(57)【要約】  エキセンジン類似体の構造中の任意のアミノ基を部位特異的に一置換することによって得られるＰＥＧ化化合物、その調製方法、およびその使用が開示される。本発明では、安定な保護基Ｄｄｅ（Ｎ−α−１−（４，４−ジメチル−２，６−ジオキソシクロヘキシ−１−イリデン）エチル）が使用され、その結果、不安定な保護基の使用によって引き起こされる多置換副反応を回避することができ、低い反応モル比で高収率のモノＰＥＧ化エキセンジン類似体の調製を実現することができる。【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下のステップ：
（１）エキセンジン類似体のペプチド原料を合成するステップであって、ペプチドのリシン残基の一部は、Ｎ−α−１−（４，４−ジメチル−２，６−ジオキソシクロヘキシ−１−イリデン）エチルであるＤｄｅによって保護されているステップと、
（２）ステップ（１）に記載のペプチド原料をアルカリ性有機溶媒中でＰＥＧ誘導体と反応させて、Ｄｄｅ保護基を有していないＬｙｓ残基をポリエチレングリコール基と結合させるステップと、
（３）ステップ（２）で製造された生成物の保護基を除去し、前記生成物を単離、精製して、ＰＥＧ化エキセンジン類似体を得るステップと
を含む、ＰＥＧ化エキセンジン類似体を調製するための方法。
【請求項２】
前記ペプチド材料が、ただ１つの位置のＤｄｅによって保護されていないＬｙｓ残基を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記ペプチド原料において、Ｎ末端がＤｄｅまたはＦｍｏｃによって保護されており、Ｆｍｏｃが９−フルオレニル−メトキシカルボニルである、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
前記ペプチド原料が以下の構造：
（Ｘ）Ｈｉｓ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｌｅｕ−Ｓｅｒ−Ｙ1−Ｇｌｎ−Ｚ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｖａｌ−Ｙ2−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｉｌｅ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−Ｙ3−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｙ4、
（式中、ＸはＦｍｏｃまたはＤｄｅであり、ＺはＬｅｕまたはＩｌｅであり、Ｙ1〜Ｙ4はＬｙｓまたは（Ｄｄｅ）Ｌｙｓであり、Ｙ1〜Ｙ4の少なくとも１つはＬｙｓである）
を有する、請求項１に記載の方法。
【請求項５】
Ｙ1〜Ｙ4において、Ｙ2〜Ｙ4のうちの１つだけがＬｙｓであり、残りが（Ｄｄｅ）Ｌｙｓである、請求項４に記載の方法。
【請求項６】
Ｙ2がＬｙｓであり、Ｙ1、Ｙ3、およびＹ4が（Ｄｄｅ）Ｌｙｓである、請求項５に記載の方法。
【請求項７】
請求項１から６の一項に記載の方法に従って調製した、ＰＥＧ化エキセンジン類似体。
【請求項８】
以下の配列構造：
Ｈｉｓ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｌｅｕ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｇｌｎ−Ｚ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｖａｌ−Ｌｙｓ−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｉｌｅ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−Ｌｙｓ−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ、
（式中、ＺはＬｅｕまたはＩｌｅであり、前記構造において、１つのＬｙｓ残基のアミノ基がポリエチレングリコールに結合されている）
を有する、ＰＥＧ化エキセンジン類似体。
【請求項９】
Ｌｙｓ20残基またはＬｙｓ27残基がポリエチレングリコールに結合している、請求項８に記載のＰＥＧ化エキセンジン類似体。
【請求項１０】
請求項７から９に記載のエキセンジン類似体の、糖尿病を治療するための使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
概要
本発明は、部位特異的モノＰＥＧ化エキセンジン類似体、調製方法、および薬学的使用に関する。
【背景技術】
【０００２】
１９６０年代に、ＭｃｌｎｔｙｒｅおよびＥｌｒｉｃｋらは、グルコースを経口投与すると、静脈内注入するよりもはるかに大きなインスリン応答が誘導されるという「インクレチン効果」を発見した。Ｐｅｒｌｅｙらによって行われた別の研究により、この「インクレチン効果」が、食後のインスリン放出の５０％超を構成することが実証された。１９８６年に、Ｎａｕｃｋらが、２型糖尿病（Ｔ２ＤＭ）患者では「インクレチン効果」が低下していることを発見した。このことから、インクレチン系の異常がＴ２ＤＭの病因の１つであり得ることが示唆された。
【０００３】
