(57)【要約】      （修正有）【課題】マウス大腸癌Ｃｏｌｏｎ２６の転移研究、治療等に有用な新規ＤＮＡアプタマーの提供。【解決手段】特定の配列で示されるヌクレオチド配列から選択される少なくとも１つのヌクレオチド配列を有し、マウス大腸癌細胞に対して特異的に結合するＤＮＡアプタマー。ＤＮＡアプタマーを含む、マウス大腸癌細胞の検出用組成物、検出用キット。ＤＮＡアプタマーを用いるマウス大腸癌検出方法。ＤＮＡアプタマーを含有する、マウス大腸癌の転移研究又は治療用医薬組成物。前記医薬組成物の製造のためのＤＮＡアプタマーの使用。ＤＮＡアプタマーを含有するマウス大腸癌の転移研究又は治療用ドラッグデリバリーシステム。前記マウス大腸癌細胞がＣｏｌｏｎ２６細胞であり、前記ＤＮＡアプタマーが、糖鎖部分がリン酸エステル部分及び核酸塩基部分のいずれかの部分での化学的置換からなる化学修飾を少なくも１つしており、５’末端又は３’末端に蛍光色素を有する。【選択図】図１
2015019607.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
配列番号１〜１４で示される配列から選択される少なくとも１つのヌクレオチド配列を有し、マウス大腸癌細胞に対して特異的に結合することを特徴とするＤＮＡアプタマー。
【請求項２】
配列番号１〜１４で示される配列から選択される少なくとも１つのヌクレオチド配列において、１〜３個のヌクレオチドの置換、欠失、又は付加を含む配列を有し、マウス大腸癌細胞に対して特異的に結合することを特徴とするＤＮＡアプタマー。
【請求項３】
マウス大腸癌細胞に対して特異的に結合するＤＮＡアプタマーであって、
５’−Ｐ１−Ｘ−Ｐ２−３’
で表されるヌクレオチド配列を有し、ここで、
Ｘは、１）配列番号１〜１４で示される配列から選択されるヌクレオチド配列、又は２）配列番号１〜１４で示される配列から選択されるヌクレオチド配列において１〜３個のヌクレオチドの置換、欠失、又は付加を含む配列であり、
Ｐ１及びＰ２は、ＰＣＲ増幅のために導入された第１及び第２プライマー認識配列である
該ＤＮＡアプタマー。
【請求項４】
Ｐ１は、配列番号１５で示される第１プライマー認識配列であり、及び
Ｐ２は、配列番号１６で示される第２プライマー認識配列である、請求項３に記載のＤＮＡアプタマー。
【請求項５】
前記マウス大腸癌細胞が、Ｃｏｌｏｎ２６細胞である、請求項１〜４のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマー。
【請求項６】
糖鎖部分での化学的置換、リン酸エステル部分での化学的置換及び核酸塩基部分での化学的置換から成る群より選択される、少なくとも１つの化学修飾を含む、請求項１〜５のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマー。
【請求項７】
５’末端又は３’末端に蛍光標識を有する、請求項１〜６のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマー。
【請求項８】
前記蛍光標識が、グリーンフルオレセントプロテイン（ＧＦＰ）、蛍光たんぱく質、フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）、６−カルボキシフルオロセイン−アミノヘキシル、フルオレセイン誘導体、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ３５０、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４０５、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ６４７、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ７５０、ローダミン、６−カルボキシテトラメチルローダミン、ＴＡＭＲＡ（登録商標）、フィコエリスリン（ＰＥ）、フィコシアニン（ＰＣ）、ＰＣ５、ＰＣ７、Ｃｙ色素、Ｃｙ３、Ｃｙ３．５、Ｃｙ５、Ｃｙ５．５、Ｃｙ７、ＴｅｘａｓＲｅｄ、アロフィコシアニン（ＡＰＣ）、アミノメチルクマリンアセテート（ＡＭＣＡ）、Ｍａｒｉｎａ  Ｂｌｕｅ、  Ｃａｓｃａｄｅ  Ｂｌｕｅ、  Ｃａｓｃａｄｅ  Ｙｅｌｌｏｗ、  Ｐａｃｉｆｉｃ  Ｂｌｕｅ、  ＳＰＲＤ、  テトラメチルローダミンイソチオシアネート（ＴＲＩＴＣ）、Ｒ１１０、ｍＣ１Ｂ、ＣｅｌｌＴｒａｃｋｅｒ色素、ＣＦＳＥ、ＪＣ−１、ＰＫＨ、ＤＣＦＨ−ＤＡ、ＤＨＲ、ＦＤＡ、Ｃａｌｃｅｉｎ  ＡＭ、ニトロベンゾオキサジアゾール（ＮＢＤ）基、ジメチルアミノスルホニルベンゾオキサジアゾール基、ａｃｒｉｄｉｎｅ（Ａｃｄ）、ｄａｎｓｙｌ（Ｄｎｓ）、７−ジメチルアミノクマリン−４−アセティックアシッド（ＤＭＡＣＡ）、５−（（２−アミノエチル）アミノ）ナフタレン−１−スルホニックアシッド（ＥＤＡＮＳ）、ナフタレン、アントラセン及びプロトポルフィリン９から選ばれる一種以上を含む発光波長４２１nmから７１２nmの有機系蛍光団である、請求項７に記載のＤＮＡアプタマー。
【請求項９】
請求項１〜８のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマーが蛍光発光し得る金属ナノ粒子（量子ドット）表面に吸着されているＤＮＡアプタマー。
【請求項１０】
５‘末端または３’末端に蛍光標識を有する請求項１〜８のいずれかに記載のＤＮＡアプタマーがラマン散乱活性を有する金属である金、銀、銅、鉄及び珪素から選ばれる一種以上の粒子に吸着されているＤＮＡアプタマー。
【請求項１１】
請求項１〜１０のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマーを含む、マウス大腸癌細胞の検出用組成物。
【請求項１２】
請求項１〜１０のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマーを含む、マウス大腸癌細胞の検出用キット。
【請求項１３】
請求項１〜１０のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマーを用いることを特徴とする、マウス大腸癌検出方法。
【請求項１４】
前記ＤＮＡアプタマーをマウス大腸細胞、大腸組織、血液、血清及び、血漿よりなる群から選択される生体から採取された試料と接触させる工程、及び当該試料とＤＮＡアプタマーとの結合による応答を観測することによってマウス大腸癌細胞の存在を検出する工程を含む、請求項１３に記載の検出方法。
【請求項１５】
前記応答が、蛍光応答である、請求項１４に記載の検出方法。
【請求項１６】
請求項１〜１０のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマーを含有する、マウス大腸癌の転移研究又は治療用医薬組成物。
【請求項１７】
マウス大腸癌の転移研究又は治療用医薬組成物の製造のための請求項１〜１０のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマーの使用。
【請求項１８】
請求項１〜１０のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマーを含有する、マウス大腸癌の転移研究又は治療用ドラッグデリバリーシステム。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、マウス大腸癌（Ｃｏｌｏｎ２６）細胞に対して特異的に結合し得る核酸、及び該核酸を含む組成物を提供することを課題とする。
【背景技術】
【０００２】
