(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
基板表面に形成された金属膜と、
この金属膜上に形成された流路と、
前記流路内の前記金属膜上に固定され、被捕捉物質を特異的に捕捉する捕捉物質により形成された捕捉物質スポットと、
前記流路内の前記金属膜上に固定され、前記被捕捉物質を捕捉しない非捕捉物質により形成された非捕捉物質スポットと
を備え、
前記捕捉物質スポットと前記非捕捉物質スポットとは、前記流路の延在方向に所定間隔を隔てて互い違いに複数配置されて捕捉物質アレイを形成し、
前記捕捉物質は、前記流路を流れる流体中の測定対象に関係する生体物質の相互作用を示すダイアグラムの各ノードに関わる物質からなり、
前記ノードの上流では、想定しうる菌の集合に対してカバー範囲が広い前記補足物質が選択され、前記ノードの下流では、想定しうる菌の集合に対してカバー範囲が狭い前記補足物質が選択される
ことを特徴とする測定チップ。
【請求項２】
請求項１記載の測定チップにおいて、
前記捕捉物質は、抗α溶血素、抗β溶血素、プロトロンビン、抗黄色ブドウ球菌病原因子およびhIgG、抗連鎖球菌属病原因子並びに阻害剤である
ことを特徴とする測定チップ。
【請求項３】
請求項１記載の測定チップにおいて、
前記捕捉物質は、２０-merのＤＮＡである
ことを特徴とする測定チップ。
【請求項４】
基板表面に形成された金属膜、この金属膜上に形成された流路、前記流路内の
前記金属膜上に固定され、被捕捉物質を特異的に捕捉する捕捉物質により形成された捕捉物質スポット、および前記流路内の前記金属膜上に固定され、前記被捕捉物質を捕捉しない非捕捉物質により形成された非捕捉物質スポットを備えた測定チップと、
前記流路を流れる流体の流速を測定する流速測定手段と、
前記流体中の物質と前記捕捉物質との吸着速度を測定する吸着速度測定手段と
を備え、
前記捕捉物質スポットと前記非捕捉物質スポットとは、前記流路の延在方向に所定間隔を隔てて互い違いに複数配置されて捕捉物質アレイを形成し、
捕捉物質は、前記流路を流れる流体中の測定対象に関係する生体物質の相互作用を示すダイアグラムの各ノードに関わる物質からなり、
前記ノードの上流では、想定しうる菌の集合に対してカバー範囲が広い前記補足物質が選択され、前記ノードの下流では、想定しうる菌の集合に対してカバー範囲が狭い前記補足物質が選択される
ことを特徴とするセンサシステム。
【請求項５】
請求項４記載のセンサシステムにおいて、
前記流速測定手段および前記吸着速度測定手段は、前記金属膜表面における屈折率に基づいて測定を行う
ことを特徴とするセンサシステム。
【請求項６】
請求項４または５記載のセンサシステムにおいて、
前記流速測定手段および前記吸着速度測定手段の測定結果に基づいて、前記被捕捉物質それぞれの濃度を測定する濃度測定手段と、
流体中に含まれる被捕捉物質の濃度と測定対象との関係を記憶する記憶手段と、
前記濃度測定手段による測定結果と、前記記憶手段に記憶された前記関係とに基づいて、前記流体中に含まれる測定対象を判別する判別手段と
をさらに備えたことを特徴とするセンサシステム。
【請求項７】
基板表面に形成された金属膜、この金属膜上に形成された流路、および、前記流路内の前記金属膜上に固定され、被捕捉物質を特異的に捕捉する捕捉物質により形成された捕捉物質スポット、および前記流路内の前記金属膜上に固定され、前記被捕捉物質を捕捉しない非捕捉物質により形成された非捕捉物質スポットを備えた測定チップの前記流路を流れる流体の流速を測定する流速測定ステップと、
前記流体中の物質と前記捕捉物質との吸着速度を測定する吸着速度測定ステップと
を有し、
前記捕捉物質スポットと前記非捕捉物質スポットとは、前記流路の延在方向に所定間隔を隔てて互い違いに複数配置されて捕捉物質アレイを形成し、
前記捕捉物質は、前記流路を流れる流体中の測定対象に関係する生体物質の相互作用を示すダイアグラムの各ノードに関わる物質からなり、
前記ノードの上流では、想定しうる菌の集合に対してカバー範囲が広い前記補足物質が選択され、前記ノードの下流では、想定しうる菌の集合に対してカバー範囲が狭い前記補足物質が選択される
ことを特徴とする測定方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、生体由来サンプル中の物質を判別するための測定チップ、この測定チップを搭載したセンサシステムおよび測定方法に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
食品の安全性検査や感染症の診断の際に行われる食品や体液由来サンプル中の菌の判別は、食品の安全性を確保したり、感染の拡大を防止したり、適正な投薬を行ったりするのに不可欠である。その判別方法としては、従来よりダイアグラムに従ってサンプル（以下、試料液体とも称する。）を順次検査する方法が採られている。ダイアグラムとは、測定対象に関係する生体物質の相互作用をグラフ化したものであり、測定対象を判別するのに必要な測定を示す複数のノードが、その測定順序に沿って紐付けられたものである。図１５に示すように、１つのノードに示される検査を行った後、この検査結果に基づいて、次のノードに進んでこのノードに示される検査を行うものである。また、ノードによっては、その検査結果をそのまま出力したり、検査結果となる可能性のリストを出力したりする場合もある。
【０００３】
例えば、菌を判別する場合には、図１６，図１７に示すようなダイアグラムが用いられている（例えば、非特許文献１参照。）。これらのダイアグラムでは、まず図１６の最初のノードにおいて、採取したサンプルを培地で希釈培養してコロニーを形成させ、このコロニーの形状で分類を行った後、図１７に示すノードに移行して、対応するノードでの検査結果に基づき次のノードに移行して種々の検査を逐次行うことにより、菌の種類の絞り込みを実現している。
また、疾病を診断する場合には、ダイアグラムに基づいて疾病を特徴付ける種々のマーカー分子の濃度または濃度比、時間的な変化を測定することによって、疾病の判断や原因の推定などが行われている。一例として、血液の凝固能の検査では、血液凝固系の転換系（例えば、非特許文献２，３参照。）と、活性化経路とが知られており、図１８に示すようなダイアグラムが用いられている。このダイアグラムによれば、分子濃度と凝固の状態を測定することにより、凝固能の異常を引き起こしている原因を推定することができる。
【０００４】
