(57)【要約】【課題】人工合成mRNAを標的細胞内で安定化する技術及びその用途を提供することを課題とする。【解決手段】目的遺伝子のmRNAと、エキソソーム複合体又はRNaseLの機能抑制物質とを併用し、標的細胞内で目的遺伝子を発現させる。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
目的遺伝子のmRNAと、
エキソソーム複合体又はRNaseLの機能抑制物質と、を組み合わせてなる、
標的細胞内で目的遺伝子を発現させるための組成物。
【請求項２】
前記mRNAを含有する第１要素と、前記機能抑制物質を含有する第２要素とからなるキットであることを特徴とする、請求項１に記載の組成物。
【請求項３】
前記mRNAと前記機能抑制物質を含有することを特徴とする、請求項１に記載の組成物。
【請求項４】
前記mRNAを含有し、標的細胞への導入時に、前記機能抑制物質が併用導入されることを特徴とする、請求項１に記載の組成物。
【請求項５】
前記機能抑制物質を含有し、標的細胞への導入時に、前記mRNAが併用導入されることを特徴とする、請求項１に記載の組成物。
【請求項６】
前記mRNAが5'キャップ構造、コザック配列、前記目的遺伝子のコード領域、及びポリ(A)鎖を備える、請求項１〜５のいずれか一項に記載の組成物。
【請求項７】
前記mRNAが、前記コード領域と前記ポリ(A)鎖の間に配置される安定化シス配列を更に備える、請求項６に記載の組成物。
【請求項８】
前記機能抑制物質が以下の(a)〜(d)からなる群より選択される化合物である、請求項１〜７のいずれか一項に記載の組成物：
(a)エキソソーム複合体の構成因子、補助因子又は制御因子、或いはRNaseLを標的とするsiRNA；
(b)エキソソーム複合体の構成因子、補助因子又は制御因子、或いはRNaseLを標的とするsiRNAを細胞内で生成する核酸コンストラクト；
(c)エキソソーム複合体の構成因子、補助因子又は制御因子、或いはRNaseLを標的とするアンチセンス核酸；
(d)エキソソーム複合体の構成因子、補助因子又は制御因子、或いはRNaseLを標的とするリボザイム。
【請求項９】
前記構成因子がDis3であり、前記補助因子がski2ヘリカーゼ又はMtr4ヘリカーゼであり、前記制御因子がGTPBP1、GTPBP2又はDom34である、請求項８に記載の組成物。
【請求項１０】
前記遺伝子が酵素遺伝子である、請求項１〜９のいずれか一項に記載の組成物。
【請求項１１】
前記酵素が、ZFN、TALEN及びCRISPR-Cas9からなる群より選択されるヌクレアーゼである、請求項１０に記載の組成物。
【請求項１２】
請求項１１に記載の組成物を有効成分とする、B型肝炎ウイルス除去剤。
【請求項１３】
以下のステップ(1)及び(2)を含む、標的細胞内で目的タンパク質を発現させる方法：
(1)標的細胞にエキソソーム複合体又はRNaseLの機能抑制物質を導入するステップ；
(2)前記標的細胞に目的遺伝子のmRNAを導入するステップ。
【請求項１４】
前記標的細胞が、生体から分離された状態の細胞である、請求項１３に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は人工合成mRNAを標的細胞内で安定化させる技術及びその利用に関する。
【背景技術】
【０００２】
ヒトゲノムの解読以来RNA研究が注目を集めるなか、RNAを薬として応用しようとするRNA医薬の研究も急速な進展をみせはじめている。RNA医薬に期待される標的疾患の一つとしてウイルス性疾患がある。実際、B型肝炎治療を目的としたRNA医薬の開発研究が進められている。B型肝炎は現在インターフェロンによる治療等が行われているが、このような治療法では肝細胞のゲノム中にプロウイルスとして潜伏しているB型肝炎ウイルス（HBV）を除去することは不可能であり、根治治療はなされていない。そこで、HBVを切断する酵素ZFN/TALEN/CRISPR-Cas9を細胞内で発現させ、HBVを切断除去することを目的とした研究事業（平成24年度厚生労働科学研究費補助金（B型肝炎創薬実用化等研究事業））が開始された。この研究では、ZFN/TALEN/CRISPR-Cas9を人工合成mRNAの形で細胞内に導入し、発現させることでHBVの除去を目指している。
尚、本発明に直接関連するものではないが、mRNAの発現に関する文献（特許文献１、非特許文献１、２）を以下に示す。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特表２０１３−５２０１５８号公報
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】尾上耕一, 星野真一: 日薬理誌, 136, 150-154, 2010
【非特許文献２】Nechama, M. et al.: KSRP-PMR1-exosome association determines parathyroid hormone mRNA levels and stability in transfected cells. BMC Cell Biol., 10, 70 (2009).
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
遺伝子治療では一般にウイルスベクターが用いられる。ウイルスベクターを使用した遺伝子導入によれば、標的細胞のゲノム中に外来性のDNAが挿入されるため、発癌等の問題がある。対照的にmRNAを用いた方法には、このような問題はなく、安全性が高いといえる。しかしその一方で、mRNAは細胞内において比較的不安定であり、また発現効率も低い。そこで本発明は、mRNAに特有のこれらの問題点に鑑み、標的細胞内での高発現を可能にすべく、人工合成mRNAを標的細胞内で安定化する技術及びその用途等を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本願発明者らの研究グループは、mRNAの転写・翻訳機構に関する過去の研究成果を踏まえ、人工合成mRNAの分解機構を詳細に調べることにした。その結果、驚くべきことに、標的細胞に導入した人工合成mRNAが通常のmRNA（細胞内mRNA）とは異なる分解経路で分解されることが示唆された。更なる検討の結果、人工合成mRNAが3'→5'方向の分解を触媒するエキソソーム複合体及びRNaseLによって分解されることが判明した。この知見は、標的細胞内で人工合成mRNAを安定化させるためには、エキソソーム複合体又はRNaseLの機能を抑制することが有効であることを示す。実際、エキソソーム複合体の構成因子（Dis3）、補助因子（Ski2ヘリカーゼ、Mtr4ヘリカーゼ）、制御因子（GTPBP1、GTPBP2、Dom34）、或いはRNaseLを標的としたsiRNAを用い、エキソソーム複合体又はRNaseLの機能を抑制したところ、人工合成mRNAの安定性が向上した。
以下に示す発明は主として以上の知見及び考察に基づくものである。
［１］目的遺伝子のmRNAと、
エキソソーム複合体又はRNaseLの機能抑制物質と、を組み合わせてなる、
標的細胞内で目的遺伝子を発現させるための組成物。
［２］前記mRNAを含有する第１要素と、前記機能抑制物質を含有する第２要素とからなるキットであることを特徴とする、［１］に記載の組成物。
［３］前記mRNAと前記機能抑制物質を含有することを特徴とする、［１］に記載の組成物。
［４］前記mRNAを含有し、標的細胞への導入時に、前記機能抑制物質が併用導入されることを特徴とする、［１］に記載の組成物。
［５］前記機能抑制物質を含有し、標的細胞への導入時に、前記mRNAが併用導入されることを特徴とする、［１］に記載の組成物。
［６］前記mRNAが5'キャップ構造、コザック配列、前記目的遺伝子のコード領域、及びポリ(A)鎖を備える、［１］〜［５］のいずれか一項に記載の組成物。
［７］前記mRNAが、前記コード領域と前記ポリ(A)鎖の間に配置される安定化シス配列を更に備える、［６］に記載の組成物。
［８］前記機能抑制物質が以下の(a)〜(d)からなる群より選択される化合物である、［１］〜［７］のいずれか一項に記載の組成物：
(a)エキソソーム複合体の構成因子、補助因子又は制御因子、或いはRNaseLを標的とするsiRNA；
(b)エキソソーム複合体の構成因子、補助因子又は制御因子、或いはRNaseLを標的とするsiRNAを細胞内で生成する核酸コンストラクト；
(c)エキソソーム複合体の構成因子、補助因子又は制御因子、或いはRNaseLを標的とするアンチセンス核酸；
(d)エキソソーム複合体の構成因子、補助因子又は制御因子、或いはRNaseLを標的とするリボザイム。
［９］前記構成因子がDis3であり、前記補助因子がski2ヘリカーゼ又はMtr4ヘリカーゼであり、前記制御因子がGTPBP1、GTPBP2又はDom34である、［８］に記載の組成物。
［１０］前記遺伝子が酵素遺伝子である、［１］〜［９］のいずれか一項に記載の組成物。
［１１］前記酵素が、ZFN、TALEN及びCRISPR-Cas9からなる群より選択されるヌクレアーゼである、［１０］に記載の組成物。
［１２］［１１］に記載の組成物を有効成分とする、B型肝炎ウイルス除去剤。
