(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
検査対象物に付着した蛋白質を検出定量する方法であって、
界面活性剤を含む抽出液に前記検査対象物を浸漬させた状態で前記検査対象物に超音波照射を施して蛋白質抽出液を得る蛋白質抽出工程と、
前記蛋白質抽出液をビシンコニン酸及び銅（ＩＩ）を含む蛋白質検出液に接触させ、得られた接触液の吸光度を測定する蛋白質検出定量工程と、
を有する、蛋白質の検出定量方法。
【請求項２】
前記検査対象物が使用後に洗浄を行った器具である、請求項１に記載の蛋白質の検出定量方法。
【請求項３】
前記界面活性剤がアニオン界面活性剤、ノニオン界面活性剤、及び両性界面活性剤からなる群より選択される少なくとも一種である、請求項１又は２に記載の蛋白質の検出定量方法。
【請求項４】
前記界面活性剤の濃度が前記抽出液１００質量％中、０．０１〜１０質量％である、請求項１〜３のいずれか一項に記載の蛋白質の検出定量方法。
【請求項５】
前記蛋白質抽出工程において、物理的刺激操作を施す際の抽出液の温度が２０〜７０℃である、請求項１〜４のいずれか一項に記載の蛋白質の検出定量方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、蛋白質の検出定量方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年、院内感染の問題が大きくなってきており、感染リスクを低減させることが医療機関においての必須課題となっている。
一般的に医療器具は高価であるため、可能な限り洗浄リサイクルが行われる。感染因子となる細菌やウイルスが存在している可能性のある血液、体液、組織片等の蛋白質汚れが付着した医療器具は、通常、感染リスクを低減させるため、洗浄（第１工程）と消毒（第２工程）の２工程を経て洗浄リサイクルが行われる。
【０００３】
洗浄（第１工程）の方法には、浸漬洗浄、用手洗浄、及び超音波洗浄機やウォッシャーディスインフェクター等による機械洗浄などがある。また、内視鏡スコープのような医療器具の構造に応じた内視鏡専用洗浄機等も使用されている。
しかし、上記のような洗浄を行っても、医療器具に血液や体液、あるいは組織片等の蛋白質汚れが残存している場合がある。その場合、消毒（第２工程）の効果が十分に発揮されず感染の可能性が高くなる。このため洗浄後の医療器具の清浄度を確認する必要がある。
【０００４】
洗浄後の医療器具の清浄度を確認する方法として、例えば特許文献１には、アルカリ性溶液に医療器具を浸漬して、蛋白質を抽出する工程と、この蛋白質抽出工程で得られた抽出液と、蛋白質染色剤とを接触させる工程とを有する蛋白質の検出方法が開示されている。この検出方法では、アルカリ性溶液として水酸化ナトリウム及び／又は水酸化カリウムの溶液を用い、アルカリ性水溶液の濃度が０．０５〜２Ｎであり、蛋白質抽出工程が２５〜９０℃において行われ、蛋白質染色剤としてクーマシーブリリアントブルーＧ−２５０を用いている。
【０００５】
特許文献２には、医療器具を純水、あるいは濃度が２０ｍＭ以下のアルカリ性溶液である抽出液に浸漬させるとともに、超音波を照射して蛋白質を抽出する工程と、超音波照射によって得た蛋白質抽出液と蛍光試薬とを反応させる反応工程と、反応させた溶液に励起光を照射して蛍光量を測定する蛍光測定工程と、前記蛍光測定工程にて測定された蛍光量に基づいて、前記蛋白質抽出液の濃度を算出する定量工程とを有する蛋白質の検出方法が開示されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】特開２００６−１４５２７１号公報
【特許文献２】特開２０１２−６３２９８号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
