(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
トウモロコシ胚芽タンパク質から活性ペプチドを調製するための方法であって、
１）反応槽にトウモロコシ胚芽タンパク質粉末を加え、水とトウモロコシ胚芽タンパク質粉末を、水とトウモロコシ胚芽タンパク質粉末の比率１００：６〜１２（Ｌ：ｋｇ）で混合し、ｐＨ９〜１１に調整し、５０〜８０℃まで加熱し、この温度で２０〜６０分間撹拌するステップと、
２）反応槽内の供給液を遠心分離し、スラグを回収後、スラグを水で希釈し、５０〜８０℃まで加熱し、撹拌し、分離し、精製スラグを収集するステップと、
３）水−スラグの比率１００：４０〜５０で精製スラグを水と混合し、撹拌し、ｐＨ７〜９に調整し、４０〜６０℃まで加熱し；タンパク質１グラム当たり２０００〜５０００ユニットの酵素量で、アルカラーゼ２．４Ｌを加え、反応を３〜５時間持続させ；次いで、タンパク質１グラム当たり１０００〜２０００ユニットの酵素量で、パパインおよびディスパーゼＩＩ（１：１）を４５〜５５℃の温度で加え、酵素による加水分解を１〜２時間持続させ、最後に、酵素による加水分解物を加熱し、酵素を失活に供するステップと
を含むことを特徴とする方法。
【請求項２】
トウモロコシ降圧活性ペプチド粉末が、酵素加水分解供給液から、分離、濃縮、脱色および乾燥を経て調製され、具体的なステップが、
１）得られた酵素による加水分解物を、回転速度１２０００〜１６０００ｒ／分で遠心分離し；透明な遠心分離液を保持し、この液を圧力０．２〜０．４ＭＰａおよび温度３０〜８０℃の条件下で、孔径０．０５〜０．１μｍの膜濾過装置を通して濾過して、活性ペプチドの透明な濾液を得るステップと、
２）活性ペプチドの透明な濾液を、蒸気圧０．１±０．０２ＭＰａ、および温度４０〜８０℃の条件下で濃縮溶液の固体含有量が２０〜５０％になるまで蒸発させ濃縮し；脱色のために、濃縮溶液の全固体含有量の５％の割合で活性炭素粉末を加え、濾過するステップと、
３）脱色後の濃縮溶液を、遠心噴霧乾燥機により、入口温度１６０〜１８０℃および出口温度８０〜９０℃の条件下で乾燥させて、トウモロコシ降圧活性ペプチド粉末を得るステップと
であることを特徴とする、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
スラグを水で希釈し、５０〜８０℃まで加熱し、撹拌し、分離するプロセスを３回繰り返して精製スラグを収集することを特徴とする、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
酵素による加水分解物を加熱して酵素を失活させる加熱条件は１２０℃であり、酵素を１０分間失活させることを特徴とする、請求項１に記載の方法。
【請求項５】
反応槽内の供給液を遠心分離するために、ディスク型遠心分離機を使用することを特徴とする、請求項１に記載の方法。
【請求項６】
酵素による加水分解物を遠心分離するために、円筒型遠心分離機を使用することを特徴とする、請求項２に記載の方法。
【請求項７】
膜濾過装置が、精密濾過装置または限外濾過装置から選択されることを特徴とする、請求項２に記載の方法。
【請求項８】
二重効用流下膜式蒸発器を用いて、濾液を蒸発させ濃縮することを特徴とする、請求項２に記載の方法。
【請求項９】
脱色のために、８０℃の加熱条件で活性炭素粉末を加え、この温度で２０〜４０分撹拌することを特徴とする、請求項２に記載の方法。
【請求項１０】
分子量が１０００Ｄａ未満の構成成分が９２％超を占め、遊離アミノ酸の含有量が５％未満であることを特徴とする、請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法に従って調製される活性ペプチド。
【請求項１１】
少なくとも０．６％のアラニン−チロシン配列のペプチド断片を含有することを特徴とする、請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法に従って調製される活性ペプチド。
