(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質であって、当該融合タンパク質の構造は、ＧＬＰ−１類似体−結合ペプチド−ヒト血清アルブミンであり、前記結合ペプチドのアミノ酸配列は、配列番号：１１〜１６から選択されるいずれかであり、結合ペプチドのＮ末端はＧＬＰ−１類似体のＣ末端にペプチド結合で連なっており、結合ペプチドのＣ末端はヒト血清アルブミンのＮ末端にペプチド結合で連なっており、前記ＧＬＰ−１類似体はＧＬＰ−１としての生物活性を持っており、且つ前記ＧＬＰ−１類似体は、
ａ）アミノ酸配列が配列番号：１であるもの、
ｂ）アミノ酸配列が配列番号：１と９０％の同一性を維持するもの、
ｃ）ａ）又はｂ）に記載のＧＬＰ−１類似体の２つ又は３つの反復配列を含むか、或いは、ＧＬＰ−１の２つ又は３つの反復配列を含むもの、
ｄ）Ｅｘｅｎｄｉｎ−４、から選択されるいずれかであるＧＬＰ−１類似体融合タンパク質。
【請求項２】
前記ＧＬＰ−１類似体は、配列番号：１と９５％の同一性を維持することを特徴とする請求項１に記載のＧＬＰ−１類似体融合タンパク質。
【請求項３】
前記ＧＬＰ−１類似体は、配列番号：１と９９％の同一性を維持することを特徴とする請求項１に記載のＧＬＰ−１類似体融合タンパク質。
【請求項４】
前記ヒト血清アルブミンのアミノ酸配列は、配列番号：２であるか、或いは、少なくとも配列番号：２と９０％の同一性を維持することを特徴とする請求項１に記載のＧＬＰ−１類似体融合タンパク質。
【請求項５】
前記ヒト血清アルブミンのアミノ酸配列は、配列番号：２と９５％の同一性を維持することを特徴とする請求項４に記載のＧＬＰ−１類似体融合タンパク質。
【請求項６】
前記ヒト血清アルブミンのアミノ酸配列は、配列番号：２と９９％の同一性を維持することを特徴とする請求項４に記載のＧＬＰ−１類似体融合タンパク質。
【請求項７】
前記ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質のアミノ酸配列は、配列番号：３〜５から選択されることを特徴とする請求項１に記載のＧＬＰ−１類似体融合タンパク質。
【請求項８】
請求項１〜７のいずれか１項に記載のＧＬＰ−１類似体融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド。
【請求項９】
前記ポリヌクレオチドの配列は、配列番号：８〜１０から選択されることを特徴とする請求項８に記載のポリヌクレオチド。
【請求項１０】
請求項１〜７のいずれか１項に記載のＧＬＰ−１類似体融合タンパク質を作製する方法であって、前記ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質の遺伝子配列を含有する発現ベクターを構築し、続いて、前記発現ベクターを宿主細胞に形質転換して誘導発現させ、発現産物から前記融合タンパク質を分離して取得する方法。
【請求項１１】
前記発現ベクターはｐＰＩＣ９であり、前記宿主細胞はピキア・パストリスであることを特徴とする請求項１０に記載のＧＬＰ−１類似体融合タンパク質を作製する方法。
【請求項１２】
前記発現産物から前記融合タンパク質を分離して取得する方法として、親和性クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー及びイオン交換クロマトグラフィーの３段階のクロマトグラフ法を組み合わせて、前記融合タンパク質を分離して取得することを特徴とする請求項１０に記載のＧＬＰ−１類似体融合タンパク質を作製する方法。
【請求項１３】
請求項１〜７のいずれか１項に記載のＧＬＰ−１類似体融合タンパク質を、糖尿病及び関連疾患の治療薬の調製に適用する方法。
【請求項１４】
糖尿病及び糖尿病関連疾患の治療に用いられる薬用組成物であって、請求項１〜７のいずれか１項に記載のＧＬＰ−１類似体融合タンパク質及び少なくとも１種の薬学的に受け入れ可能なベクター又は賦形剤を含有する薬用組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、新型のＧＬＰ−１類似体融合タンパク質と、このような融合タンパク質を作製する方法に関する。この種のＧＬＰ−１類似体融合タンパク質は、糖尿病及び関連の様々な疾病又は不調の治療に用いられる。
【背景技術】
【０００２】
グルカゴン様ペプチド−１（ＧＬＰ−１）及びその類似体としては、例えばＥｘｅｎｄｉｎ−４が２型糖尿病の研究及び治療に広く用いられている。ＧＬＰ−１は、体内においてプロテアーゼジペプチジルペプチダーゼＩＶ（ＤＰＰ−ＩＶ）により急速に不活化されることから、血漿中の半減期がたいへん短く、臨床での汎用化が難しい。一方で、Ｅｘｅｎｄｉｎ−４はＤＰＰ−ＩＶによる酵素分解への感受性が弱く、安定性は高い。しかし、分子量が低く（４１８７．６１Ｄ）、体内半減期が短いことから１日に２度注射せねばならず、臨床での使用が阻まれている。現在までに、これらの技術的難題を解決すべく、例えば徐放性マイクロスフェア、ＰＥＧ修飾、脂肪酸鎖修飾、アルブミン融合といった様々な努力が払われてきた。このうちアルブミン融合技術は、目的タンパク質の生物学的機能と治療機能を維持するとともに、ヒトアルブミンと融合することで体内半減期を大幅に延長するものである。
【０００３】
ＧＬＰ−１類製剤及びその誘導体を糖尿病治療に適用することは現実的には可能である。しかし、糖尿病患者は診断を受けた後、長期的に投与を続け、生涯にわたって治療を受けねばならないため、この種の製剤の安全性、経済性及び使用しやすさに対する要求は極めて切実である。一方、従来のＧＬＰ−１／ＨＳＡ融合類製剤には大きな弊害もある。
【０００４】
まず、ＧＬＰ−１分子に比べてアルブミンの分子量が非常に大きいことから、これらを融合すると、立体障害によってＧＬＰ−１／ＨＳＡ融合タンパク質は生物活性をほぼ持たなくなってしまう。Ａｌｂｕｇｏｎは、Ｌａｕｒｉｅ  Ｌ．Ｂａｇｇｉｏらによって設計された新型ＧＬＰ−１／ＨＳＡ融合タンパク質であり、両者の間に余分なＧＬＰ−１分子がスペーサーとして挿入されている。しかし、Ａｌｂｕｇｏｎは生物活性をわずか１％程度しか保持できず、生物活性の低下に伴って臨床投与量が大幅に増加してしまう（Ｌａｕｒｉｅ  Ｌ．Ｂａｇｇｉｏ，Ｑｉｎｇｌｉｎｇ  Ｈｕａｎｇ，Ｔｈｅｏｄｏｒｅ  Ｊ．Ｂｒｏｗｎ，ａｎｄ  Ｄａｎｉｅｌ  Ｊ．Ｄｒｕｃｋｅｒ，ＤＩＡＢＥＴＥＳ  Ｖｏｌ．５３：２４９２−２５００（２００４））。例えば、ＧＬＰ−１類似体であるエクセナチド（バイエッタ（登録商標））の場合、臨床における１回あたりの投与量はわずか５〜１０μｇであり、１日あたり１〜２回の投与でよいが、Ａｌｂｕｇｏｎの場合、臨床的に有効とされる投与量は４ｍｇ／日であり、モル数換算で２２倍近くにもなる。臨床投与量が大幅に増加すると、次の２つの問題が生じる。
【０００５】
１．潜在的な免疫原性リスクが増加する。注射による投与の容量問題に制限されて、投与量が増加すると、必然的に医薬製剤の濃度が増加する。例えば、ＧＬＰ−１類似体製剤であるバイエッタの場合、１回の投与量はわずか５〜１０μｇ（５０μＬ）であり、濃度は０．２５ｍｇ／ｍＬにすぎないが、臨床におけるＡｌｂｕｇｏｎの１回あたり投与量は３０ｍｇ／人に達し、製剤濃度は３０〜５０ｍｇ／ｍＬにもなる。高濃度のタンパク質製剤は、輸送及び貯蔵期間にタンパク質の量体が増加しやすい。過去の研究によれば、治療用タンパク質の量体が増加すると、免疫原性が向上する（Ａｎｎｅ  Ｓ．  Ｄｅ  Ｇｒｏｏｔ  ａｎｄ  Ｄａｖｉｄ  Ｗ．Ｓｃｏｔｔ，Ｔｒｅｎｄｓ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  Ｖｏｌ．２８  ＮＯ．１１：４８２−４９０）。組換えタンパク質の多量体は、Ｂ細胞の受容体に結合することでＢ細胞の増殖を活性化させて、Ｂ細胞とＴ細胞の免疫を起動する（Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇ，Ａ．Ｓ．Ｅｆｆｅｃｔｓ  ｏｆ  ｐｒｏｔｅｉｎ  ａｇｇｒｅｇａｔｅｓ：ａｎ  ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃ  ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅ．ＡＡＰＳ  Ｊ．８：５０１−５０７（２００６））。また、組換えタンパク質の多量体は、抗原提示細胞（ＡＰＣ）に取り込まれやすく、結果として樹状細胞（ｄｅｎｄｒｉｔｉｃｃｅｌｌ，ＤＣ）の成熟を加速して、様々な免疫反応を活性化させる（Ａｎｎｅ  Ｓ．Ｄｅ  Ｇｒｏｏｔ  ａｎｄ  ＤａｖＩＤ  Ｗ．Ｓｃｏｔｔ，Ｔｒｅｎｄｓ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  Ｖｏｌ．２８  ＮＯ．１１：４８２−４９０）。従って、ＧＬＰ−１／ＨＳＡ融合タンパク質製剤の投与量が著しく増加すると、必然的に抗体産生のリスクが増大してしまう。
【０００６】
２．ＧＬＰ−１／ＨＳＡ融合タンパク質類製剤は極めて複雑なバイオ技術により作製されるため、タンパク質量あたりのコストが高騰する。よって、投与量が大幅に増加した場合には、糖尿病患者が負担しきれないほど薬物価格が上がってしまう。
【０００７】
また、ＧＬＰ−１は配列の大部分がランダムコイル構造であるため、プロテアーゼの攻撃によって分解されやすい。従って、Ａｌｂｕｇｏｎは、余分に挿入された第２のＧＬＰ−１によってプロテアーゼの攻撃を受けやすくなり、不安定である。そして、この不安定さは、次の２つ面で弊害をもたらす。
【０００８】
１．組換えによりＡｌｂｕｇｏｎを発現する場合、生産コストが安価な酵母発現系か高価な哺乳動物細胞発現系かに拘わらず、培養上清に分泌されるＧＬＰ−１／ＨＳＡ融合タンパク質はプロテアーゼによって容易に分解される。これにより、発現量が減少するとともに、多くの不均一な酵素分解物が産生されるため、最終産物にむらができてしまう。
【０００９】
２．Ａｌｂｕｇｏｎは、体内に注射されて循環する際にも、プロテアーゼにより分解されるため効果を失いやすい。
【００１０】
このほか、製品としての安定性の問題に限っていえば、現在のところこの種の製品はいずれも低温で保存及び輸送せねばならないため、糖尿病患者が外出や旅行時に携帯するには不便である。
【発明の概要】
【００１１】
本発明は、従来技術における課題を解消すべく、ＧＬＰ−１類似体−結合ペプチド−ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）という３つの領域から構成される新型のＧＬＰ−１類似体融合タンパク質を設計及び作製することを目的とする。
【００１２】
従来製品と比較して、当該融合タンパク質は以下の点で特に優れている。１．より熱安定性に優れ、室温条件下で長期的に保存しても活性が低下することがないため、患者の携帯使用に都合がよい。２．よりプロテアーゼ耐性の安定性に優れ、発酵上清及び体内における安定性が従来のこの種の融合タンパク質の３倍以上であるため、工業生産が容易となる。３．生物活性がより高い。生物活性は、従来のこの種の融合タンパク質の１０倍以上である。
【００１３】
本発明を用いて作製されるＧＬＰ−１類似体含有化合物は、生産コストが抑えられ、生物活性がより高く、体内外における安定性がより良好なため、いっそう優れた糖尿病治療薬となり得る。
