(57)【要約】【課題】  ドセタキセルで治療されている患者の体液試料中のドセタキセルを特に検出しモニターすることができる免疫測定方法の提供。【解決手段】  ドセタキセルの７及び１０位から誘導される新規のドセタキセルの共役と新規のドセタキセル免疫原及びこれらの免疫原に連結されるドセタキセルによって生成されたモノクロナール抗体は、免疫測定法において生体液中のドセタキセルの定量化及びモニタリングに有用である。【選択図】  なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
試料と、ドセタキセルに反応する抗体と、一般式
【化１】
2008534927.tif 000024
（式中、Ｂは−ＣＨ２−、
【化２】
2008534927.tif 000025
又は
【化３】
2008534927.tif 000026
であって、Ｙは有機スぺーシング基、Ｘは担体に結合可能な官能基、ｐは０から１の整数である）
の化合物、
一般式
【化４】
2008534927.tif 000027
（式中、Ｂ，Ｘ，Ｙ及びｐは上述のとおり）
の化合物、
【化５】
2008534927.tif 000028
（式中、Ｂ，Ｘ，Ｙ及びｐは上述のとおり）
の化合物
及びその混合物から選択された配位子を伴う担体の共役とを含む混合物を準備することを含む試料中のドセタキセル検出のための免疫測定法であって、
試料中のドセタキセル及び前記共役を前記抗体と結合させ、その後、前記抗体に結合又は未結合の前記混合物中の前記共役量を測定し、それによって試料中のドセタキセルの存在を測定することができることを特徴とする免疫測定法。
【請求項２】
請求項１記載の方法であって、試料はヒトの試料であることを特徴とする免疫測定法。
【請求項３】
請求項２記載の免疫測定法であって、前記抗体は、一般式
【化６】
2008534927.tif 000029
（式中、ｐ，Ｙ及びＢは上述のとおりで、Ｘは担体に結合可能な官能基である）
の化合物、
一般式
【化７】
2008534927.tif 000030
（式中、Ｂ，Ｘ，Ｙ及びｐは上述のとおり）
の化合物、
一般式
【化８】
2008534927.tif 000031
（式中、Ｂ，Ｘ，Ｙ及びｐは上述のとおり）
及びその混合物を含むグループから選択された配位子に連結する免疫原担体を有する免疫原から生成されることを特徴とする免疫測定方法。
【請求項４】
請求項２記載の免疫測定法であって、前記抗体は固形支持体に付着していることを特徴とする免疫測定法。
【請求項５】
請求項４記載の免疫測定法であって、前記固形支持体はマイクロタイタープレートであることを特徴とする免疫測定法。
【請求項６】
請求項４記載の免疫測定法であって、前記固形支持体は微粒子であることを特徴とする免疫測定法。
【請求項７】
請求項６記載の免疫測定法であって、前記抗体はマウス、ウサギ又はラットから誘導されることを特徴とする免疫測定法。
【請求項８】
請求項７記載の免疫測定法であって、前記抗体はモノクロナール抗体であることを特徴とする免疫測定法。
【請求項９】
請求項３記載の免疫測定法であって、前記抗体は一般式
【化９】
2008534927.tif 000032
（式中、Ｂは−ＣＨ２−、
【化１０】
2008534927.tif 000033
又は
【化１１】
2008534927.tif 000034
であって、Ｙは有機スぺーシング基、Ｘは担体に結合可能な官能基、ｐは０から１の整数である）
の配位子を伴う免疫原担体の免疫原から誘導されることを特徴とする免疫測定法。
【請求項１０】
請求項９記載の免疫測定法であって、前記抗体はマウス、ウサギ又はラットから誘導されることを特徴とする免疫測定法。
【請求項１１】
請求項９記載の免疫測定法であって、前記抗体はモノクロナール抗体であることを特徴とする免疫測定法。
【請求項１２】
請求項３記載の免疫測定法であって、前記抗体は、一般式
【化１２】
2008534927.tif 000035
（式中、Ｂ，Ｘ，Ｙ及びｐは上述のとおり）
の配位子を伴う免疫原担体の免疫原から誘導されることを特徴とする免疫測定法。
【請求項１３】
請求項１２記載の免疫測定法であって、前記抗体はマウス、ウサギ又はラットから誘導されることを特徴とする免疫測定法。
【請求項１４】
請求項１３記載の免疫測定法であって、前記抗体はモノクロナール抗体であることを特徴とする免疫測定法。
【請求項１５】
請求項３記載の免疫測定法であって、前記抗体は、免疫原ポリアミンポリマー及び一般式
【化１３】
2008534927.tif 000036
（式中、Ｂ，Ｘ，Ｙ及びｐは上述のとおり）
の配位子の免疫原から誘導されることを特徴とする免疫測定法。
【請求項１６】
請求項１５記載の免疫測定法であって、前記抗体はマウス、ウサギ又はラットから誘導されることを特徴とする免疫測定法。
【請求項１７】
請求項１５記載の免疫測定法であって、前記抗体はモノクロナール抗体であることを特徴とする免疫測定法。
【請求項１８】
ドセタキセルに反応し、実質的にタキソールに反応しないことを特徴とする抗体。
【請求項１９】
請求項１８記載の抗体であって、前記抗体は、一般式
【化１４】
2008534927.tif 000037
（式中、Ｂは−ＣＨ２−、
【化１５】
2008534927.tif 000038
又は
【化１６】
2008534927.tif 000039
であって、Ｙは有機スぺーシング基、Ｘは担体に結合可能な官能基、ｐは０から１の整数である）
の化合物、
一般式
【化１７】
2008534927.tif 000040
（式中、Ｂ，Ｘ，Ｙ及びｐは上述のとおり）
の化合物、
一般式
【化１８】
2008534927.tif 000041
（式中、Ｂ，Ｘ，Ｙ及びｐは上述のとおり）
の化合物及びその混合物を含むグループから選択された配位子に連結された免疫原担体を含む免疫原から生成されることを特徴とする抗体。
【請求項２０】
請求項１９記載の抗体であって、前記抗体はマウス、ウサギ又はラットから誘導されることを特徴とする抗体。
【請求項２１】
請求項２０記載の抗体であって、前記抗体はモノクロナール抗体であることを特徴とする抗体。
【請求項２２】
請求項１９記載の抗体であって、前記抗体は、一般式
【化１９】
2008534927.tif 000042
（式中、Ｂ，Ｘ，Ｙ及びｐは上述のとおり）
の配位子を伴う免疫原担体の免疫原から誘導されることを特徴とする抗体法。
【請求項２３】
請求項２２記載の抗体であって、前記抗体はマウス、ウサギ又はラットから誘導されることを特徴とする抗体。
【請求項２４】
請求項２３記載の抗体であって、前記抗体はモノクロナール抗体であることを特徴とする抗体。
【請求項２５】
請求項１９記載の抗体であって、前記抗体は、一般式
【化２０】
2008534927.tif 000043
（式中、Ｂ，Ｘ，Ｙ及びｐは上述のとおり）
の配位子を伴うポリアミンポリマーの免疫原から誘導されることを特徴とする抗体。
【請求項２６】
請求項２５記載の抗体であって、前記抗体はマウス、ウサギ又はラットから誘導されることを特徴とする抗体。
【請求項２７】
請求項２５記載の抗体であって、前記抗体はモノクロナール抗体であることを特徴とする抗体。
【請求項２８】
請求項２７記載の抗体であって、前記抗体はマウス、ウサギ又はラットから誘導されることを特徴とする抗体。
【請求項２９】
請求項１９記載の抗体であって、前記抗体は、一般式
【化２１】
2008534927.tif 000044
（式中、Ｂ，Ｘ，Ｙ及びｐは上述のとおり）
の配位子を伴う担体の免疫原から誘導されることを特徴とする抗体。
【請求項３０】
請求項２９記載の抗体であって、前記抗体はマウス、ウサギ又はラットから誘導されることを特徴とする抗体。
【請求項３１】
請求項３０記載の抗体であって、前記抗体はモノクロナール抗体であることを特徴とする抗体。
【請求項３２】
請求項３１記載の抗体であって、前記抗体はマウス、ウサギ又はラットから誘導されることを特徴とする抗体。
【請求項３３】
一般式
【化２２】
2008534927.tif 000045
（式中、Ｂは−ＣＨ２−、
【化２３】
2008534927.tif 000046
又は
【化２４】
2008534927.tif 000047
であって、Ｙは有機スぺーシング基、Ｘは担体に結合可能な官能基、ｐは０から１の整数である）
であることを特徴とする化合物。
【請求項３４】
請求項３３記載の化合物であって、前記担体はポリアミンポリマーを含むことを特徴とする化合物。
【請求項３５】
請求項３４記載の化合物であって、ｐは０であることを特徴とする化合物。
【請求項３６】
請求項３５記載の化合物であって、Ｘは、
【化２５】
2008534927.tif 000048
、
【化２６】
2008534927.tif 000049
又は
【化２７】
2008534927.tif 000050
であり、式中Ｒ３は水素又はそれに結びつく酸素原子と一緒に得られる反応性エステルであり、Ｒ４は酸素又は硫黄であることを特徴とする化合物。
【請求項３７】
請求項３６記載の化合物であって、Ｘは、
【化２８】
2008534927.tif 000051
であり、Ｒ３は水素であることを特徴とする化合物。
【請求項３８】
請求項３６記載の化合物であって、Ｘは、
【化２９】
2008534927.tif 000052
であり、Ｒ３は反応性エステルを形成することを特徴とする化合物。
【請求項３９】
請求項３８記載の化合物であって、形成されたエステルは低級アルキルエステル、イミドエステル又はアミドエステルであることを特徴とする化合物。
【請求項４０】
請求項３４記載の化合物であって、ｐは１であることを特徴とする化合物。
【請求項４１】
請求項４０記載の化合物であって、Ｘは、
【化３０】
2008534927.tif 000053
、
【化３１】
2008534927.tif 000054
又は
【化３２】
2008534927.tif 000055
であり、式中Ｒ３は水素又はそれに結びつく酸素原子と一緒に得られる反応性エステルであり、Ｒ４は酸素又は硫黄であることを特徴とする化合物。
【請求項４２】
請求項４１記載の化合物であって、Ｙは、１から１０の炭素原子を含むアルキレン、
【化３３】
2008534927.tif 000056
【化３４】
2008534927.tif 000057
又は
【化３５】
2008534927.tif 000058
又は
【化３６】
2008534927.tif 000059
であり、式中ｎ及びＯは０から６の整数であり、ｍは１から６の整数であることを特徴とする化合物。
【請求項４３】
一般式
【化３７】
2008534927.tif 000060
（式中、Ｂは−ＣＨ２−、
【化３８】
2008534927.tif 000061
又は
【化３９】
2008534927.tif 000062
であって、Ｙは有機スぺーシング基、Ｘ´は−ＣＨ２−又は担体に結合可能な官能結鎖基、ｐは０から１の整数である）
の配位子半分に連結した担体を含むことを特徴とする共役。
【請求項４４】
請求項４３記載の共役であって、担体はポリアミンポリマーを含むことを特徴とする共役。
【請求項４５】
請求項４４記載の共役であって、ｐは１であることを特徴とする共役。
【請求項４６】
請求項４５記載の共役であって、Ｘ´は、
【化４０】
2008534927.tif 000063
又は
【化４１】
2008534927.tif 000064
であり、Ｒ４は酸素又は硫黄であることを特徴とする共役。
【請求項４７】
請求項４４記載の共役であって、ｐは１であることを特徴とする共役。
【請求項４８】
請求項４５記載の共役であって、Ｙは、１から１０の炭素原子を含むアルキレン、
【化４２】
2008534927.tif 000065
、
【化４３】
2008534927.tif 000066
又は
【化４４】
