(57)【要約】【課題】従来の飼育方法では、人工的に稚貝の発生を促進させることは困難である。そこで、比較的短期間にカワニナの稚貝の発生量を多くすることが可能なカワニナの繁殖促進方法を提供する。【解決手段】蛍の幼虫の餌となるカワニナの親貝を水中で飼育して稚貝を産卵させるカワニナの繁殖促進方法であって、水中で親貝を飼育する際に、水のｐＨ値を親貝の飼育に適した数値範囲内で所定値だけ変化させた後にｐＨ値の変動幅を前記所定値よりも小さくしてｐＨ値を安定させることによって親貝に産卵を促すようにしたことを特徴とする。【選択図】図４（ａ）
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
蛍の幼虫の餌となるカワニナの親貝を水中で飼育して稚貝を産卵させるカワニナの繁殖促進方法であって、
水中で親貝を飼育する際に、水のｐＨ値を親貝の飼育に適した数値範囲内で所定値だけ変化させた後にｐＨ値の変動幅を前記所定値よりも小さくしてｐＨ値を安定させることによって親貝に産卵を促すようにしたことを特徴とするカワニナの繁殖促進方法。
【請求項２】
蛍の幼虫の餌となるカワニナの親貝を水中で飼育して稚貝を産卵させるカワニナの繁殖促進方法であって、
水中で親貝を飼育する際に、水のｐＨ値を親貝の飼育に適した数値範囲内で下げ続けることによって親貝に産卵を促すようにしたことを特徴とするカワニナの繁殖促進方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、比較的短期間にカワニナの稚貝の発生量を多くすることが可能なカワニナの繁殖促進方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ホタルの生息には、ホタルの幼虫の餌となるカワニナの繁殖が必需である。
蛍の種類としては、日本では「ゲンジボタル」や「ヘイケボタル」等が有名である。
「ヘイケボタル」の幼虫は、カワニナの他にもタニシやモノアラガイなどの巻貝も餌として食すが、大きさや光の強さも大きく、観賞用として好まれる「ゲンジボタル」の幼虫は、餌としてカワニナしか食さないことが知られている。したがって、「ゲンジボタル」の生息には、その幼虫の餌となる「カワニナ」の生存・繁殖が絶対条件となる。
「ゲンジボタル」と「ヘイケボタル」の幼虫の平均的な生息条件のうち、水のｐＨ（水素イオン指数）が弱アルカリ性である、水の硬度（水１０００ｍｌ中に溶けているカルシウムとマグネシウムの量を表わした数値）が高い、有機分や窒素分が少ない、などの水質環境は、カワニナの好ましい生息環境と重複する。
尚、一匹のゲンジボタルの幼虫が蛹になるまでに，殻の長さが２ｍｍ〜２５ｍｍ程度の大きさのカワニナを２４匹食べたという観察報告がある。また，カワニナは種々の原因で殻の直径が１ｍｍ大きくなるごとに６０％ずつ死んでいき、２年後には３％しか生き残れないという報告もある。さらに、蛍の幼虫は自分の体に合った大きさのカワニナしか攻撃できないため，ホタルの成長には膨大な数のカワニナの生息が不可欠である。
従来から言われているように、ホタルは水質が悪化すると幼虫の生息環境を脅かし、最終的には死滅してしまうと考えられているが、これまでの実験において実は水質に敏感なのはホタルの幼虫ではなく、幼虫の餌となるカワニナの方がより水質の変化に敏感であることが判明している。また、幼虫は夏に卵から孵化した直後は大きさ２ｍｍ程度の極々小さな体型であり、その後カワニナを食しながら脱皮を繰り返して成長し、上陸する直前の終令幼虫になると３ｃｍ程度の大きさにまで成長する。当然ながら、それらの幼虫は、小さい時には小さいカワニナを餌とし、大きくなると大きなカワニナを食すようになる。したがって、ホタルの幼虫の生息を完成させるためには、幼虫の生息に合わせてカワニナも稚貝から大きさ２ｃｍ〜３ｃｍ程度の大きさの成貝が必要となる。