上述したようなダイアグラムを用いた菌の判別や疾病の診断の具体的な検査方法としては、例えば、感染の疑いがある体液をサンプルとして培養法でコロニーを形成した後、単一コロニーをサンプルとして種々の生理活性と栄養要求性などによって判別する方法がある。また、コロニー単離後にサンプルからＤＮＡを抽出し、その塩基配列を調べて既知のデータベースと照合する、または、ＰＣＲ（Polymerase Chain Reaction）による特定塩基配列の有無を調べるなどの方法で菌を判別する方法もある。さらに、特定の菌に特徴的な物質を非捕捉物質または活性物質とし、この物質に対する抗体を捕捉物質として免疫測定で非捕捉物質の有無を調べるまたは基質を反応物質として活性を調べる方法もある（例えば、非特許文献４参照。）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】国際公開第２００９／０８８０２１
【特許文献２】特開２０１０−１０１６４６号公報
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】C. R. Mahon, D. C. Lehman, G. Manuselis、“Textbook of Diagnostic microbiology”、W. B. Saunders、  p. 318,319,322,325、2011
【非特許文献２】藤巻道男、「血液凝固検査ハンドブック」、宇宙堂八木書店、昭和６２年
【非特許文献３】河合忠、屋形稔、伊藤喜久、「異常値のでるメカニズム第５版」、医学書院、2008年
【非特許文献４】JOURNAL OF CLINICAL MICROBIOLOGY、18、1983、pp.722-724
【非特許文献５】“Cytokine_networks”、[on line]、Abcam Poster library、インターネット、<http://docs.abcam.com/pdf/immunology/cytokine_networks.pdf>
【非特許文献６】「メタボリックパスウェイマップ  第２２版」、Sigma-Aldrich M3782
【非特許文献７】Y.Iwasaki, M.seyama, T.Miura, T.Horiuchi, E.Tamechika、“In-situ sub-micrometer surface flow velocity measurement”、15th International Conference on Miniaturized System for Chemistry and Life Sciences、予稿集 pp.906-908、October 2, 2011
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
しかしながら、上述したようなダイアグラムを用いた方法では、前段のノードの検査結果に応じて次のノードを決定して検査を行うというように、ノードに示される検査を逐次行うことにより検査が進められてゆくので、検査の終了までに時間がかかっていた。このとき、体液サンプルから菌を単離するための培養やＤＮＡの抽出増幅操作など培養や免疫反応を使う検査が含まれていたり、反応のインキュベーション（潜伏）時間がかかったり、サンプルの前処理に手間がかかったりする場合には、それぞれの処理だけで数時間から数日の時間が必要となることがあるので、これらを逐次行うことによりさらに時間がかかっていた。
【０００８】
そこで、本発明は、迅速に検査結果を得ることができる測定チップ、センサシステム、測定方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
上述した課題を解決するために、本発明に係る測定チップは、基板表面に形成された金属膜と、この金属膜上に形成された流路と、流路内の金属膜上に固定され、被捕捉物質を特異的に捕捉する捕捉物質と、流路内の金属膜上に固定され、被捕捉物質を捕捉しない非捕捉物質とを備え、捕捉物質は、流路を流れる流体中の測定対象に関係する生体物質の相互作用を示すダイアグラムの各ノードに関わる物質からなることを特徴とするものである。
【００１０】
上記測定チップにおいて、捕捉物質は、抗α溶血素、抗β溶血素、プロトロンビン、抗黄色ブドウ球菌病原因子およびhIgG、抗連鎖球菌属病原因子並びに阻害剤であるようにしてもよい。
【００１１】
また、上記測定チップにおいて、捕捉物質は、15-merのＤＮＡであるようにしてもよい。
【００１２】
また、本発明に係るセンサシステムは、基板表面に形成された金属膜、この金属膜上に形成された流路、および、流路内の金属膜上に固定され、被捕捉物質を特異的に捕捉する捕捉物質を備えた測定チップと、流路を流れる流体の流速を測定する流速測定手段と、流体中の物質と捕捉物質との吸着速度を測定する吸着速度測定手段とを備え、捕捉物質は、流路を流れる流体中の測定対象に関係する生体物質の相互作用を示すダイアグラムの各ノードに関わる物質からなることを特徴とするものである。
【００１３】
上記センサシステムにおいて、流速測定手段および吸着速度測定手段は、金属膜表面における屈折率に基づいて測定を行うようにしてもよい。
【００１４】
また、上記センサシステムにおいて、流速測定手段および吸着速度測定手段の測定結果に基づいて、被捕捉物質それぞれの濃度を測定する濃度測定手段と、流体中に含まれる被捕捉物質の濃度と測定対象との関係を記憶する記憶手段と、濃度測定手段による測定結果と、記憶手段に記憶された関係とに基づいて、流体中に含まれる測定対象を判別する判別手段とをさらに備えるようにしてもよい。
【００１５】
また、本発明に係る測定方法は、基板表面に形成された金属膜、この金属膜上に形成された流路、および、流路内の金属膜上に固定され、被捕捉物質を特異的に捕捉する捕捉物質を備えた測定チップの流路を流れる流体の流速を測定する流速測定ステップと、流体中の物質と捕捉物質との吸着速度を測定する吸着速度測定ステップとを有し、捕捉物質は、流路を流れる流体中の測定対象に関係する生体物質の相互作用を示すダイアグラムの各ノードに関わる物質からなることを特徴とするものである。
【発明の効果】
【００１６】
本発明によれば、測定チップの流路中の金属膜上に、この流路を流れる流体中の測定対象に関係する生体分子の相互作用を示すダイアグラムの各ノードに関わる被捕捉物質を特異的に捕捉する捕捉物質を固定することにより、ダイアグラムの各ノードにおける検査を並列に実行できるので、測定時間を短縮することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１７】
【図１】図１は、本発明の第１の実施の形態に係るセンサシステムの構成を模式的に示す正面図である。
【図２】図２は、図１における測定チップの構成を模式的に示す斜視図である。
【図３】図３は、図２の測定チップの分解斜視図である。
