(57)【要約】【課題】落花生の葉や茎から抗酸化物を得ようとするこれまでの試みは、種子の収穫を本来の目的とする落花生において廃棄される他なかった葉や茎の二次活用を図るというものであった。本発明においては、種子の収穫を度外視し、より抗酸化作用に優れる抗酸化物を得ることを課題とする。【解決手段】そこで、上記課題を解決するための手段として、以下の発明などを提供する。すなわち、種まき後５０日から１０５日の落花生の葉又は／及び茎をすりつぶすことによって得られる複数成分混合液体を単離調整なしで含有した抗酸化混合物などを提供する。【選択図】図２
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
種まき後５０日から１０５日の落花生の葉又は／及び茎をすりつぶすことによって得られる複数成分混合液体を単離調整なしで含有した抗酸化混合物。
【請求項２】
前記複数成分混合液体は、すりつぶした前記落花生の葉又は／及び茎を２５％〜３５％のエタノール溶媒に浸漬して得られる請求項１に記載の抗酸化混合物。
【請求項３】
請求項１又は２に記載の抗酸化混合物を含有した医薬品。
【請求項４】
請求項１又は２に記載の抗酸化混合物を含有した医薬部外品。
【請求項５】
請求項１又は２に記載の抗酸化混合物を含有した健康食品。
【請求項６】
請求項１又は２に記載の抗酸化混合物を含有したサプリメント。
【請求項７】
請求項１又は２に記載の抗酸化混合物を含有した化粧剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、収穫時期前の落花生の葉、茎から抽出した成分を主要成分とする抗酸化混合物に関する。
【背景技術】
【０００２】
これまで落花生の利用は、種子をそのまま食用に供するか圧搾して搾油することがほとんどで、葉や茎は廃棄されていた。そこで、廃棄する他なかった落花生の葉や茎を有効活用する一態様として、人体に有益な成分を抽出しようとする試みがなされている。
【０００３】
例えば、特許文献１においては、乾燥させた落花生の茎から得た抽出物を用いて血糖調節機能性食品を製造する技術が提案されている。
【０００４】
このような背景の下、本出願人らは、落花生の葉や茎をすりつぶすことによって得られる複数成分混合液体に抗酸化作用があることを明らかにし、特願２０１２−２２２５６３号として特許出願を行った。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特開２００６−３４０６３２号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
落花生の葉や茎から抗酸化物を得ようとするこれまでの試みは、種子の収穫を本来の目的とする落花生において廃棄される他なかった葉や茎の二次活用を図るというものであった。本発明においては、種子の収穫を度外視し、より抗酸化作用に優れる抗酸化物を得ることを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
そこで、上記課題を解決するための手段として、以下の発明などを提供する。すなわち、種まき後５０日から１０５日の落花生の葉又は／及び茎をすりつぶすことによって得られる複数成分混合液体を単離調整なしで含有した抗酸化混合物を提供する。
【０００８】
また、上記抗酸化混合物において、複数成分混合液体がすりつぶした落花生の葉又は／及び茎を２５％〜３５％のエタノール溶媒に浸漬して得られる抗酸化混合物を提供する。
【０００９】
さらに、上記の抗酸化混合物を含有した医薬品、医薬部外品、健康食品、サプリメント、化粧剤を提供する。
【発明の効果】
【００１０】
本発明により、落花生の葉や茎から抗酸化作用に優れる抗酸化混合物を得ることが可能になる。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】落花生の葉又は／及び茎を採取する時期の概要を示す概念図
【図２】抗酸化混合物の製造方法の流れの一例を示す図
【図３】抗酸化作用測定試験の流れを示すフロー図
【図４】抗酸化作用測定試験結果を示すグラフ
【図５】抗酸化作用測定試験結果を示すグラフ
【図６】Trolox換算値を示すグラフ
【図７】アスコルビン酸のＥＳＲによるスーパーオキシドラジカル消去能測定結果を示す表
【図８】30％濃度のエタノールを用いた落花生抽出液のＥＳＲによるスーパーオキシドラジカル消去能測定結果を示す表
