(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の４工程を含む、組成物の製造方法：
（１）胎盤を、発酵微生物を用いて発酵処理し、胎盤発酵分解物を得る工程、
（２）前記胎盤発酵分解物を可溶性画分である発酵抽出プラセンタエキスと不溶性画分とに分離する工程、
（３）前記不溶性画分を、プロテアーゼ処理し、プロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスを得る工程、及び
（４）前記発酵抽出プラセンタエキスと前記プロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスとを混合し、組成物を得る工程。
【請求項２】
前記組成物が医薬組成物である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記組成物が、非アルコール性脂肪性肝疾患の予防又は治療用である、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
前記非アルコール性脂肪性肝疾患が非アルコール性脂肪性肝炎である、請求項３に記載の方法。
【請求項５】
前記発酵微生物が、乳酸菌、酵母、枯草菌、及び麹菌からなる群から選択された１つ以上の微生物である、請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６】
前記プロテアーゼが、酸性プロテアーゼ、中性プロテアーゼ、アルカリプロテアーゼ、ペプシン、トリプシン、キモトリプシン、エラスターゼ、コラゲナーゼ、カルボキシペプチダーゼ、及びアミノペプチダーゼからなる群から選択された１つ以上のプロテアーゼである、請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項７】
請求項１〜６のいずれか一項に記載の製造方法により製造された、組成物。
【請求項８】
前記組成物が、健康食品又は機能性食品である、請求項７に記載の組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、非アルコール性脂肪性肝疾患、特には非アルコール性脂肪肝炎の予防用又は治療用組成物の製造方法に関する。本発明の製造方法によれば、非アルコール性脂肪性肝疾患、特には非アルコール性脂肪肝炎の予防用又は治療に有効な組成物を提供することができる。また、本発明の製造方法により得られる組成物は、医薬品として投与することができるだけでなく、種々の形態、例えば、健康食品や機能性食品（飲料を含む）、又は飼料として飲食物の形で与えることも可能である。
【背景技術】
【０００２】
食事内容の欧米化に伴い、近年日本でも高脂肪食が問題になってきている。従来脂肪肝の主因はアルコールの過剰摂取と考えられてきたが、そのような食事内容の変化に伴い、非アルコール性脂肪性肝疾患（ＮＡＦＬＤ：Ｎｏｎ−Ａｌｃｏｈｏｌｉｃ  Ｆａｔｔｙ  Ｌｉｖｅｒ  Ｄｉｓｅａｓｅ）が多く見られるようになってきた。
【０００３】
ＮＡＦＬＤの中でも、肝実質への脂肪沈着とともに炎症性細胞の浸潤や肝実質の障害、線維化を経て肝硬変、肝がんに至る進行性の疾患は、非アルコール性脂肪肝炎（ＮＡＳＨ：Ｎｏｎ−Ａｌｃｏｈｏｌｉｃ  Ｓｔｅａｔｏｈｅｐａｔｉｔｉｓ）と呼ばれている。肥満やインスリン抵抗性、糖尿病、脂質異常症を高頻度に合併すること、内臓脂肪から分泌されるアディポサイトカインや遊離脂肪酸がＮＡＳＨの発症や進展に深くかかわっていることから、ＮＡＦＬＤ／ＮＡＳＨはメタボリックシンドロームの肝臓における表現型とみなされている。
【０００４】
ＮＡＳＨの詳しい進展機構は明らかでなく、その治療手段も確立されていない。これまでの研究から、肥満や内臓脂肪の増加により、肝臓へ異所性に脂肪が蓄積しリポトキシシティ（脂肪毒性）を引き起こし、脂質過酸化（酸化ストレス）が増大することにより、炎症・線維化が生じ、ＮＡＳＨへ進展すると考えられている。ＮＡＳＨの進展のカギを握る脂肪肝から炎症の過程において、特に酸化ストレスの重要性が指摘されている。そのような観点から、種々の抗酸化物質について抗ＮＡＳＨ作用が検討されており、ビタミンＥ（非特許文献１）、アスタキサンチン（特許文献１）、βクリプトキサンチン（特許文献２，非特許文献２）に一定の効果があることが報告されている。また、ＮＡＳＨの背景にあるインスリン抵抗性を改善するＰＰＡＲγアゴニストであるピオグリタゾンが脂肪性肝炎の症状を改善するとの報告もある（非特許文献１）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】国際公開２０１２／１５７２８９Ａ１号
【特許文献２】特開２０１４−１１８３９０号公報
【特許文献３】特開２００５−１８５２４２号公報
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】「ザ・ニュー・イングランド・ジャーナル・オブ・メディスン（The New England Journal of Medicine）」（米国）２０１０年、第156巻、ｐ．１６７５−８５
【非特許文献２】「エンドクライノロジー（Endocrinology）」（米国）２０１５年、第３６２巻、ｐ．９８７−９９
【非特許文献３】「バイオロジカル・アンド・ファーマシューティカル・ブリティン（Biological & Pharmaceutical Bulletin）」（日本）２０１４年、第３７巻、ｐ．１８５３−９
【非特許文献４】「ヘパトロジー・リサーチ（Hepatology Research）」（日本）２０１４年、ＤＯＩ：１０．１１１１／ｈｅｐｒ．１２４３２
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
非特許文献３及び４においては、胎盤を酵素分解して得られた胎盤抽出物を有効成分とする医薬を用いて、ＮＡＳＨを治療することが試みられている。しかしながら、その治療効果は十分なものではなかった。すなわち、ＮＡＳＨの治療方法は確立されておらず、ＮＡＳＨを適応症とした治療薬は承認されていない。ＮＡＦＬＤ／ＮＡＳＨの最も重要な治療又は予防手段は、脂肪摂取の制限を伴う食事療法や減量であるが、その継続は困難な場合が多いことから、それを補う有効な医薬品又は食品の開発が強く望まれている。
従って、本発明の目的は、有効なＮＡＳＨの予防又は治療用の薬剤又は食品を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者らは、ＮＡＦＬＤ／ＮＡＳＨの予防用又は治療用組成物の製造方法について、鋭意研究した結果、驚くべきことに、胎盤を、発酵微生物を用いて発酵処理することによって得られた発酵抽出プラセンタエキスと、前記発酵抽出プラセンタエキスの残渣をプロテアーゼ処理することによって得られたプロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスとを含む組成物により、非アルコール性脂肪性肝疾患、特には非アルコール性脂肪肝炎を、効果的に予防又は治療できることを見出した。
