(57)【要約】  本発明は、癌細胞において過剰の核小体形成部位（ＮＯＲ）を検出し、癌細胞における過剰のＮＯＲの存在の同定が治療抵抗性を示すことによって、治療に対する癌細胞の抵抗性をｉｎ  ｖｉｔｒｏで検出するための方法に関する。本発明はまた、ＮＯＲ遺伝子数の調節を可能とするのに十分な時間、癌細胞を候補薬剤と接触させ、前記癌細胞におけるＮＯＲ遺伝子数の増減を観察することにより、癌細胞のＮＯＲ遺伝子数を調節する候補薬剤の能力を決定するための方法に関する。本発明はまた、本発明の方法によって得られる、癌細胞のＮＯＲ遺伝子数を調節する候補薬剤、ならびに前記候補薬剤を含んでなる、患者の癌を治療および／または予防するための組成物を提供する。これらの候補薬剤は前記癌細胞におけるＮＯＲ遺伝子数を低下させるものである。【特許請求の範囲】
【請求項１】
治療に対する癌細胞の抵抗性をｉｎ  ｖｉｔｒｏで検出するための方法であって、前記癌細胞において過剰の核小体形成部位（ＮＯＲ）を検出する工程を含んでなり、前記癌細胞における過剰のＮＯＲの存在の同定が治療抵抗性を示す、方法。
【請求項２】
前記治療抵抗性がオキサリプラチン治療抵抗性からなる、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
癌細胞のＮＯＲ遺伝子数を調節する候補薬剤の能力を決定するための方法であって、
ａ．ＮＯＲ遺伝子数の調節を可能とするのに十分な時間、候補薬剤と前記癌細胞を接触させる工程、および
ｂ．前記癌細胞におけるＮＯＲ遺伝子数の増減を観察する工程
を含んでなる、方法。
【請求項４】
前記癌細胞が、オキサリプラチンで治療される、または治療可能な、または治療されるべき癌細胞である、請求項１〜３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項５】
前記癌細胞が、結腸直腸癌細胞、卵巣癌細胞、生殖癌細胞、肺癌細胞、消化管癌細胞、前立腺癌細胞、膵臓癌細胞、胃癌細胞および小腸癌細胞からなる群から選択されるものである、請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６】
前記癌細胞において過剰のＮＯＲを検出する請求項１に記載の工程、およびＮＯＲ遺伝子数の増減を検出する請求項３の工程ｂに記載の工程が、銀染色および蛍光ｉｎ  ｓｉｔｕハイブリダイゼーション（ＦＩＳＨ）からなる群から選択される検出方法によって達成される、請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項７】
請求項３〜６のいずれか一項に記載の方法によって得られた、癌細胞のＮＯＲ遺伝子数を調節する候補薬剤であって、前記癌細胞におけるＮＯＲ遺伝子数を低下させる、候補薬剤。
【請求項８】
前記癌細胞におけるリボソームＲＮＡレベルを調整することができる、請求項７に記載の候補薬剤。
【請求項９】
アクチノマイシンＤなどのＲＮＡ転写阻害剤からなる、請求項８に記載の候補薬剤。
【請求項１０】
アルファ−サルシンなどのリボヌクレアーゼからなる、請求項８に記載の候補薬剤。
【請求項１１】
患者の癌を治療および／または予防するための組成物であって、抗癌分子と組み合わせた請求項７〜１０のいずれか一項に記載の候補薬剤と、許容可能なキャリアとを含んでなる、組成物。
【請求項１２】
前記抗癌分子がオキサリプラチンである、請求項１１に記載の組成物。
【請求項１３】
患者の癌を治療および／または予防するための方法であって、癌細胞のＮＯＲ遺伝子数を調節する薬剤を含んでなる組成物を治療的に有効な量にて前記患者に投与する工程を含んでなる、方法。
