(57)【要約】本発明は、微量流体デバイスおよび希薄な細胞を検出するための方法に関する。開示される微量流体デバイスおよび方法は、サンプル調製、細胞標識化、細胞ソーティングおよび濃縮、ならびにソートされた細胞のＤＮＡ／ＲＮＡ分析を統合および自動化する。この微量流体デバイスは、１つ以上の標識細胞を含む生物学的サンプルを微量流体デバイス中に導入する手段、生物学的サンプルを緩衝液液体で覆いこの生物学的サンプルの薄いリボンを形成する手段、生物学的サンプル中の標識細胞の検出を促進する手段、生物学的サンプルから標識細胞を分離する手段、標識細胞を溶解する手段、溶解された標識細胞から放出されたＲＮＡおよびＤＮＡを収集する手段、および収集されたＲＮＡおよびＤＮＡの定量的ＰＣＲ分析を実施する手段を備える。
2008526255.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
希薄な細胞を検出するための微量流体デバイスであって：
１つ以上の標識細胞を含む生物学的サンプルを微量流体デバイス中に導入する手段；
該生物学的サンプルを緩衝液液体で覆い、該生物学的サンプルの薄いリボンを形成する手段；
該生物学的サンプル中の標識細胞の検出を促進する手段；
該生物学的サンプルから標識細胞を分離する手段；
該標識細胞を溶解する手段；
溶解された標識細胞から放出されたＲＮＡおよびＤＮＡを収集する手段；および
収集されたＲＮＡおよびＤＮＡの定量的ＰＣＲ分析を実施する手段を備える、微量流体デバイス。
【請求項２】
前記生物学的サンプルを微量流体デバイス中に導入する手段が、サンプル入口微量流体チャネルに流体により接続されるサンプル入口ポートを備える、請求項１に記載の微量流体デバイス。
【請求項３】
生物学的サンプルを緩衝液液体で覆い、該生物学的サンプルの薄いリボンを形成する手段が、薄いリボンのシース流れアセンブリを備える、請求項１に記載の微量流体デバイス。
【請求項４】
前記薄いリボンのシース流れアセンブリが、サンプル微量流体チャネル、第１のシース液体微量流体チャネルおよび第２のシース液体微量流体チャネルを備え、ここで、該第１のシース液体微量流体チャネルおよび第２のシース液体微量流体チャネルが、該サンプル微量流体チャネルの対向する側に位置決めされ、そして該サンプル微量流体チャネルに流体的に寄り集まる、請求項３に記載の微量流体デバイス。
【請求項５】
前記生物学的サンプル中の標識細胞の検出を促進する手段が、覆われたサンプル微量流体チャネルの一部分の上に位置決めされる光学的観察窓を備える、請求項１に記載の微量流体デバイス。
【請求項６】
前記生物学的サンプルから標識細胞を分離する手段が、細胞をソートするスリット構造を備える、請求項１に記載の微量流体デバイス。
【請求項７】
前記生物学的サンプルから標識細胞を分離する手段が可撓性フィルム膜を備える細胞をソートする可撓性フィルム構造を備え、該可撓性フィルム膜が、空気圧力の付与に際し、覆われたサンプル微量流体チャネル中に変形可能である、請求項１に記載の微量流体デバイス。
【請求項８】
前記生物学的サンプルから標識細胞を分離する手段が、電磁気によって起動されるバルブを備える、請求項１に記載の微量流体デバイス。
【請求項９】
前記電磁気によって起動されるバルブが、金属ホイルを備える、請求項８に記載の微量流体デバイス。
【請求項１０】
前記標識細胞を溶解する手段が、該標識細胞を捕捉するように適合された第１の膜、および該第１の膜に流体により接続される溶解緩衝液微量流体チャネルを備える、請求項１に記載の微量流体デバイス。
【請求項１１】
前記第１の膜が、ポリブチレンテレフタレート膜である、請求項１０に記載の微量流体デバイス。
【請求項１２】
前記標識細胞を溶解する手段が、溶解緩衝液シース流れアセンブリを備える、請求項１に記載の微量流体デバイス。
【請求項１３】
前記溶解緩衝液シース流れアセンブリが、ソート細胞微量流体チャネル、第１の溶解緩衝液微量流体チャネルおよび第２の溶解緩衝液微量流体チャネルを備え、ここで、該第１の溶解緩衝液微量流体チャネルおよび第２の溶解緩衝液微量流体チャネルが、該ソート細胞微量流体チャネルの対向する側に位置決めされ、そして該ソート細胞微量流体チャネルに流体的に寄り集まる、請求項１２に記載の微量流体デバイス。
【請求項１４】
前記溶解された標識細胞から放出されたＲＮＡおよびＤＮＡを収集する手段が、放出されたＲＮＡおよびＤＮＡを捕捉するように適合された第２の膜を備える、請求項１に記載の微量流体デバイス。
【請求項１５】
前記第２の膜が、ガラスを含む、請求項１４に記載の微量流体デバイス。
【請求項１６】
前記第２の膜が、ケイ酸塩を含む、請求項１４に記載の微量流体デバイス。
【請求項１７】
前記収集されたＲＮＡおよびＤＮＡの定量的ＰＣＲ分析を実施する手段が、ＰＣＲ増幅チャンバーを備える、請求項１に記載の微量流体デバイス。
【請求項１８】
前記ＰＣＲ増幅チャンバーが、ＰＣＲプローブおよびプライマー試薬を備える、請求項１７に記載の微量流体デバイス。
【請求項１９】
前記生物学的サンプルが、血液サンプルである、請求項１に記載の微量流体デバイス。
【請求項２０】
希薄な細胞を検出するための微量流体デバイスであって：
生物学的サンプルを微量流体デバイス中に導入する手段；
該生物学的サンプルを標識緩衝液液体で覆い、該生物学的サンプルの薄いリボンを形成し、そして該生物学的サンプル中の１つ以上の細胞を標識する手段；
該生物学的サンプル中の標識細胞の検出を促進する手段；
該生物学的サンプルから標識細胞を分離する手段；
該標識細胞を溶解する手段；
溶解された標識細胞から放出されたＲＮＡおよびＤＮＡを収集する手段；および
収集されたＲＮＡおよびＤＮＡの定量的ＰＣＲ分析を実施する手段を備える、微量流体デバイス。
【請求項２１】
前記生物学的サンプルを微量流体デバイス中に導入する手段が、サンプル入口微量流体チャネルに流体により接続されるサンプル入口ポートを備える、請求項２０に記載の微量流体デバイス。
【請求項２２】
前記生物学的サンプルを標識緩衝液液体で覆い、該生物学的サンプルの薄いリボンを形成し、そして該生物学的サンプル中の１つ以上の細胞を標識する手段が、薄いリボンの標識シース流れアセンブリを備える、請求項２０に記載の微量流体デバイス。
【請求項２３】
前記薄いリボンの標識シース流れアセンブリが、サンプル微量流体チャネル、第１の標識シース液体微量流体チャネルおよび第２の標識シース液体微量流体チャネルを備え、ここで、該第１の標識シース液体微量流体チャネルおよび第２の標識シース液体微量流体チャネルが、該サンプル微量流体チャネルの対向する側に位置決めされ、そして該サンプル微量流体チャネルに流体的に寄り集まる、請求項２２に記載の微量流体デバイス。
【請求項２４】
前記生物学的サンプル中の標識細胞の検出を促進する手段が、覆われたサンプル微量流体チャネルの一部分の上に位置決めされる光学的観察窓を備える、請求項２０に記載の微量流体デバイス。
【請求項２５】
前記生物学的サンプルから標識細胞を分離する手段が、細胞をソートするスリット構造を備える、請求項２０に記載の微量流体デバイス。
【請求項２６】
前記生物学的サンプルから標識細胞を分離する手段が、可撓性フィルム膜を備える細胞をソートする可撓性フィルム膜構造を備え、該可撓性フィルム膜が、空気圧力の付与に際し、覆われたサンプル微量流体チャネル中に変形可能である、請求項２０に記載の微量流体デバイス。
【請求項２７】
前記生物学的サンプルから標識細胞を分離する手段が、電磁気によって起動されるバルブを備える、請求項２０に記載の微量流体デバイス。
【請求項２８】
前記電磁気によって起動されるバルブが、金属ホイルを備える、請求項２７に記載の微量流体デバイス。
【請求項２９】
前記標識細胞を溶解する手段が、該標識細胞を捕捉するように適合された第１の膜、および該第１の膜に流体により接続される溶解緩衝液微量流体チャネルを備える、請求項２０に記載の微量流体デバイス。
【請求項３０】
前記第１の膜が、ポリブチレンテレフタレート膜である、請求項２９に記載の微量流体デバイス。
【請求項３１】
前記標識細胞を溶解する手段が、溶解緩衝液シース流れアセンブリを備える、請求項２０に記載の微量流体デバイス。
【請求項３２】
前記溶解緩衝液シース流れアセンブリが、ソート細胞微量流体チャネル、第１の溶解緩衝液微量流体チャネルおよび第２の溶解緩衝液微量流体チャネルを備え、ここで、該第１の溶解緩衝液微量流体チャネルおよび第２の溶解緩衝液微量流体チャネルが、該ソート細胞微量流体チャネルの対向する側に位置決めされ、そして該ソート細胞微量流体チャネルに流体的に寄り集まる、請求項３１に記載の微量流体デバイス。
【請求項３３】
前記溶解された標識細胞から放出されたＲＮＡおよびＤＮＡを収集する手段が、放出されたＲＮＡおよびＤＮＡを捕捉するように適合された第２の膜を備える、請求項２０に記載の微量流体デバイス。
【請求項３４】
前記第２の膜が、ガラスを含む、請求項３３に記載の微量流体デバイス。
【請求項３５】
前記第２の膜が、ケイ酸塩を含む、請求項３３に記載の微量流体デバイス。
【請求項３６】
前記収集されたＲＮＡおよびＤＮＡの定量的ＰＣＲ分析を実施する手段が、ＰＣＲ増幅チャンバーを備える、請求項３６に記載の微量流体デバイス。
【請求項３７】
前記ＰＣＲ増幅チャンバーが、ＰＣＲプローブおよびプライマー試薬を備える、請求項３６に記載の微量流体デバイス。
【請求項３８】
前記生物学的サンプルが、血液サンプルである、請求項２０に記載の微量流体デバイス。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
（発明の背景）
（発明の分野）
本発明は、一般に、微量流体デバイスに、そしてより詳細には、稀有な細胞を検出するための微量流体および方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
