(57)【要約】【課題】木質バイオマス・パルプを原料として使用し、Ｄ−乳酸生産菌を用いてＤ−乳酸を高い生産量かつ高い生成速度で製造する方法を提供すること。【解決手段】（ａ）広葉樹漂白クラフトパルプを酵素で糖化することにより酵素糖化液を得る工程：及び（ｂ）前記工程（ａ）で得た酵素糖化液をＤ−乳酸生産菌を用いて発酵することによりＤ−乳酸を生産する工程：を含むＤ−乳酸の製造方法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
（ａ）広葉樹漂白クラフトパルプを酵素で糖化することにより酵素糖化液を得る工程：
及び
（ｂ）前記工程（ａ）で得た酵素糖化液をＤ−乳酸生産菌を用いて発酵することによりＤ−乳酸を生産する工程：
を含むＤ−乳酸の製造方法。
【請求項２】
前記工程（ａ）で得た酵素糖化液が、グルコースを含む液である、請求項１に記載のＤ−乳酸の製造方法。
【請求項３】
前記Ｄ−乳酸生産菌が、ラクトバシラス属乳酸菌である、請求項１又は２に記載のＤ−乳酸の製造方法。
【請求項４】
前記Ｄ−乳酸生産菌が、ラクトバシラス・デルブルキに属する乳酸菌である、請求項１から３の何れか１項に記載のＤ−乳酸の製造方法。
【請求項５】
前記工程（ｂ）における発酵をｐＨ５〜７、温度３０℃〜５０℃で撹拌して行う、請求項１から４の何れか１項に記載のＤ−乳酸の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、パルプを原料として使用し、Ｄ−乳酸生産菌を用いてＤ−乳酸を製造する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
セルロースを含む木質系バイオマスを原料とし、酵素や微生物を添加して、糖化や糖化発酵を行って糖液や発酵液を得る方法は多く実施されている。また、乳酸は、生物の解糖系によりグルコースなどの糖分が分解されて生産される有機酸であり、さらにTCA回路に誘導されて生体エネルギー産生の起点になる重要な化合物である。
【０００３】
非特許文献１には、セルロースを並行糖化発酵することによって乳酸を生産することが記載されている。非特許文献２及び３には、木片を粉砕及び化学処理してから、セルラーゼと乳酸菌とを使用して併行糖化発酵を行うことによって乳酸を生産することが記載されている。非特許文献４には、Entetococcus faecalisｍによる木材加水分解物の発酵によってＬ−乳酸を生産することが記載されている。非特許文献５には、セルラーゼとLactobacillus coryniformis とを使用して併行糖化発酵によってＤ−乳酸を生産することが記載されている。非特許文献６には、ペーパースラッジを原料として併行糖化発酵によって乳酸を生産することが記載されている。
【０００４】
また、特許文献１には、キャッサバパルプから高収率かつ安価に乳酸を生産する方法が記載されている。しかし、この方法は、乳酸を生産する方法であるが、Ｄ−乳酸のみを生産する方法ではない。
【０００５】
さらに、特許文献２には、ラクトバシラス・デルブルキ（Lactobacillus delbrueckii）に属する乳酸菌を用いてＤ−乳酸を発酵することが記載されている。この文献は、グルコースを基質としてＤ−乳酸を発酵するものであり、グルコース以外の原料を基質とすることについての記載はない。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】Shin-ichiro Abe and Motoyoshi Takagi, Simultaneous Saccharification and Fermentation of Cellulose to Lactic Acid, Biotechnology and Bioengineering, Vol. 37, Pp. 93-96 (1991)
【非特許文献２】Moldes, A. B., Alonso, J. L. and Parajo, J. C, Strategies to improve the bioconversion of processed wood into lactic acid by simultaneous saccharification and fermentation., J. Chem. Technol. Biotechnol., 76: 279-284 (2001)
