(57)【要約】開示されるものは、複数の性質の驚くべき組み合わせを有する、新規ホスファチジルセリン結合性構築物、および、ある範囲の、その診断性および治療性接合体である。この新規構築物は、疾患においてホスファチジルセリン標的に効果的に結合し、その破壊を促進し、および、結合される画像用または治療用因子を疾患部位に特異的に送達する。さらにまた開示されるものは、腫瘍血管標的輸送、癌の診断および治療、および、ウイルス感染およびその他の疾患の治療のために、本新規構築物組成物、治療接合体、および、それらの組み合わせを使用する方法である。【特許請求の範囲】
【請求項１】
少なくとも第１のホスファチジルセリン結合性タンパク質に作動可能に結合した抗体Ｆｃ領域を含む構築物。
【請求項２】
前記ホスファチジルセリン結合性タンパク質が、プロテインＣ、プロテインＳ、ＩＩ因子（プロトロンビン）、Ｖ因子、ＶＩＩ因子、ＩＸ因子、またはＸ因子である、請求項１に記載の構築物。
【請求項３】
前記ホスファチジルセリン結合性タンパク質が、Ｍｅｒ、ＰＳ−結合性スカベンジャーレセプター、α５β３インテグリン、ＣＲ３補体レセプター、またはＣＲ４補体レセプターである、請求項１に記載の構築物。
【請求項４】
前記ホスファチジルセリン結合性タンパク質が、ホスファチジルセリンレセプターのＰＳｒである、請求項１に記載の構築物。
【請求項５】
前記ホスファチジルセリン結合性タンパク質が、β２−糖タンパク質Ｉ（β２ＧＰＩ）である、請求項１に記載の構築物。
【請求項６】
前記抗体Ｆｃ領域が、２個のβ２ＧＰＩポリペプチドに作動可能に結合し、各β２ＧＰＩポリペプチドは、β２ＧＰＩの少なくともドメインＶを含む、請求項１に記載の構築物。
【請求項７】
前記抗体Ｆｃ領域が、２個のβ２ＧＰＩポリペプチドに作動可能に結合し、各ポリペプチドがβ２ＧＰＩの少なくともドメインＶを含み、前記β２ＧＰＩポリペプチドは、前記Ｆｃ領域に結合されると、二量体を形成する、請求項６に記載の構築物。
【請求項８】
前記β２ＧＰＩポリペプチドが、それぞれ、β２ＧＰＩの、少なくともドメインＶを含み、かつ、β２ＧＰＩのドメインＩを実質的に欠く、請求項７に記載の構築物。
【請求項９】
前記β２ＧＰＩポリペプチドが、それぞれ、β２ＧＰＩの、少なくともドメインＩＶおよびドメインＶを含む、請求項７に記載の構築物。
【請求項１０】
前記β２ＧＰＩポリペプチドが、それぞれ、β２ＧＰＩの、少なくともドメインＩＩＩ、ドメインＩＶ、およびドメインＶを含む、請求項９に記載の構築物。
【請求項１１】
前記β２ＧＰＩポリペプチドが、それぞれ、β２ＧＰＩの、少なくともドメインＩＩ、ドメインＩＩＩ、ドメインＩＶ、およびドメインＶを含む、請求項１０に記載の構築物。
【請求項１２】
前記β２ＧＰＩポリペプチドが、それぞれ、β２ＧＰＩの、少なくともドメインＩ、ドメインＩＩ、ドメインＩＩＩ、ドメインＩＶ、およびドメインＶを含む、請求項１１に記載の構築物。
【請求項１３】
前記β２ＧＰＩポリペプチドが、それぞれ、β２ＧＰＩの、少なくともニックドメインＶを含む、請求項６〜１２のいずれか１項に記載の構築物。
【請求項１４】
前記β２ＧＰＩポリペプチドが、それぞれ、ヒトのβ２ＧＰＩポリペプチドである、請求項６〜１３のいずれか１項に記載の構築物。
【請求項１５】
前記抗体Ｆｃ領域が、抗体ヒンジ、および、抗体重鎖定常ドメインＣＨ２およびＣＨ３を含む、請求項１〜１４のいずれかに記載の構築物。
【請求項１６】
前記抗体Ｆｃ領域が、抗体ヒンジ、抗体重鎖定常ドメインＣＨ２とＣＨ３、および、抗体重鎖定常ドメインＣＨ１またはＣＨ４の内の少なくとも一つを含む、請求項１〜１５のいずれかに記載の構築物。
【請求項１７】
前記抗体Ｆｃ領域が、ヒトの抗体Ｆｃ領域である、請求項１〜１６のいずれかに記載の構築物。
【請求項１８】
前記抗体Ｆｃ領域が、ヒトのＩｇＧ１（γ１）、またはヒトのＩｇＧ３（γ３）抗体由来のＦｃ領域である、請求項１〜１７のいずれかに記載の構築物。
【請求項１９】
前記抗体Ｆｃ領域が、マウスのＩｇＧ２ａ（γ２ａ）、またはマウスのＩｇＧ２ｂ（γ２ｂ）抗体由来のＦｃ領域である、請求項６から１６のいずれか１項に記載の構築物。
【請求項２０】
前記抗体Ｆｃ領域が、前記ホスファチジルセリン結合タンパク質に、直接的共有結合によってまたは化学的架橋リンカーを介して、作動可能に結合する、請求項１〜１９のいずれかに記載の構築物。
【請求項２１】
前記抗体Ｆｃ領域が、前記ホスファチジルセリン結合タンパク質に対し、組み換え発現によって融合タンパク質として作動可能に結合される、請求項１〜２０のいずれかに記載の構築物。
【請求項２２】
前記構築物が、少なくとも第１の生物学的因子に作動可能にさらに結合する、請求項１〜２１のいずれかに記載の構築物。
【請求項２３】
前記構築物が、少なくとも第１の治療因子に作動可能にさらに結合する、請求項２２に記載の構築物。
【請求項２４】
前記構築物が、抗細胞性因子または細胞傷害性因子に作動可能にさらに結合する、請求項２３に記載の構築物。
【請求項２５】
前記構築物が、リシン、ゲロニン、アブリン、ジフテリア、シュードモナス、または百日咳菌毒素に作動可能にさらに結合する、請求項２４に記載の構築物。
【請求項２６】
前記構築物が、サイトカインおよびケモカインに作動可能にさらに結合する、請求項２３に記載の構築物。
【請求項２７】
前記構築物が、ＩＬ−２、ＩＬ−１２、ＴＮＦ−α、インターフェロン、またはＬＥＣに作動可能にさらに結合する、請求項２６に記載の構築物。
【請求項２８】
前記構築物が、Ｖ型ＡＴＰアーゼインヒビターに作動可能にさらに結合する、請求項２３に記載の構築物。
【請求項２９】
前記構築物が、サリチリハラミド、コンカナマイシン、またはバフィロマイシンに作動可能にさらに結合する、請求項２８に記載の構築物。
【請求項３０】
前記構築物が、タンパク質合成インヒビターに作動可能にさらに結合する、請求項２３に記載の構築物。
【請求項３１】
前記構築物が、シンベリン、ペデリン、イルシニアスタチンＡに作動可能にさらに結合する、請求項３０に記載の構築物。
【請求項３２】
前記構築物が、化学療法剤、抗脈管形成剤、アポトーシス誘発剤、抗チューブリン剤、抗生物質、放射性同位元素、または凝固剤に作動可能にさらに結合する、請求項２３に記載の構築物。
【請求項３３】
前記構築物が、タキソール、ドセタキセル、パクリタキセル、シスプラチン、ゲムシタビン、コンブレタスタチン、ドキソルビシン、またはアドリアマイシンに作動可能にさらに結合する、請求項３２に記載の構築物。
【請求項３４】
前記構築物が、砒素の放射性同位元素に作動可能にさらに結合する、請求項３２に記載の構築物。
【請求項３５】
前記構築物が、短縮型組織因子に作動可能にさらに結合する、請求項３２に記載の構築物。
【請求項３６】
前記構築物が、抗ウイルス剤に作動可能にさらに結合する、請求項２３に記載の構築物。
【請求項３７】
前記構築物が、ヌクレオシド逆転写酵素インヒビター、非ヌクレオシド逆転写酵素インヒビター、またはプロテアーゼインヒビターに作動可能にさらに結合する、請求項３６に記載の構築物。
【請求項３８】
前記構築物が、ＡＺＴ、シドフォビル、またはリバビリンに作動可能にさらに結合する、請求項３６に記載の構築物。
【請求項３９】
前記構築物が、少なくとも第１の診断、画像、または検出可能剤に作動可能にさらに結合する、請求項２２に記載の構築物。
【請求項４０】
前記構築物が、Ｘ線検出可能な化合物、放射性イオン、核磁気スピン共鳴同位元素、ＣＥＳＴ、またはパラＣＥＳＴ剤に作動可能にさらに結合する、請求項３９に記載の構築物。
【請求項４１】
前記構築物が、薬学的組成物の内部に含まれる、請求項１〜４０のいずれかに記載の構築物。
【請求項４２】
前記薬学的組成物は、少なくとも第２の治療因子をさらに含む、請求項４１に記載の構築物。
【請求項４３】
前記少なくとも第２の治療因子は、抗癌剤、抗脈管形成剤、または抗ウイルス剤である、請求項４２に記載の構築物。
【請求項４４】
前記薬学的組成物は、ナノ粒子、リポソーム、またはステルス処理リポソーム組成物である、請求項４１から４３のいずれか１項に記載の構築物。
【請求項４５】
前記薬学的組成物は、リポソーム、またはステルス処理リポソーム組成物であり、前記構築物は、前記リポソームの外膜に作動可能に連結し、かつ、少なくとも第２の治療剤が、前記リポソームのコア内に含まれる、請求項４４に記載の構築物。
【請求項４６】
治療に用いられる、請求項１〜４５のいずれかに記載の構築物。
【請求項４７】
脈管形成の抑制に用いられる、請求項１３に記載の構築物。
【請求項４８】
癌の治療または予防に用いられる、請求項１〜４７のいずれかに記載の構築物。
【請求項４９】
ウイルス感染の治療または予防に用いられる、請求項１〜４８のいずれかに記載の構築物。
【請求項５０】
脈管形成を抑制することによって疾患を治療または予防するための医薬の製造における、請求項１３に記載の構築物の使用。
【請求項５１】
黄斑変性、加齢性黄斑変性、関節炎、関節リウマチ、アテローム硬化症、糖尿病網膜症、甲状腺過形成、グレーヴズ病、血管腫、血管新生緑内障、および乾癬を治療または予防するための医薬の製造における、請求項１３に記載の構築物の使用。
【請求項５２】
癌を治療または予防するための医薬の製造における、請求項１から４９のいずれか１項に記載の構築物の使用。
【請求項５３】
ウイルス感染を治療または予防するための医薬の製造における、請求項１から４９のいずれか１項に記載の構築物の使用。
【請求項５４】
脈管形成疾患を有する動物を治療する方法であって、脈管形成を抑制し、前記動物における前記疾患を治療するのに有効な量で、請求項１３に記載の構築物を前記動物に投与することを含む、前記方法。
【請求項５５】
前記動物は、黄斑変性、加齢性黄斑変性、関節炎、関節リウマチ、アテローム硬化症、糖尿病網膜症、甲状腺過形成、グレーヴズ病、血管腫、血管新生緑内障、または乾癬を有する、請求項５４に記載の方法。
【請求項５６】
前記動物が癌を有する、請求項５４に記載の方法。
【請求項５７】
前記動物がヒト患者である、請求項５４に記載の方法。
【請求項５８】
腫瘍を有する動物を治療する方法であって、前記動物における前記腫瘍を治療するのに有効な量で、請求項１から４９のいずれか１項に記載の構築物を前記動物に投与することを含む、前記方法。
【請求項５９】
前記構築物が、腫瘍血管内皮細胞の腔の表面に露出したホスファチジルセリンに結合する、請求項５８に記載の方法。
【請求項６０】
前記構築物が、腫瘍細胞の表面に露出したホスファチジルセリンに結合する、請求項５８に記載の方法。
【請求項６１】
治療有効量の、少なくとも第２の治療因子、または抗癌剤を前記動物に投与することをさらに含む、請求項５８に記載の方法。
【請求項６２】
前記動物がヒト患者である、請求項５８に記載の方法。
【請求項６３】
ウイルス複製、感染、または伝播を抑制する方法であって、細胞の集団を、前記細胞集団においてウイルスの複製、感染、または伝播を抑制するのに有効な量で、請求項１〜４９のいずれか１項に記載の構築物に接触させることを含む、方法。
【請求項６４】
前記細胞集団は、動物の中に局在化し、前記構築物は前記動物に投与される、請求項６３に記載の方法。
【請求項６５】
前記動物がヒト患者である、請求項６４に記載の方法。
【請求項６６】
ウイルス感染を有する動物を治療する方法であって、前記動物におけるウイルスの複製または伝播を抑制するのに有効な量で、請求項１から４９のいずれか１項に記載の構築物を前記動物に投与し、それによって前記ウイルス感染を治療することを含む、方法。
【請求項６７】
前記構築物が、ウイルス感染細胞の表面に露出されるホスファチジルセリンに結合する、請求項６６に記載の方法。
【請求項６８】
前記構築物が、ウイルス粒子の表面に露出されるホスファチジルセリンに結合する、請求項６６に記載の方法。
【請求項６９】
治療的有効量の、少なくとも第２の治療因子、または抗ウイルス剤を前記動物に投与することをさらに含む、請求項６６に記載の方法。
【請求項７０】
前記動物は、ＣＭＶ、ＲＳＶ、肝炎、インフルエンザ、ＨＩＶ、ヘルペス、パラミクソウイルス、またはアレナウイルスを患う、請求項６６に記載の方法。
【請求項７１】
前記動物は、ウイルス性肝炎、インフルエンザ、ＡＩＤＳ、ウイルス性肺炎または呼吸器疾患、またはラッサ熱を患う、請求項６６に記載の方法。
【請求項７２】
前記動物はヒト患者である、請求項６６に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本願は、共有に係る米国仮特許出願第６０／６４６，３３３号（２００５年１月２４日出願）に対する優先権を主張する。その出願（明細書、特許請求の範囲、図面および配列表を含む）の開示は、但し書きなしに本明細書中に参考として明確に援用される。
【０００２】
１．発明の分野
本発明は、ホスファチジルセリン生物学の分野、および腫瘍およびウイルス感染の治療に関する。本発明は、腫瘍血管標的輸送および癌治療、および、ウイルス感染およびその他の疾患治療用の、驚くべき新規構築物、組成物、方法および組み合わせを提供する。本発明は特に、複数の性質の驚くべき組み合わせを有する、新規ホスファチジルセリン結合構築物、およびその診断性および治療性接合体を提供する。この新規構築物は、ホスファチジルセリン疾患標的に効果的に結合し、その破壊を促進し、さらに、治療剤を特定部位に送達することが可能なので、癌、ウイルス感染、およびその他の疾患治療のための、ある範囲の方法を提供する。
【背景技術】
【０００３】
２．関連技術の記述
化学療法剤に対する腫瘍細胞の耐性は、臨床腫瘍学において重要な問題となっている。腫瘍治療において対処しなければならないもう一つの大問題は、「細胞殲滅」、すなわち、無統制増殖能力を持つ、所謂「クローン性」悪性細胞の全てを殺し、治療によって除去することが可能な全ての腫瘍塊を置換したいという希求である。この分野では若干の進歩が見られるけれども、ヒト癌の主要形態の多くが、有効な化学療法介入に依然として抵抗するのには大きく二つの理由がある。
【０００４】
細胞殲滅を実現する治療法を開発するという目標から見ると、治療に対してよく反応する腫瘍タイプもあれば、それほどでもない腫瘍タイプもある。例えば、軟組織腫瘍、例えば、リンパ腫および、血液および血液形成器官の腫瘍、例えば、白血病は、硬組織腫瘍、例えば、上皮癌よりも、化学療法に対し反応性がより高い。
【０００５】
化学療法に対し軟組織および血液系腫瘍の感受性が高い一つの理由は、リンパ腫および白血病細胞では、化学療法介入に対する接触度がより大きいためである。簡単に言うと、多くの化学療法剤にとって、硬組織腫瘍塊では、軟組織腫瘍および血管系腫瘍に比べその細胞の全てに到達するのがはるかに困難であり、従ってまた、細胞殲滅を実現するのがはるかに困難となる。
【０００６】
もう一つの腫瘍治療戦略は、抗腫瘍細胞抗体を用いてトキシンを腫瘍細胞に送達する「イムノトキシン」の使用である。しかしながら、化学療法一般に見られるように、イムノトキシン療法も、硬組織腫瘍に適用すると重大な欠点を露呈する。例えば、抗原陰性または抗原欠損細胞は生き残り、腫瘍集団を再生し、さらに転移をもたらす可能性がある。抗体療法に対する硬組織腫瘍の耐性の、もう一つの理由としては、腫瘍塊は一般に、巨大分子製剤、例えば、抗体およびイムノトキシンに対して不透過であることが挙げられる。腫瘍内における物理的分散距離および間隙圧の両方が、この種の療法に対する重大な制限因子となる。
【０００７】
改良治療戦略は、硬組織腫瘍の血管を標的とすることである。腫瘍細胞そのものではなく、腫瘍血管を標的とすることはいくつかの利点を有する。すなわち、耐性腫瘍細胞の発達をもたらすことは恐らくないこと、標的細胞への到達が簡単であるなどである。さらに、血管の破壊は、抗腫瘍作用の増幅をもたらす。これは、多くの腫瘍細胞が、その酸素と栄養素を単一血管に依存するからである。例示の血管標的剤（ＶＴＡ）が、特許文献１、特許文献２、特許文献３、特許文献４、および特許文献５に記載される。これらの特許文書は、抗細胞剤およびトキシンの、腫瘍血管マーカーに対する標的輸送を記載する。
【０００８】
血管標的法のもう一つの効果的変法は、腫瘍血管または支質内に発現される、または吸着されるマーカーに対して凝固因子を標的輸送することである（Ｈｕａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７；特許文献６、特許文献７、特許文献８、および特許文献９）。腫瘍血管に対しトキシンではなく凝固剤を送達することは、免疫原性の低下、および毒性副作用の危険度の低下という新たな利点をもたらす。特許文献８に開示されるように、このような腫瘍特異的「凝固剤」に使用するのに好ましい凝固因子は、ヒト凝固誘発タンパク質、組織因子（ＴＦ）、血液凝固主要起動因子の短縮形である。
【０００９】
比較的最近、ホスファチジルセリン（ＰＳ）が、腫瘍血管の特異的マーカーとして特定された（Ｒａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８）。これによって、抗細胞因子、トキシン、および凝固因子を腫瘍血管に送達するための、新規抗ＰＳ免疫接合体の開発がもたらされた（特許文献１０、特許文献１１、および特許文献１２）。さらに、非接合の、ＰＳに対する抗体が、治療薬剤に結合することなくして抗癌作用を示すことが発見され、この方法は、腫瘍血管標的および治療のためのホスファチジルセリン「裸抗体」法という名前で知られるようになった（特許文献１３）。
【００１０】
前述の方法は腫瘍治療技術を前進させたけれども、治療選択肢の数と有効性を拡大するには、さらに新たな治療および血管標的剤の開発が必要とされる。他のシステム、例えば、ウイルス感染治療において抗癌性および治療作用を持つ１群の治療剤が特定されたならば、それは重要な進歩となろう。二つのヒトの成分、特に、標的輸送するのに抗体の使用に依存しない成分から調製される、新規標的輸送構築物が生成されたならば、それは、安全性が向上されるという点で著明な進展となろう。病気に対する患者自身の反応を強化する、すなわち、宿主のエフェクター機能を増進する新規薬剤を設計、開発することができたならば、それは、治療効果を最大限に発揮する点で、特に、同じ機構が、癌、および他の疾患、例えば、ウイルス感染および疾患に対しても応用が可能である場合にはきわめて貴重なものとなろう。
【特許文献１】米国特許第５，８５５，８６６号明細書
【特許文献２】米国特許第５，９６５，１３２号明細書
【特許文献３】米国特許第６，２６１，５３５号明細書
【特許文献４】米国特許第６，０５１，２３０号明細書
【特許文献５】米国特許第６，４５１，３１２号明細書
【特許文献６】米国特許第６，０９３，３９９号明細書
【特許文献７】米国特許第６，００４，５５５号明細書
【特許文献８】米国特許第５，８７７，２８９号明細書
【特許文献９】米国特許第６，０３６，９５５号明細書
【特許文献１０】米国特許第６，３１２，６９４号明細書
【特許文献１１】米国特許第６，７８３，７６０号明細書
【特許文献１２】米国特許第６，８１８，２１３号明細書
【特許文献１３】米国特許第６，４０６，６９３号明細書
【発明の開示】
【課題を解決するための手段】
【００１１】
発明の概要
本発明は、腫瘍血管に標的輸送し、癌治療するため、かつ、ウイルス感染およびその他の疾患を治療するための、新規構築物、組成物、方法および組み合わせを提供することによって、従来技術における前述およびその他の要求に応える。本発明は、特に、疾患においてホスファチジルセリン標的に効果的に結合し、それら標的の破壊を、例えば、宿主エフェクター機能を増進することによって促進する、驚くべき特性の組み合わせを持つ、新規ホスファチジルセリン結合構築物を提供する。新規構築物が、さらに生物学的因子、診断剤、および治療剤に結合され、それらの薬剤の疾患部位に対する特異的送達が可能とされる、ある範囲の接合体組成物も提供される。本発明はさらに、腫瘍血管標的輸送、癌治療、および、ウイルス感染およびその他の疾患の治療における、新規構築物および接合体、およびそれらの組み合わせの効果的な使用法も提供する。
【００１２】
本出願全体を通じて、「ある」成分または工程という用語は、その言及された成分または工程について、その後で上限が特異的に明言される場合を除いて、「少なくとも一つの」、「少なくとも最初の」、「１個以上の」、または「複数の」成分または工程を意味するものとして使用される。従って、本出願で用いる「ある構築物」とは、「少なくとも最初の構築物」を意味する。組み合わせの動作可能な限界およびパラメータは、任意の単一因子の量と同様、本開示に照らせば当業者には明らかであろう。
【００１３】
レセプター本体およびベータ体：本発明は先ず、ある範囲のホスファチジルセリン結合性構築物組成物を提供する。この組成物では、構築物は、少なくとも第１の抗体Ｆｃ領域に作動可能に結合する、少なくとも第１のホスファチジルセリン結合性タンパク質、ポリペプチド、またはレセプターを含む。「抗体」Ｆｃ領域に対するフォフファチジルセリン結合タンパク質、ポリペプチド、または「レセプター」の連結から、本明細書では、本発明のホスファチジルセリン結合性Ｆｃ構築物を指すために用いる「レセプター本体（単数または複数）」という用語が生まれる。
【００１４】
本発明の構築物またはレセプター本体は、通常、少なくとも第１のホスファチジルセリン結合性タンパク質またはポリペプチド、レセプター、リガンドまたはペプチドに動作的に結合される少なくとも第１の抗体Ｆｃ領域を含む。「ホスファチジルセリン結合性タンパク質」という用語は、本明細書では、全てのホスファチジルセリン結合性タンパク質、ポリペプチド、レセプター、リガンドおよびペプチド指すために使用されることが明言される。
【００１５】
多くの実施態様では、「ホスファチジルセリン結合性タンパク質」は、本発明の構築物を形成するために抗体Ｆｃ領域に結合した場合もフォスファチジル結合性を保持する。もちろん、ホスファチジルセリン結合機能の保持は、疾患部位に暴露されるフォフファチジルセリンを標的とする使用を意図される構築物においては重要である。しかしながら、本発明の実施態様の必ずしも全てが、本発明の構築物を形成するために抗体Ｆｃ領域に結合した場合もフォスファチジル結合性を保持するホスファチジルセリン結合性タンパク質に限定されるわけではない。
【００１６】
注目すべきことは、本発明は、「ニック入り（ｎｉｃｋｅｄ）β２−糖タンパク質Ｉ」に結合する抗体Ｆｃ領域を含むことで、その際、ニック入りβ２−糖タンパク質Ｉはホスファチジルセリンにもはや結合しない（下記参照）。ニック入りβ２−糖タンパク質Ｉは、脈管形成のインヒビターであることが知られるので（米国特許出願公開ＵＳ２００３／０２１９４０６、なお本特許文書を引用することにより特に指定して本明細書に含める）、本発明の「Ｆｃ−ニック入りβ２」は、脈管形成インヒビターとして有用であり、かつ、比較的長い半減期を持ち、要すればさらに別のエフェクター機能を有するという利点を持つ。
【００１７】
従って、「ホスファチジルセリン結合性タンパク質」という用語は、本発明の構築物において使用されるタンパク質、ポリペプチド、レセプター、リガンドまたはペプチドの基本体を指す。ただし、本発明の構築物のあるものは、後述するように、重要な生物学的および治療的用途を持つが、ホスファチジルセリンには結合しない。すなわち、β２−糖タンパク質Ｉはホスファチジルセリン結合性タンパク質として知られるが、ニック入りβ２はもはやホスファチジルセリンに結合しない。
【００１８】
ホスファチジルセリンに対する結合という観点からは、基本のホスファチジルセリン結合性タンパク質および、それから得られる構築物のフォスファチジル結合性タンパク質は、生物学的に好適な条件下で、好ましくは生理的条件下でホスファチジルセリンに結合する。このホスファチジルセリン結合性タンパク質は、要すれば任意に、生物学的に好適な条件下で、好ましくは生理的条件下で他の陰イオン性リン脂質に結合してもよい。
【００１９】
ある好ましい実施態様では、構築物のホスファチジルセリン結合性タンパク質は、アミノリン脂質、フォスファチジルエタノールアミン（ＰＥ）にほとんど結合しない。別の好ましい実施態様では、構築物のフォスファチジル結合性タンパク質は、フォスファチジルエタノールアミンに対して検出可能な結合を示さない。
【００２０】
本発明の構築物では、ある範囲のホスファチジルセリン結合性タンパク質の使用が可能である。使用が可能な、例示のホスファチジルセリン結合タンパク質をいくつか挙げると、プロテインＣ、プロテインＳ、ＩＩ因子（プロトロンビン）、Ｖ因子、ＶＩＩ因子、ＩＸ因子、またはＸ因子がある。
【００２１】
使用が可能な、他の例示のホスファチジルセリン結合性タンパク質としては、Ｍｅｒ、ＰＳ−結合性スカベンジャーレセプター、α５β３インテグリン、ＣＲ３補体レセプター、ＣＲ４補体レセプターおよびホスファチジルセリンレセプター、ＰＳｒ（Ｂａｌａｓｕｂｒａｍａｎｉａｎ  ａｎｄ  Ｓｃｈｒｏｉｔ，２００３、引用することにより特に指定して本明細書に含める、特に表２を参照）が挙げられる。
【００２２】
本発明の構築物に使用してもよい、その他の例示のホスファチジルセリン結合タンパク質としては、アネキシン、好ましくはアネキシンＶがある。アネキシンＶは、ある実施態様、例えば、さらに別の接合体、リポソーム等への使用が特に考慮される。しかしながら、ある実施態様では、本発明は、少なくとも第１のホスファチジルセリン結合性タンパク質に対し作動可能に結合する抗体Ｆｃ領域を含む構築物を提供する。その際、前記ホスファチジルセリン結合性タンパク質はアネキシンではなく、または、その、ホスファチジルセリン結合性断片でもない、すなわち、アネキシンＶでもなく、または、そのホスファチジルセリン結合性断片でもない。
【００２３】
本発明の構築物に使用される、ホスファチジルセリン結合性タンパク質およびポリペプチドは、ベータ２−糖タンパク質Ｉ（β２−糖タンパク質Ｉまたはβ２ＧＰ１）タンパク質、ポリペプチドおよびペプチドである。「抗体」Ｆｃ領域に対する「ベータ」２−糖タンパク質Ｉ結合性タンパク質、ポリペプチド、またはペプチドの連結から、本明細書では、本発明の、好ましいＦｃ−β２ＧＰ１構築物を指すために用いる「ベータ体（単数または複数）」という用語が生まれる。
【００２４】
従来アポリポタンパク質Ｈという名前で知られるβ２ＧＰ１は、ホスファチジルセリンに結合する、５０ｋＤａの血漿糖タンパク質である。各種哺乳動物種、例えば、マウス、ラット、イヌ、ウシ、チンプ、およびヒトを含む哺乳動物種由来のβ２ＧＰＩのＤＮＡおよびアミノ酸配列は既知である。β２ＧＰＩは、５個のドメインＩ、ＩＩ、ＩＩＩ、ＩＶ、およびＶを持つが、そのドメイン構造は、それぞれ、図１８Ａおよび図１８Ｂに掲げられるマウスおよびヒトのβ２ＧＰＩのドメインＩ−Ｖによって示されるように、哺乳動物間で保存される。
【００２５】
β２ＧＰ１は、そのＣ末端ドメイン、ドメインＶを介してホスファチジルセリンに結合する。β２ＧＰ１ドメインＶの脂質およびホスファチジルセリン結合領域（単複）は既知であるので、本発明の構築物のホスファチジルセリン結合性部分は、ただ、「β２ＧＰＩドメインＶの脂質結合領域」を含んでいさえすればよい。
【００２６】
例として、本明細書の図１８Ｂにおいて、配列番号２２（アクセス番号１Ｃ１ＺＡ）として提示される、ヒトのβ２ＧＰＩアミノ酸配列、および、図１８Ａに示されるマウスの、同様のβ２ＧＰＩ配列を参照すると、β２ＧＰＩのドメインＶの脂質結合領域は、β２ＧＰＩの陰イオン性リン脂質に対する結合を可能とする、１群の正に荷電したアミノ酸（２８２−２８７）、および疎水性の保存領域（３１１−３１７）（図１８Ｂおよび１８Ａにおいて下線イタリック体、および二重下線イタリック体部分）を含む。
【００２７】
従って、ある実施態様では、本発明の構築物のフォスファチジル結合部分は、配列番号２２のアミノ酸２８２−２８７によって記載されるアミノ酸配列を持つペプチド、または、配列番号２２のアミノ酸３１１−３１７によって記載されるアミノ酸配列を持つペプチドを含む。別の実施態様では、本発明の構築物のフォスファチジル結合部分は、上述の領域を含むペプチド、すなわち、配列番号２４のアミノ酸配列を持つペプチド（ヒト）、または、配列番号２０のアミノ酸配列を持つペプチド（マウス）を含む。
【００２８】
上述の比較的小さいペプチドおよびポリペプチドは最適ではない可能性があるので、本発明の別の好ましい構築物は、ホスファチジルセリン結合部分が、β２ＧＰＩの、完全なまたは無傷なドメインＶを含むβ２ＧＰＩポリペプチド、例えば、少なくともドメインＶ、またはドメインＶのみを含むβ２ＧＰＩポリペプチドである。
【００２９】
本発明の方法の安全性に関する不安は無いが、抗リン脂質症候群（単複）またはＡＰＳの患者から得られた抗体は、一般に、β２ＧＰＩのドメインＩを認識する（ｄｅ  Ｌａａｔ  ｅｔ  ａｌ．，２００５ａ）。β２ＧＰＩドメインＩＩを認識する抗体は病原性を持たない。従って、ある実施態様では、本発明の構築物のホスファチジルセリン結合部分は、β２ＧＰＩドメインＶの、少なくとも脂質結合部位を含むが、β２ＧＰＩのドメインＩを実質的に欠くβ２ＧＰＩポリペプチドを含んでもよい。好ましい実施態様では、これらの構築物は、β２ＧＰＩの少なくともドメインＶを含み、β２ＧＰＩのドメインＩを実質的に欠くβ２ＧＰＩポリペプチドを含む。
【００３０】
本明細書には、図１８Ｂに示すヒトのβ２ＧＰＩアミノ酸配列、および、図１８Ａに示す、マウスの同様のβ２ＧＰＩのアミノ酸配列を含む、例示のβ２ＧＰＩ  ＤＮＡおよびアミノ酸配列が提示される（本発明の例示のＦｃ−β２ＧＰＩ構築物をコードする発現プラスミドの配列も、配列番号２５として提示される）。これらの図面、配列、およびアクセス番号を、要すれば任意に本明細書の実施例に照らして参照するならば、当業者であれば、β２ＧＰＩの、少なくともドメインＶを含む、ある範囲のポリペプチドを製造し、使用することが可能であろう。
【００３１】
前述したように、ある好ましいβ２ＧＰＩポリペプチドは、少なくともβ２ＧＰＩドメインＶを含み、β２ＧＰＩドメインＩを実質的に欠く。この記述に一致するβ２ＧＰＩポリペプチドは、β２ＧＰＩの、少なくともドメインＩＶおよびＶを含んでもよく；β２ＧＰＩの、少なくともドメインＩＩＩ、ドメインＩＶ、およびドメインＶを含んでもよく；または、β２ＧＰＩのドメインＩＩ、ドメインＩＩＩ、ドメインＩＶ、およびドメインＶを含んでもよい。
【００３２】
そうは言うものの、β２ＧＰＩドメインＩの存在は、本発明の使用において著明な欠点とはならないので、β２ＧＰＩポリペプチドがドメインＩを含む構築物を調製する方が、例えば、調製および使用が簡単であるため好都合な場合があるかもしれない。従って、本発明はさらに、ホスファチジルセリン結合部分が、完全長β２ＧＰＩポリペプチドである構築物、すなわち、β２ＧＰＩポリペプチドが、ドメインＩ、ドメインＩＩ、ドメインＩＩＩ、ドメインＩＶ、およびドメインＶを含む構築物も含む。完全長β２ＧＰＩポリペプチドは、配列番号２２のアミノ酸配列を含む、ヒトのβ２ＧＰＩポリペプチドであってもよい。
【００３３】
本発明のある実施態様では、少なくとも第１のホスファチジルセリン結合タンパク質がＦｃ領域に結合される場合、特に、構築物が、疾患部位に暴露されるホスファチジルセリンに対する標的輸送用としての使用が意図される場合には、構築物がホスファチジルセリン結合機能を保持することは重要である。ホスファチジルセリン結合性が必要でない例は、脈管形成インヒビターとして使用される、少なくとも第１のニック入りβ２ＧＰＩポリペプチドが抗体Ｆｃ領域に結合される場合である。
【００３４】
「ニック入り」β２ＧＰＩポリペプチドとは、β２ＧＰＩ配列が、例えば、酵素プラスミンによってＬｙｓ３１７／Ｔｈｒ３１８の切断部位において切断される場合のように切れ込みを入れられたポリペプチドである。本明細書で用いる「ニック入りβ２ＧＰＩポリペプチド」を含む構築物は、ニックドメインＶのみを含んでもよい。別態様として、ニック入りβ２ＧＰＩポリペプチドは、「少なくともニックドメインＶ」を含んでもよい。この場合、ポリペプチドは、ドメインＩＶ、ＩＩＩ、ＩＩ、およびＩの内の任意の一つ以上と共にニックドメインＶを含むことが可能である。
【００３５】
本発明の構築物には、ホスファチジルセリン結合性の保持が必要とされるが、本発明は、Ｆｃ領域に結合されるβ２ＧＰＩポリペプチドの使用と関連してさらに驚くべき、有利な特徴を提供する。抗体Ｆｃ領域が、２個のβ２ＧＰＩポリペプチドに作動可能に結合された場合、驚くべきことに、これらのβ２ＧＰＩポリペプチドは、得られたＦｃ−β２ＧＰＩ構築物において二量体を形成し、かつ、この二量体構築物は、ホスファチジルセリンに効果的に結合することが見出された。
【００３６】
従って、本発明の新たな実施態様は、抗体Ｆｃ領域が２個のβ２ＧＰＩポリペプチドに作動可能に結合され、好ましくは各β２ＧＰＩポリペプチドが、β２ＧＰＩの、少なくともドメインＶを含む構築物である。より好ましくは、抗体Ｆｃ領域が２個のβ２ＧＰＩポリペプチドに作動可能に結合され、各β２ＧＰＩポリペプチドが、β２ＧＰＩの少なくともドメインＶを含み、かつ、それらのβ２ＧＰＩポリペプチドが、Ｆｃ領域に結合された場合二量体を形成する構築物である。好ましくは、抗体Ｆｃ領域が、２個のβ２ＧＰＩポリペプチドに作動可能に結合した場合、各ポリペプチドは、β２ＧＰＩの少なくともドメインＶを含み、β２ＧＰＩポリペプチドは、Ｆｃ領域に結合した場合二量体を形成し、かつ、得られた構築物はホスファチジルセリンに結合する、すなわち、β２ＧＰＩポリペプチドは、Ｆｃ領域に結合すると二量体を形成し、かつ、ホスファチジルセリンに結合する。
【００３７】
さらに、抗体のＦｃ領域が２個のβ２ＧＰＩポリペプチドに作動可能に結合した場合；β２ＧＰＩポリペプチドそれぞれが、β２ＧＰＩの少なくともドメインＶを含み、β２ＧＰＩのドメインＩを実質的に欠く場合；および、β２ＧＰＩポリペプチドが二量体を形成し、Ｆｃ領域に結合した時でもホスファチジルセリンに結合する場合が好ましい。さらに、それぞれが、β２ＧＰＩの少なくともドメインＶを含む、第１のおよび第２のβ２ＧＰＩポリペプチドが、抗体Ｆｃ領域に作動可能に結合し、それによってＦｃ−β２ＧＰＩ二量体を形成する場合が好ましい。
【００３８】
しかしながら、ホスファチジルセリン結合性が本発明のβ２ＧＰＩ含有構築物に要求されるとは言うものの、構築物が２個のβ２ＧＰＩポリペプチドを含む必要はないし、また、２個以上のβ２ＧＰＩポリペプチドがＦｃ領域に結合した際に二量体を形成する必要もない。例えば、Ｆｃ領域は、β２ＧＰＩ単一ポリペプチドに結合してもよいし、あるいは、結合しても２量体を形成することがない２個以上のβ２ＧＰＩポリペプチドに結合してもよく、それでもなお、得られた構築物は、必要な結合価を与える枠組みとして処方されることによって、ホスファチジルセリン結合に使用が可能である。このような処方または枠組みの例としては、上記構築物を含むナノ粒子、リポソーム等がある。
【００３９】
ヒトに使用するためには、任意のホスファチジルセリン結合性タンパク質、例えば、１個以上のβ２ＧＰＩポリペプチドは、ヒトのホスファチジルセリン結合性タンパク質、例えば、ヒトのβ２ＧＰＩポリペプチド（単複）でなければならない。ヒトのＦｃ領域も使用されるので、このタンパク質は、副作用、例えば、免疫原性に関連する副作用が緩和された、完全にヒト的な治療剤を提供するという利点を有する。
【００４０】
本発明に使用されるＦｃ領域は、ポリクロナールおよびモノクロナール抗体を含む抗体、すなわち「免疫グロブリン」から得られる。このＦｃ領域は、疾患治療を強調するよう、宿主のエフェクター機能を刺激する能力を持つ構築物を提供する。
【００４１】
ヒトでは、ヒトのＦｃ領域の使用が好まれるとは言うものの、他の供給源、例えば、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、サル等から得られたＦｃ領域を使用してもよい。臨床前試験では、Ｆｃ領域およびホスファチジルセリン結合性タンパク質の両方とも、その臨床前試験が実施される同じ動物種、例えば、マウスＦｃ領域およびマウスβ２ＧＰＩポリペプチドから選択することが可能である。
【００４２】
従来技術では、抗体は、通常、４個のポリペプチド−２個の重鎖と２個の軽鎖から形成される“Ｙ”型分子として描かれる。抗体に、その抗原結合特異性を付与する抗原結合または「可変」領域は、軽鎖および重鎖の末端に存在する。抗体をプロテアーゼで処理することによってこの領域を切断することが可能で、それによって別々のＦａｂ（「抗原結合性断片」）とＦｃ（「結晶性断片」）領域、ドメイン、または断片が生成される。従って、“Ｆｃ”という用語は、従来技術では、「抗原結合領域、ドメイン、または断片を持たない」抗体領域、ドメイン、または断片を意味するのに用いられる。これは、本出願で意図される意味でもあり、従って、構築物の「Ｆｃ領域」は、「抗原結合領域、ドメイン、または断片を含まない」、すなわち、抗原に特異的に結合しない抗体領域、ドメイン、または断片である。従って、本発明は、標的問題によって複雑化されないエフェクター機能を持つ構築物を提供する。
【００４３】
定常域は、抗原を破壊するために使用される機構を決定する、すなわち、エフェクター機能の決定因子を含む。抗体は、その定常域の構造と免疫機能に基づいて大きく五つのクラス、ＩｇＭ、ＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＤ、およびＩｇＥに分割される。異なるクラスの免疫グロブリンに対応する重鎖定常ドメインは、それぞれ、μ、γ、α、δ、およびεと呼ばれる。これらの内のいくつかはさらにサブクラスまたはアイソタイプ、例えば、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、およびＩｇＧ４に分割される。異なるクラスの免疫グロブリンのサブユニット構造はよく知られる。重鎖γ、α、およびδの定常域は３個のドメインを持ち、一方、重鎖μおよびεの定常域は４個のドメインを持つ。
【００４４】
本発明の構築物では、抗体ヒンジ、および、抗体重鎖定常ドメインＣＨ２およびＣＨ３を有する抗体Ｆｃ領域を用いるのが好ましい。抗体ヒンジは、構造的な配慮、例えば、屈曲性にとって重要である。屈曲性は、２個以上のホスファチジルセリン結合タンパク質、例えば、２個以上のβ２ＧＰＩポリペプチドが結合される場合、二量体の形成を促進する可能性がある。ヒンジ領域およびヒンジ結合、または下方ヒンジ領域もエフェクター機能を与える可能性がある。これは必要とされるものではないが、構築物のＦｃ領域はまた、抗体重鎖の定常ドメインＣＨ１またはＣＨ４の内の少なくとも一つを含んでもよい。
【００４５】
供給されるエフェクター機能、例えば、補体活性化（Ｃ１ｑ結合）、Ｆｃレセプター結合、および、ＡＤＣＣおよび細胞分解のような過程を効果的に刺激する能力（Ｂｒｕｇｇｅｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９８７；Ｒｉｅｃｈｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９８８；Ｃｌａｒｋ，１９９７；Ｐａｄｌａｎ，１９９４、各特許文書を引用することにより特に指定して本明細書に含める）に鑑みれば、抗体Ｆｃ領域は、ヒトのＩｇＧ１（γ１）、またはヒトのＩｇＧ３（γ３）抗体のＦｃ領域であることが本発明では好ましい。マウス抗体の場合、Ｆｃ領域は、マウスのＩｇＧ２ａ（γ２ａ）、またはマウスＩｇＧ２ｂ（γ２ｂ）抗体のＦｃ領域であることが好ましい。
【００４６】
抗体Ｆｃ領域は、少なくとも第１のホスファチジルセリン結合タンパク質、例えば、β２ＧＰＩポリペプチドに、任意の動作可能的手段によって結合、結合、または接合される。例えば、直接的共有結合、例えば、化学的架橋リンカーによって、または、抗体Ｆｃ領域およびホスファチジルセリン結合タンパク質が組み換え発現によって調製される場合は、融合タンパク質として結合される。アビジン：ビオチンのような間接的結合、および、同様の他の結合も使用することが可能である。
【００４７】
Ｆｃ領域およびホスファチジルセリン結合タンパク質は、作動可能に結合または接合される。すなわち、結合または接合後も、Ｆｃ領域とホスファチジルセリン結合タンパク質それぞれが、意図される通りに十分に機能できるように結合または接合される。例えば、「作動可能に」結合されるとは、Ｆｃ領域が所望のエフェクター機能を実質的に保持し、かつ、ホスファチジルセリン結合タンパク質が、所望の性質、特に、所望の場所においてホスファチジルセリン結合性、または抗脈管形成活性を実質的に保持することを意味する。
【００４８】
ある実施態様では、「動作可能的結合」とは、Ｆｃ領域にホスファチジルセリン結合タンパク質を結合するに際し、結合された時に、特に、ホスファチジルセリン結合タンパク質が２個以上のβ２ＧＰＩポリペプチドである場合、ホスファチジルセリン結合タンパク質が二量体を形成することを可能とするやり方で行われる結合を含む。
【００４９】
選ばれたホスファチジルセリン結合タンパク質がβ２ＧＰＩポリペプチドであり、および／または、Ｆｃ領域上での二量体化が特に望まれる場合、Ｆｃ領域を構築物のＮ−末端部分として使用し、かつ、ホスファチジルセリン結合タンパク質またはβ２ＧＰＩポリペプチドを結合し、これが構築物のＣ−末端部分となるようにする（図１６）ことが本発明では好ましい。
【００５０】
一方、作動可能に結合するための他のスキームも考えられる。例えば、ホスファチジルセリン結合タンパク質またはβ２ＧＰＩポリペプチドが、構築物のＣ−末端部分となる、すなわち、抗原結合域の代わりに、または、ＣＨ１ドメインと抗原結合域の代わりに挿入されるスキームもあってもよい。この実施態様では、得られた構築物に新たな屈曲性を付与するペプチドまたは化学的リンカー、例えば、４個のグルタミン残基と１個のセリン残基を有するペプチドリンカー（Ｇ４Ｓ屈曲性リンカー）を用いるのが好ましいと思われる。
【００５１】
２個以上の成分を作動可能に結合させると、得られた構築物は所望の性質を示す。構築物全体における例示の、望ましい生物学的性質としては、ホスファチジルセリンに対する結合能力、宿主のエフェクター機能に対する刺激能力、活性化細胞、例えば、活性化、分裂、損傷、またはアポトーシス内皮細胞、腫瘍細胞、またはウイルス感染細胞等の細胞におけるホスファチジルセリン標的輸送能力、標的部位、例えば、腫瘍血管および腫瘍細胞に対する局在能力、および、抗癌および／または抗ウイルス作用を発揮する能力が挙げられる。
【００５２】
得られた構築物の生物学的性質はまた、所望の安全性特徴を含む。例えば、構築物は、静止細胞を著明に傷害せず、インビトロで凝固反応を著明に抑制せず、インビボで著明な血栓症を起こさず、または、著明な狼瘡抗凝固活性を持たないことが好ましい。
【００５３】
上記から、本発明は、癌、ウイルス感染、およびその他の疾患の治療に有効な、新規レセプター本体およびベータ体構築物を提供する。これらの構築物は、疾患においてホスファチジルセリン標的に効果的に結合し、宿主エフェクター機能を増強することによって該標的の破壊を強化する成分を含む。
【００５４】
付加的接合体、組成物、およびキット：単独でもきわめて効果的であるが、にも拘わらず本発明はまた、本発明の構築物、レセプター本体、およびベータ体がさらに新たな生物学的因子、診断剤、および治療剤に結合される接合体、組成物、および関連法も提供する。本発明のこの「付加的接合体」は、ホスファチジルセリンに結合する能力、宿主のエフェクター機能を刺激する能力、および、結合した生物学的因子、診断剤、または治療剤を所望標的に送達する能力という三つの能力を持つので、「三重機能剤」である。
【００５５】
本発明による、接合体、組成物、製剤、組み合わせ、混合物、キット、第１のおよび第２の医学的使用、および全ての方法に関する下記の説明において、「構築物」は、前述の一次的発明の全ての構築物、レセプター本体、およびベータ体を含む。
【００５６】
付加的接合体実施態様では、本発明はさらに、元の構築物、レセプター本体、またはベータ体が、「付加的な」、新たな、または外来の生物学的因子、診断剤、または治療剤に作動可能に結合される、新しい範疇の接合体、組成物、キット、および方法を提供する。「外来の」生物学的因子、診断剤、または治療剤は、「元の構築物に既に存在するＦｃドメインとは別の介在因子」である。
【００５７】
付加的、または外来性「生物学的因子」は、直接治療剤または診断剤である必要はない。例えば、本発明は、ＡＤＥＰＴ実施態様を含む薬剤前駆体と組み合わせて使用が可能であるように、生物学的因子は、介在因子であってもよく、実質的には不活性な薬剤前駆体を切断して、実質的に活性な薬剤を放出する酵素であることが好ましい。このような介在因子および酵素は、薬剤前駆体およびＡＤＥＰＴ法実施態様と関連して後述する。
【００５８】
「診断剤」に関して言えば、結合させるのに好ましい診断剤は、インビボにおける診断、画像、または検出可能剤である。このような診断的接合体は、ある範囲の疾患におけるアポトーシス前およびアポトーシス細胞の画像化、腫瘍画像化および治療の組み合わせ、および、化学療法監視のための代用マーカーとして本発明を用いる方法において使用されてもよい。好ましい診断剤としては、Ｘ線検出可能な化合物、放射性イオン、核磁気スピン共鳴同位元素、およびＣＥＳＴまたはパラＣＥＳＴ剤が挙げられる。
【００５９】
好適な検出可能ラベルとしては、Ｘ線検出可能化合物、例えば、ビスマス（ＩＩＩ）、金（ＩＩＩ）、ランタン（ＩＩＩ）、または鉛（ＩＩ）；放射性イオン、例えば、銅６７、ガリウム６７、ガリウム６８、インジウム１１１、インジウム１１３、ヨウ素１２３、ヨウ素１２５、ヨウ素１３１、水銀１９７、水銀２０３、レニウム１８６、レニウム１８８、ルビジウム９７、ルビジウム１０３、テクネチウム９９ｍ、またはイットリウム９０；核磁気スピン共鳴同位元素、例えば、コバルト（ＩＩ）、銅（ＩＩ）、クロム（ＩＩＩ）、ジスプロシウム（ＩＩＩ）、エルビウム（ＩＩＩ）、ガドリニウム（ＩＩＩ）、ホルミウム（ＩＩＩ）、鉄（ＩＩ）、鉄（ＩＩＩ）、マンガン（ＩＩ）、ネオジム（ＩＩＩ）、ニッケル（ＩＩ）、サマリウム（ＩＩＩ）、テルビウム（ＩＩＩ）、バナジウム（ＩＩ）、またはイッテルビウム（ＩＩＩ）；またはローダミン、またはフルオレセンが挙げられる。
【００６０】
「治療剤」に関しては、ある好ましい治療剤は、細胞毒性、細胞増殖抑制性、抗細胞性、および抗癌製剤である。従って、本発明のレセプター本体またはベータ体は、少なくとも第１の化学療法剤、抗脈管形成剤、アポトーシス誘発剤、抗チューブリン剤、抗生物質、放射性同位元素、または凝固剤に結合されてもよい。
【００６１】
細胞傷害剤において、本発明で好まれるものは、リシン、ゲロニン、アブリン、ジフテリア、シュードモナス、および百日咳菌毒素である。サイトカインおよびケモカインに関して、本発明で好まれる介在因子は、ＩＬ−２、ＩＬ−１２、ＴＮＦ−α、インターフェロン−α（ＩＦＮ−α）、ＩＦＮ−β、ＩＦＮ−γ、およびＬＥＣ（肝臓発現ケモカイン）である。Ｖ型ＡＴＰアーゼインヒビター、例えば、サリチリハラミド、コンカナマイシン、またはバフィロマイシンも、タンパク質合成インヒビター、例えば、シンベリン、ペデリン、イルシニアスタチンＡと同様、本発明では好まれる。
【００６２】
タキソール、ドセタキセル、パクリタキセル、シスプラチン、ゲムシタビン、コンブレタスタチン、ドキソルビシン、およびアドリアマイシンは、本発明において好まれる抗癌剤である。付加的または外来製剤として、砒素の放射性同位元素も本発明では好まれる。凝固剤に関しては、が本発明では好まれる。
【００６３】
本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体はまた、抗ウイルス因子または薬剤、例えば、ヌクレオシド逆転写酵素インヒビター、非ヌクレオシド逆転写酵素インヒビター、またはプロテアーゼインヒビターに作動可能に結合されてもよい。外来性抗ウイルス剤としては、ＡＺＴ、シドフォビル、およびリバビリンが本発明では好まれる。
【００６４】
再び、付加的接合体実施態様において、「接合体」という用語は、元の構築物、レセプター本体、またはベータ体と、付加的介在因子との動作的連結を定義するために用いられるものであって、単に、任意のタイプの動作的連結を指すことを意図するものではなく、特に化学的「共役」に限定されるものではない。ここでも組み換え融合タンパク質の使用が可能である。ホスファチジルセリン結合タンパク質、Ｆｃ領域、および新たに結合される介在因子（単複）が、意図通りに十分機能する限り、特に、インビボで標的部位に送達される限り、どのような結合方式であっても好適とされる。
【００６５】
β２ＧＰＩポリペプチドが、構築物のホスファチジルセリン結合タンパク質として用いられる場合、一般に、β２ＧＰＩドメインＶに、あるいは、少なくとも、ドメインＶの脂質結合領域（単複）の中に、どのようなものであれ付加的介在因子を結合させないことが好ましい。ある実施態様、例えば、図１６に示す実施態様では、付加的介在因子は、構築物のＮ−末端部分に、すなわち、ヒンジまたはＣＨ２領域の方に動作的に結合させることが好ましい。
【００６６】
本発明はまた、少なくとも第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体の生物学的有効量を含む組成物を提供する。好ましい組成物は、本発明の、少なくとも第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体の生物学的または治療的有効量を、製薬学的に受容可能な担体の中に含む「薬学的組成物」である。これらの組成物は、製薬学的、薬理学的、治療的、医用的、および獣医学的使用、好ましくは、癌およびウイルス感染治療における使用が意図される。
【００６７】
本薬学的組成物は、非経口的投与、例えば、静脈内投与、またはリポソームまたはエロゾルとしての投与用に処方される組成物を含む。エロゾル処方は、ウイルス感染の治療に特に好適である。薬学的組成物における「生物学的または治療的有効量」とは、疾患または障害を治療するのに有効な量、特に、癌またはウイルス感染を治療するのに有効な量である。
【００６８】
それぞれ固有の効果を持つとは言うものの、本発明の、各種構築物、レセプター本体、およびベータ体、およびそれらの接合体、および本発明の関連法はまた、他の薬剤および療法と組み合わされてさらに有利なものとして、本発明の、併用組成物、製剤、およびキット、および関連併用治療法を提供するために使用することも可能である。従って、さらに別の実施態様では、本発明は、例えば、癌および抗ウイルス治療のために用意され、下記にさらに詳述するように、驚くべき共同作用を表すように選ばれた、特定の併用組成物、方法、およびキットを提供する。
【００６９】
本発明の局面はさらに、本発明の少なくとも第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体を、生物学的または治療的有効量の、少なくとも第２の生物学的因子と組み合わせて含む、組成物、薬学的組成物、組み合わせ、混合物、薬剤、および／または、介在因子の薬用混合物を含む。このような組み合わせは全て、「生物学的または治療的に有効な組み合わせ量の」、例えば、疾患、例えば、癌またはウイルス感染を治療するのに有効な組み合わせ量を含む。
【００７０】
組成物では、「少なくとも第２の生物学的因子」は、多くの場合、診断剤または治療剤であるが、そうである必要はない。例えば、第２の生物学的因子は、薬学的組成物の成分、例えば、分散剤、または吸収遅延剤であってもよい。他の生物学的因子、例えば、薬剤前駆体およびＡＤＥＰＴ法で使用される接合体および薬剤前駆体製造用薬剤、および診断剤は、本発明の第１の組成物とは組み合わされるが、別々に維持されるのが好ましく、従って、本発明のキットを参照しながら後述される。「組み合わされるが、別々に」とは、共に緊密に同梱されるが、同じ組成物の部分としてではなく、例えば、同じ溶液または薬学的組成物の部分としてではなくということを意味する。
【００７１】
「少なくとも第２の治療剤」について言えば、「第２の」という用語は、「第１の」治療剤である、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体を参照した用語である。
【００７２】
本発明が癌治療用に意図される場合、少なくとも第２の治療剤は、「少なくとも第２の、別の抗癌剤」であることが好ましい。併合使用のための第２の抗癌剤は、放射線治療剤、化学療法剤、抗脈管形成剤、またはアポトーシス誘発剤、サイトカインまたは抗体、または、腫瘍細胞に結合する抗体−治療薬剤構築物、壊死腫瘍細胞から放出される細胞内抗原、または、腫瘍血管成分（すなわち、抗癌免疫トキシンまたは凝固リガンド）であってもよい。本明細書で用いる「化学療法剤」とは、遺伝子、ベクター、アンチセンス構築物、およびリボザイムを含む。
【００７３】
併合使用のための、ある好ましい第２の抗癌剤は、本発明の第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体、および／または、特定の腫瘍タイプまたは患者のために選択された第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体の治療作用を補充または強化するものである。「治療作用を補充または強化する治療剤」は、放射線治療剤、血管透過性強化剤、抗脈管形成剤、アポトーシス誘発剤、ある種のサイトカイン、抗癌性細胞免疫トキシンの外、選ばれた化学療法剤を含む。本発明において好まれる「選ばれた化学療法剤」は、表Ｅに見られるような抗脈管形成作用を持つ化学療法剤、表Ｆに見られるようなアポトーシスを誘発する化学療法剤、カルシウムフラックス誘発剤、炎症性サイトカイン、Ｈ２Ｏ２、トロンビン、および、コンブレタスタチンファミリーの抗チューブリン薬剤である。さらに、ドキソルビシン、エトポシド、およびアクチノマイシンＤも好まれるが、ドセタキシルがもっとも好まれる。
【００７４】
本発明がウイルス治療の使用が意図される場合、少なくとも第２の治療剤は、「少なくとも第２の、別の抗ウイルス剤」であることが好ましい。併合使用のための、この第２の抗ウイルス剤は、任意の抗ウイルス剤、または本発明の実施時に利用可能な薬剤、例えば、本発明の構築物への結合に関して本明細書に記載した範囲の抗ウイルス剤および薬剤を含む薬剤から選ばれてもよい。例示として述べれば、抗レトロウイルス剤、例えば、ＮＴＲＩ、非ヌクレオシドＲＴインヒビター、およびプロテアーゼインヒビター、表Ｇに示される抗ウイルス剤、および好ましくはＡＺＴ、またはシドフォビルが選ばれる。
【００７５】
本発明はさらに、リポソーム、脂質担体、複合体、混合物、超分子構造多分子凝集体、または本発明の少なくとも第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体を含む、脂質系薬剤送達システムを提供する。リポソームまたはリポソーム様組成物は、単層、二重層、多分子凝集体、小胞、螺旋、ディスク、チューブ、ファイバー、円環体、六角相、ゲル相、液体−結晶相、液体−結晶性多分子凝集体、ミセル、逆転ミセル、微小乳液、乳液、微小貯留槽、油小滴、脂肪小滴、ワックス小滴、および／またはコロイド状粒子の形を取ってもよい。
【００７６】
リポソーム、またはリポソーム様組成物は、一般に、「外膜」すなわち粗大な水性相と、「中心コア」すなわち内部の水性相を含む。好ましい実施態様では、リポソームまたはリポソーム様組成物は、ステルス処理されたリポソーム、脂質担体、複合体、混合物、超分子構造多分子凝集体、または脂質系薬剤送達システムである。「ステルス処理された」リポソームおよびリポソーム様組成物は、該膜と作動可能に連結した、生物学的有効量の、少なくとも第１のステルス剤を含む。「ステルス剤」とは、リポソームまたはリポソーム様組成物の外膜と動作的に連結されると、そのリポソームまたはリポソーム様組成物の生物学的半減期を延長する組成物である。「動作可能的連結」では、リポソームまたはリポソーム様組成物の外膜は、１種以上のステルス剤によってコートされることが好ましい。
【００７７】
効果的ステルス剤としては、ある範囲の生体適合性疎水性ポリマー、例えば、ポリアミン、ポリ酢酸、ポリグリコール酸、ポリ酢酸−ポリグリコール酸（ＰＬＧＡ）、ポリペプチド、および関連物質が挙げられる。好ましいステルス剤は、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）成分であり、この場合、得られるステルス処理リポソームは「ＰＥＧ処理リポソーム」と呼ばれる。
【００７８】
本発明の好ましいリポソームは、ステルス処理またはＰＥＧ処理リポソームであり、本発明の少なくとも第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体が、リポソームの外膜と作動可能に連結されるリポソームであり、その際、リポソームはステルス剤でコートされていることが好ましい。
【００７９】
特に好ましいリポソームは、このような「コートされ」、ステルス処理されるか、またはＰＥＧ処理されたリポソームであって、第１の治療剤、例えば、抗ウイルス剤または、好ましくは抗癌剤が、リポソームと作動可能に連結するか、または、リポソーム処方内部に分散するリポソームである。治療剤、抗ウイルス剤、または抗癌剤は、リポソームの中心コアと作動可能に連結するか、または中心コア内部に維持されることが好ましい。例示の抗癌剤は、核種（単複）、および化学療法剤、例えば、抗チューブリン剤、ドセタキセルおよびパクリタキセルであるが、ドセタキセルが好ましい。
【００８０】
本発明のさらに別の実施態様は、少なくとも第１の組成物または容器の中に、本発明の少なくとも第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体を、生物学的または治療的有効量の、少なくとも第２の生物学的因子、成分、またはシステムと組み合わせて含むキットに関する。
【００８１】
この「第２の生物学的因子、成分、またはシステム」は、治療剤または診断剤に限定されない。例えば、第２の生物学的因子、成分、またはシステムは、構築物を修飾する、および／または、他の薬剤を結合させるための成分を含んでもよい。ある好ましい第２の生物学的因子、成分、またはシステムは、薬剤前駆体、または、薬剤前駆体を製造・使用するための成分、例えば、薬剤前駆体そのものを製造するための成分、および、本発明の構築物を、そのような薬剤前駆体またはＡＤＥＰＴ実施態様において機能するように適応させるための成分を含む。
【００８２】
この少なくとも「第２の診断剤、成分、またはシステム」は、インビトロ診断試験によって直接または間接に検出可能な診断剤、成分、またはシステムであってもよい。「直接検出が可能なインビトロリポーター因子」としては、放射標識、免疫蛍光およびルシフェラーゼによって検出が可能なリポーター因子が挙げられる。「間接的に検出が可能なインビトロリポーター因子」は、別の外来因子（単複）、例えば、発色源物質と接触すると着色産物を生成する検出可能酵素と協調して機能する。これらは、直接的または間接的に検出可能な因子、例えば、放射標識または酵素に結合される「二次抗体」を含み、かつ、三次抗体が検出可能因子に結合される、「二次および三次抗体検出システム」を含む。
【００８３】
本発明の好ましい診断キットは、インビボ診断または画像法によって検出が可能な診断剤、成分、またはシステムを含むキットである。本発明の画像法実施態様の利点は、同じ構築物が、画像法にも治療にも使用が可能であることである。従って、本発明は、下記を含むキットおよび薬剤を提供する、すなわち、
（ａ）検出可能標識または診断剤に対して作動可能に結合される、診断有効量の、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体を含む第１の薬学的組成物；および、
（ｂ）治療有効量の、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、好ましくは、治療有効量の、第１の薬学的組成物において使用されたものと同じ構築物、レセプター本体、またはベータ体を含む第２の薬学的組成物。
【００８４】
治療実施態様で使用するためには、キットは、「少なくとも第２の治療剤」を含む。そのようなキットは、生物学的または治療的に有効な組み合わせ量、例えば、増殖またはウイルス複製を抑制する、または、癌またはウイルス感染のような疾患を治療するのに有効な組み合わせ量の、少なくとも二つの指定の薬剤を含む。
【００８５】
癌治療に関して言えば、本発明のキットは、薬剤前駆物質およびＡＤＥＰＴと組み合わせて使用される抗体を含む。この組成物では、構築物、レセプター本体、またはベータ体は、「転換または酵素能力を発揮するように修飾される」。構築物、レセプター本体、またはベータ体は、少なくとも一つの薬剤前駆体を薬剤の活性形に転換することが可能な、少なくとも第１の転換剤または酵素に対し、作動可能に連結する、好ましくは共有的に結合するまたは接合することが好ましい。
【００８６】
酵素的構築物または酵素接合構築物、レセプター本体、またはベータ体は、「薬剤前駆体」から成る、初期には別物の処方と組み合わされる。薬剤前駆体とは、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体と連結する酵素能力、転換機能、または酵素と接触すると、該薬剤の活性形に転換される、薬剤の不活性形または弱活性形である。
【００８７】
従って、好ましくは別々の組成物および／または容器において、下記、すなわち、
（ａ）生物学的有効量の、本発明の少なくとも第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体、その際、該構築物、レセプター本体、またはベータ体は、少なくとも第１の酵素に、作動可能に連結、または共有的に結合または接合する；および、
（ｂ）生物学的有効量の、少なくとも第１の、実質的に不活性な薬剤前駆体、該薬剤前駆体は、前記構築物、レセプター本体、またはベータ体に連結、結合、または接合される酵素によって、実質的に活性な薬剤に転換される、
を含むキットが提供される。
【００８８】
実質的に不活性な薬剤前駆体を切断して、実質的に活性な薬剤を放出するのに好適な酵素としては、アリールスルファターゼ、セラチアプロテアーゼ、テルモリシン、スブチリシン、カルボキシペプチダーゼ、カテプシン、Ｄ−アラニルカルボキシペプチダーゼ、β−ガラクトシダーゼ、ノイラミニダーゼ、β−ラクタマーゼ、ペニシリンアミダーゼ、およびシトシンデアミナーゼが挙げられる。
【００８９】
薬剤前駆体とは別に、少なくとも第２の抗癌剤は、本発明の組み合わされた抗癌組成物に関連して前述した、第２の抗癌剤の内の任意のものであってよい。ウイルス感染を治療するために、少なくとも第２の抗ウイルス剤も、本発明の組み合わされた抗ウイルス組成物に関連して前述した、第２の抗ウイルス剤の内の任意のものであってよい。一方、「キット」は、前述の薬剤の内の少なくとも二つを「組み合わせて、ただし別々に」含んでもよい。このようにすると、薬剤の選択にさらに大きな柔軟性が得られる。
【００９０】
従って、本発明のキットは、単一の容器または容器手段、または別々の容器または容器手段の中に、生物学的または治療的に有効な組み合わせ量の、少なくとも二つの指定薬剤を含んでもよい。キットはまた、その中に含まれる生物学的因子および治療剤を使用するための案内を含んでもよい。画像成分もまた、治療キットと組み合わせて、しかし別々に含まれてもよい。
【００９１】
腫瘍治療および関連法：本発明は、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体のための、いくつかの方法および使用を提供する。全ての方法について、「ある」という用語は、特異的に言明される場合を除き、言及される方法の工程の内、「少なくとも一つの」、「少なくとも第１の」、「一つ以上の」、または「複数の」工程を意味するのに用いられる。これは特に、治療法の投与工程に関係する。従って、本発明においては様々な用量の採用が可能であるばかりでなく、様々な回数の投与、例えば、注入または吸引、ある多数回を含む、該多数回までの注入または吸引の使用が可能である。
【００９２】
重要な生物学的内容を持つ、種々の有用なインビトロ法および使用が提供される。従って、ホスファチジルセリンに対する結合法および使用であって、一般に、本発明の第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体に、フォスファジルセリンを含む組成物を効果的に接触させることを含む方法および使用が提供される。「接触」は、結合複合体の形成を可能とし、かつ、そのように形成された複合体の、それがどのようなものであれ、検出を可能とするのに効果的な条件下で行われる。
【００９３】
この検出法および使用は、生物サンプルと組み合わせて、例えば、アポトーシス、腫瘍、およびウイルス感染細胞の診断学において使用されてもよく、この方法および使用に基づく診断キットも提供される。これらの方法およびキットは、本発明の構築物、レセプター本体、ベータ体、および接合体に関する特異的で、信用性の高い使用を提供する。例えば、本発明では、アポトーシス細胞を検出するための方法およびキットにおいてアネキシンＶが使用される。一方、アネキシンＶは、ホスファチジルセリンと同様、フォスファチジルエタノールアミンにも結合するが、他方、本発明の構築物、レセプター本体、ベータ体および接合体はホスファチジルセリンには結合するが、フォスファチジルエタノールアミンに対して目立つ程には、または好ましくは検出可能な程度には結合しない。従って、本発明の構築物は、検出法および診断アッセイにおいて、ホスファチジルセリンをより特異的に検出することが可能である。
【００９４】
本発明はさらに、沢山の有用なインビボ法および使用を提供する。例えば、腫瘍血管に到達するための、安定的標的マーカーである、ホスファチジルセリンに対する局在化に基づく、腫瘍血管標的法、腫瘍画像法および治療法が提供される。本発明の構築物、レセプター本体、およびベータ体、およびその接合体は、腫瘍を持つ動物に投与されると、硬組織腫瘍の血管に対して特異的に局在する。従って、完全アポトーシスおよび細胞死とは独立に、少なくとも相当部分において、腫瘍血管内皮細胞の表面に対するフォスファジチルセリンの転位が起こり、そのため、ホスファチジルセリンは、形態学的に無傷な血管内皮細胞でも露出される。
【００９５】
この方法および使用は、インビトロおよびインビボで実行が可能である。後者の場合、組織または細胞は動物の体内に局在し、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体はその動物に投与される。組織または細胞が体外で維持される場合、本発明は、薬剤発見プログラムにおいて好適に利用される。信頼性の高い陽性および陰性コントロールを用いたインビトロ・スクリーニングアッセイは、薬剤開発の第１の工程として有用である。組織または細胞が、動物または患者の体内に局在する場合、組成物は、治療の形式としてその動物に投与される。
【００９６】
抗脈管形成剤および抗血管療法は、望ましくない、不適切な、異常な、過剰な、および／または、病的な脈管形成または血管形成によって特徴づけられる任意の疾患または障害を持つ、または発症する恐れのある動物および患者に関連して提供される。本発明の方法および使用は、任意の形の血管増殖腫瘍、加齢性黄斑変性を含む黄斑変性、関節リウマチを含む関節炎、アテローム硬化症およびアテローム硬化プラーク、糖尿病網膜症およびその他の網膜症、グレーブズ病を含む甲状腺過形成、血管腫、血管新生緑内障、および乾癬を有する、または発症の危険性のある動物および患者に対する使用が特に意図される。ある実施態様では、脈管形成の抑制に使用するために、ニックドメインＶを含むβ２ＧＰＩポリペプチドに対し作動可能に結合されるＦｃ領域の使用が好まれる。
【００９７】
米国特許第５，７１２，２９１および６，５２４，５８３号に開示されるように、なおこれら特許文書を引用することにより特に指定して本明細書に含める、前述の治療グループは、それぞれ、本発明によって治療される病態タイプに関して決して網羅的なものではない。米国特許第５，７１２，２９１および６，５２４，５８３号は、あるいくつかの特定の目的、例えば、ある定められた範疇の化合物が開示され特許請求された後、効果的に治療される可能性のある、いくつかの他の病態を特定する目的、および、他の疾患の治療も、単一モデルシステムのみからのデータによって可能であることを示す目的のため、参照することによって本明細書に含める。
【００９８】
血管病の治療の外に、本発明の重要かつ一体的局面は、癌治療のための組成物および方法である。このような方法は、癌を抱える、または癌を発症する危険性のある動物または患者に対し、生物学的または治療的に有効な量の、本発明の、少なくとも第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体を投与することを含む。
【００９９】
本発明の癌治療法および使用は、血管増殖硬組織腫瘍、転移腫瘍、または一次腫瘍からの複数転移を有する、または発症する危険性のある動物および患者を含む、あらゆる形態の癌の治療に好適である。本発明の癌治療法は、抗血管作用、例えば、腫瘍血管内皮細胞の腔表面に露出されるホスファチジルセリンを標的輸送することによる抗血管作用のみに依存するものではない。なぜなら、本発明の構築物は、同時に腫瘍細胞の表面に露出されるホスファチジルセリンをも標的とするものであるから。本発明の方法は、目立った血栓合併症をもたらすことなく抗癌作用を発揮することが好ましい。
【０１００】
元の発明の未接合構築物、レセプター本体、またはベータ体、または、新たな、その接合体を、本発明の癌治療局面に使用してもよい。免疫接合体の使用について言うと、本発明は、腫瘍に診断剤または治療剤を送達する方法を提供する。このような実施態様は、腫瘍を持つ動物または患者に、生物学的有効量の、少なくとも第１の接合体を投与することを含む。その際、該接合体では、診断剤または治療剤が、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体に作動可能に結合される。
【０１０１】
本発明はまた、前アポトーシスおよびアポトーシス細胞を検出するために本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体を用いる、腫瘍診断、予後決定、画像記録、および関連法を提供する。このような方法は、他の治療、特に化学療法の進行を監視するための代行マーカーとして、あるいは、治療前の腫瘍の画像を形成するために使用することが可能である。
【０１０２】
癌治療、特に化学療法の進行を監視するための代行マーカーとして本発明を介入させる使用は、
（ａ）腫瘍を抱える動物または患者に対し、抗腫瘍作用を及ぼすように設計された少なくとも第１の治療を施すこと；
（ｂ）次いで、同じ動物または患者に対し、検出可能な標識または診断剤に作動可能に結合される、本発明の少なくとも第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体の診断的有効量を投与し、腫瘍の検出可能な画像、好ましくは、腫瘍内の、前アポトーシスまたはアポトーシス腫瘍細胞または腫瘍血管内皮細胞の画像を形成すること；
（ｃ）腫瘍の検出可能な画像、好ましくは、腫瘍内の、前アポトーシスまたはアポトーシス腫瘍細胞または腫瘍血管内皮細胞の画像を分析し、抗腫瘍作用を及ぼすように設計された少なくとも第１の治療の進行または効果を評価すること、
を含む。
【０１０３】
画像記録および癌治療組み合わせ法は、
（ａ）腫瘍を持つ動物または患者に対し、検出可能な標識または診断剤に作動可能に結合される、本発明の少なくとも第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体の診断的最小量または有効量を投与することによって腫瘍の画像を形成し、該腫瘍の検出可能画像を形成すること；および、
（ｂ）次いで、同じ動物または患者に対し、本発明の少なくとも第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体の治療的最適量または有効量を投与することによって抗腫瘍作用をもたらすこと、
を含む。
【０１０４】
本発明の癌治療法において、本発明はさらに、薬剤前駆体治療法であって、一般に、
（ａ）腫瘍を抱える動物または患者に対し、少なくとも第１の酵素に対し作動可能に連結、共有的に結合または接合される、本発明の第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体を含む、第１の薬学的組成物を投与すること；
（ｂ）次いで、該動物または患者に対し、効果的な時間間隔の後、生物学的有効量の、少なくとも一つの実質的に不活性な薬剤前駆体を投与することを含み、その際、薬剤前駆体は、腫瘍内に局在化される、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体に連結、結合、または接合される酵素によって実質的に活性な薬剤に転換される、
方法を提供する。
【０１０５】
本発明は、ある範囲の組み合わせ癌治療法であって、癌を抱える動物または患者に対し、本発明の少なくとも第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体、および、少なくとも第２の、別の治療剤または抗癌剤を投与することを含む方法を提供する。
【０１０６】
一般的に、少なくとも第２の抗癌剤は、動物または患者に対し、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体の投与前、投与中、または投与後に投与されてもよい。少なくとも第２の抗癌剤は、動物または患者に対し、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体と「実質的に同時に」、例えば、単一の薬学的組成物、または、きわめて接近して投与される二つの薬学的組成物から放出されるように投与される。
【０１０７】
それとは別に、少なくとも第２の抗癌剤は、動物または患者に対し、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体の投与後のある時点で投与されてもよい。本明細書で用いる「後のある時点」とは、少なくとも第２の抗癌剤は、動物または患者に対し、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体の投与時とは別の時点で投与されるように「間を置くこと」を意味する。
【０１０８】
継続投与の場合、二つの薬剤は、該二つの薬剤がそれぞれの治療効果を発揮できるよう効果的に隔てられた別時点で投与される、すなわち、二つの薬剤は、「生物学的に有効な間隔を置いて」投与される。少なくとも第２の抗癌剤は、動物または患者に対し、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体の投与前の、生物学的に有効な時点において、または該治療剤投与後の生物学的に有効な時点において投与されてもよい。
【０１０９】
本発明の組み合わせ癌治療法に使用される第２の治療または抗癌剤としては、任意の治療または抗癌剤、例えば、本発明の抗癌組成物およびキットと関連して上述した治療または抗癌剤の内の任意のものを用いてよい。好ましい薬剤は、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体の治療作用を補充または強化する薬剤、例えば、血管透過性強化剤、抗脈管形成剤、アポトーシス誘発剤、カルシウムフラックス誘発剤、炎症性サイトカイン、抗体、腫瘍細胞および壊死腫瘍細胞に対する免疫トキシン、表Ｅまたは表Ｆに見られる化学療法剤、コンブレタスタチン、ドキソルビシン、エトポシド、およびアクチノマイシン−Ｄである。
【０１１０】
ドセタキセルは、組み合わせ療法の使用には特に好まれる薬剤である。ドセタキセルは、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体とは別に、その前か後のいずれかに投与されてよい。同時投与について言えば、ドセタキセルは、別の、または同じ処方において、要すれば任意にリポソーム、またはステルス処理リポソームにおいて、好ましくは、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体によって被覆されたステルス処理リポソームのコア内に納められて投与される。
【０１１１】
ウイルス感染を治療する：別の全体的実施態様では、本発明はさらに、ウイルス感染および疾患の治療に使用される、ウイルス複製、感染、および伝播を抑制するための、重要な新規クラスの組成物および方法を提供する。これらの方法は、それが抗ウイルス剤に接合されるかどうかには無関係に、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体の使用に基づく。重要なことは、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体は、何か別の薬剤に結合されることがなくとも抗ウイルス作用を発揮することである。別の薬剤に対する結合が望まれるのであれば、古典的抗ウイルス剤ばかりでなく、細胞傷害剤およびその他の薬剤も抗ウイルス治療には効果的である。従って、ある範囲のウイルス感染および関連疾患の治療には、このような構築物および接合体も広く適用が可能である。
【０１１２】
第１の例では、本発明の抗ウイルス法は、生物学的有効量の、本発明の少なくとも第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体に対し、ウイルス感染細胞を含む、または含むことが疑われる細胞または細胞集団を接触させることに関する。ウイルス感染細胞は、真核細胞、例えば、動物細胞であることが好ましく、哺乳動物またはヒトの細胞であることが好ましい。
【０１１３】
抗ウイルス法および使用は、インビトロおよびインビボで実行することが可能である。インビトロ実施態様では、方法は重要な利便性を持つ。例えば、本発明は、抗ウイルス剤またはその組み合わせの開発のための薬剤発見プログラムの外に、ウイルス感染、複製、および伝播に関する新たな情報の定義においても有用である。インビトロ抗ウイルス法はまた、生物サンプル、例えば、実験室用の細胞集団および細胞培養体、サンプル、組織、種、植物部分、および、農業用植物、治療用血液および組織サンプルからウイルスを駆逐するためにも使用される。
【０１１４】
細胞、集団、または組織が動物の体内に局在するインビボ法では、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体は、抗ウイルス治療として動物に投与される。本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体は、ウイルス感染細胞の表面に露出されるホスファチジルセリンに結合する可能性があり、あるいは、ウイルス粒子の表面に露出されるホスファチジルセリンに結合する可能性がある。
【０１１５】
いずれの場合でも、組成物、方法、および使用は、ウイルス侵入を抑制することを含め、生産的または進行的ウイルス感染にとって必要な工程または段階を抑制する。組成物、方法、および使用は、ウイルス複製および／または伝播を抑制する、例えば、ウイルスの転写、翻訳、アッセンブリ、パッケージング、および／または、感染宿主細胞内への、または該細胞からの溢出等、の内の１個以上の工程を抑制する。従って、本発明は、ウイルス感染を、初期に感染した細胞および細胞集団に限定し、実質的に封鎖し、このようにして、さらに別の宿主細胞または組織の、その後の、または進行中の感染を抑制または阻止することが好ましい。
【０１１６】
本発明の抗ウイルス治療法は、ウイルス感染または関連疾患を持つ、持つことが疑われる、または、発症の危険性がある動物または患者に対して、生物学的有効量の、本発明の少なくとも第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体を投与することに関することが好ましい。接合体は、Ｖ型ＡＴＰアーゼ、例えば、サリチリハラミド、コンカナマイシン、またはバフィロマイシン；タンパク質合成インヒビター、例えば、シンベリン、ペデリン、イルシニアスタチンＡ；リシン、ゲロニン、アブリン、ジフテリア、シュードモナス、または百日咳菌毒素；または、少なくとも第２の、別の抗ウイルス剤に作動可能に結合されてもよい。結合のための好適な抗ウイルス剤としては、表Ｇに記載されるもの、例えば、ＡＺＴまたはシドフォビルが挙げられる。
【０１１７】
本発明は、全てのウイルスに共通な生産的または進行的感染に必要な１種以上の工程または段階を抑制するので、本発明の抗ウイルス法および使用は、エンベロープ被覆、非エンベロープ被覆を問わず、全てのウイルス、例えば、植物、動物、脊椎動物、哺乳類、およびヒト患者に感染するものを含む全てのウイルスを治療するのに好適である。本発明は、本明細書の表Ｈに列挙されるように、脊椎動物に感染する全てのウイルス、特にヒトに感染するウイルス、特に、動物およびヒトにおいて病原となるウイルスの治療に好適である。本発明によって治療が可能な、ウイルス感染および、関連および由来疾患としては、表Ｊに記載されるウイルスおよび疾患が挙げられる。例示として、ＣＭＶ、ＲＳＶ、アレナウイルスおよびＨＩＶ感染、および疾患として肝炎、インフルエンザ、肺炎、ラッサ熱、およびＡＩＤＳの治療が挙げられる。
【０１１８】
本発明の抗ウイルス治療法も、その他の治療法および診断法と組み合わせて使用することが可能である。組み合わせ治療法は、ウイルス感染を抱える動物または患者に対し、治療的に有効な組み合わせ量の、本発明の少なくとも第１の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体、および少なくとも第２の、別の治療または抗ウイルス剤を投与することを含む。
【０１１９】
この少なくとも「第２の、別の」抗ウイルス剤は、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体が、「第１の」抗ウイルス剤であることに基づく。この少なくとも第２の抗ウイルス剤は、動物または患者に対し、本発明の第１の抗ウイルス剤の投与中に、または実質的に同時に、すなわち、その前に、またはその後に、すなわち、本発明の第１の抗ウイルス剤の投与に続いて投与されてもよい。
【０１２０】
本発明の組み合わせ抗ウイルス治療法では、第２の治療剤または抗ウイルス剤として任意の治療剤または抗ウイルス剤の使用が可能であり、例えば、本発明の抗ウイルス接合体、組成物、およびキットと関連して上述した抗ウイルス剤の内の任意のものを含む抗ウイルス剤の使用が可能である。
【０１２１】
前述の癌および抗ウイルス治療法および使用は、多くの場合、動物または患者に対し、製薬学的に有効な組成物の全身的投与、例えば、経皮、筋肉内、静脈内注入等による投与を含む。ウイルス感染、特に、呼吸器のウイルス感染の治療では、エロゾルを用いて実現される肺への送達は、もう一つの好ましい実施態様である。しかしながら、腫瘍またはウイルス感染部位に対する治療剤の局在を可能とするものであれば、どのような投与ルートも受容が可能である。従って、その他の好適な送達ルートとしては、経口、直腸、鼻腔内、局所、および経膣ルートが挙げられる。関節炎治療用の使用および方法では、例えば、米国特許第５，７５３，２３０号において他の免疫剤に関して記載されるように、滑膜内投与を用いることも可能である。眼に関連した病態では、眼科用処方および投与が考慮される。
【０１２２】
本明細書で用いる「投与」とは、治療作用を及ぼすのに有効な量（単複）および期間（単複）において行われる、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体の供給または送達を意味する。タンパク質様治療剤の受動的投与は、一部は簡便と再現性のために、一般に好まれる。
【０１２３】
一方、「投与」という用語は、本明細書では、治療剤の送達に用いられる任意の、また全ての手段を指すために用いられる。従って、「投与」は、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体を効果的に生産する細胞の調製を含む。この実施態様では、選択的透過膜、構造体、または埋設可能デバイス、一般に治療を停止するために取り出すことが可能なデバイスに含まれるものとして、細胞を処方する、または包装することが望ましい。それでも、一般に、外部投与は、用量の緊密な監視、および調節を可能とする非侵襲的方法を代表するものなので、好まれる。
【０１２４】
本発明の治療法および使用はまた、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体を、インビボの発現をもたらすほど効果的なやり方でコードする核酸の調製にまで発展する。任意の遺伝子治療技術、例えば、裸のＤＮＡ送達、組み換え遺伝子およびベクター、患者細胞の体外操作を含む細胞性送達等の使用が可能である。ウイルスベクター、例えば、組み換えレトロウイルス、単純疱疹ウイルス（ＨＳＶ）、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス（ＡＡＶ）、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）等の内部に含まれるものも使用が可能である。ある実施態様では、リポソーム、およびステルス処理リポソームの使用も好ましい。
【０１２５】
本発明の薬学的組成物および治療法は、「治療的有効量の」本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体を用いる。「治療効果」、およびそれから導かれる「治療有効量」は、癌治療対抗ウイルス治療における種々のパラメータによって測定される。
【０１２６】
