(57)【要約】  ナノモル範囲の親和性でＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつアポトーシスをガン細胞または病原体感染細胞において誘導することができる組換え型の単離された抗体及びこれを含む医薬組成物が提供される。また、本発明の組換え型の単離された抗体を使用して対象においてガン又は病原体感染を処置又は診断する方法も提供される。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
アポトーシスをガン細胞または病原体感染細胞において誘導する方法であって、細胞上に特異的に発現されたＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができる組換え型の単離された抗体を細胞内で発現または接触させ、それによりアポトーシスをガン細胞または病原体感染細胞において誘導することを含む方法。
【請求項２】
ガンまたは病原体感染を処置する方法であって、ＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつ、前記ＭＨＣ−ペプチド複合体を特異的に発現するガン細胞または病原体感染細胞のアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体の治療有効量をその必要性のある対象の細胞に投与するか、または、そのような組換え型の単離された抗体の治療有効量をその必要性のある対象の細胞内で発現させ、それにより対象におけるガンまたは病原体感染を処置することを含む方法。
【請求項３】
ＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつ、前記ＭＨＣ−ペプチド複合体を特異的に発現するガン細胞または病原体感染細胞のアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体の、医薬品としての使用。
【請求項４】
ＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつ、前記ＭＨＣ−ペプチド複合体を特異的に発現するガン細胞または病原体感染細胞のアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体の、ガンまたは病原体感染の処置のために特定された医薬品を製造するための使用。
【請求項５】
ＭＨＣ−ペプチド複合体を特異的に発現するガン細胞または病原体感染細胞において前記ＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつ、前記ガン細胞または病原体感染細胞においてアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体を有効成分として含み、かつ、医薬的に許容され得るキャリアを含む、ガンまたは病原体感染を処置するための医薬組成物。
【請求項６】
前記ガン細胞または病原体感染細胞におけるアポトーシスを前記投与後または前記発現後に検出することをさらに含む請求項２に記載の方法。
【請求項７】
前記アポトーシスを検出することが、ヨウ化プロピジウムＦＡＣＳ分析、アネキシンＶ  ＦＡＣＳ分析、エチジウムホモダイマー−１染色、生／死の生存性／細胞毒性アッセイ、およびＴｕｎｎｅｌアッセイからなる群から選択される方法によって行われる請求項６に記載の方法。
【請求項８】
前記組換え型の単離された抗体が、ＦａｂフラグメントおよびｓｃＦｖからなる群から選択される請求項１〜５のいずれかに記載の方法、使用または医薬組成物。
【請求項９】
前記組換え抗体は少なくとも二価である請求項８に記載の方法、使用または医薬組成物。
【請求項１０】
前記ｓｃＦｖは、９Ｈ（配列番号１）、Ｇ１（配列番号２）またはＣＬＡ１２（配列番号１７）である請求項９に記載の方法、使用または医薬組成物。
【請求項１１】
前記ペプチドは、ＭＵＣ１、ｇｐ１００、ＨＴＥＲＴ、ＴＡＸおよびＭＡＲＴ１からなる群から選択されるポリペプチドに由来する請求項１〜５のいずれかに記載の方法、使用または医薬組成物。
【請求項１２】
前記組換え抗体は、配列番号５〜１６および配列番号１９〜２４からなる群から選択される少なくとも１つのＣＤＲを含む請求項８に記載の方法、使用または医薬組成物。
【請求項１３】
前記組換え抗体はＩｇＧサブタイプである請求項１〜５のいずれかに記載の方法、使用または医薬組成物。
【請求項１４】
前記ガンはメラノーマまたは乳ガンである請求項１〜５のいずれかに記載の方法、使用または医薬組成物。
【請求項１５】
対象においてガンまたは病原体感染を診断する方法であって：
（ａ）対象の生物学的サンプルを、ＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつ、標的のガン細胞または病原体感染細胞においてアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体と、免疫複合体形成のために好適な条件のもとで接触させること；および
（ｂ）前記免疫複合体形成を検出し、それにより対象においてガンまたは病原体感染を診断すること
を含む方法。
【請求項１６】
対象においてガンまたは病原体感染を診断する方法であって：
（ａ）対象の生物学的サンプルを、ＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつ、標的のガン細胞または病原体感染細胞においてアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体と、免疫複合体形成のために好適な条件のもとで接触させること；および
（ｂ）前記生物学的サンプルの細胞におけるアポトーシスのレベルを検出し、それにより対象においてガンまたは病原体感染を診断すること
を含む方法。
【請求項１７】
対象においてガンまたは病原体感染を診断するためのキットであって、包装材、および、ＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつ、ガン細胞または病原体感染細胞においてアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体と、前記ＭＨＣ−ペプチド複合体との間での免疫複合体形成のために好適であるとして前記包装材によって特定される少なくとも１つの薬剤を含むキット。
【請求項１８】
前記ガン細胞または病原体感染細胞におけるアポトーシスのレベルを検出するために好適であるとして前記包装材によって特定される少なくとも１つの薬剤をさらに含む請求項１７に記載のキット。
【請求項１９】
前記組換え型の単離された抗体が、ＦａｂフラグメントまたはｓｃＦｖである請求項１５〜１７のいずれかに記載の方法またはキット。
【請求項２０】
前記ｓｃＦｖは、９Ｈ（配列番号１）、Ｇ１（配列番号２）またはＣＬＡ１２（配列番号１７）である請求項１９に記載の方法またはキット。
【請求項２１】
前記抗体はＩｇＧサブタイプである請求項１５〜１７のいずれかに記載の方法またはキット。
【請求項２２】
前記ガンはメラノーマまたは乳ガンである請求項１４〜１６のいずれかに記載の方法またはキット。
【請求項２３】
ガン細胞または病原体感染細胞においてアポトーシスを誘導することができる組換え抗体。
【請求項２４】
ガン細胞または病原体感染細胞においてアポトーシスを誘導することができる組換え抗体と、医薬的に許容され得るキャリアとを含む医薬組成物。
【請求項２５】
前記組換え抗体が、ＦａｂフラグメントおよびｓｃＦｖフラグメントからなる群から選択される請求項２３または２４の組換え抗体または医薬組成物。
【請求項２６】
前記ｓｃＦｖは、配列番号１によって示されるような９Ｈ、配列番号２によって示されるようなＧ１または配列番号１７によって示されるようなＣＬＡ１２である請求項２５に記載の組換え抗体または医薬組成物。
【請求項２７】
前記組換え抗体は、配列番号５〜１６および１９〜２４からなる群から選択される少なくとも１つのＣＤＲを含む請求項２３または２４のいずれかに記載の組換え抗体または医薬組成物。
【請求項２８】
配列番号１によって示されるような組換え９Ｈ  ｓｃＦｖ。
【請求項２９】
配列番号１７によって示されるような組換えＣＬＡ１２  ｓｃＦｖ。
【請求項３０】
配列番号５〜１６および配列番号１９〜２４からなる群から選択される少なくとも１つのＣＤＲを含む組換え抗体。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ＭＨＣ−ペプチド複合体を特異的に認識し、かつ、ペプチド特異的なＭＨＣ拘束様式でアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体に関し、より具体的には、そのような組換え型の単離されたＴＣＲ様抗体を使用してガンまたは病原体感染を処置および診断する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
いくつかの表面受容体の連結がアポトーシスを誘導することが知られている。活性化されたＢ細胞では、Ｆａｓの連結により、アポトーシスが、数多くの特定のカスパーゼを活性化することによって誘導される。加えて、Ｂ細胞受容体の架橋は、異なったアポトーシス経路をＢ細胞発達の特定の段階で開始させる。
【０００３】
主要組織適合性複合体クラスＩ（ＭＨＣ−Ｉ）は、ＣＤ８１  Ｔ細胞に対するペプチド提示のための枠組みとして作用することによってヒトの免疫系において中心的な役割を果たしている（Ｂｏｏｎ  Ｔ．ｖａｎ  ｄｅｒ  Ｂ．Ｐ．、１９９６）。近年では、様々なＭＨＣ−Ｉ分子が、免疫応答の調節および微調整に関与する重要なシグナル変換分子として認められた。例えば、ＭＨＣ−Ｉのα３ドメインの架橋により、アポトーシスが休止Ｂ細胞において誘導された一方で、抗ＭＨＣ−Ｉ抗体（Ａｂ）のＢＡＬ−１はアポトーシスを活性化Ｂ細胞において誘導した。Ｔ細胞のＭＨＣ−Ｉ連結により誘導されるアポトーシス経路はＦａｓのアポトーシス経路とは明らかに異なる一方で、Ｂ細胞におけるＭＨＣ−Ｉ架橋により誘導されるアポトーシス経路は完全には理解されていない。ＭＨＣ−Ｉ架橋に続く事象の１つが、細胞内カルシウムの可動化である。従って、抗β２ミクログロブリン抗体（Ａｂ）を使用したＭＨＣ−Ｉ分子の架橋では、ｐ５３／５６ｌｙｎプロテインチロシンキナーゼおよびｐ７２ｓｙｋプロテインチロシンキナーゼのタンパク質チロシンのリン酸化が生じ、これにより、細胞内カルシウムの増大がもたらされた（Ｎａｇｙ  ＺＡ他、２００２；Ｎａｇｙ  ＺＡ他、２００３；Ｌｏｎｇｏ，Ｄ．Ｌ．、２００２；Ｖｉｄｏｖｉｃ  Ｄ，Ｔｏｒａｌ  ＪＩ．、１９９８；Ｐｅｄｅｒｓｅｎ  ＡＥ他、１９９９；Ｒｕｈｗａｌｄ  Ｍ他、１９９９；Ｍｏｒｉ  Ｍ他、１９９９；Ｇｅｎｅｓｔｉｅｒ  Ｌ他、１９９７；Ｇｅｎｅｓｔｉｅｒ  Ｌ他、１９９７；Ｓｋｏｖ  Ｓ他、１９９７）。
【０００４】
腫瘍細胞に対する細胞性免疫応答を引き起こす機構を理解することにおける著しい進歩が、ＭＨＣにより呈示された腫瘍関連抗原の特徴づけ、および、免疫認識をモニターするために開発された適切な方法論の出現によって達成された［Ａｌｔｍａｎ他、１９９６；Ｂｏｏｎ、１９９６；Ｌｅｅ他、１９９９；Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇ、２００１；Ｒｅｎｋｖｉｓｔ他、２００１］。細胞傷害性Ｔリンパ球は、抗原を、ＭＨＣ−Ｉ分子に結合した短いペプチドとして認識する［ＫｌｅｉｎおよびＳａｔｏ、２０００］。ほとんどのＭＨＣ−Ｉ提示ペプチドはプロテオソームによる細胞内タンパク質の分解に由来する［Ｎｉｅｄｅｒｍａｎｎ、２００２］。切断されたペプチドが、おそらくは、シャペロン熱ショックタンパク質によってＥＲに入る前の完全な分解から保護されて、プロセシング分子（ＴＡＰ）と会合した輸送体によって小胞体（ＥＲ）の内腔に輸送される。切り取られたペプチドがＥＲ内の組み立てられたＭＨＣ−Ｉ分子の溝に結合し、その後、この複合体が細胞表面に輸送される［Ｙｅｗｄｅｌｌ、２００１；ＹｅｗｄｅｌｌおよびＢｅｎｎｉｎｋ、２００１］。ペプチドの選択および細胞表面でのペプチド提示は様々な要因（例えば、細胞内区画における内因性または外因性のタンパク質の存在、細胞内区画におけるそのようなタンパク質の適切な分解、特定のＨＬＡ分子の溝に結合する分解されたペプチドの能力、および、細胞表面へのそのような分子の成功した輸送など）に依存する。
【０００５】
いくつかの研究では、患者の免疫系が効果的な免疫応答を腫瘍に対して誘発できないことは、多くの場合、抗原提示が良好でないためであることが明らかにされた［Ｒｅｓｔｉｆｏ他、１９９３；Ｓｅｌｉｇｅｒ他、２０００］。
【０００６】
マクロファージ、樹状細胞、腫瘍細胞またはウイルス感染細胞の表面におけるＭＨＣ−ペプチド提示を研究するために、組換え型の可溶性Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）が大腸菌で産生された。しかしながら、そのようなＴＣＲは、不安定性、および、リガンドに対する固有的に低い親和性を示した［ＷｕｌｆｉｎｇおよびＰｌｕｃｋｔｈｕｎ、１９９４］。従って、ＴＣＲと同じ特異性を伴って腫瘍関連のＭＨＣ−ペプチド複合体を認識する抗体は、腫瘍細胞による抗原提示を研究するための有益な試薬、細胞上のＭＨＣ−ペプチド複合体を可視化するための有益な試薬、および、究極的には、免疫治療期間中の特定の複合体の発現をモニターするための有益な試薬であることが認められた。加えて、そのような抗体は、組換え免疫毒素、サイトカイン分子との融合体を構築する際における標的化試薬のための良好な候補として、または、二重特異的抗体治療のための良好な候補として役立ち得る。
【０００７】
クラスＩのペプチド−ＭＨＣ複合体を特異的に認識する様々な抗体がマウス系で調製された［Ｍｕｒｐｈｙ他、１９８９；Ａｈａｒｏｎｉ他、１９９１；Ａｎｄｅｒｓｅｎ他、１９９６；Ｒｅｉｔｅｒ他、１９９７；Ｐｏｒｇａｄｏｒ他、１９９７；Ｄａｙ他、１９９７；Ｄａｄａｇｌｉｏ他、１９９７；Ｚｈｏｎｇ他、１９９７ａ；Ｚｈｏｎｇ他、１９９７ｂ；Ｋｒｏｇｓｇａａｒｄ他、２０００；Ｐｏｌａｋｏｖａ他、２０００］。しかしながら、そのような絶妙なＴ細胞受容体様特異性を有する抗体は、ファージディスプレーライブラリーからのインビトロ選択との組合せでさえ、従来のハイブリドーマ技術または免疫化法を使用して作製することが困難であることが判明している。非常に大きい非免疫ファージ抗体ライブラリーからのそのような抗体の直接的な選択が最近になって明らかにされたにすぎない［Ｃｈａｍｅｓ他、２０００；Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ  ＵＳＡ、９７（１４）：７９６９〜７４］。この経路を使用して、メラノーマ抗原ＭＡＧＥ−Ａ１をヒトＨＬＡ−Ａ１  ＭＨＣ分子との複合体で認識するファージディスプレー由来のＦａｂが単離された（すなわち、ファージ結合型）。しかしながら、そのような抗体（Ｇ８）は２５０ｎＭの範囲でＭＨＣ複合体に対する低い親和性を示した（Ｃｈａｍｅｓ  Ｐ．他、２００２、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１６９：１１１０〜８）。親和性が低いことの制約を克服するために、Ｃｈａｍｅｓ  Ｐ．他（２００２；Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１６９：１１１０〜８）は、インビトロ操作したＧ８抗体を発現するＴ細胞を移植し、細胞特異的な抗体を調製した。しかしながら、そのような抗体は、患者個々に基づく遺伝子治療操作を必要とするため、ガンまたは病原体感染を処置するために実際的ではない。
【０００８】
本発明者らは、ＴＣＲ様抗体を、メラノーマ分化Ａｇのｇｐ１００に由来するペプチドと複合体形成した安定な単鎖ＨＬＡ−Ａ２−β２分子により免疫化されたＨＬＡ−Ａ２トランスジェニックマウスから構築されたマウスｓｃＦｖファージディスプレーライブラリーから以前に単離している（Ｄｅｎｋｂｅｒｇ  Ｇ．他、Ｔｈｅ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、２００３；１７１（５）：２１９７〜２０７）。先行技術の試みとは対照的に、この可溶性の分泌型ｓｃＦｖ組換え抗体（Ｇ１）は、ＴＣＲの特異性と同様なペプチド特異的なＭＨＣ拘束様式でＨＬＡ−Ａ２−Ｇ９−２０９複合体に対する高い親和性（ナノモル濃度の範囲内、例えば、５ｎＭ）を示した（Ｄｅｎｋｂｅｒｇ  Ｇ．、２００３、上掲）。
【０００９】
本発明を実施に移しているとき、本発明者らは、ＭＨＣ−ペプチド複合体を特異的に認識する単離された組換え抗体は強力なアポトーシス誘導剤として使用することができ、従って、ガンまたは病原体感染を処置することができることを発見している。
【発明の開示】
【００１０】
本発明の１つの態様によれば、アポトーシスをガン細胞または病原体感染細胞において誘導する方法が提供され、この場合、この方法は、細胞上に特異的に発現されたＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができる組換え型の単離された抗体を細胞内で発現または接触させ、それにより、アポトーシスをガン細胞または病原体感染細胞において誘導することを含む。
【００１１】
本発明の別の態様によれば、ガンまたは病原体感染を処置する方法が提供され、この場合、この方法は、ＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつ、そのＭＨＣ−ペプチド複合体を特異的に発現するガン細胞または病原体感染細胞のアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体の治療有効量をその必要性のある対象の細胞に投与するか、または、そのような組換え型の単離された抗体の治療有効量をその必要性のある対象の細胞内で発現させ、それにより、対象におけるガンまたは病原体感染を処置することを含む。
【００１２】
本発明のさらに別の態様によれば、ＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつ、そのＭＨＣ−ペプチド複合体を特異的に発現するガン細胞または病原体感染細胞のアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体の、医薬品としての使用が提供される。
【００１３】
本発明のなおさらに別の態様によれば、ＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつ、そのＭＨＣ−ペプチド複合体を特異的に発現するガン細胞または病原体感染細胞のアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体の、ガンまたは病原体感染の処置のために特定された医薬品を製造するための使用が提供される。
【００１４】
本発明のなおさらに別の態様によれば、ＭＨＣ−ペプチド複合体を特異的に発現するガン細胞または病原体感染細胞においてそのＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつ、そのガン細胞または病原体感染細胞においてアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体を有効成分として含み、かつ、医薬的に許容され得るキャリアを含む、ガンまたは病原体感染を処置するための医薬組成物が提供される。
【００１５】
本発明のさらなる態様によれば、対象においてガンまたは病原体感染を診断する方法が提供され、この場合、この方法は、（ａ）対象の生物学的サンプルを、ＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつ、標的のガン細胞または病原体感染細胞においてアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体と、免疫複合体形成のために好適な条件のもとで接触させること；および（ｂ）免疫複合体形成を検出し、それにより、対象においてガンまたは病原体感染を診断することを含む。
【００１６】
さらに本発明のさらなる態様によれば、対象においてガンまたは病原体感染を診断する方法が提供され、この場合、この方法は、（ａ）対象の生物学的サンプルを、ＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつ、標的のガン細胞または病原体感染細胞においてアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体と、免疫複合体形成のために好適な条件のもとで接触させること；および（ｂ）生物学的サンプルの細胞におけるアポトーシスのレベルを検出し、それにより、対象においてガンまたは病原体感染を診断することを含む。
【００１７】
なおさらに本発明のさらなる態様によれば、対象においてガンまたは病原体感染を診断するためのキットが提供され、この場合、このキットは、包装材、および、ＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつ、ガン細胞または病原体感染細胞においてアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体と、該ＭＨＣ−ペプチド複合体との間での免疫複合体形成のために好適であるとして該包装材によって特定される少なくとも１つの薬剤を含む。
【００１８】
本発明のさらなる態様によれば、ガン細胞または病原体感染細胞においてアポトーシスを誘導することができる組換え抗体が提供される。
【００１９】
さらに本発明のさらなる態様によれば、ガン細胞または病原体感染細胞においてアポトーシスを誘導することができる組換え抗体と、医薬的に許容され得るキャリアとを含む医薬組成物が提供される。
【００２０】
なおさらに本発明のさらなる態様によれば、配列番号１によって示されるような組換え９Ｈ  ｓｃＦｖが提供される。
【００２１】
なおさらに本発明のさらなる態様によれば、配列番号１７によって示されるような組換えＣＬＡ１２  ｓｃＦｖが提供される。
【００２２】
なおさらに本発明のさらなる態様によれば、配列番号５〜１６および配列番号１９〜２４からなる群から選択される少なくとも１つのＣＤＲを含む組換え抗体が提供される。
【００２３】
下記に記載される本発明の好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、本発明の方法はさらに、ガン細胞または病原体感染細胞におけるアポトーシスを接触後または発現後に検出することを含む。
【００２４】
