(57)【要約】  本発明は新たなアルブミン製剤、斯かるアルブミン製剤を製造するための方法、並びに斯かるアルブミン製剤の、例えば細胞培養物、中でも哺乳類細胞培養物、特に幹細胞培養物における使用に関する。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
アルブミンと、溶媒と、少なくとも２００ｍＭのカチオンとを含み、ｐＨが約５．０〜約８．０の組成物であって、５ｍＭ以下のオクタノエート（octanoate）を含む組成物。
【請求項２】
１ｍＭ以下のオクタノエートを含む、請求項１に記載の組成物。
【請求項３】
カチオンが２００〜１０００ｍＭ存在する、請求項１又は２に記載の組成物。
【請求項４】
カチオンが２００〜３５０ｍＭ存在する、請求項３に記載の組成物。
【請求項５】
ｐＨが約６．０〜約７．０である、請求項１〜４の何れか一項に記載の組成物。
【請求項６】
ｐＨが約６．５である、請求項１〜５の何れか一項に記載の組成物。
【請求項７】
カチオンが、ナトリウム、カリウム、カルシウム、マグネシウム、及びアンモニウムである、請求項１〜６の何れか一項に記載の組成物。
【請求項８】
カチオンが、ナトリウムイオンである、請求項１〜７の何れか一項に記載の組成物。
【請求項９】
（ａ）５ｍＭ未満のアミノ酸（例えばＮ−アセチルトリプトファン）、好ましくは１ｍＭ未満のアミノ酸；及び／又は
（ｂ）２０ｍｇ／Ｌ未満の洗剤（例えばポリソルベート８０）、好ましくは５ｍｇ／Ｌ未満の洗剤
を含む、請求項１〜８の何れか一項に記載の組成物。
【請求項１０】
アミノ酸（例えばＮ−アセチルトリプトファン）を実質的に含まない、及び／又は、洗剤（例えばポリソルベート８０）を実質的に含まない、請求項８に記載の組成物。
【請求項１１】
アルブミン、変異体、又は誘導体が、アルブミン又はアルブミン変異体の融合体（fusion）又はコンジュゲーション（conjugation）である、請求項１〜１０の何れか一項に記載の組成物。
【請求項１２】
アルブミンが、１ｇ／Ｌ〜４００ｇ／Ｌの濃度である、請求項１〜１１の何れか一項に記載の組成物。
【請求項１３】
アルブミンが組換アルブミンである、請求項１〜１２の何れか一項に記載の組成物。
【請求項１４】
（ａ）５０〜２５０ｇ／Ｌのアルブミンと、
（ｂ）２２５〜２７５ｍＭのＮａ＋と、
（ｃ）２０〜３０ｍＭのホスフェート（phosphate）とを含み、
ｐＨが約６．５であり、２ｍＭ未満のオクタノエートを含む、請求項１〜１３の何れか一項に記載の組成物。
【請求項１５】
オクタノエートを実質的に含まない、請求項１〜１４の何れか一項に記載の組成物。
【請求項１６】
請求項１〜１５の何れか一項に記載の組成物と、基本培地とを含む細胞培養培地。
【請求項１７】
細胞培養培地が幹細胞培養培地である、請求項１６に記載の細胞培養培地。
【請求項１８】
動物由来成分を実質的に含まない、請求項１６又は１７に記載の細胞培養培地。
【請求項１９】
細胞を培養するための、請求項１〜１５の何れか一項に記載の組成物、又は、請求項１６〜１８の何れか一項に記載の細胞培養培地の使用。
【請求項２０】
細胞を培養する方法であって、請求項１６〜１８の何れか一項に記載の細胞培養培地中で、細胞をインキュベートすることを含む方法。
【請求項２１】
細胞が幹細胞を含む、請求項１９に記載の使用、又は、請求項２０に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本願はコンピュータ読み取り可能な形式の配列表を含む。当該配列表は引用により本明細書に組み込まれる。
【背景技術】
【０００２】
本発明はアルブミンの新たな製剤及び当該アルブミン製剤の用途に関する。
【０００３】
アルブミンは血漿中に最も豊富に存在するタンパク質である。多数の哺乳類及び鳥類について、アルブミンの報告及び特性決定がなされてきた。アルブミンは浸透圧を適切に維持する機能に関与し、更には血流における種々の化合物の輸送にも関与していると考えられている。アルブミンは、重症の火傷、ショック、及び失血による患者の治療に用いられるタンパク質でもある。また、アルブミンは、薬理活性化合物の賦形剤としても用いられる。斯かる薬理活性化合物の多くは、アルブミンの可溶性凝集体及び／又は不溶性凝集体の形成を低減する等の目的で、安定化を行う必要がある。更にアルブミンは、幹細胞等の真核細胞の生育を促進するための添加剤としても用いられる。アルブミン融合タンパク質は、アルブミン又はその変異体若しくは断片にタンパク質を融合したものであり、タンパク質の半減期の延長又は短縮、例えばインビボ（in vivo）半減期の延長に寄与する。例えばタンパク質や化学物質等のコンジュゲーションパートナーをアルブミンに融合することにより、コンジュゲーションパートナーの半減期の延長又は短縮、例えばインビボ（in vivo）半減期の延長を図ることができる。現在では、アルブミンを血清等の血液製剤から取得したり、酵母等の微生物（例えばＷＯ１９９６／０３７５１５、ＷＯ２０００／０４４７７２等）や、トランスジェニック動物又は植物において組換え産生したりすることが可能である。通常、ユーザーの要求に応え、及び／又は、高収率の製品を達成するべく、実質的に純粋な製品を提供する目的で、アルブミンを産生源から精製する。細胞培養物や医薬等の一部の技術分野では、動物由来成分を実質的に含まない、或いは全く含まない製品への要請がある。
【０００４】
精製されたアルブミンは、最終的な溶液形態では（固体形態のアルブミンと比べて）比較的不安定である。よって、その保存可能期間を最大限延長するために、凍結乾燥、及び／又は、最終液体製剤への安定化剤の添加が行われる。しかし、凍結乾燥は調製に係る総費用が大幅に高くなる上に、液体製剤が必要な場合には消費者が凍結乾燥品を再懸濁する必要があり、不便である。より好ましい液体製剤の場合、アルブミンに添加される一般的な安定化剤としては、ｎ−アセチル−トリプトファン、オクタン酸 （オクタノエート、カプリレート）及び／又はポリソルベート８０（例えばTween（登録商標））が挙げられる。ＷＯ２０００／０４４７７２のアルブミンはオクタン酸によって安定化されている。Arakawa及びKita(2000)は、ウシ血清アルブミンの熱による凝集に対してカプリレート及びアセチルトリプトファネートが有する安定作用を開示する（Biochimica et Biophysica Acta Vol 1479: 32-36）。Hosseini等(2002)は、熱処理ヒトアルブミンのカプリレート及びアセチルトリプトファネートによる安定化に関する研究結果を開示する（Iranian Biomedical Journal 6(4): 135-140）。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
本発明者等はオクタン酸が、哺乳類細胞培養物、特に幹細胞培養物に対して有害となり得ることを見出した。更に、ポリソルベート８０（Tween（登録商標））も、哺乳類細胞培養物に対して有害となり得る。よって、哺乳類細胞培養物に対して有害でない、安定なアルブミン液体製剤が求められている。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明は、安定性が改善されたアルブミンの液体製剤を提供する。ここで安定性は、例えば製剤におけるアルブミンの可溶性凝集体又はアルブミンの不溶性凝集体のレベルの低減により表される。また、本発明は、斯かる製剤を用いた方法や、斯かる製剤の使用、例えば哺乳類細胞培養物、特に幹細胞培養物も提供する。
【図面の簡単な説明】
【０００７】
【図１】図１は、吸光度（Ａ３５０）が、視覚可能な（不溶性）凝集物の尺度である０．１吸光度単位（ＡＵ）だけ上昇するのにかかる時間（秒）により測定される、アルブミン組成物（１０ｍｇ／ｍＬ）の安定性に対する、ｐＨとｎ−アセチルトリプトファン濃度の影響を示す。
【０００８】
【図２】図２は、吸光度（Ａ３５０）が０．１ＡＵ上昇するのにかかる時間（秒）により測定される、アルブミン組成物（１０ｍｇ／ｍＬ）の安定性に対する、ｐＨとホスフェート濃度の影響を示す。
【０００９】
【図３】図３は、吸光度（Ａ３５０）が０．１ＡＵ上昇するのにかかる時間（秒）により測定される、アルブミン組成物（１０ｍｇ／ｍＬ）の安定性に対する、ｐＨとナトリウム濃度の影響を示す。
【００１０】
【図４】図４は、吸光度（Ａ３５０）が０．１ＡＵ上昇するのにかかる時間（秒）により測定される、アルブミン組成物（１０ｍｇ／ｍＬ）の安定性に対する、ｐＨとナトリウム濃度（広範囲のナトリウム濃度について）の影響を示す。
【００１１】
【図５】図５は、吸光度（Ａ３５０）が０．１ＡＵ上昇するのにかかる時間（秒）により測定される、アルブミン組成物（５０ｍｇ／ｍＬ）の安定性に対する、ｐＨとナトリウム濃度の影響を示す。
【００１２】
【図６】図６は、吸光度（Ａ３５０）が０．１ＡＵ上昇するのにかかる時間（秒）により測定される、ｐＨ６．５のアルブミン組成物の安定性に対する、ナトリウム濃度とアルブミン濃度の影響を示す。
【００１３】
【図７】図７は、４０℃で１４日間インキュベートされるアルブミン組成物について、ナトリウム濃度と相対的モノマー含量（％）との関係を示す。
【００１４】
【図８】図８は、４０℃で１４日間インキュベートされるアルブミン組成物について、ナトリウム濃度と相対的ポリマー含量（％）との関係を示す。
【００１５】
【図９】図９は、本発明のアルブミン製剤の脂肪酸プロフィールを示す。
【００１６】
【図１０】図１０は、本発明のアルブミン製剤の、ＩＣＰ−ＯＥＳによる金属イオンプロフィールを示す。
【００１７】
【図１１】図１１は、４０℃で４週間インキュベーション後の、残存モノマー含量により測定されるアルブミンの安定性に対する、ナトリウム濃度とアルブミン濃度の影響を示す。
【００１８】
【図１２】図１２は、吸光度（Ａ３５０）が０．２ＡＵだけ上昇するのにかかる時間（秒）により測定される、アルブミンの安定性に対する、カチオン種とカチオン濃度の影響を示す。
【００１９】
【図１３】図１３は、吸光度（Ａ３５０）が０．１２ＡＵだけ上昇するのにかかる時間（秒）により測定される、アルブミンの安定性に対する、ナトリウムイオン濃度とアニオン分子種の影響を示す。
【００２０】
【図１４】図１４は、６５℃で２時間インキュベーション後の、残存モノマー含量により測定されるアルブミンの安定性に対する、ナトリウムイオン濃度とアニオン分子種の影響を示す。
【００２１】
【図１５】図１５は、吸光度（Ａ３５０）が０．１ＡＵ上昇するのにかかる時間（秒）により測定される、アルブミンの安定性に対する、異なる緩衝性アニオンの存在下でのナトリウムイオン濃度（ＮａＣｌと緩衝液の両方からのナトリウムの濃度が含まれる）の影響を示す。
【００２２】
【図１６】図１６は、吸光度（Ａ３５０）が０．１ＡＵ上昇するのにかかる時間（秒）により測定される、アルブミンの安定性に対する、緩衝性イオンの非存在下での又は緩衝性イオンとして５０ｍＭクエン酸塩の存在下での、ナトリウムイオン濃度（クエン酸ナトリウム緩衝液からのナトリウムイオンの寄与は無視される）の影響を示す。
【００２３】
【図１７】図１７は、吸光度（Ａ３５０）が０．１ＡＵ上昇するのにかかる時間（秒）により測定される、異なるアルブミンとアルブミン変異体の安定性に対する、ナトリウムイオン濃度の影響を示す。
【００２４】
【図１８】図１８は、吸光度（Ａ３５０）が０．１ＡＵ上昇するのにかかる時間（秒）により測定される、マウス血清アルブミンの安定性に対する、ナトリウムイオン濃度の影響を示す。
【００２５】
【図１９】図１９は、吸光度（Ａ３５０）が０．１ＡＵ上昇するのにかかる時間（秒）により測定される、アルブミンの安定性に対する、ｐＨとナトリウムイオン濃度の影響を示す。
【００２６】
【図２０】図２０は、吸光度（Ａ３５０）が０．１ＡＵ上昇するのにかかる時間（秒）により測定される、ｐＨ５．０でのアルブミンの安定性に対する、ナトリウムイオン濃度の影響を示す。
【００２７】
【図２１】図２１は、６５℃で２時間インキュベーション後の、残存モノマー含量により測定される、ｐＨ７．０、７．５、及び８．０でのアルブミンの安定性に対する、ナトリウムイオン濃度の影響を示す。
【発明を実施するための形態】
【００２８】
定義
用語「細胞培養培地」、「培養培地」、及び「培地調製物」は、細胞を培養するか又は増殖させるための栄養溶液をいう。
【００２９】
「無血清」培地は、血清（例えば、胎児牛血清（ＦＢＳ）、ウマ血清、ヤギ血清、又は当業者に公知の任意の他の動物由来の血清）を含まない培地である。
