(57)【要約】【課題】イムノクロマトグラフィーやＥＬＩＳＡなどによる免疫学的検査における偽陽性反応を確実に防止し、かつ検出感度に優れた免疫学的検査ができるようにすることである。【解決手段】畜産物由来の抗原を検出する免疫学的検査における免疫反応系に添加する非特異反応抑制剤において、前記非特異反応抑制剤は、鳥類由来のＩｇＹを含有する非特異反応抑制剤とする。食中毒菌等の畜産物由来の抗原を検出しようとするとき、分析対象物以外の夾雑成分である非特異因子がＩｇＹと優先的に反応して特異因子との抗原抗体反応が確実に起こりやすくなっていると考えられ、偽陽性反応は確実に防止され、正しい判定を安定的に行なうことができる。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
畜産物由来の抗原を検出する免疫学的検査における免疫反応系に添加する非特異反応抑制剤において、この非特異反応抑制剤は鳥類由来のＩｇＹを含有することを特徴とする免疫学的検査用の非特異反応抑制剤。
【請求項２】
前記鳥類由来のＩｇＹは、家禽のＩｇＹである請求項１に記載の非特異反応抑制剤。
【請求項３】
上記畜産物由来の抗原が、家禽または家畜の糞便に含まれる抗原である請求項１または２に記載の非特異反応抑制剤。
【請求項４】
上記抗原が、カンピロバクター属菌、サルモネラ属菌、腸管出血性大腸菌、リステリア菌、またはインフルエンザウイルスである請求項１〜３のいずれかに記載の非特異反応抑制剤。
【請求項５】
免疫学的検査が、イムノクロマトグラフィーまたはＥＬＩＳＡである請求項１〜４のいずれかに記載の非特異反応抑制剤。
【請求項６】
畜産物由来の抗原を検出する免疫学的検査方法において、請求項１〜５のいずれかに記載の非特異反応抑制剤を免疫反応系に添加することを特徴とする免疫学的検査方法。
【請求項７】
畜産物由来の抗原と結合する抗体であって標識を備えたものに、検体とその希釈液の混合物を接触させ、免疫反応により生成した標識付の抗原抗体複合物をメンブレン上で毛細管現象によって移動させながらこのメンブレン上の所定区域に予め固定しておいた抗体と結合させ、この結合により前記所定区域に集合した前記抗原抗体複合物の標識の顕在化によって前記抗原を検出するイムノクロマトグラフィーによる免疫学的検査方法において、
前記希釈液は、請求項１〜４のいずれかに記載の非特異反応抑制剤を含有する希釈液であることを特徴とするイムノクロマトグラフィーによる免疫学的検査方法。
【請求項８】
検体を含有する被検査液を吸収可能な吸液性の検体パッドと、この検体パッドに連続して設けられ畜産物由来の抗原と結合可能な標識抗体を保持する吸液性のコンジュゲートパッドと、このコンジュゲートパッドに連続して設けられ抗原抗体複合物を含む液体を毛細管現象により移動可能なメンブレンを備え、このメンブレン上の所定区域に前記抗原と結合する抗体を固定して設けたテストストリップからなり、前記検体パッド、前記コンジュゲートパッドまたは前記メンブレンに請求項１〜４のいずれかに記載の非特異反応抑制剤を固相または液相の状態で保持してなるイムノクロマトグラフィー用テストストリップ。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
この発明は、畜糞や家畜血液、畜舎内ふき取り検体、食肉処理場ライン拭き取り検体などの畜産動物の飼育や食肉処理等に関する畜産物由来の検体から、食中毒菌や病原ウイルスなどの抗原を検出するための免疫学的検査に用いる非特異反応抑制剤およびこれを用いた免疫学的検査方法並びにイムノクロマトグラフィー用テストストリップに関する。
【背景技術】
【０００２】
一般に、細菌性やウイルス性の食中毒を防止するため、食中毒性の細菌やウイルスに汚染された食品またはその原料等に対するラテラル・フロー法の一形態であるイムノクロマトグラフィーやＥＬＩＳＡなどの免疫学的検査が行われている。
【０００３】
このうちイムノクロマトグラフィーによる細菌検査は、ＰＣＲ法に比べて検出感度は劣るものの特別な装置が不要で簡便かつ迅速に行なえることから、頻繁に検査を行なうことができ、食中毒菌、病原ウイルスなどの検出には適した方法である。
【０００４】
イムノクロマトグラフィーによる細菌検査法の代表的な形態としては、食中毒菌等の標的抗原の存在を調べる液状検体を、スティック状のテストストリップの基端に設けたサンプルパッドに対して滴下し、このサンプルパッドに連結されたコンジュゲートパッドで金属コロイドなどの標識粒子と結合した抗体と前記抗原とを反応させ、この反応で生成した標識された抗原抗体複合物を、コンジュゲートパッドに連結された多孔質支持体であるメンブレンから先端の吸収パッドに向かう一定方向に毛細管現象によって移動させるものがある。
そして、前記メンブレン上の所定域には予め固定された抗体を設けて移動する抗原抗体複合物を捕捉し、この所定区域に集合した抗原抗体複合物の標識の呈色によって標的抗原の有無を判定している。
【０００５】
