(57)【要約】バイオチップをベースにした、核酸結合タンパク質の試験方法は、以下の工程を包含する：１．試験されるべき複数の核酸結合タンパク質を含む生物学的サンプルに、核酸捕捉プローブを含む複数のグループの溶液を入れ、このようにして、核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を形成する工程であって；このような核酸捕捉プローブは、目的の核酸結合タンパク質と結合し得る結合配列の少なくともあるセグメントを含む、工程；２．このような核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を分離し、次いで、核酸捕捉プローブを回収する工程；３．工程２に記載の核酸捕捉プローブを、バイオチップの基板上にある複数の一本鎖ブロッティングプローブとハイブリダイズさせる工程であって；このようなブロッティングプローブの配列は、このような核酸捕捉プローブまたは、その鎖の片方と補償する、工程；４．ハイブリダイゼーションの結果を検出する工程。
2008520212.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
バイオチップをベースにした核酸結合タンパク質を検出するための方法であって、該方法は、以下：
１）数種のグループの核酸捕捉プローブを含有する溶液を、標的核酸結合タンパク質を含有する生物学的サンプルに加える工程であって、該工程によって、該核酸捕捉プローブと該核酸結合タンパク質との間で複合体が形成され、該核酸捕捉プローブは、少なくとも１つの該標的核酸結合タンパク質が結合し得る配列を含む、工程；
２）該核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を単離して、該複合体中の該核酸捕捉プローブを収集する工程；
３）工程２）において収集した捕捉プローブを、バイオチップの基板上に固定化した一本鎖固定化プローブとハイブリダイズさせる工程であって、該固定化プローブは、対応する核酸捕捉プローブ、または、該核酸捕捉プローブの一本の鎖に対して相補的な配列を含む、工程；および
４）該ハイブリダイゼーションの結果を検出する工程
を包含する、方法。
【請求項２】
請求項１に記載の方法であって、前記工程２）における核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を単離する工程が、前記工程１）からの混合物サンプルをゲル電気泳動し、ゲルスライスを切り出し、そして、ゲル精製もしくは電気溶出法によって回収して、単離された核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を得るプロセスである、方法。
【請求項３】
請求項１に記載の方法であって、前記工程２）における核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を単離する工程が、前記工程１）からの混合物サンプルをクロマトグラフィーに供し、単離された核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を得る工程である、方法。
【請求項４】
請求項１に記載の方法であって、前記工程２）における核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を単離する工程が、前記工程１）からの混合物サンプルを、タンパク質を吸着し得る膜を用いて濾過して、単離された核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を得る工程である、方法。
【請求項５】
請求項１に記載の方法であって、前記工程２）における核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を単離する工程が、各核酸結合タンパク質を特異的に認識する抗体を前記工程１）からの混合物サンプルに加え、そして、抗体精製法により単離して、単離された核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を得るプロセスである、方法。
【請求項６】
請求項１に記載の方法であって、前記工程２）における核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を単離する工程が、キャピラリー電気泳動によって前記工程１）からの混合物サンプルを分離し、そして、該核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を収集するプロセスである、方法。
【請求項７】
請求項１に記載の方法であって、前記核酸結合タンパク質が、二本鎖ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡ）結合タンパク質、ＲＮＡ結合タンパク質、一本鎖ＤＮＡ（ｓｓＤＮＡ）結合タンパク質、または、試験管内進化法によって生成された天然に存在しないタンパク質結合核酸アプタマーである、方法。
【請求項８】
前記ｄｓＤＮＡ結合タンパク質が、転写因子である、請求項７に記載の方法。
【請求項９】
前記核酸捕捉プローブが、核酸結合タンパク質によって結合され得る核酸配列を含む、請求項１〜８のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１０】