しかしながら、特許文献１に記載の方法の場合、アルカリ性溶液は蛋白質汚れの抽出力が弱く、またアルカリ性溶液は残留蛋白質の変性を引き起こし医療器具への強固な付着を促進するため、蛋白質汚れを更に抽出しにくくしたり、医療器具を腐食したりするなどの問題があった。また物理的刺激を与えない浸漬方法では抽出力が弱いという問題があった。更に蛋白質染色剤のクーマシーブリリアントブルーＧ−２５０は蛋白質の種類によって着色に差が生じるため、蛋白質汚れ中の蛋白質の種類や割合が異なると着色程度が異なり、蛋白質量を正確に測定できないという問題があった。またクーマシーブリリアントブルーＧ−２５０の着色は界面活性剤の影響を受けやすく、抽出液中に界面活性剤が含まれると正確な検出量が測定できない。そのため、蛋白質の抽出に有効な界面活性剤を抽出液に配合しにくいという問題があった。
【０００８】
特許文献２に記載の方法の場合、純水あるいはアルカリ性溶液は浸透作用性や分散作用性が弱く、またアルカリ性溶液は残留蛋白質の変性を引き起こし医療器具への強固な付着を促進するため、蛋白質汚れを更に抽出しにくいという問題があった。またアルカリ性溶液は器具を腐食するという問題もあった。更に特許文献２に記載された蛍光試薬を使った検出方法は、定量範囲が極端に狭いことから抽出液の蛋白質量を定量範囲内に入るよう希釈等の煩雑な操作が必要になるという問題があった。更にアルカリ性物質を含め蛋白質以外の物質が前記蛍光試薬と反応することがあり、正確に蛋白質量を測定できないという問題があった。
【０００９】
本発明は上記事情に鑑みてなされたもので、検査対象物に付着している蛋白質を十分に抽出し、抽出した蛋白質を簡便に、かつ正確に検出定量する方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明は以下の態様を有する。
［１］  検査対象物に付着した蛋白質を検出定量する方法であって、前記検査対象物に界面活性剤を含む抽出液を接触させるとともに、物理的刺激操作を施して蛋白質抽出液を得る蛋白質抽出工程と、前記蛋白質抽出液をビシンコニン酸及び銅（II）を含む蛋白質検出液に接触させ、得られた接触液の吸光度を測定する蛋白質検出定量工程と、を有する、蛋白質の検出定量方法。
［２］  前記物理的刺激操作が超音波照射である、［１］に記載の蛋白質の検出定量方法。
［３］  前記検査対象物が使用後に洗浄を行った器具である、［１］又は［２］に記載の蛋白質の検出定量方法。
［４］  前記界面活性剤がアニオン界面活性剤、ノニオン界面活性剤、及び両性界面活性剤からなる群より選択される少なくとも一種である、［１］〜［３］のいずれか１つに記載の蛋白質の検出定量方法。
［５］  前記界面活性剤の濃度が前記抽出液１００質量％中、０．０１〜１０質量％である、［１］〜［４］のいずれか１つに記載の蛋白質の検出定量方法。
［６］  前記蛋白質抽出工程において、物理的刺激操作を施す際の抽出液の温度が２０〜７０℃である、［１］〜［５］のいずれか１つに記載の蛋白質の検出定量方法。
【発明の効果】
【００１１】
本発明の蛋白質の検出定量方法によれば、検査対象物に付着している蛋白質を十分に抽出し、抽出した蛋白質を簡便に、かつ正確に検出定量できる。
【図面の簡単な説明】
【００１２】
【図１】スライドグラス表面に擬似蛋白質汚染液を塗布した状態を示す平面図である。
【図２】実施例で用いた評価用器具を示す正面図である。
【発明を実施するための形態】
【００１３】
以下、本発明を詳細に説明する。
本発明の蛋白質の検出定量方法は、検査対象物に付着した蛋白質を検出定量する方法であって、以下に示す蛋白質抽出工程と、蛋白質検出定量工程とを有する。
【００１４】
＜検査対象物＞
検査対象物としては、蛋白質が付着している可能性があるものであれば特に限定されないが、器具、ベッド、机、壁、扉、ドアノブ、窓、床などが挙げられる。
器具としては、例えば、手術、検査、治療等に使用される医療用器具、食品の製造や加工に使用される食品用器具、及び使用後に洗浄を行った前記の器具、あるいは洗浄と消毒を行った前記の器具が挙げられる。これらの中でも、使用後に洗浄を行った器具が再利用可能か否か確認する、あるいは器具の洗浄方法の適正さを確認する、という観点から、使用後に洗浄、あるいは洗浄と消毒を行った器具が好適である。
医療用器具としては、具体的には、鑷子、鉗子、剪刀、吸引管、内視鏡、カテーテル、注射針等が挙げられる。
【００１５】
＜蛋白質抽出工程＞
蛋白質抽出工程は、検査対象物に界面活性剤を含む抽出液を接触させるとともに、物理的刺激操作を施して蛋白質抽出液を得る工程である。
