(57)【要約】  本発明は、骨組織を得るステップと、骨組織をボイルするステップと、コラーゲンを除去するために前記骨組織を処置するステップとを含む、移植可能な生体材料の調製方法に関する。本発明は、前記プロセスによって調製した移植可能な生体材料も提供する。
2008500094.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
移植可能な生体材料の調製方法であって、
ａ）骨組織を得るステップと、
ｂ）骨組織をボイルするステップと、
ｃ）コラーゲンを除去するために前記骨組織を処置するステップと
を含む方法。
【請求項２】
ステップ（ｃ）の処置後にＳＥＭ−ＥＤＸによってコラーゲンが検出されない、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記ボイルステップが水中で行われる、請求項１〜２に記載の方法。
【請求項４】
前記ボイルステップが蒸留水中で行われる、請求項１〜３に記載の方法。
【請求項５】
ボイル前に前記骨組織を洗浄するステップを含む、請求項１〜４に記載の方法。
【請求項６】
前記骨組織が、機械的に、空気でまたは液体を用いて洗浄される、請求項５に記載の方法。
【請求項７】
前記骨組織が水で洗浄される、請求項５〜６に記載の方法。
【請求項８】
ステップｃ）が、コラーゲンを融解および変性させるために前記骨組織を２００〜２５０℃で処置するステップと、コラーゲンを溶解するための溶媒でさらに処置するステップとを含む、請求項１〜７に記載の方法。
【請求項９】
前記温度が２１０℃である、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
前記コラーゲンを溶解するための溶媒が、エタノール、ヒドラジン、メタノール、および／または塩酸グアニジンである、請求項８〜９に記載の方法。
【請求項１１】
前記骨組織を超音波で処置するステップをさらに含む、請求項１〜１０に記載の方法。
【請求項１２】
前記骨組織を所定の形状に切断するステップｄ）をさらに含む、請求項１〜１１に記載の方法。
【請求項１３】
前記骨組織が高圧ウォータージェットを用いて切断される、請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
切断した前記骨を移植前に滅菌するステップｅ）をさらに含む、請求項１２〜１３に記載の方法。
【請求項１５】
移植可能な生体材料を包装するステップをさらに含む、請求項１〜１４に記載の方法。
【請求項１６】
得られた前記移植可能な生体材料のＣａ／Ｐ比が１．６４である、請求項１〜１５に記載の方法。
【請求項１７】
骨組織を得るステップと、
前記骨組織を水で洗浄するステップと、
前記骨組織を水でボイルするステップと、
前記ボイルした骨組織を洗浄するステップと、
前記骨組織を乾燥させるステップと、
コラーゲンを融解および変性させるために前記骨組織を高温で処置するステップと、
前記コラーゲンを溶解するために前記骨組織を溶媒で処置、および／または超音波で処置するステップと、
前記溶媒を前記骨組織から蒸発させるステップと
を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項１８】
前記移植可能な生体材料中のコラーゲンがＳＥＭ−ＥＤＸによって検出されない、請求項１〜１７に記載の方法。
【請求項１９】
得られた移植可能な生体材料が無機性骨材である、請求項１〜１８に記載の方法。
【請求項２０】
得られた移植可能な生体材料が有機基質を含まない、請求項１〜１９に記載の方法。
【請求項２１】
前記方法が、超臨界状態の流動物で前記骨組織を処置するステップを含まない、請求項１〜２０に記載の方法。
【請求項２２】
移植前に前記移植可能な生体材料をインビトロで培養するステップをさらに含む、請求項１〜２１に記載の方法。
【請求項２３】
移植前に前記移植可能な生体材料に患者自身の単離細胞を播種するステップをさらに含む、請求項１〜２２に記載の方法。
【請求項２４】
前記生体材料を脊椎動物に移植するステップをさらに含む、請求項１〜２３に記載の方法。
【請求項２５】
前記生体材料を脊椎動物に移植する美容ステップをさらに含む、請求項１〜２３に記載の方法。
【請求項２６】
請求項１〜２５に記載の方法にしたがって調製された移植可能な生体材料。
【請求項２７】
移植可能な生体材料であって、前記移植可能な生体材料が骨組織から作製され、前記移植可能な生体材料中のコラーゲンがＳＥＭ−ＥＤＸによって検出されない、移植可能な生体材料。
【請求項２８】
有機基質を含まない無機性骨材である、請求項２７に記載の移植可能な生体材料。
【請求項２９】
前記移植可能な生体材料のＣａ／Ｐ比が１．６４である、請求項２７〜２８に記載の移植可能な生体材料。
【請求項３０】
移植前に前記移植可能な生体材料がインビトロで培養される、請求項２７〜２９に記載の移植可能な生体材料。
【請求項３１】
移植前に前記移植可能な生体材料が患者自身の単離細胞を播種される、請求項２７〜３０に記載の移植可能な生体材料。
【請求項３２】
請求項２６〜３１に記載の移植可能な生体材料を含むパッケージまたはキット。
【請求項３３】
前記移植可能な生体材料が滅菌されている、請求項３２に記載のパッケージまたはキット。
【請求項３４】
脊椎動物に移植するための移植可能な生体材料の調製のための骨組織の使用であって、前記移植可能な生体材料中のコラーゲンがＳＥＭ−ＥＤＸによって検出されない、使用。
【請求項３５】
前記移植可能な生体材料が有機基質を含まない無機性骨材である、請求項３４に記載の使用。
【請求項３６】
前記移植可能な生体材料のＣａ／Ｐ比が１．６４である、請求項３４〜３５に記載の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、新規の移植可能な生体材料（移植可能な骨移植組織）の調製方法に関する。特に、本発明は、無機性(anorganic)の移植可能な生体材料の調製方法および前記方法によって得ることができる移植可能な生体材料に関する。
【背景技術】
【０００２】
骨組織の移植は、ほとんどの整形外科手術分野で日常的に使用されている技術である。自家移植片（すなわち、レシピエントの身体の異なる部分から得た骨）の使用により、レシピエントがさらなる手術を必要とし、ドナー部位が罹患する。しかし、自家移植片の使用は、患者にとって苦痛であり、ドナー部位が合併症を罹患するリスクを含み得るので、完全に満足できるものではない。さらに、多数の手術において大量の骨組織が必要とされ、これは自家移植に適合しない。骨の同種移植片または異種移植片の使用は、それぞれ、ドナー由来の骨組織からの同種または異種のレシピエントへの移植を含む。移植を実施するために、骨組織を清潔且つ純粋になるように処置することが必要である。処置に起因する骨組織の機械的性質の変化および免疫原性による拒絶は、骨の異種移植片および同種移植片における共通の問題である。
【０００３】
同種移植片は、ウイルス感染リスクおよび再コロニー形成の失敗のような他の欠点も有する一方で、異種移植片は強い免疫拒絶を引き起こす。ほとんどの免疫拒絶は、骨組織中に含まれるタンパク質ならびに髄様組織中の細胞残屑／他の成分に由来する。遅い／不正確な再コロニー形成は、タンパク質（主にコラーゲン）が細胞外基質に埋め込まれ、それにより、骨芽細胞の透過のための空間が不十分になることに起因する。
【０００４】
拒絶および再コロニー形成に関する問題を解決するために、骨組織からのタンパク質の除去は、移植前の主なステップである。しかし、動物骨の処理で使用されるほとんどの溶媒は非常に有毒である。例えば、US5,585,116は、選択的な尿素ベースの除去剤と組み合わせた有毒溶媒を使用したタンパク質除去方法を記載している。さらに、これらの溶媒は、骨組織の空隙率が高いためにリンスによって完全に除去することは容易ではない。溶媒処置骨組織の処理に関して、複雑さおよびコストの高さに関する他の問題も存在する。
【０００５】
US5,725,579およびUS6,217,614は、超臨界状態(supercritical state)の流動物（例えば、二酸化炭素（ＣＯ2））で骨組織を処置するステップを含む骨有機基質（主にコラーゲン）の調製方法を記載している。したがって、この方法は、超臨界状態の流動物を使用する必要がある。さらに、この方法は、プロテアーゼを使用したタンパク質の除去ステップが必要である。これらの超臨界状態の流動物の使用ステップおよびタンパク質除去ステップは、非常に費用のかかる過程である。
【０００６】
別の適切な移植材料は、コラーゲン基質中に多孔質の骨無機質ナノ粒子を含む粒子状骨無機質製品である、Ed.Geistlich Sohne AG Fur Chemische IndustrieのBio-Oss Collagenである。ナノ粒子は、天然の骨に由来し、平均直径が０．１〜１０μｍの範囲である。Bio-Oss Collagenは、U.S.5,573,771にも記載されている。Bio-Ossに関する問題は、ナノ粒子を移植可能な骨移植組織として適切な三次元足場構造に成形することの難しさにある。Osteograft/N(CeraMed,Lakewood,CO)およびOsteoGen(Impladent,Hollisville,NY)などの他の異種移植片は、構造が変化していた。一般に、有機基質を除去する一般的方法は、加熱である。しかし、結晶が約６００℃に加熱されると、再結晶が起こり、結晶が成長する傾向があり、それにより、材料の構造が変化する。さらに、成分によっては喪失するものもあれば改変するものもある。結果として、これら全ての異種移植片は、表面積が小さくなり、いくつかの孔が失われて弾力性が減少する傾向がある。
【０００７】
上記問題を考慮して、新規の適切な実用的且つ低価格な移植可能な生体材料がこの技術分野で必要である。
【発明の開示】
【０００８】
本発明は、処理に関連する全ての上記問題を軽減することを目的とし、骨誘導性が高く、骨伝導性が高く、生体適合性を示し、且つ天然の骨に匹敵する機械的強度を有する移植可能な生体材料を提供する。最も重要なことは、非常に低価格であり、且つ処理が簡潔である。
【０００９】
第１の態様によれば、本発明は、
ａ）骨組織を得るステップと、
ｂ）骨組織をボイルするステップと、
ｃ）コラーゲンを除去するために前記骨組織を処置するステップと
を含む、移植可能な生体材料の調製方法を提供する。
【００１０】
本発明の方法では、ボイルステップ（ｂ）を水中（例えば、蒸留水）で行うことができる。
【００１１】
特に、実質的にコラーゲンを破壊し、骨髄および細胞外基質タンパク質（ＥＣＭ:extracellular matrix protein）を除去するためにボイルステップを行うことができる。
【００１２】
残存する有機基質を遊離および／または除去するために、超音波での処置ステップをさらに適用することができる。
【００１３】
本発明の方法は、任意選択的に、次のボイルステップの前に水を交換してボイルステップの２回以上繰り返しを含み得る。
【００１４】
本方法は、任意選択的に、骨組織をボイル前に洗浄するステップを含み得る。洗浄を、当分野で公知の任意の適切な方法にしたがって実施することができる。例えば、機械的に洗浄するか、空気で洗浄するか、液体を用いて洗浄することができる。例えば、水の使用によって洗浄を行うことができる。
