(57)【要約】【課題】ユーグレナの増殖が促進されたユーグレナの培養方法及びその培養液を提供する。【解決手段】ユーグレナの培養方法であって、ユーグレナの培養に必要な栄養源を含む培養原液に、Ｆｅ（III）を含有する固体材料が浸漬されてなるＦｅ（III）含有培養液中で、ユーグレナを培養する。培養原液にユーグレナを添加するユーグレナ添加工程と、ユーグレナ添加工程と同時又はユーグレナ添加工程の前に、又は、ユーグレナ添加工程の後でかつユーグレナの増殖サイクルが定常期に達する前に、培養原液に固体材料を添加することにより、Ｆｅ（III）含有培養液を作製する固体材料添加工程と、Ｆｅ（III）含有培養液中でユーグレナを培養する培養工程と、を行う。【選択図】図１
2015144570.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ユーグレナの培養に必要な栄養源を含む培養原液に、Ｆｅ（III）を含有する固体材料が浸漬されてなるＦｅ（III）含有培養液中で、ユーグレナを培養することを特徴とするユーグレナの培養方法。
【請求項２】
前記培養原液に前記ユーグレナを添加するユーグレナ添加工程と、
該ユーグレナ添加工程と同時又は前記ユーグレナ添加工程の前に、又は、前記ユーグレナ添加工程の後でかつ前記ユーグレナの増殖サイクルが定常期に達する前に、前記培養原液に前記固体材料を添加することにより、前記Ｆｅ（III）含有培養液を作製する固体材料添加工程と、
前記Ｆｅ（III）含有培養液中で前記ユーグレナを培養する培養工程と、
を行うことを特徴とする請求項１記載のユーグレナの培養方法。
【請求項３】
前記培養工程を、前記培養原液中の窒素源が消尽される時点よりも後の時点まで行うことを特徴とする請求項２記載のユーグレナの培養方法。
【請求項４】
前記固体材料添加工程では、Ｆｅ２Ｏ３含有量が１．５〜８０重量％である多孔質焼成体からなる前記固体材料を、前記培養原液に対し、０．２ｇ／ｍｌ未満の量添加することを特徴とする請求項２又は３記載のユーグレナの培養方法。
【請求項５】
前記固体材料により前記ユーグレナの死細胞の発生を抑制することによって、前記ユーグレナの増殖を促進することを特徴とする請求項１乃至４いずれか記載のユーグレナの培養方法。
【請求項６】
Ｆｅ（III）を含有する固体材料が、ユーグレナの培養に必要な栄養源を含む培養原液に浸漬されてなるユーグレナの培養液。
【請求項７】
前記固体材料は、１．５〜８０重量％のＦｅ２Ｏ３を含有する多孔質焼成体であり、
該多孔質焼成体を、０．２ｇ／ｍｌ未満の割合で含むことを特徴とする請求項６記載のユーグレナの培養液。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ユーグレナを培養する培養方法及びその培養液に関する。
【背景技術】
【０００２】
ユーグレナ（属名：Euglena，和名：ミドリムシ）は、食糧，飼料，燃料等としての利用が有望視されている。
例えば、ユーグレナは、ビタミン，ミネラル，アミノ酸，不飽和脂肪酸など、人間が生きていくために必要な栄養素の大半に該当する５９種類もの栄養素を備え、多種類の栄養素をバランスよく摂取するためのサプリメントとしての利用や、必要な栄養素を摂取できない貧困地域での食糧供給源としての利用の可能性が提案されている。
更に、ユーグレナは、高タンパクで栄養価が高いため、家畜や養殖魚の飼料としての活用も期待されている。
【０００３】
また、ユーグレナは、光合成によって二酸化炭素を固定して成長するとき、油脂分を作り出しており、これはバイオ燃料の元として利用可能である。
バイオ燃料は、石油などの化石燃料と違って資源が枯渇する心配がない。また、化石燃料は燃料として使用することで新たに二酸化炭素を排出するが、バイオ燃料は、原料となる植物，藻類が成長する際に二酸化炭素を固定し、それを燃料として排出する。従って、全体で見れば二酸化炭素の排出量が増えないことになり、温暖化の防止に効果があるものと考えられている。
更に、トウモロコシ等、可食部を原料とするバイオ燃料は、バイオ燃料としての用途と食糧としての用途とが競合し、バイオ燃料として用いることにより食糧の不足や値上がりを引き起こす恐れがあるが、ユーグレナは、現状、可食部としての消費がないことから、食糧としての用途との競合が生じない。
【０００４】
以上のように、ユーグレナは、食糧，飼料，燃料としての利用が有望視され、長い間、注目を浴びてきた。しかしユーグレナは、食物連鎖の最底辺に位置し、捕食者により捕食されることや、光，温度条件，撹拌速度などの培養条件が他の微生物に比べて難しいなどの理由から、大量培養に成功した例は、非常に少なく、本発明者らが成功した以外には知られていない。
しかし現在においても、上述したユーグレナの産業上有用性に鑑みると、更なる収量の向上が望まれている。
従来、収量を向上させるための技術として、海洋深層水を培地に添加してユーグレナ細胞を培養する方法や（例えば、特許文献１）、流加基質として炭素源及び窒素源を添加しながらユーグレナの流加培養を行う方法（例えば、特許文献２）が、知られているが、例えば、バイオ燃料としての用途のためには、大量のユーグレナの安定供給が求められることから、更なるユーグレナの収量向上が望まれている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特開２００１−１９０２７１号公報
