(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
水不溶性で多孔性の微粒子状担体と前記微粒子状担体上に固定化されたポリミキシンとからなる、生体液からエンドトキシンを除去するための着収剤であって、
前記微粒子状担体が中性で疎水性の表面を有し、ポリミキシンが微粒子状担体表面上に疎水性相互作用により固定化されており、かつ
前記微粒子状担体の平均孔径がおよそ８０〜１００ｎｍであることを特徴とする着収剤。
【請求項２】
前記微粒子状担体が疎水性ポリマーであることを特徴とする、請求項１に記載の着収剤。
【請求項３】
前記疎水性ポリマーが、架橋ポリスチレンポリマーである請求項２に記載の着収剤。
【請求項４】
前記微粒子の粒度が２０μｍ以下であることを特徴とする、請求項１〜３の一項に記載の着収剤。
【請求項５】
請求項１〜４の一項に記載の着収剤を含む吸収装置。
【請求項６】
請求項１〜４の一項に記載の着収剤の懸濁液を含む血漿循環経路。
【請求項７】
敗血症の治療のための請求項１〜４の一項に記載の着収剤。
【請求項８】
敗血症の治療のための請求項５に記載の吸収装置。
【請求項９】
敗血症の治療のための請求項６に記載の血漿循環経路。
【請求項１０】
請求項１〜５の一項に記載の着収剤を含むマイクロスフェア系無害化システム（ＭＤＳ）。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、水不溶性で多孔性の担体と該担体上に固定化されたポリミキシンとを有する、生体液からエンドトキシンを除去するための着収剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
エンドトキシンは、グラム陰性のバクテリアの細胞壁中にあるリポ多糖類（ＬＰＳ）であり、細胞の溶解で放出される。事実、リポ多糖類は、グラム陰性バクテリアの外側細胞膜に最もよく見られる脂質成分である。エンドトキシンは、発熱性物質、即ち、例えば微生物中毒でエンドトキシンが体に入ると感染患者が強い炎症反応や熱でもって反応して全身症状を表す物質である。血液循環経路にエンドトキシンが存在すると、制御不能な免疫細胞の活性化が起こり凝固系のバランスが崩れる。濃度によってはとりわけ高熱や低血圧を特徴とする敗血症が、重篤な場合には多臓器不全を特徴とする敗血症が起こる。敗血症は、真剣にとらえるべき疾患である。重い敗血症または敗血症性ショックを患う患者の死亡率は、疾患の重篤度にもよるが、およそ３０〜６０％である。免疫防御の低下した患者、例えば肝臓患者や化学療法を受けている患者は、細菌に感染しやすく、エンドトキシン中毒の症状を示す。
【０００３】
リポ多糖分子の構造は、３つの部分に分けられる。リピドＡはバクテリア細胞の方向を向いたこの分子の領域を形成する。この分子は、リピドＡによりグラム陰性のバクテリアの外膜に固定されている。リポ多糖分子は、さらに、リピドＡに結合している中間の高度に保存されたコア部を有する。第三の最も外側の領域は、Ｏ−特異的多糖（Ｏ−抗原）で形成されるが、その構造は、いろいろなグラム陰性バクテリア間で大きく異なる。その毒性効果は、細胞溶解の際に最初に放出されるリピドＡに由来するものである。
【０００４】
エンドトキシンで汚染された血液や血漿などの生体液から、適当な着収剤を用いてエンドトキシンを除去することができる。エンドトキシン中毒または敗血症の患者の治療は、特に体外血液浄化（アフェレーシス）の分野で行われている。
【０００５】
アフェレーシス法は、体外的に行われる方法であり、この方法では、病態生理学的に関係する血液や血漿成分が、具体的には（グリコ）プロテインやペプチド、脂質、リポプロテイン、リポ多糖類などのバイオ分子や、また血液細胞や血漿が除去される。アフェレーシス法は、一方では診断や治療の目的で使用できるが、他方では健全な人々より特定の血液成分を十分な量で十分に高純度で得るのに非常に効果的である可能性がある。治療的なアフェレーシスが非常に重要である。特定の適応症に対しては、これが薬物療法に代わる非常に効果的な方法であり、また同時に副作用がほとんど無いためである。血漿交換法では、血漿が完全に分離されて置換溶液で置き換えられるか、着収剤を用いてＬＤＬやエンドトキシンまたは免疫グロブリンなどの特定成分が除去されてその血漿が次いで供与者／患者に戻される。
【０００６】
エンドトキシンで汚染された生体液（通常、血液または血漿）からエンドトキシンを除去するためには、生体液を、通常吸収装置に収められた着収剤に密接に接触させる。これらのエンドトキシンは、着収剤の表面に結合して生体液から除かれる。エンドトキシンが除かれた生体液は患者に戻される。この吸収装置は、体外血液循環経路の血液側に設置されるか、または体外血液浄化装置の血漿循環経路の濾液側に設置される。エンドトキシン結合能力と速度は、着収剤の組成の関数である。
【０００７】
着収剤のエンドトキシン結合速度は、患者の生死にきわめて大きな影響を持つ。患者の血液からエンドトキシンを除去するのに必要な時間は非常に短く（＜１２時間）、重篤な敗血症の場合において、ほんの数時間である。
【０００８】
