(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ＨＥＲ３モジュレーターによる処置に対する疾患の反応性を同定する方法であって、
リン酸化部位特異的抗体を用いて、ＨＥＲ３受容体のリン酸化チロシン残基を検出することによりＨＥＲ３受容体の活性化レベルを決定し、ＨＥＲ３モジュレーターへの曝露の非存在においてＨＥＲ３受容体のリン酸化チロシン残基を検出することにより決定したＨＥＲ３受容体の活性化レベルとの差から、前記反応性を同定すること、
を含む方法。
【請求項２】
前記疾患が過剰増殖疾患、腫瘍疾患または乾癬である請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記腫瘍疾患が、ＮＳＣＬＣ、乳房腫瘍、結腸腫瘍、胃腫瘍、メラノーマ、膵臓腫瘍、及び前立腺癌からなる群から選択される、請求項２に記載の方法。
【請求項４】
ＨＥＲ３受容体においてリン酸化チロシン残基を認識する抗体であるリン酸化部位特異的抗体を使用する請求項１〜３までのいずれか１項に記載の方法。
【請求項５】
前記リン酸化部位特異的抗体が、ＨＥＲ３タンパク質において前記リン酸化チロシン残基Ｙ１２８９またはＹ１２２２のうちの少なくとも一つに対するものであり、該リン酸化部位特異的抗体が、リン酸化部位特異的ＨＥＲ３抗体２１Ｄ３（商標、Ｃｅｌｌ  Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，  ＵＳＡ）または５０Ｃ２（商標、Ｃｅｌｌ  Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，  ＵＳＡ）である、請求項４に記載の方法。
【請求項６】
前記試料が、新鮮な、凍結した、および／または保存した器官もしくは組織試料もしくは生検もしくは吸引物由来の固体組織からなる群から選択される組織試料である、請求項１から５までのいずれか１項に記載の方法。
【請求項７】
リン酸化部位特異的抗体を用いた、ＨＥＲ３モジュレーターにより処置されたＨＥＲ３受容体の活性化レベルをｉｎ ｖｉｔｒｏで検出する方法であって、
リン酸化部位特異的抗体を用いて、ＨＥＲ３受容体のリン酸化チロシン残基を検出することによりＨＥＲ３受容体の活性化レベルを決定し、ＨＥＲ３モジュレーターへの曝露の非存在においてＨＥＲ３受容体のリン酸化チロシン残基を検出することにより決定したＨＥＲ３受容体の活性化レベルとの差から、前記ＨＥＲ３受容体の活性化レベルをｉｎ ｖｉｔｒｏで検出することを含む方法。
【請求項８】
ＨＥＲ３受容体においてリン酸化チロシン残基を認識する抗体であるリン酸化部位特異的抗体を使用する請求項７に記載の方法。
【請求項９】
前記リン酸化部位特異的抗体が、ＨＥＲ３タンパク質において前記リン酸化チロシン残基Ｙ１２８９またはＹ１２２２のうちの少なくとも一つに対するものであり、該リン酸化部位特異的抗体が、リン酸化部位特異的ＨＥＲ３抗体２１Ｄ３（商標、Ｃｅｌｌ  Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，  ＵＳＡ）または５０Ｃ２（商標、Ｃｅｌｌ  Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，  ＵＳＡ）のうちの少なくとも一つである、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
前記試料が組織試料であり、該組織試料が、正常な組織試料である、請求項７から９までのいずれか１項に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、疾患の処置について患者を選択するために、受容体型チロシンキナーゼ（例えばリン酸化ＨＥＲ３）の活性化レベルの決定方法を提供する。また、被験者由来の組織試料（例えば、腫瘍材料または皮膚もしくは毛包等の正常な組織）を利用する、疾患処置における活性物質の生物学的効果および薬力学的効果ならびに／またはその効力の評価方法を提供する。さらに、ＨＥＲ受容体関連疾患の処置方法を開示する。
【０００２】
ヒト上皮細胞増殖因子受容体３（ＨＥＲ３、ＥｒｂＢ３としても公知である）は、受容体型チロシンキナーゼであり、受容体型チロシンキナーゼの上皮細胞増殖因子受容体（ＥＧＦＲ）サブファミリーに属している。受容体型チロシンキナーゼには、ＨＥＲ１（ＥＧＲＦとしても公知である）、ＨＥＲ２、およびＨＥＲ４が含まれる（Ｐｌｏｗｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  Ｕ．Ｓ．Ａ．  ８７（１９９０），  ４９０５−４９０９；Ｋｒａｕｓ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  Ｕ．Ｓ．Ａ．  ８６（１９８９），  ９１９３−９１９７；およびＫｒａｕｓ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  Ｕ．Ｓ．Ａ．  ９０（１９９３），  ２９００−２９０４）。
【０００３】
ＨＥＲ３は、いくつかの型の癌（例えば乳癌、胃腸癌、および膵癌）で過剰発現することが判明している。興味深いことに、ＨＥＲ２／ＨＥＲ３の発現と、非侵襲性段階から侵襲性段階への進行との相互関係が示されている（Ａｌｉｍａｎｄｉ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｏｎｃｏｇｅｎｅ  １０，１８１  ３−１  ８２１；  ｄｅＦａｚｉｏ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｃａｎｃｅｒ  ８７，  ４８７−４９８；  Ｎａｉｄｕ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｒ．  Ｊ．  Ｃａｎｃｅｒ  ７８，  １３８５−１３９０）。
【０００４】
これらのデータは、癌発生におけるＨＥＲ３の役割を指摘し、および癌と、ＨＥＲ３を介するハイパーシグナルおよび／またはシグナル経路を誘導するそのヘテロ二量化パートナーによって特徴づけられる他の悪性腫瘍との治療のためのＨＥＲ３特異的標的治療の大きな可能性を示す（Ｒｅｖｉｅｗｅｄ  ｉｎ  Ｃｉｔｒｉ  ａｎｄ  Ｙａｒｄｅｎ，  Ｎａｔ  Ｒｅｖｉｅｗｓ  Ｍｏｌ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ，  ２００６（７），  ５０５−５１６；  Ｓｈａｗｖｅｒ  ｅｔ  ａｌ，  Ｃａｎｃｅｒ  Ｃｅｌｌ，  ２００２（１），  １１７−１２３；  Ｙａｒｄｅｎ  ａｎｄ  Ｓｌｉｗｋｏｗｓｋｉ，  Ｎａｔ  Ｒｅｖｉｅｗｓ  Ｍｏｌ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ，  ２００１（２），  １２７−１３７）。
【０００５】
ＨＥＲ３関連疾患を処置することができる薬剤および方法は、以前に記述されている。例えば、国際特許公開第０３／０１３６０２号に記述される坑ＨＥＲ３抗体は、促進的な受容体内部移行を誘導し、腫瘍細胞の増殖および遊走を減少させことが報告されている。米国特許第５，９６８，５１１号（国際特許公開第９７／１３５８８５号に対応）では、ＨＥＲ３抗体は、リガンドが誘導するＨＥＲ２／ＨＥＲ３ヘテロ二量体の形成を減少させることがわかった。国際特許公開第００／０７８３４７号は、細胞増殖を停止するまたは抑制する方法を開示し、その方法は、例えば、坑ＨＥＲ２抗体（例えばＨｅｒｃｅｐｔｉｎ）と、坑ＨＥＲ３抗体（例えばＮｅｏｍａｒｋｅｒｓから購入された抗体１０５．５）との組み合わせを投与することによって、ＨＥＲ２／ＨＥＲ３ヘテロ二量体の形成を阻止するまたは減少させることを含む。
【０００６】
癌を含む多数の病態において制御されないシグナル伝達の増大する影響に基づく、医用／医薬品の薬剤開発の原則の目的は、疾患の処置のための個々の治療または標的治療の開発である。そのような特定の治療は、例えば、治療抗体、小分子抑制剤、核酸干渉法、および個々に選択されたまたは適量に分けられた医薬組成物の投与を含み得る。
【０００７】
これらのいわゆる標的特異的治療の多くは、主に単一の標的に影響する。従って、現代の薬剤開発において標的特異的治療に反応する患者を同定することが重大な意味を持つ。
【０００８】
極めて顕著な例は、受容体型チロシンキナーゼＨＥＲ２に対するものである治療抗体Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎである。この特定の抗体は、乳癌（対応するタンパク質の過剰発現を引き起こしている症例の約２０％がＨＥＲ２遺伝子の増幅と付随している腫瘍徴候）の処置用に認可されている。抗体治療から益する２０％の患者と、抗体治療から益を受けない８０％の患者とを識別するために、診断アッセイ、すなわちＨｅｒｃｅｐＴｅｓｔが開発された。
【０００９】
しかし、ＨｅｒｃｅｐＴｅｓｔを含むそのようなアッセイは、標的タンパク質の量を検出するだけであり、細胞シグナルの調節解除およびそれに続く悪性腫瘍を実際に引き起こすのはそのタンパク質の活性であることが多い。例えばＨｅｒｃｅｐｔｉｎが単一の薬剤として使用されるとき、ＨｅｒｃｅｐＴｅｓｔは、症例の約３０％でうまくいく患者の応答を予測するだけである（Ｌｅｙｌａｎｄ−Ｊｏｎｅｓ，  Ｌａｎｃｅｔ  Ｏｎｃｏｌ  （２００２）  Ｍａｒ；３（３）：１３７−４４）。たとえ処置される患者のすべてがＨＥＲ２を過剰発現させていると判断されるとしても、この低予測率は注目され、この型の診断アッセイの著しい限界および治療に対する反応性のより良いバイオマーカーを同定する必要性を示している。