【００３０】
用語「基本培地」は、細胞の増殖を支持することができる任意の培地をいう。基本培地は、標準の無機塩、例えば亜鉛、鉄、マグネシウム、カルシウム、カリウム、ならびに微量元素、ビタミン、エネルギー源、緩衝系、及び必須アミノ酸を供給する。適切な基本培地は、特に限定されないが、アルファ最小必須培地（アルファＭＥＭ）；イーグル基本培地（ＢＭＥ）；アールのＢＳＳを有するイーグル基本培地；ＤＭＥ／Ｆ１２；Ｌ−グルタミンを有する高グルコースＤＭＥＭ；Ｌ−グルタミンを含まない高グルコースＤＭＥＭ；Ｌ−グルタミンを有するＤＭＥＭ：Ｆ１２  １：１；ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）；Ｆ−１０；Ｆ−１２；グラスゴーの最小必須培地（Ｇ−ＭＥＭ）；Ｌ−グルタミンを有するＧ−ＭＥＭ；グレース完全昆虫培地；ＦＢＳを含まないグレース昆虫培地；Ｌ−グルタミンを有するハムＦ−１０；Ｌ−グルタミンを含むハムＦ−１２；ＨＥＰＥＳ及びＬ−グルタミンを含むＩＭＤＭ；ＨＥＰＥＳを含みＬ−グルタミンを含まないＩＭＤＭ；ＩＰＬ−４１昆虫培地；イスコフ改変ダルベッコ培地；Ｌ−グルタミンを含まないＬ−１５（Leibovits）；Ｌ−グルタミン及びフェノールレッドを含まないＬ−１５（Leibovits）（２Ｘ）；マッコイ５Ａ改変培地；培地１９９；Ｌ−グルタミン及びフェノールレッド（２Ｘ）を含まないＭＥＭイーグル；Ｌ−グルタミンを含むＭＥＭイーグルアールのＢＳＳ；Ｌ−グルタミンを含まないＭＥＭイーグル−アールのＢＳＳ；Ｌ−グルタミンを含まないＭＥＭイーグル−ハンクスＢＳＳ；最小必須培地（ＭＥＭ）；最小必須培地−アルファ（ＭＥＭ−アルファ）；Ｌ−グルタミンを含むＮＣＴＣ−１０９；Ｌ−グルタミンを含むリヒターＣＭ培地；ＲＰＭＩ１６４０；Ｌ−グルタミンを含むＲＰＭＩ１６４０；Ｌ−グルタミンを含まないＲＰＭＩ１６４０；ＨＥＰＥＳ、Ｌ−グルタミン及び／又はペニシリン−ストレプトマイシンを含むＲＰＭＩ１６４０；シュナイダーの昆虫培地；又は当業者に公知の任意の他の培地を含む。幹細胞培養のための好適な基本培地は、ＭＥＦ、ＤＭＥＭ、ＣＴＳ、及びＤＭＥＭ／Ｆ−１２を含む。
【００３１】
用語「アルブミン」は、ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）又はＨＳＡドメインと同じか又は類似した３次構造を有するタンパク質を意味し、ＨＳＡ又は関連するドメインの類似した性質を有する。類似した３次構造は、例えば、親アルブミンで言及される種からのアルブミンの構造である。アルブミンの主要な特性のいくつかは、ｉ）血漿の量を制御する能力、ii）約１９±５日間の長い血漿半減期、iii）リガンド結合性、例えばビリルビン脂肪酸、ヘミン、及びチロキシンを含む酸性、親油性化合物などの内因性分子の結合（例えば、Kragh-Hansen et al, 2002, Biol. Pharm. Bull. 25, 695の表１を参照、参照することにより本明細書に組み込まれる）、iv）例えば、ワルファリン、ジアゼパム、イブプロフェン、及びパクリタキセルなどの薬物などの、酸性又は電気陰性度性を有する小有機化合物の結合（これも、Kragh-Hansen et al, 2002, Biol. Pharm. Bull. 25, 695の表１を参照、参照することにより本明細書に組み込まれる）である。タンパク質又はフラグメントをアルブミンとして特徴付けるのに、これらの性質の必ずしもすべてを満たす必要は無い。例えば、フラグメントがあるリガンド又は有機化合物の結合に関与するドメインを含まない場合、このようなフラグメントの変異体がこれらの性質を有することを期待されない。アルブミンという用語は、変異体、アルブミンもしくはアルブミン変異体の融合体、及び／又はコンジュゲーションなどの誘導体を含む。
【００３２】
用語「変異体」は、１つ又はそれ以上の（数個）の位置で、改変、すなわち置換、挿入、及び／又は欠失を含む親アルブミンから誘導されるポリペプチドを意味する。置換は、ある位置を占めるアミノ酸を別のアミノ酸で置換することを意味し、欠失は、ある位置を占めるアミノ酸の除去を意味し、挿入は、ある位置を占めるアミノ酸に隣接して１〜３個のアミノ酸を付加することを意味する。改変されたポリペプチド（変異体）は、親アルブミンをコードするポリヌクレオチド配列の修飾による、ヒトの介入を介して得ることができる。変異体アルブミンは、配列番号２と、好ましくは少なくとも７０％、好ましくは少なくとも７５％、さらに好ましくは少なくとも８０％、さらに好ましくは少なくとも８５％、さらにさらに好ましくは少なくとも９０％、最も好ましくは少なくとも９５％、少なくとも９６％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、少なくとも９９％、又は１００％同一であり、親アルブミン又はＨＳＡのような類似の３次構造の主要な性質の少なくとも１つを保持する。本発明の目的において、２つのアミノ酸配列間の配列同一性は、EMBOSSパッケージ（EMBOSS: The European Molecular Biology Open Software Suite, Rice et al., 2000, Trends Genet. 16: 276-277）（好ましくはバージョン５．００又はそれ以降）のNeedleプログラムで実行されるように、Needleman-Wunschアルゴリズムを使用して決定される（Needleman and Wunsch, 1970, J. Mol. Biol. 48: 443-453）。使用されるパラメータは、ギャップオープニングペナルティ１０、ギャップエクステンションペナルティ０．５、及びEBLOSUM62（BLOSUM62のEMBOSSバージョン）置換マトリックスである。「最長の同一性」（nobriefオプションを使用して得られる）と表記されるNeedleの結果は、以下のように計算される：（同一の残基×１００）／（整列の長さ−整列中のギャップの総数）。
【００３３】
この変異体は、親アルブミンと比較した時、ＦｃＲｎに対する改変された結合親和性を有するか、及び／又は内皮、上皮、及び／又は中皮細胞単層を横切るトランスサイトーシスの変化した速度を有してもよい。変異体ポリペプチド配列は、好ましくは天然には見出されないものである。変異体は、例えばアルブミンの少なくとも１００、１５０、２００、２５０、３００、３５０、４５０、５００、５５０の連続するアミノ酸を含むか又はこれらからなるフラグメントを含む。
【００３４】
用語「野生型」（ＷＴ）アルブミンは、天然の動物又はヒトに見られるアルブミンと同じアミノ酸配列を有するアルブミンを意味する。配列番号２は、ヒト（Homo sapiens）由来の野生型アルブミンの例である。
【００３５】
用語「親」又は「親アルブミン」は、本発明で使用され得るアルブミン変異体を産生するために改変されるアルブミンを意味する。親は、天然に存在する（野生型）ポリペプチド又はそのアレレ又はその変異体、例えばＰＣＴ／ＥＰ２０１０／０６６５７２に記載の変異体又はＰＣＴ／ＥＰ２０１１／０５５５７７に記載の変異体もしくは誘導体でもよい。
【００３６】
用語「融合体」は、アルブミン（又はその変異体もしくはフラグメント）と非アルブミンタンパク質との遺伝的融合体を意味する。非アルブミンタンパク質は、治療的、予防的、又は診断的タンパク質でもよい。アルブミン融合体の例は、ＥＰ６２４１９５、ＷＯ２００１／０７９２７１、ＷＯ２００３／０５９９３４、ＷＯ２００３／０６００７１、ＷＯ２０１１０５１４８９、ＰＣＴ／ＥＰ１１／０５５５７７、及びＥＰ１１１６４９５５（参照することによりその全体が本明細書に組み込まれる）に提供されている。
【００３７】
用語「コンジュゲーション」は、非アルブミン成分が化学的にコンジュゲートされたアルブミン（又はその変異体もしくはフラグメント又は融合体）を意味する。非アルブミン成分は、治療、予防、又は診断用タンパク質であってもよい。アルブミンコンジュゲーションの例は、ＰＣＴ／ＥＰ１１／０５５５７７及びＥＰ１１１６４９５５（参照することによりその全体が本明細書に組み込まれる）に提供されている。
【００３８】
用語「浮遊培養」は、培養中の大部分又はすべての細胞が懸濁液中に存在しており、容器表面もしくは容器内の別の表面に付着している培養容器内の細胞（接着細胞）が少数であるか又は全く無いことを意味する。「浮遊培養」は、約５０％、６０％、６５％、７５％、８５％、又は９５％を超える細胞が懸濁液中にあることができ、培養容器上の又はその中の表面上に結合していない。
【００３９】
用語「接着培養」は、培養中の大部分又はすべての細胞が、容器表面に又は容器内の別の表面に付着して存在しており、培養容器内で浮遊している細胞は少数であるか又は全く無いことをいう。「接着培養」は、５０％、６０％、６５％、７５％、８５％、又は９５％を超える細胞が接着していてもよい。
【００４０】
本明細書において用語「哺乳動物」は、ヒト又は非ヒト哺乳動物であって、特に限定されないが、ブタ、ヒツジ、ウシ、げっ歯類、有蹄動物、ブタ、ヒツジ、子ヒツジ、ヤギ、ウシ、シカ、ラバ、ウマ、霊長類（例えばサル）、イヌ、ネコ、ラット、及びマウスを含む。
【００４１】
用語「細胞」は、特に限定されないが、本明細書に記載のヒト又は非ヒト哺乳動物細胞などの任意の細胞を含む。細胞は、正常細胞又は異常細胞（例えば、形質転換細胞、樹立された細胞、又は疾患組織試料から得られた細胞）でもよい。細胞は、繊維芽細胞又はケラチン生成細胞などの体細胞でもよい。好適な細胞は、特に限定されないが、胚幹細胞、胎児幹細胞、成体幹細胞、及び多能性幹細胞、例えば誘導多能性幹細胞などの幹細胞である。特に好適な細胞は、ヒト胚幹細胞、ヒト胎児幹細胞、成人幹細胞、及びヒト多能性幹細胞、例えば誘導されたヒト多能性幹細胞である。
【００４２】
本発明の第１の形態は、アルブミンと、溶媒と、少なくとも１７５ｍＭのカチオンとを含み、ｐＨが約５．０〜約９．０の組成物であって、３０ｍＭ以下のオクタノエートを含む組成物を提供する。このような組成物の利点は、組成物が哺乳動物細胞培養で使用される時、この調製物が、有用な寿命を有するのに充分に安定であり、哺乳動物細胞の健康に有害ではない（例えば、毒性ではない）アルブミンを提供することである。
【００４３】
組成物は、カチオンに釣り合うアニオンを含有することが好ましい。
【００４４】
溶媒は、水、又はリン酸ナトリウム、リン酸カリウムなどのリン酸緩衝液のような無機緩衝液、又は酢酸ナトリウムもしくはクエン酸ナトリウムなどの有機緩衝液などであってもよい。緩衝液はｐＨを安定化させることができる。リン酸ナトリウム（例えばＮａＨ2ＰＯ4）は例えば、ｐＨ５．０、５．５、６．０、６．５、７．０、７．５、８．０のような好ましいｐＨ緩衝剤である。
【００４５】
本発明者らは、オクタノエートが細胞培養中の哺乳動物細胞に有害であることを観察した。従って、本組成物は低レベルのオクタノエートを含む。例えば、組成物は３０ｍＭ未満のオクタノエート、さらに好ましくは約２８、２６、２４、２２、２０、１８、１６、１５、１４、１２、１０、８ｍＭ未満のオクタノエート、さらにより好ましくは約６、５、４、３ｍＭ未満のオクタノエート、最も好ましくは約２、１、０．５、０．４、０．３、０．２、０．１、０．０１、又は０．００１ｍＭ未満のオクタノエートを含む、ことが好ましい。組成物は実質的にオクタノエートを含まないことが好ましい。すなわち、組成物中のオクタノエートのレベルは、培養中の細胞、例えばインビトロ細胞培養のような細胞培養中の哺乳動物細胞（特に、ヒト幹細胞のような幹細胞）に対して有害作用を引き起こすのには充分ではないことが好ましい。最も好ましくは、組成物はオクタノエートを含まない（０ｍＭのオクタノエート）。
【００４６】
脂肪酸の好適なパラメータは、以下に示される。脂肪酸含量は、好ましくは複数の試料（例えば、２、３、４、又は５つの試料）の平均である。
【表０】
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【００４７】
また組成物の全脂肪酸含量は、２０ｍＭ以下、さらに好ましくは１５、１０、５、４、３、２、又は１ｍＭ以下であることが好ましい。さらに、組成物は、脂肪酸を実質的に含まず、さらに好ましくは脂肪酸を全く含まないことが好ましい。
【００４８】
