、Damiano et al. (2007) Proc. Nat. Acad. Sci. USA 104: 12468-12473に記載される。
【０１６７】
ＣＰＧ７９０９は、第Ｉ／ＩＩ相臨床試験において十分に許容されることが見出された免疫賦活ＴＬＲ９アゴニストのオリゴデオキシヌクレオチドである（Cooper et al, (2004) J. Clin. Immunol., 24(6): 693-701）。ＣｐＧに富む、合成オリゴデオキシヌクレオチドのＴＬＲ９アゴニストＰＦ−３５１２６７６は、第Ｉ／ＩＩ相臨床試験において抗リンパ腫活性を有することが見出された免疫賦活ＴＬＲ９アゴニストのオリゴデオキシヌクレオチドである（Brody et al (2010) J. Clin. Oncol., 28(28): 4324-32）。
【０１６８】
特定のＴＬＲ９アゴニストは、コアＣｐＲジヌクレオチドを含む３−３´結合ＤＮＡ構造から構成されており、ここでＲは修飾されたグアノシンである（ＵＳ７２７６４８９）。加えて、特定の化学修飾は、免疫応答の異なる調節を生成する特定のオリゴヌクレオチド類似体の製造を可能にした。とりわけ、構造活性相関研究は、免疫応答の特異的調節を生成する合成モチーフ及び新規ＤＮＡに基づく化合物の同定を可能にし、これらの調節は非メチル化ＣｐＧジヌクレオチドによって生成されたものとは異なる（Kandimalla et al. (2005) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 102: 6925-6930; Kandimalla ef al. (2003) Proc. Nat. Acad. Sci. USA 100: 14303-14308; Cong et al. (2003) Biochem Biophys Res. Commun. 310: 1133-1139; Kandimalla ef al. (2003) Biochem. Biophys. Res. Commun. 306: 948-953; Kandimalla et al. (2003) Nucleic Acids Res. 31 : 2393-2400; Yu, D. et al. (2003) Bioorg. Med. Chem. 1 1 :459-464; Bhagat, L. et al. (2003) Biochem. Biophys. Res. Commun. 300:853-861 ; Yu, D. et al. (2002) Nucleic Acids Res. 30:4460-4469; Yu, D. et al. (2002) J. Med. Chem. 45:4540-4548. Yu, D. et al. (2002) Biochem. Biophys. Res. Commun. 297:83-90; Kandimalla. E. et al. (2002) Bioconjug. Chem. 13:966-974; Yu, D. et al. (2002) Nucleic Acids Res. 30:1613-1619; Yu, D. et al. (2001) Bioorg. Med. Chem. 9: 2803-2808; Yu ef al. (2001) Bioorg. Med. Chem. Lett. 1 : 2263-2267; Kandimalla et al. (2001) Bioorg. Med. Chem. 9: 807-813; Yu ef al. (2000) Bioorg. Med. Chem. Lett. 10: 2585-2588; 及びPutta et al. (2006) Nucleic Acids Res. 34: 3231-3238）。
【０１６９】
米国特許出願公開第２００９／００５３２０６号は、多くのＴＬＲ９アゴニスト、とりわけ表１に一覧される化合物１−１６９を記載する；米国特許出願公開第２００８／０２９２６４８号は、多くのＴＬＲ９アゴニスト、とりわけ表１に一覧される化合物１−９２を記載する；米国特許出願公開第２００７／０１０５８００号はＴＬＲ９アゴニストであるオリゴヌクレオチドベースの化合物を記載する（Ｉｄｅｒａ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ）。適当なＴＬＲ９アゴニストはまた、第１相／第２相臨床試験を受けている選択的なＴＬＲ９アゴニストＩＭＯ−２０５５、ＩＭＯ−２１２５及びＩＭＯ−２１３４を含み得る（Ｉｄｅｒａ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ）。米国特許出願公開第２０１０／００１６２５０号は多くのＴＬＲ９アゴニスト、とりわけ式Ｉの化合物を記載する（Ｋｙｏｗａ Ｈａｋｋｏ Ｋｉｒｉｎ Ｃｏ）。上述のように、米国特許出願公開第２００９／００４１８０９号は、ＴＬＲ９アゴニスト又はＴＬＲ３アゴニスト及びＴＬＲ９アゴニストの両方である組成物を記載する（Ｎｖｅｎｔａ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ）。
【０１７０】
本併用療法のために使用されるべき様々なＴＬＲ９アゴニストは、国際公開第２００７／７０４７３９６号、国際公開第２００７／７０４７３９６号、国際公開第２０１００８８３９５号、国際公開第０３０３５６９５号、国際公開第２０１２０８５２９１号、国際公開第１９９８／０１８８１０号、国際公開第２００５／０４２０１８号、国際公開第２００８０７３９５９号、国際公開第２００９０１８４３１号、国際公開第２００７０８４２３７に詳細が記載される。
【０１７１】
「エピトープ」なる用語は、抗体に特異的に結合することが可能なタンパク質決定因子を意味する。エピトープは、通常、アミノ酸又は糖側鎖などの分子の化学的に活性な表面のグルーピングからなり、通常エピトープは特異的な３次元構造の特徴並びに特異的な電荷特性を有する。コンホメーション及び非コンホメーションエピトープは、変性溶媒の存在において、後者ではなく、前者への結合が失われることにおいて区別される。好ましくは、本発明による抗体は、天然型及び変性ＣＳＦ−１Ｒに特異的に結合する。
【０１７２】
本明細書で使用される「可変ドメイン」（軽鎖の可変ドメイン（ＶＬ）、重鎖の可変ドメイン（ＶＨ））は、抗体を抗原に結合させることに直接関与する軽鎖及び重鎖の対のそれぞれを示す。軽鎖及び重鎖ドメインは同じ一般構造を有し、各ドメインは、その配列が広範囲に保存され、３つの「高頻度可変領域」（又は相補性決定領域、ＣＤＲ）により結合されている４つのフレームワーク（ＦＲ）領域を含む。フレームワーク領域はβシート立体構造を採り、ＣＤＲはβシート構造を連結するループを形成しうる。各鎖のＣＤＲは、フレームワーク領域によりその３次元構造で保持され、他の鎖のＣＤＲと共に抗原結合部位を形成する。抗体の重鎖及び軽鎖ＣＤＲ３領域は、本発明に係る抗体の結合特異性／親和性に特に重要な役割を果たし、よって本発明の更なる目的を提供する。
【０１７３】
「抗体の抗原結合部位」は、本明細書で使用されるとき、抗原結合に関与する抗体のアミノ酸残基を指す。抗体の抗原結合部位は、「相補性決定領域」又は「ＣＤＲ」からのアミノ酸残基を含む。「フレームワーク」又は「ＦＲ」領域は、ここで定義する高頻度可変領域の残基以外の可変ドメイン残基である。従って、抗体の軽鎖及び重鎖可変ドメインは、ＮからＣ末端に、ドメインＦＲ１、ＣＤＲ１、ＦＲ２、ＣＤＲ２、ＦＲ３、ＣＤＲ３、及びＦＲ４を含む。特に、重鎖のＣＤＲ３は、抗原結合に最も寄与する領域であり、抗体の特性を定める。ＣＤＲ及びＦＲは、Kabat et al., Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5th ed., Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, MD (1991)の標準的定義に従って決定され、及び／又は「超可変ループ」からの残基である。
【０１７４】
本発明で使用される「核酸」又は「核酸分子」なる用語は、ＤＮＡ分子及びＲＮＡ分子を含むことを意図している。核酸分子は一本鎖又は二本鎖であってよいが、好ましくは二本鎖ＤＮＡである。
【０１７５】
この出願中において使用される「アミノ酸」なる用語は、アラニン（３文字コード：ａｌａ、１文字コード：Ａ）、アルギニン（ａｒｇ、Ｒ）、アスパラギン（ａｓｎ、Ｎ）、アスパラギン酸（ａｓｐ、Ｄ）、システイン（ｃｙｓ、Ｃ）、グルタミン（ｇｌｎ、Ｑ）、グルタミン酸（ｇｌｕ、Ｅ）、グリシン（ｇｌｙ、Ｇ）、ヒスチジン（ｈｉｓ、Ｈ）、イソロイシン（ｉｌｅ、Ｉ）、ロイシン（ｌｅｕ、Ｌ）、リジン（ｌｙｓ、Ｋ）、メチオニン（ｍｅｔ、Ｍ）、フェニルアラニン（ｐｈｅ、Ｆ）、プロリン（ｐｒｏ、Ｐ）、セリン（ｓｅｒ、Ｓ）、スレオニン（ｔｈｒ、Ｔ）、トリプトファン（ｔｒｐ、Ｗ）、チロシン（ｔｙｒ、Ｙ）、及びバリン（ｖａｌ、Ｖ）を含む天然に生じるカルボキシα−アミノ酸の群を示す。
【０１７６】
本発明による抗体は、好ましくは組換え手段によって生成される。従って、抗体は、好ましくは単離されたモノクローナル抗体である。そうした組換え法は先端技術で広く知られており、原核細胞及び真核細胞におけるタンパク質の発現を含み、その後の抗体ポリペプチドの単離、及び通常は薬学的に許容される純度までの精製を伴う。タンパク質発現のために、軽鎖及び重鎖又はその断片をコードする核酸は標準的な方法によって発現ベクターに挿入される。発現は、ＣＨＯ細胞、ＮＳ０細胞、ＳＰ２／０細胞、ＨＥＫ２９３細胞、ＣＯＳ細胞、酵母、又は大腸菌細胞などの適当な原核生物又は真核生物宿主細胞中で行われ、抗体は細胞（上清又は溶解後の細胞）から回収される。
【０１７７】
組換えによる抗体の産生は、最新技術分野において周知であり、例えば、Makrides, S.C., Protein Expr. Purif. 17 (1999) 183-202; Geisse,S., et al., Protein Expr. Purif. 8 (1996) 271-282; Kaufman, R.J., Mol.Biotechnol. 16 (2000) 151-161; Werner, R.G., Drug Res. 48 (1998) 870-880の総説に記載されている。
【０１７８】
抗体は、細胞全体に、細胞溶解物中に、又は部分精製形態あるいは実質的に純粋な形態で存在してもよい。細胞成分又は他の汚染物、例えば他の細胞核酸又はタンパク質を除去するために、アルカリ／ＳＤＳ処理、ＣｓＣｌバンド形成、カラムクロマトグラフィー、アガロースゲル電気泳動、及び当技術分野で周知の他のものを含む標準的な技術によって、精製が行われる。Ausubel, F., et al., ed. Current Protocols in Molecular Biology, Greene Publishing and Wiley Interscience, New York (1987)を参照。
【０１７９】
ＮＳ０細胞における発現は、例えば、Barnes, L.M., et al., Cytotechnology 32 (2000) 109-123;及びBarnes, L.M., et al., Biotech. Bioeng. 73 (2001) 261-270に記述される。一過性発現は、例えば、Durocher, Y., et al., Nucl. Acids. Res. 30 (2002) E9に記述される。可変ドメインのクローニングは、Orlandi, R., et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86 (1989) 3833-3837; Carter, P., et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89 (1992) 4285-4289；及びNorderhaug, L., et al., J. Immunol. Methods 204 (1997) 77-87に記述される。好適な一過性発現系（ＨＥＫ２９３）は、 Schlaeger, E.-J., and Christensen, K., in Cytotechnology 30 (1999) 71-83及びSchlaeger, E.-J., in J. Immunol. Methods 194 (1996) 191-199により記述される。
【０１８０】
原核生物に適している制御配列は、例えば、プロモーター、必要に応じてオペレーター配列、及びリボソーム結合部位を含む。真核細胞は、プロモーター、エンハンサー及びポリアデニル化シグナルを利用することが知られている。
【０１８１】
核酸は、他の核酸配列と機能的な関係にあるときに「作動可能に連結」している。例えば、プレ配列又は分泌リーダーのＤＮＡは、ポリペプチドの分泌に参画するプレタンパク質として発現されている場合、そのポリペプチドのＤＮＡに操作可能に結合している；プロモーター又はエンハンサーは、配列の転写に影響を及ぼす場合、コード配列に操作可能に結合している；又はリボソーム結合部位は、もしそれが翻訳を容易にするような位置にある場合、コード配列と操作可能に結合している。一般に、「作動可能に連結した」とは、連結しているＤＮＡ配列は連続しており、分泌リーダーの場合には、リーディング・フレームにあり連続している。しかし、エンハンサーは連続している必要はない。連結は、好都合な制限部位での連結反応によって達成される。そのような部位が存在しない場合、合成オリゴヌクレオチドアダプター又はリンカーは、従来の慣例に従って使用される。
【０１８２】
モノクローナル抗体は、従来の免疫グロブリン精製手順、例えば、プロテインＡ−セファロース、ヒドロキシアパタイトクロマトグラフィー、ゲル電気泳動、透析、又はアフィニティークロマトグラフィーなどによって培養培地から適切に分離される。モノクローナル抗体をコードするＤＮＡ及びＲＮＡは容易に単離され、従来の手順を用いて配列決定される。ハイブリドーマ細胞は、ＤＮＡとＲＮＡの供給源として機能することができる。一度単離されると、ＤＮＡは、発現ベクターに挿入することができ、これらは次いで、本来ならば免疫グロブリンタンパク質を生成しないＨＥＫ２９３細胞、ＣＨＯ細胞、又はミエローマ細胞などの宿主細胞中にトランスフェクトされ、宿主細胞中で組換えモノクローナル抗体の合成を得る。
【０１８３】
本明細書中で用いる「細胞」、「細胞株」及び「細胞培養物」なる表現は相互に交換可能に用いられ、かかる標記は子孫を含む。よって、「形質転換体」や「形質転換細胞」のような用語には、初代対象細胞と何世代移行したかを問わずそれから由来した培養物とを含む。全ての子孫が、意図的な突然変異あるいは意図せざる突然変異のため、正確に同一のＤＮＡ内容であるわけではないことも理解される。最初に形質転換された細胞に対してスクリーニングされたものと同じ機能あるいは生物的活性を有する変異型子孫も含まれる。
【０１８４】
抗体の「Ｆｃ部分」は、抗体の抗原への結合に直接的にかかわらないが、様々なエフェクター機能を示す。「抗体のＦｃ部分」は当業者に良く知られており、抗体のパパイン切断に基づいて定義される。重鎖の定常領域のアミノ酸配列に応じて、抗体又は免疫グロブリンは、クラス：ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＧ及びＩｇＭ，に分けられ、これらの幾つかはサブクラス（アイソタイプ）、例えばＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、及びＩｇＧ４、ＩＧＡ１、及びＩｇＡ２に更に分けることができる。重鎖の定常領域に従って、免疫グロブリンの異なるクラスは、それぞれα、δ、ε、γ及びμと呼ばれる。抗体のＦｃ部分は、補体活性化は、Ｃ１ｑの結合及びＦｃ受容体結合に基づいて、ＡＤＣＣ（抗体依存性細胞媒介性細胞傷害）及びＣＤＣ（補体依存性細胞傷害）に直接関与している。補体活性（ＣＤＣ）は、ほとんどのＩｇＧ抗体サブクラスの定常領域に対する補体因子Ｃ１ｑの結合により開始される。補体系に対する抗体の影響は、特定の状態に依存するが、Ｃ１ｑへの結合は、Ｆｃ部分に定められた結合部位により引き起こされる。そのような結合部位は、当技術分野において公知であり、例えば、Boackle, R.J., et al., Nature 282 (1979) 742-743; Lukas, T.J., et al., J. Immunol. 127 (1981) 2555-2560; Brunhouse, R., and Cebra, J.J., Mol. Immunol. 16 (1979) 907-917; Burton, D.R., et al., Nature 288 (1980) 338-344; Thommesen, J.E., et al., Mol. Immunol. 37 (2000) 995-1004; Idusogie, E.E., et al., J. Immunol.164 (2000) 4178-4184; Hezareh, M., et al., J. Virology 75 (2001) 12161-12168; Morgan, A., et al., Immunology 86 (1995) 319-324；及び欧州特許第０３０７４３４号により記載される。このような結合部位は、例えば、Ｌ２３４、Ｌ２３５、Ｄ２７０、Ｎ２９７、Ｅ３１８、Ｋ３２０、Ｋ３２２、Ｐ３３１及びＰ３２９である（Ｋａｂａｔ，Ｅ．ＡのＥＵ指標に従い番号付け、下記参照）。通常、サブクラスＩｇＧ１、ＩｇＧ２及びＩｇＧ３の抗体は、補体活性化及びＣ１ｑ及びＣ３結合を示すが、ＩｇＧ４は補体系を活性化させず、Ｃ１ｑ及びＣ３に結合しない。
【０１８５】
一実施態様では、発明による抗体はヒト起源由来のＦｃ部分、及び好ましくはヒト定常領域の他の部分全てを含む。本明細書で使用される場合、用語「ヒト起源由来のＦｃ部分」とは、サブクラスＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３又はＩｇＧ４のヒト抗体のＦｃ部分の何れか、好ましくはヒトＩｇＧ１サブクラスからのＦｃ部分、ヒトＩｇＧ１サブクラスからの変異Ｆｃ部分（好ましくはＬ２３４Ａ＋Ｌ２３５Ａにおける変異）、ヒトＩｇＧ４サブクラスからのＦｃ部分又はヒトＩｇＧ４サブクラスからの変異Ｆｃ部分（好ましくはＳ２２８Ｐにおける変異）であるＦｃ部分を意味する。最も好ましいのは、配列番号５８（ヒトＩｇＧ１サブクラス）、配列番号５９（変異Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａを有するヒトＩｇＧ１サブクラス）、配列番号６０（ヒトＩｇＧ４サブクラス）、又は配列番号６１（変異Ｓ２２８Ｐを有するヒトＩｇＧ４サブクラス）の重鎖定常領域である。