【００１０】
薬物開発の間の重大な意味を持つ別の工程は、治療薬の投与量の選択である。通常、従来の非標的薬物の場合、最大投与可能量の想定が用いられる。しかし、この同じ原則は、標的治療に対して適用されず、代わりに最適な生物学的投与量が好まれる。実際に、投与されるべき最適な投与量の定義は、薬力学的または動態学的なパラメータおよび標的分子に関する有効性の決定によって規定され得る（Ａｌｂａｎｅｌｌ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００２，  Ｊ．  Ｃｌｉｎ．  Ｏｎｃｏｌ．  ２０，  １１０−１２４）。従って、薬力学的パラメータ（例えば、十分な濃度で作用部位への送達を可能にする化合物の十分な溶解性および安定性、化合物が効果的な薬理作用のある物質である機会がないほどあまりにも急速に身体から除去されないような代謝的安定性、または化合物が所望の血漿／血清濃度に達することを可能にする薬力学）を決定するための強固な検査系を有することが望ましい。
【００１１】
標的薬物の開発、承認、および用途の成功は、処置の前および処置の間に、薬物が標的にする特定のタンパク質の活性化状態を決定する開発者または臨床医の能力に、その大部分を依存することが多い。薬力学的相互関係の別の態様は、所与の治療効力および所望（処置）の効果および望ましくない（有害事象）効果に対する用量反応である。所与の新規薬物（−組み合わせ）のリスク便益比を慎重に評価することにより、容認できる投与および治療介入の完了の成功につながる。処置の完了後の潜在的な耐性マーカーについての評価は、さらなる治療に関する決定に影響する薬力学的効果の最終態様である。
【００１２】
しかし臨床ルーチンでは、治療薬についての生物学的効果および薬力学的効果を評価するのは難しい。通常、薬力学的効果は、物質または基質の詳細な造影および放射性標識（例えばＰＥＴ、ＣＴ）を介して測定されることができ、およびその読み取りは観察される副作用および臨床的有効性と比較されためのものである。多くの治療学（標的治療学を含む）の場合、生物学的有効性に対するいわゆる代替マーカー（ＰＤマーカー）は、規定されており、治療中、観察される。しかし、これらのマーカーは、正常な細胞および／または癌性細胞についての治療の直接的な生物学的効果を示さないため、外部（標的特異的でない）経路を介してオフターゲット効果および活性化／非活性化を受けやすいこともある。これらのマーカーの例は、ＣＡ１２５、ＫＩ６７、ＰＴＥＮ、およびβＨＣＧである。望ましいマーカーは、経路特異的であり、治療（標的）介入は、患者内のおよび／または患者間の可変性なしで、容易に利用でき、分析可能である。
【００１３】
特定の場合では、皮膚における上皮細胞増殖因子（ＥＧＦ）の機能的役割および発現、ならびにその同族受容体（ＥＧＦＲ）は、坑ＥＧＦＲ治療の薬理学的副作用（例えば皮膚発疹、脱毛）と関連がある（Ｌａｃｏｕｔｕｒｅ  ｅｔ  ａｌ．  （２００６），  Ｎａｔ．Ｒｅｖ．  Ｃａｎｃｅｒ  ６，  ８０３−８１２）。特に、代替マーカー組織として成熟した皮膚のケラチノサイト由来の試料を用いることで，例えばＥＧＦＲ抑制剤（ＺＤ１８３９）による腫瘍患者の処置を、免疫組織化学方法（Ａｌｂａｎｅｌｌ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００２、上掲）によってＥＧＦＲチロシンリン酸化の抑制を分析することでモニタリングすることができる。
【００１４】
それでもやはり、薬力学的および動態学的なパラメータの決定のために現在適用される方法は、あまり役に立たない。従来の方法は，個々の治療に対して広義でありすぎることが多いのに対して、他の方法（例えばＥＧＦＲの検出）は、標的に限定される。
【００１５】
従って、本発明の根底にある技術的課題は、迅速で定量的で再現性があり、かつ安価なアッセイを提供することであった。それは、現在の臨床検査計測手段と適合し、ＨＥＲ受容体の活性化および／または発現のレベルの決定に適している。
【００１６】
上記の課題の解決は、特許請求の範囲に特徴づけられる実施態様を提供することによって達成される。
【００１７】
本発明により、ＨＥＲモジュレーターに対する、または少なくとも１種類のＨＥＲモジュレーターとさらなる薬剤との組み合わせに対する疾患の感受性または反応性の決定方法を提供する。例えば、ＨＥＲ３モジュレーターによる抑制への腫瘍細胞増殖の感受性がＨＥＲ３受容体活性化（例えばリン酸化）と関連があるとの驚くべき発見に基づき、方法および手順がＨＥＲモジュレーターによる処置に対する被験者の反応性を予測するために考案されている。
【００１８】
本明細書の実施例で提示する結果は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで増殖する腫瘍細胞（例えばＢｘＰＣ３（膵臓癌）、Ａ４３１（上皮癌）、またはＡ５４９（肺癌））がＨＥＲ３を発現させ、基低ＨＥＲ３リン酸化を示すことを実証する。さらなる実験は、検査した腫瘍細胞系の大部分でこれらの最初の発見を確認した。興味深いことに、ＨＥＲ３抑制剤で処置した腫瘍異種移植モデルの検査が示したのは、ＨＥＲ３発現を有する腫瘍細胞系に起因するそれらの腫瘍および増加した基低ＨＥＲ３リン酸化（例えばＴ４７Ｄ（乳癌）、ＢｘＰＣ３（膵癌）、ＨＴ２９（結腸癌）、およびＣａＬｕ−３（ＮＳＣＬＣ））がＨＥＲ３受容体を標的にする治療プロトコルに特に応答することであった。データは、ＨＥＲ受容体活性化（例えばリン酸化）がＨＥＲモジュレーターに対する疾患の反応性のレベルを予め定義する一般の生物学的スイッチであり得ることを示す。従って、ＨＥＲ３等のＨＥＲ受容体の活性化は、ＨＥＲモジュレーターによる処置に対して特に感受性がある障害を示している。
【００１９】
従って、本発明の第１の態様は、疾患のリスクがあるまたは疾患を有する被験者から少なくとも一つの試料を採取することによって、ＨＥＲモジュレーターによる処置に前述の疾患が反応性であるかどうかを決定することと、細胞アッセイで少なくとも１種類のＨＥＲ受容体の発現および／または活性を検査することと、および少なくとも１種類のＨＥＲ受容体の発現および／または活性が検出される場合、疾患が反応性であると同定することとのための方法に関する。
【００２０】
用語「ＨＥＲ受容体」は、ＨＥＲ１タンパク質（例えばヒトＨＥＲ１／ＥＧＲＦ（受入番号Ｓｗｉｓｓ  Ｐｒｏｔ  Ｐ００５３３））、ＨＥＲ２タンパク質（例えばヒトＨＥＲ２（受入番号Ｓｗｉｓｓ  Ｐｒｏｔ  Ｐ０４６２６））、ＨＥＲ３タンパク質（例えばヒトＨＥＲ３（受入番号Ｓｗｉｓｓ  Ｐｒｏｔ  Ｐ２１８６０）、またはＨＥＲ４タンパク質（受入番号Ｓｗｉｓｓ  Ｐｒｏｔ  Ｑ１５５５０３）を意味することを目的としている。好ましくは、ＨＥＲ受容体は、ＨＥＲ３タンパク質であり、より好ましくは、ヒトＨＥＲ３タンパク質である。
【００２１】
別の好ましい態様では、本発明は、ＨＥＲ１、ＨＥＲ２、ＨＥＲ３、またはＨＥＲ４の群から選択されるＨＥＲ受容体に影響を及ぼすモジュレーターの使用に関する。特に、ＨＥＲ３活性に影響を及ぼすモジュレーター（例えばヒトＨＥＲ３）が好ましい。
【００２２】
用語「ＨＥＲモジュレーター」は、核酸レベルまたはタンパク質レベルのいずれかで作用して、ＨＥＲ受容体活性化を直接的または間接的に調節する化合物または薬物を意味することを目的としている。直接的または間接的な調節は、ＨＥＲ受容体活性もしくはＨＥＲ受容体シグナル伝達経路の活性化または抑制を含む。好ましくは、調節は抑制が含まれる。
【００２３】
ＨＥＲ受容体活性のモジュレーターは、転写または遺伝子それ自体のいずれかの核酸レベルで作用することがある。遺伝子レベルで前述のモジュレーターは、例えば遺伝子破壊によって、部分的または完全な遺伝子不活性化を引き起こし得る。転写を減少させることまたは抑制することは、例えばアンチセンス分子（例えばＤＮＡもしくはＲＮＡ分子もしくはＲＮＡ類似体、リポザイム、ＲＮＡ干渉（ｓｉＲＮＡ）もしくはミクロＲＮＡが可能な小分子二本鎖ＲＮＡ）のエフェクター核酸の適用を含み得る。さらに、前駆体ＲＮＡ、ｓｉＲＮＡの分子、または後者をコードするＤＮＡ分子が適することもある。
【００２４】
エフェクター分子は、細胞に直接的に導入されても、または適切な核酸鋳型からの転写によって細胞内で生成されてもよい。エフェクター核酸の生成および使用は、文献で広範に考察され、当業者にとって周知でありかつ利用可能である。
【００２５】
別の実施形態では、ＨＥＲモジュレーターは、ＨＥＲ受容体媒介シグナル伝達を少なくとも部分的に抑制することによってタンパク質レベルで作用し得る。例えば、モジュレーターは、リガントが誘導するＨＥＲ受容体の活性を遮断することも可能である。リガンドとは、ＨＥＲ受容体に結合し、および／またはＨＥＲ受容体を活性化するポリペプチドを意味する。リガンドの好ましい例は、以下の群、
ＡＭＰＲ（アンフィレギュリン）ＮＭ００１６５７
ＢＴＣ（ベータセルリン）ＮＭ００１７２９
ＤＴＲ（ジフテリア毒素受容体（ヘパリン結合上皮細胞増殖因子様増殖因子））ＮＭ００１９４５
ＥＧＦ（上皮ＧＦ、β−ウロガストロン）ＮＭ００１９６３
ＥＲＥＧ（エピュレギュリン）ＮＭ００１４３２．１
ＮＲＧ１（ニューレグリン１）ＮＭ０１３９５７
ＮＲＧ２（ニューレグリン２）ＮＭ０１３９８２
ＮＲＧ３（ニューレグリン３）ＡＬ０９６７０６
ＮＲＧ４（ニューレグリン４）ＮＭ１３８５７３
ＴＧＦＡ（トランスフォーミング増殖因子、α）ＮＭ００３２３６
から選択される。
【００２６】
特に好ましいのは、ニューレグリン１遺伝子によってコードされるニューレグリン１アイソフォームである。