【非特許文献３】Moldes, A. B., Alonso, J. L. and Parajo, J. C., Multi-step feeding systems for lactic acid production by simultaneous saccharification and fermentation of processed wood, Bioprocess Engineering, Volume 22, Issue 2, pp 175-180 (2000)
【非特許文献４】Young-Jung Wee, Jong-Sun Yun, Don-Hee Park, Hwa-Won Ryu, Biotechnological production of l(+)-lactic acid from wood hydrolyzate by batch fermentation of Enterococcus faecalis, Biotechnology Letters, Volume 26, Issue 1, pp 71-74 (2004)
【非特許文献５】R Yanez, A Belen Moldes, JL Alonso, JC Parajo, Production of D (-)-lactic acid from cellulose by simultaneous saccharification and fermentation using Lactobacillus coryniformis subsp. torquens, Biotechnology letters, Volume 25, Issue 14, pp 1161-1164 (2003)
【非特許文献６】S Marques, JAL Santos, FM Girio, JC Roseiro,  Lactic acid production from recycled paper sludge by simultaneous saccharification and fermentation,  Biochemical Engineering Journal, Volume 41, Issue 3, pp 210-216 (2008)
【特許文献】
【０００７】
【特許文献１】特開２００４−０９７１３６号公報
【特許文献２】特開２０１０−２７９３３２号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明は、木質バイオマス・パルプを原料として使用し、Ｄ−乳酸生産菌を用いてＤ−乳酸を高い生産量かつ高い生成速度で製造する方法を提供することを解決すべき課題とした。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明者らは上記課題を解決するために鋭意検討した。その結果、木質バイオマスとして広葉樹漂白クラフトパルプ（ＬＢＫＰ）を原料として使用し、酵素による糖化工程と、Ｄ−乳酸生産菌による発酵工程とを順次行うことによって、Ｄ−乳酸を高い生産量かつ高い生成速度で製造できることを見出した。これにより本発明を完成するに至った。
【００１０】
即ち、本発明によれば、以下の発明が提供される。
（１）（ａ）広葉樹漂白クラフトパルプを酵素で糖化することにより酵素糖化液を得る工程：及び
（ｂ）前記工程（ａ）で得た酵素糖化液をＤ−乳酸生産菌を用いて発酵することによりＤ−乳酸を生産する工程：
を含むＤ−乳酸の製造方法。
【００１１】
（２）  前記工程（ａ）で得た酵素糖化液が、グルコースを含む液である、（１）に記載のＤ−乳酸の製造方法。
（３）  前記Ｄ−乳酸生産菌が、ラクトバシラス属乳酸菌である、（１）又は（２）に記載のＤ−乳酸の製造方法。
【００１２】
（４）  前記Ｄ−乳酸生産菌が、ラクトバシラス・デルブルキに属する乳酸菌である、（１）から（３）の何れか１項に記載のＤ−乳酸の製造方法。
（５）  前記工程（ｂ）における発酵をｐＨ５〜７、温度３０℃〜５０℃で撹拌して行う、（１）から（４）の何れか１項に記載のＤ−乳酸の製造方法。
【発明の効果】
【００１３】
本発明によれば、木質バイオマス・パルプを原料として使用し、Ｄ−乳酸生産菌を用いてＤ−乳酸を高い生産量かつ高い生成速度で製造することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１４】