アニオン交換樹脂（例えば、ＤＥＡＥ基またはＰＥＩ基が結合しているセルロース）が、エンドトキシンとの結合に非常に好適であることが知られている。しかしながら、体内の凝固系の重要因子、例えばプロテインＣやプロテインＳとの望ましくない結合や、これにともなう凝固の問題が、短所となる。
【０００９】
エンドトキシンに対する抗体を固定化した特異的な着収剤を用いることで、このような凝固の問題を避けることができる。しかしながら、経済的な理由でこの可能性の展開には制限がある。
【００１０】
最初に述べた種類の着収剤、すなわち水不溶性で多孔性の担体にポリミキシン分子が固定化された着収剤は、非常に有用な代替着収剤として知られるようになってきた。
【００１１】
ポリミキシンは、グラム陰性バクテリアの感染の治療用の抗生物質である。ポリミキシンは、細胞壁面構造中に入りこんで細胞膜の透過性を上げ、その結果細胞溶解を引き起こす。ポリミキシンは、リン脂質と結合するだけでなく、高い親和性でリポ多糖類（エンドトキシン）とも結合する。ポリミキシンの神経毒性や腎毒性効果のため、ポリミキシンＢとポリミキシンＥ（コリスチン）のみに一定の治療的な意義を与えられている。ポリミキシンＢ及び／又はポリミキシンＥは、このため、経口的及び局所的な治療の形態にのみに適用が可能である。これらは、その毒作用のため、エンドトキシン中毒または敗血症の非経口での全身治療には不適当である。
【００１２】
しかしながら、ポリミキシンを、特にポリミキシンＢを水不溶性の担体に共有的に結合させ、このポリミキシンＢ被覆担体を、汚染された生体液からエンドトキシンを除去するための着収剤として使用することが好ましいことが判明した。
【００１３】
ポリミキシンＢが固定化された多孔性ガラス（ＦＰＧ２０００）製の担体とポリミキシンＢが固定化されたセルロース（セルロファインＡ−３）系の多糖類担体が、EP0110409Aに開示されている。ポリミキシンＢが共有結合したセルロースまたはセルロース誘導体からなる微粒子も知られている［Weber V., Loth F., Linsberger I., Falkenhagen D.: Int. J. Artif. Organs 25(7), 679］。ポリミキシン被覆セルロース担体を用いて高レベルのエンドトキシン吸着を達成することができるが、これらは、ポリミキシンが共有的にこれらの担体に結合しており、ポリミキシンを結合させる前にこのセルロースを化学的に活性化させる必要があるという欠点を有している。
【００１４】
EP0129786A2には、繊維状の担体を有するエンドトキシン無害化材料で、そこにポリミキシンが共有的に固定化された材料が記載されている。この繊維状担体は、担体の表面にポリミキシンを共有的に結合させるための官能基を有している。EP0129786A2のエンドトキシン無毒化材料は、吸着モジュール用の充填材として市販されており（商品名：トレミキシン）［Shoji H. 2003. Extracorporeal endotoxin removal for the treatment of sepsis: endotoxin adsorption cartridge (Toraymyxin)「敗血症の治療のための体外エンドトキシン除去：エンドトキシン吸着カートリッジ（トレミキシン）」］、現在のところ、これが体外血液浄化の分野で敗血症の臨床治療用に認可された唯一の着収剤である。治療の質が最適でないという固定化ポリミキシンＢを有する繊維担体の有効性について批判的な総説が、つい最近刊行された［Cruz DN et al. 2007; Effectiveness of polymyxin B-immobilized fiber column in sepsis: a systematic review. Crit. Care 11(3):137「ポリミキシンＢ固定化繊維カラムの敗血症での有効性：系統的な検討」］。
【００１５】
ポリミキシンによるエンドトキシンの結合を基礎とする既知の着収剤は、エンドトキシン結合能力と速度がともに低いという欠点を有している。ポリミキシンは、ＮＨ2基でポリマーと結合しているため、エンドトキシンへの接近が損なわれる。他の欠点は、コストのかかる複雑な製造方法と、その結果としての大きな製造コストである。
【００１６】
エンドトキシン毒性、特に敗血症を持つ患者の致死率は、上述のトレミキシン吸着モジュールの臨床応用で低下させることができたが、重篤な敗血症や敗血症性ショックの患者の致死率は、最善の療法を行っても、依然として非常に高い。このため、また敗血症状態の発生頻度が高くまた増加の傾向があるため、エンドトキシンに対する吸収性能が改善された着収剤に対して強い需要が存在する。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１７】
【特許文献１】EP0110409A
【特許文献２】EP0129786A2
【非特許文献】
【００１８】
【非特許文献１】Weber V., Loth F., Linsberger I., Falkenhagen D.: Int. J. Artif. Organs 25(7), 679
【非特許文献２】Shoji H. 2003. Extracorporeal endotoxin removal for the treatment of sepsis: endotoxin adsorption cartridge (Toraymyxin)
