(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
式、
Ｉ−（−Ｘ−ＬＭ−Ｇ）n
（式中、
Ｘは二官能性ポリオキシエチレン鎖部分または結合であり、
ＬＭは式、−Ｃ（Ｏ）−、−（ＣＨ2）bＣ（Ｏ）−（式中、ｂは１〜５の整数である。）、−Ｃ（Ｏ）−（ＣＨ2）c−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｃは２〜１０の整数であり、ラジカルの脂肪族部分は飽和または不飽和でも良い。）、−Ｃ（Ｏ）−Ｏ−（ＣＨ2）d−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｄは２〜１０の整数であり、あるいは式、−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−、−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−（ＣＨ2）c−Ｃ（Ｏ）−、または−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−Ｏ−（ＣＨ2）d−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｃは２〜１０の整数であり、ｄは２〜１０の整数であり、Ｒは１〜１０個のモノマーラクチド、グリコリド、炭酸トリメチレン、カプロラクトンまたはｐ−ジオキサノン断片を有するポリマーまたはコポリマーである。）によって表されるオリゴマージラジカルである。）によって表される二官能性結合部分であり、
ＧはＮ−オキシスクシンイミジル、Ｎ−オキシマレイミジル、Ｎ−オキシフタルイミジル、Ｎ−オキシイミダゾリル、およびトレシルの群より選択される脱離基であり、
Ｉはエチレングリコール、ペンタエリスリトール、トリメチロールプロパン、または多求核性アミンから誘導される多価結合部分であり、
ｎは２〜１０の整数であるが、
ただしＸが二官能性ポリオキシエチレン鎖部分の場合、−Ｘ−Ｉ−Ｘ−は、式、
−Ｏ−（ＣＨ2−ＣＨ2−Ｏ−）a−
（式中、ａは２０〜３００の整数である。）によって表されるジラジカル断片であるＰＥＧである。）
の架橋剤を有する、実質的に完全に脱溶媒和された架橋されたタンパク質である、活性薬剤をサブジェクトにデリバリするための、自立型の予備成形されたオブジェクトであって、
予備成形されたオブジェクトが、タンパク質としてアルブミンを含む溶液及び架橋剤の反応生成物から形成された脱溶媒和されたポリマープラグの形態である、予備成形されたオブジェクト。
【請求項２】
ポリマープラグに活性薬剤が注入されている、請求項１に記載の予備成形されたオブジェクト。
【請求項３】
架橋剤がＰＥＧ-（ＳＳ）2である、請求項１に記載の予備成形されたオブジェクト。
【請求項４】
式、
Ｉ−（−Ｘ−ＬＭ−Ｇ）n
（式中、
Ｘは二官能性ポリオキシエチレン鎖部分または結合であり、
ＬＭは式、−Ｃ（Ｏ）−、−（ＣＨ2）bＣ（Ｏ）−（式中、ｂは１〜５の整数である。）、−Ｃ（Ｏ）−（ＣＨ2）c−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｃは２〜１０の整数であり、ラジカルの脂肪族部分は飽和または不飽和でも良い。）、−Ｃ（Ｏ）−Ｏ−（ＣＨ2）d−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｄは２〜１０の整数であり、あるいは式、−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−、−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−（ＣＨ2）c−Ｃ（Ｏ）−、または−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−Ｏ−（ＣＨ2）d−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｃは２〜１０の整数であり、ｄは２〜１０の整数であり、Ｒは１〜１０個のモノマーラクチド、グリコリド、炭酸トリメチレン、カプロラクトンまたはｐ−ジオキサノン断片を有するポリマーまたはコポリマーである。）によって表されるオリゴマージラジカルである。）によって表される二官能性結合部分であり、
ＧはＮ−オキシスクシンイミジル、Ｎ−オキシマレイミジル、Ｎ−オキシフタルイミジル、Ｎ−オキシイミダゾリル、およびトレシルの群より選択される脱離基であり、
Ｉはエチレングリコール、ペンタエリスリトール、トリメチロールプロパン、または多求核性アミンから誘導される多価結合部分であり、
ｎは２〜１０の整数であるが、
ただしＸが二官能性ポリオキシエチレン鎖部分の場合、−Ｘ−Ｉ−Ｘ−は、式、
−Ｏ−（ＣＨ2−ＣＨ2−Ｏ−）a−
（式中、ａは２０〜３００の整数である。）によって表されるジラジカル断片であるＰＥＧである。）
の架橋剤を有する、実質的に完全に脱溶媒和された架橋されたタンパク質である、活性薬剤をサブジェクトにデリバリするための、自立型の予備成形されたオブジェクトであって、タンパク質としてアルブミンを含む溶液及び架橋剤の脱溶媒和された反応生成物から成形された生分解可能な複数のビーズで構成される、予備成形されたオブジェクト。
【請求項５】
生分解可能な複数のビーズに活性薬剤が注入されている、請求項４に記載の予備成形されたオブジェクト。
【請求項６】
架橋剤がＰＥＧ-（ＳＳ）2である、請求項４に記載の予備成形されたオブジェクト。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
背景
医薬品などの活性薬剤を好ましくは薬剤の徐放のためにサブジェクトにデリバリできるようにする、様々なアプローチが発達している。このようなデリバリシステムは典型的に、サブジェクトの目標領域への薬剤の徐放を可能にしながら、デリバリに先立って環境から薬剤を保護するようにデザインされている。
【０００２】
いくつかの従来の徐放システムは、リポソーム、リポ球体、マイクロカプセル、微小粒子、およびナノ粒子などの微細構造、並びにシリンダー、ディスク、および繊維などのマクロ構造に基づく。典型的に医薬品などの活性薬剤がポリマーと混合され、次に所望の形状に形成される。
【０００３】
このような従来のシステムの多くは、補綴用途に必要な構造一体性を有する固形移植片を形成するのには使用できない。さらにこのようなシステムの多くは、例えばサブジェクトへの適用時に、医師が活性薬剤（例えば医薬品）を注入できる物品を形成するのには使用できない。またこのようなシステムの多くは、生分解速度、および／またはあらゆる組み込まれた活性薬剤の放出速度に関して容易に制御できないポリマーを含む。
【０００４】
アルブミンとポリエチレングリコール（ＰＥＧ）誘導体が架橋して製造されるヒドロゲル（例えば水性媒体中で膨潤するが、水に溶けないポリマーのクラス）は、可能な医薬品デリバリ用途について既に研究されている（Ｄ’Ｕｒｓｏら、Ｂｉｏｔｅｃｈ．Ｔｅｃｈ．、８、７１〜７６ページ（１９９４年））。医薬品の制御されたデリバリに対する別のアプローチは、ポリ（乳酸）や、ラクチドとグリコリドの種々のコポリマーなどの合成生体吸収性ポリマーの使用による、マイクロカプセル封入または微小球の形成を伴う。しかし微小球使用の欠点は、外科手術部位表面あるいは負傷または病変組織上に、均一に被覆して保持できないことである。この問題と取り組むために、微小球には非溶剤である溶剤の使用によって作られる第２のポリマー溶液に微小球を懸濁し、次に混合物からフィルムをキャスティングして、微小球含有メンブランが作られている。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
したがってその他のデリバリシステム、特に、様々な生分解速度およびデリバリ速度を提供できる、変化させられるポリマー組成物を含むものに対する必要性がある。好ましくは十分な構造一体性を有して取り扱いが容易な、ポリマー組成物を含むデリバリシステムに対する必要性がある。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
要約
本発明は、活性薬剤をサブジェクトにデリバリするための予備成形されたオブジェクトを提供し、予備成形されたオブジェクトは、式、
Ｉ−（−Ｘ−ＬＭ−Ｇ）n
（式中、
Ｘは二官能性ポリオキシエチレン鎖部分または結合であり、
ＬＭは式、−Ｃ（Ｏ）−、−（ＣＨ2）bＣ（Ｏ）−（式中、ｂは１〜５の整数である。）、−Ｃ（Ｏ）−（ＣＨ2）c−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｃは２〜１０の整数であり、ラジカルの脂肪族部分は飽和または不飽和でも良い。）、−Ｃ（Ｏ）−Ｏ−（ＣＨ2）d−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｄは２〜１０の整数であり、あるいは式、−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−、−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−（ＣＨ2）c−Ｃ（Ｏ）−、または−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−Ｏ−（ＣＨ2）d−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｃは２〜１０の整数であり、ｄは２〜１０の整数であり、Ｒは１〜１０個のモノマーラクチド、グリコリド、炭酸トリメチレン、カプロラクトンまたはｐ−ジオキサノン断片を有するポリマーまたはコポリマーである。）によって表されるオリゴマージラジカルである。）によって表される二官能性結合部分であり、
