(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ウナギから離脱した細胞を含む液体を濃縮する第１の濃縮処理を行い、
前記第１の濃縮処理により得られた濃縮物に含まれる前記細胞に対しＤＮＡ抽出処理を行うことによりＤＮＡを含む抽出物を取得し、
得られたＤＮＡを含む前記抽出物に対しＤＮＡ精製処理および第２の濃縮処理を行い、
前記ＤＮＡ精製処理および前記第２の濃縮処理を行ったＤＮＡを、ウナギのシトクロムｂ遺伝子における所定領域にハイブリダイズ可能である、配列表の配列番号１に示される塩基配列（ただし、ＴはＵであってもよい）からなるフォワード側プライマーと、配列番号２に示される塩基配列（ただし、ＴはＵであってもよい）からなるリバース側プライマーと、からなるプライマーセットを用いて増幅し、
増幅されたウナギのＤＮＡを調べることにより、ウナギの種を絞り込むことを含む、ウナギの種の同定補助方法。
【請求項２】
増幅されたＤＮＡを制限酵素ＨｉｎｆＩ、ＮｌａＩＶ、およびＴｆｉＩのうち少なくともいずれか１つを用いて消化し、
消化により得られる制限断片長の比較に基づいてウナギの種を絞り込む請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記細胞を含む液体が、ウナギの粘液、ウナギの飼育に使用された水、またはウナギの糞尿である請求項１または２に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は非ジャポニカ種ウナギ混入の検査に利用可能な技術に関する。
【背景技術】
【０００２】
ウナギは、ウナギ目ウナギ科Anguillidaeに属する魚類であり、日本人の食文化に欠かせない食品の1つである。そのため、日本に加えて周辺諸国でも養殖されており、我が国では、日本種ウナギのほか、外国種ウナギも流通している。このうち、日本種ウナギ（Anguilla japonica、以下、ジャポニカ種とも称す）は、我が国の消費者の間で最も人気があり、また、２０１３年にレッドリストにおいて絶滅危惧種に指定されたこともあり、価格も高い。
一方、外国種ウナギ（以下、非ジャポニカ種ウナギとも称す）は日本種ウナギと比較していずれも安価で取引されている。
【０００３】
このような値段の開きを主な原因として、近年、外国産の外国種ウナギを国産の日本種ウナギの集団の中に混入させるとともに、すべて国産日本種ウナギであると偽装表示して販売する例が後を絶たない。
【０００４】
したがって、混入された外国種ウナギの存在を検出するための方法が求められており、これに対し特許出願人は一個体ずつ行っていた種の鑑定を行う必要なく、集団全体に対する処理によって外国種ウナギの混入を検出する方法を提供している（例えば特許文献１）。
特許文献１には、例えばウナギの頭部などの体の一部（肉片）を用いて行われるウナギの種の検査方法が開示されている。当該方法においては、得られたＤＮＡが非ジャポニカ種ウナギに由来する場合に当該非ジャポニカ種ウナギのシトクロムｂ遺伝子における所定領域にハイブリダイズ可能であるプライマーセットを用い、ウナギの種の検査を行う。
当該方法によれば、ウナギの集団に対する一括的な検査により非ジャポニカ種ウナギの混入の事実の有無や混入したウナギの種の特定を行うことができるので、従来一個体ずつ行っていた種の鑑定と比較して非常に簡便であり、時間、コストを大きく削減することができる。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特開２０１１−００００６１号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
特許文献１に記載の方法によってはウナギの肉片からＤＮＡを得ている。資源のさらなる有効利用の観点などからは、生きている状態のウナギに対しても種の検査を行えることが好ましい。
しかしながら、生きている状態の個体から得られるＤＮＡは特許文献１に記載の方法を実行できるほど常に十分であるとは限らず、例えば粘液などに含まれる細胞からＤＮＡを抽出して特許文献１に記載の方法によって検査を行う場合などは、ＤＮＡを得るために必要な粘液の量が非常に多量であり、実現が容易でない。また、生存が保たれる範囲で体の一部を採取して検査に供することも考えられるが、稚魚のシラスウナギなどは非常に小さく、そのような採取を行うこと自体が難しい。