癌治療では、薬剤の量は、腫瘍細胞、腫瘍、または腫瘍内血管内皮細胞を殺す、または少なくともその一部を特異的に殺すのに有効であり；腫瘍細胞、腫瘍、または腫瘍内血管内皮細胞においてアポトーシスを誘発する、または少なくともその一部において特異的にアポトーシスを誘発するのに有効であり；腫瘍または腫瘍内血管において凝固を促進する、または少なくともその一部において特異的に凝固を促進するのに有効であり；腫瘍の血液輸送血管を閉塞または破壊する、または少なくともその一部を特異的に閉塞または破壊するのに有効であり；腫瘍の壊死を誘発する、または少なくともその一部において特異的に壊死を誘発するのに有効であり；および／または、動物または患者に投与することによって腫瘍の萎縮または寛解を誘発するのに有効である。
【０１２７】
ウイルス感染および関連疾患の治療では、薬剤の量は、進行するウイルス感染のための一つ以上の要件、例えば、ウイルスの侵入、および、好ましくは、ウイルスの複製、感染宿主細胞からの溢出および拡散を抑制するのに有効である。その量はまた、ウイルス感染細胞の少なくとも一部を、ウイルスの複製、拡散、および進行感染に対抗するやり方で殺す、または排除することが可能である。まとめると、薬剤の量は、動物または患者に投与されると、ウイルス感染を低減、著明に低減または根絶するのに有効である。
【０１２８】
本明細書に用いる「好んで」および「特異的に」という用語は、本発明の構築物、レセプター本体、またはベータ体、またはその接合体は、疾患部位に実質的に限局した抗癌または抗ウイルス作用を実現するが、動物または患者の正常で健康的な組織に対しては凝固、破壊、および／または組織壊死を実質的にもたらすことがないことを意味する。従って、健康細胞および組織の構造および機能は、本発明を実施することによって実質的に妨げられることなく維持される。
【発明を実施するための最良の形態】
【０１２９】
（例示的な実施形態の詳細）
固形腫瘍およびガン腫は、ヒトにおける全てのガンの９０％より多くに相当する。モノクローナル抗体および免疫毒素の使用は、リンパ腫および白血病の治療において検討されている（Ｖｉｔｅｔｔａら，１９９１）が、これらの因子は、ガン腫および他の固形腫瘍に対する臨床試験においては失望すべきことに有効ではなかった（ＡｂｒａｍｓおよびＯｌｄｈａｍ，１９８５）。抗体に基づく処置が有効でないことについての主な理由は、高分子は固形腫瘍に容易に輸送されないということである。一旦、腫瘍塊内になっても、これらの分子は、腫瘍細胞、線維性間質、間質性圧力勾配および結合部位障壁の間の緊密な結合の存在に一様に起因して分布することができない（Ｄｅｎｅｋａｍｐ，１９９０；Ｄｖｏｒａｋら，１９９１）。
【０１３０】
固形腫瘍を処置するための新規なストラテジーを開発することにおいて、腫瘍細胞ではなく腫瘍の脈管を標的する工程を包含する方法によって別個の利点が得られる。腫瘍血管の有効な破壊または遮断は、腫瘍を通じた血流を停止させ、腫瘍細胞死亡の崩壊を生じる。抗体毒素および抗体凝固構築物、腫瘍血管を選択的に破壊および／または閉塞するＶＴＡの例は既に、腫瘍脈管構造の特定の標的および破壊において大きな効果を発揮しており、腫瘍壊死を生じる（Ｂｕｒｒｏｗｓら，１９９２；ＢｕｒｒｏｗｓおよびＴｈｏｒｐｅ，１９９３；ＷＯ  ９３／１７７１５；ＷＯ  ９６／０１６５３；Ｈｕａｎｇら，１９９７；各々が参考として本明細書に援用される）。
【０１３１】
ＶＴＡは、固形腫瘍の既存の血管に対してその一次的な作用を発揮し、新しい血管形成を妨げる血管新生阻害因子とは異なる。他のガン治療を上回るＶＴＡの多くの利点がある。第一に、単一の血管によって、栄養が供給されて、数百または数千の腫瘍細胞からの代謝物の廃棄物の除去が促進されており、血流の上流および下流をブロックするためには１つのポイントを損傷させるだけでよい。従ってＶＴＡは樹立された腫瘍には特に有効である。第二に、内皮細胞殺傷は有用な機構の１つであるが必要ではない。血液凝固の形状または開始位置の変化は十分であり得る。第三に内皮細胞は血流に隣接し、十分な薬物送達を保障する。第四に、標的は、薬物耐性を付与する遺伝的変異を獲得する可能性の低い正常な二倍体細胞である。第五に生物学的活性の代理のマーカー（すなわち血流）は測定可能である。
【０１３２】
第六に、血管機能に対する一時的な効果は有意な抗腫瘍効果について十分であり得る。研究によって、インビボにおいて９９％を上回る腫瘍細胞が、虚血の２時間の間に殺傷され得ることが示される。最終的に、脈管形成インヒビターとは異なり、ＶＴＡは、数ヶ月または数年を超える慢性的な投与ではなく、従来の処置と協同作用するためには間欠的な投与しか必要としない。
【０１３３】
細胞傷害性ＶＴＡは、以下の特許に記載されている：各々が参考として本明細書に援用される、米国特許第５，６６０，８２７号、同第５，７７６，４２７号、同第５，８５５，８６６号、同第５，８６３，５３８号、同第５，９６５，１３２号、同第６，００４，５５４号、同第６，０５１，２３０号、同第６，２６１，５３５号、および同第６，４５１，３１２号。腫瘍脈管構造に対して凝固因子を特異的に送達するために抗体、成長因子または他の結合リガンドが用いられる場合、このような因子は「コアグリガンド（ｃｏａｇｕｌｉｇａｎｄｓ）」と名付けられる。コアグリガンドＶＴＡは、以下の特許に記載される：各々が参考として援用される、米国特許第６，０９３，３９９号、同第６，００４，５５５号、同第５，８７７，２８９号および同第６，０３６，９５５号。
【０１３４】
コアグリガンドにおける使用のための現在好ましい凝固因子は、短縮型組織因子（ｔｒｕｎｃａｔｅｄ  Ｔｉｓｓｕｅ  Ｆａｃｔｏｒ）（ｔＴＦ）（Ｈｕａｎｇら、１９９７；ＷＯ９６／０１６５３；米国特許第５，８７７，２８９号）である。ＴＦは、血液凝固の主な開始因子である（Ｒｕｆら、１９９１；Ｅｄｇｉｎｇｔｏｎら、１９９１）。損傷の部位で、血液中の第ＶＩＩ／ＶＩＩａ因子は、血管周囲の組織における細胞上のＴＦに接触して結合する。ＴＦ：ＶＩＩａ複合体は、リン脂質表面の存在において、因子ＩＸおよびＸを活性化する。これが次に、トロンビンおよびフィブリンの形成を導き、最終的に血液凝固をもたらす（ＲｕｆおよびＥｄｇｉｎｇｔｏｎ，１９９４）。
【０１３５】
細胞質ドメインおよび膜貫通ドメインを欠く、組換えの短縮型の組織因子（ｔＴＦ）は、ネイティブなＴＦよりも凝固を誘導する能力の大きさが約５分の１である可溶性のタンパク質である（Ｓｔｏｎｅら、１９９５；Ｈｕａｎｇら、１９９７）。この理由は、ＴＦが、効率的にＩＸａまたはＸａを活性化する、ＶＩＩａとの複合体についてリン脂質と関連する必要があるということである。しかし、抗体または因子を標的化する手段によって腫瘍血管内皮に対してｔＴＦが送達される場合、これは脂質表面に近位に戻されて血栓形成性の活性を回復する（Ｈｕａｎｇら、１９９７；米国特許第６，０９３，３９９号、同第６，００４，５５５号、同第５，８７７，２８９号および同第６，０３６，９５５号）。従って、腫瘍脈管構造を選択的に血栓症にさせるコアグリガンドが作製される。
【０１３６】
短縮されたＴＦは、脈管標的化コアグリガンドにおける使用が推奨されるいくつかの利点を有する：ヒトｔＴＦは容易に利用可能であり、ヒトタンパク質は、ヒトにおいては免疫原性が無視できるかまたは低い；ヒトｔＴＦは、マウスを含む実験動物において完全に機能的である；標的されたｔＴＦは非常に強力である。なぜなら、凝固タンパク質のカスケードの活性化を誘引して、大きく増幅された効果を生じるからである（米国特許第６，０９３，３９９号、同第６，００４，５５５号、同第５，８７７，２８９号、および同第６，０３６，９５５号）。
【０１３７】
腫瘍内皮から入手できるが、正常な内皮細胞からはかなり損なわれている、一連の適切な標的分子が記載されている。例えば、発現された標的、例えば、エンドグリン、Ｅセレクチン、Ｐセレクチン、ＶＣＡＭ−１、ＩＣＡＭ−１、ＰＳＭＡ、ＴＩＥ、ＬＡＭ−１と反応性のリガンド、ＶＥＧＦ／ＶＰＦレセプター、ＦＧＦレセプター、αｖβ３インテグリン、プレイオトロピンまたはエンドシアリンが利用されてもよい（各々が参考として本明細書に援用される、米国特許第５，８５５，８６６号、同第５，８７７，２８９号；Ｂｕｒｒｏｗｓら．，１９９２；ＢｕｒｒｏｗｓおよびＴｈｏｒｐｅ，１９９３；Ｈｕａｎｇら，１９９７；Ｌｉｕら，１９９７；Ｏｈｉｚｕｍｉら，１９９７）。
【０１３８】
吸着された標的は、別の適切な群、例えば、ＶＥＧＦ、ＦＧＦ、ＴＧＦβ、ＨＧＦ、ＰＦ４、ＰＤＧＦ、ＴＩＭＰ、ＴＩＥに結合するリガンド、腫瘍関連フィブロネクチンアイソフォーム（米国特許第５，８７７，２８９号、同第５，９６５，１３２号、同第６，０５１，２３０号および同第６，００４，５５５号）。フィブロネクチンアイソフォームは、インテグリンファミリーのレセプターに結合するリガンドである。腫瘍関連フィブロネクチンアイソフォームは、腫瘍脈管および腫瘍間質の両方の標的可能成分である。モノクローナル抗体ＢＣ−１（Ｃａｒｎｅｍｏｌｌａら、１９８９）は腫瘍関連フィブロネクチンアイソフォームに特異的に結合する。
【０１３９】
天然の腫瘍環境によって、またはその後のヒトによる介入によって誘導可能な他の標的はまた、米国特許第５，７７６，４２７号、同第５，８６３，５３８号および同第６，０３６，９５５号に記載のとおり、標的可能な実体である。正常な組織および腫瘍血管誘導における以前の抑制と組み合わせて用いる場合、ＭＨＣクラスＩＩ抗原も、標的として用いることができる（米国特許第５，７７６，４２７号、同第５，８６３，５３８号、同第６，００４，５５４号および同第６，０３６，９５５号）。
【０１４０】
臨床的適用のために現在好ましい１つの標的は、脈管内皮接着分子−１（ＶＣＡＭ−１）である（米国特許第５，８５５，８６６号、同第５，８７７，２８９号、同第６，０５１，２３０号、同第６，００４，５５５号および同第６，０９３，３９９号）。ＶＣＡＭ−１は細胞接着分子であって、炎症性サイトカインＩＬ−１α、ＩＬ−４（Ｔｈｏｒｎｈｉｌｌら、１９９０）およびＴＮＦα（Ｍｕｎｒｏ，１９９３）によって誘導され、そしてそのインビボでの役割は、急性炎症の部位に対して白血球を補充することである（Ｂｅｖｉｌａｃｑｕａ，１９９３）。
【０１４１】
ＶＣＡＭ−１は、神経芽細胞腫（Ｐａｔｅｙら、１９９６）、腎臓ガン腫（Ｄｒｏｚら，１９９４）、非小細胞性肺ガン（Ｓｔａａｌ−ｖａｎ  ｄｅｎ  Ｂｒｅｋｅｌら、１９９６）、ホジキン病（Ｐａｔｅｙら、１９９６）および肉管肉腫（Ｋｕｚｕら、１９９３）を含む多数のヒト悪性腫瘍において、そして良性腫瘍、例えば、血管腫（ａｎｇｉｏｍａ）（Ｐａｔｅｙら、１９９６）および血管腫（ｈｅｍａｎｇｉｏｍａ）（Ｋｕｚｕら、１９９３）において、脈管内皮細胞に存在する。ヒトのＶＣＡＭ−１の構成的発現は、甲状腺、胸腺および腎臓においてわずかな血管に（Ｋｕｚｕら、１９９３；ＢｒｕｉｊｎおよびＤｉｎｋｌｏ，１９９３）、そしてマウスにおいては、心臓および肺における血管に対して限定される（Ｆｒｉｅｓら、１９９３）。
【０１４２】
本明細書において提示される特定のデータは、米国特許第５，８５５，８６６号、同第５，８７７，２８９号、同第６，０５１，２３０号、同第６，００４，５５５号および同第６，０９３，３９９号に提供されるデータをさらに補足し、抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦコアグリガンドの投与から生じる血栓および腫瘍梗塞の選択的誘導を示す。提示される結果は、Ｌ５４０ヒトホジキンリンパ腫を保有するマウスを用いて生成した。ＳＣＩＤマウスにおいて異種移植片として成長させた場合、この腫瘍は、炎症性サイトカインの発現（Ｄｉｅｈｌら、１９８５）ならびにその脈管構造におけるＶＣＡＭ−１および他の内皮細胞活性化分子の存在に関してヒト疾患に対して密接な類似性を示す。
【０１４３】
ｔＴＦが抗ＶＣＡＭ−１抗体に直接結合した、共有結合した抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦコアグリガンドを用いて、固体Ｌ５４０ホジキン腫瘍を有するマウスにおいて、コアグリガンドが腫瘍血管に対して選択的に局在し、これらの血管の血栓を誘導し、腫瘍全体を通じた壊死の発生を生じ、そして腫瘍増殖を遅延させることが、本明細書中で示される。腫瘍は一般に、コアグリガンドに対して応答するには少なくとも約０．３ｃｍの直径である必要があった。なぜなら、ＶＣＡＭ−１はさらに小さい腫瘍からは欠失していたからである。推定上、小さい腫瘍では、腫瘍に浸潤する腫瘍細胞または宿主細胞によって分泌されるサイトカインのレベルは、ＶＣＡＭ−１誘導には低すぎる。これは、米国特許第５，８５５，８６６号、同第５，８７７，２８９号、同第６，０５１，２３０号、同第６，００４，５５５号および同第６，０９３，３９９号における研究によるが、ここでは、本発明はさらに大きい固形腫瘍において最も有用であることが示された。
【０１４４】
ＶＣＡＭ−１染色は、腫瘍の末梢において最初にさらに観察されたが、コアグリガンドは明白に血液輸送血管に対して結合して閉塞した。そのとき、それによって全ての腫瘍領域において血流を短縮することができた。さらに、本発明者らの１人は、コアグリガンドの最初の投与によって生じたトロンビン生成が、中央の血管でのＶＣＡＭ−１のさらなる誘導を導く可能性が高く（Ｓｌｕｉｔｅｒら、１９９３）、これによって腫瘍内領域の増幅されたシグナルおよび明白な破壊が生じると考える。さらなる標的可能マーカーのこのタイプの凝固剤誘導性発現、およびこれによるシグナル増幅はまた、米国特許第６，０３６，９５５号に開示される。
【０１４５】
本明細書に示されるとおり、マウスの心臓および肺におけるＶＣＡＭ−１発現血管に対する局在化は、抗ＶＣＡＭ−１コアグリガンドの投与の際に観察されたが、この構築物は、このような非腫瘍部位において血栓を誘導しなかった。さらに、抗ＶＣＡＭ−１コアグリガンドは、特異性の無関係なコントロールのコアグリガンドほどマウスに対して毒性ではなかった。そしてこれによってもやはり、心臓および肺の血管におけるＶＣＡＭ−１の構成的発現は毒性を導かなかったことが示された。このデータは、ＶＣＡＭ−１がヒトにおける腫瘍血管内皮の天然に存在するマーカーであることを考えれば、コアグリガンド治療の直接的な臨床的進歩に重要である。しかし、この現象によって、また本発明者らは、腫瘍脈管構造破壊に対する異なるアプローチにつながる固有の洞察を得た。
【０１４６】
（Ａ．腫瘍処置のための裸の抗ホスファチジルセリン抗体の発見）
本発明者らは、抗ＶＣＡＭ−１コアグリガンドが、心臓および肺における血管上で構成的に発現されるＶＣＡＭ−１に対して結合するが、その血管において血栓は生じない能力の背景の機構を理解しようと努めた。心臓および肺における腫瘍環境のプロトロンビン性質および任意の線維素溶解性素因と一般的に結び付いた、この実験的な観察については多くの科学的な可能性がある。
【０１４７】
概して、凝固系（フィブリン沈着）と線維素溶解系（酵素によるフィブリンの分解）との間に生物学的平衡がある。しかし、悪性疾患において、特にガン腫において、この平衡は崩壊されて、凝固の異常な活性化（凝固性亢進または「プロトロンビン状態（ｐｒｏｔｈｒｏｍｂｏｔｉｃ  ｓｔａｔｅ）」が生じる。広範な研究にもかかわらず、腫瘍環境のプロトロンビン性質について明白な分子説明は、最近まで認識できなかった。
【０１４８】
多くの可能性のある選択肢の詳細な解析後、本発明者らは、抗ＶＣＡＭ−１コアグリガンドが正常な組織の血管において血栓を生じ得ないことはホスファチジルセリンがこのような血管の内面から欠失したことに起因したと判断した。従って、この理論を完成させるために、ホスファチジルセリンがこれらの正常な血管から欠失することを示さなければならないだけでなく、腫瘍関連血管の内面上のその存在が実証されなければならない。
【０１４９】
従って、本発明者らは、免疫組織化学染色を用いて、腫瘍保有マウスへ静脈内注射したモノクローナル抗ホスファチジルセリン（抗ＰＳ）抗体の分布を評価した。これらの研究によって、心臓および肺におけるＶＣＡＭ−１発現血管がＰＳを欠くことが明らかになったが、ＶＣＡＭ−１発現血管は腫瘍においてＰＳを発現した。ＰＳに結合するアネキシンＶがインビトロおよびインビボの両方で抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦコアグリガンド作用をブロックするという本発明者らの知見によって、コアグリガンド作用における表面ＰＳ発現の必要性がさらに示される。
【０１５０】
従って、正常な心臓および肺の血管において抗ＶＣＡＭ−１コアグリガンドの血栓性の影響がないことが少なくとも部分的に説明された：ホスファチジルセリンの非存在は、凝固複合体が集合し得る凝固促進性の表面が正常な血管に欠けるということを意味する。表面ＰＳの非存在下で、抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦがＶＣＡＭ−１を発現する心臓および肺血管に結合するが、血栓を誘導できない。対照的に、腫瘍におけるＶＣＡＭ−１発現血管は、表面ＰＳの同時発生的な発現を示す。従って、コアグリガンドは、腫瘍血管に結合して、凝固因子を活性化し、局所的に閉塞性血栓を形成する。
【０１５１】
抗ＶＣＡＭ−１コアグリガンドの腫瘍特異性血栓効果を描写することに加えて、腫瘍血管の管腔表面におけるホスファチジルセリンの特異的発現によってまた、本発明者らは、観察はされたが、初期の研究では理解できなかったプロトロンビン表現型を説明することができた。ＰＳ発現は、腫瘍脈管構造のプロトロンビン状態における有意な役割を示す。
【０１５２】
代表的なアミノリン脂質、ホスファチジルセリンが腫瘍血管の管腔表面上に特異的に発現されたが正常な血管では発現されなかったという発見後に、本発明者らは、他のアミノリン脂質が、治療介入についての標的として能力を有したことを判断した。従って、本発明者らは、アミノリン脂質、ホスファチジルセリンおよびホスファチジルエタノールアミン（ＰＥ）を標的することに基づいて、腫瘍脈管構造標的化および処置方法を開発した。
【０１５３】
腫瘍脈管構造の特定のマーカーとしてのホスファチジルセリンの発見が証明されるとすぐに、本発明者らは、腫瘍処置における使用のための、ある範囲のホスファチジルセリン標的免疫毒素およびコアグリガンドの開発を開始した。米国特許第６，４０６，６９３号において例示されるように、腫瘍脈管構造に対して毒素または凝固因子を送達する状況では、ホスファチジルセリン標的化の能力を検討することにおいて、裸の抗ＰＳ抗体が任意のさらなるエフェクター部分の非存在においてインビボで腫瘍脈管構造に対する破壊的効果を有したことを、本発明者らは、思いがけなくも見出した。腫瘍壊死をもたらす、抗アミノリン脂質抗体が腫瘍脈管構造に特異的に局在する能力および付随する破壊的効果を発揮する能力の両方ともほとんど予期されなかった。
【０１５４】
これらの発見は、米国特許第６，４０６，６９３号（参考として本発明に援用される）に記載されるように、ホスファチジルセリンに結合する非抱合型または「裸の」抗体を用いる腫瘍処置を生み出した。当該分野で許容される動物モデルでの抗腫瘍効果は米国特許第６，４０６，６９３号に示されており本発明に及ぶが、アミノリン脂質が腫瘍脈管構造の安全かつ効果的な標的可能マーカーとして作用する能力は、米国特許第６，４０６，６９３号より以前には研究から予測し得なかった。
【０１５５】
Ｂ．抗ホスファチジルセリン抗体による広範な腫瘍治療
ホスファチジルセリンは、通常、様々な細胞の原形質膜二重層の内面に分離されるが（Ｇａｆｆｅｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５；Ｊｕｌｉｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５）、この脂質分離によって二重層間非対称が形成される（Ｗｉｌｌｉａｍｓｏｎ  ａｎｄ  Ｓｃｈｌｅｇｅｌ，１９９４）。本発明人達は以前に、ＰＳは、腫瘍血管内皮細胞の表面に転位すること、かつ、この転位の少なくとも相当部分は、アポトーシスまたは他の細胞死機構とは無関係に起こることを明らかにした（米国特許第６，４０６，６９３号）。従って、腫瘍環境におけるＰＳの表面発現は、細胞死の結果ではなく、また、それが、直後に細胞破壊を誘発することでもない。各種硬組織腫瘍の未処置の血管内皮細胞にＰＳ露出が一貫して検出されるけれども、腫瘍血管内皮は全くアポトーシスを呈することはなく、形態的には健全で（ただし、正常組織の形態とは異なるが）、代謝的には活発である。このことは、腫瘍血管内皮細胞におけるＰＳの外部膜への転位は十分に安定で、従って、ＰＳは、治療（裸の抗体または治療接合体を用いる）の成功に必要な、標的輸送可能な実体となり得ることを意味するのであるから、ＰＳ標的輸送に基づく治療法にとって重要である。
【０１５６】
様々なリン脂質に対する精妙な特異性を持つ生物学的ツールの開発を通じて、本発明人達は、腫瘍血管内皮細胞では陰イオン性リン脂質も上方調整されることを特定した。従って、陰イオン性リン脂質も、腫瘍血管の特異的で、安定なマーカーとなるので、陰イオン性リン脂質に結合する、裸の抗体および免疫接合体による治療介入を可能とする。
【０１５７】
陰イオン性リン脂質は、正常な条件下の安静哺乳類細胞の表面にはほとんど存在しない。原形質膜においてもっとも大量に見られる陰イオン性リン脂質であるホスファチジルセリンは、正常条件では多くの細胞タイプにおいて原形質膜の内部小葉に堅く分離されている（Ｗｉｌｌｉａｍｓｏｎ  ａｎｄ  Ｓｃｈｌｅｇｅｌ，１９９４；Ｚｗａａｌ  ａｎｄ  Ｓｃｈｒｏｉｔ，１９９７）。もう一つの主要陰イオン性リン脂質であるフォスファチジルイノシトール（ＰＩ）も、主に原形質膜の内部小葉に局在する（Ｃａｌｄｅｒｏｎ  ａｎｄ  ＤｅＶｒｉｅｓ，１９９７）。比較的目立たない陰イオン性リン脂質である、フォスファチジン酸（ＰＡ）およびフォスファチジルグリセロール（ＰＧ）は、少数の細胞タイプでしか調べられていないが、これらも、主に原形質膜の内部小葉中に存在するようである（Ｈｉｎｋｏｖｓｋａ−Ｇａｌｃｈｅｖａ  ｅｔ  ａｌ．，１９８９）。もう一つの陰イオン性リン脂質であるカルジオリピンは、ミトコンドリア膜に存在し、原形質膜には見られない（Ｄａｕｍ，１９８５）。
【０１５８】
中性リン脂質も、原形質膜において非対称に分布する。中性アミノリン脂質であるフォスファチジルエタノールアミン（ＰＥ）は主に内部小葉上に存在する。コリン含有中性リン脂質である、フォスファチジルコリン（ＰＣ）およびスフィンゴミエリン（ＳＭ）は主に外部小葉上に存在する。
【０１５９】
ＰＳの非対称は、アミノリン脂質の、原形質膜の外部小葉から内部小葉への輸送を触媒する、ＡＴＰ依存性トランスポーターであるアミノリン脂質トランスロカーゼ（Ｍｇ２＋  ＡＴＰアーゼ）によって維持される（Ｓｅｉｇｎｅｕｒｅｔ  ａｎｄ  Ｄｅｖａｕｘ，１９８４）。ＰＳ非対称の消失または崩壊は、原形質膜におけるこれらのリン脂質の外方移動によって生じるが、トランスロカーゼの抑制（Ｂｉｔｂｏｌ  ｅｔ  ａｌ．，１９８７；Ｃｏｍｆｕｒｉｕｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０）、ＰＳトランスポーターの活性化、および／または、スクランブラーゼ酵素（Ｚｈａｏ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８）またはＡＢＣ−１フロッパーゼ（Ｈａｍｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，２０００）の活性化、全ての脂質を双方向に輸送するＣａ２＋依存性酵素の活性化によってもたらされる。スフィンゴミエリナーゼも活性化されて、二重層貫通脂質転位を促進するセラミドを生成することも考えられる（Ｃｏｎｔｒｅｒａｓ  ｅｔ  ａｌ．，２００３）。
【０１６０】
ＰＳ非対称の消失は、様々な病理的および生理的条件下、例えば、細胞傷害、設計された細胞死およびアポトーシス（Ｂｌａｎｋｅｎｂｅｒｇ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８；Ｂｏｍｂｅｌｉ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７）、細胞老化（Ｈｅｒｒｍａｎｎ  ａｎｄ  Ｄｅｖａｕｘ，１９９０）、血小板の活性化（Ｒｏｔｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３；Ｚｗａａｌ  ｅｔ  ａｌ．，１９８９）、損傷（Ｂｏｙｌｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６）、および悪性変形（Ｓｕｇｉｍｕｒａ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４）を含む条件下で観察される。ＰＳの露出は、筋芽細胞（Ｓｅｓｓｉｏｎｓ  ａｎｄ  Ｈｏｒｗｉｔｚ，１９８１）および栄養膜（Ａｄｌｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５）の細胞間融合、細胞移動（Ｖｏｇｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６）、および細胞脱顆粒（Ｄｅｍｏ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９）にも関わっている。内皮細胞は、トロンビン（Ｑｕ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６）、カルシウムイオノフォアまたはフォルボルエステル（Ｊｕｌｉｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７）、高脂血症（Ｌｕｐｕ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３）、および、非分解濃度の補体プロテインＣ５ｂ−９（Ｃｈｒｉｓｔｉａｎｓｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７）によって誘発されるＣａ２＋フラックスの増加に反応してＰＳを外面化する。外来の活性化因子または細胞傷害が無い場合でも、悪性細胞には自発性ＰＳ露出が観察されている（Ｕｔｓｕｇｉ  ｅｔ  ａｌ．，１９９１）。
【０１６１】
ＰＳの膜露出に続いていくつかの重大な結果が生じる。食作用に従事するマクロファージは、ＰＳ−陽性の老化よびアポトーシス細胞を認識し、結合し、排除する（ＭｃＥｖｏｙ  ｅｔ  ａｌ．，１９８６；Ｔａｉｔ  ａｎｄ  Ｓｍｉｔｈ，１９９９）。ＰＳはまた、トロンビン活性化内皮細胞に対するＴリンパ球の結合を仲介する（Ｑｕ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６）。補体系はＰＳによって活性化され、ＰＳ−陽性細胞の分解に寄与する（Ｔｅｓｔ  ａｎｄ  Ｍｉｔｓｕｙｏｓｈｉ，１９９７）。最後にＰＳは、凝固複合体の集合と活性化のために陰性荷電脂質表面を提供することによって、内皮細胞に対する凝固前駆物質の移動に寄与する（Ｂｅｖｅｒｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９８５；Ｄａｃｈａｒｙ−Ｐｒｉｇｅｎｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６）。腫瘍内皮の血液凝固促進性は以前から認められている（Ｄｏｎａｔｉ  ａｎｄ  Ｆａｌａｎｇａ，２００１）。
【０１６２】
本発明人達は、腫瘍内皮の損傷および活性化は、下記によってもたらされることを認めた。すなわち、１）腫瘍由来サイトカイン、例えば、インターロイキン−１および腫瘍壊死因子で、これらは、内皮を活性化し、細胞接着分子の発現を誘発する（Ｓｈａｕｈｎｅｓｓｙ  ｅｔ  ａｌ．，１９８９；Ｏｒｒ  ｅｔ  ａｌ．，２０００）；２）内皮に接着する白血球によって生成される酸素活性分子（ＲＯＳ）（Ｏｒｒ  ｅｔ  ａｌ．，２０００）、および３）代謝の副産物として、または、低酸素暴露に続く再度の酸素供給の結果、腫瘍細胞自身によって生成されるＲＯＳ（Ｓｈａｕｇｈｎｅｓｓｙ  ｅｔ  ａｌ．，１９８９；Ｓｏａｒｅｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４）である。これらの所見から、腫瘍内皮におけるこれらのストレスによってＣａ２＋フラックスが生成され、これが次に、スクランブラーゼの活性化またはアミノリン脂質トランスロカーゼの抑制を通じてＰＳの露出をもたらすことが考えられる。
【０１６３】
細胞表面の陰イオン性リン脂質を検出するために、本発明人達は、新規のモノクロナール抗体９Ｄ２を作製した。これは、陰イオン性リン脂質とは反応するが、中性リン脂質とは反応しない。従って、９Ｄ２は、陰イオン性アミノリン脂質、ホスファチジルセリンには結合するが、中性アミノリン脂質、フォスファチジルエタノールアミン（ＰＥ）には結合しないので、一般的なアミノリン脂質結合剤とは区別される。９Ｄ２はまた、陰イオン性リン脂質に対し、天然のリガンドアネキシンＶよりも特異的である。アネキシンＶは、陰イオン性リン脂質の外、ＰＥにも強く結合するからである（Ｂｌａｎｋｅｎｂｅｒｇ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８）。
【０１６４】
本出願において詳述するように、本発明人達は、９Ｄ２およびアネキシンＶは、様々なタイプの硬組織腫瘍を抱えるマウスに静注後の観察の結果、腫瘍内皮に特異的に局在することを見出した。この所見は、本発明人達の仮設、すなわち、ホスファチジルセリンおよび陰イオン性リン脂質は、腫瘍血管内皮の表面に通例的に暴露されるので、腫瘍治療（および画像記録）のための標的分子として使用することが可能であるとする仮設を裏付ける。
【０１６５】
本発明人達の得た大きな所見の一つは、腫瘍内皮の表面にホスファチジルセリンおよび陰イオン性リン脂質が露出することである（実施例ＶＩ；Ｒａｎ  ａｎｄ  Ｔｈｏｒｐｅ，２００２；Ｒａｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００２ｂ）。この現象は、陰イオン性リン脂質に選択的に結合する、二つの独立試薬、すなわち、この点を裏付けるために本発明人達によって特に開発されたモノクロナール抗体、およびアネキシンＶを用いることによって明らかにされた。
【０１６６】
９Ｄ２抗体およびアネキシンＶは、リポソームのようなプラスチックに吸着される、または、インビトロにおいて活性化内皮細胞またはアポトーシス内皮細胞の膜表面に提示されるホスファチジルセリンおよび陰イオン性リン脂質に対し高い親和性および特異性をもって結合する。９Ｄ２は、ＰＳ、ＰＡ、およびＣＬには強く結合するが、ＰＩおよびＰＧに対する結合は比較的弱い。アネキシンＶは、既に見たように、ＰＳ、ＣＬ、ＰＡ、ＰＩ、およびＰＧの外に、ＰＥにも結合する（Ａｎｄｒｅｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０；Ｓｃｈｌａｅｐｆｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９８７；Ｂｏｕｓｔｅａｄ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３；Ｂｌａｃｋｗｏｏｄ  ａｎｄ  Ｅｒｎｓｔ，１９９０）。９Ｄ２による、ホスファチジルセリンおよび陰イオン性リン脂質の認識は、血清の存在如何に拘わらず同じである。これは、結合は、血清の補因子を必要としていないことを示す。９Ｄ２の、陰イオン性リン脂質に対する結合はＣａ２＋イオンを必要としないが、一方、アネキシンＶの結合は、Ｃａ２＋を要する。
【０１６７】
ＰＳ塗布プレートにおいて交差ブロック実験を行ったところ、９Ｄ２およびアネキシンＶは、ＰＳに対する互いの結合をブロックしないことが示された。これは、この二つの試薬が、ＰＳ分子において異なるエピトープを認識すること、もっと考えられることは、別のパック形のＰＳを認識することを示す。アネキシンＶは、平坦なＰＳ表面に結合すると考えられ、一方、抗ＰＳ抗体の方は六角形にパックされたＰＳに結合すると考えられる（Ｒａｕｃｈ  ａｎｄ  Ｊａｎｏｆｆ，１９９０）。両方の形態とも、ＰＳ塗布プレートの上に存在すると考えられる。この実際的な交差ブロック実験からはまた、陰イオン性リン脂質に対する結合で効果的に競合する、すなわち、同じエピトープに結合する複数の抗体がある時、それらは、基準抗体（例えば、９Ｄ２）が与えられたならば、簡単に特定が可能であることも示される。
【０１６８】
本出願はまた、９Ｄ２抗体およびアネキシンＶは、腫瘍血管に、インビボで調べた全ての腫瘍の壊死領域の中および周囲の腫瘍細胞に特異的に局在することを示す（実施例ＶＩ）。腫瘍中の血管の１５から４０％は、ホスファチジルセリン陽性の内皮を有する。一方、正常組織の血管はいずれも、検出可能な、外在化した陰イオン性リン脂質を持たない。ＰＳ発現腫瘍内皮細胞は生きている。これらの細胞は、アポトーシスマーカーを欠き（カスパーゼ−３活性、ＴＵＮＥＬ）、形態的に無傷であり、代謝的に活性を持ち、かつ、血管は、血液および溶質輸送において機能的である。
【０１６９】
９Ｄ２による腫瘍血管染色の特異性は、下記によって確かめられる。すなわち、１）コントロールのラットのＩｇＭでは腫瘍血管は染色されない；２）インビトロでＨ２Ｏ２処理内皮細胞に対する９Ｄ２またはアネキシンＶの結合は、陰イオン性リン脂質から調製したリポソームによってブロックされるが、中性リン脂質から調製されたリポソームではブロックされない；３）界面活性剤または有機溶媒によって腫瘍セクションからリン脂質を抽出すると染色が阻止されるとする所見；および、４）正常器官における安静内皮には９Ｄ２またはアネキシンＶいずれの局在も認められないこと、である。
【０１７０】
９Ｄ２またはアネキシンＶによって腫瘍血管上にその局在が確かめられる、主要な陰イオン性リン脂質はホスファチジルセリンである。なぜならホスファチジルセリンが、もっとも大量に存在する陰イオン性リン脂質であり、細胞表面におけるその露出は、環境の影響または傷害によって調整されているからである。腫瘍内皮細胞上において陰イオン性リン脂質が露出される機構を調べるために、一連の実験を行い、この中で、腫瘍の微小環境に存在することが知られる様々な因子および条件の下で内皮細胞をインビトロで処理した（実施例ＶＩＩ）。低酸素状態に続く酸素補給、酸性、およびトロンビンによって、全ての細胞がアポトーシスを示す場合に見られるレベルの１０から２２％において生きている内皮細胞上のＰＳ暴露が増加した。炎症性サイトカイン（ＴＮＦαおよびＩＬ−１）も、弱いが、はっきりとＰＳ露出を誘発した。
【０１７１】
これらの所見は、腫瘍の血管内皮におけるホスファチジルセリンの露出は、低酸素／再度の酸素補給が炎症性サイトカイン、トロンビン、および酸性度と組み合わされたときに誘発されるとする予想と一致する。本発明を実行するには、正確な機構を理解する必要があるけれども、代謝の副産物として、または、低酸素症に対する反応として腫瘍細胞によってＲＯＳが生成されるのであろう（Ｚｕｌｕｅｔａ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５）。腫瘍細胞によって放出されるサイトカインは、内皮細胞の上に白血球接着分子を誘起し、これが、活性化マクロファージ、多形核細胞、および血小板の、腫瘍内皮に対する接着、および、新たなＲＯＳの分泌を仲介すると考えられる。次に、ＲＯＳが、恐らくは、Ｃａ２＋のインフラックス、または、細胞内貯蔵からのＣａ２＋放出をもたらすことによってチオール含有輸送分子の酸化、または脂質の過酸化（Ｈｅｒｍａｎｎ  ａｎｄ  Ｄｅｖａｕｘ，１９９０）を通じてＰＳ転位を誘発するものと考えられる。実際、過酸化物が、アポトーシスではなく、グルタチオン酸化および／または脂質過酸化に関連する機構によって、インビトロで、生きている内皮細胞においてＰＳ露出を誘発することが明らかにされている（ｖａｎ  Ｇｏｒｐ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９）。
【０１７２】
ＰＳおよび他の陰イオン性リン脂質の露出は、従来から認められていた腫瘍内皮の凝固促進状態を説明する（Ｄｏｎａｔｉ  ａｎｄ  Ｆａｌａｎｇａ，２００１）。陰イオン性リン脂質は、凝固因子が集中し集合する表面を提供する（Ｂｅｖｅｒｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９８５；Ｄａｃｈａｒｙ−Ｐｒｉｇｅｎｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６）。該表面はまた、循環するマクロファージ（ＭｃＥｖｏｙ  ｅｔ  ａｌ．，１９８６）、Ｔリンパ球（Ｑｕ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６）、および多形核細胞に対し結合部位を提供し、これが、白血球細胞の腫瘍への浸潤を助ける。
【０１７３】
本明細書に詳述するさらに別の実験で、本発明人達は、ホスファチジルセリンおよび陰イオン性リン脂質に向けられた、３Ｇ４と呼ばれるモノクロナール抗体を作製し、その特徴を明らかにした。この抗体はまた、腫瘍の血管内皮細胞に特異的に局在し、腫瘍の血管密度および血漿容量を下げ、腫瘍増殖を遅らせることが判明した。
【０１７４】
３Ｇ４抗体は、プラスチックに吸収された陰イオン性リン脂質、および、活性化またはアポトーシス細胞表面の陰イオン性リン脂質に対し、血清またはβ２−糖タンパク質Ｉの存在下において高い親和性をもって結合する。３Ｇ４の細胞に対する結合パターンは、陰イオン性リン脂質に対するアネキシンＡ５または９Ｄ２抗体の結合パターンと区別されない。この三つの試薬は全て、膜ブレブに近似する原形質膜集塊に結合した。これは、Ｈ２Ｏ２で処理した内皮細胞に関する他の所見（ｖａｎ  Ｇｏｒｐ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９）とも一致する。９Ｄ２同様、３Ｇ４も、酸化されにくい飽和脂肪酸を持つ合成リン脂質、およびリゾリン脂質を含む、試験した全ての陰イオン性リン脂質を認識した。
【０１７５】
９Ｄ２と違って、陰イオン性リン脂質に対する３Ｇ４の結合は、血清の完全に無添加の状態で部分的に抑制され、β２−糖タンパク質Ｉを加えると回復した。従って、３Ｇ４は、脂質−β２糖タンパク質Ｉ複合体上のエピトープを認識する。にも拘わらず、３Ｇ４は、動物に投与した場合安全であり、抗リン脂質症候群（単複）（ＡＰＳ）と関連する抗体について文献で報告される病理作用とは無縁であることが示された。
【０１７６】
３Ｇ４は、同所的ヒト乳癌ＭＤＡ−ＭＢ−４３５を抱えるマウスに注入後、腫瘍の壊死域の中、およびその周辺の腫瘍血管および腫瘍細胞に特異的に局在した。血管の平均４０±１０％が３Ｇ４による結合を見た。染色パターンは、本明細書に報告される、９Ｄ２およびアネキシンＡ５を用いた場合のものと同様であった。正常組織の血管内皮は染まらなかった。この点で、３Ｇ４は、腫瘍血管マーカーを認識するための抗体と異なる。大抵の腫瘍血管マーカーは、生理的脈管形成部位である卵巣の血管、または、血管が高い透過性を持つ腎臓および膵臓のランゲルハンス島には存在する（Ｔｈｏｒｐｅ，２００４）。
【０１７７】
ホスファチジルセリンが、３Ｇ４によって主に検出される陰イオン性リン脂質である。ＰＳは、もっとも大量に存在する陰イオン性リン脂質であり、その露出が、環境条件または傷害によって調整されることがもっともよく知られる陰イオン性リン脂質である（Ｚｗａａｌ  ａｎｄ  Ｓｃｈｒｏｉｔ，１９９７；Ｂａｌａｓｕｂｒａｍａｎｉａｎ  ａｎｄ  Ｓｃｈｒｏｉｔ，２００３）。インビボでは、腫瘍血管の上に露出したＰＳは、恐らく、血清成分、例えば、β２−糖タンパク質Ｉと複合体を形成し、３Ｇ４は恐らくこの複合体に結合すると考えられる。本実験を通じて注意しているように、未処理マウスにおけるＰＳ陽性腫瘍血管は、無傷で機能的であるようである。それらの血管は血液を輸送し、還流が可能である。ＰＳ陽性血管の内皮は、高度のアポトーシスのマーカーを提示せず（カスパーゼ−３活性、ＴＵＮＥＬ）、形態的に無傷で、急速な代謝回転タンパク質ＶＣＡＭ−１の共同発現から判断すると代謝的にも活性である。
【０１７８】
３Ｇ４による処理は、下記を含む各種マウスモデルにおいて腫瘍増殖を遅らせた。すなわち、同所的ヒト乳癌ＭＤＡ−ＭＢ−２３１およびＭＤＡ−ＭＢ−４３５確立モデル（直径０．６−０．７ｃｍ）、大型（直径１ｃｍ）の、Ｌ５４０ヒトホジキン腫瘍皮下モデル、および、小型の、同系Ｍｅｔｈ  Ａ線維肉腫モデルである。３Ｇ４処理は、これらの腫瘍の、それぞれ、７５％、６５％、５０％、および９０％の増殖遅延をもたらした。本出願における他の実験から、これらの腫瘍は、陰イオン性リン脂質を露出させた血管によって栄養補給を受けていることが示された。
【０１７９】
３Ｇ４の抗腫瘍作用は、少なくとも部分的には、腫瘍血管に対する傷害を介して起こる。３Ｇ４によって処理された、マウスの同所性ＭＤＡ−ＭＢ−２３１腫瘍の組織学的検査から、腫瘍の血管密度および血漿含量の著明な低下が明らかにされた。腫瘍血管に対するマクロファージの結合、血管機能の破壊、および壊死の進行に先立って腫瘍血管に対する３Ｇ４の局在が起こっていた。血管閉塞および壊死パターンは、一次作用が腫瘍血管に対して為されたとする所見と一致していた。腫瘍の中心部が壊死し、一方腫瘍細胞の末梢辺縁の生存が観察された。腫瘍細胞殺作用に関するこのパターンは、ＶＴＡに特徴的である（米国特許第５，８５５，８６６号；Ｔｈｏｒｐｅ，２００４）。ＶＴＡは、腫瘍内部の血管に対してもっとも有効である、というのは、この領域では細胞間圧が高くなると、血管が押し潰されるからである。一方、多くの、腫瘍に対して直接作用する治療は、十分に酸素供給を受ける腫瘍の辺縁部の腫瘍細胞に対してもっとも有効である。従って、本発明人達は、３Ｇ４と、抗増殖性抗腫瘍療法との組み合わせは、実験的硬組織腫瘍において他のＶＴＡで観察されたように、加重的、または相乗的とも言えるほどの抗腫瘍活性をもたらすであろうことを期待した（米国特許第５，８５５，８６６号；Ｂｕｒｒｏｗｓ  ａｎｄ  Ｔｈｏｒｐｅ，１９９３；Ｓｉｅｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００２；Ｓｉｉｍ  ｅｔ  ａｌ．，２００４）。
【０１８０】
本発明において使用される他の抗体と同様、３Ｇ４治療は、同じ治療用量（マウスにおいて４ｍｇ／ｋｇ、週３回）によって繰り返し治療される腫瘍担持動物によってよく受忍された。マウスは、正常な生命徴候、凝固パラメータ、骨髄細胞プロフィール、白血球カウント、および組織所見を保持した。抗カルジオリピン抗体で治療された動物とは違って、ＡＰＳの徴候は観察されなかった（Ｍａｔｚｉｎｇｅｒ，１９９８；Ｆａｄｏｋ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８；Ｆａｄｏｋ  ｅｔ  ａｌ．，２００１ａ；ｂ）。高濃度の３Ｇ４は、リン脂質依存性凝固経路を部分的に抑制するが、それにも拘わらず、治療用量と、インビボで凝固時間を延長する用量との間には相当の安全性マージンが存在する。
【０１８１】
本発明人達は、サイトカイン、低酸素、およびＲＯＳがＰＳ転位を誘発した場合（Ｍｏｌｄｏｖａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４）、非悪性病変部（例えば、アテローム硬化病変部、炎症部）においてもＰＳは血管内皮上に露出されるのかという疑問を考えた。もしもこのようなことが起こるとすれば、抗ＰＳ抗体を使用した場合若干の毒性がもたらされることが考えられるから、上記条件を持つ患者は治療から排除することが好ましい。しかしながら、本発明人達の別の実験から、アテローム硬化症のウサギを３Ｇ４のキメラ版で治療しても、大動脈のアテローム硬化病変部は悪化しないことが示された。
【０１８２】
薬剤または凝固剤を用いる血管標的剤は、大型の硬組織腫瘍を抱えるマウスにおいて極めて有効であり、場合によって治癒的であることが示された（Ｈｕａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７；Ｎｉｌｓｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００１；米国特許第５，６６０，８２７、５，７７６，４２７、５，８５５，８６６、５，８６３，５３８、５，９６５，１３２、６，００４，５５４、６，０５１，２３０、６，２６１，５３５、６，０９３，３９９、６，００４，５５５、５，８７７，２８９、および６，０３６，９５５号）。本発明人達は、ヒトにおける癌の診断と治療において腫瘍血管を標的とするために、ホスファチジルセリンに向けた裸の抗体と血管標的剤を提供する。
【０１８３】
治療を行うために、ホスファチジルセリンに向けた裸の抗体が腫瘍治療にどのように機能するかに関する正確な分子的理解は必要ではないが、本発明人達は、観察された内皮細胞殺作用を説明することが可能な機構をいくつか考えた。もっとも適正と思われる機構（特に、本明細書に記載される３Ｇ４抗体にとっては）は、Ｆｃドメイン仲介による免疫エフェクター機能、例えば、抗体依存性細胞傷害性（ＡＤＣＣ）、補体依存性細胞傷害性（ＣＤＣ）、抗体仲介性食作用である。細胞仲介性細胞傷害性、補体仲介性細胞分解および／またはアポトーシス、細胞骨格に対する抗体誘発性細胞シグナル伝達および／または干渉も関与している可能性がある。
【０１８４】
ホスファチジルセリンに対する生の抗体、特に３Ｇ４を、血管内皮細胞表面に結合させることは、抗体のＦｃ部分が血管腔の中に突出することを意味する。抗体のＦｃ断片は補体経路を活性化するので、観察される細胞破壊は、補体の指令による分解の結果かもしれない。従って、抗体結合は、補体依存性の凝固反応カスケードを活性化し、多成分複合体の集合をもたらし、最終的に、標的細胞の透過性を高める分解性複合体の生成を招く。「補体活性化ＡＤＣＣ」もこの破壊に働いている可能性がある。すなわち、補体が抗体で被われた標的細胞に結合し、補体に対するレセプターを持つ細胞、例えば、好中球がこの標的細胞を分解する可能性である。
【０１８５】
その抗原結合性断片を含む、裸の、すなわち未接合の抗体は、腫瘍血管内皮細胞表面のホスファチジルセリンに結合するので、腔表面に対する抗体コーティングを形成する。これは、免疫エフェクター細胞、例えば、細胞傷害性Ｔ細胞および／またはナチュラルキラー（ＮＫ）細胞を惹きつける働きをし、次に、これらエフェクター細胞が、血管内皮細胞に対して細胞介在性細胞傷害作用を及ぼす。
【０１８６】
ホスファチジルセリンに対する抗体の結合はまた、腫瘍血管内皮細胞においてアポトーシスを誘発する。（ＰＳは、アポトーシスの結果得られるマーカーであるというのではなくて）ＰＳに対する抗体の結合がアポトーシスを誘発するとする知見を述べる報告は知られていないが、本発明人達は、この知見は、観察された抗腫瘍作用を説明するもう一つの可能な機構と考えている。
【０１８７】
さらにまた、腫瘍血管内皮細胞表面におけるホスファチジルセリンに対する抗体の結合は、該細胞の細胞骨格組織を撹乱するという可能性もある。細胞骨格は表面膜の組織に関わっており、かつ、抗体結合は、膜を撹乱する（または、さらに新たに撹乱する）可能性があるので、ホスファチジルセリンに対する抗体の結合は、二重層と相互作用を持つ細胞骨格タンパク質に変化を伝える可能性がある。細胞骨格タンパク質の空間的組織は、膜の安定性および細胞の形状を調節することが既に知られるので、何かの細胞骨格平衡の撹乱は、細胞の統合性に対して深刻な結果を招く可能性がある。
【０１８８】
本発明の作用に関するさらに別の機構は、内皮細胞表面におけるホスファチジルセリンに対する抗体の結合は、現在不明の経路によるシグナル変換を起動する可能性である。抗体結合はまた、既知のシグナル変換経路を、例えば、膜レセプター、シグナル変換タンパク質、膜チャンネル同士の立体配座および／または相互作用を変えることによって撹乱する可能性がある。細胞破壊（アポトーシス）のためのシグナルが起動または模倣されるのかもしれないし、および／または、維持／ホメオスターシスシグナルが抑制されるのかもしれない。
【０１８９】
科学的には興味あることではあるが、ホスファチジルセリンに対する裸の抗体の結合によって実現される血管破壊について、その正確な性質を決めることは、治療の実施には必要ではない。これらの抗体の投与がインビボにおいて好都合にも特異的な抗腫瘍作用をもたらすことが示される限り、この現象の背後に横たわる分子機構とは無関係にその治療を利用することは可能である。従って、ホスファチジルセリンに結合する裸の抗体の使用は、腫瘍治療における重要な進歩を表し、調製およびコストにおける利点となる。
【０１９０】
Ｃ．３Ｇ４抗体の詳細な分析
本明細書で示すように、３Ｇ４は、有効で、よく受忍される抗腫瘍剤であり、最終的に腫瘍血管上のホスファチジルセリンに結合することによって作用し、宿主細胞介在性抗腫瘍作用をもたらす。ＰＳは、ヒトおよびマウスにおいて同じ分子であり、同じ細胞分布を持ち、両動物種においてＲＯＳによって調整および誘発される（Ｂａｌａｓｕｂｒａｍａｎｉａｎ  ａｎｄ  Ｓｃｈｒｏｉｔ，２００３；Ｗｈｉｔｗｏｒｔｈ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０）のであるから、上記実験はさらに、ヒトの癌治療にもホスファチジルセリンに結合する抗体および他の構築物を使用することを支持する。実際、３Ｇ４の、キメラ版およびヒト化版が、すでにこの目的のため、および他の目的のために調製されている。
【０１９１】
従って、腫瘍血管の標的輸送、画像記録、および／または治療のために、ホスファチジルセリンに結合する抗体および他のリンガンドを使用することが可能である。ホスファチジルセリンは、いくつかの理由で、腫瘍標的血管として魅力的である。すなわち、ホスファチジルセリンは大量に存在する（ＰＳは、細胞当たり３×１０６分子存在する）；ＰＳは腫瘍内皮の腔表面に存在するので、血液中の血管標的剤が結合のために直接接触することが可能である；ＰＳは、各種硬組織腫瘍の腫瘍内皮細胞の大多数に存在する；および、ＰＳは、全ての正常組織の内皮には事実上存在しない。
【０１９２】
３Ｇ４抗体については従来から、腫瘍の血管内皮細胞に特異的に局在すること、腫瘍の血管密度および血漿容量を低下させること、および、腫瘍増殖を遅らせることが明らかにされていた（本実施例、Ｒａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８；Ｒａｎ  ａｎｄ  Ｔｈｏｒｐｅ，２００２；Ｒａｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００２ｂ；Ｒａｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００５；Ｈｕａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，２００５）。
【０１９３】
現在進行中の実験から、３Ｇ４処理は、マウスの腫瘍の同種移植片、およびヒトの腫瘍の異種移植片の増殖を抑制すること（本実施例；Ｒａｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００５）が示された。後者は、同所性ヒト乳癌（実施例ＸＸ；Ｈｕａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，２００５）および同所性ヒト膵臓癌（実施例ＸＸ；Ｂｅｃｋ  ｅｔ  ａｌ．，２００５）を含む。３Ｇ４はまた、転移拡散、およびこれらの転移腫瘍の増殖を抑制する（実施例ＸＸ；Ｈｕａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，２００５；Ｂｅｃｋ  ｅｔ  ａｌ．，２００５）。組み合わせて使用すると、３Ｇ４は、それぞれ乳癌と膵臓ガンの治療において、化学療法剤ドセタキセルおよびゲムシタビンの治療効力を強調する（実施例ＸＸ；Ｈｕａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，２００５；Ｂｅｃｋ  ｅｔ  ａｌ．，２００５）。
【０１９４】
本発明において使用される他の抗体と同様、３Ｇ４治療は、同じ治療用量（マウスにおいて４ｍｇ／ｋｇ、週３回）によって繰り返し治療される腫瘍担持動物によってよく受忍される。マウスは、正常な生命徴候、凝固パラメータ、骨髄細胞プロフィール、白血球カウント、および組織所見を保持した。極高濃度の３Ｇ４は、リン脂質依存性凝固経路を部分的に抑制する作用を持つが、それにも拘わらず、治療用量と、インビボで凝固時間を延長する用量との間には相当の安全性マージンが存在する。従って、３Ｇ４は、有効で、よく受忍される抗腫瘍剤であり、最終的に腫瘍血管上のホスファチジルセリンに結合することによって作用し、宿主細胞介在性抗腫瘍作用をもたらす。３Ｇ４は、抗リン脂質症候群（単複）と関連する抗体について文献で報告されている病理作用とは無関係である。
【０１９５】
抗リン脂質症候群（単複）（ＡＰＳ）は、「抗カルジオリピン」抗体および「狼瘡抗凝固抗体」と名づけられる自己抗体と関連する。これらの症候群は、静脈および動脈血栓塞栓症、血小板減少症、およびいくつかの神経学的症候群に罹りやすい素因と関連する。従って、これらの患者における抗リン脂質抗体は、「病理的抗体」である。ヒト集団では、このような抗リン脂質抗体は、全身性エリテマトーデスに見られ（Ｂｒａｎｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，１９８７；Ｓｔａｕｂ  ｅｔ  ａｌ．，１９８９；Ｄｒｏｕｖａｌａｋｉｓ  ａｎｄ  Ｂｕｃｈａｎａｎ，１９９８；Ｓｍｉｒｎｏｖ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５；Ｒａｕｃｈ  ｅｔ  ａｌ．，１９８６；Ｒａｕｃｈ  ａｎｄ  Ｊａｎｏｆｆ，１９９０）、反復性流産と関連する（Ｒｏｔｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５；Ｒｏｔｅ，１９９６；Ｖｏｇｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６；１９９７；Ｋａｔｓｕｒａｇａｗａ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７）。
【０１９６】
数年間「抗リン脂質抗体」および「抗ＰＳ抗体」と記述されてきたけれども、この病原性抗体は、実際は、リン脂質それ自体ではなく、カルジオリピン、ＰＳ，またはその両方に結合するタンパク質の補因子を認識する（Ｇａｌｌｉ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０；１９９３；ＭｃＮｅｉｌ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０；Ｒｏｔｅ，１９９６）。病原性抗体にはかなりの相違点が存在する。ある抗カルジオリピン抗体は、β２−糖タンパク質Ｉの特定領域を認識することが報告されているが、一方、狼瘡抗凝固抗体はプロトロンビンを認識する。同様に、病的状態で出現する抗ＰＥ抗体は、タンパク質と組んだＰＥ、例えば、低および高分子量キニノゲン（ＨＫ）、プレカリクライン、およびＸＩ因子に結合する（Ｓｕｇｉ  ａｎｄ  ＭｃＩｎｔｙｒｅ，１９９５；１９９６ａ；１９９６ｂ）。
【０１９７】
治療薬として投与するために抗体を選ぶ場合、タンパク質補因子と組み合わさったホスファチジルセリンには結合しないという根拠で抗体を選ぶべきではなく、むしろ、「真の」抗ホスファチジルセリン抗体を求めるべきであると思われる（ＷＯ２００４／００６８４７）。
【０１９８】
一方、その後３Ｇ４抗体のインビトロ実験において、９Ｄ２と違って、３Ｇ４のホスファチジルセリンおよび陰イオン性リン脂質に対する結合は、血清の完全な無添加状態において部分的に抑制されることが示された。さらに、結合は、β２−糖タンパク質Ｉ（β２ＧＰＩ）を加えると回復することが認められた。この所見から、本発明人達は、３Ｇ４は、脂質−β２糖タンパク質Ｉ複合体上のエピトープを認識し、そのために、３Ｇ４とＰＳとの間の相互作用はβ２ＧＰＩに依存すると考えるに至った（２００５年１月２４日出願、米国特許仮出願第６０／６４６，３３３号；Ｒａｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００５）。本発明人達は、インビボで腫瘍血管の上に露出したＰＳは、血清成分、恐らくβ２ＧＰＩと複合体を形成し、かつ、３Ｇ４は恐らくこの複合体に結合するのであろうと推論した。
【０１９９】
３Ｇ４のＰＳ−β２ＧＰＩ複合体に結合する能力は極めて驚くべきものであった。その理由の少なからざる部分は、３Ｇ４が、数多くの実験で動物に投与しても安全であることが示されたことであり、抗体が、ＰＳ−β２ＧＰＩ複合体を含む、脂質−血清タンパク質複合体に結合することが知られているにも拘わらず、ＡＰＳ関連抗体について文献で報告されている病原作用とは無縁であることであった。β２ＧＰＩに対する抗カルジオリピン抗体において観察されたものとは違って、３Ｇ４治療では、いずれのものにもＡＰＳの徴候は観察されなかった（Ｍａｔｚｉｎｇｅｒ，１９９８；Ｆａｄｏｋ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８；Ｆａｄｏｋ  ｅｔ  ａｌ．，２００１ａ；ｂ）。高用量の３Ｇ４で長期間治療されたマウスでは凝固能力に変化は見られなかったが、抗カルジオリピンまたは狼瘡抗凝固抗体を注入されたマウスはＡＰＳ反応を示した。
【０２００】
本発明は、この食い違いを解明し、ＰＳ露出内皮細胞に対する結合に必要な３Ｇ４およびβ２ＧＰＩの相互作用を明らかにし、かつ、３Ｇ４が、どのようにして、従来の病原性抗体に関連する毒性に陥ることなく、ＰＳ−β２ＧＰＩ複合体に結合することができるのかを説明する。
【０２０１】
実施例ＸＸＸに示すように、３Ｇ４とＰＳとの相互作用はβ２ＧＰＩに依存する。β２ＧＰＩは、生理的条件下では陰イオン性リン脂質に弱く結合するが、本発明は、３Ｇ４が、ＰＳ陽性内皮細胞に対するβ２ＧＰＩの結合を大きく強化することを示す。データから、結合の強化には、３Ｇ４／β２ＧＰＩの２価の複合体が必要であることが示される。なぜなら、３Ｇ４のＦａｂ’断片は、ＰＳ露出内皮細胞には結合しないからである。さらにまた、β２ＧＰＩの人工的二量体構築物が、３Ｇ４を必要とすることなく、ＰＳ露出内皮細胞に結合することも明らかにされた。以上まとめると、これらのデータから、３Ｇ４は、３Ｇ４／β２ＧＰＩの２価複合体の形成を通じてＰＳに対するβ２ＧＰＩの親和度を高めることによって、腫瘍内皮細胞を含むＰＳ−陽性細胞を標的とすることが示唆される。
【０２０２】
実施例ＸＸＸはまた、３Ｇ４が、β２ＧＰＩのドメインＩＩに結合することを示す。これは、β２ＧＰＩドメインＩＩを認識する、ＡＰＳ患者由来の抗体は病原性ではないことを示す意味で重要である。一方、最近の一つの重要な研究によって、ＡＰＳ患者から単離された病原性の抗β２ＧＰＩ抗体は、共通してβ２ＧＰＩのドメインＩを認識することが証明された（ｄｅ  Ｌａａｔ  ｅｔ  ａｌ．，２００５ａ）。３Ｇ４抗体が、β２ＧＰＩのドメインＩに結合することなくＰＳ−β２ＧＰＩ複合体に結合できる、その能力は、その抗体が毒性を示さないという点で重要である。β２ＧＰＩはまた、アポリポタンパク質Ｅレセプター２’（ａｐｏＥＲ２’）とも相互作用を持つ（Ｌｕｔｔｅｒｓ  ｅｔ  ａｌ．，２００３）。もう一つの最近の研究から、β２ＧＰＩのドメインＶが、ａｐｏＥＲ２’と相互作用を持ち、血小板の活性化に与り、この活性化が、コラーゲンに対する血小板の堆積をもたらすことが示された。
【０２０３】
従って、３Ｇ４抗体は、ドメインＩにもドメインＶにも結合することがないために、ＰＳ−β２ＧＰＩ複合体に結合することが可能であるにも拘わらず、各種の動物モデルを用いて行った広範な毒物学的実験において毒性を示さない。これらの所見に徴して見れば、これからは、ＰＳ−β２ＧＰＩ複合体に結合する他の抗体を作製し、癌およびウイルス感染を含む各種病態の治療において安全に使用することが可能である。本発明によれば、β２ＧＰＩのドメインＩに対して目立って結合することのない抗体の選択がまず求められる要件であり、β２ＧＰＩのドメインＩ、またはβ２ＧＰＩのドメインＶに目立って結合することのない抗体の選択が、さらにそれに次ぐ利点を提供するものと見なされる。
【０２０４】
振り返ってまとめると、新しい研究は、３Ｇ４抗体と、その主要な陰イオン性リン脂質標的、ホスファチジルセリンとの相互作用の特徴を明らかにした。データから、３Ｇ４とＰＳの間の相互作用は血清依存性であることが示された。この３Ｇ４−ＰＳ相互作用を仲介するのに必要な血清因子としてβ２ＧＰＩが特定された。
【０２０５】
３Ｇ４は、元々、ＰＳ露出を誘発するために、Ｈ２Ｏ２で処理したマウス内皮細胞でマウスを免疫化することによって生成したものである（実施例ＩＶ；Ｒａｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００５）。細胞は、ＦＢＳ−含有で、少量のウシβ２ＧＰＩを注入したと思われる培養液中で育成し、抗ＰＳ／β２ＧＰＩ抗体を生産させた。ＰＳとの反応性に基づく最初の抗体スクリーニングをウシ血清の存在下に実施した。その後のスクリーニングは血清無添加で行ったが、本明細書に示すように、ＳＣＭから精製された抗体は、β２ＧＰＩ抗原と共に精製された。従って、この「精製」抗体は、血清無しでも、汚染性のウシのβ２ＧＰＩの存在のためにＰＳに結合が可能である。３Ｇ４が増殖され、血清無添加培養液から精製された時だけ、血清依存性が特定される。他のグループも、抗β２ＧＰＩ抗体の、β２ＧＰＩ無添加調製品の入手に関して同様の不安を報告している（Ｒｏｕｂｅｙ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５）。従って、リン脂質に直接結合すると報告されている、所謂「抗リン脂質抗体」の多くが、実際は、リン脂質に対する親和性をもって血清タンパク質を認識する可能性が大いにある。
【０２０６】
β２ＧＰＩは、血漿において〜２００μｇ／ｍＬ（４μＭ）の濃度で存在する５０−ｋＤａの糖タンパク質である（Ｃｌｅｖｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９６９）。このタンパク質は、補体調節タンパク質（ＣＣＰ）ファミリーの一員である（Ｓｔｅｉｎｋａｓｓｅｒｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９１）。β２ＧＰＩは、５個のＣＣＰ反復体を持ち、この内最初の４ドメインは、〜６０アミノ酸から成る規則的な反復体である。５番目のドメインは、陽性荷電アミノ酸（２８２−２８７）と、陰イオン性リン脂質に対するβ２ＧＰＩの結合を実行する、保存された疎水性領域（３１１−３１７）から成るクラスターを含むという点で、他の４個のドメインとは異なる（Ｓｔｅｉｎｋａｓｓｅｒｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２；Ｈｕｎｔ  ａｎｄ  Ｋｒｉｌｉｓ，１９９４；Ｓｈｅｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６；Ｍｅｈｄｉ  ｅｔ  ａｌ．，２０００、なお、これらの文献のそれぞれを引用することにより特に指定して本明細書に含める）。
【０２０７】
β２ＧＰＩの正常な生物学的機能についてはほとんど知られていない。仮定された機能としては、アポトーシス細胞排除の促進（Ｂａｌａｓｕｂｒａｍａｎｉａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７ｂ；Ｂａｌａｓｕｂｒａｍａｎｉａｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００５）、血小板機能の変調（Ｎｉｍｐｆ  ｅｔ  ａｌ．，１９８５；Ｎｉｍｐｆ  ｅｔ  ａｌ．，１９８７）、および、凝固の抑制（Ｎｉｍｐｆ  ｅｔ  ａｌ．，１９８６；Ｓｃｈｏｕｓｂｏｅ，１９８５）が挙げられるが、β２ＧＰＩ欠損マウスまたは患者には、これといった表現型は観察されていない（Ｍｉｙａｋｉｓ  ｅｔ  ａｌ．，２００４；Ｙａｓｕｄａ  ｅｔ  ａｌ．，２０００）。
【０２０８】
一方、β２ＧＰＩは、自己免疫疾患ＡＰＳにおけるその関与はよく知られている。すなわち、所謂抗リン脂質（ａＰＬ）抗体の、陰イオン性リン脂質表面に対する結合に必要な血漿補因子であると特定されている（ｄｅ  Ｌａａｔ  ｅｔ  ａｌ．，２００４ａ；Ｂｅｖｅｒｓ  ｅｔ  ａｌ．，２００４）。抗リン脂質抗体は、種々の血清タンパク質と相互作用を持つことが知られるが、β２ＧＰＩを認識するａＰＬ抗体は、ＡＰＳの臨床症状ともっとも強く相関する（ｄｅ  Ｌａａｔ  ｅｔ  ａｌ．，２００４ｂ）。従って、β２ＧＰＩ、抗β２ＧＰＩ抗体、および陰イオン性リン脂質膜面の間の相互作用は従来から広範に研究されている（Ｂｅｖｅｒｓ  ｅｔ  ａｌ．，２００４）。
【０２０９】
本研究はまた、ＰＳ塗布マイクロタイタープレート、およびＰＳ露出内皮細胞に対する３Ｇ４結合の特徴を調べた。生細胞結合アッセイを用い、３Ｇ４もβ２ＧＰＩも、この二つの分子が同時に存在するのでない限りＰＳ露出内皮細胞には結合しないと結論された（実施例ＸＸＸ）。この所見は、３Ｇ４は、陰イオン性脂質表面に結合するためにβ２ＧＰＩに依存するとするＥＬＩＳＡによる所見と一致する。さらに、この所見は、β２ＧＰＩは、生理的条件下で陰イオン性リン脂質膜に対し弱いが親和性を持つとする報告を支持し（Ｗｉｌｌｅｍｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６；Ｂｅｖｅｒｓ  ｅｔ  ａｌ．，２００４；Ｂｅｖｅｒｓ  ｅｔ  ａｌ．，２００５）、かつ、その親和性は３Ｇ４の存在によって大きく強調されることを示唆する。
【０２１０】
データはまた、３Ｇ４は、β２ＧＰＩの２価複合体の形成を通じて、陰イオン性リン脂質表面に対するβ２ＧＰＩの親和性を強化することを示す。β２ＧＰＩの濃度を一定に維持し、３Ｇ４の濃度を増していくと、ＰＳ露出内皮細胞に対する３Ｇ４／β２ＧＰＩの結合は、３Ｇ４対β２ＧＰＩ比が２：１の時にピークを持つ。３Ｇ４がそれより高濃度になると、結合は減少する。このベル型の曲線は、１価の複合体と２価の複合体の間に競合があり、これが、全体の３Ｇ４／β２ＧＰＩ複合体の結合に減少をもたらすことを示唆する。血栓症モデルにおける抗β２ＧＰＩ抗体についてもベル型関係式が報告されている（Ｊａｎｋｏｗｓｋｉ  ｅｔ  ａｌ．，２００３）。別の実験では、３Ｇ４  Ｆａｂ断片は、β２ＧＰＩの存在下にＰＳ露出内皮細胞に結合しなかった。これは、３Ｇ４／β２ＧＰＩの１価の複合体は陰イオン性リン脂質表面に結合できないことを示す。
【０２１１】
さらに、β２ＧＰＩの人工的二量体構築物は、３Ｇ４を必要とすることなくＰＳ露出内皮細胞に結合が可能であることが証明されている。従って、抗β２ＧＰＩ抗体は、二つのβ２ＧＰＩ分子を架橋してβ２ＧＰＩの２価の複合体を形成することによって、陰イオン性リン脂質表面に対するβ２ＧＰＩの親和性を高める。
【０２１２】
３Ｇ４／β２ＧＰＩ複合体は、ＡＰＳ患者から得られたａＰＬ抗体と全く同じようにＰＳと相互作用を持つが、３Ｇ４は、調べたどの動物モデルにおいてもＡＰＳの臨床的徴候を招くことはなかった。これは重要なことである。ａＰＬがＡＰＳを引き起こす機構（単複）は大分が未だ不明のままである。ある研究の示唆するところによれば、ａＰＬ／β２ＧＰＩは、安静内皮細胞（ＰＳを発現しない）に結合、および該細胞を活性化し、より血栓発現性の表現型に変えるという（Ｓｉｍａｎｔｏｖ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５；Ｐｉｅｒａｎｇｅｌｉ  ｅｔ  ａｌ．，１９９９）。比較的最近の研究によって、β２ＧＰＩとａＰＬ／β２ＧＰＩ複合体は、既に「準備活性化」されていない限り、内皮細胞に結合し、該細胞を十分に活性化できないことが明らかにされた（Ｃｈｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００４）。準備活性化は、内皮細胞にＰＳの発現を促し、ａＰＬ／β２ＧＰＩ複合体の結合に好適な陰イオン性リン脂質表面を準備させる。
【０２１３】
３Ｇ４は、生細胞アッセイにおいて、安静なＡＢＡＥ細胞またはＨＵＶＥＣには結合しない。さらに、３Ｇ４は、安静なＨＵＶＥＣ、または、低濃度のＬＰＳによってあらかじめ活性化されたＨＵＶＥＣを活性化しない。最近の研究によって、患者の血清における、β２ＧＰＩのドメインＩを認識するａＰＬ抗体の存在と、ＡＰＳの臨床症状との間には高い相関のあること（ｄｅ  Ｌａａｔ  ｅｔ  ａｌ．，２００５）、かつ、抗体結合には立体配座の変化が必要かもしれないことが報告されている。β２ＧＰＩの他のドメインを認識する抗体も患者の血清中に検出されているが、病原性との相関は得られていない。重要な所見として、本発明は、３Ｇ４は、β２ＧＰＩのドメインＩＩを認識することを明らかにしたが、これが、インビトロにおける内皮細胞の活性化の欠如、およびインビボにおける無毒を説明するようである。
【０２１４】
マウスのβ２ＧＰＩのドメインＩＩは、ラット、イヌ、ウシ、チンプ、およびヒトのβ２ＧＰＩのドメインＩＩとは、６０個のアミノ酸の内僅かに７個において異なる。従って、３Ｇ４が、マウス血清の存在下にＰＳに結合できないこと、免疫ブロット法によってマウスのβ２ＧＰＩを検出できないことは意外であり、特に、文献に記録されるマウスにおける３Ｇ４の抗腫瘍活性に徴して見れば予想外である（本実施例；Ｒａｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００５；Ｈｕａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，２００５；Ｂｅｃｋ  ｅｔ  ａｌ．，２００５）。これは重要なことだが、これらの実験は、ＳＣＭから精製した３Ｇ４を用いて行われたものである。本明細書で示したように、３Ｇ４  ＳＣＭは、ウシβ２ＧＰＩとの共同精製によってＰＳに結合することが可能となる。３Ｇ４  ＳＣＭをＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルの上に走らせ、膜支持体に移し、ウシβ２ＧＰＩの有無について調べると、５０ｋＤａのバンドをはっきりと見ることができた。さらに、３Ｇ４  ＳＣＭ注入後のマウスから採取した血清に存在する３Ｇ４はＰＳに結合する。従って、ウシβ２ＧＰＩは、マウス血漿中でＰＳに対する３Ｇ４の結合を仲介することが可能であり、３Ｇ４の抗腫瘍作用に与っている可能性がある。３Ｇ４を用いてマウスで行う腫瘍実験は全て、ＰＳ露出腫瘍内皮細胞に対する標的輸送を確実にするために、ウシまたはヒトのβ２ＧＰＩを補充しなければならない。
【０２１５】
３Ｇ４とＰＳの間の相互作用に欠かせない重要な補因子としてβ２ＧＰＩを特定することは、この独特な腫瘍血管標的輸送剤の理解を深める。３Ｇ４は、β２ＧＰＩの２価複合体の形成を通じて、陰イオン性リン脂質表面に対するβ２ＧＰＩの親和度を高めることによってＰＳ露出腫瘍内皮細胞を標的とする。本実験は、これらの諸性質を明らかにするばかりでなく、今や、病原性抗体の性質を重ねることなく、血清タンパク質との複合体におけるアミノリン脂質および陰イオン性リン脂質に結合する第３世代抗体の開発を可能とする。
【０２１６】
要約すると、β２ＧＰＩドメインＩ以外の位置で、あるいは、β２ＧＰＩドメインＩまたはドメインＶ以外の位置で、ＰＳおよびβ２ＧＰＩに結合する、好ましい「第３世代」または「非病原性ＰＳ−β２ＧＰＩ抗体」を選択することが今や可能である。本明細書のデータに徴すれば、本発明によるもっとも好ましい抗体は、ドメインＩＩにおいてβ２ＧＰＩに結合するものである。本明細書に記載される方法およびスクリーニング技術、例えば、図１８Ａおよび１８Ｂの配列情報および実施例ＸＸＸの結合アッセイに従えば、ある範囲の非病原性ＰＳ−β２ＧＰＩ抗体を調製することが可能である。このような抗体および、その免疫接合体は、ウイルス感染の安全で効果的な治療、および、癌その他の疾患の治療に好適に使用することが可能である。
【０２１７】
Ｄ．レセプター本体およびベータ体
ＷＯ２００４／００６８４７に記載される内容と好対照をなす、３Ｇ４抗体、特に、３Ｇ４とβ２ＧＰＩとの相互作用に関する前述の詳細な分析もまた、本発明人達が行った、本発明のレセプター本体の開発に貢献した。本発明はまた、重要局面として、ホスファチジルセリンに結合し、宿主のエフェクター機能を惹起する「レセプター本体」と呼ばれる、ある範囲の構築物を提供する。レセプター本体の開発局面を後述する。
【０２１８】
ホスファチジルセリンに対する抗体によって腫瘍血管を標的として狙い撃ちすることは腫瘍治療に有効であることを示すためにデータを本明細書に提示する。ホスファチジルセリンに対する抗体はまた、ウイルス感染症を治療するのにも有効である。腫瘍実験を一実施例と見なすと、本明細書には、腫瘍の微小環境におけるストレス条件が、腫瘍血管内皮上にホスファチジルセリン露出を誘発することが示される（実施例ＶＩＩ、実施例ＩＩ、実施例Ｖ、および実施例ＶＩ）。露出ホスファチジルセリンは、腫瘍血管の、画像記録用および治療用の選択的マーカーとなる（実施例ＩＸ、実施例Ｘ、実施例ＸＩ、および実施例ＸＸ）。
【０２１９】
腫瘍治療と組み合わせると、ホスファチジルセリンに対する抗体は、腫瘍内の血管を損傷し、白血球浸潤を招く（例えば、図１）。さらにこのような抗体の投与は、腫瘍内にマクロファージを招集する。例えば、３Ｇ４抗体による腫瘍治療実験において、腫瘍血管内皮に対する血液単球の広範な結合、および、腫瘍間隙部に対するマクロファージの豊富な浸潤が見られた（例えば、実施例ＸＸＶＩＩ；図６Ａ、図６Ｂ、図６Ｃ、および図６Ｄ）。
【０２２０】
治療腫瘍に対するマクロファージの浸潤を、３Ｇ４は、インビトロにおいて、骨髄由来マウスマクロファージによるＰＳ発現細胞の食作用速度を、Ｆｃ依存性に５倍高めると言う所見と合わせて考えると、抗体、例えば、３Ｇ４は、腫瘍血管または腫瘍細胞に向けてマクロファージの細胞毒性を喚起するという所見と一致する。さらにまた、３Ｇ４は、ＰＳ発現内皮細胞または腫瘍細胞の増殖を直接抑制することはせず、インビトロにおいて細胞の補体分解を仲介しない。これは、抗体は直接細胞毒性を及ぼさないことを示唆する。
【０２２１】
そこで、本発明人達は、腫瘍血管または腫瘍細胞に対するマクロファージ介在性傷害に関し、二つの実行可能な機構を提案する。先ず、３Ｇ４のような抗体が、腫瘍血管および腫瘍細胞上において、陰イオン性リン脂質、主にホスファチジルセリンと、血清タンパク質との複合体に結合する。次に、この抗体は、Ｆｃγレセプターを介して単球とマクロファージの結合を刺激し、それによって抗体依存性細胞性細胞毒性（ＡＤＣＣ）および抗体依存性マクロファージ食作用を強化する。活性化されたマクロファージが、直接的抗腫瘍活性を持つことは長い間認められている（Ｗｈｉｔｗｏｒｔｈ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０）。これを裏付けるものとして、Ｍａｎｆｒｅｄｉ  ｅｔ  ａｌ．，（１９９８）は、抗リン脂質抗体は、大量のＴＮＦ−α分泌の誘発を通してスカベンジャーマクロファージによるＰＳ発現細胞のオプソニン化を促進することを報告している。マクロファージはＰＳレセプターを持ち、ＰＳ発現細胞に結合し、該細胞を包み込むことが可能であるが（Ｂａｌａｓｕｂｒａｍａｎｉａｎ  ａｎｄ  Ｓｈｒｏｉｔ，２００３；Ｕｔｓｕｇｉ  ｅｔ  ａｌ．，１９９１；Ｆａｄｏｋ  ｅｔ  ａｌ．，２００１ａ），ＰＳ露出だけでは、包み込みを誘発するのには不十分である（Ｄｅｖｉｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，２００３）．
第２のに、３Ｇ４のような抗体は、ＰＳ発現腫瘍内皮細胞からの、ＰＳ−仲介「安静」シグナル、通常は、腫瘍血管および腫瘍細胞に結合するマクロファージによる炎症反応を抑える筈であるシグナルをブロックする可能性がある（図７）。同様の機構が、アポトーシス細胞に対する、マクロファージ系統細胞の炎症反応の欠如を説明するものと考えられる（Ｈｅｎｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００１；Ｍａｔｚｉｎｇｅｒ，１９９８；Ｇａｌｌｕｃｃｉ  ａｎｄ  Ｍａｔｚｉｎｇｅｒ，２００１；Ｆａｄｏｋ  ｅｔ  ａｌ．，２００１ｂ）。従って、３Ｇ４のような抗体は、マクロファージを刺激してＴＮＦ−α、ＩＬ−１、および、腫瘍上皮を直接傷害する他の炎症性サイトカインを分泌させることによって腫瘍血管傷害を誘発し、さらに宿主細胞を腫瘍の内部に招集する（Ｆａｄｏｋ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８）。
【０２２２】
理想的には、上記予想可能な機構のそれぞれについて、腫瘍関連マクロファージは、腫瘍脈管形成を誘発し、これが腫瘍増殖を促進するとする仮設（例えば、Ｓｕｎｄｅｒｋｏｔｔｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４）と調整させなければならない。従って、本発明人達は、マクロファージの脈管形成促進作用と、腫瘍血管および腫瘍細胞に及ぼすマクロファージの直接的細胞毒性作用との間には平衡があり、この平衡は、腫瘍微小環境（Ｂｒｅｉｔｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，２００２）における局所の条件（例えば、低酸素、ＴＧＦ−β）によって決められると考える。本発明では、３Ｇ４のような抗体は、マクロファージの直接的細胞傷害反応に有利となるように腫瘍環境を改変すると考えられる。
【０２２３】
ホスファチジルセリン生物学を、任意に、腫瘍治療中のマクロファージの振る舞いに関して本明細書に提示されるデータと比較しながら考察し、本発明人達は、ホスファチジルセリン、および任意に他の陰イオン性リン脂質に結合する、ある範囲の有利な構築物すなわち「レセプター本体」、および関連接合体および使用法を提供する。
【０２２４】
本発明のこのような構築物またはレセプター本体は、通常、ホスファチジルセリン、および要すれば任意に他の陰イオン性リン脂質を認識し結合する、結合性タンパク質またはポリペプチド、レセプター、リガンド、またはペプチドを含み、該構築物またはレセプター本体では、結合性タンパク質またはポリペプチド、レセプター、リガンドまたはペプチドは、抗体、または免疫グロブリンＦｃ領域またはドメインに結合する。Ｆｃ領域は、結合性タンパク質またはポリペプチド、レセプター、リガンドまたはペプチドを、その生物学的半減期が延長するように修飾するが、さらに重要なことは、Ｆｃ領域によって、病気治療を改善するよう宿主のエフェクター機能を刺激する能力を持つ構築物が得られることである。
【０２２５】
本発明のレセプター本体は、ホスファチジルセリンに対する抗体が使用される任意の実施態様において使用が可能である。従って、このようなレセプター本体は、多数の用途、例えば、腫瘍血管および腫瘍細胞に対しホスファチジルセリンを結合させ、腫瘍に対して宿主細胞介在性抗血管および抗細胞作用をもたらす使い方、および、ウイルスまたはウイルス感染細胞に対しホスファチジルセリンを結合させ、動物において抗ウイルス作用をもたらす使い方を含む用途を持つ。
【０２２６】
本発明の上記局面の持つ利点の一つは、レセプター本体は、特異的結合を実現するために、天然の、ホスファチジルセリン結合性タンパク質、ポリペプチド、またはレセプターを用いることである。ホスファチジルセリンに対する抗体の使用は、本明細書で、多くの治療実施態様において有効であることが示されているが、レセプター本体は、抗ＰＳ抗体よりもさらに高い親和度または特異性を持つことが可能と考えられる。ホスファチジルセリン結合性タンパク質またはポリペプチド、特にβ２ＧＰＩを、Ｆｃ免疫グロブリン領域において２価の分子とすることによって、構築物は、より優れた親和性、安定性、より長いインビボ半減期、および、ホスファチジルセリン発現組織に対し恐らくより優れた局在を実現するのを始め、インビボにおいて宿主のエフェクター機能を刺激する。抗ＰＳ抗体は、サルを含む動物に投与した場合、有効で安全であることが本明細書において示された。同様に、天然のリガンドを含むレセプター本体も有効で安全であり、抗リン脂質症候群を惹起することもない。従って、本発明のレセプター本体は、ある範囲の腫瘍およびウイルス感染を治療するのに使用が可能な、単純で、ヒト的で、特異的で、安全な治療法である。
【０２２７】
Ｄ１．ホスファチジルセリン結合性タンパク質
レセプター本体における結合性タンパク質またはポリペプチド、レセプター、リガンド、またはペプチドは、いくつかのホスファチジルセリン結合性タンパク質、例えば、細胞由来レセプター、因子Ｖ、プロトロンビン（因子ＩＩ）等を含む結合性タンパク質の内の任意の一つであってもよい。β２−糖タンパク質Ｉの使用は非常に好ましい。
【０２２８】
凝固カスケード反応の内のいくつかの因子もホスファチジルセリンに結合することが可能であり、従って、本発明のレセプター本体において使用することが可能である。例えば、因子Ｖおよびプロトロンビン（因子ＩＩ）はホスファチジルセリンに結合する。プロトロンビナーゼ複合体では、因子Ｖａの陰イオン性脂質表面に対する結合は、因子ＸａのＣａ２＋−依存性結合を増進し、これによってプロトロビンはトロンビンに転換される。いずれの複合体においても、ホスファチジルセリンがもっとも有効な陰イオン性リン脂質である。従って、ホスファチジルセリン結合性タンパク質、プロテインＣ、プロテインＳ、因子ＩＩ／ＩＩａ、因子Ｖ／Ｖａ、因子ＶＩＩ／ＶＩＩａ、因子ＩＸ／ＩＸａ、および因子Ｘ／Ｘａの使用が可能である。
【０２２９】
Ｆａｄｏｋ等（２０００、引用することにより特異的に本明細書に含める）は、アポトーシス細胞に直接結合する、ＰＳレセプターのクローニングを報告する。このレセプターは、多くの細胞タイプ、例えば、マクロファージ、線維芽細胞、および上皮細胞を含む細胞タイプにおいて発現される。抗体およびＰＳ小胞による実験から、レセプターは確かに細胞表面のホスファチジルセリンを認識することが示された。従って、このレセプターは、ＰＳ特異的レセプター、「ＰＳレセプター」、または“ＰＳｒ“である（アクセス番号ＡＦ３０４１１８）。このレセプターは、マクロファージのような食細胞の上、さらに他の細胞タイプにも存在する。従って、Ｆａｄｏｋ等のＰＳレセプター（２０００、引用することにより特異的に本明細書に含める）も本発明のレセプター本体に使用してもよい。
【０２３０】
本発明のレセプター本体において使用してもよい、他のホスファチジルセリン結合タンパク質が、Ｂａｌａｓｕｂｒａｍａｎｉａｎ  ａｎｄ  Ｓｃｈｒｏｉｔ，２００３（引用することにより特異的に本明細書に含める）に記載される。特に、Ｂａｌａｓｕｂｒａｍａｎｉａｎ  ａｎｄ  Ｓｃｈｒｏｉｔ，２００３、表２、および、その中に引用される文献を参照されたい。なお、これらの文献全てを引用することにより特異的に本明細書に含める。このようなホスファチジルセリン結合タンパク質としては、例えば、ＣＤ１４；インテグリン、例えば、α５β３（ビトロネクチン、ＣＤ５１／ＣＤ６１）、およびα５β３／ＣＤ３６；いくつかのスカベンジャーレセプター、例えば、ＳＲＢ（ＣＤ３６）、ＳＲＣ（ＬＯＸ−１，ＳＲＣＬ）、ＳＲＤ（ＣＤ６８，マクロシアリン）、およびＰＳＯＸ；補体レセプター、例えば、ＣＲ３（ＣＤ１１ｂ／ＣＤ１８）（アクセス番号ＮＭ０００６３２）、ＣＲ４（ＣＤ１１ｃ／ＣＤ１８）（アクセス番号ＮＭ０００８８７）、およびＣＤ９３（ｃＣｌｑｒ，カルレチクリン）／ＣＤ９１（α２−マクログロブリンレセプター）；およびその他のレセプター、例えば、ＰＳ発現アポトーシス細胞に対する、Ｍｅｒ／Ｇａｓの６食細胞認識パートナー（アクセス番号ＡＨ０１０００１）が挙げられる。
【０２３１】
アネキシンＶのようなアネキシンも、レセプター本体においてホスファチジルセリン結合性タンパク質として用いてもよいが、アネキシンの使用は、本発明の普遍的部分とはならない。従って、ある実施態様では、本発明は、ホスファチジルセリン結合性タンパク質がアネキシンではない構築物を提供する。ではあるが、アネキシンを含む実施態様の使用に関する下記の情報も提供する。さらに、引用することにより特異的に本明細書に含まれるアネキシン特許文書における技術情報、例えば、発現および接合に関する情報を用いて、本発明の他のＦｃ−ホスファチジルセリン結合タンパク質構築物を実現してもよい。
【０２３２】
哺乳類組織では、アネキシンファミリーの内少なくとも９個のメンバーが特定されている（アネキシンＩからアネキシンＩＸまで）。これらの内、本発明で好まれるのはアネキシンＶ（別名ＰＡＰ−１）である。アネキシンのタンパク質およびＤＮＡ配列は従来技術で既知であるので、本発明のこの局面で使用される組み換え融合タンパク質の生産は容易である。
【０２３３】
引用によって本明細書に含まれる米国特許第５，６５８，８７７号は、アネキシンＩ、有効量のアネキシンＩ、およびその薬学的組成物を記載する。さらにまた、肺における内毒素の有害作用を予防または緩和するために動物を治療する方法であって、安全量の、３３ｋＤａアネキシンＩ断片を動物の気道に投与することを含む方法も記載される。
【０２３４】
アネキシンＶは、一つの遊離スルフヒドリル基を含むが、結合炭化水素鎖を全く持たない。ｃＤＮＡ配列から導かれるアネキシンＶの一次構造は、４個の内部反復単位を含む（米国特許第４，９３７，３２４号、引用により本明細書に含める）。米国特許第５，２９６，４６７およびＷＯ９１／０７１８７は、「アネキシン」を含む薬学的組成物を提供するが、これらも、それぞれ、引用により本明細書に含める。
【０２３５】
ＷＯ９１／０７１８７は、「アネキシン」の、天然の、合成の、または遺伝学的に調製された誘導体および類縁体を提供する。変異アミノ酸を含む３２０個のアミノ酸から成り、要すれば任意に３１６−Ｃｙｓと２−Ａｌａの間にジスルフィド架橋を持つ特定のアネキシンが提供される。
【０２３６】
