(57)【要約】  組み換えアデノ随伴ウイルス（ｒＡＡＶ）ベクターが、哺乳類の中枢神経系（ＣＮＳ）に調節可能な導入遺伝子を送達するために提供される。また、ベクターを使用して神経変性病の患者を処置する方法、ならびにベクターを構築もしくは使用するか、あるいは本発明の方法を行うためのキットを提供する。導入遺伝子の配列は、小分子誘導体に応答する転写因子の一以上の結合部位を含む、プロモーター／エンハンサー領域から発現される。導入遺伝子の構築物および転写因子を含む構築物の両方が標的細胞に送達される。調節可能な導入遺伝子は、転写因子として同一のｒＡＡＶベクター上もしくは別々のベクター上で送達される。転写因子は２つのポリペプチド鎖、例えば、ＤＮＡ結合ドメインおよび転写活性ドメインを含んでよく、該ポリペプチド鎖は、ラパマイシンもしくはその非免疫原性の類似体などの二量体化物の存在下で活性化二量体を形成する。本発明のベクター、方法およびキットは、ＡＡＤＣもしくはＧＤＮＦなどの遺伝子をパーキンソン病のような神経変性病の患者の脳に送達するのに使用されてよく、脳におけるＡＡＤＣもしくはＧＤＮＦの発現は、後からラパマイシンもしくはラパマイシン類似物で患者を処置することによって調節可能である。【特許請求の範囲】
【請求項１】
転写増進活性を有している調節可能な転写因子をコードする組み換えアデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）ベクター；および
導入遺伝子をコードする組み換えＡＡＶベクター；
を含む、神経疾患にかかっている患者を処置する医薬組成物であって、導入遺伝子の発現が転写因子の活性によって影響を受けるものである、医薬組成物。
【請求項２】
調節可能な転写因子および導入遺伝子が別々のｒＡＡＶベクター上にコードされる、請求項１の医薬組成物。
【請求項３】
調節可能な転写因子の活性がラパマイシンもしくはラパマイシン類似物の存在下で上昇する、請求項１もしくは２の医薬組成物。
【請求項４】
ラパマイシン類似物がＡＰ２１９６７である、請求項３の医薬組成物。
【請求項５】
神経疾患がパーキンソン病である、請求項１から４のいずれかの医薬組成物。
【請求項６】
導入遺伝子が芳香族Ｌ−アミノ酸脱炭酸酵素（ＡＡＤＣ）である、請求項１から５のいずれかの医薬組成物。
【請求項７】
導入遺伝子がグリア細胞由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）である、請求項１から５のいずれかの医薬組成物。
【請求項８】
医薬上有効な用量の請求項１から７のいずれかの医薬組成物を投与することを含む、神経疾患にかかっている患者を処置する方法。
【請求項９】
調節可能な転写因子をコードする組み換えＡＡＶベクター：
導入遺伝子をコードする組み換えＡＡＶベクター：および
ラパマイシンもしくはラパマイシン類似物
を含む、請求項８の方法を行うためのキット。
【請求項１０】
神経疾患にかかっている患者を処置する方法における、請求項１から７のいずれかの組成物の使用。
【請求項１１】
神経疾患にかかっている患者を処置する組成物の製造における、導入遺伝子をコードする組み換えＡＡＶベクターおよび転写増進活性を有している調節可能な転写因子をコードする組み換えＡＡＶベクターの使用であって、導入遺伝子の発現が転写因子の活性によって影響を受けるものである、使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、遺伝子治療によって導入された遺伝子の調節、特に哺乳類の中枢神経系（ＣＮＳ）に形質導入された導入遺伝子の発現調節に関する。
【背景技術】
【０００２】
多くのヒトの疾患は遺伝子の異常な発現によって引き起こされる。遺伝子が低発現である場合、あるいは遺伝子産物自体が欠失している場合には、相当する機能的遺伝子産物の不在は、喪失遺伝子産物を患者に送達することによって処理されてよい。しかしながら、タンパク質の送達は、しばしば困難であり、限られた期間にのみ利益を授与し、タンパク質は、定期的に、あるいは慢性疾患の場合には無期限に繰り返し再投与されなければならないことを意味する。繰り返しの投与は、コストが高く、不便であり、貧困の患者によっては苦しいかもしれない。加えて、遺伝子産物のレベルは、１用量の投与直後と次の用量の投与直前の間で急速に変化しうる。このレベルの変動性は、低薬物動態（例、短い半減期）もしくは低い治療指数を伴う治療薬剤において特に問題である。
【０００３】
遺伝子治療は、遺伝子産物よりもむしろ遺伝子の準最適発現を示す細胞に遺伝子を送達することで用いられ得る。内在性遺伝子の低発現もしくは不完全な発現を供給することに加えて、遺伝子治療はまた、サイトカイン、ホルモン、抗体もしくは遺伝学的に修飾されたタンパク質などの標的細胞で発現される時に有益な効果を有しうる他の遺伝子を送達するためにも使用され得る。遺伝子治療によって送達される遺伝子は、本明細書では導入遺伝子を意味する。導入遺伝子が標的細胞内で安定して発現される時には、遺伝子治療は、無期限に定常レベルの遺伝子産物を送達する能力を有する。遺伝子治療は、遺伝子産物自体の繰り返し送達と比較して、一度、もしくは少なくとも低頻度で実施されることのみを必要とする。全身に投与されたタンパク質は血液脳関門のために脳に入りにくく、脳への直接定位注射は繰り返し投与には非実用的であることから、遺伝子治療が治療タンパク質を脳に送達する方法として特に好ましい。
【０００４】
（アデノ随伴ウイルス介在の遺伝子治療）
ウイルスベクターは、本明細書で形質導入を意味する過程である、標的細胞への導入遺伝子の効率的な送達を補助するために開発されてきた。遺伝子送達に使用されてきた一つのウイルス系はアデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）である。ＡＡＶはディペンドウイルス属に属するパルボウイルスである。ＡＡＶは、他のウイルスでは見られないいくつかの魅力的な特徴を有する。第一に、ＡＡＶは非分裂細胞を含む広範囲の宿主細胞に感染しうる。非分裂細胞に感染する能力は、ＡＡＶをＣＮＳ組織、例として脳への形質導入に特に適切な選択肢とする。第二に、ＡＡＶは異なる種由来の細胞に感染可能である。第三に、ＡＡＶはヒトもしくは動物の病気に関連せず、組込みによって宿主細胞の生物学的特性を変化させないようである。実際、ヒトの人口の８０−８５％がウイルスに感染していると推測されている。最後に、ＡＡＶは、広範囲の物理的および化学的状態において安定であり、生成、貯蓄および輸送に容易である。
【０００５】
ＡＡＶゲノムは、約４６８１ヌクレオチド（ｎｔ）長の直状一本鎖ＤＮＡ分子である。ＡＡＶゲノムは、一般的に両末端に末端逆位配列（ＩＴＲｓ）が配置された内部非繰り返しゲノムを含む。ＩＴＲｓは約１４５ｎｔ長である。ＩＴＲｓはＤＮＡ複製の複製開始点およびウイルスゲノムのパッケージングシグナルとして作用する。
【０００６】
ゲノムの内部非繰り返し部分は、ＡＡＶの複製（ｒｅｐ）およびキャプシド（ｃａｐ）遺伝子による２つの主要なオープン・リーディング・フレームを含む。ｒｅｐとｃａｐの遺伝子は、ウイルスが複製し、ウイルスゲノムをビリオン内にパッケージさせるタンパク質をコードする。特に、少なくとも４つのウイルスタンパク質を含む一つのファミリーは、ＡＡＶのｒｅｐ領域から発現される；Ｒｅｐ７８、Ｒｅｐ６８、Ｒｅｐ５２、およびＲｅｐ４０は、それらの見かけ上の分子量から名付けられた。ＡＡＶのｃａｐ領域は少なくとも３つのタンパク質をコードする；ＶＰ１、ＶＰ２、およびＶＰ３。
【０００７】
ＡＡＶはヘルパー依存性ウイルスである。すなわち、一般的にＡＡＶビリオンを形成するためにはヘルパーウイルス（例、アデノウイルス、ヘルペスウイルスもしくはワクシニア）との共感染を必要とする。ヘルパーウイルスによる共感染の非存在下では、ＡＡＶはウイルスゲノムがエピソームとして持続するか、もしくは宿主細胞の染色体に挿入する、潜伏状態を確立するが、感染ビリオンは生成されない。ヘルパーウイルスによる後の感染は、組込まれたゲノムを「レスキュー」する、すなわち、複製し、感染性ＡＡＶビリオンにゲノムをパッケージすることを許容する。ＡＡＶが異種由来の細胞に感染可能である一方、ヘルパーウイルスは宿主細胞と同一種でなければならない。それゆえ、例えば、ヒトＡＡＶはイヌアデノウイルスに共感染されたイヌ細胞で複製するだろう。
【０００８】
ＡＡＶベクターは、ＡＡＶゲノムの内部非繰り返し部分（すなわち、ｒｅｐおよびｃａｐ）を欠失すること、ならびにＩＴＲ間に異種性遺伝子（「導入遺伝子」）を挿入することによって目的の遺伝子を送達するように設計されている。導入遺伝子は異種性プロモーターに連結されてよい。ポリアデニル化部位などの末端シグナルもまた含まれ得る。
【０００９】
導入遺伝子を含む感染性組み換えＡＡＶ（ｒＡＡＶ）のストックを得るために、適合する産生細胞系列がＡＡＶのＩＴＲｓ間に挟まれた導入遺伝子を含むＡＡＶ発現ベクターでトランスフェクトされる。ＡＡＶヘルパーの機能および補助的な機能もまた産生細胞で発現される。ヘルパーの機能は、一般的にＡＡＶコード遺伝子（例えば、ｒｅｐおよびｃａｐ）によって供給される機能であり、補助的な機能は、一般的に野生型ＡＡＶ（ｗｔＡＡＶ）がヘルパーウイルス（例、アデノウイルス）と共感染された細胞で複製する時にヘルパーウイルスによって供給される。ＷｔＡＡＶにおいてヘルパー機能をコードする遺伝子は、ｒＡＡＶベクターの構築時に除去されて導入遺伝子配列用のスペースを作ることから、別々に供給されなくてはならない。ヘルパーおよび補助的な機能の存在下において、導入遺伝子およびＡＡＶのＩＴＲｓを含むベクター構築物は、複製、パッケージされて組み換えＡＡＶビリオン（ｒＡＡＶ）を形成する。ｒＡＡＶのストックの生成は、出典明示により本明細書に一体化させた米国特許第５，６２２，８５６号、第６，００１，６５０号、第６，０２７，９３１号、第６，３６５，４０３号、第６，３７６，２３７号、第５，９４５，３３５号、第６，００４，７９７号、および第６，４８２，６３３号でさらに記述される。
【００１０】
こうして調製されたｒＡＡＶストックは、次にヘルパーウイルスの非存在下において標的細胞をｒＡＡＶで感染させることによってｉｎ  ｖｉｔｒｏの標的細胞に、あるいはｉｎ  ｖｉｖｏの患者に、導入遺伝子を導入するために使用され得る。患者の細胞はｒｅｐおよびｃａｐの遺伝子ならびに補助的な機能遺伝子を欠如しているから、ｒＡＡＶベクターは標的細胞内で複製を欠失する。すなわち、それらはさらに自身のゲノムを複製およびパッケージができない。同様に、ｒｅｐおよびｃａｐの遺伝子の源がないと、ｗｔＡＡＶは患者の細胞内で形成され得ない。
【００１１】
（導入遺伝子発現の調節）
ＡＡＶ介在遺伝子治療、および一般的な遺伝子治療に不利な点の一つは、一度投与されると、処置を元に戻すこと、あるいはその効果を調節することが不可能なことである。必要であればいつでも中断可能な薬剤の送達と異なり、成功した遺伝子治療はベクター投与後に持続性のある長期遺伝子発現を提供する。導入遺伝子発現を遮断できる能力は、ヒトの患者の処置において重要な安全性の考慮すべき事項である。さらに、導入遺伝子の発現を下流調節する能力は、患者内で導入遺伝子産物の適正な薬理学的制御を確保するのに有用であろう。
【００１２】
小分子誘導体を用いた導入遺伝子発現を調節する様々な系が開発されている。Ｒｉｖｅｒａら（１９９６）Ｎａｔ．Ｍｅｄ．２：１０２８−３２、Ｎｏら（１９９６）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９３：３３４６−５１、Ｇｏｓｓｅｎ  ａｎｄ  Ｂｕｊａｒｄ（１９９２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８９：５５４７−５１、ｔｈｅ  ＧｅｎｅＳｗｉｔｃｈ（登録商標）ｓｙｓｔｅｍ（カリフォルニア州、バーリンゲームのＶａｌｅｎｔｉｓ社）。これらの系は、小分子薬物によって制御される改良された転写因子の活性、および調節された転写因子によって促進される導入遺伝子発現の使用に基づく。かかる系の一つは、ラパマイシンによる誘導（本明細書では「二量体化物系」（ｄｉｍｅｒｉｚｅｒ  ｓｙｓｔｅｍ）という）に基づく、ラパマイシンの添加による２つの合成融合タンパク質に由来する機能的な転写因子の形成に関する。Ｒｉｖｅｒａら（１９９６）Ｎａｔ．Ｍｅｄ．２：１０２８−３２。ラパマイシンは自然産物の免疫抑制剤ＦＫ５０６に密接に関連する経口的に生物利用可能な小分子薬物であり、細胞タンパク質ＦＫＢＰ１２に高い親和性（２００ｐＭ）で結合し、該複合体はＦＲＡＰに結合する。ラパマイシンは内在性の免疫抑制作用を有するが、非免疫抑制類似物質は、修飾ＦＲＡＰ遺伝子配列と一緒に使用されることで所望しない免疫抑制のない二量体物系での転写を促進できるように開発されてきた。Ｐｏｌｌｏｃｋら（２０００）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９７：１３２２１−２６。
【００１３】
Ｉｎ  ｖｉｖｏの遺伝学的調節の二量体化物に基づいた系は、Ｒｉｖｅｒａら（１９９６）Ｎａｔ．Ｍｅｄ．２：１０２８−３２およびＰｏｌｌｏｃｋら（２０００）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９７：１３２２１−２６でより詳細に記載されている。二量体化物系は、筋肉（Ｙｅら（１９９９）Ｓｃｉｅｎｃｅ２８３：８８−９１、Ｒｉｖｅｒａら（１９９９）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９６：８６５７−６２、Ｊｏｈｎｓｔｏｎら（２００３）Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．７：４９３−７）、肝臓（Ａｕｒｉｃｃｈｉｏら（２００２）Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒ．９：９６３−７１）、および眼（Ａｕｒｉｃｃｈｉｏら（２００２）Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．６：２３８−４２）に遺伝子を送達するウイルスベクターとの使用に採用されている。二量体化物系はまた、ＡＲＩＡＤ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ社（マサチューセッツ州、ケンブリッジ）のＡＲＧＥＮＴ転写技術基盤（ＡＧＥＮＴ  Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  ｐｌａｔｆｏｒｍ）の要素でもある。この技術は、さらにＡＲＧＥＮＴ二量体化物に基づいた系を一般的に記述する、Ｃｒａｂｔｒｅｅらの米国特許第６，０４３，０８２号、ならびに合成ＤＮＡ結合ドメイン、ｐ６５転写活性ドメインおよび減少された免疫抑制を有するラパログ（ｒａｐａｌｏｇｓ）を包含する、ラパマイシンもしくはラパマイシン類似物を使用する二量体物に基づいた系を記述する、Ｃｌａｃｋｓｏｎらの米国特許第６，６４９，５９５号で開示されている。米国特許第６，０４３，０８２号および米国特許第６，６４９，５９５号を出典明示によりそれら全体を本明細書に一体化させる。