【０００７】
本発明はこのような事情に基づきなされたものであり、生きている状態のウナギに対してもより簡単に種の検査を行うことができる技術を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者はウナギの体表面から採取される粘液など、ウナギの個体から離脱した細胞を含む液体を用いて種の同定を行う方法について鋭意研究を行い、本発明を完成させた。
【０００９】
すなわち、本発明の要旨は以下のとおりである。
[１]  ウナギから離脱した細胞を含む液体を濃縮する第１の濃縮処理を行い、
前記第１の濃縮処理により得られた濃縮物に含まれる前記細胞に対しＤＮＡ抽出処理を行うことによりＤＮＡを含む抽出物を取得し、
得られたＤＮＡを含む前記抽出物に対しＤＮＡ精製処理および第２の濃縮処理を行い、
前記ＤＮＡ精製処理および前記第２の濃縮処理を行ったＤＮＡを、ウナギのシトクロムｂ遺伝子における所定領域にハイブリダイズ可能である、配列表の配列番号１に示される塩基配列（ただし、ＴはＵであってもよい）からなるフォワード側プライマーと、配列番号２に示される塩基配列（ただし、ＴはＵであってもよい）からなるリバース側プライマーと、からなるプライマーセットを用いて増幅し、
増幅されたウナギのＤＮＡを調べることにより、ウナギの種を絞り込むことを含む、ウナギの種の同定補助方法。
【００１０】
なお、本明細書において、ウナギから離脱した細胞を含む液体とは、懸濁等している固形分が視認できない状態のもののほか、懸濁等している固形分が視認できる状態のものも含む概念である。
【００１１】
[２]  増幅されたＤＮＡを制限酵素ＨｉｎｆＩ、ＮｌａＩＶ、およびＴｆｉＩのうち少なくともいずれか１つを用いて消化し、
消化により得られる制限断片長の比較に基づいてウナギの種を絞り込む［１］に記載の方法。
【００１２】
[３]  前記細胞を含む液体が、ウナギの粘液、ウナギの飼育に使用された水、またはウナギの糞尿である[１]または[２]に記載の方法。
【発明の効果】
【００１３】
本発明によれば、生きている状態のウナギに対してもより簡単に種の検査を行うことができる技術を提供することができる。そのため、資源をより有効に利用することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１４】
【図１】本実施形態の検査方法の処理フローを示す図である。
【図２】本実施形態に係るプライマーセットを用いた、アガロースゲル電気泳動の結果を示す図である。
【図３】本実施形態に係るプライマーセットを用いた増幅および制限酵素処理による、アガロースゲル電気泳動の結果を示す図である。
【図４】本実施形態に係るプライマーセットを用いた増幅および制限酵素処理による、アガロースゲル電気泳動の結果を示す図である。
【図５】本実施形態に係るプライマーセットを用いた増幅および制限酵素処理による、アガロースゲル電気泳動の結果を示す図である。
【図６】本実施形態に係るプライマーセットによるＰＣＲ産物を制限酵素ＴｆｉＩおよび／またはＮｌａＩＶを用いて消化することにより得られる制限断片長を示す表である。
【図７】本実施形態に係るプライマーセットによるＰＣＲ産物を制限酵素ＨｉｎｆＩおよび／またはＮｌａＩＶを用いて消化することにより得られる制限断片長を示す表である。
【図８】本実施形態に係るプライマーセットによるＰＣＲ産物を制限酵素ＨｉｎｆＩおよび／またはＴｆｉＩを用いて消化することにより得られる制限断片長を示す表である。
【発明を実施するための形態】
【００１５】
以下、図面を用いて本発明の好ましい実施形態について詳しく説明する。
本実施形態のウナギの種の同定補助方法（以下、単に、本実施形態の方法、ともいう）は、図１に示すような処理フローに従って行うことができる。
【００１６】