［１３］以下のステップ(1)及び(2)を含む、標的細胞内で目的タンパク質を発現させる方法：
(1)標的細胞にエキソソーム複合体又はRNaseLの機能抑制物質を導入するステップ；
(2)前記標的細胞に目的遺伝子のmRNAを導入するステップ。
［１４］前記標的細胞が、生体から分離された状態の細胞である、［１３］に記載の方法。
【図面の簡単な説明】
【０００７】
【図１】HeLa細胞に5xFlag-EGFP-pA100 mRNAを導入した３時間後、細胞をPBSで洗浄し、100μg/mlシクロヘキシミド(CHX)を添加した（レーン6〜10）。洗浄から0、2、4、6、8時間後に細胞を回収した。A: ノザンブロットにより5xFlag-EGFP-pA100 mRNAを検出した結果を示している。トランスフェクション前の5xFlag-EGFP-pA0 mRNA（レーン11）および5xFlag-EGFP-pA100 mRNA（レーン12）を同時に泳動している。B: Aを定量した結果を示している。0時間後におけるmRNA量を100%として示している。
【図２】HeLa細胞に5xFlag-EGFP-pA0（パネルA〜C）、5xFlag-EGFP-pA72（パネルA〜C）、5xFlag-EGFP(1-30)-pA0（パネルD〜F）もしくは5xFlag-EGFP(1-30)-pA72（パネルD〜F） mRNAを導入した３時間後、細胞をPBSで洗浄し、0、2、4、6、8時間後に細胞を回収した。A: ノザンブロットにより5xFlag-EGFP mRNAを検出した結果を示している。B: Aを定量した結果を示している。0時間後におけるmRNA量を100%として示している。C: mRNAの半減期を算出した結果を示している。D: Aと同様に5xFlag-EGFP（1-30） mRNAおよび28S rRNAを検出した結果を示している。E: Bと同様。F: Cと同様。
【図３】HeLa細胞にpCMV-5xMyc-Caf1およびpCMV-5xMyc-Caf1D161Aを導入した。導入24時間後に5xFlag-EGFP(1-30)-pA0 mRNAを導入し、その３時間後に細胞をPBSで洗浄し、0、2、4、6、8時間後に細胞を回収した。A: ウエスタンブロット法により5xMyc-Caf1タンパク質の発現を検証した。抗Myc抗体（上パネル）、抗GAPDH抗体（下パネル）を用いたウエスタンブロッティングの結果を示している。B: ノザンブロットにより5xFlag-EGFP（1-30） mRNAを検出した結果を示している。トランスフェクション前の5xFlag-EGFP(1-30)-pA0 mRNA（レーン1）および5xFlag-EGFP(1-30)-pA72 mRNA（レーン2）を同時に泳動している。C: Bを定量した結果を示している。0時間後におけるmRNA量を100%として示している。D: mRNAの半減期を算出した結果を示している。
【図４】HeLa細胞にDis3 siRNAもしくはコントロールsiRNAとしてLuciferase siRNAを導入した。導入24時間後に5xFlag-EGFP-pA72 mRNAを導入し、その３時間後に細胞をPBSで洗浄し、0、2、4、6、8時間後に細胞を回収した。A: ウエスタンブロット法によりDis3タンパク質の発現を検証した。抗Dis3抗体（上パネル）、抗GAPDH抗体（下パネル）を用いたウエスタンブロッティングの結果を示している。B: ノザンブロットにより5xFlag-EGFPpA72 mRNAを検出した結果を示している。C: Aを定量した結果を示している。0時間後におけるmRNA量を100%として示している。D: mRNAの半減期を算出した結果を示している。
【図５】HeLa細胞にSki2 siRNA、Mtr4 siRNA、Ski2 siRNAとMtr4 siRNA、或いはコントロールsiRNAとしてLuciferase siRNAを導入し、図４と同様の解析を行った。A: ノザンブロットにより5xFlag-EGFP pA72 mRNAを検出した結果を示している。B: Aを定量した結果を示している。0時間後におけるmRNA量を100%として示している。C: mRNAの半減期を算出した結果を示している。
【図６】HeLa細胞にXrn1 siRNA、Dis3 siRNA、Xrn1 siRNAとDis3 siRNA、或いはコントロールsiRNAとしてLuciferase siRNAを導入し、図５と同様の解析を行った。A: ノザンブロットにより5xFlag-EGFP pA72 mRNAを検出した結果を示している。B: Aを定量した結果を示している。0時間後におけるmRNA量を100%として示している。C: mRNAの半減期を算出した結果を示している。
【図７】エキソソームの構成因子（Dis3）及び補助因子（Ski2ヘリカーゼ、Mtr4ヘリカーゼ）に対して作製したsiRNAの標的位置を示す図。
【図８】実験に使用したmRNA（5xFlag-EGFPpA72）の構造（塩基配列：配列番号１、コードするアミノ酸配列：配列番号２）。5'末端から3'末端方向に、ベクター由来の配列（配列番号３）、コザック配列（CCCACC）、コード領域（配列番号４）、終止コドン、制限酵素サイト（EcoRI、EcoRV、SalI）（配列番号５）、β−グロビン3'非翻訳領域（配列番号６）、3'非翻訳領域に繋がるβ−グロビン遺伝子のゲノム配列（AATGATG）、制限酵素サイト（XbaI）（TCTAGA）、ポリ（A）鎖が配置される。
【図９】実験に使用したmRNA（5xFlag-EGFP(1-30)pA72）の構造（塩基配列：配列番号７、コードするアミノ酸配列：配列番号８）。5'末端から3'末端方向に、ベクター由来の配列（配列番号３、コザック配列（CCCACC）、コード領域（配列番号９）、終止コドン、制限酵素サイト（EcoRI、EcoRV、SalI）（配列番号５）、β−グロビン3'非翻訳領域（配列番号６）、3'非翻訳領域に繋がるβ−グロビン遺伝子のゲノム配列（AATGATG）、制限酵素サイト（XbaI）（TCTAGA）、ポリ（A)鎖が配置される。
【図１０】HeLa細胞にDom34 siRNA、eRF1 siRNAもしくはコントロールsiRNAとしてLuciferase siRNAを導入した。導入24時間後に5xFlag-EGFP-pA72 mRNAを導入し、その３時間後細胞をPBSで洗浄し、その後0、1、2、4時間後に細胞を回収した。A: ウエスタンブロット法によりDom34、eRF1タンパク質の発現を検証した。抗Dom34抗体（上パネル）、抗eRF1抗体（中パネル）、抗GAPDH抗体（下パネル）を用いたウエスタンブロッティングの結果を示している。B: ノザンブロットにより5xFlag-EGFPpA72 mRNAを検出した結果を示している。C: Bを定量した結果を示している。0時間後におけるmRNA量を100%として示している。D: mRNAの半減期を算出した結果を示している。
【図１１】HeLa細胞にHbs1 siRNA、GTPBP1 siRNA、GTPBP2 siRNA、もしくはコントロールsiRNAとしてLuciferase siRNAを導入し、図１と同様の解析を行った。A: ウエスタンブロット法によりHbs1、GTPBP1、GTPBP2タンパク質の発現を検証した。抗Hbs1抗体（１段目パネル）、抗GTPBP1抗体（２段目パネル）、抗GTPBP2抗体（３段目パネル）、抗GAPDH抗体（４段目パネル）を用いたウエスタンブロッティングの結果を示している。B: ノザンブロットにより5xFlag-EGFP pA72 mRNAを検出した結果を示している。C: Bを定量した結果を示している。0時間後におけるmRNA量を100%として示している。D: mRNAの半減期を算出した結果を示している。
【図１２】HeLa細胞にDom34 siRNA、eRF1 siRNAもしくはコントロールsiRNAとしてLuciferase siRNAを導入した。導入24時間後に5xFlag-EGFP-pA72 mRNAを導入し、その30分後細胞をPBSで洗浄し、その後0、2、4、6時間後に細胞を回収した。A: ウエスタンブロット法によりRNaseLタンパク質の発現を検証した。抗RNaseL抗体（上パネル）、抗GAPDH抗体（下パネル）を用いたウエスタンブロッティングの結果を示している。B: ノザンブロットにより5xFlag-EGFPpA72 mRNAを検出した結果を示している。C: Bを定量した結果を示している。0時間後におけるmRNA量を100%として示している。D: mRNAの半減期を算出した結果を示している。
【図１３】エキソソームの制御因子（Dom34、GTBP1、GTBP2、Hbs1）、翻訳終結因子（eRF1）及びRNaseLに対して作製したsiRNAの標的位置を示す図。
【発明を実施するための形態】
【０００８】
１．目的遺伝子発現用の組成物