各グループの前記核酸捕捉プローブの一本の鎖が、突出末端配列を有する、請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
各固定化プローブが、その対応する核酸捕捉プローブの突出末端配列に対して相補的である、請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
前記核酸捕捉プローブの突出末端が、標識分子によって標識されている、請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
前記標識分子が、ビオチン、ジゴキシン、蛍光色素、量子ドット、金粒子、またはナノ粒子である、請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
請求項１〜８のいずれか１項に記載の方法であって、各グループの前記核酸捕捉プローブの一本の鎖が、３’突出末端を含み、そして、前記工程３）のハイブリダイゼーションの前に、前記収集された核酸捕捉プローブを増幅するための、プライマーを用いた増幅プロセスが行われ、該プライマーは、該核酸捕捉プローブの３’突出末端配列にハイブリダイズし得る、方法。
【請求項１５】
請求項１４に記載の方法であって、前記３’突出末端を有する核酸捕捉プローブの各グループにおける３’突出末端配列は同一であり、そして、前記プライマーの配列は、該３’突出末端配列に対して完全に相補的である、方法。
【請求項１６】
前記プライマーを増幅のために使用する場合、該プライマーは、標識分子で標識される、請求項１５に記載の方法。
【請求項１７】
前記プライマーの５’末端が標識される、請求項１６に記載の方法。
【請求項１８】
前記標識分子が、ビオチン、ジゴキシン、蛍光色素、量子ドット、金粒子、またはナノ粒子である、請求項１８に記載の方法。
【請求項１９】
前記プライマーを増幅のために使用する場合、標識分子で標識されたヌクレオチドが、前記増幅プロセスに加えられる、請求項１５に記載の方法。
【請求項２０】
前記標識分子が、ビオチン、ジゴキシン、蛍光色素、量子ドット、金粒子、またはナノ粒子である、請求項１９に記載の方法。
【請求項２１】
請求項１〜８のいずれか１項に記載の方法であって、各グループの前記捕捉プローブの一本の鎖が、前記３’突出末端および５’突出末端を含み、そして、前記工程３）のハイブリダイゼーションの前に、前記収集された核酸捕捉プローブを増幅するための、２つのプライマーを用いた増幅プロセスが行われ、該プライマーの一方は、３’突出末端および５’突出末端を含む該核酸捕捉プローブの３’突出末端配列にハイブリダイズし得、該プライマーのもう一方は、３’突出末端および５’突出末端を含む該核酸捕捉プローブの５’突出末端配列と同一の配列を含む、方法。
【請求項２２】
請求項２１に記載の方法であって、前記３’突出末端および５’突出末端を含む各核酸捕捉プローブの３’突出末端配列が同一であり；かつ、前記３’突出末端および５’突出末端を含む各核酸捕捉プローブの５’突出末端配列が同一であり、前記プライマーの一方は、３’突出末端および５’突出末端を含む該核酸捕捉プローブの３’突出末端配列にハイブリダイズし得、前記プライマーのもう一方は、３’突出末端および５’突出末端を含む該核酸捕捉プローブの５’突出末端配列と同一の配列を含む、方法。
【請求項２３】
前記２つのプライマーを増幅のために使用する場合、前記プライマーは標識分子で標識される、請求項２２に記載の方法。
【請求項２４】
前記プライマーの５’末端が標識される、請求項２３に記載の方法。
【請求項２５】
前記標識分子は、ビオチン、ジゴキシン、蛍光色素、量子ドット、金粒子、またはナノ粒子である、請求項２４に記載の方法。
【請求項２６】
前記２つのプライマーを増幅のために使用する場合、標識分子で標識されたヌクレオチドが、前記増幅プロセスに加えられる、請求項２２に記載の方法。
【請求項２７】
前記標識分子は、ビオチン、ジゴキシン、蛍光色素、量子ドット、金粒子、またはナノ粒子である、請求項２６に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、核酸結合タンパク質を検出するための方法、特に、バイオチップをベースにした核酸結合タンパク質を検出するための方法を開示する。
【背景技術】
【０００２】
（背景）
核酸結合タンパク質は、二本鎖ＤＮＡ（ｄｓＤＮＡ）結合タンパク質、一本鎖ＤＮＡ（ｓｓＤＮＡ）結合タンパク質、およびＲＮＡ結合タンパク質などを含む。
【０００３】
ｄｓＤＮＡ結合タンパク質は、ｄｓＤＮＡの特定の配列に結合する、タンパク質またはタンパク質分子複合体のグループである。ｄｓＤＮＡ結合タンパク質は、源核生物のリプレッサータンパク質およびオペレータータンパク質、ならびに、真核生物の転写因子（ＴＦ）などを含む。これらのｄｓＤＮＡ結合タンパク質は、ｄｓＤＮＡの特定の配列（オペレーター／プロモーター）への結合によって、標的遺伝子の発現を活性化、阻害、減少または増強し得る。原核生物において、リプレッサータンパク質およびオペレータータンパク質の機能は、比較的単純である。これらは、細胞の代謝に関する酵素をコードする遺伝子、および、抗生物質耐性遺伝子を調節して、外部環境に対する細胞の生理学的な活性を調節する。真核生物において、転写因子は、多くの活動に関与する。細胞周期、アポトーシスおよび腫瘍新生などは、全て、特定の転写因子に関連する。生物系、特に、真核生物の遺伝子発現調節ネットワークにおいて、遺伝子をコードするタンパク質の発現としては、転写因子を介した転写の活性化、転写、転写後修飾（スプライシング、ならびに、ＲＮＡの５’および３’のキャッピング）、翻訳、翻訳後修飾（リン酸化、グリコシル化、アセチル化など）が挙げられ、そして、転写前、転写後、および翻訳後の段階で調節される。