2008534927.tif 000067
又は
【化４５】
2008534927.tif 000068
であり、式中ｎ及びＯは０から６の整数であり、ｍは１から６の整数であることを特徴とする共役。
【請求項４９】
請求項４８記載の共役であって、Ｘ´は、
【化４６】
2008534927.tif 000069
又は
【化４７】
2008534927.tif 000070
であり、Ｒ４は酸素又は硫黄であることを特徴とする共役。
【請求項５０】
請求項４４記載の共役であって、前記ポリアミンポリマーは免疫原ポリマーであることを特徴とする共役。
【請求項５１】
一般式
【化４８】
2008534927.tif 000071
（式中、Ｂは−ＣＨ２−、
【化４９】
2008534927.tif 000072
又は
【化５０】
2008534927.tif 000073
であって、Ｙは有機スぺーシング基、Ｘ´は担体に結合可能な官能基、ｐは０から１の整数である）の化合物。
【請求項５２】
請求項５１記載の化合物であって、Ｘはポリアミンポリマーに結合可能な官能基であることを特徴とする化合物。
【請求項５３】
請求項５２記載の化合物であって、ｐは０であることを特徴とする化合物。
【請求項５４】
請求項５２記載の化合物であって、Ｘは、
【化５１】
2008534927.tif 000074
、
【化５２】
2008534927.tif 000075
又は
【化５３】
2008534927.tif 000076
であり、式中Ｒ３は水素又はそれに結びつく酸素原子と一緒に得られる反応性エステルであり、Ｒ４は酸素又は硫黄であることを特徴とする化合物。
【請求項５５】
請求項５４記載の化合物であって、Ｘは、
【化５４】
2008534927.tif 000077
であり、Ｒ３は水素であることを特徴とする化合物。
【請求項５６】
請求項５４記載の化合物であって、Ｘは、
【化５５】
2008534927.tif 000078
であり、Ｒ３は反応性エステルを形成することを特徴とする化合物。
【請求項５７】
請求項５６記載の化合物であって、形成されたエステルは低級アルキルエステル、イミドエステル又はアミドエステルであることを特徴とする化合物。
【請求項５８】
請求項５１記載の化合物であって、ｐは１であることを特徴とする化合物。
【請求項５９】
請求項５８記載の化合物であって、Ｙは、１から１０の炭素原子を含むアルキレン、
【化５６】
2008534927.tif 000079
、
【化５７】
2008534927.tif 000080
又は
【化５８】
2008534927.tif 000081
又は
【化５９】
2008534927.tif 000082
であり、式中ｎ及びＯは０から６の整数であり、ｍは１から６の整数であることを特徴とする化合物。
【請求項６０】
一般式
【化６０】
2008534927.tif 000083
（式中、Ｂは−ＣＨ２−、
【化６１】
2008534927.tif 000084
又は
【化６２】
2008534927.tif 000085
であって、Ｙは有機スぺーシング基、Ｘは担体に結合可能な官能基、ｐは０から１の整数である）であることを特徴とする化合物。
【請求項６１】
請求項６０記載の化合物であって、Ｘはポリアミンポリマーに結合可能であることを特徴とする化合物。
【請求項６２】
請求項６１記載の化合物であって、ｐは０であることを特徴とする化合物。
【請求項６３】
請求項６２記載の化合物であって、Ｘは、
【化６３】
2008534927.tif 000086
、
【化６４】
2008534927.tif 000087
又は
【化６５】
2008534927.tif 000088
であり、式中Ｒ３は水素又はそれに結びつく酸素原子と一緒に得られる反応性エステルであり、Ｒ４は酸素又は硫黄であることを特徴とする化合物。
【請求項６４】
請求項６３記載の化合物であって、Ｘは、
【化６６】
2008534927.tif 000089
であり、Ｒ３は水素であることを特徴とする化合物。
【請求項６５】
請求項６３記載の化合物であって、Ｘは、
【化６７】
2008534927.tif 000090
であり、Ｒ３は反応性エステルを形成することを特徴とする化合物。
【請求項６６】
請求項６５記載の化合物であって、形成されたエステルは低級アルキルエステル、イミドエステル又はアミドエステルであることを特徴とする化合物。
【請求項６７】
請求項６１記載の化合物であって、ｐは１であることを特徴とする化合物。
【請求項６８】
請求項６７記載の化合物であって、Ｘは、
【化６８】
2008534927.tif 000091
、
【化６９】
2008534927.tif 000092
又は
【化７０】
2008534927.tif 000093
であり、式中Ｒ３は水素又はそれに結びつく酸素原子と一緒に得られる反応性エステルであり、Ｒ４は酸素又は硫黄であることを特徴とする化合物。
【請求項６９】
請求項６８記載の化合物であって、Ｙは、１から１０の炭素原子を含むアルキレン、
【化７１】
2008534927.tif 000094
、
【化７２】
2008534927.tif 000095
又は
【化７３】
2008534927.tif 000096
又は
【化７４】
2008534927.tif 000097
であり、式中ｎ及びＯは０から６の整数であり、ｍは１から６の整数であることを特徴とする化合物。
【請求項７０】
一般式
【化７５】
2008534927.tif 000098
（式中、Ｂは−ＣＨ２−、
【化７６】
2008534927.tif 000099
又は
【化７７】
2008534927.tif 000100
であり、Ｙは有機スぺーシング基、Ｘ´は−ＣＨ２−又は担体に結合可能な官能結鎖基、ｐは０から１の整数である）
の配位子半分に連結する担体を含むことを特徴とする共役。
【請求項７１】
請求項７０記載の共役であって、担体はポリアミンポリマーを含むことを特徴とする共役。
【請求項７２】
請求項７１記載の共役であって、ｐは０であることを特徴とする共役。
【請求項７３】
請求項７２記載の共役であって、Ｘ´は
【化７８】
2008534927.tif 000101
又は
【化７９】
2008534927.tif 000102
であり、Ｒ４は酸素又は硫黄であることを特徴とする共役。
【請求項７４】
請求項７１記載の共役であって、ｐは１であることを特徴とする共役。
【請求項７５】
請求項７４記載の共役であって、Ｙは、１から１０の炭素原子を含むアルキレン、
【化８０】
2008534927.tif 000103
、
【化８１】
2008534927.tif 000104
又は
【化８２】
2008534927.tif 000105
又は
【化８３】
2008534927.tif 000106
であり、式中ｎ及びＯは０から６の整数であり、ｍは１から６の整数であることを特徴とする共役。
【請求項７６】
請求項７５記載の共役であって、Ｘ´は
【化８４】
2008534927.tif 000107
又は
【化８５】
2008534927.tif 000108
であり、Ｒ４は酸素又は硫黄であることを特徴とする共役。
【請求項７７】
請求項７１記載の共役であって、前記ポリアミンポリマーは免疫原ポリマーであることを特徴とする共役。
【請求項７８】
一般式
【化８６】
2008534927.tif 000109
（式中、Ｂは−ＣＨ２−、
【化８７】
2008534927.tif 000110
又は
【化８８】
2008534927.tif 000111
であり、Ｙは有機スぺーシング基、Ｘ´は−ＣＨ２−又は担体に結合可能な官能結鎖基、ｐは０から１の整数である）
の配位子半分に連結する担体を含むことを特徴とする共役。
【請求項７９】
請求項７８記載の共役であって、担体はポリアミンポリマーを含むことを特徴とする共役。
【請求項８０】
請求項７９記載の共役であって、ｐは０であることを特徴とする共役。
【請求項８１】
請求項８０記載の共役であって、Ｘ´は
【化８９】
2008534927.tif 000112
又は
【化９０】
2008534927.tif 000113
であり、Ｒ４は酸素又は硫黄であることを特徴とする共役。
【請求項８２】
請求項７９記載の共役であって、ｐは１であることを特徴とする共役。
【請求項８３】
請求項８２記載の共役であって、Ｙは、１から１０の炭素原子を含むアルキレン、
【化９１】
2008534927.tif 000114
、
【化９２】
2008534927.tif 000115
又は
【化９３】
2008534927.tif 000116
又は
【化９４】
2008534927.tif 000117
であり、式中ｎ及びＯは０から６の整数であり、ｍは１から６の整数であることを特徴とする共役。
【請求項８４】
請求項８３記載の共役であって、Ｘ´は
【化９５】
2008534927.tif 000118
又は
【化９６】
2008534927.tif 000119
であり、Ｒ４は酸素又は硫黄であることを特徴とする共役。
【請求項８５】
請求項７９記載の共役であって、前記ポリアミンポリマーは免疫原ポリマーであることを特徴とする共役。
【請求項８６】
分離した容器に詰められた試薬を含む患者試料中のドセタキセルの存在を検出するキットであって、
試薬の１つはドセタキセルに反応し、他の試薬は一般式
【化９７】
2008534927.tif 000120
（式中、Ｂは−ＣＨ２−、
【化９８】
2008534927.tif 000121
又は
【化９９】
2008534927.tif 000122
であって、Ｙは有機スぺーシング基、Ｘは担体に結合可能な官能基、ｐは０から１の整数である）
の化合物、
一般式
【化１００】
2008534927.tif 000123
（式中、Ｂ，Ｘ，Ｙ及びｐは上述のとおり）
の化合物、
【化１０１】
2008534927.tif 000124
（式中、Ｂ，Ｘ，Ｙ及びｐは上述のとおり）
の化合物
及びその混合物から選択された配位子を伴う担体の共役であることを特徴とするキット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、存在を決定しおよび／または化学療法中に急速に最適な薬物濃度を決定するために人間の生体液中のドセタキセル量を定量化する免疫学的分析の技術分野に関する。
【背景技術】
【０００２】
癌は、身体の一部の細胞がコントロールできずに成長し始める場合に発展するという共通の特性をすべて共有する一群の悪性腫瘍について記述するために使用される用語である。ほとんどの癌は腫物として生ずるが、血液にも同様に現れ、それらが成長する他の組織を通して循環することもある。癌悪性腫瘍には、外科、化学療法、放射線治療、及びこれらの組み合わせが最も一般に扱われる。特定の癌を治療するために使用される治療のタイプは、癌悪性のタイプ、およびそれが診断された段階を含むいくつかの要因に依存する。
【０００３】
タキソテール（その化学名はドセタキセルである)は、乳癌、アンドロゲン非依存性前立腺癌及び非小細胞肺癌の治療に使用される一般的な細胞毒性薬である。ドセタキセル(さらに、それはタキソテールとして知られている)は次の一般式からなる。
【０００４】
【化１０２】
2008534927.tif 000002
【０００５】
この化合物は、骨髄密度ロス、アレルギー反応、好中球減少、吐き気および嘔吐といった「衰弱させる副作用に関係している。身体中のドセタキセルのレベルのモニターおよび服用量の調整によって、これらの副作用を、患者において一層よくコントロールし制限することができる。
【０００６】
同時に、多くの場合ドセタキセルの服用量と、治療効果に影響する血清薬物濃度の結果との間に非常に可変関係がある。個人間でのドセタキセルの薬物動能学の可変性の程度は４倍にもなることがあり、次のものを含む多くの要因によって強い影響が生じる。
・器官機能