【非特許文献３】Cruz DN et al. 2007; Effectiveness of polymyxin B-immobilized fiber column in sepsis: a systematic review. Crit. Care 11(3):137
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１９】
本発明の目的は、生体液からエンドトキシンを高度にまた高速に除去可能な着収剤を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【００２０】
本目的は、最初に述べた種類の着収剤で、即ちその担体が中性で疎水性の表面を持ち、ポリミキシンが疎水性相互作用でその担体の表面に固定化されている本発明の吸着剤で達成される。
【００２１】
本発明の着収剤により、エンドトキシン吸収容量とエンドトキシン吸収速度を大きく改善することができた。本発明者らは、−既知の着収剤と比較して−本発明の着収剤により、エンドトキシンで汚染された生体液から短い処置時間で多くのエンドトキシン量を結合させることができることを予想もしなかった程度まで明らかにした。これは、大量の生体液からエンドトキシンを短時間で除くことができるため、治療上の、特に敗血症の患者の治療上の大きな利点を有している。本発明の着収剤により重篤な敗血症の患者の生存可能性が改善される。上述のように、着収剤によるエンドトキシン結合速度が患者の生存に重要である。体外血液浄化の分野での治療時間も本発明の着収剤により短縮可能であり、これにより時間的また経済的、人的な資源が節約可能である。
【００２２】
既知の着収剤と比べての本発明の更なる利点は、担体の中性で疎水性の表面上で、ポリミキシンが疎水性相互作用で（ポリミキシン分子の疎水性部分を用いて）固定化されているため、特に製造が簡単であることである。本発明の着収剤のエンドトキシン結合効果の増加は、疎水性の相互作用で形成される結合がポリミキシンのＮＨ2基を露出した状態とし、これらの基が基本的にすべてエンドトキシンとの結合に利用可能であるということで説明される。ポリミキシンを担体上に固定化するのに、複雑な化学工程の必要はない。したがって、本発明の着収剤の製造は、経済的で再現性よく行うことができる。
【００２３】
この疎水性相互作用は、大きな生化学的意義を持つもので、極性環境では疎水性分子が会合しやすいという現象に基づくものである。したがって、この疎水性相互作用は、それ自体は力ではなく、むしろ極性環境により強いられて発生するものである。本発明において、この疎水性相互作用は、ポリミキシン分子の疎水性領域と多孔性の担体の中性で疎水性の内表面及び外表面との間で起こる。
【００２４】
本明細書の文脈において「着収剤」とは、吸収を行う、好ましくは吸着を行う試薬を、即ち生体液中にある分子が着収剤の表面力で固定される試薬を意味するものとする。本明細書においては、「吸着剤」という用語も、「着収剤」に代えて用いられる。本発明によれば、この着収剤は、エンドトキシンで汚染された生体液からエンドトキシンを吸着するために提供される。本発明の着収剤は、とりわけ体外血液浄化に、特に敗血症状態の患者の血液浄化に用いられる。
【００２５】
本発明の範囲内で用いられる「生体液」は、無細胞液、特に血漿に関係し、あるいは細胞含有液、特に血液に関係しうる。体外血液浄化の過程で、他の液体、例えば凝固阻害剤を含む溶液（ヘパリン溶液、クエン酸溶液）または置換溶液（電解液、液体の減少を補償するための液体）を体外の血液循環経路中にあるいは血漿循環経路中に供給する必要があるため、生体液はまた、希釈血液または希釈血漿であるものとする。本発明は、主にヒト医学の分野を対照とするものであり、このため主にヒトの体液に関係する。しかしながら、このことは本発明が獣医学の分野においても使用されることを不可能にするものではない。
【００２６】
ポリミキシンは、もともとバクテリアのポリミキサ菌に由来する既知の化学物質である。特に、ポリミキシンＢとポリミキシンＥ（コリスチン）が注目される。
【００２７】
本明細書においては、独立請求項１に用いられる「中性で疎水性の表面をもつ水不溶性で多孔性の担体」が、外表面と内表面をもつ多孔性で水不溶性の固体に関する。これらの外表面と内表面は、中性で疎水性である。「中性」は非イオン性であることとする。本発明はとりわけ粒子状の担体に関する。
【００２８】
特にこの担体が疎水性のポリマーであれば、実際上好都合である。このようにして、特に多孔性と粒度に関して優れた担体材料の再現性が保証される。この多孔性と粒度は、さらに変化させてもまったくよい。この疎水性ポリマーは、ホモポリマーであってもヘテロポリマーであってもよい。実用的な性能のためには、架橋ポリスチレンポリマーが特に好適であることが判明している。体外血液浄化の際に患者体液に接触する装置部品の無菌性に対して、厳しい要求がある。これは、着収剤にもあてはまる。架橋ポリスチレンポリマーは熱や化学物質に対する安定性が際立っており、すでに臨床的に用いられている。
【００２９】