インクレチンは、ＧＬＰ−１およびグルコース依存性インスリン分泌刺激ペプチド（ＧＩＰ）を含めて、消化管に由来しグルコースレベルに依存するホルモンであり、食後のインスリン分泌を刺激することができる。ＧＬＰ−１は、Ｔ２ＤＭの治療戦略の開発において、より重要な役割を果たすと思われる。ＧＬＰ−１は、インスリン分泌を促進して血糖値を管理し、同時に、膵島β細胞の増殖を刺激し、β細胞のアポトーシスを防止し、グルカゴン放出、胃腸運動、および胃液分泌を抑制し、胃内容排出を遅延させ、満腹をもたらし、食欲を抑える。しかし、ＧＬＰ−１は、ｉｎ  ｖｉｖｏではＤＰＰ−ＩＶによって急速に分解され、半減期は１〜２分と短い。その結果として、その用途および開発は限定されている。
【０００４】
トカゲのＨｅｌｏｄｅｒｍａ  ｓｕｓｐｅｃｔｕｍの唾液から単離されるエキセンジン−４は、３９個のアミノ酸を有するＧＬＰ−１類似体であり、ＧＬＰ−１との相同性は５３％である。これは、ＧＬＰ−１と同様にＧＬＰ−１受容体に結合して、Ｔ２ＤＭを治療するためにインスリン分泌を刺激し、空腹を軽減し、食後の血中グルコースを低下させることができる。ＧＬＰ−１のＮ末端から２番目のアミノ酸残基はアラニンであり、エキセンジン−４ではこれがグリシンに置換されている。これにより、ｉｎ  ｖｉｖｏでのジペプチダーゼ（ＤＰＰ−ＩＶ）による分解に対する耐性が与えられて、半減期が１〜２分から２〜４時間に延びる。それゆえに、これは、１日２回投与される収載製品（ｌｉｓｔｅｄ  ｐｒｏｄｕｃｔ）に開発された（Ｂｙｅｔｔａ、Ａｍｙｌｉｎ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）。
【０００５】
しかし、頻回の注射により患者のコンプライアンスは低いため、徐放性剤形に関する飽くなき研究が行われている。例えば、リラグルチド（ＮＮ−２２１１）がＮｏｖｏ  Ｎｏｒｄｉｓｋによって開発され、１日１回投与され、Ｅｘｅｎａｔｉｄｅ  ＬＡＲ（ＰＬＧＡマイクロスフェア）がＡｍｙｌｉｎによって開発され、毎週１回投与されている。したがって、長時間作用製剤または非注射製剤が、研究および開発のトレンドとなっている。
【０００６】
長時間作用性治療用ペプチド／タンパク質に関して最も広く研究され使用されている医薬製剤技術は、ＰＥＧ化である。活性化ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）誘導体は、治療用タンパク質上の特定の接近可能なアミノ酸残基と反応して、新しい分子を形成する。最もよく研究され広く使用されている医用長時間作用性ペプチド／タンパク質技術は、ペグ化技術である。この技術により、活性化ポリエチレングリコール試薬とペプチドまたはタンパク質上の特定のアミノ酸残基との反応によって、新しい分子を形成することができる。１種の水溶性高分子としてのポリエチレングリコールは、タンパク質／ペプチドに次の特徴を与えた可能性がある：（１）薬物溶解性の向上、（２）免疫原性の低下、（３）腎クリアランスの減少に起因する血中半減期の延長。これらの特徴は、薬物作用の延長および患者のコンプライアンスの改善に寄与する。
【０００７】
一般に、ＰＥＧ化技術は、活性化ＰＥＧ誘導体をペプチドまたはタンパク質上の活性残基（活性の順に、メルカプト、アミノ、カルボキシなど）と反応させて、安定な化学結合を有するＰＥＧ化生成物を形成させる。しかし、多数の反応性残基が存在するため、異なる残基がＰＥＧ化された様々なモノＰＥＧ化生成物の混合物が生じる。さらに、ＰＥＧのモル比が高く、かつ反応が継続される状況では、マルチＰＥＧ化化合物が形成される場合があり、このことは、ｉｎ  ｖｉｖｏでの薬物の活性および有効性に大いに影響を及ぼし得る。さらに、マルチＰＥＧ化生成物の品質管理は困難である。したがって、ＰＥＧ化された市販薬は、基本的にはモノＰＥＧ化されたものである。
【０００８】
モノＰＥＧ化の位置は、ペプチド薬またはタンパク質薬の活性に大いに影響を及ぼすため、最良の任意選択の活性部位を有するモノＰＥＧ化生成物を調製することが必要である。
【０００９】
部位特異的ＰＥＧ化の既存技術は、以下の２つのタイプを含む。
【００１０】
１つ目は、構造体上の反応性残基の数を管理するものである。広く使用されている手法は、最良の任意選択の位置で変異させるもの、または合成プロセスでシステインを付加し、続いて、メルカプト反応性ＰＥＧ誘導体（ＰＥＧ化マレイミドアミンなど）をシステインに結合させるものである。しかし、ｉ）この方法は、薬物の構造を変化させて、薬物の有効性および毒性を不明確にしてしまい、ｉｉ）システインは容易に酸化され得るため、システインの導入は、タンパク質の安定性に影響を及ぼす可能性がある。他の手法は、リシンのアミノ基をＰＥＧ化部位と考え、反応させる必要のある特定のリシン以外のリシンをアルカリ性アルギニンで置換する。この手法もまた、構造変化が原因で、医薬品の有効性および毒性に大いに影響を及ぼす。本出願の発明者は、このような構造変化が治療用ペプチドの効果を大きく変えることを実験によって実証した。
【００１１】
２つ目は、酸性条件でポリエチレングリコールプロピオンアルデヒド誘導体を用いて、Ｎ末端アミノ基を修飾するものである。数名の研究者が、Ｎ末端アミノ基のｐＫａはリシン残基のアミノ基より小さい、すなわちアルカリ性の性質が強いことを見出している。したがって、リシンのアミノ基を用いたＰＥＧ化はアルカリ性条件（ｐＨ７〜８）で実施される必要があるのに対し、Ｎ末端アミノ基の場合は、リシンのアミノ基が反応しない酸性条件（ｐＨ５〜６）で実施される必要がある。したがって、数名の研究者が、酸性条件下でのＮ末端アミノ基の部位特異的ＰＥＧ化を提唱した。しかし、この手法には２つの欠点がある。１つ目は、活性部位がＮ末端にある場合には適用できないことであり、２つ目は、ＰＥＧ誘導体のモル比を最大５または１０とした場合、回収率は５０％〜６０％にすぎず、その結果、コストが高くなり製造が不可能になることである。