ＧはＮ−オキシスクシンイミジル、Ｎ−オキシマレイミジル、Ｎ−オキシフタルイミジル、ニトロフェノキシル、Ｎ−オキシイミダゾリル、およびトレシルの群より選択される脱離基であり、
Ｉは多求核性化合物から誘導される多官能性結合部分であり、
ｎは２〜１０の整数であるが、
ただしＸが二官能性ポリオキシエチレン鎖部分の場合、−Ｘ−Ｉ−Ｘ−は、式、
−Ｏ−（ＣＨ2−ＣＨ2−Ｏ−）a−
（式中、ａは２０〜３００の整数である。）によって表されるジラジカル断片であるＰＥＧである。）
の架橋剤を有する、少なくとも部分的に脱溶媒和された架橋されたアルブミンである。
【０００７】
本発明のその他の実施態様としては、その中に組み込まれた再溶媒和していてもしていなくても良い活性薬剤を有する予備成形されたオブジェクトが挙げられ、その中に活性薬剤を有する予備成形されたオブジェクトは、二次生分解性マトリックス内にさらに組み込まれる。その他の実施態様としては、予備成形されたオブジェクトについて上述した化学的性質を有する、二次生分解性マトリックス内にさらに組み込まれた、その中に活性薬剤を有するその他の生分解性ポリマーの予備成形されたオブジェクトが挙げられる。製造方法、および活性薬剤をサブジェクトにデリバリする方法も本発明によって提供される。
【図面の簡単な説明】
【０００８】
【図１】図１は、ＰＥＧ−（ＳＳ）2架橋剤で架橋されたアルブミンの予備成形されたプラグからの５−フルオロウラシル（５−ＦＵ）の放出を示す。
【図２】図２は、ＰＥＧ−ＳＳ2架橋剤との架橋直前にアルブミンに混合された、テトラサイクリンのアルギン酸塩／医薬品複合体からの放出を示す。
【図３】図３は、プラグ製造中に５−ＦＵが架橋剤と共に添加されたアルブミン／ＰＥＧ−（ＳＳ）2プラグからの５−ＦＵの放出を示す。
【図４】図４は、塩化カルシウムが添加されたアルブミン／ＰＥＧ−（ＳＳ）2プラグからの５−ＦＵの放出を示す。
【図５】図５は、再水和されたアルブミン／ＰＥＧ−（ＳＳ）2ビーズからのバンコマイシンの放出を示す。
【図６】図６は、再水和されたアルブミン／ＰＥＧ−（ＳＳ）2ビーズからのバンコマイシンの放出重量％を示す。
【図７】図７は、再水和されたアルブミン／ＰＥＧ−（ＳＳ）2ビーズからのセファゾリン放出を示す。
【図８】図８は、再水和されたアルブミン／ＰＥＧ−（ＳＳ）2ビーズからのセファゾリンの放出重量％を示す。
【図９】図９は、単一ビーズ試験におけるポリマービーズの容積増大％対水取り込み重量％を示す。
【図１０】図１０は、微小球からのテトラサイクリンの放出プロフィールを示す。
【図１１】図１１は、アルブミン／４−アーム  ＰＥＧプラグからのセファゾリンの放出を示す。
【図１２】図１２は、種々のビーズから放出されるＴＧＦ−β１の百分率を示す。
【発明を実施するための形態】
【０００９】
好ましい実施態様の詳細な説明
本発明は、第１の生分解性組成物、および任意に医薬品などの活性薬剤を含む、サブジェクトの目標領域へのデリバリのための予備成形されたオブジェクト、好ましくは予備成形された自立型オブジェクトを提供する。予備成形されたオブジェクトは少なくとも部分的に脱溶媒和させて（例えば少なくとも部分的に脱水して）、引き続いて活性薬剤と組み合わせることができ、あるいは予備成形されたオブジェクトの調製時に活性薬剤を含めることができる。このような予備成形されたオブジェクトは好ましくは、開始材料（例えばタンパク質および架橋剤）を組織に適用してサブジェクト組織存在下で硬化（例えば架橋）させて、組織を結合または封着するのに従来法で使用される生分解性組成物から調製される。しかしここでは好ましいオブジェクトは、同一または同様の組成物から調製されて硬化され（例えば架橋され）、次にサブジェクトの組織に適用される。したがって典型的に予備成形されたオブジェクトと組織の間に結合相互作用はない。
【００１０】
本発明の好ましい予備成形されたオブジェクトは、十分な構造一体性を有して、ひとたび形成（例えば硬化）されると、適切な条件下で（例えば脱溶媒和させた場合は水分不在下で、溶媒和させた場合は約４℃の温度で）保管する限りは、それらの全体的形状を維持して自立型である。予備成形されたオブジェクト製造に使用される構成要素の選択次第で、機械的強度、可撓性、硬化速度、および生分解速度の程度が変化できる。本発明の好ましい予備成形されたオブジェクトは、架橋されたタンパク質を含む。それらは典型的に緩衝化された塩基性タンパク質溶液と、多官能性、典型的には二官能性の架橋剤とから調製される。緩衝化されたタンパク質溶液および架橋剤は、典型的に市販される材料を使用して得られるが、これらの材料のほとんどは概して臨床安全性および／または用途の経歴を有することが利点である。
【００１１】
本組成物中で使用するのに適切なタンパク質としては、非免疫原性の水溶性タンパク質、好ましくはアルブミン（より好ましくは血清アルブミン、そして最も好ましくはヒト血清アルブミン）が挙げられる。本発明の予備成形されたオブジェクトを調製するのに使用しても良い、好ましい緩衝化されたタンパク質溶液は、約８．０〜約１１．０のｐＨに緩衝化された濃縮水性血清アルブミンを含み、緩衝液濃度は約０．０１モル濃度〜約０．２５モル濃度の範囲である。適切な緩衝液システムとしては、緩衝液が架橋剤と不利に反応したりそれを変性させたりしない限り、既知の炭酸またはリン酸緩衝液システムなどの生理学的および／または臨床的に許容可能な緩衝液が挙げられる。好ましい緩衝液システムは、ｐＨの値が約９．０〜約１０．５で濃度が約０．０５〜約０．１５モル濃度の範囲の炭酸塩／炭酸水素塩緩衝液システムである。
【００１２】
血清アルブミンは既知の分離工程を使用して、血清から容易に分離できる。さらに遺伝子形質転換細胞からアルブミンを製造することが可能である。例えばＱｕｉｒｋらの報告Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  ａｎｄ  Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、１１、２７３〜２８７ページ（１９８９年）、ＫａｌｍａｎらのＮｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ、１８、６０７５〜６０８１ページ（１９９０年）、ＳｌｅｅｐらのＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、８、４２〜４６ページ（１９９０年）、およびＳｉｊｍｏｎｓらのＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、８、２１７〜２２１（１９９０年）を参照されたい。組換えアルブミンを製造する能力は、この方法によって製造されたタンパク質が、ヒト血清から直接分離されたアルブミンを汚染しているかもしれないヒト病原体、ウイルスまたはその他の汚染物質を含まない利点を提供する。
【００１３】
本緩衝化された混合物中で使用される場合、血清アルブミンは変性しないことが分かった。使用前にアルブミンが変性されないので、アルブミンがその天然のコイル状立体配座を維持するために、ゲル様の固体を提供する硬化工程中に架橋された後、硬化した予備成形されたオブジェクトは十分な可撓性を維持して、所望ならば組織移植のための適切なマトリックスが提供されると考えられる。
【００１４】
本発明中で様々な適切な架橋剤を使用しても良い。架橋剤は多官能性で好ましくは二官能性である。本発明で使用するのに適切な架橋剤としては、式、
Ｉ−（−Ｘ−ＬＭ−Ｇ）n
（式中、Ｘは二官能性ポリオキシエチレン鎖部分または結合であり、ＬＭは二官能性結合部分であり、Ｇは活性脱離基であり、Ｉは多求核性化合物（例えばエチレングリコール、ペンタエリスリトール、トリメチロールプロパン、多求核性アミンなど）に由来する多官能性結合部分であり、ｎは約２〜約１０、好ましくは約２〜約４であるが、ただしＸが二官能性ポリオキシエチレン鎖部分である場合、−Ｘ−Ｉ−Ｘ−はここで定義したように−ＰＥＧ−である。）の化合物が挙げられる。
【００１５】
好ましい架橋剤は、二官能性であり、式、
Ｇ−ＬＭ−ＰＥＧ−ＬＭ−Ｇ
（式中、−ＰＥＧ−は、式、
−Ｏ−（ＣＨ2−ＣＨ2−Ｏ−）a−
（式中、ａは約２０〜約３００の整数である。）によって表されるジラジカル断片であり、−ＬＭ−は、式、−Ｃ（Ｏ）−、−（ＣＨ2）bＣ（Ｏ）−（式中、ｂは約１〜約５の整数である。）、−Ｃ（Ｏ）−（ＣＨ2）c−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｃは約２〜約１０の整数であり、ラジカルの脂肪族部分は飽和または不飽和でも良い。）、−Ｃ（Ｏ）−Ｏ−（ＣＨ2）d−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｄは約２〜約１０の整数であり、あるいは式、−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−、−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−（ＣＨ2）c−Ｃ（Ｏ）−、または−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−Ｏ−（ＣＨ2）d−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｃは約２〜約１０の整数であり、ｄは約２〜約１０の整数であり、Ｒは１〜１０個のモノマーラクチド、グリコリド、炭酸トリメチレン、カプロラクトンまたはｐ−ジオキサノン断片を有するポリマーまたはコポリマーである。）によって表されるオリゴマージラジカルである。）によって表されるジラジカル断片であり、−Ｇは、スクシンイミジル、マレイミジル、フタルイミジル、ニトロフェニル、イミダゾリル、またはトレシル脱離基などの脱離基である。）を有する。脱離基の文脈で、「スクシンイミジル」とはＮ−オキシスクシンイミジルを意味し、「マレイミジル」とはＮ−オキシマレイミジル、「フタルイミジル」とはＮ−オキシフタルイミジルを意味し、「ニトロフェニル」とは、ニトロフェノキシルを意味し、「イミダゾリル」とはＮ−オキシイミダゾリルを意味し、「トレシル」とは（ＣＦ3−ＣＨ2−ＳＯ2−Ｏ−）を意味する。
