(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
キチン及びグルカンを含むキチン‐グルカン複合体及び、
グルコース、マンノース、及びガラクトースのうち少なくともいずれか１つを含むバイオポリマーの生産方法であって、
以下の工程を含む：
窒素源として、アンモニア、水酸化アンモニウム、アンモニウム塩、及び有機窒素化合物から選択される少なくとも１つを含み、
さらに、炭素源として、アルコール、糖、有機酸、ポリオール、脂肪酸、及びアミノ酸のうち少なくともいずれか１つを含む、食品、産業廃棄物、又はバイオディーゼル産業により生じたメタノール豊富な副産物、グリセロール豊富な副産物、又はグリセロール−メタノール混合物である副産物を含み、
ｐＨ５．０とｐＨ７．０の間で発酵中のｐＨを調整するアルカリ、アンモニア、及びアンモニウム塩を含む培養液中で、
ピキア・パストリスを発酵させる工程を含むことを特徴とする方法。
【請求項２】
請求項１記載の方法であって、
培養液中の炭素源は、バイオディーゼル産業により生じたアルコール、糖、有機酸、ポリオール、脂肪酸、及びアミノ酸のうち少なくともいずれか１つを含む副産物であることを特徴とする方法。
【請求項３】
請求項１又は２記載の方法であって、
バイオディーゼル産業により生じた副産物が、少なくとも８６％グリセロール、又は
１００％メタノールであることを特徴とする方法。
【請求項４】
請求項１〜３いずれか１項記載の方法であって、
バイオディーゼル産業により生じた副産物が、少なくとも９９％グリセロールであることを特徴とする方法。
【請求項５】
請求項１〜４いずれか１項記載の方法であって、
発酵中の温度が２０〜４０℃に調節されていることを特徴とする方法。
【請求項６】
請求項１〜５いずれか１項記載の方法であって、
発酵中の温度が３０℃に調節されていることを特徴とする方法。
【請求項７】
請求項１記載の方法であって、
発酵中のｐＨは、アルカリ、アンモニア、又はアンモニウム塩を培養液に添加することによって調節されていることを特徴とする方法。
【請求項８】
請求項１記載の方法であって、
発酵中のｐＨがｐＨ５．０に調節されることを特徴とする方法。
【請求項９】
請求項１〜８いずれか１項記載の方法であって、
発酵中に得られるバイオポリマーが、キチンーグルカン複合体に加えて、グルコース、マンノース、ガラクトースのうち少なくともいずれか１つを含む水溶性の多糖を含むことを特徴とする方法。
【請求項１０】
請求項１〜９いずれか１項記載の方法であって、
発酵中に得られたバイオポリマーが、グルコース、マンノース、ガラクトースのうち少なくともいずれか１つを含む多糖を細胞の乾燥重量の最大４５％含むことを特徴とする方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、キチンと、グルコース、マンノース及び／又はガラクトースを含有するポリマー及びその誘導体とを低コストの原料を用いて大量に微生物生産する方法に関する。従って、酵母P．パストリスの高細胞密度バイオリアクター培養に基づく生産方法が記載されている。この生産方法には、バイオディーゼル生産由来のグリセロールの副産物を炭素源として用いるのが好ましい。前記バイオポリマーは、他の産業、プロセス及び医薬の応用の中で、農業食品産業、化粧品、バイオ医薬、繊維製品、廃水処理、において広く使用されている。
【背景技術】
【０００２】
ポリマーは、１又はより多くのモノマーという構造単位が重合することによって形成された高分子量の分子である。炭化水素モノマーであるモノサッカライドにより形成されたポリマーはポリサッカライドと言われる。より小さい分子（オリゴサッカライド）はポリサッカライドの化学的又は酵素的な部分加水分解により得られる。
【０００３】
