(57)【要約】      （修正有）【課題】hTROP-2と特異的に反応しin vivoで抗腫瘍活性を有する抗体、当該抗体を産生するハイブリドーマ、当該抗体と薬剤との複合体、腫瘍の診断用又は治療用医薬組成物、腫瘍の検出方法、腫瘍の検出用又は診断用キットの提供。【解決手段】hTROP-2発現安定細胞株又はリコンビナントhTROP-2タンパク質でマウスを免疫し、常法に従いhTROP-2タンパク質を認識する抗hTROP-2モノクローナル抗体（ｍＡｂ）を産生するハイブリドーマ。抗hTROP-2ｍＡｂ(約160クローン)を膵癌細胞株PK-59細胞のXenograft Treatmentモデルで評価し、in vivoで有意な腫瘍成長阻害活性を示す抗体及び産生ハイブリドーマを取得し、抗体遺伝子配列を決定した抗体。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
in vivoで抗腫瘍活性を有する、ヒトTROP-2に対する抗体であって、
該抗体は、(i) Ｈ鎖Ｖ領域のＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号３６〜３８で示されるアミノ酸配列であり、かつ、Ｌ鎖Ｖ領域のＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号４１〜４３で示されるアミノ酸配列である抗体であるか、
(ii) Ｈ鎖Ｖ領域のＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号４６〜４８で示されるアミノ酸配列であり、かつ、Ｌ鎖Ｖ領域のＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号５１〜５３で示されるアミノ酸配列である抗体であるか、
(iii) Ｈ鎖Ｖ領域のＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号５６〜５８で示されるアミノ酸配列であり、かつ、Ｌ鎖Ｖ領域のＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号６１〜６３で示されるアミノ酸配列である抗体であるか、又は、
(iv) Ｈ鎖Ｖ領域のＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号６６〜６８で示されるアミノ酸配列であり、かつ、Ｌ鎖Ｖ領域のＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号７１〜７３で示されるアミノ酸配列である抗体である、
前記抗体。
【請求項２】
5〜20mg/kg体重の投与量で50％以上の腫瘍成長阻害活性を示すものである、請求項１記載の抗体。
【請求項３】
前記腫瘍成長阻害活性を示すための投与回数が多くても１週間に１回である、請求項２記載の抗体。
【請求項４】
10mg/kg体重の単回投与で50％以上の腫瘍成長阻害活性を示すものである、請求項１記載の抗体。
【請求項５】
2種以上のヒト腫瘍細胞株に対して抗腫瘍活性を有する、請求項１〜４のいずれか１項に記載の抗体。
【請求項６】
解離定数（Kd値）が1.0×10-10 M以下である、請求項１〜５のいずれか１項に記載の抗体。
【請求項７】
抗体がモノクローナル抗体である、請求項１〜６のいずれか１項に記載の抗体。
【請求項８】
腫瘍が、ヒト膵癌、ヒト前立腺癌、ヒト大腸癌及びヒト乳癌からなる群より選ばれる少なくとも１種である、請求項１〜７のいずれか１項に記載の抗体。
【請求項９】
腫瘍がヒト膵癌である、請求項１〜７のいずれか１項に記載の抗体。
【請求項１０】
腫瘍が再発癌又は転移癌である、請求項１〜９のいずれか１項に記載の抗体。
【請求項１１】
腫瘍細胞株が、ヒト膵癌細胞株PK-59、ヒト膵癌細胞株BxPC-3、ヒト膵癌細胞株KP-3L、ヒト膵癌細胞株KP-2、ヒト膵癌細胞株PK-1、ヒト膵癌細胞株PK-45H、ヒト膵癌細胞株PK-45P、ヒト膵癌細胞株TCC-PAN2、ヒト膵癌細胞株SUIT-2、ヒト大腸癌細胞株CACO-2、ヒト大腸癌細胞株SW480、ヒト大腸癌細胞株DLD-1、ヒト大腸癌細胞株HCT 116、ヒト乳癌細胞株JIMT-1、ヒト乳癌細胞株HCC1143、ヒト乳癌細胞株MCF-7、ヒト前立腺癌細胞株DU145及びヒト前立腺癌細胞株PC-3からなる群より選ばれる少なくとも2種である、請求項５〜１０のいずれか１項に記載の抗体。
【請求項１２】
腫瘍細胞株が、ヒト膵癌細胞株PK-59及びヒト膵癌細胞株BxPC-3である、請求項５〜１０のいずれか１項に記載の抗体。
【請求項１３】
抗体が遺伝子組換え抗体である、請求項１〜１２のいずれか１項に記載の抗体。
【請求項１４】
遺伝子組換え抗体が、キメラ抗体、ヒト型化抗体 又はヒト化抗体である、請求項１３記載の抗体。
【請求項１５】
キメラ抗体は、(i) Ｈ鎖Ｖ領域のアミノ酸配列が配列番号３５で示されるアミノ酸配列を含むか、又は配列番号３５で示されるアミノ酸配列の第２０番目〜第１３４番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列を含むものであり、Ｌ鎖Ｖ領域のアミノ酸配列が配列番号４０で示されるアミノ酸配列を含むか、又は配列番号４０で示されるアミノ酸配列の第２１番目〜第１２７番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列を含むものであるか、
(ii) Ｈ鎖Ｖ領域のアミノ酸配列が配列番号４５で示されるアミノ酸配列を含むか、又は配列番号４５で示されるアミノ酸配列の第２０番目〜第１３４番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列を含むものであり、Ｌ鎖Ｖ領域のアミノ酸配列が配列番号５０で示されるアミノ酸配列を含むか、又は配列番号５０で示されるアミノ酸配列の第２１番目〜第１２７番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列を含むものであるか、
(iii) Ｈ鎖Ｖ領域のアミノ酸配列が配列番号５５で示されるアミノ酸配列を含むか、又は配列番号５５で示されるアミノ酸配列の第２０番目〜第１３２番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列を含むものであり、Ｌ鎖Ｖ領域のアミノ酸配列が配列番号６０で示されるアミノ酸配列を含むか、又は配列番号６０で示されるアミノ酸配列の第２１番目〜第１２７番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列を含むものであるか、あるいは、
(iv) Ｈ鎖Ｖ領域のアミノ酸配列が配列番号６５で示されるアミノ酸配列を含むか、又は配列番号６５で示されるアミノ酸配列の第２０番目〜第１４１番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列を含むものであり、Ｌ鎖Ｖ領域のアミノ酸配列が配列番号７０で示されるアミノ酸配列を含むか、又は配列番号７０で示されるアミノ酸配列の第２０番目〜第１３０番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列を含むものである、
請求項１４記載の抗体。
【請求項１６】
受託番号がFERM BP-11251、FERM BP-11252、FERM BP-11253、FERM BP-11346又はFERM BP-11254であるハイブリドーマにより産生される、ヒトTROP-2に対するモノクローナル抗体。
【請求項１７】
受託番号がFERM BP-11251、FERM BP-11252、FERM BP-11253、FERM BP-11346又はFERM BP-11254であるハイブリドーマにより産生されるモノクローナル抗体が結合する部位に結合する、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の抗体。
【請求項１８】
配列番号２に示されるヒトTROP-2のアミノ酸配列中の、第４３番目〜第６５番目のアミノ酸からなる領域、第１５２番目〜第１６５番目のアミノ酸からなる領域、第１７１番目〜第１８３番目のアミノ酸からなる領域、第１０９番目〜第１２０番目のアミノ酸からなる領域、第４３番目〜第５６番目のアミノ酸からなる領域、及び第１９３番目〜第２０６番目のアミノ酸からなる領域からなる群より選択される少なくとも１種の領域を含む部分と結合するものである、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の抗体。
【請求項１９】
配列番号２に示されるヒトTROP-2のアミノ酸配列中の、第４３番目〜第６５番目のアミノ酸からなる領域を含む部分と結合するものである、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の抗体。
【請求項２０】
配列番号２に示されるヒトTROP-2のアミノ酸配列中の、第１５２番目〜第１６５番目のアミノ酸からなる領域を含む部分と結合するものである、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の抗体。
【請求項２１】
配列番号２に示されるヒトTROP-2のアミノ酸配列中の、第１７１番目〜第１８３番目のアミノ酸からなる領域を含む部分と結合するものである、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の抗体。
【請求項２２】
配列番号２に示されるヒトTROP-2のアミノ酸配列中の、第１０９番目〜第１２０番目のアミノ酸からなる領域を含む部分と結合するものである、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の抗体。
【請求項２３】
請求項１〜２２のいずれか１項に記載の抗体に由来する抗体断片であって、
該抗体断片は、(i) 配列番号３６〜３８で示されるアミノ酸配列及び配列番号４１〜４３で示されるアミノ酸配列を含む抗体断片であるか、
(ii)配列番号４６〜４８で示されるアミノ酸配列及び配列番号５１〜５３で示されるアミノ酸配列を含む抗体断片であるか、
(iii)配列番号５６〜５８で示されるアミノ酸配列及び配列番号６１〜６３で示されるアミノ酸配列を含む抗体断片であるか、又は、
(iv)配列番号６６〜６８で示されるアミノ酸配列及び配列番号７１〜７３で示されるアミノ酸配列を含む抗体断片である、
前記抗体。
【請求項２４】
(i) 配列番号３５で示されるアミノ酸配列、又は配列番号３５で示されるアミノ酸配列の第２０番目〜第１３４番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列、及び、配列番号４０で示されるアミノ酸配列、又は配列番号４０で示されるアミノ酸配列の第２１番目〜第１２７番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列を含むものであるか、
(ii) 配列番号４５で示されるアミノ酸配列、又は配列番号４５で示されるアミノ酸配列の第２０番目〜第１３４番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列、及び、配列番号５０で示されるアミノ酸配列、又は配列番号５０で示されるアミノ酸配列の第２１番目〜第１２７番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列を含むものであるか、
(iii) 配列番号５５で示されるアミノ酸配列、又は配列番号５５で示されるアミノ酸配列の第２０番目〜第１３２番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列、及び、配列番号６０で示されるアミノ酸配列、又は配列番号６０で示されるアミノ酸配列の第２１番目〜第１２７番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列を含むものであるか、あるいは、
(iv) 配列番号６５で示されるアミノ酸配列、又は配列番号６５で示されるアミノ酸配列の第２０番目〜第１４１番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列、及び、配列番号７０で示されるアミノ酸配列、又は配列番号７０で示されるアミノ酸配列の第２０番目〜第１３０番目のアミノ酸からなるアミノ酸配列を含むものである、
請求項２３記載の抗体断片。
【請求項２５】
請求項１〜１２及び１７〜２２のいずれか１項に記載の抗体を産生するハイブリドーマ。
【請求項２６】
受託番号がFERM BP-11251、FERM BP-11252、FERM BP-11253、FERM BP-11346又はFERM BP-11254である、ヒトTROP-2に対するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ。
【請求項２７】
請求項１〜２２のいずれか１項に記載の抗体と、抗腫瘍活性及び／又は殺細胞活性を有する物質とを含む、抗体−薬剤複合体。
【請求項２８】
請求項２３又は２４記載の抗体断片と、抗腫瘍活性及び／又は殺細胞活性を有する物質とを含む、抗体断片−薬剤複合体。
【請求項２９】
腫瘍が、ヒト膵癌、ヒト前立腺癌、ヒト大腸癌及びヒト乳癌からなる群より選ばれる少なくとも１種である、請求項２７又は２８記載の複合体。
【請求項３０】
腫瘍がヒト膵癌である、請求項２７又は２８記載の複合体。
【請求項３１】
腫瘍が再発癌又は転移癌である、２７〜３０のいずれか１項に記載の複合体。
【請求項３２】
請求項１〜２２のいずれか１項に記載の抗体、請求項２３又は２４記載の抗体断片、及び請求項２７〜３１のいずれか１項に記載の複合体からなる群より選ばれる少なくとも１種を含む、医薬組成物。
【請求項３３】
腫瘍の治療に用いるものである、請求項３２記載の組成物。
【請求項３４】
体重減少の副作用を有しないものである、請求項３３記載の組成物。
【請求項３５】
腫瘍の診断に用いるものである、請求項３２記載の組成物。
【請求項３６】
腫瘍が、ヒト膵癌、ヒト前立腺癌、ヒト大腸癌及びヒト乳癌からなる群より選ばれる少なくとも１種である、請求項３２〜３５のいずれか１項に記載の組成物。
【請求項３７】
腫瘍が再発癌又は転移癌である、請求項３３〜３６のいずれか１項に記載の組成物。
【請求項３８】
請求項１〜２２のいずれか１項に記載の抗体、請求項２３又は２４記載の抗体断片、及び請求項２７〜３１のいずれか１項に記載の複合体からなる群より選ばれる少なくとも１種を含む、腫瘍治療剤。
【請求項３９】
体重減少の副作用を有しないものである、請求項３８記載の治療剤。
【請求項４０】
腫瘍が、ヒト膵癌、ヒト前立腺癌、ヒト大腸癌及びヒト乳癌からなる群より選ばれる少なくとも１種である、請求項３８又は３９記載の治療剤。
【請求項４１】
請求項１〜２２のいずれか１項に記載の抗体、請求項２３又は２４記載の抗体断片、及び請求項２７〜３１のいずれか１項に記載の複合体からなる群より選ばれる少なくとも１種を含む、腫瘍診断剤。
【請求項４２】
腫瘍が、ヒト膵癌、ヒト前立腺癌、ヒト大腸癌及びヒト乳癌からなる群より選ばれる少なくとも１種である、請求項４１記載の診断剤。
【請求項４３】
請求項１〜２２のいずれか１項に記載の抗体、請求項２３又は２４記載の抗体断片、及び請求項２７〜３１のいずれか１項に記載の複合体からなる群より選ばれる少なくとも１種と、生体から採取された試料とを反応させ、反応した抗体及び／又は抗体断片のシグナルを検出することを特徴とする、腫瘍の検出を補助する方法。
【請求項４４】
腫瘍が、ヒト膵癌、ヒト前立腺癌、ヒト大腸癌及びヒト乳癌からなる群より選ばれる少なくとも１種である、請求項４３記載の方法。
【請求項４５】
請求項１〜２２のいずれか１項に記載の抗体、請求項２３又は２４記載の抗体断片、及び請求項２７〜３１のいずれか１項に記載の複合体からなる群より選ばれる少なくとも１種を含む、腫瘍の治療用、診断用又は検出用キット。
【請求項４６】
腫瘍が、ヒト膵癌、ヒト前立腺癌、ヒト大腸癌及びヒト乳癌からなる群より選ばれる少なくとも１種である、請求項４５記載のキット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、抗腫瘍活性を有する抗ヒトTROP-2抗体、特にin vivoで抗腫瘍活性を有する抗ヒトTROP-2抗体に関する。また本発明は、当該抗体を産生するハイブリドーマ、及び当該抗体の用途に関する。
【背景技術】
【０００２】
ヒトTROP-2 (Tacstd2, GA733-1, EGP-1)（以下、hTROP-2とも表記する。）は、種々の上皮細胞癌種において過剰発現していることが知られる、323アミノ酸残基（配列番号２参照）からなる1回膜貫通型の1型細胞膜タンパク質である。以前より、ヒト栄養膜細胞（trophoblasts）と癌細胞に共通する免疫抵抗性に関与する細胞膜タンパクの存在（非特許文献１）が示唆されていたが、ヒト絨毛癌細胞株BeWoの細胞膜タンパクに対するマウスモノクローナル抗体（162-25.3, 162-46.2）により認識される抗原分子が特定され、ヒト栄養膜細胞（trophoblasts）に発現する分子の一つとしてTrop-2と命名された（非特許文献２）。後に、同じ分子が、他の研究者によって発見され、胃癌細胞SW948を免疫して得られたマウスモノクローナル抗体GA733によって認識される腫瘍抗原GA733-1（非特許文献３）、非小細胞肺癌細胞免疫によって得られたマウスモノクローナル抗体RS7-3G11により認識される上皮糖タンパク質（epithelial/carcinoma antigen, EGP-1）（非特許文献４）とも呼ばれたが、1995年にTrop-2の遺伝子がクローニングされ、これらが同一の分子であることが確認された（非特許文献５）。また、癌細胞において細胞内カルシウムシグナルを増幅させる機能が明らかにされ（非特許文献６）、tumor-associated calcium signal transducer 2, TACSTD2とも呼ばれる。
【０００３】
hTROP-2遺伝子は、染色体1p32にマッピングされ、約50％の相同性を持つGA733-2（TACSTD1、上皮糖タンパク質EGP-2、EpCAM及びTrop-1としても知られている）とともにTACSTD遺伝子ファミリーを構成している（非特許文献７）。hTROP-2タンパク質（323アミノ酸残基；配列番号２）は、およそ36キロダルトンの分子量を有し、親水性のシグナルペプチド（第1〜26番目のアミノ酸）、細胞外ドメイン（第27〜274番目のアミノ酸）、細胞膜貫通ドメイン（第275〜297番目のアミノ酸）ならびに細胞内ドメイン（第298〜323番目のアミノ酸）からなる。細胞外ドメインには4つの不均質N結合グリコシル化部位があり、糖鎖付加により見かけ上の分子量は11〜13キロダルトン増加する（非特許文献５）。TACSTD遺伝子ファミリーでは、細胞外ドメインに特徴的なthyroglobulin(TY)繰り返し配列を有し、癌細胞の増殖や浸潤、転移に関与すると考えられている。
【０００４】
これまでに、hTROP-2の生理学的リガンドは同定されておらず、分子機能は明らかにされていないが、腫瘍細胞においてカルシウムシグナルを伝達することが示され（非特許文献６）、また、Ca2+依存性のタンパク質キナーゼであるタンパク質キナーゼCにより、細胞内セリン303残基がリン酸化されること（非特許文献４）や、細胞内ドメインにPIP2結合配列を有することから、腫瘍細胞におけるシグナル伝達機能が示唆されている（非特許文献８)。
免疫組織化学（IHC）及びフローサイトメトリー研究などのインビトロ診察研究により、胃癌、肺癌、大腸癌、卵巣癌、乳癌、前立腺癌、膵癌、肝癌、食道癌などの多くの上皮由来癌腫においてhTROP-2の過剰発現が報告されている。これに対し、正常組織における発現は上皮領域の細胞に限定され、発現レベルも癌腫に比較して低いことが示され、TROP-2の腫瘍形成への関与が示唆されている（特許文献１〜３及び９）。
【０００５】
また、臨床検体におけるバイオマーカーとしてのhTROP-2発現レベル解析において、大腸癌（非特許文献１０及び１１）、膵臓癌（非特許文献１２）や口腔癌（非特許文献１３）の悪性度と相関し、hTROP-2が高発現している場合には癌の転移や再発が有意に高いことが示されている。また、cDNAマイクロアレイ技術を使用した大規模遺伝子発現分析において、正常な卵巣上皮と比較して卵巣の重篤な乳頭状癌に最も高度に過剰発現している遺伝子群のひとつとして同定された（非特許文献１４）。
さらに、近年、腫瘍形成におけるhTROP-2の重要な役割が大腸癌細胞を用いたモデルにより証明された（非特許文献１５）。hTROP-2の発現が腫瘍細胞の足場非依存的細胞増殖を促進し、免疫不全マウスの皮下に移植した癌細胞の腫瘍形成及び増殖に必要であることから、機能的な腫瘍抗原として新たな治療標的となる可能性を示した。
【０００６】
これまでに、いくつかの抗hTROP-2抗体について抗腫瘍効果の検討が報告されている。RS7抗体（特許文献１）について、放射標識した抗体を用いたin vivoモデルにおいて試験され、ヌードマウス異種移植モデルにおける抗腫瘍活性が示されているが、抗体単独（裸抗体）での抗腫瘍効果は報告されていない。
この他に、細胞毒素を結合させた抗hTROP-2モノクローナル抗体BR110（特許文献２）による、ヒト癌細胞株H3619、H2987、MCF-7、H3396及びH2981に対するin vitro実験での細胞障害性が報告されているが、in vivoデータでは裸抗体又は免疫複合BR110について開示されているものはなかった。
【０００７】
近年、ヒト卵巣癌組織をマウスに免疫することで得られたハイブリドーマ細胞株AR47A6.4.2あるいはAR52A301.5により産生される単離モノクローナル抗体が、hTROP-2と結合し、裸抗体として初めて、in vitroでの細胞障害性に加え、ヌードマウス異種移植モデルにおける抗腫瘍活性を示すことが報告された（特許文献３及び４）。しかしながら、これら文献中では、膵臓癌細胞株BxPC-3及びPL45、前立腺癌細胞PC-3、乳癌細胞MCF-7並びに大腸癌細胞Colo205を移植したマウス異種移植モデルにおいて抗体単独での抗腫瘍効果が示されているが、BxPC-3細胞移植において治療効果が示されている以外は、抗体の予防的投与により腫瘍形成及び増殖を部分的に（約40〜60%）抑制することが示されているに留まり、また、必要とされる抗体量も、20mg/kg程度と非常に高用量であった。
【０００８】
以上の従来の知見から、抗hTROP-2抗体の抗腫瘍抗体としての可能性が示唆されているが、同時に、抗hTROP-2抗体のすべてが裸抗体として抗体単独でin vivoにおいて抗腫瘍効果を示すものではなく、抗体の結合部位や親和性、モノクローナル抗体のプロフィールにより、hTROP-2に対する機能が異なることを示している。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００９】
【特許文献１】米国特許第6653104号
【特許文献２】米国特許第5840854号
【特許文献３】米国特許第7420040号
【特許文献４】米国特許第7420041号
【非特許文献】
【００１０】
【非特許文献１】Faulk WP, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U S A, 75(4), p. 1947-1951 (1978)
【非特許文献２】Lipinski M, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U S A, 78(8), p. 5147-5150 (1981)
【非特許文献３】Linnenbach AJ, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U S A, 86(1), p. 27-31 (1989)
【非特許文献４】Basu A, et al., Int. J. Cancer, 62(4), p. 472-479 (1995)
【非特許文献５】Fornaro M, et al., Int. J. Cancer, 62(5), p. 610-618 (1995)
【非特許文献６】Ripani E, et al., Int. J. Cancer, 76(5), p. 671-676 (1998)
【非特許文献７】Calabrese G, et al., Cell Genet., 92(1-2), p. 164-165 (2001)
【非特許文献８】El Sewedy T et al., Int. J. Cancer, 75(2), p. 324-330 (1998)
【非特許文献９】Cubas R, et al., Biochim. Biophys. Acta., 1796(2), p. 309-314 (2009)
【非特許文献１０】Ohmachi T et al., Clin. Cancer Res., 12(10), p. 3057-3063 (2006)
【非特許文献１１】Fang YJ, et al., Int. J. Colorectal Dis., 24(8), p. 875-884 (2009)
【非特許文献１２】Fong D, et al., Br. J. Cancer, 99(8), p. 1290-1295 (2008)
【非特許文献１３】Fong D, et al., Mod. Pathol., 21(2), p. 186-191 (2008)
【非特許文献１４】Santin AD, et al., Int. J. Cancer, 112(1), p. 14-25 (2004)
【非特許文献１５】Wang J, et al., Mol. Cancer Ther., 7(2), p. 280-285 (2008)
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１１】
このような状況下において、in vivoにおいて高い抗腫瘍活性を有する抗ヒトhTROP-2抗体（抗ヒトhTROP-2モノクローナル抗体）、特に、裸抗体として抗体単独でin vivoにおける抗腫瘍効果を有し、しかも低用量で当該効果を有する抗ヒトhTROP-2抗体等の開発が望まれていた。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
