(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
水晶体線維症疾患の治療において使用されるための組成物であって、当該組成物は、少なくとも１種類の骨格筋幹細胞を標的指向する分子と、少なくとも１種類の薬学的に許容され得る担体とを有し、
前記骨格筋幹細胞を標的指向する分子は、シンデカン、Ｇ８抗原、ｃ−Ｍｅｔ、ＣＤ３４、およびＭ−カドヘリンからなる群から選択される分子と特異的に結合する抗体またはリガンドであり、
前記少なくとも１種類の骨格筋幹細胞を標的指向する分子は、少なくとも１種類の細胞障害性分子に共役結合されているものである、組成物。
【請求項２】
請求項１記載の組成物において、前記組成物は、さらに、補体を有するものである、組成物。
【請求項３】
請求項１記載の組成物において、前記水晶体線維症疾患は、後嚢混濁若しくは前嚢下白内障である、組成物。
【請求項４】
請求項１記載の組成物において、前記細胞傷害性分子は、補体、感熱炭素ナノクリスタル、細胞傷害性抗生物質、カチオン性両親媒性溶解性ペプチド、放射性核種、および毒素からなる群から選択されるものである、組成物。
【請求項５】
請求項１記載の組成物において、前記骨格筋幹細胞を標的指向する分子は、Ｇ８抗体である、組成物。
【請求項６】
請求項１記載の組成物において、前記細胞傷害性分子は、補体である、組成物。
【請求項７】
請求項１記載の組成物において、前記骨格筋幹細胞を標的指向する分子は抗体である、組成物。
【請求項８】
水晶体線維症疾患を治療する薬剤の製造における、少なくとも１種類の骨格筋幹細胞を標的指向する分子の使用であって、
前記骨格筋幹細胞を標的指向する分子は、シンデカン、Ｇ８抗原、ｃ−Ｍｅｔ、ＣＤ３４、およびＭ−カドヘリンからなる群から選択される分子と特異的に結合する抗体またはリガンドであり、
前記少なくとも１種類の骨格筋幹細胞を標的指向する分子は、少なくとも１種類の細胞障害性分子に共役結合されているものである、使用。
【請求項９】
請求項８記載の使用において、前記水晶体線維症疾患は、後嚢混濁若しくは前嚢下白内障である、使用。
【請求項１０】
請求項８記載の使用において、前記細胞傷害性分子は、補体、感熱炭素ナノクリスタル、細胞傷害性抗生物質、カチオン性両親媒性溶解性ペプチド、放射性核種、および毒素からなる群から選択されるものである、使用。
【請求項１１】
請求項８記載の使用において、前記骨格筋幹細胞を標的指向する分子は抗体である、使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本出願は、米国特許法Ｕ．Ｓ．Ｃ．３５に基づき２００８年１２月４日付で出願された米国特許仮出願第６１／１１９，７５０号に対して優先権を主張する。前記仮出願は、ここに参照によって本明細書に組み入れられる。
【０００２】
本発明は、水晶体線維症疾患の技術分野に関する。詳細には、線維化特に水晶体線維症疾患の抑止、治療および／または予防用の組成物と方法が開示される。
【背景技術】
【０００３】
本発明に関連する当技術水準を記載すべく、本明細書全般にわたって幾つかの刊行物および特許文献が引用されている。これらの引用は、参照により、それぞれその全体が記載されたように本明細書に組み込まれる。
筋線維芽細胞は、例えば、後嚢混濁（ｐｏｓｔｅｒｉｏｒ  ｃａｐｓｕｌｅ  ｏｐａｃｉｆｉｃａｔｉｏｎ：ＰＣＯ）および前嚢下白内障（ａｎｔｅｒｉｏｒ  ｓｕｂｃａｐｓｕｌａｒ  ｃａｔａｒａｃｔ：ＡＳＣ）のような、視力の低下を来す水晶体の線維症疾患の原因である可能性が高いとされている。ＰＣＯは、白内障手術の一般的な合併症である。ＡＳＣおよびＰＣＯにおける、筋線維芽細胞の起源は分かっていない。現在までに、ＰＣＯのような水晶体線維症疾患の発症を効果的に抑制するのに用いられる方法は見つかっていない。
この出願の発明に関連する先行技術文献情報としては、以下のものがある（国際出願日以降国際段階で引用された文献及び他国に国内移行した際に引用された文献を含む）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】  米国特許第６１８０３５７号明細書
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献０１】  ＣＯＲＮＥＬＩＳＯＮ，Ｄ．Ｄ．，  ｅｔ  ａｌ．"Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  ａｎｄ  ｓｅｐａｒａｂｌｅ  ｒｏｌｅｓ  ｆｏｒ  Ｓｙｎｄｅｃａｎ−３  ａｎｄ  Ｓｙｎｄｅｃａｎ−４  ｉｎ  ｓｋｅｌｅｔａｌ  ｍｕｓｃｌｅ  ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ａｎｄ  ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ．"  Ｇｅｎｅｓ  Ｄｅｖ．  ２００４  Ｓｅｐ  １５；１８（１８）：２２３１−６．
【非特許文献０２】  ＣＨＥＮ，  Ｙ．，  ｅｔ  ａｌ．"Ｍａｔｒｉｘ  ｃｏｎｔｒａｃｔｉｏｎ  ｂｙ  ｄｅｒｍａｌ  ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓ  ｒｅｑｕｉｒｅｓ  ｔｒａｎｓｆｏｒｍｉｎｇ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ−ｂｅｔａ／ａｃｔｉｖｉｎ−ｌｉｎｋｅｄ  ｋｉｎａｓｅ  ５，  ｈｅｐａｒａｎ  ｓｕｌｆａｔｅ−ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ  ｐｒｏｔｅｏｇｌｙｃａｎｓ，  ａｎｄ  ＭＥＫ／ＥＲＫ：ｉｎｓｉｇｈｔｓ  ｉｎｔｏ  ｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａｌ  ｓｃａｒｒｉｎｇ  ｉｎ  ｃｈｒｏｎｉｃ  ｆｉｂｒｏｔｉｃ  ｄｉｓｅａｓｅ．"  Ａｍ  Ｊ  Ｐａｔｈｏｌ．２００５  Ｄｅｃ；１６７（６）：１６９９−７１１．
【非特許文献０３】  ＬＥＡＳＫ，  Ａ．，  ｅｔ  ａｌ．"Ｍａｔｒｉｘ  ｃｏｎｔｒａｃｔｉｏｎ  ｂｙ  ｄｅｒｍａｌ  ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔｓ  ｒｅｑｕｉｒｅｓ  ｓｙｎｄｅｃａｎ  ４：  Ｉｎｓｉｇｈｔｓ  ｉｎｔｏ  ｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａｌ  ｓｃａｒｒｉｎｇ  ｉｎ  ｃｈｒｏｎｉｃ  ｆｉｂｒｏｔｉｃ  ｄｉｓｅａｓｅ．"  Ｔｈｅ  ＦＡＳＥＢ  Ｊｏｕｒｎａｌ．２００６；２０：Ａ１０９８．［ＡＢＳＴＲＡＣＴ］．
【非特許文献０４】  ＧＥＲＨＡＲＴ，Ｊ．，ｅｔ  ａｌ．"ＭｙｏＤ−ｐｏｓｉｔｉｖｅ  ｍｙｏｂｌａｓｔｓ  ａｒｅ  ｐｒｅｓｅｎｔ  ｉｎ  ｍａｔｕｒｅ  ｆｅｔａｌ  ｏｒｇａｎｓ  ｌａｃｋｉｎｇ  ｓｋｅｌｅｔａｌ  ｍｕｓｃｌｅ．"  Ｊ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．２００１  Ｏｃｔ  ２９；１５５（３）：３８１−９２．Ｅｐｕｂ  ２００１  Ｏｃｔ  ２９．
【非特許文献０５】  ＳＲＩＮＩＶＡＳＡＮ，  Ｙ．，  ｅｔ  ａｌ．"Ｌｅｎｓ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｏｆ  ｔｒａｎｓｆｏｒｍｉｎｇ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ  ｂｅｔａ１  ｉｎ  ｔｒａｎｓｇｅｎｉｃ  ｍｉｃｅ  ｃａｕｓｅｓ  ａｎｔｅｒｉｏｒ  ｓｕｂｃａｐｓｕｌａｒ  ｃａｔａｒａｃｔｓ．"Ｊ  Ｃｌｉｎ  Ｉｎｖｅｓｔ．１９９８  Ｆｅｂ  １；１０１（３）：６２５−３４．
【非特許文献０６】  ＳＴＲＯＮＹ，  Ｒ．，  ｅｔ  ａｌ．"ＮｅｕｒｏＭ  ａｎｄ  ＭｙｏＤ  ａｒｅ  ｅｘｐｒｅｓｓｅｄ  ｉｎ  ｓｅｐａｒａｔｅ  ｓｕｂｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ  ｏｆ  ｃｅｌｌｓ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｐｒｅｇａｓｔｒｕｌａｔｉｎｇ  ｅｐｉｂｌａｓｔ．"  Ｇｅｎｅ  Ｅｘｐｒ  Ｐａｔｔｅｒｎｓ．２００５  Ｆｅｂ；５（３）：３８７−９５．
【非特許文献０７】  ＧＥＲＨＡＲＴ，  Ｊ．，  ｅｔ  ａｌ．  "Ｔｒａｃｋｉｎｇ  ａｎｄ  ａｂｌａｔｉｎｇ  ｓｕｂｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ  ｏｆ  ｅｐｉｂｌａｓｔ  ｃｅｌｌｓ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｃｈｉｃｋ  ｅｍｂｒｙｏ．"Ｂｉｏｌ  Ｐｒｏｃｅｄ  Ｏｎｌｉｎｅ．２００８  Ｓｅｐ  １；１０：７４−８２．
【非特許文献０８】  ＧＥＲＨＡＲＴ，  Ｊ．，  ｅｔ  ａｌ．"Ｃｅｌｌｓ  ｔｈａｔ  ｅｘｐｒｅｓｓ  ＭｙｏＤ  ｍＲＮＡ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｅｐｉｂｌａｓｔ  ａｒｅ  ｓｔａｂｌｙ  ｃｏｍｍｉｔｔｅｄ  ｔｏ  ｔｈｅ  ｓｋｅｌｅｔａｌ  ｍｕｓｃｌｅ  ｌｉｎｅａｇｅ．"  Ｊ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．２００７  Ａｕｇ  １３；１７８（４）：６４９−６０．