【請求項１２】
請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法に従って調製される活性ペプチドの、健康機能性食品または医薬品における製品または原材料としての使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、トウモロコシ胚芽タンパク質を原料として用いる降圧活性ペプチドを調製するための工業的方法に関し、生成物は、機能性食品、栄養および保健製品に適用することができる。したがって、本発明は、生物学的技術分野に属する。
【背景技術】
【０００２】
タンパク質は、ヒトの体に必要な主要な栄養分である。従来のタンパク質代謝モデルでは、食物栄養として摂取されたタンパク質およびポリペプチドは、ヒトの体が吸収し利用することができるように、まず、胃および小腸において多数のプロテアーゼによって遊離アミノ酸に加水分解されなければならないとみなされている。現代の研究により、ヒトの体に取り込まれたタンパク質は、主にポリペプチドの形態で腸管内に直接吸収されることが示されている。アミノ酸とペプチドとでは、吸収および輸送の機構は異なり、ペプチドの吸収効率はより高く、飽和させることが難しく、例えば、ジペプチドおよびトリペプチドの吸収率は、同じ組成を有するアミノ酸の吸収率よりも高い。天然タンパク質が酵素加水分解された後に、タンパク質酵素巨大分子が小分子ペプチド断片に切断され、これにより、消化および吸収が促進されるだけでなく、種々の生物活性ペプチドを得ることができる。
【０００３】
生物学的に活性なペプチド（生物活性ペプチド）とは、生物体の生命活動に有益である、または生理作用を有するペプチド化合物を指す。タンパク質と比較して、活性ペプチドは小さいが高い生物活性を有し、また、少量のペプチドが非常に重要な生理的役割を果たし得る。１９７５年にＨｕｇｈｅｓらにより、モルヒネと同様の活性を有する低分子ペプチドが動物組織から見いだされたことが最初に報告されてから、種々の生物活性ペプチドが動物、植物および微生物から単離されている。天然タンパク質の酵素加水分解後に得られる生物活性ペプチド生成物は、高吸収、抗酸化、抗疲労、脂質低下、血圧低下、免疫系の強化などを含めた種々の生理機能を有するが、原材料供給源が広範であること、毒性および副作用がないこと、規模生産が可能であること、低価格であることなどの利点も有する。したがって、近年、生物活性ペプチドの研究開発は、世界的な食物および栄養に関連する研究分野における主要な開発方針になっている。現在、適切な酵素加水分解分離プロセス条件下で、タンパク質含有量が高く比較的包括的な組成の天然食物資源を供給源として使用することにより、米国、ヨーロッパおよび日本で、いくつかの生物活性ペプチドの工業生産が実現され、何十億ドルもの年間生産高を有する新興の健康および食品加工産業が形成されている。
【０００４】
高血圧症は、ヒトの健康を著しく脅かす疾患であり、２００７年に発行された世界的な高血圧症の影響の報告（ｈｙｐｅｒｔｅｎｓｉｏｎ  ｉｍｐａｃｔ  ｒｅｐｏｒｔ）では、高血圧症の罹患者数が世界中で増加傾向にあり、現在１０億人にのぼり、有効な措置を取らなければ、そのような疾患の罹患者は２０２５年までに世界で１５．６億人になるであろうという警告がなされた。高血圧患者の数は、中国を含めた一部の国では８０％増加する可能性がある。アンジオテンシンＩ変換酵素（ＡＣＥ）は多機能性ジペプチドカルボキシペプチダーゼの一種であり、生理活性のないアンジオテンシンＩを、血圧上昇作用を有するアンジオテンシンＩＩに変換することができ、またブラジキニンを不活性な断片に分解することもでき、それにより血管収縮を導き、血圧を上昇させる。ＡＣＥ阻害剤によりＡＣＥ活性を阻害し、アンジオテンシンＩのアンジオテンシンＩＩへの変換を妨げることが高血圧症予防の主要な手段になっている。
【０００５】
