(57)【要約】【課題】細胞の長期的な生存に影響を及ぼさずに、早期細胞死の問題を克服する細胞の生存促進剤を提供する。【解決手段】本発明の細胞の生存促進剤は、下記式（１）で表されるペプチド、又は、下記式（１）で表されるペプチド中の１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、細胞膜透過性及びカスパーゼ酵素阻害活性を有するペプチド、を少なくとも１種含有することを特徴とする。Ｍ−ＣＳ−Ｍ’（１）［式（１）中、Ｍは、Ｎ末端又は細胞膜透過性ペプチド由来のアミノ酸配列を示し、ＣＳは、カスパーゼの基質由来のアミノ酸配列を示し、Ｍ’は、Ｃ末端又は細胞膜透過性ペプチド由来のアミノ酸配列を示し、Ｍ及びＭ’のうち、少なくとも一方は、細胞膜透過性ペプチド由来のアミノ酸配列を示す。］【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記式（１）で表されるペプチド、又は、
下記式（１）で表されるペプチド中の１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、細胞膜透過性及びカスパーゼ酵素阻害活性を有するペプチド、
を少なくとも１種含有することを特徴とする細胞の生存促進剤。
Ｍ−ＣＳ−Ｍ’（１）
［式（１）中、Ｍは、Ｎ末端又は細胞膜透過性ペプチド由来のアミノ酸配列を示し、
ＣＳは、カスパーゼの基質由来のアミノ酸配列を示し、
Ｍ’は、Ｃ末端又は細胞膜透過性ペプチド由来のアミノ酸配列を示し、
Ｍ及びＭ’のうち、少なくとも一方は、細胞膜透過性ペプチド由来のアミノ酸配列を示す。］
【請求項２】
Ｍは、Ｎ末端、又は、ＴＡＴ、ＭＰＧ、ＨＡ−２、Ｐｅｎｅｔｒａｔｉｎ、Ｔｒａｎｓｐｏｒｔａｎ、ＶＰ−２２、若しくはこれらのＲｅｔｒｏ−Ｉｎｖｅｒｓｏ型、若しくはこれらの組み合わせを示す請求項１に記載の細胞の生存促進剤。
【請求項３】
ＣＳは、イニシエーターカスパーゼ若しくはエフェクターカスパーゼの基質由来の天然アミノ酸配列又は修飾アミノ酸配列、又はこれらのＲｅｔｒｏ−Ｉｎｖｅｒｓｏ型、又はこれらの組み合わせを示す請求項１又は２に記載の細胞の生存促進剤。
【請求項４】
Ｍ’は、Ｃ末端、又は、ＴＡＴ、ＭＰＧ、ＨＡ−２、Ｐｅｎｅｔｒａｔｉｎ、Ｔｒａｎｓｐｏｒｔａｎ、ＶＰ−２２、若しくはこれらのＲｅｔｒｏ−Ｉｎｖｅｒｓｏ型、若しくはこれらの組み合わせを示す請求項１〜３のいずれか一項に記載の細胞の生存促進剤。
【請求項５】
前記ペプチドは、Ｌ−アミノ酸、Ｄ−アミノ酸、又はこれらの組み合わせからなる請求項１〜４のいずれか一項に記載の細胞の生存促進剤。
【請求項６】
前記ペプチドは、分子カーゴと共有結合的又は非共有結合的に結合してなる請求項１〜５のいずれか一項に記載の細胞の生存促進剤。
【請求項７】
前記分子カーゴは、ＭＲＩトレーサー、オリゴヌクレオチド、前記ペプチドとは異なるペプチド、タンパク質、薬剤、及びナノ粒子からなる群から選ばれる少なくとも１種である請求項１〜６のいずれか一項に記載の細胞の生存促進剤。
【請求項８】
自家移植を含む、実験的移植又は治療学的移植に用いられる請求項１〜７のいずれか一項に記載の細胞の生存促進剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、細胞の生存促進剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