本発明は、上記状況を考慮してなされたもので、以下に示す、抗ヒトhTROP-2抗体（抗ヒトhTROP-2モノクローナル抗体）、当該抗体を産生するハイブリドーマ、当該抗体の断片、当該抗体等と薬剤との複合体（イムノコンジュゲート）、腫瘍の診断用又は治療用医薬組成物、腫瘍の検出方法、腫瘍の検出用又は診断用キット等を提供するものである。
【００１３】
（１）in vivoで抗腫瘍活性を有する、ヒトTROP-2に対する抗体。
上記(1)の抗体としては、例えば、5〜20mg/kg体重の投与量で50％以上の腫瘍成長阻害活性を示すもの、前記腫瘍成長阻害活性を示すための投与回数が多くても１週間に１回であるもの、10mg/kg体重の単回投与で50％以上の腫瘍成長阻害活性を示すもの、2種以上のヒト腫瘍細胞株に対して抗腫瘍活性を有するもの、解離定数（Kd値）が1.0×10-10 M以下であるもの等が挙げられる。ここで、腫瘍としては、例えば、ヒト膵癌、ヒト前立腺癌、ヒト大腸癌及びヒト乳癌からなる群より選ばれる少なくとも１種、特にヒト膵癌が挙げられ、また腫瘍としては、再発癌及び転移癌も挙げられる。また、腫瘍細胞株としては、例えば、ヒト膵癌細胞株PK-59、ヒト膵癌細胞株BxPC-3、ヒト膵癌細胞株KP-3L、ヒト膵癌細胞株KP-2、ヒト膵癌細胞株PK-1、ヒト膵癌細胞株PK-45H、ヒト膵癌細胞株PK-45P、ヒト膵癌細胞株TCC-PAN2、ヒト膵癌細胞株SUIT-2、ヒト大腸癌細胞株CACO-2、ヒト大腸癌細胞株SW480、ヒト大腸癌細胞株DLD-1、ヒト大腸癌細胞株HCT 116、ヒト乳癌細胞株JIMT-1、ヒト乳癌細胞株HCC1143、ヒト乳癌細胞株MCF-7、ヒト前立腺癌細胞株DU145及びヒト前立腺癌細胞株PC-3からなる群より選ばれる少なくとも2種、特にヒト膵癌細胞株PK-59及びヒト膵癌細胞株BxPC-3が挙げられる。
【００１４】
上記(1)の抗体としては、例えば、抗体のＨ鎖Ｖ領域のＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号３６〜３８で示されるアミノ酸配列であり、及び／又は、抗体のＬ鎖Ｖ領域のＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号４１〜４３で示されるアミノ酸配列であるもの；
抗体のＨ鎖Ｖ領域のＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号４６〜４８で示されるアミノ酸配列であり、及び／又は、抗体のＬ鎖Ｖ領域のＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号５１〜５３で示されるアミノ酸配列であるもの；
抗体のＨ鎖Ｖ領域のＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号５６〜５８で示されるアミノ酸配列であり、及び／又は、抗体のＬ鎖Ｖ領域のＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号６１〜６３で示されるアミノ酸配列であるもの；及び
抗体のＨ鎖Ｖ領域のＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号６６〜６８で示されるアミノ酸配列であり、及び／又は、抗体のＬ鎖Ｖ領域のＣＤＲ１〜３のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号７１〜７３で示されるアミノ酸配列であるもの等が挙げられる。
【００１５】
上記(1)の抗体としては、例えば、モノクローナル抗体が挙げられる。
上記(1)の抗体としては、例えば、遺伝子組換え抗体が挙げられ、具体的には、キメラ抗体、ヒト型化抗体 又はヒト化抗体が挙げられる。
【００１６】
ここで、上記キメラ抗体としては、例えば、Ｈ鎖Ｖ領域のアミノ酸配列が配列番号３５で示されるアミノ酸配列からなり、及び／又は、Ｌ鎖Ｖ領域のアミノ酸配列が配列番号４０で示されるアミノ酸配列からなるもの；
Ｈ鎖Ｖ領域のアミノ酸配列が配列番号４５で示されるアミノ酸配列からなり、及び／又は、Ｌ鎖Ｖ領域のアミノ酸配列が配列番号５０で示されるアミノ酸配列からなるもの；
Ｈ鎖Ｖ領域のアミノ酸配列が配列番号５５で示されるアミノ酸配列からなり、及び／又は、Ｌ鎖Ｖ領域のアミノ酸配列が配列番号６０で示されるアミノ酸配列からなるもの；及び
Ｈ鎖Ｖ領域のアミノ酸配列が配列番号６５で示されるアミノ酸配列からなり、及び／又は、Ｌ鎖Ｖ領域のアミノ酸配列が配列番号７０で示されるアミノ酸配列からなるもの等が挙げられる。
【００１７】
（２）受託番号がFERM BP-11251、FERM BP-11252、FERM BP-11253、FERM BP-11346又はFERM BP-11254であるハイブリドーマにより産生される、ヒトTROP-2に対するモノクローナル抗体。
【００１８】
上記(1)及び(2)の抗体としては、例えば、受託番号がFERM BP-11251、FERM BP-11252、FERM BP-11253、FERM BP-11346 又はFERM BP-11254であるハイブリドーマにより産生されるモノクローナル抗体が結合する部位に結合するもの、及び配列番号２に示されるヒトTROP-2のアミノ酸配列中の、第４３番目〜第６５番目のアミノ酸からなる領域、第１５２番目〜第１６５番目のアミノ酸からなる領域、第１７１番目〜第１８３番目のアミノ酸からなる領域、第１０９番目〜第１２０番目のアミノ酸からなる領域、第４３番目〜第５６番目のアミノ酸からなる領域、及び第１９３番目〜第２０６番目のアミノ酸からなる領域からなる群より選択される少なくとも１種（例えばいずれか１種）の領域を含む部分と結合するものが挙げられる。
【００１９】
（３）上記(1)又は(2)の抗体に由来する抗体断片。
上記(3)の抗体断片としては、例えば、配列番号３６〜３８で示されるアミノ酸配列、及び／又は、配列番号４１〜４３で示されるアミノ酸配列を含むもの、例えば配列番号３５で示されるアミノ酸配列、及び／又は、配列番号４０で示されるアミノ酸配列を含むもの；
配列番号４６〜４８で示されるアミノ酸配列、及び／又は、配列番号５１〜５３で示されるアミノ酸配列を含むもの、例えば配列番号４５で示されるアミノ酸配列、及び／又は、配列番号５０で示されるアミノ酸配列を含むもの；
配列番号５６〜５８で示されるアミノ酸配列、及び／又は、配列番号６１〜６３で示されるアミノ酸配列を含むもの、例えば配列番号５５で示されるアミノ酸配列、及び／又は、配列番号６０で示されるアミノ酸配列を含むもの；及び
配列番号６６〜６８で示されるアミノ酸配列、及び／又は、配列番号７１〜７３で示されるアミノ酸配列を含むもの、例えば配列番号６５で示されるアミノ酸配列、及び／又は、配列番号７０で示されるアミノ酸配列を含むもの等が挙げられる。
【００２０】
（４）上記(1)又は(2)の抗体を産生するハイブリドーマ。
（５）受託番号がFERM BP-11251、FERM BP-11252、FERM BP-11253、FERM BP-11346 又はFERM BP-11254である、ヒトTROP-2に対するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ。
（６）上記(1)又は(2)の抗体と、抗腫瘍活性及び／又は殺細胞活性を有する物質とを含む、抗体−薬剤複合体。
【００２１】
（７）上記(3)の抗体断片と、抗腫瘍活性及び／又は殺細胞活性を有する物質とを含む、抗体断片−薬剤複合体。
上記(6)及び(7)の複合体において、腫瘍としては、例えば、ヒト膵癌、ヒト前立腺癌、ヒト大腸癌及びヒト乳癌からなる群より選ばれる少なくとも１種、特にヒト膵癌が挙げられ、また腫瘍としては、再発癌及び転移癌も挙げられる。
【００２２】
（８）上記(1)及び(2)の抗体、上記(3)の抗体断片、並びに上記(6)及び(7)の複合体からなる群より選ばれる少なくとも１種を含む、医薬組成物。
上記(8)の組成物としては、例えば、腫瘍の治療に用いるもの、特に体重減少の副作用を有しないものが挙げられ、また、腫瘍の診断に用いるものも挙げられる。ここで、腫瘍としては、例えば、ヒト膵癌、ヒト前立腺癌、ヒト大腸癌及びヒト乳癌からなる群より選ばれる少なくとも１種、特にヒト膵癌が挙げられ、また腫瘍としては、再発癌及び転移癌も挙げられる。
【００２３】
（９）上記(1)及び(2)の抗体、上記(3)の抗体断片、並びに上記(6)及び(7)の複合体からなる群より選ばれる少なくとも１種を含む、腫瘍治療剤。
上記(9)の治療剤としては、例えば、体重減少の副作用を有しないものが挙げられる。
（１０）上記(1)及び(2)の抗体、上記(3)の抗体断片、並びに上記(6)及び(7)の複合体からなる群より選ばれる少なくとも１種を含む、腫瘍診断剤。
【００２４】
上記(9)の治療剤及び上記(10)の診断剤において、腫瘍としては、例えば、ヒト膵癌、ヒト前立腺癌、ヒト大腸癌及びヒト乳癌からなる群より選ばれる少なくとも１種、特にヒト膵癌が挙げられ、また腫瘍としては、再発癌及び転移癌も挙げられる。
【００２５】
（１１）上記(1)及び(2)の抗体、上記(3)の抗体断片、並びに上記(6)及び(7)の複合体からなる群より選ばれる少なくとも１種と、生体から採取された試料とを反応させ、反応した抗体及び／又は抗体断片のシグナルを検出することを特徴とする、腫瘍の検出方法。
上記(11)の方法において、腫瘍としては、例えば、ヒト膵癌、ヒト前立腺癌、ヒト大腸癌及びヒト乳癌からなる群より選ばれる少なくとも１種、特にヒト膵癌が挙げられ、また腫瘍としては、再発癌及び転移癌も挙げられる。
【００２６】
（１２）上記(1)及び(2)の抗体、上記(3)の抗体断片、並びに上記(6)及び(7)の複合体からなる群より選ばれる少なくとも１種を含む、腫瘍の治療用、診断用又は検出用キット。
上記(12)のキットにおいて、腫瘍としては、例えば、ヒト膵癌、ヒト前立腺癌、ヒト大腸癌及びヒト乳癌からなる群より選ばれる少なくとも１種、特にヒト膵癌が挙げられ、また腫瘍としては、再発癌及び転移癌も挙げられる。
【発明の効果】
【００２７】
本発明によれば、hTROP-2と特異的に反応し、in vivoにおいて高い抗腫瘍活性を有する抗体、特に、低用量でin vivoでの高い抗腫瘍活性を有するモノクローナル抗体を提供することができる。さらに本発明は、当該抗体を産生するハイブリドーマ、当該抗体の断片、当該抗体等と各種薬剤との複合体、腫瘍の診断用又は治療用医薬組成物、腫瘍の検出方法、腫瘍の検出用又は診断用を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【００２８】
【図１】抗hTROP-2モノクローナル抗体( K5-70)の、抗原親和性（Kd：解離定数）測定を示す図である。 Abt: Antibody (total), Agf: Antigen (free)
【図２】抗hTROP-2モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ培養上清の、HuH-7細胞（TROP-2陰性）とHuH-7-hTROP-2細胞との反応性を示す図である。黒塗りのヒストグラムはHuH-7細胞を示し、黒のラインのヒストグラムはHuH-7-hTROP-2細胞を示す。
【００２９】
【図３】抗hTROP-2モノクローナル抗体の、内在的にhTROP-2を細胞表面に発現している、ヒト膵臓癌細胞株（PK-59細胞）との反応性を示す図である。黒塗りのヒストグラムは二次抗体（PE標識抗マウスIgG)のみ、黒ラインのヒストグラムは、各抗hTROP-2モノクローナル抗体と反応させたものを示す。
【図４】抗hTROP-2モノクローナル抗体の、内在的にhTROP-2を細胞表面に発現している、ヒト膵臓癌細胞株（BxPC-3細胞）との反応性を示す図である。黒塗りのヒストグラムは二次抗体（PE標識抗マウスIgG)のみ、黒ラインのヒストグラムは、各抗hTROP-2モノクローナル抗体と反応させたものを示す。
【００３０】
【図５】抗hTROP-2モノクローナル抗体( K5-70)の、ヒト膵臓癌細胞株との反応性を示す図である。黒塗りのヒストグラムは二次抗体（PE標識抗マウスIgG)のみ、黒ラインのヒストグラムは、抗hTROP-2モノクローナル抗体と反応させたものを示す。
【図６】抗hTROP-2モノクローナル抗体( K5-70)の、ヒト大腸癌細胞株（Colo320, CACO2, SW480, DLD1, CW2, HCT 116), ヒト乳癌（JIMT-1, HCC1143), ヒト前立腺癌細胞株（PC-3, DU145)との反応性を示す図である。黒塗りのヒストグラムは二次抗体（PE標識抗マウスIgG)のみ、黒ラインのヒストグラムは、抗hTROP-2モノクローナル抗体と反応させたものを示す。
【００３１】
【図７】抗hTROP-2モノクローナル抗体の、マウスTROP-2との交差反応性を調べた図である。細胞は、CHO-K1細胞に、マウスTROP-2遺伝子を一過性発現させた細胞を用い、陽性対照抗体として、マウスTROP-2と交差性を示すT2-102抗体（マウスIgG1)を用いた。黒塗りのヒストグラムは二次抗体（PE標識抗マウスIgG)のみ、黒ラインのヒストグラムは、各抗hTROP-2モノクローナル抗体と反応させたものを示す。
【図８】抗hTROP-2モノクローナル抗体の、ヒトEpCAM/TROP-1との交差反応性を調べた図である。細胞は、CHO-K1細胞にヒトEpCAM/TROP-1遺伝子を一過性発現させた細胞を用い、陽性対照抗体として、PE標識抗ヒトEpCAMモノクローナル抗体（ベクトンディッキンソン）を用いた。黒塗りのヒストグラムは二次抗体（PE標識抗マウスIgG)のみ、黒ラインのヒストグラムは、各抗hTROP-2モノクローナル抗体と反応させたものを示す。
【図９】抗hTROP-2抗体（T6-16, T5-86, K5-70, K5-107)のヒト膵臓癌細胞株 (PK-59細胞)の細胞増殖阻害活性を示す図である。mIgGはコントロール抗体(マウスIgG), YY01:市販の抗hTROP-2抗体(Santacruz)を示す。白カラム： 0μg/mL, 灰色カラム：0.1μg/mL, 黒カラム：1μg/mL。抗体添加をしていない（0μg/mL)の値に対するRatioで表した。エラーバーは標準偏差を示す。*P < 0.05, **P < 0.01（by Student’s t-test）
【００３２】
【図１０】抗hTROP-2抗体（T6-16, K5-70)のヒト膵臓癌細胞株 (PK-59細胞)のスクラッチアッセイを示す図である。  A. PK-59細胞のスクラッチ領域の写真の代表例を示す。Day 0: スクラッチ直後の代表例を示す。mIgG (Day 1): スクラッチ後、コントロール抗体（マウスIgG、1μg/mL）を培地に添加し、1日後（24時間後）の写真。K5-70 (Day 1): スクラッチ後、K5-70抗体（1μg/mL）を培地に添加し、1日後（24時間後）の写真。T6-16 (Day 1): スクラッチ後、T6-16抗体（1μg/mL）を培地に添加し、1日後（24時間後）の写真。写真中に示した矢印は、スクラッチ領域の幅を示した。  B. 画像解析ソフト(Scion Image)でスクラッチ領域の面積を解析し、その値を基に、コントロールmIgG添加群Day0を基準値1として、他サンプル各種の値を算出した。*P <0.05, **P < 0.01（by Student’s t-test）
【００３３】
【図１１】ヒト膵臓癌細胞株, PK-59細胞の幹細胞マーカーのFACSの図である。 A: PK-59細胞のEpCAMの発現を示すFACSの図である。黒塗りのヒストグラムは二次抗体（PE標識抗マウスIgG)のみ、黒ラインは、抗ヒトEpCAM抗体（ベクトンディッキンソン）と反応させた場合のヒストグラムを示す。B, C: PK-59細胞のP-glycoprotein/MCR1 (B), またはABCG2 (C)の発現を示すFACSの図である。青のヒストグラムは、二次抗体のみ、赤のヒストグラムが抗ヒトP-glycoprotein/MDR1抗体(BDファーミンジェン)（B), 抗ヒトABCG2抗体（BDファーミンジェン）（C)と反応させた場合を示す。 D: PK-59細胞を膵臓癌幹細胞マーカーであるFITC標識抗ヒトCD24抗体（BD ファーミンジェン）とPE標識抗ヒトCD44抗体（BD ファーミンジェン）で二重染色したFACSの図である。Dの図中の数字は、それぞれの画分の細胞の存在比率を示す。
【００３４】
【図１２】PK-59細胞を用いたXenograft Treatmentモデルにおいて、新規な抗hTROP-2モノクローナル抗体クローンK5-70 (マウスIgG2a)の抗腫瘍活性を評価した図である。  A： コントロール群（マウスIgG）とK5-70投与群の腫瘍成長を経時的に表した（平均値±標準偏差）。矢印は、抗体投与期間を表す。* P < 0.05, ** P < 0.01（by Student’s t-test）  B： Aの試験において、21日目(Day21)（実験最終日）の時点での各マウスにおける腫瘍重量をプロットした図である。各プロット上に示す数値は、平均値±標準偏差。 ** P < 0.01（by Student’s t-test）
【００３５】
【図１３】PK-59細胞を用いたXenograft Treatmentモデルにおける、A. クローンK5-107, B. クローンT6-16, C. クローンK5-116-2-1の抗腫瘍活性を評価した図である。●はコントロール群（マウスIgG）、○は抗hTROP-2抗体投与群を示す。グラフ中の矢印は抗体投与期間を表し、各プロット上に示す数値は、平均値±標準偏差。* P < 0.05（by Student’s t-test）
【００３６】
【図１４】PK-59細胞を用いたXenograft Preventionモデルにおける、A. クローンK5-70、 B. クローンT6-16及び, C.クローンK5-116-2-1の抗腫瘍活性を評価した図である。●はコントロール群（マウスIgG）、○は抗hTROP-2抗体投与群を示す。グラフ中の矢印は抗体投与期間を表し、各プロット上に示す数値は、平均値±標準偏差。** P < 0.01（by Student’s t-test）
【００３７】
【図１５】BxPC-3細胞を用いたXenograft Prevention及びTreatmentモデルにおける、クローンK5-70の抗腫瘍活性を評価した図である。A： Preventionモデルにおけるコントロール群（マウスIgG）とK5-70投与群の腫瘍成長を経時的に表した（平均値±標準偏差）。矢印は、抗体投与期間を表す。** P < 0.01（by Student’s t-test）B：Treatmentモデルにおけるコントロール群（マウスIgG）とK5-70投与群の腫瘍成長を経時的に表した（平均値±標準偏差）。矢印は、抗体投与期間を表す。 * P < 0.05（by Student’s t-test）
【００３８】
【図１６】PK-59細胞を用いたXenograft Preventionモデルにおける、クローンK5-70の用量依存的な抗腫瘍活性を示した図である。腫瘍体積は平均値±標準偏差で表した。  A：コントロール群（マウスIgG）と各用量でのK5-70投与群の腫瘍成長を経時的に表す（平均値±標準偏差）。矢印は、抗体投与期間を表す。* P < 0.05（by Student’s t-test）, ** P < 0.01（by Student’s t-test）  B：Aの試験において、17日目(Day17)（実験最終日）の時点での各マウスにおける腫瘍重量をプロットした図である。各プロット上に示す数値は、平均値±標準偏差。 ** P < 0.01（by Student’s-t-test）
【００３９】
【図１７】実験に使用したヒト／マウスキメラTROP-2タンパク質の模式図である。SP：シグナル配列、TY domain：サイログロブリンタイプ１領域、TM：膜貫通領域、C：細胞内領域 黒の塗りつぶしで表している領域はhTROP-2由来のポリペプチドである。白抜きで表している領域は、マウスTROP-2由来のポリペプチドである。キメラタンパク質の模式図の上段に示してある数字は、マウスTROP-2タンパク質の、下段はhTROP-2タンパク質のアミノ酸番号をそれぞれ示している。
【００４０】
【図１８】ヒト／マウスキメラTROP-2を用いた抗hTROP-2モノクローナル抗体結合領域の同定の結果を示す図である。ヒト／マウスキメラTROP2-C（hmTROP2-C）及びマウス／ヒトキメラTROP2-D（mhTROP2-D）タンパク質を恒常的に発現するHEK293細胞を用い、図中に示した抗hTROP-2モノクローナル抗体との反応性を検討した。陰性コントロールはmouse IgG2bを用いた。
【００４１】
【図１９】抗hTROP-2モノクローナル抗体の抗体結合領域の同定の結果を示す図である。hTROP-2遺伝子及び各ヒト／マウスキメラTROP-2遺伝子をHEK293細胞に導入し、一過性に発現させた細胞を用いてFACS解析を行った。(A) K5-70、K5-107、T5-86、K5-116-2-1抗体について、hTROP-2（上段）、hmTROP-2-A（中段）及びhmTROP-2-B（下段）との反応性を検討した。mouse IgG2bは陰性コントロールとして用いた。(B) T6-4、T6-16抗体について、hTROP-2（上段）、mhTROP-2-E（中段）及びmhTROP-2-F（下段）との反応性を検討した。mouse IgG2bは陰性コントロールとして用いた。
【００４２】
【図２０】ヒト正常組織におけるhTROP-2の発現を示す図である。抗hTROP-2モノクローナル抗体 クローンK5-63-17を用いてヒト正常組織アレイの免疫染色を行った。(A) 皮膚、(B) 食道、(C) 腎臓（皮質）、(D) 腎臓（髄質）、(E) 膵臓、(F) 前立腺、(G) 膀胱、(H) 扁桃腺、(I) 心臓、(J) 肝臓  （倍率：×200）
【図２１】癌組織でのhTROP-2の発現を示す図である。抗hTROP-2モノクローナル抗体 クローンK5-63-17を用いてヒト癌組織アレイの免疫染色を行った。(A) 乳癌、(B) 肺癌、(C) 食道癌、(D) 胃癌、(E) 膵臓癌、(F) 大腸癌、(G) 膀胱癌、(H) 前立腺癌、(I) 卵巣癌  （倍率：×100）
【００４３】
【図２２】PK-59細胞を用いたXenograft Preventionモデルにおける、クローンK5-70の単回投与による抗腫瘍活性を示した図である。  A. コントロール群（mouse IgG●）とK5-70投与群（○）の腫瘍形成を経時的に表す（平均値±標準偏差）。矢印は、抗体投与を表す。* P < 0.05（by Student’s t-test）, ** P < 0.01（by Student’s t-test）.  B. Aの試験において、28日目(Day 28)（実験最終日）の時点での各マウスにおける腫瘍重量をプロットした図である。**P < 0.01（by Student’s-t-test）.  C. コントロール群（mouse IgG ●）とK5-70投与群（○）の、各個体の腫瘍形成を経時的に表す。矢印は抗体投与を示す。
【００４４】
【図２３】ヒト大腸癌細胞SW480細胞を用いたXenograft Treatmentモデルにおける、クローンK5-70の抗腫瘍活性を示す図である。   A： コントロール群（●mouse IgG）とK5-70投与群（○）の腫瘍形成を経時的に表した（平均値±標準偏差）。矢印は、抗体投与期間を表す。** P < 0.01（by Student’s t-test）  B： Aの試験において、44日目(Day 44)（実験最終日）の時点での各マウスにおける腫瘍重量をプロットした図である。** P < 0.01（by Student’s t-test）
【００４５】
【図２４】SW480細胞を用いたXenograft Treatmentモデルにおける、クローンK5-116-2-1の抗腫瘍活性を示す図である。   A： コントロール群（●mouse IgG）とT6-16投与群（○）の腫瘍形成を経時的に表した（平均値±標準偏差）。矢印は、抗体投与期間を表す。** P < 0.01 (by Student’s t-test）  B： Aの試験において、42日目(Day 42)（実験最終日）の時点での各マウスにおける腫瘍重量をプロットした図である。** P < 0.01（by Student’s t-test）
【００４６】
【図２５】SW480細胞を用いたXenograft Treatmentモデルにおける、クローンT6-16の抗腫瘍活性を示す図である。   A： コントロール群（●mouse IgG）とT6-16投与群（○）の腫瘍形成を経時的に表した（平均値±標準偏差）。矢印は、抗体投与期間を表す。* P < 0.05 (by Student’s t-test）  B： Aの試験において、42日目(Day 42)（実験最終日）の時点での各マウスにおける腫瘍重量をプロットした図である。* P < 0.05（by Student’s t-test）
【００４７】
【図２６】SW480細胞を用いたXenograft Treatmentモデルにおける、クローンK5-70の用量依存的な抗腫瘍活性を示す図である。   A： コントロール群（●mouse IgG）とK5-70投与群（○：1mg/kg, △：5mg/kg, □：10mg/kg）の腫瘍形成を経時的に表した（平均値±標準偏差）。矢印は、抗体投与期間を表す。*P < 0.05 (by Student’s t-test）  B： Aの試験において、42日目(Day 42)（実験最終日）の時点での各マウスにおける腫瘍重量をプロットした図である。* P < 0.05（by Student’s t-test）
【００４８】
【図２７】SW480細胞を用いたXenograft Treatmentモデルにおける、クローンK5-70の抗腫瘍活性を示す図である。   A: 1週間に1回の投与間隔でのK5-70抗体の抗腫瘍活性を示す図である。コントロール群（●mouse IgG）とK5-70投与群（○：10 mg/kg)の腫瘍形成を経時的に表した（平均値±標準偏差）。矢頭（Day 10, 17, 24, 31, 38)は、K5-70抗体の投与を示す。*P < 0.05 by Student’s t-test.  B: 10日に1回 (■: q10d)、または2週間に1回 (●: q14d)の投与間隔でのK5-70抗体を投与した場合の腫瘍形成を経時的に表した図である。ひし形（◇）はコントロール群（Mouse IgG、10mg/kg)を示す（平均値±標準偏差）。黒塗りの矢頭（▼；Day 9, 19, 29)と白塗りの矢頭（▽； Day 9, 23, 37)は、K5-70抗体の投与を示す。*P < 0.05, **P < 0.01 by Student’s t-test.