キチンは、b-(1-4)結合により結合した、D-グルコサミン（GlcN）とN−アセチルーD-グルコサミン（GlcNAc）基からなる直鎖状のポリサッカライドである（化学式化１参照。（１）と（２）はGlcNとGlcNAcをそれぞれ表わしている）。キチン分子は、分子内の水素結合を形成し、その配置により、３つの異なる結晶形態をとる。α―キチンは、最も一般的で安定な形態であるが、鎖の逆平行の配置により特徴づけられる。これに対して、β―キチンは平行層により形成される。最も稀な構造、γ―キチンは、１つの逆平行と２つの平行な鎖により特徴づけられる。
【０００４】
【化１】
0005732390.tif 000002
【０００５】
水素結合は、水とほとんどの有機溶媒の両方に対するキチンの低溶解性に関与する。 酸性又はアルカリ性の溶液はポリマーの加水分解と脱アセチル化を引き起こし、これゆえにその可溶化に適さない。
【０００６】
水素結合はまた、キチン質の物質のポリマーの高い剛性と低い透過性とともに、融点の明らかな欠如の原因となる。
【０００７】
キチンの物理化学的特性はまた、２つの構造的モノマーの比率に関係する。ポリマーにおけるGlcNのモル画分（脱アセチル化の程度と言われる、％DD）は、５０％以上である。前記ポリマーはキトサンと名付けられ、キチンの主な誘導体である。アセチル基の低い含量のために、キトサンは弱酸に溶け、高分子電解質の性質を持ち、より高い反応性を有する。キトサンは通常、キチンの脱アセチル化により得られる。
【０００８】
これらの性質のために、キトサンは最近までキチンよりも多くの応用があった。その高い特異的結合能力は、廃水からの油、重金属、タンパク質及び微粒子物質の除去に使われている（非特許文献１）。同じ特性のために、それをアフィニティクロマトグラフィ（非特許文献２）とコレステロール吸着の減少のために使用することを可能にする。キトサンは、ヒトの消化経路を通り、低密度コレステロールと結合することにより、その血流中への吸収を妨げる（非特許文献３;非特許文献１）。
【０００９】
食品工業において、キトサンは主に卵と果物のコーティングに使われ（非特許文献１、非特許文献４）、二酸化炭素と病原微生物のバリアとして機能し、それゆえ、食品製品の寿命を延ばす。それはまた、飲料のための乳化剤、保存剤及び清澄剤として使用される（非特許文献５;非特許文献２）。キトサンはまた、化粧品、すなわち、ヘア製品に使われる。なぜならその高い安定性と低い静電特性のためである（非特許文献５）。
【００１０】
キトサンのバイオ医薬への応用は、その誘導体の生体適合性と生分解性のためにますます今日的な意味を帯びている。生体適合性と生分解性は、とりわけ、傷を治す（非特許文献６、非特許文献７、非特許文献８）、組織の足場（非特許文献９）、薬放出システム（非特許文献８）に使うことを可能にする。
【００１１】
キチンの主要な応用は、それを縫合材料として（非特許文献６、Okada et al., 2000、非特許文献８）、細菌又はカビに感染した動物の抗原として（非特許文献８）、または細胞壁にキチンを持つ生物に汚染された土壌においてキチナーゼ生産を増大させるものとして（Okada et al., 1999、非特許文献１０）使用することを含む。それはまた、靴下のような呼吸できる繊維製品にも使用される。
【００１２】
合成ポリマーと対照的に、キチンとキトサンは生分解性である。そのため、それらを使用することにより環境に利益がある。
【００１３】
キトサンとは別に、キチンの誘導体はポリサッカライドを含む。その中には、GlcNAc C6水酸基が、例えば、アルキル又はカルボキシル基のような他のラジカルと置換されている。これらのラジカルの挿入はポリマーの機能を増大させる。それゆえ、新しい繊維、ゲル等のような新しい応用の開発を可能にする。
【００１４】
セルロースの次に、キチンは自然界で２番目に豊富なバイオポリマーである。それは、主に節足動物門と脊索動物門の生物のクチクラと外骨格内及び、酵母とカビの細胞壁に見出される。これらの生物において、キチンは細胞の固さと機械的強度を与え、減数分裂の間重要な役割を演じる（非特許文献１１、非特許文献１２）。キチン又はその誘導体の存在は細菌にも変形菌類のカビにもまだ検出されていない。甲殻類と節足動物から抽出されたキチンはより硬く、微生物のキチンよりも脱アセチル化の度合いが大きい。
【００１５】
