(57)【要約】  本発明は、慢性創傷治癒を促進するための、少なくとも３リン酸塩単位を有する非結合ポリリン酸塩の使用を提供する。両方ともポリリン酸塩の使用に基づく治療方法および医薬組成物も提供される。
2011512394.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
慢性創傷治癒を促進するための、少なくとも３リン酸塩単位を有する非結合ポリリン酸塩の使用。
【請求項２】
ポリリン酸塩が、創傷治癒を防止または遅延することに寄与する少なくとも１つの酵素の作用を阻害する、請求項１に記載の使用。
【請求項３】
酵素が、ペプシン、コラゲナーゼ、エラスターゼおよびヒアルロニダーゼの１つまたは複数である、請求項２に記載の使用。
【請求項４】
ポリリン酸塩が平均４〜４０のリン酸塩単位を有する、請求項１から３のいずれかに記載の使用。
【請求項５】
ポリリン酸塩が、少なくとも５５重量％のＰ２Ｏ５含有量を有する、請求項１から３のいずれかに記載の使用。
【請求項６】
ポリリン酸塩が、少なくとも６０重量％のＰ２Ｏ５含有量を有する、請求項５に記載の使用。
【請求項７】
ポリリン酸塩が、６０〜７５重量％のＰ２Ｏ５含有量を有する、請求項６に記載の使用。
【請求項８】
ポリリン酸塩が、６５〜７０重量％のＰ２Ｏ５含有量を有する、請求項７に記載の使用。
【請求項９】
ポリリン酸塩がアルカリ金属塩である、請求項１から８のいずれかに記載の使用。
【請求項１０】
ポリリン酸塩が、ナトリウム塩もしくはカリウム塩またはこれらの混合物である、請求項９に記載の使用。
【請求項１１】
慢性創傷治癒を促進する方法であって、少なくとも３リン酸塩単位を有するポリリン酸塩の治療有効量を投与することを含む方法。
【請求項１２】
ポリリン酸塩の量が、１日投与量として３００ｍｇ〜２４，０００ｍｇである、請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
ポリリン酸塩が６〜８のｐＨで投与される、請求項１１または請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
少なくとも３リン酸塩単位を有するポリリン酸塩の治療有効量を、薬学的に許容されるアジュバント、希釈剤または担体と混合して含む、医薬組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、慢性創傷の治癒に関し、その点について、特定の化合物の使用、ならびに治療方法および医薬組成物を含む。
【背景技術】
【０００２】
創傷治癒は、複雑な生理学的過程であるが、通常、予測される順序の事象をたどる。この順序は、恣意的に一連の段階に分けられており、すなわち、（ｉ）炎症相；（ｉｉ）組織形成相および（ｉｉｉ）組織再生相である。多くの場合に外傷／手術によって引き起こされる急性創傷は、これらの段階を順番に適時に進行することにより修復される。対照的に、慢性創傷はこの順序をたどらず、炎症相に「止まって」しまう。このことは、治癒過程を遅延し、特定の慢性創傷が永久に治癒しない場合があるかまたは治癒するのに何年もかかる場合があることを意味する。（Ｒｏｖｅｅ  ＤＴ  ａｎｄ  Ｍａｉｂａｃｈ  ＨＩ  ｉｎ  Ｔｈｅ  Ｅｐｉｄｅｒｍｉｓ  ｉｎ  Ｗｏｕｎｄ  Ｈｅａｌｉｎｇ（２００３）Ｉｎｆｏｒｍａ  ＨｅａｌｔｈＣａｒｅ、ＮＹ、ＵＳ）。
【０００３】
慢性創傷は、分解酵素の空間的および時間的発現が歪められているので、急性創傷のときに生じる治癒段階の順序をたどらないことが示唆されている。治癒の初期段階では、細胞外マトリックス（ＥＣＭ）を分解するように酵素が特異的に発現する。ＥＣＭは、いくつかある役割の中でも、細胞に支持および足場を提供する組織の構成成分である。大まかには、ＥＣＭの３つの主要な構成成分：線維性成分（例えば、コラーゲン、エラスチン）、リンクタンパク質（例えば、フィブロネクチン）および空間充填分子（例えば、ヒアルロナン）が存在する。治癒の際のＥＣＭの分解は、線維芽細胞、好中球およびマクロファージなどの細胞が創傷領域に移動にして、組織修復を実施するのを可能にする。ＥＣＭの分解は、ＥＣＭが新たな組織の合成を支持できるように再構築するのを可能にするためにも必須である。治癒過程が進むと、創傷におけるＥＣＭ分解酵素の活性は、既存のＥＣＭの必要な崩壊および再構成と新たなＥＣＭの合成との間の平衡を可能にするために低減するはずである。組織修復部位での分解酵素の持続的活性は、創傷治癒の慢性を説明することができる。例えば、多数の研究者らによる研究によれば、ＥＣＭを分解する酵素のレベルが急性創傷よりも慢性創傷において著しく高いことが実証されている。Ｙａｇｅｒら（Ｊ  Ｉｎｖｅｓｔ  Ｄｅｒｍａｔｏｌ  １９９６；１０７：７４３〜８）は、ＭＭＰ−２およびＭＭＰ−９のレベルが急性手術創傷と比較して慢性褥瘡性潰瘍の創傷液において有意に高かったことを示した。Ｙａｇｅｒら（Ｗｏｕｎｄ  Ｒｅｐ  Ｒｅｇ  １９９７；５：２３〜３２）は、慢性創傷液が上昇したレベルのエラスターゼ活性を有したことも示した。最後に、Ｄｅｃｈｅｒｔら（Ｗｏｕｎｄ  Ｒｅｐ  Ｒｅｇ  ２００６；１４：２５２〜２５８）は、褥瘡性潰瘍のヒアルロニダーゼ活性が急性創傷と比較して有意に上昇したことを示した。
【０００４】