大腸癌は、近年日本人の発症傾向増加が顕著に認められる癌としてその診断・治療に関する研究が急がれている。大腸癌2015年には現在羅患数が第一位である肺癌を抜くことが予想されており、特に死亡率において男性では、肺癌、肝臓癌に次いで第3位に、女性では最も多くなると推定されている。この大腸癌においては、癌の転移を抑制することが重要とされ様々な研究が行われている。転移の過程には転移性癌細胞と種々の宿主細胞(血小板、リンパ球、内皮細胞)と細胞外マトリックスや基底膜との相互作用が関与していることが知られている。
【０００３】
肝臓は一般的に消化器系癌の転移、特に大腸癌の血行性転移の標的となる臓器であり、しかも肝転移を伴う大腸癌の予後は極めて悪い（非特許文献１、２、３、４、５）。従って大腸癌の肝転移メカニズムを明らかにすることは、大腸癌における生存率の向上に重要と考えられている。この肝転移の研究を行うにあたり、Ｆｉｄｌｅｒらが開発した肝転移モデルマウスによる実験は癌の転移メカニズムを明確にする上で必要不可欠なものとなっている(非特許文献  ６，７)。
【０００４】
これら大腸癌の研究として、Ｉｎ  Ｖｉｔｒｏ（試験管内）実験において多く用いられるのがマウス大腸癌（Ｃｏｌｏｎ２６）細胞であり、またIn Vivo観察においても蛍光染色したＣｏｌｏｎ２６細胞の肝臓転移研究が一般的に行われている。この様にマウス大腸癌ではあるがＣｏｌｏｎ２６は大腸癌に関する非常に多くの研究に用いられている実験用細胞であり、これらＣｏｌｏｎ２６を染色できる試薬は非常に有用である。
【０００５】
Ｃｏｌｏｎ２６を含む全ての細胞は、その細胞が産生するたんぱく質によりその表面が覆われている。これら発現したたんぱく質に対して特定の配列を有する核酸が吸着することは既に多くの文献に紹介されている。（例えば、特許文献１及び２）これら特定のターゲットに対して特異的に吸着しうる核酸配列はアプタマーと呼ばれている。これらアプタマーは化学合成法による製造が可能であることが特徴である。従って、従来病因たんぱく質と特異的に吸着するものの代表的存在であった抗体のように、生体内で合成する必要がない。これらアプタマーを診断に用いる場合は蛍光標識を行い蛍光顕微鏡での検出が多く用いられている（例えば非特許文献８）。
【０００６】
これらＣｏｌｏｎ２６に対して特異的に吸着する新規のアプタマーの探索には試験管内進化法（in vitro selection法）が最も有効な手段として用いられている。特にSELEX（Systematic Evolution of Ligands by Exponential enrichment）法は大きく分けて目的核酸分子の選別と選別されたアプタマーの増幅の2ステップがある。（例えば特許文献３）この選別と増幅を選択圧を高めながら繰り返すことにより、高い親和性を有する核酸断片が得られる。さらに、近年では様々な改良が加えられ、より少ないサイクル回数でアプタマーを回収できる、効率・選択性において優れた手法や、低分子やタンパク質だけでなく細胞や組織（正確には、表面に存在する分子）に結合するアプタマーを得る手法（Ｃｅｌｌ−ＳＥＬＥＸ法；例えば、非特許文献９）などが報告されている。この手法は従来のSELEX法に比べ、膜たんぱく質の解析が不要であること、細胞表面に存在する様々な膜たんぱく質のアプタマーを同時に選別できること、さらに、目的細胞とより特異的に結合するアプタマーを選抜できると言った特徴がある。これらアプタマーは従来診断、治療に用いられてきた抗体の特性でもあるターゲットに対する高親和性や特異性は言うまでも無く、化学的に短時間で合成することが可能であり、さらにその分子修飾も安価に行うことができ、作用機序が単純で、免疫原性もほとんどないという、抗体にはない様々な利点がある。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００７】
【特許文献１】特開２００６−１４９３０２
【特許文献２】特開２０１１−９２１３８
【特許文献３】国際公開ＷＯ９１／１９８１３
【非特許文献】
【０００８】
【非特許文献１】Nicolson G. L., Cancer Res., 47, 1473-1487(1987).
【非特許文献２】Terranova V.P., Hujanen E.S.Martin G. R., J.Natl. Cancer Inst., 77,311-316(1986).
【非特許文献３】Fidler I.J., Cancer Res., 50, 6130-6138(1990).
【非特許文献４】Fidler I.J., Nat. Rev. Cancer, 3, 453-458(2003).
【非特許文献５】Kota Funamoto, Hideaki Ichihara, Taku Matsushita.,YAKUGAKU ZASSHI 129(4), 465-473(2009)
【非特許文献６】Giavazzi R., Jessup J.M.,Campbell D.E., Walker S.M., Fidler I;J. Natl Cancer Inst., 77, 1303-1308(1986).
【非特許文献７】Ishizu K., Sunose N., Yamazaki K., TsuruoT., Sadahiro S., MakuuchiH., Yamori T., Biol. Pharm. Bull., 30, 1779-1783(2007).
【非特許文献８】Yen-An Shieh, Shu-JyuanYang, Ming-Feng Wei and Ming-JiumShieh., ACS NANO., Vol.4, No.3, 1433-1442, 2010.
【非特許文献９】Ｇｕｏ，ｅｔ ａｌ.，Ｉｎｔ.Ｊ.Ｍｏｌ.Ｓｃｉ.，９(４)：６６８，２００８
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
以上のような背景の下に、本発明は、大腸癌の診断、治療、及び転移予防等の研究に有用なマウス大腸癌（Ｃｏｌｏｎ２６）に関わる新規ＤＮＡアプタマーを提供することを課題とするものである
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明者らは、上記課題を解決するべく鋭意検討を行った結果、Ｃｅｌｌ−ＳＥＬＥＸ法を用いることによってマウス大腸癌Ｃｏｌｏｎ２６細胞に対して特異的な結合能を有するヌクレオチド配列を特定し、当該特定の配列を有するＤＮＡがマウス大腸癌Ｃｏｌｏｎ２６細胞に対する特異的アプタマーとして機能し得ることを新規に見出し、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は、一つの態様において、
（１）配列番号１〜１４で示される配列から選択される少なくとも１つのヌクレオチド配列を有し、マウス大腸癌細胞に対して特異的に結合することを特徴とするＤＮＡアプタマー；
（２）配列番号１〜１４で示される配列から選択される少なくとも１つのヌクレオチド配列において、１〜３個のヌクレオチドの置換、欠失、又は付加を含む配列を有し、マウス大腸癌細胞に対して特異的に結合することを特徴とするＤＮＡアプタマー；
（３）マウス大腸癌細胞に対して特異的に結合するＤＮＡアプタマーであって、
５’−Ｐ１−Ｘ−Ｐ２−３’
で表されるヌクレオチド配列を有し、
ここで、Ｘは、１）配列番号１〜１４で示される配列から選択されるヌクレオチド配列、又は２）配列番号１〜１４で示される配列から選択されるヌクレオチド配列において１〜３個のヌクレオチドの置換、欠失、又は付加を含む配列であり、
Ｐ１及びＰ２は、ＰＣＲ増幅のために導入された第１及び第２プライマー認識配列である、
該ＤＮＡアプタマー；
