(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
被検動物より採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含み、CIDECの発現量を基準値と比較することにより被検動物のうつ病の発症の有無が判定される、該動物におけるうつ病の診断のための検査方法。
【請求項２】
さらに、BANP、RAB11FIP4、RNASE1、SLC36A1、STYXL1、ARFRP1、BCL11B、FYCO1、NIPAL3、RPL23A、RPS2、SIGIRR及びSLC35F2からなる群より選ばれる１種又は２種以上の発現量を測定する工程を含む、請求項１に記載のうつ病の診断のための検査方法。
【請求項３】
さらに、BANP、RAB11FIP4、RNASE1、SLC36A1、STYXL1、ARFRP1、BCL11B、FYCO1、NIPAL3、RPL23A、RPS2、SIGIRR及びSLC35F2の発現量を測定する工程を含む、請求項１に記載のうつ病の検査方法。
【請求項４】
前記試料は、血液である、請求項１から３のいずれか一項に記載のうつ病の診断のための検査方法。
【請求項５】
前記測定が、マイクロアレイ、リアルタイムPCR、ELISA法、ウエスタンブロット法、ＦＡＣＳ解析法、分光光度法、蛍光光度法、質量分析法、及びクロマトグラフィーからなる群より選ばれる１種又は２種以上により行われる、請求項１から４のいずれか一項に記載のうつ病の診断のための検査方法。
【請求項６】
被検動物より採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含み、CIDECの発現量が高いほどうつ病の重症度が高いという基準に基づいてうつ病の重症度が判定される、該動物におけるうつ病の重症度評価のための検査方法。
【請求項７】
うつ病治療薬が投与されたうつ病治療を必要とする非ヒト動物より採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含む、該非ヒト動物におけるうつ病の治療効果の評価方
法。
【請求項８】
被検体とうつ病治療薬の候補化合物を接触させた後、該被検体中のCIDECの発現量を測
定する工程を含む、うつ病治療薬のスクリーニング方法。
【請求項９】
CIDECの発現量を測定し得る試薬を含んでなる、うつ病の診断のための検査用、うつ病
治療効果評価用、またはうつ病治療薬候補化合物のスクリーニング用キット。
【請求項１０】
被検動物のうつ病の診断の指標とするために、被検動物より採取された試料中のCIDEC
の発現量を測定する工程を含む、CIDECの発現量の測定方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、うつ病の診断のための検査方法、うつ病の重症度評価のための検査方法、うつ病の治療効果の評価方法、うつ病治療薬のスクリーニング方法、およびうつ病の診断のための検査用、うつ病治療効果評価用またはうつ病治療薬候補化合物スクリーニング用のキットに関するものである。
【背景技術】
【０００２】
うつ病は、精神疾患の中でも障害を有する期間と患者数の積、すなわちWHOが疾病の社会的重要性の指標としている障害調整生命年（DALY）が最も多い疾患であり、その患者数は近年において著しく増加している。うつ病の症状としては、気分が沈む、何事をするのも億劫である、興味関心が低下する、周囲の重荷になることに対する恐怖がある、不安である、イライラする等が挙げられ、いずれも個人の社会生活に重大な影響を与える症状である。また、自殺者の約半数はうつ病が原因であるとされている。そのため、うつ病を的確に診断し、迅速にその治療を行うことが、社会にとっての急務である。【０００３】
しかし、うつ病を的確に診断するには、高度の専門性が必要である。現在、うつ病の診断は、精神科医による患者への問診により行われている。しかし、この問診による診断は、患者の主観的体験を判断するため、医師間で一致しないという問題がある。また、症状が目に見えないため、患者や家族は、どの程度悪いのかという疾患の重症度を判断することができない。そのため、うつ病の診断や重症度評価のための客観的な指標が求められている。【０００４】
うつ病の客観的指標を求めて、PETやNIRSなどによる脳画像診断が補助的に使われ始めている。しかし、それらを利用できる医療施設は限られている上、施設間バイアスがあるため、統一的な評価法の確立には至っていない。【０００５】
また、現在臨床で用いられている抗うつ薬の有効性はおよそ６割程度であるものの、実験動物で評価可能なうつ症状の客観的な指標が存在しないため、新規抗うつ薬の開発は難渋している。従来、被験薬の有効性評価は、実験動物の行動解析に依存しており、慢性的にストレス負荷した実験動物が呈する行動異常で、しかも抗うつ薬によって正常化する行動を「うつ病様行動」と称してきた。しかし、客観性と妥当性に乏しいため、医薬品開発のプロセスにおいてボトルネックになっている。よって、うつ病を治療するための医薬品開発においても、臨床で検証されている上、実験動物でも同様に評価可能な客観的な指標が求められている。【０００６】
うつ病を客観的に評価する方法として、特許文献１には、被験者の末梢血由来のメッセンジャーＲＮＡより、アポトーシス関連遺伝子、ＡＴＰａｓｅ関連遺伝子、細胞周期関連遺伝子、サイトカイン関連遺伝子、熱ショックタンパク質関連遺伝子、ポリメラーゼ関連遺伝子、ＧＴＰ結合タンパク質関連遺伝子、プロテインキナーゼＣ関連遺伝子、及びミトコンドリアチトクロームＣオキシダーゼ関連遺伝子から選ばれる少なくとも１種類以上の遺伝子の発現量をDNAチップにより解析し、前記解析結果を基に被験者の病状を評価することを特徴とするうつ病の評価方法が、記載されている。
また、特許文献２には、FASLG、CX3CR1、TBX21、ID2、SLAMF7、PRSS23、YWHAQ、TARDBP、ADRB2、PPP1R8、MMAA、SQLE、PDHA1、HAVCR2、RACGAP1、AHNAK、EDG8、およびDUSP5の１８遺伝子の発現量を測定し、前記測定結果に基づき当該被験者がうつ病に罹患しているか否かを判定することを特徴とする、うつ病の検査方法が、記載されている。
しかし、これらの内で臨床応用されているものは皆無であるので、より的確な診断が可能であり、さらにうつ病治療薬の治療効果を反映するような分子マーカーが求められていた。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００７】