【００１４】
二量体化物系は、転写活性融合タンパク質の機能的な要素を示す配列が全てヒト由来のタンパク質であり、それゆえヒトにおいて不都合な免疫応答の可能性を減少させるという点で十分にヒトへの適応に有利な点を有する。Ｒｉｖｅｒａら（１９９９）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９６：８６５７−６２。
【００１５】
（パーキンソン病）
パーキンソン病（ＰＤ）は、遺伝子治療、特にＡＡＶ遺伝子治療に適合し得る病気の例である。ＰＤは、アメリカで二番目に多い神経変性疾患であり、１００万人以上に影響する。ＰＤは、自発運動の減退、歩行困難、姿勢不安定、硬直および震えに特徴付けられる。これらの臨床徴候は、脳の基底ガングリア領域の黒質内の着色神経（すなわち、ドーパミン作動性神経）変性の直接的な結果である。黒質の着色神経が重要なカテコールアミン神経伝達体の合成部位であるので、黒質の進行性変性は、利用可能なドーパミンの減少を引き起こす。
【００１６】
ドーパミンは、黒質、特に黒質緻密部のドーパミン作動性神経の終神経末端で合成される。ドーパミン作動性神経は、線条体、特に神経支配する被殻および尾状核に投射する。３つの酵素が効果的なドーパミンの生合成には必要である；それらはチロシン水酸化酵素（ＴＨ）、グアノシン三リン酸シクロヒドロラーゼＩ（ＧＣＨ）、および芳香族Ｌ−アミノ酸脱炭酸酵素（ＡＡＤＣ）である。チロシン水酸化酵素は、アミノ酸のチロシンにヒドロキシル基を付加し、Ｌ−ジヒドロキシフェニルアラニン（Ｌ−ｄｏｐａ）を合成する。ＧＣＨはＴＨ活性に必要な補因子であるＢＨ４の最初の段階および生合成律速段階を触媒する。最終的に、ＡＡＤＣがＬ−ｄｏｐａの末端カルボキシル基を除去してドーパミンを生成する。
【００１７】
ＰＤの処置は、現在では、しばしばＡＡＤＣの関連抑制剤との組み合わせによるＬ−ｄｏｐａの経口投与に関する。ＰＤの進行と同時に、患者の大半は、脳の影響を受けた領域（すなわち、黒質）におけるＡＡＤＣ含有量の減少を経験する。ＡＡＤＣがＬ−ｄｏｐａをドーパミンに変換するのに必要であることから、Ｌ−ｄｏｐａ用量を増加させることが治療効果に必要であるが、これがしばしば副作用の増多を招く。さらに、黒質が次第に悪化するに連れてＡＡＤＣの減少が絶えず続き、しばしばＬ−ｄｏｐａ投与による治療の有益性がもはや認識されないレベルに達する。
【００１８】
（ＡＡＤＣ）
ＰＤ治療への遺伝子治療に基づいた試みの一つは、ＡＡＤＣのようなドーパミン生合成に関する一つ以上の酵素をコードする遺伝子を供給することである。供給ＡＡＤＣは、Ｌ−ｄｏｐａ処置の有効性を回復する。哺乳類の患者の脳におけるＡＡＤＣの送達および発現によるＰＤ処置に使用されるＡＡＶ由来ベクターおよび方法は、その全体を出典明示により本明細書に一体化させた米国特許出願公開第２００２／０１７２６６４号に記述される。
【００１９】
パーキンソン病（ＰＤ）は、黒質におけるドーパミン作動性神経の進行的な喪失および線条体におけるドーパミンの重度な減少に特徴付けられる。Ｈｏｒｎｙｋｉｅｗｉｃｚ（１９７５）Ｎａｔｌ．Ｉｎｓｔ．Ｄｒｕｇ  Ａｂｕｓｅ  Ｒｅｓ．Ｍｏｎｏｇｒ．Ｓｅｒ．１３−２１。６−ＯＨＤＡモデルは、黒質から線条体へ投射する内側前脳束を化学的に損傷させることによって作成され、病理組織学的にＰＤに類似する。Ｕｎｇｅｒｓｔｅｄｔ（１９７１）Ａｃｔａ  Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｓｃａｎｄ．Ｓｕｐｐｌ．３６７：６９−９３。一側的に片方の半球を６−ＯＨＤＡ損傷されたラットは、治療用量のＬ−ｄｏｐａもしくはドーパミン受容体アゴニストに応答して急速な対側性回転活性を生じる。Ｕｎｇｅｒｓｔｅｄｔ（１９７１）。これまでの研究においては、ヒトＡＡＤＣ（ｈＡＡＤＣ）をコードする遺伝子をラットもしくは非ヒト霊長類の線条体に移入すること、および外因的にＬ−ｄｏｐａを送達することが、パーキンソン病（ＰＤ）の動物モデルにおいて、ドーパミンを有効なレベルにまで回復させ、Ｌ−ｄｏｐａの必要性を低下させることが可能であると示されている。Ｂａｎｋｉｅｗｉｃｚら（２０００）Ｅｘｐ．Ｎｅｕｒｏｌ．１６４：２−１４、Ｓａｎｃｈｅｚ−Ｐｅｒｎａｕｔｅら（２００１）Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．４：３２４−３０。
【００２０】
（ＧＤＮＦ）
ＰＤの処置への別の遺伝子治療に基づいた試みは、変性過程の進行を阻害するもしくは遅らせる遺伝子を送達することである。グリア細胞由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏおよびｉｎ  ｖｉｖｏのＰＤ動物モデルの双方におけるＤＡ神経の生存を増進することが示されている強力な神経栄養因子であり（Ｂｊｏｒｋｌｕｎｄら，Ｂｒａｉｎ  Ｒｅｓ．（２０００）８８６：８２−９８、Ｂｏｈｎ，Ｍ．Ｃ．，Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．（２０００）１：４９４−４９６、ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｎｅｕｒａｌ  Ｔｒａｎｓｍ．Ｓｕｐｐｌ．（２０００）５８：１８１−１９１）、出典明示により本明細書に一体化させた。哺乳類の患者の脳でのＧＤＮＦの送達および発現によるＰＤ処置のＡＡＶ由来ベクターおよび方法は、出典明示により本明細書に取り入れた米国特許出願公開第２００３／００５０２７３号に記述される。
【００２１】
パーキンソン患者の脳におけるＡＡＤＣもしくはＧＤＮＦの発現は有益である反面、これらの遺伝子の過剰発現は危険な副作用を引き起こし得る。遺伝子治療に使用される典型的なベクターが、強力な構成性プロモーターを組み込むように設計され、そのプロモーターは、治療の有効性を確実にするために全体の導入遺伝子発現を最大にするように意図されている。多くの過去の研究においては、形質導入されたごくわずかの細胞から発現を最大にするための試行がなされ、それは、形質導入効率が比較的低いと予想される場合、および導入遺伝子産物が形質導入された細胞から全身循環へ分泌されるような場合には合理的な目的であるかもしれない。二量体化物により調節される導入遺伝子発現のいくつかの以前の研究がこのような分泌タンパク質に関連する。Ｒｉｖｅｒａら（１９９６）Ｎａｔ．Ｍｅｄ．２：１０２８−３２、Ｒｉｖｅｒａら（１９９９）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９６：８６５７−６２、Ｙｅら（１９９９）Ｓｃｉｅｎｃｅ２８３：８８−９１、Ｐｏｌｌｏｃｋら（２０００）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９７：１３２２１−２６、Ａｕｒｉｃｃｈｉｏら（２００２）Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒ．９：９６３−７１、Ｊｏｈｎｓｔｏｎら（２００３）Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．７：４９３−７、Ａｕｒｉｃｃｈｉｏら（２００２）Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．６：２３８−４２。
【００２２】
分泌タンパク質の産生物が循環器系で蓄積されることと対照的に、非分泌性導入遺伝子産物がいくつかの細胞で過剰発現され、全体的に他の細胞で欠乏する場合、治療の有益性は達成され得ない。非分泌性タンパク質を利用する遺伝子治療は、各々の形質導入細胞内において所望するレベルで調節される導入遺伝子発現を必要とし、このようなタンパク質の発現が形質導入後に調節可能であることが特に重要とされ得る。
【００２３】
神経変性疾患および他のＣＮＳ障害の遺伝子治療は、拡大しつつある技術分野であり（ＴｉｎｓｌｅｙとＥｒｉｋｓｓｏｎ（２００４）Ａｃｔａ  Ｎｅｕｒｏｌ．Ｓｃａｎｄ．１０９：１−８）、導入遺伝子の調節は、投与調節と安全性の両方の目的に必要であり得る。ドーパミンの産生が、原理上前駆体Ｌ−ｄｏｐａの外因的な送達によって制御可能であることから、調節遺伝子発現は、ＡＡＤＣ治療の場合に必要でないかもしれないが、調節は、送達される酵素量を正確に制御すること、あるいは、必要ならば治療を終結することに有益であり得る。調節は、過剰発現が有害な効果である神経栄養因子（ＧＤＮＦなど）の遺伝子送達に必要であり、必要な制御の程度は、個々の適用例により決定される。
【００２４】
遺伝子治療による患者のＣＮＳ（例えば、脳）に導入された遺伝子発現を調節する方法、およびこのような調節を可能にするベクターの必要性が存在する。特に、ＰＤなどの神経変性疾患にかかっている患者の脳において、導入遺伝子の発現を調節する方法の必要性が存在する。好ましくは、調節系は、抑制状態下においては導入遺伝子発現の低いバックグラウンドレベルであるだけでなく、高い誘導率をも示す。最適な系はまた、全てをヒトタンパク質に由来する機能的な要素を含むことでヒト遺伝子治療期間に有害な免疫反応の機会を最小にするだろう。
【発明の開示】
【００２５】
（発明の要約）
当該技術分野における上記ならびに他の要求は本発明に適合する。すなわち、本発明は、神経系の標的細胞内における導入遺伝子の発現が誘導体を用いて調節可能である、ＡＡＶ介在の遺伝子治療用のベクター、方法およびキットを提供する。
【００２６】
一の態様では、本発明は、導入遺伝子の発現が患者のＣＮＳ（例えば、脳）への導入遺伝子の形質導入後に調節され得る、組み換えＡＡＶ（ｒＡＡＶ）ベクターに関する。
【００２７】
一の具体例では、調節は２つのポリペプチド要素を含む転写因子を用いて達成され、該転写因子は、２つの要素が相互に結合する時にのみ活性化し、これらの要素は、誘導体の存在下でのみ相互に結合する。一の具体例では、２つのポリペプチドはＤＮＡ結合ドメイン融合および活性化ドメイン融合を含む。典型的なＤＮＡ結合ドメイン融合は、ヒト転写因子Ｚｉｆ２６８、Ｏｃｔ−１に由来するホメオドメイン、に由来する２つのＤＮＡ結合ドメイン、およびＦＫ５０６の細胞受容体に由来する３つの薬物結合ドメインを含む。典型的な活性ドメイン融合は、ＮＦκＢのｐ６５サブユニットに由来する転写活性化ドメインに融合されたヒトＦＲＡＰのラパマイシン結合ドメインを含む。
【００２８】
一の具体例では、第一のｒＡＡＶベクターは導入遺伝子を含み、第二のｒＡＡＶベクターは転写因子要素の配列を含む。別の具体例では、単一のｒＡＡＶベクターは転写因子要素と導入遺伝子の配列を含む。
【００２９】
一の具体例では、調節は、誘導体の投与によって成される。別の具体例では、誘導体は、ラパマイシンなどの二量体化物もしくはその非免疫抑制性類似物、例えば、ＡＰ２１９６７である。
【００３０】
別の態様では、本発明は、導入遺伝子が患者のＣＮＳ（例えば、脳）に形質導入された後に導入遺伝子の発現が調節され得るｒＡＡＶベクターを用いて患者を処置する方法に関する。一の具体例では、処置方法は、誘導体、例えば、ラパマイシンなどの二量体化物もしくはその非免疫抑制性類似物、例えば、ＡＰ２１９６７の投与に関する。
【００３１】
さらに別の態様では、本発明は、本発明のベクターを構築するため、もしくは本発明の方法を行うためのキットに関する。一の具体例では、キットは、使用者の目的とする導入遺伝子をクローニングするためのポリリンカー領域を有している第一のｒＡＡＶベクターを含む。別の具体例では、キットは、第一のｒＡＡＶベクターにクローニングされた導入遺伝子からの発現を調節できる転写因子をコードする第二のｒＡＡＶベクターをさらに含む。さらに別の具体例では、キットは、誘導体、例えば、ラパマイシンなどの二量体物もしくはその非免疫抑制性類似物、例としてＡＰ２１９６７などを含む。
【００３２】
一の具体例では、本発明は、ヒト神経変性疾患、例えば、パーキンソン病（ＰＤ）の処置に関する。
【００３３】
いくつかの具体例では、調節された導入遺伝子は、ＡＡＤＣもしくはＧＤＮＦであるが、一般的には、調節された導入遺伝子は、標的組織での発現が望まれるいずれかの遺伝子であり得る。
【００３４】
本発明のこれらおよび他の具体例は、本明細書の開示のために当業者によって容易に行われるだろう。
【００３５】
（図の説明）
図１Ａは、導入遺伝子発現調節用転写因子の活性化およびＤＮＡ結合ドメインをコードするｒＡＡＶベクター（ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＴＦ）の図式である。
【００３６】
図１Ｂは、発現がラパマイシンもしくはその誘導体物の添加によって調節可能である、ｈＡＡＤＣをコードする組み換えＡＡＶベクター（ＡＡＶ−Ｚ１２−ｈＡＡＤＣ）の図式である。
【００３７】
図１Ｃは、発現が構成性ＣＭＶプロモーターによって促進されるｈＡＡＤＣをコードする組み換えＡＡＶベクター（ＡＡＶ−ＣＭＶ−ｈＡＡＤＣ２）の図式である。
【００３８】
図２は、Ｄ７−４細胞に様々なｒＡＡＶ構築物を形質導入し、０、５もしくは２５ｎＭのラパマイシン類似物ＡＰ２１９６７で処理した実験結果を示す。未処理コントロールも示す。「ＯＤ」値は、基準ロットのＡＡＶ−ＣＭＶ−ｈＡＡＤＣ２で形質導入された細胞から得られた標準曲線を用いて計算した（ＡＡＤＣの発現ＥＬＩＳＡにおけるＯＤ４０５で測定した）相対的なＡＡＤＣ発現を意味する。
【００３９】
図３は、Ｌ−ｄｏｐａに対する回転応答を６−ＯＨＤＡ損傷ラットでラパマイシン処置の機能として測定した実験の時系列である。
【００４０】
図４は、６−ＯＨＤＡ損傷ラットにおける５ｍｇ／ｋｇのＬ−ｄｏｐａに対する回転応答を示し、図３で示される時系列に沿った時間の関数として時間あたりの対側性回転数で表される。ラットに賦形剤単体（コントロール）もしくは調節可能なｈＡＡＤＣおよび対応する転写因子をコードするベクターを注入する。データは第１週と第２週の結果を示していない。図３で示すように、注入を０日に行い、その日を週の数を数え始めた日とする（例えば、「３週」は、注入後２１日を意味する）。簡単にするため、図３で示される４回のラパマイシン注射（「ラパマイシン」）を図４では単一の矢印として表した。