【００２７】
従って、そのようなモジュレーターは、ＨＥＲ受容体のリガンド結合部位またはその一部を占有することによって作用することもあり、それによって、その正常な生物活性が阻止されるまたは減少するように、受容体がその天然リガンドに近づきにくくする。この実施態様では、受容体に結合できるがシグナル伝達を誘導できないリガンド変異タンパク質、またはリガンドに対するものである抗体は、ＨＥＲモジュレーターの例である。抗体の適切な型を、以下に詳細に考察する。
【００２８】
別の態様では、モジュレーターは、ＨＥＲ受容体オリゴマー（例えば、ヘテロオリゴマーまたはホモオリゴマー）のリガンド依存的形成または非依存的形成を妨げる。本明細書でのＨＥＲ受容体ヘテロオリゴマーは、少なくとも２つの異なるＨＥＲ受容体を含む、非共有結合オリゴマーである。ＨＥＲ受容体ホモオリゴマーは、同一のＨＥＲ受容体を少なくとも２つ含む、非共有結合オリゴマーである。そのようなＨＥＲオリゴマーの例としては、ＨＥＲ１／ＨＥＲ１、ＨＥＲ１／ＨＥＲ２、ＨＥＲ１／ＨＥＲ３、ＨＥＲ１／ＨＥＲ４、ＨＥＲ２／ＨＥＲ２、ＨＥＲ２／ＨＥＲ３、ＨＥＲ２／ＨＥＲ４、ＨＥＲ３／ＨＥＲ４、ＨＥＲ４／ＨＥＲ４が挙げられるが、これらに限定されない。さらに、好ましいヘテロオリゴマーは、異なるＨＥＲ受容体（例えばＨＥＲ１、ＨＥＲ３、またはＨＥＲ４）と組み合わせた一つ、二つ、またはそれ以上のＨＥＲ２受容体を含むこともある。他のタンパク質（例えばサイトカイン受容体サブユニット（例えばｇｐ１３０））、または他の受容体型チロシンキナーゼ（例えばＩＧＦ−１Ｒ）も、ヘテロオリゴマーに含まれることもある。
【００２９】
ＨＥＲ受容体媒介シグナル伝達の減少は、膜からの下方制御および／または細胞表面からＨＥＲ分子の少なくとも部分的消滅をもたらすＨＥＲ受容体の分解によって、または実質的に不活性形（すなわち、非安定形と比較すると低シグナル伝達を示す形）で細胞表面上のＨＥＲ分子の安定化によってさらに引き起こされ得る。
【００３０】
あるいは、ＨＥＲ媒介シグナル伝達の減少は、シグナル伝達分子の結合（例えばＰＩ３Ｋ、Ｓｈｃ、もしくはＧｒｂ７のＨＥＲ３への結合、ＧＲＢ２のＨＥＲ２への結合、ＧＲＢ２のＳＨＣへの結合）に影響を及ぼすこと（例えば、低下させるまたは抑制する）によって、またはＡＫＴリン酸化、ＰＹＫ２チロシンリン酸化、またはＥＲＫ２リン酸化を抑制することによっても引き起こされ得る。負の制御因子（例えばＰＴＰまたはプロテアーゼ）も、影響され得る。
【００３１】
別の態様では、ＨＥＲモジュレーターは、ＨＥＲ受容体に対するものである抗体またはそのフラグメントであってもよい。抗体は、モノクローナル抗体またはポリクローナル抗体ならびに組換え抗体（例えば一本鎖抗体またはそのフラグメント）であってもよい。それは、少なくとも一つの抗原結合部位、抗体フラグメント（例えばＦａｂ、Ｆａｂ′、もしくはＦ（ａｂ′）２フラグメント）、または組換えフラグメント（例えばｓｃＦｖフラグメント）、およびヒト化抗体もしくはヒト抗体を含有する。治療目的で、特にそれを必要とする候補者の処置のために、キメラ抗体、ヒト化抗体、もしくはヒト抗体の適用が特に好ましい。
【００３２】
本発明の好ましい実施形態では、坑ＨＥＲ３抗体は、抗体１０５．５（Ｃｈｅｎ  ｅｔ  ａｌ，  ＪＢＣ  １９９６，  ２７１（３）７６２０−９）、ＳＧＰ−１（Ｒａｊｋｕｍａｒ  ｅｔ  ａｌ，  Ｔｈｅ  Ｂｒｅａｓｔ  １９９５，  ４  ８４−９１）、Ｈ３  ９０．６（Ｃｈｅｎ  ｅｔ  ａｌ，  ＪＢＣ  １９９６，  ２７１（３）７６２０−９）、１Ｂ４Ｃ３および２Ｄ１Ｄ１２（国際出願ＰＣＴ／ＥＰ０２／０８９３８号）、またはＵＳ６０／７５５，０２２号に開示されるヒト坑ＨＥＲ３抗体のうちの一つからなる群から選択される。坑ＨＥＲ２抗体は、トラスツズマブ、ペルツズマブ、Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ−ゲルダナマイシン、２１３−ｂｉ−Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ−α抱合体、Ｈｅｒｃｅｐｔｉｎ−ＤＭ１からなる群から選択され、および坑ＨＥＲ１抗体は、パニツムマブ、セツキシマブ、マツズマブ、Ｅｒｂｉｔｕｘ−パクリタキセル抱合体、Ｅｒｂｉｔｕｘ−ＭＭＣ（マイトマイシンＣ）、およびＬＡ２２−ＭＭＣからなる群から選択される。
【００３３】
本発明の方法に関してモジュレーターの別の例は、ＨＥＲファミリーメンバーに結合する抗体様結合活性を有する足場タンパク質である。本発明の脈絡の中で、本明細書で用いるように用語「足場タンパク質」は、そこでアミノ酸の挿入、置換、または欠失が高度に容認できる露出した表面積を有するポリペプチドまたはタンパク質を意味する。本発明に従って用いることができる足場タンパク質の例は、黄色ブドウ球菌由来のタンパク質Ａ、オオモンシロチョウ由来のビリン結合タンパク質もしくは他のリポカリン、アンキリンリピートタンパク質、およびヒトフィブロネクチン（Ｂｉｎｚ  ａｎｄ  Ｐｌｕｅｃｋｔｈｕｎ，  （２００５）  Ｃｕｒｒ  Ｏｐｉｎ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ，１６，  ４５９−６９に概説される）がある。足場タンパク質のエンジニアリングは、安定に折り畳まれたタンパク質の構造骨組上にまたは骨組内に親和性機能を移植するまたは組み込むことが考えられ得る。親和性機能とは、本発明によるタンパク質結合親和性を意味する。足場は、結合特異性を与えるアミノ酸配列から構造的に分離可能である。通常、そのような人工的親和性試薬の開発に適していると思われるタンパク質は、合理的な（すなわち最も一般的な）コンビナトリアルタンパク質エンジニアリング技法（例えば、ＨＥＲファミリーメンバー、精製タンパク質もしくは細胞表面に示されるタンパク質のいずれかに対するパニング、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで示される人工足場ライブラリーの結合剤のための当技術分野で公知の技術）によって得られることが可能である（Ｂｉｎｚ  ａｎｄ  Ｐｌｕｃｋｔｈｕｎ，２００５，上掲）。さらに、抗体様結合活性を有する足場タンパク質は、足場ドメインを含有するアクセプターポリペプチドに由来することが可能である。これは、アクセプターポリペプチドを含有する足場ドメイン上にドナーポリペプチドの結合特異性を与えるために、ドナーポリペプチドの結合ドメインと接ぎ合わすことができる。挿入は、当業者に周知の種々の方法（例えばポリペプチド合成、コードするアミノ酸の核酸合成を含む）によって、ならびに当業者に周知の組換え方法の種々の形態によって達成できる。
【００３４】
タンパク質レベルでＨＥＲ活性を減少させるまたは抑制することは、低分子量抑制剤の適用によっても達成され得る。低分子量抑制剤の例としては、有機化合物、有機金属化合物、有機および有機金属化合物の塩類、糖類、アミノ酸、およびヌクレオチドが挙げられ得る。低分子量抑制剤としては、それらの分子量が好ましくは６００を超えない、より好ましくは４５０を超えない以外にその他の点では生物分子と考えられる分子が、さらに挙げられる。従って、低分子量抑制剤は、また、脂質、オリゴ糖類、オリゴペプチド、およびオリゴヌクレオチドならびにそれらの誘導体であってもよい。これらの分子は、典型的に、６００を超えない分子量を有するため、単に低分子量抑制剤と称される。この用語は、特定の分子量に限定されると解釈してはならない。低分子量抑制剤には、天然化合物ならびに合成化合物が含まれる。
【００３５】
一実施態様では、ＨＥＲモジュレーターは、細胞増殖を抑制する低分子量抑制剤である。別の実施態様では、ＨＥＲモジュレーターは、ＨＥＲ媒介シグナル伝達を少なくとも部分的に抑制する低分子量抑制剤である。ＨＥＲ受容体に向けられる種々の低分子量抑制剤は、記述されている。例えば、本発明の一実施態様では、低分子量抑制剤は、ゲフィチニブ、エルロチニブ、ラパチニブ、ＢＩＢＷ２９９２、ＡＶ４１２を含む群のうちの一つである。別の実施態様では、低分子量抑制剤は、間接的ＨＥＲモジュレーター（例えばカハラリドＦ（Ｊａｎｍａａｔ  ｅｔ  ａｌ，  ２００５））またはエストロゲン受容体抑制剤（例えばタモキシフェン）からなる群に属する。
【００３６】
本発明は、また、ＨＥＲモジュレーターの組み合わせ（例えば、同一の受容体（例えばＨＥＲ３）に対して向けられるＨＥＲモジュレーター、または異なるＨＥＲ受容体間（例えばＨＥＲ３およびＨＥＲ１、ＨＥＲ３およびＨＥＲ２、ならびにＨＥＲ３およびＨＥＲ４）対して向けられるＨＥＲモジュレーター）を包含する。例えば、抗体の組み合わせを用いてもよい。
【００３７】
本発明は、さらに、ＨＥＲ受容体の少なくとも１種類のモジュレーターおよび／または以下に詳細に記述するさらなる薬剤の投与に対する障害の反応性を決定する方法に関する。
【００３８】
有効成分（例えばＨＥＲモジュレーター）は、通常、医薬組成物として投与される。医薬組成物は、固形、液体、またはガス状であり得、とりわけ、粉末、錠剤、溶液、またはエアロゾルの形状であってもよい。前述の組成物は、少なくとも１種類（例えば、２種類、３種類、４種類、または５種類）の活性化合物を含むこともある。
【００３９】
医薬組成物は、以下に述べるような疾患の処置に有用である。好ましい実施態様では、前述の疾患は、過剰増殖疾患、炎症疾患、または神経変性疾患である。過剰増殖疾患は、以下、ＨＥＲ受容体発現、過剰発現および／または活性化に付随する乾癬、または乳房、肺、結腸、腎臓、リンパ腫、皮膚、卵巣、前立腺、膵臓、食道、食道、胃、膀胱、子宮頚部、肝臓、甲状腺の癌、軟部組織肉腫、メラノーマ、または他の過剰形成疾患または腫瘍性疾患を含み得るがこれらに限定されない。