【００１５】
本発明の方法では、ステップｃ）が、コラーゲンを融解および変性させるために前記骨組織を高温（例えば、２００〜２５０℃（例えば、２１０℃））で処置し、さらに、コラーゲンを遊離および／または溶解するための溶媒で処置することを含み得る。コラーゲンを遊離および／または溶解するための溶媒は、当分野で公知の任意の非毒性の適切な溶媒（好ましくはアルコール）であり得る。例えば、エタノール、ヒドラジン、メタノール、および／または塩酸グアニジンである。特に、７０％エタノールである。
【００１６】
移植可能な生体材料を、コラーゲンの除去および／または脱凝集した有機基質（主にコラーゲン）の除去を最大にするために、超音波で処置することもできる。アルコールの存在下での超音波での処置によってステップを行うことができる。
【００１７】
本発明の方法は、骨組織を所定の形状に切断するステップｄ）をさらに含み得る。骨組織を、当分野で公知の任意の適切な手段（例えば、ナイフ、鋏）の使用によって切断し、そして／または高圧ウォータージェットを用いて切断することができる。
【００１８】
本発明の方法は、切断した骨を、好ましくは移植前に滅菌するステップｅ）をさらに含み得る。
【００１９】
本発明の方法は、移植可能な生体材料を包装するステップをさらに含み得る。
【００２０】
本発明によって得たか得ることができる移植可能な生体材料は、化学的性質および物理的性質が変化しないので、良好な骨伝導能力を示す（すなわち、移植片の首尾のよい再コロニー形成を容易にする）。特に、移植可能な生体材料は、無機性骨組織である。得られた移植可能な生体材料は、有機基質を含まない。
【００２１】
本発明の移植可能な生体材料中のコラーゲンの存在は、ＳＥＭ−ＥＤＸ試験の使用によって評価されている。ＳＥＭ−ＥＤＸは、コラーゲンの成分であるが骨足場自体には存在しない硫黄（Ｓ）の存在を検出する。ＳＥＭ−ＥＤＸによって本発明の移植可能な生体材料中に硫黄は検出されなかった。したがって、本発明は、ＳＥＭ−ＥＤＸによって検出不可能であるためにコラーゲンを含まない移植可能な生体材料を提供する。特に、ステップ（ｃ）の処置後にＳＥＭ−ＥＤＸによってコラーゲンを検出することができない。
【００２２】
特に、本発明の方法の任意の実施形態によって得たか得ることができる移植可能な生体材料の組成物のＣａ／Ｐ比は１．６４である。
【００２３】
特に、本発明の方法は、骨組織を超臨界状態の流動物で処理するステップを含まない。
【００２４】
本発明はまた、骨組織を得るステップと、
前記骨組織を水で洗浄するステップと、
前記骨組織を水でボイルするステップと、
前記ボイルした骨組織を洗浄するステップと、
前記骨組織を乾燥させるステップと、
コラーゲンを融解して変性させるために前記骨組織を高温で処置するステップと、
前記コラーゲンを溶解するために前記骨組織を溶媒で処置し、そして／または超音波で処置するステップと、
前記溶媒を前記骨組織から蒸発させるステップと
を含む移植可能な生体材料の調製方法を提供する。
【００２５】
別の態様によれば、本発明の方法は、上記の移植可能な生体材料を調製するステップと、生体材料を脊椎動物に移植するステップをさらに含む。
【００２６】
一般に、例えば、損傷または疾患の結果として体内の骨を置換および／または再構築する目的のために移植を行うことができる。移植を使用して、歯周欠損および歯周再生を置換および／または再構築することができる。一般に、本発明の移植可能な生体材料を使用して、骨を増加させることもできる。
【００２７】
本発明の方法は、移植可能な生体材料を移植前にインビトロで培養するステップをさらに含み得る。さらに、本方法は、移植可能な生体材料に移植前に患者自身の単離細胞を播種するステップを含み得る。
【００２８】
本方法は、生体材料を脊椎動物に移植する美容ステップをさらに含む。例えば、生体材料を、美容整形時にヒトに移植する。
【００２９】
さらなる態様によれば、本発明は、本発明の方法の任意の実施形態にしたがって調製した移植可能な生体材料を提供する。特に、移植可能な生体材料を骨組織から作製し、移植可能な生体材料中のコラーゲンはＳＥＭ−ＥＤＸによって検出できない。
【００３０】
移植可能な生体材料は、有機基質を含まない無機性骨材であり得る。特に、移植可能な生体材料の組成物のＣａ／Ｐ比は１．６４である。
【００３１】
移植可能な生体材料を移植前にインビトロで培養することができる。例えば、移植可能な生体材料に移植前に患者自身の単離細胞を播種することができる。
【００３２】
したがって、本発明はまた、本発明の方法の任意の実施形態にしたがって調製した移植可能な材料を含むインビトロ細胞培養物を提供する。インビトロ細胞培養物は、患者自身の細胞を播種される移植可能な生体材料を含み得る。
【００３３】
移植可能な生体材料を、特定の用途に適切になるような形状およびサイズにすることができる。例えば、そのサイズは１ｍｍ3〜３ｃｍ3であり得る。特に、サイズは、５ｍｍ×５ｍｍ（直径／高さ）である。
【００３４】
本発明はまた、本発明の範囲内の任意の実施形態の移植可能な生体材料を含むパッケージまたはキットを提供する。特に、移植可能な生体材料は、パッケージに含まれているか、キットが滅菌されている。
【００３５】
別の態様によれば、本発明は、脊椎動物における移植のための移植可能な生体材料の調製のための骨組織の使用を提供する。特に、移植可能な生体材料中のコラーゲンをＳＥＭ−ＥＤＸによって検出できない。
【発明を実施するための最良の形態】
【００３６】
本発明は、処理に関連する全ての上記問題を軽減することを目的とし、骨誘導性が高く、骨伝導性が高く、生体適合性を示し、且つ天然の骨に匹敵する機械的強度を有する移植可能な生体材料を提供する。最も重要には、非常に低価格であり、且つ処理が簡潔である。
【００３７】
本明細書中で使用される、用語「移植可能な生体材料」は、「移植可能な骨移植組織」である。したがって、本出願の目的のために、２つの用語を交換可能に使用することができる。本発明の移植可能な生体材料は、無機性骨移植組織である。特に実施例に関連して、用語「ブタ無機性骨材」（ＡＰＢ）を使用し、これは、ブタ起源の本発明の移植可能な生体材料をいう。
【００３８】
本発明は、骨組織から得た移植可能な生体材料の新規の調製方法を提供する。
【００３９】
移植可能な生体材料を、消費のために交配させたか、調理後に処分された動物の骨から調製することができる（図１）。したがって、大量のこれらの骨型を、容易且つ安価に利用可能である。骨を、任意の種類の適切な脊椎動物から得ることができる。例えば、ブタおよびウシなどから得ることができる。
【００４０】
骨は、ほとんどの脊椎動物の強固な骨格を形成する１つの結合組織型である。骨は、一部は有機物であり（細胞および基質）、一部は無機物である（石灰化成分）。いずれの骨においても、無機構成要素は、乾燥重量の６５〜７０％を占め、有機構成要素は、乾燥重量の３０〜３５％を占める。ほとんど全ての無機物質（約７５％）は、ヒドロキシアパタイトと呼ばれる化合物であり、コラーゲン線維間に蓄積されるようになる。Ｉ型コラーゲンは、骨中の主なコラーゲンである。ほぼ９０〜９５％の有機基質（有機材料とも示される）は、線維性タンパク質であるコラーゲンと呼ばれる物質である。残り（すなわち、５〜１０％）は、他の非コラーゲンタンパク質の骨髄を含む。非コラーゲンタンパク質は、細胞外基質タンパク質（ＥＣＭ）およびコンドロイチン硫酸、ケラチン硫酸、およびリン脂質のような物質を含む。したがって、骨の３０〜３５％は、他の化合物の小画分を含むコラーゲンである。コラーゲンは、ムコ多糖類細胞間質(ground substance)中に包埋している。骨が石灰化されるようになった場合、結晶材料はコラーゲン線維の長さに沿って規則正しく分布するようになる。骨髄は、全ての骨の小柱間の空間内に位置する。骨髄は、種々の細胞（造血において活性な細胞、脂肪細胞、および細網細胞が含まれる）を含む。骨髄は、「脚の骨などの巨大な骨の中心に由来する軟質材料である。この材料は主に脂肪であり、機械的分離によって骨材料から分離される」と定義されている。(Official Publication of American Feed Control Officials,1997,page 191)。
【００４１】
骨の骨格組織において以下の５つの骨細胞型が見出されている：骨幹細胞、骨芽細胞、骨細胞、破骨細胞、および骨内膜細胞。骨芽細胞は、骨形成に関与する。骨細胞は、骨芽細胞から生じ、その後に骨小腔(lacunae)中の骨組織内に捕捉されて骨基質の維持を補助する。破骨細胞は、骨吸収で活性な多核細胞である。
【００４２】
１つの態様によれば、本発明は、有機基質を除去するステップを含む移植可能な生体材料の調製方法を提供する。特に、本発明の方法は、
ａ）骨組織を得るステップと、
ｂ）骨組織をボイルするステップと、
ｃ）コラーゲンを除去するために前記骨組織を処置するステップと
を含む、移植可能な生体材料の調製方法を提供する。
【００４３】
本発明の方法では、ボイルステップ（ｂ）を水中で行うことができる。例えば、蒸留水中で行うことができる。
【００４４】
特に、ボイルステップを実施して骨から有機基質を実質的に除去することができる。有機基質（コラーゲンおよび非コラーゲンタンパク質が含まれる）を、ボイルステップによって実質的に脱凝集し、除去する。
【００４５】
本発明の方法は、ボイルステップを２回またはそれ以上反復し、任意選択的に、次のボイルステップ前に水を交換するステップを含み得る。ボイル回数に特に制限は無く、特定の動物の特定の骨にしたがって選択することができる。例えば、骨を、２０分〜２４時間ボイルしてスラリー（血液、骨髄、脂質、および残存する筋肉が含まれる）を除去することができる。特に、骨を、３０分間〜６時間、より詳細には、１〜２時間ボイルする。特定の態様によれば、本方法は、水中の骨組織を１時間ボイルする第１のステップ、および水を交換してさらに１時間ボイルし続けるステップを含む第２のステップを含み、任意選択的にさらに２回このステップを繰り返す。
【００４６】
本方法は、任意選択的に、ボイル前および／またはボイル後に骨組織を洗浄するステップを含み得る。当分野で公知の任意の適切な方法にしたがって洗浄することができる。例えば、機械的に洗浄するか、空気で洗浄するか、液体を用いて洗浄する。水（例えば、水道水）を使用して、骨組織を完全に洗浄することができる。
【００４７】
特に、ボイルステップ後、骨組織を、水（例えば、脱イオン水）で完全に洗浄する。
【００４８】
本方法は、ボイルした骨組織を乾燥させるステップをさらに含み得る。骨組織を乾燥させるか加熱することによって乾燥ステップを行うことができる。例えば、オーブンでの加熱乾燥によって乾燥させることができる。処置する骨組織の種類および量に適切な時間オーブンで加熱することができる。例えば、１０分間〜２時間、特に、３０分間〜１時間乾燥させることができる。オーブンの温度は、骨が得られる供給源および骨の型に適切な任意の温度（例えば、１５０〜３００℃、特に２００〜２５０℃）であり得る。例えば、２１０〜２２０℃で３０分間〜２時間加熱であり得る。任意選択的に、一定領域の過熱を防止するために、骨組織の位置を変えることが可能である。
