(57)【要約】【課題】ホローファイバー培養装置は、ＩＣＳ中を培地が循環している点や中空糸膜の素材が限られていることが要因となり、静置状態で成育していた細胞が必ずしも培養できる訳ではないため、培養環境の変化による細胞のダメージを低減し、ホローファイバー中で細胞培養および細胞からのタンパク質生産を行う方法を提供する。【解決手段】タンパク質を生産しうる細胞（例えば抗トリヨードサイロニンウサギモノクローナル抗体を産生するＣＨＯ−Ｋ１細胞）を、ポリスルホン系等の中空糸膜を用いたホローファイバーで培養する際に、培地中に界面活性剤を共存させて培養し、生産されたタンパク質を回収することにより、タンパク質を製造する。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
タンパク質を生産しうる細胞を、ホローファイバーを用いて培養する際に、培地中に界面活性剤を共存させて培養することを特徴とする、細胞の培養方法。
【請求項２】
請求項１に記載の方法で細胞を培養し、生産されたタンパク質を回収することを特徴とする、タンパク質の製造方法。
【請求項３】
タンパク質を生産しうる細胞が、ＣＨＯ−Ｋ１細胞である、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
ホローファイバーの中空糸膜がポリスルホン系の膜である、請求項１から３のいずれかに記載の方法。
【請求項５】
タンパク質がウサギモノクローナル抗体である、請求項１から４のいずれかに記載の方法。
【請求項６】
タンパク質が抗トリヨードサイロニンウサギモノクローナル抗体である、請求項１から５のいずれかに記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は細胞の培養方法及びタンパクの製造方法に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
細胞によるタンパク質の生産にはスピナーフラスコ、培養バッグ、ホローファイバーなどのバイオリアクターが利用される。ホローファイバーは、中空糸膜により、培養スペースが細胞が成育する中空糸外側スペース（ＥＣＳ）と新鮮培地が循環する中空糸内側スペース（ＩＣＳ）の２つに分けられることにより、生産された高分子タンパク質をＥＣＳ中に濃縮状態で集めることができる点で他のバイオリアクターより優れている（特許文献１）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特開２００７−２２２０６４号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
ホローファイバー培養装置は、ＩＣＳ中を培地が循環している点や中空糸膜の素材が限られていることが要因となり、静置状態で成育していた細胞が必ずしも培養できる訳ではない。
【０００５】
本発明の目的は、培養環境の変化によるダメージを低減し、ホローファイバー中での細胞培養および、細胞からのタンパク質生産を行うことである。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
上記課題に鑑みてなされた本発明は、以下の態様を包含する。
（１）タンパク質を生産しうる細胞を、ホローファイバーを用いて培養する際に、培地中に界面活性剤を共存させて培養することを特徴とする、細胞の培養方法。
（２）上述（１）に記載の方法で細胞を培養し、生産されたタンパク質を回収することを特徴とする、タンパク質の製造方法。
（３）タンパク質を生産しうる細胞が、ＣＨＯ−Ｋ１細胞である、上述（１）または（２）に記載の方法。
（４）ホローファイバーの中空糸膜がポリスルホン系の膜である、上述（１）〜（３）のいずれかに記載の方法。
（５）タンパク質がウサギモノクローナル抗体である、上述（１）〜（４）のいずれかに記載の方法。
（６）タンパク質が抗トリヨードサイロニンウサギモノクローナル抗体である、上述（１）〜（５）のいずれかに記載の方法。
【０００７】
以下、本発明を詳細に説明する。
【０００８】
（１）タンパク質生産細胞
タンパク質を生産しうる細胞は、目的タンパク質を生産しうる細胞であればよく、特に限定されない。浮遊性の細胞でも、付着性の細胞でもよい。ハイブリドーマのように、目的タンパク質を産生する細胞を不死化した細胞でもよいし、発現ベクターの形質導入によりタンパク質生産能を持たせた細胞でもよい。具体的にはＳＰ２／０細胞、ＹＢ２／０細胞、ＣＨＯ−Ｋ１細胞、ＣＨＯ−Ｓ細胞などがあげられる。目的タンパク質としては特に限定はないが、例えばモノクローナル抗体等の抗体があげられ、具体的にはウサギモノクローナル抗体、中でも抗トリヨードサイロニンウサギモノクローナル抗体があげられる。
【０００９】
（２）ホローファイバー培養装置
