(57)【要約】【課題】血液等の被検試料中に速剤する成分の影響を受けることなく、正確かつ迅速にＰＬＰ濃度を測定する方法の提供。【解決手段】次の工程（１）及び（２）を含むことを特徴とする被検試料中のＰＬＰ濃度の測定方法。（１）被検試料に、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼのアポ酵素と、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質とを添加する工程（２）被検試料中で生成したＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼとＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質との反応により生成した物質の量を測定する工程【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
次の工程（１）及び（２）を含むことを特徴とする被検試料中のＰＬＰ濃度の測定方法。
（１）被検試料に、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼのアポ酵素と、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質とを添加する工程
（２）被検試料中で生成したＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼとＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質との反応により生成した物質の量を測定する工程
【請求項２】
Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質が、Ｄ−アミノ酸とαケトグルタル酸、又はＤ−グルタミン酸とピルビン酸である請求項１記載のＰＬＰ濃度の測定方法。
【請求項３】
被検試料中で生成したＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼとＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質との反応により生じた物質が、ピルビン酸、αケトグルタル酸又はＤ−アミノ酸である請求項２記載のＰＬＰ濃度の測定方法。
【請求項４】
Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼのアポ酵素が、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼに紫外線を照射することにより生成するものである請求項１〜３のいずれかに記載のＰＬＰ濃度の測定方法。
【請求項５】
被検試料中のＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼが、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼのアポ酵素と被検試料中のＰＬＰにより生じるものである請求項１〜４のいずれかに記載のＰＬＰ濃度の測定方法。
【請求項６】
Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼのアポ酵素と、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質を含有するＰＬＰ測定試薬。
【請求項７】
Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質が、Ｄ−アミノ酸とαケトグルタル酸、又はＤ−グルタミン酸とピルビン酸である請求項６記載のＰＬＰ測定試薬。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ビタミンＢ6の活性型であるピリドキサールリン酸（ＰＬＰ）の測定方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ビタミンＢ6は、不足すると皮膚や神経障害を生じることが知られており、最近の研究ではビタミンＢ6の不足が心血管系疾患やがんの発症や進展に関与していることが報告されている。かかる観点から、ビタミンＢ6の活性型であるピリドキサールリン酸（ＰＬＰ）濃度の測定が重要であり、ＰＬＰの測定技術が注目されている。
【０００３】
ＰＬＰの測定法としては、高速液体クロマトグラフ法、微生物を用いる方法、γ−アミノ酪酸合成酵素を用いる方法、ホモシステイナーゼを用いる方法（特許文献１）、チロシンデカルボキシラーゼを用いる方法、トリプトファナーゼを用いる方法などが知られている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特表２００２−５３５００９号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
しかしながら、従来のＰＬＰの測定法は、測定に数日間を要する方法であったり、血液中に存在するγ−アミノ酪酸、ホモシステイン、チロシン等の濃度に影響を受けるため、正確な測定ができないという問題があった。
従って、本発明の課題は、血液等の被検試料中に存在する成分の影響を受けることなく、正確かつ迅速にＰＬＰ濃度を測定する方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
そこで本発明者は、新たなＰＬＰ測定技術を開発すべく種々検討してきたところ、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼに紫外線を照射すると不活性状態であるアポ酵素に変換されること、さらに当該アポ酵素はＰＬＰ活性型に変換されることを見出した。そして、被検試料に当該Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼのアポ酵素を添加すれば当該アポ酵素がＰＬＰにより直ちに活性型Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼに変換され、次いでＰＬＰにより活性化されたＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼとＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質との反応により生成した物質の量を測定すれば、反応が血液等には存在しないＤ−アミノ酸とその基質の反応であるため、血液中に存在する成分の影響を受けることなく、正確かつ迅速にＰＬＰ濃度が測定できることを見出し、本発明を完成した。
【０００７】