【００４９】
乾燥後、骨組織を、滅菌するためにオートクレーブで処置することができる。このステップを、適切な時間および適切な温度で行うことができる。例えば、８０〜３００℃、特に１００〜２００℃で行うことができる。骨組織を、１００〜２００℃で５分間〜２時間（例えば、１２０〜１２５℃で１５分間）オートクレーブすることができる。
【００５０】
本発明の方法では、ステップｃ）は、コラーゲンを除去するための１回または複数回のステップを含む。当分野で公知の任意の適切なコラーゲンの除去方法を使用することができる。例えば、ステップｃ）は、コラーゲンを融解して変性させるために高温（例えば、１５０〜３００℃、詳細には２００〜２５０℃、より詳細には２１０〜２２０℃、好ましくは２１０℃）で骨組織を処置し、コラーゲンを溶解するために溶媒でさらに処置するステップを含む。コラーゲンを溶解するために使用した溶媒は、当分野で公知の非毒性の適切な溶媒、例えば、非水性溶媒、好ましくはアルコールであり得る。例えば、エタノール、特に、７０％エタノールであり得る。コラーゲンの溶解および／または有機基質の残渣の完全な除去のための本発明の目的に適切な他の非水性溶媒は、ヒドラジン、メタノール、および／または塩酸グアニジンである。
【００５１】
脱凝集（破壊）および凝集有機基質（主にコラーゲン）を最大に有効に除去するために、骨組織を超音波で処置することもできる。アルコールの存在下における超音波での処置によってこのステップを行うことができる。公知の標準的なプロトコール（例えば、３７℃で３０分間）にしたがって、超音波処理を行うことができる。しかし、必要に応じて時間および温度を変化させることができる。無機性骨組織が得られる。特に、本発明によって得られるか得ることができる移植可能な生体材料は、有機基質を完全に含まない無機性骨組織である。
【００５２】
本発明の移植可能な生体材料中のコラーゲンの存在を、ＳＥＭ−ＥＤＸ試験の使用によって評価した。ＳＥＭ−ＥＤＸは、コラーゲンの主成分であるが、骨足場自体に存在しない硫黄の存在を検出する。表１〜１０に示すように、海綿骨および皮質骨の多数の領域におけるＳＥＭ−ＥＤＸの分析により、任意の無機性骨領域中に硫黄は検出されなかった。したがって、本発明は、ＳＥＭ−ＥＤＸによって検出可能なコラーゲンを含まない移植可能な生体材料を提供する。特に、本発明の方法のステップｃ）は、骨組織がＳＥＭ−ＥＤＸによって検出可能なコラーゲンを含まないように骨組織を処置してコラーゲンを除去するステップを含む。
【００５３】
本発明の方法は、さらに、所定の形状に骨組織を切断するステップｄ）を含み得る（図２）。骨組織を、当分野で公知の任意の適切な手段（例えば、ナイフ、鋏）の使用によって切断することができ、そして／または高圧ウォータージェットを用いて分断することができる。ウォータージェット切断の精度は１０μｍまでであり、純粋のジェットを使用して行うので、切断ツール由来のいかなる汚染リスクも回避され、さらに、大量生産目的のために使用することができる。骨組織片の形状は、移植に適切な任意の形状であってよく、直角平行六面体、円筒形、またはプラグ型などであり得る。移植可能な生体材料を、特定の用途のためのサイズにすることができる。例えば、そのサイズは１ｍｍ3〜３ｃｍ3であり得る。しかし、適切なサイズおよび／または形状を、外傷のサイズにしたがって選択することができる。好ましいサイズは、例えば、５ｍｍ×５ｍｍ（直径／高さ）であり得る(Martin,I.,et al.,J.Orthopaedic Res,16:181-189,1998;Wei Tan,B.S.,et al,.Tissue Engineering,7:203-210,2001)。
【００５４】
本発明の方法は、さらに、移植前に切断した骨を滅菌するステップｅ）を含み得る。
【００５５】
骨組織の脱水および消毒からなるステップを、任意選択的に、本発明の任意の段階で行うことができる。このステップを、漸増濃度のエタノール（例えば、７０％、９５％、および１００％）のいくつかの連続する浴への通過によって行うことができる。エタノールが優れたウイルス中和抗体(virucidin)であるので、同時に組織を脱水し、本発明の生体材料の安全性を高めることが可能となる。適切な温度（例えば、３０〜８０℃、好ましくは３０〜６０℃）での通気オーブンでの乾燥により、このステップを完了することができる。
【００５６】
本発明の方法は、さらに、移植可能な生体材料を包装するステップを含み得る。包装後、骨組織を滅菌することができる。当分野で公知の任意の方法（例えば、β粒子またはγ線（２５ｋ  Ｇｒａｙ）による照射）にしたがって、この滅菌を行うことができる。
【００５７】
特定の実施形態によれば、本発明の方法は、
骨組織を得るステップと、
前記骨組織を水で洗浄するステップと、
前記骨組織を水でボイルするステップと、
前記ボイルした骨組織を洗浄するステップと、
前記骨組織を乾燥させるステップと、
コラーゲンを融解して変性させるために前記骨組織を高温で処置するステップと、
凝集した有機基質を滅菌および／または緩めるために前記骨組織を溶媒で処置するステップと、
前記溶媒を前記骨組織から蒸発させるステップと、
任意選択的に、前記凝集した有機基質（主にコラーゲン）を完全に除去するために超音波で前記骨組織をさらに処置するステップとを含む。
【００５８】
より詳細には、本発明の方法は、
骨組織を得るステップと、
前記骨組織を水道水で完全に洗浄するステップと、
前記骨組織を水で１時間ボイルしてスラリーを確実に除去するステップと、
前記ボイルした骨組織を洗浄するステップと、
水を交換し、さらに１時間ボイルし続け、これをさらに２回繰り返すステップと、
前記骨組織を脱イオン水で完全に洗浄するステップと、
２２０℃のオーブンで３０分間乾燥させるステップと、
１２１℃で１５分間オートクレーブするステップと、
コラーゲンを融解して変性させるのに十分に高い温度のオーブンで２時間乾燥させるステップと、
コラーゲンをさらに緩めるために前記骨を２日間エタノールに浸漬するステップと、
風乾によって前記骨からエタノールを蒸発させるステップと、
前記骨組織を所定の形状に切断するステップと、
移植前に滅菌するために前記切断した骨をエタノールでリンスするステップとを含む。
【００５９】
本発明によって得られた、または得ることができる移植可能な生体材料は、良好な骨伝導能力（すなわち、首尾のよい移植片の再コロニー形成を容易にする）を示す。
【００６０】
本発明の任意の実施形態によって得られるか得ることができる移植可能な生体材料のＣａ／Ｐ比は１．６４であり、これは、天然の骨（実施例１に示す人骨）よりもわずかに低い。
【００６１】
US5,725,579およびUS6,217,614（共に本明細書中に参照することにより組み込まれる）は、平均２％未満の脂肪を含む組織が得られるように適合させた超臨界状態の流動物で骨組織を処置するステップを含む、機械的強度が改良された主にコラーゲン中の移植可能な骨有機基質の調製過程を記載している。さらに、先行技術の過程は、超臨界状態の流動物で処理した骨組織を化学的処置または酵素的処置を含むさらなる従来の過程に供して特定のタンパク質を除去するステップを含む。さらなる化学的処置を過酸化水素を使用して行うことができる一方で、酵素的処置をプロテアーゼを用いて行うことができる。このさらなる処置により、骨組織からのタンパク質のより有効な除去が確実に行われ、それにより、この方法で処置した骨組織の拒絶リスクが減少する。
【００６２】
これに反して、本発明の方法によって得られた、または得ることができる移植可能な生体材料は、天然の骨を超える強度を持たないが、天然の骨の強度に匹敵する強度を有する。さらに、本発明の方法は、骨組織を超臨界状態の流動物で処理するステップを必要とせず、さらに、プロテアーゼによるタンパク質の除去を必要としない。実際、本発明の方法は、コラーゲン線維（有機基質とも呼ばれる有機物質の約９０％〜９５％）および細胞間質からなる骨基質内の有機基質を除去するステップを含む。基質の硬度は、コラーゲン線維間に蓄積するその無機塩（ヒドロキシアパタイト；骨乾燥重量の約７５％）の含有量に起因する。骨組織のボイルステップによって有機基質を実質的に除去する。実質的にコラーゲンを含む残りの有機基質を、当分野で公知の任意の方法（例えば、適切な溶媒、特に非水性溶媒（例えば、アルコール）での骨組織の処置）を使用して除去する。したがって、本発明の方法は、エタノール（特に、７０％エタノール）、ヒドラジン、メタノール、および／または塩酸グアニジンであり得る溶媒でコラーゲンを溶解するステップを含む。しかし、当分野で公知の他の適切な非水性溶媒も使用することができる。
【００６３】
したがって、本発明の方法は、超臨界状態の流動物で骨組織を処置するステップを含まない。さらに、本発明の方法は、プロテアーゼまたは任意の他の酵素処置でタンパク質を除去するステップを含まない。
【００６４】
別の態様によれば、本発明の方法は、上記の移植可能な生体材料を調製するステップと、さらに、脊椎動物（例えば、哺乳動物（ヒトが含まれる））に生体材料を移植するステップとを含む。本発明はまた、生体材料を脊椎動物に移植する美容ステップを含む。
【００６５】
一般に、例えば、損傷または疾患の結果として体内の骨を置換および／または再構築する目的のために移植を行うことができる。移植を使用して、歯周欠損および歯周再生を置換および／または再構築することもできる。一般に、本発明の移植可能な生体材料を使用して、骨を増加させることもできる。移植可能な生体材料を、美容整形に使用することもできる。例えば、生体材料を移植した脊椎動物の審美的外観の改良のために脊椎動物を手術する。脊椎動物は、哺乳動物（ヒトまたは非ヒト哺乳動物）であり得る。
【００６６】
例えば、このような移植片は、整形外科、特に移植片が負荷を受けた場合に（すなわち、特に、脊髄手術（頸椎癒合、腰椎椎間板の置換など）、胎盤基部(base of the cotyle)の再構築、関節形成術、骨切り術、偽関節、および関節固定術など）必要とされるであろう。
【００６７】
本発明の移植可能な生体材料は、人骨と組成がほとんど同一の天然の無機性骨移植材料であり、患者の骨細胞が成長することができる一過性足場として使用される。この移植物(implant)が正しい骨の成分および三次元構造を有するので、身体は、最終的に、足場を天然の骨組織と置換し、天然に移植物を再造形するであろう。同一材料で作製され、同一構造を有するので、この移植物と既存組織との間には機械的不適合も存在しない。
【００６８】
さらなる態様によれば、本発明はまた、移植可能な生体材料を移植前にインビトロで培養するさらなるステップも含み得る。さらに、本方法は、移植前に、移植可能な生体材料に患者自身の単離細胞を播種するステップを含み得る。
【００６９】
特に、本発明の任意の実施形態によって得られるか得ることができる移植可能な生体材料の組成物のＣａ／Ｐ比は１．６４である。
【００７０】
特に、本発明の方法は、超臨界状態の流動物で骨組織を処置するステップを含まない。
【００７１】
さらなる態様によれば、本発明は、本発明の方法の任意の実施形態によって調製した移植可能な生体材料を提供する。特に、移植可能な生体材料のＣａ／Ｐ比は約１．６４である。
