(57)【要約】  本発明は、ウリジンおよびウリジンアナログの新規の適応、すなわち慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）および特発性肺線維症（ＩＰＦ）への適応に関する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
慢性閉塞性肺疾患または特発性肺線維症を治療または予防するための、化学式：
【化１】
2014521706.tif 000003
（式中、ＸはＯまたはＳを示し、Ｒ１はＨ、ＯＨまたは−Ｏ−（Ｃ１〜Ｃ６アルカノイル）を示し、Ｒ２およびＲ３はそれぞれ独立してＯＨまたは−Ｏ−（Ｃ１〜Ｃ６アルカノイル）を示す）で示される化合物。
【請求項２】
慢性閉塞性肺疾患を治療するための請求項１に記載の化合物。
【請求項３】
特発性肺線維症を治療するための請求項１に記載の化合物。
【請求項４】
化学式Ｉで示される化合物がウリジン、トリアセチルウリジンまたは４−チオウリジン、好ましくはウリジンを示す請求項１〜３のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項５】
医薬用担体と共に投与される請求項１〜４のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項６】
ＣＯＰＤまたはＩＰＦを治療するための１以上の他の薬理活性化合物と共に投与される請求項１〜５のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項７】
経口で投与される請求項１〜６のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項８】
吸入により投与される請求項１〜６のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項９】
静脈内に投与される請求項１〜６のいずれか１項に記載の化合物。
【請求項１０】
１日当たり１〜１０００ｍｇ／ｋｇ、好ましくは１日当たり５〜５００ｍｇ／ｋｇの用量で投与される請求項７に記載の化合物。
【請求項１１】
１回の吸入用量が１００μｇ〜１０００ｍｇである請求項８に記載の化合物。
【請求項１２】
噴射剤と共に投与される請求項８または１１に記載の化合物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ウリジンおよびウリジンアナログの新規の適応、すなわち慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）および特発性肺線維症（ＩＰＦ）への適応に関する。
【背景技術】
【０００２】
ＣＯＰＤは、先進国における主要な健康問題の１つであり、死亡原因の第４位となっている。ＣＯＰＤは、慢性気管支炎や肺気腫を含む閉塞性気道疾患の一領域である。ＣＯＰＤでは、個々の患者の重症度に関わる重大な肺外の影響に加えて、完全には可逆性でない気流制限を特徴とする肺内症状が見られる。気流制限は、通常進行性であり、有害な粒子やガスに対する肺の異常な炎症反応と関係がある。ＣＯＰＤにおける生理学的異常には、例えば、粘液分泌過多および線毛の機能障害、過膨張およびガス交換異常が含まれる。肺胞壁の破壊を伴って終末細気管支より末梢の気腔が恒久的に異常拡大し、かつ明らかな線維化が認められない病態を肺気腫として定義している。ＣＯＰＤの治療法に関して、肺機能低下を阻止する効果が認められた薬剤はこれまでのところ存在しない。薬物治療は、むしろ、症状を抑えた状態を維持しながら増悪を防ぐことを目的として行われており、治療法の新たな選択肢が求められている。
【０００３】
特発性肺線維症（ＩＰＦ）は、壊滅的な影響をもたらす原因不明の肺疾患の１つであり、肺機能の進行性低下が認められ、積極的に治療を施しても致死的経過をたどる予後不良な疾患である。ＩＰＦは、線維芽細胞の異常増殖や細胞外マトリックス成分の沈着を特徴とし、肺機能の進行性喪失や呼吸不全に至る疾患である。ＩＰＦの発病には、細胞外マトリックス分子の合成と分解の不均衡が関与していると考えられている。現時点でＩＰＦに対する治療法はなく、今なお、ＩＰＦの最適な治療法が社会的に求められている。
【０００４】
慢性閉塞性肺疾患、および遺伝性の線維症である嚢胞性線維症の治療を目的として、ウリジンのリン酸エステルであるウリジンヌクレオチドが提案されている。国際公開第９９／３２０８５号では、嚢胞性線維症の治療法の観点から、ウリジン三リン酸（ＵＴＰ）による粘液線毛クリアランスの亢進が提案されている。国際公開第９９／０９９９８号は、ウリジン二リン酸（ＵＤＰ）またはそのアナログを投与することにより、肺粘膜分泌物の水分含量を増加させて嚢胞性線維症および慢性閉塞性肺疾患などを治療する方法に関する。ＵＤＰおよびＵＴＰは、Ｐ２Ｙファミリーに属するプリン受容体に作用する。例えば、ＵＤＰはＰ２Ｙ６受容体の強力なアゴニストであり、ＵＴＰはＰ２Ｙ２受容体を活性化する。しかし最近では、プリン作動性の信号系はＣＯＰＤおよびアレルギー性気道炎症の発病の一因となることが示唆されている。