１００ｇ／Ｌのアルブミンと、１ｍＭ以下のオクタノエートと、２５０ｍＭのＮａ+とを含み、ｐＨが約６．５であるアルブミン製剤の、脂肪酸プロフィールと金属イオンプロフィールはそれぞれ図９と図１０に提供される。これらは特に、好適なプロフィールである。アルブミン組成物は、図９と図１０のプロフィールの１つ又は両方に適合してもよい。
【００４９】
カチオンは、少なくとも約１７５ｍＭから、例えば少なくとも約２００、２２５、２５０、２７５、３００、３２５、３５０、３７５、４００、４２５、４５０、４７５、５００、５２５、５５０、５７５、６００、６５０、７００、７５０、８００、８５０、９００、９５０、１０００ｍＭから存在することが好ましい。好適な最大カチオン濃度は、１０００、９５０、９００、８５０、８００、７５０、７００、６５０、６００、５７５、５５０、５２５、５００、４７５、４５０、４２５、４００、３７５、３５０、３２５、３００、２７５、及び２５０ｍＭを含む。好適なカチオン濃度は２００〜５００ｍＭを含む。より好適なのは、約２００〜３５０ｍＭのカチオン濃度である。最も好適なのは、約２５０ｍＭのカチオン濃度である。
【００５０】
組成物のｐＨは、約５．０〜約９．０、例えば約５．０、５．２５、５．５、５．７５、６．０、６．２５、６．５、６．７５、７．０、７．２５、７．５、７．７５、８．０、８．２５、又は８．５〜約５．５、５．７５、６．０、６．２５、６．５、６．７５、７．０、７．２５、７．５、７．７５、８．０、８．２５、８．５、８．７５、又は９．０でもよい。ｐＨは、約５．０〜８．０、例えば約６．０〜約８．０、さらに好ましくは約６．０〜約７．０、又は６．０〜６．５であることが好ましい。また好ましくは、ｐＨは約６．５である。
【００５１】
組成物のカチオンは、何れのカチオンによって提供されてもよく、後述されるように１つ又はそれ以上の（数個の）クラス又は分子種により提供されてもよい。例えば、カチオンは、１価又は２価であるか、単原子又は多原子であってもよく、アルカリ金属（例えばナトリウム、カリウム）、アルカリ土類金属（例えばカルシウム、マグネシウム）、又はアンモニウムの１つ又はそれ以上（数個）により提供されてもよい。カチオンは、ナトリウム及び／又はカリウム及び／又はマグネシウム、最も好ましくはナトリウム又はマグネシウムにより提供される。
【００５２】
カチオンは、無機酸の塩（例えば、１族又は２族の金属又はアンモニウムの塩、例えば塩化ナトリウム）、２価の酸の塩（例えば、１族又は２族の金属又はアンモニウムの硫酸塩又はリン酸塩、例えば硫酸ナトリウム）、又は有機酸の塩（例えば、１族又は２族の金属又はアンモニウムの酢酸塩又はクエン酸塩、例えば酢酸ナトリウム）により提供されてもよい。
【００５３】
アルブミンを安定化させるのに使用されるカチオンとアニオンは、本明細書に記載の（ｉ）塩、及び／又は（ii）ｐＨ緩衝液により提供されてもよい。従って、単一のカチオンの２以上（数個）の供給源があってもよく、例えばＮａは、ｐＨ緩衝液（リン酸ナトリウム）と塩（例えばＮａＣｌ）の両方により提供されてもよい。
【００５４】
本発明の有用なアニオンは、無機アニオン、例えばリン酸塩、及びハロゲン化物、例えば塩化物、及び有機アニオン、例えば酢酸塩及びクエン酸塩を含む。アニオンは、１価又は２価でも、単原子又は多原子でもよい。好適なアニオンは、硫酸塩、酢酸塩、リン酸塩、及び塩化物、特に塩化物、硫酸塩、及び酢酸塩を含む。
【００５５】
従って組成物は、１つ又はそれ以上（数個）のアルカリ金属リン酸塩又は塩化物（例えば、リン酸ナトリウム、リン酸カリウム、塩化ナトリウム、又は塩化カリウム）、アルカリ土類金属リン酸塩（例えば、リン酸カルシウム、リン酸マグネシウム、塩化カルシウム、塩化マグネシウム）、又はリン酸アンモニウムもしくは塩化アンモニウムを含んでよい。
【００５６】
組成物は、全体的イオン強度が少なくとも１７５ｍｍｏｌ／Ｌでもよい。例えば、約１７５〜１０００ｍｍｏｌ／Ｌ、例えば約１７５、２００、２２５、２５０、２７５、３００、３２５、３５０、３７５、４００、４２５、４５０、４７５、５００、５２５、５５０、５７５、６００、６５０、７００、７５０、８００、８５０、９００、９５０、１０００ｍｍｏｌ／Ｌ〜約１０００、９５０、９００、８５０、８００、７５０、７００、６５０、６００、５７５、５５０、５２５、５００、４７５、４５０、４２５、４００、３７５、３５０、３２５、３００、２７５、２５０ｍｍｏｌ／Ｌ。さらに好ましいのは、約２００〜３５０ｍｍｏｌ／Ｌの全体的イオン強度である。最も好ましいのは、約２５０ｍｍｏｌ／Ｌのイオン強度である。
【００５７】
本発明者らは、洗剤（例えばポリソルベート８０（「ツイーン（登録商標）」））が、細胞培養中の哺乳動物細胞にとって有害となり得ることを、見いだした。従って、組成物は２０ｍｇ／Ｌ未満の洗剤（例えばポリソルベート８０）、好ましくは１５、１０、５、４、３、２、１、０．５、０．１、０．０１、０．００１ｍｇ／Ｌ未満の洗剤（例えばポリソルベート８０）を含むことが好ましい。さらに好ましくは、組成物は洗剤（例えばポリソルベート８０）を実質的に含まない。すなわち、組成物中の洗剤（例えばポリソルベート８０）のレベルは、培養中の細胞、例えばインビトロ細胞培養のような細胞培養中の哺乳動物細胞（特に、ヒト幹細胞などの幹細胞）に対して有害な作用を引き起こすのには充分ではないことが好ましい。最も好ましくは組成物は、洗剤（例えばポリソルベート８０）を含まない。洗剤（例えばポリソルベート８０）レベルは、当業者に公知の技術、例えば、特に限定されないが、ＷＯ２００４／０９９２３４（参照することにより本明細書に組み込まれる）に開示されたアッセイにより測定することができる。
【００５８】
いくつかの細胞培地では、培地がトリプトファンを実質的に含まないか又は含まないことが好ましい（例えば、Lee et al (2002), Immunology Vol 107(4): 452-460に開示されているようなトリプトファン不含ＲＰＭＩ１６４０）。アルブミン組成物は、培地に添加してもよい。すなわち、媒体のトリプトファン不含性を維持するために、低レベルのアミノ酸（例えばｎ−アセチルトリプトファン）を有するか、アミノ酸（例えばｎ−アセチルトリプトファン）を実質的に含まないか、又はアミノ酸（例えばｎ−アセチルトリプトファン）を含まないアルブミン組成物が有用である。従って、アルブミン組成物が、５mM未満のアミノ酸（例えばｎ−アセチルトリプトファン）、好ましくは4、３、２、１、０．５、０．１、０．０１、０．００５、０．００１ｍＭ未満のアミノ酸（例えばｎ−アセチルトリプトファン）を含むことが好ましい。さらにより好ましくは、組成物が、アミノ酸（例えば、Ｎ−アセチルトリプトファン）を実質的に含まない。すなわち、組成物中のアミノ酸（例えばｎ−アセチルトリプトファン）のレベルが、培養中の細胞、例えばインビトロ細胞培養のような細胞培養中の哺乳動物細胞（特に、ヒト幹細胞などの幹細胞）に対して有害な作用を引き起こすのには充分ではないことが好ましい。最も好ましくは組成物は、アミノ酸（例えばｎ−アセチルトリプトファン）を含まない。
さらには、組成物が、オクタノエートと、アミノ酸（ｎ−アセチルトリプトファン）と、洗剤（例えばポリソルベート８０）とを実質的に含まないか、又は完全に含まないことが好ましい。
【００５９】
細胞培養物に対するアルブミン製剤の有害作用又は毒性作用があるかどうかを確定するために、本発明のアルブミン製剤を含む第１の細胞培養培地を調製し、１つ又はそれ以上（数個）の対照細胞培養培地を調製し、そして細胞株に対するこれらの影響を追跡する試験を行ってもよい。対照の細胞培養培地は、本発明のアルブミン製剤が、別のアルブミン製剤、例えばオクタノエート、洗剤（例えばポリソルベート８０）、及び／又はアミノ酸（例えばｎ−アセチルトリプトファン）で安定化されたアルブミン製剤で置換されていること以外は、第１の細胞培養培地と同一である。試験培地と対照とを使用して、１つ又はそれ以上（数個）の細胞株（例えば、本明細書に記載の細胞株）を培養して、例えば細胞増殖、細胞形態、及び／又は細胞分化を追跡することにより、細胞に対するアルブミンの影響が追跡される。この試験は、細胞株の複数回の継代、少なくとも２、３、４、５、６、７、８、９、又は１０回の継代にわたって行われることが好ましい。適切な方法は当該分野で公知である。本発明のアルブミン製剤は、高レベルのオクタノエート、洗剤、又はアミノ酸で安定化させたアルブミンより、細胞に対する毒性又は有害性が小さいことが好ましい。例えば、本発明のアルブミン製剤を含む培地は、別のアルブミン製剤、例えば、オクタノエート、洗剤（例えばポリソルベート８０）、及び／又はアミノ酸（例えばｎ−アセチルトリプトファン）で安定化させたアルブミン製剤を含む対照培地に対して、少なくとも２、５、１０、１００、１０００、１００００、又は１０００００倍の改良を示すことができる。２、５、１０、１００、１０００、１００００、又は１０００００倍の改良は、生存能力のある細胞の数、正しいか又は健常な細胞形態、及び／又は分化した細胞の数もしくは相対数、特に所望の細胞クラスもしくはタイプへの分化を示す細胞に関するものでもよい。
【００６０】
アルブミン組成物の安定性が、水中又は１５０ｍＭのＮａ中の同等のアルブミンの安定性より高いことが好ましい。特にアルブミンの不溶性凝集物の生成に関連する安定性を比較するための１つの方法は：
ｉ）アルブミン組成物のアリコート（例えば１ｍＬ）をキュベット（例えば、ポリスチレンキュベット、例えばSarstedt １０×４×４５ｍｍ）に入れ、
ii）あらかじめ平衡化させ所望の温度（例えば６５℃）に制御された温度制御分光光度計にキュベットを入れ、
iii）空のキュベットを対照として３５０ｎｍで、所望の時間（例えば２時間）にわたって所定の間隔（例えば１８秒毎）で読むことにより、組成物の吸光度を追跡／測定し、
iv）最初の数個（例えば７つ）のデータ点を取り、データ点の読み値を平均し、すべてのデータ点からこのデータ点を引くことによりデータを処理して、約０の基礎吸光度値を得て、
ｖ）処理された吸光度値が、このベースラインより０．１ＡＵ（吸光度単位）だけ上昇させるのにかかる時間を測定及び／又は記録する。
【００６１】
安定性解析は二重で行われることが好ましい。
【００６２】
測定された吸光度がベースラインより０．１ＡＵ上昇するのにかかる時間（６５℃で行われる上記試験に従って）が、溶媒（例えば１５０ｍＭのＮａ又は水）中の同じ濃度の、及び同じ条件下で測定されたアルブミンの対照溶液と比較して、少なくとも１０％良好になるように、本発明のアルブミン組成物の安定性が充分な高いことが好ましい。この安定性は、少なくとも２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０、又は１００％良好であることがより好ましい。
【００６３】
特にアルブミンの可溶性凝集物の生成のための代替又は追加の安定性試験は、設定した温度で、ＧＰ−ＨＰＬＣにより可溶性アルブミンポリマーの経時的生成を追跡するためである。ＧＰ ＨＰＬＣによる測定を用いる１つの適切な安定性試験は以下を含む：
ｉ）試験すべき各試料１０ｍＬを無菌的に（例えば、無菌の０．２２μｍフィルターで濾過して）無菌のバイアル（例えば、ベーキングした１０ｍＬのガラスバイアル）に入れ、次にこれを栓をし（例えば、無菌のブチルゴムシール、及び任意にオーバーシールする）、
ii）約２００μｌのＴ０試料を取り、バイアルを特定の温度でインキュベートし（例えば、特定の温度（例えば４０℃）に設定した水浴中に入れる）、
iii）次に試料（約２００μｌ）を、各バイアルからある時点（例えば１４日）後に取り、
iv）バイアル（＜５０ｍｇ／ｍＬで）から取ったアルブミン試料のアリコート（例えば２５μｌ）をＧＰ−ＨＰＬＣカラム（例えば、７．８ｍｍ内径×３００ｍｍ長のＴＳＫ Ｇ３０００ＳＷＸＬカラム（Tosoh Bioscience）、６．０ｍｍ内径×４０ｍｍ長のＴＳＫ ＳＷガードカラム（Tosoh Bioscience）を有する）に注入し、
ｖ）適切な緩衝液（例えば、２５ｍＭのリン酸ナトリウム、１００ｍＭの硫酸ナトリウム、０．０５％（ｗ／ｖ）のアジ化ナトリウム、ｐＨ７．０）中で、適切な速度（例えば１ｍＬ／分）で、アリコートのクロマトグラフィーを行い、
vi）例えば、２８０ｎｍでのＵＶ検出により、クロマトグラフィーを追跡し、
vii）アリコートのモノマー、ダイマー、トリマー、及びポリマー含量の１つ又はそれ以上（数個）又はすべてを、総ピーク面積に対する各ピーク面積を確定することにより、％（ｗ／ｗ）として定量する。
【００６４】
試験は三重で行うことが好ましい。
【００６５】