慢性創傷における創傷微環境の生化学組成が急性創傷と比較して異なることは、これらの別々の種類の創傷を治療する方法も異なることを意味する。Ｆａｌａｎｇａ（Ｗｏｕｎｄｓ  ２００２；１４（２）：４７〜５７）は、急性創傷に適した治療剤および創傷床調整法の使用が慢性創傷には適切ではないことを記述している。これは、慢性創傷が急性創傷の治癒段階の順番をたどらないからである。
【０００５】
慢性創傷は、ヒトにおいて内部的にも外部的にも生じうる。内部慢性創傷は、胃腸管の上皮の損傷によってもたらされ、口腔、咽喉、食道、胃、小および大腸、結腸ならびに直腸における病変または潰瘍化として生じうる。外部慢性創傷は、表皮／真皮に影響を与え、例えば、糖尿病性足部潰瘍、静脈うっ血性潰瘍および褥瘡性潰瘍を含む。
【０００６】
内部創傷の治癒は、胃腸管内における他のタンパク質分解酵素の存在によって複雑になる。胃液は、一連のアスパラギン酸プロテアーゼ（ペプシン１、３ａ、３ｂ、３ｃおよびガストリシン）を含有し、これらは胃粘膜において不活性前駆体（ペプシノゲン）として合成され、胃主細胞での刺激の後、胃内腔に放出され、そこで塩酸により活性化される。ペプシンの主な機能は、食事性のタンパク質およびペプチドを吸収に適したアミノ酸フラグメントに分解することである。ペプシンは食事性タンパク質を特異的に分解することはなく、あらゆる適切なタンパク質、ペプチドまたは糖タンパク質を無差別に切断する。したがって、コラーゲンおよびエラスチンなどの通常の生理学的機能に必須である一連の構成タンパク質を分解する。これらのタンパク質の無差別の分解は、自己消化とも呼ばれ、消化不良、胃炎、潰瘍化および胃食道逆流性疾患を含むいくつもの疾患状態の基礎的な病理である。これらの疾患状態では、胃腸管の粘膜はペプシンのタンパク質分解活性により損傷を受ける。
【０００７】
胃粘膜は、粘液ゲル層の分泌を含むいくつもの防御機構によりペプシン分解から保護されている。粘液ゲル層は、ペプシンと下にある粘膜表面タンパク質との相互作用を防止する拡散障壁として作用する。しかし、粘液ゲル層はペプシンにより分解される可能性があり、したがって、粘液分泌と分解との間に動的平衡が存在する。この平衡が妨げられ、粘液障壁が損なわれると、ペプシンは、下にある上皮およびコラーゲンを消化し、組織の破壊および胃損傷をもたらす可能性がある。同様に、ペプシンが食道の括約筋を越えて気道消化管の中に逆流すると、この括約筋の上方の上皮は胃に存在する防御機構を有さないので、広範囲に及ぶ組織損傷が起こる可能性がある。食道および喉頭への胃内容物の逆流は、食道および喉頭の扁平上皮に損傷を生じる場合があり、胃食道逆流性疾患および食道外逆流性疾患を起こし、さらには粘膜にバレット食道および食道または喉頭癌の素因を与える場合がある。
【０００８】
ＥＣＭ（コラゲナーゼ、ヒアルロニダーゼおよびエラスターゼを含む）を分解する酵素の過剰活性は、胃腸管の病変／潰瘍化などの内部慢性創傷、ならびに糖尿病性足部潰瘍、静脈うっ血性潰瘍および褥瘡性潰瘍などの外部慢性創傷の両方の慢性に寄与する。さらに、タンパク質分解酵素ペプシンは、胃、食道および喉頭の病変／潰瘍化における原因酵素として関与するとともに、それらの治癒の遅延に寄与している。
【０００９】
加えて、皮膚においてＥＣＭおよび構造生体分子を分解する酵素は（コラゲナーゼ、ヒアルロニダーゼおよびエラスターゼを含む）、皮膚老化の発症および進行における原因として関与している。
【００１０】
そのような酵素を阻害すること、またはマトリックス構成成分を分解から保護することは、関連する障害の介入点として確認されている。したがって、ＥＣＭ活性酵素、例えば、ペプシンなどのアスパラギン酸プロテイナーゼ、コラゲナーゼなどのマトリックスメタロプロテイナーゼ（ＭＭＰ）、エラスターゼなどのセリンプロテイナーゼおよび／またはヒアルロニダーゼなどのグリコシドヒドロラーゼの調節および／または阻害は、頑強なＥＣＭの修復および／または維持にとって有利でありうる。
【００１１】
ポリリン酸塩は、一般に、高エネルギーリン酸無水結合により連結している数十数百の多くのオルトリン酸塩残基の直鎖状ポリマーである。
【００１２】
ポリリン酸塩は、広範囲の生細胞において見出され、その役割の１つは、細胞を作動させるためにエネルギーを供給する、ＡＴＰ（アデノシン三リン酸）産生のためのリン酸塩貯蔵レザバーとして機能すると考えられている。最近、ポリリン酸塩が、細菌において、これらの単細胞生物が栄養欠乏および環境ストレスに対応するのを助けることが開示されている。例えば、細菌が栄養欠乏または環境ストレス（例えば、熱または浸透圧）に付される場合、ポリリン酸塩が合成されて、多様なタンパク質の産生に必要なエネルギーを供給する。
【００１３】
Ｋｙｕｎｇ  Ｗｏｎ  Ｍｅｄｉｃａｌの国際特許出願第０１／７２３１３号は、急性創傷の創傷治癒および瘢痕寛解を促進する多様なポリリン酸塩（Ｐ３からＰ７９８）の使用を記載する。
【００１４】
ＵＳ６，５９９，５２３は、慢性非治癒創傷の治療におけるヘキサメタリン酸ナトリウムの４〜１６％組成物から形成されるポリリン酸化創傷包帯の使用を記載する。創傷包帯は、綿セルロースなどの支持マトリックスおよび支持マトリックスに関連する活性剤から構成される。活性剤は、プロテアーゼ捕捉剤、特に、エラスターゼなどの好中球誘導カチオン性プロテアーゼの捕捉剤であってもよい。
【００１５】
最近では、Ｅｄｗａｒｄｓら、Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ  Ｍａｔｅｒｉａｌｓ  ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｐａｒｔ  Ａ  ＤＯＩ  １０．１００２、４４６〜４５４は、エラスターゼおよびコラゲナーゼの捕捉にリン酸化綿包帯の使用を記載している。しかし、従来技術の組成物は捕捉剤として作用し、したがって有意に高いリン酸塩含有量を必要とする。
