(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
基材と、該基材に結合した下記式２で表されるリンカーと、該リンカーに結合したエンドドキシン吸着リガンドＬと、を備え、Ｌが下記式３で表される、エンドトキシン吸着材。
【化１】
0005682916.tif 000016
［式２中、Ｂｎはベンジル基、ｘは２〜６の数を示す。＊は基材と結合していること、＊＊はＬと結合していることを示す。］
【化２】
0005682916.tif 000017
［式３中、ＡＡ１、ＡＡ２、ＡＡ３及びＡＡ４はそれぞれ独立にアミノ酸残基を示す。＊＊はリンカーと結合していることを示す。］
【請求項２】
前記基材が、ポリビニルアルコール樹脂である、請求項１に記載のエンドトキシン吸着材。
【請求項３】
ｘが２である、請求項１又は２に記載のエンドトキシン吸着材。
【請求項４】
水不溶性担体と、エンドドキシン吸着リガンドとを反応させて得られるエンドトキシン吸着材であって、
前記水不溶性担体が、基材と、該基材に結合した下記式１で表されるリンカーと、を備え、
【化３】
0005682916.tif 000018
［式１中、Ｂｎはベンジル基、ｘは２〜６の数、Ｂは保護基又は水素原子を示す。＊は基材と結合していることを示す。］
前記エンドドキシン吸着リガンドが、下記式４で表される、エンドトキシン吸着材。
【化４】
0005682916.tif 000019
［式４中、ＡＡ１、ＡＡ２、ＡＡ３及びＡＡ４はそれぞれ独立にアミノ酸残基を示す。］
【請求項５】
前記基材が、ポリビニルアルコール樹脂である、請求項４に記載のエンドトキシン吸着材。
【請求項６】
ｘが２である、請求項４又は５に記載のエンドトキシン吸着材。

【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、水不溶性担体及びエンドトキシン吸着材に関する。
【背景技術】
【０００２】
治療法の進歩にも関わらず、敗血症は依然として治療に難渋し、ＩＣＵにおける主たる死亡原因にもなっている病態である。最近では、ＴＮＦ−α、ＩＬ−１β、ＩＬ−６、ＩＬ−８等のサイトカインと敗血症性ショックとの関連性が注目され、エンドトキシンと様々なサイトカインが複雑に絡み合って敗血症の病態を形成することが明らかとなってきている。エンドトキシンはこれらサイトカインカスケードの引き金となるものであり、血中内に流入したエンドトキシンを速やかに体外に除去できるエンドトキシン吸着剤は、敗血症の病態改善に大きく貢献している。
【０００３】
現在では、エンドトキシン吸着式血液浄化剤として、東レ・メディカルによって開発されたトレミキシン（登録商標）が広く用いられている。トレミキシン（登録商標）は、ポリプロピレンを補強材としたα−クロロアセトアミドメチル化ポリスチレン複合繊維にポリミキシンＢを共有結合で固定化した吸着剤である。ポリミキシンＢは抗生物質であり、エンドトキシンの活性中心であるリピドＡと結合し、その活性を中和することが知られている。例えば、特許文献１には、繊維状担体にポリミキシンＢを固定化したエンドトキシン中和剤が開示されている。
【０００４】
特許文献２、３及び非特許文献１、２には、エンドトキシン、ＬＰＳ等を吸着できる細菌内毒素吸着剤やそのスクリーニング方法が開示されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特公平７−４９０５２号公報
【特許文献２】特開２００２−３１１０２９号公報
【特許文献３】特開２００７−３１４４８号公報
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】Ｋｏｉｃｈｉ  Ｆｕｋａｓｅ、Ｍａｓａｈｉｒｏ  Ｗａｋａｏ、Ｍｉｎｏｒｕ  Ｉｚｕｍｉ、Ａｔｓｕｓｈｉ  Ｕｅｎｏ、Ｍａｓａｔｏ  Ｏｉｋａｗａ、Ｙａｓｕｏ  Ｓｕｄａ、Ｓｈｏｉｃｈｉ  Ｋｕｓｕｍｏｔｏ、Ｈ．  Ｐｅｔｅｒ  Ｎｅｓｔｌｅｒ、Ｒｏｓｅｍａｒｉｅ  Ｓｈｅｒｌｏｃｋ、ａｎｄ  Ｒｕｉｐｉｎｇ  Ｌｉｕ、「Ｐｅｐｔｉｄｅ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２０００：Ｔ．  Ｓｈｉｏｒｉ  （Ｅｄ．）」、Ｔｈｅ  Ｊａｐａｎｅｓｅ  Ｐｅｐｔｉｄｅ  Ｓｏｃｉｅｔｙ  （２００１）、ｐ．３６５−３６８
