(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
微生物が選択的に結合する糖鎖が固定されている担体を、検体中の微生物と接触させることにより、上記糖鎖と微生物とを結合させる工程と、上記担体を濃縮する工程と、からなり、
上記担体は、糖鎖、リンカーおよび金属ナノ粒子からなり、上記リンカーは芳香族アミノ基と硫黄原子とを備え、上記硫黄原子は金属-硫黄結合によって上記金属ナノ粒子に固定されており、
上記リンカーは、下記一般式（１）にて表される構造を備え、
【化１】
0005700321.tif 000006
（式中、ａ，ｂ，ｃ，ｄは、それぞれ独立して、０以上６以下の整数）
上記Ｘは、末端に１個の芳香族アミノ基を有するとともに主鎖に炭素‐窒素結合を有していてもよい炭化水素誘導鎖を１鎖含んでいる直鎖構造部位であり、
上記微生物は、ヘルペスウイルス、水疱瘡ウイルス、サイトメガロウイルス、コイヘルペスウイルス、レンチウイルスまたはインフルエンザウイルスであり、
上記糖鎖はヘパリンであることを特徴とする微生物の濃縮方法。
【請求項２】
上記微生物はヘルペスウイルスであることを特徴とする請求項１に記載の方法。
【請求項３】
上記担体を濃縮する工程は、自然沈降、遠心分離、ろ過、または磁力の作用によって担体を回収する工程と、回収した担体を洗浄することにより微生物を精製する工程と、を含むことを特徴とする請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
上記金属ナノ粒子は金ナノ粒子であることを特徴とする請求項１から３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項５】
請求項１から４のいずれか１項に記載の方法によって濃縮された担体を、免疫学的手法または遺伝子工学的手法に供することより微生物を同定することを特徴とする微生物の同定方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、微生物の濃縮方法であって、特に、微生物はウィルス、細菌等よりなる群より選ばれる微生物であり、上記微生物と糖鎖を固定化したナノ粒子との相互作用を利用して、多くの成分が含まれる検体から目的の微生物を濃縮する方法、並びに上記濃縮された微生物の同定を短時間で行う方法に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
ウィルス、細菌等の微生物がより高等な動植物へ感染し、動植物に生じる病気として感染症がある。この感染症は、同じ動植物種であると伝染してしまう例が多い。例えばヒトであればインフルエンザウィルスによる流行により健康被害が生じ、また家畜や農作物、観賞用動植物の場合は、それぞれの動植物に感染する微生物であれば同じく伝染し生産被害を及ぼすこともある。
【０００３】
そのため動植物等に感染する微生物を同定する事は、感染症の早期診断、また治療や予防指針を決定するための必要な情報である。これら微生物を同定するために、それら固有のタンパク質や核酸を検出する方法として、免疫学的手法、遺伝子工学的手法などがその同定方法として従来使用されている。
【０００４】
また、ウィルスが感染する際に、ヒトの細胞の細胞膜上の糖鎖と相互作用することがきっかけで感染が始まることが知られている。そして、ウィルスによって相互作用する糖鎖は異なるため、ある特定のウィルスは特定の糖鎖を媒介として人体・細胞へ感染する。そのため、人体に及ぼす症状に違いが生じる。
【０００５】
例えば、非特許文献１，非特許文献２に開示されているように、ヘルペスウィルス１型、２型においては、当該各分離ウィルスは、ヘパリン、コンドロイチン硫酸などの硫酸化糖と相互作用することが知られている。また、非特許文献３に開示されているように、レンチウィルスにおいては、当該分離ウィルスは、ヘパリンなどの硫酸化糖と相互作用することが知られている。
【非特許文献１】Ｊ．  Ｖｉｒｏｌ．，  １９９６，  ７０，  ３４６１−３４６９
【非特許文献２】Ｊ．  Ｖｉｒｏｌ．，  ２０００，  ７４，  ９１０６−９１１４
【非特許文献３】Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．  Ｂｉｏｅｎｇ．，  ２００７，  ９８，  ７８９−７９９
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
微生物は、生体内・医薬品・食品・飲料水・河川水など様々な物質が混在しているようなものから検体をサンプリングする。しかしながら、検体中の微生物は極微量であるためそもそも検出できない場合がある。そのため、遠心分離による微生物の沈降、またフィルターろ過により微生物を濃縮する方法が考えられるが、これらの方法では夾雑物も同時に回収されているため、免疫学的手法や遺伝子工学的手法による検出を阻害する問題点があった。
【０００７】
本発明は、上記の問題点に鑑みてなされたものであり、その目的は、多くの成分が含まれる検体から目的の微生物を濃縮する方法、並びに上記濃縮された微生物の同定を短時間で行う方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者らは、上記課題に鑑み鋭意検討した結果、本発明に係る微生物の濃縮方法は、微生物と特異的に相互作用する糖鎖を固定化した担体に、ウィルス、細菌といった微生物を含む検体を接触させることによって上記微生物を捕捉し、上記微生物を濃縮できることを見出し、更に濃縮された微生物を用いることで、免疫学的手法および遺伝子工学的手法により高感度にその微生物の検出が可能となることを見出し、本発明を完成させるに至った。
【０００９】
本発明に係る微生物の濃縮方法は、微生物が選択的に結合する糖鎖が固定されている担体を、検体中の微生物と接触させることにより、上記糖鎖と微生物とを結合させる工程と、上記担体を濃縮する工程と、からなることを特徴としている。