【非特許文献０９】  ＧＥＲＨＡＲＴ，  Ｊ．，  ｅｔ  ａｌ．"Ｅｐｉｂｌａｓｔ  ｃｅｌｌｓ  ｔｈａｔ  ｅｘｐｒｅｓｓ  ＭｙｏＤ  ｒｅｃｒｕｉｔ  ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ  ｃｅｌｌｓ  ｔｏ  ｔｈｅ  ｓｋｅｌｅｔａｌ  ｍｕｓｃｌｅ  ｌｉｎｅａｇｅ．"  Ｊ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．２００４  Ｍａｒ  １；１６４（５）：７３９−４６．  Ｅｐｕｂ  ２００４  Ｆｅｂ  ２３．
【非特許文献１０】  ＧＥＲＨＡＲＴ，  Ｊ．，  ｅｔ  ａｌ．"ＭｙｏＤ−ｐｏｓｉｔｉｖｅ  ｅｐｉｂｌａｓｔ  ｃｅｌｌｓ  ｒｅｇｕｌａｔｅ  ｓｋｅｌｅｔａｌ  ｍｕｓｃｌｅ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｅｍｂｒｙｏ．"  Ｊ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．２００６  Ｏｃｔ  ２３；１７５（２）：２８３−９２．
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明によれば、線維症疾患、特に水晶体線維症疾患を抑制する方法を提供する。特定の実施形態において、前記方法は、係る治療を必要とする患者の水晶体に、少なくとも１種類の細胞傷害性分子を共役（ｃｏｎｊｕｇａｔｅ）結合させた、少なくとも１種類の、骨格筋幹細胞を標的指向する分子と、少なくとも１つの薬学的に許容され得る担体とを、含む組成物を治療有効量投与することを含む。別の実施形態において、水晶体線維症疾患は後嚢混濁または前嚢下白内障である。さらに別の実施形態において、本発明の組成物は、水晶体または周囲の組織に直接投与される。
本発明の別の実施形態によれば、水晶体線維症疾患の治療組成物が提供される。特定の実施形態において、前記組成物は、少なくとも１種類の細胞傷害性分子と、少なくとも１種類の細胞傷害性分子が共役結合されている少なくとも１種類の骨格筋幹細胞を標的指向する分子と、少なくとも１つの薬学的に許容され得る担体と、を含む。
【図面の簡単な説明】
【０００７】
【図１】図１Ａおよび図１Ｂは、後嚢混濁を誘発するためのニワトリの水晶体嚢袋の模擬白内障手術後における、それぞれ０日目と２日目水晶体の骨格筋幹細胞の画像を示すものである。
【図２】図２Ａは、補体のみでまたはＧ８抗体と補体中で培養した後嚢混濁誘導水晶体（１日目）由来のα−平滑筋アクチンおよびβ−アクチンのウェスタンブロット画像である。図２Ｂは図２Ａのウエスタンブロットのシグナル強度比のグラフである。
【図３】図３は、Ｇ８とＭｙｏＤ  ｍＲＮＡ標識マウスの水晶体細胞の画像である。
【図４】図４は、水晶体上皮内ニッチ（ｎｉｃｈｅ）に存在するＧ８ｐｏｓ細胞亜集団の画像を示す。水晶体は、上皮外植片の調製前、胚齢Ｅ１５日固定し、ｉｎ  ｓｉｔｕ（原位置）局在Ｇ８ｐｏｓ細胞を保存した。外植片は、ローダミン−共役結合二次抗体でタグ付けしたＧ８抗原に対してｍＡｂで標識し、Ｆ−アクチン（Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ−４８８ファロイジン、ｐｈａｌｌｏｉｄｉｎ）および核（に対して共染色したＴＯ−ＰＲＯ（登録商標）−３、ブルー）。ＸＹタイル（図４Ａ）（図４に、サイズバー２０μｍでより高い倍率で示す）としてデジタル処理で取得した単一光学面の共焦点イメージングは、Ｇ８ｐｏｓ細胞が、水晶体上皮細胞間で囲まれたニッチ（矢印）に局在することを示すものである。図４Ａの挿入図は、水晶体上皮関連Ｇ８ｐｏｓ細胞は、また、ＭｙｏＤ  ｍＲＮＡを発現していることを示し、これは、培地でＴ０（試験開始時）に固定した植片中に、Ｃｙ３でタグ付けしたＭｙｏＤアンチセンス  オリゴヌクレオチド配列に共役結合したＤＮＡデンドリマーズ（ｄｅｎｄｒｉｍｅｒｓ）で検出され，核はＨｏｅｃｈｓｔ色素で対比染色した。さらにＧ８ｐｏｓ細胞のニッチ位置を定める光学切片のＺ−スタックから、直交カット（上部パネル、図４Ｂ）を作成した。当該直交カットは主要光学部の水平線に沿って作成した（下部パネル、図４Ｂ）。Ｇ８ｐｏｓのニッチは、水晶体上皮細胞の頂面と関連していた（矢印、図４Ｂ）。
【図５−１】図５は、Ｇ８ｐｏｓ前駆細胞が上皮の傷害に反応して、拡大し、創傷端に移動したこと示すものである。（図５Ａ）にモデル化した、模擬白内障手術を実施し、生体外で創傷した上皮外植片を調製した。当該繊維細胞塊を水晶体嚢（基底膜、ＢＭ）から剥離し、前記繊維細胞に当接していた水晶体上皮（ｌｅｎｓ  ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ：ＬＥ）に、創傷したリーディングエッジ部（ｌｅａｄｉｎｇ  ｅｄｇｅ）を作成した。外植片を平たくするよう前嚢にカットを施し、創傷カットエッジ部（ｃｕｔ  ｅｄｇｅ）を作成した。図５Ｂ〜５Ｆで、創傷に対するＧ８ｐｏｓ細胞の初期反応は、培地中１時間で、Ｇ８ｃｍＡｂで免疫標識することによって測定した。Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８−ファロイジンでＦ−アクチンを染色して水晶体上皮細胞の輪郭を決めた。模擬白内障手術で加えた創傷で誘導されて、Ｇ８ｐｏｓの細胞集団が出現、拡大し（図５Ｂ、５Ｃ）、次いでリーディングエッジ部（図５Ｄ〜５Ｅ）およびカットエッジ部（図５Ｆ）両方の創傷端に向かって移動した。水平線の位置（図５Ｅ、下のパネル）で共焦点Ｚ−スタックを通してなした直交カット（図５Ｅ、上のパネル）は、水晶体上皮細胞の頂面に沿ってＧ８ｐｏｓ細胞（矢印）がリーディングエッジ部に移動したことを示した。図５Ｇ〜５ＩでＧ８ｐｏｓ細胞の間葉表現型は、Ｇ８とビメンチン（ｖｉｍｅｎｔｉｎ）に対する二重標識で実証されおり、図５Ｉにオーバーレイして（重ね合わせて）ある。サイズバーは２０μｍ。
【図５−２】図５は、Ｇ８ｐｏｓ前駆細胞が上皮の傷害に反応して、拡大し、創傷端に移動したこと示すものである。（図５Ａ）にモデル化した、模擬白内障手術を実施し、生体外で創傷した上皮外植片を調製した。当該繊維細胞塊を水晶体嚢（基底膜、ＢＭ）から剥離し、前記繊維細胞に当接していた水晶体上皮（ｌｅｎｓ  ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ：ＬＥ）に、創傷したリーディングエッジ部（ｌｅａｄｉｎｇ  ｅｄｇｅ）を作成した。外植片を平たくするよう前嚢にカットを施し、創傷カットエッジ部（ｃｕｔ  ｅｄｇｅ）を作成した。図５Ｂ〜５Ｆで、創傷に対するＧ８ｐｏｓ細胞の初期反応は、培地中１時間で、Ｇ８ｃｍＡｂで免疫標識することによって測定した。Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８−ファロイジンでＦ−アクチンを染色して水晶体上皮細胞の輪郭を決めた。模擬白内障手術で加えた創傷で誘導されて、Ｇ８ｐｏｓの細胞集団が出現、拡大し（図５Ｂ、５Ｃ）、次いでリーディングエッジ部（図５Ｄ〜５Ｅ）およびカットエッジ部（図５Ｆ）両方の創傷端に向かって移動した。水平線の位置（図５Ｅ、下のパネル）で共焦点Ｚ−スタックを通してなした直交カット（図５Ｅ、上のパネル）は、水晶体上皮細胞の頂面に沿ってＧ８ｐｏｓ細胞（矢印）がリーディングエッジ部に移動したことを示した。図５Ｇ〜５ＩでＧ８ｐｏｓ細胞の間葉表現型は、Ｇ８とビメンチン（ｖｉｍｅｎｔｉｎ）に対する二重標識で実証されおり、図５Ｉにオーバーレイして（重ね合わせて）ある。サイズバーは２０μｍ。
【図６】図６は、水晶体上皮の創傷に反応するＧ８ｐｏｓ細胞が創傷時に存在していたＧ８ｐｏｓ細胞の子孫であったことを示す追跡調査を提供するものである。水晶体上皮の生体外外植片（ｅｘ  ｖｉｖｏ  ｅｘｐｌａｎｔｓ）のＧ８ｐｏｓ細胞は、Ｔ０（試験開始時）において、Ｇ８  ｍＡｂおよびローダミン−共役結合二次抗体でタグ付けされた。タグ付けしたＧ８細胞を有する外植片は、培養され、傷害時の後２４時間（図６Ａ〜６Ｆ）または７２時間（図６Ｇ〜６Ｉ）追跡したが、その時点毎にで外植片を固定し、Ｇ８  ｍＡｂで再び標識し、今回はＡｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８−共役結合二次抗体でタグ付けした。図６Ａ〜６Ｃおよび図６Ｇ〜６Ｉは拡大したニッチであり、図６Ｄ〜６Ｆはリーディングエッジ部にある細胞である。重ね合わせ（ｏｖｅｒｌａｙｓ）に見られるように（図６Ｃ、６Ｆ、６Ｉ）、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８−タグ付きＧ８で標識した細胞（図６Ｂ、６Ｅ、６Ｈ）も、すべて追跡したローダミン−タグ付きＧ８で標識されていた（図６Ａ、６Ｄ、６Ｇ）。これらの結果で、水晶体上皮を治癒するのに加わった前記Ｇ８ｐｏｓ細胞は、傷害時に存在していたＧ８ｐｏｓの前駆細胞から派生したものであって、後にＧ８の系統に動員された細胞が含まれていないことが実証された。サイズバーは２０μｍ。
【図７−１】図７はＧ８ｐｏｓ細胞が筋線維芽細胞の前駆体であることを示す。６日間培養した創傷水晶体上皮（図７Ａ〜７Ｃ）はＧ８抗原（図７Ａ）とα−ＳＭＡ（図７Ｂ）に対して二重標識し、図７Ｃに重ねあわせてある。Ｇ８ｐｏｓ細胞のコロニー内で、Ｇ８ｐｏｓ細胞から筋線維芽細胞へ進行した、すなわち、α−ＳＭＡを発現していないか僅少であるＧ８ｐｏｓ細胞（白矢じり）、未だストレスファイバーに組織化していないα−ＳＭＡを発現しているＧ８ｐｏｓ細胞（矢印）、ストレスファイバーを含むα−ＳＭＡを有するＧ８ｐｏｓ細胞（開矢じり）、およびＧ８抗原を失なった（破線矢印）筋線維芽細胞である。外植片はまた、上記と同様な経過でＧ８ｐｏｓ細胞が剛性の培養皿に移動できる条件下生育させると、Ｇ８細胞が３日以内に筋線維芽細胞へ分化するのが促進された（図７Ｄ〜７Ｆ）。サイズバーは２０μｍ。
【図７−２】図７Ｇ、７Ｈは、Ｇ８ｐｏｓ細胞をＧ８  ｍＡｂによりタグ付けし、補体Ｃで溶解することで、該細胞が培養１日目に上皮外植片中で切除（ａｂｌａｔｅｄ）されたことを示す。図７Ｇは、Ｃと比較してＧ８＋Ｃでは、切除後１日目の細胞の消失によって確認された、溶解細胞（○で囲まれた領域）のトリパンブルー（ｔｒｙｐａｎ  ｂｌｕｅ）の取り込みマークのエリアを示す。図７Ｈは、培養１日目にＧ８＋Ｃ、Ｇ８のみ、Ｃのみで処理または未処理（Ｕ）で、更に５日間培養し、α−ＳＭＡおよびβ−アクチンに対して免疫ブロットした上皮外植片を示す。Ｇ８細胞の切除は、α−ＳＭＡの発現を抑制したのである。