【発明の概要】
【００１６】
発明の記述
本発明によると、慢性創傷治癒を促進するための、少なくとも３リン酸塩単位を有する非結合ポリリン酸塩の使用が提供される。
【００１７】
「非結合」とは、ポリリン酸塩が、創傷治療に積極的に使用されるとき、他の任意の化合物または基質に化学的に結合していないことを意味する。保存され、さらには適用されると化学的に結合しうるが、治療条件下では「非結合」になる。例えば基質担体に物理的に結合しうるが、ここでも、治療中は実質的に遊離リン酸塩として挙動する。
【００１８】
本発明に使用されるポリリン酸塩は、例えば、外部的に、局所的にまたは経腸的に投与することができ、ペプシン、ならびにコラゲナーゼ、エラスターゼおよびヒアルロニダーゼなどのＥＣＭの再構成に関与するものを含む多様な酵素を阻害するのに有効であってもよい。これらの酵素の過剰活性に関わる慢性状態は、下記である：
褥瘡性潰瘍、糖尿病性潰瘍などの慢性外部創傷−これらの創傷の慢性は、コラゲナーゼ（ＭＭＰ）、ヒアルロニダーゼおよびエラスターゼの過剰活性からもたらされる。
ＧＩ管の病変／潰瘍化などの慢性内部創傷−ＥＣＭを分解する酵素が、これらの内部創傷を引き起こす原因であり（ペプシン）、それらの慢性の原因である（ペプシン、コラゲナーゼ、ヒアルロニダーゼおよびエラスターゼ）。
【００１９】
したがって、ポリリン酸塩は、創傷治癒を防止または遅延することに寄与する少なくとも１つの酵素の作用を阻害することが好ましい。より好ましくは、酵素は、ペプシン、コラゲナーゼ、エラスターゼおよびヒアルロニダーゼの１つまたは複数である。
【００２０】
ポリリン酸塩は、単一の化学実体でありうるか、または異なる数のリン酸塩単位を有するポリリン酸塩の混合物でありうる。混合物である場合、平均リン酸塩単位数は、少なくとも３である。好ましくは、ポリリン酸塩は、平均４〜４０のリン酸塩単位を有する。
【００２１】
好ましくは、リン酸塩は、少なくとも５５重量％、より好ましくは少なくとも６０重量％のＰ２Ｏ５含有量を有する。好ましい範囲は、６０〜７５重量％、より好ましくは６５〜７０重量％である。
【００２２】
例としては、ヘキサメタリン酸ナトリウムとして知られている物質は、平均１２のリン酸塩単位および約６８％のＰ２Ｏ５含有量を有するポリリン酸塩の混合物である。
【００２３】
好ましくは、ポリリン酸塩は、アルカリ金属塩、より好ましくはナトリウム塩もしくはカリウム塩またはそれらの混合物である。
【００２４】
本発明は、また、慢性創傷治癒を促進する方法であって、少なくとも３リン酸塩単位および／または上記に示されたリン酸単位を有するポリリン酸塩の治療有効量を投与することを含む方法を提供する。
【００２５】
好ましくは、ポリリン酸塩の量は、１日投与量として３００ｍｇ〜２４，０００ｍｇである。  
【００２６】
好ましくは、ポリリン酸塩は、２〜６のｐＨで投与される。
【００２７】
本発明は、さらに、少なくとも３リン酸塩単位を有するポリリン酸塩の治療有効量を、薬学的に許容されるアジュバント、希釈剤または担体と混合して含む、医薬組成物を提供する。
【００２８】
発明のより詳細な記述
本発明に使用されるポリリン酸塩の例は、トリメタリン酸塩（Ｐ３）およびヘキサメタリン酸塩（名目上はＰ６であるが、実際はほぼＰ１２）である。
【００２９】
ポリリン酸塩は、例えば、アルカリ金属塩（上記の通り）、カルシウム塩またはアンモニウム塩などのアルカリ土類金属塩であってもよい。好ましくは、ポリリン酸塩は、可溶性の塩である。
【００３０】
ポリリン酸塩による阻害に付される酵素には、マトリックスメタロプロテイナーゼ（ＭＭＰ）、セリンプロテイナーゼおよびグリコシドヒドロラーゼからなる群から選択されるＥＣＭ活性酵素が含まれうる。ＭＭＰは、例えばコラゲナーゼであってもよく、セリンプロテイナーゼは、例えばエラスターゼであってもよく、グリコシドヒドロラーゼは、例えばヒアルロニダーゼであってもよい。
【００３１】
１つまたは複数の酵素が、上部消化管において活性であってもよい。これらの酵素には、アスパルチルプロテイナーゼ、例えばペプシン、ならびに例えばマトリックスメタロプロテイナーゼ（ＭＭＰ）、セリンプロテイナーゼおよびグリコシドヒドロラーゼからなる群から選択される細胞外マトリックス（ＥＣＭ）酵素が含まれる。例として、コラゲナーゼ、エラスターゼおよびヒアルロニダーゼがある。
【００３２】
ポリリン酸塩を、哺乳動物におけるＥＣＭまたは消化管活性酵素の阻害のための薬剤の製造に使用することができる。
【００３３】
ポリリン酸塩の治療有効量は、０．１〜５００ｍＭであってもよく、好ましい範囲には、０．１〜２００ｍＭおよび０．１〜１００ｍＭが含まれる。
【００３４】
ポリリン酸塩を、例えば４〜１０の範囲のｐＨで投与することができる。好ましい範囲には、６〜８が含まれ、より好ましい範囲は、６〜７である。
【００３５】
方法は、瘢痕形成の低減および／または創傷治癒の方法であってもよい。
【００３６】
方法は、哺乳動物におけるペプシン活性により引き起こされる胃部病変の予防、緩和または治療のためであってもよい。ポリリン酸塩の治療有効量は、例えば０．１〜５００ｍＭまたは０．１〜１０ｍＭであってもよい。投与のｐＨは、２〜８、２〜６および３〜５の範囲のうちの１つであってもよい。