本発明は、こうした知見に基づくものである。
従って、本発明は、
［１］以下の４工程を含む、組成物の製造方法：（１）胎盤を、発酵微生物を用いて発酵処理し、胎盤発酵分解物を得る工程、（２）前記胎盤発酵分解物を可溶性画分である発酵抽出プラセンタエキスと不溶性画分とに分離する工程、（３）前記不溶性画分を、プロテアーゼ処理し、プロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスを得る工程、及び（４）前記発酵抽出プラセンタエキスと前記プロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスとを混合し、組成物を得る工程、
［２］前記組成物が医薬組成物である、［１］に記載の方法、
［３］前記組成物が、非アルコール性脂肪性肝疾患の予防又は治療用である、［１］又は［２］に記載の方法、
［４］前記非アルコール性脂肪性肝疾患が非アルコール性脂肪性肝炎である、［３］に記載の方法、
［５］前記発酵微生物が、乳酸菌、酵母、枯草菌、及び麹菌からなる群から選択された１つ以上の微生物である、［１］〜［４］のいずれかに記載の方法、
［６］前記プロテアーゼが、酸性プロテアーゼ、中性プロテアーゼ、アルカリプロテアーゼ、ペプシン、トリプシン、キモトリプシン、エラスターゼ、コラゲナーゼ、カルボキシペプチダーゼ、及びアミノペプチダーゼからなる群から選択された１つ以上のプロテアーゼである、［１］〜［５］のいずれかに記載の方法、
［７］［１］〜［６］のいずれかに記載の製造方法により製造された、組成物、及び
［８］前記組成物が、健康食品又は機能性食品である、［７］に記載の組成物、
に関する。
なお、例えば特許文献３には、発酵菌で発酵されたプラセンタを含む健康食品が開示されている。しかしながら、この健康食品の効果は、腰痛及び関節痛の改善であった。
【発明の効果】
【０００９】
本発明の製造方法によれば、非アルコール性脂肪性肝疾患、特には非アルコール性脂肪肝炎の予防又は治療に有効な組成物を提供することができる。また、本発明の製造方法により得られる組成物により、非アルコール性脂肪性肝疾患、特には非アルコール性脂肪肝炎を予防又は治療することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】ＮＡＳＨ誘導食を摂取したＮＡＳＨモデルマウスに、本発明の組成物を経口投与した場合のマウスの体重変化を示したグラフである。
【図２】通常食摂取群（ＮＣ）、ＮＡＳＨ誘導食摂取群（ＣＬ）、又はＮＡＳＨ誘導食及び本発明の組成物摂取群（ＣＬ＋ＬＰＬ又はＣＬ＋ＨＰＬ）の平均摂餌量を示したグラフである。
【図３】ＮＡＳＨ誘導食を摂取したＮＡＳＨモデルマウスへ本発明の組成物を経口投与した場合に、血漿中のＡＳＴ及びＡＬＴの改善を示したグラフである。
【図４】ＮＡＳＨ誘導食を摂取したＮＡＳＨモデルマウスへ本発明の組成物を経口投与した場合に、肝臓組織中のＴＧ、ＴＣ及びＮＥＦＡの改善を示したグラフである。
【図５】通常食摂取群（ＮＣ）、ＮＡＳＨ誘導食摂取群（ＣＬ）、又はＮＡＳＨ誘導食及び本発明の組成物摂取群（ＣＬ＋ＬＰＬ又はＣＬ＋ＨＰＬ）の肝臓の外観及び肝臓組織切片のＨＥ染色像を示した写真である。
【図６】ＮＡＳＨ誘導食を摂取したＮＡＳＨモデルマウスへ本発明の組成物を経口投与した場合に、肝臓組織中のＳＲＥＢＰ−１ｃ遺伝子、ＦＡＳ遺伝子、及びＳＣＤ１遺伝子の発現の低下を示したグラフである。
【図７】ＮＡＳＨ誘導食を摂取したＮＡＳＨモデルマウスへ本発明の組成物を経口投与した場合に、肝臓組織中のＰＰＡＲ  ａｌｐｈａ遺伝子、及びＣｐｔｌａ遺伝子の発現の増加を示したグラフである。
【図８】ＮＡＳＨ誘導食を摂取したＮＡＳＨモデルマウスへ本発明の組成物を経口投与した場合に、肝臓組織中のＦ４／８０遺伝子、ＴＮＦ  ａｌｐｈａ遺伝子、ＩＬ１  ｂｅｔａ遺伝子、及びＣＤ１１ｃ遺伝子の発現の低下を示したグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
［１］組成物の製造方法
本発明の組成物の製造方法は、（１）胎盤を、発酵微生物を用いて発酵処理し、胎盤発酵分解物を得る工程（以下、発酵処理工程と称することがある）、（２）前記胎盤発酵分解物を可溶性画分である発酵抽出プラセンタエキスと不溶性画分とに分離する工程（以下、分離工程と称することがある）、（３）前記不溶性画分を、プロテアーゼ処理し、プロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスを得る工程（以下、プロテアーゼ処理工程と称することがある）、及び（４）前記発酵抽出プラセンタエキスと前記プロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスとを混合し、組成物を得る工程（以下、混合工程と称することがある）、を含む。
【００１２】
（１）発酵処理工程
本発明の製造方法における発酵処理工程は、（１）胎盤を、発酵微生物を用いて発酵処理する工程であり、胎盤発酵分解物を得ることができる。
【００１３】
《胎盤》
発酵処理工程に用いる胎盤の由来は、特に限定されるものではないが、ヒト、サル、ウシ、ウマ、ブタ、ヒツジ、ヤギ、ウサギ、ネコ、イヌ、マウス、ラット、モルモット、クジラ、又はハムスター由来の胎盤を挙げることができるが、商用的な使用の観点から、ブタまたはウマの正常分娩の後産で得られた胎盤を用いることが好ましい。
【００１４】
《発酵微生物》
発酵微生物としては、本発明に用いることのできる発酵抽出プラセンタエキスが得られる限りにおいて、限定されるものではないが、乳酸菌、酵母、枯草菌、又は麹菌を挙げることができる。
【００１５】
乳酸菌としては、限定されるものではないが、例えばブルガリア菌（ラクトバチルス・デルブリュッキー）、サーモフィルス菌（ストレプトコックス・サーモフィルス）、ラクトコックス・ラクチス、若しくはラクトバチルス属の種々の乳酸桿菌、ロイコノストック属、ペディオコッカス属、テトラジェノコッカス属、又はエンテロコッカス属の乳酸菌を挙げることができる。乳酸菌は、乳酸発酵により、ＧＡＢＡ及び／又はオルニチンなどの発酵によって得られるアミノ酸、又はロイシン、イソロイシン、及び／又はバリンなどの分枝鎖アミノ酸を産生することができる。
【００１６】
酵母としては、限定されるものではないが、例えばサッカロマイセス・セレビシエ、サッカロマイセス・ポンベ、サッカロミセス・パストリアヌ、サッカロミセス・バヤヌス、又はジゴサッカロマイセス属の酵母（ジゴサッカロマイセス・ロキシー、等）等を挙げることができる。酵母菌は、アルコール発酵により、ＧＡＢＡ及び／又はオルニチンなどの発酵によって得られるアミノ酸、又はロイシン、イソロイシン、及び／又はバリンなどの分枝鎖アミノ酸を産生することができる。
【００１７】
麹菌としては、限定されるものではないが、味噌醤油の製造に用いられる麹菌、例えばアスペルギルス・オリゼー、アスペルギルス・ソーヤ、アスペルギルス・ルチュエンシス等を挙げることができる。麹菌は、強いタンパク質及び炭水化物の分解能を有しており、ＧＡＢＡ及び／又はオルニチンなどの発酵によって得られるアミノ酸、又はロイシン、イソロイシン、及び／又はバリンなどの分枝鎖アミノ酸を産生することができる。