【図８】図８Ａは、パラフィンに包埋し、切片化し、ヘマトキシリン（ｈｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ）とエオシンで染色した成体マウス眼球の画像である。当該矢印は、図８Ｂと８Ｃに蛍光顕微鏡画像で高倍率で示される領域を指す。前記Ｇ８抗体で標識した細胞は、図８Ｂと８Ｃに矢印で示してある。細胞核も染色される。
【図９】図９Ａ〜９Ｄはそれぞれ、Ｇ８抗原、α平滑筋アクチン（ＳＭＡ）、ミオシン、およびＭｙｏＤタンパク質の存在に対して染色された横紋筋肉腫細胞の画像である。
【発明を実施するための形態】
【０００８】
水晶体は、単一細胞型である上皮細胞から成ると推定される。したがって、水晶体内の筋線維芽細胞は、上皮から間葉への移動を遂げる、水晶体上皮細胞から発生するという仮説を立てることが出来る。このトランス分化は、α−平滑筋アクチン（α−ＳＭＡ）の発現によって同定することができる。
【０００９】
水晶体線維症疾患のモデルが本明細書において提供されるが、該モデルにおいて、培養したニワトリ胚水晶体が嚢混濁後の水晶体線維性障害、すなわち、増殖、後嚢全体にわたる移動、および間葉系マーカーの発現の主要な特徴を反復する。このモデルを使用して線維症を引き起こす原因となる細胞を同定した。特に、骨格筋幹細胞（ｓｋｍ幹細胞）は、ＭｙｏＤ  ｍＲＮＡおよびＧ８抗原を発現する、新たに同定された水晶体細胞の集団であって、水晶体線維症疾患の発症に大きな役割を果たすことが確認された。
【００１０】
以下に実証するように、水晶体には、骨格筋系統のマーカーを発現する幹細胞の独特な亜集団（下位個体群）が含まれている。これらｓｋｍ幹細胞は、赤道上皮内ニッチに存在する。創傷時に、ｓｋｍ幹細胞は活性化され、上皮から出現し、α−平滑筋アクチン（α−ＳＭＡ）を発現する。ｓｋｍ幹細胞は、筋線維芽細胞のマーカーである、α−平滑筋アクチン（α−ＳＭＡ）発現の原因である。これらの結果は、ｓｋｍ幹細胞の前記亜集団は、水晶体の線維症疾患の原因であることを示すものである。
【００１１】
後嚢混濁（ＰＣＯ）は白内障手術後の患者の２０〜４０％に発症する疾患である。白内障手術実施後に残る水晶体上皮細胞は、クリアになった水晶体後嚢へ移動する。上皮から出現する細胞の亜集団は、ＰＣＯの発症時に視力を損なう線維性変化の原因である。ここに実証するように、筋線維芽細胞的特性を有する前記細胞は、水晶体の上皮に包埋されている骨格筋幹細胞に由来する。水晶体内の骨格筋幹細胞は、骨格筋特異転写因子ＭｙｏＤ（例えば、ＭｙｏＤ  ｍＲＮＡ）およびＧ８抗原の発現に基づいて同定することができる。骨格筋幹細胞は、タンパク質ノギン（Ｎｏｇｇｉｎ）を表すこともある。
【００１２】
本発明によれば、線維症疾患／線維症、特に眼の線維症疾患を、抑制、予防、リスク低減、および／または、治療する方法が提供される。特定の実施形態において、本発明の方法は、臓器または組織（例えば、心臓、皮膚、腸、肺、肝臓、および／または腎臓に存在）の線維症を抑制する。特定の実施形態において、前記方法は、眼球、特に水晶体内の骨格筋幹細胞を減少、および／または除去する工程を含む。好ましい実施形態では、眼の線維症疾患は、水晶体線維症疾患である。眼の線維症疾患には、先天性眼線維症症候群、眼アレルギー性疾患（例えば、眼アレルギー性炎症）、角膜線維症、小柱網線維症、網膜線維症、および水晶体線維症疾患が含まれるが、これらに限定されない。水晶体線維症疾患には、後嚢混濁および白内障（例えば、前嚢下白内障）が含まれるが、これらに限定されるものではない。
【００１３】
骨格筋幹細胞の切除は、種々の手段で達成することができる。特定の実施形態において、本発明の方法は、骨格筋幹細胞が、他の細胞、特に水晶体上皮細胞とは異なる分子（例えば、細胞膜において）を有するという事実を利用する。本発明の特定の実施態様では、水晶体の線維症疾患を抑制、予防、リスク低減、および／または治療する前記方法は、選択的に少なくとも１種類の細胞傷害性分子を有する（例えば共役結合して）、少なくとも１種類の、骨格筋幹細胞を標的指向する分子を投与する工程を含む。本発明の分子（複数を含む）は少なくとも１つの薬学的に許容され得る担体に含める。特定の実施形態において、当該標的指向部分は、選択的に連結ドメインを介して、細胞傷害性分子に共有結合されている。別の実施形態において、細胞傷害性分子は、標的指向部分（例えば、Ｇ８抗体を認識する抗体）に対して特異的親和性を有する分子に結合されている。さらに別の態様において、標的指向部分および細胞傷害性分子が共有結合されていない。例えば、本発明の方法は、Ｇ８抗体（ｓｋｍ幹細胞を標的指向する分子）と補体とを、一つの医薬組成物で、または順次または同時に投与する別々の医薬組成物で投与することを含む。
【００１４】
特異的に骨格筋幹細胞を標的指向するのは、細胞表面分子と、例えば水晶体上皮細胞に比べて骨格筋幹細胞にとって独特なリガンドおよび／または抗体とを、特異的に結び付けることよって達成できる。骨格筋幹細胞に対する細胞表面の標的は、Ｇ８抗原、シンデカン類（ｓｙｎｄｅｃａｎｓ）（シンデカン１〜４）、ｃ−Ｍｅｔ（間葉上皮移動因子、肝細胞増殖因子受容体（ＨＧＦＲ））、ＣＤ３４、およびＭ−カドヘリン（Ｍ−ｃａｄｈｅｒｉｎ）を包含するが，これらに限定されない。特定の実施形態において、細胞表面の標的は、Ｇ８抗原である。従って、本発明の前記標的指向部分は、他の水晶体の細胞、例えば、水晶体上皮細胞を普遍的に排除して、特異的に骨格筋幹細胞の細胞表面の標的と結合する。
【００１５】
骨格筋幹細胞は、前記標的指向部分を細胞死に誘導する試薬（例えば、細胞傷害性分子）と結合させることによって除去／減少させることができる。細胞傷害性分子は、補体（例えば、マウス、ラット、ウサギ、モルモット、ウシ、ウマ、およびヒト；例えば、補体を含む血液／血清分画；例えば、補体成分（等）／タンパク質（等）；例えば補体の活性剤）、ナノ粒子とナノチューブ（例えば、感熱性炭素ナノクリスタル）を包含するが、これらに限定されず；例えば、次を参照：Ｃｈａｋｒａｖａｒｔｙら（２００８）ＰＮＡＳ  １０５：８６９７〜８７０２）およびＣｈｏら（２００８）Ｃｌｉｎ．Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．，１４：１３１０〜１３１６）、細胞傷害性抗生物質（例えば、カリケアマイシン  ｃａｌｉｃｈｅａｍｉｃｉｎ）、カチオン性両親媒性溶解性ペプチド（例えば、ＫＬＡ（アミノ酸配列：ＫＬＡＫＬＡＫＫＬＡＫＬＡＫ（配列番号：２））およびＰＴＰ（前立腺特異的膜抗原を標的指向するペプチドＣＱＫＨＨＮＹＬＣ（配列番号：３）））、放射性核種、および毒素。毒素は各種の供給源に由来することができる、例えば、植物、細菌、動物、およびヒト、または合成毒素（薬剤）であり、例えば、サプリン（ｓａｐｒｉｎ）、リシン（ｒｉｃｉｎ）（例えば、リシンＡ）、アブリン（ａｂｒｉｎ）、エチジウムブロマイド（ｅｔｈｉｄｉｕｍｂｒｏｍｉｄｅ）、ジフテリア毒素、シュードモナス外毒素（ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）、ＰＥ４０、ＰＥ３８、サポリン（ｓａｐｏｒｉｎ）、ゲロニン（ｇｅｌｏｎｉｎ）、ＲＮＡｓｅ、ペプチド核酸（ＰＮＡｓ）、リボソーム不活性化タンパク質（ＲＩＰ）タイプ１またはタイプ２、ヨウシュヤマゴボウ（ｐｏｋｅｗｅｅｄ）抗ウイルスタンパク質（ＰＡＰ）、ブリオジン（Ｂｒｙｏｄｉｎ）、モモルジン（ｍｏｍｏｒｄｉｎ）、化学療法剤，およびボーガニン（ｂｏｕｇａｎｉｎ）を包含するが、これらに限定されない。本発明の放射性核種は、陽電子放出同位体およびα−、β−、γ−、オージェと低エネルギーの電子エミッタを包含するが、これらに限定されない。特定の実施形態においては、放射性核種は、α−エミッタ（放射体）またはオージェエミッタである。放射性同位元素は、１３Ｎ、１８Ｆ、３２Ｐ、６４Ｃｕ、６６Ｇａ、６７Ｇａ、６８Ｇａ、６７Ｃｕ、７７Ｂｒ、８０ｍＢｒ、８２Ｒｂ、８６Ｙ、９０Ｙ、９５Ｒｕ、９７Ｒｕ、９９ｍＴｃ、１０３Ｒｕ、１０５Ｒｕ、１１１Ｉｎ、１１３ｍＩｎ、１１３Ｓｎ、１２１ｍＴｅ、１２２ｍＴｅ、１２５ｍＴｅ、１２３Ｉ、１２４Ｉ、１２５Ｉ、１２６Ｉ、１３１Ｉ、１３３Ｉ、１６５Ｔｍ、１６７Ｔｍ、１６８Ｔｍ、１７７Ｌｕ、１８６Ｒｅ、１８８Ｒｅ、１９５ｍＨｇ、２１１Ａｔ、２１２Ｂｉ、２１３Ｂｉ、および２２５Ａｃを包含するが、これらに限定されない。さらに別の実施形態においては、放射性核種含有分子は、放射線増感剤と共に投与する。
【００１６】
本発明は、１）選択的に少なくとも１つの細胞毒を有する（例えば、共役結合されて）少なくとも１つの標的指向部分と、２）少なくとも１つの薬学的に許容され得る担体と、を含む組成物を包含する。係る組成物は、線維症疾患、特に水晶体線維症疾患の治療を必要とする患者に、治療上有効な量を投与する。本発明の組成物（等）はキット内に含められる。
【００１７】