（４）  Ｐ１は、配列番号１５で示される第１プライマー認識配列であり、及びＰ２は、配列番号１６で示される第２プライマー認識配列である、上記（３）に記載のＤＮＡアプタマー。
（５）前記マウス大腸癌細胞が、Ｃｏｌｏｎ２６細胞である、上記（１）〜（４）のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマー；
（６）糖鎖部分での化学的置換、リン酸エステル部分での化学的置換及び核酸塩基部分での化学的置換から成る群より選択される、少なくとも１つの化学修飾を含む、上記（１）〜（５）のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマー；
（７）５’末端又は３’末端に蛍光標識を有する、上記（１）〜（６）のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマー；
（８）前記蛍光標識が、グリーンフルオレセントプロテイン（ＧＦＰ）、蛍光たんぱく質、フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）、６−カルボキシフルオロセイン−アミノヘキシル、フルオレセイン誘導体、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ３５０、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４０５、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ６４７、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ７５０、ローダミン、６−カルボキシテトラメチルローダミン、ＴＡＭＲＡ（登録商標）、フィコエリスリン（ＰＥ）、フィコシアニン（ＰＣ）、ＰＣ５、ＰＣ７、Ｃｙ色素、Ｃｙ３、Ｃｙ３．５、Ｃｙ５、Ｃｙ５．５、Ｃｙ７、ＴｅｘａｓＲｅｄ、アロフィコシアニン（ＡＰＣ）、アミノメチルクマリンアセテート（ＡＭＣＡ）、Ｍａｒｉｎａ  Ｂｌｕｅ、  Ｃａｓｃａｄｅ  Ｂｌｕｅ、  Ｃａｓｃａｄｅ  Ｙｅｌｌｏｗ、  Ｐａｃｉｆｉｃ  Ｂｌｕｅ、  ＳＰＲＤ、  テトラメチルローダミンイソチオシアネート（ＴＲＩＴＣ）、Ｒ１１０、ｍＣ１Ｂ、ＣｅｌｌＴｒａｃｋｅｒ色素、ＣＦＳＥ、ＪＣ−１、ＰＫＨ、ＤＣＦＨ−ＤＡ、ＤＨＲ、ＦＤＡ、Ｃａｌｃｅｉｎ  ＡＭ、ニトロベンゾオキサジアゾール（ＮＢＤ）基、ジメチルアミノスルホニルベンゾオキサジアゾール基、ａｃｒｉｄｉｎｅ（Ａｃｄ）、ｄａｎｓｙｌ（Ｄｎｓ）、７−ジメチルアミノクマリン−４−アセティックアシッド（ＤＭＡＣＡ）、５−（（２−アミノエチル）アミノ）ナフタレン−１−スルホニックアシッド（ＥＤＡＮＳ）、ナフタレン、アントラセン及びプロトポルフィリン９から選ばれる一種以上を含む発光波長４２１nmから７１２nmの有機系蛍光団である上記（７）に記載のＤＮＡアプタマー；
（９）（１）〜（８）のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマーが蛍光発光し得る金属ナノ粒子（量子ドット）表面に吸着されているＤＮＡアプタマー；
（１０）５‘末端または３’末端に蛍光標識を有する（１）〜（８）のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマーがラマン散乱活性を有する金属である金、銀、銅、鉄及び珪素から選ばれる一種以上の粒子に吸着した形態を有する。
【００１１】
別の態様において、本発明は、上記ＤＮＡアプタマーによるマウス大腸癌細胞の検出に関し、詳細には、
（１１）上記（１）〜（１０）のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマーを含む、マウス大腸癌細胞の検出用組成物；
（１２）上記（１）〜（１０）のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマーを含む、マウス大腸癌細胞の検出用キット；
（１３）上記（１）〜（１０）のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマーを用いることを特徴とする、マウス大腸癌の検出方法；及び
（１４）前記ＤＮＡアプタマーをマウス大腸細胞、マウス大腸組織、血液、血清及び、血漿よりなる群から選択されるマウス生体から採取された試料と接触させる工程、及び当該試料とＤＮＡアプタマーとの結合による応答を観測することによってマウス大腸癌細胞の存在を検出する工程を含む、上記（１３）に記載の検出方法；
（１５）前記応答が、蛍光応答である、上記（１４）に記載の検出方法
（１６）前記応答が、ラマン散乱応答である上記（１４）記載の検出方法
に関する。
【００１２】
更なる態様において、本発明は、上記ＤＮＡアプタマーを医薬組成物及びドラッグデリバリーシステムに用いることに関し、詳細には、
（１７）上記（１）〜（１０）のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマーを含有する、マウス大腸癌の転移研究又は治療用医薬組成物；
（１８）マウス大腸癌の転移研究又は治療用医薬組成物の製造のための上記（１）〜（１０）のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマーの使用；
（１９）上記（１）〜（１０）のいずれか１に記載のＤＮＡアプタマーを含有する、マウス大腸癌細胞の転移研究又は治療用ドラッグデリバリーシステム
に関する。
【発明の効果】
【００１３】
本発明によれば、マウス大腸癌細胞に対して特異的に結合する新規ＤＮＡアプタマーを用いることによって、かかるヒト大腸癌の肝臓転移に関わるモデル研究の効率的な検討が可能となる。特に、蛍光標識等の検出部位を付与したＤＮＡアプタマーを含むキット等に応用することで、マウス生体から採取した細胞や組織を測定対象とする簡便かつハイスループットな蛍光癌転移検出又は蛍光イメージングを行うことができる。また、さらに前記の蛍光標識を施したDNAアプタマーを金属ナノ粒子に固着させた分散液を含むキット等に応用することで、マウス生体から採取した大腸癌細胞や組織を測定対象とする簡便かつハイスループットなラマンによる癌転移検出又はラマン散乱イメージングを行うことができる。そのようなマウス大腸癌細胞の検出によって、癌の発症や転移の有無、癌の予後や悪性度の診断が可能となる。
【００１４】
また、本発明のＤＮＡアプタマーはマウス大腸癌細胞に対して特異的に結合し得るという性質を有することから、上記ＤＮＡアプタマーに抗癌剤等の薬物をコンジュゲートさせて用いることによって、当該薬剤をターゲット部位に確実に作用させることが可能となるため、大腸癌の転移研究又は治療用医薬組成物又はかかる医薬組成物のためのドラッグデリバリーシステムとしても有用性が期待できる。
【００１５】
さらに、本発明のＤＮＡアプタマーにおけるコンセンサス配列は、わずか３０塩基程度の比較的短い領域であることから、製造のための手間やコストを抑制すること、及び種々の用途に応じて所望の化学修飾や更なる機能の付加を行うことが容易であるという利点も有する。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】図１は、磁性粒子を用いた２本鎖ＤＮＡの１本鎖化を示す模式図である。
【図２】図２は、配列番号１を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の実像図である。
【図３】図３は、配列番号１を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の蛍光イメージング図である。
