(57)【要約】【課題】本発明は、標的細胞への特異性及び集積性が高く、かつ非標的細胞からの蛍光シグナルが十分に抑制された蛍光標識用プローブを提供することを課題とする。【解決手段】生体内の標的細胞に蓄積して蛍光を発する蛍光標識用プローブであって、２以上の蛍光物質が互いにリンカーにより連結された分子が内包されたリポソームからなり、前記リンカーが、前記標的細胞内に発現している酵素による切断部位を有するペプチドであり、前記蛍光物質は、自己消光性を有しており、前記リポソームは、ホスファチジルセリンを含有する、又は表面が前記標的細胞の細胞表面に存在する受容体のリガンドにより修飾されていることを特徴とする、蛍光標識用プローブ。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
生体内の標的細胞に蓄積して蛍光を発する蛍光標識用プローブであって、
２以上の蛍光物質が互いにリンカーにより連結された分子が内包されたリポソームからなり、
前記リンカーが、前記標的細胞内に発現している酵素による切断部位を有するペプチドであり、
前記蛍光物質は、自己消光性を有しており、
前記リポソームは、ホスファチジルセリンを含有する、又は表面が前記標的細胞の細胞表面に存在する受容体のリガンドにより修飾されていることを特徴とする、蛍光標識用プローブ。
【請求項２】
前記リンカーが、６〜２０アミノ酸からなるペプチドである、請求項１に記載の蛍光標識用プローブ。
【請求項３】
前記リポソームが、ＰＥＧ化リポソームである、請求項１又は２に記載の蛍光標識用プローブ。
【請求項４】
前記標的細胞が、マクロファージ又は腫瘍細胞であり、
前記酵素が、カテプシンＢ又はマトリックスメタロプロテアーゼである、請求項１〜３のいずれか一項に記載の蛍光標識用プローブ。
【請求項５】
前記リガンドが、マンノース又はガラクトースである、請求項１〜４のいずれか一項に記載の蛍光標識用プローブ。
【請求項６】
前記ＰＥＧ化リポソームが、ホスファチジルセリンを含有し、かつ表面がマンノースにより修飾されている、請求項３〜５のいずれか一項に記載の蛍光標識用プローブ。
【請求項７】
前記ＰＥＧ化リポソームが、数平均分子量１５００〜２５００ｇ／ｍｏｌのＰＥＧが、リポソームを構成する脂質とＰＥＧの総量当たり３〜７ｍｏｌ％付加されており、かつ平均粒子径が２００〜３００ｎｍである、請求項３〜６のいずれか一項に記載の蛍光標識用プローブ。
【請求項８】
前記蛍光物質が近赤外蛍光を発する、請求項１〜７のいずれか一項に記載の蛍光標識用プローブ。
【請求項９】
前記蛍光物質がインドシアニングリーンである、請求項１〜８のいずれか一項に記載の蛍光標識用プローブ。
【請求項１０】
動脈硬化不安定プラークの標識に用いられる、請求項１〜９のいずれか一項に記載の蛍光標識用プローブ。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、生体内の標的細胞に蓄積して蛍光を発する蛍光標識用プローブであって、標的細胞への特異性及び集積性が高く、かつ非標的細胞からの蛍光シグナルが十分に抑制された蛍光標識用プローブに関する。
【背景技術】
【０００２】
動脈硬化病変に生じるプラーク（粥状硬化巣）のうち、不安定プラークは、破綻し脳梗塞・心筋梗塞などを引き起こす。したがって、不安定プラークを早期に検出し適切な治療を行うことが重要である。不安定プラークを検出する方法としては、これまでに、超音波検査、ＣＴ、ＭＲＩなどによる形態学的検出が試みられている。しかしながら、プラークの破綻には、形態的には検出されない分子レベルでの変化が直接的な原因となり得ることから、形態に依存せずに検出できる方法が望まれている。本発明者らはこれまでに、不安定プラークにはマクロファージが多く浸潤していることに着目し、核医学分子イメージング法である［１８Ｆ］ＦＤＧ−ＰＥＴにより、不安定プラークを画像化することに成功した（非特許文献１参照。）。しかし、ＰＥＴは大がかりな設備を要し、イメージング薬剤を用事合成しなければならない上に、放射線被曝の問題があることなどから、検診などのスクリーニングに用いることは難しい。これに対して、蛍光イメージングは、簡便で低侵襲であるため、リスク患者のスクリーニングに有用である。
【０００３】
また、癌は依然、我が国における死因第一位であり、その対策が急務である。近年、ＰＥＴやＭＲＩ、ＣＴなどによる画像診断技術の進歩に伴い、癌の早期発見が可能になってきた。一方で、早期発見により手術適用になった場合であっても、数年後に再発する症例も少なくない。これは、術中の病巣の取り残しが原因の一つであると考えられる。そこで、取り残しを無くすべく、肉眼では発見が困難な微小癌や周囲正常組織との判別が困難な癌を術中に高感度で描出可能な、蛍光分子イメージングプローブの開発も望まれている。
【０００４】
不安定プラーク中のマクロファージを標識する方法としては、例えば、ＣＴイメージング用試薬であるヨウ素を内包させたポリエチレングリコール（ＰＥＧ）化リポソームを不安定プラークのマクロファージに取り込ませる方法が報告されている（非特許文献２参照。）。また、システインプロテアーゼのカテプシンＢによる切断部位を有するタンパク質（基質）に複数の自己消光性蛍光物質を結合させた標識用分子は、そのままでは自己消光により蛍光を発しないが、マクロファージに取り込まれると、マクロファージ内に存在するカテプシンＢにより当該基質が切断されると蛍光を発すること（アクチベータブル）、及び当該標識用分子を用いてマクロファージが集積したプラークを蛍光標識し得ることが報告されている（非特許文献３参照。）。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献１】Ogawa，et al.，Journal of Nuclear Medicine，2004，vol.45(7)，p.1245−1250．
【非特許文献２】Bhavane，et al.，Circulation: Cardiovascular Imaging，2013，vol.6，p.285−294．
【非特許文献３】Jaffer，et al.，Circulation，2008，vol.118，p.1802−1809.