【特許文献１】特開２００４−２０８５４７号公報
【特許文献２】特開２００８−２５３２５８号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明は、上記の問題点に鑑み、うつ病患者の血液等の試料を用いて、的確なうつ病の検査を行う方法、及びうつ病治療効果の評価方法を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明者らは、前述の課題を解決すべく鋭意検討した結果、うつ病患者試料中のCIDECの発現量が顕著に増加しており、寛解に伴ってその発現量が減少するという知見を得て、CIDECの発現量がうつ病の検査及びうつ病治療効果の評価のための有用な指標となることを見出して、本発明を完成するに至った。【００１０】
即ち、本発明は以下を要旨とする。
［１］被検動物より採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含み、CIDECの発現量を基準値と比較することにより被検動物のうつ病の発症の有無が判定される、該動物におけるうつ病の診断のための検査方法。
［２］さらに、BANP、RAB11FIP4、RNASE1、SLC36A1、STYXL1、ARFRP1、BCL11B、FYCO1、NIPAL3、RPL23A、RPS2、SIGIRR及びSLC35F2からなる群より選ばれる１種又は２種以上の発現量を測定する工程を含む、［１］に記載のうつ病の診断のための検査方法。
［３］さらに、BANP、RAB11FIP4、RNASE1、SLC36A1、STYXL1、ARFRP1、BCL11B、FYCO1、NIPAL3、RPL23A、RPS2、SIGIRR及びSLC35F2の発現量を測定する工程を含む、［１］に記載のうつ病の検査方法。
［４］前記試料は、血液である、［１］から［３］のいずれかに記載のうつ病の検査方法。
［５］前記測定が、マイクロアレイ、リアルタイムPCR、ELISA法、ウエスタンブロット法、ＦＡＣＳ解析法、分光光度法、蛍光光度法、質量分析法、及びクロマトグラフィーからなる群より選ばれる１種又は２種以上により行われる、［１］から［４］のいずれかに記載のうつ病の診断のための検査方法。
［６］被検動物より採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含み、CIDECの発現量が高いほどうつ病の重症度が高いという基準に基づいてうつ病の重症度が判定される、該動物におけるうつ病の重症度評価のための検査方法。
［７］うつ病治療薬が投与されたうつ病治療を必要とする動物より採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含む、該動物におけるうつ病の治療効果の評価方法。
［８］被検体とうつ病治療薬の候補化合物を接触させた後、該被検体中のCIDECの発現量を測定する工程を含む、うつ病治療薬のスクリーニング方法。
［９］CIDECの発現量を測定し得る試薬を含んでなる、うつ病の診断のための検査用、うつ病治療効果評価用、またはうつ病治療薬候補化合物のスクリーニング用キット。
［１０］被検動物のうつ病の診断の指標とするために、被検動物より採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含む、CIDECの発現量の測定方法。
【発明の効果】
【００１１】
本発明によれば、CIDECがうつ病検査用分子マーカーとして提供される。また、本発明の方法により、客観的な指標に基づいて、うつ病の診断、重症度評価、及び治療効果の評価をすることが可能となる。また、うつ病治療薬を、客観的な指標に基づいてスクリーニングすることが可能となる。
【図面の簡単な説明】
【００１２】
【図１】モデル動物を含む、Sham+NS、OVX+NS、Sham+CUMS、及び、OVX+CUMSの4群について、強制水泳試験及びオープンフィールド試験を行った結果を示す。
【図２】ヒト被験者およびマウスから得たRNAによるマイクロアレイ解析結果を示す。
【図３】ヒト被験者から得たRNAによるリアルタイム定量PCRの定量解析結果を示す（CIDECおよびSTYXL1）。
【図４】ヒト被験者から得たRNAによるリアルタイム定量PCRの定量解析結果を示す（SLC36A1およびRNASE1）。
【図５】ヒト被験者から得たRNAによるリアルタイム定量PCRの定量解析結果を示す（ARFRP1、BCL11BおよびSLC35F2）。
【図６】CIDECのリアルタイム定量PCRにより得られた個々の被験者のΔCt値を示すグラフ。
【図７】SIGH-DとΔCt値との相関性解析結果を示すグラフ（CIDECおよびSTYXL1）。
【図８】SIGH-DとΔCt値との相関性解析結果を示すグラフ（SLC36A1およびRNASE1）。
【図９】モデル動物へのうつ病治療薬投与前後において強制水泳試験及びオープンフィールド試験を行った結果を示す。
【図１０】モデル動物へのうつ病治療薬投与前後において得られたRNAによるリアルタイム定量PCRの定量解析結果を示す（CIDEC、STYXL1、SLC36A1およびRNASE1）。
【図１１】うつ症状有りおよびうつ症状無しの被験者における、14遺伝子の発現レベルに基づく判別得点（ａ）とCIDEC発現レベル（ΔCt値）（ｂ）を示すグラフ。
【発明を実施するための形態】
【００１３】
以下、本発明の実施の形態を詳細に説明する。
（１）うつ病の診断のための検査方法
本発明の第１は、被検動物より採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含む、該動物におけるうつ病の診断のための検査方法である。
【００１４】
本明細書において、「うつ病」とは、WHOのICD-10ないし米国精神医学会の「精神疾患の診断と統計のためのマニュアル、DSM-IV（今後はDSM-Ｖ）」の診断基準によるうつ病性障害であり、その重症度はSIGH-D（ハミルトンうつ病評価尺度構造化面接法：Structured Interview Guide for the Hamilton Depression Rating Scale）、HAM-D（ハミルトンうつ病評価尺度：Hamilton Rating Scale for Depression）、MADRS（モントゴメリー・アスベルグうつ病評価尺度：Montgomery Asberg Depression Rating Scale）又はBDI（ベックうつ病調査表：Beck Depression Inventory）等の従来の診断方法で判定され得るうつ病であれば、特に限定されない。うつ病と診断されている限り、不安障害、睡眠障害、摂食障害等の他の疾患を併発している場合も含む。