すなわち本発明はまた、上記試験の１つ又は両方で定義した安定性を有するアルブミン組成物と、上記試験の１つ又は両方を含む、アルブミン組成物を製造するための方法とを提供する。
【００６６】
多数の哺乳動物や鳥類からのアルブミンが記載され性状解析されている［例えば、ＷＯ２０１０／０９２１３５（特に表１）及びＰＣＴ／ＥＰ１１／０５５５７７（特に第９頁と配列番号２、４〜１９、及び３１）（両方とも参照することによりその全体が本明細書に組み込まれる）に記載のアルブミン類）］。
【００６７】
本発明の組成物は、１つ又はそれ以上（数個）のアルブミンを含んでよい。好ましくはこの組成物は、ヒトアルブミン（例えばＡＡＡ９８７９７又はＰ０２７６８−１、配列番号２（成熟）、配列番号３（未熟））、ヒト以外の霊長類アルブミン、（例えばチンパンジーアルブミン（予測される配列ＸＰ＿５１７２３３．２、配列番号４）、ゴリラアルブミン又はマカクアルブミン（例えばＮＰ＿００１１８２５７８、配列番号５）、げっ歯類のアルブミン（例えばハムスターアルブミン（例えばＡ６ＹＦ５６、配列番号６）、モルモットアルブミン（例えばＱ６ＷＤＮ９−１、配列番号７）、マウスアルブミン（例えばＡＡＨ４９９７１又はＰ０７７２４−１バージョン３、配列番号８、又は成熟配列、配列番号１９）とラットアルブミン（例えばＡＡＨ８５３５９又はＰ０２７７０−１バージョン２、配列番号９）、ウシ科のアルブミン例えばウシアルブミン（例えばウシアルブミンＰ０２７６９−１、配列番号１０）、ウマ科のアルブミン例えばウマアルブミン（例えばＰ３５７４７−１、配列番号１１）又はロバアルブミン（例えばＱ５ＸＬＥ４−１、配列番号１２）、ウサギアルブミン（例えばＰ４９０６５−１バージョン２、配列番号１３）、ヤギアルブミン（例えばＡＣＦ１０３９１、配列番号１４）、ヒツジアルブミン（例えばＰ１４６３９−１、配列番号１５）、イヌアルブミン（例えばＰ４９８２２−１、配列番号１６）、ニワトリアルブミン（例えばＰ１９１２１−１バージョン２、配列番号１７）とブタアルブミン（例えばＰ０８８３５−１バージョン２、配列番号１８）から選択されるアルブミンを含む。成熟型のアルブミンが特に好ましく、当業者は、タンパク質データバンクなどの公に入手できる情報を使用して、及び／又はSignalP（例えば、SignalP（Nielsen et al., 1997, タンパク質 Engineering 10: 1-6)）などのシグナルペプチド認識ソフトウェアを使用して、成熟型を同定することができる。SignalPバージョン４．０が好ましい（Petersen et al (2011) Nature 方法s (8): 785-786）。
【００６８】
配列番号２に開示されているヒトアルブミン又はその天然に存在するアレレは、本発明のアルブミン組成物の好適なアルブミンである。配列番号２は、配列番号１のヌクレオチド配列によりコードされてよい。
【００６９】
アルブミン、特にヒトアルブミンは、変異体、又は、アルブミンの又はアルブミン変異体のコンジュゲーションの融合体などの誘導体でもよい。このアルブミンは、ＨＳＡ（配列番号2）と少なくとも７０％の同一性、より好ましくはＨＳＡと少なくとも７２、７３、７５、８０、８５、９０、９５、９６、９７、９８、９９、９９．５％の同一性を有することが好ましい。アルブミン変異体は、特に配列番号２で配列リストに提供されるような親アルブミンと比較して、１つ以上（数個）の点突然変異（例えば、Ｋ５７３Ｐ、Ｋ５７３Ｙ、Ｋ５７３Ｗ、Ｋ５００Ａ）を有してもよい（変異は、配列番号２に関連して記載されており、当業者は、本明細書に記載されたＥＭＢＯＳＳソフトウェアを使用して、配列番号２に対してアルブミン配列を整列させることにより、他のアルブミン中の同等の変異を同定することができる）。配列番号２と約７０〜８０％の同一性を有するアルブミン（例えば、配列番号１９のマウスアルブミン）について、カチオンが少なくとも２５０ｍＭから存在することが、より好ましい。
【００７０】
アルブミンは、組成物中で約１ｇ／Ｌ〜約４００ｇ／Ｌの濃度で存在することが好ましい。例えば、この濃度は、約１、５、１０、２５、５０、７５、１００、１２５、１５０、１７５、２００、２２５、２５０、２７５ｇ／Ｌから、約５、１０、２５、５０、７５、１００、１２５、１５０、１７５、２００、２２５、２５０、２７５、３００、３２５、３５０、３７５、又は４００ｇ／Ｌまででもよい。アルブミンの濃度は、約５０ｇ／Ｌ〜約２００ｇ／Ｌであることが好ましい。
【００７１】
有利には、組成物は組換アルブミンを含んでよい。すなわちアルブミンは、組換生物、例えば組換微生物、組換植物、又は組換動物から得られてよい。動物を含まない成分を好むユーザーもいるため、アルブミンは、動物ではない組換供給源、例えば組換微生物又は組換植物に由来することがより好ましい。好適な微生物は、原核生物、さらに好ましくは真核生物、例えば動物、植物、真菌、又は酵母を含み、特に限定されないが、アルブミンが組換タンパク質としてうまく発現されている以下の種を含む：
−  真菌（特に限定されないが、アスペルギルス属（Aspergillus）（ＷＯ０６０６６５９５）、クルイベロミセス属（Kluyveromyces）（Fleer 1991, Bio/technology 9, 968-975)、ピチア属（Picchia）(Kobayashi 1998 Therapeutic Apheresis 2, 257-262)、及びサッカロミセス属（Saccharomyces）（Sleep 1990, Bio/technology 8, 42-46））、細菌（Pandjaitab 2000, J. Allergy Clin. Immunol. 105, 279-285）、
−  動物（Barash 1993, Transgenic Research 2, 266-276）、
−  植物（特に限定されないが、ジャガイモ及びタバコ（Sijmons 1990, Bio/technology 8, 217 and Farran 2002, Transgenic Research 11, 337-346）及びイネ、例えばオリザ・サティバ（Oryza sativa））、
−  哺乳動物細胞、例えばＣＨＯ及びＨＥＫ。
すべての引用は参照することによりその全体が本明細書に組み込まれる。
【００７２】
本発明のアルブミンは、好ましくは適切な宿主細胞中で組換産生される。非動物宿主細胞が好ましい。好適な宿主は酵母であり、好ましくはピチア属（Picchia）又はサッカロミセス属（Saccharomycacae）、さらに好ましくはサッカロミセス・セレビッシェ（Saccharomyces cerevisiae）から選択される。
【００７３】
好適な組成物は、５０〜２５０ｇ／Ｌのアルブミンと、２００〜３００ｍＭのＮａ+と、２０〜３０ｍＭのホスフェートとを含み、２ｍＭ未満のオクタノエートを含み、ｐＨが約６．０〜７．０である。特に好適な組成物は、５０〜１５０ｇ／Ｌのアルブミンと、２２５〜２７５ｍＭのＮａ+と、２０〜３０ｍＭのホスフェートとを含み、１ｍＭ未満のオクタノエートを含み、ｐＨが約６．５である。
【００７４】
本発明の他の形態は、アルブミンと、溶媒と、少なくとも１７５ｍＭのカチオンとを有し、ｐＨが約５．０〜約８．０又は９．０である組成物を提供する。このような組成物の利点は、この製剤が、哺乳動物細胞培養物で使用される時、有用な寿命を有するのに充分に安定であり、哺乳動物細胞の健康に有害ではないアルブミンを提供することである。溶媒、カチオン、イオン強度、及びｐＨの好適なパラメータは、本発明の第１の形態に関連して開示されたものと同じである。
【００７５】
本発明のアルブミン組成物は、柔軟性のあるポリマー容器、例えばバッグ中で提供されてよい。適切な容器容量は、約５０ｍＬ〜約１００００ｍＬ、例えば５０ｍＬ、１０００ｍＬ、５０００ｍＬ、及び１００００ｍＬを含む。この容器は、容器の充填及び／又はバッグからの供給を可能にするように、１つ又はそれ以上（数個）の入り口又は出口を有することが好ましい。アルブミン組成物は、例えば容器に充填される前又は後に、滅菌されてよい。
【００７６】
組換アルブミンの産生は当該分野で公知であり、大腸菌（Escherichia coli）（ｅｐ７３，６４６）、酵母（ＷＯ００／４４７７２、ＥＰ０６８３２３３Ａ２、及びＵＳ５，６１２，１９６）、及び枯草菌（Bacillus subtilis）（Saunders et al, 1987, J. Bacteriol, 169, 2917-2925）、アスペルギルス属（Aspergillus）などの多くの宿主が報告されている。アルブミンの産生は、トランスジェニック植物（例えば、特に限定されないが、タバコ、イネ、及びトウモロコシ）、及びトランスジェニック動物（例えば、特に限定されないが、ニワトリ及びウシ）で証明されている。
【００７７】
本発明の第２の形態は、本明細書に記載の組成物と基本培地とを含む細胞培養培地を提供する。細胞培養培地は、例えばヒト細胞のような哺乳動物細胞の培養用でもよい。細胞培養培地は、例えば、幹細胞の、配偶子の、又は胚の培養用、例えば生殖補助技術（ＡＲＴ）目的の細胞培養用でもよい。
【００７８】
細胞培養培地は、動物由来成分を実質的に含まないことが好ましい。細胞培養培地は、動物由来成分を含まないことが、より好ましい。この文脈において、「動物由来」成分は、動物から得られて成分を意味する。これは、動物由来成分と同一であるか又は実質的に同一であるが、動物から得られる代わりに、非動物の組換成分として得られる成分は含まない。非動物は、植物（例えばイネ）、微生物（例えば酵母又は細菌）を含む。
【００７９】
その中でアルブミン製剤が使用される細胞培養培地の例は、ＷＯ２００８／００９６４１（参照することによりその全体が本明細書に組み込まれる）に記載されたものを含む。
【００８０】
本発明の第１の形態のアルブミン製剤を含む細胞培養培地は、１つ又はそれ以上（数個）の脂肪酸、例えば脂肪酸補助物質により提供されるような１つ又はそれ以上（数個）の脂肪酸を含んでも含まなくてもよい。脂肪酸補助物質は市販されており、例えばSIgma-Aldrichから入手できるＦ７０５０脂肪酸補助物質（動物成分不含、液体、無菌濾過、細胞培養に適している）である。
【００８１】
本発明の第３の形態は、細胞、例えば本発明の第２の形態及び／又は後述の本発明の第５の形態に関連して記載した細胞、を培養するための、本明細書に記載のアルブミン製剤、組成物、又は細胞培養培地の使用に関する。
【００８２】
本発明の第４の形態は、本明細書に記載の培養培地中で細胞をインキュベートすることを含む、細胞を培養する方法に関する。細胞は、本発明の第２の形態及び／又は後述の本発明の第５の形態に関連して記載した細胞でもよい。
【００８３】
本発明の第５の形態は、医薬品における本発明の第１の形態のアルブミン製剤の使用に関する。すなわち本発明はまた、アルブミン製剤と活性医薬成分（ＡＰＩ）とを含む医薬組成物を提供する。
【００８４】
本発明の第６の形態は、アルブミンを安定化するための高カチオン濃度、例えば本発明の第１の形態について記載した少なくとも１７５ｍＭのカチオンの使用に関する。
【００８５】
本発明の組成物と培地は、種々の細胞を培養するのに使用してもよい。ある態様において培地は、真核細胞、例えば植物細胞及び／又は動物細胞を培養するために使用される。細胞は、哺乳動物細胞、魚の細胞、昆虫細胞、両生類の細胞、又は鳥類の細胞でもよい。培地は、ＭＫ２．７細胞、ＰＥＲ−Ｃ６細胞、ＮＳ０、ＧＳ−ＮＳ０、ＣＨＯ細胞、ＨＥＫ２９３細胞、ＣＯＳ細胞、及びＳｐ２／０細胞からなる群から選択される細胞を培養するために使用することができる。ＭＫ２．７（ＡＴＣＣカタログ番号ＣＲＬ１９０９）は、ラット脾細胞とマウスＳｐ２／０骨髄腫の融合から誘導されるハイブリドーマ細胞株を発現する抗マウスＶＣＡＭ ＩｇＧＩである。ＭＫ２．７は、無血清培地中で増殖することができる非接着性細胞株である。他のタイプの細胞は、５Ｌ８ハイブリドーマ細胞，Ｄａｕｄｉ細胞，ＥＬ４細胞，ＨｅＬａ細胞，ＨＬ−６０細胞，Ｋ５６２細胞，Ｊｕｒｋａｔ細胞，ＴＨＰ−１細胞，Ｓｐ２／０細胞；及び／又は表２に列記されるハイブリドーマ細胞（表２、ＷＯ２００５／０７０１２０に列記されている）、又は本明細書に開示されるか又は当該分野で公知の任意の他のタイプの細胞からなる群から選択することができる。
【００８６】