Ｐ２受容体を阻害すると、炎症細胞の肺への流入が抑制されることにより、喫煙曝露マウスにおける気腫の発症が阻止されることが確認されており、Ｐ２Ｙ２受容体欠損マウスでは急性喫煙曝露後の肺炎症が抑制されることが示されている（Ｃｉｃｋｏ  Ｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｕｒｉｎｅｒｇｉｃ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ  ｐｒｅｖｅｎｔｓ  ｔｈｅ  ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  ｓｍｏｋｅ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ｌｕｎｇ  ｉｎｊｕｒｙ  ａｎｄ  ｅｍｐｈｙｓｅｍａ，Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．２０１０  Ｊｕｌ  １；１８５（１）：６８８−９７）。同様に、Ｐ２Ｙ６受容体の阻害またはＰ２Ｙ６受容体の欠損によっても、実験的に発症させた喘息の主要な特徴が抑制されることが確認されている（Ｐａｕｌａ  Ｖｉｅｉｒａ  Ｒ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐ２Ｙ６  Ｒｅｃｅｐｔｏｒ  Ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｅｓ  ｔｏ  Ａｉｒｗａｙ  Ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ  ａｎｄ  Ｒｅｍｏｄｅｌｉｎｇ  ｉｎ  Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ  Ａｌｌｅｒｇｉｃ  Ａｉｒｗａｙ  Ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ，Ａｍ  Ｊ  Ｒｅｓｐｉｒ  Ｃｒｉｔ  Ｃａｒｅ  Ｍｅｄ．２０１１  Ａｐｒ  ２１）。したがって、これらの受容体の活性化は逆効果となる可能性があり、慢性閉塞性肺疾患および嚢胞性線維症の治療に適用可能な化合物がなおも求められている。
【０００５】
リン酸基を持たないウリジンヌクレオシドは、ヒトを対象とした高活性抗レトロウイルス療法（ＨＡＡＲＴ）によって引き起こされるミトコンドリア毒性を軽減するための処置において既に使用されており、安全かつ効果的であることが記載されている（Ｗａｌｋｅｒ  ＵＡ  ａｎｄ  Ｖｅｎｈｏｆｆ  Ｎ，Ｕｒｉｄｉｎｅ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｔｒｅａｔｍｅｎｔ  ｏｆ  ＮＲＴＩ−ｒｅｌａｔｅｄ  ｍｉｔｏｃｈｏｎｄｒｉａｌ  ｔｏｘｉｃｉｔｙ，Ａｎｔｉｖｉｒ  Ｔｈｅｒ．２００５；１０  Ｓｕｐｐｌ  ２：Ｍ１１７−２３；ＥＰ  １３６５７５５  Ｂ１）。最近では、急性肺炎症の予防的役割に着目した、ウリジンおよびそのアナログである４−チオウリジンに関する報告もある。ウリジンは、卵白アルブミン（ＯＶＡ）／ミョウバン誘発疾患モデルマウスおよびイエダニ（ＨＤＭ）誘発気道炎症モデルマウスにおける喘息性気道炎症を抑制することが報告されている（Ｍｕｌｌｅｒ  Ｔ  ｅｔ  ａｌ．，Ｌｏｃａｌ  ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｕｒｉｄｉｎｅ  ｓｕｐｐｒｅｓｓｅｓ  ｔｈｅ  ｃａｒｄｉｎａｌ  ｆｅａｔｕｒｅｓ  ｏｆ  ａｓｔｈｍａｔｉｃ  ａｉｒｗａｙ  ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ，Ｃｌｉｎ  Ｅｘｐ  Ａｌｌｅｒｇｙ．２０１０  Ｏｃｔ；４０（１０）：１５５２−６０）。４−チオウリジンは、ウリジンと同様の抗炎症作用を有することが確認されている（Ｅｖａｌｄｓｓｏｎ  Ｃ  ｅｔ  ａｌ．，４−ｔｈｉｏｕｒｉｄｉｎｅ  ｉｎｄｕｃｅｓ  ｄｏｓｅ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ  ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｏｅｄｅｍａ，ｌｅｕｃｏｃｙｔｅ  ｉｎｆｌｕｘ  ａｎｄ  ｔｕｍｏｕｒ  ｎｅｃｒｏｓｉｓ  ｆａｃｔｏｒ  ｉｎ  ｌｕｎｇ  ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ，Ｃｌｉｎ  Ｅｘｐ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．２００９  Ｆｅｂ；１５５（２）：３３０−８）。この文献における実験は、臨床上の喘息と炎症プロファイルが類似しているセファデックス誘発急性肺炎症モデルを用いて実施されたものである。
【０００６】
ＣＯＰＤおよび嚢胞性線維症の治療においてＵＤＰおよびＵＴＰを使用することが提案されてきたが、実際には逆効果となる可能性があり、一方、慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）または特発性肺線維症（ＩＰＦ）の治療または予防におけるウリジンの役割についてはこれまで知られていない。
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【０００７】
今般、驚くべきことに、化学式Ｉの化合物がＣＯＰＤまたはＩＰＦの治療または予防に有用であることが明らかとなった。
【図面の簡単な説明】
【０００８】
