(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
フィコエリスリンを含有する紅藻類をサーモライシンで加水分解後、熱水抽出することにより得られるフィコエリスロビリンオリゴペプチドを含有するタンパク質糖化抑制剤の製造方法。
【請求項２】
フィコエリスロビリンオリゴペプチドの分子量が７００以上１０,０００以下であるタンパク質糖化抑制剤の製造方法。
【請求項３】
フィコエリスロビリンオリゴペプチドが水に対し可溶性である請求項１または２記載のタンパク質糖化抑制剤の製造方法。
【請求項４】
フィコエリスロビリンオリゴペプチドが、次の式（Ｉ）
【化１】
0006617230.tif 000008
（式中、Ｌ１はオリゴペプチド残基、Ｌ２はオリゴペプチド残基またはヒドロキシル基を示し、Ｌ１とＬ２の合計のアミノ酸基の数は、２０以内である）
で表される請求項１ないし３の何れかの項記載のタンパク質糖化抑制剤の製造方法。
【請求項５】
式（１）中、Ｌ１が、Ｖａｌ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−であり、Ｌ２がヒドロキシル基である請求項４記載のタンパク質糖化抑制剤の製造方法。
【請求項６】
熱水抽出を、８０ないし１３５℃の温度、０．１ないし０．２２ＭＰａの圧力で行う請求項１ないし５の何れかの項記載のタンパク質糖化抑制剤の製造方法。
【請求項７】
熱水抽出を１ないし６０分間行う請求項１ないし６の何れかの項記載のタンパク質糖化抑制剤の製造方法。
【請求項８】
フィコエリスリンを含有する紅藻類をサーモライシンで加水分解後、熱水抽出することを特徴とするフィコエリスロビリンオリゴペプチドの製造方法。
【請求項９】
熱水抽出を、８０ないし１３５℃の温度、０．１ないし０．２２ＭＰａの圧力で行う請求項８記載のフィコエリスロビリンオリゴペプチドの製造方法。
【請求項１０】
熱水抽出を１ないし６０分間行う請求項８または９記載のフィコエリスロビリンオリゴペプチドの製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、フィコエリスロビリン含有オリゴペプチド（オリゴペプチドが結合しているフィコエリスロビリン）に関し、更に詳細には、紅藻、藍藻等の藻類を、タンパク質分解酵素で加水分解後、熱水抽出することで得られるフィコエリスロビリン含有オリゴペプチド、その製造法およびその、赤色色素、蛍光色素、タンパク質糖化抑制剤等としての利用に関する。
【背景技術】
【０００２】
紅藻類、藍藻類などの藻類中には、紅色色素の１種であるフィコエリスリンが含まれていることが知られている。
【０００３】
例えば、単細胞紅藻チノリモ（Porphyridium Cruentum）のＢ−フィコエリスリンは分子量１９ｋＤａ程度のα，β２種のサブユニット、分子量３０ｋＤａ程度のγサブユニットからなるタンパク質とフィコエリスロビリン色素が共有結合したものであり、具体的には、開環テトラピロールであるフィコエリスロビリンと上記タンパク質のシステイン残基が共有結合したものである。
【０００４】
フィコエリスリンは光合成色素として重要な役割を果たしている（非特許文献１）。フィコエリスリンの極大吸収波長は５４０〜５７０ｎｍ付近で、極大蛍光波長は５７５〜５７８ｎｍ付近である。このフィコエリスリン色素は天然由来の食品用着色料として食品工業等において利用されている。
【０００５】
また、フィコエリスリンは臨床診断や細胞化学研究において、抗体など様々なタンパク質を標識する蛍光色素としても広く利用されている。フィコエリスリンの励起波長は広範にわたり、様々な励起源を使用できるという特徴がある。
【０００６】
このような色素としての用途の他に、紅藻類スサビノリ（Porphyra yezoensis）に含まれるフィコエリスリンは抗酸化性を有すること、フィコエリスリンとフィコエリスリンの色素成分であるフィコエリスロビリンに、アレルギー性炎症反応に対する阻害効果のあることが報告されている（非特許文献２ ）。
【０００７】
ところで、このフィコエリスリンの抽出法としては、藻類の細胞を塩類溶液など薬剤処理や超音波処理等の機械的手段により破砕することにより水中に抽出し、硫安塩析、カラムクロマトグラフィー、有機溶媒等を用いる方法が従来から行われている。例えば、特許文献１には、夾雑色素を含有する藻類由来のフィコエリスリン色素液（Ａ）と前記夾雑色素を凝集させるアルカリ土類金属のリン酸塩（Ｂ）とを混合し、前記フィコエリスリン色素液（Ａ）中の夾雑色素を凝集させて凝集物としたのち、前記凝集物を除去するフィコエリスリン色素液の精製方法が記載されている。そして、原料のフィスコエリスリン色素液は、加熱処理したものを利用することが記載されている。また、特許文献２には、赤色色素含有藻から得られた色素抽出液を加熱処理し、赤色色素を分離する天然赤色色素の製造法が記載されている。
【０００８】