本実施形態はウナギの種の同定を補助する方法に関し、ウナギから離脱した細胞を含む液体を濃縮する第１の濃縮処理を行い、第１の濃縮処理により得られた濃縮物に含まれる細胞に対しＤＮＡ抽出処理を行うことによりＤＮＡを含む抽出物を取得し、得られたＤＮＡを含む抽出物に対し第２の濃縮処理を行い、第２の濃縮処理により濃縮されたＤＮＡを含む抽出物を用いてＤＮＡ精製処理を行い、ＤＮＡ精製処理により精製されたＤＮＡを、ウナギのシトクロムｂ遺伝子における所定領域にハイブリダイズ可能である、配列表の配列番号１に示される塩基配列（ただし、ＴはＵであってもよい）からなるフォワード側プライマーと、配列番号２に示される塩基配列（ただし、ＴはＵであってもよい）からなるリバース側プライマーと、からなるプライマーセットを用いて増幅し、増幅されたウナギのＤＮＡを調べることにより、細胞が由来するウナギの種を絞り込むことを含む。
【００１７】
以下、本実施形態の方法に関し、詳細に説明する。
まず、ステップＳ１０１において、ウナギから離脱した細胞を含む液体を濃縮し、濃縮物を得る（第１の濃縮処理）。ウナギから離脱した細胞を含む液体は特に限定されないが、例えば、ウナギの粘液、ウナギの飼育に使用された水、ウナギの糞尿などを例示することができる。また、当該液体に含まれる細胞は、成鰻、稚魚であるシラスウナギのいずれに由来するものであってもよい。
また、ウナギから離脱した細胞を濃縮する方法も特に限定されず、例えば遠心分離による濃縮や真空濃縮などを挙げることができる。
【００１８】
次に、ステップＳ１０２において、第１の濃縮処理により得られた濃縮物に含まれる細胞に対しＤＮＡ抽出処理を行うことによりＤＮＡを含む抽出物を取得する。
本実施形態において行うＤＮＡ抽出方法についてはとくに限定されず、公知のいずれの方法も用いることができる。
例えば濃縮物を、STE含有バッファー中のProteinase K（（E.C. 3.4.21.64））を用いた例えば５６℃での消化処理に供する。反応時間は特に限定されないが、例えば２時間以上、好ましくは４時間とすることができる。
また、当該ステップＳ１０２の処理とこれに続くステップＳ１０３、Ｓ１０４の処理について、第１の濃縮処理により得られた濃縮物を複数に分割し、これらそれぞれについてステップＳ１０２、Ｓ１０３、Ｓ１０４の処理を行い、その後精製物を合わせるようにしてもよい。
【００１９】
次に、ステップＳ１０３において、得られたＤＮＡを含む抽出物に対し濃縮処理を行う（第２の濃縮処理）。当該第２の濃縮処理における具体的な処理方法についても特に限定されない。例えば限外ろ過などの濃縮処理を行うことができるほか、上述の遠心分離による濃縮や真空濃縮などであってもよい。
【００２０】
このように、本実施形態の方法においては、細胞を含む液体に対する第１の濃縮処理と、細胞から抽出された、ＤＮＡを含む抽出物に対する第２の濃縮処理を行う。
粘液等に含まれるＤＮＡは非常に微量であり、増幅が確認できるようなＰＣＲ等に供するサンプルを調製するのが容易でなかった(例えば、電気泳動にＰＣＲ産物を供しても、微量なためにバンドとして確認ができない)。一方、一定量のＤＮＡを採取するためには、膨大な量の検体サンプルが必要になってしまう。
本実施形態においては粘液等に対する第１の濃縮を行うことでＤＮＡ抽出における細胞への処理を効率よく行うことができるため、結果的にＤＮＡの収量が多くなる。
また、当該第一の濃縮処理を実行することにより、より少ない作業量で意図されるＤＮＡ濃度を有する、増幅のためのサンプルを得ることが可能となる。
さらに、第二の濃縮処理を実行することにより、得られるＤＮＡの純度をより高めることができる。
なお、他の文献などで使用している分泌物（粘液や糞尿等）は、ウナギ自身のＤＮＡを得てこれを調べることを目的として使用されているわけではなく、皮膚中細菌調査や分泌物組成検査などに使用されるのが主となっている。そのため、分泌物を濃縮して使用するという操作は行われず検査等に用いられている。
【００２１】
次に、第２の濃縮処理により濃縮されたＤＮＡを含む抽出物を用いてＤＮＡ精製処理を行う（ステップＳ１０４）。精製処理は公知の方法により行うことができ、当業者が適宜選択することができる。例えば、沈殿処理や遠心分離等を挙げることができ、これら処理を複数組み合わせて行うことなどができる。