【００１０】
本発明に係る微生物の濃縮方法は、上記担体を濃縮する工程が、自然沈降、遠心分離、ろ過、磁力または親和力の作用によって担体を回収する工程と、回収した担体を洗浄することにより微生物を精製する工程と、を含むことが好ましい。
【００１１】
本発明に係る微生物の濃縮方法は、上記担体がナノ粒子であることが好ましい。
【００１２】
本発明に係る微生物の濃縮方法は、上記微生物が、ウィルス感染症、細菌感染症、リケッチア感染症、クラミジア感染症、真菌感染症、原虫感染症、または寄生虫感染症を発症させる微生物であることが好ましい。
【００１３】
本発明に係る微生物の濃縮方法は、上記微生物が、ヘルペスウィルス、水疱瘡ウィルス、サイトメガロウィルス、コイヘルペスウィルス、レンチウィルスまたは遺伝子治療に用いるウィルスベクターであることが好ましい。
【００１４】
ウィルスベクターとは、ウィルスの遺伝子から毒性を発現する部分を除去し、遺伝子治療で必要な遺伝子を組み込んだウィルスの一般名である。ウィルス自体の感染性は保たれているので、ウィルスを宿主細胞に感染させることによって、組み込んだ遺伝子を宿主に導入する事が出来るので、ウィルスベクターという。例えば、レンチウィルスやアデノウィルス由来のウィルスベクターを例として挙げることができる。その濃縮は、一般のウィルスと同様に行うことが出来る。
【００１５】
本発明に係る微生物の同定方法は、本発明に係る微生物の濃縮方法によって濃縮された担体を、免疫学的手法または遺伝子工学的手法に供することより微生物を同定することを特徴としている。
【発明の効果】
【００１６】
本発明に係る微生物の濃縮方法では、微生物を効率よく濃縮しているため、検体中の微生物が極微量であって通常の検出方法では検出不可能な場合においても同定することが可能である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１７】
以下、本発明について具体的に説明する。
【００１８】
本発明に係る微生物の濃縮方法は、微生物が選択的に結合する糖鎖が固定されている担体を、検体中の微生物と接触させることにより、上記糖鎖と微生物とを結合させる工程と、上記担体を濃縮する工程と、からなる。
【００１９】
上記微生物としては、例えば、ウィルス、細菌などを挙げることができる。上記ウィルスとしては、特に限定されるものではないが、具体的にはヘルペスウィルス、インフルエンザウィルス、エイズウィルス、Ｂ型肝炎ウィルス、Ｃ型肝炎ウィルス、水疱瘡ウィルス（ＶＺＶ）、サイトメガロウィルス（ＣＭＶ）、成人Ｔリンパ球白血病ウィルス、レンチウィルス、コイヘルペスウィルス、ノロウィルス、ロタウィルス等を挙げることができる。上記細菌としては、腸内細菌、無胞子球菌などを挙げることができる。
【００２０】
上記微生物としてウィルスを用いる場合は、ウィルスは従来公知の方法を用いて調製することができる。例えば、培養細胞に測定対象となるウィルスを播種した後、二酸化炭素存在下で２〜４日間、３７℃で静置する。その後培養上清をフィルターろ過し、ろ液を遠心分離（２，５００ｒｐｍ、５分、室温）を行い、上清を回収することで調製できる。ここで上記培養細胞としてはウィルスが感染できる培養細胞を適宜用いれば良い。例えば上記ウィルスがヘルペスウィルスの場合ＶｅｒｏＥ６細胞などを好適に用いることができる。
【００２１】
また、上記培養細胞は、従来公知の方法を用いて調製することができる。例えば、測定対象となる細胞を、その細胞に適した周知の培養液と培養条件とで培養した後、目的の濃度になるように上記細胞を回収すればよい。回収の方法としては、特に限定されないが、浮遊細胞であれば、遠心することにより所望の濃度に調製することができる。また、接着細胞であれば、トリプシン等の酵素消化や、ピペッティング等の物理的な方法を用いて細胞を培養皿から剥がした後に、遠心することで所望の濃度に調製することができる。
【００２２】
微生物が相互作用しうる糖鎖は、微生物の種類によって異なっている。上記「微生物が選択的に結合する糖鎖」とは、微生物が特異的に相互作用しうる糖鎖を意味する。ここで、「相互作用」とは、微生物と糖鎖との間に生じる水素結合、疎水結合、イオン結合、ファンデルワールス結合等の作用をいう。
【００２３】
上記「糖鎖」は、糖がグリコシド結合によって複数結合した化合物を意味する。上記糖としては、特に限定されるものではなく、シアル酸や硫酸基を有する糖を好適に用いることができる。糖としては、例えばマルトース、ラクトース、パノース、セロビオース、メリビオース、マンノオリゴ糖、キトオリゴ糖、ラミナリオリゴ糖を挙げることができる。上記シアル酸を有する糖としては、特に限定されず、シアリルラクトース等を挙げることができる。
【００２４】
なお、上記糖鎖は、同一の糖からなる単一オリゴ糖であってもよいし、種々の糖やその誘導体からなる複合糖であってもよい。また、上記オリゴ糖は、いずれも、自然界から単離・精製して得られる種々の天然の糖であってもよく、人工的に合成された糖であってもよい。また、上記オリゴ糖は、多糖を分解して得られたものであってもよい。
【００２５】
上記糖鎖としては、例えば、ヘパリン、ヘパラン硫酸、コンドロイチン、コンドロイチン硫酸、ヒアルロン酸、ケラタン硫酸、デルマタン硫酸、キチン、キトサン、βグルカン、マンナン等を用いることができる。
【００２６】
上記「糖鎖が固定されている担体」は、糖鎖、リンカー及び担体から構成される。
【００２７】
リンカーは糖鎖と担体を結合できるものであれば特に限定されるものではなく、糖鎖を効率よく担体に結合させるためには、リンカーはその分子内に芳香族アミノ基と硫黄原子を持つことが好ましい。上記硫黄原子は、ジスルフィド結合（Ｓ-Ｓ結合）またはチオール基（ＳＨ基）のような状態であってもよい。硫黄原子を持つことにより、リンカーは金属−硫黄結合によって担体に容易に固定される。
【００２８】