本発明の組成物は、例えば、注射（例えば、局部に（直接、眼内水晶体を含めて）または、全身投与）、経口、肺、局所、経鼻または他の投与形式などの、如何なる適切な経路によっても投与することができる。前記組成は、非経口、筋肉内、静脈内、動脈内、腹腔内、皮下、局所、吸入、肺内、眼内皮下、アレテリアル（Ａｒｅｔｅｒｉａｌ）内、直腸内、筋肉内、および鼻腔内投与を含む任意の適節な手段によって投与される。好ましい実施形態では、前記組成物は、眼球、特に水晶体に直接投与される。該組成物の薬学的に許容され得る担体は、希釈剤、保存剤、可溶化剤、乳化剤、補助剤、および／または担体の群から選択される。前記組成物は、種々の緩衝剤（例えば、Ｔｒｉｓ塩酸、酢酸塩、リン酸塩）、ｐＨおよびイオン強度の希釈剤；界面活性剤と可溶化剤（例えば、Ｔｗｅｅｎ８０、Ｐｏｌｙｓｏｒｂａｔｅ８０）、抗酸化剤（例えば、アスコルビン酸、メタ重亜硫酸ナトリウム）等の添加剤、保存剤（例えば、Ｔｈｉｍｅｒｓｏｌ、ベンジルアルコール）および増量剤（例えば、ラクトース、マンニトール）を含むことができる。該組成物はまた、例えば、ポリエステル、ポリアミノ酸、ヒドロゲル、ポリラクチド／グリコリド共重合体、エチレンビニルアセテート共重合体、ポリ乳酸、ポリグリコール酸などの高分子化合物の粒子状製剤に、またはリポソームに組み込むことができる。係る組成物は、本発明の医薬組成物成分の物理的状態、安定性、生体内放出速度、および生体内クリアランス速度に影響を与える可能性がある。例えば、参照により本明細書中に組み入れられる（Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，１８ｔｈ  Ｅｄ．Ｅｄ．（１９９０，Ｍａｃｋ  Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ  Ｃｏ．，Ｅａｓｔｏｎ，ペンシルバニア州、１８０４２）１４３５から１７１２頁を参照。本発明の医薬組成物は例えば、液体または乾燥粉末の形態（例えば、後に再調製用に凍結乾燥）に調製することができる。
【００１８】
特定の実施形態において、本発明の組成物は、点眼剤、注射用溶液、または眼軟膏を含む。注射用溶液は、細い注射針を使用して直接水晶体または、隣接する組織に注入することができる。前記組成物はまた、コンタクトレンズ、またはより好ましくは、眼内レンズ（例えば、白内障手術で使用する眼内レンズ）を介して眼球に投与する。前記レンズは、前記組成物を塗布および／または包埋するか、または該組成物中に浸漬させる。
【００１９】
さらに別の態様において、本発明の組成物は、線維症（例えば、ＰＣＯを起こす線維症）の予防用に白内障手術時、白内障手術後、または白内障手術前に投与にすることができる。さらに別の態様において、本発明の組成物は、当該繊維細胞塊の除去後、水晶体嚢袋に直接注入することができる。水晶体は無血管であるため、本発明（例えば、結合抗体）の分子が全身循環に進入することは予想されない。
【００２０】
本明細書に記載の手法は、水晶体上皮の骨格筋幹細胞を特異的に標的し、除去／減少させるのに使用される。しかし、本発明の方法は、他の組織中の骨格筋幹細胞を除去するのに使用出来る可能性があり、骨格筋幹細胞の異常な行動および／または量、および／または異常な線維症に関連する他の疾患および障害を治療、抑制、および／または防止する。係る疾患および障害としては、例えば、瘢痕組織形成（例えば、皮膚、心臓、または肝臓の）が含まれる。
【００２１】
定義
以下の定義は、本発明の理解を助けるために提供される：
用語「線維症」は、細胞外マトリックス蛋白質の過剰な産生や堆積を指す。線維症には線維組織の異常プロセシング、または類線維（フィブロイド）または線維変性が包含される。線維症は、様々な創傷や病気に起因することがある。用語「眼球の線維症」は、眼球またはその一部を冒す線維症を指す。「抗体」または「抗体分子」は、特定の抗原に結合する任意の免疫グロブリンであって、抗体およびその断片を包含する。当該用語には、ポリクローナル、モノクローナル、キメラ、単一ドメイン（Ｄａｂ）および二重特異性抗体が含まれる。本明細書中で使用する場合に、抗体または抗体分子は、組換え的に生成した完全な免疫グロブリン分子および免疫グロブリン分子の免疫学的に活性な部分を意図し、例えば、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆ（ｖ）、ｓｃＦｖ、ｓｃＦｖ２、ｓｃＦｖ−Ｆｃ、ミニボディ（ｍｉｎｉｂｏｄｙ）、ダイアボディ（ｄｉａｂｏｄｙ二重特異性抗体）、テトラアボディ（ｔｅｔｒａｂｏｄｙ）、単一可変ドメイン（例えば、可変重鎖ドメイン、可変軽鎖ドメイン）、および二重特異性等であるが、これらに限定されない。ドメイン抗体（Ｄａｂｓ）は、単一の可変軽鎖または重鎖ドメインで構成することができる。本発明はまた、Ａｆｆｉｂｏｄｙ（登録商標）分子（Ａｆｆｉｂｏｄｙ、スウェーデン国ブロンマ）とｐｅｐｔａｂｏｄｉｅｓ（Ｔｅｒｓｋｉｋｈら（１９９７）ＰＮＡＳ  ９４：１６６３〜１６６８）も包含する。本発明の特定の実施形態では、骨格筋幹細胞上の標的分子に特異的な可変軽鎖ドメインおよび／または可変重鎖ドメインは、上記抗体構造のバックボーンに挿入される。組換え的に抗体を産生する方法は当技術分野において周知である。「Ｆｖ」は、抗原認識および抗原結合部位を含む抗体フラグメントである。この領域は、タイトな、非共有結合会合で１つの重鎖と１つの軽鎖可変ドメインの二量体で構成されている。この構成で，各可変ドメインの３つのＣＤＲｓ（相補性決定領域）が相互作用してＶＨ−ＶＬダイマーの表面上に抗原−結合部位を規定するのである。まとめて言えば、６つのＣＤＲｓが前記抗体に抗原結合特異性を付与する。しかしながら、単一の可変ドメイン（または抗原に対して特異的な３つだけのＣＤＲｓを含むＦｖの半分）でさえも、多くの場合前記結合部位全体でよりも低い親和性においてであるが、抗原を認識し結合する能力を有する。
【００２２】
「単鎖Ｆｖ」または「ｓｃＦｖ」抗体フラグメントは、抗体の前記ＶＨおよびＶＬドメインを含み、これらのドメインは単一のポリペプチド鎖に存在する。一般に、前記Ｆｖポリペプチドは、更に前記ＶＨおよびＶＬドメイン間にポリペプチドリンカーを含み、それによって前記ｓｃＦｖは抗原結合に目的とする構造を形成する。用語「ダイアボディ」は、抗原結合部位を有する、小さな抗体断片を指し、当該断片は同一ポリペプチド鎖（ＶＨ−ＶＬ）上の軽鎖可変ドメイン（ＶＬ）に接続した重鎖可変ドメイン（ＶＨ）を含む。短すぎて同じ鎖上の２つのドメイン間の対形成が出来ないリンカーを使用することで、当該ドメインは別の鎖の相補ドメインとの対形成を強いられ、２つの抗原結合部位を形成する。ダイアボディについては、例えば、ＥＰ４０４，０９７、ＷＯ９３／１１１６１１；およびＨｏｌｌｉｇｅｒら，（１９９３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９０：６４４４〜６４４８によって詳しく説明されている。さらに別の態様において、抗体はヒト化されている。
【００２３】
抗体に関して、用語「免疫学的に特異の」は、対象となるタンパク質や化合物の一種またはそれ以上のエピトープ（抗原決定基）と結合するが、抗原性生体分子の混合集団を含むサンプルにおいて他の分子を実質的に認識および結合しない抗体を指す。用語「特異的に結合する」は、目的のポリペプチドあるいはタンパク質を標的ポリペプチドあるいはタンパク質に結合させるが、生体分子の混合集団を含む試料中の他の分子を実質的に認識および結合しないことを指す。例えば、用語「特異的結合対」は、互いに特定の特異性を持ち、通常の状態で他の分子よりも優先的に互いに結合する、特異的結合メンバーと結合相手を含む。
【００２４】
用語「共役結合した（ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ）」は、本発明の二つの分子または化合物を共有結合または非共有結合によって結合することを指す。当該分子は、リンカー・ドメインで連結することが可能である。
【００２５】
用語「リンカー・ドメイン」は、細胞毒に標的指向部分を共有結合で連結させる共有結合または原子鎖を有する化学的部分を指す。特定の実施形態において、リンカーは、０（すなわち、１つの化学結合から約５００個の原子、約１個〜約１００個の原子、または約１〜約５０個の原子を含み得る。代表的なリンカーは、選択的に少なくとも１つの置換、飽和または不飽和、直鎖、分岐または環状アルキル、アルケニル、またはアリール基を含み得る。前記リンカーは、またポリペプチド（例えば、約１〜約２０個のアミノ酸）であり得る。
【００２６】
本明細書中で用いる場合、「放射線増感剤は」、放射線に対する細胞の感度を高めるように治療的有効量動物に投与する分子として定義される。放射線増感剤は、細胞の放射線の毒性作用に対する感度を増大させることが知られている。放射線増感剤は、２−ニトロイミダゾール化合物およびベンゾトリアジン  ジオキシド化合物、ハロゲン化ピリミジン、メトロニダゾール（ｍｅｔｒｏｎｉｄａｚｏｌｅ）、ミソニダゾール（ｍｉｓｏｎｉｄａｚｏｌｅ）、デスメチルミソニダゾール（ｄｅｓｍｅｔｈｙｌｍｉｓｏｎｉｄａｚｏｌｅ）、ピモニダゾール（ｐｉｍｏｎｉｄａｚｏｌｅ）、エタニダゾール（ｅｔａｎｉｄａｚｏｌ）、ニモラゾール（ｎｉｍｏｒａｚｏｌｅ）、マイトマイシンＣ、ＲＳＵ  １０６９ＳＲ  ４２３３、Ｅ０９、ＲＢ  ６１４５、ニコチンアミド、５−ブロモデオキシウリジン（ＢＵｄＲ）、５−ヨードデオキシウリジン（ＩＵｄＲ）、ブロモデオキシシチヂン（ｂｒｏｍｏｄｅｏｘｙｃｙｔｉｄｉｎｅ）、フルオロデオキシシチヂン（ｆｌｕｏｒｏｄｅｏｙｕｒｉｄｉｎｅ）（ＦｕｄＲ）、ヒドロキシ尿素、シスプラチン、および治療上有効な類縁体およびその誘導体を包含するが、これらに限定されない。
【００２７】
「薬学的に許容され得る」は、動物、特にヒトでの使用に対する連邦または州政府の規制当局による承認、または米国薬局方または他の一般に認められている薬局方に記載されていることを示す。
【００２８】