なお、本実施形態においては第二の濃縮処理を行った後にＤＮＡ精製処理を行う態様について説明したが、ＤＮＡ精製処理を行った後に第二の濃縮処理を行うようにしてもよい。
例えば第１の濃縮処理により得られた濃縮物を複数に分割し、各分割された濃縮物についてＤＮＡ抽出処理およびＤＮＡ精製処理を実行する。次いで、分割されて精製されたＤＮＡを水に溶解させた後、合わせ、当該合わせたＤＮＡについて限外ろ過チューブ等を用いて第二の濃縮処理を行う。続いて、第二の濃縮処理を行ったＤＮＡの水溶液について、水分量を調節し、ステップＳ１０５の増幅処理に供する。また、さらなる他の態様として、第１の濃縮処理により得られた濃縮物を複数に分割し、次いで各分割された濃縮物についてＤＮＡ抽出処理、ＤＮＡ精製処理、および第二の濃縮処理を順に実行した後、DNAを合わせてステップＳ１０５の増幅処理に供するようにしてもよい。
【００２２】
次に、ステップＳ１０５において、ＤＮＡ精製処理により精製されたＤＮＡを、ウナギのシトクロムｂ遺伝子における所定領域にハイブリダイズ可能である、配列表の配列番号１に示される塩基配列からなるフォワード側プライマーと、配列番号２に示される塩基配列からなるリバース側プライマーと、からなるプライマーセットを用いて増幅する。
核酸増幅の方法については、特に限定されず、当業者が任意に選択して用いることができ、例えば、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）とすることができる。当該ＰＣＲに用いる試薬キット、装置などは特に限定されず、市販のものから当業者が適宜選択して使用でき、また、反応条件についても適宜設定可能である。また、ＰＣＲに供する、精製されたＤＮＡを含むサンプルも、ＰＣＲの条件等に応じて適宜濃度や純度を設定することができる。当該適宜設定できる濃度や純度の条件を満たすために上述のステップＳ１０１〜Ｓ１０４の処理を２回以上行うようにしてもよい。また、複数のサンプル（ＤＮＡ水溶液）を調製し、それぞれをＰＣＲに供した後、生成物（増幅されたＤＮＡ）を混合するようにしてもよい。特に限定されないが、ＰＣＲに供するサンプルにおいてＤＮＡの濃度が、1〜100μg/μl程度（純度：1.7〜2.1程度）に調整できる程度のＤＮＡ量が得られることが好ましい。
なお、当該プライマーは、公開されているGenBank等のデータベースを用い、ウナギ科に属する種のミトコンドリアＤＮＡのシトクロムｂ領域について検討を行い、設計された。また、当該プライマーは、常法により合成することが可能である。プライマーを構成する核酸はＤＮＡでもＲＮＡでもよく、従って、塩基配列中のＴはＵであってもよい。
【００２３】
本実施形態に係るプライマーセットは、以下のような塩基配列を備える。
フォワード側プライマー：ATTTCAGCATGATGAAATTTTGGCTC(Tm 値：68.4℃)
リバース側プライマー：CCTAATAGGTCTTTGTAGGAGAAGTATGGGTGGAATGG (Tm 値：70.4℃)
【００２４】
次に、増幅されたウナギのＤＮＡを調べることにより、ウナギの種について絞り込み（同定または推定される種の数を少なくする）を行う（ステップＳ１０６）。絞り込みを行う方法は、増幅される領域の塩基配列が種により異なっているため、例えば増幅領域の全塩基配列を決定することにより、種を同定するなどしてもよい。また、種ごとに塩基が異なる部位を比較することにより種を同定するようにしてもよい。
【００２５】
また、増幅したＤＮＡについて、簡便、迅速に行うことができるＰＣＲ−ＲＦＬＰ法を適用し、種を絞り込むようにしてもよい。ＰＣＲ−ＲＦＬＰ法を適用する場合には、例えば、ステップＳ１０５にて増幅したＤＮＡについて制限酵素を用いて消化を行い、該消化産物をゲル電気泳動にかけ、紫外線を照射して、泳動バンド（ＤＮＡ断片）を検出する。そして、検出された泳動バンドの長さの比較を行うことにより、種を同定または絞り込む。使用する制限酵素については、例えばＨｉｎｆＩ、ＮｌａＩＶ、ＴｆｉＩを用いることができる。上述のプライマーセットにより得られたＰＣＲ産物（増幅されたＤＮＡ）の、ＨｉｎｆＩ、ＮｌａＩＶ、ＴｆｉＩによる切断パターンを図６〜８に示す。