【特許文献２】特開平７−６７６２０号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明は、上記の課題に鑑みてなされたものであり、本発明の目的は、ユーグレナの増殖が促進されたユーグレナの培養方法及びその培養液を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは、ユーグレナの収量を向上する必要があると考え鋭意研究を行った。その過程において、偶然にも、培養液にＦｅ（III）を含有する固体材料を浸漬させてユーグレナの培養を行った場合に、ユーグレナの増殖が促進されることを見出し、本発明に到達した。
【０００８】
前記課題は、請求項１のユーグレナの培養方法によれば、ユーグレナの培養に必要な栄養源を含む培養原液に、Ｆｅ（III）を含有する固体材料が浸漬されてなるＦｅ（III）含有培養液中で、ユーグレナを培養すること、により解決される。
このように構成することにより、ユーグレナの培養方法において、ユーグレナの増殖を促進し、収率を向上できる。
【０００９】
この増殖促進のメカニズムについては、現在のところ詳細には分かっていないが、次のように考えられる。
ユーグレナの培養に必要な栄養源を含むCramer-Myers培地（ＣＭ培地）等の培養液には、元々Ｆｅ（II）（二価の鉄）が含まれているが、Ｆｅ（III）（三価の鉄）は含まれていない。
このようなユーグレナの培養液に、Ｆｅ（III）を含有する固体材料を浸漬させると、この固体材料から三価の鉄が溶出し、これが、培地中の窒素源が消費されてしまった後の増殖に寄与していると考えられる。
また、三価の鉄は培養中では不安定であり容易に二価に還元されてしまうので、固体材料を取り去るとユーグレナの増殖促進効果が出なくなるが、このように、Ｆｅ（III）を含有する固体材料が浸漬されてなるＦｅ（III）含有培養液中で、ユーグレナを培養するため、ユーグレナの増殖を促進し、収率を向上できる。
【００１０】
このとき、前記培養原液に前記ユーグレナを添加するユーグレナ添加工程と、該ユーグレナ添加工程と同時又は前記ユーグレナ添加工程の前に、又は、前記ユーグレナ添加工程の後でかつ前記ユーグレナの増殖サイクルが定常期に達する前に、前記培養原液に前記固体材料を添加することにより、前記Ｆｅ（III）含有培養液を作製する固体材料添加工程と、前記Ｆｅ（III）含有培養液中で前記ユーグレナを培養する培養工程と、を行ってもよい。
本発明者らの鋭意研究の結果、ユーグレナの増殖サイクルが定常期に達する前に固体材料を添加することにより、ユーグレナの増殖促進効果が得られることが分かったため、このように構成することにより、ユーグレナの培養方法において、ユーグレナの増殖を促進し、収率を向上できる。
【００１１】
このとき、前記培養工程を、前記培養原液中の窒素源が消尽される時点よりも後の時点まで行ってもよい。
本発明者らの鋭意研究の結果、培養液中の窒素源が消費されてしまった後の増殖を特に促進することが分かったため、このように構成することにより、より効率よくユーグレナの増殖を促進し、収率を向上できる。
【００１２】
このとき、前記固体材料添加工程では、Ｆｅ２Ｏ３含有量が１．５〜８０重量％である多孔質焼成体からなる前記固体材料を、前記培養原液に対し、０．２ｇ／ｍｌ未満の量を添加してもよい。
培養液中に、Ｆｅ２Ｏ３含量が８０重量％を超える固体材料を浸漬すると、固体材料が崩れやすく、培養液が赤くなるため、培養液の物理的取扱いが煩わしくなるが、このように、固体材料の含量を８０重量％以下としているため、培養液の物理的取扱いが容易になる。
また、固体材料中のＦｅ２Ｏ３含量を１．５重量％以上としているため、Ｆｅ（III）によるユーグレナの増殖促進効果を得ることができる。
固体材料の培養液中の添加量を０．２ｇ／ｍｌ未満としているため、固体材料にユーグレナが絡められることによりユーグレナの増殖促進作用が抑制されることを、防ぐことができる。
【００１３】
このとき、前記固体材料により前記ユーグレナの死細胞の発生を抑制することによって、前記ユーグレナの増殖を促進してもよい。
発明者らの鋭意研究により、固体材料を浸漬しない従来の培養液でユーグレナを培養したときに検出されるユーグレナの死細胞のピークが、本発明の固体材料が浸漬された培養液でユーグレナを培養したときには検出されないことが証明された。固体材料は、このように、ユーグレナの死細胞の発生を抑制することにより、培養中におけるユーグレナの増殖を促進し、収率を向上できる。
【００１４】
前記課題は、請求項６のユーグレナの培養液によれば、Ｆｅ（III）を含有する固体材料が、ユーグレナの培養に必要な栄養源を含む培養原液に浸漬されていること、により解決される。
三価の鉄は培養中では不安定であり容易に二価に還元されてしまうので、固体材料を取り去るとユーグレナの増殖促進効果が出なくなるが、このように、本発明のユーグレナの培養液は、Ｆｅ（III）を含有する固体材料が浸漬されているため、Ｆｅ（III）含有培養液中でのユーグレナの培養が可能となり、ユーグレナの増殖を促進し、収率を向上できる。
【００１５】
このとき、前記固体材料は、１．５〜８０重量％のＦｅ２Ｏ３を含有する多孔質焼成体であり、該多孔質焼成体を、０．２ｇ／ｍｌ未満の割合で含んでいてもよい。
培養液中に、Ｆｅ２Ｏ３含量が８０重量％を超える固体材料を浸漬すると、固体材料が崩れやすく、培養液が赤くなるため、培養液の物理的取扱いが煩わしくなるが、このように、固体材料の含量を８０重量％以下としているため、培養液の物理的取扱いが容易になる。