【図１】急性喫煙曝露および持続喫煙曝露による応答に対するウリジンの影響を示した図である。（ａ）〜（ｃ）：雄性Ｃ５７ＢＬ／６マウスに対してタバコ５本分の煙への曝露を３日間連続して行う一方、未処置のマウスも準備した。喫煙曝露の３０分前に、マウスに対して溶媒または異なる濃度のウリジンの気管内注入を行った。最後の喫煙曝露から１時間後、マウスを屠殺し、気管支肺胞洗浄液における（ａ）細胞の数および分布、（ｂ）ＡＴＰ含有レベル、ならびに（ｃ）炎症性サイトカインであるＩＬ−６、ＩＦＮγ、ＩＬ−１β、ＫＣおよびＭＩＰ−２のレベルの分析を行った。データは平均±ＳＥＭとして示しており、各群のマウスの匹数はｎ＝５である。＊Ｐ＜０．０５、ウリジンで処置した喫煙曝露動物と溶媒で処置した喫煙曝露動物との比較。（ｄ）：動物に対してタバコ５本分の煙への曝露を３日間連続して行う一方、未処置の動物も準備した。４日目以降は、喫煙曝露を継続するか、環境空気曝露へと変更した。４〜６日目は、喫煙曝露または空気曝露の３０分前に、２００μＬの１０ｍＭウリジンまたは溶媒（ＰＢＳ）を動物に経口投与した。６日目に気管支肺胞洗浄液中の分画別細胞数の算定を行った。データは平均±ＳＥＭとして示しており、各群のマウスの匹数はｎ＝５である。＊Ｐ＜０．０５、同一時点における喫煙／溶媒処置動物と喫煙／ウリジン処置動物との比較。
【図２】タバコ煙曝露に起因した気腫性変化の進行に対するウリジンの効果を形態計測学的に評価したものである。
【図３】ウリジンによるＢＬＭ誘発肺線維症の抑制を示した図である。０日目に、ＢＬＭをＣ５７／Ｂｌ６雄性マウスに肺内投与して肺線維症を誘発させた。１４日目以降は、マウスに対して溶媒またはウリジンの週３回の経口投与を行った。３０日目に、マウスを屠殺し、気管支肺胞洗浄液中の（ａ）分画別細胞数および（ｂ）サイトカイン、ならびに（ｃ）肺内コラーゲン量を分析した。＊Ｐ＜０．０５、ＢＬＭ／溶媒処置動物とＢＬＭ／ウリジン処置動物との比較。
【発明を実施するための形態】
【０００９】
本発明は請求項に定義した通りである。化学式Ｉの化合物は、
【化１】
2014521706.tif 000002
【００１０】
（式中、ＸはＯまたはＳを示し、Ｒ１はＨ、ＯＨまたは−Ｏ−（Ｃ１〜Ｃ６アルカノイル）を示し、Ｒ２およびＲ３はそれぞれ独立してＯＨまたは−Ｏ−（Ｃ１〜Ｃ６アルカノイル）を示す）として定義される。
【００１１】
−Ｏ−（Ｃ１〜Ｃ６アルカノイル）において、Ｃ１〜Ｃ６アルカノイルは、カルボニル基を介して酸素原子に結合している。１つまたは複数の−Ｏ−（Ｃ１〜Ｃ６アルカノイル）基が存在する場合は、−Ｏ−（Ｃ１〜Ｃ４アルカノイル）が好ましく、−Ｏ−（Ｃ２〜Ｃ３アルカノイル）がより好ましく、−Ｏ−（Ｃ２アルカノイル）が最も好ましい。−Ｏ−（Ｃ１〜Ｃ６アルカノイル）において、Ｃ１〜Ｃ６アルカノイルは、直鎖状であってもよく、また炭素数により分岐が可能であれば分岐鎖状であってもよい。置換基Ｒ１、Ｒ２およびＲ３は同一であっても異なっていてもよい。本発明の特に好ましい一実施形態において、置換基Ｒ１、Ｒ２およびＲ３は同一であり、最も好ましくはＯＨまたは−Ｏ−（Ｃ２アルカノイル）である。特に、Ｒ１、Ｒ２およびＲ３がそれぞれＯＨを示し、ＸがＯを示す化学式Ｉの化合物（ウリジン）、Ｒ１、Ｒ２およびＲ３がそれぞれＯＨを示し、ＸがＳを示す化学式Ｉの化合物（４−チオウリジン）、ならびにＲ１、Ｒ２およびＲ３がそれぞれ−Ｏ−（Ｃ２アルカノイル）を示し、ＸがＯを示す化学式Ｉの化合物（トリアセチルウリジン）が好ましい。Ｒ１、Ｒ２およびＲ３がそれぞれＯＨを示し、ＸがＯを示す化学式Ｉの化合物（ウリジン）が最も好ましい。
【００１２】
本明細書において、化学式Ｉの化合物は、「活性化合物」または「本発明の活性化合物」とも言う。
【００１３】
本発明の活性化合物は、主にヒトを対象としたＣＯＰＤまたはＩＰＦの治療または予防に適用されるが、例えばイヌなどの動物に用いることも可能である。
【００１４】
ＣＯＰＤの有用な治療手段または予防手段としてのウリジンおよびそのアナログの効果は、例えば、実施例１および２より確認することができる。ＣＯＰＤ発症の主要な危険因子の１つとして、タバコの煙が挙げられることから、短期または長期に喫煙曝露を行ったマウスを用いて、ウリジン処置の効果を評価するための動物実験を実施した。
【００１５】
気道のＡＴＰレベルが疾患の重症度（気流制限）に相関していることや、ＡＴＰ／Ｐ２Ｒ経路の阻害によりＣＯＰＤの主要な特徴がすべて抑制されることが示されていることなど、放出された内因性のＡＴＰがＣＯＰＤの発病において重要な役割を担うことを示す所見は増えつつある（Ｃｉｃｋｏ  Ｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｕｒｉｎｅｒｇｉｃ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ  ｐｒｅｖｅｎｔｓ  ｔｈｅ  ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  ｓｍｏｋｅ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ｌｕｎｇ  ｉｎｊｕｒｙ  ａｎｄ  ｅｍｐｈｙｓｅｍａ，Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．