カスパーゼ等の細胞死関連酵素を阻害するペプチド性阻害剤は、広く報告されている（例えば、非特許文献１参照）。これらペプチド性阻害剤のいくつかについて、臨床試験が行われている。カスパーゼの活性を阻害するペプチド性阻害剤は、可逆的に働くか不可逆的に働くかによって分類される。又は、特定のカスパーゼに作用するか、カスパーゼの特定のグループに作用するか、カスパーゼ全体に作用するかといった選択性で分類される。
現存するペプチド阻害剤の多くは、カスパーゼによって切断されるコンセンサス配列と同一又は類似の配列を含み、切断反応を阻害する。
【０００３】
カスパーゼによって切断されるコンセンサス配列を含み、カスパーゼによって完全に切断されるペプチド性阻害剤は、細胞に多量に投与されることによって、カスパーゼの基質に対して競合的に働く。ペプチド性阻害剤の作用機序は、コンピューターモデリングによって予測されている。そして、係る予測は、細胞ベースの実験によって確かめられている。
【０００４】
しかしながら、ほとんどのペプチドが細胞内に受動輸送されないため、細胞内で機能させるためには、標的ペプチドを細胞内に導入しなければならない。ＴＡＴ、ＭＰＧ、Ｐｅｐ、ＨＡ−２、Ｐｅｎｅｔｒａｔｉｎ、Ｔｒａｎｓｐｏｒｔａｎ、ＶＰ−２２等の多くのペプチド配列が細胞内移行性を示すことが知られており、これらのペプチド配列と標的ペプチドを融合させることにより、標的ペプチドの細胞内移行性を促進することができる。
【０００５】
幹細胞を含む移植細胞は、生存率が低く、この生存率の低さは、細胞ベース療法の主要な限定要因の一つとなっている。移植された細胞の多くは、移植後数日で死ぬ。この細胞死は、酸素フリーラジカル種、炎症性サイトカイン、低酸素症、細胞外基質からの脱離等の様々な要因によって引き起こされるアポトーシスである。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】Ｙａｏｉｔａ  Ｈ，ｅｔ．ａｌ．，Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ.，（１９９８），９７（３），ｐｐ．２７６−２８１．
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
同一の細胞内経路が、細胞増殖と細胞死に対する抵抗性に寄与していることから、移植後の細胞の生存期間の短さを、将来的な悪性腫瘍化のリスクなく改善させることは、難しい。
【０００８】
本発明は、上記事情に鑑みてなされたものであって、細胞の長期的な生存に影響を及ぼさずに、早期細胞死の問題を克服する細胞の生存促進剤を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明の一実施態様は、下記（１）〜（４）を提供するものである。
（１）本発明の細胞の生存促進剤は、下記式（１）で表されるペプチド、又は、下記式（１）で表されるペプチド中の１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、細胞膜透過性及びカスパーゼ酵素阻害活性を有するペプチド、を少なくとも１種含有することを特徴とする。
Ｍ−ＣＳ−Ｍ’（１）
［式（１）中、Ｍは、Ｎ末端又は細胞膜透過性ペプチド由来のアミノ酸配列を示し、
ＣＳは、カスパーゼの基質由来のアミノ酸配列を示し、
Ｍ’は、Ｃ末端又は細胞膜透過性ペプチド由来のアミノ酸配列を示し、
Ｍ及びＭ’のうち、少なくとも一方は、細胞膜透過性ペプチド由来のアミノ酸配列を示す。］