「担体」は、本発明の有効成分と共に投与される、例えば，希釈剤、補助剤、保存剤（例えば、Ｔｈｉｍｅｒｓｏｌ、ベンジルアルコール）、抗酸化剤（例えば、アスコルビン酸、メタ重亜硫酸ナトリウム）可溶化剤（例えば、Ｔｗｅｅｎ８０、Ｐｏｌｙｓｏｒｂａｔｅ８０）、乳化剤、緩衝剤（例えば、Ｔｒｉｓ塩酸、酢酸塩、リン酸塩）、抗菌剤、増量剤（例えば、ラクトース、マンニトール）、賦形剤、補助剤または成形剤を指す。薬学的に許容され得る担体は、石油、動物、植物または合成源のものを包含する、水や油などの無菌の液体である。水または食塩水溶液およびデキストロースおよびグリセロール水溶液は、担体として好ましく、特に注射可能な溶液に採用される。適節な薬剤担体は次に記載されている："Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ'ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ"著者Ｅ．Ｗ．Ｍａｒｔｉｎ（Ｍａｃｋ  Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ  Ｃｏ．，Ｅａｓｔｏｎ，ＰＡ  １８０４２）；Ｇｅｎｎａｒｏ，Ａ．Ｒ．，Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ：Ｔｈｅ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ａｎｄ  Ｐｒａｃｔｉｃｅ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｙ，２０ｔｈ  Ｅｄｉｔｉｏｎ，（Ｌｉｐｐｉｎｃｏｔｔ，Ｗｉｌｌｉａｍｓ  ａｎｄ  Ｗｉｌｋｉｎｓ），２０００；Ｌｉｂｅｒｍａｎら編集、Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｄｏｓａｇｅ  Ｆｏｒｍｓ，Ｍａｒｃｅｌ  Ｄｅｃｋｅｒ，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，Ｎ．Ｙ．，１９８０；およびＫｉｂｂｅら編集、Ｈａｎｄｂｏｏｋ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｅｘｃｉｐｉｅｎｔｓ（３ｒｄ  Ｅｄ．），Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ，Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ，１９９９。
【００２９】
以下の実施例は、本発明を実施する説明的な方法を提供するが、いかなる方法も本発明の範囲を限定することを意図しない。
【実施例１】
【００３０】
模擬白内障手術後、ニワトリの水晶体嚢袋は、以前記載のように培養皿に固定した（Ｗａｌｋｅｒら（２００７）Ｉｎｖｅｓｔ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．Ｖｉｓ．Ｓｃｉ．，４８：２２１４〜２３）骨格筋幹細胞（ｓｋｍ幹細胞）は、Ｇ８抗原の免疫蛍光局在（図１）、ＭｙｏＤ  ｍＲＮＡに対するｉｎ  ｓｉｔｕハイブリダイゼーション（図３）並びに、共焦点および落射蛍光顕微鏡によって同定した。Ｇ抗体は、ニワトリ胚や胎児（Ｇｅｒｈａｒｔら（２００１）Ｊ．Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．，１５５：３８１〜３９１；Ｇｅｒｈａｒｔら（２００４）Ｊ．Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．，１６４：７３９〜７４６；Ｓｔｒｏｎｙら（２００５）Ｇｅｎｅ  Ｅｘｐｒ．Ｐａｔｔｅｒｎｓ，５：３８７〜３９５）および成体マウスの組織（図３）において、ＭｙｏＤ  ｍＲＮＡを発現する細胞中で特異的に発現される表面抗原を認識する。ＭｙｏＤのメッセンジャーＲＮＡは、ＤＮＡデンドリマーズ（参照、たとえばＧｅｒｈａｒｔら（２００４）Ｂｉｏｌ．Ｐｒｏｃｅｄ．Ｏｎｌｉｎｅ  ６：１４９〜１５６）にＣｙ３を共役結合させたものと以下のアンチセンスオリゴヌクレオチド配列：ニワトリのＭｙｏＤ，５'−ＴＴＣＴＣＡＡＧＡＧＣＡＡＡＴＡＣＴＣＡＣＣＡＴＴＴＧＧＴＧＡＴＴＣＣＧＴＧＴＡＧＴＡ−３'（Ｌ３４００６；Ｄｅｃｈｅｓｎｅら（１９９４）Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１４：５４７４〜５４８６）とで検出した。蛍光デンドリマーズはＧｅｎｉｓｐｈｅｒｅ，Ｉｎｃ．（Ｈａｔｆｉｅｌｄ，ＰＡ）から取得した。デンドリマーズと抗体による二重標識は、以前記載のように行った：Ｇｅｒｈａｒｔら（２００１）Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１５５：３８１〜３９１；Ｇｅｒｈａｒｔら（２００４）Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１６４：７３９〜７４６；Ｓｔｒｏｎｙら（２００５）Ｇｅｎｅ  Ｅｘｐｒ．Ｐａｔｔｅｒｎｓ，５：３８７〜３９５）；Ｇｅｒｈａｒｔら（２００４）Ｂｉｏｌ．Ｐｒｏｃｅｄ．Ｏｎｌｉｎｅ  ６：１４９〜１５６）。
【００３１】
１日目ＰＣＯの培地のｓｋｍ幹細胞の切除は、Ｇ８抗体（例えば、（Ｇ．，Ｇｅｒｈａｒｔら（２００１）Ｊ．Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．，１５５：３８１〜３９１；Ｇｅｒｈａｒｔら（２００４）Ｊ．Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．，１６４：７３９〜７４６；Ｓｔｒｏｎｙら（２００５）Ｇｅｎｅ  Ｅｘｐｒ．Ｐａｔｔｅｒｎｓ，５：３８７〜３９５；Ｇｅｒｈａｒｔら（２００７）Ｊ．Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏ．，１７８：６４９〜６６０；Ｇｅｒｈａｒｔら（２００６）Ｊ．Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．１７５：２８３〜２９２；Ｇｅｒｈａｒｔら（２００８）Ｂｉｏｌ．Ｐｒｏｃｅｄ．Ｏｎｌｉｎｅ  １０：７４〜８２）で標識した細胞を補体中で培養することによって実施した（図２）。より具体的には、前記水晶体を０．１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）含有ハンクス（Ｈａｎｋｓ'）緩衝生理食塩水で１対２０で希釈したＧ８抗体と共に３７℃で１時間培養、洗浄し、次いで０．１％ＢＳＡ含有ハンクス緩衝生理食塩水で１対４０に希釈した、幼齢ウサギ補体（Ｃｅｄａｒｌａｎｅ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，ノースカロライナ州バーリントン，Ｂｕｒｌｉｎｇｔｏｎ，ＮＣ）中室温で３０分培養した。α−ＳＭＡの発現は、ウェスタンブロット分析により測定した（図２）。
【００３２】
Ｇ８／ＭｙｏＤ  ｍＲＮＡ陽性ｓｋｍ幹細胞の亜集団は、水晶体上皮細胞間に囲まれた水晶体の赤道帯（ＥＱ）にあるニッチ内で検出された。この発見は、初めて幹細胞の諸特性と、水晶体上皮細胞とは全く異なる表現型と、を有する細胞集団が水晶体上皮内にあることを実証するものである。模擬白内障手術によって誘発された創傷時に、ｓｋｍ細胞は速やかにそのニッチから間葉形態を伴って出現するこれらｓｋｍ幹細胞は立方水晶体上皮細胞の単層上を這い回って、集団的に移動中の上皮細胞シートのリーディングエッジ部に移動する。ｓｋｍ幹細胞の切除は、後嚢混濁培地でのα−ＳＭＡ発現の発現を抑制する。
【００３３】
骨格筋幹細胞は、またＧ８抗原の免疫局在、ＭｙｏＤ  ｍＲＮＡに対するｉｎ  ｓｉｔｕハイブリダイゼーション、および落射蛍光顕微鏡（図３）でも同定した。したがって、ｓｋｍ幹細胞は、哺乳動物を含む他の動物にも存在するので、水晶体における骨格筋幹細胞の存在はニワトリに限定されるものではないことは明らかである。  
【実施例２】
【００３４】
間葉系細胞は、上皮創傷治癒、線維症、および癌において中心的な役割を果たす（Ｒａｄｉｓｋｙら（２００７）Ｊ．Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１０１：８３０〜９；Ｅｙｄｅｎ，Ｂ．（２００８）Ｊ．Ｃｅｌｌ  Ｍｏｌ．Ｍｅｄ．，１２：２２〜３７；Ｐｏｌｙａｋら（２００９）Ｎａｔ．Ｒｅｖ．Ｃａｎｃｅｒ  ９：２６５〜２７３）。間葉系表現型を有する細胞の上皮シート内での出現は、主に内因性上皮細胞の、通常上皮間葉転換（ＥＭＴ）と呼ばれている、形質転換に起因すると考えられる（Ｂａｕｍら（２００８）Ｓｅｍｉｎ．ＣｅｌｌＤｅｖ．Ｂｉｏｌ．，１９：２９４〜３０８；Ｌｅｅら（２００６）Ｊ．Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．１７２：９７３〜８１）。本研究では、上皮が、上皮創傷の治癒において機能し、筋線維芽細胞に分化するように信号を出すことができる、間葉系前駆細胞の亜集団を含んでいる可能性を調べた。これらの研究のモデルは、後嚢混濁（ＰＣＯ）として知られている水晶体線維症疾患の研究用に元々開発された生体外培養系である（Ｗａｌｋｅｒら（２００７）Ｉｎｖｅｓｔ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．Ｖｉｓ．Ｓｃｉ．，４８：２２１４〜２３）。この培養モデルで、自然状態（ｎａｔｉｖｅ）のマイクロ環境内で臨床的に関連する創傷に対する、無傷（ｉｎｔａｃｔ）上皮の反応を追跡することが可能である。前記上皮の創傷は、胎齢１５日のニワトリ水晶体の模擬白内障手術の結果である。このマイクロ手術法は、水晶体嚢内から水晶体繊維細胞塊、即ち、水晶体全体を囲む厚い基底膜を除去し、細胞を剥離された水晶体嚢の後部側面を残す事に関わる（図５Ａに図示）。前記水晶体上皮はそのまま残り、その主な傷端が前記繊維細胞が取り付けられいたエリアに接して、前記嚢に付着したままになる（リーディングエッジ部、図５Ａ）。その前面の領域に数箇所の切れ込みをいれて、さらに傷端を創る（カットエッジ部、図５Ａ）ことによって、当該組織を平たくし、培養皿に細胞面を上にして固定し、生体外外植片として培養する（図５Ａでモデル化）。この手法で創傷上皮の創傷に対する反応を高分解能共焦点顕微鏡で追跡することが可能になる。この創傷モデルにおいて、前記上皮細胞は、速やかに、剥離した基底膜の嚢細胞に亘って創傷領域中に集団移動を開始し、該傷は、培地中で数日以内に上皮細胞で満たされる（Ｗａｌｋｅｒら（２００７）Ｉｎｖｅｓｔ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．Ｖｉｓ．Ｓｃｉ．，４８：２２１４〜２３）。創傷治癒のプロセスが完了した後で初めて筋線維芽細胞の出現に関連する分子マーカーの発現が生化学的に検出されて、（Ｗａｌｋｅｒら（２００７）Ｉｎｖｅｓｔ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．Ｖｉｓ．Ｓｃｉ．，４８：２２１４〜２３）、この生体外モデルでは、線維症の発症は主として移動後と創傷閉鎖後に起こる出来事であることを実証している。