２０１０  Ｊｕｌ  １；１８５（１）：６８８−９７，Ｌｕｃａｔｔｅｌｌｉ  Ｍ，Ｃｉｃｋｏ  Ｓ  ｅｔ  ａｌ，Ｐ２Ｘ７  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｓｉｇｎａｌｌｉｎｇ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｐａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓ  ｏｆ  ｓｍｏｋｅ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ｌｕｎｇ  ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｅｍｐｈｙｓｅｍａ  Ａｍ  Ｊ  Ｒｅｓｐｉｒ  Ｃｅｌｌ  Ｍｏｌ  Ｂｉｏｌ．２０１１  Ｍａｒ；４４（３）：４２３−９，およびＬｏｍｍａｔｚｓｃｈ  Ｍ  ｅｔ  ａｌ．，Ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ  ａｄｅｎｏｓｉｎｅ  ｔｒｉｐｈｏｓｐｈａｔｅ  ａｎｄ  ｃｈｒｏｎｉｃ  ｏｂｓｔｒｕｃｔｉｖｅ  ｐｕｌｍｏｎａｒｙ  ｄｉｓｅａｓｅ，Ａｍ  Ｊ  Ｒｅｓｐｉｒ  Ｃｒｉｔ  Ｃａｒｅ  Ｍｅｄ．２０１０  Ｍａｙ  １；１８１（９）：９２８−３４）。今回、驚くべきことに、喫煙曝露マウスをウリジンで処置することにより、気管支肺胞洗浄液中の細胞外ＡＴＰ量はウリジン非処置のマウスより有意に低くなり、用量依存的に減少した（図１ｂ）。さらに、ウリジン処置により、マクロファージおよび好中球の数、ならびにＣＯＰＤにおけるタバコ煙誘発性肺炎症の発症および／または維持に関わる炎症促進性サイトカインＩＬ−６（インターロイキン６）、ＩＦＮ−γ（インターフェロンγ）、ＩＬ−１β（インターロイキン１β）、ＫＣ（角化細胞由来のケモカイン）およびＭＩＰ−２（マクロファージ炎症性タンパク質２）のレベルも用量依存的に減少した。
【００１６】
さらに、慢性喫煙曝露により肺気腫を発症させたモデルマウスにおいては、ウリジン非処置マウスと比較して、ウリジン処置マウスの平均肺胞径が有意に小さく、肺の内部表面積が大きいことが示された（図２）。平均肺胞間距離（平均肺胞径）の測定は、様々な動物モデルで気腫の有無を確認するための手段の一つとして一般に認められている。本明細書で使用したモデルマウスにおいては、喫煙曝露によって平均肺胞径が対照より増大しており、ウリジンで処置することにより喫煙の有害な影響が軽減された。
【００１７】
したがって、本発明は、ＣＯＰＤの予防、好ましくはＣＯＰＤの治療を目的とした化学式Ｉの化合物に関する。本発明において、ＣＯＰＤの治療は、「慢性閉塞性肺疾患に対するグローバルイニシアチブ（ＧＯＬＤ）」が定義している４段階に分類されたＣＯＰＤ（ＣＯＰＤ  ＧＯＬＤ  Ｉ〜ＩＶ）の治療を含み、特に気腫の治療を含む。さらに、本発明の活性化合物は、例えばＣＯＰＤ  ＧＯＬＤ  Ｉ〜ＩＩと定義されるような初期段階のＣＯＰＤの治療に特に適している。
【００１８】
またウリジン処置は、ＩＰＦと定義される肺疾患にも有用であることが明らかとなった。本発明の実施例３では、ブレオマイシン誘発肺線維症モデルマウスにおいて、ウリジンで処置することにより肺内コラーゲン量が有意に減少することが示された。さらに、マトリックスメタロプロテアーゼ（ＭＭＰ）の触媒活性の細胞外調節に関与する組織メタロプロテアーゼ阻害物質（ＴＩＭＰ−１）に関しては、ウリジンで処置していない動物ではＴＩＭＰ−１レベルが増大したのに対して、ブレオマイシン投与後にウリジンで処置した動物ではＴＩＭＰ−１が通常のレベルにまで減少した（図３）。このブレオマイシン誘発肺線維症モデルマウスにおいては、ウリジン処置により、気管支肺胞洗浄液中のマクロファージ、リンパ球および好中球の下方制御、ならびにＩＬ−１β（インターロイキン１β）、ＩＬ−６（インターロイキン６）、ＫＣ（角化細胞由来のケモカイン）およびＴＮＦα（腫瘍壊死因子α）などの炎症促進性サイトカインの下方制御も同様に見られた。
【００１９】
したがって、本発明は、ＩＰＦの治療、具体的には細胞外マトリックスの蓄積阻害を目的とした化学式Ｉの化合物にも関する。
【００２０】
ＨＩＶの脂肪組織萎縮症におけるウリジンの補充についてはこれまでに報告があり、そのような報告から本発明の活性化合物が安全で忍容性に優れていることは知られている。
【００２１】
本発明の活性化合物の治療対象への投与においては、任意の投与経路を用いればよく、該活性化合物は、例えば経口投与、経鼻投与、吸入投与または静脈内投与することができるが、本発明の活性化合物の投与としては、経口投与または吸入投与が好ましい。
【００２２】
本発明の活性化合物の用量は、種々のパラメータ、例えば活性化合物の投与対象、対象の体重および年齢、個々の対象の症状、疾患および疾患の重症度、ならびに投与経路および投与頻度によって異なる。本発明の活性化合物は、例えば１日当たり１〜１０００ｍｇ／ｋｇ、好ましくは１日当たり５〜５００ｍｇ／ｋｇの用量で経口投与してもよく、また、この用量を複数回、例えば３回に分けて投与することも可能である。吸入投与の場合は、本発明の活性化合物の好ましい１回の吸入用量は１００μｇ〜１０００ｍｇである。必要であれば、この用量を継続的に、かつ／または１日複数回投与してもよい。
【００２３】
本発明の活性化合物は、通常、医薬用担体と共に投与される。
【００２４】
本発明の化合物は、本発明の１以上の活性化合物を有効量含む医薬組成物として製剤化することができる。通常、本発明の活性化合物は、液体、固体、気体のいずれであってもよい１以上の有機および／または無機の医薬用担体と共に、または該医薬用担体との混合物として本発明の医薬組成物に含まれている。さらに、ＣＯＰＤまたはＩＰＦを治療するための１以上の他の薬理活性化合物が含まれていてもよい。