１９６０年代に、Ｆｅｒｒｅｉｒａにより、ブラジルのハララカ（Ｂｏｔｈｒｏｐｓ  Ｊａｒａｒａｃａ）の毒液のエタノール抽出物から、ブラジキニンの生理作用を増強し得るポリペプチドが最初に見いだされ、そのポリペプチドはブラジキニン増強因子（ｂｒａｄｙｋｉｎｉｎ  ｐｏｔｅｎｔｉａｔｉｎｇ  ｆａｃｔｏｒ）（ＢＰＦ）と称された。その後、ＢａｋｈｌｅおよびＯｎｄｅｔｔｉらの研究により、ＢＰＦがＡＣＥ阻害活性を有するポリペプチドであることが確認された。ＢＰＦの分子構造解析に基づいて、ＣｈｅｕｎｇおよびＣｕｓｈｍａｎにより、初の人工の降圧性テプロチド（ＳＱ２０８８１）が合成された。このようなノニル−ペプチド（ｎｏｎｙｌ−ｐｅｐｔｉｄｅ）は、ｉｎ  ｖｉｖｏにおいて強力なＡＣＥ阻害活性および降圧作用を有するが、静脈注射によってのみ投与され、経口摂取することができず、従って適用が限られている。カプトプリルの出現以来、新しい種類のＡＣＥ阻害剤が絶えず現れている。これまで、３０種類を超える合成ＡＣＥ阻害剤が臨床研究または臨床応用に入っている。これらの合成阻害剤は有意な血圧低下作用を有するが、多くの副作用、例えば、咳、アレルギー、皮疹、浮腫、心不整脈および腎障害などを引き起こす可能性がある。、したがって、より安全かつ有効なＡＣＥ阻害剤の研究開発がますます急務となっている。
【０００６】
「自然回帰」の哲学および生物学的に活性なペプチドの研究の高まりとともに、天然の動植物資源から安全、有効かつ副作用のないＡＣＥ阻害性ペプチドを抽出することが、高血圧症の予防および治療に対する研究におけるホットスポットになっている。Ｏｓｈｉｍａらにより食物タンパク質源由来のＡＣＥ阻害性ペプチドが最初に得られ、強力な活性を有する６つの配列が、細菌性のコラゲナーゼを用いたゼラチン分解から得られ、Ｓｅｐｈｄｅｘ  Ｇ−２５により、ＡＣＥ活性の阻害の大部分が主に低分子量部分にあることが確認された。食物タンパク質のｉｎ  ｖｉｔｒｏプロテアーゼ分解によって生成された活性ペプチドが得られたのはこれが初めてであり、これにより、その後の食物タンパク質からのＡＣＥ阻害性ペプチドの生成の基盤が築かれた。その後、他の新しいＡＣＥ阻害性ペプチドが、イチジク、マグロ、日本酒、納豆、カゼイン、ニンニク、ダイズおよび他の天然源から単離された。Ｔａｎｇ  Ｊｉａｎらの研究により、ダイズペプチドが、ＳＨＲ（自然発症高血圧症（ｓｐｏｎｔａｎｅｏｕｓ  ｈｙｐｅｒｔｅｎｓｉｏｎ））ラットの血圧の調節にとって重要であることが示された。この薬剤を３日間服用した後に有意な降圧効果がある。Ｂｙｕｎらにより、魚類の皮膚コラーゲン加水分解物の相対的な分子質量分布が０．９ｋＤａから１．９ｋＤａの範囲にある場合、その加水分解物はアンジオテンシン変換酵素（ＡＣＥ）の活性の阻害において役割を果たすことが見いだされた。しかし、これらの研究の大部分は、実験室規模の予備実験であり、工業生産での応用の例は依然としてまれである。これまでに、国内外で、工業生産されている食用の食物由来のペプチドの大部分は、初期に研究されたダイズペプチド、乳ペプチド、海洋性ペプチドなどである。
【０００７】
三大食用作物のうちの１つとして、トウモロコシは、世界中の食物構造において重要な役割を果たしている。現在のところ、中国におけるトウモロコシの年間生産量は約１１，０００万トンであり、世界生産の２０％を占めており、約４００万トンはデンプン、デンプン糖およびアルコールなどを生産するために使用されている。トウモロコシ胚芽タンパク質粉末は、湿潤加工処理により生成されるトウモロコシデンプンの主要な副生成物であり、タンパク質に富み、無機塩および種々のビタミンならびに他の成分も含有している。中国では、トウモロコシ胚芽タンパク質粉末は、主に飼料産業に使用されるか自然へ排出される。年間の自然への排出量はトウモロコシタンパク質の１０万トンにのぼり、これは貴重な食物資源の浪費となるだけでなく、深刻な環境汚染を引き起こす恐れもある。したがって、トウモロコシの利用率を改善すること、およびトウモロコシ胚芽タンパク質を最大限に回収することは、重要な社会的および経済的な意義を有する。