(57)【要約】【課題】本発明は、全ヘパリン量に対して少なくとも１０％ｗｔの極低分子量ヘパリン（ＶＬＭＷＨ）を含む極低分子量ヘパリン（ＶＬＭＷＨ）組成物の製造方法を提供する。【解決方法】前記製造方法は、クロマトグラフィーにより、または化学的に、またはろ過により、哺乳類以外の血管新生した海洋動物から抽出したヘパリン組成物中の８０００Ｄａを越える分子量のヘパリンの相対比率を減少させることを含む。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
クロマトグラフィーにより、または化学的に、またはろ過により、哺乳類以外の血管新生した海洋動物から抽出されるヘパリン組成物中の８０００Ｄａを越える分子量を有するヘパリンの相対比率を減少させることを含む、極低分子量ヘパリン（ＶＬＭＷＨ）含有量が総ヘパリン含有量に対して少なくとも１０％ｗｔである極低分子量ヘパリン（ＶＬＭＷＨ）組成物の製造方法。
【請求項２】
ＶＬＭＷＨ含有量が、総ヘパリン含有量に対して少なくとも２０％ｗｔであるＶＬＭＷＨ組成物を製造する請求項１に記載の方法。
【請求項３】
３０００Ｄａを越える分子量を有するヘパリンの相対比率を減少させる請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
筋組織除去後の魚廃棄物から抽出されたヘパリン組成物について実施される請求項１〜３のいずれかに記載の方法。
【請求項５】
サケ廃棄物に実施される請求項４に記載の方法。
【請求項６】
クロマトグラフィーにより実施される請求項１〜５のいずれかに記載の方法。
【請求項７】
ＶＬＭＷＨ含有量が、総ヘパリン含有量に対して少なくとも１０％ｗｔであり、生理学的に許容範囲の担体または賦形剤および／または薬物を含有してもよく、必要に応じて基質上にコーティングされる哺乳類以外の海洋動物の極低分子量ヘパリン（ＶＬＭＷＨ）組成物。
【請求項８】
ＶＬＭＷＨ含有量が、総ヘパリン含有量に対して少なくとも２０％ｗｔである請求項７に記載の組成物。
【請求項９】
請求項１〜６のいずれかに記載の方法により製造される組成物、または請求項７もしくは８のいずれかに記載の組成物の医学分野での使用。
【請求項１０】
請求項１〜６のいずれかに記載の方法により製造される組成物、または請求項７もしくは８に記載の組成物を含む人間用食料。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、極低分子量ヘパリン組成物の製造方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ヘパリンは、抗凝固性の特性を有する硫酸化グルコサミノグリカン類を指す名称である。
ヘパリンは、例えばカテーテルやインプラントのような観血的医療器具のコーティング剤としてのみならず、治療薬や予防薬としても、医学の分野で広く用いられている。
【０００３】
また、ヘパリンは、体外循環の血液透析に関連して、化学療法薬および抗炎症薬の添加物として、あるいは増殖因子の調節剤として使用され、また、血行動態障害、子癇前症、炎症性大腸疾患、癌、静脈血管塞栓症、不安定虚血性冠動脈疾患、急性脳血管虚血の治療において使用されてきた。