【００１２】
システインがない場合、部位特異的ＰＥＧ化によってエキセンジン−４類似体を修飾するためにＰＥＧマレイミドを使用することができず、また、Ｎ末端活性部位（Ｂｒｉｔｉｓｈ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ、２００３、１４０、３３９〜３４６を参照されたい）は、ポリエチレングリコールプロピオンアルデヒドを用いたＮ末端部位特異的ＰＥＧ化に対応することができない。
【００１３】
エキセンジン−４類似体は、最大で４個のリシン、Ｎ末端アミノ基を含む場合は合計５個の潜在的な反応部位を含む。したがって、ポリエチレングリコールスクシンイミジル誘導体が、エキセンジン−４類似体の側鎖のアミノ基を修飾するのに使用される場合、このプロセスにより、マルチＰＥＧ化生成物およびモノＰＥＧ化生成物の混合物が必然的に生成されているとする。混合物のうちで、１種の化合物のみが、最良の活性な目標生成物である。
【００１４】
Ｙｏｕｎらは、Ｆｍｏｃ（９−フルオレニルメトキシカルボニル）を用いて、反応に関与することが望ましくないアミノ基を保護するための方法を提唱した（Ｂｉｏｃｏｍｊｕｇａｔｅ  Ｃｈｅｍ、２００７、１８，５００〜５０６）。しかし、この手法にはかなり不都合な点がある。すなわち、Ｆｍｏｃ保護基は、アルカリ性環境で非常に脱落しやすい点である。実際に、ペプチド合成に関する多くの実験では、Ｆｍｏｃ保護基を除去するために塩基（２０％ピペリジン）を使用する。エキセンジン−４類似体中のアミノ基のＰＥＧ化は、ある種のアルカリ性条件で起こりうる。これらの矛盾する状況によって、Ｆｍｏｃによって保護されているペプチドがアルカリ性条件でＰＥＧ化修飾される場合、Ｆｍｏｃは非常に脱落しやすく、必然的に、かなりの量のマルチＰＥＧ化副産物が生成される。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１５】
したがって、部位特異的モノＰＥＧ化エキセンジン−４類似体を調製するための方法を提供することが必要である。
【課題を解決するための手段】
【００１６】
詳細な説明
本発明は、部位特異的モノＰＥＧ化エキセンジン類似体を調製するための方法、および記載した方法によって調製される部位特異的モノＰＥＧ化エキセンジン類似体を提供するものである。
【００１７】
記載した本発明の目的を実現するために、本発明は、以下のステップ：
（１）エキセンジン−４類似体のペプチド原料を合成するステップであって、
ペプチドの一部のリシン残基を、保護基のＤｄｅによって保護し、ここで、Ｄｄｅは、Ｎ−α−１−（４，４−ジメチル−２，６−ジオキソシクロヘキシ−１−イリデン）エチル（Ｎ−α−１−（４，４−ｄｉｍｅｔｈｙｌ−２，６−ｄｉｏｘｏｃｙｃｌｏｈｅｘ−１−ｙｌｉｄｅｎｅ）ｅｔｈｙｌ）であるステップ、
（２）ペプチド材料とポリエチレングリコール試薬との反応をアルカリ性有機溶媒中で行い、Ｄｄｅを有していないＬｙｓ残基をポリエチレングリコール基と結合させるステップ、
（３）ステップ（２）によって製造された生成物の保護基を除去し、分離し精製した後、ＰＥＧ化エキセンジン類似体を得るステップ
を含む、部位特異的モノＰＥＧ化エキセンジン類似体を調製するための方法を提供する。
【００１８】
本発明において開示された方法では、アルカリ性条件に対する耐性がＦｍｏｃより強い保護基としてＤｄｅを利用して、Ｆｍｏｃの不安定性（脱落）に起因するマルチＰＥＧ化および様々な副産物を回避する。したがって、副産物が大きく減少し、これにより、大規模な調製が可能になる。
【００１９】
開示された方法に従って、ペプチド原料は、ポリエチレングリコール基に結合させるために、Ｄｄｅによって保護されていないＬｙｓ残基上の位置を少なくとも１つ有するべきであり、好ましくは、部位特異的モノＰＥＧ化エキセンジン類似体の調製を容易にするために、Ｄｄｅによって保護されていないＬｙｓ残基中の位置を１つだけ有するべきである。
【００２０】
開示された方法によれば、ペプチドのＮ末端は、Ｄｄｅ保護基またはＦｍｏｃ保護基によって保護することができる。薬学的純度という面からは、Ｄｄｅで保護されたＮ末端の方がよい。しかし、Ｆｍｏｃで保護されたＮ末端はあまり多くのマルチＰＥＧ化エキセンジン類似体をもたらさないことが反応によって実証されたため、コストの点で、Ｆｍｏｃで保護されたＮ末端が選択される可能性が高い。
【００２１】
例えば、開示された方法によれば、具体的なペプチド原料は、以下の構造を有し得る。
（Ｘ）Ｈｉｓ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｌｅｕ−Ｓｅｒ−Ｙ1−Ｇｌｎ−Ｚ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｖａｌ−Ｙ2−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｉｌｅ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−Ｙ3−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｙ4、