【００１５】
本明細書において、CIDECとは、cell death-inducing DFFA-like effector cを意味する。ヒト又はマウス由来の遺伝子配列は、GenBankよりNM_022094（配列番号１）又はNM_178373（配列番号５）のアクセッション番号にて、それぞれ入手可能である。被検動物が異なる場合には、該動物由来のホモログが測定対象となる。CIDECの発現量の測定としては、ｍRNAを測定しても、タンパク質を測定してもよい。さらに、CIDECには、CIDECと同様の機能を有する断片、誘導体、および変異体も包含される。
【００１６】
上記検査方法において、「被検動物」は、うつ病を起こす可能性のある動物であれば如何なるものでもよく、具体的には、ヒト、サルの他、マウスやラット等のげっ歯類等、イヌ、ネコ、ブタ、フェレット、鳥類、爬虫類、両生類、魚類等が挙げられる。本発明のうつ病の検査方法は、このうち、うつ病の疑いのあるヒト、あるいはうつ病発症後、うつ病治療中又は治療後等のヒトにおいて特に好ましく行われる。
【００１７】
また、上記被検動物から採取された「試料」としては、CIDECのｍRNAまたはタンパク質を含有し、その濃度を測定できるものであれば特に制限はない。具体的には、血液、血漿、血清、尿、唾液等が挙げられる。これらのうち、血液、血漿、血清が、簡便に採取でき、保存が容易で且つ採取量が多いため、好ましく用いられる。上記血液等は、採取後すぐにヘパリン処置をすることが好ましい。また、血液中の有核細胞（主に白血球）から抽出したｍRNAまたはタンパク質を用いることが好ましい。
【００１８】
上記CIDECの発現量の測定方法としては、CIDECのｍRNA又はタンパク質の含有量が測定できる方法であれば特に制限はないが、例えば、ｍRNAの測定としては、PCR法、マイクロアレイ法、ノーザンブロット法、分光光度法、蛍光光度法等が挙げられる。特に、PCR法によるリアルタイムPCRは、測定の簡便さと迅速さの点で好ましい。PCRに使用するプライマーは、CIDEC遺伝子配列に基づき公知の方法で設計することができ、例えば、表３に記載されたCIDECのプライマーが利用可能である。
【００１９】
CIDECタンパク質の測定方法としては、ＦＡＣＳ解析法、分光光度法、蛍光光度法、質量分析法、クロマトグラフィーの他、該タンパク質に対する抗体を用いた既存の免疫測定法や、クロマトグラフィー技術と飛行時間型質量分析（TOF-MS）を組み合わせて、クロマト担体（例：カチオン交換体、アニオン交換体、疎水性クロマト担体、金属イオンなど）に一定条件下で捕捉されるすべての成分の質量を一括して測定する方法、二次元ゲル電気泳動法等が用いられる。
免疫測定法としては、ウエスタンブロット法、酵素免疫定量法に従い定量検出する方法、蛍光免疫測定法、化学発光免疫測定法等で測定する方法等が好ましい。酵素免疫定量法は、標識イムノアッセイ法のうち、酵素を標識物質として用いる検出方法である。中でも、イムノソルベントを用いる、enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA) 法を選択するのが、特に好適である。また、ELISAのうちサンドイッチ法は、操作の簡便性、経済上の利便性、とりわけ臨床検査における汎用性を考慮すると、特に好適な測定態様の一つとして挙げられる。これらの測定方法は、例えば、新生化学実験講座（日本生化学会編；東京化学同人）、Molecular Cloning, A Laboratory Manual (T. Maniatis et al., Cold Spring Harbor Laboratory (2001))、Antibodies - A Laboratory Manual(E.Harlow, et al., ColdSpring Harbor Laboratory(1988))等の一般的実験書に記載の方法又はそれに準じて行うことができる。
【００２０】
上記測定を行う際に用いられる抗体等（抗体断片を含む）は、対象のCIDECタンパク質を抗原として公知の方法によって得ることができる。ただし、対象のCIDECタンパク質を抗原として製造されたものである必要はなく、該タンパク質と少なくとも交差反応性を示し、その含有量を測定することができるものであれば何れのものでもよい。
【００２１】
本発明の方法で使用する試料は、被検動物から採取直後のものを上記測定に用いることが好ましいが、保存したものを用いてもよい。血液試料の保存方法としては、うつ病検査用分子マーカー量が変化しない条件であれば特に制限は無いが、例えばｍRNAの場合は、RNA抽出用の試薬を添加して-80℃又は液体窒素で凍結保存することが好ましい。タンパク質の場合は、０〜１０℃の凍結しない程度の低温条件、暗所条件および無振動条件下が好ましく、止むをえず凍結する場合には、深凍結などマーカー分子の分解や酸化反応等を避けられる方法が好ましい。
【００２２】
本発明の検査方法においては、被検動物から採取された試料中のCIDECの発現量を測定して、これを指標として、うつ病の重症度を検査することができる。また、他のうつ病検査用マーカーの試料中発現量を組み合わせてもよい。さらに、臨床症候の観察や、PETやNIRSなどによる脳画像診断の結果を関連付けた複合指標を用いることで、より的確に検査することが可能である。
【００２３】
併用する他のうつ病検査用マーカーとしては、例えば、後述のように、本発明においてうつ病患者及びうつ病モデルマウスにおいて特異的に発現変化することが確認されたBANP（ヒト配列番号１７：マウス配列番号２１）、RAB11FIP4（ヒト配列番号４９：マウス配列番号５３）、RNASE1（ヒト配列番号５７：マウス配列番号６１）、SLC36A1（ヒト配列番号１０５：マウス配列番号１０９）、STYXL1（ヒト配列番号１１３：マウス配列番号１１７）、ARFRP1（ヒト配列番号９：マウス配列番号１３）、BCL11B（ヒト配列番号２５：マウス配列番号２９）、FYCO1（ヒト配列番号３３：マウス配列番号３７）、NIPAL3（ヒト配列番号４１：マウス配列番号４５）、RPL23A（ヒト配列番号６５：マウス配列番号６９）、RPS2（ヒト配列番号７３：マウス配列番号７７）、SIGIRR（ヒト配列番号８９：マウス配列番号９３）、SLC35F2（ヒト配列番号９７：マウス配列番号１０１）等を好適に使用できる。なお、括弧内に各マーカーの配列を示したが、これらはあくまで一例であり、個体によって配列に違いが生じることもあるため、これらの配列の物に限定されない。