ホローファイバー培養装置は、中空糸膜によって、ＥＣＳとＩＣＳの２つの培養スペースに分割されている。中空糸膜は老廃物と栄養素を常時交換しているため、ＥＣＳ中の細胞は、新鮮培地が流れるＩＣＳから栄養素の供給を常に受けることができる。また、中空糸は半透過性であるため、細胞から生産された高分子のタンパク質はＥＣＳ中に留まる。結果として、ホローファイバー培養装置を用いた培養により、細胞の生産する高分子のタンパク質をＥＣＳ中に濃縮状態で集めることが可能となる。中空糸膜の種類は、培養を行う細胞の特性に合わせて選択すればよく、特に限定されない。ＣＨＯ−Ｋ１細胞を培養する際は、ポリスルホン系の中空糸膜が好ましい。
【００１０】
（３）界面活性剤
界面活性剤は、ホローファイバー培養装置による細胞へのダメージを低減する界面活性剤であればよく、特に限定されない。好ましくは非イオン界面活性剤、さらに好ましくはポリオキシエチレンポリオキシプロピレンブロックコポリマー（例えば商品名；ｐｌｕｒｏｎｉｃ  Ｆ６８（ライフテクノロジーズ社製））、または、ソルビタン系の界面活性剤（例えば商品名；ＴＷＥＥＮ  ２０（シグマ社製））等である。使用濃度は培養培地に対して、好ましくは０．０５％以上０．５％以下、さらに好ましくは０．１％以上０．２％以下である。
【００１１】
（４）界面活性剤共存の時期
細胞培養培地へ界面活性剤を共存させる時期は、ホローファイバー培養装置に細胞を播種する時と同時またはそれ以前が好ましいが、特に限定されない。好ましくは播種前の拡大培養時から培地中に共存させ、引き続き界面活性剤含有培地でホローファイバーを用いて培養する。さらに好ましくは、拡大培養前に細胞を界面活性剤含有培地で培養し、馴化した後に、界面活性剤含有培地で拡大培養を行い、引き続き界面活性剤含有培地でホローファイバーを用いて培養する。
【００１２】
（５）タンパク質の回収方法
目的タンパク質の回収方法は、ホローファイバー培養装置のＥＣＳ中の培養上清から回収するか、細胞を破砕して回収すればよく、特に限定されない。回収したタンパク溶液の精製は、例えば、疎水性カラムを用いたタンパク精製を行ってもよいし、イオン交換カラム、アフィニティーカラムを用いた精製を行ってもよい。目的タンパク質が抗体の場合には、プロテインＡカラムを用いたアフィニティー精製が好ましい。
【発明の効果】
【００１３】
本発明はホローファイバー培養装置で細胞を生育する際の培養培地中に、界面活性剤を共存させることを特徴としている。ホローファイバー培養装置では、静置培養と培養環境が異なるため、生育が進まない細胞が存在した。本発明では、培地中に界面活性剤を共存させることで、浮遊性の細胞はもちろん、付着性の細胞であっても、それまでホローファイバー培養装置中での生育が困難であった細胞を培養し、またタンパク質を回収することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１４】
【図１】実施例１でポリスルホン膜のホローファイバーを用い、培地中に界面活性剤を添加した培養培地中のグルコース濃度の変化を示す図である。
【図２】比較例１でセルロース膜のホローファイバーを用いた培養培地中のグルコース濃度の変化を示す図である。
【図３】比較例２でポリスルホン膜のホローファイバーを用いた培養培地中のグルコース濃度の変化を示す図である。
【実施例】
【００１５】
以下、実施例により本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。なお、細胞として特開２００９−２４０３００号公報に記載の方法により取得した抗トリヨードサイロニン（Ｔ３）ウサギモノクローナル抗体生産ＣＨＯ−Ｋ１細胞、界面活性剤として、非イオン界面活性剤であるポリオキシエチレンポリオキシプロピレンブロックコポリマー（商品名ｐｌｕｒｏｎｉｃ  Ｆ６８、ライフテクノロジーズ社製）、ホローファイバー培養装置としてＣｅｌｌｍａｘ  Ｄｕｏ（スペクトラムラボラトリーズ株式会社製）を用いた。
【００１６】
細胞成育の評価及びＥＣＳ中の抗体濃度の測定は以下に示す方法で行った。
【００１７】
（１）細胞成育の評価
細胞の生育の評価は、培地中のグルコース濃度をモニターすることで行った。グルコース濃度の測定には、ＧｌｕｃＣｅｌｌグルコースモニター（ワケンビーテック株式会社製）を用いて評価した。
【００１８】
（２）目的タンパク濃度（抗体濃度）の測定
抗体の生産量は以下に示す反応系のＥｎｚｙｍｅ−Ｌｉｎｋｅｄ  ＩｍｍｕｎｏＳｏｒｂｅｎｔ  Ａｓｓａｙ（ＥＬＩＳＡ）により評価した。
（２−１）抗ウサギ抗体（０．５μｇ／ｍＬ）をＥＬＩＳＡプレートに固定化後、１％スキムミルクでブロッキングした。
（２−２）濃度既知の抗Ｔ３ウサギモノクローナル抗体溶液の希釈系列を作製し、プレートに固定化された抗体と反応させた。固定化した抗ウサギ抗体に結合した抗Ｔ３ウサギモノクローナル抗体は、アルカリフォスファターゼ標識抗ウサギ抗体と結合させ、未反応の酵素標識抗体をＢ／Ｆ分離後、酵素基質である４−メチルウンベリフェリルリン酸（４−ＭＵＰ）を分注し、蛍光強度を測定することで、標準曲線を作成した。一方、測定対象の抗体溶液について同様の方法で反応を行い、前述の標準曲線から抗体濃度を測定した。