また、固体材料中のＦｅ２Ｏ３含量を１．５重量％以上としているため、Ｆｅ（III）によるユーグレナの増殖促進効果を得ることができる。
固体材料の培養液中の添加量を０．２ｇ／ｍｌ未満としているため、固体材料にユーグレナが絡められることによりユーグレナの増殖促進作用が抑制されることを、防ぐことができる。
【発明の効果】
【００１６】
本発明によれば、ユーグレナの培養方法において、ユーグレナの増殖を促進し、収率を向上できる。
この増殖促進のメカニズムについては、現在のところ詳細には分かっていないが、次のように考えられる。
ユーグレナの培養に必要な栄養源を含むCramer-Myers培地（ＣＭ培地）等の培養液には、元々Ｆｅ（II）（二価の鉄）が含まれているが、Ｆｅ（III）（三価の鉄）は含まれていない。
このようなユーグレナの培養液に、Ｆｅ（III）を含有する固体材料を浸漬させると、この固体材料から三価の鉄が溶出し、これが、培地中の窒素源が消費されてしまった後の増殖に寄与していると考えられる。
また、三価の鉄は培養中では不安定であり容易に二価に還元されてしまうので、固体材料を取り去るとユーグレナの増殖促進効果が出なくなるが、このように、Ｆｅ（III）を含有する固体材料が浸漬されてなるＦｅ（III）含有培養液中で、ユーグレナを培養するため、ユーグレナの増殖を促進し、収率を向上できる。
【図面の簡単な説明】
【００１７】
【図１】Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を培養液に添加してユーグレナを培養したときの濁度の測定結果を示すグラフである。
【図２】Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を培養液に添加してユーグレナを培養したときの細胞数の測定結果を示すグラフである。
【図３】Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を培養液に添加してユーグレナを培養したときの濁度の変化及びアンモニア濃度の変化を示すグラフである。
【図４】５倍量のＦｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を培養液に添加しユーグレナを培養したときの濁度の測定結果を示すグラフである。
【図５】Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を継続利用してユーグレナを培養（２週間目）したときの濁度の測定結果を示すグラフである。
【図６】Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を継続利用してユーグレナを培養（３週間目）したときの濁度の測定結果を示すグラフである。
【図７】Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を１週間入れた培養液でユーグレナを培養したときの濁度の測定結果を示すグラフである。
【図８】ユーグレナの培養定常期にＦｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を添加してユーグレナを培養したときの濁度の測定結果を示すグラフである。
【図９】窒素源欠乏培養液にＦｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を添加した培養液でユーグレナを培養したときの濁度の測定結果を示すグラフである。
【図１０】Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体の破砕物を利用してユーグレナを培養したときの濁度の測定結果を示すグラフである。
【図１１】Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を添加し、ｐＨ７とした培養液でユーグレナを培養したときの濁度の測定結果を示すグラフである。
【図１２】Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を添加して培養した種を次の培養に利用してユーグレナを培養したときの濁度の測定結果を示すグラフである。
【図１３】明期及び暗期を設定し、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を添加した培養液でユーグレナを培養したときの藻体濃度を示すグラフである。
【図１４】明期及び暗期を設定し、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を添加した培養液でユーグレナを培養したときの細胞数を示すグラフである。
【図１５】明期及び暗期を設定し、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を添加した培養液でユーグレナを培養したときの細胞体積を示すグラフである。
【図１６】明期及び暗期を設定し、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を添加した培養液でユーグレナを培養したときのユーグレナの夜間減少量を示すグラフである。