【請求項１４】
患者の癌を治療および／または予防することを目的とする薬物を製造するための、癌細胞のＮＯＲ遺伝子数を調節する薬剤を含んでなる組成物の使用。
【請求項１５】
前記組成物が請求項１１または１２に記載の組成物である、請求項１３に記載の方法または請求項１４に記載の使用。
【請求項１６】
前記組成物が癌細胞のＮＯＲ遺伝子数を低下させるものである、請求項１３に記載の方法または請求項１４に記載の使用。
【請求項１７】
前記癌が、オキサリプラチンで治療される、または治療可能である、または治療されるべき癌である、請求項１３〜１６のいずれか一項に記載の方法または請求項１４〜１６のいずれか一項に記載の使用。
【請求項１８】
前記癌が、結腸直腸癌、卵巣癌、生殖癌、肺癌、消化管癌、前立腺癌、膵臓癌、胃癌および小腸癌からなる群から選択されるものである、請求項１３〜１７のいずれか一項に記載の方法または請求項１４〜１７のいずれか一項に記載の使用。
【発明の詳細な説明】
【発明の背景】
【０００１】
発明の技術分野
本発明は、患者の癌治療の分野に関し、より詳細には、オキサリプラチン治療などの治療に対して抵抗性である癌に関する。
【０００２】
発明の背景
癌の化学療法は、オキサリプラチンなどの活性な抗腫瘍分子が利用可能であるにもかかわらず、単独で、または組み合わせて使用される薬物の細胞毒性効果に対して抵抗性を示す癌細胞が頻繁に出現するために、非常に限られた効果しか認められない。故に、この抵抗性を低下させることは、我々の健康および製薬業界にとって主要な課題である。
【０００３】
本出願人らは、ＷＯ０３／１０７００６において、オキサリプラチン治療に対する癌細胞の抵抗性をｉｎ  ｖｉｔｒｏで検出するための方法を既に開示している。特に、かかる方法は、オキサリプラチンで治療される、または治療可能な、または治療されるべき癌細胞のミトコンドリアアポトーシスを測定することからなる。
【０００４】
しかしながら、本出願人の知識によれば、オキサリプラチン治療などの癌治療への応答性に対する予測マーカーはない。
【０００５】
故に、治療に対する癌細胞の抵抗性をｉｎ  ｖｉｔｒｏで検出するための新規な方法、およびかかる癌治療抵抗性を回避する組成物に対する必要性が依然として存在する。
【発明の概要】
【０００６】
本発明は、上述の必要性を満たす方法に関する。
【０００７】
より詳細には、本発明の一つの目的は、治療に対する癌細胞の抵抗性をｉｎ  ｖｉｔｒｏで検出するための方法であって、前記癌細胞において過剰の核小体形成部位（ＮＯＲ）を検出する工程を含んでなり、前記癌細胞における過剰のＮＯＲの存在の同定が治療抵抗性を示す方法を提供することにある。
【０００８】
本発明の別の目的は、癌細胞のＮＯＲ遺伝子数を調節する候補薬剤の能力を決定するための方法であって、
ａ．ＮＯＲ遺伝子数の調節を可能とするのに十分な時間、前記癌細胞を候補薬剤と接触させる工程、および
ｂ．前記癌細胞におけるＮＯＲ遺伝子数の増減を観察する工程
を含んでなる方法を提供することにある。
【０００９】
更に、本発明は、先に定義した方法によって得られた、癌細胞のＮＯＲ遺伝子数を調節する候補薬剤、ならびに患者の癌を治療および／または予防するための組成物および方法におけるその使用を提供することを目的としている。
【００１０】
本発明の別の目的は、患者の癌を治療および／または予防するための方法であって、場合によりオキサリプラチンなどの活性な抗腫瘍分子と組み合わせて、癌細胞のＮＯＲ遺伝子数を調節する薬剤を含んでなる組成物を治療的に有効な量にて前記患者に投与する工程を含んでなる方法を提供することにある。
