(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
好塩性乳酸菌であって、Th1型サイトカインであるインターロイキン−１２（IL-12）及びインターフェロン−γ（IFN−γ）の産生誘導能を有し、且つIgEの産生抑制能を有する乳酸菌であり、
前記乳酸菌が、味噌の醸造工程から単離されたテトラジェノコッカス・ハロフィラス（Tetragenococcus halophilus）であり、受託番号FERM P-21804の乳酸菌であることを特徴とする乳酸菌。
【請求項２】
前記乳酸菌が、アトピー性皮膚炎に対する抗アレルギー効果を有することを特徴とする請求項１に記載の乳酸菌。
【請求項３】
Th1型サイトカインであるインターロイキン−１２（IL-12）及びインターフェロン−γ（IFN-γ）の産生誘導能を有し、且つIgEの産生抑制能を有する好塩性乳酸菌を、NaCl濃度が１．６〜１５重量％の培地で培養する乳酸菌の培養方法であり、
前記好塩性乳酸菌として、味噌の醸造工程から単離したテトラジェノコッカス・ハロフィラス（Tetragenococcus halophilus）であり、受託番号FERM P-21804の乳酸菌を用いることを特徴とする乳酸菌の培養方法。
【請求項４】
前記好塩性乳酸菌が、アトピー性皮膚炎に対する抗アレルギー効果を有することを特徴とする請求項３に記載の乳酸菌の培養方法。
【請求項５】
好塩性乳酸菌であって、Th1型サイトカインであるインターロイキン−１２（IL-12）及びインターフェロン−γ（IFN-γ）の産生誘導能を有し、且つIgEの産生抑制能を有する乳酸菌を含有し、
前記乳酸菌が、味噌の醸造工程から単離されたテトラジェノコッカス・ハロフィラス（Tetragenococcus halophilus）であり、受託番号FERM P-21804の乳酸菌であることを特徴とする抗アレルギー剤。
【請求項６】
前記抗アレルギー剤が、アトピー性皮膚炎に対する効果を有することを特徴とする請求項５に記載のアレルギー剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は乳酸菌及びその培養方法、抗アレルギー剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
花粉アレルギー（花粉症）等の環境アレルギーは、IgE抗体の過剰生産が原因とされている。かかるIgE抗体の過剰生産を抑制するには、Th1細胞を活性化し、Th2細胞の活性を抑制することが大切である（例えば、下記特許文献１参照）。
この様に、Th1細胞を活性化し、Th2細胞の活性を抑制できるものとして、下記特許文献１には、大豆を低食塩又は無塩の状態で真菌、酵母及び乳酸菌のいずれか１以上により発酵させた大豆発酵物を含有する抗アレルギー剤が提案されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特開２００７−１９７３３３号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
特許文献１に提案された大豆発酵物を摂取することによって、Th1細胞を活性化でき、且つTh2細胞の活性を抑制できることが期待される。
しかし、かかる大豆発酵物を短時間で得るには、酵母による大豆の発酵が必要であって、乳酸菌のみによる大豆の発酵では極めて長時間の発酵時間を必要とする。
また、大豆発酵物を含有する抗アレルギー剤中には、大豆発酵物を約２４重量％も含むことを要し、食品として摂取するには大豆発酵物が過多である。
そこで、本発明者は、酵母による発酵を必要とする大豆発酵物の配合量を多くせざるを得ない従来の抗アレルギー剤の課題を解決し、少量でTh1細胞を活性化でき、且つTh2細胞の活性を抑制できる抗アレルギー剤を得ることが可能な乳酸菌及びその培養方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００５】