【図１７】明期及び暗期を設定し、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を添加した培養液でユーグレナを培養したときのユーグレナの夜間減少率を示すグラフである。
【図１８】多孔質低温焼成体及びＦｅ２Ｏ３焼成体を添加した培養液でユーグレナを培養したときの濁度の測定結果を示すグラフである。
【図１９】多孔質低温焼成体及びＦｅ２Ｏ３焼成体を添加した培養液でユーグレナを培養したときのユーグレナの粒子径のヒストグラム及び細胞数を示す図である。
【図２０】Ｆｅ（II）を添加した培養液でユーグレナを培養したときの濁度の測定結果を示すグラフである。
【図２１】８００℃で焼成したＦｅ２Ｏ３焼成体を添加した培養液でユーグレナを培養したときの濁度の測定結果を示すグラフである。
【図２２】１０００℃で焼成したＦｅ２Ｏ３焼成体を添加した培養液でユーグレナを培養したときの濁度の測定結果を示すグラフである。
【図２３】Ｆｅ２Ｏ３焼成体の添加量を変化させた培養液でユーグレナを培養したときの濁度の測定結果を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１８】
以下、本発明を詳細に説明する。
文中で特に断らない限り、本明細書で用いるすべての技術用語及び科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者に一般に理解される意味と同様の意味を有する。本明細書に記載されたものと同様又は同等の任意の方法及び材料は、本発明の実施又は試験において使用することができるが、好ましい方法及び材料を以下に記載する。
本明細書において、「ユーグレナの定常期」とは、ユーグレナの培養における細胞数と培養時間の関係を表現した増殖曲線の期間区分の一つであり、増殖する細胞と死滅する細胞が平衡状態にあって、それ以上見かけ上の細胞数の増減がなく、細胞数が一定の値を保っている期間のことをいう。定常期は、培養開始後、細胞数が増加する対数増殖期の後の期間であり、定常期の後には、細胞数が減少する死亡期が続く。
本発明は、ユーグレナ（Euglena）属の培養方法及びその培養液に関する。
＜＜ユーグレナ＞＞
本発明の「ユーグレナ」とは、動物学や植物学の分類でユーグレナ属（Euglena）に分類される植物、その変種、その変異種のすべてを含み、かつα−グルコシダーゼ活性の阻害作用を有する成分を含むすべての植物を意味する。
【００１９】
ここで、ユーグレナ属（Euglena）の微生物とは、動物学では原生動物門（Protozoa）の鞭毛虫綱（Mastigophorea）、植物鞭毛虫亜綱（Phytomastigophorea）に属するミドリムシ目（Euglenida）のユーグレノイディナ亜目（Euglenoidina）に属する微生物である。一方、ユーグレナ属の微生物は、植物学ではミドリムシ植物門（Euglenophyta）のミドリムシ藻類綱（Euglenophyceae）に属するミドリムシ目（Euglenales）に属している。
【００２０】
ユーグレナ属の微生物としては、具体的には、Euglena acus、Euglena caudata、Euglena chadefaudii、Euglena deses、Euglena gracilis、Euglena granulata、Euglena intermedia、Euglena mutabilis、Euglena oxyuris、Euglena proxima、Euglena spirogyra、Euglena viridis、Euglena vermiformis、Euglena intermedia, Euglena pirideなどが挙げられる。このうち特に、広く研究に利用されているユーグレナ・グラシリス（Euglena gracilis）が好適である。特に、ユーグレナ・グラシリス（E. gracilis）Ｚ株が挙げられる。
また、そのほか、ユーグレナ・グラシリス・クレブス，ユーグレナ・グラシリス・バルバチラス等の種や、ユーグレナ・グラシリス（E. gracilis）Ｚ株の変異株ＳＭ−ＺＫ株（葉緑体欠損株）や変種のvar. bacillaris、これらの種の葉緑体の変異株等の遺伝子変異株を用いてもよい。また、その他のユーグレナ類、例えばAstaia longaを用いてもよい。
ユーグレナ属は、池や沼などの淡水中に広く分布しており、これらから分離して使用してもよく、また、すでに単離されている任意のユーグレナ属を使用してもよい。
【００２１】
本発明のユーグレナ属は、その全ての変異株を包含する。また、これらの変異株の中には、遺伝的方法、たとえば組換え、形質導入、形質転換等により得られたものも含有される。
【００２２】
＜＜ユーグレナの培養液＞＞
本実施形態のユーグレナの培養方法に用いられるユーグレナの培養液は、Ｆｅ（III）を含有する固体材料が、ユーグレナの培養に必要な栄養源を含む培養原液に浸漬されてなる。
ユーグレナの培養に必要な栄養源とは、例えば、窒素源，リン源，ミネラルなどの栄養塩類をいう。