上記リンカーはリンカー化合物またはスペーサともいい、
一般式（１）
【００２９】
【化１】
0005700321.tif 000002
【００３０】
（式中、ａ，ｂ，ｃ，ｄは、それぞれ独立して、０以上６以下の整数）
にて表される構造を備えている。上記Ｘは、末端に芳香族アミノ基を有するとともに主鎖に炭素−窒素結合を有していてもよい炭化水素誘導鎖を、３鎖以上含んでなる多分岐構造部位である構造、または１鎖含んでいる直鎖構造部位である構造を備えている。
【００３１】
上記化合物は分子内に１〜４個の芳香族アミノ基を有している。また、当該アミノ基と還元末端を有する糖鎖とを還元アミノ化反応を行うことにより簡便に結合することができる。したがって、上記化合物をリンカーとして用いることにより、１個のリンカー内に１〜４個の糖鎖を結合させることができる。
【００３２】
上記一般式（１）で表される構造を備えたリンカーは、例えば、チオクト酸と、芳香族アミノ基末端との縮合反応を行うことによって製造することができる。
【００３３】
上記担体としては、金属であることが好ましく、上記金属としては、金、銀、銅、アルミニウム、白金、酸化アルミニウム、ＳｒＴｉＯ３、ＬａＡｌＯ３、ＮｄＧａＯ３、ＺｒＯ２等を用いることができる。中でも金であることがより好ましい。
【００３４】
上記金属は、金属ナノ粒子であることが好ましい。例えば、ヘルペスウィルスならびにレンチウィルスベクターを特異的に且つ効率よく濃縮する上では、ヘパリンを始めとする硫酸化糖を固定化した金属ナノ粒子などを用いることが好ましい。金属ナノ粒子とは、粒子径が好ましくは１〜１００ｎｍであるコロイド状の金属粒子を意味する。粒子径が１ｎｍ未満ではナノ粒子が作製し難く、粒子径が１００ｎｍを超える場合は、コロイドそのものが沈降してしまい、微生物との反応が見られない恐れがある。
【００３５】
上記金属ナノ粒子を得る方法としては、特に限定されるものではない。例えば、従来公知の方法を用いて、塩化金属酸およびその塩類をメタノール、水やこれらの混合溶媒等に溶解した後、還元剤を添加することで金属ナノ粒子を得ることができる。上記塩化金属酸およびその塩類の具体例としては、テトラクロロ金（ＩＩＩ）ナトリウムを挙げることができる。
【００３６】
図１は本発明の各段階を例示するフローチャートである。図１は、ウィルス培養上清からウィルスを濃縮する方法を例示したものである。図１において、ヘパリン−ＧＮＰは糖鎖固定化ナノ粒子に該当する。本明細書では、糖鎖が固定されている担体が、糖鎖、リンカーおよび金属ナノ粒子からなる場合、上記「糖鎖が固定されている担体」を、「糖鎖固定化ナノ粒子」という。まず、ウィルスが含まれる液体（以下、ウィルス液という）と糖鎖固定化ナノ粒子を混合する。次に遠心分離を行い、沈殿物を形成させた後上清を取り除く。上清が除かれれば、ウィルス液から目的のウィルスを濃縮できたことになる。ウィルスが濃縮されれば、ウィルス液では検出することができなかった免疫学的手法や遺伝子工学的手法により高感度にウィルスを検出することが可能となる。
【００３７】
上記「糖鎖が固定されている担体」を製造する方法は特に限定されるものではなく、従来公知の方法によって製造することができる。例えば、糖鎖の還元末端と上記リンカーが有するアミノ基とを還元アミノ化反応によって結合させ糖鎖を結合させたリンカー分子、（以下、リガンド複合体と称する）を調製する。さらに、リガンド複合体を担体としての金属に接触させることによって「糖鎖が固定されている担体」を製造することができる。上記接触は、例えば、リガンド複合体を、金属を含む溶液と混和することによって行うことができる。
【００３８】
金属を含む溶液の分散媒およびリガンド複合体を含む溶液に用いる溶媒としては、特に限定されるものではないが、例えば、メタノール、水やこれらの混合溶媒等を挙げることができる。
【００３９】
なお、金属が塩として溶液に含まれているときは、リガンド複合体を金属を含む溶液と混和する前に、還元剤を用いて金属を還元しておくことが好ましい。これにより、金属と上記リガンド複合体との結合を形成しやすくすることができる。還元剤としては、特に限定されるものではないが、例えば、水素化ホウ素ナトリウム、クエン酸およびその塩類、アスコルビン酸およびその塩類、リン、タンニン酸およびその塩類、エタノール、ヒドラジン等を用いることができる。
【００４０】
上記「糖鎖が固定されている担体」を製造する場合、リガンド複合体と担体の使用量は特に限定されるものではないが、モル比で１：１から１：１０００が望ましく、より好適には１：１０であることが好ましい。
【００４１】
本発明に係る方法では、上記「糖鎖が固定されている担体」を、検体中の微生物と接触させることにより、上記糖鎖と微生物とを結合させる。上記糖鎖は、濃縮対象の微生物が特異的に相互作用する糖鎖であるため、検体中に濃縮対象の微生物が含まれていれば、当該微生物に「糖鎖が固定されている担体」は特異的に結合することになる。
【００４２】
上記「接触」を行う方法は特に限定されるものではなく、従来公知の方法によって行うことができる。例えば、微生物を含む溶液と、上記「糖鎖が固定されている担体」を含む溶液とを混和することによって、上記「糖鎖が固定されている担体」を、検体中の微生物と接触させることができる。そして、当該接触が行われると、上記糖鎖と微生物とが結合する。
【００４３】
なお、微生物を含む溶液は、例えば水疱等の患部を擦過したスワブをバッファーに浸す、血液・脳脊髄液を採取する、ウィルス培養上清を回収する、等の方法により調製することができる。また、上記「糖鎖が固定されている担体」を含む溶液は、例えばテトラクロロ金（ＩＩＩ）ナトリウムを、クエン酸三ナトリウムで還元し、リガンド複合体溶液を混和することで調製することができる。
【００４４】
微生物が結合した上記「糖鎖が固定されている担体」を濃縮する方法は、特に限定されるものではない。例えば、自然沈降、遠心分離、ろ過または磁力によって上記濃縮を行うことができる。