本発明者等は、前記課題を解決すべく検討を重ねたところ、味噌の醸造工程から単離され、所定の食塩濃度の培地で培養できる好塩性乳酸菌であって、インターロイキン−１２（IL-12）及びインターフェロン−γ（IFN-γ）の産生誘導能を有する乳酸菌を用いることによって、Th1細胞を活性化し、且つTh2細胞の活性を抑制できる抗アレルギー剤を得ることができることを見出した。
すなわち、本発明の乳酸菌は次の構成を備える。好塩性乳酸菌であって、Th1型サイトカインであるインターロイキン−１２（IL-12）及びインターフェロン−γ（IFN−γ）の産生誘導能を有し、且つIgEの産生抑制能を有する乳酸菌であり、前記乳酸菌が、味噌の醸造工程から単離されたテトラジェノコッカス・ハロフィラス（Tetragenococcus halophilus）であり、受託番号FERM P-21804の乳酸菌であることを特徴とする。
本発明の乳酸菌の培養方法は次の構成を備える。Th1型サイトカインであるインターロイキン−１２（IL-12）及びインターフェロン−γ（IFN-γ）の産生誘導能を有し、且つIgEの産生抑制能を有する好塩性乳酸菌を、NaCl濃度が１．６〜１５重量％の培地で培養する乳酸菌の培養方法であり、前記好塩性乳酸菌として、味噌の醸造工程から単離したテトラジェノコッカス・ハロフィラス（Tetragenococcus halophilus）であり、受託番号FERM P-21804の乳酸菌を用いることを特徴とする。
本発明の抗アレルギー剤は次の構成を備える。好塩性乳酸菌であって、Th1型サイトカインであるインターロイキン−１２（IL-12）及びインターフェロン−γ（IFN-γ）の産生誘導能を有し、且つIgEの産生抑制能を有する乳酸菌を含有し、前記乳酸菌が、味噌の醸造工程から単離されたテトラジェノコッカス・ハロフィラス（Tetragenococcus halophilus）であり、受託番号FERM P-21804の乳酸菌であることを特徴とする。
また、本発明において、前記乳酸菌が、アトピー性皮膚炎に対する効果を有することが好ましい。
【発明の効果】
【０００６】
本発明者等が提供した、好塩性乳酸菌によれば、酵母による大豆発酵を行うことなく乳酸菌の培養のみによって、Th1型サイトカインであるIL-12及びIFN-γの産生を行うことができる。
かかる乳酸菌を含有する抗アレルギー剤によって、産生されたIL-12によりTh1細胞の活性化が促され、且つTh1細胞から産生されるIFN-γによってTh2細胞の活性が抑制される。
このため、アレルギー物質によって、Th2細胞側に偏っていたTh1／Th2バランスを、好塩性乳酸菌を含有する抗アレルギー剤によってTh1／Th2バランスを改善できる結果、IgEの産生抑制能を図ることができる。
【図面の簡単な説明】
【０００７】
【図１】味噌由来乳酸菌１００株の各々について、IL-12の産生誘導能の測定した結果を示すグラフである。
【図２】味噌由来乳酸菌１００株の各々について、IFN-γの産生誘導能を測定した結果を示すグラフである。
【図３】アトピー性皮膚炎モデルマウスのパイエル板細胞を用いた選抜株のIL-12及びIFN-γの産生誘導能を測定した結果を示すグラフである。
【図４】アトピー性皮膚炎モデルマウスのパイエル板細胞を用いた選抜株のIL-4の産生抑制能を測定した結果を示すグラフである。
【図５】アトピー性皮膚炎モデルマウスのパイエル板細胞を用いた選抜株のTh1／Th2バランス及びIgEの産生抑制能を測定した結果を示すグラフである。
【図６】No.４５の菌株の増殖性と培地のNaCl濃度との関係を示すグラフである。
【図７】No.４５の菌株の培養NaCl濃度に対する普通マウスのパイエル板細胞を用いたIL-12及びIFN-γの産生誘導能を測定した結果を示すグラフである。
【図８】OVA誘導性下痢症モデルマウスのパイエル板細胞を用いたNo.４５の菌株のIL-12及びIFN-γの産生誘導能を測定した結果を示すグラフである。
【図９】OVA誘導性下痢症モデルマウスのパイエル板細胞を用いたNo.４５の菌株のIL-4の産生抑制能を測定した結果を示すグラフである。
【図１０】OVA誘導性下痢症モデルマウスのパイエル板細胞を用いたNo.４５の菌株のTh1／Th2バランス及びIgEの産生抑制能を測定した結果を示すグラフである。