ユーグレナの培養に必要な栄養源を含む培養原液とは、ユーグレナの培養に一般的に用いられる公知の培養液をいい、例えば、改変Cramer-Myers培地（（ＮＨ４）２ＨＰＯ４  １．０ｇ／Ｌ，ＫＨ２ＰＯ４  １．０ｇ／Ｌ，ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ  ０．２ｇ／Ｌ，ＣａＣｌ２・２Ｈ２Ｏ  ０．０２ｇ／Ｌ，ＦｅＳＯ４・７Ｈ２Ｏ  ３ｍｇ／Ｌ，ＭｎＣｌ２・４Ｈ２Ｏ  １．８ｍｇ／Ｌ，ＣｏＳＯ４・７Ｈ２Ｏ  １．５ｍｇ／Ｌ，ＺｎＳＯ４・７Ｈ２Ｏ  ０．４ｍｇ／Ｌ，Ｎａ２ＭｏＯ４・２Ｈ２Ｏ  ０．２ｍｇ／Ｌ，ＣｕＳＯ４・５Ｈ２Ｏ  ０．０２ｍｇ／Ｌ，チアミン塩酸塩（ビタミンＢ１）  ０．１ｍｇ／Ｌ，シアノコバラミン（ビタミンＢ１２）、（ｐＨ３．５））を用いることができる。なお、（ＮＨ４）２ＨＰＯ４は、（ＮＨ４）２ＳＯ４やＮＨ３ａｑに変換することも可能である。
【００２３】
また、そのほか、ユーグレナ  生理と生化学（北岡正三郎編、株式会社学会出版センター）の記載に基づき調製される公知のHutner培地，Koren-Hutner培地（以下、ＫＨ培地という。），ユーグレナの従属栄養培地として一般的に使用されるKoren-Hutner培地からグルコース、リンゴ酸、アミノ酸等の従属栄養成分を除いた独立栄養培地であるＡＹ培地等を用いてもよい。
【００２４】
培養液のｐＨは好ましくは２以上、より好ましくは３以上、さらに好ましくは３．５以上であり、また、その上限は、好ましくは７以下、より好ましくは６．５以下、さらに好ましくは４．５以下である。ｐＨを酸性側にすることにより、光合成微生物は他の微生物よりも優勢に生育することができるため、コンタミネーションを抑制することができる。
【００２５】
Ｆｅ（III）を含有する固体材料は、三価の鉄イオンを生ずる鉄化合物を含有する固体材料である。三価の鉄イオンとは、三価の鉄化合物を水溶液中に溶解させたときに生じる鉄イオンだけでなく、二価の鉄化合物を水溶液中に溶解させて生じた二価の鉄イオンを酸化させたときに生じる鉄イオンも含む意味である。
固体材料に配合する鉄化合物としては、三価の鉄化合物が好ましく、例えば、Ｆｅ２Ｏ３をいう。その他にも、クエン酸第二鉄アンモニウム、硫酸第二鉄、塩化第二鉄などが挙げられる。これらは単独で配合してもよく、また、２種以上を組み合わせて配合してもよい。      
【００２６】
Ｆｅ（III）を含有する固体材料としては、Ｆｅ２Ｏ３を含む混合物の焼成体，例えば、Ｆｅ２Ｏ３と粘土を混合して焼成した陶器状のＦｅ２Ｏ３焼成体を用いることができる。
Ｆｅ２Ｏ３焼成体は例えば、Ｆｅ２Ｏ３と粘土を、モルタルミキサー等を用いて混合し、成形後、焼成することにより作製されていてもよい。
【００２７】
Ｆｅ２Ｏ３焼成体は、次の方法により作製される。
まず、Ｆｅ２Ｏ３と粘土とを混合する混合工程を行う。この工程では、Ｆｅ２Ｏ３と粘土との混合比率（重量比）を１：１０〜１０：１とする。また、カードラン（β−１，３−グルカン）などの人工可塑剤、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、アビセル（微結晶性セルロース）などの結合剤（粘結剤）等からなる成形助剤を、混合物１００重量部あたり０．３重量部から１．５重量部程度添加してもよい。
混合工程の後、混合工程で得られた混合物を、例えば、直径６〜７ｍｍの丸玉状（粒状物）に成形する成形工程を行う。なお、成形形状としては、丸玉状に限定されるものではなく、平板状、円盤状、立方体状、筒状、柱状、ハニカム状などに成形してもよい。これらの成形は、例えば、加圧成形法等によって行うことができる。なお、成形しやすいように、成形前に混合物に水を噴霧（添加）してもよい。また、成形後は、風乾、加熱乾燥させることが好ましい。
【００２８】
その後、成形物を焼成する焼成工程を行う。
成形物の焼成は、７００〜１１００℃で、８〜３０時間、好ましくは、８〜１５時間行うことが好ましい。成形物の焼成温度は、８００〜１０５０℃とすると、より好適である。８５０〜１０００℃とすると、焼成体の取り扱いが容易となり、更に好ましい。また、焼成は、酸化焼成を行うことが好ましい。
作製されたＦｅ２Ｏ３焼成体は、多孔質体である。Ｆｅ２Ｏ３焼成体は、使用時に崩れない程度の圧縮破壊強度を有していることが好ましく、少なくとも３００Ｎ程度の強度を有していることが好ましい。
Ｆｅ２Ｏ３焼成体は、十分な比表面積を有していることが好ましく、Ｆｅ２Ｏ３焼成体の比表面積は、５〜４００ｍ２／ｇであることが好ましい。
【００２９】
なお、Ｆｅ（III）を含有する固体材料は、Ｆｅ２Ｏ３を１．５〜８０重量％含む焼成体であればよく、そのほか、ＳｉＯ２，Ａｌ２Ｏ３，Ｋ２Ｏ，ＣａＯ，Ｎａ２Ｏ，ＭｇＯ，ＴｉＯ２，Ｂ２Ｏ３等を含んでいてもよい。
Ｆｅ（III）を含有する固体材料中のＦｅ２Ｏ３含量が１．５重量％よりも少なくなると、ユーグレナの増殖促進効果を得るために、Ｆｅ（III）を含有する固体材料を多量に添加する必要が生じる。固体材料を多量に添加すると、固体材料にユーグレナが絡められることにより、ユーグレナの増殖促進効果が低下し、結果として、十分なユーグレナの増殖促進効果が得られにくくなる。
Ｆｅ（III）を含有する固体材料中のＦｅ２Ｏ３含量が８０重量％よりも多くなると、培養液中でＦｅ（III）を含有する固体材料が崩れやすくなり、取り扱いがしにくくなる。
例えば、Ｆｅ（III）を含有する固体材料として、トルマリン約１５重量％，クリノプチロライト約３０重量％，モルデナイト約２０重量％，グラニットポーフィリー約３０重量％と、造粒剤を混合して直径７ｍｍの丸玉状に造粒し、７５０〜９５０℃という低温で、１０〜３０時間という長時間をかけて焼成することにより作製したＦｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を用いてもよい。