また、ＥＬＩＳＡ法では、ウェルプレートの各ウェルに保持した固相化抗体に対し、所定濃度の抗原を含有する標準溶液または被検査溶液を接触させ、免疫反応により得られた複合体に対し、さらに酵素・基質反応に基づく発色または発光の可能な酵素（標識）を備えた抗体を結合させ、その後、酵素・基質反応による発光量または発色の程度を光学的に測定し、抗原濃度既知の標準溶液の発光量や発色程度と被検査溶液のそれとを比較することによって、抗原量を定量的に検査することができる。
【０００６】
このような免疫学的検査では、検体中に標的物質以外にも交差抗原性の細菌、ウイルス、タンパク質などの夾雑物が含まれているときに、非特異的な反応を伴いやすい。イムノクロマトグラフィーでは、この反応によりテストストリップの判定区域に標的物質を伴わない標識粒子が集合して呈色することがあり、そのような偽陽性反応による呈色によって正確な判定が妨げられる。
また、ＥＬＩＳＡ法でも夾雑物が非特異反応因子となって、抗原に代わって固定化抗体と反応し、偽陽性反応による呈色または発色によって正確な判定が妨げられる場合がある。
【０００７】
このような偽陽性反応による免疫学的検査の誤判定を防止する手段として、検体を希釈する液に対し、塩基性アミノ酸、無機塩類、界面活性剤から選ばれる２種以上を添加し、非特異因子による反応を防止する手段が知られている（特許文献１）。
【０００８】
また、検体が、ノロウイルスやサポウイルスである場合においては、検体の希釈液にマウス、ウサギ、ヒツジまたはヒト由来の動物グロブリン、界面活性剤、ポリビニルピロリドンなどの水溶性高分子、血清アルブミンを添加して特異反応を向上させることが知られている(特許文献２)。
【０００９】
ところで、細菌の一種であるカンピロバクター属菌は、動物に感染すると腸炎を起こし、ギラン・バレー症候群を起こす例もある食中毒性の細菌である。また、サルモネラ属菌は主にヒトや動物の消化管に生息する腸内細菌の一種であり、その一部はヒトや動物に感染して下痢症状を起こす。
カンピロバクター属菌もサルモネラ属菌も家畜（特に鶏など）の腸管に高い確率で存在していることが知られており、これらが食肉処理工程で食肉に付着し、それらを摂取することで食中毒の原因となることがある。
【００１０】
食中毒の原因としてカンピロバクター属菌の感染を判定するには、検体を界面活性剤で処理して菌体表面のタンパク質を液中に遊離させ、さらにこのタンパク質を所定のモノクロナール抗体を用いたイムノクロマト法で検査する方法が知られている（特許文献３）。サルモネラ属菌の検査についても所定の抗体を用いたイムノクロマト法が開発されている。
【００１１】
一般的に食中毒菌や病原性ウイルスの感染予防には、原因菌やウイルスを食品等の対象物に付着させないことが望ましく、例えば食肉の場合には、家畜の糞便中に含まれる食中毒菌が食肉に付着することを防ぐ必要がある。
食中毒菌の食肉への付着は、家畜や鶏などを解体する屠場、食鳥処理場などにおいて糞便が付着したり、処理・搬送ライン上に付着した食中毒菌が食肉に移行することによっておこる場合が多いことから、糞便中の食中毒菌の存在の有無を解体前に判断することによって、ラインならびに屠体への食中毒菌、病原性ウイルスの付着を防止することが好ましい。
【００１２】
また、飼育中や解体処理中においても食中毒菌による汚染状況をモニタリングすることで、消毒などの適切な処置を行なうことが可能になる。このために、糞中の食中毒性細菌や病原ウイルスなどを簡易の手法で迅速に検査し、判定する手法が求められている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１３】
【特許文献１】特開２００３−２７９５７７号公報（段落０００２等）
【特許文献２】特開２００４−３０１６８４号公報（請求項１〜４、段落００１１）
【特許文献３】特開２００９−７７６５８号公報（段落００１６）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１４】
しかし、上記した従来の免疫学的検査では、例えば、鶏糞など畜糞中のカンピロバクター属菌やサルモネラ属菌を検出しようとすると、夾雑物等によって偽陽性反応が起こりやすく、これを防止するために非特異因子を除去すると、検出感度が低下するなどの弊害が起こりやすく、正しい判定を確実に行なうことが容易ではなかった。
【００１５】
そこで、この発明の課題は、上記した問題点を解決し、病原性ウイルスや食中毒菌などの免疫学的検査における偽陽性反応を確実に防止できる手法を確立し、特に畜糞や畜舎内ふき取り検体、ライン拭き取り検体などを検体としてカンピロバクター属菌などの食中毒菌の家畜への感染を判別する場合においても、イムノクロマトグラフィーやＥＬＩＳＡなどによる免疫学的検査における偽陽性反応を確実に防止し、かつ検出感度に優れた免疫学的検査ができるようにすることである。
【課題を解決するための手段】
【００１６】
上記の課題を解決するために、この発明においては、畜産物由来の抗原を検出する免疫学的検査における免疫反応系に添加する非特異反応抑制剤において、この非特異反応抑制剤は、鳥類由来のＩｇＹを含有することを特徴とする免疫学的検査用の非特異反応抑制剤としたのである。