【００３７】
医薬組成物は、乾燥粉末剤、ゲル剤もしくはペースト剤または液剤を含む適切な剤形のいずれかであってもよい。ポリリン酸塩は、例えば０．１〜１２．０重量／容量％の量で存在することができる。組成物は、スプレー、ロール・オン、パッチ、懸濁剤、移植物、皮下デポー剤、注射、口紅／香膏型アプリケーター、縫合／縫合糸または手術用接着剤などの任意の適切な構造であってもよい。
【００３８】
ポリリン酸塩／トリメタリン酸塩の治療有効量を創傷部位に送達する創傷包帯は、創傷接触物質を含有する。創傷接触物質（ポリリン酸塩／トリメタリン酸塩を組み込む）は、いくつもの形態をとることができる。これらには、限定することなく、発泡体、繊維、布、膜、アルギン酸塩、ヒドロゲルおよびヒドロコロイドが含まれる。
【００３９】
発泡体は、一般に多孔性高分子構造、好ましくは開放気泡構造を意味する。適切な発泡体には、ポリウレタン、カルボキシル化ブタジエンスチレンゴム、ポリエステル、ポリアクリレートなどの合成有機ポリマー、ならびに多糖類およびそれらの誘導体などの非合成／半合成ポリマーが含まれる。一般に、発泡体は親水性であることが望ましいが、親水性被覆を有する疎水性発泡体を使用することができる。親水性発泡体には、イソシアネート、ポリエーテル／ポリエステルポリオールと、水、触媒、安定剤および他の物質とから形成される多孔性ポリウレタン発泡体が含まれる。
【００４０】
布は、合成繊維、天然繊維またはこれらの組み合わせなどの繊維から形成されうる。合成繊維には、例えば、ポリエステル、アクリル、ポリアミド、ポリオレフィン、ポリアラミド、ポリウレタン、再生セルロースおよびこれらのブレンドが含まれる。より詳細には、ポリエステルには、例えば、ポリエチレンテレフタレート、ポリトリフェニレンテレフタレート、ポリブチレンテレフタレート、ポリ乳酸およびこれらの組み合わせが含まれる。ポリアミドには、例えば、ナイロン６、ナイロン６，６およびこれらの組み合わせが含まれる。ポリオレフィンには、例えば、ポリプロピレン、ポリエチレンおよびこれらの組み合わせが含まれる。ポリアラミドには、例えば、ポリ−ｐ−フェニレンテラフタルアミド（すなわち、Ｋｅｖｌａｒ（登録商標））、ポリ−ｍ−フェニレンテラフタルアミド（すなわち、Ｎｏｍｅｘ（登録商標））およびこれらの組み合わせが含まれる。天然繊維には、例えば、羊毛、綿、亜麻およびこれらのブレンドが含まれる。布は、織布、編物、不織布またはこれらの組み合わせが含まれるが、これらに限定されない任意の種類であってもよい。
【００４１】
膜は、熱可塑性物質、熱硬化性物質またはこれらの組み合わせであってもよい。熱可塑性または熱硬化性物質には、ポリオレフィン、ポリエステル、ポリアミド、ポリウレタン、アクリル、シリコーン、メラミン化合物、ポリ酢酸ビニル、ポリビニルアルコール、ニトリルゴム、イオノマー、ポリ塩化ビニル、ポリ塩化ビニリデン、クロロイソプレンまたはこれらの組み合わせが含まれうる。ポリオレフィンは、ポリエチレン、ポリプロピレン、エチルビニルアセテート、エチルメチルアセテートまたはこれらの組み合わせであってもよい。ポリエチレンには、低密度または高密度ポリエチレンが含まれうる。膜は、約１〜約５００ミクロン、より好ましくは約１〜約２５０ミクロン、さらにより好ましくは約１〜約１００ミクロンの厚さを有することができる。
【００４２】
アルギン酸塩は、多くの褐海藻に広く存在する天然の多糖である。アルギン酸ナトリウムは、大部分の多価カチオンとの接触によりゲルを形成する能力について良く知られている。アルギン酸塩水溶液を、多価カチオン（例えば、カルシウム）を含有する凝固浴の中に押し出すかまたは紡糸して、アルギン酸塩溶液を架橋またはゲル化することによって、アルギン酸塩からアルギン酸繊維を形成することができる。次にアルギン酸繊維を通常加工し、創傷ケア包帯に組み込む。
【００４３】
ヒドロゲルは、一般に、小型分子および水溶液を封入する凝集マトリックスを形成する高分子量の分子から構成される。ヒドロゲルは、水と三次元網状構造ポリマーの２成分系と説明することができる。ヒドロゲルの例には、デンプン、ペクチン、ゼラチン、他の天然ガムおよびポリエチレンオキシドなどの不溶性架橋ポリマーが挙げられる。
【００４４】
ヒドロコロイドは、一般に多くのヒドロキシル基を含有し、高分子電解質でありうる、植物、動物、微生物または合成由来の親水性ポリマーである。ヒドロコロイドは天然に存在するか、または増粘およびゲル化が含まれる粘度および水結合性などの物質の機能性を制御するために添加される。ヒドロコロイドは、創傷滲出液をその重量の数倍吸収する能力があるので、創傷ケア用具として有利に使用される。ヒドロコロイドの例には、カーボワックス、ビニルポリマー（例えば、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドンおよびポリ酢酸ビニル）、セルロース誘導体（例えば、エチルセルロース、メチルセルロースおよびカルボキシメチルセルロース）、ならびに天然ガム（例えば、グアー、アカシアおよびペクチン）が挙げられる。
【００４５】
アゾコール用量反応アッセイ
アゾコールは、ウシ皮膚から得られる市販のアゾ染料標識Ｉ型コラーゲン基質である。特定の酵素の存在下では、レッドアゾ染料は、コラーゲンから遊離し、得られた色変化を測定し、コラーゲン分解活性と相関させることができる。アゾコールアッセイを使用して、アゾ標識コラーゲン基質に対するペプシン、コラゲナーゼ、ヘビ毒メタロプロテアーゼ、ヒト胃液およびヒト慢性創傷液の作用へのポリリン酸塩の阻害効果を決定した。