米国特許第５，２９６，４６７号は、さらに別のアネキシンおよびその薬学的組成物を記載した点について、全ての図および配列を含め、その全体を引用により本明細書に含める。米国特許第５，２９６，４６７号は、アネキシンのクローニング、組み換え発現、および調製を記載する。複数のアネキシンにおいて、例えば、それぞれのアネキシンの１個以上のシステイン基の間のジスルフィド結合によって結合される２個以上のアネキシンの凝集体も開示される。好適なアネキシン開始材料のさらに別の例が、アポトーシス細胞を検出するのに用いられるアネキシンを提供するＷＯ９５／２７９０３（引用により本明細書に含める）によって与えられる。
【０２３７】
米国特許第６，１９７，２７８号は、一般的な意味でのアネキシン、インビボにおけるアネキシンの安全で効果的な投与、および画像記録実施態様を可能とし、かつその記述的裏づけを行った点について、引用により本明細書に特異的に含める。本発明の構築物調製用に好適なアネキシン開始材料を明瞭に記載するという点で、米国特許第５，６２７，０３６号；ＷＯ９５／１９７９１；ＷＯ９５／２７９０３；ＷＯ９５／３４３１５；ＷＯ９６／１７６１８；およびＷＯ９８／０４２９４も引用により本明細書に特異的に含める。これらの特許文書の様々のものはまた、有用な組み換え発現ベクターにも関わる。
【０２３８】
米国特許第５，６３２，９８６号も、組織抽出物からのアネキシンの単離（米国特許第４，９３７，３２４号；これも引用により本明細書に含める）、および組み換え法によるアネキシン生産についてさらに記載した点で引用される。従って、米国特許第５，６３２，９８６号のｃＤＮＡクローンおよび発現ベクターは、それぞれ、引用により本明細書に含められる。
【０２３９】
米国特許第５，６３２，９８６号はまた、リン脂質結合能力において実質的に低下しない限りにおいて、さらに細かく分割された、または１個以上のアミノ酸残基において改変された、アネキシン分子突然変異および変異分子をさらに記載した点で、引用により本明細書に特異的に含める。従って、使用に好適なアネキシンは、例えば、１個以上のドメインを含むように、天然の同タンパク質よりも少数のアミノ酸残基を含むように短縮することも可能であるし、あるいは、アミノ酸置換体を含むことも可能である。ムテイン、すなわち第２の世代アネキシン分子がアミノリン脂質に対して実質的により低い親和度を持たない限り、どのような変化も受け容れることが可能である。同じ考え方が、アネキシン以外のタンパク質にも適用される。
【０２４０】
アネキシン同士および他の薬剤同士の化学的架橋についても米国特許第５，６３２，９８６号に記載される。この文書を引用により本明細書に含める。このような技術は全て、単純に、血栓溶解剤を、本明細書に記載されるＦｃと置換することによって、本発明において使用されるように適応させることができる。従って、脂肪族ジアミン；スクシニミドエステル；ヘテロ二重機能結合反応試薬、例えば、ＳＰＤＰ；マレイミド化合物；スペーサー付きリンカー等も使用が可能である。これらの介在因子はまた、アネキシン以外のタンパク質に使用することも可能である。
【０２４１】
米国特許第５，６３２，９８６号はまた、アネキシン含有接合体の組み換え生産を記載している点でも引用により本明細書に特異的に含まれる。従って、適切な核酸配列が繋ぎ合わされてキメラコード配列を形成し、これが次にキメラタンパク質を生産する。例示の発現ベクターは、ｐＫＫ２３３−２（大腸菌）、ＤＰＯＴ（酵母）、およびｐＤＳＰ１．１ＢＧＨ（哺乳動物）と言われる。この教示は、本明細書に提示される新たな情報によって補足される。
【０２４２】
米国特許第６，３１２，６９４、６，７８３，７６０、および６，８１８，２１３号は、それぞれ、一般的な意味でのホスファチジルセリン結合タンパク質、および、インビボにおけるそれらのタンパク質の安全で効果的な投与を可能とし、かつその記述的裏づけを行った点について、引用により本明細書に特異的に含める。これらの特許は、治療剤が、ホスファチジルセリン、好ましくは、血管増殖腫瘍の血管腔表面に露出されるホスファチジルセリンに結合する標的輸送剤に作動可能に結合される、結合リガンド組成物、および、そのような結合リガンドおよび、その組み合わせを用いる癌治療法を開示する。これらの特許は、Ｆｃ領域に結合したホスファチジルセリン結合リガンドを教示も示唆もしないけれども、ホスファチジルセリン結合タンパク質、結合される治療剤、および安全で効果的なインビボ治療法に関する、それら特許の開示は、引用により本明細書に特異的に含まれる。
【０２４３】
米国特許第６，３１２，６９４、６，７８３，７６０、および６，８１８，２１３号は、治療剤が、少なくとも第１のホスファチジルセリン結合タンパク質に作動可能に結合する、結合リガンドに特に関わる。これらの特許におけるタンパク質は治療剤に結合し、Ｆｃ領域無しで治療剤を腫瘍血管に送達するために使用されるので、宿主細胞のエフェクター機能を惹起することはない。けれども、タンパク質接合体、およびそれらの接合体の、癌治療を含むインビボにおける安全で効果的な投与を可能とし、かつその記述的裏づけを行った点について、引用により本明細書に特異的に含める。これらの特許の情報、および本開示の教示を用いるならば、ホスファチジルセリン結合タンパク質、または、その、ホスファチジルセリン結合断片が、今度はＦｃ領域またはドメインに結合される、ある範囲のレセプター本体を調製することは可能である。
【０２４４】
β２−糖タンパク質Ｉ（β２ＧＰＩ）は、本発明のレセプター本体に使用される、本発明において好まれるホスファチジルセリン結合タンパク質である。アポリポタンパク質Ｈとも呼ばれるβ２ＧＰＩは、そのＣ末端を介して陰性荷電リン脂質に結合する、５０ｋＤａの血漿糖タンパク質である。ヒトＢ２ＧＰＩ（ＮＰ００００３３、ＡＡＰ７２０１４、および１Ｃ１ＺＡ）、およびマウスＢ２ＧＰＩ（ＡＡＨ５３３３８、ＮＰ０３８５０３、ＣＡＡ６９４０１、ＢＡＢ２７２１）について上記アクセス番号が挙げられる。インビトロおよびインビボでの証拠から、β２ＧＰＩは、ＰＳ発現アポトーシス細胞の排除に与ることが示されている（Ｃｈｏｎｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５；Ｂａｌａｓｕｂｒａｍａｎｉａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７；Ｂａｌａｓｕｂｒａｍａｎｉａｎ  ａｎｄ  Ｓｃｈｒｏｉｔ，１９９８）。β２ＧＰ１の食細胞との相互作用は静電気的性質のもので、タンパク質の糖化は、食細胞の認識にとって決定的に重要ではない。従って、レセプター本体に使用されるβ２ＧＰＩの組み換え生産には大きな障害はない。
【０２４５】
本発明においてβ２ＧＰＩタンパク質、ポリペプチド、またはペプチドを用いる場合、得られるＦｃ−β２ＧＰＩ構築物は「ベータ体」と呼ばれる。ベータ体は、本明細書の図１８Ａおよび図１８Ｂに示されるように、β２ＧＰＩのドメインＶ由来の脂質結合領域を含むことが好ましい。ドメインＶの全てを含む構築物は、脂質結合が確保されるので好ましい。ドメインＶは、それだけ、または、他の４個のドメインの内の１個以上と共に使用されてもよい。完全長β２ＧＰＩを使用することは好都合ではあるが、ある局面では、β２ＧＰＩのドメインＩを含まないベータ体の方が好ましい。なぜなら、ＡＰＳ患者の抗体は、一般に、β２ＧＰＩのドメインＩを認識するからである（ｄｅ  Ｌａａｔ  ｅｔ  ａｌ．，２００５ａ）。
【０２４６】
他の好ましいベータ体は、２個のβ２ＧＰＩポリペプチドが、Ｆｃ領域に対し２価の分子として結合するものである。このようなベータ体は、プレートにおける、および細胞表面に露出されるホスファチジルセリンに対する結合において効果的であることが本明細書で示される。一方、２価および多価のベータ体、例えば、ナノ粒子、リポソーム、および他の分子枠組みを調製する他の手段も提供される。
【０２４７】
Ｄ２．Ｆｃ領域
Ｆｃ領域は、ホスファチジルセリン結合タンパク質またはポリペプチド、レセプター、リガンド、またはペプチドに結合、結合、または接合されるが、結合、結合、または接合は、Ｆｃ領域を結合することによって、得られるレセプター本体の所望の活性は実質的に破壊されるように行われる。従来技術で既知の接合またはリンカー技術の任意のもの、例えば、本明細書の関連セクションに記載されるものの採用が可能である。要すれば、当業者にとっては今や標準実技となっている、例えば、これも本明細書に例示される分子生物学技術を用いて融合タンパク質を創成することも可能である。従って、レセプター本体は、化学的接合体または融合タンパク質として作製することが可能である。
【０２４８】
免疫グロブリンの重鎖の中では、アミノ末端ドメインは可変ドメイン（ＶＨ）である。重鎖および軽鎖の可変ドメインは、共に抗原結合において機能する。重鎖では、可変ドメインの次には三つの定常ドメインが来る。すなわち、ＣＨ１、ＣＨ２、および、カルボキシ末端のＣＨ３である。ある種の抗体では、第４定常ドメインＣＨ４が存在する。短い幅、スイッチが、重鎖の可変域と定常域とを接続する。ヒンジは、ＣＨ２およびＣＨ３（Ｆｃ断片）を、抗体の残余部分（Ｆａ断片）に接続する。
【０２４９】
定常域の性質が、抗原結合以外の各種の作用機構を決定する。抗体は、その定常域の構造と免疫機能に基づいて大きく五つのクラス、ＩｇＭ、ＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＤ、およびＩｇＥに分類される。異なるクラスの免疫グロブリンに対応する重鎖定常ドメインは、それぞれ、μ、γ、α、δ、およびεと呼ばれる。
【０２５０】
Ｆｃ領域によって実現されるエフェクター機能に徴すると（Ｂｒｕｇｇｅｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９８７；Ｒｉｅｃｈｍａｎｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９８８；Ｃｌａｒｋ，１９９７；Ｐａｄｌａｎ，１９９４；これらの各文献を引用により本明細書に特異的に含める）、本発明において好ましいＦｃ領域は、臨床的使用の場合、ヒトのＩｇＧ１（γ１）およびヒトのＩｇＧ３（γ３）であり、マウスで臨床前試験を行う場合は、マウスのＩｇＧ２ａ（γ２ａ）およびマウスのＩｇＧ２ｂ（γ２ｂ）である。γ２は無徴候性であり、エフェクター機能を実現するために選ばれることはないが、それでも二量体形成ドメインとして使用される有用なヒトタンパク質である。免疫グロブリンのＦｃ断片は、エフェクター機能のために選ばれるものではあるが、この断片はまた半減期の延長にも貢献する。これは、腎臓における抗体の活発な再吸収による可能性がある。
【０２５１】
Ｆｃ領域および結合構築物の組み換え発現は便利ではあるが、このような断片はまた、免疫グロブリン全体のタンパク質分解、好ましくは、非特異的チオールプロテアーゼ、パパインによるタンパク質分解によって入手することが可能である。パパイン消化によって、「Ｆａｂ断片」と呼ばれる、それぞれ、単一の抗原結合部位を持つ、二つの同一の抗原結合性断片、および、残余の「Ｆｃ断片」が得られる。
【０２５２】
パパインは先ず、活性部位におけるスルフヒドリル基を、システイン、２−メルカプトエタノール、またはジチオスレイトールで還元して活性化しなければならない。最大の酵素活性を確保するために、保存酵素中の重金属をＥＤＴＡ（２ｍＭ）でキレート化して取り去らなければならない。酵素と基質は、通常、１：１００の重量比で混合する。インキュベーション後、チオール基をヨードアセタミドによって非可逆的にアルキル化することによって、または、単に透析によって反応を停止させる。消化の完全度はＳＤＳ−ＰＡＧＥによって監視し、各種分画を、タンパク質Ａ−セファローズ、またはイオン交換クロマトグラフィーで分離する。
【０２５３】
ある実施態様では、２個のＦｃ断片、好ましくは２個のヒトＦｃ断片を用いてもよい。このような局面では、２個の結合タンパク質、レセプター、またはリガンドは、２個のＦｃ断片と組み合わせて別のタイプの２価のレセプター本体を調製することが可能である。ヒトへの投与用のレセプター本体を作製するにはヒトのＦｃ断片が好ましい。実際、これは、完全にヒト的治療構築物が得られるので、本発明の利点となる。従って、Ｆｃ−β２ＧＰＩ構築物は、完全にヒト的ベータ体治療剤を含む。
【０２５４】
Ｄ３．その他の構築物および担体
Ｆｃ領域をホスファチジルセリン結合タンパク質またはポリペプチドに結合することは、本発明のレセプター本体の好ましい実施態様ではあるが、ホスファチジルセリン結合タンパク質はまた、生物学的に活性な分子に長い寿命を与えるために不活性な担体に結合されてもよい。従って、本発明はまた、少なくとも第１の不活性担体に作動可能に結合した、β２ＧＰＩを含む少なくとも第１のアミノリン脂質結合タンパク質を含む構築物を提供する。
【０２５５】
従来技術で知られるように、担体タンパク質は、生物学的半減期を延長するのに使用することが可能であり、例示のタンパク質は、アルブミン類およびグロブリン類、例えば、ニュートラビジンおよびストレプタビジンである。非タンパク質担体、例えば、ポリサッカリドおよびＰＥＧを含む天然または合成ポリマーも、生物学的半減期を延長するのに使用することが可能である。本明細書に記載される任意のホスファチジルセリン結合タンパク質に対し、上記の内の任意の不活性担体を結合させてもよい。
【０２５６】
本発明の別局面は、Ｆｃ領域以外の手段によって調製されたβ２ＧＰＩ二量体組成物と、各種使用法に関する。本発明は特に、癌の治療法、およびウイルス感染の治療法であって、治療を必要とする動物に、治療有効量のβ２ＧＰＩ２価分子を投与することを含む方法を提供する。
【０２５７】
本発明のさらに別の局面は、二量体形態を取る取らないとは無関係に、β２ＧＰＩポリペプチドを含むリポソーム、および、Ｆｃ領域に結合するものとは別のβ２ＧＰＩポリペプチドを含むリポソームである。従って、本発明は、少なくとも第１のβ２ＧＰＩポリペプチドを含む、ナノ粒子、リポソーム、脂質担体、複合体、混合物、超分子構造多数分子凝集体、または脂質系薬剤送達システムに関する。β２ＧＰＩポリペプチドは二量体であってもよいが、そうである必要はない。このようなリポソームはステルス処理されたリポソームであることが好ましく、リポソームコアに治療剤を含んでいてもよい。
【０２５８】
本発明のさらに別の局面は、β２ＧＰＩポリペプチド（Ｆｃ領域に結合したβ２ＧＰＩポリペプチドとは別のもの）の組成物であって、該β２ＧＰＩポリペプチドが少なくとも第１の治療剤に作動可能に結合する組成物、および各種の使用法に関する。特に好ましいのは、β２ＧＰＩポリペプチドが、少なくとも第１のサイトカイン、例えば、ＴＮＦα、ＩＬ−２、またはＩＦＮαに作動可能に結合する組成物である。ある実施態様では、β２ＧＰＩポリペプチドは二量体であり、２価のβ２ＧＰＩポリペプチドは、少なくとも第１の治療剤、例えば、サイトカインに作動可能に結合してもよい。上記のようなものであれば、いずれのβ２ＧＰＩ−サイトカイン構築物または接合体であっても、ウイルス感染を含む病気治療への使用について特に考慮される。
【０２５９】
従って、本発明は、癌の治療法およびウイルス感染の治療法であって、治療を要する動物に対し、少なくとも第１のサイトカイン、好ましくはＴＮＦα、ＩＬ−２、またはＩＦＮαに作動可能に結合されるβ２ＧＰＩポリペプチドを含む構築物の治療有効量を投与することを含む方法を提供する。β２ＧＰＩポリペプチドは、２価のβ２ＧＰＩポリペプチドであってもよい。
【０２６０】
Ｅ．さらに別の薬剤の接合体
本発明の構築物およびレセプター本体はまた、結合した治療剤を、特異的標的、例えば、腫瘍および腫瘍内血管、腫瘍細胞、ウイルス感染細胞、およびウイルス粒子に送達するために使用されてもよい。Ｆｃ領域を持つ構築物に関するものではないが、米国特許第６，３１２，６９４、６，７８３，７６０、および６，８１８，２１３号も、治療剤に結合するアミノリン脂質結合タンパク質に関する一般的教示に関する参照により本明細書に特異的に含められる。本発明の構築物およびレセプター本体はまた、安全で効果的な抗ウイルス治療に使用されるので、これらの構築物は、ある範囲の既知の抗ウイルス剤に結合されると好都合である。
【０２６１】
本発明の上記局面では、接合を調製するのに、本発明の任意の構築物、レセプター本体、またはベータ体の使用が可能である。このような接合体に使用される薬剤は、抗細胞または細胞傷害性薬剤、サイトカイン、ケモカイン、Ｖ型ＡＴＰアーゼインヒビター、タンパク質合成インヒビター、化学療法剤、抗脈管形成剤、アポトーシス誘発剤、抗チューブリン剤、放射性同位元素、凝固剤または抗ウイルス剤を含む。抗ウイルス接合剤では、結合剤として第２の抗ウイルス剤を使用する必要はない。
【０２６２】
（Ｅ１．抗細胞性薬剤および細胞傷害性薬剤）
特定の適用のために、治療剤は、細胞（特に、腫瘍内皮細胞、腫瘍細胞またはウイルスに感染した細胞）の増殖または細胞分裂を消失または抑制する能力を有する、細胞傷害性薬剤または薬理学的薬剤、特に細胞傷害性薬剤、細胞分裂抑制剤か、そうでなければ抗細胞性薬剤である。
【０２６３】
例示的な抗細胞性薬剤には、化学療法剤および細胞毒が挙げられる。使用され得る化学療法剤には以下が挙げられる：ホルモン（例えば、ステロイド）；代謝拮抗薬（例えば、シトシンアラビノシド、フルオロウラシル、メトトレキセートまたはアミノプテリン）；アントラサイクリン；マイトマイシンＣ；ビンカアルカロイド類；デメコルチン；エトポシド：ミトラマイシン：抗腫瘍アルキル化剤（例えば、クロラムブシルまたはメルファラン）。他の実施形態は、サイトカインのような薬剤を含み得る。基本的には、標的化された細胞（例えば、内皮細胞）の部位での血液成分への標的化、インターナリゼーション、放出および／または提示を可能にする様式で、構築物に首尾良く結合され得る限り、任意の抗細胞性薬剤が使用され得る。
【０２６４】
例えば、標的抗原が、毒性化合物による効率的な中毒と一致する経路によってインターナライズしない場合、化学療法剤（例えば、抗腫瘍薬物、サイトカイン、代謝拮抗薬、アルキル化剤、ホルモンなど）を標的化することが望まれる場合のような状況が存在し得る。種々の化学療法剤および他の薬理学的薬剤（ドキソルビシン、ダウノマイシン、メトトレキセート、ビンブラスチン、ネオカルチノスタチン、マクロマイシン、トレニモン（ｔｒｅｎｉｍｏｎ）およびα−アマニチンを含む）は、現在では、首尾良く結合され、そして薬理学的に機能することが示されている。
【０２６５】
他の状況において、細胞毒に基づく治療由来の任意の潜在的な副作用が、ＤＮＡ合成インヒビター（例えば、ダウノルビシン、ドキソルビシン、アドリアマイシンなど）の使用によって除去され得る。従って、これらの薬剤は、本発明における使用のための抗細胞性薬剤の好ましい例である。細胞分裂抑制剤に関して、そのような化合物は、一般に、標的細胞の天然の細胞周期を、好ましくはその細胞が細胞周期からはずされるように妨害する。例示的な細胞分裂抑制剤は含む。
【０２６６】
広範な種々の細胞傷害剤が、結合体化され得ることが公知である。例には、多くの有用な植物由来毒素、真菌由来毒素または細菌由来毒素が挙げられ、これらは、例として数例を挙げると、以下：種々のＡ鎖毒素、特にリシンＡ鎖；リボソーム不活化タンパク質（例えば、サポリンまたはゲロニン）；α−サルシン；アスペルギリン；レストリクトシン（ｒｅｓｔｒｉｃｔｏｃｉｎ）；リボヌクレアーゼ（例えば、胎盤リボヌクレアーゼ）；ジフテリア毒素；およびｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ外毒素、が挙げられる。
【０２６７】
周知の１９９２年の毒素の文献である「Ｇｅｎｅｔｉｃａｌｌｙ  Ｅｎｇｉｎｎｅｒｅｄ  Ｔｏｘｉｎｓ」（Ａｒｔｈｕｒ  Ｅ．Ｆｒａｎｋｅｌ編）（多数の毒素の一次アミノ酸配列を含む付録を含む）は、標的された構築物中の毒素を記載し、その使用を可能にする目的で、参考として本明細書に具体的に援用される。
【０２６８】
毒素のうちゲロニン（ｇｅｌｏｎｉｎ）およびリシンＡ鎖の使用が好ましい。脈管形成された腫瘍の腫瘍内血管において発現するマーカーに結合するか、結合へと利用可能であるか、吸着されるかまたは局在化される免疫結合体のエフェクターまたは毒素部分としてのゲロニンの使用は、米国特許第６，０５１，２３０号（これは、本明細書中において具体的に援用される）および米国特許第６，４５１，３１２号（特に、標的化剤としてＶＥＧＦに結合したゲロニンに関する）に記載される。
【０２６９】
リシンＡ鎖に関して、さらに好ましい毒素部分は、炭水化物残基を改変または除去するように処理された毒素Ａ鎖、いわゆる脱グリコシル化Ａ鎖（ｄｇＡ）である。脱グリコシル化リシンＡ鎖は、その極度の有効性、より長い寿命のため、そして臨床等級および規模での製造に経済的に適切であるために好ましい。
【０２７０】
最も小さな分子であるが、にもかかわらず適切な生物学的応答を提供することが可能な分子を使用することは、薬理学的見地から望ましくあり得る。例えば、十分な抗細胞応答を提供するより小さなＡ鎖ペプチドを使用することが望まれ得る。この目的のために、リシンＡ鎖は、Ｎａｇａｒａｓｅ（Ｓｉｇｍａ）による３０のＮ末端アミノ酸の除去によって「切り詰め」され得、そしてなお十分な毒素活性を保持し得ることが発見されている。所望される場合、この短縮されたＡ鎖は、本発明に従って結合体において使用され得ることが提案される。
【０２７１】
あるいは、毒素Ａ鎖部分への組換えＤＮＡ技術の適用は、本発明によるさらなる利益を提供することが理解され得る。生物学的に活性なリシンＡ鎖のクローニングおよび発現が達成されているという点で、現在では、より小さいまたは他の様式の改変体ペプチドであるが、にもかかわらず適切な毒素活性を示す改変体ペプチドを同定および調製することが可能である。さらに、現在では、リシンＡ鎖がクローニングされているという事実によって、部位特異的変異誘発の適用が可能であり、それを通じて、Ａ鎖由来ペプチドが容易に調製およびスクリーニングされ得、そして本発明と組み合わせての使用のためのさらなる有用な部分が得られる。
【０２７２】
（Ｅ２．サイトカイン）
サイトカインおよびケモカインは、本発明の構築物、レセプターボディ（ｒｅｃｅｐｔｏｒｂｏｄｙ）またはベータボディ（ｂｅｔａｂｏｄｙ）に連結するための因子の特定の例である。ある範囲のサイトカインが使用され得、これには、ＩＬ−３、ＩＬ−４、ＩＬ−５、ＩＬ−７、ＩＬ−８、ＩＬ−９、ＩＬ−１１、ＩＬ−１３、ＴＧＦ−β、Ｍ−ＣＳＦ、Ｇ−ＣＳＦ、ＴＮＦβ、ＬＡＦ、ＴＣＧＦ、ＢＣＧＦ、ＴＲＦ、ＢＡＦ、ＢＤＧ、ＭＰ、ＬＩＦ、ＯＳＭ、ＴＭＦ、ＩＦＮ−α、ＩＦＮ−βが挙げられる。より好ましいサイトカインとしては、ＩＬ−１α、ＩＬ−１β、ＩＬ−２、ＩＬ−６、ＩＬ−１０、ＧＭ−ＣＳＦ、ＩＦＮγ、単球化学誘引物質タンパク質−１（ＭＣＰ−１）、血小板由来増殖因子−ＢＢ（ＰＤＧＦ−ＢＢ）、およびＣ−反応性タンパク質（ＣＲＰ）などが挙げられる。特に好ましい例は、ＴＮＦα、ＴＮＦα誘導因子ＩＬ−２、ＩＬ−１２、ＩＦＮ−α、ＩＦＮ−β、ＩＦＮ−γおよびＬＥＣである。
【０２７３】
ＴＮＦαは、脈管浸透性を増加する。この因子は、本発明の構築物、レセプターボディ（ｒｅｃｅｐｔｏｒｂｏｄｙ）またはベータボディ（ｂｅｔａｂｏｄｙ）への結合を企図し、特に、得られる免疫結合体は、癌の処置のための併用療法において使用される。この構築物は、結合したＴＮＦαを腫瘍環境に送達し、そして腫瘍における向上した脈管浸透性により、第２の抗癌剤の腫瘍内への侵入を容易にし、従って、全体的な抗腫瘍効果を増幅する。
【０２７４】
例えば、ＩＬ−１２は、抗体に結合され得、そして腫瘍血管を攻撃するように、宿主の防御を変えるために使用され得る。ケモカインＬＥＣ（肝臓で発現されるケモカインであり、ＮＣＣ−４、ＨＣＣ−４、またはＬＭＣとしても公知）は、別の好ましい成分である（Ｇｉｏｖａｒｅｌｌｉら、２０００）。ＬＥＣは、樹状細胞、単球、Ｔ細胞、ＮＫ細胞および好中球に対した走化性であり、従って、宿主媒介抗腫瘍応答を改善し得る。
【０２７５】
（Ｅ３．凝固因子）
本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディは、コアグリガンドを形成するために、凝固を直接的または間接的に刺激し得る成分に連結され得る。米国特許第６，０９３，３９９号、同第６，００４，５５５号、同第５，８７７，２８９号、および同第６，０３６，９５５号が、コアグリガンドを形成するために、抗体と凝固剤の作動可能な会合をさらに記載する目的で、本明細書中において具体的に援用される。
【０２７６】
本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディは、凝血薬または凝固因子に直接的に連結され得るか、または凝血薬もしくは凝固因子を結合し、次いでそれらを放出する第２の結合領域に連結され得る。本明細書中で使用される用語「凝血薬」および「凝固因子」は各々、適切な条件下、好ましくは特定のインビボ環境（例えば、腫瘍血管構造）に提供される場合に、凝固を直接的または間接的に刺激し得る成分をいうために使用される。
【０２７７】
好ましい凝固因子は、組織因子組成物（例えば、短縮されたＴＦ（ｔＴＦ）、ダイマーＴＦ分子、マルチマーＴＦ分子および変異体ＴＦ分子）である。「短縮されたＴＦ（ｔｒｕｎｃａｔｅｄ  ＴＦ）」（ｔＴＦ）は、膜結合欠損に、この特性における変化をもたらすために十分なアミノ酸配列を除去することによってされているＴＦ構造をいう。この状況において「十分な量」とは、ＴＦ分子を膜中に進入させるか、またはＴＦタンパク質の機能的な膜結合を他の様式で媒介するに元々十分な、膜貫通アミノ酸配列の量である。従って、このような「十分な量の膜貫通配列」の除去は、リン脂質膜結合能を欠損した短縮された組織因子タンパク質またはポリペプチドを生じ、その結果、このタンパク質は、実質的に、リン脂質膜に有意に結合しない可溶性タンパク質である。従って、短縮されたＴＦは、実質的に、標準的なＴＦアッセイにおいて第ＶＩＩ因子を第ＶＩＩａ因子に変換し得ず、そしてなお第ＶＩＩａ因子の存在下で第Ｘ因子を活性化することを含む、いわゆる触媒活性を保持する。
【０２７８】
米国特許第５，５０４，０６７号、同第６，１５６，３２１号、同第６，１３２，７２９号および同第６，１３２，７３０号は、そのような短縮された組織因子タンパク質をさらに記載する目的のために、特に本明細書中において参考として援用される。好ましくは、本発明のこれらの局面における使用のための組織因子は、一般に、タンパク質の膜貫通領域および細胞質領域（アミノ酸２２０〜２６３）を欠く。しかし、短縮されたＴＦ分子が、２１９アミノ酸という正確な長さの分子に限定される必要はない。
【０２７９】
組織因子組成物はまた、ダイマーとして有用であり得る。任意の短縮された組織因子構築物、変異された組織因子構築物、または他の組織因子構築物は、本発明における使用のためにダイマー形態で調製され得る。当業者に公知のように、このようなＴＦダイマーは、分子生物学および組換え発現の標準的な技術を使用することによって調製され得る。ここで２つのコード領域は、インフレームに調製され、そして発現ベクターから発現される。同様に、種々の化学結合技術が、ＴＦダイマーの調製と組み合わせて使用され得る。個々のＴＦモノマーは、結合の前に誘導体化され得る。すべてのこのような技術は、当業者に容易に公知である。
【０２８０】
所望される場合、組織因子ダイマーまたはマルチマーは、生物学的に放出可能な（ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｌｙ−ｒｅｌｅａｓａｂｌｅ）結合（例えば、選択的に切断可能なリンカーまたはアミノ酸配列）を介して結合され得る。例えば、腫瘍環境内で優先的に配置されるか、または活性である酵素についての切断部位を含むペプチドリンカーが意図される。そのようなペプチドリンカーの例示的な形態は、ウロキナーゼ、プラスミン、トロンビン、第ＩＸａ因子、第Ｘａ因子またはメタロプロテイナーゼ（例えば、コラーゲナーゼ、ゲラチナーゼまたはストロメライシン）によって切断されるペプチドリンカーである。
【０２８１】
特定の実施形態において、組織因子ダイマーはさらに、後にリン脂質膜と組織因子の機能的会合を（特定の所定の条件下のみであるが）強化するために、妨げられた疎水性膜挿入部分を含み得る。短縮された組織因子の状況において記載される場合、疎水性膜会合配列は、一般に、それらの疎水性の性質に起因して、リン脂質環境との会合を促進するアミノ酸のストレッチである。同様に、脂肪酸は、潜在的な膜挿入部分を提供するために使用され得る。
【０２８２】
このような膜挿入配列は、それらの結合がＴＦ構築物の機能的特性を妨げない限り、ＴＦ分子のＮ末端もしくはＣ末端のいずれかに位置され得るか、または一般に膜の任意の他の点に付加され得る。妨げられた挿入部分の意義は、ＴＦ構築物が腫瘍環境に位置するまで、それは非機能性を保持し、そして疎水性付加が、接近可能になり、そしてなおさらに膜との物理的会合を促進するのを可能にすることである。再度、生物学的に放出可能な結合および選択的に切断可能な配列が、この点において特に有用であり、結合または配列のみが、腫瘍環境内の局在化および特定の酵素または他の生物活性分子への曝露の際に切断または他の様式で改変されることが意図される。
【０２８３】
他の実施形態において、ｔＴＦ構築物は、マルチマーまたはポリマーであり得る。この状況において、「ポリマー構築物」は、３以上の組織因子構築物を含む。「マルチマーＴＦ構築物またはポリマーＴＦ構築物」は、少なくとも第２のおよび第３のＴＦ分子または誘導体に作動可能に結合された第１のＴＦ分子または誘導体を含む構築物である。マルチマーは、約３〜約２０のこのようなＴＦ分子を含み得る。マルチマーまたはポリマー内の個々のＴＦ単位はまた、所望される場合、選択的に切断可能なペプチドリンカーまたは他の生物学的に放出可能な結合によって連結され得る。再度、上記に議論されたＴＦダイマーに関して、構築物は、組換え操作および発現を用いるか、または標準的な合成化学を用いるかのいずれかで容易に作製され得る。
【０２８４】
本発明の状況において有用ななおさらなるＴＦ構築物は、第ＶＩＩ因子を活性化する能力が欠損している変異体である。そのような「第ＶＩＩ因子活性化変異体」は、一般に、機能的な第ＶＩＩ／ＶＩＩａ因子を結合し、第Ｘ因子をタンパク質分解性に活性化するが、第ＶＩＩ因子をタンパク質分解性に活性化する能力が実質的に存在しないＴＦ変異体として本明細書中において定義されている。従って、そのような構築物は、第ＶＩＩ因子活性化活性を欠くＴＦ変異体である。
【０２８５】
そのような第ＶＩＩ因子活性化変異体が、腫瘍特異的凝固を促進する際に機能する能力は、腫瘍血管構造へのそれらの特異的送達、および血漿中における低いレベルでの第ＶＩＩａ因子の存在に基づく。そのような第ＶＩＩ因子活性化変異体標的化剤結合体の投与の際に、変異体は、血管新生化腫瘍の血管構造内に局在化される。局在化の前に、ＴＦ変異体は、一般に、第ＶＩＩ因子を第ＶＩＩａ因子に変換し得ないことに基づいて、任意の他の身体部位における凝固を促進し得ない。しかし、次いで、腫瘍領域内の局在化および蓄積の際に、変異体は、外因性の凝固経路を開始するために血漿から十分な第ＶＩＩａ因子と出会い、腫瘍特異的血栓症を導く。外因性の第ＶＩＩａ因子もまた患者に投与され得る。
【０２８６】
種々の第ＶＩＩ因子活性化変異体のうちの任意の１つ以上が調製され、本発明と組み合わせて使用され得る。第ＶＩＩ／ＶＩＩａ因子についてのＴＦ分子上の認識部位に関して、有意な量の科学知識が存在する。従って、第ＶＩＩ活性化領域が、一般にＴＦ分子のおよそアミノ酸１５７〜およそアミノ酸１６７の間に位置することが理解される。しかし、この領域の外側の残基もまた、第ＶＩＩ活性化活性に関連することが判明し得、従ってＴＦ配列のおよそアミノ酸１０６〜およそアミノ酸２０９に一般に位置する残基の任意の１つ以上に変異を導入することが考慮され得る（ＷＯ９４／０７５１５；ＷＯ９４／２８０１７；各々、本明細書中において参考として援用される）。
【０２８７】
米国特許第６，０９３，３９９号、同第６，００４，５５５号、同第５，８７７，２８９号および同第６，０３６，９５５号に詳細に記載されるように、種々の他の凝固因子は、以下に示される薬剤によって詳述されるように、本発明と組み合わせて使用され得る。トロンビン、第Ｖ／Ｖａ因子および誘導体、第ＶＩＩＩ／ＶＩＩＩａ因子および誘導体、第ＩＸ／ＩＸａ因子および誘導体、第Ｘ／Ｘａ因子および誘導体、第ＸＩ／ＸＩａ因子および誘導体、第ＸＩＩ／ＸＩＩａ因子および誘導体、第ＸＩＩＩ／ＸＩＩＩａ因子および誘導体、第Ｘ因子アクチベーターおよび第Ｖ因子アクチベーターが、本発明において使用され得る。
【０２８８】
ラッセルクサリヘビ蛇毒第Ｘ因子アクチベーターは、本発明における使用について意図される。ラッセルクサリヘビ蛇毒中に存在する第Ｘ因子アクチベーターについて特異的なモノクローナル抗体もまた産生されており、そして二重特異性結合リガンドの部分として因子を特異的に送達するために使用され得る。
【０２８９】
トロンボキサンＡ２は、血小板ミクロソーム中の酵素シクロオキシゲナーゼおよび酵素トロンボキサンシンテターゼの連続的作用によって、エンドペルオキシドから形成される。トロンボキサンＡ２は血小板によって容易に産生され、そして血小板凝集を生成するその能力が理由で強力な血管収縮薬である。トロンボキサンＡ２およびその活性なアナログは、本発明の用途のために意図される。
【０２９０】
トロンボキサンシンターゼ、および血小板活性化プロスタグランジンを合成する他の酵素もまた、本発明の状況において「凝固薬」として使用され得る。トロンボキサンシンターゼに対するモノクローナル抗体、およびトロンボキサンシンターゼのイムノアフィニティ精製は公知であり；ヒトトロンボキサンシンターゼについてのｃＤＮＡも同様である。
【０２９１】
α２−抗プラスミン、すなわち、α２−プラスミンインヒビターは、プラスミノゲンアクチベーターによって誘導されるフィブリン血餅の溶解を効率的に阻害するように機能する、ヒト血漿において天然に存在するプロテイナーゼインヒビターである。α２−抗プラスミンは、特に強力なインヒビターであり、そして本発明の用途のために意図される。
【０２９２】
α２−抗プラスミンについてのｃＤＮＡ配列が利用可能である場合、組換え発現および／または融合タンパク質が好ましい。α２−抗プラスミンに対するモノクローナル抗体もまた利用可能であり、これは本発明の二重特異性結合リガンドの実施形態において使用され得る。これらの抗体は、標的部位に外因性α２−抗プラスミンを送達するために使用されるか、または内因性α２−抗プラスミンを収集し、そして標的領域内でそれを濃縮するために使用され得る。
【０２９３】
（Ｅ４．抗チューブリン薬）
一連の薬物は、チューブリン活性との干渉を介してその効果を行使する。チューブリンの機能は、有糸分裂および細胞の生存能力に不可欠であるので、特定の「抗チューブリン薬」は、強力な化学療法剤である。「抗チューブリン薬」は、本明細書で使用される場合、好ましくは、細胞有糸分裂に必要なチューブリン活性（好ましくは、チューブリン重合もしくは脱重合）を直接的もしくは間接的に阻害することによって細胞有糸分裂を阻害する任意の因子、薬物、プロドラッグまたはそれらの組み合わせを意味する。
【０２９４】
いくつかの周知であってかつ本発明とともに使用するための現在好ましい抗チューブリン薬は、コルヒチン；タキサン（例えば、タキソール）；ビンカアルカロイド類（例えば、ビンブラスチン、ビンクリスチンおよびビンデスチン）；およびコンブレタスタチン（ｃｏｍｂｒｅｔａｓｔａｔｉｎ）である。他の適切な抗チューブリン薬は、サイトカラシン類（Ｂ、Ｊ、Ｅを含む）、ドラスタチン（ｄｏｌａｓｔａｔｉｎ）、オーリスタチン（ａｕｒｉｓｔａｔｉｎ）ＰＥ、パクリタキセル、ウスチロキシン（ｕｓｔｉｌｏｘｉｎ）Ｄ、リゾキシン（ｒｈｉｚｏｘｉｎ）、１０６９Ｃ８５、コルセミド（ｃｏｌｃｅｍｉｄ）、アルベンダゾール、アザトキシン（ａｚａｔｏｘｉｎ）およびノコダゾールである。
【０２９５】
米国特許第５，８９２，０６９号、同第５，５０４，０７４号、および同第５，６６１，１４３号（各々本明細書中に詳細に参考として援用される）に記載されるように、コンブレタスタチン類は、一般に細胞有糸分裂を阻害するエストラジオール誘導体である。本発明と組合せて使用され得る例示的なコンブレタスタチンとしては、コンブレタスタチンＡ、Ｂおよび／またはＤを基本とするコンブレタスタチンならびに米国特許第５，８９２，０６９号、同第５，５０４，０７４号、および同第５，６６１，１４３号に記載されるコンブレタスタチンが挙げられる。コンブレタスタチンＡ−１、Ａ−２、Ａ−３、Ａ−４、Ａ−５、Ａ−６、Ｂ−１、Ｂ−２、Ｂ−３およびＢ−４は、上記の型の例である。
【０２９６】
米国特許第５，５６９，７８６号および同第５，４０９，９５３号は、コンブレタスタチンＡ−１、Ａ２、Ａ−３、Ｂ−１、Ｂ−２、Ｂ−３およびＢ−４の各々の単離、構造的特徴付けおよび合成、ならびにこのようなコンブレタスタチンを使用して新生物性増殖を処置するための処方物および方法を記載する目的のために、本明細書中に参考として援用される。任意の１つ以上のこのようなコンブレタスタチンは、本発明と組合せて使用され得る。
【０２９７】
米国特許第５，８９２，０６９号、同第５，５０４，０７４号、同第５，６６１，１４３号および同第４，９９６，２３７号（各々詳細に本明細書中で参考として援用される）に記載されるように、コンブレタスタチンＡ−４はまた、本発明と共に使用され得る。米国特許第５，５６１，１１２号は、適切なコンブレタスタチンＡ−４プロドラッグ（これらは、本発明とともに組合せて使用することが意図される）を適切に記載するために、本明細書中に参考として援用される。
【０２９８】
米国特許第４，９４０，７２６号（本明細書中に参考として詳細に援用される）は、コンブレタスタチンＤ−１および「コンブレタスタチンＤ−２」と称される大環状ラクトンを詳細に記載し、これらは、本発明の組成物および方法と組み合わせて使用され得る。米国特許第５，４３０，０６２号（本明細書中に参考として詳細に援用される）は、抗癌活性を有するスチルベン誘導体およびコンブレタスタチンアナログに関し、これらは本発明と組合せて使用され得る。
【０２９９】
（Ｅ５．抗脈管形成剤）
抗脈管形成剤は、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディへの結合に有用である。多くの抗癌剤が、それらの作用の機構の一部として、抗脈管形成効果を有する。併用療法で使用するために記載されるこのような任意の１つ以上の薬剤（表Ｅに含まれる）がまた、本明細書中に記載されるように、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディに結合体化され得る。特定の他の薬剤が、作用の一次的な機構として、抗脈管形成効果を有することが発見されるか、設計されるか、または選択された。このような薬剤の例は、以下に記載され、これらのうちの任意がまた、免疫結合体を調製するために使用され得るか、または本発明の併用療法において別々に使用され得る。
【０３００】
種々の疾患状態で顕著であるように、新脈管形成の処置に有用である多数のチロシンキナーゼインヒビターが、現在公知である。これらとしては、例えば、米国特許第５，６３９，７５７号（具体的に、参考として本明細書中で援用される）の４−アミノピロール［２，３−ｄ］ピリミジンが挙げられる。これはまた、本発明と組み合わせて使用され得る。ＶＥＧＤＲ２レセプターを介するチロシンキナーゼシグナル伝達を媒介し得る有機分子のさらなる例は、キナゾリン化合物および米国特許第５，７９２，７７１号（具体的に、脈管形成疾患の処置における本発明と共に使用するためのさらなる組み合わせを記載する目的で、参考として本明細書中で援用される）の組成物である。
【０３０１】
他の化学クラスの化合物はまた、新脈管形成を阻害することが示されており、そして本発明と組み合わせて使用され得る。例えば、米国特許第５，９７２，９２２号（具体的に、参考として本明細書中で援用される）に記載されるステロイド（例えば、新脈管形成の４，９（１１）−ステロイドおよびＣ２１−酸化ステロイド）じは、併用治療において使用され得る。米国特許第５，７１２，２９１号および同第５，５９３，９９０号（各々、参考として本明細書中で援用される）は、サリドマイドならびに関連する化合物、前駆体、アナログ、代謝物および加水分解産物を記載する。これらもまた、新脈管形成を阻害するために本発明と組み合わせて使用され得る。米国特許第５，７１２，２９１号および同第５，５９３，９９０号における化合物は、経口的に投与され得る。組合せ治療に関して有用である、さらなる例示的な抗新脈管形成剤は、表Ｂに列挙される。ここで列挙される各薬剤は、例示であって、限定することを意味しない。
【０３０２】
【表１６−１】
2008528521.tif 000002
【０３０３】
【表１６−２】
2008528521.tif 000003
新脈管形成を阻害するのに使用するための特定の好ましい成分は、アンギオスタチン、エンドスタチン、バスキュロスタチン、カンスタチンおよびマスピンである。「アンギオスタチン」と呼ばれるタンパク質は、米国特許第５，７７６，７０４号；同第５，６３９，７２５号および同第５，７３３，８７６号において開示されている。これらの各々は、本明細書中に参考として援用される。アンギオスタチンは、還元ポリアクリルアミドゲル電気泳動によって決定されるように、約３８ｋＤａ〜約４５ｋＤａの分子量を有するタンパク質であり、これは、プラスミノゲン分子のほぼクリングル領域１〜４を含む。アンギオスタチンは、一般に、インタクトなマウスプラスミノゲン分子のアミノ酸番号９８から開始するマウスプラスミノゲンのフラグメントと実質的に類似のアミノ酸配列を有する。
【０３０４】
アンギオスタチンのアミノ酸配列は、種の間でわずかに変化する。例えば、ヒトアンギオスタチンにおいて、このアミノ酸配列は、上記のマウスプラスミノゲンフラグメントの配列と実質的に類似であるが、活性なヒトアンギオスタチン配列は、インタクトなヒトプラスミノゲンアミノ酸配列のアミノ酸番号９７または９９のいずれかで開始し得る。さらに、ヒトプラスミノゲンは、類似の抗脈管形成活性を有するので、マウス腫瘍モデルにおいて示されるように使用され得る。
【０３０５】
特定の抗脈管形成治療剤は、腫瘍後退を引き起こすことが既に示されており、アンギオスタチンがこのような薬剤の１つである。エンドスタチン（ｅｎｄｏｓｔａｔｉｎ）、コラーゲンＸＶＩＩＩの２０ｋＤａのＣＯＯＨ末端フラグメント、細菌性多糖類ＣＭ１０１、および抗体ＬＭ６０９もまた、血管静止（ａｎｇｉｏｓｔａｔｉｃ）活性を有する。しかし、それらの他の特性を考慮して、これらは、脈管形成を阻害するだけではなく、大部分規定されていない機構によって腫瘍脈管の破壊を開始するので、抗脈管治療剤または腫瘍脈管毒素と呼ばれる。
【０３０６】
アンギオスタチンおよびエンドスタチンは、マウスにおいて、腫瘍増殖を阻害するだけでなく腫瘍後退もまたもたらす能力が実証された最初の新脈管形成インヒビターであるので、これらは熱心な研究の焦点となる。エラスターゼ、マクロファージメタロエラスターゼ（ＭＭＥ）、マトリリシン（ｍａｔｒｉｌｙｓｉｎ）（ＭＭＰ−７）、および９２ｋＤａゼラチナーゼＢ／ＩＶ型コラゲナーゼ（ＭＭＰ−９）を含む、プラスミノゲンからアンギオスタチンを生成することが示される複数のプロテアーゼが存在する。
【０３０７】
ＭＭＥは、腫瘍においてプラスミノゲンからアンギオスタチンを生成し得、そして顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭＣＳＦ）は、アンギオスタチンの生成を誘導するマクロファージによってＭＭＥの発現をアップレギュレートする。アンギオスタチン生成におけるＭＭＥの役割は、ＭＭＥが患者由来の肝細胞癌の臨床サンプルにおいて実際に発現されるという知見によって支持される。アンギオスタチンを生成し得ると考えられる別のプロテアーゼは、ストロメライシン−１（ＭＭＰ−３）である。ＭＭＰ−３は、インビトロにおいてプラスミノゲンからアンギオスタチン様フラグメントを生成することが示されている。アンギオスタチンについての作用機構は現在のところ明らかではなく、これが、プログラム化された細胞死または有糸分裂の阻止を受けるように内皮細胞を誘導する内皮細胞上の同定されていない細胞表面レセプターに結合すると推定されている。
【０３０８】
エンドスタチンは、その生物学はあまり明白ではないものの、さらにより強力な抗新脈管形成および抗腫瘍剤であるようである。エンドスタチンは、マウスにおける多くの腫瘍モデルにおいて後退を生じることにおいて有効である。腫瘍は、エンドスタチンに対する耐性を発生させず、そして複数のサイクルの処置後に、腫瘍は、休眠状態に進入し、この間、これらは容量において増加しない。この休眠状態において、アポトーシスを受ける腫瘍細胞の割合は増加し、そして本質的に同じサイズをとどめる集団を生じた。エンドスタチンは、その効果を媒介する未同定の内皮細胞表面レセプターに結合すると考えられる。
【０３０９】
ＦｏｌｋｍａｎおよびＯ’Ｒｅｉｌｅｙらへの米国特許第５，８５４，２０５号（本明細書中で参考として詳細に援用される）は、内皮細胞増殖および脈管形成のインヒビターとしてのエンドスタチンおよびその使用に関する。エンドスタチンタンパク質は、コラーゲンＸＶＩＩＩ型のＣ末端フラグメントに対応し、そしてこのタンパク質は、種々の供給源から単離され得る。米国特許第５，８５４，２０５号はまた、エンドスタチンが、コラーゲンＸＶＩＩＩ型、コラーゲンＸＶ型、またはＢＯＶＭＰＥ１プロガストリン（ｐｒｅｇａｓｔｒｉｃ）エステラーゼのフラグメントのアミノ酸配列を有し得るということを教示する。エンドスタチンの他の抗脈管形成タンパク質、特にアンギオスタチンとの組み合わせはまた、米国特許第５，８５４，２０５号に記載され、その結果、組合された組成物は、脈管形成依存性腫瘍塊を効果的に後退させ得る。
【０３１０】
ＣＭ１０１は、細菌性ポリサッカリドであり、これは、腫瘍において新血管炎症を誘導する能力において十分に特徴付けられている。ＣＭ１０１は、補体系の活性化を刺激する脱分化した内皮上で発現されるレセプターに結合し、そして架橋する。それはまた、腫瘍を選択的に標的するサイトカイン駆動化炎症応答を開始する。これは、発現ＶＥＧＦおよびそのレセプターをダウンレギュレートする固有の抗病理新脈管形成剤である。ＣＭ１０１は、現在、抗癌剤として臨床試験中であり、そしてこれと組み合わせて使用され得る。
【０３１１】
トロンボスポンジン（ｔｈｒｏｍｂｏｓｐｏｎｄｉｎ）（ＴＳＰ−１）および血小板因子４（ＰＦ４）もまた、本発明において使用され得る。これらはともに、へパリンと会合する新脈管形成インヒビターであり、そしてまた血小板α−顆粒において見出される。ＴＳＰ−１は、細胞外マトリクスの構成成分である、大きな４５０ｋＤａのマルチドメイン糖タンパク質である。ＴＳＰ−１は、ＨＳＰＧ、フィブロネクチン、ラミニン、および種々の型のコラーゲンを含む、細胞外マトリクスにおいて見出される多くのプロテオグリカン分子に結合する。ＴＳＰ−１は、インビトロにおいて内皮細胞遊走および増殖、ならびにインビボにおいて新脈管形成を阻害する。ＴＳＰ−１はまた、形質転換された内皮細胞の悪性表現型および腫瘍形成を抑制し得る。腫瘍抑制遺伝子ｐ５３は、ＴＳＰ−１の発現を直接的に調節することが示されており、その結果、ｐ５３活性の損失は、ＴＳＰ−１生成における劇的な減少、および腫瘍が開始する新脈管形成を付随する増大を生じる。
【０３１２】
ＰＦ４は、ケモカインのＣＸＣ  ＥＬＲファミリーのメンバーである７０ａａタンパク質あり、これは、インビトロにおける内皮細胞の増殖およびインビボにおける新脈管形成を強力に阻害し得る。腫瘍内に投与された、またはアデノウイルスベクターによって送達されたＰＦ４は、腫瘍増殖の阻害を生じ得る。
【０３１３】
インターフェロンおよびメタロプロテイナーゼインヒビターは、本発明に従って送達され得る、２つの他のクラスの天然に存在する脈管形成インヒビターである。インターフェロンの抗内皮活性は、１９８０年代初期から公知であるが、阻害の機構は、未だ明確でない。これらが内皮細胞の移動を阻害し得ること、およびこれらが、腫瘍細胞による新脈管形成プロモーターの産生を阻害する能力によっておそれく媒介される、インビボでのいくつかの抗新脈管形成活性を有することは公知である。血管腫瘍は具体的に、インターフェロンに感受性であり、例えば、増殖中の血管腫はＩＦＮαで首尾よく処置され得る。
【０３１４】
メタロプロテイナーゼの組織インヒビター（ＴＩＭＰ）は、天然に存在するマトリックスメタロプロテアーゼ（ＭＭＰ）のインヒビターのファミリーであり、これもまた、新脈管形成を阻害し得、そして本発明の処置プロトコルにおいて使用され得る。ＭＭＰは、新脈管形成プロセスにおいて重要な役割を果たす。なぜなら、これらは、血管網を拡大または再構築する場合、内皮細胞および線維芽細胞が移動するマトリックスを分解するからである。実際、ＭＭＰの１つのメンバーであるＭＭＰ−２は、おそらくこの目的のためにインテグリンαｖβ３を介して活性化された内皮と会合することが示されている。この相互作用がＭＭＰ−２のフラグメントによって崩壊されられる場合、次いで新脈管形成はダウンレギュレートされ、そして腫瘍増殖において阻害される。
【０３１５】
新脈管形成を阻害する多くの薬理学的物質が存在し、これらの任意の１以上が本発明の一部として使用され得る。これらの物質としては、ＡＧＭ−１４７０／ＴＮＰ−４７０、サリドマイド、およびカルボキシアミドトリアゾール（ＣＡＩ）が挙げられる。フマギリンは、１９９０年に新脈管形成の強力なインヒビターであることが見出されており、そしてそれ以来、フマギリンの合成アナログである、ＡＧＭ−１４７０およびＴＮＰ−４７０が開発されてきた。これら両方の薬物は、インビトロでの内皮細胞増殖およびインビボでの新脈管形成を阻害する。ＴＮＰ−４７０は、ヒトの臨床試験で広範に研究され、そのデータは長期の投与が最適であることを示唆する。
【０３１６】
サリドマイドは、元来鎮静薬として使用されていたが、強力な催奇形物質であることが見出され、そして中止された。１９９４年に、サリドマイドは新脈管形成インヒビターであることが見出された。サリドマイドは現在、抗癌剤および血管性の眼疾患の処置として臨床試験されている。
【０３１７】
ＣＡＩは新脈管形成の低分子量の合成インヒビターであり、これは、アクチンの再組織化、内皮細胞の移動およびコラーゲンＩＶ上での延展を妨げる、カルシウムチャネルブロッカーとして作用する。ＣＡＩは生理学的に達成可能な濃度で新生血管形成を阻害し、そして癌患者によって経口的に十分許容される。ＣＡＩを用いた臨床試験によって、処置前に進行性の疾患を有する癌患者の４９％において疾患の安定化を生じた。
【０３１８】
ヘパリンまたはヘパリンフラグメントの存在下のコルチゾンは、内皮細胞増殖をブロックすることによってマウスにおいて腫瘍増殖を阻害することが示された。ステロイドおよびヘパリンの相加的な阻害効果に関与する機構は明らかでないが、ヘパリンが内皮細胞によるステロイドの取り込みを増加させ得ると考えられる。この混合物は、新しく形成された毛細血管の下の基底膜の溶解を増加させることが示されており、そしてこれはまた、相加的な血管抑制（ａｎｇｉｏｓｔａｔｉｃ）効果についての可能性のある説明である。ヘパリン−コルチゾール結合体はまた、インビボでの強力な血管抑制効果活性および抗腫瘍効果活性を有する。
【０３１９】
さらに特定の新脈管形成インヒビターが、本発明の腫瘍標的化方法を使用して腫瘍に送達され得る。これには、抗侵襲性因子（Ａｎｔｉ−Ｉｎｖａｓｉｖｅ  Ｆａｃｔｏｒ）、レチノイン酸およびパクリタキセル（米国特許第５，７１６，９８１号；参考として本明細書中に援用される）；ＡＧＭ−１４７０（Ｉｎｇｂｅｒら、１９９０；参考として本明細書中に援用される）；サメ軟骨抽出物（米国特許第５，６１８，９２５号；参考として本明細書中に援用される）；陰イオン性ポリアミドオリゴマーまたは陰イオン性ポリ尿素オリゴマー（米国特許第５，５９３，６６４号；参考として本明細書中に援用される）；オキシンドール（ｏｘｉｎｄｏｌｅ）誘導体（米国特許第５，５７６，３３０号；参考として本明細書中に援用される））；エストラジオール誘導体（米国特許第５，５０４，０７４号；参考として本明細書中に援用される）；およびチアゾールピリミジン誘導体（米国特許第５，５９９，８１３号；参考として本明細書中に援用される）が挙げられるが、これらに限定されない。これらはまた、本発明の併用使用のための、抗新脈管形成組成物としての使用が意図される。
【０３２０】
αｖβ３インテグリンのアンタゴニストを含む組成物はまた、本発明と組合せて新脈管形成を阻害するために使用され得る。米国特許第５，７６６，５９１号（参考として本明細書中に援用される）に開示されるように、ＲＧＤ含有ポリペプチドおよびその塩（環状ポリペプチドを含む）は、αｖβ３インテグリンアンタゴニストの適切な例である。
【０３２１】
アンギオポイエチン（ａｎｇｉｏｐｏｉｅｔｉｎ）がＴｉｅ２に対するリガントであるので、Ｔｉｅ２レセプターを介するシグナル伝達を変えることに基づく治療的介入の他の方法がまた、本明細書と組み合わせて使用され得る。例えば、Ｔｉｅ２を活性化をブロックし得る可溶性Ｔｉｅ２レセプター（Ｌｉｎら、１９９８ａ）が使用され得る。組換えアデノウイルス遺伝子治療を使用するこのような構築物の送達は、癌の処置および転移の減少において有効であることが示されている（Ｌｉｎら、１９９８ａ）。
【０３２２】
アンギオポエチンは、ＶＥＧＦファミリーのメンバーと同様に、血管内皮に特異的な増殖因子である（ＤａｖｉｓおよびＹａｎｃｏｐｏｕｌｏｓ、１９９９：Ｈｏｌａｓｈら、１９９９；本明細書中で参考として援用される）。最初に記載されたアンギオポエチンは、天然に存在するレセプター賦活体またはアゴニストであるアンギオポエチン−１（Ａｎｇ−１；配列番号１および配列番号２）、および天然に存在するレセプターアンタゴニストであるアンギオポエチン−２（Ａｎｇ−２；配列番号３および配列番号４）であった。この両方は、内皮細胞チロシンキナーゼレセプターＴｉｅ２によって作用する。
【０３２３】
２つの新しいアンギオポエチンである、アンギオポエチン−３（マウス）およびアンギオポエチン−４（ヒト）もまた同定された（Ｖａｌｅｎｚｕｅｌａら、１９９９）。アンギオポエチン−３は、（Ａｎｇ−２のような）アンタゴニストとして作用するようであるが、アンギオポエチン−４は、（Ａｎｇ−１のような）アゴニストとして機能するようである（Ｖａｌｅｎｚｕｅｌａら、１９９９）。アンギオポエチン−３と呼ばれるタンパク質はまた、ヒト心臓からクローニングされ、そして内皮細胞に対してマイトジェン効果を有さないと報告された（Ｋｉｍら、１９９９）。
【０３２４】
ＶＥＧＦは、血管発達の早期の段階のために必要であるが、アンギオポエチン−１は、一般に、血管新生のより後期の段階に必要とされる。従って、ＶＥＧＦは、内皮細胞分化、増殖および初期の血管形成を促進するように作用する。アンギオポエチン−１は、Ｔｉｅ２レセプターを介して、成熟管の維持および安定化を促進するように作用する。従って、アンギオポエチン−１は、成熟因子または安定化因子であり、これは、内皮細胞と周囲の支持細胞との間の相互作用を促進することにより未成熟の血管を成熟した血管に変換する（Ｈｏｌａｓｈら、１９９９）。
【０３２５】
（Ｅ６．アポトーシス誘発剤）
本発明はまた、任意の細胞（腫瘍細胞および腫瘍脈管内皮細胞およびウイルスに感染した細胞を含む）においてアポトーシスを誘発する因子を送達するために使用され得る。多くの抗癌剤は、その作用機構の一部として、アポトーシス誘発効果を有する。併用療法において使用するために記載された任意の１つ以上のこのような薬剤（表Ｆに含まれる）はまた、本明細書中に記載されるように、本発明の抗体に結合体化され得る。特定の他の薬剤が、一次的な機構として、アポトーシス効果を有することが発見されるか、設計されるか、または選択された。このような因子の例は、以下に記載され、これらのうちの任意がまた、免疫結合体を調製するために使用され得るか、または本発明の併用療法において別々に使用され得る。
【０３２６】
多くの形態の癌において、腫瘍抑制遺伝子（例えば、ｐ５３）における変異が報告されている。ｐ５３の不活性化は、アポトーシスの促進の不全を生じる。この不全によって、癌細胞は、細胞死へと運命付けられるよりむしろ、腫瘍形成を進行させる。従って、腫瘍抑制因子の送達もまた、細胞死を刺激するために本発明での使用が意図される。例示的な腫瘍抑制因子としては、ｐ５３、網膜芽細胞腫遺伝子（Ｒｂ）、ウィルムス腫瘍（ＷＴ１）、ｂａｘα、インターロイキン−１ｂ−変換酵素およびファミリー、ＭＥＮ−１遺伝子、神経芽細胞腫Ｉ型（ＮＦ１）、ｃｄｋインヒビターｐ１６、結腸直腸癌遺伝子（ＤＣＣ）、家族性腺腫症ポリポーシス遺伝子（ＦＡＰ）、多発性腫瘍抑制遺伝子（ＭＴＳ−１）、ＢＲＣＡ１ならびにＢＲＣＡ２が挙げられるがこれらに限定されない。
【０３２７】
使用のために好ましいのは、ｐ５３（米国特許第５，７４７，４６９号；同第５，６７７，１７８号；および同第５，７５６，４５５号；各々は、参考として本明細書中に援用される）、網膜芽細胞腫、ＢＲＣＡ１（米国特許第５，７５０，４００号；同第５，６５４，１５５号；および同第５，７１０，００１号；同第５，７５６，２９４号；同第５，７０９，９９９号；同第５，６９３，４７３号；同第５，７５３，４４１号；同第５，６２２，８２９号；および同第５，７４７，２８２号；各々は、参考として本明細書中に援用される）、ＭＥＮ−１（ＧｅｎＢａｎｋ登録番号Ｕ９３２３６号）およびアデノウイルスＥ１Ａ（米国特許第５，７７６，７４３号；参考として本明細書中に援用される）の遺伝子である。
【０３２８】
アポトーシスまたはプログラムされた細胞死を阻害する他の発癌遺伝子としては、ｂｃｒ−ａｂｌ、ｂｃｌ−２（ｂｃｌ−１とは異なる、サイクリンＤ１；ＧｅｎＢａｎｋ登録番号Ｍ１４７４５、Ｘ０６４８７；米国特許第５，６５０，４９１号；および同第５，５３９，０９４号；各々が本明細書中において参考として援用される）；およびファミリーメンバー（Ｂｃｌ−ｘｌ、Ｍｃｌ−１、Ｂａｋ、Ａ１、Ａ２０を含む）が挙げられる。ｂｃｌ−２の過剰発現は、最初に、Ｔ細胞リンパ腫において発見された。ｂｃｌ−２は、Ｂａｘ、アポトーシス経路におけるタンパク質に結合し、不活化することによって発癌遺伝子として機能する。ｂｃｌ−２機能の阻害は、Ｂａｘの不活化を妨げ、アポトーシス経路が進行し得る。このように、このクラスの発癌遺伝子の阻害（例えば、アンチセンスヌクレオチドを使用する）は、アポトーシスの増強が所望される局面において本発明における使用に企図される（米国特許第５，６５０，４９１号；同第５，５３９，０９４号；および同第５，５８３，０３４号；各々が、本明細書中において参考として援用される）。
【０３２９】
本発明の抗体により送達され得る他の組成物としては、腫瘍壊死因子関連アポトーシス誘導リガンド（ＴＲＡＩＬと称される）をコードする遺伝子、およびＴＲＡＩＬポリペプチド（米国特許第５，７６３，２２３号；参考として本明細書中に援用される）；米国特許第５，６０５，８２６号（参考として本明細書中に援用される）２４ｋＤアポトーシス関連プロテアーゼ；Ｆａｓ関連因子１、ＦＡＦ１（米国特許第５，７５０，６５３号；参考として本明細書中に援用される）が挙げられる。インターロイキン−１β−変換酵素およびファミリーのメンバー（これらもまた、アポトーシスを刺激することが報告されている）の提供もまた、本発明のこれらの局面における使用のために意図される。
【０３３０】
以下のような化合物もまた使用され得る；カルボスチリル（ｃａｒｂｏｓｔｙｒｉｌ）誘導体（米国特許第５，６７２，６０３号；および同第５，４６４，８３３号；各々は、参考として本明細書中に援用される）；分枝状アポトーシス原性（ａｐｏｇｅｎｉｃ）ペプチド（米国特許第５，５９１，７１７号；参考として本明細書中に援用される）；ホスホチロシンインヒビターおよび非加水分解性ホスホチロシンアナログ（米国特許第５，５６５，４９１号；および同第５，６９３，６２７号；各々は、参考として本明細書中に援用される）；ＲＸＲレチノイドレセプターのアゴニスト（米国特許第５，３９９，５８６号；参考として本明細書中に援用される）；さらには、抗酸化剤（米国特許第５，５７１，５２３号；参考として本明細書中に援用される）。チロシンキナーゼインヒビター（例えば、ゲニステイン）もまた、本発明の抗体に連結され得る（参考として本明細書中に援用される米国特許第５，５８７，４５９号により支持されるように）。
【０３３１】
（Ｅ７．抗ウイルス薬剤）
ＰＳおよび他のアニオン性リン脂質がウイスルに感染した細胞に曝露される場合、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディもまた、任意の１以上の抗ウイルス薬剤に連結され得る。構築物、レセプターボディまたはベータボディに連結するための例示的な抗ウイルス薬剤としては、表Ｇのものが挙げられる。そのような抗ウイルス薬剤もまた、本発明の抗ウイルス併用療法において別々に使用され得る。
【０３３２】
いわゆる古典的な抗ウイルス薬剤に加えて、他のＤＮＡ／ＲＮＡインヒビターもまた、抗ウイルス治療を形成するために付与される。例示的な抗ウイルス薬剤は、表Ｇに列挙されており、そのうちの任意の１以上が本発明の抗ウイルス結合体を調製するために付与され得るか、または本発明の抗ウイルス併用療法で別々に使用され得る。
【０３３３】
【表１７】
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抗ウイルス薬剤および薬物のうちで、ＡＺＴおよびシドフォビルが現在好ましい。選択される抗ウイルス薬物に関係なく、抗ウイルス結合体は肺のマクロファージ、ウイルスに感染した細胞に結合し、またウイルス粒子にも結合し得る。使用されるリンカーおよび結合体化技術に依存して、抗ウイルス薬物は、標的細胞の表面で放出され得、次いで細胞に取り込まれ得る。好ましくは、結合体それ自体は、細胞（例えば、マクロファージまたはウイルスに感染した細胞）中に取り込まれる。取り込みは、自然にまたはウイルスが介在するかのいずれかで生じ得る。一旦細胞の中に入ると、抗体結合体と同様に、リンカーの加水分解により活性な抗ウイルス薬剤が放出される。
【０３３４】
生物学的に不安定な結合を含む他の連結（例えば、ジスルフィド、酸に不安定なもの、酵素的に切断可能なもの、または加水分解可能なもの）が使用され得る。したがって、治療剤に連結するのに使用するために記載される任意の生物学的に放出可能かまたは選択的加水分解可能な結合が、本発明の抗ウイルス剤と組み合わせて使用され得る。
【０３３５】
（Ｆ．生物学的機能性等価物）
抗体およびエフェクターの等価物またはさらなる改良物が、今や、一般には上記に提供される物質を出発点として使用して作製され得る。改変および変化が、このような抗体の構造中になされ得、そしてさらに類似または他の様式の所望の特徴を有する分子を入手し得る。例えば、特定のアミノ酸が、相互作用性結合能（例えば、アミノリン脂質、ＰＳおよびＰＥへの結合）のかなり大きな損失なしに、タンパク質構造において他のアミノ酸の代わりに置換され得る。これらの考察もまた、毒素、抗脈管形成剤、アポトーシス誘発剤および凝血薬などにあてはまる。
【０３３６】
タンパク質の生物学的機能活性を規定するのは、タンパク質の相互作用能力および性質であるので、特定のアミノ酸配列置換がタンパク質配列（または、当然のことながら基礎のＤＮＡ配列）中でなされ得、にもかかわらず類似（アゴニスト）の特性を有するタンパク質を入手し得る。従って、種々の変化が、それらの生物学的有用性または活性のかなり大きな損失なく、抗体または治療剤の配列（または、基礎のＤＮＡ配列）になされ得ることが意図される。基礎のＤＮＡ配列を変異することから作製される生物学的機能性等価物は、本明細書中の表Ａにおいて提供されるコドン情報、および部位特異的変異誘発に関する支持する技術的詳細を用いてなされ得る。
【０３３７】
【表１８】
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分子の所定の部分内になされ得、なお受容可能なレベルの等価な生物学的活性を有する分子を生じ得る変化の数に対して限界が存在するという概念が、「生物学的機能性等価物」タンパク質またはペプチドの定義に固有であることもまた、当業者に十分に理解される。従って、生物学的機能性等価物タンパク質およびペプチドは、本明細書中において、ほとんどまたはすべてではないが特定のアミノ酸が置換され得るタンパク質およびペプチドとして規定される。当然のことながら、異なる置換を有する複数の異なるタンパク質／ペプチドは、本発明に従って容易に作製および使用され得る。
【０３３８】
アミノ酸置換は、一般に、アミノ酸側鎖の置換の相対的類似性（例えば、それらの疎水性、親水性、電荷、サイズなど）に基づく。アミノ酸側鎖置換のサイズ、形状および型の分析によって、アルギニン、リジンおよびヒスチジンはすべて正に荷電した残基であること；アラニン、グリシンおよびセリンはすべて類似のサイズであること；そして、フェニルアラニン、トリプトファンおよびチロシンはすべて一般的に類似の形状であることが示される。従って、これらの考察に基づいて、アルギニン、リジンおよびヒスチジン；アラニン、グリシンおよびセリン；ならびにフェニルアラニン、トリプトファンおよびチロシンは、本明細書中において、生物学的機能性等価物として規定される。
【０３３９】
より定量的な変化を生じさせる際に、アミノ酸の疎水親水指数が考慮され得る。各アミノ酸は、それらの疎水性および電荷特徴に基づいて疎水親水指数を指定されており、これらは以下である：イソロイシン（＋４．５）；バリン（＋４．２）；ロイシン（＋３．８）；フェニルアラニン（＋２．８）；システイン／シスチン（＋２．５）；メチオニン（＋１．９）；アラニン（＋１．８）；グリシン（−０．４）；トレオニン（−０．７）；セリン（−０．８）；トリプトファン（−０．９）；チロシン（−１．３）；プロリン（−１．６）；ヒスチジン（−３．２）；グルタミン酸（−３．５）；グルタミン（−３．５）；アスパラギン酸（−３．５）；アスパラギン（−３．５）；リジン（−３．９）；およびアルギニン（−４．５）。
【０３４０】
タンパク質に相互作用性生物学的機能を付与する際の疎水親水アミノ酸指数の重要性は、一般に当該分野において理解される（ＫｙｔｅおよびＤｏｏｌｉｔｔｌｅ、１９８２、本明細書中で参考として援用される）。特定のアミノ酸が、類似の疎水親水指数またはスコアを有する他のアミノ酸の代わりに置換され得、そしてなお類似の生物学的活性を保持することは公知である。疎水親水指数に基づいた変化を生じさせる際に、疎水親水指数が±２以内であるアミノ酸の置換が好ましく、±１以内である置換が特に好ましく、そして±０．５以内である置換がさらにより特に好ましい。
【０３４１】
従って、アミノ酸が、類似の親水性値を有する別のアミノ酸の代わりに置換され、そしてなお生物学的に等価なタンパク質を入手し得ることが理解される。米国特許第４，５５４，１０１号（本明細書中で参考として援用される）において詳述されるように、以下の親水性値が、アミノ酸残基に指定されている：アルギニン（＋３．０）；リジン（＋３．０）；アスパラギン酸（＋３．０±１）；グルタミン酸（＋３．０±１）；セリン（＋０．３）；アスパラギン（＋０．２）；グルタミン（＋０．２）；グリシン（０）；トレオニン（−０．４）；プロリン（−０．５±１）；アラニン（−０．５）；ヒスチジン（−０．５）；システイン（−１．０）；メチオニン（−１．３）；バリン（−０．５）；ロイシン（−１．８）；イソロイシン（−１．８）；チロシン（−２．３）；フェニルアラニン（−２．５）；トリプトファン（−３．４）。
【０３４２】
親水性値に基づいた変化を生じさせる際に、親水性値が±２以内であるアミノ酸の置換が好ましく、±１以内である置換が特に好ましく、そして±０．５以内である置換がさらにより特に好ましい。
【０３４３】
（Ｇ．結合体）
抗体Ｆｃ領域は、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディを提供するために少なくとも第１のホルファチジルセリン結合タンパク質に作動可能に結合されるか、そのタンパク質と関連するか、または結合体化される。そのような構築物、レセプターボディまたはベータボディは、例えば、抗細胞性薬剤および細胞傷害性薬剤、凝血薬ならびに抗ウイルス薬剤にさらに結合体化または結合され得る。
【０３４４】
共有結合が好ましいものの、作動可能な結合の他の手段がまた使用され得る。例えば、任意の連結される構築物は、アビジン：ビオチン架橋を使用して作製され得る。当業者に利用可能な知識に加えて、共有に係る米国特許第６，０９３，３９９号は、生物学的薬剤および治療剤に対する標的化剤の結合におけるアビジン：ビオチンの使用をさらに記載し、可能にするために、本明細書中において具体的に援用される。
【０３４５】
任意の２つまたは３つの薬剤がまた、第２の結合領域（好ましくは、抗体またはその抗原結合領域）によって結合され得る。これは、コアグリガンドによって例示され、この標的化剤は、第２の結合領域によって凝固剤に連結される（米国特許第６，０９３，３９９号、同第６，００４，５５５号、同第５，８７７，２８９号、および同第６，０３６，９５５号、各々が、本明細書中において参考として援用される）。これは、癌の処置において作製され、首尾良く使用された。
【０３４６】
免疫結合体技術は、ここで、一般的に当該分野で公知である。しかし、特定の利点が、特定の好ましい技術（調製および引き続く臨床的投与のための精製の両方）の適用を介して達成され得る。さらに、多くのタイプのジスルフィド結合含有リンカーが、公知であり、抗体およびペプチド結合体において首尾良く利用され得、特定のリンカーが、一般的に、異なる薬理学的特性および能力に基づいて、他のリンカーよりも好ましい。例えば、立体的に「妨害される」ジスルフィド結合を含むリンカーが、インビボでより大きな安定性を生じることに起因して好ましく、これによって作用部位での結合の前での凝固剤の放出を妨げる。
【０３４７】
架橋リンカーの各タイプ、ならびに架橋がどのように実行されるかは、得られる結合体の薬物動力学を変化する傾向がある。作用の意図される部位（この部位で、結合体が良好な「放出」特性を有する）を除いて、体内のいたる場所で見出される条件下でインタクトなままである結合体を有することが望ましくあり得る。従って、特定の架橋スキーム（特に、使用される特定の架橋試薬および架橋される構造を含む）は、いくらかの有用性がある。
【０３４８】
結合体化される特定の薬剤に依存して、その薬剤を作動可能に結合するペプチドスペーサーを提供することが必要であり得るかまたは所望され得る。特定のペプチドスペーサーは、ジスルフィド結合されたループ構造に折り畳まれ得る。次いで、ループ内のタンパク質分解切断は、ヘテロダイマーポリペプチドを生成し、ここでこの抗体および治療剤は、単一のジスルフィド結合のみによって連結される。このような毒素の例は、リシンＡ鎖毒素である。
【０３４９】
特定の他の毒素化合物が利用される場合、非切断可能ペプチドスペーサーが、融合タンパク質の毒素化合物を作動可能に結合するために提供され得る。非切断可能ペプチドスペーサーとともに使用され得る毒素は、それら自体が、タンパク質分解切断によって、細胞傷害性ジスルフィド結合形態に変換され得る毒素である。このような毒素化合物の例は、Ｐｓｅｕｄｏｎｏｍａｓ外毒素化合物である。
【０３５０】
種々の化学治療剤および他の薬理学的薬剤が、ここで、首尾良く結合体化され、そして薬理学的に機能することを示した。調査されている例示的な抗新生物剤としては、ドキソルビシン、ダウノマイシン、メトトレキサート、ビンブラスチン、および種々の他のものが挙げられる。さらに、他の薬剤（例えば、ネオカルジノスタチン（ｎｅｏｃａｒｊｉｎｏｓｔａｔｉｎ）、マクロマイシン、トレニモン（ｔｒｅｎｉｍｏｎ）およびα−アマニチンが記載されている。これらの結合方法が、本明細書中での使用のために適合され得る。
【０３５１】
抗体またはＰＥ結合ペプチドに対する任意の共有結合が、機能的部位とは異なる部位で理想的になされるべきである。従って、組成物は、特に、得られる構築物がなお意図される抗原またはＰＥに結合し、そして結合される薬剤が、実質的に生物学的活性を実質的に維持し、および／または構築物から放出される場合に、生物学的活性を回復するように、有意に損なうことなく、その異図とされる機能を各領域が実行する、任意の操作様式で「連結」される。
【０３５２】
Ｆｃ領域の炭水化物部分を介する生物学的薬剤の結合も企図される。グリコシル化（Ｏ結合型およびＮ結合型の両方）が抗体で天然に生じる。組換え抗体は、所望の場合、さらなるグリコシル化部位を再現または作製するように改変され得、これは、適切なアミノ酸配列（例えば、Ａｓｎ−Ｘ−Ｓｅｒ、Ａｓｎ−Ｘ−Ｔｈｒ、Ｓｅｒ、またはＴｈｒ）を抗体の一次配列に操作することによって単純に達成される。
【０３５３】
（Ｇ１．生化学架橋剤）
上記に提供される一般の情報に加えて、特定の好ましい生化学架橋剤が使用され得る。架橋試薬は、２つの異なる分子の官能基を共に結ぶ分子架橋を形成するために使用される。段階的な様式にて２つの異なるタンパク質を連結するために、所望されないホモポリマー形成を排除するヘテロ二官能性架橋剤が、使用され得る。例示的なヘテロ二官能性架橋剤は、表Ｃにおいて参照される。
【０３５４】
【表１９】
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ヘテロ二官能性架橋剤は、２つの反応基（一方は、一般に、第１の級アミン基（例えば、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド）と反応し、そして他方は、一般にチオール基（例えば、ピリジルジスルフィド、マレイミド、ハロゲンなど）と反応する）を含む。第１の級アミン反応基を通じて、この架橋剤は、あるタンパク質のリジン残基と反応し得、このチオール反応基を通じて、第１のタンパク質と既に結び付けられている架橋剤は、他のタンパク質のシステイン残基（遊離のスルフヒドリル基）と反応する。
【０３５５】
従って、組成物は、一般に、架橋の目的に利用可能な官能基を有するか、または有するように誘導体化される。この要件は、広汎な種々の基がこの様式において使用され得るという点で限定的であるとは考えられない。例えば、第一級アミン基または第二級アミン基、ヒドラジド基またはヒドラジン基、カルボキシル基、アルコール基、ホスフェート基、あるいはアルキル化基は、結合および架橋のために使用され得る。
【０３５６】
架橋剤の２つの反応基の間のスペーサーアームは、種々の長さおよび化学組成を有し得る。より長いスペーサーアームは、結合体成分のより良好な可撓性を可能にし、その一方、架橋におけるいくつかの特定の成分（例えば、ベンゼン基）は、反応基にさらに安定性を、または種々の局面の作用に化学結合の耐性の増大（例えば、還元剤への耐性のジスルフィド結合）を与え得る。ペプチドスペーサー（例えば、Ｌ−Ｌｅｕ−Ｌ−Ａｌａ−Ｌ−Ｌｅｕ−Ｌ−Ａｌａ）の使用もまた、意図される。
【０３５７】
血中にて合理的な安定性を有する架橋剤が用いられることが好ましい。標的化剤および毒素因子または凝固因子を結合体においてに首尾よく用いられ得る、多くの型のジスルフィド結合含有リンカーが、公知である。立体的に妨害されるジスルフィド結合を含むリンカーが、インビボでより大きな安定性を生じることを証明し得、このことは、作用部位での結合の前に因子の放出を妨げる。従って、これらのリンカーは、連結剤の１つの好ましい群である。
【０３５８】
最も好ましい架橋試薬のうちの１つは、ＳＭＰＴである。ＳＭＰＴは、隣接するベンゼン環およびメチル基により「立体的に妨害」されているジスルフィド結合を含む、二官能性架橋剤である。ジスルフィド結合の立体障害は、チオレート陰イオン（組織および血中に存在し得るグルタチオンのような）による攻撃から結合を保護し、それによって腫瘍部位への結合した薬剤の送達の前に結合体の脱カップリングを防ぐため際に役立つ機能を提供すると考えられる。ＳＭＰＴ剤はまた、本発明の二重特異性リガンドと組み合せて使用され得ることが意図される。
【０３５９】
多くの他の公知の架橋試薬のように、ＳＭＰＴ架橋試薬は、官能基（例えば、システインのＳＨまたは第一級アミン（例えば、リジンのε−アミノ基））を架橋する能力を与える。別の可能な型の架橋剤は、切断性ジスルフィド結合（例えば、スルホスクシンイミジル−２−（ｐ−アジドサリチルアミド）エチル−１，３’−ジチオプロピオネート）を含有する、ヘテロ二官能性感光性フェニルアジドを含む。Ｎ−ヒドロキシ−スクシンイミジル基は、第一級アミノ基と反応し、そしてフェニルアジド（光分解の際）は、任意のアミノ酸残基と非選択的に反応する。
【０３６０】
妨害された（ｈｉｎｄｅｒｅｄ）架橋剤に加えて、妨害されていないリンカーもまた、本明細書に従って用いられ得る。保護されたジスルフィドを含まないかまたは生成しないと考えられる、他の有用な架橋剤には、ＳＡＴＡ、ＳＰＤＰおよび２−イミノチオレンが挙げられる。このような架橋剤の使用は、当該分野において十分に理解されている。
【０３６１】
一旦結合体化されると、この結合体は、非結合体化因子および他の夾雑物から分離される。多数の精製技術が、結合体を臨床的に有用にするに十分な程度の純度の結合体を提供する使用に利用可能である。サイズ分離（例えば、ゲル濾過、ゲル浸透、または液体高速クロマトグラフィー）に基づく精製方法は、一般に、最も有用である。他のクロマトグラフィー技術（例えば、Ｂｌｕｅ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ分離）もまた、使用され得る。
【０３６２】
（Ｇ２．生物学的に放出可能なリンカー）
任意の結合部分は、血液において合理的な安定性を有し、疾患、例えば、腫瘍部位に標的化する前に、結合した薬剤の実質的な放出を予防することが、好ましいけれども、特定の局面において、生物学的に放出可能な結合および／または選択的に切断可能なスペーサーまたはリンカーの使用が、意図される。「生物学的に放出可能な結合」および「選択的に切断可能なスペーサーまたはリンカー」は、循環において合理的な安定性をなお有する。
【０３６３】
従って、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディは、生物学的に放出可能な結合を介して１以上の治療剤に結合され得る。「生物学的に放出可能な結合」または「選択的に加水分解可能な結合」は、唯一または優先的に特定の条件下で、放出可能、切断可能、または加水分解であるすべての結合を含む。これは、米国特許第５，４７４，７６５号および同第５，７６２，９１８号（各々は、本明細書中で特異的に参考文献として援用される）に記載されるように、ジスルフィド結合およびトリスルフィド結合ならびに酸標識結合が挙げられる。
【０３６４】
治療剤の、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディへの結合のための酸感応性スペーサーの使用は、特に意図される。このような実施形態において、治療剤または治療薬物は、細胞内の酸区画内で放出される。酸感応性放出は、細胞外で起こり得るが、特定の標識の後、好ましくは腫瘍部位に対して起こることが意図される。特定の現状で好ましい例としては、酸感応性スペーサーを介してコルヒチンまたはドキソルビシンに結合された２Ｃ３様抗体が挙げられる。抗体の糖質部分を介する結合はまた、意図される。このような実施形態において、治療剤または治療薬物は、細胞内の酸性区画内で放出される。
【０３６５】
構築物、レセプターボディまたはベータボディはまた、生物学的に放出可能な結合を介して治療剤の結合を可能にする官能基を導入するように誘導され得る。従って、構築物、レセプターボディまたはベータボディは、ヒドラジド基、ヒドラジン基、１級アミン基または２級アミン基において側鎖ターミネートを導入するように誘導され得る。治療剤は、Ｓｃｈｉｆｆの塩基結合、ヒドラゾンもしくはアシルヒドラゾン結合またはヒドラジドリンカーを介して結合体化され得る（米国特許第５，４７４，７６５号および同第５，７６２，９１８号、各々は、本明細書中で参考として特異的に援用される）。
【０３６６】
米国特許第５，４７４，７６５号および同第５，７６２，９１８号（各々は、本明細書中で参考として特異的に援用される）に記載されるように、構築物、レセプターボディまたはベータボディは、酵素感応性の１以上の生物学的に放出可能な結合（ペプチド結合、エステル、アミド、リン酸ジエステルおよびグリコシドが挙げられる）を介して治療剤に操作可能に結合され得る。
【０３６７】
本発明の特定の局面は、優先的に疾患部位、特に、腫瘍環境内に位置する、ペプチターゼおよび／またはプロテイナーゼに対する少なくとも第１の切断部位を含むペプチドリンカーの使用に関する。従って、結合された治療剤の抗体媒介送達は、疾患部位または腫瘍環境内で特異的に切断を生じ、活性薬剤の特異的放出を生じる。特定のペプチドリンカーは、再構築に関する１以上の酵素によって認識される切断部位を含む。
【０３６８】
ウロキナーゼ、プロ−ウロキナーゼ、プラスミン、プラスミノゲン、ＴＧＦβ、スタフィロキナーゼ、トロンビン、第ＩＸａ因子、第Ｘａ因子またはメタロプロテイナーゼ（例えば、間質性コラゲナーゼ、ゲラチナーゼ、またはストロメライシン）に対する切断部位を含むポリペプチドリンカーは、特に好ましい。米国特許第６、００４、５５５、米国特許第５，８７７，２８９および同第６，０９３，３９９号は、さらなる記載ならびに標的薬剤−治療剤構築（生物学的に放出可能な結合ならびに選択的に切断可能なリンカーおよびペプチドを含む）を作製かつ使用する方法を可能にする目的のために、本明細書中で参考として特異的に援用される。特に、１９９９年３月２日に発行された米国特許第５，８７７，２８９号は、さらなる記載ならびに標的薬剤−治療剤構築（ウロキナーゼ、プラスミン、トロンビン、第ＩＸａ因子、第Ｘａ因子またはメタロプロテイナーゼ（例えば、間質性コラゲナーゼ、ゼラチナーゼ、またはストロメライシン）によって腫瘍環境内で切断される選択的に切断可能なペプチドリンカーを含む）を作製かつ使用する方法を可能にする目的のために、本明細書中で特異的に参考として援用される。
【０３６９】
現状で好ましい選択的に切断可能なペプチドリンカーは、プラスミンまたはメタロプロテイナーゼ（「マトリックスメタロプロテアーゼ」または「ＭＭＰ」としても公知である）（例えば、間質性コラゲナーゼ、ゼラチナーゼまたはストロメリシン）に対する切断部位を含むリンカーである。本発明に関して有意に使用され得るさらなるペプチドリンカーとしては、例えば、プラスミン切断可能配列（例えば、プロウロキナーゼによって切断可能なもの）、ＴＧＦβ、プラスミノゲンおよびスタフィロキナーゼ；第Ｘａ因子切断可能配列；ＭＭＰ切断可能配列（例えば、ゼラチナーゼＡによって切断可能なもの）；コラゲナーゼ切断可能配列（例えば、ウシ皮膚コラーゲン（α１（Ｉ）鎖）、ウシ皮膚コラーゲン（α２（Ｉ）鎖）、ウシ軟骨コラーゲン（α１（ＩＩ）鎖）、ヒト肝臓コラーゲン（α１（ＩＩＩ）鎖）、ヒトα２Ｍ、ヒトＰＺＰ、ラットα１Ｍ、ラットα２Ｍ、ラットα１Ｉ３（２Ｊ）、ラットα１Ｉ３（２７Ｊ）、およびヒト線維芽細胞コラゲナーゼ自己分解切断部位が挙げられる。当業者に利用可能な知識に加えて、同一出願人の米国特許第６，３４２，２１９号、同第６，５２４，５８３号、同第６，３４２，２２１号および同第６，４１６，７５８号における表Ｂ２からの文書および配列が、このような切断可能な配列の使用を記載しそして可能にする目的で、本明細書中において具体的に援用される。
【０３７０】
（Ｇ３．融合タンパク質および組換え発現）
構築物、レセプターボディまたはベータボディは、分子生物学技術を使用して融合タンパク質として調製され得る。任意の融合タンパク質が、任意の構築物、レセプターボディまたはベータボディならびに第二の薬剤（本明細書中に開示されるものおよび当該分野で公知のもの）を使用して設計および作製され得る。融合タンパク質技術は、他の改変（例えば、ＣＤＲ配列の最適化、選択的に切断可能なペプチド配列を介する連結など）を有する融合タンパク質を調製するために容易に適合可能である。
【０３７１】
このような目的を達成するための組換えＤＮＡ技術の使用は、現在、当業者に標準的操作である。これらの方法としては、例えば、インビトロ組換えＤＮＡ技術、合成技術、およびインビボ組換え／遺伝的組換えが挙げられる。さらに、ＤＮＡ合成およびＲＮＡ合成は、自動合成装置を使用して実施され得る（例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら、１９８９（本明細書中に参考として援用される）に記載される技術を参照のこと）。
【０３７２】
このような融合タンパク質の調製は、一般的に、所望の融合タンパク質をコードする単一のコード領域を調製するために、第１のおよび第２のＤＮＡコード領域の調製、およびそのような領域をインフレームで機能的に連結または結合することを伴う。一旦、所望のコード領域が生成されると、発現ベクターが作製される。発現ベクターは、挿入されたＤＮＡ領域の上流に、そのＤＮＡの転写を促進するように作用し、そして従ってコードされる組換えタンパク質の発現を促進するように作用する１つ以上のプロモーターを含む。これが、「組換え発現」の趣意である。
【０３７３】
構築物、レセプターボディまたはベータボディのいわゆる「組換え」バージョンを獲得するために、ベクターが、組換え細胞内で発現される。原核生物系または真核生物系における発現のためのＤＮＡセグメントの操作は、組換え発現における当業者に一般的公知の技術によって実施され得る。実質的に任意の発現系が、この発現において使用され得ると考えられる。
【０３７４】
本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディは、真核生物発現系（例えば、ＣＨＯ細胞）において首尾良く発現され得る。しかし、Ｅ．ｃｏｌｉ  ｐＱＥ−６０のような細菌発現系が、構築物の大規模調製および引き続く精製のために特に有用であると考えられる。ｃＤＮＡはまた細菌系において発現され、発現されるそのコードタンパク質はβ−ガラクトシダーゼ、ユビキチン、Ｓｃｈｉｓｔｏｓｏｍａ  ｊａｐｏｎｉｃｕｍグルタチオンＳ−トランスフェラーゼなどを伴う融合物として発現され得る。細菌発現は、使用の容易さ、およびそれによって得られる物質の品質に関して、真核生物発現を超える利点を有すると考えられる。
