(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
生体分子検出又は定量用試験キットを用いた、競合法による、分子量が４０以上１，０００以下の生体分子の検出又は定量方法であって、
前記生体分子検出又は定量用試験キットは、生体分子検出又は定量用の試験片と、生体分子検出又は定量用の、蛍光シリカナノ粒子からなる標識試薬粒子を有し、
前記試験片は、生体分子と標識試薬粒子を捕捉する試験領域を有し、
検出対象である生体分子と競合する物質が前記標識試薬粒子の表面に導入されており、
生体分子を含む試料と前記標識試薬粒子の混合物を前記試験片に滴下し、
前記生体分子と競合して前記試験領域に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を測定し、
試験領域に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を、試験片を移動した標識試薬粒子量を示す測定値で補正し、
補正した数値に基づいて生体分子を検出又は定量する、
生体分子の検出又は定量方法。
【請求項２】
前記試験片に、生体分子との競合により前記試験領域に結合しなかった標識試薬粒子を捕捉する参照領域をさらに設けた、請求項１に記載の生体分子の検出又は定量方法。
【請求項３】
試験領域に結合した標識試薬粒子量を示す測定値が、蛍光シリカナノ粒子からなる前記標識試薬粒子が結合した試験領域の発光強度である、請求項１又は２に記載の生体分子の検出又は定量方法。
【請求項４】
試験片を移動した標識試薬粒子量を示す測定値が、試験領域の発光強度と、試験領域に結合しなかった蛍光シリカナノ粒子からなる前記標識試薬粒子が結合した参照領域の発光強度との合計値である、請求項１〜３のいずれか１項に記載の生体分子の検出又は定量方法。
【請求項５】
試験領域の発光強度を、試験領域の発光強度と参照領域の発光強度の合計値で割り、試験領域に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を補正する、請求項４に記載の生体分子の検出又は定量方法。
【請求項６】
前記参照領域に対する結合性を有する参照用物質が、前記標識試薬粒子の表面に導入されており、
前記参照用物質と前記参照領域との結合性により、前記試験領域に結合しなかった標識試薬粒子を前記参照領域に捕捉する、
請求項２〜５のいずれか１項に記載の生体分子の検出又は定量方法。
【請求項７】
前記標識試薬粒子において、標識試薬粒子の表面に導入された前記参照用物質を介して、標識試薬粒子と、生体分子と競合する物質が結合している、請求項６に記載の生体分子の検出又は定量方法。
【請求項８】
前記参照用物質が、ウシ血清アルブミン、カゼイン、スカシガイヘモシアニン、ヒト血清アルブミン、卵白アルブミン、グロブリン、アビジン、及びストレプトアビジンからなる群より選ばれる少なくとも１種の物質である、請求項６又は７に記載の生体分子の検出又は定量方法。
【請求項９】
前記標識試薬粒子の平均粒径が３０ｎｍ以上５００ｎｍ以下である、請求項１〜８のいずれか１項に記載の生体分子の検出又は定量方法。
【請求項１０】
分子量が４０以上１，０００以下の生体分子の検出又は定量装置であって、
生体分子と蛍光シリカナノ粒子からなる標識試薬粒子が互いに競合して結合する生体分子検出又は定量用の試験片の試験領域、に光を照射する、光照射部と、
前記試験領域に結合した蛍光シリカナノ粒子からなる標識試薬粒子量を示す測定値を検出する検出部、
を備えた、生体分子の検出又は定量装置。
【請求項１１】
生体分子との競合により前記試験領域に結合しなかった蛍光シリカナノ粒子からなる標識試薬粒子を捕捉する参照領域に光を照射する、光照射部と、
前記参照領域に結合した蛍光シリカナノ粒子からなる標識試薬粒子量を示す測定値を検出する検出部、
をさらに有する、請求項１０に記載の生体分子の検出又は定量装置。
【請求項１２】
試験領域に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を検出する検出部及び参照領域に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を検出する検出部が、標識試薬粒子が結合した試験領域又は参照領域の発光強度を測定し、測定した発光強度から結合した標識試薬粒子量を算出する、
請求項１０又は１１に記載の生体分子の検出又は定量装置。
【請求項１３】
試験領域に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を、試験片を移動した標識試薬粒子量を示す測定値で補正する、補正手段をさらに有する、請求項１０〜１２のいずれか１項に記載の生体分子の検出又は定量装置。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、生体分子の検出又は定量方法、及び生体分子の検出又は定量装置に関する。
【背景技術】
【０００２】
生体中の核酸や抗原などの生体分子を標的物質として検出する手法として、生体分子を捕捉する捕捉物質を担体に固定化させた多孔質の試験片と、標識試薬粒子を用いた検出法がある。この方法では、検体液に含まれる生体分子と標識試薬粒子に対して、毛細管現象により試験片の多孔質支持体内を移動させる。そして、多孔質支持体に例えばライン状に固定された捕捉物質と標識試薬粒子とを接触させることによって標識試薬粒子を濃縮し、捕捉物質が固定されたラインを標識試薬粒子により発色させる。この発色によって生体分子の有無を判定することができる。
かかる生体分子の検出法の特徴として下記の３点が挙げられる。
（１）判定までに要する時間が短く迅速な検査が可能である。
（２）検体を滴下するだけで測定でき操作が簡便である。
（３）特別な検出装置を必要とせず判定が容易である。
これらの特徴を利用して、前記の検出法は妊娠検査薬やインフルエンザ検査薬に用いられており、新たなＰＯＣＴ（Point  Of  Care  Testing）の手法として利用されている。また、食品検査においても、例えば食物アレルゲンの検査試薬等として広く利用され益々注目を集めている。
【０００３】
多孔質の試験片の担体に固定化させた捕捉物質により生体分子を捕捉し、生体分子を検出する方法としては、サンドイッチ法や競合法が知られている。
このうち競合法は、多孔質支持体に固定された捕捉物質と、標識試薬粒子及び標的物質とを競合的に接触させ、捕捉物質が固定化されている領域の標識試薬粒子由来の発色度に基づいて標的物質の濃度を定量する。競合法において標識試薬粒子及び標的物質が競合して捕捉物質が固定化されている領域に結合するので、標識試薬粒子由来の発色度は、標的物質の濃度が少ないほど上昇する。よって、競合法による検出方法では、サンドイッチ法では検出できないような極微量の低分子量の生体分子を検出することができる。
そこでこれまでに、各種生体分子検出用試験キットを用いた、競合法による生体分子の検出方法が提案されている（例えば、特許文献１〜６参照）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】国際公開第０１／４４８１１号パンフレット
【特許文献２】国際公開第９５／０４２８３号パンフレット
【特許文献３】特開平７−２７０４１２号公報
【特許文献４】特開平７−１５９４０１号公報
【特許文献５】特開平６−１０２２７５号公報
【特許文献６】特開２００４−１３８５５０号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
前述のように、競合法による生体分子の検出方法により、サンドイッチ法では検出できないような、極微量の低分子量の生体分子を高感度で検出することができる。