さらに本発明の好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、アポトーシスを検出することが、ヨウ化プロピジウムＦＡＣＳ分析、アネキシンＶ  ＦＡＣＳ分析、エチジウムホモダイマー−１染色、生／死の生存性／細胞毒性アッセイ、および、Ｔｕｎｎｅｌアッセイからなる群から選択される方法によって行われる。
【００２５】
なおさらに本発明の好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、組換え型の単離された抗体が、ＦａｂフラグメントおよびｓｃＦｖからなる群から選択される。
【００２６】
なおさらに本発明の好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、組換え抗体は少なくとも二価である。
【００２７】
なおさらに本発明の好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、ｓｃＦｖは、９Ｈ（配列番号１）、Ｇ１（配列番号２）またはＣＬＡ１２（配列番号１７）である。
【００２８】
なおさらに本発明の好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、ペプチドは、ＭＵＣ１、ｇｐ１００、ＨＴＥＲＴ、ＴＡＸおよびＭＡＲＴ１からなる群から選択されるポリペプチドに由来する。
【００２９】
なおさらに本発明の好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、組換え抗体は、配列番号５〜１６および配列番号１９〜２４からなる群から選択される少なくとも１つのＣＤＲを含む。
【００３０】
なおさらに本発明の好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、組換え抗体はＩｇＧサブタイプである。
【００３１】
なおさらに本発明の好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、ガンはメラノーマまたは乳ガンである。
【００３２】
なおさらに本発明の好ましい実施形態におけるさらなる特徴によれば、キットはさらに、ガン細胞または病原体感染細胞におけるアポトーシスのレベルを検出するために好適であるとして包装材によって特定される少なくとも１つの薬剤を含む。
【００３３】
本発明者らは、アポトーシスをガン細胞または病原体感染細胞において誘導する方法を提供することによって、現在知られている形態の欠点に対処することに成功している。
【００３４】
別途定義されない限り、本明細書中で使用されるすべての技術的用語および科学的用語は、本発明が属する技術分野の当業者によって一般に理解されるのと同じ意味を有する。本明細書中に記載される方法および材料と類似または同等である方法および材料を本発明の実施または試験において使用することができるが、好適な方法および材料が下記に記載される。矛盾する場合には、定義を含めて、本特許明細書が優先する。加えて、材料、方法および実施例は例示にすぎず、限定であることは意図されない。
【００３５】
図面の説明
本明細書では本発明を単に例示し図面を参照して説明する。特に詳細に図面を参照して、示されている詳細が例示として本発明の好ましい実施態様を例示考察することだけを目的としており、本発明の原理や概念の側面の最も有用でかつ容易に理解される説明であると考えられるものを提供するために提示していることを強調するものである。この点について、本発明を基本的に理解するのに必要である以上に詳細に本発明の構造の詳細は示さないが、図面について行う説明によって本発明のいくつもの形態を実施する方法は当業者には明らかになるであろう。
図１は抗原提示細胞に対するＴＣＲ様抗体の結合を示す（図１ａ〜図１ｆ）。図１ａ〜１ｃ：ＲＭＡＳ−ＨＨＤ細胞に、Ｇ９−２０９（図１ａ）、Ｇ９−２８０（図１ｂ）およびＧ９−１５４（図１ｃ）のメラノーマ分化抗原ｇｐ１００由来のＨＬＡ−Ａ２拘束ペプチド、または、コントロールのＨＬＡ−Ａ２ペプチド（図１ａ〜図１ｃ）を負荷した。ペプチド負荷細胞を下記の特異的な可溶性の精製ｓｃＦｖ抗体とインキュベーションした：ｓｃＦｖ  １Ａ７（Ｇ９−２０９に対して特異的；図１ａ）、ｓｃＦｖ  ２Ｆ１（Ｇ９−２８０に対して特異的）およびＦａｂ  Ｇ２Ｄ１２（Ｇ９−１５４に対して特異的）。抗体結合を、ＦＩＴＣ標識の抗ヒトＦａｂフラグメントを使用して検出した。図１ｄ〜図１ｆ：Ｆａｂ  Ｍ３Ａ１四量体を使用する細胞表面でのＨＬＡ−Ａ２／ＭＵＣ１−Ｄ６（ＭＵＣ＝ムチン）複合体。ＪＹ細胞（図１ｄ）、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１乳ガン細胞（図１ｅ）またはＨＬＡ−Ａ２＋成熟樹状細胞（ＤＣ；図１ｆ）をムチン由来のＭＵＣ１−Ｄ６  ＨＬＡ−Ａ２拘束ペプチドでパルス処理した。その後、ペプチドパルス処理細胞をＨＬＡ−Ａ２／ＭＵＣ１−Ｄ６に特異的なシュードモナス菌体外毒素（ＰＥ）標識のＭ３Ａ１四量体抗体または単量体抗体とインキュベーションした。Ｆａｂ単量体の結合をＰＥ標識の抗ヒトＦａｂにより検出した。コントロール＝非負荷細胞（Ｍ３Ａ１四量体により染色）。
図２は天然に存在する活性な細胞内プロセシングの後におけるＴＣＲ様抗体による特異的なＨＬＡ−Ａ２／ペプチド複合体の検出を示す（図２ａ〜図２ｉ）。ＪＹ  ＨＬＡ−Ａ２＋のＡＰＣ（図２ａ）またはＡＰＤ  ＨＬＡ−Ａ２−のＡＰＣ（図２ｂ）を、ｐＣＤＮＡコントロールベクターで、または、無傷の全長ＨＴＬＶ−１由来Ｔａｘ遺伝子を含有するｐＣＤＮＡ（ｐＣＴＡＸ）でトランスフェクションした。このウイルス転写因子遺伝子のプロセシングは、ＨＬＡ−Ａ２拘束ペプチドエピトープＴａｘ１１〜１９の生成をもたらすことが示された。トランスフェクション後１２時間〜２４時間で、細胞を、ＨＬＡ−Ａ２／Ｔａｘ１１〜１９特異的Ｆａｂ  Ｔ３Ｆ２、または、メラノーマ分化抗原ｇｐ１００のエピトープＧ９−１５４に特異的なコントロールのＧ２Ｄ１２  ＴＣＲ様Ｆａｂを使用するフローサイトメトリーによって染色した。ＪＹ細胞またはＡＰＤ細胞へのＴａｘ遺伝子の形質導入の効率を、ＧＦＰ遺伝子を有するｐＣＤＮＡのトランスフェクションによってモニターした（データは示されず）。図２ｃ：ＨＬＡ−Ａ２＋  ＲＳＣＤ４細胞およびＨＬＡ−Ａ２−  ＨＵＴ１０２細胞（これらは、ＨＴＬＶ−１が感染したヒトＣＤ４＋  Ｔ細胞の系統である）を、示されたようにＰＥ標識のＦａｂ四量体Ｔ３Ｆ２およびコントロールＧ２Ｄ１２で染色した。図２ｄ〜図２ｉ：活性な細胞内プロセシングの後におけるＨＬＡ−Ａ２／Ｔａｘ複合体の免疫組織化学的染色。ＪＹ  ＨＬＡ−Ａ２＋のＡＰＣまたはＨＬＡ−Ａ２−のＡＰＤ  ＡＰＣを、Ｔａｘ遺伝子を含有するｐＣＤＮＡ発現ベクター（図２ｄ、図２ｅ、図２ｇ、図２ｈ）、または、発現ベクター単独（図２ｆ、図２ｉ）でトランスフェクションした。トランスフェクション後１２時間〜２４時間で、細胞をポリ−Ｌ−リシン被覆ガラス製スリップに吸着させ、ＨＬＡ−Ａ２／Ｔａｘ特異的Ｆａｂ  Ｔ３Ｆ２（図２ｄ、図２ｅ、図２ｆ、図２ｈ、図２ｉ）、または、メラノーマｇｐｌ００のＨＬＡ−Ａ２／Ｇ９−１５４エピトープに特異的なＴＣＲ様Ｆａｂ  Ｇ２Ｄ１２（図２ｇ）で染色した。図２ｅは、図２ｄに示された像（ｘ４０）の拡大（ｘ６０）である。
図３はフローサイトメトリーによって測定されたときの、ペプチドパルス処理されたＪＹ  ＡＰＣ（図３ａ〜図３ｃ）、メラノーマＦＭ３Ｄ細胞（図３ｄ〜図３ｆ）またはｋｂ３−１細胞（図３ｇ〜図３ｈ）に対するｇ１ｓｃＦｖの結合を示す。細胞を、示されるようなＧ９−２８０ペプチド、Ｇ９−２０９ペプチド、Ｇ９−２０９Ｍペプチド、または、Ｔａｘ  ＨＬＡ−Ａ２拘束ペプチドにより３７℃で３時間パルス処理した。黒色＝非負荷細胞。図３ａ〜図３ｃ：細胞にＧ９−２０９ＭペプチドおよびＧ９−２８０ペプチドを負荷し、細胞を可溶性の精製Ｇ１  ｓｃＦｖ抗体（図３ｃ）、抗ＨＬＡ抗体Ｗ６／３２（図３ａ）または抗ＨＬＡ−Ａ２抗体ＢＢ７．２（図３ｂ）とインキュベーションした。結合した抗体を、ＦＩＴＣ標識の抗Ｍｙｃ抗体を使用して検出した。Ｗ６／３２抗体およびＢＢ７．２抗体はともに細胞表面のＨＬＡ−ペプチド複合体を検出した一方で（図３ａおよび図３ｂ）、Ｇ１抗体は、ＨＬＡ−Ｇ９−２８０複合体ではなく、ＨＬＡ−Ｇ９−２０９Ｍ複合体を特異的に検出したこと（図３ｃ）に留意すること。図３ｄ〜図３ｆ：メラノーマＦＭ３Ｄ細胞を、Ｇ９−２０９Ｍ（図３ｅ）、Ｇ９−２０９（図３ｆ）またはコントロールＧ９−２８０（図３ｄ、図３ｅおよび図３ｆ）のｇｐ１００由来ペプチドでパルス処理し、続いて、ＢＢ７．２抗ＨＬＡ−Ａ２抗体（図３ｄ）またはＧ１  ｓｃＦｖ抗体（図３ｅ、図３ｆ）で染色した。ＢＢ７．２抗体は、Ｇ９−２８０コントロールペプチドでパルス処理された細胞を検出した一方で（図３ｄ）、Ｇ１抗体は、Ｇ９−２０９（図３ｆ）またはＧ９−２０９Ｍ（図３ｅ）でパルス処理された細胞を特異的に検出したことに留意すること。変異型Ｇ９−２０９Ｍペプチドが負荷されたＧ１陽性細胞の割合が、Ｇ９−２０９ペプチドが負荷された細胞の割合よりも著しく大きかったことにもまた留意すること。図３ｇ〜図３ｈ、ＨＬＡ−Ａ２陰性ＫＢ３−１細胞をＧ９−２０９ＭまたはＧ９−２８０のｇｐ１００由来ペプチドでパルス処理し、ＢＢ７．２抗体（図３ｇ）またはＧ１  ｓｃＦｖ抗体（図３ｈ）で染色した。内因性ＨＬＡ−Ａ２分子を有しない細胞における染色細胞の非存在に留意すること。
図４はＧ１  ｓｃＦｖ抗体によるメラノーマ細胞の染色を示す免疫組織化学分析である（図４ａ〜図４ｇ）。ＨＬＡ−Ａ２陽性のｇｐ１００発現メラノーマ細胞（ＦＭ−３−２９、Ｍ−ｗｗ、Ｍ−ＰＡＴ、Ｍ−１４１、ＦＭ３−Ｄ；図４ａ〜図４ｄおよび図４ｆ）またはＨＬＡ−Ａ２陰性のｇｐ１００発現メラノーマ細胞（Ｇ−４３；図４ｅ）、あるいは、コントロール乳ガン細胞（ＭＤＡ−ＭＢ−２３１；図４ｇ）をＧ１  ｓｃＦｖ抗体で染色した。細胞（５ｘ１０６個）を、１０％ウシ胎児血清（ＦＣＳ）を含有するＲＰＭＩ培養培地において２０μｇ〜３０μｇのＧ１  ｓｃＦｖと氷上で１時間インキュベーションし、その後、ＨＲＰ−抗Ｍｙｃ抗体と氷上で４５分間インキュベーションした。細胞懸濁物を、記載されたように（ＨａｒｌｏｗおよびＬａｎｅ、１９８８）、０．１％のポリ−Ｌ−リシン（Ｓｉｇｍａ）で被覆されたガラス製スライドガラスに載せた。その後、細胞を室温で１時間インキュベーションし、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）により３回洗浄し、ＤＡＢ＋溶液（Ｄａｋｏ）と１分間インキュベーションし、その後、過剰な染色試薬をＰＢＳにより洗い流した。細胞の核をヘマトキシリン（Ｓｉｇｍａ）により染色した。ＦＭ３−Ｄ、ＦＭ−３−２９、Ｍ−ｗｗ、Ｍ−ＰＡＴ、Ｍ−１４１およびＧ−４３はメラノーマ患者由来のメラノーマ細胞株である；ＭＤＡ−ＭＢ−２３１は乳ガン患者由来の細胞株である。
図５はペプチドパルス処理されたＡＰＣに対するＧ１  ｓｃＦｖの細胞毒性を示すＦＡＣＳ分析である（図５ａ〜図５ｄ）。ＲＭＡＳ−ＨＨＤ（示されず）およびＪＹのＡＰＣにＧ９−２０９またはコントロールのＴａｘペプチドを負荷した。ペプチド負荷細胞を続いて、２５μｇ〜５０μｇのＧ１  ｓｃＦｖとインキュベーションし（図５ｃおよび図５ｄ）、または、未処理のままにした（図５ａおよび図５ｂ）。細胞を抗アネキシンＶ（初期アポトーシスについてのマーカー）およびヨウ化プロピジウム（ＰＩ）で染色し、フローサイトメトリーに供した。Ｇ９−２０９ペプチドが負荷された細胞においてＧ１  ｓｃＦｖ抗体の存在下でのアネキシンＶ標識細胞（図５ｃ）が、コントロールのＴａｘペプチドが負荷された細胞（図５ｄ）と比較して著しく増大していることに留意すること。Ｇ１  ｓｃＦｖ抗体の非存在下では、アネキシンＣの標識化における差が、Ｇ９−２０９が負荷された細胞（図５）と、コントロールのＴａｘペプチドが負荷された細胞との間で観測されないことにもまた留意すること。
図６はメラノーマ細胞に対する、Ｇ１  ｓｃＦｖ抗体を用いた細胞毒性アッセイを示すグラフである。様々なメラノーマ細胞株［ＨＬＡ−Ａ２＋／ｇｐ１００＋の細胞（５２６、５０１、６２４）、ＨＬＡ−Ａ２−／ｇｐ１００＋の細胞（Ｇ−４３）およびＨＬＡ−Ａ２＋／ｇｐ１００−の細胞（１９３８）］を、増大する濃度のＧ１  ｓｃＦｖ抗体とインキュベーションし、タンパク質合成の阻害を、細胞タンパク質内への３Ｈ−ロイシンの取り込みを測定することによって求めた。ＩＣ５０を、タンパク質合成を５０％阻害するために要求されるＧ１  ｓｃＦｖの濃度として求めた。ＩＣ５０が、５２６、６２４および５０１Ａのメラノーマ細胞株については６０μｇ／ｍＬであることが見出された。これらの結果は、ＴＣＲ様抗体がメラノーマ標的細胞においてアポトーシスを誘導することができることを明らかにしている。
図７はペプチドパルス処理されたＡＰＣに対するＧ１  ｓｃＦｖ−ＰＥ３８の細胞傷害活性を示すグラフである（図７ａ〜図７ｃ）。ＴＣＲ様抗体Ｇ１をシュードモナス菌体外毒素（ＰＥ）Ａの短縮化型ＰＥ３８に融合した。ＲＭＡＳ−ＨＨＤ細胞（図７ａ）またはＪＹ細胞（図７ｂ）に、ｇｐ１００に由来するＧ９−２０９ＭおよびＧ９−２８０ＶのＨＬＡ−Ａ２拘束ペプチド、Ｔ８６５ペプチド（テロメラーゼ触媒サブユニットに由来する）、ＴＡＸペプチド（ＨＴＬＶ−１のＴａｘタンパク質に由来する）、または、Ｂ３（Ｆｖ）−ＰＥ３８（Ｌｅｗｉｓ  Ｙ抗原に対するコントロールの非特異的免疫毒素）を負荷した。ペプチド負荷細胞を、増大する濃度のＧ１  ｓｃＦｖ−ＰＥ３８とインキュベーションした。タンパク質合成を細胞タンパク質内への３Ｈ−ロイシンの取り込みによって求めた。特異的な毒性が、特異的なＨＬＡ−Ｇ９−２０９複合体の存在下でＧ９−２０９Ｍペプチドが負荷された細胞において観測されたことに留意すること。図７ｃ：過剰な（０．１５ｍｇ／ｍＬ〜０．２５ｍｇ／ｍＬ）の示されたｓｃＨＬＡ−Ａ２−ペプチド複合体がＧ１  ｓｃＦｖ−ＰＥ３８（２５ｎｇ／ｍＬ〜５０ｎｇ／ｍＬ）の添加前にウェルに加えられる。コントロールではＭＨＣ−ペプチド複合体を添加しなかった。ｓｃＨＬＡ−Ａ２−Ｇ９−２０９複合体を発現する細胞におけるタンパク質合成の完全な阻害に留意すること。
図８はＴＣＲ様抗体の内在化（図８ａ〜図８ｃ）およびメラノーマ細胞の殺傷（図８ｄ〜図８ｅ）を示す免疫染色（図８ａ〜図８ｃ）およびグラフ（図８ｄ〜図８ｅ）である。図８ａ〜図８ｃ：ｇｐ１００の２８０エピトープを標的化するＴＣＲ様抗体２Ｆ１  ｓｃＦｖをシュードモナス菌体外毒素（ＰＥ）Ａの短縮化型ＰＥ３８に融合し、ＦＩＴＣで標識した。蛍光を、３７℃において、時間０（図８ａ）、１５分（図８ｂ）および３６０分（図８ｃ）で共焦点顕微鏡によって追った。キャッピングが１５分後および３６０分後に観測され、効率的な内在化を示す著しい蛍光が細胞質において観測された。図８ｄ〜図８ｅ：様々な患者に由来するメラノーマ細胞株の（細胞タンパク質内への３Ｈ−ロイシンの取り込みを測定することによって追跡された）タンパク質合成に対する、ｇｐ１００に向けられた２Ｆ１（図８ｄ）、または、ＭＡＲＴ１由来のＨＬＡ−Ａ２／ペプチド複合体に向けられたＣＬＡ１２  ｓｃＦｖ（図８ｅ）の影響を示すグラフ。タンパク質合成の阻害を、抗体処理を受けなかった細胞の百分率として計算した。すべてのＨＬＡ−Ａ２＋／ｇｐ１００＋のメラノーマ細胞（５２６、５０１Ａ、６２４．３８）が２Ｆ１の細胞毒性に対して感受性であった一方で、ＨＬＡ−Ａ２−／ｇｐ１００＋のメラノーマ細胞株（Ｇ−４３）またはＨＬＡ−Ａ２＋／ｇｐ１００−のメラノーマ細胞株（１９３８）は抗体処理に対して抵抗性であったこと（図８ｄ）に留意すること。比較のために、Ｇ−４３細胞の細胞合成の阻害ではなく、６２４−３８細胞および５２６細胞の細胞合成の阻害に対するＣＬＡ１２抗体（配列番号１７）の影響（図８ｅ）に留意すること。
図９はネイクド（毒素非含有）ＴＣＲ様抗体ｓｃＦｖフラグメントにより誘導されたメラノーマ細胞の細胞死を示すＦＡＣＳ分析である（図９ａ〜図９ｊ）。図９ａ〜図９ｈ：ＨＬＡ−Ａ２＋／抗原性ペプチド＋の細胞（図９ｅ〜図９ｈ）、ＨＬＡ−Ａ２−／抗原性ペプチド＋の細胞（図９ｃ〜図９ｄ）、または、ＨＬＡ−Ａ２＋／抗原性ペプチド−の細胞（図９ａ〜図９ｂ）を、ｇｐ１００由来ペプチドに向けられたネイクドＴＣＲ様抗体フラグメントの２Ｆ１（図９ａおよび図９ｃ）、９Ｈ（図９ｂおよび図９ｇ）およびＧ１（図９ｆ）、ＭＡＲＴ１由来ペプチドに向けられたＣＬＡ１２ネイクドＴＣＲ様抗体（図９ｄおよび図９ｅ）、または、１Ａ７コントロール抗体（これはＨＬＡ−Ａ２−Ｇ９−２０９Ｍに対して特異的であるが、ＨＬＡ−Ａ２−Ｇ９−２０９複合体を認識しない）で処理した。細胞死の測定をヨウ化プロピジウム（ＰＩ）フローサイトメトリー染色によって行い、ＰＩ陽性細胞の割合を示す。図９ｉ〜図９ｊ：ｇｐ１００＋／ＨＬＡ−Ａ２＋のメラノーマ細胞（６２４）をＧ１抗体（これはＨＬＡ−Ａ２−Ｇ９−２０９複合体に対して特異的である）（図９ｊ）またはコントロール抗体１Ａ７（図９ｉ）とインキュベーションした。細胞死の測定をヨウ化プロピジウム（ＰＩ）およびアネキシンＶのフローサイトメトリー染色によって行い、陽性細胞の割合を示す。
図１０は完全なＩｇＧ分子へのＴＣＲ様抗体ｓｃＦｖフラグメントの転換、メラノーマ細胞における細胞死の誘導を示すフロ−サイトメトリー分析である（図１０ａ〜図１０ｄ）。ｇｐ１００のＨＬＡ−Ａ２／Ｇ９−２０９ペプチドを標的化するＴＣＲ様抗体９Ｈを完全なＩｇＧ分子に転換し、ペプチドパルス処理されたＪＹ細胞に対するその反応性を調べた（図１０ａ〜図１０ｄ）。４つの異なるトランスフェクションされたクローンが示される：１−４０（図１０ａ）、１−３５（図１０ｂ）、１−１２（図１０ｃ）および１−６５（図１０ｄ）。赤色：Ｇ９−２０９、緑色：ＥＢＶ、青色：Ｍｕｃｌ、紫色：Ｔａｘ、黒色：ＣＭＶ。コントロールは様々なＨＬＡ−Ａ２拘束ペプチド（Ｔａｘ、ＥＢＶ、Ｍｕｃｌ、ＣＭＶ）である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００３６】
本発明は、ＭＨＣ−ペプチド複合体を発現する細胞におけるアポトーシスをペプチド特異的なＭＨＣ拘束様式で誘導する方法に関する。具体的には、本発明は、ＭＨＣ−ペプチド複合体とナノモル濃度の範囲での親和性を伴って特異的に結合することができるネイクド型の毒素非含有かつ非常に強力な抗体を使用してガンまたは病原体感染を診断および処置するために使用することができる。
【００３７】
本発明に従ってガンまたは病原体感染を診断および処置する方法の原理および操作は、図面および付随する説明を参照してより良く理解される。
【００３８】
本発明の少なくとも１つの実施形態を詳しく説明する前に、本発明は、その適用において、下記の説明において示される細部、または、実施例によって例示される細部に限定されないことを理解しなければならない。本発明は他の実施形態が可能であり、または、様々な方法で実施することができ、または、様々な方法で実施される。また、本明細書中で用いられる表現法および用語法は記述のためであって、限定であると見なしてはならないことを理解しなければならない。
【００３９】
主要組織適合性複合体クラスＩ（ＭＨＣ−Ｉ）は、ＣＤ８１  Ｔ細胞に対するペプチド提示のための枠組みとして作用することによってヒトの免疫系において中心的な役割を果たしている（Ｂｏｏｎ  Ｔ．ｖａｎ  ｄｅｒ  Ｂ．Ｐ．、１９９６）。ＭＨＣ複合体（ＨＬＡ−Ａ２−β２ミクログロブリン）によって提示されるペプチドは、プロテアソームを介して得られる、様々な内因的に発現したタンパク質、外因性タンパク質（例えば、病原体（例えば、ウイルスまたは細菌など）に由来するタンパク質）および／またはガン関連タンパク質（例えば、ｇｐ１００メラノーマ分化タンパク質）の分解産物である。ＭＨＣ−ペプチド複合体は、その後、細胞傷害性Ｔリンパ球によって抗原として認識される［ＫｌｅｉｎおよびＳａｔｏ、２０００］。
【００４０】
マクロファージ、樹状細胞、腫瘍細胞またはウイルス感染細胞の表面におけるＭＨＣ−ペプチド提示を研究するために、可溶性のＴ細胞受容体（ＴＣＲ）が大腸菌で産生された。しかしながら、そのようなＴＣＲは不安定であり、そのリガンドに対する低い親和性を示した［ＷｕｌｆｉｎｇおよびＰｌｕｃｋｔｈｕｎ、１９９４］。いくつかの研究では、ＴＣＲ様抗体をマウス系で調製することが試みられた［Ｍｕｒｐｈｙ他、１９８９；Ａｈａｒｏｎｉ他、１９９１；Ａｎｄｅｒｓｅｎ他、１９９６；Ｒｅｉｔｅｒ他、１９９７；Ｐｏｒｇａｄｏｒ他、１９９７；Ｄａｙ他、１９９７；Ｄａｄａｇｌｉｏ他、１９９７；Ｚｈｏｎｇ他、１９９７ａ；Ｚｈｏｎｇ他、１９９７ｂ；Ｋｒｏｇｓｇａａｒｄ他、２０００；Ｐｏｌａｋｏｖａ他、２０００］。しかしながら、絶妙なＴ細胞受容体様特異性を有する抗体は、ファージディスプレーライブラリーからのインビトロ選択との組合せでさえ、従来のハイブリドーマ技術または免疫化法を使用して作製することが困難であることが判明している。非常に大きい非免疫ファージ抗体ライブラリーからのそのような抗体の直接的な選択が最近になって明らかにされたにすぎない［Ｃｈａｍｅｓ他、２０００、上掲］。この経路を使用して、メラノーマ抗原ＭＡＧＥ−Ａ１をヒトＨＬＡ−Ａ１  ＭＨＣ分子との複合体で認識するファージクローン（Ｇ８）が単離された。しかしながら、ＭＨＣ−ペプチド複合体に対するこのＧ８ファージの親和性は比較的低かった（２５０ｎＭ）。親和性が低いことの制約を克服するために、Ｃｈａｍｅｓ  Ｐ．他（２００２；Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１６９：１１１０〜８）は、インビトロ操作したＧ８抗体をＴ細胞に埋め込み、細胞特異的な抗体を調製した。しかしながら、そのような抗体は、患者個々に基づく遺伝子治療操作を必要とするため、ガンまたは病原体感染を処置するために実際的ではない。
【００４１】
本発明者らは、Ｇ１  ＴＣＲ様抗体を、Ｇ９−２０９メラノーマ特異的ペプチドと複合体形成した安定な単鎖ＨＬＡ−Ａ２−β２分子により免疫化されたＨＬＡ−Ａ２トランスジェニックマウスから構築されたマウスｓｃＦｖファージディスプレーライブラリーから以前に単離している（Ｄｅｎｋｂｅｒｇ  Ｇ．他、Ｔｈｅ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、２００３；１７１（５）：２１９７〜２０７）。先行技術の試みとは対照的に、単離され、かつ、可溶性である（すなわち、ファージクローンとしてでない）このｓｃＦｖ組換え抗体（Ｇ１）は、ＴＣＲの特異性と同様なペプチド特異的なＭＨＣ拘束様式でＨＬＡ−Ａ２−Ｇ９−２０９複合体に対する高い親和性（ナノモル濃度の範囲内、例えば、５ｎＭ）を示した（Ｄｅｎｋｂｅｒｇ  Ｇ．、２００３、上掲）。
【００４２】