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
非特許文献２に記載の方法では、マクロファージへの特異性が低く、マクロファージ以外の組織にも集積しやすいことに加えて、マクロファージに取り込まれていないヨウ素含有ＰＥＧ化リポソームと、マクロファージに取り込まれたヨウ素含有ＰＥＧ化リポソームとが区別できず、正常組織からのバックグラウンドシグナルが大きい、という問題がある。また、そもそもＣＴイメージング自体、感度がかなり低く、臨床応用には適さない。一方で、非特許文献３に記載の標識用分子は、カテプシンＢにより基質が切断されない限り蛍光を発しないという利点はあるものの、生体に投与された場合に、マクロファージに選択的に取り込ませることができない上に、生体内における安定性が低いため、基質が切断された蛍光物質が血中に拡散してしまう、という問題がある。
【０００７】
本発明は、標的細胞への特異性及び集積性が高く、かつ非標的細胞からの蛍光シグナルが十分に抑制された蛍光標識用プローブを提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意研究した結果、自己消光性を有する蛍光物質同士を標的細胞内に発現している酵素による切断部位を有するペプチドで連結したアクチベータブル蛍光分子（標的細胞内でのみ蛍光を発する分子）を、標的細胞へ特異的に取り込まれるように表面を修飾したリポソームで内包させることにより、安定して標的細胞へ特異的に取り込ませることができるため、標的部位特異的に蛍光イメージング可能であることを見出し、本発明を完成させた。
【０００９】
（１）  本発明の第一の態様は、生体内の標的細胞に蓄積して蛍光を発する蛍光標識用プローブであって、２以上の蛍光物質が互いにリンカーにより連結された分子が内包されたリポソームからなり、前記リンカーが、前記標的細胞内に発現している酵素による切断部位を有するペプチドであり、前記蛍光物質は、自己消光性を有しており、前記リポソームは、ホスファチジルセリンを含有する、又は表面が前記標的細胞の細胞表面に存在する受容体のリガンドにより修飾されていることを特徴とする、蛍光標識用プローブである。
（２）  前記（１）の蛍光標識用プローブにおいては、前記リンカーが、６〜２０アミノ酸からなるペプチドであることが好ましい。
（３）  前記（１）又は（２）の蛍光標識用プローブにおいては、前記ＰＥＧ化リポソームが、ＰＥＧ化リポソームであることが好ましい。
（４）  前記（１）〜（３）のいずれかの蛍光標識用プローブにおいては、前記標的細胞が、マクロファージ又は腫瘍細胞であり、前記酵素が、カテプシンＢ又はマトリックスメタロプロテアーゼであることが好ましい。
（５）  前記（１）〜（６）のいずれかの蛍光標識用プローブにおいては、前記リガンドが、マンノース又はガラクトースであることが好ましい。
（６）  前記（３）〜（５）のいずれかの蛍光標識用プローブにおいては、前記ＰＥＧ化リポソームが、ホスファチジルセリンを含有し、かつ表面がマンノースにより修飾されていることが好ましい。
（７）  前記（３）〜（６）のいずれかの蛍光標識用プローブにおいては、前記ＰＥＧ化リポソームが、数平均分子量１５００〜２５００ｇ／ｍｏｌのＰＥＧが、リポソームを構成する脂質とＰＥＧの総量当たり３〜７ｍｏｌ％付加されており、かつ平均粒子径が２００〜３００ｎｍであることが好ましい。
（８）  前記（１）〜（７）のいずれかの蛍光標識用プローブにおいては、前記蛍光物質が近赤外蛍光を発することが好ましい。
（９）  前記（１）〜（８）のいずれかの蛍光標識用プローブにおいては、前記蛍光物質がインドシアニングリーンであることが好ましい。
（１０）  前記（１）〜（９）のいずれかの蛍光標識用プローブは、動脈硬化不安定プラークの標識に用いられることが好ましい。
【発明の効果】
【００１０】
本発明に係る蛍光標識用プローブは、生体内での安定性が高く、かつ標的細胞への指向性に優れた、アクチベータブルな蛍光プローブである。このため、当該蛍光標識用プローブを用いることにより、生体内の標的細胞を、比較的安全に、特異的に蛍光標識することができる。本発明に係る蛍光標識用プローブは、特に、動脈硬化不安定プラークや腫瘍組織等の蛍光バイオイメージングに好適に用いられる。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】参考例１において、各111Ｉｎ標識リポソームのマウス腹腔マクロファージへのタンパク量当たりの取り込み量の測定結果を示した図である。
【図２】参考例２において、各111Ｉｎ標識リポソームのマウス腹腔マクロファージへのタンパク量当たりの取り込み量の測定結果を示した図である。
【図３】参考例３において、各111Ｉｎ標識リポソームのａｐｏＥノックアウトマウスにおける動脈硬化病巣への特異的集積性とプラークへの取り込み量の測定結果を示した図である。図３（Ａ）は各111Ｉｎ標識ＰＥＧ化リポソームの非標的組織における集積量に対する標的組織における集積量の割合（Target-to-non target ratio（ＴＮＲ））の測定結果を示した図であり、図３（Ｂ）は各111Ｉｎ標識ＰＥＧ化リポソームのプラークへの取り込み量（相対値）の測定結果を示した図である。
【図４】製造例１において、各反応溶液の７９５ｎｍ（ＩＣＧの極大蛍光波長）の蛍光強度を経時的に測定した結果を示した図である。
【図５】参考例４において、血清中でＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド又はＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包リポソームをインキュベートした場合の８００ｎｍの蛍光強度を経時的に測定した結果を示した図である。
【図６】参考例４において、マクロファージ様細胞の存在下と非存在下でＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包リポソームをインキュベートした場合の８００ｎｍの蛍光強度を経時的に測定した結果を示した図である。