【００１１】
本発明の他の目的および利点は、添付の図面を参照して、以下の非制限的な具体的説明により明らかになる。
【発明の具体的説明】
【００１２】
本発明は、患者の癌治療の分野に関し、より詳細には、オキサリプラチン治療などの治療に対して抵抗性である結腸直腸癌などの幾つかの癌に関する。
【００１３】
核小体形成部位（ＮＯＲ）の分析に腫瘍病理学における実用的用途が見出されることが当技術分野において既知であるにもかかわらず（Pich, A et al. 2000. Micron 31: 133-141 and Ofner, D. 2000. Micron 31: 161-164を参照）、本出願の発明者らは、驚くべきことに、オキサリプラチン抵抗性と過剰のＮＯＲの出現との相関関係を見出した。従って、本発明は、治療に対する癌細胞の抵抗性をｉｎ  ｖｉｔｒｏで検出するための方法、ならびに癌細胞のＮＯＲ遺伝子数を調節する候補薬剤の能力を決定するための方法、および患者の癌を治療および／または予防するための組成物および方法におけるこのような候補薬剤の使用に関する。
【００１４】
本発明の範囲内にある癌細胞の例としては、オキサリプラチンなどの抗癌分子で治療される、または治療可能な、または治療されるべき癌細胞が挙げられ、より具体的には、結腸直腸癌細胞、卵巣癌細胞、生殖癌細胞、肺癌細胞、消化管癌細胞、前立腺癌細胞、膵臓癌細胞、胃癌細胞および小腸癌細胞からなる群から選択されるような癌細胞が挙げられる。
【００１５】
１．検出方法
第一の実施態様として、本発明によれば、治療に対する癌細胞の抵抗性をｉｎ  ｖｉｔｒｏで検出するための方法が提供され、該方法は前記癌細胞において過剰の核小体形成部位（ＮＯＲ）を検出する工程を含んでなり、前記癌細胞における過剰のＮＯＲの存在の同定は治療抵抗性を示す。このような方法は、好ましくはオキサリプラチン抵抗性癌細胞の検出に使用されることが理解される。特定の実施態様では、癌は結腸直腸癌である。
【００１６】
本明細書で使用される「過剰のＮＯＲ」という表現は、ある癌細胞種におけるＮＯＲ遺伝子の増幅をいう。換言すると、前記癌細胞種のＮＯＲ遺伝子数は、その細胞種のＮＯＲ遺伝子数よりも実質的に多い。
【００１７】
「実質的に多い」という表現は、ＮＯＲ遺伝子数の約２倍の増加、より好ましくは約４倍以上の増加をいう。
【００１８】
本発明の別の実施態様によれば、癌細胞のＮＯＲ遺伝子数を調節する候補薬剤の能力を決定するための方法が提供され、該方法は、
ａ．ＮＯＲ遺伝子数の調節を可能とするのに十分な時間、前記癌細胞を候補薬剤と接触させる工程、および
ｂ．前記癌細胞におけるＮＯＲ遺伝子数の増減を観察する工程
を含んでなる。
【００１９】
特に、かかる方法によれば、例えばオキサリプラチン治療などの治療に対する癌細胞の抵抗性を調節する候補分子の能力を決定することができる。
【００２０】
ＮＯＲ遺伝子数の調節は、細胞内のＮＯＲ遺伝子数を増加または減少させることにより、または、例えば、細胞内において転写または翻訳レベルでＮＯＲをアップレギュレートまたはダウンレギュレートすることにより、ＮＯＲ活性を増加または低下させる本発明の薬剤または分子の能力として定義される。
【００２１】
上述の方法において、より詳細には、第一の実施態様の方法に記載されるように前記癌細胞において過剰のＮＯＲを検出する工程、および第二の実施態様の方法の工程ｂ）に関し、これらの工程は、好ましくは、当業者に既知の検出方法、例えば銀染色法および蛍光ｉｎ  ｓｉｔｕハイブリダイゼーション（ＦＩＳＨ）法により達成される。
【００２２】