現在、トウモロコシ胚芽タンパク質粉末から生物活性ペプチドを得ることについては依然として研究が不足している。本発明によると、タンパク質分解の技術を用いて、トウモロコシ胚芽タンパク質粉末からトウモロコシ降圧活性ペプチドを得るための工業化された方法が確立され、その生成物は、明確な特徴的な構成成分および生物活性を有し、本発明は、中国におけるトウモロコシの豊富な資源を完全に使用するため、ならびに機能性食品および栄養保健製品を開発するための大きな実用価値および経済的利点を有する。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明の目的は、トウモロコシ胚芽タンパク質を加工処理し利用する方法を拡大すること、およびトウモロコシ胚芽タンパク質からトウモロコシ降圧活性ペプチドを得るための工業的方法を確立することである。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
上記の目的を実現するために、本発明では、アルカリ加熱処理と連続的な酵素による加水分解とを組み合わせる方法が使用され、その方法では、トウモロコシ胚芽タンパク質粉末と水を、水とトウモロコシ胚芽タンパク質粉末の比率１００：６〜１２（Ｌ：ｋｇ）で混合し、ｐＨ９〜１１に調整し、５０〜８０℃まで加熱し、この温度で２０〜６０分撹拌して、アルカリ性供給液を得る。次いで、反応槽内のアルカリ性供給液をディスク型遠心分離機内にポンプで送り込んで、アルカリ性供給液を透明な液体とスラグに分離する。スラグを回収した後、スラグを水で希釈し、５０〜８０℃まで加熱し、撹拌し、分離する。同じ加工処理を３回繰り返して精製スラグを得る。精製スラグを、水−スラグの比率１００：４０〜５０で水と混合し、撹拌し、ｐＨ７〜９に調整し、４０〜６０℃まで加熱する。タンパク質１グラム当たり２０００〜５０００ユニットの酵素量で、アルカラーゼ２．４Ｌを加え、反応を３〜５時間持続させる。次いで、タンパク質１グラム当たり１０００〜２０００ユニットの酵素量で、パパインおよびディスパーゼ（Ｄｉｓｐａｓｅ）ＩＩ（１：１）を４５〜５５℃の温度で加え、酵素による加水分解を１〜２時間持続させる。最後に、酵素の溶液を１２０℃まで加熱し、１０分間の酵素失活処理を行う。
【００１０】
トウモロコシ胚芽タンパク質の酵素による加水分解物を、円筒型遠心分離機により、回転速度１２０００〜１６０００ｒ／分で遠心分離する。透明な遠心分離液（ｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｌ  ｌｉｑｕｉｄ）を保持し、圧力０．２〜０．４ＭＰａ、および温度３０〜８０℃の条件下で、孔径０．０５〜０．１μｍの精密濾過および限外濾過装置を通して濾過し、トウモロコシ降圧活性ペプチドの透明な濾液を得る。トウモロコシ降圧活性ペプチドの濾液を、二重効用流下膜式蒸発器（ｄｏｕｂｌｅ−ｅｆｆｅｃｔ  ｆａｌｌｉｎｇ  ｆｉｌｍ  ｅｖａｐｏｒａｔｏｒ）を用い、蒸気圧０．１±０．０２ＭＰａ、および温度４０〜８０℃の条件で、濃縮溶液の固体含有量が２０〜５０％になるまで蒸発させる。脱色のために、濃縮溶液含有量の５％の割合で活性炭素粉末を加え、濃縮溶液を８０℃まで加熱し、この温度で２０〜４０分撹拌し、次いで、ロールナノ濾過膜（ｒｏｌｌ  ｎａｎｏｆｉｒｔｒａｔｉｏｎ  ｍｅｍｂｒａｎｅ）を用いて濾過する。トウモロコシ降圧活性ペプチドの濃縮溶液を、遠心噴霧乾燥機により、入口温度１６０〜１８０℃、および出口温度８０〜９０℃の条件下で乾燥し、トウモロコシ降圧活性ペプチド粉末を調製する。
【発明の効果】
【００１１】