検査対象物が器具の場合、蛋白質抽出工程は、例えば、器具を抽出用の容器に設置した後、器具の全体、あるいは器具の蛋白質付着部分に対し漏れなく接触できる量の抽出液を加え、それに物理的刺激を与えることで行うことができる。
【００１６】
蛋白質抽出工程で使用する抽出用の容器としては特に限定されず、検出対象となる器具の形状、大きさ等に応じて成型された専用の容器を用いてもよいし、器具の形状、大きさ等に関係なく器具の全体、あるいは器具の蛋白質付着部が収納できる、箱状、管状、袋状等の容器を用いてもよい。抽出液の使用量を少なくすることが可能となり、その結果抽出される蛋白質の濃度を濃くすることができ、微量な蛋白質量も検出可能となる観点から、抽出用の容器としては、器具の形状、大きさ等に応じて成型された専用の容器を用いることが好ましい。
抽出用の容器の材質としては特に限定されるものではないが、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリエステル、ナイロン、ポリ塩化ビニル、ガラス、金属類等が挙げられる。
【００１７】
検査対象物がベッドや壁など、抽出用の容器に設置することが困難である場合、蛋白質抽出工程は、例えば抽出液を含んだ綿棒あるいは市販のスワブ製品等の拭き取り器具で、物理的刺激として検査対象物表面の拭き取り操作を行い、拭き取りを終えた拭き取り器具を該拭き取り器具全体が接触できる量の抽出液が入った抽出用の容器に設置し、抽出用の容器を揉むなどして行うことができる。
【００１８】
蛋白質抽出工程で使用する抽出液は、界面活性剤を含む。
従来、抽出液としては水やアルカリ性溶液を用いていた。しかし、水やアルカリ性溶液は浸透作用性や分散作用性等が弱く、またアルカリ性溶液は蛋白質の変性を引き起こすため、水やアルカリ性溶液は機械洗浄等を行った後に残留する強固な蛋白質汚れを抽出するには不十分であった。
一方、界面活性剤は、高い湿潤力、分散力、浸透力等を有し、機械洗浄等を行った後に残留する強固な蛋白質汚れを抽出するにも有効である。
【００１９】
界面活性剤としては、特に蛋白質汚れに対して強い洗浄性を有し、検査対象物に対して腐食の影響を与えにくいものであれば特に限定されず、アニオン界面活性剤、カチオン界面活性剤、ノニオン界面活性剤、両性界面活性剤が挙げられる。これらは１種又は２種以上を使用することができる。これらの中でも、蛋白質の抽出効率が高く、検査対象物を腐食しにくい観点から、アニオン界面活性剤、ノニオン界面活性剤、両性界面活性剤が好ましく、アニオン界面活性剤、ノニオン界面活性剤がより好ましい。
【００２０】
アニオン界面活性剤としては特に限定はなく、例えば、炭素数１０〜２２の石鹸、炭素数１４〜２４のアルキルベンゼンスルホン酸塩、炭素数１０〜２２の高級アルコール硫酸エステル塩、アルキル基の炭素数１０〜２２でありポリオキシエチレン基のオキシエチレン単位の繰り返し数が１〜１０のポリオキシエチレンアルキルエーテル硫酸塩、炭素数１０〜２２のα−スルホ脂肪酸エステル、炭素数８〜１８のα−オレフィンスルホン酸塩、炭素数１０〜２２のアルカンスルホン酸塩、炭素数１０〜２２のモノアルキルリン酸エステル塩等が挙げられる。これらの中でも、蛋白質の抽出効率が高く、検査対象物を腐食しにくい観点から、炭素数１０〜２２の石鹸、炭素数１４〜２４のアルキルベンゼンスルホン酸塩、炭素数１０〜２２の高級アルコール硫酸エステル塩、アルキル基の炭素数１０〜２２でありポリオキシエチレン基のオキシエチレン単位の繰り返し数が１〜１０のポリオキシエチレンアルキルエーテル硫酸塩、炭素数８〜１８のα−オレフィンスルホン酸塩、炭素数１０〜２２のアルカンスルホン酸塩が好ましく、炭素数１０〜２２の高級アルコール硫酸エステル塩、炭素数８〜１８のα−オレフィンスルホン酸塩、炭素数１０〜２２のアルカンスルホン酸塩がより好ましく、炭素数１０〜２２の高級アルコール硫酸エステル塩が特に好ましい。これらは１種又は２種以上を使用することができる。
【００２１】
両性界面活性剤としては特に限定はなく、例えば、アルキルアミノ脂肪酸塩、アルキルベタイン、アルキルアミンオキシド等が挙げられる。これらは１種又は２種以上を使用することができる。
【００２２】