【００４０】
上記に示したように、医薬組成物は、さらに少なくとも１種類の活性薬剤を含み得る。本発明によって用いることのできる付加的な活性薬剤の例は、抗体、または他の受容体タンパク質キナーゼ（例えばＩＧＦ−１Ｒ）、またはｃ−Ｍｅｔ、受容体リガンド（例えば血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ））、細胞傷害性薬物もしくは坑悪性腫瘍薬（例えばドキソルビシン）、白金化合物（例えばシスプラチンもしくはカルボプラチン）、サイトカイン、アンチセンス分子、アプタマー、またはｓｉＲＮＡ分子からなる低分子量抑制剤がある。現在、数多くの坑悪性腫瘍薬が当技術分野で公知である。細胞傷害性薬物または坑悪性腫瘍薬は、抗体または免疫調節タンパク質を含むがこれらに限定されない治療用タンパク質の群から選択される場合もあれば、有糸分裂抑制剤、キナーゼ抑制剤、アルキル化剤、代謝拮抗薬、インターカレート抗生物質、成長因子抑制剤、細胞周期抑制剤、酵素、トポイソメラーゼ抑制剤、ヒストン脱アセチル化酵素抑制剤、坑生存剤、生物学的応答調節物質、坑ホルモン剤（例えば坑アンドロゲン剤）、および血管新生抑制剤からなる小分子抑制剤または化学療法薬の群から選択される場合もある。坑悪性腫瘍薬が放射線照射であるとき、処置は、内部線源（近接照射療法（ＢＴ））または外部線源（外照射療法（ＥＢＲＴ））のいずれかによって達成されることができる。
【００４１】
本発明で用いるとき、用語「疾患」は、医療から恩恵を受ける、または異常なＨＥＲ受容体発現、活性化および／またはシグナル伝達に付随するいかなる状態を意味する。これは、問題になっている疾患の候補者を病気にさせるそれらの病的状態を含む慢性疾患および急性疾患または疾患を含む。本発明に従って処置すべき好ましい疾患は、過剰増殖疾患である。上述のように過剰増殖疾患は、いかなる腫瘍症（すなわち、組織のいかな異常および／または無制御の新規増殖）を含む。本明細書で用いるように用語「組織の無制御の新規増殖」は、機能不全および／または成長調節の損失に依存し得る。過剰増殖疾患としては、さらに、腫瘍疾患および／または癌（例えば転移性癌または浸潤性癌）が挙げられる。本発明の方法についての特に好ましい実施態様では、前述の過剰増殖疾患は、脳、中枢神経系、軟部組織肉腫、血液悪性腫瘍、口腔、頭部および頚部、乳房、肺、結腸、胃、腎臓、リンパ腫、皮膚、卵巣、前立腺、膵臓、食道、膀胱、子宮頚部、肝臓、甲状腺癌、メラノーマ、原因不明の癌、またはＨＥＲ受容体発現、過剰発現、および／または活性化（例えば過剰リン酸化）に付随する他の過剰形成疾患もしくは腫瘍性疾患におけるものがある。
【００４２】
ＨＥＲ受容体の発現または過剰発現に付随する疾患は、それらの細胞表面上にＨＥＲ受容体タンパク質および／またはＨＥＲ受容体に結合しているリガンドを含む細胞による疾患である。例えば、ＨＥＲファミリーメンバーを「発現する」疾患は、同一組織型の正常な細胞と比較すると、その細胞表面に著しく高いレベルのＨＥＲ受容体（例えばＨＥＲ３）を有するものである。そのような発現は、遺伝子増幅、または転写もしくは翻訳の増加に起因することもある。ＨＥＲ受容体発現は、診断アッセイまたは予後アッセイで、細胞表面上に存在するＨＥＲタンパク質のレベルを評価する（例えば免疫組織化学（ＩＨＣ）を介して）ことによって決定され得る。あるいは（もしくはそのうえ）、細胞中のＨＥＲをコードする核酸のレベルは、例えば蛍光インサイツハイブルダイゼーション法（ＦＩＳＨ、１９９８年１０月公開の国際特許公開第９８／４５４７９号を参照されたい）、Ｓｏｕｔｈｅｒｎブロット法、またはポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）法（例えばリアルタイム定量ＰＣＲ（ＲＴ−ＰＣＲ））を介して測定することができる。ＨＥＲリガンドの発現は、種々の診断アッセイ（例えばＤＮＡアレイ、ノーザンブロット法、ＦＩＳＨ、Ｓｏｕｔｈｅｒｎブロット法、ＰＣＲ、または上述のアッセイに基づくタンパク質）によって患者におけるリガンド（もしくはそれをコードする核酸）のレベルを評価することによって診断的に決定され得る。さらに、本発明を実行するときに、種々のＮ末端ＨＥＲ３アイソフォームまたは脱落した受容体ドメインの血清濃度の存在を評価することも可能である。
【００４３】
上記のアッセイを除いて、熟練した開業医にとって種々の他のアッセイが利用できる。例えば、患者の体内の細胞を、検出可能な標識（例えば放射性同位元素）で任意に標識されている抗体に曝すことが可能である。次いで、患者内でその抗体の細胞への結合は、例えば放射活性を外部スキャニングによって、または前回その抗体に曝された患者から採取した生検を分析することによって評価されることができる。
【００４４】
本発明のさらなる態様では、疾患がＨＥＲ活性化に付随することもある。ＨＥＲファミリーメンバーの活性化は、通常、ＨＥＲオリゴマーの形成、それに続く内因性受容体キナーゼ活性の活性化、細胞内二次メッセンジャー分子の受容体への結合および／またはＨＥＲ受容体および／または二次メッセンジャー分子の調節（例えばチロシンリン酸化）を含み得る。それによって特定の生物学的応答（例えば細胞増殖、細胞遊走、もしくは坑アポトーシスとして）をもたらす。
【００４５】
本発明の別の態様は、ＨＥＲモジュレーターへのＨＥＲ受容体媒介シグナル伝達に付随する疾患または状態の感受性を、任意にさらなる薬剤との組み合わせで、決定するおよび／または予測する方法に関する。該方法は、試料のＨＥＲ受容体の発現および／または活性を検出することによってその試料を分析することを含む。好ましくは、該方法は、ＨＥＲ３受容体の発現および／または活性を検出することを含む。より好ましくは、該方法は、活性（例えばＨＥＲ３受容体のリン酸化の程度）を検出することを含む。
【００４６】
例えば、本発明により、該方法を用いて、細胞内のＨＥＲ受容体の検出、上述のように疾患を患う被験者におけるＨＥＲ受容体濃度の決定、または被験者の前述の疾患の病期分類を行い得る。検査中の被験者における疾患の進行を病期分類するために、または治療過程に対する被験者の応答を特徴づけるために、試料中に存在するＨＥＲ受容体の量、および／またはその活性化レベルを、被験者から採取した組織試料で決定する。そのように同定された量は、診断された被験者の種々の集団で同定された進行の段階または治療の段階と関連し、それによって検査中の被験者の疾患病期の決定を提供する。疾患組織内に存在するＨＥＲ受容体の量および／または活性は、ＨＥＲ受容体および／または他のシグナル伝達抗体を用いて、免疫組織化学、ＥＬＩＳＡ、またはリン酸化部位特異的抗体を含む抗体アレイによって評価され得る。他の適切な方法としては、ビーズに基づく技術（例えばＬｕｍｉｎｅｘビーズアッセイ）およびプロテオミクスアプローチ（２Ｄゲル、ＭＳ解析等）が挙げられ得る。可能性のあるホスファターゼ抑制剤の錠剤の場合、方法論的な必要条件（例えばホスファターゼ抑制剤（オルトバナジン酸、Ｓｕｒａｍｉｎｅ、Ｈ２Ｏ２、または特異的抑制剤））による細胞製剤は、リン酸化特異的抗原／エピトープの定量化の一部として予測され得る。
【００４７】
診断目的および本発明の部分を形成し得る他のパラメータは、オリゴマー形成状態ならびにＨＥＲ受容体のオリゴマー形成のパートナーである。それらのパラメータを決定するタンパク質分析方法は、当技術分野では周知であり、特にウエスタンブロットおよび免疫沈降技術、ＦＡＣＳ解析、化学架橋、生物発光共鳴エネルギー移動（ＢＲＥＴ）、蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）（例えばＰｒｉｃｅ  ｅｔ  ａｌ，  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，  ２１８：２５５−２６８（２００２）、またはｅＴａｇ技術（国際特許公開第０５／０３７０７号、国際特許公開第０４／０９１３８４号、国際特許公開第０４／０１１９００号））がある。
【００４８】
キナーゼ活性は、ともに免疫沈降した抗体による細胞可溶化物中のキナーゼを捕獲することによって測定されることができ、次いで３２Ｐ−γ−ＴＰの存在下でキナーゼ活性反応にかけられる。キナーゼ活性反応中のキナーゼの活性は、ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）−ポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＰＡＧＥ）、およびオートラジオグラフィーによって分析される。あるいは、ｉｎ  ｖｉｔｒｏキナーゼアッセイは、非放射性検出方法（例えばＣＳＴキナーゼアッセイ）を用いて行われることができ、またはＨＥＲ受容体（例えばＨＥＲ３）のための基質として役立ち得る合成ペプチドは、ＨＥＲキナーゼ活性を推定するためにアレイ上にスポットされることができる。
【００４９】
本発明の別の態様では、ＨＥＲ受容体の活性化レベルは、ＨＥＲ受容体媒介シグナル伝達に関与する二次メッセンジャー分子の活性化状態と関連する。従って、本発明の一実施態様は、ＨＥＲモジュレーターによる処置に対する疾患の反応性を同定する方法に言及し、該方法は、前述の疾患のリスクがあるまたは疾患を有する被験者から少なくとも一つの試料を採取することと、細胞アッセイにおいてＨＥＲ受容体媒介シグナル伝達に関与する少なくとも１種類の分子の発現および／または活性を調べることと、ＨＥＲ受容体媒介シグナル伝達に関与する少なくとも１種類の分子の発現および／または活性が検出される場合、疾患が反応性であると同定することとによる。好ましくは、任意に他のＨＥＲ受容体との組み合わせで、ＨＥＲ３の発現および／または活性が調べられる。