市販されているキチン及びキチン誘導体のほとんどは、カニ、エビ及びロブスターのような甲殻類から得られる。抽出方法は、通常３つの工程を含む：脱ミネラル化、タンパク質及び脂質除去及び漂白である。最初の工程は貝殻を酸（通常、HCl）と混合することにより行われる。一方、タンパク質及び脂質の除去はアルカリ性の培地中でエタノールの存在下で行われる。
【００１６】
色素除去（特にカロテノイド）は、アセトン、クロロホルム又はエーテルとエタノールの混合物のような有機溶媒で洗浄することにより達成される。
【００１７】
それにもかかわらず、種の機能と動物の年齢に応じたこの原料の季節的特徴と貝の組成の多様性によって、この方法がむしろ費用がかかり、再現性が低くなる。ロブスターやカニのような種の外骨格の剛性はまた、抽出を困難にし、より費用がかかるようにする。さらに、甲殻類の貝殻から抽出されたキチンは動物起源であり、薬学的及びバイオ医薬の応用は食品医薬品局（FDA）により高度に制限される。また、タンパク質及び動物に吸収された汚染物質の存在がまたキチンの精製を困難にしている。アレルギー反応の可能性のために、甲殻類から抽出されたポリマーはバイオ医薬への応用への適合性が低い。
【００１８】
節足動物及び甲殻類のキチンは、貝殻のタンパク質及びミネラルと凝集しており（主にカルシウム塩）、微生物においてはそれは他の細胞壁の多糖と結合している。その還元的鎖の末端は、b-(1,3)-グルカン（グルコースポリマー）の非還元末端に結合している。b-(1,3)-グルカンは、b-(1,6)-グルカン、ガラクトマンナン（ガラクトース残基とマンノース残基から形成されるポリマー）及び糖たんぱく質に結合している。細胞壁の組成は系統に依存し、それはまた生物の成長段階の間中変化する。培地組成及び濃度（例：基質利用可能性）、温度又は溶存酸素濃度（非特許文献１３）のような発酵条件を変えることで、それぞれの細胞壁成分の相対比率の多様性が得られる。
【００１９】
キチンの微生物生産は、ある程度制限のない利用可能性を持ち、該方法の連続的最適化のための安価な原料の使用を可能にする。細胞壁の環境条件への適応は、前記方法の最適化のための利点として使用できる。実際、発酵によるキチン生産は、培地に特殊なイオン及び酵素的キチン生産のための前駆体を補給することにより増大することが既に証明されている（非特許文献１１、非特許文献１４）。ポリマーの組成と特性は共に、甲殻類から伝統的抽出法により得られた物よりも安定である。
【００２０】
これまでのところ、遺伝子操作された生物を使用する場合以外に、微生物を用いてキチンを生産する最適な手順は無い。市販されているほとんどの微生物のキチンは、ビール産業のサッカロミセス・カールスベルゲンシス（Saccharomyces carlsbergensis）又はクエン酸生産のアルペルギルス・ニガー（Aspergillus niger）から抽出される（Versali et al., 2003）。後者においては、キチンは微生物の細胞壁の最高４２％までの割合を占めるだろう。とは言っても、アスペルギルス・ニガーの液体培養では、ある酵母の到達した細胞密度には到達しない。一方、サッカロミセス属によるキチン生産は細胞の乾燥重量の約８％を超えない。アガリクス・ビスポラス（Agaricus bisporus）とA.キャンペストリス（A. campestris）のような、ある可食性のキノコの培養由来の廃棄物も使われる可能性がある（特許文献１）。しかし、このキチンの含量は、該生物の乾燥重量の８％を超えない。
【００２１】
ピキア・パストリスはヘミアスコミセテス（Hemiascomycetes）／サッカロミセテス（Saccharomycetes）酵母である。キチン生産に使用される他の微生物を上回るこの種の主な利点は、この種が、グルコース、メタノール又は生のグリセロールを含む多種多様な基質による発酵中に高い細胞密度に達することである。この間、その細胞壁中には高いパーセンテージでキチンを含んでいる。さらに、グリセロールはバイオディーゼル産業由来の低コストの副産物であり、大量に入手でき、P．パストリスの成長に効果的に使用できると報告されている(非特許文献１５)。それゆえ、バイオディーゼル産業由来のグリセロール副産物を、P．パストリスによるキチン及びキトサンの生産に使用することは、その価格を安定させる方法となりうる。さらに、培養のために高い溶存酸素濃度を使用する必要がないので、操業コストは低減される。