【００４６】
【表１】
2011512394.tif 000003
【００４７】
方法
０〜１２２ｍｇ／ｍｌの提案した阻害剤を含有する一連の試験溶液を調製した。次に１００μｌのこの試験溶液を、１００μｌの関連する酵素溶液とボルテックスミキサーにより十分に混合した後、１０００μｌの緩衝アゾコール溶液を添加し混合した。次に阻害剤：酵素：アゾコール試料を、温水浴中３７℃で３時間インキュベートし、このインキュベーション時間の間に３０分毎で反転させた。次に試料をインキュベーターから取り出し、氷水の中に入れて冷却し、４０００ｒｐｍで５分間遠心分離した（Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、ａｃｃｕＳｐｉｎ  Ｍｏｄｅｌ  ４００  Ｂｅｎｃｈｔｏｐ  Ｃｅｎｔｒｉｆｕｇｅ）。上澄みの吸光度を、脱イオン水をブランク液として使用して、５４０ｎｍで測定した（Ｌａｂｓｙｓｔｅｍｓ  Ｍｕｌｔｉｓｋａｎ  Ａｓｃｅｎｔ  ３５４、ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｈｏｒｓｈａｍ、Ｗｅｓｔ  Ｓｕｓｓｅｘ、ＵＫ）。酵素活性の阻害率は、阻害剤を含有する試験試料と０μｇ／ｍｌの阻害剤を含有する試料の吸光強度を比較することにより、下記の方程式に従って計算した：
【００４８】
【数１】
2011512394.tif 000004
【００４９】
トリクロロ酢酸（ＴＣＡ）沈殿アッセイ
ＴＣＡアッセイは、Ｍ．Ｌ．Ａｎｓｏｎ（１９３８）．Ｊ  Ｇｅｎｅｒａｌ  Ｐｈｙｓｉｏｌ、２２、７９〜８９に記載された方法に基づいている。基質であるウシヘモグロビンはペプシンにより消化される。次に残った未消化のヘモグロビンをＴＣＡで沈殿させて、消化ヘモグロビンの生成物のみを含有する上澄みを生じる。上澄みにおけるヘモグロビン分解生成物の濃度を、分光光度的に測定し、プロテイナーゼ活性の指標を提示する。ＴＣＡ沈殿アッセイを使用して、ヘモグロビンに対するペプシンの作用へのポリリン酸塩およびトリメタリン酸塩の阻害効果を決定した。
【００５０】
【表２】
2011512394.tif 000005
【００５１】
方法
０〜３０６ｍｇ／ｍｌの提案した阻害剤を含有する一連の試験溶液を調製した。次に１００μｌのこの試験溶液を１００μｌペプシン溶液とボルテックスミキサーにより十分に混合した後、１５００μｌの緩衝ウシヘモグロビン溶液を添加し混合した。次に阻害剤：酵素：ヘモグロビン試料を、温水浴中３７℃で３０分間インキュベートした。次に試料をインキュベーターから取り出し、２．０ｍｌのＴＣＡ溶液と混合し、氷水中に３０分間放置した。次に試料を４０００ｒｐｍで５分間遠心分離した（Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、ａｃｃｕＳｐｉｎ  Ｍｏｄｅｌ  ４００  Ｂｅｎｃｈｔｏｐ  Ｃｅｎｔｒｉｆｕｇｅ）。上澄みの吸光度を、脱イオン水をブランク液として使用して、２８０ｎｍで測定した（Ｌａｂｓｙｓｔｅｍｓ  Ｍｕｌｔｉｓｋａｎ  Ａｓｃｅｎｔ  ３５４、ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｈｏｒｓｈａｍ、Ｗｅｓｔ  Ｓｕｓｓｅｘ、ＵＫ）。ペプシン活性の阻害率は、阻害剤を含有する試験試料と０μｇ／ｍｌの阻害剤を含有する試料の吸光強度を比較することにより、下記の方程式に従って計算した：
【００５２】
【数２】
2011512394.tif 000006
【００５３】
エラスチンコンゴレッドアッセイ
エラスチンコンゴレッドは、発色団のコンゴレッドに含浸されている市販のエラスチン基質である。エラスターゼの存在下では、コンゴレッド染料は、エラスチンから遊離し、得られた色変化を測定し、エラスチン分解活性と相関させることができる。エラスチンコンゴレッドアッセイを使用して、エラスチンコンゴレッド基質に対するエラスターゼへのポリリン酸塩およびトリメタリン酸塩の阻害効果を決定した。
【００５４】
【表３】
2011512394.tif 000007
【００５５】
方法
０〜３０６ｍｇ／ｍｌの提案した阻害剤を含有する一連の試験溶液を調製した。次に１００μｌのこの試験溶液を１００μｌのエラスターゼ溶液とボルテックスミキサーで十分に混合した。次に１０００μｌの緩衝エラスチンコンゴレッド溶液を添加し混合した。次に、阻害剤：酵素：エラスチンコンゴレッド試料を温水浴中３７℃で一晩インキュベートした。次に試料を温水浴から取り出し、氷水の中に３０分間入れて冷却した後、１３０００ｒｐｍで５分間遠心分離（Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、ａｃｃｕＳｐｉｎ  Ｍｏｄｅｌ  ４００  Ｂｅｎｃｈｔｏｐ  Ｃｅｎｔｒｉｆｕｇｅ）した。上澄みの吸光度を、脱イオン水をブランク液として使用して、５４０ｎｍで測定した（Ｌａｂｓｙｓｔｅｍｓ  Ｍｕｌｔｉｓｋａｎ  Ａｓｃｅｎｔ  ３５４、ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｈｏｒｓｈａｍ、Ｗｅｓｔ  Ｓｕｓｓｅｘ、ＵＫ）。エラスターゼ活性の阻害率は、阻害剤を含有する試験試料と０μｇ／ｍｌの阻害剤を含有する試料の吸光強度を比較することにより、下記の方程式に従って計算した：
【００５６】
【数３】
2011512394.tif 000008