【０００４】
現在入手できる市販ヘパリンの供給源は、通常、哺乳類の組織、特にブタやヒツジの組織である。以前は、ウシの肺が最も一般的な供給源であったが、今日においてはブタの腸が最も一般的な供給源となっている。
【０００５】
一般的に、ヘパリンは重合体構造を有するため、ヘパリン組成物は通常５.０ｋＤａか
ら４０ｋＤａの範囲にある分子量を有するヘパリンを含有する（例えば、Ｍｕｌｌｏｙ 
ら、Ｔｈｒｏｍｂ．Ｈａｅｍｏｓｔ．８４：１０５２−１０５６（２０００）参照）。このような広い範囲の分子量を有するヘパリンは、通常未分画ヘパリン（ＵＦＨ）と称される。現在商業的に用いられているＵＦＨの分子量の範囲は、一般的には５．０から４０ｋＤａである。近年では，低分子量ヘパリン（ＬＭＷＨ）、すなわちヘパリンを含む物質で低分子量のもの、典型的には８ｋＤａ未満のものに、またその使用に高い関心が向けられている。
【０００６】
ＬＭＷＨは様々な方法で、天然の未分画ヘパリンから製造することができる。例えば、亜硝酸解重合もしくはヘパリナーゼ消化といった化学的分解もしくは酵素分解により、例えば分画または解重合することで製造できる。現在入手できるＬＭＷＨは、ブタのヘパリンから製造されている。通常、ＬＭＷＨは少なくとも７０単位／ｍｇの抗第Ｘａ因子活性の効力を有し、抗第Ｘａ因子活性の抗第ＩＩａ因子活性に対する比は、少なくとも１．５である（Ｅｕｒｏｐｅａｎ  Ｐｈａｒｍａｃｏｐｏｅｉａ  Ｃｏｍｍｉｓｓｉｏｎ．Ｐｈａｒｍｅｕｒｏｐａ  １９９１：３：１６１−１６５参照）。
【０００７】
標準の未分画ヘパリン（ＵＦＨ）に対して、ＬＭＷＨは様々な利点を有する。すなわち、ＬＭＷＨは、よく吸収され，皮下投与でき、血流中により長く留まり、臨床的応答がより予測しやすく、ＵＦＨに関連した望ましくない副作用、例えば必要以上の出血、血小板数の低下、骨粗鬆症および注射部位の炎症といった副作用をほとんど生じない。ＬＭＷＨはこのような利点を有するため、かなり高価であるにもかかわらず、ＵＦＨよりもＬＭＷＨを選択する医師が着実に増加してきた。
【０００８】
しかし、異種間のウイルス感染あるいはプリオン感染の可能性が認められることから、哺乳類を供給源として得られるＵＦＨやＬＭＷＨの使用に関しては懸念が高まっている。このため、極低分子量ヘパリン（ＶＬＭＷＨ）の合成製造における関心が増大している。このような生物活性ヘパリンは、分子量が約１．７ｋＤａである最小の五量体構造となるように合成製造することができる。
【０００９】
現在入手可能な合成ＶＬＭＷＨは、ＡｒｉｘｔｒａTMとしてＳａｎｏｆｉ−Ｓｙｎｔｈｅｌａｂｏから、あるいはＳｙｎｔｈｅｔｉｃ  ＨｅｐａｒｉｎとしてＡｌｃｈｅｍｉａから入手できる。
【００１０】
しかしながら、このような解重合または合成手段を用いると、ＬＭＷＨ及び合成ヘパリンの製造は複雑なものとなり、最終生成物は比較的高価なものとなってしまう。それゆえ、大きな財源を持たない保健当局が使用できる量は限られてしまう。したがって、効力のあるＬＭＷＨまたはＶＬＭＷＨを得るためのより簡便かつ安価な経路が求められている。