【非特許文献２】Ｔａｋａｓｈｉ  Ｇｏｉ、Ｙｕｋａｒｉ  Ｆｕｊｉｍｏｔｏ  ａｎｄ  Ｋｏｉｃｈｉ  Ｆｕｋａｓｅ、「Ｐｅｐｔｉｄｅ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２００５：Ｔ．  Ｗａｋａｍｉｙａ  （Ｅｄ．）」、Ｔｈｅ  Ｊａｐａｎｅｓｅ  Ｐｅｐｔｉｄｅ  Ｓｏｃｉｅｔｙ  （２００６）、ｐ．４３３−４３６
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
特許文献１に記載された方法は、ポリミキシンＢ自体が高コストであり、また、ポリミキシンＢ（リガンド）を固定化する担体が、繊維であることから、リガンドの固定化が不均一になりやすく、かつ、極めて煩雑な工程であるため、実際の製造を考慮すると好ましいものではなかった。
【０００８】
特許文献２、３及び非特許文献１、２に記載された細菌内毒素吸着剤のリガンドは、分岐リジン残基を持つペプチド構造がリン酸基と相互作用する発見に基づいており、この分岐リジン構造を母骨格にして、リピドＡ誘導体に対する様々なペプチド性吸着剤ライブラリーが見出されている。
【０００９】
これらのペプチド性吸着剤ライブラリーに用いる担体としては、例えば、アミノ基、カルボキシル基、水酸基などの官能基を有する樹脂が推奨されており、具体的には、上記した官能基を有するポリエチレングリコール−ポリスチレン樹脂〔具体的な商品名としては、例えば、ＴｅｎｔａＧｅｌ  Ｓ−ＮＨ２（Ｐａｐｐ  Ｐｏｌｙｍｅｒｅ社）やＡｍｉｎｏｍｅｔｈｙｌ  ＮｏｖａＧｅｌ  ＨＬ（Ｎｏｖａｂｉｏｃｈｅｍ社）が挙げられる。〕や、親水性ビニルポリマー〔具体的な商品名としては、例えば、ＴＳＫｇｅｌ  ＡＦ−ＡｍｉｎｏＴＯＹＯＰＥＡＲＬ  ６５０Ｓ（東ソー（株））等が挙げられる。〕等が挙げられている。
【００１０】
しかしながら、これらの担体とペプチド性吸着剤とを結合した吸着材は、単にエンドトキシン等の吸着物質が吸着するか否かをｉｎ  ｖｉｔｒｏの水溶液系においてスクリーニングする目的には有効であるが、体外循環用に使用する目的には不向きであった。すなわち、全血を用いた場合には、血液中の細胞や蛋白質等の非特異的吸着が起こったり、血液凝固が起こったりしてしまうなどの欠点があった。
【００１１】
血液や血漿を対象とした吸着材の担体としては、蛋白質の非特異的吸着や血液凝固を防ぐためには、担体自体が親水性のものが望ましい。すなわち、セルロースやアガロースなどの多糖類やポリビニルアルコールのように担体自体が水酸基を有しているものが好ましい。しかしながら、例えば、水酸基を官能基として有する担体にリガンドとしてペプチド性吸着剤を、そのリガンドとしての機能を発揮させ得るように、かつ、容易に固定化することは困難であった。
【００１２】
上記のような現状に鑑み、本発明は、エンドトキシン等の被吸着物質を吸着しうるリガンドを、そのリガンドとしての機能を発揮させ得るように、かつ、容易に固定化できる水不溶性担体を提供することを目的とする。本発明はさらに、水不溶性担体にエンドトキシンを吸着することができるリガンドを固定化したエンドトキシン吸着材を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１３】
本発明は、以下の〔１〕〜〔９〕に関する。
〔１〕基材と、上記基材に結合した下記式１で表されるリンカーと、を備える、水不溶性担体。
【化１】
0005682916.tif 000002
［式１中、Ｂｎはベンジル基、ｘは２〜６の数、Ｂは保護基又は水素原子を示す。＊は基材と結合していることを示す。］