【００３５】
本研究で検討した仮説は、１）間葉系前駆体の亜集団が成熟水晶体の上皮細胞の間に存在していたこと、２）これらの細胞は、創傷治癒過程を調節するために、傷害時に活性化し得たこと、および３）これらの細胞の子孫は、線維症疾患の発症に関連する表現型である、筋線維芽細胞になる可能性を有することであった。水晶体の損傷モデルにおける間葉系前駆細胞の候補として検討した細胞型は、細胞表面抗原Ｇ８の発現によって同定される。Ｇ８モノクローナル抗体（ｍＡｂ）で標識の細胞は、胚の三つの胚葉すべてを生じる組織である、胚盤葉上層（ｅｐｉｂｌａｓｔ）の亜集団である（Ｂｅｌｌａｉｒｓ，Ｒ．（１９８６）Ａｎａｔ  Ｅｍｂｒｙｏｌ（Ｂｅｒｌ）１７４：１〜１４）。これらＧ８ｐｏｓ細胞はまた、筋原性転写因子ｍｙｏＤのｍＲＮＡを発現する（Ｇｅｏｒｇｅ−Ｗｅｉｎｓｔｅｉｎら（１９９６）Ｄｅｖ．Ｂｉｏｌ．，１７３：２７９〜９１；Ｇｅｒｈａｒｔら（２０００）Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１４９：８２５〜３４）。発症の際、大抵のＧ８ｐｏｓ／ＭｙｏＤｐｏｓ前記胚盤葉上層は、体節中に組み込まれ、当該細胞の機能は筋肉の分化を調節することである（Ｇｅｒｈａｒｔら（２００６）Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１７５：２８３〜９２）が、Ｇ８ｐｏｓ／ＭｙｏＤｐｏｓ胚盤葉上層の細胞は、分離し、培養皿で増殖させた場合、それ自身が筋原性の潜在能力を有する（Ｇｅｒｈａｒｔら（００１）Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１５５：３８１〜９２；Ｓｔｒｏｎｙら（２００５）Ｇｅｎｅ  Ｅｘｐｒ．Ｐａｔｔｅｒｎｓ，５：３８７〜３９５；Ｇｅｒｈａｒｔら（２００４）Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１６４：７３９〜４６）。興味深いことに、胚水晶体を含めて（Ｅ５，Ｇｅｒｈａｒｔら（２００９）Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ  Ｂｉｏｌｏｇｙ  ３３６：３０〜４１），Ｇ８抗原発現細胞とＭｙｏＤ発現細胞の両方の亜集団が、非筋肉組織の細胞間でも検出されている（Ｇｅｒｈａｒｔら（２００１）Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１５５：３８１〜９２；Ａｓａｋｕｒａら（１９９５）Ｄｅｖ．Ｂｉｏｌ．，１７１：３８６〜９８；Ｃｈｅｎら（２００５）Ｇｅｎｅｓｉｓ  ４１：１１６〜２１；Ｇｒｏｕｎｄｓら（１９９２）Ｅｘｐ．Ｃｅｌｌ．Ｒｅｓ．，１９８：３５７〜６１）ことであるが、これらの組織におけるそれら細胞の機能は知られていない。
【００３６】
材料および方法
生体外での上皮外植片の調製
生体外での上皮外植片を調製するために、胎齢（Ｅ）１５日のニワトリ胚（Ｔｒｕｓｌｏｗ  Ｆａｒｍｓ，メリランド州チェスタータウン，Ｃｈｅｓｔｅｒｔｏｗｎ，ＭＤ）眼球から水晶体を解剖して取り出した（Ｗａｌｋｅｒら（２００７）Ｉｎｖｅｓｔ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．Ｖｉｓ．Ｓｃｉ．，４８：２２１４〜２３）。次いで水晶体を囲む厚い基底膜である、前水晶体嚢に切開を入れ、該水晶体から水晶体繊維細胞の塊を加水溶出（ハイドロエルーション）（ｈｙｄｒｏｅｌｕｔｉｏｎ）で除去した。このプロセスは、水晶体上皮が嚢にしっかりと付着したままであって、白内障手術を模倣するのである。前記上皮の主な創傷縁（リーディングエッジ部）は、前記繊維細胞が取り付けられいたエリアに接する（モデル図５Ａ）。この組織の前面の領域に数箇の切れ込みを入れて、さらに傷端を創り、それによって外植片を平たくし、細胞側を上にして培養皿に固定させることができた（図５Ａ）。自然状態のマイクロ環境内における、創傷に対する水晶体上皮の反応は、顕微鏡イメージングで追跡した。生体外上皮外植片は、１％ペニシリンースレプトマイシン（ｐｅｎ−ｓｔｒｅｐ）（Ｍｅｄｉａｔｅｃｈ−Ｃｅｌｌｇｒｏ，Ｍａｎａｓｓａｓ，ＶＡ），１％Ｌ−グルタミン（Ｍｅｄｉａｔｅｃｈ−Ｃｅｌｌｇｒｏ、Ｍａｎａｓｓａｓ，ＶＡ）含有Ｍｅｄｉａ  １９９（Ｉｎｖｉｓｔｒｏｇｅｎ）中、１０％ウシ胎児血清（Ｉｎｖｉｓｔｒｏｇｅｎ）の有無にかかわらず，指定されたように培養した。生体内で存在するままにＧ８ｐｏｓ細胞の位置を維持するよう設計された実験では、水晶体は上皮片を調製する前に、３．７％ホルムアルデヒドで１分間固定した。
【００３７】
免疫蛍光法およびｉｎ  ｓｉｔｕハイブリダイゼーション
免疫蛍光法による研究のため、上皮外植片は以前記載したように免疫染色した（Ｗａｌｋｅｒら（２００７）Ｉｎｖｅｓｔ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．Ｖｉｓ．Ｓｃｉ．，４８：２２１４〜２３）。簡単に言えば、免疫染色前に外植片をＰＢＳ（燐酸緩衝液）中３．７％ホルムアルデヒドで固定し、０．２５％Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘー１００のＰＢＳ中で透過処理した。細胞は一次抗血清で培養し、次いでローダミン−（Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｗｅｓｔ  Ｃｈｅｓｔｅｒ，ＰＡおよびＭｉｌｌｉｐｏｒｅＣｏｒｐ．，Ｂｅｄｆｏｒｄ，ＭＡ）、フルオレセインー（Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｗｅｓｔ  Ｃｈｅｓｔｅｒ，ＰＡ）、またはＡｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ−Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ社、Ｅｕｇｅｎｅ，ＯＲ）共役結合−二次抗体と共に培養した。以下の一次抗体を免疫蛍光研究のために使用した：Ｇ８  ｍＡｂ（Ｇｅｒｈａｒｔら（２００１）Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１５５：３８１〜９２），ビメンチン（ポリクローナル）抗体（Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  ｏｆ  Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ，Ｄａｖｉｓ，ＣＡのＰａｕｌ  ＦｉｔｚＧｅｒａｌｄ氏からの貴重な寄贈）、およびフルオレセイン−（ＦＩＴＣ）共役結合α−ＳＭＡ  ｍＡｂ（Ｓｉｇｍａ社、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）。一部の外植片は、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８−を共役結合した，繊維状アクチンと結合するファロイジン（ｐｈａｌｌｏｉｄｉｎ），および核染色剤であるＴＲＯ−ＰＲＯ（登録商標）３（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ−Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ社、Ｅｕｇｅｎｅ，ＯＲ）で対比染色した。免疫染色した試料は、ｉｎ  ｓｉｔｕハイブリダイゼーションでも処理されたものを除いて、すべて共焦点顕微鏡（ＬＳＭ  ５１０；Ｃａｒｌ  Ｚｅｉｓｓ社、Ｏｂｅｒｋｏｃｈｅｎ，Ｇｅｒｍａｎｙ）で調べた。単一画像またはＺ−スタックスを収集し、分析した。提示したたデータは、頂点から基底方向へイメージした単一光学面または直交セクションを表わす。
【００３８】
ｉｎ  ｓｉｔｕハイブリダイゼーションの研究において、ＭｙｏＤのｍＲＮＡｓは、Ｃｙ３を共役結合させたＤＮＡデンドリマーズと次のアンチセンスオリゴヌクレオチド：ニワトリのＭｙｏＤ、５’−ＴＴＣＴＣＡＡＧＡＧＣＡＡＡＴＡＣＴＣＡＣＣＡＴＴＴＧＧＴＧＡＴＴＣＣＧＴＧＴＡＧＴＡー３’（配列番号：１）と、で検出された（Ｇｅｎｉｓｐｈｅｒｅ，Ｉｎｃ．（Ｈａｔｆｉｅｌｄ，ＰＡ）（Ｇｅｒｈａｒｔら（２００６）Ｊ．Ｃｅｌｌ  ｉｏｌ．，１７５：２８３〜２９２；Ｇｅｒｈａｒｔら（２００４）Ｂｉｏｌ．Ｐｒｏｃｅｄ．Ｏｎｌｉｎｅ  ６：１４９〜１５６）。外植片は、以前記載のように、Ｇ８抗原とＭｙｏＤ  ｍＲＮＡに対して二重標識し、ヘキストＩ（Ｈｏｅｃｈｓｔ）で対比染色し、（Ｇｅｒｈａｒｔら（２００１）Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１５５：３８１〜９２）落射蛍光顕微鏡（エクリプスＥ８００、ニコン，Ｅｃｌｉｐｓｅ  Ｅ８００，Ｎｉｋｏｎ）で調べた。画像は、ビデオカメラ（Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ  ＱＥ；Ｍｅｄｉａ  Ｃｙｂｅｒｎｅｔｉｃｓ）とＩｍａｇｅ−Ｐｒｏ  Ｐｌｕｓ  ソフトウェア（Ｐｈａｓｅ  ３  Ｉｍａｇｉｎｇ  Ｓｙｓｔｅｍｓ）とで捕獲した。
【００３９】
細胞トラッキング