（２）本発明の細胞の生存促進剤において、Ｍは、Ｎ末端、又は、ＴＡＴ、ＭＰＧ、ＨＡ−２、Ｐｅｎｅｔｒａｔｉｎ、Ｔｒａｎｓｐｏｒｔａｎ、ＶＰ−２２、若しくはこれらのＲｅｔｒｏ−Ｉｎｖｅｒｓｏ型、若しくはこれらの組み合わせを示すことが好ましい。
（３）本発明の細胞の生存促進剤において、ＣＳは、イニシエーターカスパーゼ若しくはエフェクターカスパーゼの基質由来の天然アミノ酸配列又は修飾アミノ酸配列、又はこれらのＲｅｔｒｏ−Ｉｎｖｅｒｓｏ型、又はこれらの組み合わせを示すことが好ましい。
（４）本発明の細胞の生存促進剤において、Ｍ’は、Ｃ末端、又は、ＴＡＴ、ＭＰＧ、ＨＡ−２、Ｐｅｎｅｔｒａｔｉｎ、Ｔｒａｎｓｐｏｒｔａｎ、ＶＰ−２２、若しくはこれらのＲｅｔｒｏ−Ｉｎｖｅｒｓｏ型、若しくはこれらの組み合わせを示すことが好ましい。
（５）本発明の細胞の生存促進剤において、前記ペプチドは、Ｌ−アミノ酸、Ｄ−アミノ酸、又はこれらの組み合わせからなることが好ましい。
（６）本発明の細胞の生存促進剤において、前記ペプチドは、分子カーゴと共有結合的又は非共有結合的に結合してなることが好ましい。
（７）本発明の細胞の生存促進剤において、前記分子カーゴは、ＭＲＩトレーサー、オリゴヌクレオチド、前記ペプチドとは異なるペプチド、タンパク質、薬剤、及びナノ粒子からなる群から選ばれる少なくとも１種であることが好ましい。
（８）本発明の細胞の生存促進剤は、自家移植を含む、実験的移植又は治療学的移植に用いられることが好ましい。
【発明の効果】
【００１０】
本発明によれば、実験的移植又は治療学的移植における細胞ベースの移植率を向上できる。
また、本発明は、プログラム細胞死を限られた期間だけ遅延させたい場合、特に、急性の熱ストレス、毒性物質の投与、再灌流傷害といった刺激によって引き起こされる大量の急性細胞死を遅延させたい場合に有用である。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】初代繊維芽細胞抽出液の低分子量（１〜３ｋＤａ）プロファイルを示す。
【図２】ラットの脊髄から抽出した初代ラット繊維芽細胞へのペプチドの導入効率を調べた結果である。
【図３】２０６０細胞へのペプチドの導入効率を調べた結果である。
【図４】Ｎ１Ｅ細胞において、スタウロスポリン処置後のアポトーシスをペプチドが抑制した結果を示す。
【図５】ウエスタンブロットにより、活性化カスパーゼ３を評価した結果である。
【図６】Ｎ１Ｅ細胞において、血清を急激に取り除くことにより誘発されるアポトーシスをペプチドが抑制した結果を示す。
【図７】Ｎ１Ｅ細胞において、過酸化水素により誘発されるアポトーシスをペプチドが抑制した結果を示す。
【図８】移植２週間後の細胞塊を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
本発明の細胞の生存促進剤は、下記式（１）で表されるペプチド、又は、下記式（１）で表されるペプチド中の１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加されたアミノ酸配列からなり、細胞膜透過性及びカスパーゼ酵素阻害活性を有するペプチド、を少なくとも１種含有する。
Ｍ−ＣＳ−Ｍ’（１）
［式（１）中、Ｍは、Ｎ末端又は細胞膜透過性ペプチド由来のアミノ酸配列を示し、
ＣＳは、カスパーゼの基質由来のアミノ酸配列を示し、
Ｍ’は、Ｃ末端又は細胞膜透過性ペプチド由来のアミノ酸配列を示し、
Ｍ及びＭ’のうち、少なくとも一方は、細胞膜透過性ペプチド由来のアミノ酸配列を示す。］