本発明の第１の局面は標的細胞内で目的遺伝子を発現させるための組成物（以下、「本発明の組成物」とも呼ぶ）に関する。本発明者らの検討によって、人工合成mRNAの分解経路が明らかになるとともに、標的細胞内で人工合成mRNAを安定化させるためには、エキソソーム複合体又はRNaseLの機能を抑制することが有効であることが示された。即ち、人工合成mRNAを標的細胞に導入する際に、エキソソーム複合体又はRNaseLの機能を抑制する物質を併せて導入すれば、標的細胞内で人工合成mRNAを安定化させることが可能であるとの知見が得られた。この知見に基づき、本発明の組成物は、二つの要素、即ち、目的遺伝子のmRNA（以下、「本発明のmRNA」とも呼ぶ）とエキソソーム複合体又はRNaseLの機能抑制物質（以下、「本発明の機能抑制物質」とも呼ぶ）を組み合わせて用いる点に特徴を有する。本明細書において「・・・を組み合わせて用いる」又は「・・・を組み合わせてなる」とは、上記二つの要素が併用されることをいう。併用の具体的な態様を以下で説明する。尚、人為的な操作によって調製されるという特徴を表すとともに、細胞内（内在性）mRNAと区別する目的で、本発明のmRNAのことを「人工合成mRNA」と呼称することがある。また、二つの用語「抑制」と「阻害」は、その意味するところが重複し、しばしば置換可能に用いられる。そこで本明細書では、前後の文脈から区別が特に必要な場合を除き、統一して用語「抑制」を使用する。
【０００９】
一態様では、本発明のmRNAを含有する第１要素と、本発明の機能抑制物質を含有する第２要素とからなるキットの形態で本発明の組成物が提供される。この場合、標的細胞に対して同時又は所定の時間的間隔を置いて両要素が投与されることになる。好ましくは、機能抑制物質の作用の発現に要する時間を考慮し、第２要素を導入した後、所定の時間差で第１要素を導入する。例えば、第２要素の導入から１時間〜４８時間後、好ましくは４時間〜３０時間後に第１要素を導入する。第１要素と第２要素を同時に導入することにしてもよい。ここでの「同時」は厳密な同時性を要求するものではない。従って、両要素を混合した後に標的細胞へ導入する等、両要素の導入が時間差のない条件下で実施される場合は勿論のこと、片方の導入後、速やかに他方を導入投与する等、両要素の導入が実質的な時間差のない条件下で実施される場合もここでの「同時」の概念に含まれる。
【００１０】
本発明の別の態様では、第１要素と第２要素とを混合した配合剤として本発明の組成物が提供されることになる。一方、本発明のmRNAを含有する組成物とし、その導入時に本発明の機能抑制物質が併用導入されるようにしてもよい。この場合の組成物と機能抑制物質の導入のタイミングは、上記のキットの形態の場合と同様である。即ち、好ましくは機能抑制物質を導入した後、本発明のmRNAを含有する組成物を導入することになる。また、当該態様とは逆に、機能抑制物質を含有する組成物とし、その導入時に本発明のmRNAが併用導入されるようにしてもよい。この場合の導入のタイミングは上記態様の場合に準ずる。
【００１１】
有効成分（mRNA、機能阻害物質）の保護を目的としてエキソヌクレアーゼ阻害剤、エンドヌクレアーゼ阻害剤、リン脂質、リン酸カルシウム、ポリエチレンイミン、ナノミセル形成剤であるポリエチレングリコール−ポリカチオン、緩衝剤、無機塩類、２価イオン等を、細菌の混入を阻止することを目的として抗生物質等を、細胞の増殖能を亢進させる目的として動物血清、成長因子、糖類、ビタミン類、２価イオン等を本発明の組成物に含有させてもよい。また、製剤上許容される他の成分（例えば、担体、賦形剤、崩壊剤、緩衝剤、乳化剤、懸濁剤、無痛化剤、安定剤、保存剤、防腐剤、生理食塩水など）を本発明の組成物に含有させてもよい。更に、有効成分の細胞導入効率を亢進させる目的として、ライフテクノロジー社が提供するOpti-MEM等の特殊合成培地を用いてもよい。
【００１２】
２．目的遺伝子のmRNA
本発明の組成物の構成要素であるmRNA（本発明のmRNA）は目的遺伝子のコード領域（目的遺伝子の発現産物であるタンパク質をコードする領域）を備える。「目的遺伝子」とは、本発明のmRNAを利用して標的細胞内で発現させる遺伝子である。様々な遺伝子を目的遺伝子として採用できる。目的遺伝子の例は、酵素（例えばヌクレアーゼ（ZFN(Zinc Finger Nuclease)、TALEN(Transcription Activator-Like Effector Nuclease)、CRISPR-Cas9等）、サイトカイン、ホルモン、神経伝達物質等の遺伝子、その機能低下（例えば変異によるもの）や欠損などが疾患の原因となる遺伝子、正常に機能をしているがその発現の増強が望まれる遺伝子、標的細胞が本来有しない遺伝子であってそれが発現されることにより標的細胞の生存、維持等に有益な遺伝子、標的細胞に作用し、標的細胞が本来有する機能を高めるタンパク質又は標的細胞が本来有する機能とは異なる機能を発揮させるタンパク質をコードする遺伝子、標的細胞には作用せず、標的細胞から分泌されて周囲の細胞に作用するタンパク質（例えば、細胞間ネットワークに関与するタンパク質）をコードする遺伝子である。標的細胞及び周囲の細胞に対しては実質的に作用しないタンパク質をコードする遺伝子も目的遺伝子となり得る。このような遺伝子として、例えば医薬品等に利用されるタンパク質等をコードする遺伝子（例えば、ヒトエリスロポエチン遺伝子、ヒトフィブリノーゲン遺伝子、ヒト血清アルブミン遺伝子、ヒトラクトフェリン遺伝子、ヒトα-グルコシダーゼ遺伝子）が挙げられる。かかる遺伝子を採用することにより、標的細胞内で医薬品等として利用可能な組換えタンパク質を産生させることが可能である。尚、ZFN遺伝子（IL28Bを標的としたもの）の配列を配列番号１０（ZFN-right）及び配列番号１１（ZFN-left）に、TALEN遺伝子の配列を配列番号１２に、CRISPR-Cas9遺伝子の配列（例えばScience. 2013 Feb 15;339(6121):819-23.を参照することができる）を配列番号１３にそれぞれ示す。
【００１３】
「標的細胞」とは、その中で目的遺伝子を発現させる細胞である。本発明では、標的細胞にエキソソーム複合体の機能抑制物質と本発明のmRNAが導入されることになる。標的細胞は特に限定されず、各種真核細胞を標的細胞として用いることができる。例えば、標的細胞として、哺乳動物（ヒト、サル、ウシ、ウマ、ウサギ、マウス、ラット、モルモット、ハムスター等）の各種細胞、例えば心筋細胞、平滑筋細胞、脂肪細胞、線維芽細胞、骨細胞、軟骨細胞、破骨細胞、実質細胞、表皮角化細胞（ケラチノサイト）、上皮細胞（皮膚表皮細胞、角膜上皮細胞、結膜上皮細胞、口腔粘膜上皮、毛包上皮細胞、口腔粘膜上皮細胞、気道粘膜上皮細胞、腸管粘膜上皮細胞など）、内皮細胞（角膜内皮細胞、血管内皮細胞など）、神経細胞、グリア細胞、脾細胞、膵臓β細胞、メサンギウム細胞、ランゲルハンス細胞、肝細胞、これらの前駆細胞又は幹細胞、或いは人工多能性幹細胞（iPS細胞）、間葉系幹細胞（MSC）、胚性幹細胞（ES細胞）、胚性生殖細胞（EG細胞）、胚性腫瘍細胞（EC細胞）などを使用することができる。また、継代細胞、特定の細胞系譜へと分化誘導された細胞、株化細胞（例えば、HeLa細胞、CHO細胞、Vero細胞、HEK293細胞、HepG2細胞、COS-7細胞、NIH3T3細胞、Sf9細胞）を用いることもできる。
【００１４】
生体から分離された状態の標的細胞（即ち、単離された標的細胞）、又は生体を構成した状態の標的細胞に対して本発明が適用される。従って、In vitro、In vivo及びEx vivoのいずれの環境下でも本発明を実施することが可能である。ここでの「単離された」とは、その本来の環境（例えば生体を構成した状態）から取り出された状態にあることをいう。従って通常は、単離された標的細胞は培養容器内又は保存容器内に存在し、それへのin vitroでの人為的操作が可能である。具体的には、生体から分離され、生体外で培養状態にある細胞（株化された細胞を含む）は、単離された標的細胞としての適格を有する。尚、上記の意味において単離された状態にある限り、組織体を形成した状態であっても単離された細胞である。
【００１５】
単離された標的細胞は生体（例えば患者）より調製することができる。一方、独立行政法人理化学研究所バイオリソースセンター、独立行政法人 製品評価技術基盤機構、ATCC (American Type Culture Collection)、DSMZ（German Collection of Microorganisms and Cell Cultures）などより入手した細胞を、単離された標的細胞として使用することもできる。
【００１６】
本発明のmRNAはその翻訳に必要な5'キャップ構造（m7G（7-メチルグアノシン）が5'末端ヌクレオシドに5'-5'三リン酸橋を介して結合した構造）及びポリ（A）鎖も備える。ポリ(A)鎖の長さは特に限定されないが、例えば、30〜200塩基である。5’キャップ構造には翻訳開始因子eIF4Eが、ポリ（A）鎖にはポリ（A）鎖結合タンパク質PABP（poly（A）-binding protein）が結合し、両者が足場タンパク質である翻訳開始因子eIF4Gを介して複合体を形成することでmRNAは環状構造をとることになる（Wells SE, et al. Mol Cell. 1998;2:135-140）。さらに、翻訳終結因子eRF3はPABP-eIF4Gと複合体を形成し、3’UTRをループアウトする（Uchida N, et al. J Biol Chem. 2002;277:50286-50292）。このようなmRNAの環状化は、翻訳終結部位と翻訳開始部位を物理的に近づけ、翻訳を終えたリボソームを、3’UTRを経ることなく終止コドンから次の翻訳開始にリサイクルすることで、翻訳開始の効率に大きく寄与する。5’末端キャップ構造と3’末端ポリ（A）鎖は、このような翻訳の効率化だけでなく、エキソヌクレアーゼによる末端からのmRNA分解を阻害することでmRNAを安定化し、翻訳の効率化とmRNA安定化の両過程において転写後の遺伝子発現制御に大きく貢献する。