【図４】図４は、配列番号２を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の実像図である。
【図５】図５は、配列番号２を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の蛍光イメージング図である。
【図６】図６は、配列番号３を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の実像図である。
【図７】図７は、配列番号３を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の蛍光イメージング図である。
【図８】図８は、配列番号４を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の実像図である。
【図９】図９は、配列番号４を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の蛍光イメージング図である。
【図１０】図１０は、配列番号５を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の実像図である。
【図１１】図１１は、配列番号５を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の蛍光イメージング図である。
【図１２】図１２は、配列番号６を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の実像図である。
【図１３】図１３は、配列番号６を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の蛍光イメージング図である。
【図１４】図１４は、配列番号７を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の実像図である。
【図１５】図１５７は、配列番号７を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の蛍光イメージング図である。
【図１６】図１６は、配列番号８を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の実像図である。
【図１７】図１７は、配列番号８を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の蛍光イメージング図である。
【図１８】図１８は、配列番号９を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の実像図である。
【図１９】図１９は、配列番号９を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の蛍光イメージング図である。
【図２０】図２０は、配列番号９を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の実像図である。
【図２１】図２１は、配列番号９を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の蛍光イメージング図である。
【図２２】図２２は、配列番号１０を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の実像図である。
【図２３】図２３は、配列番号１０を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の蛍光イメージング図である。
【図２４】図２４は、配列番号１１を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の実像図である。
【図２５】図２５は、配列番号１１を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の蛍光イメージング図である。
【図２６】図２６は、配列番号１２を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の実像図である。
【図２７】図２７は、配列番号１２を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の蛍光イメージング図である。
【図２８】図２８は、配列番号１３を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の実像図である。
【図２９】図２９は、配列番号１３を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の蛍光イメージング図である。
【図３０】図３０は、配列番号１４を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の実像図である。
【図３１】図３１は、配列番号１４を有するＤＮＡアプタマーによるＣｏｌｏｎ２６細胞の蛍光イメージング図である。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
以下、本発明の実施形態について説明する。本発明の範囲はこれらの説明に拘束されることはなく、以下の例示以外についても、本発明の趣旨を損なわない範囲で適宜変更し実施することができる。
【００１８】
１．ＤＮＡアプタマー
本願において「ＤＮＡアプタマー」とは、ターゲットとなる分子や物質を特異的に認識できる一本鎖オリゴＤＮＡを意味し、本発明に係るＤＮＡアプタマーは、マウス大腸癌細胞に対して特異的に結合する機能を有する一本鎖オリゴＤＮＡである。
本発明に係るＤＮＡアプタマーの結合ターゲットとしては、好ましくは大腸癌細胞であり、より好ましくはマウス大腸癌細胞であり、より好ましくはＣｏｌｏｎ２６細胞である。Ｃｏｌｏｎ２６細胞は杏林医学会雑誌２２（３）、４１３−４２２，１９９１、近畿大学医学雑誌１７（２）、２６５−２７２，１９９２、等に記載されている。典型的な態様において、本発明に係るＤＮＡアプタマーは、以下に示す配列番号１〜１４のいずれかで表されるヌクレオチド配列を有する。なお、本明細書においては、ヌクレオチド配列は、５’末端から３’末端方向に左から右に記載する。
【００１９】
＜配列番号１＞
ＣＧＧＴＣＡＴＡＧＡＣＧＣＧＧＧＴＴＡＧＧＴＴＣＴＴＴＧＴＧＧＧＣＣ
＜配列番号２＞
ＣＧＡＴＡＴＴＧＧＧＧＴＡＴＣＣＧＧＴＧＧＴＧＴＧＧＴＧＧＧＧＧＣＧ
＜配列番号３＞
ＧＧＡＧＴＧＣＧＣＡＴＧＧＧＡＧＴＡＧＴＴＴＧＴＣＴＧＴＴＣＧＴＧＴ
＜配列番号４＞
ＧＴＴＡＧＣＴＣＧＧＴＣＧＡＧＴＡＴＧＧＴＧＧＴＴＣＧＴＧＧＧＧＣＴ
＜配列番号５＞
ＧＴＧＧＣＡＧＴＧＴＧＴＴＡＴＴＡＴＴＡＧＡＧＴＡＣＣＧＧＧＣＡＴＧ
＜配列番号６＞
ＣＧＡＴＡＴＴＧＧＧＧＴＡＴＣＣＧＧＴＧＧＴＧＴＧＧＴＧＧＧＧＧＣＧ
＜配列番号７＞
ＣＴＧＴＧＧＣＴＴＴＡＴＴＴＣＡＡＴＧＧＴＧＴＣＡＧＣＴＧＴＧＧＴＣ
＜配列番号８＞
ＧＡＣＧＴＧＴＧＣＣＣＴＧＣＧＧＴＧＴＧＴＧＴＧＴＧＴＧＧＣＧＧＴＣ
＜配列番号９＞
ＧＴＧＴＧＣＡＧＣＴＧＧＧＧＴＧＧＴＴＣＡＧＧＧＴＧＴＴＣＧＣＧＴＣ
＜配列番号１０＞
ＣＣＧＣＴＧＧＧＣＣＴＧＧＧＣＧＧＧＴＧＴＧＴＴＴＴＧＴＴＣＧＣＧＣ
＜配列番号１１＞
ＣＧＡＧＴＧＣＡＣＴＡＧＴＴＡＧＧＴＧＴＡＴＧＴＴＣＴＧＧＴＧＧＣＣ
＜配列番号１２＞
ＧＴＴＡＣＧＣＧＴＴＡＣＧＧＧＴＴＴＧＧＴＣＧＴＣＧＧＴＧＧＧＧＣＣ
＜配列番号１３＞
ＧＴＧＧＴＴＧＧＡＣＣＧＧＧＧＴＴＴＧＴＣＧＴＧＧＴＣＧＧＧＧＧＣＣ
＜配列番号１４＞