CIDECと上記他のマーカーとを組み合わせて判別分析を行うことにより、より精度の高いうつ病検査ができる。
【００２４】
うつ病検査用分子マーカーの試料中での発現量を指標としてうつ病検査を行う場合には、CIDECの発現量を基準値と比較することにより被検動物のうつ病の発症の有無が判定される。すなわち、CIDECはうつ病を発症している場合に発症していない場合と比べて発現量が高くなるので、CIDECの発現量が基準値より高いと被検動物がうつ病を発症していると判定される。ここで基準値としては健常人やうつ病を発症していない対象者におけるCIDECの発現量が例示される。
【００２５】
また、あらかじめ発現量のカットオフ値を定めておき、カットオフ値に基づいて判定してもよい。カットオフ値とは、ある物質に着目して目的とする疾患群と非疾患群（目的とする疾患以外の群）とを判定する場合に定める値をいう。目的とする疾患と非疾患とを判定する場合に、カットオフ値以下であれば陰性、カットオフ値以上であれば陽性として、またはカットオフ値以下であれば陽性、カットオフ値以上であれば陰性として疾患を判定することができる。
【００２６】
カットオフ値を設定する方法としては、たとえば、リアルタイムPCRの場合には、ΔCt値（ターゲットRNAのCt値とコントロールRNAのCt値の差）を指標としてグラフ化し、被験者と健常者の境界をカットオフ値として設定する方法等が挙げられる。この場合、ΔCt値は発現量が高いほど低い値となるので、ΔCt値が基準値より低いとうつ病であると判定することができる。
【００２７】
後述するように、CIDECは、ΔCtをカットオフ値としてうつ病患者と健常者を１００％判別することができる優れた分子マーカーである。
【００２８】
（２）うつ病の重症度評価のための検査方法
本発明のCIDECマーカーを用いたうつ病検査方法の具体的方法として、被検者（動物）のうつ病の重症度を評価するための検査方法が挙げられる。うつ病の重症度とは、社会活動や日常生活においてうつ病症状が現れることにより、どの程度支障が生じるかを示す尺度である。たとえば、「軽度」では、仕事や日常生活、他人とのコミュニケーションに生じる障害はわずかで、周囲の人は気づかないこともある。一方「重度」では、仕事や日常生活、他人とのコミュニケーションが明らかに困難となる。「中等度」は、「軽度」と「重度」の間に位置する。
【００２９】
うつ病の重症度を評価することにより、その患者に適切な治療を選択することが可能となる。たとえば、軽度であれば、仕事の休養をとりカウンセリングを行って様子を見ることにし、重度であれば、さらに薬物による治療を加えることもできる。また、重症度を客観的に評価できることにより、患者にとっては、施設間でのバラツキなく、どの病院においても適切な治療を受けることができるというメリットがある。
【００３０】
本発明におけるCIDECマーカーは、その発現量が重症度と比例しており、発現量が多いほど重度であることを示す。すなわち、CIDECの発現量が高いほどうつ病の重症度が高いという基準に基づいてうつ病の重症度が判定される。発現量の評価としては、たとえば、上述のとおり、リアルタイムPCRの場合におけるΔCt値を指標とする方法等が挙げられる。この場合、ΔCt値は発現量が高いほど低い値となるので、ΔCt値が低いほど重症度が高いことを示す。
【００３１】
本発明における重症度評価のための検査方法においては、他の分子マーカー、たとえば上述の、BANP、RAB11FIP4、RNASE1、SLC36A1、STYXL1、ARFRP1、BCL11B、FYCO1、NIPAL3、RPL23A、RPS2、SIGIRR及びSLC35F2等を適宜組み合わせてもよい。それら他の分子マーカーを組み合わせることにより、より正確な評価を行うことが可能となる。
【００３２】
かくして、本発明の方法によりうつ病の診断がついた被検者（動物）は、それぞれの疾患に適した治療法を受けることにより、予後の経過や治療効果が非常に良好となる。
【００３３】
（３）うつ病測定用キット
本発明は、さらに上記うつ病の診断のための検査に用いるためのキット、あるいは下述するうつ病の治療効果の評価、あるいはうつ病治療薬のスクリーニング方法を行うためのキットも含まれる。キットの内容は、機器または試薬の組み合わせにより構成されるが、以下に述べる各構成要素と本質的に同一、またはその一部と本質的に同一な物質が含まれていれば、構成または形態が異なっていても、本発明のキットに包含される。
【００３４】
試薬としては、例えば、PCR法によりCIDECの発現量を測定する場合には、CIDECを特異的に増幅することが可能なプライマーを含む。また、必要に応じて、逆転写酵素、Taqポリメラーゼ、反応用緩衝液等を含めてもよい。リアルタイムPCRの場合には、蛍光試薬、蛍光光度計、サーマルサイクラー等も含まれる。
【００３５】
マイクロアレイによりCIDECの発現量を測定する場合には、CIDEC遺伝子断片をスポットしたガラス、プラスチック、シリコン又はメンブレン等の支持体を含む。また、必要に応じて、ラベル化試薬、ハイブリダイゼーション用バッファー、フラグメンテーション用バッファー等を含めてもよい。
【００３６】
免疫測定法によりCIDEC発現量を測定する場合には、抗CIDEC抗体を含む。また、必要に応じ、生体試料の希釈液、抗体固定化固相、反応緩衝液、洗浄液、標識された二次抗体またはその抗体断片、標識体の検出用試薬、標準物質なども含まれる。生体試料の希釈液としては、界面活性剤、緩衝剤などにＢＳＡやカゼインなどの蛋白質を含む水溶液などが挙げられる。
【００３７】
抗体固定化固相としては、各種高分子素材を用途に合うように整形した素材に、抗分子マーカー抗体またはそれらの抗体断片を固相化したものが用いられる。形状としてはチューブ、ビーズ、プレート、ラテックスなどの微粒子、スティック等が、素材としてはポリスチレン、ポリカーボネート、ポリビニルトルエン、ポリプロピレン、ポリエチレン、ポリ塩化ビニル、ナイロン、ポリメタクリレート、ゼラチン、アガロース、セルロース、ポリエチレンテレフタレート等の高分子素材、ガラス、セラミックスや金属等が挙げられる。抗体の固相化の方法としては物理的方法と化学的方法またはこれらの併用方法等、公知の方法が挙げられる。例えば、ポリスチレン製９６ウェルの免疫測定用マイクロタープレートに抗体または抗体断片等を疎水固相化したものが挙げられる。
【００３８】
反応緩衝液は、抗体固定化固相の抗体と生体試料中の抗原とが結合反応をする際の溶媒環境を提供するものであればいかなるものでもよいが、界面活性剤、緩衝剤、ＢＳＡやカゼインなどの蛋白質、防腐剤、安定化剤、反応促進剤等を含む反応緩衝液が挙げられる。