【図１】図１は、ＬＢＫＰ酵素糖化液（本発明）及びグルコース（比較例）からＤ−乳酸を製造した場合における、Ｄ−乳酸生成量及びグルコース量の推移を示す。黒丸はＬＢＫＰ酵素糖化液（本発明）の場合を示し、白三角はグルコース（比較例）の場合を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１５】
以下、本発明について更に詳細に説明する。
＜原料＞
本発明において、広葉樹漂白クラフトパルプ（ＬＢＫＰ）を原料として使用する。ＬＢＫＰを製造するための原料として使用する木材チップとしては、ユーカリ、オーク、アカシア、ビーチ、タンオーク、オルダー等の広葉樹材であれば特に限定されない。また、使用する広葉樹材に多少の針葉樹材を含まれていても構わない。
【００１６】
上記した木材チップをクラフト蒸解処理に供し、次いで漂白処理に供することによって、広葉樹漂白クラフトパルプ（ＬＢＫＰ）を得ることができる。
クラフト蒸解は公知の方法により行うことができる。例えば、木材をクラフト蒸解する場合、クラフト蒸解液の硫化度は５〜７５％、好ましくは２０〜３５％であり、有効アルカリ添加率は絶乾木材質量当たり５〜３０質量％、好ましくは１０〜２５質量％であり、蒸解温度は１４０〜１７０℃である。しかし、クラフト蒸解の条件はこれらに限定されるものではない。また、クラフト蒸解方式は、連続蒸解法あるいはバッチ蒸解法のどちらでもよく、連続蒸解釜を用いる場合は、蒸解白液を分割で添加する蒸解法でもよく、その方式は特に限定されない。
【００１７】
蒸解に際して使用する蒸解液には、蒸解助剤として公知の環状ケト化合物を使用することができる。例えばベンゾキノン、ナフトキノン、アントラキノン、アントロン、フェナントロキノン及び前記キノン系化合物のアルキル、アミノ等の核置換体、或いは前記キノン系化合物の還元型であるアントラヒドロキノンのようなヒドロキノン系化合物、さらにはディールスアルダー法によるアントラキノン合成法の中間体として得られる安定な化合物である９，１０−ジケトヒドロアントラセン化合物等から選ばれた１種又は２種以上が添加されてもよい。添加率は特に限定されないが、一般的には、木材チップの絶乾質量当たり０．００１〜１．０質量％である。
【００１８】
クラフト蒸解法により得られた未漂白化学パルプは、所望により、洗浄工程を経て、公知の酸素脱リグニン法により脱リグニンすることができる。酸素脱リグニン法に用いるアルカリとしては苛性ソーダあるいは酸化されたクラフト白液を使用することができる。酸素ガスとしては、深冷分離法からの酸素、ＰＳＡ（ＰＲＥＳＳＵＲＥ Ｓｗｉｎｇ Ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎ）からの酸素、ＶＳＡ（Ｖａｃｕｕｍ Ｓｗｉｎｇ Ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎ）からの酸素等が使用できる。
【００１９】
酸素脱リグニン工程では、前記酸素ガスとアルカリが中濃度ミキサーにおいて中濃度のパルプスラリーに添加され、混合が十分に行われた後、加圧下でパルプ、酸素及びアルカリの混合物を一定時間保持できる反応塔へ送られ、脱リグニンされる。酸素ガスの添加率は特に限定されないが、絶乾パルプ質量当たり０．５〜３質量％であり、アルカリ添加率は０．５〜４質量％である。また、反応温度は８０〜１２０℃で、反応時間は１５〜１００分であり、パルプ濃度は８〜１５質量％であるが、これらの条件は特に限定されない。
【００２０】
酸素脱リグニンを施されたパルプは洗浄工程へ送ることができる。酸素脱リグニン後の洗浄工程で使用する洗浄機、及び多段漂白工程中の洗浄に使用する洗浄機は、特に限定されるものではない。例えば、プレッシャーディフューザー、ディフュージョンウオッシャー、加圧型ドラムウオッシャー、水平長網型ウオッシャー、プレス洗浄機等を挙げることができる。
【００２１】
上記の通り脱リグニン処理されたパルプは多段漂白工程へ供することができる。多段漂白工程は、二酸化塩素（Ｄ）、アルカリ（Ｅ）、酸素（Ｏ）、過酸化水素（Ｐ）、オゾン（Ｚ）といった公知のＥＣＦ漂白法を組合せて行うことができる。また、多段漂白工程中に、高温酸処理段（Ａ）や酸洗浄段、酵素処理段、高温二酸化塩素漂白段、過硫酸や過酢酸等による過酸漂白段を導入することもできる。多段漂白工程中には、エチレンジアミンテトラ酢酸（ＥＤＴＡ）やジエチレントリアミンペンタ酢酸（ＤＴＰＡ）等によるキレート剤処理段等を導入することもできる。