（式中、ＸはＦｍｏｃまたはＤｄｅであり、ＺはＬｅｕまたはＩｌｅであり、Ｙ1〜Ｙ4はＬｙｓまたは（Ｄｄｅ）Ｌｙｓであり、Ｙ1〜Ｙ4の少なくとも１つはＬｙｓであり、好ましくは、Ｙ1〜Ｙ4のうちで、Ｙ2〜Ｙ4のうちの１つだけがＬｙｓであり、残りが（Ｄｄｅ）Ｌｙｓであり、より好ましくは、Ｙ2はＬｙｓであり、Ｙ1、Ｙ3、およびＹ4は（Ｄｄｅ）Ｌｙｓである。）
【００２２】
それにもかかわらず、本発明には、上記の配列のＰＥＧ化エキセンジン類似体を調製するにあたって制限はない。アミノ酸配列中に複数のＬｙｓ残基（少なくとも２個のＬｙｓ残基）があることを条件として、エキセンジン−４類似体を含むすべてのエキセンジン類似体の間で、本発明の方法は、モノＰＥＧ化エキセンジン類似体を調製するのに適切である。４個のＬｙｓ残基を有するエキセンジン類似体の構造は比較的複雑であるため、本発明は、モノＰＥＧ化エキセンジン類似体を調製するために、４個のＬｙｓ残基を有するペプチドを使用する。本発明の方法は、本出願者が中国特許出願ＣＮ１０１１２５２０７Ａにおいて開示したＰＥＧ化エキセンジン類似体すべてを調製するのに適している。ＣＮ１０１１２５２０７Ａにおいて開示された内容は、本出願に組込まれる。
【００２３】
本発明の製造方法によれば、ＰＥＧ誘導体（ＰＥＧ化誘導体）の分子量（ＭＷ）は２０，０００〜６０，０００Ｄａである。さらに、ＣＮ１０１１２５２０７Ａで開示されている分岐構造を有するポリエチレングリコールが、本発明の方法に従って使用され得る。
【００２４】
例えば、本発明の１つの実施形態は、以下のとおりである。
以下の手順による、部位特異的モノＰＥＧ化エキセンジン−４類似体の調製および精製。
１．保護基を有するエキセンジン−４類似体の合成
ＰＥＧ化がＮ末端アミノ基において起こる場合、保護基を有する以下の構造のエキセンジン−４類似体が合成される：
Ｈｉｓ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｌｅｕ−Ｓｅｒ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ｇｌｎ−Ｚ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｖａｌ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｉｌｅ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ
【００２５】
ＰＥＧ化がＬｙｓ１２の側鎖アミノ基において起こる場合、保護基を有する以下の構造のエキセンジン−４類似体が合成される：
（Ｆｍｏｃ）Ｈｉｓ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｌｅｕ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｇｌｎ−Ｚ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｖａｌ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｉｌｅ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓまたは
（Ｄｄｅ）Ｈｉｓ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｌｅｕ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｇｌｎ−Ｚ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｖａｌ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｉｌｅ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ；
【００２６】
ＰＥＧ化がＬｙｓ20の側鎖アミノ基において起こる場合、保護基を有する以下の構造のエキセンジン−４類似体が合成される：
（Ｆｍｏｃ）Ｈｉｓ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｌｅｕ−Ｓｅｒ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ｇｌｎ−Ｚ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｖａｌ−Ｌｙｓ−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｉｌｅ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓまたは
（Ｄｄｅ）Ｈｉｓ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｌｅｕ−Ｓｅｒ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ｇｌｎ−Ｚ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｖａｌ−Ｌｙｓ−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｉｌｅ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ；