ＡＧＴＧＧＧＧＧＴＣＡＴＧＧＡＴＧＧＴＧＧＧＧＧＧＴＴＧＧＣＧＧＣＣ
【００２０】
本発明に係るＤＮＡアプタマーは、マウス大腸癌細胞に対して特異的に結合するという機能を有する限り、上記配列番号１〜１４配列における１もしくは複数のヌクレオチドが置換、欠失、又は付加された配列であってもよい。好ましくは、当該置換、欠失、又は付加されるヌクレオチドは、１〜３個であり、より好ましくは１又は２個であり、さらに好ましくは１個である。
【００２１】
また、かかるヌクレオチドの置換、欠失、又は付加が存在する場合、本発明に係るＤＮＡアプタマーの配列は、上記配列番号１〜１４のそれぞれと９０％以上、好ましくは９３％以上、さらに好ましくは９６％以上の相同性である配列（以下、「相同体」という場合がある。）であることができる。ここで、本明細書で用いる場合、用語「相同性」は、当該技術分野で一般に認められた意味を示す。該用語は、典型的には配列解析プログラムによって（例えば、Ｋａｒｌｉｎ及びＡｌｔｓｃｈｕｌ，１９９０，ＰＮＡＳ  ８７：２２６４−２２６８；Ｋａｒｌｉｎ及びＡｌｔｓｃｈｕｌ，１９９３，ＰＮＡＳ  ９０：５８７３−５８７７）または目視検査によって調べたとき、参照核酸配列の同一のヌクレオチドにマッチした主題の核酸配列のヌクレオチドの数をいう。
【００２２】
１もしくは複数のヌクレオチドが置換される場合、当該置換はユニバーサル塩基によってなされることができる。用語「ユニバーサル塩基」は、当該技術分野で一般に認められたその意味を示す。すなわち、該用語は、一般的に、標準ＤＮＡ／ＲＮＡの各塩基とほとんど区別なく塩基対を形成し、細胞内酵素によって認識されるヌクレオチド塩基類似体をいう（例えば、Ｌｏａｋｅｓら，１９９７，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏ．２７０：４２６−４３５）。ユニバーサル塩基の非限定的な例としては、Ｃ−フェニル、Ｃ−ナフチル及び他の芳香族の誘導体、イノシン、アゾールカルボザミド（ｃａｒｂｏｚａｍｉｄｅ）、ならびにニトロアゾール誘導体（３’−ニトロピロール、４−ニトロインドール、５−ニトロインドール、及び６−ニトロインドールなど）が挙げられる（Ｌｏａｋｅｓ，２００１，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２９：２４３７）。
【００２３】
また、本発明に係るＤＮＡアプタマーは、マウス大腸癌細胞に対して特異的に結合するという機能を有する限り、その長さに上限はない。しかし、合成の容易さや抗原性の問題等を考慮すると、本実施の形態におけるＤＮＡアプタマーの長さは、上限としては、例えば２００塩基以下、好ましくは１５０塩基以下、より好ましくは１００塩基以下である。
【００２４】
全塩基の数が少ない場合、化学合成及び大量生産がより容易で、かつ費用面における長所も大きい。また、化学修飾も容易で生体内の安全性も高く、毒性も低くなる。下限としては、上記配列番号１〜２４における塩基数以上、すなわち３３塩基又は３４塩基以上である。ＤＮＡアプタマーは１本鎖（ｓｓＤＮＡ）であることが好ましいが、ヘアピンループ型の構造をとることにより部分的に２本鎖構造を形成する場合であっても、そのＤＮＡアプタマーの長さは１本鎖の長さとして計算するものとする。
【００２５】
好ましい実施態様において、本発明に係るＤＮＡアプタマーは、上記配列番号１〜１４のいずれかの配列、及びその５’及び３’末端側にそれぞれプライマー認識配列よりなるヌクレオチド配列であることができる。すなわち、この場合、当該ＤＮＡアプタマーは、
５’−Ｐ１−Ｘ−Ｐ２−３’
で表されるヌクレオチド配列を有する。ここで、Ｘは、配列番号１〜１４で示される配列から選択されるヌクレオチド配列、又はそれらの配列において１〜３個のヌクレオチドの置換、欠失、又は付加を含む配列である。Ｐ１及びＰ２は、ＰＣＲ増幅のために導入された第１及び第２プライマー認識配列である。好ましくは、Ｐ１は、ＧＣＣ  ＴＧＴ  ＴＧＴ  ＧＡＧ  ＣＣＴ  ＣＣＴ(配列番号１５)であり、及びＰ２は、ＣＧＣ  ＴＴＡ  ＴＴＣ  ＴＴＧ  ＴＣＴ  ＣＣＣ（配列番号１６）である。
【００２６】
本発明に係るＤＮＡアプタマーは、生体内における安定性の増大のために、化学修飾されていてもよい。そのような化学修飾の非限定的な例としては、糖鎖部分での化学的置換（例えば、２’−０メチル化）、リン酸エステル部分での化学的置換（例えば、ホスホロチオエート化、アミノ基、低級アルキルアミノ基、アセチル基等）、及び塩基部分での化学的置換が挙げられる。同様に、５’又は３’末端に付加的な塩基を有することもできる。該付加的塩基の長さは通常５塩基以下である。該付加的塩基は、ＤＮＡでもＲＮＡでもよいが、ＤＮＡを用いるとアプタマーの安定性を向上させることができる場合がある。このような付加的塩基の配列としては、例えばｕｇ−３’、ｕｕ−３’、ｔｇ−３’、ｔｔ−３’、ｇｇｇ−３’、ｇｕｕｕ−３’、ｇｔｔｔ−３’、ｔｔｔｔｔ−３’、ｕｕｕｕｕ−３’などの配列が挙げられるが、これらに限定されるものではない。
【００２７】
また、本発明に係るＤＮＡアプタマーは、後述のマウス大腸癌細胞の検出方法又は当該検出用キットにおいて用いるために、例えば５’末端又は３’末端に連結した検出標識を有することができる。かかる検出標識としては、蛍光標識が好ましいが、ラマン散乱標識、酵素標識、さらに赤外線標識を用いてもよい。
【００２８】
蛍光標識は、当該技術分野において慣用されている蛍光標識剤を用いることができるが、例えば、グリーンフルオレセントプロテイン（ＧＦＰ）、蛍光たんぱく質、フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）、６−カルボキシフルオロセイン−アミノヘキシル、フルオレセイン誘導体、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ３５０、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４０５、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ６４７、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ７５０、ローダミン、６−カルボキシテトラメチルローダミン、ＴＡＭＲＡ（登録商標）、フィコエリスリン（ＰＥ）、フィコシアニン（ＰＣ）、ＰＣ５、ＰＣ７、Ｃｙ色素、Ｃｙ３、Ｃｙ３．５、Ｃｙ５、Ｃｙ５．５、Ｃｙ７、ＴｅｘａｓＲｅｄ、アロフィコシアニン（ＡＰＣ）、アミノメチルクマリンアセテート（ＡＭＣＡ）、Ｍａｒｉｎａ  Ｂｌｕｅ、  Ｃａｓｃａｄｅ  Ｂｌｕｅ、  Ｃａｓｃａｄｅ  Ｙｅｌｌｏｗ、  Ｐａｃｉｆｉｃ  Ｂｌｕｅ、  ＳＰＲＤ、  テトラメチルローダミンイソチオシアネート（ＴＲＩＴＣ）、Ｒ１１０、ｍＣ１Ｂ、ＣｅｌｌＴｒａｃｋｅｒ色素、ＣＦＳＥ、ＪＣ−１、ＰＫＨ、ＤＣＦＨ−ＤＡ、ＤＨＲ、ＦＤＡ、Ｃａｌｃｅｉｎ  ＡＭ、ニトロベンゾオキサジアゾール（ＮＢＤ）基、ジメチルアミノスルホニルベンゾオキサジアゾール基、ａｃｒｉｄｉｎｅ（Ａｃｄ）、ｄａｎｓｙｌ（Ｄｎｓ）、７−ジメチルアミノクマリン−４−アセティックアシッド（ＤＭＡＣＡ）、５−（（２−アミノエチル）アミノ）ナフタレン−１−スルホニックアシッド（ＥＤＡＮＳ）、ナフタレン、アントラセン及びプロトポルフィリン９など市販のオリゴヌクレオチド固相合成サービスで導入できる蛍光団が挙げられる。
【００２９】
さらに、蛍光物質の近傍に該蛍光物質の発する蛍光エネルギーを吸収するクエンチャー（消光物質）がさらに結合されていてもよい。かかる実施態様においては、検出反応の際に蛍光物質とクエンチャーとが分離して蛍光が検出される。