ノニオン界面活性剤としては特に限定はなく、例えば、高級アルコールアルキレンオキサイド付加物、アルキルフェノールアルキレンオキサイド付加物、脂肪酸アルキレンオキサイド付加物、多価アルコール脂肪酸エステルアルキレンオキサイド付加物、高級アルキルアミンアルキレンオキサイド付加物、脂肪酸アミドアルキレンオキサイド付加物、ポリオキシプロピレンのアルキレンオキサイド付加物のポリアルキレングリコール型；グリセロール脂肪酸エステル、ペンタエリスリトール脂肪酸エステル、ソルビトール脂肪酸エステル、ショ糖脂肪酸エステルの多価アルコール型等が挙げられる。ここで述べた高級アルコールは通常炭素数８〜２２の直鎖又は分岐の不飽和又は飽和の高級アルコールである。また、アルキルフェノールは通常炭素数６〜２２の直鎖又は分岐の不飽和又は飽和のアルキルフェノールである。また、脂肪酸は通常炭素数１０〜２２の不飽和又は飽和の脂肪酸である。また、多価アルコールは通常炭素数３〜１２の多価アルコールである。また、高級アルキルアミンは通常炭素数８〜２２の直鎖又は分岐の不飽和又は飽和の高級アルキルアミンである。アルキレンオキサイドは、具体的には、エチレンオキサイド、プロピレンオキサイド、１，２−、２，３−、１，３−および１，４−ブチレンオキサイドなどが挙げられ、エチレンオキサイド、プロピレンオキサイドが好ましい。また、アルキレンオキサイドは同一であっても異なっていてもよく、異なっている場合は、ブロック付加でもランダム付加でも交互付加でも構わない。アルキレンオキサイドの付加モル数は１〜８０が好ましく、２〜６０がより好ましく、５〜４０が特に好ましい。これらの中でも、蛋白質の抽出効率が高く、検査対象物を腐食しにくい観点から、高級アルコールアルキレンオキサイド付加物、アルキルフェノールアルキレンオキサイド付加物、脂肪酸アルキレンオキサイド付加物、多価アルコール脂肪酸エステルアルキレンオキサイド付加物、高級アルキルアミンアルキレンオキサイド付加物、脂肪酸アミドアルキレンオキサイド付加物、ポリオキシプロピレンのアルキレンオキサイド付加物のポリアルキレングリコール型；グリセロール脂肪酸エステルが好ましく、高級アルコールアルキレンオキサイド付加物、アルキルフェノールアルキレンオキサイド付加物、脂肪酸アルキレンオキサイド付加物、多価アルコール脂肪酸エステルアルキレンオキサイド付加物、高級アルキルアミンアルキレンオキサイド付加物、脂肪酸アミドアルキレンオキサイド付加物がより好ましい。これらは１種又は２種以上を使用することができる。
【００２３】
界面活性剤の濃度は、蛋白質の抽出効率が高まり、経済的でもある観点から、抽出液１００質量％中、０．０１〜１０質量％が好ましく、０．０５〜５質量％がより好ましい。
【００２４】
界面活性剤を希釈する溶媒としては、水が好ましく、具体的には、水道水、イオン交換水、蒸留水、ＲＯ水等が挙げられる。これらは１種又は２種以上を使用することができる。
【００２５】
抽出液の使用量は、検出対象となる検査対象物の大きさ、表面積、使用状況等に応じて調節すればよく、特に限定されるものではない。
【００２６】
蛋白質抽出工程での物理的刺激操作としては特に限定されないが、超音波照射、手あるいは機械による振とう、ブラッシング、拭き取り等が挙げられる。これらの中でも、弾性振動波による物理的刺激効果による抽出効率向上の観点から、超音波照射が好ましい。
超音波照射する際の作動周波数は特に限定されるものではないが、蛋白質の抽出効率が高まる観点から、２０〜１０００ｋＨｚが好ましく、２０〜１００ｋＨｚがより好ましい。
超音波照射装置としては特に限定されるものではないが、ホーン型、定在波型等が挙げられる。
【００２７】
物理的刺激操作を施す際の抽出液の温度は、蛋白質の抽出効率が高まる観点から、２０〜７０℃が好ましく、３０〜６０℃がより好ましい。
また、物理的刺激操作の時間は特に限定されるものではないが、蛋白質の抽出効率が高まり、経済的でもある観点から、１〜１２０分間が好ましく、５〜６０分間がより好ましい。
【００２８】
＜蛋白質検出定量工程＞
蛋白質検出定量工程は、蛋白質抽出工程で得られた蛋白質抽出液をビシンコニン酸及び銅（II）を含む蛋白質検出液に接触させ、得られた接触液の吸光度を測定する工程である。
以下、ビシンコニン酸及び銅（II）を含む蛋白質検出液を用いた蛋白質検出定量法を、「ＢＣＡ法」という。
【００２９】
