(57)【要約】【課題】血漿から有形成分由来の微粒子を高い確率で除去する方法を提供する。【解決手段】ヒトあるいは動物から採取した血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法であって、血漿を、２０℃以上４０℃以下の温度で、サイズ除去ろ過用多孔膜を用いてろ過するろ過工程を含み、血漿から有形成分由来の微粒子を、含有割合が５０％以下となるまで除去することを特徴とする、血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
ヒトあるいは動物から採取した血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法であって、
前記血漿を２０℃以上４５℃以下の温度で、サイズ除去ろ過用多孔膜を用いてろ過するろ過工程を含み、
前記血漿から有形成分由来の微粒子を、含有割合が５０％以下となるまで除去することを特徴とする、血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法。
【請求項２】
前記ろ過工程の前に、採取後の前記血漿を０℃以上４０℃以下で保存する保存工程を含む、請求項１の血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法。
【請求項３】
前記保存工程において採取後の前記血漿を室温で保存する、請求項２に記載の血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法。
【請求項４】
前記ろ過工程が、前記血漿を採取後２４時間以内に行われる、請求項１ないし３のいずれか１項に記載の有形成分由来の微粒子を除去する方法。
【請求項５】
前記サイズ除去ろ過用多孔膜が、中空糸膜又は平膜である、請求項１ないし４のいずれか１項に記載の血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法。
【請求項６】
前記サイズ除去ろ過用多孔膜が、セルロース又は合成高分子からなる多孔膜である、請求項１ないし５のいずれか１項に記載の血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法。
【請求項７】
前記サイズ除去ろ過用多孔膜の孔径が４０ｎｍ以上１５０ｎｍ以下である、請求項１ないし６のいずれか１項に記載の血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法。
【請求項８】
前記血漿がアフェレーシス法で採取された血漿である、請求項１ないし７のいずれか１項に記載の血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法。
【請求項９】
前記ろ過工程において、前記サイズ除去ろ過用多孔膜を用いてろ過する前に、白血球を除去する白血球除去工程を含む、請求項１ないし８のいずれか１項に記載の血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法。
【請求項１０】
前記ろ過工程の圧力をサイズ除去ろ過用多孔膜の使用許容最高圧以下に制御する、請求項１ないし９のいずれか１項に記載の血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法。
【請求項１１】
前記ろ過工程において、前記多孔膜の膜面積当たり３Ｌ／ｍ2以上ろ過することが可能である、請求項１ないし１０のいずれか１項に記載の血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法。
【請求項１２】
ヒトあるいは動物から採取した血漿のトロンビン生成活性を低減させる方法であって、
前記血漿を２０℃以上４５℃以下の温度で、サイズ除去ろ過用多孔膜を用いてろ過するろ過工程を含み、
前記血漿から有形成分由来の微粒子を、含有割合が５０％以下となるまで除去することで、血漿のトロンビン生成活性を低減させる方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、精製技術に関し、血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
現在、血漿製剤は、採血時にアフェレーシスによる成分献血による方法で製造されるか、あるいは、全血を遠心分離して血漿成分を分離して製造されるかしている。日本赤十字社では、更に、白血球に起因する発熱反応や感染症等の副作用を減少させるために、採血装置を使用した機械的な白血球除去方法、又は白血球除去フィルターを使用してろ過する方法を血液製剤の製造工程に取り入れている。
【０００３】