【０００４】
転写因子による転写の活性化は、遺伝子発現調節ネットワークにおける最初でかつ重要な段階である。外部環境に対する生物系のストレス応答の多くは、特定の転写因子による、特定の遺伝子の活性化または停止を伴う。研究は、多くの真核生物の遺伝子の発現が、１以上の特定の転写因子によって調節されることを示す。より複雑な生物は、より多くの転写因子と、より複雑な遺伝子発現調節機構を有する。推定すると、５％より多くのタンパク質をコードする遺伝子が、転写因子をコードする。多くの転写因子は、癌に密接に関連する。例えば、いくつかの転写因子（例えば、ＦＯＳおよびＣ−Ｍｙｃ）は、悪性腫瘍のみで発現されるか、または、癌遺伝子の発現を増強し得る；他の転写因子（例えば、ｐ５３およびＥ２Ｆ）は、弱く発現するか、または、悪性腫瘍においては発現しない。従って、生物における特定の転写因子、または、全ての転写因子のレベルをある時点で検出することは、それらの標的遺伝子のデータと組み合わせて、転写前の調節情報を得ることを可能にする。この情報は、組織における腫瘍新生を診断したり、薬物標的をスクリーニングしたり、細胞のストレス応答機構を研究したり、細胞のシグナル伝達経路の活性化および停止を観察したりするなどのために使用され得る。
【０００５】
ｃＤＮＡマイクロアレイ技術は、ゲノムの遺伝子をコードする全ての転写因子のｍＲＮＡプロファイリングを提供することを可能にする。しかしながら、活性な転写因子のみが、遺伝子発現の調節に寄与する。転写因子の活性は、通常、リン酸化、アセチル化、グリコシル化などを含む多数のタンパク質修飾、または、転写因子の細胞内局在化によって調節される。従って、活性な転写因子の量は、転写因子のｍＲＮＡまたはタンパク質の量と必ずしも相関するわけではない。例えば、転写因子Ｙｉｎ  Ｙａｎｇ  １（ＹＹ１）のｍＲＮＡおよびタンパク質の発現レベルは、細胞周期の間、安定しているが、活性なＹＹ１のレベルは、異なる細胞周期の段階において、大きく変化する。従って、ｃＤＮＡマイクロアレイ技術は、研究者が興味を抱く転写因子の発現情報を提供することができない。
【０００６】
「活性な」ｄｓＤＮＡ結合タンパク質を検出するための従来の方法は、ゲルシフト法（ＥＭＳＡ：電気泳動移動度シフトアッセイ、ゲルシフト、バンドシフト）である。試験されるタンパク質は、放射性同位元素で標識された既知のｄｓＤＮＡ分子と混合される。反応生成物は、非変性条件下で、ポリアクリルアミドゲル電気泳動により解析される。電気泳動の間に、タンパク質により結合されるｄｓＤＮＡ分子は、タンパク質によって結合されていないｄｓＤＮＡ分子よりも遅く泳動される。電気泳動の後、結果は、オートラジオグラフィーによって読み取られ得る。フィルム上では、分離した電気泳動バンドが見られ得、そして、ｄｓＤＮＡと核酸結合タンパク質との間の結合を検出するために使用される。近年、ゲルシフト技術は向上している。例えば、放射性同位元素の代わりに蛍光が使用されている。非特異的な結合を解決するために、ｄｓＤＮＡ結合タンパク質に特異的な抗体を用いて、ＤＮＡ−タンパク質複合体を検出する。この方法は、スーパーシフト（Ｓｕｐｅｒ−ｓｈｉｆｔ）と呼ばれる。ゲルシフト法は、ＤＮＡとタンパク質との間の相互作用の研究を促進した。しかし、この方法は明らかな欠点を有する：この方法は、複雑な手順を伴い；時間と労力がかかり（実験には丸一日かかる）；スループットが低く（一度に、１つのｄｓＤＮＡ結合タンパク質のみが検出される）；複数のｄｓＤＮＡ結合タンパク質が検出されるべき場合、大量のサンプルを必要とし；放射性同位元素が使用される場合、人間に対して有害であり；そして、化学色素もしくは蛍光色素が使用される場合、高額なものとなる。
【０００７】
ＭｅｒｃｕｒｙＴＭ転写因子キットは、ＢＤ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ  Ｃｌｏｎｔｅｃｈ  Ｉｎｃ．（Ｐａｌｏ  Ａｌｔｏ，ＣＡ）の製品である。このキットは、転写因子の検出のための９６ウェルプレートを提供する。１つの転写因子によって特異的に結合され得るｄｓＤＮＡプローブが、各ウェルの内面上に固定化される。タンパク質サンプルがウェル内に加えられた後、固定化されたｄｓＤＮＡプローブが、サンプル内の対応する転写因子と結合する。洗浄した後、転写因子を特異的に認識する一次抗体と、この一次抗体を特異的に認識する、酵素標識した二次抗体が、一つ一つ加えられる。化学色素が、アッセイの検出のために使用される。この方法は、従来のＥＭＳＡ法よりも速く、そして、生体に有害な放射性同位元素の代わりに化学色素が使用される。しかし、この方法は、依然としてスループットの低い方法であり、１つのウェル内で常に、１つの転写因子のみが試験され得る。多数のｄｓＤＮＡ結合タンパク質を検出するためには、大量のサンプルが必要とされる。転写因子特異的な抗体に対する必要性があり、そして、この転写因子抗体の多くは、市販されていない。
【０００８】