【００３０】
＜＜ユーグレナの培養方法＞＞
本実施形態のユーグレナの培養方法は、ユーグレナの培養に必要な栄養源を含む培養原液に、Ｆｅ（III）を含有する固体材料が浸漬されてなるＦｅ（III）含有培養液中で、ユーグレナを培養する方法である。
本実施形態のユーグレナの培養方法は、フラスコ培養や発酵槽を用いた培養，回分培養法，半回分培養法（流加培養法），連続培養法（灌流培養法）等、いずれの液体培養法により行ってもよい。
【００３１】
本実施形態のユーグレナの培養方法では、まず、ユーグレナの培養に必要な栄養源を含む培養原液を、試験管，ビーカー等の培養槽や、屋外の大型の培養槽等に入れる。
次いで、この培養原液に、Ｆｅ（III）を含有する固体材料を浸漬させ、培養液を調製し、ユーグレナを添加して植菌する。
なお、固体材料の添加は、ユーグレナの添加と同時でもよいし、ユーグレナの添加の前に行ってもよい。固体材料は、培養原液量に対して、２．０×１０−４ｇ／ｍｌより多く、０．２ｇ／ｍｌ未満の量を添加するとよい。より好ましくは、固体材料は、培養原液量に対して、５．０×１０−４ｇ／ｍｌ〜０．０４ｇ／ｍｌ添加するとよい。
また、ユーグレナの添加後に固体材料を添加してもよいが、固体材料の添加は、ユーグレナの増殖サイクルが、定常期に達する前に行う。
【００３２】
その後、固体材料が培養原液に浸漬された状態で、ユーグレナの培養を行う。
ユーグレナの培養原液中の初期濃度は、１．５×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌ未満とすると好適である。本発明者らの研究の結果、１．５×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌを超えると、Ｆｅ（III）を含有する固体材料によるユーグレナの増殖促進効果が得られない。
ユーグレナの培養は、例えば、好ましくはｐＨ２以上、より好ましくは３以上、さらに好ましくは３．５以上で、また、好ましくはｐＨ７以下、より好ましくは６．５以下、さらに好ましくは４．５以下で行う。
また、ＣＯ２を資化するため、１〜２０％ＣＯ２を含む空気を培地中に通過させてもよい。培養温度は、通常２０〜３４℃で、特に２８〜３０℃が好適である。
ユーグレナの培養は、少なくとも、培養液中の窒素源が消費され尽くす時点よりも後の時点まで行う。具体的には、培養日数は、少なくとも、４日以上とし、例えば、１〜３週間でもよい。
【実施例】
【００３３】
以下、実施例に基づいて本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
（実験例１  Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体による効果の確認）
本実験例では、ユーグレナの培養液にＦｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を浸漬したときの影響について確認を行った。
まず、ＣＭ培地（初発ｐＨ３．５）を調製し、直径３０ｍｍのガラス製試験管に５０ｍＬを入れ、本発明の培養原液とした。
ここで、ＣＭ培地は、次の通りである。
（ＮＨ４）２ＨＰＯ４  １．０ｇ／Ｌ，ＫＨ２ＰＯ４  １．０ｇ／Ｌ，ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ  ０．２ｇ／Ｌ，ＣａＣｌ２・２Ｈ２Ｏ  ０．０２ｇ／Ｌ，クエン酸  ３Ｎａ・２Ｈ２Ｏ  ０．８ｇ／Ｌ，ＦｅＳＯ４・７Ｈ２Ｏ  ３ｍｇ／Ｌ，ＭｎＣｌ２・４Ｈ２Ｏ  １．８ｍｇ／Ｌ，ＣｏＳＯ４・７Ｈ２Ｏ  １．５ｍｇ／Ｌ，ＺｎＳＯ４・７Ｈ２Ｏ  ０．４ｍｇ／Ｌ，Ｎａ２ＭｏＯ４・２Ｈ２Ｏ  ０．２ｍｇ／Ｌ，ＣｕＳＯ４・５Ｈ２Ｏ  ０．０２ｍｇ／Ｌ，チアミン塩酸塩（ビタミンＢ１）  ０．１ｍｇ／Ｌ，シアノコバラミン（ビタミンＢ１２  ０．０００５ｍｇ／Ｌである。
【００３４】
次いで、この培養原液に、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体２ｇを添加し、浸漬して、実施例１の培養液を調製した。実施例１の培養液では、培養原液量に対する多孔質低温焼成体の重さの比率が、０．０４ｇ／ｍｌであった。
実施例１のＦｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体は、トルマリン約１５重量％，クリノプチロライト約３０重量％，モルデナイト約２０重量％，グラニットポーフィリー約３０重量％と、造粒剤を混合して直径７ｍｍの丸玉状に造粒し、８００℃で、３０時間焼成することにより作製したものである。
【００３５】
実施例１の多孔質低温焼成体は、ＳｉＯ２を６６．８重量％，Ａｌ２Ｏ３を２２．２重量％，Ｆｅ２Ｏ３を２．４重量％のほか、Ｋ２Ｏ，ＣａＯ，Ｎａ２Ｏ，ＭｇＯ，ＴｉＯ２，Ｂ２Ｏ３を含有していた。比表面積は１２．６ｍ２／ｇ，細孔容積は０．０８３ｃｍ３／ｇであった。実施例１の培養液では、培養原液量に対するＦｅ２Ｏ３の重さの比率が、９．６×１０−４ｇ／ｍｌであった。なお、比表面積および細孔容積は水銀圧入法を用いて測定した。
また、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体２ｇを添加していない培養原液のみのものを、対比例１の培養液とした。
【００３６】
