(57)【要約】      （修正有）【課題】機能性タンパク質、特に高分子量のタンパク質を細胞内に迅速、簡便に送達するためのリポソームキャリアの提供。【解決手段】連続した４〜２０のアルギニン残基からなるポリアルギニンペプチドが共有結合している脂質と特定のアミノ酸配列からなるＧＡＬＡペプチド及び／又はＲ−ＧＡＬＡペプチドが共有結合している脂質とを脂質膜の構成脂質として含み、かつ細胞内に送達されるべきタンパク質が外表面に非共有結合してなる脂質膜を有するリポソーム。該リポソームは機能性タンパク質を高い効率で細胞内に迅速に送達することを可能とし、細胞内に存在する生体分子を標的とした抗体を生理学的機能を保持したまま細胞内に送達することができる。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
連続した４〜２０のアルギニン残基からなるポリアルギニンペプチドが共有結合している脂質と配列番号１に示されるアミノ酸配列からなるＧＡＬＡペプチド及び／又は配列番号２で示されるアミノ酸配列からなるＲ−ＧＡＬＡペプチドが共有結合している脂質とを脂質膜の構成脂質として含み、かつ細胞内に送達されるべきタンパク質が外表面に非共有結合してなる脂質膜を有するリポソーム。
【請求項２】
前記ポリアルギニンペプチド、ＧＡＬＡペプチド及び／又はＲ−ＧＡＬＡペプチド及び細胞内に送達されるべきタンパク質が一の脂質膜の外表面に配置された、請求項１に記載のリポソーム。
【請求項３】
細胞内に送達されるべきタンパク質が細胞内タンパク質に対する特異抗体である、請求項1又は２に記載のリポソーム。
【請求項４】
一枚の脂質膜から構成される一枚膜リポソームである、請求項１〜３の何れかに記載のリポソーム。
【請求項５】
二枚又は三枚の脂質膜から構成される、請求項１〜３の何れかに記載のリポソーム。
【請求項６】
分子量が１ｋＤａを越えるタンパク質を細胞質または細胞内オルガネラに送達するための、請求項１〜５の何れかに記載のリポソーム。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、機能性タンパク質を細胞内に送達することのできるリポソームキャリアに関する。
【背景技術】
【０００２】
抗体などの分子量の大きい機能性タンパク質を細胞内に送達する技術は、商業的ならびに科学的な高い関心を集めている。特に、細胞内で生理的機能を発揮しているタンパク質に作用してその機能を制御する抗体の細胞内送達は、いわゆる抗体医薬のターゲット分子の選択肢を大幅に拡大し得る。また、標的とする細胞内生体分子と相互作用する機能性タンパク質の遺伝子組み換えに依らない細胞内送達は、分子生物学的研究において重要な知見を与え得る。
【０００３】
抗体などの機能性タンパク質を細胞内に送達する幾つかの方法が知られている。その一つは、抗体とタンパク質導入ドメイン（ＰＴＤｓ）または細胞貫通ペプチド（ＣＰＰｓ）などの機能性ペプチドとの組換え的又は化学的な共有結合である。例えば、カポジ繊維芽細胞増殖因子のシグナル配列に由来する１７アミノ酸残基のＰＴＤペプチドと共有結合した抗体は、繊維芽細胞内にデリバリーされる（非特許文献１）。しかし、こうした方法は用いられる材料の調製に時間を要し、また抗体の結合特性を変化させるリスクを伴う化学修飾を必要とする。
【０００４】
より簡便な方法は、細胞透過性を保持しつつタンパク質と作用して非共有的な複合体を形成する機能を有する改変ＣＰＰｓの利用である（非特許文献２）。この様なペプチドのいくつかは、商業的に入手可能なタンパク質細胞内送達用の試薬である。しかしながら、ＣＰＰ−タンパク質複合体のエンドソームにおける蓄積が幾つか報告されているように、エンドソームから細胞質へのタンパク質の不充分な脱出がＣＰＰｓ利用の問題である。また、ペプチドは生体内に広く存在するプロテアーゼによって分解されやすいという一般的な理解に基づくならば、培養細胞に適用したときと同様の送達効率を生体（動物）に適用したときに期待することは困難である。
【０００５】
失活されたセンダイウイルス粒子であるＨＶＪ−Ｅ（Ｈｅｍａｇｌｕｔｉｎａｔｉｎｇ  ｖｉｒｕｓ  ｏｆ  Ｊａｐａｎ  ｅｎｖｅｌｏｐｅ）の利用は、ペプチドの利用とは異なるアプローチである(非特許文献３)。しかし、ウイルスの利用は、それが失活されたものであったとしても依然として医薬への応用を困難なものとする。
【０００６】
非ウイルスベクターを利用したタンパク質送達の例の一つは、抗体と非共有結合して複合体を形成するカチオン性脂質の利用である。こうした脂質は例えば商品名「Ｌｉｐｏｄｉｎ−Ａｂ」「Ａｂ−ＤｅｌｉｖｅｒＩＮ」の下、研究用試薬として市販されている。しかし、ここで利用されるカチオン性脂質の多くは細胞或いは生体によって有毒であり得、従って機能性タンパク質の長期間投与を必要とする疾患の治療のための前記カチオン性脂質キャリアの適用は困難である。また、かかる脂質の利用もエンドソームから細胞質へのタンパク質の不充分な脱出という問題に苦しんでいる。さらに、細胞内にタンパク質が送達されるまでに数時間を要することもカチオン性脂質の利用を妨げる。
【０００７】
脂質を利用した一形態であるリポソームは、ｓｉＲＮＡなどの核酸を細胞内に送達するために生体に投与し得る、今日も開発が続けられている送達キャリアである。リポソームは脂質二重膜で閉鎖された内部空間を有する球状粒子であり、多くの場合、細胞内に送達される物質はその内部空間に封入される。送達される物質が脂質二重膜で封入されることにより、ヌクレアーゼその他の様々な生体成分からの攻撃を回避することができるためである。  しかし一方で封入された物質は、リポソームが細胞内にエンドサイトーシス等を経てエンドソームに取り込まれ、エンドソームから細胞質へとリポソームが脱出し、さらに脂質二重膜が何らかの要因で破壊されることによって細胞内へと放出される必要がある。このため、リポソームキャリアによる物質の細胞内送達は、エンドサイトーシス等による細胞内への取込、エンドソームから細胞質への脱出ならびに封入された物質の細胞内への放出の各段階の効率を高めなければならないという問題に直面する。機能性タンパク質を封入したリポソームを用いた細胞内への機能性タンパク質の送達もまた、この問題を解消しなければならない。
【０００８】
機能性タンパク質をリポソームの内部空間に封入する代わりに、リポソームの表面に静電的に結合させた細胞内タンパク質送達が報告されている（特許文献１）。この送達はしかし、機能性タンパク質にポリヌクレオチド等のリンカーを結合させる必要があり、作業が繁雑となる他、送達される機能性タンパク質が天然に存在するタンパク質ではなくなるという問題を伴う。
【０００９】