【図９】各試料についての測定結果を示すグラフ
【図１０】試料についてのスーパーオキシドラジカルに対する50％阻害濃度を示した表
【図１１】ＨＰＬＣを用いた分析の条件を示す表
【図１２】30％濃度のエタノールを用いた落花生抽出液のカラムトグラム
【図１３】30％濃度のエタノールを用いたレスベラトロール標準物質のカラムトグラム
【図１４】30％濃度のエタノールを用いた落花生抽出液のカラムトグラム
【発明を実施するための形態】
【００１２】
以下、本発明の実施の形態について説明する。なお、本発明は、これらの実施形態に何ら限定されるべきものではなく、その要旨を逸脱しない範囲において、種々なる態様で実施し得る。
<実施形態>
<概要>
【００１３】
本実施形態は、種まき後５０日から１０５日の落花生の葉や茎から得られる抽出物を含有する抗酸化混合物である。植物のライフサイクルにおけるピークは、次世代のために実を十分に育てる段階にあると考えることができる。そこで、本出願の発明者らは、落花生の葉や茎から得られる抗酸化作用が落花生の生命活動に由来するものであれば、その生命活動が最も旺盛になる実を育てる段階において最も優れた抗酸化作用が示されるであろうと想到した。そして、この着想に基づいて種々の実験を行い、種まき後５０日から１０５日の落花生の葉や茎から得られる抽出物が優れた抗酸化作用を示すことが明らかになった。
<構成>
【００１４】
本実施形態の抗酸化混合物は、種まき後５０日から１０５日の落花生の葉又は／及び茎をすりつぶすことによって得られる複数成分混合液体から抽出物を単離調製なしで含有した混合物である。
【００１５】
「落花生（Arachis hypogaea）」は、マメ科ラッカセイ属の植物である。落花生の品種として、「千葉半立」、「ナカテユタカ」、「郷の香」、「オオマサリ」、「フクマサリ」、「テコナ」などがある。
【００１６】
図１は、落花生の葉又は／及び茎を採取する時期の概要を示す概念図である。なお、落花生の種類や栽培場所により種まきから収穫までのスケジュールは前後するため、相応の幅をもって表わしている。
【００１７】
図示したように、まず５月上旬から６月にかけて種まきを行う、その後４０日から５０日程で開花する。そして、開花後７０日から１００日程で種子の収穫時期となる。落花生の葉又は／及び茎を採取する時期は、図中太線両端矢印で示した種まき後５０日から１０５日の期間であることから、概ね収穫時期より前の時期となる。なお、抗酸化混合物を得るための採取は、上記の通り種子を収穫するタイミングより早期である。したがって、抗酸化混合物を得るための落花生の栽培は、二毛作ないし三毛作も可能である。また、すべての葉及び茎を採取するのではなく、新芽（新葉）のみを採取対象とすることで、さらに複数回にわたり抗酸化混合物を得るための採取を行うこともできる。
【００１８】
抗酸化混合物を得るためには、まず、落花生の葉又は／及び茎をすりつぶして複数成分混合液体を得る。後述する試験結果からも明らかであるが、落花生の葉と茎のいずれにおいても抗酸化作用が認められた。そこで、本実施形態の抗酸化混合物は、落花生の葉と茎のいずれか一方のみを用いてもよいし、葉と茎との両方を用いてもよい。
【００１９】
また、落花生の葉又は／及び茎をすりつぶして得た液体を構成する詳細な成分については明らかではないが、少なくとも複数の成分が混合してなる液体であることから、「複数成分混合液体」という。
【００２０】
本実施形態の抗酸化混合物は、上記の複数成分混合液体を単離調製なしで含有した混合物である。すなわち、複数成分混合液体のなかに混在している複数の成分のなかから抗酸化作用を奏する特定の成分のみを取り出して抗酸化混合物を得るものではない。
【００２１】
本実施形態は、落花生の葉や茎の含有成分のなかから抗酸化物質を特定し、それを抽出して得るものではなく、落花生の葉や茎をすりつぶして得た抽出物に抗酸化作用があることを示すとともに、当該抽出物を医薬品や化粧剤などとして供するものである。
【００２２】
単離調製を行うことなく抗酸化混合物を得ることにより、製造に要する工程数を少なくすることができ、それに伴い、医薬品や化粧剤として応用する場合も比較的安価にそれらの製品を提供することが可能となる。
【００２３】
以下に、本実施形態の抗酸化混合物を製造する方法の好適な例を示しつつ、抗酸化混合物の作用等に関して行った試験について説明する。
<製造方法>
【００２４】