【発明の開示】
【課題を解決するための手段】
【００１１】
本発明者らは、海洋動物、特に魚から抽出したヘパリンが、天然の状態でＬＭＷＨを多量に含有しており、また極低分子量のヘパリン（ＶＬＭＷＨ）、すなわち分子量が３ｋＤａ未満であるヘパリンも驚くほど多量に含有していることを見出した。
【００１２】
海洋動物のヘパリンの抽出はＷＯ０２／０７６４７５に記載されており、その内容は参照することにより本明細書に組み込まれる。
それゆえ、例えばブタ、ウシ及びサケのえらならびにサケ廃棄物から得られる未分画ヘパリンのＬＭＷＨ含有量およびＶＬＭＷＨ含有量は、以下のとおりであるとわかる。
【００１３】
【表１】
2008543987.tif 000002
【発明の効果】
【００１４】
上述のように、上記の表内における海洋動物のヘパリンに対するＶＬＭＷＨ含有量は、精製したウシのアンチトロンビンに対して親和性の高いＶＬＭＷＨの含有量である。親和性の低いＶＬＭＷＨも存在し、生成物のアンチトロンビン作用に関して寄与することができる。
【００１５】
ＬＭＷＨがＵＦＨよりも有利であるのと同様に、ＶＬＭＷＨはＬＭＷＨよりも有利である。
それゆえ、特に、ＶＬＭＷＨには、血中半減期の延長、副作用の減少（例えば血小板減少症）、活性の向上が期待される。
【００１６】
[発明の詳細な説明]
具体的には、本発明者らは、海洋動物のＬＷＭＨを用いることで、分子量１〜３ｋＤａのヘパリン分画の抗第Ｘａ因子活性が、３〜８ｋＤａのヘパリン分画の抗第Ｘａ因子活性より少なくとも２０％高いことを見出した。さらに、１〜３ｋＤａ範囲における個別分子量分画における抗Ｘａ因子活性は、９０Ｕ／ｍｇにもすることができる。
【００１７】
したがって、本発明者らは、ＶＬＭＷＨの製造に、海洋動物のヘパリンを原料物質として使用することを提示する。海洋動物のヘパリンは魚介類廃棄物から抽出することができる。さらに、ＶＬＭＷＨ含有量がかなり高いため、クロマトグラフィー法やろ過法を経済的に使用できるときは、解重合を必要としない（哺乳類動物のＵＦＨについてはこのケースではない）。もっとも必要に応じて解重合を行うこともできる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１８】
ゆえに、本発明は、一つの態様として、ＶＬＭＷＨ含有量が、総ヘパリン含有量に対して少なくとも１０％ｗｔ、好ましくは少なくとも１５％ｗｔ、より好ましくは少なくとも２０％ｗｔ、特に少なくとも２５％ｗｔ、中でも特に少なくとも３０％ｗｔ（例えば１００％ｗｔまで、より一般的には８０％ｗｔまで、例えば３０％ｗｔまで）であるＶＬＭＷＨ組成物の製造方法を提供する。前記製造方法は、哺乳類以外の血管新生した海洋動物、特に魚介類、より好ましくは人間用食料として使うための筋組織を除去した後の動物から生じる廃棄物から抽出したヘパリン組成物において、分子量８０００Ｄａを越える（特に分子量３０００Ｄａを越える）ヘパリンの相対比率を、クロマトグラフィーにより、あるいは酵素的に、あるいは化学的に、あるいはろ過により減少させることを含む。