先行技術と際立って対照的に、本発明者らは、ＭＨＣ−ペプチド複合体とナノモル濃度の範囲（例えば、５ｎＭ）での親和性を伴って特異的に結合するＴＣＲ様組換え型の単離された抗体（すなわち、無細胞）が、そのような複合体を発現する細胞においてアポトーシスを誘導することができることを発見している。加えて、本発明者らは新しい組換え型の単離されたｓｃＦｖ抗体［クローン９Ｈ（配列番号１）およびＣＬＡ１２（配列番号１７）］を大きなヒト合成単鎖Ｆｖ抗体ライブラリーから発見している［Ａｚｒｉｅｌ−Ｒｏｓｅｎｆｅｌｄ  Ｒ、Ｖａｌｅｎｓｉ  Ｍ、Ｂｅｎｈａｒ  Ｉ、インビボ形成されたＣＤＲを一般的なフレームワーク領域に入れ替えることに基づく配置可能な単鎖抗体のヒト合成コンビナトリアルライブラリー、Ｊ  Ｍｏｌ  Ｂｉｏｌ、２００４（１月２日）；３３５（１）：１７７−９２］。これらの抗体は、ＨＬＡ−Ａ２−Ｇ９−２０９複合体（ｓｃＦｖ  ９Ｈ）またはＨＬＡ−Ａ２−ＭＡＲＴ１複合体（ｓｃＦｖ  ＣＬＡ１２）と、０．５ｎＭ（ｓｃＦｖ  ９Ｈについて）または１０ｎＭ（ｓｃＦｖ  ＣＬＡ１２について）の親和性を伴って特異的に結合することができる。
【００４３】
従って、図３ａ〜図３ｈ、図５ａ〜図５ｄ、図６および図９ａ〜図９ｊ、ならびに、下記の実施例の節において示されるように、以前に単離されたＧ１抗体（Ｄｅｎｋｂｅｒｇ他、２００３、上掲）、９Ｈ抗体（配列番号１）およびＣＬＡ１２抗体（配列番号１７）を、特定のＭＨＣ−ペプチド複合体を発現する細胞（例えば、ガン細胞）のアポトーシスをペプチド特異的なＨＬＡ拘束様式で選択的に誘導するためのネイクド型の毒素非含有かつ強力な薬剤として使用することができる。
【００４４】
従って、本発明の１つの態様によれば、アポトーシスをガン細胞または病原体感染細胞において誘導する方法が提供される。この方法は、細胞上に特異的に発現されたＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができる組換え型の単離された抗体を細胞内で接触または発現させることによって行われる。
【００４５】
本明細書中で使用される用語「アポトーシス」は、細胞が「細胞自殺」プログラムを実行するプログラム化された細胞死を示す。アポトーシスは、胚発生、免疫系の調節および恒常性を含む数多くの生理学的事象において重要な役割を果たしている。従って、アポトーシスは、多様なシグナルに対する応答（例えば、四肢および神経の発達、神経変性疾患、放射線療法および化学療法など）において行われるものであり得る。アポトーシスの過程は通常、ミトコンドリアの酸化の非共役、ニコチンアデニンジヌクレオチドリン酸［ＮＡＤ（Ｐ）Ｈ］のレベルの低下、チトクロームｃの放出、カスパーゼの活性化、ＤＮＡ断片化、および、原形質膜の外側小葉へのホスファチジルセリンの外在化（膜のリン脂質は通常、脂質二重層の内側小葉に拘束される）によって特徴づけられる。
【００４６】
本明細書中で使用される表現のＭＨＣ−ペプチド複合体は、任意のＭＨＣ分子（または複合体）とペプチドとの間で形成されるタンパク質複合体を示す。ＭＨＣの用語は、数クラスのＭＨＣ複合体（例えば、ＭＨＣクラスＩ、ＭＨＣクラスＩＩ、ＭＨＣクラスＩＩＩなど）を包含する。本発明の１つの好ましい実施形態によれば、ＭＨＣの用語はＭＨＣクラスＩを示す。様々なＭＨＣクラスＩ分子がほとんどの細胞の表面で発現し、ＣＤ８陽性の細胞傷害性ＴＣ細胞によって認識される。ＭＨＣクラスＩ分子は、αサブユニットおよびβサブユニットから構成されるヘテロ二量体である。αサブユニットは３つの構造的ドメイン（α１、α２、α３）を含み、ＭＨＣ遺伝子クラスター（例えば、ＨＬＡ−Ａｌ遺伝子またはＨＬＡ−Ａ２遺伝子）によってコードされる。α１およびα２の構造的ドメインは会合して、分子のペプチド結合ポケットおよび膜遠位領域を形成する。αサブユニットの第３の構造的ドメイン（α３）はβサブユニットのβ２ミクログロブリン（β２ｍ）と非共有結合的に会合し、分子の膜近位領域を形成する。β２ｍはＭＨＣ遺伝子クラスターによってコードされない。
【００４７】
ＭＨＣ分子に結合するペプチドは、タンパク質のプロテアソーム分解によって得られる任意のペプチドであることが可能である。そのようなタンパク質は、病原体［細菌、ウイルス、菌類など］に由来する病原性タンパク質、ならびに、通常、正常な細胞では発現されず、むしろ、ガン性細胞または前ガン性細胞において特有に発現するタンパク質（例えば、腫瘍促進因子タンパク質、腫瘍分化タンパク質など）であり得る。ＭＨＣ−ペプチド複合体の限定されない例には、ＨＬＡ−Ａ２−Ｇ９−２０９、ＨＬＡ−Ａ２−Ｇ９−２８０およびＨＬＡ−Ａ２−ＭＡＲＴ１が含まれる。さらなる例が下記の実施例の節において示される。
【００４８】
好ましくは、ＭＨＣ−ペプチド複合体のペプチドは、ＭＵＣ１（Ｃｏｈｅｎ他、２００２を参照のこと）、ｇｐ１００（ＧｅｎＢａｎｋアクセション番号ＡＡＢ３１１７６）、ＨＴＥＲＴ（ＧｅｎＢａｎｋアクセション番号ＡＡＤ３００３７）、ＴＡＸ（Ｃｏｈｅｎ他、２００３を参照のこと）およびＭＡＲＴ１（ＧｅｎＢａｎｋアクセション番号Ｑ１６６５５）などのタンパク質に由来する。
【００４９】
本発明の方法によれば、組換え型の単離された抗体は、細胞上に特異的に発現されたＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができる。例えば、図３ａ〜図３ｈに示されるように、抗原性ペプチドでパルス処理された細胞が、特定のＨＬＡ−Ａ２対立遺伝子を発現したときにだけ、Ｇ１抗体により特異的に標識された。加えて、図４ａ〜図４ｇに示されるように、Ｇ１のＴＣＲ様抗体は、ｇｐ１００由来のＧ９−２０９ペプチドを発現する天然の非パルス処理メラノーマ細胞を特異的に認識した。
【００５０】
本明細書中で使用される用語「組換え抗体」には、無傷の分子ならびにその機能的フラグメント、例えば、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、または、組換えＤＮＡ技術によって少なくとも部分的に作製される抗原のエピトープに対する単一ドメイン分子（例えば、ＶＨおよびＶＬなど）などが含まれる。これらの機能的な抗体フラグメントは下記のように定義される：（１）Ｆａｂ、これは、抗体分子の一価の抗原結合性フラグメントを含有し、無傷の軽鎖と、１つの重鎖の一部とを生じさせるために完全な抗体を酵素パパインで消化することによって作製することができるフラグメントである；（２）Ｆａｂ’、これは、無傷の軽鎖と、重鎖の一部とを生じさせるために完全な抗体をペプシンで処理し、その後、還元することによって得ることができる抗体分子のフラグメントであり、２つのＦａｂ’フラグメントが１個の抗体分子について得られる；（３）（Ｆａｂ’）２、これは、完全な抗体を酵素ペプシンで処理し、その後の還元を行わないことによって得ることができる抗体のフラグメントであり、Ｆ（ａｂ’）２は、２つのジスルフィド結合によって一緒になっている２つのＦａｂ’フラグメントの二量体である；（４）Ｆｖ、これは、２つの鎖として発現された軽鎖の可変領域および重鎖の可変領域を含有する遺伝子操作されたフラグメントとして定義される；（５）単鎖抗体（「ＳＣＡ」）、これは、遺伝子融合された単鎖分子（ｓｃＦｖ）として、軽鎖の可変領域および重鎖の可変領域を好適なポリペプチドリンカーによって連結されて含有する遺伝子操作された分子である；および（６）単一ドメイン抗体は、抗原に対する十分な親和性を示すＶＨドメインまたはＶＬドメインの１個だけから構成される。
【００５１】
本明細書中で使用される用語「抗体」は、免疫化および組換えファージディスプレー技術によって作製された抗体を含むだけでなく、本発明のＭＨＣ−ペプチド複合体に特異的に結合することができる少なくとも１つの相補性決定領域（ＣＤＲ）を含むように作製される任意のポリペプチドを含む（例えば、Ａｚｒｉｅｌ−Ｒｏｓｅｎｆｅｌｄ  Ｒ他、２００４、Ｊ  Ｍｏｌ  Ｂｉｏｌ．、３３５（ｌ）：１７７〜９２を参照のこと）。従って、本発明の抗体は、抗体の少なくとも１つのＣＤＲのコード配列を含むポリヌクレオチド配列から（本明細書中下記においてさらに記載されるように）発現させることができる。
【００５２】
ＭＨＣ−ペプチド複合体に対する抗体のアビディティを増大させるために、本発明の抗体は好ましくは少なくとも二価である。そのような抗体は、この分野で知られている方法を使用して、ＩｇＧサブタイプ（これは二価である）もしくはＩｇＭ（これは五価である）にクローン化することができ、または、そのようなサブタイプから選択することができる。あるいは、抗体を、架橋基または配列タグ（例えば、ＢｉｒＡ、下記の実施例の節の実施例１を参照のこと）を使用することなどによって化学的にコンジュゲート化することができる。
【００５３】
ポリクロナールおよびモノクロナール抗体並びにそれらのフラグメントの作製方法は、当該分野で公知である（例えば、Ｈａｒｌｏｗ  ａｎｄ  Ｌａｎｅ，Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，１９９８（本明細書中で参考として援用される）を参照のこと）。
【００５４】
抗体のタンパク質分解作用による加水分解またはフラグメントをコードするＤＮＡのＥ．ｃｏｌｉもしくは哺乳動物細胞（例えば、チャイニーズハムスター卵巣細胞培養物または他のタンパク質発現系）での発現によって本発明の抗体フラグメントを調製することができる。従来の方法による全抗体のペプシンまたはパパイン消化によって抗体フラグメントを得ることができる。例えば、Ｆ（ａｂ’）２と呼ばれる５Ｓフラグメントを得るためのペプシンでの抗体の酵素切断によって抗体フラグメントを産生することができる。このフラグメントをチオール還元剤を使用してさらに切断し、任意選択的にジスルフィド結合の切断に起因するスルフヒドリル基のために基をブロッキングして３．５ＳＦａｂ’の１価のフラグメントを得ることができる。あるいは、ペプシンを使用した酵素切断により、２つの１価のＦａｂ’フラグメントおよびＦｃフラグメントが直接得られる。これらの方法は、例えば、Ｇｏｌｄｅｎｂｅｒｇに付与された米国特許第４０３６９４５号および同第４３３１６４７号ならびにこれらに含まれる引例（特許全体が本明細書中で参考として援用される）に記載されている。Ｐｏｒｔｅｒ，Ｒ．Ｒ．［Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．，７３：１１９−１２６（１９５９）］もまた参照のこと。フラグメントがインタクトな抗体によって認識される抗原に結合する限り、１価の軽鎖−重鎖フラグメントを形成するための重鎖の分離、フラグメントのさらなる切断、または他の酵素、化学、もしくは遺伝的技術などの他の抗体切断方法もまた使用することができる。
【００５５】
Ｆｖフラグメントは、ＶＨ鎖とＶＬ鎖との結合を含む。Ｉｎｂａｒ  ｅｔ  ａｌ．［Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ’ｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ６９：２６５９−６２（１９７２）］に記載のように、この結合は非共有結合であり得る。あるいは、グルタルアルデヒドなどの化学物質による分子間ジスルフィド結合または架橋によって可変鎖を連結することができる。好ましくは、Ｆｖフラグメントは、ペプチドリンカーによって連結されたＶＨ鎖およびＶＬ鎖を含む。これらの単鎖抗原結合タンパク質（ｓｃＦｖ）を、オリゴヌクレオチドによって連結したＶＨおよびＶＬドメインをコードするＤＮＡ配列を含む構造遺伝子の構築によって調製する。構造遺伝子を発現ベクターに挿入し、その後Ｅ．ｃｏｌｉなどの宿主細胞に移入する。組換え宿主細胞は、２つのＶドメインを架橋するリンカーペプチドを含む１つのポリペプチド鎖を合成する。ｓｃＦｖの産生方法は、例えば、Ｗｈｉｔｌｏｗ  ａｎｄ  Ｆｉｌｐｕｌａ，Ｍｅｔｈｏｄｓ，２：９７−１０５（１９９１）；Ｂｉｒｄ  ｅｔ  ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２４２：４２３−４２６（１９８８）；Ｐａｃｋ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  １１：１２７１−７７（１９９３）；および米国特許第４９４６７７８号（その全体が本明細書中で参考として援用される）に記載されている。
【００５６】
抗体フラグメントの別の形態は、１つの相補性決定領域（ＣＤＲ）をコードするペプチドである。目的の抗体のＣＤＲをコードする遺伝子の構築によってＣＤＲペプチド（「最小認識単位」）を得ることができる。このような遺伝子を、例えば、抗体産生細胞のＲＮＡ由来の可変領域を合成するためのポリメラーゼ連鎖反応の使用によって調製する。例えば、Ｌａｒｒｉｃｋ  ａｎｄ  Ｆｒｙ［Ｍｅｔｈｏｄｓ，２：１０６−１０，（１９９１）］を参照のこと。例えば、このようなペプチドは、配列番号５〜１０（それらは９Ｈ  ｓｃＦｖから誘導される）、配列番号１１〜１６（それらはＧ１  ｓｃＦｖから誘導される）または配列番号１９〜２４（それらはＣＬＡ１２  ｓｃＦｖから誘導される）によって示されるペプチドの群からの少なくとも一つのペプチドであることができる。
【００５７】
非ヒト（例えば、マウス）抗体のヒト化形態は、免疫グロブリンのキメラ分子、免疫グロブリン鎖、または非ヒト免疫グロブリン由来の模倣配列を含むそのフラグメント（Ｆｖ、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、または抗体の他の抗原結合サブシーケンスなど）である。ヒト化抗体には、レシピエントの相補性決定領域（ＣＤＲ）由来の残基を所望の特異性、親和性、および能力を有するマウス、ラット、ウサギなどの非ヒト種（ドナー抗体）のＣＤＲ由来の残基に置換したヒト免疫グロブリン（レシピエント抗体）が含まれる。いくつかの例では、ヒト免疫グロブリンのＦｖフレームワーク残基を、対応する非ヒト残基に置換する。ヒト化抗体はまた、レシピエント抗体や導入されたＣＤＲまたはフレームワーク配列のいずれにも見出されない残基を含み得る。一般に、ヒト化抗体は、実質的に全ての少なくとも１つ、典型的には２つの可変ドメインを含み、全てまたは実質的に全てのＣＤＲ領域は非ヒト免疫グロブリンのＣＤＲ領域に対応し、全てまたは実質的に全てのフレームワーク領域（ＦＲ）はヒト免疫グロブリンコンセンサス配列のフレームワーク領域である。ヒト化抗体はまた、任意選択的に、免疫グロブリン定常領域（Ｆｃ）、典型的にはヒト免疫グロブリンの少なくとも一部を含む［Ｊｏｎｅｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，３２１：５２２−５２５（１９８６）；Ｒｉｅｃｈｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，３３２：３２３−３２９（１９８８）；およびＰｒｅｓｔａ，Ｃｕｒｒ．Ｏｐ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏｌ．，２：５９３−５９６（１９９２）］。
【００５８】
非ヒト抗体のヒト化方法は当該分野で周知である。一般に、ヒト化抗体は、非ヒト供給源由来のアミノ酸残基に移入された１つまたは複数のアミノ酸残基を有する。これらの非ヒトアミノ酸残基は、しばしば導入残基と呼ばれ、典型的には導入可変ドメインから得られる。げっ歯類ＣＤＲまたはＣＤＲ配列のヒト抗体の対応する配列への置換によるＷｉｎｔｅｒ  ａｎｄ  ｃｏ−ｗｏｒｋｅｒｓ（Ｊｏｎｅｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，３２１：５２２−５２５（１９８６）；Ｒｉｅｃｈｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ  ３３２：３２３−３２７（１９８８）；Ｖｅｒｈｏｅｙｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２３９：１５３４−１５３６（１９８８））の方法に従ってヒト化を本質的に行うことができる。したがって、このようなヒト化抗体は、実質的にインタクト未満のヒト可変ドメインが非ヒト種由来の対応する配列に置換されたキメラ抗体（米国特許第４８１６５６７号）である。実際、ヒト化抗体は、典型的には、いくつかのＣＤＲ残基およびおそらくいくつかのＦＲ残基がげっ歯類抗体中の類似の部位由来の残基に置換されたヒト抗体である。
【００５９】
当該分野で公知の種々の技術（ファージディスプレイライブラリーを含む）を使用してヒト抗体を産生することもできる［Ｈｏｏｇｅｎｂｏｏｍ  ａｎｄ  Ｗｉｎｔｅｒ，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，２２７：３８１（１９９１）；Ｍａｒｋｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，２２２：５８１（１９９１）］。ヒトモノクローナル抗体の調製のためのＣｏｌｅ  ｅｔ  ａｌ．ａｎｄ  Ｂｏｅｒｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．の技術も利用可能である（Ｃｏｌｅ  ｅｔ  ａｌ．，Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ａｎｄ  Ｃａｎｃｅｒ  Ｔｈｅｒａｐｙ，Ａｌａｎ  Ｒ．Ｌｉｓｓ，ｐ．７７（１９８５）およびＢｏｅｒｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１４７（１）：８６−９５（１９９１）；Ｃｈａｍｅｓ  Ｐ．，ｅｔ  ａｌ．，２０００，Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ＵＳＡ．９７（１４）：７９６９−７４；Ａｚｒｉｅｌ−Ｒｏｓｅｎｆｅｌｄ  Ｒ，ｅｔ  ａｌ．，２００４，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．３３５（１）１７７−９２；Ｄｅｎｋｂｅｒｇ  Ｇ．，ｅｔ  ａｌ．，２００１，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１６７：２７０−２７６；Ｄｅｎｋｂｅｒｇ  Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ，Ｂｅｎｈａｒ，Ｉ．，ａｎｄ  Ｒｅｉｔｅｒ，Ｙ．，２００２，Ｐｈａｇｅ  ｄｉｓｐｌａｙ  ｏｆ  ｓｉｎｇｌｅ−ｃｈａｉｎ  ａｎｔｉｂｏｄｙ（ｓｃＦｖ）ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｓ．Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ．４８：１０．４  ｐｐ  ５９−８７；Ｂｒｅｋｋｅ  ＯＨ，Ｌｏｓｅｔ  ＧＡ．Ｎｅｗ  ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ  ｉｎ  ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ  ａｎｔｉｂｏｄｙ  ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ．Ｃｕｒｒ  Ｏｐｉｎ  Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．２００３，３（５）：５４４−５０；Ｂｅｎｈａｒ  Ｉ，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｃａｌ  ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ  ｏｆ  ｐｈａｇｅ  ａｎｄ  ｃｅｌｌ  ｄｉｓｐｌａｙ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ  Ａｄｖ．２００１，１９（１）：１−３３））。同様に、トランスジェニック動物（例えば、内因性免疫グロブリン遺伝子が部分的または完全に不活化されているマウス）へのヒト免疫グロブリン遺伝子座の移入によってヒト抗体を作製することができる。攻撃誘発時に、遺伝子の再配置、構築、および抗体レパートリーを含むあらゆる点でヒトで認められる非常に類似しているヒト抗体産生が認められている。このアプローチは、例えば、米国特許第５５４５８０７号、同第５５４５８０６号、同第５５６９８２５号、同第５６２５１２６号、同第５６３３４２５号、同第５６６１０１６号、および以下の科学刊行物：Ｍａｒｋｓ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  １０，７７９−７８３（１９９２）；Ｌｏｎｂｅｒｇ  ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ  ３６８  ８５６−８５９（１９９４）；Ｍｏｒｒｉｓｏｎ，Ｎａｔｕｒｅ  ３６８  ８１２−１３（１９９４）；Ｆｉｓｈｗｉｌｄ  ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  １４，８４５−５１（１９９６）；Ｎｅｕｂｅｒｇｅｒ，Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  １４，８２６（１９９６）；およびＬｏｎｂｅｒｇ  ａｎｄ  Ｈｕｓｚａｒ，Ｉｎｔｅｒｎ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３  ６５−９３（１９９５）に記載されている。
【００６０】
１つの好ましい実施形態によれば、本発明の抗体は、本質的にはＣｏｈｅｎ他、２００２；Ｌｅｖ他、２００２；Ｄｅｎｋｂｅｒｇ他、２００２ａ；Ｃｏｈｅｎ他、２００３（これらは全体が参考として本明細書中に組み込まれる）に記載されるように非免疫ファージライブラリーから単離される。
【００６１】
本発明の好ましい実施形態によれば、組換え型の単離された抗体は、配列番号５〜配列番号１０、配列番号１１〜配列番号１６および／または配列番号１９〜配列番号２４によって示されるような少なくとも１つのＣＤＲ配列を含む組換えポリペプチドである。例には、ｓｃＦｖフラグメントの９Ｈ（配列番号１）、Ｇ１（配列番号２）またはＣＬＡ１２（配列番号１７）、および／あるいは、少なくとも１つのＣＤＲまたはｓｃＦｖ配列を含む任意のＩｇＧクローンが含まれるが、これらに限定されない。そのような組換えポリペプチドは、本明細書中下記においてさらに記載されるように、ＤＮＡ構築物から、そのような少なくとも１つのＣＤＲまたはｓｃＦｖをコードするポリヌクレオチドから発現させることができる。
【００６２】
ＩｇＧ抗体が（この分野で知られ、また、本明細書中下記においてさらに記載されるような組換えＤＮＡ技術を使用して）産生される場合、そのようなＩｇＧ抗体は、完全なＩｇＧ抗体よりも短く、かつ、従って、完全なＩｇＧ抗体よりも可溶性であるＦａｂフラグメントを製造するためにさらに消化され得ることが理解される。