【図１１】OVA誘導性下痢症モデルマウスの脾臓細胞を用いたNo.４５の菌株のIL-12及びIFN-γの産生誘導能を測定した結果を示すグラフである。
【図１２】OVA誘導性下痢症モデルマウスの脾臓細胞を用いたNo.４５の菌株のIL-4の産生抑制能を測定した結果を示すグラフである。
【図１３】OVA誘導性下痢症モデルマウスの脾臓細胞を用いたNo.４５の菌株のTh1／Th2バランス及びIgEの産生抑制能を測定した結果を示すグラフである。
【図１４】アトピー性皮膚炎モデルマウス（NC／Nga）に、No.４５の菌株を培養した菌体を含有する餌を与えることによる、抗アレルギー効果を調査する実験計画を示す。
【図１５】アトピー性皮膚炎モデルマウス（NC／Nga）の耳介に人工的に発症させたアトピー性皮膚炎の状態を肉眼観察して数値化したスコアの経時変化を示すグラフである。
【図１６】アトピー性皮膚炎モデルマウス（NC／Nga）の耳介に人工的にアトピー性皮膚炎を発症させて、その耳介の厚さの経時変化を示すグラフである。
【図１７】アトピー性皮膚炎モデルマウス（NC／Nga）の耳介に人工的にアトピー性皮膚炎を発症させて、その血清中のIgE量の経時変化を示すグラフである。
【図１８】アトピー性皮膚炎モデルマウス（NC／Nga）の耳介に人工的にアトピー性皮膚炎を発症させて、その耳介の病理標本の顕微鏡写真である。
【発明を実施するための形態】
【０００８】
本発明者等が提案した乳酸菌は、食塩を添加した培地で培養できる好塩性乳酸菌である。特に、味噌の醸造工程で単離された乳酸菌は、食品である味噌にも含まれているため、人体に対して安全である。
味噌の醸造工程で単離された好塩性乳酸菌の１００株について、普通マウス（BALB／c）のパイエル板細胞におけるサイトカイン（IL-12、IFN-γ）及び抗体としてのIgA産生誘導能を調査した。
ここで、好塩性乳酸菌の培養、細胞培養、抗体（IgE）、サイトカイン（IL-12、IFN-γ、IL-14）の測定については、下記の方法を用いた。
好塩性乳酸菌の培養には、NaCl含有MRS液体培地を用いた。MRS培地は、D-(+)-Glucose（ナカライテスク）２ｇ、Peptone（ミクニ化学）１０ｇ、Lab-Lemco powder（関東化学）０．８ｇ、Extract Yeast Dried（ナカライテスク）０．４ｇ、KH2PO4（ナカライテスク）０．２ｇ、tri-Ammonium Citrate（ナカライテスク）０．２ｇ、MgSO4・7H2O（ナカライテスク）０．０２ｇ、Sodium Acetate・3H2O（ナカライテスク）０．５ｇ、MnSO4・4H2O（ナカライテスク）０．００５ｇ、Tween80（ナカライテスク）０．１ｍｌを蒸留水（D.W.）１００ｍｌに溶解後、１２１℃、１５ｍｉｎ、オートクレーブにて高圧蒸気滅菌し使用した。特に記載しない限り、MRS液体培地にNaCl（ナカライテスク）を１５％添加して使用した。
各菌株はNaCl含有MRS液体培地中で３０℃にて培養した後、２０００ｒｐｍ・１５ｍｉｎ遠心分離を行い集菌した。D.W.で３回洗浄し、D.W.に懸濁した後、凍結乾燥菌体を作成し、４℃で保存した。
凍結乾燥菌体はリン酸緩衝液（PBS）ｐＨ６．８で２ｍｇ／ｍｌとなるように懸濁し、１２１℃、１５分間オートクレーブで滅菌処理を施した後、細胞培養系に添加した。
【０００９】
また、細胞培養としてのパイエル板細胞については、マウスパイエル板細胞を用いた。かかるパイエル板細胞の調整及び培養にはJoklik modified MEM（J.MEM）（SIGMA）、Dispase1. 10units／ｍｇ（GIBCO）をJ.MEMで１ｍｇ／ｍｌに調整したDispase液、RPMI-1640培地、１％Antibiotic antimycotic solution 100×（SIGMA）及び５％非動化ウシ胎児血清（BIOWEST）（FBS）を含むRPMI-1640培地（SIGMA）（1%Ab・5%FBS RPMI）を用いた。パイエル板細胞は、マウス小腸よりパイエル板を無菌的に摘出し、J.MEMにて洗浄した。Dispase液とパイエル板を４０分間反応させ、その上清を回収し氷冷する行程を３〜４回繰り返した。1%Ab・5%FBS RPMIで２回遠心洗浄（１３００ｒｐｍ・１０分間）し、懸濁したものを単細胞浮遊液とした。