【００３９】
標識された二次抗体またはその抗体断片としては、本発明に用いられる抗体または抗体断片に西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）、ウシ小腸アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼなどの標識用酵素をラベルしたもの、緩衝剤、ＢＳＡやカゼインなどの蛋白質、防腐剤などを混合したものが用いられる。
【００４０】
標識体の検出用試薬としては前記の標識用酵素に応じて、例えば西洋ワサビペルオキシダーゼであれば、テトラメチルベンジジンやオルトフェニレンジアミンなどの吸光測定用基質、ヒドロキシフェニルプロピオン酸やヒドロキシフェニル酢酸などの蛍光基質、ルミノールなどの発光基質が、アルカリホスファターゼであれば、４−ニトロフェニルフォスフェートなどの吸光度測定用基質、４−メチルウンベリフェリルフォスフェートなどの蛍光基質等が挙げられる。
なお、本発明のキットは、他の分子マーカー、BANP、RAB11FIP4、RNASE1、SLC36A1、STYXL1、ARFRP1、BCL11B、FYCO1、NIPAL3、RPL23A、RPS2、SIGIRR及びSLC35F2を測定するためのプライマーや抗体などの試薬を含んでもよい。
【００４１】
（４）うつ病の治療効果の評価方法
本発明の他の態様は、うつ病の治療薬が投与されたうつ病治療を必要とする動物から採取された試料中のCIDECの発現量を測定する工程を含む、該動物におけるうつ病治療効果の評価方法である。
【００４２】
うつ病の治療を必要とする動物とは、具体的には、うつ病の症状を示すヒトあるいは（１）記載の動物（これらを単に「被検者」と称することがある）や、上記（１）の方法によりうつ病と診断された患者、非ヒトうつ病モデル動物等が挙げられる。
【００４３】
うつ病治療薬とは、うつ病の治療薬として用いられているものであればいずれのものでもよいが、例えば、イミプラミン又はアモキサピン等の三環系抗うつ薬、ミアンセリン又はセチプチリン等の四環系抗うつ薬、エスシタロプラム又はフルボキサミン等の選択的セロトニン再取り込み阻害薬（SSRI）、トレドミン又はデュロキセチン等のセロトニン・ノルアドレナリン再取り込み阻害薬（SNRI）等が挙げられる。
【００４４】
うつ病治療薬が投与されたうつ病治療を必要とする動物から採取された試料におけるCIDECの発現量が、治療薬投与前の発現量に比べて減少するか、あるいは、うつ病を発症していない対照の動物における量に近づいた場合、治療効果があったと判定することができる。
【００４５】
うつ病治療薬は、薬の効果及び副作用の個人差が大きく、また、効果の発現まで２〜４週間という長い時間がかかる。そのため、薬の効果を客観的に評価できない状態では、薬を変更すべきか否かの判断が難しい。しかし、CIDECの発現量に基づく客観的評価を行うことにより、治療効果を的確に判断することができるため、適切な治療を施すことが可能となる。
【００４６】
（５）うつ病治療薬のスクリーニング方法
本発明の他の態様は、被検体とうつ病治療薬の候補化合物を接触させた後、該被検体の試料中のCIDEC発現量を測定する工程を含む、うつ病治療薬のスクリーニング方法である。
【００４７】
被検体には、CIDECの発現量が、うつ病状態と同様の異常を示す非ヒト動物個体、組織、細胞等が用いられる。うつ病症状を有する動物としては、例えば、卵巣摘除後に慢性変動ストレス（chronic ultra-mild stress; CUMS）を負荷したうつ病モデル非ヒト動物等が挙げられる。被検体とともに、対照として、被検体と同種の個体、組織、細胞等でCIDECの発現量が健常状態と同様（正常）であるものを用いることも好ましい。
【００４８】
うつ病状態の非ヒト動物個体におけるCIDECマーカーの発現変動を観察することにより、うつ病の治療薬を開発するための実験系を確立することができる。また、非ヒト動物個体の予後を該マーカーでモニタリングすることにより、ヒトのうつ病の予後に有効な治療薬を開発することが可能となる。
【００４９】
これらの被検体に接触させるうつ病治療薬候補化合物（以下、「候補化合物」と称することがある）としては、例えば、ペプチド、タンパク質、非ペプチド性化合物、低分子合成化合物などが挙げられ、これらの化合物は新規な化合物であってもよいし、公知の化合物であってもよい。また、これらの化合物を含む、発酵生産物、細胞抽出液、植物抽出液、動物組織抽出液などでもよい。
その投与量、投与方法、処理時間等は、用いる被検体に従って適宜選択すればよい。
【００５０】
候補化合物と接触させた後に、該被検体中のCIDECの発現量を測定する方法としては、各被検体に適した方法により行うことができ、上記（１）で述べたものを適用できる。例えば、被検体が血液の場合には、公知の方法に従って血液中の白血球等からRNAを抽出し、これを試料として用いてもよい。例えば、RNAを試料とする場合には、リアルタイムPCR法等により検出を行うことができる。これらの試料は、検出の結果得られた数値を正確に比較・解析できるように、あらかじめ抽出したRNA量をそろえることが好ましい。
【００５１】
候補化合物と接触させた被検体におけるCIDECの発現量が、接触前の量に比べて減少するか、あるいは、対照の被検体における量に近づいた場合、該候補化合物はうつ病治療効果を有すると判定することができる。
【実施例】
【００５２】
＜被験者のリクルート＞
群馬大学病院にて治療中の大うつ病（MDD）患者のうち、初発年齢が50歳以上であり、DSM-IV分類において大うつ病のメランコリー型を呈し、かつ、他の精神疾患の合併を認めない者を対象とした。MDDの重症度はハミルトンうつ病評価尺度構造化面接法（Structured Interview Guide for the Hamilton Depression Rating Scale；SIGH-D）により採点し、8点未満を寛解とした。
対照として年齢と性別を一致させた健常者をリクルートした。リクルートした健常者に、精神疾患罹患歴や家族歴が無いことを確認した。リクルートした被験者に認知機能検査（Mini Mental State Examination; MMSE）を行い、認知機能が正常であることを確認した。
以下表１に、リクルートした被験者を示す。
【表１】
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DP:遅発性うつ病患者