〔２〕上記基材が、ポリビニルアルコール樹脂である、〔１〕に記載の水不溶性担体。
〔３〕基材と、上記基材に結合した下記式２で表されるリンカーと、上記リンカーに結合したエンドドキシン吸着リガンドＬと、を備える、エンドトキシン吸着材。
【化２】
0005682916.tif 000003
［式２中、Ｂｎはベンジル基、ｘは２〜６の数を示す。＊は基材と結合していること、＊＊はＬと結合していることを示す。］
〔４〕上記基材が、ポリビニルアルコール樹脂である、〔３〕に記載のエンドトキシン吸着材。
〔５〕ｘが２である、〔３〕又は〔４〕に記載のエンドトキシン吸着材。
〔６〕Ｌが下記式３で表される、〔３〕〜〔５〕のいずれかに記載のエンドトキシン吸着材。
【化３】
0005682916.tif 000004
［式３中、ＡＡ１、ＡＡ２、ＡＡ３及びＡＡ４はそれぞれ独立にアミノ酸残基を示す。＊＊はリンカーと結合していることを示す。］
〔７〕〔１〕又は〔２〕に記載の水不溶性担体と、エンドドキシン吸着リガンドとを反応させて得られるエンドトキシン吸着材。
〔８〕ｘが２である、〔７〕に記載のエンドトキシン吸着材。
〔９〕上記エンドドキシン吸着リガンドが、下記式４で表される、〔７〕又は〔８〕に記載のエンドトキシン吸着材。
【化４】
0005682916.tif 000005
［式４中、ＡＡ１、ＡＡ２、ＡＡ３及びＡＡ４はそれぞれ独立にアミノ酸残基を示す。］
【発明の効果】
【００１４】
本発明の水不溶性担体は、エンドトキシン等の被吸着物質を吸着しうるリガンドを、そのリガンドとしての機能を発揮させ得るように、かつ、容易に固定化することができる。すなわち、そのリガンドとしての活性を保ちながら、簡便に固定化することができる。本発明の水不溶性担体は、吸着材用水不溶性担体として有用である。
【００１５】
上記水不溶性担体にエンドトキシンを吸着しうるリガンド（エンドトキシン吸着リガンド）を固定化した本発明のエンドトキシン吸着材は、血液中のエンドトキシンを選択的かつ十分に吸着することができるので、敗血症治療用の体外循環用吸着材として使用することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】本発明の一実施形態に係る水不溶性担体及びエンドトキシン吸着材の合成経路を示す模式図である。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
以下、本発明について詳細に説明する。
【００１８】
（水不溶性担体）
本発明の水不溶性担体は、基材と、その基材に結合した下記式１で表されるリンカーと、を備えるものである。式１中、Ｂｎはベンジル基、ｘは２〜６の数、Ｂは保護基又は水素原子を示す。＊は基材と結合していることを示す。なお、基材には、下記式１で表されるリンカーが、複数結合していてもよい。
【化５】
0005682916.tif 000006
【００１９】
本明細書において、水不溶性担体とは、水に溶けない担体を意味する。例えば、血液に接触した場合、血液中に溶け出さないものである。
【００２０】
（基材）
基材は、親水性の表面を有し、かつリンカーを化学結合により基材上に固定化するために利用し得る反応性の官能基（以下「反応性官能基」という。）を有するものである。反応性官能基としては、アミノ基、カルボキシル基、水酸基等が好ましい。また、非特異的吸着を抑制する観点から、反応性官能基として、電気的に中性である水酸基を有するものが、より好ましい。
【００２１】
基材の例としては、セルロース系ゲル、デキストラン系ゲル、アガロース系ゲル、ポリアクリルアミド系ゲル、多孔質ガラス、ビニルポリマー系ゲル等の有機又は無機の多孔体が挙げられる。特に、水酸基を有するビニルポリマー系ゲル、セルロース系ゲル、デキストラン系ゲル、アガロース系ゲルは、効果的に用いることができる。
【００２２】