【００１３】
損傷を受けた神経を再生し、再接続させることは、依然として困難な課題である。従来、幹細胞の移植、及び／又は、機能的回復を自然な方法で付与できる補助的細胞の移植は、移植後の細胞の生存率が低いために成功率が低かった。
移植後の最初の数日は、細胞が生存するために重要な時間である。それは、移植細胞は細胞外基質への接着が確立しておらず、損傷部位は、炎症性サイトカインを生産する免疫細胞に浸潤され、血管新生の生じない部分は、局所的に低酸素濃度となるからである。これらの状況下にある多くの細胞は、アポトーシス、アノイキス、又はネクローシスによって死ぬ。
【００１４】
アポトーシスによる細胞死は、カスパーゼと呼ばれる特定の種類のプロテアーゼの活性化を介して生じる。カスパーゼは、細胞の中の広範囲にわたるタンパク質基質を分解し、周囲の環境に炎症反応を生じさせることなく、細胞が死ぬ準備を行う。
カスパーゼは、不活性型の酵素前駆体として細胞に存在する。そして、上流の他のカスパーゼに切断されることによって活性化する。
ここで、細胞にカスパーゼの基質を過剰に供給すると、細胞内の天然の基質の分解とカスパーゼカスケードの更なる活性化は遅延する。この遅延により、移植細胞が移植部位で、環境に適合するために必要な時間を稼ぐことができる。
【００１５】
前記式（１）で表されるペプチドは、生存期間の短い細胞で分解可能な分子である。このペプチドは、（ｉ）カスパーゼの基質又は切断部位の実際の構造を模擬するために用いられ、（ｉｉ）既知の機能的な配列を融合させることによって細胞への透過性が促進する。
【００１６】
前記式（１）で表されるペプチドをデザインするための理論的根拠を以下に示す。
（ｉ）細胞に酵素の競合的基質を多量に導入することにより、実際の酵素の活性化を遅延させることができる。導入された基質が消費された後は、カスパーゼの活性化は依然として存在し、アポトーシスによる細胞死は自然に誘導される。
（ｉｉ）移植後の重要な期間に、移植細胞が生存できる一方、細胞死シグナルを持続的にブロックするおそれ、及び、移植細胞の癌化のおそれがない。
（ｉｉｉ）ペプチドの洗練された構造は、工業的化学合成に適している。
（ｉｖ）ペプチドを修飾することにより、ペプチドの迅速な細胞内移行を可能とする。
【００１７】
ペプチドを細胞内に導入させることは、技術的に難しい。そこで、本発明において、細胞内に必要な濃度のペプチドを導入するため、本発明者は、カスパーゼの切断配列に細胞内移行促進配列を融合させた。
前記式（１）で表されるペプチドにおいて、Ｍ及びＭ’のうち、少なくとも一方は、細胞膜透過性ペプチド由来のアミノ酸配列を示す。
前記式（１）で表されるペプチドにおいて、Ｍは、Ｎ末端、又は、ＴＡＴ、ＭＰＧ、ＨＡ−２、Ｐｅｎｅｔｒａｔｉｎ、Ｔｒａｎｓｐｏｒｔａｎ、ＶＰ−２２、若しくはこれらのＲｅｔｒｏ−Ｉｎｖｅｒｓｏ型、若しくはこれらの組み合わせを示すことが好ましい。
また、前記式（１）で表されるペプチドにおいて、Ｍ’は、Ｃ末端、又は、ＴＡＴ、ＭＰＧ、ＨＡ−２、Ｐｅｎｅｔｒａｔｉｎ、Ｔｒａｎｓｐｏｒｔａｎ、ＶＰ−２２、若しくはこれらのＲｅｔｒｏ−Ｉｎｖｅｒｓｏ型、若しくはこれらの組み合わせを示すことが好ましい。
【００１８】
前記式（１）で表されるペプチドにおいて、ＣＳは、カスパーゼの基質由来のアミノ酸配列を示す。