【００１９】
製造した組成物中のＶＬＭＷＨ含有量は、クロマトグラフィーにより評価してもよく、分光学的に評価してもよく、あるいは上述したＳｔａｃｈｒｏｍ  Ｈｅｐａｒｉｎ  Ｋｉｔのような検査キットを用いて評価してもよい。
【００２０】
哺乳類以外の海洋動物には、塩水魚介類のみならず淡水魚介類も含まれる。
哺乳類用の食料源として、あるいは魚粉、魚肉、および魚油用の原料として使用される魚が好ましい。特に好ましくは、養殖魚が用いられる。好適な魚の例としては、コイ（ｃａｒｐ）、ニゴイ（ｂａｒｂｅｌｌ）およびその他のコイ科（ｃｙｐｒｉｎｉｄ）；タラ（ｃｏｄ）、メルルーサ（ｈａｋｅ）、コダラ（ｈａｄｄｏｃｋ）；ヒラメ、カレイ（ｆｌｏｕｎｄｅｒ）、オヒョウ（ｈａｌｉｂｕｔ）；ソール（ｓｏｌｅ）；ニシン（ｈｅｒｒｉｎｇ）；イワシ（ｓａｒｄｉｎｅ）；アンチョビ（ａｎｃｈｏｖｙ）；カワカマス（Ｊａｃｋ）；ボラ（ｍｕｌｌｅｔ）；サンマ（ｓａｕｒｙ）；サバ（ｍａｃｋｅｒｅｌ）；スヌーク（ｓｎｏｅｋ）；太刀魚（ｃｕｔｌａｓｓ ｆｉｓｈ）；サケ（ｒｅｄ ｆｉｓｈ）；バス、スズキ（ｂａｓｓ）；ウナギ（ｅｅｌ）（例えば、ウナギ（ｒｉｖｅｒ ｅｅｌ）、アナゴ（ｃｏｎｇｅｒ）など）；ヘラチョウザメ、シナヘラチョウザメ（ｐａｄｄｌｅ ｆｉｓｈ）；テラピア、（ｔｉｌａｐｉａ）およびその他のシクリッド（ｃｉｃｈｌｉｄ）；マグロ（ｔｕｎａ）；カツオ（ｂｏｎｉｔｏ）；ビルフィッシュ（ｂｉｌｌ ｆｉｓｈ）；回遊性魚類（ｄｉａｄｒｏｍｏｕｓ ｆｉｓｈ）；などが挙げられる。好適な魚の特定例としては、ヒラメ、カレイ（ｆｌｏｕｎｄｅｒ）、オヒョウ（ｈａｌｉｂｕｔ）、ソール（ｓｏｌｅ）、タラ（ｃｏｄ）、メルルーサ（ｈａｋｅ）、コダラ（ｈａｄｄｏｃｋ）、バス、スズキ（ｂａｓｓ）、カワカマス（Ｊａｃｋ）、ボラ（ｍｕｌｌｅｔ）、サンマ（ｓａｕｒｙ）、ニシン（ｈｅｒｒｉｎｇ）、イワシ（ｓａｒｄｉｎｅ）、アンチョビ（ａｎｃｈｏｖｙ）、マグロ（ｔｕｎａ）、カツオ（ｂｏｎｉｔｏ）、ビルフィッシュ（ｂｉｌｌ ｆｉｓｈ）、サバ（ｍａｃｋｅｒｅｌ）、スヌーク（ｓｎｏｅｋ）、サメ（ｓｈａｒｋ）、エイ（ｒａｙ）、カペリン（ｃａｐｅｌｉｎ）、スプラット（ｓｐｒａｔ）、トゲウオ（ｂｒｉｓｌｉｎｇ）、ブリーム（ｂｒｅａｍ）、リング（ｌｉｎｇ）、オオカミウオ（ｗｏｌｆ ｆｉｓｈ）、サケ（ｓａｌｍｏｎ）、マス（ｔｒｏｕｔ）、ギンザケ（ｃｏｈｏ）およびチヌーク（ｃｈｉｎｏｃｋ）が挙げられる。用いる魚は、特に好ましくは、マス（ｔｒｏｕｔ）、サケ（ｓａｌｍｏｎ）、タラ（ｃｏｄ）、またはニシン（ｈｅｅｒｉｎｇ）であり、中でも特に好ましくはサケ（ｓａｌｍｏｎ）である。
【００２１】
ヘパリン抽出源として使用する魚廃棄物は、本発明の方法において必要に応じて設ける前処理段階で、一般的には頭、皮膚、えらおよび内臓器官から選択される。えらを単独で使用する、頭を使用する、あるいは内臓器官を使用することが特に好ましい。魚廃棄物の処理方法は、文献、例えばＷＯ２００４／０４９８１８から知ることができる。