【００７２】
別の態様によれば、本発明は、移植可能な生体材料であって、前記移植可能な生体材料を骨組織から作製し、前記生体材料中のコラーゲンをＳＥＭ−ＥＤＸによって検出できない、移植可能な生体材料を提供する。生体材料は、有機基質を含まない無機性骨であり得る。特に、生体材料のＣａ／Ｐ比は約１．６４である。
【００７３】
移植可能な生体材料を移植前にインビトロで培養することができる。例えば、移植前に、移植可能な生体材料に患者自身の単離細胞を播種することができる。
【００７４】
したがって、本発明はまた、本発明の方法の任意の実施形態によって調製した移植可能な生体材料を含むインビトロ細胞培養物を提供する。インビトロ細胞培養物は、患者自身の細胞を播種された移植可能な生体材料を含み得る。
【００７５】
別の態様によれば、本発明は、上記移植可能な生体材料を含むパッケージまたはキットを提供する。パッケージまたはキット中の生体材料を滅菌することができる。
【００７６】
さらに別の態様によれば、本発明は、移植可能な生体材料中のコラーゲンをＳＥＭ−ＥＤＸによって検出できない、脊椎動物に移植するための本発明の任意の実施形態の移植可能な生体材料の調製のための使用を提供する。移植可能な生体材料は、有機基質を含まない無機性骨材料であり得る。特に、生体材料のＣａ／Ｐ比は約１．６４である。
【００７７】
本発明の任意の実施形態の移植可能な生体材料は、骨組織の処理に関連する当分野に存在する問題を解決し、骨誘導性が高く、骨伝導性が高く、生体適合性を示し、且つ天然の骨に匹敵する機械的強度を有する移植可能な骨組織を提供する。最も重要には、提案された様式で動物骨を処置するために非常に低価格であり、且つ処理が簡潔である。
【００７８】
本発明のさらなる利点は、全処理が天然の処置および有毒化学物質（プロテアーゼ）を含まない低刺激性の溶媒を含み、超臨界状態の流動物で骨組織を処置する必要がないことである。ボイル過程および／または超音波処置の繰り返しは、骨足場の物理的性質および化学的性質を変化させることなく、骨髄およびＥＣＭを破壊するのに優れている。本発明によれば、ＥＣＭおよび骨髄細胞を、骨組織から除去し、骨足場のみを残す。このような材料は、天然の骨とほとんど同一の性質を有する。したがって、このような材料は骨伝導性が高く、ウイルス感染または免疫拒絶のリスクを負うことなく、移植に安全である。
【００７９】
本発明をここに一般に記載しているが、本発明は以下の実施例を参照してより深く理解される。以下の実施例は例示の目的で提供しており、本発明を制限することを意図しない。
【実施例】
【００８０】
［実施例１］
本質的に全ての脊椎動物の天然の骨は、化学式が［Ｃａ10（ＰＯ4）6（ＯＨ）2］であるヒドロキシアパタイト（ＨＡ）を基本構造とする。しかし、骨、エナメル質、象牙質、および他の石灰化組織などの生体組織中に見出されるＨＡの結晶は、他の原子ならびに過リン酸基（ＨＰＯ42-）、炭酸イオン（ＣＯ32-）、マグネシウム（Ｍｇ）、フッ素（Ｆ）などのイオンを含む(LeGeros RZ.,Crystal Growth Charact.1981;4:1-45;Rey C,et al.,Calcif.Tissue Int.1991;49:251-258)。骨結晶は、水酸基を含まないか、ＨＡよりもむしろ炭酸アパタイトと呼ばれる基をほとんど含まない(Bonar LC,et al.,J Bone Miner Res.1991;1167-1176)。骨結晶中の炭酸基およびリン酸基は比較的安定且つ非常に活性であり、それにより、骨の形成、石灰化、および溶解で重要な役割を果たす(LeGerps RZ.Tung MS.,Caries Res.1983;17:419-429)。
【００８１】
骨代用物のための大部分の合成ＨＡ調製物は合成起源であり、骨中の生体リン酸カルシウム結晶と構造的および化学的に異なる。純粋なヒドロキシアパタイトは本質的非分解性であり、ＨＡの吸収率はたった５〜１５％／年である(Fleming JE Jr,et al.,Orhop Clin North Am.2000;31:357-374)。リン酸カルシウムセラミックスは、骨より脆弱であり、且つ引っ張り強さが低い(Jarcho M.,Clin Orthop.198l,157:259-278;Truumees E,et al.,Univ of Pennsylvania Orthopaedic J 1999,12:77-88)。これらの合成リン酸カルシウム結晶は、骨のアパタイト結晶と化学的および構造的に異なるだけでなく、いくつかの場合、種々の量の全く結晶ではない無定形のリン酸カルシウムを含む(Fleming JE Jr.,et al.,Orhop Clin North Am.2000;31:357-374;Truumees E,Herkowitz HN.,Univ of Pennsylvania Orthopaedic J 1999;12:77-88;Bohner M.,Injury.2000:31:SD37-SD47)。いくつかの場合、合成リン酸カルシウムは、酸化カルシウムなどのカルシウム塩も含む。これらのさらなるカルシウム塩は、骨の石灰化、溶解、さらに破骨細胞に関連する生物機能に及ぼす影響を調査するための長期にわたる研究対象であった。
【００８２】
天然の骨は、有機構成要素の約１／３を含み、その主成分はコラーゲン原線維である(Cohen-Solal L,et al.,Proc Natl Acad Sci U S A.1979;76:4327-4330)。骨中でのコラーゲンまたは非コラーゲンタンパク質のアパタイトとのリンの共有結合により、結晶の化学的性質および構造を有意に変化させること無く有機基質から天然の動物骨を単離することが困難になる(Sakae T,et al.,J Dent Res.1988;67:1229-1234)。無機性骨材を使用した臨床試験では、良好な骨伝導性、骨同化、および種々の状況における欠点の良好な解決が証明されている(Richardson CR,et al.,J Clin Periodont.1999;26:421-428;Young C,et al.,Int J Oral Maxillofac Impl 1999;14:72-76;Lorenzoni M,et al.,Int J Oral Maxillofac Impl.1998;13:639-646)。しかし、整形外科手術において一定の副作用(contra)（機械的ストレスへの耐性、再結晶過程、および新規に形成されたＨＡ塩の減少など）が示されている(Sciadini MF,et al.,J Orhto Res.1997;15:844-857;Jensen SS,et al.,Int J Oral Maxillofac Impl.1996;11:55-66;Raspanti M,et al.,Biomater 1994;15:433-437)。
【００８３】
業務用および実験用の骨移植片材料は、種々の組成および性質を示すことができ、その多くが天然の骨と非常に異なる(Boyne PJ.Comparison of Bio-Oss and other implant materials in maintenance of the alveolar ridge of the mandibule in man.In:Huggler AH,Kuner EH,editors.Hef？e zur unfallheinde 216.Berlin:Springer' 1991.p11;Lorenzoni M,et al.,Int J Oral Maxillofac Impl 1998;13:639-646;McAllister BS,et al.,Int J Periodont Restor Dent 1998;18:227-239)。リン酸セラミックス、リン酸三カルシウム、リン酸カルシウムセメント、ナノ粒子ＨＡ、および硫酸カルシウムなどの無機カルシウム誘導体が頻繁に使用されている。これらの材料の物理化学的性質を、宿主の骨とのその接合部分に依存して調査し、生体不活性または生物活性として表した。生体セラミックスが隣接する宿主の骨由来の骨の内部成長(ingrowth)のための足場を提供するにもかかわらず、生体セラミックスは本来備わっている骨成長能力が無く、また、吸収の変動によって機械的強度が制限され、妨げられる(Jarcho M.,Clin Orthop.198l;157:259-278)。あるいは、天然の骨の無機質は、欠損した骨への新規の骨の成長を容易にするために種々の状況で臨床的に使用されている(Richardson CR,et al.,J Clin Periodont.1999;26:421-428;Young C,et al.,Int J Oral Maxillofac Impl 1999;14:72-76;Lorenzoni M,et al.,Int J Oral Maxillofac Impl.1998;13:639-646)。
【００８４】
本発明の方法は、天然の結晶構造を破壊すること無く有機基質を含まない天然の骨の精製手順を示す。ＸＲＤ分析、ＳＥＭ−ＥＤＸ、ならびに機械的試験および弾力性試験を用いた特徴づけにより、物理化学的性質を強調する。
【００８５】
［材料と方法］
〔走査電子顕微鏡法による調査〕
無機性骨材の調製に示すように、無機性皮質骨および海綿骨を、１ｃｍ×１ｃｍ×０．５ｃｍの切片にし、その後にオートクレーブを行った。密集および海綿状の調製された基本的なブタ無機性骨材ならびに骨由来の結晶構造の表面に対して走査電子顕微鏡法（ＳＥＭ）による調査を行った。金でのサンプルのスパッタリング後に研究を行った。
【００８６】
密集無機性骨材および海綿状無機性骨材由来の結晶構造が観察され、各結晶の構成要素をSEM-EDX(Hitachi 4200)によって分析した。
【００８７】
〔物理的性質の決定〕
〔機械的強度および弾性率の試験方法〕
処置したブタ大腿骨由来の皮質骨を、典型的には、５ｍｍ×３ｍｍ×６ｍｍの寸法に切断した。Instron 3345(Instron Corporation,Canton,MA)上の長手方向軸に沿って骨をロードした。試験装置のクロスヘッドの速度は、１ｍｍ／分であった。全データを、湿度５０％で２３℃の環境で乾燥骨から回収した。
【００８８】
〔空隙率の試験方法〕
海綿骨（１０ｍｍ×１０ｍｍ×１０ｍｍ）を、水銀ポロシメーター(MicromeriticsのAutopore III 9420)の透過度計に直接入れた。サンプルを、０〜６０，０００ｐｓｉで分析した。
【００８９】
〔有機基質を含まない天然の骨の単離〕
有機基質を除去するための方法を構築し、緻密骨および海綿骨由来の無機性リン酸カルシウム足場を得る。有機基質を含まない天然の骨（移植可能な生体材料）の単離を、下記の段階にしたがって調製した。
【００９０】
〔ブタ無機性骨材（ＡＰＢ）の調製〕
ブタ無機性骨材（ＡＰＢ）を、新鮮なブタ大腿骨を、骨端領域および骨内領域(diahyseal region)の除去によって得た。
【００９１】
（ブタ長骨の調製）