ＢＣＡ法は、アルカリ環境下で蛋白質が銅（II）を銅（Ｉ）に還元し、その銅（Ｉ）とビシンコニン酸が最大吸収波長５６２ｎｍの青紫色に発色する錯体を形成することを利用している。この一連の反応は、蛋白質抽出液と蛋白質検出液とを、例えば３０〜７０℃で１０〜６０分間接触することで完結するため非常に簡便である。
また、ＢＣＡ法は、界面活性剤の種類や濃度、アルカリの種類や濃度、及び蛋白質の種類の影響を受けにくく、正確に蛋白質量を測定できるという利点を有する。
【００３０】
接触液の吸光度の測定には分光光度計を用い、銅（Ｉ）とビシンコニン酸が錯体を形成して発色する青紫色の最大吸収波長５６２ｎｍにて測定する。そして、吸光度の測定結果に基づき、蛋白質量を定量する。
吸光度測定による蛋白質量の定量は、既知の濃度の蛋白質溶液に対する吸光度を用いて予め作成した検量線あるいは相関数式等を用いることにより、蛋白質量を定量するものである。蛋白質抽出液と蛋白質検出液との接触液の吸光度の値を、前記検量線あるいは相関数式に代入して蛋白質量を算出することができる。
前記検量線あるいは相関数式は、洗浄後の検査対象物に残った微量の蛋白質を検出定量することが可能であるように作成することが好ましく、蛋白質濃度が０〜２００μｇ／ｍＬの蛋白質溶液を使用して検量線あるいは相関数式を作成することが好ましい。こうして、検査対象物に付着している蛋白質を簡便に検出定量することができる。
【００３１】
なお、蛋白質抽出工程で得られた蛋白質抽出液は、使用する検量線あるいは相関数式の範囲に入るように、予め希釈や濃縮を行って蛋白質濃度を適宜調整してもよい。
【００３２】
また、ビシンコニン酸及び銅（II）を含む蛋白質検出液としては、安定性に優れる観点から、ビシンコニン酸を含むアルカリ性溶液と、銅（II）を含む溶液の２液型の蛋白質検出液を用いることが好ましい。２液型の蛋白質検出液の具体例としては、表１に示すビシンコニン酸を含む試薬Ａ溶液と、表２に示す銅（II）を含む試薬Ｂ溶液の２液型が挙げられる。
【００３３】
【表１】
0006507445.tif 000002
【００３４】
【表２】
0006507445.tif 000003
【００３５】
なお、ビシンコニン酸及び銅（II）を含む蛋白質検出液としては、市販のＢＣＡ法用蛋白質検出試薬を用いることができる。例えば、試薬Ａ溶液としてはサーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製のＰｉｅｒｃｅプロテオミクス関連製品「ＢＣＡ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ａｓｓａｙ Ｒｅａｇｅｎｔ Ａ」等が挙げられ、試薬Ｂ溶液としてはサーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製のＰｉｅｒｃｅプロテオミクス関連製品「ＢＣＡ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ａｓｓａｙ Ｒｅａｇｅｎｔ Ｂ」等が挙げられる。
【００３６】
＜作用効果＞
以上説明した本発明の蛋白質の検出定量方法は、界面活性剤を含む抽出液を用い、物理的刺激操作により検査対象物に付着した蛋白質を抽出し、これをＢＣＡ法により検出定量するので、検査対象物に付着している蛋白質を十分に抽出し、抽出した蛋白質を簡便に、かつ正確に検出定量できる。
【００３７】
なお、本発明においては、検査対象物に付着した蛋白質を検出定量する場合において、前記抽出液と前記蛋白質検出液とを備えた検出定量キットとして供給することもできる。また、この検出定量キットには、蛋白質の抽出で用いる特定の容器、比色管、吸光度測定用の簡易分光光度計等の検出定量器具が備えられていてもよい。
【実施例】
【００３８】
以下に、実施例及び比較例を挙げて本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は以下の実施例により限定されるものではない。
【００３９】
＜評価用器具の作製＞
ヘパリン添加羊血液（株式会社日本バイオテスト研究所製）と、イオン交換水にて濃度１質量％に調整した硫酸プロタミン（ナカライテスク株式会社製）溶液とを、ヘパリン添加羊血液：硫酸プロタミン溶液＝１０：１（体積比）となるように混合し、模擬蛋白質汚染液を調製した。
