(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
カレープラント抽出物を有効成分とする食後高血糖改善剤。
【請求項２】
カレープラント抽出物が水又は有機溶媒抽出物である請求項１記載の食後高血糖改善剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、食後高血糖改善剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
アディポネクチンは、脂肪細胞から特異的に産生および分泌される善玉アディポサイトカインであり、循環器系疾患、糖尿病、肥満などの生活習慣病と密接に関連することが知られている。血中でのアディポネクチンの産生を促進する成分の研究・開発が進められている。
【０００３】
アディポネクチンは分子量約30KDaの、脂肪細胞で最も豊富に発現している善玉アディポサイトカインである。補体のC1qと構造上の相同性があり、Ｎ末端よりシグナルペプチド、コラーゲン様ドメイン、球状ドメインよりなる。血中では12-18量体の高分子量アディポネクチン、6量体の中分子量アディポネクチン、3量体の低分子量アディポネクチンの3種類の多量体を形成している。
肥満や内臓脂肪蓄積に伴って、アディポネクチンの血中レベルが低下する。アディポネクチンは遺伝子の多型など遺伝的要因によっても低下する。アディポネクチン遺伝子欠損マウスは、インスリン抵抗性、耐糖能異常、脂質異常、高血圧などのメタボリックシンドロームの諸徴候を呈する。アディポネクチンの補充は、インスリン抵抗性やメタボリックシンドロームを改善する。
【０００４】
アディポネクチン産生促進に関し、多数の提案が成されている。
特許文献１（特開２００９−２０９０８０号公報）には、大豆蛋白加水分解物を有効成分とし、特に大豆蛋白加水分解物がジペプチド又は／及びトリペプチドを主成分とするオリゴペプチド混合物であるような組成物が、アディポネクチン分泌促進作用があり、血中アディポネクチン濃度を強く亢進することが開示されている。
特許文献２（特開２００９−２４９３４１号公報）には、紅麹抽出物およびプロアントシアニジンを有効成分とする、アディポネクチン産生促進剤が開示されている。
特許文献３（特開２００８−２５５０４０号公報）には、レスベラトロールを有効成分とするアディポネクチン産生促進剤が開示されている。
【０００５】
一方、キク科ムギワラギク属に属する多年草の一種であるカレープラントについて様々な研究がなされている。
カレープラントは学名Helichrysum italicumもしくはHelichrysum augustifoliumで、別名はカレープラントの他にイモーテル、インモルテル、immortele、カレープランツ、ヘリクリサムと総称されている。花卉頭頂部は乾燥させた状態でも鮮明な黄色を呈していることから、サンディーエバーラスティング、エバーラスティングフラワー（永久花）とも呼ばれている。原産地は南欧であり、それらの地域を中心に調理用として用いられ、若い枝は、米、野菜、香味料理に入れて穏やかなカレーの香り付ける香辛料として用いられて食用されている（非特許文献１：Encyclopaedia of Herbs and their Uses. Doeling Kindersley, London. 1995 p292、翻訳本  ハーブ大百科（発行(株)誠文堂新光社）p292）。
また、葉を細切しミンチ状にしてスクランブルエッグやオムレツの香り付けに、そして、抽出物や精油は、果実様のフレーバーとしてキャンディ、アイスクリーム、ソフトドリンク、チューングガムに配合されている（非特許文献２：Cornucopia - A Source Book of Edible Plants Kampong Publications. 1990 p34）。また、花卉頭頂部はお茶として用いられ、煎汁（乾燥花１ｇを熱湯150mlに5分から10分煎じた後、花をこし取って調整）1杯が1日数回にわたって飲用される。この場合乾燥花の平均的な1日使用量は3gである（非特許文献３：健康食品データベース、監訳：独立行政法人 国立健康・栄養研究所、第一出版、p425）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】特開２００９−２０９０８０号公報