血液成分中には、有形成分由来の微粒子（マイクロパーティクル）が含まれることが分かっている。マイクロパーティクルのサイズの定義は、現在明確には定められてはいないが、Ｓｉｍａｋらの論文（非特許文献１）によれば、０．０５−１．５ミクロンとされている。マクベイらの総説（非特許文献２）によれば、血漿中のマイクロパーティクルは、輸血関連急性肺障害（Ｔｒａｎｓｆｕｓｉｏｎ−ｒｅｌａｔｅｄ  ａｃｕｔｅ  ｌｕｎｇ  ｉｎｊｕｒｙ；通常ＴＲＡＬＩと略される。）に関係するとされている。ゴブランらの論文（非特許文献３）によれば、リン脂質が表面に検出されるマイクロパーティクルは、ＴＲＡＬＩ、輸血後の感染、そして癌の再発を起こしやすくする可能性があるとされている。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】Jan Simak and Monique P. Gelderman 、Transfusion Medicine Reviews, Vol 20, No 1 (January), 2006: pp 1-26、Cell Membrane Microparticles in Blood and Blood Products: Potentially Pathogenic Agents and Diagnostic Markers
【非特許文献２】McVey et al., Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol 303:L364-L381, 2012
【非特許文献３】Goubran HA, et al., The platelet-cancer loop, Eur J Intern Med. 2013 Jul;24(5):393-400
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
血漿から有形成分由来の微粒子を高い確率で除去するための研究は、従来、進められてこなかった。そこで、本発明は血漿から有形成分由来の微粒子を高い確率で除去する方法を提供することを課題とする。さらに、有形成分由来の微粒子を除去する工程において、ろ過材が閉塞することによって、定速ろ過についてろ過圧が高くなることを防ぎ、定圧ろ過において流速が著しく低下するのを防いで、効率的に、除去する方法を提供することを課題とする。また、血漿から有形成分由来の微粒子を高い確率で除去することによって、血漿のトロンビン生成活性を低減させる方法を課題とするものである。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明の態様は、ヒトあるいは動物から採取した血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法であって、血漿を２０℃以上４５℃以下の温度で、サイズ除去ろ過用多孔膜を用いてろ過するろ過工程を含み、血漿から有形成分由来の微粒子を、含有割合が５０％以下となるまで除去することを特徴とする、血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法である。
【０００７】
上記方法のろ過工程の前に、採取後の血漿を０℃以上４０℃以下で保存する保存工程を含んでいてもよい。当該保存工程において、採取後の血漿を室温で保存してもよい。
【０００８】
ろ過工程は、血漿を採取後２４時間以内に行われてもよい。サイズ除去ろ過用多孔膜は、中空糸膜又は平膜であってもよい。サイズ除去ろ過用多孔膜は、セルロース又は合成高分子からなる多孔膜であってもよい。サイズ除去ろ過用多孔膜の孔径は、４０ｎｍ以上１５０ｎｍ以下であってもよい。
【０００９】
血漿は、アフェレーシス法で採取された血漿であってもよい。
【００１０】
ろ過工程において、サイズ除去ろ過用多孔膜を用いてろ過する前に、白血球を除去する白血球除去工程を含んでいてもよい。ろ過工程の圧力を、サイズ除去ろ過用多孔膜の使用許容最高圧以下に制御してもよい。ろ過工程において、多孔膜の膜面積当たり３Ｌ／ｍ2以上ろ過することが可能であってもよい。
【００１１】
さらに、本発明の態様は、ヒトあるいは動物から採取した血漿のトロンビン生成活性を低減させる方法であって、血漿を２０℃以上４５℃以下の温度で、サイズ除去ろ過用多孔膜を用いてろ過するろ過工程を含み、血漿から有形成分由来の微粒子を、含有割合が５０％以下となるまで除去することで、血漿のトロンビン生成活性を低減させる方法である。
【発明の効果】
【００１２】
本発明の方法によれば、血漿から有形成分由来の微粒子を、高い確率で除去することができる。また、効率的に、血漿から有形成分由来の微粒子を除去することができる。さらに、血漿から有形成分由来の微粒子を除去することでトロンビン生成活性を低減させることが可能となる。
【図面の簡単な説明】
【００１３】
【図１】実施例１ないし３及び比較例１の結果を示す表である。
【図２】実施例４に係る対照（コントロール）の測定結果を示すチャートである。
【図３】実施例４に係る乏血小板血漿の測定結果を示すチャートである。
【図４】実施例４に係るろ過後の乏血小板血漿の測定結果を示すチャートである。
【図５】参考例１に係るＳＤ処理した乏血小板血漿の測定結果を示すチャートである。
【図６】参考例２に係る微粒子の含有量の１回目の測定結果を示すヒストグラムである。
【図７】参考例２に係る微粒子の含有量の２回目の測定結果を示すヒストグラムである。
【図８】実施例５の比較例に係る血小板由来マイクロパーティクルを含むヒト血漿に入れられた、ヒト好中球の光学顕微鏡写真である。
【図９】実施例５に係る血小板由来マイクロパーティクルが除去されたヒト血漿に入れられた、ヒト好中球の光学顕微鏡写真である。
【発明を実施するための形態】
【００１４】
以下に本発明の実施の形態を説明する。以下の図面の記載において、同一又は類似の部分には同一又は類似の符号で表している。但し、図面は模式的なものであり、具体的な寸法等を正確に示したものではない。したがって、具体的な寸法等は以下の説明を照らし合わせて判断するべきものであり、図面相互間においても互いの寸法の関係や比率が異なる部分が含まれていることは勿論である。
