(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
パーキンソン病を診断する目的で、生体由来試料中の中鎖〜長鎖アシルカルニチン及び２次胆汁酸から選ばれる成分の濃度を測定する方法。
【請求項２】
中鎖〜長鎖アシルカルニチンが炭素数１２〜２０の脂肪族アシルカルニチンである請求項１記載の方法。
【請求項３】
さらに前記成分の濃度と、健常者の当該成分の濃度とを対比する工程を含む請求項１又は２記載の方法。
【請求項４】
中鎖〜長鎖アシルカルニチン及び２次胆汁酸から選ばれる成分の測定用試薬を含有するパーキンソン病診断薬。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、パーキンソン病を早期に診断する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
パーキンソン病（Ｐａｒｋｉｎｓｏｎ’ｓ  ｄｉｓｅａｓｅ：以下ＰＤ）は我が国で２番目に多い神経変性疾患で、進行性の運動障害に加え、非運動症状（認知機能低下、精神症状、自律神経症状）などが経年的に進行し、多大な医療・介護負担のため深刻な社会的資産の毀損を招来する。本疾患では、８０％程度の症例が明確な遺伝学的背景を持たない「孤発性」症例であるため、ゲノムＤＮＡを用いた遺伝子診断は全症例で有用とはいえない。また頭部ＭＲＩ検査では病初期から末期まで疾患特異的で鑑別診断価値の高い変化は同定・確立されておらず、他の核医学検査でも心筋ＭＩＢＧシンチグラフィー（ＰＤに生じる交感神経脱落をノルエピネフリン類似物質ＭＩＢＧの取り込み低下により評価する方法で中期以降のＰＤ診断に有効とされる）、ＤＡＴ（ドパミントランスポーター）スキャン（黒質−線条体路の神経変性によるドパミン神経終末低下をモニタリングするため、類縁神経変性疾患鑑別に有用性は明確に確立されていない）など、６万円以上の費用を要する高価な検査が一定の診断効率上昇の効果を認めるのみである。
さらに、パーキンソン病診断手段として、αアドレナリン受容体作動薬含有点眼剤と、ノルアドレナリン再取り込み阻害薬及び／又はノルアドレナリン放出薬含有点眼剤とを用いた診断薬（特許文献１）、神経栄養因子である血液中のＮＲＧ１タイプIIIの濃度を測定する方法（特許文献２）、脳脊髄液サンプル中の可溶性α−シヌクレインオリゴマー量を測定する方法（特許文献３）、皮膚ガス又は汗中のベンジルアルコール等の量を測定する方法（特許文献４）が報告されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特開２００５−１６２６９３号公報
【特許文献２】特開２０１３−１８１８２３号公報
【特許文献３】特表２０１３−５０４７６６号公報
【特許文献４】特開２０１５−５５６２０号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
しかしながら、従来の手段では、症状が進行した後でなければ診断できない、高価な検査が必要である、脳脊髄液をサンプルとする等の問題があり、超早期、早期から鑑別診断可能な簡易診断マーカー（以下、ＢＭ）が望まれていた。
従って、本発明の課題は、早期から鑑別診断可能な簡易診断マーカーを提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００５】
そこで本発明者は、測定が容易な血中成分に着目し、血漿代謝産物の網羅的解析を行ったところ、中鎖〜長鎖アシルカルニチン及び２次胆汁酸から選ばれる成分の濃度が、ＰＤ発症の初期から健常者やアルツハイマー病の患者に比べて大きく変化することから、これらの成分を測定すれば、ＰＤが早期に診断可能となることを見出し、本発明を完成した。
【０００６】
すなわち、本発明は、次の〔１〕〜〔４〕を提供するものである。
【０００７】
〔１〕パーキンソン病を診断する目的で、生体由来試料中の中鎖〜長鎖アシルカルニチン及び２次胆汁酸から選ばれる成分の濃度を測定する方法。
〔２〕中鎖〜長鎖アシルカルニチンが炭素数１２〜２０の脂肪族アシルカルニチンである〔１〕記載の方法。
〔３〕さらに前記成分の濃度と、健常者の当該成分の濃度とを対比する工程を含む〔１〕又は〔２〕記載の方法。
〔４〕中鎖〜長鎖アシルカルニチン及び２次胆汁酸から選ばれる成分の測定用試薬を含有するパーキンソン病診断薬。