・遺伝子調節
・病状
・年齢
・薬物間相互作用
・薬物接摂取時間
・投薬の方法
・投薬に関するテクニック
この可変性の結果、異なる個人が同じ薬を等しい量で服用して、結果的に劇的に異なる臨床結果をもたらされることもある（非特許文献１参照）。同じドセタキセル投薬の有効性は、個々の薬物クリアランスおよび患者の中の最終の血清薬物濃度に基づいて著しく変わる。治療薬管理によって、臨床医は静脈注射用薬の投与で患者の個々の変化を洞察することができるだろう。治療薬管理によって、患者への投薬を個別的に取り扱うことができるかもしれない。また、望まない副作用なしで癌を有効に治療する見込みは、はるかに高いだろう。
【０００７】
さらに、ドセタキセルの治療薬管理は、実際に処方された投薬及び効果的効な血清濃度レベルの達成を備えた投薬化学療法を施す際にコンプライアンスを保証する優れたツールとして役立つだろう。血清濃度での可変性は生理学の要因によるだけでなく、投薬技術における変化からの結果にさらに起因することがあることが分かった。
【特許文献１】Hon  et. al.  Clinical Chemistry 44，pp 388−400，1998
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
ドセタキセルの型通りの治療薬管理では、一般的な実験装置に適応可能な単純な自動テストに利用できることが要求されるだろう。最もこれらの基準に適合するテストは免疫測定方法である。有効な免疫測定方法であるために、薬の活性形態に反応する抗体が開発されなければならないだろう。現在、血漿または血液中のドセタキセルのレベルの決定に利用可能な免疫測定方法はない。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明によれば、ドセタキセルに結合するために、ドセタキセルに実質的に反応する新しい抗体クラスが生産される。
【００１０】
一般式
【００１１】
【化１０３】
2008534927.tif 000003
の１０−ヒドロキシドセタキセル誘導体、
一般式
【００１２】
【化１０４】
2008534927.tif 000004
の７−ヒドロキシドセタキセル誘導体、
【００１３】
【化１０５】
2008534927.tif 000005
の７，１０−ジヒドロキシドセタキセル誘導体
（式中、Ｂは−ＣＨ２−、
【００１４】
【化１０６】
2008534927.tif 000006
又は
【００１５】
【化１０７】
2008534927.tif 000007
であり、
Ｙは有機スぺーシング（spacing）基、Ｘは担体に結合可能な官能基であり、ｐは０から１の整数である）
またはそれの混合物からなるグループから選ばれた配位子を伴う免疫原担体の共役である免疫原の使用によって、ドセタキセルに反応する抗体を生成することがわかった。これらのドセタキセルで反応する抗体を準備することにより、ドセタキセルで治療されている患者の体液試料中のドセタキセルを特に検出しモニターすることができる免疫測定方法を生ずることを可能とする。さらに、前記免疫測定方法のための試薬およびキットが本発明内に含まれている。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１６】
本発明によれば、ドセタキセルに反応する新しいクラスの抗体か供給される。免疫原として一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ又はＩＩ−Ｃのこれらドセタキセル誘導体又はその混合物の使用を通して、本発明の抗体のこれらの新しいクラスが供給されることがわかった。これらの抗体の使用を通して、血液、血漿または他の体液試料中のドセタキセルの検出及び/または定量のためのそのような免疫測定のための試薬およびキットを含む免疫測定が開発された。この免疫測定方法の使用によって、体液試料中、好ましくは血液又は血漿試料中のドセタキセルの存在及び量を検出及び／又は定量することができる。この方法で、ドセタキセルで治療されている患者を、前記モニタリングに従って調整された治療及び処置の間にモニターすることができる。本発明によって、化学療法薬としてドセタキセルで治療されている癌患者においてドセタキセルの治療の薬管理を達成する。好ましい抗体は、ドセタキセルと反応し、タキソールと実質的に交差反応しないものであり、薬学的に不活性なドセタキセル関連化合物は我々に１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩを与えた。
【００１７】
本発明の測定方法において使用される試薬は、一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物又はその混合物を伴う、好ましくはポリアミン官能基を含む担体の共役である。これらの共役は、本発明の抗体との結合のための試料中にあるドセタキセルと結合する競合的結合パートナーである。したがって、抗体に結合する共役試薬の量は試料中のドセタキセルの量に反比例するだろう。本発明によれば、測定方法は、抗体に結合又は未結合の前記共役の検出及びその量の測定に対してどんな従来の測定手段も利用する。前記手段の使用を通じて、結合又は未結合共役の量を測定することができる。一般に、試料中のドセタキセルの量は、試料中のドセタキセルによって生成された結合又は未結合共役の測定量と、既知量（既知量は、テストされる試料に予想される範囲内にある）のドセタキセルを含んでいる標準または較正曲線の試料から測定された結合又は未結合共役の値とを、相互に関連付けることにより決定される。較正曲線を作るためのこれらの研究は試料に使用されるのと同じ免疫測定方法手順を使用して決定される。免疫原と同様に共役も、一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物又はそれの混合物から生成される。共役又は免疫原では、担体及びポリアミンポリマーは、一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物の配位子部分に連結する。配位子部分は一般式。
【００１８】
【化１０８】
2008534927.tif 000008
（式中、Ｙ，Ｂ及びｐは上述のとおりであり、Ｘ´は−ＣＨ２−又は官能結鎖基である）、
一般式
【００１９】
【化１０９】
2008534927.tif 000009
の化合物、及び一般式
【００２０】
【化１１０】
2008534927.tif 000010
の化合物を有している。
【００２１】
これらの配位子部分は、共役または免疫原の担体上の１つ以上の活性部位に連結されていてもよい。一般に、これらの担体は、ポリマー、最も好ましくは反応性に富むアミノ基を有するポリアミンポリマーを有している。共役を形成する際、Ｘにはアミノ基に反応することができる官能基が好適である。一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物を、免疫原を作るために使用する場合、一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物中のＸにはポリアミンポリマーに結合又は連結可能な任意の官能基が好適である。
【００２２】
（定義）
この記述の全体にわたって、次の定義の意に解釈される。
【００２３】
「アルキレン」という用語は、１〜１０の炭素原子を含む二価の飽和直鎖又は分岐鎖炭化水素置換基を示す。
【００２４】
「免疫原」、「免疫原の」という用語は、有機体中の免疫反応を誘発する、作り出す、又は生じさせることが可能な物質を指す。
【００２５】
「共役」という用語は、２つの部分をともに結合することから形成された物質を指す。本発明に従う代表的な共役は、一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ、ＩＩ―Ｃの化合物のような小さな分子と、担体（好ましくはポリアミンポリマーを含む担体、特にタンパク質）のような大きな分子とがともに結合することによって作られたものを含む。共役では、小さな分子は大きな分子の１つ以上の活性部位と結合又は連結されていてもよい。共役という用語は免疫原という用語を含む。試薬として使用される共役では、担体は任意の担体になりえる。また、Ｘは担体に連結することができるどんな官能基にもなりえる。免疫原では、担体はポリアミンポリマーであり、Ｘはポリアミンポリマーに連結可能な任意の官能基である。
【００２６】
「ハプテン」は部分的または不完全な抗原である。それらは、抗体形成を刺激することができないが、抗体と反応する、タンパク質なしの物質（ほとんど低い分子量物質）である。後者は、高い分子量の免疫原担体にハプテンが結合し、その後この結合物、例えば免疫原、を人間または動物の被験者に注射することによって形成される。本発明のハプテンは、ドセタキセルである。
【００２７】
ここで使用されるように、「スぺーシング基」あるいは「スペーサ」は、ＣＨ２あるいは官能結鎖基により、ハプテン、担体、免疫原、標識あるいはトレーサのような２つ以上の下部構造を接続する化学構造の一部を指す。これらのスペーサ基は、本出願で後述で列挙する。スぺーシング基の原子及びスぺーシング基内の鎖の原子は、化学結合によってそれら自身接続される。好ましいスペーサは、直鎖か分岐鎖か、飽和か不飽和の炭素鎖である。これらの炭素鎖は、さらに鎖内で、あるいは鎖の末端で、１つ以上のヘテロ原子を含んでいてもよい。「ヘテロ原子」は、酸素、窒素および硫黄からなる基から選ばれる、炭素以外の原子を意味する。スぺーシング基は、さらに鎖の一部として又は鎖内の原子のうちの１つと置換して、環式又は芳香族基を含んでいてもよい。
【００２８】
スぺーシング基中の原子の数は水素以外の原子を数えることにより決定される。スぺーシング基内の鎖中の原子の数は、接続している下部構造間の最短のルートに沿った水素以外の原子の数を数えることにより決定される。官能結鎖基は、ハプテンと標識又は担体又はポリアミンポリマーとの共役を合成するためのハプテン又はスぺーシング基を活性化する、例えば、利用可能な官能部をオンする、ために使用されてもよい。
【００２９】
ここで使用される「免疫原担体」という用語は、免疫原物質（一般にタンパク質）であり、それはハプテン、本ケースでは前述されたドセタキセルあるいはドセタキセル誘導体、と結合することができ、それによってこれらのハプテン誘導体が免疫反応を引き起こすことができるようにし、これらのハプテンと特異的に結合する抗体の生成を誘発する。免疫原担体及び結鎖基は、本明細書で後述して列挙されるだろう。免疫原の担体物質は、宿主から異物として認識され、それによって免疫原反応を誘発する、タンパク質、糖タンパク質、複合ポリアミノ−多糖類、粒子、及び核酸が含まれる。ポリアミノ−多糖類は、この生成で知られている従来の手段を使用して、多糖から生成されてもよい。
【００３０】
さらに様々なタンパク質タイプが、ポリ（アミノ酸）免疫原担体として使用されてもよい。これらのタイプは、アルブミン、血清蛋白質、リポタンパク質などを含んでいる。実例となるタンパク質はウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、キーホールリンペットヘモシニアン（ＫＬＨ）、卵オボアルブミン、牛のチログロブリン（ＢＴＧ）などを含んでいる。あるいは、合成ポリ（アミノ酸）を利用してもよい。
【００３１】
免疫原担体はさらにポリアミノ多糖類を含んでもよい。それは、単糖の繰り返しの縮合によって作られた高分子量ポリマーである。多糖類の例は、デンプン、グリコーゲン、セルロース、アラビアゴムのような炭水化物ガム、寒天などである。多糖類はさらにポリアミノ酸残基および／または脂肪酸残基を含んでいる。
【００３２】
免疫原の担体は、さらに単独または上述のポリ（アミノ酸）又は多糖類の内の１つに共役するポリ（核酸）であってもよい。