上記特許文献１や２での加熱処理は、色素抽出液中に含まれるフィコシアニンやクロロフィル等の赤色色素以外の色素を変性させ、不純物として沈澱させるというものであり、その加熱温度は好ましくは４０〜７０℃、特に好ましくは５０〜６０℃であり、加熱時間は、２〜３０分とされている。一般に加熱温度が高いほど、または加熱時間が長いほど赤色色素の純度が高くなり色調が向上するが、収量が減るという問題が知られている。そして、上記温度範囲以外、例えば加熱温度が４０℃以下では、色素液の色調は赤紫色を呈し、所望する鮮明な赤色色素が得にくくなる。また、７０℃以上では赤色色素も沈降性となり、色素回収率が低下すると引用文献２の段落［０００９］に記載されている。
【０００９】
ところで、特許文献３には、クビレオゴノリを含むオゴノリ属の海藻由来のフィコエリスリンが記載されている。この発明のオゴノリ属の海藻由来のフィコエリスリンは、フィコエリスロビリンとタンパク質が共有結合したものであり、以下のような物性を有する。
【００１０】
（１）４９６±５ｎｍ、５３９±５ｎｍおよび５６６±５ｎｍに吸収極大波長を有す
る。
（２）４９６±５ｎｍおよび５３９±５ｎｍの励起波長で５７３±５ｎｍの蛍光を発
する。
（３）ドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリルアミド電気泳動で測定される分子量が
９５,０００±５,０００である。
【００１１】
そしてその製造法は、オゴノリ属の海藻を粉砕した後、水と混合し、当該混合物を攪拌する工程と、得られた混合物を遠心分離し、その上清を得る工程を含むものであり、また、フィコエリスリンを精製するために、得られた上清に硫酸アンモニウムを添加し、沈殿物を回収後、この沈殿物を少量の蒸留水で再溶解し、蒸留水で透析、沈殿物中の硫酸アンモニウムを除く工程を使用できることも記載されている。更に、この透析後の再溶解液は、フィコエリスリンを豊富に含有するもので、そのまま各種用途に使用できるが、更に、クロマトグラフィー等の公知の手段により精製してもよいことも記載されている。
【００１２】
一方、フィコエリスリンを低分子化した例としては、フィコビリン結合部位のタンパク質アミノ酸配列を知る目的で、単細胞紅藻チノリモであるポルフィリディウム・クルエンタム（以下、「Ｐ.クルエンタム」と略称する）からクロマトグラフィー等でＢ−フィコエリスリンを精製し、トリプシン分解して得たフィコエリスロビリントリペプチドを解析した例がある（非特許文献３）。同様に、Ｐ.クルエンタムのフィコエリスリンをクロマトグラフィー等で精製したのち、トリプシン分解してフィコエリスロビリン結合ペプチド（アミノ酸数６〜４０残基）を精製、フィコビリン結合部位のアミノ酸配列を解析した例がある（非特許文献４）。
【００１３】
また、フィコエリスリンから、ペプチド結合のないフィコエリスロビリン色素の生成については、Ｐ.クルエンタムのフィコエリスリンに、メタノールとＨｇＣｌ２を用いてフィコビリンとシステイン残基の間の共有結合を解離させるメタノリシスによりフィコエリスロビリンの精製が報告されている（非特許文献４）。更に、ノリの焙焼によるフィコエリスロビリンの生成が報告されている（非特許文献５）。
【００１４】
このようにフィコエリスリンの製造法は多数報告されているが、いずれも製造工程が煩雑である上、大量生産には向いていないものであった。また、前記したようにフィコエリスリンは、開環テトラピロールであるフィコエリスロビリンとサブユニットタンパクが共有結合したものであるため、サブユニットタンパク由来部分の影響を受ける場合もあった。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１５】
【特許文献１】特開２００５−７５８５１
【特許文献２】特開平０７−１１８５５５
【特許文献３】特開２０１１−３７７１４
【特許文献４】特開２００８−８８１０２
【非特許文献】
【００１６】
【非特許文献１】J. Biol. Chem. 259, 5472-5480 (1984)
【非特許文献２】http://bre.soc.i.kyoto-u.ac.jp/~jsfs-kin/History/H19/H19b/1.pdf、「海苔色素フィコエリスリンの抗炎症性の評価」平成20年度  日本水産学会近畿支部後期例会（劉 暢・西村優輝・菅原達也・平田 孝（京大院農）
【非特許文献３】J. Am. Chem. SOC. 105, 4072-4076 (1983)
【非特許文献４】J. Biol. Chem. 259, 5472-5480 (1984)
【非特許文献５】http://bre.soc.i.kyoto-u.ac.jp/~jsfs-kin/History/H20/H20b/2.pdf、「ノリの焙焼によるフィコエリスロビリンの生成」、平成20年度  日本水産学会近畿支部後期例会（劉 暢・西村優輝・菅原達也・平田 孝（京大院農）
【非特許文献６】J. Biol. Chem. 267, 14790-14798 (1992)
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１７】