【００２２】
上記により、本発明において原料として使用する広葉樹漂白クラフトパルプ（ＬＢＫＰ）を得ることができる。
【００２３】
また、広葉樹漂白クラフトパルプ（ＬＢＫＰ）に対しては、ＬＢＫＰ懸濁液の調製に使用する前に、殺菌処理を行うこともできる。ＬＢＫＰ原料中に雑菌が混入していると、酵素による糖化を行う際に雑菌が糖を消費して生成物の収量が低下してしまうという問題が発生する。殺菌処理は、酸やアルカリなど、菌の生育困難なｐＨに原料を晒す方法でも良いが、高温下で処理する方法でも良く、両方を組み合わせても良い。酸、アルカリ処理後の原料については、中性付近、もしくは、糖化・発酵工程に適したｐＨに調整した後に原料として使用することが好ましい。また、高温高圧殺菌した場合も、室温もしくは糖化工程に適した温度まで降温させてから原料として使用することが好ましい。このように、温度やｐＨを調整してから原料を送り出すことで、好適ｐＨ、好適温度外に酵素が晒されて、失活することを防ぐことができる。
【００２４】
＜糖化処理＞
本発明においては、広葉樹漂白クラフトパルプ（ＬＢＫＰ）を、発酵処理に先立って、糖化処理する。
【００２５】
糖化処理においては、ＬＢＫＰは、適量の水と酵素と混合され、糖化発酵工程に供給される。ＬＢＫＰの懸濁濃度は、１〜３０質量％であることが好ましい。１質量％未満であると、最終的に生産物の濃度が低すぎて生産物の濃縮のコストが高くなるという問題が発生する。また、３０質量％を超えて高濃度となるにしたがって原料の攪拌が困難になり、生産性が低下するという問題が発生する。
【００２６】
糖化で使用するセルロース分解酵素は、セロビオヒドロラーゼ活性、エンドグルカナーゼ活性、ベータグルコシダーゼ活性を有する、所謂セルラーゼと総称される酵素である。各セルロース分解酵素は、夫々の活性を有する酵素を適宜の量で添加しても良いが、市販されているセルラーゼ製剤は、上記の各種のセルラーゼ活性を有すると同時に、ヘミセルラーゼ活性も有しているものが多いので市販のセルラーゼ製剤を用いれば良い。
【００２７】
市販のセルラーゼ製剤としては、トリコデルマ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ）属、アクレモニウム（Ａｃｒｅｍｏｎｉｕｍ）属、アスペルギルス（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）属、ファネロケエテ（Ｐｈａｎｅｒｏｃｈａｅｔｅ）属、トラメテス（Ｔｒａｍｅｔｅｓ）属、フーミコラ（Ｈｕｍｉｃｏｌａ）属、バチルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）属などに由来するセルラーゼ製剤がある。このようなセルラーゼ製剤の市販品としては、全て商品名で、例えば、セルロイシンＴ２（エイチピィアイ社製）、メイセラーゼ（明治製菓社製）、ノボザイム１８８（ノボザイム社製）、ＧＣ２２０（ジェネンコア社製）等が挙げられる。
【００２８】
原料固形分１００質量部に対するセルラーゼ製剤の使用量は、０．５〜１００質量部が好ましく、１〜５０質量部が特に好ましい。
【００２９】
糖化処理でのｐＨは３．５〜１０．０の範囲にすることが好ましく、４．０〜７．５の範囲に維持することがより好ましい。
【００３０】
糖化処理の温度は、酵素の至適温度の範囲内であれば特に制限はなく、通例２５〜６０℃が好ましく、４５〜５５℃がさらに好ましい。反応は、連続式が好ましいが、バッチ方式でも良い。反応時間は、酵素濃度によっても異なるが、バッチ式の場合は１０〜２４０時間、さらに好ましくは１５〜１２０時間である。連続式の場合も、平均滞留時間が、１０〜１５０時間、さらに好ましくは１５〜１００時間である。
【００３１】
＜発酵処理＞
上記した糖化工程により得られた酵素糖化液は、発酵処理に供される。