生物系において生理的な活動を調節する、いくつかの配列特異的なｓｓＤＮＡ結合タンパク質およびＲＮＡ結合タンパク質が存在する。ますます多くの、標的のタンパク質分子の特異的に結合し得る「抗体様」アプタマーが、近年の試験管内進化（ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ）法により獲得されている。これらの核酸結合タンパク質を検出するためのハイスループット法は存在しない。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
本発明の目的は、バイオチップをベースにした、ハイスループットで、高感度で、かつ、特異的な、核酸結合タンパク質の検出方法を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
（発明の開示）
本発明は、バイオチップをベースにした、核酸結合タンパク質の検出方法を提供し、この方法は、以下の工程を包含する：１）数種のグループの核酸捕捉プローブを含有する溶液を、標的核酸結合タンパク質を含有する生物学的サンプルに加える工程であって、この工程によって、核酸捕捉プローブと核酸結合タンパク質との間で複合体が形成され、この核酸捕捉プローブは、少なくとも１つの標的核酸結合タンパク質が結合し得る配列を含む、工程；２）核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を単離して、複合体中の核酸捕捉プローブを収集する工程；３）工程２）において収集した捕捉プローブを、バイオチップの基板上に固定化した一本鎖固定化プローブとハイブリダイズさせる工程であって、この固定化プローブは、対応する核酸捕捉プローブ、または、核酸捕捉プローブの一本の鎖に対して相補的な配列を含む、工程；および、４）ハイブリダイゼーションの結果を検出する工程。
【００１１】
いくつかの実施形態において、工程２）における核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を単離する工程は、以下に記載される５つのプロセスのいずれかを用いて行われ得る：ａ）工程１）からの混合物サンプルをゲル電気泳動し、ゲルスライスを切り出し、そして、ゲル精製もしくは電気溶出法によって回収して、単離された核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を得る；ｂ）工程１）からの混合物サンプルをクロマトグラフィーに供し、単離された核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を得る；ｃ）工程１）からの混合物サンプルを、タンパク質を吸着し得る膜を用いて濾過して、単離された核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を得る；ｄ）各核酸結合タンパク質を特異的に認識する抗体を工程１）からの混合物サンプルに加え、そして、抗体精製法（例えば、抗体に結合させるために、プロテインＡ／Ｇコーティングアガロースビーズを用いる）により単離して、単離された核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を得る；ならびに、ｅ）キャピラリー電気泳動装置によって工程１）からの混合物サンプルを分離し、そして、核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体を自動的に収集する。
【００１２】
いくつかの実施形態において、本発明（「末端標識法」と呼ぶ）は、核酸結合タンパク質（例えば、ｄｓＤＮＡ結合タンパク質、ｓｓＤＮＡ結合タンパク質、ＲＮＡ結合タンパク質（例えば、ＨｕＢ、ＨｕＣ、ＥＬＡＶなど）、試験管内進化法によって生成された天然に存在しないタンパク質結合核酸アプタマー（例えば、トロンビンアプタマー））を検出するために使用される。
【００１３】
好ましくは、核酸結合タンパク質は、ｄｓＤＮＡ結合タンパク質であり；より好ましくは、ＡＰ１、Ｓｐ１、ｐ５３、Ｅ２Ｆなどのような転写因子である。
【００１４】
本発明の方法を用いた検出の好ましい実施形態において、上記核酸捕捉プローブは、標的核酸結合タンパク質に結合し得る核酸配列を含み；そして、各核酸捕捉プローブの一本の鎖は、突出末端を有する。
【００１５】
核酸捕捉プローブと固定化プローブとの間のハイブリダイゼーション親和性を高めるために、上記固定化プローブは、対応する核酸捕捉プローブの突出末端配列に対して完全に相補的である。
【００１６】
ハイブリダイゼーションシグナルを検出するために、核酸捕捉プローブの突出末端は、標識分子で標識される。好ましい標識分子は、ビオチン、ジゴキシン、蛍光色素、量子ドット、金粒子またはナノ粒子である。より高い感度に達するために、以下のような改善がなされている（「事前ハイブリダイゼーション一本鎖増幅法」）：上記核酸捕捉プローブの各々の一本の鎖は、３’突出末端を有し；工程３）のハイブリダイゼーション反応の前に、収集された核酸捕捉プローブが、１つのプライマーを用いて増幅され、このプライマーの配列は、後の核酸増幅手順のための３’突出末端配列とハイブリダイズし得る。
【００１７】
好ましくは、各核酸捕捉プローブの３’突出末端配列は同一であり、そして、プライマー配列は、この３’突出末端配列に対して完全に相補的である。
【００１８】
ハイブリダイゼーションシグナルを簡便に検出するために、標識分子が、この系に加えられ得る。プライマーは、増幅の前に末端が標識され得るか；または、標識されたヌクレオチドが、増幅材料に加えられ、そして、増幅の間に使用され得る。好ましい標識分子は、ビオチン、ジゴキシン、蛍光色素、量子ドット、金粒子またはナノ粒子である。