【００５０】
「シグナル経路」または「シグナル伝達」は、一連の分子現象をいい、通常、細胞表面受容体と細胞外リガンドとの相互作用で、または細胞内分子が細胞表面受容体（例えばＨＥＲ受容体）のリン酸化部位に結合することで開始される。それにより細胞の核内で遺伝子発現の調節をもたらす一連の分子相互作用が誘発される。用語「細胞内分子」、「二次メッセンジャー分子」、「ＨＥＲ受容体媒介シグナル伝達に関与する分子」、または「ＨＥＲ受容体の基質」を、本明細書では互換的に用い、Ｃｉｔｒｉ  ａｎｄ  Ｙａｒｄｅｎ，  Ｎａｔ  Ｒｅｖｉｅｗｓ  Ｍｏｌ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ，  ２００６（７），  ５０５−５１６；  Ｓｈａｗｖｅｒ  ｅｔ  ａｌ，  Ｃａｎｃｅｒ  Ｃｅｌｌ，  ２００２（１），  １１７−１２３；  Ｙａｒｄｅｎ  ａｎｄ  Ｓｌｉｗｋｏｗｓｋｉ，  Ｎａｔ  Ｒｅｖｉｅｗｓ  Ｍｏｌ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ，  ２００１（２），  １２７−１３７に概説される例に関して、ＨＥＲ媒介シグナル経路に関与する分子をいう。ＨＥＲ受容体媒介シグナル経路の一部であり得る代表的な分子としては、ＰＩ３Ｋタンパク質、ＡＫＴタンパク質、Ｇｒｂ２タンパク質、Ｇｒｂ７タンパク質、Ｓｈｃタンパク質、Ｇａｂ−１タンパク質、Ｓｏｓタンパク質、Ｓｒｃタンパク質、Ｃｂ１タンパク質、ＰＬＣｙタンパク質、Ｓｈｐ２タンパク質、ＧＡＰタンパク質、Ｖａｖタンパク質、Ｎｃｋタンパク質、およびＣｒｋタンパク質が挙げられるがこれらに限定されない。
【００５１】
本発明の好ましい実施態様では、様々なＨＥＲ受容体またはそれらの基質のうちの一つのリン酸化状態は、その受容体の発現および活性化の測定によって評価できる。当技術分野で周知のように、ＨＥＲ受容体のリン酸化は、その受容体が活性化されており、かつ下流シグナルを伝達する機構であることを示す。
【００５２】
ＨＥＲ受容体中の一つ以上のチロシン残基または一つ以上のその基質のリン酸化は、種々のチロシンリン酸化アッセイを用いて分析できる。例えば、様々なＨＥＲ受容体またはそれらの基質は、ＨＥＲ受容体およびそれらの基質を発現する細胞の可溶化液由来の特定の抗体とともに免疫沈降させることが可能であり、次いでホスホチロシンモノクローナル抗体（任意に検出可能な標識との抱合体である）を用いて、チロシンリン酸活性をアッセイさせる。好ましい実施態様では、様々なＨＥＲ受容体およびそれらの基質のチロシンリン酸化は、リン酸化部位特異的抗体を用いることで検出される。特定の実施態様では、前述のリン酸化部位特異的抗体は、リン酸化部位特異的ＨＥＲ３抗体２１Ｄ３（Ｙ１２８９，  Ｃｅｌｌ  Ｓｉｇｎａｌｌｉｎｇ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，  ＵＳＡ）および５０Ｃ２（Ｙ１２２２，  Ｃｅｌｌ  Ｓｉｇｎａｌｌｉｎｇ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，  ＵＳＡ）ならびに本明細書で網羅される所与のタンパク質においてすべて関連するホスホチロシンを有するｐＥＧＦＲ、ｐＨＥＲ２、ｐＨＥＲ４、ｐＩＧＦ−１Ｒ、ｐＡｋｔ、ｐＥｒｋ、ｐＢａｄ、ｐｐ７０−Ｓ６Ｋ、ｐＧＳＫ、ｐ−ｓｒｃ、ｐＰｙｋ２を含む群から選択される。
【００５３】
通常、用語「リン酸化部位特異的抗体」は、ＨＥＲ受容体内および／またはＨＥＲ媒介シグナル伝達に関連する二次メッセンジャー分子内のリン酸化エピトープに結合するポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体のいずれかを表すことを意図されている。例えば、リン酸化エピトープは、少なくとも一つのリン酸化セリン残基を含み得る。本発明の好ましい態様では、リン酸化エピトープは少なくとも一つのリン酸化チロシン残基を含み得る。本発明の特に好ましい実施態様では、リン酸化チロシン残基は、ＨＥＲ３タンパク質内のＹ１０５４、Ｙ１１９７、Ｙ１１９９、Ｙ１２２２、Ｙ１２２４、Ｙ１２６０、Ｙ１２６２、Ｙ１２７６、Ｙ１２８９、およびＹ１３２８（Ｋｒａｕｓ  ｅｔ  ａｌ，  ＰＮＡＳ  １９８９（８６）９１９３−９１９７による番号付け）からなる群から選択される。この用語は、また、リン酸化部位特異的組換え抗体（例えば少なくとも一つの抗原結合部位を含有する一本鎖抗体もしくはそのフラグメント）、抗体フラグメント（例えばＦａｂ、Ｆａｂ′、もしくはＦ（ａｂ′）２のフラグメント）または組換えフラグメント（例えばｓｃＦｖフラグメント）、ならびにＨＥＲ受容体内のリン酸化エピトープおよび／またはＨＥＲ媒介シグナル伝達に関連する分子に対するものであるヒト化抗体もしくはヒト抗体を包含する。
【００５４】
リン酸化部位特異的ポリクローナル抗体は、当技術分野で周知の方法によって得られ得る。例えば、抗体を産生することが知られている任意の動物を、リン酸化ＨＥＲ受容体ポリペプチドで免疫することができる。血清を含有する抗体は、免疫した動物から分離されて、例えばＥＬＩＡもしくはＦＡＣＳの方法を用いて、所望の特異性を有する抗体の存在を求めてスクリーニングする。
【００５５】
ハイブリドーマ方法によって生成さるモノクローナル抗体の生成方法は、最初にＫｏｅｈｌｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｎａｔｕｒｅ，  ２５６：４９５（１９７５）に記述されている。モノクローナル抗体は、組換えＤＮＡ方法（例えば米国特許第４，８１６，５６７号を参照されたい）によっても生成されることが可能であり、または例えば、Ｃｌａｃｋｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，  ３５２：６２４−６２８（１９９１）およびＭａｒｋｓ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  Ｍｏｌ．  Ｂｉｏｌ．，  ２２２：５８１−５９７（１９９１）に記述される技術を用いて、ファージ抗体ライブラリーから分離され得る。
【００５６】
抗体のヒト化型は、当技術分野で公知の方法（例えばキメラ化またはＣＤＲ移植法）によって生成され得る。本発明は、また、上述のモノクローナル抗体またはその結合フラグメントを産生するハイブリドーマまたは組換え細胞系に関する。
【００５７】
承認されている動物モデルまたはヒトの臨床試験において無処置またはプラセボでの処置と比較すると、処置に応答する疾患は、ＨＥＲモジュレーター処置に応答して統計的に有意な改善を示す。用語「処置する」または「処置」は、治療的処置および予防対策もしくは再発防止の両方をいい、その目的は望ましくない生理学的変化または障害（例えば過剰増殖疾患（例えば癌）の発生）を抑制するまたは衰えさせる（減少させる）ことである。本発明の目的のために、有益なまたは所望の臨床結果は、検出可能かそれとも検出不可能にせよ、症状の軽減、疾患の程度,の減弱、疾患状態の安定化（すなわち悪化しない）、疾患の進行の遅延または遅くすること、疾患状態の改善もしくは一時的緩和、および寛解（部分的かそれとも完全によせ）挙げられるが、これらに限定されない。「処置」は、処置を受けない場合、予想される生存と比較すると、生存を延ばすことも意味する。処置を必要とする被験者は、その状態もしくは障害をすでに有する被験者、ならびにその状態もしくは障害を起こしやすい被験者、またはその状態もしくは障害を予防すべき被験者が挙げられる。
【００５８】
本発明は、それを必要とする被験者を処置する方法を提供し、該方法は、前述の被験者におけるＨＥＲ受容体の発現および／または活性化を決定することと、ＨＥＲ受容体の発現および／または活性化が決定された被験者に、治療有効量のＨＥＲモジュレーターおよび任意に少なくとも１種類のさらなるＨＥＲ薬剤を投与することとを含む。好ましくは、ＨＥＲ受容体の活性化が決定される。より好ましくは、ＨＥＲ受容体はＨＥＲ３である。
【００５９】
ＨＥＲモジュレーターの型、処置されるべき状態の型および重症度に依存して、約０．０１〜１００００ｍｇのＨＥＲモジュレーターがそれを必要とする患者に、例えば単回投与もしくは複数回に分けた投与によって、または持続注入によって投与され得る。典型的な１日投与量は、上述した諸因子に応じて、約０．００１ｍｇ／ｋｇから約１０００ｍｇ／ｋｇまたはそれ以上にわたることもある。処置すべき状態に応じて、数日またはそれ以上にわたる反復投与の場合、疾患症状の所望の抑制が現れるまで処置が持続される。
【００６０】
投与される少なくとも１種類の坑悪性腫瘍薬の用量は、種々の因子に依存する。例えば、これらの因子は、薬剤の性質、腫瘍型、または投与経路である。本発明はいかなる用量にも限定されないことを強調されるべきである。
【００６１】
さらに、本発明は、ＨＥＲモジュレーターまたはＨＥＲモジュレーターおよび／もしくは少なくとも１種類のさらなる薬剤を含む医薬組成物の治療効力を評価する、付加的な方法および手順を提供する。
【００６２】
ＨＥＲ受容体および／または関連する二次メッセンジャー分子の活性化レベルを定量化するために、ＨＥＲ受容体および／またはＨＥＲ受容体媒介シグナル経路を標的にするモジュレーターの薬力学に関する決定は、病変組織（例えば腫瘍組織）の試料のリン酸化部位特異的抗体による免疫組織化学的染色を含み得る。