【００２７】
ＰＥＧ化がＬｙｓ27の側鎖アミノ基において起こる場合、保護基を有する以下の構造のエキセンジン−４類似体が合成される：
（Ｆｍｏｃ）Ｈｉｓ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｌｅｕ−Ｓｅｒ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ｇｌｎ−Ｚ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｖａｌ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｉｌｅ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−Ｌｙｓ−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓまたは
（Ｄｄｅ）Ｈｉｓ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｌｅｕ−Ｓｅｒ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ｇｌｎ−Ｚ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｖａｌ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｉｌｅ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−Ｌｙｓ−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ；
【００２８】
ＰＥＧ化がＬｙｓ40の側鎖アミノ基において起こる場合、保護基を有する以下の構造のエキセンジン−４類似体が合成される：
（Ｆｍｏｃ）Ｈｉｓ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｌｅｕ−Ｓｅｒ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ｇｌｎ−Ｚ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｖａｌ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｉｌｅ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ、または
（Ｄｄｅ）Ｈｉｓ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｌｅｕ−Ｓｅｒ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ｇｌｎ−Ｚ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｖａｌ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｉｌｅ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ；
【００２９】
２．保護基を有するエキセンジン−４類似体および特定のモル比の分子量２０，０００〜６０，０００Ｄａを有するＰＥＧ誘導体（好ましくは、４０ＫＤ  Ｙ型ＰＥＧ−ＮＨＳエステル）を適切な量の有機溶媒（好ましくはＤＭＳＯ）中に溶解する。完全に溶解させた後、ＰＥＧ誘導体と反応しない有機塩基を添加して、アルカリ性環境を実現する。試薬として、トリエチルアミン（ＴＥＡ）、ジイソプロピルエチルアミン（ＤＩＥＡ）、４−ジメチルアミノピリシン（ＤＭＡＰ）、２，４，６−トリメチルピリシン（コリシン）、ルチジン（ｌｕｔｉｄｉｎｅ）、ピリジン（ｐｙｒｉｄｉｎｅ）などを使用することができる。
【００３０】
３．ＰＥＧ化反応は、（４０℃を超えない）特定の温度で一定期間、溶液系を保存することによって実施する。続いて、十分な量の試薬（好ましくはヒドラジン水化物）を添加して、Ｆｍｏｃ保護基およびＤｄｅ保護基を除去する、特定の温度（４０℃未満）でいくらかの時間で、すべての保護基が除去されている。
【００３１】
４．最終反応溶液を純水で１０倍に希釈し、直ちにＨＣＬまたは酢酸を用いてｐＨを５．０〜６．０に調整して、試料の安定性を確保する。次いで、ＳＯＵＲＣＥ  ３０ＲＰＣ充填剤および２０ｍＭ酢酸を含む水：アセトニトリルまたは水：エタノール系を利用して、直線勾配溶離法による目標ＰＥＧ化エキセンジン−４類似体の単離および精製を実現する。
【００３２】
５．さらに、陽イオン交換樹脂、１０ｍＭクエン酸緩衝塩、１．５Ｍ  ＮａＣｌを用いて、最終ステップから得られた（いくらかの有機溶媒、アセトニトリル、またはエタノールを含有する）目標化合物を精製して、勾配溶離法によって有機溶媒を除去する。
【００３３】
６．１０ＫＤ限外ろ過フィルムを用いて、ステップ５から得られたＰＥＧ化エキセンジン−４類似体の限外ろ過を実施する。純水を用いた脱塩のために、分子ふるいクロマトグラフィーを使用する。得られたＰＥＧ化エキセンジン−４類似体水溶液を凍結乾燥した後、ＰＥＧ化エキセンジン−４類似体原料を得る。
【００３４】
本発明の目的を実現するために、前述の方法によって調製したＰＥＧ化エキセンジン類似体を提供する。
【００３５】