【００４０】
図１に示すように、スライドグラス（縦７６ｍｍ×横２５ｍｍ×厚さ１．３ｍｍ）１１の表面に、一方の端部から５ｍｍの隙間をあけて模擬蛋白質汚染液Ｘ５０μＬを２５ｍｍ×２５ｍｍになるようにして塗布し、室温で２４時間乾燥して擬似蛋白質汚染物が固着したスライドグラスを得た。
ついで、図２に示すように、スライドグラス１１の模擬蛋白質汚染液Ｘが塗布された側の表面かつ他方の端部側にステンレス板（縦５ｍｍ×横２５ｍｍ×厚さ１ｍｍ）１２を置き、その上から擬似蛋白質汚染液を塗布していないスライドグラス１３を載せた後、スライドグラス１１、１３の両端をクリップ１４で挟んで固定し、評価用器具１０を得た。
なお、ＢＣＡ法にて測定したところ、擬似蛋白質汚染液５０μＬ中には８３５０μｇの蛋白質が含まれていた。
【００４１】
＜ＢＣＡ法用の検量線の作成＞
牛血清アルブミン溶液（サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製）をイオン交換水で適宜希釈し各蛋白質濃度（０、０．２５、０．５、１、５、５０、１００、１５０、２００μｇ／ｍＬ）の希釈液を得た。
表１に示す試薬Ａ溶液５０ｍＬと、表２に示す試薬Ｂ溶液１ｍＬとを混合した蛋白質検出液２ｍＬに、先に調製した各希釈液１ｍＬを添加して攪拌した後、６０℃で３０分間反応させ、１５℃で５分間放置して各接触液を得た。得られた各接触液の５６２ｎｍにおける吸光度を分光光度計（株式会社パーキンエルマージャパン製、「Ｌａｍｂｄａ６５０Ｓ」）にて測定し、各希釈液中の蛋白質濃度に対する各吸光度をプロットし、ＢＣＡ法用の検量線を作成した。なお、蛋白質濃度０．２５、０．５、１、５、５０、１００、１５０、２００μｇ／ｍＬの吸光度は直線状に得られた。
【００４２】
＜ＣＢＢ法用の検量線の作成＞
牛血清アルブミン溶液（サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製）をイオン交換水で適宜希釈し各蛋白質濃度（０、０．２５、０．５、１、２．５、５、２５μｇ／ｍＬ）の希釈液を得た。
Ｃｏｏｍａｓｓｉｅ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ａｓｓａｙ Ｒｅａｇｅｎｔ（ＣＢＢ試薬（サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製））３ｍＬに、先に調製した各希釈液１ｍＬを添加して攪拌した後、２５℃で２０分間放置して各接触液を得た。得られた各接触液の５９５ｎｍにおける吸光度を分光光度計（株式会社パーキンエルマージャパン製、「Ｌａｍｂｄａ６５０Ｓ」）にて測定し、各希釈液中の蛋白質濃度に対する各吸光度をプロットし、ＣＢＢ法用の検量線を作成した。なお、蛋白質濃度０、０．２５、０．５、１、２．５、５、２５μｇ／ｍＬの吸光度は直線状に得られた。
【００４３】
「実施例１」
イオン交換水にドデシル硫酸ナトリウムを濃度が０．１質量％になるように溶解させ、抽出液を調製した。
別途、表１に示す試薬Ａ溶液５０ｍＬと、表２に示す試薬Ｂ溶液１ｍＬとを混合し、蛋白質検出液を調製した。
【００４４】
２００ｍＬビーカーに抽出液を１００ｍＬ入れ、そこに評価用器具を浸漬させ、超音波洗浄機（アズワン株式会社製、「ＡＳＵ−１０」）にて温度５０℃で１０分間超音波照射を行い、評価用器具に固着した擬似蛋白質汚染物を抽出して蛋白質抽出液を得た。
得られた蛋白質抽出液１ｍＬ（蛋白質抽出液に含まれる蛋白質量が２００μｇ／ｍＬ以上の場合はイオン交換水で２００μｇ／ｍＬ以下となるよう希釈した。）に蛋白質検出液２ｍＬを加えて攪拌した後、６０℃で３０分間反応させ、更に１５℃で５分間放置して接触液を得た。
得られた接触液の５６２ｎｍにおける吸光度を分光光度計（株式会社パーキンエルマージャパン製、「Ｌａｍｂｄａ６５０Ｓ」）にて測定し、ＢＣＡ法用の検量線の数式に代入して抽出蛋白質量を算出した。また、下記式より抽出率を求めた。これらの結果を表３に示す。
抽出率（％）＝１００−［８３５０（μｇ）−抽出蛋白質量（μｇ）］×１００／８３５０（μｇ）
【００４５】
「実施例２〜１２、比較例１〜３」
