(57)【要約】【課題】直鎖ポリアミンよりも優れた効果を有する動植物用成長促進剤を提供することを課題とする。【解決手段】分岐鎖ポリアミン又は長鎖ポリアミンを含有する、動植物用成長促進剤。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
分岐鎖ポリアミン又は長鎖ポリアミンを含有する、動植物用成長促進剤。
【請求項２】
前記分岐鎖ポリアミンが、下記式（Ｉ）で表わされる３級ポリアミン、又は下記式（ＩＩ）で表される４級ポリアミンである、請求項１に記載の動植物用成長促進剤
【化１】
2015081252.tif 000013
（式中、Ｒ１〜Ｒ６は、同一又は異なって、炭素数２〜６の、置換されていてもよい、アルキル基又はアルケニル基であり、かつＲ２、Ｒ３及びＲ５は、それぞれ、繰り返し単位毎に同一であっても異なっていてもよく、ｎ１〜ｎ３は、同一又は異なって、０又は３以下の整数である。）
【化２】
2015081252.tif 000014
（式中、Ｒ７〜Ｒ１５は、同一又は異なって、炭素数２〜６の、置換されていてもよい、アルキル基又はアルケニル基であり、かつＲ８、Ｒ９、Ｒ１２及びＲ１４は、それぞれ、繰り返し単位毎に同一であっても異なっていてもよく、ｎ４〜ｎ７は、同一又は異なって、０又は３以下の整数である。）。
【請求項３】
前記長鎖ポリアミンが、下記式（ＩＩＩ）で表わされる長鎖ポリアミンである、請求項１に記載の動植物用成長促進剤
【化３】
2015081252.tif 000015
（式中、Ｒ１６〜Ｒ１９は、同一又は異なって、炭素数２〜６の、置換されていてもよい、アルキル基又はアルケニル基であり、かつＲ１７及びＲ１８は、それぞれ、繰り返し単位毎に同一であっても異なっていてもよく、ｎ８及びｎ９は、同一又は異なって、３以下の整数である。）。
【請求項４】
前記分岐鎖ポリアミン及び長鎖ポリアミンが、好熱菌により産生されうるものである、請求項１に記載の動植物用成長促進剤。
【請求項５】
好熱菌又はその細胞抽出物を含有する、動植物用成長促進剤。
【請求項６】
アミノアルキル基転移酵素又はアミノアルケニル基転移酵素を含有する、動植物用成長促進剤（ただし、前記アルキル基及び前記アルケニル基は、炭素数２〜６の、置換されていてもよい、アルキル基又はアルケニル基である）。
【請求項７】
アミノアルキル基転移酵素又はアミノアルケニル基転移酵素をコードする遺伝子、又は
当該遺伝子を含有する発現ベクター
を含有する、動植物用成長促進剤（ただし、前記アルキル基及び前記アルケニル基は、炭素数２〜６の、置換されていてもよい、アルキル基又はアルケニル基である）。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、動植物用成長促進剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
ポリアミンは、第一級アミノ基（第一級アミンから水素を除去した１価の官能基（−ＮＨＲ（Ｒは脂肪族炭化水素基を表わす）））が３つ以上結合した脂肪族炭化水素の総称である。
【０００３】
ポリアミンは様々な生命現象に関与している低分子の塩基性物質である。多くの生物により産生されるポリアミンは、直鎖脂肪族炭化水素（本明細書において、「直鎖ポリアミン」という。）である。
【０００４】
直鎖ポリアミンについて、これまでに植物の生長を促進する作用（特許文献１）、動物の寿命を延長させる作用（特許文献２）、ＲＮＡ安定化作用（特許文献３）等が報告されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特開２００２−２９９０５号公報
【特許文献２】国際公開第２００９／０９３４５４号
【特許文献３】特開２００６−２０５７５号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明は、直鎖ポリアミンよりも優れた効果を有する動植物用成長促進剤を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは、好熱菌が産生する特殊なポリアミンに着目した。すなわち、分岐構造を有するポリアミン（本明細書において、「分岐鎖ポリアミン」という。）、及び他の生物が産生するものに比べてより長鎖のポリアミン（本明細書において、「長鎖ポリアミン」という。）に着目した。そして、これらの特殊なポリアミンは直鎖ポリアミンと比べて核酸の安定化能がより高く、さらに、動植物に対する成長促進作用により優れていることを見出した。本発明はかかる知見に基づきさらなる検討を重ねて完成に至ったものであり、以下の実施態様を含む。
項１．
分岐鎖ポリアミン又は長鎖ポリアミンを含有する、動植物用成長促進剤。
項２．
前記分岐鎖ポリアミンが、下記式（Ｉ）で表わされる３級ポリアミン、又は下記式（ＩＩ）で表される４級ポリアミンである、項１に記載の動植物用成長促進剤