【００１７】
上記要素の他、5'末端非翻訳領域（5'UTR）及び／又は3'末端非翻訳領域（3'UTR）を本発明のmRNAが備えていてもよい。通常、5'UTRの一部としてコザック配列が用いられる。また、好ましくは、3'UTRの一部として安定化シス配列が用いられる。安定化シス配列を用いることにより、mRNAの更なる安定化を図ることができる。安定化シス配列の具体例はPRE(pyrimidine-rich element）である。例えば、β−グロビンのPREをコード領域とポリ(A)鎖の間に介在させてmRNAを構成することにより、より安定性の高いmRNAを得ることができる。β−グロビンのPREの配列を配列表の配列番号１４〜１６に示す（Mol Cell Biol. Sep 2001; 21(17): 5879-5888を参照）。β−グロビン遺伝子等、その3'UTRにPREを含む遺伝子の3'UTR（具体例を配列番号６に示す）の全体又は一部（但し、PREを含むもの）を用いて、本発明のmRNAの3'UTRを構成してもよい。一方、安定化シス配列とは対照的にARE (AU-rich element)、GRE (GU-rich element)等のシス因子はmRNAを不安定化することが知られている（例えば Louis I et al., 2014, J Interferon Cytokine Res. 34: 233-241を参照）。従って、本発明のmRNAは、このような不安定化をもたらすシス配列を含まないことが好ましい。
【００１８】
本発明のmRNAの5’UTR又は3'UTRを構成し得る要素として、上記の要素の他、mRNAの調製に利用する鋳型（市販のクローニング用プラスミドなど）に由来する配列、制限酵素認識配列（制限酵素サイト）を挙げることができる。、れるいょうか日(木)《今日の日付》 of April 5, 2014.  to
【００１９】
本発明のmRNAはin vitro転写系、化学合成等の方法によって調製することができる。in vitro転写用のキット（例えば例えばプロメガ社が提供するRiboMAXsystem、ニッポンジーン社が提供するCUGA7 in vitro transcription kit、ライフテクノロジーズ社が提供するMEGAscript T7 kit）を利用すれば、簡便に目的のmRNAを調製することが可能である。5'キャップ構造の付加も公知の方法で行えば良く、例えばNew England Biolabsが提供する3'-O-Me-m7G(5')ppp(5')G RNA Cap Structure Analogを利用することができる。
【００２０】
本発明のmRNAとして、２種類以上のmRNAを併用することにしてもよい。例えば、特定の遺伝子のコード領域を有するmRNAと、当該遺伝子の発現産物と相互作用する発現産物をコードする領域を有するmRNAを併用することができる。
【００２１】
本発明の組成物に使用するmRNAの量は、本発明の組成物の使用目的、使用する目的遺伝子の特徴、標的細胞の種類等を考慮しつつ、標的細胞内で十分な量の発現産物が得られるように設定すればよい。mRNA量の例を示すと、一回分の量として3 cm 培養ディッシュあたり0.5〜1.0μgのmRNAを含有させるとよい。
【００２２】
３．機能抑制物質
本発明における機能抑制物質はエキソソーム複合体又はRNaseLに作用し、エキソソーム複合体又はRNaseLによる人工合成mRNAの分解を抑制ないし阻害する。即ち、抑制物質の標的はエキソソーム複合体又はRNaseLである。エキソソーム複合体は構成因子、補助因子及び制御因子（以下では、説明の便宜上、構成因子、補助因子及び制御因子をまとめて「成分」と称することがある。）から構成される。従って、エキソソームの構成因子（サブユニットDis3/Rrp44, Rrp6, Rrp4, Rrp40, Rrp41/Ski6, Rrp42, Rrp43, Rrp45, Rrp46, Mtr3, Csl4/Ski4）、補助因子（Ski2ヘリカーゼ、Mtr4ヘリカーゼ、Ski3、Ski8）及び制御因子（GTPBP1、GTPBP2、Dom34）が抑制物質の標的となり得る。ここで、翻訳の場である細胞質においてエキソソームは、ski2ヘリカーゼ、Ski3及びSki8から構成されるski複合体と相互作用し、その機能を発揮する。このように、細胞質では通常、補助因子としてski2ヘリカーゼ、Ski3、Ski8が利用される。従って、ski2ヘリカーゼ、Ski3及びSki8は、本発明における抑制物質の標的となり得る。この中でも、特に重要な補助因子であるski2ヘリカーゼを阻害することが効果的である。従って、好ましい一態様では、ski2ヘリカーゼを標的とする抑制物質を採用する。実際、後述の実施例に示す通り、ski2ヘリカーゼの抑制が人工合成mRNAの安定化に効果的であることが裏づけられている。一方、ski2ヘリカーゼではなく、核内でエキソソームと複合体を形成するとされるMtr4ヘリカーゼの抑制によっても人工合成mRNAが安定化し、しかもその効果が高いことが明らかとなった（後述の実施例を参照）。この事実に鑑みれば、抑制物質の好ましい標的の一つはMtr4ヘリカーゼである。尚、理論に拘泥する訳ではないが、Ski2ヘリカーゼが十分に機能できない場合や欠損した場合などでは、Ski2ヘリカーゼを補填するようにMtr4ヘリカーゼが機能するといわれている（Saito et al., (2011) J Biol Chem 288:17832-17843）
【００２３】
２種類以上の機能抑制物質を併用することにしてもよい。この場合、各機能抑制物質の標的、作用等は同一又は類似であっても、或いは異なっていてもよい。例えばDis3の機能抑制物質、Ski3の機能抑制物質、Ski8の機能抑制物質、Ski2ヘリカーゼの機能抑制物質、Mtr4ヘリカーゼの機能抑制物質、GTPBP1の機能抑制物質、GTPBP2の機能抑制物質、Dom34の機能抑制物質、及びRNaseLの機能抑制物質からなる群より選択される二以上の機能抑制物質を併用する。
【００２４】
本発明の機能抑制物質の例は次の通りである。
(a)エキソソーム複合体の構成因子、補助因子又は制御因子、或いはRNaseLを標的とするsiRNA
(b)エキソソーム複合体の構成因子、補助因子又は制御因子、或いはRNaseLを標的とするsiRNAを細胞内で生成する核酸コンストラクト
(c)エキソソーム複合体の構成因子、補助因子又は制御因子、或いはRNaseLを標的とするアンチセンス核酸
(d)エキソソーム複合体の構成因子、補助因子又は制御因子、或いはRNaseLを標的とするリボザイム
【００２５】
上記(a)及び(b)は、いわゆるRNAi（RNA interference；RNA干渉）による発現抑制に利用される化合物である。換言すれば、上記(a)又は(b)の化合物を機能抑制物質として採用すれば、RNAiによりエキソソーム複合体の成分又はRNaseLの発現を抑制することができる。RNAiは真核細胞内で引き起こすことが可能な、配列特異的な転写後遺伝子抑制のプロセスである。哺乳動物細胞に対するRNAiでは、標的mRNAの配列に対応する配列の短い二本鎖RNA（siRNA）が使用される。通常、siRNAは21〜23塩基対である。哺乳動物細胞は二本鎖RNA（dsRNA）の影響を受ける２つの経路（配列特異的経路及び配列非特異的経路）を有することが知られている。配列特異的経路においては、比較的長いdsRNAが短い干渉性のRNA（即ちsiRNA）に分割される。他方、配列非特異的経路は、所定の長さ以上であれば配列に関係なく、任意のdsRNAによって惹起されると考えられている。この経路ではdsRNAが二つの酵素、即ち活性型となり翻訳開始因子eIF2をリン酸化することでタンパク質合成のすべてを停止させるPKRと、RNAase L活性化分子の合成に関与する2',5'オリゴアデニル酸シンターゼが活性化される。この非特異的経路の進行を最小限に留めるためには約30塩基対より短い二本鎖RNA（siRNA）を使用することが好ましい(Hunter et al. (1975) J Biol Chem 250: 409-17; Manche et al. (1992) Mol Cell Biol 12: 5239-48; Minks et al. (1979) J Biol Chem 254: 10180-3; 及び Elbashir et al. (2001) Nature 411: 494-8を参照されたい）。
【００２６】
標的特異的なRNAiを生じさせるためには標的遺伝子のmRNA配列の一部と相同なセンスRNA及びこれに相補的なアンチセンスRNAからなるsiRNAを細胞内に導入するか、又は細胞内で発現させればよい。上記(a)は前者の方法に対応する化合物であり、同様に上記(b)は後者の方法に対応する化合物である。
【００２７】