【００１０】
各菌株についてのサイトカイン（IL-12、IFN-γ、IL-4）及び抗体（IgE）の産生誘導能は、96 wellマイクロプレート（FALCON）を用いて、パイエル板細胞の単細胞浮遊液に、前述したように滅菌処理を施した菌体を添加して培養し、その培養上清中のサイトカイン（IL-12、IFN-γ、IL-4）量及び抗体（IgE）量を測定した。
培養は、５×１０5個／wellのパイエル板細胞の細胞浮遊液１００μｌに対し、抗体（IgE）の産生誘導能については菌体２００μｇ／ｍｌを１００μｌ、サイトカイン（IL-12、IFN-γ、IL-4）の産生誘導能は菌体２μｇ／ｍｌを１００μｌ添加し、３７℃、５％CO2の下で培養した。培養３日目に上清中のサイトカイン（IL-12、IFN-γ、IL-4）量を測定し、１４日目にIgE抗体量を測定した。
【００１１】
培養上清中の抗体（IgE）及びサイトカイン（IL-12、IFN-γ、IL-4）は、下記の方法で測定した。
培養上清中のIgE量は、サンドイッチELISA法により測定した。１次抗体として、Purified Rat Anti-Mouse IgE Monoclonal Antibody（BD BIOSCIENCES）を、スタンダードとして、Purified Mouse IgE, κMonoclonal（BD BIOSCIENCES）、２次抗体として、LO-ME-2 Biotin（TECHOPHARM BIOTECHNOLOGY）を用いた。
１次抗体を96 well Immuno Plate（NUNC）に４℃で一晩固層に吸着させ、１％BSA含有Carbonate Buffer（Na2CO3  １９ｍＭ、NaHCO3  ２７．７ｍＭ、ｐＨ９．６）で３７℃９０分間ブロッキングを行った。サンプル及びスタンダードを室温で９０分間反応させ、更にStreptavidin-Horseradish Peroxidase（BIOSOURCE）を遮光条件下室温にて、３０分間反応させた。
発色基質3,3',5,5'-Tetramethylbenzidine（TMB）（SIGMA）を用い発色させた後、マイクロプレートリーダーを用い、４５０ｎｍにおける吸光度を測定した。
【００１２】
培養上清中のIL-12、IFN-γ及びIL-4は、サンドイッチELISA法により測定した。
IL-12は１次抗体としてPurified Rat Anti-Mouse IL-12（p40／p70）Monoclonal（BD BIOSCIENCES）を、２次抗体として、Biotinylated Rat Anti-Mouse IL-12（p40／p70）Monoclonal Antibody（BD BIOSCIENCES）を、スタンダードとしてRecombinant Mouse IL-12（TECHNE CORPORATION）を用いた。
IFN-γは、１次抗体としてRabbit（Polyclonal）Anti-Mouse／Anti-Mouse／Rat IFN-γ（BIOSOURCE）を、２次抗体はBiotinylated Rat Anti-Mouse IFN-γ Antibody（R&D Systems）を、スタンダードとして、Recombinant Murine IFN-γ（BIOSOURCE）を用いた。
IL-4は１次抗体にMonoclonal Antibody Mouse IL-4（MABTEC）、２次抗体にBiotine Conjugated Antibody Mouse IL-4 Monoclonal（MABTEC）を用い、スタンダードとして、Recombinant Murine IL-4（STRATHMANN BIOTEC）を用いた。