本発明の目的を実現するために、本発明はまた、エキセンジン類似体が以下の配列を有するＰＥＧ化エキセンジン類似体も提供する。
Ｈｉｓ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｌｅｕ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ−Ｇｌｎ−Ｚ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｖａｌ−Ｌｙｓ−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｉｌｅ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−Ｌｙｓ−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ、
（式中、ＺはＬｅｕ（配列番号１）またはＩｌｅ（配列番号２）であり、１つのＬｙｓ残基のアミノ基はポリエチレングリコールに結合している。）
【００３６】
好ましくは、前述の配列において、Ｌｙｓ20残基またはＬｙｓ27残基のアミノ基は、ポリエチレングリコールに結合している。
【００３７】
本発明の目的を実現するために、本発明はまた、ＰＥＧ化エキセンジン類似体を用いる、糖尿病または肥満の治療への使用も提供する。
【００３８】
本発明の方法によれば、不安定なＦｍｏｃによって引き起こされるマルチＰＥＧ化を回避するために、より安定性の高い保護基としてのＤｄｅを使用して、低いモル比の反応物質を用いてＰＥＧ化エキセンジン類似体を低コストおよび高回収率で得ることを実現する。本発明のＰＥＧ化エキセンジン類似体は部位特異的モノＰＥＧ化エキセンジン類似体であり、副生成物がわずかであるため、副生成物により生じる様々な副作用を回避するのに役立つ。
【００３９】
本発明のより詳細な説明のために、添付図面を用いて、具体的な実施方法を用いた個々の実施形態を説明する。しかしながら、本発明は、それら個々の実施形態に限定されない。
【図面の簡単な説明】
【００４０】
【図１】部位特異的に保護されたエキセンジン−４類似体のＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ質量スペクトルである。
【図２】部位特異的に保護されたエキセンジン−４類似体のＰＥＧ化前およびＰＥＧ化後のＨＰＬＣクロマトグラムである。
【図３】ＰＥＧ化エキセンジン−４類似体のＳＯＵＲＣＥ精製クロマトグラムである。
【図４】ＰＥＧ化エキセンジン−４類似体のＳＰ陽イオン交換精製クロマトグラムである。
【図５】ＰＥＧ化エキセンジン−４類似体の分子ふるい脱塩クロマトグラムである。
【図６】Ｃ５７  ＢＬ／６マウス腹腔内グルコース負荷試験（ｎ＝８）に対するモノＰＥＧ化ＨＹＢＲ−００３−ＰＥＧの影響を示す図である。図中、ａは、ブランクに対してＰ＜０．０１であり、ｂは対照に対してＰ＜０．０１である。
【発明を実施するための形態】
【００４１】
具体的な実施方法
【実施例１】
【００４２】
（１）合成で使用されるアミノ酸単量体
Ｆｍｏｃ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−ＯＨ、Ｄｄｅ−Ｈｉｓ（Ｔｒｔ）−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ａｌａ−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｇｌｙ−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｇｌｕ（ＯｔＢｕ）−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｔｈｒ（ｔＢｕ）−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｐｈｅ−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｓｅｒ（ｔＢｕ）−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ａｓｐ（ＯｔＢｕ）−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｌｅｕ−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｌｙｓ（Ｂｏｃ）−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｌｙｓ（Ｄｄｅ）−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｇｌｎ（Ｔｒｔ）−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｖａｌ−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−ＩＬｅ−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｔｒｐ（Ｂｏｃ）−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ａｓｎ（Ｔｒｔ）−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｐｒｏ−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｃｙｓ（Ｔｒｔ）−ＯＨ