【発明の効果】
【０００８】
本発明方法によれば、血液等の容易に採取できる試料を用いて、前記マーカー濃度を測定するだけで、早期にパーキンソン病をアルツハイマー病等の他の神経変性疾患と区別して診断することができる。病状が進行する前に診断し、的確な治療を行えば、パーキンソン病進行をくいとめることができる。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】代謝化合物群のクラスター解析結果を示す図である。
【図２】アシルカルニチン（ＡＣ）主成分の解析結果を示す。
【図３】アシルカルニチン（ＡＣ）と遊離脂肪酸（ＦＡ）の代謝概要を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
本発明は、パーキンソン病を診断する目的で、生体試料中の中鎖〜長鎖アシルカルニチン及び２次胆汁酸から選ばれる成分の濃度を測定する方法である。
【００１１】
本発明に用いられる生体由来試料としては、前記成分が含まれている試料であればよいが、前記成分は、血液中に存在することが知られている成分であるから、血液が好ましく、血漿がより好ましい。
【００１２】
中鎖〜長鎖アシルカルニチンとしては、炭素数１２〜２０の脂肪族アシルカルニチンが挙げられる。ここで、脂肪族アシル基には、飽和又は不飽和脂肪族アシル基が含まれる。具体的には、炭素数１２〜２０の飽和又は不飽和脂肪酸由来のアシル基により、ヒドロキシ基がアシル化されたカルニチンが挙げられる。
【００１３】
２次胆汁酸としては、デオキシコール酸が挙げられる。
【００１４】
中鎖〜長鎖アシルカルニチン及び２次胆汁酸の濃度は、例えばキャピラリー電気泳動・質量分析器、液体クロマトグラフィー・質量分析器、質量分析器・質量分析器（タンデム質量分析器）等により測定することができる。
【００１５】
後記実施例に示すように、ＰＤ患者の中鎖〜長鎖アシルカルニチン濃度は、健常者及びアルツハイマー病患者のそれと比較して有意に低下していた。一方、ＰＤ患者の短鎖アシル（炭素数４）カルニチン濃度は、健常者のそれに比べて有意に上昇していた。
【００１６】
中鎖〜長鎖アシルカルニチン濃度は、骨格筋でのミトコンドリア代謝を反映するとされる（ＵＫ：ＣＡＢＩ；２０１４：１５７−１７０）。肥満度の指標となるＢｏｄｙ  ｍａｓｓ  ｉｎｄｅｘは、後記実施例に示すように対照群に比し低値を示したため、ＰＤ患者では痩身傾向が強いことが示唆されるが、骨格筋量を正確に反映する骨格筋由来代謝産物の各群間での検討では、クレアチニン、カルニチン、クレアチン、３−メチルヒスチジンについて有意な変化を認めなかった。以上からＰＤ群における中鎖〜長鎖アシルカルニチン濃度の低下は骨格筋量変化によるとは考えられないと判断した。
さらに、ＰＤ群でのみ脂肪酸β酸化活性指標がいずれも高値を示した。カルニチン／アシルカルニチン（１６：０）比はミトコンドリア外でアシルＣｏＡをアシルカルニチンに変換するｃａｒｎｉｔｉｎｅ  ｐａｌｍｉｔｏｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ  Ｉ（ＣＰＴ−Ｉ）の活性と逆相関し（Ｄｉａｂｅｔｅｓ  ｃａｒｅ  ２０１２：３５（３）：６０５−６１１）、同指標が高い場合はＣＰＴ−Ｉ活性が低下していることを示す。またアシルカルニチン（８：０）／アシルカルニチン（１６：０）比は後期脂肪酸・酸化の活性と逆相関し、アシルカルニチン（１４：１）／アシルカルニチン（１６：０）比は初期脂肪酸・酸化活性（特にインプットの活性）と逆相関する（Ｏｂｅｓｉｔｙ  ２０１０：１８（９）：１６９５−１７００）。上記３比率がいずれもＰＤ群においてのみ高値を示すことから、ＰＤでは同活性が低下していることを示す。また中鎖〜長鎖アシルカルニチン群の一貫した低下傾向が脂肪酸・酸化にて費消される中間材料の減少を示しているにもかかわらず脂肪酸・酸化最終代謝産物に近いアシルカルニチン（４：０）は上昇している所見は、脂肪酸・酸化活性低下と一致する。また、ミトコンドリア脂肪酸・酸化の原材料は血中遊離脂肪酸（ｆａｔｔｙ  ａｃｉｄ、以下ＦＡ）である。ミトコンドリア脂肪酸・酸化にて分解される炭素数２２以下の遊離脂肪酸は概ね上昇傾向にあった。これらからミトコンドリア脂肪酸・酸化機能の低下により、ミトコンドリアにおいて分解されるべき遊離脂肪酸が貯留しているという論理的な解釈が成立すると考えられる。