（関連技術の説明）
今や癌細胞と関連することが知られている生物学的変化は、遺伝子発現パターンにおいてシフトする変異された遺伝子配列または重複された遺伝子配列からの完全な連続体、および改変されたタンパク質を包含する。癌細胞の特徴付けで生み出される分子情報の多様性を、慣用の臨床実践に移すための挑戦は、それらの測定の再現性のある、統合され、かつ自動化された方法の開発である。１つの技術的ハードルは、しばしば、正常細胞の高いバックグラウンドにおいて低濃度で見出される癌細胞の濃縮と検出とを含む標本分析のための戦略を規定することである。さらに、最大の臨床有用性は、ソートされた細胞が、タンパク質、ＤＮＡ、またはｍＲＮＡ発現改変について、迅速かつ同じ標本から分析できるならば可能にされ得る。例えば、血液中に伝播された癌細胞の検出は、特異重要である１つのアプローチである。不幸なことに、現在の検出方法は、１０ｍｌの血液あたり１〜セ１０細胞ほどの少なさであり得る伝播された癌細胞を再現性良く検出するために適切な感度を欠いている。従って、タンパク質、ＤＮＡ、またはｍＲＮＡ改変を確認し得る自動化された分析プラットホームに統合され得るより高感度の癌細胞検出方法に対する必要性が存在している。本発明は、この必要性を取り扱い、そしてさらなる関連する利点を提供する。
【０００３】
血液のような生物学的サンプル中の希薄な癌細胞を富化することへの現在のアプローチの１つは、フローサイトメトリーである。現在のところ、フローサイトメトリーおよび細胞をソートする技術における当該技術の状態は、流体力学的に集められたコア流れを用い、これは、流れに垂直な次元で単一細胞（約１０ミクロン）のほぼサイズに二次元で集められている。これは、光散乱器、蛍光検出器、またはイメージベースの細胞検出器システムに提示され得る、単一ファイル細胞流れを生成する。しかし、このスキームは、顕著な制限を受ける−これら検出器は、一度に１つの細胞を検出および取り扱うに過ぎないかも知れない。従って、大量の細胞を処理するために、流体システムは、これら検出器を過ぎて非常に速く稼動されなければならない。例えば、検出器を過ぎて１秒あたり１〜４メートルの速度がいくつかの適用のために必要であり得る。検出の後、細胞は、次に、微小液滴に分割され、そして各微小液滴は荷電され、その結果、それは、ソートするために別個の容器に静電気により偏向され得る。不幸なことに、現在のフローサイトメトリーの方法に含まれる、技術的に複雑な方法および結果解釈に起因して、このような分析は、一般に、基準実験室によって実施されている。従って、慣用の臨床実践と適合可能な検出方法に対する必要性が残っている。本発明はこの必要性を取り扱い、そしてさらなる関連した利点を提供する。
【０００４】
微量流体デバイスは、分析試験を実施するため、近年、一般的になった。電子製品をミニチュア化するために半導体産業によって開発されたツールを用い、安価に大量生産され得る錯雑流体システムを製作することが可能になった。情報の獲得および処理のために種々の分析技法を実施するシステムが開発されている。微量流体により分析を実施する能力は、スループット、試薬消費、および自動化可能性の実質的な利点を提供する。微量流体システムの別の利点は、分析および／または合成のために反応体の処理を実施するための単一の「ラップオンナチップ（ｌａｐ−ｏｎ−ａ−チップ）」デバイスで、複数の異なる操作を統合する能力である。
【０００５】
微量流体デバイスは、多層積層構造で構築され得、ここで、各層は、チャネルおよび積層材料から製作される構造を有し、流体が流れるミクロスケールの間隙またはチャネルを形成する。ミクロスケールまたは微量流体チャネルは、一般に、５００μｍ未満であり、そして代表的には、約０．１μｍと約５００μｍとの間である少なくとも１つの内部断面寸法を有する流体通路として規定される。
【０００６】
その全体が本明細書によって参考として援用される特許文献１は、微量流体デバイスの例である。この特許文献１は、指標流れおよびサンプル流れを提供する少なくとも２つの入力チャネルを有する層流チャネルを用いてサンプル流れ中の分析物粒子の存在を検出するための微量流体システムを教示し、ここで、この層流チャネルは、これら流れの層流を可能にするに十分小さい深さ、および検出領域を形成するように指標流れ中への分析物の粒子の拡散を可能にするに十分な長さを有し、そして単一の混合された流れを形成するようにこのチャネルからの出口を有している。Ｔ−Ｓｅｎｓｏｒとして知られるこのデバイスは、拡散による以外は混合することなく、チャネル内で互いの次に異なる流体層の移動を可能にする。全血のようなサンプル流れ、指標溶液のようなレセプター流れ、および既知の分析物標準であり得る参照流れは、このＴ−Ｓｅｎｓｏｒ内の共通の微量流体チャネル中に導入され、そしてこれらの流れは、それらがチャネルを出るまで互いの次に流れる。イオンまたは小さなタンパク質のようなより小さな粒子は、流れの境界を横切って迅速に拡散し、その一方、より大きな分子は、よりゆっくりと拡散する。血液細胞のような大きな粒子は、上記２つの流れのストリームが接触する時間内には有意な拡散を示さない。
【０００７】
代表的には、微量流体システムは、機能するために、圧電ポンプ、マイクロシリンジポンプ、電気浸透ポンプなどのような特定タイプの外部流体ドライバーを必要とする。しかし、本発明の譲受人に譲渡されている出願であって、その全体が本明細書によって援用される米国特許出願番号第０９／６８４，０９４号には、重力、静水圧、毛管力、多孔性材料による吸収もしくは化学的に誘導された圧力もしくは減圧による吸収のような固有に利用可能な内部力によって完全に駆動される微量流体システムが記載されている。
【０００８】
さらに、微量スケールデバイスで流体を制御することにおける使用のための多くの異なるタイプのバルブが開発されている。例えば、特許文献２は、積層された微量流体構造における使用のための（チェックバルブとしても知られる）一方向バルブを記載し、特許文献３は、積層された微量流体構造における使用のためのボールベアリングバルブを記載し、本発明の譲受人に譲渡されている米国特許出願第１０／９６０、８９０号は、積層された微量流体構造における使用のための、ゼロ死容量バルブまたは受動バルブとしても知られる空気力バルブインターフェースを記載し、および２００６年１月１３日に出願され、そして本発明の譲受人に譲渡されている「微量流体構造における使用のための電磁バルブインターフェース」と題する米国仮特許出願は、積層された微量流体構造における使用のための電磁力によって起動されるバルブインターフェースを記載している。前述する特許および特許出願は、それらの全体が参考として本明細書によって援用される。
【特許文献１】米国特許第５，７１６，８５２号明細書
【特許文献２】米国特許第６，４３２，２１２号明細書
【特許文献２】米国特許第６，５８１，８９９号明細書
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
当該分野において多くの進歩があるけれども、流体サンプルを操作および分析するための新規かつ改良された微量流体デバイスに対する必要性が残っている。特に、希薄な細胞を検出するための微量流体デバイスのような、複数のサンプル調製および分析技法を取り込む微量流体デバイスに対する必要性が残っている。本発明はこれらの必要性を取り扱い、そしてさらに関連する利点を提供する。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
（発明の簡単な要旨）
簡単に述べれば、本発明は、希薄な細胞を検出するための微量流体デバイスおよび方法に関する。開示されるデバイスおよび方法は、サンプル調製、細胞標識化、細胞ソーティングおよび富化、およびソートされた細胞のＤＮＡ／ＲＮＡ分析を統合し、そして自動化する。
【００１１】
１つの実施形態では、希薄な細胞を検出するための微量流体デバイスは：（１）１つ以上の標識細胞を含む生物学的サンプルを微量流体デバイス中に導入する手段；（２）この生物学的サンプルを緩衝液液体で覆い、この生物学的サンプルの薄いリボンを形成する手段；（３）上記生物学的サンプル中の標識細胞の検出を促進する手段；（４）上記生物学的サンプルから標識細胞を分離する手段；（５）上記標識細胞を溶解する手段；（６）溶解された標識細胞から放出されたＲＮＡおよびＤＮＡを収集する手段；および（７）収集されたＲＮＡおよびＤＮＡの定量的ＰＣＲ分析を実施する手段を備える。
【００１２】
より詳細な実施形態では、上記生物学的サンプルを微量流体デバイス中に導入する手段は、サンプル入口微量流体チャネルに流体により接続されるサンプル入口ポートを備える。
【００１３】
別のより詳細な実施形態では、上記生物学的サンプルを緩衝液液体で覆い、この生物学的サンプルの薄いリボンを形成する手段は、薄いリボンのシース流れアセンブリを備える。この薄いリボンのシース流れアセンブリは、サンプル微量流体チャネル、第１のシース液体微量流体チャネルおよび第２のシース液体微量流体チャネルを備え得、ここで、この第１のシース液体微量流体チャネルおよび第２のシース液体微量流体チャネルは、上記サンプル微量流体チャネルの対向する側に位置決めされ、そして上記サンプル微量流体チャネルに流体的に寄り集まる。
【００１４】
別のより詳細な実施形態では、上記生物学的サンプル中の標識細胞の検出を促進する手段は、覆われたサンプル微量流体チャネルの一部分の上に位置決めされる光学的観察窓を備える。
【００１５】
別のより詳細な実施形態では、上記生物学的サンプルから標識細胞を分離する手段は、細胞をソートするスリット構造を備える。
【００１６】
別のより詳細な実施形態では、上記生物学的サンプルから標識細胞を分離する手段は、可撓性フィルム膜を備える細胞をソートする可撓性フィルム構造を備え、この可撓性フィルム膜は、空気圧力の付与に際し、覆われたサンプル微量流体チャネル中に変形可能である。