本発明者の一部は、ＧＡＬＡと称されるペプチド（以下、ＧＡＬＡペプチドと表す）に結合した脂質を膜構成脂質とするリポソームを構築し、これがエンドソームからの脱出能に優れ、封入物質を細胞質中へ放出させることができることを示した（特許文献２）。このリポソームはしかし、封入された物質の細胞内送達を目的としたものである。また、ＧＡＬＡペプチドに結合した脂質及びポリアルギニンペプチドに結合した脂質を構成脂質としたリポソームを構築し、係る構成によってリポソームが生体成分に対する抵抗性を備えることを報告している（特許文献３）。このリポソームもまた封入された物質の細胞内送達を目的としたものである。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１０】
【特許文献１】公表特許公報第２００３−５３１８２０号
【特許文献２】公開特許公報特開２００６−２８０３０号
【特許文献３】国際公開ＷＯ２００８／１０５１７８号パンフレット
【非特許文献】
【００１１】
【非特許文献１】Ｙ．Ｚｈａｏら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ、２００１年、第２５４巻、第１３７−１４５頁
【非特許文献２】Ｍ．Ｃ．Ｍｏｒｒｉｓら、Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈ．、２００１年、第１９巻、第１１７３−１１７６頁
【非特許文献３】Ｙ．Ｋｏｎｄｏら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ、２００８年、第３３２巻、第１０−１７頁
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１２】
本発明は、機能性タンパク質の細胞内送達効率に優れた、内部空間に機能性タンパク質を封入しないタイプのリポソームを提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１３】
本発明者は、ＧＡＬＡペプチドに結合した脂質及びポリアルギニンペプチドに結合した脂質を構成脂質としたリポソームの脂質膜外表面に細胞内に送達しようとする機能性タンパク質を非共有的に直接結合させたリポソームが、機能性タンパク質を高い効率で細胞内に送達することを見いだし、下記（１）〜（６）の各発明を完成させるに至った。
【００１４】
（１）連続した４〜２０のアルギニン残基からなるポリアルギニンペプチドが共有結合している脂質と配列番号１に示されるアミノ酸配列からなるＧＡＬＡペプチド及び／又は配列番号２で示されるアミノ酸配列からなるＲ−ＧＡＬＡペプチドが共有結合している脂質とを脂質膜の構成脂質として含み、かつ細胞内に送達されるべきタンパク質が外表面に非共有結合してなる脂質膜を有するリポソーム。
【００１５】
（２）前記ポリアルギニンペプチド、ＧＡＬＡペプチド及び／又はＲ−ＧＡＬＡペプチド及び細胞内に送達されるべきタンパク質が一の脂質膜の外表面に配置された、請求項１に記載のリポソーム。
【００１６】
（３）細胞内に送達されるべきタンパク質が細胞内タンパク質に対する特異抗体である、請求項1又は２に記載のリポソーム。
【００１７】
（４）一枚の脂質膜から構成される一枚膜リポソームである、請求項１〜３の何れかに記載のリポソーム。
【００１８】
（５）二枚又は三枚の脂質膜から構成される、請求項１〜３の何れかに記載のリポソーム。
【００１９】
（６）分子量が１ｋＤａを越えるタンパク質を細胞質または細胞内オルガネラに送達するための、請求項１〜５の何れかに記載のリポソーム。
【発明の効果】
【００２０】
本発明のリポソームの利用は、脂質膜の外表面に非共有的に結合した機能性タンパク質を高い効率で細胞内に迅速に送達することを可能にする。従って、細胞内に存在する生体分子を標的とした抗体を、あるいはかかる生体分子と相互作用する機能性タンパク質を、それらの生理学的機能を保持したまま細胞内に送達することができる。また本リポソームは、機能性タンパク質をリポソーム内部空間へ封入する工程を要さず、これは製造工程を簡素化するのみならず、封入工程で度々生じる機能性タンパク質の失活をも回避する。また、本発明のリポソームは投与から数十分程度で細胞内に機能性タンパク質を放出するという、迅速な細胞内送達を可能にする。
【図面の簡単な説明】
【００２１】
【図１】本発明のリポソームの細胞内への取り込み能を示すグラフである。
【図２】パネルＡはＲ８ペプチドを持たないコントロールキャリアであるＤＣＧＩｇＧを、パネルＢはＧＡＬＡペプチドを持たないコントロールキャリアであるＤＣＧ０ＲＩｇＧをそれぞれ取り込ませたＨｅＬａ細胞の共焦点顕微鏡写真である。
【図３】パネルＡはＧＡＬＡペプチドを持たないＤＣＧ０ＲＩｇＧを、パネルＢは本発明のリポソームＤＣＧ２ＲＩｇＧをそれぞれ取り込ませたＨｅＬａ細胞の共焦点顕微鏡写真である。
【図４】パネルＡはＩｇＧAlexa488封入型リポソームを、パネルＢは本発明のリポソームＤＣＧ２ＲＩｇＧをそれぞれ取り込ませたＨｅＬａ細胞の共焦点顕微鏡写真である。
【図５】本発明のリポソーム、市販のタンパク質導入試薬であるＰｒｏ−Ｊｅｃｔ（登録商標）及びＣｈａｒｉｏｔ（登録商標）の細胞内へのタンパク質導入効率を比較したグラフである。
【図６】本発明のリポソーム、市販のタンパク質導入試薬であるＰｒｏ−Ｊｅｃｔ（登録商標）及びＣｈａｒｉｏｔ（登録商標）をそれぞれ導入したＨｅＬａ細胞の共焦点顕微鏡写真である。
【図７】ＨｅＬａ細胞への本発明のリポソームによる抗体導入量の経時変化を示すグラフである。
【図８】本発明のリポソームを導入したＨｅＬａ細胞を各時間インキュベートしてフローサイトメトリー解析を行なったときの抗体取込量と細胞分布を示すグラフである。
【図９】本発明のリポソームによる抗体の細胞内送達を経時的に観察した共焦点顕微鏡写真である。
【図１０】本発明のリポソームを用いて抗ＮＰＣ抗体を導入したＨｅＬａ細胞の共焦点顕微鏡写真である。
【発明を実施するための形態】
【００２２】
本発明のリポソームは、連続した４〜２０のアルギニン残基からなるポリアルギニンペプチドが共有結合している脂質と配列番号１に示されるアミノ酸配列からなるペプチド及び／又は配列番号２で示されるアミノ酸配列からなるペプチドが共有結合している脂質とを脂質膜の構成脂質として含み、かつ細胞内に送達されるべきタンパク質が外表面に非共有結合してなる脂質膜を有するリポソームである。
【００２３】
（１）ポリアルギニンペプチド
本発明における連続した４〜２０のアルギニン残基からなるポリアルギニンペプチド（以下、ＰＡＰと表す）は、特許文献３（国際公開ＷＯ２００５／０３２５９３号パンフレット）に記載された「連続した複数個のアルギニン残基を含むペプチド」の一態様である。本発明において、アルギニン残基の個数は６〜１２個が好ましく、７〜１０個がより好ましい。
【００２４】
本発明のリポソームにおいて、ＰＡＰはリポソームの脂質膜を構成する脂質とそのＮ末端またはＣ末端で共有結合され、前記脂質が脂質膜に挿入されることでＰＡＰが脂質膜の外表面に露出するように配置される。なお、本発明のリポソームにおいて、ＰＡＰが脂質膜の外表面に露出するように配置されている限り、脂質膜の内表面に露出されたＰＡＰが共存しても差支えない。