【図７】実施例１において、ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包ＰＳリポソーム添加培地で培養した後のマウス腹腔マクロファージ細胞の透過光画像（左図）と７９５ｎｍの蛍光画像（右図）である。
【図８】実施例２において、ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包ＰＳリポソームを投与したＷＨＨＬウサギの摘出前（Ａ）及び摘出後（Ｂ）の大動脈の透過光画像（左図）及び７９５ｎｍの蛍光画像（右図）である。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
本発明に係る蛍光標識用プローブは、標的細胞では蛍光を発するが、非標的細胞では蛍光を発しないアクチベータブル蛍光分子を、リポソームに内包させたものである。リポソームに内包させることにより、アクチベータブル蛍光分子の生体内における意図せぬ分解を抑制し、標的細胞へより安定的に移行させることができる。
【００１３】
本発明において用いられるアクチベータブル蛍光分子は、自己消光性（２以上の同種の蛍光分子が近接している状態では消光する性質）を有する２以上の蛍光物質が互いに、標的細胞内において切断されるリンカーにより連結された分子である。当該アクチベータブル蛍光分子は、自己消光性によりこのままでは蛍光を発しないが、標的細胞内でリンカーが切断されることにより、蛍光物質同士の距離が広がり、蛍光を発するようになる。
【００１４】
自己消光性蛍光物質をそのままリポソームに内包させた場合でも、自己消光は生じるが、複数の自己消光性蛍光物質をリンカーで連結させた場合に比べて消光効果（濃度消光）は低い。また、自己消光性蛍光物質がリポソームから漏出しやすいため、生体内に投与したとしても、バックグラウンドの蛍光が大きく、標的細胞の特異性が低いという問題もある。本発明に係る蛍光標識用プローブは、自己消光性蛍光物質を標的細胞内において切断されるリンカーで連結させた状態で内包させるため、消光効果が高く、かつリポソームからの漏出もほとんどない。
【００１５】
本発明において用いられるアクチベータブル蛍光分子を構成する蛍光物質としては、自己消光性を有するものであればよい。自己消光性蛍光物質としては、ＴＡＭＲＡ（カルボキシテトラメチルローダミン）、ＴＭＲ（テトラメチルローダミン）、Ｒ６Ｇ（ローダミン−６Ｇ）等のローダミン類、ＩＣＧ（インドシアニングリーン）（ＣＡＳ番号：３５９９−３２−４）、Ｃｙ５．５（登録商標）等のシアニン類等が挙げられる。本発明において用いられる自己消光性蛍光物質としては、皮膚などの生体透過性が高いことから、極大蛍光波長が赤色〜近赤外であるものが好ましく、近赤外蛍光物質であることがより好ましく、生体に対する安全性の点からＩＣＧが特に好ましい。
【００１６】
本発明において用いられるアクチベータブル蛍光分子を構成するリンカーとしては、標的細胞内において切断されるものであればよく、標的細胞内に発現している酵素による切断部位を有するペプチド（ペプチドリンカー）が好ましい。当該酵素としては、標的細胞内に発現している酵素であればよいが。標的細胞への特異性が高められるため、標的細胞に特異的に発現している酵素や、生体を構成する他の多くの細胞よりも標的細胞において発現量が多い酵素であることが好ましい。例えば、標的細胞がマクロファージの場合、ペプチドリンカーとしては、カテプシンＢによる切断部位（ＧＦＬＧ配列）を備えることが好ましい。また、標的細胞が腫瘍細胞の場合には、ペプチドリンカーとしては、カテプシンＢによる切断部位、及び／又はマトリックスメタロプロテアーゼ（ＭＭＰ）による切断部位を備えることが好ましい。また、ペプチドリンカー中の酵素による切断部位以外を構成するアミノ酸としては、ペプチドリンカーの可動性が高く、自己消化性蛍光物質に対する影響が小さいことから、グリシンやアラニンであることが好ましい。
【００１７】
本発明において用いられるアクチベータブル蛍光分子を構成するペプチドリンカーの長さ（ペプチド鎖長）（蛍光物質が結合しているアミノ酸を１番目とし、隣接する蛍光物質が結合しているアミノ酸を最終番目として算出したアミノ酸数）は、酵素による切断部位を備えることができ、かつ当該ペプチドリンカーにより連結された状態で自己消光性蛍光物質同士による自己消化が生じ得る距離となる長さであればよく、用いる自己消光性蛍光物質の種類等を考慮して適宜決定することができる。また、アクチベータブル蛍光分子一分子当たりに結合している自己消化性蛍光物質の数が３以上の場合、各自己消化性蛍光物質を連結するペプチドリンカーの長さやアミノ酸配列は、全て同一であってもよく、互いに異なっていてもよい。
【００１８】
例えば、ＩＣＧは２分子が２量体を形成することにより自己消化が生じる。このため、アクチベータブル蛍光分子一分子当たり、偶数個のＩＣＧが連結されていることが好ましく、２分子のＩＣＧがペプチドリンカーにより連結されていることがより好ましい。特に、自己消化性蛍光物質としてＩＣＧを用い、カテプシンＢによる切断部位（ＧＦＬＧ配列）を備える場合には、アクチベータブル蛍光分子としては、２分子のＩＣＧが６〜２０アミノ酸長のペプチドリンカーにより連結されたものが好ましく、２分子のＩＣＧが６〜１０アミノ酸長のペプチドリンカーにより連結されたものがより好ましく、アミノ酸配列がＫＧＦＬＧＫ、ＫＧＧＦＬＧＫ、ＫＧＦＬＧＧＫ、ＫＧＧＧＦＬＧＫ、ＫＧＦＬＧＧＧＫ、ＫＧＧＦＬＧＧＫ、ＫＧＧＧＧＦＬＧＫ、ＫＧＦＬＧＧＧＧＫ、ＫＧＧＧＧＧＦＬＧＫ、ＫＧＦＬＧＧＧＧＧＫ、又はＫＧＧＧＦＬＧＧＧＫからなるペプチドリンカーの両末端のリジン残基にＩＣＧが結合したものがさらに好ましい。
【００１９】