本発明は、フィコエリスリンを含有する藻類から赤色色素や、蛍光色素として使用できる成分を工業的に取得することが可能な技術、特に、色素等として有利に使用できる、フィコエリスリンを低分子化した、フィコエリスロビリンオリゴペプチドを大量生産しうる技術の提供を課題とするものである。
【課題を解決するための手段】
【００１８】
本発明者らは、フィコエリスリンを含有する藻類中から、工業的に有利に赤色色素や、蛍光色素（色素成分）を取得できる技術について研究を行っていたところ、まず、原料である藻類をタンパク質分解酵素で加水分解し、次いでこの加水分解物を熱水抽出することにより、容易に色素成分を可溶化できることを見出した。
【００１９】
またこの工程で得られたフィコエリスロビリンオリゴペプチドは、新規であり、赤色色素、蛍光色素としての作用のほか、従来の色素成分では報告されていなかったタンパク質糖化抑制作用を有することも見出した。
【００２０】
本発明は、これらの知見に基づくものであり、次の内容を含むものである。
【００２１】
（１）フィコエリスリンを含有する藻類をタンパク質分解酵素で加水分解後、熱水抽出
することにより得られるフィコエリスロビリンオリゴペプチド。
（２）分子量が７００以上１０,０００以下である（１）のフィコエリスロビリンオリ
ゴペプチド。
（３）水に対し可溶性である（１）または（２）のフィコエリスロビリンオリゴペプチ
ド。
（４）次の式（Ｉ）
【化１】
0006617230.tif 000002
（式中、Ｌ１はオリゴペプチド残基、Ｌ２はオリゴペプチド残基またはヒドロキシ
ル基を示し、Ｌ１とＬ２の合計のアミノ酸基の数は、２０以内である）
で表される（１）ないし（３）の何れかのフィコエリスロビリンオリゴペプチド。
（５）Ｌ１が、Ｖａｌ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−であり、Ｌ２がヒドロキシル基である（４）
のフィコエリスロビリンオリゴペプチド。
（６）フィコエリスリンを含有する藻類が、紅藻、藍藻、灰色藻およびクリプト藻より
なる群から選ばれたものである（１）ないし（５）の何れかのフィコエリスロビリ
ンオリゴペプチド。
（７）タンパク質分解酵素が、ペプシン、ブロメライン、パパイン、フィシン、サーモ
ライシン、プロテアーゼＫ、糸状菌由来プロテアーゼ、酵母由来プロテアーゼ、放
線菌由来プロテアーゼ、担子菌由来プロテアーゼおよび細菌由来プロテアーゼより
なる群から選ばれたものである（１）ないし（６）の何れかのフィコエリスロビリ
ンオリゴペプチド。
（８）フィコエリスリンを含有する藻類をタンパク質分解酵素で加水分解後、熱水抽出
することを特徴とするフィコエリスロビリンオリゴペプチドの製造法。
（９）フィコエリスリンを含有する藻類が、紅藻、藍藻、灰色藻およびクリプト藻から
なる群から選ばれたものである（８）のフィコエリスロビリンオリゴペプチドの製
造法。
（１０）タンパク質分解酵素が、ペプシン、ブロメライン、パパイン、フィシン、サー
モライシン、プロテアーゼＫ、糸状菌由来プロテアーゼ、酵母由来プロテアーゼ、
放線菌由来プロテアーゼ、担子菌由来プロテアーゼおよび細菌由来プロテアーゼよ
りなる群から選ばれたものである（８）または（９）のフィコエリスロビリンオリ
ゴペプチドの製造法。
（１１）熱水抽出を、８０ないし１３５℃の温度、０．１ないし０．２２ＭＰａの圧力
で行う（８）ないし（１０）の何れかのフィコエリスロビリンオリゴペプチドの製
造法。
（１２）熱水抽出を１ないし６０分間行う（８）ないし（１１）のフィコエリスロビリ
ンオリゴペプチドの製造法。
（１３）（１）ないし（７）の何れか記載のフィコエリスロビリンオリゴペプチドを含
有するタンパク質糖化抑制剤。
（１４）（１）ないし（７）の何れか記載のフィコエリスロビリンオリゴペプチドを含
有する赤色色素。
（１４）（１）ないし（７）の何れか記載のフィコエリスロビリンオリゴペプチドを含
有する蛍光色素。
【発明の効果】
【００２２】
本発明により、フィコエリスリンを含有する藻類から赤色色素、蛍光色素を容易に大量生産できる。本発明により得られた赤色色素、蛍光色素（分子量７００以上１０,０００以下のフィコエリスロビリンオリゴペプチド）は、鮮やかな赤色を呈し、紫外線で励起することにより蛍光を発する。また、フィコエリスロビリンオリゴペプチドはタンパク質糖化抑制作用を有する。従って、本発明の色素は、食品分野では赤色色素、蛍光色素として、医療・研究分野ではタンパク質の蛍光標識用試薬として、また、蛍光を利用したオブジェの材料などとして利用することができ、さらには、タンパク質糖化抑制作用を有する健康食品として利用することができる。
【図面の簡単な説明】
【００２３】
【図１】クビレオゴノリをサーモライシンで加水分解・熱水抽出することによる赤色色素の可溶化を示す図である。
【図２】クビレオゴノリをプロテアーゼＫで加水分解・熱水抽出することによる赤色色素の可溶化を示す図である。
【図３】イソノハナをサーモライシンで加水分解・熱水抽出することによる赤色色素の可溶化を示す図である。
【図４】クビレオゴノリ  サーモライシン加水分解・熱水抽出液のセファデックスＬＨ−２０カラム分画によるフラクションＮｏ．３４をＣ３０逆相カラムにより分離した図である。