【００１４】
本発明における第１の局面は、ＧＬＰ−１類似体−結合ペプチド−ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）を構造とする新型のＧＬＰ−１類似体融合タンパク質を開示する。
【００１５】
本発明で述べるＧＬＰ−１類似体融合タンパク質は、構造の第１領域がＧＬＰ−１類似体であり、その配列が、配列番号：１：HGEGTFTSDVSSYLEEQAAKEFIAWLVKで示されるか、或いは、少なくとも配列番号：１と８５％、９０％，９５％又は９９％の同一性を維持し、更に、２つ又は３つのＧＬＰ−１或いはその類似体の反復配列を含んでもよく、更には、第１領域がＧＬＰ−１と類似機能のホモログであるＥｘｅｎｄｉｎ−４であってもよい。
【００１６】
天然ＧＬＰ−１は体内で加工され、成熟ペプチドが当該分子から先頭６つのアミノ酸を切り離す。そのため、当該分野の習慣に則り、ＧＬＰ−１における１つ目のアミノ酸を７番と特定する。配列番号：１には、当該ポリペプチドにおける全アミノ酸の連続コードが示されている。例えば、７番目はヒスチジン、８番目はグリシンである。ＧＬＰ−１配列における非保存位置は、例えば、Ｇｌｙ８→Ａｌａ，Ｓｅｒ又はＣｙｓ、Ｇｌｕ９→Ａｓｐ，Ｇｌｙ，Ｓｅｒ，Ｃｙｓ，Ｔｈｒ，Ａｓｐ，Ｇｌｎ，Ｔｙｒ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｉｌｅ，Ｌｅｕ，Ｍｅｔ又はＰｈｅ、Ｇｌｙ１０→Ｓｅｒ，Ｃｙｓ，Ｔｈｒ，Ａｓｐ，Ｇｌｕ，Ｔｙｒ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｉｌｅ，Ｌｅｕ，Ｍｅｔ又はＰｈｅ、Ａｓｐ１５→Ｇｌｕ、Ｖａｌ１６→Ｌｅｕ又はＴｙｒ、Ｓｅｒ１８→Ｌｙｓ、Ｇｌｕ２１→Ａｓｐ、Ｇｌｙ２２→Ｇｌｕ又はＳｅｒ、Ｇｌｕ２３→Ａｒｇ、Ａｌａ２４→Ａｒｇ、Ｌｙｓ２６→ＧＬｙ，Ｓｅｒ，Ｃｙｓ，Ｔｈｒ，Ａｓｐ，Ｇｌｕ，Ｔｙｒ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｉｌｅ，Ｌｅｕ，Ｍｅｔ，Ｐｈｅ，Ａｒｇ、Ｌｙｓ３４→Ｇｌｙ，Ｓｅｒ，Ｃｙｓ，Ｔｈｒ，Ａｓｐ，Ｇｌｕ，Ｔｙｒ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｉｌｅ，Ｌｅｕ，Ｍｅｔ，Ｐｈｅ，Ａｒｇ、Ａｒｇ３６→Ｇｌｙ，Ｓｅｒ，Ｃｙｓ，Ｔｈｒ，Ａｓｐ，Ｇｌｕ，Ｔｙｒ，Ａｌａ，Ｖａｌ，Ｉｌｅ，Ｌｅｕ，Ｍｅｔ，Ｐｈｅ，ｌｙｓというようにその他のアミノ酸により置換され得るが、その活性は変化しない。また、ＧＬＰ−１配列のＣ末端は、１〜２又は３つのアミノ酸を欠失してもよい（Ｗｏｌｆｇａｎｇ  Ｇｌａｅｓｎｅｒら。米国特許第ＵＳ７４５２９６６号）。
【００１７】
前記ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質は、その構造における第２領域が、長さがアミノ酸２６個以下の結合ペプチドであり、且つ、一般式（Ｘａａ）ｘ−（Ｐｒｏ）ｙ−（Ｘａａ）ｚで表され、Ｘａａが、Ｇ，Ａ，Ｓから選択される１種類又は複数種類の任意の組み合わせであり、ｘ，ｙ，ｚはいずれも整数であり、且つ、ｘ，ｚ≧３、２６≧ｘ＋ｙ＋ｚ≧１４、１０≧ｙ≧３、１≧ｙ／（ｘ＋ｚ）≧０．１３である。結合ペプチドは、Ｎ末端が第１領域のＣ末端にペプチド結合で連なっており、Ｃ末端がＨＳＡのＮ末端にペプチド結合で連なっている。
【００１８】
ＸａａがＧ，Ａ，Ｓから選択される１種類又は複数種類の任意の組み合わせであるとは、各位置のＸａａが、いずれもＧ，Ａ，Ｓという３種類のアミノ酸残基から任意に選択され、各位置のＸａａが一致していてもよいし、一致していなくてもよいことを意味する。
【００１９】
更に、前記結合ペプチドの配列は以下から選択される。
ａ）GGGSSPPPGGGGSS（配列番号：１１）
ｂ）GGGSSGGGSSPPPAGGGSSGGGSS（配列番号：１２）
ｃ）GGGAPPPPPPPPPPSSGGG（配列番号：１３）
ｄ）AGGGAAGGGSSGGGPPPPPGGGGS（配列番号：１４）
ｅ）GGSSGAPPPPGGGGS（配列番号：１５）
ｆ）GGGSSGAPPPSGGGGSGGGGSGGGGS（配列番号：１６）
【００２０】
前記ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質は、第３領域がヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）である。配列は配列番号：２で示されるか、或いは、少なくとも配列番号：２と８５％、９０％、９５％、９９％の同一性を維持する。ＨＳＡ配列における非保守的位置（ｎｏｎ−ｃｏｎｓｅｒｖｅｄ  ｐｏｓｉｔｉｏｎ）は、例えば、Ｃｙｓ３４→Ｓｅｒ、Ｌｅｕ４０７→Ａｌａ、Ｌｅｕ４０８→Ｖａｌ、Ａｒｇ４０８→Ｖａｌ、Ｖａｌ４０９→Ａｌａ、Ａｒｇ４１０→Ａｌａ、Ｌｙｓ４１３→Ｇｌｎ、Ａｒｇ４１０→Ａｌａ（Ｐｌｕｍｒｉｄｇｅら。国際特許ＷＯ２０１１０５１４８９）というようにその他のアミノ酸によって置換され得るが、その活性は変化しない。
【００２１】
配列番号：２：
DAHKSEVAHRFKDLGEENFKALVLIAFAQYLQQCPFEDHVKLVNEVTEFAKTCVADESAENCDKSLHTLFGDKLCTVATLRETYGEMADCCAKQEPERNECFLQHKDDNPNLPRLVRPEVDVMCTAFHDNEETFLKKYLYEIARRHPYFYAPELLFFAKRYKAAFTECCQAADKAACLLPKLDELRDEGKASSAKQRLKCASLQKFGERAFKAWAVARLSQRFPKAEFAEVSKLVTDLTKVHTECCHGDLLECADDRADLAKYICENQDSISSKLKECCEKPLLEKSHCIAEVENDEMPADLPSLAADFVESKDVCKNYAEAKDVFLGMFLYEYARRHPDYSVVLLLRLAKTYETTLEKCCAAADPHECYAKVFDEFKPLVEEPQNLIKQNCELFEQLGEYKFQNALLVRYTKKVPQVSTPTLVEVSRNLGKVGSKCCKHPEAKRMPCAEDYLSVVLNQLCVLHEKTPVSDRVTKCCTESLVNRRPCFSALEVDETYVPKEFNAETFTFHADICTLSEKERQIKKQTALVELVKHKPKATKEQLKAVMDDFAAFVEKCCKADDKETCFAEEGKKLVAASQAALGL
【００２２】
本願の好ましい実施例において、前記ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質のアミノ酸配列は、配列番号：３〜５から選択される。
【００２３】
ａ）配列番号：３：
HGEGTFTSDVSSYLEEQAAKEFIAWLVKGGGSSPPPGGGGSSDAHKSEVAHRFKDLGEENFKALVLIAFAQYLQQCPFEDHVKLVNEVTEFAKTCVADESAENCDKSLHTLFGDKLCTVATLRETYGEMADCCAKQEPERNECFLQHKDDNPNLPRLVRPEVDVMCTAFHDNEETFLKKYLYEIARRHPYFYAPELLFFAKRYKAAFTECCQAADKAACLLPKLDELRDEGKASSAKQRLKCASLQKFGERAFKAWAVARLSQRFPKAEFAEVSKLVTDLTKVHTECCHGDLLECADDRADLAKYICENQDSISSKLKECCEKPLLEKSHCIAEVENDEMPADLPSLAADFVESKDVCKNYAEAKDVFLGMFLYEYARRHPDYSVVLLLRLAKTYETTLEKCCAAADPHECYAKVFDEFKPLVEEPQNLIKQNCELFEQLGEYKFQNALLVRYTKKVPQVSTPTLVEVSRNLGKVGSKCCKHPEAKRMPCAEDYLSVVLNQLCVLHEKTPVSDRVTKCCTESLVNRRPCFSALEVDETYVPKEFNAETFTFHADICTLSEKERQIKKQTALVELVKHKPKATKEQLKAVMDDFAAFVEKCCKADDKETCFAEEGKKLVAASQAALGL
【００２４】
ｂ）配列番号：４：
HGEGTFTSDVSSYLEEQAAKEFIAWLVKGGGAPPPPPPPPPPSSGGGDAHKSEVAHRFKDLGEENFKALVLIAFAQYLQQCPFEDHVKLVNEVTEFAKTCVADESAENCDKSLHTLFGDKLCTVATLRETYGEMADCCAKQEPERNECFLQHKDDNPNLPRLVRPEVDVMCTAFHDNEETFLKKYLYEIARRHPYFYAPELLFFAKRYKAAFTECCQAADKAACLLPKLDELRDEGKASSAKQRLKCASLQKFGERAFKAWAVARLSQRFPKAEFAEVSKLVTDLTKVHTECCHGDLLECADDRADLAKYICENQDSISSKLKECCEKPLLEKSHCIAEVENDEMPADLPSLAADFVESKDVCKNYAEAKDVFLGMFLYEYARRHPDYSVVLLLRLAKTYETTLEKCCAAADPHECYAKVFDEFKPLVEEPQNLIKQNCELFEQLGEYKFQNALLVRYTKKVPQVSTPTLVEVSRNLGKVGSKCCKHPEAKRMPCAEDYLSVVLNQLCVLHEKTPVSDRVTKCCTESLVNRRPCFSALEVDETYVPKEFNAETFTFHADICTLSEKERQIKKQTALVELVKHKPKATKEQLKAVMDDFAAFVEKCCKADDKETCFAEEGKKLVAASQAALGL
【００２５】
ｃ）配列番号：５：
HGEGTFTSDVSSYLEEQAAKEFIAWLVKGGGSSGAPPPSGGGGSGGGGSGGGGSDAHKSEVAHRFKDLGEENFKALVLIAFAQYLQQCPFEDHVKLVNEVTEFAKTCVADESAENCDKSLHTLFGDKLCTVATLRETYGEMADCCAKQEPERNECFLQHKDDNPNLPRLVRPEVDVMCTAFHDNEETFLKKYLYEIARRHPYFYAPELLFFAKRYKAAFTECCQAADKAACLLPKLDELRDEGKASSAKQRLKCASLQKFGERAFKAWAVARLSQRFPKAEFAEVSKLVTDLTKVHTECCHGDLLECADDRADLAKYICENQDSISSKLKECCEKPLLEKSHCIAEVENDEMPADLPSLAADFVESKDVCKNYAEAKDVFLGMFLYEYARRHPDYSVVLLLRLAKTYETTLEKCCAAADPHECYAKVFDEFKPLVEEPQNLIKQNCELFEQLGEYKFQNALLVRYTKKVPQVSTPTLVEVSRNLGKVGSKCCKHPEAKRMPCAEDYLSVVLNQLCVLHEKTPVSDRVTKCCTESLVNRRPCFSALEVDETYVPKEFNAETFTFHADICTLSEKERQIKKQTALVELVKHKPKATKEQLKAVMDDFAAFVEKCCKADDKETCFAEEGKKLVAASQAALGL
【００２６】