【図４】図４は、図２の測定チップの平面図である。
【図５】図５は、捕捉物質スポットおよび非捕捉物質スポットの構成を模式的に示す平面図である。
【図６】図６は、スポッター装置の構成を模式的に示す図である。
【図７】図７は、第１の実施の形態における捕捉物質と被捕捉物質を説明するための図である。
【図８】図８は、第１の実施の形態において実際に作成した測定チップを示す図である。
【図９】図９は、第１の実施の形態においてＳＰＲセンサ２による測定結果を示す図である。
【図１０Ａ】図１０Ａは、Staphylococcus aureusを測定対象としたときの濃度の算出結果を示す図である。
【図１０Ｂ】図１０Ｂは、Coagulase-negative Staphylococcus sppを測定対象としたときの濃度の算出結果を示す図である。
【図１１】図１１は、屈折率の時間変化を示す図である。
【図１２】図１２は、捕捉物質の選択方法を説明するための図である。
【図１３】図１３は、第２の実施の形態で行われる判別を説明するための図である。
【図１４Ａ】図１４Ａは、捕捉物質スポットの形成方法を説明するための図である。
【図１４Ｂ】図１４Ｂは、捕捉物質スポットの形成方法を説明するための図である。
【図１４Ｃ】図１４Ｃは、捕捉物質スポットの形成方法を説明するための図である。
【図１４Ｄ】図１４Ｄは、捕捉物質スポットの形成方法を説明するための図である。
【図１５】図１５は、ダイアグラムの基本構成を説明するための図である。
【図１６】図１６は、菌の判別に関するダイアグラムを示す図である。
【図１７】図１７は、菌の判別に関するダイアグラムを示す図である。
【図１８】図１８は、血液の凝固能に関するダイアグラムを示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１８】
[発明の原理]
上述したようにサンプルに含まれる菌の判別や疾病の診断は、図１６〜図１８で示したようなダイアグラムに表すことができる。また、糖・脂質・アミノ酸・核酸などの代謝物の経路やサイトカイン類の反応経路も、同様のダイアグラムで表すことができる（例えば、非特許文献５，６参照。）。従来では、このようなダイアグラムに沿ってサンプルに含まれる物質の測定を行っていたが、この測定に要する時間は、（２）ダイアグラムの各ノードを逐次実行するための累積時間、（２）ダイアグラムの各ノードにおける測定時間、によって長くなっていた。
【００１９】
このようなダイアグラムのような順次検査を行う方法に代わって、近年では、バイオセンサおよびバイオチップ（以下、「測定チップ」と言う。）を用いた方法が脚光を浴びている。この方法は、抗体、酵素、ＤＮＡといった特異性を有する捕捉物質を固定した基板を用い、生化学的反応に基づいてサンプル内に存在する被捕捉物質（以下、「ターゲット物質」とも称する。）を分析するものである。このような分析方法は、人や家畜の健康管理、食品や医療品などの製造管理、環境測定、医療現場での迅速で簡便な計測への応用が期待されている。その中でも、マイクロＴＡＳ（Total Analysis Systems）技術を用いた検査が注目を浴びている。このマイクロＴＡＳ技術とは、微細加工技術を使って液体のサンプルが流れる微細な流路を形成し、この流路中に捕捉物質を固定化することにより、μＬ単位のサンプルで免疫測定や酵素反応の測定を行うものである。このようなマイクロＴＡＳ技術を用いることによって、少ないサンプルで迅速にターゲット物質の検出と濃度測定を行うことができるセンサを構築することができる。特に、１つのチップに捕捉物質を多数アレイ化しておくと、一度に多数の分析対象を検出することができる。このように多数の分析対象の物質（被捕捉物質）を検出できると、単に多くの指標を得られるだけでなく、応答のパターン解析をすることによってより高度な情報として菌の判別、診断などに関する情報に変換することも可能となる。
【００２０】
このようなマイクロＴＡＳ技術を使ったセンサにおいて、多数の被捕捉物質を同時に測定する場合、サンプル量が少なくてよいとともに、サンプル中の被捕捉物質と捕捉物質とを同じ条件で反応させることができるので、成分の時間変化があっても多数の捕捉物質に対して同じサンプル状態（温度、捕捉物質の活性化度）で反応させることができる。このため、多数の捕捉物質を個別に反応させる場合と比べて、より正しい被捕捉物質の濃度比や捕捉物質の時間変化を測定することが可能となる。
【００２１】
そこで、本発明は、測定対象に関係する生体分子の相互作用を示すダイアグラムの各分岐点に関わる被捕捉物質に対する捕捉物質と、非捕捉物質とを測定チップの流路に固定し、この流路にサンプルを流通させ、サンプルが流路を流れる際の流速およびサンプル中の物質と各捕捉物質との吸着速度を同時に測定することにより、サンプルに含まれる物質を判別して、そのサンプルに含まれる菌を判定したり、疾病を診断したりするものである。このように、本発明は、ダイアグラムといった既存の診断方法を測定チップを用いた単一の測定方法に置き換えたものである。
このような構成を採ることにより、（１）については、各捕捉物質を流路に固定して、この流路にサンプルを流通させることによりダイアグラムの各ノードに示される検査を並列に実行することによって、全体の測定時間を短縮することができる。また、（２）については、各ノードにおける個々の検査を、吸着量を経時的に測定することにより吸着速度を算出して、この吸着速度から被捕捉物質の濃度を測定することによって測定時間を短縮することができる。
【００２２】
本発明のような多項目測定では、被捕捉物質と捕捉物質の吸着を測定する方法を適宜自由に選択することができる。捕捉物質として抗体を使えば、多くの被捕捉物質に対して捕捉物質を作製することができ、測定可能な判定項目を選びやすい。抗体のほかにはアプタマーを使うことができる。また、特定の基質を吸着する酵素も使うことができる。何れの場合でも、吸着量を経時的に測定し、吸着速度を測定すると、吸着平衡までインキュベーションする時間を必要とせず、被捕捉物質の濃度を迅速に計測することができる。このような、吸着量の経時的測定は、表面プラズモン共鳴（ＳＰＲ：Surface plasmon resonance）法、ＱＣＭ（Quarts Crystal Microbalance）法などで実現できる。この中でも、ＳＰＲ法は多項目の測定に適している。
【００２３】
なお、本発明では、速度、温度、サンプルの経過時間を揃える必要があるので、同じサンプルで全てのダイアグラムの判定項目を同時に測定することが望ましい。
また、サンプルの前処理にかかる時間を省略するために、サンプルを直接センサに導入することにより、サンプルの粘度、密度の変位、差異等によって生じる流路中の流れの変動を測定し、この測定結果から被捕捉物質の濃度を補正する。