【００１５】
血漿中のマイクロパーティクル（有形成分由来の微粒子）は、上述したように輸血関連急性肺障害（ＴＲＡＬＩ）と関係があると考えられているほかに、輸血後の感染、及び癌の再発等とも関係があると考えられており、これを取り除くことが望まれている。
【００１６】
本実施形態に係る血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法は、ヒトあるいは動物から採取した血漿から有形成分由来の微粒子を除去する方法であって、血漿を２０℃以上４０℃以下の温度でサイズ除去ろ過用多孔膜を用いて、ろ過するろ過工程を含み、血漿から有形成分由来の微粒子を、含有割合が５０％以下となるまで除去する。好ましくは３０％以下、２０％以下、１０％以下、５％以下となるまで除去する。より好ましくは、１％以下、０．１％以下、０．０１％以下である。これらの工程は、どのような装置を用いて操作を行なってもよいが、（ｉ）温度制御手段及び（ｉｉ）加圧手段もしくは流速制御手段を有する、雰囲気の制御可能な条件下で行えば、操作結果の再現性が良好となり、ろ過後の血漿の品質が安定するので好ましい。
【００１７】
本実施形態に係る除去方法は、ろ過工程の前に血漿を保存する保存工程を含んでいてもよい。保存工程においては、血漿を、２４時間以下、０℃以上４０℃以下の温度で保存することが好ましい。保存する温度が０℃未満だと、凝集物の増加によりろ過性が悪化し好ましくない。一方、保存温度が４０℃より高くなると、タンパク質の品質が熱により低下する可能性があり、好ましくない。血漿の保存温度は、より好ましくは２０℃以上３７℃以下である。更に好ましくは２０℃以上２５℃以下である。
【００１８】
本実施形態に係る除去方法のろ過工程において、温度制御手段（ｉ）により制御される温度は、２０℃以上４５℃以下である。ろ過工程の温度が２０℃未満だと、血漿の粘度が高くなるため、ろ過に長い処理時間を要し、実用的な時間範囲内に処理するのが困難となる。このようなことから、温度は２０℃以上が好ましい。一方、ろ過工程の温度が４５℃より高くなると、タンパク質の品質が熱により低下する可能性があり、好ましくない。より好ましくは、ろ過工程における温度は、２５℃以上４０℃以下であり、さらに好ましくは３０℃以上３７℃以下であり、特に好ましくは３５℃以上３７℃以下である。
【００１９】
血液中の有形成分由来の微粒子とは、血液成分中に存在する生理活性を有する微粒子であって、一般に、マイクロパーティクル（ｍｉｃｒｏｐａｒｔｉｃｌｅ（ｓ））と呼ばれるものである。有形成分由来の微粒子は、例えば、粒径５０ｎｍ以上１．５μｍ以下の大きさを有する。なお、このような微粒子は、有形成分（赤血球、リンパ球、単球、内皮細胞、赤血球、及び血小板等）から様々な刺激（剪断応力、補体の刺激、及びアポトーシス促進性等）により生成され、血液中を循環していることが分かっている。
【００２０】
本実施形態に用いるサイズ除去ろ過用多孔膜は、多数の孔が存在する膜であって、ろ過対象物質の大きさによってふるい分けを行う膜をいう。サイズ除去ろ過多孔膜は、多数の孔が形成する微細な流路の大きさによって、ろ過対象物質のうち通過できるものと通過できないもののふるい分けを行い、ろ過を行う。したがって、サイズ除去ろ過多孔膜は、ろ過対象物質とろ過材との吸着性によってろ過を行う、吸着ろ過とは異なるろ過機構を利用する多孔膜である。
【００２１】
本実施形態において、サイズ除去ろ過用多孔膜の形状は、特に限定されず、中空糸状、シート状、フィルム状、及びディスク状など、用いられる分離工程や目的に応じて適宜選択することができる。中空糸膜及び平膜（シート）状が好ましく、中空糸膜がより好ましい。さらに、多孔膜は、単層の膜からなるものであっても、複数の層からなる多層膜であってもよい。なお、膜内の閉塞が起こりにくいという点から、内部の孔径が不連続に変化することのない単層の膜が好ましい。
【００２２】
本実施形態に用いるサイズ除去ろ過用多孔膜の材質は、特に限定されないが、セルロース、又は合成高分子からなるものが好ましい。中でも、再生セルロース、酢酸セルロース、ポリエチレン、ポリフッ化ビニリデン、及びポリエーテルスルホンが好ましく、再生セルロースは、有用なタンパク質の吸着が少ないため、より好ましい。
【００２３】
本実施形態に用いるサイズ除去ろ過用多孔膜は、親水性膜であることが好ましい。親水性膜の材質は、特に限定されないが、疎水性の膜表面に親水基を付与された親水化膜であってもよい。例えば、親水化ポリエチレン、親水化ポリプロピレン、親水化ポリ４−メチル１−ペンテン等の親水化ポリオレフィン、親水化ポリエチレンテレフタレート、親水化ポリブチレンテレフタレート、親水化ポリエチレンナフタレート、親水化ポリブチレンナフタレート、親水化ポリシクロヘキシレンジメチレンテレフタレート等の親水化ポリエステル、親水化ナイロン６、親水化ナイロン６６、親水化ナイロン６１０、親水化ナイロン６１２、親水化ナイロン１１、親水化ナイロン１２、親水化ナイロン４６等のポリアミド系及びそれらを親水化した親水化ポリアミド系、親水化ポリフッ化ビニリデン（ＰＶＤＦ）、親水化エチレン／テトラフルオロエチレン、親水化ポリクロロトリフルオロエチレン等のフッ素系、再生セルロース、混合セルロースエステル、酢酸セルロース等の親水性セルロース系、親水化ポリフェニレンエーテル、親水化ポリスルホン、親水化ポリエーテルスルホン等の親水化ポリスルホン系、親水化アクリル共重合体、グラスファイバー及び親水化ポリアセタール、並びにこれらの複合樹脂等が挙げられ、好ましくは、親水化ポリエチレン、親水化ポリプロピレン等の親水化ポリオレフィン、親水化ポリフッ化ビニリデン（ＰＶＤＦ）、親水化ポリエーテルスルホン、再生セルロース等が挙げられる。