すなわち、本発明は、次の〔１〕〜〔７〕を提供するものである。
〔１〕次の工程（１）及び（２）を含むことを特徴とする被検試料中のＰＬＰ濃度の測定方法。
（１）被検試料に、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼのアポ酵素と、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質とを添加する工程
（２）被検試料中で生成したＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼとＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質との反応により生成した物質の量を測定する工程
〔２〕Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質が、Ｄ−アミノ酸とαケトグルタル酸、又はＤ−グルタミン酸とピルビン酸である〔１〕記載のＰＬＰ濃度の測定方法。
〔３〕被検試料中で生成したＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼとＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質との反応により生じた物質が、ピルビン酸、αケトグルタル酸又はＤ−アミノ酸である〔２〕記載のＰＬＰ濃度の測定方法。
〔４〕Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼのアポ酵素が、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼに紫外線を照射することにより生成するものである〔１〕〜〔３〕のいずれかに記載のＰＬＰ濃度の測定方法。
〔５〕被検試料中のＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼが、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼのアポ酵素と被検試料中のＰＬＰにより生じるものである〔１〕〜〔４〕のいずれかに記載のＰＬＰ濃度の測定方法。
〔６〕Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼのアポ酵素と、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質を含有するＰＬＰ測定試薬。
〔７〕Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質が、Ｄ−アミノ酸とαケトグルタル酸、又はＤ−グルタミン酸とピルビン酸である〔６〕記載のＰＬＰ測定試薬。
【発明の効果】
【０００８】
本発明方法によれば、血液等の被検試料中のＰＬＰ濃度が、正確かつ迅速に測定できる。その結果、ビタミンＢ6欠乏状態を正確かつ迅速に判定することができ、心血管系疾患、がん、皮膚疾患、神経障害等の早期診断が可能となる。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】紫外線照射によるＤ−ＡＡＴの失活を示す図である。活性測定は生成するピルビン酸をサリシルアルデヒド法で測定することにより行った。
【図２】アポ化Ｄ−ＡＡＴを用いたＰＬＰの測定結果を示す。活性測定は生成するＤ−アラニンをＤ−ＡＡＯ法で測定することにより行った。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
本発明のＰＬＰ濃度測定方法は、次の工程（１）及び（２）を含むことを特徴とする。
（１）被検試料に、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼのアポ酵素と、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質とを添加する工程
（２）被検試料中で生成したＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼとＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質との反応により生成した物質の量を測定する工程
【００１１】
工程（１）に用いられる被検試料としては、哺乳類の血液、血漿、血清、臓器、母乳、糞尿及び、食品、輸液製剤等が挙げられ、特にヒトの血液、血漿、血清、臓器、母乳、糞尿が好ましい。
【００１２】
Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼのアポ酵素は、例えばＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼに紫外線を照射することにより容易に製造することができる。紫外線照射条件は、０℃で、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼ１mg／mLあたり、１〜１００Ｗ、１〜３０時間であることが好ましい。
Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼのアポ化は、タンパク変性剤である塩酸グアニジンや尿素処理では生じない。一方、フェニルヒドラジン添加によりＰＬＰをヒドラゾンとして除くことでアポ酵素を生じる。しかし生成するアポ酵素から過剰のフェニルヒドラジンや生成するヒドラゾンを除く必要の無い点で紫外線照射は有利であることが考えられる。
【００１３】
用いられるＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼとしては、微生物由来、植物由来でもよいが、微生物由来のものが入手の容易性、安定性の点で好ましい。さらに、好熱菌Bacillus属由来のＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼがより好ましい。
【００１４】
Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質としては、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼが、Ｄ−アミノ酸とαケトグルタル酸からピルビン酸とＤ−グルタミン酸を生成する反応と、その逆反応であるＤ−グルタミン酸とピルビン酸からαケトグルタル酸とＤ−アミノ酸を生成する反応を触媒する酵素であるから、これらの成分が基質になる。ここで、Ｄ−アミノ酸としては、Ｄ−アラニン及びＤ−アスパラギン酸等が挙げられる。
より具体的な組み合わせとしては、Ｄ−アラニンとαケトグルタル酸、ピルビン酸とＤ−グルタミン酸、Ｄ−アスパラギン酸とαケトグルタル酸が挙げられる。