また、ダイアグラムの判定項目が非常に多い場合には、ダイアグラムの中から、最終判断に近い位置の判定項目を選択する。それ以外の判定項目は、エピトープ（（epitope) は、抗体が認識する抗原の一部分のこと）の異なる複数のモノクロナル抗体（単一の抗体産生細胞に由来するクローンから得られた抗体（免疫グロブリン）分子）を用いるか、ポリクロナル抗体（動物に抗原を投与して得られる抗体分子の総称）を用いるのが好ましい。
さらに、マイクロＴＡＳ技術を使ったセンサでは、サンプルの粘度や密度の違いによってマイクロ流路が詰まる可能性がある。このように性状の一定しない生体サンプルを測定する場合には、分散剤、界面活性剤、安定剤等を含むコンディショニングバッファでサンプルを希釈したり、遠心分離やフィルターで大粒径成分を除去したりするなどの方法を採ることが望ましい。
【００２４】
[第１の実施の形態]
次に、本発明に係る第１の実施の形態について詳細に説明する。
【００２５】
＜センサシステムの構成＞
本実施の形態に係るセンサシステムは、牛乳中の菌を判別するためのセンサシステムであって、図１に示すように、自己送液型マイクロ流路チップを構成する測定チップ１と、この測定チップ１を搭載するマルチチャンネル屈曲率センサ（以下、「ＳＰＲセンサ」と言う。）２０と、この屈曲率センサ２０からの出力に基づいて各種演算を行う演算装置３０とを備えている。
【００２６】
≪測定チップの構成≫
図２〜図４に示すように、測定チップ１は、平面視略矩形の基板２と、この基板２上に配設されるスペーサ部材３と、このスペーサ部材３上に配設されるキャピラリーポンプユニット４とから構成されている。
このような測定チップ１には、試料液体が導入される導入部１１と、この導入部１１に一端が接続された測定流路１２と、この測定流路１２の他端から二手に分岐される分岐流路１３と、この分岐流路１３に接続して測定流路１２の両脇に配置された吸引流路１４と、この吸引流路１４上に配置されたキャピラリーポンプ１５と、このキャピラリーポンプ１５の上部に配置された排出部１６とが設けられている。なお、排出部１６は必ずしも設けられていなくともよい。
【００２７】
基板２は、例えばＢＫ７等の光学ガラスまたはポリマー系の材料から成形され、一定の厚みを有する板状に形成されている。本実施の形態では、基板２として、１６ｍｍ×１６ｍｍで厚さが１ｍｍのＢＫ７ガラスを用いた。このような基板２の下面にはマッチングシート５が配設されており、基板２の上面には金属膜６が配設されている。
ここで、マッチングシート５は、測定チップ１をＳＰＲセンサ２０に搭載する際に、マッチングシート５が接触するプリズム２１および基板２の屈折率に整合したシリコン系のゴムやゲル状の透明シートから構成される。本実施の形態においては、２液混合タイプで硬化後の屈折率が１．５３の透明シリコンゴムを基板２の下面に滴下し、塗布しすることにより、厚さ０．１ｍｍのマッチングシート５を形成した。このようなマッチングシート５を設けることにより、容易にプリズム２１と測定チップ１を光学的に接着することができ、迅速な測定チップの交換が可能になり、また、プリズム２１面上の埃を測定チップの交換の度に除去できる。
また、金属膜６は、基板２上面に形成された金属の薄膜から構成される。本実施の形態においては、蒸着によってチタンを基板２上面に設けることにより、厚さ約５０ナノメートルの金属膜６を形成する。
【００２８】
スペーサ部材３は、基板２と同一の外周寸法の平面視矩形状をなし、例えば樹脂フィルムから成形されており、その厚みは基板２よりも小さいものとされている。この矩形状のスペーサ部材３において、１組の対辺における一方の辺寄りの領域であって、その一方の延在方向における略中央部の領域には、円形孔３ａが開口されており、また、一端がこの円形孔３ａに接続され、その１組の対辺における他方の辺に向かって延びる流路溝３ｂが開口されている。さらに、流路溝３ｂの他端から両脇に向かって二手に分岐する分岐溝３ｃおよびこれら分岐溝３ｃにそれぞれ接続される矩形孔３ｄが形成されている。
【００２９】
キャピラリーポンプユニット４は、基板２と同一の外周寸法の平面視矩形状をなし、例えばアクリル、ガラス、金属、セラミック等から成形されており、その厚さは０．５〜５ｍｍ程度とされている。なお、キャピラリーポンプユニット４は、複数のシート状基材が積層されることで構成されるようにしてもよい。
【００３０】
キャピラリーポンプユニット４には、キャピラリーポンプユニット４の上面側に形成された導入部分４ａと、キャピラリーポンプユニット４の下面側に形成された連通部分４ｂとから構成されている。ここで、導入部分４ａは、連通部分４ｂより広く形成され、導入部分４ａから連通部分４ｂにかけて階段状に形成されている。したがって、導入部分４ａを平面視した場合、連通部分４ｂの底面に加え、導入部分４ａおよび連通部分４ｂからなる階段部分の上面が、目視可能となる。
また、キャピラリーポンプユニット４には、スペーサ部材３における分岐溝３ｃおよび矩形孔３ｄに対応するようにして円柱孔４ｃが形成されており、より詳細には、分岐溝３ｃに対応する箇所には、分岐溝３ｃの幅方向に１つが配設されてるように円柱孔４ｃが形成されており、さらに、矩形孔３ｄに対応する箇所には、矩形孔３ｄ上に二次元的に配設されるように円柱孔４ｃが形成されている。なお、分岐溝３ｃに対応する箇所には、分岐溝３ｃの幅方向に２つ以上の円柱孔４ｃが配置されていてもよい。
ここで、円柱孔４ｃの径は、試料液体に対して毛細管現象が発現する大きさとされている。これにより、複数の円柱孔４ｃが毛細管現象により試料液体を吸引するキャピラリーポンプ１５として機能することとなる。
【００３１】
このようなキャピラリーポンプユニット４がスぺーサ部材３を介して基板２上に設けられることによって、本実施の形態の測定チップ１が構成される。
この際、キャピラリーポンプユニット４の連通部分４ｂとスペーサ部材３の円形孔３ａとが重なり合うことにより、試料液体が導入される導入部１１が形成される。
また、スペーサ部材３の流路溝３ｂの下方が基板２上面の金属膜６、流路溝３ｂの上方がキャピラリーポンプユニット４の下面によってそれぞれ閉塞されることにより、導入部１１に導入された試料液体が流通する測定流路１２が形成される。
同様にして、スペーサ部材３の分岐溝３ｃの上方がキャピラリーポンプユニット４の下面によって閉塞されることで、測定流路１２を通った試料液体が流通する分岐流路１３が形成される。また、スペーサ部材３の矩形孔３ｄの上方がキャピラリーポンプユニット４の下面によって閉塞されることで、キャピラリーポンプ１５によって試料液体が吸引される吸引流路１４が形成される。