【００６３】
加えて、図７ａ〜図７ｃ、図８ｄ〜図８ｅに示され、また、下記の実施例の節において記載されるように、Ｇ１、２Ｆ１またはＣＬＡ１２のｓｃＦｖのコード配列がシュードモナス菌体外毒素（ＰＥ３８）のコード配列に融合されたとき、タンパク質合成のより強力で、それにもかかわらず、非常に特異的な阻害が観測された。従って、そのような免疫毒素を使用して、メラノーマ細胞におけるタンパク質合成の５０％阻害が、わずかに１０ｎｇ／ｍＬのＧ１  ｓｃＦｖ  ＰＥ３８免疫毒素（図７ａ）、１５ｎｇ／ｍＬの２Ｆ１  ｓｃＦｖ  ＰＥ３８免疫毒素（図８ｄ）および１０ｎｇ／ｍＬ〜１００ｎｇ／ｍＬのＣＬＡ１２  ｓｃＦｖ  ＰＥ３８免疫毒素（図８ｅ）の存在下で達成された。さらに、図７ａ、図８ｄおよび図８ｅにおいてさらに示されるように、タンパク質合成のほぼ完全な阻害が１００ｎｇ／ｍＬのこれらの特定の免疫毒素の存在下で達成された。これらの結果から、ガン細胞または病原体感染細胞の処置のための、毒素に融合された抗体の使用が示唆される。
【００６４】
従って、本発明の１つの好ましい実施形態によれば、本発明の組換え型の単離された抗体は細胞傷害性剤に融合またはコンジュゲート化され、それにより、特異的な免疫毒素を形成する。そのような毒素剤は、例えば、シュードモナス菌体外毒素（ＰＥ３５、ＰＥ３８、ＰＥ４０）、緑膿菌外毒素Ａ（ＥＴＡ’）およびジフテリア毒素（ＤＴ３９０）などが可能である。加えて、または、代替として、本発明の組換え型の単離された抗体は、化学療法剤（例えば、メクロレタミン、フルオロウラシル、ダカルバジン、ドセタキセル、カルムスチンおよびビンデシンなど）、抗生物剤または抗ウイルス剤に融合またはコンジュゲート化することができる。そのような免疫毒素および／または化学療法剤は、（例えば、通常的には組換え抗体のコード配列の下流側において、薬剤分子のコード配列を組換え抗体のコード配列に連結することによって）組換えＤＮＡ技術を使用して作製することができ、あるいは、この分野で知られている方法を使用して、毒素または化学療法剤を組換え型の単離された抗体ポリペプチド配列（例えば、配列番号１、配列番号２または配列番号１７によって示されるポリペプチド）に共有結合的にコンジュゲート化することによって作製することができることが理解される。例えば、様々な二官能性のタンパク質カップリング剤、例えば、Ｎ−スクシンイミジル−３−（２−ピリジルジチオール）プロピオナート（ＳＰＤＰ）、イミノチオラン（ＩＴ）、イミドエステルの二官能性誘導体（例えば、アジポイミド酸ジメチルＨＣＬなど）、活性エステル（スベリン酸ジスクシンイミジルなど）、アルデヒド（例えば、グルタルアルデヒドなど）、ビスアジド化合物（例えば、ビス−（ｐ−アジドベンゾイル）ヘキサンジアミンなど）、ビス−ジアゾニウム誘導体（例えば、ビス−（ｐ−ジアゾニウムベンゾイル）エチレンジアミンなど）、ジイソシアナート（例えば、トルエン−２，６−ジイソシアナートなど）およびビス−活性フッ素化合物（例えば、１，５−ジフルオロ−２，４−ジニトロベンゼンなど）などを使用することによって作製することができる。例えば、５−ＦＵのペプチドコンンジュゲートを、Ｓｅｍｋｏ（１９９６）、Ｐｅｐｔｉｄｅｓ  Ａｂｓｔ．、２４ｔｈ  Ｓｙｍｐ．Ｅｕｒ．Ｐｅｐｔ．Ｓｏｃ．、Ｐ２６に記載されるように作製することができる。リシン−ペプチドコンジュゲートを、Ｖｉｔｅｔｔａ他、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２３８：１０９８（１９８７）に記載されるように調製することができる。１−イソチオシアナトベンジル−３−メチルジエチレントリアミン五酢酸（ＭＸ−ＤＴＰＡ）は、放射性ヌクレオチドをペプチドにコンジュゲート化するための例示的なキレート化剤である（国際特許出願公開ＷＯ９４／１１０２６を参照のこと）。
【００６５】
アポトーシスが誘導されるガン細胞は、充実性腫瘍（例えば、乳ガン、結腸ガン、肺ガン、メラノーマ）および非充実性腫瘍（例えば、白血病およびリンパ腫）を含めて、任意の種類の腫瘍に由来し得る。好ましくは、本発明のガン細胞は乳ガン細胞またはメラノーマ細胞である。加えて、そのような細胞は、この分野で知られている方法を使用する正常な細胞の変異誘発またはガン遺伝子によるトランスフェクションによって生じさせることができる。
【００６６】
アポトーシスが誘導される病原体感染細胞は、病原体（すなわち、この分野で知られている任意のウイルス、細菌および／または菌類）が感染する任意の真核生物細胞（好ましくは哺乳動物細胞、より好ましくはヒト細胞）であり得る。そのような細胞は、例えば、造血系細胞、リンパ系細胞、樹状細胞、マクロファージ、皮膚細胞、ニューロン、繊維芽細胞、内皮細胞、平滑筋細胞および上皮細胞であり得る。ウイルスは、本発明の細胞に感染することができる任意のウイルスであり得る。例えば、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）、Ａ型肝炎ウイルス、Ｂ型肝炎ウイルス、Ｃ型肝炎ウイルス、ヘルペスウイルス、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）およびラウス肉腫ウイルス（ＲＳＶ）である。細菌は、細胞内性である細菌（例えば、リステリア菌（Ｌｉｓｔｅｒｉａ  ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）、ネズミチフス菌（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ  ｔｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍ）および結核菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ）など）であり得る（Ｓｏｌｏｓｋｉ  ＭＪ他、Ｐｒｏｃ  Ｓｏｃ  Ｅｘｐ  Ｂｉｏｌ．Ｍｅｄ．、２０００、２２４：２３１〜９）。
【００６７】
本発明の方法によれば、組換え型の単離された抗体は本発明のガン細胞または病原体感染細胞と接触させられるか、あるいは、本発明のガン細胞または病原体感染細胞において発現させられる。抗体をこれらの細胞に投与する様々な方法がこの分野では知られており、これらには、例えば、抗体を細胞環境（例えば、血液、血漿、緩衝液および組織培養培地など）に加えることが含まれる。例えば、図８ａ〜図８ｃにおいて示されるように、ｇｐ１００の２８０エピトープを標的化する２Ｆ１抗体が細胞の培養培地に加えられ、３６０分以内に細胞の内部で見出された。
【００６８】
あるいは、本発明の組換え型の単離された抗体は、例えば、本発明の組換え型の単離された抗体のＦａｂフラグメント、ｓｃＦｖ、完全なＩｇＧ抗体、または、ＣＤＲのいずれかをコードするポリヌクレオチドを含有する核酸構築物の一部として細胞（例えば、哺乳動物細胞、細菌細胞、植物細胞、酵母細胞）において発現させることができる。
【００６９】
本発明の組換え型の単離された抗体を哺乳動物細胞において発現させるために、配列番号５〜配列番号１６および配列番号１９〜配列番号２４によって示されるような少なくとも１つのＣＤＲ配列をコードするポリヌクレオチド配列が、好ましくは、哺乳動物細胞発現のために好適な核酸構築物に連結される。そのようなポリヌクレオチドは、例えば、配列番号３（９Ｈ  ｓｃＦｖについて）、配列番号４（Ｇ１  ｓｃＦｖについて）、配列番号１８（ＣＬＡ１２  ｓｃＦｖについて）によって示されるポリヌクレオチドであり得る。核酸構築物は、構成的様式または誘導可能な様式で細胞におけるポリヌクレオチド配列の転写を行わせるためのプロモーター配列を含む。
【００７０】
本発明とともに使用される好適な構成的プロモーターは、ほとんどの環境条件およびほとんどのタイプの細胞のもとで活性であるプロモーター配列である（例えば、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）およびラウス肉腫ウイルス（ＲＳＶ）など）。本発明とともに使用される好適な誘導可能なプロモーターには、例えば、テトラサイクリン誘導可能なプロモーター（Ｚａｂａｌａ  Ｍ他、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．、２００４、６４（８）：２７９９〜８０４）が含まれる。
【００７１】
本発明の核酸構築物（これはまた本明細書中では「発現ベクター」として示される）は、このベクターを、原核生物における複製および組み込み、または、真核生物における複製および組み込み、または、好ましくは両者における複製および組み込み（例えば、シャトルベクター）のために好適にするさらなる配列を含む。加えて、典型的なクローニングベクターはまた、転写開始配列および翻訳開始配列、転写ターミネーターおよび翻訳ターミネーター、ならびに、ポリアデニル化シグナルを含有することができる。例として、そのような構築物は、典型的には、５’ＬＴＲ、ｔＲＮＡ結合部位、パッケージングシグナル、一本鎖ＤＮＡ合成の起点、および、３’ＬＴＲまたはその一部を含む。
【００７２】
本発明の核酸構築物は、典型的には、ペプチドが置かれる宿主細胞からのペプチドの分泌のためのシグナル配列を含む。好ましくは、この目的のためのシグナル配列は、哺乳動物のシグナル配列、または、本発明のポリペプチド変化体のシグナル配列である。
【００７３】
真核生物プロモーターは、典型的には、２つのタイプの認識配列（ＴＡＴＡボックスおよび上流側プロモーターエレメント）を含有する。ＴＡＴＡボックスは転写開始部位から２５塩基対〜３０塩基対上流側に位置し、ＲＮＡ合成を開始することをＲＮＡポリメラーゼに命令することに関与していると考えられる。もう一方の上流側のプロモーターエレメントは、転写が開始される速度を決定する。
【００７４】
好ましくは、本発明の核酸構築物によって利用されるプロモーターは、形質転換された特定の細胞集団において活性である。細胞タイプ特異的プロモーターおよび／または組織特異的プロモーターの例には、肝臓特異的であるアルブミン［Ｐｉｎｋｅｒｔ他（１９８７）、Ｇｅｎｅｓ  Ｄｅｖ．、１：２６８〜２７７］、リンパ系特異的プロモーター［Ｃａｌａｍｅ他（１９８８）、Ａｄｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、４３：２３５−２７５］（具体的には、Ｔ細胞受容体のプロモーター［Ｗｉｎｏｔｏ他（１９８９）、ＥＭＢＯ  Ｊ．、８：７２９〜７３３］、免疫グロブリンのプロモーター［Ｂａｎｅｒｊｉ他（１９８３）、Ｃｅｌｌ、３３７２９〜７４０］）、ニューロン特異的プロモーター（例えば、ニューロフィラメントプロモーター［Ｂｙｒｎｅ他（１９８９）、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、８６：５４７３〜５４７７］など）、膵臓特異的プロモーター［Ｅｄｌｕｎｃｈ他（１９８５）、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２３０：９１２〜９１６］または乳腺特異的プロモーター（例えば、乳清プロモーター（米国特許第４８７３３１６号および欧州特許出願公開第２６４１６６号）など）などのプロモーターが含まれる。
【００７５】
エンハンサーエレメントは、連結された同族プロモーターまたは異種プロモーターからの転写を１０００倍まで刺激することができる。エンハンサーは、転写開始部位の下流または上流に置かれたときに活性である。ウイルスに由来する多くのエンハンサーエレメントは広い宿主範囲を有し、様々な組織において活性である。例えば、ＳＶ４０の初期遺伝子エンハンサーは多くの細胞タイプに対して好適である。本発明のために好適である他のエンハンサー／プロモーター組合せには、ポリオーマウイルス、ヒトまたはマウスのサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）、様々なレトロウイルス（例えば、マウス白血病ウイルス、マウス肉腫ウイルスまたはラウス肉腫ウイルスおよびＨＩＶなど）から得られる長末端反復に由来するエンハンサー／プロモーター組合せが含まれる。Ｅｎｈａｎｃｅｒｓ  ａｎｄ  Ｅｕｋａｒｙｏｔｉｃ  Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ（Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｐｒｅｓｓ、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ、Ｎ．Ｙ．、１９８３）を参照のこと（これは参考として本明細書中に組み込まれる）。
【００７６】
発現ベクターの構築において、プロモーターは、好ましくは、プロモーターがその天然の環境において転写開始部位から配置されるのとほぼ同じ距離で異種の転写開始部位から配置される。しかしながら、この分野では知られているように、この距離におけるある程度の変化が、プロモーター機能の喪失を伴うことなく受け入れられ得る。
【００７７】
ポリアデニル化シグナルもまた、組換え型の単離された抗体のｍＲＮＡの翻訳効率を増大させるために発現ベクターに加えることができる。２つの異なった配列エレメントが正確かつ効率的なポリアデニル化のために要求される（ポリアデニル化部位の下流側に位置するＧＵリッチ配列またはＵリッチ配列、および、１１ヌクレオチド〜３０ヌクレオチド上流側に位置する６ヌクレオチドの高度に保存された配列（ＡＡＵＡＡＡ））。本発明のために好適である終結シグナルおよびポリアデニル化シグナルには、ＳＶ４０由来のシグナルが含まれる。
【００７８】
既に記載されたエレメントに加えて、本発明の発現ベクターは典型的には、クローン化された核酸の発現レベルを増大させるために、または、組換えＤＮＡを有する細胞の同定を容易にするために意図される他の特殊化したエレメントを含有することができる。例えば、数多くの動物ウイルスは、許容性細胞タイプにおけるウイルスゲノムの染色体外での複製を促進させるＤＮＡ配列を含有する。これらのウイルスレプリコンを有するプラスミドは、適切な因子が、プラスミドで運ばれる遺伝子、または、宿主細胞のゲノムとともに運ばれる遺伝子のいずれかによって提供される限り、エピソーム的に複製する。
【００７９】
ベクターは真核生物レプリコンを含んでもよく、または、真核生物レプリコンを含まなくてもよい。真核生物レプリコンが存在するならば、ベクターは、適切な選択マーカーを使用して真核生物において増幅可能である。ベクターが真核生物レプリコンを含まないならば、エピソーム増幅は不可能である。その代わり、組換えＤＮＡは、操作された細胞のゲノムに一体化し、操作された細胞のゲノムにおいて、プロモーターが所望の核酸の発現を行わせる。
【００８０】
本発明の発現ベクターはさらに、例えば、１個のｍＲＮＡからの数個のタンパク質の翻訳を可能にするさらなるポリヌクレオチド配列（例えば、内部リボソーム進入部位（ＩＲＥＳ）、および、プロモーターキメラなポリペプチドのゲノム組み込みのための配列など）を含むことができる。
【００８１】
哺乳動物発現ベクターの例には、ｐｃＤＮＡ３、ｐｃＤＮＡ３．１（＋／−）、ｐＧＬ３、ｐＺｅｏＳＶ２（＋／−）、ｐＳｅｃＴａｇ２、ｐＤｉｓｐｌａｙ、ｐＥＦ／ｍｙｃ／ｃｙｔｏ、ｐＣＭＶ／ｍｙｃ／ｃｙｔｏ、ｐＣＲ３．１、ｐＳｉｎＲｅｐ５、ＤＨ２６Ｓ、ＤＨＢＢ、ｐＮＭＴ１，ｐＮＭＴ４１、ｐＮＭＴ８１（これらはＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎから入手可能である）、ｐＣＩ（これはＰｒｏｍｅｇａから入手可能である）、ｐＭｂａｃ、ｐＰｂａｃ、ｐＢＫ−ＲＳＶおよびｐＢＫ−ＣＭＶ（これらはＳｔｒａｔｅｇｅｎｅから入手可能である）、ｐＴＲＥＳ（これはＣｌｏｎｔｅｃｈから入手可能である）、ならびに、それらの誘導体が含まれるが、これらに限定されない。
【００８２】
真核生物ウイルス（例えば、レトロウイルスなど）に由来する調節エレメントを含有する発現ベクターもまた使用することができる。ＳＶ４０ベクターには、ｐＳＶＴ７およびｐＭＴ２が含まれる。ウシ乳頭腫ウイルスに由来するベクターには、ｐＢＶ−１ＭＴＨＡが含まれ、エプスタイン・バールウイルスに由来するベクターには、ｐＨＥＢＯおよびｐ２Ｏ５が含まれる。他の例示的なベクターには、ｐＭＳＧ、ｐＡＶ００９／Ａ＋、ｐＭＴＯ１０／Ａ＋、ｐＭＡＭｎｅｏ−５、バキュロウイルスｐＤＳＶＥ、および、ＳＶ−４０初期プロモーター、ＳＶ−４０後期プロモーター、メタロチオネインプロモーター、マウス乳腫瘍ウイルスプロモーター、ラウス肉腫ウイルスプロモーター、ポリヘドリンプロモーター、または、真核生物細胞における発現のために効果的であることが示されている他のプロモーターの命令のもとでのタンパク質の発現を可能にする任意の他のベクターが含まれる。
【００８３】
上記で記載されたように、ウイルスは、多くの場合には宿主の防御機構から逃れるように進化してきた非常に特殊化された感染性媒介因子である。典型的には、ウイルスは特定の細胞タイプに感染し、増殖する。ウイルスベクターの標的化特異性では、その天然の特異性が、所定の細胞タイプを特異的に標的化し、それにより、組換え遺伝子を感染細胞に導入するために利用される。従って、本発明によって使用されるベクターのタイプは、形質転換された細胞タイプに依存する。形質転換された細胞タイプに従って好適なベクターを選択することができることは十分に当業者の能力の範囲内であり、そのため、選択の検討の一般的な記述は本明細書中には提供されない。例えば、骨髄細胞を、ヒトＴ細胞白血病ウイルスＩ型（ＨＴＬＶ−Ｉ）を使用して標的化することができ、または、腎臓細胞が、Ｌｉａｎｇ  ＣＹ他（２００４）（Ａｒｃｈ  Ｖｉｒｏｌ．、１４９：５１〜６０）に記載されるように、バキュロウイルス（Ａｕｔｏｇｒａｐｈａ  ｃａｌｉｆｏｒｎｉｃａ）のニュークレオポリヘドロウイルス（ＡｃＭＮＰＶ）に存在する異種プロモーターを使用して標的化される場合がある。
【００８４】
組換えウイルスベクターは、様々な利点（例えば、潜伏感染および標的化特異性など）を提供するため、本発明の単離された抗体のインビボ発現のために有用である。潜伏感染は、例えば、レトロウイルスの生活環において固有のものであり、出芽し、周りの細胞に感染する多くの子孫ビリオンを１個の感染細胞が産生するプロセスである。その結果は、最初のウイルス粒子によってそのほとんどが最初に感染していなかった広い面積が素早く感染することである。このことは、感染性因子が娘子孫を介してのみ広がる垂直型の感染とは対照的である。横方向に広がることができないウイルスベクターもまた作製することができる。この特徴は、所望する目的が、指定された遺伝子を局在化した多数の標的化された細胞のみに導入することであるならば、有用であり得る。
【００８５】
様々な方法を、本発明の発現ベクターを細胞に導入するために使用することができる。そのような方法が、一般には、Ｓａｍｂｒｏｏｋ他、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇｓ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ（１９８９、１９９２）；Ａｕｓｕｂｅｌ他、Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ、Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ａｎｄ  Ｓｏｎｓ、Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ、Ｍｄ．（１９８９）；Ｃｈａｎｇ他、Ｓｏｍａｔｉｃ  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐｙ、ＣＲＣ  Ｐｒｅｓｓ、Ａｎｎ  Ａｒｂｏｒ、Ｍｉｃｈ．（１９９５）；Ｖｅｇａ他、Ｇｅｎｅ  Ｔａｒｇｅｔｉｎｇ、ＣＲＣ  Ｐｒｅｓｓ、Ａｎｎ  Ａｒｂｏｒ  Ｍｉｃｈ．（１９９５）；Ｖｅｃｔｏｒｓ：Ａ  Ｓｕｒｖｅｙ  ｏｆ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  Ｖｅｃｔｏｒｓ  ａｎｄ  Ｔｈｅｉｒ  Ｕｓｅｓ、Ｂｕｔｔｅｒｗｏｒｔｈｓ、Ｂｏｓｔｏｎ  Ｍａｓｓ．（１９８８）；および、Ｇｉｌｂｏａ他［Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ  ４（６）：５０４〜５１２、１９８６］に記載され、そのような方法には、例えば、組換えウイルスベクターを用いた安定的トランスフェクション、一過性トランスフェクション、リポフェクション、エレクトロポレーションおよび感染が含まれる。加えて、陽性−陰性の選択法については米国特許第５４６４７６４号および同第５４８７９９２号を参照のこと。
【００８６】
ウイルス感染による核酸の導入は、より大きいトランスフェクション効率をウイルスの感染性質のために得ることができるため、他の方法（例えば、リポフェクションおよびエレクトロポレーションなど）を上回るいくつかの利点を提供する。
【００８７】
現在好ましいインビボ核酸移入技術（インビボ遺伝子治療）では、ウイルス構築物または非ウイルス構築物（例えば、アデノウイルス、レンチウイルス、単純ヘルペスＩウイルスまたはアデノ関連ウイルス（ＡＡＶ）、および、脂質に基づく系など）によるトランスフェクションが含まれる。遺伝子の脂質媒介による移入のための有用な脂質は、例えば、ＤＯＴＭＡ、ＤＯＰＥおよびＤＣ−Ｃｈｏｌである［Ｔｏｎｋｉｎｓｏｎ他、Ｃａｎｃｅｒ  Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ、１４（１）：５４〜６５（１９９６）］。遺伝子治療において使用される最も好ましい構築物はウイルスであり、最も好ましくは、アデノウイルス、ＡＡＶ、レンチウイルスまたはレトロウイルスである。ウイルス構築物（例えば、レトロウイルス構築物など）は、少なくとも１つの転写プロモーター／エンハンサーまたは遺伝子座規定エレメント、あるいは、他の手段（例えば、メッセンジャーの選択的スプライシング、核ＲＮＡ輸出または翻訳後修飾など）によって遺伝子発現を制御する他のエレメントを含む。そのようなベクター構築物はまた、ウイルス構築物に既に存在していない限り、パッケージングシグナル、長末端反復（ＬＴＲ）またはその一部、ならびに、使用されたウイルスに対して適切なプラス鎖プライマー結合部位およびマイナス鎖プライマー結合部位を含む。加えて、そのような構築物は典型的には、ペプチドが置かれる宿主細胞からのペプチドの分泌のためのシグナル配列を含む。好ましくは、この目的のためのシグナル配列は、哺乳動物のシグナル配列、または、本発明のポリペプチド変化体のシグナル配列である。場合により、構築物はまた、ポリアデニル化を行わせるシグナル、ならびに、１つまたは複数の制限部位および翻訳終結配列を含むことができる。例として、そのような構築物は、典型的には、５’ＬＴＲ、ｔＲＮＡ結合部位、パッケージングシグナル、第二鎖ＤＮＡ合成の起点、および、３’ＬＴＲまたはその一部を含む。非ウイルス性である他のベクターを使用することができる（例えば、カチオン性脂質、ポリリシンおよびデンドリマーなど）。