発酵処理に用いられる微生物としては、糖類（六炭糖、五炭糖）を発酵して、Ｄ−乳酸を製造できるＤ−乳酸生産菌であれば特に限定はされない。Ｄ−乳酸生産菌としては、例えば、ラクトバシラス属 (Lactobacillus)、ビフィドバクテリウム属 (Bifidobacterium)、エンテロコッカス属 (Enterococcus)、ラクトコッカス属 (Lactococcus)、ペディオコッカス属(Pediococcus)、ロイコノストック属 (Leuconostoc)、又はスポロラクトバシラス属（Spololactobacillus属）に属する細菌を挙げることができるが、特に限定されない。具体的には、ラクトバシラス・デルブルキ（Lactobacillus delbrueckii）、ラクトバシラス・プランタルム（Lactobacillus plantarum）、ロイコノストック・メセンテロイデス（Leuconostoc mesenteroides）などを挙げることができるが、特にこれらに限定されない。また、遺伝子組換え技術を用いて作製した遺伝子組換え微生物（細菌等）を用いることもできる。遺伝子組換え微生物としては、六炭糖又は五炭糖を発酵してＤ−乳酸を生産できる微生物を特に制限なく用いることができる。
【００３２】
微生物は固定化しておいても良い。微生物を固定化しておくと、次工程で微生物を分離して再回収するという工程を省くことができるため、少なくとも回収工程に要する負担を軽減することができ、微生物のロスが軽減できるというメリットがある。また、凝集性のある微生物を選択することにより微生物の回収を容易にすることができる。
【００３３】
発酵処理でのｐＨは３．０〜１０．０の範囲にすることが好ましく、３．５〜７．５の範囲に維持することがより好ましく、４．０〜７．０の範囲に維持することがさらに好ましい。
【００３４】
発酵処理の温度は、酵素の至適温度の範囲内であれば特に制限はなく、通例２５〜６０℃が好ましく、３０〜５５℃がさらに好ましい。反応は、連続式が好ましいが、バッチ方式でも良い。反応時間は、酵素濃度によっても異なるが、バッチ式の場合は１０〜２４０時間、さらに好ましくは１５〜１６０時間である。連続式の場合も、平均滞留時間が、１０〜１５０時間、さらに好ましくは１５〜１００時間である。
【００３５】
＜Ｄ−乳酸の回収＞
上記した発酵により生産されたＤ−乳酸は、発酵液から公知の方法により分離・精製することにより回収することができる。例えば、発酵液を、遠心分離や濾過等によって不溶な物質（菌体など）を除去した後、イオン交換樹脂などで脱塩し、その溶液から、結晶化やカラムクロマトグラフィー等の常法に従って所望の乳酸を分離・精製することができる。
以下の実施例により本発明を更に詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例によって限定されるものではない。
【実施例】
【００３６】
実施例１：
本実施例で用いた糖化発酵は、（１）パルプを酵素による糖化処理を行って酵素糖化液を得た後に、（２）Ｄ−乳酸生産菌（Lactobacillus delbrueckii）による乳酸発酵を行う２工程から成る。
【００３７】
（１）酵素糖化液の調製
本発明においては、広葉樹漂白クラフトパルプ（ＬＢＫＰ）を発酵処理に先立って、糖化処理するため、ＬＢＫＰを製造した。
＜ＬＢＫＰ製造方法＞
広葉樹混合木材チップ（ユーカリ７０％、アカシア３０％）を用い、液比４、硫化度２８％、有効アルカリ添加率１７％（Ｎａ2Ｏとして）となるように調製した蒸解白液に木材チップに加えた後、蒸解温度１６０℃にて２時間クラフト蒸解を行なった。クラフト蒸解終了後、黒液を分離し、得られたチップを解繊後、遠心脱水と水洗浄を３回繰り返し、次いでスクリーンにより未蒸解物を除き、蒸解未漂白パルプを得た。この未漂白パルプ絶乾質量に対して、ＮａＯＨを２．０質量％添加し、酸素ガスを注入し、１００℃で６０分間酸素脱リグニン処理を行なった。続いて、酸素脱リグニンパルプを、Ｄ−Ｅ−Ｐ−Ｄの４段漂白処理に供した。漂白時のパルプ濃度は全て１０質量％に調製し、最初の二酸化塩素処理（Ｄ）は、対絶乾パルプの二酸化塩素添加率１．０質量％、７０℃、４０分間処理を行ない、イオン交換水にて洗浄、脱水した。次いで、パルプ絶乾質量に対してＮａＯＨ添加率を１質量％として、７０℃、９０分間のアルカリ抽出処理（Ｅ）を行ない、イオン交換水にて洗浄、脱水した。次いで、パルプ絶乾質量に対して過酸化水素添加率を０．２質量％、ＮａＯＨ添加率を０．５質量％とし、７０℃、１２０分間の過酸化水素処理（Ｐ）を行ない、イオン交換水にて洗浄、脱水した。次いで、パルプ絶乾質量に対して二酸化塩素添加率を０．２質量％とし、７０℃、１２０分間の二酸化塩素処理（Ｄ）を行ない、イオン交換水にて洗浄、脱水後、白色度８５％の漂白パルプ（ＬＢＫＰ）を得た。