化学成分分析を使用して、調製したトウモロコシ降圧活性ペプチドの基本的な物理的組成および化学的組成を決定し、トウモロコシ降圧活性ペプチドの成分の分子量分布を高速液体クロマトグラフィー分析によって測定する。分子量が１０００Ｄａ未満の構成成分が全体で９２％超を占め、遊離アミノ酸の含有量は５％未満であることが分かる。Ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける安定性試験により、温度範囲３０〜１００℃、ｐＨ変動範囲３〜１１、ならびに、ペプシン消化、トリプシン消化、およびペプシン消化に続くトリプシン消化に対して、トウモロコシ降圧活性ペプチドが良好な安定性を有することが示されている。Ｉｎ  ｖｉｔｒｏ試験により、トウモロコシ降圧活性ペプチドが、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで良好なＡＣＥ阻害活性を有することが示されている。液体クロマトグラフィーによる分離および質量分析を用いて、トウモロコシ降圧活性ペプチドのペプチド断片の分離および構造的同定を行い、特徴的な降圧性ペプチド断片であるアラニン−チロシン（Ａｌａ−Ｔｙｒ、ＡＹ）が０．６％超を占める、生理活性を有するペプチド断片７種が同定されている。
【００１２】
トウモロコシ降圧活性ペプチドのｉｎ  ｖｉｖｏにおける血圧低下作用を、自然発症高血圧ラット（ｓｐｏｎｔａｎｅｏｕｓ  ｈｙｐｅｒｔｅｎｓｉｖｅ  ｒａｔ）（ＳＨＲ）をモデルとして用いて検証し、トウモロコシ降圧活性ペプチドがｉｎ  ｖｉｖｏにおいて良好な降圧作用を有し、保健健康食品および医薬の分野に適用することができることが確認されている。
【００１３】
以下は図面の簡単な説明である。
【図面の簡単な説明】
【００１４】
【図１】異なる条件下でのトウモロコシ降圧活性ペプチドの逆相クロマトグラフィーである。Ａは、異なる温度条件下での逆相クロマトグラフィーである（上から下に、それぞれ、２０℃、４０℃、６０℃、８０℃、および１００℃に対応する）；Ｂは、異なるｐＨ条件下での逆相クロマトグラフィーである（上から下に、それぞれ、ｐＨ３、５、７、９、および１１に対応する）；Ｃは、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける異なる消化条件下での逆相クロマトグラフィーである（上から下に、それぞれ、ブランク対照、ペプシン消化、トリプシン消化、およびペプシン消化に続くトリプシン消化に対応する）。
【図２】トウモロコシ降圧活性ペプチドのアイコニックな成分ＡＹの液体クロマトグラフィーおよび質量分析である。
【図３】トウモロコシ降圧活性ペプチドの、自然発症高血圧ラットの血清のアルドステロン濃度に対する作用を示し、ｎ＝８であり、＊＊はブランク対照群と比較した有意差を示し、Ｐ＜０．０１である。
【発明を実施するための形態】
【００１５】
本発明を、図および具体的な実施形態を参照してさらに説明するが、これらは本発明の範囲を限定するものではない。
【００１６】
具体的なプロセス経路は、以下のステップからなる：
１．トウモロコシ降圧活性ペプチドの調製
トウモロコシ胚芽タンパク質粉末６００ｋｇを反応槽Ｉに加え、水と、水とトウモロコシ胚芽タンパク質粉末の比率１００：９（Ｌ：ｋｇ）で混合し、ｐＨ９〜１１に調整し、６５℃まで加熱し、この温度で４０分間撹拌する。反応槽内のアルカリ性供給液をディスク型遠心分離機内にポンプで送り込んで、透明な液体とスラグに分離する。回収したスラグを反応槽ＩＩに加え、透明な液体を廃棄する。スラグを水で希釈し、６５℃まで加熱し、撹拌し、分離する。油、デンプン、繊維および他の非タンパク質物質を除去するために、同じ加工処理を３回繰り返す。精製スラグを、水と、水−スラグの比率１００：４５で混合し、撹拌する。トウモロコシ胚芽タンパク質溶液をｐＨ８に調整し、５０℃まで加熱する。タンパク質１グラム当たり３５００ユニットの酵素量で、アルカラーゼ２．４Ｌを加え、反応を４時間持続させる。次いで、タンパク質１グラム当たり１５００ユニットの酵素量で、パパインおよびディスパーゼＩＩ（１：１）を５０℃の温度で加え、酵素による加水分解を１．５時間持続させる。次いで、酵素の溶液を１２０℃まで加熱し、１０分間の酵素失活処理を行う。
【００１７】