特定の遺伝子を標的とするsiRNAは、通常、当該遺伝子のmRNAの配列における連続する領域と相同な配列からなるセンスRNAとその相補配列からなるアンチセンスRNAがハイブリダイズした二本鎖RNAである。ここでの「連続する領域」の長さは通常15〜30塩基、好ましくは18〜23塩基、より好ましくは19〜21塩基である。
【００２８】
末端に数塩基のオーバーハングを有する二本鎖RNAが高いRNAi効果を発揮することが知られている。そこで本発明においても、そのような構造のsiRNAを採用することが好ましい。オーバーハングを形成する塩基の長さは特に限定されないが、好ましくは2塩基（例えばTT、UU、UG）である。
【００２９】
修飾したRNAからなるsiRNAを用いることにしてもよい。ここでの修飾の例としてホスホロチオエート化、修飾塩基（例えば蛍光標識塩基）の使用が挙げられる。
【００３０】
RNAi法に使用するdsRNAは化学合成によって、又は適当な発現ベクターを用いてin vitro又はin vivoで調製することができる。発現ベクターによる方法は、比較的長いdsRNAの調製を行うことに特に有効である。siRNAの設計には通常、標的配列に固有の配列（連続配列）が利用される。尚、適当な標的配列を選択するためのプログラム及びアルゴリズムが開発されている。
【００３１】
Ski2ヘリカーゼを標的としたsiRNAの配列の例を以下に示す。
GGAGAUAGACUUUGAGAAA dTdT（配列番号１７。後述の実施例で使用した配列）
【００３２】
Mtr4ヘリカーゼを標的としたsiRNAの配列の例を以下に示す。
GAGUCAAUAACUGAAGACU dTdT（配列番号１８。後述の実施例で使用した配列）
【００３３】
Dis3を標的としたsiRNAの配列の例を以下に示す。
CUCAUAGAUCGUCUUGCUU dTdT（配列番号１９。後述の実施例で使用した配列）
【００３４】
Dom34を標的としたsiRNAの配列の例を以下に示す。
CAUCCAAGAGAAUGAGUAU dTdT（配列番号２７。後述の実施例で使用した配列）
【００３５】
GTPBP1を標的としたsiRNAの配列の例を以下に示す。
CGAGUAGGAGACAAUGACU dTdT（配列番号３０。後述の実施例で使用した配列）
【００３６】
GTPBP2を標的としたsiRNAの配列の例を以下に示す。
CAAAGUCUUUCUGAAUAUU dCdT（配列番号３１。後述の実施例で使用した配列）
【００３７】
RNaseLを標的としたsiRNAの配列の例を以下に示す。
GCUGUUCAAAACGAAGAUG dTdT（配列番号３２。後述の実施例で使用した配列）
【００３８】
上記(b)の「siRNAを細胞内で生成する核酸コンストラクト」とは、それを細胞に導入すると細胞内でのプロセスによって所望のsiRNA（標的遺伝子に対するRNAiを引き起こすsiRNA）が生ずる核酸性分子をいう。当該核酸コンストラクトの一つの例はshRNA（short hairpin RNA）である。shRNAは、センスRNAとアンチセンスRNAがループ構造部を介して連結された構造（ヘアピン構造）を有し、細胞内でループ構造部が切断されて二本鎖siRNAとなり、RNAi効果をもたらす。ループ構造部の長さは特に限定されないが、通常は3〜23塩基である。
【００３９】
核酸コンストラクトの別の例は、所望のsiRNAを発現し得るベクターである。このようなベクターとしては、後のプロセスによってsiRNAに変換されるshRNAを発現する（shRNAをコードする配列がインサートされた）ベクター（ステムループタイプ又はショートヘアピンタイプと呼ばれる）、センスRNAとアンチセンスRNAを別々に発現するベクター（タンデムタイプと呼ばれる）が挙げられる。これらのベクターは当業者であれば常法に従い作製することができる（Brummelkamp TR et al.(2002) Science 296:550-553; Lee NS et al.(2001) Nature Biotechnology 19:500-505; Miyagishi M & Taira K (2002) Nature Biotechnology 19:497-500; Paddison PJ et al.(2002) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 99:1443-1448; Paul CP et al.(2002) Nature Biotechnology 19 :505-508; Sui G et al.(2002) Proc Natl Acad Sci USA 99(8):5515-5520; Paddison PJ et al.(2002) Genes Dev. 16:948-958等が参考になる）。現在、種々のRNAi用ベクターが利用可能である。このような公知のベクターを利用して本発明のベクターを構築することにしてもよい。この場合、所望のRNA（例えばshRNA）をコードするインサートDNAを用意した後、ベクターのクローニングサイトに挿入し、RNAi発現ベクターとする。尚、標的遺伝子に対するRNAi作用を発揮するsiRNAを細胞内で生じさせるという機能を有する限り、ベクターの由来や構造は限定されるものではない。
【００４０】
上記(c)はアンチセンス法による発現抑制に利用される化合物である。換言すれば、上記(c)の化合物を機能抑制物質として採用すれば、アンチセンス法によりエキソソーム複合体の成分又はRNaseLの発現を抑制することができる。アンチセンス法による発現阻害を行う場合には例えば、標的細胞内で転写されたときに、エキソソーム複合体の成分又はRNaseLをコードするmRNAの固有の部分に相補的なRNAを生成するアンチセンス・コンストラクトが使用される。このようなアンチセンス・コンストラクトは例えば、発現プラスミドの形態で標的細胞に導入される。一方、アンチセンス・コンストラクトとして、標的細胞内に導入されたときに、エキソソーム複合体又はRNaseLの成分をコードするmRNA／又はゲノムDNA配列とハイブリダイズしてその発現を阻害するオリゴヌクレオチド・プローブを採用することもできる。このようなオリゴヌクレオチド・プローブとしては、好ましくは、エキソヌクレアーゼ及び／又はエンドヌクレアーゼなどの内因性ヌクレアーゼに対して抵抗性であるものが用いられる。
【００４１】
アンチセンス核酸としてDNA分子を使用する場合、エキソソーム複合体の成分又はRNaseLをコードするmRNAの翻訳開始部位（例えば-10〜+10の領域）を含む領域に由来するオリゴデオキシリボヌクレオチドが好ましい。
【００４２】
アンチセンス核酸と、標的核酸との間の相補性は厳密であることが好ましいが、多少のミスマッチが存在していてもよい。標的核酸に対するアンチセンス核酸のハイブリダイズ能は一般に両核酸の相補性の程度及び長さの両方に依存する。通常、使用するアンチセンス核酸が長いほど、ミスマッチの数が多くても、標的核酸との間に安定な二重鎖（又は三重鎖）を形成することができる。当業者であれば、標準的な手法を用いて、許容可能なミスマッチの程度を確認することができる。
【００４３】
アンチセンス核酸はDNA、RNA、若しくはこれらのキメラ混合物、又はこれらの誘導体や改変型であってもよい。また、一本鎖でも二本鎖でもよい。塩基部分、糖部分、又はリン酸骨格部分を修飾することで、アンチセンス核酸の安定性、ハイブリダイゼーション能等を向上させることなどができる。また、アンチセンス核酸に、細胞膜輸送を促す物質（例えば Letsinger et al., 1989, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 86:6553-6556; Lemaitre et al., 1987, Proc. Natl. Acad. Sci. 84:648-652; PCT Publication No. W088/09810, published December 15, 1988を参照されたい)や、特定の細胞に対する親和性を高める物質などを付加してもよい。
【００４４】
アンチセンス核酸は例えば市販の自動DNA合成装置（例えばアプライド・バイオシステムズ社等）を使用するなど、常法で合成することができる。核酸修飾体や誘導体の作製には例えば、Stein et al.(1988), Nucl. Acids Res. 16:3209やSarin et al., (1988), Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 85:7448-7451等を参照することができる。
【００４５】
標的細胞内におけるアンチセンス核酸の作用を高めるために、pol IIやpol IIIといった強力なプロモーターを利用することができる。即ち、このようなプロモーターの制御下に配置されたアンチセンス核酸を含むコンストラクトを標的細胞に導入すれば、当該プロモーターの作用によって十分な量のアンチセンス核酸の転写を確保できる。
【００４６】