しかし、従来の競合法による生体分子の検出方法では、試験キットの構成部材の不均一性やばらつき、試験キットを流れる標識試薬粒子の流れのばらつきなどによって、定量した生体分子濃度に誤差が生じることがある。よって、従来の競合法による生体分子の検出方法には、検出対象物の定量性に問題があった。
【０００６】
そこで、本発明は、試験キットの構成部材の不均一性やばらつき、試験キットを流れる標識試薬粒子の流れのばらつきによることなく、競合法により高感度及び高精度で生体分子を検出又は定量する、生体分子の検出又は定量方法を提供することを課題とする。
さらに本発明は、試験キットの構成部材の不均一性やばらつき、試験キットを流れる標識試薬粒子の流れのばらつきによることなく、競合法により高感度及び高精度で生体分子を検出又は定量する、生体分子の検出又は定量装置を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは上記課題に鑑み鋭意検討を行った。その結果、生体分子検出又は定量用の試験片と生体分子検出又は定量用の標識試薬粒子を有する生体分子検出又は定量用試験キットを用いた競合法による生体分子の検出又は定量方法において、試験片に設けた試験領域に生体分子と競合して結合した標識試薬粒子量を、試験片を移動した標識試薬粒子量で補正することで、試験キットの構成部材の不均一性やばらつき、試験キットを流れる標識試薬粒子の流れのばらつきの影響を排除できることを見出した。その結果、競合法により高感度及び高精度で生体分子を検出又は定量できることを見い出した。
本発明はこれらの知見に基づき完成されるに至ったものである。
【０００８】
本発明の上記課題は、下記の手段により解決された。
（１）生体分子検出又は定量用試験キットを用いた、競合法による、分子量が４０以上１，０００以下の生体分子の検出又は定量方法であって、
前記生体分子検出又は定量用試験キットは、生体分子検出又は定量用の試験片と、生体分子検出又は定量用の、蛍光シリカナノ粒子からなる標識試薬粒子を有し、
前記試験片は、生体分子と標識試薬粒子を捕捉する試験領域を有し、
検出対象である生体分子と競合する物質が前記標識試薬粒子の表面に導入されており、
生体分子を含む試料と前記標識試薬粒子の混合物を前記試験片に滴下し、
前記生体分子と競合して前記試験領域に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を測定し、
試験領域に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を、試験片を移動した標識試薬粒子量を示す測定値で補正し、
補正した数値に基づいて生体分子を検出又は定量する、
生体分子の検出又は定量方法。
（２）前記試験片に、生体分子との競合により前記試験領域に結合しなかった標識試薬粒子を捕捉する参照領域をさらに設けた、前記（１）項に記載の生体分子の検出又は定量方法。
（３）試験領域に結合した標識試薬粒子量を示す測定値が、蛍光シリカナノ粒子からなる前記標識試薬粒子が結合した試験領域の発光強度である、前記（１）又は（２）項に記載の生体分子の検出又は定量方法。
（４）試験片を移動した標識試薬粒子量を示す測定値が、試験領域の発光強度と、試験領域に結合しなかった蛍光シリカナノ粒子からなる前記標識試薬粒子が結合した参照領域の発光強度との合計値である、前記（１）〜（３）のいずれか１項に記載の生体分子の検出又は定量方法。
（５）試験領域の発光強度を、試験領域の発光強度と参照領域の発光強度の合計値で割り、試験領域に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を補正する、前記（４）項に記載の生体分子の検出又は定量方法。
（６）前記参照領域に対する結合性を有する参照用物質が、前記標識試薬粒子の表面に導入されており、
前記参照用物質と前記参照領域との結合性により、前記試験領域に結合しなかった標識試薬粒子を前記参照領域に捕捉する、
前記（２）〜（５）のいずれか１項に記載の生体分子の検出又は定量方法。
（７）前記標識試薬粒子において、標識試薬粒子の表面に導入された前記参照用物質を介して、標識試薬粒子と、生体分子と競合する物質が結合している、前記（６）項に記載の生体分子の検出又は定量方法。
（８）前記参照用物質が、ウシ血清アルブミン、カゼイン、スカシガイヘモシアニン、ヒト血清アルブミン、卵白アルブミン、グロブリン、アビジン、及びストレプトアビジンからなる群より選ばれる少なくとも１種の物質である、前記（６）又は（７）項に記載の生体分子の検出又は定量方法。
（９）前記標識試薬粒子の平均粒径が３０ｎｍ以上５００ｎｍ以下である、前記（１）〜（８）のいずれか１項に記載の生体分子の検出又は定量方法。
【０００９】
（１０）分子量が４０以上１，０００以下の生体分子の検出又は定量装置であって、
生体分子と蛍光シリカナノ粒子からなる標識試薬粒子が互いに競合して結合する生体分子検出又は定量用の試験片の試験領域、に光を照射する、光照射部と、
前記試験領域に結合した蛍光シリカナノ粒子からなる標識試薬粒子量を示す測定値を検出する検出部、
を備えた、生体分子の検出又は定量装置。
（１１）生体分子との競合により前記試験領域に結合しなかった蛍光シリカナノ粒子からなる標識試薬粒子を捕捉する参照領域に光を照射する、光照射部と、
前記参照領域に結合した蛍光シリカナノ粒子からなる標識試薬粒子量を示す測定値を検出する検出部、
をさらに有する、前記（１０）項に記載の生体分子の検出又は定量装置。
（１２）試験領域に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を検出する検出部及び参照領域に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を検出する検出部が、標識試薬粒子が結合した試験領域又は参照領域の発光強度を測定し、測定した発光強度から結合した標識試薬粒子量を算出する、
前記（１０）又は（１１）項に記載の生体分子の検出又は定量装置。
（１３）試験領域に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を、試験片を移動した標識試薬粒子量を示す測定値で補正する、補正手段をさらに有する、前記（１０）〜（１２）のいずれか１項に記載の生体分子の検出又は定量装置。
【発明の効果】
【００１０】
本発明の生体分子の検出又は定量方法は、試験キットの構成部材の不均一性やばらつき、試験キットを流れる標識試薬粒子の流れのばらつきによることなく、競合法により高感度及び高精度で生体分子を検出又は定量することができる。
さらに本発明の生体分子の検出又は定量装置は、試験キットの構成部材の不均一性やばらつき、試験キットを流れる標識試薬粒子の流れのばらつきによることなく、競合法により高感度及び高精度で生体分子を検出又は定量することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】本発明で用いることができる生体分子検出又は定量用試験片を模式的に示す図あり、図１（ａ）が平面図であり、図１（ｂ）が断面図である。
【図２】実施例で行った、生体分子の検出試験の結果（プロゲステロン濃度の常用対数と、生体分子検出又は定量用の試験片の試験領域の発光強度の相関性）を示すグラフである。
【図３】実施例で行った、生体分子の検出試験の結果（プロゲステロン濃度の常用対数と、生体分子検出又は定量用の試験片の試験領域の発光強度を、試験領域の発光強度と参照領域の発光強度の合計値で割った値、との相関性）を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
本明細書において「物質」とは、化合物又は化学合成された分子の他、生体分子（タンパク質、ペプチド、核酸等）を包含する。これらは人工起源のものであっても、天然起源のものであってもよい。