いくつかの断片に刻んだ新鮮なブタ長骨を、食肉処理場から得た。約１〜３ｃｍ3の断片をさらなる処置のために切断した。骨片を、水道水で完全に洗浄し、スラリーを除去するために３０分毎に水を頻繁に交換して水中で２時間ボイルした。材料を水で洗浄し、分離した軟骨から除去した。これを脱イオン水で洗浄し、一定の領域の過熱を防止するために時折位置を変えながら２１０℃のオーブンで２時間乾燥させた。この時点で、このような処置により、脱凝集有機基質が部分的に除去された。このような処置において、骨髄が完全に除去された。
【００９２】
（骨基質構成要素の分離）
乾燥後、材料を１２１℃で１５分間遠心分離して、最小限の滅菌を行った。油分を除去し、有機基質の付着を緩めるために骨片を７０％エタノールに浸漬した。次いで、凝集有機基質（主にコラーゲン）をさらに除去するために、これらを、７０％アルコールで滅菌しながら３７℃で３０分間超音波処理した。溶液が濁らなくなるまでこのステップを約４時間続けた。この材料を、各３０分間隔で新鮮な７０％アルコールと置換した。超音波処理手順を、２７０ワット、６３ｋＨｚ、ピーク出力周波数で２〜３分間行った。最後に、処置した材料を、７０％アルコール中にて１２１℃で１５分間オートクレーブして、最大限に滅菌した。
【００９３】
骨梁および皮質骨の構造を、より小さなサイズ内でインタクトに保った。本実験的研究では、処置した骨の構造を、成形し、３ｃｍと０．５ｃｍとの間のサイズにした。
【００９４】
〔無機性異種移植片の特徴づけ〕
（ＸＲＤによる結晶構造）
ブタ無機性骨材の異なる無機質の組成を決定するために、数段階の処置後、結晶構造のフィンガープリント特徴づけのためにＸ線回折（ＸＲＤ）を使用してその構造を決定した。このようなブタ無機性骨材の小片のＸＲＤでは、結晶成分の有意な変化は認められなかった（図３）。
【００９５】
得られた無機性骨材および合成ヒドロキシアパタイトのＸＲＤパターンはほぼ同一である。無機性骨材は、合成ＨＡと比較して２１１および００２で典型的なリン酸カルシウムの典型的な回折ピークを示した。無機性骨材が合成ＨＡより小さいにもかかわらず、広範な干渉線による（それにより、非常に広範なスペクトルが得られる）ＸＲＤ分析で無機骨材由来の小結晶を示す。小さな干渉線は合成ＨＡの結晶を示し、特徴的に狭いスペクトルを示した。
【００９６】
したがって、合成ＨＡの結晶構造は、無機骨材の結晶構造よりも強く、無機性骨材は骨形成過程により適合している。
【００９７】
（ＳＥＭ−ＥＤＸによって決定された化学組成）
ブタ無機骨材の全組成を、走査電子顕微鏡エネルギー分散型Ｘ線分光法によって分析した（SEM-EDX,Hitachi 4200）（図４および５）。処置した材料は、典型的なＣａ／Ｐ比が１．６４である天然の骨の無機質含有量を保持し、人骨よりもわずかに低い１．７１である(Ref:LeGeros,R.Z.,Apatites in biological system.Prog.Crystal Growth Charact.,4,1-45,1981)。ＨＡの組成を示す標準的なＣａ／Ｐ比に加えて、ブタ無機性骨材中に見出されるＭｇなどの他の無機質が存在していた。おそらくこのことが人骨と比較してＨＡ比が低くなる理由の１つであり得る。
【００９８】
〔ブタ無機性骨材の結晶の性質〕
（空隙率）
ＳＥＭによって分析した緻密骨および海綿骨の典型的な構造を、図６Ａ〜Ｅに示す。結果は、天然の骨の無機質の側面(side)相互接続孔系を証明した。一般に、ブタ骨材の天然の骨無機質は、巨視孔（図６Ａ）、密集した微細孔（図６Ｂ）、海綿骨（図６Ｄ）、および緻密骨（図６Ｃ）および海綿骨（図６Ｅ）中の結晶間の空間からなる。結晶サイズを、ＳＥＭ−ＥＤＸ画像由来の足場断面から直接測定した（図６Ｃ）。評価した孔の最も大きな軸の測定により、微結晶のサイズは、約１００ｎｍであった。系により、全体的な空隙率は６５％と高くなり、天然の骨の内面が得られた。高空隙率および内面により、移植片材料の内部への宿主骨修復物の浸透が非常に増強される。
【００９９】
（物理的性質）
測定により、無機性皮質骨の圧縮強度が４０ＭＰａであるヒト皮質骨の圧縮強度と比較して同一範囲の４０．９Ｍｐａであることが示された。合成ＨＡは高い圧縮強度を示し、周囲の宿主レシピエント骨と比較して合成材料の剛性および密度が高い。
【０１００】
無機性皮質骨の弾性係数は、最大強度で１．１Ｇｐａであり、平均強度は約６２１．４ＭＰａであった。他方では、合成ＨＡは、より高い弾性係数を示し（３４〜１００Ｇｐａ）、それにより、可撓性が低かった。
【０１０１】
【表１】
2008500094.tif 000003
【０１０２】
【表２】
2008500094.tif 000004
【０１０３】
【表３】
2008500094.tif 000005
【０１０４】
【表４】
2008500094.tif 000006
【０１０５】
〔無機性の緻密骨および海綿骨中の結晶の不均質の構成要素の分布〕
（無機性の緻密骨中の各結晶の化学組成）
図６、７、および８に示す天然の骨由来の典型的な構造が存在するにもかかわらず、緻密骨および海綿骨からいくつかの異なる種の固有の結晶が分化する可能性がある。移植片材料の化学組成は、宿主組織に組み込まれる比率および範囲ならびにその後の移植部位の物理的特徴に影響を与える。骨再造形を考慮して、移植片材料の組成も骨の溶解、石灰化、および形成に影響を与える。各結晶の化学組成を区別するために、緻密骨由来の４つの各結晶構造および海綿骨由来の６つの各結晶構造をＳＥＭ−ＥＤＸ分析のために選択した（図７および８）。
【０１０６】
緻密骨については図７（Ａ、Ｂ、Ｃ、およびＤ）に、海綿骨についての図８（Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｅ、およびＦ）に示した顕微鏡写真中に形態および成分を示す。緻密骨中の各結晶の特徴および成分により、全結晶中で原子百分率のみが異なる元素アルミニウム（Ａｌ）の存在が示唆された（緻密骨１〜緻密骨４として示した表１〜４）。元素ナトリウム（Ｎａ）は、緻密骨４の結晶中のみで出現した（図７Ｄ、表４）。緻密骨２（図７Ｂ、表２）および緻密骨３（図７Ｃ、表３）の結晶構成要素は、それぞれ図４および５中のブタ無機性骨材の全結晶構造と比較して、典型的な元素であるリン酸塩（Ｐ）またはマグネシウム（Ｍｇ）を有さなかった。各結晶のＣａ／Ｐ比は全て１未満であった。アルミニウム（Ａｌ）の原子百分率の範囲は、これら４つの結晶構造内で非常にばらつきがあった。最も小さいＡｌの比率は、緻密骨２の０．０２％であり（図７Ｂ、表２）、緻密骨４はその４００倍であり得る（図７Ｄ、表４）。
【０１０７】
緻密骨と比較して、海綿骨由来の６つの結晶構造は、類似の構成要素を示し、元素の組み合わせが異なっていた（それぞれ図８Ａ〜Ｆ、海綿骨１〜６）。６つの結晶構造のうちの４つは、元素Ａｌを欠き、海綿骨１および２のＡｌの原子百分率は極めて等価であった。全結晶構造のＣａ／Ｐ比は１未満であり、緻密骨由来の結晶構造と類似していた。緻密骨よりも海綿骨の方がナトリウムの原子百分率が高いことも認められた。
【０１０８】
本発明者らが分析した各結晶由来の構成要素の比較を、表５〜１０に列挙する。
【０１０９】
【表５】
2008500094.tif 000007
【０１１０】
【表６】
2008500094.tif 000008
【０１１１】
【表７】
2008500094.tif 000009
【０１１２】
【表８】
2008500094.tif 000010
【０１１３】
【表９】
2008500094.tif 000011
【０１１４】
【表１０】
2008500094.tif 000012
【０１１５】
ＳＥＭ−ＥＤＸ分析由来の結果により、ブタの天然の骨は概して天然の骨（Ｃａ／Ｐ比が１．６４）と類似の成分を有することが証明された。興味深いことに、結晶構造に基づいたほとんどの領域でＣａ、Ｐ、Ｃ、Ｏ、およびＭｇのような基本的元素が不均質に分布している。いくつかの結晶でＰ、Ｃ、および／またはＭｇのようないくつかの基本的元素を欠き得る場合、全部ではないが、一般に、ＡｌおよびＮａなどの余剰元素が異なる結晶構造に添加されている。
【０１１６】
［考察］
この実験では、データは、本発明のブタ無機性骨材（移植可能な生体材料）の調製方法により、ＸＲＤおよびＳＥＭ−ＥＤＸによって分析した緻密骨および海綿骨の構造、結晶構造、および化学成分がインタクトに維持されることを明確に証明している。ＡＰＢのＣａ／Ｐ比（１．６４）は、ヒドロキシアパタイト（１．６７）よりもわずかに低い。生体アパタイトは、年齢によって決定される組成、結晶サイズ、および形態、他の微量元素（Ｍｇ、炭酸塩、Ｎａ、Ｃｌ、リン酸塩など）、ならびに微量元素（ストロンチウム（Ｓｒ）、鉛（Ｐｂ）、クロム（Ｃｒ）、亜鉛（Ｚｎ）、ニッケル（Ｎｉ）など）が純粋なＨＡと異なる(Featherstone,JDB,et al.,Calcif.Tissue Int.1983;35:169-171;McConnel,D.,Biochim.Biophys.Acta.1980;32:169-174;Brown WE,Chow LC.,Ann.Res.Mater.Sci.1976;6:213-226;Arends J,Davidson C.,Calcif.Tiss.Res.1975;18:65-79;LeGeros RZ.,Arch.Oral Biol.1974;20:63-71;LeGeros RZ,Bonel G.,Calc.Tiss.Res.1978;26:111-116)。純粋なＨＡについての式Ｃａ10（ＰＯ4）6（ＯＨ）2を、生体アパタイトについての（Ｃａ、Ｎａ、Ｍｇ、Ｋ）10（ＰＯ4、ＣＯ3、ＨＰＯ4）6（ＯＨ、Ｃｌ、Ｆ）2と置換することができる。ＡＰＢの低Ｃａ／Ｐを、Ｃａとの他の微量元素の置換基（本発明の場合、Ｍｇ、Ｎａ、およびＡｌなど）によって説明することができる。元素Ｃの百分率は、Ｃａ／Ｐ比に寄与する重要な要因であり、炭酸化アパタイトは、著者が分析した全結晶構造内の主な構造である。象牙質および骨において炭酸濃度も最も高いことが報告されている(LeGeros RZ.Incorporation of magnesium in synthetic and biological apatites:a preliminary report.In:Tooth Enamel IV,Tearnhead RW,Suga S;Eds.Elsevier:Amsterdam:32-36,1984)。
【０１１７】
ＡＢＰのＸＲＤパターンにより、炭酸アパタイトの微量のＭｇとの置換に関して構造全体が十分にインタクトなままであることが示唆される。ＡＢＰは、機械的強度、弾力性、および結晶構造（巨視孔、微細孔、および結晶間の空間が含まれる）に関して物理的性質も十分に保存されている。
【０１１８】
ブタ無機性骨材の調製過程中、考慮される重要な検討材料は、７０％エタノールのみを適用し、結晶構造の変化を誘導し得る高温を回避するために２１０℃未満の温度を維持する穏やかな溶媒処置を含む。骨の結晶構造を４００℃を超える温度に加熱した場合、再結晶が起こって結晶が成長し、それにより、構造および化学組成が変化する(Raspanti M,et al.,Biomater 1994;15:433-437)。
【０１１９】
結果として、ブタ無機性骨材は、骨の天然の無機質含有量を保持し、合成ヒドロキシアパタイトと比較して複雑な組成が保存される。図６で解釈されるように、ブタ無機性骨材形態の表面／体積比は高く、相互作用のために巨大な表面（おそらく細胞の増殖、分化、およびアポトーシスの指示に必要な正確な三次元構造）が提供される。