【０３７５】
微生物発現に関して、組換え宿主細胞における遺伝子の発現と関連して本発明の開示をなおさらに補充する目的のために、米国特許第５，５８３，０１３号；同第５，２２１，６１９号；同第４，７８５，４２０号；同第４，７０４，３６２号；および同第４，３６６，２４６号が、本明細書中で参考として援用される。
【０３７６】
組換え的に生成される構築物、レセプターボディまたはベータボディは、ヒト投与のために精製および処方され得る。あるいは、免疫結合体コードする核酸は、遺伝子治療を通して送達され得る。裸の組換えＤＮＡまたはプラスミドが使用され得るが、リポソームまたはベクターの使用が好ましい。特定ウイルスが、レセプター媒介性エンドサイトーシスを介して細胞に進入する能力、および宿主細胞ゲノムに組込みそして安定的および効率的にウイルス遺伝子を発現する能力は、それらを、哺乳動物細胞内に外来遺伝子を移入させるための魅力的な候補にさせている。本発明における使用のために好ましい遺伝子治療ベクターは、一般的にウイルスベクターである。
【０３７７】
レトロウイルスは、それらの遺伝子を宿主ゲノム中に組込むそれらの能力、大量の外来性遺伝物質を移入させるそれらの能力、広範なスペクトルの種および細胞型に感染するそれらの能力、および特定の細胞株にパッケージングされるそれらの能力に起因して、遺伝子送達ベクターとして見こまれている。他のウイルス（例えば、アデノウイルス、単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）、およびアデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）（例えば、米国特許第５，１３９，９４１号（本明細書中で参考として援用される）に記載されるウイルス）もまた、遺伝子移入のためのベクターとして作用されるように操作され得る。
【０３７８】
外来性遺伝物質を受容し得るいくつかのウイルスは、それらが適応し得るヌクレオチドの数、およびそれらが感染する細胞の範囲において限定されるが、これらのウイルスは、遺伝子発現を首尾良くもたらすことが実証されている。しかし、アデノウイルスは、それらの遺伝産物を宿主ゲノム中に組込まず、従って遺伝子発現のために宿主の複製を必要としない。これは、迅速な遺伝子発現、効率的な遺伝子発現、異種遺伝子発現についてそれらを理想的に適合させる。複製欠損した感染性ウイルスを調製する技術は、当該分野において周知である。
【０３７９】
特定のさらなる実施形態において、遺伝子治療ベクターはＨＳＶである。ＨＳＶを魅力的なベクターにする因子は、ゲノムの大きさおよび組織化である。ＨＳＶは大きいので、複数の遺伝子または発現カセットを組込むことは、より小さな他のウイルス系よりもあまり問題ではない。さらに、変動する性能（例えば、時間的、強度）を有する種々のウイルスコントロール配列の利用能は、他の系におけるよりも高い程度で発現を制御することを可能にする。ウイルスが比較的少数でスプライシングされるメッセージを有し、遺伝子操作をさらに容易にすることもまた有用である。ＨＳＶはまた、操作が比較的容易であり、そして高い力価まで増殖され得る。
【０３８０】
もちろん、ウイルス送達系を使用する際には、所望されない夾雑物（例えば、不完全干渉ウイルス粒子または発熱物質）を本質的に含まないようにするために十分にビリオンを精製し、その結果、ベクター構築物を受容する細胞、動物、または個体において不都合な反応を全く引き起こさないことが所望される。ベクターを精製する好ましい手段としては、浮遊密度勾配の使用（例えば、塩化セシウム勾配遠心分離）が挙げられる。
【０３８１】
（Ｈ．薬学的組成物）
本発明の治療剤は、一般に、薬学的組成物として処方される。薬学的組成物は、少なくとも本発明の第１の治療剤（薬学的に受容可能なキャリアまたは水性媒体中に、溶解または分散した）の生物学的または治療的有効量を含む。組み合わせ治療もまた意図され、そして同じ型の基礎をなす薬学的組成物を、単一医薬および組み合わせ医薬の両方について使用し得る。
【０３８２】
句「薬学的に受容可能、または薬理学的に受容可能」とは、必要に応じて、動物またはヒトに投与された場合、有害な、アレルギー性のまたは他の有害な反応を生じない分子全体または組成物をいう。獣医学的使用、本発明に等しく包含され、そして「薬学的に受容可能な」処方物は、臨床的および／または獣医学的使用の両方のための処方物を含む。
【０３８３】
本明細書において使用する場合、「薬学的に受容可能なキャリア」としては、任意のおよび全ての、溶媒、分散媒体、コーティング、抗菌剤、抗真菌剤、等張剤および吸着遅延剤などが挙げられる。薬学的に活性な物質のための、そのような媒体および薬剤の使用は、当該分野において周知である。任意の従来の媒体または薬剤が、活性成分と不適合である場合を除いて、治療的組成物中でのその使用が意図される。ヒトへの投与のために、調製物は、ＦＤＡ官庁の生物製剤の基準によって必要とされる、滅菌性、発熱性、一般的安全性および純度の基準を充たすべきである。補助的な活性成分もまた、組成物中に組込まれ得る。
【０３８４】
「単位用量」処方物は、特定の時機に合わせられた送達に適合される投与成分の用量または副用量を含む。例えば、例示的な「単位用量」処方物は、日用量もしくは日用量単位もしくは日副用量または週用量もしくは週用量単位もしくは週副用量などを含む処方物である。
【０３８５】
（Ｈ１．注射可能処方物）
本発明の治療剤は、しばしば、非経口投与（例えば、静脈内、筋肉内、皮下、経皮を介する注射のための処方、またはぜん動投与および腫瘍もしくは疾患部位（腔内投与）中への直接滴下を含む他の経路のための処方）のために処方される。抗体、免疫結合体またはペプチド結合体を活性成分として含有する水性組成物の調製は、本明細書の開示を参照すれば、当業者に公知である。代表的には、そのような組成物は、水溶液または懸濁液のいずれかにおいて、注射可能な薬剤として調製され得る；注射前の液体への添加において、溶液または懸濁液を調製するための使用に適切な固体形態もまた調製され得る；そしてその調製物はまた、乳化され得る。
【０３８６】
注射での使用に適切な薬学的形態としては、滅菌水溶液または滅菌懸濁液；ゴマ油、ピーナッツオイル、または水性プロピレングリコールを含む処方物；および滅菌注射可能溶液または滅菌注射可能懸濁液の即時調製のための滅菌粉末、が挙げられる。全ての場合において、その形態は、滅菌であるべきであり、そして注射可能性が存在する程度に流動性であるべきである。それは、製造および保存の条件下において安定であるべきであり、そして微生物（例えば、細菌および真菌）の混入作用に対して、保護されるべきである。
【０３８７】
治療剤は、中性または塩の形態において、滅菌水性組成物中に処方され得る。遊離の塩基、または薬理学的に受容可能な塩としての治療剤の溶液は、界面活性剤（例えば、ヒドロキシプロピルセルロース）と適切に混合された水中で調製され得る。薬学的に受容可能な塩としては、酸添加塩（タンパク質の遊離のアミノ基を用いて形成される）、および無機酸（例えば、塩酸またはリン酸）または有機酸（例えば、酢酸、トリフルオロ酢酸、シュウ酸、酒石酸、マンデル酸）などを用いて形成される塩などが挙げられる。遊離のカルボキシ基を用いて形成される塩はまた、無機塩基（例えば、ナトリウム、カリウム、アンモニウム、カルシウムまたは水酸化鉄（ＩＩＩ））および有機塩基（例えば、イソプロピルアミン、トリメチルアミン、ヒスチジン、プロカイン）などから誘導され得る。
【０３８８】
適切なキャリアとしては、例えば、水、エタノール、ポリオール（例えば、グリセロール、プロピレングリコール、および液体ポリエチレングリコールなど）、それらの適切な混合物、ならびに植物油を含む、溶媒および分散媒体が挙げられる。多くの場合において、等張剤（例えば、糖類または塩化ナトリウム）を含むのが好ましい。適切な流動性は、例えば、コーティング剤（例えば、レシチン）の使用によって、分散の場合において必要とされる粒子サイズの維持によって、および／または界面活性剤の使用によって、維持され得る。
【０３８９】
貯蔵および使用の通常の条件下において、全てのそのような調製物は、防腐剤を含有し、微生物の増殖を防ぐべきである。微生物の作用の防止は、種々の抗細菌剤および抗真菌剤（例えば、パラベン、クロロブタノール、フェノール、ソルビン酸、チメロサールなど）によってもたらされ得る。注射可能な組成物の長期の吸収は、遅延型吸収剤（例えば、モノステアリン酸アルミニウムおよびゼラチン）の組成物中での使用によってもたらされ得る。
【０３９０】
処方の際、または処方前に、治療剤は、広範に透析され、所望されない低分子物質を除去するか、および／または、適切な場合、所望のビヒクル中へのより容易な処方のために凍結乾燥されるべきである。滅菌の注射可能溶液は、必要とされる量の活性薬剤を、適切な溶媒中に、上記に列挙した他の種々の成分とともに取り込まれ、必要に応じて、その後に濾過滅菌されることにより調製される。一般に、分散剤は、種々の滅菌活性成分を、塩基性分散媒体および上記に列挙される必要とされる他の成分を含有する滅菌ビヒクル中に取り込まれることにより、調製される。
【０３９１】
滅菌注射可能溶液の調製のための滅菌粉末の場合、好ましい調製方法は、活性成分、および以前に滅菌濾過されたその溶液由来の任意のさらなる所望の成分の粉末を生じる真空乾燥およびフリーズドライ技術である。
【０３９２】
本発明に従う適切な薬学的組成物は、一般に、受容可能な薬学的希釈剤または賦形剤（例えば、滅菌水溶液）と混合された治療剤のある量を含み、意図される使用に依存して、ある範囲の最終濃度を生じる。調製の技術は、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、第１の６版、Ｍａｃｋ  Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ  Ｃｏｍｐａｎｙ、１９８０（本明細書において参考として援用される）によって例示されるように、一般に当該分野において周知である。エンドトキシンの混入は、安全なレベルに最小限に維持されるべきである（例えば、０．５ｎｇ／ｍｇタンパク質未満）ことを理解するべきである。さらに、ヒトへの投与について、調製物は、ＦＤＡ官庁の生物製剤基準によって必要とされる、滅菌性、発熱性、一般的安全性および純度の基準を充たすべきである。処方の際に、抗体または免疫結合体溶液は、投薬量処方と適合する様式において、およびそのような治療的有効量において、投与される。
【０３９３】
（Ｈ２．徐放性処方物）
処方物は、種々の投薬形態（例えば、上記の注射可能な溶液の型）において容易に投与されるが、他の薬学的に受容可能な形態（例えば、錠剤、ピル、カプセルまたは経口投与のための他の固体、座剤、腟坐薬、経鼻溶液またはスプレー、エアロゾル、吸入剤、リポソーム形態など）もまた意図される。投与形態の型は、処置される疾患または障害に適合される。
【０３９４】
薬学的「遅放性」カプセルまたは「徐放性」組成物または調製物が、使用され得、そして一般的に適用可能である。徐放性処方物は、一般に、長期間にわたって一定の薬物レベルを生じるように設計され、そして本発明に従う治療剤を送達するために使用され得る。遅放性処方物は、代表的に、疾患部の近位（例えば、腫瘍またはウイルス感染の部位）に移植される。
【０３９５】
徐放性調製物の適切な例としては、抗体または免疫結合体を含む固形疎水性ポリマーの半浸透性マトリックスが挙げられ、これらのマトリックスは、成形された物品（例えば、フィルムまたはマイクロカプセル）の形態である。徐放性マトリックスの例としては、以下が挙げられる：ポリエステル；ヒドロゲル（例えば、ポリ（２−ヒドロキシエチル−メタクリレート）またはポリ（ビニルアルコール））；ポリラクチド（例えば、米国特許第３，７７３，９１９号）；Ｌ−グルタミン酸およびγエチルＬ−グルタメートのコポリマー；非分解性エチレン−酢酸ビニル；分解性乳酸−グリコール酸コポリマー（例えば、Ｌｕｐｒｏｎ  ＤｅｐｏｔＴＭ（乳酸−グリコール酸コポリマーおよびロイプロリドアセテートからなる注射可能なミクロスフェア））；およびポリ−Ｄ−（−）−３−ヒドロキシ酪酸。
【０３９６】
エチレン−酢酸ビニルおよび乳酸−グリコール酸のようなポリマーは、分子を１００日間にわたって放出し得、特定のヒドロゲルは、タンパク質をより短期間で放出する。カプセル化抗体が身体内に長時間残留する場合、３７℃で湿気に曝露される結果としてこれらは変性または凝集し得、従って生物学的活性を減少し、かつ／または免疫原性を変化する。合理的なストラテジーは、関与する機構に依存した安定化に利用可能である。例えば、凝集機構がチオ−ジスルフィド相互変換を介した分子間Ｓ−Ｓ結合形成に関与する場合、安定化は、スルフヒドリル残基の修飾、酸性溶液からの凍結乾燥、水分含有量の制御、適切な添加物の使用、特定のポリマーマトリクス組成物の開発などによって達成される。
【０３９７】
（Ｈ３．リポソームおよびナノカプセル）
特定の実施形態において、リポソームおよび／またはナノカプセルもまた、治療剤とともに使用され得る。リポソームの処方および使用は、以下に要約されるように、当業者に、一般に公知である。本発明は、抗体、リポソームおよび化学療法剤の特定の組合せ（以下に記載される）を提供する。さらに、リポソーム処方物は、本発明の治療剤のいずれかの慣用的な成分として使用され得る。
【０３９８】
リポソームは、水性媒体中に分散されるリン脂質から形成され、そして自発的に多層の同心の二重層ビヒクル（多層ビヒクル（ＭＬＶ）とも称する）を形成する。ＭＬＶは、一般に、２５ｎｍ〜４μｍの直径を有する。ＭＬＶの超音波処理は、中心に水溶液を含有する、直径２００〜５００Åの範囲の小さな単層のビヒクル（ＳＵＶ）を生じる。
【０３９９】
リン脂質は、水中に分散される場合、水に対する脂質のモル比に依存して、リポソーム以外の多様な構造を形成し得る。低い比において、リポソームは、好ましい構造である。リポソームの物理学的特徴は、ｐＨ、イオン強度、および二価カチオンの存在に依存する。リポソームは、イオンおよび極性物質に対する低い浸透性を示し得るが、高温において、その浸透性を顕著に変化させる相転移を受ける。相転移は、ゲル状態として公知の密接に充填された、規則正しい構造から、流体状態として公知の疎に充填された、より規則正しくない構造への変化を含む。これは、特徴的な相転移温度において生じ、そしてイオン、糖および薬物の浸透性を増加する。
【０４００】
リポソームは、４つの異なる機構を通じて、細胞と相互作用する：マクロファージおよび好中球のような細網内皮系の食細胞によるエンドサイトーシス；非特異的な弱い疎水的な力、もしくは静電的な力のいずれかによるか、または細胞表面成分との特異的な相互作用による細胞表面への吸着；リポソーム含有物の細胞質への同時放出をともなう、リポソームの脂質二重層の形質膜への挿入による形質細胞膜との融合；および、リポソームの内容物の会合をいずれもともなわない、リポソーム脂質の、細胞膜または細胞内（オルガネラ）膜への移入、あるいはその逆。１つより多い機構が同時に作動し得るが、リポソームの処方を変化させることは、作動する機構を変更し得る。
【０４０１】
ナノカプセルは、一般に、安定にかつ再現性のある方法において、化合物を捕獲し得る。細胞内へのポリマー性の過剰負荷に起因する副作用を避けるために、そのような超微細粒子（約０．１μｍのサイズ）が、インビボで分解され得るポリマーを使用して設計されるべきである。これらの要求を満たす生分解性ポリアルキル−シアノアクリレートナノ粒子は、本発明における使用において意図され、そしてそのような粒子は、容易に作製され得る。
【０４０２】
（Ｈ４．眼性処方物）
眼の多くの疾患（特に、脈管形成成分を有するもの）は、本発明によって処置され得る。例えば、眼の脈管新生疾患、年齢関連黄斑変性症、糖尿病性網膜症、未熟成の網膜症、角膜移植拒絶、脈管新生緑内障、水晶体後線維増殖症、ならびに角膜脈管新生または網膜／脈絡膜脈管新生と関連する他の疾患（本明細書中で以下に記載される）。
【０４０３】
従って、本発明の治療剤は、眼性溶液として使用するために適切な薬学的組成物の調製において有利に使用され得、この薬学的組成物は、硝子体内および／または房内（ｉｎｔｒａｃａｍｅｒａｌ）投与のための組成物を含む。前述の障害または他の障害の処置のために、治療剤は、従来の薬学的慣行（例えば、「Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ」第１の５編、１４８８〜１５０１頁（Ｍａｃｋ  Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ  Ｃｏ．，Ｅａｓｔｏｎ，ＰＡ）を参照のこと）に従って調製された眼性調製物の形態で処置の必要な非験体の眼に投与される。
【０４０４】
眼性調製物は、薬学的に受容可能な溶液、懸濁液または軟膏中に約０．０１〜１重量％、好ましくは約０．０５〜約０．５重量％の濃度で治療剤を含む。濃度のいくらかの変更は、使用する特定の化合物、処置される被験体の状態などに依存して必要に生じ、そして処置の担当者は、個々の被験体について最も適切な濃度を決定する。眼性調製物は、好ましくは、滅菌水溶液の形態であり、所望の場合、さらなる成分、例えば、防腐剤、緩衝液、弾力剤、酸化防止剤および安定剤、非イオン性湿潤剤または浄水剤、粘性増加剤などを含む。
【０４０５】
このような溶液において使用するための適切な防腐剤としては、塩化ベンズアルコニウム、塩化ベンズエトニウム、クロロブタノール、チメロサールなどが挙げられる。適切な緩衝液としては、約ｐＨ６とｐＨ８との間、好ましくは、約ｐＨ７とｐＨ７．５との間のｐＨを維持するために十分な量の、ホウ酸、炭酸水素ナトリウムおよびカリウム、ホウ酸ナトリウムおよびカリウム、炭酸ナトリウムおよびカリウム、酢酸ナトリウム、ビリン酸（ｂｉｐｈｏｓｐｈａｔｅ）ナトリウムなどが挙げられる。適切な弾力剤は、デキストラン４０、デキストラン７０、デキストロース、グリセリン、塩化カリウム、プロピレングリコール、塩化ナトリウム、などであり、眼性溶液の塩化ナトリウム当量は、０．９±０．２％の範囲である。
【０４０６】
適切な酸化防止剤おおび安定剤としては、亜硫酸水素ナトリウム、二亜硫酸水素ナトリウム、チオ亜硫酸ナトリウム、チオ尿素などが挙げられる。適切な湿潤剤および浄水剤としては、ポリソルベート８０、ポリソルベート２０、ポロキサマー２８２およびチロキサポールが挙げられる。適切な粘性増加剤としては、デキストラン４０、デキストラン７０、ゼラチン、グリセリン、ヒドロキシエチルセルロース、ヒドロキシメチルプロピルセルロース、ラノリン、メチルセルロース、ペトロラタム、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、カルボキシメチルセルロースなどが挙げられる。眼性調製物は、例えばドロップの形態で従来の方法によってか、または眼性溶液中に眼を浸すことによって処置の必要な被験体の眼に局所的に投与される。
【０４０７】
（Ｈ５．局所処方物）
広範な意味で、局所投与のための処方物は、口（頬側）を介してかつ皮膚を通して送達するための処方物を含む。「局所送達システム」はまた、投与される成分を含む経皮的パッチを含む。皮膚を通す送達は、所望の場合、イオン注入または電気的運搬によってさらに達成され得る。
【０４０８】
口において局所投与するための適切な処方物は、風味のある基礎原料の成分、通常は、ショ糖およびアカシアまたはトラガカントを含むロゼンジ；不活性基礎原料（例えば、ゼラチンおよびグリセリン）の活性成分またはショ糖およびアカシアを含む香錠；ならびに適切な液体キャリアで投与される成分を含むうがい薬が挙げられる。
【０４０９】
皮膚に局所投与するための適切な処方物としては、軟膏、クリーム、ゲルおよび泥膏（薬学的に受容可能なキャリアで投与される成分を含む）が挙げられる。局所使用（例えば、クリーム、軟膏およびゲルで）のための治療剤としては、当該分野で周知のような、脂肪性基剤または水溶性軟膏剤の調製物が挙げられる。例えば、これらの組成物は、野菜オイル、動物性脂肪、が挙げられ、そしてより好ましくは、石油から得た半個体炭化水素が挙げられ得る。使用される特定の成分は、白色軟膏、黄色軟膏、セチルエステルワックス、オレイン酸、オリーブオイル、パラフィン、ペトロラタム、白色ペトロラタム、鯨蝋、グリセリンデンプン、白色ワックス、黄色ワックス、ラノリン、無水ラノリンおよびモノステアリン酸グリセリルが挙げられ得る。種々の水溶性軟膏剤が、使用され得、グリコールエーテルおよび誘導体、ポリエチレングリコール、ポリオキシル４０ステアレート、ならびにポリソルベートが挙げられる。
【０４１０】
直腸投与のための処方物は、適切な塩基（例えば、ココアバターまたはサリチレートを含む）とともに坐剤として与えられ得る。窒投与のための適切な処方物は、さらなる活性成分（例えば、当該分野で適切であると知られるキャリア）を含む、ペッサリー、タンポン、クリーム、ゲル、泥膏、包状物、またはスプレー処方物として与えられ得る。
【０４１１】
（Ｈ６．鼻性処方物）
鼻経路および呼吸器経路を介する局所送達は、種々の状態を処置するため（特に、本発明の抗ウイルス処置方法における使用のため）に意図される。これらの送達経路はまた、薬剤を全身性循環に送達するために適切である。従って、鼻性投与のための適切なキャリアにおける活性成分の処方物は、本発明内に含まれ、例えば、鼻性溶液、スプレー、エアロゾルおよび吸入抗原が挙げられる。キャリアが個体である場合、処方物は、例えば、２０〜５００ミクロンの範囲の粒子サイズを有する粗散剤が挙げられ、例えば、鼻に近接して維持される散剤のコンテナから鼻経路を通る急速な吸入によって投与される。
【０４１２】
キャリアが液体である適切な処方物は、鼻投与において有用である。鼻溶液は、通常は、ドロップまたはスプレーで鼻経路に投与されるように設計される水溶液であり、そしてそれらが、多くの局面において鼻分泌と類似であり、通常の線毛作用が維持されるように調製される。従って、鼻水溶液は、通常、等張性であり、そして５．５〜６．５のｐＨを維持するようにわずかに緩衝化される。さらに、必要な場合、眼性調製物において使用される防腐剤と類似の抗菌防腐剤および適切な薬物安定剤は、処方物中に含まれ得る。種々の市販の鼻性調製物は、公知であり、そして例えば、抗生物質および抗ヒスタミン剤が挙げられ、ぜん息予防に使用される。
【０４１３】
吸入薬および吸入剤は、薬物または化合物の患者の呼吸樹への送達のために設計される薬学的調製物である。蒸気または霧が、投与され、そして有効領域に到達する。この経路はまた、薬剤を全身性循環に送達するために使用され得る。吸入薬は、鼻または口呼吸性経路によって投与され得る。吸入薬溶液の投与は、この液滴が十分に良質でかつサイズが均一であり、その結果、この霧が、細気管支に到達する場合にのみ、有効である。
【０４１４】
製品の別のグループ（吸入薬としても公知であり、そして時には、吸入剤といわれる）は、特異的送達システムの使用によって呼吸経路に運ばれる良質の散剤薬物または液体薬物（例えば、薬学的エアロゾル）を含み、液体ガス噴霧剤中に薬物の溶液または懸濁液を維持する。適切なバルブおよび口アダプターを通して放出される場合、吸入薬の測定用量は、患者の呼吸路に進められる。粒子サイズは、この型の調製物の投与において主に重要である。肺腔への穿通のための最適粒子サイズは、０．５〜７μｍのオーダーであると、報告されてきた。良質の霧は、加圧エアロゾルによって産生され、それによって、それらの使用の利点が、考慮される。
【０４１５】
（Ｉ．結合、機能およびスクリーニングアッセイ）
本発明が動物およびヒトの処置レジメンにおいて有意な有用性を有するものの、多くの他の特異的および信頼できる使用（多くのインビトロ実施形態における特定の使用を含む）も有する。これらの使用の特定のものは、抗体、ペプチドおよび免疫結合体の特異的結合特性に関連する。本発明の構築物の各々が、アミノリン脂質および／または陰イオン性リン脂質に結合する少なくとも１つの抗体またはペプチド成分を含む点で、これらは、種々の結合実施形態（有用な結合アッセイを含む）において使用され得る。
【０４１６】
Ｆｃ領域または結合される薬剤の存在（関連する場合）は、有利な特性を提供するが、任意の結合アッセイにおける第１の抗体の有用性を否定しない。従って、適切な有用な結合アッセイは、本明細書中にさらに記載されるように、当該分野で一般的に使用されるもの（イムノブロット、ウェスタンブロット、ドットブロット、ＲＩＡ、ＥＬＩＳＡ、免疫組織化学、蛍光活性化細胞選別（ＦＣＳ）、免疫沈降、アフィニティークロマトグラフィーなどを含む。
【０４１７】
特定の標準的な結合アッセイは、イムノブロット、ウェスタンブロット、ＥＬＩＳＡおよび関連アッセイのような、固体支持体マトリクス（例えば、ニトロセルロース、ナイロンまたはそれらの組合せ）上に固定される。他の重要なアッセイは、細胞を使用し、本発明の成分が、細胞表面において、ＰＳまたは陰イオン性リン脂質を用いて細胞についてのアッセイに使用され得る。このようなアッセイは、前臨床試験（例えば、薬物の設計、作用の機構の試験および／または組み合わせた使用のための治療剤の選択に関する）において適用され得る。
【０４１８】
さらなるインビトロアッセイは、異常な細胞活性化および／またはアポトーシスに関連した疾患の診断に有用であり、細胞表面でのＰＳまたは陰イオン性リン脂質の存在の試験は、特に有用である。本発明の構築物は、このように、免疫組織化学において、新鮮凍結およびホルマリン固定の両方、パラフィン包埋組織ブロック；蛍光活性化細胞選別、フローサイトメトリーまたはフローマイクロフルオロメトリーと組み合わせて使用され得る。
【０４１９】
これらの本発明の構築物は、免疫沈降、抗原精製実施形態（例えば、アフィニティークロマトグラフィー）、および本明細書中に提示される情報を与えられる当業者に公知の多くの他の結合アッセイにおいてさらなる実際的な使用を有する。
【０４２０】
本発明の構築物のなおさらなる実際的な使用は、機能的アッセイ（多くのインビトロおよびエキソビボのアッセイおよびシステムを含む）におけるコントロールとしてである。本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディ
の結合特性および機能的特性が本明細書中に開示されるように特に特異的であるので、このような「コントロール」の使用は、実際に非常に価値がある。本発明のこのような実際的な適用からの利点があるアッセイとしては、例えば、細胞表面でのＰＳまたは陰イオン性リン脂質の検出に関するアッセイが挙げられる。
【０４２１】
これらのアッセイシステムはまた、インビトロまたはエキソビボでの薬物スクリーニングアッセイへと開発され得、ここで、十分に規定された特性を有する生物学的材料の現在の提供（ｐｒｏｖｉｓｉｏｎ）が特に重要である。例えば、類似した、等価な、または改善された結合特性を有する低分子の選択におけるポジティブコントロールとして本発明の構築物を使用すること（例えば、薬物スクリーニングおよび開発において）。
【０４２２】
本発明の結合アッセイおよびシステムはまた、インビトロまたはエキソビボでの薬物スクリーニングアッセイへと開発され得、ここで、十分に規定された特性を有する生物学的材料の現在の提供（ｐｒｏｖｉｓｉｏｎ）が特に重要である。例えば、類似した、等価な、または改善された結合特性を有する低分子の選択におけるポジティブコントロールとして本発明の構築物を使用すること（例えば、薬物スクリーニングおよび開発において）。
【０４２３】
（Ｊ．診断および治療キット）
本発明はまた、処置方法、組合せ処置方法ならびに／または画像化および処置実施形態において使用するための、本発明の少なくとも１つの第１の構築物、レセプターボディまたはベータボディを含む診断キットおよび治療キットを提供する。このようなキットは、一般的に、少なくとも第１の適切な容器（または容器手段）、少なくとも１つの治療剤、アミノリン脂質または陰イオン性リン脂質に結合する抗体、免疫結合体またはペプチド結合体の薬学的に受容可能な処方物を含む。キットは、例えば、前臨床的、臨床的および／または獣医学的実施形態での使用のための記載された指示書または電子指示書を備え得る。
【０４２４】
キットはまた、他の組成物、薬学的に受容可能な処方物および第２の生物学的および治療的薬剤（併用療法ならびに／または診断および画像化のためを含む）を含み得る。例えば、このようなキットは、任意の１つ以上のある範囲の化学治療剤、放射線療法剤または抗脈管形成剤、抗腫瘍細胞、抗腫瘍脈管構造または抗腫瘍間質抗体、免疫毒素またはコアグリガンド、抗ウイルス剤および／または診断成分または診断薬剤を含み得る。併用療法において使用するためならびに／または診断および画像化のための記載された指示書または電子指示書もまた含まれ得る。
【０４２５】
キットは、任意のさらなる成分を伴うかまたは伴わないで、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディを含む単一容器を有し得るか、あるいは、これらは、各所望の薬剤のための異なる容器を有し得る。併用療法が提供される場合、単一の容器が、等しいモルの組合せで、または他方が過剰な一方の成分を有してのいずれかで予め混合され得る。あるいは、本発明の一次的な薬剤および第２の生物学的および治療的薬剤（例えば、第２の抗癌剤または抗ウイルス剤）、キットが、患者への投与の前に、キットの異なる容器内で別々に維持され得る。
【０４２６】
診断成分は、ほとんど大部分、少なくとも第２の容器（１つ以上の治療剤を含む他の容器または第１の容器とは異なる）で維持される。診断キットは、ＰＳに結合する標識された抗体またはペプチド、あるいは処置される疾患を診断するために適切な任意の他の薬剤を含み得る。キットは、インビトロでの使用、インビボでの使用のため診断剤、またはこのような薬剤の両方を含み得る。キットは、例えば、前臨床的、臨床的および／または獣医学的実施形態での使用のための記載された指示書または電子指示書を備え得る。
【０４２７】
インビトロでの免疫検出のために、構築物、レセプターボディまたはベータボディは、固体支持体（例えば、マイクロタイタープレートの壁）に結合し得るが、再構成のために抗体溶液または粉末が、好ましい。免疫検出キットは、好ましくは、少なくとも第１の免疫検出試薬を含む。キットの免疫検出試薬は、種々の形態のいずれか１つ（例えば、インビボで使用される、抗体に結合するかまたは連結した検出可能な標識を含む）を取り得る。第２の結合リガンドに結合するかまたは連結した検出可能な標識もまた、企図される。例示的な二次リガンドは、第１の抗体に対する結合親和性を有する第２の抗体である。
【０４２８】
本発明のキットでの使用のためのさらに適切な免疫検出試薬は、第２の抗体に対する結合親和性を有する第３の抗体とともに、第１の抗体に対する結合親和性を有する第２の抗体を含む二成分試薬を含み、第三の抗体は、検出可能な標識に連結されている。多くの例示的な標識が当該分野において公知であり、全てのこのような標識が、本発明とともに使用され得る。これらのキットは、完全に結合体化された形態で、中間の形態で、またはキットの使用者によって結合体化されるように別々の部分として、のいずれかで抗体標識結合体を含み得る。画像化キットは、好ましくは、インビボ検出可能な標識に既に結合された標的薬剤または抗体を含む。しかし、標識および結合手段は、別々に供給され得る。
【０４２９】
診断キットのいずれの形態も、さらに、コントロール薬剤（例えば、適切なアリコートの生物学的組成物（標識されているかまたは標識されていない）を含み得、これは、検出アッセイのための検量線を調製するために使用され得る。
【０４３０】
このキットの成分が、１つ以上の液体中で提供される場合、液体は、好ましくは、水溶液であり、特に滅菌水溶液が好ましい。しかし、このキットの成分は、乾燥粉末において提供され得る。試薬または成分が乾燥粉末として提供される場合、この粉末は、適切な溶媒の添加によって再構成され得る。この溶媒もまたキット内の別の容器中で提供され得る。
【０４３１】
治療用キットおよび診断用キットの容器は、一般に、少なくとも１つのバイアル、試験管、フラスコ、ボトル、シリンジ、または他の容器手段を含み、これらの中で治療剤および任意の他の所望の薬剤が、好ましくは適切なアリコートで、配置され得る。少なくとも２つの別々の成分が好ましいので、キットは、好ましくは、少なくとも２つのこのような容器を含む。このキットは、滅菌の、薬学的に受容可能な緩衝液または他の希釈剤を含むための第３／第４の容器もまた、含み得る。
【０４３２】
このキットはまた、治療剤を動物または患者に投与するための手段（例えば、１つ以上の針またはシリンジ、あるいは点眼剤、ピペット、または他のそのような装置）を含み、その手段によって、この処方物が、動物に注入され得るか、または身体の疾患領域に適用され得る。本発明のキットはまた、代表的に、バイアルなど、および他の成分を、市販のために密接な拘束において含む手段（例えば、射出成形またはブロー成形したプラスチック容器）を含み、これらの手段の中で、所望のバイアルおよび他の装置が配置され、そして保持される。
【０４３３】
（Ｋ．免疫検出および画像化）
本発明はさらに、インビトロおよびインビボでの診断法および画像化法を提供する。このような方法は、診断情報、予後情報および／または画像情報（例えば、脈管形成疾患およびウイルス感染、好ましくは、腫瘍処置および画像化方法に関連する）を生成する際の使用に適用可能である。本発明の方法は、インビトロでの診断試験（例えば、サンプルが非侵襲的に得られ、好ましくは、高スループットアッセイにて試験され得るか、そして／または曖昧および確認における臨床診断が望まれる）を含む。インビボ診断および画像化の分野において、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディは、１つ以上の検出可能な薬剤に連結され、そして必要に応じて、処置の前に第１の工程として、脈管形成部位または腫瘍の画像を形成するために使用される。
【０４３４】
（Ｋ１．免疫検出法およびキット）
従って、本発明は、アミノリン脂質および陰イオン性リン脂質を結合、精製、除去、定量またはさもなければ一般には検出するため（例えば、活性化細胞およびアポトーシス細胞および関連する疾患の診断において使用するため）の、免疫検出法に関する。本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディが、インビボ（下記）にて、単離された組織サンプル、生検またはスワブにおいて、そして／またはホモジナイズされた組織サンプルにおいて、ＰＳおよび陰イオン性リン脂質を検出するために使用され得る。このような免疫検出法は、明らかな診断的有用性を有するが、また、非臨床サンプルに（例えば、抗原サンプルの力価測定などにおいて）も適用を有する。
【０４３５】
種々の有用な免疫検出法の工程は、科学文献（例えば、Ｎａｋａｍｕｒａら、（１９８７、本明細書中に具体的に参考として援用される））に記載されている。一般には、免疫結合法は、ＰＳおよび陰イオン性リン脂質を含むと疑われるサンプル（好ましくは、細胞表面にＰＳを有することが疑われる細胞）を得る工程、およびそのサンプルを本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディと、免疫複合体の形成を可能にするに有効な条件下で接触させる工程を包含する。次いで、結合プロセスの間に形成される任意の免疫複合体が検出され、好ましくは、定量される。
【０４３６】
分析されるサンプルは、細胞サンプル（例えば、実験室において特定の試験条件下に曝露された細胞）であり得る。サンプルはまた、動物または患者（１つ以上の細胞型の活性化またはアポトーシスと関連する疾患を有することが疑われるもの）由来の生物学的サンプルであり得る。このようなサンプルは、組織切片または試料、生検、スワブ、またはスメア試験サンプル、ホモジナイズされた組織抽出物または分離もしくは精製されたこれらの形態であり得る。
【０４３７】
免疫複合体（一次免疫複合体）の形成を可能にするに有効な条件下でかつそれを可能にするに十分な時間の間、選択した生物学的サンプルをその抗体と接触させることは、一般には、そのサンプルに構築物、レセプターボディまたはベータボディを単に添加し、そして構築物、レセプターボディまたはベータボディが存在する任意のＰＳおよび陰イオン性リン脂質と免疫複合体を形成する（すなわち、結合する）に十分に長い時間その混合物をインキュベートすることである。この時点の後、そのサンプル−抗体組成物（例えば、組織切片、またはＥＬＩＳＡプレート）が、一般には洗浄されて、非特異的結合したすべての抗体種が除去されて、一次免疫複合体中の特異的に結合した抗体のみ検出することが可能になる。
【０４３８】
免疫複合体の検出は、当該分野で周知であり、そして多数のアプローチの適用を介して達成され得る。これらの方法は、一般的には、標識またはマーカー（例えば、当該分野で公知の任意の放射性、蛍光性、生物学的または酵素的な、タグもしくは標識）の検出に基づく。このような標識の使用に関する米国特許としては、第３，８１７，８３７号；同第３，８５０，７５２号；同第３，９３９，３５０号；３，９９６，３４５号；同第４，２７７，４３７号；同第４，２７５，１４９号および同第４，３６６，２４１号（各々が、本明細書中で参考として援用される）が挙げられる。色素形成基質との接触に際して有色生成物を生成する酵素の使用が、一般的に好ましい。二次結合リガンド（例えば、第２の抗体またはビオチン／アビジンリガンド結合配置）もまた、当該分野で公知であるように、使用され得る。
【０４３９】
検出において使用される構築物、レセプターボディまたはベータボディ自体は、検出可能な標識に連結され得、次いでこの標識が簡単に検出され、それにより組成物中の一次免疫複合体の量を決定することが可能になる。
【０４４０】
好ましくは、この一次免疫複合体は、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディについて結合親和性を有する第２の結合リガンドによって検出される。この場合において、その第２の結合リガンドは、検出可能な標識に連結され得る。この第２の結合リガンド自体は、しばしば抗体であり、従って、「二次」抗体と呼ばれ得る。この一次免疫複合体は、この標識された二次結合リガンドまたは抗体と、二次免疫複合体の形成を可能にするに有効な条件下かつそれを可能にするに十分な時間の間、接触される。次いで、この二次免疫複合体は、一般的には、非特異的に結合したすべての標識二次抗体またはリガンドを除去するために洗浄され、次いでその二次免疫複合体中の残りの標識が検出される。
【０４４１】
さらなる方法は、２工程アプローチによる一次免疫複合体の検出を含む。第１の抗体に結合親和性を有する第２の結合リガンド（例えば、抗体）が、上記のように二次免疫複合体を形成するために使用される。洗浄の後、その二次免疫複合体は、その第２の抗体に結合親和性を有する第３の結合リガンドまたは抗体と、免疫複合体（三次免疫複合体）の形成を可能にするに有効な条件下かつそれを可能にするに十分な時間、接触させられる。この第３のリガンドまたは抗体は、そのようにして形成された三次免疫複合体の検出を可能にする、検出可能な標識に連結される。この系は、所望ならば、シグナル増幅を提供し得る。
【０４４２】
臨床的診断またはモニタリングは、種々の疾患（特に、細胞表面での増加したＰＳまたは陰イオン性リン脂質の曝露と関連するもの）を有する患者に適用され得る。アミノリン脂質および／または陰イオン性リン脂質の検出、あるいは正常な被験体由来の対応する生物学的サンプルのレベルと比較した、アミノリン脂質および／または陰イオン性リン脂質のレベルの上昇は、このような疾患を有する患者を示す。
【０４４３】
しかし、当業者に公知であるように、このような臨床診断は、この方法に基礎基づいて孤立しては行われないだろう。当業者は、バイオマーカーの有意な発現（ポジティブな同定を示す）とバイオマーカーの低レベル発現またはバックグラウンド発現との間を識別することに非常に精通している。実際、バックグラウンド発現レベルは、しばしば、「カットオフ」を形成するために使用され、このカットオフを超える染色の増加が、有意またはポジティブと記録される。
【０４４４】
（Ｋ２．インビボ画像化）
本発明は、種々のインビボ診断および画像化の実施形態を提供する。本発明の特定の局面は、インビボ診断および画像化について、新規な驚くべき有効な組成物に関する。例えば、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディが、インビトロで検出可能な薬剤に連結されて、本発明の免疫診断結合体を形成する。抗体がこの分野において重要な発展を示しているものの、得られる免疫診断は、現在、アミノリン脂質および／または陰イオン性リン脂質の検出と連結されて、任意の以前に記載された診断実施形態または画像化実施形態において使用され得る。
【０４４５】
これに関して、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディを含む免疫診断は、脈管血栓症（特に、心臓または心臓近く（例えば、深静脈血栓症、肺塞栓症、心筋梗塞、心房性細動、補綴心臓血管材料に伴う問題、発作など））を画像化する際に使用され得る。本発明のこのような組成物はまた、例えば、膿瘍、再狭窄、関節の炎症および止血性障害（例えば、動脈、冠状、静脈および大脳の塞栓など）のような状態において、活性化血小板を画像化する際に使用され得る。本発明の免疫診断組成物がまた、アポトーシス細胞を検出する際に使用され得、これは、増加したまたは不適切なアポトーシスが生じる種々の疾患の診断および画像化において使用され得る。
【０４４６】
本発明のインビボ画像化組成物および方法は、画像化それ自体で、または処置の前に信頼のある画像を形成するために身体の部位を予め画像化する際に使用され得る。好ましくは、画像化は、腫瘍の画像化である。これらの組成物および方法はまた、ＰＳおよび陰イオン性リン脂質と関連する他の疾患または状態（例えば、細胞活性化および／またはアポトーシスを含むもの（脈管形成疾患、アテローム性硬化症、ウイルス感染、および診断目的もしくは予後目的または処置を設計するために内部画像が望ましい他のこのような状態を含む））の画像化および診断に適用され得る。
【０４４７】
これらの実施形態において、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディが、検出可能な標識に作動可能に結合、連結または結合体化される。「検出可能な標識」は、それらの特異的な機能特性、または化学的特徴に起因して検出され得る化合物あるいはエレメントであり、その使用により、それらが結合する成分が検出可能になり、そして所望であれば、さらに定量可能になる。インビボでの診断プロトコルまたは「画像化方法」のための抗体およびペプチド結合体において、非侵襲的方法を用いて検出され得る標識が必要である。
【０４４８】
結合リガンドにそれらを結合させる方法のような多くの適切な画像化剤が、当該分野において公知である（例えば、米国特許第５，０２１，２３６号および同第４，４７２，５０９号を参照のこと。両方とも本明細書中に参考として援用される）。特定の結合方法は、例えば、抗体に結合されたＤＴＰＡのような有機キレート剤を使用する金属キレート複合体の使用を含む（米国特許第４，４７２，５０９号）。モノクローナル抗体はまた、グルタルアルデヒドまたは過ヨウ素酸塩のような結合剤の存在下で酵素と反応され得る。フルオレセインマーカーとの結合体は、これらの結合剤の存在下で、またはイソチオシアネートとの反応により、調製される。
【０４４９】
検出可能な標識の例は、常磁性イオンである。この場合、適切なイオンとしては、以下が挙げられる：クロム（ＩＩＩ）、マンガン（ＩＩ）、鉄（ＩＩＩ）、鉄（ＩＩ）、コバルト（ＩＩ）、ニッケル（ＩＩ）、銅（ＩＩ）、ネオジム（ＩＩＩ）、サマリウム（ＩＩＩ）、イッテルビウム（ＩＩＩ）、ガドリニウム（ＩＩＩ）、バナジウム（ＩＩ）、テルビウム（ＩＩＩ）、ジスプロシウム（ＩＩＩ）、ホルミウム（ＩＩＩ）、およびエルビウム（ＩＩＩ）（ガドリニウムが特に好ましい）。
【０４５０】
他の状況（例えば、Ｘ線画像化）において有用なイオンは、以下を含むがそれらに限定されない：ランタン（ＩＩＩ）、金（ＩＩＩ）、鉛（ＩＩ）および特にビスマス（ＩＩＩ）。蛍光標識には、ローダミン、フルオレセイン、およびレノグラフィンが挙げられる。ローダミンおよびフルオレセインは、しばしば、イソチオシアネート中間体を介して結合される。
【０４５１】
診断的適用のための放射性同位体の場合、適切な例としては、以下が挙げられる：１４炭素、５１クロム、３６塩素、５７コバルト、５８コバルト、銅６７、１５２Ｅｕ、ガリウム６７、３水素、ヨウ素１２３、ヨウ素１２５、ヨウ素１３１、インジウム１１１、５９鉄、３２リン、レニウム１８６、レニウム１８８、７５セレニウム、３５硫黄、テクネチウム９９ｍ、およびイットリウム９０。１２５Ｉは、しばしば、特定の実施形態において使用するために好ましく、そしてテクネチウム９９ｍおよびインジウム１１１はまた、しばしば、それらが低エネルギーでありかつ広範囲での検出に適しているために好ましい。
【０４５２】
本発明における使用のための放射性標識された構築物、レセプターボディまたはベータボディが、当該分野で周知の方法により生成され得る。例えば、放射性同位体金属イオンを抗体に結合するために、しばしば使用される中間体官能基は、ジエチレントリアミンペンタ酢酸（ＤＴＰＡ）およびエチレンジアミンテトラ酢酸（ＥＤＴＡ）である。
【０４５３】
構築物、レセプターボディまたはベータボディはまた、ヨウ化ナトリウムまたはヨウ化カリウム、および次亜塩素酸ナトリウムのような化学的酸化剤、またはラクトペルオキシダーゼのような酵素酸化剤と接触することによりヨウ素化され得る。本発明による構築物、レセプターボディまたはベータボディは、リガンド交換プロセスにより、例えば、二価のスズの溶液で過テクネチウム酸（ｐｅｒｔｅｃｈｎａｔｅ）を還元し、Ｓｅｐｈａｄｅｘカラム上でその還元されたテクネチウムをキレート化し、そしてこのカラムに抗体を適用することにより、テクネチウム９９ｍで標識され得る；かまたは直接的標識技術により、例えば、過テクネチウム酸、ＳＮＣｌ２のような還元剤、ナトリウム−カリウムフタレート溶液のような緩衝溶液、およびその抗体をインキュベートすることにより、標識され得る。
【０４５４】
上記の型の検出可能に標識された結合リガンドのいずれかが、画像化単独または処置の前に疾患部位または腫瘍の画像を形成するためのいずれかで、本発明の画像化の局面において使用され得る。いずれに方法においても、この方法は、一般的に、動物または患者に、非侵襲的な方法によって検出可能なマーカーに結合された抗体または結合リガンドの診断的有効量を投与する工程を包含する。抗体または結合リガンド−マーカー結合体は、疾患部位（例えば、腫瘍または腫瘍脈管構造）においてアミノリン脂質および／または陰イオン性リン脂質の曝露を発現する細胞に局在化および結合するのに十分な時間を可能にする。次いで、患者は、検出可能なマーカーを同定するために、検出デバイスに曝露され、このようにして、疾患部位または腫瘍の画像を形成する。
【０４５５】
核磁気スピン−共鳴同位体（例えば、ガドリニウム）は、核磁気画像化装置を使用して検出され；そして放射性物質（例えば、テクネチウム９９ｍまたはインジウム１１１）は、ガンマシンチレーションカメラまたは検出器を使用して検出される。米国特許第５，６２７，０３６号はまた、検出可能に標識された構築物の個々の血液内への安全かつ効果的な導入に関するさらなるガイダンス、および例えば、ガンマシンチレーションカメラを使用するかまたは磁気共鳴測定によって体外的に検出可能な標識薬剤の分布を決定するための方法を提供する目的で、本明細書中において具体的に参考として援用される。
【０４５６】
画像化実施形態のための投薬量は、一般的に、治療用よりも少ないが、患者の年齢および体重に依存する。患者１人当たり、０．１ｍｇ、０．５ｍｇまたは約１ｍｇと約９ｍｇまたは１０ｍｇとの間、より好ましくは、約１ｍｇと約５〜１０ｍｇの間の抗体または結合体リガンド−結合体の１回の用量が有用であると企図される。
【０４５７】
（Ｋ３．癌治療のための代理マーカー）
インビボ診断および画像化に関して、本発明は、さらに、癌治療のための代理マーカーとして使用するための組成物および方法を提供する。このような実施形態は、インビボ検出可能な薬剤に連結された、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディの使用に関する。
【０４５８】
現在の使用において多くの抗癌治療は、アポトーシスおよび壊死を誘導する。アミノリン脂質および陰イオン性リン脂質（特に、ＰＳ）は、アポトーシス前およびアポトーシス細胞のマーカーである。従って、適切な構築物、レセプターボディまたはベータボディでの画像化は、アポトーシス前細胞およびアポトーシス細胞を同定するために使用され得、従って、治療の進行に関する情報を提供し得る。これは、本明細書中において使用されるように、「癌治療のための代理マーカー」によって意味されることである。
【０４５９】
本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディの使用は、癌治療のための代理マーカーとしての特定の利点を提供する。例えば、アポトーシス前細胞を同定する能力は、特に有利である。特異性はまた、医師により意味のある画像化を提供する。また、安全性プロフィールは、印象的であり、例えば、アネキシンが凝固と関連する欠点を受けるので、アネキシン対して利点を提供する。
【０４６０】
従って、上記の任意のインビボ診断および画像化方法が、単純に、癌治療を受ける患者における使用によって、癌の治療のための代理マーカーとして診断的使用のために適合され得る。
【０４６１】
（Ｌ．腫瘍処置）
本発明の重要な局面は、悪性疾患、腫瘍および脈管新生化腫瘍の処置に関する。これは、脈管新生が多かれ少なかれ重要である腫瘍、およびプロトロンビン血管を有する腫瘍を含む。良性腫瘍の処置が本発明に含まれ、例えば、聴覚神経腫、神経線維腫、トラコーマ、化膿性肉芽腫およびＢＰＨが挙げられる。血液の腫瘍（例えば、白血病）および骨髄の種々の急性または慢性の新生物形成疾患の処置もまた包含される。
【０４６２】
本発明は、任意の悪性腫瘍（脈管成分を有するかまたは有さないか関わらず）の処置に幅広く適用可能である。処置される腫瘍としては、固形腫瘍、特に癌腫（酸素および栄養の提供のための脈管成分を必要とする）が挙げられる。本発明を使用して処置され得る例示的な固形腫瘍としては、限定しないが、以下が挙げられる：肺、乳房、卵巣、胃、膵臓、咽頭、食道、精巣、肝臓、耳下腺、胆管、結腸、直腸、頚部、子宮、子宮内膜、腎臓、膀胱、前立腺、甲状腺、扁平細胞の癌、腺癌、小細胞癌、メラノーマ、神経膠腫、神経膠芽細胞腫、神経芽細胞腫。
【０４６３】
本発明は、固形腫瘍を呈する任意の患者の処置における使用を企図される。一般的に、本発明は、全てのサイズの腫瘍（約０．３〜０．５ｃｍ以上を含むもの、０．５ｃｍより大きいサイズの腫瘍、および約１．０と約２．０との間のサイズの腫瘍を呈する患者）を処置するために使用され得るが、ヒトにおいて見出される最も大きな腫瘍までを含む腫瘍がまた処置され得る。
【０４６４】
本発明が、一般的に、予防的（ｐｒｅｖｅｎｔｉｖｅ）または予防的（ｐｒｏｐｈｙｌａｃｔｉｃ）処置として意図されないが、本発明の使用は、中程度または大きなサイズのみの腫瘍を有する患者の処置に特に制限されない。本発明のこれらの局面の元にある多くの理由が存在する。例えば、中程度以上の原発性腫瘍を呈する患者はまた、転移腫瘍の種の初期段階で小さなサイズであることが考えられる種々の他の転移性腫瘍を有し得る。本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディは、一般的に、患者の全身循環内に投与されることを考慮すると、これらは、自然に、二次のより小さな転移性腫瘍に対する効果を有するものの、これは、処置の最初の意図ではないかもしれない。さらに、全体としての腫瘍質量が単一の小さな腫瘍である状況においてさえ、特定の有利な抗腫瘍効果が、本書値の使用から生じる。
【０４６５】
本発明と関係する使用についてより適切な患者に関して本明細書中に提供されるガイダンスは、特定の患者のプロフィールが、本発明による処置についての患者の選択を補助し得るという教示として意図される。特定の患者の予備選択、または患者のカテゴリーは、癌を有する全ての患者の処置に関係する本発明の有用性を、いかなる方法でも否定しない。さらなる考慮は、本発明の抗体治療によって提供される腫瘍に対する攻撃が、腫瘍をさらなる治療処置を受けやすくさせ、その結果、引き続く処置は全体的な相乗効果を生じるか、完全な寛解または治癒を導きさえする。
【０４６６】
任意の特定の型の腫瘍が本発明を使用する処置から除外されることは考えられない。しかし、腫瘍細胞の型は、他の治療剤、特に化学療法剤および抗腫瘍細胞イムノトキシンを組合せた本発明の使用に関連し得る。本発明が、腫瘍脈管構造の標的化および破壊をその作用の様式内で含み、その脈管系は実質的または全体的に全ての固形腫瘍で同じであるために、本発明の方法論は、腫瘍細胞自体の特定の表現型または遺伝子型に無関係に、全ての固形腫瘍の処置に広範に、または全体的に適用可能であることが理解される。本明細書中に提示されるデータは、幅広い範囲の異なる腫瘍モデルにおいて印象的な結果を示すように思われる。
【０４６７】
治療的有効用量は、例えば、本明細書中に詳述される研究に示されるように、動物モデルからのデータを使用して、そしてある範囲の治療剤を使用する臨床的なデータから、容易に決定可能である。固形腫瘍を保持する実験動物は、臨床環境に移行する前に適切な治療用量を最適化するために、しばしば使用される。このようなモデルは、効果的な抗癌ストラテジーを予測する際に非常に信頼性があることが公知である。例えば、固形腫瘍を保持するマウス（例えば、本実施例で使用される）は、前臨床試験において広範に使用される。本発明者らは、このような分野で受容されるマウスモデルを使用して、最小の毒性で有益な抗腫瘍効果を与える治療剤の作用範囲を決定した。
【０４６８】
本発明に関連して付随する安全性の利益を考慮して腫瘍治療の点で、他の脈管治療を使用する成功に関する化学文献および特許文献を参照し得る。例として、米国特許第５，８５５，８６６号；同第５，８７７，２８９号；同第５，９６５，１３２号；同第６，０５１，２３０号；同第６，００４，５５５号；同第５，７７６，４２７号；同第６，００４，５５４号；および同第６，０３６，９５５号；ならびに同第６，０９３，３９９号の各々が挙げられ、これらは、本発明に適用され得る、このような薬剤の使用をさらに記載する目的で、本明細書中に参考として援用される。米国特許第６，３１２，６９４号、同第６，７８３，７６０号、同第６，８１８，２１３号および同第６，４０６，６９３号は、ＰＳおよびＰＥならびに関連する免疫結合体に対する非結合体化抗体を使用する投薬および処置についてのガイダンスについて、本明細書中に参考としてさらに具体的に援用される。
【０４６９】
当該分野で公知のように、臨床処置に進める前に、前臨床試験と関係するガイドラインとして使用され得る、現実的目的が存在する。しかし、受容されるモデルにおいてすでに実証された安全性に起因して、本発明の前臨床試験は、有効性を確認するというよりも、最適化である。従って、前臨床試験は、最も有利な薬剤、用量または組み合わせを選択するために利用され得る。
【０４７０】
任意の一定して検出可能な抗腫瘍効果（検出可能な腫瘍脈管構造後退、血栓および／または破壊、ならびに腫瘍壊死を含む）を生じる任意の用量、組合せ方法または医薬が有用な発明をなお規定する。退行、血栓、破壊および壊死効果は、好ましくは、約１０％と約４０〜５０％との間の腫瘍血管および腫瘍組織において観察され、約５０％と約９９％との間までのこのような効果が観察される。本発明はまた、腫瘍の下流の脈管に効果的であり得る（すなわち、特に腫瘍から放出されるサイトカインがこれらの脈管に作用し、それらの抗原性プロフィールを変化させるので、少なくとも排出脈管のサブセットを標的化する）。
【０４７１】
治療の抗腫瘍効果が、この範囲の下端に向かうような状況下でさえ、この治療が、特定の腫瘍の状況における他の全ての公知の治療となお等価であるか、またはより効果的でさえあることがあり得ることもまた理解される。特定の腫瘍が中期間または長期間効果的に処置され得ないことは臨床医に不幸にも明らかであるが、特に一般的に提案されている他のストラテジーと少なくともほぼ同様に効果的である場合、それは、本発明の治療の有用性を否定しない。
【０４７２】
血管新生化腫瘍の処置のための、構築物、レセプターボディまたはベータボディの適切な用量を設計する際に、臨床投与のための適切な用量に到達するために、本明細書中に記載される動物研究および文献における技術的常識から容易に推定し得る。このコンバージョンを達成するために、当業者は、実験動物の単位質量あたり投与される薬剤の質量を計算し、そして好ましくは、実験動物とヒト患者との間の体表面積の差異を計算する。全てのこのような計算は、当業者に周知でありそして慣用的である。
【０４７３】
例えば、マウス研究において使用される治療剤の首尾良い用量を採用し、そして質量および表面積に基づいて標準計算を適用する場合、ヒト患者における使用のため薬剤の有効用量は、患者当たり約１ｍｇと約５００ｍｇとの間の抗体、好ましくは、患者当たり約１０ｍｇと約１００ｍｇとの間の抗体である。
【０４７４】
従って、この情報を使用して、本発明者らは、ヒト投与のための有用な低用量は、患者当たり、約１ｍｇ、２ｍｇ、３ｍｇ、４ｍｇ、５ｍｇ、６ｍｇ、７ｍｇ、８ｍｇ、９ｍｇ、１０ｍｇ、１５ｍｇ、２０ｍｇ、２５ｍｇ、または約３０ｍｇなどであり；そしてヒト投与のための有用な高用量は、患者当たり約２５０ｍｇ、２７５ｍｇ、３００ｍｇ、３２５ｍｇ、３５０ｍｇ、３７５ｍｇ、４００ｍｇ、４２５ｍｇ、４５０ｍｇ、４７５ｍｇまたは約５００ｍｇなどである。ヒト投与のための有用な中程度の用量は、患者当たり、約３５ｍｇ、４０ｍｇ、５０ｍｇ、６０ｍｇ、７０ｍｇ、８０ｍｇ、９０ｍｇ、１００ｍｇ、１２５ｍｇ、１５０ｍｇ、１７５ｍｇ、２００ｍｇ、または約２２５ｍｇなどであることが企図される。一般的に、患者当たり、約５〜１００ｍｇ、約１０〜８０ｍｇ、約２０〜７０ｍｇ、約２５〜６０ｍｇ、または約３０〜５０ｍｇの間の用量範囲が好ましい。しかし、上記に引用されたいずれかの例示的用量を用いる任意の特定の範囲または特定の記載された範囲の間の任意の中間の値が意図される。
【０４７５】
記載された範囲にかかわらず、本明細書中に提示されるパラメータおよび詳細なガイダンスを考慮して、活性な範囲または最適な範囲にさらなる変更が、本発明内において包含される。従って、特定の薬剤と組合わせにおいて、低用量がより適切であり得、そして特に、本発明の構築物の増強された安全性を考慮すると、高用量がなお許容され得ることは理解されるべきである。ヒト構築物およびヒトエフェクターの使用は、健常組織における有意な毒性または副作用の機会をさらに減少して、本発明を臨床使用のためにさらに安全にする。
【０４７６】
本発明の治療レジメの意図は、一般的に、受け入れられない毒性に関連するレベル未満の用量をなお維持しながら、有意な抗腫瘍効果を生成することである。用量自体の変化に加えて、投与レジメはまた、処置ストラテジーを最適化するために採用され得る。現在の好ましい処置ストラテジーは、約１ｍｇ〜５００ｍｇ、好ましくは、約１０ｍｇ〜１００ｍｇの抗体、あるいはこれらを含む治療カクテル（ｔｅｒａｐｅｕｔｉｃ  ｃｏｃｋｔａｉｌ）を、約７日間に約３回で投与することである。例えば、用量は、およそ１日目、およそ３日目または４日目、および６日目または７日目に与えられる。
【０４７７】
特定の用量自体の投与において、好ましくは薬学的受容可能な組成物（無菌性、発熱性、純度および一般的な安定性のＦＤＡ基準に従う）を患者に全身的に提供する。静脈内注射が、一般的に好ましく、最も好ましい方法は、約１時間または２時間などの期間にわたって連続注入を使用することである。本発明を使用する処置の前にこのようなパラメータを決定することは必要ではないが、本明細書中に詳述される研究が、注射の約１２〜２４時間以内に固形腫瘍の血管において特異的に観察される少なくともいくらかの血栓を生じること、および腫瘍細胞自体が、約２４〜７２時間以内に死滅し始めることに留意すべきである。広範な腫瘍壊死は、一般的に、次の約４８〜９６時間で観察され、６０％までおよび６０％を超える壊死が、観察される。
【０４７８】
当然、広範な使用の前に、臨床試験が実施される。臨床試験の実行の種々のエレメント（患者の処置およびモニタリングを含む）は、本発明の開示に照らして当業者に公知である。以下の情報は、このような治験を確立する際の使用のための一般的なガイドラインとして提示されている。
【０４７９】
第１の処置研究について選択される患者は、従来の治療の少なくとも１つの過程に応答せず、そして身体検査、実験技術、および／またはＸ線撮影手段によって決定されるような客観的に測定可能な疾患を有する。いずれの化学療法も、本研究に入る少なくとも２週間前に停止する。マウスモノクローナル抗体または抗体部分を使用する場合、患者はマウス免疫グロブリンに対するアレルギーの病歴を有さない。
【０４８０】
特定の利点は、三管腔ポート（ｔｒｉｐｌｅ  ｌｕｍｅｎ  ｐｏｒｔ）を有する中心静脈カテーテルの留置を使用する際に見出される。この治療は、例えば、０．２２μフィルターを使用して濾過され、そして適切に（例えば、生理食塩水で）１００ｍｌの最終用量に希釈される。使用の前に、この試験サンプルはまた、同様の様式で濾過され、そしてＡ２８０を測定することによって濾過の前後でその濃度を評価される。予想される回収率は、８７％〜９９％の範囲内であり、次いで、タンパク質の損失についての調整が補正される。
【０４８１】
この構築物は、約４〜２４時間の期間にわたって投与され、各患者は、２〜７日間の間隔で２〜４回の注入を受ける。投与はまた、７日間にわたって一定速度の注入によって実施され得る。任意の用量レベルで与えられる注入は、観察される任意の毒性に依存する。従って、グレードＩＩの毒性が、任意の単回注入後または一定速度注入の間の特定の期間で達した場合、毒性が改善されない限り、さらなる用量を中止するか、またはその一定速度注入を停止する。漸増用量は、約６０％の患者が、任意のカテゴリーにおいて、受け入れられないグレードＩＩＩまたはＩＶの毒性を示すまで、患者群に投与される。この値の２／３である用量が、安全用量として定義される。
【０４８２】
身体検査、腫瘍測定、および実験室試験は、もちろん、処置前および１ヶ月後までの間隔で実施される。実験室試験としては、全血球計数、血清クレアチニン、クレアチニンキナーゼ、電解質、尿素、ＳＧＯＴ、窒素、ビリルビン、アルブミン、および全血清タンパク質が挙げられる。処置後６０日までに採取された血清サンプルは、投与された構築物、およびそのいずれかの部分に対する抗体の存在について放射免疫アッセイによって評価される。任意の標準的アッセイ（例えば、ＥＬＩＳＡまたはＲＩＡのような）を使用する、血清の免疫学的分析は、治療剤の薬物動態およびクリアランスの評価を可能にする。
【０４８３】
抗腫瘍応答を評価するために、患者を、最後の注入の、４８時間後〜１週間後に、そして再び３０日後に試験するべきである。触知可能な疾患が存在した場合、全ての塊の二つの垂直直径（ｐｅｒｐｅｎｄｉｃｕｌａｒ  ｄｉａｍｅｔｅｒ）を、処置の間毎日、治療完了後１週間以内、および３０日で測定すべきである。触知可能でない疾患を測定するために、連続ＣＴスキャンが、胸部、腹部、および骨盤の全体を通して、１ｃｍ間隔で、４８時間〜１週間で、そして３０日で再び実施され得る。組織サンプルはまた、組織学的におよび／あるいはフローサイトメトリーにより、疾患部位から、または適切であれば血液もしくは体液サンプルからの生検を用いて評価されるべきである。
【０４８４】
臨床応答は、受容可能な基準により規定され得る。例えば、完全な応答は、処置の１カ月後、全ての測定可能な腫瘍がみられないことにより規定され得る。これに対し、部分的な応答は、処置の１カ月後に、増大を示す腫瘍部位なしでの、全ての評価可能な腫瘍小節の垂直直径の積の和の５０％またはそれ以上の減少により規定され得る。同様に、混合応答は、処置の１カ月後に、一つ以上の部位での進行を伴った、全ての測定可能な病巣の垂直直径の積の５０％以上の減少により規定され得る。
【０４８５】
上記のような臨床試験の結果を鑑みて、さらにより正確な処置レジメが処方され得る。そうであったとしても、投与量におけるいくらかのバリエーションは、処置される被験体の状態に依存して、後で必要であり得る。投与に責任をもつ医者は、本開示に鑑みて、個々の被験体に適切な用量を決定し得る。このような最適化および調節は、当該分野において慣用的に実施され、そして過剰な実験量をけっして反映しない。
【０４８６】
Ｍ．併用腫瘍療法
本発明の処置方法は、患者が示す特定の腫瘍、疾患または障害の処置において一般に使用される任意の他の方法と組み合わされてもよい。特定の治療アプローチがそれ自体で患者の状態に対して有害であることが知られておらず、そして本発明の処置に有意に反作用しない限り、本発明とのその組み合わせが考えられる。
【０４８７】
非悪性疾患の併用療法も意図される。このような特定の例は、良性の前立腺過形成（ＢＰＨ）であり、これは当該分野で現在行なわれる他の処置との組み合わせで処置されてもよい。例えば、ＰＳＡのようなＢＰＨ内に局在するマーカーに対する免疫毒素の標的化。
【０４８８】
固形腫瘍処置に関して、本発明は、古典的なアプローチ、例えば外科手術、化学療法、放射線療法、サイトカイン療法、血管新生抑制などと組み合わせて用いられ得る。従って、構築物、レセプターボディまたはベータボディを、外科手術または放射線治療と同時に、または前後に用いる；あるいは従来の化学療法剤または放射線治療剤、サイトカイン、血管新生阻害因子、アポトーシス誘導性因子、標的化免疫毒素またはコアグリガンドなどとともに、またはその前後に患者に投与する、併用療法を本発明は提供する。適切な治療因子の多くの例は、本発明の免疫複合体の局面と関連して上記されている。治療複合体の一部としての使用のために最初に記載された任意の因子はまた、本発明の併用療法において別々に用いられてもよい。
【０４８９】
外科手術に関しては、任意の外科的介入を本発明と組み合わせて実施してもよい。放射線療法と組み合わせて、ＤＮＡ損傷を腫瘍細胞内に局所的に誘導するための任意の機構、例えば、γ放射線、Ｘ線、ＵＶ照射、マイクロ波およびさらには電子発光などが考えられる。腫瘍細胞への放射性同位体の指向性の送達もまた考えられ、これは、標的化抗体または他の標的化方法と組み合わせて用いられ得る。
【０４９０】
ガン処置における物質の組み合わせの一般的使用が周知である。例えば、米国特許第５，７１０，１３４号（参考として本明細書に援用される）は、非毒性物質または「プロドラッグ（ｐｒｏｄｒｕｇｓ）」と組み合わせて腫瘍における壊死を誘導する成分を開示する。壊死的プロセスによって自由になる酵素は、非毒性の「プロドラッグ（ｐｒｏｄｒｕｇ）」を毒性の「薬物（ｄｒｕｇ）」へ切断し、これが腫瘍細胞死をもたらす。また、米国特許第５，７４７，４６９号（参考として本明細書において援用される）は、ｐ５３およびＤＮＡ損傷因子をコードするウイルスベクターの併用使用を開示する。任意のこのような類似のアプローチを本発明とともに用いることができる。
【０４９１】
１つ以上の因子を、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディと組み合わせて用いる場合、併用結果が、各々の処置を別々に行なう場合に観察される効果の相加的なものである必要はない。少なくとも相加作用が一般に所望されるが、単一での治療の１つを上回る抗腫瘍効果の任意の増大が有益である。また、併用処置が相乗作用を示すための特定の要件はないが、これは特に見込みがあって有利である。
【０４９２】
Ｍ１．第二の抗ガン剤の選択
本明細書において用いる場合、本発明の「一次治療因子（ｐｒｉｍａｒｙ  ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ  ａｇｅｎｔｓ）」は、構築物、レセプターボディまたはベータボディである。本明細書において用いる場合、「二次治療因子（ｓｅｃｏｎｄａｒｙ  ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ  ａｇｅｎｔｓ）」は、第二の、別個の治療因子または抗ガン剤、すなわち、一次治療因子「以外の（ｏｔｈｅｒ  ｔｈａｎ）」治療剤または抗ガン剤である。任意の二次治療因子は、本発明の併用療法において用いられ得る。また、二次治療因子または「二次抗ガン剤」は、以下の手引きに従って、相加作用、相加作用より大きい作用および潜在的に相乗的な作用を達成するという観点で選択され得る。
【０４９３】
併用された抗腫瘍治療を行なうために、動物または患者に、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディを、別の、すなわち、第二の別個の抗ガン剤と組み合わせて、その動物または患者において、その併用された抗腫瘍作用を得るのに有効な様式で、単に投与する。従って、この因子は、腫瘍または腫瘍脈管構造内に組み合わされて存在し、その腫瘍環境において組み合わせた作用をするのに有効な量で、かつ有効な時間で提供される。この目的を達成するために、本発明の一次治療剤および第二の別個の抗ガン因子を動物に実質的に同時に、単一の組成物として投与してもよく、または異なる投与経路を用いて２つの別個の組成物として投与してもよい。
【０４９４】
あるいは、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディは、例えば、数分から数週間の間隔で、第二の別個の抗ガン剤と前後してもよい。本発明の一次治療剤および第二の別個の抗ガン剤が動物に別々に適用される特定の実施形態では、各々の因子は腫瘍に対して有利に組み合わされた効果をさらに発揮することができるように、各々の送達の間に長時間経過して失効しないことを確実にする。このような場合、腫瘍を両方の因子と、互いの約５分〜約１週内に、より好ましくは互いの約１２〜７２時間内に、最も好ましくはわずか約１２〜４８時間の遅延時間で、接触させることを考慮する。
【０４９５】
離れたタイミングの併用療法のための二次治療因子は、以下に考察される規準を含む、特定の規準に基づいて選択され得る。しかし、１つ以上の第二の別個の抗ガン剤の事前の投与または引き続く投与の選択の優先は、所望の場合に実質的に同時投与でそれを使用することを妨げない。
【０４９６】
第二に、本発明の一次治療因子の「前の（先立った）（ｐｒｉｏｒ  ｔｏ）」投与のために選択され、そして増大されかつ潜在的に相乗的である作用を達成するように設計された別個の抗ガン剤は、腫瘍脈管構造内にアミノリン脂質または陰イオン性リン脂質の発現を誘導する因子を含む。例えば、局所的なカルシウム産生を刺激して、原形質膜の外面へＰＳおよび他のリン脂質を移動する膜輸送因子を活性化し、腫瘍内皮細胞を傷害し、前アポトーシス性変化を生じ、そして／または腫瘍内皮細胞においてアポトーシスを誘導する因子は一般に、アミノリン脂質および陰イオン性リン脂質の発現を増大させる。このような因子の例は、ドセタキセルおよびパクリタキソールである。次いで、アミノリン脂質および陰イオン性リン脂質は、本発明の抗体を用いて標的され得、これによって全体的な治療効果を増幅して、また宿主エフェクターを介した攻撃の増大が得られる（補体、ＡＤＣＣ、抗体媒介性食作用、ＣＤＣ）。
【０４９７】
血管形成、再構築または活性化内皮細胞についての選択性を有する薬物、例えば、腫瘍血管には存在するが、正常な休止期の血管には存在しない薬物がまた、腫瘍内皮細胞の表面上でＰＳおよび他のリン脂質の露出を選択的に生じるために用いられ得る。このような因子の例は、コンブレタスタチンおよびドセタキセルである。これもやはり、抗体結合の増大および宿主エフェクター機構の開始の増強をもたらす。
【０４９８】
第二に、本発明の一次治療因子に「引き続く（ｓｕｂｓｅｑｕｅｎｔ  ｔｏ）」投与のために選択された、そして増大されかつ潜在的に相乗的な作用を達成するために設計された別個の抗ガン剤としては、この一次治療因子の効果から利益がある因子が挙げられる。本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディは、腫瘍破壊を生じる。従って、引く続く投与のための有効な第二の、別個の抗ガン剤としては、転移を阻害する血管新生阻害因子；細胞内抗原に特異的な抗体がインビボにおいて悪性細胞から接近可能になるように壊死性腫瘍細胞を標的する因子（各々が参考として本明細書に援用される、米国特許第５，０１９，３６８号、同第４，８６１，５８１号および同第５，８８２，６２６号）；および末梢で生存し得る任意の腫瘍細胞を攻撃する、化学療法剤および抗腫瘍細胞免疫複合体が挙げられる。
【０４９９】
いくつかの状況では、処置の期間を有意に延ばすことが所望され得、各々の投与の間に、数日間（２、３、４、５、６または７）、数週間（１、２、３、４、５、６、７または８）またはさらに数ヶ月間（１、２、３、４、５、６、７または８）経過する。これは、本発明の一次治療因子のような１つの処置が、腫瘍を実質的に破壊し、そして血管新生阻害因子の投与のような別の処置が、微小転移または腫瘍再増殖を妨げることが、意図される状況の場合に、有利である。しかし、効率的な創傷治癒を可能にするため、外科手術後、血管新生阻害因子は、注意深く投与されなければならない。次いで、血管新生阻害因子は、患者の一生涯投与されてもよい。
【０５００】
一次治療因子または第二の別個の抗ガン因子のいずれかの２つ以上の投与が利用されることもまた想定される。一次治療因子および第二の別個の抗ガン剤は、別々の日または週に、互換可能に投与されてもよい；または１つの因子の処置の手順の後に他の処置の手順が行なわれてもよい。いずれの場合においても、併用療法を用いて腫瘍回帰を達成するために必要なことは、投与の回数にかかわらず、抗腫瘍効果を発揮するのに有効な併用量で両方の因子を送達することが全てである。
【０５０１】
実質的に、同時にまたは続けてのいずれで投与されようと、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディ、ならびに治療剤は、１つ以上の化学療法剤または薬物と組み合わせて投与され得る。化学療法薬物は、増殖する腫瘍細胞を殺傷し得、これによって処置全体によって生み出される壊死領域を増強する。これによって薬物は、本発明の一次治療因子の血栓性作用を増強し得る。
【０５０２】
ほとんどのガン化学療法薬物は、分裂している酸素化された細胞に選択性である。これらは、併用療法において有利である。なぜなら、化学療法薬物は、本発明の一次治療因子とは異なる標的に対して作用し、これがさらに完全な抗血管または抗腫瘍効果をもたらすからである。例えば、化学療法薬物は、腫瘍末梢の、急速に分裂している酸素化された腫瘍細胞に対して選択的に活性であるが、本発明の因子は、活性化反応性酸素種が豊富である、「抑制された（ｓｔｒｅｓｓｅｄ）」腫瘍コアにおける血管または腫瘍細胞に対して主に作用する。腫瘍末梢において十分に酸素化された脈管形成性血管に選択性である血管新生阻害薬物はまた、併用で有効である。なぜなら、本発明の因子は、腫瘍コアにおける比較的低酸素で静止状態の血管に対して作用するからである。
【０５０３】
腫瘍血管において血栓の形成を誘導することによって、本発明の一次治療因子はまた、腫瘍内に薬物を保持または捕獲することによって化学療法薬物の作用を増強し得る。従って、化学療法剤は、腫瘍内に保持されるが、残りの薬物は身体から排出される。従って腫瘍細胞は、より高濃度の薬物により長時間曝される。腫瘍内の薬物のこの捕獲によって、薬物の用量を減らすことが可能になり、処置はさらに安全かつさらに有効になる。
【０５０４】
本発明における併用使用のためのさらなる薬物は、一次治療因子の作用によって薬物に対して「感作（ｓｅｎｓｉｔｉｚｅｄ）」されている細胞に作用して、その結果、その抗腫瘍効果を達成するために必要とされる第二の薬物の用量が低下される薬物である。例えば、これは、第二の薬物の作用の主な成分が腫瘍血管で発揮されて本発明の抗体または因子が薬物に対して細胞を感作する場合に生じ得る。本発明の一次治療因子が、直接またはサイトカイン放出の刺激によるかのいずれかによって、第二の薬物に対して腫瘍細胞を感作する場合も同じことがあてはまる。
【０５０５】
併用療法のための他の適切な二次抗ガン剤は、例えば、免疫系の免疫抑制成分の活性を選択的に阻害することによって、宿主エフェクター細胞の活性を増強するものである。このような因子は、その機構の一部としてエフェクター細胞による攻撃を刺激する本発明の一次治療因子がさらに積極的に働くことを可能にする。このような因子の例はドセタキセルである。
【０５０６】
一次治療因子の作用の正確な機構（単数または複数）の理解は本発明の処置を行なうために必要ではないが、このような機構に関連するデータおよび理論的な推察を用いて、本発明における組み合わせた使用のための特定の第二の抗ガン剤を選択することができる。選択された併用療法の有効性によって、次に作用のもとのデータおよび提唱される機構が支持され、これによってまた、併用療法を行なうための第二の抗ガン剤の好ましいカテゴリーがもたらされる。
【０５０７】
アポトーシスを誘導する薬物は、併用療法における使用のために好ましい。例えば、ドセタキセルは、アポトーシスを誘導し、従ってＰＳは、微小管に対する結合および細胞有糸分裂の破壊によって露出する（Ｈｏｔｃｈｋｉｓｓら、２００２）。臨床濃度未満のドセタキセルを用いた、腫瘍血管をライニングする内皮細胞および腫瘍細胞の処置は本明細書においてインビトロにおける３Ｇ４抗体の強力な結合によって実証されるとおり、細胞表面でＰＳ発現を誘導することが示されている。
【０５０８】
本発明の抗腫瘍効果が、抗体媒介性食作用の増大によって示されるように免疫エフェクター機能のＦｃドメイン媒介性増強を誘導するということを本発明者らはまた決定した。従って、この抗体はまた、他のＦｃドメイン媒介性機能、例えば、ＡＤＣＣ、ＣＤＣ、サイトカイン産生の刺激、およびこのような機構の組み合わせを発揮するはずである。これはまた、ドセタキセルに関連する。なぜなら、他の研究は、ドセタキセルを用いた乳ガン患者の処置が、血清ＩＦＮ−γ、ＩＬ−２、ＩＬ−６およびＧＭ−ＣＳＦサイトカインレベルにおける増大をもたらし、これがナチュラルキラー（ＮＫ）細胞およびリンホカイン活性化キラー（ＬＡＫ）細胞の活性を増強することによって、これらの患者における抗腫瘍免疫応答を増強するということを示しているからである（Ｔｓａｖａｒｉｓら、２００２）。
【０５０９】
従って、本発明者らは、ドセタキセルがＰＳ発現および投与された構築物、レセプターボディまたはベータボディの結合の両方を誘導し、また免疫エフェクターの活性を増強し、これが抗腫瘍効果を媒介すると判断した。前述の考慮に基づいて、本発明者らは、３Ｇ４抗体によって例示されるような本発明の抗体の、ドセタキセルとの組み合わせが、同所性ＭＤＡ−ＭＢ−４３５ヒト乳ガン異種移植片を保有するマウスにおいて、ドセタキセルまたは３Ｇ４のいずれか単独よりも有意に優れていたことを示した（実施例ＸＸ）。
【０５１０】
従って、アポトーシスを誘導するドセタキセルおよび他の化学療法剤は、本発明の併用療法における使用のための好ましい因子である。構築物、レセプターボディまたはベータボディと、アポトーシスを誘導する化学療法薬物、例えばドセタキセルとの組み合わせは、腫瘍脈管内皮細胞および腫瘍細胞成分を相乗作用的に攻撃するはずであり、これは処置有効性の有意な増強だけでなく、毒性の低下ももたらす。これらの組み合わせは、乳ガン処置における使用、詳細には、ドセタキセルと本発明の抗体とを用いるメトロノームのような化学療法の併用が意図される。
【０５１１】
Ｍ２．内毒素
内毒素および解毒された内毒素誘導体は、併用処置において、好ましくは低用量で用いられ得る（本明細書において参考として詳細に援用される、ＰＣＴ公開第ＷＯ０３／０２８８４０号）。動物での使用のために、詳細にはヒトにおける使用のために好ましい、種々の解毒された内毒素が利用可能である。解毒および精練された内毒素、ならびにそれらの組み合わせは、各々が参考として本明細書において詳細に援用される、米国特許第４，８６６，０３４号；同第４，４３５，３８６号；同第４，５０５，８９９号；同第４，４３６，７２７号；同第４，４３６，７２８号；同第４，５０５，９００号に記載される。
【０５１２】
非毒性の誘導体モノホスホリル脂質Ａ（ＭＰＬ）は、本発明において用いられ得る解毒された内毒素の１例である。ＭＰＬは、ヒトについて安全であることが公知である；アジュバントとしてＭＰＬを用いる臨床試験によって、外来患者でさえ、ヒトでの使用については１００μｇ／ｍ２が安全であることが示されている。
【０５１３】
Ｍ３．サイトカイン
サイトカイン療法は、組み合わせの治療レジメンのための有効なパートナーであることが証明されている。本発明の組み合わせアプローチにおいて、種々のサイトカインが使用され得る。サイトカインの例としては、ＩＬ−１α、ＩＬ−１β、ＩＬ−２、ＩＬ−３、ＩＬ−４、ＩＬ−５、ＩＬ−６、ＩＬ−７、ＩＬ−８、ＩＬ−９、ＩＬ−１０、ＩＬ−１１、ＩＬ−１２、ＩＬ−１３、ＴＧＦ−β、ＧＭ−ＣＳＦ、Ｍ−ＣＳＦ、Ｇ−ＣＳＦ、ＴＮＦα、ＴＮＦβ、ＬＡＦ、ＴＣＧＦ、ＢＣＧＦ、ＴＲＦ、ＢＡＦ、ＢＤＧ、ＭＰ、ＬＩＦ、ＯＳＭ、ＴＭＦ、ＰＤＧＦ、ＩＦＮ−α、ＩＦＮ−β、ＩＦＮ−γが挙げられる。サイトカインは、患者の状態およびサイトカインの相対的な毒性のような、臨床的指標と整合する標準的レジメンに従って投与される。ウテログロビンはまた、転移を防止または阻害するために用いられ得る（米国特許第５，６９６，０９２号；参考として本明細書に援用される）。
【０５１４】
Ｍ４．ＴＮＦαおよびＴＮＦαの誘導因子
ＴＮＦαおよびＴＮＦαの誘導因子はまた、本発明と組み合わせて用いられ得る。ＴＮＦαは、脈管透過性を増大し、従って、腫瘍への抗ガン剤の浸透を促進することにおいて有用である。抗体局在化は、ＰＳおよび陰イオン性リン脂質を標的化する場合には決して問題ではない。なぜなら本発明においては、ＴＮＦαの併用使用は、腫瘍への他の化学療法剤および免疫複合体の接近を容易にし得、そして遠くの腫瘍細胞への本発明の抗体の結合を増大さえするからである。
【０５１５】
低レベルの内毒素であるＲａｃ１アンタゴニスト、例えば、弱毒化されるかまたは操作されたアデノウイルス、ＤＭＸＡＡ（およびＦＡＡ）、ＣＭ１０１およびサリドマイドがまた使用されてもよい。Ｒａｃ１アンタゴニストは、本発明の併用処置において用いられてもよい。なぜなら１細胞あたり約５０００個のＤＮＡ粒子でＣＤ１４と独立してＴＮＦ上方制御が生じるからである（Ｓａｎｌｉｏｇｌｕら、２００１）。ＣＭ１０１、サリドマイドおよびＤＭＸＡＡがまた、標準的用量または低下した用量で、これと組み合わされて用いられてもよい。
【０５１６】
Ｍ５．化学療法剤
背景にある機構（単数または複数）にかかわらず、種々の化学療法剤が、本明細書に開示される併用処置方法において用いられ得る。併用療法について考えられる化学療法剤としては、例えば、タモキシフェン、タキソール、ビンブラスチン、エトポシド（ＶＰ−１６）、アドリアマイシン、５−フルオロウラシル（５ＦＵ）、カンプトテシン、アクチノマイシン−Ｄ、マイトマイシンＣ、コンブレタスタチン（類）、さらに詳細には、ドセタキセル（タキソテール）、シスプラチン（ＣＤＤＰ）、シクロホスファミド、ドキソルビシン、メトトレキセート、パクリタキセル、およびビンクリスチン、ならびにその誘導体およびプロドラッグが挙げられる。
【０５１７】
当業者に理解されるように、適切な用量の化学療法剤は、一般に、臨床治療においてすでに利用されてきており、ここで、この化学療法剤は、単独で、または他の化学療法剤と組み合わせて投与される。しかし、ここで、本発明によって提供される利点に起因して、低用量が、可能である。例示のみのために、シスプラチンのような薬剤、および他のＤＮＡアルキル化剤が使用され得る。シスプラチンは、ガンを処置するために広範に使用され得、臨床適用において使用される有効な用量は、総計３つの経路について３週間毎に５日間２０ｍｇ／ｍ２である。シスプラチンは、経口で吸収されず、従って、注射を介して、静脈内で、皮下で、腫瘍内で、または腹腔内で送達されねばならない。
【０５１８】
さらに有用な薬剤は、ＤＮＡ複製、有糸分裂、染色体分離および／またはチューブリン活性に干渉する化合物を含む。このような化学療法剤化合物には、アドリアマイシン（ドキソルビシンとしてもまた公知である）、エトポシド、ベラパミル、ポドフィロトキシンなどが挙げられる。新形成の処置のための臨床設定において広範に使用されるので、これらの化合物は、静脈内では、アドリアマイシンについて２１日間隔で２５〜７５ｍｇ／ｍ２からエトポシドについては３５〜５０ｍｇ／ｍ２までの範囲の用量で、静脈内にボーラス注射を通じて、または経口的に静脈内用量の２倍で、投与される。
【０５１９】
ポリヌクレオチド前駆体の合成および忠実度を崩壊させる薬剤もまた使用され得る。特に有用なものは、広範な試験を受け、そして容易に利用可能な薬剤である。そのようなものとして、５−フルオロウラシル（５−ＦＵ）のような薬剤は，新形成組織によって優先的に使用され、新形成細胞に対する標的化のためにこの薬剤を特に有用にさせる。非常に毒性の５−ＦＵは、広範囲のキャリア（局所を含む）において適用可能であるが、３〜１５ｍｇ／ｋｇ／日の範囲の用量を有する静脈内投与が一般に使用される。
【０５２０】
併用療法に関して有用な例示的な化学療法剤は、表Ｄにおいて列挙される。そこで列挙される各薬剤は、例示的であり、そしていかなるようにも限定することを意味しない。当業者は、「Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ」第１の５版、第３３章（特に６２４頁〜６５２頁）に指向される。投薬量におけるいくらかの改変は、おそらく、処置されるべき被験体の状態に依存して生じる。処置を施す医師は、個々の被験体について適切な用量を決定し得る。
【０５２１】
【表２０−１】
2008528521.tif 000007
【０５２２】