かかるIL-12、IFN-γ及びIL-4の測定は、所定の１次抗体を96 well Immuno Plate（NUNC）に４℃で一晩固層に吸着させ、１％BSA含有Carbonate Bufferで３７℃９０分間ブロッキングを行った。サンプル及びスタンダードを室温で９０分間反応させ、更にStreptavidin-Horseradish Peroxidase（BIOSOURCE）を遮光条件下室温にて、３０分間反応させた。発色基質TMBを用い発色させた後、マイクロプレートリーダーを用い、４９０ｎｍにおける吸光度を測定した。
【００１３】
味噌の醸造工程で単離された好塩性乳酸菌の１００株の各々について、前述したように滅菌処理を施した菌体を通常マウス（BAL／c）のパイエル板細胞の細胞浮遊液に添加して培養し、サイトカイン（IL-12、IFN-γ）の産生誘導能を調査した。その結果を図１及び図２に示す。
図１ではIL-12の産生誘導能の調査結果を示し、図２ではIFN-γの産生誘導能の調査結果を示す。図１及び図２に示すコントロール（CONT）は、単細胞浮遊液に菌体を添加しないで、菌体を添加した水準と同一条件で培養したものである。
図１及び図２に示す様に、味噌の醸造工程で単離された好塩性乳酸菌の１００株の殆どは、サイトカイン（IL-12、IFN-γ）の産生誘導能がコントロールよりも良好であった。
かかる図１及び図２に示す１００株のうち、サイトカイン（IL-12、IFN-γ）の産生誘導能に優れている菌株は、Th1細胞を活性化する菌株である。従って、図１及び図２に示す１００株のうち、IL-12及びIFN-γの産生誘導能が高い菌株を選択して下記表１に示す。
【００１４】
【表１】
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【００１５】
表１に示す菌株のうち、IL-12及びIFN-γの産生誘導能が特に優れているNo.５、No.４２、No.４５及びNo.７４の菌株を選抜し、アトピー性皮膚炎モデルマウスNC／Ngaマウスを用いた免疫調節作用に関する試験に供した。
ここで、アトピー性皮膚炎モデルマウスは、「ビオスタAD（ダニ抗原）によるアトピー性皮膚炎モデルマウス誘発プロトコール」従って作製した。
NC／Ngaマウスは１０週齢になったところでエーテル麻酔をし、背部及び耳介部の毛を刈り、除毛剤で除毛した。そして、ダニ抗原であるビオスタAD（ビオスタ）１００ｍｇを背部・耳介部に塗布し、アトピー性皮膚炎の初回誘発を行った。
２回目以降は、４％SDS水溶液１５０μｌを背部と耳介部に均一に塗布し、乾燥させて２〜３時間放置した後、ビオスタAD１００ｍｇを背部及び耳介部に塗布した。この処理を、週に２回４週間、計８回行い、アトピー性皮膚炎を誘発した。
血中IgE値の確認をするために、ダニ抗原処理前日に、毎回尾静脈から採血を行い、その血清を−４℃で冷凍保存した。また、皮膚スコアのスコアリングをダニ抗原塗布直前に行い、（ｉ）発赤・出血、（ｉｉ）乾燥・痂皮形成、（ｉｉｉ）浮腫、（ｉｖ）擦傷・組織欠損の４項目を１０段階で表記した。血中IgEの値が１５００ｎｇ／ｍｌを超えたことを確認し、アトピー性皮膚炎モデルマウスとして用いた。
【００１６】
かかるアトピー性皮膚炎モデルマウスNC／Ngaマウスから取り出したパイエル板細胞の細胞浮遊液に、No.５、No.４２、No.４５及びNo.７４の菌株（但し、前述したように滅菌処理を施した菌体）の各々を添加して培養し、サイトカイン（IL-12、IFN-γ、IL-4）の産生量及びIgEの産生抑制能を調査した。
ここで、各菌株のサイトカイン（IL-12、IFN-γ、IL-4）の産生量及びIgE産生抑制能について、コントロールと各種菌株間及び各種菌株同士間の差の検定には、スチューデントのＴ検定を用いた。どの検定においても、ｐ＜０．０５の場合に有意差があると判定し、＊で表記し、ｐ＜０．０１、ｐ＜０．００１の場合には、非常に有意差があると判断し、各々＊＊及び＊＊＊で表記した。
パイエル板細胞を用いた各菌株のIL-12の産生誘導能を図３Ａに示し、IFN-γの産生誘導能を図３Ｂに示す。また、パイエル板細胞を用いた各菌株のTh2細胞の増殖を促すIL-4の産生抑制能を図４に示す。
図３から明らかな様に、IL-12及びIFN-γの産生量が、コントロールに対して共に有意に増加しているのは、No.４２、No.４５の菌株である。