【００３０】
酵素標識の例としては、β−ガラクトシダーゼ、β−グルコシダーゼ、アルカリフォスファターゼ、パーオキシダーゼ、リンゴ酸脱水素酵素等が挙げられる。また、発光基質として、ルミノール、ルミノール誘導体、ルシフェリン、ルシゲニンなどを標識剤として用いてもよい。
【００３１】
ラマン散乱標識に関しては、前記の蛍光標識されたアプタマーの例えば５’末端又は３’末端に金属表面と結合能を有する置換基として特に限定するものではないが、チオール（ＳＨ）基、アルキルアミノ基、芳香族アミノ基、カルボキシル基を導入し、これを例えば、金ナノ粒子表面に吸着させることにより当該アプタマー吸着金属粒子から発せられる増強ラマン散乱光を検出することで細胞認識を行うものである。この場合、特に限定するものではないが、金属ナノ粒子として、金、銀、銅、鉄、珪素、量子ドットなどを用いることができる。
【００３２】
２．ＤＮＡアプタマーの選別
本発明のＤＮＡアプタマーは、当該技術分野において周知のインビトロセレクション法を用いて選別及び取得することができる。そのような手法の好ましい例として、試験管内進化法（Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ  Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｌｉｇａｎｄｓ  ｂｙ  ＥＸｐｏｎｅｎｔｉａｌ  ｅｎｒｉｃｈｍｅｎｔ：ＳＥＬＥＸ法）が用いられる。
【００３３】
当該ＳＥＬＥＸ法は、ターゲット物質に結合する核酸リガンド（アプタマー）の選別と、ＰＣＲ（Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  Ｃｈａｉｎ  Ｒｅａｃｔｉｏｎ）による指数関数的な増幅を複数回繰り返すことにより，ターゲット物質に親和性を有する核酸分子（一本鎖ＤＮＡ、ＲＮＡ）を得るというものである。
【００３４】
また、その改良手法として、例えばＧｕｏ，ｅｔ ａｌ.，Ｉｎｔ.Ｊ.Ｍｏｌ.Ｓｃｉ.，９(４)：６６８，２００８に記載されているようなＣｅｌｌ−ＳＥＬＥＸ法を用いることが好ましい。この手法は、ターゲットとして細胞自体を用いることができるため、従来のＳＥＬＥＸ法と比較して、細胞表面に膜タンパク質の解析が不要であること、細胞表面に結合し得る複数のアプタマーを同時に選抜できること、及びターゲット細胞に対してより特異的に結合するアプタマーを選抜できるといった利点を有するものである。
【００３５】
なお、これら以外にも当該技術分野において周知の方法を用いて本発明のＤＮＡアプタマーを選別及び取得することもできる。
【００３６】
上述のとおり、「インビトロセレクション法」は、ランダムなヌクレオチド配列を含む核酸分子のプール（いわゆる、ＤＮＡプール）からターゲットとする分子や細胞に対して親和性を持つアプタマー分子を選択し、親和性を持たない分子を排除する方法である。当該選択されたアプタマー分子のみをＰＣＲ法等で増幅し、さらに親和性による選択をするというサイクルを繰り返すことにより、強い結合能を持つアプタマー分子を濃縮することができるというものである。
【００３７】
具体的には、まず、２０〜３００塩基、好ましくは３０〜１５０、より好ましくは３０〜１００塩基程度のランダムなヌクレオチド配列（塩基配列）領域を含む１本鎖核酸分子、例えば、オリゴＤＮＡを調製する。オリゴＤＮＡは、ＰＣＲ増幅を可能にするために、その両端にプライマーとなるべき塩基配列を有するものを用いることが好ましい。
【００３８】
プライマー認識配列部分は、ＰＣＲ増幅後にプライマー部分を制限酵素によって切除し得るように適当な制限酵素サイトを有するようにしてもよい。用いるプライマー認識配列部分の長さは、特に限定されるものではないが、約２０〜５０、好ましくは２０〜３０塩基程度である。また、ＰＣＲ増幅後の１本鎖ＤＮＡを電気泳動などで分離可能とするために、５’側末端に、放射標識、蛍光標識などによる標識を行ってもよい。
【００３９】
次に、上記で得られたランダムなヌクレオチド配列を有する核酸分子（ライブラリープール）と、ターゲット細胞とを適当な濃度比で混合し、適当な条件下でインキュベートする。インキュベート後、混合物を遠心機にかけて、核酸分子−ターゲット細胞複合体と遊離核酸分子とを分離する。分離溶液の上澄み部分を除去し、得られた核酸分子−ターゲット細胞複合体を用いてＰＣＲ反応を行うことで細胞結合性核酸配列の増幅を行う。この後、ターゲット細胞と複合体を形成している核酸分子を当該技術分野において周知の手法に従って一本鎖化する。そのような手法としては、例えば、ストレプトアビジン固定化磁性粒子とビオチンとの結合を利用する分離が挙げられる。これにより、増幅した核酸二重鎖のうち細胞結合能を有するｓｓＤＮＡを分離することができ、さらにＤＮＡポリメラーゼなどのＰＣＲ反応溶液中に含まれる不要な共存物質を除去することができる。その後、回収されたｓｓＤＮＡをライブラリープールとして用いて同様の操作を行う。
【００４０】
上述の核酸分子とターゲット細胞との混合、ターゲット細胞と結合した核酸分子の分離、ＰＣＲ増幅、増幅された核酸分子を再びターゲット細胞との結合に使用するまでの一連の操作は数ラウンドを行う。ラウンドを繰り返し行うことにより、より特異的にターゲット細胞と結合する核酸分子を選別することができる。得られた核酸分子は、当該技術分野において周知の手法によりその配列解析を行うことができる。
【００４１】
３．癌細胞の検出用組成物、検出方法、及びキット
上述のように、本発明に係るＤＮＡアプタマーは、マウス大腸癌細胞に対して特異的に結合する機能を有することから、当該マウス大腸癌細胞の検出において好適に用いることができ、本発明のＤＮＡアプタマーを含む検出用組成物は、マウス大腸癌に対する腫瘍マーカとしても用いることができる。
【００４２】
具体的には、本発明のＤＮＡアプタマーを含む検出用組成物をマウス大腸細胞、大腸組織、血液、血清及び血漿よりなる群から選択される生体から採取された試料と接触させ、その後、当該試料とＤＮＡアプタマーとの結合による応答（シグナルの有無）を観測することによってマウス大腸癌細胞の存在を検出する。
【００４３】
当該生体から採取された試料は、動物から採取したものであって、最小侵襲で確保可能な試料または分泌体液、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ細胞培養液成分試料等であれば、その形態は特に限定されない。
【００４４】
また、大腸細胞の存在を検出するための「応答」は、蛍光応答もしくはラマン散乱応答であることが好ましく、そのため上記で述べたとおり、蛍光応答においてはＤＮＡアプタマーの５’末端又は３’末端にＴＡＭＲＡ（登録商標）、ＦＩＴＣ等の蛍光標識剤を連結させることが好ましい。またラマン散乱応答においてはＤＮＡアプタマーの５’末端又は３’末端にＣｙ３．５（登録商標）、ＴＡＭＲＡ（登録商標）、ＦＩＴＣ等の蛍光標識剤を連結させ、さらに前記のチオール（ＳＨ）基、アルキルアミノ基、芳香族アミノ基、カルボキシル基を導入し、これを例えば、金ナノ粒子表面に吸着させることが好ましい。
【００４５】
また、本発明のマウス大腸癌細胞の検出用組成物は、その簡便性や携帯性を高めるためＤＮＡアプタマーを含むキットとして提供することもできる。当該キットにおいてＤＮＡアプタマーは、通常、適当な濃度となるように溶解された水溶液の態様で、或いは該ＤＮＡアプタマーが固相担体上に固定されたＤＮＡアレイの態様で提供されることができる。
【００４６】