表３〜５に示す組成の抽出液を用いた以外は、実施例１と同様の処理を行った。結果を表３〜５に示す。
【００４６】
「比較例４〜８」
表６に示す組成の抽出液を用い、該抽出液１００ｍＬが入った２００ｍＬビーカーに評価用器具を浸漬し、温度５０℃で１０分間放置し、評価用器具に固着した擬似蛋白質汚染物を抽出して蛋白質抽出液を得た。
得られた蛋白質抽出液の蛋白質検出は実施例１と同様の処理を行った。結果を表６に示す。
【００４７】
【表３】
0006507445.tif 000004
【００４８】
【表４】
0006507445.tif 000005
【００４９】
【表５】
0006507445.tif 000006
【００５０】
【表６】
0006507445.tif 000007
【００５１】
表３〜６中におけるイオン交換水の「残部」とは、抽出液の総量を１００質量％とするのに必要とした量のことである。
また、表３〜６中の略号は以下の通りである。
・活性剤１：ポリオキシエチレン（６モル）ポリオキシプロピレン（２．５モル）モノアルキル（Ｃ１２−１３）エーテル
・活性剤２：ポリオキシエチレン（８．５モル）ポリオキシプロピレン（２．５モル）モノアルキル（Ｃ１２−１３）エーテル
・活性剤３：ポリオキシエチレン（１４モル）ポリオキシプロピレン（２．５モル）モノアルキル（Ｃ１２−１３）エーテル
・活性剤４：ポリオキシアルキレン（９モル）アルキル（Ｃ１０−１６モル）エーテル
・活性剤５：ポリオキシエチレン（１１モル）牛脂硬化アルキルアミン
・活性剤６：ポリオキシエチレン（２０モル）ソルビタンモノラウレート
・活性剤７：ポリオキシエチレン（１０モル）オクチルフェニルエーテル
・活性剤８：３―［（３―コラミドプロピル）ジメチルアンモニオ］―１―プロパンスルホナート
・活性剤９：ドデシルジメチル（３−スルホプロピル）アンモニウムヒロドキシド分子内塩
【００５２】
表３〜６から明らかなように、界面活性剤を含む抽出液を用い、超音波照射して蛋白質を抽出した各実施例の場合、抽出効率が高く抽出率はすべて９８％以上であった。
一方、抽出液としてイオン交換水又は水酸化ナトリウム水溶液を用い、超音波照射して蛋白質を抽出した比較例１〜３の場合、各実施例に比べて蛋白質の抽出率が低く、９５％以下であった。
界面活性剤を含む抽出液を用いたものの、超音波照射せずに浸漬だけで蛋白質を抽出した比較例４〜８の場合は、極端に抽出効率が低下し、抽出率は８０％未満であった。
これらの結果より、界面活性剤を用いて超音波照射することが蛋白質の抽出に極めて効果的であることが確認できた。
【００５３】
「実施例１３〜１９」
イオン交換水にドデシル硫酸ナトリウムを濃度が１質量％になるように溶解させ、抽出液を調製した。
得られた抽出液を用い、表７に示す温度で１０分間超音波照射を行った以外は、実施例１と同様の処理を行った。結果を表７に示す。また、実施例２の結果も表７に示す。
【００５４】
【表７】
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【００５５】
表７から明らかなように、各実施例では、評価用器具に付着している蛋白質を十分に抽出でき、抽出した蛋白質を簡便かつ正確に検出定量できた。特に、物理的刺激操作を施す際の抽出液の温度が２０〜７０℃である場合、蛋白質の抽出率が９５％以上であり、抽出温度としてより効果的であることが確認できた。
【００５６】
「実施例２０」
表８に示す組成に従い、疑似蛋白質抽出液（１）〜（９）を調製した。
別途、表１に示す試薬Ａ溶液５０ｍＬと、表２に示す試薬Ｂ溶液１ｍＬとを混合し、蛋白質検出液を調製した。
各疑似蛋白質抽出液１ｍＬに蛋白質検出液２ｍＬを加えて攪拌した後、６０℃で３０分間反応させ、更に１５℃で５分間放置して接触液を得た。
得られた接触液の５６２ｎｍにおける吸光度を分光光度計（株式会社パーキンエルマージャパン製、「Ｌａｍｂｄａ６５０Ｓ」）にて測定し、ＢＣＡ法用の検量線の数式に代入して蛋白質量を算出した。結果を表１１に示す。
【００５７】
「実施例２１」
表９に示す組成の疑似蛋白質抽出液（１０）〜（１８）を用いた以外は、実施例２０と同様の処理を行った。結果を表１１に示す。
【００５８】
「実施例２２」
表１０に示す組成の疑似蛋白質抽出液（１９）〜（２７）を用いた以外は、実施例２０と同様の処理を行った。結果を表１１に示す。