【表２０−２】
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【０５２３】
【表２０−３】
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（Ｍ６．抗脈管形成）
用語「脈管形成」とは、一般的に組織または器官への新規な脈管の生成をいう。通常の生理学的条件下で、ヒトまたは動物は、特定の制限された状況においてのみ脈管形成を受ける。例えば、脈管形成は、通常、組織治癒、胎児および胚の発生、および黄体、子宮内膜および胎盤の形成において観察される。しかし、新たな証拠として、脈管形成が、例えば、副腎組織、前立腺および卵巣における特定の正常な状態において重要であることが示される。本発明の治療剤（抗脈管形成が、作用の様式だけでない）は、従って、所望のまたは「生理学的」脈管形が、本発明を使用する場合、阻害されない点で、顕著な抗脈管形成治療に対する利点を、有する（例えば、抗体Ａ４．６．１（Ｂｒｅｍ、１９９８；Ｂａｃａら、１９９７；Ｐｒｅｓｔａら、１９９７）。
【０５２４】
非制御（持続および／または非調節）脈管形成は、種々の疾患状態に関連し、腫瘍の発生および転移の間に生じる。制御脈管形成および非制御脈管形成は、類似の様式で進行すると考えられる。内皮細胞および周皮細胞（基底膜によって囲まれる）は、毛細血管を形成する。脈管形成は、内皮細胞および白血球によって放出される酵素による、基底膜の侵食から始まる。内皮細胞（血管の管腔を裏打ちする）は、基底膜を通って突出する。脈管形成刺激物によって、内皮細胞が、侵食される基底膜を通って移動するように誘導する。移動する細胞は、親の血管から「出芽（ｓｐｒｏｕｔ）」を形成し、ここで内皮細胞が、有糸分裂および増殖を行う。内皮出芽は、互いに吸収して、毛細管ループを形成し、新たな血管を作製する。
【０５２５】
脈管形成がいくつかの正常組織において必要とされる新たな証拠にも関わらず、抗脈管形成治療は、腫瘍および他の疾患の処置においてなお重要である。従って、抗脈管形成治療は、本発明の併用処置における使用のために意図される。本発明の低い比較的頻繁な用量の治療剤と脈管形成を阻害する薬剤との組み合わせは、特に意図される。併用療法と関連して有用な例示的な抗脈管形成剤は、（免疫結合体とともに）上に記載される。任意の１つ以上のこのような薬剤（表Ｂに含まれる）は、本発明とともに併用療法において使用され得る。アンギオスタチン、エンドスタチン、バスキュロスタチン、カンスタチンおよびマスピンが現在好ましい。
【０５２６】
多くの公知の抗ガン剤もまた、それらの作用機構の一部として抗脈管形成効果を有する。これらの薬剤（表Ｅの薬剤によって例示される）は、本発明の併用療法の局面における使用に特に企図される（これらは、上記のように、本発明の抗体に結合体化され得る）。
【０５２７】
【表２１】
2008528521.tif 000010
さらに、αｖβ３に対する抗体ＬＭ６０９はまた、腫瘍後退を誘導し、併用療法において使用され得る。インテグリンαｖβ３アンタゴニスト（例えば、ＬＭ６０９）は、脈管形成内皮細胞のアポトーシスを誘導し、静止血管に影響を与えないで残す。ＬＭ６０９または他のαｖβ３アンタゴニストはまた、αｖβ３とＭＭＰ−２との相互作用を阻害することによって作用し得、タンパク質分解酵素が、内皮細胞および線維芽細胞の移動において重要な役割を果たすと考えられる。
【０５２８】
ＬＭ６０９による脈管形成内皮のアポトーシスは、脈管ネットワークの残りに対するカスケード効果を有し得る。実際に、腫瘍脈管ネットワークが、増殖するための腫瘍のシグナルに完全に応答することを妨げることは、ネットワークの部分的なまたは完全な崩壊を開始し得、腫瘍細胞の死および腫瘍容積の減少を生じる。エンドスタチンおよびアンギオスタチンが同様な様式で機能することが可能である。ＬＭ６０９が静止脈管に影響しないが、腫瘍後退を引き起こし得るという事実は、抗腫瘍効果を得るために、腫瘍内の全ての血管が処置のために標的される必要があるわけではないことを強く示唆する。
【０５２９】
アンギオスタチンに対する抗体はまた、米国特許第５，５２０，９１４号（具体的に本明細書中において参考として援用される）に記載されるように使用され得る。ＦＧＦが脈管形成と関連するので、ＦＧＦインヒビターがまた使用され得る。特定の例は、アルチャラン（ａｒｃｈａｒａｎ）スルフェートのようなグリコサミノグリカンを含む、それらの主要な反復単位として、２−Ｏ硫酸化ウロン酸で配列を交代するＮ−アセチルグルコサミンを有する化合物である。このような化合物は、米国特許第６，０２８，０６１号（本明細書中において具体的に参考として援用される）に記載され、そして併用して使用され得る。
【０５３０】
（Ｍ７．ＶＥＧＦインヒビター）
ＶＥＧＦは、低酸素および発ガン性変異によって誘導される多機能性サイトカインである。ＶＥＧＦは、胚形成における脈管ネットワークの発生および維持の最初の刺激物である。これは、強力な浸透性誘導剤、内皮細胞化学走化性剤、内皮生存因子、および内皮細胞増殖因子として機能する。その活性は、正常な胚発生に必要とされる。なぜなら、ＶＥＧＦの一方または両方の対立遺伝子の標的化された破壊が、胚の死を生じるからである。
【０５３１】
１つ以上のＶＥＧＦ阻害方法の使用は、本発明の併用療法の好ましい局面である。病理学的状態における脈管形成の第１の刺激としてのＶＥＧＦの認識は、ＶＥＧＦの活性を遮断する種々の方法を導いた。開発された任意のＶＥＧＦインヒビターは、ここで、有利にこれとともに使用され得る。従って、ＶＥＧＦシグナル伝達を妨害するために設計された、以下の中和抗ＶＥＧＦ抗体、可溶性レセプター構築物、アンチセンスストラテジー、ＲＮＡアプタマーおよびチロシンキナーゼインヒビターの任意の１つ以上が、使用され得る。
【０５３２】
適切な薬剤としては、中和抗体（Ｋｉｍら、１９９２；Ｐｒｅｓｔａら、１９９７；Ｓｉｏｕｓｓａｔら、１９９３；Ｋｏｎｄｏら、１９９３；Ａｓａｎｏら、１９９５）、可溶性レセプター構築物（ＫｅｎｄａｌｌおよびＴｏｍａｓ、１９９３；Ａｉｅｌｌｏら、１９９５；Ｌｉｎら、１９９８；Ｍｉｌｌａｕｅｒら、１９９６）、チロシンキナーゼインヒビター（Ｓｉｅｍｅｉｓｔｅｒら、１９９８）、アンチセンスストラテジー、ＲＮＡアプタマーおよびＶＥＧＦまたはＶＥＧＦレセプターに対するリボザイム（Ｓａｌｅｈら、１９９６；Ｃｈｅｎｇら、１９９６）が挙げられる。アンタゴニスト特性を有するＶＥＧＦの改変体もまた、ＷＯ９８／１６５５１に記載されるように使用され得る。上記参考文献の各々が、本明細書中において具体的に援用される。
【０５３３】
ＶＥＧＦに対するブロッキング抗体は、特に、単純さのために、特定の実施形態において好ましい。ＶＥＧＦに対するモノクローナル抗体は、ヒト腫瘍異種移植片増殖およびマウスにおける腹水形成を阻害することが示されている（Ｋｉｍら、１９９３；Ｍｅｉｓｉａｎｏら、１９９８；Ｌｕｏら、１９９８ａ；１９９８ｂ；Ｂｏｒｇｓｔｒｏｍら、１９９６；１９９８；各々が、本明細書中において参考として援用される）。抗体Ａ４，６．１は、ＶＥＧＦＲ１およびＶＥＧＦＲ２の両方に結合するＶＥＧＦを遮断し得る高親和性抗ＶＥＧＦ抗体である（Ｋｉｍら、１９９２；Ｗｉｅｓｍａｎｎら、１９９７；Ｍｕｌｌｅｒら、１９９８；Ｋｅｙｔら、１９９６；各々が、本明細書中において参考として援用される）。Ａ４．６．１は、最近、一価ファージディスプレイ技術によってヒト化され、現在、抗ガン剤として第Ｉ期の臨床試験にある（Ｂｒｅｍ、１９９８；Ｂａｃａら、１９９７；Ｐｒｅｓｔａら、１９９７；各々が、本明細書中において参考として援用される）。
【０５３４】
Ａ４．６．１のＦａｂフラグメントによって結合されたＶＥＧＦのアラニン走査変異誘発およびＸ線結晶は、Ａ４．６．１が結合するＶＥＧＦに対するエピトープが、アミノ酸８９〜９４の辺りで中心であることを示した。この構造データは、Ａ４．６．１が、ＶＥＧＦをＶＥＧＦＲ２への結合から競合的に阻害するが、おそらく立体障害によって、ＶＥＧＦがＶＥＧＦＲ１へ結合することを阻害することを示す（Ｍｕｌｌｅｒら、１９９８；Ｋｅｙｔら、１９９８；各々が、本明細書中において参考として援用される）。
【０５３５】
Ａ４．６．１は、本発明とともに使用され得る。しかし、２Ｃ３（４５４５）と呼ばれる新規な抗体が現在好ましく、これは、ＶＥＧＦと２つのＶＥＧＦレセプターのうちの１つのみとの相互作用を選択的に遮断する。２Ｃ３は、内皮細胞のＶＥＧＦ媒介増殖を阻害し、強力な抗腫瘍活性を有し、そしてＶＥＧＦとＶＥＧＦＲ２（ＫＤＲ／Ｆｌｋ−１）との相互作用を選択的に遮断するが、ＶＥＧＦＲ１（ＦＬＴ−１）を遮断しない。Ａ４．６．１と対照的に、２Ｃ３は、マクロファージ化学走化性（ＶＥＧＦＲ１によて媒介される）の付随した阻害無しに、ＶＥＧＦＲ２によって誘導される脈管形成の特異的阻害を可能にし、従って、より安全な治療剤であると企図される。米国特許第６，３４２，２１９号、同第６，３４２，２２１号、同第６，４１６，７５８号、および同第６，４１６，７５８号は、２Ｃ３抗体ならびに抗脈管形成治療およびＶＥＧＦ阻害におけるその使用をさらに記載するために、本明細書中で具体的に参考として援用される。
【０５３６】
（Ｍ８．アポトーシス誘導剤）
本発明の治療剤はまた、好ましくは、腫瘍（腫瘍細胞および腫瘍脈管内皮細胞を含む）内で任意の細胞のアポトーシスを誘導する処置方法と組み合わされる。アポトーシスを誘導する例示的な薬剤は、（免疫結合体とともに）上に列挙される。任意の１つ以上のこのようなアポトーシス誘導剤が、本発明の抗体に連結されること無しに、本発明の併用療法において使用され得る。
【０５３７】
多くの公知の抗ガン剤がまた、それらの作用機構の一部として、アポトーシス誘導効果を有する。これらの薬剤（表Ｆにおける薬剤によって例示される）は、本発明の併用療法の局面における使用のために特に企図される（これらは、上記のように、本発明の抗体に結合体化され得る）。
【０５３８】
【表２２】
2008528521.tif 000011
（Ｍ９．免疫毒素およびコアグリガンド）
本発明はまた、標的タンパク質が腫瘍細胞のマーカー、腫瘍脈管構造または腫瘍支質に向けられる、他の免疫毒素またはコアグリガンドとともに使用され得る。ＰＥ結合ペプチドを標的化する際に使用するための本明細書中に記載される標的化剤のいずれかが、これらの実施形態において使用され得る。免疫毒素において、結合される薬剤は、抗細胞剤または細胞傷害剤、サイトカイン、放射線治療剤、抗脈管形成剤、アポトーシス誘導剤および抗チューブリン薬物を含む。コアグリガンドにおいて、結合される薬剤は、コアグリガンドである。米国特許第５，８５５，８６６号、同第５，９６５，１３２号、同第６，２６１，５３５号、同第６，０５１，２３０号、同第６，４５１，３１２号（免疫毒素）、同第６，０９３，３９９号、同第６，００４，５５５号、同第５，８７７，２８９号、および同第６，０３６，９５５号（コアグリガンド）が、このような構築物を例示するために、本明細書中で具体的に参考として援用される。
【０５３９】
（Ｍ１０．ＡＤＥＰＴおよびプロドラッグ治療）
本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディは、プロドラッグと組み合わせて使用され得、ここでこの抗体は、プロドラッグ活性化成分（例えば、抗体に接触した際にのみ、プロドラッグをより活性な形態へ変換するプロドラッグ活性化酵素）と作動可能に付随される。この技術は、一般に「ＡＤＥＰＴ」と称され、そして例えば、ＷＯ９５／１３０９５；ＷＯ９７／２６９１８、ＷＯ９７／２４１４３および米国特許第４，９７５，２７８号および同第５，５６８，５６８号（これらは、各々具体的に本明細書中に参考として援用される）において記載される。
【０５４０】
本明細書中で使用される場合、用語「プロドラッグ」は、プロドラッグが基づく親の薬物と比較して（腫瘍血管内皮細胞を含む）標的細胞に対する減少した細胞傷害性または他の抗細胞性効果を及ぼす生物学的にかまたは薬学的に活性な物質の前駆体または誘導体形態をいう。好ましくは、プロドラッグまたは前駆体形態は、有意な減少を及ぼすか、またはより好ましくは、「ネイティブ」または親の形態と比較して、無視できる細胞傷害性または抗細胞性効果を及ぼす。「プロドラッグ」は、活性化されているかまたは変換されて、その薬物のより活性な親の形態を生じ得る。
【０５４１】
プロドラッグを作製しそして使用する技術的能力は、当業者の範囲内である。Ｗｉｌｌｍａｎら（１９８６）およびＳｔｅｌｌａら（１９８５）は、種々のプロドラッグの作製方法および使用方法に関する記載および技術をさらに供給する目的のために参考として本明細書中に各々具体的に援用される。本発明の文脈で使用され得る例示的なプロドラッグ構築物としては、以下が挙げられるがこれらに限定されない：ホスフェート含有プロドラッグ（米国特許第４，９７５，２７８号）、チオホスフェート含有プロドラッグ、サルフェート含有プロドラッグ、ペプチドベースのプロドラッグ（米国特許第５，６６０，８２９号；同第５，５８７，１６１号；同第５，４０５，９９０号；ＷＯ９７／０７１１８）、Ｄ−アミノ酸改変プロドラッグ、グリコシル化プロドラッグ（米国特許第５，５６１，１１９号；同第５，６４６，２９８号；同第４，９０４，７６８号、同第５，０４１，４２４号）、βラクタム含有プロドラッグ、必要に応じて置換されたフェノキシアセトアミド含有プロドラッグ（米国特許第４，９７５，２７８号）、必要に応じて置換されたフェニルアセトアミド含有プロドラッグおよびさらには５−フルオロシトシン（米国特許第４，９７５，２７８号）および５−フルオロウリジンプロドラッグなど（これらの特許の各々は、本明細書中に参考として具体的に援用される）。
【０５４２】
プロドラッグの形態で使用され得る治療剤または細胞傷害性薬物の型は、実質的には限られる。より細胞傷害性薬剤は、このような送達の形態には好ましく、たとえば、コアグラント（プロドラッグとしての使用にあまり好ましくない）の送達より好ましい。プロドラッグが実質的に不活性であり、そして「放出された」かまたは活性化された薬物が、実質的にかまたは意図される目的のための活性を有するように構築物を設計することが、プロドラッグの形成において必要とされる全てである。
【０５４３】
もとのプロドラッグに関する種々の改良もまた、ＷＯ  ９５／０３８３８０；ＥＰ  ７５１，１４４（アントラサイクリン）；ＷＯ  ９７／０７０９７（シクロプロピルインドール）；およびＷＯ  ９６／２０１６９に開示されるように、公知でありかつ本明細書との使用について意図される。例えば、Ｋｍが減少したプロドラッグは、米国特許第５，６２１，００２号（本明細書中に参考として特に援用される）に記載され、これは本発明の状況において使用され得る。細胞内にて実行されるプロドラッグ治療もまた、ＷＯ  ９６／０３１５１（本明細書中に参考として特に援用される）に例示されるように公知であり、そして本明細書を用いて実施され得る。
【０５４４】
ＡＤＥＰＴにおける使用のために、そのプロドラッグをより活性な薬物へと活性化または変換する因子が、本発明の抗体に作動可能に結合される。従って、この抗体は、脈管形成部位内または腫瘍部位内で、プロドラッグ変換能力を局在化し、活性薬物がそのような領域のみで産生され、そして循環中または健常組織においては産生されないようにする。
【０５４５】
本発明の抗体に結合してプロドラッグ活性化にて機能し得る酵素としては、ホスフェート含有プロドラッグと組み合わせた使用のためのアルカリホスファターゼ（米国特許第４，９７５，２７８号）；スルフェート含有プロドラッグと組み合わせた使用のためのアリールスルファターゼ（米国特許第５，２７０，１９６号）；ペプチドに基づくプロドラッグと組み合わせた使用のためのペプチダーゼおよびプロテアーゼ（例えば、セラチアプロテアーゼ、サーモリシン、サブチリシン、カルボキシペプチダーゼ（米国特許第５，６６０，８２９号；同第５，５８７，１６１号；同第５，４０５，９９０号）およびカテプシン（カテプシンＢおよびＬを含む））；Ｄ−アミノ酸修飾プロドラッグと組み合わせた使用のためのＤ−アラニルカルボキシペプチダーゼ；グリコシル化プロドラッグと組み合わせた使用のための炭水化物切断酵素（例えば、β−ガラクトシダーゼおよびノイラミニダーゼ）（米国特許第５，５６１，１１９号；同第５，６４６，２９８号）；β−ラクタム含有プロドラッグと組み合わせた使用のためのβ−ラクタマーゼ；アミノ窒素にてフェノキシアセトアミド基またはフェニルアセトアミド基で誘導体化された薬物と組み合わせた使用のためのペニシリンアミダーゼ（例えば、ペニシリンＶアミダーゼ（米国特許第、９７５，２７８号）またはペニシリンＧアミダーゼ）；ならびに５−フルオロシトシンに基づくプロドラッグ（米国特許第４，９７５，２７８号）と組み合わせた使用のためのシトシンデアミナーゼ（米国特許第５，３３８，６７８号；同第５，５４５，５４８号）が、挙げられるがこれらに限定されず、これらの特許各々は、本明細書中に参考として特に援用される。
【０５４６】
（Ｎ．抗体コーティングリポソームおよび治療剤）
リポソーム処方物は、しばしば、治療剤および薬剤において使用される。しかし、最初の研究においてリポソームの生体分布は、このような処方物が、ヒトにおいて幅広く適用可能でないことを意味する。リポソームは、細網内皮系（ＲＥＳ）の食細胞（循環する単核食細胞ならびに肝臓および脾臓に位置する細胞を含む）によって迅速に取り込まれる。したがって、血液循環半減期は、数分と短くあり得る。
【０５４７】
「ステルス（ｓｔｅａｌｔｈ）またはステルス化」リポソームおよび処方の技術は、このように開発され、これは、リポソームがより長く循環することを可能にする。ステルス化リポソームにおける使用のための好ましい薬剤は、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）であり、そして得られるリポソームはまた、ＰＥＧ化リポソームと呼ばれる。
【０５４８】
毛細管中の窓の平均直径よりも直径が小さいリポソームは、循環から漏出する。迅速に増殖する腫瘍における窓の平均直径は、正常な組織よりも大きく、したがって、直径が約１００ｎｍよりも小さいリポソームは、腫瘍に入り込む。ステルスリポソームは、ガン患者において腫瘍に、細胞傷害剤を送達する際に使用するために提案されている。ある範囲の薬物は、ステルスリポソームに組み込まれている（シスプラチン（Ｒｏｓｅｎｔｈａｌら、２００２）、ＴＮＦα（Ｋｉｍら、２００２）、ドキソルビシン（Ｓｙｍｏｎら、１９９９）およびアドリアマイシン（Ｓｉｎｇｈら、１９９９）（各々が、本明細書中において具体的に参考として援用される）を含む）。しかし、最近の報告は、転移性乳ガンの処置においてステルスリポソームドキソルビシンおよびビノレルビンの予期しない低い効力を示した（Ｒｉｍａｓｓａら、２００３）。
【０５４９】
本発明は、改善されたステルス化リポソーム処方物を提供し、当該分野の種々の欠点を克服し、ここで、ステルス化リポソームは、本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディと機能的に関連するかまたは「コーティング」される。９Ｄ２、３Ｇ４（ＡＴＣＣ４５４５）および本発明の類似の競合抗体が、このような使用に好ましいが、任意の抗体、またはその抗原結合領域（アミノリン脂質または陰イオン性リン脂質に結合する）が使用され得る。二価抗体または抗体部分は、本発明のこれらの局面において必要とされない。
【０５５０】
任意のステルス化リポソームが、新規なリポソーム処方物の基礎を形成し得、そして好ましくは、ＰＥＧ化リポソームが使用される。ステルス化リポソームは、「コーティング」される。すなわち、構築物、レセプターボディまたはベータボディと作動可能にまたは機能的に関連する。作動可能にまたは機能的に関連は、構築物、レセプターボディまたはベータボディが、標的ＰＳまたは陰イオン性リン脂質に特異的に結合する能力を保持し、それによってステルス化リポソームおよびその任意の内容物をＰＳポジティブ細胞（例えば、腫瘍細胞および腫瘍脈管内皮細胞）に送達または標的化するように、なされる。
【０５５１】
本発明のコーティングステルス化リポソームは、単独で使用され得る。しかし、好ましくは、このようなリポソームはまた、１つ以上の第２の治療剤（例えば、抗ガン剤または化学療法剤（第１の治療剤が、抗体自体である））を含む。第２の治療剤は、一般的に、リポソームの「コア」内であるとして記載される。抗体への結合体のためにまたは併用療法のために、当該分野で公知であり、そして／または本明細書中に記載される任意の１つ以上の第２の抗ガン剤または化学療法剤が、本発明の抗体コーティングステルスリポソームにおいて使用され得る。例えば、任意の化学療法剤または放射線療法剤、サイトカイン、抗脈管形成剤またはアポトーシス誘導剤。化学療法剤において現在好ましいのは、抗チューブリン薬物、ドセタキセルおよびパクリタキセルである。
【０５５２】
さらに、本発明の抗体コーティングステルス化リポソームはまた、ウイルス感染および疾患を処置する際に使用するための１つ以上の抗ウイルス薬物を装填され得る。抗ガン剤とともに、抗体への結合体のためにまたは併用療法のために、当該分野で公知であり、そして／または本明細書中に記載される、第２の抗ウイルス薬物の任意の１つ以上が、本発明の抗体コーティングステルス化リポソームにおいて使用され得る。シドファビルおよびＡＺＴは、現在好ましい例である。
【０５５３】
（Ｏ．抗脈管、抗脈管形成および他の治療）
本発明はまた、異常な脈管形成が関与する他の疾患（プロトロンビン血管を有する疾患および障害を含む）の処置において使用され得る。治療機構のみではないが、本発明の抗体、免疫結合体およびペプチドベース治療剤はまた、異常な脈管形成（例えば、種々の疾患および障害に寄与する）を有する動物および患者を処置するために使用され得る。
【０５５４】
抗脈管形成、プロトロンビン脈管構造または他の抗脈管機構に基づくか否かに関わらず、本発明は、流行したおよび／または臨床的に重要なガン処置の分野以外の疾患を処置するために使用され、これには、以下が挙げられる：関節変形、慢性関節リウマチ、乾癬、アテローム性動脈硬化症、糖尿病性網膜症、加齢性黄斑変性、グレーヴズ病、血管性再狭窄（以下の再狭窄を含む：血管形成術、動静脈機能不全（ＡＶＭ）、髄膜腫、血管腫および血管新生緑内障）。介入についての他の標的には、以下が挙げられる：血管線維腫、アテローム性動脈硬化症斑、角膜移植新生血管形成、血友病性関節、肥大性瘢痕、オースラー−ウェーバー症候群、化膿性肉芽腫水晶体後線維増殖症、強皮症、トラコーマ、脈管接着、滑膜炎、皮膚炎、種々の他の炎症性疾患および障害、ならびに子宮内膜症。本発明によって処置可能なさらなる疾患および障害、ならびにこのような脈管形成障害の統一的な基礎が、以下に記載される。
【０５５５】
異常な脈管構造および脈管形成が関連する１つの顕著な疾患は、慢性関節リウマチであり、ここで、関節の滑膜内壁における血管は、脈管形成を起こす。新しい脈管ネットワークの形成に加えて、内皮細胞は、パンヌス増殖および軟骨破壊に導く、因子および反応性酸素種を放出する。脈管形成に関連する因子は、慢性関節リウマチの慢性的な炎症状態に能動的に寄与し、そして維持するのを助け得る。脈管形成に関連する因子はまた、変形性関節症において役割を有し、関節の破壊に寄与する。種々の因子（ＶＥＧＦを含む）が、慢性関節リウマチおよび変形性関節炎の病態に関係することが示されている。
【０５５６】
異常な脈管構造および脈管形成を含む疾患の別の重要な例は、眼血管新生疾患である。この疾患は、眼の構造（例えば、網膜または角膜）への新しい血管の侵入によって特徴付けられる。それは、失明に最も一般的な原因であり、そして約２０の眼の疾患に関係する。加齢性黄斑変性において、関連した視覚問題は、網膜色素上皮の真下での維管束組織の増殖を有するブルーフ膜における欠陥を介する脈絡膜毛細管の内殖によって引き起こされる。脈管形成損傷はまた、糖尿病性網膜症、未熟児網膜症、角膜移植拒絶、血管新生緑内障および水晶体後線維増殖症と関連する。
【０５５７】
本発明に従って処置され得る角膜新生血管形成に関連する他の疾患には、以下が挙げられるが、これらに限定されない：流行性角結膜炎、ビタミンＡ欠損、コンタクトレンズ過剰装着（ｏｖｅｒｗｅａｒ）、萎縮性角膜炎、上輪部角膜炎、翼状角膜炎乾燥症、シェーグレン症（ｓｊｏｇｒｅｎｓ）、しゅさ性挫瘡、フリクテン症（ｐｈｙｌｅｃｔｅｎｕｌｏｓｉｓ）、梅毒、マイコバクテリア感染、脂質変性、化学的やけど、細菌性潰瘍、真菌性潰瘍、単純疱疹感染、帯状疱疹感染、原虫感染、カポージ肉腫、モーレン潰瘍、テリエン辺縁変性、辺縁角膜炎、慢性関節リウマチ、全身性狼瘡、多発性動脈炎、外傷、ヴェーゲナー類肉腫症、強膜炎、スティーヴンズ−ジョンソン疾患、脈絡放射状角膜切開、および角膜移植片（ｇｒａｐｈ）拒絶。
【０５５８】
本発明に従って処置され得る網膜／脈絡膜新生血管形成に関連する疾患には、以下が挙げられるが、これらに限定されない：糖尿病性網膜症、黄斑変性、鎌状赤血球貧血、サルコイド、梅毒、弾性線維性仮性黄色腫、パジェット病、静脈閉鎖、動脈閉鎖、頸動脈閉塞性疾患、慢性ブドウ膜炎／硝子体炎（ｖｉｔｒｉｔｉｓ）、マイコバクテリア感染、ライム病、全身性エリテマトーデス（ｅｒｙｔｈｅｍａｔｏｓｉｓ）、未熟児網膜症、イールズ病、ベチェット病（Ｂｅｃｈｅｔｓ  ｄｉｓｅａｓｅ）、網膜症または脈絡膜炎を引き起こす感染、推定眼ヒストプラスマ症、ベスト病、近視、視神経乳頭の先天的な構造上の欠損、シュタルガルト病、扁平部炎、慢性網膜剥離、過粘稠度症候群、トキソプラスマ症、外傷およびレーザー処置後の合併症。
【０５５９】
本発明に従って処置され得る他の疾患には、以下が挙げられるが、これらに限定されない：ルベオーシス（角の新生血管形成）に関連する疾患、および増殖性硝子体網膜症の全ての形態を含む維管束組織または線維性組織の異常増殖によって引き起こされる疾患（糖尿病と関連するかしないか）。
【０５６０】
慢性炎症はまた、異常な脈管構造および病理学的新脈管形成に関連する。潰瘍性大腸炎およびクローン病のようなこのような疾患状態は、新しい血管の炎症性組織への内殖とともに、組織学的変化を示す。南アメリカに見出されるバルトネラ症（細菌性感染）は、脈管内皮細胞の増殖によって特徴付けられる慢性的な段階を生じ得る。
【０５６１】
異常な脈管構造および脈管形成に関連する別の病理学的役割は、アテローム性動脈硬化症に見出される。血管の管腔内に形成されるプラークは、脈管形成刺激活性を有することが示されている。ヒト冠状動脈硬化の進行において、および閉塞性冠疾患における再疎通プロセスにおけるＶＥＧＦのような脈管形成マーカーの病態生理学的重要性についての特定の証拠がある。本発明は、このような状態のための有効な処置を提供する。
【０５６２】
小児期の最も頻繁な脈管形成疾患の１つは、血管腫である。ほとんどの場合において、腫瘍は良性であり、そして介入なく退行する。より重篤な場合において、腫瘍は、大きな空洞性かつ浸潤性の組織に進行し、そして臨床的な合併症を作り出す。血管腫の全身的な形態である、血管腫症（ｈｅｍａｎｇｉｏｎｍａｔｏｓｅｓ）は、高い死亡率を有する。現在使用される治療法を用いて処置され得ない治療耐性血管腫が存在する。
【０５６３】
新脈管形成はまた、オースラー−ウェーバー−ランデュ病、つまり遺伝性出血性毛細管拡張症のような遺伝性疾患に見出される損傷についての原因である。これは、血管またはリンパ管の複数の小さな血管腫、腫瘍によって特徴付けられる遺伝疾患である。血管腫は、皮膚および粘膜に見出され、しばしば、鼻出血（鼻血）または胃腸出血によって、ならびにときどき肺および肝動静脈瘻を伴って生じる。
【０５６４】
新脈管形成はまた、生殖および創傷治癒のような通常の生理学的プロセスに関係する。新脈管形成は、排卵、およびまた、受精後の胞胚の着床において重要な工程である。新脈管形成の阻止により、排卵をブロックするために、または胞胚による着床を防止するために無月経を誘導し得る。創傷治癒において、過剰修復または線維増殖症は、外科手順の有害な副作用であり得、そして新脈管形成によって引き起こされ得るか、または悪化され得る。接着は、手術の頻繁な合併症であり、そして小腸閉塞症のような問題に導く。これは、本発明によって処置され得る。
【０５６５】
前述の疾患および障害の各々はまた、全てのタイプの腫瘍とともに、本発明に従う処置が考えられる。米国特許第５，７１２，２９１号は、本明細書において参考として詳細に援用されており、一旦脈管形成の阻害が特定の因子を用いて示されれば、その因子などを用いる異常な脈管形成に関連する広範な疾患の処置は合理的に実行できるという当該分野における知識をさらに実証する。米国特許第６，５２４，５８３号はまた、同様の目的のために、そしてこの原理が抗体に基づく治療剤を用いる脈管形成の阻害および血管形成性疾患の処置にあてはまるということを詳細に実証するために、本明細書において参考として詳細に援用される。従って、腫瘍保有マウスにおける３Ｇ４抗体（ＡＴＣＣ  ４５４５）の血管新生阻害効果（図１７Ａ）は、３Ｇ４などの抗体が広範な血管形成性疾患を処置するために適切である重要な証拠である。
【０５６６】
本発明はさらに、ＰＳまたは陰イオン性リン脂質がある役割を果たす他の疾患を処置するのにおける使用のために提供される。例えば、ＰＳは細胞接着、炎症性応答および敗血性ショックに関与するので、構築物、レセプターボディまたはベータボディが、炎症性および敗血症ショックの処置において用いられ得る。
【０５６７】
アミノリン脂質および／または陰イオン性リン脂質、詳細にはＰＳはまた、鎌状赤血球貧血に、詳細にはクリアランス機構の一部として関与する。従って、構築物、レセプターボディまたはベータボディは、鎌状赤血球貧血を処置または緩和するために用いられ得る。本発明の構築物、レセプターボディまたはベータボディはまた、寄生虫疾患を処置するため、およびマラリアを処置するために使用され得る。
【０５６８】
Ｐ．抗ウイルス処置方法
本発明はさらに、ウイルス感染を処置するのにおける使用のために、必要に応じて抗ウイルス剤に結合体化された、ある範囲の構築物を提供する。この処置レジメン、および詳細には用量は一般に、本発明のガン処置局面について上記されたとおりであって、この適応性は本発明全体の利点である。作用の特定の機構（単数または複数）の理解は、本発明の抗ウイルス処置を行なうのに必要ではないが、本明細書の実施例によって支持されるとおり、ウイルス処置の基礎にある特定の理由は以下のとおりである。
【０５６９】
最も重要な機構は、ウイルス複製および宿主細胞の活性化と関連していると考えられる。ウイルス感染の間、このウイルスは、細胞の内側での複製プロセスの間に細胞を活性化する。細胞活性化のこのプロセスは、ヘルペスウイルス、Ｃ型肝炎およびＨＩＶ−１について示されるとおり、ウイルス複製に必須である。ウイルスの発達は、ウイルスおよび宿主の両方の遺伝子発現を活性化する。例えば、ＰｉｃｈｉｎｄｅウイルスおよびＭａｃｈｕｐｏウイルスの複製は、複製周期後期でアクチノマイシンＤによって阻害され、このことは宿主細胞遺伝子転写がウイルス複製の完成に必要であることを示す。
【０５７０】
ウイルスによる宿主細胞の活性化は、細胞の陰イオン性リン脂質およびアミノリン脂質、例えばＰＳおよびＰＥを外面化させる。詳細には、本発明者らは、ウイルス活性化が細胞内へＣａ２＋流入を生じ、これがスクランブラーゼを活性化して、陰イオン性リン脂質およびアミノリン脂質、詳細にはＰＳおよびＰＥを外面化させると判断する。陰イオン性リン脂質およびアミノリン脂質、好ましくはＰＳおよびＰＥに結合する抗体、ペプチド誘導体、および結合体は、次いで活性化プロセスに結合して、これを妨害し、これによってウイルスが適切に複製され得ることを妨げる。
【０５７１】
本実施例によって、本発明がウイルス感染の後期プロセスにおいて機能して、ウイルスの成熟または出現をブロックすることが示される。本発明者らの研究によって、本発明の因子の阻害性効果が広範に適用可能であることが示される。なぜなら、この因子は異なる発現機構を用いるウイルス上で作動することが示されているからである。例えば、本実施例は、ゴルジ由来開口分泌小胞から逃避するヘルペスウイルス（ＣＭＶ）のブロック、ならびに原形質膜から直接出芽する、アレナウイルス（Ｐｉｃｈｉｎｄｅウイルス）およびパラミクソウイルス（ＲＳＶ）のブロックを実証する。
【０５７２】
ウイルス感染した細胞は、陰イオン性リン脂質およびアミノリン脂質、詳細にはＰＳおよびＰＥを外面化させ、これは正常には細胞内であり、すなわち、原形質膜の内面に限局される。ウイルスの逃避の間、リン脂質は、逃避の部位で再分布して、これは原形質膜からのウイルスの出芽または開口分泌の間の膜屈曲に適合し、そして陰イオン性リン脂質およびアミノリン脂質が、このプロセスの間に外面化される。従って、本発明の抗体、ペプチド誘導体および結合体は、外面化した陰イオン性リン脂質およびアミノリン脂質、詳細にはＰＳおよびＰＥに結合して、感染した細胞からのウイルスの逃避をブロックする。ウイルス感染した細胞への本発明の構築物の結合も、本実施例に示される。
【０５７３】
本発明の構築物および結合体はさらに、外面化された陰イオン性リン脂質およびアミノリン脂質、詳細にはＰＳおよびＰＥに結合し得、そしてウイルス遺伝子発現および／または複製のために必要な１つ以上のシグナル伝達経路を妨げる。
【０５７４】
さらに、エンベロープのあるビリオン自体は、それらの外面に、陰イオン性リン脂質（例えばＰＳ）を有する可能性が高い。ウイルスは転位酵素を欠いて、リン脂質を対称に維持するかまたは修復するので、ＰＳおよびＰＥのようなリン脂質の連続的な露出が期待される。従って、本発明の抗体、ペプチド誘導体および結合体は、マクロファージのような宿主細胞によるオプソニン作用、補体結合、食作用および遊離のウイルス粒子の排泄を生じ得る。
【０５７５】
本発明のさらなる局面において、ウイルスは、感染および／または合胞体（ｓｙｎｃｉｔｉａ）形成のためにアミノリン脂質を必要とするようである。本発明の抗体、ペプチド誘導体および結合体はさらに、アミノリン脂質に対する結合によってウイルスのライフサイクルのこれらの局面をブロックし得る。
【０５７６】
前述の洞察に従って、そして本実施例に照らして、本発明についてのウイルス処置のスペクトルは、エンベロープの有無、ＤＮＡまたはＲＮＡにかかわらず、任意のウイルスに拡大する。本発明の陰イオン性リン脂質およびアミノリン脂質に結合する抗体、ペプチド誘導体および結合体は少なくとも部分的には、細胞の内側のウイルス複製をブロックし、そして／または細胞からのウイルスの逃避を防止するので、本発明はエンベロープのあるウイルスのみの処置にも任意の特定のウイルスにも限定されず、これは重要な利点である。例えば、本発明に引き続いて公開された研究によって、アネキシンＶおよびＰＳのビヒクルがマクロファージのＨＩＶ−１感染を阻害し得るが、Ｔ細胞のＨＩＶ−１感染も他のウイルス、例えば、水疱性口内炎ウイルスＧおよびアンホトロピックマウス白血病ウイルスも阻害できないということが報告される（Ｃａｌｌａｈａｎら、２００３）。
【０５７７】
天然には、本発明の構築物および結合体は、エンベロープのあるウイルス上で、詳細には、ＰＳおよびＰＥの、陰イオン性リン脂質およびアミノリン脂質を有するウイルスにおいて、エンベロープの外面上で作用し、ここでこの抗体、ペプチド誘導体および結合体は、ウイルスのクリアランスおよび／または標的細胞のウイルス進入の阻害を生じる。
【０５７８】
従って、本発明の重要な局面は、これが普遍的に適用可能であり、例えばバイオテロの一部として作製された、組み換えの、操作された、および合成のウイルスの処置に適切であるということである。実際、本発明は、動物およびヒトの処置には限定されない。ウイルス分類群において見出される宿主のカテゴリーとしては、藻類、古細菌、細菌、真菌、無脊椎動物、マイコプラズマ、植物、原生動物、スピロプラズマおよび脊椎動物が挙げられるので、本発明を用いて、農業で重要なウイルスを含む、任意のこのような設定におけるウイルス感染および複製を阻害することができる。脊椎動物におけるウイルス感染および関連の疾患の処置は現在好ましく、そして脊椎動物に感染する、表Ｈのウイルスのうちの任意の１つ以上が、本発明を用いて阻害され得、そして生じた感染が処置され得る。
【０５７９】
表Ｈ
脊椎動物のウイルス
【０５８０】
【表２３−１】
2008528521.tif 000012
【０５８１】
【表２３−２】
2008528521.tif 000013
哺乳動物におけるウイルス感染および関連に疾患を処置するのにおける本発明の使用が、詳細には貴重であるかまたは価値のある動物、例えば、競走馬および家庭用ペット、ならびにヒトの消費のための食品を直接生産するために（例えば、肉）または間接的に生産するために（例えば、乳および卵）用いられる動物および鳥類に関して、好ましい。ヒト処置に加えて、本発明の例示的な実施形態としては、ウマ、イヌ、ネコなどの処置；ウシ、ブタ、イノシシ、ヒツジ、ヤギ、バッファロー、バイソン、ラマ、シカ、オオジカ、および他の大型動物、ならびに仔ウシおよび仔ヒツジを含む、その若齢動物の処置が挙げられる。
【０５８２】
天然に存在するウイルスについてか、またはバイオテロによって作製されるウイルスについてかにかかわらず、ヒトの処置は、特に好ましい。天然に存在するウイルスおよび生じた疾患に関して、本発明はここでもその適用において限定されない。従って、表Ｊにお
けるウイルスの任意の１つ以上が本発明を用いて阻害され得、これによってその得られた感染および疾患が処置され得る。
【０５８３】
表Ｊ
ヒトにおけるウイルス疾患
【０５８４】
【表２４−１】
2008528521.tif 000014
【０５８５】
【表２４−２】
2008528521.tif 000015
本発明は詳細には、ＣＭＶ関連疾患、例えば、ウイルス性肺炎、単球細胞症関連の先天性奇形（難聴および精神遅延）；気管支炎およびウイルス性肺炎、インフルエンザ、感冒およびＳＡＲＳを含む、呼吸器疾患、例えばＲＳＶによって生じる疾患；ＡＩＤＳ；肝炎；ウイルス感染に関連するガン；単球細胞症；および天然痘の処置における使用が考慮される。
【０５８６】
他の実施形態では、本発明者らは詳細には、ヒトにおいて病原性である、アレナウイルスの阻害を意図する。アレナウイルスとしては、ラッサ熱（ラッサウイルス）およびリンパ球性脈絡髄膜炎（ＬＣＭＶ）の原因である旧世界ウイルスが挙げられる。ラッサ熱は、西アフリカにおいて風土性であって、１年に３００，０００人におよぶ人が罹患し、３０００例に及ぶ死亡が生じる。ラッサ熱での感染は、約１０日内で熱および倦怠感を生じる。腹部疼痛、悪心、嘔吐および下痢が一般的である。咽頭炎および咳も発症し得る。神経学的症状は一般に軽度である。さらに重篤な場合には、血管漏出症候群、例えば、浮腫および胸水が存在する。患者のほぼ四分の一で出血がみられる。この疾患は、心血管系の変化を生じ得、ついにはショックおよび死亡に至る。
【０５８７】
アレナウイルスはまた、アルゼンチン出血熱（フニンウイルス）、ボリビア出血熱（マチュポウイルス）およびベネスエラ出血熱（グアナリトウイルス）の原因である、抗原的に異なる新世界ウイルスを含む、そのようなウイルスである。これらのウイルスの全てが、潜在的なバイオテロ兵器のＣＤＣカテゴリーＡのリストにある。
【０５８８】
抗腫瘍実施形態に適切な用量はまた、抗ウイルス処置に適切である。同様に、複数回の投与が慢性の感染に用いられ得、そして高用量が急性の感染に用いられ得る。ここでもガン処置局面に開示されるように、ＩＶ、ＩＭ、ＳＣ、肺または気道に対するエアロゾルとしてなど、を含む、任意の適切な経路の投与が使用され得る。
【０５８９】
本発明によって提供される治療剤は、広範なスペクトルの抗ウイルス活性を有する有用な因子である。多数の致命的なウイルスに対して有効であることに加えて、この因子はまた、ウイルスの正確な性質が未知である設定でさえ、ウイルスに対する曝露後に投与され得る。従って、本発明の抗ウイルス治療剤は、特定のワクチンの開発、生成または送達に伴う時間および費用とは著しく対照的に、病原体の同定と治療の送達との間に長時間を要さない。
【０５９０】
以下の実施例は、本発明の好ましい実施形態を実証するために含まれる。以下の実施例に開示される技術は、本発明者によって本発明の実施において十分に機能することが発見された技術を示し、したがって、その実施のための好ましい様式を構成すると考えられ得ることが当業者によって理解されるべきである。しかし、当業者は本開示に照らして、多くの変化が、開示されている特定の実施形態においてなされ得、さらには類似または同様の結果が本発明の趣旨および範囲から逸脱することなく獲得可能であるということを理解すべきである。
【実施例】
【０５９１】
実施例１
（抗ＶＣＡＭ−１−ｔＴＦコアグリガンドを用いた腫瘍処置）
本実施例は、腫瘍保有動物に対する腫瘍脈管標的化凝固因子（「コアグリガンド（ｃｏａｇｕｌｉｇａｎｄ）」）の投与後に生じるインビボにおける腫瘍脈管構造の特異的な凝固、および得られた抗腫瘍効果を示す。このコアグリガンドでは、ＶＣＡＭ−１（血管内皮接着分子−１、ＶＣＡＭ−１）に対する抗体を、腫瘍脈管構造に対して改変型のヒト凝固因子である短縮型組織因子（ｔｒｕｎｃａｔｅｄ  Ｔｉｓｓｕｅ  Ｆａｃｔｏｒ）（ｔＴＦ）を送達するための標的因子として用いる。
【０５９２】
マウスＶＣＡＭ−１に対するラットＩｇＧ１抗体を分泌するＭＫ２．７ハイブリドーマを、Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ，Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭＤ；ＡＴＣＣ  ＣＲＬ  １９０９）から入手した。マウスウイルスタンパク質ｐ３０  ｇａｇに対するラットＩｇＧ１抗体を分泌するＲ１８７ハイブリドーマをまた、ＡＴＣＣから入手して、抗ＶＣＡＭ−１抗体についてのアイソタイプマッチングしたコントロールとして用いた。
【０５９３】
皮下のＬ５４０ヒトホジキン腫瘍を保有するマウス由来の主な器官および腫瘍の血管を、抗ＶＣＡＭ−１抗体を用いてＶＣＡＭ−１発現について免疫組織化学的に検査した。陽性コントロールとして用いた抗エンドグリン抗体ＭＪ７／１８によって染色した総腫瘍血管のうち２０〜３０％で、全体的に、ＶＣＡＭ−１発現が観察された。腫瘍保有動物および正常動物の両方において、心臓および肺において、ＶＣＡＭ−１の構成的な血管発現が見出された。ＶＣＡＭ−１発現が厳密に血管外である精巣では、強力な間質染色が観察された。
【０５９４】
皮下のＬ５４０腫瘍を保有するマウスに、抗ＶＣＡＭ−１抗体を静脈内注射して、２時間後にこのマウスを放血させた。この腫瘍および正常な器官を取り出して、凍結切片を調製して、免疫組織化学的に検査して抗体の位置を決定した。抗ＶＣＡＭ−１抗体は、腫瘍、心臓および肺の内皮細胞で検出された。染色は特異的であった。なぜなら、内皮の染色は、無関係の特異性の種アイソタイプマッチングした抗体であるＲ１８７を注射したマウスの腫瘍および器官において観察されたからである。抗ＶＣＡＭ−１抗体の局在化は、精巣でも心臓および肺以外のどの正常な器官でも見出されなかった。
【０５９５】
抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦ結合体または「コアグリガンド」を、短縮された組織因子（ｔＴＦ）を用いて調製した。抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦコアグリガンドの静脈内投与によって、腫瘍保有マウスにおいて、正常な組織における血管と対比して、腫瘍血管の選択的な血栓症が誘導される。
【０５９６】
０．４〜０．６ｃｍの直径の皮下Ｌ５４０腫瘍を保有するマウスに抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦコアグリガンドを投与した。コアグリガンド注射の前には、腫瘍は正常であって、均一な形態を有して壊死の領域はなかった。腫瘍は十分に血管新生されて、自発的な血栓症血管も出血も全くなかった。コアグリガンド注射の４時間内に、腫瘍血管のうち最初の染色はわずか２０〜３０％にもかかわらず、４０〜７０％の血管が血栓症になった。血栓症になった血管は、閉塞性の血小板凝集体、充填された赤血球およびフィブリンを含んだ。いくつかの領域では、血管は、腫瘍間質内に破裂した流出している赤血球を有した。
【０５９７】
コアグリガンド注射の２４時間後まで、血管は閉塞されたままであって、過度の出血が腫瘍全体にわたって広がった。腫瘍細胞は、お互いから分離され、濃縮された核を有し、そして細胞溶解を被った。７２時間まで、進行した壊死が、腫瘍全体にわたって明白であった。最初のコアグリガンド誘導性トロンビン沈着は、中枢の血管におけるＶＣＡＭ−１標的抗原の誘導の増大をもたらし、これによって標的化および腫瘍破壊の増幅が得られる可能性が高い。
【０５９８】
腫瘍血管上での抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦの血栓性作用は、抗原特異的である。等量で投与したコントロール試薬では（ｔＴＦ単独、抗ＶＣＡＭ−１抗体単独、ｔＴＦに加えて抗ＶＣＡＭ−１抗体または無関係な特異性のコントロールのコアグリガンド）血栓を生じなかった。
【０５９９】
腫瘍血管の血栓に加えて、本研究によってまた、抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦコアグリガンドの静脈内投与が、正常な器官で血管の血栓を誘導しないことが示される。正常なマウスまたはＬ５４０腫瘍保有マウスの心臓および肺における血管でのＶＣＡＭ−１の発現にかかわらず、抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦコアグリガンド投与後に血栓は生じなかった。４時間前でも２４時間前でも、５〜４５μｇのコアグリガンドを注射した２５匹のマウスでは、血栓、組織障害、形態の変化の兆候はどれも見られなかった。同じマウス由来の心臓および肺の正常な組織学的外見は、大きい腫瘍血栓を有した。全ての他の主な器官（脳、肝臓、腎臓、脾臓、膵臓、小腸、精巣）もまた、形態の変化を有さなかった。
【０６００】
コアグリガンド処置マウス由来の器官および腫瘍の凍結切片は、抗ＴＦ抗体１０Ｈ１０、または抗ラットＩｇＧ抗体のいずれで発色した場合でも同時発生的な染色パターンを有し、これによってこのコアグリガンドが心臓、肺および腫瘍における血管に局在することが確認された。染色の強度は、コアグリガンドが高濃度で直接切片に適用され、続いて抗ＴＦまたは抗ラットＩｇＧのいずれかでの発色された場合に見られるものと同じであって、このことは結合の飽和がインビボで保持されていたことを示した。
【０６０１】
これらの研究によって、心臓および肺における正常な脈管構造でのＶＣＡＭ−１に対するコアグリガンドの結合は、血栓を誘導するほど有意ではないこと、そして腫瘍脈管構造は、コアグリガンドを支持するためのさらなる因子を提供することが示される。
【０６０２】
０．３〜０．４ｃｍ３のＬ５４０腫瘍を保有するＳＣＩＤマウスにおいて、抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦコアグリガンドの抗腫瘍活性を決定した。４日の間隔で静脈内に３回、この薬物を投与した。抗ＶＣＡＭ−１処置したマウスの平均腫瘍容積は、他の全ての群に比較して２１日の処置で有意に（Ｐ＜０．００１）低下した。特定のコアグリガンドで処置した全部で１５匹のマウスのうち９匹が、腫瘍容積の５０％より大きい低下を示した。この効果は特異的であった。なぜなら、未結合のｔＴＦ、コントロールＩｇＧコアグリガンド、ならびに遊離の抗ＶＣＡＭ−１抗体およびｔＴＦの混合物は腫瘍増殖に影響しなかったからである。
【０６０３】
実施例ＩＩ
腫瘍血管上のホスファチジルコリン発現
心臓および肺におけるＶＣＡＭ−１陽性脈管構造上の抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦの血栓性効果の欠失を説明するために、正常な血管と腫瘍血管との間の異なるアミノリン脂質および陰イオン性リン脂質、例えば、ＰＳおよびＰＥの局在化という本発明者らの発展させた概念を確認した。詳細には、彼らは、正常な組織における内皮細胞が、アミノリン脂質および陰イオン性リン脂質、例えばＰＳおよびＰＥを、原形質膜のリン脂質二重相の内面に分離して、ここでＰＳは血栓性反応に関与することができないが；一方、腫瘍の内皮細胞は、原形質膜の外面に対してアミノリン脂質および陰イオン性リン脂質を転位させ、ここでＰＳはコアグリガンドの凝固作用を支持し得るという仮説をたてた。細胞表面でのＰＳ発現によって、凝固が可能になる。なぜなら、ＰＳ発現によって、膜に対する凝固因子の結合が可能になり、凝固開始複合体のアセンブリが協調されるからである。
【０６０４】
腫瘍血管内皮細胞の表面に対するアミノリン脂質および陰イオン性リン脂質転位の本発明者らのモデルは、本明細書において開発されたとおり、ＰＳ発現が細胞死の後に生じず、そして必然的に細胞死を誘発しないという点で驚くべきである。従って、腫瘍上皮細胞表面でのアミノリン脂質および陰イオン性リン脂質の発現は、アミノリン脂質および陰イオン性リン脂質、例えばＰＳおよびＰＥが、治療介入のための標的可能な実体として機能することを可能にするのに十分安定である。
【０６０５】
腫瘍血管内皮細胞が、原形質膜の管腔表面上でＰＳを発現するという仮説を確認するために、本発明者らは、以下の免疫組織化学研究を用いて、Ｌ５４０腫瘍保有マウスへの静脈内注射後の抗ＰＳ抗体の分布を決定した。
【０６０６】
Ａ．方法
両方ともマウスのモノクローナルＩｇＭ抗体である、抗ＰＳ抗体および抗カルジオリピン抗体を、実施例ＩＶに記載のとおり、Ｒｏｔｅら（１９９３、本明細書において参考として援用される）によって生成して、特徴付けした。３ＳＢの主な反応性はＰＳとの反応であるが、３ＳＢはまた、正常な細胞における内部小葉部分に緊密にやはり分離される原形質膜の比較的少ない成分である、陰イオン性リン脂質、ホスファチジン酸との反応性も有する。
【０６０７】
Ｌ５４０腫瘍保有マウスに、抗ＰＳまたは抗カルジオリピンマウスＩｇＭ抗体のいずれか２０μｇをｉｖ注射した。１０分後、マウスを麻酔して、その血液循環をヘパリン処理した生理食塩水で灌流させた。腫瘍組織および正常組織を取り出して、急速凍結させた。器官および腫瘍の連続切片を、抗ＰＳ抗体の検出のためにＨＲＰ標識抗マウスＩｇＭを用いるか、または抗ＶＣＡＭ−１抗体、続いてＨＲＰ標識抗ラットＩｇを用いて染色した。
【０６０８】
凍結された切片上で膜リン脂質を保存するために、以下のプロトコールを開発した。２．５ｍＭ  Ｃａ２＋を含有するＤＰＢＳを用いて動物を灌流させた。組織を３−アミノプロピルトリエトキシシランでコーティングしたスライド上に装填して、２４時間染色した。スライドの固定にも洗浄にも、有機溶媒、ホルムアルデヒド、界面活性剤は用いなかった。２．５ｍＭ  Ｃａ２＋および０．２％ゼラチンを含有するＤＰＢＳによってスライドを再水和した。同じ溶液をまた用いて、切片を洗浄して過剰の試薬を除去した。ＨＲＰ標識した抗マウスＩｇＭを用いて、室温で３．５時間切片をインキュベートして、抗ＰＳ  ＩｇＭを検出した。
【０６０９】
Ｂ．結果
この免疫組織学研究によって、抗ＰＳ抗体は、ＶＣＡＭ−１を欠き得る腫瘍の中央領域の血管を含むほとんどの腫瘍血管に１０分以内で局在したことが示された。ＶＣＡＭ−１が陽性であった血管はまたＰＳについても陽性であった。従って、腫瘍におけるＶＣＡＭ−１発現血管上ではＰＳの同時発現が存在する。
【０６１０】
インビボの局在化研究において、心臓および肺のＶＣＡＭ−１陽性脈管構造を含む正常な器官では染色された血管はなく、このことは内皮細胞の外部表面からはＰＳが欠けていることを示す。対照的に、正常な組織および腫瘍の切片をインビトロで抗ＰＳ抗体を用いて直接染色した場合、正常な組織と腫瘍、内皮または他の細胞タイプとの間には相違はみられず、このことはＰＳがこれらの細胞内に存在するが、腫瘍の内皮細胞の表面でのみ発現されたことを示す。
【０６１１】
ＰＳ検出の特異性は、２つの独立した研究によって確認された。第一に、示差的に負に荷電された脂質、カルジオリピンに対するマウスＩｇＭモノクローナル抗体は、インビボで腫瘍にもどの器官にも存在しなかった。第二に、アセトンを用いた凍結切片の事前処置は、おそらく結合した抗ＰＳ抗体と一緒に脂質を抽出したという理由によって、抗ＰＳ抗体を用いた染色を無効にした。
【０６１２】
実施例ＩＩＩ
アネキシンＶはコアグリガンド活性をブロックする。
【０６１３】
本実施例によって、インビトロおよびインビボにおけるＰＳ機能をブロックする、高い親和性のＰＳ結合リガンド、アネキシンＶを用いる研究から、コアグリガンド活性における表面ＰＳ発現の役割のさらなる証拠が得られる。
【０６１４】
（Ａ．アネキシンＶは第Ｘ因子のインビトロでのコアグリガンド活性化をブロックする）
アネキシンＶがコアグリガンドによって誘導される第Ｘａ因子形成に影響を与える能力を、色素生産性アッセイによって決定した。ＩＬ−１α刺激したｂＥｎｄ．３細胞を、抗ＶＣＡＭ−・ｔＴＦとともにインキュベートし、そしてサポニンで透過化処理した。アネキシンＶを、０．１〜１０μｇ／ｍｌの範囲の濃度で添加し、そして細胞を、希釈したＰｒｏｌｅｘＴの添加前に３０分間インキュベートした。アネキシンＶの存在下または非存在下で生成した第Ｘａ因子の量を、決定した。各処置を２連で行い、そして少なくとも２回繰り返した。
【０６１５】
コアグリガンド作用における表面ＰＳ発現の必要性はさらに、アネキシンＶ（これは、高親和性でＰＳに結合する）が、ｂＥｎｄ．３細胞に結合される抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦがインビトロで第Ｘａ因子を生成する能力をブロックするという本発明者らの発見によって示される。
【０６１６】
抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦとともにプレインキュベートされた、透過化処理された細胞に添加されたアネキシンＶは、用量依存性様式で第Ｘａ因子の形成を阻害した（図３）。アネキシンＶの非存在下で、細胞結合コアグリガンドは、６０分、１０，０００細胞あたり９５ｎｇの第Ｘａ因子を産生した。漸増量のアネキシンＶ（１ｍｌあたり１μｇの範囲で）の添加は、第Ｘａ因子の産生を阻害した。１ｍｌあたり１０μｇでは、アネキシンＶは、第Ｘａ因子の産生を５８％阻害した。アッセイの間のアネキシンＶの濃度の増加によるさらなる阻害は観察されず、このことは、アネキシンＶが、１ｍｌあたり１０μｇで全ての利用可能な結合部位を飽和したことを示す。
【０６１７】
（Ｂ．：アネキシンＶはインビボでコアグリガンド活性をブロックする）
アネキシンＶのインビボでコアグリガンド誘導性血栓症を阻害する能力を、Ｌ５４０ホジキン腫保有ＳＣＩＤマウスにおいて試験した。腫瘍を、上記の実施例ＩＩに記載のようにマウスにおいて増殖させた。１群あたり２匹のマウス（直径０．５ｃｍの腫瘍サイズ）を、以下の試薬のいずれか１つで尾静脈を介して静脈内注射した：ａ）生理食塩水；ｂ）１００ｇのアネキシンＶ；ｃ）４０μｇの抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦ；ｄ）１００μｇのアネキシンＶ、続いて２時間後に４０μｇの抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦ。
【０６１８】
最後の注射の４時間後、マウスを麻酔し、そしてヘパリン化生理食塩水で灌流した。腫瘍を取り出し、４％ホルマリンで固定し、パラフィン包埋し、そしてヘマトキシレン−エオシンで染色した。血栓が形成された血管および血栓が形成されていない血管の数を計数し、そして血栓の割合を算出した。
【０６１９】
アネキシンＶはまた、インビボでの抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦコアグリガンドの活性をブロックする。腫瘍保有マウスの群を、方法に記載の通りに、コントロールまたは試験試薬の１つで処置した。マウスに以下を与えた：（ａ）生理食塩水；（ｂ）１００ｇのアネキシンＶ；（ｃ）４０μｇの抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦコアグリガンド；または（ｄ）１００のアネキシンＶ、続いて２時間後に４０μｇの抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦコアグリガンド。同一の結果が、１群あたり両方のマウスで得られた。
【０６２０】
自発的な血栓、出血または壊死は、生理食塩水を注射したマウス由来の腫瘍において観察されなかった。アネキシンＶ単独での処置は、腫瘍形態を変更しなかった。
【０６２１】
本明細書中で示される他のデータによれば、４０μｇの抗ＶＣＡＭ−１・ｔＴＦコアグリガンドは、全腫瘍血管の７０％において血栓を生じた。血管の大部分は固まった赤血球および血餅で閉塞し、そして腫瘍細胞は互いに分離した。コアグリガンド誘導性抗腫瘍効果（すなわち、静脈内血栓）および腫瘍細胞形態における変化の両方は、マウスをアネキシンＶで前処置することによって完全に消失した。
【０６２２】
これらの知見は、コアグリガンドの抗腫瘍効果が、腫瘍脈管構造の妨害によって媒介されることを確認する。これらのデータはまた、ＰＳが、インビボでのコアグリガンド誘導性血栓に必須であることを実証する。
【０６２３】
実施例ＩＶ
アミノリン脂質、陰イオン性リン脂質および複合体に対する抗体の生成
本実施例は、腫瘍血管内皮細胞におけるアミノリン脂質および陰イオン性リン脂質の転位に対するその観察に照らして、本発明者らによって設計された、そしてアミノリン脂質および陰イオン性リン脂質の転位に対する抗体の生成において十分に機能するように開発された、免疫プロトコールを記載する。アミノリン脂質および陰イオン性リン脂質、例えばＰＳおよびＰＥと反応性の多数の抗体が得られた。本実施例および以下の実施例において、簡便性のために、ＰＳと反応性の抗体を「抗ＰＳ抗体（ａｎｔｉ−ＰＳ  ａｎｔｉｂｏｄｙ）」と命名してもよいが、特定のこれらの抗体の結合はＰＳには限定されず、本明細書に示されるような特定の他のアミノリン脂質および陰イオン性リン脂質に拡大される。
【０６２４】
Ａ．免疫プロトコール
さらに強力な免疫原として免疫系にアミノリン脂質および陰イオン性リン脂質を提示するために、アミノリン脂質および陰イオン性リン脂質を、アミノリン脂質陽性細胞および陰イオン性リン脂質陽性細胞として処方した。他の膜成分によって囲まれる、膜に挿入されたアミノリン脂質および陰イオン性リン脂質は、抗体を惹起するためのさらに良好な構成およびクリアランス速度を有する。
【０６２５】
この意図は、この例ではＰＳで例示されるようなアミノリン脂質および陰イオン性リン脂質を発現する自家の細胞を用いて免疫コンピテントな動物を免疫することであって、ここでこの動物は、全ての自己表面抗原に対して抗体を生成しないが、膜露出リン脂質、例えばＰＳを外来の要素として認識する。この手順は、任意のアミノリン脂質陽性細胞および陰イオン性リン脂質陽性細胞を用いる、任意の標準的な実験動物、例えば免疫コンピテントなＢＡＬＢ／ｃマウスおよびルイス（Ｌｅｗｉｓ）ラットの使用に適用可能である。
【０６２６】
ＢＡＬＢ／ｃマウスおよびマウス内皮細胞ｂＥｎｄ．３（不死化マウス（ＢＡＬＢ／ｃ株）内皮細胞）を最初に選択した。１０％ＣＯ２インキュベーター中で、９ｍｌ／５００ｍｌ  ＨＥＰＥＳ緩衝液を含有する１０％ＤＭＥＭ中でｂＥｎｄ．３を培養した。所望の細胞が得られるまで、ｂＥｎｄ．３細胞をＴ１７５  ＴＣフラスコ中で増殖させた。代表的には、各々のフラスコは、約７０〜８０％コンフルエンスで、約３×１０６個の細胞を有し、そして各々のマウスには、１×１０６個〜２０×１０６個の細胞、１×１０７個におよぶ細胞をあたえなければならない。
【０６２７】
ｂＥｎｄ．３細胞を５０μＭ〜２００μＭの過酸化水素を用いて１または２時間３７℃で処理して、免疫の前に陰イオン性リン脂質、例えばＰＳを曝す。Ｈ２Ｏ２のストックは、［９．８Ｍ］；３０％（ｖ／ｖ）である。これを１：１０００に希釈して、次いで０．４ｍｌを、４０ｍｌの培地を含むＴ１７５  ＴＣフラスコ中に１００μＭのＨ２Ｏ２の最終濃度まで添加する。細胞を３７℃で１時間維持した。回収のために、細胞を、暖かいＰＢＳ＋１０ｍＭ  ＥＤＴＡを用いて３×洗浄して、培地中の全てのＢＳＡまたは血清タンパク質を除いた。穏やかなトリプシン処理によって細胞を取り外して、洗浄し、１０００ｒｐｍで５分間遠心分離した。この上清を吸引して、適切な容積まで添加することなく細胞をＤＭＥＭに再懸濁して（各々のマウスは約１×１０７個の細胞を含む２００μｌを投与される）、氷上で保持した。
【０６２８】
この方式で処理した細胞を、１ｍｌのシリンジおよび２３ゲージの針を用いて各々のマウスの腹腔内に注射した（２００μｌの細胞懸濁液）。３〜４週間の間隔で３〜７回マウスを免疫した。第二のブースト（追加免疫）から開始して、各々のブーストの１０日後、マウスを放血することによって免疫血清を収集した。抗ＰＳについての血清力価をＥＬＩＳＡによって試験した。
【０６２９】
自家のＰＳ陽性細胞を用いたこれらの免疫では、自己抗体の非制限的な産生は生じなかったが、ＰＳと反応性であるか、他のアミノリン脂質および陰イオン性リン脂質と組み合わせてＰＳと反応性である抗体の産生に限定された。
【０６３０】
別の研究では、２００μＭの過酸化水素を用いて２時間処置したｂＥｎｄ．３内皮細胞を用いて雌性のルイス（Ｌｅｗｉｓ）ラットを免疫した。この処置によって、１２５Ｉ標識されたアネキシンＶによって検出した場合、７０〜９０％の細胞において外面に対する陰イオン性リン脂質の転位が生じた。処置した細胞を洗浄して脱離させて、カウントした。２百万個の細胞を滅菌ＰＢＳに再懸濁して、注射の間、３週間の間隔で５回腹腔内注射した。陰イオン性リン脂質に対するポリクローナル抗体の力価を、各々の免疫の２日後に決定した。
【０６３１】
Ｂ．高力価の抗血清
陰イオン性リン脂質、例えばＰＳと反応性の抗体の極度に高い力価を有するマウスを得た（表１）。マウスは、なんら毒性の兆候を示さなかった。この免疫プロトコールは、ラット全体よりもマウスで有効であったが、ラットの免疫は、有効であって、９Ｄ２抗体が産生された（以下を参照のこと）。
【０６３２】
表１
抗ＰＳ  ＩｇＧ抗体生成
【０６３３】
【表１】
2008528521.tif 000016
さらなる免疫において、種々のマウスを、過酸化水素処理ｂＥｎｄ．３細胞を用いて３回免疫して、その血清を最初の免疫の５４日後に試験した。血清内のＰＳと反応性のＩｇＧ抗体を、抗マウスＩｇＧ、Ｆｃ特異的二次抗体を用いて検出して、血清内のＩｇＭ抗体を抗マウスＩｇＧμ特異的二次抗体を用いて検出した。ＰＳと反応性のＩｇＧおよびＩｇＭ抗体を有する多数の有効な抗血清を、この免疫プロトコールを用いて得たが、そのうちＩｇＧ抗体を有する抗血清が一般に有効であった。
【０６３４】
これらの方法をここで用いて、例えば、以下に記載の３Ｇ４抗体との効率的な競合についてスクリーニングされた抗ＰＳ抗体を含む、さらなる特定の抗ＰＳ抗体を生成することができる。代表的には、ＰＳについての所望の抗血清のＩｇＧ力価が２００，０００を上回ったが、ＰＣ力価は５０，０００未満である場合、モノクローナル抗体を生成するために融合が実施され得る。
【０６３５】
また、これらの方法は、Ｈ２Ｏ２を用いた最初の細胞処置に限定されない。なぜなら、アミノリン脂質および陰イオン性リン脂質の発現を誘導する他の方法が用いられてもよいからである。例えば、ＴＮＦおよびアクチノマイシＤでの処置は、別の有用な方法である。１例では、サブコンフルエント（約８５％コンフルエンス）のｂＥｎｄ．３細胞を、１０ｎｇ／ｍｌのマウスＴＮＦおよび１μｇ／ｍｌのアクチノマイシンＤを用いて３７℃で１６時間、インキュベーター中で処置した。次いで、上記の概要のような免疫手順を通じて細胞を採取した。
【０６３６】
Ｃ．ＩｇＧおよびＩｇＭモノクローナル抗体
免疫した動物由来の脾細胞とミエローマパートナーＰ３Ｘ６３ＡＧ８．６５３細胞（ＡＴＣＣ，Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭＤ）とを融合することによってハイブリドーマを得た。
【０６３７】
腫瘍処置において有用なモノクローナル抗体を調製するための本発明者らの技術の重要な局面は、選択ストラテジーであり、これはアミノリン脂質または陰イオン性リン脂質に結合するが、中性のリン脂質には結合しない抗体を選択するためのスクリーニングの工程を包含する。別の重要な局面は、血清の非存在下で、血清の存在下と同様に強力に、ＰＳコーティングしたプレートに結合する抗体を選択することである。これは、抗リン脂質症候群を生じるかまたはそれに寄与すると考えられる、ＰＳおよび血清タンパク質の複合体を認識する抗体を排除するために行なわれる。
【０６３８】
例えば、ＰＳと反応性のモノクローナル抗体を単離するためのストラテジーは、抗マウスＩｇＧ、Ｆｃγ特異的二次抗体を用いて、ＰＳコーティングプレート上のハイブリドーマ上清をスクリーニングする工程を包含した。スクリーニングを最初に、４つのリン脂質（ＰＳ，ホスファチジルセリン；ＰＥ、ホスファチジルエタノールアミン；ＣＬ、カルジオリピン；およびＰＣ、ホスファチジルコリン）ならびにｂＥｎｄ３細胞に対して行なった。中性のリン脂質、ＰＣと反応性のクローンを、ｂＥｎｄ３細胞と非反応性のクローンと同様に破棄した。高い結合の抗ＰＳクローンを選択した。ＰＳのみに反応性、またはＰＳについて強力な優先度を有するウェルを最初にサブクローニングして、他の陰イオン性リン脂質に対する結合と組み合わせたＰＳ反応性を示すウェルを二番目にサブクローニングした。
【０６３９】
以下の特定の研究においては、Ｒｏｔｅら（１９９３）によって記載されたように生成された３ＳＢ、Ｄ１１およびＢＡ３と命名されたマウスモノクローナルＩｇＭ抗体もまた含まれた。３ＳＢ抗体は、抗ＰＳ抗体としてその文献に記載されて、Ｄ１１抗体は、抗カルジオリピン（抗ＣＬ）抗体としてその文献に記載される。これらの抗体の生成および特徴づけの詳細は、Ｒｏｔｅらによって報告された（１９９３，参考として本明細書に援用される）。
【０６４０】
本発明者らによって生成される各々の選択されたハイブリドーマのアイソタイプを決定した。ＩｇＧクラスの抗体は、代表的には高い親和性、インビボでの低いクリアランス速度、ならびに精製、改変および取り扱いの簡便性を含む、ＩｇＭを上回る多くの利点を有するので、それらの生成が特に所望される。相同なＩｇＧアイソタイプを有するウェルに集中するため、ＩｇＭまたは異なるＩｇの混合物を含むウェルを破棄するかまたは再クローニングした。高度に陽性のクローンのサブクローニングを３〜４回繰り返した。
【０６４１】
ＥＬＩＳＡによって決定される、代表的なＩｇＧおよびＩｇＭ抗体のアイソタイプを表２に示す。本発明者らは、３Ｇ４に対する称号を変更する前に３Ｇ４抗体「Ｆ３−Ｇ４」と最初に命名した。これは、生物学的材料におけるいかなる変化も反映しない。抗体の血清依存性または非依存性も、表２に記載される（実施例ＸＸＸも参照のこと）。
【０６４２】
【表２】
2008528521.tif 000017
Ｄ．ＥＬＩＳＡプロトコールおよび初期モノクローナル抗体特徴づけ
抗体をＥＬＩＳＡによってさらに研究して、３ＳＢおよびＤ１１と比較した。本研究で用いた抗ＰＳ  ＥＬＩＳＡは以下のとおり行なう。特別な相違が特定されない限り、これが本出願の研究全体を通じて用いたＥＬＩＳＡの形式である。
【０６４３】
抗原ＰＳを用いるＥＬＩＳＡを例示する（２．５ｍｌのボトル中に、Ｐ−６６４１  ２５ｍｇ  １０ｍｇ／ｍｌ（溶媒はクロロホルム：ＭｅＯＨ  ９５：５））。同じプロトコールを用いて、他のリン脂質を用いてもよい。ＰＳ（または他のリン脂質）のストック溶液を、アリコートにして、気密容器に−３０℃で保管しなければならない。好ましい９６ウェルプレートは、Ｄｙｎａｔｅｃｈ  Ｕ底  Ｉｍｍｕｌｏｎ  １（Ｄｙｎａｔｅｃｈ  Ｌａｂｓ，カタログ番号０１１−０１０−３５５０）である。
【０６４４】
本明細書において用いられる標準的なブロッキング緩衝液は、ＰＢＳに溶解した１０％ウシ血清である。他のブロッキング溶液は適切であるが、界面活性剤はブロックおよび洗浄溶液から排除されなければならない。一次抗体は試験サンプルまたは混合物である。好ましい二次抗体はヤギ、抗マウスＩｇＧ−ＨＲＰである。発色溶液は、１０ｍｌの０．２Ｍ  Ｎａ２ＰＯ４、１０ｍｌの０．１Ｍ  クエン酸、ＯＰＤの１０ｍｇの錠剤１つ、および１０μｌの過酸化水素である。停止溶液は０．１８Ｍ  Ｈ２ＳＯ４である。
【０６４５】
このプロトコールは、以下のようにＰＳを用いて９６ウェルプレートをコーティングする工程を必要とする：ＰＳストック溶液をｎ−ヘキサン注で１０μｇ／ｍｌまで希釈してよく混合する。各々のウェルに５０μｌを添加して、これを１時間エパポレートさせる。２００μｌの１０％血清（または他のブロッキング緩衝液）を各々のウェルに加えて、カバーして、室温で２時間、または４℃で一晩維持する。ＰＢＳを用いてプレートを３回洗浄する。一次抗体（ブロッキング緩衝液中で希釈）を添加して、３７℃で２時間インキュベートする。ＰＢＳを用いて３回洗浄する。１００μｌ／ウェルの二次抗体（代表的には、ヤギ、抗マウスＩｇＧ−ＨＲＰまたは他の適切な二次抗体）を添加して、３７℃で１時間インキュベートする。ＰＢＳを用いてプレートを３回洗浄する。各々のウェルに１００μｌの発色溶液を添加することによってＥＬＩＳＡを発色させて、１０分間発色させ、次いで、各々のプレートに１００μｌの停止溶液を加えて、Ｏ．Ｄ．を４９０ｎｍで読みとる。
【０６４６】
以下の結果は、９Ｄ２、１Ｂ１２、３Ｇ４および１Ｂ９について示している。ＰＳについてのこれらの抗体の親和性を確認して、３ＳＢに対して比較した。新規な抗体の特定の相対的な親和性は３ＳＢに比較してかなり改善されている（表３）。
【０６４７】
表３
抗ＰＳ抗体の相対的な親和性
【０６４８】
【表３】
2008528521.tif 000018
１組織培養上清の希釈に基づく；捕獲抗体として抗マウスまたはラットＩｇのいずれかを用いるサンドイッチＥＬＩＳＡによって、ＩｇＧおよびＩｇＭの濃度を決定した。全てのクローンが平均１０〜１５μｇ／ｍｌのＩｇを分泌する。
２変換のために用いたＭＷ：ＩｇＭ−９００ｋＤａ、ＩｇＧ−１５０ｋＤａ、アネキシンＶ−３６ｋＤａ
３ＰＳに対するアネキシンＶの親和性は、０．１ｎＭ〜１ｎＭの範囲である。この表における値は、抗ＰＳ抗体についてと同じＥＬＩＳＡ条件を用いてストレプトアビジン−ＨＲＰによって検出された市販のビオチン化アネキシンＶの結合に相当する。
【０６４９】
抗体の特異性は、以下のリン脂質を用いてコーティングしたプレートを用いるＥＬＩＳＡによって決定された：ＰＳ、ホスファチジルセリン；ＰＥ、ホスファチジルエタノールアミン；ＰＩ、ホスファチジルイノシトール；ＰＡ、ホスファチジン酸；ＰＧ、ホスファチジルグリセロール；ＰＣ、ホスファチジルコリン；ＣＬ、カルジオリピン；およびＳＭ、スフィンゴミエリン。３ＳＢおよびＤ１１に比較した、９Ｄ２、１Ｂ１２、３Ｇ４および１Ｂ９の特異性プロフィールを表４に示す。
【０６５０】
【表４】
2008528521.tif 000019
１＞という記号は、同一の抗体濃度で試験した種々のリン脂質に対する結合における少なくとも２倍の相違を示す。
２＞＞という記号は、同一の抗体濃度で試験した種々のリン脂質に対する結合における少なくとも１０倍の相違を示す。
【０６５１】
１Ｂ９、２Ｇ７および７Ｃ５という抗体は、本質的に同じく挙動する。これらの抗体は、ＰＳのみを認識して、ＰＳに対する結合について血清または血清タンパク質を要する。種々のリン脂質に対する１Ｂ９、２Ｇ７および７Ｃ５の結合を、１０％ウシ血清の存在下でのみアッセイしたが、他の抗体の結合は、血清の有無のいずれかにおいて試験した。１Ｂ９、２Ｇ７および７Ｃ５以外の抗体については、血清の存在は、特定のリン脂質に対する結合における優先度を変化させない。３Ｇ４、３Ｂ１０および９Ｄ２を含む後者の群は、血清の非存在下でＰＳに対する結合の好ましい特性を有する。
【０６５２】
３ＳＢ抗体は、血清の有無においてインタクトな細胞上のＰＳを認識する。３ＳＢの主な反応性はＰＳとの反応であるが、これはまた、原形質膜の比較的わずかな成分であるホスファチジン酸との反応性を有する（Ｈｉｎｋｏｖｓｋａ−Ｇａｌｃｈｅｖａら、１９８９）。３ＳＢは本質的に、ホスファチジルエタノールアミンおよびホスファチジルイノシトール、ならびにホスファチジルコリンおよびスフィンゴミエリンとの反応性を欠く（表４）。
【０６５３】
Ｅ．さらなる抗体の特徴づけ
３Ｇ４抗体とプラスチック固定リン脂質との反応性をさらに試験した。リン脂質を、ｎ−ヘキサン中に５０μｇ／ｍｌの濃度まで溶解させた。この溶液の１００μｌを９６ウェルマイクロタイタープレートに添加した。空気中で溶媒をエバポレートしたのち、このプレートを、２ｍＭのＣａ２＋を含むＤＰＢＳ中に溶解した１０％  ＦＢＳ（結合緩衝液）で２時間ブロックした。３Ｇ４抗体を３３ｎＭの初期濃度で１０％のウシ血清の存在下で結合緩衝液に希釈した。連続２倍希釈物をプレート中に調製した（１ウェルあたり１００μｌ）。次いで、このプレートを２時間室温でインキュベートした。洗浄の後、ＨＲＰヤギ抗マウスＩｇＧ（１：１０００希釈）を用いて、３Ｇ４を検出した。二次試薬を
発色基質ＯＰＤを用い、その後マイクロプレートリーダー（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｄｅｖｉｃｅｓ，Ｐａｌｏ  Ａｌｔｏ，ＣＡ）を用いて４９０ｎｍでプレートを読み取ることによって検出した。
【０６５４】
リン脂質認識の特異性を、種々のリポソームとの競合アッセイによってさらに確認した。リポソームをクロロホルム中の５ｍｇの単一のリン脂質（ＰＳ、ＰＩ、ＰＣ、ＣＬ、ＰＡ）の溶液から調製した。その溶液を、窒素下で乾燥させて、丸底ガラスフラスコ中に薄層を形成した。次いで、１０ｍｌのＴｒｉｓ緩衝液（０．１Ｍ、ｐＨ７．４）を添加し、そのフラスコを、２分間、５回超音波分散した。３Ｇ４（６．６ｎＭ）を２００μｇ／ｍｌのリポソーム溶液とともに室温で１時間プレインキュベートした。その混合物を、リン脂質をコーティングしたプレートに添加した。様々なリポソームの存在下および非存在下での、固定したリン脂質に対する３Ｇ４の結合の能力を、上記のように決定した。
【０６５５】
継続的な研究により、３Ｇ４は、陰イオン性リン脂質を特異的に認識するマウスＩｇＧ３κモノクローナル抗体であることが示された。それは、５％のウシ血清の存在下（図４）またはヒト血清の存在下で、陰イオン性リン脂質（ＰＳ、ＰＡ、ＣＬ、ＰＩ）をコーティングしたＥＬＩＳＡプレートに強く結合する。最大の半分の結合が、３Ｇ４で０．２ｎＭ〜０．４ｎＭの濃度で観察された（図４）。３Ｇ４は、ＥＬＩＳＡにおいて中性のリン脂質（ＰＥ、ＰＣおよびＳＭ）には結合しない。無関係の特異性のコントロールマウスＩｇＧ３モノクローナル抗体は結合しなかった。結合は、陰イオン性リン脂質から調製されたリポソームによってブロックされたが、中性のリン脂質から調製されたリポソームではブロックされなかった（図３）。
【０６５６】
３Ｇ４は、飽和した（酸化できない）ジパルミトイル側鎖を有する合成のＰＳ、ＰＡおよびＣＬでコーティングしたＥＬＩＳＡプレート、および単一の脂肪酸側鎖を有するリゾホスファチジン酸に結合した。結合は、５ｍＭのＥＤＴＡの存在によって影響を受けず、これは、結合がＣａ２＋に依存しないことを示す。
【０６５７】
本実施例の研究において、血清の非存在下では、陰イオン性リン脂質でコーティングしたＥＬＩＳＡプレートに対する結合は、９０％減少された。１ｍｇ／ｍｌのヒトβ２−糖タンパク質Ｉの存在下では、完全な結合が保存された。結合は、プロトロンビン、プロテインＣ、プロテインＳ、酸化型ＬＤＬ、ＨＭＷキニノゲン、ＬＭＷキニノゲン、ＸＩＩ因子、組織プラスミノーゲン活性化因子またはアネキシンＡ５によって影響を受けなかった。したがって、３Ｇ４抗体は、血清またはβ２−糖タンパク質Ｉの存在下で陰イオン性リン脂質を認識することが発見された。この特徴づけに関連するさらなる研究からの結果は、本明細書中で実施例ＸＸＸに示される。
【０６５８】
ＰＳは、原形質膜の最も豊富な陰イオン性リン脂質であって、正常な条件下で正常な細胞において原形質膜の内部小葉に厳密に隔離される。ＰＳはアミノリン脂質である。ＰＥはまた、アミノリン脂質であるが、ＰＥは天然であって陰イオン性ではない。中性のアミノリン脂質であるよりも、ＰＥはＰＳと同様に挙動して、正常には原形質膜の内部小葉に厳密に隔離される。
【０６５９】
ＰＩは、原形質膜の別の主な陰イオン性リン脂質であって、これはさらに正常な条件下では正常な細胞における内部小葉構造に厳密に隔離される。ＰＡおよびＰＧは、原形質膜のわずかな陰イオン性リン脂質であって、これも通常は内部小葉構造に隔離される。ＣＬは、ミトコンドリア膜に存在する陰イオン性リン脂質であって、代表的には原形質膜には存在しない。
【０６６０】
ＰＣおよびＳＭは、原形質膜の、コリン含有の中性のリン脂質である。ＰＣおよびＳＭの各々は、正常な条件下では外部の小葉構造に主に局在する。
【０６６１】
正常な血管と腫瘍血管との間の示差的なアミノリン脂質および陰イオン性リン脂質の発現についての本発明者らのモデルを踏まえて、選択されたプロトコールを用いて開発された抗体で、中性のリン脂質、ＰＣおよびＳＭと反応したものはなかった。１Ｂ９抗体は、ＰＳと特異的であったが、９Ｄ２、１Ｂ１２および３Ｇ４は、表４に示される優先度で陰イオン性リン脂質およびアミノリン脂質に結合した。９Ｄ２抗体も実施例ＶＩに記載される。
【０６６２】
実施例Ｖ
外面化したホスファチジルセリンは腫瘍血管の全体的なマーカーである。
【０６６３】
本実施例によって、ＰＳの露出がマウスにおいて増殖する１０個の異なる固形腫瘍の各々について内皮細胞上で生じ、実施例ＩＩに記載されるＬ５４０腫瘍モデルには限定されないことが示される。
【０６６４】
インビボにおける外面化したＰＳは、種々のタイプのヒトおよびマウスの腫瘍を保有するマウスへＰＳに対するモノクローナル抗体を静脈内注射することによって検出された。抗ＰＳ抗体は、全ての１０個の異なる腫瘍モデルにおいて血管内皮に特異的に結合することが示される。同じマウス由来の正常な器官における血管内皮は染色されなかった。アイソタイプマッチしたコントロールモノクローナル抗体は、腫瘍細胞または正常細胞のいずれにも局在しなかった。アポトーシス性細胞がまた免疫組織化学的に同定されたが、ここで腫瘍における極めて少数の内皮細胞がアポトーシスのマーカーを発現した。
【０６６５】
従って、本実施例によって、腫瘍における血管内皮細胞はＰＳを外面化するが、正常な血管はＰＳを外面化しないことが示される。露出したＰＳを有するほとんどの腫瘍内皮細胞はアポトーシスを起こさなかった。従って、ＰＳは、腫瘍脈管構造の豊富でかつ利用しやすいマーカーであって、腫瘍血管画像化および治療について用いることができる。
【０６６６】
Ａ．Ｌ５４０、Ｈ３５８およびＨＴ２９腫瘍
これらの研究で用いた抗ＰＳ抗体は、３ＳＢと命名されたマウスモノクローナルＩｇＭ抗体だった（実施例ＩＶ、Ｒｏｔｅら、１９９３）。３ＳＢは、主にＰＳに結合するがまた、ＰＳのような分布を有する比較的わずかな陰イオン性リン脂質であるＰＡとも反応する。用いた抗ＣＬ抗体は、Ｄ１１と命名されたマウスモノクローナルＩｇＭ抗体であった（実施例ＩＶ、Ｒｏｔｅら、１９９３）。
【０６６７】
腫瘍または正常な血管内皮でのＰＳ露出は最初に、３つの動物腫瘍モデルで試験された：Ｌ５４０ヒトホジキンリンパ腫、ＮＣＩ  Ｈ３５８ヒト非小細胞肺ガン（ＮＳＣＬＣ）およびＨＴ２９ヒト結腸直腸ガン。インビボで腫瘍を増殖させるため、２×１０６個の細胞を、ＳＣＩＤマウスの右脇腹に注射して、腫瘍を０．８〜１．２ｃｍの直径にさせた。
【０６６８】
大きい腫瘍（約８００ｍｍ３を超える容積）を保有するマウスに、２０μｇの抗ＰＳまたは抗ＣＬ抗体のいずれかを、尾静脈を介して静脈内注射した。注射の１時間後、マウスを麻酔して、その血液循環を、ヘパリン処理した生理食塩水で灌流させた。腫瘍および正常な器官を取り出して、凍結切片の調製のために急速凍結した。ヤギ抗マウスＩｇＭ（μ特異的）−ＨＲＰ結合体、続いてカルバゾールでの発色を用いてマウスＩｇＭを検出した。１切片あたり少なくとも１０個の無作為な領域を×４０の倍率で検査して、陽性血管の平均割合を算出した。
【０６６９】
抗ＰＳ抗体は、マウスＩｇＭの検出によって示されるとおり、インビボで３つの腫瘍全て（ＨＴ２９、Ｌ５４０およびＮＣＩ−Ｈ３５８）の脈管構造に特異的に存在した。この最初の研究では、腫瘍における染色された血管の平均割合は、ＨＴ２９について８０％、Ｌ５４０について３０％、そしてＮＣＩ−Ｈ３５８について５０％であった。腫瘍の全ての領域における血管が染色され、小さい毛細管および大きい血管の両方が染色されていた。
【０６７０】
どの正常組織においても抗ＰＳ抗体での血管染色は観察されなかった。腎臓では、尿細管は抗ＰＳおよび抗ＣＬのレシピエントの両方で染色されて、これはこの器官を通じたＩｇＭの分泌に関連する。抗ＣＬ抗体は、腎臓以外のどのような腫瘍組織または正常組織においても検出されなかった。これらの知見によって、腫瘍内皮のみが原形質膜の外部にＰＳを露出させることが示される。
【０６７１】
Ｂ．小さいおよび大きいＬ５４０腫瘍
膜の内面に対してＰＳを隔離する能力を腫瘍脈管構造が失う時点を推定するため、１４０〜１６００ｍｍ３の容積におよぶＬ５４０腫瘍において、抗ＰＳ局在化を検査した。
【０６７２】
マウスをその腫瘍サイズに応じて３つの群に分けた：１４０〜３００、３５０〜８００および８００〜１，６００ｍｍ３。小さいＬ５４０腫瘍（３００ｍｍ３まで）を保有する３匹のマウスでは抗ＰＳＡｂは検出されなかった。抗ＰＳ  Ａｂは、中間のサイズのＬ５４０腫瘍の群において５匹のうち３匹の動物に、そして大きいＬ５４０腫瘍を保有する全てのマウスにおいて（４匹中４匹）局在した（表５）。全てのＰＳ陽性血管の割合（汎内皮マーカーＭｅｃａ３２によって同定される）は、Ｌ５４０中間群において１０〜２０％であって、大きいＬ５４０腫瘍の群において２０〜４０％であった（表５）。
【０６７３】
表５
中間および大きいサイズの腫瘍において検出されたＰＳ外面化
【０６７４】
【表５】
2008528521.tif 000020
＊Ｌ５４０Ｃｙ腫瘍を保有するマウスを、腫瘍サイズに応じて３つの群に分割した。２０μｇの抗ＰＳ抗体を静脈内注射して、１時間循環させた。抗マウスＩｇＭペルオキシダーゼ結合体を用いて凍結切片でマウス抗体を検出した。
†汎内皮Ａｂ  Ｍｅｃａ  ３２を用いて血管の総数を決定した。ＰＳ陽性およびＭｅｃａ陽性の血管を腫瘍の１断面あたり４領域でカウントした。同じ群内のＰＳ陽性血管の範囲（％）を示す。
【０６７５】
Ｃ．Ｌ５４０、Ｈ３５８、ＨＴ２９、Ｃｏｌｏ２６、Ｂ１６および３ＬＬ腫瘍
同じ抗ＰＳ（３ＳＢ）抗体および抗ＣＬ（Ｄ１１）抗体を用いて、腫瘍および正常血管内皮上のＰＳ露出を、さらなる３つの動物腫瘍モデル（全部で６つ）を用いるさらなる研究において試験した：Ｌ５４０ヒトホジキンリンパ腫、ＮＣＩ  Ｈ３５８ヒト非小細胞肺ガン（ＮＳＣＬＣ）、ＨＴ２９ヒト結腸直腸ガン、Ｃｏｌｏ２６マウス結腸ガン、Ｂ１６マウス黒色腫、および３ＬＬマウス肺腫瘍。
【０６７６】
これらの研究では、ＳＣＩＤマウスにおいて腫瘍を皮下で増殖させて、０．４〜０．７ｃｍ３の容積にさせた。１群あたり３匹以上のマウスを用いた。抗ＰＳまたは抗ＣＬマウスＩｇＭ抗体（３０μｇ／マウス）を含む２００μｌの生理食塩水を静脈内注射した。３０分後、このマウスを屠殺して、放血して、その血液循環をヘパリン処理した生理食塩水で灌流させた。ほとんどの器官および腫瘍を回収して、凍結切片の調製のために急速凍結した。ヤギ抗マウスＩｇＭ（μ特異的）ＨＲＰ結合体を用い、続いてカルバゾールを用いた発色によって、マウスＩｇＭを検出した。
【０６７７】
腫瘍の連続切片を、マウス血管の汎内皮マーカーに対するモノクローナル抗体ＭＥＣＡ３２を用いて染色した。ＰＳ陽性血管を形態学的に、そして抗マウスＩｇＭおよびＭＥＣＡ３２での同時染色によって同定した。１切片あたり少なくとも１０の無作為な領域（１領域あたり０．３１７ｍｍ２）を、２つの独立した観察によって盲検的に検査した。ＰＳについて陽性に染色したＭＥＣＡ３２陽性血管の割合を算出した。各々のタイプの３つの腫瘍を、各々２つの別の研究において検査した。平均値および標準誤差（ＳＥ）を算出した。各々の群における総血管数およびＰＳ陽性血管数の腫瘍間の変動は約１０％であった。
【０６７８】
この研究の６つの腫瘍全てがＰＳ陽性血管を有した（表６Ａ）。３ＳＢによるＰＳの検出は、特異的であった。なぜなら、抗ＣＬ抗体を用いては腫瘍内皮の染色は観察されなかったからである（表６Ａ）。抗ＰＳまたは抗ＣＬ抗体の血管局在化は、腎臓以外の正常な器官では観察されなかった（抗ＰＳおよび抗ＣＬレシピエントの両方における尿細管染色は、この器官を通じたＩｇＭの分泌を反映する）。
【０６７９】
表６Ａ
腫瘍脈管に対する抗ＰＳ抗体の特異的局在化
【０６８０】
【表６Ａ】
2008528521.tif 000021
＊この結果は、１領域の０．３１７ｍｍ２あたりのＭＥＣＡ  ３２染色された血管のうちのＰＳ陽性血管の平均（±ＳＥ）割合として示される。各々のタイプの６つの腫瘍を解析した。１領域の０．３１７ｍｍ２あたりのＭＥＣＡ  ３２陽性血管の平均数は、それぞれＬ５４０、Ｈ３５８、ＨＴ２９、Ｂ１６、３ＬＬおよびＣｏｌｏ２６腫瘍について２５、２１、１７、１８、２７および２２±１０％の血管であった。
†非抗原特異的尿細管染色は、抗ＰＳおよび抗ＣＬレシピエントの両方で可視であった。
【０６８１】
これらの研究では、ＰＳ陽性血管の割合は、Ｃｏｌｏ２６腫瘍での１０％からＢ１６腫瘍での４０％に及んだ。抗ＰＳ  ＩｇＭは、腫瘍の全ての領域において毛細血管および細静脈の内腔表面に存在した。ＰＳ陽性血管は、壊死および壊死の周囲の領域において特に一般的であるようである。陽性の血管は一般に形態学的異常を示さなかったが、これは光学顕微鏡によって明らかになった。壊死領域にたまたま局在した血管は、悪化の形態学的兆候を示した。抗ＰＳ抗体（ただし抗ＣＬ抗体ではない）はまた、壊死性およびアポトーシス性の腫瘍細胞に局在した。
【０６８２】
これらの制御された研究によって、ＰＳは種々の腫瘍において血管内皮の内腔表面に一貫して露出されるが、正常な組織には露出されず、そして腫瘍脈管構造発現はモデル特異的ではないことが実証される。
