(57)【要約】  本明細書に開示されるのは、ヒドロゲル組成物およびヒドロゲル組成物を作製する方法である。さらに、開示されたヒドロゲル組成物を用いてサンプルから生物学的材料を特異的に捕獲および遊離する方法が開示され、これは、マイクロ流体デバイス中で組成物を利用する方法を包含する。【選択図】図４
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
ヒドロゲル組成物であって：
複数のアルギン酸分子と；
複数の分岐したポリマー分子と；を含み
ここで前記複数のアルギン酸分子が、前記分岐したポリマー分子または１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされるかまたはそれらと混合されて、ヒドロゲルを形成し；かつ
各々の前記分岐したポリマー分子が複数の基を含み、
ここで、各々の分岐したポリマー分子の少なくとも１つの基が、前記アルギン酸分子に対してコンジュゲートされ；かつ
各々の分岐したポリマー分子の少なくとも１つの他の基が、前記１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされる、ヒドロゲル組成物。
【請求項２】
前記分岐したポリマーが、ポリエチレングリコールである、請求項１に記載の組成物。
【請求項３】
前記ポリエチレングリコール分子が４−アーム分子である、請求項２に記載の組成物。
【請求項４】
前記１つ以上の結合剤が、抗体、抗体フラグメント、ペプチド模倣化合物、ペプチド、小分子、または核酸である、請求項１に記載の組成物。
【請求項５】
前記抗体が、ＧＰＲ４９、ＬＧＲ５、ＣＤ２４、ＦＬＫ１、ＣＤ４５、ＣＤ３１、ＣＤ３４、およびｓｃａ−１タンパク質に対する抗体からなる群より選択される、請求項４に記載の組成物。
【請求項６】
サンプルから標的の生物学的材料を捕獲および遊離する方法であって：
（ａ）流体を受容するための１つ以上のチャンバを備えているマイクロ流体デバイスを設けることであって、ここで前記１つ以上のチャンバのうちの少なくとも１つが、ヒドロゲル組成物でコーティングされた表面を備え、前記ヒドロゲル組成物が：
複数のアルギン酸分子および複数の分岐したポリマー分子を含み；
ここで前記複数のアルギン酸分子が、分岐したポリマー分子または１つ以上の結合剤とコンジュゲートされるかまたはそれらと混合されて、ヒドロゲルを形成し；かつ
ここで前記各々の分岐したポリマー分子が、複数の基を含み、各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの基が、アルギン酸分子に対してコンジュゲートされ、そして各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの他の基が、前記１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされることと；
（ｂ）標的および非標的の生物学的材料を含んでいるサンプルを、前記ヒドロゲル組成物に対して前記標的の生物学的材料を結合するのに有効な条件下で前記１つ以上のチャンバ中に導入することと；
（ｃ）前記標的の生物学的材料を、遊離剤を用いて遊離することと；
を包含する、方法。
【請求項７】
前記サンプルから未結合の非標的の材料を除去することをさらに包含する、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
サンプルから標的の生物学的材料を捕獲および遊離する方法であって：
（ａ）流体を受容するための１つ以上のチャンバを備えているマイクロ流体デバイスを設けることであって、ここで前記１つ以上のチャンバのうちの少なくとも１つが、ヒドロゲル組成物でコーティングされた少なくとも１つの表面を備え、前記ヒドロゲル組成物が：
複数のアルギン酸分子および複数の分岐したポリマー分子を含み；
ここで前記複数のアルギン酸分子が、分岐したポリマー分子または１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされて、ヒドロゲルを形成し；かつ
ここで前記各々の分岐したポリマー分子が、複数の基を含み、各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの基が、アルギン酸分子に対してコンジュゲートされ、そして各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの他の基が、１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされることと；
（ｂ）標的の生物学的材料を含んでいるサンプルを、前記ヒドロゲル組成物に対して生物学的材料を結合するのに有効な条件下で前記デバイスの第一のチャンバ中に導入することと；
（ｃ）前記結合した生物学的材料を、遊離剤を用いて遊離することと；
（ｄ）前記遊離剤と中和剤とを接触させて、第二のチャンバ中で前記遊離剤を中和することと；
（ｅ）前記第二のチャンバの内容物を、前記ヒドロゲル組成物でコーティングされた表面を備える第三のチャンバ中に提供することであって、ここで前記第三のチャンバ中の前記結合剤が、（ａ）前記ヒドロゲル組成物に対して前記標的の生物学的材料を結合するのに有効な条件下で、で用いられたものとは異なる結合剤であることと；
（ｆ）前記結合した標的の生物学的材料を、遊離剤を用いて遊離することと；
を包含する、方法。
【請求項９】
前記遊離された生物学的材料に対して培養培地を添加することをさらに包含する、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
異なる結合剤を用いて、（ｄ）から（ｆ）を繰り返すことをさらに包含する、請求項８に記載の方法。
【請求項１１】
前記ヒドロゲル組成物からの遊離後に、前記標的の生物学的材料を検出することをさらに包含する、請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
前記生物学的材料が、細胞、タンパク質、溶質または粒子であり、ここで前記遊離剤がキレート剤、酵素、またはそれらの組み合わせである、請求項６〜１１のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１３】
前記細胞が、成体幹細胞、胎児幹細胞、前駆細胞、末梢造血幹細胞、内皮前駆細胞、循環中の腫瘍細胞、成熟の循環中の内皮細胞、羊膜幹細胞、間充織幹細胞、脂肪由来幹細胞、腸管幹細胞、皮膚幹細胞、神経幹細胞、または癌幹細胞である、請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
前記細胞が、前記サンプルから捕獲された生きている細胞である、請求項１２に記載の方法。
【請求項１５】
前記キレート剤が、ＥＤＴＡ、ＥＧＴＡ、およびクエン酸ナトリウムからなる群より選択される、請求項１２に記載の方法。
【請求項１６】
前記生きている細胞を培養、検出、分析または形質転換するために有効な条件下で前記生きている細胞を維持することをさらに包含する、請求項１４に記載の方法。
【請求項１７】
ヒドロゲル組成物を作製する方法であって：
（ａ）分岐したポリマー分子と１つ以上の結合剤とを緩衝液中で反応させることと；
（ｂ）前記分岐したポリマー−結合剤溶液と少なくとも１つのアルギン酸分子とを反応させて、官能化されたヒドロゲルを形成し、前記官能化されたヒドロゲルは、１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされ、さらに少なくとも１つのアルギン酸分子に対してコンジュゲートされた各々の分岐したポリマー分子を含んでいることと、
を包含する、方法。
【請求項１８】
前記分岐したポリマーがポリエチレングリコール分子である、請求項１７に記載の方法。
【請求項１９】
前記ポリエチレングリコール分子が４−アーム分子である、請求項１８に記載の方法。
【請求項２０】
前記１つ以上の結合剤が、抗体、抗体フラグメント、ペプチド模倣化合物、ペプチド、小分子、または核酸である、請求項１７に記載の方法。
【請求項２１】
前記抗体が、ＧＰＲ４９、ＬＧＲ５、ＣＤ２４、ＦＬＫ１、ＣＤ４５、ＣＤ３１、ＣＤ３４、およびｓｃａ−１タンパク質に対する抗体からなる群より選択される、請求項２０に記載の方法。
【請求項２２】
マイクロ流体デバイスであって：前記マイクロ流体デバイスは
（ａ）基板と；
（ｂ）１つ以上のチャンバを含み、標的の生物学的材料を含んでいるサンプルを受容するための１つ以上のチャンバであって、前記１つ以上のチャンバが：
（ｉ）ヒドロゲル組成物でコーティングされた表面であって、前記ヒドロゲル組成物が：
複数のアルギン酸分子および複数の分岐したポリマー分子を含んでおり、
ここで、前記複数のアルギン酸分子が、前記分岐したポリマー１分子または１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされて、ヒドロゲルを形成し；かつ
ここで、前記各々の分岐したポリマー分子が複数の基を含み、各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの基がアルギン酸分子に対してコンジュゲートされ、かつ各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの他の基が前記結合剤に対してコンジュゲートされ；
（ｉｉ）結合された標的の生物学的材料と中和剤とを混合するための混合チャンバと；
（ｉｉｉ）ヒドロゲル組成物でコーティングされた１つ以上の追加の表面であって、前記ヒドロゲル組成物が：
複数のアルギン酸分子および複数の分岐したポリマー分子を含んでおり；
ここで、前記複数のアルギン酸分子が、前記分岐したポリマー分子または前記１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされてヒドロゲルを形成し；かつ
ここで、各々の前記分岐したポリマー分子が、複数の基を含み、各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの基が、アルギン酸分子に対してコンジュゲートされ、かつ各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの他の基が、工程（ｉ）における前記結合剤とは異なる前記結合剤に対してコンジュゲートされる、
チャンバと、
を備える、マイクロ流体デバイス。
【請求項２３】
前記分岐したポリマー分子がポリエチレングリコール分子である、請求項２２に記載のデバイス。
【請求項２４】
前記１つ以上の結合剤が、抗体、抗体フラグメント、ペプチド模倣化合物、ペプチド、小分子、または核酸である、請求項２２に記載のデバイス。
【請求項２５】
前記ポリエチレングリコール分子が４−アーム分子である、請求項２３に記載のデバイス。
【請求項２６】
前記抗体が、ＧＰＲ４９、ＬＧＲ５、ＣＤ２４、ＦＬＫ１、ＣＤ４５、ＣＤ３１、ＣＤ３４、およびｓｃａ−１タンパク質に対する抗体からなる群より選択される、請求項２５に記載のデバイス。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
連邦政府支援の研究または開発
本発明は、それぞれ、助成金Ｒ０１−ＥＢ００９３２７およびＣＢＥＴ０９３２１９５として、国立衛生研究所および全米科学財団の助成金によって支援された。従って、米国政府は、本出願に一定の権利を有する。
【０００２】
優先権
本開示は、その開示の全体が参照によって本出願に依拠され、かつ本出願に援用される、２０１１年２月３日出願の米国仮特許出願第６１／４３９，１６６号の優先権の恩典を主張する。
【０００３】
発明の分野
本発明は概して、医薬およびエンジニアリングに関する。さらに具体的には、本分野は、組織工学および再生医療のための、細胞などの生物学的材料の単離に関する。
【背景技術】
【０００４】
背景
細胞単離技術は、増殖、ゲノムおよびプロテオームの検討を可能にする、特定の集団を研究するのに必須の要素である。任意の表面に結合された細胞の脱離には、結合の力よりも大きい力の適用を必要とする。流体剪断力は、細胞脱離のための簡易な方法であることが示された。これは、細胞遊離の局所的かつ簡易な方法であるが、流体剪断に対する過剰な暴露は細胞の損傷および生存度の減少を生じる。別のアプローチは、トリプシンのような酵素を用いて捕獲表面に結合しているタンパク質リガンドを切断することである。しかし、酵素的な暴露は、細胞膜およびグリコカリックスの破壊に起因して形態学的な変化を生じて、細胞活性の損失をもたらし得る。さらに、酵素による消化は、細胞自体の挙動および化学的な構成の両方に直接影響することが示された。
【０００５】
細胞の単離における、蛍光活性化細胞分取（ＦＡＣＳ）および磁気活性化細胞分取（ＭＡＣＳ）のような現行の技術は、組織工学のような分野で不利な点がある。細胞の単離の従来の方法であるＦＡＣＳは、処理能力が限定されたものであり、細胞生存度に対して有害であり得る。ＦＡＣｓ法は、サンプル処理時間を実質的に減少する、多重化の能力に限界がある。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
これらの限界によって、細胞環境に対して過剰な物理的または化学的な摂動なく、マイクロスケールのデバイス中で、細胞のような生物学的材料を捕獲および遊離するための一般的な技術を確立する必要性が示される。特定の細胞に高い特異性を有し、細胞の挙動および構成を変更することなく、捕獲された細胞の遊離を可能にする、表面およびゲルの必要性が残っている。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
要旨
本開示は、細胞のような生物学的材料を捕獲および遊離するための組成物および方法に関する。いくつかの実施形態では、この捕獲は、極めて特異的である。
【０００８】
一態様では、開示されたヒドロゲル組成物は、複数のアルギン酸分子および複数の分岐したポリマー分子を含む。この複数のアルギン酸分子は、分岐したポリマー分子または１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされるかまたはそれらと混合されて、ヒドロゲルを形成し、かつこの各々の分岐したポリマー分子は複数の基を含む。さらに、本明細書に開示の態様では、各々の分岐したポリマー分子の少なくとも１つの基は、アルギン酸分子に対してコンジュゲートされ、かつ各々の分岐したポリマー分子の少なくとも１つの他の基は、１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされる。
【０００９】