【０１８６】
好ましくは、本発明による抗体は、ヒトＩｇＧ１サブクラス又はヒトＩｇＧ４サブクラスのものである。一実施態様において、本発明による抗体は、ヒトＩｇＧ１サブクラスのものである。一実施態様において、本発明による抗体は、ヒトＩｇＧ４サブクラスのものである。
【０１８７】
一実施態様において、本発明による抗体は、定常領域がヒト起源であることを特徴とする。そのような定常鎖は、当技術分野の現状において周知であり、例えば、Ｋａｂａｔ，  Ｅ．Ａ．によって説明されている（例えば、Johnson, G. and Wu, T.T., Nucleic Acids Res. 28 (2000) 214-218を参照のこと）。例えば、有用なヒト重鎖定常領域は、配列番号５８のアミノ酸配列を含む。例えば、有用なヒト重鎖定常領域は、配列番号５７のカッパ軽鎖定常領域のアミノ酸配列を含む。
【０１８８】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、
ａ）重鎖可変ドメインは配列番号２３であり、軽鎖可変ドメインは配列番号２４である、又は
ｂ）重鎖可変ドメインは配列番号３１であり、軽鎖可変ドメインは配列番号３２である、又は
ｃ）重鎖可変ドメインは配列番号３９であり、軽鎖可変ドメインは配列番号４０である、又は
ｄ）重鎖可変ドメインは配列番号４７であり、軽鎖可変ドメインは配列番号４８である、又は
ｅ）重鎖可変ドメインは配列番号５５であり、軽鎖可変ドメインは配列番号５６であることを特徴とする。
【０１８９】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、
ａ）重鎖可変ドメインは配列番号２３であり、軽鎖可変ドメインは配列番号２４である、又は
ｂ）重鎖可変ドメインは配列番号３１であり、軽鎖可変ドメインは配列番号３２である、又は
ｃ）重鎖可変ドメインは配列番号３９であり、軽鎖可変ドメインは配列番号４０である、又は
ｄ）重鎖可変ドメインは配列番号４７、及び軽鎖可変ドメインは配列番号４８であることを特徴とする。
【０１９０】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは配列番号２３、軽鎖可変ドメインは配列番号２４であることを特徴とする。
【０１９１】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは配列番号３１、軽鎖可変ドメインは配列番号３２であることを特徴とする。
【０１９２】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは配列番号３９、軽鎖可変ドメインは配列番号４０であることを特徴とする。
【０１９３】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは配列番号４７、軽鎖可変ドメインは配列番号４８であることを特徴とする。
【０１９４】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは配列番号１５、及び軽鎖可変ドメインは配列番号１６であることを特徴とし又はそのヒト化バージョンである。
【０１９５】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは配列番号７５、軽鎖可変ドメインは配列番号７６であることを特徴とし又はそのヒト化バージョンである。
【０１９６】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、重鎖可変ドメインは配列番号８３、軽鎖可変ドメインは配列番号８４であることを特徴とし又はそのヒト化バージョンである。
【０１９７】
一実施態様において、併用療法において使用されるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体は、
ａ）重鎖可変ドメインは、配列番号１のＣＤＲ３領域、配列番号２のＣＤＲ２領域、及び配列番号３のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号４のＣＤＲ３領域、配列番号５のＣＤＲ２領域、及び配列番号６のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｂ）重鎖可変ドメインは、配列番号９のＣＤＲ３領域、配列番号１０のＣＤＲ２領域、及び配列番号１１のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号１２のＣＤＲ３領域、配列番号１３のＣＤＲ２領域、及び配列番号１４のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｃ）重鎖可変ドメインは、配列番号１７のＣＤＲ３領域、配列番号１８のＣＤＲ２領域、及び配列番号１９のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２０のＣＤＲ３領域、配列番号２１のＣＤＲ２領域、及び配列番号２２のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｄ）重鎖可変ドメインは、配列番号２５のＣＤＲ３領域、配列番号２６のＣＤＲ２領域、及び配列番号２７のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２８のＣＤＲ３領域、配列番号２９のＣＤＲ２領域、及び配列番号３０のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｅ）重鎖可変ドメインは、配列番号３３のＣＤＲ３領域、配列番号３４のＣＤＲ２領域、及び配列番号３５のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号３６のＣＤＲ３領域、配列番号３７のＣＤＲ２領域、及び配列番号３８のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｆ）重鎖可変ドメインは、配列番号４１のＣＤＲ３領域、配列番号４２のＣＤＲ２領域、及び配列番号４３のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号４４のＣＤＲ３領域、配列番号４５のＣＤＲ２領域、及び配列番号４６のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｇ）重鎖可変ドメインは、配列番号４９のＣＤＲ３領域、配列番号５０のＣＤＲ２領域、及び配列番号５１のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号５２のＣＤＲ３領域、配列番号５３のＣＤＲ２領域、及び配列番号５４のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｈ）重鎖可変ドメインは、配列番号６９のＣＤＲ３領域、配列番号７０のＣＤＲ２領域、及び配列番号７１のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号７２のＣＤＲ３領域、配列番号７３のＣＤＲ２領域、及び配列番号７４のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｉ）重鎖可変ドメインは、配列番号７７のＣＤＲ３領域、配列番号７８のＣＤＲ２領域、及び配列番号７９のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号８０のＣＤＲ３領域、配列番号８１のＣＤＲ２領域、及び配列番号８２のＣＤＲ１領域を含むことを特徴とする。
【０１９８】
一実施態様において、ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体との併用療法は、
重鎖可変ドメインは、配列番号１７のＣＤＲ３領域、配列番号１８のＣＤＲ２領域、及び配列番号１９のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２０のＣＤＲ３領域、配列番号２１のＣＤＲ２領域、及び配列番号２２のＣＤＲ１領域を含むことを特徴とする。
【０１９９】
一実施態様において、ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体との併用療法は、重鎖可変ドメインは、配列番号２５のＣＤＲ３領域、配列番号２６のＣＤＲ２領域、及び配列番号２７のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２８のＣＤＲ３領域、配列番号２９のＣＤＲ２領域、及び配列番号３０のＣＤＲ１領域を含むことを特徴とする。
【０２００】
一実施態様において、ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体との併用療法は、重鎖可変ドメインは、配列番号３３のＣＤＲ３領域、配列番号３４のＣＤＲ２領域、及び配列番号３５のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号３６のＣＤＲ３領域、配列番号３７のＣＤＲ２領域、及び配列番号３８のＣＤＲ１領域を含むことを特徴とする。
【０２０１】
一実施態様において、ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体との併用療法は、重鎖可変ドメインは、配列番号４１のＣＤＲ３領域、配列番号４２のＣＤＲ２領域、及び配列番号４３のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号４４のＣＤＲ３領域、配列番号４５のＣＤＲ２領域、及び配列番号４６のＣＤＲ１領域を含むことを特徴とする。
【０２０２】
本発明は、本発明による抗体の治療的有効量を患者に投与することにより特徴付けられる、治療法を必要としている患者の治療のための方法を含む。
【０２０３】
本発明は、記述された治療法のための本発明による抗体の使用を含む。
【０２０４】
発明の好ましい実施態様は、「ＣＳＦ−１Ｒ媒介疾患」の治療における使用のための本発明のＣＳＦ−１Ｒ抗体、又は「ＣＳＦ−１Ｒ媒介疾患」の治療における医薬の製造に対する使用のための本発明のＣＳＦ−１Ｒ抗体であり、以下のように説明されうる：
【０２０５】
それによりＣＳＦ−１Ｒシグナル伝達が腫瘍増殖及び転移に関与すると思われる３つの異なるメカニズムがある。一つ目は、ＣＳＦ−リガンド及び受容体の発現が、女性生殖器系（胸、卵巣、子宮内膜、子宮頸部）に起因する腫瘍細胞に見つけられ（Scholl, S.M., et al., J. Natl. Cancer Inst. 86 (1994) 120-126; Kacinski, B.M., Mol. Reprod. Dev. 46 (1997) 71-74; Ngan, H.Y., et al., Eur. J. Cancer 35 (1999) 1546-1550; Kirma, N., et al., Cancer Res 67 (2007) 1918-1926）、発現が乳がん異種移植片増殖並びに乳がん患者における予後不良に関連したことである。２つの点変異が、一研究において試験された、急性骨髄性白血病、慢性骨髄性白血病及び骨髄形成異常患者の約１０−２０％におけるＣＳＦ−１Ｒに見られ、変異の一つが受容体ターンオーバーを妨害することが分かった（Ridge, S.A., et al., Proc. Natl. Acad. Sci USA 87 (1990) 1377-1380）。しかしながら、変異の出現は後の研究で確認されることができなかった（Abu-Duhier, F.M., et al., Br. J. Haematol. 120 (2003) 464-470）。変異は肝細胞がん（Yang, D.H., et al., Hepatobiliary Pancreat.Dis.Int. 3 (2004) 86-89）及び特発性骨髄線維症（Abu-Duhier, F.M., et al., Br. J. Haematol.120 (2003) 464-470）の幾つかのケースにおいても見られた。近年、骨髄単芽球性白血病の患者に由来するＧＤＭ−１細胞株において、ＣＳＦ−１ＲのＹ５７１Ｄ変異が同定された（Chase, A., et al., Leukemia 23 (2009) 358-364）。
【０２０６】
色素性絨毛結節性滑膜炎（ＰＶＮＳ）及び腱しょう巨細胞腫（ＴＧＣＴ）は、Ｍ−ＣＳＦ遺伝子をコラーゲン遺伝子ＣＯＬ６Ａ３に融合させ、Ｍ−ＣＳＦの過剰発現をもたらすトランスロケーションの結果として生じうる（West, R.B., et al., Proc.Natl.Acad.Sci.USA 103 (2006) 690-695）。ランドスケープ効果が、生じた腫瘍体積に関与することが提案され、それはＭ−ＣＳＦを発現する細胞によって誘因される単球系細胞からなる。ＴＧＣＴは小さい腫瘍であり、それらの主に生じる指から比較的容易に除去されることができる。ＰＶＮＳはより浸潤性であり、大関節において再発し得、外科的に容易にコントロールされない。
【０２０７】
２つ目のメカニズムは、破骨細胞形成、骨吸収及び溶骨性病変を誘発する、骨の転移部位でのＭ−ＣＳＦ／ＣＳＦ−１Ｒを介したシグナル伝達の阻害に基づく。乳がん、多発性骨髄腫及び肺がんは、骨に転移することが分かったがんの例であり、骨格合併症をもたらす溶骨性病変を引き起こす。腫瘍細胞及びストローマにより放出されるＭ−ＣＳＦは、核内因子κＢ活性化受容体リガンド−ＲＡＮＫＬのとの協調において、造血骨髄性単球前駆体の成熟破骨細胞への分化を誘発する。このプロセスの間、破骨細胞に生存シグナルを与えることにより、Ｍ−ＣＳＦは許容因子として作用する（Tanaka, S., et al., J. Clin.Invest.91 (1993) 257-263）。抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体での、破骨細胞の分化及び成熟中のＣＳＦ−１Ｒ活性の阻害は、溶骨性疾患及び転移性疾患における関連骨関連事象を引き起こす破骨細胞の不均衡な活性を防止すると思われる。乳がん、肺がん及び多発性骨髄腫は典型的には溶骨性病変となるが、前立腺がんにおける骨への転移は最初は造骨性の様子を有し、そこでは増加した骨形成活性が線維性骨をもたらし、これは正常な骨の典型的な層状組織と異なる。疾患進行の間、骨病変は、著しい溶骨性成分並びに高血清レベルの骨吸収を示し、抗吸収性治療が有用でありうることを示唆する。ビスホスホネートは溶骨性病変の形成を阻害することが示され、ホルモン不応性転移性前立腺がんを有する男性においてのみ骨関連事象の数を低減するが、現時点では、造骨性病変におけるそれらの効果は議論の余地があり、ビスホスホネートはこれまで、骨転移又はホルモン応答性前立腺がんを防止することに有益ではなかった。混合溶骨性／造骨性前立腺がんにおける抗吸収剤の効果は臨床において依然として研究中である（Choueiri, M.B., et al., Cancer Metastasis Rev. 25 (2006) 601-609; Vessella, R.L. and Corey, E., Clin. Cancer Res. 12 (20 Pt 2) (2006) 6285s-6290s）。
【０２０８】
３つ目のメカニズムは、乳がん、前立腺がん、卵巣がん及び子宮頸がんの固形腫瘍において見られる腫瘍関連マクロファージ（ＴＡＭ）が予後不良に相関するという最近の観察に基づく（Bingle, L., et al., J. Pathol.196 (2002) 254-265; Pollard, J.W., Nat. Rev. Cancer 4 (2004) 71-78）。マクロファージは、Ｍ−ＣＳＦ及び他のケモカインによって腫瘍に動員される。マクロファージは次いで、血管新生因子、プロテアーゼ及び他の増殖因子及びサイトカインの分泌による腫瘍進行に貢献することができ、ＣＳＦ−１Ｒシグナル伝達の阻害によってブロックされうる。最近、Ｚｉｎｓ，Ｋ．ら（Zins, K., et al., Cancer Res. 67 (2007) 1038-1045）によって、腫瘍壊死因子α（ＴＮＦアルファ）、Ｍ−ＣＳＦ又は双方の組合せのｓｉＲＮＡの発現が、それぞれのｓｉＲＮＡの腫瘍内投与の後、３４％〜５０％で、マウス異種移植片モデルにおける腫瘍増殖を低減させることが示された。ヒトＳＷ６２０細胞により分泌されるＴＮＦアルファを標的にするＳｉＲＮＡはマウスＭ−ＣＳＦレベルを低減させ、腫瘍におけるマクロファージの減少を導いた。更に、Ｍ−ＣＳＦに対する抗原結合断片によるＭＣＦ７腫瘍異種移植片の処置は、４０％の腫瘍増殖阻害をもたらし、化学療法への抵抗性を逆転させ、化学療法と併用して与えられた場合、マウスの生存度を改善した（Paulus, P., et al., Cancer Res. 66 (2006) 4349-4356）。
【０２０９】
ＴＡＭは慢性炎症及びがんの間の新たな関連の一例にすぎない。炎症及びがんの間の関連に対する更なるエビデンスがあり、多くの慢性疾患はがんのリスクの増大と関連し、がんは慢性炎症の部位で生じ、炎症の化学伝達物質は多くのがんにおいて見つけられ；炎症の細胞性又は化学伝達物質の欠失は実験がんの発生を阻害し、抗炎症剤の長期の使用は幾つかのがんのリスクを低減させる。がんへの関連は、多くの炎症性疾患に対し存在し、胃がんに対するＨ．ピロリ誘発による胃炎、膀胱がんに対する住血吸虫症、カポジ肉腫に対するＨＨＶＸ、卵巣がんに対する子宮内膜症及び前立腺がんに対する前立腺炎がある（Balkwill, F., et al., Cancer Cell 7 (2005) 211-217）。マクロファージは慢性炎症において鍵となる細胞であり、それらの微小環境に対して異なって応答する。機能状態の連続においてエクストリームであると考えられる２タイプのマクロファージがある：Ｍ１マクロファージは１型反応に関与する。これらの反応は、微生物産物による活性化、及び活性酸素中間体を生じる病原微生物の結果としての殺傷を含む。エクストリームの対極は、細胞増殖を促進し、炎症及び適応免疫を調整し、組織リモデリング、血管新生及び修復を促進する２型反応に関与するＭ２マクロファージである（Mantovani, A., et al., Trends Immunol. 25 (2004) 677-686）。確立した新生物をもたらす慢性炎症は通常、Ｍ２マクロファージに関連する。炎症反応を媒介する中心的なサイトカインはＴＮＦアルファであり、その名の通り高用量で抗腫瘍免疫及び出血性壊死を刺激するが、近年、腫瘍細胞によって発現され、腫瘍プロモーターとして作用することが見出された（Zins, K., et al., Cancer Res. 67 (2007) 1038-1045; Balkwill, F., Cancer Metastasis Rev. 25 (2006) 409-416）。腫瘍に対するマクロファージの具体的な役割は依然として更に理解される必要があり、それらの機能における空間的及び時間的潜在依存、及び特定の腫瘍タイプへの関連を含む。