好適な細胞は、幹細胞、例えば特に限定されないが、胚幹細胞、胎児幹細胞、成人幹細胞、及び多能性幹細胞（例えば、誘導された多能性幹細胞）を含む。特に好適な細胞は、ヒト胚幹細胞、ヒト胎児幹細胞、ヒト成人幹細胞、及びヒト多能性幹細胞、例えば誘導されたヒト多能性幹細胞である。細胞株は胚盤胞由来でもよい。この細胞株は、１つ又はそれ以上（数個）の以下の細胞マーカーについて陽性であってもよい：ＰＯＵ５Ｆ１（ＯＣＴ−４）、ＳＳＥＡ−３、ＳＳＥＡ−４、ＴＲＡ１−６０、ＴＲＡ１−８１、ＡＬＰＬ、テロメラーゼ活性、及び／又はｈＥＳ−Ｃｅｌｌｅｃｔ（登録商標）（Cellartis AB, Gothenburg Sweden）。細胞株は、細胞マーカーＡＬＰＬ及び／又はＳＳＥＡ−１について陰性であってもよい。. 特に好適な細胞株は、ＳＡ１２１及びＳＡ１８１（Cellartis AB, Gothenburg, Sweden）を含む。
【００８７】
追加の哺乳動物細胞のタイプは、特に限定されないが、１次上皮細胞（例えば、ケラチン細胞、子宮頸部上皮細胞、気管支上皮細胞、気管上皮細胞、腎臓上皮細胞、及び網膜上皮細胞）、及び樹立された細胞株、及びこれらの株（例えば、２９３胚性腎臓細胞、ＢＨＫ細胞、ＨｅＬａ子宮頸部上皮細胞、及びＰＥＲ−Ｃ６網膜細胞、ＭＤＢＫ（ＮＢＬ−１）細胞、９１１細胞、ＣＲＦＫ細胞、ＭＤＣＫ細胞、ＣＨＯ細胞、ＢｅＷｏ細胞、Ｃｈａｎｇ細胞、Ｄｅｔｒｏｉｔ５６２細胞、ＨｅＬａ２２９細胞、ＨｅＬａＳ３細胞、Ｈｅｐ−２細胞、ＫＢ細胞、ＬＳ１８０細胞、ＬＳ１７４Ｔ細胞、ＮＣＩ−Ｈ−５４８細胞、ＲＰＭＩ２６５０細胞、ＳＷ−１３細胞、Ｔ２４細胞、ＷＩ−２８  ＶＡ１３、２ＲＡ細胞、ＷＩＳＨ細胞、ＢＳ−Ｃ−Ｉ細胞、ＬＬＣ−ＰＫ２細胞、Ｃｌｏｎｅ  Ｍ−３細胞、１−１０細胞、ＲＡＧ細胞、ＴＣＭＫ−１細胞、Ｙ−１細胞、ＬＬＣ−ＰＫ１細胞、ＰＫ（１５）細胞、ＧＨ．１細胞、ＧＨ３細胞、Ｌ２細胞、ＬＬＣ−ＲＣ２５６細胞、ＭＨｌＣ１細胞、ＸＣ細胞、ＭＤＯＫ細胞、ＶＳＷ細胞、及びＴＨ−Ｉ、Ｂ１細胞、又はこれらの誘導体）、任意の組織又は臓器［特に限定されないが、心臓、肝臓、腎臓、結腸、小腸、食堂、胃、神経組織（脳、脊髄）、肺、管組織（動脈、静脈、毛細管）、リンパ組織（リンパ腺、アデノイド、扁桃腺、骨髄、及び血液）、脾臓］からの繊維芽細胞、及び繊維芽細胞と繊維芽細胞様細胞株（例えば、ＣＨＯ細胞、ＴＲＧ−２細胞、ＩＭＲ−３３細胞、Ｄｏｎ細胞、ＧＨＫ−２１細胞、シトルリン血症細胞、Ｄｅｍｐｓｅｙ細胞、Ｄｅｔｒｏｉｔ５５１細胞、Ｄｅｔｒｏｉｔ５１０細胞、Ｄｅｔｒｏｉｔ５２５細胞、Ｄｅｔｒｏｉｔ５２９細胞、Ｄｅｔｒｏｉｔ５３２細胞、Ｄｅｔｒｏｉｔ５３９細胞、Ｄｅｔｒｏｉｔ５４８細胞、Ｄｅｔｒｏｉｔ５７３細胞、ＨＥＬ２９９細胞、ＩＭＲ−９０細胞、ＭＲＣ−５細胞、ＷＩ−３８細胞、ＷＩ−２６細胞、ＭｉＣｌ１細胞、ＣＨＯ細胞、ＣＶ−１細胞、ＣＯＳ−１細胞、ＣＯＳ−３細胞、ＣＯＳ−７細胞、Ｖｅｒｏ細胞、ＤＢＳ−ＦｒｈＬ−２細胞、ＢＡＬＢ／３Ｔ３細胞、Ｆ９細胞、ＳＶ−Ｔ２細胞、Ｍ−ＭＳＶ−ＢＡＬＢ／３Ｔ３細胞、Ｋ−ＢＡＬＢ細胞、ＢＬＯ−１１細胞、ＮＯＲ−１０細胞、Ｃ３Ｈ／ＩＯＴＩ／２細胞、ＨＳＤＭｌＣ３細胞、ＫＬＮ２０５細胞、ＭｃＣｏｙ細胞、マウスＬ細胞、２０７１株（マウスＬ）細胞、Ｌ−Ｍ株（マウスＬ）細胞、Ｌ−ＭＴＫ（マウスＬ）細胞、ＮＣＴＣクローン２４７２及び２５５５、ＳＣＣ−ＰＳＡ１細胞、Ｓｗｉｓｓ／３Ｔ３細胞、インドキョン細胞、SIRC細胞、CII細胞、及びジェンセン細胞、又はこれらの誘導体）を含むことができる。
【００８８】
細胞は、癌細胞、例えば特に限定されないが、以下の癌細胞株を含む：ヒト骨髄腫（例えば、  ＫＭＭ−１、ＫＭＳ−１１、ＫＭＳ−１２−ＰＥ、ＫＭＳ−１２−ＢＭ、ＫＭＳ−１８、ＫＭＳ−２０、ＫＭＳ−２１−ＰＥ、Ｕ２６６、ＲＰＭＩ８２２６）；ヒト乳癌（例えば、ＫＰＬ−１、ＫＰＬ−４、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１、ＭＣＦ−７、ＫＰＬ−３Ｃ、Ｔ４７Ｄ、ＳＫＢＲ３、ＨＳ５７８Ｔ、ＭＤＡ４３５５、Ｈｓ６０６（ＣＲＬ−７３６８）、Ｈｓ６０５．Ｔ（ＣＲＬ−７３６５）ＨＳ７４２．Ｔ（ＣＲＬ−７４８２）、ＢＴ−４７４、ＨＢＬ−１００、ＨＣＣ２０２、ＨＣＣ１４１９、ＨＣＣ１９５４、ＭＣＦ７、ＭＤＡ−３６１、ＭＤＡ−４３６、ＭＤＡ−４５３、ＳＫ−ＢＲ−３、ＺＲ−７５−３０、ＵＡＣＣ−７３２、ＵＡＣＣ−８１２、ＵＡＣＣ−８９３、ＵＡＣＣ−３１３３、ＭＸ−１及びＥＦＭ−１９２Ａ）；乳管（乳房）癌（例えば、ＨＳ５７ＨＴ（ＨＴＢ−１２６）、ＨＣＣ１００８（ＣＲＬ−２３２０）、ＨＣＣ１９５４（ＣＲＬ−２３３８；ＨＣＣ３８（ＣＲＬ−２３１４）、ＨＣＣ１１４３（ＣＲＬ−２３２１）、ＨＣＣ１１８７（ＣＲＬ−２３２２）、ＨＣＣ１２９５（ＣＲＬ−２３２４）、ＨＣＣ１５９９（ＣＲＬ−２３３１）、ＨＣＣ１９３７（ＣＲＬ−２３３６）、ＨＣＣ２１５７（ＣＲＬ−２３４０）、ＨＣＣ２２１８（ＣＲＬ−２３４３）、Ｈｓ５７４．Ｔ（ＣＲＬ−７３４５）、Ｈｓ７４２．Ｔ（ＣＲＬ−７４８２）；皮膚癌（例えば、ＣＯＬＯ８２９（ＣＲＬ−１９７４）、ＴＥ３５４．Ｔ（ＣＲＬ−７７６２）、Ｈｓは９２５．Ｔ（ＣＬＵ−７６７７））；ヒト前立腺癌（例えば、ＭＤＡのＰＣａ２ａとＭＤＡのＰＣａ２Ｂ）；骨癌（例えば、Ｈｓ９１９．Ｔ（ＣＲＬ−７６７２）、Ｈｓ８２１．Ｔ（ＣＲＬ−７５５４）、Ｈｓ８２０．Ｔ（ＣＲＬ−７５５２）ＹＨＳ７０４．Ｔ（ＣＲＬ−７４４４）、ＨＳ７０７（Ａ）、Ｔ（ＣＲＬ−７４４８）、ＨＳ７３５．Ｔ（ＣＲＬ−７４７１）、ＨＳ８６０．Ｔ（ＣＲＬ−７５９５）ＹＨＳ８８８．Ｔ．（ＣＲＬ−７６２２）；ＨＳ８８９．Ｔ（ＣＲＬ−７６２６）；ＨＳ８９０．Ｔ（ＣＲＬ−７６２８）、ＨＳ７０９．Ｔ（ＣＲＬ−７４５３））；ヒトリンパ腫（例えば、Ｋ５６２）；ヒト子宮頚癌（例えば細胞、ＨｅＬＡ）；肺癌細胞株（例えば、Ｈ１２５、Ｈ５２２、Ｈ１２９９、ＮＣＩ−Ｈ２１２６（ＡＴＣＣ  ＣＣＬ−２５６）、ＮＣＩ−Ｈ１６７２（ＡＴＣＣ  ＣＲＬ−５８８６）、ＮＣＩ−２１７１（ＣＲＬ−５９２９）；ＮＣＩ−Ｈ２１９５（ＣＲＬ０５９３１）；肺腺癌（例えば、ＮＣＩ−Ｈ１３９５（ＣＲＬ−５８５６）、ＮＣＩ−Ｈ１４３７（ＣＲＬ−５８７２）、ＮＣＩ−Ｈ２００９（ＣＲＬ−５９１１）、ＮＣＩ−Ｈ２１２２（ＣＲＬ−５９８５）、ＮＣＩ−Ｈ２０８７（ＣＲＬ−５９２２）；転移性肺癌（例えば、骨）（例えば、ＮＣＩ−Ｈ２０９（ＨＴＢ−１７２）；結腸癌細胞株（例えば、ＬＮ２３５、ＤＬＤ２、ＣｏｌｏｎＡ、ＬＩＭ２５３７、ＬＩＭ１２１５、ＬＩＭ１８６３、ＬＩＭ１８９９、ＬＩＭ２４０５、ＬＩＭ２４１２、ＳＫ−ＣＯ１（ＡＴＣＣ  ＨＴＢ−７７）、ＨＴ２９（ＡＴＣＣ  ＨＴＢ３８）、ＬｏＶｏ（ＡＴＣＣ  ＣＣＬ−２２９）、ＳＷ１２２２（ＡＴＣＣ  ＨＢ−１１０２８���、及びＳＷ４８０（ＡＴＣＣ  ＣＣＬ−２２８）；卵巣癌（例えば、ＯＶＣＡＲ−３（ＡＴＣＣ  ＨＴＢ−１６１）及びＳＫＯＶ−３（ＡＴＣＣ  ＨＴＢ−７７）、中皮腫（例えば、ＮＣＩ−Ｈ２０５２（ＣＲＬ−５９１５）；神経内分泌癌（例えば、ＨＣＩ−Ｈ１７７０（例えば、ＣＲＬ−５８９３）；胃癌（例えば、ＬＩＭ１８３９）；神経膠腫（例えば、Ｔ９８、Ｕ２５１、ＬＮ２３５）；頭頸部扁平上皮癌細胞株（例えば、ＳＣＣ４、ＳＣＣ９、及びＳＣＣ２５）、髄芽腫（例えば、Ｄａｏｙ、Ｄ２８３  Ｍｅｄ、及びＤ３４１Ｍｅｄ）；精巣非セミノーマ（例えば、ＴＥＲＡ１）；前立腺癌（例えば、１７８−２ＢＭＡ、ＤＵ１４５、ＬＮＣａＰ、及びＰＣ−３）。他の癌細胞株は、当該分野で周知である。
【００８９】
本明細書に開示される培地は、浮遊細胞又は接着細胞を培養するのに使用することができる。本発明の培地は、細胞の、及び単層培養又は浮遊培養の細胞中のタンパク質もしくは抗体の発現のための、接着培養、単層培養、又は浮遊培養、トランスフェクション、及び／又は培養に適している。
【００９０】
細胞培養は、種々の培養器具、例えば発酵槽型のタンク培養器具、エアリフト型の培養器具、培養フラスコ型の培養器具、スピナーフラスコ型の培養器具、マイクロキャリアー型の培養器具、流動床型の培養器具、中空繊維型の培養器具、ローラーボトル型の培養器具、充填ベッド型の培養器具、又は当該分野で公知の任意の他の適した器具、を使用して行うことができる。
【００９１】
本発明はさらに、本発明の範囲を限定すると解するべきではない以下の例により記載される。
【実施例】
【００９２】
実施例１：アルブミンの安定性に対するｎ−アセチルトリプトファン、ホスフェート濃度、及びナトリウム濃度の影響
【００９３】
目的：以前の研究は、６５℃での３５０ｎｍの吸光度の上昇による不溶性凝集物の生成の追跡は、アルブミンの安定性に対する異なる製剤（組成物）パラメータの影響のスクリーニングのための有効な方法であることを示した。オクタノエート及びポリソルベート８０は幹細胞増殖に対して有害なようであるため、アルブミン製剤はこれらの成分を実質的に含まないことが好ましい。本実施例は、アルブミンの安定性に対するｐＨ、ナトリウムイオン、及び緩衝液濃度の影響を分析する。アルブミンの一般的な安定剤はｎ−アセチルトリプトファンであり、従って本実施例にはこれが試験成分として含まれる。
【００９４】
方法：１４５ｍＭのＮａＣｌ中の１００ｍｇ／ｍＬのアルブミン（アルブミンバッチ１４０１）を、表３に従って１０ｍｇ／ｍＬに希釈した。希釈に使用された緩衝液は表１と２に示される。
【００９５】
【表１】
2014520535.tif 000003
【００９６】
【表２】
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【００９７】
【表３−１】
2014520535.tif 000005
【表３−２】
2014520535.tif 000006
【表３−３】
2014520535.tif 000007
【表３−４】
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【００９８】
いったん希釈後、試料は、１Ｍ ＨＣｌ（その容量はわずかであり、アルブミン又は成分濃度を変化させない）を用いて、その目的ｐＨに調整された。次に、得られる溶液のアリコート（１ｍｍＬ）をポリスチレンキュベット（Sarstedt １０×４×４５ｍｍ）に入れた。次に、キュベットを６５℃であらかじめ平衡化させ制御しておいた温度制御分光光度計に入れた。次に、３５０ｎｍでの吸光度を、空のキュベットを対照として、２時間にわたって１８秒毎に読むことにより追跡した。最初の７つのデータ点を取り、これらを平均し（平均を計算し）、次にすべてのデータ点からこれを引いて処理することにより、約０の基礎吸光度値を得た。特定の製剤試料について、この吸光度値をこのベースラインより０．１ＡＵ（吸光度単位）だけ上昇させるのにかかる時間を記録した。各製剤試料を二重で測定し、吸光度値を０．１ＡＵだけ上昇させるのにかかる時間を、各多重測定値について平均した。
【００９９】
結果：各試料が０．１ＡＵ上昇するための時間の処理されたデータを、試験した各製剤成分（ｎ−アセチルトリプトファン、ホスフェート濃度、及びナトリウム濃度）について、ｐＨに対する吸光度上昇の時間をプロットした。７２００秒を超える値は外挿された。データは、図１（ｐＨとｎ−アセチルトリプトファン）、図２（ｐＨとホスフェート）、及び図３（ｐＨとナトリウム）に提示される。
【０１００】
結論：
・５０ｍＭナトリウム以外のすべてのデータについて、最適ｐＨはｐＨ６〜７の間であった。５０ｍＭナトリウムについては、不溶性凝集物は生成していなかったが、高レベルの可溶性オリゴマーが生成されており、これらは、合体して不溶性凝集物を形成するということはない可能性がある。可溶性凝集物は、ＧＰ−ＨＰＬＣにより同定することができる。
・ホスフェート緩衝液濃度について、５０ｍＭと１００ｍＭの間に有意差はなかった。しかし、０ｍＭのホスフェートは、ｐＨ６〜８の間でわずかにより安定のように見えた。安定性の点ではホスフェートを使用しないことが最適であるが、例えば、緩衝液は製剤化の前にアルブミンのｐＨを調整する必要性を低減又は排除するため、緩衝液の使用はｐＨ制御を助ける。
・ナトリウムレベルを上昇させることは安定性に大きな効果を与え、１４５〜３００ｍＭのナトリウムの間で安定性が大きく上昇する。
【０１０１】
実施例２：アルブミンの安定性に対するナトリウム濃度上昇の影響
目的：実施例１は、上昇したナトリウムレベルがアルブミン安定性に有益な影響を与えることを示した。これをさらに調べるために、最適ｐＨ範囲で実施例１より広い範囲にわたって上昇させたナトリウム濃度を調べた。
【０１０２】
方法：１４５ｍＭのＮａＣｌ中の１００ｍｇ／ｍＬのアルブミン（アルブミンバッチ１４０１）を、表６に従って１０ｍｇ／ｍＬに希釈した。希釈に使用された緩衝液は表４と５に示される。