いくつかの実施形態では、上記分岐したポリマー分子は、ポリエチレングリコールである。いくつかの実施形態では、このポリエチレングリコール分子は４−アーム分子である。
【００１０】
いくつかの実施形態では、上記１つ以上の結合剤は、抗体、抗体フラグメント、ペプチド模倣化合物、ペプチド、小分子、または核酸である。
【００１１】
いくつかの実施形態では、上記抗体は、ＧＰＲ４９、ＬＧＲ５、ＣＤ２４、ＦＬＫ１、ＣＤ４５、ＣＤ３１、ＣＤ３４、およびｓｃａ−１に対する抗体からなる群より選択される。
【００１２】
一態様では、サンプルから標的の生物学的材料を捕獲および遊離する開示された方法は、流体を受容するための１つ以上のチャンバを備えているマイクロ流体デバイスを設けることを包含し、ここでこの１つ以上のチャンバのうちの少なくとも１つは、ヒドロゲル組成物でコーティングされた表面を備る。このヒドロゲル組成物は、複数のアルギン酸分子および複数の分岐したポリマー分子を含み、ここでこの複数のアルギン酸分子が、分岐したポリマー分子または１つ以上の結合剤とコンジュゲートされるかまたはそれらと混合されて、ヒドロゲルを形成する。本明細書に開示されるある態様では、上記各々の分岐したポリマー分子は、複数の基を含み、各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの基が、アルギン酸分子に対してコンジュゲートされ、そして各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの他の基が、１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされる。この方法はさらに、標的および非標的の生物学的材料を含んでいるサンプルを、ヒドロゲル組成物に対して標的の生物学的材料を結合するのに有効な条件下で１つ以上のチャンバ中に導入することと、この標的の生物学的材料を、遊離剤を用いて遊離することととを包含する。
【００１３】
いくつかの実施形態では、上記方法はさらに、サンプルから未結合の非標的の材料を除去することをさらに包含する。
【００１４】
別の態様では、サンプルから標的の生物学的材料を捕獲および遊離する、開示された方法は、流体を受容するための１つ以上のチャンバを備えているマイクロ流体デバイスを設けることを包含し、ここでこの１つ以上のチャンバのうちの少なくとも１つは、ヒドロゲル組成物でコーティングされた少なくとも１つの表面を備える。上記ヒドロゲル組成物は、複数のアルギン酸分子および複数の分岐したポリマー分子を含み、ここでこの複数のアルギン酸分子は、分岐したポリマー分子または１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされて、ヒドロゲルを形成する。ある態様では、この各々の分岐したポリマー分子は、複数の基を含み、各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの基は、アルギン酸分子に対してコンジュゲートされ、そして各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの他の基が、１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされる。さらに、この方法は、標的の生物学的材料を含んでいるサンプルを、ヒドロゲル組成物に対して生物学的材料を結合するのに有効な条件下で上記デバイスの第一のチャンバ中に導入することと、この結合した生物学的材料を、遊離剤を用いて遊離することとを包含する。この方法はまた、上記遊離剤と中和剤とを接触させて、第二のチャンバ中で遊離剤を中和することと、この第二のチャンバの内容物を、上記ヒドロゲル組成物に対して標的の生物学的材料を結合するのに有効な条件下で、このヒドロゲル組成物でコーティングされた表面を備える第三のチャンバ中に提供することであって、ここで上記第三のチャンバ中の上記結合剤が、（ａ）で用いられたものとは異なる結合剤であることとを包含する。さらに、この方法は、上記結合した標的の生物学的材料を、遊離剤を用いて遊離することを包含する。
【００１５】
いくつかの実施形態では、この方法は、上記遊離された生物学的材料に対して培養培地を添加することをさらに包含する。
【００１６】
いくつかの実施形態では、この方法は、異なる結合剤を用いて、（ｄ）から（ｆ）を繰り返すことをさらに包含する。
【００１７】
いくつかの実施形態では、この方法は、上記ヒドロゲル組成物からの遊離後に、上記標的の生物学的材料を検出することをさらに包含する。
【００１８】
いくつかの実施形態では、開示された方法で用いられるこの生物学的材料は、細胞、タンパク質、溶質または粒子であり、ここで上記遊離剤はキレート剤、酵素、またはそれらの組み合わせである。
【００１９】
いくつかの実施形態では、上記細胞は、成体幹細胞、胎児幹細胞、前駆細胞、末梢造血幹細胞、内皮前駆細胞、循環中の腫瘍細胞、成熟の循環中の内皮細胞、羊膜幹細胞、間充織幹細胞、脂肪由来幹細胞、腸管幹細胞、皮膚幹細胞、神経幹細胞、または癌幹細胞である。
【００２０】
いくつかの実施形態では、この細胞は、サンプルから捕獲された生きている細胞である。
【００２１】
いくつかの実施形態では、上記開示された方法で用いられるキレート剤は、ＥＤＴＡ、ＥＧＴＡ、およびクエン酸ナトリウムからなる群より選択される。
【００２２】
いくつかの実施形態では、上記開示された方法は、生きている細胞を培養、検出、分析または形質転換するために有効な条件下で、この生きている細胞を維持することをさらに包含する。
【００２３】
別の態様では、ヒドロゲル組成物を作製する方法が開示される。この方法は、分岐したポリマー分子と１つ以上の結合剤とを緩衝液中で反応させることと、分岐したポリマー−結合剤溶液と少なくとも１つのアルギン酸分子とを反応させて、官能化されたヒドロゲルを形成することとを包含する。この官能化されたヒドロゲルは、１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされ、さらに少なくとも１つのアルギン酸分子に対してコンジュゲートされた各々の分岐したポリマー分子を含んでいる。
【００２４】
いくつかの実施形態では、上記分岐したポリマー分子はポリエチレングリコール分子である。いくつかの実施形態では、このポリエチレングリコール分子は４−アーム分子である。
【００２５】
いくつかの実施形態では、上記１つ以上の結合剤は、抗体、抗体フラグメント、ペプチド模倣化合物、ペプチド、小分子、または核酸である。
【００２６】
いくつかの実施形態では、上記抗体は、ＧＰＲ４９、ＬＧＲ５、ＣＤ２４、ＦＬＫ１、ＣＤ４５、ＣＤ３１、ＣＤ３４、およびｓｃａ−１に対する抗体からなる群より選択される。
【００２７】
別の態様では、上記開示されたマイクロ流体デバイスは、基板と、標的の生物学的材料を含んでいるサンプルを受容するための１つ以上のチャンバとを備える。この１つ以上のチャンバは、ヒドロゲル組成物でコーティングされた表面を備え、このヒドロゲル組成物は、複数のアルギン酸分子および複数の分岐したポリマー分子を含んでいる。この複数のアルギン酸分子は、上記分岐したポリマー分子または１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされるか、またはそれらと混合されて、ヒドロゲルを形成する。さらに、上記各々の分岐したポリマー分子は複数の基を含み、この各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの基がアルギン酸分子に対してコンジュゲートされる。また、各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの他の基は、結合剤に対してコンジュゲートされる。混合チャンバはまた、結合された標的の生物学的材料と中和剤とを混合するためにも備えられる。さらにある態様では、１つ以上の追加の表面は、ヒドロゲル組成物でコーティングされる。このヒドロゲル組成物は、複数のアルギン酸分子および複数の分岐したポリマー分子を含んでおり、ここで、この複数のアルギン酸分子は、上記分岐したポリマー分子または１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされてヒドロゲルを形成する。また、各々の分岐したポリマー分子は、複数の基を含み、各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの基は、アルギン酸分子に対してコンジュゲートされる。さらに、各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの他の基は、工程（ｉ）における結合剤とは異なる結合剤に対してコンジュゲートされる。
【００２８】
いくつかの実施形態では、開示されたデバイス中の上記分岐したポリマー分子はポリエチレングリコール分子である。いくつかの実施形態では、上記ポリエチレングリコール分子は４−アーム分子である。
【００２９】
いくつかの実施形態では、上記開示されたデバイスで用いられる上記１つ以上の結合剤は、抗体、抗体フラグメント、ペプチド模倣化合物、ペプチド、小分子、または核酸である。
【００３０】
いくつかの実施形態では、上記抗体は、ＧＰＲ４９、ＬＧＲ５、ＣＤ２４、ＦＬＫ１、ＣＤ４５、ＣＤ３１、ＣＤ３４、およびｓｃａ−１に対する抗体からなる群より選択される。
【００３１】
以下の図面は、例示の目的でのみ提示するものであって、限定するものではない：
【図面の簡単な説明】
【００３２】
【図１】図１は、抗体の標準的な溶液（０．１ｍｇ／ｍｌおよび０．０５ｍｇ／ｍｌの抗体）に比較したＰＥＧ−および抗体―官能化ヒドロゲル（ゲルＩＩ−ＶＩＩ）の赤外線スペクトルの図示である。測定はバルク測定であることに注意のこと。
【図２】図２は、ヒドロゲルでコーティングしたマイクロ流体デバイス内のアクセス可能な抗体の定性的測定の図示である。
【図３Ａ】図３Ａは、ＰＥＧ−および抗体−官能化ヒドロゲルヒドロゲルでコーティングしたマイクロ流体デバイス内の全血から捕獲した内皮前駆細胞（ＥＰＣ）捕獲の収率を示している図示である。
【図３Ｂ】図３Ｂは、ＰＥＧ−および抗体−官能化ヒドロゲルヒドロゲルでコーティングしたマイクロ流体デバイス内の全血から捕獲したＥＰＣの純度を示している図示である。
【図４Ａ】図４Ａ〜図４Ｃは、異なるゲルタイプにおける構造的相違を示しているグラフの図示である。図４Ａでは、全ての試薬（ＰＥＧ、抗体、アルギン酸を含む）を、ゲルタイプＩＩ〜ＩＶ中で一緒に組み合わせる。図４Ｂでは、ゲルタイプＶは、２段階のプロトコールを利用し、ここでは、ＰＥＧ、抗体、ＥＤＣ、およびスルホ−ＮＨＳを、一回の第一工程で組み合わせる。図４Ｃでは、ゲルタイプＶＩ−ＶＩＩは、他の成分を混合する前にＰＥＧ、および抗体の事前混合を有する。
【図４Ｂ】図４Ａ〜図４Ｃは、異なるゲルタイプにおける構造的相違を示しているグラフの図示である。図４Ｂでは、ゲルタイプＶは、２段階のプロトコールを利用し、ここでは、ＰＥＧ、抗体、ＥＤＣ、およびスルホ−ＮＨＳを、一回の第一工程で組み合わせる。
【図４Ｃ】図４Ａ〜図４Ｃは、異なるゲルタイプにおける構造的相違を示しているグラフの図示である。図４Ｃでは、ゲルタイプＶＩ−ＶＩＩは、他の成分を混合する前にＰＥＧ、および抗体の事前混合を有する。
【図５Ａ】図５〜図５Ｃは、マイクロ流体アレイの前後の注入および遊離された懸濁物の定性的な提示を示す。注入された集団（図５Ａに示す）は、それぞれの濃度でのチップ内の沈降効果（図５Ｂに示す）に起因して１００，０００〜２００，０００細胞／ｍｌの濃度に制約された。図５Ｃでは、細胞を２４ウェルのプレート中に遊離させ、細胞密度の顕著な減少を観察した。スケールのバーは１００μｍに相当する。
【図５Ｂ】図５〜図５Ｃは、マイクロ流体アレイの前後の注入および遊離された懸濁物の定性的な提示を示す。注入された集団（図５Ａに示す）は、それぞれの濃度でのチップ内の沈降効果（図５Ｂに示す）に起因して１００，０００〜２００，０００細胞／ｍｌの濃度に制約された。スケールのバーは１００μｍに相当する。
【図５Ｃ】図５〜図５Ｃは、マイクロ流体アレイの前後の注入および遊離された懸濁物の定性的な提示を示す。図５Ｃでは、細胞を２４ウェルのプレート中に遊離させ、細胞密度の顕著な減少を観察した。スケールのバーは１００μｍに相当する。
【図６Ａ】図６Ａ〜図６Ｄは、抗体−官能化アルギン酸塩の最適化によって、改善された捕獲効率および純度の収率が可能になったことを図示する。図６Ａは、サンプルおよび処方物を、各々が１つの変数が異なる、５つのシナリオに分けたことを示す。図６Ｂは、注入された集団に対してこれらのシナリオの純度収率を比較する。純度パーセントの定量は、注入した細胞（図６Ｃ）および遊離した細胞（図６Ｄ）に対するフローサイトメトリーによって行った。
【図６Ｂ】図６Ａ〜図６Ｄは、抗体−官能化アルギン酸塩の最適化によって、改善された捕獲効率および純度の収率が可能になったことを図示する。図６Ｂは、注入された集団に対してこれらのシナリオの純度収率を比較する。
【図６Ｃ】図６Ａ〜図６Ｄは、抗体−官能化アルギン酸塩の最適化によって、改善された捕獲効率および純度の収率が可能になったことを図示する。純度パーセントの定量は、注入した細胞（図６Ｃ）および遊離した細胞（図６Ｄ）に対するフローサイトメトリーによって行った。
【図６Ｄ】図６Ａ〜図６Ｄは、抗体−官能化アルギン酸塩の最適化によって、改善された捕獲効率および純度の収率が可能になったことを図示する。純度パーセントの定量は、注入した細胞（図６Ｃ）および遊離した細胞（図６Ｄ）に対するフローサイトメトリーによって行った。
【図７Ａ】図７Ａ〜図７Ｆは、Ｗｎｔ３ａタンパク質の非存在下において富化されていない集団に対する遊離された細胞のエイジ・プログレッション（ａｇｅ  ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｏｎ）を示す。富化されていないオルガノイドの発達（ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｏｎ）（図７Ａ〜Ｃに示す）では、外来の集団によって囲まれる有意に大きい嚢胞様のオルガノイドが生じた。図７Ｄ〜図７Ｆは、単一細胞懸濁物由来の富化されたオルガノイドの４日の発達を示す。図７Ｄは、単一の細胞の増殖を２日で示し、図７Ｅは、誘導された過形成を３日で示し、図７Ｆは、周囲の分泌されたアポトーシス細胞で知覚された小さい管腔の形成を４日で示す。