【００２４】
本実施形態において、血漿から有形成分由来の微粒子を除去するためのサイズ除去ろ過用多孔膜の孔径は１５０ｎｍ以下であることが好ましい。孔径が１５０ｎｍより大きくなると、有形成分由来の微粒子の除去率が低下するため好ましくない。１２０ｎｍ以下、１００ｎｍ以下、８０ｎｍ以下であれば除去率が更に向上するためより好ましく、７５ｎｍ以下であれば更に好ましく、得られる血漿製剤の安全性が増加する。
【００２５】
一方、サイズ除去ろ過用多孔膜の孔径は４０ｎｍ以上であることが好ましい。孔径が４０ｎｍ未満になると、膜が閉塞し、ろ過圧の上昇又はろ過流速の低下を引き起こしてろ過を続けられなくなる場合がある。
【００２６】
サイズ除去ろ過用多孔膜の孔径は、平均透水孔径測定法（特開平４−３７１２２１号公報参照）により測定することができる。
【００２７】
ろ過処理時の圧力は、多孔膜の使用許容最高圧以下であればよいが、１０００ｋＰａ以下が好ましく、３５０ｋＰａ以下であればより好ましく、９８ｋＰａ以下の圧力であれば、操作安全性に優れ、除去性を充分に担保でき、タンパク質の変性が少ないため、さらに好ましく、８０ｋＰａ以下であれば特に好ましい。特に、合成高分子からなる多孔膜では、３５０ｋＰａ以下が好ましく、セルロースからなる多孔膜では、９８ｋＰａ以下が好ましい。
【００２８】
定速ろ過でろ過処理する場合のろ過流速は、多孔膜の使用許容最高圧以下の範囲であればよい。例えば、プラノバ７５Ｎフィルターの場合は、定速ろ過でのろ過処理時のろ過流速は膜面積（ｍ2）あたり０．００５Ｌ／分以上、好ましくは０．０１Ｌ／分以上、より好ましくは０．０５Ｌ／分以上であり、４０Ｌ／分以下、好ましくは２０Ｌ／分以下、より好ましくは５Ｌ／分以下である。
【００２９】
本実施形態において、サイズ除去用多孔膜の気孔率は約２０％以上９０％以下である事が好ましく、より好ましくは約３０％以上約８０％以下であり、さらに好ましくは約５５以上７０％以下、特に好ましくは約５８以上６５％である。
気孔率（％） は、次式により計算される値をいう。
（式）気孔率（％）＝１００×（１−膜重量÷（膜材質の密度×膜体積））
【００３０】
血漿製剤の製造方法には、アフェレーシスによる成分献血による方法で製造する方法と、全血を遠心分離して血漿成分を分離する方法が挙げられる。アフェレーシス法は、血液中から血漿、血小板、血球を体外循環により目的物別に分離採取する方法を意味する。この方法は専用のアフェレーシス装置を用いて行われる。アフェレーシス法は成分献血の際に使用され、目的以外の成分は通常供血者に戻すので、供血者の負担が少ない。また、全血を遠心分離して血漿成分を分離する方法では、全血を取得してから血漿に分画するまでに長時間が経過したり、運搬により物理的刺激が加わったりして、有形成分由来の微粒子が増加する可能性がある。一方で、アフェレーシス法のように血液の採取から短時間で血漿を得られる方法では、有形成分由来の微粒子の増加が抑えられる。したがって、得られる血漿製剤に含有される有形成分由来の微粒子の絶対量を低減させるためには、アフェレーシス法を用いる事が好ましい。
【００３１】
本実施形態の除去方法では、血漿を採取してから２４時間未満である新鮮なものをろ過工程で処理することが好ましい。つまり、保存工程の時間は２４時間未満である事が好ましい。２４時間以上では、タンパク質の品質が低下する傾向がある。保存工程の時間は、より好ましくは２０時間以内、さらに好ましくは１２時間以内、よりさらに好ましくは８時間以内、特に好ましくは６時間以内である。また、アフェレーシス方法では即時に血漿を分離することが可能である。「即時」とは、血漿中のタンパク質の凝集等により、膜の透過性が低下しない時間をいい、通常全血の採取から１２時間以内、４時間以内、好ましくは２時間以内、さらに好ましくは１時間以内、最も好ましくは１０分以内をいう。
【００３２】
本実施形態の除去方法におけるろ過工程において、サイズ除去ろ過用多孔膜を用いてろ過する前に、白血球を除去するろ過工程を含むことが好ましい。アフェレーシス法で採取した血漿であっても、微量の白血球が混入している場合があり、サイズ除去ろ過用多孔膜を用いて有形成分由来の微粒子を除去する前に混入した白血球を除去すると、サイズ除去ろ過用多孔膜でのろ過する際に、膜の目詰まりが減少し、定速ろ過ではろ過圧の上昇が抑制され、定圧ろ過ではろ過流速の低下が抑制され、いずれのろ過方法でも、より多くの血漿ろ液を回収できる可能性が高いため、好ましい。
【００３３】
本実施形態の除去方法では、ろ過工程で、多孔膜の膜面積当たり３Ｌ／ｍ2以上ろ過することが可能であることが好ましい。より好ましくは５Ｌ／ｍ2以上ろ過することが可能であることが好ましい。多孔膜の膜面積当たりのろ過可能量は、流速制御ろ過における使用許容最大圧力に達するまでのろ過量を膜面積で除した値として算出する。通常の輸血用血漿製剤の量は１２０ｍＬから４５０ｍＬ程度であり、５Ｌ／ｍ2以上ろ過することが可能な方法であれば、０．１ｍ2以下の小型の膜面積のフィルターを用いることが可能であるためである。小型の膜面積のフィルターを利用できる場合は、アフェレーシス法での血漿採取の工程に連続して、あるいは併設してろ過をすることが可能となり、好ましい。