【００６３】
意外にも、関連する薬力学的パラメータ（例えばＨＥＲ３受容体の活性化レベル）は、一次試料（すなわち、非病変の正常な組織の試料）でも決定され得ることが判明した。これは、現在の臨床検査室の計測手段に適合する、迅速で定量的、再現可能で、かつ安価なアッセイの確立を可能にする。一次ヒト組織において、特にその活性化の形でＨＥＲ３の存在は、例えば免疫組織化学によって決定できる。
【００６４】
その結果を本明細書で以下の実施例に提示する。それらは、ヒト腫瘍細胞がＨＥＲ３を発現することを示す。意外にも、極めて強力なＨＥＲ３発現および／または活性も、毛包で検出された。完全なＨＥＲ３の発現が主に細胞質に位置していたのに対して、リン酸化（すなわち、活性化ＨＥＲ３）は、ほとんどもっぱら細胞表面膜に結合していた。
【００６５】
この発見は、そのような組織内で活性化（例えばリン酸化）ＨＥＲ３の存在は、被験者に投与されるとき、ＨＥＲモジュレーターの有効性の簡単かつ迅速な決定のために用いられ得ることを支持した。例えば、ＨＥＲ３受容体活性化の少なくとも部分的減少は、前述のモジュレーターの治療有効量を示す。逆に、ＨＥＲ３モジュレーターによる処置後、ＨＥＲ３受容体の活性において差がないことは、無効な治療処置と相関する。従って、これらの発見は、治療に向けられたＨＥＲ３受容体をモニタリングする新規で効率的な方法の基礎の形成を可能にする。さらに、毛包の生検は、処置に向けられたＨＥＲ３モジュレーターをモニタリングするための薬力学的マーカーとして役立つ。
【００６６】
従って、本発明は、ＨＥＲ受容体（特にＨＥＲ３受容体関連疾患）の処置の治療効力を、ＨＥＲモジュレーターおよび／またはさらなる活性剤を用いて決定する方法を提供し、該方法は、被験者をＨＥＲモジュレーターおよび／またはさらなる活性剤に曝すことと、被験者から少なくとも一つの試料を採取することと、前述の試料におけるＨＥＲ受容体の活性化レベルを検出することとを含む。ＨＥＲモジュレーターおよび／またはさらなる活性剤への曝露の非存在と比較すると、ＨＥＲモジュレーターおよび／またはさらなる活性剤への曝露の結果、ＨＥＲの活性化レベルにおける差が観察される。
【００６７】
本発明によって包含するように、用語「試料」は、好ましくは、ＨＥＲファミリーメンバーの活性化型の検出またはＨＥＲ受容体発現の定量化のための組織試料の使用を意味する。ＨＥＲ受容体は、好ましくはＨＥＲ３である。活性化レベルは、好ましくはリン酸化の程度である。
【００６８】
用語「組織試料」は、被験者または患者の組織から得られる細胞の収集物（好ましくはタンパク質物質を用いて核形成した細胞を含有する）を含むことを意図されている。４種類の主なヒト組織は、（１）上皮、（２）血管、骨、および軟骨を含む結合組織、（３）筋組織、および（４）神経組織である。組織試料源は、新鮮な、凍結した、および／または保存した器官もしくは組織試料もしくは生検もしくは吸引物由来の固形組織を含む群から選択され得る。本発明は、また、血液またはいかなる血液成分、体液（例えば脳脊髄液、羊水、腹水、または間質液）由来の試料、および被験者の妊娠または発育における任意の時期に由来の細胞の使用を含む。組織試料は、また初代もしくは培養細胞または細胞系であってもよい。組織試料は、天然の組織と自然に混合していない化合物（例えば保存料、坑凝固薬、緩衝液、固定液、栄養剤、抗生物質等）を含有し得る。
【００６９】
本発明での使用の場合、組織試料は、組織試料の単一部分または片（例えば、組織試料からの組織の薄切り、または切断または顕微解剖した細胞）であり得る。通常、組織アレイは、薄切片に切断されたホルマリン固定組織試料であり得、タンパク質、ＲＮＡ、またはＤＮＡレベル上での発現分析および細胞局在のために用いることができるシラン処理ガラススライド上に載せることができる。好ましい実施態様では、少なくとも１０の試料を１枚のシラン処理ガラススライド上に載せる。より好ましい実施態様では、少なくとも２０の試料を１枚のシラン処理ガラススライド上に載せる。最も好ましい実施例では、４０以上の試料を１枚のシラン処理ガラススライド上に載せる。
【００７０】
組織は、当業者に周知の従来からの方法によって固定され得る（すなわち保存される）。細胞形態を保存するために、組織は、４％中性緩衝ホルマリン中で１６〜２０時間の間固定させ、次いでパラフィンに包埋させる。
【００７１】
本発明の好ましい実施態様では、組織試料は、パンチ生検方法を用いて採取できる毛包試料である。生検を行うのに適した部位は、前腕、上肢、および胴体である。選択した部位は、可視毛を有する必要がある。
【００７２】
生検の大きさは、２ｍｍから８ｍｍまで異なり得る。可能な限り、少なくとも直径３．５ｍｍの検体を収集する必要がある。皮膚を洗浄して、麻酔する。不快感を制限するために、細い針を用いて麻酔薬を投与する。生検される部位のための最少の皮膚張力線を確認する必要がある。例えば、腕の上でこれらの皮膚張力線は、腕の長軸に対して垂直に走行する。生検が行われた後に縫合することによって作られる切開線を、最少の皮膚張力線と平行に方向を合わせる。特定の身体領域に対する方向線を思い出せない医師は、広範囲にわたって公開されているこれらの皮膚張力線の図面を調べる必要がある。皮膚は、最少の皮膚張力線に対して垂直に伸びる。生検が行われた後、皮膚が弛緩するとき、最少の皮膚張力線と同じ方向に向かっている楕円形の傷が残る。腕では、皮膚は腕の長軸に添って伸びる。パンチ生検器具を皮膚の上に垂直に保持し、クルクル回す動きを用いて下向きに回転させる。一旦、生検器具が真皮から皮下脂肪に貫入する、または生検器具が一旦ハブに達すると、それを除去する。円柱状の皮膚検体を麻酔針で持ち上げる。これらの生検器具は、クラッシュアーチファクトを引き起こすこともあるので、鉗子を使わないことを勧める。次いで検体を皮下組織から切り離す。切断は、真皮レベルの下で行う。必要に応じて、傷を、１、２の結節ナイロン縫合で閉じる。５−０ナイロン糸は、大抵非顔面領域で用いられ、６−０ナイロン糸は大抵顔面領域で用いられる。皮膚検体は、直ちに緩衝培地に移し、さらに（タンパク質）分析のために処理される。
【００７３】
特に好ましい実施態様では、毛髪収集に適した領域は、頭皮（後方頚部）、眉、および眉毛である。収集される個々の毛髪の本数は、２〜６本の間で異なってもよく、可能な限り少なくとも４本の個々の毛（包）を収集する必要がある。さらなる麻酔なしで、毛を前述した領域から抜く。毛は、毛幹および毛包が損なわれていないかを検査し、適切な検体を、さらなる処理およびタンパク質分析のために個々にスライドに載せる。
【００７４】
リン酸化エピトープを固定化およびパラフィン包埋材料で保存するために、組織試料を、できるだけ迅速に処理する必要がある。すなわち、外科医が生検材料を取り出したら直ぐに、固定化／凍結、続いて処理を行う必要がある。使用する固定化溶液は、分析されるべき特定のリン酸化エピトープに依存し得る。
【００７５】
用語「治療効力」は、ＨＥＲモジュレーターおよび／または少なくともＨＥＲ受容体活性化を部分的に遮断するのに効果的なさらなる薬剤の量をいう。治療有効量は、前述のように有益な結果または臨床結果を示す。好ましい実施態様では、治療有効量は以下：癌細胞の数を減少させ、腫瘍の大きさを縮小させ、癌細胞の末梢器官への侵入および腫瘍転移を少なくとも部分的に抑制し、腫瘍増殖を少なくとも部分的に抑制し、および／または癌に付随する種々の症状のうち一つ以上を少なくとも部分的に軽減させることをもたらし得る。
【００７６】
従って、本発明は、また、代替マーカーとしてＨＥＲ受容体活性化レベルを用いることによって、被験者においてＨＥＲモジュレーターおよび／またはさらなる薬剤の治療効力を決定する方法を提供する。
【００７７】
本明細書で用いるように、用語「被験者」は、ＨＥＲモジュレーターまたは、ＨＥＲモジュレーターおよび目的に応じて、少なくともさらに１種類の薬剤を含む医薬組成物のいずれかを用いて処置されたもしくは無処置の個体または患者であることを意図されている。用語「被験者」は、ＨＥＲモジュレーターを用いて処置される動物、好ましくは哺乳類（例えばマウス、ラット、ウサギ、イヌ、ブタ、および非ヒト霊長類（例えばカニクイザル、チンパンジー））を含む。用語「患者」は、ＨＥＲモジュレーター および／または少なくともさらに１種類の薬剤での処置を必要とするヒトをいう。好ましくは、ヒトは、過剰増殖疾患（例えばいかなる腫瘍性疾患または癌）を処置するために、そのような処置を必要とする。
【図面の簡単な説明】
【００７８】
【図１ａ】図１ａは、腫瘍細胞系でのＨＥＲ３の基底リン酸化を示す図である。
【図１ｂ】図１ｂは、腫瘍細胞系でのＨＥＲ３の基底リン酸化を示す図である。
【図２ａ】図２ａは、乳癌細胞系でのＨＥＲ３の基底リン酸化および発現を示す図である。
【図２ｂ】図２ｂは、肺癌細胞系でのＨＥＲ３の基底リン酸化および発現を示す図である。
【図２ｃ】図２ｃは、結腸癌細胞系でのＨＥＲ３の基底リン酸化および発現を示す図である。
【図２ｄ】図２ｄは、膵癌細胞系でのＨＥＲ３の基底リン酸化および発現を示す図である。
【図２ｅ】図２ｅは、胃癌細胞系でのＨＥＲ３の基底リン酸化および発現を示す図である。
【図２ｆ】図２ｆは、メラノーマ癌細胞系でのＨＥＲ３の基底リン酸化および発現を示す図である。
【図２ｇ】図２ｇは、前立腺癌細胞系でのＨＥＲ３の基底リン酸化および発現を示す図である。
【図３】図３は、分析したすべての細胞系でのＨＥＲ３とｐＨＥＲ３のｉｎ  ｖｉｒｏ発現との関連を示す図である。
【図４ａ】図４ａは、選択した癌細胞系でのＨＥＲ３基底リン酸化および発現を示す図である。
【図４ｂ】図４ｂは、ｐＨＥＲ３発現と、坑ＨＥＲ３処置への感受性との関連を示す図である。