【００２５】
経口投与用の固形の医薬組成物を調製する場合に用いられる医薬用担体としては、具体的には、例えばセルロース誘導体、微結晶セルロース、ラクトース、マンニトール、キシリトール、サッカロース、デンプン、ポリビニルピロリドン、アミロペクチンなどの充填剤および結合剤が挙げられる。上記医薬組成物には、崩壊剤、滑沢剤および流動促進剤が含まれていてもよい。さらに、本発明の医薬組成物は、腸溶性コーティングでコーティングされていてもよい。経口投与用の固形の医薬組成物は、錠剤、または硬質もしくは軟質のゼラチンカプセル剤などのカプセル剤の形態で調製されることが好ましい。また、本発明の活性化合物を含む経口投与用の医薬組成物は、サシェなどの容器に充填される散剤として調製してもよい。そのようにすれば、容器の中身を、例えば水、ジュースまたは牛乳に溶解または懸濁することにより、簡便に摂取することができる。
【００２６】
注射用の医薬組成物の調製においては、通常、本発明の活性化合物を、例えばｐＨ調整剤、安定化剤、緩衝剤および等張化剤などの医薬用担体および医薬用添加剤と混合する。また、注射時に即時に溶解して使用できる乾燥製剤を調製することも可能である。
【００２７】
経鼻投与の場合、本発明の医薬組成物は、本発明の活性化合物を、例えば、液体の医薬用担体、好ましくは水性の液体の医薬用担体に溶解または懸濁した状態で含んでいてもよい。例えば可溶化剤、界面活性剤および／または防腐剤などの添加剤が含まれていてもよい。
【００２８】
吸入投与の場合、本発明の活性化合物は、例えば、乾燥粉末吸入器により送達することが可能であり、また、エアゾールスプレー剤として送達することも可能である。後者の場合、本発明の活性化合物が適当な液化噴射剤、例えばジクロロジフルオロメタン、トリクロロフルオロメタン、ジクロロテトラ−フルオロ−エタン、ヒドロフルオロアルカン（例えば１，１，１，２−テトラフルオロエタン、１，１，１，２，３，３，３−ヘプタフルオロプロパンなど）、二酸化炭素などに懸濁もしくは溶解した状態で保有される加圧容器により、または本発明の活性化合物の溶液もしくは懸濁液を保有できるポンプ、噴霧器もしくはネブライザーにより送達することができる。本発明の活性化合物は、必要であれば、例えば溶媒、緩衝剤、アミノ酸、防腐剤または界面活性剤のような添加剤と共に製剤化してもよい。本発明の活性化合物を含む粉末混合物を含有する、吸入器用のカプセル剤またはカートリッジ剤として製剤化してもよい。吸入用の乾燥粉末は、例えば、本発明の活性化合物をラクトース、トレハロース、マンニトールなどの糖類または糖アルコールおよびその他の任意の添加剤（例えば緩衝剤およびアミノ酸）と共にスプレー乾燥させることによって調製することができる。
【００２９】
また、本発明の活性化合物は、ＣＯＰＤまたはＩＰＦを治療するための１以上の他の薬理活性化合物と共に投与してもよい。ＣＯＰＤを治療するための他の薬理活性化合物としては、例えばフェノテロール、レバルブテロール、サルブタモール（アルブテロール）、テルブタリンやホルモテロール、アルホルモテロール、インダカテロール、サルメテロールなどの短時間作用型または長時間作用型のβ２アゴニスト；臭化イプラトロピウム、臭化オキシトロピウム、臭化チオトロピウムなどの短時間作用型または長時間作用型の抗コリン作用薬；アミノフィリン、テオフィリンなどのメチルキサンチン類；ベクロメタゾン、ブデノシド、プロピオン酸フルチカゾン、プレドニゾン、メチルプレドニゾロンなどのグルココルチコイド；およびロフルミラストなどのホスホジエステラーゼ４阻害剤が挙げられる。ＩＰＦを治療するための他の薬理活性化合物としては、例えばプレドニゾン、メチルプレドニゾロンなどのグルココルチコイド；アザチオプリン、シクロホスファミド、シクロスポリンＡ、メトトレキサート、クロラムブチル、コルヒチンなどの免疫抑制薬または細胞毒性薬；その他の薬物、例えばサイトカイン、プロテアーゼ、酸化物質、線維芽細胞成長因子などを阻害する薬物；酸化防止剤；ジホスホン酸塩；および白血球インテグリンの阻害剤が挙げられる。
【００３０】
したがって、本発明は、本発明の活性化合物および１以上の他の薬理活性化合物が同一製剤中に含まれる製剤を包含し、例として、双方の化合物を含む錠剤が挙げられる。本発明には、本発明の活性化合物と他の薬理活性化合物とをそれぞれ別々の製剤として同時にまたは時間差をおいて投与する場合も包含される。例としては、本発明の活性化合物を含むが、ＣＯＰＤまたはＩＰＦを治療するための他の薬理活性化合物を含まない錠剤と、本発明の活性化合物は含まないが、ＣＯＰＤまたはＩＰＦを治療するための１以上の他の薬理活性化合物を含む別の錠剤とを投与する場合が挙げられる。
【００３１】
以下の実施例は、本発明について説明するためのものであり、本発明を限定するものではない。
【実施例】
【００３２】
＜実施例１＞
タバコ煙への急性曝露および持続曝露