【００１７】
この発明の非特異反応抑制剤は、家禽糞や家畜糞などの検体に存在する食中毒菌等の畜産物由来の抗原を検出することを目的として免疫学的検査を行なう際に、抗原を一般的な緩衝液（例えばPBSなど）で希釈した混合液（以下、「畜糞乳剤」と称する場合がある。）に添加して用いるなど、免疫学的検査における被検査液や検査装置などの免疫反応系のシステムに添加して用いられる。
【００１８】
非特異反応抑制剤は、鳥類由来のＩｇＹを必須成分として含有するものである。
この発明の非特異反応抑制剤は、免疫学的検査における免疫反応系に添加して用いられる際、畜糞中の食中毒菌等のような畜産物由来の抗原以外の夾雑物である非特異因子とＩｇＹが優先的に反応することで、食中毒菌病原性ウイルス等の特異因子とそれらを標的とする抗体との抗原抗体反応が確実に起こりやすくなっていると考えられ、非特異反応である偽陽性反応は確実に防止され、正確な判定を安定して行なうことができるようになる。
【００１９】
後述する試験結果からも明らかなように、非特異反応抑制剤の必須成分である鳥類由来のＩｇＹの代表例としては、鶏やウズラなどの家禽のＩｇＹを採用することができる。また上記畜産物由来の抗原が、家禽や家畜の糞に含まれる抗原である場合でも偽陽性反応が防止でき、これにより正しい判定を確実に行なうことができる。
【００２０】
また、上記した畜産物由来の抗原としては、例えばカンピロバクター属菌、サルモネラ属菌、腸管出血性大腸菌、リステリア菌またはインフルエンザウイルスであってもよい。
前記免疫学的検査としては、イムノクロマトグラフィーまたはＥＬＩＳＡを採用することができる。
すなわち、この発明では、畜産物由来の抗原を検出する免疫学的検査方法において、上記した非特異反応抑制剤を免疫反応系に添加する免疫学的検査方法を採用することができる。
【００２１】
また、前記抗原を検出するイムノクロマトグラフィーによる免疫学的検査方法としては、畜産物由来の抗原と結合する抗体であって標識を備えたものに、検体とその希釈液の混合物を接触させ、免疫反応により生成した標識付きの抗原抗体複合物をメンブレン上で毛細管現象によって移動させながら、このメンブレン上の所定区域に予め固定しておいた抗体と結合させ、この結合により前記所定区域に集合する前記抗原抗体複合物の標識の顕在化によって畜産物由来の抗原を検出することができる。
【００２２】
その際、検体中に標識付抗体に結合する夾雑物が含まれると、夾雑物と標識付抗体が結合した複合物が前記所定区域に集合して呈色がおこる。この場合、真の標的の食中毒菌が存在しない場合においても、陽性と判定される程度の呈色が生じる場合がある。
この偽陽性反応による呈色を防止するために、畜糞乳剤等に添加する非特異反応抑制剤として、鳥類由来のＩｇＹを含有する非特異反応抑制剤を用いた検査方法を採用することができる。
【００２３】
この発明の畜産物由来の抗原を検出する免疫学的検査方法によれば、畜産物由来の抗原と反応する抗体であって標識を備えたものに、この発明の非特異反応抑制剤を接触させた際、検体中の夾雑物が鳥類由来のＩｇＹと優先的に反応して複合物を生成するため、抗原と反応する抗体の当該抗原（食中毒菌、病原ウイルスなど）との反応が確実に起こりやすくなる。
【００２４】
イムノクロマトグラフィーにおいては、生成した複合物をメンブレンに流下させながら、このメンブレンの所定流域に予め固定した抗体との反応は、夾雑物と結合した標識付複合物との反応ではなく、標識と結合しかつ抗原である食中毒菌とが結合した複合物との反応が優先され、この反応により前記所定流域の抗体に捕捉された前記複合物の標識の呈色によって食中毒菌などの標的抗原を確実に検出することができるので、偽陽性反応が防止される。
【００２５】
上記のイムノクロマトグラフィーによる免疫学的検査方法において、前記鳥類由来のＩｇＹは、家禽由来のＩｇＹを採用することができ、また上記畜糞としては、家禽糞または家畜糞を採用することができる。また、上記抗原として、カンピロバクター属菌、サルモネラ属菌、腸管出血性大腸菌、リステリア菌、インフルエンザウイルスなどを検出対象とすることができる。
【００２６】
また、上記したイムノクロマトグラフィー用のテストストリップとしては、検体を含有する被検査液を吸収可能な吸液性の検体パッドと、この検体パッドに連続して設けられ、畜産物由来の抗原と結合可能な標識抗体を保持する吸液性のコンジュゲートパッドと、このコンジュゲートパッドに連続して設けられ抗原抗体複合物を含む液体を毛細管現象により移動可能なメンブレンを備え、このメンブレン上の所定区域に前記抗原と結合する抗体を固定して設けたテストストリップからなり、前記検体パッド、前記コンジュゲートパッドまたは前記メンブレンのいずれかに鳥類由来のＩｇＹを含有する非特異反応抑制剤を固相または液相の状態で保持してなるイムノクロマトグラフィー用テストストリップを採用することができる。
【００２７】