【００２２】
上述のように、本発明の方法においては、例えば（亜硝酸のような）酸、アルカリ、亜硝酸イソアミル、酸化剤（例えば過酸化水素もしくはＣｕ（Ｉ））またはヘパリナーゼを使用することで化学的（または酵素的）に解重合を行ってもよい。この際、従来の解重合法を使用してもよい（例えばＬｉｎｈａｒｄｔ ｅｔ ａｌ． Ｓｅｍｉａｒｓ ｉｎ Ｔｈ
ｒｏｍｂｏｓｉｓ ａｎｄ Ｈｅｍｏｓｔａｓｉｓ ２５ （ｓｕｐｐｌ ３）：５−１６ （１９９９）および該文献中の参考文献を参照、この内容を参照することにより本書に組み込まれる）。しかしながら、好ましくはろ過（例えば膜ろ過）またはクロマトグラフィー、特に好ましくは、サイズ排除クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、サンプル置換クロマトグラフィーを使用して、ＶＬＭＷＨ含有量を相対的に増加することが望ましい。
【００２３】
膜ろ過はよく確立された技術であり、また、特定の分子量をカットオフ（分画）する膜は、例えばＰａｌｌおよびＭｉｌｌｉｐｏｒｅより市販されている。
サイズ排除クロマトグラフィー（ＳＥＣ）もまたよく確立された化学的技法であり、適切な分離用物質が広く入手できる。例えばＡｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｅｓから
ＳｅｐｈａｄｅｘTMまたはＳｅｐｈａｃｒｙｌTMが入手でき、また、Ｂｉｏ−ＲａｄからＢｉｏ−Ｇｅｌ  Ｐ１０、Ｂｉｏ−Ｇｅｌ  Ｐ３０、もしくはＢｉｏ−Ｇｅｌ  Ｐ６０が入手できる。Ｇ−７５  ＳｅｐｈａｄｅｘTM、ＳｅｐｈａｃｒｙｌTMＳ−２００ＨＲ及びＳｅｐｈａｃｒｙｌTM  Ｓ−３００ＨＲを使用することが特に好ましい。必要に応じて、ＳＥＣ工程を２回以上実施することも可能である。
【００２４】
サンプル置換クロマトグラフィーは、米国特許Ｎｏ．６２４５２３８および米国特許Ｎｏ．６５７６１３４に記載されており、その内容を参照することにより本書に組み込まれる。
【００２５】
本発明の好ましい実施形態では、ＶＬＭＷＨ含有量を相対的に増加させるためのクロマトグラフィー工程に供する前に、海洋動物のヘパリンを濃縮し、脱塩する。これはＳＥＣを使用する場合に特に重要となる。したがって、例えば、イオン交換カラム（例えばＤｏｗｅｘカラム）にヘパリン含有物質を充填することにより、他の諸成分からヘパリンを分離し、続いて塩水（例えば４ＭＮａＣｌ）を用いて、ヘパリンを溶出させる。その後、溶離液を例えば、Ｎａｎｏｍａｘ−５０フィルターを具備したＭｉｌｌｉｐｏｒｅ／Ａｍｉｃｏｎ撹拌セルを用いて脱塩し、次いで凍結乾燥する。これにより塩が除去され、かつ再溶解した試料の容積が最小限度に抑えられ、例えばＧ−７５  ＳｅｐｈａｄｅｘカラムのようなＳＥＣカラムに供される。
【００２６】
特に好ましくは、海洋動物のヘパリンを膜ろ過に供し、例えばアンチトロンビン結合五量体の分子量（ＭＷ１７２８Ｄａ）の前となる分子量で、一般的には１ｋＤａカットオフの膜（例えばＦｉｌｔｒｏｎ/Ｐａｌｌより入手できるＯｍｅｇａ−１Ｋ  Ｕｌｔｒａｓ