【００２５】
ＰＡＰがそのＮ末端またはＣ末端で共有結合する脂質は、リポソームの脂質膜を構成し得る脂質であればよく、ステアリル基、パルミトイル基、オレイル基、ステアリル基、アラキドイル基等の炭素数１０〜２０の飽和又は不飽和の脂肪酸基又はコレステロール基を有する脂質、リン脂質、糖脂質又はステロール、ホスファチジルエタノールアミンやコレステロール等の長鎖脂肪族アルコール、ポリオキシプロピレンアルキル、グリセリン脂肪酸エステル等を例示することができる。好ましい脂質はステアリン酸及びコレステロールである。
【００２６】
（２）ＧＡＬＡペプチド
本発明におけるＧＡＬＡペプチドは、Ｔ．Ｋａｋｕｄｏらの非特許文献（Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、２００４年、第４３巻、第５６１８−５６２３頁）に記載されたアミノ酸配列からなる機能性ペプチドである。ＧＡＬＡペプチドは、これを脂質膜の表面に有するリポソーム同士の脂質膜融合を酸性条件下で促進させる機能を有している。またＧＡＬＡペプチドは、ＧＡＬＡペプチドを脂質膜の表面に有するリポソームがエンドサイトーシスによってエンドソームに取り込まれた後、細胞質画分にリポソームの封入物を放出させる機能があるとされるペプチドである。なお、ＧＡＬＡペプチドのアミノ酸配列をＣ末端側からＮ末端側へと逆転させたアミノ酸配列からなるペプチドであるＲ−ＧＡＬＡペプチドもＧＡＬＡペプチドと同様の機能を有しており、本発明のリポソームではＧＡＬＡペプチドはＲ−ＧＡＬＡペプチドと交換可能にまたは同時に利用することができる。以下、ＧＡＬＡペプチドを例として説明する。
【００２７】
またＧＡＬＡペプチドのアミノ酸配列において欠失、置換又は付加されるアミノ酸の個数及び位置は、ペプチド（ｂ）が酸性条件下において脂質膜同士を融合できる限り特に限定されるものではなく、アミノ酸の個数は１又は複数個、好ましくは１又は数個であり、その具体的な範囲は、欠失に関しては通常１〜４個、好ましくは１〜３個、さらに好ましくは１〜２個であり、置換に関しては通常１〜６個、好ましくは１〜４個、さらに好ましくは１〜２個であり、付加に関しては通常１〜１２個、好ましくは１〜６個、さらに好ましくは１〜４個である。
【００２８】
本発明のリポソームにおいて、ＧＡＬＡペプチドはリポソームの脂質膜を構成する脂質とそのＮ末端またはＣ末端で共有結合され、前記脂質が脂質膜に挿入されることでＧＡＬＡペプチドが脂質膜の外表面に露出するように配置される。なお、本発明のリポソームにおいて、ＧＡＬＡペプチドが脂質膜の外表面に露出するように配置されている限り、脂質膜の内表面に露出されたＧＡＬＡペプチドが共存しても差支えない。
【００２９】
ＧＡＬＡペプチドがそのＮ末端またはＣ末端で共有結合する脂質は、リポソームの脂質膜を構成し得る脂質であればよく、ステアリル基、パルミトイル基、オレイル基、ステアリル基、アラキドイル基等の炭素数１０〜２０の飽和又は不飽和の脂肪酸基又はコレステロール基を有する脂質、リン脂質、糖脂質又はステロール、ホスファチジルエタノールアミンやコレステロール等の長鎖脂肪族アルコール、ポリオキシプロピレンアルキル、グリセリン脂肪酸エステル等を例示することができる。好ましい脂質はステアリン酸及びコレステロールである。なお、ＰＡＰとＧＡＬＡペプチドはいずれも、脂質等と共有結合させるためにシステインその他のアミノ酸残基または適当な官能基をその末端に付加されることがあり、この様な末端に基が付加されたペプチドも依然としてＰＡＰまたはＧＡＬＡペプチドに包含される。
【００３０】
（３）機能性タンパク質
本発明のリポソームを構成する脂質膜の外表面に非共有結合する機能性タンパク質は、細胞内部に送達することを目的とした、何らかの生理活性を有するタンパク質であればよい。元々細胞内に局在することで何らかの機能を発揮している細胞内タンパク質は、その一例である。この様な細胞内タンパク質を遺伝子操作に依らずに細胞の中に送り込むことができれば、細胞の分子生物学的研究に有効な研究ツールとなる。特に宿主ベクター系の確立が十分ではない細胞において有効である。
【００３１】
また、細胞内タンパク質と相互作用することでその細胞内タンパク質の機能を調節することが期待されるタンパク質も、本発明のリポソームによって細胞内に送達することを目的としたタンパク質の好ましい例である。特定のアミノ酸配列を認識して加水分解する特異的なプロテアーゼや特定の塩基配列を認識して結合する核酸結合酵素などはその例である。特に好ましい例は、細胞内タンパク質と特異的に結合する抗体である。抗体はモノクローナル抗体であることが好ましく、Ｆｃ領域が保持されたモノクローナル抗体であることが特に好ましい。なお、ＩｇＧやＩｇＭ等の抗体の種類や特異性に結合する対象となる細胞内タンパク質の種類には特に制限はない。また、細胞内に送達することを目的とした機能性タンパク質は、細胞外から細胞質内には自発的に移動することが困難なタンパク質であればよく、その分子量は１ｋＤａ（キロダルトン）以上が考えられる。特に抗体等の１００ｋＤａを越える巨大タンパク質や、２分子以上のタンパク質から形成されるタンパク質複合体が、本発明にいう細胞内に送達しようとする機能性タンパク質の好ましい例である。
【００３２】
（４）リポソームの構造
本発明のリポソームは、脂質二重層で構成される脂質膜を有する閉鎖小胞である限り、脂質膜の数は特に限定されない。多重膜リポソーム（ＭＬＶ、Ｍｕｌｔｉ  ｌａｍｅｌｌａ  ｖｅｓｉｃｌｅ）であってもよいし、ＳＵＶ（ｓｍａｌｌ  ｕｎｉｌａｍｅｌｌａ  ｖｅｓｉｃｌｅ）、ＬＵＶ（ｌａｒｇｅ  ｕｎｉｌａｍｅｌｌａ  ｖｅｓｉｃｌｅ）またはＧＵＶ（ｇｉａｎｔ  ｕｎｉｌａｍｅｌｌａ  ｖｅｓｉｃｌｅ）等の一枚膜リポソームであってもよい。
【００３３】
一枚膜リポソームの場合、ＰＡＰ、ＧＡＬＡペプチド及び細胞内に送達されるべき機能性タンパク質は一枚膜の外表面に配置される。一方、ＭＬＶの場合、ＰＡＰ、ＧＡＬＡペプチド及び細胞内に送達されるべき機能性タンパク質は各脂質膜の外表面に配置されていてもよく、何れかの脂質膜の外表面に選択的に配置されていてもよい。さらにＰＡＰ、ＧＡＬＡペプチド及び細胞内に送達されるべき機能性タンパク質は同一の脂質膜の外表面に配置されていてもよく、またＰＡＰ及びＧＡＬＡペプチドと機能性タンパク質とは異なる脂質膜の外表面に配置されてもよい。なお、ＭＬＶの場合、ＰＡＰとＧＡＬＡペプチドは同じ脂質膜の外表面に配置されることが好ましい。またＭＬＶの場合、各脂質膜特に最外側の脂質膜はポリアルキレングリコールなどの親水性ポリマー、標的組織や標的細胞に対する特異リガンドその他のリポソームキャリアに利用可能な他の機能性物質で修飾されていてもよい。
【００３４】