【００１８】
枯草菌としては、限定されるものではないが、バチルス・サチリス、又はバチルス・アムロリケファシエンス等を挙げることができる。枯草菌は、強いタンパク質及び炭水化物の分解能を有しており、ＧＡＢＡ及び／又はオルニチンなどの発酵によって得られるアミノ酸、又はロイシン、イソロイシン、及び／又はバリンなどの分枝鎖アミノ酸を産生することができる。
【００１９】
（発酵処理）
発酵処理は、胎盤からγ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）が抽出できる限りにおいて、特に限定されるものではない。
発酵処理にける発酵微生物のエネルギー源としては、特に限定されるものではないが、糖類（例えば、ブドウ糖、白糖、黒糖、糖蜜）を挙げることができる。糖類の添加量は特に限定されるものではないが、例えば、胎盤１ｋｇに対して、糖類を１〜５０ｇ添加して発酵処理を行うことができる。
従って、発酵温度は、本発明に用いることのできる胎盤発酵分解物が得られる限りにおいて、特に限定されるものではないが、例えば１５℃〜４５℃で行うことができ、好ましくは２０℃〜３５℃であり、更に好ましくは２５℃〜３０℃である。
また、発酵時間も、本発明に用いることのできる胎盤発酵分解物が得られる限りにおいて、特に限定されるものではないが、例えば６時間〜５日で行うことができ、好ましくは１２時間〜４日であり、更に好ましくは１日〜３日である。比較的短い発酵と、後述のプロテアーゼ分解とを組み合わせることにより、効果的な量のγ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及び／又はオルニチン（Ｏｒｎ）並びにロイシン、イソロイシン、及び／又はバリンなどの分枝鎖アミノ酸を得ることができる。
充分な量のγ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）を得るためには、一般的に発酵温度が高い場合は反応時間が短くてもよく、逆に発酵温度が低い場合は反応時間を長くすることによって調整することができる。例えば、得られる発酵抽出プラセンタエキスに、遊離アミノ酸分析によるγ−アミノ酪酸を１重量％以上、又はオルニチンを０．４重量％以上含むように発酵処理することが好ましい。
【００２０】
（胎盤発酵分解物）
胎盤発酵分解物は、発酵によって得られた抽出物を含み、後述の可溶性画分である発酵抽出プラセンタエキス及び不溶性画分の残渣を含む。
【００２１】
（２）分離工程
分離工程（２）は、前記胎盤発酵分解物を可溶性画分である発酵抽出プラセンタエキスと不溶性画分とに分離する工程である。胎盤発酵分解液を可溶性画分と不溶性画分とに分離する方法としては、遠心分離、濾過、及び篩過分離並びにそれらを組み合わせた方法などが用いられるが、これらに限定されない。不溶性画分は、次工程であるプロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスを得る工程（３）に供される。
【００２２】
《発酵抽出プラセンタエキス》
発酵抽出プラセンタエキスは、多種類のアミノ酸を含むが、特徴的なアミノ酸としてγ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）を含む。発酵抽出プラセンタエキスにおけるγ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）の含有量は、特に限定されるものではないが、アミノ酸の全体量に対して好ましくは１重量％以上であり、より好ましくは２重量％以上であり、更に好ましくは３重量％以上であり、更に好ましくは４重量％以上である。また、発酵抽出プラセンタエキスにおけるオルニチン（Ｏｒｎ）の含有量は、アミノ酸の全体量に対して好ましくは０．４重量％以上であり、より好ましくは０．８重量％以上であり、更に好ましくは１．２重量％以上であり、更に好ましくは１．６重量％以上である。なお、γ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）の含有量の上限は、胎盤に含まれるγ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）、オルニチン（Ｏｒｎ）、及びそれらの前駆物質の含有量の上限によって、決定されるため、特に限定されない。限定されるものではないが、γ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）を含むことにより、非アルコール性脂肪性肝疾患、特には非アルコール性脂肪肝炎を効果的に予防又は治療することができる。また、発酵抽出プラセンタエキスは、ロイシン、イソロイシン、及び／又はバリンなどの分枝鎖アミノ酸を含む。これらの分枝鎖アミノ酸により、更に非アルコール性脂肪性肝疾患、特には非アルコール性脂肪肝炎の予防又は治療の効果を高めることができる。
また、発酵抽出プラセンタエキスは、分子量１万以上の高分子量成分を含むものが好ましい。分子量１万以上の高分子量成分の含有量は、限定されるものではないが、好ましくは３重量％以上であり、より好ましくは５重量％以上であり、更に好ましくは８重量％以上であり、最も好ましくは１０重量％以上である。分子量１万以上の高分子量画分は、消化管において、胆汁酸と結合することにより胆汁酸の再吸収を抑制することができる。それによって、非アルコール性脂肪性肝疾患、特には非アルコール性脂肪肝炎の発症及び進展を抑制することができる。
分子量１万以上の高分子量成分の含有量の上限は、特に限定されるものではないが、好ましくは５０重量％以下であり、より好ましくは４０重量％以下であり、更に好ましくは３５重量％以下である。高分子量成分の含有量が多い場合、タンパク質のアミノ酸への発酵分解が少なくなり、ロイシン、イソロイシン、及び／又はバリンの含有量が少なくなることがある。
【００２３】
《不溶性画分》
胎盤発酵分解物の不溶性画分は、前記遠心分離、濾過、及び／又は篩過分離などによって得られた固形分である。すなわち、発酵微生物によって分解されにくい固形成分を含む。
【００２４】
（３）プロテアーゼ処理工程
プロテアーゼ処理工程（３）は、前記不溶性画分を、プロテアーゼ処理し、プロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスを得る工程である。具体的には、不溶性画分に水又は緩衝液を加え、プロテアーゼを添加し、インキュベーションする。水又は緩衝液は、使用するプロアーゼによって適宜選択することができるため、特に限定されるものではないが、水、リン酸緩衝、重炭酸緩衝液、クエン酸緩衝液、乳酸緩衝液、酢酸緩衝液、アジピン酸緩衝液、酒石酸緩衝液、フマル酸緩衝液、リンゴ酸緩衝液、Ｔｒｉｓ緩衝液、又はＨＥＰＥＳ緩衝液などを挙げることできる。いずれの場合においても、適当量の酸又はアルカリにより至適ｐＨに調整しても良い。水又は緩衝液の量は、不溶性画分の量及びプロテアーゼの種類によって、適宜決定することができる。