【００５７】
ヒアルロニダーゼ用量反応アッセイ
ヒアルロニダーゼ活性アッセイは、ＢｏｎｎｅｒおよびＣａｎｔｅｙ（Ｃｌｉｎ．Ｃｈｉｍ．Ａｃｔａ、１３（１９６６）７４６〜７５２）ならびにＲｅｉｓｓｉｇら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．、２１７（１９５５）９５９〜９６６の方法に基づいている。このアッセイは、ヒアルロン酸ナトリウムがヒアルロニダーゼの存在下で分解して、Ｎ−アセチルグルコサミン（ＮＡＧ）末端基を有する糖類になることを利用したものである。次にＮＡＧをアルカリ四ホウ酸塩と共に加熱して定量して、中間体を形成し、それをｐ−ジメチルアミノベンズアルデヒドと酸性媒質中で反応させて、着色生成物を形成することができる。色変化を測定し、ヒアルロニダーゼの活性と相関させることができる。ヒアルロニダーゼアッセイを使用して、ヒアルロン酸ナトリウム基質に対するヒアルロニダーゼの活性へのポリリン酸塩の阻害効果を決定した。
【００５８】
【表４】
2011512394.tif 000009
【００５９】
０〜６１．２ｍｇ／ｍｌの提案した阻害剤を含有する一連の試験溶液を調製した。次に、１００μｌのこの試験溶液を１００μｌの１ｍｇ／ｍｌヒアルロニダーゼとボルテックスミキサーを使用して十分に混合した後、２００μｌの４ｍｇ／ｍｌ緩衝ヒアルロン酸ナトリウム溶液を添加した。次に、ポリマー：ヒアルロニダーゼ：ＨＡ試験試料を、ボルテックスミキサーを使用して十分に混合し、３７℃で４時間インキュベートした。その後、８０℃で５分間加熱することにより反応を停止させた。インキュベーションの後、６０μｌの四ホウ酸カリウム（０．８Ｍ）を添加し、試料を再び８０℃で５分間インキュベートし、続いて氷で５分間冷却した。冷却した後、２．０ｍｌのＤＭＡＢ溶液を添加し、色を３７℃で２０分間発色させた。次に試料をインキュベーターから取り出し、１５００ｒｐｍ（１８５４×ｇ）で１０分間遠心分離した（Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、ａｃｃｕＳｐｉｎ  Ｍｏｄｅｌ  ４００  Ｂｅｎｃｈｔｏｐ  Ｃｅｎｔｒｉｆｕｇ）。上澄みの吸光度を、脱イオン水をブランク液として使用して、５４０ｎｍで測定した。ヒアルロニダーゼ活性の阻害率は、阻害剤を含有する試験試料と０μｇ／ｍｌの阻害剤を含有する試料の吸光強度を比較することにより、以下の方程式に従って計算した：
【００６０】
【数４】
2011512394.tif 000010
【００６１】
リゾチーム用量反応アッセイ
リゾチーム用量反応アッセイは、リゾチームの存在下、Ｍｉｃｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｌｙｓｏｄｅｉｋｔｉｃｕｓの細胞懸濁液の光学濃度が減少するという知見に基づいている。光学濃度のこの減少速度を測定し、リゾチーム活性と相関させることができる。リゾチームアッセイを使用して、Ｍｉｃｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｌｙｓｏｄｅｉｋｔｉｃｕｓの細胞懸濁基質に対するリゾチームの作用へのポリリン酸ナトリウム（６８％のＰ２Ｏ５）の阻害効果を決定した。
【００６２】
【表５】
2011512394.tif 000011
【００６３】
方法
２．５ｍｌのＭｉｃｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｌｙｓｏｄｅｉｋｔｉｃｕｓ細胞懸濁液をキュベット（ｋａｒｔｅｌｌ使い捨てセミミクロＰＭＭＡ、ＵＶ等級、パス長１０ｍｍ、容量１．５ｍｌ、範囲２８０〜８００ｎｍ、ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  Ｈｏｒｓｈａｍ、Ｗｅｓｔ  Ｓｕｓｓｅｘ、ＵＫ）に添加し、２５℃に維持したサーモスタット制御ＵＶ分光光度計に設置した。次に、０〜６１．２ｍｇ／ｍｌの提案した阻害剤を含有する１００μｌの試験溶液をキュベットに添加し、反転により十分に混合した。次に、阻害剤：基質試料を室温で１時間インキュベートした後、１００μｌのリゾチーム溶液を添加し反転により混合した。阻害剤：基質：リゾチーム試験試料の吸光度を、４５０ｎｍで３秒間の間隔で５分間測定した（Ｕｎｉｃａｍ  ＵＶ  ５００、Ｔｈｅｒｍｏ−Ｓｐｅｃｔｒｏｎｉｃ、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ、ＵＫ）。緩衝液をブランク液として使用した。
【００６４】
リゾチーム活性の阻害は、阻害剤を含有する試験試料と０μｇ／ｍｌの阻害剤を含有する試料の、５分間での光学濃度の低下の最大直線勾配を比較することにより計算した。阻害率は、下記の方程式に従って計算した：
【００６５】
【数５】
2011512394.tif 000012
【００６６】
キモトリプシン用量反応アッセイ
キモトリプシン用量反応アッセイは、キモトルプシンの存在下、基質のＮａ−ベンゾイル−Ｌ−チロシンエチルエステル（ＢＴＥＥ）が分解して、Ｎａ−ベンゾイル−Ｌ−チロシン＋エタノールになるという知見に基づいている。この変換は、２５３ｎｍでの吸光度の増加により分光光度的に測定することができる。次に、吸光度の変化速度を測定し、キモトリプシン活性と相関させることができる。キモトリプシンアッセイを使用して、ＢＴＥＥ基質に対するキモトリプシンの作用へのポリリン酸ナトリウム（６８％のＰ２Ｏ５）の阻害効果を決定した。