本発明におけるＭＬＶの一態様は、ＰＡＰ、ＧＡＬＡペプチド及び細胞内に送達されるべき機能性タンパク質が外表面に配置された内側の脂質膜と、これを取り囲む外側の脂質膜とからなる二枚膜リポソームである。また別の態様は、細胞内に送達されるべき機能性タンパク質が脂質膜の外表面に配置された内側の脂質膜と、これを取り囲む、ＰＡＰ及びＧＡＬＡペプチドが外表面に配置された外側の脂質膜とからなる二枚膜リポソームである。さらに別の態様は、細胞内に送達されるべき機能性タンパク質が脂質膜の外表面に配置された最内側の脂質膜と、前記最内側の脂質膜を取り囲む、当該機能性タンパク質と同種の或いは異なる機能性タンパク質が脂質膜の外表面に配置された中間の脂質膜と、これをさらに取り囲む、ＰＡＰ及びＧＡＬＡペプチドが外表面に配置された最外側の脂質膜とからなる三枚膜リポソームも、本発明におけるＭＬＶの一態様である。ただし、本発明のリポソームはこれらの態様には限定されない。
【００３５】
本発明のリポソームの脂質膜で閉鎖された内部空間には、脂質膜の表面に非共有的に結合させた機能性タンパク質とは別の、細胞内に送達しようとする物質を封入してもよい。目的物質の種類は特に限定されるものではなく、例えば、薬物、核酸、ペプチド、タンパク質、糖又はこれらの複合体等が挙げられ、診断、治療等の目的に応じて適宜選択することができる。なお、「核酸」には、ＤＮＡ又はＲＮＡに加え、これらの類似体又は誘導体（例えば、ペプチド核酸（ＰＮＡ）、ホスホロチオエートＤＮＡ等）が含まれる。また、核酸は一本鎖又は二本鎖のいずれであってもよいし、線状又は環状のいずれであってもよい。
【００３６】
本発明のリポソームのサイズは特に限定されるものではないが、直径５０〜８００ｎｍであることが好ましく、直径１００〜２００ｎｍであることがさらに好ましい。
【００３７】
（５）脂質膜の構成成分
本発明のリポソームの脂質膜を構成する脂質の種類は特に限定されるものではないが、ＰＡＰ又はＧＡＬＡペプチドが共有結合している脂質を含め、リン脂質、糖脂質、ステロール、長鎖脂肪族アルコールまたはグリセリン脂肪酸エステルなどを利用することができる。
【００３８】
リン脂質としては、例えば、ホスファチジルコリン（例えば、ジオレオイルホスファチジルコリン、ジラウロイルホスファチジルコリン、ジミリストイルホスファチジルコリン、ジパルミトイルホスファチジルコリン、ジステアロイルホスファチジルコリンなど）、ホスファチジルグリセロール（例えば、ジオレオイルホスファチジルグリセロール、ジラウロイルホスファチジルグリセロール、ジミリストイルホスファチジルグリセロール、ジパルミトイルホスファチジルグリセロール、ジステアロイルホスファチジルグリセロールなど）、ホスファチジルエタノールアミン（例えば、ジオレオイルホスファチジルエタノールアミン、ジラウロイルホスファチジルエタノールアミン、ジミリストイルホスファチジルエタノールアミン、ジパルミトイルホスファチジルエタノールアミン、ジステアロイルホスファチジルエタノールアミン（ＤＳＰＥ）、ジオレオイルグリセロフォスフォエタノールアミン（ＤＯＰＥ）など）、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジン酸、カルジオリピン、またはこれらの水素添加物、卵黄、大豆その他の動植物に由来する天然脂質（例えば、卵黄レシチン、大豆レシチンなど）などを挙げることができ、これらのうちの１種または２種以上を用いることができる。前記リン脂質は、脂質膜構造体の主要な構成成分として用いられる。その使用量は、脂質膜構造体の総脂質に対する量として１０〜１００％（モル比）であることが好ましく、５０〜８０％（モル比）であることがさらに好ましいが、これらの値に特に限定されるものではない。
【００３９】
糖脂質としては、スフィンゴミエリン、スルホキシリボシルグリセリド、ジグリコシルジグリセリド、ジガラクトシルジグリセリド、ガラクトシルジグリセリド、グリコシルジグリセリドなどのグリセロ糖脂質、ガラクトシルセレブロシド、ラクトシルセレブロシド、ガングリオシドなどのスフィンゴ糖脂質などを挙げることができ、これらの１種または２種以上を用いることができる。
【００４０】
ステロールとしては、コレステロール、コレステロールコハク酸、ラノステロール、ジヒドロラノステロール、デスモステロール、ジヒドロコレステロールなどの動物由来のステロール、スチグマステロール、シトステロール、カンペステロール、ブラシカステロールなどの植物由来のステロール（フィトステロール）、チモステロール、エルゴステロールなどの微生物由来のステロールなどを挙げることができ、これらの１種または２種以上を用いることができる。これらのステロールは、一般には脂質二重層を物理的または化学的に安定させたり、膜の流動性を調節したりするために用いることができる。その使用量は、脂質膜構造体の総脂質に対する量として５〜４０％（モル比）であることが好ましく、１０〜３０％（モル比）であることがさらに好ましいが、これらの値に特に限定されるものでない。
【００４１】
長鎖脂肪酸または長鎖脂肪族アルコールとしては、炭素数１０〜２０の脂肪酸またはそのアルコールを使用することができる。そのような長鎖脂肪酸または長鎖脂肪族アルコールとしては、例えば、パルミチン酸、ステアリン酸、ラウリン酸、ミリスチン酸、ペンタデシル酸、アラキジン酸、マルガリン酸、ツベルクロステアリン酸などの飽和脂肪酸、パルミトレイン酸、オレイン酸、アラキドン酸、バクセン酸、リノール酸、リノレン酸、アラキドン酸、エレオステアリン酸などの不飽和脂肪酸、オレイルアルコール、ステアリルアルコール、ラウリルアルコール、ミリスチルアルコール、セチルアルコール、リノリルアルコールなどを挙げることができ、これらの１種または２種以上を用いることができる。その使用量は、脂質膜構造体の総脂質に対する量として５〜４０％（モル比）であることが好ましく、１０〜３０％（モル比）であることがさらに好ましいが、これらの値に特に限定されるものでない。
【００４２】
グリセリン脂肪酸エステルとしては、モノアシルグリセリド、ジアシルグリセリド、トリアシルグリセリドを挙げることができ、これらの１種または２種以上を用いることができる。その使用量は、脂質膜構造体の総脂質に対する量として５〜４０％（モル比）であることが好ましく、１０〜３０％（モル比）であることがさらに好ましいが、これらの値に特に限定されるものでない。
【００４３】