【００２５】
《プロテアーゼ》
プロテアーゼとしては、本発明に用いることのできるプロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスを得ることができる限りにおいて、特に限定されるものではないが、例えば食品加工に用いられる種々の酵素を使用することができる。具体的には、Rhizopus sp.、Aspergilus sp.（A. saitoi, A. niger, A.等）等の微生物の産生する酸性プロテアーゼ、Aspergillus sp.（A. oryzae等）、Bacillus sp.（B. subtilis、B. amyloliquefaciens、等）、Geobacillus caldoproteolyticus、等の微生物の産生する中性プロテアーゼ、Bacillus sp.（B. subutilis、B. licheniformis、B. amyloliquefaciens等）、Aspergillus sp.（A. niger、A. oryzae、等）等の微生物の産生するアルカリプロテアーゼ、その他、Streptomyces sp.（Streptomyces griseus等）、Rhizomucor sp.（Rhizomucor miehei、Rhizomucor miehei等）、Kluyveromyces sp.（Kluyveromyces lactis等）等の微生物や、パパイヤ、パイナップル、等の植物の産生するプロテアーゼ、あるいは動物が消化酵素として産生する種々のプロテアーゼ（ペプシン、トリプシン、キモトリプシン、エラスターゼ、コラゲナーゼ、カルボキシペプチダーゼ、アミノペプチダーゼ等）を単独で、もしくは組み合わせて用いることができる。
【００２６】
本発明に用いるプロテアーゼは、得られるプロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスに含まれる分子量５００以下の低分子量成分を十分に得られる限りにおいて、限定されるものではない。
また、プロテアーゼの添加量も、それぞれのプロテアーゼの力価、分解性能に従って、適宜調整することが可能である。具体的には、例えばプロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスに含まれる分子量５００以下の低分子量成分の含有量が、３０重量％以上となるようにプロテアーゼの添加量を調整することができる。
更に、プロテアーゼ処理の温度及び時間も、用いるプロテアーゼの種類、又はプロテアーゼの力価などによって、適宜調整することが可能である。具体的には、例えばプロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスに含まれる分子量５００以下の低分子量成分の含有量が、３０重量％以上となるようにプロテアーゼのプロテアーゼ処理の温度及び時間を調整することができる。例えば、プロテアーゼ処理の温度２５℃〜６５℃で行うことができ、好ましくは３０℃〜６０℃、より好ましくは４０〜５５℃である。また、プロテアーゼ処理の時間も、特に限定されるものではないが、例えば０．５時間〜７２時間で行うことができ、好ましくは１時間〜４８時間、より好ましくは１時間〜２４時間である。
【００２７】
《プロテアーゼ分解抽出プラセンタエキス》
胎盤発酵分解物の不溶性画分（残渣）をプロテアーゼ処理することによって得られるプロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスは、本発明の効果を得られる限りにおいて、特に限定されるものではないが、分子量５００以下の低分子量成分を十分含むことが好ましい。分子量５００以下の低分子量成分の含有量は、特に限定されるものではないが、好ましくは３０重量％以上であり、より好ましくは４０重量％以上であり、更に好ましくは４５重量％以上であり、最も好ましくは５０重量％以上である。低分子量成分が、３０重量％以下であると、プロテアーゼ分解が充分でなく、本発明の効果が得られないことがある。
【００２８】
また、プロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスは、限定されるものではないが、γ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）を含むことが好ましい。胎盤をそのままプロテアーゼで処理した場合は、γ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）の抽出効率は高くないが、胎盤を発酵微生物で発酵させた後の残渣（不溶性画分）をプロテアーゼ処理することにより、γ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）を効率よく抽出することができる。γ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）を含むことにより、本発明の効果を効率的に得ることができる。また、発酵微生物による発酵工程のみでは十分抽出できなかったロイシン、イソロイシン、及び／又はバリンなどの分岐鎖アミノ酸についても、本工程の実施により効果的に抽出でき、本発明の効果を更に効率的に得ることにつながる。
【００２９】
（４）混合工程
混合工程（４）は、前記発酵抽出プラセンタエキスと前記プロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスとを混合し、組成物を得る工程である。前記発酵抽出プラセンタエキスと前記プロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスとを混合することにより、本発明の組成物は、充分な量のγ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）並びにロイシン、イソロイシン、及び／又はバリンなどの分岐鎖アミノ酸を含有することができる。また、分子量１万以上の高分子量成分を十分含むことができる。
混合方法は、本分野において用いられる混合方法を、限定することなく用いることができる。また、必要に応じて、混合する前に、遠心分離又は濾過などによって、不溶物を除去する工程を含むことができる。
【００３０】
《混合比》
前記発酵抽出プラセンタエキスと前記プロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスとの混合比は、本発明の効果が得られる限りにおいて、特に限定されるものではないが、発酵抽出プラセンタエキス及びプロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスの混合比は、好ましくは１：９〜９：１であり、より好ましくは２：８〜８：２であり、更に好ましくは３：７〜７：３であり、最も好ましくは４：６〜６：４である。前記の混合比であることにより、γ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）並びに分子量１万以上の高分子量成分をバランスよく、含むことができる。