上記の略語は次のとおりである。Ｆｍｏｃは９−フルオレニル−メトキシカルボニル、Ｂｏｃはｔｅｒｔ−ブトキシカルボニル基、Ｔｒｔはトリチル、ＯｔＢｕはｔｅｒｔ−ブトキシ、ｔＢｕはｔｅｒｔ−ブチル、ＤｄｅはＮ−α−１−（４，４−ジメチル−２，６−ジオキソシクロヘキシ−１−イリデン）エチル
【００４３】
（２）試薬：Ｎ，Ｎ−ジイソプロピルエチルアミン、ジイソプロピルカルボジイミド（ＤＩＣ）、Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）、ジクロロメタン、ヘキサヒドロピリジン、１−ヒドロキシベンゾトリアゾールトリアゾール、リンクアミド（Ｒｉｎｋ  Ａｍｉｄｅ）樹脂、ニンヒドリン、メタノール、トリイソプロピルシラン、トリフルオロ酢酸
【００４４】
（３）操作
Ａ．合成：０．２５ｍｍｏｌの規模で例示すると、リンクアミド樹脂０．５ｇおよびＤＩＣ／ＨＯＢｔ法を用いて活性化しておいたアミノ酸１ｍｍｏｌの存在下、反応器中でＣ末端からＮ末端に向かって配列を合成した。２５℃の室温で反応を行い、この工程は以下のように実施した。
１．２０％ピペリシンＤＭＦ溶液を用いることによって、保護基Ｆｍｏｃを除去した。各工程につき１０分。
２．１０ｍＬのＤＭＦを用いて３回洗浄し、液体を捨てる。
３．保護されたアミノ酸（１ｍｍｏｌ）およびＨＯＢｔ（１ｍｍｏｌ）を１０ｍＬのＤＭＦに溶解し、活性化するためにＤＩＣ（１ｍｍｏｌ）を１０分間添加した。
４．活性化されたアミノ酸の溶液を反応器に添加し、１時間振盪した。
５．ＤＭＦを用いて３回洗浄し、液体を捨てる。
６．ニンヒドリン反応が陰性である場合、続いてステップ１〜５を繰り返すべきである。陽性である場合、ステップ３〜５を繰り返す。
ペプチド鎖の合成を完了した後、メタノールで樹脂を洗浄し、それを乾燥させる。
【００４５】
Ｂ．保護基を除去し、過剰なペプチドを排除する
ペプチドが結合した樹脂１ｇを反応器に添加し、次いで、溶解溶液（比率：アニソール２ｍｌ、メタノール２ｍｌ、トリイソプロピルシラン２ｍｌ、およびトリフルオロ酢酸６ｍｌ）を添加した。
【００４６】
室温で２時間、試料を振盪した。ろ過後、ろ液を回収した。少量の酢酸で樹脂を洗浄した。回収した試料を合わせ、濃縮した。沈殿物をろ過した後、ジエチルエーテルを沈殿物に添加し、少量のジエチルエーテルで試料を洗浄し、次いで、粗生成物を得た。
【００４７】
Ｃ．分取ＨＰＬＣによって試料を分離および精製し、凍結乾燥した。
得られた粗生成物を少量の１０％酢酸溶液に溶解し、カラムに載せ、分取ＨＰＬＣによって精製し、次いで凍結乾燥した。質量分析法によって、得られたペプチドが必要とされる化合物であることを証明した。
【００４８】
クロマトグラムカラム：Ｂｏｓｔｏｎ  Ｃ１８、５ｕｍ、１００Ａ、波長２１４ｎｍ、Ｗａｔｅｒｓ製分取ＨＰＬＣ
勾配：１０％  ０．０５％  ＴＦＡ／ＣＡＮ−４５％  ０．０５％  ＴＦＡ／ＣＡＮ  ２０分、４５％  ０．０５％  ＴＦＡ／ＣＡＮ  １０分。
【００４９】
図１は、部位特異的に保護されたエキセンジン−４類似体のＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ質量スペクトルである。
【実施例２】
【００５０】
部位特異的に保護されたエキセンジン−４類似体をＰＥＧ化するための方法
本実施形態では、エキセンジン−４類似体上のＰＥＧ化できる唯一の遊離側鎖アミノ基に結合し修飾するために、従来のアミノＰＥＧ誘導体、例えば、（ＳＣ−ＰＥＧ、ＳＳ−ＰＥＧ、ＮＨＳ−ＰＥＧなど）を使用した。ここで、ＰＥＧ誘導体は、好ましくは４０ＫＤ  Ｙ型ＮＨＳ−ＰＥＧから選択され、部位特異的に保護されたエキセンジン−４類似体は、
（Ｆｍｏｃ）Ｈｉｓ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｌｅｕ−Ｓｅｒ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ｇｌｎ−Ｚ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｖａｌ−Ｌｙｓ−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｉｌｅ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓまたは
（Ｆｍｏｃ）Ｈｉｓ−Ｇｌｙ−Ｇｌｕ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−Ｔｈｒ−Ｓｅｒ−Ａｓｐ−Ｌｅｕ−Ｓｅｒ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ｇｌｎ−Ｚ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｖａｌ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ｌｅｕ−Ｐｈｅ−Ｉｌｅ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｌｅｕ−（Ｄｄｅ）Ｌｙｓ−Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｐｒｏ−Ｓｅｒ−Ｌｙｓ