次いで、実施例１及び対比例１の培養液に、それぞれ、Euglena gracilis Ｚ株（八重山株）を、初期濃度ＯＤ６８０＝０．１となるように添加して、ユーグレナの培養を行った。このとき、ＣＯ２を、通気濃度１５％、通気流量０．１ｖｖｍで通気しながら撹拌した。光条件は、蛍光灯を用いた２４時間照射、水温は、２９℃の一定温度とした。
分光光度計（ＵＶｍｉｎｉ―１２４０，島津製作所社製）を用いて、培養０日，１日，２日，３日，４日，７日後のサンプルの濁度（ＯＤ６８０）を測定した。
また、粒子計数分析装置（ＣＤＡ−１０００，シスメックス株式会社製）を用いて、培養１日，２日，３日，４日，７日後のサンプルの細胞数を測定した。細胞数の測定では、ユーグレナ以外の粒子は除外してカウントした。それぞれ、Ｎ数は、３とした。
【００３７】
測定結果を、図１，図２に示す。培養０日の実施例１及び対比例１のユーグレナの細胞数は、０．１５×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌであった。
なお、図１の実験結果において、３日後のサンプルは、４倍希釈、４日後のサンプルは、１０倍希釈、７日後のサンプルは、２０倍希釈して濁度（ＯＤ６８０）を測定し、図１のグラフ中のデータは、実測値に希釈倍率を掛けた値を用いている。
図１，図２のように、実施例１は濁度（ＯＤ６８０），細胞数ともに対比例１に対して終濃度で約２倍の濃度となった。この結果より、実施例１の多孔質低温焼成体には、ユーグレナの増殖促進効果があることが強く示唆された。
【００３８】
実施例１と対比例１との濁度（ＯＤ６８０）及び細胞数の差は、培養４日後以降に、顕著にあらわれた。従って、ユーグレナが高密度となったときに、増殖促進作用が高まっている可能性が示唆された。
細胞数の測定では、ユーグレナ以外の粒子は除外してカウントし、顕微鏡でも確認したため、培養４日後以降の顕著な濁度（ＯＤ６８０）及び細胞数の増加は、コンタミネーション等ではなくユーグレナが増えたことを示していると考えられる。
なお、培養原液に多孔質低温焼成体を浸漬した実施例１の培養液に、ユーグレナを添加せずに、実施例１及び対比例１と同様の条件で７日間通気撹拌したところ、最終濃度ＯＤ６８０＝０．０３程度であった。従って、実施例１の濁度（ＯＤ６８０）の増加は、多孔質低温焼成体からの色素の漏出によるものではないことが示された。
【００３９】
（実験例２  培養液中のアンモニア濃度の検討）
本実験例では、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体の増殖促進効果と培養液中の窒素源濃度との間に関係があるかについて、検討した。
まず、実験例１の実施例１，対比例１とそれぞれ同様の条件で、７日間培養を行い、実施例２，対比例２とした。実施例２，対比例２について、ユーグレナ添加前（培養０日後），１日，２日，３日，４日，７日後における培養液中のアンモニア濃度を、デジタルパックテスト・マルチ（共立理化学研究所社製）を用い、公知のインドフェノール青法により測定した。実験例１と同様の測定方法で、実施例２，対比例２の濁度（ＯＤ６８０）を測定した。それぞれ、Ｎ数は、１とした。
測定結果を、図３に示す。なお、図３の実験結果において、２〜７日後のサンプルは、１０倍希釈して濁度（ＯＤ６８０）を測定し、図４のグラフ中のデータは、実測値に希釈倍率を掛けた値を用いている。
図３のアンモニア濃度のグラフより、アンモニアの消費速度は実施例２と対比例２との間に差がなく、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体の有無に関わらず同程度であった。実施例２及び対比例２のいずれでも、アンモニアは培養４日目には消費され尽くしていた。
【００４０】
また、アンモニアが消費され尽くした４日後から、実施例２と対比例２との間で、濁度（ＯＤ６８０）の値に差が生じており、アンモニアが消費され尽くすタイミングと、Ｆｅ（III）を含有する固体材料の有無によって細胞数に変化が出るタイミングとが一致していることが分かった。
以上より、Ｆｅ（III）を含有する固体材料は、培養液中の窒素源が消費されてしまった後の増殖に寄与していることが分かった。
【００４１】
（実験例３  Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を５倍量添加）
本実験例では、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体の添加量を増加した場合におけるＦｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体の増殖促進効果を検討した。
実施例１のＦｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体２ｇの代わりに、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を１０ｇ添加した培養液を調整し、参考例１の培養液とした。参考例１の培養液では、培養原液量に対する多孔質低温焼成体の重さの比率が、０．２ｇ／ｍｌ、培養原液量に対するＦｅ２Ｏ３の重さの比率が、４．８×１０−３ｇ／ｍｌであった。
この参考例１の培養液に、実験例１と同様にユーグレナを添加し、実験例１と同様の条件でユーグレナの培養を行った。培養０日，１日，２日，３日，４日，７日後の濁度（ＯＤ６８０）を測定した。それぞれ、Ｎ数は、１とした。