【図５】クビレオゴノリ  サーモライシン加水分解・熱水抽出液のシメトリー・プレップ  Ｃ１８カラムによるピークＡの分取と、そのピークＡをＣ３０逆相カラムに負荷することによりフィコエリスロビリンオリゴペプチドを分離した図である。
【図６】イソノハナのサーモライシン加水分解・熱水抽出液を固相Ｃ１８カートリッジ処理して得たフィコエリスロビリンオリゴペプチドを含む画分のＣ１８逆相カラムカラムによる分離を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００２４】
以下、本発明について詳細に説明するが、本発明の範囲はこれらの説明に拘束されるものでなく、以下の例示以外についても、本発明の趣旨を損なわない範囲で適宜実施し得る。
【００２５】
本発明のフィコエリスロビリンオリゴペプチドは、フィコエリスリンを含有する藻類をタンパク質分解酵素で加水分解後、熱水抽出することにより得ることができる。
【００２６】
このものは、例えば次の一般式（Ｉ）
【化２】
0006617230.tif 000003
（式中、Ｌ１はオリゴペプチド残基、Ｌ２はオリゴペプチド残基またはヒドロキシル基を示し、Ｌ１とＬ２の合計のアミノ酸基の数は、２０以内である）
で表されるものである。
【００２７】
このものは、分子量が７００以上１０,０００以下で、水に対して可溶性であり、赤色色素、蛍光色素としての作用を有するものである。なお、水に対して可溶性であることは、目視において浮遊物、沈殿物が認められないことを意味する。例えば、後述の実施例５において、得られた色素成分を、５０ｍｇ／ｍｌの濃度の水溶液とした際に浮遊物、沈殿物が認められず、また、これを１５，０００ｒｐｍで、１５分間の遠心処理した後も沈降物を認められないことにより判断できる。
【００２８】
このフィコエリスロビリンオリゴペプチドを製造するための原料である藻類は、フィコエリスリンを含有する藻類である。このような藻類の例としては、紅藻や藍藻等が挙げられる。より具体的には、オゴノリ（Gracilaria tikvahiae）、クビレオゴノリ（Gracilaria blodgettii）、イソノハナ (Halymenia floresia)、チノリモ（Porphyridium Cruentum）、スサビノリ（Porphyra yezoensis）、アサクサノリ（Porphyra tenera）、テングサ（Gelidiaceae）、フノリ（Gloiopeltis）、マフノリ（Gloiopeltis tenax (Turner) Decaisne）等の紅藻、藍藻を挙げることができる。
【００２９】
上記のうち、クビレオゴノリは南西諸島に分布し、モーイ豆腐の原料（寒天の材料），刺身のツマや海藻サラダとして用いられている藻類である（沖縄水海研セ事報９６，５０−５３（２００８））。また、イソノハナは石垣島で冬季に見られる藻類である（沖縄深層水研報１０号、１９−２０頁）。更に、紅藻、藍藻のほかにフィコエリスリンを含有するものであれば、灰色藻、クリプト藻を用いてもよい。更にまた、上記藻類に代え、精製したフィコエリスリンあるいはフィコエリスリンを含む粗製物を材料として用いてもよい。
【００３０】
一方、本発明に用いるタンパク質分解酵素は、特に限定されることなく種々のものを利用することができる。その具体例としては、ペプシン、ブロメライン、パパイン、フィシン、サーモライシン、プロテアーゼＫ、その他糸状菌由来プロテアーゼ、酵母由来プロテアーゼ、放線菌由来プロテアーゼ、担子菌由来プロテアーゼ、細菌由来プロテアーゼ等が含まれる。
【００３１】
本発明のフィコエリスロビリンオリゴペプチドを得るには、例えば次のようにすればよい。すなわち、まず、フィコエリスリンを含有する藻類（以下、「原料藻類」と略称することがある）を適当な反応容器中で水に懸濁させ、懸濁液とする。
【００３２】
原料藻類は、水で洗浄後、細かく細断して用いてもよいが、水洗後に乾燥、粉砕機で粉砕して用いるのが望ましい。また、反応容器としては、フラスコ、鍋等の容器を利用することができる。
【００３３】
更に、懸濁に利用する水としては、例えば、最終生産物が食品の用途である場合は、精製水が好適であるが、次の工程で用いるタンパク分解酵素の種類によっては、これに適合した緩衝液や、精製水中に塩類等の安定化剤を含むものであってもよい。
【００３４】
この懸濁液中の原料藻類の重量（乾燥重量）は、特に制約はなく適宜変更しうるが、例えば、精製水１００ｍｌあたり２ｇ程度の濃度とすることが好ましい。
【００３５】
また、上記懸濁液は、例えば、ポリトロンなどでホモジェナイズすることが望ましいが、マグネットスターラー等で攪拌してもよい。
【００３６】
次に、このようにして調製した懸濁液に、上記したタンパク質分解酵素を加え、加水分解を行う。
【００３７】
この加水分解に用いるタンパク質分解酵素の濃度は、例えば、サーモライシンを用いる場合は、原料藻類の乾燥重量の０.１〜４質量％（以下、「％」で示す）程度（溶液中濃度として０.００２％〜０.０８％程度）、好ましくは０.５〜２％程度（溶液中濃度０.０１％〜０.０４％程度）であり、より好適には０.５％程度（溶液中濃度０.０１％程度である。