【００３３】
免疫原担体はさらに固形粒子を含んでいてもよい。粒子は、大体少なくとも約０．０２ミクロン(μm)で約１００μm以下であり、そして通常およそ０．０５〜１０μｍの直径である。粒子は有機又は無機であってもよく、膨張可能又は膨張不可能であってもよく、多孔性又は非多孔性であってもよく、最適にはおおよそ水の密度である通常約０．７〜１．５ｇ／ｍＬであり、透明な、又は部分的に透明な、又は不透明な物質から構成されている。粒子は、赤血球、白血球、リンパ細胞、ハイブリドーマ、連鎖球菌、黄色ブドウ球菌、大腸菌およびウィルスのような例に制限されない細胞及び微生物のような生体物質であってもよい。粒子は、更に有機および無機ポリマー、リポソーム、ラテックス、リン脂質小胞あるいはリポタンパク質で構成されていてもよい。
【００３４】
「ポリ（アミノ酸）」あるいは「ポリペプチド」は、アミノ酸から形成されたポリアミドである。ポリ（アミノ酸）は、約２，０００分子量から、分子量の上限はなく、通常１０，０００，０００未満、通常多くても約６００，０００ダルトンの範囲にある。免疫原担体あるいは酵素が含まれているかどうかに依存して、通常範囲が異なるだろう。
【００３５】
「ペプチド」は、アミド（ペプチド）結合による２つ以上のアミノ酸の連結によって形成された化合物であり、通常α―アミノ酸のポリマーであり、各アミノ酸残基（ＮＨ２末端を除く）のα―アミノ基が線鎖中の隣の残基のα―カルボキシ基に連結している。ここでは、ペプチド、ポリペプチドおよびポリ（アミノ酸）という用語を、サイズに関する制限なく、この種の化合物を現すために同じ意味で使用する。この種の最大の部分はタンパク質と言う。
【００３６】
「標識」、「検出分子」あるいは「トレーサ」は、検出信号を作る、あるいは作ることを引き起こすことができるあらゆる分子である。標識は、分析物、免疫源、抗体、又は、配位子（特にハプテン）のような受容体に結合し得る受容体や分子のような他の分子に、共役することができる。標識の制限されない例は、放射性同位体および酵素、酵素破片、酵素基質、酵素阻害物、補酵素、触媒、蛍光物質、染料、化学ルミネセンス、ルミネセンス、又は感光剤を含み、磁性がない又は磁性のある粒子、固形支持体、リポソーム、配位子あるいは受容体を含む。
【００３７】
用語「抗体」は、抗原の結合パートナーである特異タンパク質を指し、他の物質を除外して抗原に対して特異結合親和力を持つ物質又は物質のグループである。一般的な用語の抗体は、ポリクロナール抗体、モノクロナール抗体および抗体断片を包含する。
【００３８】
用語「誘導体」は、１つ以上の化学反応によって母化合物から作られた化合物か分子を指す。
【００３９】
用語「担体」は、上述したような免疫原ポリマーのような固形粒子及び／又は重合体ポリマーを指す。担体が固形粒子である場合、固形粒子は、好ましくは一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物中の末端官能基Ｘに結合するための１つ以上の反応部位を提供するためのポリアミンポリマーである重合体物質に結合される、覆われる、あるいは付着されていてもよい。
【００４０】
用語「試薬キット」又は「テストキット」は、測定を行うのに使われる用具一式を指す。試薬は、それらの交差反応性および安定性、液中かあるいは凍結乾燥状態下であるかによって、同じ又は個別の容器の中に化合物がパッケージされた状態で提供することができる。キット中に供給される試薬の量および割合は、個々の用途に最適の結果がでるように選択することができる。本発明の特徴を具体化する試薬キットは、ドセタキセルに特異な抗体を含んでいる。キットは、さらに分析物の配位子及び較正制御物質を含んでいてもよい。試薬は液体の形態で残ってもよいし、凍結乾燥されていてもよい。
【００４１】
「較正制御物質」という表現は、測定される薬の既知量を含んでいる任意の標準あるいは参照物質を指す。薬の濃縮は、標準に対して得られた結果と未知の資料に対して得られた結果との比較により計算される。これは、較正曲線を描くことにより一般に行われる。
【００４２】
用語「生体試料」は、生き物あるいは以前は生きているものからの物質の任意の量を含むが、これに限定されるものではない。そのような生き物は、人間、マウス、猿、ラット、ウサギ、馬、及び他の動物を含むが、これらに限定されるものではない。そのような物質は、血液、血清、血漿、尿、細胞、臓器、組織、骨、骨髄、リンパ液、リンパ節、滑膜組織、軟骨細胞、骨膜マクロファージ、内皮細胞、及び皮膚を含むが、これらに限定されるものではない。
【００４３】
（試薬と免疫原）
免疫測定方法を構築する際、ドセタキセルの共役は、抗体上の結合部位に対して試料中のドセタキセルと競合するために構築される。本発明の免疫測定方法では、試薬は、担体と、ａ）一般式ＩＩ−Ａの化合物の１０位置換ドセタキセル誘導体、ｂ）一般式ＩＩ−Ｂの７−ドセタキセル誘導体、及びｃ）一般式ＩＩ−Ｃのドセタキセルの７，１０位二置換誘導体又はそれの混合物との共役である。一般式ＩＩＩ−Ａ、ＩＩＩ−Ｂ及びＩＩＩ−Ｃの化合物では、リンカースぺーサは、この分子の‘−Ｂ−（Ｙ）ｐ−Ｘ´−’の部分を構成する。リンカーＸ´及びスぺーサ‘−Ｂ−（Ｙ）ｐ−’は、共役及び免疫原の従来の生成方法で生成される。免疫測定方法のために共役と免疫原を生成するために利用される、従来のスペーサー結鎖基（spacer-linking  group）のうちのどれでも、一般式ＩＩＩ-Ａ，ＩＩＩ−Ｂ及びＩＩＩ−Ｃの化合物において使用することができる。そのような従来のリンカーおよびスペーサは米国特許５，５０１，９８７及び米国特許５，１０１，０１５に開示されている。
【００４４】
好ましいスペーサ基中に、前述したスペーサ基が含まれている。特に好ましいスぺーシング基は、１から１０の炭素原子を含むアルキレンのような基、
【００４５】
【化１１１】
2008534927.tif 000011
、
【００４６】
【化１１２】
2008534927.tif 000012
、
【００４７】
【化１１３】
2008534927.tif 000013
又は
【００４８】
【化１１４】
2008534927.tif 000014
である。式中、ｎ及びｏは０から６の整数であり、ｍは特に好ましいスぺーシング基であるアルキレンを伴う１から６の整数である。
【００４９】
一般式ＩＩＩ−Ａ、ＩＩＩ−Ｂ及びＩＩＩ−Ｃの化合物では、Ｘ´は−ＣＨ２−又は、担体、好ましくは重合体の担体上のアミン基に、スぺーサを連結する官能基である。基Ｘ´は、担体、好ましくは担体中に存在する又は免疫原として使用されるポリアミンポリマーにおけるアミノ基に、結合可能な一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物における末端官能基Ｘの結果である。担体、好ましくはアミンに反応可能な担体に、結合可能な末端官能基は、一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物中の官能基Ｘとして利用することができる。これらの末端官能基は、好ましくはＸが、
【００５０】
【化１１５】
2008534927.tif 000015
、
【００５１】
【化１１６】
2008534927.tif 000016
、
又は
【００５２】
【化１１７】
2008534927.tif 000017
であるものを含む。式中、Ｒ３は水素又はそれに結びつく酸素原子と一緒に得られる反応性エステルであり、Ｒ４は酸素又は硫黄である。ラジカル−Ｎ＝Ｃ＝Ｒ４はイソシアン酸塩またはイソチオシアン酸塩になりえる。ＯＲ３によって形成された反応性エステルは、Ｎ-ヒドロキシスクシンアミド、１−ヒドロキシベンゾトリアゾール及びｐ−ニトロフェニルエステルのようなイミドエステルを含む。しかしながら、アミン基と反応することができるどんな反応性エステルも使用することができる。カルボキシル基及び反応性エステルは、従来の手段によって担体又は免疫原のポリマーに結合する。タンパク質のようなポリアミンポリマー上のアミン基は、本発明のポリマー、免疫原または担体及び／又は共役にスペーサを接続するアミド基を生成する。他方、担体を、アミノ基が配位子部分に連結させるポリアミンポリマーで覆うことができる。
【００５３】
本発明の免疫原および共役では、カルボキシル基を含んでいるドセタキセルハプテンと、担体又は免疫原上のポリアミンポリマー上のアミノ基との間の化学結合は、当業者に既知の様々な方法を使用して確立することができる。アミド結合を形成することはたびたび望ましい。アミド結合は、カルボキシ基と脱離基試薬（例えばＮ-ヒドロキシスクシンイミド、１−ヒドロキシベンゾトリアゾール、ｐ−ニトロフェノールなど）とを反応させることにより、一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物中のドセタキセルハプテンのカルボン酸半分を最初に活性化することにより形成される。ジシクロヘキシルカルボジイミド、ジイソプロピルカルボジイミドなどのような活性化試薬を使用することができる。その後、タンパク質担体を含む緩衝液と、一般式ＩＩ-Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃのドセタキセルハプテン中のカルボキシル基の活性化形態を反応させる。
【００５４】
一般式ＩＩ-Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃのドセタキセル誘導体が、カルボキシル基と同様に第１又は第２アミノ基を含む場合は、共役がそれら自身で反応するのを防ぐために、活性化及びカップリング反応中にアミン保護基を使用することが必要である。典型的には、共役上のアミンは、対応するＮ-トリフルオロアセトアミド、Ｎ−第三ブチルオキシカルボニルウレタン（Ｎ−ｔ−ＢＯＣウレタン）、Ｎ−カルボベンジルオキシウレタンまたは同様の構造を形成することによって保護される。上述されるように、一旦、免疫原のポリマー又は担体へのカップリング反応が行われたならば、アミン保護基は、免疫原か共役の構造を他の状態に変えない試薬を使用して除去することができる。そのような試薬および方法は、当業者に知られており、弱い又は強い水又は無水の酸、弱い又は強い水又は無水の塩基、水素化ホウ素ナトリウムやシアノ水素化ホウ素ナトリウムのような水素化物を含む試薬及び接触的水素添加を含んでいる。ハプテン及び担体を共役させる様々な方法も、米国特許３，９９６，３４４及び米国特許４，０１６，１４６に開示され、ここでは参照によって組込まれる。
【００５５】
他方、一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物においてＸが末端イソシアン酸塩又はイソチオシアン酸塩である場合、ポリアミンポリマーの自由なアミンと反応させられた時、これらのラジカルは、一般式ＩＩＩ−Ａ、ＩＩＩ−Ｂ及びＩＩＩ−Ｃの化合物の担体又は免疫原ポリペプチドを含むポリアミンのアミノ基に機能的に結合する配位子部分においてＸ´が
【００５６】
【化１１８】
2008534927.tif 000018
である共役または免疫原を生成する。
【００５７】
一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物においてＸがアルデヒド基である場合、これらの化合物は還元アミノ化によってアミン連結を通してポリアミンポリペプチドや担体のアミン基に結合してもよい。還元アミノ化によってのようなアミンを伴うアルデヒドを縮合する従来の方法をこの連結形成に用いることができる。この場合、一般式ＩＩＩ−Ａ、ＩＩＩ−Ｂ及びＩＩＩ−Ｃの化合物の配位子部分中のＸ´は、−ＣＨ２−である。
【００５８】