【００３２】
これら測定流路１２、分岐流路１３および吸引流路１４の上下方向の間隔、すなわち、スペーサ部材３の厚みは、試料液体に対して毛細管現象が発現する大きさとされている。また、上述したように貫通孔１３ｃの径は、試料液体に対して毛細管現象が発現する大きさとされている。
これにより、導入部１１に導入された試料液体は、測定流路１２、分岐流路１３および吸引流路１４内を毛細管現象により進行していくことになる。また、分岐流路１３および吸引流路１４に到達した試料液体は、毛細管現象により貫通孔１３ｃに吸い上げられる。すると、測定流路１２内を試料液体が所定の流速で移送されることとなる。この測定流路１２を通過する際にＳＰＲ装置２０により表面プラズモン共鳴現象を利用した測定が実施される。この表面プラズモン共鳴現象を利用した測定は、測定対象のサンプルが接触した金属（本実施の形態においては金属膜６）の表面における、エバネッセント波と表面プラズモン波との共鳴を用いるものである。したがって、金属膜６上の測定流路１２の領域がＳＰＲ装置２０による観測領域となる。
【００３３】
この観測領域に対応する測定流路１２を構成する金属膜６上には、図５に示すように、捕捉物質により形成された捕捉物質スポット１０１と、非捕捉物質により形成された非捕捉物質スポット１０２とが、測定流路１２の延在方向に所定間隔を隔てて互い違いに複数設けた捕捉物質アレイが形成されている。
【００３４】
捕捉物質スポット１０１は、互いに異なるｎ種の捕捉物質からなるスポットが複数設けられている（捕捉物質スポット１０１ａ〜１０１ｎ）。捕捉物質は、ターゲット分子を特異的に捕捉する物質であり、抗体、酵素、ＤＮＡ、ＤＮＡおよびＲＮＡのうちの何れかからなるアプタマー、またはタンパク質等が用いられる。
本実施の形態においては、後述するように、牛乳中の菌を判別するための９個の捕捉物質スポット１０１を設けている。
【００３５】
一方、非捕捉物質スポット１０２を構成する非捕捉物質は、捕捉物質が捕捉するターゲット分子および試料液体中に含まれる夾雑物質の吸着を妨げる物質であり、測定対象物と同じものを主成分としていない物質から構成される。ここで、非捕捉物質の主成分とは、総量とすると水中に０．１−５％含まれている天然由来または人工のタンパク質、核酸、界面活性剤等のことを示すが、後述するスポッター装置の性能に適合させるために、その濃度は薄めても、または、濃縮してもよい。
また、捕捉物質スポット１０１および非捕捉物質スポット１０２は、免疫測定で用いられるブロッキング剤で形成されている。例えば、ＤＳファーマバイオメディカル（登録商標）社製ブロックエースを用いることができる。
被捕捉物質と捕捉物質のスポットは、そのスポット内では均一な屈折率を有することが望ましい。
【００３６】
このような被捕捉物質スポット１０１および非捕捉物質スポット１０２は、図６に示すようなインクジェット型のスポッター装置４０により、それぞれ異なる捕捉物質４１〜４３、または、非捕捉物質４４を吸引し、基板２上面の金属膜６の所定の位置に吐出させることにより形成される。なお、本実施の形態では、インクジェット型のスポッター装置６０を用いるが、ピンを押しつけるタイプのアレイヤーや圧力式のスポッター装置を用いてもよい。
また、捕捉物質スポット１０１および非捕捉物質スポット１０２を形成した後に、基板２上に非特異吸着を防ぐブロッキング処理を施して、捕捉物質スポット１０１および非捕捉物質スポット１０２の上にブロッキング剤が設けられた状態とするようにしてもよい。
【００３７】
≪ＳＰＲセンサの構成≫
ＳＰＲセンサ２０は、図１に示すように、光源２２からプリズム２１を介して測定チップ１に対して光を照射し、ＣＣＤカメラ２３によって測定チップ１により反射された反射光の強度を測定することで、測定チップ１上に生じるエバネッセンス波と表面プラズモンとの共鳴角度を測定する。これらの測定結果は、演算装置３０に出力される。なお、図１において、符号２４は、光源２２からの光を透過するレンズ、符号２５は、測定チップ１から反射された反射光を透過するレンズを示している。このようなＳＰＲセンサ２０に対して、測定チップ１はプリズム２１上にマウントされた状態で用いられる。このようなＳＰＲセンサ２０を用いることにより、測定チップ１の測定流路１２中の流速を測定することができる（例えば、非特許文献７参照。）。
【００３８】
本実施の形態では、ＳＰＲセンサ２０としてＳＰＲ測定装置（ＮＴＴアドバンステクノロジ（登録商標）社製 smart SPR）に測定チップ１を装着して、この測定チップ１に固定した捕捉物質とサンプル中の非捕捉物質の反応量を経時的に測定した。そのＳＰＲ測定装置は、全反射光学系の焦線方向に観測可能な領域があり、長手方向は約５ミリメートル、幅は光源の収束幅に依存するが約０．３ミリメートル程度の領域となっている。観測領域における分解能力は、１０マイクロメートルである。
また、被捕捉物質と捕捉物質の反応は固定されている捕捉物質の厚さと同程度の液体の厚さの流速が実効的である。したがって、ＳＰＲセンサ２０により測定すべき流速は、測定流路１２の捕捉物質固定面から１００ナノメートル程度の極薄層とすることが望ましい。
【００３９】
≪演算装置の構成≫
演算装置３０は、図１に示すように、Ｉ／Ｆ部３１と、吸着速度算出部３２と、流速算出部３３と、濃度算出部３４と、判定部３５と、記憶部３６とを備えている。
【００４０】
Ｉ／Ｆ部３１は、ＳＰＲセンサ２０との間で各種信号の送受信を行うインターフェース回路から構成される。このようなＩ／Ｆ部３１は、ＳＰＲセンサ２０に搭載された測定チップ１にサンプルが供給されたときのＳＰＲセンサ２０のＣＣＤカメラ２３による測定結果を受信すると、これを吸着速度算出部３２および流速算出部３３に送出する。
【００４１】
吸着速度算出部３２は、ＣＣＤカメラ２３による測定結果に基づいて、測定チップ１の測定流路１２に固定された捕捉物質スポット１０１を構成する捕捉物質に、被捕捉物質が捕捉される速度を算出する機能部である。この算出結果は、濃度算出部３４に送出される。
【００４２】
流速算出部３３は、ＣＣＤカメラ２３による測定結果に基づいて、測定チップ１の測定流路１２を流れるサンプルの流速を算出する機能部である。この算出結果は、濃度算出部３４に送出される。
【００４３】
濃度算出部３４は、吸着速度算出部３２および流速算出部３３による算出結果に基づいて、サンプル中の各被捕捉分子の濃度を算出する機能部である。この算出結果は、判定部３５に送出される。
【００４４】