【０００８】
【化１】
2015081252.tif 000002
【０００９】
（式中、Ｒ１〜Ｒ６は、同一又は異なって、炭素数２〜６の、置換されていてもよい、アルキル基又はアルケニル基であり、かつＲ２、Ｒ３及びＲ５は、それぞれ、繰り返し単位毎に同一であっても異なっていてもよく、ｎ１〜ｎ３は、同一又は異なって、０又は３以下の整数である。）
【００１０】
【化２】
2015081252.tif 000003
【００１１】
（式中、Ｒ７〜Ｒ１５は、同一又は異なって、炭素数２〜６の、置換されていてもよい、アルキル基又はアルケニル基であり、かつＲ８、Ｒ９、Ｒ１２及びＲ１４は、それぞれ、繰り返し単位毎に同一であっても異なっていてもよく、ｎ４〜ｎ７は、同一又は異なって、０又は３以下の整数である。）。
項３．
前記長鎖ポリアミンが、下記式（ＩＩＩ）で表わされる長鎖ポリアミンである、請求項１に記載の動植物用成長促進剤
【００１２】
【化３】
2015081252.tif 000004
【００１３】
（式中、Ｒ１６〜Ｒ１９は、同一又は異なって、炭素数２〜６の、置換されていてもよい、アルキル基又はアルケニル基であり、かつＲ１７及びＲ１８は、それぞれ、繰り返し単位毎に同一であっても異なっていてもよく、ｎ８及びｎ９は、同一又は異なって、３以下の整数である。）。
項４．
前記分岐鎖ポリアミン及び長鎖ポリアミンが、好熱菌により産生されうるものである、項１に記載の動植物用成長促進剤。
項５．
好熱菌又はその細胞抽出物を含有する、動植物用成長促進剤。
項６．
アミノアルキル基転移酵素又はアミノアルケニル基転移酵素を含有する、動植物用成長促進剤（ただし、前記アルキル基及び前記アルケニル基は、炭素数２〜６の、置換されていてもよい、アルキル基又はアルケニル基である）。
項７．
アミノアルキル基転移酵素又はアミノアルケニル基転移酵素をコードする遺伝子、又は
当該遺伝子を含有する発現ベクター
を含有する、動植物用成長促進剤（ただし、前記アルキル基及び前記アルケニル基は、炭素数２〜６の、置換されていてもよい、アルキル基又はアルケニル基である）。
【発明の効果】
【００１４】
本発明により、動植物に対する成長促進作用により優れている剤を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１５】
【図１】TK1691オルソログの系統樹を示す図面である。
【図２】TK1691のオルソログに保存されているS-adenosylmethionine-dependent methyltransferase 様の領域を示す図面である。
【図３】T. kodakarensisのポリアミン生合成経路を示す図面である。
【図４】Aは、BL21(DE3)codonplus-RIL株/pET21aのポリアミン分析を、Bは、BL21(DE3)codonplus-RIL株/pET21a-Tk1691のポリアミン分析を示す（矢印はビスアミノプロピルスペルミジンに由来するピークを表わす）。
【図５】各食餌を与えた線虫における体長の伸長を調べた結果を示すグラフである（Controlは、BL21(DE3)codonplus-RIL株/pET21aで生育した線虫を、TK1691は、BL21(DE3)codonplus-RIL株/pET21a-Tk1691で生育した線虫を表わす）。
【図６】各食餌を与えた線虫における咽頭の伸長を調べた結果を示すグラフである（Control: BL21(DE3)codonplus-RIL株/pET21aで生育した線虫, TK1691: BL21(DE3)codonplus-RIL株/pET21a-Tk1691で生育した線虫を表わす）。
【図７】各食餌を与えたカブトムシ幼虫における体長、体重の変化を調べた結果を示すグラフである。
【図８】各種ポリアミンについて、翻訳の活性化効果を調べたグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１６】
１．分岐鎖ポリアミン
本発明において、分岐鎖ポリアミンとは、好熱菌以外の生物が産生する直鎖ポリアミンと異なり、一部に分岐構造を有しているものを意味する。本発明において、分岐鎖ポリアミンは、好熱菌により産生されうるものに限定されず、一部に分岐構造を有しているものを全て包含する。
【００１７】
特に限定されないが、分岐鎖ポリアミンの代表例として、下記式（Ｉ）で表わされる３級ポリアミンが挙げられる。
【００１８】
【化４】
2015081252.tif 000005
【００１９】
（式中、Ｒ１〜Ｒ６は、同一又は異なって、炭素数２〜６の、置換されていてもよい、アルキル基又はアルケニル基であり、かつＲ２、Ｒ３及びＲ５は、それぞれ、繰り返し単位毎に同一であっても異なっていてもよく、ｎ１〜ｎ３は、同一又は異なって、０又は３以下の整数である。）
上記において、好ましくは、Ｒ１〜Ｒ６は、炭素数３〜４の、置換されていてもよい、アルキル基又はアルケニル基である。Ｒ１〜Ｒ６は、より好ましくは、アルキル基である。