関連する実施態様では、本発明は、好ましくは上述の方法によって得られた、癌細胞のＮＯＲ遺伝子数を調節する候補薬剤に関し、この候補薬剤は、前記癌細胞におけるＮＯＲ遺伝子数を低下させる。好ましくは、本発明の候補薬剤は、前記癌細胞におけるリボソームＲＮＡレベルを調整することができる。例えば、この候補薬剤は、アクチノマイシンＤなどのＲＮＡ転写阻害剤、またはアルファ−サルシンなどのリボヌクレアーゼからなってもよい。
【００２３】
２．治療方法および組成物
ＮＯＲ遺伝子数を調節する、好ましくは低下させる薬剤、例えば本発明の方法によって得られる候補薬剤は、癌治療においていろいろな形で使用することができ、特に、オキサリプラチンなどの抗癌分子と組み合わせて使用することができる。
【００２４】
別の実施態様では、本発明は、患者の癌を予防または治療するための組成物に関する。かかる組成物は、抗癌分子と組み合わせた先に定義するような候補薬剤と、動物の癌を治療および／または予防する上で許容可能なキャリアとを含む。
【００２５】
好ましくは本発明が想定している抗癌分子はオキサリプラチンであるが、例えばシスプラチンまたはカーボプラチンなどのその他のプラチン塩類も、場合により５−ＦＵ（５−フルオロウラシル）などの別の薬剤と組み合わせて、本発明の範囲内にあることが理解される。
【００２６】
本明細書で使用される「治療する」との用語は、癌の症状が軽減されるか、または完全に排除される過程を意味する。本明細書で使用される「予防する」との用語は、癌の症状が妨害されるか、または遅延される過程を意味する。
【００２７】
本明細書で使用される「許容可能なキャリア」という表現は、悪影響なく宿主に注入可能な、本発明の組成物に配合するための賦形剤を意味する。当技術分野において既知の好適なキャリアとしては、金粒子、滅菌水、生理食塩水、グルコース、デキストロースまたは緩衝溶液などが挙げられるが、これらに限定されない。キャリアとしては、希釈剤、安定化剤（即ち、糖およびアミノ酸）、防腐剤、湿潤剤、乳化剤、ｐＨ緩衝剤、増粘剤、着色剤などの助剤も挙げられるが、これらに限定されない。
【００２８】
更なる薬剤を本発明の組成物に添加することができる。例えば、本発明の組成物はまた、薬物、免疫賦活剤（例えば、α−インターフェロン、β−インターフェロン、γ−インターフェロン、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、マクロファージコロニー刺激因子（Ｍ−ＣＳＦ）、インターロイキン２（ＩＬ２）、インターロイキン１２（ＩＬ１２）およびＣｐＧオリゴヌクレオチド）、酸化防止剤、界面活性剤、香料、揮発油、緩衝剤、分散剤、噴射剤および防腐剤などの薬剤を含んでもよい。このような組成物を調製するためには、当技術分野で周知の方法を用いることができる。
【００２９】
抗癌分子（例えば、オキサリプラチン）および本発明の候補薬剤の量は、治療的に有効な量とするのが好ましい。オキサリプラチンおよび本発明の候補薬剤の治療的に有効な量とは、組成物が投与される宿主において負の影響を過度に引き起こすことなく、それらが抗癌作用を発揮し得るのに必要な量である。オキサリプラチンおよび本発明の候補薬剤の正確な使用量および組成物の正確な投与量は、治療される癌の種類、投与形態、並びに組成物の他の成分などの要因によって異なる。
【００３０】