【００３８】
また、加水分解反応を行う温度は、それぞれの酵素の至適温度付近とすれば良く、例えば、サーモライシンを用いる場合は、３０℃から６０℃程度の範囲であり、６０℃で行うと反応時間が短くてすむ。更に、加水分解反応を行う時間はとくに限定はないが、例えばサーモライシンを用いる場合は１時間から６時間程度であり、３時間の反応時間で十分である。
【００３９】
上記加水分解反応物は、次に熱水抽出に付される。この熱水抽出は、前の酵素反応の停止工程も兼ねて行うこともできる。具体的には、沸騰水中に反応容器を入れ、１ないし６０分間、好ましくは１ないし２０分間、さらに好ましくは５ないし１５分間煮沸することで行なえば良い。
【００４０】
以上のようにして得られる熱水抽出液は、次に、この容器を氷水中に入れることで、冷却される。得られた熱水抽出液は、冷却後遠心分離を行なうことで、上清として回収される。また、この方法に代え、濾紙等による濾過を行い、不溶物を除去しても良い。
【００４１】
このような工程により製造されたフィコエリスロビリンオリゴペプチドを含有する色素液は、このまま利用してもよいが、凍結乾燥、遠心エバポレーター等で乾燥、粉末として利用してもよい。あるいは、さらに限外濾過、クロマトグラフィー等による精製を行い、高純度標品として利用してもよい。
【００４２】
かくして得られた本発明のフィコエリスロビリンオリゴペプチドは、例えば、赤色色素、蛍光色素等として、清涼飲料、乳酸飲料、調味料、スープ、チーズ、ハム、アイスクリーム、菓子類などの様々な食品中に添加して用いることができる。また、本発明に係るフィコエリスロビリンオリゴペプチドは、抗体や種々の生体タンパク質の蛍光標識を目的とした、医療、研究分野で用いることができる。
【００４３】
なお、フィコエリスロビリンオリゴペプチドおよびこれを含有する画分は、上記した色素としての作用の他、タンパク質糖化抑制作用を有することが本発明者により見出された。
【００４４】
タンパク質の糖化とは、タンパク質とグルコースが結合し、アマドリ化合物を経て糖化最終生成物（advanced glycosylation end products ；ＡＧＥｓ）を生成する現象で、ＡＧＥｓとして多数の物質が知られている。例えば、カルボキシメチルリジンは、糖尿病時に生成し、カルボキシメチルリジン化したコラーゲンはヒト皮膚線維芽細胞のアポトーシスを誘導するとされている。ペントシジンはリジン残基とアルギニン残基が五炭糖により架橋された構造で蛍光性があり、糖尿病や慢性腎不全患者の血中ペントシジン濃度は高値になるとされている。またこのものは皮膚コラーゲン中にも存在して加齢と共に増加、骨粗鬆症を反映するマーカーとされている。
【００４５】
このタンパク質糖化を抑制する薬剤としては、アミノグアニジンなど多数の化合物が知られているが、経口的に摂取するにはその安全性に疑問があるものが多かった。
【００４６】
これに対し、本発明のフィコエリスロビリンオリゴペプチドおよびこれを含有する画分は、食品成分由来のものであるから、安全性が高く、アンチエイジングなどの目的で、さまざまな食品に添加し、機能性食品として用いることができる。
【００４７】
なお、海藻由来のタンパク質糖化抑制成分としては、特許文献４に、もずく成分の記載がある（特許文献４）。しかし、もずくは褐藻であり、赤色色素フィコエリスロビリンを含有しないことから、本発明の成分とは異なると判断される。
【実施例】
【００４８】
次に実施例を挙げ、本発明を更に詳しく説明するが、本発明はこれら実施例等に何ら制約されるものではない。
【００４９】
実  施  例  １.
クビレオゴノリからのフィコエリスロビリンオリゴペプチドの製造（１）：
クビレオゴノリ（（Gracilaria blodgettii）；沖縄県産を乾燥し、これを破砕してクビレオゴノリ粉末を得た。この粉末０.４ｇを容量５０ｍｌの遠心チューブに入れ、蒸留水２０ｍｌを加えて攪拌した。更にこれにサーモライシン（株式会社ペプチド研究所製）２ｍｇを添加し、６０℃で３時間保温することで、タンパク質を加水分解した。
【００５０】
反応後、この遠心チューブを沸騰水中に１０分間保持することで、熱水抽出を行った。１０分経過後直ちに氷冷し、１０,０００ｒｐｍで１０分間の遠心分離を行い、上清を回収した。また、サーモライシンを添加しない以外は、上と同様の処理を行ない、比較上清を得た。
【００５１】
得られたサーモライシンで処理後熱水抽出を行った上清を目視で観察したところ、このものは可溶化されており、赤色を呈していたが、比較上清では、赤色はほとんど観察できなかった。また、これらの５４０ｎｍの吸光度は、サーモライシン処理後熱水抽出した上清で０.６２、比較上清では０.０３６で、吸光度に２０倍近い差のあることが確認できた。
【００５２】
また、サーモライシンで加水分解後、熱水抽出液した上清を３６５ｎｍの紫外線で励起したところ、蛍光を発することが確認できた。
【００５３】
実  施  例  ２.