ポリミキシンと担体の間の疎水性相互作用の強度は、一方では中性で疎水性の担体の疎水性から、他方では媒体のイオン強度から決まる。上述のように、ポリミキシンは神経毒性と腎毒性をもつ。したがって、ポリミキシンと担体の外表面・内表面との間で最も強固な可能である結合が形成されることが望ましい。特に好ましい実施様態では、この架橋ポリスチレンポリマーがポリスチレン−ジビニルベンゼンコポリマーである。ポリスチレン−ジビニルベンゼンコポリマーの表面は疎水性が高く、ポリミキシンと担体表面との間に非常に強固な結合が形成される。本発明者らは、疎水性相互作用によりポリミキシンを固定化した後は、ポリミキシンがまったく生体液中に放出されないことを見出した。しかしながら、疎水性が高い他の中性で疎水性のポリマーを用いることも可能であり、このことは当業者には公知のことである。本発明者らは、本発明の着収剤をオートクレーブ処理しても、ポリミキシンの脱着が観測されない、したがってエンドトキシン結合の減少も観測されないことを見出した。これは、患者の安全性に極めて有利である。
【００３０】
また、エンドトキシンの吸着に関して、多孔性担体の孔径も重要であることがわかった。したがって、また再現性の理由から、この多孔性担体が特定の平均孔径をもつことが好ましい。この担体の平均孔径は、常に、疎水性相互作用によるポリミキシンの可動化の前の平均孔径に関する。
【００３１】
この多孔性担体を合成ポリマーから製造すると、この平均孔径を特によく設定することができる。「ポリマーの平均粒径」の意味するものや、どのように多孔性や平均孔径を任意の値に設定するかについては当業者には既知であるが、この用語を、より明確とするためにここで簡単に説明する。平均孔径は、孔の平均径に関係する。孔径がガウシアン分布である場合は、平均孔径は分布曲線の最大値に相当する口径である。この平均孔径は、例えば窒素吸着により（Weber et al. 2008. Neutral styrene divinylbenzene copolymers for adsorption of toxins in liver failure. Biomacromolecules 9(4):1322-1328「肝不全における毒素吸着用の中性のスチレンジビニルベンゼンコポリマー」に記載されているように）、あるいは水銀圧入により決定される。ポリマーの孔径は、関係するモノマーやコモノマー、溶媒または調整剤の濃度を変化させて設定される。ポリマーの孔を小さくすればするほど、吸収に、特に吸着に用いられるポリマーの内表面積が大きくなる。孔が大きいほど大きな分子が孔に接近しやすくなる。本発明で使用可能な、明確な孔径をもつ疎水性の合成ポリマーの製造方法が、上記のウェーバらの刊行物に記載されている。
【００３２】
担体の平均孔径が少なくとも１５ｎｍである場合に、着収剤によるエンドトキシン吸収が特によくなることが示された。この担体の平均孔径は、好ましくは少なくとも３０ｎｍである。しかしながら、体外血液浄化の臨床応用のためには、非被覆担体の平均孔径が１２０ｎｍ以下であることが好ましい。そうでないと着収剤の内表面積があまり小さくなりすぎ、その結果としてエンドトキシン吸収容量（エンドトキシン吸着能力）が低下するであろう。室内試験（以下の実施例を参照）では、非被覆担体の平均孔径が３０〜４０ｎｍの時に非常に良い結果が得られた。
【００３３】
特に有利な実施様態においては、非被覆担体の平均孔径がおおむね８０〜１００ｎｍである。この実施様態では、生体液からエンドトキシンが、特に高速かつ高効率で取り除かれる。したがって、大量のエンドトキシンへの結合に、ほんの小量の着収剤が必要となる。例えば、体外の血漿循環経路中で懸濁液として用いられる場合、本発明の着収剤のこの実施様態での濃度を、１％（重量％体積％）としてもよい。吸着剤微粒子の懸濁液を含む体外の血漿循環経路は、マイクロスフェア系の無害化システム（ＭＤＳ）の中心要素である。ＭＤＳは、EP0776223BとUS5855782から公知である。
【００３４】
また、吸収処理中の着収剤の形状も重要である。ある有利な実施様態では、本発明の着収剤が微粒子の形をとる。粒度は吸着速度に影響を与える。また粒度が小さいと、表面積／体積比が大きくなる。ある有利な、詳細な実施様態では、この微粒子の粒度が２０μｍ以下である。
【００３５】
上述のように、この微粒子は特にＭＤＳで用いられる。微粒子は、懸濁液としてメンブランフィルターの濾液側にある浄化経路（血漿循環経路）中を循環する。しかしながら、もしメンブランフィルターが漏れると、微粒子が体外の血液循環経路に到達し、次いで患者の体内に到達して、そこで肺塞栓症を引き起こす危険がある。このため、さらに詳細な実施様態では、微粒子の粒度が８μｍ以下、理想的には５μｍ以下であることが有利である。これは、このような小粒度で肺塞栓の危険を回避することができるためである。
【００３６】
本発明の着収剤は、主に体外の血液浄化（アフェレーシス）の用途に提供される。
【００３７】
本発明のある重要な用途では、この着収剤を吸収装置の充填材として用いることができる。この吸収装置は、カラムあるいはカートリッジの形で実施できる。どの血液浄化装置または血液浄化方法（血液灌流、血漿交換／血漿吸着）を採用するのかにより、この吸収装置を、体外の血液循環経路の血液側に置いたり、血漿循環経路の濾液側に置いたりすることができる。生体液（血液または血漿）がこの吸収装置を通過すると、エンドトキシンが着収剤の固定化ポリミキシン分子に結合する。浄化後の血液または血漿は患者に戻される。