例えば、ＤＮＡアプタマーの末端にビオチンを結合させて複合体を形成し、固相担体の表面にストレプトアビジンを固定化させて、ビオチンとストレプトアビジンの相互作用によってＤＮＡアプタマーを固相担体表面に固定化することができる。当該キットには、必要に応じて他の試薬等を適宜含んでいても良く、例えば、添加剤として、溶解補助剤、ｐＨ調節剤、緩衝剤、等張化剤などの添加剤を用いることができ、これらの配合量は当業者に適宜選択可能である。
【００４７】
４．医薬組成物及びＤＤＳ
別の態様において、本発明は、上記ＤＮＡアプタマーを含有する、マウス大腸癌の転移研究又は治療用医薬組成物を提供するものである。好ましくは、当該医薬組成物は、ＤＮＡアプタマーに加えて、有効量のマウス大腸癌の転移研究又は治療のための医薬化合物（有効成分）、及び医薬上許容される担体を含むことができる。例えば、本アプタマーを金ナノ粒子に結合したものを用いて、癌の温熱療法用の試薬として利用できる可能性がある。
【００４８】
上記「マウス大腸癌」は、好ましくはＣｏｌｏｎ２６細胞と関連するマウス大腸癌である。「転移研究又は治療」には、癌細胞の遊離、移動、転移、浸潤または増殖の抑制、アポトーシスの誘導が含まれ得る。転移の抑制とは、癌細胞が原発巣から異なる部位に到達し、該部位において癌を二次的に生じることを抑制することを意味する。
【００４９】
本発明の医薬組成物中に含まれる有効成分は、マウス大腸癌の転移研究又は治療に有効なものであれば、特に限定されるものではないが、好ましくは抗癌剤である。かかる抗癌剤の例としては、アルキル化剤、代謝拮抗剤、抗腫瘍性抗生物質、化学療法剤、分子標的治療薬、これら以外の他の抗癌剤等が挙げられる。
【００５０】
アルキル化剤としては、例えば、ナイトロジェンマスタード、クロラムブチル、ジブロモダルシトール、チオテパ、カルムスチン、ブスルファンなどが挙げられる。
【００５１】
代謝拮抗剤としては、６−メルカプトプリン、フルオロウラシル、テガフール、ドキシフルリジン、シタラビン、エノシタビン、メトトレキセートなどが挙げられる。
【００５２】
抗生物質としては、マイトマイシンＣ、ブレオマイシン、ペプロマイシン、ドキソルビシン、ＴＨＰ−アドリアマイシン、アクチノマイシンＤなど、その他の抗癌剤としては、塩酸アムルビシン、塩酸イリノテカン、イホスファミド、エトポシドラステット、ゲフィニチブ、シクロホスファミド、シスプラチン、トラスツズマブ、フルオロウラシル、メシル酸イマニチブ、メソトレキサート、リツキサン、アドリアマイシン、カルボプラチン、タモキシフェン、カンプトテシン、メルファラン、Ｌ−アスパラギナーゼ、アセクラトン、シゾフィランなどが挙げられる。
【００５３】
分子標的治療薬の標的は細胞表面抗原、増殖因子・受容体・シグナル伝達系、細胞周期、アポトーシス、テロメア・テロメラーゼ、転移・血管新生などに分類される。
【００５４】
細胞表面抗原を標的とする分子標的治療薬は抗体であることが多い。代表はRituximib（Rituxan）、Trastuzumab、Cetuximab 、Oncophage、Provengeなどが挙げられる。
【００５５】
増殖因子・受容体・シグナル伝達系にかかわる分子標的治療薬は特に限定するものではないが、Trastzumabやc-kitおよびBCR-ABLチロシンキナーゼ阻害薬、特にEGFRチロシンキナーゼなどが挙げられる。
【００５６】
大腸癌の分子標的治療薬としては、VEGFそのものに対する抗体であるBevacizumabや、Thalidomide、Lenalidomideなどが挙げられる。
【００５７】
大腸癌の分子標的治療薬として現在検討されているものとして１）抗VEGF抗体Bevacizumab、２）抗EGFR抗体Cetuximab、３）抗EGFR抗体Panitumumabなどが挙げられる。
【００５８】
本発明の医薬組成物中に含まれる医薬上許容される担体としては、例えば、ショ糖、デンプン等の賦形剤、セルロース、メチルセルロース等の結合剤、デンプン、カルボキシメチルセルロース等の崩壊剤、ステアリン酸マグネシウム、エアロジル等の滑剤、クエン酸、メントール等の芳香剤、安息香酸ナトリウム、亜硫酸水素ナトリウム等の保存剤、クエン酸、クエン酸ナトリウム等の安定剤、メチルセルロース、ポリビニルピロリドン等の懸濁剤、界面活性剤等の分散剤、水、生理食塩水等の希釈剤、ベースワックス等が挙げられるが、それらに限定されるものではない。
【００５９】
本発明の医薬組成物の癌細胞内への導入を促進するために、当該組成物には、さらに核酸導入用試薬を含むこともできる。該核酸導入用試薬としては、アテロコラーゲン、リポソーム、ナノパーティクル、リポフェクチン、リプフェクタミン、ＤＯＧＳ（トランスフェクタム）、ＤＯＰＥ、ＤＯＴＡＰ、ＤＤＡＢ、ＤＨＤＥＡＢ、ＨＤＥＡＢ、ポリブレン、或いはポリエチレンイミン等の陽イオン性脂質等を用いることが出来る。
【００６０】
本発明の医薬組成物は、例えば、哺乳動物（例えば、ヒト、ラット、マウス、ウサギ、ヒツジ、ブタ、ウシ、ネコ、イヌ、サル等）に対して投与することができる。
【００６１】
本発明の医薬組成物は、多様な製剤形態、例えば、カプセル剤、錠剤、液剤等の剤形をとることができ、限定はしないが、より一般的には、液剤化され、注射剤とされるか、または、経口剤とされるか、又は徐放剤とされる。
【００６２】
当該注射剤は、当該技術分野における周知の方法より調製することができる。例えば、滅菌水、緩衝液、生理食塩水等の適切な溶媒に溶解した後、フィルター等で濾過して滅菌し、次いで無菌的な容器に充填することにより調製することができる。
【００６３】
経口剤としては、例えば、錠剤、顆粒剤、細粒剤、散剤、軟又は硬カプセル剤、液剤、乳剤、懸濁剤、シロップ剤等の剤形に製剤化される。
【００６４】
徐放剤としては、例えば、錠剤、顆粒剤、細粒剤、散剤、軟又は硬カプセル剤、マイクロカプセル等の剤形に製剤化される。製剤化する場合には、好ましくは、例えば、アルブミン、グロブリン、ゼラチン、マンニトール、グルコース、デキストラン、エチレングリコール等の安定化剤が添加され得る。
【００６５】
さらに、本発明の医薬組成物の製剤化においては、例えば、賦形剤、溶解補助剤、酸化防止剤、無痛化剤、等張化剤等の必要な補助添加物を含んでもよい。
【００６６】
液状製剤とした場合は、凍結保存又は凍結乾燥等により水分を除去して保存するのが望ましい。凍結乾燥剤は、使用時に注射用蒸留水等を加え、再溶解して使用される。
【００６７】
また、徐放剤とした場合、徐放用担体として例えば、可溶性コラーゲン又は可溶性コラーゲン誘導体、ゼラチン等の蛋白質、セラミックス多孔体、ポリアミノ酸、ポリ乳酸、キチン又はキチン誘導体、水膨潤性高分子ゲル等を使用することができる。
【００６８】
本発明の医薬組成物は、その形態に応じた適切な投与経路により投与され得る。経口的に又は非経口的投与することが可能であるが、非経口的に投与するのが望ましい。例えば、注射剤の形態にして静脈、動脈、皮下、筋肉内等に投与することができる。また、徐放剤の形態にして生体内、例えば患部、皮下、筋肉内等に埋め込むことにより投与することができる。
【００６９】
投与量及び投与回数等は、投与の目的、投与方法、癌の種類、大きさ、投与対象者の状況（性別、年齢、体重など）によって異なるが、基本的には上記有効成分における望ましい投与形態に従う。
【００７０】
また、本発明のＤＮＡアプタマーをリポソームやナノ粒子等の輸送材料の表面に付着もしくは内包させることによって、当該輸送材料中に含まれる医薬成分をマウス大腸癌細胞に選択的に輸送することができる。従って、更なる態様において、本発明は上記ＤＮＡアプタマーを含有する、マウス大腸癌の転移研究又は治療用ドラッグデリバリーシステムを提供するものである。
【００７１】