【００２０】
上記において、ｎ１〜ｎ３は、好ましくは、０又は２以下の整数であり、より好ましくは、０又は１であり、さらに好ましくは、０である。
【００２１】
特に限定されないが、好熱菌により産生されうる分岐鎖ポリアミンの代表例として、下記式（ＩＶ）で表わされるＮ４−アミノプロピルスペルミジン、及び下記式（Ｖ）で表わされるＮ４−アミノプロピルスペルミン等が挙げられる。
【００２２】
【化５】
2015081252.tif 000006
【００２３】
【化６】
2015081252.tif 000007
【００２４】
特に限定されないが、分岐鎖ポリアミンの別の代表例として、下記式（ＩＩ）で表わされる４級ポリアミンが挙げられる。
【００２５】
【化７】
2015081252.tif 000008
【００２６】
（式中、Ｒ７〜Ｒ１５は、同一又は異なって、炭素数２〜６の、置換されていてもよい、アルキル基又はアルケニル基であり、かつＲ８、Ｒ９、Ｒ１２及びＲ１４は、それぞれ、繰り返し単位毎に同一であっても異なっていてもよく、ｎ４〜ｎ７は、同一又は異なって、０又は３以下の整数である。）。
【００２７】
上記において、好ましくは、Ｒ７〜Ｒ１５は、炭素数３〜４の、置換されていてもよい、アルキル基又はアルケニル基である。Ｒ７〜Ｒ１５は、より好ましくは、アルキル基である。
【００２８】
上記において、ｎ４〜ｎ７は、好ましくは、０又は２以下の整数であり、より好ましくは、０又は１であり、さらに好ましくは、０である。
【００２９】
特に限定されないが、好熱菌により産生されうる分岐鎖ポリアミンの代表例として、下記式（ＶＩ）で表わされるＮ４−ビス（アミノプロピル）スペルミジン等が挙げられる。
【００３０】
【化８】
2015081252.tif 000009
【００３１】
２．長鎖ポリアミン
本発明において、長鎖ポリアミンとは、好熱菌以外の生物が産生する直鎖ポリアミンと比べてより鎖長の長いものを意味する。本発明において、長鎖ポリアミンは、好熱菌により産生されうるものに限定されない。
【００３２】
特に限定されないが、長鎖ポリアミンの代表例として、下記式（ＩＩＩ）で表わされる２級ポリアミンが挙げられる。
【００３３】
【化９】
2015081252.tif 000010
【００３４】
（式中、Ｒ１６〜Ｒ１９は、同一又は異なって、炭素数２〜６の、置換されていてもよい、アルキル基又はアルケニル基であり、かつＲ１７及びＲ１８は、それぞれ、繰り返し単位毎に同一であっても異なっていてもよく、ｎ８及びｎ９は、同一又は異なって、３以下の整数である。）。
【００３５】
上記において、好ましくは、Ｒ１６〜Ｒ１９は、炭素数３〜４の、置換されていてもよい、アルキル基又はアルケニル基である。Ｒ１６〜Ｒ１９は、より好ましくは、アルキル基である。
【００３６】
上記において、ｎ８及びｎ９は、好ましくは、０又は２以下の整数であり、より好ましくは、０又は１であり、さらに好ましくは、０である。
【００３７】
特に限定されないが、好熱菌により産生されうる長鎖ポリアミンの代表例として、下記式（ＶＩＩ）で表わされるサーモペンタミン（Ｔｈｅｒｍｏｐｅｎｔａｍｉｎｅ）、及び下記式（ＶＩＩＩ）で表わされるカルドヘキサミン（Ｃａｒｄｏｈｅｘａｍｉｎｅ）等が挙げられる。
【００３８】
【化１０】
2015081252.tif 000011
【００３９】
【化１１】
2015081252.tif 000012
【００４０】
これらの分岐鎖ポリアミン及び長鎖ポリアミンは、第一級アミノ基（第一級アミンから水素を除去した１価の官能基（−ＮＨＲ（Ｒは脂肪族炭化水素基を表わす）））の部分で比較的柔軟に折れ曲がることができる。これらの分岐鎖ポリアミン及び長鎖ポリアミンは、第一級アミノ基の部分で折れ曲がった状態で、ｔＲＮＡのｌｏｏｐ構造の内部に入り込んで、ｔＲＮＡを安定化することができると考えられる。この理論に束縛されないが、分岐鎖ポリアミン及び長鎖ポリアミンとしては、ｔＲＮＡのｌｏｏｐ構造の大きさを考慮すると、第一級アミノ基で挟まれた脂肪族炭化水素基部分の鎖長が、炭素数３〜４であればｔＲＮＡ安定化能の点では好ましい。
【００４１】
また、理論に束縛されないが、ｔＲＮＡ安定化能の点では、分岐鎖ポリアミン及び長鎖ポリアミンは、アミノ基の数が多いほど塩基度がより高くなるので、より好ましい。
【００４２】
分岐鎖ポリアミン及び長鎖ポリアミンは、ｔＲＮＡ安定化能を通じて翻訳の高効率化を促し、ひいては成長促進能を発揮すると考えられる。
【００４３】
２．好熱菌
本発明において、分岐鎖ポリアミン及び長鎖ポリアミンは、好熱菌により産生されうるものであってもよい。
【００４４】
本発明において、好熱菌とは、至適生育温度が４５℃以上、あるいは生育限界温度が５５℃以上の微生物のことを意味する。
【００４５】
好熱菌は、分岐鎖ポリアミン及び長鎖ポリアミンを産生するものであればよく、特に限定されない。好熱菌は、古細菌、真正細菌及び真核生物のいずれに属するものであってもよい。