【００４９】
【図２８】SW480細胞を用いたXenograft Treatmentモデルにおける、クローンT6-16の用量依存的な抗腫瘍活性を示す図である。   A： コントロール群（●mouse IgG）とT6-16投与群（○：1mg/kg, △：5mg/kg, □：10mg/kg）の腫瘍形成を経時的に表した（平均値±標準偏差）。矢印は、抗体投与期間を表す。**P < 0.01 (by Student’s t-test）  B： Aの試験において、43日目(Day 43)（実験最終日）の時点での各マウスにおける腫瘍重量をプロットした図である。** P < 0.01（by Student’s t-test）
【００５０】
【図２９】SW480細胞を用いたXenograft Treatmentモデルにおける、クローンT6-16の抗腫瘍活性を示す図である。コントロール群（●：mouse IgG 10 mg/kg）、T6-16(10 mg/kg）投与群（○：q7d,△：q10d)の腫瘍形成を経時的に表した（平均値±標準偏差）。矢頭（Day 10, 17, 24, 31, 38)、及び矢印（Day 10, 20, 30, 40)は、T6-16抗体の投与を示す。コントロール群は3日に1回投与を行った。*P < 0.05, **P < 0.01 by Student’s t-test.
【００５１】
【図３０】ヒト前立腺癌細胞DU-145細胞を用いたXenograft Preventionモデルにおける、クローンK5-70の抗腫瘍活性を示す図である。   A： コントロール群（●mouse IgG）とK5-70投与群（○）の腫瘍形成を経時的に表した（平均値±標準偏差）。矢印は、抗体投与期間を表す。* P < 0.05 (by Student’s t-test）  B： Aの試験において、40日目(Day 40)（実験最終日）の時点での各マウスにおける腫瘍重量をプロットした図である。* P < 0.05（by Student’s t-test）
【００５２】
【図３１】PK-59細胞の肝転移モデルを用いたクローンK5-70の転移抑制活性を示す図である。   A： コントロール群（mouse IgG）とB： K5-70投与群の細胞移植6週間後の摘出肝臓像を示す。矢印は、肝転移巣を示す。
【００５３】
【図３２】SW480細胞を用いたXenograftモデルにおける塩酸イリノテカン投与後の癌再発モデルにおけるK5-70の抗腫瘍活性を示す図である。無処置群（◆）、と塩酸イリノテカン(40mg/kg）投与後K5-70（○：10 mg/kg)、あるいはマウスIgG投与群（●： 10 mg/kg)の腫瘍形成を経時的に表した図である（平均値±標準偏差）。矢頭（Day 11, 14, 17)は、塩酸イリノテカンの投与を示す。K5-70抗体あるいはマウスIgGはDay 20より3日に1回投与を行った。矢印は抗体投与期間を示す。*P < 0.05, **P < 0.01 by Student’s t-test.
【００５４】
【図３３】クローンK5-70 H鎖可変領域（VH）のcDNA塩基配列（配列番号３４）と推定アミノ酸配列（配列番号３５）を示す図である。シグナルペプチドはイタリックで表している。二重下線を引いたグルタミン（Q）は、成熟ペプチドのN末端アミノ酸残基を示す。CDR配列（下線; IYWIN, NIYPSDSYTNYNQKFKD, TSMADY）は、Kabatら(Sequences of Proteins of Immunological Interests, Fifth edition, NIH Publication No. 91-3242, U.S. Department of Health and Human Services, 1991) の定義に従って決定した。クローンK5-70 VHのCDR1〜3のアミノ酸配列は、それぞれ順に、配列番号３６〜３８に示す。
【００５５】
【図３４】クローンK5-70 L鎖可変領域（VL）のcDNA塩基配列（配列番号３９）と推定アミノ酸配列（配列番号４０）を示す図である。シグナルペプチドはイタリックで表している。二重下線を引いたアスパラギン酸（D）は、成熟ペプチドのN末端アミノ酸残基を示す。CDR配列（下線; RASQSIGTSIH,YASESIS, QQSNSWPFT）は、Kabatら(Sequences of Proteins of Immunological Interests, Fifth edition, NIH Publication No. 91-3242, U.S. Department of Health and Human Services, 1991) の定義に従って決定した。クローンK5-70 VLのCDR1〜3のアミノ酸配列は、それぞれ順に、配列番号４１〜４３に示す。
【００５６】
【図３５】クローンK5-107 H鎖可変領域（VH）のcDNA塩基配列（配列番号４４）と推定アミノ酸配列（配列番号４５）を示す図である。シグナルペプチドはイタリックで表している。二重下線を引いたグルタミン（Q）は、成熟ペプチドのN末端アミノ酸残基を示す。CDR配列（下線; SYWMH,NIYPGGGYTNYDEKFKS, SSVFDY）は、Kabatら(Sequences of Proteins of Immunological Interests, Fifth edition, NIH Publication No. 91-3242, U.S. Department of Health and Human Services, 1991) の定義に従って決定した。クローンK5-107 VHのCDR1〜3のアミノ酸配列は、それぞれ順に、配列番号４６〜４８に示す。
【００５７】
【図３６】クローンK5-107 L鎖可変領域（VL）のcDNA塩基配列（配列番号４９）と推定アミノ酸配列（配列番号５０）を示す図である。シグナルペプチドはイタリックで表している。二重下線を引いたアスパラギン酸（D）は、成熟ペプチドのN末端アミノ酸残基を示す。CDR配列（下線; RASQNIGTSIH, YASESIS, QQSNSWPFT）は、Kabatら(Sequences of Proteins of Immunological Interests, Fifth edition, NIH Publication No. 91-3242, U.S. Department of Health and Human Services, 1991) の定義に従って決定した。クローンK5-107 VLのCDR1〜3のアミノ酸配列は、それぞれ順に、配列番５１０〜５３に示す。
【００５８】
【図３７】クローンK5-116-2-1 H鎖可変領域（VH）のcDNA塩基配列（配列番号５４）と推定アミノ酸配列（配列番号５５）を示す図である。シグナルペプチドはイタリックで表している。二重下線を引いたグルタミン（Q）は、成熟ペプチドのN末端アミノ酸残基を示す。CDR配列（下線; SYWIT,NIYPSDSYTNYNQKFRD, LFDY）は、Kabatら(Sequences of Proteins of Immunological Interests, Fifth edition, NIH Publication No. 91-3242, U.S. Department of Health and Human Services, 1991) の定義に従って決定した。クローンK5-116-2-1 VHのCDR1〜3のアミノ酸配列は、それぞれ順に、配列番号５６〜５８に示す。
【００５９】
【図３８】クローンK5-116-2-1 L鎖可変領域（VL）のcDNA塩基配列（配列番号５９）と推定アミノ酸配列（配列番号６０）を示す図である。シグナルペプチドはイタリックで表している。二重下線を引いたアスパラギン酸（D）は、成熟ペプチドのN末端アミノ酸残基を示す。CDR配列（下線; RASQSIGTSIH, YASESIS, QQSNSWPFT）は、Kabatら(Sequences of Proteins of Immunological Interests, Fifth edition, NIH Publication No. 91-3242, U.S. Department of Health and Human Services, 1991) の定義に従って決定した。クローンK5-116-2-1 VLのCDR1〜3のアミノ酸配列は、それぞれ順に、配列番号６１〜６３に示す。
【００６０】
【図３９】クローンT6-16 H鎖可変領域（VH）のcDNA塩基配列（配列番号６４）と推定アミノ酸配列（配列番号６５）を示す図である。シグナルペプチドはイタリックで表している。二重下線を引いたグルタミン酸（E）は、成熟ペプチドのN末端アミノ酸残基を示す。CDR配列（下線; DYNMH, YIYPYNGGTGYNQRFKS, EDYGSSPSYAMDY）は、Kabatら(Sequences of Proteins of Immunological Interests, Fifth edition, NIH Publication No. 91-3242, U.S. Department of Health and Human Services, 1991) の定義に従って決定した。クローンT6-16 VHのCDR1〜3のアミノ酸配列は、それぞれ順に、配列番号６６〜６８に示す。
【００６１】
【図４０】クローンT6-16 L鎖可変領域（VL）のcDNA塩基配列（配列番号６９）と推定アミノ酸配列（配列番号７０）を示す図である。シグナルペプチドはイタリックで表している。二重下線を引いたアスパラギン酸（D）は、成熟ペプチドのN末端アミノ酸残基を示す。CDR配列（下線; RSSQSLVHGNGNTYLH, KVSNRFS, SQTTHVPT）は、Kabatら(Sequences of Proteins of Immunological Interests, Fifth edition, NIH Publication No. 91-3242, U.S. Department of Health and Human Services, 1991) の定義に従って決定した。クローンT6-16 VLのCDR1〜3のアミノ酸配列は、それぞれ順に、配列番号７１〜７３に示す。
【発明を実施するための形態】
【００６２】
以下、本発明を詳細に説明する。本発明の範囲はこれらの説明に拘束されることはなく、以下の例示以外についても、本発明の趣旨を損なわない範囲で適宜変更し実施し得る。
なお、本明細書は、本願優先権主張の基礎となる特願2010-113302号明細書（2010年5月17日出願）の全体を包含する。また、本明細書において引用された全ての刊行物、例えば先行技術文献、及び公開公報、特許公報その他の特許文献は、参照として本明細書に組み込まれる。
【００６３】
１．本発明の概要
ヒトTROP-2（hTROP-2）は、前述したように、全長323アミノ酸残基からなる１回膜貫通型の１型膜タンパク質である。そして、hTROP-2遺伝子及びその遺伝子産物は、種々の癌細胞において発現していることが知られている。
前述したように、in vivoにおいて高い抗腫瘍活性を有する抗ヒトhTROP-2抗体（抗ヒトhTROP-2モノクローナル抗体）などの開発が望まれていた状況の下、本発明者は、極めて多数のクローンからスクリーニングを行うことにより、in vivoで高い抗腫瘍活性を有するクローンを取得することに成功した。具体的には、本発明は、in vivoにおいてhTROP-2の細胞外領域を特異的に認識するモノクローナル抗体、特にピコモルオーダー（pM）の高い親和性を示すモノクローナル抗体を提供するものである。本発明の抗体は、裸抗体の単独投与で、既存の抗hTROP-2抗体と比較して、より少ない用量（例えば1/20投与量）で顕著な腫瘍成長阻害活性を有し、かつ複数のヒト癌細胞を用いた担癌マウス治療モデルにおいて顕著な腫瘍成長阻害活性を示す、抗hTROP-2モノクローナル抗体である点で、極めて有用なものである。
【００６４】
２．抗hTROP-2抗体の作製
(１) 抗原の調製
hTROP-2のアミノ酸配列（配列番号２）の情報は、例えばNCBI（GenBank）のウェブサイト（http://www.ncbi.nlm.nih.gov/）に「Accession number：NP 002344」として公表されている。なお、hTROP-2のアミノ酸配列をコードする塩基配列（配列番号１）の情報は、同ウェブサイトに「Accession number：NM 002353」として公表されている。
【００６５】
抗原としては、hTROP-2のアミノ酸配列の少なくとも一部（全部又は一部）を含むポリペプチド又はペプチド（単にペプチドともいう）を使用することができ、好ましくは、hTROP-2の細胞外領域のアミノ酸配列の少なくとも一部（全部又は一部）を含むペプチドを使用することができる。hTROP-2の細胞外領域（シグナルペプチドを含む）は、配列番号２で示されるアミノ酸配列のうちの第1番目〜第274番目のアミノ酸を含む領域（シグナルペプチド：第1番目〜第26番目のアミノ酸）のことを言う。ここで、抗原に用いるペプチドにつき、上記「アミノ酸配列の少なくとも一部」とは、長さが特に限定されるわけではないが、例えば、配列番号２で示されるアミノ酸配列のうちの第1番目〜第145番目のアミノ酸を含む領域や、当該アミノ酸配列のうちの第146番目〜第274番目のアミノ酸を含む領域などが好ましい。
【００６６】
抗原とするペプチドの作製方法は、化学合成でも、大腸菌などを用いる遺伝子工学的手法による合成でもよく、当業者に周知の方法を用いることができる。
ペプチドの化学合成を行う場合は、ペプチドの合成の周知方法によって合成することができる。また、その合成は、固相合成法及び液相合成法のいずれをも適用することができる。市販のペプチド合成装置（例えば、島津製作所製：PSSM-8など）を使用してもよい。
【００６７】
ペプチドを遺伝子工学的に合成する場合は、まず、当該ペプチドをコードするDNAを設計し合成する。当該設計及び合成は、例えば、全長hTROP-2遺伝子を含むベクター等を鋳型とし、所望のDNA領域を合成し得るように設計したプライマーを用いて、PCR法により行うことができる。そして、上記DNAを適当なベクターに連結することによってタンパク質発現用組換えベクターを得、この組換えベクターを目的遺伝子が発現し得るように宿主中に導入することによって形質転換体を得る（Sambrook J. et al., Molecular Cloning, A Laboratory Manual, 3rd edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2001）。
【００６８】
ベクターには、宿主微生物で自律的に増殖し得るファージ又はプラスミドが使用される。さらに、動物ウイルス、昆虫ウイルスベクターを用いることもできる。組換えベクターの作製は、精製されたDNAを適当な制限酵素で切断し、適当なベクターDNAの制限酵素部位等に挿入してベクターに連結すればよい。形質転換に使用する宿主としては、目的の遺伝子を発現できるものであれば特に限定されるものではない。例えば、細菌（大腸菌、枯草菌等）、酵母、動物細胞（COS細胞、CHO細胞等）、昆虫細胞又は昆虫が挙げられる。ヤギ等の哺乳動物を宿主として使用することも可能である。宿主への組換えベクターの導入方法は公知である。
【００６９】
そして、前記形質転換体を培養し、その培養物から抗原として使用されるペプチドを採取する。「培養物」とは、(ａ)培養上清、(ｂ)培養細胞若しくは培養菌体又はその破砕物のいずれをも意味するものである。
培養後、目的ペプチドが菌体内又は細胞内に生産される場合には、菌体又は細胞を破砕することによりペプチドを抽出する。また、目的ペプチドが菌体外又は細胞外に生産される場合には、培養液をそのまま使用するか、遠心分離等により菌体又は細胞を除去する。その後、ペプチドの単離精製に用いられる一般的な生化学的方法、例えば硫酸アンモニウム沈殿、ゲル濾過、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー等を単独で又は適宜組み合わせて用いることにより、目的のペプチドを単離精製することができる。
【００７０】
本発明においては、無細胞合成系を用いたin vitro翻訳により抗原となるペプチドを得ることもできる。この場合は、RNAを鋳型にする方法とDNAを鋳型にする方法（転写／翻訳）の２通りの方法を用いることができる。無細胞合成系としては、市販のシステム、例えばExpresswayTMシステム（インビトロジェン社）、PURESYSTEM（登録商標；ポストゲノム研究所）、TNTシステム（登録商標；プロメガ社）等を用いることができる。
上記のごとく得られたペプチドは、適当なキャリアタンパク質、例えば牛血清アルブミン(BSA)、キーホールリンペットヘモシアニン(KLH)、ヒトチログロブリン、ニワトリガンマグロブリン等に結合することも可能である。
【００７１】
また抗原は、hTROP-2のアミノ酸配列（配列番号２）又は前述したその部分配列において１又は複数のアミノ酸が欠失、置換又は付加されたアミノ酸配列からなるペプチドであってもよい。例えば、hTROP-2のアミノ酸配列又はその部分配列のうち１又は複数個（好ましくは１個又は数個（例えば１個〜10個、さらに好ましくは１個〜５個））のアミノ酸が欠失しており、１又は複数個（好ましくは１個又は数個（例えば１個〜10個、さらに好ましくは１個〜５個））のアミノ酸が他のアミノ酸で置換されており、あるいは、１又は複数個（好ましくは1個又は数個（例えば１個〜10個、さらに好ましくは１個〜５個））の他のアミノ酸が付加されたアミノ酸配列からなるペプチドを使用することもできる。
【００７２】
本発明において、細胞等に導入するための遺伝子としては、hTROP-2タンパク質若しくはその部分断片又はこれらの変異型のタンパク質又は断片をコードする遺伝子が挙げられる。そのような遺伝子としては、例えば、配列番号１に示される塩基配列又はその部分配列を有するものを使用することができる。
また、細胞等に導入するための遺伝子としては、配列番号１に示される塩基配列に相補的な配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし且つhTROP-2活性を有するタンパク質をコードする塩基配列、又はその部分配列を使用することも可能である。
【００７３】
「ストリンジェントな条件」とは、ハイブリダイズさせた後の洗浄時の条件であって、バッファーの塩（ナトリウム）濃度が10〜500mMであり、温度が42℃〜72℃、好ましくは、上記塩濃度が50〜300mMであり、温度が55〜68℃での条件をいう。
遺伝子に変異を導入するには、Kunkel法やGapped duplex法等の公知手法により、例えば部位特異的突然変異誘発法を利用した変異導入用キット、例えばGeneTailorTM Site-Directed Mutagenesis System（インビトロジェン社製）、TaKaRa Site-Directed Mutagenesis System（Mutan-K、Mutan-Super Express Km等：タカラバイオ社製）を用いて行うことができる。
【００７４】
(２) ポリクローナル抗体の作製
調製した抗原を、免疫のため哺乳動物に投与する。哺乳動物は特に限定はされず、例えばラット、マウス及びウサギなどを挙げることができ、なかでもマウスが好ましい。
抗原の動物一匹あたりの投与量は、アジュバントの有無により適宜設定することができる。アジュバントとしては、フロイント完全アジュバント(FCA)、フロイント不完全アジュバント(FIA)、水酸化アルミニウムアジュバント等が挙げられる。免疫は、主として静脈内、足蹠、皮下、腹腔内等に注入することにより行うことができる。また、免疫の間隔については、特に限定されず、数日から数週間間隔、好ましくは１週間間隔で、１〜10回、好ましくは２〜３回免疫を行う。そして、最終の免疫日から３〜７日後に、酵素免疫測定法（ELISA又はEIA）や放射性免疫測定法（RIA）等で抗体価を測定し、所望の抗体価を示した日に採血して、抗血清を得ることができる。上記抗体の採取方法において、抗体の精製が必要とされる場合は、硫安塩析法、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー等の公知の方法を適宜選択して、又はこれらを組み合わせることにより、精製することができる。その後は、抗血清中のポリクローナル抗体の反応性をELISA法などで測定する。
【００７５】
(３) モノクローナル抗体の作製
(3-1) 抗体産生細胞の採取
本発明の抗hTROP-2抗体は、限定はされないが、モノクローナル抗体であることが好ましい。
調製した抗原を、免疫のため哺乳動物、例えばラット、マウス及びウサギなどに投与する。抗原の動物一匹あたりの投与量は、アジュバントの有無により適宜設定することができる。アジュバントとしては上記と同様である。免疫手法も前記と同様である。そして、最終の免疫日から１〜60日後、好ましくは１〜14日後に、抗体産生細胞を採取する。抗体産生細胞としては、脾臓細胞、リンパ節細胞及び末梢血細胞などが挙げられるが、なかでもリンパ節細胞及び脾臓細胞が好ましい。
【００７６】
(3-2) 細胞融合
ハイブリドーマ（抗体産生細胞株）を得るため、抗体産生細胞とミエローマ細胞との細胞融合を行う。抗体産生細胞と融合させるミエローマ細胞として、マウスなどの動物の一般に入手可能な株化細胞を用いることができる。用いる細胞株としては、薬剤選択性を有し、未融合の状態ではHAT選択培地（ヒポキサンチン、アミノプテリン及びチミジンを含む）で生存できず、抗体産生細胞と融合した状態でのみ生存できる性質を有するものが好ましい。
ミエローマ細胞としては、例えば、P3-X63-Ag8.653、P3-X63-Ag8(X63)、P3-X63-Ag8.U1(P3U1)、P3/NS I/1-Ag4-1(NS1) 及びSp2/0-Ag14(Sp2/0)等のマウスミエローマ細胞株が挙げられる。ミエローマ細胞の選択は、抗体産生細胞との適合性を適宜考慮して行うことができる。
【００７７】
次いで、ミエローマ細胞と抗体産生細胞とを細胞融合させる。細胞融合は、血清を含まないDMEM及びRPMI-1640培地などの動物細胞用培地中で、1×106〜1×107個／mLの抗体産生細胞と2×105〜2×106個／mLのミエローマ細胞とを混合する。抗体産生細胞とミエローマ細胞との細胞比（抗体産生細胞：ミエローマ細胞）は、限定はされないが、通常、１：１〜１０：１とすることが好ましく、より好ましくは３：１である。次に、細胞融合促進剤の存在下で融合反応を行う。細胞融合促進剤として、例えば、平均分子量1,000〜6,000ダルトン(D)のポリエチレングリコールなどを使用することができる。また、電気刺激（例えばエレクトロポレーション）を利用した市販の細胞融合装置を用いて、抗体産生細胞とミエローマ細胞とを融合させることもできる。
【００７８】
(3-3) ハイブリドーマの選別及びクローニング
細胞融合処理後の細胞から目的とするハイブリドーマを選別する。その方法として、細胞懸濁液を、例えばウシ胎児血清含有RPMI-1640培地などに適当に希釈後、マイクロタイタープレート上に播き、各ウェルに選択培地を加え、以後適当に選択培地を交換して培養を行う。その結果、選択培地で培養開始後、14日前後から生育してくる細胞をハイブリーマとして得ることができる。
【００７９】
次に、増殖してきたハイブリドーマの培養上清中に、hTROP-2に反応する抗体が存在するか否かをスクリーニングする。ハイブリドーマのスクリーニングは、通常の方法に従えばよく、特に限定はされない。例えば、ハイブリドーマとして生育したウェルに含まれる培養上清の一部を採取し、ELISA、EIA及びRIAなどによってスクリーニングすることができる。
融合細胞のクローニングは、限界希釈法等により行うことができる。hTROP-2に強い反応性を示す抗体をフローサイトメトリー等により判定し、これを産生するハイブリドーマを選択し、クローンとして樹立する。
【００８０】
(3-4) モノクローナル抗体の採取
樹立したハイブリドーマを培養し、得られる培養物からモノクローナル抗体を採取する方法として、通常の細胞培養法、又は腹水形成法等を採用することができる。「培養」とは、ハイブリドーマを培養皿又は培養ボトル中で生育させること、あるいはハイブリドーマを下記のように動物の腹腔内で増殖させることを意味する。
【００８１】
細胞培養法においては、ハイブリドーマを10%ウシ胎児血清含有RPMI-1640培地、MEM培地又は無血清培地等の動物細胞培養培地中で、通常の培養条件（例えば37℃、５％CO2濃度）で７〜14日間培養し、その培養上清から抗体を取得することができる。
腹水形成法の場合は、ミエローマ細胞由来の哺乳動物と同種系動物の腹腔内にハイブリドーマを約１x107個投与し、ハイブリドーマを大量に増殖させる。そして、２〜３週間後に腹水を採取することが好ましい。
上記抗体の採取方法において、抗体の精製が必要とされる場合は、硫安塩析法、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過、アフィニティークロマトグラフィー等の公知の方法を適宜選択して、又はこれらを組み合わせることにより精製することができる。
【００８２】
(3-5) 抗腫瘍活性を有するクローンの選別
本発明の抗hTROP-2抗体は、in vivoで抗腫瘍活性を有する抗体である。
ここで、「抗腫瘍活性」とは、腫瘍細胞（癌細胞）を死滅させる活性又は腫瘍成長を阻害する活性を意味する。抗腫瘍活性としては、例えば、癌細胞の増殖阻害活性や腫瘍血管新生阻害活性が好ましく挙げられる。また、本発明の抗体が抗腫瘍活性を発揮しうるヒト腫瘍（腫瘍細胞）の種類としては、hTROP-2の発現が確認されている公知の各種ヒト腫瘍が挙げられ、特に限定はされないが、例えば、ヒト膵癌、ヒト前立腺癌、ヒト大腸癌及びヒト乳癌のうちの１種又は２種以上が好ましく挙げられ、より好ましくはヒト膵癌である。さらに、上記腫瘍の種類としては、再発癌や転移癌であってもよく、本発明の抗体はこれらに腫瘍に対しても優れた抗腫瘍活性を発揮し得る。
【００８３】
in vivoでの抗腫瘍活性の確認は、例えば、所望の腫瘍細胞をマウスの皮下に移植した担癌マウス（担癌動物治療モデル）を用い、このマウスに前記のとおり得られた抗体を投与することにより行うことができる。この場合、抗体の投与は、腫瘍細胞の移植直後から行ってもよいし（Preventionモデル）、移植に腫瘍が所定の体積になったのを確認してから行ってもよい（Treatmentモデル）。投与方法は、限定はされないが、例えば、3日、1週間,10日又は2週間に1回あるいは単回（1回のみ）で、5〜20mg/kg体重、腹腔内投与等とすることができる。Preventionモデルの場合は、腫瘍形成頻度と腫瘍体積により抗腫瘍活性の有無及びレベルを評価することができる。Treatmentモデルの場合は、腫瘍体積により抗腫瘍活性の有無及びレベルを評価することができる。