【０２１０】
従って、発明の一実施態様は、がんの治療における使用のための本発明のＣＳＦ−１Ｒ抗体である。ここで使用される「がん」なる用語は、例えば、肺がん、非小細胞肺（ＮＳＣＬ）がん、細気管支肺胞細胞肺がん、骨がん、膵臓がん、皮膚がん、頭部もしくは頚部のがん、皮膚もしくは眼内黒色腫、子宮がん、卵巣がん、直腸がん、肛門部のがん、胃がん（ｓｔｏｍａｃｈ ｃａｎｃｅｒ、ｇａｓｔｒｉｃ ｃａｎｃｅｒ）、結腸がん、乳がん、子宮がん、卵管癌、子宮内膜癌、子宮頚部癌、膣癌、外陰癌、ホジキン病、食道がん、小腸がん、内分泌系のがん、甲状腺がん、副甲状腺のがん、副腎のがん、軟組織の肉腫、尿道のがん、陰茎のがん、前立腺がん、膀胱のがん、腎臓もしくは尿道のがん、腎細胞癌、腎盂癌、中皮腫、肝細胞がん、胆道がん、中枢神経系（ＣＮＳ）の新生物、脊髄軸腫瘍、脳幹膠腫、多形膠芽腫、星状細胞腫、シュワン腫、上衣腫、髄芽腫、髄腹腫、扁平上皮癌、下垂体腺腫、リンパ腫、リンパ性白血病、例えば上記がんの何れかの難治性型、又は上記がんの一又は複数の組み合わせでありうる。好ましい一実施態様において、がんは、乳がん、結腸直腸がん、黒色腫、頭頸部がん、肺がん又は前立腺がんである。好ましい一実施態様において、がんは、乳がん、卵巣がん、子宮頸がん、肺がん又は前立腺がんである。好ましい一実施態様において、そのようながんは、ＣＳＦ−１若しくはＣＳＦ−１Ｒの発現又は過剰発現によって更に特徴付けられる。更なる一実施態様では、発明は、原発腫瘍及び新しい転移の同時治療における使用のための、本発明のＣＳＦ−１Ｒ抗体である。
【０２１１】
従って、発明の別の実施態様は、歯周炎、ヒスチオサイトーシスＸ、骨粗鬆症、骨パジェット病（ＰＤＢ）、がん治療による骨量減少、プロテーゼ周囲骨溶解、グルココルチコイド誘発性骨粗しょう症、関節リウマチ、乾癬性関節炎、変形性関節症、炎症性関節炎、及び炎症の治療における使用のための本発明のＣＳＦ−１Ｒ抗体である。
【０２１２】
Rabello, D., et al., Biochem. Biophys. Res. Commun. 347 (2006) 791-796は、ＣＳＦ１遺伝子におけるＳＮＰが、侵襲性歯周炎：歯槽骨の吸収による歯欠損を引き起こす歯周組織の炎症性疾患とポジティブ相関を示すことを実証した。
【０２１３】
ヒスチオサイトーシスＸ（ランゲルハンス細胞組織球症、ＬＣＨとも呼ばれる）は、骨及び骨外ＬＣＨ病変において破骨細胞に分化すると思われるランゲルハンス樹状細胞の増殖性疾患である。ランゲルハンス細胞は、循環単球由来である。血清及び病変において測定されたＭ−ＣＳＦの増加レベルが、疾患重症度と相関することが分かった（da Costa, C.E., et al., J. Exp. Med. 201 (2005) 687-693）。該疾患は小児患者集団において主に生じ、疾患が全身性になった場合、又は再発性である場合、化学療法で治療されなければならない。
【０２１４】
骨粗鬆症の病態生理は、骨形成骨芽細胞の欠如及び増加した破骨細胞依存骨吸収によって媒介される。裏付けデータがＣｅｎｃｉらによって記述され、抗Ｍ−ＣＳＦ抗体インジェクションが骨密度を保護し、卵巣摘出マウスにおける骨吸収を阻害することを示した（Cenci, S., et al., J. Clin. Invest. 105 (2000) 1279-1287）。近年、エストロゲン欠乏に起因する閉経後の骨量減少の潜在的な関連が同定され、Ｔ細胞を産生するＴＮＦアルファの存在が骨代謝に影響することがわかった（Roggia, C., et al., Minerva Med. 95 (2004) 125-132）。考えられるメカニズムは、インビボでのＴＮＦαによるＭ−ＣＳＦの誘発である。ＴＮＦ−アルファ誘発破骨細胞形成におけるＭ−ＣＳＦの重要な役割が、マウスにおけるＴＮＦ−アルファ誘発骨溶解をブロックするＭ−ＣＳＦに対する抗体の効果によって確認され、そして炎症性関節炎のためのＣＳＦ−１Ｒシグナル伝達潜在標的の阻害剤が作成された（Kitaura, H., et al., J. Clin. Invest. 115 (2005) 3418-3427）。
【０２１５】
骨パジェット病（ＰＤＢ）は、骨粗鬆症後の２番目に一般的な骨代謝障害であり、増加した骨ターンオーバーの局限性異常が、骨痛、奇形、病的骨折及び難聴等の合併症を引き起こす。正常な破骨細胞機能を制御し、個体をＰＤＢ及び関連疾患に掛かりやすくさせる４つの遺伝子における変異が同定された：破骨細胞機能の重要な制御因子である核内因子（ＮＦ）κＢ活性化受容体（ＲＡＮＫ）をコードするＴＮＦＲＳＦ１１Ａにおける挿入変異、オステオプロテゲリン（ＲＡＮＫリガンドに対するデコイ受容体）をコードするＴＮＦＲＳＦ１１Ｂの不活性化変異、ＮＦカッパＢ経路における重要なスカフォールドタンパク質をコードするｓｅｑｕｅｓｔｏｓｏｍｅ １ ｇｅｎｅ（ＳＱＳＴＭ１）の変異、及びバロシン含有タンパク質（ＶＣＰ）遺伝子における変異。この遺伝子は、プロテアソームによる分解に対するＮＦカッパＢのインヒビターを標的にすることにおいて役割を果たすＶＣＰをコードする（Daroszewska, A. and Ralston, S.H., Nat. Clin. Pract. Rheumatol. 2 (2006) 270-277）。標的化ＣＳＦ−１Ｒインヒビターは、ＲＡＮＫＬシグナル伝達の脱制御を間接的にブロックする機会を提供し、現在使用されているビスホスホネートに更なる治療選択を加える。
【０２１６】
特に乳がん及び前立腺がん患者における、がん治療誘発骨量減少は、標的化ＣＳＦ−１Ｒインヒビターが骨量減少を防止しうる更なる適応症である（Lester, J.E., et al., Br. J. Cancer 94 (2006) 30-35）。早期乳がんの改善された予後によりアジュバント療法の長期的結果がより重要になり、これは、化学療法、放射線療法、アロマターゼ阻害剤及び卵巣切除を含む療法の幾つかは、骨ミネラル濃度を低下されることにより骨代謝に影響し、骨粗鬆症及び関連骨折をもたらすからである（Lester, J.E., et al., Br. J. Cancer 94 (2006) 30-35）。乳がんにおけるアジュバントアロマターゼ阻害剤に相応するものは、前立腺がんにおけるアンドロゲン除去療法であり、これは、骨ミネラル濃度の欠乏を導き、骨粗鬆症関連骨折のリスクを著しく増加させる（Stoch, S.A., et al., J. Clin. Endocrinol. Metab. 86 (2001) 2787-2791）。
【０２１７】
ＣＳＦ−１Ｒシグナル伝達の標的化阻害は、標的化細胞タイプが破骨細胞及びマクロファージを含む場合、他の適応症においても有益であり得、例えば、関節リウマチの結果としての関節置換による特定の合併症の治療に有用である。プロテーゼ周囲骨量減少によるインプラントの失敗及び義肢の結果としての緩みは、関節置換の主な合併症であり、それぞれの患者及び医療制度に対し高い社会経済的負担を伴う度重なる手術を必要とする。これまでに、プロテーゼ周囲骨溶解を防止又は阻害する承認された薬物療法はない（Drees, P., et al., Nat. Clin. Pract. Rheumatol. 3 (2007) 165-171）。
【０２１８】
グルココルチコイド誘発性骨粗鬆症（ＧＩＯＰ）は別の適応症であり、ＣＳＦ−１Ｒインヒビターが、慢性閉塞性肺疾患、喘息及び関節リウマチにおける様々な状態の結果として与えられる長期のグルココルチコステロイドの使用後の骨量減少を防止しうる（Guzman-Clark, J.R., et al., Arthritis Rheum. 57 (2007) 140-146; Feldstein, A.C., et al., Osteoporos. Int. 16 (2005) 2168-2174）。
【０２１９】
関節リウマチ、乾癬性関節炎及び炎症性関節炎はそれ自体、それらがマクロファージ成分から成るとういう点において、また様々な程度の骨破壊に対し、ＣＳＦ−１Ｒシグナル伝達阻害剤の潜在的適応症である（Ritchlin, C.T., et al., J. Clin. Invest. 111 (2003) 821-831）。骨関節炎及び関節リウマチは、結合組織におけるマクロファージの蓄積、及び滑液へのマクロファージの浸潤によって引き起こされる炎症性自己免疫疾患であり、少なくとも部分的にＭ−ＣＳＦにより媒介される。Campbell, I., K., et al., J. Leukoc. Biol. 68 (2000) 144-150は、Ｍ−ＣＳＦがインビトロでヒト関節組織細胞によって産生され、関節リウマチを有する患者の滑液に見られることを示し、それが、疾患の病変形成と関連する滑膜組織増殖及びマクロファージ浸潤の一因となることを示唆した。ＣＳＦ−１Ｒシグナル伝達の阻害は、関節におけるマクロファージの数を制御し、関連する骨破壊からの疼痛を軽減すると考えられる。副作用を最小限にし、これらの適応症におけるＣＳＦ−１Ｒシグナル伝達の影響を更に理解するために、一方法は、Ｒａｆキナーゼなどの無数の他のキナーゼを標的にすることなく、ＣＳＦ−１Ｒを特異的に阻害する。
【０２２０】
最近の文献報告は、増加した循環Ｍ−ＣＳＦと、慢性冠動脈疾患における予後不良及びアテローム硬化性進行とを相関させる（Saitoh, T., et al., J. Am. Coll. Cardiol. 35 (2000) 655-665; Ikonomidis, I., et al., Eur. Heart. J. 26 (2005) p. 1618-1624）；Ｍ−ＣＳＦは、ＣＳＦ−１Ｒを発現し初期プラークを呈する泡沫細胞（摂取された酸化ＬＤＬを有するマクロファージ）の形成を支援することによってアテローム硬化性プロセスに影響する（Murayama, T., et al., Circulation 99 (1999) 1740-1746）。
【０２２１】
Ｍ−ＣＳＦ及びＣＳＦ−１Ｒの発現及びシグナル伝達は、活性化マイクログリアに見られる。中枢神経系の常在マクロファージであるマイクログリアは、感染及び外傷を含む様々な侵襲によって活性化される。Ｍ−ＣＳＦは脳における炎症反応の鍵となる制御因子と考えられており、Ｍ−ＣＳＦレベルは、ＨＩＶ−１、脳炎、アルツハイマー病（ＡＤ）及び脳腫瘍において増加する。Ｍ−ＣＳＦ／ＣＳＦ−１Ｒによる自己分泌シグナル伝達の結果として生じる小膠細胞症は炎症性サイトカイン及び一酸化窒素を誘導し、例えば実験神経損傷モデルを使用して示されるように放出される（Hao, A.J., et al., Neuroscience 112 (2002) 889-900; Murphy, G.M., Jr., et al., J. Biol. Chem. 273 (1998) 20967-20971）。ＣＳＦ−１Ｒの増加発現を有するマイクログリアは、ＡＤ及びＡＤのアミロイド前駆体タンパク質Ｖ７１７Ｆトランスジェニックマウスモデルにおいて周囲プレークに見られる（Murphy, G.M., Jr., et al., Am. J. Pathol. 157 (2000) 895-904）。一方、脳に少ないマイクログリアを有するｏｐ／ｏｐマウスは、正常対照と比較してＡ−ベータの線維性沈着及びニューロン欠失を生じ、マイクログリアが、ｏｐ／ｏｐマウスにおいて欠失しているＡＤの発生において神経保護機能を持つことを示唆する（Kaku, M., et al., Brain Res. Brain Res. Protoc. 12 (2003) 104-108）。
【０２２２】
Ｍ−ＣＳＦ及びＣＳＦ−１Ｒの発現及びシグナル伝達は、炎症性腸疾患（ＩＢＤ）に関連する（国際公開第２００５／０４６６５７号）。「炎症性腸疾患」なる用語は、胃腸管の様々な部位での慢性炎症により特徴付けられる腸管の重篤な慢性疾患を指し、具体的には、潰瘍性大腸炎（ＵＣ）及びクローン病を含む。
【０２２３】
従って、発明の別の実施態様は、歯周炎、ヒスチオサイトーシスＸ、骨粗鬆症、骨パジェット病（ＰＤＢ）、がん治療による骨量減少、プロテーゼ周囲骨溶解、グルココルチコイド誘発性骨粗しょう症、関節リウマチ、乾癬性関節炎、変形性関節症、炎症性関節炎、及び炎症の治療における使用のための本発明のＣＳＦ−１Ｒ抗体である。
【０２２４】
本発明は、上記エピトープ結合特性によって、あるいは上記アミノ酸配列及びアミノ酸配列断片によって特徴付けられるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体による、ＴＬＲ９アゴニストととの、がんの治療のための併用療法を含む。
【０２２５】
本発明は、上記エピトープ結合特性によって、あるいは上記アミノ酸配列及びアミノ酸配列断片によって特徴付けられるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体による、ＴＬＲ９アゴニストととの、骨量減少の治療のための併用療法を含む。
【０２２６】
本発明は、上記エピトープ結合特性によって、あるいは上記アミノ酸配列及びアミノ酸配列断片によって特徴付けられるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体による、ＴＬＲ９アゴニストととの、転移の予防又は治療のための併用療法を含む。
【０２２７】
本発明は、上記エピトープ結合特性によって、あるいは上記アミノ酸配列及びアミノ酸配列断片によって特徴付けられるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体による、ＴＬＲ９アゴニストととの、炎症性疾患の治療のための併用療法を含む。
【０２２８】
本発明は、上記エピトープ結合特性によって、あるいは上記アミノ酸配列及びアミノ酸配列断片によって特徴付けられるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体を含むことを特徴とする、本明細書に記載されるがんの併用治療のための、あるいは本明細書に記載されるＴＬＲ９アゴニストによるがんの併用治療のための医薬の製造のための抗体の使用を含む。
【０２２９】
本発明は、上記エピトープ結合特性によって、あるいは上記アミノ酸配列及びアミノ酸配列断片によって特徴付けられるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体を含むことを特徴とする、骨量減少の本明細書に記載される併用治療のための、あるいは本明細書に記載されるＴＬＲ９アゴニストによる骨量減少の併用治療のための医薬の製造のための抗体の使用を含む。
【０２３０】
本発明は、上記エピトープ結合特性によって、あるいは上記アミノ酸配列及びアミノ酸配列断片によって特徴付けられるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体を含むことを特徴とする、本明細書に記載される併用による転移の予防又は治療のための、あるいは明細書に記載されるＴＬＲ９アゴニストによる併用による転移の予防又は治療のための医薬の製造のための抗体の使用を含む。
【０２３１】
本発明は、上記エピトープ結合特性によって、あるいは上記アミノ酸配列及びアミノ酸配列断片によって特徴付けられるヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体を含むことを特徴とする、本明細書に記載される炎症性疾患の併用治療のための、あるいは本明細書に記載されるＴＬＲ９アゴニストによる炎症性疾患の併用治療のための医薬の製造のための抗体の使用を含む。
【０２３２】
本発明による抗体は、好ましくは組換え手段によって生成される。そのような方法は先端技術で広く知られており、原核細胞及び真核細胞におけるタンパク質の発現を含み、その後の抗体ポリペプチドの単離、及び通常は薬学的に許容される純度までの精製を伴う。タンパク質発現のために、軽鎖及び重鎖又はその断片をコードする核酸は標準的な方法によって発現ベクターに挿入される。発現は、ＣＨＯ細胞、ＮＳ０細胞、ＳＰ２／０細胞、ＨＥＫ２９３細胞、ＣＯＳ細胞、酵母、又は大腸菌細胞などの適当な原核生物又は真核生物宿主細胞中で行われ、抗体は細胞（上清から又は細胞溶解後）回収される。
【０２３３】
組換えによる抗体の産生は、最新技術分野において周知であり、例えば、Makrides, S.C., Protein Expr. Purif. 17 (1999) 183-202; Geisse,S., et al., Protein Expr. Purif. 8 (1996) 271-282; Kaufman, R.J., Mol.Biotechnol. 16 (2000) 151-161; Werner, R.G., Drug Res. 48 (1998) 870-880の総説に記載されている。
【０２３４】
抗体は、細胞全体に、細胞溶解物中に、又は部分精製形態あるいは実質的に純粋な形態で存在してもよい。細胞成分又は他の汚染物、例えば他の細胞核酸又はタンパク質を除去するために、アルカリ／ＳＤＳ処理、ＣｓＣｌバンド形成、カラムクロマトグラフィー、アガロースゲル電気泳動、及び当技術分野で周知の他のものを含む標準的な技術によって、精製が行われる。Ausubel, F., et al., ed. Current Protocols in Molecular Biology, Greene Publishing and Wiley Interscience, New York (1987)を参照。
【０２３５】
ＮＳ０細胞における発現は、例えば、Barnes, L.M., et al., Cytotechnology 32 (2000) 109-123; Barnes, L.M., et al., Biotech. Bioeng. 73 (2001) 261-270により説明される。一過性発現は、例えば、Durocher, Y., et al., Nucl. Acids. Res. 30 (2002) E9に記述される。可変ドメインのクローニングは、Orlandi, R., et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86 (1989) 3833-3837; Carter, P., et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89 (1992) 4285-4289; Norderhaug, L., et al., J. Immunol. Methods 204 (1997) 77-87に記述される。好適な一過性発現系（ＨＥＫ２９３）は、 Schlaeger, E.-J., and Christensen, K., in Cytotechnology 30 (1999) 71-83及びSchlaeger, E.-J., in J. Immunol. Methods 194 (1996) 191-199により記述される。