判定部３５は、濃度算出部３４による算出結果と、記憶部３６に記憶された所定のサンプルに含まれる測定対象に関連する各被捕捉分子の濃度に関する情報とを比較し、この比較結果に基づいて測定チップ１に供給されたサンプルに含まれる物質を判定する機能部である。
【００４５】
記憶部３６は、所定のサンプルに含まれる各被捕捉分子の濃度と測定対象との関係を予め記憶しているメモリ装置から構成されている。このような記憶部には、その関係が複数記憶されている。なお、判定部３５により、濃度算出部３４による算出結果と一致する情報が存在しないと判定された場合、その算出結果を新たなサンプルとして記憶部３６に記憶するようにしてもよい。これにより、判定部３５による判定精度を向上させることができる。
【００４６】
このような演算装置３０は、ＣＰＵ等の演算装置と、メモリ、ＨＤＤ（Hard Disk Drive）等の記憶装置と、キーボード、マウス、ポインティングデバイス、ボタン、タッチパネル等の外部から情報の入力を検出する入力装置と、インターネット、ＬＡＮ（Local Area Network）、ＷＡＮ（Wide Area Network）等の通信回線を介して各種情報の送受信を行うＩ／Ｆ装置と、ＬＣＤ（Liquid Crystal Display）や有機ＥＬ（Electro Luminescence）ディスプレイ等の表示装置を備えたコンピュータと、このコンピュータにインストールされたプログラムとから構成される。すなわちハードウェア装置とソフトウェアとが協働することによって、上記のハードウェア資源がプログラムによって制御され、Ｉ／Ｆ部３１、吸着速度算出部３２、流速算出部３３、濃度算出部３４、判定部３５および記憶部３６が実現される。なお、上記プログラムは、ＣＤ−ＲＯＭ、ＤＶＤ−ＲＯＭ、メモリカードなどの記録媒体に記録された状態で提供されるようにしてもよい。
【００４７】
＜判別動作＞
次に、本実施の形態に係るセンサシステムによる判別動作について説明する。本実施の形態では、測定チップ１に流すサンプルとして牛乳を用いた。この測定チップ１を用いた測定の特徴は、サンプルである菌に感染した牛乳を前処理することなく送液でき、サンプルを構成する分子の分布から感染菌に特徴的な分子を抗体で選び出し、その吸着反応をリアルタイムに測定し、経時変化量から被捕捉物質の濃度を推定し、その結果サンプル中の菌を迅速に判定できることである。本実施の形態では、牛乳中に含まれていると考えられる連鎖球菌族（Streptococcus spp）、黄色ブドウ球菌（Staphylococcus aureus）、コアグラーゼ陰性ブドウ球菌属（Coagulase-negative Staphylococcus spp）を測定対象とし、図１６，図１７のダイアグラムから９個の判定ステップ（ノード）を選択した図７に示すダイアグラムを作成した。さらに、このダイアグラムに基づいて捕捉物質を選択し、この捕捉物質から図５を参照して説明した方法により９個の捕捉物質スポット１０１ａ〜１０１ｉを作成した。具体的には、被捕捉物質であるα溶血素（α-Hemolysin）に対する捕捉物質として抗α溶血素（抗α-Hemolysin）、β-Hemolysinの２個の被捕捉物質（SPEB、SPEC）に対する捕捉物質として抗SPEB、抗SPECの２個を選択している。また、被捕捉物質であるコアグラーゼ（Coagulase）に対する捕捉物質としてプロトロンビン（Prothrombin）、黄色ブドウ球菌の病原因子（Staphylococcus aureus virulence factors）における被捕捉物質としてprotain A、SEB、SEDの３個を選択し、これらの捕捉物質として抗protain A、抗SEB、抗SED、ヒトIgGの４個を選択している。また、被捕捉物質である連鎖球菌の病原因子（Streptococcus virulence factor）に対する捕捉物質として、抗連鎖球菌の病原因子（抗Streptococcus virulence factor）を選択するとともに、ブロッキング剤（阻害剤：Blocking reagent）を選択した。このため、捕捉物質は合計で９個となる。このようにして作成した実際の測定チップ１を図８に示す。
なお、図５のダイアグラムにおいては、便宜上判別を「＋」と「−」で表しているが、本実施の形態においては、各ノードにおける判定では定量的な値が得られている。
【００４８】
このような測定チップ１をＳＰＲセンサ２０に装着し、牛乳中に含まれる菌の判別動作を行った。
【００４９】
まず、測定チップ１に、非捕捉物質スポット１０２と同等の非捕捉物質を含むブロッキング剤を流した後、牛乳を流通させた。このときに得られたＳＰＲセンサ２０による測定結果を図９に示す。この図９において、縦軸は共鳴角度、横軸は時間を示している。
【００５０】
図９の符号ａで示す時間までは、測定流路１２内をブロッキング剤が流れているので、各捕捉物質は反応しておらず、被捕捉物質の捕捉物質への吸着による屈折率の変化も見られない。一方、符号ａで示す時間を経過して測定流路１２内に牛乳が流れると、屈折率が変化しており、各捕捉物質が牛乳中の被捕捉物質と反応していることがわかる。
【００５１】
このような測定結果が得られると、演算装置３０の吸着速度算出部３２は、その屈折率の時間変化を測定することによって、被捕捉物質の吸着速度を算出する。また、濃度算出部３４は、吸着速度算出部３２により算出された初期の吸着速度に基づいて、被捕捉分子の濃度を算出する。この算出結果を図１０Ａ，図１０Ｂに示す。ここで、図１０Ａは黄色ブドウ球菌（Staphylococcus aureus）、図１０Ｂはコアグラーゼ陰性ブドウ球菌属（Coagulase-negative Staphylococcus spp）をそれぞれ測定対象としており、縦軸は濃度、横軸は被捕捉分子を表している。その縦軸は、各ノードの結果を定量的に表しており、横軸に付された数字１〜９は、捕捉物質スポット１０１ａ〜１０１ｉに１対１に対応している。
なお、濃度は、捕捉物質スポット１０１の両側の被捕捉物質スポットでの反応速度を基準として算出するので、図１０Ａ，図１０Ｂに示すように負の値として算出されることがある。また、サンプルの流速が遅い場合には捕捉物質に対する非捕捉物質の吸着が拡散律速になるが、どのような流速であっても正しく被捕捉物質の濃度を計算できるように、本実施の形態では、初期吸着速度から濃度を求める際に拡散律速となる場合を考慮したモデルを用いている。
【００５２】
被捕捉物質の濃度は、吸着速度算出部３２により算出された初期の吸着速度に比例する。したがって、事前に被捕捉物質の濃度が既知のサンプルを測定して、検量線を作成しておけば、測定された初期の吸着速度か被捕捉物質の濃度を求めることができる。一方、センサの判定結果を得るためには、濃度の絶対値は必ずしも必要ではないので、初期の吸着速度を濃度と読み替えてもよい。
