(57)【要約】【課題】選択的なp38MAPキナーゼγおよび／またはδ阻害剤を提供すること。【解決手段】下記一般式（I）で表される化合物又はその塩を含む、p38MAPキナーゼγおよび／またはδ阻害剤。2015155389.tif 000011Rは主鎖の炭素数が７である直鎖または分岐鎖の脂肪族炭化水素基を示し、該脂肪族炭化水素基の１つ以上の水素は水酸基、アミノ基、カルボキシル基またはハロゲンで置換されていてもよく、Ｘはハロゲンを示す。【選択図】図３
2015155389.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記一般式（I）で表される化合物又はその塩を有効成分とする、p38MAPキナーゼγおよ
び／またはδ阻害剤。
【化１】
2015155389.tif 000008
Ｒは主鎖の炭素数が７である直鎖または分岐鎖の脂肪族炭化水素基を示し、該脂肪族炭化水素基の１つ以上の水素は水酸基、アミノ基、カルボキシル基またはハロゲンで置換されていてもよく、Ｘはハロゲンを示す。
【請求項２】
以下のいずれかの化合物又はその塩を含むp38MAPキナーゼγおよび／またはδ阻害剤。
【化２】
2015155389.tif 000009
【請求項３】
請求項１または２に記載のp38MAPキナーゼγおよび／またはδ阻害剤を含む医薬。
【請求項４】
以下のいずれかの化合物又はその塩。
【化３】
2015155389.tif 000010
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、p38MAPキナーゼγおよび／またはδ阻害剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
p38MAPキナーゼ（mitogen-activated protein kinase）は、細胞外刺激を細胞応答へと導く過程で重要な機能を持つリン酸化酵素である。p38MAPキナーゼには、主な酵素として、α、β、γ、δの4種類がある。この中で、α、βは、SB203580に代表される酵素活性
阻害剤に感受性であり、しかもほとんどの組織で発現している。一方、γ(筋肉)、δ(腎
、肝，肺)は組織特異的な発現パターンを示すものの、特異的な阻害剤が報告されていな
いのでそれらの生理機能は不明である。
しかし、ノックアウトマウスの解析からp38MAPキナーゼδがインスリン分泌やグルコースホメオスタシスにおいてPKDの制御により関与しているという報告（非特許文献１）も
あり、p38MAPキナーゼのγやδの阻害剤を開発すれば、生理機能解析が加速し、薬の開発が可能になることが期待される。
特許文献１では、p38MAPキナーゼγの阻害剤が開示されているが、阻害活性は十分ではなく、αも阻害するので特異性は低い。
特許文献２では、チアジアゾール誘導体を有効成分とするJAKプロテインキナーゼの阻
害剤が開示されているが、p38MAPキナーゼに対する阻害活性は示唆されていない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特表2009-517390号公報
【特許文献２】特表2006-513192号公報
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】Cell 136, 235−248, January 23, 2009
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
本発明は、これまでに特異的な阻害剤が知られていなかったp38MAPキナーゼγおよび／またはδに対する阻害剤として使用しうる化合物を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明者らは上記課題を解決するために鋭意検討を行った。その結果、新規化合物を含むチアジアゾール誘導体を合成し、それらがp38MAPキナーゼγおよび／またはδの特異的阻害剤として使用しうることを見出し、本発明を完成させた。
【０００７】
すなわち、本発明は下記一般式（I）で表される化合物又はその塩を有効成分とする、p38MAPキナーゼγおよび／またはδの阻害剤並びにそれらを含む医薬に関する。本発明は