【００４１】
図５Ａは、ｈＡＡＤＣのラパマイシン調節発現に必要な配列を有するＡＡＶベクターとともにラパマイシンで処理した注入７週後ラット線条体内のＡＡＤＣ免疫組織化学の結果を示す。スケールバーは７５μｍを表す。
【００４２】
図５Ｂは、ラットがラパマイシン未処理であること以外には図５Ａと同様の実験結果を示す。
【００４３】
図６は、注入７週後で得られた３つの処理群における典型的なラット由来のホールマウント脳切片のＡＡＤＣ免疫組織化学の結果を示す：Ａ：ベクター注入（＋）ラパマイシン；Ｂ：ベクター注入（−）ラパマイシン；Ｃ：賦形剤注入（＋）ラパマイシン。図４で示すように、ラットに賦形剤のみ（図６Ｃ）、もしくは調節可能なｈＡＡＤＣと対応する転写因子（図６Ａと６Ｂ）をコードするベクターを注入した。その後、図６Ａと６Ｃのラットをラパマイシンで処理した（図３で示すように）が、図６Ｂのラットは処理しなかった。左側の半球は、６−ＯＨＤＡ損傷と線条体内ベクター（もしくは賦形剤）注入の部位であり、右側の半球は、正常ラットのＡＡＤＣ陽性繊維の内在性染色を示す。
【００４４】
図７は、図６に準拠して考察された３つの処理群において、ウエスタンブロット解析で測定された注入７週後のＡＡＤＣ発現を示す。上の図は、３つの処理群各々からの典型的なラット脳由来のタンパク質の電気泳動によって観察されたＡＡＤＣとβ−アクチンのバンドである。β−アクチンをコントロールとして使用した。棒グラフは、３つの各処理群ラットのＡＡＤＣバンドにおけるタンパク質バンドの平均した統合像密度、および標準偏差を示す。
【００４５】
図８Ａは、ｈＧＤＮＦの発現がラパマイシンもしくはその類似物によって調節され得る、転写因子の活性化ドメイン融合およびＤＮＡ結合ドメイン融合をコードする転写、ならびに導入遺伝子ｈＧＤＮＦをコードする調節可能な転写、を含むｒＡＡＶベクター（ＡＡＶ−ＴＦ−Ｚ８−ｈＧＤＮＦ）の図式である。
【００４６】
図８Ｂは、転写因子のＤＮＡ結合ドメインの発現が活性化ドメインの発現とは別々の転写上でＳＶ４０プロモーターによって促進されること、ならびに活性化ドメインが反対の鎖（すなわち、反対方向）から発現されることを除いて、図８Ａで示されるベクターに類似するベクターの図式である。
【００４７】
図８Ｃは、発現が構成性ＣＭＶプロモーターによって促進される、ｈＧＤＮＦをコードする組み換えＡＡＶベクター（ＡＡＶ−ＣＭＶ−ｈＧＤＮＦ）の図式である。
【００４８】
図９は、０、５もしくは２５ｎＭのラパマイシン処理に応じて、調節ＴＦ−ＧＤＮＦプラスミド（ＡＡＶ−ＴＦ−Ｚ８−ｈＧＤＮＦ）もしくは構成性ＣＭＶ−ＧＤＮＦプラスミド（ＡＡＶ−ＣＭＶ−ｈＧＤＮＦ）のどちらかで一時的にトランスフェクトされたＨｅｌａＤ７−４細胞におけるピコグラム（ｐｇ）単位のＧＤＮＦ発現を示す。
【００４９】
（発明の詳細な説明）
本発明の実施は、他に特に規定がなければ、当技術分野内のタンパク質化学、生化学、組み換えＤＮＡ技術および薬理学の慣用的方法に従って行われる。このような技術は文献で十分に説明されている。Ｔ．Ｅ．Ｃｒｅｉｇｈｔｏｎ，Ｐｒｏｔｅｉｎｓ：Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ  ａｎｄ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ（Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ  ａｎｄ  Ｃｏｍｐａｎｙ，１９９３）、Ａ．Ｌ．Ｌｅｈｎｉｎｇｅｒ，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ（Ｗｏｒｔｈ  Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ，Ｉｎｃ．，ｃｕｒｒｅｎｔ  ａｄｄｉｔｉｏｎ）、Ｓａｍｂｒｏｏｋら，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ（２ｎｄ  Ｅｄｉｔｉｏｎ，１９８９）、Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（Ｓ．Ｃｏｌｏｗｉｃｋ  ａｎｄ  Ｎ．Ｋａｐｌａｎ  ｅｄｓ．，Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．）、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅ，１８ｔｈ  Ｅｄｉｔｉｏｎ（Ｅａｓｔｏｎ，Ｐａ．：Ｍａｃｋ  Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ  Ｃｏｍｐａｎｙ，１９９０）を参照。
【００５０】
（Ｉ、定義）
本出願で使用される全ての科学的および技術的用語は、他に特に規定がなければ、当該技術分野で一般的に使用される意味を有する。本出願で使用される場合において、以下の単語もしくは語句は特定の意味を有する。
【００５１】
本明細書および特許請求の範囲で使用されるように、単数形「ａ」「ａｎ」および「ｔｈｅ」は、内容が明確に他に指示しない限り、複数形の関連物を含むことに注意しなければならない。それゆえ、例えば、「ａ  ｖｅｃｔｏｒ」に関しては、二以上のかかるベクターの混合物、およびその類似物を含む。
【００５２】
用語「導入遺伝子」は、本明細書で使用されるように、いくつかの具体例において、標的細胞にすでに存在する内在性遺伝子の付加コピーもしくは配列変化を含む、導入遺伝子由来の如何に関わらず標的細胞に送達される遺伝子を意味する。導入遺伝子は、生物から得られる遺伝子配列もしくは部分的な遺伝子配列、かかる遺伝子の遺伝学的に操作された配列変化、または合成（非自然発生）ＤＮＡ配列であり得る。導入遺伝子は、タンパク質をコードするメッセンジャーＲＮＡの産生を指示してよく、あるいはアンチセンス、リボザイム、三重鎖形成性、ＲＮＡｉもしくは他のＲＮＡ配列などの生物学的な活性ＲＮＡ分子をコードしてよい。
【００５３】
「調節可能な導入遺伝子」は、本明細書で使用されるように、標的細胞に形質導入された後に遺伝子の発現が誘導体の投与によって変化され得る遺伝子である。治療用導入遺伝子発現の調節は、導入遺伝子産物のレベルの薬理学的な制御を提供する。
【００５４】
「発現カセット」は、目的の配列もしくは遺伝子の発現を指示することが可能である構築物を意味する。発現カセットは、目的の配列もしくは遺伝子（の直接的な転写を行うため）を作動可能であるように結合させたプロモーターもしくはプロモーター／エンハンサーを含み、しばしばポリアデニル化配列も含む。本発明の特定の具体例の範囲内において、本明細書に記述された発現カセットは、アデノウイルス随伴ウイルス構築物内に含まれてよい。
【００５５】
本明細書で核酸に関して使用される「組み換え」は、その起源もしくは操作によって、ゲノム、ｃＤＮＡ、ウイルス、半合成、もしくは合成由来のポリヌクレオチドが、本来関連する全てもしくは一部のポリヌクレオチドと関連していないことを意味する。タンパク質もしくはポリペプチドに関して使用される用語「組み換え」は、組み換えポリヌクレオチドの発現によって産生されるポリペプチドを意味する。一般的に、さらに下記のように、目的の遺伝子がクローン化され、次に形質転換された動物で発現される。宿主生物は発現条件の下で外部遺伝子を発現してタンパク質を産生する。
【００５６】
「コード配列」もしくは選択ポリペプチドを「コード」する配列は、適合する調節配列（もしくは「制御エレメント」）の制御下に配置された場合に、ｉｎ  ｖｉｖｏでポリペプチドに転写（ＤＮＡの場合）および翻訳（ｍＲＮＡの場合）される核酸分子である。コード配列の境界は、５’（アミノ）末端の開始コドンおよび３’（カルボキシ）末端の翻訳停止コドンによって決定され得る。コード配列は、ウイルス由来のｃＤＮＡ、原核生物もしくは真核生物のｍＲＮＡ、ウイルスもしくは原核生物ＤＮＡ由来のゲノムＤＮＡ配列、ならびに合成ＤＮＡ配列さえも含み得るが、それらだけに限らない。転写終結配列は、コード配列の３’側に配置され得る。
【００５７】
典型的な「制御エレメント」は、転写プロモーター、転写エンハンサーエレメント、転写終結シグナル、ポリアデニル化配列（３’側翻訳停止コドンに局在する）、翻訳開始の最適化配列（５’側コード配列に局在する）、および翻訳終結配列を含むが、それらだけに限らない。
【００５８】
用語「核酸」は、ＤＮＡとＲＮＡ、および修飾骨格（例、ホスホロチオエート）などのそれらの類似物、ならびにペプチド核酸（ＰＮＡ）なども含む。本発明は、上記のものに相補的な配列を包含する核酸（例、アンチセンスもしくはプローブ用）を含む。
【００５９】
用語「トランスフェクション」は、細胞への外部ＤＮＡの取り込みを意味することに使われる。細胞は、外因性ＤＮＡが細胞膜の内部に導入される時に「トランスフェクトされる」。多くのトランスフェクション技術が当該技術分野で一般的に知られている。Ｇｒａｈａｍら（１９７３）Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，５２：４５６、Ｓａｍｂｒｏｏｋら（１９８９）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ，ａ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ、Ｄａｖｉｓら（１９８６）Ｂａｓｉｃ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｅｌｓｅｖｉｅｒ、およびＣｈｕら．Ｇｅｎｅ１３：１９７，１９８１を参照。かかる技術は、プラスミドベクターおよび他の核酸分子などの一つ以上の外因性ＤＮＡ部分を適する宿主細胞に導入することに使用され得る。用語は遺伝学的物質の安定的および一時的な取り込みの両方を意味する。
【００６０】
用語「形質導入」は、組み換えアデノ随伴ウイルスベクターなどのベクターを介してｉｎ  ｖｉｖｏもしくはｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける受容細胞へのＤＮＡ分子の送達を意味する。
【００６１】
遺伝子配列および制御配列などの核酸配列に関連する、用語「異種性」は、通常、一緒に結合せず、および／もしくは特定の細胞に一般的に関連しない配列を意味する。それゆえ、核酸構築物もしくはベクターの「異種性」領域は、本来、他の分子に関連して見出されない別の核酸分子内もしくは別の核酸分子に結合している核酸の断片である。例えば、核酸構築物の異種性領域は、本来のコード配列に関連して見出されない配列により隣接されるコード配列を含み得る。異種性コード配列の別の例は、コード配列自身が本来見つけられない構築物である（例、野生型の遺伝子と異なるコドンを有している合成配列）。同様に、一般的に細胞内に存在しない構築物で形質転換された細胞は、本発明の目的である異種性と考えられる。対立遺伝子変異もしくは自然発生変異現象は、本明細書で使用されるような異種性ＤＮＡを生じない。
【００６２】
用語「制御エレメント」は、受容細胞内のコード配列の複製、転写、および翻訳を提供する、プロモーター領域、ポリアデニル化シグナル、転写終結配列、上流調節ドメイン、複製開始点、配列内リボソーム進入部位（「ＩＲＥＳ」）、エンハンサー、およびその類似物を総じて意味する。選択されたコード配列が、適する宿主細胞内で複製、転写および翻訳可能ならば、これらの制御エレメントの全てが常に必要ではない。
【００６３】
本明細書で使用される用語「プロモーター領域」は、一般的な意味においてＤＮＡ調節配列を含む核酸領域とするのであって、調節配列は、ＲＮＡポリメラーゼが結合し、下流（３’方向）コード配列の転写を開始できる遺伝子に由来する。
【００６４】
「作動可能に連結された」は、そのように記述された要素が通常の機能を果たすために設定されたエレメントの配置を意味する。それゆえ、コード配列に作動可能に連結された制御エレメントはコード配列の発現をもたらし得る。制御エレメントは、コード配列の発現を指示する働きを有する限り、コード配列に隣接する必要はない。それゆえ、例えば、介在する未翻訳の転写配列がプロモーター配列とコード配列の間に配置されても、プロモーター配列はなおコード配列に「作動可能に連結された」と考えられる。
【００６５】
ヌクレオチド配列に関して「単離」によるとは、その特定の分子が同一型の他の生物学的高分子の実質的な非存在化で存在することを意味する。それゆえ、「特定ポリペプチドをコードする単離核酸分子」は、目的ポリペプチドをコードしていない他の核酸分子を実質的に含んでいない核酸分子を意味するが、化合物の基本的な性質に有害的に影響しない付加塩基もしくは分子を含んでよい。
【００６６】
「ベクター」は、核酸配列を標的細胞に移入することが可能である（例えば、ウイルスベクター、非ウイルスベクター、微粒子キャリア、およびリポソーム）。典型的には、「ベクター構築物」、「発現ベクター」、および「遺伝子移入ベクター」は、目的の核酸の発現を指示し、核酸配列を標的細胞に移入可能である核酸構築物を意味する。それゆえ、この用語は、クローニングおよび発現の担体、ならびにウイルスベクターを含む。
【００６７】
「患者」とは、チンパンジーおよび他の類人猿ならびにサル種などの非ヒトの類人猿、ウシ、ヒツジ、ブタ、ヤギおよびウマなどの家畜動物、イヌおよびネコなどの家畜哺乳類を含むヒトおよび他の霊長類、マウス、ラット、テンジクネズミなどの齧歯類を含む実験動物、ニワトリ、七面鳥および他の家禽鳥、カモ、ガチョウ、およびその類似生物などの飼い鳥、野鳥および狩猟鳥を含む鳥を包含する脊索動物亜門を意味するが、それらだけに限らない。本用語は、特定の年齢を意味しない。それゆえ、成体および新生児の各々を範囲とする。
【００６８】
調節可能な転写因子および／もしくは導入遺伝子をコードするＡＡＶベクターの「治療上有効な用量もしくは量」によるとは、ＡＡＶベクターが本明細書の記載通りに投与される時に陽性の治療応答、例えば、神経疾患の症状の改善もしくは進行の抑制をもたらす量が意図される。例えば、治療上有効な量のＡＡＶベクターの投与は、パーキンソン病を治療する患者内で治療因子（例、ＡＡＤＣ、ＧＤＮＦ）の発現を生じ、例えば、運動機能を改善するか、または静止時の震えの軽減などの症状を改善するかもしれない。必要とされるＡＡＶベクターの適正な量は、種、年、および患者の総体的な状態、処置される状態の程度、および使用される個々の化合物、投与形態、およびその類似要素によって患者ごとに変化するであろう。
【００６９】
（ＩＩ、本発明の実施形態）