【００４６】
好熱菌は、特に限定されないが、好ましくは至適生育温度が８０℃を超える超好熱菌である。
【００４７】
超好熱菌としては、特に限定されないが、例えば、Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ属、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ属、Ｍｅｔｈａｎｏｃａｌｄｏｃｏｃｃｕｓ属、Ａｒｃｈａｅｏｇｌｏｂｕｓ属、Ｍｅｔｈａｎｏｃｏｃｃｕｓ属、Ｔｈｅｒｍｏｔｏｇａ属、Ａｑｕｉｆｅｘ属及びＴｈｅｒｍｏａｎａｅｒｏｂａｃｔｅｒ等に属するものが挙げられる。Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ属に属するものとしては、特に限定されないが、Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ  ｋｏｄａｋａｒｅｎｓｉｓ、Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ  ｐｒｏｆｕｎｄｕｓ及びＴｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ  ｌｉｔｒａｌｉｓ等が挙げられる。
【００４８】
本発明では、超好熱菌ではない好熱菌も使用することができ、そのような好熱菌としては、特に限定されないが、例えば、Ｇｅｏｂａｃｉｌｌｕｓ属、Ｍｅｔｈａｎｏｔｏｒｒｉｓ属、Ｒｈｏｄｏｔｈｅｒｍｕｓ属、Ｔｈｅｒｍｕｓ属、Ｆｅｒｒｏｇｌｏｂｕｓ属、Ｄｅｓｕｌｆｕｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ属、Ｔｈｅｒｍｏｖｉｒｇａ属、Ｃａｌｄｉｃｅｌｌｕｌｏｓｉｒｕｐｔｏｒ属、Ｂａｃｉｌｌｕｓ属、Ｒｈｏｄｏｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ属及びＣｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ属等に属するものが挙げられる。Ｔｈｅｒｍｕｓ属に属するものとしては、特に限定されないが、例えば、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ及びＴｈｅｒｍｕｓ  ａｑｕａｔｉｃｕｓ等が挙げられる。
【００４９】
本発明の動植物用成長促進剤は、分岐鎖ポリアミン又は長鎖ポリアミンを産生する好熱菌又はその細胞抽出物を含有するものであってもよい。
【００５０】
細胞抽出物としては、分岐鎖ポリアミン又は長鎖ポリアミンが含まれていればよく、特に限定されないが、超音波や界面活性剤で破砕する方法等によって抽出されたものを用いることができる。
【００５１】
３．アミノアルキル基転移酵素・アミノアルケニル基転移酵素
分岐鎖ポリアミンを産生しない動植物であっても、それが元来有しているポリアミン生合成系に対して、外部からアミノアルキル基転移酵素又はアミノアルケニル基転移酵素を導入することによって、分岐鎖ポリアミンを合成させることができる。したがって、本発明の動植物用成長促進剤は、アミノアルキル基転移酵素又はアミノアルケニル基転移酵素を有効成分として含有するものであってもよい。
【００５２】
アミノアルキル基転移酵素又はアミノアルケニル基転移酵素の例として、例えば、スペルミジンに対してアミノプロピル基を付加する反応を触媒するＴｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ  ｋｏｄａｋａｒｅｎｓｉｓ由来のＴＫ１６９１等を挙げることができる。ＴＫ１６９１のオルソログは、好熱菌に幅広く見出される（図１）。さらに、ＴＫ１６９１のオルソログには、Ｓ−ａｄｅｎｏｓｙｌｍｅｔｈｉｏｎｉｎｅ-ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ  ｍｅｔｈｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ様の領域が幅広く保存されている（図２）。
【００５３】
ＴＫ１６９１のアミノ酸配列を配列番号１に示す。また、それをコードする塩基配列を配列番号２に示す。
【００５４】
本発明では、配列番号１に示すアミノ酸配列において１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつアミノプロピル基転移活性を有するタンパク質を使用することもできる。左記において、欠失、置換若しくは付加は、好ましくは、上述のＳ−ａｄｅｎｏｓｙｌｍｅｔｈｉｏｎｉｎｅ-ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ  ｍｅｔｈｙｌｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ様の領域とは異なる領域においてなされたものである。