本発明の組成物は、さまざまな投与経路を通じて宿主に投与することができる。例えば、組成物は、滅菌した注射可能な製剤の形態で、例えば、滅菌した注射可能な水性または油性懸濁液の形態で投与されてもよい。これらの懸濁液は、好適な分散剤もしくは湿潤剤および懸濁剤を使用して、当技術分野において既知の技法に従って処方され得る。滅菌した注射可能な製剤はまた、非経口的に許容可能な無毒性の希釈剤または溶剤中の、滅菌した注射可能な溶液または懸濁液であってもよい。それらは、非経口的に投与されてもよく、例えば注射によって静脈内投与、筋肉内投与または皮下投与されてもよく、注入または経口によって投与されてもよい。本発明の組成物はまた、局所投与用のクリーム、軟膏、ローション、ゲル、ドロップ、座薬、スプレー、液体または粉末として処方されてもよい。それはまた、加圧エアゾールディスペンサー、鼻腔スプレー、ネブライザー、計量式吸入器、乾燥粉末吸入器またはカプセルにより、被験者の気道内に投与されてもよい。好適な投与量は、組成物中の各成分の量、所望の効果（短期間または長期間）、投与経路、治療されるべき宿主の年齢および体重などの要因によって異なる。当技術分野で周知であるその他の方法を、本発明の組成物を投与するために用いてもよい。
【００３１】
更なる実施態様では、本発明は、患者の癌を治療および／または予防するための方法を提供し、該方法は、ＮＯＲ遺伝子数を調節する、好ましくは低下させる薬剤を含んでなる組成物、例えば本発明の組成物を治療的に有効な量にて前記患者に投与する工程を含んでなる。
【００３２】
本発明の別の態様によれば、患者の癌を治療および／または予防することを目的とする薬物を製造するための、ＮＯＲ遺伝子数を調節する、好ましくは低下させる薬剤を含んでなる組成物、例えば本発明の組成物の使用が提供される。
【００３３】
特定の実施態様では、癌は結腸直腸癌である。本明細書で使用される、本発明が想定する「リボソームＤＮＡ」は、ＮＣＢＩ受託番号Ｕ１３３６９に記載されるようなヌクレオチド配列を有するのが有利である。
【実施例】
【００３４】
本発明は、以下の実施例を参照することにより、より容易に理解される。これらの実施例は、広範な本発明の利用可能性を例証するものであり、その範囲の限定を意図するものではない。本発明の精神および範囲から逸脱することなく、修正および変更を行うことができる。本明細書に記載される方法および物質と同様の、または同等のいかなる方法および物質も、本発明の試験を実施する際に用いることができるが、好ましい方法および物質が記載される。
【００３５】
緒言
オキサリプラチン抵抗性を試験するために、本発明者らは、４種の結腸直腸癌細胞株ＨＣＴ１１６、ＳＷ４８、ＳＷ４８０およびＳＷ６２０（ＡＴＣＣから入手）を用いて４種の細胞モデルを生成した。各細胞モデルは、１種の感受性クローン（親細胞株の代表）、徐々に濃度が高くなるオキサリプラチンへの曝露によって単離される１種または２種の抵抗性クローンからなる。ＨＣＴ１１６細胞モデルについては、数ヶ月間、オキサリプラチンの不存在下で抵抗性クローンを維持することにより、「全ての、または一部の復帰突然変異」クローンを得る。本発明者らは、まずＨＣＴ１１６細胞モデルの核型を決定することにより、オキサリプラチン抵抗性と関連する遺伝子の改変を調査した。この調査により、オキサリプラチン抵抗性と、過剰のＮＯＲ（リボソーム遺伝子がクラスター化している核小体形成部位）の出現との厳密な相関関係を決定するに至った。逆に、抵抗性表現型の反転は、復帰突然変異体クローンにおいて検出されるように、過剰のＮＯＲの損失と相関関係がある。その後、全細胞モデルにおける活性なＮＯＲを（メタファシスの銀着色法により）分析することにより、本発明者らは、抵抗性クローンにおける体系的なＮＯＲ増幅、全ての復帰突然変異クローンにおけるＮＯＲの初期数への復帰、および一部復帰突然変異体におけるＮＯＲの中間数への復帰を明らかにした。ＮＯＲ数の調節がオキサリプラチン抵抗性と厳密な相関関係を有するとの同定は、異なる遺伝的背景を示す４種の細胞モデルにおいて見出されたので、極めて妥当である。