本発明の詳細を記述する前に、本発明では、特に例示された分子もしくは方法のパラメーターに限定されるものではなく、そのようなものとして当然に変更されてもよいことが理解されるべきである。本明細書で使用される専門用語は、個々の具体例を記述することのみを目的とするのであって、限定することを意図しないことも理解されるだろう。加えて、本発明の実施は、他に規定がない限り、ウイルス学、微生物学、分子生物学、組み換えＤＮＡ技および免疫学全ての通常の技術範囲内における慣用的方法を採用するだろう。このような技術は文献で十分に説明される。Ｓａｍｂｒｏｏｋら，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ（２ｎｄ  ｅｄｉｔｉｏｎ，１９８９）、ＤＮＡ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ａｐｐｒｏａｃｈ，ｖｏｌ．Ｉ＆ＩＩ（Ｄ．Ｇｌｏｖｅｒ編）、Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ（Ｎ．Ｇａｉｔ編，１９８４）、Ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ｇｕｉｄｅ  ｔｏ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ（１９８４）、およびＦｕｎｄａｍｅｎｔａｌ  Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，２ｎｄ  Ｅｄｉｔｉｏｎ，ｖｏｌ．Ｉ＆ＩＩ（Ｂ．Ｎ．Ｆｉｅｌｄｓ  ａｎｄ  Ｄ．Ｍ．Ｋｎｉｐｅ編）を参照。材料と方法の多くは本明細書に記述したものに類似するか、もしくは等価であり、本発明の実施に使用され得るが、好ましい材料と方法は本明細書に記述されている。
【００７０】
本発明は、標的細胞において導入遺伝子の発現を調節するためのベクターの構築、方法およびキットを提供する。一の具体例では、細胞内で調節可能な導入遺伝子の形質導入に必要である配列が、複数の別々の組み換えＡＡＶベクター分子上に提供される。実施例１および２においては、本発明の二重ベクターの具体例の構築物および使用を示す。別の具体例では、単一の組み換えＡＡＶベクターが、標的細胞内で調節可能な導入遺伝子の形質導入に必要である全ての配列を運ぶ。実施例３においては、本発明のこのような単一ベクターの一つの具体例の構築物および使用を示す。
【００７１】
一の具体例において、ＡＡＤＣ遺伝子の調節可能な形態が標的細胞に送達される。実施例１および２は、ＡＡＤＣ遺伝子の調節可能な形態の送達を示す。別の具体例では、ＧＤＮＦ遺伝子の調節可能な形態が標的細胞に送達される。実施例３は、ＧＤＮＦ遺伝子の調節可能な形態の送達を示す。
【００７２】
本明細書で使用される用語、導入遺伝子は、ある具体例において、すでに標的細胞に存在する内在性遺伝子の付加的なコピー、もしくは配列変化を包含する、導入遺伝子の起源にかかわらず標的細胞に送達される遺伝子を意味する。導入遺伝子は、いくつかの生物から得られた遺伝子配列もしくは部分的な遺伝子配列であって、このような遺伝子の遺伝学的に改良された配列変化、あるいは合成（非自然発生）ＤＮＡ配列であり得る。導入遺伝子は、タンパク質をコードするメッセンジャーＲＮＡの産生を指示し得るか、またはアンチセンス、リボザイム、三重鎖形成性、ＲＮＡｉもしくは他のＲＮＡ配列などの生物学的な活性ＲＮＡ分子をコードし得る。
【００７３】
本明細書で使用される調節可能な導入遺伝子は、遺伝子が標的細胞に形質導入された後に、誘導体の投与によって発現が変化可能な遺伝子である。治療上の導入遺伝子発現の調節は、導入遺伝子産物レベルの薬理学的制御を提供する。一つのこのような小分子薬物はラパマイシンである。
【００７４】
一の具体例では、本発明の調節可能な遺伝子発現系は、ラパマイシンもしくはＡＰ２１９６７、非免疫抑制ラパマイシン類似物の存在下でのイムノフィリンＦＫＢＰおよび脂質キナーゼ相同体ＦＲＡＰの特異的な二量体化を利用することで、特異的に誘導可能なプロモーターを活性化する活性な転写因子の複合体を産生する。Ｒｉｖｅｒａら（１９９６）Ｎａｔ．Ｍｅｄ．２：１０２８−３２。ＡＰ２１９６７の構造を下記に提供する。
【化１】
2008523093.tif 000002
【００７５】
ＡＰ２１９６７（分子量１０１７．４Ｄａ）は、米国特許第６，６４９，５９５号（‘５９５特許）の化合物６９で示される７−メチルインドリル類似物であり、その中の実施例５に記述されるように、７−メチルインドールをジメトキシベンゼンに置換させることによって調製され得る。ＡＰ２１９６７は、インドール環上に７−メチル基を有することを除いて‘５９５特許の化合物７１に一致する。
【００７６】
他のラパマイシン類似物もまた、本発明の範囲から逸れることなく使用され得る。ラパマイシン類似物は、患者の内在性ＦＲＡＰと相互作用せず、所望しないラパマイシンの免疫抑制性および細胞周期阻害性効果を潜在的に有さないであろう。Ｐｏｌｌｏｃｋら（２０００）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９７：１３２２１−２６。ＦＲＡＰ変異型は、二量体化物系の活性化ドメイン融合タンパク質のＦＲＢ部分の使用によって、非免疫抑制性ラパマイシン類似物への結合能を維持するように作成され得る。例として、Ｐｏｌｌｏｃｋら（２０００）を参照。
【００７７】
（ＡＡＤＣの調節発現）
実験は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏのＨｅＬａＤ７−４細胞において、およびｉｎ  ｖｉｖｏのパーキンソン病（ＰＤ）の齧歯類モデルにおいて、ＡＡＶベクター介在のラパマイシン依存性ＡＡＤＣ導入遺伝子発現の調節を用いて行われる。ヒトＡＡＤＣ（ｈＡＡＤＣ）導入遺伝子の発現は、実施例１ならびに図１Ａおよび１Ｂでさらに記載されるベクターを用いて二量体化物ラパマイシンによる機能的な転写因子（ＴＦ）の再構成に依存してなされる。転写因子ＡＡＶベクターは、転写因子のＤＮＡ結合ドメインおよび活性化ドメインを送達することに使用され、発現ＡＡＶベクターは調節可能なプロモーターの制御下においてｈＡＡＤＣ導入遺伝子を送達することに使用される。
【００７８】
（Ｉｎ  ｖｉｔｒｏのＡＡＤＣ調節）
Ｉｎ  ｖｉｔｒｏのヒト細胞における二量体化物依存性ＡＡＤＣ発現を行う実験を実施例１に記述した。実施例１で使用される二量体化物、ＡＰ２１９６７は、ラパマイシンより約３倍少ない活性を有する非免疫抑制性ラパマイシン類似物である。結果を図２に示し、一番右のデータは、二量体化物依存性転写因子（ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＴＦ）をコードするベクターと共形質導入された細胞におけるラパマイシン用量依存性ｈＡＡＤＣ発現（ＡＡＶ−Ｚ１２−ｈＡＡＤＣ）を示す。ＥＬＩＳＡデータは、ＡＡＤＣ発現がＡＰ２１９６７の非存在下より２５ｎＭ  ＡＰ２１９６７の存在下では９倍高いことを示す。２５ｎＭは、ＡＰ２１９６７の最大限に有効な濃度であり、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて導入遺伝子発現に安定的なレベルを与える。２５ｎＭのＡＰ２１９６７における調節可能なプロモーターからのｈＡＡＤＣ発現は、構成性ＣＭＶプロモーターの制御下（ＡＡＶ−ＣＭＶ−ｈＡＡＤＣ２）におけるｈＡＡＤＣ発現の約半分のレベルである（図１Ｃ、およびＳａｎｆｔｎｅｒら（２００４）Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．９：４０３−９）。
【００７９】
両方のベクター（ＡＡＶ−Ｚ１２−ｈＡＡＤＣおよびＡＡＶ−ＣＭＶ−ＴＦ）を有する細胞は、ＡＰ２１９６７の非存在下で低レベルのＡＡＤＣ産生のみを示す、すなわち、系は「漏洩しやすい」ものでない。漏洩の非存在は、導入遺伝子が必要に応じて総体的に遮断可能であることを裏付け、広範囲な薬理学上の調節を提供するために遺伝子治療にとって重大であり得る。
【００８０】
（Ｉｎ  ｖｉｖｏにおけるＡＡＤＣ調節）
Ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける二量体化物調節ｈＡＡＤＣのＡＡＶ介在形質導入を行うことに使用された同一ベクター（図１Ａおよび１Ｂ）が、実施例２で記述されるように、線条体脱神経の外科的モデルである、パーキンソン病の６−ヒドロキシドーパミン（６−ＯＨＤＡ）ラットモデルのｉｎ  ｖｉｖｏにおいて調べられた。処置日程を図３において図式的に表わす。図４で示されるように、パーキンソン病ラットにＡＡＶ−ＣＭＶ−ＴＦおよびＡＡＶ−Ｚ１２−ｈＡＡＤＣの両方を形質導入し、次に一連のラパマイシン処理後にそれらの回転行動を測定する。
【００８１】
ラパマイシンの適正な濃度が以前に調べられているという単純な理由から、ｉｎ  ｖｉｖｏ実験においては、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで使用したＡＰ２１９６７よりむしろラパマイシンを使用する。二量体化物のラパマイシンは、ヒト遺伝子治療における誘導体としての使用に多くの有利な特性を有するが、その特有な免疫抑制性がその利用性を限定し得る。ＡＰ２１９６７のようなラパマイシンの非免疫抑制性類似物は、特にヒト患者の処置において、導入遺伝子発現の優れた誘導体であり得る。Ｉｎ  ｖｉｖｏである動物およびヒトの患者におけるＡＰ２１９６７の適正な用量は、臨床試験を含む一般的な実験方法によって決められてよい。
【００８２】
Ｌ−ｄｏｐａおよびラパマイシン投与の組み合わせによる調節ｈＡＡＤＣベクターの形質導入は、ドーパミンの有意なレベルの産生に一致する６−ＯＨＤＡ損傷ラットにおける行動効果を生じる。図４で表されるように、ラパマイシン処理は、損傷線条体でｈＡＡＤＣ発現を可逆的に増加させ、それは、ベクター注入（＋）ｒａｐ群においてラパマイシン使用停止によって可逆的である５ｍｇ／ｋｇに対する変化した回転応答によって示される。ベクター注入（＋）ラパマイシン群のＬ−ｄｏｐａに対する回転応答は、３、５および７週において、ラパマイシン処置直後にはベクター注入（−）ラパマイシン群および賦形剤注入コントロール群の両方を上回って有意に増加する（Ｐ＜０．００１）が、４および６週ではコントロールレベル近くに戻る。
【００８３】
定量的リアルタイムＰＣＲにおいては、２つの群で観察された異なる結果の説明としての異なる形質導入効率の可能性を排除するため、ベクター注入（＋）ラパマイシン群およびベクター注入（−）ラパマイシン群のラットが同等コピー数のｈＡＡＤＣ遺伝子で形質導入されたことを確認する。
【００８４】
研究の終了時点で実施された免疫組織化学およびタンパク質発現アッセイ（表１ならびに図５、６および７）は、以下において詳細を考察するような行動結果を裏付ける。
【００８５】
図５Ａは、ベクター注入（＋）ラパマイシン群由来のラット線条体の中間にある棘状神経におけるＡＡＤＣの強度の免疫組織化学染色、それゆえ有効な導入遺伝子発現を示す一方、図５Ｂは、ベクター注入（−）ラパマイシン群由来ラットにおける非常に低レベルのＡＡＤＣ発現のみを示す。
【００８６】
図６Ａ−６Ｃは、ＡＡＤＣの免疫組織化学で染色されたホールマウント脳切片の低倍率図を表す。結果は、ベクター注入（−）ラパマイシン群由来ラットの左側（処理済み）半球（図６Ａ）と比較してベクター注入（＋）ラパマイシン群由来ラットの左側（処理済み）半球（図６Ｂ）では、ＡＡＤＣが有意に高いレベルの発現であるという視覚的な確認を与える。ベクター注入（−）ラパマイシン群由来ラットの結果は、コントロール賦形剤注入ラットの結果に類似する（図６Ｃ）。
【００８７】
免疫組織化学の立体的解析は、陽性細胞のカウントで測定される発現レベルが、ベクターがラパマイシンとの組み合わせで投与される時に有意に増加することを確認する。表１は、ラパマイシン誘導およびラパマイシン未誘導ラットにおける定量的立体解析による導入遺伝子由来の免疫染色および推定された陽性細胞数の結果を表す。ラパマイシン誘導ラットは、未誘導ラットと比較すると、約２倍のＡＡＤＣ免疫染色の前後方向の拡散、ＡＡＤＣ免疫染色の拡散体積、およびＡＡＤＣの陽性細胞数を示す。
【００８８】
総体的なタンパク質解析は、タンパク質レベルでさらにより大きな相違を示す。図７で示すように、線条体タンパク質サンプル電気泳動後のｈＡＡＤＣ酵素レベルのウエスタンブロット解析は、（−）ラパマイシン群と比較して（＋）ラパマイシン群においては有意により高いｈＡＡＤＣ発現を示す。内在性ＡＡＤＣ発現が図７のプロットされたデータから差し引かれると、ｈＡＡＤＣレベルは（＋）ラパマイシン群と比較して（−）ラパマイシン群では８８％低い。
【００８９】
未誘導ラットで観察される低レベル発現はｉｎ  ｖｉｖｏの調節系における「漏洩」を示唆するが、実施例２で記述される実験結果は、ｈＡＡＤＣ遺伝子発現が二量体化物ラパマイシンによって誘導されることを示す。系の漏洩理由は明白ではなく、結合転写因子の非存在下で最小ＩＬ−２プロモーター由来の未調節発現によって引き起こされるかもしれないが、理論によって限定することを意図しない。しかしながら、誘導なしで観察される低レベルのｈＡＡＤＣは、治療用量以下のＬ−ｄｏｐａに応答する行動を引き出すのに十分ではなく、誘導薬剤の非存在下で誘導可能なプロモーターによって生成される少量の遺伝子発現が、この特定用途に許容可能であるかもしれないことを示唆する。
【００９０】
Ｉｎ  ｖｉｖｏにおいて所望するレベルの導入遺伝子誘導を生じるためのラパマイシン（もしくは類似物）の適正な投薬量は、治療プロトコールにおいて一般的であるように、ケースバイケースで実験によって調べられてよい。投薬量を表現型の測定もしくは代理マーカーに基づいた試行錯誤によって調節してよい。また、投薬量を患者の標的組織もしくは血中におけるラパマイシンの所定標的濃度を達成するようにも調節し得る。静脈注射によって導入される場合、典型的な投薬量は０．０１から５０ｍｇ／ｋｇ、好ましくは０．１から１０ｍｇ／ｋｇの範囲であり、例えば、０．１、０．２、０．３、０．４、０．５、０．６、０．８、０．９、１、１．５、２、３、４、５、６、７、８、９もしくは１０ｍｇ／ｋｇである。ヒトの患者を処置する場合において、投薬量は臨床試験の結果を参照に決定されるか、あるいは動物データから推測され得る。
【００９１】
組み換えＡＡＶベクターは、送達される導入遺伝子、その作用メカニズム、および所望する標的細胞に応じて、脳の様々な局所に外科的に導入され得る。例えば、基底ガングリアは皮質下に位置する神経群である。それらは、尾状核、被殻、および淡蒼球を含む。尾状核および被殻は、一緒になって大脳基底核の線条体（もしくは単に線条体）を形成する。尾状および被殻は各々、黒質緻密部（ＳＮｐｃ）および黒質網様部から成る黒質と相互に連結される。ＳＮｐｃはドーパミン生合成の通常部位であり、ＳＮｐｃの変性はＰＤの特徴である。大脳基底核線条体の被殻もしくは尾状核の神経にＡＡＤＣのようなドーパミン生合成経路の酵素をコードする遺伝子を形質導入することによって、ドーパミン合成が回復され、それによって機能的に減少したＳＮｐｃネットワークを克服可能である。