また、本明細書において「結合」又は「連結」とは、複数のものが分離した状態から連続して一体となることを全般的に指し、共有結合やイオン結合、水素結合といった化学的な結合のほか、化学吸着や物理吸着、そのほか嵌合、螺合、咬合した物理的な連結状態等も含む意味である。ここで、「結合」又は「連結」とは、直接複数のものが結合しても、別のものを介して間接的に結合してもよい意味である。
さらに、本明細書において「検出」とは、定性的な検出や定量的な検出のみならず、その他の各種の測定や同定、分析、評価等を含む概念である。
【００１３】
本発明の生体分子の検出又は定量方法は、生体分子検出又は定量用試験キット（以下、単に「試験キット」ともいう）を用いて、競合法により生体分子の検出を行う。生体分子検出又は定量用試験キットは、試験片（以下、「テストストリップ」ともいう）と、生体分子検出又は定量用の標識試薬粒子（以下単に、「標識試薬粒子」ともいう）を有する。
以下、本発明の構成についてその好ましい実施形態を中心に詳述する。
【００１４】
［競合法］
本発明において、生体分子の検出又は定量は競合法により行う。ここで「競合法」とは、測定対象物質（標的物質）と標識試薬粒子との間で競合して、多孔質支持体に固定された捕捉物質により測定対象物質及び標識試薬粒子を捕捉する手法である。競合法において、測定対象物質に比べて標識試薬粒子の量が多いと、捕捉物質への標識試薬粒子の結合が優位となる。したがって、測定対象物質の量が少ないほど、捕捉物質が固定化されている領域の標識試薬粒子による標識度合が上昇する。一方、測定対象物質が多量に存在する場合捕捉物質への測定対象物質の結合が優位となるため、捕捉物質が固定されている領域の標識度合は低下する。競合法はこのようなメカニズムに基づくものであって、捕捉物質が固定されている領域の標識度合を測定し、測定対象物質濃度が増えるにしたがって標識度合が低下する現象を利用して、間接的に測定対象物質の濃度を定量する。
【００１５】
［生体分子］
本発明において、検出対象物質（標的物質）としての生体分子に特に制限はなく、抗原、抗体、核酸、糖、糖鎖、リガンド、受容体、ペプチド、その他生体活性を有する化学物質等が挙げられる。
前述のように、本発明において生体分子の検出又は定量は競合法により行う。本発明において生体分子は、競合法による検出又は定量により生体分子を認識できる大きさであれば特に問題ない。例えば、本発明における検出対象物質としての生体分子の分子量は、４０以上が好ましく、８０以上がより好ましい。
また、一般に、サンドイッチ法による生体分子の検出方法は、低分子量の生体分子の検出には不向きである。これは、サンドイッチ法において、生体分子に２種類の抗体を結合させる必要があるからである。生体分子が小さい場合、１つの抗体が生体分子に結合すると、もう１つの抗体が他方の抗体の立体障害により結合できなくなる。したがって、低分子量の生体分子の検出又は定量を行う場合、競合法はサンドイッチ法に比べて相対的に優位な手法である。そこで、本発明の検出又は定量方法がサンドイッチ法よりも優位であるとする観点からは、生体分子は低分子量であることが好ましい。例えば、本発明における検出対象物質としての生体分子の分子量は、１，０００以下が好ましく、５００以下がより好ましい。しかしこのような分子量の範囲は、分子量が大きいものが競合法に不向きであることを示すものではない。
【００１６】
本発明において、生体分子を含む試料としては特に制限はないが、臨床検体（例えば、血液、血漿、血清、リンパ液、尿、唾液、膵液、胃液、喀痰、鼻や咽等の粘膜から採取したぬぐい液等の体液や便等）、食品検体（例えば、液体飲料、半固形食品、固形食品等）、環境サンプリング検体（例えば、土壌、河川、海水等の自然界のサンプル、工場内の生産ラインやクリーンルームに設置されたエアーサンプラーによるサンプリング検体、ふき取り検体等）等が挙げられる。
また、試料は液体であればそのまま用いることもできる。試料が半固形又は固形物等の場合には、希釈や抽出等の処理を施した後に用いることもできる。
【００１７】
［生体分子検出又は定量用の試験片］
本発明で用いる試験キットに含まれる試験片の形状に特に制限はないが、平面状の試験片であることが好ましく、ラテラルフロー用の試験片であることがより好ましい。
また、試験片の構造に特に制限はないが、試料添加用部材（サンプルパッド）と、生体分子と標識試薬粒子を競合的に捕捉する試験領域を有するメンブレンと、吸収パッドとが、この順でそれぞれ相互に毛細管現象が生じるように直列に連結している構造であることが好ましい。そして、各構成部材は粘着剤付きバッキングシートにより裏打ちされていることが好ましい。
以下、上記形状及び構造を有する試験片について、図１を参照しながら本発明の好ましい実施形態を説明する。しかし、本発明はこれに制限するものではない。
【００１８】
（サンプルパッド）
サンプルパッド２は、生体分子を含む試料と標識試薬粒子の混合物を滴下する構成部材である。サンプルパッド２の材料や寸法等は特に限定されず、この種の製品に適用される一般的なものを利用することができる。
【００１９】
（メンブレン）
メンブレン３は、サンプルパッド２から毛細管現象により移動してきた生体分子と標識試薬粒子を捕捉するための構成部材である。
図１に示すように、メンブレン３には、少なくとも１つの試験領域１０が設けられている。そして、生体分子と標識試薬粒子それぞれに対して特異的な結合性を有し、生体分子及び標識試薬粒子と競合的に複合体を形成しうる捕捉物質（以下、本明細書において「第１の捕捉物質」ともいう）が、試験領域１０の所定の領域に導入されている。これにより、生体分子と標識試薬粒子が競合的に試験領域１０へ捕捉される。
【００２０】
図１に示すように、メンブレン３には、生体分子との競合により試験領域１０に結合しなかった標識試薬粒子を捕捉する参照領域１１をさらに設けてもよい。参照領域１１は、標識試薬粒子に対する特異的な結合性を有し、標識試薬粒子と複合体を形成しうる捕捉物質（以下、本明細書において「第２の捕捉物質」ともいう）をメンブレン３の所定の領域に固定化することで設けることができる。なお第２の捕捉物質は、標識試薬粒子に対して特異的な結合性を有するが、検出対象物質である生体分子に対して結合性を有さない物質であることが好ましい。
【００２１】
試験領域１０及び参照領域１１の形状としては、局所的に各捕捉物質が固定化されている限り特に制限はなく、ライン状、円状、帯状等が挙げられる。本発明において試験領域１０及び参照領域１１はそれぞれライン状であることが好ましく、幅０．５〜１．５ｍｍのライン状であることがより好ましい。
なお図１に示すように、生体分子と標識試薬粒子が毛細管現象により移動する方向に対して、試験領域１０よりも下流に参照領域１１を設けることが好ましい。
【００２２】
試験領域１０で用いる第１の捕捉物質は、生体分子と標識試薬粒子それぞれに対して特異的な結合性を有する。そのため、サンプルパッド２から毛細管現象により移動してきた、標識試薬粒子と生体分子とが互いに競合して、第１の捕捉物質が固定化されている試験領域１０に結合する。
試験領域１０に用いる第１の捕捉物質としては、標識試薬粒子と生体分子それぞれに対して特異的な結合性を有するものであれば特に制限はない。第１の捕捉物質と生体分子の組み合わせの例としては、抗体とその抗原の組み合わせ、抗原とその抗体の組み合わせ、核酸（ＤＮＡやＲＮＡ等）とストリンジェントな条件で該核酸とハイブリダイズするオリゴヌクレオチドの組み合わせ、受容体とそのリガンドの組み合わせ、リガンドとその受容体の組み合わせ、レクチンと糖鎖の組み合わせ、アプタマーと該アプタマーに特異的に結合する分子の組み合わせが挙げられる。