一方、IL-4の産生量については、図４から明らかな様に、No.４５の菌株のみがコントロールに対して有意に減少している。No.４２の菌株もNo.４５の菌株に次いでIL-4の産生量が減少している。
かかる菌株について、IFN-γとIL-4との各産生量から算出したTh1／Th2バランス（IFN-γ／IL-4）について図５Ａに示す。図５Ａから明らかな様に、No.４２とNo.４５との菌株が、Th1／Th2バランスの改善が見られた。
また、パイエル板細胞を用いた各菌株のIgEの産生量については、図５Ｂに示す様に、いずれの菌株もIgEの産生量がコントロールに対して減少傾向を示した。
【００１７】
この様に、Th1／Th2バランスの改善は、No.４５よりもNo.４２の菌株が最も良好であったが、IL-4の産生抑制効果はNo.４５のみがコントロールに対して有意であった。このため、No.４５の菌株を抗アレルギー作用が期待できる菌株として選抜した。
No.４５の菌株について、その帰属分類群の推定・菌株の同定を、株式会社テクノスルガ・ラボに依頼して行った。No.４５の菌株の同定は、１５％NaCl含有MRS液体培地で３０℃のもと、５日間培養した菌株の16SrRNA遺伝子塩基配列約１５００ｂｐを決定し、その配列を用いて行った。その結果、No.４５の菌株はテトラジェノコッカス・ハロフィラス（Tetragenococcus halophilus）であって、テトラジェノコッカス・ハロフィラス（Tetragenococcus halophilus）MKN45と命名した（以下、単にNo.４５の菌株又はNo.４５菌株と称する）。
このNo.４５の菌株は、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに寄託し、その受託番号はFERM P-21804である。
【００１８】
かかるNo.４５の菌株について培養条件である培地の塩分条件を検討した。菌体としては、No.４５の菌株をNaCl濃度が１．６ｗｔ％，５ｗｔ％，１０ｗｔ％，１５ｗｔ％，２０ｗｔ％，２５ｗｔ％の各MRS液体培地で７２時間培養した菌体を用い、各塩分濃度で培養した菌体を、前述した好塩乳酸菌用のNaCl含有MRS液体培地に接種して３０℃で培養を行った。培養中に所定時間ごとに、吸光度計を用いて吸光度（OD）６６０ｎｍを測定し、その増殖の測定を行った。その結果を図６に示す。
図６から明らかな様に、NaCl濃度が５ｗｔ％と１０ｗｔ％との水準が、増殖速度及び定常期における吸光度（OD）が最も高くなった。次いで、増殖速度及び定常期における吸光度（OD）が高くなった水準は、NaCl濃度が１．６ｗｔ％と１５ｗｔ％との水準であった。
更に、No.４５の菌株とをNaCl濃度が１．６ｗｔ％，５ｗｔ％，１０ｗｔ％，１５ｗｔ％の各MRS液体培地で７２時間培養した後、前述したように滅菌処理を施した菌体について、通常マウス（BAL／c）のパイエル板細胞を用いてサイトカイン（IL-12、IFN-γ）を測定した。その結果を図７に示す。図７ＡはIL-12の産生量を示し、図７ＢはIFN-γの産生量を示す。図７Ａ及び図７Ｂから明らかな様に、いずれの水準もコントロールよりもIL-12及びIFN-γの産生量が有意に増加している。特に、NaCl濃度が１５ｗｔ％のMRS液体培地を用いた水準では、NaCl濃度が１０ｗｔ％のMRS液体培地を用いた水準よりもIL-12及びIFN-γの産生量が有意に増加している。
かかる培養速度とIL-12及びIFN-γの産生量との関係から、No.４５の菌株の培養を、NaCl濃度が１．６〜１５重量％の培地で行うことによって、良好な培養速度で培養でき、培養して得られた菌体はIL-12及びIFN-γの優れた産生誘導能を呈する。
【００１９】
また、No.４５の菌株について、NaCl濃度が１５重量％の培地で培養した菌株について、培養時間と免疫調節作用との関係を検討した。
かかる免疫調整作用の検討では、卵白（OVA）誘因性下痢症モデルマウスのパイエル板細胞と脾臓細胞とを用いた。