アンチセンス核酸の発現には、哺乳動物細胞（好ましくはヒト細胞）で機能することが知られている任意のプロモーター（誘導性プロモーター又は構成的プロモーター）によって行うことができる。例えば、SV40初期プロモーター領域 (Bernoist and Chambon, 1981, Nature 290:304-310)、ラウス肉腫ウイルスの3'末端領域由来のプロモーター(Yamamoto et al., 1980, Cell 22:787-797)、疱疹チミジン・キナーゼ・プロモーター(Wagner et al., 1981, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 78:1441-1445)等のプロモーターを使用することができる。
【００４７】
本発明の一態様では、リボザイムによる発現抑制を利用する（上記(d)の化合物の場合）。部位特異的認識配列でmRNAを開裂させるリボザイムを用いて標的mRNAを破壊することもできるが、好ましくはハンマーヘッド・リボザイムを使用する。ハンマーヘッド・リボザイムの構築方法については例えばHaseloff and Gerlach, 1988, Nature, 334:585-591を参考にすることができる。
【００４８】
アンチセンス法を利用する場合と同様に、例えば安定性やターゲット能を向上させることを目的として、修飾されたオリゴヌクレオチドを用いてリボザイムを構築してもよい。効果的な量のリボザイムを標的細胞内で生成させるために、例えば、強力なプロモーター（例えばpol IIやpol III）の制御下に、当該リボザイムをコードするDNAを配置した核酸コンストラクトを使用することが好ましい。
【００４９】
本発明の組成物に使用する機能抑制物質の量は、本発明の組成物の使用目的、使用する機能抑制物質の特性、標的細胞の種類等を考慮しつつ、標的細胞内で所望の効果を発揮できるように設定すればよい。機能抑制物質としてsiRNAを採用する場合には、例えば、一回分の量として、培養液中においてその濃度が10〜50 nMとなるようにsiRNAを含有させるとよい。
【００５０】
４．導入方法
本発明を利用して標的細胞内で目的遺伝子を発現させるためには、典型的には以下のステップ(1)及び(2)を行う。
(1)標的細胞にエキソソーム複合体又はRNaseLの機能抑制物質（本発明の第２要素）を導入するステップ
(2)前記標的細胞に目的遺伝子のmRNA（本発明の第１要素）を導入するステップ
【００５１】
ステップ(1)における、機能抑制物質としてのsiRNA等の標的細胞への導入、及びステップ(2)におけるmRNAの標的細胞への導入は公知の方法で行うことができる。例えば、リン酸カルシウム共沈降法、エレクトロポレーション(Potter, H. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 81, 7161-7165(1984))、リポフェクション(Felgner, P.L. et al.,  Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 84,7413-7417(1987))、マイクロインジェクション(Graessmann, M. & Graessmann,A., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 73,366-370(1976))、Hanahanの方法(Hanahan, D., J. Mol. Biol. 166, 557-580(1983))、酢酸リチウム法(Schiestl, R.H. et al., Curr. Genet. 16, 339-346(1989))、プロトプラスト−ポリエチレングリコール法(Yelton, M.M. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. 81, 1470-1474(1984))、超音波遺伝子導入法、カチオン性ポリアミン酸を利用した方法（例えば特開２０１１−１７３８０２号公報を参照）、カチオン性ポリマーセグメントと非架電親水性ポリマーセグメントとを有するブロックコポリマーからなるポリイオンコンプレックス（ＰＩＣ）型の高分子ミセルを利用した方法（例えば、特開２００４−３５２９７２号公報、国際公開第２０１２／００５３７６号パンフレットを参照）等によって実施することができる。
【００５２】
上でも言及したように、機能抑制物質の作用の発現に要する時間を考慮すれば、機能抑制物質とmRNAは、この順序で且つ間隔をあけて導入することが好ましい。従って、好ましくは、ステップ(1)の後、所定の時間（例えば１時間〜４８時間、好ましくは４時間〜３０時間）が経過した段階でステップ(2)を行う。但し、ステップ(1)とステップ(2)を同時に行うことにしてもよい。この場合、例えば、導入操作に先立って機能抑制物質とmRNAを混合したものを用意し、これを標的細胞へ導入する（この場合はステップ(1)とステップ(2)が同時に一つの操作として実施されることになる）。或いは、機能抑制物質とmRNAを別個に用意しておき、両者を実質的に時間差のない条件でそれぞれ標的細胞に導入する。
【００５３】
５．用途
本発明の組成物によれば、標的細胞内で人工合成mRNAを安定化させることができ、目的タンパク質が高発現する。従って、本発明は、目的タンパク質の高発現が望まれる様々な用途への適用が可能である。本発明の用途の例として、(A)各種ウイルス性疾患（例えばB型肝炎、後天性免疫不全症候群AIDS、成人T細胞白血病）や遺伝病（例えばデュシェンヌ型筋ジストロフィー、嚢胞性腺維症、βサラセミア、Hurler症候群、網膜色素変性症、X連鎖型腎性尿崩症）の治療、（B)癌免疫療法、(C)iPS細胞の作製、(D)幹細胞（例えばiPS細胞やES細胞などの多分化能幹細胞）又は前駆細胞の分化誘導、を挙げることができる。
【００５４】
(A)及び(B)は、いわゆるRNA医薬として本発明を利用するものである。(A)の具体例はB型肝炎の治療である。例えば、ゲノムに組み込まれたウイルスDNAを切断・分解するヌクレアーゼ（ZFN、TALEN、又はCRISPR-Cas9）遺伝子を目的遺伝子として組み込んだmRNAを用いることにより、従来のウイルスベクターを使用した方法で問題となる発がんリスクを伴わないウイルス治療が可能となる。このように、本発明の組成物はウイルス除去剤としても有用である。遺伝病の治療においては、例えば、疾患原因遺伝子（機能低下又は欠損により疾患を引き起こすもの）を目的遺伝子とし、本発明を適用する。（B)の用途では、本発明を利用してがん抗原のmRNAを抗原提示細胞に導入し、癌ワクチンを体内で産生させることになる。(C)の用途に本発明を適用すれば、ウイルスベクターを使用することなく初期化因子を導入することが可能になるため、細胞のがん化の問題を克服することができる。(D)の用途においても同様の利点が得られる。
【００５５】
本発明の組成物をRNA医薬として利用する場合の製剤化は常法に従って行うことができる。製剤化する場合には、製剤上許容される他の成分（例えば、緩衝剤、賦形剤、崩壊剤、乳化剤、懸濁剤、無痛化剤、安定剤、保存剤、防腐剤、生理食塩水、担体など）を含有させることができる。緩衝剤としてはリン酸緩衝液、クエン酸緩衝液などを用いることができる。賦形剤としては乳糖、デンプン、ソルビトール、D-マンニトール、白糖等を用いることができる。崩壊剤としてはデンプン、カルボキシメチルセルロース、炭酸カルシウム等を用いることができる。緩衝剤としてはリン酸塩、クエン酸塩、酢酸塩等を用いることができる。乳化剤としてはアラビアゴム、アルギン酸ナトリウム、トラガント等を用いることができる。懸濁剤としてはモノステアリン酸グリセリン、モノステアリン酸アルミニウム、メチルセルロース、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシメチルセルロース、ラウリル硫酸ナトリウム等を用いることができる。無痛化剤としてはベンジルアルコール、クロロブタノール、ソルビトール等を用いることができる。安定剤としてはプロピレングリコール、アスコルビン酸等を用いることができる。保存剤としてはフェノール、塩化ベンザルコニウム、ベンジルアルコール、クロロブタノール、メチルパラベン等を用いることができる。防腐剤としては塩化ベンザルコニウム、パラオキシ安息香酸、クロロブタノール等と用いることができる。
【００５６】
製剤化する場合の剤型も特に限定されない。剤型の例は注射剤、錠剤、散剤、細粒剤、顆粒剤、カプセル剤及びシロップ剤である。
【００５７】
本発明のRNA医薬はその剤型に応じて経口投与又は非経口投与（静脈内、動脈内、皮下、皮内、筋肉内又は腹腔内注射、経皮、経鼻、経粘膜など）によって対象に適用される。これらの投与経路は互いに排他的なものではなく、任意に選択される二つ以上を併用することもできる（例えば、経口投与と同時に又は所定時間経過後に静脈注射等を行う等）。ここでの「対象」は特に限定されず、ヒト及びヒト以外の哺乳動物（ペット動物、家畜、実験動物を含む。具体的には例えばマウス、ラット、モルモット、ハムスター、サル、ウシ、ブタ、ヤギ、ヒツジ、イヌ、ネコ、ニワトリ、ウズラ等である）を含む。好ましい一態様では本発明のRNA医薬はヒトに対して適用される。
【００５８】