本発明の第２の局面は、前記ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを開示する。
【００２７】
本願の好ましい実施例において、前記ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質におけるヌクレオチドのコード配列は配列番号：１０であり、これに対応するタンパク質配列は配列番号：５である。本発明のＧＬＰ−１類似体融合タンパク質は、ヌクレオチドのコード配列を配列番号：８とし、これに対応するタンパク質配列を配列番号：３としてもよいし、ヌクレオチドのコード配列を配列番号：９とし、これに対応するタンパク質配列を配列番号：４としてもよい。
【００２８】
配列番号：８  ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質におけるヌクレオチドのコード配列
CACGGCGAAGGGACCTTTACCAGTGATGTAAGTTCTTATTTGGAAGAGCAAGCTGCCAAGGAATTCATTGCTTGGCTGGTGAAAGGTGGTGGATCTTCTCCACCACCAGGTGGTGGAGGCTCTTCAGATGCACACAAGAGTGAGGTTGCTCATCGGTTTAAAGATTTGGGAGAAGAAAATTTCAAAGCCTTGGTGTTGATTGCCTTTGCTCAGTATCTTCAGCAGTGTCCATTTGAAGATCATGTAAAATTAGTGAATGAAGTAACTGAATTTGCAAAAACATGTGTTGCTGATGAGTCAGCTGAAAATTGTGACAAATCACTTCATACCCTTTTTGGAGACAAATTATGCACAGTTGCAACTCTTCGTGAAACCTATGGTGAAATGGCTGACTGCTGTGCAAAACAAGAACCTGAGAGAAATGAATGCTTCTTGCAACACAAAGATGACAACCCAAACCTCCCCCGATTGGTGAGACCAGAGGTTGATGTGATGTGCACTGCTTTTCATGACAATGAAGAGACATTTTTGAAAAAATACTTATATGAAATTGCCAGAAGACATCCTTACTTTTATGCCCCGGAACTCCTTTTCTTTGCTAAAAGGTATAAAGCTGCTTTTACAGAATGTTGCCAAGCTGCTGATAAAGCTGCCTGCCTGTTGCCAAAGCTCGATGAACTTCGGGATGAAGGGAAGGCTTCGTCTGCCAAACAGAGACTCAAGTGTGCCAGTCTCCAAAAATTTGGAGAAAGAGCTTTCAAAGCATGGGCAGTAGCTCGCCTGAGCCAGAGATTTCCCAAAGCTGAGTTTGCAGAAGTTTCCAAGTTAGTGACAGATCTTACCAAAGTCCACACGGAATGCTGCCATGGAGATCTGCTTGAATGTGCTGATGACAGGGCGGACCTTGCCAAGTATATCTGTGAAAATCAAGATTCGATCTCCAGTAAACTGAAGGAATGCTGTGAAAAACCTCTGTTGGAAAAATCCCACTGCATTGCCGAAGTGGAAAATGATGAGATGCCTGCTGACTTGCCTTCATTAGCTGCTGATTTTGTTGAAAGTAAGGATGTTTGCAAAAACTATGCTGAGGCAAAGGATGTCTTCCTGGGCATGTTTTTGTATGAATATGCAAGAAGGCATCCTGATTACTCTGTCGTGCTGCTGCTGAGACTTGCCAAGACATATGAAACCACTCTAGAGAAGTGCTGTGCCGCTGCAGATCCTCATGAATGCTATGCCAAAGTGTTCGATGAATTTAAACCTCTTGTGGAAGAGCCTCAGAATTTAATCAAACAAAATTGTGAGCTTTTTGAGCAGCTTGGAGAGTACAAATTCCAGAATGCGCTATTAGTTCGTTACACCAAGAAAGTACCCCAAGTGTCAACTCCAACTCTTGTAGAGGTCTCAAGAAACCTAGGAAAAGTGGGCAGCAAATGTTGTAAACATCCTGAAGCAAAAAGAATGCCCTGTGCAGAAGACTATCTATCCGTGGTCCTGAACCAGTTATGTGTGTTGCATGAGAAAACGCCAGTAAGTGACAGAGTCACAAAATGCTGCACAGAGTCCTTGGTGAACAGGCGACCATGCTTTTCAGCTCTGGAAGTCGATGAAACATACGTTCCCAAAGAGTTTAATGCTGAAACATTCACCTTCCATGCAGATATATGCACACTTTCTGAGAAGGAGAGACAAATCAAGAAACAAACTGCACTTGTTGAGCTTGTGAAACACAAGCCCAAGGCAACAAAAGAGCAACTGAAAGCTGTTATGGATGATTTCGCAGCTTTTGTAGAGAAGTGCTGCAAGGCTGACGATAAGGAGACCTGCTTTGCCGAGGAGGGTAAAAAACTTGTTGCTGCAAGTCAAGCTGCCTTAGGCTTATAA
【００２９】
配列番号：９  ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質におけるヌクレオチドのコード配列
CACGGCGAAGGGACCTTTACCAGTGATGTAAGTTCTTATTTGGAAGAGCAAGCTGCCAAGGAATTCATTGCTTGGCTGGTGAAAGGCGGGGGTGCTCCACCACCACCACCACCACCACCACCACCATCTTCCGGAGGCGGTGATGCACACAAGAGTGAGGTTGCTCATCGGTTTAAAGATTTGGGAGAAGAAAATTTCAAAGCCTTGGTGTTGATTGCCTTTGCTCAGTATCTTCAGCAGTGTCCATTTGAAGATCATGTAAAATTAGTGAATGAAGTAACTGAATTTGCAAAAACATGTGTTGCTGATGAGTCAGCTGAAAATTGTGACAAATCACTTCATACCCTTTTTGGAGACAAATTATGCACAGTTGCAACTCTTCGTGAAACCTATGGTGAAATGGCTGACTGCTGTGCAAAACAAGAACCTGAGAGAAATGAATGCTTCTTGCAACACAAAGATGACAACCCAAACCTCCCCCGATTGGTGAGACCAGAGGTTGATGTGATGTGCACTGCTTTTCATGACAATGAAGAGACATTTTTGAAAAAATACTTATATGAAATTGCCAGAAGACATCCTTACTTTTATGCCCCGGAACTCCTTTTCTTTGCTAAAAGGTATAAAGCTGCTTTTACAGAATGTTGCCAAGCTGCTGATAAAGCTGCCTGCCTGTTGCCAAAGCTCGATGAACTTCGGGATGAAGGGAAGGCTTCGTCTGCCAAACAGAGACTCAAGTGTGCCAGTCTCCAAAAATTTGGAGAAAGAGCTTTCAAAGCATGGGCAGTAGCTCGCCTGAGCCAGAGATTTCCCAAAGCTGAGTTTGCAGAAGTTTCCAAGTTAGTGACAGATCTTACCAAAGTCCACACGGAATGCTGCCATGGAGATCTGCTTGAATGTGCTGATGACAGGGCGGACCTTGCCAAGTATATCTGTGAAAATCAAGATTCGATCTCCAGTAAACTGAAGGAATGCTGTGAAAAACCTCTGTTGGAAAAATCCCACTGCATTGCCGAAGTGGAAAATGATGAGATGCCTGCTGACTTGCCTTCATTAGCTGCTGATTTTGTTGAAAGTAAGGATGTTTGCAAAAACTATGCTGAGGCAAAGGATGTCTTCCTGGGCATGTTTTTGTATGAATATGCAAGAAGGCATCCTGATTACTCTGTCGTGCTGCTGCTGAGACTTGCCAAGACATATGAAACCACTCTAGAGAAGTGCTGTGCCGCTGCAGATCCTCATGAATGCTATGCCAAAGTGTTCGATGAATTTAAACCTCTTGTGGAAGAGCCTCAGAATTTAATCAAACAAAATTGTGAGCTTTTTGAGCAGCTTGGAGAGTACAAATTCCAGAATGCGCTATTAGTTCGTTACACCAAGAAAGTACCCCAAGTGTCAACTCCAACTCTTGTAGAGGTCTCAAGAAACCTAGGAAAAGTGGGCAGCAAATGTTGTAAACATCCTGAAGCAAAAAGAATGCCCTGTGCAGAAGACTATCTATCCGTGGTCCTGAACCAGTTATGTGTGTTGCATGAGAAAACGCCAGTAAGTGACAGAGTCACAAAATGCTGCACAGAGTCCTTGGTGAACAGGCGACCATGCTTTTCAGCTCTGGAAGTCGATGAAACATACGTTCCCAAAGAGTTTAATGCTGAAACATTCACCTTCCATGCAGATATATGCACACTTTCTGAGAAGGAGAGACAAATCAAGAAACAAACTGCACTTGTTGAGCTTGTGAAACACAAGCCCAAGGCAACAAAAGAGCAACTGAAAGCTGTTATGGATGATTTCGCAGCTTTTGTAGAGAAGTGCTGCAAGGCTGACGATAAGGAGACCTGCTTTGCCGAGGAGGGTAAAAAACTTGTTGCTGCAAGTCAAGCTGCCTTAGGCTTATAA
【００３０】
配列番号：１０  ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質におけるヌクレオチドのコード配列