本発明において、アクチベータブル蛍光分子を内包するリポソームは、グリセロリン脂質やスフィンゴリン脂質等のリン脂質を主たる構成成分として製造することができる。グリセロリン脂質としては、ホスファチジルコリン（ＰＣ）、ホスファチジルセリン（ＰＳ）、ホスファチジルグリセロール（ＰＧ）、ホスファチジルエタノールアミン（ＰＥ）、ホスファチジルイノシトール（ＰＩ）等が挙げられる。スフィンゴリン脂質としては、スフィンゴミエリンが挙げられる。また、リン脂質に加えて、コレステロールを構成成分としてもよい。リポソームを構成する脂質（リン脂質に加えて、コレステロール等の他の脂質を含む。）の組成は、標的細胞への特異性や集積性を高められるように、標的細胞が取込みやすい組成に適宜調節することが好ましい。例えば、標的細胞がマクロファージの場合、本発明に係る蛍光標識用プローブとしては、アクチベータブル蛍光分子を内包するリポソームとしては、ＰＳを含有しているものが好ましく、リポソームを構成する脂質（リン脂質のみならず、コレステロールも含む。）当たり１０ｍｏｌ％以上のＰＳを含有するものがより好ましく、リポソームを構成する脂質当たり２０ｍｏｌ％以上のＰＳを含有するものがさらに好ましく、リポソームを構成する脂質当たり３０〜４０ｍｏｌ％のＰＳを含有するものがよりさらに好ましい。
【００２０】
本発明において、アクチベータブル蛍光分子を内包するリポソームは、少なくとも表面の一部にＰＥＧが付加されているＰＥＧ化リポソームが好ましい。ＰＥＧ化により、標的細胞への取り込み自体は抑制される傾向にあるが、血中滞留性が向上する結果、生体内に投与された場合に標的細胞への集積性を向上させることができる。
【００２１】
ＰＥＧ化リポソームにおいて、リポソーム表面に付加されたＰＥＧの鎖長が長いほど、またリポソーム表面に付加されたＰＥＧの量が多くなるほど、標的細胞への取り込みやすさが低くなるが、血中滞留性は高くなる。そこで、本発明において、アクチベータブル蛍光分子を内包するリポソームの表面に付加されるＰＥＧの鎖長や付加量は、標的細胞への取り込みやすさに対する低下効果と血中滞留性改善効果とのバランスで適宜調節されることが好ましい。例えば、リポソームの表面に付加されるＰＥＧの鎖長としては、１０００〜７０００ｇ／ｍｏｌの範囲内が好ましく、１５００〜６０００ｇ／ｍｏｌの範囲内がより好ましく、１５００〜５０００ｇ／ｍｏｌの範囲内がさらに好ましく、１５００〜３０００ｇ／ｍｏｌの範囲内がよりさらに好ましく、１５００〜２５００ｇ／ｍｏｌの範囲内が特に好ましい。また、リポソームの表面に付加されるＰＥＧの量としては、リポソームを構成する脂質とＰＥＧの総量当たり、０．５〜１０ｍｏｌ％の範囲内が好ましく、０．５〜７．５ｍｏｌ％の範囲内がより好ましく、１．０〜７．０ｍｏｌ％の範囲内がさらに好ましく、３．０〜７．０ｍｏｌ％の範囲内がよりさらに好ましい。
【００２２】
本発明において、アクチベータブル蛍光分子を内包するリポソームの大きさとしては、標的細胞への取り込まれやすさの点から、平均粒子径が５００ｎｍ以下が好ましく、３００ｎｍ以下がより好ましく、血中滞留性の点から１００〜３００ｎｍがさらに好ましく、２００〜３００ｎｍがよりさらに好ましい。なお、リポソームの平均粒子径は、ＤＬＳ（動的光散乱法）により測定することができる。
【００２３】
標的細胞への特異性を高めることができるため、本発明において、アクチベータブル蛍光分子を内包するリポソームとしては、表面が標的細胞の細胞表面に存在する受容体のリガンドにより修飾されていることが好ましい。当該リガンドとしては、リポソームを構成するリン脂質等と結合可能な物質であればよく、糖鎖、核酸鎖、抗体、アビジン等の低分子化合物等が挙げられる。例えば、標的細胞がマクロファージの場合、アクチベータブル蛍光分子を内包するリポソームの表面は、マンノース（末端がマンノースである糖鎖を含む。）により修飾されていることが好ましい。また、標的細胞が腫瘍細胞の場合、アクチベータブル蛍光分子を内包するリポソームの表面は、ガラクトース（末端がガラクトースである糖鎖を含む。）やトラスツズマブ等の抗体医薬等により修飾されていることが好ましい。
【００２４】
アクチベータブル蛍光分子を内包させたリポソームは、水溶性成分を内包するリポソームを製造する際に用いられる各種の方法により製造することができる。当該製造方法としては、例えば、薄膜法、リモートローディング（ｐＨ勾配）法等が挙げられる。アクチベータブル蛍光分子の封入効率が高いことから、酢酸カルシウムでｐＨ勾配をつけたリモートローディング法によりリポソームを製造した後にアクチベータブル蛍光分子を内包させる方法が好ましい。
【００２５】
ＰＥＧ化リポソームは、リポソームを構成する脂質として、予めＰＥＧを結合させたリン脂質やコレステロールを用いることにより製造できる。また、表面がリガンドで修飾されているリポソームを製造する場合には、予めリガンドをエーテル結合やエステル結合等により結合させたリン脂質やコレステロール、炭化水素、脂肪酸をリポソームを構成する脂質として用いることにより製造できる。
【００２６】
マクロファージを標的細胞とする本発明に係る蛍光標識用プローブを、静脈注射等により生体に投与することによって、マクロファージを、ひいてはマクロファージが多く集積する動脈硬化不安定プラークを蛍光標識することができる。これにより、形態にとらわれず、動脈硬化不安定プラークを高感度に検出することが可能になる。
【００２７】
また、腫瘍細胞を標的細胞とする本発明に係る蛍光標識用プローブを生体に投与することによって、ごく小さな腫瘍細胞も蛍光標識することができる。例えば、腫瘍部の切除手術前に当該蛍光標識用プローブを投与しておくことにより、開腹手術や内視鏡手術において腫瘍部を取り残すことなく切除することが期待できる。特に、自己消光性蛍光物質として、近赤外蛍光で励起可能な近赤外蛍光物質を使用した蛍光標識用プローブは、術野の色に影響を及ぼさずに腫瘍組織を蛍光標識できる。
【００２８】
本発明に係る蛍光標識用プローブは、ＰＥＧリポソームに、アクチベータブル蛍光分子以外の他の蛍光物質を内包していてもよい。例えば、フォトダイナミックセラピー（ＰＤＴ）効果を有する物質を共に内包させておくことができる。例えば、腫瘍細胞を標的細胞とし、ＰＤＴ効果を有する物質を共に内包させた蛍光標識用プローブを生体に投与した場合、蛍光により標識された腫瘍細胞に適当な光を照射することにより、腫瘍細胞特異的にＰＤＴ効果を奏させることができる。ＰＤＴ効果を有する物質としては、例えば、近赤外蛍光化合物であるＩＲ７００（Mitsunaga，et al.，Nature  Medicine，2011，vol.17(12)，p.1685−1691.）等が挙げられる。