【図７Ｂ】図７Ａ〜図７Ｆは、Ｗｎｔ３ａタンパク質の非存在下において富化されていない集団に対する遊離された細胞のエイジ・プログレッション（ａｇｅ  ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｏｎ）を示す。富化されていないオルガノイドの発達（ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｏｎ）（図７Ａ〜Ｃに示す）では、外来の集団によって囲まれる有意に大きい嚢胞様のオルガノイドが生じた。
【図７Ｃ】図７Ａ〜図７Ｆは、Ｗｎｔ３ａタンパク質の非存在下において富化されていない集団に対する遊離された細胞のエイジ・プログレッション（ａｇｅ  ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｏｎ）を示す。富化されていないオルガノイドの発達（ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｏｎ）（図７Ａ〜Ｃに示す）では、外来の集団によって囲まれる有意に大きい嚢胞様のオルガノイドが生じた。
【図７Ｄ】図７Ａ〜図７Ｆは、Ｗｎｔ３ａタンパク質の非存在下において富化されていない集団に対する遊離された細胞のエイジ・プログレッション（ａｇｅ  ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｏｎ）を示す。図７Ｄ〜図７Ｆは、単一細胞懸濁物由来の富化されたオルガノイドの４日の発達を示す。図７Ｄは、単一の細胞の増殖を２日で示し、図７Ｅは、誘導された過形成を３日で示し、図７Ｆは、周囲の分泌されたアポトーシス細胞で知覚された小さい管腔の形成を４日で示す。
【図７Ｅ】図７Ａ〜図７Ｆは、Ｗｎｔ３ａタンパク質の非存在下において富化されていない集団に対する遊離された細胞のエイジ・プログレッション（ａｇｅ  ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｏｎ）を示す。図７Ｄ〜図７Ｆは、単一細胞懸濁物由来の富化されたオルガノイドの４日の発達を示す。図７Ｄは、単一の細胞の増殖を２日で示し、図７Ｅは、誘導された過形成を３日で示し、図７Ｆは、周囲の分泌されたアポトーシス細胞で知覚された小さい管腔の形成を４日で示す。
【図７Ｆ】図７Ａ〜図７Ｆは、Ｗｎｔ３ａタンパク質の非存在下において富化されていない集団に対する遊離された細胞のエイジ・プログレッション（ａｇｅ  ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｏｎ）を示す。図７Ｄ〜図７Ｆは、単一細胞懸濁物由来の富化されたオルガノイドの４日の発達を示す。図７Ｄは、単一の細胞の増殖を２日で示し、図７Ｅは、誘導された過形成を３日で示し、図７Ｆは、周囲の分泌されたアポトーシス細胞で知覚された小さい管腔の形成を４日で示す。
【図８Ａ】図８Ａ〜Ｄでは、Ｌｇｒ５基本培地の構成およびＷｎｔ３ａに存在する富化されたオルガノイドおよび富化されていないオルガノイドが示される。図８Ａは、富化されていない集団ではＷｎｔ３ａの存在下でプレート効率の増大がなんらなかったことを示す。図８Ｃは、注入された培養物中で形成されたほとんどのオルガノイドが、アポトーシス細胞を保有している嚢胞様構造を発現したことを示す。図８Ｂでは、富化された集団はプレート効率が増大しており、単一に由来するオルガノイド増殖をもたらすことを示す。図８Ｄでは、富化された細胞が、同様の時点で研究（ｄ）の非存在下でｗｎｔ３ａと同様の形態を示したことが示される。
【図８Ｂ】図８Ａ〜Ｄでは、Ｌｇｒ５基本培地の構成およびＷｎｔ３ａに存在する富化されたオルガノイドおよび富化されていないオルガノイドが示される。図８Ｂでは、富化された集団はプレート効率が増大しており、単一に由来するオルガノイド増殖をもたらすことを示す。
【図８Ｃ】図８Ａ〜Ｄでは、Ｌｇｒ５基本培地の構成およびＷｎｔ３ａに存在する富化されたオルガノイドおよび富化されていないオルガノイドが示される。図８Ｃは、注入された培養物中で形成されたほとんどのオルガノイドが、アポトーシス細胞を保有している嚢胞様構造を発現したことを示す。
【図８Ｄ】図８Ａ〜Ｄでは、Ｌｇｒ５基本培地の構成およびＷｎｔ３ａに存在する富化されたオルガノイドおよび富化されていないオルガノイドが示される。図８Ｄでは、富化された細胞が、同様の時点で研究（ｄ）の非存在下でｗｎｔ３ａと同様の形態を示したことが示される。
【図９Ａ】図９Ａ〜図９Ｄは、開示されたマイクロ流体単離技術をも用いた後、富化されたオルガノイドを図示している共焦点圧縮画像を示す。図９Ｃは、球状のオルガノイド中の中空の性質の指標である形成された管腔を示す。図９Ａは、休眠状態を示している有意なＳｏｘ９発現を示す、ＣＤ２４の尖端局在化を示す。図９Ｂでは、単離捕獲抗体、ＧＰＲ４９／Ｌｇｒ５（ｂ）が中央ドメイン内で高頻度であるが、発現はＣＤ２４に比較して低かったことが示される。
【図９Ｂ】図９Ａ〜図９Ｄは、開示されたマイクロ流体単離技術をも用いた後、富化されたオルガノイドを図示している共焦点圧縮画像を示す。図９Ｂでは、単離捕獲抗体、ＧＰＲ４９／Ｌｇｒ５（ｂ）が中央ドメイン内で高頻度であるが、発現はＣＤ２４に比較して低かったことが示される。
【図９Ｃ】図９Ａ〜図９Ｄは、開示されたマイクロ流体単離技術をも用いた後、富化されたオルガノイドを図示している共焦点圧縮画像を示す。図９Ｃは、球状のオルガノイド中の中空の性質の指標である形成された管腔を示す。
【図９Ｄ】図９Ａ〜図９Ｄは、開示されたマイクロ流体単離技術をも用いた後、富化されたオルガノイドを図示している共焦点圧縮画像を示す。
【図１０Ａ】図１０Ａ〜図１０Ｄは、ｚ面で圧縮した富化されていないオルガノイド共焦点画像を示す。オルガノイドは培養物中で４日後にマトリゲルから抽出した。アポトーシス細胞は中央管腔内で顕著である（図１０Ｃ）が、オルガノイドの形態は球状かつ平坦である。ＣＤ２４発現（図１０Ａ）は、中央ドメイン内で尖端に局在し、密度のレベルが変化する。ＧＰＣＲ４９／Ｌｇｒ５は、矢印で示している、ＣＤ２４が発現される位置に低密度で存在する。ＧＰＣＲ４９／Ｌｇｒ５発現の顕著な存在は、ＣＤ２４の重層によって作られた（図１０Ｄ）。
【図１０Ｂ】図１０Ａ〜図１０Ｄは、ｚ面で圧縮した富化されていないオルガノイド共焦点画像を示す。オルガノイドは培養物中で４日後にマトリゲルから抽出した。ＧＰＣＲ４９／Ｌｇｒ５は、矢印で示している、ＣＤ２４が発現される位置に低密度で存在する。
【図１０Ｃ】図１０Ａ〜図１０Ｄは、ｚ面で圧縮した富化されていないオルガノイド共焦点画像を示す。オルガノイドは培養物中で４日後にマトリゲルから抽出した。アポトーシス細胞は中央管腔内で顕著である（図１０Ｃ）が、オルガノイドの形態は球状かつ平坦である。
【図１０Ｄ】図１０Ａ〜図１０Ｄは、ｚ面で圧縮した富化されていないオルガノイド共焦点画像を示す。オルガノイドは培養物中で４日後にマトリゲルから抽出した。ＧＰＣＲ４９／Ｌｇｒ５発現の顕著な存在は、ＣＤ２４の重層によって作られた（図１０Ｄ）。
【図１１Ａ】図１１Ａ〜図１１Ｄは、複数の表面マーカーに対する細胞の接着ベースのマイクロ流体分離の一実施形態のデバイスの順序を表す。デバイスからの捕獲および遊離後に（図１１Ａ）、マーカー１を発現する細胞は、デバイスに入り（図１１Ｂ）、ここでは、塩化カルシウム溶液を同時注入して、細胞懸濁液中に存在するエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）を中和する。デバイスの別の部分（図１１Ｃ）を塩化カルシウム溶液および細胞懸濁液と混合する。最終的に、図１１Ｄでは、チャンバはマーカー２に対する細胞を捕獲し、次いでこれが、ＥＤＴＡ溶液の注射を用いて溶出され得る。
【図１１Ｂ】図１１Ａ〜図１１Ｄは、複数の表面マーカーに対する細胞の接着ベースのマイクロ流体分離の一実施形態のデバイスの順序を表す。デバイスからの捕獲および遊離後に（図１１Ａ）、マーカー１を発現する細胞は、デバイスに入り（図１１Ｂ）、ここでは、塩化カルシウム溶液を同時注入して、細胞懸濁液中に存在するエチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）を中和する。
【図１１Ｃ】図１１Ａ〜図１１Ｄは、複数の表面マーカーに対する細胞の接着ベースのマイクロ流体分離の一実施形態のデバイスの順序を表す。デバイスの別の部分（図１１Ｃ）を塩化カルシウム溶液および細胞懸濁液と混合する。
【図１１Ｄ】図１１Ａ〜図１１Ｄは、複数の表面マーカーに対する細胞の接着ベースのマイクロ流体分離の一実施形態のデバイスの順序を表す。最終的に、図１１Ｄでは、チャンバはマーカー２に対する細胞を捕獲し、次いでこれが、ＥＤＴＡ溶液の注射を用いて溶出され得る。
【図１２】図１２は、二重マーカー分離における、多段階の捕獲−遊離デバイスシステムの能力を示す。
【発明を実施するための形態】
【００３３】
詳細な説明
本開示は、細胞などの生物学的材料の極めて特異的な捕獲および遊離のための組成物および方法に関する。ヒドロゲルを形成するために、分岐したポリマー分子または１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされるかまたはそれらと混合された複数のアルギン酸分子を含んでいるヒドロゲル組成物を開示する。
【００３４】
いくつかの実施形態では、開示された方法および組成物は、捕獲された細胞を非破壊的に遊離する追加的な能力を有する、異種懸濁物からの標的細胞タイプの選択的な捕獲のための表面コーティングを提供する。本明細書に開示される処方物および技術によって、フルオロカーボン類およびシリコーン類を含むがこれに限定されない、細胞を結合および遊離する能力を有するが、細胞およびタンパク質結合を抑制することが公知である分岐したポリマー類、例えば、ポリ（エチレングリコール）（ＰＥＧ）または化学的な官能基を有する分岐したポリマー類と、有意な非特異的な細胞接着をしやすい、アルギン酸ヒドロゲルの変化した化学的組成が可能になる。ヒドロゲル構築物への分岐したポリマーの組み込みは、結合剤（例えば、抗体、抗体フラグメント、ペプチド模倣化合物、ペプチド、小分子または核酸）でのアルギン酸塩プレポリマーの官能化がまた捕獲の特異性ももたらすことを可能にする方法で行われる。
【００３５】
いくつかの実施形態では、マイクロ流体チャネルのような、限定された構造内のヒドロゲルのインサイチュアセンブリのための合成技術を設計する。本明細書で開示されるアセンブリ技術によって、ある種類の材料を必要とすることなく、任意の材料からできているチャネルのコーティングが可能になる。全血からこのアプローチを用いて捕獲および脱離した細胞のフローサイトメトリー分析によって、このプロセスは化学的にかつ生物学的に非破壊的であることが示され、具体的には、細胞生存度または表現型の同一性には変化が全くないか、またはごくわずかにしかない。さらに、ヒドロゲル構造内のＰＥＧのような分岐したポリマーの組み込みによって、公知のヒドロゲル捕獲システムと関連した多くの問題が克服される。
【００３６】
本明細書は、電位または小さい温度変化のような、外部刺激が与えられた場合の細胞脱離を容易にし得る表面コーティングの設計を記載する。電位での例は、電気活性の化学官能基を介して表面に結合されたリガンドからなる表面コーティングである。電気活性のキノインエステルは、電位を加えた際にラクトンへの化学的変化を受ける。このアプローチには、捕獲デバイスへの電極組み込みおよび遊離パラメーターの注意深い最適化を必要とする。３７℃で疎水性であり、かつ２０℃で親水性であるポリ（Ｎ−イソプロピルアクリルアミド）のような熱反応性のポリマーの使用は、別の現在記載されるアプローチである。疎水性表面は、細胞に接着され、その形質転換は比較的完全な細胞遊離を生じる。
【００３７】
このような方法の欠点は、低流量レジメンでの接着特異性の欠失、および３７℃という生理学的温度の下へ温度を低下するという潜在的な有害効果である。アルギン酸塩ヒドロゲルを、マイクロ流体システムにおける細胞の捕獲および遊離のために使用し、ただし非接着性分子での化学的修飾なしに、これらのヒドロゲルは、非特異的な細胞およびタンパク質接着を極めて受けやすく、高い効率の細胞遊離はない。
【００３８】
本発明の開示の利点は、レセプターリガンド相互作用を通じて選択性の捕獲を可能にするということである。さらに、開示される方法およびデバイスによって、停止細胞培養またはフローベースの細胞分離のいずれかにおいて基板から標的細胞の遊離が可能になる。本発明の開示は、細胞脱離のための機械的、酵素的、電気的または光学的な境界を必要としない。開示される方法およびデバイスは、生物学的環境に対して過度の物理的または化学的な摂動なしに用いられ得る。先行技術は、他方では、例えば、細胞環境を損なう外部刺激を必要とするか、または物理的もしくは化学的な摂動を必要とする。
【００３９】
本発明の開示を用いて、例えば、幹細胞および前駆細胞の集団を単離するための生物学的材料を選択的に捕獲および遊離してもよい。単離された集団を、遺伝子操作された足場に播種するために用いてもよい。遺伝子操作された移植用臓器および再生医療は一般には、まれな細胞の純粋な集団が機能的な臓器を生じることを必要とする。
【００４０】
本明細書に言及されるすべての刊行物、特許出願、特許および他の引用文献は、その全体が参照によって援用される。矛盾する場合、定義を含んでいる本明細書が優先する。さらに、材料、方法および実施例は例示に過ぎず、限定することは意図しない。
【００４１】
多に規定しない限り、本明細書に用いられる全ての技術用語および科学用語は、本発明が属する当該分野の当業者によって一般的に理解されるのと同じ意味を有する。本明細書に記載される方法および材料と同様または等価な方法および材料を、本発明の実施または試験において用いてもよいが、適切な方法および材料は下に記載する。
【００４２】
定義
便宜上、本明細書、実施例および特許請求の範囲で使用されるある用語をここにまとめる。別段定義しない限り、本開示で用いる全ての技術用語および科学用語は、本開示が属する当該分野の当業者によって通常理解されるのと同じ意味を有する。本開示で提供される群または用語について提供される最初の定義は、別段示されない限り、本開示全体を通じてその群または用語に対して、個々にまたは別の群の一部としてあてはまる。
【００４３】
本開示で用いられるような「化合物」および「化合物類（複数）」という用語は、本開示の化合物、ならびに任意のかつ全ての可能性のある、異性体、立体異性体、光学異性体、ジアステレオマー、互変異性体、薬学的に許容される塩、およびそれらの溶媒和化合物を指す。
【００４４】
一般に、本開示の組成物はあるいは、本開示で開示される任意の適切な構成要素を含むか、それらからなるか、または本質的に構成するように処方されてもよい。開示の組成物はさらに、またはあるいは、先行技術の組成物で用いられる任意の構成要素、材料、成分、アジュバントもしくは種を欠くか、または実質的に含まないように処方されてもよく、またはそうでなければ、本開示の機能および／または目的の達成を必要としない。