図２は、実施形態の抗酸化混合物の製造方法の流れの一例を示すフロー図である。まず、落花生の葉又は／及び茎を洗浄する（洗浄工程  Ｓ０２０１）。この工程は、落花生の葉や茎に付着する土や汚れ等を除去する工程である。
【００２５】
そして、洗浄工程にて洗浄された落花生の葉又は／及び茎をすりつぶす（すりつぶし工程  Ｓ０２０２）。すりつぶす前処理として、切断、破砕、ホモジナイズ（均質化）などの処理を行ってもよい。また、果実などから抽出する場合には、果実を凍結乾燥させた後にすりつぶすことがよく行われるが、本工程においては、落花生の葉又は／及び茎を生のままですりつぶせばよい。
【００２６】
そして、すりつぶし工程にてすりつぶされた落花生の葉又は／及び茎をアルコール溶媒に１２時間以上浸漬して浸漬液を製造する（浸漬工程  Ｓ０２０３）。好ましくは、暗所にて２４時間以上浸漬する。アルコール溶媒は既知の溶媒を用いることができ、例えば、エタノール、メタノール、グリセロール、ブチレングリコールなどを用いることができる。より好ましくは、30％程度のエタノールが好適である。
【００２７】
そして、浸漬工程にて製造された浸漬液のアルコール溶媒を蒸発させる（蒸発工程  Ｓ０２０４）。この工程でアルコール溶媒を除去し、抗酸化混合物を得る。蒸発工程には、例えば、ロータリーエバポレーターなどを用いることができる。なお、蒸発させる前に浸漬液を濾過することが好ましい。
【００２８】
上記方法は、落花生の葉又は／及び茎から抗酸化混合物を得るための方法の一例を示すものであり、この方法に限らず、植物の抽出物を得るための既知の方法を用いてもよい。
【００２９】
上記方法などにより得られた抗酸化混合物は、さらに既知の方法を用いることにより、当該抗酸化混合物を含有する医薬品、医薬部外品、健康食品、サプリメント、化粧剤として提供することも可能である。
【００３０】
例えば、医薬品とする場合には、本実施形態の抗酸化混合物を粉体や粒体としカプセルに充填したり、あるいは、賦形剤、結合剤、崩壊剤などを添加して打錠機等を用いて製造することができる。また、サプリメント、健康食品とする場合には、医薬品のようにカプセルや錠剤のような形態で提供してもよいし、飲料、調味料、菓子等の各種の食品に抗酸化混合物を添加した態様で提供することもできる。
【００３１】
また、美容液、クリーム、ローションなどの化粧剤とすることもできる。例えば、美容液とする場合には、本実施形態の抗酸化混合物の他、水、コメヌカ油、ペンチレングリコール、グリセリン、スクワラン、パルミチン酸セチル、ダイマージリノール酸などを主成分とし、ヒアルロン酸ナトリウム、水添ナタネ油アルコール、カルボマー、キサンタンガム、水酸化カリウム、ジメチコン、ポリソルベート-60、ステアリン酸グリセリル、水添ヒマシ油、フェノキシエタノール、尿素、アルギニン、アルブチン、クエン酸などを添加剤とする。そして、各成分を水溶性原料・油溶性原料に分けて溶解してから、それらを加熱して混合・乳化する。これを冷却しながらエキスなどの添加物を配合し、さらに低温になったところで精油や香料などの揮発性の高いものを添加する。その後、所定の安全性の検査（菌、pH、温度安定性、粘度等）を行い、瓶などに充填して製品として提供することができる。また、アスタキサンチン、トコフェロール、ユビキノン、アスコルビン酸Naなどの抗酸化作用成分をさらに添加することにより、製品としての抗酸化作用をより向上させることも好ましい。また、パラベン類を防腐剤として添加することも可能である。
<試験>
【００３２】
本実施形態に係る抗酸化混合物の作用について、ポリフェノール量の測定試験と抗酸化作用の評価試験を行った。両試験に用いた試料について説明した後、それぞれの試験方法及び試験結果を示す。
<試料>
【００３３】
供試した落花生の品種は、「千葉半立（千葉県産）」である。また、葉及び茎を採取した時期は種まき後７０日であり、種子が収穫されていない落花生から採取した。
【００３４】
まず、落花生の葉や茎から、上述した製造方法に基づき抽出液を得る。具体的には、落花生の葉、茎を生のまますりつぶし、2ｇ用意する。これをエタノール30mlに漬けて暗所にて静置する。静置時間の差異による抗酸化作用への影響を評価するために、静置時間を12時間とした試料と24時間とした試料を用意した。そして、所定の静置時間経過後にろ過して得た抽出液を試料とした。
【００３５】