【００３８】
他の可能な用途は血漿循環経路であり、この場合、着収剤は血漿中の懸濁液として分散した状態で供給される。このような血漿循環経路の一例が、上述のＭＤＳ中の装置要素である。血漿循環経路中に懸濁液として供給される着収剤は、微粒子の形状であることが好ましい。
【００３９】
本発明のエンドトキシン着収剤は、主に体外血液浄化（アフェレーシス）での使用に供給されるが、クロマトグラフィーでの使用も考えられる。したがって、この着収剤は、エンドトキシンで汚染された血液または血漿を浄化するためのクロマトグラフィーカラム用の充填材として用いることができる。生体液または水からエンドトキシンを除去する他の用途も考えられる。
【００４０】
本発明の着収剤、本発明の着収剤を含有する吸収装置、または本発明の着収剤の懸濁液を含む血漿循環経路は、特に敗血症の治療に好適である。
【００４１】
また、本発明は、生体液からエンドトキシンを除去する方法であって、エンドトキシンで汚染された生体液を本発明の着収剤に接触させる方法を提供する。上述のように、この生体液は本着収剤を含む吸収装置を通過することができる。しかしながら、この着収剤を生体液中に懸濁させることもできる。後者の一例が、上述のＭＤＳである。この生体液は、血液であっても血漿であってもよい。
【図面の簡単な説明】
【００４２】
【図１】ＰＭＢ被覆吸着剤（平均孔径：８０−１００ｎｍ）のエンドトキシン（ＥＴ）の吸着（エンドトキシン単位：（ＥＵＩ／ｍｌ）の時間曲線を示すグラフである。
【図２】ＰＭＢ被覆吸着剤（平均孔径１５〜２０または３０〜４０ｎｍ）のエンドトキシン（ＥＴ）の吸着（エンドトキシン単位：（ＥＵＩ／ｍｌ）の時間曲線を示すグラフである。
【図３−６】エンドトキシン（ＥＴ）吸着（エンドトキシン単位：（ＥＵ）／ｍｌ）を時間曲線で表す。これらの表や図は以下を示すグラフである。
【図７】吸着剤濃度が１％でエンドトキシン濃度が１ｎｇ／ｍｌでの、ＰＭＢ被覆吸着剤のエンドトキシン（ＥＴ）吸着（エンドトキシン単位：（ＥＵ／ｍｌ）の時間曲線のグラフである。
【図８】オートクレーブ処理の吸着剤、非オートクレーブ処理の吸着剤またはセルロース吸着剤とコントロールのエンドトキシン（ＥＴ）吸着（エンドトキシン単位：（ＥＵ／ｍｌ））の時間曲線のグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００４３】
以下、非制限的な実施例を参照しながら、本発明をより詳細に説明する。
【実施例１】
【００４４】
本発明の着収剤（吸着剤）の製造
本発明の着収剤の製造のために、いろいろな孔径をもつ中性で疎水性のポリスチレン−ジビニルベンゼンコポリマーを、ポリミキシンＢを用いて被覆した。即ち、ポリミキシンＢを、ポリスチレン−ジビニルベンゼンコポリマーの外表面及び内表面に、疎水性相互作用で吸着させた。
【００４５】
１．１．中性で疎水性のポリマーの製造：
いろいろな平均孔径をもつポリスチレン−ジビニルベンゼンコポリマー（短縮して、「ポリマー」または「担体」または「非被覆吸着剤」と呼ぶ）を表１に示す。
【００４６】
【表１】
0005656871.tif 000002
【００４７】
これらのポリマーの粒度は、５μｍ±３〜４μｍであった。
【００４８】
１．２．ポリスチレン−ジビニルベンゼンコポリマーのポリミキシンでの被覆：
本発明の吸着剤を製造するために、表１に示すポリマーを、ポリミキシンＢを用いて被覆した。
【００４９】
ポリミキシンＢ（ＰＭＢ）はシグマアルドリッチ社から入手した（カタログ番号：８１３３４、ロット：１３４８７４４）。被覆のために、５０ｍｇのポリミキシンＢを１０ｍＬのＬＡＬ水に溶解して、ポリミキシンＢ溶液（ＰＭＢ溶液）を生産した。
【００５０】
湿重量で各々１ｇのポリマーを、５ｍＬのＰＭＢ溶液と混合し、エンビロゲニー（Ｒ）振とう機中、室温で６０分間培養した。
【００５１】
次いで、この混合物を４０００ｇで１５分間遠心分離し、上澄液を抜き出し、沈降物を１０ｍＬの０．９％のＮａＣｌと混合し、攪拌した。この工程を３〜５回繰り返した。次いで、この混合物をもう一度、４０００ｇで１５分間遠心分離し、上澄液を抜き出して、発熱物質を含まない０．９％のＮａＣｌ中の５０％吸着剤懸濁液を得た。ポリミキシンＢ被覆の吸着剤を表２に示す。
【００５２】
【表２】
0005656871.tif 000003
【実施例２】
【００５３】
エンドトキシンの吸着、バッチ試験
エンドトキシンの結合に関して、ポリマーの平均孔径（ＰＳ）が８０〜１００ｎｍであるポリミキシンＢ被覆の吸着剤＃１８２５＋ＰＭＢと＃１８２６＋ＰＭＢ（実施例１、表２参照）を相当する非被覆の吸着剤＃１８２５と＃１８２６と比較した。
【００５４】
２．１．吸着剤と、吸着剤の製造：
以下の吸着剤（ＰＳ＝８０〜１００）を、実施例１の手順で製造した：
１）＃１８２５
２）＃１８２６
３）＃１８２５＋ＰＭＢ（ＰＭＢ被覆）
４）＃１８２６＋ＰＭＢ（ＰＭＢ被覆）
【００５５】