カスパーゼの基質を一時的に投与することにより、異なるアポトーシス刺激によって誘導されるカスパーゼの酵素活性が臨界閾に達するのを抑制することができる。この抑制により、下流のカスパーゼカスケードの活性化によるアポトーシスの実行を遅延させる。アポトーシス刺激が続く場合、細胞死は遅延するが依然として起きる。細胞を取り囲む環境がより生存促進的となる場合、生存経路が優先的に働く。
【００１９】
前記式（１）で表されるペプチドにおいて、ＣＳは、イニシエーターカスパーゼ若しくはエフェクターカスパーゼの基質由来の天然アミノ酸配列又は修飾アミノ酸配列、又はこれらのＲｅｔｒｏ−Ｉｎｖｅｒｓｏ型、又はこれらの組み合わせを示すことが好ましい。
イニシエーターカスパーゼとしては、カスパーゼ２、カスパーゼ８、カスパーゼ９、カスパーゼ１０、カスパーゼ１２等が挙げられる。カスパーゼ８の基質由来の天然アミノ酸配列としては、ＩＥＴＤ（該アミノ酸配列は一文字表記である。）が挙げられる。カスパーゼ９の基質由来の天然アミノ酸配列としては、ＬＥＨＤが挙げられる。
エフェクターカスパーゼとしては、カスパーゼ３、カスパーゼ６、カスパーゼ７等が挙げられる。カスパーゼ３の基質由来の天然アミノ酸配列としては、ＤＥＶＤが挙げられる。
【００２０】
本発明に用いられるペプチドは、Ｌ−アミノ酸、Ｄ−アミノ酸、又はこれらの組み合わせからなるものであってもよい。Ｌ−アミノ酸は、天然に存在するアミノ酸であり、Ｄ−アミノ酸は、Ｌ−アミノ酸残基のキラリティーが反転しているものである。
Ｒｅｔｒｏ−Ｉｎｖｅｒｓｏ型とは、対応するネイティブＬ−アミノ酸配列についての逆転したアミノ酸配列（Ｄ−アミノ酸を含むアミノ酸配列）を合成することによって構築されたものである。
【００２１】
式（１）で表されるペプチドとしては、以下のものが挙げられる。
Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｌｙｓ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ｉｌｅ−Ｇｌｕ−Ｔｈｒ−Ａｓｐ−Ｓｅｒ−Ｇｌｙ−Ｔｈｒ（配列番号１）
この配列は、Ｃａｓｐａｓｅ−３を活性化するための切断配列とＴＡＴタンパク質由来の配列を融合させた配列を示す。
【００２２】
ｄＴｈｒ−Ｇｌｙ−ｄＳｅｒ−ｄＡｓｐ−ｄＴｈｒ−ｄＧｌｕ−ｄＩｌｅ−Ｇｌｙ−Ａｒｇ−Ｌｙｓ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ（配列番号２）
この配列は、Ｃａｓｐａｓｅ−３を活性化するための切断配列のＲｅｔｒｏ−Ｉｎｖｅｒｓｏ型とＴＡＴタンパク質由来の配列を融合させた配列を示す。配列中、ｄＸａａは、Ｄ−アミノ酸を示す。
【００２３】
Ｓｅｒ−Ｓｅｒ−Ｖａｌ−Ｇｌｕ−Ｔｈｒ−Ａｓｐ−Ｇｌｙ−Ｌｙｓ−Ｇｌｕ−Ｔｈｒ−−Ｔｒｐ−Ｔｒｐ−Ｇｌｕ−Ｔｈｒ−Ｔｒｐ−Ｔｒｐ−Ｔｈｒ−Ｇｌｕ−Ｔｒｐ−Ｓｅｒ−Ｇｌｎ−Ｐｒｏ−Ｌｙｓ−Ｌｙｓ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ｌｙｓ−Ｖａｌ（配列番号３）
この配列は、Ｃａｓｐａｓｅ−８の切断配列とＰｅｐ−１タンパク質由来の配列を融合させた配列を示す。
【００２４】
Ｇｌｙ−Ｔｒｐ−Ｔｈｒ−Ｌｅｕ−Ａｓｎ−Ｓｅｒ−Ａｌａ−Ｇｌｙ−Ｔｙｒ−Ｌｅｕ−Ｌｅｕ−Ｇｌｙ−Ｌｙｓ−Ｉｌｅ−Ａｓｎ−Ｌｅｕ−Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ｌｅｕ−Ａｌａ−Ａｌａ−Ｌｅｕ−Ａｌａ−Ｌｙｓ−Ｌｙｓ−Ｉｌｅ−Ｌｅｕ−Ｓｅｒ−Ｇｌｕ−Ｖａｌ−Ａｓｐ−Ｓｅｒ（配列番号４）