【０６８３】
Ｄ．ＰＳ陽性腫瘍血管のほとんどがアポトーシス性ではない。
【０６８４】
二重標識技術を用いて、腫瘍切片におけるアポトーシス性内皮細胞を同定した。内皮細胞を、汎内皮的な細胞マーカーであるＭＥＣＡ３２を用いて同定した。２つの独立したマーカー：瀕死の細胞における細胞質の変化を同定する、カスパーゼ３の活性フォーム（Ｋｒａｊｅｗｓｋａら、１９９７）、および核変化を有する細胞を同定する、断片化されたＤＮＡ（Ｇａｖｒｉｅｌｉら、１９９２）を用いてアポトーシス細胞を免疫組織化学的に同定した。
【０６８５】
ウサギ抗カスパーゼ３特異的抗体（Ｒ＆Ｄ、Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ，ＭＮ）、続いてアルカリホスファターゼに結合体化された抗ウサギＩｇＧ（ＡＰ，Ｐｉｅｒｃｅ，Ｒｏｃｋｆｏｒｄ，ＩＬ）とのインキュベーションによって、活性なカスパーゼ３を検出した。他の腫瘍切片を、検出試薬として抗ジゴキシゲニンアルカリホスファターゼ結合体を用いて、Ｔｕｎｅｌアッセイ（ＡｐｏｐＴａｇＴＭキット、Ｏｎｃｏｒ，ＭＤ）によって解析した。切片をアポトーシスマーカー（ピンク）および内皮細胞マーカー、ＭＥＣＡ  ３２（褐色）について二重に染色した。内皮細胞およびアポトーシス細胞のマーカーが同時に存在する場合、両方の色が同じ細胞で明白に可視であった。
【０６８６】
６つのタイプの腫瘍のうち５つ（ＨＴ２９、Ｈ３５８、Ｂ１６、Ｃｏｌｏ２６、Ｌ５４０）において、内皮細胞は、いずれのアポトーシスマーカーも示さなかった（表７）。腫瘍のうち６番目のタイプである３ＬＬは、壊死の領域に局在した２〜３のアポトーシス内皮細胞を示した。対照的に、アポトーシス悪性細胞は、全てのタイプの腫瘍において共通であった。アポトーシス腫瘍細胞の割合は、Ｌ５４０腫瘍における１〜２％から３ＬＬ腫瘍における１２．６〜１９．６％に及んだ。
【０６８７】
表７
腫瘍におけるアポトーシスマーカーの発現
【０６８８】
【表７】
2008528521.tif 000022
＊カスパーゼ−３またはＴｕｎｅｌのいずれかについて陽性であった腫瘍細胞または腫瘍血管の割合を、１切片あたり１０倍大きいパワーで決定した。この分野を、腫瘍の中央を通じて端部から２つの垂直方向にそって無作為に選択した。６匹のマウス由来の腫瘍における陽性の細胞または血管の割合の平均（±ＳＥ）を示す。
†３ＬＬ腫瘍の壊死領域に時折存在する血管（１００を超える内の１）は、アポトーシスの両方のマーカーを示した。
【０６８９】
Ｅ．ＭＤＡ−ＭＢ−２３１およびＭｅｔｈ  Ａ腫瘍
腫瘍血管内皮細胞上でのＰＳ露出をまた、マウスで増殖しているＭＤＡ−ＭＢ−２３１ヒト乳房腫瘍において、および皮下で増殖しているマウスＭｅｔｈ  Ａ線維肉腫において検査した。これらの研究において用いた抗体は、実施例ＩＶに記載のように生成された、９Ｄ２抗体であって、これは陰イオン性リン脂質と反応性である。
【０６９０】
実施例ＶＩに詳細に記載されるように、９Ｄ２は、Ｌ５４０、ＮＣＩ−Ｈ３５８およびＢ１６腫瘍における腫瘍血管に、そしてＳＣＩＤマウスの乳腺脂肪パッドにおいて同所性に増殖しているＭＤＡ−ＭＢ−２３１乳房腫瘍のモデルおよび皮下で増殖しているマウスＭｅｔｈ  Ａ線維肉腫に局在した。９Ｄ２は、全ての５つの腫瘍において腫瘍血管に局在した。腫瘍における血管内皮細胞は、別個の膜染色を示した。９Ｄ２抗体はまた、壊死およびアポトーシス性腫瘍細胞の膜および細胞質に局在した。９Ｄ２抗体の血管局在は、試験された１０個の正常な器官のうち９個で観察されなかったが、ここでは腎臓における尿細管の非特異的染色が観察された。
【０６９１】
二重染色研究も実施したが、ここでは同所性ＭＤＡ−ＭＢ−２３１乳房腫瘍を保有するマウスにビオチン化した９Ｄ２抗体を静脈内注射して、その後に凍結した切片を後にＦＩＴＣ結合体化ＭＥＣＡ３２を用いて染色した（実施例ＶＩ）。ＭＥＣＡ  ３２陽性血管のうち約４０％が９Ｄ２に結合した。
【０６９２】
Ｆ．ＭＤ−ＭＢＡ−４３５腫瘍
さらなる乳ガンモデルにおいては、腫瘍血管内皮上のＰＳ露出を、マウスで増殖しているＭＤＡ−ＭＢ−４３５ヒト乳ガン細胞中で検査した。これらの研究で用いた抗体は、３Ｇ４抗体のキメラバージョン（ｃｈ３Ｇ４）である。３Ｇ４抗体生成は実施例ＩＶに記載され、そしてキメラ３Ｇ４抗体の生成は、実施例ＸＩＸに詳細に記載される。ＭＤＡ−ＭＢ−４３５モデルにおける腫瘍血管内皮に対するｃｈ３Ｇ４の局在化は、実施例ＸＩＸにさらに詳細に記載されており、図２２に示される。
【０６９３】
要するに、腫瘍をＭＤ−ＭＢＡ−４３５細胞を用いて樹立して、キメラ３Ｇ４抗体のビオチン化バージョンおよび無関係の特異性のコントロールＩｇＧを投与した。腫瘍切片をＣｙ３結合体化ストレプトアビジンで染色してビオチン化タンパク質を検出した。ＭＥＣＡ  ３２抗体に続いてＦＩＴＣタグ化抗ラットＴｇＧ二次抗体を用いる二重染色を行なって、血管内皮を検出した。この検出方法は、赤および緑を用いてビオチン化タンパク質および血管内皮細胞を標識して、その結果、内皮細胞に結合したビオチン化タンパク質は、集束型（ｃｏｎｖｅｒｇｅｄ）画像で黄色にみえる（図２２）。この研究によって、腫瘍脈管内皮細胞に対するキメラ３Ｇ４抗体の特異的な局在化が示された。
【０６９４】
類似の研究において、インビボにおいて３Ｇ４が腫瘍血管に選択的に局在化する能力を、抗体をｉ．ｐ．またはｉ．ｖ．注射し、１時間後、６時間後、または２４時間後にそのマウスを放血することによって決定した。腫瘍および正常組織の凍結切片を、マウス免疫グロブリンの存在について染色した。検出可能な免疫グロブリンを有さないことを確認したＳＣＩＤマウスを使用して、バックグラウンド染色を避けた。これらの研究において、切片を、抗マウスＣＤ３１で対比染色して、血管内皮を検出し、画像を統合した。局在した３Ｇ４とＣＤ３１との間の染色の一致を、特異的な局在化の証拠とみなした。その領域において特に強い緑または赤の蛍光が占めていなければ、一致した染色は黄色に見えた。脈管局在化の抗原特異性は、アイソタイプがマッチするコントロール抗体であるＢＢＧ３を注射したマウスに由来する腫瘍における内皮染色の欠如によって確認された。
【０６９５】
これらの研究において、３Ｇ４は、統合した画像によって決定した場合、同所性ＭＤＡ−ＭＢ−４３５乳房腫瘍を有するマウスへのｉ．ｐ．またはｉ．ｖ．注射後に、平均４０±１０％の腫瘍血管に局在化した。３Ｇ４のｉ．ｐ．注射後の腫瘍脈管への局在化は、注射１時間後に、可視的であり最大で注射後６時間までであったが、ｉ．ｖ．注射した３Ｇ４は、注射１時間以内に最大の染色を示した。標識した脈管は、腫瘍のすべての領域で可視的であったが、壊死およびその周りで特に豊富であった。より大きい脈管において、単一の脈管内のＰＳ曝露の異種が、ときどき観察された。３Ｇ４が腫瘍間質に漏出した領域もまた、いくつかの脈管の内皮の周りで可視的であった。腫瘍壊死およびその周りの腫瘍細胞が染色された。壊死腫瘍細胞の染色は、コントロール抗体のＢＢＧ３を注射したマウス由来の腫瘍では観察されず、これは、３Ｇ４を注射したマウスにおける壊死腫瘍細胞の局在化が抗原特異的であることを示す。
【０６９６】
正常組織における脈管内皮への３Ｇ４の局在化は、３Ｇ４またはコントロール抗体（ＢＢＧ３）をｉ．ｖ．注射したマウスでは４時間以前に観察されなかった。試験した正常組織は以下である：心臓、肺、肝臓、胆嚢、食道、胃、膵臓、十二指腸、盲腸、直腸、腎臓、副腎、脾臓、脳、眼、唾液腺および卵巣。これらの正常組織の非脈管成分もまた染色されなかった。
【０６９７】
Ｇ．ＲＩＰ−タグ腫瘍
１０番目のモデルについて、腫瘍血管内皮に対するＰＳの露出を、多段階の発現の「ＲＩＰ−Ｔａｇ」トランスジェニックマウスモデル（ＲＩＰ１−Ｔａｇ  ２）において検査した。このトランスジェニックマウスモデルでは、あらゆるマウスが、インスリン産生β細胞におけるＳＶ４０  Ｔ抗原（Ｔａｇ）ガン遺伝子の発現の結果として１２〜１４週齢までに膵臓の島腫瘍を発症する。腫瘍は、過剰増殖性島から多段階で発症して、悪性に進行するには血管形成性の切り替えを要する。マトリックスメタロプロテイナーゼ９が血管形成切り替えを制御する（ＲＥＦ）。
【０６９８】
ＵＣＳＦの病理学の教授であるＤｏｎａｌｄ  ＭｃＤｏｎａｌｄ博士と共同してＲＩＰ１−Ｔａｇ２モデルにおいて、９Ｄ２局在化研究を行なった。全てのマウスが小さい高度に血管新生された固形腫瘍を有する場合、９Ｄ２を、１０週齢で開始してＲＩＰ１−Ｔａｇ２マウスに静脈内注射した。厚い（８０μｍ）腫瘍切片の二重染色を実施して、腫瘍および正常な膵臓に局在した９Ｄ２およびＣＤ３１を同定した。膵臓腫瘍における血管の約５０％（ＣＤ３１陽性）が、局在化した９Ｄ２を有したが、正常な島における血管は染色されなかった。コントロールラットＩｇＭを注射されたマウスが有した腫瘍血管の染色は弱くかつまれであった。内皮細胞をこえる血管外組織への９Ｄ２およびコントロールラットＩｇＭのある程度の漏出がまた出現した。
【０６９９】
Ｈ．腫瘍局在化研究の概要
本発明者らは、多くの様々な腫瘍を有するマウスの腫瘍血管への、種々の抗ＰＳ抗体の局在化を研究した。そのような研究から合わせた結果が、以下の表６Ｂに要約される。抗ＰＳ抗体は、すべての腫瘍の腫瘍血管に局在化するが、脈管局在化は正常な器官では観察されない（表６Ｂ）。
【０７００】
【表６Ｂ】
2008528521.tif 000023
従って、本実施例によって、腫瘍中の血管内皮細胞がその管腔表面にＰＳおよび陰イオン性リン脂質を外面化して、ここでそれらはインビボにおいて抗ＰＳ抗体によって結合され得ることが確認される。ＰＳは、正常組織における血管内皮細胞の外面には欠けており、このことはＰＳ認識抗体、アネキシンＶおよび他のリガンドが、固形腫瘍における血管の選択的画像化または破壊のための細胞毒性薬物、凝固剤および放射性核種を送達するために用いられ得ることを示す。
【０７０１】
ＰＳ陽性腫瘍内皮細胞は、ほとんどの部分について、この研究で用いられる腫瘍において生存可能であると考えられた。これは、アポトーシスのマーカーを示さず、これは、ＶＣＡＭ−１、Ｅセレクチンおよび他の急速に代謝されたタンパク質の発現によって示されるとおり、形態学的にインタクトであってかつ代謝的に活性である。アポトーシスの指標としてしばしばみなされるが、ＰＳ露出は、悪性細胞（Ｒａｏら、１９９２）、（Ｕｔｓｕｇｉら、１９９１）活性化血小板（Ｒｏｔｅら、１９９３）、ならびに種々の段階の遊走、細胞間質浸潤および融合の胚性トロホブラスト（Ａｄｌｅｒら、１９９５）を含む、いくつかのタイプの生存細胞において、観察されている。
【０７０２】
細胞死に対するＰＳ露出とコミットメントとの間の関係がないことはまた、プロアポトーシス刺激の除去後にＰＳの非対称性および増殖を正常に修復するプレアポトーシス性Ｂリンパ球細胞上で示されている（Ｈａｍｍｉｌｌら、１９９９）。正常な生存細胞において、ＰＳ露出はおそらく、細胞へのＣａ２＋フラックスを誘導するリガンド−レセプター相互作用のような表面事象によって誘発される（Ｄｉｌｌｏｎら、２０００）。Ｃａ２＋フラックスは、スクランブラーゼを活性化して（Ｚｈａｏら、１９９８）、アミノリン脂質転位酵素を同時に阻害する（Ｃｏｍｆｕｒｉｕｓら、１９９０）。
【０７０３】
腫瘍血管上のＰＳは、いくつかの理由のためにガン画像化または治療についての標的として魅力的である：ＰＳは豊富である（１細胞あたり約３×１０６個の分子）；ＰＳは腫瘍内皮細胞の管腔表面にあり、これは血液中の血管標的化因子による結合について直接利用可能である；ＰＳは、多様な固形腫瘍において腫瘍内皮細胞のうち高い割合で存在し、ＰＳは、今まで試験された全ての正常組織における内皮細胞には欠けている。従って、腫瘍脈管構造上の未結合の抗体、血管標的因子およびＰＳに対する画像化剤は、ヒトでのガンの検出および処置のために用いることができる。
【０７０４】
実施例ＶＩ
陰イオン性リン脂質を腫瘍血管の表面上に露出させる。
【０７０５】
陰イオン性リン脂質は、正常な条件下で、哺乳動物細胞の原形質膜の外部小葉からはほとんど欠けている。例えば、細胞表面上のホスファチジルセリンの露出が、アポトーシス、壊死、細胞損傷、細胞活性化および悪性転換の間に生じる。本実施例は、陰イオン性リン脂質に対して結合する特定の抗体および天然のリガンドの両方の局在化によって実証されるとおり、陰イオン性リン脂質がインビボにおいて腫瘍脈管構造上で上方制御されることを示す。
【０７０６】
陰イオン性リン脂質を特異的に認識するモノクローナル抗体９Ｄ２を、種々の同所性または異所性の腫瘍を保有するマウスに注射した。他のマウスには、陰イオン性リン脂質に結合する天然のリガンドであるアネキシンＶを投与した。９Ｄ２およびアネキシンＶの両方は、全ての腫瘍における血管内皮に、そしてまた壊死の領域中のおよびその周囲の腫瘍細胞に特異的に局在した。腫瘍血管において１５〜４０％の内皮細胞が染色された。正常な内皮細胞では局在化は検出されなかった。
【０７０７】
腫瘍の微小環境に存在することが公知の種々の要因および腫瘍関連状態を、９Ｄ２およびアネキシンＶ結合によって判定されるように、培養された内皮細胞における陰イオン性リン脂質の露出を生じる能力について試験した。低酸素／再酸素化、酸性度、トロンビンおよび炎症性サイトカインは全てが陰イオン性リン脂質の露出を誘導した。過酸化水素もまた強力な誘導因子であった。炎症性サイトカインおよび低酸素／再酸素化との併用処置によって相加作用よりも大きい効果が得られた。従って、インビボにおける腫瘍内皮上の陰イオン性リン脂質の実証された露出は、サイトカインおよび反応性酸素種による傷害および活性化によって生じる可能性が高い。この機構にかかわらず、陰イオン性リン脂質は、腫瘍血管標的化、画像化および治療について現在用いることができる腫瘍血管のマーカーである。
【０７０８】
Ａ．材料および方法
１．材料
Ｎａ１２５Ｉは、Ａｍｅｒｓｈａｍ（Ａｒｌｉｎｇｔｏｎ  Ｈｅｉｇｈｔｓ，ＩＬ）から入手した。ダルベッコ改変イーグル組織培養培地、およびＣａ２＋およびＭｇ２＋を含有するダルベッコＰＢＳをＧｉｂｃｏから入手した（Ｇｒａｎｄ  Ｉｓｌａｎｄ，ＮＹ）。ウシ胎仔血清をＨｙｃｌｏｎｅ（Ｌｏｇａｎ，Ｕｔａｈ）から入手した。Ｌ−α−ホスファチジルセリン、Ｌ−α−ホスファチジルコリン、カルジオリピン、Ｌ−α−ホスファチジルエタノールアミン、Ｌ−α−ホスファチジルイノシトール、スフィンゴミエリン、ホスファチジン酸、ホスファチジルグリセロール、Ｏ−フェニレンジアミン、過酸化水素およびトロンビンをＳｉｇｍａ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）から入手した。２４ウェルの平底プレートをＦａｌｃｏｎ（Ｂｅｃｔｏｎ  ＤｉｃｋｉｎｓｏｎおよびＣｏ．，Ｌｉｎｃｏｌｎ  Ｐａｒｋ，ＮＪ）から入手した。
【０７０９】
組み換え肝細胞増殖因子（ＨＧＦまたは散乱因子）およびアクチノマイシンＤは、Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ（Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）からであった。組み換えマウスインターロイキン−１α、βおよび腫瘍壊死因子α（ＴＮＦα）を、Ｒ＆Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓ（Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ，ＭＮ）から購入した。ユニバーサルタイプＩ（Ｕｎｉｖｅｒｓａ
ｌ  Ｔｙｐｅ  Ｉ）のインターフェロン（全てのタイプのインターフェロンの代わりになるハイブリッドタンパク質）をＰＢＬ  Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（Ｎｅｗ  Ｂｒｕｎｓｗｉｃｋ，ＮＪ）から購入した。組み換えのヒト血管内皮増殖因子１２１（ＶＥＧＦ）、ヒト血小板由来増殖因子−ＢＢ、インターロイキン−６（ＩＬ−６）、インターロイキン−８（ＩＬ−８）、インターロイキン−１０（ＩＬ−１０）およびヒト線維芽細胞増殖因子−２（ＦＧＦ−２）をＰｅｐｒｏＴｅｃｈ（Ｒｏｃｋｙ  Ｈｉｌｌ，ＮＪ）から購入した。
【０７１０】
２．抗体
ＭＥＣＡ３２、汎マウス内皮細胞抗体は、Ｄｒ．Ｅ．Ｂｕｔｃｈｅｒ（Ｓｔａｎｆｏｒｄ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，ＣＡ）から入手して、免疫組織学的研究のための陽性コントロールとして用いた。この抗体の詳細は公表されている（Ｌｅｐｐｉｎｋら、１９８９）。西洋ワサビペルオキシダーゼ（ＨＲＰ）に結合体化したウサギ抗ラット免疫グロブリン二次抗体、ラット抗マウス免疫グロブリン二次抗体、ならびにヤギ抗マウス二次抗体および抗ラット二次抗体は、Ｄａｃｏ（Ｃａｒｐｉｎｔｅｒｉａ，ＣＡ）またはＪａｃｋｓｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅｒａｒｃｈ  Ｌａｂｓ（Ｗｅｓｔ  Ｇｒｏｖｅ，ＰＡ）のいずれかから購入した。
【０７１１】
これらの研究で用いた９Ｄ２抗体は、実施例ＩＶに記載されたように生成した。９Ｄ２は、陰イオン性リン脂質と反応性のラットモノクローナル抗体である。９Ｄ２のリン脂質特異性のさらなる特徴付けは、本実施例の結果の節に記載される。
【０７１２】
３．細胞
末期の疾患を有する患者由来のＬ５４０Ｃｙホジキンリンパ腫細胞は、Ｖ．Ｄｉｅｈｌ教授（Ｋｏｅｌｎ，Ｇｅｒｍａｎｙ）から提供された。ＮＣＩ−Ｈ３５８ヒト非小細胞肺ガンは、Ａｄｉ  Ｇａｚｄａｒ博士（Ｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ｃｅｎｔｅｒ，Ｄａｌｌａｓ，ＴＸ）から提供された。Ｍｅｔｈ  Ａマウス線維肉腫およびＭＤＡ−ＭＢ−２３１ヒト乳ガンは、Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｅｌｌ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭＤ）から入手した。マウス脳内皮腫株ｂＥｎｄ．３は、Ｗｅｒｎｅｒ  Ｒｉｓａｕ教授（Ｍａｘ  Ｐｌａｎｋ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎ，Ｍｕｎｉｃｈ，Ｇｅｒｍａｎｙ）から提供されて、１０％ＦＢＳを有するＤＭＥＭ中で維持した。成体ウシ大動脈内皮（ＡＢＡＥ）細胞は、Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ（Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ；Ｗａｌｋｅｒｖｉｌｌｅ，ＭＤ）から購入した。ＡＢＡＥ細胞は、１０％血清および２ｎｇ／ｍｌのｂＦＧＦを含有するＤＭＥＭ中で維持した。
【０７１３】
４．組織培養
ｂＥｎｄ．３，ＡＢＡＥ細胞およびＬ５４０Ｃｙリンパ腫以外の全ての腫瘍細胞を、１０％ウシ胎仔血清、２ｍＭ  Ｌ−グルタミン、２単位／ｍｌペニシリンＧおよび２μｇ／ｍｌストレプトマイシンを補充したＤＭＥＭ中で維持した。Ｌ５４０Ｃｙ細胞は、同じ添加物を含むＲＰＭＩ  １６４０中で維持した。細胞を週に１回継代培養した。０．２％  ＥＤＴＡを含有するＰＢＳにおいて０．１２５％トリプシンを用いてｂＥＮｄ．３細胞のトリプシン処理を行なった。インビトロ研究については、２４ウェルプレートにおいて１ｍｌの培養培地に１０×１０３細胞／ｍｌの密度で内皮細胞を播種して、アッセイでの使用の前に４８〜９６時間インキュベートした。各々の研究の２４時間前に培地を再生した。
【０７１４】
５．プラスチック固定リン脂質との反応性
リン脂質をｎ−ヘキサンに５０μｇ／ｍｌの濃度まで溶解した。この溶液の１００μｌを９６ウェルマイクロタイタープレートのウェルに加えた。空気中の溶媒のエバポレーション後に、このプレートを、２ｍＭ  Ｃａ２＋を含有するＤＰＢＳに溶解した１０％ウシ胎仔血清（結合緩衝液）を用いて２時間ブロックした。
【０７１５】
初期濃度６．７ｎＭで、１０％血清の存在下において結合緩衝液中で、９Ｄ２抗体またはアネキシンＶを希釈した。連続２倍希釈物をプレート中で調製した（１ウェルあたり１００μｌ）。次いで、このプレートを室温で２時間インキュベートした。このプレートを洗浄して、それぞれＨＲＰに対して結合体化したヤギ抗ラットＩｇＭおよびウサギ抗ヒトアネキシンＶによって、続いてＨＲＰに結合体化されたヤギ抗ウサギＩｇＧによって（全て１：１０００希釈）、９Ｄ２およびアネキシンＶを検出した。色素生産性の基質ＯＰＤを用い、続いてマイクロプレートリーダー（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｄｅｖｉｃｅｓ，Ｐａｌｏ  Ａｌｔｏ，ＣＡ）を用いて４９０ｎｍでプレートを読み取ることによって、二次試薬を検出した。
【０７１６】
９Ｄ２抗体結合の特異性を、無関係の特異性のコントロールのラットＩｇＭ（Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ，Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）を用いることによって確証した。Ｃａ２＋依存性であるリン脂質に対するアネキシンＶ結合の特異性を、５ｍＭ  ＥＤＴＡを含有するＤＰＢＳ中に試薬を希釈することによって決定した。さらなる陰性コントロールは、０．２％の界面活性剤Ｔｗｅｅｎ  ２０を含有する結合緩衝液を用いてプレートを洗浄する工程から構成された。この処置によって脂質を抽出して、これによってプラスチックに吸着されたリン脂質を除去する。９Ｄ２抗体もアネキシンＶも、界面活性剤で洗浄したプレートには結合しなかった。
【０７１７】
６．培養された内皮細胞の表面上の陰イオン性リン脂質の検出
内皮細胞が約７０％コンフルエンスに達するまで内皮細胞を増殖させた。ＰＳ露出を誘導するために、細胞をＨ２Ｏ２（２００μＭ）を用いて３７℃で１時間処置した。コントロールのスライドおよび処置したスライドをＣａ２＋およびＭｇ２＋含有ＤＰＢＳを用いて洗浄して、同じ緩衝液に希釈した０．２５％グルタルアルデヒドで固定した。５０ｍＭのＮＨ４Ｃｌとの５分間のインキュベーションによって過剰なアルデヒド基をクエンチした。リン脂質の検出に対する界面活性剤および有機溶媒の効果を試験するために、いくつかのスライドをアセトンを用いるか（５分）、または１％（ｖ／ｖ）ＴｒｉｔｏｎＴＭＸ−１００を含有するＰＢＳを用いてプレインキュベートした。
【０７１８】
細胞をＤＰＢＳ（Ｃａ２＋、Ｍｇ２＋および０．２％（ｗ／ｖ）ゼラチン含有）を用いて洗浄して、１μｇ／ｍｌのビオチン化アネキシンＶ（Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ，Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）とともに、または１μｇ／ｍｌの９Ｄ２抗体とともにインキュベートした。インキュベーションの２時間後、細胞を０．２％ゼラチン緩衝液とともに洗浄して、ストレプトアビジン−ＨＲＰ（１：５００希釈）とともにインキュベートした。無関係の特異性のラットＩｇＭおよびストレプトアビジン単独を、これらの研究における陰性コントロールとして用いた。全ての工程を室温で行なった。Ｏ−フェニレンジアミン（０．５ｍｇ／ｍｌ）および過酸化水素（０．０３％ｗ／ｖ）を含有するクエン酸−リン酸緩衝液、ｐＨ５．５を添加することによってＨＲＰ活性を測定した。１５分後、１００μｌの上清を９６ウェルプレートに移して、１００μｌの０．１８Ｍ  Ｈ２ＳＯ４を添加して、その吸光度を４９０ｎｍで測定した。あるいは、ＰＳ陽性細胞をカルバゾール基質の添加によって検出して、不溶性の赤褐色の沈殿を得た。各々の研究を、二連でかつ少なくとも２回繰り返して行なった。
【０７１９】
７．リン脂質に対する９Ｄ２およびアネキシンＶ結合のリポソームによる阻害
リン脂質認識の特異性をさらに、種々のリポソームを用いた競合アッセイによって確認した。リポソームを、５ｍｇの単一のリン脂質を含有するクロロホルムの溶液から調製した。この溶液を窒素下で乾燥して、丸底ガラスフラスコ中に薄層を形成させた。次いで、１０ｍｌのＴｒｉｓ緩衝液（０．１Ｍ、ｐＨ７．４）を添加して、フラスコを２分間に５回超音波処理した。９Ｄ２またはアネキシンＶ（６．６６ｎＭ）を２００μｇ／ｍｌのリポソーム溶液とともに室温で１時間プレインキュベートした。この混合物をリン脂質コーティングしたプレートまたは内皮細胞単層に加えた。異なるリポソームの有無において固定されたリン脂質または細胞表面に対して９Ｄ２が結合する能力を上記のように決定した。
【０７２０】
８．固定されたＰＳに対する結合についての９Ｄ２およびアネキシンＶの競合
１０倍モル過剰のＮ−ヒドロキシスクシンイミドビオチン（Ｓｉｇｍａ，ＭＯ）を用いて精製されたタンパク質を室温で１時間インキュベートすることによって、ビオチン化９Ｄ２抗体およびアネキシンＶを調製した。遊離のビオチンをＰＢＳに対する透析によって除去した。ビオチン化手順は、いずれのタンパク質のＰＳ結合能力も損なうことはなかった。競合研究について、未改変のタンパク質およびビオチン化タンパク質を１０倍モル過剰の未改変のタンパク質と事前混合した。次いで、この混合物をＰＳコーティングプレートに加えた。結合した試薬を、１：１０００に希釈されたストレプトアビジン−ＨＲＰ結合体によって検出した。競合物の非存在下での各々の試薬のＰＳへの結合を１００％値として採用した。
【０７２１】
９．皮下移植された腫瘍の増殖
局在化研究のために、２×１０７個のＬ５４０ヒトホジキンリンパ腫細胞または他の腫瘍タイプの１×１０７個の細胞をＳＣＩＤマウス（Ｃｈａｒｌｅｓ  Ｒｉｖｅｒ，Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ，ＭＡ）の右脇腹に皮下注射した。腫瘍を０．４〜０．７ｃｍ３の容積まで到達させた。１群あたり最小３匹の動物のを用いた。研究を少なくとも３回繰り返した。
【０７２２】
１０．ヒトＭＤＡ−ＭＢ−２３１乳ガンの同所性モデル
雌性のｎｕ／ｎｕマウスまたはＳＣＩＤマウスをＣｈａｒｌｅｓ  Ｒｉｖｅｒから購入した。ＭＤＡ−ＭＢ−２３１ヒト乳腺ガン細胞を、公表されたプロトコール（Ｐｒｉｃｅ，１９９６）に従って乳腺脂肪パッドに移植した。要するに、マウスを麻酔して外胸部にわたって皮膚に５ｍｍの切開を作製した。乳腺パッドを露出させて、０．１ｍｌの生理食塩水に再懸濁した１×１０７個のＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞の注射のための正確な部位を確認した。
【０７２３】
１１．インビボにおける腫瘍保有マウスにおける陰イオン性リン脂質の検出
９Ｄ２またはアネキシンＶが凍結組織の切片に直接付与される免疫組織化学技術では、原形質膜の内部小葉構造と外部小葉構造との上の陰イオン性リン脂質の間が識別されない。外部に位置するリン脂質を検出するために、本質的に以前に記載されたような方法を行なった（実施例Ｖ；Ｒａｎら、１９９８）。腫瘍保有ＳＣＩＤマウスに、５０μｇの９Ｄ２もしくはビオチン化９Ｄ２抗体、または１００μｇのビオチン化アネキシンＶのいずれかを静脈内注射した。６０分後にマウスを屠殺して、その血液循環を放血して、以前に記載されたようにヘパリン処理生理食塩水を用いて灌流させた（Ｂｕｒｒｏｗｓら、１９９２）。全ての主な器官および腫瘍を回収して、凍結切片の調製のために急速凍結させた。
【０７２４】
切片を１０％血栓含有ＰＢＳでブロックした。スライド処理の間のリン脂質の損失を妨げるために、界面活性剤および有機溶媒をブロッキング緩衝液および洗浄緩衝液から除外した。ヤギ抗ラットＩｇＭ（μ特異的）−ＨＲＰ結合体を用い、続いてカルバゾールまたはＤＡＢを用いた発色によって、ラットＩｇＭを検出した（Ｆｒｉｅｓら、１９９３）。ＨＲＰに結合体化されたストレプトアビジンによってビオチン化試薬を検出した。
【０７２５】
生理食塩水または無関係の特異性のラットＩｇＭを注射したマウス由来の腫瘍切片を陰性コントロールとして使用した。さらなるコントロールは、１％Ｔｒｉｔｏｎ溶液またはアセトン中で１０分間、スライドをインキュベートする工程から構成された。これらの処置によってリン脂質が抽出される。これらの条件下でシグナルを検出した。１つの強拡大視野あたりの陽性血管の数を×１００の倍率で決定した。１切片あたり少なくとも１０の視野を試験して、陽性の血管の平均割合を算出した。９Ｄ２またはアネキシンＶの存在下におけるこの方法による切片の染色によって、インビボにおいて試薬による結合に利用可能な外面化した陰イオン性リン脂質を有する細胞を検出する。
【０７２６】
１２．ＰＳ陽性腫瘍血管の同定および定量
局在化した９Ｄ２抗体またはアネキシンＶを有する構造を、ＤＡＢ染色した切片上の形態学的外観によって、および凍結組織の連続切片上の汎内皮細胞マーカーＭＥＣＡ３２を用いた同時染色によって、血管として同定した。腫瘍の連続切片においてＭＥＣＡ  ３２、９Ｄ２またはアネキシンＶによって染色した血管をカウントすることによって、ＤＡＢ染色した切片上の定量を行なった。９Ｄ２抗体、コントロールラットＩｇＭまたはアネキシンＶを注射した６匹のマウス由来の各々の腫瘍タイプの６つのスライドを試験した。１切片あたり少なくとも１０個の無作為の視野（１視野あたり０．３１７ｍｍ２）を、２人の独立した観察者によって、盲検的にスコア付けした。９Ｄ２、アネキシンＶまたはＭＥＣＡ３２によって染色された血管の平均数および標準誤差を算出した。各々の腫瘍タイプ群において決定した９Ｄ２またはアネキシンＶの陽性血管の平均数を、同じ腫瘍群におけるＭＥＣＡ３２陽性血管の平均数と比較した。９Ｄ２またはアネキシンＶ陽性血管の割合を算出した。
【０７２７】
さらなる研究において、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１腫瘍（０．３〜０．７ｃｍ３の容積）を保有するマウスに、５０μｇのビオチン化９Ｄ２、コントロールＩｇＭまたはアネキシンＶを静脈内注射した（１群あたりマウス６匹）。ビオチン化試薬を最初にストレプトアビジン−Ｃｙ３結合体とともにインキュベートして、ＰＢＳ中で洗浄し、次いでＭＥＣＡ３２抗体、その後にＦＩＴＣタグ化抗ラットＩｇＧ二次抗体とともにインキュベートした。それぞれ、Ｃｙ３（赤）およびＦＩＴＣ（緑）蛍光について適切なフィルターでとった単一の画像をデジタルカメラによって撮影して、コンピューターに送信した。黄色（融合された緑および赤の蛍光の結果）を示す１０個の無作為の視野（１視野あたり０．３１７ｍｍ２）の画像を、Ｍｅｔａｖｉｅｗソフトウェアの補助によって重ね合わせた。同じ方法を用いて、コントロールラットＩｇＭまたは生理食塩水を注射したマウス由来の腫瘍を解析した。９Ｄ２またはアネキシンＶが局在化した血管の割合を以下のように算出した：１視野あたりの黄色の血管の平均数を緑の血管の平均数（総数）で割って１００を掛ける。
【０７２８】
Ｂ．結果
１．９Ｄ２抗体およびアネキシンＶのリン脂質特異性
９Ｄ２抗体は、ＥＬＩＳＡにおいて、特異的に陰イオン性リン脂質（ＰＳ、ＰＡ、ＣＬ、ＰＩ、ＰＧ）を認識して、中性のリン脂質（ＰＥ、ＰＣおよびＳＭ）とは有意な反応性を有さなかった（図２Ａ；表８）。ＥＬＩＳＡにおけるリン脂質に対する９Ｄ２の結合の強度の順序は、ＰＡ＞ＰＳ＝ＣＬ＞ＰＧ＝ＰＩであった。結合は抗原特異的であった。なぜなら無関係の特異性であるいくつかのコントロールラットＩｇＭでは結合は観察されなかったからである。ＥＬＩＳＡプレートに吸着された任意の陰イオン性リン脂質に対する９Ｄ２の結合は、任意の陰イオン性リン脂質から調製されたリポソームによってブロックされたが、任意の中性のリン脂質から調製されたリポソームによってはブロックされなかった。
【０７２９】
【表８】
2008528521.tif 000024
ａＦｒｉｄｒｉｋｋｓｏｎら、１９９９から採用した総リン脂質の割合。割合は異なる細胞タイプについて変化し得る。
【０７３０】
アネキシンＶはまた、陰イオン性リン脂質に結合したが、その結合はアネキシンＶが中性のリン脂質であるＰＥにも強力に結合するという点で９Ｄ２の結合よりも特異性が劣った。ＥＬＩＳＡにおけるリン脂質に対するアネキシンＶの結合の強度の順序は、ＰＩ＞ＰＳ＝ＰＥ＝ＰＡ＝ＣＬ＞ＰＧであった（表８）。アネキシンＶについてのこれらの知見は、初期のデータと一致する（Ａｎｄｒｅｅら、１９９０）。
【０７３１】
９Ｄ２の結合は、５ｍＭ  ＥＤＴＡの存在によっては影響されず、このことはこの結合には陰イオン性リン脂質に対する結合にＣａ２＋を要さないことを示した。対照的に、陰イオン性リン脂質に対するアネキシンの結合は、陰イオン性リン脂質またはＰＥに対する結合についてＣａ２＋に対するその公知の依存性から予想されるように、５ｍＭ  ＥＤＴＡの存在下で無効にされた（Ｓｃｈｌａｅｐｆｅｒら、１９８７；ＢｌａｃｋｗｏｏｄおよびＥｒｎｓｔ，１９９０）。
【０７３２】
９Ｄ２もアネキシンＶも、リン脂質でコーティングされているＥＬＩＳＡプレートに結合せず、そのため０．２％Ｔｗｅｅｎ含有生理食塩水で洗浄され、それらの結合が吸着されたリン脂質に対したものであったことが確認された。９Ｄ２およびアネキシンＶは、ヘパリンにも、硫酸ヘパランにも、または二本鎖もしくは一本鎖のＤＮＡにも検出可能には結合しなかった。
【０７３３】
２．９Ｄ２抗体およびアネキシンＶは、ＰＳに対するお互いの結合を交差ブロックしなかった
９Ｄ２抗体およびアネキシンＶがＰＳに対する結合について競合するか否かを試験するために、ＰＳコーティングしたプレート上でビオチン化タンパク質を用いて、交差ブロック研究を行なった。ビオチン化９Ｄ２抗体およびアネキシンＶの結合を、それぞれ１０倍モル過剰の未改変９Ｄ２およびアネキシンＶによってブロックした（表９）。しかし、未改変のアネキシンＶは、ビオチン化９Ｄ２がＰＳプレートに対して結合する能力に影響しなかった。同様に、未改変の９Ｄ２抗体の添加は、ビオチン化アネキシンＶがＰＳプレートに対して結合する能力に影響しなかった（表９）。
【０７３４】
【表９】
2008528521.tif 000025
ａアネキシンＶまたは９Ｄ２抗体は、ビオチン化試薬を１０倍モル過剰上回って事前混合された。マイクロタイタープレート上のＰＳに対するビオチン化試薬の結合を、ストレプトアビジン−ＨＲＰによって検出した。
ｂ競合物の非存在下でのビオチン化試薬の反応性を１００％とした。三連の決定の平均値を示す。ＳＤは、平均値の１０％未満であった。
【０７３５】
これらの結果によって、９Ｄ２抗体およびアネキシンＶが、ＰＳコーティングプレートに対するお互いの結合を交差ブロックしないことが示される。なぜなら９Ｄ２抗体およびアネキシンＶはＰＳ分子上の異なるエピトープを認識するか、またはプラスチック上に吸着されたＰＳの異なる構成を認識するからである
３．細胞表面上に外面化された陰イオン性リン脂質に対する結合
細胞表面に対する９Ｄ２抗体およびアネキシンＶの結合を、マウスｂＥｎｄ．３内皮細胞またはウシＡＢＡＥ細胞を用いて試験した。９Ｄ２もアネキシンＶも、静止条件下でいずれの細胞タイプの非透過性単層にも結合しなかった。このことは、原形質膜の陰イオン性リン脂質のほとんどが細胞質ドメインに対して正常に隔離されることを示す。対照的に、内皮細胞の９０〜１００％においてアポトーシスを生じる条件下で細胞をＴＮＦαおよびアクチノマイシンＤとともにプレインキュベートした場合、強力な染色が観察された。
【０７３６】
９Ｄ２およびアネキシンＶが細胞表面上のリン脂質に結合されたことを確認するために、Ｈ２Ｏ２処置したｂＥｎｄ．３細胞を、種々の競合するリポソームの有無において９Ｄ２抗体またはアネキシンＶとともにインキュベートした。陰イオン性リン脂質は、それらが毒性濃度未満（１００〜２００μＭ）のＨ２Ｏ２を用いて事前処置された場合に、非アポトーシス性の生存可能なｂＥｎｄ．３細胞上に露出された（Ｒａｎら、２００２）。
【０７３７】
Ｈ２Ｏ２処理されたｂｅｎｄ．３細胞に対する９Ｄ２抗体の結合は、陰イオン性リン脂質を含むリポソームによって阻害されたが、中性のリン脂質を含むリポソームによっては阻害されなかった（図３）。細胞に対する９Ｄ２結合の阻害の大きさは、プラスチック固定されたリン脂質を用いて得られた結果に極めて一致して、ＰＡ＞ＰＳ＞ＣＬ＞ＰＧ＞ＰＩの順で変化した（図２Ａおよび図２Ｂ）。同様に、Ｈ２Ｏ２処置した細胞に対するアネキシンＶの結合は、ＰＳ、ＰＡ、ＰＥ、ＣＬならびに、それより低い程度ではＰＩおよびＰＧを含むリポソームによってブロックされた。ＳＭまたはＰＣを含むリポソームは、プラスチック固定されたリン脂質を用いて得られた結果と全く一致して、細胞に対するアネキシンＶ結合をブロックしなかった。
【０７３８】
これらの結果によって、Ｈ２Ｏ２処置された内皮細胞における陰イオン性リン脂質に９Ｄ２が結合するが、アネキシンＶは陰イオン性リン脂質に加えてＰＥに結合することが確認された。
【０７３９】
４．インビボにおける細胞上で外面化した陰イオン性リン脂質の検出
９Ｄ２またはアネキシンＶが凍結組織の切片に直接加えられる、直接免疫組織化学技術では、原形質膜の内部小葉構造および外部小葉構造の上の陰イオン性リン脂質の間は識別されない。外側に位置するリン脂質を検出するために、９Ｄ２およびアネキシンＶを腫瘍保有マウスに静脈内注射して、腫瘍血管に対する局在化を直接免疫組織化学によって決定した。
【０７４０】
種々のタイプの固形腫瘍を保有するマウスに、９Ｄ２抗体またはビオチン化アネキシンＶを静脈内注射して、その１時間後に屠殺して、その腫瘍および正常な組織を取り出して、凍結切片を調製した。組織の凍結切片を切断して、ＨＲＰ標識抗ラットＩｇＭを用いるか、ＨＲＰ標識化ストレプトアビジンを用いて染色して、注射後にどの細胞に９Ｄ２およびアネキシンＶが結合したかを決定した。血管を形態学的に、そして連続切片上の汎内皮細胞抗体ＭＥＣＡ３２によるその陽性の染色から同定した。
【０７４１】
５．腫瘍保有マウスにおける９Ｄ２抗体およびアネキシンの体内分布
９Ｄ２抗体およびアネキシンＶは、この研究に含まれた５つ全ての腫瘍において腫瘍血管に局在した（図４；表１０）。腫瘍は以下であった：ＳＣＩＤマウスの乳腺脂肪パッドにおいて正所性に増殖しているヒトＭＤＡ−ＭＢ−２３１乳ガン；皮下で増殖しているヒトＬ５４０ホジキン腫瘍；皮下で増殖しているヒトＮＣＩ−Ｈ３５８  ＮＳＣＬＣ；皮下で増殖しているマウスＢ１６黒色腫、および皮下で増殖しているマウスＭｅｔｈ  Ａ線維肉腫。
【０７４２】
【表１０】
2008528521.tif 000026
ａ腫瘍保有マウスにおける９Ｄ２抗体およびラットＩｇＭコントロールの局在を、抗体（５０μｇ）の注射、生理食塩水を用いてマウスの血液循環を灌流させること、および抗マウスＩｇＭペルオキシダーゼ結合体を用いることにより組織の切片上で抗体を検出することによって決定した。１領域０．３１７ｍｍ２あたりのＭＥＣＡ３２染色血管のＰＳ陽性血管の平均（±ＳＥ）割合として結果を示す。各々のタイプの６つのサンプルを解析した。１領域０．３１７ｍｍ２あたりのＭＥＣＡ３２陽性血管の平均数は、それぞれ、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１、Ｌ５４０ｃｙ、Ｈ３５８、Ｂ１６およびＭｅｔｈＡ腫瘍について２３、２５、２１、１８および１９±１０の血管であった。
ｂアネキシンＶの局在化は、ビオチン化アネキシンＶ注射と、それに続くストレプトアビジン−ペルオキシダーゼ結合体を用いる凍結切片上での検出によって決定された。
ｃ非抗原特異的尿細管染色は、９Ｄ２およびコントロール抗体レシピエントの両方で可視であった。
【０７４３】
９Ｄ２およびアネキシンＶは、本質的に同じパターンの染色を示した。腫瘍血管に対する９Ｄ２抗体の局在化は特異的であった。なぜなら腫瘍内皮の染色が無関係な特異性のラットＩｇＭで観察されなかったからである。おそらく、腫瘍血管外へのコントロールラットＩｇＭの漏出がある程度まで生じるが、血管外のＩｇＭの染色は、間接的な免疫組織化学によって識別するには拡散しすぎているかまたは弱すぎた。
【０７４４】
９Ｄ２抗体またはアネキシンＶの血管局在化は、試験した１０個の正常な器官のうち９つでは観察されなかった（表１０）。腎臓では、抗原特異的ではないと考えられる尿細管の染色が観察された。おそらくは尿細管を通したＩｇＭまたはその代謝物の分泌のおかげで、この器官は９Ｄ２およびコントロールラットＩｇＭレシピエントの両方で染色された。生理学的な血管形成の部位である卵巣は試験しなかった。
【０７４５】
９Ｄ２およびアネキシンＶ陽性血管の割合は、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１腫瘍における４０％からＨ３５８腫瘍における１５％に及んだ。陰イオン性リン脂質陽性血管は、腫瘍の全ての領域における毛細管および血管の管腔表面に存在したが、特に壊死の領域およびその周辺では優勢であった。ほとんどの陰イオン性リン脂質陽性血管は、光学顕微鏡によって明らかである形態学的異常を示さなかった。まばらに存在する血管、詳細には壊死領域に位置する血管は、悪化の形態学的兆候を示した。９Ｄ２抗体およびアネキシンＶはまた、壊死細胞およびアポトーシス腫瘍細胞に局在したが、コントロールＩｇＭの局在化は検出不能であった（図４）。
【０７４６】
これらの知見によって、陰イオン性リン脂質は、種々の腫瘍における血管内皮細胞の管腔表面に存在するが、正常な組織には存在しないことが実証される。
【０７４７】
６．二重染色研究
正所性ＭＤＡ−ＭＢ−２３１乳房腫瘍を保有するマウスにビオチン化９Ｄ２抗体、ビオチン化コントロールＩｇＭまたはビオチン化アネキシンＶを静脈内注射した二重染色研究を行なった。１時間後、マウスを屠殺して、その腫瘍を取り出して、凍結切片を切断した。次いで腫瘍切片をＣｙ３結合体化ストレプトアビジンを用いて染色して、ビオチン化タンパク質を検出し、ＦＩＴＣ結合体化ＭＥＣＡ３２を用いて染色して血管内皮細胞を検出した。この検出方法では赤および緑によってビオチン化タンパク質および血管内皮細胞を標識した。ビオチン化タンパク質が内皮に結合した場合、集束型画像（ｃｏｎｖｅｒｇｅｄ  ｉｍａｇｅ）は黄色になる。
【０７４８】
これらの研究では、ビオチン化９Ｄ２およびアネキシンＶはほとんどが、血管内皮に結合するようであった。なぜならそれらの染色パターンは、ＭＥＣＡ３２の染色パターンに収斂したからである。間接的な免疫組織化学によって得られた結果と極めて一致して、約４０％のＭＥＣＡ  ３２陽性血管が９Ｄ２およびアネキシンＶに結合した。腫瘍間質へのビオチン化タンパク質の漏出は、二重染色で検出されたが、それは間接的な免疫組織化学によっては明らかではなかった。
【０７４９】
ビオチン化タンパク質は、血管のうちわずか（約５％）の周囲の血管内皮の外側に見出された。無関係の特異性のビオチン化ラットＩｇＭを注射されたマウス由来の腫瘍において、ビオチン化ＩｇＭはまた、血管のうちほぼ同様の割合（約５％）の周囲の腫瘍間質に漏出したが、ほとんどは血管内皮によって結合されないようであった。おそらく、二重染色技術によって検出されるが、ただし間接的な免疫組織化学技術によっては検出されない、血管外遊出した９Ｄ２およびアネキシンＶの検出は、過去の技術のさらに大きい感度、および２つの染色パターンが比較され得るさらに大きい精度を反映する。注射されていないコントロール腫瘍は、ストレプトアビジン−Ｃｙ３によって完全に染色され、このことは赤い蛍光が局在化されたタンパク質に相当することを示す。
【０７５０】
実施例ＶＩＩ
腫瘍環境における陰イオン性リン脂質膜転位
腫瘍血管内皮細胞に固有のインビボ表面マーカーとしてのアミノリン脂質および陰イオン性リン脂質の発見によって、このような分子の転位および外膜発現に対する腫瘍の微小環境の効果をさらに検討するように本発明者らは促された。本実施例は、腫瘍内の条件を模倣する特定の条件に対して細胞内皮をインビトロで暴露することによって、インタクトな生存可能な細胞において、初期に観察されたアミノリン脂質および陰イオン性リン脂質表面発現が再現されることを示す。
【０７５１】
Ａ．材料および方法
１．アネキシンＶのヨウ素化
組み換えヒトアネキシンＶは、ＥＴ１２ａ−Ｐａｎｉｏｎｉｃ  リン脂質１プラスミド（Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  ｏｆ  Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ，ＳｅａｔｔｌｅのＪ．Ｔａｉｔ博士から入手）で形質転換したＥ．ｃｏｌｉから精製した。タンパク質の純度およびＰＳに対する結合を、それぞれＳＤＳ−ＰＡＧＥおよびＰＳコーティングされたプラスチックで確認した。ウサギポリクローナル、アフィニティー精製抗アネキシンＶ抗体を用いてＰＳに結合したアネキシンＶを検出した。アネキシンＶは、Ｂｏｃｃｉ（１９６４）によって記載されたとおりクロラミンＴを用いて１２５Ｉで放射性標識した。比活性は、Ｂｒａｎｄｆｏｒｄアッセイ（１９７６）で測定した場合、タンパク質１μｇあたり約１×１０６ｃｐｍであった。
【０７５２】
２．内皮細胞処置
表１１に挙げた濃度のサイトカインまたは増殖因子を用いて内皮細胞を処置した。全ての試薬を１０％の血清を含む培地中で希釈して、細胞とともに３７℃で２４時間インキュベートした。
【０７５３】
低酸素の効果を研究するため、細胞を２４ウェルプレートに播種して、４８時間、加湿した正常酸素雰囲気（２１％Ｏ２、５％ＣＯ２）中でインキュベートさせ、その後に密閉したチャンバ（Ｂｉｌｌｕｐｓ  Ｒｏｔｈｅｎｂｅｒｇ  Ｉｎｃ．，Ｄｅｌ  Ｍａｒ，Ｃａ）中で加湿した低酸素雰囲気（１％Ｏ２、５％ＣＯ２、９４％Ｎ２）に移した。細胞を低酸素チャンバにおいて３７℃で２４時間インキュベートして、次いで３７℃で正常酸素環境に４時間戻した。この細胞を同一継代からの平行培養と比較して、同じ日に播種して、完全に正常酸素条件下で維持した。いくつかの研究において、低酸素チャンバに移す前に、ＩＬ−１α（１０ｎｇ／ｍｌ）およびＴＮＦα（２０ｎｇ／ｍｌ）を培地に加えた。
【０７５４】
酸性微小環境の効果を試験するために、必要量のＨＣｌを用いて種々のｐＨ（７．３から６．２の間におよぶ）に調節した、重炭酸塩を欠く増殖培地に細胞を曝露させた。ＣＯ２の非存在下で３７℃で細胞をインキュベートした。培養の２４時間の間、培養培地が割り当てられたｐＨを保持することを確認した。これらの実験条件は、ウシまたはマウスの内皮細胞のいずれにも毒性ではなく、結合した単層の細胞形態学にも生存度にも影響を有さなかった。
【０７５５】
３．１２５Ｉ標識したアネキシンＶによる培養内皮細胞上でのＰＳの検出
上記の試薬を用いた処置後に、処置した細胞およびコントロール細胞を、７．１ピコモルの１２５Ｉ標識アネキシンＶ（２００μｌ／ウェル）を含有する結合緩衝液とともにインキュベートした。室温での２時間のインキュベーション後、細胞を徹底的に洗浄して、０．５ＭのＮａＯＨに溶解した。０．５ｍｌの全体容積をプラスチックチューブに移して、ガンマカウンターでカウントした。５ｍＭ  ＥＤＴＡの存在下で非特異的結合を決定して、実験値から差し引いた。その結果を、１×１０６個の細胞について正規化した、細胞結合したアネキシンＶの正味のピコモルとして表現した。
【０７５６】
アクチノマイシンＤおよびＴＮＦα（各々の成分の５０ｎｇ／ｍｌ）で同時にい処置した細胞上で、アネキシンＶの最大結合を決定した。以前に報告されたとおり、これらの因子は、内皮細胞のうち９０〜１００％でアポトーシスおよびＰＳ露出を生じる（Ｌｕｃａｓら、１９９８）。未処置の細胞に対する１２５ＩアネキシンＶの基礎的な結合を、１０％血清を含む培地の存在下で決定した。未処置の培養物に結合した１２５ＩアネキシンＶの量を、処置した培養物における量から差引きした。ＰＳの露出を以下の式に従って算出した：実験条件下の細胞結合アネキシンＶ（ピコモル）を最大アネキシンＶ結合（ピコモル）で割り、１００を掛けた。各々の研究を二連で行い、少なくとも３回行なった。平均値を算出した。これらの別の実験からのＳＥの平均値は５％未満であった。
【０７５７】
４．培養した内皮細胞およびＭＤＡ−ＭＢ−４３５腫瘍細胞におけるＰＳの検出
ＨＵＶＥＣ細胞および腫瘍細胞を８ウェルチャンバースライド上で約７０％コンフルエンスまで増殖させた。ＰＳ曝露を誘導するために、細胞を無血清培地中でＨ２Ｏ２（２００μＭ）で３７℃にて１時間処理した。細胞をＤＰＢＳで洗浄し、無血清培地中に希釈した２μｇ／ｍｌの３Ｇ４抗体とともに室温で１時間インキュベートした。ＤＰＢＳで穏やかに洗浄したのち、細胞をＰＢＳ中の４％（ｖ／ｖ）パラホルムアルデヒドで１５分間固定した。
【０７５８】
Ｔｅｘａｓ  Ｒｅｄ標識ファロイジン（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ，Ｅｕｇｅｎｅ，ＯＲ）で細胞骨格を同時染色するために、細胞をＰＢＳ中の０．１％  Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ１００で５分間透過性にした。Ｔｅｘａｓ  Ｒｅｄ標識ファロイジン（１％ＢＳＡを含むＰＢＳ中の１：５０希釈）およびＦＩＴＣ標識ヤギ抗マウス抗体（１％ＢＳＡを含むＰＢＳ中の１：２００希釈）を、室温で１時間インキュベートした。細胞核を、ＤＡＰＩで対比染色した。無関係の特異性のマウスＩｇＧ３および二次抗体単独を、これらの研究においてネガティブコントロールとして用いた。各研究を二連で行い、少なくとも２回繰り返した。
【０７５９】
他の、研究においてＨ２Ｏ２処理した細胞を、０．２５％トリプシンで分離させ、洗浄し、０．０５％  ｗ／ｖアジ化ナトリウムおよび２μｇ／ｍｌの３Ｇ４を含む氷冷ＤＭＥＭに１時間懸濁させた。細胞ペレットを１％  ＢＳＡを含むＰＢＳで洗浄し、ＦＩＴＣ標識ヤギ抗マウス抗体（１：２００希釈）を含む同じ緩衝液に３０分間懸濁させた。３回洗浄したのち、細胞ペレットを、１％  ＰＢＳおよび０．０５％  ｗ／ｖアジ化ナトリウムを含むＰＢＳに懸濁させた。生／死の識別のために、ヨウ化プロピジウムをＦＡＣＳ分析の前に添加した。
【０７６０】
Ｂ．結果
１．Ｈ２Ｏ２による誘導
マウスｂＥｎｄ．３内皮細胞を、５０，０００細胞／ウェルの初期密度で播種した。２４時間後に細胞を、漸増濃度（１０μＭ〜５００μＭ）のＨ２Ｏ２とともに３７℃で１時間インキュベートするか、または未処置のままにした。インキュベーションの終わりに細胞を０．２％ゼラチン含有ＰＢＳで３回洗浄して、０．２５％グルタルアルデヒドで固定した。同一のウェルを抗ＰＳ  ＩｇＭで染色するか、またはトリプシン処理してトリパンブルー排除試験によって生存度について評価した。抗ＰＳ染色のために、２％ゼラチンを用いた１０分間のブロッキング後に、細胞を２μｇ／ｍｌの抗ＰＳ抗体とともにインキュベートし、続いて抗マウスＩｇＭ−ＨＲＰ結合体を用いて検出した。
【０７６１】
高濃度のＨ２Ｏ２に対する内皮細胞の暴露によって約９０％の細胞においてＰＳ転位が生じる。しかし、これには、基板からの細胞の脱離および約５０〜６０％までの細胞生存度の低下をともなう。細胞生存度の低下を伴う表面ＰＳ発現の関連は理解可能であるが、それでもなお約９０％の転位が観察され、これには細胞生存度のわずか５０〜６０％の低下しか伴わないということは注目される。
【０７６２】
より低濃度のＨ２Ｏ２を用いることで、細胞生存度において感知できるほどの低下なしに有意なＰＳ発現が得られた。例えば、ＰＳは２０μＭ程度の低濃度でＨ２Ｏ２を用いて、全てのＨ２Ｏ２処置したウェルにおける約５０％の細胞の細胞表面で検出された。これらの低いＨ２Ｏ２濃度下で、プラスチックおよびお互いに対して強固に結合したままの細胞は、形態学的変化を示さず、そして細胞傷害性の兆候も有さなかったことに注目することが重要である。詳細な解析によって本質的に１００％の細胞間接触、適切な細胞形状の保持およびインタクトな細胞骨格が明らかになった。
【０７６３】
従って、低レベルのＨ２Ｏ２によって誘導された５０％のＰＳ表面発現が細胞集団で観察され、ここでは細胞生存度は、コントロールの未処置細胞に同一であった（すなわち、９５％）。高いＨ２Ｏ２濃度に関連したＰＳ発現には、細胞損傷と伴い、そして高いＨ２Ｏ２濃度に対して曝露されたＰＳ陽性細胞は、脱落されて、浮かび、そして細胞骨格が破壊されていた。
【０７６４】
低濃度Ｈ２Ｏ２の存在下での細胞生存度の維持は、他の実験からのデータと一致する。例えば、Ｓｃｈｏｒｅｒら（１９８５）は、１５μＭ  Ｈ２Ｏ２で処置したヒト臍静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）が平均９０〜９５％の生存度（５％〜１０％の傷害として報告された）であったが、１５００μＭ  Ｈ２Ｏ２に暴露された細胞ではわずか０〜５０％の生存度（５０％〜１００％損傷された）であったことを示した。
【０７６５】
インビトロにおける腫瘍環境を模倣するためのＨ２Ｏ２の使用はまた、腫瘍環境が、Ｈ２Ｏ２および他の反応性酸素種を生成する炎症性細胞、例えば、マクロファージ、ＰＭＮおよび顆粒球において豊富であるという点でも適切である。安定な腫瘍血管マーカーと前には決して結び付けられていないが、炎症性細胞は、Ｈ２Ｏ２の存在を要する反応性酸素種に関する機構によって内皮細胞損傷を媒介することが公知である（Ｗｅｉｓｓら、１９８１；Ｙａｍａｄａら、１９８１；Ｓｃｈｏｒｅｒら、１９８５）。実際に、インビトロにおけるＰＭＮの刺激は、細胞死（クロム遊離アッセイによって測定される）も細胞剥落も生じることのない、致死に至らない内皮細胞損傷を生じるのに十分なＨ２Ｏ２の濃度を生じること；およびこれらのＨ２Ｏ２濃度がインビボで局所的に獲得可能であることが研究によって示されている（Ｓｃｈｏｒｅｒら、１９８５）。
【０７６６】
現在のインビトロ転位データは、抗ＰＳ抗体がインビボで腫瘍血管内皮細胞に特異的に局在して、正常な組織における細胞には結合しないことを示す、初期の結果と相関している。インビボのような濃度のＨ２Ｏ２が細胞完全性を破壊することなく内皮細胞表面に対するＰＳ転位を誘導するという知見は、もとのインビボデータおよび本発明者らの治療アプローチを確証することに加えて重要な意味を有する。
【０７６７】
ヒト、ウシおよびマウスの内皮細胞は全てが、正常な条件下ではＰＳ陰性であることが公知である。任意の以前に考証されたＰＳ発現は常に、細胞損傷および／または細胞死に関連している。これは正常な生存度が維持される本研究においては事情が異なる。これによって、腫瘍血管内皮におけるＰＳ転位が、細胞損傷とは関係のない生化学的機構によって媒介されることが示される。これは、形態学的にインタクトな内皮細胞におけるＰＳ表面発現の最初の実証であり、そしてＰＳ発現がアポトーシス経路（単数または複数）から切り離され得るという最初の開示であると考えられる。本発明の実現可能性に戻れば、これらの観察によってやはり、ＰＳが一過性ではなく持続できる腫瘍血管のマーカーであって、治療介入のための適切な候補物であることが確認される。
【０７６８】
２．トロンビンによる誘導
トロンビンはまた、ＰＳ発現を増大するが、Ｈ２Ｏ２と同じ程度までではないことが観察された。このデータはまた、本発明者らによって開発されたＰＳ発現の腫瘍誘導モデルの欠くことのできない部分である：正常組織におけるトロンビン誘導性ＰＳ表面発現はまた、さらなる凝固物である。なぜなら、ＰＳ発現は凝固開始複合体のアセンブリを協調させるからである。
【０７６９】
腫瘍環境は、腫瘍血管が凝固する傾向があるように血栓促進性（プロトロンビン性）であることが公知である（米国特許第５，８７７，２８９号）。トロンビンは、凝固カスケードの産物であるので、これは腫瘍血管に存在する。実際、トロンビンの存在は、ＶＣＡＭ発現を誘導して、これは本発明者らが腫瘍血管の標的可能マーカーとしてＶＣＡＭを開発する能力に貢献する（米国特許第５，８５５，８６６号；同第５，８７７，２８９号）。従って、トロンビンがまたＰＳ発現を誘導するということを示す本発明のデータは、裸の抗体および治療結合体を用いてアミノリン脂質を標的化することに関係し、さらに組織因子を含む抗ＶＣＡＭコアグリガンドの有益な効果を説明する（実施例Ｉ）。
【０７７０】
３．酸化的ストレスの他の因子
インビトロにおけるマウスｂＥｎｄ．３またはウシＡＢＡＥ細胞を、多くの腫瘍の微小環境に存在する（Ｌｉｃｈｔｅｎｂｅｌｄら、１９９６；Ｈａｒｒｉｓら、１９９６）種々の濃度の因子および条件、例えば、低酸素／再酸素化、トロンビン、酸性度、炎症性サイトカインおよび過酸化水素を用いて２４時間処置した（表１１）。
【０７７１】
ＰＳおよび陰イオン性リン脂質の外面化を、１２５ＩアネキシンＶ結合を測定することによって定量した。アネキシンＶ結合の量を、アクチノマイシンＤおよびＴＮＦ−αを用いる併用処置によって、細胞のうち９０〜１００％のアポトーシスが誘導された細胞での量と比較した。アクチノマイシンＤおよびＴＮＦαは、文献報告（Ｒａｏら、１９９２）とよく一致して、両方の細胞タイプにおいて１０６個の細胞あたり６．２ピコモルのアネキシンＶの結合（１細胞あたり３．８×１０６個のアネキシンＶの分子）を誘導した。この値を外面化された陰イオン性リン脂質の最大レベルとした。
【０７７２】
【表１１】
2008528521.tif 000027
表１１では、用いられるサイトカイン、増殖因子およびトロンビンの濃度を、培養された内皮細胞に対して最大の刺激効果を有する文献の値から選択した。これらの濃度は、形態学的外観、脱落のないこと、およびトリパンブルーの取り込みのないことによって判定されるとおり、試験の期間（２４時間）を通じて毒性を生じなかった。使用されるＨ２Ｏ２の濃度は、選択された条件下で細胞傷害性を生じない最大濃度であった。
【０７７３】
１２５ＩアネキシンＶの基礎的な結合を増殖培地単独の存在下で決定した。アクチノマイシンＤおよびＴＮＦαを用いた併用処置によるアポトーシスの導入後に最大のＰＳ露出を決定した。３つの別の研究からの繰り返しの平均を示す。標準誤差は５％未満であった。
【０７７４】
未処理の細胞を、アネキシンＶまたは抗ＰＳ（９Ｄ２）抗体結合によって判定されるように、外面化したＰＳをほとんど欠いた（表１１）。増殖媒体単独の存在下での基礎的結合は、それぞれＡＢＡＥおよびｂＥｎｄ．３細胞について、０．４４および０．６８ピコモルの１２５ＩアネキシンＶであった。これは、同じ条件下で約１０％の細胞がビオチン化アネキシンＶに結合するという知見とよく関連して、それぞれ、ＡＢＡＥおよびｂＥｎｄ．３細胞について約７．１％および１０．９％の最大の結合に相当した。
【０７７５】
ＶＥＧＦ、ＨＧＦ、ＦＧＦ、ＴＧＦβ１、ＰＤＧＦ、ＩＬ−６、ＩＬ−８およびＩＬ−１０は、未処置の細胞について基礎的レベルを上回って１２５ＩアネキシンＶの結合を増大しなかった。炎症伝達物質（ＩＬ−１α、ＩＬ−１β、ＴＮＦαおよびインターフェロン）は、ＡＢＡＥ細胞について最大レベルの５〜８％およびｂＥｎｄ３細胞について３〜１４％に及ぶ、ＰＳおよび陰イオン性リン脂質の転位において少ないが再現性の増大を生じた。
【０７７６】
低酸素／再酸素化、トロンビンまたは酸性の外部条件（ｐＨ６．８〜６．６）によって、ＡＢＡＥ細胞については最大レベルの８〜２０％、およびｂｅｎｄ．３細胞については最大レベルの１７〜２２％におよぶ、ＰＳおよび陰イオン性リン脂質の中程度の高い外面化が誘導された。１００〜２００μＭの過酸化水素を用いた処置後にＰＳおよび陰イオン性リン脂質転位における最大の増加が観察された。この処置によって、１２５ＩアネキシンＶ結合によって判定されるように、両方の細胞タイプにおけるＰＳのほぼ完全な（９５％）外面化が生じた（表１１）。免疫組織化学的に判定されたとおり、ＡＢＡＥおよびｂＥｎｄ．３細胞の７０％より多くがビオチン化アネキシンＶに結合した。
【０７７７】
ＰＳおよび陰イオン性リン脂質転位が低酸素／再酸素化、トロンビン、酸性度、ＴＮＦα、ＩＬ−１またはＨ２Ｏ２を用いた処置によって生成された内皮細胞は、アッセイの期間（２４時間）中、マトリックスに結合したままであり、細胞間接触を保持し、トリパンブルー色素を排除する能力を保持した。誘導性因子が除去されるか、または培養条件が正常に戻された後に、正常なＰＳおよび陰イオン性リン脂質の配向は、ほとんどの細胞において２４〜４８時間後に回復された。Ｈ２Ｏ２の直接の適用によって、または低酸素／再酸素化、酸性度、トロンビンもしくは炎症性サイトカインによって間接的に、生み出された穏やかな酸化的ストレスが生存可能な内皮細胞上のＰＳおよび陰イオン性リン脂質の一過性の転位を誘発することがこれらの結果によって示される。
【０７７８】
４．炎症性サイトカインおよび低酸素／再酸素化の併用効果
ＡＢＡＥおよびｂＥｎｄ．３細胞をＩＬ−１αまたはＴＮＦαの存在下で低酸素／再酸素化に供した場合、強化されたＰＳおよび陰イオン性リン脂質露出が観察された。サイトカインの非存在下で、低酸素／再酸素化は、ＡＢＡＥ細胞によるＰＳ露出を、アポトーシス濃度のアクチノマイシンＤおよびＴＮＦαで処置した細胞について最大レベルの１５％〜１７．５％まで増大した。毒性未満の濃度のＩＬ−１αまたはＴＮＦαの存在下で、低酸素／再酸素化は、陰イオン性リン脂質露出をそれぞれ最大の２６％および３３％まで増大した（図５；表１１）。低酸素／再酸素化の非存在下でのサイトカインの効果との比較によって、サイトカインおよび低酸素／再酸素化の組み合わせがＰＳ露出に対して相加作用よりも大きい作用であったことが示される。同様の効果がｂＥｎｄ．３細胞上で観察された。
【０７７９】
従って、腫瘍環境においては、低酸素／再酸素化によって誘導されたＰＳおよび陰イオン性リン脂質の露出は、炎症性サイトカインによって、そしておそらくは酸性度およびトロンビンのような他の刺激によって増幅され得る。
【０７８０】
これらのインビトロ研究は、インビボにおける腫瘍内皮細胞に対するＰＳ露出の機構の解明に役立った。それらによって、インビボにおいて腫瘍における刺激を模倣する細胞傷害性を生じずに、種々の要因が内皮細胞に対するＰＳ露出を誘導するということが示される。低酸素とその後の再酸素化、酸性度およびトロンビンが、生存可能な内皮細胞上のＰＳ露出を最も増大した。炎症性サイトカイン（ＴＮＦαおよびＩＬ−１α）はまた、ＰＳ露出の弱いが明確な誘導を生じた。
【０７８１】
これらの条件は、以下の理由によってインビボでの腫瘍における主な誘導性刺激である可能性が高い：ｉ）ＰＳ陽性内皮細胞は、低酸素、酸性度、血栓症になった血管、および浸潤性宿主白血球が通常観察される、壊死および壊死の周囲の領域において優勢である；ｉｉ）低酸素／再酸素化がインビトロにおける内皮細胞に対するＴＮＦαおよびＩＬ−１の弱いＰＳ露出活性を増幅するという知見は、低酸素およびサイトカイン分泌腫瘍および宿主細胞が共存する腫瘍におけるインビボ状況と相関する；ｉｉｉ）低酸素／再酸素化およびトロンビンは、ＮＡＤＰＨオキシダーゼ様膜酵素の活性化を通じて内皮細胞において反応性酸素種（ＲＯＳ）を生成することが報告されている（Ｚｕｌｕｅｔａら、１９９５）。悪性細胞によって生成されたＲＯＳは、内皮細胞の損傷に寄与し得る（Ｓｈａｕｇｈｎｅｓｓｙら、１９８９）。過酸化水素は、本研究において見出された培養された内皮細胞上のＰＳ露出の最も強力な誘導因子であって、これによってＲＯＳの関与についての直接の支持が得られる。
【０７８２】
外面化したＰＳによって、凝固因子がその上に濃縮およびアセンブルする陰性のリン脂質表面が得られる。これは、長らく認識されている腫瘍内皮上の凝固促進性の状況に寄与し得る。ＰＳはまた、腫瘍への白血球浸潤を補助する、循環しているマクロファージ（ＭｃＥｖｏｙら、１９８６）、Ｔリンパ球（Ｑｕら、１９９６）および多形核球細胞についての結合部位を提供する。腫瘍内皮上のＰＳに対する活性化マクロファージ、多形核細胞および血小板の結合は、反応性酸素種のさらなる分泌およびＰＳ露出のさらなる増幅をもたらし得る。
【０７８３】
５．Ｈ２Ｏ２処理したＨＵＶＥＣおよびＭＤＡ−ＭＢ−４３５細胞に対する抗体結合
Ｈ２Ｏ２処理した、および未処理のＨＵＶＥＣおよびＭＤＡ−ＭＢ−４３５細胞に対する３Ｇ４抗体の結合を、フローサイトメトリーによって分析した（図５Ａ）。Ｈ２Ｏ２処理条件は、上記のように確立し、原形質膜の外面における陰イオン性リン脂質の曝露を誘導した。
【０７８４】
Ｈ２Ｏ２での処理前にいずれの細胞も検出可能なレベルで３Ｇ４に結合しなかった。Ｈ２Ｏ２での処理後、３Ｇ４で染色しその後ＦＩＴＣ−抗マウスＩｇＧで染色した細胞の平均蛍光強度は、ＢＢＧ３で処理しその後二次試薬で処理した細胞の平均蛍光強度と比べて約１０倍であった。Ｈ２Ｏ２処理した細胞は、ヨウ化プロピジウムで染色されず、これは、これらの外側の膜がインタクトであることを示す。３Ｇ４結合は、陰イオン性リン脂質から調製したリポソームによってブロックされたが、中性のリン脂質から調製したリポソームではブロックされず、これは、３Ｇ４が細胞の陰イオン性リン脂質に結合することを示す。
【０７８５】
細胞表面における３Ｇ４抗体の分布を決定するために、Ｈ２Ｏ２処理したＨＵＶＥＣおよびＭＤＡ−ＭＢ−４３５細胞を、間接免疫蛍光によって３Ｇ４で染色し、蛍光顕微鏡を用いて試験した（図５Ｂ、図５Ｃ、図５Ｄおよび図５Ｅ）。３Ｇ４抗体は、Ｈ２Ｏ２処理したＨＵＶＥＣおよびＭＤＡ−ＭＢ−４３５細胞の原形質膜の別個の領域を染色した。細胞膜の染色された領域は、Ｈ２Ｏ２で処理した内皮細胞に観察される「膜泡」と類似の、小さい表面泡が現れた（Ｈａｓｔｉｅら、１９９７；ｖａｎ  Ｇｏｒｐら、２００２）。Ｈ２Ｏ２で処理した細胞は、コントロール抗体であるＢＢＧ３によって染色されず（図５Ｂ、５Ｄ）、これは、細胞への３Ｇ４の結合が抗原特異的であることを示す。同一の染色パターンが、ＦＩＴＣ標識アネキシンＡ５で観察された。３Ｇ４陽性のＨ２Ｏ２で処理した細胞は、Ｈ２Ｏ２の添加１時間後に試験した場合、核濃縮の形態学的兆候を示さず、内皮細胞中の過酸化物誘導性膜泡がグルタチオン酸化と関連し、アポトーシスと関連せず、可逆的ではあり得ないという報告（ｖａｎ  Ｇｏｒｐｒａ、２０００）と一致する。
【０７８６】
したがって、これらの知見は、３Ｇ４抗体が通常はＨＵＶＥＣまたはＭＤＡ−ＭＢ−４３５細胞の表面に存在せず、細胞がＨ２Ｏ２で処理された場合に細胞表面に曝露される陰イオン性リン脂質に結合することを示す。
【０７８７】
（実施例ＸＩＩＩ：アネキシン結合体の抗腫瘍効果）
アミノホスホリピドが腫瘍脈管構造の安定なマーカーであるという驚くべき知見はまた、抗体−治療剤構築物がガン治療に使用され得ることを意味する。標的剤としての抗体の使用に加えて、本発明者らは、アネキシン、および他のアミノホスホリピド結合タンパク質もまた、治療剤を腫瘍脈管構造に特異的に送達するのに使用され得ると結論付けた。以下のデータは、アネキシン−ＴＦ構築物のインビボ投与から生じる抗腫瘍効果を示す。
【０７８８】
（Ａ．方法）
アネキシンＶ−ｔＴＦ結合体を調製し、そして固形腫瘍を有するｎｕ／ｎｕマウスに投与した。この腫瘍は、少なくとも約１．２ｃｍ３の腫瘍を形成したヒトＨＴ２９結腸直腸腺ガン細胞から形成された。アネキシンＶ−ｔＴＦコアグリガンド（１０μｇ）を静脈内投与し、そして２４時間循環させた。生理食塩水で処置したマウスを、コントロールマウスとして別々に維持した。１日の処置期間の後、このマウスを屠殺し、そして放血させ、そしてこの腫瘍および主な器官を分析のために採取した。
【０７８９】
（Ｂ．結果）
アネキシンＶ−ｔＴＦ結合体が、ＨＴ２９腫瘍保有マウスにおいて特定の腫瘍血管凝固を誘導することを見出した。アネキシンｖ−ｔＴＦ結合体処置した動物における腫瘍血管の約５５％が、１回の注射後に血栓形成した。対照的に、コントロール動物の腫瘍脈管構造において血栓、最小限に現れた。
【０７９０】
実施例ＩＸ
３ＳＢ抗ＰＳ抗体の抗腫瘍効果
本実施例は、同系および異種の腫瘍モデルを用いる抗ＰＳ抗体の抗腫瘍効果を示す。本研究で用いる３ＳＢ抗体は、ＰＳ（およびＰＡ）に結合するが、本質的にＰＥとの反応性は欠く。この抗ＰＳ抗体は、血栓および腫瘍壊死を伴った腫瘍血管傷害を生じた。
【０７９１】
抗ＰＳ抗体の効果を、３ＳＢ抗体を用いる同系および異種の腫瘍モデルにおいて最初に試験した。同系のモデルについて、マウス結腸直腸ガンＣｏｌｏ２６の１×１０７個の細胞（Ｄｒ．ｌａｎ  Ｈａｒｔ，ＩＣＲＦ、Ｌｏｎｄｏｎから入手）をＢＡＬＢ／ｃマウスの右脇腹に皮下注射した。異種モデルにおいては、雄性ＣＢ１７  ＳＣＩＤマウスの右脇腹に１×１０７個の細胞を皮下注射することによってヒトホジキンリンパ腫Ｌ５４０異種移植片を樹立した。処置の前に約０．６〜０．９ｃｍ３のサイズまで腫瘍を増殖させた。
【０７９２】
腫瘍保有マウス（１群あたり４匹）に２０μｇの３ＳＢ抗ＰＳ抗体（ＩｇＭ）、コントロールのマウスＩｇＭまたは生理食塩水を腹腔内注射した。４８時間の間隔で処置を３回繰り返した。動物を腫瘍測定および体重について毎日モニターした。腫瘍容積を実施例Ｉに記載のとおり算出した。腫瘍が２ｃｍ３に達するか、または腫瘍が壊死もしくは潰瘍形成の兆候を示す前にマウスを屠殺した。
【０７９３】
同系および異種の腫瘍の両方の増殖を３ＳＢ抗ＰＳ抗体を用いた処置によって効率的に阻害した（図６Ａおよび図６Ｂ）。抗ＰＳ抗体は、血栓および腫瘍壊死を伴った腫瘍血管傷害を生じた。ブロックされた血管の周囲の血餅の存在および腫瘍塊の分解が証明された。
【０７９４】
定量的に、３ＳＢ抗ＰＳ抗体処置は、大きいＣｏｌｏ２６腫瘍（図６Ａ）およびＬ５４０腫瘍（図６Ｂ）を保有するマウスにおけるコントロール腫瘍容積の６０％まで腫瘍増殖を阻害した。生理食塩水またはコントロールのＩｇＭで処置したマウスでは、腫瘍増殖の遅延は見出されなかった。抗ＰＳ抗体で処置したマウスでは毒性は観察されず、正常な器官では、未処置または生理食塩水で処置されたマウスと識別できない、未変化の形態が保存されていた。
【０７９５】
腫瘍の退行は最初の処置の２４時間後に開始して、腫瘍はその後６日間サイズが低下し続ける。これは同系および免疫無防備状態＋腫瘍モデルの両方で観察され、このことはこの効果が免疫状態依存性機構（単数または複数）によって媒介されることを示した。さらに、腫瘍負荷の減少は、１５００ｍｍ３より大きい腫瘍を保有するコントロールのマウスに比べて、動物の意識の覚醒の向上および一般的に健常な外観を伴っていた。最初の処置の７〜８日後に腫瘍の再増殖が生じた。
【０７９６】
Ｌ５４０腫瘍の抗ＰＳ処置で得られた結果は以下の利用のためにさらに納得される。とりわけ、Ｌ５４０腫瘍処置において観察された腫瘍壊死は、Ｌ５４０腫瘍においてＰＳに陽性に染色された血管の割合がＨＴ２９およびＮＣＩ−Ｈ３５８腫瘍におけるよりも少ないという事実にかかわらず生じた。このことは、他の腫瘍タイプを処置した場合、さらに急速な壊死が生じる可能性が高いということを意味する。さらに、Ｌ５４０腫瘍は、清澄な組織学的切片を提供して、実際に壊死に対して耐性であることが公知なので、一般に実験モデルとして選択される。
【０７９７】
実施例Ｘ
陰イオン性リン脂質に対する抗体（９Ｄ２）の抗腫瘍効果
本実施例は、インビボにおける抗腫瘍研究において、ＰＳおよび他の陰イオン性リン脂質に結合する、９Ｄ２抗体の効果を実証する。
【０７９８】
陰イオン性リン脂質９Ｄ２に結合する高用量（＞１５０μｇ）のラット抗体を、Ｈ３５８腫瘍を保有するヌードマウスに注射した。免疫局在化研究によって、これが腫瘍内皮に強力に局在した（４＋）が、正常な血管による９Ｄ２の非特異的な結合が、高用量に起因していくらか低いレベルで観察されたことが示された（無関係の特異性のコントロールのＩｇＭ抗体について観察されるように）。
【０７９９】
腹水産物にＬ５４０腫瘍を有するＳＣＩＤマウスに９Ｄ２を腹腔内注射した場合、腫瘍は壊死して崩壊した。Ｌ５４０腫瘍を有するＳＣＩＤマウスへのコントロール抗体（ＭＫ２．７、ラットＩｇＧ）の注射の際、同様の効果は観察されなかった。
【０８００】
次いで、インビボでのＬ５４０腫瘍の増殖に対する９Ｄ２抗ＰＳ抗体の効果をさらに正確に決定した。腫瘍が２００〜２５０μｌに達した場合、処置を開始した（０日）。０日から７日まで、マウスに約１５０μｇのＩｇＭ（２００μｌ上清）または２００μｌの１０％ＤＭＥＭを腹腔内注射した。７日から２２日まで、マウスに約３００μｇのＩｇＭ（４００μｌ上清）または４００μｌの１０％ＤＭＥＭを腹腔内注射した。２２日が処置の最終日であって、マウスを屠殺した。
【０８０１】
表１２に示すとおり、１０〜２２日まで、腫瘍増殖は一般に約４０％〜５０％まで阻害される。研究の終わりに、２０００μｌ容積を超える腫瘍を有するのはコントロール群での９匹中９匹に比べて、処置群ではわずか４匹のマウスであった。
【０８０２】
【表１２】
2008528521.tif 000028
別のインビボ研究では、ＣＢ１７  ＳＣＩＤマウスにおけるＬ５４０腫瘍の増殖に対するラット抗ＰＳ抗体の効果を、腫瘍細胞注射後４５日間追跡した。これらの腫瘍保有マウスを、毎日３００μｇの抗ＰＳ抗体を腹腔内に用いて処置するか、またはコントロールとして毎日３００μｌの１０％  ＤＭＥＭを腹腔内に用いて処置した。腫瘍処置の種々のパラメーターは、コントロールに比べて処置群において著しく良好であった（表１３）。
【０８０３】
【表１３】
2008528521.tif 000029
１処置後示した時点で（６０日対９０日）、処置したマウスにおいては測定するには腫瘍が小さすぎる
２リンパ節における転移
さらなる研究では、９Ｄ２抗体を、Ｌ５４０腫瘍を有するマウスに１週あたり３回１００μｇの用量で腹腔内注射した。週に２回ノギスで腫瘍サイズを測定した。コントロール群に比較した抗腫瘍効果を図７に示す。カッコの数は、１群あたりのマウスの総数あたりの退行した腫瘍を有するマウスの数を示す。
【０８０４】
実施例ＸＩ
抗ＰＳ抗体３Ｇ４の抗腫瘍効果
本実施例は、同系および異種の腫瘍モデルにおいて抗ＰＳ抗体３Ｇ４を用いて、さらなる抗腫瘍効果を実証する。本研究で用いる３Ｇ４抗体は、ＰＳおよび他の陰イオン性リン脂質に結合するＩｇＧ抗体である（実施例ＩＶ）。
【０８０５】
Ａ．動物腫瘍研究についてのプロトコール
同系および異種の腫瘍モデルにおいて３Ｇ４の効果を検討した。動物腫瘍処置研究のための一般的プロトコールは以下のとおり行なう。特に相違を示さない限り、これは本出願の研究全体にわたって用いたプロトコールである。
【０８０６】
動物は、Ｃｈａｒｌｅｓ  Ｒｉｖｅｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓから入手した。マウスは４〜５週齢の雌性Ｃ．Ｂ−１７  ＳＣＩＤまたはＦｏｘ  Ｃｈａｓｅ  ＳＣＩＤマウスである。マウスをオートクレーブしたケージで、無菌の食物および水で、無菌的な取り扱いで飼育した。ラミナーフローのフードにおいて全ての手順を行なった。マウスを１週間馴化させて、次いで耳にタグを付けて、血液サンプル（約７５〜１００μｌ）を尾静脈から採取して、ＥＬＩＳＡによって漏出をチエックする。漏出ＥＬＩＳＡ試験をできないマウスは試験手順には用いるべきではない。耳にタグ付けして血液サンプルを取り出した２〜３日後に、乳房の脂肪パッド（ＭＦＰ）に、または右の脇腹に皮下的に、腫瘍細胞をマウスに同所性に注射する。
【０８０７】
同所性モデルでは、１×１０７個の細胞を含む０．１ｍｌのＤＭＥＭを麻酔されたマウスのＭＦＰに局所注射する。マウスを０．０７５ｍｌのマウスカクテル腹腔内注射によって麻酔する。このマウスカクテルは５ｍｌ  ケタミン（１００ｍｇ／ｍｌ）；２．５ｍｌ
キシラジン（２０ｍｇ／ｍｌ）；１ｍｌ  アセプロマジン（１０ｍｇ／ｍｌ）；１１ｍｌ滅菌水である。投与量は、３０分間にわたりＩＰ経路を介して体重２０〜３０グラムあたり０．１ｍｌである。
【０８０８】
つまさき／足のピンチに応答しないことを測定した場合、一旦マウスを麻酔すれば、マウスを左を下にして横にさせて、頭部のすぐ後ろおよび右前脚／背中領域周囲を７０％エタノールで拭く。２〜３ｍｍの切開を右前脚のすぐ後ろ（胸部側方）で行い、これによって、皮膚弁を持ち上げた場合、白っぽい脂肪パッドが明らかになる。１ｍｌのシリンジおよび２７ゲージの針を用いて０．１ｍｌの細胞を脂肪パッドに注射して、この脂肪パッドに小疱を生成する。９ｍｍ滅菌創傷クリップを用いて切開を閉鎖する。マウスをそのケージに戻して、麻酔から覚醒して動くまで観察する。術後の健康状態を確認し、もし窮迫の何らかの兆候が観察されれば、その動物にアセトアミノフェン（０．２４ｍｇ／ｍｌ）＋コデイン（０．０２４ｍｇ／ｍｌ）を含む飲料水を与える。創傷クリップは１週後に除去する。この方法を用いて、細胞を選択された部位に正確において、皮下領域にはいれない。腫瘍は１４〜１５日では約２００μｌの容積（Ｌ×Ｗ×Ｗ）であって、摂取率は本質的に１００％である。
【０８０９】
皮下モデルにおいては、マウスに代表的には、１×１０７個の細胞を含む０．２ｍｌを注射する。マウスを麻酔せず、ただしマウス皮膚の確実なグリップを用いて拘束して、右脇腹を曝す。２３ゲージの針を備える１ｍｌのシリンジを用いて、マウスの皮膚の直下に１×１０７個の細胞を含む２００μｌを注射して、小疱が示される。注射部位からの少量の液体漏出が観察されるのは珍しいことではない。この漏出を減らすために皮下注射から針を抜く場合にねじれ運動を用いてもよい。腫瘍容積はＬ×Ｗ×Ｈによって測定する。
【０８１０】
灌流プロトコールでは、マウスに１０００Ｕのヘパリンを含有する０．２ｍｌの生理食塩水を静脈内注射する。次いで、０．１ｍｌのマウスカクテルを用いたマウス腹腔内注射によってマウスを鎮静する。つまさき／足にピンチングされる場合に反射がないということで測定されるように一旦マウスが十分に鎮静されれば、胸腔を開口して心臓および肺を露出させる。チューブおよび灌流ポンプに接続した３０ゲージ針を左心室に挿入する。右心室を切りとって、これによって血液を滴下させ得る。１分あたり１ｍｌの速度で１２分間、生理食塩水をポンピングする。灌流の終わりに、この針およびチューブを抜き取る。免疫組織化学または病理にいずれかのさらなる研究のために組織を取り出す。
【０８１１】
Ｂ．腫瘍処置結果
同系モデルについては、Ｍｅｔｈ  Ａマウス線維肉腫腫瘍細胞を用いた。異種モデルの１つにおいて、ヒトＭＤＡ−ＭＢ−２３１乳ガン細胞を、乳腺脂肪パッドに播種した。別の異種モデルでは、細胞を注射することおよび腫瘍を処置の前に５００ｍｍ３を超えるサイズまで増殖させることによって、大きいヒトホジキンリンパ腫Ｌ５４０異種移植片を樹立した。腫瘍保有マウス（１群あたり１０匹）に、コントロールに対して、１００μｇの３Ｇ４抗ＰＳ抗体（ＩｇＧ）を腹腔内注射した。処置は週に３回繰り返した。動物を腫瘍測定のために週に２回モニターした。
【０８１２】
同系および異種の腫瘍の両方の増殖は、３Ｇ４抗ＰＳ抗体での処置によって効率的に阻害された。最初の２０〜３０日間の処置を図８Ａ、図８Ｂおよび図８Ｃに示す。この抗体は、腫瘍血管損傷、局所的血栓および腫瘍壊死を生じた。
【０８１３】
同系のＭｅｔｈ  Ａ腫瘍細胞の処理は特に首尾よく、そして乳腺脂肪パッドにおいて増殖しているヒトＭＤＡ−ＭＢ−２３１乳ガン細胞の処置も腫瘍退行を生じた（図８Ａおよび図８Ｂ）。壊死に耐性であることが公知の大きいＬ５４０腫瘍を保有するマウスでさえ、３Ｇ４抗体処置は、コントロールに比べて腫瘍増殖を阻害した。腫瘍増殖の遅延はコントロールマウスでは見いだされなかった。抗ＰＳ抗体で処置したマウスでは毒性は観察されなかった。
【０８１４】
腫瘍をまたＭＤ−ＭＢＡ−４３５細胞を用いて樹立して上記のように処置した。これらの腫瘍の増殖はまた、３Ｇ４抗体での処置によって効率的に阻害された。６０日間の大きいＬ５４０腫瘍、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１およびＭＤ−ＭＢＡ−４３５腫瘍細胞の処置を図８Ｄ、図８Ｅおよび図８Ｆに示す。この抗体は、腫瘍血管損傷、血栓および壊死および腫瘍増殖の遅延を生じ、毒性の証拠はなかった。
【０８１５】
ＭＤ−ＭＢＡ−４３５ルシフェラーゼ細胞は、Ｂａｒｃｅｌｏｎａ、ＳｐａｉｎのＡｎｇｅｌｓ  Ｓｉｅｒｒａ  Ｊｉｍｅｎｅｚ博士から入手して、１０％ＤＭＥＭ中で増殖させた。マウスに上記のような腫瘍細胞を注射して、注射の２週後にこの腫瘍を測定して容積を記録した。同様の平均容積（２００ｍｍ３）の腫瘍でのマウスの処置を、コントロールに対して、実施例ＸＩＸに記載のように生成した、３Ｇ４抗体およびキメラ３Ｇ４抗体を用いて行った。１５日の腹腔内注射（８００μｇ）によって処置を開始して、３５日の４００μｇの最終注射まで２〜３日ごとに２００μｇの注射を続けた。腫瘍容積およびマウス体重を注射の日に測定した。マウスを屠殺して、生理食塩水を１２分間灌流させた。器官および腫瘍を取り出して、液体窒素中で急速凍結させて、免疫組織化学的解析のために腫瘍を切片化した。
【０８１６】
この研究によって、コントロールに対して、３Ｇ４抗体およびキメラ３Ｇ４抗体の両方とも腫瘍増殖を効率的に遅延させたことが示された（図８Ｇ）。
【０８１７】
実施例ＸＩＩ
ＣＭＶに対する抗ＰＳ抗体の抗ウイルス効果
驚くべきことに、腫瘍脈管構造からウイルス感染へ分野を切り替えて、本発明者らは次に、アミノリン脂質および陰イオン性リン脂質に対する抗体がまた抗ウイルス効果を発揮する可能性が高いと判断した。本実施例は実際に、サイトメガロ（ＣＭＶ）感染の処置において３Ｇ４抗体を最初に用いて、これが真実であることを示す。
【０８１８】
Ａ．方法
１．インビトロにおけるＣＭＶ感染細胞の処置
６ウェルプレート中のヒト二倍体包皮線維芽細胞（ＨＨＦ−Ｒ２）のコンフルエントな単層を、前に記載されたように、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）を発現するヒトＣＭＶ  ＡＤ１６９を用いて、ＭＯＩ＝０．０１で感染させた（Ｂｒｅｓｎａｈａｎら、１９９６）。要するに、この細胞を、１ウェルあたり１ｍｌの総容積でウイルスとともに、３７℃で９０分間インキュベートした。感染の間、プレートを３０分ごとに穏やかにロッキングさせた。感染後、細胞上清を取り出してＤＭＥＭ／１０％  ＦＢＳ／ｐｅｎ−ｓｔｒｅｐ（１ウェルあたり２ｍｌ）を各々のウェルに添加した。
【０８１９】
３Ｇ４またはアイソタイプマッチングしたコントロール抗体ＧＶ３９Ｇの希釈物（１００μｇ／ｍｌおよび５０μｇ／ｍｌ）をウェルに添加した。感染した細胞を３７℃で、全部で１９日間インキュベートさせた。各々のウェルにおいて培地および抗体を３日ごとに交換した。１９日目に各々のウェル由来の細胞および上清を回収して、プラークアッセイを行なうまで−８０℃で凍結させた。
【０８２０】
２．蛍光顕微鏡
組み換えＣＭＶは、ＳＶ４０プロモーターの制御下でＧＦＰを発現する。従って、感染した細胞は、蛍光顕微鏡下で緑になる。これらの研究では、抗体で処置したＣＭＶ感染細胞は、２日目、３日目および９日目に蛍光顕微鏡下で観察された。
【０８２１】
３．プラークアッセイ
標準的プロトコールと用いてプラークアッセイを行なった。要するに、凍結細胞細胞懸濁液を３７℃で急速に融解して、１０００ｒｐｍで１分間、遠心分離によって砕片を除去した。細胞上清の種々の希釈物を、６ウェルプレート中のＨＨＦ−Ｒ２細胞のサブコンルフエントな単層に加えて、その細胞を３７℃で９０分間インキュベートさせた（このプレートを３０分ごとに穏やかにロッキングさせた）。感染後に、細胞上清を取り出して、２ｍｌのＤＭＥＭ／１０％  ＦＢＳと交換した。４日目に、各々のウェルの上清を取り出して、細胞に０．０１％の低融点のアガロース／ＤＭＥＭ／１０％  ＦＢＳを重層した。このプレートを感染後、３７℃で、全部で１４日間インキュベートさせた。１４日目に、感染した単層を１０％緩衝化ホルマリンで固定して、メチレンブルーで染色して、プラークを可視化した。
【０８２２】
Ｂ．結果
１．３Ｇ４がＣＭＶのウイルス伝播を阻害する
３Ｇ４がＣＭＶ感染および複製に対して阻害性効果を有するか否かを検討するために、コンフルエントなヒト線維芽細胞を、低いｍ．ｏ．ｉでＣＭＶを添加する前に、３Ｇ４で前処置した。これらの研究において用いられるＣＭＶは、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）を発現する。従って、感染された細胞は、蛍光顕微鏡下で観察された場合に緑になる。
【０８２３】
処置の３日目に、抗体の５０μｇ／ｍｌおよび１００μｇ／ｍｌの両方を用いて、未処置のウェルにおいて、および３Ｇ４またはアイソタイプマッチングコントロール抗体ＧＶ３９Ｇで処置したウェルにおいて、両方とも単一の感染細胞が存在する。従って、３Ｇ４を用いた線維芽細胞の処置は、細胞へのウイルスの侵入を有意に阻害しないようである。
【０８２４】
しかし、９日目には、３Ｇ４処置対コントロールＧＶ３９Ｇ処置ウェルにおける感染細胞の数に劇的な相違が存在する（図９Ａおよび図９Ｂ；上側の右のパネルを中央および下部の右側のパネルと比較する）。ウイルスは、コントロールウェルにおいては単層の約８０％に感染しているが、ウイルスは、３Ｇ４処置ウェルにおいては最初の単一感染した細胞に限定される。従って、３Ｇ４は、もとの感染細胞から周囲の細胞へのＣＭＶの伝播を制限する。ウイルス伝播の阻害は、細胞が１００μｇ／ｍｌ（図９Ａ）および５０μｇ／ｍｌ（図９Ｂ）で処置された場合に観察される。
【０８２５】
２．ウイルス阻害は、抗体濃度依存性である
低ｍ．ｏ．ｉでの抗ウイルス効果に必要な３Ｇ４の濃度を決定するために、感染した細胞を、異なる濃度の３Ｇ４およびコントロール抗体ＧＶ３９Ｇで処置した。図１０に示されるように、３Ｇ４を１００μｇ／ｍｌおよび５０μｇ／ｍｌで用いて細胞間の伝播の完全な阻害が観察される。細胞を２５、１２．５および６．２５μｇ／ｍｌの３Ｇ４で処置した場合、ＧＦＰ陽性ＣＭＶ感染細胞の数が増大される。３Ｇ４は、これらのさらに低濃度の一次感染細胞からのウイルス伝播を完全には妨げないが、依然として意味のある抗ウイルス効果を有する。なぜなら、ＧＶ３９Ｇ処置したコントロールウェルに比較して３Ｇ４処置したウェルでは、みられるＧＦＰ陽性ＣＭＶ感染細胞はわずかであるからである（図１０）。
【０８２６】
３．低Ｍ．Ｏ．Ｉでのウイルスロードの定量
抗体処置後のウイルスロードを決定するプラークアッセイを行なうことによって３Ｇ４の抗ウイルス効果を定量した。このコントロールは、未処置の細胞、ＧＶ３９Ｇ抗体、およびＣ４４抗体を用いるさらなる抗体コントロール、コルヒチンに対するマウスＩｇＧ２ａアイソタイプ抗体を含んだ。
【０８２７】