鳥類由来のＩｇＹを含有する非特異反応抑制剤が、固相または液相の状態で検体パッド、コンジュゲートパッドまたはメンブレンのいずれかに保持されていることにより、これらを通過する液体に鳥類由来のＩｇＹが含まれることになり、ＩｇＹと被検査液中の夾雑物は優先的に反応して抗原抗体複合物を生成するため、抗原と抗体との反応が確実に起るとも考えられる。
すなわち、固定化抗体は、標識と結合しかつ抗原である食中毒菌等とが結合した抗原抗体反応物と確実に反応し、この反応により前記所定流域の抗体に捕捉された前記複合物の標識の呈色や発光によって畜産物由来の抗原を確実に検出して偽陽性反応は防止される。
【発明の効果】
【００２８】
この発明の免疫学的検査用の非特異反応抑制剤およびこれを用いた免疫学的検査方法に係る発明は、非特異反応抑制剤が鳥類由来のＩｇＹを含有することにより、畜産物由来の抗原を検出しようとするときに、非特異因子である夾雑物と抗体との反応が防止され、すなわち特異因子との抗原抗体反応のみが確実に起こりやすくなり、偽陽性反応が防止されて正しい判定を確実に行なうことができる利点がある。
【００２９】
また、上記した免疫学的検査方法に用いるイムノクロマトグラフィー用テストストリップの発明は、鳥類由来のＩｇＹが、固相または液相の状態で検体パッド、コンジュゲートパッドまたはメンブレンのいずれかに保持されていることにより、非特異因子である夾雑物と抗体との反応が防止され、特異因子との抗原抗体反応のみが確実に起こりやすくなり、結果的に偽陽性反応が防止され、正しい判定を確実に行なうことができるイムノクロマトグラフィー用テストストリップとなる利点がある。
【図面の簡単な説明】
【００３０】
【図１】実施形態のテストストリップ（未使用状態）を模式的に示す斜視図
【図２】実施形態のテストストリップ（陽性呈色状態）を模式的に示す斜視図
【図３】実施例１、２、比較例１、２に用いたＩｇＹ精製試料画分のSDS-PAGE泳動図
【図４】実施例１のカンピロバクター属菌の検出感度を示す図表
【図５】実施例３のサルモネラ属菌の検出感度を示す図表
【発明を実施するための形態】
【００３１】
この発明の非特異反応抑制剤、免疫学的検査方法およびイムノクロマトグラフィー用テストストリップの各実施形態を、以下に添付図面を参照して説明する。
【００３２】
先ず、実施形態のテストストリップの基本構造を図１、２を用いて説明すると、このテストストリップは、滴下される液状の検体（試料）を吸収可能な検体パッド１と、この検体パッド１に連続して設けられ食中毒菌を抗原として結合可能な標識抗体を保持する吸液性のコンジュゲートパッド２と、このコンジュゲートパッド２に連続するように基板５上に薄い層状に設けられて抗原抗体複合物を含む液体を毛細管現象により移動可能なメンブレン３、さらに最下流部で液体を吸収する吸収パッド４を備えている。
【００３３】
そして、メンブレン３上の所定区域にはライン状に前記抗原と結合する特異的抗体Ａを保持し、それより下流側には、同様に標識された抗体Ａと結合する抗体Ｂからなるコントロールラインを設け、検体を標識された抗体Ａを含有する希釈液がコントロールラインまで到達した場合に呈色して、含有する希釈液も同ラインまで到達したことを確認できるようにしている。
【００３４】
実施形態のテストストリップは、所要長さのシート状の検体パッド（サンプルパッドとも称される）、コンジュゲートパッド、メンブレン、吸収パッドが、この順にプラスチック製の基板５上に重ねて一体に配置され、各パッドは隣り合うものが部分的に重ね合わされて連結されている構造を有する。
【００３５】
この発明に用いる抗体は、抗原の所定部位と結合する特異的抗体であり、通常、ＩｇＧ抗体を採用して好ましい結果を得ており、その他の抗体クラスのものでも使用可能である。
また、この発明に用いる特異的抗体の標識は、上記抗体と予め結合せることのできる識別可能な周知のものであり、例えば金などの金属のコロイド粒子、ラテックス粒子、蛍光物質など公知の識別可能な標識を採用できる。
【００３６】
そして、この発明の非特異反応抑制剤は、鳥類由来のＩｇＹを含有し、上記の食中毒菌検出用テストストリップを使用する際に、液状の検体（試料）に混ぜてこれを吸収可能な検体パッドに滴下または含浸して用いることができる。
【００３７】
検体パッド、コンジュゲートパッドおよび吸収パッドは、いずれも繊維集合体からなる吸液性の多孔質素材であり、代表的な素材として、ガラス繊維単独またはガラス繊維と有機高分子繊維との複合材料を採用している。ちなみに、有機高分子繊維の材料は、ニトロセルロース、酢酸セルロース、ポリオレフィン、ポリアミド、ポリエステルなどが挙げられる。
【００３８】
また、メンブレンは、一般的なラテラル・フロー用のテストストリップに使用されているニトロセルロースやナイロン等で形成された素材を用いることができる。
【００３９】