【０２３６】
抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体のアミノ酸配列変異体をコードしている核酸分子は当該分野で知られている様々な方法により調製される。これらの方法は、限定されないが、天然源からの単離（天然に存在するアミノ酸配列変異体の場合）又はオリゴヌクレオチド媒介（又は部位特異的）突然変異誘発、ＰＣＲ突然変異誘発、そしてヒト化抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の以前に調製された変異体又は非変異体バージョンのカセット変異誘発による調製を含む。
【０２３７】
発明による重及び軽鎖可変ドメインは、プロモーター、翻訳開始、定常領域、３´非翻訳領域、ポリアデニル化、及び転写終結の配列と組み合わせられ、発現ベクターコンストラクトが形成される。重及び軽鎖発現コンストラクトは単一ベクターに組み入れられ、宿主細胞に同時に、連続的に、又は別々にトランスフェクトされ、次いでそれは融合され両鎖を発現する単一宿主細胞が形成される。
【０２３８】
別の態様では、本発明は、本発明の、モノクローナル抗体、又はその抗原結合部分の一又は複数の組合せを含有し、薬学的に許容可能な担体と共に製剤化された、組成物、例えば薬学的組成物を提供する。
【０２３９】
本明細書で使用される場合、「薬学的に許容可能な担体」は、生理学的適合性の、ありとあらゆる溶剤、分散媒、コーティング、抗菌及び抗真菌剤、等張剤及び吸収／再吸収遅延剤、及び同様なものを含む。好ましくは、担体は注射又は注入に適している。
【０２４０】
本発明の組成物は、当該技術で知られている種々の方法で投与することができる。当業者に理解されているように、投与の経路及び／又は方式は、所望する結果に応じて変えられるであろう。
【０２４１】
薬学的に許容可能な担体は、無菌の水溶液又は分散系及び無菌の注射可能溶液又は分散系の調製のための無菌粉末を含む。薬学的に活性な物質に対するこのような媒体及び薬剤の使用は当分野で知られている。水に加えて、担体は、例えば、等張緩衝生理食塩水でありうる。水に加えて、担体は、例えば、等張緩衝生理食塩水でありうる。
【０２４２】
選択された投与経路にかかわらず、適切な水和形態、及び／又は本発明の薬学的組成物で使用される本発明の化合物は、当業者に知られている一般的な方法により、薬学的に許容可能な剤形に処方される。
【０２４３】
本発明の薬学的組成物における活性成分の実際の投与量レベルは、患者にとって毒性であること無く、特定の患者、組成物、及び投与の形式について所望の治療応答を達成するのに有効である活性成分の量を得るために、変更されてもよい（有効量）。選択された投与量レベルは、使用される本発明の特定の組成物、又はそれらのエステル、塩、もしくはアミドの活性、投与の経路、投与の時間、使用される特定の化合物、使用される特定の組成物と併用して使用される他の薬物、化合物及び／又は材料の排出速度、治療される患者の年齢、性別、体重、状態、一般健康状態及び事前治療歴、ならびに、医療技術分野において周知である同様の因子を含む様々な薬物動態因子に依存するであろう。
【０２４４】
用語「治療の方法」又はその等価物は、例えば、がんに適用される場合、患者においてがん細胞の数を減少又は除外するように又はがんの症状を緩和する設計されている手順若しくは採るべき道を指す。がん又は別の増殖性疾患を「治療する方法」は、がん細胞もしくは他の疾患が実際に排除されること、細胞の数もしくは疾患が実際に減ること、又はがんもしくは他の疾患の症状が実際に緩和されることを必ずしも意味しない。しばしば、がんを治療する方法は、成功の可能性が低いが、それにも関わらず、患者の病歴及び推定生存年数を所与として、全体的に有益な採るべき道を誘導するとみなされて実施されることとなる。
【０２４５】
用語「併用して投与される」又は「同時投与」、「同時投与する」又は「併用」は、抗ＣＳＦ−１Ｒ、及びＴＬＲ９アゴニストの、例えば別々の処方／適用（又は単一の処方／適用）としての投与を言う。同時投与は、同時もしくはいずれかの順序で逐次的であることができ、好ましくは両方（又は全て）の活性薬剤がその生物学的活性を同時に発揮する期間がある。前記抗体及び前記ＴＬＲ９アゴニストは、点滴を介して（例えば、静脈内に（ｉｖ））同時に又は逐次的に同時投与される。両方の治療薬が逐次的に共投与される場合、投与量は同日に別々の投与で投与され、又は薬剤の一つが第１日に、２番目のが第２日から第７日に、好ましくは第２日から第４日に共投与される。従って、一実施態様において、用語「連続的に（逐次的に）」は、第一成分の投与後７日以内に、好ましくは第一成分の投与後４日以内を意味し；用語「同時に」は同時刻でを意味する。抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の維持（投与）量に関する用語「共投与」は、維持投与量は、治療サイクルが両方の薬剤で適切である場合、例えば毎週、両方を共投与することができることを意味する。又は、更なる薬剤が、例えば初日から第３日おきに、投与され、前記抗体は毎週投与される。又は維持投与量は、１日以内又は数日以内の何れかで逐次的に共投与される。
【０２４６】
抗体は、患者に対して、研究者、獣医、医師又は他の臨床医によって求められている、組織、系、動物又はヒトの生物学的又は医学的応答を惹起するであろうそれぞれの化合物もしくはそれらの組み合わせの量である「治療的有効量」（又は単に「有効量」）で投与されるのは自明である。
【０２４７】
同時投与の量及び同時投与のタイミングは、タイプ（種、性別、年齢、体重など）、及び治療される患者の状態、及び治療される疾患又は状態の重症度に依存するであろう。前記抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体と更なる薬剤は、患者に対して、一時に又は一連の治療にわたって、例えば同じ日に、又は翌日に適切に共投与される。
【０２４８】
疾患のタイプ及び重症度に依存して、前記抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の約０．１ｍｇ／ｋｇから５０ｍｇ／ｋｇ（例えば、０．１−２０ｍｇ／ｋｇ）が、患者への両方の薬剤の同時投与のための初期候補投与量である。本発明は、がん、とりわけ結腸がん、肺がん又は膵臓がんに罹患した患者の治療のための本発明による抗体の使用を含む。
【０２４９】
疾患のタイプ及び重症度に依存して、前記抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の約０．１ｍｇ／ｋｇから５０ｍｇ／ｋｇ（例えば、０．１−２０ｍｇ／ｋｇ）が、患者への両方の薬剤の同時投与のための初期候補投与量である。本発明は、がん、とりわけ結腸がん、肺がん又は膵臓がんに罹患した患者の治療のための本発明による抗体の使用を含む。
【０２５０】
ＴＬＲ９アゴニストと併用される抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体に加えて、化学療法剤も投与することができる。
【０２５１】
一実施態様において、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体及びＴＬＲ９アゴニストとともに投与されうる係る付加的化学療法剤は、限定されないが、メクロレタミン、シクロホスファミド、イホスファミド、メルファラン及びクロラムブシルなどのナイトロジェンマスタード；カルムスチン（ＢＣＮＵ）、ロムスチン（ＣＣＮＵ）、及びセムスチン（メチル−ＣＣＮＵ）などのニトロソ尿素；テモダール（ＴＭ）（テモゾロミド）；トリエチレンメラミン（ＴＥＭ）、トリエチレン、チオホスホルアミド（チオテパ）、ヘキサメチルメラミン（ＨＭＭ、アルトレタミン）などのエチレンイミン／メチルメラミン；ブスルファンなどのスルホン酸アルキル；ダカルバジンなどのトリアジン（ＤＴＩＣ）を含むアルキル化剤；メトトレキサート及びトリメトレキサートなどの葉酸類似体、５−フルオロウラシル（５ＦＵ）、フルオロデオキシウリジン、ゲムシタビン、シトシンアラビノシド（ＡｒａＣ、シタラビン）、５−アザシチジン、２，２’−ジフルオロデオキシシチジンなどのピリミジン類似体；６−メルカプトプリン、６−チオグアニン、アザチオプリン、２’−デオキシコフォルマイシン（ペントスタチン）、エリスロヒドロキシノニルアデニン（ＥＨＮＡ）、リン酸フルダラビン及び２−クロロデオキシアデノシン（クラドリビン、２−ＣｄＡ）などのプリン類似体を代謝拮抗剤；パクリタキセル、ビンブラスチン（ＶＬＢ）、ビンクリスチン、及びビノレルビンなどのビンカアルカロイド、タキソテール、エストラムスチン、及びリン酸エストラムスチンなどの抗有糸分裂薬；エトポシド及びテニポシドなどのポドフィロトキシン（ｐｐｉｐｏｄｏｐｈｙｌｏｔｏｘｉｎ）；ダウノマイシン（ルビドマイシン）、ドキソルビシン、ミトキサントロン、イダルビシン、ブレオマイシン、プリカマイシン（ミトラマイシン）、マイトマイシンＣ及びアクチノマイシンなどの抗生物質；Ｌ−アスパラギナーゼなどの酵素；インターフェロン−α、ＩＬ−２、Ｇ−ＣＳＦ及びＧＭ−ＣＳＦなどの生物学的応答調節剤を含む天然物；オキサリプラチン、シスプラチン及びカルボプラチンなどの白金配位錯体、ミトキサントロンなどのアントラセンジオン、ヒドロキシ尿素などの置換尿素、Ｎ−メチルヒドラジン（ＭＩＨ）及びプロカルバジンを含むメチルヒドラジン誘導体、ミトタン（Ｏ、Ｐ−ＤＤＤ）及びアミノグルテチミドなどの副腎皮質抑制剤を含むその他の薬剤；プレドニゾン及び等価物などの副腎皮質ステロイドアンタゴニスト、デキサメタゾン及びアミノグルテチミド；ジェムザール（ＴＭ）（ゲムシタビン）、カプロン酸ヒドロキシプロゲステロン、酢酸メドロキシプロゲステロン及び酢酸メゲストロールなどのプロゲスチン；ジエチルスチルベストロール及びエチニルエストラジオール等価物などのエストロゲン；タモキシフェンなどの抗エストロゲンを含むホルモン及びアンタゴニスト；プロピオン酸テストステロン及びフルオキシメステロン／等価物を含むアンドロゲン；フルタミド、ゴナドトロピン放出ホルモン類似体及びロイプロリドなどの抗アンドロゲン；及びフルタミドなどの非ステロイド性抗アンドロゲン、を含む抗腫瘍剤が含まれる。エピジェネティックな機構を標的とする治療薬（Ｔｈｅｒａｐｉｅｓ）は、限���されないが、ヒストンデアセチラーゼ阻害剤、脱メチル化剤（例えば、Ｖｉｄａｚａ）を含み、そして転写抑制（ＡＴＲＡ）治療薬の放出は、抗原結合タンパク質と組み合わせることができる。一実施態様において、化学療法剤は、タキサン（例えば、パクリタキセル（タキソール）、ドセタキセル（タキソテール））、修飾パクリタキセル（例えば、アブラキサン及びオパキシオ）、ドキソルビシン、スニチニブ（スーテント）、ソラフェニブ（ネクサバール）、及びその他のマルチキナーゼ阻害剤、オキサリプラチン、シスプラチン及びカルボプラチン、エトポシド、ゲムシタビン、及びビンブラスチンからなる群から選択される。一実施態様において、化学療法剤は、タキサン（例えばタキソール（パクリタキセル）、ドセタキセル（タキソテール）、修飾パクリタキセル（例えばアブラキサン及びオパキシオ）からなる群から選択される。一実施態様において、付加的化学療法剤は、５−フルオロウラシル（５−ＦＵ）、ロイコボリン、イリノテカン、又はオキサリプラチンから選択される。一実施態様において、化学療法剤は、５−フルオロウラシル、ロイコボリン及びイリノテカン（ＦＯＬＦＩＲＩ）である。一実施態様において、化学療法剤は、５−フルオロウラシル、ロイコボリン及びオキサリプラチン（ＦＯＬＦＯＸ）である。
【０２５２】
付加的化学療法剤との併用療法の具体的な例は、例えば、乳がんの治療用に、タキサン（例えば、ドセタキセル又はパクリタキセル）又は修飾パクリタキセル（例えば、アブラキサン又はオパキシオ）、ドキソルビシン）、カペシタビン及び／又はベバシズマブ（アバスチン）による治療；卵巣がんには、カルボプラチン、オキサリプラチン、シスプラチン、パクリタキセル、ドキソルビシン（又は修飾ドキソルビシン（Ｃａｅｌｙｘ又はＤｏｘｉｌ））、又はトポテカン（ハイカムチン）による治療；腎臓がんの治療用に、マルチキナーゼ阻害剤、ＭＫＩ、（スーテント、ネクサバール、又は７０６）及び／又はドキソルビシンによる治療；扁平上皮癌の治療用にオキサリプラチン、シスプラチン及び／又は放射線とヒトＣＳＦ−１Ｒ抗体による治療；肺がんの治療用に、タキソール及び／又はカルボプラチンによる治療が含まれる。
【０２５３】
従って、一実施態様において、付加的化学療法剤は、乳がんの治療用に、タキサン（ドセタキセル又はパクリタキセル又は修飾パクリタキセル（アブラキサン又はオパキシオ）、ドキソルビシン、カペシタビン及び／又はベバシズマブの群から選択される。
【０２５４】
一実施態様において、ＣＳＦ−１Ｒ抗体／ＴＬＲ９アゴニストの併用療法は、化学療法剤が投与されない。
【０２５５】
本発明はまた、そのような疾患に罹患した患者の治療のための方法を含む。
【０２５６】
本発明は、本発明による抗体の有効量を薬学的に許容される担体と一緒に含む薬学的組成物の製造法、及びその方法のための本発明による抗体の使用を提供する。
【０２５７】
本発明は、がんに罹患した患者の治療のために、好ましくは薬学的に許容される担体と一緒に、医薬品の製造のための本発明による抗体の有効量での使用を更に提供する。
【０２５８】
本発明はまた、がんに罹患した患者の治療のために、好ましくは薬学的に許容される担体と一緒に、医薬品の製造のための本発明による抗体の有効量での使用を提供する。
【０２５９】
以下の実施例、配列表及び図面は、本発明、添付の特許請求の範囲に記載されている真の範囲の理解を助けるために提供される。本発明の精神から逸脱することなく、改変は記載された手順で行うことができることが理解される。
【０２６０】
配列の記述
配列番号１  重鎖ＣＤＲ３、Ｍａｂ ２Ｆ１１
配列番号２  重鎖ＣＤＲ２、Ｍａｂ ２Ｆ１１
配列番号３  重鎖ＣＤＲ１、Ｍａｂ ２Ｆ１１
配列番号４  軽鎖ＣＤＲ３、Ｍａｂ ２Ｆ１１
配列番号５  軽鎖ＣＤＲ２、Ｍａｂ ２Ｆ１１
配列番号６  軽鎖ＣＤＲ１、Ｍａｂ ２Ｆ１１
配列番号７  重鎖可変ドメイン、Ｍａｂ ２Ｆ１１
配列番号８  軽鎖可変ドメイン、Ｍａｂ ２Ｆ１１
配列番号９  重鎖ＣＤＲ３、Ｍａｂ ２Ｅ１０
配列番号１０  重鎖ＣＤＲ２、Ｍａｂ ２Ｅ１０
配列番号１１  重鎖ＣＤＲ１、Ｍａｂ ２Ｅ１０
配列番号１２  軽鎖ＣＤＲ３、Ｍａｂ ２Ｅ１０
配列番号１３  軽鎖ＣＤＲ２、Ｍａｂ ２Ｅ１０
配列番号１４  軽鎖ＣＤＲ１、Ｍａｂ ２Ｅ１０
配列番号１５  重鎖可変ドメイン、Ｍａｂ ２Ｅ１０
配列番号１６  軽鎖可変ドメイン、Ｍａｂ ２Ｅ１０
配列番号１７  重鎖ＣＤＲ３、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｃ１１
配列番号１８  重鎖ＣＤＲ２、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｃ１１
配列番号１９  重鎖ＣＤＲ１、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｃ１１
配列番号２０  軽鎖ＣＤＲ３、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｃ１１
配列番号２１  軽鎖ＣＤＲ２、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｃ１１
配列番号２２  軽鎖ＣＤＲ１、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｃ１１
配列番号２３  重鎖可変ドメイン、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｃ１１
配列番号２４  軽鎖可変ドメイン、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｃ１１
配列番号２５  重鎖ＣＤＲ３、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｄ８
配列番号２６  重鎖ＣＤＲ２、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｄ８
配列番号２７  重鎖ＣＤＲ１、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｄ８
配列番号２８  軽鎖ＣＤＲ３、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｄ８
配列番号２９  軽鎖ＣＤＲ２、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｄ８
配列番号３０  軽鎖ＣＤＲ１、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｄ８
配列番号３１  重鎖可変ドメイン、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｄ８
配列番号３２  軽鎖可変ドメイン、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｄ８
配列番号３３  重鎖ＣＤＲ３、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７
配列番号３４  重鎖ＣＤＲ２、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７
配列番号３５  重鎖ＣＤＲ１、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７
配列番号３６  軽鎖ＣＤＲ３、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７
配列番号３７  軽鎖ＣＤＲ２、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７
配列番号３８  軽鎖ＣＤＲ１、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７