【００５９】
「比較例９」
表８に示す組成に従い、疑似蛋白質抽出液（１）〜（９）を調製した。
各疑似蛋白質抽出液１ｍＬに、蛋白質検出液としてＣｏｏｍａｓｓｉｅ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ａｓｓａｙ Ｒｅａｇｅｎｔ〔ＣＢＢ試薬（サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製）〕３ｍＬを加えて攪拌した後、２５℃で２０分間放置して接触液を得た。
得られた接触液の５９５ｎｍにおける吸光度を分光光度計（株式会社パーキンエルマージャパン製、「Ｌａｍｂｄａ６５０Ｓ」）にて測定し、ＣＢＢ法用の検量線の数式に代入して蛋白質量を算出した。結果を表１２に示す。
なお、疑似蛋白質抽出液中に含まれるアルカリ化合物、又は界面活性剤の影響を受けて測定値が高く出た場合は、疑似蛋白質抽出液をイオン交換水にて希釈したものを用いて接触液を得て、吸光度を測定した。
【００６０】
「比較例１０」
表９に示す組成の疑似蛋白質抽出液（１０）〜（１８）を用いた以外は、比較例９と同様の処理を行った。結果を表１２に示す。
【００６１】
「比較例１１」
表１０に示す組成の疑似蛋白質抽出液（１９）〜（２７）を用いた以外は、比較例９と同様の処理を行った。結果を表１２に示す。
【００６２】
【表８】
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【００６３】
【表９】
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【００６４】
【表１０】
0006507445.tif 000011
【００６５】
【表１１】
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【００６６】
【表１２】
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【００６７】
表８〜１０中におけるイオン交換水の「残部」とは、疑似蛋白質抽出液の総量を１００質量％とするのに必要とした量のことである。
また、  表８〜１２中の略号は以下の通りである。
・活性剤２：ポリオキシエチレン（８．５モル）ポリオキシプロピレン（２．５モル）モノアルキル（Ｃ１２−１３）エーテル
・活性剤５：ポリオキシエチレン（１１モル）牛脂硬化アルキルアミン
【００６８】
表１１、１２から明らかなように、ＢＣＡ法による蛋白質の定量はアルカリ、アニオン界面活性剤、ノニオン界面活性剤の影響を受けにくく、蛋白質仕込み量とほぼ同等の蛋白質量が検出されることが確認できた（実施例２０〜２２）。
一方、ＣＢＢ法による蛋白質の定量はアルカリ、アニオン界面活性剤、ノニオン界面活性剤の影響を受け、蛋白質仕込み量と異なる蛋白質量が検出された（比較例９〜１１）。
これらの結果より、検査対象物の洗浄剤に界面活性剤を使用した場合、すすぎ不足等で界面活性剤が被抽出物に付着している懸念があっても、ＢＣＡ法を使用すれば、正確な測定が可能であり、また抽出剤として抽出効率が高い界面活性剤を用いることも可能であることが確認できた。対して、ＣＢＢ法を用いた場合は、すすぎ不足等で界面活性剤が被抽出物に付着している懸念がある場合、正確な測定が困難であり、また抽出剤として抽出効率が高い界面活性剤を用いることも困難である。
【産業上の利用可能性】
【００６９】
本発明の蛋白質の検出定量方法によれば、検査対象物に付着している蛋白質を十分に抽出し、抽出した蛋白質を簡便に、かつ正確に検出定量できる。よって、本発明の蛋白質の検出定量方法は、医療機関等で再利用されている器具等の検査対象物の清浄度評価や、医療用洗浄機等の性能評価に特に好適に利用できる。
【符号の説明】
【００７０】
１０  評価用器具
１１  スライドグラス
１２  ステンレス板
１３  スライドグラス
１４  クリップ
Ｘ  模擬蛋白質汚染液
【図１】
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【図２】
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