【００２２】
現在、ピキア・パストリアを本発明の目的であるバイオポリマーの工業生産に使用することに関する報告は入手できていない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００２３】
【特許文献１】GB２２５９７０９号公報
【非特許文献】
【００２４】
【非特許文献１】Hennen W (1996) Woodland Publishing Inc, Utah, EUA.
【非特許文献２】Synowiecki J, Al-Khateeb N (2003) Crit Rev Food Sci Nutr, 43(2), 145-171.
【非特許文献３】ICNHP (1995) International Commission on Natural Health Products, Georgia, EUA.
【非特許文献４】Kim S, No H, Prinyawiwatkul W (2007) J Food Sci, 72(1), 44-48.
【非特許文献５】Kim S (2004) Department of Food Science, Louisiana State University, EUA.
【非特許文献６】Hamlyn F, Schmidt R (1994)Mycologist, 8(4), 147-152.
【非特許文献７】Tanabe S, Okada M, Jikumaru Y, Yamane H, Kaku H, Shibuya N, Minami E (2006) Biosci Biotechnol Biochem, 70, 1599-1605.
【非特許文献８】Singh D, Ray A (2000) Polymer Reviews, 40(1), 69-83.
【非特許文献９】Tangsadthakun C, Kanokpanont S, Sanchavanakit N, Pichyangkura R, Banaprasert T, Tabata Y, Damrongsakkul S(2007) J Biomater Sci Polymer Edn,(18)2, 147-163.
【非特許文献１０】Hallmann J, Rodriguez-Kabana R, Kloepper J (1999) Soil Biol Biochem, 31, 551-560.
【非特許文献１１】Keller F, Cabib E (1970) J Biol Chem, 246(1), 160-166.
【非特許文献１２】Momany M, Hamer J (1997) Cell Mot Cytoskel, 38, 373-384.
【非特許文献１３】Aguilar-Uscanga B, Francois J (2003) Lett Appl Microb, 37, 268-274.
【非特許文献１４】Camargo E, Dietrich C, Sonnenborn D, Strominger J (1967) J Biol Chem, 242(13), 3121-3128.
【非特許文献１５】Celik E, Ozbay N, Oktar N, Calik P (2008), Ind Eng Chem Res, 47(9),2985-2990.
【非特許文献１６】Freimund S, Janett S, Arrigoni E, Amado R (2005) European Food Research and Technology, 220(1), 101-105.
【非特許文献１７】MacMurrough I, Rose A (1967) Biochem J, 105, 189-203.
【非特許文献１８】Vetter J (2007) Food Chemistry, 102(1), 6-9.