【００６７】
【表６】
2011512394.tif 000013
【００６８】
方法
０〜６１．２ｍｇ／ｍｌの提案した阻害剤を含有する１．２８ｍｌの試験溶液を石英キュベットに添加し、２５℃に維持したサーモスタット制御ＵＶ分光光度計に設置した。１．２６ｍｌのＢＴＥＥ溶液および０．０７ｍｌの塩化カルシウム溶液もキュベットに添加し、反転により混合し、２５３ｎｍでの吸光度が一定になるまで平衡にした。次に、０．０９ｍｌのキモトリプシン溶液をキュベットに添加し、反転により直ぐに混合した。阻害剤：基質：キモトリプシン試験試料の吸光度を、２５３ｎｍで３秒間の間隔で５分間測定した（Ｕｎｉｃａｍ  ＵＶ  ５００、Ｔｈｅｒｍｏ  Ｓｐｅｃｔｒｏｎｉｃ、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ、ＵＫ）。緩衝液をブランク液として使用した。
【００６９】
キモトリプシン活性の阻害は、阻害剤を含有する試験試料と０μｇ／ｍｌの阻害剤を含有する試料の、５分間の２５３ｎｍでの吸光度の増加の最大直線勾配を比較することにより計算した。阻害率は、下記の方程式に従って計算した：
【数６】
2011512394.tif 000014
【００７０】
結果
以下の考察は、添付の図面を参照して行う。
【図面の簡単な説明】
【００７１】
【図１】異なるｐＨでのポリリン酸ナトリウム（６８％のＰ２Ｏ５）によるペプシンの阻害。ｐＨ２では、平均ｎ＝２。ｐＨ４および６では、平均ｎ＝３。エラーバーは、明確にするために省略した。
【図２】ｐＨ４でのポリマー鎖長さ（Ｐ２Ｏ５の含有率で定義）の異なるポリリン酸ナトリウムによるペプシンの阻害。平均ｎ＝１。
【図３】ｐＨ４でのポリリン酸カリウム（６０％のＰ２Ｏ５含有量）によるペプシンの阻害。平均ｎ＝１。
【図４】ｐＨ２でのトリメタリン酸ナトリウムによるペプシンの阻害。平均ｎ＝１。
【図５】異なるｐＨでのポリリン酸ナトリウム（６８％のＰ２Ｏ５）によるコラゲナーゼの阻害。平均ｎ＝２。エラーバーは、明確にするために省略した。
【図６】ｐＨ７でのポリマー鎖長さ（Ｐ２Ｏ５の含有率で定義）の異なるポリリン酸ナトリウムによるコラゲナーゼの阻害。平均ｎ＝１。
【図７】ｐＨ７でのポリリン酸カリウム（６０％のＰ２Ｏ５含有量）によるコラゲナーゼの阻害。平均ｎ＝１。
【図８】異なるｐＨでのポリリン酸ナトリウム（６８％のＰ２Ｏ５）によるヒアルロニダーゼの阻害。平均ｎ＝３±ＳＥＭ。
【図９】ｐＨ４．５でのポリマー鎖長さ（Ｐ２Ｏ５の含有率で定義）の異なるポリリン酸ナトリウムによるヒアルロニダーゼの阻害。平均ｎ＝１。
【図１０】ｐＨ７でのポリリン酸カリウム（６０％のＰ２Ｏ５含有量）によるヒアルロニダーゼの阻害。平均ｎ＝１。
【図１１】異なるｐＨでのポリリン酸ナトリウム（６８％のＰ２Ｏ５）によるエラスターゼの阻害。平均ｎ＝３±ＳＥＭ。
【図１２】ｐＨ８でのポリマー鎖長さ（Ｐ２Ｏ５含有率で定義）の異なるポリリン酸ナトリウムによるエラスターゼの阻害。平均（ｎ＝４）である６８％のＰ２Ｏ５以外は、全て平均（ｎ＝１）。
【図１３】ｐＨ８でのポリリン酸カリウム（６０％のＰ２Ｏ５含有量）によるエラスターゼの阻害。平均ｎ＝１。
【図１４】ｐＨ８でのトリメタリン酸ナトリウムによるエラスターゼの阻害。平均（ｎ＝２）±ＳＥＭ。
【図１５】ｐＨ４でのポリリン酸ナトリウム（６８％のＰ２Ｏ５）によるヒト胃液のタンパク質分解活性の阻害。平均ｎ＝１。
【図１６】ｐＨ７．２でのポリリン酸ナトリウム（６８％のＰ２Ｏ５）によるヘビ毒メタロプロテイナーゼの阻害。平均ｎ＝１。
【図１７】ｐＨ７のポリリン酸ナトリウム（６８％のＰ２Ｏ５）によるリゾチームの阻害。平均ｎ＝１。
【図１８】ｐＨ７．８のポリリン酸ナトリウム（６８％のＰ２Ｏ５）によるキモトリプシンの阻害。平均ｎ＝１。
【図１９】ｐＨ７でのポリリン酸ナトリウム（６８％のＰ２Ｏ５）によるヒト慢性創傷のタンパク質分解活性の阻害。平均ｎ＝４±ＳＥＭ。
【００７２】
１．ペプシンの阻害
図１は、ポリリン酸ナトリウム（６８％のＰ２Ｏ５含有量）が濃度依存的にペプシンのタンパク質分解活性を阻害したことを示す。阻害は、広範囲の濃度のポリリン酸塩で生じた。阻害は、ｐＨ依存的でもあり、ｐＨ４で最大であることが見出された。ｐＨ４では、９０％を超える阻害レベルが、４．５９ｍｇ／ｍｌを超える濃度のポリリン酸塩で達成された。
【００７３】
図２は、ポリリン酸ナトリウムのポリマー鎖長さ（Ｐ２Ｏ５の含有量で表される）により、阻害能力が異なることを示す。Ｐ２Ｏ５含有量が大きいポリリン酸ナトリウムほど、より効果的なペプシンの阻害剤であった。
【００７４】
図３は、ポリリン酸塩を使用するペプシンの濃度依存的阻害が、アルカリ金属対イオンの選択により影響を受けなかったことを示す。ポリリン酸カリウムは、ポリリン酸ナトリウムで観察されたものと同じ程度でペプシンを阻害した。
【００７５】
図４は、トリメタリン酸ナトリウムが、広範囲の濃度でペプシンを阻害することもできるが、最大濃度での能力および阻害程度は、ポリリン酸塩で観察されたもの程大きくなかったことを示す。
【００７６】
２．コラゲナーゼの阻害
図５は、ポリリン酸ナトリウム（６８％のＰ２Ｏ５含有量）が濃度依存的にコラゲナーゼのタンパク質分解活性を阻害したことを示す。阻害は、広範囲の濃度のポリリン酸塩で生じた。阻害は、ｐＨ依存的でもあり、ｐＨ７で最大であることが見出された。ｐＨ７では、７０％を超える阻害レベルが、より高い濃度のポリリン酸塩で達成された。