【００８８】
挿入されたコード配列の転写および翻訳のための必要なエレメントを含有すること以外に、本発明の発現ベクターはまた、発現したペプチドの安定性、産生、精製、収率または毒性を高めるために操作された配列を含むことができる。例えば、本発明のＭｅｔ変化体および異種のタンパク質を含む融合タンパク質または切断可能な融合タンパク質の発現を操作することができる。そのような融合タンパク質は、融合タンパク質が、アフィニティークロマトグラフィーによって、例えば、異種タンパク質について特異的なカラムでの固定化によって容易に単離することができように設計することができる。切断部位がＭｅｔ成分と異種タンパク質との間で操作される場合、Ｍｅｔ成分を、切断部位を分断する適切な酵素または薬剤による処理によってクロマトグラフィーカラムから放出させることができる［Ｂｏｏｔｈ他（１９８８）、Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｌｅｔｔ．、１９：６５〜７０；Ｇａｒｄｅｌｌａ他（１９９０）、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６５：１５８５４〜１５８５９を参照のこと］。
【００８９】
様々な原核生物細胞または真核生物細胞が、本発明の単離された組換え抗体（ポリペプチド）を発現させるための宿主発現システムとして使用され得ることが理解される。これらには、微生物（例えば、コード配列を含有する組換えられたバクテリオファージＤＮＡ発現ベクター、プラスミドＤＮＡ発現ベクターまたはコスミドＤＮＡ発現ベクターにより形質転換された細菌など）；コード配列を含有する組換え酵母発現ベクターにより形質転換された酵母；コード配列を含有する組換えウイルス発現ベクター（例えば、カリフラワーモザイクウイルス、ＣａＭＶ；タバコモザイクウイルス、ＴＭＶ）を感染させた植物細胞システム、または、コード配列を含有する組換えプラスミド発現ベクター（例えば、Ｔｉプラスミドなど）により形質転換された植物細胞システムが含まれるが、これらに限定されない。哺乳動物発現システムもまた、本発明のポリペプチドを発現させるために使用することができる。
【００９０】
細菌構築物の例には、大腸菌発現ベクターのｐＥＴシリーズが含まれる［Ｓｔｕｄｉｅｒ他（１９９０）、Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌ．、１８５：６０〜８９］。
【００９１】
酵母では、米国特許第５９３２４４７号に開示されるような、構成的プロモーターまたは誘導可能なプロモーターを含有する数多くのベクターを使用することができる。あるいは、酵母染色体内への外来ＤＮＡ配列の組み込みを促進するベクターを使用することができる。
【００９２】
植物発現ベクターが使用される場合、コード配列の発現が数多くのプロモーターによって駆動され得る。例えば、ウイルスプロモーター（例えば、ＣａＭＶの３５Ｓ  ＲＮＡプロモーターおよび１９Ｓ  ＲＮＡプロモーター［Ｂｒｉｓｓｏｎ他（１９８４）、Ｎａｔｕｒｅ、３１０：５１１〜５１４］またはＴＭＶのコートタンパク質プロモーター［Ｔａｋａｍａｔｓｕ他（１９８７）、ＥＭＢＯ  Ｊ．、６：３０７〜３１１］など）を使用することができる。あるいは、植物プロモーター、例えば、ＲＵＢＩＳＣＯの小サブユニット［Ｃｏｒｕｚｚｉ他（１９８４）、ＥＭＢＯ  Ｊ．、３：１６７１〜１６８０；Ｂｒｏｇｌｉ他（１９８４）、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２２４：８３８〜８４３］または熱ショックプロモーター（例えば、タイズのｈｓｐ１７．５−Ｅまたはｈｓｐ１７．３−Ｂ［Ｇｕｒｌｅｙ他（１９８６）、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．、６：５５９〜５６５］）などを使用することができる。これらの構築物を、当業者に広く知られているＴｉプラスミド、Ｒｉプラスミド、植物ウイルスベクター、直接的なＤＮＡ形質転換、顕微注入、エレクトロポレーションおよび他の技術を使用して植物細胞に導入することができる。例えば、Ｗｅｉｓｓｂａｃｈ＆Ｗｅｉｓｓｂａｃｈ、１９８８、Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｆｏｒ  Ｐｌａｎｔ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ（Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ、ＮＹ）、第ＶＩＩＩ章、４２１頁〜４６３頁を参照のこと。
【００９３】
他の発現システム（例えば、昆虫宿主細胞システムおよび哺乳動物宿主細胞システムなど）がこの分野では広く知られており、これらもまた本発明によって使用することができる。
【００９４】
組換えポリペプチドの回収が培養での適切な時間の後で行われる。表現「組換えポリペプチドを回収する」は、ポリペプチドを含有する発酵培地全体を集めることを示し、分離または精製のさらなる工程を意味する必要はない。上記にかかわらず、本発明のポリペプチドは、様々な標準的なタンパク質精製技術を使用して、例えば、アフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、ろ過、電気泳動、疎水性相互作用クロマトグラフィー、ゲルろ過クロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、クロマトフォーカシングおよび示差的可溶化などを使用して精製することができる。
【００９５】
本発明の好ましい実施形態によれば、本発明のこの態様による方法はさらに、本発明の組換え型の単離された抗体の投与後または発現後においてガン細胞またはウイルス感染細胞におけるアポトーシスを検出する工程を含む。
【００９６】
本発明の組換え型の単離された抗体によって誘導されるアポトーシスは、この分野で知られている様々な方法を使用して検出することができる。
【００９７】
エチジウムホモ二量体−１染色。アポトーシスを、膜が損なわれた細胞（すなわち、死細胞）に特異的に結合する色素によって検出することができる。簡単に記載すると、固定処理されていない細胞、例えば、懸濁状態、組織培養および組織切片などにおける細胞などが蛍光性色素のエチジウムホモ二量体−１（励起、４９５ｎｍ；放射、６３５ｎｍ）で染色される。このアッセイでは、生細胞は緑色蛍光の細胞質を有するが、ＥｔｈＤ−１のシグナルを有さず、これに対して、死細胞は緑色蛍光がなく、ＥｔｈＤ−１により染色される。
【００９８】
Ｔｕｎｎｅｌアッセイ（Ｒｏｃｈｅ、Ｂａｓｅｌ、スイス）。これは、アポトーシスを受けている細胞に特徴的なＤＮＡ分解物をフルオレセイン（励起、４５０ｎｍ〜５００ｎｍ；放射、５１５ｎｍ〜５６５ｎｍ）により標識する。
【００９９】
生／死の生存性／細胞毒性の二色蛍光アッセイ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ，Ｉｎｃ．、Ｌ−３２２４、Ｅｕｇｅｎｅ、ＯＲ、米国）。このアッセイでは、細胞内エステラーゼ活性が、生細胞によって蛍光性誘導体（ポリアニオンのカルセイン、励起、４９５ｎｍ；放射、５１５ｎｍ）に変換され、その後、生細胞の無傷の原形質膜によって保持される細胞透過性基質（カルセイン−ＡＭ）を用いて測定される。
【０１００】
ＦＡＣＳ分析。アポトーシスを受けている細胞と特異的に結合することができる分子（例えば、ヨウ化プロピジウムおよびアネキシンＶなど）を使用する（図面の説明および下記の実施例の節を参照のこと）。アネキシンＶは、初期アポトーシスのときに原形質膜の外側への外在化を受けるホスファチジルセリンに対するカルシウム媒介による高親和性の結合によって特徴づけられるヒトタンパク質である。
【０１０１】
ゲル電気泳動によるＤＮＡ断片化。簡単に記載すると、ＤＮＡを固定処理されていない細胞から抽出し、ゲル電気泳動（例えば、１．５％〜２％のアガロースゲル）に供し、ＤＮＡ断片化の程度が、任意のＤＮＡ染色剤（例えば、臭化エチジウムおよびＳｙｂｅｒ  Ｇｒｅｅｎなど）を使用して評価される。
【０１０２】
図６においてさらに示され、また、下記の実施例の実施例３に記載されるように、ネイクドｓｃＦｖ  Ｇ１抗体は、ペプチド特異的なＭＨＣ拘束様式で、５２６、６２４および５０１Ａのメラノーマ細胞のタンパク質合成を阻害すること（従って、これらのメラノーマ細胞を「殺す」こと）ができた。加えて、タンパク質合成の阻害は用量依存的であり、ＩＣ５０（すなわち、タンパク質合成の５０％阻害を達成するために要求される抗体の濃度）がすべてのＨＬＡ−Ａ２＋／ｇｐ１００＋のメラノーマ細胞について６０μｇ／ｍＬであった。
【０１０３】
これらの結果から、ガンまたは病原体感染を処置することにおける、本発明のＴＣＲ様の組換え型の単離された抗体の使用が強く示唆される。
【０１０４】
従って、本発明の別の態様によれば、ガンまたは病原体感染を処置する方法が提供される。この方法は、その必要性のある対象において、ＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつ、そのＭＨＣ−ペプチド複合体を特異的に発現するガン細胞または病原体感染細胞のアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体の治療有効量を接触または発現させ、それにより、対象におけるガンまたは病原体感染を処置することによって行われる。
【０１０５】
用語「処置する」は、疾患、障害または状態（例えば、ガンまたは病原体感染）の発症を阻害または停止すること、および／あるいは、疾患、障害または状態の軽減、寛解または退行を引き起こすことを示す。当業者は、様々な方法論およびアッセイを、疾患、障害または状態の発症を評価するために使用することができ、また、同様に、様々な方法論およびアッセイを、疾患、障害または状態の軽減、寛解または退行を評価するために使用することができることを理解する。
【０１０６】
本明細書中で使用される用語「対象」（または、本明細書中では交換可能に使用される「個体」）には、哺乳動物（好ましくは、疾患、障害または状態に罹患している任意の年齢のヒト）が含まれる。好ましくは、この用語は、疾患、障害または状態を発症する危険性がある個体を包含する。例えば、低レベルのガン分化タンパク質を前悪性状態で発現する個体、または、依然として潜伏期にある病原体に感染している個体が挙げられる。
【０１０７】
本明細書中で使用される表現「対象の細胞」には、対象に由来し、かつ、対象から取り出される任意の細胞（すなわち、エクスビボ遺伝子治療）、または、対象の一部である細胞（すなわち、本明細書中上記で記載されたようなインビボ遺伝子治療）が含まれる。
【０１０８】
エクスビボ遺伝子治療については、対象（処置の必要性がある対象またはドナー対象のいずれか）に由来する細胞が、本質的には本明細書中上記で記載されたように、適切な組織培養培地の存在下で培養され、そして、本発明の組換え型の単離された抗体を発現および分泌するように設計されたポリヌクレオチドを含有する発現ベクターを用いて標的細胞（例えば、対象のガン細胞またはウイルス感染細胞）にエクスビボでトランスフェクションされることが理解される。そのような細胞は、例えば、腎臓細胞、骨髄細胞、ケラチノサイト細胞およびリンパ球細胞であることが可能である。
【０１０９】
本発明の抗体発現細胞の投与は、任意の好適な経路（例えば、静脈内、腹腔内、腎臓内、胃腸管内、皮下、経皮、筋肉内、皮内、クモ膜下、硬膜外および直腸など）を使用して行うことができる。現在好ましい実施形態によれば、本発明の抗体発現細胞は、静脈内投与、腎臓内投与、胃腸管内投与および／または腹腔内投与を使用して個体に導入される。
【０１１０】
本発明の抗体発現細胞は、自家供給源（例えば、自己の骨髄細胞など）または同種供給源（例えば、非自家供給源に由来する骨髄細胞または他の細胞など）のいずれかに由来し得る。非自家細胞は、身体に投与されたとき、免疫反応を誘導する可能性があるため、いくつかの方法が、非自家細胞の拒絶の可能性を軽減するために開発されている。これらには、受容者の免疫系を抑制すること、または、免疫隔離する半透過性膜で非自家の細胞または組織を移植前にカプセル化することのいずれかが含まれる。
【０１１１】
カプセル化技術は一般には、小さい球状ビヒクルを伴うマイクロカプセル化として、また、より大きい平坦なシート膜および中空繊維膜を伴うマクロカプセル化として分類される（Ｕｌｕｄａｇ，Ｈ．他、哺乳動物細胞カプセル化技術、Ａｄｖ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖ  Ｒｅｖ．、２０００、４２：２９〜６４）。
【０１１２】
マイクロカプセルを調製する様々な方法がこの分野では知られており、これらには、例えば、Ｌｕ  ＭＺ他（アルギン酸塩およびα−フェノキシシンナミリデン−アセチル化ポリ（アリルアミン）を用いた細胞カプセル化、Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ  Ｂｉｏｅｎｇ．、２０００、７０：４７９〜８３）；Ｃｈａｎｇ  ＴＭおよびＰｒａｋａｓｈ  Ｓ．（酵素、細胞および遺伝子操作微生物のマイクロカプセル化法、Ｍｏｌ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．、２００１、１７：２４９〜６０）；Ｌｕ  ＭＺ他（光感受性ポリ（アリルアミン  α−シアノシンナミリデンアセタート）を使用する新規な細胞カプセル化方法、Ｊ  Ｍｉｃｒｏｅｎｃａｐｓｕｌ．、２０００、１７：２４５〜５１）によって開示される方法が含まれる。
【０１１３】
例えば、マイクロカプセルが、修飾コラーゲンを、メタクリル酸２−ヒドロキシエチル（ＨＥＭＡ）、メタクリル酸（ＭＡＡ）およびメタクリル酸メチル（ＭＭＡ）のターポリマー外皮と複合体化し、これにより、２μｍ〜５μｍのカプセル厚さを生じさせることによって調製される。そのようなマイクロカプセルはさらに、負荷電の滑らかな表面を与えるために、また、血漿タンパク質の吸収を最小限に抑えるために、さらなる２μｍ〜５μｍのターポリマー外皮でカプセル化することができる（Ｃｈｉａ，Ｓ．Ｍ．他、細胞カプセル化のための多層マイクロカプセル、Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ、２００２、２３：８４９〜５６）。
【０１１４】
他のマイクロカプセルがアルギン酸塩（海洋多糖）（Ｓａｍｂａｎｉｓ，Ａ．、糖尿病処置におけるカプセル化小島、Ｄｉａｂｅｔｅｓ  Ｔｅｃｈｎｏｌ．Ｔｈｅｒ．、２００３、５：６６５〜８）またはその誘導体に基づく。例えば、マイクロカプセルを、ポリアニオンのアルギン酸ナトリウムおよび硫酸セルロースナトリウムと、ポリカチオンのポリ（メチレン−ｃｏ−グアニジン）塩酸塩との、塩化カルシウムの存在下での多電解質複合体化によって調製することができる。
【０１１５】
より小さいカプセルが使用されるとき、細胞マイクロカプセル化が改善されることが理解される。従って、カプセルサイズが１ｍｍから４００μｍに低下したとき、カプセル化細胞の品質管理、機械的安定性、拡散特性およびインビトロ活性が改善された（Ｃａｎａｐｌｅ  Ｌ．他、サイズ制御による細胞カプセル化の改善、Ｊ  Ｂｉｏｍａｔｅｒ  Ｓｃｉ  Ｐｏｌｙｍ  Ｅｄ．、２００２、１３：７８３〜９６）。さらに、７ｎｍもの小さい十分に制御された細孔サイズ、用途に合わせて調製された表面化学性、および、的確な微細構造を有するナノ多孔性のバイオカプセルは、細胞のための微小環境を免疫隔離することに成功したことが見出された（Ｗｉｌｌｉａｍｓ  Ｄ．、小さいことは美しい：医療デバイスにおけるマイクロ粒子技術およびナノ粒子技術、Ｍｅｄ  Ｄｅｖｉｃｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌ．、１９９９、１０：６〜９；Ｄｅｓａｉ，Ｔ．Ａ．、膵臓細胞カプセル化のための微細製造技術、Ｅｘｐｅｒｔ  Ｏｐｉｎ  Ｂｉｏｌ  Ｔｈｅｒ．、２００２、２：６３３〜４６）。
【０１１６】
本発明の組換え型の単離された抗体、本発明の組換え型の単離された抗体をコードする核酸構築物、または、本発明の組換え型の単離された抗体を発現する細胞は、それ自体で生物に投与することができ、あるいは、好適なキャリアまたは賦形剤と混合される医薬組成物で生物に投与することができる。
【０１１７】
本明細書中で使用される「医薬組成物」は、本明細書中に記載される有効成分の１つまたは複数と、他の化学的成分（例えば、生理学的に好適なキャリアおよび賦形剤）との調製物を示す。医薬組成物の目的は、生物に対する化合物の投与を容易にすることである。
【０１１８】
本明細書中で使用される用語「活性成分（有効成分）」は、生物学的効果に関与できる、本発明の組換え型の単離された抗体またはポリヌクレオチドまたはこれらを発現する細胞に関する。
【０１１９】
以降、表現「生理学的に許容され得るキャリア」および表現「医薬的に許容され得るキャリア」は交換可能に使用することができ、生物に対する著しい刺激を生じさせず、かつ、投与された調合物の生物学的活性および生物学的性質を阻害しないキャリアまたは希釈剤を示す。アジュバントはこれらの表現下で包含される。
【０１２０】
本明細書中において、用語「賦形剤」は、有効成分の投与をさらに容易にするために医薬組成物に添加される不活性な物質を示す。賦形剤の非限定的な例には、炭酸カルシウム、リン酸カルシウム、様々な糖およびタイプのデンプン、セルロース誘導体、ゼラチン、植物油およびポリエチレングリコールが含まれる。
【０１２１】
薬物の配合および投与のための様々な技術が“Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ”（Ｍａｃｋ  Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ  Ｃｏ．、Ｅａｓｔｏｎ、ＰＡ、最新版）（これは参考として本明細書中に組み込まれる）に見出され得る。
【０１２２】
好適な投与経路には、例えば、経口送達、直腸送達、経粘膜送達、特に経鼻送達、腸管送達または非経口送達（これには、筋肉内注射、皮下注射および髄内注射、ならびに、クモ膜下注射、直接的な脳室内注射、心臓内注射、静脈内注射、腹腔内注射、鼻内注射または眼内注射が含まれる）が含まれ得る。
【０１２３】
あるいは、例えば患者の組織領域中への医薬組成物の直接注射によって医薬組成物を全身的な方法によりむしろ局所的な方法で投与してもよい。
【０１２４】
本発明の医薬組成物は、この分野で十分に知られている様々なプロセスによって、例えば、混合、溶解、造粒、糖衣錠作製、研和、乳化、カプセル化、包括化または凍結乾燥の従来のプロセスによって製造することができる。
【０１２５】
本発明に従って使用するための医薬組成物は有効成分を医薬として使用可能な製剤にする加工を容易にする賦形剤及び補助剤を含む一つ以上の生理学的に許容され得るキャリアを使用して従来のように配合されてもよい。適切な配合は選択された投与経路に依存する。
【０１２６】
注射の場合、本発明の医薬組成物は、水溶液において、好ましくは生理学的に適合し得る緩衝液（例えば、ハンクス溶液、リンゲル溶液、または生理学的な生理的食塩水緩衝液など）において配合することができる。経粘膜投与の場合、浸透されるべきバリヤーとして適した浸透剤が配合において使用される。そのような浸透剤はこの分野では一般に知られている。
【０１２７】
経口投与の場合、医薬組成物は、活性な化合物を、この分野で十分に知られている薬学的に受容可能なキャリアと組み合わせることによって容易に配合することができる。そのようなキャリアにより、医薬組成物は、患者によって経口摂取される錠剤、ピル、糖衣錠、カプセル、液剤、ゲル、シロップ、スラリー剤、懸濁物などとして配合することが可能になる。経口使用される薬学的調製物は、錠剤または糖衣錠コアを得るために、固体の賦形剤を使用し、得られた混合物を場合により粉砕し、そして所望する場合には好適な補助剤を添加した後、顆粒の混合物を加工して作製することができる。好適な賦形剤は、具体的には、ラクトース、スクロース、マンニトールまたはソルビトールを含む糖などの充填剤；セルロース調製物、例えば、トウモロコシデンプン、コムギデンプン、コメデンプン、ジャガイモデンプン、ゼラチン、トラガカントゴム、メチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ナトリウムカルボメチルセルロースなど；および／またはポリビニルピロリドン（ＰＶＰ）などの生理学的に受容可能なポリマーである。所望する場合には、架橋型ポリビニルピロリドン、寒天、またはアルギン酸もしくはその塩（アルギン酸ナトリウムなど）などの崩壊剤を加えることができる。
【０１２８】
糖衣錠コアには、好適なコーティングが施される。この目的のために、高濃度の糖溶液を使用することができ、この場合、糖溶液は、場合により、アラビアゴム、タルク、ポリビニルピロリドン、カルボポールゲル、ポリエチレングリコール、二酸化チタン、ラッカー溶液および好適な有機溶媒または溶媒混合物を含有し得る。色素または顔料が、活性な化合物の量を明らかにするために、または活性な化合物の量の種々の組合せを特徴づけるために、錠剤または糖衣錠コーティングに添加され得る。
【０１２９】
経口使用され得る医薬組成物には、ゼラチンから作製されたプッシュ・フィット型カプセル、ならびにゼラチンおよび可塑剤（グリセロールまたはソルビトールなど）から作製された軟密閉カプセルが含まれる。プッシュ・フィット型カプセルは、充填剤（ラクトースなど）、結合剤（デンプンなど）、滑剤（タルクまたはステアリン酸マグネシウムなど）および場合により安定化剤と混合された有効成分を含有し得る。軟カプセルでは、活性な成分を好適な液体（脂肪油、流動パラフィンまたは液状のポリエチレングリコールなど）に溶解または懸濁させることができる。さらに、安定化剤を加えることができる。経口投与される配合物はすべて、選ばれた投与経路に好適な投薬形態でなければならない。
【０１３０】
口内投与の場合、組成物は、従来の様式で配合された錠剤またはトローチの形態を取ることができる。
【０１３１】
鼻腔吸入による投与の場合、本発明に従って使用される有効成分は、好適な噴射剤（例えば、ジクロロジフルオロメタン、トリクロロフルオロメタン、ジクロロテトラフルオロエタンまたは二酸化炭素）の使用により加圧パックまたはネブライザーからのエアロゾルスプレー提示物の形態で都合よく送達される。加圧されたエアロゾルの場合、投薬量単位は、計量された量を送達するためのバルブを提供することによって決定され得る。吸入器または吹き入れ器で使用される、例えば、ゼラチン製のカプセルおよびカートリッジで、化合物と好適な粉末基剤（ラクトースまたはデンプンなど）との粉末混合物を含有するカプセルおよびカートリッジを配合することができる。