１００μｇ／ｍｌの３Ｇ４で感染させた感染細胞の処置（ｍ．ｏ．ｉ＝０．０１ｐｆｕ／細胞）によって、コントロールＧＶ３９Ｇ処置細胞に比較して、ウイルス力価において劇的である６ｌｏｇ１０の低下が得られた（図１１Ａ）。この阻害は、ウイルス複製のほぼ９９．９９９９％阻害に変換する。５０μｇ／ｍｌの濃度での３Ｇ４を用いた処置によって、３Ｇ４での処置によって、ＧＶ３９Ｇ処置に比較してウイルス力価の３．５のｌｏｇ１０の低下が生じる。３Ｇ４を２５μｇ／ｍｌおよび１２．５μｇ／ｍｌで用いたところ、結果はさらに劇的であって、６．２５μｇ／ｍｌでさえ阻害効果がやはり観察される（図１１Ａ）。
【０８２８】
４．高Ｍ．Ｏ．Ｉ．でのウイルスロードの定量
３という高ｍ．ｏ．ｉ．で感染された線維芽細胞の３Ｇ４処置によってまた、ウイルス力価の劇的な低下が生じる。１００μｇ／ｍｌでは、３Ｇ４での処置は、コントロールのＧＶ３９Ｇ処置細胞に比較してウイルス力価の５ｌｏｇ１０の低下が生じた（図１１Ｂ）。５０μｇ／ｍｌでは、３Ｇ４が、ＧＶ３９Ｇに比較して３ｌｏｇまでウイルス複製を阻害した（図１１Ｂ）。
【０８２９】
５．後期段階での複製の阻害
ＣＭＶ複製サイクルのどの段階が３Ｇ４によってブロックされるかを決定するために、タイミング的な添加研究を行なった。このために、感染後種々の時点で高ｍ．ｏ．ｉ．で感染した線維芽細胞に３Ｇ４を加えた。ウイルスロード（細胞および上清の両方において）を標準的なプラークアッセイを用いて定量した。
【０８３０】
感染後２４時間までの３Ｇ４の添加によって、ウイルス力価におけるｌｏｇ１０の５〜６の低下が生じた（図１１Ｃ）。しかし、３Ｇ４の添加が４８時間まで遅れた場合、３Ｇ４の阻害性効果は、ｌｏｇ１０で２まで低下して、添加が７２時間〜９６時間まで遅れた場合、阻害性効果がさらに低下された。これによって、感染後２４〜４８時間の間に生じるＣＭＶ複製の後期段階を３Ｇ４が妨害することが示される。従って、３Ｇ４は、感染もごく早期もしくは早期の遺伝子発現も有意に妨害しない。これは、例えば、後期遺伝子発現、ウイルスＤＮＡ合成、ウイルスパッケージングまたは出現に対してよりも、ウイルス複製周期の後期に作用する。
【０８３１】
実施例ＸＩＩＩ
ＲＳＶに対する抗ＰＳ抗体の抗ウイルス効果
実施例ＸＩＩに示されるＣＭＶに対する劇的な抗ウイルス効果に加えて、本実施例は、呼吸器合胞体ウイルス（ＲＳＶ）複製の阻害における３つの異なる抗ＰＳ抗体の使用を実証する。
【０８３２】
Ａ．方法
１．インビトロにおけるＲＳＶ感染細胞の処置
Ａ５４９細胞を、３つのＣｏａｓｔｅｒ  １２ウェル組織培養プレートにおいて１００％コンフルエンスまで増殖させた。２００μＬの最小基本イーグル培地を全てのウェルに添加した。抗リン脂質抗体（Ａｂ）を各々のプレートの９つのウェルに添加（１００μＬに１００μｇ）して、３０分後に最初の９ウェルのうちの６つにおける細胞をＲＳＶ長型株を含む１００μＬの容積を１のＭＯＩで用いて感染させた。３つの残りのウェルを感染されていない、抗体処置ウェルのまま残した。抗体を有さない３つの他のウェルを、ＲＳＶを上記と同じＭＯＩで用いて感染させた。
【０８３３】
各々のプレートを用いて３つの異なる抗体：３Ｇ４、３ＳＢおよび１Ｂ９を試験した（実施例ＩＶ）。細胞を５％ＣＯ２において４０℃で２時間インキュベートして、次いで６００μＬの培地を、各々のウェルに添加して１ｍＬにした。Ａ５４９細胞プレートをコントロールとして同じ条件で維持した。上清を感染後に４時間、２４時間および７２時間で収集した。各々の時点で、各々のプレートから４つのウェルをサンプリングした：１つのウェルにはＡｂ処理細胞のみがあり、２つのウェルにはＡｂ処理した／ＲＳＶ感染細胞があり、そして１つのウェルにはＲＳＶ感染細胞のみがあった。このサンプルをプラークアッセイまで−８０℃で凍結させた。
【０８３４】
２．プラークアッセイ
プラークアッセイを前に記載の通り行なった（Ｋｉｓｃｈら、１９６３；Ｇｒａｈａｍら、１９８８）。要するに、凍結細胞の細胞上清を３７℃で急速融解させた。未希釈の細胞上清から３段の１０倍希釈を行なった：１０−１、１０−２および１０−３。各々の希釈の１００μＬに加えて未希釈のサンプルを、全て３連の８０％コンフルエントＨｅｐ−２細胞株プレートに接種した。プレートを５％ＣＯ２，４０℃インキュベーターに５日間入れた。５日目に、このプレートを発色させて、ヘマトキシリンおよびエオシンで染色して、各々のウェルにおけるプラークを明らかにした。このプラークを、解剖顕微鏡を用いてカウントして、ｐｆｕ（プラーク形成単位）／ｍＬにおけるＲＳＶウイルスロードを算出した。
【０８３５】
Ｂ．結果
図１２に示されるとおり、３ＳＢまたは１Ｂ９のいずれかを用いるＲＳＶ感染細胞の処置によって、ウイルス複製の対数低下が生じた。感染した細胞を３Ｇ４で処置した場合、抗ウイルス効果が、さらに証明された。３Ｇ４を用いた処置によって、ウイルス力価において２ｌｏｇ１０の低下が得られた（図１２）。阻害は、ＣＭＶで見られるよりも低く、これは３Ｇ４の濃度が低かった（２５〜５０μｇ／ｍｌ）ためである可能性が最も高い。
【０８３６】
実施例ＸＩＶ
短鎖抗ＰＳ抗体
抗腫瘍因子単独として、腫瘍に対して結合した治療因子を送達するための標的化因子として、および抗ウイルス剤としての使用を含む、本明細書に記載される抗ＰＳ抗体の多くの使用を考慮すれば、本実施例は、短鎖（ｓｃＦｖ）抗ＰＳ抗体を生成するのに適切な技術を記載しており、すなわち、ここではＶＨドメインおよびＶＬドメインがペプチドリンカーによって一般に結合される短鎖ポリペプチド鎖に存在する。
【０８３７】
Ａ．ファージ抗体ライブラリーの調製
細菌ライブラリーの二次ストック（約１×１０１０クローン）を１００μｇ／ｍｌアンピシリンおよび１％グルコースを含む１００ｍｌ  ２×ＴＹに接種した。これをＯＤが６００ｎｍで０．５になるまで、３７℃で振盪しながら増殖させた。
【０８３８】
Ｍ１３ＫＯ７ヘルパーファージを１０１３ｐｆｕで添加して、３７℃の水浴中で振盪せずに３０分間インキュベートさせた。感染した細胞を３，５００ｇで１０分間遠心分離した。このペレットを１００μｇ／ｍｌ  アンピリシンおよび７５μｇ／ｍｌ  カナマイシンを含む２００ｍｌの２×ＴＹに再懸濁して、振盪しながら３０℃で一晩インキュベートさせた。
【０８３９】
培養物を１０，８００ｇで１０分間遠心分離した。１／５容積のＰＥＧ／ＮａＣｌをこの上清に加え、十分に混合させて、４℃に１時間おいた。次いで、１０，８００ｇで３０分間遠心分離した。このペレットを４０ｍｌのＰＢＳに再懸濁して８ｍｌ  ＰＥＧ／ＮａＣｌを添加した。これを混合して４℃に２０分間おいた。次いで、これを１０，８００ｇで１０分間遠心分離して、上清を吸引した。このペレットを２ｍｌの１０％ヒト血清に再懸濁して、微小遠心分離機で１１，６００ｇで１０分間遠心分離して、残りの細菌の破片のほとんどを除去した。
【０８４０】
プレパン（ｐｒｅ−ｐａｎ）するために、１０％ヒト血清におけるファージ抗体ライブラリーをＰＣコーティングディッシュに添加して、室温で６０分間インキュベートした。
【０８４１】
Ｂ．ビオチン化リポソーム上の選択
２０μｍｏｌのホスファチジルイノシトールおよび２０μｍｏｌのビオチン化ホスファチジルセリンを１０ｍｌのヘキサンに溶解した。この溶液を、回転エバポレーターを用いてフラスコの表面上に薄層に乾燥させた。２ｍｌ  ＰＢＳを添加して、槽を４℃で３０分間超音波処理した。
【０８４２】
次いで、１００μｌのファージｓｃＦｖおよび１００μｌ  ビオチン化リポソームを１０％のヒト血清の存在下で混合して、室温で１時間穏やかに回転させた。室温で３０分間６００μｌ  ２．５％カゼイン／０．５％  ＢＳＡを添加することによって１００μｌ  ストレプトアビジンＭ−２８０ダイナビーズを用いてブロッキングを行なった。４〜５分間、ＭＰＣ−Ｅ（Ｍａｇｎｅｔｉｃ  Ｐａｒｔｉｃｌｅ  Ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｏｒ  ｆｒｏｍ  Ｄｙｎａｌ）を用いてブロッキング緩衝液からビーズを分離した。
【０８４３】
１００μｌのＰＢＳにビーズを再懸濁した。１００μｌのブロックされたストレプトアビジンダイナビーズ（Ｄｙｎａｂｅａｄｓ）をビオチン化抗原に結合したファージに添加して、室温で１５分間穏やかに回転させた。ＭＰＣ−Ｅを用いて５分間分離を達成して、上清を流し出した。これを１ｍｌ  ＰＢＳを用いて５分間洗浄した。各々の洗浄のために、ビーズを再懸濁してＭＰＣ−Ｅを用いて沈下させた。
【０８４４】
最終的に、ファージを３００μｌ  １００ｍＭ  トリエーテルアミンに３０分間再懸濁することによってビーズから溶出させた。１５０μｌ  １Ｍ  Ｔｒｉｓ  ｐＨ＝７．４を中和のために添加した。ＭＰＣ−Ｅを用いてビーズを再度分離した。
【０８４５】
１５０μｌのファージ上清を用いて、対数期の１０ｍｌ  ＴＧ１細菌に感染させた。１０ｍｌの培養物を２０μｇ／ｍｌ  アンピシリンの存在下で３７℃で１時間振盪させた。アンピシリンを最終濃度５０μｇ／ｍｌまで添加して、さらに１時間振盪させた。１０１３ｐｆｕ  Ｍ１３ヘルパーファージをこの培養物に添加して、１００μｇ／ｍｌ  アンピシリンを含む１００ｍｌ  ２ＴＹ培地に移して、３７℃で１時間振盪させた。カナマイシンを最終濃度１００μｇ／ｍｌまで添加して、３０℃で一晩振盪させた。
【０８４６】
ファージ調製手順を繰り返して、選択手順をさらに３〜４回繰り返した。
【０８４７】
Ｃ．モノクローナル単鎖抗体ＥＬＩＳＡ
プレートからの個々のＨＢ２１５１コロニー（４回の選択後）を、９６ウェルプレート中に１００μｇ／ｍｌのアンピシリンおよび１％グルコースを含有する５００μｌ  ２×ＴＹ中に接種して、３７℃で一晩振盪しながら（３００ｒｍ．）増殖させた。このプレートからの５μｌを、１ウェルあたり１００μｇ／ｍｌのアンピシリンを含有する５００μｌ  ２×ＴＹを含有する第二の９６ウェルプレートに移して、振盪しながら３７℃で３時間増殖させた（ＯＤ６００＝０．９）。
【０８４８】
１００μｇ／ｍｌアンピシリン、１０ｍＭ  ＩＰＴＧ（最終濃度は１ｍＭ）を含有する５０μｌ  ２×ＴＹを各々のウェルに添加して、これを振盪しながら３０℃で一晩増殖させた。これを１，８００ｇで１０分間遠心分離して、以下のＥＬＩＳＡにおいて１００μｌの上清を用いた。
【０８４９】
１０μｇ／ｍｌの濃度で、エタノールに溶解したＰＳを用いて、９６ウェルプレート（ＤＹＮＥＸ  ＩＭＭＵＬＯＮ（登録商標）１Ｂ）をコーティングした（Ｐ６６４１  １０ｍｇ／ｍｌ溶媒は、クロロホルム：ＭｅＯＨ  ９５：５であった）。１０μｇ／ｍｌのＰＣを同じ方法でコーティングした。これらのプレートを冷室で４℃でエバポレートした。２５０μｌ  ２．５％カゼインを各々のウェルに添加して、そのプレートをカバーして、３７℃で１時間ブロックした。
【０８５０】
ＰＢＳを用いてウェルを３回リンスして、可溶性のｓｃＦｖを含有する１００μｌ／ウェル  １０％ヒト血清および１００μｌ／ウェルの上清を添加して、３７℃で６０分間インキュベートした。溶液を廃棄して、ＰＢＳを用いて６回洗浄した。１００μｌ  ９Ｅ１０を含有する５％カゼイン／０．５％  ＢＳＡ−ＰＢＳ（１：５０００希釈）を各々のウェルに添加して、３７℃で１時間インキュベートしてＰＢＳを用いて６回洗浄した。１００μｌ  ＨＲＰヤギ抗マウス抗体（１：１００００希釈）を各々のウェルに添加して、３７℃で１時間インキュベートして、ＰＢＳを用いて５回洗浄した。１００μｌ  ０．０５％ＯＰＤを各々のウェルに添加して、５分間発色させた。１００μｌ  ０．１８Ｍ  Ｈ２ＳＯ４を添加して反応を停止させてＯ．Ｄ．４９０で読み取った。
【０８５１】
抗原陽性クローンを２×ＴＹＡＧプレート上にストリークして、３０℃で一晩増殖させた。陽性の単一のコロニーを３ｍｌ  ２×ＴＹＡＧ培地中に拾い上げて、３７℃で１２時間増殖させた。プラスミドを抽出して、ｓｃＦｖ遺伝子挿入物を酵素消化およびＰＣＲによってチェックした。正確なサイズの挿入物を有するものを配列決定した。
【０８５２】
正確なサイズの挿入物を有するコロニーを１００ｍｌ  ２×ＴＹＡＧ培地中で増殖させて、３７℃  ＯＤ  ６００＝０．５で振盪させた。これらを９００ｍｌ  ２×ＴＹＡに移して、ＯＤ６００＝０．９まで増殖させた。１Ｍ  ＩＰＴＧを最終濃度１ｍＭに添加して３０℃で一晩振盪させた。前と同じＥＬＩＳＡ方法を用いて上清をチェックした。Ｎｉ＋＋アガロースアフィニティークロマトグラフィーを用いて周辺質画分からｓｃＦｖタンパク質を精製した。
【０８５３】
Ｄ．結果
４回のパンニング後、以下のクローンはＰＳプレート上の見込みのあるＥＬＩＳＡシグナルを生じて、正確なサイズの挿入物を有する：３Ｅ５、３Ａ２、Ｇ５、Ｃ８、Ｅ４および４Ｄ５。これらをサブクローニングさせたが、ここではＥ４は、５つの陽性のサブクローンを有して、４Ｄ５は、５つの陽性のサブクローンを有した（表１４）。
【０８５４】
表１４
ＰＳプレートでのＥＬＩＳＡ
【０８５５】
【表１４】
2008528521.tif 000030
一旦陽性クローンが同定されれば、それらのクローンを配列決定した。ＳｃＦｖ核酸およびクローン３Ａ２のタンパク質の配列を、それぞれ配列番号５および配列番号６に示す。陽性クローンを大規模に増殖させて、Ｎｉｃｋｅｌアガロースアフィニティークロマトグラフィーを用いてｓｃＦｖを精製させた。Ｐｈａｓｔゲル電気泳動を用いて、精製されたｓｃＦｖを得た。
【０８５６】
実施例ＸＶ
ＰＥ結合ペプチド誘導体の合成
本実施例は、腫瘍およびウイルス疾患を処置するのにおける使用のための例示的なＰＥ結合ペプチド誘導体および結合体の設計および合成に関する。例示的なデュラマイシン誘導体の構造は、図１３Ａ〜図１３Ｏのパネルに示されており、これは以下の説明に合致する。
【０８５７】
Ａ．ＤＬＢ
０．３８７ｍｌの０．１Ｍ  ＮａＨＣＯ３を含有する水に溶解された０．５ｍｇ（０．２５μｍｏｌ）のデュラマイシンを０．１１３ｍｇ（０．２５μｍｏｌ）のＮＨＳ−ＬＣ−ビオチン（Ｓｉｇｍａ）に添加した。この反応混合物を室温で１時間、次いで４℃で一晩インキュベートさせた。サンプルをシリカカラムにロードして、０．１％トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）を用いて洗浄して、０．１％ＴＦＡおよび７０％ＣＨ３ＣＮを用いて溶出させた。この溶出物を収集して、遠心分離によって濃縮した。総収量は０．５ｍｇであった（図１３Ａ）。
【０８５８】
Ｂ．ＤＩＢ
０．２８６ｍｌの０．１Ｍ  ＮａＨＣＯ３を含有する水に溶解された０．５ｍｇ（０．２５μｍｏｌ）のデュラマイシンを０．０３４ｍｇ（０．２５μｍｏｌ）の２−イミノチオラン塩酸塩（２−ＩＴ）に添加した。この混合物を室温で１時間インキュベートさせた。０．１３ｍｇ（０．２６μｍｏｌ）のヨードアセチル−ＬＣ−ビオチン（Ｐｉｅｒｃｅ）を添加して、その反応物を室温で１時間、そして４℃で一晩インキュベートさせた。サンプルをシリカカラムにロードして、０．１％  ＴＦＡを用いて洗浄して、０．１％ＴＦＡおよび７０％ＣＨ３ＣＮを用いて溶出させた。この溶出物を収集して、遠心分離によって濃縮した。総収量は０．５ｍｇであった（図１３Ｂ）。
【０８５９】
Ｃ．（ＤＬＢ）４ＮＡ
０．５ｍｌの０．１Ｍ  ＮａＨＣＯ３を含有する水に１．９ｍｇ（０．９４μｍｏｌ）のデュラマイシンを溶解した。ここに、０．４ｍｇ（０．８８μｍｏｌ）のＮＨＳ−ＬＣ−ビオチン（Ｓｉｇｍａ）を含有する２００μｌジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）を添加した。この混合物を室温で４時間インキュベートさせた。１０ｍｇ（０．１７μｍｏｌ）ニュートラビジン（ＮＡ）を含有する１ｍｌをこの反応混合物に添加して、これを室温で２時間、次いで４℃で一晩インキュベートさせた。次いでこの反応混合物を、ＰＢＳ緩衝液を含むＧ−２５カラム（容積５０ｍｌ）上にロードさせた。この画分を収集して、ＳＤＳ  ＰＡＧＥ（ｐｈａｓｔゲル）によって解析した。タンパク質含有画分（７〜１６）を一緒にプールして、０．２２μｍフィルターを通した濾過によって滅菌して、２８０ｎｍでの吸光度を測定することによって濃度を決定した。総収量は５．１ｍｇであった。
【０８６０】
次いで、サンプルをＦＰＬＣによって分画した。以下に相当する３つのピークを収集した：ピーク１：［（ＤＬＢ）４ＮＡ］３（画分１７〜２３）；ピーク２：［（ＤＬＢ）４］２（画分２４  ３３）およびピーク３：（ＤＬＢ）４ＮＡ（画分３５〜４８）。全てのサンプルを０．２２μｍのフィルターを通した濾過によって滅菌した。得られた最終収量は以下であった：０．３４ｍｇの［（ＤＬＢ）４ＮＡ］３；０．５９ｍｇの［（ＤＬＢ）４］２および１．４１ｍｇの（ＤＬＢ）４ＮＡ（図１３Ｃ）。
【０８６１】
Ｄ．（ＤＬＢ）４ＮＡ−Ｆ
０．６１ｍｇの（ＤＬＢ）４ＮＡを含有するＰＢＳ緩衝液を、０．００５ｍｇＮ−ヒドロキシスクシンイミジルフルオレセイン（ＮＨＳ−フルオレセイン）（Ｓｉｇｍａ）を含有するＤＭＦに添加した。この混合物を室温で１時間インキュベートした。次いで、この反応物をＰＤ１０カラム（１０ｍｌ）に分画した。（ＤＬＢ）４ＮＡ−Ｆを、タンパク質含有画分（３および４）に溶出させて、これを一緒にプールして、０．２２μｍフィルターを通した濾過によって滅菌した。総収量は０．５ｍｇであった（図１３Ｄ）。
【０８６２】
Ｅ．（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧ
ヒトＩｇＧ（ＨＩｇＧ）を最初に以下のとおり精製した：１．３ｍｌ  ＨＩｇＧ（これは、１ｍＭ  ＥＤＴＡ、ｐＨ９を有するホウ酸緩衝液に１００ｍｇ／ｍｌ  ＨＩｇＧ、２２．５ｍｇ／ｍｌグリシンおよび３ｍｇ／ｍｌアルブミンを含んだ）を、ＦＰＬＣ（Ｓ２００、２５０ｍｌ）カラムに加えた。この画分を収集して、ｐｈａｓｔゲル上でＳＤＳ  ＰＡＧＥによって解析した。単量体のＩｇＧを含む画分（２１〜３２）を一緒にプールして、０．２２μｍフィルターを通した濾過によって滅菌した。２８０ｎｍでの吸光度によって決定される総収量は１１１ｍｇであった。
【０８６３】
精製したＨＩｇＧ（５５ｍｇを１３ｍｌのホウ酸緩衝液、ｐＨ９に含む）を、０．５ｍｌの、ＳＭＣＣ（Ｐｉｅｒｃｅ）を含むＤＭＦに１．００３ｍｇに添加した。この混合物を室温で１時間インキュベートした。同時に、６ｍｇのデュラマイシンを含む別の反応混合物（３μｍｏｌ；０．５ｍｌ  ０．１Ｍ  ＮａＨＣＯ３に溶解される）および０．４１３ｍｇ  ２−ＩＴ（３μｍｏｌ；０．１Ｍ  ＮａＣＯ３に含まれる）を室温で１時間インキュベートさせた。反応の終了後、２つの反応混合物を合わせて、室温で２時間、そして４℃で一晩インキュベートさせた。この反応産物を、ｐｈａｓｔゲル上のＳＤＳ  ＰＡＧＥによって解析した。この反応産物を、ホウ酸緩衝液、ｐＨ９を含むＦＰＬＣカラムにロードした。三量体（５〜１４）、二量体（１５〜２４）、および単量体（２５〜３７）に相当するＦＰＬＣ画分をプールして、０．２２μｍフィルターを通した濾過によって滅菌した。単量体の総収量は５４．６ｍｇであった。５〜７つのデュラマイシン基をＨｉｇＧの各々の分子に結合させた（図１３Ｅ）。
【０８６４】
Ｆ．（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧ−Ｆ
１ｍｇ（０．７ｍｌ）の（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧを、５μｌの、ＮＨＳ−フルオレセインを含有するＤＭＦに添加した。反応混合物を室温で１時間インキュベートして、ＰＤ−１０カラムで脱塩した。タンパク質含有画分（２〜３）をプールして、０．２２μｍフィルターを通した濾過によって滅菌した。総収量は０．９ｍｇであった（図１３Ｆ）。
【０８６５】
Ｇ．（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧ−Ｂおよび［（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧ］２−Ｂ
［（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧ］２のビオチン化誘導体を合成するために、０．６６ｍｇ（１ｍｌ）の［（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧ］２を８μｌの、１ｍｇ／ｍｌのＮＨＳ−ＬＣ−ビオチン（Ｐｉｅｒｃｅ）を含有するＤＭＦに添加した。この混合物を室温で１時間インキュベートした。次いで、この反応混合物をＰＤ−１０カラムで脱塩した。タンパク質含有画分（３および４）をプールして、０．２２μｍフィルターを通した濾過によって滅菌した。最終の収量は０．４６ｍｇであった。
【０８６６】
単量体（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧのビオチン化を同じ様式で行なった。要するに、１．０６ｍｇ（０．７５ｍｌ）の（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧを、１２μｌの１ｍｇ／ｍｌ  ＮＨＳ−ＬＣ−ビオチンを含有するＤＭＦに添加した。室温での１時間のインキュベーション後、反応産物をＰＤ−１０カラムで脱塩した。タンパク質含有画分（３および４）をプールして、０．２２μｍフィルターを通した濾過によって滅菌した。最終の収量は０．６２ｍｇであった（図１３Ｇ）。
【０８６７】
Ｈ．（ＤＩＢ）４ＮＡ
２ｍｇ（０．９９μモル）のデュラマイシンを、０．５ｍｌ  ０．１Ｍ  ＮａＨＣＯ３に溶解して、０．１３６ｍｇ（０．９９μｍｏｌ）の２−ＩＴに添加した。この反応混合物を室温で１時間インキュベートした。その後に、０．４８３ｍｇ（０．９５μｍｏｌ）のヨードアセチル−ＬＣ−ビオチン（Ｐｉｅｒｃｅ）を添加してその反応混合物を室温で１時間インキュベートした。１０ｍｇ（０．１７μｍｏｌ）のニュートラビジンを含む１ｍｌのＨ２Ｏを添加して、４℃で一晩インキュベートした。反応混合物をＦＰＬＣによって分画した。３つの異なるピークを収集してプールした：［（ＤＩＢ）４ＮＡ］３（画分１７〜２３）；［（ＤＩＢ）４ＮＡ］２（画分２４〜３３）および（ＤＩＢ）４ＮＡ（画分３５〜４８）。全てのサンプルを０．２２μｍのフィルターを通した濾過によって滅菌した。得られた最終収量は以下であった：０．８７ｍｇの［（ＤＩＢ）４ＮＡ］３；１．２５ｍｇの［（ＤＩＢ）４ＮＡ］２；および１．８３ｍｇの（ＤＩＢ）４ＮＡ（図１３Ｈ）。
【０８６８】
Ｉ．（ＤＩＢ）４ＮＡ−Ｂ
Ｊ．０２３ｍｇ（０．３μｍｏｌ）の（ＤＩＢ）４ＮＡを、０．９μｇのＮＨＳ−ＬＣ−ビオチン（Ｐｉｅｒｃｅ）に添加した。この反応物を室温で１時間インキュベートして、次いでＰＤ１０カラムで脱塩した。総収量は０．０４ｍｇであった（図１３Ｉ）。
【０８６９】
Ｈ．ＤＳ−１
０．５ｍｌ  ０．１Ｍ  ＮａＨＣＯ３を含有する水に溶解した５ｍｇ（２．５μｍｏｌ）のデュラマイシンを、０．３１９ｍｇ（２．６μｍｏｌ）の１，３プロパンスルトンに添加した。この混合物を４℃で一晩インキュベートした。このサンプルをシリカカラムにロードして、０．１％ＴＦＡで洗浄して、０．１％  ＴＦＡおよび７０％  ＣＨ３ＣＮを用いて溶出させた。この溶出物を収集して、減圧下での遠心分離によって濃縮した。総収量は５ｍｇであった（図１３Ｊ）。
【０８７０】
Ｋ．ＤＳ−２
０．３ｍｌ  ０．１Ｍ  ＮａＨＣＯ３を含有する水に溶解した１ｍｇ（０．４９７μｍｏｌ）のデュラマイシンを、０．０７２ｍｇ（０．５２３μｍｏｌ）の２−ＩＴに添加した。この反応混合物を室温で１時間インキュベートした。０．１２５ｍｇ（０．４９μｍｏｌ）のＳＢＦ−塩化物（Ｐｉｅｒｃｅ）を添加した。この反応混合物を室温で１時間および４℃で一晩インキュベートした。このペプチドをシリカカラムで精製した。この溶出物を収集して、減圧下での遠心分離によって濃縮した。総収量は１ｍｇであった（図１３Ｋ）。
【０８７１】
Ｌ．ＤＳ−３
０．４ｍｌ  ０．１Ｍ  ＮａＨＣＯ３を含有する水に溶解した１ｍｇ（０．４９７μｍｏｌ）のデュラマイシンを、０．１０９ｍｇ（０．５９２μｍｏｌ）の２−スルホ安息香酸環状無水物に添加した。この反応物を室温で１時間、４℃で一晩インキュベートした。このペプチドをシリカカラム上で精製した。この溶出物を収集して、減圧下での遠心分離によって濃縮した。総収量は１ｍｇであった（図１３Ｌ）。
【０８７２】
Ｍ．ＤＳ−４
０．５ｍｌの、０．１Ｍ  ＮａＨＣＯ３を含有する水に溶解した０．２５ｍｇ（０．１２４μｍｏｌ）のデュラマイシンを、０．０１７ｍｇ（０．１２４μｍｏｌ）の２−ＩＴに添加した。この反応混合物を室温で１時間インキュベートした。次いで、この混合物を０．０４９ｍｇ（０．１２４μｍｏｌ）のＥｌｌｍａｎ試薬に添加した。この混合物を室温で２時間および４℃で一晩インキュベートした。２５０μｌの１ｍｇ／ｍｌの４−アミノ−５−ヒドロキシ−２，７−ナフタレンジスルホン酸一ナトリウム塩水和物を１００μｌの１ｍｇ／ｍｌ  ２−ＩＴに添加した。この反応物を室温で１時間インキュベートした。５０μｌの反応混合物を前の反応物に添加して、室温で１時間インキュベートした。このペプチドをシリカカラムで精製した。溶出物を収集して、減圧下での遠心分離によって濃縮した（図１３Ｍ）。
【０８７３】
Ｎ．ＤＳ−５
０．５ｍｌ  ０．１Ｍ  ＮａＨＣＯ３を含有する水に溶解した５ｍｇ（２．５μｍｏｌ）のデュラマイシンを、０．３５６ｍｇ（２．６μｍｏｌ）の１，３−ブタンスルトンに添加した。この混合物を４℃で一晩インキュベートした。このサンプルをシリカカラムにロードして、０．１％ＴＦＡで洗浄して、０．１％  ＴＦＡおよび７０％  ＣＨ３ＣＮで溶出した。この溶出物を収集して、減圧下での遠心分離によって濃縮した。総収量は５ｍｇであった（図１３Ｎ）。
【０８７４】
Ｏ．ＤＣ−１
０．５ｍｌ  ０．１Ｍ  ＮａＨＣＯ３を含有する水に溶解した０．２５ｍｇ（０．１２４μｍｏｌ）のデュラマイシンを、０．０１７ｍｇ（０．１２４μｍｏｌ）の２−ＩＴに添加した。この反応混合物を室温で１時間インキュベートした。次いで、この混合物を０．０４９ｍｇ（０．１２４μｍｏｌ）のＥｌｌｍａｎ試薬に添加した。この混合物を室温で２時間および４℃で一晩インキュベートした。このペプチドをシリカカラムで精製した。この溶出物を収集して、減圧下での遠心分離によって濃縮した（図１３Ｏ）。
【０８７５】
実施例ＸＶＩ
デュラマイシン誘導体はＰＥに特異的に結合する
本実施例は、実施例ＸＶにおいて合成されたデュラマイシン誘導体がＰＳに特異的であり、従って細胞不浸透性の標的化または抗ウイルス剤に対して連結すること、ならびに腫瘍およびウイルス疾患の処置における使用によって設計されたとおり用いることができることが示される。
【０８７６】
デュラマイシン誘導体の特異性、詳細には他のリン脂質よりもＰＥに対する結合を試験するために、一連の競合ＥＬＩＳＡを行なった。ＰＥに対する結合についてＤＩＢまたはＤＬＢのいずれかと競合するデュラマイシン誘導体の能力を以下の方法で試験した。
【０８７７】
ＰＥおよびＰＣをエタノール中で別々に溶解した。最終濃度は５μｇ／ｍｌであった。９６ウェルＥＬＩＳＡプレート（ＤＹＮＥＸ  ＩＭＭＵＬＯＮ（登録商標）１Ｂ）の各々のウェルに１００μｌを添加した。これらのプレートを冷室において４℃でエバポレートした。２５０μｌ  ２．５％カゼインを各々のウェルに添加して、カバーして３７℃で１時間ブロックした。ブロッキング緩衝液を破棄して、１００μｌ  ２．５％カゼインを各ウェルに添加した。（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧ、（ＤＩＢ）４ＮＡ、（ＤＬＢ）４ＮＡ、ＤＳ、デュラマイシンおよびＤＩＢのようなプレートを横切る連続希釈としてデュラマイシン化合物を添加した。
【０８７８】
（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧの出発濃度は、１．４ｍｇ／ｍｌであって、（ＤＩＢ）４ＮＡ出発濃度は８００μｇ／ｍｌであって、（ＤＬＢ）４ＮＡ出発濃度は８００μｇ／ｍｌであった。これらを３７℃で１時間インキュベートして、ＰＢＳを用いて５回洗浄した。１００μｌ  ＨＲＰ−ストレプトアビジン（１：５０００希釈）を各々のウェルに添加して、３７℃で１時間インキュベートして、ＰＢＳを用いて５回洗浄した。１００μｌの０．０５％  ＯＰＤを各々のウェルに添加して、５分間発色させた。１００μｌ  ０．１８Ｍ  Ｈ２ＳＯ４を添加して、反応を停止させて、Ｏ．Ｄ．４９０で読み取った。
【０８７９】
得られたデータを作表して、次いでグラフにプロットした。図１４Ｃおよび図１４Ｄにおけるデータによって例示されるように、デュラマイシン誘導体の濃度の増大につれて、４９０ｎｍでの吸光度は低下して、このことはデュラマイシン誘導体が、ホスファチジルエタノールアミンに対する結合について、ＤＩＢおよびＤＬＢと競合することを示す。
【０８８０】
デュラマイシン構築物のリン脂質結合プロフィールを、さらなるＥＬＩＳＡを用いて確認した。各々の試験脂質ＰＳ、ＰＥ、ＰＩ、ＣＬ、ＰＣ、ＰＧ、ＳＭおよびコレステロールをエタノール中に別々に溶解して、これを用いてＥＬＩＳＡプレートをコーティングした。デュラマイシン化合物を、このプレートを横切って連続希釈として添加した。インキュベーションおよび洗浄工程の後に、上記のように、二次検出試薬を各々のウェルに添加して、比色アッセイを用いて反応性を決定した。
【０８８１】
デュラマイシンビオチン誘導体、ＤＩＢおよびＤＬＢについて代表的なリン脂質結合プロフィールを図１４Ａに示した。ＤＩＢおよびＤＬＢは、ＰＥについて特異的であり、ここではＰＳ、ＰＩ、ＣＬ、ＰＣ、ＰＧおよびＳＭの各々についての結合は無視できるかまたは検出不能であることが示されている。（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧ−Ｂおよび［（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧ］２−Ｂは本質的にＤＬＢと同じ結合プロフィールを有した。ＰＳに対する最小結合は、高濃度のＤＩＢで観察されたが（図１４Ａ）、これは、この研究の状況では意味がない。なぜならＰＳに対する結合は、ＰＥ結合について飽和しているかまたは最大半減のＤＩＢ濃度では検出不能であったからである。従って、このデュラマイシン構築物はホスファチジルエタノールアミンに特異的に結合する。
【０８８２】
血清はデュラマイシン誘導体によるＰＥ結合に対して有意な効果を有さないことも示された。これは血清（ＢＳＡ）の有無におけるＰＥコーティングＥＬＩＳＡプレートに対するデュラマイシンビオチン誘導体であるＤＬＢの結合によって例示されており、ここでは結合プロフィールは有意な相違を示さない（図１４Ｂ）。
【０８８３】
実施例ＸＶＩＩ
ＰＥ結合ペプチド誘導体の抗ウイルス効果
実施例ＸＩＩおよび実施例ＸＩＩＩに示されるとおり、抗ＰＳ抗体によって媒介される抗ウイルス効果に加えて、本実施例は、他の共通のアミノリン脂質ＰＥに特異的に結合するペプチド誘導体の抗ウイルス効果を実証する。
【０８８４】
Ａ．方法
１．インビトロにおけるＣＭＶ感染細胞の処置
６ウェルプレートにおけるヒト二倍体包皮線維芽細胞（ＨＨＦ−Ｒ２）のコンフルエント単層を、実施例ＸＩＩに記載されるように、ＭＯＩ＝０．０１で、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）を発現するヒトＣＭＶ  ＡＤ１６９を用いて感染させた（Ｂｒｅｓｎａｈａｎら、１９９６）。この細胞を１ウェルあたりの１．５ｍｌの総容積でウイルスとともに３７℃で９０分間インキュベートした。感染の間、３０分ごとにこのプレートを穏やかにロッキングさせた。感染の後に、細胞上清取り出して、ＤＭＥＭ／１０％  ＦＢＳ／ｐｅｎ−ｓｔｒｅｐ（１ウェルあたり２ｍｌ）を各々のウェルに添加した。
【０８８５】
デュラマイシン誘導体（ＤＬＢ）４ＮＡ、（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧ、ＤＳ−１、ＤＳ−２、ＤＳ−３およびＤＣ−１の種々の希釈物を、ウイルスの添加前にそのウェルに添加してその後に感染させた。感染した細胞を３７℃で全部で１４日間インキュベートさせた。各々のウェルにおいて培地およびデュラマイシン誘導体を３日ごとに置き換えた。
【０８８６】
２．蛍光顕微鏡
実施例ＸＩＩに記載のとおり、組み換えＣＭＶは、ＳＶ４０プロモーターの制御下でＧＦＰを発現する。従って、感染した細胞は、蛍光顕微鏡下で緑にみえる。これらの研究では、デュラマイシン誘導体で処置したＣＭＶ感染した細胞は、４日および６日に蛍光顕微鏡下で観察された。
【０８８７】
Ｂ．結果
４日目に、未処理のウェルならびに（ＤＬＢ）４ＮＡおよび（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧで処理したウェルに単一の感染したＧＦＰ陽性緑色細胞がある（図１５、左パネル）。従って、これらのデュラマイシン誘導体でのＨＨＦ−Ｒ２細胞の処置は、細胞へのウイルスの侵入を阻害しないようである。デュラマイシン誘導体ＤＳ−１、ＤＳ−２およびＤＳ−３が細胞へのウイルス進入を阻害するといういくつかの前段階的な証拠がある。
【０８８８】
（ＤＬＢ）４ＮＡおよび（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧでの処置の６日後、未処置ウェル対デュラマイシン誘導体処置ウェルにおける感染したＧＦＰ陽性細胞の数は著しく異なる（図１５、中央のパネル）。６日目までに、ウイルスは、未処理のウェルにおいて周囲の細胞に４日目にみられる単一の感染した細胞から伝播した（図１５、上部、左パネルと中央パネルを比較する）。しかし、（ＤＬＢ）４ＮＡおよび（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧで処理したウェルにおいては６日目において、ウイルスは、もとの１つだけ感染した細胞に限定される（図１５、中央および底部、左パネルと中央パネルを比較する）。
【０８８９】
従って、（ＤＬＢ）４ＮＡおよび（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧは、ＣＭＶの伝播を、もとの感染した細胞から周囲の細胞に制限する。細胞を種々の濃度の（ＤＬＢ）４ＮＡ（１００μｇ／ｍｌおよび５０μｇ／ｍｌ）および（ＤＩＭ）ｎＨＩｇＧ（２００μｇ／ｍｌおよび１００μｇ／ｍｌ）で処理した場合の、ウイルス伝播の阻害を観察する。
【０８９０】
実施例ＸＶＩＩＩ
３Ｇ４抗体の利点
実施例ＩＶに記載のように、本発明者らの固有のプロトコールによって開発された３Ｇ４抗体は、文献の抗ＰＳ抗体を上回る多くの利点を有するが、これには卓越した抗ＰＳ抗体である３ＳＢが挙げられる（Ｒｏｔｅら、（１９９３）。本実施例は、これらの特有の利点を記載する。
【０８９１】
Ａ．クラスおよび特異性
３Ｇ４はＩｇＧ抗体であり、一方３ＳＢはＩｇＭである。ＩｇＧクラスの抗体は、高い親和性、インビボにおける低いクリアランス速度、ならびに精製、改変および取り扱いの容易さを含む、ＩｇＭを超える多くの利点を有する。ＩｇＭ抗体である３ＳＢのＰＳ結合の、３Ｇ４および別のＩｇＧ抗体との比較を図１９Ａおよび図１９Ｂに示す。
【０８９２】
３Ｇ４は、ほぼ同じ強度を有する陰イオン性リン脂質であるＰＳ、ＰＡ、ＰＩ、ＰＧおよびＣＬと強力に反応して、アミノリン脂質ＰＥに対しては弱い強度で結合する。これは、ＰＣおよびＳＭとの反応性は有さず、そして結合特異性プロフィール：ＰＳ＝ＰＡ＝ＰＩ＝ＰＧ＞ＣＬ＞＞ＰＥを有する（実施例ＩＶ；表４）。３Ｇ４は、ヘパリンにも、硫酸ヘパランにも、または二本鎖もしくは一本鎖のＤＮＡにも、ウエスタンブロットでｂＥｎｄ．３細胞から抽出された細胞タンパク質にも検出可能には結合しない。３Ｇ４の結合は、５ｍＭ  ＥＤＴＡの存在によって影響されず、このことはＣａ２＋が陰イオン性リン脂質に対する３Ｇ４結合に必要ないことを示す。３Ｇ４は、リン脂質でコーティングされたＥＬＩＳＡプレートに結合せず、そのため０．２％  Ｔｗｅｅｎ２０を含む生理食塩水で洗浄されて、これによってこの結合が吸収されたリン脂質に対してであったことが確認された。
【０８９３】
３Ｇ４によって認識されるエピトープは、陰イオン性リン脂質のホスホグリセロールコア内に存在すると考えられ、これは全ての哺乳動物種由来のリン脂質において同じである。従って、この抗体は、マウスおよびヒトのリン脂質の両方と反応し、これは前臨床開発および臨床開発について重要である。３Ｇ４は、天然のリガンドであるアネキシンＶよりも陰イオン性リン脂質に対してさらに特異的である。３Ｇ４とは異なり、アネキシンＶはまた、生理学的な濃度のＣａ２＋で、中性のリン脂質に強力に結合する。
【０８９４】
陰イオン性リン脂質についての３Ｇ４の特異性は、異なるリン脂質から形成されたリポソームを用いて、免疫されたＰＳに対する３Ｇ４結合と競合するアッセイによって確認された。５ｍｇの単一のリン脂質を含むクロロホルムの溶液からリポソームを調製した。この溶液を窒素下で乾燥させて、丸底ガラスフラスコにおいて薄層を形成させた。次いで、１０ｍｌのＴｒｉｓ緩衝液（０．１Ｍ、ｐＨ７．４）を添加して、このフラスコを２分間５回超音波処理した。３Ｇ４抗体（０．１μｇ／ｍｌ）を、緩衝液かまたは種々のリン脂質リポソームのいずれかに添加して、室温で３０分間プレインキュベートさせた。この混合物をＰＳコーティングプレートに添加して（標準的ブロッキング後）、１時間インキュベートして、洗浄し、二次抗体を添加した。１時間後、このプレートを洗浄して、ＯＰＤを用いて５分間発色させた。
【０８９５】
実施例ＩＶに示されるとおり、３Ｇ４は、固定されて、固定されたＰＥに対してより少ない程度まで結合するが、固定されたＰＣに対しては結合しないとき、ＰＳ、ＰＡ、ＰＩ、ＰＧおよびＣＬに結合する。種々のリポソームの有無において、３Ｇ４が固定されたＰＳに結合する能力を図２０に示す。これらのリポソーム競合研究からの結果によって、ＥＬＩＳＡプレートに対して吸着されたＰＳに対する３Ｇ４の結合は、ＰＳ、ＰＡ、ＰＩ、ＰＧおよびＣＬから調製されたリポソームによってブロックされたが、ＰＥおよびＰＣから調製されたリポソームは、３Ｇ４結合において検出可能な低下を生じなかったことが示される（図２０）。また、ＳＭリポソームは、阻害性ではなかった。
【０８９６】
Ｂ．細胞増殖の阻害
３Ｇ４は、ＰＳおよび他の陰イオン性リン脂質を外面化する、活性化された、分裂中の、傷害されたアポトーシスおよび悪性の細胞に結合する。３Ｇ４抗体は、インビトロにおいて内皮細胞の増殖を阻害して、静止期細胞と対照的に、分裂している内皮細胞の顕著な選択性阻害を示す。
【０８９７】
インビトロにおけるｂＥｎｄ．３細胞の増殖に対する、抗ＰＳ抗体３Ｇ４、９Ｄ２、３Ｂ１０、１Ｂ９、２Ｇ７、７Ｃ５および３ＳＢの効果を決定した。ｂＥｎｄ．３細胞（１０，０００／ウェル）を４８ウェルプレートに播種して、結合させた。２０％  ＤＭＥＭ単独（コントロール）または抗体を含む２０％  ＤＭＥＭ（１ウェルあたりの２０μｇ〜４０μｇ総ＩｇＧ）を、播種後４時間添加した。各々のクローンを２つの別のプレートにおいて三連で試験した。細胞を４８時間後および９６時間後に脱離させた。細胞カウントを各々のウェルにおいて決定した。１処置あたりの平均細胞数を算出した。
【０８９８】
３Ｇ４および９Ｄ２抗体が、特に有効であって、続いて、３ＳＢおよび３Ｂ１０であって、１Ｂ９、２Ｇ７および７Ｃ５は阻害性効果が少ない。各々の抗体が、静止期の（コンフルエントな）細胞とは対照的に、分裂している（サブコンフルエントな）内皮細胞の選択性阻害を示す。競合的研究において、３Ｇ４が最大の阻害効果を示し、続いて９Ｄ２であって、その各々が３ＳＢよりも阻害性であった（図１６）。
【０８９９】
Ｃ．抗腫瘍効果
３Ｇ４は、インビボにおいて腫瘍血管内皮細胞の表面に結合する。種々の腫瘍を保有するマウスに静脈内注射した場合、３Ｇ４は腫瘍に特異的かつ一貫して局在するが、正常な器官には局在しない。染色は腫瘍血管内皮（図２２）、壊死領域および個々の悪性細胞で観察された。腫瘍には、腫瘍内皮および腫瘍細胞の両方の同時の標的を可能にする、３Ｇ４についてのマルチ結合部位が存在する。
【０９００】
３Ｇ４は、インビボにおいて血管形成および腫瘍増殖を抑制し、そして腫瘍保有マウスにおいて検出可能な器官毒性を示さない。最初の研究では、抗体が腫瘍血管損傷を生じ、血管分布および腫瘍壊死を低下させる、同系および異種の腫瘍モデルにおいて３Ｇ４は、印象的な抗腫瘍効果を示している（実施例ＸＩ）。樹立された腫瘍の退行は、処置された動物のうち３０％〜５０％で観察されている。
【０９０１】
３Ｇ４抗体の代表的な血管新生抑制および血管標的化効果を、それぞれ図１７Ａおよび図１７Ｂに示す。３Ｇ４で処置したＭＤＡ−ＭＢ−２３１正所性腫瘍を保有するヌードマウスからの腫瘍切片の解析によって、全ての処置腫瘍において血管新生抑制効果が明らかになった。図１７Ａは、コントロール抗体とは対照的に、３Ｇ４で処置したマウスからの腫瘍の代表的画像を示す。このコントロールの腫瘍は、壊死の兆候を示さず、そして腫瘍血管上で検出された汎内皮細胞マーカーＣＤ３１によって実証されるように、高度に血管新生されている（図１７Ａ、左パネル）。対照的に、３Ｇ４で処置したマウスからの腫瘍は、８０〜９０％の壊死およびＣＤ３１陽性構造のほぼ完全な消失を示し、これによってこの処置は実質的な血管新生抑制効果を生じたことが示される（図１７Ａ、右パネル）。
【０９０２】
３Ｇ４の抗ガン活性の別の成分は、腫瘍血管損傷の誘導である。これは、同じコントロール研究に由来するＨ＆Ｅ染色腫瘍の代表的な画像を提供する、図１７Ｂに例示される。コントロール腫瘍における血管は十分に灌流され、形態学的にインタクトであり、そして生存可能な分裂している腫瘍細胞によって囲まれる（図１７Ｂ、左パネル）。対照的に、３Ｇ４処置された動物における血管は、分解している内皮細胞層を有することが頻繁に観察され、脱落した内皮細胞によって、そしておそらくは裸出された血管に誘引される宿主細胞によってブロックされる（図１７Ｂ、右パネル）。３Ｇ４処置された腫瘍における代表的な血管によって、周囲の腫瘍細胞の前壊死性層によって示されたとおり、機能の損失が明確に示される（図１７Ｂ、右パネル）。
【０９０３】
これらの研究において、同所性ＭＤＡ−ＭＢ−２３１腫瘍を有するマウスの３Ｇ４処置もまた、腫瘍中の血漿容積を減少させ、脈管密度を低下させた。血漿マーカーであるＦＩＴＣ−デキストランの減少によって判断した場合、ＢＢＧ３処置マウスと比べて、６０％の減少割合が３Ｇ４処置マウスの総血漿容積で観察された。３Ｇ４処置マウス由来の腫瘍中の１平方ミリメートルあたりのＣＤ３１陽性脈管の平均数は、ＢＢＧ３処置マウス由来の腫瘍において１６０±２０であるのに比べて、５０±１５であり、３Ｇ４処置後の約７０％の腫瘍血管分布の減少を示す。
【０９０４】
まとめると、３Ｇ４を用いる正所性のＭＤＡ−ＭＢ−２３１腫瘍の処置後の組織学的検査によって以下が示される：１）腫瘍における約５０％の血管における血管内皮の分解；２）腫瘍内皮細胞への白血球の結合および腫瘍間質への単核細胞の浸潤；３）血小板凝集および赤血球による腫瘍血管の閉塞；４）３Ｇ４処置マウス対未処置マウス由来の腫瘍における微小血管密度の７０％低下；および５）ＶＴＡに代表的な、腫瘍細胞の末梢辺縁の生存を伴う、腫瘍の中央壊死。従って、３Ｇ４抗体の一次抗腫瘍作用は、腫瘍脈管構造に対する効果を通じて発揮される。他の機構、詳細には腫瘍細胞自体に対する抗体依存性の細胞傷害性が、抗腫瘍効果に寄与する可能性が高い。これは重要であって、末梢の辺縁における腫瘍細胞を含む、さらに多くの腫瘍細胞の殺傷を可能にし得る。
【０９０５】
フォローアップ研究において、腫瘍増殖に対する３Ｇ４の効果は、同系（マウスＭｅｔｈ  Ａ線維肉腫）、皮下異種腫瘍（Ｌ５４０ヒトホジキンリンパ腫）および正所性腫瘍（ヒトＭＤＡ−ＭＢ−２３１乳ガンおよびヒトＭＤＡ−ＭＢ−４３５乳ガン）を含む他のマウスモデルにおいて試験されている。３Ｇ４抗体を有するマウスの処置によって、それぞれ、これらの腫瘍の９０％、６５％および５０％および７０％の増殖遅延が生じた。小さい腫瘍（０．１ｃｍ直径）および十分樹立された腫瘍（０．３ｃｍ直径、２００ｍｍ３）の両方とも同様に阻害された。抗ＰＳ処置は、Ｍｅｔｈ  Ａ保有マウスの５０％およびＭＢＡ−ＭＤ−２３１腫瘍を有するマウスの３０％において長期の完全な緩和を誘導した。３Ｇ４は、免疫応答性のマウスにおいて最高の阻害性効果を有する。ヒト胸部腫瘍がマウスの乳腺脂肪パッドにおいて増殖されるヒト胸部腫瘍（ＭＤＡ−ＭＢ−２３１およびＭＤＡ−ＭＢ−４３５）の正所性モデルは重要である。なぜなら、これらは、ヒトの胸部内で増殖するヒト胸部腫瘍の実際的かつ現実的なモデルであるからである。
【０９０６】
Ｄ．安全性プロフィール
３Ｇ４抗体は、文献で記載される抗リン脂質抗体とは異なる。代表的には、抗リン脂質抗体は、凝固カスケードを妨害する病原性抗体とみなされる。それらは、インビトロにおいて凝固反応を阻害してインビボで血栓を生じる。対照的に３Ｇ４、９Ｄ２および同様の抗体は、病原性効果のない治療抗体である。
【０９０７】
１．凝固
血清の非存在下と同じく血清の存在下で強力にＰＳコーティングプレートに結合する抗体を同定するためのスクリーニングを用いて、好ましくは所望の抗体が選択されるべきであるという本発明者らの認識から、３Ｇ４、９Ｄ２および同様の抗体の基部の重要な局面が得られる。この新規な展開によってＰＳタンパク質および血清タンパク質の複合体を認識する抗体を同定して排除する能力が得られる。なぜならこのような複合体は、抗リン脂質症候群および関連の病態の原因であるかまたはその重要な要因であると考えられるからである。
【０９０８】
インビトロにおける血液凝固の研究において、組織因子（Ｔｉｓｓｕｅ  Ｆａｃｔｏｒ）（ＴＦ）−誘導性凝固の弱い阻害が、高用量の３Ｇ４抗体を用いて観察された。それより低い用量を用いる他の研究では、３Ｇ４処置マウス由来のカルシウム再添加血清は、組織因子の存在下においてＢＢＧ３処置マウス由来のカルシウム再添加血漿と同じ速度で凝固した。またインビトロにおける細胞プラス組織因子への１００μｇ／ｍｌの３Ｇ４の添加は、プロプレックス（ｐｒｏｐｌｅｘ）における凝固因子Ｘａの生成速度に影響しなかった（外因系凝固経路）。
【０９０９】
インビトロにおける高い抗体レベルを用いるＴＦ誘導性凝固の弱い阻害にかかわらず、３Ｇ４抗体はインビボで試験されており、正常マウスでも腫瘍保有マウスでも血栓の合併症を生じない（例えば、実施例ＸＩを参照のこと）。３Ｇ４抗体はまた、インビボにおいてサルで試験されており、有意な副作用は観察されていない。
【０９１０】
２．低い毒性または毒性のないことの他の指標
３Ｇ４はマウスにおいて毒性を有さないか毒性が低いという最初の証拠は、３Ｇ４が毒性の証拠なしにマウスにおいてハイブリドーマとして増殖するという知見によってもたらされる。また、１ｍｇの精製された３Ｇ４が腹腔内に注射された場合、毒性は観察されなかった。
【０９１１】
系統的なインビボ研究がここで行なわれており、ここでは３匹の８週齢のＢＡＬＢ／ｃマウスの群に１００μｇの精製した３Ｇ４または同位体マッチしたコントロールＩｇＧ３（ＢＢＧ３）を２〜３週間の間に週に３回、腹腔内注射した。毒性の生理学的兆候は観察されておらず、そして器官毒性も形態学的異常の組織病理学的兆候も、３Ｇ４処置されたマウスから取り出された主な器官の切片で検出されていない。以下のパラメーターを特に試験した。
【０９１２】
体重に関して、３Ｇ４処置したマウスはＢＢＧ３処置マウスと同じ速度で体重増加した。初期の研究において体重の低下は観察されなかった。毒性の身体的兆候、例えば、脱毛、食欲の低下などは観察されなかった。赤血球、血小板、白血球、絶対リンパ球カウントまたは絶対好中球カウントを含む血球カウントでは変化はない。
【０９１３】
コントロール動物と比べて、血液学的な毒性の証拠は何も同定されなかった。末梢血組成は正常であり（完全血球算定微分の測定に基づく）；赤血球形態の評価は血管内溶血の証拠を示さず（すなわち、分裂赤血球が存在しない）；全血凝固パラメータ（ＰＴ、ＡＰＴＴ、Ｄ−ダイマー）は正常であった。血球数（赤血球、血小板、白血球を含む）も、リンパ球絶対数も好中球絶対数も、変化はなかった。
【０９１４】
骨髄細胞質を解析するために、３Ｇ４またはＢＢＧ３処置マウス（６注射、１００μｇ）由来の骨髄のパラフィン切片を、総細胞質および細胞組成について試験した。処置動物における骨髄は本質的に完全に細胞性であった（若齢の哺乳動物について予想されるとおり）。赤血球、顆粒球、リンパ球性前駆体および巨核球が正常な数で存在した。
【０９１５】
まとめると、高用量の３Ｇ４（０．１ｍｇ）を用いて２〜３週間の間、週に３回処置した２００匹を超えるマウスで、毒性の事例は観察されていない。２ｍｇより多い程度の用量が与えられた場合でさえ、毒性の兆候は示されなかった。マウスは正常な肉体的兆候、骨髄細胞質、白血球カウント、組織学および凝固機能を保持している。
【０９１６】
３Ｇ４抗体はまた安全性研究においてサルに投与されており、副作用は観察されていない。
【０９１７】
血液クリアランス動態の研究はまたマウスで行なわれた。３Ｇ４を、Ｂｏｌｔｏｎ  Ｈｕｎｔｅｒ試薬を用いて放射ヨウ素標識して、マウスに静脈内注射した（２５ｇ）。血液のサンプルを、種々の時点後に尾静脈を介して取り出した。３Ｇ４の血液クリアランスは、マウスのマウスＩｇＧに代表的であった。クリアランスのα相の半減期は３時間であって、β相の半減期は５日であった。分布の容積は正常であった（１００ｍｌ／ｋｇ）。これらの研究によって３Ｇ４は、正常な宿主組織とは反応せず、加速されたクリアランスをもたらすことが示される。
【０９１８】
ヒト化３Ｇ４抗体もまた、アテローム硬化症のウザギに投与され、安全であることを示した。
【０９１９】
３．サル安全性研究
ヒト化３Ｇ４抗体（以下の実施例ＸＩＸを参照のこと）もまた、安全性研究においてサルに投与され、有意な副作用は観察されていない。ヒト化３Ｇ４抗体を、１００ｍｇ／ｋｇまで単一のボーラスでカニクイザルにＩＶ投与した。これは計算される治療用量（１ｍｇ／ｋｇ）の１００倍である。
【０９２０】
副作用のないレベル（ＮＯＡＥＬ）は、反復投与において約１０ｍｇ／ｋｇ／週であった。１０〜１００ｍｇ／ｋｇの用量ではＡＰＴＴおよびＰＴにおける一過性の延長があった。血球数（白血球、赤血球および血小板を含む）も、他の臨床化学も変化はなかった。
【０９２１】
Ｅ．抗ウイルス効果
３Ｇ４抗体はまた、有意な抗ウイルス効果を発揮する。実施例ＸＩＩＩに示されるとおり、３Ｇ４を用いたＲＳＶ感染細胞の処置は、３ＳＢを用いて観察される効果よりも優れていた。従って、これらの結果によって、文献における目立った抗ＰＳ抗体である３ＳＢを上回る３Ｇ４抗体の別の利点が強調される（Ｒｏｔｅら（１９９３））。
【０９２２】
３Ｇ４抗体はまた、インビトロ（実施例ＸＩＩ）においてＣＭＶを阻害するのに、そしてインビボにおいて（実施例ＸＸＩ）ｍＣＭＶに感染されたマウスの生存を増強するのにおいて極めて有効であることが示される。それに加えて、３Ｇ４抗体は、ラッサ熱の感染因子であるＰｉｃｈｉｎｄｅウイルス感染を阻害することがさらに示される（実施例ＸＸＩＶ）。ウイルス感染後に示される本明細書の細胞表面ＰＳ露出、および３Ｇ４抗体がワクシニアウイルスに感染した細胞に結合する能力（実施例ＸＸＩＩＩ）によって、３Ｇ４抗体が、広いスペクトルの抗ウイルス剤として大きい能力を有することが示される。
【０９２３】
実施例ＸＩＸ
３Ｇ４抗体、ＣＤＲ配列およびキメラ
従って３Ｇ４抗体は、血管新生阻害、抗腫瘍血管、および抗ウイルス剤の合わせた特性を保有する。細胞分裂、血管新生、腫瘍増殖およびウイルス性感染に対する３Ｇ４の阻害活性は、明白な毒性の欠失とともに考慮すれば、血管新生障害、ガン、糖尿病およびウイルス性感染の処置を含む、この抗体についての広範な治療指標を示す。
【０９２４】
３Ｇ４抗体と実質的に同じエピトープを認識する抗体は、例えば、免疫により、血管新生阻害、抗腫瘍血管および抗ウイルス治療の１つ以上における使用のために生成され得、そして抗体競合研究によって確認され得る。３Ｇ４抗体と実質的に同じエピトープに結合する抗体はまた、本明細書に提供される３Ｇ４抗体の配列の知識から生成され得る。本実施例によって３Ｇ４抗体の相補性決定領域（ＣＤＲ）の配列およびその配列情報の用途が得られる。
【０９２５】
Ａ．３Ｇ４抗体配列
抗体の可変領域のもとの配列を、３Ｇ４抗体を生成するハイブリドーマからＲＡＣＥによって得て、そしてその配列を確証した。３Ｇ４抗体ＣＤＲ１−３の重鎖（Ｖｈ）の可変領域の核酸およびアミノ酸の配列は、それぞれ配列番号１および配列番号２によって提示される。
【０９２６】
配列番号１および配列番号２は、図１８Ａに示されるようにマウスのリーダー配列および定常鎖配列の一部を含む。リーダー配列は、配列番号２のアミノ酸１〜１９によって提示され、そして成熟タンパク質は図１８Ａにおける矢印によって示されるように始まる。十分な相補性決定領域の配列情報は、ＶＳＳを含む配列部分までの成熟タンパク質の配列によって含まれ、その後のアミノ酸は抗原結合には必須ではない。従って、核酸配列におけるＢｓｔＥＩＩ部位は、機能的なマウス可変領域を調製するため、例えば、ヒト定常領域上への接合における使用のための便利な部位として用いられ得る（図１８Ａ）。
【０９２７】
実際には、３Ｇ４−２ＢＶＨ配列は、Ｌｏｎｚａ  ｐＥＥベクターを用いてＢｓｔＩＩ部位のヒトγ１定常領域上に接合されている。得られた産物はマウスリーダー配列を含み、そのＶＨは、図１８Ａにおいて示される様式でヒトＣＨ１配列に結合され、ここでＡＳＴＬＧＰＳＶＦＰＬＡＰＳＳＫＳＴＳＧ（配列番号７）は、ヒトＣＨ１配列の第一の部分に相当する。
【０９２８】
３Ｇ４抗体ＣＤＲ１−３の軽鎖（Ｖκ）の可変領域の核酸およびアミノ酸配列は、それぞれ配列番号３および配列番号４によって示される。配列番号３および配列番号４はここでも、配列番号１８Ｂに示されるとおりマウスリーダー配列および定常鎖配列の一部を含む。このリーダー配列は、配列番号４のアミノ酸１〜２２であり、その成熟タンパク質は、図１８Ｂにおける矢印によって示されるとおり始まる。ＴＶＦを含む配列部分までの成熟タンパク質の配列によって、十分な相補性決定領域の配列情報が含まれ、その後ろのアミノ酸は、抗原結合に必須ではない。従って、核酸配列におけるＢｂｓＩ部位は、機能的なマウス可変領域を調製するため、例えば、ヒト定常領域上への接合における使用のための便利な部位として用いられ得る（図１８Ｂ）。
【０９２９】
実際には、３Ｇ４−２ＢＶＬ配列は、Ｌｏｎｚａ  ｐＥＥベクターを用いてＢｓｔＥＩ部位のヒトκ定常領域上に接合されている。得られた産物はマウスリーダー配列を含み、そのＶＬは、図１８Ｂにおいて示される様式でヒトＣＬ１配列内に結合され、ここでＩＦＰＰＳＤＥＱＬＫＳＧＴＡＳ（配列番号８）は、ヒトκ定常領域配列の第一の部分に相当する。
【０９３０】
Ｂ．３Ｇ４キメラ抗体の生成および特徴づけ
マウス相補性決定領域およびヒト定常領域を含むキメラ構築物（ｃｈ３Ｇ４）を生成して、もとのマウス抗体と本質的に同じように挙動することが示された。
【０９３１】
マウス３Ｇ４抗体を、ヒトマウスキメラ抗体（Ａｖａｎｉｒ（Ｘｅｎｅｒｅｘ）Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）に変換した。マウスＶＨをクローニングして、Ｌｏｎｚａ２ＢＶＨベクターのＢｓｔＥＩＩ部位のヒトγ１定常領域に接合した。マウスＶＫをクローニングして、Ｌｏｎｚａ２ＢＶＬベクターのＢｂｓＩ部位のヒトＫ定常領域に接合した。この配列を確証した。全体的構築物をＣＨＯ細胞において発現させて、精製した。このヒト−マウスキメラ（「ヒト化」）抗体はバビツキシマブと称されている。
【０９３２】
得られたｃｈ３Ｇ４は、リン脂質コーティングＥＬＩＳＡプレートに対してマウス３Ｇ４が結合するのと少なくとも同じように結合する。リン脂質のパネルに対するキメラ３Ｇ４のインビトロ結合プロフィールを図２１に示しており、ここでＰＳ、ＰＡ、ＣＬ、ＰＩおよびＰＧに対する結合は、同様に示される。この結合は抗原特異的である。なぜなら無関係の特異性のコントロール抗体とは結合が観察されなかったからである。特定の研究では、キメラ３Ｇ４対３Ｇ４抗体の見かけ上最大の結合が観察された；これは、二次抗体の優れた結合に起因し得る。
【０９３３】
Ｃ．ヒト化抗体の抗腫瘍効果
インビボでは、ｃｈ３Ｇ４は、腫瘍血管内皮細胞に局在して、抗腫瘍効果を発揮する。マウスにおいて増殖しているＭＤＡ−ＭＢ−４３５ヒト乳ガン細胞におけるｃｈ３Ｇ４の抗腫瘍効果は、実施例ＸＩに記載されて、図８Ｇに示される。キメラ抗体を用いるＭＤＡ−ＭＢ−４３５腫瘍を有するマウスの処置は、コントロールとは対照的に腫瘍増殖を効率的に遅延させた。
【０９３４】
ｃｈ３Ｇ４の局在化を、マウスで増殖するＭＤＡ−ＭＢ−４３５ヒト乳ガン細胞において試験した。マウスにビオチン化ｃｈ３Ｇ４または無関係の特異性のコントロールＩｇＧを静脈内注射した。１時間後、マウスを放血させて、その腫瘍を取り出して凍結切片を切り出した。ビオチン化試薬を最初にストレプトアビジンＣｙ３結合体とインキュベートして、ＰＢＳ中で洗浄し、次いでＭＥＣＡ抗体とともに、続いてＦＩＴＣタグ化二次抗体とともにインキュベートした。それぞれＣｙ３の蛍光（赤）およびＦＩＴＣの蛍光（緑）について適切なフィルターでとった単一の画像を、デジタルカメラで撮ってコンピューターに移した。黄色（融合した緑および赤の蛍光の生成物）を示す集束型（ｃｏｎｖｅｒｇｅｄ）画像を、Ｍｅｔａｖｉｅｗソフトウェアの補助によって重ね合わせた。
【０９３５】
この二重染色方法において、ビオチン化タンパク質および血管内皮を赤および緑で標識する。ビオチン化タンパク質を内皮に結合する場合、この集束型画像は黄色にみえる。図２２に示されるとおり、ビオチン化ｃｈ３Ｇ４は、腫瘍血管内皮細胞に結合する。なぜなら染色パターンはＭＥＣＡ３２のパターンに収斂するからである。
【０９３６】
バビツキシマブはまた、放射標識され、ラットにおける同系前立腺腫瘍に存在することが示されている。減少した腫瘍灌流もまた、バビツキシマブで処置した腫瘍保有ラットで観察された。
【０９３７】
Ｄ．３Ｇ４の組換えＩｇＧ２ａアイソタイプの生成および特徴づけ
マウス３Ｇ４抗体のヒトキメラ（ｃｈ３Ｇ４）は、ヒトＩｇＧ１アイソタイプ（ｈＩｇＧ１）である。ｃｈ３Ｇ４マウスＩｇＧホモログは、マウスＩｇＧ２ａアイソタイプ（ｍＩｇＧ２ａ）を必要とする。この構築物を作製し、試験し、親抗体と本質的に同じようにふるまうことを示した。
【０９３８】
Ｌｏｎｚａ発現ベクターｐＥＥ１２．４およびｐＥＥ６．４を、Ｐｅｒｅｇｒｉｎｅ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ  Ｉｎｃの承諾を経てＬｏｎｚａ  Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓから入手した。ベクターの使用、トランスフェクション、およびトランスフェクトしたＮＳ０マウス骨髄腫細胞のスクリーニングを、Ｌｏｎｚａ  Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓの「Ｏｐｅｒａｔｉｎｇ  Ｐｒｏｃｅｄｕｒｅｓ  ｆｏｒ  ｕｓｅ  ｗｉｔｈ：  ＮＳ０  Ｍｙｅｌｏｍａ  ｃｅｌｌｓ」にしたがって行った。簡単に述べると、３Ｇ４軽鎖コード配列を、３Ｇ４ハイブリドーマ細胞株から単離した全ＲＮＡからＲＴ−ＰＣＲによって増幅した。ＲＴ−ＰＣＲプライマーは、増幅されたフラグメントがＬｏｎｚａ  ｐＥＥ１２．４ベクターへのクローニングのためにＸｍａＩおよびＥｃｏＲＩ制限酵素部位を増幅産物のいずれかの末端に含むように設計した。
【０９３９】
３Ｇ４重鎖の可変領域を、３Ｇ４ハイブリドーマ細胞株から単離した全ＲＮＡからＲＴ−ＰＣＲによって増幅した。プライマーは、増幅されたフラグメントがＬｏｎｚａ  ｐＥＥ６．４ベクターへのクローニングのためにＨｉｎｄＩＩＩおよびＸｍａＩ制限酵素部位を増幅産物のいずれかの末端に含むように設計した。マウスＩｇＧ２ａ定常領域を、Ｄｒ．Ｓｈｏｚｏ  Ｉｚｕｉによって提供されたプラスミドベクターからＰＣＲによって増幅した。ＰＣＲプライマーは、ｐＥＥ６．４＋３Ｇ４ＶＨベクターへのクローニングのためにＢｓｔＩＩおよびＥｃｏＲＩ制限部位を増幅産物のいずれかの末端に有するように設計した。重要なことは、ＢｓｔＥＩＩ部位を、３Ｇ４  ＶＨ可変領域配列上流とインフレームであるように設計したことである。重鎖および軽鎖構築物を、単一の二重遺伝子ベクター（１２．４  ３Ｇ４  ＩｇＧ２ａ）に、両方のベクターをＳａｌＩおよびＮｏｔＩで切断することによって合わせた。重鎖および軽鎖コード領域を、ＵＴ  Ｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎ  ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ  ｃｏｒｅ  ｆａｃｉｌｉｔｙで配列決定することによって確認した。
【０９４０】
１２．４  ３Ｇ４  ＩｇＧ２ａベクターを、エレクトロポレーションによってＮＳ０細胞にトランスフェクトした。トランスフェクションの後、ＮＳ０細胞を希釈し、グルタミンを欠く培地中の９６ウェルプレートにプレーティングした。構築物でトランスフェクトした細胞のみ（ポジティブ選択のためにグルタミンシンテターゼ遺伝子を含む）が、グルタミンの非存在下で増殖し得る。その後２ヶ月にわたり、種々のトランスフェクト体をＰＳ−ＥＬＩＳＡによって抗体分泌について同定しスクリーニングした。最も多い量の抗体を分泌するトランスフェクト体を大規模培養で増殖させて、純粋な抗体を生成した。その抗体を３Ｇ４抗体について使用されるのと同じ精製プロトコルを用いて精製した。
【０９４１】
ＩｇＧ２ａ重鎖および３Ｇ４軽鎖（Ｃκ）のアミノ酸配列は、図２Ｃおよび図２Ｄに示されるように、それぞれ、配列番号１０および配列番号１１に示される。
【０９４２】
予期されるように、精製した２ａＧ４抗体は、１５０ｋＤａのバンドとしてＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル上で移動し、ＰＳ−ＥＬＩＳＡにおいて一定の親和性かつ３Ｇ４と本質的に同じ特異性でＰＳに結合する。したがって、２ａＧ４は、３Ｇ４と同じプロフィールで陰イオン性リン脂質に結合する（上の表４を参照のこと）。
【０９４３】
マウスＩｇＧ２ａアイソタイプを、ヒトキメラのｃｈ３Ｇ４（バビツキシマブ）についてのより良いモデルを提供するために主に生成した。マウスＩｇＧ２ａアイソタイプはまた、マウスＩｇＧ３（マウス３Ｇ４抗体の現在のアイソタイプ）よりもより安定であると考えられる。２ａＧ４抗体は、増強されたＡＤＣＣにより、３Ｇ４ＩｇＧ３よりも強力な抗腫瘍効果を生じ得る。
【０９４４】
２ａＧ４抗体は、３Ｇ４およびｃｈ３Ｇ４抗体、ならびにコントロールとしてＣ４４抗体とともに、マウスＷｉＤｒ（結腸がん）モデルでの予備研究において試験されている。腫瘍が小さい場合（１群あたり１０匹のマウス）、処置を５日目に開始した。１００μｇの各抗体を１週間あたり３回注射し、腫瘍増殖をモニタリングした。試験抗体の３種すべてが、本質的に同程度の腫瘍増殖を示した。
【０９４５】
実施例ＸＸ
ドセタキセルとの併用療法における３Ｇ４抗体
本実施例は、３Ｇ４抗体および化学療薬ドセタキセルを用いる腫瘍処置のための併用療法に関する。これらの薬剤は、腫瘍脈管構造内皮細胞および腫瘍細胞区画を攻撃するように設計されて、毒性の低い相乗的な処置をもたらす。この結果によって、この併用療法は、処置効率を実際に有意に増強したことが示された。
【０９４６】
Ａ．Ｆｃドメイン媒介性抗腫瘍効果
インビトロでの腫瘍細胞に対する阻害効果について３Ｇ４抗体を試験した。腫瘍細胞に対する直接の阻害効果は観察されなかった。従って、３Ｇ４抗体の抗腫瘍効果は、Ｆｃドメイン媒介性の免疫エフェクター機能の増強、例えば、抗体媒介性食作用、ＡＤＣＣ、ＣＤＣおよびサイトカイン産生の刺激、またはこれらの機構の組み合わせの増強を含む可能性が高い。
【０９４７】
マクロファージによるＰＳ陽性細胞の食作用に対する３Ｇ４の効果を評価した。蛍光腫瘍細胞をＨ２Ｏ２で処置してＰＳ露出を誘導した。次いで、処置細胞および未処置の細胞を収集して３Ｇ４抗体またはコントロールの抗体（ＢＢＧ）と接触させた。次いで、マウス骨髄マクロファージを添加して、このマクロファージが蛍光腫瘍細胞を食菌する能力を、蛍光顕微鏡を用いて解析した。
【０９４８】
３Ｇ４は、マクロファージによるＰＳ陽性細胞の食作用を３倍を超えて増大し得ることが確認されている（図２３）。この知見によって、３Ｇ４抗体のＦｃドメインが抗体の抗腫瘍効果に寄与するという本発明者らの推論が支持される。すなわち、Ｆｃドメインは、宿主免疫エフェクター機能を活性化し、次いでこれが抗腫瘍効果を発揮する。従って３Ｇ４抗体は、ＮＫ細胞の溶解活性を増強してさらに有効なＡＤＣＣをもたらす。
【０９４９】
Ｂ．ドセタキセルは、内皮細胞上のＰＳ露出を誘導する。
【０９５０】
ドセタキセルの皮下濃度による内皮細胞上でのＰＳ露出の誘導をＦＡＣＳ解析によってインビトロで試験した。ヒト臍静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）およびヒト微小血管内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）を１０ｎＭのドセタキセルで２４時間処置して、ＦＡＣＳによって試験した。処置されたＨＵＶＥＣおよびＨＭＶＥＣの両方とも、未処置細胞に比べて３Ｇ４結合における有意な増大を示した（それぞれ、図２４Ａおよび図２４Ｂ）。４８時間および７２時間のドセタキセルインキュベーションをまた行なった。
【０９５１】
Ｃ．ドセタキセルは、腫瘍細胞上のＰＳ露出を誘導する。
【０９５２】
臨床未満の濃度のドセタキセルによるＰＳ露出のインビトロ誘導をまた、腫瘍細胞株のパネルを用いるＦＡＣＳ解析によって試験した。マウスルイス肺ガン腫３ＬＬ、マウス結腸ガンＣｏｌｏ２６およびヒト乳ガンＭＤＡ−ＭＢ−４３５細胞を１０ｎＭのドセタキセルを用いて２４時間処置して、ＦＡＣＳで試験した。試験した全ての腫瘍細胞株は、未処置の細胞と比較して３Ｇ４結合の有意な増大を示した（それぞれ、図２５Ａ、図２５Ｂおよび図２５Ｃ）。４８時間および７２時間のドセタキセルインキュベーションをまた行なった。マウス黒色腫Ｂ１６およびマウス線維肉腫Ｍｅｔｈ  Ａ腫瘍細胞株をさらに試験して、また未処置の細胞と比較して３Ｇ４結合における有意な増大が示された。
【０９５３】
ヒト乳ガンＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞を１０ｎＭのドセタキセルを用いて２４時間処置して、キメラ３Ｇ４抗体（ｃｈ３Ｇ４）またはコントロールのヒトＩｇＧのいずれかともにインキュベートしてＦＡＣＳによって解析した。これらの結果によって、抗体結合における有意な増大が抗原特異的であることおよびキメラ抗体が親の３Ｇ４抗体のように挙動することが示される（図２６）。
【０９５４】
Ｄ．ドセタキセルは腫瘍脈管におけるＰＳ曝露を誘導する
コントロールされた研究からの結果は、ドセタキセルが腫瘍脈管におけるＰＳ曝露を増加させることを示す。そのような研究において、マウスのドセタキセル処置は、陰イオン性リン脂質を曝露する腫瘍脈管の割合を３５％〜６０％増大させた。正常組織の脈管では、ドセタキセルでの全身処置後でさえ、ＰＳの誘導は観察されなかった。
【０９５５】
Ｅ．３Ｇ４およびドセタキセルを用いた相乗的な腫瘍処置
従って、本発明者らは、臨床濃度未満のドセタキセルを用いた内皮細胞および腫瘍細胞の処置が３Ｇ４結合を有意に増大することを示した。それらによってまた、３Ｇ４抗体が、表面上にＰＳが露出されている腫瘍細胞のマクロファージ媒介性食作用を促進することが示された。従って、ドセタキセルによって媒介される３Ｇ４結合の増大は腫瘍細胞の食作用および３Ｇ４抗体のＦｃドメインによって媒介される他の抗腫瘍効果、例えば、ＮＫ細胞の溶解活性を増強して、さらに有効なＡＤＣＣをもたらす。他の研究によってまた、ドセタキセルを用いた乳ガン患者の処置は血清のＩＦＮ−γ、ＩＬ−２、ＩＬ−６およびＧＭ−ＣＳＦサイトカインのレベルの増大、ならびにＮＫおよびＬＡＫ細胞の活性の増強をもたらすことが示されている（Ｔｓａｖａｒｉｓら、２００２）。
【０９５６】
従って、ドセタキセルとの３Ｇ４の組み合わせ治療の抗腫瘍効果を、ヒトＭＤＡ−ＭＢ−４３５乳ガンを保有するＳＣＩＤマウスにおける正所性モデルにおいて試験した。正所性ＭＤＡ−ＭＢ−４３５ヒト乳ガンを保有するマウスを、腹腔内に３Ｇ４のみ（１００μｇ／１用量）、ドセタキセルのみ（１０ｍｇ／ｋｇ）または３Ｇ４をドセタキセルと組み合わせて（それぞれ１００μｇ／１用量および１０ｍｇ／ｋｇ）用いて、３週間、週に３回投与して処置した。処置は腫瘍細胞移植後６日で開始した。
【０９５７】
これらの研究により、同所性ＭＤＡ−ＭＢ−４３５ヒト乳房腫瘍を有するマウスの３Ｇ４とドセタキセルとによる処置が、腫瘍増殖を９３％阻害したことが示された。広まったＭＤＡ−ＭＢ−４３５腫瘍を有するマウスの３Ｇ４とドセタキセルとによる処置は、肺における腫瘍コロニーの平均数を９３％減少させ、半数の動物が腫瘍を発症しなかった。両方の腫瘍モデルにおいて、組み合わせの抗腫瘍効果は、ドセタキセルまたは３Ｇ４単独の抗腫瘍効果に対して統計学的に有利である（ｐ＜０．０１）。併用療法は、腫瘍における腫瘍脈管密度および血漿容積を、個々の薬物がなす程度よりも大きく減少させる。併用療法は、ドセタキセル単独と同様にマウスに対して毒性ではない。これらの結果は、アジュバント療法と同様に、３Ｇ４が乳がん患者においてドセタキセルの治療効力を増強し得ることを示す。
【０９５８】
Ｆ．３Ｇ４は薬物耐性の乳房腫瘍に対するシスプラチンの活性を増強する
３Ｇ４抗体はまた、動物において薬物耐性の乳房腫瘍に対するシスプラチンの活性を増強する。マウスに薬物耐性の乳房腫瘍を接種し、２０日目の後に処置した。処置群は、シスプラチン単独、３Ｇ４抗体単独、アイソタイプがマッチするコントロール抗体（ＢＢＧ３）または、３Ｇ４抗体と併用したシスプラチンであった。
【０９５９】
コントロール動物における腫瘍は迅速に増殖し続けた。シスプラチン単独または３Ｇ４抗体単独で処置したマウスにおいて、腫瘍増殖が遅延された。組み合わせ処置群（シスプラチンと３Ｇ４抗体）は、最も良い抗腫瘍応答を示した。したがって、３Ｇ４のような抗体は、薬物耐性腫瘍に対してでさえ、シスプラチンのような化学療法剤の有効性を増強する。
【０９６０】
Ｇ．膵臓癌の併用療法
膵臓癌に対して改善された処置の緊急の必要性が存在する。ヒトにおいて、膵臓癌を有する患者についての全体的な長期生存率は、４％未満である。膵臓癌患者のうちの約７０〜８０％が、肝臓への転移に起因して治療に失敗し、現在、転移性疾患に対する有効な治療は存在しない。
【０９６１】
Ｐａｎ０２マウス膵臓腺癌細胞を免疫応答性Ｃ５７Ｂｌ／６マウスの膵臓に注射した。腫瘍細胞の注射の５日後に処置を開始した。処置群は、コントロールとしてＰＢＳ、３Ｇ４抗体単独（１００μｇ）、ゲムシタビン単独（３．５ｍｇ）、またはゲムシタビンと併用した３Ｇ４抗体（それぞれ、３．５ｍｇおよび１００μｇ）であった。ゲムシタビンは、ピリミジン系代謝拮抗物質である。腫瘍細胞注射の２２日後に動物を犠牲にし、腫瘍重量を決定した。
【０９６２】
これらの研究において、ゲムシタビンおよび３Ｇ４抗体の両方が、有意な抗腫瘍効果を示した３Ｇ４抗体を併用してゲムシタビンで処置した動物は、各々の薬剤よりも、副作用（例えば、体重減少）を伴わずに、有意に増強された抗腫瘍効果を示した。結節、腹膜および肝臓転移もまた、ゲムシタビンまたは３Ｇ４抗体単独のいずれかでの処置において有意に減少された。ここでも、３Ｇ４抗体を併用してゲムシタビンで処置した動物は、各々の薬剤単独と比べた場合、有意に減少した結節、腹膜および肝臓転移を示した。重要なことは、ゲムシタビンと３Ｇ４抗体との組み合わせで処置した動物において、検出可能な肝臓への転移が存在しなかったことである。このことは有意であり、ヒトでの場合、肝臓への転移は、膵臓癌の診断後の最も頻繁な死因である。
【０９６３】
これらの研究はまた、組み合わせ処置群において腫瘍へのマクロファージの有意な浸潤を示した。微細血管密度が、３Ｇ４抗体単独およびゲムシタビンと併用した３Ｇ４抗体での処置の際に減少した。
【０９６４】
Ｈ．照射および３Ｇ４による肺癌の処置
肺癌を有するマウスの研究において、１０Ｇｙの焦点照射は、二重標識研究で示されるように、腫瘍血管内皮におけるＰＳの曝露を誘導した。処置段階において、照射および３Ｇ４抗体単独は、抗腫瘍効果を示した。この場合も、処置モダリティ（すなわち、照射および３Ｇ４抗体）の組み合わせは、最も高い抗腫瘍効果を示した。
【０９６５】
（Ｉ．樹状細胞上のＦｃγＲに対するアポトーシス腫瘍細胞の３Ｇ４標的化）
３Ｇ４に加えてドセタキセルで処置したマウス由来の腫瘍はまた、コントロールの腫瘍に比較して異常な量のリンパ球を含んだ。この現象は腫瘍細胞を崩壊させることによる免疫細胞の代表的な化学誘引に相当しているが、これはまた、免疫エフェクター細胞上のＦｃγＲに対するＦｃ結合を通じて媒介された３Ｇ４による免疫系の活性化を反映し得る。
【０９６６】
腫瘍内免疫細胞浸潤に対する３Ｇ４およびドセタキセル投与の効果を特徴付けるために、これらの浸潤に存在する細胞のタイプを、マクロファージ、抗中球、顆粒球、ＮＫ細胞および活性化リンパ球の特異的マーカーに対する抗体を用いる、腫瘍組織の凍結切片および／またはパラフィン切片の免疫染色によって同定することができる（Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ，Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）。この浸潤物の程度、表現型および活性化状態を等級付けしてもよい。ＩＬ−２およびＩＮＦを含む免疫細胞に浸潤することによるサイトカイン産生はまた、免疫組織化学的技術を介して解析され得る。血清サイトカインレベルは、ＥＬＩＳＡによって評価され得、そして細胞内染色を用いて、サイトカイン産生を担う特定の細胞区画を同定することができる。従って、腫瘍細胞の増殖およびアポトーシスに対する、浸潤する免疫細胞の効果は、体系的に評価することができる。
【０９６７】
前述のデータに照らして、本発明者らは、さらに樹状細胞上のＦｃγレセプター（Ｆｃ（γ）Ｒ）に対するアポトーシス腫瘍細胞の３Ｇ４媒介性標的化によって乳ガンの免疫療法の力価を増強する方法を企図する。有効な細胞性および体液性の免疫応答を誘導する効率的な抗原提示は、腫瘍ワクチンおよび免疫療法の発達に重要である。樹状細胞（ＤＣ）は、腫瘍関連抗原に対して細胞傷害性Ｔリンパ球をプライムする最も強力な抗原提示細胞（ＡＰＣ）である。樹状細胞（ＤＣ）による腫瘍抗原提示の改善は、さらに強力な腫瘍ワクチンの開発をもたらすはずである。
【０９６８】
ＤＣのＦｃ（γ）Ｒレセプター媒介性の内面化による抗原提示は、液体相の抗原飲作用と比較して１，０００倍まで増強され得る。アポトーシス腫瘍細胞（ＡＴＣ）は、樹状細胞ロードのための抗原の優れた供給源である。なぜなら複数の腫瘍特異的抗原（公知および未知の両方）が、ナイーブなＴ細胞に対して効率的に提示され得、特定のエピトープのロックに起因する可能性が低い免疫系回避改変体の出現が生じるからである。動物研究では、ＡＴＣでパルスされたＤＣは、インビトロおよびインビボで強力な抗腫瘍免疫を生じることが示されている。しかし、最近のデータでは、ＡＴＣ単独では、抗腫瘍免疫を活性化するためにいくらか効率が悪いことが実証されており、これはおそらくその効率の悪い取り込みおよびＤＣ成熟を誘導する能力の欠如による。
【０９６９】
最近の研究ではまた、アポトーシス腫瘍細胞に対する抗腫瘍抗体の結合によって形成されたＡＴＣ免疫複合体は、ＤＣ上のＦｃ（γ）Ｒに対して標的化され得ることが実証された。ＡＴＣ単独と比較して、ＡＴＣ免疫複合体は、ＤＣによってより効率的に内面化され、ＤＣ活性化および成熟を誘導するのにおいてより効率的であって、そしてさらに重要なことには、ＡＴＣ免疫複合体はＭＨＣ  ＩおよびＭＨＣ  ＩＩ制限抗原提示の両方を有意に増強し得、従って、強力な抗腫瘍ＴヘルパーおよびＣＴＬ免疫を誘導する。
【０９７０】
従って、本発明者らは、体液性および細胞性の抗腫瘍免疫の両方を増強する本発明の抗ＰＳ抗体を用いることを考えて、ＡＴＣベースのＤＣ腫瘍ワクチンの有効性をブーストする。ＰＳは、普遍的であって、アポトーシス腫瘍細胞の最も豊富な特異的マーカーであるので、本発明の抗体、詳細には３Ｇ４のパネルは、ＡＴＣ上のＰＳに結合し得る。３Ｇ４−ＡＴＣ複合体のＦｃ（γ）Ｒ媒介性内面化を通じて、３Ｇ４が３００％までアポトーシス腫瘍細胞のＤＣ取り込みを増強し得ることを、本発明者らは既に実証している。従って、Ｆｃ（γ）Ｒを通じて媒介されたＤＣによってＡＴＣの取り込みを増強することによって、３Ｇ４および同様の抗体は、ＭＨＣ  ＩおよびＭＨＣ  ＩＩ制限抗原提示の両方を大きく増強し得、強力な体液性および細胞性抗腫瘍免疫の両方を誘導し得、ＡＴＣベースのＤＣ腫瘍ワクチンの有効性をブーストし得るということが判断されている。これは、インビボにおいて、Ｔｈ１、ＣＴＬおよび抗体応答の誘導における、３Ｇ４−ＡＴＣ免疫複合体をロードされたＤＣの有効性を確立することによって、およびインビボにおいて３Ｇ４−ＡＴＣ免疫複合体をロードされたＤＣの免疫によって誘導された抗腫瘍免疫の力価を決定することによって、実証され得る。
【０９７１】
（実施例ＸＸＩ）
（抗ＰＳ抗体は、インビボにおいてＣＭＶ感染を処置する）
実施例ＸＩＩに示されるインビトロのＣＭＶに対する抗ウイルス効果に従い、本実施例は、ＣＭＶウイルスのマウスバージョン、ｍＣＭＶを感染させたマウスの生存の増大が実証される。
【０９７２】
Ｂａｌｂ／Ｃマウス（６週齢、１群あたり５匹のマウス）を、５×１０５ｐｆｕのｍＣＭＶ  ＲＶＧ１０２を用いて腹腔内感染させた。このマウスを３Ｇ４抗体（マウス１匹あたり１ｍｇ）または上記のヒトマウスキメラ抗体ｃｈ３Ｇ４（マウス１匹あたり１ｍｇ）で１日目に腹腔内処置した。未処置のマウスをコントロールとして使用した。その後、マウス１匹あたり０．５ｍｇの抗体またはキメラ抗体を用いて４日ごとに、２６日までマウスを処置した。マウスを感染後９０日間、生存についてモニターした。
【０９７３】
３Ｇ４抗体の親およびキメラ型の両方を用いた処置によって、ｍＣＭＶ感染マウスの生存の向上が得られた。３Ｇ４またはｃｈ３Ｇ４を用いて処置したマウスは、感染マウスのうち２５％しか生存しなかった、未処置のマウスと比較して、それぞれ１００％および８０％の生存を有した（図２７）。
【０９７４】
（実施例ＸＸＩＩ）
（インビボにおいてＰＥ結合ペプチド誘導体はＣＭＶ感染を処置する）
実施例ＸＶＩＩに示されるＣＭＶに対するインビトロの抗ウイルス効果に加えて、本実施例によって、デュラマイシンビオチン誘導体であるＤＬＢがｍＣＭＶで感染されたマウスの生存を向上させたことが実証される。
【０９７５】
Ｂａｌｂ／Ｃマウス（１群あたり６週齢、マウス５匹）を、５×１０５ｐｆｕのｍＣＭＶ  ＲＶＧ１０２で腹腔内感染させた。これらのマウスを、マウス１匹あたり２０μｇのデュラマイシン誘導体ＤＬＢを用いて１日目に、そして４日ごとに腹腔内処置した。未処置のマウスをコントロールとして使用した。マウスを感染後９０日間、生存についてモニターした。
【０９７６】
デュラマイシン−ビオチン誘導体であるＤＬＢを用いた処置によって、ｍＣＭＶ感染マウスの生存が向上した。ＤＬＢで処置したマウスは、マウスのうち２５％しか感染から生存しなかった未処置のマウスと比較して、１００％の生存を有した（図２８）。
【０９７７】
（実施例ＸＸＩＩＩ）
（抗ＰＳ抗体は、ウイルス感染した細胞に結合する）
本実施例によって、ウイルス感染が細胞表面でＰＳ露出を誘導することおよび抗ＰＳ抗体がウイルス感染した細胞に結合することが示される。ＦＡＣＳ解析において実証される細胞表面に対するキメラ３Ｇ４抗体の結合の増大によって示されるように、ワクシニアウイルスに感染した細胞はＰＳ陽性になる。
【０９７８】
トリプシン処理されたワクシニアウイルスを２という高いｍ．ｏ．ｉで用いてＵ９３７細胞を感染させた。要するに、ワクシニアウイルスを、等容積の０．２５ｍｇ／ｍｌのトリプシンを用いて３７℃で３０分間処置した。このウイルスを０．５ｍｌの総容積でＵ９３７細胞に添加した。１．５時間後、新鮮な培地を細胞に添加して、細胞をＴ２５フラスコ中において３７℃で２日間インキュベートさせた。未感染の細胞をコントロールとして使用した。
【０９７９】
感染したＵ９３７細胞および未感染のＵ９３７細胞を、一次抗体を用い、コントロールとしてキメラ３Ｇ４抗体（ｃｈ３Ｇ４）またはヒトＩｇＧ（ＨＩｇＧ）のいずれかを用いて染色した。細胞を洗浄して、正常なマウス血清を用いてブロックし、次いで一次抗体を用いて氷上で４５分間染色した。３回の洗浄後、１：４００希釈のヤギ抗ヒトＦＩＴＣ結合体化二次抗体を用いて細胞を染色して、ＦＡＣＳｃａｎで解析した。
【０９８０】
ＦＡＣＳ解析からの結果によって、未感染のＵ９３７細胞上で得られたシフト（図２９Ａ、右（緑）ピーク）と比較して、ワクシニアウイルスで感染されたＵ−９３７細胞上にｃｈ３Ｇ４での有意なシフト（図２９Ｂ、右（緑）ピーク）が存在することが示される。従って本研究によって、ワクシニアウイルスを用いた細胞の感染が、細胞表面上でのＰＳ露出をもたらすこと、および抗ＰＳ抗体３Ｇ４のキメラバージョンが、これらのウイルス感染した細胞に対して結合し得ることが示される。
【０９８１】
（実施例ＸＸＩＶ）
（Ｐｉｃｈｉｎｄｅウイルスに対する抗ＰＳ抗体の抗ウイルス効果）
ＣＭＶおよびＲＳＶに対する抗ウイルス効果に加えて、本実施例によってさらに、抗ＰＳ抗体がインビトロでＰｉｃｈｉｎｄｅウイルス感染を阻害することが示される。Ｐｉｃｈｉｎｄｅウイルスは新世界（Ｎｅｗ  Ｗｏｒｌｄ）アレナウイルスであって、ヒトでは非病原性であり、ラッサ熱の動物モデルにおいて用いられる。
【０９８２】
Ｖｅｒｏ細胞のコンフルエントな単層を、Ｐｉｃｈｉｎｄｅウイルスを０．０１ｐｆｕ／細胞という低ｍ．ｏ．ｉ．で用いた感染後、３Ｇ４抗体またはアイソタイプマッチングしたコントロール抗体であるＧＶ３９Ｇで処置した。要するに、細胞を１ウェルあたり１ｍｌの総容積で、３７℃で９０分間、ウイルスとともにインキュベートさせた。感染の間、プレートを３０分ごとにおだやかにロッキングさせた。感染後、細胞上清を取り出して、ＤＭＥＭ／１０％  ＦＢＳ／ｐｅｎ−ｓｔｒｅｐを各々のウェルに添加した（１ウェルあたり２ｍｌ）。２日目に、細胞を、トリプシンを用いて回収して、Ｂｉｏｃｏａｔチャンバスライドに固着させた。それらを固定して、ポリクローナルウサギ抗ＰＩＣ血清、続いてビオチン結合体化ヤギ抗ウサギ二次（二次抗体単独では、図３０Ｃに示されるように染色を生じない）を用いて染色した。１００細胞の領域あたりの感染細胞の数をカウントした。
【０９８３】
３Ｇ４を用いて処置した細胞では、ウイルスは、ほぼ１００個の細胞中約１個に達する、暗い赤に染まる単一の細胞に限定される（図３０Ａ）。これらはおそらく、ＣＭＶで見られるように、ウイルスによってもともと感染された細胞である（実施例ＸＩＩ）。しかし、コントロールのＣＶ３９Ｇ抗体で処置した細胞では、ウイルスは全ての細胞に伝播して感染した（図３０Ｂ）。
【０９８４】
ウイルス複製の阻害のこのパターンは、３Ｇ４を用いてＣＭＶ感染ヒト線維芽細胞を処置した場合に観察されたパターンと類似である。従って、抗ＰＳ抗体である３Ｇ４は、図３０Ｄにおいて定量されるように、細胞から細胞へのＰｉｃｈｉｎｄｅウイルスの伝播を効率的に妨げる。
【０９８５】
（実施例ＸＸＶ）
（ＰＥ結合ペプチド誘導体を用いる腫瘍処置）
デュラマイシン誘導体の抗ウイルス効果に加えて、インビトロおよびインビボの両方で、本実施例は、腫瘍脈管構造に対するデュラマイシン誘導体の局在化および関連の抗腫瘍効果を実証する。
【０９８６】
（Ａ．デュラマイシンＨｕＩｇＧ結合体での腫瘍処置）
ヒトＩｇＧ（ＨＩｇＧ）を実施例ＸＶに記載されるように最初に精製した。精製したＨＩｇＧを、ＳＩＡＢリンカーを用いてデュラマイシンに連結して、得られた（Ｄ−ＳＩＡＢ）ｎＨＩｇＧ結合体を精製した。
【０９８７】
マウス線維肉腫細胞株ＭｅｔｈＡを増殖させて、対数期に回収して、ＤＰＢＳに再懸濁させた。約１０６個のＭｅｔｈＡ腫瘍細胞を６〜８週齢のＢＡＬＢ／ｃ雄性マウスの背中中央に皮下注射した。移植の５日後、マウスを２つの群に無作為に分離した（ｎ＝１５）。１０日目から、１つの群には腹腔内注射によって１５０μｇのデュラマイシンＨｕＩｇＧ結合体を連続して２週間投与した。もう一方の群にはコントロールとして同じ量のＨｕＩｇＧを投与した。腫瘍容積を週に２回測定して、式１／２ａｂ２を用いて算出した（ここで、「ａ」は腫瘍の長軸であって、「ｂ」は、腫瘍の短軸である）。腫瘍が約１４００ｍｍ３のサイズに達したとき、マウスを屠殺した。
【０９８８】
デュラマイシンＨＩｇＧ結合体は、ヒトＩｇＧコントロールと比較して、ＢＡＬＢ／ｃマウスにおいて１５０μｇ／日の用量でＭｅｔｈ  Ａ腫瘍増殖を阻害した（図３１）。
【０９８９】
（Ｂ．デュラマイシンＨｕＩｇＧ結合体は腫瘍脈管構造に局在する）
腫瘍サイズが５００ｍｍ３に達したとき、上記と同じＭｅｔｈＡマウス腫瘍モデルを用いて、１００μｇ（Ｄ−ＳＩＡＢ）ｎＨＩｇＧを含有する１００μｌＰＢＳを、尾静脈を介して注射した。同じ量のヒトＩｇＧをコントロールとして注射した。４時間後、マウスを屠殺して正常な生理食塩水を用いて５分間、１％パラホルムアルデヒドを用いて１０分間灌流させた。腫瘍および他の主な器官を切り取って液体窒素中で凍結させた。ＯＣＴに埋め込んだ後、組織を１０μｍの切片に凍結切片化してシラン処理したスライドにおいた。冷アセトン中での１０分間の固定後に、ペルオキシダーゼ標識ヤギ抗ヒトＩｇＧを用いてスライドを染色して、デュラマイシンＨｕＩｇＧの体内分布を検出した。Ｍｅｃａ３２およびペルオキシダーゼ標識したヤギ抗ラットＩｇＧを用いて組織の血管構造を検出した。
【０９９０】
本研究によって、処置した動物においてデュラマイシンＨＩｇＧ結合体が腫瘍血管脈管構造に局在することが示された。
【０９９１】
（実施例ＸＸＶＩ）
（デュラマイシン結合体の生体分布および特性）
本実施例は、インビトロにおける細胞不浸透性デュラマイシン誘導体の毒性の欠失、インビボで投与されたデュラマイシン誘導体の体内分布、およびデュラマイシン−抗体結合体がマクロファージによるアポトーシス細胞の食作用を増大する能力を実証する。
【０９９２】
（Ａ．デュラマイシン−ビオチン結合体は細胞毒性ではない）