【００１７】
別のより詳細な実施形態では、上記生物学的サンプルから標識細胞を分離する手段は、電磁気によって起動されるバルブを備える。この電磁気によって起動されるバルブは、金属ホイルを備え得る。
【００１８】
別のより詳細な実施形態では、上記標識細胞を溶解する手段は、上記標識細胞を捕捉するように適合された第１の膜、およびこの第１の膜に流体により接続される溶解緩衝液微量流体チャネルを備える。この第１の膜は、Ｌｕｋｅｓｏｒｂ（登録商標）膜のような、ポリブチレンテレフタレート（ＰＢＴ）膜であり得る。
【００１９】
別のより詳細な実施形態では、上記標識細胞を溶解する手段は、溶解緩衝液シース流れアセンブリを備える。この溶解緩衝液シース流れアセンブリは、ソート細胞微量流体チャネル、第１の溶解緩衝液微量流体チャネルおよび第２の溶解緩衝液微量流体チャネルを備え得、ここで、この第１の溶解緩衝液微量流体チャネルおよび第２の溶解緩衝液微量流体チャネルは、上記ソート細胞微量流体チャネルの対向する側に位置決めされ、そしてこのソート細胞微量流体チャネルに流体的に寄り集まる。
【００２０】
別のより詳細な実施形態では、上記溶解された標識細胞から放出されたＲＮＡおよびＤＮＡを収集する手段は、放出されたＲＮＡおよびＤＮＡを捕捉するように適合された第２の膜を備える。この第２の膜は、ガラスまたはケイ酸塩を含み得る。
【００２１】
別のより詳細な実施形態では、上記収集されたＲＮＡおよびＤＮＡの定量的ＰＣＲ分析を実施する手段は、ＰＣＲ増幅チャンバーを備える。このＰＣＲ増幅チャンバーは、このＰＣＲ増幅チャンバーに予備装填されるか、またはプリントされるＰＣＲプローブおよびプライマー試薬を備え得る。
【００２２】
別のより詳細な実施形態では、上記生物学的サンプルは、血液サンプルである。
【００２３】
第２の実施形態では、希薄な細胞を検出するための微量流体デバイスが提供され、これは：（１）生物学的サンプルを微量流体デバイス中に導入する手段；（２）上記生物学的サンプルを標識緩衝液液体で覆い、この生物学的サンプルの薄いリボンを形成し、そしてこの生物学的サンプル中の１つ以上の細胞を標識する手段；（３）上記生物学的サンプル中の標識細胞の検出を促進する手段；（４）上記生物学的サンプルから標識細胞を分離する手段；（５）上記標識細胞を溶解する手段；（６）溶解された標識細胞から放出されたＲＮＡおよびＤＮＡを収集する手段；および（７）収集されたＲＮＡおよびＤＮＡの定量的ＰＣＲ分析を実施する手段を備える。
【００２４】
別のより詳細な実施形態では、上記生物学的サンプルを微量流体デバイス中に導入する手段は、サンプル入口微量流体チャネルに流体により接続されるサンプル入口ポートを備える。
【００２５】
別のより詳細な実施形態では、上記生物学的サンプルを標識緩衝液液体で覆い、上記生物学的サンプルの薄いリボンを形成し、そしてこの生物学的サンプル中の１つ以上の細胞を標識する手段は、薄いリボンの標識シース流れアセンブリを備える。この薄いリボンの標識シース流れアセンブリは、サンプル微量流体チャネル、第１の標識シース液体微量流体チャネルおよび第２の標識シース液体微量流体チャネルを備え得、ここで、この第１の標識シース液体微量流体チャネルおよび第２の標識シース液体微量流体チャネルは、上記サンプル微量流体チャネルの対向する側に位置決めされ、そして上記サンプル微量流体チャネルに流体的に寄り集まる。
【００２６】
別のより詳細な実施形態では、上記生物学的サンプル中の標識細胞の検出を促進する手段は、覆われたサンプル微量流体チャネルの一部分の上に位置決めされる光学的観察窓を備える。
【００２７】
別のより詳細な実施形態では、上記生物学的サンプルから標識細胞を分離する手段は、細胞をソートするスリット構造を備える。
【００２８】
別のより詳細な実施形態では、上記生物学的サンプルから標識細胞を分離する手段は、可撓性フィルム膜を備える細胞をソートする可撓性フィルム膜構造を備え、この可撓性フィルム膜は、空気圧力の付与に際し、覆われたサンプル微量流体チャネル中に変形可能である。
【００２９】
別のより詳細な実施形態では、上記生物学的サンプルから標識細胞を分離する手段は、電磁気によって起動されるバルブを備える。この電磁気によって起動されるバルブは、金属ホイルを備え得る。
【００３０】
別のより詳細な実施形態では、上記標識細胞を溶解する手段は、この標識細胞を捕捉するように適合された第１の膜、およびこの第１の膜に流体により接続される溶解緩衝液微量流体チャネルを備える。この第１の膜は、Ｌｕｋｅｓｏｒｂ（登録商標）膜のような、ポリブチレンテレフタレート（ＰＢＴ）膜であり得る。
【００３１】
別のより詳細な実施形態では、上記標識細胞を溶解する手段は、溶解緩衝液シース流れアセンブリを備える。この溶解緩衝液シース流れアセンブリは、ソート細胞微量流体チャネル、第１の溶解緩衝液微量流体チャネルおよび第２の溶解緩衝液微量流体チャネルを備え得、ここで、この第１の溶解緩衝液微量流体チャネルおよび第２の溶解緩衝液微量流体チャネルは、上記ソート細胞微量流体チャネルの対向する側に位置決めされ、そして上記ソート細胞微量流体チャネルに流体的に寄り集まる。
【００３２】
別のより詳細な実施形態では、上記溶解された標識細胞から放出されたＲＮＡおよびＤＮＡを収集する手段は、放出されたＲＮＡおよびＤＮＡを捕捉するように適合された第２の膜を備える。この第２の膜は、ガラスまたはケイ酸塩を含み得る。
【００３３】
別のより詳細な実施形態では、上記収集されたＲＮＡおよびＤＮＡの定量的ＰＣＲ分析を実施する手段は、ＰＣＲ増幅チャンバーを備える。このＰＣＲ増幅チャンバーは、このＰＣＲ増幅チャンバーに予備装填されるか、またはプリントされるＰＣＲプローブおよびプライマー試薬を備え得る。
【００３４】
別のより詳細な実施形態では、上記生物学的サンプルは、血液サンプルである。
【００３５】
本発明のこれらの局面およびその他の局面は、添付の図面および以下の詳細な説明を参照する際に明らかになる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００３６】
（発明の詳細な説明）
先に注記したように、本発明は、希薄な細胞を検出するための微量流体デバイスおよび方法に関する。本発明のデバイスは、複数の微量流体チャネル、入口、バルブ、膜、ポンプ、液体障壁および種々の形態で配列されたその他の要素を利用し、分析用に流体サンプルを調製するためにこのようなサンプルの流れを操作し、この流体サンプルを分析する。以下の説明では、本発明のデバイスおよび方法の特定の詳細な実施形態が提示されるが、当業者は、以下に記載される種々の実施形態および要素が、本発明の思想および範囲から逸脱することなく組み合わされ得るか、または改変され得ることを理解する。
【００３７】
当業者が認識するように、本明細書で用いられる用語「希薄（ｒａｒｅ）な細胞」は、極度に低濃度（すなわち、百万の中の１つのオーダー）の（生物学的サンプルのような）サンプル中にある、そして癌を含む多くの症状にともない得る特有に識別可能な細胞をいう。
【００３８】
さらに、当業者が認識するように、本明細書で用いられる用語「生物学的サンプル」は、（制限されないで）血液サンプル、尿サンプル、および精液サンプルのような液体の生物学的サンプルを含む。例示の目的のために、以下の説明は、頻繁に「血液サンプル」に言及するが、当業者が認識するように、本明細書および記載された実施形態は、尿および精液のようなその他の液体生物学的サンプルに等しく適用され、そしてそれらを包含する。
【００３９】
図１は、本発明の局面に従って、希薄な細胞を検出するための代表的な方法におけるステップを示すフローチャートである。このような方法は以下のステップを包含する：（１）（図１中参照番号１００によって示される）１つ以上の標識細胞を含む血液サンプルを、微量流体デバイス上に装填する工程；（２）（図１中参照番号１１０によって示される）緩衝液液体の２つの流れ間で血液サンプルの薄いリボン（すなわち、１細胞厚み）流れを達成するために緩衝液液体で血液サンプルを覆う工程；（３）（図１中参照番号１２０によって示される）血液サンプル中の標識細胞を検出する工程；（４）（図１中参照番号１３０によって示される）標識細胞を含む血液サンプルの一部分の流れを反らす工程であって、それによって、上記標識細胞を、血液サンプルの塊から分離する工程；（５）（図１中参照番号１４０によって示される）第１の膜（例えば、Ｌｕｋｅｓｏｒｂ（登録商標）膜のような、ポリブチレンテレフタレート（ＰＢＴ）膜）上に標識細胞を集める工程；（６）（図１中参照番号１５０によって示される）上記第１の膜上に集められた標識細胞を洗浄し、そして溶解する工程；（７）（図１中参照番号１６０によって示される）第２の膜（例えば、ガラスまたはケイ酸塩）上に溶解物（これは、溶解された標識細胞から放出されたＲＮＡおよびＤＮＡを含む）を集める工程；（８）（図１中参照番号１７０によって示される）この第２の膜上の溶解物を洗浄し、そして乾燥する工程；（９）（図１中参照番号１７０によって示される）この第２の膜上に集められたＲＮＡおよびＤＮＡをＰＣＲチャンバー中に溶出する工程；および（１０）（図１中参照番号１８０によって示される）集められたＲＮＡおよびＤＮＡの定量的ＰＣＲ（すなわち、ポリメラーゼ連鎖反応）またはｑＲＴ−ＰＣＲ（定量的逆転写ポリメラーゼ連鎖反応）分析を実施する工程。
【００４０】