ｅｔｔｅ）を用いて、低分子量の成分を除去する。同様に、特に好ましくは、海洋動物のヘパリンを膜ろ過に供して、例えば３０００Ｄａの分子量カットオフで（例えば、Ｆｉｌｔｒｏｎ／Ｐａｌｌより入手できるＯｍｅｇａ  Ｃｅｎｔｒａｍｅｔｅ  Ｓｕｓｐｅｎｄｅｄ  Ｓｃｒｅｅｎ  ＯＳ００５Ｃ１１Ｐ１を用いて）高分子量の成分を除去する。
【００２７】
イオン交換クロマトグラフィーを用い、過度の交換体容量で試料をイオン交換体に供して生成物のＬＭＷＨおよびＶＬＭＷＨ含有量を上昇させると特に都合がよい。低分子量ヘパリンは通常最も強い結合成分であるため、得られた溶出液中のヘパリン含有量が対応して増加する。
【００２８】
濃縮し脱塩したヘパリンは、処理をさらに行う前に必要に応じて、例えば凍結乾燥などによりの乾燥させてもよい。
本発明の方法にしたがって製造したＶＬＭＷＨ組成物は、乾燥してもよく、用途に応じて、例えば希釈剤、担体、または活性薬物とともに製剤化してもよい。また、前記ＶＬＭＷＨ組成物は、好ましくは液体担体とともに製剤化した後、例えばカテーテルやインプラントのような医療器具表面のコーティング剤として適用してもよい。このような組成物およびコーティングした医療器具は本願発明の更なる態様を形成し、また、例えば混合またはコーティングによる製造方法も同様に本願発明の更なる態様を形成する。
【００２９】
本発明の方法を用いて製造されるＶＬＭＷＨ組成物は、特定の適応症について現行のＬＭＷＨに使用される濃度あるいは用量、例えばＬＭＷＨの推奨レベルの２０％以内と同程度の濃度あるいは用量で使用することができる。代表的な適応症は、本明細書の導入部に記載されている。
【００３０】
その他の態様の観点からは、本発明は総ヘパリン含量に対して、少なくとも１０％ｗｔ、好ましくは少なくとも１５％ｗｔ、より好ましくは少なくとも２０％ｗｔ、特に少なくとも２５％ｗｔ、中でも特に少なくとも３０％ｗｔ（例えば１００％ｗｔまで、より一般的には８０％ｗｔまで、例えば３０％ｗｔまで）のＶＬＭＷＨの含有量を有し、必要に応じて生理学的に許容できる担体または賦形剤および／または薬物を含有し、必要に応じて基材上にコーティングされる、哺乳類以外の海洋動物のＶＬＭＷＨ組成物を提供する。
【００３１】
さらに他の態様の観点からは、本発明は、医療分野において、例えば、人間または人間以外の動物の被験体においてまたは血液接触のために、手術、治療、予防または診断に使用される組成物あるいは医療器具において、本発明による組成物、または本発明の方法により製造される組成物の用途を提供する。
[実施例]
以下、本発明を実施例によりさらに詳細に説明するが、本発明はこれら実施例になんら限定されるものではない。
【実施例１】
【００３２】
海洋動物ＵＦＨの製造
等量の組織（サケのえらとサケ廃棄物）と緩衝液（５ｍＭＮＨ4ＣＯ3／ＮＨ3を含む０