【００１６】
架橋剤の−ＰＥＧ−部分は好ましくは市販される化合物から誘導されて、約１，０００〜約１５，０００の量平均分子量を有し、好ましくは約２，０００〜約４，０００の量平均分子量を有する。これらの化合物は無害であることが実証されており、また分子量が約３０，０００未満であれば迅速に体から排出されることから、異なるタイプの生物医学的材料中で使用されている。
【００１７】
架橋剤の脱離基−Ｇ部分は、架橋剤をタンパク質の遊離一級または二級アミン基と反応させ、あるいは化学的に結合させる活性脱離基である。適切な脱離基としては、Ｎ−オキシスクシンイミジルと、Ｎ−オキシマレイミジルおよびＮ−オキシフタルイミジルなどのその他のイミドと、Ｎ−オキシイミダゾリルなどのヘテロ環式脱離基と、ニトロフェノキシルなどの芳香族脱離基と、あるいはトレシル（ＣＦ3−ＣＨ2−ＳＯ2−Ｏ−）などのフッ素化アルキルスルホン脱離基と、が挙げられる。変異原性、発がん性、および催奇形性の研究からは、少量のＮ−オキシスクシンイミジル基が局所的または全身的毒物学リスクを呈さないことが示唆されるので、この群の脱離基が好ましい。
【００１８】
架橋剤は、米国特許番号第４，１０１，３８０号または第４，８３９，３４５号で報告された手順、１９９０年４月１９日に出願された国際出願整理番号ＰＣＴ／ＵＳ９０／０２１３３で報告された手順、またはＡｂｕｃｈｏｗｓｋｉらによってＣａｎｃｅｒ  Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．、７、１７５〜１８６ページ（１９８４年）で報告された手順などの既知の工程、手順または合成方法を使用して調製しても良い。簡単に述べると、塩基存在下でポリエチレングリコールおよび適切な酸無水物を適切な極性有機溶剤中に溶解し、ポリエチレングリコールジエステル二酸を形成するのに十分な時間還流する。次にジシクロヘキシルカルボジイミドまたはその他の縮合剤の存在下に、適切な極性有機溶剤中で、ジエステル二酸をＮ−ヒドロキシイミド化合物などの脱離基と反応させて、室温で撹拌して所望の二官能性架橋剤を形成する。
【００１９】
代案としては、ポリエチレングリコールおよび適切な塩化ジカルボン酸またはビスクロロホルメートを、混合酸塩化物ポリエチレングリコールエステルまたは混合クロロホルメートポリエチレングリコールエステルを形成するのに十分な時間、適切な極性有機溶剤中に溶解しても良い。次に適切な極性有機溶剤中で、混合エステルをＮ−ヒドロキシイミド化合物などの化合物と反応させて、所望の二官能性架橋剤を形成するのに十分な時間、高温で撹拌しても良い。
【００２０】
予備成形されたオブジェクトは、タンパク質などの材料を架橋する従来の方法、および押出し技術、噴霧乾燥技術、およびエマルジョン重合技術をはじめとする、架橋されたポリマーをビーズまたは微小球などの形状に形成する従来の方法を使用して調製しても良い。このような方法は、ポリマー化学技術分野の当業者には周知である。
【００２１】
異なるｐＨ値を有する緩衝液を使用してタンパク質のｐＨを変更することで、本組成物の硬化時間を目的に合わせても良い。例えば緩衝液のｐＨを変化させることでアルブミンのｐＨを変更し、それによって硬化速度時間を約１０秒から約１０分未満に変化させることが可能である。簡単に述べると、濃縮水性血清アルブミンをより高いｐＨで架橋剤と混合することで、最速硬化時間が提供される。より高濃度のタンパク質および架橋剤が、比較的より強力な硬化マトリックスを提供することも分かった。しかし混合物が濃くなりすぎ、粘度が高くなりすぎると、得られる硬化マトリックスは弱くなって球状になる。さらに架橋剤濃度が高すぎると、得られる硬化マトリックスは、水またはその他の流体存在下において、マトリックス強度が低くなる程度にまで膨潤するかもしれない。
【００２２】
本発明の予備成形されたオブジェクトを形成するのに使用される組成物については、米国特許番号第５，５８３，１１４号（Ｂａｒｒｏｗｓら）で述べられている。しかしそこでは、組成物は直接組織に適用されて現場で（ｉｎ  ｓｉｔｕ）硬化されて、組織との結合相互作用が得られる。これらは例えば、現行の方法で標準的に必要な縫合糸数を排除または大きく削減したり、再建外科手術中に皮膚移植片を付着して組織皮弁または自由皮弁を配置したり、歯周部の外科手術において歯肉皮弁を閉じるのに使用される。これらの全ての用途において、組成物は、２つの隣接する生体組織層の間に事実上はさまれた、硬化接着剤の薄層を形成する。代案としては、組成物は、例えば肺外科手術に関連した空気漏れを防止するために、あるいはその他の外科手術手順において出血を阻害または防止するための密封材として使用されることが開示されている。このようにして使用する場合、下にある組織を比較的厚い接着剤層で被覆しても良い。
【００２３】
対照的にここで述べる組成物は、サブジェクトに接触させるのに先立ってオブジェクトに成形される。したがって「予備成形された」という用語は、サブジェクトをオブジェクトに接触させるのに先立って、ポリマー組成物に形態または形状を提供することを指す。好ましくは予備成形されたオブジェクトは、自立型の三次元形状を有する。したがってこのように予備成形されたオブジェクトは、薄膜または薄層を含まない。しかし例えば形状が、裏材料上のシート材料または層の形状でパッチを形成する場合、予備成形されたオブジェクトは２ｍｍを越える厚さを有する。本発明の予備成形されたオブジェクトは、マイクロカプセル、微小粒子、ナノ粒子などの微細構造、ならびにビーズまたはその他のボール形のオブジェクト、シリンダー、ディスク、繊維、シート、プラグ、リボン、ウェッジなどのマクロ構造の形態であることができる。好ましい構造は、微小球およびビーズである。典型的にビーズは約１ｍｍを越える直径を有し、微小球は約１μｍ〜約１０００μｍの直径を有する。
【００２４】
予備成形されたオブジェクトは、形成後に少なくとも部分的に脱溶媒和することができ、好ましくは実質的に完全に脱溶媒和される。ここで「脱溶媒和された」とは、タンパク質と架橋剤との反応に続いて、調製中に使用された溶剤が予備成形されたオブジェクトから除去されることを意味する。典型的にこれは、最初の形成時に予備成形されたオブジェクト中に組み込まれた水の少なくとも一部が除去されるために、予備成形されたオブジェクトが少なくとも部分的に脱水されることを意味する。このような予備成形されたオブジェクトの調製には、水の他に、または水に加えてその他の溶剤も使用できる。注目に値すべきは本発明の好ましい予備成形されたオブジェクトが、脱溶媒和および再溶媒和に際してそれらの形状を維持することである。
【００２５】
予備成形されたオブジェクトを少なくとも部分的に脱溶媒和した後は、例えば大気中の湿気による再溶媒和を起こさない環境に、それらを貯蔵することが望ましい。取り扱いが容易で、医師に提供されて使用時に活性薬剤で再溶媒和できることから、このようなオブジェクトが望ましい。
【００２６】
脱溶媒和されているか否かに関わらず、予備成形されたオブジェクトは活性薬剤を含むことができる。本発明の予備成形されたオブジェクトの好ましい実施態様は、その中に組み込まれた活性薬剤を有する。ここでの用法で「活性薬剤」とは、それが化学的、薬理学的、物理的、または生物学的に関わらず、所望の効果を生じることができるものである。したがってその中に組み込まれた１つ以上の活性薬剤を有する、得られた予備成形されたオブジェクトは、医薬品、薬物、またはその他の活性薬剤のためのデリバリシステムとして機能できる。予備成形されたオブジェクトは、例えばサブジェクトの体腔または組織空隙に移植する際などに組織と接触させて、あるいは例えば皮膚上などサブジェクトの体外に配置できる。
【００２７】
活性薬剤は、例えばタンパク質と架橋剤の反応中など、またはそれに引き続いて、予備成形されたオブジェクトの形成中に添加できる。予備成形されたオブジェクトに形成中に活性薬剤を組み込む場合、活性薬剤が架橋剤またはタンパク質のどちらとも反応しないことが好ましい。特定の好ましい実施態様では、活性薬剤である液体または活性薬剤を含む液体を有する、予備成形され少なくとも部分的に脱溶媒和されたオブジェクトと活性薬剤とを組み合わせて、その中に組み込まれた活性薬剤を有する再溶媒和され予備成形されたオブジェクトを形成する。次にこの再溶媒和され予備成形されたオブジェクトは、活性薬剤のデリバリのためにサブジェクトと接触させて配置できる。予備成形されたオブジェクトの形成中、またはそれに続いて、それらに活性薬剤を組み込む特定方法を以下の実施例で開示する。
【００２８】
本発明の一態様では、これは抗菌剤などの活性薬剤を含有する水性組成物で、複数のボール形の予備成形されたオブジェクトを再溶媒和して、膿瘍または創傷清拭した骨空洞などの組織空隙に、このような複数のオブジェクトを詰めることを伴う。したがって特定の一実施態様では、骨髄炎の治療において、抗菌剤を含有する再溶媒和され予備成形されたオブジェクトが使用できる。骨髄炎は骨とその骨髄の感染症であり、骨の病変形成が帰結する。病因は通常ブドウ球菌である。これは治療および根絶が困難な感染症である。現行の慣行は、長期的な予防的抗生物質と複数の外科的壊死組織切除である。壊死組織切除手術に続いて、骨髄炎組織の除去によって生じた空所に、生分解性ではないポリメタクリル酸メチル骨セメントビーズを詰める。このようなビーズは立証された抗生物質担体であるが、それらは生体内（ｉｎ  ｖｉｖｏ）で分解せず、組織不適合反応に帰結することもあるために、それらは理想的とは言えない。したがって１つ以上の抗生物質を含有する本発明の予備成形されたオブジェクトは、骨髄炎の治療に使用できる。
【００２９】