前述の方法のより詳細な実施形態では、そして以下により詳細に記載されるように：（１）血液サンプル中の特定細胞は、血液サンプル中の希薄な細胞の表面上に見出される特異的抗原に結合する、蛍光によって標識されたモノクローナル抗体（例えば、ＣＤ−３４）で標識され得；そして（２）この蛍光によって標識された細胞は、上記微量流体デバイスの光学的観察窓または領域を通じて、光学的デバイスによって検出され得る。定量的ＰＣＲ（すなわち、ポリメラーゼ連鎖反応）分析、およびｑＲＴ−ＰＣＲ（定量的逆転写ポリメラーゼ連鎖反応）分析は、ＰＣＲのために必要なプローブおよびプライマーを、微量流体デバイス中に組み込むこと（液体形態（すなわち、ブリスターパウチ）または乾燥形態（すなわち、プリントされる）いずれか）、この微量流体デバイス中にＰＣＲ増幅チャンバーを組み込むこと、およびこの微量流体デバイスを、Ｐｅｌｔｉｅｒデバイスのような熱サイクリング加熱デバイスとインターフェースすることにより、この微量流体デバイス上で実施され得る。一体化された熱サイクリングシステムを有する代表的な微量流体デバイスは、本発明の譲受人に譲渡され、そしてその全体が参考として本明細書によって援用される米国特許番号第１０／８６２，８２６号に記載されている。さらに、ソフトウェアが、この方法における各ステップを制御および実施するために利用され得、そしてアルゴリズムが考案されて、このデバイスが、全血サンプルの所定の容量中の標識細胞の数、および同じ血液サンプル中の目的の遺伝子標識細胞の数を報告することを可能にする。
【００４１】
図２は、本発明の局面に従って、希薄な細胞を検出するための代表的な微量流体デバイス２００の概略図である。示されるように、乾燥された蛍光標識抗体を含むバキュテイナー２０５は、全血サンプル（約１〜１０ｍｌ）で充填される。このバキュテイナー２０５は、次いで、微量流体デバイス２００と嵌合され、そしてこのアセンブリは、ポンプ輸送／読み取りデバイスまたはステーション（詳細には識別しない）中に挿入される。このポンプ輸送／読み取りデバイスは、複数のマイクロポンプ２１０、減圧ライン２１５、廃液ライン２２０、青色レーザー２２５、青色ＬＥＤ２３０、熱サイクラー２３５、およびいくつかの検出器２４０、ならびに洗浄流体および廃棄液体のためのリザーバーを備える。
【００４２】
作動において、上記ポンプ輸送／読み取りデバイスは、全血サンプルを、上記バキュテイナー２０５から微量流体デバイス２００のサンプル入口微量流体チャネル（詳細には示さず）中に、サンプル入口ポート（詳細には示さず）を経由し、そして微量流体デバイス２００上の薄いリボンシース流れアセンブリ２０７を通ってポンプ輸送し、それによって、上記血液サンプルが緩衝液流体に覆われ、血液サンプルの薄いリボン流れを生成するようにする（図２中標識１によって示される）。この血液サンプルの薄いリボン流れは、光学的観察窓２４５まで進行し、そこで、青色レーザー２２５で照射され、そして検出器２４０が標識細胞をモニターする（図２中標識２によって示される）。標識細胞が検出されるとき、この細胞を含む小容量の血液サンプルは、第１の膜（図２中標識３によって示される）上に反らされる。このようにして、複数の細胞が、個々にではなく、一度にリボンの全細胞の列またはセクションとして、観察および貯蔵される。十分な数の標識細胞が捕捉されたとき、または血液サンプルが枯渇されるとき、第１の膜２５０は、所望されない細胞を除去するために洗浄される（図２中標識４によって示される）。次いで、溶解緩衝液が第１の膜２５０上に通され、標識細胞を溶解し、そしてＲＮＡおよびＤＮＡを含む溶解物を放出し、これは、第２の膜２５５上に捕捉される（図２中標識６によって示される）。この第２の膜２５５は、次いで、洗浄され（図２中標識６によって示される）、乾燥され（図２中標識７によって示される）、そしてこのＲＮＡ／ＤＮＡは、ＰＣＲ増幅チャンバー２６０中に溶出される（図２中標識８によって示される）。この集められたＲＮＡ／ＤＮＡは、次いで、試薬と混合され、定量的ＰＣＲおよびｑＲＴ−ＰＣＲが進行することを可能にする（図２中標識９によって示される）。ｑＲＴ−ＰＣＲでは、青色ＬＥＤ２３０は、サイクルあたりの蛍光の増加を検出するためにサンプルの各サイクルを照射する（図２中標識１０によって示される）。
【００４３】
上記のように、図１および２の実施形態は、微量流体デバイス中に予め標識された血液サンプルが導入されるよう準備される。しかし、当業者が認識するように、代替の実施形態では、この微量流体デバイスは、血液サンプルを標識することを提供するようにも構成され得る。例えば、図３Ａ〜３Ｃは、例えば、本発明の局面に従って白血球細胞を標識する抗体のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイス３００の一連の断面図である。示されるように、全血サンプルおよび標識緩衝液液体（例えば、抗体試薬）の両方が、微量流体デバイス３００上に装填される。この血液サンプルは、サンプル入口ポート３０５およびサンプル入口微量流体チャネル３１０を通って微量流体デバイス３００中に導入される。示される実施形態では、駆動流体が利用されて、この血液サンプルおよび抗体試薬を押して、薄いリボンのシース流れアセンブリ３１５（より詳細には、この実施形態では、薄いリボン標識シース流れアセンブリ３１５）に通し、抗体試薬の流れの間に血液サンプルの薄いリボンを形成する。上記で注記されたように、この薄いリボンのシース流れアセンブリ３１５は、第１のシース液体微量流体チャネルおよび第２のシース液体微量流体チャネルを備え得、ここで、この第１のシース液体微量流体チャネルおよび第２のシース液体微量流体チャネルは、上記サンプル微量流体チャネルの対向する側に位置決めされ、そしてそれと流体的に互いに近づき合う。その全体が参考として本明細書中に援用される米国特許番号第６，５７６，１９４号は、このようなシース流れアセンブリをさらに記載している。この薄いリボン形成における間、および覆われたサンプル微量流体チャネル３２０を通って流れる間、流体流れ間の拡散が、血液サンプル中の白血球細胞の抗体での標識を容易にする。この標識された細胞は、次に、覆われたサンプル微量流体チャネル３２０の一部分上に位置決めされる示された光学的観察窓３２５を通じて光学的に検出され得る。
【００４４】
微量流体デバイス中の血液サンプルを標識することを提供する別の実施形態が図４Ａ〜４Ｄに示され、これらは、例えば、本発明の局面に従って、白血球細胞の抗体標識および赤血球細胞の溶解の両方のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイス４００の一連の断面図を示す。図３Ａ〜３Ｃにおけるように、全血サンプルおよび標識緩衝液液体（すなわち、抗体試薬液体）が、微量流体デバイス４００上に装填される。この血液サンプルは、サンプル入口ポート４０５およびサンプル入口微量流体チャネル４１０を通って微量流体デバイス４００中に導入される。駆動流体を利用して、この血液サンプルと抗体試薬を押して薄いリボンシース流れアセンブリ４１５（より詳細には、示される実施形態では薄いリボンの標識シース流れアセンブリ）を通し、抗体試薬の流れ間に薄いリボンの血液サンプルを形成する。上記で注記したように、この薄いリボンシース流れアセンブリ４１５は、第１のシース液体微量流体チャネルおよび第２のシース液体微量流体チャネルを備え得、ここで、この第１のシース液体微量流体チャネルおよび第２のシース液体微量流体チャネルは、上記サンプル微量流体チャネルの対向する側に位置決めされ、そしてそれと流体的に互いに近づき合う。その全体が参考として本明細書中に援用される米国特許番号第６，５７６，１９４号は、このようなシース流れアセンブリをさらに記載している。しかし、図４Ａ〜４Ｄのデバイスでは、溶解試薬液体がまた、微量流体デバイス４００上に装填され、そして血液サンプル中の白血球細胞の抗体での標識の後、駆動流体をも用いて溶解試薬と標識された血液サンプルとを押して溶解緩衝液シース流れアセンブリ４２０を通し、このような流体の層流を生成する。上記薄いリボンのシース流れアセンブリと同様に、この溶解緩衝液シース流れアセンブリは、第１の溶解緩衝液微量流体チャネルおよび第２の溶解緩衝液微量流体チャネルを備え、ここでこの第１の溶解緩衝液微量流体チャネルおよび第２の溶解緩衝液微量流体チャネルは、上記サンプル微量流体チャネルの対向する側に位置決めされ、そしてそれと流体的に互いに近づき合う。得られる流体流れ間の拡散は、血液サンプル中の赤血球細胞の溶解を生じる。結果として、残存する標識白血球細胞は、示された光学的観察窓４２５を通じてより容易に検出され得る。その他の実施形態では、溶解緩衝液シース流れアセンブリ４２０は、標識細胞を血液サンプルから分離するための手段の下流に位置決めされ得る。
【００４５】
細胞を集め、そして溶解する流体力学を提供するさらなる微量流体デバイスの例は、本発明の譲受人に譲渡され、そしてその全体が参考として本明細書によって援用される米国特許番号第６，６７４，５２５号に記載されている。
【００４６】
図１および２に関して記載されるように、標識細胞の検出の後、この細胞を含む全血サンプルの小容量は反らされる。当業者が認識するように、広範な範囲の微量流体チャネル、バルブ、膜、ポンプ、液体障壁およびその他の要素が、この結果を達成するために種々の形態で配列され得る。例えば、図５Ａ〜５Ｇは、本発明の局面に従って、抗体標識細胞をソートするための種々の代表的なサブ回路の作動を示す種々の微量流体デバイスおよび構造の多くの断面図を示す。流体力学に細胞を集め、そしてソートするための微量流体デバイスのさらなる例は、本発明の譲受人に譲渡され、そしてその全体が参考として本明細書によって援用される米国特許出願公開番号第２００３／０１７５９８０号に記載されている。
【００４７】
図５Ａ〜５Ｂに示される１つの実施形態では、標識された細胞をソートするための代表的なサブ回路は、光学的観察窓５１０の下流に位置決めされる細胞ソーティングスリット構造５００を備える。この細胞ソーティングスリット構造５００は、主要なサンプル微量流体チャネル５２５に垂直に位置決めされる、上部スリット５１５および下部スリット５２０の両方を備える。上部スリット５１５および下部スリット５２０のそれぞれを通る空気圧力のパルスは、血液サンプルの流れを反らすために利用され得る。例えば、上部スリット５１５を通る圧力パルスは、主要サンプル微量流体チャネル５２５からの流れを下部スリット５２０に反らすために利用され得る。上部スリット５１５および下部スリット５２０の幅は、それぞれ２５〜２００ミクロンのオーダーであり得る。