配列番号３９  重鎖可変ドメイン、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７
配列番号４０  軽鎖可変ドメイン、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７
配列番号４１  重鎖ＣＤＲ３、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｆ１２
配列番号４２  重鎖ＣＤＲ２、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｆ１２
配列番号４３  重鎖ＣＤＲ１、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｆ１２
配列番号４４  軽鎖ＣＤＲ３、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｆ１２
配列番号４５  軽鎖ＣＤＲ２、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｆ１２
配列番号４６  軽鎖ＣＤＲ１、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｆ１２
配列番号４７  重鎖可変ドメイン、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｆ１２
配列番号４８  軽鎖可変ドメイン、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｆ１２
配列番号４９  重鎖ＣＤＲ３、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｇ１
配列番号５０  重鎖ＣＤＲ２、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｇ１
配列番号５１  重鎖ＣＤＲ１、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｇ１
配列番号５２  軽鎖ＣＤＲ３、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｇ１
配列番号５３  軽鎖ＣＤＲ２、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｇ１
配列番号５４  軽鎖ＣＤＲ１、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｇ１
配列番号５５  重鎖可変ドメイン、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｇ１
配列番号５６  軽鎖可変ドメイン、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｇ１
配列番号５７  ヒトカッパ軽鎖定常領域
配列番号５８  ＩｇＧ１由来のヒト重鎖定常領域
配列番号５９  Ｌ２３４Ａ及びＬ２３５Ａに関して変異されたＩｇＧ１由来のヒト重鎖定常領域
配列番号６０  ＩｇＧ４由来のヒト重鎖定常領域
配列番号６１  Ｓ２２８Ｐに関して変異されたＩｇＧ４由来のヒト重鎖定常領域
配列番号６２  ヒト野生型ＣＳＦ−１Ｒ（ｗｔ ＣＳＦ−１Ｒ）
配列番号６３  ヒト変異体ＣＳＦ−１Ｒ Ｌ３０１Ｓ Ｙ９６９Ｆ
配列番号６４  ヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（ドメインＤ１−Ｄ５）
配列番号６５  ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４
配列番号６６  ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ドメインＤ１−Ｄ３
配列番号６７  シグナルペプチド
配列番号６８  プライマー
配列番号６９  重鎖ＣＤＲ３、Ｍａｂ １Ｇ１０
配列番号７０  重鎖ＣＤＲ２、Ｍａｂ １Ｇ１０
配列番号７１  重鎖ＣＤＲ１、Ｍａｂ １Ｇ１０
配列番号７２  軽鎖ＣＤＲ３、Ｍａｂ １Ｇ１０
配列番号７３  軽鎖ＣＤＲ２、Ｍａｂ １Ｇ１０
配列番号７４  軽鎖ＣＤＲ１、Ｍａｂ １Ｇ１０
配列番号７５  重鎖可変ドメイン、Ｍａｂ １Ｇ１０
配列番号７６  軽鎖可変ドメイン、Ｍａｂ １Ｇ１０
配列番号７７  重鎖ＣＤＲ３、Ｍａｂ ２Ｈ７
配列番号７８  重鎖ＣＤＲ２、Ｍａｂ ２Ｈ７
配列番号７９  重鎖ＣＤＲ１、Ｍａｂ ２Ｈ７
配列番号８０  軽鎖ＣＤＲ３、Ｍａｂ ２Ｈ７
配列番号８１  軽鎖ＣＤＲ２、Ｍａｂ ２Ｈ７
配列番号８２  軽鎖ＣＤＲ１、Ｍａｂ ２Ｈ７
配列番号８３  重鎖可変ドメイン、Ｍａｂ ２Ｈ７
配列番号８４  軽鎖可変ドメイン、Ｍａｂ ２Ｈ７
配列番号８５  ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ドメインＤ４−Ｄ５
配列番号８６  ヒトＣＳＦ−１
配列番号８７  ヒトＩＬ−３４
配列番号８８  ヒトｔｏｌｌ様受容体９（ＴＬＲ９）
配列番号８９  ＴＬＲ９アゴニストＣｐＧ ＯＤＮ ２２１６
配列番号９０  ＴＬＲ９アゴニストＣｐＧ ＯＤＮ ＰＢ４
配列番号９１  ＴＬＲ９アゴニストＣｐＧ ＯＤＮ １００２
配列番号９２  ＴＬＲ９アゴニストＣｐＧ−７９０９（ＣｐＧ ２００６、ＰＦ−３５１２６７６，Ａｇａｔｏｌｉｍｏｄ）
配列番号９３  ＴＬＲ９アゴニストＣｐＧ−６８５（ＧＮＫＧ１６８；ＣｐＧ ＯＤＮ；ＳＢＩ Ｂｉｏｔｅｃｈ）
配列番号９４  ＴＬＲ９アゴニストＣｐＧ−６８４
配列番号９５  ＴＬＲ９アゴニストＣｐＧ−２８
【０２６１】
以下に本発明の実施態様を記載する：
１．がんの治療において使用のために、抗体が、Ｔｏｌｌ様受容体９（ＴＬＲ９）と併用して投与される、ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体。
２．がんの治療において使用のための医薬の製造のための
ｉ）ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体、及び
ｉｉ）Ｔｏｌｌ様受容体９（ＴＬＲ９）アゴニスト
の組み合わせの使用。
３．がんが、ＣＳＦ−１Ｒ発現又は過剰発現により更に特徴づけられる、実施態様１又は２に記載の抗体又は使用。
４．がんが、乳がん、結腸直腸がん、黒色腫、頭頸部がん、肺がん又は前立腺がんである、実施態様１又は２の何れか一に記載の抗体又は使用。
５．ａ）ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１リガンド非依存性ＣＳＦ−１Ｒ発現腫瘍細胞における細胞増殖の阻害；
ｂ）ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性ＣＳＦ−１Ｒ発現マクロファージ浸潤物を含む腫瘍の細胞増殖の阻害；
ｃ）（ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性）ＣＳＦ−１Ｒ発現単球及びマクロファージにおける細胞生存の阻害；及び／又は
ｄ）（ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性）ＣＳＦ−１Ｒ発現単球のマクロファージへの細胞分化の阻害；
において使用のためのヒトＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメインの（二量体化）ドメインＤ４からＤ５（配列番号８５）への結合を特徴とする、ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体であって、ＴＬＲ９アゴニストと併用して投与される、抗体。
６．ａ）ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１リガンド非依存性ＣＳＦ−１Ｒ発現腫瘍細胞における細胞増殖の阻害；
ｂ）ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性ＣＳＦ−１Ｒ発現マクロファージ浸潤物を含む腫瘍の細胞増殖の阻害；
ｃ）（ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性）ＣＳＦ−１Ｒ発現単球及びマクロファージにおける細胞生存の阻害；及び／又は
ｄ）（ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性）ＣＳＦ−１Ｒ発現単球のマクロファージへの細胞分化の阻害；
において使用のための医薬の製造のための
ｉ）ヒトＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメインの（二量体化）ドメインＤ４からＤ５（配列番号８５）に結合する抗体、及び
ｉｉ）Ｔｏｌｌ様受容体９（ＴＬＲ９）アゴニスト
の組み合わせの使用。
７．ＣＳＦ−１Ｒ発現腫瘍を有する又はＣＳＦ−１Ｒ発現マクロファージ浸潤物を含む腫瘍を有する患者の治療において使用のためのヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体であって、腫瘍はＣＳＦ−１Ｒリガンドの増加を特徴とし、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体はＴＬＲ９アゴニストと併用して投与される、方法。
８．腫瘍がＣＳＦ−１Ｒリガンドの増加により特徴づけられる、ＣＳＦ−１Ｒ発現腫瘍を有する又はＣＳＦ−１Ｒ発現マクロファージ浸潤物を含む腫瘍を有する患者の治療において使用のための医薬の製造のための、
ｉ）ヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体、及び
ｉｉ）Ｔｏｌｌ様受容体９（ＴＬＲ９）アゴニスト
の組み合わせの使用。
９．ＴＬＲ９アゴニストが、形質細胞様樹状細胞（ｐＤＣ）において、ＩＦＮ−α、ＩＬ−６及び／又はＩＬ−１２の誘導により特徴づけられる、実施態様１又は８の何れか一に記載の抗体又は使用。
１０．ＴＬＲ９アゴニストが、シトシン−ホスフェート−グアノシン（ＣｐＧ）モチーフ（ＣｐＧ ＯＤＮ）を含むオリゴデオキシヌクレオチドである、実施態様１から８の何れか一に記載の抗体又は使用。
１１．抗体が、ヒトＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメインの（二量体化）ドメインＤ４からＤ５（配列番号８５）への結合を特徴とする、実施態様１から１０の何れか一に記載の抗体又は使用。
１２．抗体が、ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４（配列番号６５）に結合しないことを特徴とする、実施態様１から１１の何れか一に記載の抗体。
１３．ａ）重鎖可変ドメインは配列番号７であり、軽鎖可変ドメインは配列番号８である；
ｂ）重鎖可変ドメインは配列番号１５であり、軽鎖可変ドメインは配列番号１６である；
ｃ）重鎖可変ドメインは配列番号７５であり、軽鎖可変ドメインは配列番号７６である；
ｄ）重鎖可変ドメインは配列番号８３であり、軽鎖可変ドメインは配列番号８４である；
ｅ）重鎖可変ドメインは配列番号２３であり、軽鎖可変ドメインは配列番号２４であり、又は
ｆ）重鎖可変ドメインは配列番号３１であり、軽鎖可変ドメインは配列番号３２であり、又は
ｇ）重鎖可変ドメインは配列番号３９であり、軽鎖可変ドメインは配列番号４０であり、又は
ｈ）重鎖可変ドメインは配列番号４７であり、軽鎖可変ドメインは配列番号４８であり、又は
ｉ）重鎖可変ドメインは配列番号５５であり、軽鎖可変ドメインは配列番号５６であることを特徴する、実施態様１から１２の何れか一に記載の抗体。
１４．ａ）重鎖可変ドメインは、配列番号１のＣＤＲ３領域、配列番号２のＣＤＲ２領域、及び配列番号３のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号４のＣＤＲ３領域、配列番号５のＣＤＲ２領域、及び配列番号６のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｂ）重鎖可変ドメインは、配列番号９のＣＤＲ３領域、配列番号１０のＣＤＲ２領域、及び配列番号１１のＣＤＲ１領域を含み、及び軽鎖可変ドメインは、配列番号１２のＣＤＲ３領域、配列番号１３のＣＤＲ２領域、及び配列番号１４のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｃ）重鎖可変ドメインは、配列番号１７のＣＤＲ３領域、配列番号１８のＣＤＲ２領域、及び配列番号１９のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２０のＣＤＲ３領域、配列番号２１のＣＤＲ２領域、及び配列番号２２のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｄ）重鎖可変ドメインは、配列番号２５のＣＤＲ３領域、配列番号２６のＣＤＲ２領域、及び配列番号２７のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号２８のＣＤＲ３領域、配列番号２９のＣＤＲ２領域、及び配列番号３０のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｅ）重鎖可変ドメインは、配列番号３３のＣＤＲ３領域、配列番号３４のＣＤＲ２領域、及び配列番号３５のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号３６のＣＤＲ３領域、配列番号３７のＣＤＲ２領域、及び配列番号３８のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｆ）重鎖可変ドメインは、配列番号４１のＣＤＲ３領域、配列番号４２のＣＤＲ２領域、及び配列番号４３のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号４４のＣＤＲ３領域、配列番号４５のＣＤＲ２領域、及び配列番号４６のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｇ）重鎖可変ドメインは、配列番号４９のＣＤＲ３領域、配列番号５０のＣＤＲ２領域、及び配列番号５１のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号５２のＣＤＲ３領域、配列番号５３のＣＤＲ２領域、及び配列番号５４のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｈ）重鎖可変ドメインは、配列番号６９のＣＤＲ３領域、配列番号７０のＣＤＲ２領域、及び配列番号７１のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号７２のＣＤＲ３領域、配列番号７３のＣＤＲ２領域、及び配列番号７４のＣＤＲ１領域を含み、又は
ｉ）重鎖可変ドメインは、配列番号７７のＣＤＲ３領域、配列番号７８のＣＤＲ２領域、及び配列番号７９のＣＤＲ１領域を含み、軽鎖可変ドメインは、配列番号８０のＣＤＲ３領域、配列番号８１のＣＤＲ２領域、及び配列番号８２のＣＤＲ１領域を含むことを特徴する、実施態様１から１３の何れか一に記載の抗体。
１５．抗体がヒトＩｇＧ１サブクラスのものであるか又はヒトＩｇＧ４サブクラスのものであることを特徴とする、実施態様１から１４の何れか一に記載の抗体。
１６．抗体がＴｏｌｌ様受容体９（ＴＬＲ９）アゴニストと併用して投与される、がんに罹患した患者にヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体の有効量を投与することを含む治療の方法。
１７．がんが、ＣＳＦ−１Ｒ発現又は過剰発現により更に特徴づけられる、実施態様１６に記載の方法。
１８．がんが、乳がん、結腸直腸がん、黒色腫、頭頸部がん、肺がん又は前立腺がんである、実施態様１６に記載の方法。
１９．ａ）ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１リガンド非依存性ＣＳＦ−１Ｒ発現腫瘍細胞における細胞増殖の阻害；
ｂ）ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性ＣＳＦ−１Ｒ発現マクロファージ浸潤物を含む腫瘍の細胞増殖の阻害；
ｃ）（ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性）ＣＳＦ−１Ｒ発現単球及びマクロファージにおける細胞生存の阻害；及び／又は
ｄ）（ＣＳＦ−１Ｒリガンド依存性及び／又はＣＳＦ−１Ｒリガンド非依存性）ＣＳＦ−１Ｒ発現単球のマクロファージへの細胞分化の阻害；
において使用のための、ヒトＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメインの（二量体化）ドメインＤ４からＤ５（配列番号８５）への結合を特徴とするヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体の有効量を投与することを含む方法であって、抗体は、ＴＬＲ９アゴニストの有効量と併用して投与される、方法。
２０．ＣＳＦ−１Ｒ発現腫瘍を有する又はＣＳＦ−１Ｒ発現マクロファージ浸潤物を含む腫瘍を有する患者の治療において使用のためのヒトＣＳＦ−１Ｒに結合する抗体の有効量を投与することを含む方法であって、腫瘍はＣＳＦ−１Ｒリガンドの増加を特徴とし、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体はＴＬＲ９アゴニストの有効量と併用して投与される、方法。
【０２６２】
以下の実施例、配列表及び図面は、本発明、添付の特許請求の範囲に記載されている真の範囲の理解を助けるために提供される。本発明の精神から逸脱することなく、改変は記載された手順で行うことができることが理解される。
【実施例】
【０２６３】
実施例１
抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体を産生するハイブリドーマ細胞株の生成
ＮＭＲＩマウスの免疫化方法
ＮＭＲＩマウスを、エレクトロポレーションを使用して、ｈｕＣＳＦ−１Ｒの細胞外ドメインをコードする発現ベクターｐＤｉｓｐｌａｙＴＭ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，ＵＳＡ）を用いて免疫化した。全てのマウスを１００μｇのＤＮＡで４回免疫化した。抗ｈｕＣＳＦ−１Ｒの血清力価が十分であった場合、マウスを、融合の４及び３日前に、静脈内に（ｉ．ｖ．）、２００μｌのＰＢＳ中に５０μｇの１：１混合ｈｕＣＳＦ−１Ｒ ＥＣＤ／ｈｕＣＳＦ−１Ｒ ＥＣＤｈｕＦｃキメラを用いて１回更にブーストした。