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００２５】
本発明の課題は、好気性条件下でバイオリアクター中で酵母ピキア・パストリスの高細胞密度発酵により、好ましくは、バイオディーゼル産業からのグリセロールの副産物を炭素源として用いて、グルコサミンポリマー（キチン、キトサン、又はそのあらゆる誘導体）とグルコース、マンノース及び／又はガラクトースを含むポリマーの共生産のための方法を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【００２６】
本発明は酵母ピキア・パストリスの細胞壁多糖の生産菌としての使用について述べる。細胞壁多糖としては、マンノース及び／又はグルコース、又はその誘導体産物であり、それらは低コストの基質、例えばバイオディーゼル産業由来のグリセロール副産物を使用して生産される。
【００２７】
この目的に使用される生物は野生型のピキア・パストリス株、その変種もしくは突然変異体、又は遺伝子操作された株であってもよい。遺伝子操作された株は、例えば下流のプロセスで使われる酵素の発現に関する異種タンパク発現のための構成的な株であってもメタノール資化性（MUT）株であってもよい。
【００２８】
これらの多糖の生産性は微生物の細胞増殖に密接に関連している。それゆえ、P．パストリスによるキチン又はキトサンの生産を経済的に成り立つようにするために、このプロセスは高い細胞増殖速度と高い細胞密度を得るために最適化されてきた。
【００２９】
この点から見ると、本発明は、好ましい炭素源として、バイオディーゼル産業のグリセロール副産物を用いて、ピキア・パストリスによる好気性発酵によるグルコサミン、グルコース及び／又はマンノースを含む細胞壁多糖の生産方法を記述する。他の可能な炭素源としては、純粋なグリセロール、メタノール及びグルコース又はその混合物を含む。
【００３０】
低コストのグリセロール副産物を主な炭素源として使用することは、重要な利点である。なぜなら、それは、他の高純度でより高価な基質に比べて生産コストを低減できるからである。この方法の体積生産性は、連続モードで稼働される発酵プロセスを適用することにより最大化されうる。そして好ましくは酸素移動能力を上げるための圧力下で稼働されてもよい。それにより、より高い細胞密度が可能となる。
【００３１】
P．パストリス発酵の間、溶存酸素濃度は飽和濃度の５％を超えて維持される。このパラメータは、炭素源添加により制御される。炭素源添加は連続的又は半連続的に行われてもよい。このようにして、高い細胞密度が得られ、嫌気的条件が回避され、最大の代謝活性が得られる。
【００３２】
発酵の間中生産される多糖の抽出は、カビ又は酵母の細胞壁から多糖を抽出するための文献に記載されたどんな方法によって行われてもよい（例えば、非特許文献２）。本発明で使用される化学的プロセスは、キチンが豊富な多糖混合物を生産する他に、グルコース、マンノース及び／又はガラクトースを含む他の多糖の異なる画分を生産する。それらについては、いくつかの農食品及びバイオ医薬への応用が見つかる可能性がある。
【００３３】
化学抽出操作はポリマーが分解するいくつかのリスクがある。もうひとつの方法として、タンパク性の物質と細胞壁グルカンをそれぞれ分解するタンパク分解酵素とリゾチームを用いる酵素抽出法を適用してもよい。それらは汚染のより少ない方法ではあるが、比較的コストが高いという不利な点がある。
【図面の簡単な説明】
【００３４】
【図１】図１は、炭素源としてバイオディーゼル産業由来のグリセロール（９９％）又はグリセロール副産物（８６％）を使用した発酵中のピキア・パストリスの細胞の乾燥重量の分析結果である。
【発明を実施するための形態】
【００３５】
１．ポリマー生産
１．１．微生物
本発明は、キチンと、グルコース、マンノース及び／又はガラクトースを含むポリマー、また、それらの誘導体の、ピキア・パストリス野生型株、その変種及び突然変異体の発酵による生産に関する。