下記文献に記載の方法と同様にして、特別に設計されたマクロロン（ｍａｃｒｏｌｏｎ）ケージ（Ｔｅｃｎｉｐｌａｓｔ社（イタリア、ブグッジャーテ））に雄性Ｃ５７ＢＬ／６マウスを入れ、タバコ（Ｖｉｒｇｉｎｉａ社の市販のフィルター付きタバコ：タール含量１２ｍｇ、ニコチン含量０．９ｍｇ）５本分の煙または室内空気への２０分間の曝露を３日間連続して行った（Ｃａｖａｒｒａ  Ｅ  ｅｔ  ａｌ．，Ｈｕｍａｎ  ＳＬＰＩ  ｉｎａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  ａｆｔｅｒ  ｃｉｇａｒｅｔｔｅ  ｓｍｏｋｅ  ｅｘｐｏｓｕｒｅ  ｉｎ  ａ  ｎｅｗ  ｉｎ  ｖｉｖｏ  ｍｏｄｅｌ  ｏｆ  ｐｕｌｍｏｎａｒｙ  ｏｘｉｄａｔｉｖｅ  ｓｔｒｅｓｓ，Ａｍ  Ｊ  Ｐｈｙｓｉｏｌ  Ｌｕｎｇ  Ｃｅｌｌ  Ｍｏｌ  Ｐｈｙｓｉｏｌ．２００１  Ａｕｇ；２８１（２）：Ｌ４１２−７，Ｃｉｃｋｏ  Ｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｕｒｉｎｅｒｇｉｃ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ  ｐｒｅｖｅｎｔｓ  ｔｈｅ  ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  ｓｍｏｋｅ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ｌｕｎｇ  ｉｎｊｕｒｙ  ａｎｄ  ｅｍｐｈｙｓｅｍａ，Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．２０１０  Ｊｕｌ  １；１８５（１）：６８８−９７）。タバコの燃焼により発生させた煙を、機械的換気装置（７０２５  Ｒｏｄｅｎｔ  Ｖｅｎｔｉｌａｔｏｒ、Ｕｇｏ  Ｂａｓｉｌｅ社、Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ（イタリア、コメリオ））で発生させた気流にのせて２５０ｍＬ／ｍｉｎの速度でチャンバー内に導入した。別の機械的換気装置を用いて室内空気を供給し、タバコの煙流を１：８に希釈した。
一部の実験においては、毎回の喫煙曝露の前に気管内投与（ｉ．ｔ．）を行った。ケタミン／キシラジンの腹腔内注射によりマウスを麻酔下におき、全量８０μＬとしたウリジン（１ｍＭまたは１０ｍＭ）または溶媒として用いたＰＢＳを気管内注射した。最後の喫煙曝露から１時間後、マウスを屠殺して気管支肺胞洗浄（ＢＡＬ）を行った。
【００３３】
タバコ煙持続曝露マウスにおけるウリジンの効果を調べるために、１〜３日目は上述した方法と同様にして喫煙曝露を行った。次いで、上記マウスを無作為に群分けし、４〜６日目も上述した方法と同様にして一連の３回の喫煙曝露または空気曝露を行ったが、毎回の曝露の３０分前に溶媒（ＰＢＳ）またはウリジン（２００μＬ、１０ｍＭ）を経口（ｐ．ｏ．）投与した。６日目に最後の喫煙／空気曝露を行ってから１時間後、マウスを屠殺して気管支肺胞洗浄液（ＢＡＬＦ）を回収した。
【００３４】
動物における気管支肺胞洗浄
ＢＡＬＦは、下記文献に記載の方法と同様にして、ペントバルビタールの深麻酔下でカニューレを気管に挿入し、１ｍＬの０．１ｍＭ  ＥＤＴＡ含有ＰＢＳで肺を３回洗浄することにより回収した（Ｉｄｚｋｏ  Ｍ  ｅｔ  ａｌ．，Ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ  ＡＴＰ  ｔｒｉｇｇｅｒｓ  ａｎｄ  ｍａｉｎｔａｉｎｓ  ａｓｔｈｍａｔｉｃ  ａｉｒｗａｙ  ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ  ｂｙ  ａｃｔｉｖａｔｉｎｇ  ｄｅｎｄｒｉｔｉｃ  ｃｅｌｌｓ，Ｎａｔ  Ｍｅｄ．２００７  Ａｕｇ；１３（８）：９１３−９，Ｃｉｃｋｏ  Ｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｕｒｉｎｅｒｇｉｃ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ  ｐｒｅｖｅｎｔｓ  ｔｈｅ  ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  ｓｍｏｋｅ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ｌｕｎｇ  ｉｎｊｕｒｙ  ａｎｄ  ｅｍｐｈｙｓｅｍａ，Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．２０１０  Ｊｕｌ  １；１８５（１）：６８８−９７）。総細胞数の算定を行い、また、サイトスピン標本をＤｉｆｆ−Ｑｕｉｃｋ（Ｍｅｄｉｏｎ  Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ社（スイス、デューディンゲン））で染色したものを用いて分画別細胞数の算定を行った。分画別細胞数の算定は、２００個を超える細胞を対象に、標準的な形態学的判定基準およびＦＡＣＳ分析を用いて行った。
【００３５】
フローサイトメトリー