【図５ａ】図５ａは、ヒト毛包でのＨＥＲ３発現を示す図である。モノクローナルＨＥＲ３抗体を用いての、ヒト毛包での免疫染色およびペルオキシダ−ゼ検出を示す。
【図５ｂ】図５ｂは、ヒト毛包でのＨＥＲ３リン酸化を示す図である。高レベルの膜ＨＥＲ３リン酸化を示すモノクローナル抗体２１Ｄ３を用いての、ｐＨＥＲ３ヒト毛包の免疫染色およびペルオキシダーゼ検出を示す。
【図６】図６は、ヒト正常組織でのＨＥＲ３でのＨＥＲ３リン酸化を示す図である。高レベルの膜ＨＥＲ３リン酸化を示すモノクローナル抗体２１Ｄ３を用いての、ｐＨＥＲ３ヒト正常組織の免疫染色およびペルオキシ検出を示す。胃腸管（左）、精巣（中央）、および膀胱の上皮（右）を示す。
【図７】図７は、ＢｘＰＣ３異種移植（２０ｘ）のＦＦＰＥ切片で、ウサギモノクローナル坑ｐＨＥＲ３抗体（Ｃｅｌｌ  Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ  ２１Ｄ３（ロット番号４）、１：６５０希釈、０．０７４ｕｇ／ｍＬ）を用いる免疫組織化学染色を示す図である。（Ａ）および（Ｂ）は、対照ＩｇＧ１  ５００μｇ／マウスを投与した後の腫瘍。（Ｃ）および（Ｄ）は、抗体Ｕ３−１２８７  ５００μｇ／マウスを投与した後の腫瘍。染色は、２連で３つの別個の異種移植で行った。
【図８】図８は、ＢｘＰＣ３異種移植（２０ｘ）のＦＦＰＥ切片で、ウサギモノクローナル坑ｐＨＥＲ３抗体（Ｃｅｌｌ  Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ  ２１Ｄ３（ロット番号４）、１：６５０希釈、０．０７４ｕｇ／ｍＬ）を用いる免疫組織化学染色を示す図である。（Ａ）は、抗体Ｕ３−１２８７  ２５μｇ／マウスを投与した後の腫瘍。（Ｂ）は、抗体Ｕ３−１２８７  １００μｇ／マウスを投与した後の腫瘍。（Ｃ）は、抗体Ｕ３−１２８７  ２００μｇ／マウスを投与した後の腫瘍。（Ｄ）は、抗体Ｕ３−１２８７  ５００μｇ／マウスを投与した後の腫瘍。（Ｅ）は、対照ＩｇＧ１  ５００μｇ／マウスを投与した後の腫瘍。染色は、２連で３つの別個の異種移植で行った。
【図９】図９は、ＢｘＰＣ３異種移植（２０ｘ）のＦＦＰＥ切片で、マウスモノクローナル坑ＨＥＲ３抗体（Ｄａｋｏ−Ｈ３−ＩＣ、１：２５０希釈、０．５２ｕｇ／ｍＬ）を用いる免疫組織化学染色を示す図である。（Ａ）および（Ｂ）は、対照ＩｇＧ１  ５００μｇ／マウスを投与した後の腫瘍。（Ｃ）および（Ｄ）は、抗体Ｕ３−１２８７  ５００μｇ／マウスを投与した後の腫瘍。染色は、２連で３つの別個の異種移植で行った。
【図１０】図１０は、ＢｘＰＣ３異種移植（２０ｘ）のＦＦＰＥ切片で、マウスモノクローナル坑ＨＥＲ３抗体（Ｄａｋｏ−Ｈ３−ＩＣ、１：２５０希釈、０．５２ｕｇ／ｍＬ）を用いる免疫組織化学染色を示す図である。（Ａ）は、抗体Ｕ３−１２８７  ２５μｇ／マウスを投与した後の腫瘍。（Ｂ）は、抗体Ｕ３−１２８７  １００μｇ／マウスを投与した後の腫瘍。（Ｃ）は、抗体Ｕ３−１２８７  ２００μｇ／マウスを投与した後の腫瘍。（Ｄ）は、抗体Ｕ３−１２８７  ５００μｇ／マウスを投与した後の腫瘍。（Ｅ）は、対照ＩｇＧ１  ５００μｇ／マウスを投与した後の腫瘍。染色は、２連で３つの別個の異種移植で行った。
【図１１】図１１は、Ｃａｌｕ−３異種移植（４０ｘ）のＦＦＰＥ切片で、ウサギモノクローナル坑ｐＨＥＲ３抗体（Ｃｅｌｌ  Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ  ２１Ｄ３（ロット番号４）、１：８０００希釈、０．００６ｕｇ／ｍＬ）を用いる免疫組織化学染色を示す図である。（Ａ）および（Ｂ）は、対照ＩｇＧ１２５ｍｇ／ｋｇを投与後の腫瘍（７２ｈ）。（Ｃ）および（Ｄ）は、抗体Ｕ３−１２８７  ２５ｍｇ／ｋｇを投与後の腫瘍（７２ｈ）。染色は、２連で５つの別個の異種移植で行った。
【００７９】
実施例
ＨＥＲ３の基底リン酸化の検出は、自己分泌受容体活性化の基礎をなし、かつＨＥＲ３が導入する治療介入の用途において潜在的に適したモデルの選択マーカーを表すと思われていた。この目的を達成するために、いくつかの細胞系を選んで、それらのリン酸化ＨＥＲ３内容物を、血清の存在下または非存在下で分析した。最初の実験は、膵臓腫瘍細胞系Ｂｘ−ＰＣ３が基底リン酸化（すなわち、血清飢餓細胞および非血清飢餓細胞での活性化ＨＥＲ３）を高レベルで含有することを示した。これは、Ｂｘ−ＰＣ３が坑ＨＥＲ３治療方法に適したモデルであり得ることを示す（図１ａ）。
【００８０】
さらなる実験では、Ｂｘ−ＰＣ３細胞での発見を確認し、基底ＨＥＲ３リン酸化の観察をＡ５４９細胞およびＡ４３１細胞まで広げた（図１ｂ）。
【００８１】
続いて、これらの発見に基づいて、より多くの細胞系を系統的に分析して、７つの異なる癌適用（乳房、肺、結腸、膵臓、前立腺、胃、メラノーマ）の腫瘍細胞系まで広げた（図２ａ〜ｇ）。
【００８２】
全体的なリン酸化（すなわち活性化ＨＥＲ３）を、検査した腫瘍細胞系のほぼ三分の２で検出した。血清と血清飢餓リン酸化との間の有意差は、検出できなかった（図３ａ、ｂ）。
【００８３】
腫瘍細胞系におけるリン酸化ＨＥＲ３の存在はｉｎ  ｖｉｔｒｏで暗示し、ＨＥＲ３が誘導する介入への反応性を予測する仮説を、それに続くｉｎ  ｖｉｖｏ研究で、細胞系（特に、Ｂｘ−ＰＣ３、  ＨＴ−１４４、およびＴ４７Ｄ等）を用いて、検証した。これらの研究から、ｉｎ  ｖｉｖｏ有効性はｐＨＥＲ３のｉｎ  ｖｉｔｒｏ発現と関連があり、活性化ＨＥＲ３が治療のための代替マーカーとしての役割を果たすことを示唆した（図４ａ、ｂ）。
【００８４】
ｉｎ  ｖｉｔｒｏウエスタンブロット解析およびｉｎ  ｖｉｖｏ動物異種移植実験で得たこれらの結果を、治療的に関連するシナリオに適用するために、本発明者は、主要なヒト細胞におけるＨＥＲ３の存在およびその活性型を、免疫組織化学によって詳しく調べた。ＨＥＲ３の発現を、種々の腫瘍試料で検出し、それにはメラノーマに顕著に存在する発現も含まれた。対照的に、ＨＥＲ３発現は正常な皮膚には傑出されなかったが、意外にも、毛包には極めて強い発現が検出された（図５ａ、ｂ）。
【００８５】
ＨＥＲ３の発現全体は主に細胞質に位置していたが、リン酸化（すなわち、活性化ＨＥＲ３）は、ほぼ例外なく細胞表面膜に結合していた。この発見は、そのような組織中のリン酸化ＨＥＲ３の存在を用いて、坑ＨＥＲ３治療に反応性である腫瘍患者を選択することが可能であるという考えを支持した。さらに、ＨＥＲ３誘導型治療をモニタリングすることと同様に、毛包生検はＨＥＲ３誘導型処置をモニタリングするための薬力学的マーカーとしての役割を果たし得る。活性化ＨＥＲ３は、胃腸管、精巣、および膀胱を含む、多くのさらなる正常なヒト組織にも検出された（図６）。
【００８６】
坑ＨＥＲ３抗体の投与後、膜染色強度の減少、腫瘍中の全細胞数と比較して腫瘍細胞の減少、および腫瘍中の全細胞数と比較してｐＨＥＲ３陽性細胞の減少が見られた（図７、８、および１１）。
【００８７】
染色強度の減少およびＨＥＲ３陽性細胞の減少は、腫瘍量の減少と関連する（図９および１０）。
【００８８】
正常な皮膚でのＨＥＲ３の役割は、以前に特徴づけられなかった。ＲＮＡ発現は、生後皮膚で以前に検出された（Ｋｒａｕｓ  ｅｔ  ａｌ，  １９８９）。従って、我々の現在の分析はこれに関して最初の記述を表す。意外にも、ＨＥＲ３およびその活性化形態が毛包およびエクリンの細胞でならびに皮脂腺で発現されることを、本発明者は発見した。これは、ＨＥＲ３の好ましいパートナーであるＨＥＲ２がこれらの組織で発現されることが報告されていなかったため、予想されなかった。これは、患者選択等で活性化ＨＥＲ３の用途を広くする。活性化ＥＧＦＲと対照的に、活性化ＨＥＲ３は、細胞内に位置していないが、主に膜質に位置する。（活性化）ＨＥＲ３の発現は、正常なケラチノサイトでも観察されなかったが、ＥＧＦＲの発現は広範である（ＨＥＲ３の発現は、ケラチノサイトでいくぶん低い（Ｌａｕｘ  ｅｔ  ａｌ，  ２００６））。従って、診断／選択および治療のためのＨＥＲ３の用途は、顕著な皮膚発疹を引き起こすＥＧＦＲ治療と比較して、より少ない重篤な副作用を有するレジメンを提供し得るばかりでなく、併用療法のモニタリングにとって極めて有用であることが判明し得る。
【００８９】
腫瘍細胞系におけるＨＥＲ３リン酸化
腫瘍細胞を６ウェル皿で一晩播種して、１０％ＦＣＳ含有成長培地で２４時間、血清飢餓させるかまたは培養し、次いで溶解緩衝液で２０分間処置した。可溶化液を３０分間、遠心分離によってクリアし、次いでＨＥＲ３を、特異的坑ＨＥＲ３モノクローナル抗体（１Ｂ４Ｃ３）とともに、粗溶解物から免疫沈降させた。免疫沈降物を４℃で、４時間インキュベートし、１×ＨＮＴＧ（５０ｍＭのヘペス（ｐＨ７．５）、１５０ｍＭのＮａＣｌ、１０％グリセリン、１ｍＭのＥＤＴＡ（ｐＨ８．０）、０．１％Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００）で三回洗浄し、次いでｂ−メルカプトエタノールを含有する３×Ｌａｅｍｍｉｌ緩衝液で、１００℃で５分間、変性させた。タンパク質試料を７．５％ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分離させ、ニトロセルロース膜に移し、坑ホスホチロシン（４Ｇ１０）または坑ｐＨＥＲ３（２１Ｄ３）とともにインキュベートした。リン酸化タンパク質を、坑マウスＰＯＤ（４Ｇ１０に対して）または坑ウサギＰＯＤ（２１Ｄ３に対して）の二次抗体を用いて検出した。ニトロセルロース膜を取り除き、坑ＨＥＲ３抗体（ｓｃ−２８５）を用いて際検出させた。
【００９０】
組織試料中のＨＥＲ３リン酸化