【００４５】
自然沈降による濃縮は、例えば静置のような方法で行うことができる。遠心分離による濃縮は、従来公知の遠心分離機を用いて行うことができる。遠心分離の条件としては、例えば１,０００〜１２，０００ｒｐｍ、１０〜３０分、４℃〜２５℃であることが好ましい。ろ過による濃縮は、例えば限外濾過膜を用いて従来公知の方法によって行うことができる。磁力による濃縮は、例えば金属ナノ粒子に鉄を含ませることによって磁性ナノ粒子を作成し、同様の方法で糖鎖を固定化して「糖鎖が固定されている担体」を調製し、ウィルス液と混合した後、永久磁石を容器の外から当てるというような方法で行うことができる。
【００４６】
上記微生物は、ウィルス感染症、細菌感染症、リケッチア感染症、クラミジア感染症、真菌感染症、原虫感染症、または寄生虫感染症を発症させる、宿主生物に感染能を有する微生物である。
【００４７】
ウィルス感染症とは、ヘルペス性歯肉口内炎・性器ヘルペス・ヘルペス脳炎・ヘルペス性ひょう疽・水痘・帯状疱疹・ＣＭＶ網膜炎・インフルエンザ・流行性耳下腺炎・麻疹・急性気道感染症・狂犬病・エボラ出血熱・ポリオ・風疹・日本脳炎・ウィルス性胃腸炎・後天性免疫不全症候群・ウィルス肝炎などのことである。ウィルス感染症を発症させる微生物としては、例えばヘルペスウィルス・水痘-帯状疱疹ウィルス・サイトメガロウィルス・インフルエンザウィルス・ムンプスウィルス・麻疹ウィルス・ＲＳウィルス・狂犬病ウィルス・エボラウィルス・ポリオウィルス・風疹ウィルス・日本脳炎ウィルス・ノロウィルス・ヒト免疫不全ウィルス・肝炎ウィルスを挙げることができる。
【００４８】
細菌感染症とは、急性咽頭炎・膿痂疹・淋病・レジオネラ肺炎・ブルセラ症・出血性大腸炎・チフス・ペスト・コレラ・食中毒・胃炎・炭疽・ジフテリアなどのことである。細菌感染症を発症させる微生物としては、例えば化膿レンサ球菌・淋菌・レジオネラ菌・ブルセラ菌・腸管出血性大腸菌・サルモネラ菌・ペスト菌・コレラ菌・腸炎ビブリオ・黄色ブドウ球菌・ヘリコバクター-ピロリ・炭疽菌・ジフテリア菌・を挙げることができる。
【００４９】
リケッチア感染症とは、発疹チフス・発疹熱・ロッキー山紅斑熱・日本紅斑熱などのことである。リケッチア感染症を発症させる微生物としては、例えばリケッチア・プロヴァゼッキ（Ｒｉｃｋｅｔｔｓｉａ ｐｒｏｗａｚｅｋｉｉ），リケッチア・ティフィ（Ｒｉｃｋｅｔｔｓｉａ ｔｙｐｈｉ）を挙げることができる。
【００５０】
クラミジア感染症とは、トラコーマ・封入体粘膜炎・非淋菌性尿道炎・性病性リンパ肉芽腫症・オウム病などのことである。クラミジア感染症を発症させる微生物としては、例えばトラコーマクラミジア・肺炎クラミドフィラ・オウム病クラミドフィラを挙げることができる。
【００５１】
真菌感染症とは、カンジダ症・クリプトコッカス症・アスペルギルス症・ヒストプラズマ症・ニューモシスチスーカリニ肺炎などのことである。真菌感染症を発症させる微生物としては、例えばカンジダーアルビカンス・クリプトコッカスーネオフィルマンス・アスペルギルスーフラバス・ヒストプラズマーカプスラータム・ニューモシスチスーカリニを挙げることができる。
【００５２】
原虫感染症とは、アメーバ赤痢・アメーバ性格膜炎・アフリカ睡眠病などのことである。原虫感染症を発症させる微生物としては、例えば赤痢アメーバ・アカントアメーバ・膣トリコモナス・ガンビアトリパノソーマを挙げることができる。
【００５３】
寄生虫感染症とは、回虫症、象皮病、住血吸虫症などのことである。寄生虫感染症を発症させる微生物としては、例えば回虫やフィラリア、住血吸虫を挙げることができる。
【００５４】
上記微生物を濃縮するために用いる前記糖鎖固定化ナノ粒子の量は、望ましくは５３０ｎｍにおける紫外可視吸収スペクトル（ＯＤ５３０ｎｍ）が０．１〜３．０（／ｍｍ）であり、より望ましくは０．１〜０．５（／ｍｍ）である。糖鎖固定化ナノ粒子の使用量については目的に応じて適宜決定することができる。
【００５５】
本発明において、微生物が存在する検体から糖鎖固定化ナノ粒子を用いて濃縮を行うには、例えば、糖鎖固定化ナノ粒子を推定される検体内の微生物の０．００１〜１０００モル倍量、好ましくは０．１〜１００モル倍量の割合で、より好ましくは１〜１０モル倍量の割合で添加し、４℃で一晩静置した後、遠心分離（１０，０００ｒｐｍ、４０分、室温）し、上清を除去した後、微生物と糖鎖固定化ナノ粒子が含まれる沈殿物を超純水で懸濁し、再度遠心分離（１０，０００ｒｐｍ、１分、室温）して上清を除去することにより達成される。
【００５６】
本発明に係る方法によって濃縮された担体を、免疫学的手法または遺伝子工学的手法に供することより微生物を同定することができる。上記免疫学的手法または遺伝子工学的手法としては、ウェスタンブロッティング法、リアルタイムＰＣＲなどを挙げることができ、微生物を特異的に認識する抗体や、微生物の核酸に相補的配列をもつプライマーを用いることで微生物を同定することができる。すなわち、本発明において微生物の濃縮の効果は、ウェスタンブロッティング法、リアルタイムＰＣＲ法などで確認することができる。例えば、ウェスタンブロッティング法によって濃縮の効果を確認するためには、定法によりＳＤＳ−ＰＡＧＥを行った後、ニトロセルロース膜に転写する。使用する抗体は微生物のタンパク質を選択的に認識するものであればよい。
【００５７】
なお本発明は上述した各実施形態に限定されるものではなく、請求項に示した範囲で種々の変更が可能であり、異なる実施形態にそれぞれ開示された技術的手段を適宜組み合わせて得られる実施形態についても本発明の技術的範囲に含まれる。
【実施例】
【００５８】
以下、本発明を実施例を介して更に詳細に説明するが、本発明の範囲はこれら実施例に限定されるものではない。
【００５９】
（実施例１：ヘパリン固定化金ナノ粒子の調製）
微生物として、ヘルペスウィルスを用いたため、ナノ粒子に固定化する糖鎖としてヘパリンを選択した。なお、以下、ヘルペスウィルスを「ＨＳＶ」と略記する場合がある。