注目に値すべきは、予備成形されたオブジェクトの生分解速度が、タンパク質、架橋剤、および調製条件を選択することで、所望の用途について目的に合わせられることである。ここでの用法では「生分解」とは、材料の完全性の低下をもたらす可溶化、加水分解、酵素、および生物学的存在の作用をはじめとする様々な機序によって、予備成形されたオブジェクトがより単純な中間体または最終産物に転換することを意味する。必ずしもそうではないが、ポリマー分子はより小さい断片に壊れることができる。このような生分解の範囲には、予備成形されたオブジェクトの生体再吸収、生体吸収または生体侵食が含まれる。典型的に、本発明予備成形されたオブジェクトは、約２日間〜約６０日間の間に分解するように調合できる。
【００３０】
活性薬剤の放出は、典型的にポリマーの侵食、およびポリマーからの活性薬剤の拡散の組み合わせによって起きる。拡散成分はフィックの法則に従うかも従わないかもしれず、他方、侵食寄与は分解の動態学に従う。活性薬剤の放出速度は、数時間程度から数ヶ月、典型的に約６０日間程度までの範囲になるように、目的に合わせることができる。
【００３１】
活性薬剤は、例えば治療的または予防的であっても良い、生理的、薬理学的、または生物学的効果を提供する多種多様の薬剤から選択できる。例としては、細胞増殖を向上させ、組織再生を向上させ、血管形成および血管新生を向上させ、神経刺激を向上させ、骨成長を向上させ、感染症（例えば細菌性またはウイルス性）および／または炎症を阻害（例えば防止、低下、または逆転）し、ガン細胞増殖を阻害し（例えば既存のガン状態を治療する、または前ガン状態からガン状態への転換を防止する）、免疫反応を調節し、創傷治癒を促進し、あるいは組織軟化および加湿を促進できる物質またはその代謝前駆体が挙げられる。このような物質としては、テトラサイクリン、バンコマイシン、およびセファロスポリンなどの抗菌剤と、血小板由来増殖因子、トランスフォーミング増殖因子β、上皮性増殖因子、および繊維芽細胞増殖因子などの増殖因子と、５−フルオロウラシル、マイトマイシン、メトトレキセート、ドキソルビシン、およびシスプラチンなどの抗ガン剤（例えば抗有糸分裂薬）と、リドカイン、ブピバカイン、テトラカイン、プロカイン、およびプリロカインなどの局所麻酔薬と、防腐薬（例えばクロルヘキシジン）と、ホルモン（例えばステロイド、インスリン）と、抗ウイルス薬剤と、麻薬拮抗薬と、免疫反応調節剤と、目薬（例えばアトロピン、ピロカルピン、およびチモロール）と、ワクチンと、および美容医薬品と、が挙げられるが、これに限定されるものではない。その他の具体例は、米国特許番号第第５，７３３，５６３号（Ｆｏｒｔｉｅｒら）および第５，７５９，５６３号（Ｙｅｗｅｙら）に列挙されている。本発明の予備成形されたオブジェクトに、このような１つ以上の活性薬剤を組み込んでも良い。
【００３２】
好ましくはその中に組み込まれた活性薬剤を有する本発明の予備成形されたオブジェクトは、二次生分解性マトリックスに組み込むことができる。この二次生分解性マトリックスは、液体（例えば液体中の微小球）としてサブジェクトに適用しても良く、あるいは成形オブジェクト（例えば成形オブジェクト内の微小球などの予備成形された成形オブジェクト）に形成できる。このようにして予備成形されたオブジェクトは、サブジェクトへのデリバリのためにマトリックス内に組み込むことができる。二次生分解性マトリックスは、好ましくは上述され、米国特許番号第５，５８３，１１４号（Ｂａｒｒｏｗｓら）で述べられるような予備成形されたオブジェクトと同様の化学的性質であることができ、あるいはそれは別の生分解性ポリマーであることができる。同様に予備成形されたオブジェクトは、上述の架橋されたタンパク質を含み、あるいは別の生分解性ポリマーでも良い。マトリックスまたは予備成形されたオブジェクトのいずれかのための適切な生分解性ポリマーの例としては、Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｓｙｓｔｅｍｓ、Ｖ．Ｖ．Ｒａｎａｄｅ編、ＣＲＣ  Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．、ＢｏｃａＲａｔｏｎ、ＦＬ、７８〜８１ページ、１９９６年、およびＢｉｏｄｅｇｒａｄａｂｌｅ  Ｐｏｌｙｍｅｒｓ  ａｓ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｓｙｓｔｅｍｓ、Ｍ．Ｃｈａｓｉｎ編、Ｄｒｕｇｓ  ａｎｄ  ｔｈｅ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ  Ｓｅｒｉｅｓ、第４５巻、Ｍａｒｃｅｌ  Ｄｅｋｋｅｒ，Ｉｎｃ．ＮＹ、１９９０年で開示されるものが挙げられる。二次生分解性マトリックスの好ましい例としては、ポリ（ホスホエステル）、ポリ（α−ヒドロキシ酸）、親水アクリレートおよびメタアクリレートポリマー、ヒドロキシプロリンポリエステル、ポリ無水物（例えばポリ（ラクチド−コ−グリコリド））、ポリカプロラクトン、ポリ（オルトエステル）、ポリホスファゲン、ポリ（アミノ酸）、多糖類、およびそれらのコポリマーが挙げられる。予備成形されたオブジェクトの好ましい例としては、ポリ（α−ヒドロキシ酸）（例えばポリ（グリコール酸）、ポリ（ＤＬ−乳酸）、およびポリ（Ｌ−乳酸））、ポリ（アミノ酸）、ポリ（酸無水物）、ポリ（オルトエステル）、ポリ（ホスファジン）、ポリ（ホスホエステル）、ポリラクトン（例えばポリ（ε−カプロラクトン）、ポリ（δ−バレロラクトン）、およびポリ（γ−ブチロラクトン）が挙げられる。予備成形されたオブジェクトは、当業者には既知の技術を使用して、二次生分解性マトリックスに組み込むことができる。例えば米国特許番号第５，５８３，１１４号（Ｂａｒｒｏｗｓら）で開示される組織密封材を二次生分解性マトリックスとして使用して、その中に組み込まれた予備成形されたオブジェクトをサブジェクトにデリバリできる。
【００３３】
以下の実施例によって本発明の目的および利点をさらに実証するが、これらの実施例で言及される特定材料およびその量、ならびにその他の条件と詳細は、本発明を不当に制限するものではない。
【実施例】
【００３４】
実施例
アルブミン溶液の調製
アルブミンは、Ｂａｘｔｅｒ  Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ（イリノイ州ディアフィールド）から２５％濃度のヒト血清アルブミンとして得た。それを米国特許番号第５，５８３，１１４号（Ｂａｒｒｏｗｓら）で述べられるような透析（手順Ａ）で処理し、あるいはカットオフ分子量５０，０００の６８０ｃｍ2ポリスルホン繊維モジュール（Ｓｐｅｃｔｒｕｍ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．から入手できる）を装着した、接線フロー分離のためのＭＩＮＩＫＲＯＳ  Ｓａｍｐｌｅｒ  Ｌａｂ  Ｕｎｉｔ（カリフォルニア州ランチョドミンゲスのＳｐｅｃｔｒｕｍ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．から入手できる）を使用して、連続ダイアフィルトレーションによって処理した（手順Ｂ）。ｐＨ１０の０.１Ｍ炭酸／炭酸水素塩緩衝液溶液を使用して、Ｂａｒｒｏｗｓ法（米国特許番号第５，５８２，１１４号）（工程Ａ）から得られたアルブミンを２３％溶液に希釈した。ダイアフィルトレーション（工程Ｂ）から得られたアルブミンの場合は、ｐＨ８．９〜９．１の０．０７５Ｍ炭酸／炭酸水素塩緩衝液を用いてダイアフィルトレーションを実施した。ダイアフィルトレーション装置を使用して、サンプルを２９％〜３０％に濃縮した。アルブミンの最終濃度を標準ビウレット滴定によって求めた。
【００３５】
ポリエチレングリコールジスクシンイミジルスクシネート（ＰＥＧ−ＳＳ）2架橋剤の合成
３０ガロンのガラス内張反応器に、１０．９ｋｇのポリエチレングリコール（分子量３４００）、７６０ｇの無水コハク酸、および４．４ｋｇのトルエンを装填した。装填物を窒素ガスシール下で１１０℃で６時間混合した。次に反応混合物を８０℃に冷却した。１３．０ｋｇの無水エタノールを撹拌しながら添加した。それ以上の加熱は行わなかった。温度が２５℃に冷めるまで混合物を撹拌した。４３．８ｋｇのメチルｔｅｒｔ−ブチルエーテル（ＭｔＢＥ）を冷却混合物に撹拌しながら添加して、窒素ガス体下で一晩混合した。反応混合物を遠心分離した。反応器を同量のＭｔＢＥでさらに４回すすいだ。このすすぎ水を使用して遠心分離ケークを洗浄した。ブレンダー乾燥機内で、ポリエチレングリコールジスクシネートのケークを真空下、３０℃でおよそ１９．５時間乾燥した。１０．９ｋｇのポリエチレングリコールジスクシネートが回収された。
【００３６】
３０ガロンガラス内張反応器に、５．６ｋｇのポリエチレングリコールジスクシネート、５４０ｇのＮ−ヒドロキシスクシンイミド、８４ｇの４−ジメチルアミノピリジン、および８．２ｋｇのアセトニトリルを装填した。全固形物が溶解するまで、装填物を室温で１時間混合した。１．３ｋｇの１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミドを添加した。混合物を窒素ガスシール下で、２５℃で６時間撹拌した。次に３９．６ｋｇの無水エタノールを反応混合物に撹拌しながら添加した。混合物を７５ガロンポータブルガラス内張反応器に移した。８０．０ｋｇのＭｔＢＥを撹拌しながら添加した。冷却ジャケットを使用して混合物を一晩撹拌した。翌朝、反応混合物は５〜７℃であった。反応混合物を遠心分離して、反応フラスコを同量のＭｔＢＥで４回すすいだ。このすすぎ水を使用して遠心分離ケークを洗浄した。遠心分離した濡れたケークを４０ｋｇ無水エタノールと共に３０ガロンガラス内張反応器に加えた。反応器を窒素ガス体下、周囲温度でおよそ１時間混合した。混合物を遠心分離して、反応器を４０ｋｇの無水エタノールですすぎ、このすすぎ水を使用して遠心分離ケークを洗浄した。次に反応器を４０ｋｇのＭｔＢＥですすぎ、このこのすすぎ水を使用して遠心分離ケークを洗浄した。ケークのおよそ半分をタンブル乾燥機に移して、真空下、３０℃でおよそ１８時間乾燥した。液体窒素冷却を使用して、２．７ｋｇの乾燥生成物を粉砕した。ケークの半分からそれぞれ２．５５ｋｇのポリエチレングリコールジスクシンイミジルスクシネート、ＰＥＧ−（ＳＳ）2が回収された。