一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物の７−及び−１０−モノ誘導体及びドセタキセルの７，１０−二置換誘導体の生成において、ドセタキセルの２´−ヒドロキシ基が最初に保護される。この２´-ヒドロキシ基は、ドセタキセル環構造の１３位から伸びる側鎖上にある。これはドセタキセル中のヒドロキシ基の中で最も反応性に富むものである。反応に自由な７位及び１０位にヒドロキシ基を置いている間、エステル化によってのようなヒドロキシ基を保護する従来方法を、２´位にあるこのヒドロキシ基を保護するために利用することができる。従来のヒドロキシ基の保護基はこの目的を行うために利用することができる。好ましいヒドロキシ基の保護基は、当業者によって周知の従来の手段によって、一般式Ｉの化合物をアリルクロロギ酸塩と反応させることにより形成されるアリルクロロギ酸塩エステルである。これは、工程中、後の段階で容易に除去することができる、容易に生成される保護基である。
【００５９】
２´ヒドロキシ基を保護した後、一般式Ｉのこの保護されたドセタキセルは、一般式Ｉの２´保護ドセタキセルと反応させるために利用される試薬のモル量によって、一般式ＩＩ−Ａの１０−ドセタキセル誘導体、一般式ＩＩ−Ｂの７−ドセタキセル誘導体又は一般式ＩＩ−Ｃの７，１０−ドセタキセル誘導体に転化することができる。一般に、試薬のモル過剰が一般式Ｉの２´保護ドセタキセルに反応する場合、７，１０−Ｏ二置換誘導体と同様に、生じる最終生産物は、７−Ｏと１０−Ｏ置換誘導体との混合物になるだろう。これらの誘導体はシリカゲルカラム、およびジクロロメタンと酢酸エチルを含むグラディエント（通常はスタート時が１００％ジクロロメタンで徐々に酢酸エチルをカラムに加えていく）を使用して、分離することができる。個々の成分は集めることができ、それらの構造はＮＭＲによって確認される。
【００６０】
この反応を行なう際に、２´ヒドロキシ基保護ドセタキセル中の７ヒドロキシ基は、一般式Ｖ−Ａの化合物のような試薬と最初に反応するだろう。したがって、１モルあたり約０．９〜１．５モルというように一般式Ｉの化合物と反応する一般式Ｖ−Ａ又はＶＩの化合物のような試薬の比率を制限することによって、最終生成物は、実質的に一般式ＩＩ−Ｂの化合物からなるだろう。一般式Ｉの２´保護ヒドロキシドセタキセルと反応する試薬のモル比率を増加させることは、生成物中の一般式ＩＩ−Ａ及びＩＩ−Ｃの化合物を更に生成するだろう。これらの誘導体は上述されるような生成物から分離することができる。
【００６１】
一般式ＩＩ−Ｃの７，１０位二置換誘導体と同様に、一般式ＩＩ−Ａ及びＩＩ−Ｂ（式中Ｂは−ＣＨ2-）の１０位及び７位置換誘導体は、７及び１０−ヒドロキシ基が次の一般式のハロゲン化物と反応することによって生成される。
【００６２】
halo−ＣＨ２−（Ｙ）ｐ−Ｘ        Ｖ−Ａ
式中、ｐ、Ｙ及びＸは上述のとおりである。
【００６３】
これら誘導体を生成する際、エーテルを形成するためにアルコールを反応させるどんな従来の手段も、ドセタキセル上での７−ヒドロキシ基の位置を伴う一般式Ｖ−Ａの化合物の縮合に利用することができる。一般式Ｖ−Ａの化合物でのハロゲン化物の使用は、アルコールで縮合することによってエーテルを形成するための効率的な手段となる。他方では、一般式Ｖ−Ａの化合物が官能基（それらはこれらの誘導体を形成するためにこの反応の邪魔をしてもよい）を含んでいる場合、これらの官能基は、上記されるようなこの反応の後に除去することができる適切な保護基によって保護することができる。
【００６４】
２´保護ドセタキセル上の１つ以上の自由なヒドロキシ基をクロロギ酸塩基
【００６５】
【化１１９】
2008534927.tif 000019
に最初に添加した後に、
Ｂが
【００６６】
【化１２０】
2008534927.tif 000020
である一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ又はＩＩ−Ｃの上記の誘導体は、１つ以上の２´保護ドセタキセルでの自由なヒドロキシ基と、一般式
ＮＨ−ＣＨ２−（Ｙ）ｐ−Ｘ          ＶＩ
（式中、Ｘ、Ｙ及びｐは上述のとおりである）
のアミノ化合物とを反応させることにより生成される。
【００６７】
ヒドロキシ基をクロロギ酸塩基に転化するどんな従来の手段も使用することができる。クロロギ酸塩の調合の後、クロロギ酸塩のハロ基は一般式ＶＩの化合物のアミン基で縮合される。この反応に先立って、上述されるように従来の保護基で、ドセタキセルおよび／又は一般式ＶＩの化合物上の反応基は保護される。これらの保護基は、前述されたような従来の手段によってこのハロゲン化物縮合の後に除去することができる。
【００６８】
一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物は、これらの化合物と担体、好ましくはポリアミンポリペプチド又はポリアミンポリペプチドで覆われた担体、を反応することによって、本発明の免疫原及び／または共役試薬に転化することができる。同じポリペプチドは、担体として、及び、ポリアミンまたはポリペプチドを免疫学的に活性にする本発明の免疫原中の免疫原ポリマーとして、利用することができる。しかしながら、免疫測定法において試薬として使用される共役を形成するために、これらのポリマーは、免疫原用に求められるような免疫反応を生じる必要はない。本発明に従って、一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物中のＸによって表わされるさまざまな官能基は、担体に官能基をつける従来の方法によって、担体に共役することができる。好ましい実施形態よれば、一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物において、Ｘはカルボン酸基である。
【００６９】
（抗体）
本発明は、さらに前述の免疫原の利用により生成されたドセタキセルに対するモノクロナール抗体を含む新規の抗体に関する。本発明によれば、本発明に従って生成されたこれらの抗体は、ドセタキセルに反応的で、ドセタキセル免疫測定法を邪魔するドセタキセル誘導体の代謝物質と反応しないことが分かった。さらに、本発明の抗体は、実質的にタキソールに反応しない。タキソールは、その化学名はパクリタクセルであり、ドセタキセル又はタキソール環構造を含む１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩのような化合物のようなドセタキセルである。化合物１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩは一般式
【００７０】
【化１２１】
2008534927.tif 000021
を有する。
【００７１】
本発明は、新規な抗体及びドセタキセルに対するモノクロナール抗体に関する。発明の抗血清は、本発明の免疫原を宿主動物に免疫することにより好都合に生成することができる。適切な宿主動物は、例えばネズミ、ラット、ウサギ、モルモットおよびその他同種のもののようなげっ歯動物、またはヤギ、羊、馬およびその他同種のもののような高等哺乳動物を含んでいる。初回量、出血および追加免疫注射は、動物中の免疫反応を誘発するために認められた試験計画書（ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ）に従って与えることができる。周期的な出血を通して、免疫されたネズミの血液試料は、従来の免疫測定法を利用することを邪魔するドセタキセルに対する免疫反応を起こすことが認められた。これらの方法は、好ましい活性を有する抗血清を生成している宿主および抗体に対して選別するための便利な方法を提供する。抗体はまたタキソールに対して選別され、タキソールに実質的な結合を示さなかった抗体が生成された。
【００７２】
モノクロナール抗体は、細胞融合に先立って３日のスタートを切る連続３日に腹腔内投与（ｉ．ｐ．）又は静脈内投与（ｉ．ｖ．）で追加免疫原をマウスに注射するスケジュールに従って、Ｂａｌｂ／ｃマウスを免疫することにより好都合に生成される。抗体技術において周知の他の試験計画書をもちろん同様に利用してもよい。ここに詳述された完全な免疫処置試験計画書は、ドセタキセルの抗体用の血清抗体反応に最適な試験計画書を提供した。
【００７３】
脾臓、末梢血、リンパ節または宿主の他の組織から得られたＢリンパ球は、細胞を生成するモノクロナール抗体として使用されてもよい。最も好まれるものは、脾臓から得られるＢリンパ球である。発明の望むモノクロナール抗体を生成することができるハイブリドーマは、そのようなＢリンパ球と無限増殖できる細胞系（それはハイブリッド細胞上の長期的な組織培養安定性を与える細胞系である）を融合させることにより得られる。発明の好ましい実施形態では、無限増殖できる細胞は、骨髄腫細胞のようなリンパ芽球状細胞あるいはプラズマ細胞腫細胞でもよい。ドセタキセルモノクロナール抗体を生成するマウスのハイブリドーマは、前述の免疫原共役で免疫されたマウスから、マウス骨髄腫細胞および脾臓細胞の融合によって生成される。キメラ的及びヒトモノクロナール抗体は、ハイブリドーマ細胞から遺伝子を発現させる抗体をクローン化し、ヒトの定常部領域にマウス可変領域の続きを結合するか、あるいは、ドナーマウスかラットの免疫グロブリンから相補性決定領域（ＣＤＲの）とヒトのフレームワーク領域を組み合わせる現在当業者によって知られている組み換えＤＮＡ方法を使用することによって生成することができる。親和力が高められた抗体を提供するマウスのモノクロナール抗体をヒトに適用するための改良方法は、国際特許出願ＷＯ９２／１１０１８に述べられる。
【００７４】
一次抗体構造の一部だけを含むポリペプチド断片を生成してもよく、その断片は１つ以上の免疫グロブリン活性を有している。これらのポリペプチド断片は、当業者によって知られている方法によって手をつけていない抗体のタンパク質分解開裂によって、又は、Ｆａｂ断片又は（Ｆａｂ´）２断片を生成するために部位特異的突然変異誘発を用いる抗体遺伝子を含んでいる発現ベクターに望ましい位置に終止コドンを挿入することによって、生成してもよい。単鎖抗体は、ＤＮＡリンカーにＶＬとＶＨの部位を結合することによって生成してもよい（ヒューストンら、Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.,８５：５８７９−５８８３（１９８８）及びバードら、Science, ２４２：４２３−４２６（１９８８）参照）。
【００７５】
本発明の抗体はドセタキセルに反応的である。さらに、好ましい抗体はタキソールまたは１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩに実質的に交差反応性を持たない。実質的な交差反応性によって、本発明の抗体はタキソールまたは２０％以下の１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩを伴うドセタキセルに関する交差反応性を持つことを意味している。
【００７６】
（免疫測定法）
本発明によれば、一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物又はそれの混合物の免疫原から生じた共役および抗体は、患者試料中のドセタキセルの測定試薬として利用することができる。この測定は免疫測定法によって行なわれる。一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物から形成された試薬共役は、本発明に従って生じた抗体中の結合部位に向けて試料中のドセタキセルと競合するどんな免疫測定法も、患者試料中のドセタキセルの存在を決定するために使用することができる。ドセタキセルを含んでいるという疑いをかけられた試料中のドセタキセルの測定を行うための方法は、（ａ）水性媒質試料、（ｂ）本発明に従って生成されたドセタキセルの抗体、（ｃ）一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物又はそれの混合物から形成された共役を、混合することを含む。試料中のドセタキセル量は、試料と抗体との混合物に既知量で加えられた共役の特異抗体への結合の阻害を測定することにより決定することができる。未知の試料による既知量の共役のそのような結合の阻害の結果は、ドセタキセルの既知の標準溶液を使用して同じ測定で得られた結果と比較される。未知の試料中のドセタキセルの量を測定する際、試料、一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物から形成された共役、および抗体は、任意の順に加えられてもよい。