【００５３】
また、流速算出部３３は、ＳＰＲセンサ２の測定結果に基づいて流速を算出する。この流速の算出には、図１１に示すようなＳＰＲセンサ２から得られる測定流路１２中における屈折率の時間変化を表す図を用いた。この図１１において、縦軸は測定流路１２に沿った流れ方向の位置、横軸は時間を示しており、この座標中における色は屈折率を表している。図１１の縦軸に示す符号は、捕捉物質スポット１０１ａ〜１０１ｉ（１−９）と非捕捉物質スポット１０２（ＢＬＫ）を示しており、これらが交互に並んでいる。この図１１からわかるように、測定流路１２にブロッキング剤と牛乳を順次流すと、上流から下流に屈折率の境界が移動している。そこで、流速算出部３３は、その境界で表されるサンプルの移動速度、すなわち符号ｂで示す三角形の斜辺の傾きから流速を求める。
【００５４】
このように、図１０Ａ，図１０Ｂに示すような測定する牛乳中の菌に応じて選択した９個の捕捉物質に対応する非捕捉物質とそれぞれの濃度を表す棒グラフ（以下、「パターン」と言う。）と、測定流路１２中を流れるサンプルの流速が算出されると、判定部３５は、算出されたパターンと、記憶部３６に予め記憶されたパターンとを比較して、一致するパターンを抽出し、この一致したパターンに対応する物質を判定結果として出力する。これにより、サンプル中に含まれる物質を判別することができる。なお、判定部３５は、流速算出部３３により算出された流速に基づいて、濃度算出部３４により算出されたパターンを記憶部３６に記憶されたパターンを得たときの流速と対応するように補正する。これにより、濃度算出部３４により算出されたパターンと記憶部３５に記憶されたパターンとの比較をより正確に行うことができる。
【００５５】
以上説明したように、本実施の形態によれば、捕捉物質スポット１０１と、非捕捉物質スポット１０２とを測定チップ１の測定流路１２に固定し、この測定流路１２にサンプルを流通させ、サンプルが測定流路１２を流れる際の流速とサンプル中の物質と各捕捉物質との吸着速度を測定することにより、ダイアグラムの各ノードにおける検査を並列に実行できるので、測定時間を短縮することができる。
【００５６】
ダイアグラムのノードの数が増えると、測定流路１２中に高密度で捕捉物質スポット１０１をスポットする必要があるが、ノードの判定方法を確実に実現するためには、各捕捉物質が混ざることなく、活性が分離するようにスポットを形成する必要がある。そこで、本実施の形態では、被捕捉物質からなる非捕捉物質スポット１０２を設けている。これにより、隣り合う捕捉物質の活性の混合を防止でき、さらに大きな非特異吸着の起きるサンプルでも捕捉物質スポット１０１と非捕捉物質スポット１０２との吸着速度の差分測定を行うことにより、捕捉物質の濃度をより正確に測定することができる。
なお、測定対象の主成分とは、捕捉物質を製造または設計する際に、捕捉対象とする分子のことである。動物に免役させて作製する抗体の場合には、その抗原となる分子が主成分である。また、人工的に設計するアプタマーの場合には、設計の際に使う捕捉対象分子のことである。
【００５７】
また、本実施の形態によれば、単一の測定チップ１で多数の物質を計測するので計測に必要なサンプル体積を小さくできる。また、同じ条件で生化学的反応を行うことができるのでサンプルの時間的な変化の影響を排除できるとともに時間的な変化を追跡することができる。さらに、サンプルを分割して多数のセンサで並列または順次測定する場合と比べて、被捕捉物質の濃度間の相関に対する変動要因を小さくすることができるので、菌の判別や診断をより正しく行うことができる。
【００５８】
また、ダイアグラムを逐次実行する場合、最終結果に到達する経路にあるノードだけで判定が行われるが、本実施の形態によれば、測定流路１２に固定した全捕捉物質との反応が測定される。そこで、必要とされる測定以外の捕捉物質とサンプルとの反応性を予め調べておくことによって、最終結果の妥当性を検証するデータを得ることができる。これにより、ダイアグラムの作製を想定していなかった特異なサンプルや、混合物があっても、菌の判別や、診断を正しく行う可能性が高くなる。例えば菌の判別では、図１６，図１７で示した判定は目視で行われるために、曖昧さを含むものとなっている。また、図１８の判定では、菌をどのような培養条件でも判定関連分子（カタラーゼ、コアグラーゼ、Virulence factor）を産生するかは不明である。ダイアグラムを逐次実行する判定では最大４つのノードがあり、得られる４つのデータをもとに判別が行われることになるが、予めｎ（＞４）個の判定関連分子に対するサンプルの反応を調べて記憶部３６に記憶させておけば、ｎ個のデータをもとに判別することになり、サンプルの変異に対応することができる。
【００５９】
また、ダイアグラムから選択する捕捉物質は、図１２に示すように、想定しうる菌の集合に対して、ノードの上流では符号Ａ，Ｂ，Ｃ，Ｄのようにカバー範囲が広い判定を行える捕捉物質を選択し、ノードの下流では符号Ｅ，Ｆ，Ｇのようにカバー範囲が狭い捕捉物質を選択することが望ましい。実際のカバー範囲の重なりは、多次元で複雑である。カバー範囲の狭い判定は、特異性の高い抗体に相当する。カバー範囲の狭い判定では決定的で正確な判定が期待できるが、１つのノードで１つの菌しか判定できないので、実際には多数のノードが必要になる。一方、カバー範囲が広い判定は、特定の結果には結びつかないが、判定結果の集合をより等しい範囲に分割することができる。このように捕捉物質を選択することにより、ノードの上流での大まかな判定と、ノードの下流での細かい判定の組み合わせて、少ないノード数で多くの判別をより正確に行うことができる。一方、ノードの判定が特定の菌に決定的である場合には、ｎ個のデータではｎ種の菌しか判別できない。また、ノードの判定が菌の集合を分割する場合には、各データに閾値を設けて判定すると最大で２n個の判定を行うことができるので、捕捉物質を節約することができる。さらに、閾値を設けずに定量的なパターンで判定する場合には、捕捉物質のカバー範囲を必要な判別に適切に設定することにより、正確に判別できる数を多くできる。
【００６０】
また、本実施の形態によれば、簡便に測定が行えるので、サンプルを取得した場所で測定することができる。また、迅速に測定できるために、サンプルが劣化しやすい、または菌の判定ではサンプリング中に雑菌が混入した場合でも、サンプルの輸送時間で劣化が進んだり、培養する必要がないために混入した菌が増殖する前に測定することができ、正しい測定を行うことができる。
【００６１】
［第２の実施の形態］