加水分解溶液を、円筒型遠心分離機により、回転速度１４０００ｒ／分で遠心分離する。透明な液体とスラグを分離する。透明な遠心分離液を保持し、圧力０．３ＭＰａ、および温度５５℃の条件下で孔径０．０６μｍの精密濾過および限外濾過装置を通して濾過して、トウモロコシ降圧活性ペプチドの透明な濾液を調製する。トウモロコシ降圧活性ペプチドの濾液を、二重効用流下膜式蒸発器を用い、蒸気圧０．１ＭＰａ、および温度６０℃の条件で、濃縮溶液の固体含有量が４０％になるまで蒸発させる。濃縮溶液含有量の５％の割合で活性炭素粉末を濃縮溶液に加え、濃縮溶液を８０℃まで加熱し、この温度で３０分間撹拌し、次いで、濾過する。トウモロコシ降圧活性ペプチドの濃縮溶液を、遠心噴霧乾燥機により、入口温度１７０℃、および出口温度８５℃の条件下で乾燥させて、トウモロコシ降圧活性ペプチド１１６．２５ｋｇを調製する。
【００１８】
２．トウモロコシ降圧活性ペプチドの物理的および化学的組成の分析ならびに分子量分布（ＭＷＤ）
トウモロコシ降圧活性ペプチドの物理的および化学的組成の分析結果：総タンパク質の含有量は８９．２８％であり、脂肪の含有量は０．０５％であり、灰分の含有量は５．０６％であり、水分の含有量は５．２１％である。以上から分かるように、本発明で調製されるトウモロコシ降圧活性ペプチドの総タンパク質含有量は８５％超であり、生成物の品質は高い。トウモロコシ降圧活性ペプチド試料をＧＥＬ−ＨＰＬＣに注入した後、試料ペプチドの相対的な分子質量およびその分子量分布範囲を、液体クロマトグラフィーデータ処理ソフトウェアを用いてトウモロコシ降圧活性ペプチドのゲルクロマトグラフィーのデータを較正曲線方程式に代入することによって算出する。分子量が１０００Ｄａ以下のジペプチドおよびトリペプチドはヒトの体内における吸収率および利用率が非常に高く、したがって、遊離アミノ酸よりも栄養価および生理機能が高い。本発明によると、最小のジペプチド（Ｇｌｙ−Ｇｌｙ）の分子量１３２Ｄａおよび最大のトリペプチド（Ｔｒｐ−Ｔｒｐ−Ｔｒｐ）の分子量５７６Ｄａを分子量範囲の境界値として使用し、また、ピーク面積比較法（ｐｅａｋ  ａｒｅａ  ｎｏｒｍａｌｉｚａｔｉｏｎ  ｍｅｔｈｏｄ）を採用して、表１に示されているようにトウモロコシ降圧活性ペプチドの相対的な分子量分布範囲を算出する。分子量分布の結果から、分子量が１０００Ｄａ未満の構成成分が全体で９３．０５％を占める。アミノ酸の平均分子量１３７Ｄａに従って算出すると、分子量が１０００Ｄａ以下の構成成分は、いくらかの遊離アミノ酸を含む、主に、オクタペプチドよりも低次のオリゴペプチドである。分子量が１３２Ｄａ〜５７６Ｄａの構成成分が７８．１７％を占め、それが、分子量が１０００Ｄａ未満である構成成分の大半を形成し、主にジペプチド、トリペプチドおよびテトラペプチドである。
【００１９】
【表１】
0005763203.tif 000002
【００２０】
３．トウモロコシ降圧活性ペプチドのｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける安定性
２０℃、４０℃、６０℃、８０℃、および１００℃のウォーターバスに２時間入れた後のトウモロコシ降圧活性ペプチド試料の分子量分布を表２に示す。異なる温度のウォーターバスに２時間入れた後、トウモロコシ降圧活性ペプチドにおける分子量が１０００Ｄａ未満の構成成分の総含有量には実質的な変化はなく、約９３％を占めている。各分子量範囲の比率の変化は２％以下である。異なる温度におけるトウモロコシ降圧活性ペプチドの逆相クロマトグラフィーを図１Ａに示す。異なる温度でウォーターバスに２時間入れた後に、トウモロコシ降圧活性ペプチドの逆相クロマトグラフィーはほとんど変化せず、ピークの数とピーク時間はよく一致していることがわかる。同時に、類似性算出ソフトウェアにより算出された類似性は約０．９９である。
【００２１】
【表２】
0005763203.tif 000003
【００２２】