クビレオゴノリからのフィコエリスロビリンオリゴペプチドの製造（２）：
容量５０ｍｌの遠心チューブに、実施例１のクビレオゴノリ粉末０.５ｇを入れ、蒸留水２５ｍｌを加えて攪拌した。これにプロテアーゼＫ（プロメガ株式会社製）４ｍｇを添加し、４５℃で４時間保温することで、タンパク質を加水分解した。
【００５４】
反応後、この遠心チューブを沸騰水中に１０分間保持することで、熱水抽出を行った。１０分経過後直ちに氷冷し、１０,０００ｒｐｍ、１０分間の遠心分離を行い、上清を回収した。
【００５５】
この結果、プロテアーゼＫ処理後熱水抽出液した上清を目視で観察したところ、このものは可溶化されており、赤色を呈していた。また、この上清の５４０ｎｍの吸光度は０.７７５であった。更に、プロテアーゼＫ処理後熱水抽出液した上清を３６５ｎｍの紫外線で励起したところ蛍光を発することが確認できた。
【００５６】
実  施  例  ３.
イソノハナからのフィコエリスロビリンオリゴペプチドの製造（１）：
イソノハナ（Halymenia floresia；沖縄県産を乾燥し、これを破砕してイソノハナ粉末を得た。この粉末０.６ｇを容量５０ｍｌの遠心チューブに入れ、蒸留水３０ｍｌを加えて攪拌した。更にこれにサーモライシン３ｍｇを添加し、６０℃で３時間保温することで、タンパク質を加水分解した。
【００５７】
反応終了後、この遠心チューブを沸騰水中に１０分間保持することで、熱水抽出を行った。１０分間経過後、直ちに氷冷し、１０,０００ｒｐｍ、１０分間の遠心分離を行い、上清を回収した。また、サーモライシンを添加しない以外は、上記と同様の処理を行ない、比較上清を得た。
【００５８】
得られたサーモライシン処理後熱水抽出を行った上清を目視で観察したところ、このものは可溶化されており、比較上清に比べ濃い赤色を呈していた。これに対し、比較上清は僅かに赤色を呈しているが、低温にすると僅かに残存する多糖類の塊が浮遊し、この赤色部分はこの多糖類に吸着したものであり、実際は水に溶けていないものであった。
【００５９】
また、サーモライシンで加水分解後熱水抽出液した上清を３６５ｎｍの紫外線で励起したところ蛍光を発することが確認できた。
【００６０】
実  施  例  ４.
クビレオゴノリからのフィコエリスロビリンオリゴペプチドの精製：
容量２００ｍｌの三角フラスコに、実施例１のクビレオゴノリ粉末１ｇを入れ、蒸留水５０ｍｌを加えて攪拌した。これにサーモライシン５ｍｇを添加し、６０℃で３.５時間保温することで、タンパク質を加水分解した。
【００６１】
反応後、この三角フラスコを沸騰水中に１０分間保持することで、熱水抽出を行った。抽出終了後直ちに氷冷し、１０,０００ｒｐｍで、１０分間の遠心分離を行って、上清およそ４６ｍｌを回収した。この上清のうち４０ｍｌについて分画分子量１０,０００の限外濾過膜を通過させ、この液を遠心エバポレータで減圧下に乾燥させることにより３４４ｍｇの固形物を得た。
【００６２】
この固形物のうち２４０ｍｇをセファデックスＬＨ−２０カラム（内径２６×９００ミリメートル；ＧＥヘルスケア・ジャパン株式会社製）に負荷し、３０％メタノール水溶液で溶出した。７ｍｌ／フラクションで分画し、各フラクションの２２０ｎｍおよび５４０ｎｍの吸光度を測定した。  
【００６３】
５４０ｎｍの吸収のあるピークのうちフラクションＮｏ.３４について、遠心エバポレータで濃縮後、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）による精製を行った。Ｃ３０逆相カラム（Ｄｅｖｅｌｏｓｉｌ  ＸＧ−Ｃ３０Ｍ−３  ４.６×２５０ｍｍ、野村化学株式会社製）に負荷し、０.１％トリフルオロ酢酸を含むアセトニトリル水溶液の直線濃度勾配（流速１ｍｌ／分、０〜５２％の勾配を３０分間で行なう）により溶出し、５４０ｎｍに吸収のあるピーク（図４の矢印）を分取した。
【００６４】
このピーク部分について、遠心エバポレータで溶媒を除去した後、Ｑ−ＴＯＦ  ＬＣ／ＭＳ（Agilent 6530 Accurate-Mass Quadrupole Time-of-Flight (Q-TOF) LC/MS system）分析を行ったところ、プレカーサ−・イオン、［Ｍ＋Ｈ］＋  １０４９.５１１５、ＭＳＭＳ  プロダクト・イオン、［Ｍ＋Ｈ］＋  ５８７.２７９８のデータを得た。フィコエリスロビリンのモノアイソトピック質量が５８６.２７９１１４であるので、精製した成分はフィコエリスロビリンにアミノ酸４残基程度のペプチドが結合した物質であると推定できた。
【００６５】
実際、ペプチドと思われるピーク、［Ｍ＋Ｈ］＋  ４６３.２２５１のピークが確認できた。また、この物質のアミノ酸配列をアプライドバイオシステムズ社のプロテインシークエンサー（ニッピ株式会社に依頼分析）で解析したところ、Ｖａｌ−Ａｓｎ−Ｌｙｓの配列まで確認できた。フィコエリスロビリンはＣｙｓに結合しているため、ペプチド部分をＶａｌ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ｃｙｓとすると、分子量４６２.２２６１０となり、上記ペプチドのＭＳＭＳプロダクト・イオン、［Ｍ＋Ｈ］＋  ４６３.２２５１と一致した。この配列は、オゴノリ属オゴノリ科の藻類、Gracilaria tenuistipitata liuiのＲ−フィコエリチリン・サブユニット  アルファ（R-phycoerythrin, Subunit alpha）の配列上７９−８２に存在する。したがって、Ｃ３０逆相カラム（Develosil XG-C30M-3 4.6×250mm）で５４０ｎｍに吸収のあるピーク（図４の矢印）に含まれる物質は、フィコエリスロビリンとＶａｌ−Ａｓｎ−Ｌｙｓ−Ｃｙｓが結合した下記式（II）に示す構造のフィコエリスロビリンテトラペプチドであると推定される。