しかし、カワニナ自体の成長は遅く、１年でせいぜい１ｃｍ程度までにしか成長せず、２ｃｍ〜３ｃｍ程度の大きさになるまでには２年〜３年程度の時間が必要とされており、幼虫の成長に合わせて自然界と同様にいろいろな大きさのカワニナを生存させることは至難のわざと言われている。
尚、水槽内でカワニナを人工的に飼育する技術等も知られている（例えば特許文献１等参照）が、人工的に稚貝の発生を促進させることは困難である。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特開２０１２−１２０４８０号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
従来の飼育方法では人工的に稚貝の発生を促進させることは困難である。
本発明は、比較的短期間にカワニナの稚貝の発生量を多くすることが可能なカワニナの繁殖促進方法を提供する。
【課題を解決するための手段】
【０００５】
本発明に係るカワニナの繁殖方法は、蛍の幼虫の餌となるカワニナの親貝を水中で飼育して稚貝を産卵させるカワニナの繁殖促進方法であって、水中で親貝を飼育する際に、水のｐＨ値を親貝の飼育に適した数値範囲内で所定値だけ変化させた後にｐＨ値の変動幅を前記所定値よりも小さくしてｐＨ値を安定させることによって親貝に産卵を促すようにしたので、比較的長い期間において、稚貝発生量を多くすることが可能となる。
また、蛍の幼虫の餌となるカワニナの親貝を水中で飼育して稚貝を産卵させるカワニナの繁殖促進方法であって、水中で親貝を飼育する際に、水のｐＨ値を親貝の飼育に適した数値範囲内で下げ続けることによって親貝に産卵を促すようにしたので、比較的短期間において、稚貝発生量を多くすることが可能となる。
【図面の簡単な説明】
【０００６】
【図１】カワニナの繁殖促進方法を実証するために行った各実験区を上から見た図及び実験条件を示す図。
【図２】各実験区においての、ｐＨの変化、Ｅｃの変化、水温の変化、および、稚貝発生状況を観測した結果を示す表。
【図３】各実験区においての、ｐＨの変化、Ｅｃの変化、水温の変化、および、稚貝発生状況を観測した結果を示す表。
【図４（ａ）】実験期間中における各実験区での水のｐＨの変化を示した表。
【図４（ｂ）】実験期間中における各実験区での水のｐＨの変化を示したグラフ。
【図５】実験期間中における各実験区での水のＥｃの変化を示した表及びグラフ。
【図６】実験期間中における各実験区での水温の変化を示した表及びグラフ。
【図７】水温による影響を検証するために行った実験の条件及び実験結果を示す図。
【図８】カワニナが生存可能な水の水温、ｐＨ、塩分濃度についての推測値を示す表。
【発明を実施するための形態】
【０００７】
水温、ｐＨ、Ｅｃの変化に伴う稚貝発生状況を実験した。
図１に示すように、４種類の実験区を作成して、各実験区で親貝を２０１１年１０月１１日から２０１１年１１月２１日までの実験期間において飼育し、各実験区での水温、ｐＨ、Ｅｃの変化、および、稚貝発生状況を観測した。
図１（ａ）はＣＡＳＥ１（コントロール区）、図１（ｂ）はＣＡＳＥ４（雨ざらしブロック区）、図１（ｃ）はＣＡＳＥ５（新鮮ブロック（粗）区）、図１（ｄ）はＣＡＳＥ６（新鮮ブロック（密）区）を上から見た図（写真）である。即ち、ＣＡＳＥ１（コントロール区）は、ブロック無しの実験区、ＣＡＳＥ４；５；６は、ブロックを入れた実験区である。尚、本実験においては、実際にはＣＡＳＥ２、ＣＡＳＥ３の実験区の実験も行ったが、ＣＡＳＥ２、ＣＡＳＥ３の実験区は、本発明とは関係のない条件を設定した実験区であったので、除外した。
各実験区では、水槽に水を入れるとともに水槽の底の中央部にレンガを置き、このレンガの周りを水が流れるように水流を作った。そして、ＣＡＳＥ４；５；６では、さらに、水槽の底に１ｋｇ分の各種のブロックを置いた。