【特許文献２】特開２００９−２４９３４１号公報
【特許文献３】特開２００８−２５５０４０号公報
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】Encyclopaedia of Herbs and their Uses. Doeling Kindersley, London. 1995 p292、翻訳本  ハーブ大百科（発行(株)誠文堂新光社）p292）。
【非特許文献２】Cornucopia - A Source Book of Edible Plants Kampong Publications. 1990 p34）
【非特許文献３】健康食品データベース、監訳：独立行政法人 国立健康・栄養研究所、第一出版、p425）。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明の目的は、新規なアディポネクチンの産生・分泌促進剤を提案することである。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明者は、517種の植物抽出物を調査分析した結果、キク科ムギワラギク属の植物であるカレープラントの抽出物について、食後高血糖改善作用を知見したので提案する。
すなわち、本発明の主な構成は、次のとおりである
（１）カレープラント抽出物を有効成分とする食後高血糖改善剤。
（２）カレープラント抽出物が水又は有機溶媒抽出物である（１）記載の食後高血糖改善剤。
【発明の効果】
【００１０】
本発明の有効成分であるカレープラント抽出物は、アディポネクチン産生促進作用を有するため、アディポネクチン産生が低下した状態を改善する。これによりアディポネクチンが関与する種々のインスリン抵抗性を改善し、メタボリックシンドロームに基づく種々の病態の治療・予防に役立つことが期待される。特にアディポネクチン産生促進によって食後血糖の上昇を抑制するため、糖尿病などの血糖コントロールを必要とする患者にとって有効な治療剤となる。また、カレープラントから高濃度に抽出された抽出物を含有する飲食品を摂取することは、日常的な血糖の改善作用をもたらす。また本発明は核内受容体PPARγを活性化するので、PPARγの活性が低下することに起因する疾患の治療剤として有用である。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】前駆脂肪細胞の分化の相対割合を示すグラフ。
【図２】前駆脂肪細胞のadiponectin産生量を示すグラフ。
【図３】核内因子PPARγに対してカレープラント抽出物が濃度依存性リガンドすることを示すグラフ。
【図４】in vivo試験でモデル動物の食餌量を示すグラフ。
【図５】in vivo試験でモデル動物の体重変化を示すグラフ。
【図６】糖負荷試験での血中グルコース濃度の変化を示すグラフ。
【図７】糖負荷試験での血中グルコースAUCを示すグラフ。
【図８】モデル動物の尿糖測定結果を示すグラフ。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
以下、本発明を詳細に説明する。
本発明で用いる抽出物は、カレープラント地上部が好適である。また、カレープラントの植物体はそのままの形態で抽出してもよい。抽出効率を高めるために好ましくは粉砕して抽出する。
【００１３】
抽出には、溶媒抽出や圧搾抽出等種々の抽出方法を用いることができるが、好ましくは、溶媒抽出を用いることができる。抽出に使用される溶媒としては、水、アルコール、エーテル、アセトン、ヘキサン、クロロホルム、トルエン、酢酸エチル、テトラヒドロフラン等が挙げられるがこれに限定されるものではない。これらの溶媒の中から1種または2種以上選択して使用するが、安全性の見地から、水、エタノールが好ましく、更に好ましくは、水とエタノールの混合物、例えば1〜99％のエタノール水溶液、特に20〜80％のエタノール水溶液を使用することが好ましい。
【００１４】
抽出方法は、植物体の粉砕物100gに対して0.1〜10リットル、好ましくは1リットルの溶媒を加え、1時間〜1週間、室温にて放置、あるいは抽出効率を高めるため攪拌する。あるいは溶媒を加温してもよい。