CACGGCGAAGGGACCTTTACCAGTGATGTAAGTTCTTATTTGGAAGAGCAAGCTGCCAAGGAATTCATTGCTTGGCTGGTGAAAGGCGGTGGATCTTCTGGTGCTCCACCACCATCTGGTGGTGGAGGCTCTGGAGGTGGAGGTTCCGGAGGCGGGGGTTCAGATGCACACAAGAGTGAGGTTGCTCATCGGTTTAAAGATTTGGGAGAAGAAAATTTCAAAGCCTTGGTGTTGATTGCCTTTGCTCAGTATCTTCAGCAGTGTCCATTTGAAGATCATGTAAAATTAGTGAATGAAGTAACTGAATTTGCAAAAACATGTGTTGCTGATGAGTCAGCTGAAAATTGTGACAAATCACTTCATACCCTTTTTGGAGACAAATTATGCACAGTTGCAACTCTTCGTGAAACCTATGGTGAAATGGCTGACTGCTGTGCAAAACAAGAACCTGAGAGAAATGAATGCTTCTTGCAACACAAAGATGACAACCCAAACCTCCCCCGATTGGTGAGACCAGAGGTTGATGTGATGTGCACTGCTTTTCATGACAATGAAGAGACATTTTTGAAAAAATACTTATATGAAATTGCCAGAAGACATCCTTACTTTTATGCCCCGGAACTCCTTTTCTTTGCTAAAAGGTATAAAGCTGCTTTTACAGAATGTTGCCAAGCTGCTGATAAAGCTGCCTGCCTGTTGCCAAAGCTCGATGAACTTCGGGATGAAGGGAAGGCTTCGTCTGCCAAACAGAGACTCAAGTGTGCCAGTCTCCAAAAATTTGGAGAAAGAGCTTTCAAAGCATGGGCAGTAGCTCGCCTGAGCCAGAGATTTCCCAAAGCTGAGTTTGCAGAAGTTTCCAAGTTAGTGACAGATCTTACCAAAGTCCACACGGAATGCTGCCATGGAGATCTGCTTGAATGTGCTGATGACAGGGCGGACCTTGCCAAGTATATCTGTGAAAATCAAGATTCGATCTCCAGTAAACTGAAGGAATGCTGTGAAAAACCTCTGTTGGAAAAATCCCACTGCATTGCCGAAGTGGAAAATGATGAGATGCCTGCTGACTTGCCTTCATTAGCTGCTGATTTTGTTGAAAGTAAGGATGTTTGCAAAAACTATGCTGAGGCAAAGGATGTCTTCCTGGGCATGTTTTTGTATGAATATGCAAGAAGGCATCCTGATTACTCTGTCGTGCTGCTGCTGAGACTTGCCAAGACATATGAAACCACTCTAGAGAAGTGCTGTGCCGCTGCAGATCCTCATGAATGCTATGCCAAAGTGTTCGATGAATTTAAACCTCTTGTGGAAGAGCCTCAGAATTTAATCAAACAAAATTGTGAGCTTTTTGAGCAGCTTGGAGAGTACAAATTCCAGAATGCGCTATTAGTTCGTTACACCAAGAAAGTACCCCAAGTGTCAACTCCAACTCTTGTAGAGGTCTCAAGAAACCTAGGAAAAGTGGGCAGCAAATGTTGTAAACATCCTGAAGCAAAAAGAATGCCCTGTGCAGAAGACTATCTATCCGTGGTCCTGAACCAGTTATGTGTGTTGCATGAGAAAACGCCAGTAAGTGACAGAGTCACAAAATGCTGCACAGAGTCCTTGGTGAACAGGCGACCATGCTTTTCAGCTCTGGAAGTCGATGAAACATACGTTCCCAAAGAGTTTAATGCTGAAACATTCACCTTCCATGCAGATATATGCACACTTTCTGAGAAGGAGAGACAAATCAAGAAACAAACTGCACTTGTTGAGCTTGTGAAACACAAGCCCAAGGCAACAAAAGAGCAACTGAAAGCTGTTATGGATGATTTCGCAGCTTTTGTAGAGAAGTGCTGCAAGGCTGACGATAAGGAGACCTGCTTTGCCGAGGAGGGTAAAAAACTTGTTGCTGCAAGTCAAGCTGCCTTAGGCTTATAA
【００３１】
ＧＬＰ−１類似体含有融合タンパク質をコードするヌクレオチド配列は、当業者が熟知する任意の適切な技術により作成可能である。この技術としては、ＤＮＡ組換え技術や化学合成等の方法が含まれるが、これらに限定しない。また、ＧＬＰ−１アミノ酸配列を備えたヌクレオチド配列を先に合成してから、部位特異的突然変異誘発、定方向突然変異誘発、又は当業者が熟知するその他の技術によって配列を挿入、置換、削除することで、必要なヌクレオチド配列を取得してもよい。
【００３２】
キャリアタンパク質をコードするヌクレオチド配列は、当業者が熟知する任意の適切な技術により作成可能である。本発明の具体的実施例では、キャリアタンパク質のヌクレオチド配列は、ヒト血清アルブミンをコードするヌクレオチド配列か、或いは、少なくとも９５％の配列がこれと一致するものとする。
【００３３】
ＧＬＰ−１類似体をコードするヌクレオチド配列と、キャリアタンパク質をコードするヌクレオチド配列との融合技術については、例えば『分子クローン実験ガイドライン』（Ｊ．サムブルックら、科学出版社、１９９５）のような当該分野における一般的な著述を参照すればよい。
【００３４】
本発明における第３の局面は、融合タンパク質の遺伝子配列を含有する発現ベクターを構築し、続いて、融合タンパク質の遺伝子配列を含有する発現ベクターを宿主細胞に形質転換して誘導発現させ、発現産物から前記融合タンパク質を分離して取得する、前記融合タンパク質を作製する方法を開示する。
【００３５】
融合タンパク質の遺伝子配列を含有する発現ベクターを構築するには、まず、ＧＬＰ−１類似体をコードするヌクレオチド配列を合成し、続いてこのヌクレオチド配列とヒト血清アルブミンをコードするヌクレオチド配列とを融合して、適切な発現ベクター内に構築することで取得する。
【００３６】
ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質を発現する遺伝子配列は、当業者が熟知する発現系により発現可能であり、組換えファージ、プラスミド等のベクターを用いて形質転換された細菌、酵母発現ベクターを用いて形質転換された酵母、真菌ベクターを用いて形質転換された糸状菌、ウィルスベクターにより感染した昆虫細胞、動物細胞等が含まれるが、これらに限定しない。本発明の具体的実施例では、発現系としてピキア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ  ｐａｓｔｏｒｉｓ）による分泌発現を選択した。ピキア・パストリスは発現レベルが高く、低コストであり、且つ真核生物発現系によるタンパク質の加工、フォールディング、翻訳後修飾といった利点がある。具体的な生産においては、細胞は実験室内で振盪培養してもよいし、発酵槽によって発酵培養してもよい（連続培養、バッチ培養、流加培養及び固体発酵を含む）。
【００３７】
培地に分泌された融合タンパク質は、当業者が熟知する方法で精製すればよく、限外ろ過、硫安沈殿、アセトン沈殿、及びイオン交換クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、分子ふるいクロマトグラフィー等を含むが、これらに限定しない。本発明の具体的実施例において、発明者は、親和性クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー及びイオン交換クロマトグラフィーという３段階のクロマトグラフィーを手段として用い、融合タンパク質を均一に精製した。
【００３８】
本発明における第４の局面は、前記ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質を、糖尿病治療及び関連疾患の治療薬製造に適用する用途を開示する。
【００３９】
本発明における第５の局面は、前記ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質及び少なくとも１種の薬学的に受け入れ可能なベクター又は賦形剤を含有する薬用組成物を開示する。
【００４０】
前記薬用組成物の主な用途は、糖尿病及び関連疾患の治療である。前記関連疾患には、２型糖尿病、１型糖尿病、肥満、２型糖尿病患者における深刻な心臓血管障害及びその他の深刻な合併症等が含まれる（Ｍａｄｓｂａｄ  Ｓ，Ｋｉｅｌｇａｓｔ  Ｕ，Ａｓｍａｒ  Ｍ，ｅｔ  ａｌ．Ｄｉａｂｅｔｅｓ  Ｏｂｅｓ  Ｍｅｔａｂ．２０１１  Ｍａｙ；１３（５）：３９４−４０７；Ｉｓｓａ  ＣＭ，Ａｚａｒ  ＳＴ．Ｃｕｒｒ  Ｄｉａｂ  Ｒｅｐ，２０１２  Ｏｃｔ；１２（５）：５６０−５６７；Ｎｅｆｆ  ＬＭ，Ｋｕｓｈｎｅｒ  ＲＦ．Ｄｉａｂｅｔｅｓ  Ｍｅｔａｂ  Ｓｙｎｄｒ  Ｏｂｅｓ，２０１０  Ｊｕｌ  ２０；３：２６３−２７３；Ｓｉｖｅｒｔｓｅｎ  Ｊ，Ｒｏｓｅｎｍｅｉｅｒ  Ｊ，Ｈｏｌｓｔ  ＪＪ，ｅｔ  ａｌ．Ｎａｔ  Ｒｅｖ  Ｃａｒｄｉｏｌ，２０１２  Ｊａｎ  ３１；９（４）：２０９−２２２）。
【００４１】
当業者にとって既知の治療上不活性な無機又は有機のベクターには、糖類又はその誘導体、アミノ酸類又はその誘導体、界面活性剤、植物油、ロウ、脂肪、例えばポリエチレングリコール、アルコール類、グリセリンといったポリヒドロキシ化合物が含まれるが、これらに限定しない。また、各種防腐剤、酸化防止剤、安定剤、塩、バッファー、水、といったものが加えられてもよい。これらの物質は、必要に応じて配合の安定性を補助したり、活性又はバイオアベイラビリティの向上に寄与したりする。
【００４２】
本発明の薬用組成物は当業者が熟知する技術で調製可能であり、安定して保存され、且つ人又は動物への投与に適した薬物を作製すべく、液体又はゲル、凍結乾燥されたもの或いはその他の態様とされる。
【００４３】
本発明における第６の局面は、対象者に対し、本発明によるＧＬＰ−１類似体融合タンパク質を使用する糖尿病及び関連疾患の治療方法を開示する。
【００４４】
前記融合タンパク質を非インスリン依存型及びインスリン依存型糖尿病、肥満及びその他様々な疾患を患う患者に適用する方法としては、例えばバイエッタ（登録商標）（ＧＬＰ−１類似ペプチド）、Ａｌｂｕｇｏｎ（登録商標）（ＧＬＰ−１／ＨＳＡ融合タンパク質）、Ｄｕｌａｇｌｕｔｉｄｅ（登録商標）（ＧＬＰ−１／Ｆｃ融合タンパク質）といった従来のＧＬＰ−１類医薬製剤を参考にすればよい。また、投与量については０．０５〜１ｍｇ／ｋｇの範囲とする。
【００４５】
本発明のタンパク質は単体で投与してもよいし、各種を組み合わせて投与してもよい。また、その他の治療薬剤と組み合わせて投与してもよい。
【００４６】
なお、本発明では、ＧＬＰ−１（Ｇｌｕｃａｇｏｎ  ｌｉｋｅ  ｐｒｏｔｅｉｎ−１）をグルカゴン様ペプチド−１の略称として、ＨＳＡ（ｈｕｍａｎ  ｓｅｒｕｍ  ａｌｂｕｍｉｎ）をヒト血清アルブミンの略称として用いる。
【図面の簡単な説明】
【００４７】
【図１】図１は、ＧＬＰ−１類似体タンパク質の発現を構造別に示す電気泳動図であり、レーン１〜９はそれぞれ表１に示す１〜９番の融合タンパク質の発現結果である。
【図２Ａ】図２Ａは、正常なアカゲザルにＧＬＰ−１類似体融合タンパク質を１回皮下注射した場合の薬物動態試験を示すものであり、ＧＬＰ−１−Ｅ３−ＨＳＡを皮下注射した１日後にブドウ糖を段階的に投与した場合のアカゲザルの血糖値をしめす。
【図２Ｂ】図２Ｂは、正常なアカゲザルにＧＬＰ−１類似体融合タンパク質を１回皮下注射した場合の薬物動態試験を示すものであり、ＧＬＰ−１−Ｅ３−ＨＳＡを皮下注射した４日後にブドウ糖を段階的に投与した場合のアカゲザルの血糖値を示す。
【図２Ｃ】図２Ｃは、正常なアカゲザルにＧＬＰ−１類似体融合タンパク質を１回皮下注射した場合の薬物動態試験を示すものであり、ＧＬＰ−１−Ｅ３−ＨＳＡを皮下注射した１日後にブドウ糖を段階的に投与した場合のアカゲザルのインスリンレベルを示す。
【図２Ｄ】図２Ｄは、正常なアカゲザルにＧＬＰ−１類似体融合タンパク質を１回皮下注射した場合の薬物動態試験を示すものであり、ＧＬＰ−１−Ｅ３−ＨＳＡを皮下注射した４日後にブドウ糖を段階的に投与した場合のアカゲザルのインスリンレベルを示す。
【図３】図３は、アカゲザルに対する１回投与後の薬物−時間曲線である。
【００４８】
［配列の簡単な説明］
配列番号：１    ＧＬＰ−１類似体のアミノ酸配列
配列番号：２    ＨＳＡのアミノ酸配列