この発明で検出対象とする畜産物由来の抗原のうち、食中毒菌としては、カンピロバクター属菌、サルモネラ属菌、病原性（腸管出血性）大腸菌、セレウス菌、腸炎ビブリオ菌、エロモナス属菌、ウェルシュ菌またはリステリア・モノサイトゲネス(Listeria monocytogenes)、赤痢菌(志賀赤痢菌等)などが挙げられる。病原性ウイルスとしては、ノロウイルス、インフルエンザウイルスなどが挙げられる。
【００４０】
また後述する試験結果からも明らかなように、特にカンピロバクター属菌またはサルモネラ属菌に対するイムノクロマトグラフィーによる食中毒菌の検査方法についても、この発明を適用して正しい判定を確実に行なうことができる。因みに、これらの菌が含まれる可能性のある検体の対象として、鶏糞、牛糞または豚糞などの家畜糞便が挙げられる。
【００４１】
非特異反応抑制剤は、鳥類由来のＩｇＹを含有するが、この発明でいう鳥類とは、系統分類学上の鳥類の全種をいい、鳥類が有する免疫グロブリンのＩｇＹを採用する。また、この発明では、鳥類由来のＩｇＹのうち、鶏を代表例とする家禽類由来のＩｇＹを使用して好ましい結果を得ている。
【００４２】
ここでいう家禽類とは、鳥類に属する家畜として、食用、観賞用などの目的で人間の生活に役だつように飼養可能なものをいう。家禽類は、人の生活環境に近い存在であり、人に有用な免疫グロブリンも含まれている可能性が高いと考えられる。代表的な家禽類としては、ニワトリ、アヒル、シチメンチョウ、ハト、ガチョウ、ウズラ、ダチョウ、シャモ、チャボなどが挙げられる。
【００４３】
ＩｇＹは、哺乳類のＩｇＧに相当する分子量約１８万の免疫グロブリンであり、鳥類における免疫グロブリンの約７割を占め、その血清中に３．０〜７．０ｍｇ／ｍｌ程度存在することが知られており、特に卵黄にはＩｇＹが１０〜２０ｍｇ／ｍｌ程度局在するが、卵白には殆ど存在しない。
【００４４】
ＩｇＹの卵黄または血清からの精製は、公知の手法を用いて行なうことができる。例えば分取した卵黄から、卵黄膜をろ過によって取り除き、デキストラン硫酸を終濃度０．２％、塩化カルシウムを終濃度０．１Ｍとなるように添加後、遠心分離を行なう脱脂法によって脂質とリポ蛋白質を除去した後、硫安沈殿によってＩｇＹ分画を回収することができる。得られたＩｇＹ分画からさらにアフィニティー精製によって高純度のＩｇＹを得ることができる。
【００４５】
アフィニティー精製については、2-メルカプトピリジンをリガンドとして有する市販の抗体精製用カラム（例えば、ＧＥヘルスケア社製HiTrap IgY Purification HP Column）を用いることができる。
【００４６】
このようにして得られるＩｇＹは、前記した畜糞乳剤等と混合して使用することができる。また畜糞乳剤等を作製する際に、畜糞と混合する緩衝液中に下記の濃度の範囲にて添加して使用することもできる。
【００４７】
非特異反応抑制剤は、一般的な緩衝液であるリン酸緩衝生理食塩水 (Phosphate Buffered Saline)などを主成分とし、上記のＩｇＹを必須成分として添加混合したものが代表的なものであり、イムノクロマトグラフィーに用いる場合には、テストストリップに滴下して使用することができる。
【００４８】
上記非特異反応抑制剤中のＩｇＹ濃度は、必要に応じて調整され、畜糞乳剤と混合したテストストリップに滴下する場合の液状検体中には、終濃度で０．０５〜５質量％の割合で含まれるようにすることが好ましい。
【００４９】
上記の使用状態では、数値範囲未満の少量のＩｇＹでは、確実に偽陽性を防止することが困難な場合があり、また上記数値範囲を超えて多量に添加しても偽陽性防止効果はそれ以上に確実になることはなく、実用的な効果の向上は望めないからである。
このような理由から、免疫学的検査における免疫反応系における好ましいＩｇＹの配合割合は、０．０５〜５質量％であり、より好ましくは０．５〜２質量％であり、さらに好ましくは１〜１.５質量％である。
【００５０】
検査対象となる畜糞としては、家禽または牛、豚などの家畜糞を採用でき、これを界面活性剤水溶液あるいはリン酸緩衝液等の一般的な緩衝液を適量添加して得られた畜糞乳剤をＩｇＹと混合し、イムノクロマトグラフィーでは、これを被検査液としてテストストリップの検体パッドに滴下する。または、ＩｇＹを含む緩衝液を作製し、これを適量畜糞に添加してからテストストリップの検体パッドに滴下することもできる。
さらに、この発明の非特異反応抑制剤を加える前に、畜産物由来の抗原の希釈液に、煮沸等の方法で熱を加えることによって、より確実に偽陽性反応を防止することもできる。
【００５１】
図１、図２に示されるように、この発明の非特異反応抑制剤と畜糞乳剤の混合物をテストストリップの検体パッド１に滴下して検査するとき、抗原（食中毒菌や病原性ウイルス）および家禽由来のＩｇＹを含んだ非特異反応抑制剤が検体パッド１からコンジュゲートパッド２に浸透するまでに、畜糞中の夾雑物が鳥類由来のＩｇＹと反応して複合物を生成している。
【００５２】
そのため、図２に示すようにコンジュゲートパッド２に抗原（食中毒菌や病原性ウイルス）を含んだ非特異反応抑制剤と畜糞の混合物が到達した際には、夾雑物は既にＩｇＹと反応しており、夾雑物は標識結合抗体（以下、標識抗体と称します。）とは反応できなくなっているから、標識抗体と抗原のみが抗原抗体反応により結合する。