カチオン性脂質としては、上述した脂質の他、例えば、ジオクタデシルジメチルアンモニウムクロライド（ｄｉｏｃｔａｄｅｃｙｌｄｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｃｈｌｏｒｉｄｅ、ＤＯＤＡＣ）、Ｎ−（２，３−オレイルオキシ）プロピル−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアンモニウム（Ｎ−（２，３−ｄｉｏｌｅｙｌｏｘｙ）ｐｒｏｐｙｌ−Ｎ，Ｎ，Ｎ−ｔｒｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ、ＤＯＴＭＡ）、ジドデシルアンモニウムブロミド（ｄｉｄｏｄｅｃｙｌａｍｍｏｎｉｕｍ ｂｒｏｍｉｄｅ、ＤＤＡＢ）、１，２−ジオレイルオキシ−３−トリメチルアンモニウムプロパン（１，２−ｄｉｏｌｅｏｙｌｏｘｙ−３−ｔｒｉｍｅｔｈｙｌａｍｍｏｎｉｏ ｐｒｏｐａｎｅ、ＤＯＴＡＰ）、３β−Ｎ−（Ｎ’，Ｎ’−ジメチルアミノエタン）カルバモールコレステロール（３β−Ｎ−（Ｎ’，Ｎ’，−ｄｉｍｅｔｈｙｌ−ａｍｉｎｏｅｔｈａｎｅ）−ｃａｒｂａｍｏｌ ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｏｌ、ＤＣ−Ｃｈｏｌ）、１，２−ジミリストイルオキシプロピル−３−ジメチルヒドロキシエチルアンモニウム（１，２−ｄｉｍｙｒｉｓｔｏｙｌｏｘｙｐｒｏｐｙｌ−３−ｄｉｍｅｔｈｙｌｈｙｄｒｏｘｙｅｔｈｙｌ ａｍｍｏｎｉｕｍ、ＤＭＲＩＥ）、２，３−ジオレイルオキシ−Ｎ−［２（スペルミンカルボキサミド）エチル］−Ｎ，Ｎ−ジメチル−１−プロパンアンモニウムトリフルオロアセテート（２，３−ｄｉｏｌｅｙｌｏｘｙ−Ｎ−［２（ｓｐｅｒｍｉｎｅｃａｒｂｏｘａｍｉｄｏ）ｅｔｈｙｌ］−Ｎ，Ｎ−ｄｉｍｅｔｈｙｌ−１−ｐｒｏｐａｎａｍｉｎｕｍ ｔｒｉｆｌｕｏｒｏａｃｅｔａｔｅ、ＤＯＳＰＡ）などを挙げることができ、これらの１種または２種以上を用いることができる。なお、カチオン性脂質は細胞毒性を有するので、本発明のリポソームの細胞毒性を低減させる点からは、脂質二重層に含まれるカチオン性脂質の量を出来る限り少なくすることが好ましく、脂質二重層を構成する総脂質に対するカチオン性脂質の割合は０〜４０％（モル比）であることが好ましく、０〜２０％（モル比）であることがさらに好ましい。
【００４４】
また、中性脂質としては、上述した脂質の他、例えば、ジアシルホスファチジルコリン、ジアシルホスファチジルエタノールアミン、セラミドなどを挙げることができ、これらの１種または２種以上を用いることができる。また、アニオン性脂質としては、上述した脂質の他、例えば、ジアシルホスファチジルセリン、ジアシルホスファチジン酸、Ｎ−スクシニルホスファチジルエタノールアミン（Ｎ−スクシニルＰＥ）、ホスファチジルエチレングリコールなどを挙げることができ、これらの１種または２種以上を用いることができる。
【００４５】
脂質は必須のリポソーム膜成分であり、その配合量はリポソーム膜構成物質の総配合量の通常５０〜１００％（モル比）、好ましくは６５〜１００％（モル比）、さらに好ましくは７５〜１００％（モル比）である。
【００４６】
この範囲において  ＰＡＰまたはＧＡＬＡペプチドと共有結合した脂質の占める割合Ｐは、脂質膜を構成する脂質の総量を１００（％）とした場合、５ｍｏｌ％≦Ｐ≦２５ｍｏｌ％が好ましい。また本発明のリポソームの表面に存在するＰＡＰ及びＧＡＬＡペプチドの量は、リポソームの脂質膜を構成する総脂質に対してＰＡＰが通常５〜３０モル％、好ましくは１０〜２５モル％、さらに好ましくは１５〜２０モル％、ＧＡＬＡペプチドが通常０．５〜３モル％、好ましくは１．０〜２．５モル％、さらに好ましくは１．５〜２モル％である。
【００４７】
本発明のリポソームは、脂質膜特にＭＬＶの場合にはその最外側の脂質膜の表面を親水性ポリマーで修飾してもよい。親水性ポリマー種類は、生体に投与されたときのリポソームの血中滞留性を向上させることができる限り特に限定されるものではない。その様な親水性ポリマーの例は、ポリアルキレングリコール（例えば、ポリエチレングリコール、ポリプロピレングリコール、ポリテトラメチレングリコール、ポリヘキサメチレングリコール等）、デキストラン、プルラン、フィコール、ポリビニルアルコール、スチレン−無水マレイン酸交互共重合体、ジビニルエーテル−無水マレイン酸交互共重合体、アミロース、アミロペクチン、キトサン、マンナン、シクロデキストリン、ペクチン、カラギーナン等である。中でもポリアルキレングリコールが好ましく、ポリエチレングリコールがさらに好ましい。ポリアルキレングリコールの好ましい分子量は、通常３００〜１００００、特に好ましくは５００〜１００００、さらに好ましくは１０００〜５０００である。
【００４８】
また本発明のリポソームがＭＬＶである場合、その最外膜の表面上に機能性タンパク質を送達しようとする組織又は細胞と特異的に結合できる物質を配置してもよい。その様な物質の種類は特に限定されるものではないが、例えば、トラスフェリン、インシュリン、葉酸、ヒアルロン酸、細胞表面に存在する生体分子に対する抗体又はその断片、糖鎖、成長因子、アポリポタンパク質等が挙げられる。
【００４９】
本発明において、脂質膜には上述した脂質の他に、トコフェロール、没食子酸プロピル、パルミチン酸アスコルビル、ブチル化ヒドロキシトルエンなどの抗酸化剤、ステアリルアミン、オレイルアミン等の飽和又は不飽和脂肪族アミン；ジオレオイルトリメチルアンモニウムプロパン等の飽和又は不飽和カチオン性合成脂質等の正荷電を付与する荷電物質、ジセチルホスフェート、コレステリルヘミスクシネート、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジン酸等の負電荷を付与する荷電物質、膜安定化剤、膜タンパク質等を含有させることができ、その含有量は適宜調節することができる。
【００５０】
荷電物質は、リポソーム膜に正荷電又は負荷電を付与するために添加できる任意のリポソーム膜成分であり、その配合量は、リポソーム膜構成物質の総配合量の通常０〜５０％（モル比）、好ましくは０〜３０％（モル比）、さらに好ましくは０〜２０％（モル比）である。
【００５１】
（６）リポソームの作製方法
本発明のリポソームは、ＰＡＰが共有結合している脂質とＧＡＬＡペプチドが共有結合している脂質とを構成脂質とした脂質膜を有するキャリアリポソームを作製し、このキャリアリポソームと細胞内に送達されるべき機能性タンパク質とを適当な緩衝液中で混合することで作製することができる。
【００５２】
キャリアリポソームは、例えば、水和法、超音波処理法、エタノール注入法、エーテル注入法、逆相蒸発法、界面活性剤法、凍結・融解法などの公知の方法を用いて作製することができる。例えば水和法の場合、ＰＡＰまたはＧＡＬＡペプチドと結合した脂質、さらにはその他の脂質や先に記載した脂質膜に含まれる任意成分を有機溶剤に溶解した後、有機溶剤を蒸発除去することにより脂質膜を得た後、脂質膜を水和させ、攪拌または超音波処理することにより、本発明に係るペプチドと結合した脂質を膜の構成成分として含む脂質膜構造体を製造することができる。
【００５３】
また本発明におけるキャリアリポソームは、上述した脂質やその他の脂質を有機溶剤に溶解した後、有機溶剤を蒸発除去することにより脂質膜を得、この脂質膜を水和させ、攪拌または超音波処理することによりリポソームを製造し、次いで、このリポソームにＰＡＰ又はＧＡＬＡペプチドが共有結合した脂質を添加することにより、リポソームの外表面にこれらのペプチドを導入して作製することもできる。