１．２に記載のように、ポリミキシンＢ被覆の吸着剤と非被覆の吸着剤を、発熱物質を含まないＮａＣｌで５回洗浄した。発熱物質を含まないＮａＣｌ中の５０％吸着剤懸濁液が最終的に得られた。
【００５６】
２．２．ヘパリン血漿：：
ある供与者から２５ｍＬのヘパリン血漿を得た（５×９ｍｌ全血抜き出し）。
【００５７】
２．３．エンドトキシン溶液：
ＬＰＳ緑膿菌（シグマアルドリッチ社、Ｌ７０１８、バッチ１０９Ｈ４０４３）。ミクロ遠心分離チューブ中で−７０℃で保存されていた、小分けした（それぞれ１００μｌの１０-3ｇ／ｍｌ（１ｍｇ／ｍｌ））エンドトキシンを、解凍し、９００μｌのＬＡＬ水と混合した。次いで、このエンドトキシンを、ＮａＣｌ中でさらに希釈し、必要な濃度である５０ｎｇ／ｍｌ（＝エンドトキシン溶液；ＥＴ溶液）とした。
【００５８】
２．４．試験バッチ：
試験のバッチにおいて、このエンドトキシン溶液をさらに希釈し、最終濃度の５ｎｇ／ｍｌとした。吸着剤の最終濃度は１０％であった。試験バッチのために、５０％吸着剤懸濁液（吸着剤懸濁液体積）、ヘパリン血漿（血漿）、およびエンドトキシン溶液［５０ｎｇ／ｍｌ］（ＥＴ溶液）を、表３の比率で、ピペットを用いて試験管に投入した。コントロールとして、吸着剤（コントロール）を含まない試験管と無処理ヘパリン血漿（血漿）を含む試験管を使用した。
【００５９】
【表３】
0005656871.tif 000004
【００６０】
試験バッチは、エンビロゲニー振とう機中で、３７℃で６０分間培養した。
【００６１】
２．５．サンプリング：
バッチ試験とＬＡＬ試験のすべての段階は、クロモゲニックス社のガラスＬＡＬ試験管（Ｔ１００、プラスチックキャップ付き）中で行った（希釈と標準曲線も）。遠心分離用のサンプリングだけは、発熱物質を含まないミクロ遠心分離チューブ中で行った。
【００６２】
５分間、１５分間、６０分間培養後に、チューブを攪拌した。いずれの場合も、０．２ｍＬの試料を抜き取り、発熱物質を含まないミクロ遠心分離チューブに移した。試料は、遠心器（エピヒュージ）中、１１，０００ｇで１０分間遠心分離した。１００μＬの上澄み液をガラスＬＡＬ試験管に移し、ＬＡＬ試験を行った。
【００６３】
２．６．材料：
【表３ａ】
0005656871.tif 000005
【００６４】
２．７．結果：
結果を表４に記載し、また図１に示す。なお、図１中の曲線は、ＰＭＢ被覆吸着剤（平均孔径：８０−１００ｎｍ）のエンドトキシン（ＥＴ）の吸着（エンドトキシン単位：（ＥＵＩ／ｍｌ）の時間曲線を示す。
【００６５】
【表４】
0005656871.tif 000006
【実施例３】
【００６６】
エンドトキシン吸着−バッチ試験
エンドトキシンの結合について、平均孔径（ＰＳ）が１５〜２０ｎｍまたは３０〜４０ｎｍのポリミキシンＢ被覆の吸着剤＃１８２２＋ＰＭＢ、＃１８２３＋ＰＭＢおよび＃１８２４＋ＰＭＢと、相当する非被覆の吸着剤＃１８２２と＃１８２３と＃１８２４とを比較した。
【００６７】
３．１．吸着剤と、吸着剤の製造：
以下の吸着剤を、実施例１の手順で製造した。
１）＃１８２２
２）＃１８２３
２）＃１８２４
３）＃１８２２＋ＰＭＢ（ＰＭＢ被覆）
４）＃１８２３＋ＰＭＢ（ＰＭＢ被覆）
５）＃１８２４＋ＰＭＢ（ＰＭＢ被覆）
【００６８】
１．２に記載のように、ポリミキシンＢ被覆の吸着剤と非被覆の吸着剤を、発熱物質を含まないＮａＣｌで５回洗浄した。最終的に発熱物質を含まないＮａＣｌ中の５０％吸着剤懸濁液が得られた。
【００６９】
３．２．ヘパリン血漿とエンドトキシン溶液：２．２節と２．３節に相当
【００７０】
３．３．試験バッチ：
試験のバッチにおいて、このエンドトキシン溶液をさらに希釈し、最終濃度の５ｎｇ／ｍｌとした。吸着剤の最終濃度は１０％であった。試験バッチのために、５０％吸着剤懸濁液（吸着剤懸濁液体積）、ヘパリン血漿（血漿）、およびエンドトキシン溶液［５０ｎｇ／ｍｌ］（ＥＴ溶液）を、表５の比率で、ピペットを用いて試験管に投入した。コントロールとして、吸着剤（吸着剤を含まないコントロール）を含まない試験管と無処理ヘパリン血漿（天然血漿）を含む試験管を使用した。
【００７１】
【表５】
0005656871.tif 000007
【００７２】
試験バッチは、エンビロゲニー振とう機中で、３７℃で６０分間培養した。
【００７３】
３．４．サンプリングと材料：２．５節と２．６節に相当
【００７４】
３．５．結果：
結果を表６に記載し、また図２に示す。なお、図２中の曲線は、ＰＭＢ被覆吸着剤（平均孔径１５〜２０または３０〜４０ｎｍ）のエンドトキシン（ＥＴ）の吸着（エンドトキシン単位：（ＥＵＩ／ｍｌ）の時間曲線を示す。
【００７５】
【表６】
0005656871.tif 000008
【実施例４】
【００７６】
エンドトキシン吸着−ヘパリン血漿中でいろいろな吸着剤最終濃度でのバッチ試験
いろいろな吸着剤最終濃度での、即ち１０％、４％、２％、１％の濃度でのエンドトキシン結合について、ポリミキシンＢ被覆の吸着剤＃１８２３＋ＰＭＢ（平均孔径１５〜２０ｎｍ）と＃１８２６＋ＰＭＢ（平均孔径８０〜１００ｎｍ）を、相当する非被覆で無処理の吸着剤＃１８２３と＃１８２６と比較した。
【００７７】
４．１．吸着剤と、吸着剤の製造：
以下の吸着剤を、実施例１の手順で製造した。
１）＃１８２３
２）＃１８２６