【００５３】
そして、標識付き抗原抗体複合物をメンブレン３に流下させると、メンブレンの所定流域に予めライン状に固定した抗体Ａと標識付き抗原抗体複合物との反応が起こり、夾雑成分と結合した標識付複合物との偽陽性反応ではなく、食中毒菌等を抗原として結合した標識付き抗原抗体複合物とメンブレン３に固定された抗体Ａとが結合する真正の陽性反応が起こる。
【００５４】
このようにして抗原である食中毒菌等が結合した抗原抗体複合物と抗体Ａとの反応が優先され、この反応により前記所定流域の抗体Ａに捕捉された前記抗原抗体複合物の標識の呈色が起こり、偽陽性反応は起こらずに食中毒菌を確実に検出することができる。
【００５５】
また、上記の使用状態とは異なる状態で使用されるテストストリップの他の実施形態を以下に説明する。
図１、２に示すように、この発明のイムノクロマトグラフィーによる畜産物由来の抗原検出用テストストリップの実施形態は、検体（試料）を含有する被検査液を吸収可能な検体パッド１と、この検体パッド１に連続して設けられ食中毒菌などの畜産物由来の抗原を結合可能な標識抗体を保持する吸液性のコンジュゲートパッド２と、このコンジュゲートパッド２に連続して設けられ、抗原抗体複合物を含む液体を毛細管現象で移動させるメンブレン３と、さらに必要に応じて吸収パッド４を非透液性の基板５上に順に連続させて設けたテストストリップであり、このメンブレン３上の所定区域には、前記抗原と結合する抗体Ａおよびコントロールライン用の抗体Ｂを間隔を開けてライン状に固定している。
【００５６】
そして、この発明の他の実施形態では、検体パッド１、コンジュゲートパッド２またはメンブレン３のいずれかに、鳥類由来のＩｇＹを固相または液相の状態で保持しておくことができる。
【００５７】
前記したようにＩｇＹを液相の状態で保持するには、上述した非特異反応抑制剤を所定部品に滴下して含浸し乾燥しないように保持させればよいが、固相の状態で保持するには、この含浸保持した状態の所定部品を乾燥させる。
【００５８】
このような食中毒菌検出用テストストリップの実施形態を使用するときには、鳥類由来のＩｇＹを予め畜糞乳剤等に添加しておく必要はなく、一般的に使用される緩衝液を用いて畜糞乳剤等を作製し、実施形態のテストストリップに滴下すればよい。
【００５９】
このようにすると、抗原を含有する畜糞乳剤等が、検体パッドから、テストストリップを展開された際、検体パッド、コンジュゲートパッドまたはメンブレンのいずれかで、畜糞乳剤中の夾雑成分が鳥類由来のＩｇＹと反応して複合物を生成する。
そのため、食中毒菌は標識付きの抗原特異的抗体と結合する確率が高められ、抗体と標的とする抗原との複合反応が確実に起こりやすくなる。
【００６０】
そして、標識付きの複合物がメンブレンに流下するとき、メンブレンの所定流域に予め固定された抗体との反応は、抗原特異的標識抗体が夾雑物と結合した複合物との偽陽性反応ではなく、食中毒菌等を抗原として結合した標識付き複合物とメンブレン上の所定の位置に結合した抗体との結合になり、この結合位置で抗原抗体反応物の標識の呈色が局所的に起こり、偽陽性反応は起こらずに食中毒菌を呈色によって確実に検出することができる。
【００６１】
免疫学的検査としては、上記したイムノクロマトグラフィーばかりでなく、エンザイムイムノアッセイ（酵素標識免疫学的検査方法）、その他に凝集、混濁などによって定量も可能な方法を含めて周知な免疫学的検査方法を採用することができ、例えばＥＬＩＳＡを採用することもできる。
すなわち、この発明では、畜産物由来の抗原を検出する免疫学的検査方法において、上記した非特異反応抑制剤を免疫反応系に添加する様々な免疫学的検査方法を採用することができる。
【００６２】
例えば、ＥＬＩＳＡ法では、ウェルプレートの各ウェルに分注する被検査液（検体）を調製する際に、上述した非特異反応抑制剤を添加しておくことにより、偽陽性反応のない正確な判定を行なうことができる。また、上述した非特異反応抑制剤をウェルプレートの各ウェルに固相状態で保持させておくことによっても、偽陽性反応のない正確な判定を行なうことができる。
【実施例】
【００６３】
［実施例１、２、比較例１、２］
＜イムノクロマトグラフィー用非特異反応抑制剤の調製＞
図３に示すように鶏血清と卵黄よりＩｇＹを精製した。また、鶏血清と卵黄よりＩｇＹ除去画分を調製した。
【００６４】
先ず、鶏血清あるいは卵黄を緩衝液で１０倍に希釈したものを作製した。これらは前述の方法を用いて、脱脂法によって脂質とリポ蛋白質を除去した後、硫安沈殿によってＩｇＹ分画を回収した。
これらのＩｇＹ分画を０．５Ｍ硫酸カリウムが含有される緩衝液に懸濁し、平衡化を行ったHi trap IgYに前述の０．５Ｍ硫酸カリウム含有の緩衝液に懸濁したＩｇＹ分画を流し、カラム担体にＩｇＹのみを特異的に吸着させることで、アフィニティー精製を行なった。この際、カラムを通過した液をＩｇＹ除去画分とした。続いて、カラムに硫酸カリウムを除去した緩衝液を流すことで、カラムに吸着したＩｇＹを溶出させることでＩｇＹを精製した。