【００４８】
図５Ｃ〜５Ｅに示される別の実施形態では、標識された細胞をソートするための代表的なサブ回路は、光学的観察窓５１０の下流に位置決めされた細胞ソーティング可撓性膜構造５４０を備える。この細胞ソーティング可撓性膜構造５４０は、空気圧力の付与によって主要微量流体チャネル５２５中に変形され得る可撓性フィルム膜５４５を備える。図５Ｄ〜５Ｅにより詳細に示されるように、このように可撓性フィルム膜５４５を変形することにより、血液サンプルの流れは、主要サンプル微小流体チャネル５２５から反らされ得る。
【００４９】
図５Ｆ〜５Ｉに示される別の実施形態では、標識された細胞をソートするための代表的なサブ回路は、電磁石により起動されるバルブ５１０を備える。図５Ｆ〜５Ｇに示される１つの実施形態では、この電磁石により起動されるバルブ５１０は、上記デバイスの２つの薄片層の間に配置され、そして主要微量流体チャネル５１５中に「浮遊する」１つの端部を有する金属ホイルを備える。上記デバイスでインターフェースされる「オフカード（ｏｆｆ−ｃａｒｄ）」電磁石５３０を交互に起動することにより、この金属ホイル５１０は、この金属ホイル５１０の下流の２つの微量流体チャネル５２０および５２５間で血液サンプルの流れを反らすために利用され得る（示される実施形態では、１つのチャネル５２０は廃棄細胞リザーバーに至り、そして他方のチャネル５２５は、ソート細胞リザーバーに至る）。図５Ｈ〜５Ｉに示される別の実施形態では、電磁石により起動されるバルブ５１０は、デバイスの２つの薄片層の間に配置され、そして、通常、主要微量流体チャネル５１５の１つの面（例えば、底面）に対して配置される１つの端部を有する金属ホイルを備える。図５Ｆ〜５Ｇの実施形態におけるように、デバイスによってインターフェースされる「オフカード」電磁石５３０を交互に起動することにより、この金属ホイル５１０は、この金属ホイル５１０の下流の２つの微量流体チャネル５２０および５２５間で血液サンプルの流れを反らすために利用され得る（示される実施形態では、１つのチャネル５２０は廃棄細胞リザーバーに至り、そして他方のチャネル５２５は、ソート細胞リザーバーに至る）。これらの代表的な電磁石により起動されるバルブは、２００６年１月１３日に出願され、そして本発明の譲受人に譲渡され、その全体が本明細書によって参考として本明細書中に援用される「微量流体構造における使用のための電磁石バルブインターフェース」と題する米国仮特許出願にさらに記載されている。
【００５０】
図１および２に関して記載されたように、標識細胞を含む全血サンプルの反れた部分は、第１の膜上に捕捉され、これは、次いで、洗浄されて所望されない細胞を取り除く。溶解緩衝液が、次いで、この第１の膜上に通され、標識細胞を溶解し、そしてＲＮＡおよびＤＮＡを含む溶解物を放出する。これらのステップは、図６Ａ〜６Ｄに示され、これらは、本発明の局面に従って、例えば、白血球細胞捕捉および溶解のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイス６００の一連の断面図を示す。図６Ａに示されるように、このサブ回路は、第１の膜６０５に加え、複数のバルブ、入口、出口および微量流体チャネルを含む。図６Ｂは、全血サンプルの微量流体デバイス６００中への導入、第１の膜６０５上の白血球細胞の-捕捉、および廃液出口を通る（白血球細胞、血小板および血漿を含む）枯渇全血サンプルの通過を示す。図６Ｃは、洗浄緩衝液により洗浄されている第１の膜６０５を示す。図６Ｄは、溶解緩衝液微量流体チャネル６１０（第１の膜６０５に流体により接続される）を通って導入された溶解緩衝液液体による第１の膜６０５上に捕捉された白血球細胞の溶解、および引き続く拡散捕捉および生成のための溶解物溶液の放出を示す。
【００５１】
上記に記載されたように、得られる溶解物溶液は、ＲＮＡおよびＤＮＡを含み、これは、次いで、第２の膜上に捕捉される。この第２の膜は洗浄され、そして乾燥されてこの捕捉されたＲＮＡ／ＤＮＡを生成し、そしてこのＲＮＡ／ＤＮＡは、次いで、ＰＣＲ増幅チャンバー中に溶出される。これらのステップは、図７Ａ〜７Ｆに示され、これらは、本発明の局面に従う、拡散捕捉および生成のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイス７００の一連の断面図を示す。図７Ａに示されるように、このサブ回路は、第２の膜７０５（すなわち、核酸捕捉膜）に加え、複数のバルブ、入口、出口および微量流体チャネルを備える。図７Ｂは、この微量流体デバイス７００中への溶解溶液および洗浄緩衝液の導入を示す。図７Ｃは、第２の膜７０５上を通過される溶解溶液を示す−ＲＮＡ／ＤＮＡはこの第２の膜上に捕捉され、そして枯渇された溶解物溶液は、廃液チャンバーに向けられる。図７Ｄは、洗浄緩衝液によって洗浄されている第２の膜７０５を示す。図７Ｅは、空気乾燥されている第２の膜７０５を示す。図７Ｆは、溶出緩衝液での第２の膜７０５からのＲＮＡ／ＤＮＡの離脱を示す。
【００５２】
図１および２に関して記載されたように、第２の膜上のＲＮＡ／ＤＮＡの精製の後、この精製されたサンプルは、１つ以上のＰＣＲ増幅チャンバー中に溶出され、ここで、定量的ＰＣＲおよびｑＲＴ−ＰＣＲ分析が実施され得る。図８Ａ〜８Ｂは、本発明の局面に従う核酸増幅のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイス８００の断面図である。当業者が認識するように、示される微量流体デバイス８００は、（約３５サイクルを実施し得る）「オフ−カード」熱サイクラー、および（増幅チャンバー中で蛍光を定量的に検出し得る）「オフ−カード」ｅｐｉ蛍光検出器の両方でインターフェースされる。詳細には示されていないけれども、ＰＣＲに必要な試薬（例えば、プローブおよびプライマー）は、（１）１つ以上のさらなる入口を通って液体形態で微量流体デバイス８００中に導入され得るか、（２）１つ以上のブリスターパウチで微量流体デバイス８００中に液体形態で提供され得るか、または（３）例えば、乾燥試薬をＰＣＲ増幅チャンバー８０５中にプリントすることにより微量流体デバイス８００中に乾燥形態で提供され得る。図８Ｃは、本発明の局面に従って核酸増幅のために図８Ａ〜８Ｂの微量流体デバイスを組み込むシステムの写真である。このシステムは、３つの主要な構成要素、すなわち、ｍｉｃｒｏＦｌｏｗ（商標名）システム、熱サイクラーおよび電源を備える。
【００５３】
当業者が認識するように、前述のサブ回路は、種々の形態で組み合わされ得、希薄な細胞を検出するための微量流体デバイスを生成し、これは、サンプル調製、細胞標識化、細胞ソーティングおよび富化、およびソートされた細胞のＤＮＡ／ＲＮＡ分析を統合し、そして自動化する。例えば、図９Ａ〜９Ｂは、本発明の局面に従って、図６Ａ〜６Ｄ（細胞捕捉）、７Ａ〜７Ｆ（核酸捕捉）および８Ａ〜８Ｂ（ＰＣＲ増幅）のサブ回路を取り込む代表的な微量流体デバイス９００の断面図を示す。示されるように、図９Ａ〜９Ｂのデバイスは、細胞捕捉、核酸捕捉およびＰＣＲ増幅を一体化する。
【００５４】
以下の実施例は、本発明の特定の実施形態および局面を示すために含められ、そして如何なる様式においても制限するとして解釈されるべきではない。
【実施例】
【００５５】
（実施例１）
以下の実施例では、サンプルおよび抗体溶液は、ｍｉｃｒｏＦｌｏｗ（商標名）システムによる微量流体デバイスのチャネルを通って移動され、これは、コントローラー、ポンプ（２５０μＬおよび２，３００μＬ容量ポンプ）、および多岐管を備える。このｍｉｃｒｏＦｌｏｗ（商標名）システムは、市販され、入手可能な超低パルスポンプシステム（Ｍｉｃｒｏｎｉｃｓ，Ｉｎｃ．）であり、ＰＣをベースにしたソフトウェアによって制御される空気、減圧、前方および後方ポンプ輸送能力を備える。微量流体デバイスでは、流体は、空気またはＦｌｕｏｒｉｎｅｒｔ（商標名）ＦＣ−７０（Ｈａｍｐｔｏｎ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ＨＲ２−７９７）のいずれかによって輸送され得る。Ｆｌｕｏｒｉｎｅｒｔ（商標名）ＦＣ−７０は、水と類似の粘度を有し、約７５％より大きい密度を備え、そして水性溶液とは混和可能でない。以下の実施例では、Ｆｌｕｏｒｉｎｅｒｔ（商標名）ＦＣ−７０を、プロセッシングの間にサンプルおよび抗体溶液の希釈を防ぐために用いた。
【００５６】
（ラボのカードの設計）
図３Ａ〜３Ｃおよび５Ａ〜５Ｅに示されるサブ回路を有する微量流体デバイスを、以下の細胞および／またはビーズ計数およびソート実験のために用いた。このデバイスは、ビーズおよび／または細胞のための３０μＬのサンプルチャネル（またはループ）、４００μＬの（用いられる場合）希釈抗体または（抗体が用いられない場合）ＰＢＳを保持するオンカード（ｏｎ−ｃａｒｄ）チャンバー（またはリザーバー）、オンカードの薄いリボン形成構造（またはサンプルインジェクター）、標識チャネル（またはループ）、観察領域、および標識細胞および／またはビーズの除去のためのソーティングスリット構造を備える。このカードは、薄片（ラミネート）をプロトタイプする方法（例えば、個々の層をレーザーカットし、次いで積層されて三次元チャネルおよびバルブを形成する）を用いて製造された。これらの実験で用いられるデバイスには、チャネルは各々１．５ｍｍ幅であり、そして標識チャネルにおける滞留時間は約１５秒であった。
【００５７】
（オンカード光学）