【００３１】
《作用》
本発明の製造方法によって得られた発酵抽出プラセンタエキス及びプロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスを含む組成物が、効果的に非アルコール性脂肪性肝疾患を予防又は治療できるメカニズムは、明確に解析されているわけではないが、以下のように推定することができる。しかしながら、本発明は、以下の推定により限定されるものではない。
本発明の製造方法においては、まず胎盤を発酵微生物によって発酵させる。この発酵処理によって得られた発酵抽出プラセンタエキス（胎盤発酵分解物）は、γ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）を多く含んでいる。これらのγ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）が、非アルコール性脂肪性肝疾患に有効に作用しているものと考えられる。一方、従来のプロテアーゼ処理によって得られた抽出物は、γ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）を含んでおらず、本発明の組成物は非アルコール性脂肪性肝疾患に有効であると考えられる。
更に、本発明においては、前記胎盤発酵分解物の残渣を、プロテアーゼ処理することによって得られるプロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスもγ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）を多く含んでいる。前記のように、胎盤を直接プロテアーゼ処理した抽出物が、γ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）を含まないのに対して、本発明のプロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスがγ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）を含むかは、明確ではないが、発酵微生物によって発酵された残渣にＧＡＢＡ及びＯｒｎが含まれており、それをプロテアーゼ処理に用いることによって、効率よくγ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）が抽出されたと考えられる。従って、本発明において、発酵処理工程（１）の後に、プロテアーゼ処理工程（３）を行うことは、重要である。
更に、発酵抽出プラセンタエキスは、分子量１万以上の高分子量成分を含んでいるが、胎盤を直接プロテアーゼ処理した抽出物には、分子量１万以上の高分子量成分が含まれていない。この高分子成分を含むことにより、本発明の顕著な効果が得られるものと考えられる。
また、本発明の製造方法により得られる発酵・プロテアーゼ分解プラセンタエキスには、従来のプロテアーゼ分解プロテアーゼエキスと同等の分岐鎖アミノ酸（ロイシン、イソロイシン、バリン）が含まれており、従来品で期待される抗ＮＡＳＨ作用についても併せて保持していることが期待される。これらのロイシン、イソロイシン、及び／又はバリンなどの分枝鎖アミノ酸は、発酵微生物による発酵処理及びプロテアーゼによる処理行うことにより、効率よく抽出することができる。
なお、本発明の製造方法においては、プロテアーゼ分解により抽出したプラセンタエキスを、微生物を用いた発酵にさらに供することはできない。タンパク質分解酵素により、プロテアーゼ分解により抽出したプラセンタエキス成分の組成が微生物を用いた発酵により変質してしまうからである。
【００３２】
［２］組成物
本発明の組成物は、前記の製造方法によって製造することができるが、前記製造方法によって製造されたものに限定されるものではない。本発明の組成物は、具体的には前記発酵抽出プラセンタエキス及びプロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスを含むことができるが、他の成分を含んでもよい。また、本発明の組成物は、医薬組成物、又は健康食品として用いることができる。医薬組成物としては、非アルコール性脂肪性肝疾患（ＮＡＦＬＤ：Ｎｏｎ−Ａｌｃｏｈｏｌｉｃ  Ｆａｔｔｙ  Ｌｉｖｅｒ  Ｄｉｓｅａｓｅ）に有効であり、特には非アルコール性脂肪肝炎（ＮＡＳＨ：Ｎｏｎ−Ａｌｃｏｈｏｌｉｃ  Ｓｔｅａｔｏｈｅｐａｔｉｔｉｓ）に有効である。
【００３３】
本発明の製造方法により得られる組成物の投与剤型としては、特に限定がなく、例えば、散剤、細粒剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤、懸濁液、エマルジョン剤、シロップ剤、エキス剤、若しくは丸剤等の経口剤、又は注射剤、外用液剤、軟膏剤、坐剤、局所投与のクリーム、若しくは点眼薬などの非経口剤を挙げることができるが、特には経口剤が好ましい。
【００３４】
経口剤は、例えば、ゼラチン、アルギン酸ナトリウム、澱粉、コーンスターチ、白糖、乳糖、ぶどう糖、マンニット、カルボキシメチルセルロース、デキストリン、ポリビニルピロリドン、結晶セルロース、大豆レシチン、ショ糖、脂肪酸エステル、タルク、ステアリン酸マグネシウム、ポリエチレングリコール、ケイ酸マグネシウム、無水ケイ酸、又は合成ケイ酸アルミニウムなどの賦形剤、結合剤、崩壊剤、界面活性剤、滑沢剤、流動性促進剤、希釈剤、保存剤、着色剤、香料、矯味剤、安定化剤、保湿剤、防腐剤、又は酸化防止剤等を用いて、常法に従って製造することができる。
【００３５】
非経口投与方法としては、注射（皮下、静脈内等）、又は直腸投与等が例示される。これらのなかで、注射剤が最も好適に用いられる。
例えば、注射剤の調製においては、有効成分としての前記画分の他に、例えば、生理食塩水若しくはリンゲル液等の水溶性溶剤、植物油若しくは脂肪酸エステル等の非水溶性溶剤、ブドウ糖若しくは塩化ナトリウム等の等張化剤、溶解補助剤、安定化剤、防腐剤、懸濁化剤、又は乳化剤などを任意に用いることができる。
また、本発明による組成物は、徐放性ポリマーなどを用いた徐放性製剤の手法を用いて投与してもよい。例えば、本発明による組成物をエチレンビニル酢酸ポリマーのペレットに取り込ませて、このペレットを治療又は予防すべき組織中に外科的に移植することができる。
【００３６】
《健康食品》
本発明の製造方法により得られる組成物は、種々の形態、例えば、健康食品（好ましくは機能性食品）又は飼料として与えることも可能である。なお、前記食品には飲料が含まれる。
【００３７】
本明細書において「健康食品」とは、健康に何らかの効果を与えるか、あるいは、効果を期待することができる食品を意味し、「機能性食品」とは、前記「健康食品」の中でも、種々の生体調節機能（例えば、消化器系、循環器系、内分泌系、免疫系、又は神経系などの生理系統の調節機能）を充分に発現することができるように設計及び加工された食品を意味する。