配列番号：３    ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質のアミノ酸配列
配列番号：４    ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質のアミノ酸配列
配列番号：５    ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質のアミノ酸配列
配列番号：６    ＧＬＰ−１類似体のヌクレオチドのコード配列
配列番号：７    ＨＳＡのヌクレオチドのコード配列
配列番号：８    ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質のヌクレオチドのコード配列
配列番号：９    ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質のヌクレオチドのコード配列
配列番号：１０  ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質のヌクレオチドのコード配列
【発明を実施するための形態】
【００４９】
以下に、特定の具体的実施例を用いて本発明の実施形態を説明する。なお、当業者であれば、本明細書に開示の内容から本発明のその他の利点及び効果を容易に理解可能である。本発明は、その他の異なる具体的実施形態によっても実施又は応用が可能であり、本明細書における各詳細事項も、他の観点及び応用に基づいて、本発明の主旨を逸脱しないことを前提に各種の補足又は変形が可能である。
【００５０】
なお、特に言及しない限り、本発明で開示する実験方法、検出方法、作製方法は、いずれも当該技術分野において一般的な分子生物学、生物化学、染色質構造及び分析、分析化学、細胞培養、ＤＮＡ組換え技術、及び、関連分野における一般的な技術を用いるものとする。
【００５１】
実施例１  組換え融合タンパク質の発現プラスミドの構築
ＧＬＰ−１類似体ヌクレオチドのコード配列（配列番号：６）：
CACGGCGAAGGGACCTTTACCAGTGATGTAAGTTCTTATTTGGAAGAGCAAGCTGCCAAGGAATTCATTGCTTGGCTGGTGAAA
【００５２】
１．１  ３’末端のＨＳＡ融合部位における（ＧＬＰ−１類似体）2の遺伝子断片
以下のオリゴヌクレオチド配列を人工的に合成した（配列番号：１７）：
CACGGCGAAGGGACCTTTACCAGTGATGTAAGTTCTTATTTGGAAGAGCAAGCTGCCAAGGAATTCATTGCTTGGCTGGTGAAACACGGCGAAGGGACCTTTACCAGTGATGTAAGTTCTTATTTGGAAGAGCAAGCTGCCAAGGAATTCATTGCTTGGCTGGTGAAAGATGCACACAAGAGTGAGG
【００５３】
うち、下線部は（ＧＬＰ−１類似体）2の遺伝子配列であり、残りの部分はＨＳＡにおけるＮ末端部分のコード配列である。
【００５４】
１．２  ３’末端のＨＳＡ融合部位におけるＧＬＰ−１類似体−（Ｇｌｙ4Ｓｅｒ）3の遺伝子断片
以下のオリゴヌクレオチド配列を人工的に合成した（配列番号：１８）：
CACGGCGAAGGGACCTTTACCAGTGATGTAAGTTCTTATTTGGAAGAGCAAGCTGCCAAGGAATTCATTGCTTGGCTGGTGAAAGGTGGTGGAGGCTCTGGAGGTGGAGGTTCCGGAGGCGGGGGTTCAGATGCACACAAGAGTGAGG
【００５５】
うち、下線部はＧＬＰ−１類似体−（Ｇｌｙ4Ｓｅｒ）3の遺伝子配列であり、残りの部分はＨＳＡにおけるＮ末端部分のコード配列である。
【００５６】
１．３  ３’末端のＨＳＡ融合部位におけるＧＬＰ−１類似体−（Ｇｌｙ4Ｓｅｒ）4の遺伝子断片
以下のオリゴヌクレオチド配列を人工的に合成した（配列番号：１９）：
CACGGCGAAGGGACCTTTACCAGTGATGTAAGTTCTTATTTGGAAGAGCAAGCTGCCAAGGAATTCATTGCTTGGCTGGTGAAAGGTGGTGGAGGCTCTGGTGGTGGAGGCTCTGGAGGTGGAGGTTCCGGAGGCGGGGGTTCAGATGCACACAAGAGTGAGG
【００５７】
うち、下線部はＧＬＰ−１類似体−（Ｇｌｙ4Ｓｅｒ）4の遺伝子配列であり、残りの部分はＨＳＡにおけるＮ末端部分のコード配列である。
【００５８】
１．４  ３’末端のＨＳＡ融合部位におけるＧＬＰ−１類似体−Ｅ１の遺伝子断片
以下のオリゴヌクレオチド配列を人工的に合成した（配列番号：２０）：
CACGGCGAAGGGACCTTTACCAGTGATGTAAGTTCTTATTTGGAAGAGCAAGCTGCCAAGGAATTCATTGCTTGGCTGGTGAAAGGTGGTGGATCTTCTCCACCACCAGGTGGTGGAGGCTCTTCAGATGCACACAAGAGTGAGG
【００５９】
うち、下線部はＧＬＰ−１類似体−Ｅ１の遺伝子配列であり、残りの部分はＨＳＡにおけるＮ末端部分のコード配列である。
【００６０】
１．５  ３’末端のＨＳＡ融合部位におけるＧＬＰ−１類似体−Ｅ２の遺伝子断片
以下のオリゴヌクレオチド配列を人工的に合成した（配列番号：２１）：
CACGGCGAAGGGACCTTTACCAGTGATGTAAGTTCTTATTTGGAAGAGCAAGCTGCCAAGGAATTCATTGCTTGGCTGGTGAAAGGTGGAGGCTCTTCAGGTGGAGGCTCTTCACCACCACCAGCTGGTGGAGGCTCTTCAGGTGGAGGCTCTTCAGATGCACACAAGAGTGAGG
【００６１】
うち、下線部はＧＬＰ−１類似体−Ｅ２の遺伝子配列であり、残りの部分はＨＳＡにおけるＮ末端部分のコード配列である。
【００６２】
１．６  ３’末端のＨＳＡ融合部位におけるＧＬＰ−１類似体−Ｅ３の遺伝子断片
以下のオリゴヌクレオチド配列を人工的に合成した（配列番号：２２）：
CACGGCGAAGGGACCTTTACCAGTGATGTAAGTTCTTATTTGGAAGAGCAAGCTGCCAAGGAATTCATTGCTTGGCTGGTGAAAGGCGGGGGTGCTCCACCACCACCACCACCACCACCACCACCATCTTCCGGAGGCGGTGATGCACACAAGAGTGAGG
【００６３】
うち、下線部はＧＬＰ−１類似体−Ｅ３の遺伝子配列であり、残りの部分はＨＳＡにおけるＮ末端部分のコード配列である。
【００６４】
１．７  ３’末端のＨＳＡ融合部位におけるＧＬＰ−１類似体−Ｅ４の遺伝子断片
以下のオリゴヌクレオチド配列を人工的に合成した（配列番号：２３）：
CACGGCGAAGGGACCTTTACCAGTGATGTAAGTTCTTATTTGGAAGAGCAAGCTGCCAAGGAATTCATTGCTTGGCTGGTGAAAGCTGGCGGGGGTGCTGCTGGAGGCGGGTCTTCTGGCGGGGGTCCACCACCACCACCAGGAGGCGGGGGTTCAGATGCACACAAGAGTGAGG
【００６５】
うち、下線部はＧＬＰ−１類似体−Ｅ４の遺伝子配列であり、残りの部分はＨＳＡにおけるＮ末端部分のコード配列である。
【００６６】
１．８  ３’末端のＨＳＡ融合部位におけるＧＬＰ−１類似体−Ｅ５の遺伝子断片
以下のオリゴヌクレオチド配列を人工的に合成した（配列番号：２４）：
CACGGCGAAGGGACCTTTACCAGTGATGTAAGTTCTTATTTGGAAGAGCAAGCTGCCAAGGAATTCATTGCTTGGCTGGTGAAAGGTGGATCTTCTGGTGCTCCACCACCACCAGGAGGCGGGGGTTCAGATGCACACAAGAGTGAGG
【００６７】
うち、下線部はＧＬＰ−１類似体−Ｅ５の遺伝子配列であり、残りの部分はＨＳＡにおけるＮ末端部分のコード配列である。
【００６８】
１．９  ３’末端のＨＳＡ融合部位におけるＧＬＰ−１類似体−Ｅ６の遺伝子断片
以下のオリゴヌクレオチド配列を人工的に合成した（配列番号：２５）：
CACGGCGAAGGGACCTTTACCAGTGATGTAAGTTCTTATTTGGAAGAGCAAGCTGCCAAGGAATTCATTGCTTGGCTGGTGAAAGGCGGTGGATCTTCTGGTGCTCCACCACCATCTGGTGGTGGAGGCTCTGGAGGTGGAGGTTCCGGAGGCGGGGGTTCAGATGCACACAAGAGTGAGG
【００６９】
うち、下線部はＧＬＰ−１類似体−Ｅ６の遺伝子配列であり、残りの部分はＨＳＡにおけるＮ末端部分のコード配列である。
【００７０】
Ｅ１：GGGSSPPPGGGGSS（配列番号：１１）
Ｅ２：GGGSSGGGSSPPPAGGGSSGGGSS（配列番号：１２）
Ｅ３：GGGAPPPPPPPPPPSSGGG（配列番号：１３）
Ｅ４：AGGGAAGGGSSGGGPPPPPGGGGS（配列番号：１４）
Ｅ５：GGSSGAPPPPGGGGS（配列番号：１５）
Ｅ６：GGGSSGAPPPSGGGGSGGGGSGGGGS（配列番号：１６）
【００７１】
注：（Ｘａａ）ｘ−（Ｐｒｏ）ｙ−（Ｘａａ）ｚのうち、ＸａａはＧ，Ａ，Ｓのうち１種類又は複数種類の任意の組み合わせであり、ｘ，ｚ≧３、２６≧ｘ＋ｙ＋ｚ≧１４、１０≧ｙ≧３、１≧ｙ／（ｘ＋ｚ）≧０．１３である。結合ペプチドは、Ｎ末端が第１領域のＣ末端にペプチド結合で連なっており、Ｃ末端がＨＳＡのＮ末端にペプチド結合で連なっている。
0006519929.tif 000002
【００７２】
２．ＨＳＡ遺伝子の増幅
ＨＳＡヌクレオチドのコード配列（配列番号：７）：