【００４５】
「１つの、ある（不定冠詞：ａおよびａｎ）」という項目は、本開示において、その項目の文法上の目的のうちの１つまたは２つ以上（すなわち、少なくとも１つ）を指すのに用いられる。例えば、「ある要素（ａｎ  ｅｌｅｍｅｎｔ）」とは、１つの要素、または２つ以上の要素を意味する。
【００４６】
「または」という用語は、本開示において用いて、他に示さない限り「および／または」という用語を意味し、それと交換可能に用いられる。
【００４７】
「約」という用語は、本開示で用いて、所定の数値プラスまたはマイナスこの所定の数値の２０％を意味する。
【００４８】
「ヒドロゲル」とは、比較的大量の水が存在する１つ以上の分子の三次元の、半固体の網目状構造である。いくつかの場合には、ヒドロゲルはポリマーであってもよい。本明細書において用いる場合、「ポリマー」はモノマーから構成されている構造である。
【００４９】
「モノマー」とは、お互いとまたは他の種類のモノマーと反応して、ポリマーを形成し得る、１つ以上の基を有する分子である。モノマーの非限定的な例は、塩化ビニルであり、これは、「ビニル」として公知のプラスチックをもたらし得る。ビニルモノマーの別の非限定的な例は、ポリアクリルアミドとして公知のゲルをもたらし得るアクリルアミドである。
【００５０】
全般
本開示では、アルギン酸が二価の陽イオンの存在下である、アルギン酸塩ヒドロゲルを含んでいる組成物を、部分的には提供する。このような組成物は、キレーターの存在下で容易に溶解し得る。さらに、現在開示されるヒドロゲルは生体適合性であり、かつ細胞接着分子で官能化（すなわち、コンジュゲート）され得る。アルギン酸塩ヒドロゲルは、結合剤で官能化され得る。本明細書において用いる場合、「結合剤」という用語は、別の分子または複合構造に結合する分子を意味する。結合剤としては、抗体、抗体フラグメント、ペプチド模倣化合物、ペプチド、小分子、および核酸が挙げられる。抗体は、ＧＰＲ４９、ＬＧＲ５、ＣＤ２４、ＦＬＫ１、ＣＤ４５、ＣＤ３１、ＣＤ３４、ｓｃａ−１、および種々の他のタンパク質に対する抗体からなる群より選択される。
【００５１】
アルギン酸塩ヒドロゲルはまた、フルオロカーボン類およびシリコーン類を含むがこれに限定されない、細胞およびタンパク質の結合を抑制することが公知である分岐したポリマー類、例えば、ポリ（エチレングリコール）（ＰＥＧ）または化学的な官能基を有する分岐したポリマー類を含んでもよい。ＰＥＧは、結合剤とコンジュゲートされるか、または混合され（すなわち、官能化され）てもよい。さらに、ＰＥＧは、アルギン酸分子とコンジュゲートされるか、または混合されて、ヒドロゲルを形成する。ある実施形態では、ヒドロゲルは、各々のアームの末端に一級アミン末端を有する４−アームのＰＥＧ分子を利用する。４−アームのＰＥＧ分子は、アルギン酸、結合剤、またはリンカーのような他の因子との官能化のための４つの結合ポイントを有する。特定の実施形態では、各々の４−アームのＰＥＧ分子の１つのアームは、アルギン酸塩ヒドロゲル骨格に対してカルボン酸基を結合し、結合剤との官能化のための最大３個までの一級アミン基を残す。４−アームの配置によって、ヒドロゲルの結合剤（例えば、抗体）含量を３倍にすることが可能になり、非ペグ化した（ｎｏｎ  ＰＥＧ−ｙ−ｌａｔｅｄ）アルギン酸塩ヒドロゲルに対する非特異的な細胞結合に対して防御がもたらされる。
【００５２】
さらに、本明細書に開示されるヒドロゲルを作製するための方法が開示される。ヒドロゲル組成物を作製する方法は、ポリエチレングリコール分子と１つ以上の結合剤とを緩衝液中で反応させることと、ポリエチレングリコール−結合剤溶液と少なくとも１つのアルギン酸分子とを反応させて、官能化されたヒドロゲルを形成することとを包含し、この官能化されたヒドロゲルは、１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされ、さらに少なくとも１つのアルギン酸分子に対してコンジュゲートされた各々のポリエチレングリコール分子を含んでいる。
【００５３】
本明細書に記載される方法では、ＰＥＧ分子のような分岐したポリマー中の少なくとも１つの結合ポイントが、アルギン酸塩ゲルマトリクスとの結合に利用可能であり、抗体のような結合剤での官能化のための少なくとも別の結合ポイントを残すことが確実にされる。抗体としては、限定するものではないが、ＧＰＲ４９、ＬＧＲ５、ＣＤ２４、ＦＬＫ１、ＣＤ４５、ＣＤ３１、ＣＤ３４、ｓｃａ−１、および種々の他のタンパク質に対する抗体が挙げられる。ある実施形態では、この方法は、アルギン酸を抗体のような結合剤に対してコンジュゲートすることと、抗体／アルギン酸コンジュゲートをＰＥＧのような分岐したポリマーに提供してヒドロゲルを形成することとを包含する。このアルギン酸−抗体コンジュゲートは、アミン末端のＰＥＧ分子と反応される。ある実施形態では、このアミン末端のＰＥＧ分子は、４−アームのＰＥＧ分子である。他の実施形態では、この結合剤、抗体、およびＰＥＧは同時に反応されて、抗体／アルギン酸／ＰＥＧヒドロゲルが生み出される。さらに他の実施形態では、ＰＥＧおよび結合剤がコンジュゲートされる。これらの実施形態では、コンジュゲートはアルギン酸と反応される。
【００５４】
いくつかの態様では、この方法はさらに、フルオレニルメチルオキシカルボニル（ＦＭＯＣ）基のような保護基を利用して、一級アミン基に対する結合剤のコンジュゲーションを上回る制御を達成することを包含する。この方法はまた、抗体／アルギン酸／ＰＥＧヒドロゲルをマイクロ流体デバイスに対して添加して、そのデバイスの内面をコーティングすることを包含する。このような実施形態では、ヒドロゲルは、インサイチュで形成すること、およびデバイスの１つ以上のチャンバの内面をコーティングすることが可能になる。
【００５５】
また開示されたのは、本明細書に開示されるマイクロ流体セパレーターを用いて複合媒体から細胞を分離する方法である。一態様では、この開示は、基板を含んでいるマイクロ流体デバイスを記載しており；かつサンプルを受容するための１つ以上のチャンバは標的の生物学的材料を含んでおり、この１つ以上のチャンバは、ヒドロゲル組成物でコーティングされた表面を備え、このヒドロゲル組成物は、複数のアルギン酸分子および複数のポリエチレングリコール分子を含んでおり、ここで各々のポリエチレングリコール分子は複数の基を含み、各々のポリエチレングリコール分子の少なくとも１つの基は、アルギン酸分子に対してコンジュゲートされ、そして各々のポリエチレングリコール分子の少なくとも１つの他の基は、結合剤に対してコンジュゲートされる。本明細書に開示されるデバイスはさらに、結合した標的の生物学的材料と中和剤とを混合するための混合チャンバと、ヒドロゲル組成物でコーティングされた１つ以上の追加の表面とを備える。このヒドロゲル組成物は、複数のアルギン酸分子および複数のポリエチレングリコール分子を含み、ここで各々のポリエチレングリコール分子は、複数の基を含み、かつ各々のポリエチレングリコール分子の少なくとも１つの基は、アルギン酸分子に対してコンジュゲートされる。さらに、各々のポリエチレングリコール分子の少なくとも１つの基は、工程（ｉ）における結合剤とは異なる結合剤に対してコンジュゲートされる。
【００５６】
種々の基板が、開示されたデバイスで用いられ得る。いくつかの実施形態では、この基板は、シリカ含有物質（例えば、ガラス、ＰＤＭＳ）である。いくつかの実施形態では、この基板は、ポリマー材料（生体適合性および非生体適合性の両方）であり、かつこのポリマーは、それ自体に結合されるか、または他のシリカ基板に対して結合される。いくつかの実施形態では、この基板は、繊維強化プラスチックを含めて、エポキシのような熱硬化性のプラスチックである。いくつかの実施形態では、この基板は、金属（例えば、金、銀、プラチナ、銅、アルミニウム）；金属合金；金属酸化物（酸化銅、酸化アルミニウム、酸化銀、インジウムスズ酸化物など）；無機物質、例としては、限定するものではないが、半導体および磁気物質である。いくつかの実施形態では、この基板は、本明細書に記載される、シリカ物質、ポリマー物質、金属素材、または無機物質の組み合わせである。
【００５７】
当該分野で公知のマイクロ流体デバイスはまた、本明細書に開示の方法についても利用され得る。この方法は、血管組織遺伝子操作における引き続く使用、またはインビボでの血管組織の細胞ベースの再生修復のために、血液から例えばＥＰＣを分離するために用いられ得る。この方法は、アルギン酸／ＰＥＧヒドロゲルが、マイクロ流体デバイス中でインサイチュで（その場で）形成することを可能にすることを包含する。この方法はさらに、サンプルをデバイスに提供すること、およびヒドロゲルにコンジュゲートされた結合剤が標的の生物学的材料、例えば、ある細胞タイプを捕獲することを可能にすることを必要とする。このサンプルは、デバイスを通過することを可能にされ、この捕獲された細胞は、遊離剤を用いて遊離される。ある実施形態では、この遊離剤は、遊離緩衝液であり、これには、例えば、キレーター、例えば、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）、エチレングリコール四酢酸（ＥＧＴＡ）、およびクエン酸ナトリウムが挙げられる。これらの実施形態では、サンプルとしては限定するものではないが、全血、血清、唾液、リンパ、胆汁、尿および任意の他の生体液が挙げられる。
【００５８】
いくつかの態様では、サンプルから標的の生物学的材料を捕獲および遊離する方法は、流体を受容するための１つ以上のチャンバを備えるマイクロ流体デバイスを提供することを包含し、ここでこの１つ以上のチャンバの少なくとも１つは、ヒドロゲル組成物でコーティングされた表面を備える。このヒドロゲル組成物は、複数のアルギン酸分子および複数の分岐したポリマー分子を含み、ここでこの各々の分岐したポリマー分子は、複数の基を含み、そして各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの基は、アルギン酸分子に対してコンジュゲートされる。さらに、各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの他の基は、１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされる。この方法はさらに、標的のおよび非標的の生物学的材料を含んでいるサンプルを、ヒドロゲル組成物に対して標的の生物学的材料を結合するのに有効な条件下で１つ以上のチャンバ中に導入すること、および遊離剤を用いて標的の生物学的材料を遊離することを包含する。
【００５９】
いくつかの実施形態では、この方法はさらに、サンプルから未結合の非標的材料を除去することを包含する。
【００６０】
別の態様では、サンプルから標的の生物学的材料を捕獲および遊離する方法は、（ａ）流体を受容するための１つ以上のチャンバを備えているマイクロ流体デバイスを設けることであって、ここでこの１つ以上のチャンバのうちの少なくとも１つが、ヒドロゲル組成物でコーティングされた少なくとも１つの表面を備えることを包含する。いくつかの実施形態では、このヒドロゲル組成物は、複数のアルギン酸分子および複数の分岐したポリマー分子を含み、ここで各々の分岐したポリマー分子は、複数の基を含み、各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの基は、アルギン酸分子に対してコンジュゲートされ、そして各々の分岐したポリマー分子のうちの少なくとも１つの他の基は１つ以上の結合剤に対してコンジュゲートされる。さらに、この方法は、（ｂ）標的の生物学的材料を含んでいるサンプルを上記デバイスの第一のチャンバ中に、生物学的材料がヒドロゲル組成物に結合するのに有効な条件下で導入することと；（ｃ）この結合した生物学的材料を、遊離剤を用いて遊離することと；（ｄ）この遊離剤と中和剤とを接触させて、第二のチャンバ中で遊離剤を中和することとを包含する。ある実施形態では、この方法は、（ｅ）上記第二のチャンバの内容物を、ヒドロゲル組成物に対して標的の生物学的材料を結合するのに有効な条件下で、ヒドロゲル組成物でコーティングされた表面を備える第三のチャンバ中に提供することであって、ここで第三のチャンバ中の結合剤が、（ａ）で用いられたものとは異なる結合剤であることと；（ｆ）上記結合した標的の生物学的材料を、遊離剤を用いて遊離することと；
を必要とする。
【００６１】
図１１Ａ〜図１１Ｄは、複数のチャンバを用いるデバイスおよび方法を図示する。図１１Ａ〜図１１Ｄでは、サンプルを、シリンジポンプで、第一のアルギン酸塩−ベースの捕獲ステージ中に注入した（「マーカー１単離（Ｍａｒｋｅｒ  １  ｉｓｏｌａｔｉｏｎ）」／図１１Ａ）。このステージを、２方向バルブであるステージＢまで続けた。その「閉じた」構成では、このバルブによって、ステージＡ由来の廃棄物を、収集管を通過させた。この廃棄物が通過した後、その廃棄物のストリームを、例えば、ピンチバルブを用いて閉じた。（図１１Ｂ）。塩化カルシウムの目的は、ステージから生じる細胞懸濁物中のＥＤＴＡを中和することであった（図１１Ａ）。塩化カルシウム溶液とこの細胞懸濁物との混合を確実にするために、合わせたアウトプット（これはラミナフロー中であった）を、ヘリングボーン構造を備える混合チャンバ（図１１Ｃ）中に送った。次いで、この混合された溶液をステージに入れ（図１１Ｄ）、ここで第二の捕獲分子について受容体を発現する細胞を捕獲した。この分離プロセスの最終工程は、ステージＡ（図１１Ａ）インレットへのＥＤＴＡ溶液の注入であって、ここではステージＢから捕獲された細胞を遊離する（図１１Ｂ）。この溶液を、過剰の培養培地を含有する管に収集して、細胞に対するＥＤＴＡのなんらかの有害な影響を最小限にした。
【００６２】
いくつかの実施形態では、この方法はさらに、遊離された生物学的材料に対して培養培地を添加することを包含する。いくつかの実施形態では、（ｄ）〜（ｆ）を、異なる結合剤を用いて繰り返してもよい。いくつかの実施形態では、この方法はさらに、ヒドロゲル組成物からの遊離後に標的の生物学的材料を検出することを包含する。いくつかの実施形態では、この方法はさらに、生きている細胞を含めて細胞を培養、検出、分析または形質転換するのに有効な条件下で細胞を維持することを包含する。
【００６３】
いくつかの実施形態では、この細胞とは、まれな細胞であって、これには限定するものではないが、成体幹細胞、胎児幹細胞、前駆細胞、末梢造血幹細胞、内皮前駆細胞、循環中の腫瘍細胞、成熟した循環中の内皮細胞、羊膜幹細胞、間充織幹細胞、脂肪由来幹細胞、腸管幹細胞、皮膚幹細胞、神経幹細胞、および癌幹細胞が挙げられる。いくつかの実施形態では、この細胞とは、サンプルから捕獲された生きている細胞である。いくつかの実施形態では、キレート剤は、ＥＤＴＡ、ＥＧＴＡ、およびクエン酸ナトリウムからなる群より選択される。