また、下記のSU-005、SU-010、SU-011、SU-012、SU-013、SU-014から選択される化合物又はそれらの塩に関する。
【発明の効果】
【０００８】
本発明の化合物はp38MAPキナーゼのγおよび／またはδの特異的な阻害剤として使用することができる。本発明の化合物は特許文献１に記載された化合物と比べて特異性が高く、強力な薬理活性が期待できる。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】インビトロキナーゼアッセイによる各化合物（SU-001〜SU-008）のp38MAPキナーゼα、α変異体（T106M）、γおよびδに対する阻害効果を示す図（写真）。DはDMSOを示し、SはSB202190を示す。
【図２】Flag-p38MAPKδを強制発現したHeLa細胞における各化合物（SU-001〜SU-008）のp38MAPキナーゼδに対する阻害効果を示す図（写真）。DはDMSOを示し、SはSB202190を示す。
【図３】Flag-p38MAPKγを強制発現したHEK293T細胞における各化合物（SU-001〜SU-008）のp38MAPキナーゼγに対する阻害効果を示す図（写真）。DはDMSOを示し、SBはSB202190を示す。
【図４】HEK293T細胞における各化合物（SU-001〜SU-018）の内在性p38MAPキナーゼγに対する阻害効果を示す図（写真）。DはDMSOを示し、SはSB202190を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
本発明の化合物は下記一般式（I）で表される。
【化１】
2015155389.tif 000003
ここで、Ｒは主鎖の炭素数が７である直鎖または分岐鎖の脂肪族炭化水素基を示し、該脂肪族炭化水素基の１つ以上の水素は水酸基、アミノ基、カルボキシル基、またはハロゲン（塩素、臭素、フッ素、ヨウ素など）で置換されていてもよい。また、脂肪族炭化水素基は、二重結合や三重結合を１以上有してもよい。脂肪族炭化水素基が、分岐鎖を有するとき、分岐鎖の炭素数は１〜５が好ましい。Ｘはハロゲンであり、好ましくは塩素、臭素、フッ素またはヨウ素であり、より好ましくは塩素である。
【００１１】
具体的には、以下の化合物が例示される。
【化２】
2015155389.tif 000004
【００１２】
これらの化合物は、後述の実施例に記載の方法によって合成することができる。
【００１３】
一般式（I）で表される化合物の塩としては、例えば、塩酸塩、硫酸塩等の鉱酸塩；又
はp-トルエンスルホン酸塩等の有機酸塩等を挙げることができるが、これらに限定されることはない。
【００１４】
本発明の化合物またはその塩は、p38MAPキナーゼのγおよび／またはδの阻害剤として使用することができる。γとδのいずれか片方を阻害するものでもよいし、両方を阻害するものでもよい。使用濃度は化合物の種類やキナーゼの種類に応じて適宜設定されるが、
０．１ｎＭ〜１０μＭの低濃度でも効果を発揮し得る。
【００１５】
本発明の化合物またはその塩を有効成分とするp38MAPキナーゼのγおよび／またはδ阻害剤は、医薬や研究用試薬として使用することができる。医薬としては、p38MAPキナーゼのγおよび／またはδの活性を阻害することによって治療できる疾患の治療薬が例示される。具体的には、特許文献１に記載されたような、炎症性疾患や線維症疾患、もしくは、糖尿病、肥満、高脂血症、高血圧などの代謝性疾患などが挙げられる。
【００１６】
医薬として使用される場合、本発明の化合物またはその塩は、薬理学的に許容される担体と混合して医薬組成物とすることができる。
本発明の化合物またはその塩を有効成分とする医薬の製剤形態は、使用目的や使用対象に応じて適宜選択することができ、例えば、注射剤（液剤、懸濁剤等）、錠剤、丸剤、散剤、液剤、懸濁剤、乳剤、顆粒剤、カプセル剤等の形態で用いることができる。上記担体としては、賦形剤、結合剤、崩壊剤、乳化剤、可溶化剤、分散剤、滑沢剤、コーティング剤、着色剤、安定剤、等張剤等を挙げることができるが、これらに限定されるものではない。腑形剤としては、乳糖、白糖、ブドウ糖などの糖類、デンプン、炭酸カルシウム、硫酸カルシウム等の無機物、結晶セルロース、蒸留水、精製水、ゴマ油、ダイズ油、トウモロコシ油、オリーブ油、綿実油等の一般に使用されているものを例示することができる。本発明の薬剤は、これらの添加物を用いて常法によって製剤化することができる。また、本発明の抗癌剤は、他の医薬品（例えば、他の抗癌剤など）と併用することもできる。