【００１９】
より高い感度に達するために、以下のような改善がなされている（「事前ハイブリダイゼーション二本鎖増幅法」）：上記核酸捕捉プローブの各々の一本の鎖は、３’突出末端および５’突出末端の両方を有し；工程３）のハイブリダイゼーション反応の前に、収集された核酸捕捉プローブが、２つのプライマーを用いて増幅され、このプライマーのうちの一方のプライマーは、３’突出末端および５’突出末端の両方を有する核酸捕捉プローブの鎖の３’突出末端とハイブリダイズし得、そして、もう一方のプライマー配列は、３’突出末端および５’突出末端の両方を有する核酸捕捉プローブの鎖の５’突出末端と同じである。
【００２０】
好ましくは、３’突出末端および５’突出末端の両方を有する核酸捕捉プローブの各々における３’突出末端配列は同一であり、かつ、３’突出末端および５’突出末端の両方を有する核酸捕捉プローブの各々における５’突出末端配列は同一であり、そして、使用されるプライマーのうちの一方の配列は、３’突出末端および５’突出末端の両方を有する核酸捕捉プローブの３’突出末端配列にハイブリダイズし得、もう一方のプライマー配列は、３’突出末端および５’突出末端の両方を有する核酸捕捉プローブの５’突出末端配列と同一の配列である。
【００２１】
二本鎖増幅法の作業手順は、図７に示される。捕捉プローブ１と標的タンパク質３（図面において、丸と三角で表される）とを混合する；核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体４を単離し、そして、複合体中の捕捉プローブを収集する；２つのプライマー６を使用して、収集した捕捉プローブを増幅する；増幅生成物を、バイオチップ上に固定化した固定化プローブ２とハイブリダイズさせる；そして、ハイブリダイゼーションシグナルを検出して、結果を得る。捕捉プローブ、固定化プローブおよびプライマーのための好ましい設計は、図８に示される：捕捉プローブは、標的タンパク質結合配列を含み；２本の鎖のうちの１本の鎖が、３’突出末端および５’突出末端を有する；プライマー１の配列は、３’突出末端に対して相補的であり、かつ、プライマー２の配列は、５’突出末端と同じであり；そして、固定化プローブの配列は、結合配列と同じである。
【００２２】
ハイブリダイゼーションシグナルを簡便に検出するために、標識分子が、この系に加えられ得る。プライマーは、増幅の前に末端が標識され得るか；または、標識されたヌクレオチドが、増幅材料に加えられ、そして、増幅の間に使用され得る。好ましい標識分子は、ビオチン、ジゴキシン、蛍光色素、量子ドット、金粒子またはナノ粒子である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２３】
（好ましい実施形態）
（実施例１：３つの核酸結合タンパク質ＡＰ１、ＮＦκＢおよびＳｐ１を同時に検出するためのＤＮＡバイオチップの使用（末端標識法））
図１に示すように、末端標識した捕捉プローブ１を、標的タンパク質３と混合した（図面において、丸と三角で表す）。形成した核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体４を、次いで単離し、そして、この複合体中の捕捉プローブを収集した。この収集した捕捉プローブを、バイオチップ５の上に固定化した固定化プローブ２とハイブリダイズさせ、そして、ハイブリダイゼーションシグナルを検出して、結果を得た。
【００２４】
図２は、捕捉プローブおよび固定化プローブのための好ましい設計を示す。二本鎖捕捉プローブは、標的核酸結合タンパク質が結合する配列を含む。捕捉プローブのうちの１本の鎖は、標識分子（図面ではビオチン）で標識された突出末端を含む。固定化プローブは、捕捉プローブの長い方の鎖に対して相補的である。
【００２５】
（材料）
転写因子ＡＰ−１（ｃ−Ｊｕｎ）（＃Ｅ３０６１）、ＮＦκＢ（ｐ５０）（＃Ｅ３７７０）およびＳｐ１（＃Ｅ６３９１）を、Ｐｒｏｍｅｇａ（Ｍａｄｉｓｏｎ，ＷＩ）から入手した。一般的な結合緩衝液は、１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ  ７．５）、４％  グリセロール、１ｍＭ  ＭｇＣｌ２、０．５ｍＭ  ＥＤＴＡ、５ｍＭ  ＤＴＴ、５０ｍＭ  ＮａＣｌおよび０．０５ｍｇ／ｍＬ  ポリ（ｄＩ−ｄＣ）・（ｄＩ−ｄＣ）を含んだ。電気泳動バッファーは、０．５ｘＴＢＥ（０．９Ｍ  Ｔｒｉｓ、０．９Ｍ  ホウ酸および０．０２Ｍ  ＥＤＴＡ，ｐＨ  ８．０）であった。ＰＢＳＴ（ＰＢＳ、０．１％  Ｔｗｅｅｎ  ２０）を洗浄緩衝液として使用した。電気泳動のためのアガロースは、Ｂｉｏｗｅｓｔ（Ｍｉａｍｉ，ＦＬ）から入手した。ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）は、Ａｍｒｅｓｃｏ（Ｓｏｌｏｎ，ＯＨ）から入手した。Ｃｙ３標識ストレプトアビジンは、Ａｍｅｒｓｈａｍ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ（Ｕｐｐｓａｌａ，Ｓｗｅｄｅｎ）から入手した。
【００２６】
（実験手順）