また、本技術分野において、アフィニティクロマトグラフィー用担体として通常用いられる材料は全て基材として使用することができる。このような担体を例示すると、特公平１−４４７２５号公報記載の全多孔質活性化ゲルや、ＣＭ−トヨパール６５０Ｃ（排除限界タンパク質分子量：５×１０６、東ソー（株）製）等のポリビニルアルコール系担体、旭化成マイクロキャリア（旭化成工業（株）社製）、ＣＭ−セルロファインＣＨ（排除限界タンパク質分子量：約３×１０６、生化学工業（株）販売）等のセルロース系担体、セファロースＣＬ−４Ｂ（ＳｅｐｈａｒｏｓｅＣＬ−４Ｂ）〔排除限界タンパク質分子量：２×１０７、スウェーデン国ファルマシア−ＬＫＢ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ−ＬＫＢ）社製〕等のアガロース系担体等の有機質担体、ＣＭ−トリスアクリルＭ（ＣＭ−Ｔｒｉｓａｃｒｙｌ  Ｍ）〔排除限界タンパク質分子量：１×１０７、スウェーデン国ファルマシア−ＬＫＢ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ−ＬＫＢ）社製〕等のポリアクリルアミド系担体、及びＣＰＧ−１０−１０００〔排除限界タンパク質分子量：１×１０８、平均細孔径：１００ｎｍ、米国エレクトロ−ニュークレオニクス（Ｅｌｅｃｔｒｏ−ｎｕｃｌｅｏｎｉｃｓ）社製〕等の多孔性ガラス等の無機質担体が挙げられる。
【００２３】
また、基材は有効表面積が広い多孔性であるものが望ましい。これにより、リガンドを結合させることが可能な表面積が広くなるため、吸着材として用いたときに吸着効率を高くすることができる。基材は、粒子状、繊維状、シート状、中空糸状等の任意の形状であってよい。
【００２４】
（リンカー）
リンカーは、基材とリガンドを結合する際のスペーサーの役割を果たすものをいう。具体的には、下記式１で表される。式１中、Ｂｎはベンジル基を示す。リンカーは、式１中、＊で示す部位で、基材の反応性官能基と共有結合している。
【化６】
0005682916.tif 000007
【００２５】
上記式１中、Ｂは保護基又は水素原子である。Ｂが水素原子の場合は、リンカーの末端がアミノ基となり、このアミノ基を介してリガンドと結合することが可能となる。すなわち、Ｂが水素原子の場合は、アミノ基が保護されていない状態である。Ｂが保護基の場合、脱保護によりリンカーの末端をフリーのアミノ基とすることで、リガンドとの結合が可能となる。保護基としては、アミノ基の保護基として常用されているものを用いることができる。具体的には、ｔ−ブトキシカルボニル基（ｔ−Ｂｏｃ基）、ベンジル基、ベンゾイル基等が挙げられる。
【００２６】
式１中のｘは、２〜６の数を示す。ｘがこの範囲であれば、本発明の効果を奏することができるが、化合物の安定性や入手の容易さといった観点から、ｘが２であるリンカーが、最も好ましい。
【００２７】
本発明者らは、上記式１で表されるリンカーをポリビニルアルコール樹脂等の基材に共有結合させることによって、エンドトキシンを吸着するリガンドを、そのエンドトキシン吸着能を十分に発揮できるように、かつ容易に、固定化することができる水不溶性担体となることを見出した。また、この水不溶性担体を用いて作製したエンドトキシン吸着材が、血中のエンドトキシンを良く吸着することを見出した。本発明はこれらの知見に基づいている。このような効果が得られる機構について、本発明者らは次のように考えている。リンカーを介さず、水不溶性担体の基材に存在する官能基に直接リガンドを結合させた場合、リガンドと基材との距離が近いため、エンドトキシン等の被吸着物質と基材との相互作用が大きくなると考えられる。これにより、フリーのリガンドに対し、血液中の蛋白質等が非特異的に吸着してしまう。一方、リンカーを介して基材とリガンドを結合させた場合、リガンドと基材との距離がリンカーの長さ分長くなるため、エンドトキシン等の被吸着物質と基材との相互作用が抑えられ、リガンドへの被吸着物質の吸着効率が上がるものと考えられる。
【００２８】
さらに、リンカーを介してリガンドを結合させることによって、基材に存在する官能基に直接リガンドを結合させる場合に比べて結合させることが容易となり、リガンドの固定化量を上げることができる。