３）＃１８２３＋ＰＭＢ（ＰＭＢ被覆）
４）＃１８２６＋ＰＭＢ（ＰＭＢ被覆）
【００７８】
１．２に記載のように、ポリミキシンＢ被覆の吸着剤と非被覆の吸着剤を、発熱物質を含まないＮａＣｌで５回洗浄した。最終的に発熱物質を含まないＮａＣｌ中の５０％吸着剤懸濁液が得られた。
【００７９】
４．２．ヘパリン血漿とエンドトキシン溶液：  ２．２節と２．３節に相当
【００８０】
４．３．試験バッチ：
試験のバッチにおいて、このエンドトキシン溶液をさらに希釈し、最終濃度の５ｎｇ／ｍｌとした。
【００８１】
異なる吸着剤最終濃度で合計４回の試験バッチＡ、Ｂ、Ｃ、Ｄを行い、それぞれポリミキシンＢ被覆の吸着剤には、二バッチを行った。これらの試験バッチには、５０％吸着剤懸濁液（吸着剤懸濁液体積）、ヘパリン血漿（血漿）、およびエンドトキシン溶液（ＥＴ溶液）を、表７〜１０の比率で、ピペットを用いて試験管に投入した。コントロールとして、吸着剤（吸着剤を含まないコントロール）を含まない試験管と無処理ヘパリン血漿（血漿）を含む試験管を使用した。
【００８２】
【表７】
0005656871.tif 000009
【００８３】
【表８】
0005656871.tif 000010
【００８４】
【表９】
0005656871.tif 000011
【００８５】
【表１０】
0005656871.tif 000012
【００８６】
試験バッチは、エンビロゲニー振とう機中で、３７℃で６０分間培養した。
【００８７】
４．４．サンプリング：
バッチ試験とＬＡＬ試験のすべての段階は、クロモゲニックス社のガラスＬＡＬ試験管（Ｔ１００、プラスチックキャップ付き）中で行った（希釈と標準曲線も）。遠心分離用のサンプリングだけは、発熱物質を含まないミクロ遠心分離チューブ中で行った。５分間、１５分間、６０分間培養後、チューブを攪拌した。いずれの場合も、０．３ｍＬの試料を抜き取り、発熱物質を含まないミクロ遠心分離チューブに移した。試料は、遠心器（エピヒュージ）中、１１，０００ｇで１０分間遠心分離した。５０μＬの上澄液を抜き出して、４５０μＬのＬＡＬ水と共にガラスＬＡＬ試験管に移し、直ちに７５℃で５分間培養し、マイクロタイトレーションプレートに塗布し、ＬＡＬ試験を行った。
【００８８】
４．５．材料：  ２．５節と２．６節に相当
【００８９】
４．６．結果：
結果を表１１と表１２と表１３と表１４に記載し、また図３と図４と図５と図６に示す。エンドトキシン（ＥＴ）吸着（エンドトキシン単位：（ＥＵ）／ｍｌ）を時間曲線で表す。これらの表や図は以下を示す。
【００９０】
【表１１】
0005656871.tif 000013
【００９１】
【表１２】
0005656871.tif 000014
【００９２】
【表１３】
0005656871.tif 000015
【００９３】
【表１４】
0005656871.tif 000016
【実施例５】
【００９４】
エンドトキシン濃度が１ｎｇ／ｍｌでのエンドトキシン吸着バッチ試験
バッチ試験のエンドトキシン濃度が１ｎｇ／ｍｌでのエンドトキシン結合について、ポリミキシンＢ被覆の吸着剤（実施例１参照）＃１８２３＋ＰＭＢ（平均孔径：１５〜２０ｎｍ）と＃１８２４＋ＰＭＢ（平均孔径：３０〜４０ｎｍ）と＃１８２６＋ＰＭＢ（平均孔径：８０〜１００ｎｍ）を、相当する非被覆吸着剤＃１８２３と＃１８２４と＃１８２６と比較した。
【００９５】
５．１．吸着剤と、吸着剤の製造：
以下の吸着剤を、実施例１の手順で製造した。
１）＃１８２３
２）＃１８２４
３）＃１８２６
４）＃１８２３＋ＰＭＢ（ＰＭＢ被覆）
５）＃１８２４＋ＰＭＢ（ＰＭＢ被覆）
６）＃１８２６＋ＰＭＢ（ＰＭＢ被覆）
【００９６】
１．２に記載のように、ポリミキシンＢ被覆の吸着剤と非被覆の吸着剤を、発熱物質を含まないＮａＣｌで５回洗浄した。最終的に発熱物質を含まないＮａＣｌ中の５０％吸着剤懸濁液が得られた。
【００９７】
５．２．ヘパリン血漿：  ２．２節に相当する
【００９８】
５．３．エンドトキシン溶液：
ＬＰＳ緑膿菌（シグマアルドリッチ社、Ｌ７０１８、バッチ１０９Ｈ４０４３）。ミクロ遠心分離チューブ中で−７０℃で保存されていた、小分けした（それぞれ１００μｌの１０-3ｇ／ｍｌ（１ｍｇ／ｍｌ））エンドトキシンを、解凍し、９００μｌのＬＡＬ水と混合した。次いで、このエンドトキシンを、ＮａＣｌ中でさらに希釈し、必要な濃度である１０ｎｇ／ｍｌ（＝エンドトキシン溶液；ＥＴ溶液）とした。
【００９９】
５．４．試験バッチ：
試験のバッチにおいて、このエンドトキシン溶液をさらに希釈し、最終濃度の１ｎｇ／ｍｌとした。吸着剤の最終濃度は１％であった。これらの試験バッチには、５０％吸着剤懸濁液（吸着剤懸濁液、５０％）、ヘパリン血漿（血漿）およびエンドトキシン溶液［１０ｎｇ／ｍｌ］（ＥＴ溶液）を、表１５の比率で、ピペットを用いて試験管に投入した。コントロールとして、吸着剤（吸着剤を含まないコントロール）を含まない試験管と無処理ヘパリン血漿（天然血漿）を含む試験管を使用した。
【０１００】
【表１５】
0005656871.tif 000017
【０１０１】
試験バッチは、エンビロゲニー振とう機中で、３７℃で６０分間培養した。
【０１０２】
５．５．サンプリングと材料：  ２．５節と２．６節に相当する