【００９２】
大脳基底核の線条体細胞は、当該技術分野で知られる多様な技術を用いて形質導入され得る。例えば、定位注射は、様々な化合物をＣＮＳに投与するために神経外科医によって使用される一般的な外科技術である。直接注射もまた使用され得る。この技術を使用する場合、ＣＴ、ＰＥＴ、もしくはＭＲＩスキャンからの解剖学的なマップが、注射部位を選択する際に補助するために外科医によって用いられ得る。対流促進送達（出典明示により本明細書に取り入れた米国特許第６，３０９，６３４号で詳細に記述される）を含む他の技術が、ｒＡＡＶビリオンをＣＮＳに送達する本発明の方法に採用され得る。
【００９３】
実施例１および２で記述される実験は、別々のベクターが転写因子融合タンパク質および導入遺伝子を送達することに使用される、本発明の二重ベクターの具体例に関する。他の具体例では、異なる遺伝子が発現ベクター内のｈＡＡＤＣに代わって使用される。最大約５０００−５２００ヌクレオチド（ｎｔ）がＡＡＶビリオンにパッケージされ得、最適であるのは約４５００ｎｔである。Ｄｏｎｇら（１９９６）Ｈｕｍ．Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒ．７：２１０１−１２。図１Ｂで表される一つのようなｒＡＡＶ発現ベクターの他の必要な配列エレメント（例、ＩＴＲ領域、プロモーター、転写因子結合配列、等）が与えられると、発現ベクター内の導入遺伝子配列は約２５００ヌクレオチド（ｎｔ）もないかもしれない。この大きさの制限内において、所望する導入遺伝子が本発明の二重ベクターの具体例で示されるｒＡＡＶ発現ベクター構築物を用いて送達され得る。より短小化されたＩＴＲ、プロモーターもしくは転写因子結合領域を有する最適化された発現ベクターの改良型は、より長い導入遺伝子配列の送達を可能にするように構築され得る。
【００９４】
実施例１および２の結果は、二量体化物依存性ｈＡＡＤＣ導入遺伝子の発現が、本発明の二重ベクターｒＡＡＶ介在の具体例を用いてヒトの培養細胞、およびｉｎ  ｖｉｖｏのラット神経において調節され得ることを示す。
【００９５】
（単一ベクター系におけるＧＤＮＦ調節）
実施例３で記述されるように、実験を本発明の単一ベクターの具体例を用いて行い、単一のｒＡＡＶベクターを、ＧＤＮＦ導入遺伝子発現の二量体化物依存性調節に必要である全てのタンパク質を発現するように設計した。調節されたｒＡＡＶのｈＧＤＮＦ発現ベクターの図式を、図８Ａで提供し、構成性（非調節）ｈＧＤＮＦ発現を有するコントロールベクターの図式を図８Ｃで提供する。（図８Ｂは、実施例３で使用されない調節ＧＤＮＦ発現ベクターの代替的なデザインを示す。）プラスミドベクターをｉｎ  ｖｉｔｒｏでＨＥＫ−２９３細胞に一時的にトランスフェクトさせる。次に細胞を０、５もしくは２５ｎＭのラパマイシンを含む培地で処理する。
【００９６】
トランスフェクション３日後に行なったＧＤＮＦのＥＬＩＳＡの結果を図９で表す。データは、構成的に発現したＧＤＮＦ（ｐＡＡＶ−ＣＭＶ−ｈＧＤＮＦを意味する「ＣＭＶ−ＧＤＮＦプラスミド」）からの発現の最大で約４分の１レベルの観察された発現を有する、調節された構築物（ｐＡＡＶ−ＴＦ−Ｚ８−ｈＧＤＮＦを意味する「ＴＦ−ＧＤＮＦプラスミド」）でトランスフェクトされた細胞におけるＧＤＮＦのラパマイシン投与量応答性発現を表す。ｐＣＭＶ−ＧＤＮＦからのＧＤＮＦ発現はラパマイシンの添加によっても増加しない。
【００９７】
実施例３に記載される実験は、ヒトの培養細胞において、ＧＤＮＦ発現が単純に小分子誘導体ラパマイシンの添加によって調節され得るような、単一ベクター調節可能なＡＡＶ−ＧＤＮＦ構築物が構築され得ることを表す。結果は、ＧＤＮＦ発現が調節可能なＡＡＶ−ＧＤＮＦベクターによってｉｎ  ｖｉｖｏの患者でも調節され得ることを示唆する。実施例３の単一ベクターは、前記で考察した二重ベクターの具体例における転写因子ベクターおよび発現ベクターの両方の役割を果たす。２つのベクターを標的細胞に共トランスフェクションする必要がある二ベクター法と比較して、単一ベクターによる処置は、調節可能なＧＤＮＦを導入するために１回の形質導入イベントのみを必要とする点で有利である。この単一ベクターの具体例の利点は、非常に少ない割合の標的細胞が両ベクターによって同時に形質導入されると予想される遺伝子治療方法などの低形質導入効率を供するプロトコールに対して特に有意である。例えば、非依存性形質導入効率を推定すると、全体の形質導入効率が各ベクターについて５％である場合、細胞の僅か０．２５％のみが両方のベクターで形質導入されるだろう。
【００９８】
ＡＡＶビリオンにパッケージされるベクターが約５０００−５２００ヌクレオチド（ｎｔ）より長いことはあり得ないことから、単一ベクターの調節可能な構築物は、比較的短い導入遺伝子の送達のみに有用である。例えば、図８Ａで表されるｒＡＡＶベクターで使用される転写因子融合タンパク質および調節エレメントの特定の選択物（実施例３で使用されるように）と一緒で、導入遺伝子（ＧＤＮＦ）配列は約６００ｎｔ長である。配列エレメントのより効率的な置換とともに、不必要なヌクレオチドが融合タンパク質および調節可能なエレメントから除去された、最適化単一ベクター調節可能なＡＡＶ−構築物を用いて、より長い導入遺伝子配列、例えば、８５０まで、もしくは１０００ｎｔでさえが送達可能である。ＡＡＶ−パッケージの大きさ制限内において、所望する導入遺伝子が本発明の単一ベクター構築物を用いて送達され得る。導入遺伝子は、単一ベクターの送達を促進するために、全長の遺伝子よりもむしろ所望する遺伝子の活性部分断片を含み得る。
【００９９】
特定の治療効果を達成するために必要とされるｒＡＡＶビリオンの用量、例えば、体重キログラムあたりベクターゲノムの単位用量（ｖｇ／ｋｇ）は、ｒＡＡＶビリオン投与経路、治療効果を得るために必要とされる導入遺伝子発現レベル、ならびに異種性遺伝子産物の安定性を包含するいくつかの因子に依存してよいが、それらだけに限らない。当該技術分野における技術の一つは、前記の因子、ならびに当該技術分野でよく知られる他の因子に基づいた特定の病気もしくは疾患にかかっている患者を処置するｒＡＡＶビリオンの用量範囲を決定しうる。本発明のいくつかの具体例では、哺乳類で形質導入を生じさせることに使用されるｒＡＡＶの適正用量は、１Ｘ１０８ｖｇ／ｋｇから１Ｘ１０１５ｖｇ／ｋｇまで、好ましくは４Ｘ１０９ｖｇ／ｋｇから４Ｘ１０１２ｖｇ／ｋｇまでの範囲であり得るが、実験で調べられることによってより高いもしくは低い用量であってもよい。ＡＡＤＣおよびＧＤＮＦを本明細書の実施例で典型的な導入遺伝子として示すが、送達される特定の導入遺伝子を本発明の態様に限定しない。他の遺伝子もしくは遺伝子の一部は、利益的な（例、治療上の）効果を提供することが期待され、その配列がＡＡＶビリオンにパッケージされ得るＡＡＶベクター構築物内に合うほどに短い場合、本発明のベクター、方法およびキットを用いて脳に導入され得る。
【０１００】
上記で議論したように、ＡＡＤＣ（ＯＭＩＭ１０７９３０、ＥＣ４．１．１．２８、ジェンバンク受託番号Ｍ７６１８０）は、ドーパミン生合成に関する導入遺伝子である。ドーパミン生合成に関連する他の可能性のある導入遺伝子は、チロシン水酸化酵素（ＴＨ）（ＯＭＩＭ１９１２９０、ＥＣ１．１４．１６．２、ジェンバンク受託番号Ｘ０５２９０）およびグアノシン三リン酸シクロヒドロラーゼＩ（ＧＣＨ）（ＯＭＩＭ６００２２５、ＥＣ３．５．４．１６、ジェンバンク受託番号ＮＭ＿０００１６１）である。さらに他の可能性のある導入遺伝子は、ＧＤＮＦ（ＯＭＩＭ６００８３７、ジェンバンク受託番号ＡＸ７１３０４９、Ｌ１９０６３）ならびにアルテミン（ａｒｔｅｍｉｎ）（ＯＭＩＭ６０３８８６、ジェンバンク受託番号ＡＦ１０９４０１）、ニューチュリン（ｎｅｕｒｔｕｒｉｎ）（ＯＭＩＭ６０２０１８、ジェンバンク受託番号ＨＳＵ７８１１０）、およびパーセフィン（ｐｅｒｓｅｐｈｉｎ）（ＯＭＩＭ６０２９２１、ジェンバンク受託番号ＡＦ０４０９６２）などのＧＤＮＦタンパク質ファミリーの他のメンバーを包含するニューロトロフィンを含む。Ｓａａｒｍａら（１９９９）Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ  Ｒｅｓ．Ｔｅｃｈ．４５：２９２−３０２。さらに他の導入遺伝子はＩＬ−１０（ＯＭＩＭ１２４０９２、ジェンバンク受託番号Ｍ５７６２７）を含む。
【０１０１】
ＯＭＩＭ番号は、ジョンホプキンス大学によって管理されているＯｎｌｉｎｅ  Ｍｅｎｄｅｌｉａｎ  Ｉｎｈｅｒｉｔａｎｃｅ  ｉｎ  Ｍａｎのデータベースを意味し、国立医学図書館のウェブサイトｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｅｎｔｒｅｚ．を通してインターネット上で利用可能である。本明細書に記載される全てのＯＭＩＭ項目の内容、および受託番号で記載される配列は、出典明示により本明細書に一体化させる。
【０１０２】
ジェンバンク受託番号は代表的な完全なｃＤＮＡ配列のみを提供し、本発明の範囲を制限することを意図しない。特に、可能性のある導入遺伝子は、ジェンバンクで報告された他の遺伝子、自然遺伝子の全長および部分断片、他種由来の相同性遺伝子、これらの配列の対立遺伝子多型、ならびに自然発生もしくは人工創出変異型の遺伝子を含む。
【０１０３】
導入遺伝子はまた、アルツハイマー病、ハンチントン病、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、多発性硬化症、カナバン病、脳虚血、進行性核上麻痺、レビー小体型認知症、シャイ・ドレガー症候群、ＡＩＤＳ認知症候群、本態性振戦、筋失調症、大脳皮質基底核変性症、多系統萎縮症および網膜変性（例、黄斑変性症、糖尿病性網膜症、網膜色素変性症、緑内障）などの他の神経変性疾患を処置するための遺伝子も含む。
【０１０４】
誘導体は、好ましくは有意な毒性もしくは副作用を有さずにヒト患者に送達され得る化合物から選択される。神経系もしくは他のＣＮＳ疾患を治療するための好ましい具体例において、誘導体は血液脳関門を通過することが可能である。より好ましい具体例において、誘導体は二量体化物、例えば、ラパマイシンもしくはその非免疫抑制性類似物である。
【０１０５】
いくつかの具体例において、誘導体は局所的、例えば、皮下、筋肉内、眼球内もしくは静脈内注射によって送達される。好ましい具体例において、誘導体は、経口的に、局所に鼻腔送達による（スプレー式点鼻薬）、エアロゾル／肺送達による（吸入器）、眼の送達による（点眼）もしくはその他の利便的な送達様式によって、比較的便利に送達され得る一つである。誘導体はまた、経皮貼布、皮下移植、埋め込み型浸透圧ミニポンプ、機械的輸液ポンプもしくは制御放出医薬組成物を用いて継続的もしくは半継続的に送達されてもよい。
【０１０６】
本発明によるｒＡＡＶベクターのストックは、ＡＡＶビリオン生成のための当該技術分野で知られるいくつかの方法を用いて調製されてよい。野生型ＡＡＶおよびヘルパーウイルスが、ｒＡＡＶビリオン生成用に必要な複製機能を提供するために使用され得るか、あるいは、プラスミドが、ヘルパー機能遺伝子（例、ｐＨＬＰ１９）、補助的な機能遺伝子（例、ｐｌａｄｅｎｏ５）のどちらか、または三重形質導入法の場合ではそれら両方を供給するために使用され得る。出典明示により本明細書に一体化させた、米国特許第５，１３９，９４１号、第５，６２２，８５６号、第６，００１，６５０号および第６，００４，７９７号を参照。
【０１０７】
Ｉｎ  ｖｉｖｏ送達用では、ｒＡＡＶビリオンは、適切な用量の一種以上のｒＡＡＶビリオンおよび医薬上許容される賦形剤を含む医薬組成物に製剤化される。このような賦形剤は、個々の受容組成物に有害である抗体の産生を自身で誘導せず、過度の毒性を伴うことなく投与され得る薬学的な剤を含む。医薬上許容される賦形剤は、水、生理食塩水、グリセロールおよびエタノールなどの液体を包含するが、それらだけに限らない。
【０１０８】
医薬上許容される塩は、例えば、塩酸塩、臭化水素酸塩、リン酸塩、硫酸塩およびその類似塩などの鉱酸塩、ならびに酢酸塩、プロピオン酸塩、マロン酸塩、安息香酸塩、およびその類似塩などの有機酸塩を含み得る。加えて、湿潤剤もしくは乳化剤、ｐＨ緩衝薬剤、およびその類似薬剤などの補助薬物がこのようなビヒクル内に存在する。医薬上許容される賦形剤に関する詳細な考察は、ＲＥＭＩＮＧＴＯＮ’Ｓ  ＰＨＡＲＭＡＣＥＵＴＩＣＡＬ  ＳＣＩＥＮＣＥ（Ｍａｃｋ  Ｐｕｂ．Ｃｏ．，Ｎ．Ｊ．１９９１）で利用可能である。
【０１０９】
いくつかの具体例において、本発明のｒＡＡＶビリオンは、長期ストックおよび繰り返される凍結融解サイクルへの曝露に対するウイルスの安定性を高め、輸液用器具へのベクターの付着を軽減させる賦形剤を包含する医薬組成物として供給される。好ましい具体例において、賦形剤は、標的組織、例えば、ＣＮＳでは低い毒性を示す。例えば、ビリオンは、０．０１％から０．０００１％、好ましくは０．００１％のプルロニックＦ−６８（ニュージャージー州、マウントオリーブのＢＡＳＦ社）を含む緩衝液でストックされ、供給され得る。付加的な化合物および賦形剤が、出典明示により本明細書に一体化させた米国特許第６，７５９，０５０号および第６，７６４，８４５号に記述される。
【０１１０】
別の態様において、本発明は、導入遺伝子の調節発現用キットに関する。いくつかの具体例では、図１Ａおよび１Ｂ、または図８Ａもしくは８Ｂで示されるベクターに実質的に同一である一種以上のベクターがこのようなキットに含まれる。
【０１１１】
他の具体例において、図１Ｂ、８Ａもしくは８Ｂで表されたベクターに類似するベクターは、ＡＡＤＣおよびＧＤＮＦのコード配列がポリリンカーなどの利便的なクローニング配列によって置換されることを除くこのようなキットに含まれる。図１Ｂで示されるベクターに類似する発現ベクターが、二重ベクター法で有用である一方、図８Ａおよび８Ｂで示されるベクターに類似するベクターは、本発明の単一ベクター法において有用である。本発明のキットの使用者は、目的の遺伝子もしくは遺伝子断片を発現ベクターにクローン化し、続いて形質導入用にｒＡＡＶビリオンを調製し得る。
【０１１２】
二重ベクター法で使用する発現ベクターを包含しているキットはまた、図１Ａで示されるベクターに実質的に類似する転写因子ベクターも含んでもよい。
【０１１３】