ミクロトームを用いて、２〜４μｍの厚さの薄片を切断し、シラン処理ガラスウライド上に載せ、６０℃で３０分間乾燥させ、３８℃で一晩乾燥させた。検体の脱パラフィンおよび再水和を、キシロール中で２×５分間、１００％エタノール中で２×２分間、９６％、８０％、および７０％のエタノール中で各２分間インキュベートすることによって達成した。蒸留水中で２０秒間すすいでから、スライドをＰＢＳ中で２分間インキュベートした。抗原検索のために、検体を、１ｍＭのＥＤＴＡ（ｐＨ８．０）を充填したキュベットを含有するスチーマー内で９６〜９８℃で、２０分間インキュベートした。スライドを室温で２０分間冷却させ、次いでＡ．ｄｅｓｔ中で５分間洗浄した。一次抗体ｐＨＥＲ３によるインキュベーション以外は、以下の工程を室温で行った。
すなわち、内因性ペルオキシダーゼを、ＲＥ７１０１（切片あたり３滴、Ｎｏｖａｃａｓｔｒａ）中で２０分間遮断した。次いで、切片をＡ．ｄｅｓｔ中で５分間洗浄して、ＴＢＳ緩衝液中で５分間洗浄した。非特異的なバックグラウンド染色を、ＰＢＳ中１０％ヤギ血清を用いて２０分間インキュベートすることで遮断した。溶液を取り出して、切片を、モノクローナル抗体ウサギ坑ｐＨＥＲ３（１０μｇ／ｍＬ（ロット番号３）、Ｃｅｌｌ  Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ）と共に加湿したチャンバー（１：４０のＤａｋｏ希釈緩衝液）内で、一晩４℃で、インキュベートした。ＩｇＧアイソタイプ対照として、ＩｇＧウサギ吸収（１５ｇ／Ｌ、Ｘ０９３６  Ｄａｋｏ）を用いた（１：５０，０００のＤａｋｏ希釈緩衝液）。抗体を除去するために、スライドを、ＴＢＳ／Ｔｗｅｅｎ０．０５％で２×５分間、ＴＢＳで１×５分間、洗浄した。Ｐｏｓｔ  Ｐｒｉｍａｒｙ  Ｂｌｏｃｋ（ＲＥ７１１１、Ｎｏｖｏｃａｓｔｒａ）を（切片あたり３滴）を加えてから３０分後、前述のように洗浄した。次いで、ＮｏｖｏＬｉｎｋ  Ｐｏｌｙｍｅｒ  ＲＥ７１１２（切片あたり３滴、Ｎｏｖｏｃａｓｔｒａ）を加えて、３０分間インキュベートし、前述の洗浄工程で除去した。染色を、１００μＬ  ＤＡＢ基質・色素原溶液で１０分間インキュベートすることによって達成した。最終工程では、スライドを新しい蒸留水で３回すすぎ、Ｈａｒｒｉｓヘマトキシリンで対比染色してから、ガラススライドで覆った。
【００９１】
異種移植実験
ＨＥＲモジュレーターの坑腫瘍有効性を、ヒト異種移植腫瘍の研究で評価した。これらの研究では、免疫低下マウスで、ヒト腫瘍を異種移植として増殖させ、治療効力を、ＨＥＲモジュレーターの投与に応答する腫瘍増殖の抑制の程度を測定した。前述の段落で規定したようにＨＥＲモジュレーターが、少なくとも部分的にヒト癌細胞の腫瘍増殖をｉｎ  ｖｉｖｏで妨げるかどうかを決定するために、当業者に周知のプロトコル（Ｓａｕｓｖｉｌｌｅ  ａｎｄ  Ｂｕｒｇｅｒ，  （２００６），  Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．  ６６，  ３３５１−３３５４）を用いて、細胞をヌード／ヌードマウスまたはＳＣＩＤマウスに移植した。例えば、腫瘍細胞をヌードマウスの皮膚下に注射し、該動物の背中に皮下腫瘍増殖が生じた。処置を、腫瘍細胞移植の時点で、または腫瘍が規定した大きさ（例えば２０〜５０ｍｍ３の平均量）に達したときのいずれかで開始した。最初の処置に先立って、マウスを無作為化して、処置群にわたって均一の腫瘍量（平均、中央値、標準偏差）を確実にした。典型的な投与レジメンは、腹腔内に２５ｍｇ／ｋｇのＨＥＲモジュレーターの毎週投与を含んだ。最初の処置は、５０ｍｇ／ｋｇの負荷量を含んだ。対照治療群のマウスに、ヒト腫瘍細胞に対して細胞増殖抑制作用または細胞障害活性で公知の薬剤（例えば、ドキソルビシン（医薬品グレード））を投与した。
【００９２】
ヒト患者組織におけるＨＥＲ３リン酸化の検出
坑ＨＥＲ３モノクローナル抗体処置を受け入れられる患者の選択のために、ＨＥＲ３受容体活性化を、坑ＨＥＲ３モノクローナル処置の候補者と見なされる患者由来の細胞試料中（診断時の腫瘍材料、処置の前に新鮮な腫瘍材料、正常な組織）のＩＨＣを介して測定する。細胞試料は、生検の種々の方法（例えば、パンチ、ブラシ、切開、コア）または他の方法（例えば毛包および空気嚢をぬく、口腔の拭き取り）によって得られる。収集した組織材料を、処理し、固定して、ｐＨＥＲ３の存在を分析する（定性アッセイ）、および免疫組織化学または他の適用可能な方法（例えばｒｔＰＣＲ、ＷＢ）を介してｐＨＥＲ３の相対量（定量アッセイ）を分析する。ｐＨＥＲ３の活性化スコアを算出し、それに応じて被験者は、臨床試験／処置のルーチンに登録される。
【００９３】
ＨＥＲ３抑制剤の有効性の評価
ＨＥＲ３受容体活性化および／またはＨＥＲ３媒介シグナル伝達を減少させる坑ＨＥＲ３抗体の有効性を、前述のＨＥＲ３抗体で処置された被験者由来の細胞試料で評価することができる。細胞試料を前述した方法で取り出すことができ、試料のタイミングは、処置の継続期間、スケジュール、および治療の経過観察に依存しているが、少なくとも試料を２回（１回は処置の開始時、１回は最大反応時）採取する。２時点の定量測定および定性測定を比較して、薬力学的効果を、ＨＥＲ３受容体活性化のデルタ／シフト値から算出する。正常な組織（例えば皮膚、毛包）は、臨床日常検査で容易に利用できるので、それらは腫瘍組織の代替組織としての役割を果たす。
【００９４】
坑ＨＥＲ３モノクローナル抗体治療を受け入れられる被験者のための予後指数の開発
坑ＨＥＲ３モノクローナル抗体処置を受けた患者の場合、処置の結果は、ＨＥＲ３リン酸化のレベルとリン酸化／活性化の調節とが徐々に関連する。結果として生じる予後指数を、標準指数（例えば腫瘍悪性度、病期、患者のデモグラフィック、処置）と比較して、ｐＨＥＲ３が、疾患の処置または再発に反応して結果、変動性に対する処置、予後指数の有効性のための、優れたマーカーとして役割を果たすことができるかどうかを決定する。最終的に、ＨＥＲ３リン酸化は、坑ＨＥＲ３モノクローナル抗体治療および他の標的または古典的な坑悪性腫瘍治療に関して、リスク便益スコアまたは肯定的／否定的な予後の評価の新たな代替マーカーになり得る。
【００９５】
坑ＨＥＲ３抗体による処置のための癌患者を確認する臨床研究
正常細胞および／または癌細胞を含む細胞試料を、該処置に適格と見なされる被験者から採取する。以下の方法を日常の臨床診療で用いて、組織試料を収集する：すなわち、拭き取り検体（口腔拭き取り、鼻腔拭き取り）、切り取り（指の爪、足の爪）、穿刺吸引細胞診パンチ生検、ブラシ生検、掻爬生検、ハサミまたは他の外科器具を用いる生検、吸引（例えば血液、骨、骨髄）、穿刺（例えば腹水、胸水、脳脊髄液）、（マイクロ真皮）擦過細胞診、切開、器官の部分的外科切除または全体の解剖学的構造（ブロック切除、腫瘍切除、乳腺腫瘍摘出術）、放射線を利用した外科的処置（γ−ナイフ外科手術、レーザーを利用した外科手術）、洗浄（例えば気管支肺胞洗浄、腹部洗浄）、器官の外部排液法（例えば頭水症、腎痩造設、Ｔ−ドレーン総胆管）。組織試料の収集のための臨床診療で公知の他の方法のいずれも、同様に用いることが可能である。生体試料を、ＨＥＲ３リン酸化のために分析し（例えば、免疫沈降またはウエスタンブロット分析によって）、および／またはＨＥＲ２／ＨＥＲ３および／またはＨＥＲ３／ＨＥＲ４のヘテロ二量体の存在を上述のいずれかの技術によって分析する。
【００９６】
ＨＥＲ３モジュレーターによる処置の有効性をモニタリングする臨床研究
固形腫瘍（例えば肺癌、結腸直腸癌、乳癌）の患者は、ＨＥＲ３リン酸化における変化／調節を介して評価される坑ＨＥＲ３モノクローナル抗体処置の薬力学的効果の評価のために、少なくとも２回の生検を受ける。試験開始時に、患者をｐＨＥＲ３レベルおよび最大臨床反応時で層別化し、二次組織試料を患者から採取する。試料をｐＨＥＲ３発現を分析し（定量および定性）、その結果を他のパラメータおよび臨床結果と相関する。ｐＨＥＲ３活性化の上昇は、進行または非反応と考えられ得るが、ｐＨＥＲ３の低下は、治療に対する反応と考えられ得る。ｐＨＥＲ３レベルが少なくとも安定している（ベースラインからの上昇≦２５％）患者は、坑ＨＥＲ３モノクローナル抗体治療による処置を継続し、ベースラインからの上昇ｐＨＥＲ３＞２５％の患者は、向上すると考えられ、坑ＨＥＲ３モノクローナル抗体治療による処置を中断する。
【図１ａ】
0005656406.tif 000002
【図１ｂ】
0005656406.tif 000003
【図２ａ】
0005656406.tif 000004
【図２ｂ】
0005656406.tif 000005
【図２ｃ】
0005656406.tif 000006
【図２ｄ】
0005656406.tif 000007
【図２ｅ】
0005656406.tif 000008
【図２ｆ】
0005656406.tif 000009
【図２ｇ】
0005656406.tif 000010
【図３】
0005656406.tif 000011
【図４ａ】
0005656406.tif 000012
【図４ｂ】
0005656406.tif 000013
【図５ａ】
0005656406.tif 000014
【図５ｂ】
0005656406.tif 000015
【図６】
0005656406.tif 000016
【図７】
0005656406.tif 000017
【図８】
0005656406.tif 000018
【図９】
0005656406.tif 000019
【図１０】
0005656406.tif 000020
【図１１】
0005656406.tif 000021