３７℃で、それぞれｐＨ３、５、７、９、および１１のウォーターバスに２時間入れた後のトウモロコシ血圧降下活性ペプチド試料の分子量分布を表３に示す。異なるｐＨ条件下で、３７℃のウォーターバスに２時間入れた後、トウモロコシ降圧活性ペプチドにおける分子量が１０００Ｄａ未満の構成成分の総含有量には実質的な変化はなく、約９３％を占めている。各分子量範囲の比率の変化は、１％以下である。異なるｐＨの下でのトウモロコシ降圧活性ペプチドの逆相クロマトグラフィーを図１Ｂに示す。異なるｐＨ条件下で３７℃のウォーターバスに２時間入れた後に、トウモロコシ降圧活性ペプチドの逆相クロマトグラフィーはほとんど変化せず、ピークの数とピーク時間はよく一致していることがわかる。同時に、類似性算出ソフトウェアにより算出された類似性は０．９９超であった。すなわち、分子極性の観点からすると、トウモロコシ血圧降下活性ペプチドの組成にはほとんど変化がない。
【００２３】
【表３】
0005763203.tif 000004
【００２４】
ペプシン消化、トリプシン消化、および、ペプシン消化に続くトリプシン消化をそれぞれ行った後のトウモロコシ降圧活性ペプチドの分子量分布を表４に示す（Ｃ：ブランク対照；Ｐ：ペプシン消化；Ｔ：トリプシン消化；Ｐ＋Ｔ：ペプシン消化に続くトリプシン消化）。異なる消化様式では、トウモロコシ降圧活性ペプチドにおける分子量が１０００Ｄａ未満の構成成分の総含有量はわずかに増加するが、２％未満の増加である。分子量範囲が１０００〜５７６Ｄａである構成成分の割合はわずかに低下するが、１％未満の低下であり、これにより、酵素分解により消化されるペプチド断片は非常に少量であることが示されている。これに対応して、より分子量の小さい構成成分がわずかに増加し、この増加は主に１３２Ｄａ未満の範囲に集中しており、消化されたごく一部の構成成分は、主に低分子アミノ酸に分解されたことが示されている。
【００２５】
【表４】
0005763203.tif 000005
【００２６】
ペプシン消化、トリプシン消化、およびペプシン消化に続くトリプシン消化によってそれぞれ消化された組成物の逆相クロマトグラフィーを図１Ｃに示す；異なる消化様式の後、トウモロコシ降圧活性ペプチドの逆相クロマトグラフィーではわずかな変化があるが、主要なピークの数とピーク時間はよく一致していることがわかる。対照群と比較して、類似性算出ソフトウェアにより算出された各クロマトグラフィーの類似性は０．９３超である。すなわち、分子極性の観点からすると、トウモロコシ降圧活性ペプチドの組成はわずかに変化する、すなわち、変化は小さい。
【００２７】
４．トウモロコシ降圧活性ペプチドのｉｎ  ｖｉｔｒｏにおけるＡＣＥ阻害活性および象徴的なペプチド断片の分析
Ｎ−Ｈｉｐｐｕｒｙｌ−Ｈｉｓ−Ｌｅｕ（ＨＨＬ）法を用いて、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおけるＡＣＥ阻害活性をＨＰＬＣにより検出する。降圧活性ペプチドを加える前と加えた後の馬尿酸生成物のクロマトグラフィーのピーク面積の差を測定する。この差は、降圧活性ペプチドの降圧活性の変化を反映する。ＡＣＥ阻害率を以下の通り算出する：ＡＣＥ阻害率（％）＝（Ｍ−Ｎ）＊１００／Ｎ、Ｍはブランク対照群における馬尿酸のピーク面積（ｍＡＵ・ｓ）であり、Ｎは阻害剤を加えた群における馬尿酸のピーク面積である（ｍＡＵ・ｓ）。異なる濃度におけるトウモロコシ降圧活性ペプチド溶液のＡＣＥ阻害率を表５に示す。測定、算出したトウモロコシ降圧活性ペプチドのＩＣ５０は１．０２ｍｇ／ｍＬであり、このトウモロコシ降圧活性ペプチドがｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける良好なＡＣＥ阻害活性を有することが示されている。
【００２８】
【表５】
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【００２９】