前述のラボカードを含む多岐管をＺｅｉｓｓの倒立顕微鏡（モデルＩＭ３５）のステージ上に置いた。このカードを、ＢｌｕｅＳｋｙ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ４８８ｎｍレーザー（モデルＦＴＥＣ−４８８−０２０−ＳＭ００）で照射した。チャージカップルデバイス（ＣＣＤ）カメラ（Ａｎｄｏｒ  ｉＸｏｎ（モデルＤＶ８７７−ＢＩ）およびＷａｔｅｃ（モデルＬＣＬ−９０２Ｃ）、モノクロ）を用いて、上記ラボカードを顕微鏡を通じて観察した。このＷａｔｅｃカメラは、従来のビデオ出力を有し、そしてこのカメラからのビデオを、Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓビデオキャプチャーカード（モデルＩＭＡＱ  ＰＣＩ−１４０９）を用いてキャプチャーした。データをムービーフォーマットで収集し、これは、ジャンプする（ｏｎ−ｔｈｅ−ｆｌｙ）分析を可能にしたか、または後の時間のさらなる分析のために保存された。分析部分は、Ｖｉｓｉｏｎアドオン（ＬａｂＶＩＥＷ用のＩＭＡＱ  Ｖｉｓｉｏｎ）を備えたＮａｔｉｏｎａｌ  Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ  ＬａｂＶＩＥＷ（登録商標）（バージョン６ｉ）を用いた。このソフトウェアには、「ｂｌｏｂ」分析が付属し、これは、目的の領域中の明るいスポットを認識するように構成され得、そしてビーズまたは細胞を、それらがレーザースポットを通過するとき計数するために用いた。
【００５８】
計数速度は、カメラフレーム速度および光感度によって決定された。感度はまた、標識またはビーズの輝度によって決定された。これらの実験には、明るく標識された細胞またはビーズのみを用いた。速度は、カメラが視野の小部分のみを読み取る場合には増加され得る。Ｗａｔｅｃカメラは１秒あたり３０フレーム（ＦＰＳ）で固定され、その一方、ｉＸｏｎＦＰＳはラインあたりの画素のコンフィギュレーション数およびラインの数、ならびに読み返し速度によって決定された。ｉＸｏｎのための最大ＦＰＳは、２００ＦＰＳであった。しかし、より速い読み返しは、信号対ノイズ比を減少するので、速度および解像度は交換条件であった。
【００５９】
（蛍光ビーズ制御）
これらの実験のために用いられたすべてのビーズは、Ｐｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅ，Ｉｎｃ．から得た。初期の視覚化は、非常に明るいＦｌｕｏｒｅｓｂｒｉｔｅ（登録商標）Ｙｅｌｌｏｗ  Ｇｒｅｅｎ  Ｍｉｃｒｏｓｐｈｅｒｅを用いた。３μｍビーズ（較正グレード＃１７１４７）および１０μｍビーズ（＃１８１４０）の両方が混合された。これらのビーズは、深く染色され、ほぼ全部のビーズが標識された。次に、中間の明るさのＦｌｏｗ  Ｃｈｅｃｋ  ＦＩＴＣ６μｍビーズ（＃２４２５３）が視覚化された。これらのビーズは、深くは染色されず（代表的には、見かけで１０％に過ぎない）、そしてゴースト様外観を示す。最後に、抗ＩｇＧでコートされたＰｏｌｙＣｏｍｂビーズ（＃２４３１２）が、オンまたはオフカードいずれかでＣＤ４抗体を用いてタグ化された。これらのビーズは、明るい蛍光レベルおよび中間明るさの蛍光レベルを有する。ビーズのサイズは特定されなかったが、約６μｍであるように見えた。
【００６０】
（ＣＤ４白血球細胞標識）
実行可能性試験には、ＣＤ４が、より高い細胞計数で開始するために、良好に確立された試薬および標識プロトコールを用いて利用された。用いられたＣＤ４抗体は、ＢＤ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ  Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ  ＃５５７６９５  ＡｌｅｘａＦｌｕｏｒ（登録商標）４８８が結合したマウス抗ヒトＣＤ４であった。このＣＤ４抗体は、平均血液サンプル中の白血球細胞の約１５％を染色することが知られている。用いたＣＤ４抗体は、フルオレセイン結合体に類似の応答性をもつが、より光安定性である、色素ＡｌｅｘＦｌｕｏｒ４８８でタグ化された。波長４８８ｎｍ（青色）の光で照射されるとき、ＡｌｅｘＦｌｕｏｒ４８８は、約５２０ｎｍの波長（緑色）を発する。Ｚｅｉｓｓ顕微鏡には、散乱をなくし、蛍光の光のみのカメラへの伝達を制限するフィルターセットが供給された。４８８ｎｍレーザーの使用に起因して、励起フィルターは用いなかった。５１０ｎｍの２０ｄｂバンドパスフィルター（Ｃｈｒｏｍａ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  Ｃｏｒｐ＃Ｄ５１０／２０×−フィルターセット３１０４０のパーツ）、またはビームスプリッター（Ｃｈｒｏｍａ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  Ｃｏｒｐ＃５０５ｄｃｌｐ−セットＣＺ７１６のパーツ）を備えた５２０ｎｍの４０ｄｂバンドパスフィルター（Ｏｍｅｇａ＃ＸＦ３００３）のいずれかを用いた。
【００６１】
ＣＤ４抗体のために推奨されるプロトコールは、１００μＬの全血に対して５μＬの抗体の使用を特定する。オンカード標識試験には、この抗体の５μＬを、標識リボンを生成するために必要なシース容量を提供するために２００μＬのＰＢＳ中に希釈した。
【００６２】
比較試験は、標準的に受容された粒子を用いてオフカードで調製された白血球細胞で行った。全血は、ＥＤＴＡと混合し、そして４℃で貯蔵した。プロトコールは、１．４ｍＬの塩化アンモニウムとともに、１００μＬの全血および溶解された赤血球細胞を用いた。細胞は、次いで、ＰＢＳで洗浄し、そして使用されるまで４℃で貯蔵した。用いるとき、細胞を１００μＬＰＢＳ中に再懸濁し、全血に類似の濃度を得た。
【００６３】
（カード上の蛍光ビーズの計数）
蛍光および機能させた両方の種々のタイプのビーズを、ラボカードの３０μＬのサンプルループ中に装填した。カード上の抗体リザーバーを、ＰＢＳ単独（非標識サンプルのため）またはＰＢＳで希釈されたＣＤ４ｍＡＢＳ（機能化ビーズのオンカード標識のため）で充填した。サンプルをＦｌｕｏｒｉｎｅｒｔで押し、そして抗体リザーバー流体は、カード上で標識しない場合ＰＢＳで押したか、またはオンカード標識にはＦｌｕｏｒｉｎｅｒｔで押した。Ｆｌｕｏｒｉｎｅｒｔは、抗体を加えたＰＢＳの希釈を防ぐために用いられた。種々のサンプルおよびシース比率を試験した。良好な標識は、１０：１の抗体を加えたシース：サンプル流速比で生じた。１．０のシース流速は、ゆっくりとしたＣＣＤを可能にし、各ビーズまたは細胞の良好な視野を得た。この流速において、１０μＬのサンプルは、試験するのに約２分を要し得る。試験のサンプリング部分は、約１５秒を要した。蛍光ビーズ計数は、表１に示されるように、予測および測定計数の両方に非常に正確な相関で成功した。
【００６４】
【表１】
2008526255.tif 000003
（カード上の蛍光ＷＢＣ計数）
ＷＢＣ計数は、平均の予測値を用いて算出した。すべての血液サンプルは、同じ固体からであった。表２は、この試験結果の要約を提示する。ほんの２〜３の細胞が、照射されたチャネルの小領域に存在することが予測されるので、算出された比は、単一細胞の存在または不在とともに変化し得る。より長い稼動時間および種々のドナーからのサンプルが、より多くの統計学的有意を提供するために試験され得る。
【００６５】
【表２】
2008526255.tif 000004
（カード上の抗体標識）
表３は、ソーティングの前に細胞を標識するために用いた種々のステップについて必要な時間の詳細である。示されるように、通常のプロトコールは１時間以上を要し、その一方、このオンカードプロセスは、３０秒以内に終了する。試薬の容量もまた減少され、そして廃液は、安全にオンカードに含まれた。
【００６６】
【表３−１】
2008526255.tif 000005
【００６７】
【表３−２】
2008526255.tif 000006
（ソーティング／蛍光ゲーティング）
実行可能性試験について、目的は、ビーズの手動ソーティングを示すことであった。単独か、またはＷＢＣと混合されるかいずれかで用いたビーズを、システムを通って動かし、そして捕捉した。プラスチックカード内に配置されたソーティング容量は、スリット幅（２５μｍ）、スリット長さ（１，５００μｍ）、およびスリット深さ（１５０μｍ）によって規定された。２３００μＬ容量のポンプを用いて３０μＬ／秒で流体を吸引した。このポンプは、約１〜２μＬの流体を置換し、そして小置換容量よりもむしろ迅速流速のために選択された。細胞またはビーズソーティングには、サンプル流速は０．１μＬ／秒であり、そして抗体標識溶液流速は１μＬ／秒であった。ソーティングの最高の頻度は、細胞をソートするためにｍｉｃｒｏＦｌｏｗシステム上のポンプを用いて、ソーティングパルスあたり０．９１秒で測定された。
【００６８】
薄いリボンの細胞ソーターは、白血球細胞からの希薄な細胞ソーティングの非常に適した方法であるように見える。標識された細胞は視覚化され、そして細胞をソートするときを決定する目的のためにそれらの速度を記録した。ソートする容量は小さく、そして分析されるべき細胞の数を効率的に低減する。移動する流れからの細胞位置ずれは良好に作用し、そしてある程度の最適化は、移動する流れ内の小容量をサンプリングし得る。
【００６９】
（実施例２）
（ラボカードおよび微量流体回路）
図７Ａ〜７Ｆに示されるサブ回路を有する微量流体デバイスを用いて、ＲＮＡ抽出のための自動化液体取り扱いステップを評価した。このデバイスは、７００μＬの洗浄溶液チャンバー、１５０μＬの溶出溶液チャンバー、２５０μＬの溶解液／結合溶液チャンバー、およびシリカ膜アセンブリを備えた。このシリカ膜アセンブリは、２つの円形ガラスファイバーフィルタータイプＤ膜（ＧＦ／Ｄ、８ｍｍ直径ディスク、Ｗｈａｔｍａｎ）を備えていた。流体回路は、流体経路および単純な減圧を制御するためにオンカードのバルブ調節を用い、そして上記ＧＦ／Ｄ膜を通って溶液を送達し、そして引いた。さらに、小容量ポンプ（約１５０μＬ）を用いて溶出溶液を送達した。このデバイスに適切な溶液を装填した後、このデバイスは、以下のステップを自動化した：（１）溶解物溶液中の白血球細胞を、減圧によってシリカ膜を横切って引いた；（２）細胞からの核酸を、用いた溶解条件下で膜に結合させた；（３）洗浄溶液を、膜を横切って引き、細胞残渣を取り除いた；（４）チャネルを通って空気を引くことにより膜を乾燥した；（５）溶出溶液を、膜上でポンプ輸送した；そして（６）溶出溶液中のＲＮＡを、分析のためにピペットを経由してオフカードに取った。これらのステップは、５分以内に終了した。