また、種子の収穫が落花生の葉や茎の抗酸化作用に与える影響を評価するために、種子収穫後の落花生から採取した葉、茎から抽出した抽出液を試料に加えた。また、落花生の葉、茎を浸漬したエタノール水溶液は、「20％」、「30％」、「40％」、「80％」の各容量パーセント濃度を用い、エタノール濃度毎の抗酸化作用を測定し、抽出に好適なエタノール濃度を検証する。なお、医薬品や健康食品などとする場合には、この抽出液に含まれるエタノールを蒸発させて除去するが、本試験においては抽出液を供試した。
<ポリフェノール量の測定試験>
【００３６】
この試験は、上述した抽出液に含まれるポリフェノール量を測定するものである。ポリフェノールは分子内に複数のフェノール性の水酸基を持つ植物成分の総称であり、抗酸化作用を有するといわれている。ポリフェノール量を測定することにより、本実施形態の抗酸化混合物が有する抗酸化作用を示す。
【００３７】
試験方法は、ポリフェノールの総量の測定法として一般的に用いられているフォーリン・チオカルト法を一部改変した方法を用いた。フォーリン・チオカルト法はフェノール試薬を用いる吸光光度法であり、ポリフェノール総量の分析法としてISO（国際標準化機構）の公定法(ISO14502-1:2005)に採用されている方法である。本試験では、フェノール試薬と蒸留水を1:1で調製したフェノール試液希釈液を用いた。測定は、ポリフェノールの一種でタンニンの成分である没食子酸（gallic acid）を標準物質とし、没食子酸の濃度と吸光度（波長750nm）との検量線をあらかじめ作成し、この検量線に基づき上記抽出液の没食子酸相当量を算出した。
【００３８】
図３は、試験の流れを示したフロー図である。まず、上述したように調製した抽出液を1/10に希釈し10ｍｌ分注する（Ｓ０３０１）。そして、フェノール試薬と純水を１：１で調整したフェノール試薬希釈液１ｍｌを分注する（Ｓ０３０２）。そして、これらを3分間ボルテックスで混合させ、10％炭酸ナトリウム溶液１ｍｌを分注する（Ｓ０３０３）。60分間放置した後、液を遠心分離機にセットし、遠心分離（10000rpm、20分、22度）を行う（Ｓ０３０４）。その後、上澄み液を分光光度計にて波長750nmで吸光度を測定する（Ｓ０３０５）。そして、あらかじめ作成した没食子酸の検量線に基づき、新鮮重量(生体重量）100ｇあたりの没食子酸相当量を算出する（Ｓ０３０６）。なお、上澄みを測定対象としているのは、抽出成分の純度を高めるとともに、測定精度を阻害するノイズを除去するためである。
【００３９】
図４は、上記試験結果から、種子収穫前の葉、茎から得た試料と、種子収穫後の葉、茎から得た試料の抗酸化作用を対比させて示したグラフである。測定量の単位は「mg of GAE / 100g-fw」であり、新鮮重量(fresh weight）100gあたりの没食子酸相当量（gallic acid equivalence）を意味する。種子収穫前の試料は上述の通りである。種子収穫後の試料は、千葉半立における一般的な収穫時期に種子を収穫し、収穫から３日内で葉及び茎を採取したものから抽出して得たものである。抽出したエタノール濃度はいずれも80％であり、静置時間はいずれも12時間である。図示したように、葉、茎のいずれにおいても種子収穫前の試料が種子収穫後の試料の２倍程度の没食子酸相当量が認められた。
【００４０】
図５も、図４と同様に上記試験の結果を示すグラフである。また、落花生と比較するためにブドウの「甲州」についても同様の試験を行い、その結果も併せて示している。また、括弧内に「12ｈ」と付記した試料は、浸漬工程に費やした時間を12時間としたものであり、浸漬工程に24時間費やした付記のない試料と対比するためのものである。
【００４１】
図示したように、30％濃度のエタノールを用いた抽出した試料が、最も高い抗酸化作用が認められた。また、このときの値は、同様の抽出条件で得られたブドウの値よりも大きいことが分かった。この結果から、落花生の葉や茎には親水性の抗酸化物が多く含まれていると考えられる。また、落花生の葉や茎が含有する疎水性の抗酸化物を得る場合には、80％濃度のような高濃度のエタノールにより抽出すればよい。さらに、30％濃度のエタノールで抽出した後に、さらに80％濃度にエタノールに浸漬して抽出することで、落花生の葉や茎に含まれる親水性及び疎水性の抗酸化物のいずれをももれなく抽出することができる。また、エタノール濃度が50％以上の試料については抽出液が緑色化することが分かった。このことから、クロロフィルが抽出されていると考えられる。
【００４２】