【００３７】
実施例１
予備成形されたアルブミンポリマープラグからの５−フルオロウラシル（５ＦＵ）の放出
シリンジバレルを切断して開放円筒容器を形成した改造５ｍｌポリシリンジ内で、２９％アルブミン溶液（テキサス州セギーンのＡｍｅｒｉｃａｎ  Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙから入手できる、あるいは上述したダイアフィルトレーション（手順Ｂ）によって得られる）０．５ｍｌと、１３６ｍｇ／ｍｌのＰＥＧ−（ＳＳ）2架橋剤０．５ｍｌとを混合して、２つのポリマープラグを予備成形した。架橋完了後（１５分間）、プラグをシリンジから除去して押し出した。ポリマープラグを真空下で２４時間乾燥させた。各プラグが全部で１８７．６μｇ、または１６５．５μｇの５ＦＵを含有するように、プラグを２ｍｌの５ＦＵ溶液（１．０４ｍｇ／ｍｌ、ミズーリ州セントルイスのＳｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏ．）で戻した。各プラグを別々のバイアルに入れて、ｐＨ７．４のリン酸緩衝食塩水５ｍｌをサンプル時間０（ｔ0）時に添加した。バイアルを室温に保持して絶え間なく振盪した。各サンプル時間毎にバイアルの全内容物を取り出して、５ｍｌの新鮮なＰＢＳと入れ替えた。サンプルは０．２５時間、０．５時間、１時間、２時間、３時間、４時間、５時間、６時間、および２４時間目に採取した。５ＦＵの分析は、ＢｅｒｎａｔｃｈｅｚらのＩｎｔ．Ｊ．Ｐｈａｒｍ．、１０６、１６１〜１６６ページ（１９９４年）の方法に従って、高圧液体クロマトグラフィーによって実施した。図１のデータは、５時間の間に５ＦＵが放出されたことを示す。
【００３８】
実施例２
バイオポリマープラグからのテトラサイクリンの放出
アルギン酸（３０ｍｇ、ミズーリ州セントルイスのＳｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏ．）を１．０１ｍｇ／ｍｌテトラサイクリン（ミズーリ州セントルイスのＳｉｇｍａＣｈｅｍｉｃａｌＣｏ．）１ｍｌに添加した。ＣｌｏｒｏｐＨａｓｔ  ｐＨストリップ（イリノイ州イタスカのＦｉｓｃｈｅｒＣｏｍｐａｎｙ）を使用して、１ＮのＮａＯＨで混合物のｐＨを６．８にして、次にＤＲＩＥＲＩＴＥ（オハイオ州ジーニアのＷ．Ａ．Ｈａｍｍｏｎｄ  Ｄｒｉｅｒｉｔｅ  Ｃｏ．）と共に真空デシケーターに入れて２４時間乾燥した。得られたルギン酸塩／テトラサイクリンフィルムを粉砕して３０％アルブミン溶液（手順Ｂ）中に混合し、直ちに５ｍｌポリシリンジ型に入れて等容積のＰＥＧ−（ＳＳ）2架橋剤（１３６ｍｇ／ｍｌ）で架橋した。各プラグを別々のバイアルに入れて、ｐＨ７．４のリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）５ｍｌをサンプル時間０（ｔ0）時に添加した。バイアルを室温に保持して絶え間なく振盪した。各サンプル時間毎にバイアルの全内容物を取り出して、５ｍｌの新鮮なＰＢＳと入れ替えた。サンプルを１時間、２時間、３時間、５時間、および２４時間目に採取した。可変波長検出器を有するＨｅｗｌｅｔｔ  Ｐａｃｋａｒｄ（カリフォルニア州パロアルト）ＨＰＬＣモデル１１９０、およびＳｕｐｅｌｃｏ  Ｃｏ．（ペンシルベニア州ベルフォンテ）からの逆相ＬＣ−８−ＤＢカラム（１５．０ｃｍ×４．６ｍｍ、粒度５μｍ）でサンプルを分析した。ＨＰＬＣ分析のために使用した移動相は、比率が４５：４５：１０：１の０．０５Ｍリン酸アンモニウム緩衝液（ｐＨ６．８）、メタノール、アセトニトリル、およびトリエチルアミンから構成された。移動相の流速は１．０ｍｌ／分であり、カラム温度は２５℃に保った。テトラサイクリンは２８０ｎｍで検出された。
【００３９】
図２のデータは、５時間の間に約７０％のテトラサイクリンが放出されたことを示す。収集テトラサイクリン量は、テトラサイクリンの分解による損失について補正しなかった。
【００４０】
実施例３
架橋剤およびアルブミンと混合された５ＦＵから製造されるプラグからの５−フルオロウラシルの放出
１３６ｍｇのＰＥＧ−（ＳＳ）2架橋剤を１．０４ｍｇ／ｍｌの５−フルオロウラシル溶液１ｍｌに溶解した。次にこの溶液をあらかじめ５ｍｌの型に入れた１ｍｌの３０％アルブミン溶液（実施例２参照）中に混合した。得られたヒドロゲルプラグを１５分後に型から取り出して、３つの等しい寸法の小片に切断した（厚さおよそ０．５ｃｍ）。次に各小片をバイアルに入れて、４ｍｌのＰＢＳ緩衝液（ｐＨ７．４）をサンプル時間０（ｔ0）時に添加した。バイアルを室温に保持して絶え間なく振盪した。各サンプル時間毎にバイアルの全内容物を取り出して、４ｍｌの新鮮なＰＢＳと入れ替えた。サンプルは１時間、２時間、３時間、４時間、および８時間目に採取した。５−フルオロウラシルを実施例１に述べるようにして分析した。
【００４１】
図３のデータは、８時間の間に約５５％の５−フルオロウラシルが放出されたことを示す。残る５ＦＵは、恐らくポリマー中に架橋されており、ポリマーが分解すれば放出される。
【００４２】
実施例４
カルシウム無添加のアルギン酸を含有するアルブミンプラグからの５−フルオロウラシルの放出
１．０４ｍｇ／ｍｌの５−フルオロウラシル１ｍｌを３０ｍｇのアルギン酸と混合した。混合物のｐＨを６．８にして、次にＤＲＩＥＲＩＴＥと共に真空デシケーター内に入れて２４時間乾燥させた。得られたアルギン酸塩／５ＦＵフィルムを粉砕し、３０％アルブミン溶液（実施例２参照）中に混合し、直ちに５ｍｌシリンジ型に入れて等容積のＰＥＧ−（ＳＳ）2架橋剤（１３６ｍｇ／ｍｌ）で架橋した。各プラグを別々のバイアルに入れて、ｐＨ７．４のリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）５ｍｌをサンプル時間０（ｔ0）時に添加した。バイアルを室温に保持して絶え間なく振盪した。各サンプル時間毎にバイアルの全内容物を取り出して、５ｍｌの新鮮なＰＢＳと入れ替えた。サンプルを１時間、２時間、３時間、４時間、５時間、および２４時間目に採取した。
【００４３】
５−ＦＵを実施例１に述べるようにして分析した。図４のデータは、５時間の間に約４０％の５ＦＵが放出されたことを示す。
【００４４】
実施例５
カルシウム添加アルギン酸を含有するアルブミンプラグからの５−フルオロウラシルの放出
１．０４ｍｇ／ｍｌの５−フルオロウラシル１ｍｌを３０ｍｇのアルギン酸と混合した。混合物のｐＨを６．８にして、１５０μｌの飽和塩化カルシウム／水溶液を添加してアルギン酸塩をゲル化した。ゲルを３個のほぼ同じ容積に分割し、次にＤＲＩＥＲＩＴＥと共に真空デシケーター内に入れて２４時間乾燥させた。得られたアルギン酸塩／Ｃａ／５ＦＵフィルムを粉砕し、３０％アルブミン溶液（実施例２参照）中に混合し、直ちに５ｍｌシリンジ型に入れて等容積のＰＥＧ−（ＳＳ）2架橋剤（１３６ｍｇ／ｍｌ）で架橋した。各プラグを別々のバイアルに入れて、ｐＨ７．４のリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）５ｍｌをサンプル時間０（ｔ0）時に添加した。バイアルを室温に保持して絶え間なく振盪した。各サンプル時間毎にバイアルの全内容物を取り出して、５ｍｌの新鮮なＰＢＳと入れ替えた。サンプルを１時間、２時間、３時間、４時間、５時間、および２４時間目に採取した。
【００４５】
５−ＦＵを実施例１に述べるようにして分析した。図４のデータは、５時間の間に約６０％の５ＦＵが放出されたことを示す。
【００４６】
実施例６
生分解性ビーズの製造方法
二液システムからビーズを調製した。パートＡは、等張（０．０７５Ｍ）炭酸緩衝液（ｐＨ９）中の２９％アルブミン滅菌溶液（実施例１参照）であった。パートＢは、使用直前に滅菌水溶液で戻したＰＥＧ−（ＳＳ）2の２６０ｍｇ／ｍｌ溶液であった。静止ミクシングヘッドに接続したデュアルシリンジシステムによって、溶液ＡおよびＢを等容積で混合した。８ｍｍ径の孔を有する６インチ×４インチ×１インチのテフロン金型内に液体を注入して、ビーズを調製した。注入した混合物を８ｍｍ径の孔内で１０分間硬化した。ビーズをテフロン金型から１０分後に取り出した。ビーズは２つの異なるやり方で使用できる。一例では水和したビーズをテフロン金型から取り出して、直接使用できる。別の例では、ビーズを金型から取り出した後に脱水できる。乾燥は、真空下または空気中、またはその他の適切な様式で実施できる。球状のビーズ以外にも様々な形状寸法が製造できることに留意すべきである。
【００４７】
実施例７
バンコマイシンの試験管内（ｉｎ  ｖｉｔｒｏ）放出試験
実施例６から製造された２個の脱水されたビーズを４ｍｌバイアルに入れた。バンコマイシン（６０ｍｇ、イリノイ州ノースシカゴのＡｂｂｏｔｔ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）を２ｍｌの滅菌水に溶解してバイアルに入れた。ビーズを室温で２４時間浸漬した。２４時間の浸漬後にビーズを取り出して、ｐＨ７．４のリン酸緩衝食塩水５ｍｌと共に２０ｍｌガラス瓶に入れた。バンコマイシン放出速度は定温水浴内で３７℃で測定した。緩衝液を２４時間毎に最高３週間まで交換した。ＵＶ分光光度計（ＤＵ６４０、カリフォルニア州フラートンのＢｅｃｋｍａｎ）によって、これらのサンプルをバンコマイシンについて分析した。バンコマイシンは２８２ｎｍで検出された。結果を図５および６に示す。
【００４８】
実施例８
セファゾリンの試験管内（ｉｎ  ｖｉｔｒｏ）放出