【００８４】
本発明において、in vivoで抗腫瘍活性を有する抗hTROP-2抗体としては、例えば、Ｈ鎖Ｖ領域のCDR1〜3のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号３６〜３８で示されるアミノ酸配列であり、及び／又は、Ｌ鎖Ｖ領域のCDR1〜3のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号４１〜４３で示されるアミノ酸配列であるものが、好ましく挙げられる。当該Ｈ鎖Ｖ領域としては、例えば、配列番号３５で示されるアミノ酸配列からなるものが好ましく、当該Ｌ鎖Ｖ領域としては、例えば、配列番号４０で示されるアミノ酸配列からなるものが好ましい。
【００８５】
また本発明の抗hTROP-2抗体の他の態様としては、例えば、Ｈ鎖Ｖ領域のCDR1〜3のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号４６〜４８で示されるアミノ酸配列であり、及び／又は、Ｌ鎖Ｖ領域のCDR1〜3のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号５１〜５３で示されるアミノ酸配列であるものが、好ましく挙げられる。当該Ｈ鎖Ｖ領域としては、例えば、配列番号４５で示されるアミノ酸配列からなるものが好ましく、当該Ｌ鎖Ｖ領域としては、例えば、配列番号５０で示されるアミノ酸配列からなるものが好ましい。
【００８６】
同様に、本発明の抗hTROP-2抗体の他の態様としては、例えば、Ｈ鎖Ｖ領域のCDR1〜3のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号５６〜５８で示されるアミノ酸配列であり、及び／又は、Ｌ鎖Ｖ領域のCDR1〜3のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号６１〜６３で示されるアミノ酸配列であるものが、好ましく挙げられる。当該Ｈ鎖Ｖ領域としては、例えば、配列番号５５で示されるアミノ酸配列からなるものが好ましく、当該Ｌ鎖Ｖ領域としては、例えば、配列番号６０で示されるアミノ酸配列からなるものが好ましい。
【００８７】
同様に、本発明の抗hTROP-2抗体の他の態様としては、例えば、Ｈ鎖Ｖ領域のCDR1〜3のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号６６〜６８で示されるアミノ酸配列であり、及び／又は、Ｌ鎖Ｖ領域のCDR1〜3のアミノ酸配列が、それぞれ順に、配列番号７１〜７３で示されるアミノ酸配列であるものが、好ましく挙げられる。当該Ｈ鎖Ｖ領域としては、例えば、配列番号６５で示されるアミノ酸配列からなるものが好ましく、当該Ｌ鎖Ｖ領域としては、例えば、配列番号７０で示されるアミノ酸配列からなるものが好ましい。
【００８８】
本発明において、in vivoで抗腫瘍活性を有する抗hTROP-2抗体としては、より具体的には、例えば、受託番号がFERM BP-11251であるハイブリドーマにより産生される抗hTROP-2モノクローナル抗体（クローン名：K5-70）、受託番号がFERM BP-11252であるハイブリドーマにより産生される抗hTROP-2モノクローナル抗体（クローン名：K5-107）、受託番号がFERM BP-11253であるハイブリドーマにより産生される抗hTROP-2モノクローナル抗体（クローン名：K5-116-2-1）、受託番号がFERM BP-11346であるハイブリドーマにより産生される抗hTROP-2モノクローナル抗体（クローン名：T6-16）及び受託番号がFERM BP-11254であるハイブリドーマにより産生される抗hTROP-2モノクローナル抗体（クローン名：T5-86）などが好ましく挙げられる。
【００８９】
ここで、受託番号がFERM BP-11251であるハイブリドーマは、「Mouse-Mouse Hybridoma K5-70」と称し2010年5月12日付で、受託番号がFERM BP-11252であるハイブリドーマは、「Mouse-Mouse Hybridoma K5-107」と称し2010年5月12日付で、受託番号がFERM BP-11253であるハイブリドーマは、「Mouse-Mouse Hybridoma K5-116-2-1」と称し2010年5月12日付で、受託番号がFERM BP-11346であるハイブリドーマは、「Mouse-Mouse Hybridoma T6-16」と称し2011年3月1日付で、受託番号がFERM BP-11254であるハイブリドーマは、「Mouse-Mouse Hybridoma T5-86」と称し2010年5月12日付で、いずれも独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センター（〒305-8566 茨城県つくば市東1-1-1 中央第6）に寄託されたものである。
【００９０】
さらに、本発明の抗hTROP-2抗体としては、例えば、受託番号がFERM BP-11251、FERM BP-11252、FERM BP-11253、FERM BP-11346又はFERM BP-11254であるハイブリドーマにより産生されるモノクローナル抗体が結合（認識）する部位（例えばエピトープ）に結合する抗hTROP-2抗体も好ましく挙げられる。エピトープとしては、下記(3-6)項において例示するものが好ましく挙げられる。
【００９１】
(3-6) 抗hTROP-2抗体のエピトープ
本発明の抗hTROP-2抗体のエピトープ（抗原決定基）は、抗原であるhTROP-2の少なくとも一部であればよく限定はされないが、例えば、配列番号２に示されるhTROP-2のアミノ酸配列中の、第252番目〜第260番目のアミノ酸からなる領域とを除く領域の少なくとも一部であることが好ましく、より好ましくは、第1番目〜第69番目のアミノ酸からなる領域の少なくとも一部又は第100番目〜第274番目のアミノ酸からなる領域（第252番目〜第260番目のアミノ酸からなる領域を除く）の少なくとも一部であり、さらに好ましくは第27番目〜第69番目のアミノ酸からなる領域の少なくとも一部又は第109番目〜第206番目のアミノ酸からなる領域の少なくとも一部である。上記エピトープとして、特に好ましくは、配列番号２に示されるhTROP-2のアミノ酸配列中の、第43番目〜第65番目のアミノ酸からなる領域、第152番目〜第165番目のアミノ酸からなる領域、第171番目〜第183番目のアミノ酸からなる領域、第109番目〜第120番目のアミノ酸からなる領域、第193番目〜第206番目のアミノ酸からなる領域、及び第43番目〜第56番目のアミノ酸からなる領域、並びにこれらを含む部分であり、中でも特に好ましいのは、第43番目〜第65番目のアミノ酸からなる領域、第152番目〜第165番目のアミノ酸からなる領域、第171番目〜第183番目のアミノ酸からなる領域、及び第109番目〜第120番目のアミノ酸からなる領域、並びにこれらを含む部分である。当該領域を認識する（当該領域又はそれを含む部分と結合する）抗hTROP-2抗体は、例えば、腫瘍細胞内へのインターナリゼーション活性が高く、後述するイムノコンジュゲート等の用途に極めて有用なものである。
【００９２】
(3-7) 抗hTROP-2抗体の特性
本発明の抗hTROP-2抗体は、前述の通り、低用量で高いin vivo抗腫瘍活性を有する抗体である。具体的には、担癌動物モデルに対して、20mg/kg体重以下（好ましくは10mg/kg体重以下、より好ましくは5mg/kg体重以下、さらに好ましくは1mg/kg体重以下）の投与量（裸抗体）で50％以上（好ましくは80％以上、より好ましくは90％以上、さらに好ましくは95％以上、特に好ましくはほぼ100％（例えば98％以上又は99％以上））の腫瘍成長阻害活性を示すものであることが好ましい。
【００９３】
ここで、腫瘍成長阻害活性（％）は、例えば、下記式により算出することができる。
腫瘍成長阻害活性（％）＝ 100−〔（抗体投与群の腫瘍体積又は腫瘍重量）÷（対照群の腫瘍体積又は腫瘍重量）〕×100
【００９４】
また、本発明の抗hTROP-2抗体は、2種以上のヒト腫瘍細胞株に対して抗腫瘍活性を有するものであることが好ましい。ヒト腫瘍細胞株としては、限定はされないが、例えば、各種ヒト膵癌細胞株、ヒト前立腺癌細胞株、ヒト大腸癌細胞株及びヒト乳癌細胞株からなる群より選ばれる少なくとも2種が挙げられ、具体的には、ヒト膵癌細胞株PK-59、ヒト膵癌細胞株BxPC-3、ヒト膵癌細胞株KP-3L、ヒト膵癌細胞株KP-2、ヒト膵癌細胞株PK-1、ヒト膵癌細胞株PK-45H、ヒト膵癌細胞株PK-45P、ヒト膵癌細胞株TCC-PAN2、ヒト膵癌細胞株SUIT-2、ヒト大腸癌細胞株CACO-2、ヒト大腸癌細胞株SW480、ヒト大腸癌細胞株DLD-1、ヒト大腸癌細胞株HCT 116、ヒト乳癌細胞株JIMT-1、ヒト乳癌細胞株HCC1143、ヒト乳癌細胞株MCF-7、ヒト前立腺癌細胞株DU145及びヒト前立腺癌細胞株PC-3からなる群より選ばれる少なくとも2種が好ましく挙げられる。中でも、前記2種以上のヒト腫瘍細胞株としては、ヒト膵癌細胞株PK-59及びヒト膵癌細胞株BxPC-3がより好ましく挙げられる。
【００９５】
さらに、本発明の抗hTROP-2抗体は、解離定数（Kd値）が1.0×10-10 M以下であることが好ましく、より好ましくは1.0×10-11 M以下であり、さらに好ましくは1.0×10-12 M以下である。ここで、抗体の結合能（親和性）は、例えば、スキャッチャード解析やBiacoreと呼ばれる表面プラズモン共鳴センサーにより、解離定数(Kd値)、解離速度定数(Kdiss [1/Sec])、結合速度定数(Kass [1/M.Sec])として測定することができる。Biacore装置としては、例えばBiacore 3000、Biacore 2000、Biacore X、Biacore J、Biacore Q（いずれもBiacore社）などが挙げられる。抗体は、解離定数（Kd値）が小さい値であるほど結合能（親和性）が高いという点で好ましい。Kd値は、Kdiss及びKassの２つのパラメーターにより決定され、例えば、式：Kd[M]＝Kdiss/Kass により表すことができる。なお、Kd値の算出方法については、後述する実施例（具体的には実施例10）に記載の方法も好ましく採用することができる。
【００９６】
(４) 遺伝子組換え抗体、及び抗体断片
(4-1) 遺伝子組換え抗体
本発明の抗hTROP-2抗体の好ましい態様の一つとして、遺伝子組換え抗体が挙げられる。遺伝子組換え抗体としては、限定はされないが、例えば、キメラ抗体、ヒト型化抗体 及びヒト抗体等が挙げられる。
キメラ抗体（すなわちヒト型キメラ抗体）は、マウス由来抗体の可変領域をヒト由来の定常領域に連結（接合）した抗体であり（Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 81, 6851-6855, (1984) 等を参照）、キメラを作製する場合は、そのように連結した抗体が得られるよう、遺伝子組換え技術によって容易に構築できる。
【００９７】
ヒト型化抗体を作製する場合は、マウス抗体の可変領域から相補性決定領域（CDR）をヒト可変領域に移植して、フレームワーク領域（FR）はヒト由来のものでCDRはマウス由来のものからなる、再構成した可変領域を作製する（いわゆるCDRグラフティング（CDR移植））。次に、これらのヒト型化された再構成ヒト可変領域をヒト定常領域に連結する。このようなヒト型化抗体の作製法は、当分野において周知である（Nature, 321, 522-525 (1986)；J. Mol. Biol., 196, 901-917 (1987)；Queen C et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 86: 10029-10033 (1989)；特表平4-502408号公報（特許第2828340号公報；クイーンら）等を参照）。
【００９８】
ヒト抗体（完全ヒト抗体）は、一般にV領域の抗原結合部位である超可変領域（Hyper Variable region）、V領域のその他の部分及び定常領域の構造が、ヒトの抗体と同じ構造を有するものである。但し、超可変部位は他の動物由来であってもよい。ヒト抗体を作製する技術も公知であり、ヒトに共通の遺伝子配列については遺伝子工学的手法によって作製する方法が確立されている。ヒト抗体は、例えば、ヒト抗体のH鎖及びL鎖の遺伝子を含むヒト染色体断片を有するヒト抗体産生マウスを用いた方法（Tomizuka, K.et al., Nature Genetics, (1977)16, 133-143; Kuroiwa, Y.et.al., Nuc. Acids Res., (1998)26, 3447-3448; Yoshida, H.et.al., Animal Cell Technology: Basic and Applied Aspects,(1999)10, 69-73 (Kitagawa, Y.,Matuda, T. and Iijima, S. eds.), Kluwer Academic Publishers; Tomizuka, K.et.al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, (2000)97, 722-727 等を参照）や、ヒト抗体ライブラリーより選別したファージディスプレイ由来のヒト抗体を取得する方法（Wormstone, I. M.et.al, Investigative Ophthalmology & Visual Science., (2002)43 (7), 2301-8; Carmen, S. et.al., Briefings in Functional Genomics and Proteomics,(2002)1 (2), 189-203; Siriwardena, D. et.al., Opthalmology, (2002)109 (3), 427-431 等を参照）により取得することができる。
【００９９】
上記キメラ抗体、ヒト型抗体及びヒト抗体は、抗体Fc領域におけるN-グリコシド結合複合型糖鎖が該糖鎖の還元末端のN-アセチルグルコサミンにフコースが結合していない糖鎖であるものが好ましく、詳しくは、該フコースの１位がN-グリコシド結合複合型糖鎖還元末端のN-アセチルグルコサミンの６位にα結合していない糖鎖を抗体分子のFc領域に有する遺伝子組換え抗体分子からなる抗体が挙げられる。このような抗体であれば、ADCC活性を飛躍的に向上させることができる。なお、この点（抗体Fc領域におけるN-グリコシド結合複合型糖鎖の特徴）は、前述したポリクローナル抗体及びモノクローナル抗体についても同様に好ましい。
【０１００】
(4-2) 抗体断片
本発明の抗hTROP-2抗体の断片（部分断片）も、本発明の抗体に含まれるものとする。ここで、本発明の抗体断片は、本発明の抗hTROP-2抗体と同様に、hTROP-2に対する結合活性を有するもの（すなわちhTROP-2に結合し得るもの）であって in vivoで抗腫瘍活性を有するものである。
当該抗体の断片としては、抗hTROP-2ポリクローナル抗体又は抗hTROP-2モノクローナル抗体の一部分の領域（すなわち、本発明の抗hTROP-2抗体に由来する抗体断片）を意味し、例えば、Fab、Fab'、F(ab')2、Fv（variable fragment of antibody）、一本鎖抗体（H鎖、L鎖、H鎖V領域、及びL鎖V領域等）、scFv、diabody（scFv二量体）、dsFv（ジスルフィド安定化V領域）、並びに、相補性決定領域（complementarity determining region：CDR）を少なくとも一部に含むペプチド等が挙げられる。
【０１０１】
Fabは、抗体分子をタンパク質分解酵素パパインで処理して得られる断片のうち、H鎖のN末端側約半分とL鎖全体とがジスルフィド結合で結合した、分子量約5万の抗原結合活性を有する抗体断片である。また、抗体のFabをコードするDNAを、原核生物用発現ベクター又は真核生物用発現ベクターに挿入し、該ベクターを原核生物又は真核生物へ導入することにより発現させ、Fabを製造することもできる。
F(ab')2は、抗体分子をタンパク質分解酵素ペプシンで処理して得られる断片のうち、Fabがヒンジ領域のジスルフィド結合を介して結合されたものよりやや大きい、分子量約10万の抗原結合活性を有する抗体断片である。また、後述するFabをチオエーテル結合あるいはジスルフィド結合させて、作製することもできる。
【０１０２】
Fab'は、上記F(ab')2のヒンジ領域のジスルフィド結合を切断した、分子量約5万の抗原結合活性を有する抗体断片である。また、抗体のFab'断片をコードするDNAを、原核生物用発現ベクター又は真核生物用発現ベクターに挿入し、該ベクターを原核生物又は真核生物へ導入することにより発現させ、Fab'を製造することもできる。
scFvは、１本のH鎖V領域（VH）と１本のL鎖V領域（VL）とを適当なペプチドリンカー（P）を用いて連結した、VH-P-VLないしはVL-P-VHポリペプチドで、抗原結合活性を有する抗体断片である。scFvは、抗体のVHおよびVLをコードするcDNAを取得し、scFvをコードするDNAを構築して、該DNAを原核生物用発現ベクター又は真核生物用発現ベクターに挿入し、該発現ベクターを原核生物又は真核生物へ導入することにより発現させて、製造することができる。
【０１０３】
diabodyは、scFvが二量体化した抗体断片で、二価の抗原結合活性を有する抗体断片である。二価の抗原結合活性は、同一であることもできるし、一方を異なる抗原結合活性とすることもできる。diabodyは、抗体のVHおよびVLをコードするcDNAを取得し、scFvをコードするDNAをPのアミノ酸配列の長さが８残基以下となるように構築して、該DNAを原核生物用発現ベクター又は真核生物用発現ベクターに挿入し、該発現ベクターを原核生物又は真核生物へ導入することにより発現させて、製造することができる。
【０１０４】
dsFvは、VHおよびVL中のそれぞれ１アミノ酸残基をシステイン残基に置換したポリペプチドを、該システイン残基間のジスルフィド結合を介して結合させたものをいう。システイン残基に置換するアミノ酸残基は、Reiterらにより示された方法（Protein Engineering, 7, 697-704, 1994）に従って、抗体の立体構造予測に基づいて選択することができる。dsFvは、抗体のVHおよびVLをコードするcDNAを取得し、dsFvをコードするDNAを構築して、該DNAを原核生物用発現ベクター又は真核生物用発現ベクターに挿入し、該発現ベクターを原核生物又は真核生物へ導入することにより発現させて、製造することができる。
【０１０５】
CDRを含むペプチドは、VHのCDR（CDR1〜3）及びVLのCDR（CDR1〜3）の中の少なくとも１領域以上を含んで構成され、VHのCDRをすべて含むもの、及びVLのCDRをすべて含むものがより好ましく、VH及びVLのCDR（計6領域）をすべて含むものが特に好ましい。CDRのアミノ酸配列としては、例えば、前述した配列番号３６〜３８、４１〜４３、４６〜４８、５１〜５３、５６〜５８、６１〜６３、６６〜６８及び７１〜７３に示されるアミノ酸配列が好ましく挙げられる。複数のCDRを含むペプチドは、直接又は適当なペプチドリンカーを介して結合させることができる。CDRを含むペプチドは、抗体のVHおよびVLのCDRをコードするDNAを構築し、該DNAを原核生物用発現ベクター又は真核生物用発現ベクターに挿入して、該発現ベクターを原核生物又は真核生物へ導入することにより発現させて、製造することができる。また、CDRを含むペプチドは、Fmoc法（フルオレニルメチルオキシカルボニル法）及びtBoc法（t-ブチルオキシカルボニル法）等の化学合成法によって製造することもできる。
【０１０６】
本発明の抗体断片としては、そのままの形状でN-グリコシド結合複合型糖鎖が該糖鎖の還元末端のN-アセチルグルコサミンにフコースが結合していない糖鎖である抗体Fc領域の一部または全部を含む抗体断片でもよく、また、上述した抗体断片とN-グリコシド結合複合型糖鎖が該糖鎖の還元末端のN-アセチルグルコサミンにフコースが結合していない糖鎖である抗体Fc領域の一部または全部との融合タンパク質であってもよい。このような抗体断片であれば、ADCC活性を飛躍的に向上させることができるため、好ましい。
以下、本明細書中の説明においては、上述した抗体断片も、本発明の抗hTROP-2抗体に含まれるものとする。
【０１０７】
３．抗体−薬剤複合体の作製
上記本発明の抗hTROP-2抗体を用いたイムノコンジュゲート等として、当該抗体と、抗腫瘍活性及び／又は殺細胞活性を有する物質（化合物等）とを含む、抗体−薬剤複合体を提供することができる。なお、予め、当該抗体分子と、抗腫瘍活性及び／又は殺細胞活性を有する物質とを、それぞれ調製したのち、これらを複合化させて得られたものは、一般に、イムノコンジュゲートと称される。また、遺伝子組換え技術を用い、抗腫瘍活性及び／又は殺細胞活性を有する物質としてのタンパク質トキシンを、遺伝子上で抗体遺伝子と連結させて、１つのタンパク質（融合タンパク質）として発現させて得られたものは、一般に、イムノトキシンと称される。
【０１０８】
抗腫瘍活性を有する物質としては、例えば、ドキソルビシン、カリケアマイシン、マイトマイシンC、Auristatin E、放射性同位体（RI）などが挙げられる。殺細胞活性を有する物質としては、例えば、サポリン、リシン、緑膿菌外毒素、ジフテリアトキシン、放射性同位体（RI）等が挙げられ、なかでもサポリン及び緑膿菌外毒素が好ましく用いられる。なお、抗腫瘍活性及び／又は殺細胞活性を有するRIとしては、限定はされないが、例えば、90Y、111In、125I、3H、35S、14C、186Re、188Re、189Re、177Lu、67Cu、212Bi、213Bi、211At、198Au、224Ac、126I、133I、77Br、113mIn、95Ru、97Ru、103Ru、105Ru、107Hg、203Hg、94mTc、121mTe、122mTe、125mTe、165Tm、167Tm、168Tm、111Ag、197Pt、109Pd、32P、33P、47Sc、153Sm、177Lu、105Rh、142Pr、143Pr、161Tb、166Ho、199Au、57Co、58Co、51Cr、59Fe、18F、75Se、201Tl、225Ac、76Br、86Y、169Yb、166Dy、212Pb及び223Ra等が挙げられる。
【０１０９】
抗体−薬剤複合体の作製方法としては、限定はされないが、例えば、ジスルフィド結合やヒドラゾン結合によって抗体と薬剤とをカップリングする方法などが挙げられる。
上記本発明の抗hTROP-2抗体は、hTROP-2を発現する標的腫瘍細胞内へのインターナリゼーション活性に優れたものである。そのため、予め、抗腫瘍活性及び／又は殺細胞活性を有する物質を複合化させておくことにより、これら物質を腫瘍細胞に直接かつ高選択的に作用させることができる。本発明の抗体−薬剤複合体は、標的腫瘍細胞への薬剤送達能に極めて優れたものである。
【０１１０】
なお、細胞内へのインターナリゼーション活性は、抗体をローダミン等により蛍光標識し、細胞内への移行挙動及び抗体の局在性について蛍光顕微鏡等を用いて観察することにより評価することができる。
また本発明においては、抗体−薬剤複合体において、抗体の代わりに前述の抗体断片を用いた抗体断片−薬剤複合体を提供することもできる。抗体断片−薬剤複合体の詳細については、上述の抗体−薬剤複合体の説明を適宜適用することができる。
以下、本明細書中の説明においては、抗体断片−薬剤複合体も、本発明の抗体−薬剤複合体に含まれるものとする。
【０１１１】
４．医薬組成物
本発明の抗hTROP-2抗体及び抗体−薬剤複合体は、医薬組成物に含まれる有効成分として有用である。
当該医薬組成物は、腫瘍の治療用及び／又は診断用の医薬組成物として有用である。特に、本発明の抗hTROP-2抗体、及び該抗体を含む抗体−薬剤複合体は、抗腫瘍活性として優れた腫瘍成長阻害活性を有するものであるため、腫瘍の治療用に使用されることが好ましい。すなわち、本発明の抗hTROP-2抗体及び抗体−薬剤複合体は、腫瘍治療剤及び腫瘍診断剤に含まれる有効成分として有用なものである。なお、本発明において、上記腫瘍の治療には、腫瘍の成長阻害及び成長抑制の意味も含むものとし、具体的には、例えば腫瘍治療剤であれば、腫瘍の成長阻害剤及び成長抑制剤の形態も含むものとする。
【０１１２】
本発明の医薬組成物は、本発明の抗hTROP-2抗体及び／又は抗体−薬剤複合体を有効成分として含み、さらに薬学的に許容される担体を含む医薬組成物の形態で提供することが好ましい。また、本発明の医薬組成物は、公知の抗腫瘍剤との併用もすることができる。併用によりさらに高い抗腫瘍効果が得られる。
本発明の医薬組成物の適用の対象となる疾患（腫瘍）としては、hTROP-2の発現が確認されている前述した公知の各種ヒト腫瘍が挙げられる。なかでも特に、ヒト膵癌、ヒト前立腺癌、ヒト大腸癌及びヒト乳癌のうちの１種又は２種以上が好ましく挙げられる。これらの疾患は単独であってもよく、２つ以上が併発してもよい。また、対象となる腫瘍は、再発癌や転移癌であってもよく、本発明の医薬組成物（ひいては、本発明の抗hTROP-2抗体及び／又は抗体−薬剤複合体）は、再発癌や転移癌の治療剤及び診断剤としても有効に用いることができる。
【０１１３】
「薬学的に許容され得る担体」とは、賦形剤、希釈剤、増量剤、崩壊剤、安定剤、保存剤、緩衝剤、乳化剤、芳香剤、着色剤、甘味剤、粘稠剤、矯味剤、溶解補助剤あるいはその他の添加剤等が挙げられる。そのような担体の１種以上を用いることにより、注射剤、液剤、カプセル剤、懸濁剤、乳剤あるいはシロップ剤等の形態の医薬組成物を調製することができる。これらの医薬組成物は、経口あるいは非経口的に投与することができる。非経口投与のためのその他の形態としては、１つ以上の活性物質を含み、常法により処方される注射剤などが含まれる。注射剤の場合には、生理食塩水又は市販の注射用蒸留水等の薬学的に許容される担体中に溶解または懸濁することにより製造することができる。
【０１１４】