【００３６】
従って、この発見は極めて普遍的であり得る。この遺伝子増幅の潜在的な用途は、腫瘍片に対するオキサリプラチン抵抗性の早期診断、並びにＮＯＲ増幅の効果に焦点を当てた抵抗性の薬物調節に関するものである。結腸直腸癌患者から得られたパラフィン埋め込み組織切片におけるＮＯＲ増幅の同定は解決中である。本出願においては、２種の方法を調査している：銀染色、およびリボソームプローブ（リボソームＲＮＡ上に位置する配列）を用いたＦＩＳＨ。後者の技法（ＦＩＳＨ）は、ＨＣＴ１１６細胞モデルについて実証されている。更に、アクチノマイシンＤを用いてオキサリプラチンの活性を薬理学的に調節するように設計された実験を行った。幾つかの結果は、中程度の毒性濃度での細胞のアクチノマイシンＤプレインキュベーションが、オキサリプラチン活性に対する相乗効果をもたらすことを示唆している。
【００３７】
実施例１：パラフィン埋め込み組織切片におけるＮＯＲ遺伝子増幅の同定
スライド調製
異なるクローンから得られた対数増殖期の細胞を、コルセミド（１００ｎｇ／ｍｌ）またはノコダゾール（１０μＭ）で２時間〜４時間処理した。細胞を、
１） トリプシン化し、１２００ｒｐｍで５分間遠心分離し、
２） ＰＢＳですすぎ、１２００ｒｐｍで５分間遠心分離し、
３） ０．００７５ＭのＫＣＬ／１０％ウシ胎児血清中にて３７℃で１０分間インキュベートし、１２００ｒｐｍで５分間遠心分離し、
４） ３容量の無水エタノール／１用量の酢酸中にて固定し、１２００ｒｐｍで５分間遠心分離し（この工程を２〜５回）、
５） スライド上に拡げ、細胞学的試験のために使用する。
【００３８】
ｒＤＮＡに関するＦＩＳＨプロトコル
本質的には記載されるようにＦＩＳＨを行う。
【００３９】
１）ＲＮＡｓｅ処理：
＊２ＳＳＣ（ｐｈ＝７）−ＲｎＡｓｅ（最終濃度：１００μｇ／ｍｌ）中にて３７℃で１時間
＊２ＳＣＣ中で室温（ＲＴ）にて１０分間
＊２ＳＣＣ中でＲＴにて１０分間
＊５０％エタノール中でＲＴにて１０分間
＊７５％エタノール中でＲＴにて１０分間
＊１００％エタノール中でＲＴにて１０分間
＊空気乾燥
【００４０】
２）プローブ調製
各スライド毎に調製：２μｌのプローブ＋８μｌのハイブリダイゼーションミックス（hybmix）。供給者の推奨に従ってプローブを標識（供給者の推奨に従って、１μｇのＤＮＡを標識）。
【００４１】
３）スライド変性
＊７０％ホルムアミド／２ＳＳＣ中で２分間。７０℃
＊２ＳＳＣ中で１分間。４℃
＊５０％エタノール中で５分間。４℃
＊７５％エタノール中で５分間。４℃
＊１００％エタノール中で５分間。４℃
＊空気乾燥
【００４２】
４）プローブ変性
＊９６℃〜１００℃で１０分間
氷上
【００４３】
５）ハイブリダイゼーション
１０μｌの変性プローブをスライド毎に加える。カバーガラスを被せて封止する。加湿したチャンバ内にて３７℃で一晩インキュベートする。
【００４４】
６）ハイブリダイゼーション後の洗浄
＊カバーガラスを外す
＊５０％ホルムアミド／２ＳＳＣ中で５分間。３８℃
＊５０％ホルムアミド／２ＳＳＣ中で５分間。３８℃
＊２ＳＳＣ中で５分間。３８℃
＊２ＳＳＣ中で５分間。３８℃。
【００４５】
プローブ標識（間接的または直接的）のプロトコルに応じて、従来の抗体（例えば、ヒツジ抗ビオチン／抗ヒツジＦＩＴＣ）またはそれ以外でプローブを顕在化する。次いで、ヨウ化プロピジウムを含む退色防止調製物（Ｖｅｃｔａｓｈｉｅｌｄ；Ｂｉｏｓｙｓ  Ｓ．Ａ．）中にスライドをマウントする。