キットはまた、ラパマイシンもしくはその類似物を選択的に含んでもよい。
【０１１４】
キットはまた、米国特許第６，００１，６５０号および第６，００４，７９７号でさらに十分記載されるように、プラスミドｐＨＬＰ１９およびｐｌａｄｅｎｏ５などのｒＡＡＶビリオンストックの調製に使用するプラスミドを選択的に含んでもよい。
【０１１５】
キットは使用説明書を含んでもよい。
【０１１６】
いくつかの具体例において、本発明の遺伝子治療ベクター、方法およびキットは、治療効果を提供するために、パーキンソン病のような病気にかかっている患者に投与される。一般的に言うと、「治療効果」は、患者の病気もしくは疾患が症状の改善を示すような、所望する結果もしくは臨床治療の終結に向けた病気（もしくは疾患）の要素を変化させるのに十分な一つ以上の導入遺伝子の発現レベルであって、しばしば病気もしくは疾患に関する臨床的徴候もしくは症状の改善によって反映されることを意味する。パーキンソン病の場合では、治療効果は、例えば、手先の器用さの改善によって現れた運動機能、（例、繊細な運動作業）の改善であり得る。代替的には、静止時の震えの減少もＰＤ改善の徴候であり得る。特定のＰＤ処置に対する治療の有効性（すなわち、治療効果）を調べるために、いくつかの他の当該技術分野公知の観察および測定可能な評価項目がある。
【０１１７】
ＰＤの臨床的徴候および症状を示しているヒトの患者において、医師は、病気の程度を評価し、また特定の処置様式の治療の有効性を測定するために、よく知られるパーキンソン病統一スケール（ＵＰＤＲＳ）にしばしば依存する。ＵＰＤＲＳ系に類似して、科学者は、微細運動テスト、静止時の震え、運動緩慢、運動低下、および筋固縮などの他の特徴について測定する、霊長類パーキンソン病統一スケール（ＰＰＲＳ、治療評価スコア−ＣＲＳとしても知られる）を用いてＰＤの霊長類モデルにおいてＰＤの特徴を評価する。ＰＰＲＳ系は、Ｌａｎｇｓｔｏｎら（２０００）Ａｎｎ．Ｎｅｕｒｏｌ．４７：Ｓ７９−８９に記述されている。
【０１１８】
（ＩＩＩ、実験）
以下は、本発明を実施するための特定な具体例である。実施例においては、事例的な目的のみを提案し、決して本発明の範囲を限定することを意図していない。使用される数量（例えば、量、温度など）に関して正確性を裏付ける試みを行ったが、いくぶんかの実験誤差および狂いは許されるべきであろう。
【実施例】
【０１１９】
実施例１
（Ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおけるＡＡＤＣの調節発現）
Ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおけるＡＡＤＣ導入遺伝子の調節を以下の通りに行う。
【０１２０】
（ＡＡＶベクター）
ｈＡＡＤＣの二量体化物依存性発現を実践するために２つのベクターを構築する：ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＴＦおよびＡＡＶ−Ｚ１２−ｈＡＡＤＣ。図１Ａは、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＴＦの図式であり、その中のサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）のエンハンサー／プロモーターは、活性化ドメインおよびＤＮＡ結合ドメイン融合タンパク質の２シストロン性メッセージの発現を促進する。活性化ドメイン融合タンパク質は、ＮＦκＢのｐ６５サブユニット（ｐ６５）由来の転写活性化ドメインに連結されたヒトＦＲＡＰのラパマイシン結合ドメイン（ＦＲＢ＊）を含む。本具体例で使用された特定のＦＲＢドメイン（ＦＲＢＴ２０９８Ｌ）は、図１Ａで表され（ＦＲＢ＊）、野生型ＦＲＢ配列と比較すると、２０９８番目でＴからＬへの変異が入っている。Ｐｏｌｌｏｃｋら（２０００）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９７：１３２２１−２６。ＦＲＢＴ２０９８Ｌは、ＡＰ２１９６７もしくはラパマイシンのどちらかを用いてＤＮＡ結合ドメイン融合で二量体化され得る。
【０１２１】
配列内リボソーム進入部位（ＩＲＥＳ）は脳心筋炎ウイルスに由来する。ＤＮＡ結合ドメイン融合タンパク質は、ヒト転写因子Ｚｉｆ２６８、Ｏｃｔ−１由来のホメオドメインの２つのＤＮＡ結合ドメイン（ＺＦＨＤ１）、および細胞質受容体ＦＫ５０６由来の３つの薬物結合ドメイン（３ｘＦＫＢＰ）を含む。図１Ｂは、ＡＡＶ−Ｚ１２−ｈＡＡＤＣの図式であり、ヒトＡＡＤＣ（ｈＡＡＤＣ）の発現は最小ＩＬ−２プロモーターに連結された転写因子の１２個の結合部位によって制御される。ＡＡＶ２の末端逆位配列（ＩＴＲ）、ｈＡＡＤＣコード配列（ｈＡＡＤＣ）およびヒト成長ホルモンのポリアデニル化領域（ｐＡ）を示す。
【０１２２】
（Ｉｎ  ｖｉｔｒｏ発現解析）
ｈＡＡＤＣの遺伝子発現を調節する能力を、１：１の割合のＡＡＶ−ＣＭＶ−ＴＦとＡＡＶ−Ｚ１２−ｈＡＡＤＣをＨｅＬａＤ７−４細胞に共形質導入し、続いて０、５もしくは２５ｎＭのラパマイシン類似物ＡＰ２１９６７（マサチューセッツ州、ケンブリッジのＡＲＩＡＤ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ，Ｉｎｃ．）で細胞を処理することによってｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて測定する。結果を図２で表し、それらは、非形質導入細胞、転写因子ベクター単独を形質導入された細胞（ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＴＦ）、構成性発現ｈＡＡＤＣベクターを形質導入された細胞（ＡＡＶ−ＣＭＶ−ｈＡＡＤＣ２）、ならびに転写因子ベクターを除いた調節ｈＡＡＤＣベクター（ＡＡＶ−Ｚ１２−ｈＡＡＤＣ）を形質導入された細胞を包含する様々なコントロール実験を含む。
【０１２３】
実施例１で使用された実験方法に関する実験の詳細は以下の通りである。
【０１２４】
（ベクターの構築）
ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＴＦは以前に記述されている（ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＴＦ１Ｎｃ、Ａｕｒｉｃｃｈｉｏら（２００２）Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．６：２３８−４２）。ｐＡＡＶ−ｈＡＡＤＣのＣＭＶエンハンサーおよびプロモーター（Ｓａｎｆｉｎｅｒら（２００４）Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．９：４０３−９）を、最小ＩＬ−２プロモーターの上流にあるＺＦＨＤ１のＤＮＡ結合ドメインの１２個の結合部位を含む、Ｚ１２−ＩＬ２−ＳＥＡＰの領域（Ｒｉｖｅｒａら（１９９６）Ｎａｔ．Ｍｅｄ．２：１０２８−３２）に置換することによって、ＡＡＶ−Ｚ１２−ｈＡＡＤＣを作成する。
【０１２５】
（組み換えベクターの産生）
組み換えＡＡＶベクター（血清型２）をＨＥＫ−２９３（ＡＴＣＣ受託番号ＣＲＬ１５７３）細胞における三重トランスフェクションによって作成し、塩化セシウム密度勾配遠心によって精製する。Ｇｒｉｍｍら（２００３）Ｂｌｏｏｄ１０２：２４１２−９。簡単に説明すると、ｒＡＡＶを含む細胞の回収を微量流動化させ、０．２−μｍのフィルターを通して濾過して行う。ベクターを塩化セシウム密度勾配遠心によって抽出された細胞溶解物から精製し、送達カテーテル内の本ベクター喪失分が添加された０．００１％プルロニックＦ−６８（ニュージャージー州、マウントオリーブのＢＡＳＦ社）を含む、ｐＨ７．４の５％ソルビトールを包含するリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ−ソルビトール）で限外濾過およびダイアフィルトレーション（ｄｉａｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ）によって濃縮する。ベクターの純度をＳＤＳ−ＰＡＧＥで測定する。本研究で使用された精製ｒＡＡＶベクターは、ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルの銀染色によるＶＰ１、ＶＰ２、およびＶＰ３のみを示す。力価をベクターゲノムのＱ−ＰＣＲ解析で調べる。
【０１２６】
（発現ＥＬＩＳＡによるｉｎ  ｖｉｔｒｏのＡＡＤＣ解析）
発現ＥＬＩＳＡにおいては、ｈＡＡＤＣに対する抗体を用いて透過性ＨｅＬａＤ７−４細胞中のｈＡＡＤＣタンパク質の発現を測定する。ＨｅＬａＤ７−４細胞をｒＡＡＶベクターで形質導入させ、３つの異なる濃度（０、５、２５ｎＭ）のＡＰ２１９６７で処理する。各群ｎ＝３。形質導入の２４時間前に細胞を９６ウェルプレートに蒔く。細胞に完全培地１００μｌ中で（多重ベクターを使用する時は各ベクターの）１０４ｖｇ／細胞のＭＯＩで形質導入させる。
【０１２７】
ＥＬＩＳＡを形質導入４８時間後の細胞で行う。簡単に説明すると、培地を吸引し、細胞をＰＢＳで洗浄する。細胞を４％パラホルムアルデヒドで固定し、室温で２０分培養する。細胞をＰＢＳで洗浄し、振盪させながら、ブロッキング緩衝液（ＰＢＳ中の３％ヤギ血清、０．５％  ＴｒｉｔｏｎＸ−１００）でブロックし、次に振盪しながら室温で６０分間培養する。一次抗体（ＡＢ１３６ラビット抗ｈＡＡＤＣ、Ｃｈｅｍｉｃｏｎ社、１：１０００）を洗浄緩衝液（ＰＢＳ中の１％ヤギ血清、０．５％  ＴｒｉｔｏｎＸ−１００）で希釈し、室温で６０分間シェーカーによって反応させる。プレートを洗浄緩衝液で洗浄し、二次抗体（ヤギ抗ラビットＩｇＧ−ＡＰ（カリフォルニア州、バーリンゲームのＶｅｃｔｏｒ  Ｌａｂｓ）、洗浄緩衝液中に１：１０００）と室温で３０分間シェーカーにおいて反応させる。プレートを洗浄緩衝液で洗浄する。基質溶液〔基質緩衝液（１００ｍＭ  ＮａＨＣＯ３、ｐＨ１０．０）（カリフォルニア州、バーリンゲームのＶｅｃｔｏｒ  Ｌａｂｓ）中の１Ｘｐ−ニトロフェニルリン酸、１Ｘレバミゾール（消光剤）〕を添加し、プレートを３０−６０分間室温で反応させ、次にプレートリーダーでＯＤ４０５を読み取る。このｈＡＡＤＣの発現ＥＬＩＳＡからのデータを、ＡＡＶ−ＣＭＶ−ｈＡＡＤＣ２基準ロットの形質導入の投与反応曲線と比較して、ベクターを形質導入された細胞で測定された相対光学密度として報告する。
【０１２８】
実施例２
（Ｉｎ  ｖｉｖｏにおけるＡＡＤＣの調節発現）
Ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて二量体化物調節ｈＡＡＤＣのＡＡＶ介在形質導入に使用された同一ベクターを、パーキンソン病の６−ヒドロキシドーパミン（６−ＯＨＤＡ）ラットモデルにおいて、以下のようにｉｎ  ｖｉｖｏでもテストする。より高い可能性と公知の薬学動態から、実施例２では、ＡＰ２１６６７の代わりにラパマイシンを二量体化物として使用する。ラパマイシンは、ｉｎ  ｖｉｖｏで急速なクリアランスを伴う約１０時間の半減期を有する。Ｇａｌｌａｎｔ−Ｈａｉｄｎｅｒら（２０００）Ｔｈｅｒ．Ｄｒｕｇ  Ｍｏｎｉｔ．２２：３１−５。
【０１２９】
本実施例で使用される全てのラットを、一側的に左側を６−ＯＨＤＡによって損傷させる。３つの実験群、すなわち、賦形剤注入コントロール群（賦形剤注入（＋）ラパマイシン処理）、ベクター注入（−）ラパマイシン処理コントロール群、およびベクター注入（＋）ラパマイシン処理群がある。ベクター注入（−）ラパマイシン群はラパマイシン非存在下のｈＡＡＤＣ遺伝子発現のコントロール、すなわち、系が漏洩するかを調べるためのコントロールを供給する。
【０１３０】
ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＴＦおよびＡＡＶ−Ｚ１２−ｈＡＡＤＣの１：１混合物（各３ｘ１０１０ウイルスゲノム（ｖｇ））を片側６−ヒドロキシドーパミン（６−ＯＨＤＡ）損傷ラットの同側に注入した。賦形剤のみを賦形剤注入コントロール群に注入する。以下で考察するように、導入遺伝子の発現は設定時点におけるラパマイシンの腹腔内注射を介してもたらされる。
【０１３１】
図３は、本実施例で記述される実験の時系列を示す。ｒＡＡＶ処理前において、Ｌ−ｄｏｐａ（５ｍｇ／ｋｇ）投与による基準回転テストを全ての群で行う。ベクターもしくは賦形剤を０日目で線条体内に注入する。１７日目のラットをラパマイシンで誘導するか、あるいは希釈剤で処理する。誘導は、４日連続の１０ｍｇ／ｋｇ／日のラパマイシン腹腔内注射から成る。（ラパマイシンを４日連続投与して脳中での最大循環レベルを確保する。）図４の矢印は、４日間のラパマイシン誘導の初回を示す。２１日目のラットにおける５ｍｇ／ｋｇのＬ−ｄｏｐａに対する回転応答を再度テストする。ラットは一週間にわたってラパマイシンから回復させ、続いて２８日目に応答テストを行う。３１日目のラットに２回目の誘導を行い、３５日目に回転応答をテストする。一週間にわたってラパマイシンから回復させた後、回転テストを４２日目で繰り返した。４５日目のラットに３回目の誘導を行い、続けて最後の誘導後の４９日目に最後の回転テストを行う。この時の誘導（＋ラパマイシン）状態でラットを安楽死させ、免疫組織化学が行われる。
【０１３２】
（Ｌ−ｄｏｐａに対する行動回転応答）
ドーパミンのアゴニストに対する古典的な回転応答を用いた行動解析を行う。今回の場合には、アゴニストは、ＰＤの片側性６−ＯＨＤＡラットモデルにおいて外因性Ｌ−ｄｏｐａから合成されるドーパミンである。Ｕｎｇｅｒｓｔｅｄｔ（１９７１）Ａｃｔａ  Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｓｃａｎｄ．Ｓｕｐｐｌ．３６７：６９−９３。図４で示されるように、形質導入３週後のベクター注入（＋）ラパマイシン群ラットは、ベクター注入（−）ラパマイシン群のラットより有意に高いＬ−ｄｏｐａ（５ｍｇ／ｋｇ）に対する強い対側回転応答を示す（６０分間で１６．３３±２１．９２の右旋回に対して２１５．１３±７３．８６である。Ｐ＜０．００１）。統計的な差異を複数群用の一元分散分析を用いて比較する。
【０１３３】
ベクター注入（＋）ラパマイシン群では、３、５、および７週におけるＬ−ｄｏｐａに対する対側回転応答が、前注入のスコアもしくは時間を合わせた対照（ベクター注入（−）ラパマイシン群および賦形剤注入（＋）ラパマイシン群）と比較して有意に上昇する（Ｐ＜０．００１）。対照的に、ベクター注入（＋）ラパマイシン群は、前注入時点とその後のラパマイシン効果の引き下がった時点（４および６週）において２つのコントロール群（Ｐ＞０．０５）と有意な相違がない。