１．２．発酵培地
ピキア・パストリス発酵は、炭素源、窒素源及び無機塩を含む液体培地で行われる。
【００３６】
炭素源は、好ましくはバイオディーゼル産業により生じるグリセロールが豊富な混合物である。純粋なグリセロール、メタノール、グルコース又はそれらの混合物もまた使用されうる。その他にも、P．パストリスは、いくつかの他の化合物上でも生育可能である。他の化合物は、モノマー、ダイマー又はオリゴマーの形のアルコール、糖、有機酸、脂肪酸又はアミノ酸を含む。
【００３７】
これら全ての基質は純粋な化合物又は好ましくはバイオディーゼル産業のような農産工業廃棄物又は副産物由来でもよい。窒素源は、好ましくは、アンモニアであるが、アンモニウム塩又は有機態窒素化合物（酵母エキス、尿素又はペプトン）も使用できる。
【００３８】
発酵培地はまた、イオン（例えば、Ca2+, K+, Mg2+, SO42-, PO43-）を含む塩及び、コバルト、銅、マンガン及び鉄のような微量金属を含む。記載された培地は、P．パストリスの生育に使用される基質の幅広い多様性の単なる例示であり、それらは制限的に解釈すべきではない。
１．３．発酵条件
本発明は、ピキア・パストリス発酵を用いた、細胞壁多糖の生産のためのあらゆる手段又は手順に関する。多糖は例えば、キチン、グルコース、マンノース及び／又はガラクトースを含むポリマー又はその誘導体産物である。より具体的には、本発明は、P．パストリスの生育が高い細胞密度と微生物の細胞壁中の高いキチン／グルカン含量に達するのに有利に働くいくつかの方法を記述する。
【００３９】
発酵は、圧縮空気を用いた通気の下で好気的培地の中で行われる。温度は、１０℃と６０℃の間、好ましくは２０℃と４０℃の間に制御される。pHは、アルカリ（例えばNaOH, KOHまたはNH3）の自動的添加により、１．０と１０．０の間、好ましくは３．０と８．０の間に制御される。アンモニア又は水酸化アンモニウムが使用される場合、それらはまた窒素源としても役立つ。
【００４０】
発酵培養液中の溶存酸素濃度は、細胞の増殖に従って徐々に減少する。この減少は、菌株の具体的な増殖速度によって決定される。酸素の制限は、バイオリアクターの容量と制限に従って、撹拌速度、空気の流速、圧力、温度及び／又は律速となる炭素源の供給速度を操作することで回避される。
【００４１】
高い細胞密度を実現するためには、操作モードが連続的又はバッチで供給され、最初のバッチ層を持っていてもよい。
【００４２】
前記方法をバッチ式で始めると、発酵培養液の供給は、炭素源が成長を限定する濃度に達したときに始まる。それから、好ましくは、溶存酸素濃度が決定的な閾値に達するまで、反応装置の特徴に基づいて予め決定された指数関数的な供給速度で維持される。供給溶液は炭素源と２％（V/V）食塩水によりなる。pHがアンモニア以外の塩基で制御されると、供給溶液は、最初の培地中に存在する同じ炭素／窒素の割合（約３：１）で窒素源を含むべきである。
【００４３】
細胞壁多糖の生産は増殖に関連する。それゆえ、バッチで供給される発酵は培養が定常増殖相に入ると終了する。もし、前記方法が連続法で行われると、溶存酸素濃度が０％に落ちない限り、希釈割合は、流出の閾値近くに維持される。
【００４４】
キチン及びキトサンの生産は、１０と４０ｇ／Lの間及び最大１０ｇ／Lでそれぞれ変動する。これらの値は得られる細胞密度により変動する。細胞密度は通常１５０ｇ／Lよりも高い。バイオマス中のキチン／キトサン含有量は、それらの生産を細胞増殖と分離させる条件の下で発酵を延長することによって増加することができる。そのような条件は、定常増殖相の間、温度を高め（３０℃まで）、pH（５と８の間）又はイオン強度を上げることを含む。
【００４５】
キチン／キトサンの生産に付随して、本発明の方法はまた、細胞の乾燥重量の最大４５％までを含むグルコース、マンノース及び／又はガラクトースを含む細胞壁多糖の共生産（co-production）を予測する。