続いて中鎖〜長鎖アシルカルニチンとＰＤ疾患重症度との相関について検討した。一般的にＰＤ重症度の評価には生活機能評価より構成されるＨｏｅｈｎ  ａｎｄ  Ｙａｈｒ分類が利用される。ＰＤ群１０９例の症例群はＩ度２６名、II度５２名、III度２１名、IV度９名、Ｖ度１名であった。最も重要な点は、Ｈ＆Ｙ  Ｉ−ＩＩＩ度についてはアシルカルニチン（１２：０）、アシルカルニチン（１３：１）、アシルカルニチン（１４：０）、アシルカルニチン（１６：０）、アシルカルニチン（１６：１）、アシルカルニチン（１８：０）、アシルカルニチン（１８：１）、アシルカルニチン（１８：２）、アシルカルニチン（２０：１）が全て対照群に比し有意差を持って低値を示し、かつ、Ｈ＆Ｙ  Ｉ−IV度においてアシルカルニチン（１６：０）、アシルカルニチン（１８：０）が有意な低値を示したことである。即ち中鎖〜長鎖アシルカルニチン群は疾患重症度との相関は認められないものの、病初期から低下することが明らかとなった。
【００１７】
また、ＰＤ群で２次胆汁酸であるデオキシコール酸（以下ＤＣＡ）が上昇（ＰＤＤ群でも上昇）し、２次胆汁酸にタウリン・グリシン等による結合修飾を受けた４化合物（タウロコール酸（以下ＴＣＡ）、グリコウルソデオキシコール酸（以下ＧＵＤＣＡ）、タウロケノデオキシコール酸（以下ＴＣＤＣＡ）、グリコケノデオキシコール酸（以下ＧＣＤＣＡ））の低下を認めた。ＤＣＡは２次胆汁酸であり、ＴＣＤＣＡやＧＣＤＣＡの原料となる。ＴＣＤＣＡ、ＧＣＤＣＡは腸内細菌Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ  ｐｅｒｆｒｉｇｅｎｓおよびＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｊｏｈｎｓｏｎｉｉによって産生されることから、ＰＤにおけるＤＣＡおよびＴＣＤＣＡ、ＧＣＤＣＡ濃度の変化は腸内細菌巣の変化を示唆しており、２０１５年に報告されたＰＤ患者の腸内フローラ変化に一致する。同変化はアルツハイマー病群では認められておらず、アルツハイマー病との鑑別診断ＢＭとしての有用性が示唆された。
【００１８】
以上のように、被検者の生体試料中の中鎖〜長鎖アシルカルニチン濃度及び／又は２次胆汁酸濃度を、健常者及び／又はアルツハイマー病患者のそれと対比することにより、ＰＤが早期に診断できる。
【００１９】
本発明においては、中鎖〜長鎖アシルカルニチン又は２次胆汁酸濃度は、液体クロマトグラフィー・質量分析器によって測定できることから、これを測定するための試薬は、パーキンソン病診断薬として有用である。
【実施例】
【００２０】
次に実施例を挙げて本発明を詳細に説明する。
【００２１】
実施例１
表１に示す患者群（対照群をｃｏｎｔｒｏｌ、認知症を伴うＰＤ群をＰＤＤ、アルツハイマー型認知症群をＡＤと表記する）において、キャピラリー電気泳動・質量分析器、および液体クロマトグラフィー・質量分析器の両装置を用いて、血漿代謝産物の網羅的解析を行い、ＰＤ早期診断に資するバイオマーカー同定を試みた。血漿代謝産物は食餌・運動に影響を受けやすいことから、採血前日の２１時より絶食（飲水・内服は可能）とし、採血当日は９〜１２時に血液採取・血漿抽出を行い、液体窒素中に保存し、抽出後３ヶ月以内に本解析を行った。
【００２２】
〔サンプル調整について〕
１）キャピラリー電気泳動・質量分析器用
内部標準物質の濃度が１０μＭになるように調製した４５０ｍＬのメタノール溶液に、５０μＬのヒト血漿を添加して撹拌した。これに５００μＬのクロロホルムおよび２００μＬのＭｉｌｌｉ−Ｑ水を加えて撹拌し、遠心分離（２，３００×ｇ，４℃，５分）を行った。遠心分離後、水層を限外ろ過チューブ（ウルトラフリーＭＣ  ＰＬＨＣＣ，ＨＭＴ，遠心式フィルターユニット  ５ｋＤａ）に４００μＬ×１本移し取った。これを遠心（９，１００×ｇ，４℃，１２０分）し、限外ろ過処理を行った。ろ液を乾固させ、再び２５μＬのＭｉｌｌｉ−Ｑ水に溶解して測定に供した。
【００２３】
２）液体クロマトグラフィー質量分析器用
内部標準物質の濃度が６ｍＭとなるように調製した１，５００ｍＬの１％ギ酸−アセトニトリル溶液に、５００ｍＬのヒト血漿を添加して撹拌した。その後、遠心分離（２，３００×ｇ，４℃，５分）を行い、上清を回収し、固相抽出を用いてリン脂質を除去後、ろ液を回収した。これを乾固させ、２００ｍＬの５０％イソプロパノール溶液（ｖ／ｖ）に溶解して測定に供した。