【実施例】
【００２９】
次に実施例を示して本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
【００３０】
［参考例１］
ＰＳを構成成分とするリポソームとＰＳを含有しないリポソームの、マウス腹腔マクロファージへの取り込まれやすさを調べた。
【００３１】
＜111Ｉｎ標識リポソームの作製＞
まず、ＤＳＰＣ（ジステアロイルホスファチジルコリン）: Ｄ−ＤＳＰＳ（ジステアロイルホスファチジルＤセリン）: ｃｈｏｌ（コレステロール）＝１：１：１（モル比）にて脂質を混合し、クロロホルムに溶解させた。このクロロホルム溶液を丸底フラスコにいれて減圧乾固し、フラスコに内壁に薄膜を作製した（Ｄ−ＰＳリポソーム膜）。なお、Ｄ−ＤＳＰＳに代えてＬ−ＤＳＰＳ（ジステアロイルホスファチジルＬセリン）を用いたもの（ＰＳリポソーム膜）と、Ｄ−ＤＳＰＳに代えてＤＳＰＣを用いたもの（ＤＳＰＣ：ｃｈｏｌ＝２：１）（ＰＣリポソーム膜）も、対照として作製した。
【００３２】
作製した薄膜は、１０ｍＭ  ＮＴＡ（ニトリロ三酢酸）が入った３０ｍＭ  ＨＥＰＥＳ／５％  マンニトールバッファーを用いて水浴中６０℃にてゆっくり膨潤させた。膨潤後に得られた溶液を、エクストルーダを用いて孔径が１００ｎｍ又は２００ｎｍのポリカーボネートメンブレンフィルターに通すことにより、サイジングを行った。得られたリポソーム溶液は、ゲル濾過（Ｓｅｐｈａｄｅｘ  Ｇ−５０）し、内包されなかったＮＴＡを除いた。以降、Ｄ−ＰＳリポソーム膜から調製され、孔径１００ｎｍフィルターに通されたリポソームを「Ｄ−ＰＳ１００」、孔径２００ｎｍフィルターに通されたリポソームを「Ｄ−ＰＳ２００」という。ＰＳリポソーム膜とＰＣリポソーム膜から調製されたリポソームも同様である。
【００３３】
作製されたＮＴＡを内包したＤ−ＰＳリポソーム、ＰＳリポソーム、及びＰＣリポソームに、111ＩｎＣｌ３、５１ｍＭ  Ｏｘｉｎｅ（エタノール溶液）、２Ｍ  酢酸ナトリウムバッファー混合溶液を加え、キレート剤ＯｘｉｎｅとＮＴＡの交換反応により、リポソームを111Ｉｎ標識した。得られた111Ｉｎ標識リポソームは、超遠心分離処理後、生理食塩水で再懸濁することにより回収し、リポソーム画分と上清の放射能を測定することにより、放射化学的収率を求めた。この結果、［111Ｉｎ］Ｄ−ＰＳ１００、［111Ｉｎ］ＰＳ１００、［111Ｉｎ］ＰＣ１００、［111Ｉｎ］Ｄ−ＰＳ２００、［111Ｉｎ］ＰＳ２００、［111Ｉｎ］ＰＣ２００の全てにおいて、放射化学的収率９５％以上にて目的物を得ることに成功した。
【００３４】
＜マウス腹腔マクロファージを用いたin vitroにおける取り込み量の測定＞
マウス（ddY、８週齢、メス）の腹腔にチオグリコレート培地を２ｍＬ投与した。３日後に、氷冷ＰＢＳ（リン酸生理食塩水）８ｍＬにより腹腔マクロファージを回収し、３０ｍｍディッシュに播種し、Ｄ−ＭＥＭ培地中、５体積％ＣＯ２雰囲気下で２４時間培養した。採取したマウス腹腔マクロファージの培地を交換して浮遊細胞を除いた後、１時間のプレインキュベーションを行った後、［111Ｉｎ］Ｄ−ＰＳ１００、［111Ｉｎ］ＰＳ１００、［111Ｉｎ］ＰＣ１００、［111Ｉｎ］Ｄ−ＰＳ２００、［111Ｉｎ］ＰＳ２００、又は［111Ｉｎ］ＰＣ２００を３７ｋＢｑずつそれぞれのディッシュに添加し、３７℃で２時間、５体積％ＣＯ２雰囲気下にて静置した。２時間後に培地を回収し、細胞をＰＢＳにて洗浄し、回収した培地と洗浄したＰＢＳを合わせたものを上清とした。
【００３５】
ＰＢＳで洗浄された後の細胞は、０．３５ｍＬのＰＢＳを加えた状態でディッシュの底から掻き取り回収する操作を２回繰り返すことにより回収し、これを細胞液とした。ガンマカウンタを用いて上清と細胞液の放射能を測定し、細胞への各リポソームの取り込み量を求めた。なお、カウント測定後、細胞液のタンパク濃度を測定し、タンパク量当たりのリポソーム取り込み量を算出した。また、対照として、111Ｉｎ標識リポソームに代えて［111Ｉｎ］Ｃｌ３を用いて同様に検討を行った。
【００３６】
図１に、各111Ｉｎ標識リポソームのマウス腹腔マクロファージへのタンパク量当たりの取り込み量の測定結果を示す。ＰＳリポソームでは、ＰＣリポソームに比べて高い取り込みが認められただけでなく、Ｄ−ＤＳＰＳを用いたＤ−ＰＳリポソームはＬ−ＤＳＰＳを用いたＰＳリポソームに比べてマクロファージへの取り込みは低かった。これらの結果から、ＰＳリポソームのマクロファージへの取り込みが、ＰＳを特異的にマクロファージが認識したことによるものであることが示された。
【００３７】
［参考例２］
ＰＥＧ化リポソームのマウス腹腔マクロファージへの取り込まれやすさを調べた。ＰＥＧとして、ＰＥＧ２０００（数平均分子量２０００ｇ／ｍｏｌのＰＥＧ）又はＰＥＧ５０００（数平均分子量５０００ｇ／ｍｏｌのＰＥＧ）を用いた。
【００３８】
＜111Ｉｎ標識ＰＥＧ化リポソームの作製＞
まず、ＤＳＰＣ：ＤＰＰＳ（ジパルミトイルホスファチジルセリン）：ｃｈｏｌ：ＰＥＧ＝３２：３２：３１：５（モル比）にて脂質を混合し、クロロホルムに溶解させたクロロホルム溶液を丸底フラスコにいれて減圧乾固し、フラスコに内壁に薄膜を作製した（５ｍｏｌ％ＰＥＧ化リポソーム膜）。また、ＤＳＰＣ：ＤＰＰＳ：ｃｈｏｌ：ＰＥＧ＝３３：３３：３２：１（モル比）にて脂質を混合し、クロロホルムに溶解させたクロロホルム溶液を丸底フラスコにいれて減圧乾固し、フラスコに内壁に薄膜を作製した（１ｍｏｌ％ＰＥＧ化リポソーム膜）。ＰＥＧとして、鎖長の異なる２種類のＰＥＧ（ＰＥＧ２０００又はＰＥＧ５０００）を用いた。なお、ＰＥＧを用いなかったもの（ＤＳＰＣ：ＤＰＰＳ：ｃｈｏｌ＝３４：３４：３２（モル比））（０ｍｏｌ％ＰＥＧ化リポソーム膜）も、対照として作製した。
【００３９】