なお、本明細書において、「ストリンジェントな条件」としては、例えばMolecular  Cloning−A  LABORATORY  MANUAL  THIRD  EDITION［Joseph  Sambrook，David  W．Russell.，Cold  Spring  Harbor  Laboratory  Press］記載の方法が挙げられ、例えば、６×ＳＳＣ（１×ＳＳＣの組成：０.１５Ｍ塩化ナトリウム、０．０１５Ｍクエン酸ナトリウム、pH７．０）、０．５％ＳＤＳ、５×デンハート及び１００ｍｇ／ｍＬニシン精子ＤＮＡを含む溶液にプローブとともに６５℃で８〜１６時間恒温し、ハイブリダイズさせる条件が挙げられる。
【００２３】
前述のようにメンブレン３に参照領域１１を設ける場合、標識試薬粒子のみを捕捉するための第２の捕捉物質が固定化されている。第２の捕捉物質は、標識試薬粒子に対して特異的な結合性を有するが、検出対象である生体分子に対して結合性を有さない。そのため、標識試薬粒子のみが参照領域１１に結合する。
参照領域１１に用いる第２の捕捉物質としては、生体分子に対して結合性を有さず、標識試薬粒子に対して特異的な結合性を有するものから、適宜選択することができる。具体的には、抗体、抗原、核酸、受容体、リガンド、糖鎖、アプタマーなどから適宜選択することができる。
【００２４】
試験領域１０における第１の捕捉物質の固定化量を調整することで、定量したい生体分子の濃度範囲を適宜調整することができる。例えば、第１の捕捉物質の固定化量を減らすと、生体分子を定量できる範囲は低濃度側にシフトする。一方、第１の捕捉物質の固定化量を増やすと、生体分子を定量できる範囲は高濃度側にシフトする。ただし、第１の捕捉物質の固定量が少なすぎるとライン強度が十分に得られなくなり、定量できる濃度範囲が狭くなる。また、試験領域１０における第１の捕捉物質の固定化量が生体分子量よりも多すぎると、生体分子と標識試薬粒子との間で競合することなく、生体分子と標識試薬粒子が全て第１の捕捉物質により捕捉されてしまう。したがって、生体分子と標識試薬粒子との間で競合して第１の捕捉物質により捕捉されるよう、試験領域１０における第１の捕捉物質の固定化量を適宜設定する必要がある。
以上の観点から、試験領域１０の形状がライン状の場合、単位長さ（ｃｍ）当たりの第１の捕捉物質の固定化量は０．００１μｇ以上が好ましく、０．０１μｇ以上がより好ましく、１０μｇ以下が好ましく、２μｇ以下がより好ましい。また、参照領域１１における第２の捕捉物質の固定化量は、検出又は定量装置で標識試薬粒子を検出するために十分な量の粒子が結合し得る範囲であれば特に制限ない。例えば、参照領域１１の形状がライン状の場合、単位長さ（ｃｍ）当たりの第２の捕捉物質の固定化量は０．１μｇ以上が好ましく、１μｇ以上がより好ましく、２０μｇ以下が好ましく、５μｇ以下がより好ましい。
第１の捕捉物質及び第２の捕捉物質それぞれの固定化方法としては、各捕捉物質の溶液をメンブレン３の所定の領域に塗布、滴下又は噴霧後、乾燥して物理吸着により固定化する方法等が挙げられる。また、非特異的吸着による測定への影響を防止するため、各捕捉物質の固定化後にメンブレン３全体をいわゆるブロッキング処理を施してもよい。
【００２５】
（吸収パッド）
吸収パッド４は、毛細管現象でメンブレン３を移動してきた溶液を吸収し、一定の流れを生じさせるための構成部材である。
【００２６】
これら各構成部材の材料としては特に制限は無く、この種の試験片に通常用いられる部材が使用できる。例えば、サンプルパッド２としてはGlass  Fiber  Conjugate  Pad（商品名、MILLIPORE社製）等のガラスファイバーのパッドを好ましく用いることができる。メンブレン３としてはHi-Flow  Plus180メンブレン（商品名、MILLIPORE社製）等のニトロセルロースメンブレンを好ましく用いることができる。吸収パッド４としてはCellulose  Fiber  Sample  Pad（商品名、MILLIPORE社製）等のセルロースメンブレンを好ましく用いることができる。
前記粘着剤付きバッキングシート５としては、AR9020（商品名、Adhesives  Research社製）等が挙げられる。
【００２７】
試験片の作製法としては、サンプルパッド２、メンブレン３、吸収パッド４の並び順に、各部材間で毛管現象を生じさせ易くするために、それら各部材の両端と隣接する部材と１〜５ｍｍ程度重ね合わせて（好ましくはバッキングシート５上に）貼付することで、テストストリップ１を作製することができる。
【００２８】
［標識試薬粒子］
本発明で用いる標識試薬粒子としては、この種の試験キットに通常適用されるものを適宜使用することができる。例えば、蛍光シリカナノ粒子からなる標識試薬粒子、吸光シリカナノ粒子からなる標識試薬粒子、蛍光ラテックスナノ粒子からなる標識試薬粒子、吸光ラテックスナノ粒子からなる標識試薬粒子、半導体微粒子からなる標識試薬粒子、金コロイド粒子からなる標識試薬粒子、放射性物質で標識した粒子が挙げられる。
本発明で用いる標識試薬粒子は、蛍光シリカナノ粒子からなる標識試薬粒子が好ましい。蛍光シリカナノ粒子を用いた場合、蛍光検出装置により蛍光強度を容易に数値化でき、高感度及び高精度で生体分子を検出することができる。さらに、蛍光シリカナノ粒子の表面に様々な官能基を導入することができ、試験領域の発光が高輝度である。そのため、蛍光シリカナノ粒子を用いた場合、広い定量レンジで生体分子の検出を実現することができる。
以下、蛍光シリカナノ粒子からなる標識試薬粒子について説明する。しかし、本発明はこれに限定するものではない。
【００２９】
蛍光シリカナノ粒子の調製方法に特に制限はなく、任意のいかなる調製方法によって蛍光シリカナノ粒子を得ることができる。例えば、Journal  of  Colloid  and  Interface  Science，159，p．150-157（1993）に記載のゾル−ゲル法や、国際公開第２００７／０７４７２２号パンフレットに記載されたコロイドシリカ粒子の調製方法を参照することができる。
【００３０】
蛍光材料としての蛍光色素を用いた蛍光シリカナノ粒子の調製例について、具体的に説明する。
蛍光色素を含有するシリカ粒子は、蛍光色素とシランカップリング剤とを反応させ、共有結合、イオン結合その他の化学的に結合若しくは吸着させて得られた生成物に１種又は２種以上のシラン化合物を縮重合させシロキサン結合を形成させることにより調製することができる。これによりオルガノシロキサン成分とシロキサン成分とがシロキサン結合してなるシリカ粒子が得られる。１例としては、N-ヒドロキシスクシンイミド（ＮＨＳ）エステル基、マレイミド基、イソシアナート基、イソチオシアナート基、アルデヒド基、パラニトロフェニル基、ジエトキシメチル基、エポキシ基、シアノ基等の活性基を有する又は付加した蛍光色素と、それら活性基と対応して反応する置換基（例えば、アミノ基、水酸基、チオール基）を有するシランカップリング剤とを反応させ、共有結合させて得られた生成物に１又は２種以上のシラン化合物を縮重合させシロキサン結合を形成させることにより調製することができる。
【００３１】
前記シランカップリング剤としてアミノプロピルトリエトキシシラン（ＡＰＳ）、シラン化合物としてテトラエトキシシラン（ＴＥＯＳ）を用いた場合を下記に例示する。
【００３２】
【化１】
0006523021.tif 000002
【００３３】
前記活性基を有する又は付加した前記蛍光色素の具体例として、5-（及び-6）-カルボキシテトラメチルローダミン-NHSエステル（商品名、emp  Biotech  GmbH社製）や、下記式でそれぞれ表されるDY550-NHSエステル又はDY630-NHSエステル（いずれも商品名、Dyomics  GmbH社製）等のＮＨＳエステル基を有する蛍光色素化合物を挙げることができる。