OVA誘因性下痢症モデルマウス（OVA下痢症モデルマウス）は、Kweonらの方法をもとに一部改編して作製した。１ｍｇのOVA（SIGMA）を１００μｌのリン酸緩衝液ｐＨ６．８（PBS）に溶解し、１００μｌの完全Freundアジュバンド（CFA）（SIGMA）と混合エマルジョンを作成し、マウス皮下に免疫した。初回免疫から１週間後に再度OVAとCFAの混合エマルジョンを皮下免疫した。２回目の皮下免疫から２週間後よりOVA１０ｍｇを３００μｌのPBSに溶解し、週３回の間隔で胃ゾンデにて経口投与した。経口投与１時間後に下痢発症を観察した。下痢症の有無は、通常の糞便の形態をしていないものを軟便も含めて下痢と判断した。
かかるOVA誘因性下痢症モデルマウスからのパイエル板細胞の調整及び培養については、前述した方法と同一方法で行った。
また、OVA誘因性下痢症モデルマウスからの脾臓細胞の調整及び培養には、RPMI-1640培地、１％Antibiotic antimycotic solution 100×（SIGMA）及び５％非動化ウシ胎児血清（BIOWEST）（FBS）を含むRPMI-1640培地（SIGMA）（1%Ab・5%FBS RPMI）、赤血球溶血試薬（NH4Cl  １４４ｍＭ、トリス  １７ｍＭ、ｐＨ７．２）、Hanks' Balanced Salt Solution（HBSS）（SIGMA）を用いた。
脾臓細胞は、マウスより無菌的に脾臓を摘出した後、RPMI-1640培地中で５ｍｌシリンジのブランジャーの後ろ側を用いてすりつぶした。メッシュで脾臓細胞以外を取り除き、脾臓細胞はRPMI-1640培地で遠心洗浄（１３００ｒｐｍ・１０分間）した後、赤血球溶血試薬で赤血球を溶血除去した。HBSSで２回遠心洗浄し、1%Ab・5%FBS RPMIで懸濁したものを単細胞浮遊液とした。
【００２０】
かかるOVA誘因性下痢症モデルマウスから取り出したパイエル板細胞を用いて、No.４５の菌株について、サイトカイン（IL-12、IFN-γ、IL-4）の産生誘導能、Th1／Th2バランス、及びIgEの産生抑制能について調査した。
この調査では、No.４５の菌株をNaCl濃度が１５ｗｔ％のMRS液体培地に添加し、３０℃で４８時間、７２時間、１２０時間培養した後、前述したように滅菌処理を施した各菌体についてパイエル板細胞によるサイトカイン（IL-12、IFN-γ、IL-4）及び抗体（IgE）の産生量を測定した。
IL-12及びIFN-γの産生量については図８に示す。図８ＡはIL-12の産生量について示し、図８ＢはIFN-γの産生量について示す。図８Ａ及び図８Ｂから明らかな様に、培養した菌体は、いずれの水準でも、コントロールに対してIL-12及びIFN-γの産生量が有意に増加しており、IL-12及びIFN-γの産生誘導能に優れている。
また、IL-4の産生量について図９に示す。図９から明らかな様に、培養した菌体は、いずれの水準でも、コントロールに対してIL-4の産生抑制能は見られなかった。
しかし、図１０Ａに示す様に、培養した菌体は、いずれの水準でも、コントロールに対してTh1／Th2バランスの著しい改善効果を示している。このため、図１０Ｂに示す様に、培養した菌体は、いずれの水準でも、コントロールに対してIgEの産生量は有意に低下しており、優れたIgEの産生抑制能を有している。
【００２１】
更に、OVA誘因性下痢症モデルマウスから取り出した脾臓細胞を用いて、No.４５の菌株をについて、サイトカイン（IL-12、IFN-γ、IL-4）の産生量、Th1／Th2バランス及びIgEの産生量について調査した。
この調査では、No.４５の菌株をNaCl濃度が１５ｗｔ％のMRS液体培地に添加し、３０℃で４８時間、７２時間、１２０時間培養した後、前述したように滅菌処理を施した各菌体について、脾臓細胞によるサイトカイン（IL-12、IFN-γ、IL-4）及び抗体（IgE）の産生量を測定した。
IL-12及びIFN-γの産生量については図１１に示す。図１１ＡはIL-12の産生量を示し、図１１ＢはIFN-γの産生量を示す。図１１Ａ及び図１１Ｂから明らかな様に、培養した菌体は、いずれの水準でも、コントロールに対してIL-12及びIFN-γの産生量が有意に増加しており、IL-12及びIFN-γの産生誘導能に優れている。