【００６４】
図４Ａ〜図４Ｃは、ヒドロゲル（ゲルタイプＩ〜ＶＩＩと命名）の産生のための種々の合成法を図示する。ゲルタイプＩＩ〜ＶＩＩからのＥＰＣ捕獲の収率および純度における進歩的な改善が示される。図４Ａでは、全ての試薬（ＰＥＧ、抗体、アルギン酸を含む）を、ゲルタイプＩＩ〜ＩＶにおいて一緒に組み合わせる。図４Ｂでは、ゲルタイプＶは、二段階のプロトコールを利用し、ここではＰＥＧ、抗体、ＥＤＣ、およびスルホ−ＮＨＳを一回の第一工程で組み合わせる。図４Ｃでは、ゲルタイプＶＩ−ＶＩＩは、他の成分との混合の前に、ＰＥＧおよび抗体の事前混合を有する。事前混合によって、ＰＥＧ鎖の中での抗体分子の最適の分散が可能になる。
【００６５】
抗ＣＤ３４抗体の結合効果は、ゲルタイプＩおよびＩＩを比較することによって証明される（図３Ａ）。図３Ａ〜図３Ｂは、ヘパリン管に収集した３００μＬの全血を個々のマイクロ流体デバイス中に直接注入し、１０個のデバイスを並行して使用した後の結果を示す。各々のデバイスから遊離された細胞を、単一の懸濁物中にプールして、フローサイトメトリーによる計数を可能にした。報告されたデータは、３ｍＬの総血液量から回収したＥＰＣの収率および純度を示す。エラーバーは、ＥＰＣの３つの独立した測定および同じサンプルで行った総細胞カウントに基づく標準偏差を示す。収量および純度の増大が、１０ｋのＭＷのＰＥＧの組み込みで観察された（ゲルタイプＩＩ対ＩＶ）。開示される方法および組成物はまた、２０ｋのＭＷのＰＥＧで用いられてもよいし、同様に立体力のようなサイズ制限が細胞結合の効率に影響しない限り、他の分子量のＰＥＧ分子で用いられてもよい。
【００６６】
図４Ｂでは、合成における第一工程は、第二工程のアルギン酸の添加の前の、ＰＥＧおよび抗体と、カップリング剤ＥＤＣおよびスルホ−ＮＨＳとの組み合わせであった。ゲルタイプＩＶに対して、ゲルタイプＶは、わずかに大きいＥＰＣ捕獲をもたらすが、散乱の程度は低く、このことは、抗体分子とＰＥＧとのより良好な混合を示している。ゲルタイプＶのアクセス可能な抗体含量は、ゲルタイプＩＶのものと同様であり（図２）、このことで、ＰＥＧ−抗体混合が良いことは、際立った要因であることが示される。図２では、ビシンコニン酸（ＢＣＡ）アッセイキットを利用して、各々のデバイスを流れる溶液にアクセス可能な抗体の相対量を測定した。吸光度が低いほど、アクセス可能な抗体の量が大きいことに関連する。エラーバーは、各々のゲルタイプについて８つの独立した測定に基づく標準誤差を示す。混合がよいほどまた、ヒドロゲル表面上でＰＥＧおよび抗体分子のさらに有効な分散が可能になり、これは、ゲルタイプＩＶに対してゲルタイプＶで得られたより高いＥＰＣ純度と一致している。ＰＥＧ−および抗体−官能化アルギン酸溶液ではＰＥＧ粒子がより少ないことが観察され、これは、ＰＥＧ−抗体混合がより優れていることと一致する。
【００６７】
ゲルタイプＶＩおよびＶＩＩについての二段階の合成プロトコールによって、ＥＤＣおよびスルホ−ＮＨＳの存在を強制することなく、抗体およびＰＥＧ分子が「邪魔されることなく」混合するための時間を得ることによって、事前混合が可能になる。事前混合は、本明細書に開示される方法および組成物に必ずしも必要ではないが、より長い混合時間によって、ゲルタイプＶＩおよびＶＩＩとゲルタイプＶを比較したときみられるように、収率および純度に関してＥＰＣ捕獲能力を改善することが可能である。ゲルタイプＶＩに対してゲルタイプＶＩＩについて提供されるより長い混合およびインキュベーションの時間によって、良好な収率（約１０4のＥＰＣが回収）および純度（７４％）が同様に得られた。
【００６８】
等価物
当業者は、本明細書に詳細に記載される特定の実施形態に対する多数の等価物を、慣用的な実験以下を用いて、理解するか、または獲得できる。このような等価物は、添付の特許請求の範囲に包含されるものとする。
【００６９】
実施例
実施例１−マイクロ流体の捕獲および遊離のデザイン
実施例１は、細胞のような生物学的材料の極めて特異的な捕獲および遊離のための方法および組成物を記載する。
【００７０】
材料および装置
ガラススライド、ＥＤＣ、スルホ−ＮＨＳ、ＥＤＴＡ、ＭＥＳ緩衝液、マイクロビシンコニン酸（ｂｉｃｉｎｃｈｏｎｉｎｉｃ  ａｃｉｄ）（ＢＣＡ）タンパク質アッセイキット（Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ａｓｓａｙ  Ｋｉｔ）およびヘパリン真空管（採血管）は、Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ（Ｆａｉｒ  Ｌａｗｎ，ＮＪ）から購入した。マイクロ流体デバイス製造のために、ＳＵ−８フォトレジストおよび現像液は、ＭｉｃｒｏＣｈｅｍ（Ｎｅｗｔｏｎ、ＭＡ）から入手した；シリコーンエラストマーおよび硬化剤は、Ｄｏｗ  Ｃｏｒｎｉｎｇ（Ｍｉｄｌａｎｄ、ＭＩ）から入手した。リン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ；１×、カルシウムもマグネシウムもなし）は、Ｍｅｄｉａｔｅｃｈ（Ｈｅｒｎｄｏｎ、ＶＡ）から購入した。捕獲抗体、モノクローナルマウス抗ヒトＣＤ３４、およびヤギ抗ヒトＦＬＫ−１を、Ｓａｎｔａ  Ｃｒｕｚ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（Ｓａｎｔａ  Ｃｒｕｚ，ＣＡ）から入手した。抗ヒトＣＤ１３３−ＰＥ、抗ヒトＣＤ４５−ＦＩＴＣ、および抗ヤギＩｇＧ−ＰｅｒＣＰ抗体は、ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ（Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）から入手した。ウサギＩｇＧは、Ｖｅｃｔｏｒ  Ｌａｂｓ（Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ，ＣＡ）から購入した。塩化カルシウム二水和物およびアルギン酸は、Ｓｉｇｍａ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）から購入した。１０，０００（１０ｋのＭＷ）および２０，０００（２０ｋのＭＷ）という分子量を有するアミン末端の４−アームのＰＥＧ（ＰＥＧ−ＮＨ２）を、Ｌａｙｓａｎ  Ｂｉｏ（Ａｒａｂ、ＡＬ）から購入した。
【００７１】
マイクロ流体細胞捕獲デバイスのデザイン
このデバイスは、Ｎａｇｒａｔｈら、Ｎａｔｕｒｅ，４５０（７１７３），１２３−Ｕ１０（２００７）に用いられるデザインと同様のアレイ後デザインを用いた。流動ストリームを途絶して、最適の捕獲を達成するために、Ｇｌｅｇｈｏｒｎら、Ｌａｐ  Ｃｈｉｐ，１０（１），２７−２９（２０１０）に記載のように六角形のレイアウトでポストを配置した。このポストは１００μｍの直径、および中心と中心の間が１５０μｍという横の間隔であった。列は、中心から中心の間隔が１２５μｍであって、各々が５０μｍずつ相殺される。このポストのアレイは０．７ｃｍ長および０．５ｃｍ幅であった。このポストの高さは下記のようにソフトリソグラフィーによって製造したデバイスについては約５０μｍであった。
【００７２】
ポリ（ジメチルシロキサン）（ＰＤＭＳ）デバイス製造のため、シリコーンエラストマーおよび硬化剤を１０：１（ｗ／ｗ）の比で混合して、ネガティブマスター（雌型）ウエハの上に注いで、脱気して、６５℃で一晩硬化させた。次いで、ＰＤＭＳのレプリカをこのウエハから引っ張り出した後に、１９ゲージの鈍い切っ先（ブラントノーズ）の針を用いて入口の穴と出口の穴とを穿孔した。このレプリカおよびガラススライドを、ＰＸ−２５０プラズマチャンバ（Ｍａｒｃｈ  Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ，Ｃｏｎｃｏｒｄ，ＭＡ）中で酸素プラズマ（１００ｍＷで８％酸素３０秒間）に曝し、直ちにお互いと接触させた。ＰＤＭＳとガラスとの間の不可逆的な結合を、６５℃で５分間焼き付けることによって完了させた。
【００７３】
ＰＥＧ／抗体−官能化ヒドロゲル合成
７つの異なるヒドロゲル処方物を、この研究で検討し、これらをゲルタイプＩ〜ＶＩＩと命名する。ゲルタイプＩについては、４５ｍｇのアルギン酸、４．８ｍｇのＥＤＣ、１３．２ｍｇのスルホ−ＮＨＳ、および２０μＬの不活性なＩｇＧ（１ｇ／ｍＬ）を、２ｍｌのＭＥＳ緩衝液溶液に添加して、ＩＫＡ  Ｕｌｔｒａ  Ｔｕｒｒａｘ  Ｔｕｂｅ  Ｄｉｓｐｅｒｓｅｒを用いて２９分間混合し、６０分間インキュベートさせた。ゲルタイプＩＩについては、４５ｍｇのアルギン酸、４．８ｍｇのＥＤＣ、１３．２ｍｇのスルホ−ＮＨＳおよび１００μＬの抗ヒトＣＤ３４（２００μｇ／ｍＬ）を、２ｍＬのＭＥＳ緩衝液に添加し、前と同様に混合して、６０分間インキュベートさせた。ゲルタイプＩＩＩについては、４５ｍｇのアルギン酸、４．８ｍｇのＥＤＣ、１３．２ｍｇのスルホ−ＮＨＳ、２２．５ｍｇの２０ｋのＭＷのＰＥＧおよび１００μＬの抗ヒツジＣＤ３４を、２ｍＬのＭＥＳ緩衝液に添加し、２９分間混合し、６０分間インキュベートさせた。ゲルタイプＩＶは、４５ｍｇのアルギン酸、４．８ｍｇのＥＤＣ、１３．２ｍｇのスルホ−ＮＨＳ、２２．５ｍｇの１０ｋのＭＷのＰＥＧおよび１００μＬの抗ヒツジＣＤ３４から構成され、２ｍＬのＭＥＳ緩衝液を添加され、２９分間混合され、６０分間インキュベートされた。ゲルタイプＶは、４．８ｍｇのＥＤＣ、１３．２ｍｇのスルホ−ＮＨＳ、２２．５ｍｇの１０ｋのＭＷのＰＥＧおよび１００μＬの抗ヒツジＣＤ３４を２ｍｌのＭＥＳ緩衝液中で２９分間混合すること、次いで４５ｍｇのアルギン酸を添加すること、続いて２９分間の混合および６０分間のインキュベーションによって作製した。ゲルＶＩおよびＶＩＩは、２２．５ｍｇの１０ｋのＭＷのＰＥＧと１００μＬの抗体とを２ｍＬのＭＥＳ緩衝液中で混合すること、ならびに、それぞれ１０分間および２９分間混合すること、ならびにそれぞれ１５分間および６０分間インキュベートすることによって形成した。次いで、４．８ｍｇのＥＤＣ、１３．２ｍｇのスルホ−ＮＨＳ、および４５ｍｇのアルギン酸をこの混合物に添加して、２９分間混合し、６０分間インキュベートさせた。
【００７４】
このインキュベーション工程に続いて、各々のゲルタイプについての各々の官能化されたアルギン酸溶液を、Ｓｌｉｄｅ−Ａ−Ｌｙｚｅｒ  Ｄｉａｌｙｓｉｓ  Ｃａｓｓｅｔｔｅ  １０，０００分子量カットオフ（Ｆｉｓｈｅｒ）に注入して、ＭＥＳ緩衝液に対して４８時間透析して、未反応のスルホ−ＮＨＳおよびＥＤＣを取り除いた。表１は、各々のゲルタイプについての合成工程および構成要素をまとめている。工程１および２では、それぞれの試薬を組み合わせるために従ったプロトコールの結果として生じた性質を示す。
【表１】
2014506671.tif 000003
【００７５】
赤外線分光法
官能化したアルギン酸サンプルを、ポリ（テトラフルオロエチレン）（ＰＴＦＥ）のサンプルカード（Ｃｒｙｓｔａｌ  Ｌａｂｓ，Ｇａｒｆｉｅｌｄ，ＮＪ）上に、スパーテルを用いて広げ、４時間肥厚させた。次いで、このカードを、Ｐｅｒｋｉｎ  Ｅｌｍｅｒ  １０００フーリエ変換赤外（Ｆｏｕｒｉｅｒ−ｔｒａｎｓｆｏｒｍ  Ｉｎｆｒａｒｅｄ）（ＦＴＩＲ）分光計に挿入した。６３８ｃｍ-1の吸光度を分析して、各々のゲルタイプについて比較した。このピーク（これは、抗体分子がＰＥＧ−ＮＨ2に対して首尾よくコンジュゲートされた時に形成されたアミド結合と関連する）は、ヒドロゲル中の抗体負荷の指標である。
【００７６】
マイクロ流体デバイス内の其の位置でのヒドロゲル形成
脱イオン水中のＣａＣｌ2の１ｇ／ｍＬ溶液を、各々のデバイス中に注入し（１ｍＬのシリンジを用いて手技によって）、一晩インキュベートさせた。次いでＣａＣｌ2溶液を、１ｍＬのシリンジを用いて手動で取り出した。各々ゲルタイプについて調製されたＰＥＧ−および抗体−官能化アルギン酸塩溶液を、次いで、手動でデバイス中に注入して、１時間吸着させた。次に、このデバイスを、Ｈａｒｖａｒｄ  Ａｐｐａｒａｔｕｓ  ＰＨＤ  ２０００シリンジポンプ（Ｈｏｌｌｉｓｔｏｎ、ＭＡ）を用い、１０μｌ／分で１０分間、ＭＥＳ緩衝液で、続いてＭＥＳ緩衝液中の１００ｍＭのＣａＣｌ2溶液によって１０μＬ／分で１０分間リンスして、マイクロチャネルの壁に対して薄いヒドロゲルの層を形成した。最終的にこのデバイスを、ＭＥＳ緩衝液を用いて、５μＬ／分で１０分間リンスして、未反応のＣａＣｌ2を除去した。
【００７７】
ＢＣＡタンパク質アッセイ
ＢＣＡタンパク質アッセイ溶液を、製造業者の指示に従って調製した。次いで、この溶液を、各々のデバイス中に５μＬ／分で４０分間注入した。このアウトプットをマイクロプレート中に収集し、５６２ｎｍの吸収を、Ｂｉｏ−Ｔｅｋ  Ｐｏｗｅｒｗａｖｅ  ＸＳ分光計を用いて測定した。
【００７８】
採血
ヒトの全血を、ノースイースタン大学施設内倫理委員会（Ｎｏｒｔｈｅａｓｔｅｒｎ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ  Ｒｅｖｉｅｗ  Ｂｏａｒｄ）が承認したプロトコールのもとで、健康なボランティアからヘパリン収集管中に採取した。
【００７９】
ＥＰＣ捕獲実験
全血を、マイクロ流体捕獲デバイス中に、５μＬ／分で６０分間注入した。次いで、各々のデバイスを、ＭＥＳ緩衝液を１０μｌ／分で用いて５分間リンスした。捕獲した細胞の遊離のため、ＰＢＳに含有されるＥＤＴＡの５０ｍＭ溶液を、１０μＬ／分で１０分間注入し、そのアウトプットを１．５ｍＬの微小遠心管中に収集した。各々の個々の実験は、１０のマイクロ流体デバイスを含んだ。３００μＬの血液を、上記で特定した速度で、各々のデバイスを通過させた。各々のデバイスから遊離された細胞を、単一の懸濁物にプールして、フローサイトメトリーによる計数を可能にした。図３Ａ〜図３Ｂに報告されるデータによって、３ｍＬという血液の総容積から回収したＥＰＣの収率および純度が示される。
【００８０】
フローサイトメトリー
ＥＰＣの計数のために、各々のデバイスから遊離された細胞を、抗ヒトＣＤ１３３ＰＥ、抗ヒトＣＤ４５ＦＩＴＣ、抗ヤギＦＬＫ−１、および抗ヤギＩｇＧＰｅｒＣＰの各々の１０μｌと混合した。この混合物を、暗野に３０分間保管して、１３０×ｇで１０分間遠心分離した。その上清をデカントして、細胞を、Ｂｅｃｋｍａｎ  Ｃｏｕｌｔｅｒ  Ｃｅｌｌ  Ｌａｂ  Ｑｕａｎｔａ  ＳＣフローサイトメーターを用いる計数のために２００μＬのＰＢＳ中に懸濁した。ＣＤ１３３＋、ＣＤ４５−、およびＦＬＫ−１＋であった細胞をＥＰＣとしてカウントした。
【００８１】
結果