【００３４】
後述する実施例で明らかになったように、有形成分由来の微粒子を除去することにより、トロンビン生成活性を低下させられる。活性化第Ｘ因子と活性化第Ｖ因子は複合体を形成し、カルシウムイオンと血小板由来のリン脂質の存在下で、トロンビン生成活性を発揮する。また、活性化第ＶＩＩＩ因子と活性化第ＩＸ因子の複合体は、カルシウムイオンと血小板由来のリン脂質の存在下で、第Ｘ因子を活性化第Ｘ因子にする作用を発揮する。有形成分由来の微粒子を除去することにより、血小板由来のリン脂質を除くことで、トロンビン生成活性を示さない血漿が得られる。本実施形態により、トロンビン生成活性を示さない血漿を得られる。
【００３５】
さらに、血漿から有形成分由来の微粒子を除去することにより、血漿中のプリオン除去または低減に寄与する。血漿中のプリオンには、正常と異常（病原性）のものがあるが、血漿中に異常プリオンが含まれる場合、これを除去または低減することができる。
【００３６】
また、本実施形態の除去方法により、血漿の有形成分由来の微粒子を除去することで、好中球刺激活性を低減させ、例えば好中球細胞外トラップ（略称：ＮＥＴｓ）の形成を抑制することが可能となる。好中球細胞外トラップは、細菌やカビを殺傷する作用がある一方、肺で過剰に形成されると急性の肺障害を起こし、時には死因となる場合もある。
【００３７】
１回のろ過処理で処理する血漿の容量は、特に制限はないが、一個体から採取できる血漿は通常１００−５００ｍＬであるため、１００ｍＬ−５００ｍＬが通常１回に処理する容量である。１００ｍＬ未満であると１回の処理量としては経済上好ましくなく、５００ｍＬ以上であると一個体から採取するには個体への負担が大きい。より好ましくは１２０ｍＬ−４５０ｍＬ以下、さらに好ましくは２００−４００ｍＬである。
【００３８】
一方、プール血漿を処理する場合は、プール血漿の一部を用いて、予備ろ過試験を行い、ろ過にかけることのできる時間を加味して、必要な膜面積を計算して行うのが好ましい。
【００３９】
また、処理時間は、処理する血漿量と膜の面積などにより決定されるが、４０分以下にするように設定することが好ましい。個体からの採血と同時にろ過する場合、４０分以下であれば個体への負担が少ないためであり、あまりにろ過時間が長いと製剤の変性の可能性も場合によっては考えられるからである。
【実施例】
【００４０】
（有形成分由来の微粒子の含有量の測定方法）
有形成分由来の微粒子の含有量の測定方法としては、ｑＮａｎｏ（Ｉｚｏｎ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  Ｌｔｄ、ニュージーランド）での測定を行った。この装置は、約１００ｎｍから約４μサイズのあいだの７段階のサイズのいずれかの孔のあいた伸縮可能なポリウレタン素材製の試料を入れる部品（この部品は「ナノポア」と呼称される）の１つを選択し、この部品の試料受けに試料を入れ、その試料中に存在する微粒子が、帯電している場合は、膜間電位差により孔を通過させることができ、粒子の通過時の電気抵抗の変化を電気抵抗ナノパルス法で検出し、電気抵抗の大きさから、粒子サイズ、及び時間当たりの通過粒子数を計測し、本装置のデータ解析ソフトウェアを用いることにより粒子濃度が測定できる。本実施例では、４００ｎｍの孔径のナノポア（ＮＰ４００）、及び１００ｎｍの孔径のナノポア（ＮＰ１００）を使用した。
【００４１】
（流速制御ろ過におけるろ過可能量の測定方法）
フィルターの各試料液のろ過可能量の測定では、一定範囲の流速で流した際に使用許容最高圧に達して、ろ過を中止するまでの、ろ過可能量を測定した。具体的には、中空糸膜フィルター（Ｐｌａｎｏｖａ  ７５Ｎ）による各試料液のろ過可能量の測定を、以下のごとく行った。
【００４２】
ＧＥ  Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社製液体クロマトグラフィーシステムＡＫＴＡｐｒｉｍｅ  ｐｌｕｓを用いて一定範囲の流速で試料液をＰｌａｎｏｖａ  ７５Ｎフィルターに送液しろ過を行った。流速は、Ｐｌａｎｏｖａ  ７５Ｎフィルターの膜面積１．０ｍ2当たり０．０５Ｌ／分から０．２Ｌ／分の間で行った。フィルターのろ過圧力はＡＫＴＡｐｒｉｍｅ  ｐｌｕｓの圧力センサーで測定し、ろ過液量に対するろ過圧力の変化を記録させながら行なった。ろ過可能量の測定は、使用するフィルターの使用許容最高圧に達した時点（Ｐｌａｎｏｖａ  ７５Ｎフィルターでは、９８ｋＰａ）での、膜面積１ｍ2当たりのろ過量（Ｌ）で測定した。
【００４３】
なお、フィルターの使用許諾最大圧に達するまでろ過を続けることが難しい場合は、ろ過圧とろ過量の挙動から、ろ過可能量から予測する事も可能である。一定の流速でのフィルターによるろ過の場合、試料液のろ過が進行すると、ろ中に試料液由来の物質が、ろ過流路入口側表面、ろ過流路の表面、あるいはろ過流路途中に捕捉、沈着、積層する場合には、ろ過圧が上昇する。そして、そのままろ過を継続すると急激にろ過圧が上昇する。ろ過可能量の測定指標として、フィルターの使用許容最高圧に達した時点を用いる場合、ろ過量対ろ過圧の変化をプロットしたグラフから、圧の上昇が予測できる場合は、使用許容圧に達すると推測される時点のろ過量を予測することができる。