この配列は、Ｃａｓｐａｓｅ−９の切断配列とＴｒａｎｓｐｏｒｔａｎタンパク質由来の配列を融合させた配列を示す。
【００２５】
また、本発明に用いられるペプチドは、分子カーゴと共有結合的又は非共有結合的に結合してなるものであってもよい。本発明において、分子カーゴとは、細胞膜透過性を有する本発明に用いられるペプチドに結合して、細胞内に移行させたい分子をいう。
分子カーゴとしては、ＭＲＩトレーサー、オリゴヌクレオチド、本発明に用いられるペプチド（例えば、前記式（１）で表されるペプチド）とは異なるペプチド、タンパク質、薬剤、ナノ粒子等が挙げられる。これらの内、少なくとも一種を分子カーゴとして用いることが好ましい。
【００２６】
本発明の細胞の生存促進剤は、自家移植を含む、実験的移植又は治療学的移植に好適に用いられる。移植に用いられる細胞としては、幹細胞、循環血球、シュワン細胞、膵臓β細胞、細胞株等が挙げられる。
移植後の最初の数日は、移植細胞は細胞死を起こしやすい。移植細胞は細胞外基質への接着が確立しておらず、損傷部位は、炎症性サイトカインを生産する免疫細胞に浸潤され、血管新生の生じない部分は、局所的に低酸素濃度となるからである。
本発明の細胞の生存促進剤によれば、カスパーゼカスケードの更なる活性化は遅延させ、移植細胞が移植部位で、環境に適合するために必要な時間を稼ぐことができる。
【００２７】
以下、実施例により本発明を説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
【実施例】
【００２８】
［ペプチドの作製］
以下に、示すペプチドを作製した。
（１）ＬＬ１８［ＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲＧＩＥＴＤＳＧＴ（配列番号１）］は、Ｃａｓｐａｓｅ−３を活性化するための切断配列とＴＡＴタンパク質由来の配列を融合させた配列を示す。
【００２９】
（２）ＤＬ１８［ｔＧｓｄｔｅｉＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲＧ（配列番号２）］は、Ｃａｓｐａｓｅ−３を活性化するための切断配列のＲｅｔｒｏ−Ｉｎｖｅｒｓｏ型とＴＡＴタンパク質由来の配列を融合させた配列を示す。
【００３０】
（３）ＣＰＥＰ［ＳＳＶＥＴＤＧＫＥＴＷＷＥＴＷＷＴＥＷＳＱＰＫＫＫＲＫＶ（Ｐｅｐ−１）（配列番号３）］は、Ｃａｓｐａｓｅ−８の切断配列とＰｅｐ−１タンパク質由来の配列を融合させた配列を示す。
【００３１】
（４）ＬＬ３１［ＧＷＴＬＮＳＡＧＹＬＬＧＫＩＮＬＫＡＬＡＡＬＡＫＫＩＬＳＥＶＤＳ（配列番号４）］は、Ｃａｓｐａｓｅ−９の切断配列とＴｒａｎｓｐｏｒｔａｎタンパク質由来の配列を融合させた配列を示す。
【００３２】
（５）ＬＬ−Ｔ［ＦＩＴＣ−ＲＲＧＩＥＴＤＳＧＴ］は、ＬＬ１８からＴＡＴタンパク質由来の配列を欠損させた配列を示す。
【００３３】
（６）３１９６［Ａｃ−ＩＥＴＤ−ＣＨＯ］は、カスパーゼ−８／６やグランザイムＢといったプロカスパーゼ−３を切断する酵素の細胞非透過性阻害剤で商業的に入手可能なものを示す。
【００３４】
［ペプチドの細胞内透過性の確認］
＜トリクロロ酢酸処理細胞可溶化物を用いたＭＡＬＤＩ ＴＯＦ定性分析＞
約１０６個の細胞（Ｎ１Ｅ細胞（Ｎ１Ｅ−１１５（ＡＴＣＣ（登録商標）ＣＲＬ２２６（商標）と初代ラット線維芽細胞）を、５００ｎＭＬＬ１８ペプチドを含有する通常の培養液（胎児の子牛血清１０％を含有し、ＤＭＥＭ/ＲＰＭＩ１６４０を１／１の体積比で混合したもの）に３７℃３０分間さらした。