【００１５】
抽出は不溶物と抽出液を濾過あるいは沈降法等により分離する。好ましくは、不溶物は同様の抽出操作を繰り返し、適当な濃縮処理により、例えばエバポレーターのような減圧濃縮装置や加熱による溶媒除去などにより濾別後、濾液を濃縮し濃縮液を得ることが出来る。さらに濃縮液を凍結乾燥させて濃縮乾固物を得ることも出来る。さらには、カラムクロマトグラフィー等各種のクロマトグラフィー等、植物成分の分離、抽出に利用される公知の方法を用いて有効成分を分画し、その純度を高めてもよい。
【００１６】
カレープラント抽出物は、ラットの血中アディポネクチン量の増加作用をもたらす。従って上記作用を有することにより、カレープラント抽出物はアディポネクチンの欠乏や不足に伴う各種疾患、特に肥満や糖尿病の改善剤として使用できる。
【００１７】
上述のようにして得られるカレープラント抽出物は、アディポネクチン産生促進剤としてそのまま直接使用してもよいが、種々の剤型での投与が可能であり、一般的には薬学的に許容される適当な液体担体に溶解するか若しくは分散させ、または薬学的に許容される適当な粉末担体と混合するか若しくはこれに吸着させ、例えば、カプセル剤、錠剤、顆粒剤、細粒剤、シロップ剤等の経口投与剤や、座薬や点滴剤などの非経口投与剤として使用できる。投与量は患者の症状や年齢に応じて適宜変更できるが、1日当たり、乾燥抽出物0.01〜1000mg/kg体重の範囲で用いればよく、更に0.1〜100mg/kg体重の範囲で用いるのが好ましい。
【００１８】
また、本発明のアディポネクチン産生促進剤は、通常の飲食品に上記のカレープラントから得られた抽出物を添加することもできる。例えば、チョコレート、キャンディ、ゼリー、ビスケット、チューインガム、アイスクリーム、シャーベット、氷菓、和菓子等の菓子、清涼飲料、ジュース、ウーロン茶等の飲料、畜肉加工品、魚肉・水産加工肉、乳・卵加工品、野菜加工品、穀類加工品、冷凍食品、調味料、スプレッド等の飲食品に用いることができる。添加量は、対象の飲食品に対して重量を基準として乾燥抽出物を0.01〜10％、好ましくは0.05〜5％の範囲で添加するのが好ましい。
本発明のアディポネクチン産生促進剤の有効投与量は、経口摂取において成人1日当り1〜10gである。
以下実施例を示し、本発明をさらに説明する。
【実施例】
【００１９】
カレープラント抽出物のアディポネクチン産生促進効果試験
[材料]
カレープラントの抽出物は以下の方法で調製した。
地上部全草を採取したカレープラントは乾熱乾燥を経て室温保管した乾燥物を使用した。採取物に対する植物乾燥物の乾燥歩留は15％から30％の範囲で、一般的な植物の乾燥歩留と大差無かった。
カレープラント水抽出物（以下CP-W）は1時間60℃に加温した水に浸潤抽出して得た抽出液を減圧濃縮により固形化し、ドラムドライヤーにて加熱乾燥させた固形物として調製した。
カレープラント40％エタノール抽出物（以下CP-E）は、室温で１時間40％（v/v）エタノールに浸潤抽出して得た抽出液を減圧濃縮により固形化し、ドラムドライヤーにて加熱乾燥させた固形物として調製した。
またアディポネクチン産生促進試験の陽性対照としてピオグリタゾン（以下PGZ、シグマ）を用いた。
【００２０】
［in vitro試験］
前駆脂肪細胞の分化促進作用、およびアディポネクチン産生促進作用
１．試験方法
マウス由来前駆脂肪細胞（3T3-L1、DSファーマバイオメディカル）を10％FBS、1％Penicilin-Streptmycinを含有したDulbecco's変法Eagle培地（DMEM）にて継代・培養した。これを試験細胞とする。
試験は、ラット尾コラーゲンIをコートしたマルチウェルプレート（48ウェル、BD BioCoat、BD Bioscience）に1ウェル当り5×104個の3T3-L1細胞を播種し、コンフルエントになるまで培養した（6〜8日）。その後、1mMデキサメタゾン（シグマ）5.55mLと3-イソブチルメチルキサンチン（シグマ） 61.05mg、10mg/mLインスリン（ウシ膵臓由来、シグマ）（氷酢酸を添加してpH調製した酸性水（pH 2.0））555μLを含む誘導培地500mLにて3〜4日間培養して前駆脂肪細胞から未熟脂肪細胞へ分化誘導した。次いで、10mg/mLインスリン555μLとDMSOに溶解させた被験サンプルを含む維持培地にて1週間培養した。1週間の培養の後、成熟脂肪細胞中の脂肪滴の量をOil Red O染色法にて測定した。測定方法は、培養上清に存在する産生・分泌されたアディポネクチンの量をELISAキット（マウス/ラットアディポネクチンELISAキット、大塚製薬）を用いて測定した。