【００３４】
【化２】
0006523021.tif 000003
【００３５】
前記置換基を有するシランカップリング剤の具体例として、γ-アミノプロピルトリエトキシシラン（ＡＰＳ）、3-［2-（2-アミノエチルアミノ）エチルアミノ］プロピル−トリエトキシシラン、N-2（アミノエチル）3-アミノプロピルメチルジメトキシシラン、3-アミノプロピルトリメトキシシラン等のアミノ基を有するシランカップリング剤を挙げることができる。中でも、ＡＰＳが好ましい。
【００３６】
縮重合させる前記シラン化合物としては特に制限はないが、ＴＥＯＳ、γ-メルカプトプロピルトリメトキシシラン（ＭＰＳ）、γ-メルカプトプロピルトリエトキシシラン、ＡＰＳ、3-チオシアナトプロピルトリエトキシシラン、3-グリシジルオキシプロピルトリエトキシシラン、3-イソシアナトプロピルトリエトキシシラン、及び3-［2-（2-アミノエチルアミノ）エチルアミノ］プロピル−トリエトキシシランを挙げることができる。中でも、前記シリカ粒子内部のシロキサン成分を形成する観点からはＴＥＯＳが好ましく、前記シリカ粒子内部のオルガノシロキサン成分を形成する観点からはＭＰＳ又はＡＰＳが好ましい。
【００３７】
上述のように調製すると、球状、又は球状に近いシリカ粒子を調製することができる。ここで、「球状に近いシリカ粒子」とは、具体的には長軸と短軸の比が２以下の形状である。
【００３８】
蛍光シリカナノ粒子の平均粒径に特に制限はないが、２０ｎｍ以上が好ましく、３０ｎｍ以上がより好ましく、６０ｎｍ以上がさらに好ましく、１０００ｎｍ未満が好ましく、６００ｎｍ以下がより好ましく、５００ｎｍ以下がさらに好ましく、３００ｎｍ以下が特に好ましい。粒径が小さすぎると、検出感度が低下し、粒径が大きすぎると、試験片に用いられる多孔質支持体（メンブレン）の目詰まりの原因となる。
本発明において、前記平均粒径は、透過型電子顕微鏡（ＴＥＭ）、走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）等の画像から無作為に選択した１００個の標識試薬シリカ粒子の合計の投影面積から蛍光シリカナノ粒子の占有面積を画像処理装置によって求め、この合計の占有面積を、選択した蛍光シリカナノ粒子の個数（１００個）で割った値に相当する円の直径の平均値（平均円相当直径）を求めたものである。
なお、前記平均粒径は、一次粒子が凝集してなる二次粒子を含む概念の後述する「動的光散乱法による粒度」とは異なり、一次粒子のみからなる粒子の平均粒径である。
所望の平均粒径の蛍光シリカナノ粒子を得るためには、ＹＭ−１０、ＹＭ−１００（いずれも商品名、ミリポア社製）等の限外ろ過膜を用いて限外ろ過を行い、粒径が大きすぎたり小さすぎる粒子を除去するか、又は適切な重力加速度で遠心分離を行い、上清若しくは沈殿のみを回収することで可能である。
蛍光シリカナノ粒子は粒状物質として単分散であることが好ましい。蛍光シリカナノ粒子の粒度分布の変動係数、いわゆるＣＶ値に特に制限はないが、１０％以下が好ましく、８％以下がより好ましい。
【００３９】
本明細書において、前記「動的光散乱法による粒度」とは、動的光散乱法により測定され、前記の平均粒径とは異なり、一次粒子だけでなく、一次粒子が凝集してなる二次粒子をも含めた概念であり、前記複合粒子の分散安定性を評価する指標となる。
動的光散乱法による粒度の測定装置としては、ゼータサイザーナノ（商品名；マルバーン社製）が挙げられる。この手法は、微粒子などの光散乱体による光散乱強度の時間変動を測定し、その自己相関関数から光散乱体のブラウン運動速度を計算し、その結果から光散乱体の粒度分布を導出するというものである。
【００４０】
蛍光シリカナノ粒子の表面には、検出対象である生体分子と競合する物質が導入されている。蛍光シリカナノ粒子の表面に生体分子と競合する物質が導入されていることで、生体分子と標識試薬粒子とが互いに競合して、前記試験領域に結合する。
生体分子と競合する物質は、生体分子と競合して、前記試験領域１０に標識試薬粒子が結合しうるものであれば特に制限はなく、検出対象である生体分子や試験領域１０に固定化する第１の捕捉物質などに応じて適宜選択することができる。なお、蛍光シリカナノ粒子の表面に導入する生体分子と競合する物質は、検出対象である生体分子と同種の物質であっても、異種の物質であってもよい。
【００４１】
前述のように試験片１に参照領域１１が設けられている場合、参照領域に対する結合性を有する参照用物質を蛍光シリカナノ粒子の表面に導入する。参照用物質と参照領域１１に固定化した第２の捕捉物質との結合性により、生体分子との競合により試験領域１０に結合しなかった標識試薬粒子を参照領域１１に捕捉する。
本発明で好ましく用いることができる参照用物質に特に制限はない。具体的には、参照領域１１に固定化した第２の捕捉物質に応じて、タンパク質（例えば、ウシ血清アルブミン（以下、「ＢＳＡ」ともいう）、カゼイン、スカシガイヘモシアニン、ヒト血清アルブミン、卵白アルブミン、グロブリン、アビジン、及びストレプトアビジンなど）、アミノ酸、タグペプチド（例えば、Hisタグ、FLAGタグなど）、抗体、核酸、糖鎖などから適宜選択することができる。
【００４２】
生体分子と競合する物質及び参照用物質を蛍光シリカナノ粒子の表面に導入する方法としては特に制限はなく、常法に従って導入することができる。例えば、静電的引力、ファンデルワールス力、疎水性相互作用等によって生体分子と競合する物質及び参照用物質をそれぞれ蛍光シリカナノ粒子の表面に導入させてもよい。あるいは、架橋剤や縮合剤の化学結合によって、生体分子と競合する物質及び参照用物質をそれぞれ蛍光シリカナノ粒子の表面に導入してもよい。なお、蛍光シリカナノ粒子の表面に生体分子と競合する物質及び／又は参照用物質を導入したときに蛍光シリカナノ粒子同士が凝集する場合は、予め交互吸着法によって蛍光シリカナノ粒子の表面に表面処理を施しておいてもよい。
なお、生体分子と競合する物質及び参照用物質をそれぞれ蛍光シリカナノ粒子の表面に独立して導入してもよいし、生体分子と競合する物質及び参照用物質の複合体を蛍光シリカナノ粒子の表面に導入してもよい。本発明で好ましく用いることができる蛍光シリカナノ粒子は、その表面に参照用物質が結合しており、参照用物質を介して蛍光シリカナノ粒子と生体分子と競合する物質とが結合していることが好ましい。このような構成とすることで、蛍光シリカナノ粒子への生体分子と競合する物質の固定化の効率が向上する。さらに、蛍光シリカナノ粒子が試験領域に非特異的に吸着することを抑制し、生体分子の定量結果の精度をさらに向上させることができる。
【００４３】
以下、参照用物質としてＢＳＡを用いて、生体分子と競合する物質及び参照用物質を導入した蛍光シリカナノ粒子の調製方法の１例について説明する。しかし、本発明はこれに制限するものではない。
【００４４】
まず、反応性官能基を有するシランカップリング剤を加水分解し、加水分解されたシランカップリング剤と蛍光シリカナノ粒子の表面に存在するヒドロキシル基とを縮重合させ、反応性官能基を蛍光シリカナノ粒子の表面に導入する。
反応性官能基を有するシランカップリング剤の具体例としては、3-メルカプトプロピルトリメトキシシラン、ＭＰＳ、ＡＰＳ、3-チオシアナトプロピルトリエトキシシラン、3-グリシジルオキシプロピルトリエトキシシラン、3-イソチオシアナトプロピルトリエトキシシラン、3-［2-（2-アミノエチルアミノ）エチルアミノ］プロピルトリエトキシシラン、（-クロロプロピルトリメトキシシラン、ビニルメトキシシラン、3-メタクリロキシプロピルメチルジメトキシシラン、3-アクリロキシプロピルトリメトキシシラン、N-フェニル-3-アミノプロピルトリメトキシシラン、3-ウレイドプロピルトリエトキシシラン、ビス（トリエトキシシリルプロピル）テトラスルフィドが挙げられる。