【００７７】
抗体に結合した一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物から形成された共役量を測定するために、様々な手段を使用することができる。１つの方法は、抗体への共役の結合が蛍光団共役の回転率の減少を引き起こす点である。液体混合物中の蛍光団共役の回転率の減少量は、米国特許４，２６９，５１１及び米国特許４，４２０，５６８に開示されているような蛍光性の極性化技術によって検出することができる。
【００７８】
他方で、粒子が一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物から形成されたドセタキセル共役と反応する時、これらの微粒子が集合体を形成するように、抗体は微粒子に覆われているか吸収されていてもよい。しかしながら、微粒子に覆われた或いは吸収された抗体が試料中のドセタキセルと反応するとき、これらの微粒子に結合する試料からのドセタキセルは、抗体微粒子の集合を生じさせない。集合または凝集の量は、吸光度による混合測定で測定することができる。
【００７９】
他方、これらの測定は、マイクロタイタープレートのような固形支持体あるいは固形微粒子を含む他の従来の固形支持体に、抗体あるいはドセタキセル共役のいずれかを付着することにより実行することができる。そのような固形微粒子に抗体とタンパク質を付着することは当業者によって知られている。どんな従来方法もそのような付着を行うために使用することができる。多くの場合では、測定を促進するために、放射性標識や酵素標識のような標識を、抗体と結合または結合していない一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物から形成された共役量の検出を助けるものとして、抗体、共役あるいは固形微粒子に配置してもよい。他の適切な標識としては、発色団、蛍光団などがある。
【００８０】
便宜の問題として、本発明の測定コンポーネントは、ドセタキセルを測定するのに使用される所定量の新しい試薬を備えた化合物がパッケージされた状態でキットとして提供することができる。これらの試薬は、本発明の抗体を含んでいることに加え、一般式ＩＩ−Ａ、ＩＩ−Ｂ及びＩＩ−Ｃの化合物又はその混合物から生成された共役も含んでいる。行われる免疫測定法において、もし一般式ＩＩ−Ｂの化合物から形成された共役が利用されるならば、一般式ＩＩ−Ｂの化合物から形成された免疫原によって生じた抗体であることが通常好ましい。同様の方法で、もし一般式ＩＩ−Ｂ又はＩＩ−Ｃの化合物から形成された共役が利用されるならば、同じ化合物から形成された免疫原によって生じる抗体が共役に使用される。しかし、これは、事例にならないことを要し、行われる測定法での抗体及び共役は、これらの共役及び免疫原の任意の１つから得ることができる。本発明による免疫測定法を実行する場合、行われる免疫測定法で使用される抗体を形成する試薬及び免疫原中のラジカルｐ、Ｘ、Ｙ及びＢは、これらのラジカルそれぞれを規定する基の範囲内で同じ又は異なる置換基であってもよい。したがって、ラジカルｐ、Ｘ、Ｙ及びＢの定義が試薬および免疫原に対して同じである間、行われる測定方法で、これらのラジカルが免疫原及び共役試薬に対して表わす特別な置換基は異なるかもしれない。
【００８１】
これらの必要な試薬に加えて、補助試薬のような添加物には、例えば安定剤、緩衝材などが含まれていてもよい。様々な試薬の相対量は、実質的に測定の感度を最適化するような試薬の溶液濃度を提供するために、広く変わってもよい。試薬は、溶液又は乾燥パウダー（通常は凍結乾燥されたもの）として供給され、溶解して測定を行うのに適した濃度の試薬溶液を提供する補形薬を含んでいる。
【００８２】
（例）
例において、次の略語は、下記に指し示すように使用される。
ＥＡ        エチルアルコール
ＭｅＯＨ    メタノール
ＥｔＯＡｃ  酢酸エチル
ＤＣＭ      ジクロロメタン
ＤＭＡＰ    ジメチルアミノピリジン
Ｅｔ３Ｎ    トリエチルアミン
ＮＨＳ      Ｎ−ヒドロキシ−スクシンイミド
ＥＤＣ      １−（３−ジメチルアミノプロピル）−３−エチルカルボジイミド塩酸塩
ＴＬＣ      薄層クロマトグラフィー
ＫＬＨ      キーホールリンペットヘモシアニン
ＡＮＳ      ８−アニリノ-１-ナフタリンスルホン酸
ｉ．ｐ．    腹腔内の
ＨＲＰ      西洋わさびペルオキシダーゼ
ＴＭＢ      ３，３´，５，５´―テトラメチルベンチジン
ＴＲＩＳ    トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン塩酸塩
ＢＳＡ      ウシ血清アルブミン
ＢＴＧ      ウシチログロブリン
ＰＢＳ      リン酸塩緩衝生理的食塩水
ＨＥＰＥＳ  ４−（２−ヒドロキシエチル）ピペラジン−１−エタンスルホン酸
ｄｉ        脱イオン水
例において、図式１及び図式２は、例の番号に従って生成され言及された特異化合物を下記に示す。図式は以下の通りである。
【化１２２】
2008534927.tif 000022
【００８３】
【化１２３】
2008534927.tif 000023
（例）
（例１）
Ｃ７，Ｃ１０ドセタキセルジアシッド誘導体［４］の生成  図式１
ドセタキセル［１］（５００ｍｇ）を、アルゴンを連続的に流した状態で、新しく蒸留して得たジクロロメタン２０ｍｌが入った三つ口フラスコに加えた。温度を−１５℃に保ち、その時にジイソプロピルエチアミン（２当量）及びアリルクロロギ酸塩（１．１当量）を加えた。反応混合物温度を室温にし、５時間攪拌した。ジクロロメタン２０ｍｌを加え、混合物を０．１Ｎの塩酸（６０ｍｌ）で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥し、ロータリーエバポレータで濃縮した。そのままの物質を、ＥｔＯＡｃ／ＤＣＭのグラディエント（３０％ＥｔＯＡｃ：７１％ＤＣＭ）のシリカゲルカラムで精製し、オフホワイト固形物の［２］（４６８ｍｇ、８４．７８％）を得た。
【００８４】
窒素下、ＤＣＭ（５０ｍｌ）中にアロック保護ドセタキセル、［２］（５１１ｍｇ、０．５７ｍｍｏｌ）及びＤＭＡＰ（０．２２ｍｍｏｌ）が溶解した溶液に、グルタル酸無水物（２当量）の添加に続いてＥｔ３Ｎ（０．２２ｍｍｏｌ）を加えた。得られた混合物を室温で夜通し攪拌した。ＤＣＭを真空下で除去し、そのままの物質をＥｔＯＡｃ／ＤＣＭのグラディエント（４０％ＥｔＯＡｃ：６０％ＤＣＭ）のシリカゲルカラムで精製し、オフホワイト固形物の［３］（１９４ｍｇ、３０．２３％）を得た。
【００８５】
誘導体［３］（０．１７３ｍｍｏｌ）をアルゴン下で６ｍｌのジクロロメタンに溶解し、その後ＰｈＳｉＨ３（１．０４ｍｍｏｌ）をＰｄ（ＰＰｈ３）４（０．００８ｍｍｏｌ）と共に加えた。４時間後、１．５ｍｌのＭｅＯＨを加え、混合物を１０分間更に攪拌した。反応混合物を蒸留して乾燥し、保護基が脱離されたドセタキセル誘導体［４］を得た。
【００８６】
誘導体［４］をシリカゲルカラム（溶媒系として６０％ＥｔＯＡｃ：４０％ＤＣＭ）で精製し、７−モノドセタキセル誘導体及び１０−モノドセタキセル誘導体のような他の誘導体の存在からこの誘導体を分離した。誘導体［４］は、オフホワイト粘性ゴム（１４５．１ｍｇ、８０．８６％）として、出発物質から２４．２５％で分離され、その構造はＮＭＲによって確認された。
【００８７】
（例２）
化合物［４］からの活性化Ｃ７，Ｃ１０ドセタキセルジアシッド誘導体の生成
ジグルタル酸誘導体［４］（１２５．１ｍｇ、０．１２１ｍｍｏｌ）を無水のＤＭＳＯ１０ｍｌ中に溶解した。窒素下攪拌しながら、ＥＤＣ（１０２．４ｍｇ、０．５３４ｍｍｏｌ、４．４当量）の後に続いてＮ-ヒドロキシスルホスクシンイミドナトリウム塩（１１４．７ｇ、０．５２８ｍｍｏｌ、４．４当量）を加えた。追加ＥＤＣを加えた時（９６ｍｇ、０．５０１ｍｍｏｌ、４．１５当量）、反応を室温で夜通し起こした。室温で継続的に起こされた７時間の反応後、反応はＴＬＣによって完了した。ＴＬＣ条件は、酢酸２滴を伴う酢酸エチル：ジクロロメタン（３：２）だった。
【００８８】
（例３）
活性化Ｃ７，Ｃ１０ドセタキセルジアシッド誘導体を伴うドセタキセル−ＢＳＡ共役（１：１比率）の生成
氷上で攪拌しながら５０ｍＭリン酸緩衝液（５０ｍＭ、ｐＨ７．５）中にＢＳＡ（５０ｍｇ／ｍＬ）を溶解した２０ｍｌ溶液に、例２で生成された活性化Ｎ−ヒドロキシスルホスクシンイミドエステルドセタキセル誘導体１．３４ｍＬ（０．０１６ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。ＢＳＡに対するジアシッド共役を生成するため、室温で反応混合物を夜通し攪拌した。その後この共役は、以前に記載した手順（Wu  et. al., Bioconj. Chem., 8:pp385-390, 1997, Li et al., Bioconj. Chem., 8:pp896-905, 1997, Salamone et al., J. Forensic Sci. pp821-826, 1998）に従って透析によって精製され、特色づけられた。
【００８９】
（例４）
ＢＴＧを伴うＣ７，Ｃ１０ドセタキセルジアシッド誘導体免疫原の生成
氷上で攪拌しながらリン酸緩衝液（５０ｍＭ、ｐＨ７．５）中にＢＴＧ（３２．９ｍｇ／ｍＬ）を溶解した６．１ｍｌ溶液に、例２で生成された活性化Ｎ−ヒドロキシスルホスクシンイミドエステルドセタキセル誘導体５．１ｍＬ（０．０６１７ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。ＢＴＧに対するジアシッド共役を生成するため、室温で反応混合物を夜通し攪拌した。その後免疫原共役は、以前に記載した手順（Wu  et. al., Bioconj. Chem., 8:pp385-390, 1997, Li et al., Bioconj. Chem., 8:pp896-905, 1997, Salamone et al., J. Forensic Sci. pp821-826, 1998）に従って透析によって精製され、特色づけられた。
【００９０】
（例５）
ＫＬＨを伴うＣ７，Ｃ１０ドセタキセルジアシッド誘導体免疫原の生成
氷上で攪拌しながらリン酸緩衝液（５０ｍＭ、ｐＨ７．５）中にＫＬＨ（８．９ｍｇ／ｍＬ）を溶解した５．４ｍｌ溶液に、例２で生成された活性化Ｎ−ヒドロキシスルホスクシンイミドエステルドセタキセル誘導体５．１ｍＬ（０．０１４５ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。ＫＬＨに対するジアシッド共役を生成するため、室温で反応混合物を夜通し攪拌した。その後免疫原共役は、以前に記載した手順（Wu  et. al., Bioconj. Chem., 8:pp385-390, 1997, Li et al., Bioconj. Chem., 8:pp896-905, 1997, Salamone et al., J. Forensic Sci. pp821-826, 1998）に従って透析によって精製され、特色づけられた。