【０１２０】
図６に示すように、研究所で生成される合成材料では天然のブタの骨の複雑な表面は複製されなかった。海綿骨および緻密骨の構造を含むそれぞれの固有の不均質な結晶構造が、細胞の増殖、分化、および骨形成の指示のための足場の複雑な網状組織をさらに構築する。天然の骨は、新規の骨の構築のための供給源を提供するだけでなく、複雑な三次元構造および生体材料の組み合わせの網状組織も提供する。骨再造形を指示するためのこのような複雑な系は、いかなる合成材料によっても再生は容易ではない。
【０１２１】
［実施例２：有機骨(organic bone)の溶解］
無機性骨材は、インビトロでの骨の溶解／沈殿分析に理想的な生体材料である。有機基質を含まないブタ無機性骨材は、天然の骨と同様の物理化学的性質および結晶構造を保持する（実施例１に示す）。しかし、一定の実験の困難さに起因する天然の骨の沈殿についてはほとんど知られていない。したがって、本実施例の目的は、骨芽細胞に遭遇するか遭遇しないブタ無機性骨材由来の結晶構造の溶解／沈殿を調査し、生理学的条件下での骨石灰化に関連する種々の所見を強調することである。沈殿物は、いくつかの元素（Ｃａおよび／またはＰが含まれる）を含む。各元素の溶解率がそれぞれの対応する部位の組成に依存するので、全沈殿物のＣａ／Ｐ比は１未満である。本発明者らは、皮質骨および海綿骨に沿った必須／微量元素の不均質の分布を報告した。生体無機性アパタイトの生物活性の現象の基礎をなす一般的に提案されている機構は、アパタイト由来のカルシウム、リン酸塩、ケイ素、および微量／必須元素の溶解を含む。
【０１２２】
したがって、実施例２の溶解／沈殿の結果として得られたＣａ／Ｐ比は、実施例１で得られた有機骨の組成物のＣａ／Ｐ比（１．６４）と異なる。
【０１２３】
［材料と方法］
〔ブタ無機性骨材〕
ブタ無機性骨材（ＡＰＢ）（移植可能な生体材料とも示される）を、実施例１に記載のように得た。処置したサンプルを、試験前にオートクレーブした（１２１℃で１５分間）。個のような処置下では、骨梁および皮質骨の構造はインタクトなままであった。ＢＤＳ(BD Biosciencez,Bedford,USA)と呼ばれる市販の合成リン酸カルシウム足場をコントロールとして使用した。
【０１２４】
〔細胞培養手順〕
骨芽細胞（ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１）を、１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）、５０Ｕｍｌ-1ストレプトマイシン、および５０μｇｍｌ-1ペニシリン(Gibco)を補足したα−最小必須培地（ＭＥＭ）中で培養した。筋芽細胞（Ｃ２Ｃ１２）を、４ｍＭグルタミン、１．５ｇ／Ｌ重炭酸ナトリウム、および４．５ｇ／Ｌグルコース、１０％ＦＢＳおよび５０Ｕｍｌ-1ストレプトマイシン、および５０μｇｍｌ-1ペニシリン(Gibco)を含むダルベッコ改変イーグル培地中で培養した。倒立位相差光学顕微鏡(Olympus,CKX41)を使用して、細胞の形態を観察した。
【０１２５】
〔足場の調製〕
０．５ｃｍ3の足場としてブタ無機性骨材（ＡＰＢ）を調製した。直径が５ｍｍの市販の合成リン酸カルシウム(BDS;BD Biosciences)の実験で使用した。
【０１２６】
無機質の沈殿を研究するために、ＡＰＢおよびＢＤＳの足場を、培養培地中にて３７℃で１日間プレインキュベートした。足場の培地とのプレインキュベーションの目的は、足場を完全に水和させることである。
【０１２７】
〔インビトロ石灰化〕
０．５ｃｍ3の足場を、２４ウェルプレートに入れた。約５×１０6個の細胞を含む１ｍｌの培養培地を、足場上に播種し、３７℃で一晩インキュベートした。実験終了まで、４日毎に培地を交換した。
【０１２８】
［分析］
〔アルカリホスファターゼアッセイ〕
アルカリホスファターゼ活性を、ＡＰアッセイキット(Sigma Diagnostics,Switzerland)を使用して測定した。簡単に述べれば、１２ウェルプレート中の後期継代細胞を、１ｍｍ3のＡＰＢで処置しないかＡＰＢで１日間、２日間、および３日間処置した。示した時点で、細胞を、氷冷ＰＢＳ（ｐＨ７．４）で２回リンスし、氷冷ＰＢＳに再懸濁し、次いで、６００×ｇで２分間遠心分離した。ペレットを、６μｌの氷冷ＰＢＳに再懸濁した。サンプル（２μｌ）を、１０μＬの可溶化溶液（ｐＨ１０．５）（５ｍＭ  Ｔｒｉｓ、１００ｍＭグリシン、および０．１％  ＴｒｉｔｏｎＸ−１００）に添加し、室温で５分間溶解させた。可溶化サンプルを、ＯＤ450で測定した。総タンパク質のＩＵ／Ｌ／μｇを得るために、アルカリホスファターゼを、１分間での１μｇのタンパク質あたりのリン酸ｐ−ニトロフェノール量（ｎｍｏｌ）として示した。総タンパク質を、標準としてウシ血清アルブミンを使用したＢｉｏ−Ｒａｄタンパク質アッセイキットＩＩ(BioRad,Glattbrugg,Switzerland)によって測定した。
【０１２９】
〔走査電子顕微鏡エネルギー分散型Ｘ線分光法〕
７日目および１４日目に培地を分析した。無機質分析は、走査電子顕微鏡エネルギー分散型Ｘ線分光法（Jeol 3010;TEM-EDX）に基づいた。
【０１３０】
播種から１週間後および２週間後、培養由来の培地をそれぞれ回収した。回収した培地を、３，０００ｒｐｍで１０分間遠心分離して、細胞破片を除去した。次いで、１００μｌの培地を、室温で炭素蒸着ＴＥＭ銅グリッドに吸収させた。過剰な液体を濾紙片で除去し、グリッドを風乾した。
【０１３１】
〔走査電子顕微鏡エネルギー分散型Ｘ線分光法〕
カバーガラス上で２週間培地のみまたはＡＰＢと共に骨芽細胞を含む培地を分析した。培地を除去し、カバーガラス上の沈殿を風乾し、Ａｕでコーティングした。サンプルを、走査電子顕微鏡エネルギー分散型Ｘ線分光法（SEM-EDX,Hitachi 4200）の使用によって分析した。
【０１３２】
〔Ｘ線回折〕
サンプリングピッチ０．０２およびスキャン速度２0／分を用いたステップスキャン手順を使用し、グラファイト逆モノクロマト(back-monochromato)を具備したShimadzu回折計（λＣｕＫα、３０ｍＡ、４０ｋＶ）を使用して、Ｘ線回折（ＸＲＤ）を記録した。培地を、室温でそれぞれ２ｍｍ3のサイズのスポンジに吸収させ、風乾した。
【０１３３】
［結果］
〔培養物の形態〕
５ｍｍ3のブタ無機性骨材（ＡＰＢ）に、骨芽細胞ＭＣ３Ｔ３−Ｅ１を播種した。１４日間のインキュベーション後、光学顕微鏡下で細胞の形態を観察した。ＡＰＢによって促進された滑らかな縁を有する非常に細長い形状を有する細胞が認められた（図９Ｂ）。正常細胞は平均サイズが３０μｍの非常に不規則な形状を有するが、ＡＰＢ指示細胞は、２００μｍまで伸長することができた（図９Ａ）。このような細長い細胞は、細胞をＡＰＢと密接に接触させずにインキュベートした場合のみで認められた（データ示さず）。さらに、細胞のＡＰＢとのインキュベーション日数の増加は、骨芽細胞の分化のマーカーであるアルカリホスファターゼ活性の増加と相関した（図１０）。培地を骨芽細胞のみから回収した場合、ＡＬＰの明確な変化は無かった。まとめると、これらの所見は、ＡＰＢが骨形成過程における骨芽細胞のインビトロ分析に適切な環境を提供することを示す。
【０１３４】
〔ＡＰＢの骨芽細胞とのインキュベート中の結晶構造の形成〕
骨芽細胞およびＡＰＢのインキュベーション中、いくつかの結晶構造が石灰化し、皿に沈殿した（図１１Ａ〜Ｃ）。表面上に孔様構造（図１１Ａ）、直線（図１１Ｂ）、またはその両方（図１１Ｃ）のいずれかを有する非常に組織化された配列を有するシェル様構造である。これらの結晶構造は、より小さなサイズからより大きなサイズへの連続した経路の後に形成される。
【０１３５】
〔ＡＰＢと共に細胞を含む培地から沈殿した成分の分析〕
ブタ無機性骨材の溶解および結晶構造の形成により、細胞分化および骨形成についての大量の情報が得られる。
【０１３６】
実施例１の実験は、ＳＥＭ−ＥＤＸによって、緻密骨および海綿骨が、一般に、Ｐ、Ｏ、Ｃ、Ｃａ、およびＭｇを含むことを示した。緻密骨および海綿骨ＡＰＢ内に各結晶中のＰ、Ｏ、Ｃ、Ｃａ、Ａｌ、Ｎａ、およびＭｇの不均質な分布が認められた。場所に依存して、各結晶構造でＣａ／Ｐモル比が異なった。三次元（３−Ｄ）構造は、３−Ｄ構造のみでなく、各結晶構造の成分によっても複雑化する。ＡＰＢと共に細胞を含む培地由来の沈殿物を試験するために、骨芽細胞を濃縮様式（６×１０5細胞／ｍｌ）で０．５ｍｍ3のサイズのＡＰＢに入れた。１週間のインキュベーション後、このような馴化培地下でのいくつかの区別された結晶構造由来の成分の分析を、ＴＥＭ−ＥＤＸによって試験した。ＡＰＢおよび細胞を含まない同一の培地を、コントロールとして使用した。使用した培地に基づいて、馴化培地から沈殿した各結晶構造の成分は、培地自体、ＡＰＢの溶解、またはその両方に由来し得る。沈殿用のコントロール培地由来の基本成分は、Ｎａ、Ｋ、Ｐ、Ｓ、Ｃａ、Ｃ、およびＭｇであった。馴化培地由来のいくつかの沈殿物は、基本成分のほとんどを含んでいた（表１１）。
【０１３７】
【表１１】
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【０１３８】
一般に、馴化培地由来の沈殿は、元素Ｃｌの原子百分率が４２％、５７％、および３４％と非常に高く、Ｃａの原子百分率が非常に低かった。対照的に、コントロール中のＣｌの原子百分率は１．５％、１．２％、および２．６％と非常に低かった。一定の元素の区別された異なるモル比を有する各結晶構造の他の類似の成分に加えて、いくつかの余剰元素（Ｃｒ、Ｓｉ、およびＣｏが含まれる）を、ＡＰＢから溶解し、いくつかの沈殿を石灰化することができる。６つの結晶構造のうちの２つは、元素Ｓｉを含んでいた。
【０１３９】
ＡＰＢ調製中のガラスベースのスライドガラスまたは容器のいずれか由来の元素Ｓｉの汚染を防止するために、顕微鏡実験の準備中にガラスと接触しない無ケイ素ＡＰＢを調製した。図１２に示すように、骨芽細胞を含むこのような無ケイ素ＡＰＢ由来の結晶構造の成分は、元素Ｓｉを含んでいた。ガラスベースのスライドガラスを使用するか使用しないコントロール培地は、試験した各沈殿物中にケイ素は認められなかった。合成リン酸カルシウム足場（ＢＤＳ）を含む同一細胞由来の沈殿も試験した。同一条件下でケイ素や微量元素は検出されなかった。
【０１４０】
時間依存性石灰化を評価するために、ＡＰＢと２週間接触させた骨芽細胞を試験した。２週間の沈殿由来の成分プロフィールは、１週間の成分プロフィールと有意に異なっていた。基本成分は、Ｓ、Ｃ、およびＳｉであった。元素Ｓｉは、試験した各固体中に沈殿していた。種々の微量元素（Ｃｒ、Ｍｎ、Ｆｅ、およびＮｉなど）も見出された（図１３Ｂ）。微量元素を含む結晶構造は、枝(brunch)様形態を示し（図１３Ａ）、十分に組織化されたニードル構造は、単純なＳｉ含有カーボネート（図１３ＣおよびＤ）またはＣｌ、Ｓｉ含有カーボネート（図１３ＥおよびＦ）をそれぞれ有していた。
【０１４１】
〔骨芽細胞依存性石灰化〕