【００４５】
反応性官能基としてはチオール基、アミノ基、カルボキシル基、ハロゲン基、ビニル基、エポキシ基及びイソシアネート基から選ばれる少なくとも１種の反応性官能基が好ましく、チオール基がより好ましい。
反応性官能基がチオール基である場合は、蛍光シリカナノ粒子表面におけるチオール基の密度は０．００２〜０．２個／ｎｍ2が好ましく、０．００２〜０．１個／ｎｍ2がより好ましい。当該含色素シリカ粒子の表面に存在するチオール基の量Ｂは、ＤＮＴＢ（5,5'-ジチオビス(2-ニトロ安息香酸)）を試薬として用いて測定することができる。ＤＮＴＢを用いたチオール基の定量法としては、例えば、Archives  of  Biochemistry  and  Biophysics,  82,  70(1959)の方法で行うことができる。具体的な方法の一例としては、リン酸緩衝液（ｐＨ７．０）に溶解した１０ｍＭのＤＮＴＢの溶液２０μＬと、２００ｍｇ／ｍＬに調製したシリカ粒子コロイド２．５ｍＬとを混合し、１時間後に４１２ｎｍの吸光度を測定し、標準物質としてγ−メルカプトプロピルトリメトキシシラン（ＭＰＳ）を用いて作成した検量線から粒子表面に存在するチオール基量を定量することができる。
【００４６】
蛍光シリカナノ粒子の表面に導入した反応性官能基と、これと化学結合を形成するリンカー分子とを反応させる。そして、リンカー分子とＢＳＡとを結合させ、蛍光シリカナノ粒子とＢＳＡとの複合体を形成する。
反応性官能基がチオール基である場合は、チオール基が導入された蛍光シリカナノ粒子と、マレイミド基及びカルボキシル基を有するリンカー分子とを非プロトン性溶媒中に共存させる。これにより、チオール基とマレイミド基との間でチオエーテル結合を形成させて、リンカー分子が結合した粒子を作製する。続いて、リンカー分子が結合した粒子と、カルボジイミドと、アミノ基を有するＢＳＡとを水系溶媒中に共存させる。これにより、カルボジイミドにより活性エステル化されたリンカー分子のカルボキシル基と、ＢＳＡが有するアミノ基との間でアミド結合を形成させ、蛍光シリカナノ粒子とＢＳＡとの複合体を形成する。
反応性官能基がアミノ基、カルボキシル基、ビニル基、エポキシ基、イソシアネート基である場合も、常法によりＢＳＡと蛍光シリカナノ粒子との複合体を形成することができる。これらの方法は、例えば、特開２００９−２７４９２３号公報、特開２００９−１６２５３７号公報、特開２０１０−１００５４２号公報等の記載を参照することができる。
【００４７】
そして、蛍光シリカナノ粒子に結合するＢＳＡと、生体分子と競合する物質とを常法に従って結合させる。例えば、静電的引力、ファンデルワールス力、疎水性相互作用等によって、ＢＳＡと、生体分子と競合する物質とを結合させることができる。あるいは、架橋剤や縮合剤の化学結合により、ＢＳＡと、生体分子と競合する物質とを結合させることができる。なお、ＢＳＡと、生体分子と競合する物質とが直接結合して複合体を形成してもよいし、他の物質を介して間接的にＢＳＡと、生体分子と競合する物質とが結合して複合体を形成していてもよい。
【００４８】
蛍光シリカナノ粒子の表面における生体分子と競合する物質の導入量に特に制限なく、適宜設定することができる。例えば、蛍光シリカナノ粒子の表面１ｎｍ2当たりの生体分子と競合する物質の導入量は、０．０００１個以上０．１個以下が好ましく、０．００１個以上０．０５個以下が好ましい。
【００４９】
蛍光シリカナノ粒子の表面における参照用物質の結合量に特に制限なく、適宜設定することができる。例えば、蛍光シリカナノ粒子１ｇ当たりの参照用物質の結合量は、１ｍｇ以上２００ｍｇ以下が好ましく、１０ｍｇ以上５０ｍｇ以下が好ましい。
【００５０】
［生体分子の検出又は定量方法］
本発明の生体分子の検出又は定量方法は、生体分子を含む試料と標識試薬粒子の混合物を試験片１に滴下し、生体分子と競合して試験領域１０に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を測定し、試験領域に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を、試験片１を移動した標識試薬粒子量を示す測定値で補正し、補正した数値に基づいて生体分子を検出又は定量する。
以下、上記構成の生体分子の検出又は定量方法について、好ましい実施態様に基づいて説明する。しかし、本発明はこれに制限するものではない。
【００５１】
生体分子を含有しうる液体試料と前記構成の標識試薬粒子との混合物を、生体分子検出又は定量用の試験片１のサンプルパッド２に滴下する。サンプルパッド２に滴下する液体試料の量は、試験片１の構成に合わせて適宜設定することができる。また、サンプルパッド２に滴下する生体分子と標識試薬粒子の量は、試験片１の試験領域１０における第１の捕捉物質の固定化量に応じて、適宜設定することができる。
【００５２】
そして、毛細管現象によりサンプルパッド２からメンブレン３に移動してきた生体分子と標識試薬粒子が互いに競合して、試験片１の試験領域１０上に固定された第１の捕捉物質との結合によりそれぞれ濃縮される。そして、試験領域１０に光を照射し、濃縮された標識試薬粒子の標識（蛍光シリカナノ粒子に含まれる色素の発光強度）を検出する。
ここで、試験領域１０の発光強度と、試験領域１０に結合する粒子量の関係性を決定する。そして、決定した発光強度と粒子量との関係性と、実際に測定した試験領域１０の発光強度から、試験領域１０に結合した標識試薬粒子量を算出することができる。その結果、間接的に、試料に含まれる生体分子を定性的又は定量的に検出することができる。
【００５３】
蛍光シリカナノ粒子に含まれる色素の発光強度の検出方法に特に制限はなく、目視で検出してもよいし、汎用の蛍光検出器を用いて検出してもよい。
汎用の蛍光検出器は、励起光源及びフィルタからなる。前記励起光源としては水銀ランプ、ハロゲンランプ、キセノンランプ、レーザダイオード、発光ダイオードなどが挙げられる。前記フィルタは、励起光源から特定の波長の光のみを透過するフィルタであり、前記蛍光微粒子の蛍光波長、蛍光波長から適宜選択する。前記蛍光検出器は、蛍光を受光する光電子倍増管又はＣＣＤ検出器を備えていてもよい。これにより目視では確認できない強度ないしは波長の蛍光も検出でき、さらにはその蛍光強度を測定できる。
照射する励起光の波長は特に限定されないが、３００ｎｍ以上が好ましく、４００ｎｍ以上がより好ましく、５００ｎｍ以上が特に好ましい。また、７００ｎｍ以下が好ましく、６００ｎｍ以下がより好ましく、５５０ｎｍ以下が特に好ましい。
蛍光の波長は３５０ｎｍ以上が好ましく、４５０ｎｍ以上がより好ましく、５３０ｎｍ以上が特に好ましい。また、８００ｎｍ以下が好ましく、７５０ｎｍ以下がより好ましく、５８０ｎｍ以下が特に好ましい。
【００５４】
次に、試験領域１０に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を、試験片１を移動した標識試薬粒子量を示す測定値で補正する。これにより、試験キットの構成部材の不均一性やばらつき、試験キットを流れる標識試薬粒子の流れのばらつきの影響を排除する。
【００５５】
試験片１を移動した標識試薬粒子量は、常法により決定することができる。
例えば、試験片１に、参照領域１１を試験領域１０よりも下流に設け、生体分子との競合により試験領域１０に結合しなかった標識試薬粒子を参照領域１１に結合させてもよい。そして、参照領域１１に光を照射し、参照領域１１の発光強度を測定し、試験領域１０の発光強度と参照領域１１の発光強度の合計値から、試験片を移動した標識試薬粒子量を算出することができる。
あるいは、試験片１に滴下する混合物中の標識試薬粒子の濃度を決定し、実際に試験片１に滴下した混合物の量から、試験片１を移動した標識試薬粒子量を算出することもできる。