【００９１】
（例６）
Ｃ７置換ドセタキセル酸誘導体［６］の生成  図式２
窒素下、ＤＣＭ（６ｍｌ）中にアロック保護ドセタキセル、［２］（２０１ｍｇ、０．２３ｍｍｏｌ）及びＤＭＡＰ（１１０ｍｇ、０．９ｍｍｏｌ）を溶解した溶液に、ｐ−ニトロフェニルクロロギ酸塩（５４．６ｍｇ、０．２７ｍｍｏｌ）に続いてＥｔ３Ｎ（０．９ｍｍｏｌ、０．１３ｍＬ）を加えた。反応混合物を室温で３．５時間攪拌し、その後ＤＣＭ（２ｍＬ）中に６−アミノ−ヘキサン酸アリルエステル（５２．６ｍｇ、０．２９ｍｍｏｌ）を溶解した溶液を加えた。得られる混合物を室温で夜通し攪拌した。ＤＣＭを真空下で除去し、そのままの物質をＥｔＯＡｃ／ヘキサンのグラディエント（Ｒｆ＝０．３９、５０％ＥｔＯＡｃ／ヘキサン）のシリカゲルカラムで精製し、オフホワイト粘性ゴムとして［５］（８１．４ｍｇ、３５％）を得た。
【００９２】
窒素下、ＤＣＭ（６ｍＬ）に［５］（１００ｍｇ、０．０９４ｍｍｏｌ）及びＰｄ（ＰＰｈ３）４（１５．３ｍｇ，０．０１３ｍｍｏｌ）を溶解した溶液に、ＤＣＭ（１ｍＬ）にＰｈＳｉＨ３（４０．８ｍｇ、０．３８ｍｍｏｌ）を溶解した溶液を加えた。得られる混合物を室温で夜通し攪拌した。ＤＣＭを除去し、そのままの物質をＭｅＯＨ／ＤＣＭのグラディエント（Ｒｆ＝０．２、１０％ＭｅＯＨ／ＤＣＭ）のシリカゲルカラムで精製し、黄褐色粘性ゴムとして［６］（３９．６ｍｇ、４１％）を得、その構造はＮＭＲによって確認された。
【００９３】
（例７）
化合物［６］からの活性化Ｃ７置換ドセタキセル酸誘導体の生成
誘導体［６］（３９．６ｍｇ、０．０４２ｍｍｏｌ）を無水ＤＣＭ５ｍＬに溶解した。窒素下攪拌しながらＥＤＣ（２４．０ｍｇ、０．１２６ｍｍｏｌ、３．０当量）の後に続いてＮＨＳ（１４．５ｍｇ、０．１２６ｍｍｏｌ、３．０当量）を加えた。室温で２９時間反応を起こさせ、その後、塩酸（３ｍＬ、０．３Ｎ）及びＤＣＭ１５ｍＬを加えることによって急冷した。混合物を１０分間攪拌し、有機相を分離し、乾燥（Ｎａ２ＳＯ４）し、濾過し、ＤＣＭを真空内で除去し、オフホワイトのアモルファスの固形物を得た。
【００９４】
（例８）
活性化Ｃ７置換ドセタキセル酸誘導体を伴うドセタキセル-ＢＳＡ共役（１：１比率）の生成
例６で生成された活性化エステルを７００μＬのＤＭＳＯに溶解し、この溶液５０μＬをＢＳＡ溶液（４ｍＬＤＭＳＯ／４ｍＬ５０ｍＭリン酸塩、ｐＨ７．５）に滴下法で加えた。ＢＳＡの共役とドセタキセル誘導体［６］を生成するため溶液を室温で２４時間攪拌した。この共役を前述した手順（Wu  et. al., Bioconj. Chem., 8:pp385-390, 1997, Li et al., Bioconj. Chem., 8:pp896-905, 1997, Salamone et al., J. Forensic Sci. pp821-826, 1998）で透析によって精製した。
【００９５】
（例９ａ）
ＢＴＧを伴うＣ７置換ドセタキセル酸誘導体免疫原の生成
氷上で攪拌している５０ｍＭリン酸緩衝液（５０ｍＭ、ｐＨ７．５）中にＢＴＧ（２１．１ｍｇ／ｍＬ）を溶解した６．３ｍｌの溶液に、１２．６ｍＬのＤＭＳＯをゆっくり滴下法で加えた。この溶液に、例７（６５０μＬ、ＤＭＳＯ中に６２ｍｇ／ｍＬ）で生成したＣ７置換ドセタキセル（誘導体［６］）の活性化ＮＨＳエステルを滴下法で加えた。Ｃ７ドセタキセル誘導体にＢＴＧを共役させるために、生じる混合物を室温で夜通し攪拌した。その後免疫原共役は、以前に記載した手順（Wu  et. al., Bioconj. Chem., 8:pp385-390, 1997, Li et al., Bioconj. Chem., 8:pp896-905, 1997, Salamone et al., J. Forensic Sci. pp821-826, 1998）に従って透析によって精製され特色づけられた。
【００９６】
（例９ｂ）
ＫＬＨを伴うＣ７置換ドセタキセル酸誘導体免疫原の生成
６６．６％ＤＭＳＯ／４３．４％５０ｍＭリン酸緩衝液（５０ｍＭ、ｐＨ７．５）中にＫＬＨ（４．９２ｍｇ／ｍＬ）を溶解した２７．０２ｍｌの溶液に、例７（１０００μＬ、ＤＭＳＯ中に６２ｍｇ／ｍＬ）で生成したＣ７置換ドセタキセル（誘導体［６］）の活性化ＮＨＳエステルを滴下法で加えた。Ｃ７ドセタキセル誘導体にＫＬＨを共役させるために生じる混合物を室温で夜通し攪拌した。その後免疫原共役は、以前に記載した手順（Wu  et. al., Bioconj. Chem., 8:pp385-390, 1997, Li et al., Bioconj. Chem., 8:pp896-905, 1997, Salamone et al., J. Forensic Sci. pp821-826, 1998）に従って透析によって精製され、特色づけられた。
【００９７】
（例１０）
Ｃ７，Ｃ１０ドセタキセルジアシッド誘導体抗体の生成
１０匹の雌のＢＡＬＢ／ｃのマウスを、完全フロイントアジュバントで乳化された、例４で生成したドセタキセル−ＢＴＧ又は例５で生成したドセタキセル−ＫＬＨのどちらかのドセタキセル免疫原で、一匹につき１００μｇ、腹腔内投与（ｉ．ｐ．）で免疫した。マウスに、不完全フロイントアジュバントで乳化された同じ免疫原を一匹につき１００μｇで最初の注射の４週間後に追加免疫した。追加免疫テストの６〜１０日後、各マウスからの出血を、眼窩出血によって得た。マウスそれぞれからのドセタキセル抗体を含む最後のテスト出血からの抗血清は、ドセタキセルへの反応性及び１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩ及びパクリタクセル［タキソール］への交差反応性を測定するために、例１４ａ及び１５の手順によって評価した。ドセタキセルに対して選択的で１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩを伴うドセタキセルに交差反応性を有する抗体を有する抗血清及びこれらの選別手順によって測定された６％以下のパクリタクセルだけが選択された。
【００９８】
（例１１）
Ｃ７置換ドセタキセル酸誘導体抗体の生成
１０匹の雌のＢＡＬＢ／ｃのマウスを、完全フロイントアジュバントで乳化された、例９ａで生成したドセタキセル−ＢＴＧ又は例９ｂで生成したドセタキセル−ＫＬＨのどちらかのドセタキセル免疫原で、一匹につき１００μｇ、腹腔内投与（ｉ．ｐ．）で免疫した。マウスは、不完全フロイントアジュバントで乳化された同じ免疫原を一匹につき１００μｇで最初の注射の４週間後に追加免疫した。追加免疫テストの１０日後、各マウスからの出血を、眼窩出血によって得た。マウスそれぞれからのドセタキセル抗体を含む最後のテスト出血からの抗血清は、ドセタキセルへの反応性及び１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩ及びパクリタクセル［タキソール］への交差反応性を測定するために、例１４ａ及び１６の手順によって評価した。ドセタキセルに対して選択的で１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩを伴うドセタキセルに交差反応性を有する抗体を有する抗血清及びこれらの選別手順によって測定された６％以下のパクリタクセルだけが選択された。
【００９９】
融合前の４日のスタートを切るモノクロナール抗体のために、マウスに、連続３日間、ＰＢＳ中のドセタキセル−ＢＴＧ又はドセタキセル−ＫＬＨ（最初の免疫原による）を、４００μｇ（融合前３日）、２００μｇ（融合前２日）、２００μｇ（融合前１日）で、腹腔内投与（ｉ．ｐ．）で注射した。コリガン（Ｃｏｌｉｇａｎ）などの試験計画書に従って、脾臓細胞を選択されたマウスから分離し、５０％ポリエチレングリコール１５００を用いる骨髄腫融合パートナー細胞系（ＳＰ２／Ｏ）の２×１０７細胞と融合した［Coligan, J.E. et.,al., eds., Current Protoclos in Immunology,2.5.1-2.5.8,(1992), Wiley&Sons,NY.］。融合細胞をコリガンなどの方法に従ってコロニーを作る抗体に育てるために、２０％ウシ胎児血清代替物が追加され、２％Ｌ−グルタミン（１００ｍＭ）、２％５０Ｘ  ＨＡＴを含むＤＭＥＭ／Ｆ１２（１：１のＬ−グルタミンとＨＥＰＥＳを伴うダルベッコの変性したイーグル培養液）のような通常のＨＡＴ（ヒポキサンチン、アミノプテリン及びチミジン）選択発育培地に、融合細胞を、１０個の９６ウェル形式プレートで培養した。２週間後、ハイブリドーマ上澄みを例４ｂに記載するようなＥＬＩＳＡによって抗-ドセタキセル抗体の存在のために測定した。陽性ウェルを拡大し、再び同じＥＬＩＳＡ方法によって選別した。陽性クローンは、直接サブクローン化され、又は例１６に記載されるような競合的ＥＬＩＳＡによって結合するドセタキセルとして確認された。例１４ｂに示されるようなＥＬＩＳＡによる陽性クローンは、Coligan、J.E.et al., Current Protocols in Immunology, 2.5.8-2.5.17,(1992),Wiley & Sons, NYで開示されている限界希釈法によって、一、二度サブクローン化された。
【０１００】
ドセタキセルに選択的で１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩに交差反応性を示すモノクロナール抗体及びこれらの選別手順によって限定される１５％以下のパクリタクセルのみが選択された。
【０１０１】
（例１２）
Ｃ７，Ｃ１０ドセタキセルジアシッド誘導体―ＢＳＡ共役を伴うマイクロタイタープレート感作手順
酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）によって抗体を選別し、ドセタキセル濃度を測定する目的のために、タンパク質結合に最適化されたプレートにつき９６ウェルを含むポリスチレンマイクロタイタープレートを用いた。ｐＨ９．６の０．０５Ｍ重炭酸ナトリウム中に１０μｇ／ｍＬでドセタキセル―ＢＳＡ共役を混合したもの３００μＬを加え、室温で３時間培養することによって、各ウェルをドセタキセル−ＢＳＡ共役（例３でのように生成）でコーティングした。ウェルをｐＨ９．６の０．０５Ｍ重炭酸ナトリウムで洗浄し、その後５％スクロース、０．２％カゼインナトリウム溶液４００μＬで室温で３０分間ブロックした。ポストコート溶液を除去したのち、プレートを３７℃で夜通し乾燥した。
【０１０２】
（例１３）
Ｃ７置換ドセタキセル酸誘導体―ＢＳＡ共役を伴うマイクロタイタープレート感作手順
酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）によって抗体を選別しドセタキセル濃度を測定する目的のために、タンパク質結合に最適化されたプレートにつき９６ウェルを含むポリスチレンマイクロタイタープレートを用いた。ｐＨ９．６の０．０５Ｍ重炭酸ナトリウム中に１０μｇ／ｍＬでドセタキセル―ＢＳＡ共役を混合したもの３００μＬを加え、室温で３時間培養することによって、各ウェルをドセタキセル−ＢＳＡ共役（例８でのように生成）でコーティングした。ウェルをｐＨ９．６の０．０５Ｍ重炭酸ナトリウムで洗浄し、その後５％スクロース、０．２％カゼインナトリウム溶液４００μＬで室温で３０分間ブロックした。ポストコート溶液を除去したのち、プレートを３７℃で夜通し乾燥した。
【０１０３】
（例１４ａ）
抗体選別手順−滴定量