参考例１と同様にして、作製した薄膜から、ＮＴＡを内包したリポソームを調製し、111Ｉｎ標識リポソームを得た。ＰＥＧ２０００を用いた５ｍｏｌ％ＰＥＧ化リポソーム膜から調製され、孔径１００ｎｍフィルターに通された111Ｉｎ標識リポソームを「［111Ｉｎ］ＰＳ１００−５％ＰＥＧ２０００」、ＰＥＧ２０００を用いた５ｍｏｌ％ＰＥＧ化リポソーム膜から調製され、孔径２００ｎｍフィルターに通された111Ｉｎ標識リポソームを「［111Ｉｎ］ＰＳ２００−５％ＰＥＧ２０００」、ＰＥＧ２０００を用いた１ｍｏｌ％ＰＥＧ化リポソーム膜から調製され、孔径１００ｎｍフィルターに通された111Ｉｎ標識リポソームを「［111Ｉｎ］ＰＳ１００−１％ＰＥＧ２０００」、ＰＥＧ２０００を用いた１ｍｏｌ％ＰＥＧ化リポソーム膜から調製され、孔径２００ｎｍフィルターに通された111Ｉｎ標識リポソームを「［111Ｉｎ］ＰＳ２００−１％ＰＥＧ２０００」という。ＰＥＧ５０００を用いた111Ｉｎ標識ＰＥＧ化リポソーム膜から調製されたリポソームも同様である。０ｍｏｌ％ＰＥＧ化リポソーム膜から調製され、孔径１００ｎｍフィルターに通された111Ｉｎ標識リポソームを「［111Ｉｎ］ＰＳ１００」、０ｍｏｌ％ＰＥＧ化リポソーム膜から調製され、孔径２００ｎｍフィルターに通された111Ｉｎ標識リポソームを「［111Ｉｎ］ＰＳ２００」という。これら全ての111Ｉｎ標識リポソームにおいて、放射化学的収率は９５％以上であった。
【００４０】
＜マウス腹腔マクロファージを用いたin vitroにおける取り込み量の測定＞
調製された111Ｉｎ標識リポソームについて、参考例１と同様にして、マウス腹腔マクロファージへの取り込み量を定量的評価した。結果を図２に示す。図中、「ＰＳ１００」は孔径１００ｎｍフィルターに通された111Ｉｎ標識リポソームの結果を、「ＰＳ２００」は孔径２００ｎｍフィルターに通された111Ｉｎ標識リポソームの結果を、それぞれ示す。また、図中、「ＰＥＧ ｌｅｎｇｔｈ」が「２０００」の欄はＰＥＧ２０００を用いた111Ｉｎ標識リポソームの結果を、「５０００」の欄はＰＥＧ５０００を用いた111Ｉｎ標識リポソームの結果を、「−」はＰＥＧ化していない111Ｉｎ標識リポソーム（０ｍｏｌ％ＰＥＧ化リポソーム）の結果を、それぞれ示す。また、「１ｍｏｌ％」は１ｍｏｌ％ＰＥＧ化リポソームの結果を、「５ｍｏｌ％」は５ｍｏｌ％ＰＥＧ化リポソームの結果を、それぞれ示す。この結果、リポソームをＰＥＧ化することにより、マクロファージへの取り込み量は減少した。また、ＰＥＧの鎖長が短く、また、ＰＥＧの量が少ない方がマクロファージへ取り込まれやすい傾向が観察された。ただし、ＰＥＧ５０００を５ｍｏｌ％含有するＰＥＧ化リポソーム以外においては、取り込み量の低下はそれほど大きなものではなかった。
【００４１】
［参考例３］
参考例２で調製した111Ｉｎ標識ＰＥＧ化リポソームの動脈硬化モデル動物ａｐｏＥノックアウトマウスにおける動態を調べた。
【００４２】
具体的には、ａｐｏＥノックアウトマウスに参考例２で調製した各111Ｉｎ標識リポソームを尾静脈内投与し、２時間後に屠殺し、大動脈を摘出した。摘出した大動脈は、縦方向に切開した後、Ｏｉｌ−Ｒｅｄ−Ｏ染色を施した。この後、イメージングプレートに暴露し、イメージャーにてｅｘ  ｖｉｖｏ  ＡＲＧ画像を得た。
この結果、ＰＥＧ化していない［111Ｉｎ］ＰＳ１００、［111Ｉｎ］ＰＳ２００と同様に、ＰＥＧ化した111Ｉｎ標識リポソームは、いずれもＯｉｌ−Ｒｅｄ−Ｏ染色により得られた動脈硬化病巣とほぼ一致した画像を得ることができた。
【００４３】
また、画像解析により、非標的組織（Ｏｉｌ−Ｒｅｄ−Ｏで染色されなかった部分）における111Ｉｎ標識リポソームの集積量に対する、標的組織（Ｏｉｌ−Ｒｅｄ−Ｏで染色された部分）における111Ｉｎ標識リポソームの集積量の割合（Target-to-non target ratio（ＴＮＲ））を調べた。結果を図３（Ａ）に示す。この結果、ＴＮＲに関しては、ＰＥＧ化の有無やＰＥＧの鎖長や含有量により大きな変化はなかった。
【００４４】
同様に、画像解析により、111Ｉｎ標識リポソームのプラーク（病変）への取り込み量（相対値）を調べた。結果を図３（Ｂ）に示す。この結果、プラーク（病変）への取り込みは［111Ｉｎ］ＰＳ２００−５％ＰＥＧ２０００で最も高いものとなった。なお、図３（Ａ）及び（Ｂ）中、「ＰＳ１００」、「ＰＳ２００」、「ＰＥＧ ｌｅｎｇｔｈ」の欄は、図２と同じ意味である。
【００４５】
［製造例１］
カテプシンＢ切断配列（ＧＦＬＧ配列）を含んだＡｃ−ＫＧＧＧＦＬＧＫ−ＯＨの両末端のリジン残基をＩＣＧにより標識し、蛍光のＯＮ／ＯＦＦが可能であるアクチベータブル近赤外蛍光標識ペプチド（ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド）を製造した。
具体的には、１０ｍＭのＩＣＧ−Ｓｕｌｆｏ−ＯＳｕ（ＤＭＳＯに溶解させたもの。Ｄｏｊｉｎｄｏ社製）と５００μＭのＡｃ−ＫＧＧＧＦＬＧＫ−ＯＨを含有する１５０μＬのＮａ２ＨＰＯ４溶液（１００ｍＭ）を反応溶液として調製した。当該反応溶液を室温で３０分間反応させた後、ＩＣＧの吸収極大波長である７９５ｎｍにおいてモニターしながら、ＨＰＬＣにより、ＩＣＧとペプチドの結合物を分取した。凍結乾燥の後、質量分析をした結果、当該結合物は、ペプチド１分子当たり２分子のＩＣＧが結合していることがわかり、目的のＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチドであることが確認された（図示せず。）。得られたＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチドは、ほとんど蛍光を発していなかった（蛍光ＯＦＦ）。
【００４６】
ペプチドとして、アミノ酸配列をランダム化したＡｃ−ＫＧＦＧＧＧＬＫ−ＯＨを用いて同様にして、当該ペプチドの両末端のリジン残基をＩＣＧにより標識したペプチド（ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ非含有ペプチド）を製造した。この結果、ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ非含有ペプチドも、ほとんど蛍光を発していなかった（蛍光ＯＦＦ）。
【００４７】