【００５４】
なお、所定のポアサイズのフィルターを通過させることにより、一定の粒度分布を持った脂質膜構造体を得ることができる。
【００５５】
有機溶媒として、例えば、ペンタン、ヘキサン、ヘプタン、シクロヘキサンなどの炭化水素類、塩化メチレン、クロロホルムなどのハロゲン化炭化水素類、ベンゼン、トルエンなどの芳香族炭化水素類、メタノール、エタノールなどの低級アルコール類、酢酸メチル、酢酸エチルなどのエステル類、アセトンなどのケトン類などを、単独でまたは２種以上を組み合わせて使用することができる。
【００５６】
なお、脂質膜で閉鎖された内部空間への物質の封入は、当該物質が水溶性である場合には前記キャリアリポソームの作製において脂質膜を水和する際に使用される水性溶媒に前記物質を添加することで行なう事ができる。また、前記物質が脂溶性である場合には、前記キャリアリポソームの作製において使用される有機溶剤に前記物質を添加することによってリポソームの脂質膜に封入することができる。
【００５７】
この様にして作製されたキャリアリポソームと機能性タンパク質とを適当な緩衝液中で混合して、本発明のリポソームは作製される。ここで緩衝液は機能性タンパク質に応じてその活性の保持に適した種類の緩衝液を選択して使用すればよい。
【００５８】
リポソームの内部空間への機能性タンパク質の封入は、キャリアリポソームを水和法で作製する際に機能性タンパク質も超音波処理に暴露して行なうことを必要とし、タンパク質の失活というリスクを伴う。本発明はこの機能性タンパク質の超音波処理への暴露を必要とせず、このことは本願発明の利点の一つである。
【００５９】
またキャリアリポソームと機能性タンパク質との混合は任意の混合比率で行なうことができるが、キャリアリポソームの脂質：機能性タンパク質＝１：０．１〜５の範囲、好ましくは１：１で混合することが好ましい。リポソームの内部空間への機能性タンパク質の封入は、水和の際に大量の抗体溶液を必要とするが、本発明ではキャリアリポソームと混合する機能性タンパク質のほぼ７０％が脂質膜表面に結合するなど、コストならびに簡便性の点で有利である。
【００６０】
作製された本発明のリポソームは、分散液の状態で保存、使用することができる。分散溶媒としては、例えば、生理食塩水、リン酸緩衝液，クエン緩衝液，酢酸緩衝液等の緩衝液を使用することができる。分散液には、例えば、糖類、多価アルコール、水溶性高分子、非イオン界面活性剤、抗酸化剤、ｐＨ調節剤、水和促進剤等の添加剤を添加して使用してもよい。また本発明のリポソームは、使用する直前に乾燥（例えば、凍結乾燥、噴霧乾燥等）させたキャリアリポソームと機能性タンパク質とを混合して作製してもよい。
【００６１】
本発明のリポソームを投与することができる生物種は特に限定されるものではなく、動物、植物、微生物等のいずれであってもよいが、動物であることが好ましく、哺乳動物であることがさらに好ましい。哺乳動物としては、例えば、ヒト、サル、ウシ、ヒツジ、ヤギ、ウマ、ブタ、ウサギ、イヌ、ネコ、ラット、マウス、モルモット等が挙げられる。
【００６２】
本発明のリポソームは、インビボ（生体への投与を含む）及びインビトロのいずれにおいても使用することもできる。本発明のリポソームを生体に投与する経路としては、例えば、静脈、腹腔内、皮下、経鼻等の非経口投与が挙げられ、投与量及び投与回数は、細胞内に相対されるべき機能性タンパク質の種類や量、投与目的等に応じて適宜調節することができる。
以下、実施例及び比較例に基づいて本発明を非限定的に説明する。
【実施例】
【００６３】
＜実施例１＞  ＩｇＧ抗体を結合させたリポソームの作製
（１）キャリアリポソームの作製
前記非特許文献１に記載の方法に準じて、ペプチド合成機を用いて配列番号１に示されるアミノ酸配列からなるＧＡＬＡペプチドのＣ末端アミド体を化学合成及び精製し、次いでコレステロールと反応させてコレステリル化したＧＡＬＡペプチド（Ｃｈｏｌ−ＧＡＬＡ）を作製した。同様に、前記非特許文献１に記載の方法に準じて、ペプチド合成機を用いて８つのアルギニン残基からなるオクタアルギニンペプチド（Ｒ８）のＣ末端アミド体を化学合成及び精製し、ステアリン酸と反応させてステアリル化したオクタアルギニンペプチド（ＳＴＲ−Ｒ８）を作製した。
【００６４】
０．５５ｍＭのローダミンで修飾されたＤＯＰＥ／ＰＡ（モル比９：２）を４本のガラス試験管に分取し、０ｍｏｌ％、１ｍｏｌ％、２ｍｏｌ％及び３ｍｏｌ％となるようにＣｈｏｌ−ＧＡＬＡをそれぞれ添加し、さらにエタノール：クロロホルム＝１：１混合液を加えて溶解した（全量２５０μＬ）。各ガラス試験管に窒素ガスを吹き付けて混合脂質を蒸発乾固させた。ここに２５０μＬの１０ｍＭ  ＨＥＰＥＳ緩衝液ｐＨ７．４を添加して１０分間水和させた後、水槽型超音波発生装置で超音波処理を行うことで多重膜リポソームを作製した。同様の操作を０．５５ｍＭのＤＯＰＥ/ＣＨＥＭＳ（モル比９：２）について繰り返した。
【００６５】
各多重膜リポソーム０．５５ｍＭに全脂質に対して２０モル％となる量のＳＴＲ−Ｒ８を添加した後、室温で３０分間インキュベートして、Ｒ８ペプチドとＧＡＬＡペプチドとが最外側の脂質膜の外表面に配置されたキャリアリポソームを得た。
【００６６】
（２）ＩｇＧ抗体を非共有結合させたリポソームの作製
ヤギＩｇＧ（Ｒｏｃｋｌａｎｄ社）をＡｌｅｘａＦｌｕｏｒ（登録商標）４８８  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｌａｂｅｌｉｎｇ  Ｋｉｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）で推奨プロトコルに従い標識して、Ａｌｅｘａ−４８８標識ＩｇＧ抗体（以下、ＩｇＧAlexa488と表す）を得た。（１）で得た各キャリアリポソーム（脂質０．５５ｍＭ）と１０ｍＭのＨＥＰＥＳ緩衝液に溶解した０．１２５ｍｇ/ｍＬのＩｇＧAlexa488とを体積比１：１で混合し、室温で１５分間インキュベートして、最外側の脂質膜の外表面にＩｇＧAlexa488が非共有結合したリポソームを得た。各リポソームのサイズ、ＰＤＩ及びζ（ゼータ）電位をＺｅｔａｓｉｚｅｒ  Ｎａｎｏ  ＺＳ  ＺＥＮ３６００（ＭＡＬＶＥＲＮ  Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ社）を用いて測定した結果を表１に示す。
【００６７】
【表１】
2015110522.tif 000002
【００６８】
各リポソームの構成は次の様に表すことができる。
【００６９】
ＤＰＧ０ＲＩｇＧ
ＤＯＰＥ：ＰＡ：Ｃｈｏｌ−ＧＡＬＡ：ＳＴＲ−Ｒ８＝９：２：０：２．２（モル比）の脂質組成を有し、最外側の脂質膜の外表面にＰＡＰであるＲ８およびＩｇＧAlexa488を有している多重膜リポソーム
【００７０】
ＤＰＧ１ＲＩｇＧ