以前記載の手順にしたがって追跡（トラッキング）するために、Ｇ８細胞を標識した（Ｇｅｒｈａｒｔら（２００６）Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１７５：２８３〜９２）。簡単に言えば、水晶体生体外上皮外植片はＴ０時にＧ８  ｍＡｂ（１：４０）を含むＭｅｄｉａ  １９９中、室温で４５分間培養し、Ｍｅｄｉａ  １９９でリンスし、次いでローダミンを共役結合したＩＧＭ抗体（ＭｉｌｌｉｐｏｒｅＣｏｒｐ．，Ｂｅｄｆｏｒｄ，ＭＡ）と３０分間室温で培養した。当該標識した外植片は、Ｍｅｄｉａ  １９９でリンスし、無血清培地（ＳＦＭ：１％ペニシリンースレプトマイシン（ｐｅｎ−ｓｔｒｅｐ）およびＬ−グルタミンを含む：Ｍｅｄｉａ  １９９）に入れ、３７℃で培養した。培地２４時間または７２時間後に上皮外植片を３．７％ホルムアルデヒドで固定した。創傷２４時間または７２時間後の上皮の損傷治癒に反応したＧ８ｐｏｓ細胞が実際にＴ０に存在していたＧ８ｐｏｓ細胞の子孫であったかどうかを確認するために、前記固定外植片を再びＧ８  ｍＡｂ（１：４０）で、次いで今回は、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ−Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ社、Ｅｕｇｅｎｅ，ＯＲ）に共役結合したＩＧＭ二次抗体で標識した。外胚葉から胚組織までＧ８ｐｏｓ細胞を追跡した、以前の運命マッピング調査では、胚盤葉上層のＧ８ｐｏｓをタグするＧ８  ｍＡｂが当該調査の間、これらの細胞との関連を維持し、周辺の細胞に移動しないことが示されてている（Ｇｅｒｈａｒｔら（２００６）Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１７５：２８３〜９２）。
【００４０】
上皮細胞外植片のＧ８ｐｏｓ細胞の切除
上皮外植片のＧ８ｐｏｓ細胞の切除は、ニワトリ胚の胚盤葉上層内でのＧ８ｐｏｓ細胞切除について以前記載した手法に従って行った（Ｇｅｒｈａｒｔら（２００６）Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１７５：２８３〜９２）。これらの研究には、生体外の水晶体上皮外植片は無血清培地（ＳＦＭ）で調製された。培養１日目に、上皮外植片は、ハンクス緩衝生理食塩水で希釈したＧ８抗原（１：２０）と１時間３７℃で培養し、ついで０．１％ＢＳＡを含むハンクス緩衝生理食塩水で希釈した、幼齢ウサギ補体（１：４０；Ｃｅｄａｒ  Ｌａｎｅ，Ｉｎｃ，Ｂｕｒｌｉｎｇｔｏｎ，Ｏｎｔａｒｉｏ，Ｃａｎａｄａ）中３０分間室温で培養した。幼齢ウサギ補体は、製造元のプロトコルに従って調製した（Ｃｅｄａｒ  Ｌａｎｅ，Ｉｎｃ，カナダ，オンタリオ州バーリントンＢｕｒｌｉｎｇｔｏｎ，Ｏｎｔａｒｉｏ，Ｃａｎａｄａ）。対照群の外植片は、未処理のままか、またはＧ８  ｍＡｂと、または補体とだけで培養した。処理後、外植片は、リンスし、ＳＦＭ（無血清）で培養した。溶解したＧ８細胞の存在は、処理直後に３７℃で１５分間０．２％トリパンブルー（ｔｒｙｐａｎ  ｂｌｕｅ）ＰＢＳ中，該生体外上皮外植片を培養することにより、確定し、解剖顕微鏡（ＳＭＺ８００、ニコン社、日本、東京）とニコンＤｉｇｉｔａｌ  Ｓｉｇｈｔ  ＤＳ−Ｆｉｌカメラで可視化し、画像は、ＮｉｋｏｎＮＩＳ−Ｅｌｗｅｍｅｎｔｓイメージングソフトウェアを使用して獲得した。
【００４１】
ウェスタンブロット分析
６日目に、プロテアーゼ阻害剤カクテル（Ｓｉｇｍａ，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）を含む、ＯＧＴ緩衝液（４４．４ｍＭのｎ−オクチルβーＤグルコピラノシド、１％  Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００、１００ｍＭ  ＮａＣｌ、１ｍＭ  ＭｇＣｌ２、５ｍＭ  ＥＤＴＡ、１０ｍＭ  イミダゾール）で上皮外植片を抽出し溶解した。タンパク質濃度はＢＣＡ  ａｓｓａｙ（Ｐｉｅｒｃｅ、イリノイ州ロックフォード，Ｒｏｃｋｆｏｒｄ，Ｉｌ）を用いて測定した。タンパク質はＴｒｉｓ−ｇｌｙｃｉｎｅ  ゲル（Ｎｏｖｅｘ，Ｓａｎｄｉｅｇｏ，ＣＡ）上で分離、電気泳動的に膜（Ｉｍｍｏｂｉｌｏｎ−ｐ；Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ  Ｃｏｒｐ．，Ｂｅｄｆｏｒｄ，ＭＡ）に転写し、免疫ブロットした。検出には、ＥＣＬ試薬（Ａｍｅｒｓｈａｍ  Ｌｉｆｅ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ａｒｌｉｎｇｔｏｎ  Ｈｅｉｇｈｔｓ，ＩＬ）を用いた。すべてのゲルは還元条件下で実験した。ウェスタンブロッティングで使用した抗体はβ−アクチンとα−平滑筋アクチン（Ｓｉｇｍａ，Ｓｔ  Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）を包含していた。
【００４２】
結果
Ｇ８ｐｏｓ細胞が成熟した水晶体（Ｅ１５）（幼齢１５日）に存在していることを確認し、生体位における（ｉｎ  ｓｉｔｕ）所在を水晶体上皮との関連に注目して確定した。生体内にあるがままにＧ８ｐｏｓ細胞の位置を保持するために、該水晶体は、水晶体上皮外植片の調製前に固定した。外植片内Ｇ８ｐｏｓ細胞はＧ８抗原に対するｍＡｂで標識し、次いでローダミンを共役結合した二次抗体で標識した。繊維状アクチン（Ｆ−アクチン）をタグ付けし、外植片内細胞の細胞構造を明らかにするために、培養物をフルオレセインを共役結合したファロイジンで共染色した。標識した外植片は、高分解能共焦点顕微鏡で調べた（図４）。Ｇ８ｐｏｓ細胞が水晶体上皮細胞（図４Ａ）間に囲まれたニッチに局在しているのが見出された（図４Ａ）。代表的なＧ８ｐｏｓ細胞のニッチ（図４Ｂに下部パネルにより高倍率で示す）は、平均７個の細胞（７．５７＋／−０．６６、平均＋／−標準誤差（ＳＥＭ））を含んでいた。上皮外植片においてそのようなニッチは最大１４箇検出された。水晶体上皮内のＧ８ｐｏｓ細胞ニッチの位置は無傷（ｉｎｔａｃｔ）の水晶体の赤道域に相当した。以前の研究では、Ｇ８ｐｏｓ細胞がしばしば筋原性転写因子ＭｙｏＤのｍＲＮＡを共発現することが示されている。Ｅ１５（幼齢１５日）水晶体上皮内でのＧ８ｐｏｓ細胞によるＭｙｏＤ  ｍＲＮＡの発現は、前記上皮外植片をフルオレセインでタグ付けしたＧ８  ｍＡｂと、ＭｙｏＤ  ｍＲＮＡのアンチセンスオリゴヌクレオチド配列および蛍光色素Ｃｙ３の両方に共役結合したＤＮＡデンドリマーズとで、二重標識することによって調査した（Ｇｅｒｈａｒｔら（２０００）Ｊｏｕｒｎａｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１４９：８２５〜３４；Ｇｅｒｈａｒｔら（２００４）Ｂｉｏｌ．Ｐｒｏｃｅｄ．Ｏｎｌｉｎｅ  ６：１４９〜１５６）。蛍光イメージングで、水晶体上皮内にあるＧ８ｐｏｓ細胞も、ＭｙｏＤ  ｍＲＮＡを発現したことが示された（挿入図、図４Ａ）。
【００４３】
水晶体上皮内Ｇ８ｐｏｓ細胞ニッチのマイクロ環境を調べるために、レーザー走査型共焦点顕微鏡で収集したＺ−スタックスの直交部分を作成した。Ｚ−スタックスは、ニッチの領域で頂端から基底方向に１ミクロン厚さの光学切片として取得した。直交部分の解析によって、Ｇ８ｐｏｓ細胞のニッチは、Ｇ８ｐｏｓ細胞が水晶体の基底膜に関連している証拠は余りなく、水晶体上皮細胞の頂端面に沿って局在していることが分かった（図４Ｂ、上部パネルの矢印参照）。Ｇ８ｐｏｓ細胞のニッチの独的な位置によって、これらの細胞は、上皮の創傷に対して迅速に反応するものとして機能するように配置されている。
【００４４】
本研究の焦点は、水晶体上皮の傷害に対するＧ８ｐｏｓ前駆細胞の反応を調べることであった。これらの研究において水晶体上皮は、模擬白内障手術によって創傷され、生体外外植片として培地中に配置された（図５Ａ）。上皮の傷害に対するＧ８ｐｏｓ前駆細胞の反応は、血清含有培地で培養１時間後に測定した。この時点で培養物を固定し、Ｇ８抗原の抗体で免疫染色し、Ｆ−アクチンに対して共染色し、共点顕微鏡で調べた（図５Ｂ〜Ｆ）。画像解析で、傷害後この短時間内に前記Ｇ８ｐｏｓ前駆細胞はそのニッチから出現していて、その集団の大きさは拡大していたことが判明した（図５Ｂ、Ｃ）。さらに、Ｇ８ｐｏｓ細胞は急速に創傷端（ｅｄｇｅｓ）に移動していた（図５Ｄ〜Ｆ）、つまり繊維細胞が除去されていた場所に隣接するリーディングエッジ部（前縁）（図５Ｄ、Ｅ）と、上皮が平たくなっていたカットエッジ部（図５Ｆ）との両方への移動である。共焦点イメージングでＺ−スタックスを通して収集された直交部分は、Ｇ８ｐｏｓ細胞が上皮の頂面に沿って移動することで、創傷端（ｅｄｇｅｓ）に移行したことを明らかにした（図５Ｅ、矢印、上部パネル）。移動したＧ８ｐｏｓ細胞は、間葉系マーカービメンチンの発現によって確認された表現型である、間葉形態を示した（図５Ｇ〜Ｉ）。これらの結果で、水晶体上皮内のＧ８ｐｏｓ間葉系前駆細胞の亜集団は、それらのニッチから出現し、拡大し、創傷端に移動することで上皮の傷害に迅速に反応したことが実証された。
【００４５】
約３日かかる創傷治癒の過程の間中、Ｇ８ｐｏｓ細胞は水晶体上皮の頂面に沿ったクラスターズ（ｃｌｕｓｔｅｒｓ）の中でも、創傷端ででも見出された。上皮創傷に反応したＧ８ｐｏｓ細胞が実際に時点０（Ｔ０、マイクロ手術の直後）で存在していたＧ８ｐｏｓ細胞の子孫であったかどうかを調べるために、Ｇ８ｐｏｓ細胞をＴ０でＧ８抗体およびローダミンを共役結合した二次抗体でタグ付けし、創傷が閉鎖する期間中追跡した。培地２４時間（図６Ａ〜Ｆ）および７２時間（図６Ｇ〜Ｉ）の両時点で、外植片を固定し、これらの時間に存在していたＧ８ｐｏｓ細胞をＡｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８−共役結合二次抗体でタグ付けしたＧ８  ｍＡｂで免疫染色した。共焦点解析は、創傷の有効治癒中（２４時間）において、Ｇ８ｐｏｓ細胞が上皮に沿ったクラスターズに位置していたか（図６Ａ〜Ｃ）、リーディング創傷エッジ部（図６Ｄ〜Ｆ）に移動していたかに関わらず、Ｇ８ｐｏｓ／Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８標識細胞はすべてＧ８−ローダミンタグでも標識化していたことを示した。創傷治癒が完了した時（７２時間）でも、すべてのＧ８ｐｏｓ／Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８−で標識した細胞はＧ８−ローダミンタグで共通に標識されていたのである（図６Ｇ〜Ｉ）。これらの結果は、水晶体上皮の創傷治癒反応に参加したＧ８ｐｏｓ細胞は、Ｔ０で存在していたＧ８ｐｏｓ細胞の集団から由来したものであることを示した。