【００６６】
【化３】
0006617230.tif 000004
【００６７】
また、セファデックスＬＨ−２０カラムの代わりに、シメトリー・プレップ  Ｃ１８カラム（SymmetryPrep C18 7.8×300mm；Ｗａｔｅｒｓ社製）により、フィコエリスロビリンオリゴペプチドを精製することもできる。すなわち、分画分子量１０,０００の限外濾過膜を通過させたて得た色素粗製物５００ｍｇを１ｍｌの精製水に溶解し、その１００μｌをカラムに負荷し、０.１％トリフルオロ酢酸を含むアセトニトリル水溶液の直線濃度勾配（流速１.５ｍｌ／分、０〜７０％の勾配を５０分間で行なう）により溶出し、図５（Ａ）のピークＡを分取した。これを８回繰り返した。
【００６８】
分取したピークＡについて、Ｃ３０逆相カラム（Develosil XG-C30M-3 4.6×250mm）に６回にわけて負荷し、０.１％トリフルオロ酢酸を含むアセトニトリル水溶液の直線濃度勾配（流速１ｍｌ／分、０〜５２％の勾配を３０分間で行なう）により溶出し、図５（Ｂ）のピークＡ１とＡ２を分取した。Ａ２は図４の矢印ピークと同一であった。
【００６９】
一方、ピークＡ１は遠心エバポレータで溶媒を除去した後、Ｑ−ＴＯＦ  ＬＣ／ＭＳ  システム分析を行ったところ、さらに二つのピークに分かれた（量比は１：２ほど）。それぞれのプレカーサー・イオンは［Ｍ＋Ｈ］＋  １２４０.５１５９、［Ｍ＋Ｈ］＋１３１１.５５２５であった。また、フィコエリスロビリンの存在を支持するそれぞれのＭＳＭＳ  プロダクト・イオン、［Ｍ＋Ｈ］＋  ５８７.２８９８、［Ｍ＋Ｈ］＋  ５８７.２８１０を確認した。すなわち、ピークＡ１は推定分子量１２３９と１３１０のフィコエリスロビリンオリゴペプチドがおよそ２：１の量比からなると推定できる。
【００７０】
実  施  例  ５.
イソノハナからのフィコエリスロビリンオリゴペプチドの精製：
容量３００ｍｌの三角フラスコに実施例３のイソノハナ粉末３ｇを入れ、蒸留水１５０ｍｌを加えて攪拌、これにサーモライシン１５ｍｇを添加し、６０℃で３時間保温することで、タンパク質を加水分解した。
【００７１】
反応後、この遠心チューブを沸騰水中に１０分間保持することで、熱水抽出を行った。抽出終了後直ちに氷冷し、１０,０００ｒｐｍ、１０分間の遠心分離を行い、上清を回収した。この上清のうち９０ｍｌを分画分子量３０,０００の限外濾過膜を通過させ、この液を遠心エバポレータで減圧下に乾燥させることにより１.３５ｇの固形物を得た。
【００７２】
これを１５０ｍｇ／ｍｌの濃度で蒸留水に溶解した。次に、Ｃ１８カートリッジ（ISOLUTE SPE column 500 mgC18(EC) 3ml）による分画を行った。０.１％トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）１ｍｌでカートリッジを洗浄後、上記試料０.５ｍｌを負荷し、２ｍｌの０.１％ＴＦＡでカートリッジを洗浄した。カートリッジにメタノールを０.５ｍｌ加えることで、赤色の色素を溶出した。この作業を合計１０回行なった。
【００７３】
溶出液を合わせて遠心エバポレータで減圧下にメタノールを除去し、１３ｍｇの試料を得た。この試料に含有される色素についてＨＰＬＣにより精製した。Ｃ１８逆相カラム（Symmetry C18 3.5μm 4.6×100mm、ウオーターズ社製）に負荷し、０.１％トリフルオロ酢酸を含むアセトニトリル水溶液の直線濃度勾配（流速１ｍｌ／分、０〜４０％の勾配を２０分間で行なう）により溶出した。それを図６に示す。
【００７４】
５４０ｎｍに吸収のある複数のピークを分取し、それぞれについて、遠心エバポレータで溶媒を除去した後、Ｑ−ＴＯＦ  ＬＣ／ＭＳシステム分析を行ったところ、図６のピーク１は［Ｍ＋Ｈ］＋  １０６３.５２６０、ＭＳＭＳ  プロダクト・イオン［Ｍ＋Ｈ］＋  ５８７.２８１６のデータを得た。
【００７５】
フィコエリスロビリンのモノアイソトロピック質量が５８６.２７９１１４であるので、精製した成分はフィコエリスロビリンにアミノ酸４残基程度のペプチドが結合した物質であると推定できる。
【００７６】
また、図６のピーク２は［Ｍ＋Ｈ］＋  ８５０.３７７５、ＭＳＭＳ  プロダクト・オン［Ｍ＋Ｈ］＋  ５８７.２７９５のデータを得た。フィコエリスロビリンのアイソトロピック質量が５８６.２７９１１４であるので、精製した成分はフィコエリスロビリンにアミノ酸数残基のペプチドが結合した物質であると推定できる。
【００７７】
実施例４および５で精製したフィコエリスロビリンオリゴペプチドを下記表１に整理した。
【表１】
0006617230.tif 000005
【００７８】
実  例  例  ６.