【０２６４】
抗原特異的ＥＬＩＳＡ
免疫化マウスの血清中における抗ＣＳＦ−１Ｒ力価を、抗原特異的ＥＬＩＳＡによって決定した。
０．３μｇ／ｍｌのｈｕＣＳＦ−１Ｒ−ｈｕＦｃキメラ（可溶性細胞外ドメイン）を、ストレプトアビジンプレート（ＭａｘｉＳｏｒｂ；ＭｉｃｒｏＣｏａｔ，ＤＥ，カタログ番号１１９７４９９８／ＭＣ１０９９）において、０．１ｍｇ／ｍｌのビオチン化抗Ｆｃγ（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ．，カタログ番号１０９−０６６−０９８）を用いて捕獲し、ＰＢＳ／０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０／０．５％ＢＳＡにおいて１／８００に希釈された西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）コンジュゲート化Ｆ（ａｂ’）２抗マウス（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ，ＵＫ，カタログ番号ＮＡ９３１０Ｖ）を加えた。全タップからの血清をＰＢＳ／０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０／０．５％ＢＳＡにおいて１／４０に希釈し、段階的に１／１６３８４００まで希釈した。希釈血清をウェルに加えた。プレタップ血清を陰性対照として使用した。５００ｎｇ／ｍｌ〜０，２５ｎｇ／ｍｌのマウス抗ヒトＣＳＦ−ＩＲ Ｍａｂ３２９１（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ，ＵＫ）の希釈系列を陽性対照として使用した。全要素を共に１，５時間インキュベートし、ウェルをＰＢＳＴ（ＰＢＳ／０．２％Ｔｗｅｅｎ２０）を用いて６回洗浄し、アッセイを新鮮に調製されたＡＢＴＳ（登録商標）溶液（１ｍｇ／ｍｌ）（ＡＢＴＳ：２，２’−アジノ ビス（３−エチルベンズチアゾリン−６−スルホン酸）を用いて１０分間室温で展開させた。吸光度を４０５ｎｍで測定した。
【０２６５】
ハイブリドーマ生成
マウスリンパ球は単離され、ＰＥＧに基づく標準プロトコルを使用してマウス骨髄腫細胞株を用いて融合されハイブリドーマが生成されうる。得られたハイブリドーマは次いで、抗原特異的抗体の産生に対しスクリーニングされる。例えば、免疫化マウスからの脾臓由来リンパ球の単一細胞懸濁液は、５０％ＰＥＧを用いてＡｇ８非分泌マウス骨髄腫細胞Ｐ３Ｘ６３Ａｇ８．６５３（ＡＴＣＣ，ＣＲＬ−１５８０）と融合される。細胞は、平底９６ウェルマイクロタイタープレートにおよそ１０４でプレーティングされ、次いで選択培地において約２週間インキュベートされる。個々のウェルは次いで、ＥＬＩＳＡによって、ヒト抗ＣＳＦ−１ＲモノクローナルＩｇＭ及びＩｇＧ抗体に対してスクリーニングされる。一旦大規模なハイブリドーマ増殖が生じたら、抗体分泌ハイブリドーマは再プレーティングされ、再度スクリーニングされ、もしヒトＩｇＧ抗ＣＳＦ−１Ｒモノクローナル抗体に対して依然として陽性である場合には、ＦＡＣＳによってサブクローニングされうる。安定サブクローンは次いで、特徴づけのために組織培養培地において抗体を生産するためにインビトロで培養される。本発明による抗体は、実施例４に記載されるように、ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４及びヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）に対する抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の結合の決定と、並びに実施例５に記載されるように、抗ＣＳＦ−１Ｒモノクローナル抗体による処置の元で、野生型ＣＳＦ−１Ｒ（リガンド依存性シグナル伝達）又は変異型ＣＳＦ−１Ｒ Ｌ３０１Ｓ Ｙ９６９Ｆ（リガンド非依存性シグナル伝達）でトランスフェクトされたＮＩＨ３Ｔ３細胞の増殖阻害の決定を用いて選択することができた。
【０２６６】
ハイブリドーマの培養
生成されたｍｕＭＡｂハイブリドーマを、２ｍＭのＬ−グルタミン（ＧＩＢＣＯ−カタログ番号３５０５０−０３８）、１ｍＭのＮａ−Ｐｙｒｕｖａｔ（ＧＩＢＣＯ−カタログ番号１１３６０−０３９）、１×ＮＥＡＡ（ＧＩＢＣＯ−カタログ番号１１１４０−０３５）、１０％ＦＣＳ（ＰＡＡ−カタログ番号Ａ１５−６４９）、１×Ｐｅｎ Ｓｔｒｅｐ（Ｒｏｃｈｅ−カタログ番号１０７４４４０）、１×Ｎｕｔｒｉｄｏｍａ ＣＳ（Ｒｏｃｈｅ−カタログ番号１３６３７４３）、５０μＭのメルカプトエタノール（ＧＩＢＣＯ−カタログ番号３１３５０−０１０）及び５０Ｕ／ｍｌのＩＬ６マウス（Ｒｏｃｈｅ−カタログ番号１ ４４４ ５８１）で補充されたＲＰＭＩ １６４０（ＰＡＮ−カタログ番号（Ｃａｔ．Ｎｏ．）ＰＯ４−１７５００）において、３７℃、５％ＣＯ２で培養した。得られたマウス抗体の幾つかは、ヒト化され（例えば、Ｍａｂ ２Ｆ１１）、組換え的に発現された。
【０２６７】
実施例２
ＣＳＦ−１ＲへのＣＳＦ−１の結合の阻害（ＥＬＩＳＡ）
最初に、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体をＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤに結合させ、その後受容体に結合していないリガンドを検出する本アッセイを設定することにより、リガンド置換抗体及び二量体化阻害抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の両方を試験することができる。試験を、３８４ウェルマイクロタイタープレート（ＭｉｃｒｏＣｏａｔ，ＤＥ，カタログ番号４６４７１８）において室温で実施した。各インキュベーション工程後、プレートをＰＢＳＴで３回洗浄した。
初めに、プレートを、０．５ｍｇ／ｍｌのヤギＦ（ａｂ’）２ビオチン化抗Ｆｃγ（Ｊａｃｋｓｏｎ ＩｍｍｕｎｏＲｅｓｅａｒｃｈ．，カタログ番号１０９−００６−１７０）で、１時間（ｈ）コートした。
その後、ウェルを、０．２％Ｔｗｅｅｎ（登録商標）−２０及び２％ＢＳＡ（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ ＧｍｂＨ，ＤＥ）で補充されたＰＢＳで０．５ｈブロックした。７５ｎｇ／ｍｌのｈｕＣＳＦ−１Ｒ−ｈｕＦｃキメラ（ｈｕＣＳＦ−１Ｒの可溶性細胞外ドメインを形成する）を、１ｈ、プレートに固定化した。次いで、ＰＢＳ／０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０／０．５％ＢＳＡ中における精製抗体の希釈を、１ｈ、インキュベートした。３ｎｇ／ｍｌのｈｕＣＳＦ−１（ヒトＣＳＦ−１の活性な１４９アミノ酸断片（配列番号８６のアミノ酸３３−１８１；Ｂｉｏｍｏｌ，ＤＥ，カタログ番号６０５３０））、５０ｎｇ／ｍｌのビオチン化抗ＣＳＦ−１クローンＢＡＦ２１６（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ，ＵＫ）及び１：５０００に希釈されたストレプトアビジンＨＲＰ（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ ＧｍｂＨ，ＤＥ，カタログ番号１１０８９１５３００１）の混合物を１ｈ加えた後、プレートをＰＢＳＴで６回洗浄した。リガンド−受容体相互作用を阻害する抗ＣＳＦ−１Ｒ ＳＣ ２−４Ａ５（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，ＵＳ）を陽性対照として使用した。プレートを、新鮮に調製されたＢＭブルー（登録商標）ＰＯＤ基質溶液（ＢＭブルー：３，３´−５，５´−テトラメチルベンジジン、Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ ＧｍｂＨ，ＤＥ，カタログ番号１１４８４２８１００１）を用いて３０分間室温で展開させた。吸光度を３７０ｎｍで測定した。抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体が二量体複合体からのＣＳＦ−１の放出を生じる場合に、吸光の減少が観察される。全ての抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体は、ＣＳＦ−１ＲとのＣＳＦ−１の相互作用の有意な阻害を示した（表１を参照）。リガンド−受容体相互作用を阻害する抗ＣＳＦ−１Ｒ ＳＣ ２−４Ａ５（Santa Cruz Biotechnology, Sherr, C.J. et al., Blood 73 (1989) 1786-1793も参照）を参照対照として使用した。
0006506254.tif 000002
【０２６８】
実施例３
ＮＩＨ３Ｔ３−ＣＳＦ−１Ｒ組換え細胞におけるＣＳＦ−１誘発ＣＳＦ−１Ｒリン酸化の阻害
完全長ＣＳＦ−１Ｒに対する発現ベクターでレトロウイルス性感染された４．５×１０３のＮＩＨ ３Ｔ３細胞を、ＤＭＥＭ（ＰＡＡカタログ番号Ｅ１５−０１１）、２ｍＭのＬ−グルタミン（Ｓｉｇｍａ，カタログ番号Ｇ７５１３，２ｍＭのピルビン酸ナトリウム、１×非必須アミノ酸、１０％ＦＫＳ（ＰＡＡ，カタログ番号Ａ１５−６４９）及び１００μｇ／ｍｌのＰｅｎＳｔｒｅｐ（Ｓｉｇｍａ，カタログ番号Ｐ４３３３［１０ｍｇ／ｍｌ］）において、それらがコンフルエンシーに達するまで培養した。その後、細胞を、亜セレン酸ナトリウム［５ｎｇ／ｍｌ］（Ｓｉｇｍａ，カタログ番号Ｓ９１３３）、トランスフェリン［１０μｇ／ｍｌ］（Ｓｉｇｍａ，カタログ番号Ｔ８１５８）、ＢＳＡ［４００μｇ／ｍｌ］（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ ＧｍｂＨ，カタログ番号１０７３５０７８）、４ｍＭのＬ−グルタミン（Ｓｉｇｍａ，カタログ番号Ｇ７５１３）、２ｍＭのピルビン酸ナトリウム（Ｇｉｂｃｏ，カタログ番号１１３６０）、１×非必須アミノ酸（Ｇｉｂｃｏ，Ｃａｔ：１１１４０−０３５）、２−メルカプトエタノール［０，０５ｍＭ］（Ｍｅｒｃｋ，カタログ番号Ｍ７５２２）、１００μｇ／ｍｌ及びＰｅｎＳｔｒｅｐ（Ｓｉｇｍａ，カタログ番号Ｐ４３３３）で補充された無血清ＤＭＥＭで洗浄し、３０μｌの同じ培地において１６時間インキュベートし、受容体をアップレギュレーションさせた。１０μｌの希釈抗ＣＳＲ−１Ｒ抗体を細胞に１．５ｈ加えた。次いで、細胞を５分間、１０μｌの１００ｎｇ／ｍｌのｈｕ ＣＳＦ−１（ヒトＣＳＦ−１の活性１４９アミノ酸断片（配列番号８６のアミノ酸３３−１８１）；Ｂｉｏｍｏｌ，ＤＥ，カタログ番号６０５３０）で刺激した。インキュベーション後、上澄みを取り除き、細胞を８０μｌの氷冷ＰＢＳで２回洗浄し、５０μｌの新鮮に調製された氷冷溶解緩衝液（１５０ｍＭのＮａＣｌ／２０ｍＭのＴｒｉｓ ｐＨ７．５／１ｍＭのＥＤＴＡ／１ｍＭのＥＧＴＡ／１％トリトンＸ１００／１プロテアーゼインヒビタータブレット（Ｒｏｃｈｅ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ ＧｍｂＨ カタログ番号１ ８３６ １７０）ｐｅｒ１０ｍｌの緩衝液／１０μｌ／ｍｌのホスファターゼインヒビターカクテル１（Ｓｉｇｍａ カタログ番号 Ｐ−２８５０，１００×Ｓｔｏｃｋ）／１０μｌ／ｍｌのプロテアーゼインヒビター１（Ｓｉｇｍａカタログ番号Ｐ−５７２６，１００×Ｓｔｏｃｋ）／１０μｌ／ｍｌ １ＭのＮａＦ）を加えた。氷上に３０分後、プレートをプレートシェイカー上で３分間勢いよく振とうさせ、次いで２２００ｒｐｍで１０分間遠心分離させた（Ｈｅｒａｅｕｓ Ｍｅｇａｆｕｇｅ １０）。
細胞溶解物におけるリン酸化及び全ＣＳＦ−１受容体の存在を、Ｅｌｉｓａで分析した。リン酸化受容体の検出のために、Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ（カタログ番号ＤＹＣ３２６８−２）からのキットを、サプライヤーの指示に従って使用した。全ＣＳＦ−１Ｒの検出のために、１０μｌの溶解物を、キットに含まれる捕獲抗体の使用によりプレートに固定化した。その後、１：７５０に希釈されたビオチン化抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体ＢＡＦ３２９（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ）及び１：１０００に希釈されたストレプトアビジン−ＨＲＰコンジュゲートを加えた。６０分後、プレートを新鮮に調製されたＡＢＴＳ（登録商標）溶液で展開させ、吸光度を検出した。データを、抗体を用いない陽性対照の％、及び発現されたリン酸／全受容体の比率として算出した。陰性対照を、Ｍ−ＣＳＦ−１を加えずに定義した。リガンド−受容体相互作用を阻害する抗ＣＳＦ−１Ｒ ＳＣ ２−４Ａ５（Santa Cruz Biotechnology,Sherr,C.J. et al., Blood 73 (1989) 1786-1793も参照）を参照対照として使用した。
0006506254.tif 000003
【０２６９】
実施例４
抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の、ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４及びヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）への結合の決定
配列番号６４のヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）（細胞外サブドメインＤ１−Ｄ５を含む、ｈＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）の調製
ｐＣＭＶ−ｐｒｅＳ−Ｆｃ−ｈＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ（７８３６塩基対）は、ＣＭＶプロモーターの制御下で、Ｃ末端がＰｒｅＳｃｉｓｓｉｏｎプロテアーゼ切断部位に融合し、続いてヒトＩｇＧ１のアミノ酸１００−３３０及び６×ヒスタグが続く、ヒトＣＳＦ−１Ｒの完全なＥＣＤ（配列番号６４）をコードする。天然のシグナルペプチドは、ＢａｍＨＩ制限酵素部位をつくるために、最初のＭの後にアミノ酸のＧ及びＳを挿入することにより変えられている。
【０２７０】
配列番号６５のヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４（細胞外サブドメインＤ１−Ｄ３、及びＤ５を含む、ｈＣＳＦ−１Ｒ−ｄｅｌＤ４）の調製：
ｈＣＳＦ１Ｒ−ｄｅｌＤ４−Ｖ１−ＰｒｅＳｃ−ｈＦｃ−Ｈｉｓは、ストラタジーン社のＱｕｉｋＣｈａｎｇｅ ＸＬ部位特異的突然変異誘発のプロトコルを用いて、フォワードプライマーとして配列ＣＡＣＣＴＣＣＡＴＧＴＴＣＴＴＣＣＧＧＴＡＣＣＣＣＣＣＡＧＡＧＧＴＡＡＧ（配列番号６８）を有するｄｅｌＤ４−ｆｏｒを使用し、リバースプライマーとして逆相補配列を有するｄｅｌＤ４−ｒｅｖを使用して、ｐＣＭＶ−ｐｒｅＳ−Ｆｃ−ｈＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤからクローニングされた。ＢｉｏＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ２６（１９９９）６８０に出版されたプロトコールの変法が使用され、ストラタジーン社の正規プロトコルに先行する３つのサイクルにおいて別々反応で両方のプライマーを拡張した。
２つの独立した５０μｌの反応混合物が製造者のマニュアルに従い設定され、各々は鋳型としてプラスミドｐＣＭＶ−ｐｒｅＳ−Ｆｃ−ｈＣＳＦ１Ｒ−ＥＣＤを１０ｎｇ、プライマーのｄｅｌＤ４−ｆｏｒ又はｄｅｌＤ４−ｒｅｖの一方を１０ｐＭ，及びキットで提供されたＰｆｕ ＤＮＡポリメラーゼを０．５μｌ含有する。３回のＰＣＲサイクル、９５℃で３０秒／５５℃で６０秒／６８℃で８分が実行され、その後両方の反応混合物の各々２５μｌが新しいチューブに混合され、０．５μｌの新鮮なＰｆｕ ＤＮＡポリメラーゼが添加された。ストラタジーン社によってキットのマニュアルに指定された１８の温度サイクルによる正規のＰＣＲプロトコールが実施され、続いてキットに提供されたＤｐｎ１制限酵素で２時間最終の消化を行った。欠失を有するクローンはＣＥＬ ＩＩ及びＮｏｔ Ｉによる消化によって検出され、シークエンシングにより確認された。
タンパク質は、製造元の仕様に従って、Ｈｅｋ２９３ ＦｒｅｅＳｔｙｌｅ懸濁細胞システム（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）中で一過性トランスフェクションによって調製した。１週間後、５００ｍｌの上清が濾過され、１ｍｌのＨｉＴｒａｐ ＭａｂＳｅｌｅｃｔ Ｘｔｒａ（ＧＥ ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）プロテインＡカラムへロードされた（０．２ｍｌ／分）。カラムは最初にＰＢＳで洗浄され、その後５０ｍＭのＴｒｉｓ／１５０ｍＭのＮａＣｌ／１ｍＭのＥＤＴＡ／ｐＨ７，３で洗浄された。同じ緩衝液の３７５μｌに希釈された７５μｌのＰｒｅＳｃｉｓｓｉｏｎ Ｐｒｏｔｅａｓｅ（ＧＥ＃２７−０８４３−０１）がカラムにロードされて、クローズドカラムは４℃でローリングさせながら一晩インキュベートした。カラムは１ｍｌのＧＳＴｒａｐ ＦＦカラム（ＧＥ ｈｅｌｔｈｃａｒｅ）の上にマウントされ、望みのタンパク質が溶出された（０．２ｍｌ／分，０．２ｍｌフラクション）。プールされたフラクションは、３ｋナノセップ（Ｎａｎｏｓｅｐ）での遠心限外ろ過により、１．８ｍｌから０．４ｍｌへ濃縮され、ＰＢＳ中でＳ２００ ＨＲ ＳＥＣ上でクロマトグラフされた（０．５ｍｌ／分）。
ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４は２つのフラクションで得られ、二量体分子として（プール１、Ｖ＝１．５ｍｌ；ｃ＝０．３０ｍｇ／ｍｌ；ＳＤＳページでの見かけの質量は８３ｋＤａ，換算質量６２ｋＤａ）、及び単量体として（プール２、Ｖ＝１．４ｍｌ；ｃ＝０．２５ｍｇ／ｍｌ；ＳＤＳページでの見かけの質量は６２ｋＤａ）。二量体形態が全ての実験で使用された。
【０２７１】
抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体のヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４への結合及びヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）への結合の決定（反応単位（ＲＵ）としての結合シグナル）：
機器：ビアコアＴ１００（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）
ソフトウエア：Ｔ１００対照、バージョン２．０．１
Ｔ１００エバリュエーション、バージョン２．０．２
アッセイ形式  チップ：ＣＭ５
温度：２５℃
ＣＳＦ−１Ｒ断片はアミンカップリングを介して固定された。本発明による抗体による異なる抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の結合を比較するため、試験抗体の一つの濃度が注入された。抗ＣＳＦ−１ＲのＭａｂ３２９１（Ｒ＆Ｄ−Ｓｙｓｔｅｍｓ）及びＳＣ ２−４Ａ５（Santa Cruz Biotechnology,US- Sherr, C.J. et al., Blood 73 (1989) 1786-1793も参照）が参照対照として使用され、抗ＣＣＲ５の＜ＣＣＲ５＞Ｐｚ０３．１Ｃ５（２００４年８月１８日にＤＳＭＺにＤＳＭ ＡＣＣ ２６８３として寄託された）が陰性対照として使用され、全ては本発明による抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体と同じ条件下で使用された。
【０２７２】
ＣＳＦ−１Ｒ断片のアミンカップリング
製造者の指示に従った標準的なアミンカップリング：泳動用緩衝液：ＰＢＳ−Ｔ（Ｒｏｃｈｅ：１１ ６６６ ７８９＋０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０：１１ ３３２ ４６５）、ＥＤＣ／ＮＨＳの混合物による活性化、ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４（細胞外サブドメインＤ１−Ｄ３及びＤ５を含む）（配列番号６５）及びヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）（細胞外サブドメインＤ１−Ｄ５を含む）（配列番号６４）を６００秒、流速１０μｌ／分で注入；カップリング緩衝液ＮａＡｃ、ｐＨ５．０、ｃ＝１０μｇ／ｍＬで希釈し；最後に残りの活性化カルボキシル基は、１Ｍのエタノールアミンの注入によってブロックされた。
【０２７３】
＜ＣＳＦ−１Ｒ＞Ｍａｂ２Ｆ１１、Ｍａｂ２Ｅ１０、Ｍａｂ３２９１及びｓｃ２−４Ａ５、及び他の抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体のヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４及びヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）への２５℃における結合
泳動用緩衝液：ＰＢＳ−Ｔ（Ｒｏｃｈｅ：１１ ６６６ ７８９ ＋ ０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０：１１ ３３２ ４６５）
分析物試料：
結合は、分析物を濃度ｃ＝１０ｎＭで１回の注入により、３０μＬ／分の流速で測定された。（Ｍａｂ １Ｇ１０、Ｍａｂ ２Ｈ７及びヒト化ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７については第二の実験で）。各注入は７００秒の長さであり、その後１８０秒の分離段階が続いた。最終の再生は、各サイクル後に５０ｍＭのＮａＯＨを用い、接触時間６０秒、流速３０μＬ／分で行われた。
シグナルは注入終了後１０秒の報告点により測定された。参照シグナル（空の参照フローセル（ＥＤＣ／ＮＨＳ及びエタノールアミンのみで処置）由来のシグナル）が差し引かれて、結合シグナルを（ＲＵとして）与えた。非結合抗体の結合シグナルがわずかに０未満であった場合には（Ｍａｂ ２Ｆ１１＝−３；Ｍａｂ ２Ｅ１０＝−２；Ｍａｂ １Ｇ１０＝−６，Ｍａｂ ２Ｈ７＝−９；及びヒト化ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７＝−７）、値は０に設定された。
0006506254.tif 000004
Ｍａｂ ２Ｆ１１及びＭａｂ ２Ｅ１０はヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）への結合を示した（図３ｂを参照）；しかし、ＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４に対しては結合は検出されなかった（図３ａ参照）。
Ｓｃ２−４Ａ５及びＭＡＢ３２９１はＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ及びｄｅｌ Ｄ４への結合を示した（図３ｂ及び３ａを参照）。
従って、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体Ｍａｂ ２Ｆ１１及びＭａｂ ２Ｅ１０のＣＳＦ１Ｒ断片ｄｅｌＤ４への結合／抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体Ｍａｂ ２Ｆ１１及びＭａｂ ２Ｅ１０のＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤへの結合の比率は明らかに１：５０（＝０．０２）未満であったが、ＭＡＢ３２９１及びＳｃ２−４Ａの結合比率はそれぞれ１．６１及び１．５０であって、１：５０（＝０．０２）を超えて大きかった。陰性対照抗体ｍ＜ＣＣＲ５＞Ｐｚ０３．１Ｃ５はいかなる結合をも示さなかった（予想された通り）。
Ｍａｂ １Ｇ１０、Ｍａｂ ２Ｈ７及びヒト化ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７はヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）への結合を示したが（図３ｄを参照）；しかしＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４に対して、結合は検出されなかった（図３ｃを参照）。従って、抗ＣＳＦ１Ｒ抗体のＭａｂ １Ｇ１０、Ｍａｂ ２Ｈ７及びヒト化ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７のＣＳＦ１Ｒ断片ｄｅｌＤ４への結合／抗ＣＳＦ１Ｒ抗体のＭａｂ １Ｇ１０、Ｍａｂ ２Ｈ７及びヒト化ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７のＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤへの結合の比率は、明らかに１：５０（＝０．０２）未満であった。
更なる実験にて、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体１．２．ＳＭ（国際公開第２００９０２６３０３号に記載されたリガンド置換ＣＳＦ−１Ｒ抗体）、ＣＸＩＩＧ６（国際公開第２００９／１１２２４５号に記載されたリガンド置換ＣＳＦ−１Ｒ抗体）、ヤギポリクローナル抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体ａｂ１０６７６（ａｂｃａｍ）が調べられた。抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体のＭａｂ３２９１（Ｒ＆Ｄ−Ｓｙｓｔｅｍｓ）が参照対照として用いられた。抗ＣＣＲ５ ｍ＜ＣＣＲ５＞Ｐｚ０３．１Ｃ５（ＤＳＭＺに２００４年８月１８日にＤＳＭ ＡＣＣ ２６８３として寄託された）が陰性対照として使用された。
0006506254.tif 000005
１．２．ＳＭ、ＣＸＩＩＧ６、ａｂ１０６７６及びＭＡＢ３２９１は、ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤへ及びｄｅｌ Ｄ４への結合を示した（図３ｆ及び３ｅを参照）。
１．２．ＳＭ、ＣＸＩＩＧ６、ａｂ１０６７６及びＭＡＢ３２９１の結合比率は１：５０（＝０．０２）を超えて大きかった。陰性対照抗体ｍ＜ＣＣＲ５＞Ｐｚ０３．１Ｃ５はいかなる結合をも示さなかった（予想された通り）。
【０２７４】
実施例５
抗ＣＳＦ−１Ｒモノクローナル抗体による処置下の３次元培養におけるＮＩＨ３Ｔ３−ＣＳＦ−１Ｒ組換え細胞の増殖阻害（ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏ−アッセイ）
全長の野生型ＣＳＦ−１Ｒ（配列番号６２）又は変異体ＣＳＦ−１Ｒ Ｌ３０１Ｓ Ｙ９６９Ｆ（配列番号６３）の何れかでレトロウイルス性に感染させたＮＩＨ ３Ｔ３細胞が、プラスチック表面への付着を防ぐためにポリ−ＨＥＭＡ（ポリ（２−ヒドロキシエチルメタクリレート））（Ｐｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｗａｒｒｉｎｇｔｏｎ，ＰＡ，ＵＳＡ））でコーティングされたディッシュ上で、２ｍＭのＬ−グルタミン、２ｍｍのピルビン酸ナトリウム、非必須アミノ酸及び１０％ウシ胎児血清（Ｓｉｇｍａ，Ｔａｕｆｋｉｒｃｈｅｎ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を補充されたＤＭＥＭ高グルコース培地（ＰＡＡ，Ｐａｓｃｈｉｎｇ，Ａｕｓｔｒｉａ）で培養された。細胞は、血清を５ｎｇ／ｍｌ亜セレン酸ナトリウム、１０ｍｇ／ｍｌトランスフェリン、４００μｇ／ｍｌＢＳＡ及び０．０５ｍＭの２−メルカプトエタノールで置き換えた培地に播種される。１００ｎｇ／ｍｌのｈｕＣＳＦ−１（ヒトＣＳＦ−１の活性な１４９アミノ酸断片（配列番号８６のアミノ酸３３−１８１）；Ｂｉｏｍｏｌ， ＤＥ， カタログ番号６０５３０）で処置されると、ｗｔＣＳＦ−１Ｒ発現細胞は、足場非依存性と呼ばれている性質である、３次元的に成長する密集したスフェロイドを形成する。これらのスフェロイドはインサイツで固形腫瘍の３次元的な構築と組織化に密接に類似している。変異体ＣＳＦ−１Ｒ組換え細胞はＣＳＦ−１リガンドと無関係な球状体を形成する。球状体培養物はＩＣ５０（細胞生存率の５０パーセント阻害の濃度）を決定するため、異なる濃度の抗体の存在下、３日間インキュベートされた。ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏアッセイは、細胞のＡＴＰ含有量の測定により細胞生存率を検出するために用いられた。
0006506254.tif 000006
参照対照のＭａｂ Ｒ＆Ｄ−Ｓｙｓｔｅｍｓ ３２９１は変異体ＣＳＦ−１Ｒ組換え細胞増殖の阻害を示さなかった。
さらなる実験では、本発明による抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７、及び抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体、１．２．ＳＭ（国際公開第２００９０２６３０３号に記載されたリガンド置換ＣＳＦ−１Ｒ抗体）、ＣＸＩＩＧ６（国際公開第２００９／１１２２４５号に記載されたリガンド置換ＣＳＦ−１Ｒ抗体）、ヤギポリクローナル抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体のａｂ１０６７６（ａｂｃａｍ）、及び２−４Ａ５（Santa Cruz Biotechnology,US- Sherr, C.J. et al., Blood 73 (1989) 1786-1793も参照）が調べられた。
スフェロイド培養物はＩＣ３０（細胞生存率の３０パーセント阻害の濃度）を決定するため、異なる濃度の抗体の存在下、３日間インキュベートされた。最大濃度は２０μｇ／ｍｌであった。ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏアッセイは、細胞のＡＴＰ含有量の測定により細胞生存率を検出するために用いられた。
0006506254.tif 000007
【０２７５】
実施例６
抗ＣＳＦ−１Ｒモノクローナル抗体で処置下の３次元培養物におけるＢｅＷｏ腫瘍細胞の増殖阻害（ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏ−アッセイ）
ＢｅＷｏ絨毛癌細胞（ＡＴＣＣ ＣＣＬ−９８）が、１０％ＦＢＳ及び２ｍＭのＬ−グルタミンを補充されたＦ１２Ｋ培地（Ｓｉｇｍａ，Ｓｔｅｉｎｈｅｉｍ，Ｇｅｒｍａｎｙ）で培養された。５×１０４細胞／ウェルが９６穴のポリＨＥＭＡ（ポリ（２−ヒドロキシエチルメタクリレート））でコーティングされた、０．５％ＦＢＳ及び５％ＢＳＡを補充されたＦ１２Ｋ培地を含むプレートに播種された。付随して、２００ｎｇ／ｍｌのｈｕＣＳＦ−１（ヒトＣＳＦ−１の活性な１４９アミノ酸断片（配列番号８６のアミノ酸３３−１８１））及び１０μｇ／ｍｌの異なる抗ＣＳＦ−１Ｒモノクローナル抗体が添加され、６日間インキュベートされた。細胞生存率を、その細胞のＡＴＰ含有量を測定することにより相対発光量（ＲＬＵ）で検出するために、ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏアッセイが用いられた。ＢｅＷｏ球状体培養物が別々の抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体（１０μｇ／ｍｌ）で処置されると、ＣＳＦ−１誘導性増殖の阻害が観察された。抗体媒介性阻害を計算するために、非刺激ＢｅＷｏ細胞の平均のＲＬＵ値が全ての試料から差し引かれた。ＣＳＦ−１刺激細胞の平均のＲＬＵ値は任意で１００％に設定された。ＣＳＦ−１で刺激され、かつ抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体で処置された細胞の平均のＲＬＵ値は、ＣＳＦ−１で刺激されたＲＬＵの％で計算された。表６は、抗ＣＳＦ−１Ｒモノクローナル抗体による処置下の３次元培養におけるＢｅＷｏ腫瘍細胞の増殖阻害についての計算されたデータを示す；図２ａ及びｂは規格化された平均のＲＬＵ値を表わす。
0006506254.tif 000008
【０２７６】
実施例７
抗ＣＳＦ−１Ｒモノクローナル抗体による処置下のヒトマクロファージ分化の阻害（ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏ−アッセイ）
ヒトの単球がＲｏｓｅｔｔｅＳｅｐＴＭヒト単球濃縮カクテル（Ｈｕｍａｎ Ｍｏｎｏｃｙｔｅ Ｅｎｒｉｃｈｍｅｎｔ Ｃｏｃｋｔａｉｌ）（ＳｔｅｍＣｅｌｌ Ｔｅｃｈ．カタログ番号１５０２８）を用いて末梢血から単離された。濃縮された単球個体群は、３７℃、５％のＣＯ２の加湿した大気中で、１０％ＦＣＳ（ＧＩＢＣＯ−カタログ番号０１１−０９００１４Ｍ），４ｍＭのＬ−グルタミン（ＧＩＢＣＯ−カタログ番号２５０３０）及び１×ＰｅｎＳｔｒｅｐ（Ｒｏｃｈｅカタログ番号１ ０７４ ４４０）を補充された１００μｌのＲＰＭＩ １６４０（Ｇｉｂｃｏ−カタログ番号３１８７０）を含む９６穴のマイクロタイタープレートへ播種された（２．５×１０４細胞／ウェル）。培地に１５０ｎｇ／ｍｌのｈｕＣＳＦ−１が添加されると、接着性マクロファージへの明確な分化が観察された。この分化は抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の添加で阻害された。更に、単球の生存が影響を受けており、ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏ（ＣＴＧ）分析により分析することができた。抗体処置による単球の生存の濃度依存性阻害からＩＣ５０が計算された（図７を参照）。
0006506254.tif 000009
別の試験シリーズにおいて、Ｍａｂ ２ Ｆ１１のヒト化型、例えば、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｃ１１、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｄ８、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７、ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｆ１２、は、ＩＣ５０の値として、０．０７μｇ／ｍｌ（ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｃ１１）、０．０７μｇ／ｍｌ（ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｄ８）、０．０４μｇ／ｍｌ（ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７）及び０．０９μｇ／ｍｌ（ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｆ１２）を示した。
【０２７７】
実施例８
抗ＣＳＦ−１Ｒモノクローナル抗体による処置下のカニクイザルマクロファージ分化の阻害（ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏ−アッセイ）
カニクイザル単球は、ＣＤ１４ ＭｉｃｒｏＢｅａｄｓの非ヒト霊長類キット（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ−カタログ番号１３０−０９１−０９７）を製造者の記述に従って使用して、末梢血から単離された。濃縮された単球個体群は、３７℃、５％のＣＯ２の加湿した大気中で、１０％ＦＣＳ（ＧＩＢＣＯ−カタログ番号０１１−０９００１４Ｍ），４ｍＭのＬ−グルタミン（ＧＩＢＣＯ−カタログ番号２５０３０）及び１×ＰｅｎＳｔｒｅｐ（Ｒｏｃｈｅカタログ番号１ ０７４ ４４０）を補充された１００μｌのＲＰＭＩ １６４０（Ｇｉｂｃｏ−カタログ番号３１８７０）を含む９６穴のマイクロタイタープレートへ播種された（１−３×１０４細胞／ウェル）。培地に１５０ｎｇ／ｍｌのｈｕＣＳＦ−１が添加されると、接着性マクロファージへの明確な分化が観察された。この分化は抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の添加で阻害された。更に、単球の生存が影響を受けており、ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏ（ＣＴＧ）分析により分析することができた。生存率は５μｇ／ｍｌ濃度の抗体処置で分析された（図８を参照）。