特に、本発明の抗hTROP-2抗体由来の抗体断片（中でも低分子のもの）を生体内に投与する場合は、上記に加えて、コロイド分散系を用いることができる。コロイド分散系は化合物（抗体断片）の生体内の安定性を高める効果や、特定の臓器、組織又は細胞へ化合物を効率的に輸送する効果が期待される。コロイド分散系は、通常用いられるものであればよく限定はされないが、ポリエチレングリコール、高分子複合体、高分子凝集体、ナノカプセル、ミクロスフェア、ビーズ、及び水中油系の乳化剤、ミセル、混合ミセル及びリポソームを包含する脂質をベースとする分散系を挙げることができ、好ましくは、特定の臓器、組織又は細胞へ化合物を効率的に輸送する効果のある、複数のリポソーム、人工膜の小胞である（Mannino et al., Biotechniques, 1988, 6, 682; Blume and Cevc, Biochem.et Biophys. Acta, 1990, 1029, 91; Lappalainen et al., Antiviral Res., 1994, 23, 119; Chonn and Cullis, Current Op. Biotech., 1995, 6, 698）。
【０１１５】
本発明の医薬組成物の投与量は、患者の年齢、性別、体重及び症状、治療効果、投与方法、処理時間、あるいは医薬組成物に含有される本発明の抗hTROP-2抗体及び抗体−薬剤複合体の種類などにより異なる。通常、成人一人あたり、一回につき600μgから6000mgの範囲で投与することができるが、この範囲に限定されるものではない。
【０１１６】
例えば注射剤により投与する場合は、ヒト患者に対し、１回の投与において１kg体重あたり、100μg〜100mgの量を、１日平均あたり１回〜数回投与してもよく、好ましくは３日、１週間、１０日又は２週間に１回投与したり、あるいは単回（合計投与回数が１回）投与する態様も採ることができる。投与の形態としては、静脈内注射、皮下注射、皮内注射、筋肉内注射あるいは腹腔内注射などが挙げられるが、好ましくは静脈内注射である。また、注射剤は、場合により、非水性の希釈剤（例えばポリエチレングリコール、オリーブ油等の植物油、エタノール等のアルコール類など）、懸濁剤あるいは乳濁剤として調製することもできる。そのような注射剤の無菌化は、フィルターによる濾過滅菌、殺菌剤の配合等により行うことができる。注射剤は、用時調製の形態として製造することができる。すなわち、凍結乾燥法などによって無菌の固体組成物とし、使用前に無菌の注射用蒸留水または他の溶媒に溶解して使用することができる。
【０１１７】
なお、本発明は、腫瘍を治療及び／又は診断する医薬（薬剤）を製造するための、前記本発明の抗hTROP-2抗体及び／又は抗体−薬剤複合体の使用を提供するものでもある。また、本発明は、腫瘍を治療用及び／又は診断用の、前記本発明の抗hTROP-2抗体及び／又は抗体−薬剤複合体を提供するものでもある。
さらに、本発明は、前記本発明の抗hTROP-2抗体及び／又は抗体−薬剤複合体を用いる（すなわち患者に投与する）ことを特徴とする腫瘍の治療及び／又は診断方法を提供するものであり、また、腫瘍を治療及び／又は診断するための、前記本発明の抗hTROP-2抗体及び／又は抗体−薬剤複合体の使用を提供するものでもある。
【０１１８】
５．腫瘍の検出方法
本発明の腫瘍の検出方法は、前記本発明の抗hTROP-2抗体と、生体から採取された試料（以下、生体試料）とを反応させ、反応した抗体のシグナルを検出することを特徴とする方法である。
前述したように、hTROP-2は各種腫瘍細胞において特異的に発現することが確認されているため、hTROP-2、特に遊離hTROP-2（hTROP-2の細胞外領域部分）は、各種腫瘍マーカーとして利用することが可能である。なかでも、ヒト膵癌、ヒト前立腺癌、ヒト大腸癌及びヒト乳癌のマーカーとして利用することが好ましい。
【０１１９】
そこで、本発明の抗hTROP-2抗体を生体試料と反応させ、反応した抗体のシグナルを検出することにより、腫瘍を検出することができる。得られた抗体のシグナルは、生体試料中の抗原量（すなわちhTROP-2量又は遊離hTROP-2量）の指標となる。本発明の抗体を用いた腫瘍の検出は、まず、検体として被験者から採取した生体試料、例えば検査対象とする組織片又は血液等と、本発明の抗体とを、抗原抗体反応によって結合させる。次いで、結合した抗体量の測定結果に基づいて、生体試料中の目的とする抗原量を測定することにより行う。当該測定は、公知の免疫学的測定法に従って行えばよく、例えば、免疫沈降法、免疫凝集法、標識免疫測定法、免疫比懸濁法、ウエスタンブロット法、フローサイトメトリー法などを用いることができる。標識免疫測定法では、抗体のシグナルは、標識抗体を用いて直接検出した標識量で表すほか、既知濃度あるいは既知抗体価の抗体を標準液として相対的に表してもよい。すなわち、標準液と検体を測定計により測定し、標準液の値を基準にして生体試料中の抗体シグナルを相対的に表すことができる。標識免疫測定法としては、例えばELISA法、EI法、RIA法、蛍光免疫測定(FIA)法、化学発光免疫測定法(Luminescence immunoassay)等が挙げられる。なかでも特に、ELISA法が、簡便かつ高感度という点で好ましい。
【０１２０】
本発明においては、上記検出方法により得られた検出結果を指標として腫瘍の状態を評価又は診断することができる。例えば、検出結果が所定の基準値を超えるものを腫瘍陽性、所定の基準値以下のものを腫瘍陰性とし、陽性の場合には、いずれかの腫瘍を発症している可能性があると判断し、腫瘍の状態を評価することができる。ここで、腫瘍の状態とは、腫瘍の罹患の有無又はその進行度を意味し、腫瘍の発症の有無、進行度、悪性度、転移の有無及び再発の有無等が挙げられる。
【０１２１】
上記評価にあたり、腫瘍の状態としては１つを選択してもよいし、複数個を組み合わせて選択してもよい。腫瘍の有無の評価は、得られた検出結果に基づいて、所定の基準値を境界として腫瘍に罹患しているか否かを判断することにより行うことができる。腫瘍の悪性度は、癌がどの程度進行しているのかを示す指標となるものであり、検出結果に基づいて、病期(Stage)を分類して評価したり、あるいは早期癌や進行癌を分類して評価したりすることも可能である。例えば、検出結果を指標として早期癌又は進行癌であると評価することもできる。腫瘍の転移は、検出結果を指標として、原発巣の位置から離れた部位に新生物が出現しているか否かにより評価することができる。再発は、間欠期又は寛解の後に検出結果が再び所定の基準値を超えたか否かにより評価することができる。
【０１２２】
６．腫瘍の検出用又は診断用キット
本発明の抗hTROP-2抗体は、腫瘍の検出用又は診断用キットの形態で提供することができる。本発明のキットは抗体を含むが、その他に、標識物質、あるいは抗体又はその標識物を固定した固相化試薬などを含めることができる。抗体の標識物質とは、酵素、放射性同位体、蛍光化合物及び化学発光化合物等によって標識されたものを意味する。本発明のキットは、上記の構成要素のほか、本発明の検出を実施するための他の試薬、例えば標識物が酵素標識物の場合は、酵素基質（発色性基質等）、酵素基質溶解液、酵素反応停止液、あるいは検体用希釈液等を含んでいてもよい。また、各種バッファー、滅菌水、各種細胞培養容器、各種反応容器（エッペンドルフチューブ等）、ブロッキング剤（Bovine Serum Albumin (BSA), Skim milk, Goat血清等の血清成分）、洗浄剤、界面活性剤、各種プレート、アジ化ナトリウム等の防腐剤、及び実験操作マニュアル（説明書）等を含んでいてもよい。
【０１２３】
本発明のキットは、上記本発明の検出方法を行うために有効に用いることができ、極めて有用性が高いものである。
【０１２４】
以下に、実施例を挙げて本発明をより具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
【実施例１】
【０１２５】
[hTROP-2遺伝子のクローニング]
hTROP-2遺伝子全長の単離は、ヒト胎児肝臓（胎生10週）からRT-PCR法により行った。まずhTROP-2遺伝子（Genbank accession No. NM 002353）の配列をもとに以下に示すPCRプライマーを設計した。
【０１２６】
フォワード側プライマー：  5’-ttcctccgccccaccatggc-3’ （配列番号３）
リバース側プライマー：  5’-ctcgagcaagctcggttcctttctc-3’ （配列番号４）
【０１２７】
このとき、リバース側プライマーにはストップコドンを除き、Xho Iによる制限酵素消化配列を付加した。これらのプライマーとヒト胎児肝臓（胎生10週）より調製した全RNA (TAKARA)から合成したcDNAを鋳型としてPCR反応を行った。その後、アガロースゲル電気泳動による展開、目的のバンドの抽出を行い、pCRIIベクター(Invitrogen)にクローニングした(pCRII-hTROP2)。クローニングしたhTROP-2のcDNAはシークエンスにより確認した。
【０１２８】
発現ベクターの構築は、pCRII-hTROP2からhTROP-2遺伝子を含むEco RI/Xho I断片を切り出し、pcDNA4/myc-His(c) Aベクター（Invitrogen）のEcoRI/Xho I部位に挿入して行った（pcDNA4-hTROP2-myc/His）。またpcDNA4-hTROP2-myc/HisからhTROP-2遺伝子を含むHind III/Pme I断片を切り出し（Hind III切断部位は平滑末端化した）、pcDNA3.1(+)ベクター（Invitrogen）のPme I部位へ挿入することでネオマイシン耐性遺伝子を持つ発現ベクターを構築した（pcDNA3.1-hTROP2-myc/His）。
【実施例２】
【０１２９】
[hTROP-2遺伝子安定細胞株の構築]
上記の方法で作製したhTROP-2の全長cDNAをコードした発現ベクター(pcDNA3.1-hTROP2-myc/His)を、HEK293細胞（RIKEN）、HuH-7細胞（HSRRB）、7E2-C細胞（WO 2005/052156に記載）、CHO-K1細胞（HSRRB）にリポフェクタミン2000試薬(Invitrogen)を用いて遺伝子導入し、抗生物質G418（geneticin, GIBCO BRL）による選択を行った後、hTROP-2を安定して発現している細胞株を樹立することにより得た。

【実施例３】
【０１３０】
[hTROP-2細胞外領域のリコンビナントタンパク質作製]
hTROP-2細胞外領域の一部（具体的には、配列番号２で示されるアミノ酸配列のうちの第1番目〜第263番目のアミノ酸からなる領域）をコードする遺伝子断片はPCR法により増幅した。増幅に使用したプライマーは以下の通りである。
【０１３１】
フォワード側プライマー：5’-ttcctccgccccaccatggc-3’ （配列番号３）
リバース側プライマー：5’-ctcgagctcgtccaggtaatagatgagcg-3’ （配列番号５）
【０１３２】
このとき、リバース側プライマーにXho Iによる制限酵素消化部位を付加した。PCR法により増幅したDNA断片はアガロースゲル電気泳動により展開し、QIAquick（登録商標） Gel Extraction Kit（QIAGEN）を用いて精製した。精製したDNA断片はpCR Bluntベクター（Invitrogen）にサブクローニングし（pCRB-hTROP-2 EC）、遺伝子配列を確認した。次にpCRB-hTROP-2 ECからhTROP-2の細胞外領域をコードする遺伝子断片を含むEco RI/Xho I断片を切り出し、pcDNA4/myc-His(c) Aベクター（Invitrogen）のEco RI/Xho I部位に挿入した（pcDNA4mH-hTROP-2 EC）。さらにpcDNA4mH-hTROP-2 ECのBam HI/EcoRI部位にNru I制限酵素切断部位を作製するため、以下に示すオリゴヌクレオチドを会合させ挿入した。
【０１３３】
オリゴヌクレオチド１：5’-gatccactagtcgcgagtggtgg-3’ （配列番号６）
オリゴヌクレオチド２：5’-aattccaccactcgcgactagtg-3’ （配列番号７）
【０１３４】
同様にpcDNA4mH-hTROP-2 ECのPme I部位にpBgl IIリンカー（TAKARA）を挿入した（pcDNA4mH-NB-hTROP-2 EC）。バキュロウイルスを用いたリコンビナントタンパク質作製のため、pcDNA4mH-NB-hTROP-2 ECからhTROP-2の細胞外領域をコードする遺伝子断片を含むNru I/BglII断片を切り出し、pPSC8ベクター（日本農産工業）のNru I/BglII部位に挿入した（pPSC8-hTROP2 EC）。バキュロウイルスを用いたhTROP-2細胞外領域のリコンビナントタンパク質作製は日本農産工業に委託した。
hTROP-2細胞外領域のリコンビナントタンパク質の精製は以下のように行った。リコンビナントタンパク質を含む培養上清にNi Sepharose 6 Fast Flow（GE Healthcare）を加え、4℃、2時間結合させた。その後、エコノカラム（BIO RAD）を用いて20mMイミダゾールを含むリン酸緩衝液で洗浄、300mMイミダゾールを含むリン酸緩衝液で溶出を行い精製した。
【実施例４】
【０１３５】
[ヒトEpCAM cDNAの単離と発現ベクターの構築]
ヒトEpCAM 遺伝子全長の単離は、ヒト胎児肝臓（胎生10週）からRT-PCR法により行った。まずヒトEpCAM遺伝子（Genbank accession No. NM 002354）の配列をもとに以下に示すPCRプライマーを設計した。
【０１３６】
フォワード側プライマー：  5’-tcctcgtgtcccactcccgg-3’ （配列番号８）
リバース側プライマー：  5’-ctcgagtgcattgagttccctatgc-3’ （配列番号９）
【０１３７】
このとき、リバース側プライマーにはストップコドンを除き、Xho Iによる制限酵素消化配列を付加した。これらのプライマーとヒト胎児肝臓（胎生10週）由来の全RNA (TAKARA)から合成したcDNAを鋳型としてPCR反応を行った。その後、アガロースゲル電気泳動による展開、目的のバンドの抽出を行い、pCRIIベクター(Invitrogen)にクローニングした(pCRII-hEpCAM)。クローニングしたヒトEpCAMのcDNAはシークエンスにより確認した。
【０１３８】
発現ベクターの構築は、pCRII-hEpCAMからヒトEpCAM遺伝子を含むEco RI/Xho I断片を切り出し、pcDNA4/myc-His(c) Aベクター（Invitrogen）のEcoRI/Xho I部位に挿入して行った（pcDNA4-hEpCAM-myc/His）。またpcDNA4-hEpCAM-myc/HisからヒトEpCAM遺伝子を含むHind III/Pme I断片を切り出し（Hind III切断部位は平滑末端化した）、pcDNA3.1(+)ベクター（Invitrogen）のPme I部位へ挿入することでネオマイシン耐性遺伝子を持つ発現ベクターを構築した（pcDNA3.1-hEpCAM-myc/His）。
【実施例５】
【０１３９】
[抗hTROP-2モノクローナル抗体の作製]
免疫原としては、hTROP-2発現安定細胞株（HEK293-hTROP-2細胞、CHO-K1-hTROP-2細胞、7E2-C-hTROP-2細胞）、内在的にhTROP-2タンパク質を細胞表面に発現している、ヒト膵臓癌細胞株（PK-59, RCB1901; RIKEN cell bankより購入）、または上記の方法で作製した、hTROP-2の細胞外領域のリコンビナントタンパク質を用いた。
【０１４０】
hTROP-2発現安定細胞株の場合は1×107細胞、リコンビナントhTROP-2タンパク質の場合は、20μgのタンパクを、それぞれ免疫補助剤TiterMax Gold (フナコシ株式会社)と、１：１ で混合してエマルジョンを調製し、マウス（C57/BL6, Balb/c）の両足蹠、または腹腔内に注射した（初回免疫）。両足蹠への短期免疫の場合は、初回免疫から３日後及び10日後に追加免疫を行い、最終免疫の翌日に、両膝膏リンパ節を採取し、リンパ球を調製した。腹腔内への長期免疫の場合は、初回免疫から１週間に１回の割合で、追加免疫を行い（１〜２ヵ月間実施）、常法に従い、脾臓よりＢ細胞を単離した。追加免疫は、細胞免疫では5×106 細胞のPBSによる細胞懸濁液を用い、タンパク質抗原の場合は、5μgのPBS溶液を用いた。
【０１４１】
調製したリンパ球とマウスミエローマ細胞株（P3-X63-Ag8.653）とを、３：１の割合で混合し、ポリエチレングリコール法で細胞融合を行い、HAT (ヒポキサンチン、アミノプテリン、チミジン）を含むメチルセルロース培地（商品名：ClonaCell-HY Cloning Medium D; Stem Cell）で7〜28日間培養し、増殖してきたハイブリドーマの単一コロニーを、１つ１つを96穴平底プレートにピックアップして、HATを含む液体選択培地を用い、5% CO2インキュベーターで培養した。増殖してきた単一コロニー由来のハイブリドーマの培養上清を、Cell ELISA（後述）による一次スクリーニング、HuH-7-hTROP-2細胞, PK-59を用いたFACS解析で２次スクリーニングを行うことで、生細胞の細胞表面に発現しているhTROP-2タンパク質を認識する抗hTROP-2 モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを300種類樹立した。
【実施例６】
【０１４２】
[Cell ELISAを用いた一次スクリーニング]
96穴培養プレート（BDファルコン）に、CHO-K1細胞（hTROP-2陰性コントロール：ヒューマンサイエンス振興事業団より購入）とCHO-K1-hTROP-2細胞（または、HuH-7細胞（hTROP-2陰性コントロール：ヒューマンサイエンス振興事業団より購入）とHuH-7-hTROP-2細胞）を3×104細胞/ウェルで交互に播種し、5% CO2、37℃で１〜２日間培養した。デカンテーションで細胞培養液を除去し、次いで、氷冷PBSで洗浄後、4%パラホルムアルデヒド-PBSで５分間処理することにより細胞を固定し、氷冷PBSで洗浄後ELISAプレートとした。以後、常法に従い、ELISA法を行った。具体的には以下のとおりである。
【０１４３】
まず、2%スキムミルク-PBS溶液によるブロッキングを室温で30分〜1時間行った。次に、ハイブリドーマ培養上清を加え、室温で１時間反応させた後、0.1% Tween20-PBS溶液で３回洗浄した。二次抗体として、ブロッキング溶液で1000倍希釈した、Horseradish peroxidase (HRP)標識抗マウスIgG (GEヘルスケアバイオサイエンス)を加え、室温で１時間反応させた後、0.1% Tween20-PBS溶液で３回洗浄した。TMB(3,3',5,5'-tetramethylbenzidine: SIGMA)基質溶液を添加して発色反応を行い、１M硫酸を加えて反応を停止させた。Microplate reader Model 550 (バイオ・ラッド)を用いて、吸光度（405nm）を測定した。陰性コントロールに対して、高い吸光度の値を示したハイブリドーマ培養上清に対応するハイブリドーマを24穴平底プレートに拡大培養を行い、FACS解析を用いた二次スクリーニング（後述）に移行した。
【実施例７】
【０１４４】
[FACS 解析を用いた二次スクリーニング]
上記のCell ELISAを用いた一次スクリーニングで陽性であったハイブリドーマについて、FACS解析を用いた二次スクリーニングを行った。細胞は、hTROP-2を発現していないヒト肝癌細胞株であるHuH-7細胞を陰性コントロールとして、hTROP-2を発現させた安定細胞株であるHuH-7-hTROP-2細胞に対する反応性を指標に評価し、次に内在的にhTROP-2タンパク質を細胞表面に発現しているヒト膵臓癌細胞株であるPK-59細胞（RCB1901; RIKEN cell bankより購入）との反応性で評価した。
【０１４５】
細胞はトリプシン処理によって培養皿から剥がし、細胞懸濁液（細胞密度2×106cells/mL）を調製した。Cell ELISAを用いた一次スクリーニングで陽性反応を示したハイブリドーマ培養上清と細胞懸濁液100μLとを、4℃で20分間反応させた。PBSで洗浄後、PE標識抗マウスIgG (BDファーミンゲン)（0.1μg）と反応(4℃、30分)させた後、FACSCalibur (ベクトンディッキンソン)により解析した。
最終的に、生細胞の細胞表面に発現しているhTROP-2タンパク質を認識する抗hTROP-2 モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを約300種類樹立した。
【実施例８】
【０１４６】
[アイソタイプの同定]
作製した抗hTROP-2モノクローナル抗体のアイソタイプは、MOUSE MONOCLONAL ANTIBODY ISOTYPING TEST KIT (Serotec社)を用いて、キット添付の方法に従って行った。
【実施例９】
【０１４７】
[TROP-2抗体の腹水化及び抗体精製]
上記方法で作製したハイブリドーマのクローンを、予め（７日前）2,6,10,14-テトラメチルペンタデカン（プリスタン）を投与されたBALB/cヌードマウスの腹腔内に3×106個投与し、２週間後の腹水を採取した。さらに、この腹水から、カプリル酸沈澱、プロテインGカラム（HiTrap protein G；GEヘルスケアバイオサイエンス）、またはプロテインAカラム（HiTrap protein A；GEヘルスケアバイオサイエンス）を用いてアフィニティー精製を行うことで、各ハイブリドーマクローンが産生する抗hTROP-2モノクローナル抗体を得た。
【実施例１０】
【０１４８】
[抗原親和性の測定(Kd値の測定)]
作製した抗hTROP-2モノクローナル抗体の抗原親和性 (Kd値)は、ELISA を用いた方法で算出した（Djavadi-Ohaniance L. et al (1996), In Antibody Engineering, Chapter 4, pp77-97. IRL Press, Oxford）。
【０１４９】
具体的には、96穴培養プレート(コーニング)に、精製したリコンビナントhTROP-2タンパク質（0.1μg/mL）を添加して抗原を固相化した（室温, １時間、または4℃, 一晩）。次に、PBSで３回洗浄し、2% スキムミルク（PBS溶液）を加えてブロッキングを行った（室温、１時間）。PBSで２回洗浄後、予め抗原溶液（精製hTROP-2タンパク質；50, 25, 12.5, 6.25, 3.125 nM）と抗hTROP-2モノクローナル抗体の各クローン（0.5nM）とを混合し平衡化させておいた抗原−抗体複合体を、上記ELISAプレートに添加して反応させた（室温、1時間）。PBSで３回洗浄した後、ブロッキング液で希釈したHRP標識抗マウスIgG (最終濃度1μg/mL)（GEヘルスケアバイオサイエンス）と反応させた（室温、１時間）。次いで、0.1%Tween20-PBS溶液で３回洗浄した後に、TMB(3,3',5,5'-tetramethylbenzidine: SIGMA)基質溶液を添加して発色反応を行い、１M硫酸を加えて反応を停止させた。Microplate reader Model 550 (バイオ・ラッド)を用いて、吸光度を測定した。
【０１５０】
解離定数(Kd)の計算式は以下の通りとした。
【０１５１】
【数１】
2015221793.tif 000002
【０１５２】
上記の方法で、作製した抗hTROP-2モノクローナル抗体300クローンのKd値を測定した結果、1×10-10 (M)以下のKd値を示すクローンが133クローン、1×10-11(M)以下のKd値を示すクローンが59クローン、1×10-12 (M)以下のKd値を示すクローンが2クローンであった。
in vivoで腫瘍成長阻害活性を示した、抗hTROP-2モノクローナル抗体のうち、K5-70 (マウスIgG2a)、T6-16 (マウスIgG2a)、K5-107 (マウスIgG1)、K5-116-2-1 (マウスIgG1)、及びT5-86 (マウスIgG1)のKd値は、それぞれ順に、6.8×10-12 (M)、4.3×10-12(M)、4.7×10-12 (M)、2.69×10-11(M)、及び8.49×10-11(M)であった（図１、表１）。
【０１５３】
【表１】
2015221793.tif 000003
【実施例１１】
【０１５４】
[抗hTROP-2モノクローナル抗体のヒト癌細胞株との反応性]
ヒト癌細胞株（ヒト腫瘍細胞株）は、ヒューマンサイエンス振興事業団(HSRRB)、RIKEN cell bank (RIKEN),  ATCC (American Type Culture Collection)、ECACC (European Collection of Cell Cultures)、DSMZ (German Collection of Microorganisms and Cell Cultures)より入手したものを使用した。具体的には、以下に列挙した通りである。
【０１５５】
huH-1 (HSRRB), HUH-6 (HSRRB), HuH-7 (HSRRB), JHH-5 (HSRRB), JHH-6 (HSRRB), JHH-7(HSRRB), HLE (HSRRB), HLF (HSRRB), HepG2 (HSRRB), Alexander (HSRRB), KP-1N (HSRRB), KP-1NL (HSRRB), KP-2 (HSRRB), KP-3 (HSRRB), KP-3L (HSRRB), PK-1 (RIKEN), PANC-1 (RIKEN), MIA PaCa-2 (HSRRB), PK-59 (RIKEN), PK-45H (RIKEN), PK-45P (RIKEN), BxPC-3 (ATCC), SUIT-2 (HSRRB), TCC-PAN2 (HSRRB), SW480 (ATCC), DLD-1 (HSRRB), LoVo (HSRRB), COLO-320 (RIKEN), CACO-2 (RIKEN), CW-2 (RIKEN), HCT 116 (ATCC), HCC-56 (HSRRB), MCF-7 (HSRRB), JIMT-1 (DSMZ), HCC1143 (ATCC), A549 (HSRRB), DU145 (RIKEN), PC-3 (HSRRB)
【０１５６】