ＤＯＰＥ：ＰＡ：Ｃｈｏｌ−ＧＡＬＡ：ＳＴＲ−Ｒ８＝９：２：０．１１：２．２（モル比）の脂質組成を有し、最外側の脂質膜の外表面にＰＡＰであるＲ８、ＧＡＬＡペプチド及びＩｇＧAlexa488を有している多重膜リポソーム
【００７１】
ＤＰＧ２ＲＩｇＧ
ＤＯＰＥ：ＰＡ：Ｃｈｏｌ−ＧＡＬＡ：ＳＴＲ−Ｒ８＝９：２：０．２２：２．２（モル比）の脂質組成を有し、最外側の脂質膜の外表面にＰＡＰであるＲ８、ＧＡＬＡペプチド及びＩｇＧAlexa488を有している多重膜リポソーム
【００７２】
ＤＰＧ３ＲＩｇＧ
ＤＯＰＥ：ＰＡ：Ｃｈｏｌ−ＧＡＬＡ：ＳＴＲ−Ｒ８＝９：２：０．３３：２．２（モル比）の脂質組成を有し、最外側の脂質膜の外表面にＰＡＰであるＲ８、ＧＡＬＡペプチド及びＩｇＧAlexa488を有している多重膜リポソーム
【００７３】
ＤＣＧ０ＲＩｇＧ
ＤＯＰＥ：ＣＨＥＭＳ：Ｃｈｏｌ−ＧＡＬＡ：ＳＴＲ−Ｒ８＝９：２：０：２．２（モル比）の脂質組成を有し、最外側の脂質膜の外表面にＰＡＰであるＲ８及びＩｇＧAlexa488を有している多重膜リポソーム
【００７４】
ＤＣＧ１ＲＩｇＧ
ＤＯＰＥ：ＣＨＥＭＳ：Ｃｈｏｌ−ＧＡＬＡ：ＳＴＲ−Ｒ８＝９：２：０．１１：２．２（モル比）の脂質組成を有し、最外側の脂質膜の外表面にＰＡＰであるＲ８、ＧＡＬＡペプチド及びＩｇＧAlexa488を有している多重膜リポソーム
【００７５】
ＤＣＧ２ＲＩｇＧ
ＤＯＰＥ：ＣＨＥＭＳ：Ｃｈｏｌ−ＧＡＬＡ：ＳＴＲ−Ｒ８＝９：２：０．２２：２．２（モル比）の脂質組成を有し、最外側の脂質膜の外表面にＰＡＰであるＲ８、ＧＡＬＡペプチド及びＩｇＧAlexa488を有している多重膜リポソーム
【００７６】
ＤＣＧ３ＲＩｇＧ
ＤＯＰＥ：ＣＨＥＭＳ：Ｃｈｏｌ−ＧＡＬＡ：ＳＴＲ−Ｒ８＝９：２：０．３３：２．２（モル比）の脂質組成を有し、最外側の脂質膜の外表面にＰＡＰであるＲ８、ＧＡＬＡペプチド及びＩｇＧAlexa488を有している多重膜リポソーム
【００７７】
＜実施例２＞リポソームのＨｅＬａ細胞内への取込と抗体の細胞内局在性の確認
（１）取込効率の確認
６ウェルプレート中のＨｅＬａ細胞２×１０５個／Ｄ’ＭＥＭ培地に実施例１（２）で作製したリポソーム（終濃度６．２５μｇ／ｍＬ  ＩｇＧAlexa488、Ｄ’ＭＥＭ、ＦＢＳ無し）を添加し、３７℃で１０分間、１５分間、３０分間、４５分間、６０分間または１２０分間インキュベートした。２０Ｕ／ｍＬの冷ヘパリン溶液で、ＦＢＳを含むＤ’ＭＥＭ培地で、再度２０Ｕ／ｍＬの冷ヘパリン溶液でそれぞれ細胞を洗浄した。洗浄後の細胞について、ＦＡＣＳａｎおよびＣｅｌｌＱｕｅｓｔソフトウェア（いずれもＢｅｃｔｏｎ
Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ社）を用いてフローサイトメトリー解析を行なった。解析は各細胞の全細胞数が１０，０００個について、２回行なった。その結果を図１に示す。
【００７８】
最外側の脂質膜の外表面にＧＡＬＡペプチドを共存させることで、その容量依存的にリポソームの細胞内への取込効率が若干ながら低下することが確認された。また細胞内取込の効率という観点からは、ＣＨＥＭＳの使用がＰＡと比較して有利であることが確認された。
【００７９】
（２）共焦点顕微鏡による細胞内局在性の確認
実施例１に記載した方法に準じて、ＤＯＰＥ：ＣＨＥＭＳ：Ｃｈｏｌ−ＧＡＬＡ＝９：２：０．２２（モル比）の多重膜リポソームの最外側の脂質膜の外表面にＩｇＧAlexa488を結合させたリポソーム（ＤＣＧ２ＩｇＧ）を作製した。ＤＣＧ２ＩｇＧは、ＧＡＬＡペプチドは持つがＲ８ペプチドを持たないコントロールリポソームである。
【００８０】
３５ｍｍガラス底ディッシュ中のＨｅＬａ細胞５×１０４個／Ｄ’ＭＥＭ培地に、ＤＣＧ２ＩｇＧ、及び実施例１（２）で作製したＤＣＧ０ＲＩｇＧ及びＤＣＧ２ＲＩｇＧ（いずれも終濃度３．１２５μｇ／ｍＬ  ＩｇＧAlexa488、Ｄ’ＭＥＭ、ＦＢＳ無し）を別々に添加して、３７度で１時間インキュベートした。４０Ｕ／ｍＬの冷ヘパリン溶液で細胞を洗浄後、ＦＢＳを含むＤ’ＭＥＭ培地を添加して３７度で６０分間インキュベートした。細胞を再び洗浄した後、直ちに共焦点顕微鏡（Ｎｉｃｏｎ  Ａ１  Ｃｏｎｆｏｃａｌ  ｉｍａｇｉｎｇ  ｓｙｓｔｅｍ、ニコン社）を用いてリポソーム（ローダミンで修飾された脂質）及びＩｇＧAlexa488の細胞内局在性を調べた。その結果を図２及び図３に示す。
【００８１】
図２のパネルＡに示される様に、Ｒ８ペプチドを持たないＤＣＧ２ＩｇＧはＨｅＬａ細胞に殆ど取り込まれず、また図２のパネルＢに示される様にＧＡＬＡペプチドを持たないＤＣＧ０ＲＩｇＧのＩｇＧAlexa488はＨｅＬａ細胞内部のエンドソームにトラップされていて、細胞質へは放出されていないことが確認された。同様に、ＤＣＧ０ＲＩｇＧではＩｇＧAlexa488はＨｅＬａ細胞内部のエンドソームにトラップされていて、細胞質へは放出されていない（図３のパネルＡ）のに対して、ＤＣＧ２ＲＩｇＧでは、ＩｇＧAlexa488に由来する蛍光は核を除く細胞質全体に拡がっている様子が観察された（図３のパネルＢ）。このことから、本発明のリポソームは細胞内にエンドサイトーシスによって取り込まれ、リポソームの脂質はエンドソーム内に残るが、表面に結合した抗体は細胞質内部に放出され拡散されることが確認された。
【００８２】
＜実施例３＞封入型リポソームとの抗体放出能の比較
実施例１（１）の水和の際に２５０μＬの１０ｍＭ  ＨＥＰＥＳ緩衝液ｐＨ７．４をＩｇＧAlexa488を含む２５０μＬの１０ｍＭ  ＨＥＰＥＳ緩衝液ｐＨ７．４に置換えて、ＩｇＧAlexa488を封入したリポソーム（封入型リポソーム）を作製した。
【００８３】
実施例２（２）に記載の方法に準じて、封入型リポソームをＨｅＬＡ細胞に取り込ませ、ＩｇＧAlexa488の細胞内局在性を調べた。その結果を図４に示す。
【００８４】
図４に示される様に、封入型リポソームでは細胞内に導入されたＩｇＧAlexa488に由来する蛍光の殆どはエンドソームにドット状に分布していることが観察された（図４のパネルＡ）。このことから、封入型リポソームに封入された抗体はリポソームから放出されず、リポソームと共にエンドソームにトラップされたままであることを示すものである。一方、本発明のリポソームでは、封入型リポソームと比較してＩｇＧAlexa488に由来する蛍光がより均一に細胞質内部に拡がっていることが観察された。
【００８５】
＜実施例４＞市販タンパク質導入試薬との比較
ＡＣＴＩＶＥ ＭＯＴＩＦ社から市販されているタンパク質導入試薬であるＣｈａｒｉｏｔ（登録商標、http://www.activemotif.jp/catalog/37.html）１００μＬ（０．１２ｍｇ／ｍＬ）を、メーカーの推奨条件に従って０．０１ｍｇ／ｍＬのＩｇＧAlexa488／１０ｍＭ  ＨＥＰＥＳ緩衝液ｐＨ７．４の１００μＬと室温で３０分間混合して、Ｃｈａｒｉｏｔベースの導入試薬を作製した。
【００８６】