ＢＡＬ細胞を計数して洗浄した後、０．５％ＢＳＡおよび０．０１％アジ化ナトリウムを含有したＰＢＳ中にて、抗ＭＨＣクラスＩＩ（マクロファージ／ＤＣ）、抗７／４（Ｃａｌｔａｇ社）−ＦＩＴＣ（好中球；Ａｂｄ−Ｓｅｒｏｔｅｃ社（ドイツ、デュッセルドルフ））、抗ＣＤ３−ｃｙ−ｃｈｒｏｍｅおよび抗ＣＤ１９−ｃｙ−ｃｈｒｏｍｅ（リンパ球）、ならびに抗ＣＤ１１ｃ−ＡＰＣ（マクロファージ／ＤＣ）（ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社（カリフォルニア州サンディエゴ））で３０分間染色した。分画別細胞数の算定は、下記文献に記載の方法と同様にして、フローサイトメトリーにより行った（Ｉｄｚｋｏ  Ｍ  ｅｔ  ａｌ．，Ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ  ＡＴＰ  ｔｒｉｇｇｅｒｓ  ａｎｄ  ｍａｉｎｔａｉｎｓ  ａｓｔｈｍａｔｉｃ  ａｉｒｗａｙ  ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ  ｂｙ  ａｃｔｉｖａｔｉｎｇ  ｄｅｎｄｒｉｔｉｃ  ｃｅｌｌｓ，Ｎａｔ  Ｍｅｄ．２００７  Ａｕｇ；１３（８）：９１３−９およびＣｉｃｋｏ  Ｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｕｒｉｎｅｒｇｉｃ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ  ｐｒｅｖｅｎｔｓ  ｔｈｅ  ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  ｓｍｏｋｅ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ｌｕｎｇ  ｉｎｊｕｒｙ  ａｎｄ  ｅｍｐｈｙｓｅｍａ，Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．２０１０  Ｊｕｌ  １；１８５（１）：６８８−９７）。
【００３６】
ＢＡＬＦにおけるＡＴＰ測定
マウスのＢＡＬＦ中のＡＴＰ濃度は、新鮮なＢＡＬＦ上清を用いて、メーカーの取扱説明書（ＡＴＰｌｉｔｅ  Ａｓｓａｙ、ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ社（マサチューセッツ州ウェルズリー））に従って測定した。ただし、下記文献に記載の方法と同様に、細胞内ＡＴＰの混入を避けるために細胞溶解工程は行わなかった（Ｉｄｚｋｏ  Ｍ  ｅｔ  ａｌ．，Ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ  ＡＴＰ  ｔｒｉｇｇｅｒｓ  ａｎｄ  ｍａｉｎｔａｉｎｓ  ａｓｔｈｍａｔｉｃ  ａｉｒｗａｙ  ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ  ｂｙ  ａｃｔｉｖａｔｉｎｇ  ｄｅｎｄｒｉｔｉｃ  ｃｅｌｌｓ，Ｎａｔ  Ｍｅｄ．２００７  Ａｕｇ；１３（８）：９１３−９，Ｃｉｃｋｏ  Ｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｕｒｉｎｅｒｇｉｃ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ  ｐｒｅｖｅｎｔｓ  ｔｈｅ  ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  ｓｍｏｋｅ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ｌｕｎｇ  ｉｎｊｕｒｙ  ａｎｄ  ｅｍｐｈｙｓｅｍａ，Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．２０１０  Ｊｕｌ  １；１８５（１）：６８８−９７）。
【００３７】
ＢＡＬＦにおけるサイトカイン測定
ＢＡＬＦ中のサイトカイン濃度は、市販のＥＬＩＳＡキット（Ｒ＆Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓ社（ミネソタ州ミネアポリス））を用いて、メーカー推奨方法に従って測定した。
【００３８】
統計分析
サンプル間の統計学的有意差は、ＡＮＯＶＡを実施した後、ボンフェローニの比較検定を行って判定した。ｐ＜０．０５の場合に、有意差があるとみなした。
【００３９】
実施例１のデータを図１に示す。
【００４０】
＜実施例２＞
タバコ煙への慢性曝露
実施した慢性喫煙曝露の方法は下記文献に記載されている（Ｃａｖａｒｒａ  Ｅ  ｅｔ  ａｌ．，Ｈｕｍａｎ  ＳＬＰＩ  ｉｎａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  ａｆｔｅｒ  ｃｉｇａｒｅｔｔｅ  ｓｍｏｋｅ  ｅｘｐｏｓｕｒｅ  ｉｎ  ａ  ｎｅｗ  ｉｎ  ｖｉｖｏ  ｍｏｄｅｌ  ｏｆ  ｐｕｌｍｏｎａｒｙ  ｏｘｉｄａｔｉｖｅ  ｓｔｒｅｓｓ，Ａｍ  Ｊ  Ｐｈｙｓｉｏｌ  Ｌｕｎｇ  Ｃｅｌｌ  Ｍｏｌ  Ｐｈｙｓｉｏｌ．２００１  Ａｕｇ；２８１（２）：Ｌ４１２−７，Ｃｉｃｋｏ  Ｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｕｒｉｎｅｒｇｉｃ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ  ｐｒｅｖｅｎｔｓ  ｔｈｅ  ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  ｓｍｏｋｅ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ｌｕｎｇ  ｉｎｊｕｒｙ  ａｎｄ  ｅｍｐｈｙｓｅｍａ，Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．２０１０  Ｊｕｌ  １；１８５（１）：６８８−９７）。簡潔に説明すると、雄性Ｃ５７ＢＬ／６マウスを、１日あたりタバコ（Ｖｉｒｇｉｎｉａ社の市販のフィルター付きタバコ：タール含量１２ｍｇ、ニコチン含量０．９ｍｇ）３本分の煙に週５日曝露するか、室内空気（対照）に曝露し、これを４ヶ月間または７ヶ月間継続した。ウリジン投与と記載のある場合は、喫煙曝露の４５分前に、マウスに対してウリジン（０．６ｍｇ／ｋｇ）を強制的に経口投与した。