Ａ．ＤＮＡプローブの調製：全てのプローブは、Ｂｉｏａｓｉａ  Ｉｎｃ．（Ｓｈａｎｇｈａｉ，Ｃｈｉｎａ）により合成され、その配列は表１に列挙する。表１において、ＡＰ−１−ＩＰは、ＡＰ−１に対する固定化プローブを表し；ＡＰ−１−ＬＰおよびＡＰ−１−ＦＰは、ＡＰ１のための捕捉プローブを形成し；そして、ＡＰ−１−ＣＰおよびＡＰ−１−ＦＰは、ＡＰ−１結合のための競合プローブを形成した。他のプローブの設計は、ＡＰ−１の設計と同様であった。この実施例におけるＬＰプローブの突出末端の配列は、５’−ＣＧＧＧＡ−３’であった。各グループのための固定化プローブを、まず、水中に溶解し、次いで、５０％ＤＭＳＯ水溶液で希釈して、１０μＭの最終プローブ濃度にした。タンパク質捕捉プローブを水中に溶解し、そして、それぞれ同じグループからの対応するプローブ（各捕捉プローブグループにおいてＦＰおよびＬＰ）とアニールさせて、二本鎖ＤＮＡ分子を形成させた。各二本鎖ＤＮＡ分子は、６０ｎＭの最終濃度を有した。
【００２７】
Ｂ．ＤＮＡチップの調製：ＰｉｘＳｙｓ５５００機械式アレイ作成装置（Ｃａｒｔｅｓｉａｎ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｒｖｉｎｅ，ＣＡ）を用いて、図３Ａのアレイ形式に従い、アミノ誘導体化ガラススライド上に、上記の固定化プローブをスポットした。２つの隣接するスポット間の中心間距離は、３５０μｍであった。スポッティングの後、スライドを８０℃にて１時間インキュベートした。次いで、２５０ｍＪのＳｔｒａｔａｌｉｎｋｅｒセットを用いて、スライド表面上にスポットされた核酸分子を架橋して、固定化した。図３Ａにおいて、ＡＰ１のための固定化プローブをＡ１〜Ａ５にスポットし；ＮＦκＢのための固定化プローブをＢ１〜Ｂ５にスポットし；Ｓｐ１のための固定化プローブをＣ１〜Ｃ５にスポットし；ＴＦＩＩＤのための固定化プローブをＤ１〜Ｄ５にスポットし；ＮＣのための固定化プローブをＥ１〜Ｅ５にスポットし；そして、ＨＣのための固定化プローブをＦ１〜Ｆ５にスポットした。Ａ６、Ｂ６、Ｃ６、Ｄ６、Ｅ６およびＦ６には、コントロール（蛍光色素で標識した核酸分子）をスポットした。スポッティングの後、スライドを走査してコントロールを検出し、スポッティング手順が適切であったことを示した。
【００２８】
Ｃ．核酸−タンパク質結合系の調製：３つの転写因子（０．１μｇ  ＡＰ１、３００ｎｇ  ＮＦκＢおよび１．０μｇ  Ｓｐ１）およびタンパク質捕捉プローブ（ＬＰおよびＦＰのアニールさせた生成物）を混合した。一般的な結合緩衝液を、１倍の最終濃度に達するように加えた。この反応混合物を、室温で３０分間インキュベートした。図３Ｃ、３Ｄおよび３Ｅに示される実験において、反応に、競合プローブを加えた。
【００２９】
Ｄ．核酸−タンパク質結合複合体の単離：２％のアガロースゲルおよびＴＢＥ電気泳動バッファーを調製し、そして、４℃に冷却した。上記の反応混合物を、アガロースゲルのサンプルウェルにロードした。電気泳動を、１２０Ｖにて２０分間行った。ブロモフェノールブルーの位置に基づいて、該当するゲルのスライスを切り出した。
【００３０】
Ｅ．核酸の抽出：ＱＩＡＥＸ  ＩＩゲル精製キットを、製造業者の説明書に従って用いることによって、ゲルスライスから核酸を収集した。
【００３１】
Ｆ．バイオチップを用いたハイブリダイゼーション解析：これより前の工程において得られた核酸を、ハイブリダイゼーション緩衝液（ＨＣ−ＬＰプローブを含む）と混合し、１５ｍｌにした。ハイブリダイゼーション緩衝液は、３×ＳＳＣおよび０．１％  ＳＤＳを含んだ。このハイブリダイゼーション混合物を、スライドとともに６５℃で１時間インキュベートした。このスライドを、０．２×ＳＳＣおよび０．１％  ＳＤＳを含有する洗浄緩衝液を用いて、室温にて１０分間洗浄した。このスライドを、１０００ｒｐｍで回転させることによって乾燥させた。次いで、このスライドを、３７℃にて３０分間１％  ＢＳＡでブロッキングした。このスライドを、室温にて１０分間ＰＢＳＴで洗浄し、次いで、１０００ｒｐｍで回転させることによって乾燥させた。１μｇ／ｍｌのＣｙ３標識ストレプトアビジンを含有する１５μｌの溶液を、このスライドの表面に加え、そして、３７℃にて１時間反応させた。このスライドを、室温にて１０分間ＰＢＳＴで洗浄した。このスライドを、１０００ｒｐｍで回転させることによって乾燥させた。このスライドを、スキャンアレイ４０００画像スキャナで走査し、そして、ＧｅｎｅＰｉｘを用いて像を解析した。図３Ａは、アレイ形式を示す。図３Ｂは、「末端標識法」を用いた、１枚のスライド上での３つの核酸結合タンパク質の同時検出の結果を示す。図３Ｃは、核酸結合タンパク質ＡＰ１に対する競合プローブを反応系に加えた場合の、「末端標識法」を用いた、１枚のスライド上での３つの核酸結合タンパク質の同時検出の結果を示す。図３Ｄは、核酸結合タンパク質ＮＦκＢに対する競合プローブを反応系に加えた場合の、「末端標識法」を用いた、１枚のスライド上での３つの核酸結合タンパク質の同時検出の結果を示す。図３Ｅは、核酸結合タンパク質Ｓｐ１に対する競合プローブを反応系に加えた場合の、「末端標識法」を用いた、１枚のスライド上での３つの核酸結合タンパク質の同時検出の結果を示す。これらの結果は、本発明の「末端標識法」が、３つの転写因子を容易に検出し得ることを示す。ＮＣ内の配列は、原核生物のファージのプロモーターに由来し、真核生物の転写因子結合配列とは有意に異なるので、そして、それゆえ、上記の転写因子のいずれにも結合し得ない。従って、ＮＣプローブに由来するシグナルは、常にネガティブであった。ＨＣは、ハイブリダイゼーションコントロールとして使用した。ＨＣは、ハイブリダイゼーション前に加え、そして、異なるスポッティング形式間での規準化のために使用した。従って、ＨＣのシグナルは、常にポジティブである。