【０１３４】
ベクター注入（−）ラパマイシン群および賦形剤注入コントロール群は、いずれの時点でも有意な相違がない（Ｐ＞０．０５）。理論により拘束されるつもりはないが、両方のコントロール群における７週経過以降の緩やかな上昇は、反復されたＬ−ｄｏｐａ処理に対する感受性のためであるかもしれない。
【０１３５】
「オフ」ラパマイシン時点である４および６週におけるベクター注入（＋）ラパマイシン群の回転応答は、同時点におけるベクター注入（−）ラパマイシン群もしくは賦形剤注入（＋）ラパマイシン群と有意な相違がなく、誘導応答の可逆可能性を示す。ｈＡＡＤＣ発現の誘導、その後の未処理の週における減少した発現が３回以上の連続的なラパマイシン処理サイクルで観察されたという結果は、ｉｎ  ｖｉｖｏにおいてラパマイシン誘導遺伝子発現の誘導が生じるという結論を強める。
【０１３６】
（注入線条体におけるｈＡＡＤＣ導入遺伝子コピーの定量）
定量的リアルタイムＰＣＲを全てのラットで行うことで、両方のベクター注入群に等量コピー数のｈＡＡＤＣ遺伝子が形質導入されていることを確認する。ベクター注入（＋）ラパマイシン群におけるｈＡＡＤＣ遺伝子のコピー数（２２２±９２ゲノムコピー／２０ｎｇＤＮＡ）（±ＳＤ）は、ベクター注入（−）ラパマイシン群（２２９±４８ゲノムコピー／２０ｎｇＤＮＡ）と相違がない。
【０１３７】
（免疫組織化学および発現の定量化）
ｈＡＡＤＣ発現のレベルを注入７週後の免疫組織化学的な解析によって評価する。ベクター注入（＋）ラパマイシン群の代表的なラット線条体注入部位内の高率拡大図を図５Ａに示し、ベクター注入（−）ラパマイシン群からのものを図５Ｂに示す。図５Ａで表されるように、ｈＡＡＤＣ導入遺伝子発現は、ラット線条体の中間の棘状神経に局在する。対照的に、誘導されないベクター（ベクター注入（−）ラパマイシン群）を注入されたラットは、非常に低レベルのｈＡＡＤＣ導入遺伝子発現を示す（図５Ｂ）。
【０１３８】
図６は、線条体注入７週後の各群からの代表的なラット由来のホールマウント脳切片におけるＡＡＤＣ免疫組織化学の低倍率図を示す。ラパマイシン誘導有り（Ａ）もしくはラパマイシン誘導無し（Ｂ）のＡＡＶ−ＣＭＶ−ＴＦ＋ＡＡＶ−Ｚ１２−ｈＡＡＤＣ（各ベクター３ｘ１０１０ｖｇ）ラットをラパマイシン誘導した賦形剤コントロール（Ｃ）と比較して示す。左側半球は６−ＯＨＤＡ損傷および線条体内ベクター（もしくは賦形剤）注入部位である。右側半球は未損傷および非注入であり、右側半球の染色は未処理のＡＡＤＣ陽性線維由来の内在性染色を反映する。
【０１３９】
６−ＯＨＤＡ損傷は、内在性ＡＡＤＣの欠失を引き起こし、図６Ｃの賦形剤注入コントロール群でよく表されるように、左側半球における酵素の低い組織化学染色を生じる。ベクター注入（＋）ラパマイシン群のラット全てが、注入された左側においてｈＡＡＤＣ導入遺伝子染色を示す（例、図６Ａを参照）。ベクター注入（−）ラパマイシン群のラットは、低レベルのｈＡＡＤＣ導入遺伝子発現を有する（例、図６Ｂを参照）。このｈＡＡＤＣ発現は、ベクター注入（−）ｒａｐラットの６匹中５匹で観察される。ベクター注入（＋）ラパマイシン群と比較するとベクター注入（−）ラパマイシン群では、陽性細胞がほとんどなく、細胞当たりの染色が低強度であって、ラパマイシン非存在化における誘導可能なプロモーターからの低レベルのｈＡＡＤＣ発現のみを示す。
【０１４０】
線条体内注入後すぐにラパマイシンを投与し、７週で安楽死させたラットから得られた連続脳切片において定量的な立体解析学をも行う。ＡＡＤＣ免疫染色を固定させた脳組織の連続切片において立体解析学によって評価し、定量化する。統計的に最適化された空間的な試料採取手順と光学的な解像を組み合わせた、効率的に無作為に計数する方法である、光学的な分画装置の立体解析学プロトコールを用いる。Ｇｕｎｄｅｒｓｅｎら（１９８８）Ａｐｍｉｓ９６：８５７−８１およびＧｕｎｄｅｒｓｅｎ（１９８６）Ｊ．Ｍｉｃｒｏｓｃ．１４３（Ｐｔ１）：３−４５。結果を表１で表す。表１は、ベクター注入（＋）ラパマイシン群が、最も広い染色の前後方向への拡張（３，７２０±１，２７６μｍ）（±ＳＤ）である一方、ベクター注入（−）ラパマイシン群がより低いレベルの拡散（１，９２０±１，５７７μｍ）であることを明らかにする。
【表１】
2008523093.tif 000003
（表１）ラットの脳におけるＡＡＤＣ発現
「ｎ」は調べた半球の数である。
データ値を±標準偏差で表す。
ラパマイシン誘導群の平均の前後方向への拡張、拡張体積、およびＡＡＤＣ陽性細胞数は、Ｓｔｕｄｅｎｔのｔ−検定による「非誘導」群（Ｐ＜０．０２）の値と統計的に異なる。
【０１４１】
表１はまた、線条体内の導入遺伝子陽性細胞の平均的な分布および拡張体積も表す。ベクター注入（＋）ラパマイシン群は、最も多いＡＡＤＣ陽性細胞数（７５，８２５＋／−３０，５０６細胞）であり、続いてベクター注入（−）ラパマイシン群（Ｐ＜０．０１）では、より少ない陽性細胞数（３１，０００＋／−２５，８１２細胞）であり、賦形剤注入コントロール群では、検出可能な発現が見られない（データなし）。同様に、ベクター注入（＋）ラパマイシン群が、多くのｈＡＡＤＣの線条体拡散（１５．７５±８．１６ｍｍ３）を示す一方で、ベクター注入（−）ラパマイシン群は、線条体拡散の５５％低い体積（７．０９±５．６９ｍｍ３）を示す。
【０１４２】
立体解析学は、形質導入された線条体の神経数およびウイルスベクター粒子の分布の精密な測定である。しかしながら、細胞当たりで作成されたｈＡＡＤＣ量が群の間で異なり得ることから、総体的なタンパク質解析が、産生ｈＡＡＤＣ酵素量のより正確な測定である。免疫染色によって観察された非誘導群におけるより低強度のｈＡＡＤＣ発現がより低いｈＡＡＤＣ発現の合計レベルと相互に関連することを裏付けるために、全タンパク質を連続的な組織切片から抽出し、ウエスタンブロット解析によって調べる。
【０１４３】
非誘導群におけるより低いｈＡＡＤＣタンパク質濃度を確認する。図７は、線条体内のｈＡＡＤＣのタンパク質レベル（５０ｋＤａ）において変化を示す、ベクター注入（＋／−）ラパマイシンおよび賦形剤注入（＋）ラパマイシンの片側６−ＯＨＤＡ損傷ラット由来の関連ゲルバンドの図および統合されたバンド強度のプロットを示す。β−アクチンをローディングコントロールとして含む。ＡＡＤＣのバンド濃度は、両方のコントロール群と比較してベクター注入（＋）ラパマイシン群で有意に高い、Ｐ＜０．００１。ベクター注入（＋）ラパマイシンおよび（−）ラパマイシンのラット由来のウエスタンブロットのバンド密度は、注入７週後において、各々１０２．０４±７．０２メガピクセル（ＭＰ）および３０．６３±３．４７ＭＰである。平均の全ＡＡＤＣタンパク質レベルは、ベクター注入（＋）ラパマイシン群と比較してベクター注入（−）ラパマイシン群では、内在性ラットＡＡＤＣレベルを補正した後に８８％まで減少する。これらのデータは、２群間のｈＡＡＤＣ酵素レベルにおいて立体解析学によって推定された結果よりより大きな相違を示す。
【０１４４】
実施例２で使用された実験方法に関する詳細は以下の通りである。
【０１４５】
（外科的処置）
６−ＯＨＤＡ損傷スプラーグ−ドーリーラット（賦形剤注入およびベクター注入（−）ラパマイシン群用ラットｎ＝６、ならびにベクター注入（＋）ラパマイシン群用ラットｎ＝８）をＴａｃｏｎｉｃ  Ｆａｒｍｓ（ニューヨーク州、ジャーマンタウン）から入手する。ラットを一般的な条件下：調節された温度と湿度、１２時間の光周期、および餌と水の自由な提供、においてケージ当たり１匹で飼育する。ベクターを対流促進送達（ｃｏｎｖｅｃｔｉｏｎ−ｅｎｈａｎｃｅｄ  ｄｅｌｉｖｅｒｙ、ＣＥＤ）によって注入して線条体中への最適な分布を成し遂げる。Ｂａｎｋｉｅｗｉｃｚら（２０００）Ｅｘｐ．Ｎｅｕｒｏｌ．１６４：２−１４、Ｌｉｅｂｅｒｍａｎら（１９９５）Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｕｒｇ．８２：１０２１−９。簡単に説明すると、ベクターを１ｍｌの気密ハミルトンシリンジから送り出されるオリーブオイルで満たされた管に接続したポリマーチュービング（ＯＤ、１／１６’’；ＩＤ、０．０３０’’；ワシントン州、オークハーバーのＵｐｃｈｕｒｃｈ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）にロードする。ベクターをプログラム可能なポンプ（インディアナ州、ウエストラフィエットのＢｉｏａｎａｌｙｔｉｃａｌ  Ｓｙｓｔｅｍ社）で送達する。２７ゲージのニードルに組み込んだ融合シリカキャピラリー（ＯＤ、１６４μｍ；ＩＤ、１００μｍ；アリゾナ州、フェニックスのＰｏｌｙｍｉｃｒｏ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）から成るカニューレをポリマーチュービングの先端に接続する。Ｏ２循環下の３％イソフルラン（２Ｌ／分）で麻酔にかけ、ラットを定位フレーム（カリフォルニア州、タハンガのＫｏｐｆ社）に配置する。次に定位フレームに固定されたマスクを通してＯ２中の１％イソフルランで麻酔を維持する。ドリルウェル（Ｂｕｒｒ  ｈｏｌｅｓ）を標的部位上方に開け、ブレグマと硬膜に対する以下の座標において、カニューレを尾状核から被殻へ垂直方向に挿入する。切歯バーを３．３ｍｍにセットしてＡＰ０．０ｍｍ、ＭＬ−３．５ｍｍ、ＤＶ−５．０ｍｍ。ラットに１：１の割合の２つのベクター１０μｌを０．５μｌ／分の速度で片側的に注入する。２０分の注入期間終了後に速度を０μｌ／分まで減速し、５分間静止してカニューレをゆっくり抜く。
【０１４６】
（行動解析）
アポモルヒネ（０．０５ｍｇ／ｋｇ、ミズーリ州、セントルイスのＳｉｇｍａ社）およびＬ−ｄｏｐａ（メチルエステル、Ｓｉｇｍａ社）に対する応答をロトマックス回転解析ソフトウエア（オハイオ州、コロンバスのＡｃｃｕＳｃａｎ  Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ社）を作動するコンピューターに接続された自動化ロトメーターで測定する。合計の反対側回転および同側回転を３０分以上（アポモルヒネ用）と６０分以上（Ｌ−ｄｏｐａ用）において算出する。損傷３週後にアポモルヒネ（０．０５ｍｇ／ｋｇ）に反応して３０分間で平均的な回転＞６の反対側回転／分を有するラットのみを適切に損傷させる（Ｕｎｇｅｒｓｔｅｄｔ（１９７１）Ａｃｔａ  Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｓｃａｎｄ．Ｓｕｐｐｌ．３６７：６９−９３）と判断し、Ｌ−ｄｏｐａ応答をテストする。これらのラットを下記の治療範囲用量、２．５ｍｇ／ｋｇのベンセラジド（ミズーリ州、セントルイスのＳｉｇｍａ社）と一緒に共投与される５ｍｇ／ｋｇのＬ−ｄｏｐａメチルエステルを使用してＬ−ｄｏｐａ応答を測定する。テストしたラットの９５％以上は、５ｍｇ／ｋｇのＬ−ｄｏｐａに応答して回転しない。この用量に対する最終的に反対側回転を示すラットを実験から排除する。Ｌ−ｄｏｐａ応答を外科手術前および線条体内注入後の異なる時点（３、４、５、６および７週）で評価する。
【０１４７】
（免疫組織化学）
組織学的な研究のために、ラットを生理食塩水、続けて４％パラホルムアルデヒドで大動脈を通して浸透させる（賦形剤注入およびベクター注入（−）ラパマイシン群、ｎ＝６のラットならびにベクター注入（＋）ラパマイシン群、ｎ＝８のラット）。脳を４％パラホルムアルデヒドで一晩かん流し、勾配スクロース溶液で平衡化させ、イソペンタン中で凍結する。脳をクラリオスタットで４０μｍ厚の冠状断片に連続的に切断する。ＡＡＤＣ（カリフォルニア州、テメキュラのＣｈｅｍｉｃｏｎ社、１：１５００）の免疫組織化学を浮遊性（Ｆｒｅｅ−ｆｌｏａｔｉｎｇ）切片上で行う。切片を３％過酸化水素水で３０分間処理して内在性ペルオキシダーゼを抑える。５％の一般的なヤギ血清で非特異的な結合を阻害した後、切片を室温で一次抗体と一晩反応させる。ビオチン化抗ラビットＩｇＧ抗体（カリフォルニア州、バーリンゲームのＶｅｃｔｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、１：３００）、続いてストレプトアビジン抱合西洋わさびペルオキシダーゼ（Ｖｅｃｔｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、１：３００）と室温で１時間ずつ反応させ、複合体を３−３’−ジアミノベンジジン（ＤＡＢ、Ｖｅｃｔｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社）および過酸化水素で可視化する。切片をゼラチンコートしたスライド上にマウントして、乾燥させ、エタノールを逐次増加させて脱水し、キシレンで透明にし、Ｃｙｔｏｓｅａｌ−６０（ミシガン州、カラマズーのＲｉｃｈａｒｄ−Ａｌｌｅｎ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）を用いてマウントする。ｈＡＡＤＣ免疫染色の前後方向の分布を式（ｎｘ１２ｘ４０μｍ）によって調べる。ここで、ｎはｈＡＡＤＣ陽性細胞を伴う切片の数であり、４０μｍが切片の厚さであり、１２切片毎に調べる。分布体積および陽性細胞数をビデオカメラ搭載のＺｅｉｓｓの顕微鏡および立体解析学ソフトウエア（Ｓｔｅｒｅｏｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｏｒ  ｓｔｅｒｅｏｌｏｇｙ  ｓｏｆｔｗａｒｅ）（バーモント州、ウィリストンのＭｉｃｒｏｂｒｉｇｈｔｆｉｅｌｄ社）上において６３Ｘ倍率で立体解析学的方法に基づいた光学的分画装置−光学的解剖（ｔｈｅ  Ｏｐｔｉｃａｌ  Ｆｒａｃｔｉｏｎａｔｏｒ−Ｏｐｔｉｃａｌ  Ｄｉｓｓｅｃｔｏｒ）を用いてＡＡＤＣで染色した連続的な切片（１２切片毎）中で算出する。各群ＣＥＥ＜５％。結果を平均±ＳＤとして報告する。Ｓｔｕｄｅｎｔのｔ−検定を統計的な有意性を測定するために使用する。
【０１４８】
（定量的なリアルタイムＰＣＲ）