本発明の健康食品としては、非アルコール性脂肪肝炎および／または非アルコール性脂肪性肝疾患予防又は治療機能を有するものが好ましい。
【００３８】
本発明の健康食品は、有効成分として、細菌発酵抽出プラセンタエキスとプロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスとを含有すること以外は、一般的な健康食品と同様に調製することができる。例えば、食品として摂取可能な物質に、有効量の前記有効成分を含有させることにより、本発明の健康食品を調製することができる。前記有効量は、食品の形状若しくは種類、又はそれを摂取する個体の症状、年齢、体重等の種々の要因に応じて適宜決定することができる。
【実施例】
【００３９】
以下、実施例によって本発明を具体的に説明するが、これらは本発明の範囲を限定するものではない。
【００４０】
《実施例１：非アルコール性脂肪性肝疾患予防又は治療用組成物の製造》
ブタの正常分娩の際に後産として得られた胎盤約２０ｋｇに酵母（Zygosaccharomyces sp.）及び乳酸菌（Pediococcus sp.）を加え、更にブドウ糖約３００ｇを加えた上で、１日間静置培養し、胎盤発酵分解液を得た。培養上清と残渣を篩過及び遠心分離で分離し、上清はエバポレーターで濃縮後、０．２μｍのフィルターで濾過滅菌し発酵抽出プラセンタエキスを得た（約２．６ｋｇ）。残渣（約４．５ｋｇ）には、等量の水とプロテアーゼ（天野エンザイム製）を添加し、２時間プロテアーゼ分解した。加熱滅菌後篩過したところ、残渣は２７ｇであり、これは仕込みに用いた前工程の残渣４．５ｋｇの約０．５％であった。残渣を取り除いて得たプロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスを、前述の発酵抽出プラセンタエキスと混合し、凍結乾燥することにより、パウダー状の非アルコール性脂肪肝炎および／または非アルコール性脂肪性肝疾患予防用又は治療用組成物を約１．１ｋｇ得た。
なお、発酵抽出プラセンタエキスをそのまま凍結乾燥するとパウダー状組成物約５００ｇが得られたので、発酵工程及びプロテアーゼ分解工程のそれぞれで約５０％ずつプラセンタエキスが抽出されたことになる。すなわち、細菌による発酵工程の後で、残渣をプロテアーゼ分解することにより発酵抽出による特徴と、プロテアーゼ分解による特徴とを併せ持つ抽出物を余すことなく取得することができることが分かった。
【００４１】
《比較例１》
ブタ胎盤約２０ｋｇに、水６．７ｋｇとプロテアーゼ（天野エンザイム製）を加え、５時間反応させた。加熱・滅菌後篩過し、エバポレーターで濃縮後、凍結乾燥することにより、直接プロテアーゼ分解プラセンタエキス、約１．２ｋｇを得た。
【００４２】
《参考例１〜１２及び比較例２》
ブタ胎盤１００ｇまたは５００ｇスケールで、種々の発酵微生物によるエキス抽出を実施した。発酵微生物としては、パン酵母（サッカロマイセス・セルビシエ）（参考例１〜４）、ヨーグルト用乳酸菌類混合物（乳酸菌５種＋酵母１種）（参考例５）、醤油用麹菌（アスペルギルス・ソーヤ種）（参考例６〜９）、醤油用乳酸菌（ペディオコッカス属）（参考例６〜９）、醤油用酵母（ジゴサッカロマイセス属）（参考例６〜９）、ケフィア用種菌（参考例１０〜１２）、である。発酵は菌種により１日または２日実施し、発酵後の抽出液を加熱滅菌後、遠心濾過し、総窒素量測定及び遊離アミノ酸分析に供した。実施例７及び８は、醤油用麹菌で１日培養後に、醤油用乳酸菌及び醤油用酵母で１日培養した。実施例９及び１０は、醤油用麹菌、醤油用乳酸菌、及び醤油用酵母の混合物で1日培養した。また、比較例２は、微生物による培養を行わず、ブタ胎盤から熱湯で抽出を行ったものである。
【００４３】
《分析例１：遊離アミノ酸分析》
実施例１の発酵抽出プラセンタエキス（Ａ）、プロテアーゼ分解抽出プラセンタエキスの凍結乾燥粉末（Ｂ）、（Ａ）及び（Ｂ）を合わせた本発明の組成物（Ｃ）、及び比較例１で得られた胎盤を直接プロテアーゼ分解して得た直接プロテアーゼ分解プラセンタエキスの凍結乾燥粉末（Ｄ）、のそれぞれについて、遊離アミノ酸組成分析を行った。結果を表１に示す。各サンプル０．１ｇを取り、スルホサリチル酸試液を加えて２０ｍＬとし１０分間激しく振り混ぜたのち、室温で４時間放置した。この溶液を２ｍＬ取り、クエン酸リチウム緩衝液（ｐＨ２．９８）を加え２０ｍＬとした後、０．２２μｍのメンブランフィルターで濾過し試料溶液とした。この液５０μＬを用いてアミノ酸自動分析計を用いて測定した。Ａ、Ｂ、Ｃ、及びＤの各サンプルで、遊離アミノ酸量（粉末重量あたり；ｎｍｏｌｅ／ｇ）の分布に極端に大きな違いはないことが分かった。また、本発明の組成物（Ｃ）には直接プロテアーゼ分解プラセンタエキス（Ｄ）に含まれているアミノ酸はすべて含まれていた。逆に、発酵工程を含む（Ａ）、（Ｂ）、及び（Ｃ）においては、（Ｄ）に含まれていないγ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）及びオルニチン（Ｏｒｎ）が検出された。（Ｄ）に多く含まれているアルギニンの量が、（Ａ）、（Ｂ）、及び（Ｃ）のそれぞれにおいて少ないが、これは微生物によるオルニチンの合成のために消費された可能性がある。
【００４４】
【表１】
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【００４５】
参考例１〜１２及び比較例２において得られた種々の発酵微生物を用いて調製したプラセンタエキスについて、遊離アミノ酸分析を実施した。併せてケルダール法による総窒素量の分析も実地した。結果は表２に示した。表２には、遊離アミノ酸の内、ＧＡＢＡ及オルニチン量についても特にピックアップして示した。いずれの発酵菌を使用しても、発酵無に比べて総窒素量及び遊離アミノ酸の合計量が顕著に増加することが分かった。このことから、いずれの菌種を用いても遊離アミノ酸に代表される可溶性のプラセンタエキスが抽出されることが分かる。また、発酵時に炭素源としてグルコースを添加することで、総窒素量及び遊離アミノ酸合計量が増加傾向にあり、特にパン酵母及びケフィア用種菌での検討において、ＧＡＢＡ及び／又はオルニチン量の増加が顕著であった。
【００４６】
【表２】
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【００４７】
《分析例２：分子量分布解析》
上記の本発明の組成物（Ｃ）、及び、発酵抽出プラセンタエキス（Ａ）、発酵残渣のプロテアーゼ分解物（Ｂ）、及び直接プロテアーゼ分解プラセンタエキス（Ｄ）についてゲル濾過ＨＰＬＣの手法を用いて分子量分布を調べた。各サンプルを精製水に約５％の濃度に溶解し、フィルター濾過により不溶物を取り除いた後分析に供した。分子量標準物質としては、チトクロムＣ（分子量１２３２７）、インスリンＢ鎖（分子量３４９６）、Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ（分子量３６０．３２）、Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ（分子量１８９．１７）、Ｇｌｙ（分子量７５．０７）の混合物を用いた（各濃度は、それぞれ０．１９２ｍｇ／ｍＬ、０．２ｍｇ／ｍＬ、０１６８ｍｇ／ｍＬ、０．２８ｍｇ／ｍＬ、及び０．８６ｍｇ／ｍＬ）。試料液は２０μＬ、標準液は１０μＬ打ち込むことでゲル濾過ＨＰＬＣ分析を実施した。測定条件は以下の通りである。