次いで、細胞をＰＢＳで、二度洗い、１％ Ｔｒｉｔｏｎｅ Ｘ−１００含有蒸留水で溶解し、等量の４０％トリクロロ酢酸を用いて、タンパク質を沈澱させた。遠心分離（９０００ｇ、２０分）後、２０μＬの上澄みを２，５−ジヒドロキシ安息香酸溶液と混合し、ＭＡＬＤＩプレート上に滴下し、ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦに供した。結果を図１に示す。
【００３５】
図１は、初代繊維芽細胞抽出液の低分子量（１〜３ｋＤａ）プロファイルを示す。導入したペプチドの標的分子量２１５８Ｄａが検出された。
【００３６】
＜ＦＩＴＣラベル化ペプチドの直接的なＦＡＣＳ分析＞
約１０６個の細胞（Ｎ１Ｅ細胞、２０６０（ＰＦＳＫ１（ＡＴＣＣ（登録商標）ＣＲＬ２０６０（商標）と初代ラット線維芽細胞）を、末端にＦＩＴＣを付加した１００ｎＭの各ペプチドを含有する通常の培養液（胎児の子牛血清１０％を含有し、ＤＭＥＭ/ＲＰＭＩ１６４０を１／１の体積比で混合したもの）に３７℃１０分間さらした。
次いで、細胞をＰＢＳで、二度洗い、Ｔｒｙｐｓｉｎ−５．３ｍｍｏｌ/ｌのＥＤＴＡ溶解液で細胞を剥がし、４％のパラホルムアルデヒドで室温下３０分固定した。固定された細胞をＦＡＣＳ分析（ＬＳＲ、ＢｅｃｔｏｎＤｉｃｋｅｎｓｏｎ）に供した。結果を図２及び図３に示す。
【００３７】
図２は、ラットの脊髄から抽出した初代ラット繊維芽細胞へのペプチドの導入効率を調べた結果である。細胞膜透過性ペプチドを融合されたペプチドは、細胞膜透過性ペプチドを欠くＬＬ−Ｔと比較して効率よく細胞内透過性を示した。
【００３８】
図３は、２０６０細胞へのペプチドの導入効率を調べた結果である。細胞膜透過性ペプチドを融合されたペプチドは、細胞膜透過性ペプチドを欠くＬＬ−Ｔと比較して効率よく細胞内透過性を示した。
【００３９】
［ペプチドのアポトーシス抑制効果］
＜スタウロスポリンによって誘発されるアポトーシス＞
スタウロスポリンは、酵素ＰＫＣの阻害剤であり、生存シグナルの阻害剤である。Ｎ１Ｅ細胞は、この薬に非常に感受性を示す。１００ｎＭスタウロスポリンを終夜暴露することにより、これらの細胞に細胞死を誘導することができる。
Ｎ１Ｅ細胞をポリリジンでコートした６ウェルプレートで、８０％コンフルエントになるまで培養した。スタウロスポリンで処理する１時間前に、ペプチド（５００ｎＭ）を細胞に添加した。スタウロスポリン処理１８時間後、細胞をＰＢＳで洗浄し、ｃａｌｃｅｉｎＡとｅｔｈｉｄｉｕｍ  ｈｏｍｏｄｉｍｅｒ１（ＬＩＶＥ／ＤＥＡＤ（登録商標）Ｖｉａｂｉｌｉｔｙ／Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ Ｋｉｔ，ＬｉｆｅＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）で同時に室温下３０分間染色した。染色後の細胞像を図４に示す。
【００４０】
図４は、Ｎ１Ｅ細胞において、スタウロスポリン処置後のアポトーシスをペプチドが抑制した結果を示す。すべてのペプチドは、検討された濃度で、Ｎ１Ｅ細胞において、スタウロスポリン処置後のアポトーシスを抑制した。