【００５５】
ＴＫ１６９１を含む、Ｔ．  ｋｏｄａｋａｒｅｎｓｉｓのポリアミン生合成経路を図３に示す。
【００５６】
本発明の動植物用成長促進剤は、アミノアルキル基転移酵素又はアミノアルケニル基転移酵素をコードする遺伝子、又は当該遺伝子を含有する発現ベクターを有効成分として含有するものであってもよい。
【００５７】
発現ベクターとしては、特に限定されないが、適用対象に応じて適切なプロモーターの制御下に当該遺伝子を有するものを使用できる。
【００５８】
長鎖ポリアミンを産生しない動植物であっても、それが元来有しているポリアミン生合成系に対して、外部から長鎖ポリアミン合成酵素を導入することによって、長鎖ポリアミンを合成させることができる。したがって、本発明の動植物用成長促進剤は、長鎖ポリアミン合成酵素を有効成分として含有するものであってもよい。
【００５９】
４．動植物用成長促進剤
本発明において、動植物には、動物及び植物が幅広く含まれる。なお、動物には、昆虫が含まれる。
【００６０】
特に限定されないが、動物の具体例としては、いわゆる家畜動物全般、具体的には、イヌ、ネコ、ウマ、ウシ、ブタ、ヒツジ、ヤギ、ロバ、ラバ、ラクダ、ラマ、アジアゾウ、
アルパカ、トナカイ（カリブー）、コブウシ、スイギュウ、ヤク、モルモット、ウサギ（ラビット）、ミンク、ニワトリ、アヒル、ガチョウ、シチメンチョウ、バリケン、ウズラ、ダチョウ、ドバト、キジ及びウミウ等；並びに魚類等が挙げられる。
【００６１】
また、動物の別の具体例としては、いわゆる飼育昆虫全般、具体的には、ミツバチ、カイコ、カブトムシ及びクワガタムシ等：並びにイナゴその他の食用昆虫等が挙げられる。
【００６２】
特に限定されないが、植物の具体例としては、キャベツ、ハクサイ、ホウレンソウ、サツマイモ、ジャガイモ、ダイコン、ニンジン、リンゴ、ナシ、ブドウ、モモ、イチゴ、ミカン、ヒノキ、スギ、マツ、バラ、サクラ、ウメ、イネ、ムギ、シイタケ及びエリンギ等が挙げられる。
【００６３】
本発明の動植物用成長促進剤における上記した有効成分の含有割合は適宜設定できる。特に限定されないが、例えば、０．０５〜２重量％含有するものであってもよい。
【００６４】
本発明の動植物用成長促進剤の剤形としては、特に限定されないが、液剤、噴霧剤、固形剤及び粉末剤等が挙げられる。上記した有効成分が必要な期間、持続的に放出されるような剤型としてもよい。
【００６５】
本発明の動植物用成長促進剤は、必要に応じて、上記した有効成分に加えて、別の有効成分、あるいは他の添加剤（安定剤、賦形剤等）をさらに含んでいてもよい。
【実施例】
【００６６】
以下に実施例を掲げて本発明をさらに詳しく説明するが、本発明はこれら実施例のみに限定されるものではない。
【００６７】
１．実施例：分岐鎖ポリアミンが線虫の体長に与える効果 
１．１  遺伝子操作
一般的な遺伝子操作は、既報(Green and Sambrook)に準拠した。DNA断片のクローニングには大腸菌DH5α株を用い、50 μg ml-1 アンピシリンを添加したLB培地で培養することで形質転換体を選抜した。プラスミドDNAの抽出には、Plasmid mini Kit (キアゲン社)を用いた。以下に記す遺伝子破壊ベクター構築の際に用いたプライマーは、Thermococcus kodakarensis KOD1株(Morikawa M., et al, Appl. Environ. Microbiol., 1994, 60:4559-4566)のゲノムデータ(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/Taxonomy/Browser/wwwtax.cgi?id=69014)を基に設計した。DNAポリメラーゼは、KOD plus (東洋紡)を用いた。制限酵素およびその他核酸修飾酵素は、タカラバイオ社およびニッポンジーン社より購入した。DNAシーケンシングは、BigDye Terminator Cycle Sequencing kit, ver. 3.1および3130ジェネティックアナライザー(共にアプライド・バイオシステムズ社)を用いた。
【００６８】
１．２  Tk1691遺伝子発現ベクターの構築
T. kodakarensis KOD1株(野生株)のゲノムDNAを抽出した後、これを鋳型として、Tk1691の遺伝子領域を、それぞれTk1691-Fw (5’- AAAAAAACATATGATGAGGGAGATAATTGAGAG -3（配列番号３）’; 下線, NdeI認識サイト)-Tk1691-Rv(5’- AGAATTCTCAGGTAGTCGAGCTCTCCT-3’（配列番号４）; 下線, EcoRI認識サイト)のプライマーペアを用いてPCR増幅した。得られたDNA断片を制限酵素で消化し、pET21a (ノバジェン社)の該当位置にクローニングしたものをTk1691発現ベクター(pET21a-Tk1691)とした。