【００３８】
＜ＬＢＫＰの糖化処理＞
所定量の水が入れられている容量３００ｍＬの培養容器に、ＬＢＫＰ絶乾１０％と終濃度１０ｍＭとなるように酢酸緩衝液（ｐＨ５．０）を加えて、オートクレーブ滅菌（１２１℃、20分間）した。次に、０．２２μmのディスクフィルター（DISMIC  13HP020AN、ADVANTEC社製）で無菌ろ過したセルラーゼ製剤ＧＣ２２０（ジェネンコア社製）を、反応液に対して１０質量％添加して、全量１００ｍＬの反応液を調製した。反応液は、処理温度を５０℃として、回転振とう培養機の回転数１２０ｒｐｍで２４時間、糖化反応を行った。
【００３９】
得られた糖化反応液のグルコース濃度は、糖化反応液を適量採取し、遠心分離後、上清を0.22μmのディスクフィルター（DISMIC  13HP020AN、ADVANTEC社製）でろ過し、脱イオン水で希釈して測定用試料とした。この測定用試料について、グルコース電極（EDO05-0003／王子計測機器社製）を使用して、バイオセンサー（BF-5／王子計測機器社製）で測定した。
【００４０】
（２）Ｄ−乳酸発酵
＜前培養＞
−８０℃で凍結保存したLactobacillus delbrueckii subsp. delbrueckii NBRC3202株［独立行政法人製品評価技術基盤機構（千葉県木更津市かずさ鎌足２−５−８）から入手可能］を解凍した。オートクレーブにより滅菌した前培養培地（１体積％ポリペプトン（日本製薬社製）、１体積％酵母エキス（ＢＤ社製）、１体積％グルコース（和光純薬社製）、０．０２体積％硫酸マグネシウム七水和物（和光純薬社製）ｐＨ６．６−７．０）１０ｍｌに植菌した。３７℃、４８-７２時間静置培養を行ない、前々培養液を調製した。さらに、滅菌処理した前培養培地３０ｍｌに、前々培養液を０．９ｍｌ接種する。これを３７℃、４８時間静置培養を行ない、前培養液を調製した。
【００４１】
＜本培養＞
本培養培地（１体積％ポリペプトン（日本製薬社製）、１体積％酵母エキス（ＢＤ社製）、０．０２体積％硫酸マグネシウム七水和物（和光純薬社製） ｐＨ６．６−７．０）を５００ｍＬ容の培養容器に入れてオートクレーブ滅菌した。これにグルコース濃度を最終３０ｇ／Ｌになるように上記糖化反応液を添加して、容量を２００ｍＬに調製した。上記前培養液を４ｍｌ接種し、３７℃にて培養した。この際、培養開始後２４時間はｐＨの制御は行わずに嫌気的に培養し、２４時間後から５Ｍ アンモニア水を添加することにより、ｐＨ６．０に制御して攪拌培養した。培養液のグルコース濃度は、糖化反応液のグルコース濃度測定と同様に行った。
【００４２】
培養液のＤ-乳酸およびＬ-乳酸濃度は、培養液を適量採取し、遠心分離後、上清を0.22μmのディスクフィルターでろ過し、脱イオン水で希釈した測定用試料を、次の条件でＨＰＬＣ法により測定した。
カラム：住化分析センター製 Ｓｕｍｉｃｈｉｒａｌ ＯＡ−５０００（内径：４．６ｍｍ、カラム長：１５．０ｃｍ）
溶媒： ２ｍＭ 硫酸銅水溶液/２−プロパノール  ９８/２
流速： １ｍＬ／分
検出器：ＵＶ（紫外線吸収、波長：２５４ｎｍ）
カラム温度：３０℃
【００４３】
また、Ｄ-乳酸の光学純度は次式で計算した。
Ｄ-乳酸の光学純度（％ee）＝｛（Ｄ−乳酸濃度）−(Ｌ−乳酸濃度）｝／[（Ｄ−乳酸濃度）+(Ｌ−乳酸濃度）｝×100
【００４４】
比較例１：
ＬＢＫＰの酵素糖化液（糖化処理後、本培養のグルコース濃度  ３０ｇ／Ｌに調製）の代わりにグルコース（和光純薬社製）溶液（３０ｇ／Ｌ）を用いる以外は実施例１と同様に実験を行った。これによりＤ−乳酸生産菌  Lactobacillus delbrueckii subsp. delbrueckii NBRC3202株を用いてＤ−乳酸の生成を確認した。
【００４５】
実施例１及び比較例１の結果を図１に示す。ＬＢＫＰ酵素糖化液（グルコース３０ｇ／Ｌ含有）からは、２日間でグルコースを全量消費して、Ｄ−乳酸４８．５ｇ／Ｌが生成した。一方、グルコース溶液（３０ｇ／Ｌ）からは、５日間でグルコースを全量消費して、Ｄ−乳酸４４．２ｇ／Ｌが生成した。上記の結果から、ＬＢＫＰ酵素糖化液の方がグルコースより早く発酵が進行することが示された。
【図１】
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