GATGCACACAAGAGTGAGGTTGCTCATCGGTTTAAAGATTTGGGAGAAGAAAATTTCAAAGCCTTGGTGTTGATTGCCTTTGCTCAGTATCTTCAGCAGTGTCCATTTGAAGATCATGTAAAATTAGTGAATGAAGTAACTGAATTTGCAAAAACATGTGTTGCTGATGAGTCAGCTGAAAATTGTGACAAATCACTTCATACCCTTTTTGGAGACAAATTATGCACAGTTGCAACTCTTCGTGAAACCTATGGTGAAATGGCTGACTGCTGTGCAAAACAAGAACCTGAGAGAAATGAATGCTTCTTGCAACACAAAGATGACAACCCAAACCTCCCCCGATTGGTGAGACCAGAGGTTGATGTGATGTGCACTGCTTTTCATGACAATGAAGAGACATTTTTGAAAAAATACTTATATGAAATTGCCAGAAGACATCCTTACTTTTATGCCCCGGAACTCCTTTTCTTTGCTAAAAGGTATAAAGCTGCTTTTACAGAATGTTGCCAAGCTGCTGATAAAGCTGCCTGCCTGTTGCCAAAGCTCGATGAACTTCGGGATGAAGGGAAGGCTTCGTCTGCCAAACAGAGACTCAAGTGTGCCAGTCTCCAAAAATTTGGAGAAAGAGCTTTCAAAGCATGGGCAGTAGCTCGCCTGAGCCAGAGATTTCCCAAAGCTGAGTTTGCAGAAGTTTCCAAGTTAGTGACAGATCTTACCAAAGTCCACACGGAATGCTGCCATGGAGATCTGCTTGAATGTGCTGATGACAGGGCGGACCTTGCCAAGTATATCTGTGAAAATCAAGATTCGATCTCCAGTAAACTGAAGGAATGCTGTGAAAAACCTCTGTTGGAAAAATCCCACTGCATTGCCGAAGTGGAAAATGATGAGATGCCTGCTGACTTGCCTTCATTAGCTGCTGATTTTGTTGAAAGTAAGGATGTTTGCAAAAACTATGCTGAGGCAAAGGATGTCTTCCTGGGCATGTTTTTGTATGAATATGCAAGAAGGCATCCTGATTACTCTGTCGTGCTGCTGCTGAGACTTGCCAAGACATATGAAACCACTCTAGAGAAGTGCTGTGCCGCTGCAGATCCTCATGAATGCTATGCCAAAGTGTTCGATGAATTTAAACCTCTTGTGGAAGAGCCTCAGAATTTAATCAAACAAAATTGTGAGCTTTTTGAGCAGCTTGGAGAGTACAAATTCCAGAATGCGCTATTAGTTCGTTACACCAAGAAAGTACCCCAAGTGTCAACTCCAACTCTTGTAGAGGTCTCAAGAAACCTAGGAAAAGTGGGCAGCAAATGTTGTAAACATCCTGAAGCAAAAAGAATGCCCTGTGCAGAAGACTATCTATCCGTGGTCCTGAACCAGTTATGTGTGTTGCATGAGAAAACGCCAGTAAGTGACAGAGTCACAAAATGCTGCACAGAGTCCTTGGTGAACAGGCGACCATGCTTTTCAGCTCTGGAAGTCGATGAAACATACGTTCCCAAAGAGTTTAATGCTGAAACATTCACCTTCCATGCAGATATATGCACACTTTCTGAGAAGGAGAGACAAATCAAGAAACAAACTGCACTTGTTGAGCTTGTGAAACACAAGCCCAAGGCAACAAAAGAGCAACTGAAAGCTGTTATGGATGATTTCGCAGCTTTTGTAGAGAAGTGCTGCAAGGCTGACGATAAGGAGACCTGCTTTGCCGAGGAGGGTAAAAAACTTGTTGCTGCAAGTCAAGCTGCCTTAGGCTTATAA
【００７３】
プライマー設計：
ＧＬＰ−１／Ｐ１（配列番号：２６）：
5’−TCTCTCGAGAAAAGACACGGCGAAGGGACCTTTACCAGTG−3’（制限酵素ＸｈｏＩによる切断部位）
ＨＳＡ／Ｐ１（配列番号：２７）：5’−GATGCACACAAGAGTGAGG−3’
ＨＳＡ／Ｐ２（配列番号：２８）：
5’−TTAGCGGCCGCTTATAAGCCTAAGGCAGCTTG−3’（制限酵素ＮｏｔＩによる切断部位）
【００７４】
Ｈｕｍａｎ  Ｓｅｒｕｍ  Ａｌｂｕｍｉｎ／ＨＳＡ／ＡＬＢ  Ｇｅｎｅ  ｃＤＮＡ  Ｃｌｏｎｅ／ＯＲＦ  Ｃｌｏｎｅ遺伝子（Ｓｉｎｏ  Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ社）を鋳型とし、ＨＳＡ／Ｐ１及びＨＳＡ／Ｐ２をプライマーとして、ＨＳＡ断片を増幅した。ＰＣＲ体系としては、鋳型を０．５μｌとし、２５μｍｏｌ／ＬのＨＳＡ／Ｐ１及びＨＳＡ／Ｐ２をプライマーとして各１μｌ、２ｍｍｏｌ／ＬのｄＮＴＰを４μｌ、５ｘＰＳ反応バッファーを１０μｌ、ＰｒｉｍｅＳｔａｒ  ＤＮＡポリメラーゼを２．５Ｕとして、ｄｄＨ２Ｏを体積５０μｌとなるまで補充した。
【００７５】
ＰＣＲ条件としては、９８℃で１０分間変性させ、６８℃で１分４８秒放置し、これを２５回繰り返した後に４℃で保温した。ＰＣＲ産物は、アガロースゲル電気泳動でゲル抽出し、分子量約１７５０ｂｐのバンドを回収した。
【００７６】
３．融合遺伝子の増幅
３．１  （ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡ融合遺伝子の増幅
（ＧＬＰ−１類似体）2の遺伝子断片とＨＳＡのＰＣＲ産物を等モル混合して鋳型とし、ＧＬＰ−１／Ｐ１及びＨＳＡ／Ｐ２をプライマーとして、（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡを増幅した。ＰＣＲ体系としては、鋳型を０．５μｌとし、２５μｍｏｌ／ＬのＧＬＰ−１／Ｐ１及びＨＳＡ／Ｐ２をプライマーとして各１μｌ、２ｍｍｏｌ／ＬのｄＮＴＰを４μｌ、５ｘＰＳ反応バッファーを１０μｌ、ＰｒｉｍｅＳｔａｒ  ＤＮＡポリメラーゼを２．５Ｕとし、ｄｄＨ２Ｏを体積５０μｌとなるまで補充した。ＰＣＲ条件としては、９８℃で１０秒間変性させ、６８℃で２分３０秒放置し、これを２５回繰り返した後に４℃で保温した。ＰＣＲ産物は、アガロースゲル電気泳動でゲル抽出し、分子量約１９５０ｂｐのバンドを回収した。
【００７７】
３．２  ＧＬＰ−１類似体−（Ｇｌｙ4Ｓｅｒ）3−ＨＳＡ融合遺伝子の増幅
ＧＬＰ−１類似体−（Ｇｌｙ4Ｓｅｒ）3の遺伝子断片とＨＳＡのＰＣＲ産物との等モル混合物を鋳型とした。なお、ＰＣＲ体系及びＰＣＲ条件は３．１と同様とした。ＰＣＲ産物は、アガロースゲル電気泳動でゲル抽出し、分子量約１９３０ｂｐのバンドを回収した。
【００７８】
３．３  ＧＬＰ−１類似体−（Ｇｌｙ4Ｓｅｒ）4−ＨＳＡ融合遺伝子の増幅
ＧＬＰ−１類似体−（Ｇｌｙ4Ｓｅｒ）4の遺伝子断片とＨＳＡのＰＣＲ産物との等モル混合物を鋳型とした。なお、ＰＣＲ体系及びＰＣＲ条件は３．１と同様とした。ＰＣＲ産物は、アガロースゲル電気泳動でゲル抽出し、分子量約１９５０ｂｐのバンドを回収した。
【００７９】
３．４  ＧＬＰ−１類似体−Ｅ１−ＨＳＡ融合遺伝子の増幅
ＧＬＰ−１類似体−Ｅ１の遺伝子断片とＨＳＡのＰＣＲ産物との等モル混合物を鋳型とした。なお、ＰＣＲ体系及びＰＣＲ条件は３．１と同様とした。ＰＣＲ産物は、アガロースゲル電気泳動でゲル抽出し、分子量約１９３０ｂｐのバンドを回収した。
【００８０】
３．５  ＧＬＰ−１類似体−Ｅ２−ＨＳＡ融合遺伝子の増幅
ＧＬＰ−１類似体−Ｅ２の遺伝子断片とＨＳＡのＰＣＲ産物との等モル混合物を鋳型とした。なお、ＰＣＲ体系及びＰＣＲ条件は３．１と同様とした。ＰＣＲ産物は、アガロースゲル電気泳動でゲル抽出し、分子量約１９６０ｂｐのバンドを回収した。
【００８１】
３．６  ＧＬＰ−１類似体−Ｅ３−ＨＳＡ融合遺伝子の増幅
ＧＬＰ−１類似体−Ｅ３の遺伝子断片とＨＳＡのＰＣＲ産物との等モル混合物を鋳型とした。なお、ＰＣＲ体系及びＰＣＲ条件は３．１と同様とした。ＰＣＲ産物は、アガロースゲル電気泳動でゲル抽出し、分子量約１９４０ｂｐのバンドを回収した。
【００８２】
３．７  ＧＬＰ−１類似体−Ｅ４−ＨＳＡ融合遺伝子の増幅
ＧＬＰ−１類似体−Ｅ４の遺伝子断片とＨＳＡのＰＣＲ産物との等モル混合物を鋳型とした。なお、ＰＣＲ体系及びＰＣＲ条件は３．１と同様とした。ＰＣＲ産物は、アガロースゲル電気泳動でゲル抽出し、分子量約１９６０ｂｐのバンドを回収した。
【００８３】
３．８  ＧＬＰ−１類似体−Ｅ５−ＨＳＡ融合遺伝子の増幅
ＧＬＰ−１類似体−Ｅ５の遺伝子断片とＨＳＡのＰＣＲ産物との等モル混合物を鋳型とした。なお、ＰＣＲ体系及びＰＣＲ条件は３．１と同様とした。ＰＣＲ産物は、アガロースゲル電気泳動でゲル抽出し、分子量約１９３０ｂｐのバンドを回収した。
【００８４】
３．９  ＧＬＰ−１類似体−Ｅ６−ＨＳＡ融合遺伝子の増幅
ＧＬＰ−１類似体−Ｅ６の遺伝子断片とＨＳＡのＰＣＲ産物との等モル混合物を鋳型とした。なお、ＰＣＲ体系及びＰＣＲ条件は３．１と同様であった。ＰＣＲ産物は、アガロースゲル電気泳動でゲル抽出し、分子量約１９７０ｂｐのバンドを回収した。
【００８５】
４．融合タンパク質発現プラスミドの構築
４．１  （ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡ発現プラスミドの構築
まず、発現ベクターのプラスミドｐＰＩＣ９をＸｈｏＩ、ＮｏｔＩでダブルダイジェストした。具体的な条件として、発現ベクターのプラスミドｐＰＩＣ９を１０μｌ、ＸｈｏＩを１μｌ、ＮｏｔＩを１μｌ、１０×制限酵素切断バッファー（Ｈ）を４μｌ（タカラ社より購入）、ｄｄＨ2Ｏを２４μｌ、総体積を４０μｌとした。同様にして、（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡ断片についてもダブルダイジェストを実施した。続いて、３７℃の恒温水槽内で２時間反応させ、線形化したプラスミドのＤＮＡ及び（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡの遺伝子断片をアガロースゲル電気泳動によって回収した。そして、回収したベクターと遺伝子断片を結合し、融合タンパク質発現プラスミド（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡ／ｐＰＩＣ９を構築した。結合体系は通常１０μｌであり、ベクターと遺伝子断片のモル比を１：２〜１０、１０×Ｔ４  ＤＮＡ  ｌｉｇａｓｅバッファーを１μｌ、Ｔ４  ＤＮＡ  ｌｉｇａｓｅを１μｌとし、滅菌水を総体積１０μｌとなるまで加えた。そして、１６℃の恒温水槽内で１時間結合反応させた。結合産物はコンピテントセルＥ．ｃｏｌｉＴｏｐ１０に形質転換し、形質転換されたクローンスポットにユニバーサルプライマー５’ＡＯＸ１と３’ＡＯＸ１をプラマイーとして用いてＰＣＲ鑑定を行った。そして、鑑定結果の正しかったクローン培養液を金斯瑞生物技術社に送り、ユニバーサルプライマー５’ＡＯＸ１と３’ＡＯＸ１を用いてシークエンシングを実施した。シークエンシングにより、予測の正しさを検証した。
【００８６】
４．２  ＧＬＰ−１類似体−（Ｇｌｙ4Ｓｅｒ）3−ＨＳＡ発現プラスミドの構築
融合タンパク質の遺伝子断片にＧＬＰ−１類似体−（Ｇｌｙ4Ｓｅｒ）3−ＨＳＡ融合遺伝子を用いて置き換えたほかは、４．１と同様とした。シークエンシングの結果、予測の正しさを検証した。
【００８７】
４．３  ＧＬＰ−１類似体−（Ｇｌｙ4Ｓｅｒ）4−ＨＳＡ発現プラスミドの構築
融合タンパク質の遺伝子断片にＧＬＰ−１類似体−（Ｇｌｙ4Ｓｅｒ）4−ＨＳＡ融合遺伝子を用いて置き換えたほかは、４．１と同様とした。シークエンシングの結果、予測の正しさを検証した。
【００８８】
４．４  ＧＬＰ−１類似体−Ｅ１−ＨＳＡ発現プラスミドの構築
融合タンパク質の遺伝子断片にＧＬＰ−１類似体−Ｅ１−ＨＳＡ融合遺伝子を用いて置き換えたほかは、４．１と同様とした。シークエンシングの結果、予測の正しさを検証した。
【００８９】
４．５  ＧＬＰ−１類似体−Ｅ２−ＨＳＡ発現プラスミドの構築
融合タンパク質の遺伝子断片にＧＬＰ−１類似体−Ｅ２−ＨＳＡ融合遺伝子を用いて置き換えたほかは、４．１と同様とした。シークエンシングの結果、予測の正しさを検証した。
【００９０】
４．６  ＧＬＰ−１類似体−Ｅ３−ＨＳＡ発現プラスミドの構築
融合タンパク質の遺伝子断片にＧＬＰ−１類似体−Ｅ３−ＨＳＡ融合遺伝子を用いて置き換えたほかは、４．１と同様とした。シークエンシングの結果、予測の正しさを検証した。
【００９１】
４．７  ＧＬＰ−１類似体−Ｅ４−ＨＳＡ発現プラスミドの構築
融合タンパク質の遺伝子断片にＧＬＰ−１類似体−Ｅ４−ＨＳＡ融合遺伝子を用いて置き換えたほかは、４．１と同様とした。シークエンシングの結果、予測の正しさを検証した。