使用機器：Agilent 1100（検出波長=214 nm）
カラム：SuperdexTM Peptide 10/300GL（GEヘルスケアジャパン）
カラム温度：室温
移動相：20 mM リン酸緩衝液pH7.2（250 mM塩化ナトリウム含）
流量：9.5 mL/min
分析時間：45分
分子量は、標準液での保持時間データを用いて作成した校正曲線より求めた。
表３にそれぞれの分子量範囲におけるクロマト面積を示した。遊離アミノ酸の分子量領域に相当する５００以下の領域については、いずれのサンプルも全体の５０％近く、あるいはそれ以上を占めた。この結果は、遊離アミノ酸分析でいずれも同等の遊離アミノ酸が認められることと一致する。（Ａ）においては、５００以下の割合は更に多目だが、恐らくアミノ酸以外にも発酵に伴う低分子を含有しているためであると思われる。一方、分子量５００−１０，０００の領域（オリゴペプチド、ペプチド、低分子タンパク質の分子量に相当する領域）については、発酵抽出エキス（Ａ）よりも、プロテアーゼ分解で得られた画分を含む（Ｂ）、（Ｃ）、及び（Ｄ）の方が多い傾向であった。しかし、分子量が１０，０００より大きい成分（タンパク質領域）については、本発明の組成物（Ｃ）、及び発酵工程を経た成分を含むもの（Ａ）、（Ｂ）の方が、直接プロテアーゼ分解プラセンタエキスの凍結乾燥粉末（Ｄ）よりも多く含まれていることが分かった。この結果は、微生物を用いて直接胎盤からエキスを抽出することにより、胎盤を直接プロテアーゼ分解をすることでは得られない高分子領域の成分を含むプラセンタエキスを製造することができることを示している。このようなプラセンタエキスは、発酵工程とプロテアーゼ分解工程の順番を逆にする方法では得ることができないものである。
【００４８】
【表３】
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【００４９】
《分析例３：発酵分解液のメタボローム解析》
発酵工程で特徴的に産生される低分子成分を明らかにするために、発酵抽出プラセンタエキス（Ａ）と、直接プロテアーゼ分解プラセンタエキス（Ｄ）について、メタボローム解析を実施した。各サンプル１００ｍｇを超純水１０ｍＬに溶解し、メタボローム解析用溶液を調製した。内部標準物質の濃度が１０μＭになるように調製したメタノール溶液４５０μＬに、メタボローム解析用溶液１００μＬを添加して撹拌した。これにのクロロホルム５００μＬ及び超純水１００μＬを加えて撹拌し、遠心分離を行った。遠心分離後、水層を限外ろ過チューブ（Ｍｉｌｉｐｏｒｅ、ウルトラフリーＭＣ  ＰＬＨＣＣ  ＨＭＴ遠心式フィルターユニット  ５ｋＤａ）に４００μＬ×１移し取った。これを遠心し、限外ろ過処理を行った。濾液を乾固させ、再び５０μＬの超純水に溶解して測定に供した。
測定は、キャピラリー電気泳動／飛行時間型質量分析（ＣＥ−ＴＯＦＭＳ）の手法で、カチオンモード及びアニオンモードの両者で分析した。分析条件は以下に示す通りである。
陽イオン性代謝物質（カチオンモード）
装置
Agilent CE-TOFMS system（Agilent Technologies社）
Capillary：Fused silica capillary i.d. 50μm×80 cm
測定条件
Run buffer：Cation Buffer Solution（p/n：H3301-1001）
Rinse buffer：Cation Buffer Solution（p/n：H3301-1001）
Sample injection：Pressure injection 50 mbar, 10sec
CE voltage：Positive, 27 kV
MS ionization：ESI positive
MS capillary voltage：4,000 V
MS scan range：m/z 50-1,000
Sheath liquid：HMT Sheath Liquid（p/n：H3301-1020）
陰イオン性代謝物（アニオンモード）
装置
Agilent CE-TOFMS system（Agilent Technologies社）
Capillary：Fused silica capillary i.d. 50μm×80 cm
測定条件
Run buffer：Anion Buffer Solution（p/n：H3302-1021）
Rinse buffer：Anion Buffer Solution（p/n：H3302-1022）
Sample injection：Pressure injection 50 mbar, 25sec
CE voltage：Positive, 30 kV
MS ionization：ESI negative
MS capillary voltage：3,500 V
MS scan range：m/z 50-1,000
Sheath liquid：HMT Sheath Liquid（p/n：H3301-1020）
ＣＥ−ＴＯＦＭＳで検出されたピークは自動積分ソフトウェアにより自動抽出され、ピーク情報として質量電荷比（ｍ／ｚ）、泳動時間（ｍｉｇｒａｔｉｏｎ  ｔｉｍｅ：ＭＴ）、及びピーク面積が計算された。得られたピーク面積値は、内部標準物質の面積を用いて相対面積値（＝［目的のピークの面積値］／［内部標準物質の面積値×試料量］）に変換された。Ｎａ＋、Ｋ＋等のアダクトイオン、脱水、脱アンモウム等のアーティファクトを精査後、ｍ／ｚ及びＭＴの値を用いて、試料間のピークの照合・整列化を行った。検出されたピークについて、HMT代謝物質データベース（ヒューマンメタボロームテクノロジーズ社のデータベース）との照合を行い、ピークの同定を実施した。本解析の結果、発酵抽出プラセンタエキス（Ａ）において標準物質に対する相対ピーク面積が１以上で、かつ、発酵抽出プラセンタエキス（Ａ）において直接プロテアーゼ分解プラセンタエキス（Ｄ）よりも１０倍以上多く検出された代謝物を表４にまとめた。発酵工程を含めることにより、例えばここに例示される、γ−アミノ酪酸、オルニチン、２−アミノ酪酸、Ｎ−アセチルグルコサミン、コハク酸、乳酸といったプロテアーゼ分解のみでは得ることができない成分を含むプラセンタエキスを調製できることが分かった。発酵抽出プラセンタエキス（Ａ）でのγ−アミノ酪酸及びオルニチンの検出は、遊離アミノ酸分析の結果とも符合する。
【００５０】
【表４】
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【００５１】
《分析例４：胆汁酸結合活性》
（Ａ）の乾燥粉末、及び（Ｄ）の乾燥粉末のそれぞれの胆汁酸結合活性を調べた。