すなわち、未熟脂肪細胞に被験サンプルを添加し、維持培地にて培養したのち、各ウェルを0.1Mリン酸緩衝液（PBS）200μLで2回洗浄した。洗浄後、各ウェルに100μLの10％中性ホルマリンを加えて1時間室温にて放置し、細胞を固定させた。その後ホルマリンを除去し、イソプロパノールで溶解した5.0g/L Oil Red O染色液（予め半日撹拌し、使用直前に濾紙にて濾過した）を各ウェルに100μL加えて、15分間室温で放置した。その後各ウェルを蒸留水200μLで3回洗浄し、洗浄後各ウェルに150μLのイソプロパノールを加えて15分間室温で放置し、細胞内の脂肪滴の色素を脱色した。15分後、脱色されたイソプロパノールを96ウェルプレート（IWAKI）に移し、490nmの吸光度を測定した。コントロールにはDMSOのみ添加し、前駆脂肪細胞からの分化促進作用の相対的な活性を求めた。
【００２１】
アディポネクチン濃度の測定は、1週間の維持培地での培養後、培養上清（500μL）を1.5mLのチューブに移し、-80℃で凍結後、凍結乾燥させた。その後、蒸留水100μLを加えて再溶解させ、ELISAキット（マウス/ラットアディポネクチンELISAキット、大塚製薬）のマニュアルに従い測定した。
【００２２】
２．試験結果
前駆脂肪細胞の分化促進作用、およびアディポネクチン産生・分泌促進作用に対する各サンプルの結果を図１、図２に示した。カレープラント抽出物は濃度依存性で、前駆脂肪細胞を脂肪細胞へ分化させることが確認できた。また同様にアディポネクチン産生を促進させることが確認できた。アディポネクチン産生促進効果はエタノール抽出物（CP-E）の方が強かった。
【００２３】
Peroxisome proliferator-activated receptor（PPAR）γに対するリガンド活性の測定
核内転写因子であるPPARγは主に脂肪組織に分布して脂肪細胞分化などに関与する他、マクロファージや血管内皮細胞などにも発現が見られる。インスリン抵抗性改善薬の標的分子でもある。このリガンド活性を測定することでアディポネクチンが脂肪組織に有効に作用し、脂肪組織においてインシュリン抵抗性が改善し、グルコースが細胞内に取り込まれ、抗糖尿病作用を示すことを確認できる。
【００２４】
１．試験方法
被験サンプルのPPARγに対するリガンド活性の測定は被験サンプルをDMSOに溶解して、市販のキット（EnBio RCAS for PPARγ、藤倉化成）のマニュアルに従い測定した。なおこの測定はコアクチベータの関与を確認できる測定方法である。
【００２５】
２．試験結果
前駆脂肪細胞のインスリン抵抗性の指標となるPPARγに対するリガンド活性は、CP-E、CP-Wとも有していた。図３に示すとおり、エタノール抽出物CPEは濃度依存的に、PPARγに対するリガンド活性を有しており、この核内レセプターを介してアディポネクチンの産生を促進していることが裏付けられた。またこの反応はコアクチベータが関わっていることが確認できた。
【００２６】
［in vivo試験］
１．試験方法
試験動物には4週齢の雄性のKKAy-TaJclマウス（日本クレア）27匹を用いた。マウス搬入後、7日間は馴化期間とし、食餌はCRF-1（オリエンタル酵母）、給水は水道水の自由摂取とした。5週齢より本飼育を開始した。試験食として、高脂肪高ショ糖食（オリエンタル酵母、F2HFHSD粉末飼料、以下HFとする）、HFにカレープラント水抽出物（以下CP-Wとする）、カレープラント40％エタノール抽出物（以下CP-Eとする）を1.0％となるように添加した。また、HFの対照となる試験飼料はAIN-93G（オリエンタル酵母、以下LFとする）を用いた。