【００２９】
（水不溶性担体の製造方法）
本発明の水不溶性担体は、基材の反応性官能基と、リンカーの前駆体とを共有結合させることにより得ることができる。リンカーの前駆体としては、基材の反応性官能基と共有結合を形成可能な残基を有し、その残基と反応性官能基とで共有結合を形成することにより、上記式１で表されるリンカーを形成可能な１つの化合物であってもよいし、逐次反応させることにより上記式１で表されるリンカーを形成可能な複数の化合物であってもよい。
【００３０】
リンカーの前駆体として、例えば、下記式６で表される化合物とすることができる。式６中、Ｂｎはベンジル基、ｘは２〜６の数を示す。また、Ｒは、反応性官能基と共有結合を形成可能な残基を示す。
【化７】
0005682916.tif 000008
【００３１】
リンカーの前駆体としては、上記残基Ｒを有するリンカーの一部に相当する化合物と、その化合物と反応することにより上記式６で表される化合物を形成可能な１又は複数の化合物とからなっていてもよい。この場合、これらリンカーの前駆体を予め反応させて上記式６で表される化合物を形成した後、基材との共有結合を形成させてもよい。また、上記残基Ｒを有するリンカーの一部に相当する化合物と、基材との間に共有結合を形成した後、上記１又は複数の化合物を逐次反応させてもよい。
【００３２】
基材の反応性官能基と共有結合を形成可能な残基（Ｒ）の例としては、例えば、反応性官能基がアミノ基の場合、Ｒとしては、カルボキシル基、ハロゲン原子（例えば、フッ素、塩素、臭素又はヨウ素原子）等とすることができる。この場合、基材と、上記式１で表されるリンカーとの結合部は、それぞれ、−ＮＨ−Ｃ（Ｏ）−、−ＮＨ−等となる。反応性官能基がカルボキシル基の場合、Ｒとしては、水酸基、アミノ基、チオール基等とすることができる。この場合、上記結合部は、それぞれ、−Ｃ（Ｏ）−Ｏ−、−Ｃ（Ｏ）−ＮＨ−、−Ｃ（Ｏ）−Ｓ−等となる。反応性官能基が水酸基の場合、Ｒとしては、カルボキシル基、ハロゲン原子（例えば、フッ素、塩素、臭素又はヨウ素原子）等とすることができる。この場合、上記結合部は、それぞれ、−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−、−Ｏ−等となる。
【００３３】
以下、基材が反応性官能基として水酸基を有する場合、例えば基材がポリビニルアルコール樹脂（ＰＶＡ樹脂）等、を例として、基材中の反応性官能基（水酸基）上で逐次反応を行うことにより、式１で表されるリンカーを形成する方法について、図１を参照しながら、具体的に説明する。
【００３４】
リンカーの前駆体として、上記残基Ｒを有するリンカーの一部に相当する化合物として下記式７で表されるクロロメチルオキシランと、クロロメチルオキシランと化学的に反応することにより上記式６で表される化合物を形成可能な１又は複数の化合物として下記式８で表される化合物とすることができる。
【化８】
0005682916.tif 000009
【化９】
0005682916.tif 000010
［式８中、Ｂｎはベンジル基、ｘは２〜６の数を示す。］
【００３５】
基材であるポリビニルアルコール樹脂１に、ＤＭＳＯ中、水酸化ナトリウム、水素化ホウ素ナトリウム、上記式７で表されるクロロメチルオキシランを作用させる。これにより、基材であるポリビニルアルコール樹脂１上の−ＯＨと、クロロメチルオキシラン上のＣｌ−との間の化学反応により、エーテル結合（−Ｏ−）が形成される（図１）。
【００３６】
次に、得られた樹脂に、上記式８で表される化合物と、水中、炭酸ナトリウム、炭酸水素ナトリウムを作用させる。最後に上記作用により得られた樹脂に、トリフルオロ酢酸を作用させて、基材であるポリビニルアルコール樹脂に、上記式１で表されるリンカーが結合した水不溶性担体２を製造することができる。
【００３７】
（水不溶性担体の使用方法）