．１ＭＮａＣｌ、ｐＨ９.０）とを組織磨砕機（ｔｉｓｓｕｅ ｇｒｉｎｄｅｒ）（台所用タイプ、Ｂｒａｗｎ）でホモジナイズした。通常は、３００ｍｌの緩衝液中、３００ｇの組織を使用した。ホモジネートを８０℃で１時間インキュベートし、１３０００ｒｐｍで遠心分離した。その上澄みを、上記緩衝液で平衡化させ同じ緩衝液で洗浄したＤｏｗｅｘ（２×８、アニオン交換体）に充填した。４ＭＮａＣｌを含む同じ緩衝液を使用してヘパリンを溶出させた。この溶出液を、Ｎａｎｏｍａｘ−５０フィルター（Ｍｗカットオフ＝１０００Ｄａ）を具備した撹拌セル（Ａｍｉｃｏｎ８４００）中で濃縮して脱塩した。この濃縮して脱塩した溶出液を凍結乾燥した。
【実施例２】
【００３３】
海洋動物ＶＬＭＷＨ
実施例１（サケ廃棄物）のＤｏｗｅｘアニオン交換カラムから溶出したヘパリン溶出液１００ｍｌ（４Ｍ ＮａＣｌを含む）を、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ Ｍａｓｔｅｒｆｌｅｘポンプを用いて、１〜２ｍｌ／分で１０００Ｄａ分子量カットオフの膜（Ｆｉｌｔｒｏｎ／Ｐａｌｌから入手できるＯｍｅｇａ  １Ｋ、Ｕｌｔｒａｓｅｔｔｅ  ｍｅｍｂｒａｎｅ）によりろ過した。この方式は接線流（ｔａｎｇｅｎｔｉａｌ  ｆｌｏｗ）の原理を利用する。
【００３４】
ろ液（すなわち、フィルターを通過した液）をｐＨ９．０の５ｍＭＮＨ4ＣＯ3／ＮＨ3
中で１０倍希釈し、Ｎａｎｏｍａｘ−５０フィルター（１０００Ｄａ分子量カットオフ）を具備した撹拌セル中で脱塩して濃縮した。この脱塩した濃縮液を凍結乾燥した。この凍結乾燥し脱塩したろ液をｐＨ９.０の０.０２５ＭＮＨ4ＣＯ3／ＮＨ3１ｍｌに溶解し、Ｇ
−７５Ｓｅｐｈａｄｅｘ（ブルーデキストランで測定した場合に、直径２.６ｃｍ、１１
０ｍＬ、およびボイド容量４２ｍＬ）を用いたサイズ排除クロマトグラフィーに供した。移動相にはｐＨ９.０の０.０２５ＭＮＨ4ＣＯ3／ＮＨ3を用いた。
【００３５】
最初の４７ｍＬの溶出液がカラムから溶出した後に溶出液を集め、続いて集めた溶出液を凍結乾燥した。溶出液中のヘパリンは少なくとも１５ｗｔ％であり、分子量は３０００Ｄａ未満であった。かかるＶＬＭＷＨ富化したヘパリン組成物中の抗Ｘａ因子活性は、１１６Ｕ／ｍｇであった。
【実施例３】
【００３６】
海洋動物ＶＬＭＷＨの調製
５.６倍過剰の樹脂容量でＤｏｗｅｘアニオン交換体を適用した以外は、実施例１に従
って廃棄物抽出物を調製した。その後、生成物を実施例２と同様にサイズ排除クロマトグラフィーに供した。処理後の生成物中、（総ヘパリンに対して）２８.６％ｗｔはＬＭＷ
Ｈ、２２.０％ｗｔはＶＬＭＷＨであった。
【実施例４】
【００３７】
海洋動物ＶＬＭＷＨの調製
Ｍｉｎｉｍ装置（Ｐａｌｌ／Ｆｉｌｔｒｏｎ  ＵＳＡ）を、３０００Ｄａ分子量カットオフのフィルター（Ｏｍｅｇａ  Ｃｅｎｔｒａｍａｔｅ  Ｓｕｓｐｅｎｄｅｄ  Ｓｃｒｅｅｎ、ＯＳ００５Ｃ１１Ｐ１）と共に用いて、実施例１と同様に調製した廃棄物抽出物を濾過した。
【００３８】
Ｍｉｎｉｍ装置を用いたろ過では、流量を８０ｍｌ／分に設定した後、管栓を用いて流量を４ｍｌ／分に制限し、４Ｍ ＮａＣｌ／５ｍＭ ＮＨ4ＣＯ3／ＮＨ3(ｐＨ９.０)中の前記溶出液（廃棄物）を、３０００ＤａＭｗカットオフ・フィルターを用いた接線流ろ過に供した。
【００３９】