【００５６】
試験領域１０に結合した標識試薬粒子量を、試験片１を移動した全標識試薬粒子量で補正する具体的な方法としては、試験領域１０の発光強度を、試験領域１０の発光強度と参照領域１１の発光強度の合計値で割り、試験領域１０の発光強度を補正する方法が挙げられる。
【００５７】
［生体分子の検出又は定量装置］
本発明の生体分子の検出又は定量装置は、試験片１の試験領域１０に光を照射する光照射部と、試験領域１０に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を検出する検出部を備える。
本発明の生体分子の検出又は定量装置は、生体分子との競合により試験領域１０に結合しなかった標識試薬粒子を捕捉する参照領域１１に光を照射する光照射部と、参照領域１１に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を検出する検出部をさらに備えていてもよい。
【００５８】
本発明の生体分子の検出又は定量装置は、前述した、蛍光シリカナノ粒子からなる標識試薬粒子を用いた生体分子の検出又は定量方法に好適に用いることができる。そして本発明の生体分子の検出又は定量装置において、試験領域に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を検出する検出部及び参照領域に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を検出する検出部は、標識試薬粒子が結合した試験領域１０又は参照領域１１の発光強度を測定し、測定した発光強度から結合した標識試薬粒子量を算出する。
【００５９】
本発明の生体分子の検出又は定量装置はさらに、試験領域１０に結合した標識試薬粒子量を示す測定値を、試験片１を移動した標識試薬粒子量を示す測定値で補正する、ＣＰＵ（中央演算処理装置）やメモリ、ハードディスク等の記録媒体が内蔵されたコンピューター等の補正手段を有することが好ましい。さらに本発明の生体分子の検出又は定量装置は、前記補正手段により補正した数値に基づいて生体分子の濃度を算出する、ＣＰＵやメモリ、ハードディスク等の記録媒体が内蔵されたコンピューター等の生体分子の濃度の算出手段を備えることが好ましい。
【００６０】
本発明の生体分子の検出又は定量装置は、前述した汎用の蛍光検出器のように、光照射部と検出部が一体化していてもよい。
【実施例】
【００６１】
以下、本発明を実施例に基づきさらに詳細に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。
【００６２】
（調製例１）参照用物質を介して生体分子と競合する物質を導入した蛍光シリカナノ粒子からなる標識試薬粒子の調製
（１）蛍光シリカナノ粒子の調製
蛍光分子であるカルボキシローダミン６Ｇを含有する蛍光シリカナノ粒子を以下の方法で調製した。
5-（及び-6）-カルボキシローダミン６Ｇ・スクシンイミジルエステル（商品名、emp  Biotech  GmbＨ社製）３１ｍｇをジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）１０ｍＬに溶解した。これにＡＰＳ（信越シリコーン社製）１２μＬを加え室温（２３℃）で１時間反応を行い、5-（及び-6）-カルボキシローダミン６Ｇ−ＡＰＳ複合体（５ｍＭ）を得た。
【００６３】
得られた5-（及び-6）-カルボキシローダミン６Ｇ−ＡＰＳ複合体の溶液６００μＬと、エタノール１４０ｍＬ、ＴＥＯＳ（信越シリコーン社製）６．５ｍＬ、蒸留水２０ｍＬ及び２８質量％アンモニア水１５ｍＬを混合し、室温で２４時間反応を行った。
反応終了後１８０００×ｇの重力加速度で３０分間遠心分離を行い、上清を除去した。沈殿した粒子に蒸留水４ｍＬを加え粒子を分散させ、再度１８０００×ｇの重力加速度で３０分間遠心分離を行った。本洗浄操作をさらに２回繰り返し、分散液に含まれる未反応のＴＥＯＳやアンモニア等を除去した。
その結果、平均粒径２７１ｎｍの蛍光分子を含有する蛍光シリカナノ粒子１．６５ｇを得た（収率約９４％）。
【００６４】
（２）蛍光シリカナノ粒子へのチオール基の導入
上記で得た蛍光シリカナノ粒子１ｇを水／エタノール＝１／４の混合液１５０ｍＬに分散させた。これにＭＰＳ（和光純薬社製）１．５ｍＬを加えた。続いて２８％アンモニア水２０ｍＬを加え、室温で４時間混合した。
【００６５】
反応終了後１８０００×ｇの重力加速度で３０分間遠心分離を行い、上清を除去した。沈殿した蛍光シリカナノ粒子に蒸留水１０ｍＬを加え蛍光シリカナノ粒子を分散させ、再度１８０００×ｇの重力加速度で３０分間遠心分離を行った。本洗浄操作をさらに２回繰り返し、分散液に含まれる未反応のＭＰＳやアンモニア等を除去した。その結果、チオール基が導入された蛍光シリカナノ粒子（以下、「チオール基導入蛍光シリカナノ粒子Ａ」と呼ぶ。）を得た。
得られたチオール基導入蛍光シリカナノ粒子Ａ  ５００ｍｇについて、ＤＮＴＢを用いて導入されたチオール基の定量分析を行った。その結果、チオール基導入蛍光シリカナノ粒子Ａの粒子表面のチオール基の密度は、０．０４６個／ｎｍ2であった。
【００６６】
（３）チオール基導入蛍光シリカナノ粒子ＡとＢＳＡとの結合
以下の方法により、チオール基を介して、前記チオール基導入蛍光シリカナノ粒子ＡにＢＳＡを標識した参照用物質として結合させた。
チオール基導入蛍光シリカナノ粒子Ａの分散液（濃度２５ｍｇ／ｍＬ、分散媒：蒸留水）８０μＬにＤＭＦ４２０μＬを加え、１５０００×ｇの重力加速度で１０分遠心分離した。上清を除去し、ＤＭＦを５００μＬ加え遠心分離し、上清を除去した。再度ＤＭＦ５００μＬを加えチオール基導入蛍光シリカナノ粒子Ａを分散させた。これにリンカー分子として3-マレイミド安息香酸１ｍｇを加え３０分混合した。このようにして、前記リンカー分子のマレイミド基とチオール基導入蛍光シリカナノ粒子Ａのチオール基との間でチオエーテル結合を形成させた。
【００６７】
この反応液を１５０００×ｇの重力加速度で１０分遠心分離した。上清を除去後、蒸留水８８．６μＬを加え粒子を分散させた。続いて、０．５Ｍ  ＭＥＳ（2-モルホリノエタンスルホン酸)（ｐＨ６．０）１００μＬ、５０ｍｇ／ｍＬ  ＮＨＳ（N-ヒドロキシスクシンイミド）２３０．４μＬ、１９．２ｍｇ／ｍＬ  ＥＤＣ（1-エチル-3-（3-ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド）７５μＬを加え混合した。これにＢＳＡ（１０ｍｇ／ｍＬ、Sigma  Aldrich社製）を６．０μＬ加え、６０分間混合した。
１５０００×ｇの重力加速度で１０分遠心分離し、上清を除去した。これに１０ｍＭ  ＫＨ2ＰＯ4（ｐＨ７．５）４００μＬを加え、粒子を分散させた。続いて１５０００×ｇの重力加速度で１０分遠心分離し、上清を除去した。再度１０ｍＭ  ＫＨ2ＰＯ4（ｐＨ７．５）４００μＬを加え、粒子を分散させてコロイドを得た。
【００６８】
得られたコロイド２００μＬをサンプルとして、チオール基導入蛍光シリカナノ粒子Ａに結合したＢＳＡの定量を行った。ＢＳＡの定量は、PierceBCA  Protein  Assay  Kit（商品名、Thermo  Fisher  Scientific社製）を用いた。
その結果、チオール基導入蛍光シリカナノ粒子Ａ１ｇあたりのＢＳＡの結合量は、１４．６ｍｇであった。
【００６９】
（４）ＢＳＡを介したチオール基導入蛍光シリカナノ粒子Ａとプロゲステロンとの結合
以下の方法により、ＢＳＡを介して、前記チオール基導入蛍光シリカナノ粒子Ａにプロゲステロンを生体分子と競合する物質として結合させた。