癌細胞はトリプシン処理によって培養皿から剥がし、細胞懸濁液（細胞密度2×106cells/mL）を調製した。細胞懸濁液100μLに抗hTROP-2モノクローナル抗体を加え（0.1μg）、4℃で20分間反応させた。PBSで洗浄後、PE標識抗マウスIgG (BDファーミンゲン)（0.1μg）と反応(4℃、30分)させた後、FACSCalibur (ベクトンディッキンソン)により解析した。
【０１５７】
作製した抗hTROP-2抗体は、いずれも内在的にhTROP-2を発現していないヒト肝癌細胞株HuH-7とは結合せず、一方hTROP-2遺伝子を発現させた安定細胞株であるHuH-7-hTROP-2細胞には結合を示した（図２）。次に、作製した抗hTROP-2モノクローナル抗体のヒト癌細胞株（内在的に細胞表面に発現しているhTROP-2タンパク質）との反応性をFACS解析により検討した結果、作製した300種類の抗hTROP-2モノクローナル抗体は、全て、ヒト膵臓癌細胞株（PK-59、BxPC-3）との結合を示し、特に、in vivoで腫瘍成長阻害活性を示した、K5-70, T6-16, K5-107, K5-116-2-1, T5-86抗体は、PE標識抗マウスIgG (BDファーミンジェン)のみと反応させた場合と比較して、PK-59細胞では、平均蛍光強度でK5-70 (44倍)、T6-16 (59倍)、K5-107 (89倍)、K5-116-2-1 (122倍)、T5-86 (15倍)（図３）、BxPC-3細胞では、K5-70 (45倍)、T6-16 (25倍)、K5-107 (90倍)、K5-116-2-1 (121倍)、T5-86 (10倍) と、いずれの抗体も高い結合を示した（図４）。
【０１５８】
PK-59とBxPC-3以外のヒト癌細胞株では、膵臓癌細胞株12種類のうち、KP-2, KP-3L, PK-1, PK-45H、SUIT-2、TCC-PAN2に結合し、KP-1N, KP-1NL, KP-3, PANC-1, MIA-PaCa2には結合しなかった（図５）。ヒト大腸癌細胞株では、CACO-2, SW480, DLD-1, HCT 116に結合し、COLO-320, CW-2には結合しなかった（図６）。その他、JIMT-1, HCC1143（いずれもヒト乳癌細胞株）、PC-3, DU145 (いずれもヒト前立腺癌細胞株)と結合し、多くのヒト癌細胞株の細胞表面に内在的に発現しているhTROP-2タンパク質を認識した（図６）。
【実施例１２】
【０１５９】
[マウスTROP-2タンパク質、ヒトTROP-1/EpCAMタンパク質との交差反応性]
作製した抗hTROP-2モノクローナル抗体の特異性を調べる目的で、hTROP-2タンパク質とアミノ酸配列で80％の相同性を示すマウスTROP-2タンパク質、hTROP-2タンパク質とアミノ酸配列で50％の相同性を示すヒトTROP-1/EpCAMとの反応性をFACS解析にて行った。
【０１６０】
具体的には、マウスTROP-2遺伝子（GenBank accession No. NM 020047、Y08830）の全長cDNAを含む発現ベクター（マウスTROP-2-pcDNA3.1(+)、東京大学・分子細胞生物学研究所より供与）、およびヒトTROP-1/EpCAM遺伝子（GenBank accession No. NM 002354）の全長cDNAを含む発現ベクター（pcDNA3.1-hEpCAM-myc/His）を、それぞれLipofectamine2000試薬（Invitrogen）を用いて、一過性にCHO-K1細胞に遺伝子導入を行い、24〜48時間後に細胞をトリプシン処理で培養皿から剥がして細胞懸濁液を調整し、作製した抗hTROP-2モノクローナル抗体（0.1μg）、PE標識抗マウスIgG と順次反応させた後、FACSCaliburにより解析した。
【０１６１】
マウスTROP-2遺伝子を一過性に発現させたCHO-K1細胞において、陽性対照として用いたマウスTROP-2と交差反応を示すT2-102抗体（マウスIgG1）は強い結合を示し、一方、K5-70, T6-16, K5-107, K5-116-2-1, T5-86抗体はマウスTROP-2との交差反応は示さなかった（図７）。
同様に、ヒトEpCAM/TROP-1遺伝子を一過性に発現させたCHO-K1細胞において、陽性対照として用いた抗ヒトEpCAMモノクローナル抗体（BDファーミンジェン）は強い結合を示し、一方、K5-70, T6-16, K5-107, K5-116-2-1, T5-86抗体はヒトEpCAM/TROP-1との交差反応は示さなかった（図８）。
【０１６２】
以上の結果は、作製した抗hTROP-2モノクローナル抗体、特にin vivoで抗腫瘍活性を示したK5-70, T6-16, K5-107, K5-116-2-1, T5-86抗体は、hTROP-2に特異的に結合することが示された。
【実施例１３】
【０１６３】
[細胞増殖阻害活性の測定]
抗hTROP-2モノクローナル抗体のhTROP-2の機能阻害を調べる方法の１つとして、内在的にhTROP-2を細胞表面に発現しているヒト癌細胞の細胞増殖に対する影響を、テトラカラーワン（生化学工業）を用いた生細胞数の測定に基づいて評価した。具体的には、PK-59細胞を0.5%のウシ胎児血清（BioWest社製）を含むRPMI1640培地に2×105 細胞/mLの細胞濃度となるように細胞懸濁液を調製し、96穴培養プレートに100μLずつ播種した。次いで、マウスIgG (陰性コントロール)、抗hTROP-2モノクローナル抗体(最終濃度0.1, 1μg/mL)を添加し、37℃、5% CO2インキュベーターで72時間培養した。比較対照として、市販の抗hTROP-2モノクローナル抗体(クローンYY01, Santa Cruz)を使用した。細胞にテトラカラーワン（生化学工業）を添加し、5% CO2インキュベーターで1〜2時間反応させた。反応後の96穴プレートを、そのままマイクロプレートリーダーを用いて波長490nm（対照波長：655nm）の吸光度を測定した。各群3ウェルで実施し、Student’s t検定（Student’s t-test）で有意差検定を行い、P < 0.05を統計的に有意と判定した。
【０１６４】
これまでに自社で作製した抗hTROP-2モノクローナル抗体のうち、約160クローンについて、上記の方法でPK-59細胞の細胞増殖に与える効果を調べたところ、in vivoで腫瘍成長阻害活性を示した、T6-16, T5-86, K5-70, K5-107は、マウスIgG (陰性コントロール)と比較して、20%〜40%の細胞増殖阻害活性が確認され、これら抗hTROP-2抗体は、ヒト癌細胞表面に発現するhTROP-2タンパク質に結合し、hTROP-2タンパク質の機能を中和し、癌細胞の増殖を阻害する活性を有することが明らかとなった（図９）。
【実施例１４】
【０１６５】
[スクラッチアッセイ]
抗hTROP-2モノクローナル抗体のヒト癌細胞の移動能をスクラッチアッセイで評価した。PK-59細胞を10%のウシ胎児血清を含むRPMI1640培地に3×105 cell/mL の細胞濃度となるように細胞懸濁液を調製し、96穴培養プレートに100μLずつ播種した。細胞がコンフルエントに達した段階で、チップの先端で縦に線を引くようにして単層培養した細胞の一部を剥離した。抗hTROP-2モノクローナル抗体、および陰性コントロールとしてマウスIgGを最終濃度が0.1、および1μg/mLとなるように培地に添加し、24時間培養を行い、抗体添加前(Day 0)と24時間培養後（Day 1）の剥離した領域の写真を撮影し、細胞間距離を測定した。また、剥離領域の面積をScion Imageソフトウェアで定量化した。各群8ウェルで実施し、Student’s t-testで有意差検定を行い、P < 0.05を統計的に有意と判定した。
【０１６６】
スクラッチ領域に浸潤する細胞の運動能に対するhTROP-2抗体の効果を調べた。細胞増殖阻害アッセイと同様に薬効のあった抗体を評価した。評価方法として、Day0(抗体添加時)およびDay1(24時間経過後)の細胞を撮影し、移動距離(μm)および、スクラッチ領域の面積を画像解析した。結果、図１０に示すように、細胞の運動能に明らかな違いが見られた。本試験に使用したT6-16およびK5-70はコントロールと比較し、どちらも有意な増殖阻害が見られ、再現性試験においても同様の傾向が確認できた。特にT6-16についてはP < 0.01 (by Student’s t-test)であり、in vivoの試験との相関性が認められた。
【実施例１５】
【０１６７】
[担癌マウスでの抗hTROP-2モノクローナル抗体の薬効評価]
Prevensionモデル
hTROP-2を発現する膵癌細胞株（PK-59, BxPC-3）をトリプシン処理で剥がし、PBSで1×108 cells/mLの細胞懸濁液を調製し、氷上にて等量のマトリゲル（BDファーミンゲン）と混合した。６週齢の雌のヌードマウス（Balb/c, nu/nu）の右脇腹の皮下に26 Gのシリンジを用いて100μL（5×106 cell）注射した。癌細胞移植当日(Day 1)に、マウスを群分し、抗体の投与（1, 5, または10 mg/kg 体重、腹腔内投与）を開始した。以降は、3日に1回の間隔で同様の投与を行った。抗腫瘍活性は、腫瘍形成頻度及び腫瘍体積により評価した。腫瘍体積の計測は、以下の計算式を用いた。
腫瘍体積(mm3) = (短径)2 × (長径) × π/6
【０１６８】
Treatmentモデル
hTROP-2を発現する膵癌細胞株（PK-59, BxPC-3）をトリプシン処理で剥がし、PBSで1×108 cells/mLの細胞懸濁液を調製し、氷上にて等量のマトリゲル（BDファーミンゲン）と混合した。６週齢の雌のヌードマウス（Balb/c, nu/nu）の右脇腹の皮下に26 Gのシリンジを用いて100μL（5×106 cells）注射した。癌細胞移植から5〜6日後、腫瘍体積が50〜150 mm3 (平均値で約 100 mm3)に成長したマウスを群分し、群分した当日を1日目（Day 1）として、抗体投与を開始した。抗体は3日に1回の間隔で腹腔内投与を行った（10 mg/kg 体重）。抗腫瘍活性は、腫瘍体積を計測することによって評価した。有意差検定は、Student’s t-testで行い、P < 0.05を統計的に有意と判定した。
【実施例１６】
【０１６９】
[ヒト膵癌細胞Xenograftモデルにおける抗hTROP-2モノクローナル抗体のin vivoにおける抗腫瘍活性の検討]
hTROP-2を標的とした癌治療用抗体は、Xenograft Treatmentモデルにおいて、hTROP-2を発現する腫瘍組織を特異的に死滅させるか、腫瘍の成長を阻害する活性を示すことが必須である。
【０１７０】
本発明において新たに作製した抗hTROP-2モノクローナル抗体(約160クローン)を、膵癌細胞株PK-59細胞のXenograft Treatmentモデルで評価した。PK-59細胞は、膵臓癌幹細胞マーカーであるEpCAMを発現し（図11A）(Chenwei Li, et al. Cancer Res 2007; 67: (3). 1030-1037), 薬剤耐性に関わるABCトランスポーターである P-glycoprotein/MDR1（図11B）, ABCG2/CDw338（図11C)を細胞表面に発現している（Chen,C.J. et al. Cell 47 (3), 381-389 (1986), Allikmets,R., et al. Hum. Mol. Genet. 5 (10), 1649-1655 (1996)。また、膵臓癌幹細胞の特徴であるCD24とCD44共陽性の細胞画分（8.93%）（図11D)を含み、悪性度の高いヒト膵臓癌細胞株であると推測される(Chenwei Li, et al. Cancer Res 2007; 67: (3). 1030-1037、Jane E. Visvader and Geoffrey J. Lindeman.Nat Rev Cancer. Vol.8(10):755-68, 2008)。
【０１７１】
新規に作製した約160クローンのうち、大部分のクローンはPK-59細胞 Xenograft Treatmentモデルでは薬効を示さなかったが、その中でも有意な腫瘍成長阻害活性を示す以下のクローン、すなわちクローンK5-70, T6-16, K5-107, T5-86及びK5-116-2-1が得られた。
クローンK5-70 (マウスIgG2a) 投与群では、腫瘍成長速度が統計的に有意に阻害され、投与開始後21日目(Day 21)において、コントロール群（N=14）の腫瘍体積が1200.8±377.3 mm3に対し、クローンK5-70投与群では748.7±162.9 mm3（P < 0.01 by Student’s t-test）であった（図12A）。抗体投与開始時点での腫瘍体積を1.0としたときの、21日目(Day 21)における腫瘍体積は、コントロール群が12.5であるのに対し、クローンK5-70投与群では7.8であった（図12A）。摘出した腫瘍重量も、コントロール群が0.73±0.26 gであったのに対し、クローンK5-70投与群では0.43±0.14 g（P < 0.01 by Student’s t-test）であり、約60％の阻害を示した（図12B）。
【０１７２】
同様に、クローンK5-107(マウスIgG1) 投与群(N=8)、クローンT6-16 (マウスIgG2a) 投与群(N=8)、クローンT5-86(マウスIgG1) 及びクローンK5-116-2-1 (マウスIgG2a) 投与群(N=8)でも、腫瘍成長速度が統計的に有意に阻害された。クローンK5-107投与群（N=8）並びにクローンT6-16投与群（N=8）では、投与開始後17日目(Day 17)において、コントロール群（N=8）の腫瘍体積が1039.3±271.6 mm3に対し、それぞれ698.2±175.9 mm3（P < 0.05 by Student’s t-test）、707.2±254.5 mm3（P < 0.05 by Student’s t-test）であった。同様に、クローンK5-116-2-1投与群（N=8）では、投与開始後16日目(Day 16)において、コントロール群（N=8）の腫瘍体積が797.0±172.9 mm3に対し、508.5±225.2 mm3（P < 0.05 by Student’s t-test）であった（図13）。
【０１７３】
一方、クローンT5-86については、投与開始後15日目(Day 15)において、コントロール群（N=8）の腫瘍体積が1033.2±319.4 mm3に対し、クローンT5-86投与群（N=8）では744.1±289.1 mm3であり、腫瘍体積の比較では有意差はつかなかったものの、同日における腫瘍重量の比較では、コントロール群が0.62±0.14 gであったのに対し、クローンT5-86投与群では0.44±0.13 g（P < 0.05 by Student’s t-test）であり有意な阻害が示された。
また、下記表２に、各クローン抗体投与群の実験最終日におけるコントロール群との比率(T/C)を、腫瘍体積および腫瘍重量のそれぞれについて示した。表２に示した通り、各クローン抗体投与群において、それぞれT/C=62〜72%の有意な阻害が得られた。
【０１７４】
【表２】
2015221793.tif 000004
【０１７５】
また、クローンK5-70、クローンT6-16、クローンK5-116-2-1について、それぞれ膵癌細胞株PK-59細胞のXenograft Preventionモデルでの抗腫瘍活性を検討した。それぞれのクローンにおいて、抗体投与後全ての個体で（N=8）腫瘍成長が阻害され、クローンK5-70投与群（10 mg/kg 体重）では、投与開始後１8日目(Day 18)において、コントロール群（N=8）の腫瘍体積が880.8±206.4 mm3に対し、62.4±80.4 mm3（P < 0.01 by Student’s t-test）と92.9%の腫瘍成長阻害活性を示し、クローンT6-16投与群（10 mg/kg 体重）では、投与開始後28日目(Day 28)において、コントロール群（N=8）の腫瘍体積が992.3±250.8 mm3に対し、152.4±122.3 mm3（P < 0.01 by Student’s t-test）と84.6%の腫瘍成長阻害活性、クローンK5-116-2-1投与群（10 mg/kg 体重）では、クローンK5-116-2-1投与群（10 mg/kg 体重）では、投与開始後20日目(Day20)において、コントロール群（N=8）の腫瘍体積が1159.4±413.3 mm3に対し、207.7±319.2 mm3（P < 0.01 by Student’s t-test）と82.1%の腫瘍成長阻害活性を示した（図14, 表3）。また、すべての実験において、試験期間を通じて、コントロール群と抗hTROP-2抗体投与群の間に、平均体重の変化に有意な差はなかった。
【０１７６】
下記表３に、各クローン抗体投与群の、実験最終日におけるコントロール群との比率(T/C)を、腫瘍体積および腫瘍重量それぞれについて示した。表３に示したとおり、各クローン抗体投与群において、有意な腫瘍成長阻害が見られ、特にクローンK5-70投与群では、T/C=10%以下の顕著な効果が確認された。
【０１７７】
【表３】
2015221793.tif 000005
【０１７８】
公知の抗TROP-2抗体AR47A6.4.2（米国特許第7420041号）は、様々なヒト癌細胞株を用いた20 mg/kgの投与量で、Xenograft prevensionモデルで腫瘍成長阻害効果を示しているが、ヒト膵臓癌細胞株PL45細胞では、ほぼ100%の腫瘍成長を阻害しているものの、膵臓癌細胞株BxPC-3では約50%、前立腺癌細胞株PC-3では約40%, 乳癌細胞株であるMCF-7では約60%, 大腸癌細胞株Colo205で約40%の腫瘍成長阻害効果であったことに対して、本願発明の抗hTROP-2抗体は、半分の投与量(10 mg/kg)で、より強い腫瘍成長阻害効果を発揮した。
【実施例１７】
【０１７９】
[ヒト膵癌細胞株BxPC-3細胞のXenograftモデル（PreventionモデルおよびTreatmentモデル）における抗腫瘍活性の検討]
上記のヒト膵癌細胞株PK-59細胞のXenograft Treatmentモデルを用いた場合と同様に、ヒト膵癌細胞株BxPC-3細胞のXenograft Preventionモデル及びXenograft Treatmentモデルでの抗腫瘍活性を、クローンK5-70について検討した。
【０１８０】
クローンK5-70投与群(N=8)では、コントロール群（N=8）と比較して、腫瘍成長が有意に阻害され、 52日目(Day 52 )において、コントロール群（N=8）の腫瘍体積が616.3±266.8 mm3であったのに対し、クローンK5-70投与群（N=8）では236.0±136.4 mm3と61.7%の腫瘍成長阻害効果を示した（P < 0.01 by Student’s t-test）（図15）。
以上の結果より、抗hTROP-2モノクローナル抗体は、少なくとも2つ以上の複数の癌細胞種に対して、in vivoでの有意な腫瘍成長阻害活性を示すことが明らかとなった。
【実施例１８】
【０１８１】
[抗hTROP2抗体（クローンK5-70）の、hTROP2発現膵癌細胞株（PK-59細胞）Xenograft preventionモデルにおける用量依存的な抗腫瘍活性]
抗hTROP-2抗体のin vivoにおける腫瘍成長阻害活性を、より詳細に検討する目的で用量依存性試験を行った。図16に示したとおり、PK-59細胞の腫瘍の成長はK5-70の投与によって用量依存的に阻害され、抗体投与後21日目(Day 21)において、コントロール群（N=7）の腫瘍体積が937.8±295.3 mm3であったのに対し、K5-70（1 mg/kg）投与群（N=8）が493.5±305.1 mm3と50%の阻害率を示し、K5-70（5mg/kg）投与群（N= 8）が124.7±89.0 mm3と90%の阻害効果を示し、公知の抗TROP-2抗体AR47A6.4.2（米国特許第7420041号）と比較して、２０分の１の投与量でほぼ同等のin vivoにおける腫瘍成長阻害効果を示し、４分の１の投与量では、より高い90%の阻害効果を示すことが明らかになった。
【実施例１９】
【０１８２】
[エピトープアッセイ]
ヒト／マウスキメラTROP-2タンパク質の作製
ヒト／マウスキメラTROP-2遺伝子はPCR法を用いて作製した。ヒトTROP-2遺伝子配列およびマウスTROP-2遺伝子配列（Genbank accession No. NM 020047）をもとに以下に示すPCRプライマーを設計した。
【０１８３】
ヒト／マウスTROP-2-Cプライマー
Y606（フォワード側）：5’-cctgagcctacgctgcgacgaagtggtgcg-3’ （配列番号１０）
Y607（リバース側）：5’-cgcaccacttcgtcgcagcgtaggctcagg-3’ （配列番号１１）
【０１８４】
ヒト／マウスTROP-2-Aプライマー
Y612（フォワード側）：5’-gactgctccacgctgacttccaagtgcctg-3’ （配列番号１２）
Y613（リバース側）：5’-caggcacttggaagtcagcgtggagcagtc-3’ （配列番号１３）
【０１８５】
ヒト／マウスTROP-2-Bプライマー
Y614（フォワード側）：5’-ctcgtggacaacgatggcctctacgacccg-3’ （配列番号１４）
Y615（リバース側）：5’-cgggtcgtagaggccatcgttgtccacgag-3’ （配列番号１５）
【０１８６】
マウス／ヒトTROP-2-Dプライマー
Y608（フォワード側）：5’-ccaaagcctgcgctgcgatgagctggtgcgc-3’ （配列番号１６）
Y609（リバース側）：5’-gcgcaccagctcatcgcagcgcaggctttgg-3’ （配列番号１７）
【０１８７】
マウス／ヒトTROP-2-Eプライマー
Y616（フォワード側）：5’-agcttcctatccgcggtgcactacgagcag-3’ （配列番号１８）
Y617（リバース側）：5’-ctgctcgtagtgcaccgcggataggaagct-3’ （配列番号１９）
【０１８８】
マウス／ヒトTROP-2-Fプライマー
Y618（フォワード側）：5’-gacattaaaggcgagtctctattccagggc-3’ （配列番号２０）
Y619（リバース側）：5’-gccctggaatagagactcgcctttaatgtc-3’ （配列番号２１）
【０１８９】
マウスTROP-2プライマー
フォワード側： 5-ctactccaccccaccctggcg-3’ （配列番号２２）
リバース側： 5’-ctcgagcaagctaggttcgcttctc-3’ （配列番号２３）
【０１９０】
マウスTROP-2リバース側プライマーにはストップコドンを除き、Xho Iによる制限酵素消化配列を付加した。作製したヒト／マウスキメラTROP-2タンパク質の模式図を図17に示す。
【０１９１】
hmTROP-2-Aキメラタンパク質は、hTROP-2タンパク質のN末端から69番目までのポリペプチドとマウスTROP-2タンパク質の64番目からC末端までのポリペプチドから成るキメラタンパク質である。hmTROP2-Bキメラタンパク質は、hTROP-2タンパク質のN末端から101番目までのポリペプチドとマウスTROP-2タンパク質の96番目からC末端までのポリペプチドから成るキメラタンパク質である。hmTROP2-Cキメラタンパク質は、hTROP-2タンパク質のN末端から145番目までのポリペプチドとマウスTROP-2タンパク質の140番目からC末端までのポリペプチドから成るキメラタンパク質である。mhTROP-2-Dキメラタンパク質は、マウスTROP-2タンパク質のN末端から139番目までのポリペプチドとhTROP-2タンパク質の146番目からC末端までのポリペプチドから成るキメラタンパク質である。mhTROP-2-Eキメラタンパク質は、マウスTROP-2タンパク質のN末端から187番目までのポリペプチドとhTROP-2タンパク質の194番目からC末端までのポリペプチドから成るキメラタンパク質である。mhTROP-2-Fキメラタンパク質は、マウスTROP-2タンパク質のN末端から227番目までのポリペプチドとhTROP-2タンパク質の234番目からC末端までのポリペプチドから成るキメラタンパク質である。
【０１９２】
上記キメラタンパク質を作製するための発現ベクターは、具体的には以下の方法で構築した。hmTROP-2-Aキメラ遺伝子を作製するためhTROP-2遺伝子を鋳型にして、hTROP-2フォワード側プライマー及びヒト／マウスTROP-2-AプライマーY613を用いてPCRを行った。同様にマウスTROP-2遺伝子を鋳型にして、ヒト／マウスTROP-2-AプライマーY612及びマウスTROP-2リバース側プライマーを用いてPCRを行った。PCRにより増幅したDNA断片はアクリルアミドゲルを用いて展開、目的バンドの抽出により回収した。次に抽出した2種類のDNA断片を混合して鋳型とし、hTROP-2フォワード側プライマー及びマウスTROP-2リバース側プライマーを用いてPCRを行った。PCR産物はアガロースゲル電気泳動により展開し、目的のDNA断片を抽出した。抽出したDNA断片はpCR（登録商標）-Bluntベクター（Invitrogen）にクローニングし（pCRB-hmTROP-2-A）、遺伝子配列を確認した。動物細胞用発現ベクターは、pcDNA3.1-hTROP-2-myc/HisからEco RI/Xho I消化によりhTROP-2遺伝子を除き、pCRB-hmTROP-2-Aから調製したhmTROP-2-Aキメラ遺伝子を含むEco RI/Xho I断片を挿入することで作製した（pcDNA3.1-hmTROP-2-A-myc/His）。その他hmTROP-2-B（ヒトTROP-2フォワード側プライマー、ヒト／マウスTROP-2-BプライマーY615、ヒト／マウスTROP-2-BプライマーY614及びマウスTROP-2リバース側プライマーを使用）、hmTROP-2-C（ヒトTROP-2フォワード側プライマー、ヒト／マウスTROP-2-CプライマーY607及びヒト／マウスTROP-2-CプライマーY606、マウスTROP-2リバース側プライマーを使用）、mhTROP-2-D（マウスTROP-2フォワード側プライマー、マウス／ヒトTROP-2-DプライマーY609及びマウス／ヒトTROP-2-DプライマーY608、ヒトTROP-2リバース側プライマーを使用）、mhTROP-2-E（マウスTROP-2フォワード側プライマー、マウス／ヒトTROP-2-EプライマーY617及びマウス／ヒトTROP-2-EプライマーY616、ヒトTROP-2リバース側プライマーを使用）、mhTROP-2-F（マウスTROP-2フォワード側プライマー、マウス／ヒトTROP-2-FプライマーY619及びマウス／ヒトTROP-2-FプライマーY618、ヒトTROP-2リバース側プライマーを使用）についても同様の方法でキメラ遺伝子を作製し、発現ベクターを構築した（pcDNA3.1-hmTROP-2-B-myc/His、pcDNA3.1-hmTROP-2-C-myc/His、pcDNA3.1-hmTROP-2-D-myc/His、pcDNA3.1-hmTROP-2-E-myc/His、pcDNA3.1-hmTROP-2-F-myc/His）。