in vitro試験と同様にカレープラント（地上部全草）は乾熱乾燥を経て室温保管した乾燥物を使用した。採取物に対する植物乾燥物の乾燥歩留は15％から30％の範囲で、一般的な植物の乾燥歩留と大差無かった。各カレープラント抽出物の製造詳細に関しては、CP-Wは60℃、1時間水に浸潤抽出して得た抽出液を減圧濃縮により固形化し、ドラムドライヤーにて加熱乾燥させた固形物として調整した。CP-Eは、室温にて1時間、40％（v/v）エタノールに浸潤抽出して得た抽出液を減圧濃縮により固形化し、ドラムドライヤーにて加熱乾燥させた固形物として調整した。
【００２７】
試験動物の馴化終了後、上記の各試験食を4週間摂取させた。試験期間中、食餌摂取量、および体重を週2回測定した。4週間の食餌摂取後に約16時間の絶食処置をし、経口グルコース負荷試験（OGTT）を実施した。OGTTでは絶食時に尾切断により採血したのち、D-グルコース（2g/10ml/kg）溶液を強制経口投与して投与開始30分、60分、120分後に尾切断により採血した。血液は6,200g、5分間遠心分離して血漿を得た。得られた血漿を用いて血漿中のグルコース濃度を富士ドライケム3500（富士フィルム）（測定キットは富士ドライケムスライド  GLU-PIIIを使用）にて測定した。
OGTT後、各群に1週間各試験群の試験飼料を再摂食させ、1週間後に16時間以上の絶食下にて解剖を実施した。また、解剖までの約16時間に排泄された尿を全量採取した。
解剖は絶食下にて断頭屠殺にて実施し、血液を採取し、6,200g、15分間遠心分離して得られる血漿を採取し、分析まで-80℃で保存した。
尿を用いて尿糖のレベルをプレテスト3aII（和光純薬）にて測定した。
【００２８】
２．統計解析
in vivo試験における尿糖の分析以外のすべての結果を平均値±標準誤差（Means±SE）で示した。HF群との有意差の検定には、Dunnett法を用いて統計学的な解析を行った。尿糖の分布の分析にはクラスカルウォルス検定を行い、HF群との有意差の検定にはSteel法を用いた。いずれの検定も統計学的な有意差をp<0.05とした。
【００２９】
３．試験結果
＜食餌摂取量、および体重推移＞
試験期間中の食餌摂取量、および体重推移を図４、図５以下に示した。
試験期間を通じての総食餌摂取量については、HF群と比較して有意な差は確認されなかった。体重推移については、試験期間を通じてLF群においてHF群と比較して有意に低値であった（試験期間3日目〜35日目）。また、CP-W群において3日目、7日目、14日目の時点でHF群と比較して低くなる結果となったが、その後の体重においてはHF群と比較して有意な差は確認されなかった。
【００３０】
＜グルコース付加試験（耐糖能試験）＞
OGTTでの血漿グルコース濃度の推移を図６に示した。糖負荷後の血中グルコース濃度はLF群、CP-W群、CP-E群においてHF群と比較して有意に低値に推移した。この結果はカレープラント抽出物が食後血糖を低下させる効果を有することを意味している。
また血中グルコース濃度の曲線下面積（AUC）を図７に示す。エタノール抽出物CP-Eは、AUCも有意に低く、血中に出現するグルコース総量を引き下げる作用を有することがわかった。すなわちカレープラント抽出物は食後血糖を低下させる作用を有していることが明らかとなった。
【００３１】
＜尿糖の測定結果＞
高脂肪食摂取することで肥満に伴う血中グルコースが尿糖に漏出すると糖尿病と呼ばれる。図８に示すとおりカレープラント抽出物は尿糖を低下させる。特にエタノール抽出物CP-Eは顕著に尿糖を低下させた。
【００３２】
以上のin vitro、in vivo試験から、カレープラント抽出物はアディポネクチン産生を促進し、血中グルコース濃度を低下させ、糖尿病治療に有用であることが明らかとなった。
【図１】
0005830316.tif 000002
【図２】
0005830316.tif 000003
【図３】
0005830316.tif 000004
【図４】
0005830316.tif 000005
【図５】
0005830316.tif 000006
【図６】
0005830316.tif 000007
【図７】
0005830316.tif 000008
【図８】
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