【０１３２】
本明細書で記述される医薬組成物は非経口投与、例えばボーラス注射または連続点滴のために配合されることができる。注射のための配合は、単位用量形態（例えばアンプルまたは多用量コンテナ）で提供されることができ、これらには所望により保存剤が添加されている。組成物は懸濁物、溶液または油性もしくは水性ビヒクル中のエマルションであることができ、懸濁剤、安定化剤および／または分散剤の如き配合剤を含むことができる。
【０１３３】
非経口投与される医薬組成物には、水溶性形態における活性な調製物の水溶液が含まれる。さらに、活性な成分の懸濁物を、適切なオイル状のまたは水ベースの注射用懸濁物として調製することができる。好適な親油性の溶媒またはビヒクルには、脂肪油（ゴマ油など）、または合成脂肪酸エステル（オレイン酸エチルなど）、トリグリセリドまたはリポソームが含まれる。水性の注射用懸濁物は、懸濁物の粘度を増大させる物質、例えば、ナトリウムカルボキシメチルセルロース、ソルビトールまたはデキストランなどを含有し得る。場合により、懸濁物はまた、高濃度の溶液の調製を可能にするために化合物の溶解性を増大させる好適な安定化剤または薬剤を含有し得る。
【０１３４】
あるいは、有効成分は、使用前に好適なビヒクル（例えば、滅菌されたパイロジェン非含有水ベースの溶液）を用いて構成される粉末形態にする。
【０１３５】
本発明の医薬組成物はまた、例えば、カカオ脂または他のグリセリドなどの従来の座薬基剤を使用して、座薬または停留浣腸剤などの直腸用組成物に配合することができる。
【０１３６】
本発明に関連した使用のために好適な医薬組成物には、有効成分が、意図された目的を達成するために効果的な量で含有される組成物が含まれる。より具体的には、治療効果がある量（治療有効量）は、処置されている対象の障害（例えば、がんまたはウイルス感染）の症状を防止、軽減または改善するために、あるいは、処置されている対象の生存を延ばすために効果的な有効成分（本発明の組換え型の単離された抗体またはポリヌクレオチドまたはこれらを発現する細胞）の量を意味する。
【０１３７】
治療効果がある量の決定は、特に本明細書に与えられた詳細な開示に照らして、十分に当業者の範囲内である。
【０１３８】
本発明の方法に使用される調製物に対して、治療的に有効な量又は用量は最初にインビトロおよび細胞培養分析から分析されることができる。例えば、用量は所望の濃度または滴定量を達成するために動物モデルで配合されることができる。かかる情報は人間に有用な用量をより正確に決定するために使用されることができる。
【０１３９】
本明細書中に記載される有効成分の毒性および治療効力は、インビトロ、細胞培養または実験動物における標準的な薬学的手法によって明らかにすることができる。これらのインビトロアッセイおよび細胞培養アッセイならびに動物研究から得られたデータは、ヒトへの使用のための投薬量範囲を定める際に使用することができる。投薬量は、用いられる投薬形態物および利用される投与経路に依存して変化し得る。正確な配合、投与経路および投薬量は、患者の状態を考慮して個々の医師によって選ぶことができる（例えば、Ｆｉｎｇｌ他、１９７５、“Ｔｈｅ  Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｂａｓｉｓ  ｏｆ  Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ”（第１章、１頁）を参照のこと）。
【０１４０】
例えば、図６および下記の実施例の節において示されるように、Ｇ１  ｓｃＦｖ抗体は、６０μｇ／ｍＬの濃度でメラノーマ細胞におけるタンパク質合成の５０％阻害を引き起こし、１２０μｇ／ｍＬの濃度で８０％の阻害を引き起こした。加えて、下記の実施例の節の表２に示されるように、２Ｆ１  ｓｃＦｖ抗体はメラノーマ細胞におけるタンパク質合成について１３０μｇ／ｍＬのＩＣ５０を示した一方で、そのようなＦａｂフラグメントに由来する完全なＩｇＧクローンは４μｇ／ｍＬの著しくより低いＩＣ５０を示した。
【０１４１】
加えて、図７ａ〜図７ｃ、図８ｄ〜図８ｅに示され、また、下記の実施例において記載されるように、免疫毒素が利用されたとき、メラノーマ細胞の阻害が、１０ｎｇ／ｍＬのＧ１  ｓｃＦｖ  ＰＥ３８のＩＣ５０濃度（図７ａ）、１５ｎｇ／ｍＬの２Ｆ１  ｓｃＦｖ  ＰＥ３８のＩＣ５０濃度（図８ｄ）、および、１０ｎｇ／ｍＬ〜１００ｎｇ／ｍＬのＣＬＡ１２  ｓｃＦｖ  ＰＥ３８のＩＣ５０濃度（図８ｅ）を伴って達成された。
【０１４２】
投与量および間隔は、アポトーシスを誘導するのに十分な活性成分のレベル（最小有効濃度（ＭＥＣ））をがん細胞またはウイルス細胞に与えるために個々に調整されてもよい。ＭＥＣは、各調製物に対して変動しうるが、インビトロデータから推定されることができる。ＭＥＣを達成するために必要な投与は、個々の特性および投与ルートに依存するだろう。検出アッセイは、血漿濃度を決定するために使用されることができる。
【０１４３】
処置される状態の重篤度および応答性に依存して、投薬は単回投与または多回投与が可能であり、処置の経過が、数日から数週間まで、あるいは、治癒が達成されるまで、または、疾患状態の縮小が達成されるまで続く。
【０１４４】
投与される組成物の量は、当然のことではあるが、処置されている対象、苦痛の重篤度、投与様式、主治医の判断などに依存する。
【０１４５】
本発明の組成物は、所望される場合には、活性成分を含有する一つ以上の単位投薬形態物を含有し得る、ＦＤＡ承認キットなどのパックまたはディスペンサーデバイスで提供され得る。パックは、例えば、金属箔またはプラスチック箔を含むことができ、例えば、ブリスターパックなどである。パックまたはディスペンサーデバイスには、投与のための説明書が添付され得る。パックまたはディスペンサーにはまた、医薬品の製造、使用または販売を規制する政府当局により定められた形式で容器に付けられた通知が伴い得る。この場合、そのような通知は、ヒトもしくは動物への組成物の形態の当局による承認を反映する。そのような通知は、例えば、処方薬物についての米国食品医薬品局により承認されたラベル書きであり得るか、または承認された製品添付文書であり得る。適合し得る医薬用キャリアに配合された本発明の調製物を含む医薬組成物はまた、上でさらに詳述したように、適応状態の処置のために調製し、適切な容器に入れ、表示することができる。
【０１４６】
本発明の方法はまた、低下したレベルのアポトーシスに関連する様々な他の病理を処置するために使用され得ることが理解される。これらには、例えば、乾癬（Ｖｉｃｔｏｒ  ＦＣおよびＧｏｔｔｌｉｅｂ  ＡＢ、２００２、Ｊ．Ｄｒｕｇｓ  Ｄｅｒｍａｔｏｌ．、１：２６４〜７５）、魚鱗癬（Ｍｅｌｉｎｏ  Ｇ他、２０００、Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｅｎｚｙｍｏｌ．，３２２：４３３〜７２）、尋常性疣ぜい、角化棘細胞腫（Ｔｓｕｊｉ  Ｔ、１９９７、Ｊ．Ｃｕｔａｎ．Ｐａｔｈｏｌ．、２４：４０９〜１５）、脂漏性角化症（Ｓａｔｃｈｅｌｌ  ＡＣ他、２００４、Ｂｒ．Ｊ．Ｄｅｒｍａｔｏｌ．、１５１：４２〜９）、脂漏症、扁平上皮ガン（ＳＣＣ；Ｓｅｔａ  Ｃ他、２０００、Ｊ．Ｏｒａｌ  Ｐａｔｈｏｌ．Ｍｅｄ．、２９：２７１〜８）、基底細胞ガン（ＢＣＣ；Ｌｉ  Ｃ他、２００４、Ｏｎｃｏｇｅｎｅ、２００４、２３：１６０８〜１７）、非メラノーマ皮膚ガン（ＮＭＳＣ）および多数のヒト腫瘍が含まれる。
【０１４７】
本発明を実施にさらに移しているとき、本発明者らは、本発明の組換え型の単離された抗体は、ガンまたは病原体感染を診断するために使用することができることを発見している。図４ａ〜図４ｆに示され、また、下記の実施例の節の実施例２において記載されるように、Ｇ１  ｓｃＦｖ抗体は、ＨＬＡ−Ａ２陰性／ｇｐ１００発現のＧ−４３自然メラノーマ細胞ではなく、ＨＬＡ−Ａ２陽性／ｇｐ１００発現のＦＭ−３−２９、Ｍ−ｗｗ、Ｍ−ＰＡＴ、Ｍ−１４１およびＦＭ３−Ｄの自然メラノーマ細胞を特異的に免疫染色することができた。
【０１４８】
従って、本発明のさらなる態様によれば、対象においてガンまたはウイルス感染を診断する方法が提供される。この方法は、（ａ）対象の生物学的サンプルを、ＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつ、標的のガン細胞または病原体感染細胞においてアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体と、免疫複合体形成のために好適な条件のもとで接触させること；および（ｂ）免疫複合体の形成を検出すること、それにより、対象におけるガンまたは病原体感染を診断することによって行われる。
【０１４９】
本明細書中で使用される表現「診断する」は、疾患（ガンまたは病原体感染）または症状を分類すること、疾患の重篤度を決定すること、疾患の進行をモニターすること、疾患の結果および／または回復の見込みを予測することを示す。
【０１５０】
本明細書中で使用される「生物学的サンプル」は、対象から単離された組織または流体のサンプルを示し、これには、例えば、血液細胞、骨髄細胞および特にマクロファージ、リンパ液、様々な腫瘍、ニューロン細胞、樹状細胞、臓器、ならびに、同様に、インビボ細胞培養構成物のサンプルが含まれるが、これらに限定されない。「対象の生物学的サンプル」はまた、場合により、対象から物理的に取り出されていないサンプルを含む場合があることに留意しなければならない。
【０１５１】
本発明の１つの好ましい実施形態によれば、本発明のこの態様による方法を使用して診断されるガンは充実性腫瘍（例えば、乳ガンおよびメラノーマなど）である。好ましくは、対象から得られる生物学的サンプルは組織標本であり、例えば、好ましくは切片（例えば、パラフィン切片または凍結切片）に切断される組織生検物などである。
【０１５２】
本発明によるガンまたは病原体感染の診断は、対象の生物学的サンプルを、本発明の組換え型の単離された抗体と、免疫複合体形成のために好適な条件のもとで接触させることによって行うことができる。
【０１５３】
本明細書中で使用される用語「免疫複合体」は、抗体（例えば、本明細書中上記で記載されたような本発明の組換え型の単離された抗体）とその特異的な抗原との間で形成された複合体（例えば、特定のＭＨＣ−ペプチド複合体、例えば、ＨＬＡ−Ａ２−Ｇ９−２０９複合体、ＨＬＡ−Ａ２−Ｇ９−２８０複合体、ＨＬＡ−Ａ２−ＭＡＲＴ１２６−３５複合体など）を示す。
【０１５４】
本発明の免疫複合体は、使用された抗体、および、抗原を提示する細胞に依存して変化し得る様々な温度、塩濃度およびｐＨ値において形成することができ、当業者は、それぞれの免疫複合体の形成のために好適な条件を調節することができる。
【０１５５】
例えば、実施例２において、また、図４ａ〜図４ｇの説明において記載されるように、Ｇ１−ＨＬＡ−Ａ２−Ｇ９−２０９免疫複合体の形成については、メラノーマ細胞（例えば、ＦＭ−３−２９細胞、Ｍ−ｗｗ細胞、Ｍ−ＰＡＴ細胞、Ｍ−１４１細胞）が、１０％のウシ胎児血清（ＦＣＳ）を含有するＲＰＭＩ培養培地において２０μｇ〜３０μｇのＧ１  ｓｃＦｖと氷上で１時間インキュベーションされた。
【０１５６】
本発明のこの態様の方法によれば、免疫複合体形成の検出により、疾患（例えば、ガンまたはウイルス感染）の診断が示される。様々な方法を、本発明の免疫複合体を検出するために使用することができ、当業者は、どの方法が、それぞれの免疫複合体について、かつ／または、診断のために使用された細胞のタイプについて好適であるかを決定することができる。
【０１５７】
例えば、免疫複合体を、免疫組織化学または免疫蛍光、ＦＡＣＳ、ＥＬＩＳＡ、ウエスタンブロットおよびＲＩＡの各分析によって、あるいは、分子量に基づく方法によって検出することができる。
【０１５８】
免疫組織化学分析または免疫蛍光分析。この方法は、抗原（例えば、ＭＨＣ−ペプチド複合体）を抗原特異的な抗体（すなわち、本発明の組換え型の単離された抗体）によって固定処理細胞においてインサイチュで検出することを伴う。抗原特異的な抗体は酵素に結合することができるか、または、蛍光団に結合することができる。検出は顕微鏡および主観的評価または自動的評価によって行われる。酵素結合抗体が用いられるならば、比色反応が要求される場合がある。免疫組織化学は、多くの場合、その後に、例えば、ヘマトキシリン染色またはギムザ染色を使用する細胞核の対比染色が行われることが理解される。
【０１５９】
蛍光活性化細胞分取（ＦＡＣＳ）。この方法は、抗原を抗原特異的な抗体によって細胞においてインサイチュで検出することを伴う。抗原特異的な抗体が蛍光団に結合される。検出は、細胞が光ビームを通過するときのそれぞれの細胞から放射される光の波長を読み取る細胞分取装置によって行われる。この方法では２つ以上の抗体を同時に用いることができる。
【０１６０】
酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）。この方法は、抗原（例えば、ＭＨＣ−ペプチド複合体）を含有するサンプル（例えば、固定処理細胞またはタンパク質性溶液）を表面（例えば、マイクロタイタープレートのウェルなど）に固定することを伴う。酵素にカップリングされた抗原特異的な抗体が加えられ、抗原に結合させられる。その後、抗体の存在が、抗体にカップリングされた酵素を用いる比色反応によって検出および定量される。この方法において一般に用いられる酵素には、西洋ワサビペルオキシダーゼおよびアルカリホスファターゼが含まれる。十分に校正され、かつ、応答の直線範囲にあるならば、サンプルに存在する基質の量は、生じた色の量に比例する。基質標準が、量的正確性を改善するために一般に用いられる。
【０１６１】
ウエスタンブロット。この方法は、基質をアクリルアミドゲルによって他のタンパク質から分離すること、その後、メンブラン（例えば、ナイロンまたはＰＶＤＦ）への基質の転写を伴う。その後、基質の存在が、基質に対して特異的な抗体によって検出され、次いで、その抗体が抗体結合試薬によって検出される。抗体結合試薬は、例えば、プロテインＡまたは他の抗体（例えば、ＥＣＬキット（Ａｍｅｒｓｈａｍ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ  Ｉｎｃ．、Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ、ＮＪ、米国）における抗体など）であり得る。抗体結合試薬は放射能標識することができ、または、本明細書中上記で記載されたように酵素に結合することができる。検出を、オートラジオグラフィー、比色反応または化学発光によって行うことができる。この方法は、基質の量の定量と、電気泳動期間中のアクリルアミドゲルにおける移動距離を示すメンブラン上での相対的な位置によるその同一性の決定との両方を可能にする。ＭＨＣ−ペプチド複合体の場合、非変性ゲル電気泳動が好ましくは用いられることが理解される。
【０１６２】
放射免疫アッセイ（ＲＩＡ）。１つの型式において、この方法は、特異的抗体と、沈殿可能なキャリア（例えば、アガロースビーズなど）に固定化された放射能標識された抗体結合性タンパク質（例えば、Ｉ１２５で標識されたプロテインＡ）とを用いて所望の抗原（すなわち、ＭＨＣ−ペプチド複合体）を沈殿させることを伴う。沈殿ペレットにおけるカウント数が抗原の量に比例する。
【０１６３】
ＲＩＡの１つの代わりの型式において、標識された抗原と、標識されていない抗体結合性タンパク質とが用いられる。未知量の抗原を含有するサンプルが様々な量で加えられる。標識された抗原からの沈殿したカウント数の減少が、添加されたサンプルにおける抗原の量に比例する。
【０１６４】
分子量に基づく方法。ＭＨＣ−ペプチド複合体との間で形成された免疫複合体はその構成成分（すなわち、組換え型の単離された抗体またはＭＨＣ−ペプチド複合体）よりも大きい分子量を示すことが理解される。従って、分子量におけるそのような変化を検出することができる方法もまた用いることができる。例えば、免疫複合体をゲル遅延アッセイによって検出することができる。簡単に記載すると、非変性アクリルアミドゲルに、組換え型の単離された抗体およびＭＨＣ−ペプチド複合体を含有する免疫複合体形成前および免疫複合体形成後のサンプルが負荷される。その構成成分と比較したときのタンパク質生成物のサイズ（分子量）における変化により、免疫複合体の存在が示される。高分子量側へのそのような変化を、非特異的なタンパク質染色（例えば、銀染色またはクーマシーブルー染色など）を使用して可視化することができる。あるいは、ＭＨＣまたは組換え型の単離された抗体をゲル電気泳動前に（例えば、放射性標識で）標識することができる。加えて、または、あるいは、ＭＨＣ複合体を発現する細胞をタンパク質抽出前に放射能標識することができる。
【０１６５】
好ましくは、免疫複合体の形成を検出する方法は、充実性腫瘍の組織切片（例えば、パラフィン切片または凍結切片）に対して行われる免疫組織化学（免疫蛍光を含む）である。
【０１６６】
ガンまたは病原体感染の診断はまた、細胞を本発明の組換え型の単離された抗体と接触させた後、細胞におけるアポトーシスを（本明細書中上記で記載されたように）検出することによって行われ得ることが理解される。
【０１６７】
従って、本発明のさらにさらなる態様によれば、対象においてガンまたは病原体感染を診断する方法が提供される。この方法は、（ａ）対象の生物学的サンプルを、ＭＨＣ−ペプチド複合体と特異的に結合することができ、かつ、標的のガン細胞または病原体感染細胞においてアポトーシスを誘導することができる組換え型の単離された抗体と、免疫複合体形成のために好適な条件のもとで接触させること；および（ｂ）生物学的サンプルの細胞におけるアポトーシスのレベルを検出すること、それにより、対象においてガンまたは病原体感染を診断することによって行われる。
【０１６８】
免疫複合体形成の検出のために本明細書中上記で記載された薬剤は、好ましくは、使用のための適切な説明書、ならびに、ガンまたはウイルス感染の重篤度を診断および／または評価することにおける使用のためのＦＤＡ承認を示すラベルと一緒に診断キット／製造物に含めることができる。
【０１６９】
そのようなキットは、例えば、上記で記載された診断剤の少なくとも１つ（例えば、Ｇ１抗体、９Ｈ抗体またはＣＬＡ１２抗体）を含む少なくとも１つの容器と、別の容器に包装された画像化試薬（例えば、酵素、二次抗体、緩衝剤、発色性基質、蛍光性物質）とを含むことができる。キットはまた、キットの貯蔵寿命を改善するための適切な緩衝剤および保存剤を含むことができる。
【０１７０】
本発明の好ましい実施形態によれば、ガンまたはウイルス感染の診断はまた、組換え型の単離された抗体を細胞と接触させた後、細胞におけるアポトーシスのレベルを検出することによって行うことができる。そのような方法が本明細書中上記に記載される。
【０１７１】
本明細書中で使用される用語「約」は±１０％を示す。
【０１７２】
本発明のさらなる目的、利点、および新規の特徴は、制限を意図しない以下の実施例の実験によって当業者に自明である。さらに、上記の本発明および以下の特許請求の範囲に記載の各々の種々の実施形態および態様は、以下の実施例の実験により支持される。
【実施例】
【０１７３】
ここでは、上記説明と共に以下の実施例を参照して、非限定的様式で本発明を例示する。