本発明の水不溶性担体は、リンカー末端のアミノ基（Ｂが保護基の場合は、常法に従って脱保護すればよい）との化学結合によって、被吸着物質を吸着し得る任意のリガンドを結合させ、その被吸着物質の吸着材として使用することができる。本発明の水不溶性担体は、上記式１で表されるリンカーを有するため、このようなリガンドの機能（被吸着物質の吸着能）を十分に発揮させることができるとともに、リガンドの固定化を容易（簡便）に行うことができる。
【００３８】
また、本発明の水不溶性担体は、血液に接触した際に血液中に溶け出さないため、例えば、エンドトキシンを吸着し得るリガンド（エンドトキシン吸着リガンド）を結合させ、エンドトキシン吸着材とすることが好ましい。このエンドトキシン吸着材は、血中エンドトキシンを除去するために使用することができる。
【００３９】
（エンドトキシン吸着リガンド）
本発明に係るエンドトキシン吸着リガンドは、エンドトキシンを吸着し得る化合物であればよい。エンドトキシン吸着リガンドとしては、高分子化合物、低分子化合物、ペプチド化合物等特に限定はないが、ぺプチド化合物は、有効なリガンドとなり得る。具体的には、特開２００２−３１１０２９号公報に開示されたペプチド化合物は有効である。即ち、下記式４のような分岐リジン残基を持つペプチド化合物を、エンドトキシン吸着リガンドとして好ましく用いることができる。
【化１０】
0005682916.tif 000011
【００４０】
なお、式４中、ＡＡ１，ＡＡ２，ＡＡ３及びＡＡ４はそれぞれ独立してアミノ酸残基を示す。ＡＡ１，ＡＡ２，ＡＡ３及びＡＡ４は任意のアミノ酸残基とすることができるが、エンドトキシンを吸着する能力を指標として、適切なアミノ酸残基を選択することもできる。例えば、上記式１で表されるリンカーのアミノ基末端と式４で表されるペプチド化合物のカルボキシル基末端とを結合させ、いわゆる、ペプチドライブラリーを作製した後、ペプチドライブラリーとのリムルス活性測定、又は血漿及び全血吸着実験を行うことにより、このペプチドライブラリーの中から、血中エンドトキシンを効果的に吸着するものを探索、抽出することができる。
【００４１】
そのようにして得られたエンドトキシン吸着リガンドの具体例としては、例えば、上記式４において、ＡＡ１，ＡＡ２，ＡＡ３及びＡＡ４が下記表１に記載のいずれかの組み合わせからなるもの等が挙げられる。オリゴペプチド構造と細菌内毒素吸着剤としての有効性との相関関係は、未だ十分には解明されていないが、ＡＡ４がリジン等の酸性アミノ酸残基又はグルタミン酸残基であるものがより有効のようである。
【００４２】
【表１】
0005682916.tif 000012
【００４３】
（エンドトキシン吸着材）
本発明のエンドトキシン吸着材は、基材と、基材に結合した下記式２で表されるリンカーと、リンカーに結合したエンドドキシン吸着リガンドＬと、を備える。なお、式２中、Ｂｎはベンジル基、ｘは２〜６の数を示す。＊は基材と結合していること、＊＊はＬと結合していることを示す。
【化１１】
0005682916.tif 000013
【００４４】
エンドトキシン吸着リガンドＬとしては、下記式３で表されるものとすることが好ましい。なお、式３中、ＡＡ１，ＡＡ２，ＡＡ３及びＡＡ４はそれぞれ独立してアミノ酸残基を示し、表１に示したいずれかの組み合わせからなるものが特に好ましい。また、＊＊はリンカーと結合していることを示す。
【化１２】
0005682916.tif 000014
【００４５】
本発明のエンドトキシン吸着材は、また、上述の水不溶性担体と、エンドドキシン吸着リガンドとを反応させて得られるものとすることもできる。水不溶性担体は、反応前にリンカーの保護基を脱保護することが好ましい。このような反応により得られるエンドトキシン吸着材においては、リンカーのアミノ基末端と結合したリガンドと、基材中の反応性の官能基と結合したリガンドが混在しているものと考えられる。
【００４６】
（エンドトキシン吸着材の製造方法）