実施例６から作られた２個の脱水されたビーズを４ｍｌバイアルに入れた。セファゾリン（６０ｍｇ、ニュージャージー州チェリーヒルのＭａｒｓａｍ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ，Ｉｎｃ．）を２ｍｌの滅菌水に溶解してバイアルに入れた。ビーズを室温で２４時間浸漬した。２４時間の浸漬後にビーズを取り出して、ｐＨ７．４のリン酸緩衝食塩水５ｍｌと共に２０ｍｌガラス瓶に入れた。セファゾリン放出速度は定温水浴内で３７℃で測定した。緩衝液を２４時間毎に最高３週間まで交換した。ＵＶ−分光光度計（Ｂｅｃｋｍａｎ，ＤＵ６４０，カリフォルニア州フラートン）によって、これらのサンプルをセファゾリンについて分析した。セファゾリンは２７２ｎｍで吸光する。結果を図７および８に示す。
【００４９】
実施例９
架橋程度および溶剤容積の関数としての再水和されたビーズの水取り込み
ＰＥＧ−（ＳＳ）2のいくつかの架橋剤調合物を使用したこと以外は、実施例６と同様にしてビーズを製造した。標準の密封材（ＮＳ）調合物からできたビーズは、１ｍｌの水中の１３０ｍｇのＰＥＧ−（ＳＳ）2と、ｐＨ９．０の炭酸緩衝液中の１ｍｌの２９％アルブミンとを混合して製造した。架橋剤濃度が半分（ＮＳ*１／２）のビーズでは、ビーズは１ｍｌの水中に６５ｍｇのＰＥＧ−（ＳＳ）2、ｐＨ９．０の炭酸緩衝液中に１ｍｌの２９％アルブミンを含有した。架橋剤濃度が２倍（ＮＳ*２）のビーズでは、ビーズは１ｍｌの水中に２６０ｍｇのＰＥＧ−（ＳＳ）2、ｐＨ９．０の炭酸緩衝液中に１ｍｌの２９％アルブミンを含有した。架橋剤濃度が３倍（ＮＳ*３）のビーズでは、ビーズは１ｍｌの水中に３９０ｍｇのＰＥＧ−（ＳＳ）2、ｐＨ９．０の炭酸緩衝液中に１ｍｌの２９％アルブミンを含有した。各調合物からの３個のビーズを２０ｍｌのあらかじめ秤量したバイアルに入れた。３ｍｌの水を秤量してバイアルに加えた。６ｍｌの水を使用して同じ試験を繰り返した。ビーズを取り出してバイアル中の水を秤量し、ビーズの水取り込みを２、４、６、８、および２４時間目に測定した。結果を表１に示す。
【００５０】
【表１】
0005781994.tif 000002
【００５１】
実施例１０
ビーズの直径および架橋程度の関数としての水和されたビーズの水取り込み
ビーズは実施例６と同様にして製造した。標準、２倍、３倍の架橋剤濃度のビーズは、実施例９で述べたようにして調製した。各調合物からの３個のビーズを２０ｍｌのあらかじめ秤量したバイアルに入れた。６ｍｌの水を秤量して、バイアルに加えた。ビーズをバイアルから取り出してバイアル内に残留する水を秤量し、ビーズの水取り込みおよびビーズ径を２、４、６、８、および２４時間目に測定した。１個のビーズと２ｍｌの水で試験を繰り返した。ビーズ径はＳｃｈｅｒｒ−Ｔｕｍｉｃｏ  Ｏｐｔｉｃａｌ  Ｃｏｍｐａｒａｔｏｒ（Ｓ．Ｔ．Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ）を使用して測定した。複数のビーズについての結果を表２に、単一ビーズについての結果を表３に示す。表４は単一ビーズ試験と複数ビーズ試験における、乾燥ビーズ容積と比較した容積増大％を乾燥ビーズの再水和に伴う時間の関数として示す。図９はビーズ１個の試験の水取り込みに関するこのデータを示す。ビーズ３個の試験は同様の結果をもたらした。
【００５２】
【表２】
0005781994.tif 000003
【００５３】
【表３】
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【００５４】
【表４】
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【００５５】
実施例１１
架橋されたアルブミン微小球の調製
米国特許番号第５，５０８，０６０号に従って、種々の修正を加えて、油中水型エマルジョン法によって微小球を調製した。米国特許番号第５，５８３，１１４号（Ｂａｒｒｏｗｓら）の実施例８で教示されるようにしてヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）溶液を使用し、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）Ｆｒａｃｔｉｏｎ  Ｖは、Ｓｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏ．（ミズーリ州セントルイス）から購入した。ＰＥＧ−（ＳＳ）2を架橋剤として使用した。概して、電動の３枚羽根プロペラタイプ撹拌機（Ｍｏｔｏｍａｔｉｃ、米国のＥｌｅｃｔｒｏ−Ｃｒａｆｔ）を使用して、ピーナツ油（Ｎａｂｉｓｃｏ  Ｆｏｏｄｓ，Ｉｎｃ．、ニュージャージー州イーストハノーバー）を所定速度で撹拌した。絶え間なく撹拌しながら油浴中に皮下注射針で滴下して、アルブミン溶液と混合した架橋剤の水性溶液を添加した。別の変法では、架橋剤溶液を油に添加してからアルブミン溶液を滴下して加えた。アルブミンと架橋剤との容積比は１：１であり、使用した架橋剤濃度は１３８ｍｇ／ｍｌおよび２７６ｍｇ／ｍｌであった。油と水との比率はおよそ１００：１であり、３００〜５００ｍｌの範囲の油を使用した。所定時間の撹拌後、微小球を収集して酢酸エチルで洗浄し、０．４４μｍまたは１．１μｍのセルロースまたはナイロンフィルターを通して濾過した。
【００５６】
実施例１１Ａ
以下の修正と共に実施例１１の手順を使用して微小球を調製した。ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）はｐＨ９．４で２７％濃度で使用した。ＰＥＧ−（ＳＳ）2溶液は１３８ｍｇ／ｍｌの濃度であった。ＰＥＧ−（ＳＳ）2溶液を油に添加して、次にアルブミン溶液を２７ゲージの針を通して滴下して撹拌中の油に添加した。３枚羽根プロペラタイプ撹拌機を使用して、油を１０００ｒｐｍで１５分間撹拌した。撹拌停止後、溶液を８５℃に加熱して、実施例１１と同様に微小球を濾過して洗浄した。溶液の加熱中に媒体温度が約４５℃に達すると、架橋された粒子が凝集しはじめ、混合物から白色フレークが形成した。凝集した粒子を除去して微小球を収集した。この工程から回収された微小球の典型的な画像分析は、平均径が４．２２μｍで、１．０μｍ〜１５μｍの範囲内の粒度分布を有した。
【００５７】
実施例１１Ｂ
撹拌速度が１３００ｒｐｍで撹拌後に溶液を加熱しなかったこと以外は、実施例１１Ａで使用したのと同一手順によって微小球を製造した。この工程から回収された微小球の典型的な画像分析は、平均径が３．０５μｍで、１．０μｍ〜１０μｍの範囲内の粒度分布を有した。
【００５８】
実施例１１Ｃ
ＰＥＧ−（ＳＳ）2架橋剤濃度が２７６ｍｇ／ｍｌ、撹拌速度が１３００ｒｐｍで撹拌時間が２０分であり、撹拌後に溶液を加熱しなかったこと以外は、実施例１１Ａで使用したのと同一手順によって微小球を製造した。この工程から回収された微小球の典型的な画像分析は、平均径が５．４５μｍで、０．５μｍ〜１６μｍの範囲内の粒度分布を有した。これらの微小球を実施例１２の医薬品装填試験に使用した。
【００５９】
実施例１１Ｄ
ｐＨ９．１７で１５％の血清アルブミン（ＢＳＡ）溶液を使用し、撹拌速度が１５００ｒｐｍで撹拌時間が２０分であり、撹拌後に溶液を加熱しなかったこと以外は、実施例１１Ａで使用したのと同一手順によって微小球を製造した。この工程から回収された微小球の典型的な画像分析は、平均径が２．４２μｍで、１．０μｍ〜６．０μｍの範囲内の粒度分布を有した。
【００６０】
実施例１２
テトラサイクリンを用いた現場での（ｉｎ  ｓｉｔｕ）微小球への医薬品装填
２ｍｌのＨＳＡ溶液と、等容積の油浴中に医薬品を含有する架橋剤溶液とを混合して、実施例１１Ｃの方法に従って塩酸テトラサイクリンの存在下で微小球を調製した。簡単に述べると、５５２ｍｇのＰＥＧ−（ＳＳ）2架橋剤を２ｍｌのテトラサイクリン溶液（１０ｍｇ／ｍｌ）に添加して、架橋剤溶液を調製した。医薬品を含有するＰＥＧ−（ＳＳ）2溶液を１３００ｒｐｍで撹拌しながら油に添加した。水性溶液が安定したエマルジョンを形成するのに十分な時間をおいてから、２ｍｌのヒト血清アルブミン（２７％、ｐＨ９．４）を滴下して添加しエマルジョンを２０分間撹拌した。酢酸エチルで洗浄後、粒子は良好に分離した微粉末状を呈した。画像分析からは、粒子が良好に分離して小型であることが示された。
【００６１】
実施例１３
試験管中での（ｉｎ  ｖｉｔｒｏ）医薬品放出評価
微小球（実施例１１Ａ参照）を拡張放出試験器（ＢＩＯ−ＤＩＳ、ニュージャージー州エジソンのＶａｎＫｅｌ）の容器に入れて、試験管中での（ｉｎ  ｖｉｔｒｏ）医薬品放出の試験を実施した。１分あたり浸漬３回の撹拌速度、初期遅延ｌ５秒で、１００ｍｌのリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ、ｐＨ７．４）を含有する２００ｍｌガラスビーカー内に容器を浸漬した。放出試験中、水浴の温度は電子的に３７℃に保った。所定時間経過後、１ｍｌのサンプルを取り出して、新鮮な溶液をＰＢＳレザバーに添加した。０．２２ｍ  ＣＯＳＴＡＲシリンジフィルター（ニューヨーク州コーニングのＣｏｒｎｉｎｇ）を通してサンプル溶液を濾過し、あらゆる微粒子を除去した。塩化テトラサイクリンの定量は、ＨＰＬＣ法を使用して分光測定ＵＶ検出により実施した。使用した装置は、注入器（ＳｈｉｍａｄｚｕモデルＳｉｌ−９Ａ、メリーランド州コロンビアのＳｈｉｍａｄｚｕ）、溶剤デリバリシステム（Ｗａｔｅｒｓ  ６２５ＬＣ、マサチューセッツ州ミルフォードのＭｉｌｌｉｐｏｒｅ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）、マルチ波長検出器（Ｗａｔｅｒｓ  ４９０Ｅ、マサチューセッツ州ミルフォードのＭｉｌｌｉｐｏｒｅ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）、および積分器（Ｗａｔｅｒｓ  Ｍｉｌｌｅｎｎｉｕｍ、マサチューセッツミルフォードのＭｉｌｌｉｐｏｒｅ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）から構成された。医薬品を含有する溶液（２０μｌ〜１５０μｌ、直線検出範囲に入るように調節済み）をＢｅｃｋｍａｎ逆相Ｃ−１８カラム（５μｍ×４．６ｍｍ×２５ｃｍ、米国のＢｅｃｋｍａｎ）に注入した。移動相は０．１％のトリフルオロ酢酸を含有する、水とアセトニトリルの８０／２０混合物であった。流速は１．０ｍｌ／分であり、使用したＵＶ波長は２７５ｎｍであった。医薬品濃度は、医薬品ピークの下の面積と標準曲線から得られたものとを比較して測定した。各サンプルを少なくとも２回分析し、平均放出医薬品総量を計算した。