次に、本発明の第２の実施の形態について説明する。本実施の形態は、サンプルとして血液を用いて血液の凝固系を測定するものであり、上述した第１の実施の形態と捕捉物質スポット１０１を構成する捕捉物質およびこの捕捉物質に捕捉される非捕捉物質が異なるものである。したがって、上述した第１の実施の形態と同等の構成要素については同じ名称および符号を付し、適宜説明を省略する。
【００６２】
本実施の形態は、図１３に示すように図１８のダイアグラムから選択した血液の凝固系に関する１つのノードについて判別を行うものであり、２０−ｍｅｒのＤＮＡ（５’−Ｂ−ＴＴＴＴＴＧＧＴＴＧＧＴＧＴＧＧＴＴＧＧ−３’）をアプタマーとして用い、捕捉物質とした捕捉物質スポット１０１を作成した。この捕捉物質には第ＩＩａ因子（prothrombin）を吸着するので、この第ＩＩａ因子が被捕捉物質となる。
【００６３】
そして、２０−ｍｅｒのＤＮＡからなる捕捉物質スポット１０１を備えた測定チップ１に血清サンプルを流通し、上述した第１の実施の形態と同等の方法により被捕捉物質の濃度と流速を測定する。この結果、被捕捉物質の濃度に関するパターンと流速を測定することができる。得られたパターンは、プロソロンビン時間と相関があり、血液凝固に関する診断を行うことができる。さらに、第ＩＩａ因子の濃度を測定できるので、凝固の異常が第ＩＩａ因子を経由した経路で起きていか否かの判断ができる。
【００６４】
このように、本実施の形態によれば、２０−ｍｅｒのＤＮＡからなる捕捉物質スポット
１０１を測定チップ１の測定流路１２に固定し、この測定流路１２に血清サンプルを流通
させ、サンプルが測定流路１２を流れる際の流速とサンプル中の物質と各捕捉物質との吸
着速度を測定することにより、測定時間を短縮することができる。
【００６５】
なお、本実施の形態では、バイオハザード材料である血液をサンプルとするので、採取できる体積が小さいほど望ましく、その凝固を測定するとともにサンプリングから測定までに時間がかかると凝固が進んでしまうので、サンプルの取得から限られた時間で測定を行う必要があり、かつ、測定後も測定チップを衛生的に処分する必要がある。そこで、本実施の形態における測定チップ１は、小型であり、かつ、使い捨てであることが望ましい。
【００６６】
また、本実施の形態では、捕捉物質を金属膜６上に固定する方法は第１の実施の形態で説明した方法に限定されず、図１４Ａ〜図１４Ｄに示す方法であってもよい。この方法について以下に説明する。
【００６７】
まず、図１４Ａに示すように、基板２上の金属膜３の表面にＵＶ処理を行い、親水性処理を行う。
【００６８】
次に、図１４Ｂに示すように、金属膜３上に、一末端にビオチンを付加し、他末端にＳＨ基を付加したＰＥＧ溶液をチップ表面に塗布し、基板修飾を行いポリマー層７を形成した。この場合、基板２全面に表面からおよそ３００（オングストローム）離れた領域にビオチンが提示されるようにした。このように離間させることで、最終的に均一な距離で捕捉物質が整列すると同時に反応の空間自由度が増す。なお、金属膜３は金から構成されている。
【００６９】
次に、図１４Ｃに示すように、表面修飾した基板２上にスポッター装置４０を使って、ストレプトアビジン（ＳＡ）１０３のスポットを隣接させて２つ形成する。
【００７０】
次に、図１４Ｄに示すように、隣接する２つのストレプトアビジン１０３の中央にビオチン付きの捕捉物質からなる捕捉物質スポット１０１を形成する。その後は、接続分子の反応のため５分静置し、その後は、ビオチン付き２０塩基のポリミチンを混合したブロッキング剤を基板２表面全体に乗せた後、超純水で洗浄を行い風乾して測定まで４℃で保管する。
【００７１】
このようにして捕捉物質スポット１０１を形成することにより、高精度に位置決めでき、フレキシブルな設計が可能となる。
【産業上の利用可能性】
【００７２】
本発明は、食品検査、生乳検査、人畜の疾病診断、環境指標の検定等に適用することができる。
【符号の説明】
【００７３】
１…測定チップ、２…基板、３…スペーサ部材、３ａ…円形孔、３ｂ…流路溝、３ｃ…分岐溝、３ｄ…矩形孔、４…キャピラリーポンプユニット、４ａ…導入部分、４ｂ…連通部分、４ｃ…円柱孔、５…マッチングシート、６…金属膜、１１…導入部、１２…測定流路、１３…分岐流路、１４…吸引流路、１５…キャピラリーポンプ、１６…排出部、２０…ＳＰＲセンサ、２１…プリズム、２２…光源、２３…ＣＣＤカメラ、２４，２５…レンズ、３０…演算装置、３１…Ｉ／Ｆ部、３２…吸着速度算出部、３３…流速算出部、３４…濃度算出部、３５…判定部、３６…記憶部、４０…スポッター装置、１０１…捕捉物質スポット、１０２…非捕捉物質スポット。
【図１】
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【図４】
0005706300.tif 000003
【図６】
0005706300.tif 000004
【図７】
0005706300.tif 000005
【図１２】
0005706300.tif 000006
【図１３】
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【図１４Ａ】
0005706300.tif 000008
【図１４Ｂ】
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【図１４Ｃ】
0005706300.tif 000010
【図１４Ｄ】
0005706300.tif 000011
【図１５】
0005706300.tif 000012
【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図２】
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【図３】
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【図５】
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【図８】
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【図９】
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【図１０Ａ】
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【図１０Ｂ】
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【図１１】
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