ＢＳＡ定量後に残ったコロイド２００μＬを１５０００×ｇの重力加速度で１０分遠心分離し、上清を除去した。これに１０ｍＭ  ＫＨ2ＰＯ4（ｐＨ７．５）５００μＬを加え、粒子を分散させた。分散液を１５０００×ｇの重力加速度で１０分遠心分離し、上清を除去した。続いて蒸留水を７４．６μＬ加え粒子を分散させた。さらに０．５Ｍ  ＭＥＳ（ｐＨ６．０）１００μＬ、５０ｍｇ／ｍＬ  ＮＨＳ２３０．４μＬ、１９．２ｍｇ／ｍＬ  ＥＤＣ７５μＬを加え、よく混合した。
これにプロゲステロン−１１α−ヘミコハク酸エステル（０．０５ｍｇ／ｍＬ）２０μＬを加え、６０分間混合した。
【００７０】
反応液に対して１５０００×ｇの重力加速度で１０分遠心分離を行い、上清を回収した。
回収した上清液に含まれるプロゲステロンをELISA法により定量測定した結果、初期濃度からの減少分が０．１３μｇであった。すなわち、０．１３μｇのプロゲステロンが前記蛍光シリカナノ粒子に結合したことが分かった。これをチオール基導入蛍光シリカナノ粒子Ａ  １ｎｍ2当たりで計算すると、プロゲステロンの結合量は１ｎｍ2あたり０．０１７個であった。
【００７１】
上清を回収した後の粒子の沈降物に１０ｍＭ  ＫＨ2ＰＯ4（ｐＨ７．５）４００μＬを加え、粒子を分散させた。続いて１５０００×ｇの重力加速度で１０分遠心分離し、上清を除去した。続いて１０ｍＭ  ＫＨ2ＰＯ4（ｐＨ７．５）４００μＬを加え粒子を分散させて、ＢＳＡを介してプロゲステロンが結合した蛍光シリカナノ粒子のコロイドを得た。
【００７２】
（調製例２）生体分子検出又は定量用テストストリップの作製
生体分子検出又は定量用テストストリップを以下の方法で作製した。
メンブレン３（丈２５ｍｍ、商品名：Hi-Flow  Plus180  メンブレン、MILLIPORE社製）の端から約８ｍｍの位置に、幅約１ｍｍの試験領域（テストライン）１０として、ウサギ由来の抗プロゲステロンポリクローナル抗体（Sigma  Aldrich社製）を１ｍｇ／ｍＬ含有する溶液（（５０ｍＭ  ＫＨ2ＰＯ4、ｐＨ７．０）＋５％スクロース）を０．７５μＬ／ｃｍの塗布量で塗布した。
また、幅約１ｍｍの参照領域（コントロールライン）１１として、ウサギ由来の抗ＢＳＡポリクローナル抗体（ミリポア社製）を１ｍｇ／ｍＬ含有する溶液（（５０ｍＭ  ＫＨ2ＰＯ4、ｐＨ７．０）シュガー・フリー）を０．７５μＬ／ｃｍの塗布量で塗布した。
その後、５０℃で３０分乾燥させ、メンブレン３を作製した。なお、テストラインとコントロールラインとの間隔は５ｍｍとした。
【００７３】
サンプルパッド（Glass  Fiber  Conjugate  Pad（ＧＦＣＰ）、MILLIPORE社製）２、前記メンブレン３、及び吸収パッド（Cellulose  Fiber  Sample  Pad（ＣＦＳＰ）、MILLIPORE社製）４の順で、バッキングシート（商品名：AR9020、Adhesives  Research社製）５上で組み立てた。なお、メンブレン３は、テストラインがサンプルパッド２側、コントロールラインが吸収パッド４側に位置するように配置した。
続いて、５ｍｍ幅、長さ６０ｍｍのストリップ状に切断し、生体分子検出又は定量用テストストリップ１を作製した。
【００７４】
試験例１  プロゲステロンの定量
表１に示す濃度で、プロゲステロン（Sigma  Aldrich社製）の溶液を調製した。
続いて、プロゲステロン溶液１００μＬと、前記調製例１で作製した蛍光シリカナノ粒子のコロイド（２．５ｍｇ／ｍＬ）２μＬを混合し、混合液をテストストリップ１のサンプルパッド２に滴下した。
１５分後、下記検出装置を用いて、テストラインの発光強度（Ｔ）とコントロールラインの発光強度（Ｃ）を数値化した。さらに、テストラインの発光強度（Ｔ）をテストラインの発光強度（Ｔ）とコントロールラインの発光強度（Ｃ）の合計値で割った値（Ｔ／（Ｔ＋Ｃ））を算出した。
その結果を表１に示す。
【００７５】
＜検出装置＞
光源と光学フィルタと光電子倍増管（ＰＭＴ）からなる検出ユニットを有し、該検出ユニットが、モーターによって一定速度で直線移動する機構を備え、ＰＭＴの受光強度を５０μ秒ごとに記録する記録機構を備えた検出装置を作製した。なお、検出ユニットは、光源が５３２ｎｍのレーザダイオードであり、レーザダイオードをサンプルに照射し、反射光を５５０ｎｍ以上の波長の光のみを透過する光学フィルタを透過させた後にＰＭＴで受光する機構を有する。
【００７６】
【表１】
0006523021.tif 000004
【００７７】
表１の結果に基づき、横軸にプロゲステロン濃度の常用対数、縦軸にテストラインの発光強度（Ｔ）をプロットしたグラフを作成した。その結果を図２に示す。また、横軸にプロゲステロン濃度の常用対数、縦軸にテストラインの発光強度（Ｔ）をテストラインの発光強度（Ｔ）とコントロールラインの発光強度（Ｃ）の和で割った値（Ｔ／（Ｔ＋Ｃ））をプロットしたグラフを作成した。その結果を図３に示す。
そして図２及び３に示すそれぞれのグラフについて、決定係数を求めた。決定係数は、横軸をプロゲステロンの濃度（ng/mL）の常用対数、縦軸をテストラインの発光強度（a.u.）又は（Ｔ／（Ｔ＋Ｃ））値とし、最小二乗法で一次式の回帰直線を作成することで算出した。その結果を表２に示す。
【００７８】
【表２】
0006523021.tif 000005
【００７９】
図２及び３、並びに表２からわかるように、縦軸に（Ｔ／（Ｔ＋Ｃ））値を用いた方が、縦軸にＴ値を用いた場合よりも決定係数の値が１に近く、テストラインの発光強度とコントロールラインの発光強度の測定値のばらつきが小さかった。
【００８０】
試験例２  プロゲステロン量の測定値の精度評価
プロゲステロンの濃度が５ｎｇ/ｍＬの溶液について、前記試験例１と同じ方法で１０回試験を実施した。そして、テストラインの発光強度（Ｔ）の変動係数ＣＶ値（標準偏差／平均値）と、テストラインの発光強度をテストラインの発光強度とコントロールラインの発光強度の合計値で割った値（Ｔ／（Ｔ＋Ｃ））の変動係数ＣＶ値（標準偏差／平均値）を算出した。その結果を表３に示す。
【００８１】
【表３】
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【００８２】
表３からわかるように、Ｔ値を採用した場合の変動係数は１６％であったのに対し、Ｔ／（Ｔ＋Ｃ）値を採用した場合の変動係数は５％であった。すなわち、Ｔ／（Ｔ＋Ｃ）値を採用した場合の方は測定値のばらつきが小さく、測定値の精度が高いことが分かる。
【００８３】
テストラインの発光強度（Ｔ）は、試験キットの構成部材の不均一性やばらつき、メンブレンを毛細管現象により移動する標識試薬粒子の流れのばらつきに影響する。そのため、表２及び３にしめすように、テストラインの発光強度とプロゲステロン濃度との相関性は低い。
これに対し、テストラインの発光強度とコントロールラインの発光強度の和を、メンブレン３を移動した標識試薬粒子の流れを示す量として用い、この値でテストラインの発光強度Ｔの値を補正することで、試験キットの構成部材の不均一性やばらつき、標識試薬粒子の流れのばらつきがあっても、テストラインの発光強度と生体分子濃度との高い相関性が得られた。すなわち、本発明により、生体分子の検出精度を向上させることができる。
【符号の説明】
【００８４】
１  テストストリップ
２  サンプルパッド
３  メンブレン
４  吸収パッド
５  バッキングシート
１０  試験領域
１１  参照領域
【図１】
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【図２】
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【図３】
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