【００６２】
図１０は、３つの異なる大きさ範囲の微小球からの塩酸テトラサイクリンの放出プロフィールを示す。分粒は較差沈降法によって実施した。３つの標本全てで初期のバースト放出が観察された。しかしバースト効果に対する顕著な粒度の影響があった。微小球からの初期の医薬品流量は粒度が増大するにつれて低下し、初期のバースト相が主に微小球表面積に左右されることが示された。
【００６３】
実施例１４
４−アーム  ＰＥＧ架橋剤を用いて製造したアルブミンポリマープラグからのセファゾリンの放出
３０％アルブミン溶液（手順Ｂ）０．５ｍｌと、１１０ｍｇ／ｍｌのポリ（エチレングリコール）−スクシネート架橋剤の４−アーム−Ｎ−ヒドロキシスクシンイミジルエステル（アラバマ州ハンツビルのＳｈｅａｒｗａｔｅｒ  Ｐｏｌｙｍｅｒｓ，Ｉｎｃ．）０．５ｍｌから、２個のポリマープラグを予備成形した。架橋剤を添加してシリンダー状プラグを形成する前に、およそ１０ｍｇのナトリウムセファゾリン（ミズーリ州セントルイスのＳｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏ．）をアルブミン中に溶解した。各形成プラグを別々のバイアルに入れて、ｐＨ７．４のリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）８ｍｌをサンプル時間（ｔ0）時に添加した。バイアルを室温に保持して絶え間なく振盪した。各サンプル時間毎にバイアルの全内容物を取り出して、８ｍｌの新鮮なＰＢＳと入れ替えた。サンプルを０．２５時間、０．５時間、１時間、２時間、３時間、４時間、５時間、および２４時間目に採取した。それ以降は１４４時間目まで、およそ２４時間毎にサンプルを採取した。図１１のデータは、最初の５時間でおよそ６７％のセファゾリンが、１４４時間で全セファゾリンの９５．６％が放出されることを示す。
【００６４】
ＬｉａｎｇらのＪ．Ｃｈｒｏｍａｔｏｇ．Ｂ．、６５６、４５〜４６５ページ（１９９４年）の方法に従って、高圧液体クロマトグラフィーによってセファゾリンを分析した。カラムはＭＩＣＲＯＢＯＮＤＡＰＡＫの商品名の下に市販されるＷａｔｅｒｓ  Ｃ−１８（３．９×３００ｍｍ）カラムであり、カラム温度を２５℃に保った。移動相は０．０２Ｍのリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ＝５．０）およびメタノール（７７：２３）から構成された。検出に使用した波長は２７０ｎｍであり、カラム流速は１．０ｍｌ／分であった。
【００６５】
実施例１５
生分解性の予備成形されたアルブミンビーズからのＴＧＦ−β１放出
以下のバリエーションで実施例６で述べた方法に従って、ビーズを調製した。実施例６で述べたのと全く同じようにして２個のビーズを調製し、それらの水和した形態（ビーズＮＳ１およびＮＳ２）で使用した。実施例６で述べたのと全く同じようにして２個のビーズを調製し、脱水して水中で再水和した（ビーズＮＳ３およびＮＳ４）。実施例６のパートＢに３．７５μｇ／ｍｌヒト組換えトランスフォーミング増殖因子β１（ＴＧＦ−β１、メリーランド州ロックビルのＧｉｂｃｏ  ＢＲＬ）２０μｌを加えて２個のビーズを調製し、ビーズあたり２５ｎｇのＴＧＦ−β１の最終濃度を得て、それらの水和した形態で使用した（ビーズＮＳ５およびＮＳ６）。実施例６で述べたのと全く同じようにして２個のビーズを調製し、脱水して５０ｎｇ／ｍｌのＴＧＦ−β１溶液２ｍｌ中で４時間再水和した（４時間で２５％の取り込みが見られたので１００ｎｇの内２５ｎｇがＮＳ７およびＮＳ８の各ビーズに組み込まれた）。等張（０．０７５Ｍ）炭酸緩衝液（ｐＨ８．６６）中の２３％の滅菌アルブミン溶液（手順Ｂ）から成る実施例６のパートＡ、およびＰＥＧ（ＳＳ）2の６５ｍｇ／ｍｌ溶液から成るパートＢ（実施例１参照）から２個のビーズを調製し、滅菌水中で使用直前に戻した（ビーズＦＳ１およびＦＳ２）。等張（０．０７５Ｍ）炭酸緩衝液（ｐＨ８．６６）中の２３％の滅菌アルブミン溶液（手順Ｂ）から成る実施例６のパートＡ、およびＰＥＧ（ＳＳ）2の６５ｍｇ／ｍｌ溶液から成るパートＢ（実施例１参照）から２個のビーズを調製し、２０μｌの３．７５μｇ／ｍｌヒト組換えＴＧＦ−β１を添加した滅菌水中で使用直前に戻した（ビーズＦＳ３およびＦＳ４）。
【００６６】
１２ウェルペトリプレート（ペンシルベニア州ピッツバーグのＦｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）の個々のウェル内で、１０％ウシ胎児血清（バージニア州マナッサスのＡｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）およびペニシリン／ストレプトマイシン１００Ｕ／ｍｌ（メリーランド州ロックビルのＧｉｂｃｏ  ＢＲＬ）を含有する４ｍｌの修正Ｅａｇｌｅ’ｓ  Ｍｉｎｉｍｕｍ  Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  Ｃｅｌｌ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｍｅｄｉｕｍ（バージニア州マナッサスのＡｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）に全てのビーズを入れた。試験の実施期間中、プレートを細胞培養器（３７℃、５％のＣＯ2）に入れた。サンプルを経時的に（ｔ＝０から開始）採取して、ビーズが完全に分解するまで各時点で培養液の全容積を置き換えた。各時点の培養液はクリオバイアルに収集して、−２０℃で貯蔵した。採取時点は、ＮＳビーズでは０時間、２４時間、４８時間、７２時間、９６時間、１２０時間、１４４時間、１６８時間、１９２時間、２１６時間、２４０時間、２６４時間、２８９時間、および３３０時間であり、ＦＳビーズでは、０時間、２４時間、４８時間、７２時間、９６時間、および１２０時間であった。
【００６７】
次にＴＧＦ−β１濃度を求めるための酵素結合抗体免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）（ヒトＴＧＦ−β１用ＱＵＡＮＴＩＫＩＮＥ、ミネソタ州ミネアポリスのＲ  ＆  Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓ）で、製造元の取扱説明書に従って培養液の全サンプルをアッセイした。測定されたＴＧＦ−β１は活性形態で販売され、培養中の細胞が生成したものではなかったので、サンプルは活性化を必要としなかった。ビーズの製造で使用したのと同一供給元のＴＧＦ−β１を用いて別に用量反応曲線を生成し、この後者の用量反応曲線に従って結果を計算した。
【００６８】
図１２の結果は、ビーズ（ＮＳ７、ＮＳ８）の再水和に使用される溶液に増殖因子を組み込むことで、組み込まれた増殖因子の４０％までが２〜６日中に放出されることを示す。架橋剤（ＮＳ５、ＮＳ６、ＦＳ３、ＦＳ４）へのＴＧＦ−β１の組み込みは、ビーズからの顕著な量のＴＧＦ放出をもたらさなかった。対照ビーズ（ＴＧＦ−β１を含まないＮＳ１、ＮＳ２、ＮＳ３、ＮＳ４、ＦＳ１、ＦＳ２）を試験したところ、アッセイを妨害しなかった。
【００６９】
前出の記述が例証のみを目的とするものであり、発明の範囲を逸脱することなく様々な実施態様が想定されるできることは、当業者によって容易に理解される。
本願発明に関連する発明の実施形態を以下に列挙する。
［実施形態１］  式、
Ｉ−（−Ｘ−ＬＭ−Ｇ）n
（式中、
Ｘは二官能性ポリオキシエチレン鎖部分または結合であり、
ＬＭは式、−Ｃ（Ｏ）−、−（ＣＨ2）bＣ（Ｏ）−（式中、ｂは１〜５の整数である。）、−Ｃ（Ｏ）−（ＣＨ2）c−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｃは２〜１０の整数であり、ラジカルの脂肪族部分は飽和または不飽和でも良い。）、−Ｃ（Ｏ）−Ｏ−（ＣＨ2）d−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｄは２〜１０の整数であり、あるいは式、−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−、−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−（ＣＨ2）c−Ｃ（Ｏ）−、または−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−Ｏ−（ＣＨ2）d−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｃは２〜１０の整数であり、ｄは２〜１０の整数であり、Ｒは１〜１０個のモノマーラクチド、グリコリド、炭酸トリメチレン、カプロラクトンまたはｐ−ジオキサノン断片を有するポリマーまたはコポリマーである。）によって表されるオリゴマージラジカルである。）によって表される二官能性結合部分であり、
ＧはＮ−オキシスクシンイミジル、Ｎ−オキシマレイミジル、Ｎ−オキシフタルイミジル、ニトロフェノキシル、Ｎ−オキシイミダゾリル、およびトレシルの群より選択される脱離基であり、
Ｉは多求核性化合物から誘導される多官能性結合部分であり、
ｎは２〜１０の整数であるが、
ただしＸが二官能性ポリオキシエチレン鎖部分の場合、−Ｘ−Ｉ−Ｘ−は、式、
−Ｏ−（ＣＨ2−ＣＨ2−Ｏ−）a−
（式中、ａは２０〜３００の整数である。）によって表されるジラジカル断片であるＰＥＧである。）