【０１０３】
【表４】
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【０１０４】
【表５】
2014520535.tif 000010
【０１０５】
【表６】
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【０１０６】
まずアルブミンと緩衝液とをバルクとして混合して希釈を行い、次にこれを１Ｍ ＨＣｌの添加により正しいｐＨに調整した。次に、これを分割し、水と５Ｍ ＮａＣｌを適宜加えた。これにより、すべての試料が確実にちょうど同じｐＨになった。得られた溶液のアリコート（１ｍＬ）をポリスチレンキュベット（Sarstedt １０×４×４５ｍｍ）に入れた。次に、キュベットを６５℃であらかじめ平衡化させ温度制御しておいた温度制御分光光度計に入れた。次に、３５０ｎｍでの吸光度を、空のキュベットを対照として、２時間にわたって１８秒毎に読むことにより追跡した。最初の７つのデータ点を取り、これらを平均し（平均を計算し）、次にすべてのデータ点からこれを引いて処理することにより、約０の基礎吸光度値を得た。特定の製剤試料について、この吸光度値をこのベースラインより０．１ＡＵ（吸光度単位）だけ上昇させるのにかかる時間を記録した。各製剤試料を二重測定で測定し、吸光度値を０．１ＡＵだけ上昇させるのにかかる時間を、各多重測定値について平均した。
【０１０７】
結果：各試料が０．１ＡＵ上昇するための時間の処理されたデータを、各ｐＨについて、Ｎａ濃度に対して吸光度上昇の時間をプロットした。７２００秒を超える値は外挿された。データは、図４に示される。
【０１０８】
結論：
・実施例１に一致して、ナトリウムレベルの上昇はアルブミンの安定性を上昇させた。これは、特に約２００ｍＭで顕著であり、ここで安定性が急に上昇した。これはすべてのｐＨについて同じであったが、ｐＨ６では、＜２００ｍＭでも、上昇する塩はまだ有効な影響を与えたため、これはあまり明らかではなかった。この上昇が約２００ｍＭであったという事実は、ほとんどの他のアルブミン製剤がほぼ生理学的に維持するために１５０ｍＭ以下であるため、以前は観察されなかったことが理由かも知れない。細胞培養培地で使用されるアルブミンについては、アルブミンは培地の中へ希釈され、培地の全体の塩濃度が細胞培養に適したものとなるため、これは問題ではないはずである。
・ｐＨ６はｐＨ６．５よりわずかに良好であり、何れもｐＨ７よりは顕著に良好であった。
【０１０９】
実施例３：異なる濃度のアルブミンの安定性に対するナトリウム濃度の影響
【０１１０】
目的：実施例２は、ナトリウム濃度がアルブミンの安定性にとって重要であることを示す。実施例２は、アルブミン濃度１０ｍｇ／ｍＬで行われた。この作用がより高濃度でも同じであることを確認するために、より高濃度のアルブミンでナトリウムの影響を調べた。
【０１１１】
方法：１４５ｍＭのＮａＣｌ中の１００ｍｇ／ｍＬのアルブミン（アルブミンバッチ１４０１）を、表９に従って５０又は９０ｍｇ／ｍＬに希釈した。希釈に使用された緩衝液は表７と８に示される。
【０１１２】
【表７】
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【０１１３】
【表８】
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【０１１４】
【表９】
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【０１１５】
まずアルブミンと緩衝液とをバルクとして混合し、次にこれを１Ｍ ＨＣｌの添加により正しいｐＨに調整した。次に、これを分割し、水と５Ｍ ＮａＣｌを適宜加えた。これにより、すべての試料が確実にちょうど同じｐＨになった。
【０１１６】
次に、得られた溶液のアリコート（１ｍＬ）をポリスチレンキュベット（Sarstedt １０×４×４５ｍｍ）に入れた。次に、キュベットを６５℃であらかじめ平衡化させ制御しておいた温度制御分光光度計に入れた。次に、３５０ｎｍでの吸光度を、空のキュベットを対照として、２時間にわたって１８秒毎に読むことにより追跡した。最初の７つのデータ点を取り、これらを平均し（平均を計算し）、次にすべてのデータ点からこれを引いて処理することにより、約０の基礎吸光度値を得た。特定の製剤試料について、この吸光度値をこのベースラインより０．１ＡＵ（吸光度単位）だけ上昇させるのにかかる時間を記録した。各製剤試料を二重で測定し、吸光度値を０．１ＡＵだけ上昇させるのにかかる時間を、各多重測定値について平均した。
【０１１７】
結果：各試料が０．１ＡＵ上昇するための時間の処理されたデータを、各ｐＨ（６．０、６．５、及び７．０）で５０ｍｇ／ｍＬのアルブミンについて、Ｎａ濃度に対する吸光度上昇の時間をプロットし、次に３つの異なるアルブミン濃度（１０、５０、及び９９０ｍｇ／ｍＬ）についてｐＨ６．５でプロットした。データは、図５と６に示される。
【０１１８】
結論：
・５０ｍｇ／ｍＬのアルブミンで、ナトリウム濃度の上昇がアルブミン安定性を改善する傾向が、すべての３つのｐＨで確認された。この例では、ｐＨ６．５が最適であった。
・ｐＨ６．５では、増加したナトリウムが安定性を改善する傾向が、再度すべてのアルブミン濃度で確認された。この傾向は９０ｇ／Ｌではそれほど顕著ではなかったが、２００ｍＭを超えるナトリウム濃度は、やはりアルブミン安定性を顕著に改善させた。
【０１１９】
実施例４：アルブミン中の可溶性凝集物の産生に対するナトリウム濃度の影響
【０１２０】
目的：不溶性凝集物を測定する製剤スクリーニングアッセイを使用すると、実施例１〜３は、ナトリウム濃度の上昇がアルブミン安定性を改善させることを示す。可溶性凝集物（アルブミンポリマー）を調べるために、４０℃で２週間の加速安定性試験でポリマー生成を追跡するための測定手段として、ＧＰ−ＨＰＬＣを使用する必要がある。実施例１〜３によりｐＨ６．５が好適なｐＨであることが証明されたため、この試験はｐＨ６．５で行われた。前記の製剤化条件（ｐＨ８．６、１５０ｍＭのＮａ）中のアルブミンの対照をまた、新しい製剤が有意に有益であることを確認するために使用した。実際のアルブミン濃度は、予測された１００ｍｇ／ｍＬではなく９０ｍｇ／ｍＬであった（これは、種々の製剤への希釈を可能にする最も高い濃度であったため）。しかし、このわずかに低い濃度で観察された傾向は、より高いアルブミン濃度でも同じであろうと考えられた。
【０１２１】
方法：１４５ｍＭのＮａＣｌ中の１００ｍｇ／ｍＬのアルブミン（アルブミンバッチ１４０１）を、表１２に従って９０ｍｇ／ｍＬに希釈した。希釈に使用された緩衝液は表１０と１１に示される。
【０１２２】
【表１０】
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【０１２３】
【表１１】
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【０１２４】
【表１２】
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【０１２５】
まずアルブミンと緩衝液とをバルクとして混合して希釈を行い、次にこれを１Ｍ ＨＣｌの添加により正しいｐＨに調整した。次に、これを適切なサイズのアリコートに分割し、必要に応じて水と５Ｍ ＮａＣｌを加えた。これにより、すべての試料が確実にちょうど同じｐＨになった。
【０１２６】
各試料１０ｍＬを、ベーキングした１０ｍＬのガラスバイアル中に無菌濾過し、無菌のブチルゴムシールをし、次にオーバーシールした。約２００μｌのＴ０試料を取り、バイアルを４０℃に設定した水浴中に入れた。次に試料（約２００μｌ）を、１４日後に各バイアルから取り、２倍希釈し、ＧＰ−ＨＰＬＣシステムに三重で注入した。
【０１２７】
ＧＰ−ＨＰＬＣシステムは、６．０ｍｍ内径×４０ｍｍ長のＴＳＫ ＳＷガードカラム（Tosoh Bioscience）を有する７．８ｍｍ内径×３００ｍｍ長のＴＳＫ Ｇ３０００ＳＷＸＬカラム（Tosoh Bioscience）に注入（２５μｌ）して行なった。試料を、２５ｍＭのリン酸ナトリウム、１００ｍＭの硫酸ナトリウム、０．０５％（ｗ／ｖ）のアジ化ナトリウム、ｐＨ７．０中で、１ｍＬ／分でクロマトグラフィーを行い、２８０ｎｍでのＵＶ検出により追跡した。さらに、モノマー、ダイマー、トリマー、及びポリマー含量を、総ピーク面積に対する各ピーク面積を％（ｗ／ｗ）として定量した。三重注入からの結果を平均して、各試料の平均値を得た。
【０１２８】
結果：モノマー（図７）とポリマー（図８）についての１４日時点のデータを、ナトリウム濃度に対してプロットした。
【０１２９】
結論：
・ｐＨ６．５の製剤は、アルブミンバッチ１４０１について使用したｐＨ８．６の製剤より、顕著に良好であった。ｐＨ８．６ではポリマーのレベルは顕著に上昇して、ｐＨ６．５での同じ濃度の約２％と比較すると、４０℃で２週間後に約２０％まで上昇した。
・スクリーニングアッセイで観察されたナトリウムの上昇がアルブミン安定性を上昇させるという提唱された傾向は、ここで可溶性凝集物についても確認され、ナトリウム濃度の上昇によりポリマー生成が低下する顕著な傾向がある。生理学的条件に近いために標準的アルブミン濃度である１５０ｍＭから２００ｍＭナトリウムまで行くと、ポリマーのレベルは＞２倍低下し、２００から２５０ｍＭに行くとさらに約２倍低下する。塩濃度がさらに３５０ｍＭ（及びそれ以上の可能性有り）まで上昇すると、ポリマーはさらに低下するが、その低下速度は遅くなる。これらの結果は、ナトリウムの上昇により残存するモノマーが増加することと一致する。全体で、１５０から２５０ｍＭナトリウムまで行くと、ポリマー生成が＞４倍低下する。従って、好適なアルブミン製剤は、２０ｍＭのリン酸緩衝液、ｐＨ６．５、２５０ｍＭ ナトリウムである。ホスフェートは、ｐＨ制御を助けるために存在する。注意すべきことは、ナトリウムは塩化ナトリウムとリン酸ナトリウムの両方から得られ（ホスフェートのｐＨを確保するために使用されるＮａＯＨを含むことは正しい）、従って緩衝液は、２５０ｍＭのＮａＣｌではないことである。
・この研究はナトリウムを用いて行われているが、同様の１価又は２価金属イオンは、同様の効果を有すると予測される。しかしナトリウムは幹細胞培養と適合性があるため、好適な金属イオンである。
【０１３０】
実施例５：アルブミンの安定性に対するアルブミン濃度とナトリウムイオン濃度の影響
【０１３１】
方法：低オクタノエート（約０．２ｍＭのオクタノエート、１００ｇ／Ｌのアルブミン）を含有する精製アルブミンの試料を、２５ｍＭのホスフェート、５０ｍＭのナトリウム、ｐＨ６．５の少なくとも１０の連続容量に対してダイアフィルターで濾過し、次に１０ＫＤａのPall OmegaクロスフローUFを使用して濃縮し、５０ｍＭのナトリウム出発物質を得た。次に試料を水、５ＭのＮａＣｌ、及び０．５Ｍのリン酸ナトリウム、ｐＨ６．５で、表１３に示すように希釈した。
【０１３２】
【表１３】
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【０１３３】
次に、試料を無菌の５ｍＬガラスバイアル中に無菌濾過（０．２２μｍフィルター）し、バイアルを４０℃のインキュベーター中に４週間入れた。各試料のアリコートを間隔をおいて取り出し、水で４０ｇ／Ｌに希釈し、可溶性凝集物について実施例４に示したようにＧＰ−ＨＰＬＣにより測定した。
【０１３４】
結果：図１１は、４週間インキュベーション後のモノマーレベルを示す。より高いモノマー含量は、良好な安定性を示す。
【０１３５】
結論：
・すべての点は、１５０ｇ／Ｌのアルブミン、１００ｍＭのナトリウム試料とは異なる傾向に従う。この試料がなぜ傾向をはずれたかは不明であるが、外れ値の可能性があり、実験の全体的結論を変えることは無い。
・試験したすべてのアルブミン濃度について、モノマー含量、すなわち安定性の上昇とナトリウム含量の上昇の明らかな相関がある。
・改善された安定性の大部分は、最大約２００ｍＭのナトリウムイオン濃度の上昇からくる。この濃度を超えると、安定性がわずかにさらに上昇するが、ほとんど横ばい状態になった。従って最適ナトリウムイオン濃度は２００ｍＭ以上である。
【０１３６】
実施例６：アルブミンの安定性に対する異なるカチオンの影響
【０１３７】