図１は、一段階または二段階の合成プロトコールから生じる官能化されたアルギン酸溶液内の抗体負荷の定量のための赤外線分光法データを示す。既知の抗ＣＤ３４濃度の標準溶液と比較した場合、全てのアルギン酸溶液は、０．０５〜０．０６ｍｇ／ｍＬの間の匹敵する抗体含量を有する。
【００８２】
図２は、ＢＣＡアッセイキットを用いて行った相対的なタンパク質測定を示す。ＢＣＡ溶液は、抗体のようなタンパク質と接触するにつれて、より透明になる。従って、ヒドロゲルコーティングしたマイクロ流体デバイスを通じてこの溶液を流すことによって、各々のゲルタイプ上のアクセス可能な抗体の量を比較できる。デバイスを出る溶液のタンパク質含量は、図２でゲルタイプの関数として示され、較正された質量または濃度としてではなく、任意の単位の吸収で表現される。相対的な測定によって、各々のゲルタイプの間のアクセス可能な抗ＣＤ３４捕獲抗体の比較が可能になる。図２では、混合物に添加された抗体の総量が一定のままであるが、ゲルタイプＩ〜ＶＩＩ由来のアクセス可能な抗体の増大が示され（図１）、このことは、ゲル化表面と抗体との間のコンジュゲーションの効率の増大を示している。
【００８３】
図３は、ヒドロゲルコーティングしたマイクロ流体デバイスを用いる全血からのＥＰＣの捕獲について収率および純度のデータを示す。図３Ａでは、ゲルタイプＩ（これにコンジュゲートされた不活性抗体を有する）は、予想どおり無視できるＥＰＣ結合を示す。ゲルタイプＩＩは、抗ＣＤ３４抗体を含んでおり、散乱の程度が高いにもかかわらず、ゲルタイプＩに対して有意に高いＥＰＣ結合を示す（ｐ＜０．００５）。しかし、ゲルタイプＩＩで達成された捕獲の純度は、比較的低い（約２３％；図３Ｂ）。ヒドロゲル構造に対して４−アームのＰＥＧを追加することの効果は、ゲルタイプＩＩおよびＩＶ（その合成プロトコールは、それ以外は同一である）を比較することによって明らかに示される。４−アームの１０ｋのＭＷのＰＥＧ分子の分岐したアミン末端では、より高い全体的なＥＰＣ結合で反映されるとおり、より大きいレベルの抗体コンジュゲーションの機会が得られる（図３Ａ）。非特異的な結合の抑制によって、純度の増大が生じる（図３Ｂ；ゲルタイプＩＶ）。興味深いことに、２０ｋのＭＷのＰＥＧ（ゲルタイプＩＩＩ）の使用によって、同じ合成条件下で１０ｋのＭＷのＰＥＧに対して有意に低いＥＰＣ捕獲収率が生じ（ゲルタイプＩＶ；ｐ＜０．００５）、純度のレベルは匹敵した。
【００８４】
ゲルタイプＶ−ＶＩＩでは、試薬を組み合わせるため二段階のプロトコールに従った。ゲルタイプＶでは、４−アームのＰＥＧに対する抗体分子のコンジュゲーションを、アルギン酸の導入前に最初に行う。この処方物は、ゲルタイプＩＶに対してＥＰＣ捕獲の収率および純度を改善した。この二段階のプロトコールは、ＥＤＣおよびスルホ−ＮＨＳをアルギン酸による第二の工程に加え、および第一工程は、ＰＥＧおよび抗体の一緒の混合に限定するように、改変した。第一の工程のための混合およびインキュベーションを短時間にした場合（ゲルタイプＶＩについてはそれぞれ１０分間および１５分間）、その収率は、ゲルタイプＶに対しては改善されなかったが、純度は高かった。より長い混合およびインキュベーション時間を次に検討し（ゲルタイプＶＩＩについて、それぞれ２９および６０分間）、ＰＥＧ分子と抗体分子とのより大きい混合およびエンタングルメント（絡み合い）を達成した。この処方物によって、ゲルタイプＶＩおよびＶＩＩに対して有意に高い収率および純度が得られた（それぞれ、ｐ＜０．００５およびｐ＜０．０１）。
【００８５】
実施例２−ＧＰＲ４９／Ｌｇｒ５受容体を用いる幹細胞のマイクロ流体捕獲および遊離
実施例２は、２つの結合剤、具体的には、ＧＰＲ４９およびＬｇｒ５抗体の受容体を用いる腸管幹細胞のマイクロ流体捕獲および遊離のためのデバイスおよび方法を開示する。
【００８６】
腸管系内の多能性および静止期の幹細胞を検討することに向かって進むことが、近年広まっている（Ｄａｖｉｄ、Ｈ．Ｓ．ら、Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｖｉｅｗ：Ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ  ａｎｄ  Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ．Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ  ２００８、１３４（３）、８４９〜８６４．；  Ｍｏｎｔｇｏｍｅｒｙ、Ｒ．Ｋ．ら、Ｐｒｏｍｉｎｉｎｌ（ＣＤ１３３）ａｓ  ａｎ  Ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  Ｍａｒｋｅｒ：Ｐｒｏｍｉｓｅ  ａｎｄ  Ｎｕａｎｃｅ．Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ  ２００９、１３６（７）、２０５１〜２０５４．）。しかし、現行の方法は、ハイブリダイズのマウスモデルおよび蛍光マーカーに依拠している。本開示は、親和性捕獲と組み合わされたマイクロ流体を実行することによって、蛍光マーカーおよび細胞ソーティング装置の必要性を回避する。
【００８７】
腸管幹細胞を特徴付けることおよび特定することは、胃腸病学のグループ内でかなり精査された（Ｓａｎｇｉｏｒｇｉ、Ｅ．、ら、Ｂｍｉ１  ｉｓ  ｅｘｐｒｅｓｓｅｄ  ｉｎ  ｖｉｖｏ  ｉｎ  ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ．Ｎａｔ  Ｇｅｎｅｔ  ２００８、４０（７）、９１５〜９２０；Ｓｎｉｐｐｅｒｔ、Ｈ．Ｊ．ら、Ｐｒｏｍｉｎｉｎ−１／ＣＤ１３３  Ｍａｒｋｓ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ  ａｎｄ  Ｅａｒｌｙ  Ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒｓ  ｉｎ  Ｍｏｕｓｅ  Ｓｍａｌｌ  Ｉｎｔｅｓｔｉｎｅ．Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ  ２００９、１３６（７）、２１８７〜２１９４；Ｂｊｅｒｋｎｅｓ、Ｍ．ら、Ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ  ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  ａｎｄ  ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒｓ．Ｍｅｔｈｏｄ  Ｅｎｚｙｍｏｌ  ２００６、４１９、３３７〜３８３；Ｂａｒｋｅｒ、Ｎ．、ら、Ｔｈｅ  ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ．Ｇｅｎｅ  Ｄｅｖ  ２００８、２２（１４）、１８５６〜１８６４．）
【００８８】
これらの細胞が、陰窩領域にある矛盾するモデルは、＋４標識保持細胞（ＬＲＣ）モデルおよび陰窩底部円柱細胞（ｃｒｙｐｔ  ｂａｓｅｄ  ｃｏｌｕｍｎａｒ  ｃｅｌｌ）（ＣＢＣ）モデルに制約された。最近まで、腸管幹細胞集団の特徴付けマーカーは、ＢＭＩ−１、Ｍｕｓｈａｓｈｉ−１、ならびに細胞内ドメインに制限された他の静止期のおよび活性な循環中のマーカーに依拠していた。Ｂａｒｋｅｒらは、活性な循環中の腸管幹細胞をコードする遺伝子が、ロイシンカップリングしたＧタンパク質受容体（Ｌｇｒ５）として公知の受容体に存在することを発見した（Ｂａｒｋｅｒ、Ｎ．、ら、Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  ｉｎ  ｓｍａｌｌ  ｉｎｔｅｓｔｉｎｅ  ａｎｄ  ｃｏｌｏｎ  ｂｙ  ｍａｒｋｅｒ  ｇｅｎｅ  Ｌｇｒ５．Ｎａｔｕｒｅ  ２００７、４４９（７１６５）、１００３−Ｕ１）。ＧＦＰ−ＦＡＣＳソーティングと組み合わされたハイブリダイズしたマウスにおけるこれらの遺伝子の過剰発現によって、インビトロの培養系を開発することおよびこれらの細胞タイプをゲノム分析することが可能になった。Ｓａｔｏ、Ｔ．ら、Ｓｉｎｇｌｅ  Ｌｇｒ５  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  ｂｕｉｌｄ  ｃｒｙｐｔ−ｖｉｌｌｕｓ  ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ｗｉｔｈｏｕｔ  ａ  ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ  ｎｉｃｈｅ．Ｎａｔｕｒｅ  ２００９、４５９（７２４４）、２６２−Ｕ１４７）。市販の抗体を利用することによって、Ｌｇｒ５受容体を標的する、これらの幹細胞サブタイプの細胞外染色が可能になった。（Ｏｌｓｅｎ  Ｈｕｌｔ、Ｌ．Ｔ．ら、ＥＰ  Ｒｅｃｅｐｔｏｒ  Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｉｎ  Ｈｕｍａｎ  Ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ  Ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ  ａｎｄ  Ｌｏｃａｌｉｚａｔｉｏｎ  Ｒｅｌａｔｉｖｅ  ｔｏ  ｔｈｅ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  Ｚｏｎｅ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｃｒｙｐｔｓ．ＰＬｏＳ  Ｏｎｅ  ２０１１、６（１０）、ｅ２６８１６）。これらを実行することによって、抗体で野性型ラット組織由来の抗体で官能化されたアルギン酸塩を利用する、これらの標的細胞の選択的な捕獲および遊離が可能になる。
【００８９】
逆に、本実施例によって、回避された標的集団の生存度を保持しながら、多重化して、およびより大きいサンプル容積を処理することが可能になる。他のグループによる以前の研究では、培養方法は、単一細胞由来の過形成およびオルガノイド形成単位の誘導を発症した（Ｓａｔｏ、Ｔ．ら、Ｓｉｎｇｌｅ  Ｌｇｒ５  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  ｂｕｉｌｄ  ｃｒｙｐｔ−ｖｉｌｌｕｓ  ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ｗｉｔｈｏｕｔ  ａ  ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ  ｎｉｃｈｅ．Ｎａｔｕｒｅ  ２００９、４５９（７２４４）、２６２−Ｕ１４７）。これらの細胞は、これらの単位に発達するために間葉性のニッチを必要とせず、分化の合図を誘導するための増殖因子に依拠する。培養中のｌｇｒ５細胞は、６％というプレート有効性を有することが報告された（Ｓａｔｏ  ２００９）；近年の発展によって、プレートを改善するためにＰａｎｅｔｈ細胞を介した必須のｗｎｔシグナル伝達がほのめかされた。（Ｓａｔｏ  ら、Ｐａｎｅｔｈ  ｃｅｌｌｓ  ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｅ  ｔｈｅ  ｎｉｃｈｅ  ｆｏｒ  Ｌｇｒ５  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  ｉｎ  ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ  ｃｒｙｐｔｓ．Ｎａｔｕｒｅ  ２０１１，４６９（７３３０）、４１５−＋）。
【００９０】
本実施例では、富化されたｌｇｒ５陽性集団は、開示された方法を用いて捕獲および遊離され、そしてこの細胞は、以前のグループによって生じたのと同様の形態学的応答を生じた。さらに、培養物中のｗｎｔ３aの添加は、プレートの効率の増大を容易にした。共焦点顕微鏡と組み合わされた免疫組織学的分析によって、近年の報告と一致する中央管腔内のｌｇｒ５およびｃｄ２４発現が明らかになった。（Ｇｒａｃｚ、Ａ．Ｄ．ら、Ｓｏｘ９  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｍａｒｋｓ  ａ  ｓｕｂｓｅｔ  ｏｆ  ＣＤ２４−ｅｘｐｒｅｓｓｉｎｇ  ｓｍａｌｌ  ｉｎｔｅｓｔｉｎｅ  ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  ｔｈａｔ  ｆｏｒｍ  ｏｒｇａｎｏｉｄｓ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ．Ａｍ  Ｊ  Ｐｈｙｓｉｏｌ−Ｇａｓｔｒ  Ｌ  ２０１０、２９８（５）、Ｇ５９０−Ｇ６００を参照のこと）。
【００９１】
本実施例では、共有結合した拮抗性のＧＰＲ４９／Ｌｇｒ５を有するアルギン酸塩ヒドロゲルでは、捕獲および遊離の機構は、キレート化遊離を伴うヒドロゲルとカルシウムとの架橋に存在する。本実施例は、野性型ラット結腸陰窩消化物からＧＰＲ４９／Ｌｇｒ５陽性細胞を選択的に捕獲および遊離する能力を実証する。ワンパスのアプローチを通じて、出発の懸濁物からＧＰＲ４９／Ｌｇｒ５細胞の４９％という最終純度まで２４倍の富化が得られた。提示されたマイクロ流体プラットフォームでは、最終使用者がサンプルを多重化する能力をもたらしながら、標的細胞の生存度を保持する。本開示によって、腸管幹細胞単離が可能になり、これは組織工学の分野および同時培養の適用での進歩の能力を有する。
【００９２】
方法
動物
雄性および雌性の新生仔のＬｅｗｉｓラット（Ｃｈａｒｌｅｓ  Ｒｉｖｅｒ）を用いて、米国の東部標準時間に従って、１２時間の明／暗サイクルによって室温条件で飼育した。前駆細胞の単離研究のために、２日齢〜５日齢の新生仔ラットを利用して、断頭によって屠殺した。全ての研究およびプロトコールは、ノースイースタン大学（Ｎｏｒｔｈｅａｓｔｅｒｎ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ）の施設内動物実験委員会（Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ  Ａｎｉｍａｌ  Ｃａｒｅ  ａｎｄ  Ｕｓｅ  Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ）（ＩＡＣＵＣ）によって承認された。
【００９３】
組織消化