【００１９】
［実施例１］  ポリスルホン膜のホローファイバーと界面活性剤を用いた細胞培養
ポリスルホン膜と界面活性剤を用いた細胞培養は、抗Ｔ３ウサギモノクローナル抗体産生ＣＨＯ−Ｋ１細胞を、シャーレを用いた静置培養により界面活性剤を含む培地に馴化させた後、拡大培養し、３×１０７ｃｅｌｌｓをＥＣＳに播種することで開始した。培養培地は１０％のウシ血清（ＦＣＳ）を含んだＥ−ＲＤＦ培地（極東製薬工業株式会社製）を用いた。界面活性剤はＰｌｕｒｏｎｉｃ  Ｆ６８（ライフテクノロジーズ社製）を、培地に対して０．１％になるよう添加した。
【００２０】
培養経過中のグルコース濃度変化を図１に示す。縦軸に培地中のグルコース濃度、横軸に培養開始からの経過日数をプロットした。図中の点線矢印は培地交換を行った日数を、実線矢印は培地中に炭酸水素ナトリウムを添加しｐＨ調整を行った日数を示す。また点線矢印の上の数字はＩＣＳ中の総培地量（ｍＬ）を示す。ポリスルホン膜と界面活性剤を用いたホローファイバーでの培養では、培養開始から日数が経過しても、グルコース消費の速度が減少することはなかった。次に、使用した培地１Ｌあたりの抗体生産量を表１に示す。
【００２１】
【表１】
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【００２２】
培養開始から１２日が経過しても、抗体生産量が大きく低下することはなかった。また２週間以上の培養を続けても、抗体生産量が大きく低下することはなかった。
【００２３】
ＥＣＳ中の抗体は、ＥＣＳ中の培地を回収し、遠心により細胞を沈殿させ、上清をフィルターろ過した後、プロテインＡカラムによるアフィニティー精製を行うことで回収した。培養開始後１４日、１６日、１８日目に回収したＥＣＳ中の培地を合わせて抗体精製を行うことで、約１．０ｍｇの抗Ｔ３ウサギモノクローナル抗体を得た。
【００２４】
［比較例１］  セルロース膜のホローファイバーを用いた細胞培養
セルロース膜のホローファイバーでの培養は、シャーレを用いた静置培養により抗Ｔ３ウサギモノクローナル抗体産生ＣＨＯ−Ｋ１細胞を拡大培養し、３×１０７ｃｅｌｌｓをＥＣＳに播種することで開始した。培養培地は１０％のウシ血清（ＦＣＳ）を含んだＥ−ＲＤＦ培地（極東製薬工業株式会社製）を用いた。
【００２５】
培養経過中のグルコース濃度変化を図２に示す。縦軸に培地中のグルコース濃度、横軸に培養開始からの経過日数をプロットした。図中の点線矢印は培地交換を行った日数を、実線矢印は培地中に炭酸水素ナトリウムを添加しｐＨ調整を行った日数を示す。また点線矢印の上の数字はＩＣＳ中の総培地量（ｍＬ）を示す。セルロース膜のホローファイバーを用いた培養では、培地中のグルコース濃度が約２００ｍｇ／ｄＬになったところでグルコースの消費がストップした。また、培養開始初期からグルコース消費速度が遅く、培地交換を繰り返すごとに、グルコース消費速度が低下していった。この結果から、ＥＣＳ中の生細胞数が減少していることが示唆された。
【００２６】
［比較例２］  ポリスルホン膜のホローファイバーを用いた細胞培養
ポリスルホン膜での細胞培養も、比較例１と同様に、シャーレを用いた静置培養により抗Ｔ３ウサギモノクローナル抗体産生ＣＨＯ−Ｋ１細胞を拡大培養し、３×１０７ｃｅｌｌｓをＥＣＳに播種することで開始した。培養培地は１０％のウシ血清（ＦＣＳ）を含んだＥ−ＲＤＦ培地（極東製薬工業株式会社製）を用いた。
【００２７】
培養経過中のグルコース濃度変化を図３に示す。縦軸に培地中のグルコース濃度、横軸に培養開始からの経過日数をプロットした。図中の点線矢印は培地交換を行った日数を、実線矢印は培地中に炭酸水素ナトリウムを添加しｐＨ調整を行った日数を示す。また点線矢印の上の数字はＩＣＳ中の総培地量（ｍＬ）を示す。ポリスルホン膜のホローファイバーを用いた培養では、培養開始から２５日までは、日数が経過してもグルコース消費の速度が減少することはなかった。次に、使用した培地１Ｌあたりの抗体生産量を表２に示す。
【００２８】
【表２】
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【００２９】
培養開始から１４日が経過すると抗体生産量は大幅に低下（８０μｇ／Ｌ）し、１８日が経過すると抗体生産は５μｇ／ｍＬ未満へと低下した。以上の結果から、ポリスルホン膜のホローファイバーを用いた細胞培養では、細胞の生育は可能であるが、抗体の生産は連続的に行えないことが考えられる。
【００３０】
以上の結果から、ホローファイバーを用いたＣＨＯ細胞の培養において、比較例のような通常条件では生育困難な細胞でも、界面活性剤の添加により継続した培養が可能となり、かつ目的タンパク質を連続して生産可能となることがわかる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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