【００９２】
４．８  ＧＬＰ−１類似体−Ｅ５−ＨＳＡ発現プラスミドの構築
融合タンパク質の遺伝子断片にＧＬＰ−１類似体−Ｅ５−ＨＳＡ融合遺伝子を用いて置き換えたほかは、４．１と同様とした。シークエンシングの結果、予測の正しさを検証した。
【００９３】
４．９  ＧＬＰ−１類似体−Ｅ６−ＨＳＡ発現プラスミドの構築
融合タンパク質の遺伝子断片にＧＬＰ−１類似体−Ｅ６−ＨＳＡ融合遺伝子を用いて置き換えたほかは、４．１と同様とした。シークエンシングの結果、予測の正しさを検証した。
【００９４】
実施例２  融合タンパク質における発現株の構築
発現ベクターのプラスミド（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡ／ｐＰＩＣ９、ＧＬＰ−１類似体−（Ｇｌｙ4Ｓｅｒ）3−ＨＳＡ／ｐＰＩＣ９、ＧＬＰ−１類似体−（Ｇｌｙ4Ｓｅｒ）4−ＨＳＡ／ｐＰＩＣ９、ＧＬＰ−１類似体−Ｅ１−ＨＳＡ／ｐＰＩＣ９、ＧＬＰ−１類似体−Ｅ２−ＨＳＡ／ｐＰＩＣ９、ＧＬＰ−１類似体−Ｅ３−ＨＳＡ／ｐＰＩＣ９、ＧＬＰ−１類似体−Ｅ４−ＨＳＡ／ｐＰＩＣ９、ＧＬＰ−１類似体−Ｅ５−ＨＳＡ／ｐＰＩＣ９、ＧＬＰ−１類似体−Ｅ６−ＨＳＡ／ｐＰＩＣ９を含有する細菌クローンをそれぞれ選別し、各発現ベクターのプラスミドをそれぞれ抽出した。続いて、ＳａｌＩを用いて各プラスミドを線形化し、線形化した各プラスミドのＤＮＡをアガロースゲル電気泳動によって回収した。最後に、エレクトロポーション法で各線形化プラスミドをピキア酵母ＧＳ１１５のコンピテントセル内に移動させた。電気刺激が完了すると、すぐに１ｍｌの１Ｍソルビトール溶液を加えて菌体を均一に混合し、１．５ｍｌの遠心分離管に移した。そして、３０℃で１．５時間静置した後、菌体懸濁液をＲＤＢ選択プレートに塗布した。なお、各プレートには３００μｌずつを塗布した。プレートを３０℃下に置き、シングルコロニーが出現するまで培養した。そして、取得した陽性コロニーを新鮮なＲＤＢプレートに移し、２４時間培養した後、ＲＤＢプレートで成長した各ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質に対応するシングルコロニーをそれぞれ抽出し、１０ｍｌのＢＭＧＹ培地に接種した。続いて、３０℃且つ２５０ｒｐｍで２４時間培養し、沈殿するまで静置した後に上清を捨て、１０ｍｌのＢＭＭＹ（２％メタノール）で再浮遊させた。そして、３０℃且つ２５０ｒｐｍで４８時間誘導し、遠心分離によって上清を取り除き、１０％ＳＤＳ−ＰＡＧＥ電気泳動を実施して融合タンパク質の発現を検出した。バンドの大きさが予測と一致している場合、融合タンパク質のＮ末端をシークエンシングし、シークエンシングの結果が予測に一致しているシングルコロニーを即ち各ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質の発現株とした。
【００９５】
プラスミド線形化の具体的条件としては、発現ベクターのプラスミドを６０μｌ、ＳａｌＩを２．５μｌ、１０×バッファー（Ｈ）を２０μｌとし、ｄｄＨ2Ｏを総体積が２００μｌとなるまで補充した。そして、３７℃の恒温水槽内で３時間反応させた。
【００９６】
また、コンピテントセル作製の具体的方法としては、まず菌体を用意し、酵母のシングルコロニーを選別して５ｍｌのＹＰＤ培地を含む５０ｍｌの三角フラスコに接種した。続いて、３０℃且つ２５０ｒｐｍで一晩培養した。その後、３０μｌの培養物を取り、５０ｍｌのＹＰＤ培地を含む２５０ｍｌの三角フラスコに接種して、３０℃且つ２５０ｒｐｍでＯＤ６００が１〜１．５となるまで一晩培養した。そして、細胞培養物を氷上で予め１０分間冷却した後、４℃で１５００ｇを５分間遠心分離した。続いて、上清を捨て、４０ｍｌの予め冷却しておいた滅菌水で菌体の沈殿物を再浮遊させた。遠心分離後に、再び２５ｍｌの予め冷却した滅菌水を用い、菌体の沈殿物を再浮遊させた。続いて、再び遠心分離し、５ｍｌの予め冷却した１Ｍソルビトール溶液を用いて菌体の沈殿物を再浮遊させた。そして、更に遠心分離にかけ、８０μｌの予め冷却した１Ｍソルビトール溶液で菌体の沈殿物を再浮遊させた。
【００９７】
エレクトロポーションの具体的な方法としては、１０μｌの線形化プラスミドと８０μｌの前記コンピテントセルを均一に混合し、０．２ｃｍの予め冷却しておいたエレクトロポーション用容器に移した。エレクトロポーション用容器を５分間冷却してから、電圧１５００Ｖで電気刺激を加えた。
【００９８】
実施例３  ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質の作製
ピキア酵母発現マニュアル（Ａ  Ｍａｎｕａｌ  ｏｆ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｆｏｒ  Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｏｆ  Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ  Ｐｒｏｔｅｉｎｓ  ｉｎ  Ｐｉｃｈｉａ  ｐａｓｔｏｒｉｓ．Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を参考に、実施例２で取得した各ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質の発現株をＹＰＤ培地に接種し、菌体が湿重量約５０ｇ／Ｌとなるまで３０℃且つ２２０〜２８０ｒｐｍで振盪培養した。そして、接種量１０％でタンクに投入し（Ｂｉｏｓｔａｔ  Ｃ１０，ザルトリウス社）、３０℃且つｐＨ５．０、飽和度３０％の溶存酸素を用いて２０時間培養した後、メタノールを連続して流加して誘導を開始した。続いて、溶存酸素の飽和度を４０％に制御し、４時間誘導した後に温度を２２℃まで低下させ、５０時間後に誘導を終了した。そして、１００００ｇを１５分間遠心分離して、発酵上清液を回収した。
【００９９】
精製には、ＢＬＵＥ親和性、ＰＨＥ疎水性、ＤＥＡＥイオン交換及びゲル排除の４段階のクロマトグラフを採用した。まず、発酵上清液を２０ｍＭのｐＨ７．０リン酸ナトリウム溶液で３倍希釈し、親和性クロマトグラフィーＢｌｕｅ  Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ  Ｆａｓｔ  Ｆｌｏｗ（ＸＫ  ５０／２０、ＧＥヘルスケア社）にかけた。そして、ＰＢＳで平衡化した後、２ＭのＮａＣｌと、２０ｍＭのｐＨ６．５リン酸ナトリウム溶液を用いて目的タンパク質を溶出した。そして、得られたタンパク質溶液に（ＮＨ4）2ＳＯ4を投入して最終濃度を０．５Ｍとし、ＰＨＥ  Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ  Ｆａｓｔ  Ｆｌｏｗ（ＸＫ  ５０／２０、ＧＥヘルスケア社）クロマトグラフィーにかけて、０．６Ｍの（ＮＨ4）2ＳＯ4溶液で平衡化した後、５ｍＭのｐＨ６．５リン酸ナトリウムバッファーでタンパク質を溶出した。取得したタンパク質は、更に５ｍＭのｐＨ６．５リン酸ナトリウムバッファーで２倍希釈した後、イオン交換クロマトグラフィーにかけ、ＤＥＡＥ  Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ  Ｆａｓｔ  Ｆｌｏｗ（ＸＫ  ５０／２０、ＧＥヘルスケア社）クロマトグラフィーを用いて、ＰＢＳをそのまま用いて目的タンパク質を溶出した。最後に、ゲルクロマトグラフィーＳｅｐｈａｄｅｘ  Ｇ２５  ｃｏａｒｓｅ（ＸＫ  ５０／６０、ＧＥヘルスケア社）にかけ、脱塩して５ｍＭのｐＨ６．５リン酸ナトリウムバッファーに置換した。発現上清と精製した融合タンパク質は、それぞれ非還元ＳＤＳ−ＰＡＧＥで分析した。図１に示すように、ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質は、構造ごとに発現時の安定性に大きな違いがあり、中でも（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡの安定性が最も劣っていた。
【０１００】
実施例４  体外活性試験
文献（Ｚｌｏｋａｒｎｉｋ  Ｇ，Ｎｅｇｕｌｅｓｃｕ  ＰＡ，Ｋｎａｐｐ  ＴＥ，Ｍｅｒｅ  Ｌ，Ｂｕｒｒｅｓ  Ｎ，Ｆｅｎｇ  Ｌ，Ｗｈｉｔｎｅｙ  Ｍ，Ｒｏｅｍｅｒ  Ｋ，  Ｔｓｉｅｎ  ＲＹ．Ｓｃｉｅｎｃｅ．２７９（５３４７）：８４−８．（１９９８））に基づいて、ヒトＧＬＰ−１受容体とＣＲＥ−Ｌｕｃレポーター遺伝子を持つＨＥＫ−２９３細胞を構築し、５００００細胞／孔／２００μｌで、１０％ＦＢＳを含有するＤＭＥＭ培地をＣｏｓｔａｒ９６ウェル細胞培養プレートに接種した。接種から２日後に培養液を吸い取り、ＩＢＭＸを５００μＭ含有する段階希釈されたＧＬＰ−１類似体融合タンパク質の無血清ＤＭＥＭ培養液５０μｌを各ウェルに投入し、５〜６時間インキュベートした。その後、５０μｌのルシフェラーゼ基質（Ｂｒｉｇｈｔ−ＧｌｏTM  Ｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ  Ａｓｓａｙ  Ｓｙｓｔｅｍ、プロメガ社、Ｅ２６２０）を投入して２分間反応させ、ｃｏｓｔａｒ９６ウェル白色マイクロプレートに移した。続いて、多機能マイクロプレートリーダー（ＳｐｅｃｔｒａＭａｘＭ５  ｓｙｓｔｅｍ、モレキュラーデバイス社）上で蛍光値を測定し、蛍光値に基づいて用量反応曲線を描き、ＥＣ50値を特定した。そして、（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡの活性を１００％として、各融合タンパク質の相対活性を算出した。表１にその結果を示す。Ｇｌｙ4Ｓｅｒを結合ペプチドとした場合、その体外活性はＧＬＰ−１類似体を結合ペプチドとした場合とほぼ類似していた。これに対し、ＧＬＰ−１類似体とＨＳＡの間に請求項１に記載する配列を挿入すると（配列Ｅ１−Ｅ６）、融合タンパク質の体外活性は７〜１０倍程度高まった。
【０１０１】
表１
0006519929.tif 000003
【０１０２】
実施例５  体外安定性の分析
高度に精製されたＧＬＰ−１類似体融合タンパク質の原液を取り、適量の塩化ナトリウム、リン酸水素二ナトリウム及びリン酸二水素ナトリウムを加え、水酸化ナトリウム又は塩酸を用いてｐＨ７．４に調整した。続いて、注射用水を加えて、１ｍｌあたりにＧＬＰ−１類似体タンパク質を５．０ｍｇ、塩化ナトリウムを９ｍｇ、リン酸塩を２０μｍｏｌ含有させた。そして、０．２２μｍのＰＶＤＦ又はＰＥＳろ過膜でろ過して除菌し、クラス１００の環境下でバイアル瓶に無菌封入した。試料は安定性試験チャンバーに載置し、保存温度を２５℃として、０か月時、１か月時、３か月時にサンプリングし、−７０度の冷蔵庫に検査まで保存した。そして、全ての検査待ち試料を集め、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ純度及び細胞生物活性を検査した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥ純度の検査方法は実施例１で述べた通りであり、検査待ち試料の検体量は１０ｕｇとした。また、１μg、０．５μg、０．２μg、０．１μg、０．０５μgの対照実験（ｓｅｌｆ−ｃｏｎｔｒｏｌ）を行い，スキャニングデンシトメトリーによって標準曲線を取得した。そして、各夾雑タンパク質の含有割合を計算し、最終的に融合タンパク質の純度を算出した。体外活性の測定方法は実施例４に記載の通りとし、各試料につき０か月時の活性を１００％として計算した。活性測定に先立ち、試料は、活性測定が干渉を受けないように、分子ふるいクロマトグラフィーＳｕｐｅｒｄｅｘ７５  １０／３０（ＧＥヘルスケア社）を用いて分子量が１００００Ｄａ未満の分解断片を取り除いた。表２にその結果を示す。ＧＬＰ−１類似体とＨＳＡの間に結合ペプチドとしてＧＬＰ−１類似体を挿入した場合、活性保持率が最も低くなり、融合タンパク質が最も不安定となった。