なお、ウナギの種の組み合わせによっては、上記３種の制限酵素のうちいずれか１種または２種の使用によっても、その種を同定等することは可能である。
また、制限酵素ＨｉｎｆＩ、ＮｌａＩＶ、ＴｆｉＩを用いた当該ＰＣＲ−ＲＦＬＰ法によっても完全に同定されない種については、絞り込まれた種の中で、さらなるＤＮＡ分析による種の同定、あるいは個体の外観的特徴による種の同定などを行うようにしてもよい。
【００２６】
以上、本発明の1つの実施形態について説明した。本実施形態によれば、生きている状態のウナギに対してもより簡便に種の検査を行うことができる技術を提供することができる。そのため、資源をより有効に利用することができる。
【００２７】
より具体的に説明すると、従来技術において提案されているウナギの種の鑑定方法は、増幅を行うためにウナギの肉片からＤＮＡを抽出しているため、特に生育が中途段階にある個体などにおいては、生きたままで種の同定を試みることが難しかった。また、粘液などからＤＮＡを得ようとしても非常に多くのサンプルが必要となるため、実現性に乏しかった。
【００２８】
一方、本実施形態の方法によれば、離脱した細胞を含む液体（例えば粘液など）を用いて、種にもよるが、完全に種を同定することも可能である。よって、生きたままの状態のウナギを用いてより容易に種の検査を行うことが可能である。
その結果、例えば検査を行った個体について再度養殖池に戻すなどして生育を続けさせることができるため、生育中途段階における種の検査などにおいて本方法を特に有効に利用できる。
【実施例】
【００２９】
以下、実施例により本発明をより詳しく説明する。しかしながら、本実施例は本発明を何ら限定するものではない。
【００３０】
生きている状態のA.japonica，A.bicolorpacificaの成鰻から粘液（それぞれ100ml）を採取した。得られた粘液を1.5ml チューブにそれぞれ移し、高速遠心機（４℃、15,000rpm、５分）で濃縮処理を行った。
【００３１】
濃縮した粘液をそれぞれ10本の1.5ml チューブに同等量分注し、STE バッファー1000μl とプロティナーゼK(20ng/μl)40μl を加え、撹拌・簡易遠心して56℃の恒温槽で4時間反応させた。
反応開始から４時間後、反応液を高速冷却遠心機にて4℃・15,000rpm・5 分間の遠心を行った。上澄み700μl を1.5ml チューブに移し、PCI（フェノール・クロロホルム・イソアミルアルコール）700μl を混合して高速冷却遠心機にて4℃・15,000rpm・5 分間の遠心を行った。上澄み600μl を1.5ml チューブに移し、PCI 600μl を混合して高速冷却遠心機にて4℃・15,000rpm・5 分間遠心を行った。
【００３２】
上澄み500μlをろ過フィルターに移し、液量が1/10 になるまで濃縮した。次に、濃縮液を1 本の1.5ml チューブに移し、フィルターに滅菌水20μl を加えて静置し、フィルターに付着しているDNA を回収した。回収した溶液は濃縮液に追加した。
【００３３】
次にDNA精製処理を行った。
まず、濃縮液に冷凍100％エタノール1000μl と5M NaCl 30μl を混合し−80℃冷凍庫で1 時間インキュベートした。インキュベートさせていた溶液を解凍後に簡易撹拌し、高速冷却遠心にて4℃・15,000rpm・15 分間で遠心後、チューブ内の溶液を廃液した。沈殿物に冷凍70％エタノール500μl を加え、4℃・15,000rpm・10 分間の高速冷却遠心に供した。溶液を廃液し、沈殿物を真空乾燥機にて30 分乾燥させ、滅菌水を50μl 加えて30 分室温で静置した（以下、得られた液をDNA液という）。
なお、PCRによる増幅処理に供する前にナノドロップにて吸光度を測定し、測定した吸光度より、DNA の濃度や純度を算出した。算出された濃度および純度は以下のとおりである。
A.japonica DNA濃度：3.59μg/μl (PCRに使用する5μl中には17.95μg)
A.japonica DNA純度：2.1
A.bicolorpacifica DNA濃度：1.64μg/μl (PCRに使用する5μl中には8.2μg)