【００６９】
１．３  Tk1691を発現する大腸菌のポリアミン分析
pET21a-Tk1691を大腸菌BL21(DE3)codonplus-RIL株（アジレントテクノロジー社）にTSS法（Chung C.T. et al., Proc. Natl. Acad. Sci., 1989, 86:2172-2175）にて導入した。pET21a-Tk1691を有する大腸菌BL21(DE3)codonplus株（以下、BL21(DE3)codonplus-RIL株/pET21a-Tk1691）をLB液体培地で37℃、12時間培養した後、50μg ml-1のアンピシリンと1 mMのイソプロピル-β-チオガラクトピラノシドを含む5 mlのM9培地に接種し、37℃で12時間培養した。培養液から菌体を6000 rpm, 10分間の遠心分離により回収し、トリクロロ酢酸沈殿により粗ポリアミン画分を得た。高速液体クロマトグラフィー(CCPM, 東ソー社)により菌体内に存在する分岐鎖ポリアミン（ビスアミノプロピルスペルミジン, [3(3)(3)4]の生成量を解析した。カラムは、CK-10S (6.0 mm × 50 mm)（GLサイエンス社）を用いた。100 mM クエン酸カリウム, 2.0 M 塩化カリウム, 650 mM 2-プロパノール, 2.4 mM ポリエチレンラウリルエーテル, 0.195 N HClの組成の展開溶媒で流速1.0 mL min-1でポリアミンを分画した。分画液を流速0.5 mL min-1の400 mM ホウ酸、400 mM 塩化ナトリウム、4.9 mM ポリエチレンラウリルエーテル, 7.5 mM O-フタルアルデヒド, 171 mM エタノール, 28 mM 2-メルカプトエタノールの組成の反応溶媒と反応させ、蛍光検出器（GL-7453A, GLサイエンス社）で励起波長 325 nm, 蛍光波長 450 nmで誘導体化したポリアミンを検出した。分岐鎖ポリアミンを産出しない株としてpET21aで形質転換した大腸菌BL21(DE3)codonplus-RIL株（以下、BL21(DE3)codonplus-RIL株/pET21a）を同様の方法で培養し、同様の方法で粗ポリアミンの抽出を行い、抽出液のビスアミノプロピルスペルミジンの解析を行った。
【００７０】
１．４  Tk1691を発現する大腸菌を食餌とする線虫の体長と咽喉の測定
大腸菌BL21(DE3)codonplus-RIL株/pET21a及びBL21(DE3)codonplus-RIL株/pET21a-Tk1691を50μg ml-1のアンピシリンを含む5 mlのLB液体培地にて37℃で12時間前培養した。50μg ml-1のアンピシリンと1 mMのイソプロピル-β-チオガラクトピラノシドを含む200 mlのM9培地に接種し、37℃で12時間培養した。培養液を6000 rpm, 10分間の遠心分離により集菌後、0.8% (wt/v) NaCl水で2回洗浄した。次に、100μlの0.8% (wt/v) NaCl水に大腸菌を懸濁し、M9固形培地に菌液100μlを添加し、42℃で12時間培養した。菌液を塗布したM9固形培地に卵を持つ成虫を5匹ずつ載せ20℃で3日間飼育した。13匹の成虫(young adult)をM9液体培地で溶解した2％Sodium Azide（シグマ社）により筋肉を弛緩させ、顕微鏡倍率10×10で写真撮影し、体長と咽喉の長さを測定した。体長の測定にはImageJ（http://rsbweb.nih.gov/ij/）を用いた。独立した体長測定実験を三回行った。また、独立した咽頭長測定実験を二回行った。
【００７１】
１．５.   結果
M9液体培地で生育したBL21(DE3)codonplus-RIL株/pET21aのポリアミン分析でスペルミジンは生成していた一方で、ビスアミノプロピルスペルミジンは生成しなかった。他方、M9液体培地で生育したBL21(DE3)codonplus-RIL株/pET21a-Tk1691におけるポリアミン分析では、ビスアミノプロピルスペルミジンは生成した（図４）。M9寒天培地でBL21(DE3)codonplus-RIL株/pET21a またはBL21(DE3)codonplus-RIL株/pET21a-Tk1691を食餌とした線虫の体長と咽喉の長さを測定したところ、BL21(DE3)codonplus-RIL株/pET21a-Tk1691を食餌とした線虫で有意に体長が伸長することが判った（図５）。しかしながら、咽頭の長さは、BL21(DE3)codonplus-RIL株/pET21a-Tk1691とBL21(DE3)codonplus-RIL株/pET21aを食餌にした線虫で変化がなかった（図６）。これは、咽頭以外の組織の伸長がビスアミノプロピルスペルミジンにより促されたことを示している。
【００７２】