本発明のRNA医薬の投与量は、期待される治療効果が得られるように設定される。治療上有効な投与量の設定においては一般に患者の症状、年齢、性別、及び体重などが考慮される。尚、当業者であればこれらの事項を考慮して適当な投与量を設定することが可能である。投与スケジュールとしては例えば１日１回〜数回、２日に１回、或いは３日に１回などを採用できる。投与スケジュールの作成においては、患者の症状や有効成分の効果持続時間などを考慮することができる。
【実施例】
【００５９】
１．目的
B型肝炎をはじめとするウイルス性疾患の治療や癌免疫療法への適用が期待される人工合成mRNAの安定性を高めることを目的とし、以下の検討を行った。
【００６０】
２．研究材料および方法
（１）プラスミド
RNAトランスフェクション用のベクターpBK-5F-EGFP-pA72は以下のように作製した。まず、オリゴヌクレオチド5’-ACC CTC GAC CCC ACC ATG GCA TCA ATG GAT -3’（配列番号２０）と、5’-ATC GAA TTC AAG CTT AGT ACA GCT CGT CCA TGC C -3’ （配列番号２１）を用いpCMV-5xFlag-EGFP（Hosoda, N., Funakoshi, Y., Hirasawa, M., Yamagishi, R., Asano, Y., Miyagawa, R., Ogami, K., Tsujimoto, M., Hoshino, S. (2011) Anti-proliferative protein Tob negatively regulates CPEB3 target by recruiting Caf1 deadenylase. EMBO J 30, 1311-1323.）を鋳型としたPCR法により得られたDNA断片を、XhoIおよびEcoRIにより処理した。このDNA断片をpBluskript II SK(-)（アジレント・テクノロジー株式会社）のXhoI、EcoRIサイトに挿入し、pBK-5F-EGFPを得た。次に、オリゴヌクレオチド5’-CTT GAA TTC GAT ATC GTC GAC GCT CGC TTT CTT GCT GTC CAA TTT CT -3’ （配列番号２２）と、5’- GTC TCT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT TTT CTA GAC ATC ATT GCA ATG AAA A -3’ （配列番号２３）を用いpFlag-CMV5/TO-BGG（Funakoshi et al Genes and Development）を鋳型としたPCR法により得られたDNA断片を、EcoRIにより処理した。このDNA断片をpBK-5F-EGFPのEcoRIサイトおよび平滑化したBamHIサイトに挿入し、pBK-5F-EGFP-pA72を作製した。pBK-5F-EGFP(1-30)pA72は、オリゴヌクレオチドCTTGAATTCGATATCGTCGACGCTCGCTTTCTTGCTGTCCAATTTCT（配列番号２４）およびCTTACACGCTGAACTTGTGGCCGTT（配列番号２５）を用い、pBK-5F-EGFPpA72を鋳型としたインバースPCR法により作成した。また、同様の方法で、ポリ(A)鎖の長さが100のmRNA用のプラスミド（pBK-5F-EGFPpA100）も作成した。
【００６１】
（２）siRNA配列
以下のsiRNAを実験に使用した(Saito, S., Hosoda, N., Hoshino, S. (2013) Hbs1-Dom34 functions in non-stop mRNA decay (NSD) in mammalian cells. J Biol Chem 288, 17832-17843.)。
＜Ski2を標的としたsiRNA＞
GGAGAUAGACUUUGAGAAA dTdT（配列番号１７）
＜Mtr4を標的としたsiRNA＞
GAGUCAAUAACUGAAGACU dTdT（配列番号１８）
＜Dis3を標的としたsiRNA＞
CUCAUAGAUCGUCUUGCUU dTdT（配列番号１９）
＜Dom34を標的としたsiRNA＞
CAUCCAAGAGAAUGAGUAU dTdT（配列番号２７）
＜eRF1を標的としたsiRNA＞
GAAAGUCAACAUUGACUUU dTdT（配列番号２８）
＜Hbs1を標的としたsiRNA＞
GCAGUUCUGAAGAACAAGU dTdT（配列番号２９）
＜GTPBP1を標的としたsiRNA＞
CGAGUAGGAGACAAUGACU dTdT（配列番号３０）
＜GTPBP2を標的としたsiRNA＞
CAAAGUCUUUCUGAAUAUU dCdT（配列番号３１）
＜RNaseLを標的としたsiRNA＞
GCUGUUCAAAACGAAGAUG dTdT（配列番号３２）
【００６２】
（３）RNA合成
T7 RNAポリメラーゼを用いて、pBK-5F-EGFP-pA72を、BsmBIで処理したものを鋳型として5xFlag-EGFP-pA72 mRNAを合成した。また、pBK-5F-EGFP-pA72を、XbaIで処理したものを鋳型として5xFlag-EGFP-pA0 mRNAを合成した。その他のmRNA（5xFlag-EGFP(1-30)-pA72 mRNA、5xFlag-EGFP(1-30)-pA0、mRNA 5xFlag-EGFP-pA100 mRNA）も同様の方法で用意した。RNA合成はT7 RNAポリメラーゼ（タカラバイオ株式会社）を用い、その取扱い説明書に従って行った。尚、上記合成反応溶液中にNew England Biolabsが提供する3’O-Me-m7G(5’)G RNA Cap Structure Analogを添加し、5’キャップ構造を付加した。
【００６３】
（４）トランスフェクション
HeLa細胞は、5% ウシ胎仔血清を添加したDulbecco’s Modified Eagle’s Medium （日水製薬）を用い5% CO2存在下37℃で培養した。HeLa細胞を50%コンフルエントとなるように35 mmディッシュに撒種し、24時間培養後、ディッシュあたり0.5μgのRNAをLipofectamine RNAiMAX（ライフテクノロジーズ）を用い取扱い説明書に従って導入した。プラスミドについてはPEI MAX (Polysciences, Inc)を用い取扱説明書に従って導入した。
【００６４】
（５）RNAの解析
RNAトランスフェクション後のHeLa細胞からのtotal RNAの単離は、グアニジンチオシアン酸塩、酸性フェノール、クロロホルムを用いた方法（AGPC法）により行った。調製したtotal RNAは、アガロースMOPSバッファーゲル（20 mM MOPS (pH 7.0), 5 mM 酢酸ナトリウム, 1 mM EDTA, 2.0 % Agarose, 2.46 M ホルムアルデヒド）により分離した後、アルカリ条件下（3 M 塩化ナトリウム, 8 mM 水酸化ナトリウム）でナイロン膜Biodyne-B (Pall)に転写した。転写後のナイロン膜は、UVで固定した後、7% SDS, 250 mM Na3PO4 (pH 7.4), 2 mM EDTA溶液中においてFlagプローブと42℃で一晩ハイブリダイゼーションした。Flagプローブは、ターミナル・デオキシヌクレオチジル・トランスフェラーゼ(TdT)(ライフテクノロジーズ)により、オリゴヌクレオチド5’-CTT ATC GTC GTC ATC CTT GTA ATC-3’（配列番号２６）の3’末端に[α-32P]dCTPを取り込ませることにより作製した。ナイロン膜に取り込まれた放射活性は、バイオ・イメージングアナライザーBAS-1800（富士写真フィルム株式会社）を用い検出した。
【００６５】
（６）タンパク質の解析
タンパク質の細胞内発現は、以下に示すウエスタンブロット法により行った。導入後の細胞からのタンパク質ライセートの調製は、SDS-PAGEサンプルバッファー(50 mM Tris-HCl (pH6.8)、4%グリセロール、2% SDS、2% 2-メルカプトエタノール、0.004%ブロモフェノールブルー)を用い行った。タンパク質ライセートは8、10、12、もしくは15%のアクリルアミドを用いたSDS-PAGE法により分離した後、ニトロセルロース膜BioTrace NC (Pall)に電気的に転写した。転写後のニトロセルロース膜は、抗Myc 9E10マウスモノクローナル抗体（Roche）、抗Dis3抗体（Santa Cruz）、もしくは抗GAPDH抗体（Saito, S., Hosoda, N., Hoshino, S. (2013) Hbs1-Dom34 functions in non-stop mRNA decay (NSD) in mammalian cells. J Biol Chem 288, 17832-17843.）およびペルオキシダーゼ付加抗マウスIgG（Jackson ImmunoResearch Laboratories, Inc.）、ペルオキシダーゼ付加抗ラットIgG(Jackson ImmunoResearch Laboratories, Inc.)、もしくはペルオキシダーゼ付加抗ウサギIgG(Jackson ImmunoResearch Laboratories, Inc.)とインキュベートした。ニトロセルロース膜上のペルオキシダーゼ酵素活性は、ルミノール化学発光法を用い、LAS3000mini（富士写真フィルム株式会社）により検出した。