また、上述した条件で２種類のペプチドの存在下で、１００ｎＭのスタウロスポリンで処理したＮ１Ｅ細胞からの抽出液を用いて、ウエスタンブロットにより、活性化カスパーゼ３を評価した。具体的には、５００ｎＭのペプチドの存在下、非存在下に、１００ｎＭのスタウロスポリンで処理したＮ１Ｅ細胞をＬａｅｍｍｌｉサンプルに溶解し、１００℃で５分加熱し、４−２０％グラジエントポリアクリルアミドゲル（Ｃｒｉｔｅｒｉｏｎ, ＢｉｏＲａｄ)で分離した。このゲルをＰＶＤＦ膜に転写した後、５％の脱脂ミルク含有ＰＢＳでブロッキングした。次いで、活性化カスパーゼ３一次抗体で、４℃終夜処理し、０．５％Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ含有ＰＢＳで２度洗浄後、ＨＲＰ結合二次抗体で処理し、再度０．５％Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ含有ＰＢＳで２度洗浄後、ＥＣＬ化学発光試薬でシグナルを可視化した。
結果を図５に示す。
【００４１】
＜血清を急激に取り除くことにより誘発されるアポトーシス＞
Ｎ１Ｅ細胞は、段階的な血清除去下でも比較的生きられる。しかし、血清を急激に取り除くことにより、多くの細胞がアポトーシスを誘発される。細胞移植後の数日は、成長因子の枯渇条件下にある。本発明で用いたペプチドは、短期間で効率的であることを示した。結果を図６に示す。
【００４２】
Ｎ１Ｅ細胞を播種した２４時間後、血清除去した培地に交換した。同時に所定の濃度のペプチドを添加した。２０日後の細胞を＜スタウロスポリンによって誘発されるアポトーシス＞と同様の方法にて細胞を染色した。
【００４３】
＜過酸化水素により誘発されるアポトーシス＞
過酸化水素による細胞の処理は、移植後の細胞が遊離した活性酸素に曝されることを模している。過酸化水素によるアポトーシス誘導のメカニズムは分かっていないが、カスパーゼの関与が報告されている。Ｎ１Ｅ細胞にペプチド添加１時間後、過酸化水素水を加えた。処理２４時間後の細胞を＜スタウロスポリンによって誘発されるアポトーシス＞と同様の方法にて細胞を染色した。結果を図７に示す。本発明において、ペプチドが過酸化水素によるアポトーシス誘導を抑制できることが示された。
【００４４】
＜シンジェニックな細胞移植後、細胞塊に対するペプチド前処理の効果＞
Ｒ３細胞にＧＦＰ発現ベクターを組み込み、ラベルした。トリプシン処理と遠心分離により１０８個の蛍光細胞を集め２等分した。２等分したもののうち、一方に１０μＭＤＬ１８ペプチドを添加し、５分混合した。
キトサン／ＰＳＴＰ足場に細胞を入れ込んだものを、２匹のウィスター・ラットの皮下に注入した。 ２週間後、足場材料を取り、蛍光顕微鏡観察により分析した。結果を図８に示す。
【００４５】
図８は、移植２週間後の細胞塊を示す。ＤＬ１８（１０μＭ）で処理した細胞は、移植されたマトリックス中でより生存していたことが蛍光強度から確認された。
【００４６】
本発明において用いられたペプチドは、効率よく細胞内に移行し、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ細胞モデルにおける増殖／生存シグナル遮断（スタウロスポリン及び血清除去）及び酸化ストレスによって誘導される細胞死を有意に抑制した。動物に移植前の細胞のペプチド処理も移植後の細胞の生存効率を増加させた。
本発明によれば、これらのペプチドが実験上及び医療上の細胞ベースの移植応用により良い結果をもたすことが期待される。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【配列表】
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