２．実施例：超好熱菌T. kodakarensisの抽出物がカブトムシの幼虫の成長に与える影響 
２. １. T. kodakarensis無細胞抽出液の調製とカブトムシ幼虫への投与
T. kodakarensis KOD1株(Morikawa M., et al, Appl. Environ. Microbiol., 1994, 60:4559-4566)はビスアミノプロピルスペルミジンを生成する。T. kodakarensis KOD1株を1.5 LのASW-YT-Pyruvate培地[1.25倍希釈した人工海水 (0.8 × ASW) (Robb and Place 1995), 5 g l-1酵母エキス (ナカライテスク社), 5 g l-1  ポリペプトン（ナカライテスク社）, 5 g l-1 ピルビン酸]で60℃、で48時間培養した。ビスアミノプロピルスペルミジンを生成しないBacillus subtilis 168trpC株をLB培地で37℃、12時間培養した。それぞれの培養液を6000 rpm, 10分間の遠心分離により集菌後、T. kodakarensis KOD1株は0.8 × ASWで、 Bacillus subtilis 168trpC株を0.8% (wt/v) NaCl水で2回、懸濁、6000 rpm, 10分間の遠心を繰り返すことで洗浄した。湿重量0.6 gのそれぞれの菌体を200 mlの超純水に懸濁し、超音波破砕機（Sonifier 25, ブランソン社）で十分に菌体を破砕した。200 mlの超純水または各菌体破砕液を200 gの乾燥おが屑と混合した。体長、体重がほぼ同等の24匹の1齢幼虫のカブトムシを8匹に分け、それを一群として、それぞれの菌体破砕液を混合したおが屑に一群の幼虫を投入した。室温で一ヶ月静置した後、幼虫の体重を測定した。
【００７３】
２. ２. 結果
60℃で生育させたT. kodakarensis KOD1株の抽出液を含むおが屑で生育したカブトムシ幼虫は、Bacillus subtilis 168trpC株もしくは超純水を含むおが屑で生育したカブトムシ幼虫よりも、体長、体重が著しく増加することが判った（図７）。
３．実施例：分岐鎖ポリアミンが与える超好熱菌T. kodakarensisの無細胞翻訳系活性化効果 
３．１  超好熱菌T. kodakarensisのS30画分の調製
キチナーゼ活性を欠損したT. kodakarensis KC1株(Endoh et al., J. Biotechnol., 2006, 126:186-195)を6 LのASW-YT-Pyruvate培地[1.25倍希釈した人工海水 (0.8 × ASW) (Robb and Place 1995), 5 g l-1酵母エキス (ナカライテスク社), 5 g l-1  ポリペプトン（ナカライテスク社）, 5 g l-1 ピルビン酸]で60℃で48時間培養した。培養液を遠心分離により集菌後、0.8 × ASWで2回、懸濁、遠心を繰り返すことで洗浄した。菌体をS30 protease inhibitorバッファー（10 mM トリス-酢酸 pH7.4, 1 mM ジチオスレイトール, 1.4 mM 酢酸マグネシウム, 6.0 mM 酢酸カリウム, protease inhibitor (Roch社) 1錠/10 ml）で懸濁した。この細胞懸濁液をホモジナイザー (EmulsiFlex C-5, AVESTIN社)を用いて、7,500 psi、1 分間破砕した。得られた細胞破砕液を30,000×g, 4℃, 30分間遠心した。上清を再度30,000×g, 4℃,30分間遠心した。上清を回収し、サイズ排除限界が6-8kDaの透析膜（に入れて、上清の100 倍量のS30 バッファー(10 mM トリス-酢酸 pH7.4, 1 mM ジチオスレイトール, 1.4 mM 酢酸マグネシウム, 6.0 mM 酢酸カリウム)で45分間透析を行った。透析操作をさらに2回繰り返し行い、上清液をS30 バッファーで100万倍希釈した。その後、4,000×g, 4℃, 10分間遠心し、S30画分を得た。
【００７４】
３．２  超好熱菌T. kodakarensis由来chiA Δ4 mRNAの調製
T. kodakarensis由来キチナーゼをコードするchiAΔ4遺伝子の領域をもつプラスミドpTRC1（Endoh et al., J. Biotechnol., 2006, 126:186-195）を用い、T7 RiboMax （登録商標）Express RNA system（プロメガ社）でキチナーゼをコードするmRNAを調製した。
【００７５】
３．３  超好熱菌T. kodakarensisのS30画分を用いた無細胞翻訳系とキチナーゼの活性測定