腸組織サンプルは、新生仔Ｌｅｗｉｓラットから入手した。大腸を取り出し、側方に分けて、１ｍｍの切片に断片化した。断片化した組織を、２ｍＭのＥＤＴＡ中で、４℃で３０分間インキュベートした。組織サンプルを、溶液から分離し、２０ｍＬのリン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ、Ｇｉｂｃｏ）中に入れて１０分間撹拌した。次いで上清の液を収集して、１５０×ｇで３分間遠心分離し；ペレットを収集し、１０ｍＬの無血清ダルベッコの改変イーグル培地（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｅａｇｌｅ’ｓ  Ｍｅｄｉｕｍ）（ＤＭＥＭ，Ｃｅｌｌｇｒｏｗ）中に懸濁して、１５０×ｇで再度遠心分離した。このペレットを、５ｍＬの無血清のＤＭＥＭ溶液に懸濁して、１００μｍの細胞ストレーナーを通して濾過した。次いで、溶液を２０μｍの細胞ストレーナーを通して、１ｍＬのエッペンドルフチューブ中に濾過した。
【００９４】
マイクロ流体細胞単離デバイス製造
マイクロ流体デバイスを、ノースイースタン大学（Ｎｏｒｔｈｅａｓｔｅｒｎ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ）のジョージ・ジェイ・コスタス・ナノスケール・テクノロジー・アンド・マニュファクチャリング・リサーチ・センター（Ｇｅｏｒｇｅ  Ｊ．Ｋｏｓｔａｓ  Ｎａｎｏｓｃａｌｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  ａｎｄ  Ｍａｎｕｆａｃｔｕｒｉｎｇ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｃｅｎｔｅｒ）で伝統的なソフトリソグラフィーを用いて製造した。このデバイスの物理的な寸法およびデザインは、Ｈａｔｃｈらによって記載されるデバイスのものと同一であった。これらのデバイスは、ガラススライドに結合された１００μｍの直径のピラーでパターン化されたポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）からなる。
【００９５】
アルギン酸処方物
抗体−官能化アルギン酸塩反応は、６つの異なるシナリオを経験したが、試薬の化学量論的な比は、各々のスキームを通じて一定のままであった。１９４０μＬのＭＥＳ（Ｔｈｅｒｍｏ−ｆｉｓｈｅｒ）、．０４ｍｇの抗ＧＰＣＲ  ＧＰＲ４９（Ａｂｅａｍ）、および２２．５ｍｇの１０ＫＤの４−アームのｓｔａｒ  ＰＥＧ（）を３０分間混合した。ＭＥＳのｐＨは各々のそれぞれのシナリオについて変更され、ｐｈ４．７または６．０のいずれかで保持された；このｐＨは、ＮａＯＨを用いて６．０のｐＨまで滴定された。アマルガムをシナリオＩＩで６０分間インキュベートさせたが、残りのシナリオでは引き続く試薬を直ちに添加した。１３．８ｍｇのスルホ−ＮＨＳ（ｐｉｅｒｃｅ）、４．８ｍｇのＥＤＣ（ｐｉｅｒｃｅ）、および４５ｍｇのアルギン酸塩（ｔｈｅｒｍｏ）を添加して、６０分間混合させ、シナリオＩＩでさらに６０分間インキュベートした。この官能化されたアルギン酸塩を、１０ＫＤの透析カセット（Ｔｈｅｒｍｏ）に注入し、そのそれぞれのシナリオｐＨで４８時間、その拡張ＭＥＳ中で懸濁した。
【００９６】
チャネル形成、注入および遊離
六角形のポストのアレイを有するマイクロ流体デバイスを、細胞分離に利用した。各々のデバイスを抗ＧＰＣＲ  ＧＰＲ４９で官能化されたアルギン酸で満たし、６０分間インキュベートさせた。チャネルは、１００μＬのｐＨ６のＭＥＳ緩衝液を１０μＬ／分で、１００μＬの１００ｍＭのＣａＣｌ2を１０μＬ／分で、および１００μＬの０．１％のウシ血清アルブミンを１０μＬ／分で流すことによって形成した。Ｈａｒｖａｒｄ  Ａｐｐａｒａｔｕｓシリンジポンプを用いて正確な流速を得た。得られた細胞溶液を混合して、均一な懸濁物を保証して、２００μＬを１ｍＬのシリンジに吸引した。１００μＬの細胞溶液を、各々のデバイスを通して、３μＬ／分の速度で、続いて１００μＬのｐＨ６のＭＥＳ緩衝液を３μＬ／分でポンピングしてリンスした。次いで、１００μＬの１００ｍＭのＥＤＴＡ溶液を、デバイスを通して１０μＬ／分でポンピングして、このデバイスから細胞を遊離させた。培養のために、細胞を、氷上の、５０μＬのＭａｔｒｉｇｅｌ（ＢＤ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ）を含有するエッペンドルフチューブ中に遊離した。
【００９７】
フローサイトメトリー
出発の（すなわち、組織消化物）細胞懸濁物および単離した細胞の両方のフローサイトメトリー分析を、Ｂｅｃｋｍａｎ  Ｃｏｕｌｔｅｒ  Ｑｕａｎｔａ  ＳＣフローサイトメーターを用いて行った。抗ＧＰＣＲ  ＧＰＲ４９−ＲＰＥを用いて、注入された集団および遊離された集団を定量した。一次および二次をそれぞれ、ＰＢＳ中で１：５０希釈した。
【００９８】
細胞培養
富化された幹細胞集団を、遊離後にマトリゲルと混合し、各々のサンプルをウェルプレート中にプレートして、１０分間、３７℃でインキュベートした。Ｌｇｒ５基本培地は、以下の構成要素を含んだ：進行したＤＭＥＭ  Ｆ−１２、５ｍｌのＮ２補充物、１０ｍＬのＢ２７（ビタミンＡなし）、５ｍＬ  ＨＥＰＥＳ、６．２５ｍＬのグルタマックス（ｇｌｕｔａｍａｘ）。各々のサンプルを３５０μＬのＬｇｒ５基本培地でリンスして、細胞培養物からＥＤＴＡを除去した。次いで１７μＬのＲＯＣＫインヒビター（ｙ−２７６３２、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）を１０ｍＬのＬｇｒ５培地に添加した。この溶液の４８６μＬを、以下の濃度で増殖因子とともに各々のウェルのプレートに添加した：１００ｎｇ／ｍＬのマウスＮｏｇｇｉｎ（Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ）、１００ｎｇ／ｍＬのマウスＷｎｔ３Ａ（Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ）、５０ｎｇ／ｍＬのラット、ＥＧＦ（Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ）、および１μｇ／ｍＬのマウスＲｓｐｏｎｄｉｎ−１（Ｒ＆Ｄ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）。各々の増殖因子を添加した後、サンプルを３７℃、５％ＣＯ2で保持した湿潤チャンバ中に移動した。細胞増殖の２日後、培地を回復させた。使用済み培地を取り除き、Ｌｇｒ５培地（ＲＯＣＫインヒビターなし）を、各々のウェルプレートに添加する。増殖因子を以下の濃度で添加した：１００ｎｇ／ｍＬのＮｏｇｇｉｎ、１００ｎｇ／ｍＬのＷｎｔ３Ａ、５０ｎｇ／ｍＬのＥＧＦ、および５００ｎｇ／ｍＬのＲｓｐｏｎｄｉｎ−１。
【００９９】
オルガノイドの免疫組織化学染色
富化されたオルガノイドを、４％のパラホルムアルデヒドで固定して、ＰＢＳ中に含有される２ｍＭのグリシンでリンスした。６Ｕ／ｍｌのディスパーゼ（ステム・セル・テクノロジーズ（ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ  ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ））を添加して、１時間インキュベートして、マトリゲルからオルガノイドを遊離した。オルガノイドを、以下を含有する２００μＬのＬｇｒ５培地ブロッキング溶液中にピペッティングした：３％のＢＳＡ、１０％のヤギ血清、１％のｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００、１０ｍＭのＨＥＰＥＳおよび１０ｍＭのグリシン。ブロッキング溶液に対して、１：５０のそれぞれの抗体、抗ＧＰＣＲ  ＧＰＲ４９および抗ＣＤ２４を添加して、４℃で一晩インキュベートした。オルガノイド類の溶液をピペッティングして、中和濃度のＡｌｅｘｆｌｕｏｒ４８８、Ａｌｅｘａｆｌｕｏｒ５６８、および０．５μｇ／ｍｌのＤＡＰＩを含有する２００μＬのブロッキング溶液中に３時間入れた。オルガノイドをガラスカバースライドに装填して、ニコンの共焦点顕微鏡で共焦点画像を撮った。
【０１００】
結果
腸幹細胞のマイクロ流体富化
実験パラメーターの改変、例としては、反応ｐＨの調節および調停（ｐａｃｉｆｉｃａｔｉｏｎ）が、Ｌｇｒ５富化および純度の倍数を増大するのに必要であった（図６Ａ）。サンプルおよび処方物を、各々が１つの変数で異なる５つのシナリオに分けた（図６Ａ）。これらのシナリオの純度収率を、注入された集団に対して比較した。純度パーセントの量子化は、注入（（図６Ｃ）および遊離された（図６Ｃ）に対してフローサイトメトリーを介して行った。各々のヒストグラムは、ＥＶ対側方散乱のレジメンからゲートして、ノイズをミディカゲートし（ｍｉｄｉｃａｇａｔｅ）、各々のゲートは、各々のサンプルを通して伝播させた。*Ｐ＜．０００５、**Ｐ＜．００１、***Ｐ＞．０５；ｎ＝３。Ｌｇｒ５捕獲のための最適化は、流速、調停、ｐＨおよび反応時間を含めて４つの変数を包含した。調停因子であるウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）によって、マイクロ流体チャネル内のファウリングの減少が可能になり、これによって、チャネルを横切る一定の流速およびアルギン酸塩／抗体のコンジュゲートに対する非特異的な結合の阻害の確立が容易になった。ＢＳＡの濃度は、手順ＩＶおよびＶで異なり、システムにはほとんど影響はなく、純度収率に影響はなかった（図６Ｂ）。流速を、３〜５μＬ／分（シナリオＩＩＩおよびＩＶ）に調節したところ、かなり有意な不均衡が生じ、ここでは、高い流速で標的細胞に対して潜在的な剪断効果がほのめかされた（図６Ｂ）。
【０１０１】
４−アームのスター（ｓｔａｒ）ＰＥＧ、ＥＤＣ、および抗体の相互作用を改善するためにアルギン酸塩反応に影響するｐＨを検討した。シナリオＩＩＩおよびＶＩの比較では、４．７〜６．０のｐＨの変化が、Ｌｇｒ５陽性細胞を捕獲するのにおけるアルギン酸塩ヒドロゲルの有効性に対して有意な全体的な影響を有することが証明された（ｐ＜．００１）。ｐＨを増大することは、反応部位を脱プロトン化し、これによって、抗体−ＰＥＧおよびアルギン酸塩−ＥＤＣコンジュゲートの反応力の増大を可能にし、全体的な反応を完了させる。混合およびインキュベーションの時間は、富化において統計学的に有意な影響はなかった。シナリオＩＩＩでは、最高の純度収率が得られ、これは放出されるＬｇｒ５陽性細胞のうちほぼ４９％純粋な集団であった；この処方物は、注入された懸濁物からの２４倍のｌｇｒ５富化を容易にした（図６Ｂ）。生存度は、マイクロ流体アプローチで評価して、約８５％生存可能を保持した（データ示さず）。
【０１０２】
フローサイトメトリーを介したＬｇｒ５陽性細胞の検証および計数
マイクロ流体デバイス後の富化能力および純度収率を決定するため、フローサイトメトリーを用いて、異なるアルギン酸塩／抗体処方物に対して陽性の集団を計数した。側方および前方の散乱レジメン内の最初のゲーティングによって、外因性の細片を軽減することが可能になった。注入および遊離された腸内消化懸濁物を、ＰＢＳ中の抗ＧＰＣＲ  ＧＰＲ４９−ＲＰＥとコンジュゲートした。コントロールの集団は、抗体タグの非存在下で、同じ方式で流して、ノイズと自己蛍光との調停を可能にした。注入集団および遊離集団は、同じ方式でゲーティングされコントロールに対して重層されて、ノイズを相殺した。注入されたサンプルは、腸内消化物由来の約２．３％のＬｇｒ５陽性細胞から構成された（図６Ｃ）。このフローサイトメトリー分析によって、シナリオＩＩＩにおける遊離に比較して標的のＬｇｒ５陽性集団の２４倍の富化が図示された（図６Ｄ）。
【０１０３】
富化された細胞は、過形成および単一細胞からのオルガノイドを誘導した。
遊離された富化されたＬｇｒ５陽性細胞をマトリゲルに埋め込んで、Ｓａｔｏら；Ｓｉｎｇｌｅ  Ｌｇｒ５  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  ｂｕｉｌｄ  ｃｒｙｐｔ−ｖｉｌｌｕｓ  ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ｗｉｔｈｏｕｔ  ａ  ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ  ｎｉｃｈｅ．Ｎａｔｕｒｅ  ２００９，４５９（７２４４），２６２−Ｕ１４７に記載と同様の条件下で増殖させた。ｌｇｒ５陽性細胞の培養技術が含む増殖因子成分は、種依存性の要因を考慮するためにわずかに変更されていた。ハイブリダイズしたマウスモデルを実行した原文献とは対照的に、ラット内皮増殖因子（ＥＧＦ）およびマウスｒｓｐｏｎｄｉｎ−１を用いた。ロックインヒビター（ｒｏｃｋ  ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ）であるＹ−２６７４３を用いて培養の安定性を改善し、単一細胞懸濁物におけるアノイキスを防いだ。このインヒビターをまた、マイクロ流体富化技術において併用して、プレート有効性の増大（データ示さず）を生じることを観察したが、富化されてない培養物ではほとんど影響は示されなかった（図７Ａ〜図Ｃ）。富化された単一のｌｇｒ５細胞からのオルガノイドの発達は、４日までに見られ、富化されていない集団と比較された（図７Ｄ〜図７Ｅ）。増殖には２日目に気づき、３日目に過形成の段階まで進行した。過形成の増大と組み合わされた小管腔形成は、４日目に観察される。
【０１０４】
図７Ａ〜図７Ｃでは、富化されていないオルガノイドの発達（ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｏｎ）が、外因性集団によって囲まれた有意に大きい嚢胞様オルガノイドを生じたことが示される。図７Ｄ〜図７Ｆは、単一細胞懸濁物由来の富化されたオルガノイドの発達を４日で示す。２日目の単一細胞の増殖（図７Ｄ）、３日目の誘導された過形成（図７Ｅ）、および４日目の周囲の分泌されたアポトーシス細胞で判明した小管腔形成（図７Ｆ）を示す。スケールバーは１００μｍを表す。
【０１０５】
遊離されたｌｇｒ５陽性細胞の一日の発達は、富化されていない集団に対して並行して培養した。富化されていない懸濁物を、遊離された集団と同じ容積で播種して、同じ条件下で培養した。富化されていない培養では多重の形態が明らかになり、これはアポトーシス細胞を保有している、中央管腔を有するオルガノイド（図７Ｃおよび図８Ｃ）から線維芽細胞の形態におよぶ。富化されてない懸濁物の増殖速度は、富化された集団に比較してさらに加速された。プレート効率は、培養系に対するＷｎｔ３ａの添加によって富化された集団のなかで改善された（図８Ｂ）。培養培地に対するｗｎｔ３ａの添加によって、生存度およびパネート細胞からの独立が維持される（図８Ｄ）。