【００６０】
ヘパリンをリンカーと結合する方法はＷＯ２００５／０７７９６５号公報と同様の方法を用いた。まず、チオクト酸とｍ−フェニレンジアミンとを含むリンカーを作成した。その後、リンカーとヘパリンとを還元アミノ化反応によりナノ粒子に固定化するヘパリンリガンド複合体を調製した。
【００６１】
金ナノ粒子はＮａｔｕｒｅ．  Ｐｈｙｓｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅ，  １９７３，  ２４１，  ２０−２２の方法に従って調製した。
【００６２】
金ナノ粒子とヘパリンリガンド複合体とを混和し、1時間室温で静置した後、ＭＷＣＯ：３，５００の透析膜を用いて精製後、更に遠心分離（１０，５００ｒｐｍ、４０分）してＯＤ５３０ｎｍが０．８（／ｍｍ）のヘパリン固定化金ナノ粒子を調製した。
【００６３】
（実施例２：ウェスタンブロッティング法を用いたヘルペスウィルス濃縮効果の確認）
ヘパリン固定化金ナノ粒子をＯＤ５３０ｎｍ＝０．４４の濃度に希釈する。その後ヘルペスウィルスを含む液２００μＬに対してヘパリン固定化金ナノ粒子を１００μＬ加えて、４℃で一晩静置した。その後遠心分離（１０，０００ｒｐｍ、４０分、室温）し、上清を除去し、得られたウィルスとヘパリン固定化金ナノ粒子を含む沈殿物へ超純水を１ｍｌ加えて洗浄し、再び遠心分離（１０，０００ｒｐｍ、１分、室温）して沈殿を回収した。沈殿物に２０μlのＰＢＳ−Ｔ（５％Ｔｗｅｅｎ２０を含むリン酸等張緩衝液）を加えて懸濁させウィルスを濃縮したヘルペスウィルス懸濁液を調製した。
【００６４】
ヘパリン固定化金ナノ粒子未処理のヘルペスウィルス液（表１中、「未処理」と記載）、濃縮したヘルペスウィルス懸濁液（表１中、「沈殿物」と記載）及び上記遠心分離時に除去した上清（表１中、「上清」と記載）を通常公知の方法でＳＤＳ−ＰＡＧＥに供した。表１には加えたウィルス液、ＳＤＳ−ＰＡＧＥのサンプル調整用緩衝液（Leammli bufferと記載）、ＳＤＳ−ＰＡＧＥの１レーンに入れた量（Apply量と記載）を示した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥのランニングバッファーには１０％Ｔｒｉｃｉｎｅ、Ｔｒｉｃｉｎｅ−ＳＤＳ緩衝液を用いた。ＳＤＳ−ＰＡＧＥ終了時の判別、およびタンパク質の可視化にはクマシーブリリアントブルー（ＣＢＢステインワン：ナカライテスク社）及びウエスタンブロッティング法を併用した。ウエスタンウエスタンブロット法はＳＤＳ−ＰＡＧＥにて分離したヘルペスウィルス由来のタンパク質をＰＶＤＦ膜（０．２μｍ  ＭＩＬＬＩＰＯＲＥ社）に転写した後、１次抗体に抗ＨＳＶ抗体マウスモノクローナル抗体またはウサギポリクローナル抗体（ｂｉｏｍｅｄａ社）、２次抗体にアルカリフォスファターゼでラベルした抗マウスＩｇＧまたは抗ウサギＩｇＧ（ＳＩＧＭＡ社）を用い、ＢＣＩＰ−ＮＢＴ溶液キット（ナカライテスク社）で可視化した。
【００６５】
【表１】
0005700321.tif 000003
【００６６】
図２の（ａ）に示すように、クマシーブリリアントブルー染色により、ヘパリン固定化金ナノ粒子未処理のヘルペスウィルス液と濃縮したヘルペスウィルス懸濁液を比較した結果、濃縮したヘルペスウィルス由来のタンパク質はバックグラウンドとなるタンパク質がほとんど除かれたため明確になっており、また除かれたタンパク質は遠心分離時に除去した上清で検出されていた。
【００６７】
図２の（ｂ）はウサギポリクローナル抗体を用いたウエスタンブロット法による結果であり、濃縮したヘルペスウィルス由来のタンパク質には特異的に結合する抗体に基づく強いシグナルが得られているが、ヘパリン固定化金ナノ粒子未処理のヘルペスウィルス液由来のタンパク質や遠心分離時に除去した上清では特異的に結合する抗体に基づくシグナルが得られていないことより、効率よく濃縮されていることが判明した。その濃縮の効率はバンドの発色強度をＧｅｌ−Ｐｒｏ  Ａｎａｌｙｚｅｒ（ＭｅｄｉａＣｙｂｅｒｎｅｔｉｃｓ社）によって数値化したところ、ヘパリン固定化金ナノ粒子未処理のヘルペスウィルス培養上清と比較して濃縮したヘルペスウィルスタンパク質は約３倍に濃縮されていた事が分かった。
【００６８】
図２の（ｃ）はマウスモノクローナル抗体を用いたウエスタンブロット法による結果である。同様に濃縮の効率を解析した結果、ヘパリン固定化金ナノ粒子未処理のヘルペスウィルス液と比較して濃縮したヘルペスウィルス懸濁液にはヘルペスウィルスが約６倍濃縮されていることが認められた。これらの結果から、ヘルペスウィルス液をヘパリン固定化金ナノ粒子で濃縮することにより、ヘルペスウィルスを効率良く濃縮できることが明らかとなった。
【００６９】
（実施例３：リアルタイムＰＣＲを用いたヘルペスウィルス濃縮の検討）
ヘパリン固定化金ナノ粒子をＯＤ５３０ｎｍ＝０．７８（／ｍｍ）に調製した溶液２６０μｌに対して、１５０ＰＦＵ／ｍｌ相当のヘルペスウィルス液１０ｍｌを混和して、４℃で一晩静置した。その後遠心分離（１０，０００ｒｐｍ、３０分、室温）し、上清を除去した後、ウィルスとヘパリン固定化金ナノ粒子を含む沈殿物へ超純水１０μｌを加え懸濁した。またＰＦＵとは、ＰＬＡＱＵＥ ＦＯＲＭＡＴＩＯＮ  ＵＮＩＴを指しウィルス量を定義する指標である。
【００７０】
ウィルスの懸濁液を９５℃で１０分間加熱して、ウィルスの熱変性を行い、その後4℃まで急冷した後、再度遠心分離（１０，０００ｒｐｍ、1分、室温）して上清を回収し、リアルタイムＰＣＲ機器へ供するテンプレートとした。また１５０ＰＦＵ／ｍｌ相当のヘルペスウィルス液１０μｌを９５℃で１０分間熱変性を行い、対照のテンプレートとした。
【００７１】