また、IL-4の産生量について図１２に示す。図１２から明らかな様に、培養した菌体は、いずれの水準でも、コントロールに対してIL-4の産生量については有意の差が認められなかった。
しかし、図１３Ａに示す様に、培養した菌体は、いずれの水準でも、コントロールに対してTh1／Th2バランスの著しい改善効果を示している。このため、図１３Ｂに示す様に、培養した菌体は、いずれの水準でも、コントロールに対してIgEの産生量は有意に低下しており、優れたIgEの産生抑制能を有している。
【００２２】
図３〜図１３に示す結果から、No.４５の菌株やNo.４５の菌株を培養して得た菌体は、アトピー性皮膚炎モデルマウスのパイエル板細胞、及びOVA誘因性下痢症モデルマウスのパイエル板細胞及び脾臓細胞について、Th1型サイトカインであるIL-12及びIFN-γの産生誘導能を呈するが、IL-4の産生抑制能は見られなかった。しかし、Th1／Th2バランスが著しく改善されている。このため、No.４５の菌株やNo.４５の菌株を培養した菌体によってTh1細胞が活性化されたものと考えられる。
この様に、No.４５の菌株やNo.４５の菌株を培養した菌体によって、Th1／Th2バランスを著しく改善でき、IgEの産生抑制能を有している。
かかるNo.４５の菌株やNo.４５の菌株を培養した菌体を含有する抗アレルギー剤によれば、少量でTh1細胞を活性化でき、且つTh2細胞の活性を抑制し、Th1／Th2バランスを改善して、IgEの産生量を抑制できる。
【００２３】
次に、アトピー性皮膚炎モデルマウス（NC／Nga）に、No.４５の菌株を培養した菌体を含有する餌を与えて、抗アレルギー効果を調査した。
調査には、６週齢のアトピー性皮膚炎モデルマウス（NC／Nga）のオスを用い、No.４５の菌株を培養した菌体を含まない餌を与えるコントロール（CONT群）、No.４５の菌株を培養した菌体を０．０５ｗｔ％含有する餌を与える０．０５％群、及びNo.４５の菌株を培養した菌体を０．５ｗｔ％含有する餌を与える０．５％群の三群に分けた。かかる三群の各々には、モデルマウスを７匹ずつ用意した。
三群の各モデルマウスの耳には、図１４に示す様に、アトピー性皮膚炎を発症させる１％PiClを定期的に塗布しつつ、定期的に採血して血清中のIgE量を調査した。また、定期的に各モデルマウスの耳の皮膚状態を肉眼観察して、（ｉ）発赤・出血、（ｉｉ）浮腫、（ｉｉｉ）乾燥、（ｉｖ）皮膚欠損・脱毛、（ｖ）発疹の５項目の各々について０〜３点で採点し、５項目の合計点（スコア：０〜１５点）で各モデルマウスの耳の皮膚状態を数値化した。かかるスコアを付ける際に、マウスの耳介の厚さも測定した。
【００２４】
測定したスコア、耳介の厚さ及び血清中のIgE量の経時変化（７匹の平均値）については図１５〜図１７に示す。スコアの経時変化を図１５に示し、耳介の厚さの経時変化を図１６に示す。更に、血清中のIgE量の経時変化を図１７に示す。
図１５〜図１７に示すCONT群と０．０５％群及び０．５％群との差の検定には、スチューデントのＴ検定を用いた。どの検定においても、ｐ＜０．０５の場合に有意差があると判定し、＊で表記し、ｐ＜０．０１、ｐ＜０．００１の場合には、非常に有意差があると判断し、各々＊＊及び＊＊＊で表記した。
図１５〜図１７に示す様に、０．０５％群及び０．５％群は、CONT群に比較して、スコア、耳介の厚さ及び血清中のIgE量の経時に伴う増加が少なく、抗アレルギー効果が認められた。
また、各モデルマウスについて、採血開始日から８２日目に解剖に付して、各群のマウスの耳介の病理標本を採取した。各群の耳介の病理標本の顕微鏡写真を図１８に示す。CONT群の耳介は、皮膚炎によって肥大化していたが、０．０５％群及び０．５％群の耳介の肥大化は少なく、特に、０．５％群の耳介の肥大化が極めて少ない。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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