各凍結乾燥粉末各７０ｍｇを１．５ｍＬマイクロチューブ内で１．２５ｍＭタウロコール酸ナトリウム水溶液（１０ｍＭリン酸緩衝液、ｐＨ６．８）１．４ｍＬと混合し、３７℃で２．５時間インキュベートした。インキュベート後、遠心分離（１２，０００ｒｐｍ、１０分間、４℃）を行い、０．２２μｍのフィルターで濾過後、分子量カットオフ１０，０００の遠心式限外ろ過膜にて高分子画分を得た。高分子画分をリン酸緩衝液で３回洗浄後、５００μＬのリン酸緩衝液に再溶解し、残留したタウロコール酸ナトリウムの濃度を、酵素反応法（和光純薬製、胆汁酸テストワコーを使用）により定量した。
結果を表５に示した。プロテーゼのみで製造したプラセンタエキスで処理した際には高分子画分に残った胆汁酸の濃度はコントロールと変わらなかったが、発酵・プロテアーゼ分解プラセンタエキス（Ｄ）においては高分子画分に残る胆汁酸の濃度が有意に高かった。
【００５２】
【表５】
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【００５３】
《分析例５：マウスモデルによるＮＡＳＨ発症抑制活性の評価》
材料及び方法
（材料）
ＮＡＳＨを誘導する特殊飼料である高コレステロール・高脂肪食（以下、ＣＬと略す）を用いた。ＣＬはオリエンタル酵母製（ココアバター４０％、コレステロール１．２５％、コール酸Ｎａ  ０．５％、ＣＲＦ−１  ５８．２５％）で、これをベースに、本発明の組成物を０．１％又は０．３％を混合し、固形化して作成した。
【００５４】
（動物試験デザイン）
雄性７週齢Ｃ５７ＢＬ／６Ｌマウス（日本ＳＬＣ）を１週間馴化させた後、通常食群（ＮＣ、ｎ＝８）、ＣＬ食群（ＣＬ、ｎ＝１０）、ＣＬ食＋０．１％プラセンタエキス（ＣＬ＋Ｌ−ＰＬ、ｎ＝８）、ＣＬ食＋０．３％プラセンタエキス（ＣＬ＋Ｈ−ＰＬ、ｎ＝８）の４群に分け、それぞれの飼料を１２週間、経口自由摂取させた。
【００５５】
（評価項目）
体重（飼料摂取１２週後まで）、飼料摂取量（最初の８日間）を測定した。飼料摂取１２週後に安楽死させたのち、血液（血漿）、肝臓組織を採取した。各試料を用いて以下の項目の測定を行った。
血漿：肝機能（アラニンアミノ基転移酵素（ＡＬＴ）、アスパラギン酸アミノ基転移酵素（ＡＳＴ）。
肝臓組織：脂質（トリグリセリド（ＴＧ）、総コレステロール（ＴＣ）、非エステル化脂肪酸（ＮＥＦＡｓ））、各種遺伝子発現（リアルタイムＰＣＲ法にて測定；使用したプライマーは表６に示した）。
【００５６】
【表６】
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【００５７】
（統計解析）
実験群間の比較は、ｔ検定で実施した。
【００５８】
結果
（体重推移及び摂餌量）
図１及び図２に、それぞれ体重の推移と一日当たりの平均摂餌量を示した。体重変化については、ＣＬ摂取群はＦＰプラセンタエキス配合の如何に係らず、ＮＣ摂取群に比して体重増加が遅い傾向があったが、ＣＬ摂取の各群間で大きな違いは認められなかった。
【００５９】
平均摂餌量については、ＮＣ群よりもＣＬ群の方が有意に少なかった。そこにＦＰプラセンタエキスを配合することにより、減少した摂餌量が増加する傾向であった。以上の結果は、摂餌量の変化（いわゆる食べ過ぎ）によって、以下述べる脂肪肝状態及び脂肪肝炎状態の発症を説明することができないことを示している。
【００６０】
（血漿を用いたＡＳＴ及びＡＬＴの測定）
各種の餌を１２週間摂取させたのちの血液中のＡＳＴ及びＡＬＴを測定した結果を図３に示す。ＡＳＴ、ＡＬＴともにＣＬ群においてＮＣ群に比して有意に増加しており、肝炎症状が引き起こされたことが分かる。しかし、このような変化はＦＰプラセンタエキスをＣＬに配合することにより用量依存的に改善した。
【００６１】
（肝臓の脂肪状態）
各種の餌を１２週間摂取させたのちに肝臓を取りだし、組織中のトリグリセリド（ＴＧ）、総コレステロール（ＴＣ）、及び非エステル化脂肪酸（ＮＥＦＡ）の量を測定した。結果を図４に示した。また、各群の代表的な肝臓表面の像及びヘマトキシリン／エオシン染色した組織切片像を図５に示した。
【００６２】
図４に示されるように、ＣＬ群においてはＮＣ群に比して、肝臓組織中のＴＧ、ＴＣ、及びＮＥＦＡのいずれも著明に増加することが分かった。しかし、ＣＬ中にＦＰプラセンタエキスを配合することによって、用量依存的にこれらの増加が改善した。
【００６３】
図５の上段に示されるように、上記結果は、肝臓の外観像からも見て取れた。ＮＣ群においてはきれいな赤い肝臓表面の色を呈しているが、ＣＬ群においては脂肪肝状態を反映して著明に白っぽい色を呈する。しかし、ＣＬにＦＰプラセンタエキスを配合するとこの白味が薄らぎ、０．３％配合群ではほぼＮＣ群と同様の赤みを呈した。
これらの変化は、肝臓組織切片の顕微鏡による観察からも確認された（図５、下段）。肝臓組織を切り出し、切片作製後、ヘマトキシリン・エオシン染色を行い検鏡した結果、ＮＣ群においては脂肪組織を反映する白い空隙はほとんど観察されなかったのに対し、ＣＬ群においては、多くの白い空隙が観察された。しかし、ＣＬにＦＰプラセンタエキスを配合することにより、この空隙は激減した。
【００６４】
（肝臓における各種遺伝子発現の変化）
各種餌を１２週間摂取させた後に肝臓を取りだし、組織中の各種遺伝子発現をリアルタイムＰＣＲ法により調べた。脂質合成及びトリグリセリド合成に係る遺伝子発現の結果を図６に、脂肪酸の代謝に関わる遺伝子発現の結果を図７に、炎症性サイトカインの遺伝子発現の結果を図８に、それぞれ示した。
【００６５】
ＣＬ群においては、脂質及びトリグリセリド合成に関わる遺伝子の内、ＳＲＥＢＰ−１ｃ及びＳＣＤ１の発現は有意に上昇し、ＦＡＳについても上昇傾向であった（図６）。しかし、ＣＬにＦＰプラセンタエキスを配合することにより、用量依存的にこれらの発現が低下する傾向であった。一方、脂肪の代謝に関わる遺伝子であるＰＰＡＲα及びＣｐｔ１については逆にＣＬ群においてＮＣ群に比して有意に発現が低下した（図７）。しかし、この低下はＣＬにＦＰプラセンタエキスを配合することにより、用量依存的に回復した。更に、肝炎の指標として測定した炎症性サイトカイン遺伝子（Ｆ４／８０、ＴＮＦα、ＩＬ−１β、及びＣＤ１１ｃ）の発現については、ＣＬ群においていずれも発現上昇していることが分かった（図８）。しかし、これらの発現上昇も、ＣＬにＦＰプラセンタエキスを配合することにより、用量依存的に低下した。
【００６６】
以上の結果は、高コレステロール餌（ＣＬ）によりＮＡＳＨ状態が惹起されること、及びそのＮＡＳＨ状態がＣＬにＦＰプラセンタエキスを配合することで顕著に、用量依存的に改善することを示している。すなわち、ＦＰプラセンタは経口摂取によりＮＡＳＨの発症を予防する効果を発揮することが示唆された。
【産業上の利用可能性】
【００６７】
本発明の製造方法により製造される組成物は、非アルコール性脂肪肝炎および／または非アルコール性脂肪性肝疾患予防用又は治療に有効である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【配列表】
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