リアルタイムＰＣＲに供するサンプルは、ＳＹＢＲ Ｐｒｅｍｉｘ ＥＸ Ｔａｑ（登録商標、タカラバイオ社）のキットを使用し、その調整は添付されたマニュアルに準じた。反応に使用したプライマーは、順方向プライマーはＡＣＡＴＣＡＴＣＡＡＣＴＴＣＧＡＣＴＧＧ（配列番号１）、逆方向プライマーは、ＣＴＣＡＧＡＴＣＣＴＴＣＴＴＣＴＴＧＲＣＣ（配列番号２）であり、ヘルペスウィルスのｇｐ０４６をコーティングする遺伝子にそれぞれ相補的である。なお、ｇｐ０４６とは、DNA polymerase catalytic subunitのことでる。
【００７２】
リアルタイムＰＣＲ装置Ｔｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ Ｄｉｃｅ（タカラバイオ社）を用いて、ＰＣＲ条件は９５℃（１０秒）を１サイクル、９５℃（５秒）→６０℃（３０秒）を４０サイクルに設定した。
【００７３】
上述の実験の結果はＣｔで確認した。Ｃｔ（Ｃｙｃｌｅ  ｏｆ  ｔｈｒｅｔｈｏｌｄ）とは、蛍光信号による標的テンプレートの検出が可能となるまで繰り返される、ＰＣＲのサイクル数をいう。すなわち初期テンプレート濃度が高いほど、小さいＣｔでも標的テンプレートの増幅量は多くなるため、蛍光信号が検出可能であり、逆に初期テンプレート濃度が低いほどＣｔは大きくなる。したがってＣｔが１減少すると、初期テンプレート量が２倍量存在した事を表している。
【００７４】
表２のサンプルＡ，Ｂは、ヘパリン固定化金ナノ粒子のヘルペスウィルス濃縮効果をＣｔで表したものである。ヘパリン固定化金ナノ粒子によって濃縮されたウィルス懸濁液のＣｔは２１．７であり、対照サンプルのＣｔ＝３３．０と比べてその値は大幅に減少しており、２の（３３．０−２１．７）乗、即ち約２５００倍濃縮されていた事が示された。これらの結果から、ヘルペスウィルス液をヘパリン固定化金ナノ粒子で濃縮することによって、ウィルスが効率良く濃縮されることが明らかとなった。
【００７５】
【表２】
0005700321.tif 000004
【００７６】
本発明に係る微生物の濃縮方法は、微生物を効率よく濃縮しているため、検体中の微生物が極微量であって通常の検出方法では検出不可能な場合においても同定することが可能である。
【００７７】
（実施例４：リアルタイムＰＣＲを用いた水疱瘡ウィルスの濃縮効果の確認およびサイトメガロウィルスの濃縮の検討）
ヘパリン固定化金ナノ粒子をＯＤ５３０ｎｍ＝０．７８（／ｍｍ）に調製した溶液２６０μｌに対して、１５０ＰＦＵ／ｍｌ相当の水疱瘡ウィルス（以下「ＶＺＶ」と称する）またはサイトメガロウィルス（以下「ＣＭＶ」と称する）を含むウィルス液１０ｍｌを混和して、４℃で一晩静置した。その後遠心分離（１０，０００ｒｐｍ、３０分、室温）し、上清を除去した後、ウィルスとヘパリン固定化金ナノ粒子を含む沈殿物へ超純水１０μｌを加え懸濁した。
【００７８】
懸濁液を９５℃で１０分間加熱して、ウィルスの熱変性を行い、その後4℃まで急冷した後、再度遠心分離（１０，０００ｒｐｍ、1分、室温）して上清を回収し、リアルタイムＰＣＲ機器へ供するテンプレートとした（ＶＺＶ：サンプルＣ  ＣＭＶ：サンプルＥ）。また１５０ＰＦＵ／ｍｌ相当の１５０ＰＦＵ／ｍｌ相当のＶＺＶまたはＣＭＶウィルス液１０μｌを９５℃で１０分間熱変性を行い、対照のテンプレートとした（ＶＺＶ：サンプルＤ  ＣＭＶ：サンプルＦ）。
【００７９】
リアルタイムＰＣＲに供するサンプルは、ＳＹＢＲ Ｐｒｅｍｉｘ ＥＸ Ｔａｑ（登録商標、タカラバイオ社）のキットを使用し、その調製は添付されたマニュアルに準じた。反応に使用したプライマーは、ＶＺＶの順方向プライマーはＣＴＣＧＣＣＣＧＴＣＴＣＴＡＴＣＴＣ（配列番号３）、逆方向プライマーは、ＧＡＴＧＡＧＧＴＧＧＴＴＧＴＴＡＴＴＧＴＴＣ（配列番号４）、ＣＭＶの順方向プライマーはＣＡＡＧＣＧＧＣＣＴＣＴＧＡＴＡＡＣＣＡ（配列番号５）、逆方向プライマーは、ＡＣＴＡＧＧＡＧＡＧＣＡＧＡＣＴＣＴＣＡＧＡＧＧＡＴ（配列番号６）であり、ＶＺＶのｇＢまたはＣＭＶのｐＩＥ２をコーティングする遺伝子にそれぞれ相補的である。リアルタイムＰＣＲ装置Ｔｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ Ｄｉｃｅ（タカラバイオ社）を用いて、ＰＣＲ条件は９５℃（１０秒）を１サイクル、９５℃（５秒）→６０℃（３０秒）を４０サイクルに設定した。なお、上記ｇＢとはｇＢとはenvelope glycoprotein Bのことであり、ｐＩＥ２とはimmediate-early transcriptional regulatorのことである。
【００８０】
上述の実験の結果はＣｔで確認した。表２のサンプルＣ〜Ｆは、ヘパリン固定化金ナノ粒子のＶＺＶまたはＣＭＶの濃縮効果をＣｔで表したものである。ＶＺＶについて、ヘパリン固定化金ナノ粒子により、濃縮処理した場合のＣｔは１５．４であり、対照のサンプル（Ｃｔ＝２２．５）と比較してその値は大幅に減少しており、１３８倍にまで濃縮された事が示された。これらの結果から、ＶＺＶウィルス液をヘパリン固定化金ナノ粒子で濃縮することによって、ＶＺＶが効率良く濃縮されることが明らかとなった。
【００８１】
ＣＭＶについて、ヘパリン固定化金ナノ粒子により、濃縮処理した場合のＣｔは２３．４であり、対照のサンプル（Ｃｔ＝２８．８）と比較してその値は大幅に減少しており、４２倍にまで濃縮される事が示された。これらの結果から、ＣＭＶウィルス液をヘパリン固定化金ナノ粒子で濃縮することによって、ＣＭＶが効率良く濃縮されたことが明らかとなった。
【００８２】
（実施例５：リアルタイムＰＣＲを用いたコイヘルペスウィルス濃縮の検討）
ニシキゴイヒレ由来細胞にコイヘルペスウィルスを感染させ、２週間培養した細胞培養液をＰＢＳで５倍に希釈したウィルス液０．５ｍｌとヘパリン固定化金ナノ粒子をＯＤ５３０ｎｍ＝０．７８（／ｍｍ）に調製した溶液６．５μｌとを混和して、４℃で１時間振とうした。その後遠心分離（１０，０００ ｇ、３０分、室温）し、上清を除去した後、ウィルスとヘパリン固定化金ナノ粒子を含む沈殿物へ超純水１０μｌを加え懸濁した。懸濁液を９５℃で１０分間加熱して、ウィルスの熱変性を行い、その後氷上で急冷した後、再度遠心分離（１０，０００ｒｐｍ、1分、室温）して上清を回収し、リアルタイムＰＣＲ機器へ供するテンプレートとした（サンプルＧ）。また上記の５倍に希釈したウィルス液１０μｌを１００ ℃で１０分熱変性を行い、対照のテンプレートとして用いた（サンプルＨ）。