【００６６】
（７）ポリクローナル抗体の作成
抗GTPBP1抗体は、大腸菌から調製したHisタグ付加GTPBP全長タンパク質をウサギに免疫し作製した。抗GTPBP2抗体は、大腸菌から調製したHisタグ付加GTPBP2 (1-166 a.a.)タンパク質をウサギに免疫し作製した。抗RNaseL抗体は、大腸菌から調製したHisタグ付加RNaseL (1-340 a.a.)タンパク質をウサギに免疫し作製した。抗Dom34抗体、抗Hbs1抗体は、以前報告(Saito et al., (2011) J Biol Chem 288:17832-17843)したものを用いた。抗eRF1抗体は、以前報告(Hoshino et al., (1999)  J. Biol. Chem.274: 16677-16680.)したものを用いた。
【００６７】
３．結果
人工合成mRNAを安定化するためには、まず人工合成mRNAが細胞内においてどのような分解経路で分解されるのかを知る必要がある。細胞内mRNAの分解機構はすでに解明されており（Funakoshi, Y., Doi, Y., Hosoda, N., Uchida, N., Osawa, M., Shimada, I., Tsujimoto, M., Suzuki, T., Katada, T., and Hoshino, S. (2007) Mechanism of mRNA deadenylation: evidence for a molecular interplay between translation termination factor eRF3 and mRNA deadenylases. Genes Dev 21, 3135-3148.）、翻訳に依存する形で3’末端ポリA鎖の分解を第一段階として5’→3’方向にmRNAの分解が進行する。人工合成mRNAも同様の機構で分解されると予想し、人工合成mRNAについて翻訳阻害剤の効果を検討した。その結果、図１に示す通り、翻訳阻害剤シクロヘキシミド（CHX）添加による人工合成mRNAの安定化が観察された。このことは、細胞内mRNAと同様に人工合成mRNAの分解も翻訳依存的であることを示している。一方、人工合成mRNAの3’末端ポリA鎖長を変えて半減期を測定すると、ポリA鎖長の違いによる安定性の変化は観察されず（図２Ａ、Ｂ、Ｃ）、ポリA鎖分解による分子量の変化も検出できなかった（図２Ｄ、Ｅ、Ｆ）。また、細胞内mRNAではポリA鎖分解酵素Caf1の過剰発現によって分解促進が観察され、Caf1のドミナントネガティブ変異体の過剰発現によって逆に安定化が観察されるが、人工合成mRNAにおいてはそのような効果は皆無であった（図３Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ）。以上の結果より、人工合成mRNAは細胞内mRNAとは全く異なる分解経路で分解を受けることが明らかとなった。
【００６８】
そこで、細胞内mRNAの分解において補助的に働く3’→5’エキソヌクレアーゼであるエキソソームの関与について検討を行うことにした。図４に、エキソソームの触媒サブユニットであるDis3のノックダウンの結果を示す。Dis3に対するsiRNAにより9割以上の発現抑制が観察された（図４Ａ）が、そのような条件下、人工合成mRNAの半減期は二倍以上に延長し人工合成mRNAの安定化が観察された。また、エキソソームはSki2やMtr4と複合体を形成して機能することから、これらの因子についても同様にノックダウンしたところ、Ski2、Mtr4両者の発現を抑制することで人工合成mRNAの半減期はやはり二倍以上に延長した。以上の結果は、人工合成mRNAがエキソソーム-Ski複合体によって分解されていることを示している。また、人工合成mRNAの分解にエキソソーム-Mtr4複合体も関与し得ることも示唆する。
【００６９】
一方、5’→3’方向の分解を触媒するXrn1のノックダウン単独では有意な変化は観察されず、Dis3と共にノックダウンした時にのみ、Xrn1欠損による軽度の半減期延長が観察された（図６）。
【００７０】
細胞内mRNAの品質管理においては、エキソソームはその制御因子であるHbs1及びDom34によってmRNA上にリクルートされることが報告されている（Saito, S., Hosoda, N., Hoshino, S. (2013) Hbs1-Dom34 functions in non-stop mRNA decay (NSD) in mammalian cells. J Biol Chem 288, 17832-17843.）。そこで、これらの因子が人工合成mRNA分解に関与する可能性について検討した。図１０にDom34、図１１にGTPBP1、GTPBP2のノックダウンの結果を示す。Dom34、GTPBP1、GTPBP2はどれも9割以上の発現抑制が観察された（図１１Aと図１２A）が、そのような条件下、人工合成mRNAの半減期はどれも有意に延長し、人工合成mRNAの安定化が観察された（図１１B-Dと図１２B-D）。一方、Hbs1やeRF1のノックダウンではそのような効果は観察されなかった。以上の結果は、人工合成mRNAがエキソソーム制御因子であるGTPBP1、GTPBP2、Dom34によって分解促進を受けることを示している。
【００７１】
細胞内mRNAの品質管理では、エキソソームやその制御因子に加えエンドヌクレアーゼがその分解に重要であるケースが知られている。そのようなエンドヌクレアーゼについて検索した結果、RNaseLが人工合成mRNAの分解において機能することを見出した。図１２に示す通り、RNaseLをノックダウンすることで人工合成mRNAの半減期が約二倍に増大した。従って人工合成mRNAの分解においてもエンドヌクレアーゼが機能しており、RNaseLがその分解に重要な役割を果たしていることが明らかとなった。
【００７２】
４．考察
人工合成mRNAの分解経路についてはこれまで報告はなく、細胞内のmRNAと同様にポリA鎖分解の後に5’→3’方向の分解を受けることが想定されてきたが、本検討の成果により、人工合成mRNAは主として3’→5’方向の分解を触媒するエキソソーム-Ski複合体によって分解されることが初めて明らかとなった。また、GTPBP1、GTPBP2、Dom34がその制御因子として機能し、エンドヌクレアーゼであるRNaseLの関与についても実証された。図４、図５、図１０、図１１、図１２の実験に示したように、Dis3をはじめとするエキソソーム構成因子、Ski2、Mtr4ヘリカーゼなどのエキソソームの補助因子、又はGTPBP1、GTPBP2、Dom34をはじめとするエキソソーム制御因子、或いはRNaseLに対するsiRNAをトランスフェクトし、エキソソーム複合体やRNaseLの機能を抑制することで、人工合成mRNAを細胞内において安定化することが可能となる。
【００７３】
このような技術は、B型肝炎の治療だけでなく、(i)他の多くのウイルス性疾患にも適用することが可能であり、また、(ii)癌抗原をコードする人工合成mRNAを抗原提示細胞に導入して行う癌免疫療法、(iii)疾患原因遺伝子に対する人工合成mRNAを用いて原因遺伝子の機能欠損を補う補充療法、(iv)ウイルスベクターを用いて山中4因子を細胞に導入し多能性幹細胞iPSを作製する代りに人工合成mRNAを用いることで発癌のリスクをなくしたiPS細胞の作製など、RNA医薬が関わるさまざまな局面において応用可能である。
【産業上の利用可能性】
【００７４】
本発明によれば、標的細胞に導入した人工合成mRNAが安定化し、目的遺伝子の高発現が可能となる。本発明の用途としてRNA医薬（各種ウイルス性疾患の治療、癌免疫療法等）、iPS細胞の作製、幹細胞又は前駆細胞の分化誘導が想定される。
【００７５】
この発明は、上記発明の実施の形態及び実施例の説明に何ら限定されるものではない。特許請求の範囲の記載を逸脱せず、当業者が容易に想到できる範囲で種々の変形態様もこの発明に含まれる。本明細書の中で明示した論文、公開特許公報、及び特許公報などの内容は、その全ての内容を援用によって引用することとする。
【配列表フリーテキスト】
【００７６】
配列番号1：人工配列の説明：プラスミドの配列
配列番号３：人工配列の説明：ベクター由来の配列
配列番号５：人工配列の説明：制限酵素サイト
配列番号７：人工配列の説明：プラスミドの配列
配列番号１７：人工配列の説明：siRNA
配列番号１８：人工配列の説明：siRNA
配列番号１９：人工配列の説明：siRNA
配列番号２０：人工配列の説明：プライマー
配列番号２１：人工配列の説明：プライマー
配列番号２２：人工配列の説明：プライマー
配列番号２３：人工配列の説明：プライマー
配列番号２４：人工配列の説明：プライマー
配列番号２５：人工配列の説明：プライマー
配列番号２６：人工配列の説明：プローブ
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【配列表】
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