〔測定について〕
１）ＣＥ−ＴＯＦＭＳ  測定
本試験ではカチオンモード、アニオンモードのＣＥ−ＴＯＦＭＳ測定を以下に示す条件１−３）で行った。得られたピーク強度、形状から判断して、カチオンモードでの測定には２倍（ＰＤ６９のみ５倍）、アニオンモードでの測定には５倍に希釈した試料を用いた。
・陽イオン性代謝物質（カチオンモード）
装置
Agilent CE-TOFMS system（Agilent Technologies 社） 6 号機
Capillary : Fused silica capillary i.d. 50 μm × 80 cm
測定条件
Run buffer : Cation Buffer Solution (p/n : H3301-1001)
Rinse buffer : Cation Buffer Solution (p/n : H3301-1001)
Sample injection : Pressure injection 50 mbar, 10 sec
CE voltage : Positive, 27 kV
MS ionization : ESI Positive
MS capillary voltage : 4,000 V
MS scan range : m/z 50-1,000
Sheath liquid : HMT Sheath Liquid (p/n : H3301-1020)
【００２４】
・陰イオン性代謝物質（アニオンモード）
装置
Agilent CE-TOFMS system（Agilent Technologies 社） 5 号機
Capillary : Fused silica capillary i.d. 50 μm × 80 cm
測定条件
Run buffer : Anion Buffer Solution (p/n : I3302-1023)
Rinse buffer : Anion Buffer Solution (p/n : I3302-1023)
Sample injection : Pressure injection 50 mbar, 25 sec
CE voltage : Positive, 30 kV
MS ionization : ESI Negative
MS capillary voltage : 3,500 V
MS scan range : m/z 50-1,000
Sheath liquid : HMT Sheath Liquid (p/n : H3301-1020)
【００２５】
２）ＬＣ−ＴＯＦＭＳ  測定
本試験では、ポジティブモード、ネガティブモードのＬＣ−ＴＯＦＭＳ測定を以下に示す条件で行った。得られたピーク強度から判断して、注入量を１μＬとした。
陽イオン性代謝物質（ポジティブモード）
装置
LC system : Agilent 1200 series RRLC system SL（Agilent Technologies 社）
Column : ODS column, 2×50 mm, 2μm
MS system : Agilent LC/MSD TOF（Agilent Technologies 社）4 号機
測定条件
Column temp. : 40℃
Mobile phase : A : H2O / 0.1% HCOOH
Mobile phase : B : Isopropanol: Acetonitrile: H2O (65:30:5) / 0.1% HCOOH, 2mM HCOONH4
Flow rate : 0.3 mL / min
Run time : 20 min
Post time : 6 min
Gradient condition : 0-0.5 min : B 1%, 0.5-13.5 min : B 1-100%, 13.5-20 min : B 100%
MS ionization mode : ESI Positive
MS Nebulizer pressure : 40 psi
MS dry gas flow : 10 L / min
MS dry gas temp : 350℃
MS capillary voltage : 4,000 V