【００７０】
（ＲＮＡ制御）
ＢＣＲ−ＡＢＬ融合転写物のためのＲＮＡ制御は、Ｋ５６２細胞株から単離された総ヒトＲＮＡから獲得した。このＫ５６２細胞株は、末梢血から単離された慢性骨髄性白血病（ＣＭＬ）細胞由来であり、調査されるべきＢＣＲ−ＡＢＬ融合転写物の供給源として用いた。白血球細胞は、赤血球細胞（ＲＢＣ）溶解溶液（Ｇｅｎｔａ）を用いて全血から単離された。収集されたＷＢＣは、ＲＮＡｌａｔｅｒ（登録商標）試薬（ＱＩＡＧＥＮ）を用いて安定化し、そして溶解直前まで−２０℃で貯蔵された。
【００７１】
（比較のＲＮＡ単離方法）
前述のラボカードの性能を評価するために用いた２つのキットは、ＲＮｅａｓｙ（登録商標）およびＭａｇｎａＰｕｒｅ（Ｒｏｃｈｅ）であった。このＲＮｅａｓｙキットは、独自の溶解化学品、結合化学品および洗浄化学品とともに、シリカを基礎にした微量遠心分離スピンカラムを用い、細胞溶解物から総ＲＮＡを単離する。代替物として、上記ＭａｇｎａＰｕｒｅキットは、これは、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ（登録商標）（Ｒｏｃｈｅ）プラットホームのために選択の推奨された方法であり、独自の溶解化学品、結合化学品および洗浄化学品とともに、オリゴヌクレオチドプローブがつながれた磁性ビーズを用い、メッセンジャーＲＮＡを単離する。
【００７２】
（ＲＮＡ収率の定量的測定）
ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ（登録商標）ＲＴ−ＰＣＲ定量キット（Ｒｏｃｈｅ）を、ＢＣＲ−ＡＢＬ融合転写物の相対的定量化のために用いた。このキットは、ＢＣＲ−ＡＢＬおよびグルコース−６−リン酸デヒドロゲナーゼ（Ｇ６ＰＤＨ）遺伝子転写物の両方の定量的ＲＴ−ＰＣＲを実施するための試薬を含んでいた。逆転写およびＰＣＲは、２つの別個のステップで実施された。Ｇ６ＰＤＨハウスキーピング標的は、ＲＴ−ＰＣＲ性能のためのコントロールおよび転写物発現の相対的定量化のための参照としての両方として供された。
【００７３】
Ｐｌａｔｉｎｕｍ  Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ  ＲＴ−ＰＣＲ  Ｔｈｅｒｍｏｓｃｒｉｐｔ  Ｏｎｅ−Ｓｔｅｐ  Ｓｙｓｔｅｍ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）は、単一ステップ逆転写ＰＣＲのために用いられる試薬キットであった。このキットを用い、ＲＮＡ転写物の単一ステップ終点増幅を、従来の熱サイクラー（ＭＪ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ）と両方で実施した。プライマーは、市販され、入手可能なプライマー設計ツール（Ｏｌｉｇｏ６；Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ  Ｉｎｓｉｇｈｔｓ，Ｉｎｃ．）を用いて、Ｇ６ＰＤＨおよびＢＣＲ−ＡＢＬの両方について設計した。
【００７４】
（オンカードＲＮＡ抽出の確認）
提案されたラボカード溶液（すなわち、結合溶液、洗浄溶液および溶出溶液）の初期の機能の確証は、ＲＮｅａｓｙ実行標準中に提供されるガラスファイバーを基礎にした精製カラムを用いて行った。約１×１０６のＷＢＣをラボカードおよび実行標準化学品の両方を用いて処理した。得られる精製されたＲＮＡサンプルを、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒによってアッセイし、両方のセットの化学品が、Ｇ６ＰＤＨ転写物の類似の相対量を生じたかいなかを決定した。図１０に示されるデータによって示されるように、提案された微量流体カード溶液は、コントロールのＲＮｅａｓｙ溶液（２７．１）よりわずかに低い交差ポイント（２５．３）を有し、そしてそれ故、回収されたＲＮＡの量および質に関して少なくともコントロールと同じほど良好であると考えられた。
【００７５】
このラボカードを、次いで、記載されたカードに適合する溶液を用いて確認し、そしてＲＮＡ精製について２つの確立された標準的方法：ＲＮｅａｓｙおよびＭａｇｎａＰｕｒｅと比較した。２５０ｎｇのＫ５６２ＲＮＡでスパイクされた約１×１０６のＷＢＣ（１０μＬあたり細胞−ＲＮＡ量；Ｋ５６２ＲＮＡは、ＢＣＲ−ＡＢＬ転写物を提供するために添加された）を、これら精製方法の各々を用いて処理した。受容された標準的な方法は、製造業者の指示書に従って実施された。得られるサンプルは、次いで、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒによってアッセイされ、Ｇ６ＰＤＨおよびＢＣＲ−ＡＢＬ両方のＲＮＡ転写物を測定した。図１０に示されるように、ラボカード上で処理されたＲＮＡは、Ｇ６ＰＤＨおよびＢＣＲ−ＡＢＬに対し、それぞれ２７．８および３０．８の交差ポイントを有していた。同様に、ＲＮｅａｓｙコントロールは、Ｇ６ＰＤＨおよびＢＣＲ−ＡＢＬに対し、それぞれ２７．３および３０．４の交差ポイントを有していた。対照的に、Ｇ６ＰＤＨおよびＢＣＲ−ＡＢＬに対し、それぞれ３０．１および３６．２の交差ポイントで、ＭａｇｎａＰｕｒｅコントロールキットは、ラボカードまたはＲＮｅａｓｙ法のいずれかに対して、減少した量および／または質のＲＮＡを生じた。従って、総ＲＮＡ単離のためのラボカード法は、回収されたＲＮＡの量および質について、ＲＮｅａｓｙ実行標準と少なくとも同程度良好であることが証明され、そして両方の方法は、ＭａｇｎａＰｕｒｅ法より有意に優れていた。
【００７６】
（オンカードＲＮＡの検出限界）
オンカードの確証の終了のために、実験を、ＢＣＲ−ＡＢＬ  ｍＲＮＡ転写物の検出の限界を評価することに広げた。上記に記載された確証実験と同様に、上記に記載されたラボカードを、これらの実験のためにＲＮｅａｓｙおよびＭａｇｎａＰｕｒｅ標準方法の両方に比較した。
【００７７】
２５０ｎｇのＫ５６２ＲＮＡでスパイクされた約１×１０６のＷＢＣのストック（ＢＣＲ−ＡＢＬ転写物を提供するために添加されたＫ５６２  ＲＮＡ；１０μＬあたりの細胞−ＲＮＡ量）を水で系列希釈（１：２）して５つの希釈物を生成し、これらは、未希釈ストックとともに、上記精製方法の各々を用いて処理された。これらの希釈物は、最低の希釈レベルで、Ｋ５６２総ＲＮＡが、合理的に低い細胞等価数の代表であるレベルでアッセイされ得るように調製された。この実験には、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒによってアッセイされたＫ５６２総ＲＮＡの最低の希釈は、０．２ｎｇ／アッセイであり、これは、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒマニュアル中に提供される５０のＫ５６２細胞あたり１ｎｇの総ＲＮＡの値を用いるとき、１０の総Ｋ５６２細胞に等価であった。前のように、受容された標準的方法は、製造業者の指示書に従って実施された。
【００７８】
精製された希釈系列は、最初、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒによってアッセイされ、Ｇ６ＰＤＨおよびＢＣＲ−ＡＢＬ  ＲＮＡ両方のＲＮＡ転写物検出限界を測定した。記載された初期確証実験と同様に、プラスチックの精製サブ回路およびＲＮｅａｓｙ標準は、Ｇ６ＰＤＨおよびＢＣＲ−ＡＢＬ両方のＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒアッセイによって評価されるとき、性能は匹敵し得、その一方、ＭａｇｎａＰｕｒｅ法は、表４に示されるように、明らかに減少した量および／または質のｍＲＮＡを生じた。
【００７９】
【表４】
2008526255.tif 000007
【００８０】
ＢＣＲ−ＡＢＬ  ＬｉｇｔｈＣｙｃｌｅｒアッセイ結果に対する分析に集中して、ＲＮｅａｓｙ法は、６つすべての希釈物を首尾良く増幅し、それ故、アッセイあたり少なくとも１０の細胞等価物に至るまでの感度を達成した。ラボカードは、最初の５つのサンプル希釈物を首尾良く増幅し、少なくとも２０細胞に至るまでの感度を達成し、そしてこれまでに生成されたすべてのデータと一致し、ＭａｇｎａＰｕｒｅ法は、３００を超えるＫ５６２細胞に等価であった最も高い濃度のみを首尾良く増幅した。ＲＮｅａｓｙコントロールおよび微量流体精製カードの両方に対する平均の交差ポイントはそれぞれ３２．５および３１．５であり、それ故、両方の方法が類似の質のＲＮＡを生じることを確認した。対照的に、増幅された唯一のＭａｇｎａＰｕｒｅ反応に対する交差ポイントは、３６．２であった。
【００８１】
上記に記載の同じ希釈系列に対し、従来の熱サイクラー（ＭＪ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ）を用いて増幅される単一ステップ逆転写ＰＣＲキット（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて実験が行われた。増幅産物を、アガロースゲル電気泳動によって解像し、そしてエチジウムブロマイド染色によって可視化された（データは示さず）。ポジティブ終点増幅は、表４に示されるように、予測されたバンドの可視化について（＋）、そしてバンドが観察されなかったとき（−）で表された。ＭａｇｎａＰｕｒｅ精製されたＲＮＡのいくつかについての２〜３の例外はあるが、記載されたアプローチは、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒアッセイについて観察されたのと同じ終点結果を生じた。