【００６５】
得られた実施例１、２、比較例１、２のイムノクロマトグラフィー用非特異反応抑制剤の主要成分である鶏血清のＩｇＹの精製物、鶏血清のＩｇＹ除去画分、鶏卵黄のＩｇＹの精製物、鶏卵黄のＩｇＹの除去画分のそれぞれについて、ＩｇＹが含まれているかどうかを確認するため、ＳＤＳ−ＰＡＧＥを行ない、その結果を図３に示した。
【００６６】
図３の結果からも明らかなように、鶏血清のＩｇＹの精製物、鶏卵黄のＩｇＹの精製物には、約７０ｋＤａ付近にＩｇＹＨ鎖の分子量に相当するバンド、約３０ｋＤａ付近にＬ鎖の分子量に相当するラインが認められ、ＩｇＹであると認められた。
【００６７】
なお、鶏血清のＩｇＹ除去画分、鶏卵黄のＩｇＹの除去画分にはＩｇＹに相当する分子量のラインは認められなかった。またウエスタンブロッティングにより鶏卵黄、鶏血清のＩｇＹ除去分画にＩｇＹは検出されないことを確認した。
【００６８】
以上の結果を確認し、次いで実施例１として鶏血清から精製されたＩｇＹを０．５質量％含有するＰＢＳ、実施例２として、鶏卵黄から精製されたＩｇＹを０．５質量％含有するＰＢＳを調製した。
【００６９】
また、比較例１として、鶏血清からＩｇＹを除去した画分を５０質量％含有するＰＢＳ、実施例２としては、鶏卵黄からＩｇＹを除去した画分を５０質量％含有するＰＢＳを調製した。
そして、実施例１、実施例２、比較例１のものをＰＢＳで希釈した糞便と等量で混合することで被検査液を調製し、これをイムノクロマトグラフィーによる検査に供した。
【００７０】
［比較例３〜９］
以下の表１に示すように、鶏以外の血清としてウサギ血清（比較例３）、ウマ血清（比較例４）、ブタ血清（比較例５）、ロバ血清（比較例６）、ヒツジ血清（比較例７）について、またその他の添加剤として、Ｌ−アルギニン塩酸塩（比較例８）、四塩化アンモニウム塩（比較例９）について、それぞれＰＢＳ中に２０質量％懸濁したものを調製した。
【００７１】
得られた比較例３〜９のイムノクロマトグラフィー用検体および実施例１のイムノクロマトグラフィー用非特異反応抑制剤について、鶏糞便中のカンピロバクター属菌のイムノクロマトグラフィーを以下のように行なった。
【００７２】
＜イムノクロマトグラフィーによる鶏糞中のカンピロバクター属菌の検査＞
カンピロバクター属菌陰性であることが判明している鶏２８羽の糞便について、比較例３〜９のものを、鶏糞乳剤と等量混合したものをイムノクロマトグラフィー用検体とし、前記検体を日本ハム社製の食中毒菌検出用テストストリップ（実施形態で説明した構造のもの）の検体パッドに滴下し、テストラインに呈色が起きず陰性と判断されたものの割合を調べ、その結果を表１中に示した。また実施例１の非特異反応抑制剤を畜糞乳剤と等量混合し、テストストリップの検体パッドに滴下し、陰性と判断されたものの割合を調べて、表１中に併記した。
【００７３】
【表１】
2015222197.tif 000003
【００７４】
表１の結果からも明らかなように、実施例１のイムノクロマトグラフィー用非特異反応抑制剤を使用した場合は、２８羽の鶏の糞便のすべてが陰性と判断され、偽陽性解消効果は確実に得られたことが認められた。
【００７５】
さらに、上記と同じ試験において、検体としてＡにはカンピロバクター属菌を緩衝液と混合したもの、ＢにはＡと同量のカンピロバクター属菌を含有する鶏糞を緩衝液と混合したものを用い、イムノクロマトグラフィー用非特異反応抑制剤として、Ａには鶏血清を含有しないもの（ブランク）を用い、Ｂには鶏の血清を含有する実施例１のイムノクロマトグラフィー用非特異反応抑制剤を用いて、食中毒菌検出用テストストリップで検査し、陽性ライン強度を数値化した結果を図４のグラフに示した。
Ｂにおけるカンピロバクター属菌の検出感度はＡにおける検出感度と同等かそれ以上であり、ＩｇＹを非特異反応抑制剤の必須成分として用いる鶏糞検査法におけるカンピロバクター属菌検出感度は従来のイムノクロマトを用いたカンピロバクター属菌の検出感度と同等かそれ以上であった。
【００７６】
＜イムノクロマトグラフィーによる鶏糞中のサルモネラ属菌の検査＞
実施例１のイムノクロマトグラフィー用非特異反応抑制剤に対し、予めサルモネラ属菌陰性または陽性が判別されている鶏糞便を検体として、偽陽性解消効果および検出感度の調査を以下のように行なった。
【００７７】
まず (1)にはイムノクロマトグラフィー用非特異反応抑制剤にＩｇＹを含有しないもの（ブランク）を用い、(2)にはＩｇＹを含有する実施例１のイムノクロマトグラフィー用非特異反応抑制剤を用いて、６個体由来のサルモネラ属菌陰性鶏糞便（検体No.１〜６）をサルモネラ属菌検出用テストストリップで検査し、その結果を表２に示した。
【００７８】
【表２】
2015222197.tif 000004
【００７９】
表２の結果からも明らかなように、サルモネラ属菌陰性の鶏糞便を検体として実施例１のイムノクロマトグラフィー用非特異反応抑制剤を用いた場合には、すべての検体が陰性と判断され全く偽陽性は発生しなかった。