RM:寛解した遅発性うつ病患者
HC:健常者
SIGH-D：ハミルトンうつ病評価尺度構造化面接法
MMSE: 認知機能検査
遅発性うつ病患者の２名は、MMSEを辞退した。データは、平均値±標準誤差（mean ± SE）で表す。表中の米印（＊）は、対応する健常者群に対するp値がp＜0.05であることを示す（ボンフェローニ試験）。【００５３】
＜被験者血液からのRNA抽出＞
被験者から10mLの血液を採取し、血液中の有核細胞（主に白血球）から、QIAmp RNA Blood Mini Kit (QIAGEN K.K.)によりRNAを抽出した。抽出操作はキットに添付の説明書の記載に多少の修正を加えて行われた。その操作は、要約すると次のとおりである。採取した10mlの血液を、50mlチューブに半分ずつ分け、各々のチューブに25mlのバッファーELを加えて、よく転倒混和した。各々のチューブを氷中に２０分置いた後、4℃、480×gで15分遠心し、上清を捨てた。チューブ中のペレットに10mlのバッファーELを加えてボルテックスし、再懸濁した。再懸濁したサンプルを、4℃、480×gで15分遠心し、上清を捨てた。2-メルカプトエタノールを含むバッファーRLTをペレットに3ml加えて、ボルテックスにより溶解した。前記溶解物はQIAshredder spin columnsで室温にて２分遠心することによりホモジナイズした。ホモジナイズした溶解物に等量の70%エタノールを加えて、ボルテックスによりよく混和した。混和したサンプルをQIAamp spin columnに加えて15秒遠心した。カラムを洗浄後、DNaseI消化した。溶出工程はキットに添付の説明書どおりに行った。溶出したサンプルは標準的なエタノール沈殿法により処理された。RNAペレットはRNaseフリーの水に溶解した。
RNAの量はNanodrop ND-1000 spectrophotometer (Thermo Fisher Scientific Inc.)により測定した。【００５４】
＜モデル動物の作製＞
メスのC57BL/6Jマウス（8週齢）をCharles River Laboratories Japanより購入し、1週間の馴化後、ペントバルビタール麻酔下にて卵巣の摘除を行った（Ovariectomy; OVX）。同様にペントバルビタール麻酔を行い、卵巣を露出させたものの摘出せずに縫合したものを対照動物とした（Sham-operation; Sham）。
上記処置の2週間後より、慢性変動ストレス（chronic ultra-mild stress; CUMS）の負荷を開始した。CUMSの方法は既報（Uchida et al., Neuron, 69, 359-372, 2011）に準じ、6週に亘って負荷を行った。なお、同期間ストレス負荷を行わなかった群（Nonstress：NS群）を設けた。すなわち、本試験は、Sham+NS（n=9）、Sham+CUMS（n=8）、OVX+NS（n=8）、及び、OVX+CUMS（n=9）の４つの群構成で行われた。【００５５】
上記CUMSの負荷を停止後１日目に、強制水泳試験及びオープンフィールド試験を行った。
強制水泳試験は、以下のように行った。アクリルシリンダー（高さ22cm、直径11.5cm）に室温の水を高さ15cmまで注ぎ、その中にマウスを置いた。マウスの行動は、パソコンに接続したCCDカメラにより5分間記録され、ImageJ PS1（小原医科産業社製）による解析を行った。記録された無動時間をうつ様行動の指標とした。
オープンフィールド試験は、以下のように行った。オープンフィールド装置（50×50×40cm）を発光ダイオードで照明し（フィールドの中央で30 lux）、フィールドの中央にマウスを置いて、5分間自由に移動させた。中央領域内（フィールドの36％）で移動した合計距離と、中央領域にて過ごした時間を、指標として採用した。集めたデータは、ImageJOF4（小原医科産業社製）を使用して解析した。【００５６】
動物の行動解析を行った結果を、図１に示す。OVX+CUMSマウスは、強制水泳試験においてうつ病様行動を呈し、また、オープンフィールド試験において不安様行動を呈した。一方、Sham+CUMSマウスやOVX+NSマウスには、行動変化は認められなかった。これらの行動解析の結果から、OVX+CUMSマウスをうつ病のモデルと定義し、Sham+Nonstressマウスを対照群とした。【００５７】
＜マウス血液からのRNA抽出＞
ペントバルビタール麻酔下にてマウスの大静脈から300μLの血液を採取後、すぐにヘパリン処置し、1000×gにて2分遠心した。得られたペレットは、2−メルカプトエタノールを含む冷却した溶解バッファーに溶解した。当該溶解物から、GeneJet Whole Blood RNA Purification Mini Kit (Thermo Fisher Scientific Inc.)を使用して、キット添付の説明書に従ってトータルRNAを抽出した。
RNAの量はNanodrop ND-1000 spectrophotometer (Thermo Fisher Scientific Inc.)により測定した。【００５８】
＜マイクロアレイ＞
被験者ならびにマウスから得たRNAを、Agilent Low Input Quick Amp Labeling Kit, one-color (Agilent Technologies)を使用して、キットに添付の説明書に従ってCyanine 3でラベルした。ラベル化したRNAを、 RNeasy mini spin column（QIAGEN）により精製した。得られたラベル化RNAをフラグメント化し、Agilent SurePrint G3 Human GE 8×60K v2 Microarray (Design ID: 039494)ならびにAgilent SurePrint G3 Mouse GE 8×60K Microarray (Design ID: 028005)と65℃で17時間ハイブリダイズさせた後、マイクロアレイを洗浄し、Agilent DNA microarray scannerにより測定した。発光強度をAgilent feature extraction software version 10.7.3.1により定量化し、Agilent GeneSpring GX version 11.0.2により標準化した。【００５９】
得られたデータをもとに統計解析を行い、うつ病患者病相期に特異的に発現変化する遺伝子3,066種と、うつ病モデルマウスに特異的に発現変化する遺伝子637種を見出した（図２）。