A.bicolorpacifica DNA純度：1.7
また、A.japonica，A.bicolorpacificaの上記DNA液を用いて、A.japonica  DNA液とA.bicolorpacifica  DNA液を50：50（体積比）の割合で混合し、混合DNA液を調製した。
【００３４】
これらDNA液をそれぞれ5μl 使用し、PCR 装置にてDNAを増幅させた。DNA増幅プライマーは、独自に調合し(混合比率プライマー)、37サイクルで増幅を行った。
フォワード側プライマー：ATTTCAGCATGATGAAATTTTGGCTC(Tm 値：68.4℃)
リバース側プライマー：CCTAATAGGTCTTTGTAGGAGAAGTATGGGTGGAATGG(Tm 値：70.4℃)
反応溶液：
10×PCR Buffer 10.0μl 
1×dNTP mix 8.0μl 
フォワード側プライマー  （濃度：５pmol/μl） 4.0μl   
フォワード側プライマー  （濃度：５pmol/μl） 4.0μl  
滅菌水 74.5μl
Taq ポリメラーゼ 0.5μl
DNA 液 5.0μl
計 100.0μl
反応条件：
1)95℃  8分、
2)94℃  1分、
3)58℃  1分、
4)73℃  1分、
2)〜4)について37サイクル、
反応終了後、4℃で保存
【００３５】
3％アガロースゲルを使用して電気泳動を行い、DNA が増幅されているかを確認した。増幅されている場合、バンドは614bp に出現する（図2）。
【００３６】
次に、前処理（増幅されたDNAの精製処理）を行った後、制限酵素を用いた切断処理に供した。なお、前処理は以下のようにして行った。
まず、PCR 産物を限外ろ過チューブにて、PCR 産物に含まれるプライマー等の濃度が1/1000以上になるまで精製した。次に、PCR 産物全量をフィルターに移し、滅菌水300μl を足して1 分遠心した。フィルターの破れがないかを確認後、溶液量を30〜40μl にした。滅菌水を360μl 足して遠心し、溶液量が30〜40μl になるようにした。もう一度同様の操作を行い、最終溶液量が30〜40μl になるようにした。
【００３７】
制限酵素を用いた処理は、精製物に制限酵素を添加して反応させることによって行った。
具体的には、制限酵素NlaIVについては、精製物に付属のバッファーとともに添加し、37℃に設定した恒温槽で15分反応させた。また、制限酵素TfiIについては、精製物に付属のバッファーとともに添加し、65℃に設定した恒温槽で15分反応させた。また、制限酵素HinfIについては、精製物に付属のバッファーとともに添加し、37℃に設定した恒温槽で1時間反応させた。
反応終了後、3％ NuSieve GTG アガロースを使用して電気泳動を行い、酵素消化断片の確認をした。例えば、制限酵素NlaIVを用いた場合を図3に示す。A.japonica は、180bp と434bp にバンドを確認でき、また、A.bicolorpacifica は168bp と180bp, 266bp のバンドを確認することができる。また、同様のバンドは、A.japonicaのDNAとA.bicolorpacificaのDNAを混合して増幅させたサンプルについても確認できた。
【００３８】
図6〜8中に記した他の種についてもA.japonica、A.bicolorpacificaの場合と同様の操作を行った。例示として、A.japonicaの制限酵素TfiI消化物の電気泳動結果を図4に、A.bicolorpacificaおよびA.marmorataの制限酵素NlaIV消化物の電気泳動結果を図5に示す。当該操作の結果、図6〜8に示すような断片パターンが得られた。
一方、同濃度、純度のA.bicolorpacifica のDNA液を、特許文献１のプライマーを用いたPCRに供したが増幅は確認できなかった。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【配列表】
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