本発明のデュラマイシン誘導体および結合体は、親のデュラマイシン分子の非特異的な毒性効果を最小にするように設計する。多くの実施例では、これは細胞不浸透性基に対するデュラマイシンの連結によって達成される（実施例ＸＶ）。
【０９９３】
ビオチン化デュラマイシン構築物ＤＬＢを実施例ＸＶに記載の通り調製した。未改変のデュラマイシン化合物およびＤＬＢを、ＭＴＴアッセイを用いてＨＵＶＥＣ上での細胞毒性効果について試験した。未改変のデュラマイシンは用量依存性の毒性を示したが、ＤＬＢは毒性ではなく、未処置のコントロールにマッチした（図３２）。
【０９９４】
（Ｂ．肺におけるマクロファージに対するデュラマイシン−ビオチン結合体の局在化）
ヒト乳ガン細胞株ＭＤＡ−ＭＢ−４３５を増殖させて、対数期に回収して、ＤＰＢＳに再懸濁した。約１０７個の細胞を、６〜８週齢の雌性無胸腺ヌードマウスの乳房の脂肪パッドに注射した。１００μｇデュラマイシン−ビオチンを含む１００μｌ  ＰＢＳを尾静脈を介して注射した。４時間後、マウスを屠殺して正常な生理食塩水を用いて５分間、１％パラホルムアルデヒドを用いて１０分間灌流させた。心臓、肺、肝臓、腎臓、脳、小腸、胸腺および脾臓を含む主な器官を切り取って液体窒素中で凍結させた。ＯＣＴに埋め込んだ後、組織を１０μｍの切片に凍結切片化してシラン処理したスライドにおいた。冷アセトン中での１０分間の固定後に、Ｃｙ３標識したストレプトアビジンを用いてスライドを染色してデュラマイシン−ビオチン構築物の体内分布を検出した。Ｍｅｃａ３２およびＦＩＴＣ標識したヤギ抗ラットＩｇＧを用いて組織の血管構造を検出した。
【０９９５】
ＭＤＡ−ＭＢ−４３５腫瘍を保有するヌードマウスへのデュラマイシン−ビオチン結合体の静脈内注射によって、腫瘍細胞、尿細管および肺のマクロファージにおける薬物の沈着が得られた。肝臓に最小の沈着があり、脳、小腸、精巣には検出可能な分布はない。肺におけるマクロファージに対する局在は、本発明の抗ウイルスの実施形態において利用され得る。
【０９９６】
（Ｃ．デュラマイシン−抗体結合体はアポトーシス細胞の食作用を増強する）
デュラマイシン−抗体結合体（デュラマイシン−Ｃ４４、ＤｕＣ４４）がアポトーシス細胞の食作用を増大する能力を次に検討した。
【０９９７】
マクロファージを単離して、マウス骨髄から培養した。ＢＭマクロファージの単離、培養および刺激のために用いられる培地は、２ｍＭグルタミン、０．３７％（ｗ／ｖ）ＮａＨＣＯ３、１０％（ｖ／ｖ）熱不活性化されたＦＣＳおよび０．５ｎｇ／ｍｌマウスＧＭ−ＣＳＦを含むＤＭＥＭであった。２５ゲージの針を通じた完全培地のジェットを用いて、解剖した大腿骨から骨髄細胞を無菌的にフラッシュさせた。次いでこの細胞を完全培地１ｍｌあたり約３×１０５個の細胞の密度に調節して、８ウェルチャンバスライド中の０．５ｍｌアリコートに分配した。
【０９９８】
加湿チャンバ中において３７℃で、５％ＣＯ２中で１時間細胞をインキュベートして、マクロファージを固着させかつ広げさせた。各々のウェルに５ｍｌの暖めたＰＢＳを添加することによって非固着細胞を取り出して、プレートを穏やかに叩くことによって非固着細胞を再懸濁して、このスライドを軽くたたいて非固着細胞を廃棄した。この洗浄を全部で３回行なった。細胞を７．５％（ｖ／ｖ）ＣＯ２雰囲気下において３７℃で５日間維持した。細胞を用いるまで、完全培地を１日おきに交換した。
【０９９９】
以下の方法を用いて、蛍光細胞トレーサーを用いてＨＬ−６０標的細胞を標識した。１バイアル色素の含量を９０μＬのＤＭＳＯに溶解して、ＰＢＳ中で１０μＭに希釈することによって、使用の直前に１０ｍＭ  ＣＦＤＡ  ＳＥストック溶液を調製した。ＨＬ−６０細胞ペレットを得るために遠心分離を用いて、上清を吸引した。細胞をＣＦＤＡ／ＰＢＳに再懸濁して、３７℃で１５分間インキュベートした。サンプルを遠心分離して上清を吸引した。細胞を培地に再懸濁してさらに３０分間インキュベートした。細胞生存度および蛍光が９５％を超えることを確認した。
【１０００】
この食作用アッセイにおいて、標識されたＨＬ−６０細胞をＵＶ２５４ｎｍに５分間露出して、３７℃で１時間インキュベートしてアポトーシスを誘導した。１０４個のアポトーシス性ＨＬ−６０細胞をマクロファージとともに１時間インキュベートした。デュラマイシンＣ４４結合体を１０μｇ／ｍｌの濃度で含んだ。同じ濃度のマウス抗体ＢＢＧ３を陰性コントロールとして用いて、３Ｇ４抗体をまた比較のために含んだ。Ｈｏｅｃｈｓｔ３３３４２を、最後の４５分間に、１０μｇ／ｍｌの濃度で培地に添加した。
【１００１】
スライドをＰＢＳで３回洗浄して、１５分間４％パラホルムアルデヒド中で固定した。スライドをラット抗マウスＣＤ１１抗体（ＣＤ１１は、マクロファージマーカーである）で染色して、０．２％ゼラチン中で１時間希釈して洗浄し、テキサスレッド標識ヤギ抗ラット二次抗体を用いて染色した。
【１００２】
細胞を蛍光顕微鏡下で解析した。マクロファージはＣＤ１１マーカーに起因して赤い細胞として同定された。アポトーシス細胞を食菌したマクロファージは、標的細胞における蛍光トレーサーに起因して緑の細胞として同定される。赤および緑の細胞をカウントして、食作用を取り込みの食作用陽性の割合として定量する。
【１００３】
この研究によって、デュラマイシン抗体結合体ＤｕＣ４４がマクロファージによるアポトーシス性ＨＬ−６０細胞の食作用を増強したことが示される（図３３）。従って、デュラマイシン部分は、アポトーシス細胞の表面に結合して、これによって結合体の突出する抗体部分がマクロファージによって認識されることが可能になる。従ってこのデュラマイシン−抗体結合体は、３Ｇ４抗体に類似して機能した。予想どおり、Ｆｃ領域を欠く３Ｇ４抗体の（Ｆａｂ）２フラグメントは、コントロールレベルを超える食作用を誘導しなかった。
【１００４】
初期の研究では、デュラマイシン−ビオチン結合体がインビボにおいて肺投与後にマクロファージに局在することが示されたので、本研究において示されるアポトーシス細胞のマクロファージ媒介性食作用の刺激は、本発明の治療用途のために、例えば肺ウイルス感染を処置するのにおいて重要な意味を有する。
【１００５】
実施例ＸＸＶＩＩ
腫瘍治療時におけるマクロファージの浸潤
前述の実験に示すように、アミノリン脂質および陰イオン性リン脂質に対する抗体は癌治療に有効である。例えば、３Ｇ４抗体は、腫瘍血管に特異的に局在し、腫瘍血管の破壊をもたらし、かつ、複数のマウスモデルにおいて毒性をもたらすことなく腫瘍増殖を遅らせる（実施例ＸＩ；実施例ＸＶＩＩＩ）。本実施例は、腫瘍を抱える動物に対する３Ｇ４治療もまた、単球白血球の腫瘍血管内皮に対する結合をもたらし、マクロファージの腫瘍への浸潤を誘発することを示す。
【１００６】
Ａ．方法
８−１０匹の雌性ＳＣＩＤマウスから成るグループに、２×１０７個のＬ５４０細胞、または同所的に１×１０７個のＭＤＡ−ＭＢ−４３５またはＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞を皮下に注入した。ＢＡＬＢ／Ｃマウスに１×１０６個のＭｅｔｈ  Ａ細胞を皮下に注入した。腫瘍を、平均直径０．８−１ｃｍ（Ｌ５４０）、０．６−０．７ｃｍ（ＭＤＡ−ＭＢ−４３５）、０．５−０．７ｃｍ（ＭＤＡ−ＭＢ−２３１）、または＜０．１ｃｍ（Ｍｅｔｈ  Ａ）となるまで増殖させた。次に、マウスを、１００μｇの３Ｇ４抗体、またはコントロール抗体（ＢＢＧ３）を週に３回２−３週腹腔に投与して処置した。週に３回、腫瘍サイズおよび体重について動物を監視した。コントロールマウスの腫瘍が直径１．５−２ｃｍに達した時動物を屠殺した。
【１００７】
Ｂ．結果
同所性ＭＤＡ−ＭＢ−４３５およびＭＤＡ−ＭＢ−２３１腫瘍を抱えるマウスの３Ｇ４による治療は、単球白血球の、腫瘍血管内皮に対する結合、および腫瘍間隙組織への浸潤をもたらした（図６Ａ、図６Ｂ、図６Ｃ、および６Ｄ）。この図において、赤色染色は内皮を示し、緑色染色はマクロファージを示し、青色染色は核を示す。
【１００８】
３Ｇ４処理腫瘍における血管には、しばしば単球白血球が詰まっているが（図６Ｄ）、一方、コントロールの、ＢＢＧ３−処理マウスの腫瘍では、血管に結合する白血球はほんの散発的にしか見られなかった（図６Ｃ）。３Ｇ４処理マウスでは、ＢＢＧ３処理マウスに比べて、驚くほど多数の単球白血球が腫瘍の間隙組織に浸潤していた（図６Ｂと図６Ａを比較せよ）。
【１００９】
腫瘍血管に結合し、かつ腫瘍中に浸潤した細胞のほとんど全て（＞９０％）が、単球／マクロファージマーカーＦ４／８０，Ｍ１／７０（ＣＤ１１ｂ、Ｍａｃ−１）およびＦｃγＲ（図６Ａ、図６Ｂ、図６Ｃ、および図６Ｄ）。細胞は、好中球マーカー、Ｌｙ−６Ｇ、ＮＫ細胞マーカー、Ｌｙ−４９、および樹状突起細胞マーカー、ＣＤ１１ｃを持たなかった。ＳＣＩＤマウスから予期されたように、リンパ球マーカーは存在しなかった。以上まとめると、結果から、腫瘍血管に結合し、腫瘍間隙組織に浸潤する細胞は、それぞれ、単球およびマクロファージであることが示された。
【１０１０】
実施例ＸＸＶＩＩＩ
Ｆ（ａｂ’）２断片は腫瘍治療に有効である
アミノリン脂質および陰イオン性リン脂質に対する抗体、例えば、３Ｇ４は、腫瘍治療に有効である（実施例ＸＩ；実施例ＸＶＩＩＩ）。本実施例は、３Ｇ４抗体のＦ（ａｂ’）２断片も、元の３Ｇ４抗体と同程度に腫瘍治療に有効であることを示す。
【１０１１】
コントロール設定実験において、腫瘍マウスを、３Ｇ４抗体、３Ｇ４抗体のＦ（ａｂ’）２断片、または異性体適合コントロール抗体（ＢＢＧ３）のいずれかで処置した（９日目）。コントロール動物の腫瘍は急速に増殖を続けたが、一方、３Ｇ４抗体、または、３Ｇ４抗体のＦ（ａｂ’）２断片で処置したマウスでは、腫瘍増殖は有意に遅くなった（図８）。Ｆ（ａｂ’）２断片は、元の抗体と少なくとも同程度に有効であり（図８）、Ｆ（ａｂ’）２断片の抗腫瘍作用は、これらの実験では過小評価されている可能性がある。
【１０１２】
これは、３Ｇ４のような抗体は、ＰＳ発現腫瘍血管および腫瘍細胞に対する、単球およびマクロファージの炎症反応惹起能力を強化すると言う仮設を支持する。３Ｇ４のような抗体は、腫瘍血管上のＰＳの、宿主の炎症反応に対する抑止を阻止するため、マクロファージが炎症性サイトカイン、例えば、ＴＮＦ−α、ＩＬ−１、およびその他を分泌することを可能とし、このため腫瘍内皮の直接傷害、さらに腫瘍内部への宿主細胞の招集が可能とされる（図７）。
【１０１３】
実施例ＸＸＩＸ
アネキシンＶ二量体は、モノマーよりも優れて腫瘍血管に局在する
実施例ＸＸＶＩＩおよび実施例ＸＸＶＩＩＩは、アミノリン脂質および陰イオン性リン脂質に対する抗体による腫瘍治療におけるマクロファージの役割に関する。これらのデータおよびその他の情報から、本発明人達は、全体発明の内のレセプター本体局面を発展させた。この実施態様を支えるものとして、アネキシンＶのホモの二量体を作製したところ、対応するアネキシンＶモノマーよりも優れて腫瘍血管に局在することが判明した。
【１０１４】
実施例ＸＸＸ
３Ｇ４およびβ２ＧＰＩのＰＳに対する協調結合
本実施例は、３Ｇ４抗体とＰＳとの相互作用は、血漿タンパク質、β２−糖タンパク質Ｉ（β２ＧＰＩ）に依存することを明らかにする。３Ｇ４はβ２ＧＰＩに対しドメインＩＩにおいて結合するが、このドメインＩＩは、ＡＰＳ患者から単離された病原性抗体（一般に、β２ＧＰＩドメインＩを認識する）とは結合しない。データから、ＰＳ陽性細胞に対する結合を含むＰＳ結合の強化には、３Ｇ４／β２ＧＰＩの２価の複合体が必要であることが示された。なぜなら、３Ｇ４  Ｆａｂ’断片はこの活性を持たないからである。ＰＳ陽性細胞に対する、３Ｇ４／β２ＧＰＩの２価複合体の結合は、本発明のＦｃ−β２ＧＰＩ構築物の使用、すなわち同様に、二量体である該構築物の、ＰＳ陽性細胞を標的とし、従って癌およびウイルス感染のような疾患を治療するための使用を支持する。
【１０１５】
Ａ．材料および方法
１．材料
ダルベッコの改変イーグル培養液（ＤＭＥＭ）およびトリプシン／ＥＤＴＡは、Ｍｅｄｉａｔｅｃｈ，Ｉｎｃ．（Ｈｅｒｎｄｏｎ、バージニア州）から入手した。ウシ胎児血清（ＦＢＳ）、ヒトの正常血清、ラットの正常血清、およびマウスの正常血清は、Ｂｉｏｍｅｄｉａ（Ｆｏｓｔｅｒ  Ｃｉｔｙ、カリフォルニア州）から入手した。ヒトの新鮮血漿は、Ｃａｒｔｅｒ  Ｂｌｏｏｄ  Ｃａｒｅ（ダラス、テキサス州）から入手した。血清無添加ハイブリドーマ培養液、Ｓｙｎｔｈｅｃｈｏｌ  ＮＳ０添加剤、Ｌ−α−ホスファチジルセリン（ＰＳ）、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、および、ニワトリ卵白由来のオボアルブミン（ＯＶＡ）は、Ｓｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏ．，（セントルイス、ミズーリ州）から入手した。ＤＥＡＥセルロース、ヘパリン−セファローズ、およびＨｙｂｏｎｄ−Ｐ膜は、Ａｍｅｒｓｈａｍ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ（Ｂｕｃｋｉｎｇｈａｍｓｈｉｒｅ，ＵＫ）から入手した。１−パルミトイル−２−ヒドロキシ−ｓｎ−グリセロ−３−フォスフォコリン［リゾフォスファチジルコリン（ＬＰＣ）］は、Ａｖａｎｔｉ  Ｐｏｌａｒ  Ｌｉｐｉｄｓ（Ａｌａｂａｓｔｅｒ，アラバマ州）から入手した。９６ウェルＩｍｍｕｌｏｎ−１Ｂおよび−２ＨＢマイクロタイタープレートは、Ｔｈｅｒｍｏ  Ｌａｂ  Ｓｙｓｔｅｍｓ（Ｆｒａｎｋｌｉｎ、マサチューセッツ州）から入手した。Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ勾配ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルおよびＯｐｔｉ−４ＣＮ基質キットは、Ｂｉｏｒａｄ（Ｈｅｒｃｕｌｅｓ，カリフォルニア州）から入手した。８ウェル・ガラスチェンバーは、ＢＤ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ（ベッドフォード、マサチューセッツ州）から入手した。
【１０１６】
２．抗体
陰イオン性リン脂質ＰＳに結合するよう免疫化された、３Ｇ４マウスモノクロナール抗体は、実施例ＩＶ、および本明細書の他の実施例に記載される抗体である（また、Ｒａｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００５も参照されたい）。３Ｇ４は、もともと、ハイブリドーマ上清において生産されたものであるが、その後、マウスＩｇＧ２ａ異性体に転換され（実施例ＸＩＸ、Ｄ）、現在では、ＮＳ０マウス骨髄腫細胞系統において生産されている。
【１０１７】
ＮＳ０細胞は、１０％ＦＢＳ添加ＤＭＥＭ、または、Ｓｙｎｔｈｅｃｈｏｌ  ＮＳ０添加剤含有の、血清無添加ハイブリドーマ培養液にて培養した。３Ｇ４のヒトのＩｇＧ１キメラ版も作製され（実施例ＸＩＸ，Ｂ）、Ｐｅｒｅｇｒｉｎｅ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ，Ｉｎｃ．（Ｔｕｓｔｉｎ，カリフォルニア州）によって血清無添加条件下に生産された。この抗体は“バビツキシマブ”と呼ばれる。
【１０１８】
マウスの抗ヒトβ２ＧＰＩ（抗−β２ＧＰＩ、またはα−β２ＧＰＩ）ｍＡｂを、ＵＳＢｉｏｌｏｇｉｃａｌ（Ｓｗａｍｐｓｃｏｔｔ，マサチューセッツ州）より入手した。Ｃ４４、コルヒチン特異的マウスＩｇＧ２ａ  ｍＡｂを分泌するハイブリドーマを、米国基準菌株保存機関（Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，メリーランド州）から入手し、３Ｇ４および抗β２ＧＰＩに対するコントロールとして用いた。Ｒｉｔｕｘｉｍａｂ（ヒトＩｇＧ１キメラｍＡｂ）を、ＵＴ  Ｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎ  ｐｈａｒｍａｃｙから入手し、ｃｈ３Ｇ４に対するコントロールとして用いた。培養上清において生産された抗体は全て、前述の実施例に記載するやり方で精製した（また、Ｒａｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００３も参照されたい、なお、この文献を引用により本明細書に特異的に含める）。二次抗体は全て、Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｌａｂｓ（Ｗｅｓｔ  Ｇｒｏｖｅ，ペンシルバニア州）から入手した。
【１０１９】
３．抗体断片の調製
３Ｇ４  Ｆ（ａｂ’）２は、プロテーアゼ、ペプシンとインキュベーションすることによって作製した。３Ｇ４  Ｆａｂ、およびコントロールＦａｂ  ７Ｈ１１（抗アデノウイルス）は、プロテアーゼ、パパインとインキュベーションすることによって作製した。抗体切断産物は全てＦＰＬＣにて精製し、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにて確認した。
【１０２０】
４．ヒト血漿からのβ２ＧＰＩの精製
ヒトβ２ＧＰＩ（ｈβ２ＧＰ１）は、事実上前述の通りにヒトの血漿から精製した（Ｐｏｌｚ  ｅｔ  ａｌ．，１９８０；Ｗｕｒｍ  ｅｔ  ａｌ．，１９８４、なお、引用によりそれぞれを本明細書に特異的に含める）。簡単に言うと、プールされた血漿に過塩素酸（７０％）を、最終濃度が１．５７％（ｖ／ｖ）となるように加えた。沈殿を捨て、上清を、飽和Ｎａ２ＣＯ３にてｐＨ７．５に調整し、次いで、５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ，ｐＨ８．０に対して十分な透析を行った。この物質を、５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ，ｐＨ８．０で平衡させたＤＥＡＥセルロースカラムに対して与え汚染物質を除いた。次に、ＤＥＡＥカラム流出物を、５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ，ｐＨ８．０で平衡させたヘパリンセファロース・アフィニティーカラムに与え、結合タンパク質を、１．０Ｍ  ＮａＣｌを用いて溶出した。最後に、このβ２ＧＰＩ調製品をＰＢＳに対して透析し、タンパク質Ａ／Ｇでさらに精製し、汚染性のＩｇＧを除去した。最終調製品は、非還元性ＳＤＳ／ＰＡＧＥおよびクーマシー染色で示されるように、５０ｋＤａの所に均一なバンドを含んでいた。
【１０２１】
５．β２ＧＰＩおよびβ２ＧＰＩドメインの構築と発現
β２ＧＰＩの純粋な組み換え全長形態、および欠失形態を作製するために、酵母のシャトル発現ベクターｐＰＩＣ６αＡ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）および宿主株Ｍｕｔ＋Ｘ−３３（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いた。この発現ベクターは、アルコール（メタノール）オキシダーゼ遺伝子（ＡＯＸ１）の５’プロモーターおよび３’転写終止配列を含む。ベクターはまた、組み換え異種タンパク質が培養液へ分泌されるようにするために、ＡＯＸ１プロモーターの下流に、外来ｃＤＮＡが融合可能な酵母α接合因子シグナル配列を持つ。Ｐ．ｐａｓｔｏｒｉｓにおける発現は、哺乳類細胞におけるものと同様の、グリコシル化およびジスルフィド結合形成を実現する。
【１０２２】
発現構築物を作製するために、下記の五つの発現構築物を、ヒトβ２ＧＰＩ  ｃＤＮＡを用いて製造した。
【１０２３】
（１）コグネイトのシグナルペプチドを持たない、β２ＧＰＩ  ｃＤＮＡ全体コード領域（ドメイン１−５）、
５’プライマー；５’−ＧＧＡＡＴＴＣＧＧＡＣＧＧＡＣＣＴＧＴＣＣＣＡＡＧＣ−３’（配列番号１２）
（２）ドメイン１欠失（ドメイン２−５）
５’プライマー；５’−ＧＧＡＡＴＴＣＧＴＡＴＧＴＣＣＴＴＴＴＧＣ−３’（配列番号１３）
（３）ドメイン１および２欠失（ドメイン３−５）
５’プライマー；５’−ＧＧＡＡＴＴＣＧＣＴＣＣＣＡＴＣＡＴＣＴＧＣ−３’（配列番号１４）
（４）ドメイン１−３欠失（ドメイン４−５）
５’プライマー；５’−ＧＧＡＡＴＴＣＧＴＡＡＡＡＴＧＣＣＣＡＴＴＣ−３’（配列番号１５）、および、
（５）ドメイン５のみ
５’プライマー；５’−ＧＧＡＡＴＴＣＧＣＡＴＣＴＴＧＴＡＡＡＧＴＡＣ−３’（配列番号１６）
全ての断片のＰＣＲにおいて共通の３’プライマー、５’−ＴＴＣＴＡＧＡＴＴＡＧＣＡＴＧＧＣＴＴＴＡＣ−３’（配列番号１７）が用いられた。ＰＣＲ増幅断片は、α接合因子シグナル配列の直接下流側の、ｐＰＩＣαＡのＥｃｏＲＩおよびＸｂａＩ制限部位の間にインフレームに挿入された。Ｃ−末端において組み換えタンパク質がｃ−ｍｙｃエピトープまたはＨｉｓタグに融合することを防止するために、各断片の末端に終止コドンを導入した。プラスミド構築物を、１００μｇ／ｍｌのブラスチシディンの存在下に大腸菌に移し、制限分析とヌクレオチド配列によって確認した。構築物（１）、（２）、（３）、（４）、および（５）によって発現される組み換えタンパク質は、グリコシル化前、それぞれ、約３６、２９、２４、１６、および、９ｋＤａのタンパク質をコードした。
【１０２４】
発現クローンの形質転換およびスクリーニングのために、組み換えプラスミド構築物を、制限酵素ＳａｃＩによって直線化し、精製し、１０μｇを用いて、宿主株Ｘ−３３をスフェロプラスト法（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）によって形質転換した。上記構築物のそれぞれについて形質転換株を、４００μｇ／ｍｌのブラスチシディンを含むＹＰＤ（酵母抽出ペプトンデキストロース培養液）プレートに４日間インキュベートして選択した。真の統合株を決めるために、各構築物についていくつかのクローンを、４００μｇ／ｍｌのブラスチシディンを含むＹＰＤプレートに再度線条接種した。次に、各構築物について１０クローンを、最小デキストロース（ＭＤ）および最小メタノール（ＭＭ）プレートに線条接種した。ＭＤおよびＭＭの両プレートにおいて等しく好調に増殖する、各構築物当たり５クローンを、液体ＭＤおよびＭＭ培養液にて、２４、４８、７２、９６、および１２０時間育成した。各クローンについて各時点における上清およびペレットを、抗ヒトβ２ＧＰＩポリクロナール抗体を用いウェスタンブロットで分析した。上清中にタンパク質の最高発現を示したクローンを、その後の大規模調製のために用いた。
【１０２５】
組み換えタンパク質の大規模精製のために、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎの推薦する培養条件を用いて組み換えタンパク質を生産した。各クローンの出発培養物を、５ｍｌの、最小グリセロール複合体緩衝（ＢＭＧＹ）培養液中で活発に攪拌しながら３０℃で一晩培養した。細胞を収集し、２５ｍｌのＢＭＧＹに接種するのに用い、２日間育成した。次に、この２５ｍｌ培養体から得られた細胞を用いて、１Ｌの最小メタノール複合体緩衝（ＢＭＭＹ）培養液（１．０％メタノール）に接種した。培養を、活発に攪拌しながら３０℃で４日間続け、１００％メタノールを２４時間置きに加え（最終濃度１．０％）、タンパク質発現を維持した。培養液を遠心（４０００×ｇ、１５分）にて澄明にし、上清を、５０ｍＭ  Ｔｒｉｓバッファーにて４℃で２日間透析し、次いで、５０ｍＭ  Ｔｒｉｓバッファーで平衡させたＤＥＡＥ−セファセルカラムに与えた。通流液を収集し、ヘパリン−セファローズカラムに与えた。β２ＧＰＩを、１．０Ｍ  ＮａＣｌを用いてヘパリン−セファローズカラムから溶出し、５０ｍＭ  Ｔｒｉｓバッファーに対して透析し、Ａｍｉｃｏｎ濃縮機を用いて濃縮し、ウェスタンブロットにて分析した。各タンパク質のＮ−末端の配列決定を行い、α因子リーダー配列の切断を確認した。タンパク質収率は、１０ｍｇ／Ｌ（全長β２ＧＰＩ）から２５ｍｇ／Ｌ（β２ＧＰＩドメインＶ）まで変動した。
【１０２６】
６．「ニック入り」ｈβ２ＧＰＩの調製
ニック入りｈβ２ＧＰＩは、ヒトの血漿から精製された元のｈβ２ＧＰＩから前述のようにして調製した。ｈβ２ＧＰＩを、プラスミン被覆ビーズと共に３７℃で１７時間インキュベートした。ビーズを遠心で取り除き、切断されたタンパク質を含む上清を回収した。精製産物のウェスタンブロット分析により、このニック入りβ２ＧＰＩ調製品は、プラスミン非含有であり、プラスミンの自己分解産物も含まないことが示された（抗プラスミンまたは抗アンギオスタチン抗体に対して無反応）。Ｎ−末端配列分析から、β２ＧＰＩのＮ−末端に対応するもの、および、Ｌｙｓ３１７／Ｔｈｒ３１８切断部位に生成された新規配列から成る２個のＮ−末端が明らかにされた。
【１０２７】
７．抗ＰＳ  ＥＬＩＳＡ
アッセイは下記のようにして実行した（さらにＲａｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００５を参照；なお、この文献を引用により本明細書に特異的に含める）。ＰＳ−塗布Ｉｍｍｕｎｌｏｎ  １Ｂマイクロタイタープレートを１％ＯＶＡ（ｗ／ｖ）において一晩ブロックした。翌日、血清含有または血清非含有上清から精製した３Ｇ４について、初期濃度１３．３３ｎＭから２倍ずつの連続希釈液を調製した。希釈は、１％ＯＶＡ、または１０％の、ウシ、ヒト、ラット、または、マウスの非加熱不活性化血清を用いて行った。プレートを３７℃で１時間インキュベートし、３Ｇ４の結合を検出した。ＥＬＩＳＡ実験は全て少なくとも３回実行した。
【１０２８】
８．抗ｈβ２ＧＰＩ  ＥＬＩＳＡ
アッセイは、前述の通りに、ただし下記の改変を加えて行った。ｈβ２ＧＰＩ、ニック入りｈβ２ＧＰＩ、または組み換えｈβ２ＧＰＩペプチドを、９６ウェルＩｍｍｕｎｌｏｎ  ２ＨＢマイクロタイタープレート上に１０μｇ／ｍｌの濃度で塗布し一晩置いた。次に、プレートを、１％ＯＶＡに室温で１時間浸してブロックした。３Ｇ４、ｃｈ３Ｇ４、または抗β２ＧＰＩを、１％ＯＶＡにて１３．３３ｎＭの初期濃度に希釈し、２倍ずつの連続希釈を調製した。プレートを３７℃で１時間インキュベートし、抗体結合を検出した。ＥＬＩＳＡ実験は全て少なくとも３回実行した。
【１０２９】
９．ウェスタンブロット
タンパク質サンプルは、非還元性ＳＤＳサンプルバッファーにおいて９５℃で５分間加熱した。次にサンプルを、Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ  ４−１５％勾配のＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルに負荷し、Ｍｉｎｉ  Ｐｒｏｔｅａｎ  ＩＩ装置（Ｂｉｏｒａｄ）を用いて分離した。分離されたタンパク質をＰＶＤＦ膜に移し、３％ＢＳＡ（ｗ／ｖ）で一晩ブロックした。膜を、３％ＢＳＡにおいて１μｇ／ｍｌに希釈した、抗β２ＧＰＩ、３Ｇ４、またはコントロールマウスＩｇＧによって探査し、十分に洗浄し、ペルオキシダーゼ標識ヤギ抗マウスＩｇＧとインキュベートした。膜を、Ｏｐｔｉ−４ＣＮ基質キットを用いて現像した。
【１０３０】
１０．内皮細胞におけるＰＳ露出の誘発および検出
成熟ウシ大動脈内皮（ＡＢＡＥ）細胞を、１０％ＦＢＳおよび２ｍＭ  Ｌ−グルタミンを添加したＤＭＥＭにおいて維持した。ＡＢＡＥ細胞を、０．２５％トリプシン／０．０２％ＥＤＴＡに短時間暴露することによって、下集密状態の培養体から取り出し、８−ウェル・チェンバースライドに、２×１０４細胞数／ウェルとなるように撒いた。一晩培養後、細胞をＰＢＳで穏やかに洗浄し、２００μＭリゾフォスファチジルコリン（ＬＰＣ）で処理してＰＳ露出を誘発した。ＬＰＣ−処理は、１０％ＦＢＳ、または１０％正常マウス血清（ＭＳ）のいずれかにおいて、３Ｇ４、ｃｈ３Ｇ４、またはコントロールＩｇＧの存在下に３７℃で３０分実行した。ＬＰＣ−処理を１０％ＭＳで実行する場合、ｈβ２ＧＰＩを、補因子として加えた。これは、そうしないと、３Ｇ４／ｃｈ３Ｇ４が、ＭＳ中のＰＳに結合できないからである。
【１０３１】
ＰＳ露出は、免疫蛍光染色によって定量した。細胞はＰＢＳにて十分洗浄し、４％パラフォルムアルデヒド（ｗ／ｖ）にて固定し、ビオチン接合抗マウス二次抗体と共にインキュベートした。次に、細胞を、ＦＩＴＣ−接合ストレプトアビジン（Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈ）とインキュベートして抗体結合を検出した。ＰＢＳに溶解した０．１％Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ１００によって細胞の透過性を強化し、テキサス赤接合ファロイジン（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ、Ｅｕｇｅｎｅ，オレゴン州）および４’，６−ジアミジノ−２−フェニルインドール（ＤＡＰＩ；Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ）によってカウンター染色した。画像は、Ｎｉｋｏｎ顕微鏡に取り付けたＣｏｏｌｓｎａｐディジタルカメラ（Ｐｈｏｔｏｍｅｔｒｉｃｓ，Ｔｕｓｃｏｎ，アリゾナ州）を用いて捕捉し、ＭｅｔａＶｕｅソフトウェア（Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ  Ｉｍａｇｉｎｇ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ｄｏｗｎｉｎｇｔｏｗｎ，ペンシルベニア州）で処理した。
【１０３２】
１１．ＡＢＡＥ細胞に対する抗体結合の定量
抗体結合面積は、画像中の輝いているピクセルの数を定量することが可能な、ＭｅｔａＶｕｅ画像分析ソフトウェアを用いて求めた。ＦＩＴＣ蛍光画像を用いて抗体結合を定量した。ＤＡＰＩ蛍光の対応画像を用いて、視野に存在する細胞の数についてＦＩＴＣ画像を正規化した。小さいＦＩＴＣ／ＤＡＰＩ比は、小さい抗体結合面積を示し、一方、大きいＦＩＴＣ／ＤＡＰＩ比は、大きい結合面積を示す。ＦＩＴＣ／ＤＡＰＩ比は、選択された条件下における抗体結合の基礎量に対する、抗体結合面積の増減を定めるのに用いられた。各分析には２００×倍率の、５枚の画像を用いた。データは、標準偏差を表す誤差バー付きの、ＦＩＴＣ／ＤＡＰＩ平均相対比として表した。
【１０３３】
Ｂ．結果
１．３Ｇ４は、ＰＳ−塗布マイクロタイタープレートに結合するのに血清因子を必要とする
血清含有培養液（ＳＣＭ）、または血清非含有培養液（ＳＦＭ）から精製した３Ｇ４抗体は、連続希釈を１０％ＦＢＳで行った場合、ＰＳ−塗布マイクロタイタープレートに結合する（図９Ａ、実線）。一方、連続希釈を１％ＯＶＡ（ウシ血清タンパク質を欠如する）で行った場合、ＳＦＭから精製した３Ｇ４はＰＳに結合しない（図９Ａ、点線、黒四角）。この所見は、ウシ血清に存在するある因子が、３Ｇ４とＰＳの間の相互作用を仲介することを示す。
【１０３４】
興味あることに、ＳＣＭから精製した３Ｇ４は、連続希釈が１％ＯＶＡで行われた場合でも弱いながらＰＳに結合する（図９Ａ、点線、黒上向き三角）。これは、ＳＣＭ中で培養した３Ｇ４の精製は、３Ｇ４とＰＳの間の相互作用を仲介するのに必要な血清タンパク質を完全には除去しないことを示唆する。従って、後述の実験は、ＳＦＭから精製した３Ｇ４を用いて行った。
【１０３５】
２．様々な動物種由来血清中のＰＳに対する３Ｇ４結合
他の哺乳動物種由来の血清が、３Ｇ４とＰＳの間の相互作用を仲介可能かどうかを決めるために、３Ｇ４の連続希釈を、１０％マウス、ラット、ヒト、またはその他の血清で行った。３Ｇ４は、ウシ血清の存在下と全く同様に、ラットおよびヒト血清の存在下にＰＳに結合した（図９Ｂ）。しかしながら、３Ｇ４は、マウス血清の存在下ではＰＳに結合しなかった（図９Ｂ）。別の実験で、３Ｇ４は、ハムスター、フェレット、モルモット、ウサギ、およびサルの血清の存在下ではＰＳに結合した。従って、３Ｇ４によって認識される血清タンパク質のエピトープは、マウスを除き、試験した全ての哺乳動物種において保存されている。
【１０３６】
３．３Ｇ４は、血清糖タンパク質β２ＧＰＩに結合する。
【１０３７】
１９８０年代後半、静脈および動脈血栓症、血小板減少症、および／または、反復性流産を抱える患者のコホートが、抗リン脂質（ａＰＬ）抗体を有することが示された（Ｈｕｇｈｅｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９８６；Ｄｅｌｅｚｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９８９）。これらの患者は「抗リン脂質症候群」（ＡＰＳ）を有すると記述された。１９９０年代初期、多くの所謂ａＰＬ抗体は直接リン脂質を認識するのではなく、リン脂質に対して親和性を持つ血清タンパク質に結合することが明らかになった（Ｇａｌｌｉ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０；ＭｃＮｅｉｌ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０）。従って、陰イオン性リン脂質と相互作用を持つことが知られる、一連の血清タンパク質について、３Ｇ４との反応性の有無に関してスクリーニングした。
【１０３８】
β２ＧＰＩについては、ヒトのβ２ＧＰＩ（ｈβ２ＧＰＩ）をマイクロタイタープレートに塗布し、マウス抗ヒトβ２ＧＰＩ抗体（抗−β２ＧＰＩ）、３Ｇ４、または、無関係な特異性を持つ、コントロールマウスＩｇＧ２ａ（コントロールｍＩｇＧ）と共にインキュベートした。予想通り、抗−ベータ２ＧＰＩは、ｈβ２ＧＰＩに結合したが、一方、コントロールｍＩｇＧは結合しなかった（図１０Ａ）。３Ｇ４も、ｈβ２ＧＰＩ塗布プレートに強力に結合した（図１０Ａ）。
【１０３９】
β２ＧＰＩが、３Ｇ４によって認識される唯一の血清タンパク質であるかどうかを決めるために、精製ｈβ２ＧＰＩおよび１０％ヒト血清を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルの上に走らせ、免疫ブロットのために膜支持体に移した。３Ｇ４は、５０−ｋＤａの精製ｈβ２ＧＰＩ、ヒト血清における同様サイズの単一バンドを検出した。３Ｇ４免疫ブロットは、抗−β２ＧＰＩ抗体によって作製されるブロットと事実上同一であった。これは重要である。コントロールのｍＩｇＧは全くタンパク質を検出しなかった。以上まとめると、これらのデータは、３Ｇ４が血清タンパク質β２ＧＰＩに結合することを示す。
【１０４０】
陰イオン性リン脂質と相互作用を持つことが知られる、他のヒト血清タンパク質についても、３Ｇ４との反応性の有無についてＥＬＩＳＡで調べた。等量の特定タンパク質をマイクロタイタープレートに塗布し、１％ＯＶＡにてブロックし、３Ｇ４の連続希釈液とインキュベートした。プレートを十分に洗浄し、抗体結合を、ペルオキシダーゼ標識二次検出抗体によって検出した。実験は全て陽性、および陰性コントロール抗体を含んでおり、予期した通りに作動した。免疫ブロットおよびＥＬＩＳＡの結果を表１５に示す。この表から、β２ＧＰＩは、３Ｇ４にとっての共同結合因子であると特定される。
【１０４１】
【表１５】
2008528521.tif 000031
４．３Ｇ４は、ドメインＩＩにおいてβ２ＧＰＩに結合する
β２ＧＰＩは、五つのドメインを持つが、その内の第５ドメインが、陰イオン性リン脂質に対する結合に与る。β２ＧＰＩのどのドメインが３Ｇ４抗体によって認識されるかを決めるために、種々のドメイン構造を持つ組み換えヒトβ２ＧＰＩ構築物を作製し、全長のｈβ２ＧＰＩ組み換え体と共に調べた。これらのドメイン構築物は、Ｎ−末端からの連続短縮によって作製したので、各Ｎ−末端ドメインが下記のように順に欠如する。すなわち、全長ｈβ２ＧＰＩ組み換え体は、ドメインＩ−Ｖを含む；ドメインＩを欠失させたｈβ２ＧＰＩはドメインＩＩ−Ｖを含む；ドメインＩおよびＩＩを欠失させたｈβ２ＧＰＩはドメインＩＩＩ−Ｖを含む；ドメインＩ、ＩＩ，およびＩＩＩを欠失させたｈβ２ＧＰＩはドメインＩＶ−Ｖを含む；および、ドメインＩ、ＩＩ、ＩＩＩ、およびＩＶを欠失させたｈβ２ＧＰＩはドメインＶのみを含む。
【１０４２】
等量の全長ｈβ２ＧＰＩおよび、前記各ｈβ２ＧＰＩドメイン構築物をマイクロタイタープレートに塗布し、３Ｇ４の連続希釈とインキュベートした。この実験から、β２ＧＰＩのドメインＩＩを含むｈβ２ＧＰＩ構築物（ドメインＩ−Ｖ、およびドメインＩＩ−Ｖ）のみが３Ｇ４によって検出されることが明らかにされた（図１０Ｂ）。ドメインＩが欠失されても、３Ｇ４は、ドメインＩＩ−Ｖに対し同様にしっかりと結合した（図１０Ｂ）。従って、３Ｇ４は、ドメインＩＩにおいてβ２ＧＰＩに結合する。
【１０４３】
ＡＰＳ患者から単離した病原性抗体に関して知られる情報に徴するならば、３Ｇ４がドメインＩＩにおいてβ２ＧＰＩに結合するというこの所見は重要である。ＡＰＳ患者から単離した、病原性の、抗−β２ＧＰＩ抗体は、一般に、β２ＧＰＩのドメインＩを認識する（ｄｅ  Ｌａａｔ  ｅｔ  ａｌ．，２００５ａ）。ＡＰＳ患者から得られる、ドメインＩＩを認識する抗−β２ＧＰＩ抗体は、多くの場合病原性ではない。各種動物モデルにおいて実施された広範な毒物学的実験においても３Ｇ４関連の毒性が見られていないが、これがその理由を説明するものと考えられる。
【１０４４】
５．ＰＳ露出細胞に対する、３Ｇ４とβ２ＧＰＩの協調結合
β２ＧＰＩ塗布マイクロタイタープレート使用による抗−β２ＧＰＩ抗体結合の特徴解明は、タイプや、場合によってはマイクロタイタープレートのロットにまで依存して観察される不一致のために問題が多かった（ｄｅ  Ｌａａｔ  ｅｔ  ａｌ．，２００４ａ）。さらに生理的な条件下で上記所見を確かめるために、生細胞結合アッセイを開発した。このアッセイは、膜破壊剤であるリゾフォスファチジルコリン（ＬＰＣ）による処理によってＰＳ露出を誘発した後、内皮細胞膜表面に対する抗体の結合を検出し、測定する。
【１０４５】
このアッセイでは、ＡＢＡＥ細胞を、２００μＭ  ＬＰＣの存在または不在下に、ＤＭＥＭ＋１０％ＦＢＳに溶解した３Ｇ４またはコントロールのｍＩｇＧと３０分インキュベートした。次に、細胞を洗浄し、固定し、蛍光マーカーで染色し、細胞表面に対する抗体の結合を視像化した。３Ｇ４またはｍＩｇＧ結合のピクセル面積は、ＭｅｔａＶｕｅソフトウェアを用いて定量した。数値は全て、非ＬＰＣ処理細胞に対する３Ｇ４の結合、これを１に設定、に対する相対値である。
【１０４６】
３Ｇ４が、正常条件下でＡＢＡＥ細胞培養液に添加されても、細胞に対する結合は観察されない。しかしながら、ＡＢＡＥ細胞を、ＬＰＣの存在下に３Ｇ４とインキュベートすると、多数の、３Ｇ４結合点が容易に検出される。ＬＰＣは、一過性の膜の歪みを誘発することが知られるが（Ｋｏｇｕｒｅ  ｅｔ  ａｌ．，２００３）、これが、膜の非対称の喪失、およびＰＳの露出を招くと考えられる。
【１０４７】
定量化によって、３Ｇ４結合面積は、ＬＰＣ処理によって５００倍を超えて増加するが、一方、コントロールのｍＩｇＧの結合は検出されないままであることが示された。同様の結果が前にも得られた。すなわち、Ｈ２Ｏ２によるＰＳ露出の誘発後、３Ｇ４とＰＳ結合性分子であるアネキシンＶとは、内皮細胞に結合した（実施例ＶＩ；実施例ＶＩＩ；さらにＲａｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００５を参照されたい）。
【１０４８】
重要なことであるが、ＬＰＣ処理ＡＢＡＥ細胞は、膜不透過の染料、ヨウ化プロピジウムまたはＤＡＰＩによって染色されなかった。これは、３Ｇ４は、原形質膜の内部小葉ではなく、細胞表面のＰＳに結合することを示す。
【１０４９】
ＰＳ露出内皮細胞に対する３Ｇ４の結合にβ２ＧＰＩが必要かどうかを決めるために、ウシβ２ＧＰＩからの干渉を防ぐために、１０％ＦＢＳではなく１０％ＭＳを含む培養液において生細胞結合アッセイを実施した。上に示したように、３Ｇ４は、ＭＳの存在下ではＰＳに結合しない。さらに、免疫ブロットにおいて、３Ｇ４は、１０％ＭＳにおいて全くタンパク質を検出しなかった。これは、３Ｇ４がマウスβ２ＧＰＩを認識しないことを示す。
【１０５０】
この実験では、ＭＳに存在するマウスＩｇＧの検出によって惹起されるバックグラウンドを防ぐために、ヒトのキメラ３Ｇ４（ｃｈ３Ｇ４）を用いた。ＡＢＡＥ細胞を、１０％ＭＳおよびＬＰＣの存在下にｃｈ３Ｇ４とインキュベートしたが、抗体結合は検出されなかった（図１１）。一方、結合反応に精製ｈβ２ＧＰＩを加えたところ、ｃｈ３Ｇ４の広範な結合が見られた（図１１）。これは、ｃｈ３Ｇ４の結合がｈβ２ＧＰＩに依存することを示す。全ての状況において、ｃｈ３Ｇ４の結合はＬＰＣ処理に依存し、かつ、無関係の特異性を持つコントロールのヒトＩｇＧを用いた場合結合は検出されなかった。
【１０５１】
興味あることに、１０％ＭＳおよびＬＰＣの存在下に、ＡＢＡＥ細胞をｈβ２ＧＰＩとインキュベートし、細胞を十分に洗浄し、次に、ｈβ２ＧＰＩの結合を検出するためにｃｈ３Ｇ４とインキュベートすると、きわめて僅かではあるがｃｈ３Ｇ４結合が検出された（図１１）。この所見は、ｈβ２ＧＰＩは、ｃｈ３Ｇ４の不在下ではＰＳ露出内皮細胞には結合しないことを示し、かつ、β２ＧＰＩは、生理的条件下で陰イオン性リン脂質膜表面に対して低度の親和性を持つとする報告と一致する（Ｗｉｌｌｅｍｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６；Ｂｅｖｅｒｓ  ｅｔ  ａｌ．，２００５）。以上まとめると、これらのデータは、ｃｈ３Ｇ４およびｈβ２ＧＰＩは、ＰＳ露出ＡＢＡＥ細胞に結合するためには同時に存在しなければならないことを示し、これは、ｃｈ３Ｇ４は、陰イオン性リン脂質表面に対するβ２ＧＰＩの親和性を強化することを示唆する。
【１０５２】
６．３Ｇ４の協調結合には、β２ＧＰＩの脂質結合領域が必要である
ＰＳ露出内皮細胞、および他の陰イオン性リン脂質に対するβ２ＧＰＩと３Ｇ４（およびｃｈ３Ｇ４）の協調結合にはβ２ＧＰＩの脂質結合領域が必要であることを確かめるために、「ニック入り」ｈβ２ＧＰＩによる生細胞結合アッセイを行った。ニック入りｈβ２ＧＰＩは、ドメインＶの脂質結合領域内におけるプラスミン介在性切断のために、ＰＳおよび他の陰イオン性リン脂質に結合することができない（Ｈｕｎｔ  ｅｔ  ａｌ．，  １９９３；  Ｈｕｎｔ  ａｎｄ  Ｋｒｉｌｉｓ，  １９９４）。
【１０５３】
ＡＢＡＥ細胞を、ＬＰＣ無添加の下に、ｃｈ３Ｇ４、およびｈβ２ＧＰＩまたはニック入りｈβ２ＧＰＩとインキュベートすると、ｃｈ３Ｇ４結合は検出されない（図１２Ａ）。ＬＰＣの存在下では、ｈβ２ＧＰＩは、ＰＳ露出ＡＢＡＥ細胞に対するｃｈ３Ｇ４の結合を仲介することができる（図１２Ａ）。この生細胞アッセイで結合が見られなかったのは、ｃｈ３Ｇ４がニック入りｈβ２ＧＰＩに結合できなかったためではない。なぜなら、ｃｈ３Ｇ４は、ニック入りｈβ２ＧＰＩにも、ｈβ２ＧＰＩにも、等量のタンパク質がマイクロタイタープレートに塗布されている場合、結合するからである（図１２Ｂ）。これらの所見は、ｃｈ３Ｇ４／ｈβ２ＧＰＩ複合体は、ＬＰＣ処理後、ｈβ２ＧＰＩドメインＶの脂質結合領域を通じて、ＡＢＡＥ細胞上に露出したＰＳおよび他の陰イオン性リン脂質を検出することを示す。
【１０５４】
７．β２ＧＰＩの協調結合には、抗体の２価性は必要である。
【１０５５】
前述のデータから、３Ｇ４は、陰イオン性リン脂質に対するβ２ＧＰＩの親和性を強調することによって、ＰＳおよび陰イオン性リン脂質を検出することが示唆される。興味あることに、多くのＡＰＳ患者から単離された抗β２ＧＰＩ抗体も、陰イオン性リン脂質表面に対するβ２ＧＰＩの親和性を増すことが知られている（Ｂｅｖｅｒｓ  ｅｔ  ａｌ．，２００４）。さらに、この現象は、２価の、抗体−β２ＧＰＩ複合体の形成に依存する。
【１０５６】
ＰＳおよび陰イオン性リン脂質に対する３Ｇ４／β２ＧＰＩ複合体の結合に、２価性が必要なのかどうかを確定するために、ＬＰＣ−処理ＡＢＡＥ細胞を、精製ｈβ２ＧＰＩ、および種々の量のｃｈ３Ｇ４とインキュベートした。ｃｈ３Ｇ４結合面積は、濃度依存的に増加し、抗体対β２ＧＰＩ比が２：１の時にピークに達する（図１３）。ｃｈ３Ｇ４の濃度がそれ以上増すと、結合の濃度依存性低下が得られた。ｃｈ３Ｇ４濃度と、ＰＳ露出内皮細胞に対する結合との間に見られるこのベル型関係から、膜表面における、ｃｈ３Ｇ４／β２ＧＰＩの２価の複合体の形成が示唆される。抗体濃度がきわめて高いところでは、１価の複合体と２価の複合体の間の競合によって、ＬＰＣ−処理ＡＢＡＥ細胞に結合するｃｈ３Ｇ４／β２ＧＰＩ複合体の量に減少が生じる。
【１０５７】
ＰＳ露出内皮細胞に対する結合に２価性が必要なのかどうかをさらに調べるため、３Ｇ４  Ｆ（ａｂ’）２および３Ｇ４  Ｆａｂ’モノマーを作製し、天然３Ｇ４による生細胞結合アッセイに用いた。予期した通り、天然３Ｇ４は、ＬＰＣ−処理ＡＢＡＥ細胞に結合したが、未処理細胞には結合しなかった（図１４Ａ）。当量濃度の３Ｇ４  Ｆ（ａｂ’）２も、ＬＰＣ−処理ＡＢＡＥ細胞には結合したが、３Ｇ４  Ｆａｂ’の結合はほとんで検出されなかった（図１４Ａ）。ＡＢＡＥ細胞において、３Ｇ４  Ｆａｂ’の結合は、マイクロタイタープレートに塗布されたβ２ＧＰＩに結合する濃度よりも１０００倍高い２μＭの濃度でも検出されなかった（図１４Ｂ）。
【１０５８】
さらに、３Ｇ４  Ｆａｂ’は、ＬＰＣ−処理ＡＢＡＥ細胞に対するｃｈ３Ｇ４／β２ＧＰＩ結合を濃度依存的に抑制したが（図１４Ｃ）、一方、無関係な特異性を持つコントロールＦａｂ’は抑制しなかった。３Ｇ４  Ｆａｂ’がｃｈ３Ｇ４結合を抑制できるということは、３Ｇ４  Ｆａｂ’がβ２ＧＰＩに結合が可能であること、および、３Ｇ４  Ｆａｂ’／β２ＧＰＩのモノマー複合体が、ＰＳ露出内皮細胞に結合することができないことを裏付ける。これらのデータは、陰イオン性リン脂質表面に対する結合には、３Ｇ４／β２ＧＰＩの２価の複合体が必要であるという仮設を支持する。
【１０５９】
図１０Ｂに示すように、３Ｇ４は、ドメインＩＩにおいてβ２ＧＰＩに結合し、図１２Ａおよび１２Ｂに示すように、３Ｇ４（およびｃｈ３Ｇ４）およびβ２ＧＰＩが、内皮細胞の上に露出したＰＳに対し協調結合するためには、β２ＧＰＩドメインＶの脂質結合領域が必要とされる。さらに、ここに示されたように、露出ＰＳに対する３Ｇ４（およびｃｈ３Ｇ４）およびβ２ＧＰＩの協調結合のためには抗体の２価性が必要である。従って、本発明人達は、膜の外面、例えば、活性化内皮細胞、腫瘍血管内皮細胞、および腫瘍細胞の外、ウイルス感染細胞上に露出されるＰＳに対する、抗体とβ２ＧＰＩの協調結合のモデルを提示する（図１５）。
【１０６０】
実施例ＸＸＸＩ
Ｆｃ−β２ＧＰＩの調製と特徴解明
本実施例は、Ｆｃ−β２ＧＰＩ構築物の調製および特徴解明に関する。この構築物では、マウスＩｇＧ２ａのＦｃ領域が、完全長のマウスのβ２ＧＰＩ（ドメインＩ−Ｖ）に結合されて、マウスＦｃ−β２ＧＰＩ、すなわちＦｃ−ｍβ２ＧＰＩを生成する。このマウスＩｇＧ２ａ  Ｆｃは、二量体形成ドメイン、およびエフェクター機能付与ドメインとして用いられる。得られたＦｃ−β２ＧＰＩの二量体構築物は、いずれもＰＳを露出させる、腫瘍血管およびウイルス感染細胞に対する標的輸送を含む、様々な用途を持つ。Ｆｃ領域を用いる利点は、Ｆｃ−β２ＧＰＩ構築物は、宿主の免疫システムによって攻撃の対象とされる標的細胞をマークすることができることである。
【１０６１】
Ａ．調製
各種Ｆｃ−β２ＧＰＩ構築物が設計されてきたけれども、本実施例の、例示のＦｃ−β２ＧＰＩ（Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩ）構築物は、Ｎ−末端としてマウスのＦｃ領域を用い、Ｃ−末端としてマウスのβ２ＧＰＩのドメインＩ−Ｖを用いる。このようにして、Ｆｃ−β２ＧＰＩは、２個の、全長マウスβ２ＧＰＩタンパク質のＮ−末端に結合した、マウスＩｇＧ２ａ由来の、ジスルフィド結合ヒンジ領域、および、Ｆｃ領域の２個のＣＨ２およびＣＨ３ドメインを含む（図１６）。
【１０６２】
発現プラスミドを調製するために、３Ｇ４軽鎖のシグナル配列を、２ａＧ４構築物から増幅した。ヒンジ、ＣＨ２およびＣＨ３ドメインを含むマウスＩｇＧ２ａ  Ｆｃ領域を、２ａＧ４構築物からＰＣＲにて増幅し、かつ、マウスβ２ＧＰＩを、購入したマウス肝臓ＲＮＡからＲＴ−ＰＣＲにて増幅した。得られたＦｃ−ｍβ２ＧＰＩタンパク質配列を図１８Ａに示す。ｍＩｇＧκシグナル配列（配列番号１８）は切断され、成熟Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩを配列番号１９（図１８Ａ）として残す。
【１０６３】
プラスミドマップを図１７に示すが、プラスミドの全体配列は、配列番号２５として提示される。Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩ構築物は、ＦｕＧＥＮＥ６試薬によってＣＨＯ細胞の中にトランスフェクトされる。２日後、上清を採取し、いくつかのアッセイに使用した。
【１０６４】
対応するヒトのＦｃ−β２ＧＰＩ（Ｆｃ−ｈβ２ＧＰＩ）も、図１８Ｂの配列情報を用いて調製することが可能である。該配列情報は、ヒトのＩｇＧ１重鎖定常域の、例示のアミノ酸配列（アクセス番号Ｐ０１８５７；配列番号２１）、および、ドメインＩ、ＩＩ、ＩＩＩ、ＩＶ、およびＶの場所を含む、ヒトのβ２ＧＰＩの全体配列（アクセス番号１Ｃ１ＺＡ；配列番号２２）を提供する。ヒトのヒンジ、ＣＨ２およびＣＨ３ドメインは、配列番号２３のＦｃ−ｈβ２ＧＰＩを実現するために、ヒトのβ２ＧＰＩのドメインＩ、ＩＩ、ＩＩＩ、ＩＶ、およびＶに結合されてもよい。
【１０６５】
Ｂ．Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩは二量体である。
【１０６６】
選ばれたシステムは、Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩを発現するのに有効であった。図１９は、二つの異なるＦｃ−ｍβ２ＧＰＩクローン（＃８および＃１８）による捕捉アッセイの結果を示す。該アッセイにおいて、Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩ細胞培養上清は、抗マウスＩｇＧに結合する。
【１０６７】
Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩタンパク質のサンプルについてゲル電気泳動を行った。非還元ゲル条件下では、二量体について予想されたサイズのバンドが検出された（ゲルにおける見かけのＭｗは１５０ｋＤａ）。還元条件下では、より小さいサイズの複数のバンドが検出された（ゲルにおける見かけのＭｗは〜９０−１００ｋＤａ）。
【１０６８】
Ｃ．Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩは、ＰＳ、およびＰＳ露出細胞に結合する
Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩは、ＰＳ塗布プレートの上でＰＳに結合が可能であった。ＰＳをコートさせたマイクロタイタープレートを用い、Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩ細胞培養上清（＃８および＃１８）が、濃度依存的にＰＳに結合することが確かめられた（図２０）。
【１０６９】
３Ｇ４抗体、およびキメラ版（ｃｈ３Ｇ４、またはバビツキシマブ）に共通することであるが、Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩ結合はＰＳに限られたことではなく、他の陰イオン性リン脂質に拡張される。リン脂質結合アッセイ（１０％ＦＢＳに溶解した）の結果から、Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩ細胞培養体の上清は、陰イオン性リン脂質、ＰＳ、ＰＡ、ＰＩ、およびＰＧには結合するが、中性脂質、ＰＣ、およびＳＭには結合しないことが示された。
【１０７０】
Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩはまた細胞表面に露出したＰＳにも結合することが可能である。アポトーシスを経過する細胞は、外表面にＰＳを露出する。アポトーシスを経過するＡＢＡＥ細胞を用いた実験では、Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩが、アポトーシス細胞を染めることが見出された（図２２Ａ、図２２Ｂ、および図２２Ｃ）。矢印はアポトーシス細胞をマークする。アポトーシス細胞は丸く、濃密な核を持つ。
【１０７１】
細胞はまた、アポトーシスを経過せずとも表面にＰＳを提示するように誘発することが可能である。ＡＢＡＥ細胞をＬＰＣの存在下にインキュベートすると、一過性の膜の歪みが生じ、これが、膜の非対称の喪失、およびＰＳの露出を招く。ＬＰＣ−処理ＡＢＡＥ細胞を用いると、Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩはまた、細胞表面に露出したＰＳに結合することが、緑色に染まった小さいピンポイントとして認められた（図２３Ａおよび図２３Ｂ）。ピンポイント染色は、非ＬＰＣ処理細胞の上、またはコントロール上清を用いた場合は見られなかった。
【１０７２】
実施例ＸＸＸＩＩ
β２ＧＰＩ二量体は、ＰＳ露出内皮細胞に結合する
実施例ＸＸＸに記載される結果に従い、さらに、実施例ＸＸＸＩに記載される情報の正当性を跡づけるために、本実施例は、β２ＧＰＩの二量体は、３Ｇ４抗体の不在下でもＰＳ露出内皮細胞に結合することを示すデータを提供する。
【１０７３】
これらの実験では、β２ＧＰＩの人工的二量体を用いる。この人工的二量体は、因子ＸＩのａｐｐｌｅ  ４ダイマー化ドメインのＣ−末端にｈβ２ＧＰＩを融合することによって作製した。このβ２ＧＰＩは、本出願で前述したような、Ｆｃ領域に結合されることによって得られる利点を持たない。にも拘わらず、この二量体がＰＳ露出細胞に対して結合することは、ＰＳ−陽性細胞に対する結合のためにＦｃ−β２ＧＰＩの二量体を用いることを正当化する。
【１０７４】
ＡＢＡＥ細胞は、ＰＳ露出を誘発するためにＬＰＣで処理し、精製ｈβ２ＧＰＩ、ｈβ２ＧＰＩ−二量体、または、破壊された脂質結合ドメインを含む、ｈβ２ＧＰＩ−変異二量体とインキュベートした。予期した通り、ＬＰＣ−処理ＡＢＡＥ細胞に対するｈβ２ＧＰＩモノマーの結合は無視できるレベルであった（図２４Ａ）。一方、ｈβ２ＧＰＩ−二量体は、ＬＰＣ−処理細胞に対しては強力に結合したが（図２４Ｂ）、非ＬＰＣ処理細胞には結合しなかった（図２４Ｄ）。ｈβ２ＧＰＩ−二量体の結合はまた、機能的な脂質結合ドメインに依存することが判明した（図２４Ｃ）。これらのデータは、β２ＧＰＩの２価の構築物は、ＰＳ露出細胞に結合することを示す。
【１０７５】
本発明のＦｃ−β２ＧＰＩ二量体はまた、ＰＳ露出細胞、例えば、腫瘍血管細胞、腫瘍細胞、ウイルス感染細胞、およびウイルス粒子に結合する。しかしながら、Ｆｃ−β２ＧＰＩ構築物は、Ｆｃ領域が、宿主のエフェクター機能を増進し、病気治療を強化するというさらに別の利点を持つ。ＰＳ−陽性標的細胞に治療主体を送達するために、さらに別の薬剤、例えば、毒素、サイトカイン、放射性同位元素、薬剤等を、Ｆｃ−β２ＧＰＩ構築物に結合させてもよい。
【１０７６】
本明細書に開示され、請求される組成物および方法は全て、本開示に徴すれば面倒な実験を要することなく作製および実行することが可能である。本発明の組成物および方法は、好ましい実施態様という観点で記載されているけれども、組成物および方法に対し、本明細書に記載される方法の工程において、または工程の順序において、本発明の概念、精神、および範囲から逸脱することなく変更を加えることが可能であることは当業者には明白であろう。さらに具体的に言うと、化学的にも生理的にも関連する、ある介在因子を、本明細書に記載される介在因子の代わりに用い、しかも他方では、同じまたは類似の結果を実現することが可能であることは明白であろう。当業者には明白な、このような代替物および改変は全て、付属の特許請求項によって定義される、本発明の精神、範囲、および概念の中に含まれるものとする。
【１０７７】
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【１０９７】
【数２０】
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【１０９８】
【数２１】
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【１０９９】
【数２２】
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【１１００】
【数２３】
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【１１０１】
【数２４】
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【１１０２】
【数２５】
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【１１０３】
【数２６】
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【図面の簡単な説明】
【１１０４】
下記の図面は、本明細書の一部を形成し、本発明のある局面をさらに具体的に説明するために含まれる。本発明は、本明細書に記載される特定の実施態様の説明と組み合わせて、一つ以上の、これらの図面を参照することによってさらによく理解されよう。本特許の米国ファイルは、カラーでプリントされた少なくとも１枚の図面を含む。カラー図面（単複）を含む本特許のコピーは、請求および必要手数料を支払うことによって特許および商標局から入手することが可能である。
【図１】図１。３Ｇ４抗体で処置したマウスにおいて白血球が腫瘍に浸潤する。ＭＤＡ−ＭＢ−２３１同所腫瘍を抱えるヌードマウスを、１００μｇ／用量の３Ｇ４抗体、または、同じ用量の、異性体適合コントロール抗体で週３回処置した。処置の終了時に、動物を還流し、腫瘍を急速凍結し、切断し、染色し、白血球を検出した。図には、腫瘍に浸潤する白血球が示される。
【図２Ａ】図２Ａ、図２Ｂ、図２Ｃ、および図２Ｄ。３Ｇ４抗体および２ａＧ４抗体の、相補性決定域（ＣＤＲ）のＤＮＡおよびアミノ酸配列。３Ｇ４抗体の重鎖のＤＮＡおよびアミノ酸配列（図２Ａ；配列番号１、および配列番号２）、および、該抗体の軽鎖のＤＮＡおよびアミノ酸配列（図２Ｂ；配列番号３、および配列番号４）、および、ＤＮＡ配列中には制限部位が示される。リーダー配列は、成熟配列と区別される。成熟配列の開始位置は、図２Ａおよび図２Ｂのそれぞれにおいて第１の矢印で示される。各可変配列を、ヒトの定常域に植え継ぐ例示の手段が記載される。すなわち、それぞれのヒトの定常域配列（配列番号７および配列番号８）の最初の部分が、図２Ａおよび図２Ｂのそれぞれにおいて第２の矢印で示される。ＩｇＧ２ａ重鎖および３Ｇ４軽鎖（Ｃκ）のアミノ酸配列は、それぞれ、図２Ｃおよび図２Ｄに示す配列番号１０および配列番号１１によって表される。
【図２Ｂ】図２Ａ、図２Ｂ、図２Ｃ、および図２Ｄ。３Ｇ４抗体および２ａＧ４抗体の、相補性決定域（ＣＤＲ）のＤＮＡおよびアミノ酸配列。３Ｇ４抗体の重鎖のＤＮＡおよびアミノ酸配列（図２Ａ；配列番号１、および配列番号２）、および、該抗体の軽鎖のＤＮＡおよびアミノ酸配列（図２Ｂ；配列番号３、および配列番号４）、および、ＤＮＡ配列中には制限部位が示される。リーダー配列は、成熟配列と区別される。成熟配列の開始位置は、図２Ａおよび図２Ｂのそれぞれにおいて第１の矢印で示される。各可変配列を、ヒトの定常域に植え継ぐ例示の手段が記載される。すなわち、それぞれのヒトの定常域配列（配列番号７および配列番号８）の最初の部分が、図２Ａおよび図２Ｂのそれぞれにおいて第２の矢印で示される。ＩｇＧ２ａ重鎖および３Ｇ４軽鎖（Ｃκ）のアミノ酸配列は、それぞれ、図２Ｃおよび図２Ｄに示す配列番号１０および配列番号１１によって表される。
【図２Ｃ】図２Ａ、図２Ｂ、図２Ｃ、および図２Ｄ。３Ｇ４抗体および２ａＧ４抗体の、相補性決定域（ＣＤＲ）のＤＮＡおよびアミノ酸配列。３Ｇ４抗体の重鎖のＤＮＡおよびアミノ酸配列（図２Ａ；配列番号１、および配列番号２）、および、該抗体の軽鎖のＤＮＡおよびアミノ酸配列（図２Ｂ；配列番号３、および配列番号４）、および、ＤＮＡ配列中には制限部位が示される。リーダー配列は、成熟配列と区別される。成熟配列の開始位置は、図２Ａおよび図２Ｂのそれぞれにおいて第１の矢印で示される。各可変配列を、ヒトの定常域に植え継ぐ例示の手段が記載される。すなわち、それぞれのヒトの定常域配列（配列番号７および配列番号８）の最初の部分が、図２Ａおよび図２Ｂのそれぞれにおいて第２の矢印で示される。ＩｇＧ２ａ重鎖および３Ｇ４軽鎖（Ｃκ）のアミノ酸配列は、それぞれ、図２Ｃおよび図２Ｄに示す配列番号１０および配列番号１１によって表される。
【図２Ｄ】図２Ａ、図２Ｂ、図２Ｃ、および図２Ｄ。３Ｇ４抗体および２ａＧ４抗体の、相補性決定域（ＣＤＲ）のＤＮＡおよびアミノ酸配列。３Ｇ４抗体の重鎖のＤＮＡおよびアミノ酸配列（図２Ａ；配列番号１、および配列番号２）、および、該抗体の軽鎖のＤＮＡおよびアミノ酸配列（図２Ｂ；配列番号３、および配列番号４）、および、ＤＮＡ配列中には制限部位が示される。リーダー配列は、成熟配列と区別される。成熟配列の開始位置は、図２Ａおよび図２Ｂのそれぞれにおいて第１の矢印で示される。各可変配列を、ヒトの定常域に植え継ぐ例示の手段が記載される。すなわち、それぞれのヒトの定常域配列（配列番号７および配列番号８）の最初の部分が、図２Ａおよび図２Ｂのそれぞれにおいて第２の矢印で示される。ＩｇＧ２ａ重鎖および３Ｇ４軽鎖（Ｃκ）のアミノ酸配列は、それぞれ、図２Ｃおよび図２Ｄに示す配列番号１０および配列番号１１によって表される。
【図３】図３。競合リン脂質リポソームによる、不動化ＰＳに対する３Ｇ４抗体結合の抑制。リン脂質塗布マイクロタイタープレートを、１０％ウシ血清に溶解した０．０１６から３３ｎＭの濃度範囲を持つ３Ｇ４で処理した。結合抗体を、ヤギ抗マウスＩｇＧ−ＨＲＰを用いて検出した。各種リン脂質から調製したリポソームによる競合アッセイは、陰イオン性リン脂質が、３Ｇ４（６．７ｎＭ）のＰＳに対する結合に競合可能であることを示す。
【図４】図４。３Ｇ４のリン脂質に対する結合。リン脂質塗布マイクロタイタープレートを、１０％ウシ血清に溶解した０．０１６から３３ｎＭの濃度範囲を持つ３Ｇ４で処理した。結合抗体を、ヤギ抗マウスＩｇＧ−ＨＲＰを用いて検出した。３Ｇ４は、ＰＳ、ＰＩ、ＰＡ、およびＣＬを含む陰イオン性リン脂質には特異的に結合するが、ＰＥ、ＰＣ、およびＳＭを含む中性脂質には結合しない。
【図５】図５Ａ、図５Ｂ、図５Ｃ、図５Ｄ、および図５Ｅ。未処置のＨＵＶＥＣ、およびＭＤＡ−ＭＢ−４３５細胞に対する３Ｇ４結合の、Ｈ２Ｏ２処理による誘発を、ＦＡＣＳ（図５Ａ）、および免疫組織化学（図５Ｂ、図５Ｃ、図５Ｄ、および図５Ｅ）で示した。図５Ａ、ＨＵＶＥＣまたはＭＤＡ−ＭＢ−４３５細胞は、Ｈ２Ｏ２で３７℃で１時間処理した。細胞は洗浄し、トリプシンで培養皿から遊離した。細胞は、３Ｇ４（実線）、またはコントロールマウスＩｇＧ３（ＢＢＢ３）（点線）で染色し、ＦＡＣＳによるサイトフルオロメトリーで分析した。装置は、未処置細胞（ヨウ化プロピジウム陰性）に対しゲート調整した。図５Ａ、上段左、ＨＵＶＥＣ；上段右、Ｈ２Ｏ２処理ＨＵＶＥＣ；下段左、ＭＤＡ−ＭＢ−４３５；下段右、Ｈ２Ｏ２処理ＭＤＡ−ＭＢ−４３５。図５Ｂ、図５Ｃ、図５Ｄ、および図５Ｅ。未処置、非透過性増強Ｈ２Ｏ２処理ＨＵＶＥＣに対する３Ｇ４結合の形態を、接着細胞を上述のようにＨ２Ｏ２処理し、細胞を洗浄し、それを３Ｇ４またはコントロールのマウスＩｇＧ３、ＢＢＧ３で染色し、次いでＦＩＴＣ標識ヤギ抗マウスＩｇＧ抗体（緑色）で染色して求めた。次に、細胞を、パラフォルムアルデヒドにて固定し、透過性増強した。細胞骨格を、テキサス赤標識ファロイジン（赤色）で染色し、核をＤＡＰＩ（青色）でカウンター染色した。３Ｇ４は、原形質膜の不連続領域に結合するので、膜の小胞体の外観を持つ。図５Ｂは、ＢＢＧ３で染めたＨＵＶＥＣ；図５Ｃは、３Ｇ４で染めたＨＵＶＥＣ；図５Ｄは、ＢＢＧ３で染めたＭＤＡ−ＭＢ−４３５細胞；および、図５Ｅは、３Ｇ４で染めたＭＤＡ−ＭＢ−４３５細胞である。Ｈ２Ｏ２で処理しなかった細胞は３Ｇ４によって染色されなかった。スケールバーは５０μｍを表す。
【図６】図６Ａ、図６Ｂ、図６Ｃ、および図６Ｄ。ホスファチジルセリンおよび陰イオン性リン脂質に対する抗体によって、単球の腫瘍血管に対する結合、および、マクロファージの腫瘍に対する浸潤がもたらされる。ヒトの同所性乳癌を抱えるＳＣＩＤマウスに、１００μｇのコントロール抗体ＢＢＧ３（図６Ａおよび図６Ｃ）または３Ｇ４抗体（図６Ｂおよび図６Ｄ）を１週間３回２週間腹腔投与した。腫瘍は、ＭＤＡ−ＭＢ−４３５（図６Ａおよび図６Ｂ）、またはＭＤＡ−ＭＢ−２３１（図６Ｃおよび図６Ｄ）であった。腫瘍の凍結切片を調製した。マウスのマクロファージと単球は、ラット抗マウスＭ１／７０（Ｍａｃ−１）抗体の投与、次いでＦＩＴＣ標識抗ラットＩｇＧ（緑色）によって検出した。抗Ｆ４／８０および抗ＦｃγＲ抗体は、抗Ｍ１／７０抗体によるものと一致する染色パターンを示した。血管は、ハムスター抗マウスＣＤ３１、次いでテキサス赤標識抗ハムスターＩｇＧ（赤色）の投与によって検出した。核は、ＤＡＰＩによって視像化した（青色）。図６Ａは、コントロールＢＢＧ３で処理したマウスの腫瘍で、マクロファージによる散発的な浸潤を示す。図６Ｂは、３Ｇ４によって処理されたマウスの腫瘍で、多量なマクロファージの浸潤を示す。図６Ｃは、ＢＢＧ３で処理したマウスからのコントロール腫瘍であり、血管に結合する単球が見られないことを示す。図６Ｄは、３Ｇ４で処理されたマウスの腫瘍であり、腫瘍血管内皮の腔面に結合する単球を示す（矢印）。図６Ａおよび図６Ｂのスケールバーは５０μｍを表し、図６Ｃおよび６Ｄのものは１０μｍを表す。
【図７】図７。食作用の休止相と炎症相。３Ｇ４抗体による腫瘍治療実験から、３Ｇ４のような抗体が、ＰＳ発現腫瘍内皮細胞からのＰＳシグナル伝達を阻止するという仮設が提出される。正常時には、腫瘍内皮細胞のＰＳが、腫瘍血管および腫瘍細胞に結合するマクロファージによる炎症反応を抑えると考えられる（休止相）。３Ｇ４のような抗体が存在すると、抗体がＰＳに結合するので、マクロファージのＰＳレセプターは結合相手を持たない。次に、マクロファージは、ＴＮＦ−α、ＩＬ−１、およびその他の炎症性サイトカインを分泌し、これらのサイトカインが腫瘍内皮を直接損傷し、さらに新たな宿主細胞を腫瘍部位に招集する（炎症相）。
【図８】図８。３Ｇ４抗体のＦ（ａｂ’）２断片は、抗腫瘍剤として３Ｇ４と同程度に有効である。マウスに１日目で腫瘍を接種し、９日目に３Ｇ４抗体、３Ｇ４抗体のＦ（ａｂ’）２断片、または異性形適合コントロール抗体（ＢＢＧ３）で処置した。コントロール動物における腫瘍は急速に増殖を続けた（黒四角）が、一方、３Ｇ４抗体（黒丸）、または、３Ｇ４抗体のＦ（ａｂ’）２断片（黒下向き三角）で処置したマウスでは、腫瘍増殖は有意に遅くなり、かつ、Ｆ（ａｂ’）２断片は、３Ｇ４と少なくとも同程度に有効であった。
【図９】図９Ａおよび図９Ｂ。ＰＳ塗布マイクロタイタープレートに対する３Ｇ４の結合は血清依存性である。図９Ａ、３Ｇ４抗体は、ウシ血清含有媒体（ＳＣＭ）または血清無添加媒体（ＳＦＭ）の中で育成した細胞から精製した。マイクロタイタープレートにＰＳを塗布し、１％ＯＶＡでブロックした。３Ｇ４の連続希釈を、１０％ウシ胎児血清（ＦＢＳ）、または、鶏卵白身から得た１％オボアルブミン（ＯＶＡ）で調製した。図９Ａ、マイクロタイタープレートにＰＳを塗布し、１％ＯＶＡにてブロックした。３Ｇ４  ＳＦＭの連続希釈を、図示の動物種、マウス、ラット、ヒト、およびウシの１０％血清において調製した。
【図１０Ａ】図１０Ａおよび図１０Ｂ。３Ｇ４は、血漿タンパク質β２ＧＰＩに結合し（図１０Ａ）、β２ＧＰＩドメインＩＩにおいて結合する（図１０Ｂ）。図１０Ａ、マイクロタイタープレートに、ヒト血漿から精製したヒトβ２ＧＰＩ（ｈβ２ＧＰＩ）を塗布し、１％ＯＶＡにてブロックした。市販のマウス抗ヒトβ２ＧＰＩ（抗−β２ＧＰＩ、または“α−β２ＧＰＩ”）、３Ｇ４  ＳＦＭ、およびコントロールマウスＩｇＧ（ｍＩｇＧ）の連続希釈を１％ＯＶＡにて調製した。図１０Ｂ、マイクロタイタープレートのウェルに、全長の、組み換えｈβ２ＧＰＩ（ドメインＩ−Ｖ）、または、ドメインＩ欠如（ドメインＩＩ−Ｖ）、ドメインＩおよびＩＩ欠如（ＩＩＩ−Ｖ）、ドメインＩ−ＩＩＩ欠如（ＩＶ−Ｖ）、またはドメインＩ−ＩＶ欠如（Ｖ）ｈβ２ＧＰＩを塗布した。プレートは１％ＯＶＡでブロックし、３Ｇ４  ＳＦＭの連続希釈は１％ＯＶＡで調製した。
【図１０Ｂ】図１０Ａおよび図１０Ｂ。３Ｇ４は、血漿タンパク質β２ＧＰＩに結合し（図１０Ａ）、β２ＧＰＩドメインＩＩにおいて結合する（図１０Ｂ）。図１０Ａ、マイクロタイタープレートに、ヒト血漿から精製したヒトβ２ＧＰＩ（ｈβ２ＧＰＩ）を塗布し、１％ＯＶＡにてブロックした。市販のマウス抗ヒトβ２ＧＰＩ（抗−β２ＧＰＩ、または“α−β２ＧＰＩ”）、３Ｇ４  ＳＦＭ、およびコントロールマウスＩｇＧ（ｍＩｇＧ）の連続希釈を１％ＯＶＡにて調製した。図１０Ｂ、マイクロタイタープレートのウェルに、全長の、組み換えｈβ２ＧＰＩ（ドメインＩ−Ｖ）、または、ドメインＩ欠如（ドメインＩＩ−Ｖ）、ドメインＩおよびＩＩ欠如（ＩＩＩ−Ｖ）、ドメインＩ−ＩＩＩ欠如（ＩＶ−Ｖ）、またはドメインＩ−ＩＶ欠如（Ｖ）ｈβ２ＧＰＩを塗布した。プレートは１％ＯＶＡでブロックし、３Ｇ４  ＳＦＭの連続希釈は１％ＯＶＡで調製した。
【図１１】図１１。露出ＰＳを持つ内皮細胞（ＥＣ）に結合するには、ｃｈ３Ｇ４およびβ２ＧＰＩが同時に存在しなければならない。ＡＢＡＥ細胞を、ＤＭＥＭ＋１０％正常マウス血清（ＭＳ）、プラス、（ｉ）精製ｈβ２ＧＰＩ、（ｉｉ）ｃｈ３Ｇ４、または（ｉｉｉ）ｃｈ３Ｇ４＋ｈβ２ＧＰＩ同時、に溶解した２００μＭリゾフォスファチジルコリン（ＬＰＣ）と３０分インキュベートした。次に、細胞を洗浄し、それぞれ、（ｉ）ｃｈ３Ｇ４、（ｉｉ）ｈβ２ＧＰＩ、または（ｉｉｉ）ＤＭＥＭ＋１０％ＭＳと３０分インキュベートした。最後に細胞を洗浄し、固定し、ｃｈ３Ｇ４の結合を検出するための蛍光マーカーで染色した。ｃｈ３Ｇ４およびｈβ２ＧＰＩは２μｇ／ｍｌの濃度で用いた。ｃｈ３Ｇ４結合のピクセル面積は、ＭｅｔａＶｕｅソフトウェアを用いて定量化した。数値は、条件（ｉ）の下におけるｃｈ３Ｇ４の結合、これを１に設定、に対する相対値である。
【図１２】図１２Ａおよび図１２Ｂ。露出ＰＳを持つ内皮細胞に対するｃｈ３Ｇ４の結合を仲介するためには、β２ＧＰＩの脂質結合領域が必要である。図１２Ａ、ＡＢＡＥ細胞を、ｃｈ３Ｇ４、プラス、（ｉ）β２ＧＰＩの非脂質結合形（ニック入りｈβ２ＧＰＩ）、または（ｉｉ）無傷のｈβ２ＧＰＩとインキュベートした。インキュベーションは、ＤＭＥＭ＋１０％ＭＳに溶解した２００μＭ  ＬＰＣの存在下、または不在下に実行した。次に、細胞を洗浄し、固定し、ｃｈ３Ｇ４を検出するために蛍光マーカーで染色した。ｃｈ３Ｇ４、ｈβ２ＧＰＩ、およびニック入りｈβ２ＧＰＩは２μｇ／ｍｌの濃度で用いた。ｃｈ３Ｇ４結合のピクセル面積は、ＭｅｔａＶｕｅソフトウェアを用いて定量化した。数値は、条件（ｉ）ＬＰＣ無しの下におけるｃｈ３Ｇ４の結合、これを１に設定、に対する相対値である。図１２Ｂ、マイクロタイタープレートのウェルに、ｈβ２ＧＰＩ、またはニック入りｈβ２ＧＰＩを塗布し、１％ＯＶＡでブロックした。ｃｈ３Ｇ４またはコントロールのｍＩｇＧの連続希釈を１％ＯＶＡで調製した。
【図１３】図１３。過剰なｃｈ３Ｇ４は、露出ＰＳを持つ内皮細胞に対するｃｈ３Ｇ４／β２ＧＰＩ複合体の結合を抑制する。ＡＢＡＥ細胞を、ＤＭＥＭ＋１０％ＭＳに溶解した、２００μＭ  ＬＰＣ、４０ｎＭ精製ｈβ２ＧＰＩ、および１力価のｃｈ３Ｇ４と３０分インキュベートした。次に、細胞を洗浄し、固定し、ｃｈ３Ｇ４を検出するために蛍光マーカーで染色した。ｃｈ３Ｇ４結合のピクセル面積は、ＭｅｔａＶｕｅソフトウェアを用いて定量化した。数値は、３２０ｐＭ  ｃｈ３Ｇ４の結合、これを１に設定、に対する相対値である。
【図１４】図１４Ａ、図１４Ｂ、および図１４Ｃ。露出ＰＳを持つ内皮細胞に対するβ２ＧＰＩ介在性結合のためにはｃｈ３Ｇ４の二価性が必要とされる。図１４Ａ、ＡＢＡＥ細胞を、ＤＭＥＭ＋１０％ＦＢＳに溶解した２００μＭ  ＬＰＣの存在下、または不在下に、２０ｎＭの、３Ｇ４、３Ｇ４  Ｆ（ａｂ’）２、または３Ｇ４  Ｆａｂ’モノマーと３０分インキュベートした。次に、細胞を洗浄し、固定し、３Ｇ４または３Ｇ４断片の結合を検出するために蛍光マーカーで染色した。抗体結合のピクセル面積は、ＭｅｔａＶｕｅソフトウェアを用いて定量化した。数値は、ＬＰＣ不在下の３Ｇ４の結合、これを１に設定、に対する相対値である。図１４Ｂ、ＡＢＡＥ細胞を、ＤＭＥＭ＋１０％ＭＳに溶解した２００μＭ  ＬＰＣ、４０ｎＭ精製ｈβ２ＧＰＩ、および１力価の３Ｇ４  Ｆａｂ’モノマーと３０分インキュベートした。次に、細胞を洗浄し、固定し、３Ｇ４  Ｆａｂ’の結合を検出するために蛍光マーカーで染色した。３Ｇ４  Ｆａｂ’結合のピクセル面積は、ＭｅｔａＶｕｅソフトウェアを用いて定量化した。数値は、２ｎＭ  ３Ｇ４  Ｆａｂ’の結合、これを１に設定、に対する相対値である。図１４Ｃ、ＡＢＡＥ細胞を、ＤＭＥＭ＋１０％ＦＢＳに溶解した２００μＭ  ＬＰＣ、４０ｎＭ精製ｈβ２ＧＰＩ、２０ｎＭ  ｃｈ３Ｇ４、および１力価の３Ｇ４  Ｆａｂ’モノマーと３０分インキュベートした。次に、細胞を洗浄し、固定し、ｃｈ３Ｇ４の結合を検出するために蛍光マーカーで染色した。ｃｈ３Ｇ４結合のピクセル面積は、ＭｅｔａＶｕｅソフトウェアを用いて定量化した。数値は、競合する３Ｇ４  Ｆａｂ’不在下のｃｈ３Ｇ４の結合、これを１００に設定、に対する相対値である。
【図１５】図１５。ＰＳ表面に対する、３Ｇ４抗体、および、“バビツキシマブ”と名づけられたヒト・マウスキメラ対応抗体の、β２ＧＰＩ依存性結合の模式図。β２ＧＰＩは、その五つのドメイン（Ｉ、ＩＩ、ＩＩＩ、ＩＶ、およびＶ）を持つところが描かれる。細胞膜上に露出したＰＳを含むＰＳ表面に対する抗体の結合は、β２ＧＰＩのドメインＩＩに対する結合によって仲介される。
【図１６】図１６。例示のＦｃ−β２ＧＰＩ構築物の模式図。この構築物は、抗体の可変域が取り除かれるが、β２ＧＰＩによって置換されていない。むしろ、β２ＧＰＩは、Ｆｃ領域のＣＨ３ドメインのＣ−末端に結合する。図は、２個のマウスβ２ＧＰＩタンパク質に作動可能に結合した、マウスＩｇＧ２ａ由来の、ジスルフィド結合ヒンジ領域、および、Ｆｃ領域のＣＨ２およびＣＨ３の２ドメインを示す。対応するヒト構築物があるとすれば、ヒトのＩｇＧ１由来のＦｃ領域が、２個のヒトのβ２ＧＰＩタンパク質に作動可能に結合されることになろう。ヒトのＩｇＧ３由来のＦｃ領域も、２個のヒトのβ２ＧＰＩタンパク質と共に使用するのに好適と考えられる。図示の、例示のＦｃ−β２ＧＰＩ構築物では、５個のドメイン（Ｉ−Ｖ）全てを持つマウスβ２ＧＰＩが描かれる。しかしながら、β２ＧＰＩのドメインＶの脂質結合領域が維持される限り、必ずしも５個のドメイン全てを持たなくともよく、かつ、そのような５個のドメイン全てを含むことのない、他のマウスまたはヒトの構築物は簡単に調製することが可能であろう。
【図１７】図１７。Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩ構築物のプラスミドマップ。“Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩ”と名づけられた、最初に調製されたＦｃ−β２ＧＰＩ構築物は三つの単位から構成される。すなわち、（１）２ａＧ４構築物からＰＣＲで増幅された３Ｇ４軽鎖のシグナル配列、（２）２ａＧ４構築物からＰＣＲで増幅されたヒンジ、ＣＨ２、ＣＨ３を含むマウスＩｇＧ２ａのＦｃ領域、および、（３）市販のマウス肝臓ＲＮＡからＲＴ−ＰＣＲで増幅したマウスのβ２ＧＰＩである。プラスミドマップを示す。このプラスミドの配列は配列番号２５として提示される。
【図１８Ａ】図１８Ａ。Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩアミノ酸配列。切断されたシグナルペプチド（「ｍＩｇＧκシグナル配列」）ＭＤＭＲＡＰＡＱＩＬＧＦＬＬＬＬＦＰＧＴＲＣＬＲは、配列番号１８で表される。ポジション１は、シグナルペプチドが切断された後の、成熟Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩタンパク質のスタート点を示す。成熟Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩのアミノ酸配列は配列番号１９である。Ｆｃ領域のヒンジ、ＣＨ２、およびＣＨ３ドメインも、マウスβ２ＧＰＩのドメインＩ、ＩＩ、ＩＩＩ，ＩＶ、およびＶと同様に示される。β２ＧＰＩにおいてドメイン内ジスルフィド結合形成に与るＣｙｓ残基は、ゴシック体影付き文字で示す。下線を施したイタリック体で示されるアミノ酸は、陰イオン性リン脂質の認識に与る陽性荷電領域の一部である。二重下線を施したイタリック体で示されるアミノ酸は、脂質膜に対する結合にとって必要な疎水性ループの一部である。陰イオン性リン脂質の認識に与るアミノ酸配列から始まり、脂質膜に結合するのに必要な疎水性ループの一部であるアミノ酸配列で終わる、アミノ酸配列ＫＮＫＥＫＫＣＳＹＴＶＥＡＨＣＲＤＧＴＩＥＩＰＳＣＦＫＥＨＳＳＬＡＦＷＫは、配列番号２０である。
【図１８Ｂ】図１８Ｂ。ヒトのＦｃ−β２ＧＰＩ（Ｆｃ−ｈβ２ＧＰＩ）を調製するための、ヒトの重鎖定常域およびヒトのβ２ＧＰＩのアミノ酸配列。ヒトのＩｇＧ１重鎖定常域（アクセス番号Ｐ０１８５７；配列番号２１）は、ＣＨ１ドメインから始めて提示されるが、このドメインは欠失させてもよい。ヒトのＦｃ−ｈβ２ＧＰＩでは、ヒンジ（ヒンジのスタートは、図１８Ａのポジション１に一致する）、ヒトＣＨ２ドメイン、および、ヒトＣＨ３ドメインで、次いで、図ではドメインＩ、ＩＩ、ＩＩＩ、ＩＶ、およびＶを含むところが示されるヒトのβ２ＧＰＩ（アクセス番号１Ｃ１ＺＡ；配列番号２２）が来る。Ｆｃ−ｈβ２ＧＰＩのアミノ酸配列は配列番号２３である。ヒトのβ２ＧＰＩのドメイン構造は、ドメイン内ジスルフィド結合形成に与るＣｙｓ残基の場所（ゴシック体影付き文字）、陰イオン性リン脂質の認識に与る陽性荷電領域の一部であるアミノ酸（下線付きイタリック体）、および、脂質膜の結合に必要な疎水性ループの一部であるアミノ酸（二重下線付きイタリック体）を含め、マウスのβ２ＧＰＩ（図１８Ａ）に緊密に一致する。陰イオン性リン脂質の認識に与るアミノ酸配列から始まり、脂質膜に結合するのに必要な疎水性ループの一部であるアミノ酸配列で終わる、アミノ酸配列ＫＮＫＥＫＫＣＳＹＴＥＤＡＱＣＩＤＧＴＩＥＶＰＫＣＦＫＥＨＳＳＬＡＦＷＫは、配列番号２４である。
【図１９】図１９。Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩの発現および抗マウスＩｇＧによる捕捉。Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩ構築物を、ＦｕＧＥＮＥ６試薬によってＣＨＯ細胞にトランスフェクトさせた。二日後、細胞上清を採取し、定量した。発現アッセイでは、マイクロタイタープレートに抗マウスＩｇＧを塗布し、１％ＯＶＡでブロックした。細胞培養体上清の連続希釈を１％ＯＶＡで調製した。＃８および＃１８は、Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩの二つの異なるクローンである。結合は、ｃｈ３Ｇ４および抗ヒトＩｇＧ−ＨＲＰによって検出した。ベクターを陰性コントロールとし、基線とした。
【図２０】図２０。Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩは、ＰＳ塗布プレートにおいてＰＳに結合する。この結合アッセイでは、マイクロタイタープレートにＰＳを塗布し、１％ＯＶＡでブロックした。Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩ細胞培養体上清の連続希釈を１％ＯＶＡで調製した。＃８および＃１８は、Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩの二つの異なるクローンである。抗マウスＩｇＧ−ＨＲＰとの結合が検出された。
【図２１】図２１。Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩは陰イオン性リン脂質に結合する。このアッセイでは、１０％ＦＢＳにおいてリン脂質に結合するＦｃ−ｍβ２ＧＰＩが測定された。マイクロタイタープレートに、図示の、種々の脂質を塗布し、１％ＯＶＡでブロックした。Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩ細胞培養体上清の連続希釈を１％ＯＶＡで調製した。抗マウスＩｇＧ−ＨＲＰとの結合が検出された。Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩは、陰イオン性リン脂質ＰＳ、ＰＡ、ＰＩ、およびＰＧには結合するが、中性脂質ＰＣおよびＳＭには結合しない。
【図２２】図２２Ａ、図２２Ｂ、および図２２Ｃ。Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩは、天然のアポトーシスＡＢＡＥ細胞の上に露出されるＰＳを検出する。ＤＭＥＭ＋１０％ＦＢＳに懸濁させた２×１０４のＡＢＡＥ細胞を、８−ウェルのガラスチェンバースライドに撒き３７℃で一晩インキュベートした。翌日、細胞を洗浄し、２ａＧ４（図２２Ａ）、Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩをトランスフェクトしたＣＨＯ細胞の上清（図２２Ｂ）、擬似トランスフェクトさせた細胞の上清（「コントロール上清」、図２２Ｃ）とインキュベートした。２ａＧ４とＦｃ−ｍβ２ＧＰＩは、ＦＩＴＣ−標識二次抗体によって検出した（緑色）。細胞骨格および核を、それぞれ、テキサス赤標識ファロイジンおよびＤＡＰＩ（青色）でカウンター染色した。矢印は、アポトーシス細胞をマークする。
【図２３】図２３Ａおよび図２３Ｂ。Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩは、ＬＰＣ−処理ＡＢＡＥ細胞の上に露出されるＰＳを検出する。ＤＭＥＭ＋１０％ＦＢＳに懸濁させた２×１０４のＡＢＡＥ細胞を、８−ウェルのガラスチェンバースライドに撒き３７℃で一晩インキュベートした。翌日、細胞を洗浄し、Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩをトランスフェクトしたＣＨＯ細胞の上清とインキュベートした。Ｆｃ−ｍβ２ＧＰＩは、ＦＩＴＣ−標識二次抗体によって検出した（緑色）。細胞骨格および核を、それぞれ、テキサス赤標識ファロイジンおよびＤＡＰＩ（青色）でカウンター染色した。図２３Ａおよび図２３Ｂはそれぞれ、小さな、緑色のピンポイントとして見られるＦｃ−ｍβ２ＧＰＩの結合を示す。
【図２４】図２４Ａ、図２４Ｂ、図２４Ｃ、および図２４Ｄ。β２ＧＰＩの人工的二量体構築物は、露出ＰＳを持つ内皮細胞に結合する。ＡＢＡＥ細胞を、ＤＭＥＭ＋１０％ＦＢＳに溶解した２００μＭ  ＬＰＣ、プラス、精製ｈβ２ＧＰＩ−モノマー（図２４Ａ）、ｈβ２ＧＰＩ−二量体（図２４Ｂ）、または、脂質に結合することができないｈβ２ＧＰＩ−二量体変異種（図２４Ｃ）と３０分インキュベートした。次に、細胞を洗浄し、抗β２ＧＰＩとインキュベートしてｈβ２ＧＰＩモノマーおよび二量体を検出した。抗β２ＧＰＩ抗体は、ウシのβ２ＧＰＩを認識しないので、１０％ＦＢＳの存在は、ｈβ２ＧＰＩ−モノマーまたはｈβ２ＧＰＩ二量体の検出を妨げなかった。次に、細胞を洗浄し、固定し、蛍光マーカーで染色した。細胞骨格は赤色に見え、核は青色に見え、ｈβ２ＧＰＩ−モノマーおよびｈβ２ＧＰＩ二量体は緑色に見える。図２４Ｄ、ｈβ２ＧＰＩ−モノマーおよびｈβ２ＧＰＩ二量体の結合面積を、ＭｅｔａＶｕｅソフトウェアを用いて定量化した。数値は全て、非ＬＰＣ処理細胞に対するｈβ２ＧＰＩ二量体の結合、これを１に設定、に対する相対値である。
【図１】
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【図２Ａ】
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【図２Ｂ】
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【図２Ｃ】
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【図２Ｄ】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０Ａ】
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【図１０Ｂ】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８Ａ】
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【図１８Ｂ】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
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【図２２】
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【図２３Ａ】
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【図２３Ｂ】
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【図２４】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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