一般に、本明細書中で使用した用語および本発明で使用した実験手順には、分子、生化学、微生物学、および組換えＤＮＡの技術が含まれる。このような技術は、文献で完全に説明されている。例えば、“Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：  Ａ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ”、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、１９８９；“Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ”、第Ｉ〜ＩＩＩ巻、Ａｕｓｕｂｅｌ，Ｒ．Ｍ．編１９９４；Ａｕｓｕｂｅｌら、“Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ”、Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ａｎｄ  Ｓｏｎｓ、Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ、Ｍａｒｙｌａｎｄ、１９８９；Ｐｅｒｂａｌ，“Ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ｇｕｉｄｅ  ｔｏ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ”、Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ、Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ、１９８８；Ｗａｔｓｏｎら、“Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ  ＤＮＡ”、Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｂｏｏｋｓ、Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ；Ｂｉｒｒｅｎら編、“Ｇｅｎｏｍｅ  Ａｎａｌｙｓｉｓ：  Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ  Ｓｅｒｉｅｓ”、第１〜４巻、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ、Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ、１９９８；米国特許第４６６６８２８号、同第４６８３２０２号、同第４８０１５３１号、同第５１２９６５９号、および同第５２７２０５７号に記載の方法；“Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌｏｇｙ：  Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｈａｎｄｂｏｏｋ”、第Ｉ〜ＩＩＩ巻、Ｃｅｌｌｉｓ，Ｊ．Ｅ．編、１９９４；“Ｃｕｌｔｕｒｅ  ｏｆ  Ａｎｉｍａｌ  Ｃｅｌｌｓ−Ａ  Ｍａｎｕａｌ  ｏｆ  Ｂａｓｉｃ  Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ”、Ｆｒｅｓｈｍｅｙ、Ｗｉｌｅｙ−Ｌｉｓｓ、Ｎ．  Ｙ．、１９９４；第３版，“Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ”、第Ｉ〜ＩＩＩ巻、Ｃｏｌｉｇａｎ  Ｊ．Ｅ．編、１９９４；Ｓｔｉｔｅｓら編、“Ｂａｓｉｃ  ａｎｄ  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ”、第８版、Ａｐｐｌｅｔｏｎ＆Ｌａｎｇｅ、Ｎｏｒｗａｌｋ，ＣＴ、１９９４；Ｍｉｓｈｅｌｌ  ａｎｄ  Ｓｈｉｉｇｉ編、“Ｓｅｌｅｃｔｅｄ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｃｅｌｌｕｌａｒ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ”、Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ  ａｎｄ  Ｃｏ．、Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ、１９８０を参照のこと；利用可能な免疫アッセイは、特許および化学論文に広く記載されており、例えば、米国特許第３７９１９３２号、同第３８３９１５３号、同第３８５０７５２号、同第３８５０５７８号、同第３８５３９８７号、同第３８６７５１７号、同第３８７９２６２号、同第３９０１６５４号、同第３９３５０７４号、同第３９８４５３３号、同第３９９６３４５号、同第４０３４０７４号、同第４０９８８７６号、同第４８７９２１９号、同第５０１１７７１号、および同第５２８１５２１号；“Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ”、Ｇａｉｔ，Ｍ．Ｊ．編、１９８４；“Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ”、Ｈａｍｅｓ，Ｂ．Ｄ．ａｎｄ  Ｈｉｇｇｉｎｓ  Ｓ．Ｊ．編、１９８５；“Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ  ａｎｄ  Ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎ”、Ｈａｍｅｓ，Ｂ．Ｄ．ａｎｄ  Ｈ��ｇｇｉｎｓ  Ｓ．Ｊ．編、１９８４；“Ａｎｉｍａｌ  Ｃｅｌｌ  Ｃｕｌｔｕｒｅ”、Ｆｒｅｓｈｎｅｙ，Ｒ．Ｉ．編、１９８６；“Ｉｍｍｏｂｉｌｉｚｅｄ  Ｃｅｌｌｓ  ａｎｄ  Ｅｎｚｙｍｅｓ”、ＩＲＬ  Ｐｒｅｓｓ、１９８６；“Ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ｇｕｉｄｅ  ｔｏ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ”、Ｐｅｒｂａｌ，Ｂ．、１９８４および“Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ”、第１〜１３７巻、Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ、“ＰＣＲ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ：  Ａ  Ｇｕｉｄｅ  Ｔｏ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ａｎｄ  Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ”、Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ、Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ、１９９０；Ｍａｒｓｈａｋら、“Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ  ｆｏｒ  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ａｎｄ  Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ−Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  ＣｏｕｒｓｅＭａｎｕａｌ”、ＣＳＨＬ  Ｐｒｅｓｓ、１９９６“Ｔｈｅ  ｆｕｎｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ＭＨＣ  ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ”，“Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ”，Ｐａｕｌ  ＷＥ編、１９９９、第４版；Ｌｉｐｐｉｎｃｏｔｔ−Ｒａｖｅｎ  ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ（その全てが本明細書中に完全に記載されているかのように参照として援用される）を参照のこと。他の一般的引例を、本明細書中に記載する。引例中の手順は当該分野で周知であると考えられ、読者の都合のために記載する。引例中に含まれる全ての情報は、本明細書中で参考として援用される。
【０１７４】
実施例１
ＴＣＲ様抗体の調製
ＴＣＲ様抗体の単離および特徴づけ。本研究で使用されたモデルシステムは、白人集団における最も高頻発のＭＨＣ対立遺伝子（約４０％）であるヒトスーパーハプロタイプＨＬＡ−Ａ２分子であった。腫瘍関連抗原およびウイルス抗原に由来するペプチドのペプチドＴ細胞エピトープを呈示する組換えＭＨＣ−ペプチド複合体を、単鎖ＭＨＣ（ｓｃＭＨＣ）構築物を使用することによって作製した［Ｄｅｎｋｂｅｒｇ他、２０００；Ｄｅｎｋｂｅｒｇ他、２００１］。
【０１７５】
Ｌｅｖ他（２００２）は、組換え操作された単鎖ＭＨＣ−ペプチド複合体を利用して、ＴＣＲ様特異性を有する抗体をファージ抗体ライブラリーの大きな非免疫レパートリーから単離した。スクリーニングされた標的ＨＬＡ−Ａ２／ペプチド複合体には、腫瘍関連抗原に由来する様々なエピトープ（例えば、多くの腫瘍細胞において広く発現されるテロメラーゼ触媒サブユニット（ｈＴＥＲＴ）、メラノーマ分化抗原ｇｐ１００［Ｄｅｎｋｂｅｒｇ他、２００２ａ］、乳ガンに関係づけられる上皮細胞関連ムチン（ＭＵＣ１）［Ｃｏｈｅｎ他、２００２］、または、ヒトＴ細胞リンパ親和性ウイルスタイプＩ（ＨＴＬＶ−１）転写因子（ＴＡＸ）に由来するウイルスエピトープ［Ｃｏｈｅｎ他、２００３］など）、あるいは、インフルエンザマトリックスタンパク質エピトープ、または、エプスタイン・バールウイルス（ＥＢＶ）由来のエピトープが含まれた。
【０１７６】
ペプチド−ＭＨＣ複合体に対する２回および３回の選択の後、様々なペプチドと複合体形成したヒトＨＬＡ−Ａ２  ＭＨＣ分子を認識する予想外かつ驚くほどの高頻度（６％〜８０％）の抗体が観測された。さらに、これらの抗体の著しく大きい割合（２０％〜８０％）がＴ細胞のようなＭＨＣ拘束かつペプチド特異的な結合特性を示した。１つだけの珍しい抗体クローンがハイブリドーマまたはファージライブラリーから単離することができたマウス系における以前の報告とは異なり、今回は、スクリーニングされたそれぞれのＭＨＣ−ペプチド複合体についての一群の異なる抗体が単離された［Ｃｏｈｅｎ他、２００２；Ｌｅｖ他、２００２；Ｄｅｎｋｂｅｒｇ他、２００２ａ；Ｃｏｈｅｎ他、２００３］。これらの抗体は、Ｔ細胞の抗原特異的かつＭＨＣ拘束の特異性を有しており、それらの対応するＭＨＣ−ペプチド複合体にナノモル濃度の範囲での大きい親和性を伴って結合した。加えて、これらの抗体は、特定のペプチドが呈示されたときにだけ、ＭＨＣ複合体に対して選択的であった。従って、これらの抗体は抗体の結合特性および結合速度論を示したが、Ｔ細胞の細かい特異性を模倣しており、従って、これらの抗体をＴＣＲ様抗体と名付けた。
【０１７７】
単離された抗体フラグメント（ｓｃＦｖ）が、細胞表面に発現されるような天然形態でのＭＨＣ−ペプチド複合体に特異的に結合することを明らかにするために、数通りの方法を用いた。これらの実験では、特定のｓｃＦｖが、適切な特定のペプチドを呈示する細胞に対してだけ結合したことが明らかにされた（Ｄｅｎｋｂｅｒｇ，Ｇ．他、２００２ａ；Ｌｅｖ，Ａ．他、２００２；Ｃｏｈｅｎ，ＣＪ．他、２００２；Ｌｅｖ，Ａ．他、２００２、ＭＨＣ拘束のＴ細胞受容体様特異性を有するヒト組換え抗体：様々な腫瘍関連抗原に由来する異なったＴ細胞エピトープの認識、Ｔｕｍｏｒ  Ｍｉｃｒｏｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ：Ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｏｎ，Ｔｈｅｒａｐｙ  ａｎｄ  Ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ、Ｍｏｎｄｕｚｚｉ  Ｅｄｉｔｏｒｅ  ｐｒｅｓｓ、１６３頁〜１６７頁；Ｃｏｈｅｎ，ＣＪ．他、２００３、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ、１７０：４３４９〜４３６１；Ｄｅｎｋｂｅｒｇ，Ｇ．他、２００３、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１７１：２１９７〜２２０７；Ｃｏｈｅｎ  Ｃ．Ｊ．他、２００３、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｒｅｃｏｇ．、１６：３２４〜３３２；Ｙａｍａｎｏ，Ｙ．他、２００４、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．、１９９：１３６７〜１３７７；Ｈｅｌｄ，Ｇ．他、２００４、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、３４：２９１９〜２９２９）。例えば、１Ａ７、２Ｆ１およびＧ２Ｄ１２の各ｓｃＦｖは、それらのそれぞれのｇｐ１００由来エピトープのＧ９−２０９、Ｇ９−２８０およびＧ９−１５４が負荷されたＲＭＡ−Ｓ−ＨＨＤ細胞とのみ反応し、コントロールのペプチドが負荷された細胞とは反応しなかった（図１ａ〜図１ｃ）。いくつかの他のＡＰＣが、これらのＦａｂのペプチド特異的な結合を明らかにするために使用された（例えば、ＴＡＰ＋のＥＢＶにより形質転換されたＢリンパ芽球ＨＬＡ−Ａ２＋のＪＹ細胞、または、成熟した樹状細胞（ＤＣ）など）。これらの細胞では、ペプチド負荷が、内因的に由来するペプチドを、細胞を所望のペプチドとインキュベーションすることによって外部から供給されるＨＬＡ−Ａ２拘束ペプチドと交換することによって促進される。ＴＣＲ様Ｆａｂフラグメントが、図１ｂに示されるように、他のコントロールＨＬＡ−Ａ２拘束ペプチドを呈示するコントロール細胞とではなく、ＴＣＲ様Ｆａｂフラグメントが選択された特定のペプチドとインキュベーションされたＪＹ細胞または成熟ＤＣと反応した。
【０１７８】
予想されなかった高頻度のこれらの抗体、および、いずれかの複合体に向けられたいくつかの異なる抗体を単離することができたことは、免疫化ファージライブラリーまたは実験未使用のファージライブラリーの使用により、１個だけの抗体クローンがもたらされただけであった以前の報告［Ａｎｄｅｒｓｅｎ他、１９９６；Ｐｏｒｇａｄｏｒ他、１９９７；Ｄａｄａｇｌｉｏ他、１９９７；Ｚｈｏｎｇ他、１９９７ｂ；Ｋｒｏｇｓｇａａｒｄ他、２０００；Ｐｏｌａｋｏｖａ他、２０００；Ｃｏｈｅｎ他、２００３］に照らしてさらに一層驚くべきことである。
【０１７９】
ＴＣＲ様抗体を使用する抗原提示の研究。ＴＣＲ様抗体は、腫瘍細胞の場合と同様に、トランスフェクションされたモデルにおいて抗原提示を研究するための強力なツールである。例えば、生理学的な抗原プロセシング条件のもとで産生されたＨＬＡ−Ａ２／Ｔａｘ複合体を検出するＴＣＲ様Ｆａｂ抗体の能力を調べるために、ＥＢＶ形質転換されたＢ細胞のＨＬＡ−Ａ２陽性の抗原提示ＪＹ細胞をＨＴＬＶ−１  Ｔａｘ遺伝子によりトランスフェクションした。トランスフェクション後２４時間で、コントロールを越える著しい染色が、Ｔａｘ遺伝子によりトランスフェクションされたＨＬＡ−Ａ２陰性のＡＰＤ細胞に関してではなく、Ｔａｘ遺伝子によりトランスフェクションされたＨＬＡ−Ａ２陽性のＪＹ細胞に関してのみ、ＴＣＲ様抗体を使用して明瞭に見ることができた（図２ｄ〜図２ｉ）。抗ＴＡＸ／ＨＬＡ−Ａ２  Ｆａｂによる反応性のペプチド特異的かつＭＨＣ拘束のパターンは、トランスフェクションされた細胞の割合が、ＧＦＰ構築物を利用するコントロール実験で明らかにされたように類似していたため、ＪＹ細胞およびＡＰＤ細胞のトランスフェクション効率またはＨＬＡ発現における違いのためではなかった。これらの結果は、ＴＣＲ様Ｆａｂ抗体は、活性かつ天然に存在する内因性の細胞内プロセシングの後において特定のＭＨＣ−ペプチド複合体を検出することができることを示している。
【０１８０】
腫瘍細胞上での特定のペプチド−ＨＬＡ複合体の密度は、ペプチドパルス処理されたＡＰＣまたはトランスフェクションされたＡＰＣと比較して低いことが予想されるため、いくつかのｓｃＦｖのアビディティを、直接的にタグ化された蛍光性プローブを用いて、ｓｃＦｖ四量体を作製することによって増大させた。ｓｃＦｖ四量体を形成させるために、それぞれのｓｃＦｖフラグメントを、ＣＬドメインまたはＣＨ１ドメインのＣ末端での部位特異的なビオチン化のためのＢｉｒＡ配列タグを含むように操作し、ビオチン化後、それぞれのストレプトアビジン分子は４つのｓｃＦｖフラグメントと結合することができた。蛍光性四量体を使用することの別の利点は、１回だけの染色工程が要求されることであり、これに対して、単量体の非標識ｓｃＦｖでは、蛍光標識された二次抗体が要求される。これらの非常に高感度なｓｃＦｖ四量体を使用して、乳ガン細胞の表面における所望のペプチド／ＭＨＣ複合体の出現を特異的に検出することが可能であった。ＨＬＡ−Ａ２分子との複合体でムチンエピトープに向けられた四量体化ｓｃＦｖは、ＭＵＣ１陰性かつＨＬＡ−Ａ２＋のメラノーマＦＭ３Ｄ細胞またはＨＬＡ−Ａ２かつＭＵＣ１陰性のＧ−４３細胞においてではなく、ＭＵＣ１を発現するＨＬＡ−Ａ２＋のＭＣＦ７細胞およびＭＤＡ−ＭＢ  ２３１細胞の表面においてＭＵＣ１−Ｄ６複合体を検出することができた。Ｍ３Ａ１四量体は、ＭＵＣ１陽性かつＨＬＡ−Ａ２陰性のＳＫ−ＢＲ３細胞に関して低いバックグラウンド染色を示した。そのような分子は、ＡＰＣおよび腫瘍細胞の表面に提示されるような特定のペプチド／ＭＨＣ複合体を定量するための新しい手段をも提供する。この方法は、腫瘍細胞の表面における腫瘍関連ＴＣＲリガンド（ペプチド−ＭＨＣ複合体）の数を、直接的な手段を使用して定量するための最初の試みである。
【０１８１】
染色された細胞の蛍光強度を測定し、既知数の蛍光団を有する校正用ビーズの蛍光強度と比較した（Ｃｏｈｅｎ，ＣＪ．他、２００２、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．、６２：５８３５〜５８４４）。この方法は、蛍光団により染色された細胞をフローサイトメーターにより定量する容易かつ高感度な手段を提供する。抗ムチンＴＣＲ様Ｆａｂを使用し、ペプチドパルス処理された細胞、ならびに、天然ではパルス処理されない腫瘍細胞において呈示されるＭＵＣ１−Ｄ６／ＨＬＡ−Ａ２複合体の数を初めて定量した：ＪＹ  ＡＰＣ細胞をペプチドでパルス処理することにより、細胞あたり１．２×１０５個もの多くのＤ６−ＨＬＡ−Ａ２複合体を検出することができた。後者の結果は、マウスの特異的なＴＣＲ様抗体を使用した細胞のインビトロでの組換えワクシニアウイルス感染の後におけるオボアルブミンペプチドＳＩＩＮＦＥＫＬに結合したマウスＨ−２ｋｂの最近の定量と完全に一致している［Ｐｏｒｇａｄｏｒ他、１９９７］。ＭＵＣ１を発現する腫瘍細胞の表面におけるＤ６−ＭＵＣ１由来複合体の数が細胞あたりわずかに数百個に達することが推定された（表１、下記）。
2008501781.tif 000002
表１：それぞれの実験における染色細胞の蛍光強度を、ビーズあたり既知数のフィコエリトリン（ＰＥ）分子を有する校正用ビーズ（ＱｕａｎｔｉＢＲＩＴＥ  ＰＥビーズ、Ｂｅｃｔｏｎ−Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ）の蛍光強度と比較し、それぞれの実験についての部位数を求めた。非特異的な部位の数を、ペプチドまたはＨＬＡ−Ａ２を発現しない細胞の染色強度によって求めた。その後、それぞれの実験についての特異的な部位の数をそれぞれの実験について計算した。平均部位数を１０回の独立した実験／測定から計算した。部位数の偏差はそれぞれの個々の測定における検出感度および細胞の生理学的状態に依存する。バックグラウンド部位数を、ＳＫ−ＢＲ３細胞（ＨＬＡ−Ａ２−／ＭＵＣ１＋）、ＦＭ３Ｄ細胞（ＨＬＡ−Ａ２＋／ＭＵＣ１−）およびＧ−４３細胞（ＨＬＡ−Ａ２−／ＭＵＣ１−）をコントロールとして使用して記載のように求めた。ＪＹ細胞はＢ細胞である。ペプチドによるパルス処理は、細胞表面における潜在的な総ＨＬＡ−Ａ２分子を定量するための手段として役立つ。
【０１８２】
ウイルスモデルにおいて、ＨＴＬＶ−１感染細胞上のＨＬＡ−Ａ２／Ｔａｘ複合体を検出することが可能であった。ＨＴＬＶ−１は、成人Ｔ細胞リンパ腫／白血病（ＡＴＬＬ）および神経学的障害（ＨＡＭ／ＴＳＰ）をはじめとする多くの病理に関与する。抗Ｔａｘ／ＨＬＡ−Ａ２  Ｆａｂによる著しい染色が、ＨＵＴ１０２細胞（ＨＬＡ−Ａ２−）においてではなく、ＨＴＬＶ−１感染のＲＳＣＤ４（ＨＬＡ−Ａ２＋）細胞において観測された。このことは、ＴＣＲ様Ｆａｂはウイルス感染細胞の表面の特定のＨＬＡ−Ａ２／Ｔａｘ複合体を検出できることを示している。染色パターンにより、ＴＣＲ様Ｆａｂとの大きい反応性および低〜中度の反応性を有する２つの亜集団が明らかにされた。このことは、ＲＳＣＤ４のＨＴＬＶ−１感染細胞の亜集団内での特定のＴａｘエピトープの発現における変動性を示しているかもしれない。類似する変動性が、抗Ｔａｘタンパク質抗体を用いた染色実験において観測された。この分析では、ウイルス感染のＲＳＣＤ４細胞（これもまた、大きい反応性および中度の反応性を有する２つの亜集団に分けることができた）がその表面に３×１０４個のＨＬＡ−Ａ２／Ｔａｘ複合体および数百個の部位をそれぞれ呈示することが明らかにされた。これらの結果は、集団内のそれぞれの細胞における特定のペプチド−ＭＨＣ複合体の発現に関する有用かつ容易に得られる直接的な量的データを提供するそのようなＴＣＲ様抗体の力を明瞭に明らかにしている。加えて、これらの結果は、無傷の完全な遺伝子によるトランスフェクションのときに産生されたタンパク質に由来する決定基を呈示するか、決定基を直接にウイルス感染細胞上に呈示する特定のＭＨＣクラスＩ分子の高レベルの発現を明らかにしている。
【０１８３】
これらの結果は、腫瘍細胞の表面におけるＭＨＣ−ペプチド複合体の数が低く、細胞あたり数百個の複合体の範囲であると測定されたという事実（表１）に照らして驚くべきことである。
【０１８４】
実施例２
ＴＣＲ様抗体はメラノーマ細胞における特定のＭＨＣ−ペプチド複合体を認識することができる
腫瘍細胞に対するＴＣＲ様抗体の生物学的活性を調べるために、ＨＬＡ−Ａ２をｇｐ１００由来ペプチド２０９との複合体で認識する抗体Ｇ１を下記のようにインビトロで用いた。実施例２〜実施例５において報告される実験で使用された手順（例えば、アポトーシス、細胞死、ＦＡＣＳ、フローサイトメトリーおよび抗体結合）は、Ｄｅｎｋｂｅｒｇ，Ｇ．他、２００２、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．、９９：９４２１〜９４２６；Ｌｅｖ，Ａ．他、２００２、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．、６２：３１８４〜３１９４；Ｄｅｎｋｂｅｒｇ，Ｇ．他、２００３、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１７１：２１９７〜２２０７に含まれる（これらはすべてがそれらの全体において参考として本明細書中にすべて組み込まれる）。
【０１８５】
メラノーマ腫瘍細胞を、組換えＦａｂ抗体またはｓｃＦｖ抗体と、細胞表面に発現したＨＬＡ−Ａ２／ペプチド複合体との反応性を明らかにするために使用した。約１０６個の細胞を血清非含有ＲＰＭＩにより２回洗浄し、１００μＬにおいて組換えＴＣＲ様抗体（１０μｇ／ｍＬ〜１００μｇ／ｍＬ）と４℃で６０分間〜９０分間インキュベーションした。３回洗浄した後、細胞をＦＩＴＣ標識の抗ヒトＦａｂ（Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈ、Ｗｅｓｔ  Ｇｒｏｖｅ、ＰＡ、米国）とインキュベーションした。最後の洗浄の後、細胞を氷冷ＰＢＳに再懸濁した。接着性の腫瘍細胞をトリプシン処理によって集め、冷ＲＰＭＩに再懸濁した。すべてのその後の洗浄およびインキュベーションを氷冷ＰＢＳにおいて行った。細胞の分析をＦＡＣＳｔａｒフローサイトメーター（Ｂｅｃｔｏｎ  Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ  ａｎｄ  Ｃｏ．、Ｓａｎ  Ｊｏｓｅ、ＣＡ、米国）によって行い、結果をＷｉｎＭＤＩプログラム（Ｔｒｏｔｔｅｒ  Ｊ．、ｈｔｔｐ：／／ｆａｃｓ．ｓｃｒｉｐｐｓ．ｅｄｕ／）により分析した。
【０１８６】
安定なＨＬＡ−Ａ２複合体がペプチド負荷細胞上に形成される。ＨＬＡ−Ｇ９−２０９複合体と特異的に結合するＧ１抗体の能力を明らかにするために、ＨＬＡ−Ｇ９−２０９複合体またはＨＬＡ−Ｇ９−２８０複合体を発現する細胞、あるいは、非負荷細胞を、Ｗ６／３２抗体（ＨＬＡに対する抗体）、ＢＢ７．２抗体（ＨＬＡ−Ａ２に対する抗体）またはＧ１抗体とインキュベーションした。図３ａ〜図３ｃに示されるように、細胞表面におけるＨＬＡ分子の発現および安定化はＭＨＣ−ペプチド複合体に依存している。加えて、Ｇ１抗体は、ＭＨＣ−Ｇ９−２０９複合体を提示する細胞と特異的に相互作用することが見出された。Ｇ１  ｓｃＦｖが、腫瘍細胞の表面に呈示された特定のＭＨＣ−ペプチド複合体と結合できることを明らかにするために、ＨＬＡ−Ａ２＋のメラノーマＦＭ３Ｄ細胞を使用した。細胞を特定のｇｐ１００由来Ｇ９−２０９ペプチドまたはコントロールペプチドでパルス処理した（図３ｄ）。ＪＹ  ＡＰＣと同様に、パルス処理中のメラノーマ細胞は、ペプチド交換によって促進される外部から供給されたペプチドの呈示を可能にする。この方法を使用して、細胞表面に呈示されるＨＬＡ−Ａ２上に提示された外因的および内因的に由来するペプチドの混合物を得た。図３ｅに示されるように、Ｇ１  ｓｃＦｖ抗体は、ｇｐ１００由来のＧ９−２８０ペプチドでパルス処理されたＦＭ３Ｄ細胞においてではなく、Ｇ９−２０９Ｍでパルス処理されたＦＭ３Ｄ細胞におけるＨＬＡ−Ａ２／Ｇ９−２０９Ｍ複合体を染色および検出することができた。Ｇ１  ｓｃＦｖ抗体はまた、天然の非修飾Ｇ９−２０９ペプチドでパルス処理されたＦＭ３Ｄ細胞を染色することができた（図３ｆ）。しかしながら、Ｇ９−２０９ＭペプチドまたはＧ９−２０９ペプチドでパルス処理されたコントロールのＨＬＡ−Ａ２陰性ＫＢ３−１細胞（図３ｇ）はＧ１  ｓｃＦｖ抗体によって認識されなかった（図３ｈ）。