また、落花生の葉と茎から80％濃度のエタノールを用いて抽出した試料から分かるように、24時間浸漬した方が没食子酸相当量が高かった。このことから、落花生から抗酸化混合物を抽出する好適な条件が、浸漬工程に費やす時間を24時間以上とし、浸漬するエタノール溶液の濃度を30％とすることであることが分かった。
【００４３】
なお、ブドウについては、30％のエタノールに24時間浸漬して抽出した試料と80％のエタノールに12時間浸漬して抽出した試料とに大差なかった。したがって、上述したエタノール濃度と浸漬時間の好適な条件は、落花生から抽出する場合における特有の条件であると考えられる。
<Trolox相当量による抗酸化作用測定>
【００４４】
次に抗酸化作用の評価方法としてよく知られているDPPH法により上記試料に対して抗酸化作用測定試験を行った。この方法は、DPPHラジカルを反応溶液とし、これに添加する試料の抗酸化作用を既知の抗酸化物質であるTrolox（6-ヒドロキシ-2,5,7,8-テトラメチルクロマン-2-カルボン酸）換算値として評価するものである。なお、比較対象としてブドウの「甲州」の葉及び茎を30％濃度のエタノールで抽出した試料に対しても試験を行った。
【００４５】
まず、DPPH（1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl）、エタノール溶液を、400μM  MES buffer(6.0) 20%エタノールを1:1:1で調製し、６本の試験管に0.9ｍｌずつ分注する。そして、60sec毎に試料を加え、ボルテックスミックスする（0,30,60,120,180,240μl）。20min静値し分光光度計を用いて波長520nmにおける吸光度測定を行った。
【００４６】
図６は、上記作成した検量線を用いて、各試料を添加したDPPHラジカル反応溶液の吸光度を測定した結果から得たTrolox換算値を示すグラフである。図示したように、30％濃度のエタノールを用いた試料が80％濃度のエタノールを用いた試料よりも優れた抗酸化作用を有することが認められた。また、甲州の試料に対しても優れた抗酸化作用を有することが認められた。
<ＥＳＲによる抗酸化力測定>
【００４７】
次に電子スピン共鳴法（ＥＳＲ：Electron Spin Resonance）によりスーパーオキシドアニオンラジカル消去能を測定した。電子スピン共鳴法は不対電子を検出する分光法の一種であり、遷移金属イオンもしくは有機化合物中のフリーラジカルの検出に用いられる。本試験では既知の抗酸化物質であるアスコルビン酸を標準物質として、30％濃度のエタノールを用いた落花生抽出液の抗酸化作用を、アスコルビン酸相当量を算出することにより評価する。
【００４８】
図７は、既知の抗酸化物質であるアスコルビン酸のＥＳＲによるスーパーオキシドラジカル消去能測定結果を示す表である。また、図８は、30％濃度のエタノールを用いた落花生抽出液のＥＳＲによるスーパーオキシドラジカル消去能測定結果を示す表である。また、図９は、それぞれの試料についての測定結果を併せてグラフ化したものである。
【００４９】
この測定結果から、アスコルビン酸と30％濃度のエタノールを用いた落花生抽出液のそれぞれについて、スーパーオキシドラジカルに対する50％阻害濃度（ＩＣ50）を求めた。図１０は、それぞれの試料についてのスーパーオキシドラジカルに対する50％阻害濃度を示した表である。そして、これらの測定結果より、30％濃度のエタノールを用いた落花生抽出液のスーパーオキシドラジカルに対する抗酸化能が、「91μｇ-アスコルビン酸相当／ｍＬ」であるとの結果を得た。
<ＨＰＬＣによる定性分析>
【００５０】
次にＨＰＬＣ（High performance liquid chromatography）を用いて、30％濃度のエタノールを用いた落花生抽出液の定性分析を行った。また、比較対象として試薬の1ｍＭアスコルビン酸、クロロゲン酸、カテキン、没食子酸、エピカテキン、500μMレスベラトロール、2mg/10mlレスベラトロール配糖体を調整し分析を行った。図１１に分析の条件を示す。図１１（ａ）は、装置の条件を示すものであり、図１１（ｂ）は溶離液を示すものである。
【００５１】
図１２は、分析の結果得られたクロマトグラムである。横軸を保持時間とし、縦軸を信号強度としている。図示したように、抗酸化物質として既知のレスベラトロール配糖体が検出された。また、他のポリフェノール類として、カテキン、エピカテキン、没食子酸あるいはクロロゲン酸等を確認することができた。また、抗酸化剤として、アスコルビン酸も確認することができた。