２．発酵産物の抽出と精製
本発明に記載された多糖を抽出し、精製するために使用される手順は以下のとおりである。
【００４６】
細胞は発酵培養液からろ過、デカンテーション又は遠心分離により分離される。後者が最も有効な方法である。
【００４７】
好ましくは遠心分離により分離された細胞は、脂質、タンパク質及び核酸を除くために、アルカリ溶液（１０を超えるpH）で処理される。タンパク質及び核酸は高濃度の強塩基（NaOH又はKOH）で反応させることにより分解される。一方、脂質は有機溶媒（例えば、エタノール、メタノール、アセトン）又は界面活性剤で反応させることにより除去される。それらの方法は温度（６５℃〜９５℃）によって３０分と３時間の間の時間がかかる。連続して、又は同時に行われてもよい。それにより、方法はより安くなり、生産量も増える。
【００４８】
それにより得られた不溶性の物質は主に無機物、キチン及びその誘導体、並びにグルカンとマンナンのような、他の不溶性の多糖からなる。可溶性多糖、すなわち、高度に分岐したβ―グルカン及びα―１，３−グルカン並びにガラクトマンナン（マンノースとガラクトース残基からなるポリマー）は上清に残る。
【００４９】
遠心分離と水とエタノール（又はメタノール、ジエチルエーテル又はアセトンのような他の有機溶媒）での洗浄後、キチンは他の不溶性の多糖から分離される。その目的のために、酢酸（又は他の弱酸）を用いた部分加水分解が７５℃を超える温度で、又は、希釈したHCｌ（又は他の無機酸）を用いた部分加水分解が５０℃で行われる。この手順は、これまで抽出されなかったある分岐したβ―１，６−グルカンを可溶化できる。ほとんどのグルカンはアルカリ抽出とそれに続く不溶性画分を回収する遠心分離により回収される。不溶性画分にはキチンが含まれる。
【００５０】
不溶性物質は、アルカリに可溶なグルカンを溶かすために高温の強アルカリ（NaOH）に懸濁される。温度はキチンの分解を避けるために２０℃より高く、７５℃よりも低くすべきである。
【００５１】
不溶性物質は遠心分離により回収され、水とエタノール（又は他の有機溶媒）で完全に洗浄される。その後、キトサンは２％（V/V）酢酸中で溶解されることにより抽出され、遠心分離により分離される。キトサンは上清に残るが、沈殿物はキチンと他の不溶性ポリマーを含んでいる。キトサンはpHを６．０に調整することで沈殿させられ、遠心分離により回収される。
【００５２】
キチンと他の不溶性ポリマー（キチン／グルカン複合体）を含む沈殿物は、ジメチルアセタミド（DMAC）又はジメチルスルホキシド（DMSO）中の５％塩化リチウム溶液中に溶かされる。この溶液は、ポリマーを完全に溶解させるために、持続的な撹拌の元で少なくとも１２時間保たれる。溶解しない物質を除去するための遠心分離後、キチン／グルカン複合体は水を添加することにより沈殿させれらる。DMAC（又はDMSO）溶液は沈殿を生じなくなるまで水と何回か混合される。抽出されたキチン／グルカン複合体は、溶媒を除去するために水で完全に洗浄される。最終工程は６０℃までの温度で乾燥すること、又は凍結乾燥よりなる。
【００５３】
あるいは、強アルカリでの処理の間、より厳しい条件を使ってもよい。このようにすることで、キチンを完全に脱アセチル化してキトサンが得られる。この極端な条件は、温度を１２８℃まで上げること、アルカリ濃度１５Nを使用すること、又は反応時間を７時間まで増加させることを含む。
【００５４】
上述の抽出及び精製手順は、キチン／グルカン複合体以外に、他のポリマーのいくつかの画分の生成につながる。これらのポリマーは、主にグルコース、マンノース及び／又はガラクトース残基からなる多糖である。
【００５５】
アルカリに可溶な細胞壁グルカンは、主にβ―（１，３）及びβ―（１，６）グルコシド結合からなる。それらは、アルカリ溶液中に溶解することにより抽出され、非混和性の溶媒中で沈殿することにより、又は透析により回収される。結果として約４％のアルカリに可溶なグルカンが得られる。