【００１７】
本発明の化合物またはその塩を患者に投与する場合の投与量は、患者の年齢、体重、癌の種類と進行度、症状等に応じて適宜設定することができるが、一般的には、成人一人一日当たり有効成分として０．１〜１０００mg／kg体重、特に１〜１００mg／kg体重を１〜数回に分けて投与することができる。投与経路は、特に限定されず、例えば、経口投与、又は注射などの非経口投与により投与することができる。注射による投与を行う場合は、静脈注射、動脈注射、皮下注射、皮内注射、腹腔内注射、筋肉内投与等を行うことができる。
【実施例】
【００１８】
以下、実施例を挙げて本発明を具体的に説明する。ただし、本発明は以下の実施例の態様に限定されない。
【００１９】
＜化合物の合成＞
【化３】
2015155389.tif 000005
チアジアゾール誘導体１は米国特許7271179号明細書に記載の方法に準じて 4,7-dichloroquinolineおよび5-amino-1,3,4-thiadiazolo-2-thiolから合成した。
チアジアゾール誘導体１のスペクトルは以下のとおりである。
【００２０】
1: 1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ7.23 (d, J = 4.6 Hz, 1H), 7.77 (dd, J = 9.1, 2.3 Hz, 1H), 7.82 (bs, 2H), 8.14 (d, J = 2.3 Hz, 1H), 8.20 (d, J = 9.1 Hz, 1H), 8.79 (d, J = 4.6 Hz, 1H).
13C NMR, (125 MHz, CDCl3) δ1 119.8, 123.9, 125.4, 128.1, 128.4, 135.0, 141.8, 144.2, 147.9, 151.4, 173.2.
HRMS(ESI): calcd. for C11H8ClN4S2, 294.9879; found, 294.9879.
【００２１】
チアジアゾール誘導体3a〜3gは以下の手順で合成した。
【化４】
2015155389.tif 000006
【００２２】
５ｍｌのTHFに0.2mmolのチアジアゾール誘導体１を溶解させ、その溶液に、RCOOH （R
はそれぞれ上記のａ〜ｇ）(0.25 mmol) と N-(3-dimethylaminopropyl)-N'-ethylcarbodiimide hydrochloride (EDC) (0.3 mmol) を室温で加えた。チアジアゾール誘導体１が完
全に消費されるまで50℃で３〜１２時間反応液を撹拌した。室温まで冷却した後、反応物をCHCl3で希釈し、1N NaHCO3 水溶液、水、飽和食塩水で洗浄した後、Na2SO4を用いて乾
燥させた。溶媒を減圧留去させ、残渣をpreparative TLC（CHCl3 : MeOH)で精製して上記３ａ〜３ｇの無色の固体を得た。各化合物のスペクトルは以下のとおり。
【００２３】
SU-002 (3a): 1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ0.84 (t, J = 6.9 Hz, 3H), 1.24 − 1.34 (m, 8H), 1.73 (m, 2H), 2.64 (t, J = 7.4 Hz, 2H), 7.40 (d, J = 4.6 Hz, 1H), 7.60 (dd, J = 9.2, 1.7 Hz, 1H), 8.16 (d, J = 1.7 Hz, 1H), 8.24 (d, J = 9.2 Hz, 1H), 8.80 (d, J = 4.6 Hz, 1H).
13C NMR (125 MHz, CDCl3) δ14.0, 22.6, 25.1, 28.9, 29.0, 31.6, 36.2, 122.8, 125.4 (x 2), 128.7, 129.3, 136.5, 141.8, 148.9, 150.8, 154.7, 162.8, 171.9.
HRMS(ESI): calcd. for C19H22ClN4S2O, 429.0924; found, 429.0915.