【００８３】
リアルタイムＰＣＲに供するサンプルは、ＳＹＢＲ Ｐｒｅｍｉｘ ＥＸ Ｔａｑ（登録商標、タカラバイオ社）のキットを使用し、その調整は添付されたマニュアルに準じた。反応に使用したプライマーは、順方向プライマーはＧＡＣＧＣＣＧＧＡＧＡＣＣＴＴＧＴＧ（配列番号７）、逆方向プライマーは、ＣＧＧＧＴＴＣＴＴＡＴＴＴＴＴＧＴＣＣＴＴＧＴＴ（配列番号８）であり、コイヘルペスウィルスのＯＲＦ８９をコーティングする遺伝子にそれぞれ相補的である。なお、ＯＲＦ８９とは、機能未知のhypothetical proteinのことである。
【００８４】
リアルタイムＰＣＲ装置Ｔｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ Ｄｉｃｅ（タカラバイオ社）を用いて、ＰＣＲ条件は９５℃（１０秒）を１サイクル、９５℃（５秒）→６０℃（３０秒）を４０サイクルに設定した。
【００８５】
上述の実験の結果はＣｔで確認した。表２は、ヘパリン固定化金ナノ粒子の濃縮効果をＣｔで表したものである。ヘパリン固定化金ナノ粒子により、濃縮処理したサンプルＧのＣｔは１３．３であり、対照のサンプルＨ（Ｃｔ＝２０．９）と比較してその値は大幅に減少しており、１８０倍にまで濃縮される事が示された。これらの結果から、コイヘルペスウィルス液をヘパリン固定化金ナノ粒子で濃縮することにより、ウィルスを効率良く濃縮できることが明らかとなった。
【００８６】
（実施例６：フローサイトメーターを用いたレンチウィルス濃縮の検討）
ヘパリン固定化金ナノ粒子をＯＤ５３０ｎｍ＝０．７８（／ｍｍ）に調製した溶液２４μｌに対して、Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｖａｉｒａｌ ｔｉｔｅｒ ＝ ２．５ × １０５／ｍｌ相当のレンチウィルス液１ｍｌを混和して、室温で３０分静置した。その後遠心分離（１０，０００ ｇまたは３，０００ｇ、３０分、４℃）し、上清を除去した後、ウィルスとヘパリン固定化金ナノ粒子を含む沈殿物へ滅菌超純水１０μｌを加え懸濁した。なお、Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｖａｉｒａｌ ｔｉｔｅｒとは、感染性のあるウィルス量を定義する指標である。
【００８７】
ヘパリン固定化金ナノ粒子をＯＤ５３０ｎｍ＝０．７８（／ｍｍ）に調製した溶液２４μｌに対して、Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｖａｉｒａｌ ｔｉｔｅｒ ＝ ２．５ ｘ １０５／ｍｌ相当のレンチウィルス培養上清１ｍｌを混和して、室温で３０分静置した。その後遠心分離（１０，０００ ｇまたは３，０００ ｇ、３０分、４℃）し、上清を除去した後、ウィルスとヘパリン固定化金ナノ粒子を含む沈殿物へ滅菌超純水１０μｌを加え懸濁した。懸濁液にＤＭＥＭ培地を添加し、ホスト細胞に感染させた。またＦｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｖａｉｒａｌ ｔｉｔｅｒ ＝ ２．５ ｘ １０５／ｍｌ相当のレンチウィルス培養上清１０μｌを対照として用いた。
【００８８】
ホスト細胞としては、２９３Ｔ細胞を用いた。２９３Ｔ細胞は２×１０５個／穴となるようにあらかじめ６穴プレート上に増殖させた。ウィルスを感染させる際には、終濃度が８μｇ／ｍｌとなるようにＤＭＥＭ培地中にｐｒｏｔａｍｉｎｅ ｓｕｌｆａｔｅを添加した。ウィルスの添加から１６時間後に培地を交換し、感染細胞をその後４日間培養した。
【００８９】
当該ウィルスが感染した細胞は蛍光を発する。そこでフローサイトメーターＣｙｔｏｍｉｃｓ ＦＣ ５００（ベックマンコールター社）を用いて細胞が発する蛍光強度を測定した。フローサイトメーターに供するサンプルの調整は、装置に添付されたマニュアルに準じた。
【００９０】
上述の実験の結果はウィルスのＦｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｖａｉｒａｌ ｔｉｔｅｒ（ｔｉｔｅｒ）で確認した。ｔｉｔｅｒとは、感染性のあるウィルス量を定義する指標である。すなわち、感染能力をもつウィルスの濃度が高いほど、高いｔｉｔｅｒを示す。逆に感染能力をもつウィルスの濃度が低いほどｔｉｔｅｒは小さくなる。
【００９１】
表３は、ヘパリン固定化金ナノ粒子の濃縮効果をｔｉｔｅｒで表したものである。ヘパリン固定化金ナノ粒子により、濃縮処理した場合のｔｉｔｅｒは、３．３ ｘ １０７ ／ｍｌ （遠心分離 ３，０００ ｇ ｘ ３０分：サンプルＩ）または５．３ ｘ １０７ ／ｍｌ （遠心分離 １０，０００ ｇ ｘ ３０分：サンプルＪ）であり、対照のサンプル（サンプルＫ）と比較してその値は大幅に上昇しており、１６０〜２６０倍にまで濃縮される事が示された。これらの結果から、レンチウィルス培養上清をヘパリン固定化金ナノ粒子で濃縮することにより、ウィルスのみを効率良く濃縮できることが判明した。
【００９２】
【表３】
0005700321.tif 000005
【００９３】
（実施例７：ヘパリン固定化金ナノ粒子を用いたリアルタイムＲＴ-ＰＣＲを用いたインフルエンザウィルス濃縮の検討）