また、Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社から市販されているタンパク質導入試薬であるＰｒｏ−Ｊｅｃｔ（登録商標、http://www.funakoshi.co.jp/node/10301）をメーカーの推奨条件に従ってクロロホルム中で再構築し、１０μＬ単位で分画した後、乾燥させた。ここに０．０５ｍｇ／ｍＬのＩｇＧAlexa488／１０ｍＭ  ＨＥＰＥＳ緩衝液ｐＨ７．４を加えて１０分間インキュベートし、次いで超音波処理を行なってＰｒｏ−ｊｅｃｔベースの試薬を作製した。
【００８７】
５×１０４個のＨｅＬａ細胞に対して、Ｃｈａｒｉｏｔベースの導入試薬４００μＬ、Ｐｒｏ−Ｊｅｃｔベースの導入試薬４０μＬを用いてメーカーの推奨条件でＩｇＧAlexa488を導入した。また５×１０４個のＨｅＬａ細胞に対して、実施例２（１）に記載の取込実験に準じて本発明のＤＣＧ２ＲＩｇＧ（終濃度３．１２５μｇ／ｍＬ  ＩｇＧAlexa488、Ｄ’ＭＥＭ、ＦＢＳ無し）を用いてＩｇＧAlexa488を導入した。前記２種類のタンパク質導入試薬の取込能と本発明のリポソームであるＤＣＧ２ＲＩｇＧのそれとを、ＦＡＣＳａｎおよびＣｅｌｌＱｕｅｓｔソフトウェア（いずれもＢｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ社）を用いてフローサイトメトリー解析によって比較した。その結果を図５に示す。
【００８８】
図５に示される様に、本発明のリポソームによるＩｇＧAlexa488の導入効率は、Ｃｈａｒｉｏｔ（登録商標）及びＰｒｏ−Ｊｅｃｔ（登録商標）をそれぞれの推奨条件における使用したときの導入効率を大幅に上回るものであることが確認された。
【００８９】
また、実施例２（２）に記載の方法に準じて上記の各種導入後のＨｅＬａ細胞における導入されたＩｇＧAlexa488の局在性を共焦点顕微鏡で観察したところ、Ｃｈａｒｉｏｔ（登録商標）及びＰｒｏ−Ｊｅｃｔ（登録商標）はいずれもエンドソームにトラップされていて、細胞質に放出されていないことが確認された（図６）。
【００９０】
＜実施例５＞導入されたタンパク質の放出速度の確認
３５ｍｍガラス底ディッシュ中のＨｅＬａ細胞５×１０４個／Ｄ’ＭＥＭ培地に、実施例１（２）で作製したＤＣＧ２ＲＩｇＧ（終濃度３．１２５μｇ／ｍＬ  ＩｇＧAlexa488、Ｄ’ＭＥＭ、ＦＢＳ無し）を添加して、３７度で１０分、１５分、３０分、４５分、６０分または１２０分インキュベーションした後に、４０Ｕ／ｍＬの冷ヘパリン溶液で細胞を洗浄し、一部の細胞についてＦＡＣＳａｎおよびＣｅｌｌＱｕｅｓｔソフトウェア（いずれもＢｅｃｔｏｎ  Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ社）を用いてフローサイトメトリー解析を行なった。また別の一部の細胞については直ちに共焦点顕微鏡（Ｎｉｃｏｎ  Ａ１  Ｃｏｎｆｏｃａｌ  ｉｍａｇｉｎｇ  ｓｙｓｔｅｍ、ニコン社）を用いてＩｇＧAlexa488の細胞内局在性を調べた。また、ＰＢＳで細胞を洗浄後、Ｈｏｅｃｈｓｔ３３３４２（終濃度１μｇ／ｍＬ）を加えて５分間インキュベートすることで細胞核を染色した。結果を図７〜図９に示す。
【００９１】
図７に示される様に、ＤＣＧ２ＲＩｇＧの細胞内取り込み量はインキュべーション時間に比例して増加することが確認された。また図８から、Ｍ２領域（ＩｇＧAlexa488が十分に取り込まれている細胞に相当する）に位置する細胞数が経時的に増加していくこと、１０分のインキュベーションで８０％を越える細胞が、また１５分のインキュベーションで９５％を越える細胞がＭ２領域に位置すること等が理解される、これは本発明のリポソームが迅速に細胞内に取り込まれていくことを示している。さらに、図９に示される様に、ＩｇＧAlexa488の細胞質への放出は、リポソームの導入後１０分には既に始まり、導入後３０分では大部分の細胞で抗体の細胞質放出が観察された。Ｃｈａｒｉｏｔ（登録商標）やＰｒｏ−Ｊｅｃｔ（登録商標）等の試薬では、一般に抗体の細胞質内への放出に３〜４時間を要するとされていることから、本発明のリポソームは細胞質への機能性タンパク質の放出速度に優れていることが確認された。
【００９２】
＜実施例６＞導入された抗体の特異的結合能の確認
実施例１に記載の方法に従って、本発明のリポソームであるＤＣＧ２ＲＩｇＧにおけるＩｇＧAlexa488を同量のマウス抗核孔複合体（Ｎｕｃｌｅａｒ Ｐｏｒｅ Ｃｏｍｐｌｅｘ、ＮＰＣ）抗体（ＩｇＧ）に置換えたリポソームＤＣＧ２ＲＮＰＣを作製した抗ＮＣＰ抗体の細胞内分布は、免疫染色法を利用してヤギ抗マウスＩｇＧAlexa488によって検出した。
【００９３】
ゼラチンでプレコートした３５ｍｍガラス底ディッシュ中のＨｅＬａ細胞５×１０４個／Ｄ’ＭＥＭ培地に、ＤＣＧ２ＲＮＰＣ（終濃度３．１２５μｇ／ｍＬ  抗ＮＰＣ抗体、Ｄ’ＭＥＭ、ＦＢＳ無し）を添加して、３７度で１時間インキュベートした。４０Ｕ／ｍＬの冷ヘパリン溶液で細胞を洗浄後、ＦＢＳを含むＤ’ＭＥＭ培地を添加して３７度で４時間インキュベートした。細胞を−２０度の冷エタノールで７分間固定化し、次いで１％ＢＳＡ溶液を加えて３７度で３０分間インキュベートした。その後、１０ｎｇ／ｍＬのヤギ抗マウスＩｇＧAlexa488／１％ＢＳＡ（２次抗体）に置換し、３７度で１時間インキュベートした。ＰＢＳで洗浄後、Ｈｏｅｃｈｓｔ３３３４２（終濃度１μｇ／ｍＬ）を加えて５分間インキュベートし、細胞核を染色した。対照として、抗ＮＰＣ抗体溶液をそのまま添加したＨｅＬａ細胞と、抗ＮＰＣ抗体を同量の非特異的ＩｇＧに置換えたリポソームＤＣＧ２ＲＩｇＧを用いて上記と同じ操作を行なったＨｅＬａ細胞とを用意した。共焦点顕微鏡（Ｎｉｃｏｎ Ａ１ Ｃｏｎｆｏｃａｌ ｉｍａｇｉｎｇ ｓｙｓｔｅｍ、ニコン社）を用いて上記の対照を含む３種類のＨｅＬａ細胞における抗ＮＰＣ抗体の細胞内局在性を観察した結果を図１０に示す。
【００９４】
図１０に示される様に、ＤＣＧ２ＲＮＰＣを加えたＨｅＬａ細胞では抗ＮＰＣ抗体と結合する２次抗体の蛍光はＨｏｅｃｈｓｔ３３３４２で青色に染色される細胞核の輪郭に沿って存在することが確認された。一方、抗ＮＰＣ抗体を直接加えたＨｅＬａ細胞では細胞内に抗ＮＰＣ抗体と結合する２次抗体の蛍光は全く確認できず、ＤＣＧ２ＲＩｇＧを加えたＨｅＬａ細胞では抗体の蛍光は細胞内にドット状に確認され、非特異的ＩｇＧはエンドソームにトラップされたままであることが示唆された。
【００９５】
以上から、本発明のリポソームは抗体をその特異的結合能を維持したまま細胞内に効率的に送達し、細胞質に拡げることができることが確認された。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【配列表】
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