0006506254.tif 000010
【０２７８】
実施例９
抗ＣＳＦ−１Ｒモノクローナル抗体を用いた処置下のヒトＭ１及びＭ２の阻害（ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏアッセイ）
ヒトの単球がＲｏｓｅｔｔｅＳｅｐＴＭヒト単球濃縮カクテル（Ｈｕｍａｎ Ｍｏｎｏｃｙｔｅ Ｅｎｒｉｃｈｍｅｎｔ Ｃｏｃｋｔａｉｌ）（ＳｔｅｍＣｅｌｌ Ｔｅｃｈ．カタログ番号１５０２８）を用いて末梢血から単離された。濃縮された単球個体群は、３７℃、５％のＣＯ２の加湿した大気中で、１０％ＦＣＳ（ＧＩＢＣＯ−カタログ番号０１１−０９００１４Ｍ），４ｍＭのＬ−グルタミン（ＧＩＢＣＯ−カタログ番号２５０３０）及び１×ＰｅｎＳｔｒｅｐ（Ｒｏｃｈｅ カタログ番号１ ０７４ ４４０）を補充された１００μｌのＲＰＭＩ １６４０（Ｇｉｂｃｏ−カタログ番号３１８７０）を含む９６穴のマイクロタイタープレートへ播種された（２．５×１０４細胞／ウェル）。１００ｎｇ／ｍｌのｈｕＣＳＦ−１を６日間培地に添加した場合、細長い形態を有する、接着性のＭ２マクロファージへの明らかな分化を観察することができた。１００ｎｇ／ｍｌのｈｕＧＭ−ＣＳＦを６日間培地に添加した場合、丸い形態を有する、接着性のＭ１マクロファージへの明らかな分化を観察することができた。フローサイトメトリーによって評価される場合、この分化は、Ｍ２マクロファージに対してＣＤ１６３、Ｍ１マクロファージに対してＣＤ８０又は高ＭＨＣクラスＩＩなど特定のマーカーの発現と関連していた。細胞をＰＢＳで洗浄し、接着する場合には、５ｍＭのＥＤＴＡのＰＢＳ溶液を用いて剥離した（３７℃で２０分）。細胞は、その後、十分に再懸濁し、染色緩衝液（ＰＢＳ中の５％ＦＣＳ）で洗浄し、５分間３００×ｇで遠心分離した。ペレットを１ｍｌの染色緩衝液に再懸濁し、そして細胞をノイバウアーチャンバー中で計数した。約１×１０ｅ５細胞を各ＦＡＣＳチューブに移し、５分間３００×ｇで遠心分離し、染色緩衝液に再懸濁した。Ｆｃγ受容体は、氷上で２０分間、染色緩衝液中で１μｇのヒトＩｇＧ／２，５×１０ｅ４細胞（ＪＩＲカタログ番号００９−０００−００３）とのインキュベーションによりブロックした。次に、細胞をＣＤ８０及びＣＤ１６３を検出するために１，５μｌ抗体／２，５×１０ｅ４細胞と混合し、一方ＭＨＣクラスＩＩを検出するために５μｌの抗体／２，５×１０ｅ４細胞を使用した：ＰＥ標識化マウス抗ヒトＣＤ１６３（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅカタログ番号５５６０１８）、ＰＥ標識化マウス抗ヒトＣＤ８０（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ カタログ番号５５７２２７）及びアレクサ６４７（Ａｌｅｘａ ６４７）標識化マウス抗ヒトＭＨＣクラスＩＩ（Ｄａｋｏ−カタログ番号Ｍ０７７５）。アレクサ６４７（Ａｌｅｘａ ６４７）標識を、ゼノンのアレクサ６４７抗マウスＩｇＧ標識キットを使用して抗体にコンジュゲートさせた（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、カタログ番号Ｚ２５００８）。氷上で１時間インキュベート後に、細胞は染色緩衝液で２回洗浄し、再度懸濁し、ＦＡＣＳ ＣａｎｔｏＩＩで測定した。
排他的に、ＣＤ１６３の発現、ＣＤ８０の欠如及び低ＭＨＣクラスＩＩ発現を特徴としている、Ｍ２マクロファージ分化は、ヒト抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体ｈＭａｂ２Ｆ１１−Ｅ７の添加により阻害され得る。更に、Ｍ１でなくＭ２マクロファージの生存が影響を受け、ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏ（ＣＴＧ）分析によって分析することができた。７日間の抗体処理によるマクロファージの生存の濃度依存性阻害は、図５ａに示される。フローサイトメトリーによって評価されるＭ１及びＭ２マクロファージマーカーの発現は、図５ｂに示される。
【０２７９】
実施例１０
ヒトＣＳＦ−１Ｒへの抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体の結合親和性の決定
機器：ビアコア（登録商標）Ａ１００
チップ：ＣＭ５（ビアコアＢＲ−１００６−６８）
カップリング：アミンカップリング
緩衝液：（ビアコアＢＲ−１００６−７２）、ｐＨ７．４、３５℃
親和性の測定において、３６μｇ／ｍｌの抗マウスＦｃｇ抗体（ヤギ由来、Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏ Ｒｅａｓｅａｒｃｈ ＪＩＲ１１５−００５−０７１）が、ＣＳＦ−１Ｒに対する抗体を捕獲するためにチップ表面へ結合された。ヒトＣＳＦ−１Ｒ細胞外ドメイン（ＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）（細胞外サブドメインＤ１−Ｄ５を含む）（配列番号６４）（Ｒ＆Ｄ−Ｓｙｓｔｅｍｓ ３２９−ＭＲ又はサブクローニングされたｐＣＭＶ−ｐｒｅｓＳ−ＨｉｓＡｖｉｔａｇ−ｈＣＳＦ−１Ｒ−ＥＣＤ）が、様々な濃度で溶液に添加された。会合は３５℃で１．５分のＣＳＦ−１Ｒ注入により測定された；解離は３５℃で１０分間、緩衝液でチップ表面を洗浄することで測定された。反応速度論的パラメーターの計算についてはラングミュア１：１モデルが使用された。
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ＣＳＦ−１Ｒ ＥＣＤを使用する別のビアコア結合アッセイにおいて（データ非公開）、抗体Ｍａｂ ２Ｆ１１及びＭａｂ ２Ｅ１０の抗体Ａｂ ＳＣ−２−４Ａ５との一部の競合が示された。しかし、Ｍａｂ ２Ｆ１１／Ｍａｂ ２Ｅ１０はヒトＣＳＦ−１Ｒ断片ｄｅｌＤ４に結合せず、一方Ａｂ ＳＣ−２−４Ａ５はこのｄｅｌＤ４断片に結合する（実施例４及び図３ａを参照）。従って、Ｍａｂ ２Ｆ１１／Ｍａｂ ２Ｅ１０の結合領域はＡｂ ＳＣ−２−４Ａ５の結合領域とは明らかに異なるが、恐らく近傍領域に位置している。そうした競合アッセイにおいて、抗体Ｍａｂ ２Ｆ１１及びＭａｂ ２Ｅ１０の両方ともＲ＆Ｄ−ＳｙｓｔｅｍｓのＭａｂ３２９１と競合しなかった（データ非公開）。
【０２８０】
実施例１１
抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体のヒトＣＳＦ−１Ｒ断片Ｄ１−Ｄ３への結合の決定
機器：ビアコアＴ１００（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）
ソフトウエア：Ｔ１００対照，バージョン１．１．１１
Ｂ３０００エバリュエーション、バージョン４．０１
スクラバー、バージョン２．０ａ
アッセイ形式  チップ：ＣＭ５−Ｃｈｉｐ
ＣＳＦ−１Ｒに対する抗体は、アミン結合の捕獲分子を介して捕獲された。単一サイクル反応速度論を用い、ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片Ｄ１−Ｄ３（配列番号６６）が、濃度を増加させながら５回注入された。ヒトＣＳＦ−１Ｒ断片Ｄ１−Ｄ３は、ｐＣＭＶ−ｐｒｅｓＳ−ＨｉｓＡｖｉｔａｇ発現ベクターにサブクローニングされた。
抗ＣＳＦ−１Ｒ ＳＣ ２−４Ａ５（Santa Cruz Biotechnology,US;Sherr, C.J. et al., Blood 73 (1989) 1786-1793）（リガンド−受容体相互作用を阻害する）及びＭａｂ３２９１（Ｒ＆Ｄ−Ｓｙｓｔｅｍｓ）が参照対照として用いられた。
捕獲分子：本発明による抗体として抗マウスＦｃｇ抗体（ヤギ由来、Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏ Ｒｅａｓｅａｒｃｈ ＪＩＲ１１５−００５−０７１）、及び参照対照の抗ＣＳＦ−１Ｒ ＳＣ ２−４Ａ５としてＲ＆Ｄ−Ｓｙｓｔｅｍｓの対照Ｍａｂ３２９１及び抗ラットＦｃｇ抗体（ヤギ由来、Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｏ Ｒｅａｓｅａｒｃｈ ＪＩＲ１１５−００５−０７１）。
【０２８１】
捕獲分子のアミンカップリング
製造者の指示に従った標準的なアミンカップリング：泳動用緩衝液：ＨＢＳ−Ｎ緩衝液：、ＥＤＣ／ＮＨＳの混合物による活性化、リガンド密度２０００ＲＵを目標；捕獲抗体（Ａｂ）はカップリング緩衝液：、ＮａＡｃ、ｐＨ４．５、ｃ＝１０μｇ／ｍＬで希釈された；最後に、残りの活性化カルボキシル基が１Ｍのエタノールアミンの注入によってブロックされた。
【０２８２】
３７℃におけるＭＡｂｓ＜ＣＳＦ−１Ｒ＞へのヒトＣＳＦ−１Ｒ断片Ｄ１−Ｄ３の結合の反応速度論的特性評価
泳動用緩衝液：ＰＢＳ（ビアコアＢＲ−１００６−７２）
フローセル２から４におけるＭａｂｓ＜ＣＳＦ−１Ｒ＞の捕獲：流速２０μＬ／分、接触時間９０秒、ｃ（Ａｂｓ＜ＣＳＦ−１Ｒ＞）＝５０ｎＭ、泳動用緩衝液＋１ｍｇ／ｍＬのＢＳＡで希釈
分析物試料：
単一サイクル反応速度論が、再生無しで、濃度ｃ＝７．８、３１．２５、１２５  ５００及び２０００ｎＭでの５回の連続した注入により、流速３０μＬ／分で測定された。各注入は３０秒の長さで、続いて最初の４回の注入については１２０秒の解離段階が続き、最終的に最高濃度において（最後の注入）１２００秒の分離段階が続いた。
最後の再生が各サイクル後、１０ｍＭのグリシンｐＨ１．５（ビアコアＢＲ−１００３−５４）、接触時間６０秒、流速３０μＬ／分を用いて実施された。
反応速度論パラメーターは、通常の二重の参照（対照参照：分析物の捕獲分子への結合；フローセル：ブランクとしてサブドメインＣＳＦ−１Ｒの濃度「０」）及び「ドリフトを考慮した１：１結合の滴定反応速度論」モデルによる計算を使用することにより計算された。
0006506254.tif 000012
抗体のＭａｂ ２Ｆ１１、Ｍａｂ ２Ｅ１０及びＭａｂ １Ｇ１０はヒトＣＳＦ−１Ｒ断片Ｄ１−Ｄ３への結合を示さなかった。
また、参照対照のＡｂ ＳＣ−２−４Ａ５はヒトＣＳＦ−１Ｒ断片Ｄ１−Ｄ３へ結合しなかった。
参照対照のＭａｂ Ｒ＆Ｄ−Ｓｙｓｔｅｍｓ ３２９１はヒトＣＳＦ−１Ｒ断片Ｄ１−Ｄ３への結合を示した。
【０２８３】
実施例１２
カニクイザルにおいてＣＳＦ−１Ｒ阻害の間ＣＳＦ−１レベルは増大する。
血清のＣＳＦ−１レベルは、抗ヒトＣＳＦ−１Ｒ二量体阻害剤ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７のＣＳＦ−１Ｒ中和活性の薬物動態マーカーを提供する。投与グループあたり一匹のオス及び一匹のメスのカニクイザル（１及び１０ｍｇ／ｋｇ）に、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７が静脈内投与された。ＣＳＦ−１レベルの分析のために血液試料が、処置の前（投与前）の１週間採取され、投与後２、２４、４８、７２、９６、１６８時間、及びその後の２週間について毎週採取された。ＣＳＦ−１レベルは市販のＥＬＩＳＡキット（Ｑｕａｎｔｉｋｉｎｅ（登録商標）ヒトＭ−ＣＳＦ）を使用して、製造業者（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ，ＵＫ）の指示に従って決定された。サルのＣＳＦ−１レベルは、キットに与えられたＣＳＦ−１の標準曲線試料と比較して決定された。
ｈＭａｂ ２Ｆ１１−ｅ７の投与はおよそ１０００倍というＣＳＦ−１の劇的な増大を誘導し、それは４８時間（１ｍｇ／ｋｇ）又は１５日間（１０ｍｇ／ｋｇ）続いて投与された量に依存する。従って、ＣＳＦ−１Ｒの二量体化阻害剤は、リガンド置換抗体とは対照的に、受容体への結合について劇的に上方制御されたリガンドと直接的には競合しないという利点を与える。（結果は図４に示す）。
【０２８４】
実施例１３
皮下同系ＭＣ３８結腸癌モデルにおける、化学療法又はがん免疫療法と併用した、抗ＣＳＦ−１Ｒモノクローナル抗体を用いた処置下の腫瘍増殖の阻害
マウス結腸直腸腺癌細胞株の細胞ＭＣ−３８（ホープ市のベックマン研究所、米国カリフォルニア州から入手）を、５％ＣＯ２で水分飽和大気中、３７℃で、１０％のＦＣＳ及び２ｍＭのＬ−グルタミンを補充したダルベッコ変法イーグル培地（ＤＭＥＭ，ＰＡＮ Ｂｉｏｔｅｃｈ）で培養した。播種の日に、ＭＣ３８腫瘍細胞を培養フラスコからＰＢＳで回収し、培地中に移し、遠心分離し、一回洗浄し、ＰＢＳに再懸濁した。細胞の注入のため、最終力価を１×１０７細胞／ｍｌに調整した。その後、この懸濁液（１×１０６細胞）の１００μｌを、７〜９週齢の雌Ｃ５７ＢＬ／６Ｎマウス（Ｃｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ，Ｓｕｌｚｆｅｌｄ，Ｇｅｒｍａｎｙから入手）に対して皮下に接種した。対照抗体（ＭＯＰＣ−２１；Ｂｉｏ×Ｃｅｌｌ，Ｗｅｓｔ Ｌｅｂａｎｏｎ）、抗マウスＣＳＦ−１Ｒ ｍＡｂ＜マウスＣＳＦ１Ｒ＞抗体を毎週３０ｍｇ／ｋｇを腹腔内に（ｉ．ｐ．）単独又はＴＬＲ９アゴニストＣｐＧ ＯＤＮ １８２６（ＯＤＮ １８２６、クラスＢ ＣｐＧ ＯＤＮ，ＶａｃｃｉＧｒａｄｅ，ＩｎｖｉｖｏＧｅｎ，１００μｇ ｐｅｒｉｔｕｍｏｒａｌ，１×）と併用した処置。腫瘍体積を週に２回測定し、動物の体重を並行してモニターした。
比較可能な設定を持つ別の研究では、示された処置群からの原発性腫瘍を切除し、秤量し、ＦＡＣＳ分析に供した。原発性腫瘍材料は、示されるように研究の第２０日〜２５日の間に採取した。フローサイトメトリー分析のために適した単一細胞懸濁液を得るために、腫瘍は、マッキルウェーン組織チョッパーを用いて切り刻んだ。その後、腫瘍片を、コラゲナーゼＩ、ディスパーゼＩＩ及びＤＮアーゼＩを補充したＲＰＭＩ培地に再懸濁し、３７℃でインキュベートし、細胞懸濁液をマッシュに通した。ＣＤ４５陽性細胞を、製造業者の説明書（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ）に従って、磁気細胞分離により濃縮した。簡潔には、細胞を、ＡＰＣとコンジュゲートした抗マウスＣＤ４５（ＢＤ、カタログ番号５５９８６４）で標識し、抗ＡＰＣマイクロビーズで分離した。ＣＤ８＋Ｔ細胞を分析するため、これらのＣＤ４５陽性細胞を、０，２μｇ／ｍｌのＤＡＰＩ（Ｒｏｃｈｅ、カタログ番号１０２３６２７６００１）及びＰＥコンジュゲートＣＤ８抗体（ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ カタログ番号１２−００８１−８３）又はＰＥコンジュゲートＣＤ４抗体（ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ，カタログ番号２−００４１−８３）で染色した。データの取得は、ＦＡＣＳカントＩＩを用いて実施し、続いてＦｌｏｗＪｏソフトソフトウェアで分析した。生存細胞のみ（ＤＡＰＩ陰性細胞にゲートする）細胞残屑及び死細胞を除外するために分析した。
＜マウスＣＳＦ１Ｒ＞抗体による単剤療法は、対照抗体治療と比較した場合、原発性腫瘍増殖を阻害した（ＴＧＩ：６７％、ＴＣＲ：０．３８ ＣＩ：０．１５−０．６４）。  また、ＴＬＲ９アゴニスト（ＣｐＧ ＯＤＮ １８２６）単剤療法はＭＣ３８原発性腫瘍増殖に影響を及ぼした（ＴＧＩ：７４％、ＴＣＲ：０．２８ ＣＩ：０．１０−０．５０）。ＴＬＲ９アゴニスト療法への＜マウスＣＳＦ１Ｒ＞抗体の追加は、ＴＬＲ９アゴニスト治療単独に比較して優れた抗腫瘍効果をもたらした（ＴＧＩ：９５％、ＴＣＲ：０．０８ ＣＩ：−０．１１−０．２８）。（表１１を参照）。
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【０２８５】
腫瘍進行の評価
２週間の治療後の腫瘍体積の中央値の評価後に、研究における個々の腫瘍の進行は進行≧７００ｍｍ３まで続いた（図１（ＣｐＧはＴＬＲ９アゴニストＣｐＧ ＯＤＮ １８２６である）及び表１１）。
進行までの時間の中央値≧７００ｍｍ３はＩｇＧ対照処置群において２１日間であった。進行時間の中央値の僅かな改善が、＜ＣＳＦ１Ｒ＞抗体単剤療法による治療により達成された。
ＴＬＲ９アゴニストによる単剤療法は、進行までの時間の中央値２４日間をもたらした。抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体治療に対するＴＬＲ９アゴニストの付加は、抗ＣＳＦ−１Ｒ抗体単剤療法又はＴＬＲ９アゴニスト単剤療法と比較して、進行までの時間の中央値の統計学的に有意な相加作用以上の改善（４６日）をもたらした。
【図１】
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【図２】
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【図３ａ】
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【図３ｂ】
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【図３ｃ】
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【図３ｄ】
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【図３ｅ】
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【図３ｆ】
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【図４ａ】
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【図４ｂ】
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【図４ｃ】
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【図４ｄ】
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【図５ａ】
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【図５ｂ】
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【配列表】
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