【００８２】
前述から、そして先に提示されたように、本発明の特定の実施形態が、例示の目的のために本明細書中に記載されているが、種々の改変が、本発明の思想および範囲を逸脱することなくなされ得る。従って、本発明は、添付の特許請求の範囲によることを除いて制限されない。
【図面の簡単な説明】
【００８３】
【図１】図１は、本発明の局面に従って希薄な細胞を検出するための代表的な方法におけるステップを示すフローチャートである。
【図２】図２は、本発明の局面に従って希薄な細胞を検出するための代表的な微量流体デバイスの概略図である。
【図３Ａ】図３Ａは、本発明の局面に従って白血球細胞の標識を行う抗体のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの一連の断面図の１つである。
【図３Ｂ】図３Ｂは、本発明の局面に従って白血球細胞の標識を行う抗体のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの一連の断面図の１つである。
【図３Ｃ】図３Ｃは、本発明の局面に従って白血球細胞の標識を行う抗体のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの一連の断面図の１つである。
【図４Ａ】図４Ａは、本発明の局面に従って白血球細胞の標識、そして赤血球細胞の溶解の両方を行う抗体のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの一連の断面図の１つである。
【図４Ｂ】図４Ｂは、本発明の局面に従って白血球細胞の標識、そして赤血球細胞の溶解の両方を行う抗体のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの一連の断面図の１つである。
【図４Ｃ】図４Ｃは、本発明の局面に従って白血球細胞の標識、そして赤血球細胞の溶解の両方を行う抗体のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの一連の断面図の１つである。
【図４Ｄ】図４Ｄは、本発明の局面に従って白血球細胞の標識、そして赤血球細胞の溶解の両方を行う抗体のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの一連の断面図の１つである。
【図５Ａ】図５Ａは、本発明の局面に従って抗体標識された細胞をソートするための種々の代表的なサブ回路を示す種々の微量流体デバイスおよび構造の断面図である。
【図５Ｂ】図５Ｂは、本発明の局面に従って抗体標識された細胞をソートするための種々の代表的なサブ回路を示す種々の微量流体デバイスおよび構造の断面図である。
【図５Ｃ】図５Ｃは、本発明の局面に従って抗体標識された細胞をソートするための種々の代表的なサブ回路を示す種々の微量流体デバイスおよび構造の断面図である。
【図５Ｄ】図５Ｄは、本発明の局面に従って抗体標識された細胞をソートするための種々の代表的なサブ回路を示す種々の微量流体デバイスおよび構造の断面図である。
【図５Ｅ】図５Ｅは、本発明の局面に従って抗体標識された細胞をソートするための種々の代表的なサブ回路を示す種々の微量流体デバイスおよび構造の断面図である。
【図５Ｆ】図５Ｆは、本発明の局面に従って抗体標識された細胞をソートするための種々の代表的なサブ回路を示す種々の微量流体デバイスおよび構造の断面図である。
【図５Ｇ】図５Ｇは、本発明の局面に従って抗体標識された細胞をソートするための種々の代表的なサブ回路を示す種々の微量流体デバイスおよび構造の断面図である。
【図５Ｈ】図５Ｈは、本発明の局面に従って抗体標識された細胞をソートするための種々の代表的なサブ回路を示す種々の微量流体デバイスおよび構造の断面図である。
【図５Ｉ】図５Ｉは、本発明の局面に従って抗体標識された細胞をソートするための種々の代表的なサブ回路を示す種々の微量流体デバイスおよび構造の断面図である。
【図６Ａ】図６Ａは、本発明の局面に従って白血球細胞捕捉および溶解のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの一連の断面図の１つである。
【図６Ｂ】図６Ｂは、本発明の局面に従う白血球細胞捕捉および溶解のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの一連の断面図の１つである。
【図６Ｃ】図６Ｃは、本発明の局面に従う白血球細胞捕捉および溶解のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの一連の断面図の１つである。
【図６Ｄ】図６Ｄは、本発明の局面に従う白血球細胞捕捉および溶解のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの一連の断面図の１つである。
【図７Ａ】図７Ａは、本発明の局面に従う核酸捕捉および生成のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの一連の断面図の１つである。
【図７Ｂ】図７Ｂは、本発明の局面に従う核酸捕捉および生成のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの一連の断面図の１つである。
【図７Ｃ】図７Ｃは、本発明の局面に従う核酸捕捉および生成のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの一連の断面図の１つである。
【図７Ｄ】図７Ｄは、本発明の局面に従う核酸捕捉および生成のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの一連の断面図の１つである。
【図７Ｅ】図７Ｅは、本発明の局面に従う核酸捕捉および生成のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの一連の断面図の１つである。
【図７Ｆ】図７Ｆは、本発明の局面に従う核酸捕捉および生成のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの一連の断面図の１つである。
【図８Ａ】図８Ａは、本発明の局面に従う核酸増幅のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの断面図である。
【図８Ｂ】図８Ｂは、本発明の局面に従う核酸増幅のための代表的なサブ回路の作動を示す微量流体デバイスの断面図である。
【図８Ｃ】図８Ｃは、本発明の局面に従う核酸増幅のための図８Ａ〜８Ｂの微量流体デバイスを組み込む代表的なシステムの写真である。
【図９】図９のＡおよび図９のＢは、本発明の局面に従う図６Ａ〜６Ｄ、７Ａ〜７Ｆおよび８Ａ〜８Ｂのサブ回路を組み込む代表的な微量流体デバイスの断面図である。
【図１０】図１０は、実施例２の光サイクラーアッセイの結果を示す。
【図１】
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【図２】
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【図３Ａ】
2008526255.tif 000010
【図３Ｂ】
2008526255.tif 000011
【図３Ｃ】
2008526255.tif 000012
【図４Ａ】
2008526255.tif 000013
【図４Ｂ】
2008526255.tif 000014
【図４Ｃ】
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【図４Ｄ】
2008526255.tif 000016
【図５Ａ】
2008526255.tif 000017
【図５Ｂ】
2008526255.tif 000018
【図５Ｃ】
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【図５Ｄ】
2008526255.tif 000020
【図５Ｅ】
2008526255.tif 000021
【図５Ｆ】
2008526255.tif 000022
【図５Ｇ】
2008526255.tif 000023
【図５Ｈ】
2008526255.tif 000024
【図５Ｉ】
2008526255.tif 000025
【図６Ａ】
2008526255.tif 000026
【図６Ｂ】
2008526255.tif 000027
【図６Ｃ】
2008526255.tif 000028
【図６Ｄ】
2008526255.tif 000029
【図７Ａ】
2008526255.tif 000030
【図７Ｂ】
2008526255.tif 000031
【図７Ｃ】
2008526255.tif 000032
【図７Ｄ】
2008526255.tif 000033
【図７Ｅ】
2008526255.tif 000034
【図７Ｆ】
2008526255.tif 000035
【図８Ａ】
2008526255.tif 000036
【図８Ｂ】
2008526255.tif 000037
【図８Ｃ】
2008526255.tif 000038
【図９】
2008526255.tif 000039
【図１０】
2008526255.tif 000040
【国際調査報告】
2008526255.tif 000041
2008526255.tif 000042
2008526255.tif 000043