上記式１で表されるリンカーに対して、所望のリガンド（例えば、エンドトキシン吸着性リガンド）を結合させるための一例としては、式１中のＢがアミノ基の保護基の場合は、常法に従って脱保護し、アミノ基をフリーの状態にする。その後、例えば、リガンドにカルボキシル基がある場合は、リンカーのアミノ基とリガンドのカルボキシル基を脱水縮合させて、化学的に結合することができる。その他、リンカーのアミノ基とリガンドとの結合方法については、適宜選択することができる。
【００４７】
以下、基材がポリビニルアルコール樹脂（ＰＶＡ樹脂）、リガンドが上記式３で表されるペプチド化合物である場合を例として、エンドトキシン吸着材を形成する方法について、図１を参照しながら、具体的に説明する。
【００４８】
基材がポリビニルアルコール樹脂（ＰＶＡ樹脂）である水不溶性担体２の保護基（ｔ−Ｂｏｃ）を常法に従って脱保護し、Ｆｍｏｎ−Ｌｙｓ（Ｆｍｏｃ）−ＯＨ、１−ヒドロキシベンゾトリアゾール（ＨＯＢｔ）及びＮ，Ｎ’−ジイソプロピルカルボジイミド（ＤＩＣ）を作用させる。次に、同様の方法を用いてＢｏｃ基の脱保護とＦｍｏｃ−保護アミノ酸の導入を順次繰り返すことにより、ペプチド鎖の伸長を行うことができる。これにより、エンドトキシン吸着材３を得ることができる。なお、ペプチド固相合成に用いられる他の方法によっても、同様にエンドトキシン吸着材３を得ることができる。
【実施例】
【００４９】
以下、実施例を挙げて本発明をより詳細に説明するが、本発明はこれら実施例により何ら限定されるものではない。
【００５０】
〔実施例１〕水不溶性担体の合成
クロロメチルオキシラン、水素化ホウ素ナトリウム、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、炭酸ナトリウム、炭酸水素ナトリウム及びＮ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）は、ナカライテスク株式会社から購入し、水酸化ナトリウムは、和光純薬工業株式会社から購入した。無水ジクロロメタンは、水素化カルシウムを脱水剤に用いて蒸留してから反応に用いた。ジメチルスルホキシド（４０ｍＬ）で膨潤させたポリビニルアルコール樹脂（ＰＶＡ樹脂）（水酸基担持量：１１０μｍｏｌ／ｍＬ，４．０ｇ，１２．４ｍＬ，１．３６ｍｍｏｌ）に対して、細砕した水酸化ナトリウム（４．８ｇ，０．１２ｍｏｌ）を室温で作用させて３０秒間震盪し、さらに水素化ホウ素ナトリウム（３０ｍｇ，０．７９ｍｍｏｌ）、及びクロロメチルオキシラン（３１．４ｍＬ，０．４０ｍｏｌ）作用させて、３５℃で５時間震盪した。反応溶液を濾過により除去した後、樹脂をメタノール（３５℃，１５分間×３回）、及び水（４５℃，５分間×８回）で洗浄した。
【００５１】
次いで、得られた樹脂に対して、水（５０ｍＬ）、及びＮ−Ｂｏｃ，Ｎ’−ベンジルエタノールジアミン（ＢｎＮＨＣＨ２ＣＨ２ＮＨＢｏｃ，１．０３ｇ，４．１３ｍｍｏｌ）を作用させて３０秒間震盪させた後、炭酸ナトリウム（２３２ｍｇ，２．１８ｍｍｏｌ）及び炭酸水素ナトリウム（２７６ｇ，３．２９ｍｍｏｌ）を作用させて、５０℃で１４時間震盪した。反応溶液を濾過により除去した後、樹脂をメタノール（３５℃，１５分間×３回）、及び水（４５℃，５分間×８回）で洗浄することにより、水不溶性担体を得た。水不溶性担体におけるリンカーの導入率は、用いた試薬溶液（ＢｎＮＨＣＨ２ＣＨ２ＮＨＢｏｃ）とリンカー導入後の洗浄濾液中のベンジル基に由来する吸光度（２５８ｎｍ）を比較することにより算出した（導入率：９６％）。
【００５２】
〔実施例２〕エンドトキシン吸着材の合成