本研究で使用されたベクターＡＡＶ−Ｚ１２−ｈＡＡＤＣはヒトＡＡＤＣ標的遺伝子を含む。Ｑ−ＰＣＲプライマーおよびプローブは、ＡＡＤＣ遺伝子のエクソン２および３に対合し、それゆえにベクター配列に存在しないイントロンを及び、従ってゲノムＤＮＡの増幅を最小限にする。リアルタイムＱ−ＰＣＲ（Ｈｅｉｄら（１９９６）Ｇｅｎｏｍｅ  Ｒｅｓ．６：９８６−９４）をベクターの挿入部を含むプラスミドＤＮＡで標準化する。プラスミドを制限酵素で直鎖状にし、精製し、ＵＶ吸光度で定量し、Ｑ−ＰＣＲ希釈緩衝液（１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ８．０、１ｍＭ  ＥＤＴＡ、１０μｇ／ｍｌ  ｙｅａｓｔ  ｔＲＮＡ、および０．１％  Ｔｗｅｅｎ  ８０）で希釈して１回の反応あたり３から１０６コピーの範囲の１０種類の標準を提供する。各標準を９６ウェルの光学的プレート中の３つの５０μｌ反応液に流す。各２０ｎｇのＤＮＡを含む１０μｌのサンプルを４０μｌの反応混合液を含む３つのＱ−ＰＣＲウェルに添加する。ＰＣＲをＡｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ  ７７００  Ｓｅｑｕｅｎｃｅ  Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  Ｓｙｓｔｅｍで実行する。ｈＡＡＤＣ遺伝子のコピー数を検量曲線との比較によって計算し、１ウェルあたりに生じるコピー数に２をかけ、二本鎖プラスミドＤＮＡの１コピーが２つの一本鎖ベクターゲノムに等価であることと推定する。
【０１４９】
（ウエスタンブロット解析）
全体脳の１０個の連続的な切片（各４０μｍ）を脱リン酸化酵素阻害剤とタンパク質分解酵素阻害剤の混合液を包含する溶解緩衝液で手操作のホモジェナイザーによって別々に均質化する。タンパク質をブラッドフォード法によって定量する。タンパク質サンプル（１５μｇ）をＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル（４−１５％の勾配ゲル；カリフォルニア州、ハーキュリーズのＢｉｏ−ｒａｄ社）で分離し、二フッ化ポリビニリデンフィルター（マサチューセッツ州、ベッドフォードのＭｉｌｌｉｐｏｒｅ社）に移行させる。
【０１５０】
フィルターを３％スキームミルクでブロッキングし、ポリクローナルラビット抗ＡＡＤＣ（１：５００、カリフォルニア州、テメキュラのＣｈｅｍｉｃｏｎ社）一次抗体と１時間反応させる。次にブロットを対応するＨＲＰ−抱合二次抗体（１：３０００；イリノイ州、アーリントンヘイツのＡｍｅｒｓｈａｍ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）と室温（ＲＴ）で１時間反応させ、ＥＣＬ溶液（カリフォルニア州、エメリービルのＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ  Ｌｉｆｅ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ社）で１分間発色させ、Ｋｏｄａｋ（ニューヨーク州、ロチェスター）のＸ−Ｏｍａｔフィルム上に１−３０分間露光する。最後に、ブロットを剥離緩衝液（６７．５ｍＭ  Ｔｒｉｓ、ｐＨ６．８、２％  ＳＤＳ、および０．７％  β−メルカプトエタノール）において５０℃で３０分間反応させ、ローディングコントロールとしてのポリクローナルラビット抗β−アクチン抗体（１：１０００；テキサス州、サンアントニオのＡｌｐｈａ  Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ社）と再対合させる。抗ＡＡＤＣ一次抗体は、過去の研究で広範囲に使用されており、本研究で観察されたウエスタンブロットのバンドは、抗体情報シートで示される同一バンドの大きさ（〜５０ｋＤａ）を示す。
【０１５１】
各特異的なバンドの密度をコンピューター補助画像解析システム（ｃｏｍｐｕｔｅｒ−ａｓｓｉｓｔｅｄ  ｉｍａｇｉｎｇ  ａｎａｌｙｓｉｓ  ｓｙｓｔｅｍ）（ＡｌｐｈａＩｍａｇｅｒ（登録商標）、カリフォルニア州、サンリアンドロのＡｌｐｈａ  Ｉｎｎｏｔｅｃｈ社）を用いて測定する。各群間のβ−アクチンローディングコントロールのバンド濃度に有意な相違はない。賦形剤注入（＋）ラパマイシンコントロール群およびベクター注入群の相違を比較することによって、各特異的なバンド濃度を、対応する内部ローディングバンドの濃度（各群ｎ＝３）に対して最初に標準化する。賦形剤注入ラットで見られた内在性ｈＡＡＤＣレベルをベクター注入群から差し引いた後に全タンパク質の百分率の減少を調べる。
【０１５２】
実施例３
（Ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおけるＧＤＮＦの調節発現）
哺乳類細胞に二量体化物調節可能なＧＤＮＦ導入遺伝子の構築物を以下の通りに形質導入させる。
【０１５３】
（ＡＡＶ−ＧＤＮＦベクター）
図８Ａおよび８Ｂは、調節可能なヒトＧＤＮＦ（ｈＧＤＮＦ）導入遺伝子送達用の組み換えＡＡＶベクタープラスミド構築物の図式である。構成的に発現されるｈＧＤＮＦの送達用コントロールベクター（ｐＡＡＶ−ＣＭＶ−ｈＧＤＮＦ）を図８Ｃに示す。
【０１５４】
調節可能な構築物（図８Ａおよび８Ｂ）は、ｈＧＤＮＦをコードする遺伝子、ならびに転写因子の活性化ドメイン融合タンパク質およびＤＮＡ結合ドメイン融合タンパク質の要素を有している、単一のｒＡＡＶベクターに関する。両方の構築物において、ｈＧＤＮＦ発現は、さらに詳細を以下に記述した二量体化可能な転写因子用の８つの結合部位に隣接する最小ＩＬ−２プロモーターによって促進される。
【０１５５】
図８Ａで表される構築物（ｐＡＡＶ−ＴＦ−Ｚ８−ｈＧＤＮＦ）では、ＣＭＶエンハンサー／プロモーターが、転写因子の活性化とＤＮＡ結合ドメインの両方をコードする単一の転写発現とともにその２つの間にある内部リボソーム進入部位（ＩＲＥＳ）を促進する。対照的に、図８Ｂで表される構築物では、ＳＶ４０プロモーターがＤＮＡ結合ドメインの発現を促進し、ＣＭＶエンハンサー／プロモーターが反対鎖からの異なる転写（すなわち、反対方向）の活性化ドメインの発現を促進する。
【０１５６】
ＤＮＡ結合ドメイン融合タンパク質は、ヒト転写因子Ｚｉｆ２６８、Ｏｃｔ−１由来のホメオドメインの２つのＤＮＡ結合ドメイン（ＺＦＨＤ１）、および細胞質受容体ＦＫ５０６由来の３つの薬物結合ドメイン（３ｘＦＫＢＰ）を含む。
【０１５７】
活性化ドメイン融合タンパク質は、ＮＦκＢのｐ６５サブユニット由来の転写活性ドメイン（ｐ６５）に連結されたヒトＦＲＡＰのラパマイシン結合ドメイン（ＦＲＢ＊）を含む。図８Ａおよび８Ｂで表されるＦＲＢ＊は実施例１で記述されている。
【０１５８】
ＡＡＶ２の末端逆位配列（ＩＴＲ）、最小ＳＶ４０ポリアデニル化（Ｍｉｎ．ＳＶ４０  ｐＡ）、最小ラビットβ−グロビンポリアデニル化（Ｍｉｎ．ＲＢＧ  ｐＡ）および最小ヒト成長ホルモンポリアデニル化（Ｍｉｎ．ｈＧＨ  ｐＡ）配列を示す。
【０１５９】
コントロールベクターｐＡＡＶ−ＣＭＶ−ｈＧＤＮＦ（図８Ｃ）では、ＣＭＶプロモーター／エンハンサーがｈＧＤＮＦの発現を促進する。ＡＡＶ２末端逆位配列（ＩＴＲ）およびヒト成長ホルモンポリアデニル化（ｐＡ）配列を示す。
【０１６０】
ラパマイシン誘導実験の結果を図９で表し、ＧＤＮＦ発現をベクター構築物およびラパマイシン濃度の関数として表す。ｐＡＡＶ−ＴＦ−Ｚ８−ｈＧＤＮＦは、細胞をラパマイシンで処理した時に濃度に応答する形でＧＤＮＦ産生を指令する一方で、ｐＡＡＶ−ＣＭＶ−ｈＧＤＮＦは、ラパマイシン処理に関係なく構成性（高）レベルのＧＤＮＦ発現を指令する。
【０１６１】
実施例３で使用されたＥＬＩＳＡアッセイ法に関する実験の詳細は以下の通りである。
【０１６２】
（ＧＤＮＦのＥＬＩＳＡ）
ＧＤＮＦ発現を定量するためのＥＬＩＳＡアッセイを以下の通りに実施する。
【０１６３】
ＨＥＫ−２９３細胞（５ｘ１０５細胞／ウェル）を２つの６ウェルプレートで一晩増殖させて６０−７０％集合にする。プレートに３００μＭ  ＣａＣｌ２を用いてｐＡＡＶ−ＴＦ−Ｚ８−ｈＧＤＮＦもしくはｐＡＡＶ−ＣＭＶ−ｈＧＤＮＦのどちらか１０μｇでトランスフェクトする。６時間後に培地をラパマイシン（２つとも各々０ｎＭ、５ｎＭ、もしくは２５ｎＭ）を含む新鮮な培地と交換し、３日間培養する。培地と細胞の両方を別々に回収し、急速に凍結し、ＥＬＩＳＡを行うまで−８０℃で保存する。全てのサンプルを１Ｎ  ＨＣｌで処理して１５分間ｐＨ３．０まで酸性にし、次に１Ｎ  ＮａＯＨで約ｐＨ７．６まで中和して戻す。
【０１６４】
培地サンプルをＰｒｏｍｅｇａ  Ｅｍａｘ（登録商標）免疫アッセイシステム（ウィスコンシン州、マディソンのＰｒｏｍｅｇａ社）によってＧＤＮＦの存在を測定する。コーティング緩衝液を９６ウェルプレートに添加し、４℃で一晩培養した。コーティング緩衝液を除去し、プレートを乾燥させる。ブロッキング緩衝液（２００μＬ）をプレートに添加し、振蘯せずに室温で１時間培養する。ブロッキング緩衝液を除去し、プレートを乾燥させる。
【０１６５】
９６ウェルプレートの２つの８ウェルの段をＧＤＮＦ標準段と設定する。１Ｘブロック＆サンプル緩衝液（１００μＬ／ウェル）を標準段の列Ｂ−Ｈに添加する。希釈したＧＤＮＦ標準液（１０００ｐｇ／ｍｌの２００ｍＬ）を標準段の列Ａに添加し、１００μＬ／ウェルの２倍の連続的な希釈を列Ｇまで作成する。列ＨはＧＤＮＦを含まない緩衝液のみのコントロールである。
【０１６６】
実験サンプルをｐＡＡＶ−ＴＦ−Ｚ８−ｈＧＤＮＦは１：３００およびｐＡＡＶ−ＣＭＶ−ｈＧＤＮＦは１：１０００で希釈し、各１００μＬを重複したウェルに添加し、振蘯（５００ｒｐｍ）させながら室温で６時間培養する。ウェルを５回洗浄し、各回約４００μｌのキット付属の推奨洗浄緩衝液を使用する。１００μＬの抗ｈＧＤＮＦポリクローナル抗体１：５００希釈液（１Ｘブロック＆サンプル緩衝液中）を各ウェルに添加し、振蘯することなく４℃で一晩反応させる。プレートを上述のように再度洗浄する。１００μＬの抗ニワトリＩｇＹ、ＨＲＰ抱合の１：２５０希釈液（１Ｘブロック＆サンプル緩衝液中）を各ウェルに添加し、振蘯（５００ｒｐｍ）しながら室温で２時間反応させる。プレートを上述のように再度洗浄する。１００μＬの室温の（ＨＲＰ基質３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジンを包含する）ＴＭＢ  Ｏｎｅ溶液を各ウェルに添加し、振蘯せずに室温で１５分間反応させる。１００μＬの１Ｎ塩酸を各ウェルに添加することで発色を停止させる。吸光度をＴＭＢ添加後３０分以内にプレートリーダーにおいて４５０ｎｍで測定する。ｐｇ／ｍｌ単位におけるＧＤＮＦレベルを同一プレート上のＧＤＮＦ標準と実験サンプルから得られるシグナルの比較によって調べる。標準偏差を各サンプル（２プレート各々の２つのサンプル）の４つの測定値の合計に由来する。
【０１６７】
本発明の好ましい事例の具体例が記述される一方で、この発明の要旨を逸脱しない範囲で種々の変更と修正がなされることは当業者なら言うまでもなく、添付した請求の範囲は、本発明の精神と範囲内にある全てのかかる変更と修正を網羅するであろう。
【０１６８】
本明細書で参照した全ての出版物、特許、特許出願、配列およびデータベース項目を出典明示により本明細書に一体化させる。
【図面の簡単な説明】
【０１６９】
【図１Ａ】図１Ａは、導入遺伝子発現調節用転写因子の活性化およびＤＮＡ結合ドメインをコードするｒＡＡＶベクター（ＡＡＶ−ＣＭＶ−ＴＦ）の図式である。
【図１Ｂ】図１Ｂは、発現がラパマイシンもしくはその誘導体物の添加によって調節可能である、ｈＡＡＤＣをコードする組み換えＡＡＶベクター（ＡＡＶ−Ｚ１２−ｈＡＡＤＣ）の図式である。
【図１Ｃ】図１Ｃは、発現が構成性ＣＭＶプロモーターによって促進されるｈＡＡＤＣをコードする組み換えＡＡＶベクター（ＡＡＶ−ＣＭＶ−ｈＡＡＤＣ２）の図式である。
【図２】図２は、Ｄ７−４細胞に様々なｒＡＡＶ構築物を形質導入し、０、５もしくは２５ｎＭのラパマイシン類似物ＡＰ２１９６７で処理した実験結果を示す。
【図３】図３は、Ｌ−ｄｏｐａに対する回転応答を６−ＯＨＤＡ損傷ラットでラパマイシン処置の機能として測定した実験の時系列である。
【図４】図４は、６−ＯＨＤＡ損傷ラットにおける５ｍｇ／ｋｇのＬ−ｄｏｐａに対する回転応答を示し、図３で示される時系列に沿った時間の関数として時間あたりの対側性回転数で表される。
【図５Ａ】図５Ａは、ｈＡＡＤＣのラパマイシン調節発現に必要な配列を有するＡＡＶベクターとともにラパマイシンで処理した注入７週後ラット線条体内のＡＡＤＣ免疫組織化学の結果を示す。スケールバーは７５μｍを表す。
【図５Ｂ】図５Ｂは、ラットがラパマイシン未処理であること以外には図５Ａと同様の実験結果を示す。
【図６】図６は、注入７週後で得られた３つの処理群における典型的なラット由来のホールマウント脳切片のＡＡＤＣ免疫組織化学の結果を示す：Ａ：ベクター注入（＋）ラパマイシン；Ｂ：ベクター注入（−）ラパマイシン；Ｃ：賦形剤注入（＋）ラパマイシン。
【図７】図７は、図６に準拠して考察された３つの処理群において、ウエスタンブロット解析で測定された注入７週後のＡＡＤＣ発現を示す。
【図８Ａ】図８Ａは、ｈＧＤＮＦの発現がラパマイシンもしくはその類似物によって調節され得る、転写因子の活性化ドメイン融合およびＤＮＡ結合ドメイン融合をコードする転写、ならびに導入遺伝子ｈＧＤＮＦをコードする調節可能な転写、を含むｒＡＡＶベクター（ＡＡＶ−ＴＦ−Ｚ８−ｈＧＤＮＦ）の図式である。
【図８Ｂ】図８Ｂは、転写因子のＤＮＡ結合ドメインの発現が活性化ドメインの発現とは別々の転写上でＳＶ４０プロモーターによって促進されること、ならびに活性化ドメインが反対の鎖（すなわち、反対方向）から発現されることを除いて、図８Ａで示されるベクターに類似するベクターの図式である。
【図８Ｃ】図８Ｃは、その発現が構成性ＣＭＶプロモーターによって促進される、ｈＧＤＮＦをコードする組み換えＡＡＶベクター（ＡＡＶ−ＣＭＶ−ｈＧＤＮＦ）の図式である。
【図９】図９は、０、５もしくは２５ｎＭのラパマイシン処理に応じて、調節ＴＦ−ＧＤＮＦプラスミド（ＡＡＶ−ＴＦ−Ｚ８−ｈＧＤＮＦ）もしくは構成性ＣＭＶ−ＧＤＮＦプラスミド（ＡＡＶ−ＣＭＶ−ｈＧＤＮＦ）のどちらかで一時的にトランスフェクトされたＨｅｌａＤ７−４細胞におけるピコグラム（ｐｇ）単位のＧＤＮＦ発現を示す。
【図１Ａ】
2008523093.tif 000004
【図１Ｂ】
2008523093.tif 000005
【図１Ｃ】
2008523093.tif 000006
【図２】
2008523093.tif 000007
【図３】
2008523093.tif 000008
【図４】
2008523093.tif 000009
【図５】
2008523093.tif 000010
【図６】
2008523093.tif 000011
【図７】
2008523093.tif 000012
【図８Ａ】
2008523093.tif 000013
【図８Ｂ】
2008523093.tif 000014
【図８Ｃ】
2008523093.tif 000015
【図９】
2008523093.tif 000016
【国際調査報告】
2008523093.tif 000017
2008523093.tif 000018
2008523093.tif 000019