カテプシンＢによるペプチド鎖の切断と、切断による消光していた蛍光の回復（ＯＮ）について調べた。具体的には、酵素反応バッファーに、ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド又はＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ非含有ペプチド（２５０μＭ）とカテプシンＢ（５Ｕ／ｍＬ）を含有させた反応溶液を調製し、当該反応溶液を３７℃で２４時間反応を行い、反応溶液の７９５ｎｍの蛍光強度を経時的に測定した。測定結果を図４に示す。図中、「−」は酵素反応バッファーのみの対照溶液、「カテプシンＢ」はカテプシンＢのみを含有させた溶液、「ＫＧＧＧＦＬＧＫ」はＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチドのみを含有させた溶液、「ＫＧＧＧＦＬＧＫ／カテプシンＢ」はＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチドとカテプシンＢを含有させた溶液、「ＫＧＦＧＧＧＬＫ」はＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ非含有ペプチドのみを含有させた溶液、「ＫＧＦＧＧＧＬＫ／カテプシンＢ」はＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ非含有ペプチドとカテプシンＢを含有させた溶液の結果である。この結果、ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチドとカテプシンＢを含有させた溶液では、カテプシンＢによって鎖が切断され経時的に蛍光強度が増加した。カテプシンＢを含有させず、ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチドのみを含有する溶液では、蛍光強度は増加しなかった。また、ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ非含有ペプチドを含む溶液では、蛍光強度は増加しなかった。すなわち、ＩＣＧ２分子をカテプシンＢで切断されるアミノ酸配列を含有するペプチドで連結することにより、カテプシンＢ存在下では蛍光を発する（蛍光ＯＮ）が、それ以外では蛍光を発しない（蛍光ＯＦＦ）アクチベータブル蛍光分子が製造できた。
【００４８】
［参考例４］
＜ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチドを内包させたリポソームの作製＞
製造例１で製造したＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチドを、酢酸カルシウムでｐＨ勾配をつけたリモートローディング法によりリポソームに内包させた。
まず、ＤＰＰＣ（ジパルミトイルホスファチジルコリン）: ｃｈｏｌ＝２：１（モル比）にて脂質を混合し、クロロホルムに溶解させた後、ｔ−ブタノールを用いて凍結乾燥した。得られた凍結乾燥物に１２０ｍＭの酢酸カルシウム溶液を最終ＤＰＰＣ濃度が１０ｍＭとなるように加えて水和した後、液体窒素を用いて凍結融解を３回行った。次いで、バス型ソニケーターを用いて超音波処理を行い、その後エクストルーダを用いて孔径が１００ｎｍのポリカーボネートメンブレンフィルターに通すことにより、サイジングを行った。得られたリポソーム溶液は、超純水中で透析処理（２時間、２回）を行った後、超遠心分離処理（４℃、１００，０００ｒｐｍ、１５分間）し、得られた沈殿（リポソーム）を１２０ｍＭ  クエン酸バッファー（ｐＨ５．０）で再懸濁させた溶液に、エタノールに溶解させたＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド（１．２５ｎｍｏｌ）を加え、６０℃で１時間インキュベートした後、氷冷した。氷冷後の反応溶液を、Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（登録商標）４  Ｆａｓｔ  Ｆｌｏｗを用いてゲル濾過を行い、リポソーム画分を回収し、さらに超遠心分離処理（４℃、１００，０００ｒｐｍ、１５分間）することにより、未封入のＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチドを除去した。
【００４９】
最終的に得られたリポソーム（ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包リポソーム）中のＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチドを定量し、封入率を算出したところ、封入ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド量は０．８６ｎｍｏｌであり、封入率は６８．８％であった。また、当該リポソームについて、ＤＬＳにより平均粒子径を測定したところ、１２１．７ｎｍであった。さらに、当該リポソームの８００ｎｍの蛍光強度について、ＴｒｉｔｏｎＸ−１００を添加する前と添加した後（リポソームを崩壊させた後）の蛍光強度比を調べたところ、２４．３であり、ＴｒｉｔｏｎＸ−１００添加により蛍光強度が大幅に増加した。
【００５０】
＜血清中での安定性＞
ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包リポソームの血清存在下での安定性を評価した。
具体的には、９０容量％ＦＢＳ溶液中に、ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド又はＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包リポソームを添加し、３７℃で２４時間インキュベートし、各溶液の８００ｎｍの蛍光強度を経時的に測定した。測定結果を図５に示す。この結果、むき出しのＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチドは、インキュベート開始から速やかに蛍光強度が上昇し、その後徐々に低下した。この低下傾向は、生成したＩＣＧの蛍光の減弱が進んだためと考えられる。これに対して、リポソームに内包させたＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチドは、２４時間インキュベートしても蛍光強度はほとんど高くならなかった。これらの結果から、リポソームに内包させることにより、血清中においてもＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチドは蛍光ＯＦＦの状態で安定に存在できることが確認された。