図１（ｅ）は、各実験区での実験条件を示す。即ち、ブロックの有無、ブロックの種類の違い以外は、各実験区での実験条件はすべて同じである。
【０００８】
尚、レンガは、アルカリ分の供給が少ないことと、微量のミネラル分の供給を期待して設置した。ブロックは、カワニナの殻に必要なカルシウム分の供給を期待して設置した。
また、ＣＡＳＥ４で用いた雨ざらしブロックは、長期間風雨にさらされていたものであるので、溶出するアルカリ分が新鮮ブロック（作成して間もないブロック）と比べて少ないことを予測して実験区の一つにした。
ＣＡＳＥ５；６で用いたブロックは、新鮮ブロックなので、アルカリ分の溶出が多いと予測して実験区とした。すなわち、ＣＡＳＥ５；６の実験区では、ｐＨが高くなる条件となる。尚、粗と密はブロックの密度の違いである。密の方が単位容量当たりのセメント量が多いことになり、よりアルカリ分を多く保持していると考えられることから、新鮮ブロック（粗）区と新鮮ブロック（密）区とを分けて設定した。また、カルシウム分についても、雨ざらしでは、既に溶脱していると考えられるため、新鮮ブロックの方が多く含まれている条件となる。
【０００９】
即ち、各実験区に供給されるアルカリ分およびカルシウム分の量は、コントロール区＜雨ざらしブロック区＜新鮮ブロック（粗）区＜新鮮ブロック（密）区となり、水のｐＨ条件として、高い方から、新鮮ブロック（密）区＞新鮮ブロック（粗）区＞雨ざらしブロック区＞コントロール区となることを目的として実験区を設定した。
尚、新鮮ブロックの粗・密は、どちらもアルカリ分の溶出が同程度に大きいため、ＣＡＳＥ５；６の各実験区でのｐＨ変動は同じような感じとなった（図４参照）。
【００１０】
図２；図３に、実験期間中における各実験区ＣＡＳＥ１；４；５；６においての、ｐＨの変化、Ｅｃの変化、水温の変化、および、稚貝発生状況を観測した結果を表にしてまとめて示した。
また、図４に実験期間中における各実験区でのｐＨの変化を示した。図４（ａ）は実験期間中における各実験区でのｐＨの変化を示す表、図４（ｂ）は実験期間中における各実験区でのｐＨの変化を示すグラフである。
また、図５に実験期間中における各実験区でのＥｃの変化を示した。図５（ａ）は実験期間中における各実験区でのＥｃの変化を示す表、図５（ｂ）は実験期間中における各実験区でのＥｃの変化を示すグラフである。
また、図６に実験期間中における各実験区での水温の変化を示した。図６（ａ）は実験期間中における各実験区での水温の変化を示す表、図６（ｂ）は実験期間中における各実験区での水温の変化を示すグラフである。
【００１１】
上記実験によれば、すべての実験区で稚貝の発生を確認できた。特に、ＣＡＳＥ４の実験区（雨ざらしブロック区）において、稚貝の発生量が最も多く、かつ、稚貝も最も長く生存することがわかった。
【００１２】
・ｐＨ変化の影響についての推測
ＣＡＳＥ１では、実験開始（１０月１１日）から実験期間中の中間時期（１０月２７日）までの期間、ｐＨ値が８．１５から６．５２まで下降し続けている（図４参照）。当該期間中は、４実験区中で稚貝発生量が一番多くなっている（図２参照）。
ＣＡＳＥ１において、ｐＨ値が次第に下がった理由は、水槽の底の中央部に置かれたレンガからのアルカリ分の溶出が少ないため、エアレーションによる炭酸ガスの供給とカワニナからのアンモニアなどの排泄物が酸化されたことが原因であると考えられる。
【００１３】
尚、特にアルカリ分が放出される新鮮ブロックを入れたＣＡＳＥ５；６の実験区においては、早い時期においてｐＨ値が９．３以上になり、カワニナの親貝の死亡が早くから観察された。このことから、親貝の生存限界としてのｐＨ値の上限値を、９．３と推測した。また、カワニナの殻は炭酸カルシウムが主成分であることから、酸性側の環境は、良い条件ではないと考えられる。よって、親貝の生存限界としてのｐＨ値の下限値は、５と推測した。