【００３２】
【表１】
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（実施例２：３つの核酸結合タンパク質ＡＰ１、ＮＦκＢおよびＳｐ１を同時に検出するためのＤＮＡバイオチップの使用（一本鎖増幅法））
図４は、一本鎖増幅法を用いた検出の作業概略を示す。捕捉プローブ１を、標的タンパク質３と混合した（図面において、丸と三角で表す）。形成した核酸捕捉プローブ−核酸結合タンパク質複合体４を単離し、そして、捕捉プローブを収集した。プライマー６を使用して、この収集した捕捉プローブを増幅し、そして、この増幅生成物を、バイオチップ５の上に固定化した固定化プローブ２とハイブリダイズさせた。ハイブリダイゼーションシグナルを検出して、結果を得た。
【００３３】
図５は、捕捉プローブ、固定化プローブおよびプライマーのための好ましい設計を示す。二本鎖捕捉プローブは、核酸結合タンパク質が結合する配列を含み、そして、一本の鎖が、３’突出末端を含む。プライマーの配列は、この３’突出末端に対して相補的である。固定化プローブの配列は、結合配列と一致する。
【００３４】
（材料）
転写因子ＡＰ−１（ｃ−Ｊｕｎ）（＃Ｅ３０６１）、ＮＦκＢ（ｐ５０）（＃Ｅ３７７０）およびＳｐ１（＃Ｅ６３９１）を、Ｐｒｏｍｅｇａ（Ｍａｄｉｓｏｎ，ＷＩ）から入手した。一般的な結合緩衝液は、１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ  ７．５）、４％  グリセロール、１ｍＭ  ＭｇＣｌ２、０．５ｍＭ  ＥＤＴＡ、５ｍＭ  ＤＴＴ、５０ｍＭ  ＮａＣｌおよび０．０５ｍｇ／ｍＬ  ポリ（ｄＩ−ｄＣ）・（ｄＩ−ｄＣ）を含んだ。電気泳動バッファーは、０．５ｘＴＢＥ（０．９Ｍ  Ｔｒｉｓ、０．９Ｍ  ホウ酸および０．０２Ｍ  ＥＤＴＡ，ｐＨ  ８．０）であった。洗浄緩衝液は、ＰＢＳＴ（ＰＢＳ、０．１％  Ｔｗｅｅｎ  ２０）であった。電気泳動のためのアガロースは、Ｂｉｏｗｅｓｔ（Ｍｉａｍｉ，ＦＬ）から入手した。ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）は、Ａｍｒｅｓｃｏ（Ｓｏｌｏｎ，ＯＨ）から入手した。Ｃｙ３標識ストレプトアビジンは、Ａｍｅｒｓｈａｍ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ（Ｕｐｐｓａｌａ，Ｓｗｅｄｅｎ）から入手した。
【００３５】
（実験手順）
Ａ．ＤＮＡプローブの調製：全てのプローブは、Ｂｉｏａｓｉａ  Ｉｎｃ．（Ｓｈａｎｇｈａｉ，Ｃｈｉｎａ）により合成され、その配列は表２に列挙する。プローブの各グループにおいて、ＬＦＰおよびＬＰは対応する転写因子のための捕捉プローブを形成し；そして、ＩＰプローブは、固定化プローブであった。各グループにおける固定化プローブの調製は、実施例１の「ＤＮＡプローブの調製」と同様である。タンパク質捕捉プローブを水中に溶解させ、そして、対応するプローブ（各グループにおいてＬＦＰプローブおよびＬＰプローブ）とアニールさせて、二本鎖ＤＮＡを形成させた。各プローブグループの最終濃度は６０ｎＭであった。
【００３６】
Ｂ．ＤＮＡチップの調製：手順は実施例１の「ＤＮＡチップの調製」と同様である。
【００３７】
Ｃ．核酸−タンパク質結合系の調製：３つの転写因子（０．１μｇ  ＡＰ１、１００ｎｇ  ＮＦκＢおよび１．０μｇ  Ｓｐ１）およびタンパク質捕捉プローブを混合した。一般的な結合緩衝液を、１倍の最終濃度に達するように加えた。この結合反応を、室温で３０分間行った。
【００３８】
Ｄ．核酸−タンパク質結合複合体の単離：２％のアガロースゲルおよびＴＢＥ電気泳動バッファーを調製し、そして、４℃に冷却した。上記の反応混合物を、アガロースゲルのサンプルウェルにロードした。電気泳動を、１２０Ｖにて２０分間行った。ブロモフェノールブルーの位置に基づいて、該当するゲルのスライスを切り出した。
【００３９】
Ｅ．核酸の抽出：ＱＩＡＥＸ  ＩＩゲル精製キットを、製造業者の説明書に従って用いて、ゲルスライスから核酸を収集した。溶出には、２０μｌの溶出緩衝液を用いた。
【００４０】
Ｆ．ＤＮＡチップを用いたハイブリダイゼーション解析：抽出したＤＮＡを真空で乾燥させ、次いで、５μｌの水に再度溶解させた。核酸増幅のために、ｄＮＴＰ、ＰＣＲ緩衝液およびＣｙ３標識Ｔ７  Ｐｒｏプライマーを加えた。ＰＣＲのサイクルは、９５℃で５分間；９５℃で３０秒間、５３℃で３０秒間、７２℃で２０秒間、を４０回の増幅サイクル；そして、７３℃で７分間であった。この増幅生成物を真空で乾燥させ、次いで、５μｌの水に再度溶解させた。この溶解した増幅生成物を、３×ＳＳＣおよび０．１％  ＳＤＳを含有する、１５μｌのハイブリダイゼーション溶液（このハイブリダイゼーション溶液にはＨＣ−ＬＰプローブを加えた）に入れた。このハイブリダイゼーション溶液を、ＤＮＡチップに加え、６５℃にて１時間ハイブリダイゼーションさせた。次いで、０．２×ＳＳＣおよび０．１％  ＳＤＳを含有する洗浄緩衝液を用いて、室温にて１０分間このスライドを洗浄した。このスライドを、１０００ｒｐｍで回転させることによって乾燥させた。Ｓｃａｎａｒｒａｙ  ４０００画像スキャナを用いてスライドを走査し、そして、ＧｅｎｅＰｉｘを用いて像を解析した。
【００４１】
実施例１に記載される「末端標識法」を用いて、この実施例において３つの転写タンパク質を検出し、そして、この「末端標識法」を、結果の比較のためのコントロールとして使用した。