【実施例１】
【００５６】
グリセロール中でのピキア・パストリス発酵
表１に記載の組成の１４．２５Lの発酵培地に、７５０ｍLのピキア・パストリスDSMZ70877の培養液を接種した。発酵は、パイロットスケールのバイオリアクター（LP３５１、５０L、BioEngineering, スイス）中で、制御された温度とpH（それぞれ３０℃及び５．０）で行われた。空気の流速は、全稼働中、３０L／分に保たれ、圧力は０．１０バール（bar）に維持された。
【００５７】
pHは水酸化アンモニウムを添加することにより制御された。最初の撹拌速度は３００ｒｐｍであった。
【００５８】
３０時間の発酵後、溶存酸素濃度（pO2）は５０％に低下した。その点から、溶存酸素濃度は、撹拌速度を１０００ｒｐｍまで上げることで、２０％に調節された。撹拌速度が４４０ｒｐｍに達すると、バイオリアクターは、グリセロール（９９０ｇ／L）を含有する溶液及び、２４ｇ／Lの、表１に記載のミネラル溶液を供給し始めた。供給速度は、指数関数的であり、所望の細胞増殖速度に従って算出された。
表１  発酵培地組成
【表１】
0005732390.tif 000003
【００５９】
(＊ミネラル溶液組成: 6.0 g/L CuSO4.5H2O, 0.08 g/L NaI, 3.0 g/L MnSO4.H2O, 0.2 g/L Na2MoO4.2H2O, 0.02 g/L H3BO3, 0.5 g/L CoCl2, 20.0 g/L ZnCl, 65.0 g/L FeSO4.7H2O, 0.2 g/L biotin e 5.0 mL/L H2SO4.)
最高撹拌速度（１０００ｒｐｍ）に達すると（約４４時間の発酵）、pO2は基質の制限により２０％に調節された。供給溶液の添加速度は、pO2が２０％以下に落ちないように連続的に調節された。
【００６０】
発酵の７０時間以内で、培養は定常増殖期に入り、稼働は終了した。細胞は、発酵培養液の遠心分離（８０００ｒｐｍ、４５分）により回収され、凍結乾燥される。２３７ｇの細胞が発酵培養液１Lにつき得られた。
【実施例２】
【００６１】
バイオディーゼル産業由来のグリセロール副産物中におけるピキア・パストリスの発酵によるキチン／グルカン複合体の生産
実施例１に記載の手順がピキア・パストリスDSMZ７０８７７を増殖させるために使用された。純粋なグリセロールが、８６％グリセロールを含む、バイオディーゼル産業由来のグリセロール副産物によって置き換えられた。供給溶液の流速は、新しい基質組成を考慮して修正された。両方の培養の間、細胞の乾燥重量の漸進的変化を、図１に表わしている。
【００６２】
発酵の終了時には、２２４g／Lのバイオマスが得られた。定常増殖期には、純粋なグリセロールを用いて発酵した場合よりも約６時間早く到達した。
【００６３】
Synowieckiら（２００３、非特許文献２）によって提案された抽出方法を用いると、０．３５２ｇのキチン／グルカン複合体が得られた。これはP．パストリスのバイオマスの１１．７％に相当する。発酵の最後に得られた細胞密度を考慮すると、ポリマー生産性は８．９９ｋｇ／ｍ３・日であった。
【００６４】
グルカン分析の酵素キット（K-YBG, メガザイム）を用いると、グルカンに関するバイオマス含量は１４％であった。一方、抽出されたキチン／グルカン複合体は３８．２％のグルカンを含んでいた。グルコースとグルコサミンは、酸分解の後液体クロマトグラフィーにより検出される唯一の糖モノマーであった。このようにして、抽出されたキチン／グルカン複合体は、９％のキチン、１％の湿度、４％の灰分及び６％のタンパク質を含有した。
【００６５】
これらの結果を考慮すると、実施例２で得られたバイオマスは３％のキチン含有量を有していたと結論づけられた。
【図１】
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