方法：低オクタノエート（１００ｇ／Ｌのアルブミンについて約０．２ｍＭ）を含有する精製アルブミンの試料を、まず水で５０ｍｇ／ｍＬに希釈して、５０ｍｇ／ｍＬのアルブミン、７５ｍＭのＮａＣｌを含み、ｐＨ緩衝液成分は０になるようにした。ｐＨは、０．５ＭのＨＣｌを用いてｐＨ６．４３に調整した。加えたＨＣｌの量はわずかであり、アルブミン又は他の成分の濃度を変化させることは無いであろう。次に、表１４に示すように、１Ｍカチオンストック（ＫＣｌ，ＮＨ4Ｃｌ、ＣａＣｌ2、ＭｇＣｌ2、ＮａＣｌ）を使用して、ＵＶ透過性マイクロタイタープレートのウェル中で、試料をさらに１０ｍｇ／ｍＬに希釈した。
【０１３８】
【表１４】
2014520535.tif 000019
【０１３９】
各ＫＣｌ，ＮＨ4Ｃｌ、ＣａＣｌ2、ＭｇＣｌ2、ＮａＣｌの試料を、表１４に従って調製した。すなわち、全部で４０の異なる試料を調製した。各試料を、マイクロタイタープレート上で二重で試験した。
【０１４０】
マイクロタイタープレートを静かに揺らして各ウェルの内容物を混合し、遠心して気泡を除去し、６５℃であらかじめ平衡化させ制御しておいたBiotek Synergy Mx（(Potton, UK）プレートリーダーに入れた。次にプレートを３５０ｎｍで、総インキュベーション時間８時間にわたって毎分読んだ。Gen5ソフトウェア（プレートリーダー用のBiotekソフトウェア、バージョン２．００．１８）を使用して、Ａ３５０ｎｍの吸光度がベースラインより０．２吸光度単位だけ上昇するのにかかる時間を計算した。ベースラインは、最初の５つのデータ点の平均から計算した。
【０１４１】
結果：図１２は、試料の吸光度がベースラインより０．２単位上昇するのにかかる時間を示す。より長い時間は、良好な安定性を示す。
【０１４２】
結論：
・ＮａＣｌを使用する対照は、他の例と同じ傾向を示し、すなわちナトリウムレベルの上昇は安定性を改善する。これは、このマイクロタイタープレート法が、安定性効果を試験するのに適していることを確認する。
・すべての異なるカチオン［１価と２価（それぞれ１族金属と２族金属）の両方］について、カチオン濃度が最大５００ｍＭまで（及びおそらくはそれ以上も）上昇された、アルブミン安定性が明らかに上昇した。
・これらのデータは、すべてのカチオンがアルブミンの安定性を改善することを示すが、ＭｇＣｌ2が非常に優れている。
【０１４３】
実施例７：アルブミンの安定性に対する異なるアニオンの影響
方法：低濃度のオクタノエートを含有する精製アルブミンの試料（約０．２ｍＭ、１００ｇ／Ｌのアルブミン）を、まず水で５０ｍｇ／ｍＬに希釈して、５０ｍｇ／ｍＬのアルブミン、７５ｍＭのＮａＣｌを含み、ｐＨ緩衝液成分は０になるようにした。試料を０．５ＭのＨＣｌを用いてｐＨ６．４３に調整した。加えたＨＣｌの量はわずかであり、アルブミン又は他の成分の濃度を変化させることは無かったであろう。表１５に従って、１Ｍのアニオンストック溶液を調製した。
【０１４４】
【表１５】
2014520535.tif 000020
【０１４５】
アルブミンとアニオンストックを後述のように使用して、ポリスチレンキュベット（Sarstedt １０×４×４５ｍｍ）に最終容量１ｍＬで作成した。試料を静かに混合した後、キュベットを６５℃であらかじめ平衡化させ制御しておいた温度制御分光光度計に入れた。次に、３５０ｎｍでの吸光度を、空のキュベットに対して３０秒毎に読むことにより、２時間にわたって追跡した。最初の９つのデータ点（ほぼ最初の４分）を取り、平均値を計算し（平均し）、次にすべてのデータ点からこれを引いて処理することにより、ベースライン吸光度を得た。特定の製剤試料について、この吸光度をこのベースラインより０．１ＡＵだけ上昇させるのにかかる時間を記録した。吸光度が２時間（７２００秒）で０．１ＡＵを超えなかった場合は、データを外挿して近似時間を得た。吸光度が２時間で０．１ＡＵを超えない試料は、より低いカチオン濃度を有する試料と比較して、安定性が顕著に改善されている。
【０１４６】
分光光度計中の６キュベットホルダーを使用して、最初の試料はいつも対照とし、他の５つの試料は、上昇する賦形剤（すなわち、ＮａＣｌ、Ｎａ2ＳＯ4などの試験物質）濃度を使用した。対照はいつも、２５０ｍＭのＮａＣｌを含有するｐＨ６．５試料であったが、これは、試験が有効であると見なされる完全な２時間の６５℃でのインキュベーションにわたって、不溶性凝集物が溶液中に残存しないようにするため必要であった。
【０１４７】
【表１６】
2014520535.tif 000021
【０１４８】
Ａ３５０ｎｍ吸光度の上昇により検出される不溶性凝集物を測定する時、クエン酸試料について、ナトリウムの安定化作用は決定的ではなかった。従って、分光光度計中で２時間の６５℃インキュベーション後、試料を取り出し，遠心分離して大きな粒子を除去し、試料をＧＰ−ＨＰＬＣにより可溶性凝集物について分析した（実施例４のように）。データは、残存する％モノマーアルブミンとして表した（この値が高いほど、製剤が安定である）。これはまた、ホスフェート試料についても行われた。
【０１４９】
結果：すべての対照は有効であった。図１３は、Ａ３５０吸光度がベースラインより０．１ＡＵ上まで上昇するのにかかる時間に対する、ナトリウムイオン濃度とアニオン分子種の影響を示す。図１４は、６５℃で２時間インキュベーション後の、アルブミンの安定性に対するクエン酸塩、ホスフェート、及びナトリウムの影響を示す。より高いモノマーレベルは、より高い安定性を示す。同時に行なったｐＨ６．５の対照（２５０ｍＭのナトリウム）の結果は、８１％のモノマー含量の平均結果を与えた。
【０１５０】
結論：
・塩化ナトリウム（無機酸のナトリウム塩）、硫酸ナトリウム（２価酸のナトリウム塩）、及び酢酸ナトリウム（有機酸のナトリウム塩）はすべて、ナトリウム濃度の上昇によるアルブミン安定性の強い上昇を与えた。
・リン酸二水素ナトリウムについては、その傾向は、塩化ナトリウム、硫酸ナトリウム、及び酢酸ナトリウムほど強くなかった。しかし１５０ｍＭ及びそれ以上では、ナトリウム含量の上昇により安定性が上昇する傾向がある。この傾向は、ナトリウム濃度の上昇による残存モノマーの上昇の強い傾向で示されるように、可溶性凝集物を測定した時確認された。
・リン酸ナトリウム試料について、ナトリウム濃度の上昇とともに安定性が上昇する傾向は、６００ｍＭのナトリウムまで続き、おそらくより高いナトリウム濃度でも続くであろう。
・クエン酸ナトリウムについては、不溶性凝集物の存在をＡ３５０吸光度により測定すると、ナトリウム濃度の上昇によるアルブミン安定性の明らかな傾向はなかった。しかし、試料（６５℃で２時間インキュベーション後）を、ＧＰ−ＨＰＬＣにより残存する％モノマー含量を測定して可溶性凝集物について評価すると、傾向があった。２００ｍＭのナトリウム及びそれ以下では、モノマー含量はほぼ一定であったが、ナトリウム含量が２００ｍＭを超えて上昇すると、モノマー含量が上昇し、従ってアルブミン安定性が上昇する明確な傾向があった。クエン酸はキレート剤であり、従って存在するナトリウムはクエン酸塩によりキレート結合され、例えばＮａＣｌによりナトリウムが提供された時、アルブミンを安定化するのに利用できる可能性は低い。
・従って、本発明者らは、ナトリウム塩（又は、前の例に基づいて他の１価又は２価アニオン）はアルブミンに安定性を与え、アニオン濃度の上昇により安定性が上昇する傾向があると考える。
【０１５１】
実施例８：アルブミン安定性に対する異なる緩衝液の影響
【０１５２】
方法：低濃度のオクタノエートを含有する精製アルブミンの試料（約０．２ｍＭ、１００ｇ／Ｌのアルブミン）を、まず水で５０ｍｇ／ｍＬに希釈して、５０ｍｇ／ｍＬのアルブミン、７５ｍＭのＮａＣｌを含み、緩衝液成分は０になるようにした。試料を０．５ＭのＨＣｌを用いてｐＨ６．４３に調整した。加えたＨＣｌの量はわずかであり、アルブミン又は他の成分の濃度を変化させることは無かったであろう。
【０１５３】
１ＭのＮａＣｌの緩衝化していないストックを、アルブミンストックと同様にｐＨ６．４３に調整した（従ってアルブミンに添加されても、ｐＨは変化しないであろう）以下の緩衝液（表１７）を調製した。ホスフェートについては、ｐＨを２７％のＮａＯＨで調整し、クエン酸塩については、クエン酸（クエン酸粉末）で調整し、酢酸塩については酢酸（氷酢酸）で調整した。
【０１５４】
【表１７】
2014520535.tif 000022
添加した酸の量はわずかであり、アルブミン又は成分濃度を変化させることは無かったであろう。
【０１５５】
アルブミンと緩衝液ストックを後述するように使用し、ポリスチレンキュベット（Sarstedt １０×４×４５ｍｍ）に最終容量１ｍＬで作成した。試料を静かに混合した後、キュベットを６５℃であらかじめ平衡化させ制御しておいた温度制御分光光度計に入れた。次に、３５０ｎｍでの吸光度を、空のキュベットに対して３０秒毎に読むことにより、２時間にわたって追跡した。最初の９つのデータ点（ほぼ最初の４分）を取り、平均値を計算し、次にすべてのデータ点からこれを引いて処理することにより、ベースライン吸光度を得た。特定の製剤試料について、この吸光度をこのベースラインより０．１ＡＵだけ上昇させるのにかかる時間を記録した。吸光度が２時間（７２００秒）で０．１ＡＵを超えなかった場合は、データを外挿して近似時間を得た。
【０１５６】
分光光度計中の６キュベットホルダーを使用して、最初の試料はいつも対照とし、他の５つの試料は、上昇する賦形剤濃度を使用した。対照はいつも、２５０ｍＭのＮａＣｌを含有するｐＨ６．５試料であったが、これは、試験が有効であると見なされる完全な２時間の６５℃でのインキュベーションにわたって、不溶性凝集物が溶液中に残存しないようにするため必要であった。
【０１５７】
【表１８】
2014520535.tif 000023
【０１５８】
結果：すべての対照は有効であった。試料について、Ａ３５０吸光度がベースラインより０．１ＡＵ上まで上昇するのにかかる時間をナトリウム濃度に対してプロットした。図１５は、すべての緩衝液について、ナトリウムイオン濃度が上昇するとアルブミン安定性が上昇することを示す。
【０１５９】
クエン酸塩試料について、傾向は他の試料に比較して弱いようである。従って、緩衝液が無い場合（ナトリウムはＮａＣｌによってのみ提供される）のデータを、クエン酸ナトリウムで緩衝化した試料とともにプロットしたが、クエン酸ナトリウムからくるナトリウム濃度は無視された（図１６）。
【０１６０】
・すべての緩衝液について、及び緩衝液が無い場合について、ナトリウム濃度の上昇によりアルブミン安定性が上昇する明らかな傾向がある。
・ＮａＣｌのようなアルブミン安定性用の良好なナトリウム供与体とは見えなかったクエン酸塩でさえ、ナトリウム濃度の上昇で安定性が上昇する傾向があったが、これは少し弱かった。この弱い理由は、すべての緩衝液についてと同様に、総ナトリウム含量の計算に、緩衝液からのナトリウムが使用されたためであった。従って、このナトリウムが塩化ナトリウムからのナトリウムのように有効（例えば利用可能）ではない場合（前の実施例で示されるように）、弱くなるであろう。これは、図１６により確認された。
・リン酸ナトリウムは、良好なｐＨ緩衝液であるが、安定化のためのナトリウムの供与体としては、より良好な供与体があり、従ってリン酸ナトリウムを他のカチオン供与体（ナトリウム又は他のカチオン）と組合せて、アルブミンを安定化することが有利かも知れない。
・従って、本発明者らは、製剤中の緩衝液は特に重要ではなく、任意の緩衝液、又は緩衝液無しでも使用できると考えている。しかし、緩衝液がキレート性である場合、緩衝液からの存在するアニオンは、アニオンの必要濃度の計算に含めるべきではない。
【０１６１】
実施例９：緩和変異体の安定性に対する高塩濃度の影響
【０１６２】
方法：種々のアルブミン及び変異体（表１９）を０．５Ｍのリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ６．５）で希釈した。変異体は、点突然変異（Ｋ５７３Ｐ、Ｋ５００Ａ、Ｋ５７３Ｙ、Ｋ５７３Ｗ）を有する成熟ＨＳＡ（配列番号２）と、マウス血清アルブミン（ＭＳＡ、配列番号１９）であった。アルブミン変異体のストック溶液のｒＨＳＡ濃度とナトリウムイオン濃度は、表２０に示される。
【０１６３】
【表１９】
2014520535.tif 000024
【０１６４】
【表２０】
2014520535.tif 000025
【０１６５】
【表２０ｂ】
2014520535.tif 000026
【０１６６】