【００４６】
創傷した水晶体上皮の治癒（創傷閉鎖）は、α平滑筋アクチン（α−ＳＭＡ）およびフィブロネクチン（ｆｉｂｒｏｎｅｃｔｉｎ）などの線維症に関連する分子類が生化学的に検出される前に起こるのである（Ｗａｌｋｅｒら（２００７）Ｉｎｖｅｓｔ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．Ｖｉｓ．Ｓｃｉ．，４８：２２１４〜２３）。しかし、創傷治癒完了後数日以内にこれら分子両方の発現が誘導される。この時点で、新生筋線維芽細胞の代表的な間葉系形態を有する、α−ＳＭＡ陽性細胞が水晶体上皮細胞の間に現れる（Ｗａｌｋｅｒら（２００７）Ｉｎｖｅｓｔ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．Ｖｉｓ．Ｓｃｉ．，４８：２２１４〜２３）。さて、前記水晶体上皮の傷害に反応した際に活性化したＧ８ｐｏｓ細胞は、生体外での創傷モデルにおいて後に現れた筋線維芽細胞の前駆体であるかどうかを、高分解能共焦点イメージングを使用して調べた。筋線維芽細胞とは、α−ＳＭＡをストレス線維に組織化した間葉系細胞であって、これらの細胞に、それらをＰＣＯのような線維症疾患に関連させる、収縮機能を提供する機能を有するものとして定義される（Ｔｏｍａｓｅｋら（２００２）Ｎａｔ．Ｒｅｖ．Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，３：３４９〜６３；Ｈｉｎｚら（２００７）Ａｍ．Ｊ．Ｐａｔｈｏｌ．，１７０：１８０７〜１６）。Ｇ８ｐｏｓ細胞が前記培養モデルで出現する筋線維芽細胞の前駆体であったかどうかを調べるために、無血清条件下で培養し、培養６日目に固定し、Ｇ８  ｍＡｂおよびローダミン−共役結合二次で免疫標識し、次いでフルオレセインに直接共役結合したα−ＳＭＡ抗体で共通標識した、生体外植片について画像解析を行った（図７Ａ〜Ｃ）。共焦点顕微鏡画像で、α−ＳＭＡ陽性ストレスファイバーを含んでいた細胞の存在が明らかになり、Ｇ８ｐｏｓ細胞が実際にこの創傷モデルにおける筋線維芽細胞の源であることが実証された。さらに、上皮に関連するＧ８ｐｏｓ細胞の小さなクラスターズ内でＧ８ｐｏｓ前駆細胞から筋線維芽細胞への発達があったことが見出された。移行細胞のタイプは、α−ＳＭＡの発現が僅か乃至全くないＧ８ｐｏｓ細胞（白矢じり）、未だストレスファイバーに組織化されていないα−ＳＭＡを発現したＧ８ｐｏｓ細胞（矢印）、そしてα−ＳＭＡ陽性ストレスファイバーを含むＧ８ｐｏｓ細胞（開矢じり）である、Ｇ８発現筋線維芽細胞を包含した。本研究はまた、Ｇ８細胞が筋線維芽細胞へ分化する際の最後の工程は、前駆細胞抗原Ｇ８の消失であることを実証した（破線矢印）。化時の前駆細胞マーカーの消失は、これらの細胞が多くの前駆細胞集団の分化した子孫と共有する機能である（Ｃａｔｔａｎｅｏら（１９９０）Ｎａｔｕｒｅ  ３４７：７６２〜５；Ｂａｉら（２００９）Ｎｅｕｒｏｒｅｐｏｒｔ．，２０：９１８〜２２）。
【００４７】
次にＧ８ｐｏｓ細胞を強制的に筋線維芽細胞に分化させることが可能であるかどうかを調べた。これらの研究では、筋線維芽細胞の発達が硬質環境で向上することが知られているという事実を利用し（Ｈｉｎｚ，Ｂ．（２００７）Ｊ．Ｉｎｖｅｓｔ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．，１２７：５２６〜３７）、前記生体外培養物を、カットエッジ部のＧ８ｐｏｓ細胞が水晶体嚢から硬質培養皿に移動可能な培池含む血清中で増殖させた。この集団のＧ８ｐｏｓ細胞について、培養３日目、即ち、α−ＳＭＡ陽性筋線維芽細胞が水晶体上皮の自然マイクロ環境内で出現した以前の時点で、Ｇ８ｐｏｓ細胞におけるα−ＳＭＡの発現を調べた。その結果、Ｇ８ｐｏｓ細胞が硬質物質と接触した時にＧ８ｐｏｓ前駆細胞からα−ＳＭＡ陽性筋線維芽細胞への移動が促進されることが実証された（図７Ｄ〜Ｆ）。Ｇ８ｐｏｓ細胞から筋線維芽細胞への移行プロセスは、水晶体嚢上での筋線維芽細胞の出現について上記したことと同一であった。これらのデータは、Ｇ８ｐｏｓ細胞が筋線維芽細胞を発生することを実証している。
【００４８】
最後に、Ｇ８ｐｏｓ細胞を生体外培養初日にＧ８抗体で標識し、補体で溶解することによって除去した場合にα−ＳＭＡの発現が抑制されたかどうかを調べた。前記処理培養物中の細胞溶解は、生細胞から除外される色素である、トリパンブルーの取り込みにより確認された。細胞の小さなコロニー群にトリパンブルー染色が検出された（図７Ｇ、Ｇ８＋Ｃ、および切除。リーディングエッジ部に○印を付けた大きなコロニーを参照）。トリパンブルー標識コロニーの分布は、培養１日目に通常存在しているＧ８ｐｏｓ細胞の拡大したコロニーの分布と似ていた。トリパンブルで染色していた領域から細胞がその後消失したことによって、切除後２４時間で溶解が確認された（図７Ｇ、Ｇ８＋Ｃ、切除後１日目）。同様な細胞の消失は、補体だけで培養した対照培養では観察されなかった（図７Ｇ、Ｃ）。Ｇ８細胞の切除後、生体外外植片（切除済および対照群）を６日間培養したが、この時までに、イムノブロット分析でここに示すように、未処理の対照培養物は、通常α−ＳＭＡを発現する（図７Ｈ、Ｕ）。Ｇ８ｐｏｓ細胞が培養１日目（図７Ｈ、Ｇ８＋Ｃ）で切除したときには、α−ＳＭＡの発現抑制されたが，培地でＧ８抗体（Ｇ８）または補体（Ｃ）だけに接触させた場合、α−ＳＭＡの発現に余り影響がなかった。これらの結果は、Ｇ８ｐｏｓ細胞が筋線維芽細胞の前駆体であることを確認するものである。
【００４９】
本研究は、間葉系前駆細胞の特異的な亜集団が、水晶体上皮の細胞の間に局在したニッチに存在していたという発見を報告する。この細胞型は急速に前記上皮の傷害に反応し、筋線維芽細胞に分化する潜在能力を有していた。これらの細胞の独特な特徴は、細胞表面抗原Ｇ８とＭｙｏＤ  ｍＲＮＡの発現を包含していたが、これは、種々の胚組織（Ｇｅｒｈａｒｔら（２００１）Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１５５：３８１〜９２）に組み込まれることが以前同定されていた外胚葉の亜集団と該細胞が共有する特性であって、水晶体などのように筋原性潜在能力を欠いているものを包含する。水晶体上皮の創傷後、前記Ｇ８ｐｏｓ亜集団は、そのニッチから出現し、集団の大きさが拡大し、間葉表現型を示し、そして創傷端に移動した。創傷端における間葉系細胞の存在は、多くの上皮創傷治癒のモデルの特徴であるが、その出現は通常、上皮間葉転換（ＥＭＴ）に起因する。創傷水晶体上皮の本研究では、Ｇ８ｐｏｓ／ＭｙｏＤｐｏｓ前駆体細胞は、傷害に反応し、創傷端に局在した間葉系細胞の前駆細胞であるという別のパラダイムを提案した。この同じ前駆体集団は、筋線維芽細胞に分化することができ、それが創傷後出現することが線維症疾患の発症に関連している。白内障手術時の水晶体上皮創傷の結果である、水晶体線維症疾患ＰＣＯの発生にとって、この知見は、特に重要であった。しかし、肺、肝臓や腎臓などのように線維症を起こしやすい他の組織におけるＧ８抗原および／またはＭｙｏＤを発現する細胞の小亜集団の存在（Ｇｅｒｈａｒｔら（２００１）Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１５５：３８１〜９２；Ｍａｙｅｒら（１９９７）Ｊ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．，１３９：１４７７〜８４）は、筋線維芽細胞に分化するように活性化されたＧ８ｐｏｓ／ＭｙｏＤｐｏｓの能力が、多くの組織で線維化の発生に寄与することを意味する。
【実施例３】
【００５０】
成体マウスの眼球をパラフィンに包埋し、切片化し、ヘマトキシリン（ｈｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ）とエオシンで染色した（図８Ａ）。矢印は、図８Ｂと８Ｃの蛍光顕微鏡写真において高倍率で示される領域を示す。水晶体の赤道付近の細胞は、Ｇ８抗体で標識される（図８Ｂおよび８Ｃの矢印）。細胞核は色素で染色する。これらの結果で、骨格筋幹細胞は、成体マウスの水晶体に存在することが実証される。
【００５１】
横紋筋肉腫は骨格筋細胞に似た細胞を含む腫瘍である（図９Ａ〜９Ｄ）。前記Ｇ８抗体はまた、ヒト横紋筋肉腫細胞の培養においてその抗原を認識する。横紋筋肉腫細胞はまた、Ｇ８抗原、アルファ平滑筋アクチン（ＳＭＡ）、ミオシン、およびＭｙｏＤタンパク質を包含する筋線維芽細胞に存在する分子を合成する。これらの結果で、Ｇ８抗体は、ヒト水晶体の筋線維芽細胞を検出するのに使用可能である。
【００５２】
以上本発明の幾つかの好適な実施形態を記載し、特定して例示したが、本発明は係る実施形態に限定されることを意図していない。本発明に対して、種々の修正が以下の請求項に記載する本発明の範囲および精神から逸脱することなく行うことができる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５−１】
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【図５−２】
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【図６】
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【図７−１】
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【図７−２】
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【図８】
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【図９】
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