【００４４】
定速ろ過を行う場合、膜への試料液中の物質の吸着や、除去対象物である微粒子や凝集物などによるろ過膜の細孔の狭窄や、閉塞により、ろ過圧力が上昇する。ろ過圧力が一旦増すと急激に高圧に達して、ろ過膜の破裂やフィルターのハウジングの破壊、送液回路の破裂、送液回路とフィルターの接続部からの液の漏洩などで、ろ過の失敗を招く。また、ろ過作業者が、被液や怪我を蒙る場合がある。更に、高圧になった場合、ろ過膜の変形を招き、期待する効果が得られない。
【００４５】
なお、一定の圧力条件でろ過を行い、既定の流速に至るまでのろ過可能量を測定することもできる。
【００４６】
定圧ろ過の場合は、使用するろ過膜の使用許容最高圧（Ｐｌａｎｏｖａ  ７５Ｎフィルターの場合９８ｋＰａ）以下であれば、いずれの圧力でも構わないが、使用許容最高圧の１０％から１００％の範囲がより好ましい。試料液を耐圧容器に入れ空気又は窒素ガスにより耐圧容器内に圧力をかけ、耐圧容器に差し込んだ配管から試料液を、ろ過膜の上流側に送液し、ろ過された液を採取しろ過量を体積又は重量で計測し、ろ過開始からのろ過量の変化を経時的に記録する。既定の流速に達するまでのろ過量を測定することができる。なお、既定の流速に達するまでろ過を続けられない場合は、ろ過速度の経時変化から予測計算することでろ過可能量を予測することができる。
【００４７】
（トロンビン生成活性の評価方法）
トロンビン生成活性は、Ｔｅｃｈｎｏｃｌｏｎｅ  ＧｍｂＨ（オーストリア）社のＴＥＣＨＮＯＴＨＲＯＭＢＩＮ（登録商標）  ＴＧＡ  Ｋｉｔを用いて測定した。
【００４８】
（実施例１：ＭＰｓ除去率、ろ過圧力の評価）
濃縮血小板溶液を、６０００ｘｇで、３０分間、室温（２０℃−２４℃）にて遠心分離し、その上清（血漿）を採取した。さらに上清を１ないし２時間、室温（２２−２４℃）で保存した。次に、上清から、白血球除去フィルター（不織布）であるセパセルフィルター（旭化成メディカル、日本）にて白血球除去を行った。その後、ろ液を膜面積０．００１ｍ2のプラノバ７５Ｎフィルター（旭化成メディカル、日本）にて、更にろ過を行った。
【００４９】
プラノバ７５Ｎフィルターのろ過の流速は０．１−０．２Ｌ／分／ｍ2で行い、ろ過工程は、３５℃以上３７℃以下の温度環境下で行った。その結果、プラノバ７５Ｎフィルターでのろ過は、徐々にろ過圧力が上昇し、図１に示すとおり、１２Ｌ／ｍ2のろ過が行われた時点で、ろ過圧力が９８ｋＰａに達した。また、保存工程後の上清と、前記上清を白血球除去した後、プラノバ７５Ｎフィルターでろ過したろ液について、マイクロパーティクルの濃度（粒子数/ｍＬ）をｑＮａｎｏで測定して除去率を求めたところ、マイクロパーティクルの除去率は９９％以上の高い値を示した。
【００５０】
（実施例２：ＭＰｓ除去率、ろ過圧力の評価）
濃縮血小板溶液を、６０００ｘｇで、３０分間、室温（２０℃−２４℃）にて遠心分離し、その上清（血漿）を採取し、−２０℃凍結し一晩保存した。その後、３０℃で融解し、室温(２２-２４℃)にて融解後３０分未満保存したのち、セパセルフィルターにて白血球除去を行い、そのろ液を膜面積０．００１ｍ2のプラノバ７５Ｎフィルター（旭化成メディカル、日本）にて、更にろ過を行った。
【００５１】
プラノバ７５Ｎフィルターのろ過の流速は０．１−０．２Ｌ／分／ｍ2で行い、ろ過工程は、３５℃以上３７℃以下の温度環境下で行った。その結果、プラノバ７５Ｎフィルターでのろ過は、徐々にろ過圧力が上昇し、図１に示すとおり、２．２Ｌ／ｍ2のろ過が行われた時点で、ろ過圧力が９８ｋＰａに達した。また、保存工程後の上清と、前記上清を白血球除去した後、プラノバ７５Ｎフィルターでろ過したろ液について、マイクロパーティクルの濃度（粒子数/ｍＬ）をｑＮａｎｏで測定して除去率を求めたところ、マイクロパーティクルの除去率は９９％以上の高い値を示した。
【００５２】
（実施例３：ＭＰｓ除去率、ろ過圧力の評価）
アフェレーシス採取血漿（ＰＰＰ：Ｐｌａｔｅｌｅｔ  Ｐｏｏｒ  Ｐｌａｓｍａ）を室温（２２−２４℃）保存し、３−４時間の内に、セパセルフィルターにて白血球除去を行い、そのろ液を膜面積０．０１ｍ2のプラノバ７５Ｎフィルターにて、ろ過を行った。
【００５３】
プラノバ７５Ｎフィルターのろ過の流速は０．０５Ｌ／分／ｍ2で行い、ろ過工程は、３５℃以上３７℃以下の温度環境下で行った。その結果、プラノバ７５Ｎフィルターでのろ過は、図１に示すとおり、１２．５Ｌ／ｍ2のろ過が行われた時点でも、ろ過圧力は０．２ｂａｒで安定しており、上昇傾向は見られなかった。また、保存工程後のアフェレーシス採取血漿と、この血漿の白血球除去後、プラノバ７５Ｎフィルターでろ過したろ液中について、マイクロパーティクルの濃度（粒子数/ｍＬ）をｑＮａｎｏで測定し、除去率を求めたところ、マイクロパーティクルの除去率は９９％以上の高い値を示した。
【００５４】
（比較例１：ＭＰｓ除去率、ろ過圧力の評価）