【００７７】
図６は、ポリリン酸ナトリウムのポリマー鎖長さ（Ｐ２Ｏ５含有量で表される）により、阻害能力が異なることを示す。Ｐ２Ｏ５の含有量が大きいポリリン酸ナトリウムほど、より効果的なコラゲナーゼの阻害剤であった。
【００７８】
図７は、ポリリン酸塩を使用するコラゲナーゼの濃度依存的阻害が、アルカリ金属対イオンの選択により比較的影響を受けなかったことを示す。ポリリン酸カリウムは、ポリリン酸ナトリウムで観察されたものと同じ程度でコラゲナーゼを阻害した。
【００７９】
３．ヒアルロニダーゼの阻害
図８は、ポリリン酸ナトリウム（６８％のＰ２Ｏ５含有量）が濃度依存的にヒアルロニダーゼの消化活性を阻害したことを示す。阻害は、広範囲の濃度のポリリン酸塩で生じた。阻害は、ｐＨ依存的でもあり、ｐＨ４．５で最大であることが見出された。ｐＨ４．５では、９０％を超える阻害レベルが、０．６１２ｍｇ／ｍｌを超える濃度のポリリン酸塩で達成された。
【００８０】
図９は、ポリリン酸ナトリウムのポリマー鎖長さ（Ｐ２Ｏ５の含有量で表される）により、阻害能力が異なることを示す。Ｐ２Ｏ５含有量が大きいポリリン酸ナトリウムほど、より効果的なヒアルロニダーゼの阻害剤であった。
【００８１】
図１０は、ポリリン酸塩を使用するヒアルロニダーゼの濃度依存的阻害が、アルカリ金属対イオンの選択により影響を受けなかったことを示す。ポリリン酸カリウムは、ポリリン酸ナトリウムで観察されたものと同じ程度でヒアルロニダーゼを阻害した。
【００８２】
４．エラスターゼの阻害
図１１は、ポリリン酸ナトリウム（６８％のＰ２Ｏ５含有量）が濃度依存的にエラスターゼの消化活性を阻害したことを示す。阻害は、広範囲の濃度のポリリン酸塩で生じた。高濃度のポリリン酸塩では、９０％を超える阻害レベルが達成された。
【００８３】
図１２は、ポリリン酸ナトリウムのポリマー鎖長さ（Ｐ２Ｏ５の含有量で表される）により、阻害能力が異なることを示す。６０〜６８％のＰ２Ｏ５含有量を有するポリリン酸ナトリウムは、同様のレベルの阻害を与えたが、７０％のＰ２Ｏ５を含有するポリリン酸ナトリウムは、高濃度でエラスターゼ活性を１００％阻害することができた。
【００８４】
図１３は、ポリリン酸塩を使用するエラスターゼの濃度依存的阻害が、アルカリ金属対イオンの選択により悪影響を受けなかったことを示す。ポリリン酸カリウムは、ポリリン酸ナトリウムで観察されたものよりも僅かに優れた程度でエラスターゼを阻害した。
【００８５】
図１４は、トリメタリン酸ナトリウムが、広範囲の濃度でエラスターゼを阻害することもできるが、最大濃度での阻害程度は、ポリリン酸塩で観察されたもの程大きくなかったことを示す。
【００８６】
５．他の酵素および酵素を含有するヒト体液の阻害
ポリリン酸ナトリウム（６８％のＰ２Ｏ５）は、前述のものと同じ部類の他の酵素を阻害することも示した。
【００８７】
図１５は、ポリリン酸塩が、ヒト胃液のタンパク質分解活性を濃度依存的に阻害したことを示す。６．１２ｍｇ／ｍｌを超える濃度のポリリン酸塩では、ヒト胃液のタンパク質分解活性のほぼ１００％が阻害された。ヒト胃液は、ペプシン１、３ａ、３ｂ、３ｃおよびガストリシンを含むアスパラギン酸プロテアーゼの混合物を含有する。ヒト胃液の活性の阻害は、ポリリン酸塩がペプシンに加えて他のアスパラギン酸プロテアーゼを阻害できることを示す。
【００８８】
図１６は、ポリリン酸塩が、ヘビ毒メタロプロテイナーゼを濃度依存的に阻害できることを示す。これは、コラゲナーゼに加えて、ポリリン酸塩は他のマトリックスメタロプロテイナーゼを阻害できることを示す。
【００８９】
図１７は、ポリリン酸塩がリゾチームの消化活性を濃度依存的に阻害できることを示す。これは、ヒアルロニダーゼに加えて、ポリリン酸塩がグリコシドヒドロラーゼの部類の他の酵素を阻害できることを示す。
【００９０】
図１８は、ポリリン酸塩がα−キモトリプシンの消化活性を濃度依存的に阻害できることを示す。これは、エラスターゼに加えて、ポリリン酸塩がセリンプロテアーゼの部類の他の酵素を阻害できることを示す。
【００９１】
最後に、図１９は、ポリリン酸塩がヒト慢性創傷から抽出された液体のタンパク質分解活性を濃度依存的に阻害できることを示す。
【図１】
2011512394.tif 000015
【図２】
2011512394.tif 000016
【図３】
2011512394.tif 000017
【図４】
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【図５】
2011512394.tif 000019
【図６】
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【図７】
2011512394.tif 000021
【図８】
2011512394.tif 000022
【図９】
2011512394.tif 000023
【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
2011512394.tif 000028
【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【国際調査報告】
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2011512394.tif 000035
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