である。
【００５１】
部位特異的に保護されたエキセンジン−４類似体２ｇおよび４０ＫＤ  Ｙ型ＮＨＳ−ＰＥＧ  ２６ｇ（ペプチドに対するモル比は約１．５：１）をＤＭＳＯ  ４００ｍＬに溶解し、次いで、４０℃で継続的に撹拌した。完全に溶解した後、トリエチルアミン（ＴＥＡ）２００ｕＬ（０．０５％）を添加して、温度４０℃でのＰＥＧ化反応を活性化し、２時間撹拌することによって、ＰＥＧ化を実質的に完了させた（９０％以上。保護されたエキセンジン−４類似体に基づいて算出）。次いで、ヒドラジン８ｍｌ（２％）を４０℃で添加し、反応が終わるまで溶液を１時間撹拌して、保護基を除去した。最終反応溶液を純水で１０倍に希釈し、６Ｍ  ＨＣＬを用いてｐＨを６．０に直ちに調整し、次いで、４℃に冷却して保存した。
【００５２】
図２は、部位特異的に保護されたエキセンジン−４類似体のＰＥＧ化前およびＰＥＧ化後のＨＰＬＣクロマトグラムである。
【実施例３】
【００５３】
ＰＥＧ化エキセンジン−４類似体を単離および精製するための方法
純粋なＰＥＧ化エキセンジン−４類似体原料は、部位特異的に保護されたエキセンジン−４類似体の最終反応溶液の逆相ＨＰＬＣ、イオン交換、限外ろ過、分子ふるい、および凍結乾燥によって得ることができる。
【００５４】
Ａ．ＳＯＵＲＣＥ逆相ＨＰＬＣによる精製
移動相：Ａ相：２０ｍＭ  ＨＡｃ、５％アセトニトリル；Ｂ相：２０ｍＭ  ＨＡｃ、５０％アセトニトリル
カラム：ＧＥ  Ｆｉｎｅｌｉｎｅ  Ｐｉｌｏｔ  ３５
充填剤：ＳＯＵＲＣＥ  ３０ＲＰＣ  １７５ｍＬ
流速：３０ｍＬ／分
溶離勾配：試料を送達した後、カラム体積の２倍量で平衡化する。０〜３０％  ５分、３０％〜１００％  ５分。
【００５５】
図３は、ＰＥＧ化エキセンジン−４類似体のＳＯＵＲＣＥ精製クロマトグラムである。
【００５６】
Ｂ．ＳＰ陽イオン交換精製
移動相：Ａ相：１０ｍＭ  ｐＨ３．５  ＣＢＳ
Ｂ１相：１０ｍＭ  ｐＨ３．５  ＣＢＳ＋０．１５Ｍ  ＮａＣＬ
Ｂ２相：１０ｍＭ  ｐＨ３．５  ＣＢＳ＋１．５Ｍ  ＮａＣＬ
クロマトグラフィーのカラム：ＧＥ  ＸＫ  ５０
充填剤：ＳＰセファロース  Ｆａｓｔ  Ｆｌｏｗ  ６００ｍＬ
流速：３０ｍＬ／分
勾配溶離：０％〜１００％  Ｂ１相２０分、１００％  Ｂ１相〜Ｂ２相１００％  ０分
【００５７】
図４は、ＰＥＧ化エキセンジン−４類似体のＳＰ陽イオン交換精製クロマトグラムである。
【００５８】
Ｃ．限外ろ過
装置：１０ＫＤ  ＰＡＬＬ剪断限外ろ過
プレフィルター添加体積は２４００ｍＬであり、ろ過後は４００ｍＬであった。
限外濾過（１０００ｍＬ〜４００ｍＬ）を３回繰り返した。
【００５９】
Ｄ．Ｇ２５脱塩
移動相：水
クロマトグラフィーのカラム：ＧＥ  ＸＫ  ５０
充填剤：Ｇ２５；９００ｍＬ
流速：３０ｍＬ／分
試料の添加量：２００ｍＬ
【００６０】
図５は、ＰＥＧ化エキセンジン−４類似体の分子ふるい脱塩クロマトグラムである。
【００６１】
Ｅ．凍結乾燥
ＰＥＧ化エキセンジン−４類似体純水溶液の共融点は約−５℃であり、したがって、１回目の凍結乾燥温度は−１０℃に設定し、２回目は５℃に設定する。他のパラメーター（凍結時間およびオーブン温度など）は、試料の量、凍結乾燥器の性能、および個々の気候条件に応じて設定する。
【実施例４】
【００６２】
正常Ｃ５７マウスにおける腹腔内グルコース負荷試験（ＩＰＴＴ）
（１）材料
動物：Ｓｈａｎｇｈａｉ  ＳＬＡＣＣＡＳ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ａｎｉｍａｌ  Ｃｏ．からＳＰＦレベルのＣ５７マウスを購入した。会社の一時的な動物飼育施設で動物を飼育した。ＣＬクラス。量：６０匹、性別：雄。
試薬：エキセンジン−４類似体（０．１２５ｕｇ／ｍｌ）；ＰＥＧ化エキセンジン−４類似体（３．１２５ｕｇ／ｍｌ、未修飾のペプチドに基づいて算出）；グルコースキット；２０％グルコース注射；および生理食塩水注射。
【００６３】
（２）実験方法
薬剤投与チーム：ＰＥＧ化エキセンジン−４類似体（３．１２５ｕｇ／ｍｌ、未修飾の（ｂａｒｅ）ペプチドに基づいて算出）を各マウスに投与した。投与量０．２ｍＬ／２０ｇのブランク群；０．２ｍＬ／２０ｇの投与量で生理食塩水を各マウスに注射した。対照群：０．２ｍＬ／２０ｇの投与量でエキセンジン−４類似体（０．１２５ｕｇ／ｍｌ）を各マウスに投与した。血中グルコースを検査する３０分前に、０．２ｍｌ／体重２０ｇの２０％グルコース溶液を腹腔内注射することによって、血中グルコース負荷を実現した。投与後２４時間後および７２時間後に、試験した動物の血糖降下効果の持続期間を観察した。
【００６４】
（３）実験結果
図６は、個々のＰＥＧ化エキセンジン−４類似体の血糖降下効果の持続期間を示す。
【図１】
2014510735.tif 000002
【図２】
2014510735.tif 000003
【図３】
2014510735.tif 000004
【図４】
2014510735.tif 000005
【図５】
2014510735.tif 000006
【図６】
2014510735.tif 000007
【配列表】
2014510735000001.app
【国際調査報告】
2014510735.tif 000008
2014510735.tif 000009
2014510735.tif 000010
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