【００５２】
なお、レスベラトロールについては、図１１に示したカラム等の条件下での保持時間が40分あたりにピークが見られることが知られており、図１２のクロマトグラムにおいてはそこまで示すことができなかった。そこで、レスベラトロールについては別途試験を行った。試験の方法は上記の方法と基本的に同様である。
【００５３】
まず、落花生の葉と茎2.00ｇ（湿量）を30％エタノールに浸漬し、24時間室温で静置した。そして、上記浸漬液を0.45μmフィルターでろ過した。一方、30％エタノール1.00mlにレスベラトロール標準物質1.0mg/ml含む液を調整し、30％エタノールで100倍貴希釈して、0.010mg/mlの濃度の溶液を調整した。分析の条件は、検出波長を306nmとした他は図１１で示したものと同様である。
【００５４】
図１３は、レスベラトロール標準物質のクロマトグラムである。図１４は落花生の葉と茎の抽出物のクロマトグラムである。図示するように、両図ともに保持時間40分にピークが見られた。さらに、この結果に示されたピーク面積及びピーク高さからレスベラトロールの濃度計算を行った。
【００５５】
まずピーク面積からの濃度計算について説明する。標準物質のHPLCピークの面積は970452.37でこの中にレスべラトロールは0.010mg×（1.0/1000）＝1.0×10-5mg =10ng/1.0ml となる。また、ピーク面積当たりの量は10 / 970452.37 =1.0304 × 10-5 ng -1となった。抽出液 5.0 μlのピーク面積は957334.17であったことから 1.0304 × 10-5 ng -1× 957334.17＝9.864 ng/ 5μl= 1.973 ng/μl となった。抽出液量は30 mlなので、1.973 ng/μl × 30 ×103 μl＝ 59.19 × 103 ng = 59.19 μgとなる。この抽出液には2.0 gの葉と茎を用いたので、59.19μg/2g=29.59μg/gとなる。ラッカセイ1 kg（湿量）の葉と茎にレスベラトロール30 mgが含まれることになる。この時30％エタノールは30 ml /2g ×1000ｇ ＝1.5Lを使う。ラッカセイの葉と茎1kgの抽出エタノールとして450 mlを使用する。エバポレーターで回収して再利用することも可能である。
【００５６】
次にピーク高さからの濃度計算について説明する。レスベラトロール0.010mg/mlを1.0ml注入した時のピーク高さは24.0 mVであった。葉と茎2.0 gを30％エタノール30 mlで抽出した溶液の5.0ml注入した時のピーク高さは23.5 mVであった。ピーク高さが存在量に比例すると仮定すると、0.010×（23.5/24.0）÷5.0＝0.001958mg/ml =1.958μg/mlとなる。30ｍｌの抽出液には1.958×30＝58.75μg/mlとなる。これは葉と茎2.0 g（湿量）に相当するので、１ｇあたりでは58.75/2.0＝29.36μg/gとなる。つまり、葉と茎1.0 kgあたり、約30 mgとなる。この値はピーク面積からの計算とほぼ同じ値であった。
【００５７】
レスベラトロールは、動脈硬化の防止効果が認められており、また、長寿遺伝子の活性化を促すことが期待されている。なお、レスベラトロール配糖体は、難水溶性（疎水性）のレスベラトロールに対して水溶性（親水性）であり、吸収性に優れるものである。本抽出方法において抽出時間を十分に設けること、また30％前後のエタノール溶媒を使用することでレスベラトロール単体も効率良く抽出可能とするものである。
【００５８】
以上の通り、各種の試験を行った結果、収穫前の落花生の葉又は／及び茎から抽出して得た混合物に抗酸化作用があることが分かった。また、抽出するためのエタノール濃度が30％の場合が最も好適であることも分かった。なお、落花生の根から抽出して得る抽出物についても抗酸化作用を有する可能性が十分にあると考えられる。
<効果>
【００５９】
本実施形態により、収穫前の落花生の葉又は／及び茎から抗酸化混合物を提供することが可能となる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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