【００２４】
SU-005 (3b): 1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ0.83 (t, J = 6.9 Hz, 3H), 1.27 (m, 4H), 1.51 (tt, J = 7.4, 6.9 Hz, 2H), 2.26 (dt, J = 7.4, 6.9 Hz, 2H), 6.46 (d, J = 15.5
Hz, 1H), 7.25 (dt, J = 15.5, 6.9 Hz, 1H), 7.42 (d, J = 4.6 Hz, 1H), 7.60 (dd, J
= 9.2, 1.7 Hz, 1H), 8.16 (d. J = 1.7 Hz, 1H), 8.24 (d. J = 9.2 Hz, 1H), 8.80 (d, J = 4.6 Hz, 1H).
13C NMR (125 MHz, CDCl3) δ13.9, 22.4, 27.4, 31.3, 32.5, 121.2, 122.6, 125.3 (x 2), 128.7, 129.2, 136.4, 141.9, 148.8, 150.8, 151.9, 154.6, 163.8, 164.0.
HRMS(ESI): calcd. for C19H20ClN4S2O, 419.0767; found, 419.0763.
【００２５】
SU-010 (3c): 1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ1.32 − 1.45 (m, 4H), 1.74 (btt, J = 7.4,
6.9 Hz, 2H), 2.01 (bdt, J = 6.9, 6.3 Hz, 2H), 2.68(t, J = 7.2 Hz, 2H), 4.89(dd,
J = 10.3, 1.1 Hz, 1H), 4.95(dd, J = 17.2, 1.7 Hz, 1H), 5.75(ddt, J = 17.2, 10.3, 6.9 Hz, 1H), 7.40(d, J = 4.6 Hz, 1H), 7.60(dd, J = 8.6, 1.7 Hz, 1H), 8.16(d, J
= 1.7 Hz, 1H), 8.24(d, J = 8.6 Hz, 1H), 8.80(d, J = 4.6 Hz, 1H).
13C NMR (125 MHz, CDCl3) δ25.0, 28.4, 28.5, 33.5, 36.0, 114.5, 122.9, 125.4, 128.7, 129.3, 136.5, 138.6, 141.7, 148.9, 150.8, 154.7, 163.2, 172.0
HRMS(ESI): calcd. for C19H20ClN4OS2, 419.0767; found, 419.0751.
【００２６】
SU-011 (3d): 1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ 0.94 (d, J = 6.3 Hz, 3H), 1.9 − 1.28 (m
,1H), 1.35 − 1.44 (m, 1H), 1.55 (bs, 3H), 1.63 (bs, 3H), 1.90 − 2.06 (m, 2H), 2.05 − 2.14 (m, 1H), 2.50 (dd, J = 14.3, 8.0 Hz, 1H), 2.66 (dd, J = 14.3,5.7 Hz), 5.03 (bt, J = 6.9 Hz, 1H), 7,43 (d, J = 4.6 Hz, 1H), 7.59 (dd, J = 9.2, 2.3 Hz, 1H), 8.15 (d, J = 2.3 Hz, 1H), 8.21 (d, J = 9.2 Hz, 1H), 8.80 (d, J = 4.6 Hz,
1H).
13C NMR (125 MHz, CDCl3) δ17.7, 19.4, 25.3, 25.7, 30.6, 36.6, 43.5, 123.1, 124.0, 125.5, 128.7, 129.3, 131.7, 136.4, 141.5, 148.9, 150.8, 154.7, 163.0, 171.6
HRMS(ESI): calcd. for C21H24ClN4OS2, 447.1080; found, 447.1070.
【００２７】
SU-012 (3e): 1H NMR (500 MHz, CDCl3) δ 0.82 (t, J = 6.9 Hz, 3H), 0.86 (d, J = 6.9 Hz, 3H), 1.08−1.33 (m, 6H), 1.40 − 1.49 (m, 1H), 1.49 − 1.58 (m, 1H), 1.73
− 1.81 (m, 1H), 2.66 (ddt, J = 15.5, 9.7, 6.9 Hz, 1H), 2.72 (ddt, J = 15.5, 8.7, 5.7 Hz, 1H), 7.39 (d, J = 4.6 Hz, 1H), 7.59 (dd, J = 9.2, 2.3 Hz, 1H), 8.15 (d, J = 2.3 Hz, 1H), 8.23 (d, J = 9.2, 1H), 8.79 (d, J = 4.6 Hz, 1H).