プラノバ７５Ｎフィルター（旭化成メディカル、日本）によって濾過しなかった以外は、実施例１と同様の手順を行った。すなわち、濃縮血小板溶液を、６０００ｘｇで、３０分間、室温（２０℃−２４℃）にて遠心分離し、その上清を採取した。さらに上清を１ないし２時間、室温（２２−２４℃）で保存した。次に、上清からセパセルフィルターにて白血球除去を行った。結果を図１に示す。また、保存工程後の上清と、前記上清を白血球除去したろ液について、マイクロパーティクルの濃度（粒子数/ｍＬ）をｑＮａｎｏで測定して除去率を求めたところ、マイクロパーティクルの除去率は約２０％となった。
【００５５】
（実施例４：トロンビン生成活性の評価）
表１に示す非凍結の乏血小板血漿試料（ＰＰＰ）、それをセパセルフィルターにて白血球除去した試料（Ｓｅｐａｃｅｌｌ）、及びセパセルフィルターにて白血球除去した試料を更にプラノバ７５Ｎフィルターにてろ過した試料（Ｐｌａｎｏｖａ）のそれぞれのトロンビン生成活性を、Ｔｅｃｈｎｏｃｌｏｎｅ  ＧｍｂＨ（オーストリア）社のＴＥＣＨＮＯＴＨＲＯＭＢＩＮ（登録商標）  ＴＧＡ  Ｋｉｔを用いて測定した。測定は、キット付属の試薬（表２）を用いて説明書に従って行った。
【表１】
2015231523.tif 000002
【表２】
2015231523.tif 000003
【００５６】
表３は、トロンビン生成活性を測定した反応液を構成する液組成を示している。反応は、３７℃で行われ、ＴＧＡ  ＳＵＢ液を反応容器に投入した時点から、トロンビン生成活性の計測が開始された。測定は、同一測定試料に対して２つの別の反応容器で反応液を調整して測定した。即ち、同一試料について２回測定した。
【表３】
2015231523.tif 000004
【００５７】
図２ないし図４の各チャートは、トロンビン生成活性の測定結果を示している。各チャートの横軸は反応開始後の時間（単位：分）で、縦軸は反応容器中に生成されたトロンビン活性をトロンビン濃度に換算した値（ｎｍｏｌ／Ｌ）である。トロンビン活性が反応液に生成されれば、反応開始後約５分から約６０分の間に、チャートの縦軸に高いピークが現れる。一方、反応液中にトロンビン活性が生成されない場合は、時間が経過しても、チャートの縦軸に高いピークは現れない。試料にどの程度のトロンビン生成活性があるかは、対照としてキットに付属されている高トロンビン生成活性参照用液と低トロンビン生成活性参照用液の測定チャートでの反応容器中に生成されたトロンビン活性をトロンビン濃度に換算した値（ｎｍｏｌ／Ｌ）と比較することでわかる。
【００５８】
図２に示すチャート１は、測定キットに付属の高トロンビン生成活性参照用液（Ｃ  Ｈｉｇｈ）を測定試料としたときのトロンビン生成活性の測定結果を示している。チャート２は、測定キットに付属の低トロンビン生成活性参照用液（Ｃ  Ｌｏｗ）を測定試料としたときのトロンビン生成活性の測定結果を示している。
【００５９】
図３に示すチャート３は、白血球除去処理前の乏血小板血漿（ＰＰＰ）を測定試料としたときのトロンビン生成活性の測定結果を示している。
【００６０】
図４に示すチャート４は、乏血小板血漿のセパセルろ過後のろ液試料（Ｓｅｐａｃｅｌｌ）を測定試料としたときのトロンビン生成活性の測定結果を示している。チャート５は、乏血小板血漿のセパセルろ過後の試料を更にプラノバ７５Ｎでろ過後のろ液試料（Ｐｌａｎｏｖａ）を測定試料としたときのトロンビン生成活性の測定結果を示している。
【００６１】
図２ないし図４に示すチャート１ないし５の数値を基に、測定結果をまとめた表４を作成した。図４及び表４より明らかな様に、非凍結の乏血小板血漿試料をセパセルフィルターにて白血球除去した試料を更にプラノバ７５Ｎフィルターにてろ過した試料には、トロンビン生成活性が検出されなかった。
【表４】
2015231523.tif 000005
【００６２】
（参考例１：ＳＤ処理した乏血小板血漿のトロンビン生成活性の評価）
ソルベントデタージェント（ＳＤ）処理した乏血小板血漿（以下、ＰＰＰ−ＳＤと略す。）は、非凍結の乏血小板血漿試料１ｍＬにＴｎＢＴ（Ｔｒｉｂｕｔｙｌｐｈｏｓｐｈａｔｅ；  Ｍｅｒｃｋ；  ８．１８６０４．０５００）終濃度１％とＴｒｉｔｏｎＸ４５（Ｓｉｇｍａ；  Ｘ４５−１００ＭＬ）終濃度１％を加え、２５℃で、３０分間、緩徐に撹拌することにより得た。
【００６３】
ＰＰＰ−ＳＤを測定対象としたトロンビン生成活性を、実施例４と同様に評価した。即ち、ＴＧＡ  ＲＣ  Ｌｏｗ  １０μＬ、ＰＰＰ−ＳＤ４０μＬに、ＴＧＡ  ＳＵＢ  ５０μＬを添加して反応開始させた試料のトロンビン生成活性を測定した。測定結果のチャートを図５に示す。また、チャートの数値をもとに、測定結果をまとめたものを表５に示す。図５及び表５から明らかなように、ソルベントデタージェント処理した乏血小板血漿中には、トロンビン生成活性が認められなかった。
【表５】
2015231523.tif 000006
【００６４】
（参考例２：濃厚血小板血漿から調製したマイクロパーティクルの懸濁液のろ過試験）
【００６５】
（血小板由来マイクロパーティクル懸濁液の調製）
アフェレーシス法で採取した濃厚血小板（２００ｍＬ）を、３０００ｘｇで、１５分間、室温（２２℃）にて遠心分離し、生じた上清は捨て、生じた沈殿（血小板）を２００ｍＬのタイロード塩緩衝液（シグマ‐アルドリッチ、Ｔ２３９７）で懸濁した。
【００６６】