微量元素およびＳｉの沈殿／石灰化により、特定の細胞がこの過程を調節するのかという疑問が生じた。この疑問に答えるために、２つの培養条件を準備した。一方は、細胞を添加しない通常の培養条件下で培養したＡＰＢであった。他方は、筋芽細胞、Ｃ２Ｃ１２などの非骨芽細胞と培養したＡＰＢであった。
【０１４２】
２週間ＡＰＢを含む培地から得た結晶構造を分析した。結果は、微量元素および元素Ｓｉが結晶構造と共に沈殿したことを示した（図１４Ａ、Ｂ、Ｃ）。異なる場所中の１つの結晶構造由来の成分は、異なる元素分布を示した。結晶構造の縁は、Ｃ、Ｏ、Ｓ、Ｃｌ、Ｓｉ、Ｎｉ、およびＡｌを含んでいる一方で（図１４ＡおよびＢ）、結晶の中心はＮｉ以外の同一の元素を含んでいた（図１４ＡおよびＣ）。Ｐ、Ｃａ、Ｃｒ、Ｆｅ、およびＺｎなどのいくつかの他の成分も中心で検出された。通常の培地中のＡＰＢのみ由来の沈殿／石灰化により、微量元素およびＳｉを含む結晶を形成することができ、骨芽細胞は過程に直接影響を及ぼさないことが示された。
【０１４３】
沈殿の連続的順序を研究するために、骨芽細胞の代わりに、非骨芽細胞を、ＡＰＢとインキュベートした。Ｃｒ、Ｎｉ、およびＳｉを、筋芽細胞およびＡＰＢを含む培地中で形成された結晶構造で検出することもできる（図１５Ａ、Ｂ）。結果により、沈殿／石灰化過程が骨芽細胞と無関係であることがさらに確認された。
【０１４４】
［考察］
この実験では、天然の無機性骨材足場中で細胞性無機質の沈殿が認められた。これらの条件下で、補足のない古典的な培養培地中で自発的な無機質の沈殿が検出された。骨芽細胞培養系は、インビトロでの石灰化過程の調査および移植材料に対する骨形成細胞の応答の評価のための有益なツールと見なされる。インビトロでの石灰化過程に関する有用な情報を提供するために、骨培養系においてβ−グリセロールホスフェートなどの有機リン酸塩が日常的に使用されている(Tenenbaum,H.C.,J.Dent Res.1981;60:1586-1589;Temembai,.H.C.,Heersche,J.N.,Calcif.Tissue Int.1982;34:76-79;Ecarot-Charrier,G.,et al.,J.Cell Biol.1983;96:639-643;Robey,P.G.,Termine,J.D,Calcif Tissue Int.1985;37:453-460;Gotoh,Y.,et al.,Bone Miner.1990;8:239-250)。これらの実験は、有機リン酸塩がアルカリホスファターゼによって加水分解されて遊離無機リン酸塩を放出し(Fortuna,R.,et al.,Calcif.Tissue Int.1980;30:217-225)、それにより、石灰化促進の化学ポテンシャルが得られることを明確に示した。しかし、破骨細胞の過程、非常に組織化された三次元構造、不均質な成分分布、および他のエフェクターによって天然の骨の分解の程度が様々であるので、天然の沈殿／石灰化は、非常に複雑な系であると見なされる。天然の骨からのＨＡの段階的溶解により、カルシウムイオンおよびリン酸イオンが放出され、周囲の細胞集団に影響を与えてリン酸カルシウムが再沈殿し、それにより、骨付着および骨組織への結合が増強される(Daculsi,G.,et al.,Calcif.Tissue.Int.1990;46:20-27;Bagambisa,F.B.,et al.,J.Biomed.Mater.Res.1993;27:1047-1055)。
【０１４５】
この実験では、動的無機性骨材は、骨形成のための基本構成要素だけでなく、他の微量／必須元素も提供する。４０を超える沈殿物の組成および結晶形態を、走査電子顕微鏡（ＳＥＭ）およびエネルギー分散型Ｘ線分析（ＥＤＸ）によって決定した。分析により、第１週目の調査した全ての沈殿が主な構成要素としてナトリウム、カリウム、リン酸塩、硫黄、およびカルシウムを含むことが明らかとなった。主な構成要素内で、いくつかのサンプルは、Ｃ、Ｃｒ、Ｓｉ、およびＭｇなどの他の元素からなっていた。測定したほとんどの結晶構造は、広範なＣａ／Ｐモル比を有していた（０．５と２．７との間）。コントロール培地から測定したＣａ／Ｐは、０．７〜０．９２内に非常に固定された。一旦沈殿物を２週間の石灰化培地から採取すると、沈殿の新規の組成が見出されるので、主な構成要素は減少した。主な構成要素は、元素Ｓｉを含む元素ＳまたはＣのいずれかであった。種々の微量元素が見出された。ＡＰＢのみの培地またはＡＰＢを含む非骨芽細胞の培地の分析から同一の現象が認められた。ＳＥＭ／ＥＤＸを用いた選択された培地の試験により、種々の沈殿物の構成要素の特徴的な形態および元素組成が明らかとなった。結晶構造の形態は、枝様形状ならびにケイ酸塩の典型的な構造であるニードルおよび結晶様外観などの他の形状を示した。
【０１４６】
沈殿物において一定のプロフィールが存在する。初期段階でマグネシウム（Ｍｇ）含有沈殿物が時折認められ、後期に完全に消滅した。初期にリン酸塩が沈殿し、後期にほとんど認められなかった。炭酸塩沈殿は、リン酸塩、Ｍｇ含有沈殿物と比較して異なるプロフィールを有していた。ケイ素含有沈殿物が初期段階で沈殿し、全沈殿物が後期にも一貫して生じた。ケイ素含有沈殿物由来のこのようなプロフィールは、微量元素含有沈殿物と適合した。初期段階で、元素ＣｒおよびＣｏが見出された。より多様な微量元素が後期段階で認められた。図１６Ａ、Ｂに示されるように、ＡＰＢを含む骨芽細胞の培地由来の１つの典型的な沈殿物は、他の成分（Ｃ、Ｏ、Ｎａ、およびＫ、Ａｌ、Ｓｉ）と共に種々の微量元素を有していた。この沈殿物のサイズは、約２μｍである。いくつかの元素が初期段階で見出され、且つ後期に完全に検出不可能になる理由は、初期の溶解の絶対的発生および／または認められた沈殿物によって部分的に支持される沈殿物を形成する沈殿に起因していた。Ｓｉおよび微量元素含有沈殿物の所見では、骨形成過程時に必須／微量元素の溶解／沈殿が連続して起こると結論づけることができる。
【０１４７】
さらなる調査は、任意の結晶形態（特に、ＨＡの前駆体またはは自体）を検出することができるかどうかをチェックすることであった。無定形リン酸カルシウム（ＡＣＰ）、brushit（ＤＣＰＤ）、β−リン酸三カルシウム（β−ＴＣＰ）、またはリン酸八カルシウム（ＯＣＰ）などのいくつかの可能な前駆体から生体アパタイトを形成することができることが提案されている(Brown,W.E.,Chow,L.C.,Ann.Res.Mater.Sci.1976;6:213-226;Francis,M.D.and Webb,N.C.,Calcify.Tissue Res.1971;6:335-342)。ＡＰＢのみ、骨芽細胞を含むＡＰＢ、および骨芽細胞を含む合成リン酸カルシウム（ＢＤＳ）由来のいくつかの馴化培地のＸＲＤパターン分析では３１．４および４５に典型的なピークが認められた（図１７）。ＡＰＢと共に骨芽細胞を含む培地由来の結晶が最も高いピークを示したので、培地自体または他の馴化培地由来のピークは、２番目に高いピークであるか、ほとんどピークがなかった。これらはＮａＣｌに特徴的なピークであるにも関わらず、２θのリン酸カルシウムを示すピークは３２である。骨芽細胞を含むＡＰＢ由来の３２でのピークの高さに基づいて、リン酸カルシウムが存在する可能性が高い。
【０１４８】
ＢＤＳは、市販の合成アパタイトである。これをコントロールとして使用する一方で、細胞はこのような足場の表面場に十分に増殖することができる。ＳＥＭ−ＥＤＸによるＢＤＳの成分分析により、Ｃａ／Ｐが１．３６である元素Ｃ、Ｏ、Ｓｉ、Ｐ、およびＣａが示された（図１８Ａ、Ｂ）。ＢＤＳが元素Ｓｉを含むにもかかわらず、細胞の存在下でＢＤＳの溶解時にＳｉを含む沈殿物が認められないことが、ＡＰＢ中のＳｉの原子百分率が高い（２．８７％）ことと無関係に認められた（データ示さず）。実施例１では、ＡＰＢの主成分がＰ、Ｏ、Ｃ、Ｃａ、およびＭｇであることが示された。Ｓｉおよび微量／必須元素をＳＥＭ−ＥＤＸで明らかに検出することができなかった。結果は、ＢＤＳ中のＳｉはＡＰＢ投与におけるＳｉと比較して溶解が困難なようであることを示す。合成アパタイトの溶解性が齲歯に関連する脱石灰化過程と再石灰化過程との組み合わせにおいて興味深いにもかかわらず(LeGeros,R.Z.,Prog.Crystal Growth Charact.1981;4:1-45;LeGeros,RZ.,Suga,S.,Calcif.Tissue Int.1980;32:169-174;LeGeros,RZ.,et al.,Calc.Tiss.Res.1978;26:111-116;Boskey,A.,Posner,A.S.,J.Phys.Chem.1976;80:40-45)、Ｓｉ、Ａｌ、およびＭｇのような微量元素および他の必須元素が溶解／沈殿で受容な役割を果たし得るので、カルシウム欠乏性アパタイトを形成するためのカルシウム化合物の反応を研究することは非常に難しい(Zhuoer,H.,J.analy.Atomic spectro.1994;9:11-15;Mirtchi,A.A.,et al.,Biomater.1990;11:83-88;LeGeros,R.Z.,et al.,J.Dent.Res.1982;61-342,Abstr.1482)。
【０１４９】
インビボでの溶解／沈殿の研究は、骨再造形過程を理解するために重要である。カルシウム、リン酸塩、ケイ素、および他の微量／必須元素の溶解についての生体無機性アパタイトの生物活性により、生物環境における天然の溶解性が得られる。本発明者らの所見は、生体系における溶解／沈殿の過程が生理学的条件下でのその組成および微細構造に依存するようであるという仮定を強化する。骨芽細胞はＡＰＢのインキュベーションによって高度に分化することができるにも関わらず、分化した細胞は、溶解／沈殿過程に影響を及ぼさない。ＨＡセラミックスの研究は、生物活性が微細構造と密接に関連することを示す(Nelson,D.G.,et al.,J.Ultrastruct.Res.1983;84:1-15;Daculsi,G.,et al.,Calcif.Tissue Int.1989;45:95-103)。ケイ素置換ＨＡ生体セラミックスは、純粋なＨＡ投与と比較して溶解速度が増加する(Porter,A.E.,et al.,Biomater.2003;24:4609-4620)。Ｓｉ、Ｍｇ、またはＳｉ置換ＨＡは良好な生体適合性を示し、より良好な移植生体材料と見なされる(Carlisle,E.M.,Science 1970;167:279)。
【図面の簡単な説明】
【０１５０】
【図１】処理前の動物の骨を示す図である。
【図２】移植前に骨足場を切断し、エタノールでリンスする。
【図３】ブタ無機性骨材（Ａ）および合成ヒドロキシアパタイト(hydroxypatite)（Ｂ）の無機構造を含むＸ線回折パターン分析を示す図である。
【図４】走査電子顕微鏡エネルギー分散型Ｘ線（ＳＥＭ−ＥＤＸ）由来のブタ無機性骨材構造の概観を示す図である。
【図５】Ｃａ／Ｐ比が１．６４の成分分析を示す図である。
【図６Ａ】無機性網状構造および密集構造のＳＥＭ分析由来の足場構造（全構造、３５倍）を示す図である。
【図６Ｂ】無機性密集構造のＳＥＭ分析由来の足場構造（３５００倍）を示す図である。
【図６Ｃ】無機性密集構造のＳＥＭ分析由来の足場構造（４５０００倍）を示す図である。