【０１９３】
hTROP-2、ヒト／マウスキメラTROP-2-C、及びマウス／ヒトキメラTROP-2-Dタンパク質を恒常的に発現するHEK293細胞株の樹立
HEK293細胞株に上記発現ベクターpcDNA3.1-hTROP-2-myc/His、pcDNA3.1-hmTROP-2-C-myc/His及びpcDNA3.1-mhTROP-2-D-myc/Hisをそれぞれ遺伝子導入した。抗生物質G418（Calbiochem）による選択を行い、hTROP-2タンパク質、hmTROP-2-Cキメラタンパク質およびmhTROP-2-Dキメラタンパク質を恒常的に発現するHEK293細胞株を樹立した。
【０１９４】
膵臓癌細胞株PK-59を用いたXenograft treatmentモデルにおいて、薬効を示した抗hTROP-2モノクローナル抗体K5-70、T5-86、K5-107、T6-4、T6-16、K5-116-2-1について結合領域の同定を行った。まずhmTROP-2-C、mhTROP-2-D、それぞれのキメラタンパク質を恒常的に発現するHEK293細胞を用いて、薬効を示した抗hTROP-2モノクローナル抗体の反応性をFACS解析により検討した（図18）。その結果、K5-70、K5-107、T5-86、K5-116-2-1はhmTROP-2-Cと反応したがmhTROP-2-Dとは反応しなかった。一方、T6-4、T6-16はmhTROP-2-Dと反応したがhmTROP-2-Cとは反応しなかった。これらのことからK5-70、K5-107、T5-84、K5-116-2-1の結合領域はhTROP-2のN末端から145番目のアミノ酸までの領域、T6-4、T6-16の結合領域はhTROP-2の146番目のアミノ酸から274番目のアミノ酸までの領域に限定された（図18）。
【０１９５】
さらに詳細に結合領域の解析を行うため、hmTROP-2-A、hmTROP-2-B、mhTROP-2-E及びmhTROP-2-Fキメラタンパク質発現用ベクターを作製し、薬効を示す抗hTROP-2モノクローナル抗体との反応性を検討した（図19）。新たに作製したキメラタンパク発現用ベクターをHEK293細胞に遺伝子導入し、一過性に発現させた細胞を用いてFACS解析を行った。K5-70、K5-107、T5-86、K5-116-2-1はhmTROP-2-Aとは反応したがmhTROP-2-Bとは反応しなかった。調べた6種類のモノクローナル抗体はすべてhTROP-2とは反応を示した。このことからK5-70、K5-107、T5-86、K5-116-2-1の結合領域はhTROP-2のN末端から69番目のアミノ酸までの領域に存在することが明らかとなった。またT6-4、T6-16はmhTROP-2-E、mhTROP-2-F共に反応しなかったことから、hTROP-2の146番目から193番目のアミノ酸までの領域を認識することが示唆された。
【実施例２０】
【０１９６】
[免疫組織化学]
＜材料・方法＞
免疫組織染色に使用した正常および癌組織アレイは以下の通りである。
【０１９７】
ヒト正常組織アレイ：
Human, Normal organs in duplicates (Catalog No.: AB1, Super Bio Chips)
Normal tissues more than single spots (Catalog No.: A103(VI), ISU ABXIS)
肺癌組織アレイ：
Human Lung cancer-metastasis-normal (Catalog No.: CCA3, Super Bio Chips)
Human lung carcinoma tissue with margin tissue, 2 location cores (Catalog No.: OD-CT-RsLug03-002, Shanghai Outdo Biotech)
【０１９８】
膵臓癌組織アレイ：
Human Pancreas carcinoma tissue with mono-pathological type from 60 cases, 2 location cores (Catalog No.: OD-CT-DgPan03-001, Shanghai Outdo Biotech)
肝臓癌組織アレイ：
Hepatocellular carcinoma, grade I〜III with normal tissue controls, 63 cases tissue arrays (Catalog No.: CS03-01-002U, Cybrdi)
Human liver carcinoma tissue with mono-pathological type from 30 cases, 2 location cores (Catalog No.: OD-CT-DgLiv02-002, Shanghai Outdo Biotech)
【０１９９】
大腸癌組織アレイ：
Human, Colorectal cancer (Catalog No.: CD3, Super Bio Chips)
Human colon carcinoma with margin tissue, 2 location cores (Catalog No.: OD-CT-DgCol03-002, Shanghai Outdo Biotech)
大腸癌リンパ節転移、肝転移組織アレイ：
Colorectal (colon and rectum) cancer with matched lymph node metastasis tissue array, 44 cases/99 cores, trial slide (Catalog No.: CO991t, Biomax us)
Colorectal (colon and rectum) cancer with matched lymph node metastasis and normal adjacent tissue array, 43 cases/99 cores (Catalog No.: CO992, Biomax us)
Colon cancer tissuesliver metastasis (Catalog No.: A203(IV), ISU ABXIS)
【０２００】
乳癌組織アレイ：
Human, Breast cancer-metastasis-normal (Catalog No.: CBA3, Super Bio Chips)
Human breast carcinoma with margin tissue, 2 location cores (Catalog No.: OD-CT-RpBre03-002, Shanghai Outdo Biotech)
胃癌組織アレイ：
Human, Stomach cancer (Catalog No.: CQ1, Super Bio Chips)
Human gastric carcinoma with margin tissue, 2 location cores (Catalog No.: OD-CT-DgStm03-002, Shanghai Outdo Biotech)
【０２０１】
食道癌組織アレイ：
Human, Esophagus cancer (Catalog No.: CR1, Super Bio Chips)
Human esophagus carcinoma with margin tissue, 2 location cores (Catalog No.: OD-CT-DgEso03-002, Shanghai Outdo Biotech)
卵巣癌組織アレイ：
Human, Ovary cancer (Catalog No.: CJ1, Super Bio Chips
【０２０２】
前立腺癌組織アレイ：
Human, Prostate cancer-normal (Catalog No.: CA3, Super Bio Chips)
膀胱癌組織アレイ：
Bladder carcinoma / transitional cell carcinoma, grade I〜III with normal tissue arrays (Catalog No.: CC12-01-001U, Cybrdi)
【０２０３】
上記組織アレイの患者情報および臨床情報は添付のデータシートおよび各社のホームページから入手した。
【０２０４】
免疫組織染色法
ヒト正常組織および癌組織の組織アレイパラフィン切片は、脱パラフィン処理後、37℃で5分間ペプシンによるプロテアーゼ処理を行い、抗hTROP-2モノクローナル抗体を用いた免疫染色に使用した。DAB(3,3'-ジアミノベンチジン)を基質とて発色反応を行った後、対比染色としてヘマトキシリンによる核染色を行った。
【０２０５】
これらの操作はより具体的には次のようにして行なった。パラフィン包埋された切片を脱パラフィン処理した後、37℃で5分間ペプシン（DAKO）によるプロテアーゼ処理を行った。抗原賦活化後、メタノールに終濃度0.3%となるように過酸化水素水を加えた溶液により、室温で20分間処理し内因性のペルオキシダーゼ活性を除いた。PBSで室温5分間の洗浄を2回行った後、1.5%の正常ウマ血清（DAKO）を含むPBS溶液を用いて室温30分間のブロッキングを行い、組織中の非特異的結合部位をふさぐ操作を行った。次に1.5%の正常ウマ血清を含むPBS溶液により希釈した抗hTROP-2モノクローナル抗体clone K5-63-17（終濃度10μg/ml）を室温で1時間反応させた後、PBSで室温5分間の洗浄を3回行い、続いて1.5%の正常ウマ血清を含むPBS溶液により200倍に希釈したビオチン化抗マウスIgG抗体（Vector）を室温で30分間反応させた。PBSによる室温5分間の洗浄を3回行った後、Vectastain ABCキット（Vector）の試薬を説明書通りに混合しABCコンプレックスを作り、これを室温で30分間反応させた。PBSで室温5分間の洗浄を3回行った後、ヒストファインペルオキシダーゼ基質シンプルステインDAB溶液（ニチレイバイオサイエンス）によって発色を行った。発色を確認した後、脱イオン水で5分間洗浄し、マイヤーヘマトキシリン溶液（和光純薬）によって核を染色し、その後アルコールで脱水、キシレンで透徹してエンテランニュー（メルク・ジャパン株式会社）で封入した。
【０２０６】
＜結果＞
ヒト正常組織におけるhTROP-2の発現
ヒト正常組織におけるhTROP-2の発現パターンについて、抗hTROP-2モノクローナル抗体 クローンK5-63-17を用いて解析した。ヒト正常組織組織アレイ（Catalog No.: AB1, Super Bio Chips）を脱パラフィン、親水化処理を行った後、タンパク質分解酵素ペプシンによる抗原の賦活化を行い、抗hTROP-2モノクローナル抗体 クローンK5-63-17で免疫染色を行った（図20）。その結果、皮膚、食道、腎臓（皮質及び髄質）、膵臓、前立腺、膀胱、扁桃腺で染色が見られた。ほとんどの染色像は細胞膜への局在を示していたが（図20 A, B, C, D, F, G. H）、一部細胞質にも発現が見られた（図20. E, H）。一方、心臓、肝臓、胃、小腸、大腸、骨格筋、肺、脾臓、胸腺などでは染色されなかった（図20. I, J）。
【０２０７】
ヒト癌組織におけるhTROP-2の発現
ヒト癌組織におけるhTROP-2の発現（hTROP-2の陽性率）を調べるため、抗hTROP-2モノクローナル抗体 クローンK5-63-17を用いて、ヒトの各癌種の癌組織アレイの免疫染色を行った。癌細胞の10%以上が染色される組織切片をhTROP-2陽性とした。この染色結果を表４に示した。
【０２０８】
【表４】
2015221793.tif 000006
【０２０９】
また、代表的な染色像を図21に示した。hTROP-2の発現を検討した癌種では、前立腺癌で最も陽性率が高く（92.1%）、肺癌（65.4%）、食道癌（76.7%）、膀胱癌（71.2%）などで高い陽性率であった。最も陽性率の低かったのは肝臓癌で7.61%であった。癌細胞でも正常細胞と同様に、hTROP-2は細胞膜に強く局在している染色像が見られた（図21. A〜F, H, I）。また一部は細胞質にも発現していた（図21. A, B, E, G）。
膵臓癌でのhTROP-2の陽性率は41.9%であった。このときのhTROP-2陽性率と膵臓癌のグレード（分化度）との関係について検討した。その結果、グレードが高い、すなわち低分化膵臓癌で高頻度に発現していた（表５）。
【０２１０】
【表５】
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【実施例２１】
【０２１１】
[K5-70抗体の単回投与による、ヒト膵臓癌細胞株PK-59 Xenograft Preventionモデルでの抗腫瘍効果]
クローンK5-70（マウスIgG2a）のin vivoにおける強い抗腫瘍活性は、ヒト膵癌細胞株PK-59を用いたXenograft Prevention モデルにおいて、10 mg/kg体重の投与量で1回投与した場合においても示された。コントロール群（マウスIgG 10mg/kg 体重, N=3）では、全ての個体において腫瘍形成が観察され、細胞移植後28日目（Day 28）における腫瘍体積は781.7±74.5 mm3であったのに対して、癌細胞移植日(Day 1)に1回K5-70を投与した群では（10 mg/kg 体重、N=3）、Day 28における腫瘍体積は144.4±176.9 mm3 (P < 0.05 by Student’s t-test)と81.5%の腫瘍成長阻害活性を示した（図22A）。腫瘍重量においては、Day 28においてコントロール群が0.59±0.06 gであったのに対し、クローンK-70投与群では0.07±0.10 g (P < 0.01 by by Student’s t-test))と88%の阻害活性を示した（図22B）。腫瘍体積、腫瘍重量のいずれにおいても、K5-70投与群では3個体中2個体では、1回の10 mg/kg体重の投与で、完全に腫瘍形成が阻害された（図22C）。
【実施例２２】
【０２１２】
[ヒト大腸癌細胞株SW480細胞 Xenograft treatmentモデルにおける抗ヒトTROP-2モノクローナル抗体の抗腫瘍活性]
抗ヒトTROP-2モノクローナル抗体（クローンK5-70, K5-116-2-1, T6-16）の抗腫瘍活性を、ヒト大腸癌細胞株SW480を用いたXenograft treatmentモデルで検討した。5×106 cellsのSW480細胞を6週齢雌のNOD-scidマウスの右脇腹皮下に移植（Day 1）し、平均の腫瘍体積が100 mm3 に達した段階で群分けを行い（Day 7又はDay 10）, Day 7又はDay 10から3日に1回の投与間隔で、抗体の腹腔内投与を開始した。クローンK5-70の抗腫瘍活性評価と、クローンK5-116-2-1およびクローンT6-16の抗腫瘍活性評価は、それぞれ独立した試験で評価した。K5-70の抗腫瘍活性評価試験においては、癌細胞移植から44日目（Day 44）におけるコントロール群（マウスIgG（10 mg/kg体重）, N=8）の腫瘍体積が365.4±214.6 mm3であったのに対して、K5-70 (10 mg/kg 体重)投与群では、27.4±29.4 mm3 (P < 0.01 by Student’s t-test)と著しく腫瘍形成が阻害された（阻害率92.5 %）（図23A）。腫瘍重量においては、コントロール群が0.11±0.07 g であったのに対して、K5-70投与群では0.005±0.007 (g) (P < 0.01 by Student’s t-test)と95.5 %の阻害率であった（図23B）。特に、K5-70投与群では8個体中2個体では、完全に腫瘍形成が阻害され腫瘍の確認が出来なかった。
【０２１３】
別に行ったK5-116-2-1とT6-16の抗腫瘍活性評価試験においては、Day 42におけるコントロール群の腫瘍体積が713.8±354.5 mm3 (N=8)であったのに対して、K5-116-2-1 投与群 (10 mg/kg体重)では、188.9±97.4 mm3 (N=8, P < 0.01 by Student’s t-test) (図24A), T6-16 投与群(10 mg/kg体重)では、292.8±199.7 mm3 (N=8, P < 0.01 by Student’s t-test) (図25A)と、それぞれ73.5 %, 59.0%の阻害率であった。腫瘍重量についても同様に、コントロール群では0.39±0.19 gであったのに対して、K5-116-2-1投与群、T6-16投与群では、0.10±0.07 g (P < 0.01 by Student’s t-test), 0.17±0.14 g (P < 0.05 by Student’s t-test)と、それぞれ72.2 %, 56.4 %の阻害率を示した（図24B, 図25B）。
【実施例２３】
【０２１４】
[ヒト大腸癌細胞株SW480細胞 Xenograft treatmentモデルにおけるクローンK5-70の用量依存的な抗腫瘍活性]
次に、クローンK5-70（マウスIgG2a）の用量依存的な抗腫瘍活性を、ヒト大腸癌細胞株SW480を用いたXenograft treatmentモデルにおいて検討した。5×106cellsのSW480細胞を6週齢雌のNOD-scidマウスの右脇腹皮下に移植し、移植から10日後（Day 10）に平均の腫瘍体積が100 mm3 に達した段階でコントロール群（マウスIgG 10 mg/kg体重投与群、N=8, 104.4±17.6 mm3）, K5-70 （1 mg/kg 体重）投与群 (N=8, 104.3±16.1 mm3), K5-70 (5mg/kg 体重)投与群（N=8, 104.6±15.9 mm3）, K5-70 (10 mg/kg体重)投与群（N=8, 104.8±14.9 mm3）に群分を行い、3日に1回の腹腔内投与を行った。Day 42におけるコントロール群の腫瘍体積が713.8 ± 354.5 mm3 であったのに対して、K5-70投与群では用量依存的な腫瘍形成阻害活性が観察され、1 mg/kg体重投与群では、485.0±207.3 mm3 (阻害率32.1%), 5 mg/kg体重投与群では、339.5 ± 253.2 mm3 (阻害率52.4%), 10 mg/kg体重投与群では、355.4±202.8 mm3 (阻害率50.2 %, P < 0.05 by Student’s t-test)であった（図26A）。同様に、Day 42における腫瘍重量については、コントロール群が0.39±0.19 gであったのに対して、K5-70 (1 mg/kg体重)投与群では, 0.24±0.11 g (阻害率 37.8%), 5 mg/kg体重投与群では、0.17±0.14 g (阻害率 55.8%, P < 0.05 by Student’s t-test), 10 mg/kg体重投与群では、0.20±0.13 g (阻害率 47.1 %) となり、用量依存的な抗腫瘍活性が確認された（図26B）。
【実施例２４】
【０２１５】
[ヒト大腸癌細胞株SW480細胞 Xenograft treatmentモデルにおけるクローンK5-70の投与間隔の検討]
さらに、クローンK5-70（マウスIgG2a）の至的投与間隔を検討するために、週に1回（7日に1回）投与を行った際の抗腫瘍活性を、ヒト大腸癌細胞株SW480を用いたXenograft treatmentモデルにおいて検討した。5×106cellsのSW480細胞を6週齢雌のNOD-scidマウスの右脇腹皮下に移植し、移植から10日後（Day 10）に平均の腫瘍体積が100 mm3 に達した段階でコントロール群（マウスIgG 10 mg/kg体重投与群、N=8, 104.4±17.6 mm3）, K5-70 （10 mg/kg 体重、週1回）投与群 (N=8, 104.3±16.1 mm3)に群分を行い、７日に1回の腹腔内投与を行った。Day 42におけるコントロール群の腫瘍体積が713.8±354.5 mm3 であったのに対して、K5-70週1回投与群では、323.3±239.9 mm3 (阻害率55%, P < 0.05 by Student’s t-test) となり（図27A）、更に、投与間隔を10日に1回、2週間に1回と広げた場合においては、Day 39におけるコントロール群の腫瘍体積が956.9±367.8 mm3であったのに対して、K5-70投与群 （10日に１回投与）では、525.4±180.6 mm3 (阻害率45.1%, P < 0.01 by Student’s t-test)となり、K5-70投与群 （14日に１回投与）では459.4±217.6 mm3 (阻害率52.0%, P < 0.01 by Student’s t-test)となり（図27B）、先行技術（US 7420040, US 7420041）が膵臓癌細胞株（BxPC-3）を用いたXenograft treatment モデルにおいて、20 mg/kg体重の投与量で、週に3回投与（投与間隔2日間）で、阻害率50-60%の抗腫瘍活性を示しているのに対し、K5-70抗体は1回の投与量が半分の投与量（10 mg/kg体重）、2週間に1回の投与（投与間隔12日間）で、先行技術に匹敵する抗腫瘍活性を示し、1回の投与量と投与間隔を考えると、少なくとも先行技術の12分の1の総投与量で顕著な抗腫瘍活性を示すことが明らかとなった。
【実施例２５】
【０２１６】
[ヒト大腸癌細胞株SW480細胞 Xenograft treatmentモデルにおけるクローンT6-16の用量依存的な抗腫瘍活性]
次に、クローンT6-16（マウスIgG2a）の用量依存的な抗腫瘍活性を、ヒト大腸癌細胞株SW480を用いたXenograft treatmentモデルにおいて検討した。5×106cellsのSW480細胞を6週齢雌のNOD-scidマウスの右脇腹皮下に移植し、移植から10日後（Day 10）に平均の腫瘍体積が100 mm3 に達した段階でコントロール群（マウスIgG 10 mg/kg体重投与群、N=8, 105.8±9.9mm3）, T6-16 （1 mg/kg 体重）投与群 (N=8, 104.4±13.3 mm3), T6-16 (5mg/kg 体重)投与群（N=8,  104.7±13.0 mm3）, T6-16 (10 mg/kg体重)投与群（N=8, 104.8±12.4 mm3）に群分を行い、3日に1回の腹腔内投与を行った。Day 43におけるコントロール群の腫瘍体積が 473.5 ± 137.0 mm3 であったのに対して、T6-16投与群では用量依存的な腫瘍形成阻害活性が観察され、1 mg/kg体重投与群では、397.9±97.5 mm3 (阻害率 16.0 %), 5 mg/kg体重投与群では、195.9±89.7 mm3 (阻害率 58.7 %, P < 0.01 by Student’s t-test), 10 mg/kg体重投与群では、190.2±56.5 mm3 (阻害率59.8 %, P < 0.01 by Student’s t-test)であった（図28A）。同様に、Day 43 における腫瘍重量については、コントロール群が0.19±0.07 gであったのに対して、T6-16 (1 mg/kg体重)投与群では, 0.20±0.08 g, 5 mg/kg体重投与群では、0.08±0.04 g (阻害率 57.9 %, P < 0.01 by Student’s t-test), 10 mg/kg体重投与群では、0.09±0.04 g (阻害率 52.6 %, P < 0.01 by Student’s t-test) となり、用量依存的な抗腫瘍活性が確認された（図28B）。
【実施例２６】
【０２１７】
[ヒト大腸癌細胞株SW480細胞 Xenograft treatmentモデルにおけるクローンT6-16の投与間隔の検討]
さらに、クローンT6-16（マウスIgG2a）の至的投与間隔を検討するために、週に1回（7日に1回）および10日に1回の投与間隔での抗腫瘍活性を、ヒト大腸癌細胞株SW480を用いたXenograft treatmentモデルにおいて検討した。5×106cellsのSW480細胞を6週齢雌のNOD-scidマウスの右脇腹皮下に移植し、移植から10日後（Day 10）に平均の腫瘍体積が100 mm3 に達した段階でコントロール群（マウスIgG 10 mg/kg体重投与群、N=8, 105.8±9.9mm3）,T6-16 (10 mg/kg 体重、週1回)投与群(N=8, 105.0±11.6 mm3), T6-16 (10 mg/kg 体重、10日に1回)投与群（(N=5, 130.8±2.4 mm3)に群分けを行い、投与を開始した。Day 43におけるコントロール群の腫瘍体積が473.5±137.0 mm3であったのに対して、T6-16（週1回）投与群では、243.7±65.3 mm3 (阻害率 48.5 %, P < 0.01 by Student’s t-test), T6-16 (10日に1回)投与群では、297.8±54.4 mm3 (阻害率37.1%, P < 0.05 by Student’s t-test)となり（図29）、先行技術（US 7420040, US 7420041）が膵臓癌細胞株（BxPC-3）を用いたXenograft treatment モデルにおいて、20 mg/kg体重の投与量で、週に3回投与（投与間隔2日間）で、阻害率50-60%の抗腫瘍活性を示しているのに対し、T6-16抗体は、1回の投与量が、先行技術の半分の用量で、10日に1回の投与（投与間隔8日間）で、顕著な抗腫瘍活性を示すことが明らかとなり、1回の投与量と投与間隔を考えると、少なくとも先行技術の8分の1の総投与量で顕著な抗腫瘍活性を示すことが明らかとなった。
【実施例２７】
【０２１８】
[ヒト前立腺癌細胞株DU-145 Xenograft Preventionモデルにおける抗腫瘍活性の検討]