クビレオゴノリのフィコエリスロビリンオリゴペプチドのタンパク質糖化抑制
作用：
実施例４で得られた、ピークＡ１（推定分子量１２３９と１３１０のフィコエリスロビリンオリゴペプチドがおよそ２：１の量比からなる）の物質について、タンパク質糖化抑制効果を試験した。
【００７９】
本実施例では、グルコースと牛血清アルブミン（ＢＳＡ）を６０℃で３日間インキュベートすることにより糖化反応を行い、その蛍光発色を検出することによりタンパク質糖化抑制効果を評価した。
【００８０】
具体的には、ＰＢＳ（−）溶液に溶解した５０ｍｇ／ｍｌの牛血清アルブミン０.０５ｍｌ、ＰＢＳ（−）溶液に溶解した１.７Ｍブドウ糖０.１５ｍｌ、蒸留水または希釈した上記色素溶液０.０５ｍｌを１.５ｍｌのチューブに入れ、６０℃で３日間静置した。次いで、各チューブの溶液０.１ｍｌを９６穴マイクロプレートに移し、蛍光マイクロプレートリーダーにて、蛍光発生（励起波長Ｅｘ：３５５ｎｍ、蛍光波長Ｅｍ：４６０ｎｍ）を測定した。また、終濃度１ｍＭのアミノグアニジンを添加した場合についても同様の試験を行い陽性対照とした。
【００８１】
結果は下式により、タンパク質糖化抑制率（％）として算出したものを表２に示す。なお、各試料添加区は２連で、蒸留水添加区は４連で行い、それぞれの平均値を結果として記載した。
【００８２】
タンパク質糖化抑制率（％）＝
［１ − （Ａ１−ＢＬ）／ （Ａ０−ＢＬ）］×１００
Ａ１：色素溶液添加における蛍光測定値
Ａ０：蒸留水添加における蛍光測定値
ＢＬ：蒸留水添加、反応時間ゼロにおける蛍光測定値
【００８３】
【表２】
0006617230.tif 000006
【００８４】
この結果から、クビレオゴノリから得たフィコエリスロビリンオリゴペプチドはタンパク質糖化抑制効果を有することが示された。
【００８５】
実  施  例  ７.
フィコエリスロビリンオリゴペプチド含有画分のタンパク質糖化抑制作用：
実施例５の方法により、Ｃ１８カートリッジで分画した色素成分について、５０ｍｇ／ｍｌの濃度の水溶液として、タンパク質糖化抑制効果を試験した。
【００８６】
まず、ＰＢＳ（−）溶液に溶解した５０ｍｇ／ｍｌの牛血清アルブミン０.１ｍｌ、ＰＢＳ（−）溶液に溶解した１.７Ｍブドウ糖０.３ｍｌ、蒸留水または希釈した上記色素溶液０.１ｍｌを１.５ｍｌのチューブに入れ、６０℃で３日間静置した。
【００８７】
次いで、各チューブの溶液０.１ｍｌを９６穴マイクロプレートに移し、蛍光マイクロプレートリーダーにて、蛍光発生（励起波長  Ｅｘ：３５５ｎｍ、蛍光波長  Ｅｍ：４６０ｎｍ）を測定した。また、終濃度１ｍＭのアミノグアニジンを添加した場合についても同様の試験を行い陽性対照とした。
【００８８】
結果は、実施例６と同様にタンパク質糖化抑制率（％）として算出し、表３に示した。
【００８９】
【表３】
0006617230.tif 000007
【００９０】
この結果、イソノハナから得たフィコエリスロビリンオリゴペプチドを含む画分は濃度依存的にタンパク質糖化抑制効果を示すことが明らかとなった。
【図１】
0006617230.tif 000009
【図２】
0006617230.tif 000010
【図３】
0006617230.tif 000011
【図４】
0006617230.tif 000012
【図５】
0006617230.tif 000013
【図６】
0006617230.tif 000014
【配列表】
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