この遺伝子リスト同士を照合した結果、一致する遺伝子14種を見出した（表２）。これをうつ病およびうつ症状を反映するバイオマーカーの候補とした。【００６０】
【表２】
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【００６１】
＜被験者におけるリアルタイム定量PCRによる定量解析＞
被験者から得たRNAをPrimeScript RT reagent Kit (Takara Bio Inc.)により逆転写してcDNAサンプルを得た後、このcDNAサンプルとマイクロアレイの結果から得られたバイオマーカー候補14種に対する特異的なプライマーペアー（表３）ならびにSYBR Premix Ex Taq II (Takara Bio Inc.)とを混合してリアルタイム定量PCRを行った。リアルタイム定量PCRは、StepOnePlusリアルタイムPCRシステム（Applied Biosystems）により、95℃3秒及び60℃30秒を50サイクルで行った。なお、内標準物質としてRPS29を選択した。ターゲット遺伝子の増幅量はΔΔCt法に従って定量解析を行い、健常者と比較した。【００６２】
【表３】
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【００６３】
配列番号１及び２は、CIDECのヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号３（forward）及び４（reverse）に示す。配列番号５及び６は、CIDECのマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号７（forward）及び８（reverse）に示す。
配列番号９及び１０は、ARFRP1のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号１１（forward）及び１２（reverse）に示す。配列番号１３及び１４は、ARFRP1のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号１５（forward）及び１６（reverse）に示す。
配列番号１７及び１８は、BANPのヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号１９（forward）及び２０（reverse）に示す。配列番号２１及び２２は、BANPのマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号２３（forward）及び２４（reverse）に示す。
配列番号２５及び２６は、BCL11Bのヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号２７（forward）及び２８（reverse）に示す。配列番号２９及び３０は、BCL11Bのマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号３１（forward）及び３２（reverse）に示す。
配列番号３３及び３４は、FYCO1のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号３５（forward）及び３６（reverse）に示す。配列番号３７及び３８は、FYCO1のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号３９（forward）及び４０（reverse）に示す。
配列番号４１及び４２は、NIPAL3のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号４３（forward）及び４４（reverse）に示す。配列番号４５及び４６は、NIPAL3のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号４７（forward）及び４８（reverse）に示す。
配列番号４９及び５０は、RAB11FIP4のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号５１（forward）及び５２（reverse）に示す。配列番号５３及び５４は、RAB11FIP4のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号５５（forward）及び５６（reverse）に示す。
配列番号５７及び５８は、RNASE1のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号５９（forward）及び６０（reverse）に示す。配列番号６１及び６２は、RNASE1のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号６３（forward）及び６４（reverse）に示す。
配列番号６５及び６６は、RPL23Aのヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号６７（forward）及び６８（reverse）に示す。配列番号６９及び７０は、RPL23Aのマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号７１（forward）及び７２（reverse）に示す。
配列番号７３及び７４は、RPS2のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号７５（forward）及び７６（reverse）に示す。配列番号７７及び７８は、RPS2のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号７９（forward）及び８０（reverse）に示す。
配列番号８１及び８２は、RPS29のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号８３（forward）及び８４（reverse）に示す。配列番号８５及び８６は、RPS29のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号８７（forward）及び８８（reverse）に示す。