【０１８７】
だが、これらの結果は、Ｇ１  ｓｃＦｖ抗体は、特定のＭＨＣ−ペプチド複合体を、パルス処理されていない腫瘍メラノーマ細胞だけでなく、ペプチドでパルス処理された腫瘍メラノーマ細胞の表面において認識することができることを明らかにしている。
【０１８８】
実施例３
９Ｈ組換え抗体およびＣＬＡ１２組換え抗体の同定
大きいヒト合成単鎖Ｆｖ抗体ライブラリーを、ＭＨＣ−ペプチド複合体と結合することができる抗体についてスクリーニングした。このライブラリーでは、インビボ形成された相補性決定領域（ＣＤＲ）を生殖系列由来のヒト可変領域フレームワークに組合せ論的に入れ替えた［Ａｚｒｉｅｌ−Ｒｏｓｅｎｆｅｌｄ  Ｒ、Ｖａｌｅｎｓｉ  Ｍ、Ｂｅｎｈａｒ  Ｉ、インビボ形成されたＣＤＲを一般的なフレームワーク領域に入れ替えることに基づく配置可能な単鎖抗体のヒト合成コンビナトリアルライブラリー、Ｊ  Ｍｏｌ  Ｂｉｏｌ、２００４（１月２日）；３３５（１）：１７７−９２］。
【０１８９】
スクリーニングを、下記の抗原を使用して、本質的に他の所（Ｄｅｎｋｂｅｒｇ，Ｇ．他、２００２、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．、９９：９４２１〜９４２６）で記載されるように行った：メラノーマｇｐ１００タンパク質に由来するＧ９−２０９ペプチドとの単鎖ＨＬＡ−Ａ２−β２ｍ分子複合体、および、メラノーマＭＡＲＴ１タンパク質に由来する２６−３５ペプチドとの単鎖ＨＬＡ−Ａ２−β２ｍ分子複合体。
【０１９０】
２つのｓｃＦｖ抗体クローンを可溶性の抗体として単離した：
１．９Ｈ  ｓｃＦｖ抗体（ｓｃＦｖコード配列が配列番号３によって示され、ｓｃＦｖポリペプチド配列が配列番号１によって示され、９ＨのＣＤＲが配列番号５〜配列番号１０で提供される）、これは、０．５ｎＭの結合親和性を伴ってＨＬＡ−Ａ２−Ｇ９−２０９複合体に対して特異的なヒト抗体である（示されず）。
２．ＣＬＡ１２  ｓｃＦｖ抗体（ｓｃＦｖコード配列が配列番号１８によって示され、ｓｃＦｖポリペプチド配列が配列番号１７によって示され、ＣＬＡ１２のＣＤＲが配列番号１９〜配列番号２４で提供される）、これは、ＭＡＲＴ１メラノーマタンパク質に由来するＨＬＡ−Ａ２−ＭＡＲＴ２６〜３５ペプチドに対して特異的なヒト抗体である。
【０１９１】
実施例４
ＴＣＲ様抗体は腫瘍由来のＭＨＣ複合体をインサイチュで検出することができる
ＴＣＲ様抗体についての別の大きな潜在的な使用は、免疫組織学的方法を使用する、非障害組織におけるリガンド保有細胞の直接的なインサイチュ可視化である。この可能性を評価するための第１歩として、リガンド保有細胞（ＨＬＡ−Ａ２／Ｇ９−２０９複合体）を直接的に可視化するＧ１  ｓｃＦｖの可能性をメラノーマ細胞に関して調べた。
【０１９２】
メラノーマ細胞はメラノーマ患者に由来し、国立ガン研究所（ＮＩＨ）から譲渡された。
【０１９３】
メラノーマ細胞上のＨＬＡ−Ａ２／Ｇ９−２０９ペプチド−ＭＨＣ複合体のインサイチュ検出。細胞表面のｇｐ１００由来のＧ９−２０９エピトープを認識するＧ１抗体の能力をさらに特徴づけるために、パルス処理していないメラノーマ細胞を免疫組織化学分析において用いた（図４ａ〜図４ｇ）。メラノーマｇｐ１００を発現するＨＬＡ−Ａ２陽性のメラノーマ細胞およびＨＬＡ−Ａ２陰性のメラノーマ細胞を、Ｇ１  ｓｃＦｖ抗体を用いた免疫組織化学染色、次いで、ＨＲＰ標識の抗Ｍｙｃ抗体を用いた二次染色工程に供した。図４ａ〜図４ｇに示されるように、これらの実験では、ｇｐ１００を発現するＨＬＡ−Ａ２陽性メラノーマ細胞株のＦＭ−３−２９（図４ａ）、Ｍ−ｗｗ（図４ｂ）、Ｍ−ＰＡＴ（図４ｃ）、Ｍ−１４１（図４ｄ）およびＦＭ３−Ｄ（図４ｆ）の強い陽性染色が示され、しかし、ｇｐ１００を発現するＨＬＡ−Ａ２陰性メラノーマＧ−４３細胞（図４ｅ）の陽性染色は示されず、また、ＨＬＡ−Ａ２陽性かつｇｐ−１００陰性のＭＤＡ−ＭＢ−２３１乳ガン細胞（図４ｇ）の陽性染色も示されなかった。Ｇ１  ｓｃＦｖは、調べられたさらに６つの非メラノーマ細胞株を染色しなかった（データは示されず）。
【０１９４】
これらのデータは、Ｇ１  ｓｃＦｖ  ＴＣＲ様抗体は、天然に存在する活性な細胞内プロセシングの後、細胞表面において、また、潜在的には組織切片において特定のペプチド−ＭＨＣ複合体をインサイチュで検出することができることを示している。これは、ＴＣＲ様ｓｃＦｖ組換え抗体を使用する腫瘍由来のＴ細胞エピトープのインサイチュ検出を最初に明らかにするものである。
【０１９５】
実施例５
ＴＣＲ様抗体はペプチド特異的なＭＨＣ複合体拘束様式で細胞死を誘導することができる
細胞死を誘導し、かつ、抗原提示細胞を排除するＴＣＲ様抗体の能力を明らかにするために、ペプチド負荷ＡＰＣをＧ１  ｓｃＦｖ抗体による処理に供し、ヨウ化プロピジウム（ＰＩ）染色またはアネキシンＶ染色を用いた。ＰＩは接着性のアポトーシス細胞を染色し、アネキシンＶは、損傷細胞における初期のアポトーシス事象を示すホスファチジルセリン（ＰＳ）に対する膜露出を検出する。
【０１９６】
結果
Ｇ１  ｓｃＦｖは、ＨＬＡ−Ａ２ペプチドが負荷されたメラノーマ細胞において細胞死を誘導することができる。ＪＹ細胞に、ｇｐ１００由来エピトープのＧ９−２０９ＭおよびＧ９−２８０Ｖ、ならびに、他のコントロールＨＬＡ−Ａ２拘束ペプチドを負荷した。前述されるように、抗ＨＬＡ−Ａ２抗体を用いたＦＡＣＳ分析では、Ｇ９−２０９Ｍ負荷細胞、Ｇ９−２８０Ｖ負荷細胞および他のコントロールペプチド負荷細胞に関して、ＨＬＡ−Ａ２分子の類似する発現パターンが明らかにされた（図３ａ〜図３ｈ）。図５ａ〜図５ｄに示されるように、アネキシンＶ染色では、Ｇ１  ｓｃＦｖにより、コントロールペプチドが負荷された細胞（図５ｄ）の細胞死ではなく、特定のＧ９−２０９ペプチドが負荷された細胞（図５ｃ）の細胞死が誘導され得ることが明らかにされた。細胞傷害活性が、ｇｐ１００由来Ｇ９−２８０Ｖエピトープまたは他のコントロールＨＬＡ−Ａ２拘束ペプチドが負荷されたＲＭＡＳ−ＨＨＤ細胞において、あるいは、ペプチドが負荷されなかった細胞において観測された（示されず）。ＥＢＶにより形質転換されたＪＹ細胞（これは正常なＴＡＰを発現する）では、外部から供給されたペプチドの呈示がペプチド交換によって促進される（すなわち、外部からのペプチドが、内部から来ているそのペプチドに取って代わりつつある）。
【０１９７】
これらの結果は、ＴＣＲ様抗体がペプチド特異的なＭＨＣ拘束様式で細胞死を誘導し得ることを初めて明らかにしている。
【０１９８】
Ｇ１  ｓｃＦｖは非処理メラノーマ細胞において細胞死を誘導することができる。誘導された細胞死（「殺傷作用」）をさらに調べるために、Ｇ１  ｓｃＦｖの影響を、患者から樹立されたヒトメラノーマ細胞株について調べた。ｇｐ１００およびＨＬＡ−Ａ２が陽性であるメラノーマ株（５２６、６２４および５０１Ａ）、ｇｐ１００が陽性であるが、ＨＬＡ−Ａ２が陰性であるメラノーマ株（Ｇ４３）、そして、ｇｐ１００が陰性であり、ＨＬＡ−Ａ２が陽性であるメラノーマ株（１９３８）をＧ１抗体による処理に供し、タンパク質合成に対する抗体の影響を測定した。図６に示されるように、Ｇ１  ｓｃＦｖ抗体は、ＨＬＡ−Ａ２タンパク質および腫瘍特異的なｇｐ１００タンパク質の両方について陽性のすべてのメラノーマ細胞の細胞死を用量依存的様式で誘導した。他方で、図６においてさらに示されるように、ｇｐ１００抗原または正しいＭＨＣ対立遺伝子をそれぞれ発現しない１９３８メラノーマ細胞株またはＧ４３メラノーマ細胞株のタンパク質合成は抗体によって影響を受けなかった。
【０１９９】
これらの結果は、ＴＣＲ様抗体（例えば、Ｇ１など）が標的細胞の効率的な細胞死を誘導し得ることを初めて明らかにしている。これらの結果は、疾患特異的なＭＨＣ−ペプチド複合体を発現する疾患細胞（例えば、腫瘍細胞またはウイルス感染細胞など）の特定の集団を抗原（ペプチド）およびＭＨＣに拘束された様式で排除するための治療剤として使用することができる新しいファミリーの抗体型分子への道を開き得る。
【０２００】
メラノーマ分化抗原に由来するＴ細胞エピトープは最も特徴づけられているＴＡＡであり、多くの免疫治療法（例えば、ペプチドおよび樹状細胞（ＤＣ）を用いた養子移入法およびワクチン接種など）が、これらの標的を使用して開発されていたため、本発明者らは、メラノーマ分化抗原（例えば、ｇｐ１００、ＭＡＲＴ１およびチロシナーゼなど）および他の腫瘍関連ＭＨＣ−ペプチド複合体、ならびに、ウイルス標的に向けられた一連のＴ細胞受容体様（ＴＣＲＬ）抗体を作製している（Ｄｅｎｋｂｅｒｇ，Ｇ．他、２００２、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．、９９：９４２１〜９４２６；Ｄｅｎｋｂｅｒｇ，Ｇ．他、２００３、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１７１：２１９７〜２２０７；Ｌｅｖ，Ａ．他、２００２、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．、６２：３１８４〜３１９４；Ｃｏｈｅｎ，ＣＪ．他、２００２、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．、６２：５８３５〜５８４４；Ｃｏｈｅｎ，ＣＬ．他、２００３、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ、１７０：４３４９〜４３６１）。これらのＴＣＲＬ抗体は、ペプチドでパルス処理されたＡＰＣに結合することができ（図１〜図３）、同様に、ＨＬＡ−Ａ２陽性であるメラノーマ患者由来のメラノーマ細胞株にも結合することができた（図４ａ〜図４ｄ）。従って、ＴＣＲＬ抗体は、細胞表面に発現されるような正真正銘のＭＨＣ−ペプチド複合体と結合することができることが見出され、この反応性はＨＬＡ−Ａ２および抗原の発現と相関し、かつ、ＨＬＡ−Ａ２および抗原の発現に依存していた。
【０２０１】
ＴＣＲＬ−ＰＥ融合抗体は抗腫瘍活性を示す。ＴＣＲＬ抗体を、毒素の細胞結合ドメインが欠失され、移行ドメインおよびＡＤＰ−リボシル化ドメインがＴＣＲＬ抗体に融合される短縮化形態のシュードモナス菌体外毒素（ＰＥ３８）に遺伝子融合した。タンパク質合成に対するそのような融合ＴＣＲＬ分子の影響を、様々なペプチドが負荷された細胞について調べた。図７ａ〜図７ｃに示されるように、細胞が特定のｇｐ１００由来ペプチドにより負荷され、従って、ＨＬＡ−ペプチド（例えば、Ｇ９−２０９）複合体を呈示したとき、特異的なタンパク質阻害活性が達成された。
【０２０２】
図８ａ〜図８ｄは、メラノーマ細胞内へのＴＣＲＬの内在化、および、ＨＬＡ−Ａ２−／ｇｐ１００＋のメラノーマ細胞株（Ｇ−４３）またはＨＬＡ−Ａ２＋／ｇｐ１００−のメラノーマ細胞株（１９３８）に対してではなく、ＨＬＡ−Ａ２＋／ｇｐ１００＋のメラノーマ細胞（例えば、５２６、５０１Ａ、６２４．３８）に対するＴＣＲＬ（例えば、２Ｆ１抗体）の特異的な２Ｆ１細胞毒性作用を示す。加えて、図８ｄにおいてさらに示されるように、細胞死のそのような誘導が比較的低いＴＣＲＬ濃度の存在下で達成され、有効ＩＣ５０が１５ｎｇ／ｍＬ〜３０ｎｇ／ｍＬであった。
【０２０３】
これらの結果から、特に腫瘍細胞上において薬物または毒素を標的化するためのＴＣＲＬ抗体の潜在的な使用が強く示唆される。
【０２０４】
ネイクドＴＣＲＬ抗体はＨＬＡ−Ａ２および抗原に特異的な様式でタンパク質合成の強力な阻害を示す。文献では、ＭＨＣクラスＩおよびＭＨＣクラスＩＩに対する抗体が標的細胞に対する様々な生物学的作用（特に、標的細胞のアポトーシスを引き起こすシグナル伝達事象を開始させるその能力）を有することが強く示されている（Ｎａｇｙ  ＺＡ他、２００２；Ｎａｇｙ  ＺＡおよびＭｏｏｎｅｙ  ＮＡ．、２００３；Ｌｏｎｇｏ，Ｄ．Ｌ．、２００２；Ｖｉｄｏｖｉｃ  ＤおよびＴｏｒａｌ  ＪＩ．、１９９８；Ｐｅｄｅｒｓｅｎ  ＡＥ他、１９９９；Ｒｕｈｗａｌｄ  Ｍ他、１９９９；Ｍｏｒｉ  Ｍ他、１９９９；Ｇｅｎｅｓｔｉｅｒ  Ｌ他、１９９７；Ｇｅｎｅｓｔｉｅｒ  Ｌ他、１９９７；Ｓｋｏｖ  Ｓ他、１９９７）。これらの研究は、ＭＨＣに対して特異的ではあるが、本発明のＴＣＲＬ抗体のように、対立遺伝子およびペプチドに対して特異的ではない抗クラスＩ抗体および抗クラスＩＩ抗体を用いて行われていた。ネイクド抗体として標的細胞に対する生物学的活性を発揮する本発明のＴＣＲＬ抗体の能力を調べるために、患者由来のメラノーマ細胞株をｇｐ１００特異的ＴＣＲＬ抗体およびＭＡＲＴ１特異的ＴＣＲＬ抗体とインキュベーションした。
【０２０５】
ネイクドＴＣＲＬ抗体はＨＬＡ−ペプチド特異的な様式でメラノーマ細胞においてアポトーシスを誘導した。メラノーマ細胞を、ｇｐ１００またはＭＡＲＴ１（ＣＬＡ１２）に向けられた、２Ｆ１、９ＨおよびＧ１の各ネイクドＴＣＲ様抗体フラグメントに供し、細胞のアポトーシスを、ヨウ化プロピジウム（ＰＩ）フローサイトメトリー染色を使用して測定した。図９ａ〜図９ｊはこれらの実験の結果を示す。ＨＬＡ−Ａ２＋／抗原＋である細胞では、ＰＩ陽性細胞の割合が４４％〜５８％の範囲であった（図９ｅ〜図９ｇ）が、ＨＬＡ−Ａ２（＋）ｇｐ１００（−）ＭＡＲＴ（−）の細胞またはＨＬＡ−Ａ２（−）ｇｐ１００（＋）ＭＡＲＴ（＋）の細胞では、ＰＩ陽性細胞の割合が７％〜１４％の範囲であった（図９ａ〜図９ｄ）。
【０２０６】
ＨＬＡ−ペプチド複合体に対するネイクドＴＣＲＬ抗体の特異性を調べるために、ｇｐ１００＋／ＨＬＡ−Ａ２＋である６２４メラノーマ細胞をＧ１  ＴＣＲＬ抗体およびコントロール１Ａ７  ＴＣＲＬ抗体（これは、天然のＧ９−２０９ペプチドとの複合体においてではなく、変異型Ｇ９−２０９Ｍペプチドとの複合体でＨＬＡ−Ａ２に対して特異的である）で処理し、細胞をＰＩアネキシンＶフローサイトメトリー分析に供した。図９ｉ〜図９ｊに示されるように、Ｇ１  ＴＣＲＬで処理された細胞では、ＰＩ陽性細胞およびアネキシンＶ陽性細胞の割合がそれぞれ約２０％および５３％であったが、コントロールの１Ａ７  ＴＣＲＬ抗体で処理された細胞では、ＰＩ陽性細胞およびアネキシンＶ陽性細胞の割合がそれぞれ約７ａ％および１２％であった。
【０２０７】
ＴＣＲＬ抗体のクローニング。抗体がクラスＩに結合することにより関与するシグナル伝達経路が二量体化を必要とするかどうかは文献から知られていない。本発明者らは、高濃度のメラノーマ特異的ＴＣＲＬ  ｓｃＦｖが、高濃度では自発的な二量体形成が存在するという事実のためであることを仮定している。従って、ＴＣＲＬ  ｓｃＦｖフラグメントを、ＦｄドメインおよびＣＬ  ＦａｂドメインをＩｇＧ１骨格内にクローン化することによって完全なＩｇＧ分子に転換し、完全なＴＣＲＬ  ＩｇＧ分子をＨＥＫ２９３細胞において形成させ、ＴＣＲＬ  ＩｇＧを培養上清から精製した。数個のクローンを、本質的にはＴｈｏｍａｓ  Ｊｏｓｔｏｃｋａ他（Ｆａｂオンファージディスプレーライブラリーに由来する機能的なヒトＩｇＧ抗体の迅速な作製、Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｍｅｔｈｏｄｓ、第２８９巻、発行：１−２、２００４年６月、６５頁〜８０頁）に記載されるように単離した。
【０２０８】
クローン化されたＴＣＲＬ  ＩｇＧはＨＬＡ−ペプチド複合体に対する増大した特異性を示す。ｇｐ１００のＨＬＡ−Ａ２／Ｇ９−２０９ペプチドを標的化するＴＣＲ様抗体９Ｈを完全なＩｇＧ分子に転換し、ペプチドでパルス処理されたＪＹ細胞に対するその反応性を調べた。図１０ａ〜図１０ｄに示されるように、特定のｇｐ１００由来メラノーマペプチドでパルス処理されたＡＰＣに対するＴＣＲＬ  ＩｇＧ分子の反応性および特異性は維持され、また、そのアビディティの増大のために改善さえされた。同様に、１つのＩｇＧクローンを、ＨＬＡ−Ａ２−Ｇ９−２８０複合体に向けられている２Ｆ１  ｓｃＦｖから調製した。表２（下記）は、メラノーマ細胞株に対するネイクドＴＣＲＬ  ＩｇＧ分子の活性およびｓｃＦｖ分子の活性の比較を示す。表２に示されるように、細胞死誘導活性が、クローン化されたＴＣＲＬでは維持されていた。さらに、５０％細胞死の著しいレベルを達成するために要求されたＴＣＲＬ  ＩｇＧ分子の濃度が、ｓｃＦｖ抗体と比較して、著しく低下していた。
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表２：ｇｐ１００−Ｇ９−２８０メラノーマエピトープを標的化するＴＣＲ様抗体を用いたメラノーマ細胞の特異的な細胞死を達成するために要求された２Ｆ１  ｓｃＦｖ抗体（一価）および完全な２Ｆ１  ＩｇＧ（二価）の濃度
【０２０９】
これらの結果は、特異的なＭＨＣ拘束かつペプチド特異的なアポトーシスを標的細胞において誘導することができ、また、メラノーマおよび他の腫瘍タイプに対する治療的な免疫治療様式として前臨床的に開発され得る新しい実体として見なすことができる分子としてのその潜在的な適用を検討することだけでなく、メラノーマ細胞に対する標的化成分として役立たせるためのＴＣＲＬ抗体の潜在的な使用を明らかにしている。
【０２１０】
明確にするため別個の実施態様で説明されている本発明の特定の特徴は単一の実施態様に組み合わせて提供することもできることは分かるであろう。逆に、簡潔にするため単一の実施態様で説明されている本発明の各種の特徴は別個にまたは適切なサブコンビネーションで提供することもできる。
【０２１１】
本発明はその特定の実施態様によって説明してきたが、多くの別法、変更及び変形があることは当業者には明らかであることは明白である。従って、本発明は、本願の請求項の精神と広い範囲の中に入るこのような別法、変更及び変形すべてを包含するものである。本願で挙げた刊行物、特許及び特許願はすべて、個々の刊行物、特許及び特許願が各々あたかも具体的にかつ個々に引用提示されているのと同程度に、全体を本明細書に援用するものである。さらに、本願で引用又は確認したことは本発明の先行技術として利用できるという自白とみなすべきではない。
【０２１２】
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【図面の簡単な説明】
【０２１３】
【図１ａ−ｃ】抗原提示細胞に対するＴＣＲ様抗体の結合を示す。
【図１ｄ−ｆ】抗原提示細胞に対するＴＣＲ様抗体の結合を示す。
【図２ａ−ｃ】天然に存在する活性な細胞内プロセシングの後におけるＴＣＲ様抗体による特異的なＨＬＡ−Ａ２／ペプチド複合体の検出を示す。
【図２ｄ−ｉ】天然に存在する活性な細胞内プロセシングの後におけるＴＣＲ様抗体による特異的なＨＬＡ−Ａ２／ペプチド複合体の検出を示す。
【図３ａ−ｄ】フローサイトメトリーによって測定されたときの、ペプチドパルス処理されたＪＹ  ＡＰＣ（図３ａ〜図３ｃ）またはメラノーマＦＭ３Ｄ細胞（図３ｄ）に対するｇ１ｓｃＦｖの結合を示す。
【図３ｅ−ｈ】フローサイトメトリーによって測定されたときの、メラノーマＦＭ３Ｄ細胞（図３ｅ〜図３ｆ）またはｋｂ３−１細胞（図３ｇ〜図３ｈ）に対するｇ１ｓｃＦｖの結合を示す。
【図４】Ｇ１  ｓｃＦｖ抗体によるメラノーマ細胞の染色を示す免疫組織化学分析である。
【図５】ペプチドパルス処理されたＡＰＣに対するＧ１  ｓｃＦｖの細胞毒性を示すＦＡＣＳ分析である。
【図６】メラノーマ細胞に対する、Ｇ１  ｓｃＦｖ抗体を用いた細胞毒性アッセイを示すグラフである。
【図７ａ−ｂ】ペプチドパルス処理されたＡＰＣに対するＧ１  ｓｃＦｖ−ＰＥ３８の細胞傷害活性を示すグラフである。
【図７ｃ】ペプチドパルス処理されたＡＰＣに対するＧ１  ｓｃＦｖ−ＰＥ３８の細胞傷害活性を示すグラフである。
【図８ａ−ｄ】ＴＣＲ様抗体の内在化（図８ａ〜図８ｃ）およびメラノーマ細胞の殺傷（図８ｄ）を示す免疫染色（図８ａ〜図８ｃ）およびグラフ（図８ｄ）である。
【図８ｅ】メラノーマ細胞の殺傷（図８ｅ）を示すグラフ（図８ｅ）である。
【図９ａ−ｈ】ネイクド（毒素非含有）ＴＣＲ様抗体ｓｃＦｖフラグメントにより誘導されたメラノーマ細胞の細胞死を示すＦＡＣＳ分析である。
【図９ｉ−ｊ】ネイクド（毒素非含有）ＴＣＲ様抗体ｓｃＦｖフラグメントにより誘導されたメラノーマ細胞の細胞死を示すＦＡＣＳ分析である。
【図１０】完全なＩｇＧ分子へのＴＣＲ様抗体ｓｃＦｖフラグメントの転換、メラノーマ細胞における細胞死の誘導を示すフロ−サイトメトリー分析である。
【配列表フリーテキスト】
【０２１４】
配列番号１は単鎖Ｆｖ  ９Ｈの配列である。
配列番号２は単鎖Ｆｖ  Ｇ１の配列である。
配列番号３は単鎖Ｆｖ  ９Ｈのコーディング配列である。
配列番号４は単鎖Ｆｖ  Ｇ１のコーディング配列である。
配列番号５〜１０はｓｃＦｖ  ９Ｈ  ＣＤＲの配列である。
配列番号１１〜１６はｓｃＦｖ  Ｇ１  ＣＤＲの配列である。
配列番号１７は単鎖Ｆｖ  ＣＬＡ１２の配列である。
配列番号１８は単鎖Ｆｖ  ＣＬＡ１２のコーディング配列である。
配列番号１９〜２４はｓｃＦｖ  ＣＬＡ１２  ＣＤＲの配列である。
【図１ａ−ｃ】
2008501781.tif 000009
【図１ｄ−ｆ】
2008501781.tif 000010
【図２ａ−ｃ】
2008501781.tif 000011
【図２ｄ−ｉ】
2008501781.tif 000012
【図３ａ−ｄ】
2008501781.tif 000013
【図３ｅ−ｈ】
2008501781.tif 000014
【図４】
2008501781.tif 000015
【図５】
2008501781.tif 000016
【図６】
2008501781.tif 000017
【図７ａ−ｂ】
2008501781.tif 000018
【図７ｃ】
2008501781.tif 000019
【図８ａ−ｄ】
2008501781.tif 000020
【図８ｅ】
2008501781.tif 000021
【図９ａ−ｈ】
2008501781.tif 000022
【図９ｉ−ｊ】
2008501781.tif 000023
【図１０】
2008501781.tif 000024
【配列表】
2008501781000001.xml
【国際調査報告】
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