【０１０３】
表２
0006519929.tif 000004
【０１０４】
実施例６  血清安定性分析
精製した高濃度ＧＬＰ−１類似体融合タンパク質の原液を取り、体積比１：２５でサル血清に加えた。続いて、菌をろ過し、バイアル瓶に無菌封入してから３７℃でインキュベートした。そして、０日目、１５日目、３０日目にサンプリングし、検査まで−７０度の冷蔵庫に保存した。全ての分析用試料を集め、Ａｎｔｉ−ＧＬＰ−１モノクローナル抗体（Ａｎｔｉｂｏｄｙｓｈｏｐ社）を捕捉抗体とし、Ｇｏａｔ  ａｎｔｉ−Ｈｕｍａｎ  Ａｌｂｕｍｉｎ−ＨＲＰ（Ｂｅｔｈｙｌ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社）を検出抗体として、サンドイッチＥＬＩＳＡ法で融合タンパク質の濃度を測定した。捕捉抗体は融合タンパク質のＧＬＰ−１類似体部分に結合し、検出抗体はアルブミン部分に結合するため、測定された融合タンパク質の濃度が未分解部分の含有量に正相関することになる。表３にその結果を示す。３０日後に、サル血清中の（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡは大部分が分解されたが、その他の試料は４０％近くを保持していた。
【０１０５】
表３  血清中の融合タンパク質含有量の経時変化
0006519929.tif 000005
注：０日目の測定濃度を１００％として算出した。
【０１０６】
実施例７  マウス腹腔内注射によるブドウ糖負荷試験
雌雄各半数の３２匹のＫＭマウスを１８時間にわたって一晩絶食させ（ただし、摂水は禁止せず）、１．０ｍｇ／ｋｇのＨＳＡ（対照群）、（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡ、ＧＬＰ−１類似体−Ｅ３−ＨＳＡ及びＧＬＰ−１類似体−Ｅ６−ＨＳＡを皮下注射した。そして、投与から１時間後と８時間後に、腹腔内注射によるブドウ糖負荷試験（ＩＰＧＴＴ）をそれぞれ実施した。本試験では、１．５ｇ／ｋｇのブドウ糖を腹腔内注射し、ブドウ糖注射前（ｔ=０）及び注射から１０分後、２０分後、３０分後、６０分後、９０分後、１２０分後に採血して、血液中のブドウ糖含有量を測定した（ＹＳＩ２７００型生化学分析装置）。対照群（ＨＳＡ群）と比較して、（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡ群、ＧＬＰ−１類似体−Ｅ３−ＨＳＡ群及びＧＬＰ−１類似体−Ｅ６−ＨＳＡ群のマウスの血糖値は著しく低下し、血糖曲線のピーク下面積（ＡＵＣ0-120min）がいずれも対照群を明らかに下回った（結果を表４に示す）。投与１時間後にＩＰＧＴＴを実施した場合、各時点における血糖値は３群間で類似しており、血糖曲線のピーク下面積（ＡＵＣ0-120min）も類似し、各群間に明らかな差はなかった（Ｐ＞０．０５）。しかし、投与８時間後にＩＰＧＴＴを実施した場合、１０〜３０分におけるＧＬＰ−１類似体−Ｅ３−ＨＳＡ群とＧＬＰ−１類似体−Ｅ６−ＨＳＡ群の血糖値レベルは、（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡ群よりも明らかに低く、血糖値のＡＵＣ0-120minも（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡ群を明らかに下回った（Ｐ＜０．０１）。この結果より、（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡとＧＬＰ−１類似体−Ｅ３−ＨＳＡはいずれもマウスの空腹時血糖を効果的に下げることができ、且つ長時間有効との特性を有するが、ＧＬＰ−１類似体−Ｅ３−ＨＳＡ群とＧＬＰ−１類似体−Ｅ６−ＨＳＡ群は、（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡ群に比べてより顕著且つ持続的な血糖低下作用があることがわかった。
【０１０７】
表４  ＫＭマウスにおける１回投与から１時間後及び８時間後のＩＰＧＴＴ血糖ピーク下面積ＡＵＣ0-120min
0006519929.tif 000006
【０１０８】
実施例８  正常なアカゲザルにＧＬＰ−１類似体融合タンパク質を１回皮下注射した場合の薬物動態試験
アカゲザルに０．５ｍｇ／ｋｇの（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡ又はＧＬＰ−１類似体−Ｅ３−ＨＳＡを１回皮下注射し、２４時間後と９６時間後に段階的静脈内ブドウ糖負荷試験を実施した。本試験では、ブドウ糖溶液（２０％右旋糖溶液、２００ｍｇ／ｍｌ）１０ｍｇ／ｋｇ／ｍｉｎ（３．０ｍｌ／ｋｇ／ｈ）を２０分間継続的に静脈注射し、続いてブドウ糖溶液２５ｍｇ／ｋｇ／ｍｉｎ（７．５ｍｌ／ｋｇ／ｈ）を２０分間継続的に投与した。そして、ブドウ糖を注射してから０分後、１０分後、２０分後、３０分後、４０分後に採血し、血糖とインスリンを測定した。血糖の測定にはＹＳＩ２７００型生化学分析装置を使用し、インスリンの測定には酵素結合免疫吸着法（Ｉｎｓｕｌｉｎ  ＥＬＩＳＡキット、ＤＲＧ  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ社）を用いた。血糖値については、投与から１日後の各時点において両群間に明らかな差はなかったが（図２に結果を示す）、投与から４日後の１０分、３０分、４０分時点において各群間に明らかな差がみられた（Ｐ＜０．０５又はＰ＜０．０１）。また、インスリンについては、投与から１日後と４日後の２０分、４０分時点すべてにおいて明らかな差がみられた（Ｐ＜０．０１）。この結果より、ＧＬＰ−１類似体−Ｅ３−ＨＳＡは、（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡよりも良好にインスリン分泌を促進し、正常なアカゲザルの段階的静脈内ブドウ糖負荷試験において血糖値レベルを低下させ得ることが明らかとなった。
【０１０９】
実施例９  カニクイザルへの１回投与による薬物代謝動態試験
カニクイザルに０．５ｍｇ／ｋｇの（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡとＧＬＰ−１類似体−Ｅ３−ＨＳＡを１回皮下注射し、投与前（ｔ=０）と、投与から４時間後、８時間後、１２時間後、２４時間後、４８時間後、７２時間後、９６時間後、１２０時間後、１４４時間後、２１６時間後に採血して血清を分離し、−８０度で冷凍保存した後に一括検査した。Ａｎｔｉ−ＧＬＰ−１モノクローナル抗体（Ａｎｔｉｂｏｄｙｓｈｏｐ社）を捕捉抗体とし、Ｇｏａｔ  ａｎｔｉ−Ｈｕｍａｎ  Ａｌｂｕｍｉｎ−ＨＲＰ（Ｂｅｔｈｙｌ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社）を検出抗体として、血清中の融合タンパク質濃度を検出するとともに（図３参照）、薬物代謝動態パラメーターを算出した（表５参照）。本研究より、カニクイザル体内における０．５ｍｇ／ｋｇのＧＬＰ−１類似体−Ｅ３−ＨＳＡの半減期は１０２時間（約４日）であるのに対し、（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡの半減期は約６０時間（２．５日）であることがわかった。
【０１１０】
表５
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【０１１１】
実施例１０  カニクイザルにおける反復皮下投与時の免疫原性
カニクイザルに対し、毎週１回１ｍｇ／ｋｇの（ＧＬＰ−１類似体）2−ＨＳＡ及びＧＬＰ−１類似体−Ｅ３−ＨＳＡを３か月連続で皮下投与した。そして、投与前（ｔ=０）と、投与から１か月後、２か月後、３か月後にそれぞれ採血し、血清を分離して−８０度で冷凍保存した後に一括検査した。酵素結合免疫吸着法（ＥＬＩＳＡ）を用いて、産生し得るサルの抗融合タンパク質抗体を測定した。また、対応する融合タンパク質を被覆物とし、異なる希釈度の検査待ち血清試料を加え、ｍｏｕｓｅ−ａｎｔｉ−ｍｏｎｋｅｙ  ＩｇＧを検出抗体として抗体の力価を測定した。更に、類似の測定条件で、検査待ち血清試料にヒト血清アルブミン（最終濃度６０μＭ）をアンタゴニストとして加えることで、産生された抗体の特異性を更に分析した（表６参照）。本研究の結果、複数回投与したところ、両者のいずれにも抗体が産生し、最高力価は１：６４００に達した。また、両者に産生した抗体の傾向と力価はほぼ一致していた。更に、血清にヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）を加えて拮抗分析を実施したところ、ＨＳＡ存在時には血清力価が著しく低下するとの結果が得られ、産生する抗体のほとんどがＨＳＡにより拮抗されることがわかった。以上は、サルに対し融合タンパク質を繰り返し投与することで産生される抗体の大部分は、融合タンパク質におけるヒト血清アルブミン部分に対するものであり、ＧＬＰ−１類似体部分に対する抗体は産生されないことを意味している。
【０１１２】
表６
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注：抗体力価＜１：１００を未検査（Ｎ．Ｄ．）と定義
【０１１３】
上記の実施例は本発明の原理と効果を例示的に説明するものにすぎず、本発明を限定するものではない。当業者であれば、本発明の精神及び範疇を逸脱しないことを前提に、上記の実施例を補足又は変形可能である。従って、本発明に開示の精神と技術思想から逸脱することなく当業者によって実施されるあらゆる等価の補足又は変形は、いずれも本発明の請求の範囲とみなされる。
【図１】
0006519929.tif 000009
【図２Ａ】
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【図２Ｂ】
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【図２Ｃ】
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【図２Ｄ】
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【図３】
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【配列表】
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