配列番号８９及び９０は、SIGIRRのヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号９１（forward）及び９２（reverse）に示す。配列番号９３及び９４は、SIGIRRのマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号９５（forward）及び９６（reverse）に示す。
配列番号９７及び９８は、SLC35F2のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号９９（forward）及び１００（reverse）に示す。配列番号１０１及び１０２は、SLC35F2のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号１０３（forward）及び１０４（reverse）に示す。
配列番号１０５及び１０６は、SLC36A1のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号１０７（forward）及び１０８（reverse）に示す。配列番号１０９及び１１０は、SLC36A1のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号１１１（forward）及び１１２（reverse）に示す。
配列番号１１３及び１１４は、STYXL1のヒト遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号１１５（forward）及び１１６（reverse）に示す。配列番号１１７及び１１８は、STYXL1のマウス遺伝子配列とアミノ酸配列をそれぞれ示し、それに対するプライマー配列を、配列番号１１９（forward）及び１２０（reverse）に示す。【００６４】
結果を、図３、４及び５において、健常者（HC）と比較したターゲット遺伝子増幅量の倍率変化として示す。その結果、マイクロアレイ解析においてうつ病で特異的に発現増加していた遺伝子のうち、CIDEC（図３左）、STYXL1（図３右）ならびにSLC36A1（図４左）は、リアルタイム定量PCRにおいてもうつ病群（DP）において有意な発現増加を示し、寛解（RM）によって正常化することが明らかとなった。RNASE1（図４右）も同様の傾向があり、特に、寛解（RM）によって発現が有意に正常化した。
また、マイクロアレイ解析においてうつ病で特異的に発現減少していた遺伝子のうち、ARFRP1（図５左上）、BCL11B（図５右上）ならびにSLC35F2（図５下）は、リアルタイム定量PCRにおいても、うつ病群（DP）において有意な発現減少を示した。【００６５】
次に、被験者個々から得られるΔCt値（ターゲット遺伝子のCt値とRPS29（コントロール遺伝子）のCt値の差）を指標にしてグラフ化した結果、CIDECはΔCt値9.85を境界としてうつ病群（DP）と健常者（HC）を100%判別できた。さらに、1例の例外を除き、RMによって健常者レベルにまで正常化した（図６）。【００６６】
次に、うつ症状の重症度の指標であるSIGH-DとΔCt値との相関性解析を行った結果、CIDEC（図７左）、RNASE1（図７右）、SLC36A1（図８左）およびSTYXL1（図８右）は統計学的に有意に相関したが、最も相関性が強いのはCIDECであった。このことから、CIDECをうつ症状の判定に最重要の測定項目とし、SLC36A1、STYXL1およびRNASE1を補足的な測定項目とした。【００６７】
＜モデル動物におけるリアルタイム定量PCRによる定量解析＞
OVX+CUMSマウスに抗うつ薬であるエスシタロプラムを投与した結果、行動異常の改善が認められた（図９）。
そこで、Sham+NSに水を投与した群、OVX+CUMSに水を投与した群、及び、OVX+CUMSにエスシタロプラムを投与した群の計3群の血液からRNAを抽出し、PrimeScript RT reagent Kit (Takara Bio Inc.)により逆転写してcDNAサンプルを得た後、このcDNAサンプルとマイクロアレイの結果から得られたバイオマーカー候補14種に対する特異的なプライマーペアー（表３）ならびにSYBR Premix Ex Taq II (Takara Bio Inc.)とを混合してリアルタイム定量PCRを行った。詳細な手順は上記と同様である。なお、内標準物質としてRps29を選択した。ΔΔCt法に従って定量解析を行い、Sham+Nonstressマウスと比較した。その中から、上記ヒト解析で重要と判断された4種（Cidec、Rnase1、Slc36a1、Styxl1）をグラフに示した（図１０）。
その結果、うつ病モデルであるOVX+CUMSマウスにおいて全ての遺伝子で発現が増加し、抗うつ薬の処置により改善する傾向が見られた。特に、Slc36a1は、上記発現増加及び改善において、統計学的な有意差が認められた。【００６８】
表１に記載の被験者に対し、表２に記載の１４遺伝子の発現量をそれぞれ測定し、それを基に判別関数を算出した。
【数１】
0006614659.tif 000005
[]内は被験者個人の対象遺伝子の発現レベル（ΔCt値を示す）【００６９】
この関数に被験者個人の１４遺伝子の発現レベルを代入し、算出された判別得点を図１１ａにプロットした。その結果、図１１ｂのCIDEC単独の発現レベルでの判別結果と比較して、うつ症状の有る無しで境界がより明確になり、複数のマーカーを組み合わせて判定することでより精度の高い判定ができることが分かった。【００７０】
以上から、うつ病患者のマイクロアレイの結果から得られた上記バイオマーカー14種を用いて、その発現状況を測定することにより、うつ病の重症度を客観的に把握できることが示された。特に、CIDECは、リアルタイム定量PCRにおけるΔCt値を指標とすることにより、うつ病と健常者を高い精度で判別できる優れたマーカーであるといえる。
【産業上の利用可能性】
【００７１】
本発明の方法によれば、うつ病の診断や予後予測の検査、治療効果の評価を行うことができ、医療や診断の分野で有用である。また、本発明の方法によれば、うつ病の治療薬をスクリーニングすることができ、医薬分野でも有用である。
【図１】
0006614659.tif 000006
【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
0006614659.tif 000015
【図１１】
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【配列表】
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