液体クロマトグラフィーによる分離および質量分析を用いることにより、トウモロコシ降圧活性ペプチドのペプチド断片の単離および構造同定を行う。現在のところ、５３種のペプチド断片の構造が同定されている。トウモロコシプロテオミクスの配列データベースとの対照によると、３２種のペプチド断片のアミノ酸配列が、トウモロコシプロテオミクスにおける既存の断片の配列と一致し、これにより、これらのペプチドが、トウモロコシタンパク質の加水分解によって生じることが示されている。生物活性ペプチドデータベースと比較することにより、降圧活性を有するアラニン−チロシン（Ａｌａ−Ｔｙｒ、ＡＹ）が含まれていることが分かる。Ｙａｎｊｕｎ  Ｙａｎｇら（Ｊ．Ａｇｒｉｃ．Ｆｏｏｄ  Ｃｈｅｍ．、２００７年、５５巻（１９号））により、ＡＹが降圧性ペプチド断片であり、そのｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける降圧活性ＩＣ５０が１４．２μＭであることが見いだされた。ＳＨＲに用量５０ｍｇ／ｋｇで経口挿管した２時間後の血圧の降下は９．５ｍｍＨｇである。
【００３０】
本発明者らは、ＡＹの高速液体クロマトグラフィー分析による定量法を考案した。前処理した後、トウモロコシ降圧活性ペプチド試料を、逆相Ｃ１８充填剤を固定相として使用して試料構成成分の分子極性の差異によって分離し、ＵＶ吸収波長２２０ｎｍにおいて検出する。クロマトグラムおよびそのデータ（図２）を、外部標準法を用いて処理して数値化する。算出されたＡＹ含有量は１．１３％である。トウモロコシ降圧活性ペプチド試料の異なるバッチが全て０．６％超のＡＹを含有することを考慮して、ＡＹをトウモロコシ降圧活性ペプチドの特徴的な構成成分として使用する。
【００３１】
５．トウモロコシ降圧活性ペプチドの、自然発症高血圧症ラットに対する降圧効果
自然発症高血圧症ラットをモデル動物として用いて、トウモロコシ降圧活性ペプチドを異なる用量（体重１ｋｇ当たり０．４５ｇ、１．３５ｇ、および４．０５ｇ）で胃管投与（ｇａｖａｇｅ）する。ブランク対照群には、適切な用量の蒸留水を胃管投与する。陽性対照群には、体重１ｋｇ当たり１０ｍｇのカプトプリルを胃管投与する。８週間の連続的な胃管投与後、各群のラットの体重、心臓／体重比、心拍数に有意な変化はない（Ｐ＞０．０５）。
【００３２】
試験の間、対照群のラットの血圧はおよそ２００ｍｍＨｇであり、胃管投与期間にわたってわずかに上昇したが、差は有意ではない（Ｐ＞０．０５）。低用量群のラットの血圧は胃管投与期間にわたって徐々に低下した。第６週における血圧はブランク対照群と比較して有意に異なり（Ｐ＜０．０５）、そのような有意差は第７週および第８週において維持され（Ｐ＜０．０５）、血圧は１５．６％低下した。中用量群のラットの血圧は胃管投与期間にわたって低下したが、わずかに緩やかであった；第８週まで、血圧はブランク対照群と比較して有意に異なり（Ｐ＜０．０５）、血圧は１０．３％低下した。高用量群のラットの血圧は８週間においてわずかに低下したが、ブランク対照群と比較して差は有意ではない（Ｐ＞０．０５）（表６）。
【００３３】
高用量群およびカプトプリル群の血清アルドステロン濃度は、対照群よりも有意に低い（Ｐ＜０．０１、図４）。試験結果より、本発明のトウモロコシ降圧活性ペプチドが有意な降圧作用を有し、降圧薬および機能性食品の原料を開発するために使用することができ、開発に大きな見込みがあることが示されている。
【００３４】
【表６】
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【図１Ａ】
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【図１Ｂ】
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【図１Ｃ】
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【図２】
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【図３】
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