当該ドラッグデリバリーシステムによって輸送され得る医薬成分は、典型的には上述の抗癌剤であるが、マウス大腸癌の転移予防又は治療に有用な物質である限り、それら以外にもトキシン、癌成長阻害遺伝子、自殺遺伝子、又は、マウス大腸癌の成長及び転移に重要な役割を果たす遺伝子の発現を阻害するｓｉＲＮＡ（ｓｍａｌｌ  ｉｎｔｅｒｆｅｒｉｎｇ  ＲＮＡ）等であることもできる。
【実施例】
【００７２】
以下、実施例により本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらによって限定されるものではない。
【００７３】
実施例１：アプタマーの選別
Ｃｅｌｌ−ＳＥＬＥＸ法を用いて、ランダムな配列を有するＤＮＡプールからマウス大腸癌細胞であるＣｏｌｏｎ２６細胞に特異的に結合するアプタマーの選別を行った。当該Ｃｅｌｌ−ＳＥＬＥＸ法における各工程は以下のとおりである。
１）  ＤＮＡプールの調製（ＤＮＡアプタマー候補群の溶液調製）
２）  ターゲット物質−Ｃｏｌｏｎ２６細胞−との混合
３）  ターゲット結合性ＤＮＡと非結合性ＤＮＡの分離
４）  ターゲット結合性ＤＮＡの複製（ターゲット物質と結合したＤＮＡアプタマーを増幅する工程）
５）  ターゲット結合性ＤＮＡの精製（増幅したＤＮＡアプタマーを１本鎖ＤＮＡに精製する工程）
６）  ターゲット結合性核酸のクローンニング（得られたＤＮＡアプタマーの配列解析の前処理）
７）  これら１）〜６）の工程を６ラウンド実行
８）  ターゲット結合性核酸の配列解析（シーケンサーによるＤＮＡアプタマーのヌクレオチド配列の解析）
【００７４】
より詳細な実験手順は、以下のとおりである。
ＤＮＡプールは、以下の配列を有する全長が７０塩基でランダム配列部分（Ｎ）が３４塩基のオリゴＤＮＡを用いた。
ＤＮＡ  ｐｏｏｌ:Ｒａｎｄｏｍ３４（日本遺伝子研究所社製）
・配列:  ５’-ＧＣＣ  ＴＧＴ  ＴＧＴ  ＧＡＧ  ＣＣＴ  ＣＣＴ(Ｎ３４)ＣＧＣ  ＴＴＡ  ＴＴＣ  ＴＴＧ  ＴＣＴ  ＣＣＣ−３’
・長さ:  ７０塩基(ランダム配列は中央の３４塩基)
・分子量:  ２１３９１．３  ｇ／ｍｏｌ
・モル吸光係数:  ６３０４７５  Ｌ／ｍｏｌ・ｃｍ
【００７５】
ランダム配列の両側は、後のＰＣＲにおいてプライマーによって認識され、増幅を可能にするための配列である。上記ランダムＤＮＡを細胞培養用培地（和光純薬工業株式会社製：ＲＰＭ１−１６４０）バッファーを溶媒として１μＭのＤＮＡプールを調製した。
【００７６】
その後、Ｃｏｌｏｎ２６細胞を培養シャーレで培養し、細胞数が１０６〜１０７個になるまで培養した。培養後培地を除去し、さらに同シャーレにリン酸緩衝生理食塩水（以下、ＰＢＳと称する。）を２ｍＬ添加して細胞を洗浄した。このシャーレにＥＤＴＡ含有０．０５％トリプシン溶液１ｍＬを添加し、３７℃インキュベーターに２分間静置した。細胞がシャーレから剥がれていることを確認した後、ＰＢＳを４ｍＬ添加し、これを１５ｍＬ遠沈管にて回収し、２００ｇで３分間遠心処理を行った。その後上澄み液をアスピレータにより除去した。それにＰＢＳを３ｍL添加し、ピペッティングにより細胞を懸濁させたのち２００ｇで３分間遠心処理を行い、上澄みを除去する洗浄工程を２回行った。培地を３３０ｕＬ中１０６セルになるように調製した。調製した懸濁液に予め準備しておいた１μＭのランダムＤＮＡ（ＤＮＡプール）溶液３７０μＬを混和し、ボルテックスにより十分に混和させた。
【００７７】
得られた混合溶液を３７℃インキュベーター内に１時間静置した。その後同遠沈管を用いて４００ｇで４分間遠心処理を行い、上澄みを除去した後ＰＢＳを５００μL添加し４００ｇで４分間遠心処理を行った。この洗浄操作を３回行った。上澄みを除去した後ＰＢＳ２００μＬを添加し、９５℃で１０分間過熱した。１３０００ｇで５分間遠心処理を行い、上澄みを回収した。
【００７８】
分離したＣｏｌｏｎ２６細胞結合性のＤＮＡをＰＣＲにより増幅した。装置は、Ｔｈｅｒｍａｌ  Ｃｙｃｌｅｒ（ＴＡＫＡＲＡ−ＴＰ６００）を用いた。プライマーは、上記ランダムＤＮＡの共通配列に対応する１８塩基のプライマーを用いた（日本遺伝子研究所社製）。当該プライマーの５’末端側には、後述のように１本鎖ＤＮＡの分離を可能にするためビオチン修飾を施してある。
【００７９】
精製したＤＮＡにストレプトアビジンを加えて磁性粒子に吸着させ、磁石により磁性粒子を回収したのち上澄みを除去、その後アルカリバッファー変性により上澄み中に磁性粒子と結合していない１本鎖ＤＮＡを回収した（図１）。その後アルカリバッファーをＰＢＳバッファーに置換することで、磁性粒子と結合した目的物である１本鎖ＤＮＡを回収した。これを１ラウンドとし、この操作を６回行った。
【００８０】
６ラウンド後、ビオチン非修飾の１８塩基プライマーを用いてＰＣＲ増幅を行い、ＰＣＲ産物を、ライフテクノロジーズ社製ＩｏｎＰＧＭシステムを用いてシークエンサー解析した。
【００８１】
実施例２：蛍光標識ＤＮＡアプタマーによるマウス大腸癌細胞の染色
Ｃｏｌｏｎ２６細胞を培養シャーレで培養し、細胞数が１０６〜１０７になるまで培養する。これにシークエンサー解析により見出されたＣｏｌｏｎ２６細胞に対して親和性のあるヌクレオチド配列からなるＤＮＡアプタマーの５‘末端をＴＡＭＲＡ（商標）で修飾し、このＤＮＡを超純水により１００μＭに調製したアプタマー溶液を２０μＬとり、１ｍＬ培養液を有する培養シャーレに分散させながら添加した。これを３７℃１時間インキュベーターに静置した。その後、ＰＢＳで細胞を３回洗浄した後、さらにＰＢＳを２ｍＬ添加した状態でオリンパス製の倒立型蛍光顕微鏡ＩＸ７１により観察した。配列番号１〜１４を有するＤＮＡアプタマーによる結果を、それぞれ図２から図３１に示す。これらの蛍光標識ＤＮＡアプタマーがＣｏｌｏｎ２６細胞に特異的に結合し、それによってＣｏｌｏｎ２６細胞に対する良好な蛍光イメージング画像が得られることが明らかとなった。
【図１】
2015019607.tif 000003
【図２】
2015019607.tif 000004
【図３】
2015019607.tif 000005
【図１２】
2015019607.tif 000006
【図１３】
2015019607.tif 000007
【図１４】
2015019607.tif 000008
【図１５】
2015019607.tif 000009
【図１６】
2015019607.tif 000010
【図１７】
2015019607.tif 000011
【図１８】
2015019607.tif 000012
【図１９】
2015019607.tif 000013
【図４】
2015019607.tif 000014
【図５】
2015019607.tif 000015
【図６】
2015019607.tif 000016
【図７】
2015019607.tif 000017
【図８】
2015019607.tif 000018
【図９】
2015019607.tif 000019
【図１０】
2015019607.tif 000020
【図１１】
2015019607.tif 000021
【図２０】
2015019607.tif 000022
【図２１】
2015019607.tif 000023
【図２２】
2015019607.tif 000024
【図２３】
2015019607.tif 000025
【図２４】
2015019607.tif 000026
【図２５】
2015019607.tif 000027
【図２６】
2015019607.tif 000028
【図２７】
2015019607.tif 000029
【図２８】
2015019607.tif 000030
【図２９】
2015019607.tif 000031
【図３０】
2015019607.tif 000032
【図３１】
2015019607.tif 000033