MS scan range : m/z 100-1,700
陰イオン性代謝物質（ネガティブモード）
装置
LC system : Agilent 1200 series RRLC system SL（Agilent Technologies 社）
Column : ODS column, 2×50 mm, 2 μm
MS system : Agilent LC/MSD TOF（Agilent Technologies 社）4 号機
測定条件
Column temp. : 40℃
Mobile phase : A : H2O / 0.1% HCOOH
Mobile phase : B : Isopropanol: Acetonitrile: H2O (65:30:5) / 0.1% HCOOH, 2 mM HCOONH4
Flow rate : 0.3 mL / min
Run time : 20 min
Post time : 6 min
Gradient condition : 0-0.5 min : B 1%, 0.5-13.5 min : B 1-100%, 13.5-20 min : B 100%
MS ionization mode : ESI Negative
MS Nebulizer pressure : 40 psi
MS dry gas flow : 10 L / min
MS dry gas temp : 350℃
MS capillary voltage : 4,000 V
MS scan range : m/z 100-1,700
【００２６】
【表１】
0006573394.tif 000002
【００２７】
図１は、各疾患群を横軸に、縦軸に代謝産物を配置し、疾患特異的な代謝化合物群の検索を行う「クラスター解析」結果を示す。黒点線で示す領域はＰＤ群で低下傾向を示しており、同領域に含まれるのは図右端に示すように中鎖〜長鎖アシルカルニチン（ａｃｙｌｃａｒｎｉｔｉｎｅ、以下ＡＣ）が１６化合物中１５化合物を占めた。本結果を多面的に検証すべく、主成分解析（ｐｒｉｎｃｉｐｌｅ  ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ  ａｎａｌｙｓｉｓ）を行ったところ、ＰＤ群と対照群を効果的に区別できる軸（ＰＣ３）を同定し、同軸への貢献度の高い化合物は図右端に示すように１５化合物中１４化合物を中鎖〜長鎖ＡＣが占めた（図２）。同１４化合物全てが先述のクラスター解析で同定されたＡＣに含まれていた。それぞれのＡＣ濃度についてＰＤと対照群との有意差を検討したところ、表２のように１４個のＡＣがＰＤ群で有意に低下し、短鎖のＡＣ（４：０）はコントロール群に比しＰＤ群で有意に上昇していた。
【００２８】
【表２】
0006573394.tif 000003
【００２９】
アシルカルニチン群以外に本網羅的解析により、ＰＤ群で２次胆汁酸であるｄｅｏｘｙｃｈｏｌｉｃ  ａｃｉｄ（以下ＤＣＡ）が上昇（ＰＤＤ群でも上昇）し、２次胆汁酸にタウリン・グリシン等による結合修飾を受けた４化合物（ｔａｕｒｏｃｈｏｌｉｃ  ａｃｉｄ（以下ＴＣＡ）、ｇｌｙｃｏｕｒｓｏｄｅｏｘｙｃｈｏｌｉｃ  ａｃｉｄ（以下ＧＵＤＣＡ）、ｔａｕｒｏｃｈｅｎｏｄｅｏｘｙｃｈｏｌｉｃ  ａｃｉｄ（以下ＴＣＤＣＡ）、ｇｌｙｃｏｃｈｅｎｏｄｅｏｘｙｃｈｏｌｉｃ  ａｃｉｄ（以下ＧＣＤＣＡ））の低下を認めた（表３）。ＤＣＡは２次胆汁酸であり、ＴＣＤＣＡやＧＣＤＣＡの原料となる。ＴＣＤＣＡ、ＧＣＤＣＡは腸内細菌Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ  ｐｅｒｆｒｉｇｅｎｓおよびＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｊｏｈｎｓｏｎｉｉによって産生されることから、ＰＤにおけるＤＣＡおよびＴＣＤＣＡ、ＧＣＤＣＡ濃度の変化は腸内細菌巣の変化を示唆しており、２０１５年に報告されたＰＤ患者の腸内フローラ変化に一致する。同変化はＡＤ群では認められておらず、ＡＤとの鑑別診断バイオマーカーとしての有用性が示唆された。
【００３０】
【表３】
0006573394.tif 000004
【００３１】