【００８０】
また、上記と同じ試験において、検体としてＡにはサルモネラ属菌液、ＢにはＡと同量のサルモネラ属菌を含有する鶏糞を用い、イムノクロマトグラフィー用非特異反応抑制剤として、ＡにはＩｇＹを含有しないもの（ブランク）を用い、ＢにはＩｇＹを含有する実施例１のイムノクロマトグラフィー用非特異反応抑制剤を添加した後、検出用テストストリップで検査し、その結果を図５に示した。
【００８１】
図５の結果からも明らかなように、Ｂにおけるサルモネラ属菌の検出感度は、Ａにおける検出感度と同等かそれ以上であり、ＩｇＹを非特異反応抑制剤の必須成分として用いる鶏糞検査法におけるサルモネラ属菌検出感度は、従来のイムノクロマトを用いたサルモネラ属菌の検出感度と同等かそれ以上であった。
【００８２】
［実施例３、比較例１０］
実施例２において、鶏卵黄に代えてウズラ卵黄由来のＩｇＹを使用したこと以外は、全く同様にしてイムノクロマトグラフィー用非特異反応抑制剤（実施例３）を調製した。また、比較例１０は、実施例３においてウズラ卵黄由来のＩｇＹを含まないイムノクロマトグラフィー用非特異反応抑制剤でありブランクである。
【００８３】
次に、実施例３、比較例１０に対して、前記した＜イムノクロマトグラフィーによる鶏糞中のサルモネラ属菌の検査＞を行なって、その結果を以下の表３に示した。
【００８４】
【表３】
2015222197.tif 000005
【００８５】
表３の結果からも明らかなように、実施例３のイムノクロマトグラフィー用非特異反応抑制剤を用いた場合には、サルモネラ属菌陰性の鶏糞便を３つの検体として試験した結果、全く偽陽性は発生しなかった。またカンピロバクター属菌陰性の糞便においても同様のウズラ卵黄を使用した試験を行い、偽陽性が完全に抑止されることを確認した。
【００８６】
［実施例４〜８、比較例１１〜１５］
以下のようにして、ＥＬＩＳＡ法による鶏糞中のカンピロバクター属菌の検査を行なった。
＜抗体固相プレートの作製＞
抗カンピロバクターモノクローナル抗体（４Ｂ４抗体）を５μg/mLとなるように、固相化緩衝液（0.1M NaHCO3, NaOH（pH 8.5））に懸濁し、１００μｌずつマイクロウェルに分注後、４℃で一晩固相化処理を行なった。固相化処理後、マイクロウェルを洗浄液（0.01M リン酸緩衝液(pH7.2), 0.15 M NaCl, 0.05 % Tween 20）で２回洗浄した後、ブロッキング液（1% BSA, 5 % スクロース）２００μｌをマイクロウェルに満たし、４℃、で一晩静置することで、ブロッキングを行った。ブロッキング後、プレートは風乾させＥＬＩＳＡに使用した。
【００８７】
＜ＥＬＩＳＡ法によるカンピロバクター属菌の検出＞
ＥＬＩＳＡ法は、定法に従って行ない、ブロッキング後のプレートを洗浄液で３回洗浄し、検体を１００μｌ各ウェルに分注した。同じ検体については２反復（２ウェル）で試験を行った。各検体の詳細については表４にまとめて示した。
表１中の鶏糞A、Ｂは、鶏糞を採取した個体の相違を示し、陰性と陽性は、カンピロバクターに非感染または感染した個体であることを示している。
【００８８】
２２．５℃で１時間反応を行なった（1次抗体反応）。1次抗体反応後、プレートを５回洗浄し、ビオチン標識抗体を１００ μｌずつ各ウェルに分注し、２２．５℃で１時間反応を行なった。ビオチン標識抗体にはビオチン標識した４Ｂ４抗体を使用し、５ μg/mLの濃度で使用した。この反応後、プレートを洗浄液で５回洗浄し、ストレプトアビジン液（Thermo）を１００μｌ各ウェルに分注し、２２．５℃で３０分間反応させた。反応後、発色基質（TMB）を各ウェルに１００μｌ分注し、２０分間反応させた。この反応後、反応停止液（0.5 M硫酸）を各ウェルに１００μｌ分注し、マイクロプレートリーダーにて各ウェルの４５０ｎｍの吸光度を測定し、その吸光度の結果を表4にまとめて示した。
【００８９】
【表４】
2015222197.tif 000006
【００９０】
表４の結果からも明らかなように、比較例１１、１２は、カンピロバクター属菌陰性の検体であるにも関わらず高い吸光度を示し、偽陽性反応が生じていることが示された。
しかし、実施例４、５における吸光度は低く、鶏糞に鶏血清を終濃度５０％で添加することで、偽陽性反応を抑えることができることが判明した。
【００９１】
また、実施例６、７の陽性検体に鶏血清を添加したものにおいては、陽性反応を確認することができた。
これらのことから、鶏糞検体に鶏血清（ＩｇＹ）を添加することでＥＬＩＳＡ法においても鶏糞中からカンピロバクター属菌を検出できることが分かった。
【符号の説明】
【００９２】
１  検体パッド
２  コンジュゲートパッド
３  メンブレン
４  吸収パッド
５  基板
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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