【００５１】
＜マクロファージ様細胞における蛍光アクチベーションの検討＞
作製したＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包リポソームを用いて、マクロファージ様細胞（ＲＡＷ２６４細胞）存在下で、蛍光を発するかを検討した。
具体的には、細胞培養用９６穴黒色プレートにＲＡＷ２６４細胞を播種し、１０容量％ＦＢＳ含有Ｄ−ＭＥＭ（Ｈｉｇｈ Ｇｌｕｃｏｓｅ）中で５体積％ＣＯ２雰囲気下、３７℃で一晩培養した。培養後の細胞は、ＰＢＳにより３回洗浄した後、無血清Ｄ−ＭＥＭで希釈したＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包リポソームを添加し、３７℃で２４時間インキュベートし、各溶液の８００ｎｍの蛍光強度を経時的に測定した。測定結果を図６に示す。この結果、細胞非存在下では、ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包リポソームの蛍光強度はほとんど変化しなかったのに対して（図中、「Ｃｅｌｌ  ｆｒｅｅ」）、ＲＡＷ２６４細胞存在下では、経時的に蛍光強度が増加し、添加後３時間経過時点までで蛍光強度がプラトーに達していることが確認できた（図中、「ＲＡＷ２６４」）。
【００５２】
［実施例１］
ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチドをＰＳリポソームに内包させ、マウス腹腔マクロファージへの取り込まれやすさを調べた。
【００５３】
＜ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチドを内包させたＰＳリポソームの作製＞
製造例１で製造したＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチドを、酢酸カルシウムでｐＨ勾配をつけたリモートローディング法によりリポソームに内包させた。具体的には、脂質としてＤＰＰＣ：ｃｈｏｌ＝２：１（モル比）に代えてＤＰＰＣ：ＤＰＰＳ：ｃｈｏｌ＝１：１：１（モル比）を用いた以外は、参考例４と同様にして、ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包ＰＳリポソームを得た。
【００５４】
＜マウス腹腔マクロファージへの取り込み＞
参考例１と同様にして調製したマウス腹腔マクロファージの培養液中に、調製したＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包ＰＳリポソームを添加し、２４時間培養した。培養後の細胞について、培地を洗浄した後に蛍光顕微鏡により観察した。図７に、ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包ＰＳリポソーム添加培地で培養後の細胞の透過光画像（左図）と７９５ｎｍの蛍光画像（右図）を示す。この結果、マクロファージ内において、ＩＣＧからの蛍光が発されていることが確認できた。
【００５５】
また、ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包ＰＳリポソーム添加後のマウス腹腔マクロファージを蛍光顕微鏡で経時的に観察したところ、時間の経過とともにマクロファージが蛍光を発する様子を捉えることができた（図示せず。）。これは、ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包ＰＳリポソームがアクチベータブルプローブとして機能し、マクロファージの中でのみ蛍光信号がＯＮになったことを示すものである。
【００５６】
［実施例２］
ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包ＰＳリポソームについて、動脈硬化モデル動物ＷＨＨＬウサギにおける動態を調べた。
【００５７】
ＷＨＨＬウサギ（１７ヶ月齢、３．３〜３．５ｋｇ）を用いた。ウサギは、ペントバルビタール（３０ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｖ．）により導入麻酔後、プロポフォール（１０ｍｇ／ｋｇ／ｈ、ｉ．ｖ．）の持続麻酔を行った。
実施例１で製造したＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包ＰＳリポソームを耳静脈から投与し、投与から２２時間後にウサギをペントバルビタールの過量投与により屠殺し、大動脈を摘出した。摘出前後の大動脈を、ハンドヘルド型蛍光カメラを用いて撮像した。図８（Ａ）は、摘出される前の大動脈の画像であり、図８（Ｂ）は、摘出後の大動脈の画像である（左：透過光画像、右：７９５ｎｍの蛍光画像）。図８（Ａ）に示すように、血管は蛍光を発しているものの、血液が蛍光を発しておらず、ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包ＰＳリポソームがアクチベータブルプローブとして機能していることが示された。また、図８（Ｂ）に示すように、病変の進行が強度である大動脈弓部においてより強い蛍光が観察されたことから、ＩＣＧ２標識ＧＦＬＧ含有ペプチド内包ＰＳリポソームは動脈硬化病変を特異的に蛍光標識可能であることが示された。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【配列表】
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