13C NMR (125 MHz, CDCl3) δ14.1, 19.2, 22.9, 29.1, 32.0, 32.4, 34.0, 36.3, 122.8, 125.4, 128.7, 129.3, 136.5, 141.8, 148.9, 150.7, 154.6, 163.3, 172.5.
HRMS(ESI): calcd. for C20H24ClN4OS2, 435.1080; found, 435.1075.
【００２８】
SU-013 (3f): 1H NMR  (500 MHz, CDCl3) δ 0.86 (t, J = 6.9 Hz, 3H), 1.24 − 1.36 (m, 4H), 2.03 (bdt, J = 6.9, 6.9 Hz, 2H), 3.36 (dd, J = 6.9, 1.1 Hz, 2H), 5.56 (dtt, J = 15.5, 6.9, 1.1 Hz, 1H), 5.72 (dtt, J = 15.5, 6.9, 1.1 Hz, 1H), 7.40 (d,
J = 4.6 Hz, 1H), 7.59 (dd, J = 9.2, 2.3 Hz, 1H), 8.15 (d, J = 2.3 Hz, 1H), 8.24
(d, J = 9.2 Hz, 1H), 8.79 (d, J = 4.6 Hz, 1H).
13C NMR (125 MHz, CDCl3) δ13.9, 22.2, 31.1, 32.2, 39.8, 120.1, 122.9, 125.4, 125.5, 128.7, 129.2, 136.5, 137.6, 141.7, 148.9, 150.8, 154.9, 162.9, 170.2
HRMS(ESI): calcd. for C19H20ClN4OS2, 419.0767; found, 419.0773.
【００２９】
SU-014 (3g): 1H-NMR (500 MHz, CD3OD) δ1.35 (m, 6H), 1.48 − 1.54(tt, J = 6.9, 6.9 Hz, 2H), 1.69 (tt, J = 6.9, 6.9 Hz, 2H), 2.51 (t, J = 7.4 Hz, 2H), 3.52 (t, J
= 6.3 Hz, 2H), 7.38 (d, J = 4.6 Hz, 1H), 7.71 (dd, J = 9.2, 1.7 Hz, 1H), 8.08 (d, J = 1.7 Hz, 1H), 8.31 (d, J = 9.2 Hz, 1H), 8.73 (d, J = 4.6 Hz, 1H).
13C NMR (125 MHz, CD3OD) δ26.0, 26.7, 30.1, 31.2, 33.5, 36.3, 62.9, 123.0, 126.3, 126.8, 129.1, 129.8, 137.8, 145.5, 149.3, 152.1, 154.5, 164.0, 174.0
HRMS(ESI): calcd. for C19H22ClN4O2S2, 437.0873; found, 437.0867.