【００４６】
Ａｇ  ＮＯＲ定量のための銀染色プロトコル
スライド毎に２００μｌの染色溶液（染色溶液：０．０１ｇのゼラチン／ｍｌ、０．２５ｇのＡｇＮＯ３／ｍｌ、０．５％ギ酸）：７０℃にて９０秒〜１２０秒間インキュベートする。
この溶液を捨て、蒸留水でスライドをすすぐ。
ギムザ染色：１．５％ギムザ中で４分間。
【００４７】
【表１】
2008505882.tif 000002
2008505882.tif 000003
【００４８】
実施例２：アクチノマイシンＤプレインキュベーションを用いたオキサリプラチン細胞毒性の調節に関する予備実験
以下の実施例は、オキサリプラチンとアクチノマイシンＤとの相乗効果を示す、アクチノマイシンＤによる細胞の予備プレインキュベーション結果に関する。
【００４９】
【表２】
2008505882.tif 000004
2008505882.tif 000005
2008505882.tif 000006
【００５０】
実施例３：異なる細胞モデルにおけるリボソームＲＮＡの発現レベルに関する試験
試験した２種類のリボソームＲＮＡ（１８Ｓ  ＲＮＡおよび２８Ｓ  ＲＮＡ）に関し、本発明者らは、オキサリプラチン感受性のＨＣＴ１１６＿Ｓと比較して、抵抗性細胞株ＨＣＴ１１６＿Ｒ１、ＨＣＴ１１６＿Ｒ２によるリボソームＲＮＡの過剰発現を観察した。単一ＲＮＡ抽出の場合に得られた結果は、ＳＷ６２０／Ｒ株では１８Ｓおよび２８Ｓ  ＲＮＡの過剰発現、並びにＳＷ４８０／Ｒ株では１８Ｓ  ＲＮＡの過剰発現を実証している。これらの結果は、リボソームＲＮＡをコードする遺伝子レベル（ＲＮＡ−ＮＯＲ）で以前に観察された上流増幅を確認し、完結させるものである。ＮＯＲ遺伝子の転写産物があらゆる細胞において非常に豊富であり、且つ、その他全てのＲＮＡと比較して概ね過半数を占めるので、この増加は更により重要である。本発明者らが既に記載した、転写的に活性なＲＮＡ−ＮＯＲ（銀染色により顕示、図面参照）の増加に関する観察は、リボソームＲＮＡの増加を予測するための強い論拠となった。本結果によれば、ＲＮＡ−ＮＯＲの増幅が、最終的にリボソームＲＮＡの細胞含有量の増加につながることが証明された。先に論じたように、リボソームＲＮＡは過半数を占め、細胞の転写活性の約４０％〜６０％に相当すると共に、全細胞ＲＮＡ含有量の８０％に相当する。この知見は、オキサリプラチン抵抗性と関連して出現するリボソームＲＮＡの過剰発現が、細胞内構造に関しては重要でないので、抵抗性の表現型に関して生物学的に重要な意義を有するはずであるということを暗示している。このリボソームＲＮＡの過剰発現は、遺伝子増幅の延長として生じ、新たな診断的要素と、薬理学的介入要素とを構成する。
【００５１】
【表３】
2008505882.tif 000007
【００５２】
相補的ＤＮＡにレトロ転写された全ＲＮＡ抽出物から定量的ＰＣＲによって、発現レベルをリアルタイムで測定した（ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ  Ｓｙｓｔｅｍ−Ｒｏｃｈｅ）。これらの値は、抵抗性細胞株と対照の感受性細胞株との発現レベル比（平均値とその後の標準偏差）に相当する。ＳＷ４８、ＳＷ４８０およびＳＷ６２０株に関して、平均値および標準偏差は、１つの同じＲＮＡ抽出物から、リアルタイムで測定された３つまたは４つの独立したＰＣＲ実験により得られた。ＨＣＴ１１６細胞株に関し、各平均値および標準偏差は、１つの同じＲＮＡ抽出物から、リアルタイムで測定された３つまたは４つの独立したＰＣＲ実験により決定した。斜体で表した値は、異なるＲＮＡ抽出物について得られた発現比の平均に相当する。