中鎖〜長鎖アシルカルニチン群についてのさらなる検討について述べる。中鎖〜長鎖アシルカルニチン群は骨格筋でのミトコンドリア代謝を反映するとされる。肥満度の指標となるＢｏｄｙ  ｍａｓｓ  ｉｎｄｅｘは、表１に示すように対照群に比しＰＤ／ＰＤＤ／ＡＤでも対照群に比し低値を示したため、ＰＤ患者では痩身傾向が強いことが示唆されるが、骨格筋量を正確に反映する骨格筋由来代謝産物の各群間での検討では、表４に示すようにクレアチン、カルニチン、クレアチン、３−メチルヒスチジンについて有意な変化を認めなかった。以上からＰＤ群における中鎖〜長鎖アシルカルニチン群の低下は骨格筋量変化によるとは考えられないと判断した。
【００３２】
【表４】
0006573394.tif 000005
【００３３】
さらに、表５に示すようにＰＤ群でのみ脂肪酸・酸化活性指標がいずれも高値を示した。同変化を理解する上で、図３に示すミトコンドリア脂肪酸・酸化の知識が不可欠となる。
【００３４】
【表５】
0006573394.tif 000006
【００３５】
カルニチン／アシルカルニチン（１６：０）比はミトコンドリア外でアシルＣｏＡをアシルカルニチンに変換するｃａｒｎｉｔｉｎｅ  ｐａｌｍｉｔｏｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ  Ｉ  （ＣＰＴ−Ｉ）の活性と逆相関し、同指標が高い場合はＣＰＴ−Ｉ活性が低下していることを示す。またアシルカルニチン（８：０）／アシルカルニチン（１６：０）比は後期脂肪酸・酸化の活性と逆相関し、アシルカルニチン（１４：１）／アシルカルニチン（１６：０）比は初期脂肪酸・酸化活性（特にインプットの活性）と逆相関する。上記３比率がいずれもＰＤ群においてのみ高値を示すことから、ＰＤでは同活性が低下していることを示す。また中鎖〜長鎖アシルカルニチン群の一貫した低下傾向が脂肪酸・酸化にて費消される中間材料の減少を示しているにもかかわらず脂肪酸・酸化最終代謝産物に近いアシルカルニチン（４：０）は上昇している所見は、脂肪酸・酸化活性低下と一致する。また、図３概略図に示すようにミトコンドリア脂肪酸・酸化の原材料は血中遊離脂肪酸（ｆａｔｔｙ  ａｃｉｄ、以下遊離脂肪酸）である。本網羅的解析では表６のように、ミトコンドリア脂肪酸・酸化にて分解される炭素数２２以下の遊離脂肪酸（表６における着色したセル）は概ね上昇傾向にあった。
【００３６】
【表６】
0006573394.tif 000007
【００３７】
これらからミトコンドリア脂肪酸・酸化機能の低下により、ミトコンドリアにおいて分解されるべき遊離脂肪酸が貯留しているという論理的な解釈が成立すると考えられる。
【００３８】
続いて中鎖〜長鎖アシルカルニチンとＰＤ疾患重症度との相関について検討した。表７に示すように、一般的にＰＤ重症度の評価には生活機能評価より構成されるＨｏｅｈｎ  ａｎｄ  Ｙａｈｒ分類が利用される。
【００３９】
【表７】
0006573394.tif 000008
【００４０】
ＰＤ群１０９例の症例群に示すようにＩ度２６名、II度５２名、III度２１名、IV度９名、Ｖ度１名であった。最も重要な点は、Ｈ＆Ｙ  Ｉ−III度についてはアシルカルニチン（１２：０）、アシルカルニチン（１３：１）、アシルカルニチン（１４：０）、アシルカルニチン（１６：０）、アシルカルニチン（１６：１）、アシルカルニチン（１８：０）、アシルカルニチン（１８：１）、アシルカルニチン（１８：２）、アシルカルニチン（２０：１）が全て対照群に比し有意差を持って低値を示し、かつ、Ｈ＆Ｙ  Ｉ−ＩＶ度においてアシルカルニチン（１６：０）、アシルカルニチン（１８：０）が有意な低値を示したことである。即ち中鎖〜長鎖アシルカルニチン群は疾患重症度との相関は認められないものの、病初期から低下することが明らかとなった（表８）。コントロール群に比しPD群にて有意に減少していた上記のアシルカルニチンを判別分析（統計ソフトウェアJMP11, SAS Institute Inc, 2014を使用）にて検討すると、ＡＵＣ＝０．９７２８，Ｒ２＝０．５８９７であり、表８（判別分析）に示すような優れた診断的意義を持つことが示された（表９）。
【００４１】
【表８】
0006573394.tif 000009
【００４２】
【表９】
0006573394.tif 000010
【図１】
0006573394.tif 000011
【図２】
0006573394.tif 000012
【図３】
0006573394.tif 000013