【００３０】
＜p38MAPK阻害活性の評価＞
上記で合成したSU-002およびSU-005を含む様々な化合物の存在下、p38MAPキナーゼタンパク質を用いたインビトロのキナーゼアッセイを、DMSO(D)をコントロールに使用して行
った。まず、GST融合タンパク質で基質ATF2のリン酸化を検証したところ、図1上に示すように、ヒトp38MAPキナーゼαは公知のp38MAPキナーゼα阻害剤であるSB202190（S）（1μM）により阻害された。一方、ヒトp38MAPKαT106M（106位のＴがＭに置換された変異体）はSB202190に阻害されなかった。これは、106位のアミノ酸がp38MAPキナーゼ阻害剤のサ
ブタイプ特異性に重要であることを示し、アミノ酸配列のアラインメントから、p38MAPキナーゼのαとβは106位がＴであり、p38MAPキナーゼのγとδはαの106位に相当するアミノ酸がＭであるため、SB202190はαとβに特異的な阻害剤であることを示している。
【００３１】
一方、p38MAPKαT106Mは、キナーゼ阻害剤の認識においては、p38MAPキナーゼのγとδを模しているが、1μM  SU-002および-005により明らかに阻害された。1μM  SU-002および-005は野生型p38MAPキナーゼαは阻害しなかったので、p38MAPキナーゼのγとδの選択的阻害剤として働くことが考えられた。
【００３２】
次に、His融合タンパク質として作製したヒトp38MAPキナーゼα、γ、δを用いてイン
ビトロキナーゼアッセイを行った。p38 MAPキナーゼδについては、基質ATF2をほとんど
リン酸化できなかったので、MBPを基質として用いた。その結果、図１下に示すように、SU-002とSU-005は、p38 MAPキナーゼγ及びδを阻害できることが明らかになった。
なお、SU-004、SU-006はいずれのタイプのp38 MAPキナーゼも阻害しなかった。SU-004
、SU-006の構造は以下のとおりであることから、チアジアゾール骨格に結合したアミド基の側鎖の炭素数が７であることが重要であることがわかった。
なお、阻害活性を示さなかったSU-001、SU-003、SU-007、SU-008については、ここでは構造は示さない。
【化５】
2015155389.tif 000007
【００３３】
次に、培養細胞に対する活性を検討するために、これら薬剤の評価系を構築した。HeLa細胞にFlag-hp38MAPKδ（Flag付加ヒトp38MAPキナーゼδ）を過剰発現させ、IL-1β刺激
によるp38MAPキナーゼδ活性化（自己リン酸化）に対するこれらの化合物の効果を評価した。
前日にFlag-hp38MAPKδ発現用プラスミドをトランスフェクションしたHeLa細胞に終濃
度10μMで各化合物を添加し、一時間後に終濃度100 ng/mlのIL-1βで20分刺激し、細胞を回収し、抗リン酸化抗体を用いて評価した。その結果、図２に示すように、過剰発現のp38MAPキナーゼδの自己リン酸化が、SU-005によって阻害された。弱いながらも、SU-002でもこの傾向は見られる。これにより、ヒト培養細胞に対してもSU-005やSU-002がp38MAPキナーゼδの阻害効果を発揮できることが明らかになった。
【００３４】
次に、HEK293T細胞にFlag-hp38MAPKγ（Flag付加ヒトp38MAPキナーゼγ）を過剰発現させ、p38γ自己リン酸化に対する化合物の効果を評価した。
Flag-hp38MAPKγ発現用プラスミドをトランスフェクションしたHEK293T細胞を回収し、抗リン酸化抗体を用いて評価した。その結果、図３に示すように、過剰発現のp38γの自
己リン酸化が、SU-002およびSU-005によって阻害された。これにより、ヒト培養細胞に対してもSU-005やSU-002がp38MAPキナーゼγの阻害効果を発揮できることが明らかになった。この実験の際にHEK293T細胞においてp38MAPキナーゼγが内在的に発現していることも
明らかとなった。
【００３５】
次に、内在性p38MAPキナーゼγの発現を確認したHEK293T細胞に対して、各化合物を終
濃度10μMで加えて1時間培養した後、20分間の0.2 M NaCl処理によるp38MAPキナーゼγのリン酸化を抗リン酸化抗体で検出した。結果を図４に示す。
上記のSU-002およびSU-005に加えて、SU-010, SU-011, SU-012, SU-013, SU-014にもp38MAPKγのリン酸化を抑制する活性がみられた。
なお、SU-001、SU-003、SU-007、SU-008、SU-009、SU-015、SU-016、SU-017、SU-018に
ついては、ここでは構造は示さない。
【００３６】
また、データは示さないが、上記のp38MAPキナーゼδ／γの阻害活性を有する化合物は細胞毒性が低いことが確認できた。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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