【００１４】
従って、ＣＡＳＥ１による実験結果は、親貝の生存限界としてのｐＨ値の上限値とした９．３よりも小さくかつｐＨ値の下限値とした５よりも大きいという親貝の飼育に適したｐＨ値範囲内において、ｐＨ値が下降し続けたという環境が、親貝に産卵を促したことを証明している。
【００１５】
また、ＣＡＳＥ４では、実験開始直後（１０月１１日  １４：３０から１６：００の間）にｐＨ値が８．０７から８．８４に急変した後、実験終了（１１月２１日）までの期間、ｐＨ値が８．３４から７．８６までの間で安定しており、実験期間中の前半期（１０月２７日まで）はＣＡＳＥ１に次いで稚貝発生量が多く、実験期間中の後半期（１０月３１日〜１１月２１日）は４実験区中で稚貝発生量が一番多くなっている。
ＣＡＳＥ４において、実験開始直後にｐＨ値が急変（１時間半の間にｐＨ値が８．０７→８．８４に急上昇した変化）した後、安定した理由は、雨ざらしブロックに残っていたアルカリ分が実験開始直後に一気に溶出し、その後、安定したことが原因であると考えられる。
【００１６】
従って、ＣＡＳＥ４による実験結果は、親貝の生存限界としてのｐＨ値の上限値とした９．３よりも小さくかつｐＨ値の下限値とした５よりも大きいという親貝の飼育に適したｐＨ値範囲内において、ｐＨ値が急変した後、安定していた（ｐＨ値の変化が小さい）という環境が、親貝に産卵を促したことを証明している。即ち、水のｐＨ値を親貝の飼育に適した数値範囲内で所定値（例えば０．７７（図４（ａ）参照））だけ変化させた後にｐＨ値の変動幅（例えば最大変動幅＝８．３４−７．８６＝０．４８）を前記所定値よりも小さくしてｐＨ値を安定させることによって、親貝の産卵量が多くなることが実証された。
【００１７】
よって、ＣＡＳＥ４による実験結果とＣＡＳＥ１による実験結果とによって以下のような事実が導かれる。
即ち、比較的長い期間において、稚貝発生量を多くしたい場合には、親貝の生存限界としてのｐＨ値の上限値と下限値との間である親貝の飼育に適したｐＨ値範囲内において、ｐＨ値を急変させた後、ｐＨ値の変動が小さくなるように（ｐＨ値が安定するように）すればよい。
また、比較的短い期間において、稚貝発生量を多くしたい場合には、親貝の生存限界としてのｐＨ値の上限値と下限値との間である親貝の飼育に適したｐＨ値範囲内において、ｐＨ値を下降させ続ければよい。
【００１８】
また、水中でカワニナを飼育する際においてカワニナが生存可能な水質条件の限界を検証した。即ち、水質条件のうち、水温、ｐＨ、塩分濃度の限界値について検証した。
【００１９】
図７（ａ）に水温による影響を検証するために行った実験の条件を示す。
図７（ｂ）に示す実験結果１は、２０１３年４月２３日に水槽１〜４にそれぞれカワニナの親貝を５匹ずつ投入して５月１３日まで飼育した場合の、親貝の生存状況、稚貝の発生、最高水温を示す。
図７（ｃ）に示す実験結果１は、２０１３年７月１６日に水槽１〜４にそれぞれカワニナの親貝を４匹ずつ投入して飼育した場合の、親貝の生存状況（７月１８日に確認）、最高水温（７月１６日〜７月１８日までの２日間の最高水温、７月１６日〜９月１７日までの２ヶ月の最高水温）を示す。
実験結果２からわかるように、遮光されておらず直射日光にさらされていた水槽１；水槽２においては、短期間（２日間）でも４０度以上になったため、カワニナは死滅した。
実験結果１からわかるように、遮光されておらず直射日光にさらされていた水槽１；水槽２においては、３５度以上になったため、ほとんどのカワニナが死んだ。
一方、遮光されていて直射日光にさらされなかった水槽３；水槽４においては、水温が３５度以上になっても遮光の影響でカワニナは生存できたと推測できる。
以上の実験結果１；２から、直射日光にさらされて直射日光から避難する場所が無い条件において、カワニナが生存できる水温条件は、３５度以下程度であると推測できる。