使用した各種アミノ酸は、ペプチド研究所又は渡辺化学工業株式会社から購入した。１−ヒドロキシベンゾトリアゾール（ＨＯＢｔ）はペプチド研究所から、またＮ，Ｎ’−ジイソプロピルカルボジイミド（ＤＩＣ）は東京化成から購入した。ペプチド鎖の伸長反応は、標準的なＦｍｏｃペプチド固相合成法に従って行った。ペプチド縮合にはＨＯＢｔ／ＤＩＣ法を用いた。すなわち、実施例１に記載の方法に従って得られた水不溶性担体（１００ｍｇ，３２．７μｍｏｌ）に対して、２０％トリフルオロ酢酸／ジクロロメタン溶液（２．０ｍＬ）を室温で１時間作用させることによってＢｏｃ基を脱保護した。反応溶液を濾過により除去した後、水不溶性担体をジクロロメタン（５分間×５回）、ジメチルホルムアミド（５分間×５回）を用いて洗浄した。次いで得られた水不溶性担体に対して、Ｆｍｏｎ−Ｌｙｓ（Ｆｍｏｃ）−ＯＨ（５８．０ｍｇ，９８．２μｍｏｌ）、ＨＯＢｔ（１３．３ｍｇ，９８．２μｍｏｌ）、及びＤＩＣ（１５．４μＬ，９８．２ｍｍｏｌ）のジメチルホルムアミド溶液（１．５ｍＬ）を作用させ、室温で５時間震盪した。反応溶液を濾過した後、ジメチルホルムアミドで（５分間×５回）洗浄した。同様の方法を用いてＢｏｃ基の脱保護とＦｍｏｃ−保護アミノ酸の導入を順次繰り返すことにより、ペプチド鎖の伸長を行った。以上の方法により、表１に示すＡＡ１−ＡＡ４のアミノ酸を導入し、ペプチド配列ａ〜ｌを有するエンドトキシン吸着材を得た。
【００５３】
〔実施例３〕ヒト血漿及びヒト全血を用いたエンドトキシン吸着試験
１．エンドトキシン吸着材及び試験器具の前処理
実施例２で作製したエンドトキシン吸着材の中から、ペプチド配列ａ、ｃ、ｅ及びｆを有するエンドトキシン吸着材を使用した。
上記エンドトキシン吸着材及び使用器具は、０．２ｍｏｌ／Ｌ  ＮａＯＨ（和光純薬株式会社）用いて１６時間アルカリ液処理し、１６時間後にパイロジエンフリー水（大塚製薬株式会社）で洗浄し、最終洗浄液が中性であることをｐＨ試験紙（メルク社製）で確認したものを使用し、ガラス器具は乾熱滅菌（２５０℃、３時間）を行ったものを使用した。
【００５４】
２．吸着試験
抗凝固剤としてヘパリン（三菱ウェルファーマ）を１５ＩＵ／ｍＬ及び１００ＩＵ／ｍＬの濃度で添加し、健常人ボランティアより血液を得た。採血後の血液を３５００ｒｐｍで１５分間遠心分離し、得られた上清を血漿とした。血液（全血）及び血漿にＬＰＳ（Ｌｉｐｏｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ；ＳＩＧＭＡ  Ｌ２６３０）を１μＬ／ｍＬ添加し、エンドトキシン添加サンプル液とした。
実施例２で合成したエンドトキシン吸着材１ｍＬとエンドトキシン添加サンプル液１２ｍＬを三角フラスコに入れ、３７℃温浴で３０分間、振盪を加えて反応した。
対照として、実施例１で合成した水不溶性担体１ｍＬ（実施例２で合成したエンドトキシン吸着材１ｍＬ中に含まれる水不溶性担体の量に相当する）とエンドトキシン添加サンプル液１２ｍＬを三角フラスコに入れ、３７℃温浴で３０分間、振盪を加えて反応した。
【００５５】
３．分析
反応後の溶液からエンドトキシン吸着材を除去し、分析サンプルとした。エンドトキシンの濃度を比濁時間分析法により測定し、反応前の濃度と反応後の濃度を求め、エンドトキシン吸着率（％）＝（１−吸着反応後濃度／吸着反応前濃度）×１００を算出して、エンドトキシン吸着能を評価した（表２中、「Ｅｔ吸着率（％）」と表示した）。また、反応後の血液凝固物の有無（表２中、「凝固物の有無」と表示した）については、目視にて確認した。
【００５６】
４．結果
結果を表２に示した。実施例３で用いられたエンドトキシン吸着材は、ヘパリン存在のヒト血漿及びヒト全血中においてもエンドトキシン吸着能があることが認められた。特に、ペプチド配列ｃを有するエンドトキシン吸着材においては、ヒト全血においても血液凝固物が認められず、かつ、良好なエンドトキシン吸着能があることが確認された。
【００５７】
【表２】
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【産業上の利用可能性】
【００５８】
本発明の水不溶性担体は、リガンドを簡便かつ効果的に固定化することができ、この水不溶性担体にエンドトキシンを吸着するリガンドを固定化したエンドトキシン吸着材は、血漿及び全血中よりエンドトキシンを効率よく吸着するので、体外循環吸着療法用の吸着材や治療器として有用である。
【図１】
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