【０１０６】
富化されていない集団（図８Ａ）は、Ｗｎｔ３ａタンパク質の存在下でプレート効率の増大をなんら有さない。注入された培養物中で形成されるほとんどのオルガノイド類は、アポトーシス細胞を保有する嚢胞様構造を発現した（図８Ｃ）。逆に、富化された集団（図８Ｂ）は、プレート効率の増大を有し、これによって、単一に由来するオルガノイド増殖が多くなる。富化された細胞は、同様の時点でｗｎｔ３aなしの研究（図８Ｄ）と同様の形態を示した。３日目に培養物中の画像を撮った；スケールバーは、１００μｍを表す。
【０１０７】
共焦点顕微鏡を介した富化されたオルガノイドおよび富化されていないオルガノイドの免疫染色
負荷されたおよび富化されていないオルガノイドを、ディスパーゼ処理によって４日で培養物から遊離して、マトリゲル（Ｍａｔｒｉｇｅｌ）を分解した。染色されたオルガノイドを、抗ＧＰＲ  ＧＰＲＣＲ４９、抗ＣＤ２４、およびＤＡＰＩに曝して、各々をアレクサフルオル（ａｌｅｘａ  ｆｌｕｏｒ）４８８（緑）および５２４（赤）とコンジュゲートした。（図９および１０）。共焦点顕微鏡によって、オルガノイドおよびタンパク質発現の形態の決定が容易になった。富化されていないオルガノイド（図１０）は、中央ドメイン内にアポトーシス細胞の有意な集団を有した。このオルガノイドは、培養期間の間過形成を受けず、楕円形パターンの明るいＣＤ−２４シグナルを示した。抗Ｌｇｒ５／ＧＰＲＣＲ４９発現は、かすかであって（図１０ｂ）、発現はオルガノイドの管腔ドメインに限定された。抗Ｌｇｒ５／ＧＰＲＣＲ４９の局在化は、低ＣＤ２４集団を有意に減らした（図１０Ａ−Ｂ）。
【０１０８】
富化されていない培養のトポグラフィーによって、球形であった、富化されたオルガノイド（図９Ｄ）とは対照的に、楕円の平面な形態が示された（図１０Ｄ）。中央のドメインは、頂端膜に局在する、ＣＤ−２４（緑）および抗Ｌｇｒ５／ＧＰＣＲ４９（赤）を発現した（図９Ａ〜Ｂ）。ＣＤ−２４発現は、４つの異なる膜にそって局在化し（図９Ａ）、発現は、富化されていないオルガノイドに比較して強度が低かった。局在化された抗Ｌｇｒ５／ＧＰＣＲ４９は、頂端膜に集中し、２つの膜で発現された（図９Ｂ）。両方のマーカーの発現は、中央ドメインに厳密に制限され、これはＳｏｘ９（ＣＤ−２４）およびＬｇｒ５のゲノムの傾向と一致していた（Ｇｒａｃｚ、Ａ．Ｄ．ら、Ｓｏｘ９  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｍａｒｋｓ  ａ  ｓｕｂｓｅｔ  ｏｆ  ＣＤ２４−ｅｘｐｒｅｓｓｉｎｇ  ｓｍａｌｌ  ｉｎｔｅｓｔｉｎｅ  ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  ｔｈａｔ  ｆｏｒｍ  ｏｒｇａｎｏｉｄｓ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ．Ａｍ  Ｊ  Ｐｈｙｓｉｏｌ−Ｇａｓｔｒ  Ｌ  ２０１０、２９８（５）、Ｇ５９０〜Ｇ６００；１４；Ｓｅｉ、Ｙ．ら、Ａ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ  ｍａｒｋｅｒ−ｅｘｐｒｅｓｓｉｎｇ  ｓｕｂｓｅｔ  ｏｆ  ｅｎｔｅｒｏｅｎｄｏｃｒｉｎｅ  ｃｅｌｌｓ  ｒｅｓｉｄｅｓ  ａｔ  ｔｈｅ  ｃｒｙｐｔ  ｂａｓｅ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｓｍａｌｌ  ｉｎｔｅｓｔｉｎｅ．Ａｍ  Ｊ  Ｐｈｙｓｉｏｌ−Ｇａｓｔｒ  Ｌ  ２０１１、３００（２）、Ｇ３４５〜Ｇ３５６）。
【０１０９】
考察
本発明の開示は、費用効果的で蛍光の不要な細胞単離デバイス、および組織工学のような適用のための方法を開発における要件を満たす。腸管幹細胞単離における従来の方法は、ハイブリダイズしたマウスモデルおよびＦＡＣＳのような複雑な装置に依拠する。本発明の実施例は、抗ＧＰＣＲ４９／Ｌｇｒ５と組み合わせてアルギン酸を用いる、腸管幹細胞集団を富化するマイクロ流体方法を記載する。さらに、この富化されたｌｇｒ５細胞は、適切な培養培地中で増殖された。培地に細胞を添加した後、オルガノイド中央ドメインでのＬｇｒ５発現と一致しているＣＤ２４発現を検討した。本実施例は、生存度、発現および増殖の形態を維持したままで、選択した標的集団を富化する方法およびデバイスを記載する。
【０１１０】
本実施例は、４９％というＧＰＣＲ４９／Ｌｇｒ５純度まで２４倍富化できる、ワンパス（ｏｎｅ−ｐａｓｓ）のマイクロ流体アルギン酸塩捕獲および遊離モデルを記載する。安定化剤（ｐａｃｉｆｙｉｎｇ  ａｇｅｎｔ）であるＢＳＡを用いて、非特異的な結合の減少を可能にした。この現象は、カスケードの影響を生じ、ここではｌｇｒ５陽性細胞を含んでいる凝集した細胞タイプがアルギン酸塩コーティングに結合する；濾過した細胞を即時に注入して、分散を容易にした。アルギン酸塩、ＥＤＣ、４−アームのスターＰＥＧ、抗ＧＰＣＲ４９／Ｌｇｒ５の間の化学的な相互作用および安定性は、反応のｐＨがより塩基性になるにつれて増大した
【０１１１】
いかなる理論にも束縛されないが、反応ｐＨが大きくなれば、４−スターＰＥＧの活性部位は脱プロトン化され、これは、抗体相互作用を４つの活性部位に対して制限し得、従って、吸着効果を生じるアルギン酸塩マトリックスに対する共有結合を阻害する。相互作用の可能性は、要求されていない副反応を阻害するためのキャッピング試薬を導入することによって軽減され得る。従来の方法とは対照的に、開示された方法は、多くのデバイスを多重化し、並行して駆動できるようにし、処理能力を向上するために用いられ得る。さらに、開示された方法によって、インサイチュで同様の増殖形態を維持したままで、腸管幹細胞の蛍光標識なしの単離が可能になった。
【０１１２】
注入および単離された細胞集団の培養によって、細胞の組成、形態、および可溶性の因子、特にＷｎｔ３ａの効果に関する情報が得られた。注入されたサンプルおよび遊離されたサンプルを、文献で以前に報告されたのと同様の方式で培養した。Ｌｇｒ５が富化された集団および変更されていない消化物の形態学的な増殖を検討するため、培養物を、並行して流して、増殖および形態の相違を評価した。富化されてない集団内の増殖には、オルガノイドとオルガノイドとの間で有意な形態学的変動があった。オルガノイドの多くは、過形成を受けず、嚢胞様の状態で残ったが、他方では、モノリシックの線維形成性層が形成された。Ｗｎｔ３ａが培養物内に存在しようとしまいと、富化されていないオルガノイドは、影響されないまま残り、同様の形態を維持した。富化されていない集団は、パネート（ｐａｎｅｔｈ）−ｌｇｒ５陽性細胞の二重構造を含み、これによってＷｎｔシグナル伝達の必要性は残る；従って、補因子の存在下ではヌル効果が注目された。Ｗｎｔ３ａの非存在下では、富化されていない集団の中のプレート効率は、富化された懸濁物よりもわずかに高いことが注目された；これは、パネート細胞ニッチのシグナル伝達の指標であり、これによって長期のオルガノイド生存度の改善が可能になる。富化されたオルガノイドを、注入された懸濁物に対して同様の方式でプレートしたが、遊離されたＧＰＣＲ４９／ｌｇｒ５陽性細胞の形態学的変化およびプレート効率には有意な相違が存在していた。
【０１１３】
Ｗｎｔ３ａの不存在下では、富化された集団のプレート効率は、以前に報告された６％の範囲内であった。Ｗｎｔ３ａ欠損細胞のエイジ・プログレッション（ａｇｅ  ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｏｎ）によって、管腔形成および最終的な過形成の発現が示された。これらは、単一のＬｇｒ５由来オルガノイドの以前に報告された形態と一致している。分泌されたアポトーシス細胞は、富化されたオルガノイドを囲み、これは、インビボの増殖を模倣する、自律的な性質を示した。Ｗｎｔ３ａの存在は、プレート効率の増大および形態の変化をもたらした。Ｗｎｔ３ａ欠損培養物における同様の時点で、形態は嚢胞様であって、前駆体の表現型を呈した。この構成の追加によって、ｒ−スポンジン１の活性化が容易になり、直接接触なしにパネート細胞ニッチが保持される。
【０１１４】
最近の文献では、腸管幹細胞が、２つのコードされた遺伝子、Ｓｏｘ９およびＬｇｒ５に潜在的に属することが示唆される。これらの発現傾向は、それぞれ、ＣＤ２４およびＧＰＣＲ４９で特定され得る、細胞の細胞内ドメインおよび細胞外ドメインと結び付けられる。オルガノイド内のこの発現傾向を検討するために、共焦点顕微鏡と組み合わされた免疫組織化学によってこれらのパターンへの洞察が得られた。富化されていない臓器は、中央のドメイン内にアポトーシス細胞を保有する嚢胞様の形態を呈する。ＣＤ２４発現は、中央管腔内の頂端膜で示されるが、ＧＰＣＲ４９／Ｌｇｒ５は、ＣＤ２４発現の低い領域で正の発現を示した；この傾向は、以前に発見されたゲノム発現と同様である。逆に、富化されたオルガノイドは、わずかに異なる形態だが、同様の免疫発現パターンを示した。この画像によって、小さい中央管腔を有するより小さいオルガノイドは、なんらアポトーシス細胞を形成して保有しなかったことが示される。ＣＤ２４およびＧＰＣＲ４９／Ｌｇｒ５発現は、ＧＰＣＲ４９／Ｌｇｒ５と同様の発現パターンを有する中央ドメインに結び付けられた。提示された画像では、マイクロ流体富化プロセスが前に報告されたのと同様の形態学的な結果を保持するということにはならなかった。
【０１１５】
本実施例は、細胞のソーティング（分取）および組織工学に用いられ得る方法およびデバイスを開示する。本実施例は、野性型腸管消化物からの腸管幹細胞単離技術を記載する。現在の慣例は、これらの細胞を単離するにはトランスジェニックマウスモデルおよび複雑な装置に限定される。この開示された方法によって、エンドユーザーは、細胞の生存度を維持しながら、スピーディーなプロセスで細胞の亜種を単離することが可能になる。
【０１１６】
実施例３−多段階の捕獲および遊離のデバイスおよび方法
本実施例は、細胞のような生物学的材料の多段階の、極めて特異的な捕獲および遊離のための組成物および方法に関する。
【０１１７】
その同一性が２つの異なる表面細胞受容体によって規定される標的細胞（例えば、ＣＤ３１＋およびＦＬＫ１＋の両方である全血由来の細胞集団）の分離における第一の工程。図１１Ａ〜図１１Ｄでは、２つの抗体の各々について捕獲ステージを包含する、アルギン酸塩−ヒドロゲルベースのデバイスの構成を示す。いくつかの実施形態では、２つ以上の抗体が考慮される。
【０１１８】
図１１Ａ〜図１１Ｄでは、サンプルを、シリンジポンプを介して、第一のアルギン酸塩−ベースの捕獲ステージ（「マーカー１単離（Ｍａｒｋｅｒ  １  ｉｓｏｌａｔｉｏｎ）」図１１Ａ）に注入した。このステージは、ステージＢにつながり、これは２方向のバルブであった。その閉じた構成では、このバルブによって、ステージＡからの廃棄物を収集管に通過させることが可能になった。廃棄物が通過した後、この廃棄物のストリームを、例えば、ピンチバルブを用いて閉じた。（図１１Ｂ）。塩化カルシウムの目的は、ステージから生じる細胞懸濁物中のＥＤＴＡを中和することであった（図１１Ａ）。塩化カルシウム溶液とこの細胞懸濁物との混合を確実にするために、合わせたアウトプット（これはラミナフロー中であった）を、ヘリングボーン構造を備える混合チャンバ（図１１Ｃ）中に送った。次いで、この混合された溶液をステージに入り（図１１Ｄ）、ここで第二の捕獲分子について受容体を発現する細胞を捕獲した。この分離プロセスの最終工程は、ステージＡ（図１１Ａ）インレットへのＥＤＴＡ溶液の注入であって、ここではステージＢから捕獲された細胞を遊離する（図１１Ｂ）。この溶液を、過剰の培養培地を含有する管に収集して、細胞に対するＥＤＴＡのなんらかの有害な影響を最小限にした。
【０１１９】
本実施例によって、未反応の全血から内皮前駆細胞（ＥＰＣ）を単離するためのこの二段階（ｄｕａｌ−ｓｔａｇｅ）の捕獲システムの能力が示された。この目的は、ＣＤ３４＋／ＦＬＫ１＋である細胞を捕獲することであった。図１２は、ステージＡおよびステージＢから生じる細胞の細胞カウント（フローサイトメトリーによって得られる）を示す。図１２では、示される種々の集団は、ＣＤ３４＋細胞のカテゴリーを表し、および「総（ｔｏｔａｌ）」のカラムは、遊離された細胞の総数を表す。第二の捕獲デバイスの目的は、第二のマーカーＦＬＫ−１を発現しないＣＤ３４＋細胞、すなわち、ＣＤ４５＋でもあるＣＤ３４＋細胞を除去することであった。第一の捕獲ステージに対して第二の捕獲ステージから生じたＣＤ４５＋細胞の数の急激な減少によって、この富化が示される。
【０１２０】
他の態様、改変および実施形態は、添付の特許請求の範囲内である。
【図１】
2014506671.tif 000004
【図２】
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【図３Ａ−３Ｂ】
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【図４Ａ−４Ｂ】
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【図４Ｃ】
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【図６Ａ−６Ｂ】
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【図６Ｃ−６Ｄ】
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【図１２】
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【図５Ａ−５Ｃ】
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【図７Ａ−７Ｆ】
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【図８Ａ−８Ｄ】
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【図９Ａ−９Ｄ】
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【図１０Ａ−１０Ｄ】
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【図１１Ａ−１１Ｄ】
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【国際調査報告】
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