この血小板懸濁液にウシ由来トロンビン（シグマ‐アルドリッチ、Ｔ４６４８）を終濃度０．１Ｕ／ｍＬ加え、振とうしながら、３７℃、６０分間反応させた。この反応により血小板を活性化し、血小板由来マイクロパーティクルを生じせしめた。反応液にエチレンジアミン四酢酸（バイオショップ、ＥＤ００１）溶液を終濃度２０ｍｍｏｌ／Ｌ添加し血小板活性化反応を停止した。この停止反応液を３２００ｘｇ、１０分間、室温にて遠心分離し、上清を採取した。尚、沈殿物は、活性化された血小板である。得られたこの上清を、２００００ｘｇ、９０分間、１８℃で遠心分離した。上清を取り除き、沈殿に１ｍＬのタイロード塩緩衝液を加え懸濁して血小板由来マイクロパーティクル懸濁液を得た。この懸濁液を少量ずつ容器に分取し、−８０℃にて凍結した。
【００６７】
（プラノバ７５Ｎフィルターによるろ過）
凍結した血小板由来マイクロパーティクル懸濁液の容器を、３０℃の水に浸し、凍結懸濁液を融解し、振とうして懸濁した。懸濁液１５５μＬをダルベッコリン酸緩衝生理食塩水（シグマ‐アルドリッチ、Ｄ８５３７）３０ｍＬ中に加え混和し、ろ過用懸濁液を得た。
【００６８】
調製したろ過用懸濁液を膜面積０．００１ｍ2のプラノバ７５Ｎフィルター（旭化成メディカル、日本）により、定速ろ過を行った。ろ過速度は１Ｌ／分／ｍ2、ろ過時の温度は３５℃以上３７℃以下の温度環境下で行った。プラノバ７５Ｎフィルターによるろ液試料は、ろ過開始後１分到達時点から、４ｍＬずつ分取し、合計５本の試料を得た。以下、これらの試料を順にＦＴ１、ＦＴ２，ＦＴ３、ＦＴ４、ＦＴ５と呼ぶことにする。
【００６９】
（ｑＮａｎｏでの微粒子測定）
上記のろ過用懸濁液、及びプラノバ７５Ｎフィルターによるろ液試料をｑＮａｎｏ（Ｉｚｏｎ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  Ｌｔｄ、ニュージーランド）で測定した。ナノポアはＮＰ１００を用いた。プラノバ７５Ｎフィルター、及び試料送液の回路由来の粒子が検出されないように、事前にダルベッコリン酸緩衝生理食塩水（シグマ‐アルドリッチ、Ｄ８５３７）での洗浄を行った。ろ過用懸濁液（即ち、プラノバ７５Ｎフィルターによるろ過前の試料）の測定結果のヒストグラムを図６及び図７に記す。図６及び図７に示す２つのヒストグラムは、ろ過用懸濁液を２回ｑＮａｎｏで測定した結果である（１回目測定時間約６０秒、２回目測定時間約１７０秒）。横軸は、粒子の直径（単位：ｎｍ）、縦軸は、行った計測時間の間に計測された全粒子数（１００％とする）に対する各ヒストグラムの棒の幅である粒子径範囲の粒子数の割合（％）を示している。ろ過用懸濁液中には、１２０ｎｍ程度の直径の粒子が多く、大きなサイズになるにしたがって含有割合は減少し４００から５００ｎｍ程度の粒子まで小数だが存在することが判る。
【００７０】
ｑＮａｎｏ測定結果の測定時間、検出粒子数などの結果をまとめた表を表６に示す。ろ過前の元液であるろ過用懸濁液の粒子濃度の２回の算定は、２×１０9と３×１０9粒子／ｍＬであった。これに対し、ろ過用懸濁液を、プラノバ７５Ｎフィルターによりろ過して得られたろ液試料（ＦＴ１からＦＴ５まで）についての測定結果では、ろ過の初期に採取されたＦＴ１で約１分の測定時間で１個検出され、その濃度は４×１０7粒子／ｍＬと算定されたのみで、ＦＴ２、ＦＴ３，ＦＴ４，ＦＴ５では、約１分の測定時間で、いずれの試料でも検出粒子は０個であった。
【００７１】
ろ過の初期の採取試料（ＦＴ１）のみに１個の粒子が検出され、それ以降の４試料には粒子が検出されなかったことから、これら５試料中に１個の粒子が検出されたといえる。この前提で計算すると、ろ液中の粒子濃度は４×１０7粒子／ｍＬ÷５＝８×１０6粒子／ｍＬという計算が、成り立つ。そして、ろ過用懸濁液の粒子濃度を２×１０9粒子／ｍＬとした場合は、プラノバ７５Ｎフィルターによる粒子の除去後の割合は、０．４％、ろ過用懸濁液の粒子濃度を３×１０9粒子／ｍＬとした場合は、プラノバ７５Ｎフィルターによる粒子の除去後の割合は、約０．２７％と算出される。したがって、９９％以上のマイクロパーティクルの除去率が示された。
【表６】
2015231523.tif 000007
【００７２】
（実施例５：好中球細胞外トラップの形成の有無の評価）
血小板由来マイクロパーティクル（微粒子）を含むヒト血漿に入れられたヒト好中球を光学顕微鏡写真で観察して得られた画像を図８に示す。図８において、白い丸い粒が好中球であり、数十個凝集している様子が観察された。これは、ＮＥＴｓの形成が起きていることを示している。
【００７３】
また、血小板由来マイクロパーティクルを含むヒト血漿を、膜面積０．００１ｍ2のプラノバ７５Ｎフィルターを使用し、ろ過の流速は０．５Ｌ／分／ｍ2で行ったこと以外は実施例３と同様の条件においてろ過し、ヒト血漿から血小板由来マイクロパーティクルを９９％以上除去した後のヒト血漿に入れられた、ヒト好中球を光学顕微鏡写真で観察して得られた画像を図９に示す。図９において、白い丸い粒が好中球であり、凝集している様子は観察されなかった。これは、ＮＥＴｓの形成が起きていないことを示している。
【図１】
2015231523.tif 000008
【図２】
2015231523.tif 000009
【図３】
2015231523.tif 000010
【図４】
2015231523.tif 000011
【図５】
2015231523.tif 000012
【図６】
2015231523.tif 000013
【図７】
2015231523.tif 000014
【図８】
2015231523.tif 000015
【図９】
2015231523.tif 000016