【０１０３】
５．６．結果：
結果を表１６に記載し、また図７に示す。図７は、吸着剤濃度が１％でエンドトキシン濃度が１ｎｇ／ｍｌでの、ＰＭＢ被覆吸着剤のエンドトキシン（ＥＴ）吸着（エンドトキシン単位：（ＥＵ／ｍｌ）の時間曲線のグラフを示す。
【０１０４】
【表１６】
0005656871.tif 000018
【実施例６】
【０１０５】
ポリミキシンＢ被覆吸着剤のオートクレーブ処理能力の試験
ポリミキシンＢ被覆の吸着剤＃１８２６＋ＰＭＢ（平均孔径：８０〜１００ｎｍ）のオートクレーブ処理能力を、ポリミキシンＢがセルロースに共有的に結合しているセルロース系吸着剤と比較した。エンドトキシン結合へのオートクレーブ処理の影響を調べた。
【０１０６】
６．１．吸着剤と、吸着剤の製造
二つの、ポリミキシンＢ被覆の吸着剤＃１８２６＋ＰＭＢの５０％吸着剤懸濁液（ＡとＢ）を実施例１の手順で製造した。
【０１０７】
また、二つの、ポリミキシンＢで修飾された粒子状のセルロース吸着剤＃１８６２Ｃｅｌｌ＋ＰＭＢの５０％吸着剤懸濁液（ＡとＢ）を製造した（セルロース粒子、Ｆｉｓｃｈｅｒ、ロット：ＥＡ  １３／１  ＰＣＫＴ  ０３８、エピクロロヒドリンで活性化しポリミキシンＢと反応＝＞ポリミキシンＢ分子がセルロース粒子と共有結合）。
【０１０８】
＃１８２６＋ＰＭＢ  Ａと＃１８６２Ｃｅｌｌ＋ＰＭＢ  Ａの各吸着剤懸濁液Ａを１２１℃で２０分間オートクレーブ処理した。＃１８２６＋ＰＭＢ  Ｂと＃１８６２Ｃｅｌｌ＋ＰＭＢ  Ｂの各吸着剤懸濁液Ｂは、オートクレーブ処理しなかった。
１）＃１８２６＋ＰＭＢ  Ａ（オートクレーブ処理）
２）＃１８２６＋ＰＭＢ  Ｂ（非オートクレーブ処理）
３）＃１８６２Ｃｅｌｌ＋ＰＭＢ  Ａ（オートクレーブ処理）
４）＃１８６２Ｃｅｌｌ＋ＰＭＢ  Ｂ（非オートクレーブ処理）
【０１０９】
５０％吸着剤懸濁液のそれぞれの６００μＬを、ＬＡＬ試験管Ｔ１００（チャールスリバーエンドセーフ、発熱物質非含有）中に入っている提供ヘパリン血漿中に入れた。
【０１１０】
６．２．ヘパリン血漿：  ２．２節に相当
【０１１１】
６．３．エンドトキシン溶液：
ＬＰＳ緑膿菌（シグマアルドリッチ社、Ｌ７０１８、バッチ１０９Ｈ４０４３）。ミクロ遠心分離チューブ中で−７０℃で保存されていた、小分けした（それぞれ１００μｌの１０-3ｇ／ｍｌ（１ｍｇ／ｍｌ））エンドトキシンを、解凍し、９００μｌのＬＡＬ水と混合した。次いで、このエンドトキシンを、ＮａＣｌ中でさらに希釈し、必要な濃度である１０ｎｇ／ｍｌ（＝エンドトキシン溶液；ＥＴ溶液）とした。
【０１１２】
６．４．試験バッチ：
試験のバッチにおいて、このエンドトキシン溶液をさらに希釈し、最終濃度の１ｎｇ／ｍｌとした。この試験バッチでは吸着剤の最終濃度が１％であった。これらの試験バッチには、５０％吸着剤懸濁液（吸着剤懸濁液体積）、ヘパリン血漿（血漿）およびエンドトキシン溶液［１０ｎｇ／ｍｌ］（ＥＴ溶液）を、表１７の比率で、ピペットを用いて試験管に投入した。コントロールとして、吸着剤（吸着剤を含まないコントロール）を含まない試験管と無処理ヘパリン血漿（天然血漿）を含む試験管を使用した。
【０１１３】
【表１７】
0005656871.tif 000019
【０１１４】
試験バッチは、エンビロゲニー振とう機中で、３７℃で６０分間培養した。
【０１１５】
６．５．サンプリング：
バッチ試験とＬＡＬ試験のすべての段階は、クロモゲニックス社のガラスＬＡＬ試験管（Ｔ１００、プラスチックキャップ付き）中で行った（希釈と標準曲線も）。遠心分離用のサンプリングだけは、発熱物質を含まないミクロ遠心分離チューブ中で行った。
【０１１６】
５分間、１５分間、６０分間培養後、チューブを攪拌した。いずれの場合も、０．２ｍＬの試料を抜き取り、発熱物質を含まないミクロ遠心分離チューブに移した。試料は、卓上遠心器（エピヒュージ）中、１１，０００ｇで１０分間遠心分離した。１００μＬの上澄液をガラスＬＡＬ試験管に移し、ＬＡＬ試験（ＬＡＬ試験：チャールスリバーエンドセーフエンドクロム、キットロット：Ｙ１８９２ＥＫ１）を行った。
【０１１７】
６．６．結果：
結果を表１８に記載し、また図８に示す。図８は、オートクレーブ処理の吸着剤、非オートクレーブ処理の吸着剤またはセルロース吸着剤とコントロールのエンドトキシン（ＥＴ）吸着（エンドトキシン単位：（ＥＵ／ｍｌ））の時間曲線のグラフを示す。
【０１１８】
【表１８】
0005656871.tif 000020
【０１１９】
本発明に係る吸着剤＃１８２６＋ＰＭＢ  Ａと＃１８２６＋ＰＭＢ  Ｂは、オートクレーブ処理の前後共に好ましいエンドキシン吸着を示す。
【０１２０】
これ対して、セルロース吸着剤をオートクレーブ処理すると、エンドトキシン吸着が大幅に低下した。
【図１】
0005656871.tif 000021
【図２】
0005656871.tif 000022
【図３】
0005656871.tif 000023
【図４】
0005656871.tif 000024
【図５】
0005656871.tif 000025
【図６】
0005656871.tif 000026
【図７】
0005656871.tif 000027
【図８】
0005656871.tif 000028