ろ液を、上述のように１０００ＤａＭｗカットオフのフィルター（Ｎａｎｏｍａｘ−５０）を具備した撹拌セル中で濃縮して脱塩し、凍結乾燥した。凍結乾燥したろ液を、実施例２に示したようにＳｅｐｈａｄｅｘ  Ｇ−７５を用いた分子量ろ過に供した。
【００４０】
３０００ＤａＭｗカットオフろ過から得られたろ液を、Ｓｅｐｈａｄｅｘ  Ｇ−７５（Ｎａｎｏｍａｘ５０）を用いて分子量ろ過したところ、溶出したヘパリンの分子量は３０００Ｄａを下回ることがわかった。
【実施例５】
【００４１】
輸液に関する検討
上述のように製造し、凍結乾燥した２つの抽出物を調査した。一方（試料Ａ）は、分子量＜８０００、他方（試料Ｂ）は分子量＞８０００であった。これら２つの試料をそれぞれ５ｍＬの蒸留水に溶かし、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ  ｆｉｌｔｅｒｓ  Ｍｉｌｌｅｘ  ＧＰ
ｆｉｌｔｅｒ  ｕｎｉｔ  ０.２２μｍでろ過して、透明な淡褐色の抽出物を得た。抗
第Ｘａ因子活性は、機器ＳｔａＣｏｍｐａｃｔを用いる、Ｓｔａｇｏ（アニエール、フランス）より入手できるＳｔａｃｈｒｏｍ  Ｈｅｐａｒｉｎアッセイを用いて測定した（Ｔｅｉｅｎ ら、 Ｔｈｒｏｍｂ Ｒｅｓ １０：３９９−４１０（１９７７）参照）。試料Ａは７．０抗第Ｘａ因子／ｍｌ含有し、試料Ｂは１０．４抗第Ｘａ因子／ｍｌ含有していた。
【００４２】
輸液に関する検討は、Ｈｙｐｎｏｒｍ  Ｖｅｔ（Ｒ）で麻酔した体重４．３ｋｇの健康な雌性ウサギ３匹に対して行った。ウサギＮｏ．１には、総量２８抗第Ｘａ因子単位であり、体重１ｋｇあたり６．５抗Ｘａ因子Ｕに相当する試料Ａ４ｍｌを静脈内投与した。ウサギＮｏ．２には、総量３９．５抗第Ｘａ因子単位であり、９．２抗Ｘａ因子Ｕ／ｋｇ（体重）に相当する試料Ｂ３．８ｍｌを投与した。ウサギＮｏ．３には、体重１ｋｇあたり５２抗Ｘａ因子Ｕに相当するＦｒａｇｍｉｎ（Ｒ）  Ｐｈａｒｍａｃｉａを投与した。輸液の注入前、注射後５分、１５分、３０分、６０分、および９０分の時点で、真空採血管（０．１２９Ｍクエン酸Ｎａ０．２ｍｌ含有）に、血液（１．８ｍｌ）を抜き取った。試料を混合し、室温で１５分間、２０００ｇで遠心分離し、前記分析法を３．５時間以内に行った。
【００４３】
人間の血漿と比較すると、外因性グルコサミノグリカンが存在しないウサギの血漿中においては１分あたりのΔＯＤが若干低く、０．１３Ｕという高い平均抗第Ｘａ因子活性（０．１１〜０．１６の範囲にわたる）に相当することがわかった。したがって、ウサギの血漿におけるすべての測定結果に関して、０．１３ａｎｔｉＸａ Ｕを減じた。下記表２には、３つの製剤を使用することで得られた血漿濃度を示した。得られた血漿濃度の経時変化は、魚のＧＡＧｓの半減期がＦｒａｇｍｉｎ（Ｒ）の半減期に比べて長くなることを示している。
【００４４】
【表２】
2008543987.tif 000003
【国際調査報告】
2008543987.tif 000004
2008543987.tif 000005
2008543987.tif 000006