抗体を酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）によって選別した。ドセタキセル抗体（例１０及び１１で生成される）を選別するこの方法は、例１２及び１３で記載されるようなドセタキセル―ＢＳＡで感作されたマイクロタイタープレートで行なった。抗体選別検査を、ドセタキセル抗体を含む抗血清を、０．１％ＢＳＡ及び０．０１％チメロサールを含むリン酸緩衝生理食塩水で１：１００、１：１０００、１：１０，０００及び１：１００，０００に希釈することによって行った。感作されたドセタキセル―ＢＳＡウェル（例１２，１３で生成）のそれぞれのウェルに、希釈抗体１００μＬを加え、振動させながら室温で１０分間培養した。この培養中、抗体はウェル内でドセタキセル共役に結合する。未結合抗体を除去するために、プレートのウェルを、３回、０．０２Ｍのトリス、０．９％塩化ナトリウム、０．５％Ｔｗｅｅｎ−８０及び０．００１％チメロサール、ｐＨ７．８で、洗浄した。ウェル内でドセタキセル―ＢＳＡ共役に結合するドセタキセル抗体の量を検出するために、培養基で培養する時、特にマウス科の免疫グロブリンに結合可能で有色の生成物を生成することが可能な、０．１％ＢＳＡ、０．０５％ＡＮＳ、０．０１％チメロサールを伴うＰＢＳに予め決められた比活性に希釈（約１／２４００）されたヤギ抗マウス抗体―ＨＲＰ酵素共役（ジャクソン  イムノリサーチ）１００μＬを、各ウェルに加えた。振動させながら室温で１０分間培養した後、ヤギ抗マウス抗体―ＨＲＰ酵素共役がウェル内でドセタキセル抗体に結合する間、未結合ヤギ抗マウス抗体―ＨＲＰ酵素共役を除去するために、プレートを再び３回洗浄した。ウェル内に適度な色をつけるために、洗浄後ＴＭＢ（ＴＭＢ  Liquid  Substrate、ＨＲＰ用培養基）１００μＬを加え、室温で振動させながら１０分培養する間に適度な色をつけた。着色のための培養に続いて、停止液（１．５％フッ化ナトリウムの脱イオン水）５０μＬを着色を停止するために各ウェルに加え、１０秒間の振動後、６５０ｎｍの吸光度を９６ウェルプレートリーダ-で測定した。ウェル内の抗体量は、測定される吸光度に比例し、１．５の吸光度となる希釈（滴定量）として表わされる。滴定量は、測定された抗体の抗体希釈（ｘ軸）対６５０ｎｍでの吸光度（ｙ軸）をログで図示し、１．５の吸光度での滴定量を推定することによって測定される。滴定量は、例１５及び１６に記載された間接競合マイクロタイタープレート測定で使用された抗体の濃度（希釈）を決定した。
【０１０４】
（例１４ｂ）
抗体選別手順―モノクロナール選別
抗体を酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）によって選別した。ドセタキセルモノクロナール抗体（例１１で生成される）を選別するこの方法は、例１３で記載されるようなドセタキセルＣ７置換―ＢＳＡ（例８）で感作されたマイクロタイタープレートで行なった。ドセタキセルＣ７置換―ＢＳＡ感作ウェル（例１３で生成）の各ウェルに、０．１％ＢＳＡ及び０．０１％チメロサールを含む５０μＬリン酸緩衝生理食塩水と、そして次にモノクロナール培養上澄み５０μＬを加え、１０分間室温で振動させながら培養した。この培養の間、抗体はウェル内でドセタキセルＣ７置換共役に結合する。未結合抗体を除去するために、プレートのウェルを３回、０．０２Ｍトリス、０．９％塩化ナトリウム、０．５％Ｔｗｅｅｎ−８０及び０．００１％チメロサール、ｐＨ７．８で、洗浄した。ウェル内でドセタキセルＣ７置換―ＢＳＡ共役に結合するドセタキセル抗体の量を検出するために、培養基で培養する時、特にマウス科の免疫グロブリンに結合可能で有色の生成物を生成することが可能な、０．１％ＢＳＡ、０．０５％ＡＮＳ、０．０１％チメロサールを伴うＰＢＳ中に予め決められた比活性に希釈（約１／２４００）されたヤギ抗マウス抗体―ＨＲＰ酵素共役（ジャクソン  イムノリサーチ）１００μＬを各ウェルに加えた。振動させながら室温で１０分間培養した後、ヤギ抗マウス抗体―ＨＲＰ酵素共役がウェル内でドキソルビシン抗体に結合する間、未結合ヤギ抗マウス抗体―ＨＲＰ酵素共役を除去するためにプレートを再び３回洗浄した。ウェル内に適度な色をつけるために、洗浄後ＴＭＢ（ＴＭＢ  Liquid  Substrate、ＨＲＰ用培養基）１００μＬを加え、室温で振動させながら１０分培養する間に着色した。着色のための培養に続いて、停止液（１．５％フッ化ナトリウムの脱イオン水）５０μＬを着色を停止するために各ウェルに加え、１０秒間の振動後、９６ウェルプレートリーダ−で６５０ｎｍの吸光度を測定した。ウェル内の抗体量は、測定される吸光度に比例した。バックグラウンドの３倍以上の大きい吸光度を有する試料を陽性とした。
【０１０５】
（例１５）
Ｃ７、Ｃ１０ドセタキセルジアシッド誘導体共役の抗体におけるＩＣ５０及び交差反応性を測定する間接競合マイクロタイタープレート免疫測定手順
ドセタキセル濃度を間接競合酵素免疫測定法（ＥＬＩＺＡ）によって測定した。ドセタキセル濃度を測定するこの方法を、例１３に記載するドセタキセル―ＢＳＡで感作したマイクロタイタープレートで行った。ドセタキセル、パクリタクセル及び１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩは、０．０１〜１０，０００ｎｇ／ｍＬの濃度範囲の間で、０．１％ＢＳＡ及び０．０１％チメロサールを伴うＰＢＳ中に１０倍希釈された。測定は、例１４ａで測定された滴定量に希釈された５０μＬの抗体（例５の免疫原を用いて例１０で生成）で測定するために、５０μＬの分析物を培養することによって行った。１０分間の培養（振動を伴うローテーター（Ｒ．Ｔ．））の間、ウェル内のドセタキセル共役及び溶液中の分析物に結合する抗体の競合が生じる。この培養に続いて、結合しないあらゆる物質を除去するために、プレートのウェルを、０．０２Ｍトリス、０．９％塩化ナトリウム、０．５％Ｔｗｅｅｎ−８０及び０．００１％チメロサール、ｐＨ７．８で、３回洗浄した。ウェル内のドセタキセル―ＢＳＡ共役に結合したドセタキセル抗体の量を検出するために、培養基で培養するとき、特にマウス科の免疫グロブリンに結合可能で有色の生成物を生成することが可能な、０．１％ＢＳＡ、０．０５％ＡＮＳ、０．０１％チメロサールを伴うＰＢＳ中に予め決められた比活性に希釈（約１／２４００）されたヤギ抗マウス抗体−ＨＲＰ酵素共役（ジャクソン  イムノリサーチ）１００μＬを、各ウェルに加えた。振動させながら室温で１０分間培養した後、ヤギ抗マウス抗体−ＨＲＰ酵素共役がウェル内のドセタキセル抗体に結合する間、結合していない第二の共役を除去するために、プレートを再び３回洗浄した。ウェル内で測定可能な色をつけるために、洗浄後、ＴＭＢ（ＴＭＢ  Liquid  Substrate、ＨＲＰ用培養基）を１００μＬ加え、室温で振動させながら１０分培養して着色した。着色のための培養に続いて、停止液（１．５％フッ化ナトリウムの脱イオン水）５０μＬを、着色を停止するために各ウェルに加え、１０秒間の振動後、９６ウェルプレートリーダ−で６５０ｎｍの吸光度を測定した。ウェル内の抗体量は、測定される吸光度に比例し、試料中のドセタキセル量に反比例した。分析物を含むウェル内の色の吸光度を、分析物のないものと比較し、標準曲線を形成した。与えられた分析物に対するＩＣ５０値は、分析物を含んでいないウェルにおける吸光度の５０％を阻害するために欠かせない分析物の濃度と定義した。与えられた分析物の交差反応性は、ドセタキセルに対するＩＣ５０とパクリタクセル及び１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩに対するＩＣ５０との比率で、パーセント表示で計算した。例４及び例５の免疫原で例１０で生成した抗体で測定するとき、パクリタクセル及び１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩに対するドセタキセルに関連するパーセント表示で表わした交差反応性は６％以下であった。
【０１０６】
（例１６）
Ｃ７置換ドセタキセル酸誘導体共役の抗体におけるＩＣ５０及び交差反応性を測定する間接競合マイクロタイタープレート免疫測定手順
ドセタキセル濃度を間接競合酵素免疫測定法（ＥＬＩＺＡ）によって測定した。ドセタキセル濃度を測定するこの方法を、モノクロナール抗体に対して例１３及びポリクロナール抗体に対して例１２及び１３に記載するドセタキセル-ＢＳＡで感作したマイクロタイタープレートで行った。ドセタキセル、パクリタクセル及び１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩは、０．０１〜１０，０００ｎｇ／ｍＬの濃度範囲の間で、０．１％ＢＳＡ及び０．０１％チメロサールを伴うＰＢＳ中に１０倍希釈された。測定は、例１４ａで測定された滴定量に希釈された５０μＬの抗体（例１１で生成）で測定するために、５０μＬの分析物を培養することによって行った。１０分間の培養（振動を伴うローテーター（Ｒ．Ｔ.））の間、ウェル内及び溶液中の分析物にドセタキセル共役に結合する抗体の競合が生じる。この培養に続いて、結合しないあらゆる物質を除去するために、プレートのウェルを、０．０２Ｍトリス、０．９％塩化ナトリウム、０．５％Ｔｗｅｅｎ−８０及び０．００１％チメロサール、ｐＨ７．８で、３回洗浄した。ウェル内のドセタキセル―ＢＳＡ共役に結合したドセタキセル抗体の量を検出するために、培養基で培養するとき、特にマウス科の免疫グロブリンに結合可能で有色の生成物を生成することが可能な、０．１％ＢＳＡ、０．０５％ＡＮＳ、０．０１％チメロサールを伴うＰＢＳ中に予め決められた比活性に希釈（約１／２４００）されたヤギ抗マウス抗体−ＨＲＰ酵素共役（ジャクソン  イムノリサーチ）１００μＬを、各ウェルに加えた。振動させながら室温で１０分間培養した後、ヤギ抗マウス抗体−ＨＲＰ酵素共役がウェル内のドセタキセル抗体に結合する間、結合していない第二の共役を除去するために、プレートを再び３回洗浄した。ウェル内で測定可能な色をつけるために、洗浄後、ＴＭＢ（ＴＭＢ  Liquid  Substrate、ＨＲＰ用培養基）を１００μＬ加え、室温で振動させながら１０分培養して着色した。着色のための培養に続いて、停止液（１．５％フッ化ナトリウムの脱イオン水）５０μＬを、着色を停止するために各ウェルに加え、１０秒間の振動後、９６ウェルプレートリーダ−で６５０ｎｍの吸光度を測定した。ウェル内の抗体量は、測定される吸光度に比例し、試料中のドセタキセル量に反比例した。分析物を含むウェル内の色の吸光度を、分析物のないものと比較し、標準曲線を形成した。与えられた分析物に対するＩＣ５０値は、分析物を含んでいないウェルにおける吸光度の５０％を阻害するために欠かせない分析物の濃度と定義した。与えられた分析物の交差反応性は、ドセタキセルに対するＩＣ５０とパクリタクセル及び１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩに対するＩＣ５０との比率で、パーセント表示で計算した。例９ａの免疫原で例１１で生成した抗体で測定したとき、例１２のように生成されたマイクロタイタープレート上でパクリタクセルに対するドセタキセルに関するパーセント表示で表わした交差反応性は２％未満で、１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩに対しては０．０２％未満であった。例９ａの免疫原で例１１で生成された抗体で測定した場合、例１３のように生成されたマイクロタイタープレート上でパクリタクセルに対するドセタキセルに関するパーセント表示で表わした交差反応性は１％未満で、１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩに対しては０．０１％未満であった。例９ａ及び９ｂの免疫原で例１１で生成された抗体で測定した場合、例１３のように生成されたマイクロタイタープレート上でパクリタクセルに対するドセタキセルに関するパーセント表示で表わした交差反応性は１２％未満で、１０−Ｏ−デアセチルバッカチンＩＩＩに対しては１．０％未満であった。
【国際調査報告】
2008534927.tif 000125
2008534927.tif 000126