【００４１】
組織学
各期間の終了時に、マウスを屠殺して気管支肺胞洗浄を行い、次いで肺切除を行った。気管内にホルマリン（５％）を２０ｃｍＨ２Ｏの圧力をかけて注入し、肺のホルマリン固定を行った。肺容量を水置換法により測定した。次いで、すべての肺を脱水してトルエンで透徹し、真空下でパラフィンに包埋した。７μｍの横断切片を２つ作製し、ヘマトキシリン・エオジンで染色した。形態学的評価および形態計測学的評価は、上述の曝露プロトコールを知らされていない２名の病理医により行われた。形態計測学的評価は、気腔（肺胞管、肺胞嚢および肺胞）の平均サイズを表す平均肺胞間距離（平均肺胞径：Ｌｍ）（Ｃｉｃｋｏ  Ｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｐｕｒｉｎｅｒｇｉｃ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ  ｐｒｅｖｅｎｔｓ  ｔｈｅ  ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  ｓｍｏｋｅ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ｌｕｎｇ  ｉｎｊｕｒｙ  ａｎｄ  ｅｍｐｈｙｓｅｍａ，Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．２０１０  Ｊｕｌ  １；１８５（１）：６８８−９７）の測定、および肺の内部表面積（ＩＳＡ）の測定を含む。Ｌｍは、肺の組織スライド上に引いた試験線の長さを、該線と肺胞壁（表面でない）との交差回数で除したものである。気管支、太い細気管支または血管を有する視野は測定対象から除外した。下記式を用いてＬｍを計算した：Ｌｍ＝５０本の線の全長／肺胞との交点の数。
このＬｍ値を用いて、式４Ｖ／Ｌｍ（式中、Ｖは固定後肺容量である）により、気腫の程度を評価するために必要なＩＳＡ（ガス交換表面積を表す）を算出した。左右の肺のＬｍを算出するために、１匹あたり４０個の組織視野を選択し、縦方向および横方向に評価を行った。
これだけの数の視野を調べたことは、実質的に肺全域を評価したことを意味している。
【００４２】
統計分析
サンプル間の統計学的有意差は、ＡＮＯＶＡを実施した後、ボンフェローニの比較検定を行って判定した。ｐ＜０．０５の場合に、有意差があるとみなした。
【００４３】
実施例２のデータを図２に示す。
【００４４】
＜実施例３＞
ブレオマイシン（ＢＬＭ）誘発肺線維症モデルマウス
ＢＬＭによる肺線維症の誘導は、下記文献に記載の方法と同様にして行った（Ｇａｓｓｅ  Ｐ，Ｍａｒｙ  Ｃ，Ｇｕｅｎｏｎ  Ｉ，Ｎｏｕｌｉｎ  Ｎ，Ｃｈａｒｒｏｎ  Ｓ，Ｓｃｈｎｙｄｅｒ−Ｃａｎｄｒｉａｎ  Ｓ，Ｓｃｈｎｙｄｅｒ  Ｂ，Ａｋｉｒａ  Ｓ，Ｑｕｅｓｎｉａｕｘ  ＶＦ，Ｌａｇｅｎｔｅ  Ｖ，ｅｔ  ａｌ．Ｉｌ−１ｒ１／ｍｙｄ８８  ｓｉｇｎａｌｉｎｇ  ａｎｄ  ｔｈｅ  ｉｎｆｌａｍｍａｓｏｍｅ  ａｒｅ  ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  ｉｎ  ｐｕｌｍｏｎａｒｙ  ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｆｉｂｒｏｓｉｓ  ｉｎ  ｍｉｃｅ．Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｉｎｖｅｓｔ  ２００７；１１７（１２）：３７８６−３７９９）。次いで、ＢＬＭ投与後１４日目の雄性Ｃ５７／Ｂｌ６マウスにウリジン（２００μＬ、１０ｍＭ）または溶媒を経口投与し、以降、この処置を週３日行った。３０日目に、マウスがＢＬＭ誘発肺障害の典型的な特徴を有しているか否かを調べた。そのために、上述した方法と同様にして、ＢＡＬＦを回収して分画別細胞数の算定を行った。
【００４５】
ＢＡＬＦにおけるサイトカイン測定
ＢＡＬＦ中のサイトカイン濃度は、市販のＥＬＩＳＡキット（Ｒ＆Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓ社（ミネソタ州ミネアポリス））を用いて、メーカー推奨方法に従って測定した。
【００４６】
肺内コラーゲン量
肺組織中の肺内コラーゲン量は、Ｓｉｒｃｏｌアッセイを用いてメーカーの推奨方法（Ｂｉｏｃｏｌｏｒ社、Ｌｉｆｅ−Ｓｃｉｅｎｃｅ、英国）に従って測定した。
【００４７】
統計分析
サンプル間の統計学的有意差は、ＡＮＯＶＡを実施した後、ボンフェローニの比較検定を行って判定した。ｐ＜０．０５の場合に、有意差があるとみなした。
【００４８】
実施例３のデータを図３に示す。
【図１】
2014521706.tif 000004
【図２】
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【図３】
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【国際調査報告】
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