の架橋剤を有する、少なくとも部分的に脱溶媒和された架橋されたアルブミンである、活性薬剤をサブジェクトにデリバリするための予備成形されたオブジェクト。
［実施形態２］  架橋されたタンパク質が架橋された血清アルブミンを含む、実施形態１に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態３］  架橋された血清アルブミンが架橋されたヒト血清アルブミンを含む、実施形態２に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態４］  ＧがＮ−オキシスクシンイミジルである、実施形態１に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態５］  組み込まれた活性薬剤をさらに含む、実施形態１に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態６］  活性薬剤が、抗菌剤、増殖因子、抗ガン剤、局所麻酔薬、防腐薬、ホルモン、抗ウイルス剤、麻薬拮抗薬、免疫反応調節剤、目薬、ワクチン、それらの代謝前駆体、およびそれらの混合物から選択される、実施形態１に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態７］  二次生分解性ポリマーマトリックス内に分散した、実施形態１に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態８］  シート、ボール、ビーズ、球体、プラグ、繊維、リボン、またはウェッジの形態である、実施形態１に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態９］  約１ｍｍを越える直径を有するビーズの形態である、実施形態１に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態１０］  約１μｍから約１０００μｍの直径を有する微小球の形態である、実施形態１に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態１１］  式、
Ｉ−（−Ｘ−ＬＭ−Ｇ）n
（式中、
Ｘは二官能性ポリオキシエチレン鎖部分または結合であり、
ＬＭは、式、−Ｃ（Ｏ）−、−（ＣＨ2）bＣ（Ｏ）−（式中、ｂは１〜５の整数である。）−Ｃ（Ｏ）−（ＣＨ2）c−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｃは２〜１０の整数であり、ラジカルの脂肪族部分は飽和でも不飽和でも良い。）、−Ｃ（Ｏ）−Ｏ−（ＣＨ2）d−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｄは２〜１０の整数であり、あるいは式、−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−、−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−（ＣＨ2）c−Ｃ（Ｏ）−、または−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−Ｏ−（ＣＨ2）d−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｃは２〜１０の整数であり、ｄは２〜１０の整数であり、Ｒは１〜１０個のモノマーラクチド、グリコリド、炭酸トリメチレン、カプロラクトンまたはｐ−ジオキサノンの断片を有するポリマーまたはコポリマーである。）によって表されるオリゴマージラジカルである。）によって表される二官能性結合部分であり、
ＧはＮ−オキシスクシンイミジル、Ｎ−オキシマレイミジル、Ｎ−オキシフタルイミジル、ニトロフェノキシル、Ｎ−オキシイミダゾリル、およびトレシルの群より選択される脱離基であり、
Ｉは多求核性化合物から誘導される多官能性結合部分であり、
ｎは２〜１０の整数であるが、
ただしＸが二官能性ポリオキシエチレン鎖部分の場合、−Ｘ−Ｉ−Ｘ−は、式、
−Ｏ−（ＣＨ2−ＣＨ2−Ｏ−）a−
（式中、ａは２０〜３００の整数である。）によって表されるジラジカル断片であるＰＥＧである。）
の架橋剤を有する架橋されたタンパク質内に分散した活性薬剤を含む、活性薬剤をサブジェクトにデリバリするための予備成形されたオブジェクト。
［実施形態１２］  架橋されたタンパク質が架橋された血清アルブミンを含む、実施形態１１に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態１３］  架橋された血清アルブミンが架橋されたヒト血清アルブミンを含む、実施形態１２に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態１４］  ＧがＮ−オキシスクシンイミジルである、実施形態１１に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態１５］  少なくとも部分的に脱水された、実施形態１１に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態１６］  活性薬剤が抗菌剤、増殖因子、抗ガン剤、局所麻酔薬、防腐薬、ホルモン、抗ウイルス剤、麻薬拮抗薬、免疫反応調節剤、目薬、ワクチン、それらの代謝前駆体、およびそれらの混合物から選択される、実施形態１１に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態１７］  二次生分解性ポリマーマトリックス中に分散した、実施形態１１に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態１８］  シート、ボール、ビーズ、球体、プラグ、繊維、リボン、またはウェッジの形態である、実施形態１１に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態１９］  約１ｍｍを越える直径を有するビーズの形態である、実施形態１１に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態２０］  直径約１μｍ〜約１０００μｍの微小球の形態である、実施形態１１に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態２１］  少なくとも部分的に脱水されたボール形のオブジェクトである、実施形態１１に記載の予備成形されたオブジェクト。
［実施形態２２］  タンパク質を含む第１の水性混合物を提供するステップと、
式、
Ｉ−（−Ｘ−ＬＭ−Ｇ）n
（式中、
Ｘは二官能性ポリオキシエチレン鎖部分または結合であり、
ＬＭは式、−Ｃ（Ｏ）−、−（ＣＨ2）bＣ（Ｏ）−（式中、ｂは１〜５の整数である。）、−Ｃ（Ｏ）−（ＣＨ2）c−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｃは２〜１０の整数であり、ラジカルの脂肪族部分は飽和または不飽和でも良い。）、−Ｃ（Ｏ）−Ｏ−（ＣＨ2）d−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｄは２〜１０の整数であり、あるいは式、−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−、−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−（ＣＨ2）c−Ｃ（Ｏ）−、または−Ｒ−Ｃ（Ｏ）−Ｏ−（ＣＨ2）d−Ｏ−Ｃ（Ｏ）−（式中、ｃは２〜１０の整数であり、ｄは２〜１０の整数であり、Ｒは１〜１０個のモノマーラクチド、グリコリド、炭酸トリメチレン、カプロラクトンまたはｐ−ジオキサノン断片を有するポリマーまたはコポリマーである。）によって表されるオリゴマージラジカルである。）によって表される二官能性結合部分であり、
ＧはＮ−オキシスクシンイミジル、Ｎ−オキシマレイミジル、Ｎ−オキシフタルイミジル、ニトロフェノキシル、Ｎ−オキシイミダゾリル、およびトレシルの群より選択される脱離基であり、
Ｉは多求核性化合物から誘導される多官能性結合部分であり、
ｎは２〜１０の整数であるが、
ただし、Ｘが二官能性ポリオキシエチレン鎖部分である場合、−Ｘ−Ｉ−Ｘ−は、式、
−Ｏ−（ＣＨ2−ＣＨ2−Ｏ−）a−
（式中、ａは２０〜３００の整数である。）によって表されるジラジカル断片であるＰＥＧである。）
の架橋剤を含む第２の水性混合物を提供するステップと、
第１および第２の水性混合物を混合して物品を形成するステップと、
物品をタンパク質と架橋剤との架橋に有効な条件に曝すステップと、からなる
薬剤をデリバリするための予備成形されたオブジェクトを形成する方法。
［実施形態２３］  サブジェクトを実施形態５に記載の予備成形されたオブジェクトに接触させるステップを含む、活性薬剤をサブジェクトにデリバリする方法。
［実施形態２４］  接触させるステップが、予備成形されたオブジェクトをサブジェクトに体内埋植するステップを含む、実施形態２３に記載の方法。
［実施形態２５］  接触させるステップが、複数の予備成形されたオブジェクトをサブジェクト内の組織空隙に詰めるステップを含む、実施形態２３に記載の方法。
［実施形態２６］  サブジェクトを実施形態１１に記載の予備成形されたオブジェクトに接触させるステップを含む、活性薬剤をサブジェクトにデリバリする方法。
［実施形態２７］  接触させるステップが、予備成形されたオブジェクトをサブジェクトに体内埋植するステップを含む、実施形態２６に記載の方法。
［実施形態２８］  接触させるステップが、複数の予備成形されたオブジェクトをサブジェクト内の組織空隙に詰めるステップを含む、実施形態２６に記載の方法。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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