【００１５】
工程（１）における前記アポ酵素の添加量は、特に限定されないが、被検試料中に１〜１０００μｇとなる量が好ましく、１０〜１００μｇとなる量がより好ましい。また、工程（１）における前記基質の添加量は、特に限定されないが、被検試料中に１〜１００mM Ｄ−グルタミン酸及び０．１〜１００mMピルビン酸となる量が好ましく、１〜１０mM Ｄ−グルタミン酸及び０．１〜１０mMピルビン酸となる量がより好ましい。また、工程（１）は、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼが作用する条件が好ましく、例えばpH８．０、３７℃の条件で行うのが好ましい。
【００１６】
工程（１）において、被検試料中にＰＬＰが存在すれば、前記アポ酵素は、ＰＬＰの濃度依存的に直ちにＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼ（活性型）に変換される。このためアポトリプトファナーゼを用いたＰＬＰ測定法の様に予め２０分間放置してＰＬＰをアポ酵素に結合させる操作は不要である。一方、被検試料中にＰＬＰが存在しなければ、前記アポ酵素は活性型には変換されない。
従って、工程（１）によれば、被検試料中のＰＬＰの濃度依存的にＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼが生成していることになる。
【００１７】
工程（１）において、前記アポ酵素と、前記基質になる物質とは、同時に添加してもよいが、まず前記アポ酵素を添加した後、１分以内に、より好ましくは直後に前記基質になる物質を添加するのが好ましい。
【００１８】
そこで、工程（２）において、被検試料中で生成したＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼと前記基質になる物質との反応により生成した物質の量（生成物質量）を測定すれば、被検試料中のＰＬＰ濃度が測定できる。
ここで、生成物質は、前記基質とＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼとの反応により生じるＤ−アミノ酸、ピルビン酸又はαケトグルタル酸であり、これらの生成物質量を測定すればよい。
ピルビン酸の測定には、サリシルアルデヒド法、すなわち強アルカリ下でサリシルアルデヒドを反応させて得られる生成物をＯＤ４８０で測定すればよい。また、Ｄ−アラニンの測定には、Ｄ−アミノ酸オキシダーゼ法、すなわちＤ−アラニンをＤ−アミノ酸オキシダーゼで酸化し、生成する過酸化水素を４−アミノアンチピリン法で測定すればよい。これらの測定法は、全て公知である。
【００１９】
生成物質量とＰＬＰ量とは、相関しているので、予め検量線を作成しておき、被検試料中のＰＬＰ濃度を計算することができる。
【００２０】
本発明のＰＬＰ濃度測定方法を実施するにあたっては、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼのアポ酵素と、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質とを含有するＰＬＰ測定試薬を使用するのが好ましい。ここで、Ｄ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼのアポ酵素及びＤ−アミノ酸アミノトランスフェラーゼの基質になる物質としては、いずれも前記のものが使用できる。当該試薬には、前記生成物質の測定試薬、緩衝剤、標準試薬、プロトコール（操作手順書等）等が含まれる。
【実施例】
【００２１】
次に実施例を挙げて本発明を更に詳細に説明する。
【００２２】
実施例１
（１）Ｄ−ＡＡＴの調製方法
好熱菌Bacillus sp.  ＹＭ−１株由来Ｄ−アミノ酸トランスアミナーゼ（Ｄ−ＡＡＴ）遺伝子発現プラスミド（Fuchikami Y. et al., J. Biochem., 124, 905-910 (1998)）でＢＬ２１を形質転換させ、得られた菌体をＬＢ培地で培養し、０．１mMイソプロピル−β−チオガラクトピラノシドを加えＤ−ＡＡＴを発現誘導させた。この菌体を超音波破砕後、遠心上清をＴＡＬＯＮ（Cobalt）レジンを用いたアフィニティクロマトグラフィーにより精製し、透析を行った後、限外濾過膜を用いてＤ−ＡＡＴを濃縮した。
【００２３】
（２）Ｄ−ＡＡＴのアポ化方法
精製した１２mg／mLのＤ−ＡＡＴ溶液０．１mLを１．５mLの遠心チューブに入れ、氷上で１５Ｗ紫外線ランプにより紫外線照射しアポ化させた。変性剤の影響は精製酵素に尿素、グアニジン塩酸塩及び、エタノールをそれぞれ７．２Ｍ、５．４Ｍ、９０％になるように添加し、４℃で１時間放置した。
【００２４】
（３）活性測定方法
Ｄ−ＡＡＴはＤ−アラニンとオキソグルタル酸を基質としてピルビン酸とＤ−グルタミン酸を生成する反応を可逆的に触媒する酵素である。このため二通りのＤ−ＡＡＴの活性測定方法が知られている。サリシルアルデヒド法では０．１Ｍ  Ｄ−アラニンと１０mM  α−ケトグルタル酸を基質として生成するピルビン酸を強アルカリ下でサリシルアルデヒドと反応させて得られる生成物をＯＤ４８０で測定した(Fuchikami Y. et al., J. Biochem., 124, 905-910 (1998))。Ｄ−アミノ酸オキシダーゼ法（ＤＡＡＯ法）では１０mMピルビン酸と４０mM  Ｄ−グルタミン酸を基質として生成するＤ−アラニンをＤ−アミノ酸オキシダーゼで酸化し、生成する過酸化水素を４−アミノアンチピリン法(Miyamoto K. et al., 衛生化学, 24, 175-181 (1978))で測定することで行った。
【００２５】
精製酵素はＳＤＳ−ＰＡＧＥで９５％以上の純度であった。Ｄ−ＡＡＴは塩酸グアニジンや尿素などの変性剤でほとんど失活しないものの、８時間の紫外線照射によりほぼ失活した（図１）。この失活した酵素に１mM  ＰＬＰを添加したところ、失われた活性は一部回復した。このことから紫外線照射による失活は紫外線照射によりＰＬＰが破壊されＤ−ＡＡＴの一部がアポ化したためであると考えられた。このアポ化Ｄ−ＡＡＴに既知濃度のＰＬＰを添加して活性測定したところ、その比活性と１０nMから４０nMまでのＰＬＰ濃度が直線関係にある検量線を作成することができた（図２）。この方法においてＰＬＰの検出限界値が健常人の血漿中ＰＬＰ濃度よりも低いため、ＰＬＰ血漿中濃度の迅速診断に応用できる。
【図１】
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【図２】
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