クローンK5-70のヒト前立腺癌に対する抗腫瘍活性を、DU-145細胞（RIKEN Cell Bank, RCB2143）を用いたXenograft Preventionモデルで評価した。5×106 細胞のDU-145細胞を６週齢の雌のヌードマウス（Balb/c, nu/nu）の皮下に移植し、移植当日をDay 1とし、コントロール群（N=8）とK5-70投与群（N=8）に群分けを行い、Day 1から3日の1回の頻度で10 mg/kg 体重の投与量で腹腔内投与を行った。Day 40において、コントロール群における腫瘍体積が368.2±307.8 mm3 であったのに対し、K5-70投与群では30.6±29.6 mm3(P < 0.05 by Student’s t-test)と約90%の腫瘍形成阻害活性を示した（図30A）。腫瘍重量においては、更に顕著な抗腫瘍活性が認められ、Day 40におけるコントロール群の腫瘍重量が0.18±0.18 gであったのに対して、K5-70投与群では8個体の全てにおいて腫瘍が消失しており、完全に腫瘍形成が阻害された（図30B）。以上の結果から、抗ヒトTROP-2モノクローナル抗体クローンK5-70は、ヒト前立腺癌に対しても強い抗腫瘍活性を示すことが明らかとなった。
【実施例２８】
【０２１９】
[ヒト膵癌細胞株PK-59細胞 の肝転移モデルを用いたクローンK5-70の転移抑制活性]
消化器癌の治療において、癌の転移は臨床上の予後を左右する重要な因子であり、転移をコントロールすることは治療上重要な意味を有する。
TROP-2を標的とした癌治療用抗体投与により、腫瘍形成の抑制のみならず、癌細胞の他臓器への転移を抑制することが可能であれば、高い臨床上の有用性が期待されるため、癌治療抗体として望ましい特性である。
【０２２０】
TROP-2は多くの癌腫における発現が確認されているが、特に転移巣において高発現していることが示されている（Br. J. Cancer (2008); 99: 1290-1295, Clin. Cancer Res. (2006); 12: 3057-3063, Mod. Pathol. (2008); 21: 186-191）。さらに、Trop-2遺伝子を導入した癌細胞を経脾的あるいは経膵的にヌードマウスに移植した場合に、肝転移の発症率が増加すること（WO 2010/089782、Molecular Cancer (2010); 9: 253）が報告され、TROP-2の癌転移過程における重要性が示唆されている。しかしながら、TROP-2を標的とした抗体を用いてin vivoで転移抑制作用を具体的に示した報告はこれまでに認められない。
【０２２１】
本発明により見出された抗hTROP-2マウスモノクローナル抗体K5-70は、膵臓癌細胞を皮下に移植したゼノグラフトモデルにおいて高い治療効果が示されているが、癌細胞の増殖抑制効果に加え、膵癌細胞PK-59の遊走能を抑制することが、in vitroのスクラッチアッセイで示されており、癌の転移をin vivoにおいても抑制する可能性が考えられた。そこで、膵癌細胞PK-59をヌードマウスの脾臓から注入し、肝転移を発生させるモデルを用いて抗hTROP-2マウスモノクローナル抗体の転移抑制効果を検証した。
【０２２２】
hTROP-2を内在的に発現する膵癌細胞株（PK-59）をトリプシン処理で剥がし、PBSで2×107cells/mLの細胞懸濁液を調製した。細胞懸濁液は移植時まで氷上に保管した。６〜７週齢の雌のヌードマウス（Balb/c, nu/nu）をペントバルビタールの腹腔内投与により麻酔し、麻酔下で左側腹部を10〜15mm切開し、脾臓を腹腔外に引き出し、26 Gのシリンジを用いて50μLの細胞懸濁液（1 x 106 cell）を脾臓内に注入した。細胞注入4分後に脾門部を5-0silkにて結紮し、脾臓を摘出した。切開した腹膜を5-0silkで閉創し、Wound Clips (AUTOCLIP 9mm, Becton Dickinson)を用いて閉腹した。癌細胞移植の前日に、マウスを群分し、抗hTROP-2モノクローナル抗体(K5-70)あるいは対照抗体（精製マウスIgG）を10 mg/kg 体重にて腹腔内投与した。また、癌細胞移植7日後に、同様に抗体の投与を行った。癌細胞移植から4〜6週間後に頸椎脱臼によりマウスを安楽死させ、肝臓を摘出し、転移巣の有無を確認した。
【０２２３】
コントロールとして用いたマウスIgGを投与した群においては、PK-59細胞を移植した6匹のマウス中、4匹において、移植後４から６週間後に肝葉辺縁部への明らかな転移巣（2〜7個）が認められた（図31A、転移発生率67%, 表6）。これに対し、K5-70投与群では、PK-59細胞を移植した４匹のマウスにおいて、いずれの個体でもまったく肝臓への転移巣が認められず、転移発生率は0％であった（図31B, 表6）。
【０２２４】
【表６】
2015221793.tif 000008
【０２２５】
これらの結果から、抗hTROP-2抗体K5-70は、膵癌細胞PK-59の肝転移に対して極めて強い抑制作用を有することが明らかとなった。
【実施例２９】
【０２２６】
[大腸癌細胞株SW480 Xenograftモデルにおける塩酸イリノテカン投与後の癌再発モデルにおけるK5-70抗体の抗腫瘍活性]
癌治療剤として近年、癌細胞の増殖を抑制する化学療法剤が多く開発され、一定の治療成績を上げているが、癌細胞以外の正常細胞に対する増殖抑制作用に伴う副作用と、治療中止後の癌の再発が大きな問題となっている。したがって、TROP-2を標的とした癌治療用抗体投与により、化学療法剤による治療後の腫瘍再発を抑制することが可能であれば、高い臨床上の有用性が期待されるため、癌治療抗体として望ましい特性である。
【０２２７】
大腸癌の治療剤としては、5-FU, 白金製剤に加え、トポイソメラーゼ阻害効果を有する塩酸イリノテカン（トポテシン、第一三共株式会社）が近年臨床適応され、動物モデルにおいても、大腸癌をはじめとした種々のヒト腫瘍細胞を移植したマウスモデルにおける抗腫瘍効果が報告されている（Cancer Chemother Pharmacol. (1991); 28(3):192-8）。そこで、塩酸イリノテカン投与後の腫瘍再発に対する抗hTROP-2抗体クローンK5-70（マウスIgG2a）の再発予防効果について、ヒト大腸癌細胞株SW480を用いたXenograft モデルにおいて検討した。5×106 cellsのSW480細胞を8週齢雌のNOD-scidマウスの右脇腹皮下に移植し、移植から11日後（Day 11）に平均の腫瘍体積が100 mm3 以上に達した段階で無処置群（生理食塩水投与群、N=8, 130.7±16.2 mm3）, 塩酸イリノテカン（CPT-11, トポテシン、第一三共株式会社）投与群（N=16, 123.0±21.4 mm3）に群分けを行い、塩酸イリノテカンを40mg/kg体重で3日に1回、合計3回（Day 11, 14, 17）腹腔内投与した。塩酸イリノテカンの最終投与から3日目(Day 20)に、無処置群の腫瘍体積は232.1±21.1 mm3に達したのに対し、塩酸イリノテカン投与群は126.6±26.6 mm3 (P < 0.01 by Student’s t-test)であり、明らかな腫瘍抑制効果が認められた。この段階で腫瘍サイズに基づき塩酸イリノテカン投与群を2群に分け、片方の群はK5-70 （10 mg/kg 体重）投与群 (N=8, Day 20の腫瘍体積126.0±28.0 mm3)とし、もう片方の群はマウスIgG (10mg/kg 体重)投与群（N=8, Day 20の腫瘍サイズ127.2±27.0 mm3）とし、それぞれ3日に1回の腹腔内投与と腫瘍体積の測定を行い腫瘍の再発を評価した（図32）。マウスIgG投与群では、塩酸イリノテカンの最終投与から18日目(Day 35)より腫瘍体積が300 mm3を超える明らかな再発腫瘍を有する個体が複数認められ、塩酸イリノテカンの最終投与から30日目(Day 47)においては、8例中5例で300 mm3を超える腫瘍が認められた（腫瘍平均体積401.7±172.7 mm3）。これに対し、K5-70投与群では顕著に腫瘍再発が抑制され、腫瘍平均体積は、180.5±142.1 mm3,（P < 0.05 by Student’s t-test)であった（図32）。特に、K5-70投与群では、Day 47における腫瘍体積が群分け時（126.0±28.0 mm3）よりも退縮し、100 mm3未満となった個体が8例中4例認められた。これらの結果から、抗hTROP-2抗体K5-70は、塩酸イリノテカン投与後の腫瘍再発に対しても極めて強い抑制作用を有することが明らかとなった。
【実施例３０】
【０２２８】
[CLIPS技術を用いたエピトープマッピング]
＜材料と方法＞
ペプチド合成
本実験で使用した直鎖型15-mer及び30-merのTROP-2細胞外領域に由来するペプチドは、Fmoc (9-Fluorenylmethoxycarbonyl)法による固相合成により取得した。また不連続エピトープ解析のため、両端にシステイン残基を付加したTROP-2細胞外領域に由来する17-merのペプチドを合成し、CLIPS技術（Chemically Linked Peptides on Scaffolds technology）によりループ構造を一つまたは二つ有する立体構造を再構築した。付加したシステイン残基近傍に別のシステイン残基が存在する場合、アラニンに置換した。
【０２２９】
エピトープスクリーニングELISA
5034種類の合成したペプチドをPEPSCANカード（445ペプチド/カード）へ共有結合させ、ELISA法により合成ペプチドと抗体の結合を検証した。PEPSCANカードはブロッキングバッファー（4%ウマ血清、5%卵白アルブミン、1% Tweenを含むリン酸緩衝液）で1μg/mLに希釈した抗ヒトTROP-2モノクローナル抗体（K5-70、K5-107、K5-116-2-1、T5-86、T6-16）と反応させた。洗浄後、1000倍希釈したペルオキシダーゼ−二次抗体複合体と25℃、1時間反応させた。洗浄後、基質溶液（2,2’-azino-di-3-ethylbenzthiazoline sulfonate(ABTS)と2μLの3%過酸化水素水を含む溶液）を加え、1時間発色反応を行った。抗体結合活性はCCDカメラで撮影し、画像解析を行い定量した。
【０２３０】
＜結果＞
薬効を示した抗ヒトTROP-2モノクローナル抗体K5-70、K5-107、K5-116-2-1、T5-86、T6-16についてCLIPS（Chemically Linked Peptides on Scaffolds）技術を利用しエピトープ解析を行った。なお、以下、本実施例において「アミノ酸番号」とは、配列番号２に示されるアミノ酸配列（hTROP-2タンパク質（323アミノ酸残基））中のアミノ酸番号を意味する。
【０２３１】
K5-70抗体についての解析結果を下記表7に示す。その結果、33ペプチドがK5-70抗体と強い結合を示すことが明らかとなった。これら33ペプチドの中で、VCSPDGPGGRCQCRALGSGMAVD（アミノ酸番号43-65）を含む配列（表7中ペプチドNo. 1-7, 9）、HHILIDLRHRPTAG（アミノ酸番号152-165）を含む配列（表7中ペプチドNo. 14, 22-25, 28, 29, 31,33）、VHYEQPTIQIELRQ（アミノ酸番号193-206）を含む配列（表7中ペプチドNo. 8, 10, 12, 13, 15, 18, 20, 21, 23, 26, 28, 30, 32）、DAELRRLFRER（アミノ酸番号171-183）を含む配列（表7中ペプチドNo. 11, 12, 14, 16, 18, 19, 21, 22, 25, 29, 31）は、繰り返し出現した。K5-70抗体は、特にVCSPDGPGGRCQCRALGSGMAVDを含む配列に強く結合した。これらの結果から、hTROP-2タンパク質中、上記4種類のペプチド配列領域がK5-70抗体のエピトープである可能性が示唆された。
【０２３２】
【表７】
2015221793.tif 000009
【０２３３】
K5-107についての解析結果を下記表8に示す。その結果、VCSPDGPGGRCQCRALGSGMAVD（アミノ酸番号43-65）を含む配列が20ペプチド中10ペプチド（表8中ペプチドNo. 1-6, 8, 13,14, 17）に含まれていた（表8）。
従って、hTROP-2タンパク質中、上記VCSPDGPGGRCQCRALGSGMAVDのペプチド配列領域がK5-107抗体のエピトープであることが示唆された。
【０２３４】
【表８】
2015221793.tif 000010
【０２３５】
K5-116-2-1抗体についての解析結果を下記表9に示す。当該解析では、VCSPDGPGGRCQCRALGSGMAVD（アミノ酸番号43-65）を含む配列（表9中のペプチドNo. 1-7, 15, 25）、HHILIDLRHRPTAG（アミノ酸番号152-165）を含む配列（表9中のペプチドNo. 8-11, 16, 17, 19, 20, 22-24, 27-29）、DLDAELRRLFRER（アミノ酸番号171-183）を含む配列（表9中のペプチドNo. 11-14, 17, 19, 21, 23, 29）の3種類のペプチド配列が複数回出現した（表9）。従って、hTROP-2タンパク質中、これら3種類のペプチド配列領域がK5-116-2-1抗体のエピトープであることが示唆された。
【０２３６】
【表９】
2015221793.tif 000011
【０２３７】
T5-86及びT6-16抗体についての解析結果を下記表10及び表11に示す。当該解析では、DPEGRFKARQCN（アミノ酸番号109-120）の配列を含むペプチドと強く結合した。T5-86抗体に対しては結合する26ペプチド中22ペプチド（表10中のペプチドNo. 1-3, 5-8, 10-13, 15-19, 21-26）に、T6-16抗体に対しては結合する26ペプチド中4ペプチド（表11中のペプチドNo. 1, 2, 9, 13）に、上記ペプチド配列が含まれていた（表10及び表11）。またT5-86抗体についての解析では、DPEGRFKARQCN（アミノ酸番号109-120）を含む配列以外にもVCSPDGPGGRCQCR（アミノ酸番号43-56）を含む配列（表10中のペプチドNo. 4, 14, 20）が複数回出現した。さらに、T6-16抗体についての解析でも、他の配列としてHHILIDLRHRPTAG（アミノ酸番号152-165）を含む配列（表11中のペプチドNo. 4-8, 10-12, 19, 21, 23, 25, 26）が複数回確認された。従って、T5-86抗体のエピトープとしては、hTROP-2タンパク質中、DPEGRFKARQCN（アミノ酸番号109-120）、VCSPDGPGGRCQCR（アミノ酸番号43-56）の2種類のペプチド配列領域が示唆され、T6-16抗体のエピトープとしては、hTROP-2タンパク質中、DPEGRFKARQCN（アミノ酸番号109-120）、HHILIDLRHRPTAG（アミノ酸番号152-165）の2種類のペプチド配列領域が示唆された。
【０２３８】
【表１０】
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【０２３９】
【表１１】
2015221793.tif 000013

【実施例３１】
【０２４０】
[マウス抗ヒトTROP-2抗体（クローンK5-70, K5-107, K5-116-2-1, T6-16）の抗体遺伝子の可変領域の配列決定]
3×106個のマウス抗TROP-2モノクローナル抗体産生ハイブリドーマから、TRIzol試薬（Invitrogen）を用いて全RNAを抽出した。クローンK5-70, クローンK5-107, クローンK5-116-2-1については、SMARTerTM RACE cDNA Amplification kit (Clontech)を用いて、キット添付の方法に従い、マウスIgGのH鎖特異的プライマー (5’-TCCAKAGTT-3’ (配列番号２４))と、L鎖特異的プライマー（5’-GCTGTCCTGATC-3’ (配列番号２５)）を用いてcDNAを合成した。クローンT6-16については、GeneRacer Kit（Invitrogen）を用いて、キット添付の方法に従い、オリゴdTプライマーを用いてcDNAを合成した。クローンK5-70 (マウスIgG2a), クローンK5-107 (マウスIgG1)、およびクローンK5-116-2-1 (マウスIgG2a)のH鎖及びL鎖の可変領域（VH, VL）をコードする遺伝子は、上記合成後のcDNAを鋳型として、PCR法を用いてクローニングした。この際、5’-プライマーはSMARTerTM RACE cDNA Amplification kitに添付されている10 × Universal Primer A Mix（UPM）を使用した。一方、3’-プライマーは、VH増幅用3’-プライマーとしてはマウスIgG H鎖に特異的な配列を有するものを使用し、VL増幅用3’-プライマーとしてはマウスIgG L鎖に特異的なな配列を有するものを使用した。
【０２４１】
5’-プライマー（10 × Universal Primer A Mix（UPM））：
Long (0.4μM)
5'-CTAATACGACTCACTATAGGGCAAGCAGTGGTATCAACGCAGAGT -3' （配列番号２６）
Short (2μM)
5’-CTAATACGACTCACTATAGGGC-3’ （配列番号２７）
【０２４２】
3’-プライマー（Rプライマー）：
VH：5'-GGGAARTARCCCTTGACCAGGCA-3' （配列番号２８）
5’-GGGAARTAGCCTTTGACAAGGCA-3’ （配列番号２９）
VL：5'-CACTGCCATCAATVTTCCACTTGACA-3' （配列番号３０）
【０２４３】
上記各プライマーを用いたPCRは、以下の反応液組成及び反応条件で行った。またVHのcDNA増幅のRプライマーは上記の２配列を等モル数ずつ混合して使用した。
【０２４４】
＜反応液組成＞
鋳型cDNA:                                      2.5μL
5×PrimeSTAR バッファー(Mg2+ plus):            10μL
2.5mM dNTP:                                    4μL
PrimeSTAR HS DNA ポリメラーゼ(2.5U/μL):     0.5μL
10 × Universal Primer A Mix (UPM):            5μL
Rプライマー (10μM):                           1μL
滅菌水：                                       27μL    
合計：                                         50μL
【０２４５】
＜反応条件＞
94℃（10 sec）反応させた後、「熱変性・解離：98℃（10 sec）→アニーリング：60℃（5 sec）→合成・伸長：72℃（60 sec）」を１サイクルとして計30サイクル反応させた後、最後に72℃（3 min）反応させた。
【０２４６】
合成したVH及びVLのcDNAを、pMD20-T vector (タカラバイオ)にサブクローニングして、塩基配列を決定した。複数のVHクローン及びVLクローンの塩基配列を解読し、マウスH鎖及びL鎖の可変領域に典型的な塩基配列を同定した。図33及び図34に、K5-70のVH及びVLのコンセンサスcDNA塩基配列、ならびに推定アミノ酸配列を示した。図35及び図36に、K5-107のVH及びVLのコンセンサスcDNA塩基配列、ならびに推定アミノ酸配列を示した。図37及び図38に、K5-116-2-1のVH及びVLのコンセンサスcDNA塩基配列、ならびに推定アミノ酸配列を示した。
【０２４７】
クローンT6-16のH鎖及びL鎖の可変領域（VH, VL）をコードする遺伝子は、上記合成後のcDNAを鋳型として、PCR法を用いてクローニングした。この際、この際、5’-プライマーはGeneRacer Kitに添付されているものを使用した。一方、3’-プライマーは、VH増幅用3’-プライマーとしてはマウスIgG H鎖に特異的な配列を有するものを使用し、VL増幅用3’-プライマーとしてはマウスIgG L鎖に特異的な配列を有するものを使用した。
【０２４８】
5’-プライマー（Fプライマー）：
5'-CGACTGGAGCACGAGGACACTGA-3' （配列番号３１）
3’-プライマー（Rプライマー）：
VH:  5'- GCCAGTGGATAGACAGATGG -3' （配列番号３２）
VL:  5'- GATGGATACAGTTGGTGCAGC-3' （配列番号３３）
【０２４９】
上記各プライマーを用いたPCRは、以下の反応液組成及び反応条件で行った。
【０２５０】
＜反応液組成＞
鋳型cDNA：                                     1.0μL
5×PrimeSTAR バッファー(Mg2+ plus)：           10μL
2.5mM dNTP：                                   4μL
PrimeSTAR HS DNA ポリメラーゼ(2.5U/μL)：    0.5μL
Fプライマー (10μM)：                          3μL
Rプライマー (10μM)：                          1.0μL
滅菌水：                                       30.5μL    
合計：                                         50μL
【０２５１】
＜反応条件＞
「熱変性・解離：98℃（10 sec）→アニーリング：57℃（10 sec）→合成・伸長：72℃（60 sec）」を１サイクルとして計35サイクル。
【０２５２】
合成したVH及びVLのcDNAを、pCR4Blunt-TOPO vector (Invitrogen)にサブクローニングして、塩基配列を決定した。複数のVHクローン及びVLクローンの塩基配列を解読し、マウスH鎖及びL鎖の可変領域に典型的な塩基配列を同定した。図39及び図40に、T6-16のVH及びVLのコンセンサスcDNA塩基配列、ならびに推定アミノ酸配列を示した。
【配列表フリーテキスト】
【０２５３】
配列番号３：合成DNA
配列番号４：合成DNA
配列番号５：合成DNA
配列番号６：合成DNA
配列番号７：合成DNA
配列番号８：合成DNA
配列番号９：合成DNA
配列番号１０：合成DNA
配列番号１１：合成DNA
配列番号１２：合成DNA
配列番号１３：合成DNA
配列番号１４：合成DNA
配列番号１５：合成DNA
配列番号１６：合成DNA
配列番号１７：合成DNA
配列番号１８：合成DNA
配列番号１９：合成DNA
配列番号２０：合成DNA
配列番号２１：合成DNA
配列番号２２：合成DNA
配列番号２３：合成DNA
配列番号２４：合成DNA
配列番号２５：合成DNA
配列番号２６：合成DNA
配列番号２７：合成DNA
配列番号２８：合成DNA
配列番号２９：合成DNA
配列番号３０：合成DNA
配列番号３１：合成DNA
配列番号３２：合成DNA
配列番号３３：合成DNA
【図１】
2015221793.tif 000014
【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図１２】
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【図１３】
2015221793.tif 000023
【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２２】
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【図２３】
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【図２４】
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【図２５】
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【図２６】
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【図２７】
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【図２８】
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【図２９】
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【図３０】
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【図３２】
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【図３３】
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【図３４】
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【図３５】
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【図３６】
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【図３７】
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【図３８】
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【図３９】
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【図４０】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図２０】
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【図２１】
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【図３１】
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【配列表】
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