【図面の簡単な説明】
【００５３】
【図１】図１は、ＨＣＴ１１６／Ｓに関する核型の一例を示す。
【図２】図２は、ＨＣＴ１１６／Ｒ２に関する核型の一例を示す。矢印はｐ２１＋を示す。
【図３】図３は、ＨＣＴ１１６／ＳにおけるＡｇ  ＮＯＲの銀染色を示す。矢印は活性なＮＯＲ（陽性）を示す。増幅は検出されない。
【図４】図４は、ＨＣＴ１１６／Ｒ２におけるＡｇ  ＮＯＲの銀染色を示す。矢印は活性なＮＯＲ（陽性）を示す。大きい矢印は増幅を示す。
【図５】図５は、ＨＣＴ１１６／Ｒｅｖ１におけるＡｇ  ＮＯＲの銀染色を示す。矢印は活性なＮＯＲ（陽性）を示す。増幅は存在しない。
【図６】図６は、ＨＣＴ１１６／Ｒ２におけるＡｇ  ＮＯＲの銀染色を示す。矢印は活性なＮＯＲ（陽性）を示す。大きい矢印は増幅を示す。
【図７】図７は、ＨＣＴ１１６／Ｒ２におけるＡｇ  ＮＯＲの別の銀染色を示す。矢印は活性なＮＯＲ（陽性）を示す。大きい矢印は増幅を示す。
【図８Ａ】図８Ａは、ＳＷ４８／ＳにおけるＡｇ  ＮＯＲの銀染色を示す。矢印は活性なＮＯＲ（陽性）を示す。増幅は存在しない。
【図８Ｂ】図８Ｂは、ＳＷ４８／Ｒ１におけるＡｇ  ＮＯＲの銀染色を示す。矢印は活性なＮＯＲ（陽性）を示す。大きい矢印は増幅を示す。
【図９】図９は、ＳＷ４８／Ｒ２におけるＡｇ  ＮＯＲの銀染色を示す。矢印は活性なＮＯＲ（陽性）を示す。大きい矢印は増幅を示す。
【図１０】図１０は、ＳＷ４８０／ＳにおけるＡｇ  ＮＯＲの銀染色を示す。矢印は活性なＮＯＲ（陽性）を示す。増幅は存在しない。
【図１１Ａ】図１１Ａは、ＳＷ４８０／ＲにおけるＡｇ  ＮＯＲの銀染色を示す。矢印は活性なＮＯＲ（陽性）を示す。大きい矢印は増幅を示す。
【図１１Ｂ】図１１Ｂは、ＳＷ４８０／ＲにおけるＡｇ  ＮＯＲの銀染色を示す。矢印は活性なＮＯＲ（陽性）を示す。大きい矢印は増幅を示す。
【図１２】図１２は、ＨＣＴ１１６／Ｒｅｖ２におけるリボソームＤＮＡの蛍光ｉｎ  ｓｉｔｕハイブリダイゼーション（ＦＩＳＨ）を示す。
【図１３】図１３は、ＨＣＴ１１６／Ｒｅｖ２におけるリボソームＤＮＡの蛍光ｉｎ  ｓｉｔｕハイブリダイゼーション（ＦＩＳＨ）を示す。
【図１４】図１４は、ＨＣＴ１１６／Ｒｅｖ２におけるリボソームＤＮＡの蛍光ｉｎ  ｓｉｔｕハイブリダイゼーション（ＦＩＳＨ）を示す。
【図１５】図１５は、ＨＣＴ１１６／ＳにおけるリボソームＤＮＡの蛍光ｉｎ  ｓｉｔｕハイブリダイゼーション（ＦＩＳＨ）を示す。
【図１６】図１６は、ＨＣＴ１１６／ＳにおけるリボソームＤＮＡの蛍光ｉｎ  ｓｉｔｕハイブリダイゼーション（ＦＩＳＨ）を示す。
【図１７】図１７は、Ａｇ  ＮＯＲの配置を示す。
【図１８】図１８は、ＨＣＴ１１６モデル系における過剰のＡｇ  ＮＯＲの局在化を示す。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８Ａ】
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【図８Ｂ】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１Ａ】
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【図１１Ｂ】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【国際調査報告】
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