【００４２】
結果を、図６Ａおよび図６Ｂに示す。図６Ａは、一本鎖増幅法を用いた場合の検出の結果を示す。図６Ｂは、実施例１の「末端標識法」を用いた場合の検出の結果を示す。この図において、Ａ１〜Ａ５は、ＡＰ１の検出結果であり；Ｂ１〜Ｂ５は、ＮＦκＢの検出結果であり；Ｃ１〜Ｃ５は、ハイブリダイゼーションコントロールであり（ＨＣ；ＨＣ−ＩＰおよびＨＣ−ＬＰの配列については表１を参照のこと）；Ｄ１〜Ｄ５は、Ｓｐ１の検出結果である。これらの結果は、一本鎖増幅法を用いることで、検出感度が向上し；末端標識法を用いても検出できなかったシグナルが、単一のプライマー増幅によって検出されたことを示した。
【００４３】
【表２】
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【産業上の利用可能性】
【００４４】
本発明は、核酸結合タンパク質、特に、転写因子を検出するためのバイオチップをベースにした方法を使用する。この方法は、捕捉プローブと固定化プローブとの間のハイブリダイゼーションシグナルの検出を包含する。これは、非常に感度が高く、ハイスループットの方法である。さらに、本発明の２つの改善された方法（ハイブリダイゼーション前の一本鎖増幅、ハイブリダイゼーション前の二本鎖増幅）およびプライマーが予め標識され得る場合、各グループの捕捉プローブを標識する必要がない。実験の費用は、有意に低減され得る。本発明の方法は、疾患の診断、薬物標的のスクリーニング、および、疾患プロセスの研究に広く使用され得る。
【図面の簡単な説明】
【００４５】
【図１】図１は、本発明において使用される「標識方法」を用いた場合の、複数の核酸結合タンパク質の検出の概略を示す。
【図２】図２は、本発明において使用される「末端標識法」を用いた場合の、複数の核酸結合タンパク質の検出のためのプローブ構造の概略を示す。
【図３Ａ】図３Ａは、実施例１において使用されるアレイ形式を示す。
【図３Ｂ】図３Ｂは、実施例１における、３つの核酸結合タンパク質の同時検出の実験結果を示す。
【図３Ｃ】図３Ｃは、競合因子であるＡＰ１結合プローブが加えられた場合の、実施例１における、３つの核酸結合タンパク質の同時検出の実験結果を示す。
【図３Ｄ】図３Ｄは、競合因子であるＮＦκＢ結合プローブが加えられた場合の、実施例１における、３つの核酸結合タンパク質の同時検出の実験結果を示す。
【図３Ｅ】図３Ｅは、競合因子であるＳｐ１結合プローブが加えられた場合の、実施例１における、３つの核酸結合タンパク質の同時検出の実験結果を示す。
【図４】図４は、本発明において使用される「一本鎖増幅法」を用いた場合の、複数の核酸結合タンパク質の検出の作業概略を示す。
【図５】図５は、本発明において使用される「一本鎖増幅法」を用いた場合の、複数の核酸結合タンパク質を検出するためのプローブおよびプライマーの設計の概略を示す。
【図６Ａ】図６Ａは、実施例２における「一本鎖増幅法」を用いた場合の、３つの核酸結合タンパク質（ＡＰ１、ＮＦκＢおよびＳｐ１）の同時検出の実験結果を示す。
【図６Ｂ】図６Ｂは、実施例１に記載される「末端標識法」を用いた場合の、実施例２における実験結果を示す。
【図７】図７は、本発明において使用される「二本鎖増幅法」を用いた場合の、複数の核酸結合タンパク質の検出の作業概略を示す。
【図８】図８は、本発明において使用される「二本鎖増幅法」を用いた場合の、複数の核酸結合タンパク質を検出するためのプローブおよびプライマーの設計の概略を示す。
【図１】
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【図２】
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【図３Ａ】
2008520212.tif 000007
【図３Ｂ】
2008520212.tif 000008
【図３Ｃ】
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【図３Ｄ】
2008520212.tif 000010
【図３Ｅ】
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【図４】
2008520212.tif 000012
【図５】
2008520212.tif 000013
【図６Ａ】
2008520212.tif 000014
【図６Ｂ】
2008520212.tif 000015
【図７】
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【図８】
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【手続補正書】
【提出日】平成20年1月22日(2008.1.22)
【手続補正１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】配列表
【補正方法】追加
【補正の内容】
【配列表】
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【国際調査報告】
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2008520212.tif 000019
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