無細胞翻訳反応は、11 mM 酢酸マグネシウム, 2 mM ジチオスレイトール, 80 mM 酢酸アンモニウム, 275 mM 酢酸カリウム, 1.5 mM グアノシン三リン酸, 1.5 mM シチジン三リン酸, 1.5 mM ウリジン三リン酸, 10 mM  ホスホエノールピルビン酸, 45 mM ビシン (pH 8.5), 3 mM アデノシン三リン酸, 2 mM L-グリシン, 2 mM L-システイン, 2 mM L-グルタミン酸, 2 mM L-アルギニン, 2 mM L-プロリン, 2 mM L-アスパラギン, 2 mM L-ヒスチジン, 2 mM L-イソロイシン, 2 mM L-ロイシン, 2 mM L-リジン, 2 mM L-スレオニン, 2 mM L-チロシン, 2 mM L-アラニン, 2 mM L-メチオニン, 2 mM L-フェニルアラニン, 2 mM L-セリン, 2 mM L-トリプトファン, 2 mM L-アスパラギン酸, 2 mM L-グルタミン, 2 mM L-バリン, 4% (v/v) RNAsecure（登録商標）（ライフテクノロジー社）, 2% (v/v) ポリエチレングリコール, 0.3 mg/ml ChiAΔ4 mRNA, 6.5 mg/ml S30画分, 0.2 mM 各ポリアミンの組成で全量 30 μlで行った。ポリアミン非添加を無細胞翻訳反応の対照実験とした。無細胞翻訳反応に添加したポリアミンはそれぞれ、1,3-プロパンジアミン [3], 1,4-ブタンジアミン [4], N1-(3-アミノプロピル)ブタン-1,4-ジアミン [34], N1,N1-ビス(2-アミノエチル)エタン-1,2-ジアミン[2(2)2],  N1,N1-ビス(2-アミノプロピル)プロパン-1,2-ジアミン[3(3)3], N, N1-ビス（3-アミノプロピル）ブタン-1,4-ジアミン[343], N1-(3-アミノプロピル)-N3-(3-(3-アミノプロピルアミノ)プロピル)プロパン-1,3-ジアミン[3333], N1-(3-(3-アミノプロピルアミノ)プロピル)ブタン-1,4-ジアミン[334], 1,3-ビス[3-(3-アミノプロピルアミノ)プロピルアミノ]プロパン [33333], N1,N1-ビス(3-アミノプロピル)ブタン-1,4-ジアミン[3(3)4], N1-(3-アミノプロピル)-N1-(3-(3-アミノプロピルアミノ)プロピル)ブタン-1,4-ジアミン[3(4)33], N1-(3-アミノプロピル)-N4-(3-(3-アミノプロピルアミノ)プロピル)ブタン-1,4-ジアミン[3343], N1,N1,N4-トリス(3-アミノプロピル)ブタン-1,4-ジアミン [3(3)43], N1-(3-(3-(3-アミノプロピルアミノ)プロピルアミノ)プロピル)ブタン-1,4-ジアミン [3334], 4-アミノ-N,N,N-トリス(3-アミノプロピル)ブタン-1-アミニウム[ビスアミノプロピルスペルミジン] [3(3)(3)4], 4-アミノ-N-(4-アミノブチル)-N,N-ビス(3-アミノプロピル)ブタン-1-アミニウム [3(3)(4)4]を使用した（鍵括弧内の数字はアミノ基を介した炭素鎖の数を表す、また鍵括弧内の丸括弧内の数字は、アミノ基を介して分岐した炭素鎖の数を表す）。これら組成の無細胞翻訳反応液を80℃で１時間反応させ、4℃に冷却して反応停止させた。無細胞翻訳反応終了後の3 μlの無細胞翻訳反応液に 33 mM 4-methylumbelliferyl-β-D-N,N’-diacetyl chitobioside (シグマ社)となるよう加えて、90℃, 30分, キチナーゼ反応させた。50 mM Glycine (pH 11.0) となるようキチナーゼ反応液に添加し、キチナーゼ反応を停止させた。その後、4℃, 13,200rpm,  5分間遠心し、上清 200 μl を96穴蛍光プレート（パーキエルマー社）に分注した。蛍光プレートリーダー（ARVOMx/Light, 1420 Multilabel / Luminescence Counter, パーキンエルマージャパン社）にて励起波長 365 nm, 検出波長 455 nm で、キチナーゼ反応で生じた化合物の蛍光を測定した。
【００７６】
３．４.  結果
80℃での無細胞翻訳反応において、ポリアミンを添加していない系に比べて、3(3)3や343以上の価数を有するポリアミンは翻訳の活性化効果を有することが判った。一方で、スペルミジンやプトレスシンは翻訳を阻害した。また、分岐したアミノプロピル基の数が増加するのに伴って、翻訳の活性化効果がみられた（図８；without polyamineの翻訳活性を1とした）。
【配列表フリーテキスト】
【００７７】
配列番号３  Tk1691-Fw primer
配列番号４  Tk1691-Rv primer
【図５】
2015081252.tif 000016
【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【配列表】
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