すべての変異体は、野生型ヒトアルブミンとはわずかに異なって精製されており、存在するオクタノエートのレベルは各変異体についてわずかに異なっていたであろう。前記結果から、変異体中に存在するオクタノエートは、１００ｇ／Ｌアルブミンで約４ｍＭに等しかったであろうと推定された。野生型ストックは存在するオクタノエートが無視できるレベルであるため、次にこのストックに２Ｍのオクタノエート５μｌを最終容量まで加えて、変異体アルブミンに対してほぼ同等のオクタノエート濃度を与えた。
【０１６７】
アルブミンストックと１ＭのＮａＣｌストックを表２１に従って使用し、各試料はポリスチレンキュベット（Sarstedt １０×４×４５ｍｍ）に最終容量１ｍＬで作成した。試料を静かに混合した後、キュベットを６５℃であらかじめ平衡化させ制御しておいた温度制御分光光度計に入れた。次に、３５０ｎｍでの吸光度を、空のキュベットに対して３０秒毎に読むことにより、２時間にわたって追跡した。最初の９つのデータ点（ほぼ最初の４分）を取り、平均値を計算（平均）し、次にすべてのデータ点からこれを引いて処理することにより、ベースライン吸光度を得た。特定の製剤試料について、この吸光度をこのベースラインより０．１ＡＵだけ上昇させるのにかかる時間を記録した。吸光度が２時間（７２００秒）で０．１ＡＵを超えなかった場合は、データを外挿して近似時間を得た。
分光光度計中の６キュベットホルダーを使用して、最初の試料はいつも対照とし、他の５つの試料は、上昇する賦形剤濃度を使用した。対照はいつも、２５０ｍＭのＮａＣｌを含有するｐＨ６．５試料であったが、これは、試験が有効であると見なされる完全な２時間の６５℃でのインキュベーションにわたって、不溶性凝集物が溶液中に残存しないようにするため必要であった。
【０１６８】
【表２１】
2014520535.tif 000027
【０１６９】
結果：すべての対照は有効であった。図１７と１８は、Ａ３５０吸光度がベースラインより０．１ＡＵ上まで上昇するのにかかる時間に対する、ナトリウムイオン濃度の影響を示す。
【０１７０】
結論：すべての点は、野生型アルブミン、１５０ｍＭのナトリウム試料とは異なる傾向に従う。この点が傾向をはずれる理由は不明であるが、外れ値である可能性があり、全体の結論を変えることは無い。
・すべてのアルブミン変異体について、ナトリウム濃度の上昇によりアルブミン安定性が上昇する明らかな傾向がある。
・成熟マウス血清アルブミン（配列番号１９）は、成熟野生型ヒト血清アルブミン（配列番号２）と７２．１％同一であり、全体の安定性はＨＳＡ又はＨＳＡ変異体ほど高くはないが、２００ｍＭ以上でナトリウム濃度の上昇により安定性が上昇する明らかな傾向がある。
・存在するオクタノエートのレベルについて基礎製剤は、各変異体間で同じであるように完全には制御されていないため、変異体の安定性を野生型アルブミンの安定性と比較することは困難なため、異なる変異体間の安定性の有意差があるかどうかを言うのは難しい。しかし、各変異体についてのデータセット内で、オクタノエートのレベルは同じであり、従って安定性の上昇は、ナトリウムレベルの上昇にのみ由来する可能性が高い。
・オクタノエートが既知である１つの試料（野生型ヒト血清アルブミン、１００ｇ／Ｌアルブミンで４ｍＭに等しい）は、ナトリウムによる観察された安定性の上昇がまた、このレベルのオクタノエートでも有効であることを示す。
【０１７１】
実施例１０：アルブミン安定性に対するｐＨの影響
【０１７２】
方法：低濃度のオクタノエートを含有する精製アルブミンの試料（約０．２ｍＭ、１００ｇ／Ｌのアルブミン）を、まず表２３のホスフェートストックを使用して、表２２に従って５０ｍｇ／ｍＬに希釈した。
【０１７３】
【表２２】
2014520535.tif 000028
【０１７４】
【表２３】
2014520535.tif 000029
【０１７５】
試料は０．５ＭのＨＣｌ（すなわち、ナトリウムの添加無し）でｐＨを調整し、ｐＨ５ストックを使用して最終ｐＨ５．０２と５．５５を得て、ｐＨ６．５ストックを使用して最終ｐＨ６．００と６．４９を得て、ｐＨ７ストックを使用して最終ｐＨ７．０４を得て、そしてｐＨ８ストックを使用して最終ｐＨ７．５５と７．９８を得た。添加したＨＣｌの量はわずかであり、アルブミン又は成分濃度は変化させなかったであろう。
【０１７６】
ストックは後述（表２４）のように使用し、ポリスチレンキュベット（Sarstedt １０×４×４５ｍｍ）に最終容量１ｍＬで作成した。試料を静かに混合した後、キュベットを６５℃であらかじめ平衡化させ制御しておいた温度制御分光光度計に入れた。次に、３５０ｎｍでの吸光度を、空のキュベットに対して３０秒毎に読むことにより、２時間にわたって追跡した。最初の９つのデータ点（ほぼ最初の４分）を取り、平均値を計算（平均）し、次にすべてのデータ点からこれを引いて処理することにより、ベースライン吸光度を得た。特定の製剤試料について、この吸光度をこのベースラインより０．１ＡＵだけ上昇させるのにかかる時間を記録した。吸光度が２時間（７２００秒）で０．１ＡＵを超えなかった場合は、データを外挿して近似時間を得た。
【０１７７】
分光光度計中の６キュベットホルダーを使用して、最初の試料はいつも対照とし、他の５つの試料は、上昇する賦形剤濃度を使用した。対照はいつも、２５０ｍＭのＮａＣｌを含有するｐＨ６．５試料であったが、これは、試験が有効であると見なされる完全な２時間の６５℃でのインキュベーションにわたって、不溶性凝集物が溶液中に残存しないようにするため必要であった。
【０１７８】
【表２４】
2014520535.tif 000030
【０１７９】
Ａ３５０ｎｍ吸光度の上昇により検出される不溶性凝集物を測定する時、ｐＨ７（ｐＨ７．０４と測定された）試料、ｐＨ７．５（ｐＨ７．５５と測定された）試料、及びｐＨ８（ｐＨ７．９８と測定された）試料について、ナトリウムの安定化作用は決定的ではなかった。従って、分光光度計中で２時間の６５℃インキュベーション後、試料を取り出し，遠心分離して大きな粒子を除去し、試料をＧＰ−ＨＰＬＣにより可溶性凝集物について分析した（実施例４のように）。データは、残存する％モノマーアルブミンとして表した（この値が高いほど、製剤が安定である）。
【０１８０】
結果：すべての対照は有効であった。図１９、２０、及び２１は、ナトリウムイオン濃度に対するアルブミンの安定性を示す。ｐＨ７、７．５、及び８試料と同時に流したｐＨ６．５対照の結果は、８２％のモノマー含量の平均結果を与えた。
【０１８１】
結論：
・ｐＨ５からｐＨ６．５までのすべてのｐＨについて、Ａ３５０吸光度上昇（不溶性凝集物）により測定すると、アルブミン濃度の上昇によりアルブミン安定性が上昇することが明らかであった。
・ｐＨ７、７．５、及び８では、この傾向は明瞭ではなく（図１９）、１５０ｍＭのＮａあたりに安定性の低下の可能性があった。しかし、これらの試料を、可溶性凝集物と残存する％モノマー（図２１）についてＧＰ−ＨＰＬＣにより分析すると、ナトリウムの上昇により安定性が上昇する明らかな傾向があった。不溶性凝集物についてこの傾向が観察されなかった理由は、これらのｐＨがアルブミンのｐＩ（アルブミンについて５．２）から最も遠く、従って、これらが溶液から出てくる凝集物とともに参加する可能性が低かったためである。
・ｐＨ６．５対照は、より高いｐＨのものより、同じナトリウムイオン濃度（２５０ｍＭ）で残存するモノマーのレベルが高く、ｐＨ６．５がアルブミンについてより安定なｐＨであることを示していた。
・不溶性凝集物と可溶性凝集物の両方のデータを組合せると、ナトリウム濃度の上昇は、ｐＨ５からｐＨ８まで、アルブミン安定性を上昇させることを示す。
【０１８２】
実施例１１：幹細胞培養物に対するオクタノエートの影響
【０１８３】
方法：幹細胞培養物に対するオクタノエートの影響は、委託研究機関であるCellartis AB（Gothernburg, Sweden）により行われた。簡単に説明すると、異なるレベルのオクタノエート（０．２、０．５、１．０、及び８．０ｍＭ）を有する１００ｇ／Ｌのアルブミンを、標準的幹細胞培地のアルブミン補助物質として使用した。ヒト胚幹細胞（細胞株ＳＡ１２１とＳＡ１８１（Cellartis AB、European Human Embryonic Stem Cell Registryに寄託された細胞株））を、その標準培地から移し、６ウェルプレート中で、種々のレベルのオクタノエートを含有するアルブミンを補足した培地中で、５継代にわたって増殖させた。５継代にわたる細胞増殖を、細胞産生中の連続継代中の細胞倍加時間を追跡することにより評価した。培養物の倍加時間は、２８〜４０時間の範囲内のはずであり、傾向の指標として見られる。アルブミン補足培地中での５継代後の細胞の未分化状態を調べるために、未文化状態の４つの異なる認められたマーカー（すなわち、Ｏｃｔ−４、ＳＳＥＡ−３、Ｔｒａ−１  ６０、及びｈＥＳ−Ｃｅｌｌｅｃｔ）に対する抗体を免疫染色で使用した。
【０１８４】
結果：表２５は、倍加時間のデータを示す。初期の倍加時間は極めて大きいが、おそらく細胞が新しい培地組成物に適応する必要があるためであろう。しかし、継代２と継代４の間の倍加時間は、８ｍＭのオクタノエートを含有する試料（これは、許容される細胞付着を維持できず、改変培地及び被覆条件を用いても継代２を超えて継続できなかった）以外は、すべて予測された範囲内である。継代５の倍加時間は極めて変動が大きく、一部の試料については、標準範囲のかなり外にあった。しかし、培養物はさらに拡張できなかったため、結論を導くのは困難である。
【０１８５】
【表２５】
2014520535.tif 000031
【０１８６】
表２６は、分化マーカーについての免疫細胞化学染色のデータを示し、すべての試料（第５継代に到達できなかったため、８ｍＭのオクタノエートを含有する試料は除く）は、培養物が、試験した５継代について未分化状態を維持することを支持した。
【０１８７】
【表２６】
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【０１８８】
結論：
・アルブミン中に存在するオクタノエートレベルは、幹細胞の付着、未分化細胞増殖の維持に重要である。１００ｇ／Ｌのアルブミン中の８ｍＭオクタノエートでは、オクタノエートは幹細胞に対して毒性であり、表面へのこれらの結合又は細胞増殖を可能にしない。
【０１８９】
本明細書に記載され、添付の特許請求の範囲に規定された発明の範囲は、本明細書に挙げる具体的な態様によって限定されるべきではない。斯かる具体的態様はあくまでも本発明の一部態様の例示を目的とするものだからである。任意の均等な態様が本発明の範囲に含まれるものとする。事実、本明細書に提示及び記載された変形の他にも、本発明に対して種々の変形が可能であることは、本明細書の上記記載に接した当業者には明らかであろう。斯かる変形例も添付の特許請求の範囲に規定された発明の範囲に含まれるものとする。不整合がある場合には、定義を含む本明細書の記載が優先するものとする。
【図１】
2014520535.tif 000033
【図２】
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【図３】
2014520535.tif 000035
【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
2014520535.tif 000039
【図８】
2014520535.tif 000040
【図９】
2014520535.tif 000041
【図１０】
2014520535.tif 000042
【図１１】
2014520535.tif 000043
【図１２】
2014520535.tif 000044
【図１３】
2014520535.tif 000045
【図１４】
2014520535.tif 000046
【図１５】
2014520535.tif 000047
【図１６】
2014520535.tif 000048
【図１７】
2014520535.tif 000049
【図１８】
2014520535.tif 000050
【図１９】
2014520535.tif 000051
【図２０】
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【図２１】
2014520535.tif 000053
【配列表】
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【国際調査報告】
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2014520535.tif 000055