【図６Ｄ】無機性網状構造のＳＥＭ分析由来の足場構造（２５００倍）を示す図である。
【図６Ｅ】無機性網状構造のＳＥＭ分析由来の足場構造（８０００倍）を示す図である。
【図７】緻密骨中の各結晶構造のＳＥＭ−ＤＥＸ分析を示す図である。
【図８】海綿骨中の各結晶構造のＳＥＭ−ＤＥＸ分析を示す図である。
【図９Ａ】ブタ無機性骨材との接触前の正常な骨芽細胞３Ｔ３の形態を示す図である。
【図９Ｂ】ブタ無機性骨材との接触後の分化細胞の形態を示す図である。
【図１０】正常な骨芽細胞３Ｔ３（ＭＣ３Ｔ３）および分化した細胞（ＭＣ３Ｔ３／ＡＰＢ）のＡＬＰ活性を示すグラフである。
【図１１】小さな点を有する卵様結晶を示す図である。
【図１２】３Ｔ３細胞およびＡＰＢを含む溶液中で形成された結晶のＥＤＸの結果を示す図である。
【図１３】ＥＤＸ（Ｄ〜Ｆ）によって示された成分と共に３Ｔ３細胞およびＡＰＢを含む溶液中にて２週間で形成された結晶（Ａ〜Ｃ）の顕微鏡写真である。
【図１４】異なる位置（部位１（Ｂ）および部位２（Ｃ））でのＥＤＸによって示された成分と共にＡＰＢのみを含む溶液中にて２週間で形成された結晶（Ａ）の顕微鏡写真である。
【図１５】ＥＤＸ（Ｂ）によって示された成分と共にＣ2Ｃ12細胞およびＡＰＢを含む溶液中にて２週間で形成された結晶（Ａ）の顕微鏡写真である。
【図１６】カバーガラス（Ａ）上の沈殿物のＳＥ顕微鏡写真およびその主な成分（Ｂ）を示す図である。
【図１７】溶液中の結晶のＸＲＤパターンを示す図である。
【図１８】ＢＤＳのＳＥ顕微鏡写真（Ａ）およびＥＤＸによって検出されたその主な成分（Ｂ）を示す図である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７Ａ】
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【図７Ｂ】
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【図７Ｃ】
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【図７Ｄ】
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【図８Ａ】
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【図８Ｂ】
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【図８Ｃ】
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【図８Ｄ】
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【図８Ｅ】
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【図８Ｆ】
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【図９Ａ】
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【図９Ｂ】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３Ａ】
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【図１３Ｂ】
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【図１３Ｃ】
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【図１３Ｄ】
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【図１３Ｅ】
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【図１３Ｆ】
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【図１４Ａ】
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【図１４Ｂ】
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【図１４Ｃ】
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【図１５Ａ】
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【図１５Ｂ】
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【図１６Ａ】
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【図１６Ｂ】
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【図１７】
2008500094.tif 000048
【図１８Ａ】
2008500094.tif 000049
【図１８Ｂ】
2008500094.tif 000050
【手続補正書】
【提出日】平成19年5月28日(2007.5.28)
【手続補正１】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
移植可能な生体材料の調製方法であって、
ｂ）骨組織をボイルするステップと、
ｃ）コラーゲンを除去するために前記骨組織を処置するステップであって、コラーゲンを融解および変性させるために前記骨組織を２００〜２５０℃で処置し、コラーゲンを溶解するための溶媒でさらに処置するステップと
を含む方法。
【請求項２】
前記温度が２１０℃である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記コラーゲンを溶解するための溶媒が、エタノール、ヒドラジン、メタノール、および／または塩酸グアニジンである、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
ステップ（ｃ）の処置後にＳＥＭ−ＥＤＸによって硫黄が検出されず、これによりコラーゲンが検出されないことが示される、請求項１に記載の方法。
【請求項５】
前記ＳＥＭ−ＥＤＸが、SEM-EDX Hitachi 4200である、請求項４に記載の方法。
【請求項６】
前記ボイルステップが水中で行われる、請求項１〜５に記載の方法。
【請求項７】
前記ボイルステップが蒸留水中で行われる、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
ボイル前に前記骨組織を洗浄するステップを含む、請求項１〜７に記載の方法。
【請求項９】
前記骨組織が、機械的に、空気でまたは液体を用いて洗浄される、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
前記骨組織が水で洗浄される、請求項５〜９に記載の方法。
【請求項１１】
前記骨組織を超音波で処置するステップをさらに含む、請求項１〜１０に記載の方法。
【請求項１２】
前記骨組織を所定の形状に切断するステップｄ）をさらに含む、請求項１〜１１に記載の方法。
【請求項１３】
前記骨組織が高圧ウォータージェットを用いて切断される、請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
切断した前記骨を滅菌するステップｅ）をさらに含む、請求項１２〜１３に記載の方法。
【請求項１５】
移植可能な生体材料を包装するステップをさらに含む、請求項１〜１４に記載の方法。
【請求項１６】
得られた前記移植可能な生体材料のＣａ／Ｐ比が１．６４である、請求項１〜１５に記載の方法。
【請求項１７】
前記骨組織を水で洗浄するステップと、
前記骨組織を水でボイルするステップと、
前記ボイルした骨組織を洗浄するステップと、
前記骨組織を乾燥させるステップと、
コラーゲンを融解および変性させるために前記骨組織を２００〜２５０℃で処置するステップと、
前記コラーゲンを溶解するために前記骨組織を溶媒で処置、および／または超音波で処置するステップと、
前記溶媒を前記骨組織から蒸発させるステップと
を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項１８】
前記移植可能な生体材料において硫黄がＳＥＭ−ＥＤＸによって検出されず、これによりコラーゲンが検出されないことが示される、請求項１〜１７に記載の方法。
【請求項１９】
得られた移植可能な生体材料が無機性骨材である、請求項１〜１８に記載の方法。
【請求項２０】
得られた移植可能な生体材料が有機基質を含まない、請求項１〜１９に記載の方法。
【請求項２１】
前記方法が、超臨界状態の流動物で前記骨組織を処置するステップを含まない、請求項１〜２０に記載の方法。
【請求項２２】
移植前に前記移植可能な生体材料をインビトロで培養するステップをさらに含む、請求項１〜２１に記載の方法。
【請求項２３】
移植前に前記移植可能な生体材料に患者自身の単離細胞を播種するステップをさらに含む、請求項１〜２２に記載の方法。
【請求項２４】
生体材料を脊椎動物に移植する美容ステップをさらに含む、請求項１〜２３に記載の方法。
【請求項２５】
請求項１〜２４に記載の方法にしたがって調製された移植可能な生体材料。
【請求項２６】
前記移植可能な生体材料が骨組織から作製され、前記移植可能な生体材料において硫黄がＳＥＭ−ＥＤＸによって検出されず、これによりコラーゲンが検出されないことが示される、請求項２５に記載の移植可能な生体材料。
【請求項２７】
有機基質を含まない無機性骨材である、請求項２６に記載の移植可能な材料。
【請求項２８】
前記移植可能な生体材料のＣａ／Ｐ比が１．６４である、請求項２６〜２７に記載の移植可能な生体材料。
【請求項２９】
移植前に前記移植可能な生体材料がインビトロで培養される、請求項２６〜２８に記載の移植可能な生体材料。
【請求項３０】
移植前に前記移植可能な生体材料が患者自身の単離細胞を播種される、請求項２６〜２９に記載の移植可能な生体材料。
【請求項３１】
請求項２５〜３０に記載の移植可能な生体材料を含むパッケージまたはキット。
【請求項３２】
前記移植可能な生体材料が滅菌されている、請求項３１に記載のパッケージまたはキット。
【請求項３３】
脊椎動物に移植するための移植可能な生体材料の調製のための骨組織の使用であって、前記移植可能な生体材料中の硫黄がＳＥＭ−ＥＤＸによって検出されず、これによりコラーゲンが検出されないことが示され、前記移植可能な材料のＣａ／Ｐ比が１．６４である、使用。
【請求項３４】
前記移植可能な生体材料が有機基質を含まない無機性骨材である、請求項３３に記載の使用。
【請求項３５】
前記ＳＥＭ−ＥＤＸが、SEM-EDX Hitachi 4200である、請求項３３または３４に記載の使用。
【国際調査報告】
2008500094.tif 000051
2008500094.tif 000052
2008500094.tif 000053