尚、冬季に池などが結氷しても、カワニナは土や泥等に潜り避難する。また、池なども底盤まで結氷することはないことと、川など流水では川底まで結氷することはないため、水温の下限値は「無し」とした。
【００２０】
次にカワニナが生存可能な水中の塩分濃度の上限値（高値）は、３％とした。これは、カワニナに寄生（付着）しているヒルを除去するための塩水処理を行った際、３％濃度の塩水で処理した後、２〜３時間程度そのままにしておいたとき、ほとんどのカワニナが死亡したことから、水中の塩分濃度の限界値の上限値を３％と推測した。
【００２１】
また、カワニナが生存可能な水のｐＨ値の上限値（高値）は上述した実験結果に基づいて上述したように９．３と推測し、また、ｐＨ値の下限値（低値）は上述したように５と推測した。
【００２２】
カワニナを飼育する際において、カワニナが生存可能な水の水温、ｐＨ、塩分濃度についての推測値を図８に示すように表にまとめて示した。
【００２３】
尚、図５；図６に示すように、４実験区での、Ｅｃの変化、水温の変化については、いずれの実験区においても、図８に示す推測値よりもカワニナの飼育に適した値で推移している（尚、Ｅｃ値から推察すると塩分濃度は十分に小さい値）。よって、４実験区での稚貝発生状況の差異は、Ｅｃや水温の影響は小さく、ｐＨの変化の違いにより生じたものであると推測できる。
従って、４実験区での実験結果から、上述したように、比較的短い期間において、稚貝発生量を多くしたい場合には、親貝の生存限界としてのｐＨ値の上限値と下限値との間である親貝の飼育に適したｐＨ値範囲内において、ｐＨ値を下降させ続ければ良く、また、比較的長い期間において、稚貝発生量を多くしたい場合には、親貝の飼育に適したｐＨ値範囲内において、ｐＨ値を所定値だけ急変させた後にｐＨ値の変動幅を所定値よりも小さくしてｐＨ値を安定させれば良いという事実が実証されたといえる。
【００２４】
即ち、水中でカワニナの親貝を飼育する際に、水のｐＨを親貝の飼育に適した数値範囲内で変化させることによって親貝に刺激を与えて親貝に産卵を促すことができ、比較的短期間にカワニナの稚貝の発生量を多くすることが可能となる。
特に、カワニナの親貝の飼育期間中に、水のｐＨ値を親貝の飼育に適した数値範囲内で所定値だけ変化させた後にｐＨ値の変動幅を前記所定値よりも小さくしてｐＨ値を安定させることによって、比較的長い期間において、稚貝発生量を多くすることが可能となる。
また、カワニナの親貝の飼育期間中に、水のｐＨ値を親貝の飼育に適した数値範囲内で下げ続けるようにすることで、比較的短い期間において、稚貝発生量を多くすることが可能となる。 
【図２】
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【図３】
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【図４（ａ）】
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【図７】
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【図８】
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【図１】
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【図４（ｂ）】
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【図５】
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【図６】
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