ヘパリン固定化金ナノ粒子をＯＤ５３０ｎｍ＝０．７８（／ｍｍ）に調製した溶液２.６μｌに対して、１．０，０．１，または０．０１ＨＡＵのインフルエンスウィルス溶液１００μｌを混和して、室温で３０分静置した。その後遠心分離（１０，０００ｘ ｇ、３０分、室温）し、上清を除去した後、ウィルスとヘパリン固定化金ナノ粒子を含む沈殿物へ超純水１０μｌを加え懸濁した。その懸濁液を９５℃で１０分熱変性を行い、４℃まで急冷した後、リアルタイムＰＣＲ機器の供するテンプレートとして用いた。なおＨＡＵは、Ｈｅｍａｇｇｌｕｔｉｎａｔｉｏｎ  Ｕｎｉｔを指しウィルス量を定義する指標である。
【００９４】
またヘパリン固定化金ナノ粒子を入れないウィルス液を、対照のテンプレートとして用いた。
【００９５】
リアルタイムＰＣＲ機器に供するサンプルは、Ｏｎｅ Ｓｔｅｐ ＳＹＢＲ（登録商標）  ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ（登録商標）ＲＴ-ＰＣＲ ＫｉｔＩＩ（登録商標）（タカラバイオ社）のキットを使用し、その調製は添付されたマニュアルに準じた。反応に使用したプライマーは、順方向プライマーはＧＧＡＣＴＧＣＡＧＣＧＴＡＧＡＧＧＣＴＴ（配列番号９）、逆方向プライマーは、ＣＣＡＧＣＡＡＡＴＡＧＣＣＣＧＡＡＧＡＡＡ（配列番号１０）であり、インフルエンザウィルスのＭタンパク質をコーティングする遺伝子にそれぞれ相補的である。
【００９６】
リアルタイムＰＣＲ装置Ｔｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ Ｄｉｃｅ（タカラバイオ社）を用いて、逆転写反応条件は、４２度（５分）、９５℃（１０秒）を1サイクル、ＰＣＲ条件は９５℃（５秒）→６０℃（３０秒）を４０サイクルに設定した。
【００９７】
上述の実験の結果はＣｔで確認した。１．０ＨＡＵのウィルス液の場合は、ヘパリン固定化金ナノ粒子の添加によってＣｔ＝２９．０からＣｔ＝２３．７へ、０．１ＨＡＵのウィルス液の場合は、ヘパリン固定化金ナノ粒子の添加によってＣｔ＝３３．２からＣｔ＝２７．５へ、０．０１ＨＡＵのウィルス液の場合は、ヘパリン固定化金ナノ粒子の添加によってＣｔ＝３７．５からＣｔ＝３１．８へいずれも少ないサイクル数でインフルエンザウィルスに由来するＤＮＡが検出された。これらの結果から、インフルエンザウィルス溶液をヘパリン固定化金ナノ粒子で濃縮することにより、ウィルスを効率良く濃縮できることが明らかとなった。
【００９８】
（実施例８：シアル酸含有糖鎖固定化金ナノ粒子を用いたリアルタイムＲＴ-ＰＣＲを用いたインフルエンザウィルス濃縮の検討）
シアル酸含有糖鎖（NeuAcα2-6Galβ1-4Glc）固定化金ナノ粒子をＯＤ５３０ｎｍ＝０．８９６（／ｍｍ）に調製した溶液３．７μｌに対して、１．０，０．１，または０．０１ＨＡＵのインフルエンザウィルス溶液１００μｌを混和して、室温で３０分静置した。その後遠心分離（１０，０００ｘ ｇ、３０分、室温）し、上清を除去した後、ウィルスとシアル酸含有糖鎖固定化金ナノ粒子を含む沈殿物へ超純水１０μｌを加え懸濁した。その懸濁液を９５℃で１０分熱変性を行い、４℃まで急冷した後、リアルタイムＰＣＲ機器の供するテンプレートとして用いた。
【００９９】
またシアル酸含有糖鎖固定化金ナノ粒子を加えないウィルス液を、対照のテンプレートとして用いた。
【０１００】
リアルタイムＰＣＲ機器に供するサンプルは、Ｏｎｅ Ｓｔｅｐ ＳＹＢＲ（登録商標）  ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ（登録商標）ＲＴ-ＰＣＲ ＫｉｔＩＩ（登録商標）（タカラバイオ社）のキットを使用し、その調製は添付されたマニュアルに準じた。反応に使用したプライマーは、順方向プライマーはＧＧＡＣＴＧＣＡＧＣＧＴＡＧＡＧＧＣＴＴ（配列番号９）、逆方向プライマーは、ＣＣＡＧＣＡＡＡＴＡＧＣＣＣＧＡＡＧＡＡＡ（配列番号１０）であり、インフルエンザウィルスのＭタンパク質をコーティングする遺伝子にそれぞれ相補的である。
【０１０１】
リアルタイムＰＣＲ装置Ｔｈｅｒｍａｌ Ｃｙｃｌｅｒ Ｄｉｃｅ（タカラバイオ社）を用いて、逆転写反応条件は、４２度（５分）、９５℃（１０秒）を1サイクル、ＰＣＲ条件は９５℃（５秒）→６０℃（３０秒）を４０サイクルに設定した。
【０１０２】
上述の実験の結果はＣｔで確認した。１.０ＨＡＵのウィルス液の場合は、シアル酸含有糖鎖固定化金ナノ粒子の添加によってＣｔ＝２７．７からＣｔ＝２０．２へ、０．１ＨＡＵのウィルス液の場合は、シアル酸含有糖鎖固定化金ナノ粒子の添加によってＣｔ＝２８．５からＣｔ＝２３．５へ、０．０１ＨＡＵのウィルス液の場合は、シアル酸含有糖鎖固定化金ナノ粒子の添加によってＣｔ＝３４．５からＣｔ＝２７．７へいずれも少ないサイクル数でインフルエンザウィルスに由来するＤＮＡが検出された。これらの結果から、インフルエンザウィルス溶液をシアル酸含有糖鎖固定化金ナノ粒子で濃縮することにより、ウィルスを効率良く濃縮できることが明らかとなった。
【産業上の利用可能性】
【０１０３】
本発明に係る微生物の濃縮方法は、微生物が選択的に結合する糖鎖が固定されている担体を、検体中の微生物と接触させることにより、上記糖鎖と微生物とを結合させる工程と、上記担体を濃縮する工程と、からなり、病原性微生物を効率よく濃縮および同定できる。よって、病原性微生物によって発症する病気の予防、治療を行うことができ、家畜・農産物など生産物の経済的損害を予見し、さらにそれら損害を防ぐことができる。それゆえ、本発明は、農業、畜産業、医療機器等の産業に広く利用することが可能である。
【図面の簡単な説明】
【０１０４】
【図１】本発明の一連の過程を示すフローチャートである。
【図２】ヘパリン固定化金ナノ粒子による濃縮効果を示した図である。（ａ）ＳＤＳ−ＰＡＧＥの結果、（ｂ）抗ＨＳＶ抗体としてウサギポリクローナル抗体を用いたウェスタンブロッティング法の結果（ｃ）抗ＨＳＶ抗体としてマウスモノクローナル抗体を用いたウェスタンブロッティング法の結果。
【図１】
0005700321.tif 000007
【図２】
0005700321.tif 000008
【配列表】
0005700321000001.app