結果を、図４に示す。なお、図４の実験結果において、２〜７日後のサンプルは、１０倍希釈して濁度（ＯＤ６８０）を測定し、図４のグラフ中のデータは、実測値に希釈倍率を掛けた値を用いている。図４は、参考例１の結果を、対比例２，実施例２の結果と合わせて示している。
図４の参考例１に示すように、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を５倍量添加しても増殖促進効果は認められず、かえって、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を浸漬しない対比例２よりも増殖が抑制されていた。試験管の底に多孔質低温焼成体が堆積し、その隙間にユーグレナが絡められたため十分撹拌されなかったことも要因と考えられる。
【００４２】
（実験例４  Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体の継続利用（２，３週間目））
本実験例では、同じＦｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を繰り返し使っても増殖促進効果があるかどうかについて、検討した。
まず、実施例１，対比例１と同じ培養液を調製し、実施例３，対比例３の培養液とした。
実施例１と同じ培養液に、実験例１と同様にユーグレナを添加し、１週間培養したユーグレナ入りの培養液を、ＯＤ６８０＝０．１に調整し、実施例４のユーグレナ入りの培養液とした。
実施例３，４，対比例３のユーグレナ入りの培養液を、実験例１と同様の条件で、７日間培養した。培養０日，１日，２日，３日，６日，７日後の濁度（ＯＤ６８０）を測定した。それぞれ、Ｎ数は、１とした。
【００４３】
また、実施例１と同じ培養液に、実験例１と同様にユーグレナを添加して、２週間培養した。このユーグレナ入りの２週間培養サンプルを、ＯＤ６８０＝０．１に調整し、実施例５のユーグレナ入りの培養液とした。
実施例５のユーグレナ入りの培養液を、実験例１と同様の条件で、７日間培養した。
また、対比例１と同じ培養液を対比例４の培養液とし、実験例１と同様にユーグレナを植菌し、実験例１と同様の条件で培養した。
実施例５及び対比例４について、培養０日，３日，４日，５日，６日，７日後の濁度（ＯＤ６８０）を測定した。それぞれ、Ｎ数は、１とした。
【００４４】
実施例３，４及び対比例３の結果を、図５に示す。なお、図５の実験結果において、３日後のサンプルは、２倍希釈、６日後のサンプルは、２０倍希釈、７日後のサンプルは、２０倍希釈（実施例３，４）１０倍希釈（対比例３）して濁度（ＯＤ６８０）を測定し、図７のグラフ中のデータは、実測値に希釈倍率を掛けた値を用いている。
図５に示すように、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を添加したユーグレナ培養２週間目の実施例４は、ユーグレナ培養１週間目の実施例３と同程度の増殖促進効果があり、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体は、ユーグレナ培養２週間目も増殖促進効果が低下しないことが分かった。
【００４５】
また、実施例５及び対比例４の結果を、図６に示す。なお、図６の実験結果において、４〜６日後のサンプルは、１０倍希釈、７日後のサンプルは、２０倍希釈して濁度（ＯＤ６８０）を測定し、図６のグラフ中のデータは、実測値に希釈倍率を掛けた値を用いている。
図６に示すように、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体は、ユーグレナ培養３週間目でもユーグレナの増殖促進効果があり、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体は、ユーグレナ培養３週間目も増殖促進効果が低下しないことが分かった。
【００４６】
（実験例５  多孔質低温焼成体１週間入れた培養液で培養）
本実験例では、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を１週間入れた後取り除いた培養液に、ユーグレナの増殖促進効果があるかどうかについて、検討した。
実験例１と同様の培養原液に、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体２ｇを浸漬して実施例１と同じ培養液を調製した。ユーグレナを添加せずに、実験例１と同様の条件で、７日間通気撹拌し、その後、培養液からＦｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体２ｇを取り除いた。多孔質低温焼成体を取り除いたものを、参考例２の培養液とした。
その後、実施例１と同様にユーグレナを植菌し、実施例１と同様の条件で、ユーグレナの培養を行い、培養０日，１日，２日，３日，６日，７日後の濁度（ＯＤ６８０）を測定した。Ｎ数は、１とした。
【００４７】
参考例２の結果を、実験例４の実施例３，対比例３の結果と共に、図７に示す。なお、図７の実験結果において、３日後のサンプルは、２倍希釈、６日後のサンプルは、２０倍希釈、７日後のサンプルは、２０倍希釈（実施例３）又は１０倍希釈（対比例３，参考例２）して濁度（ＯＤ６８０）を測定し、図７のグラフ中のデータは、実測値に希釈倍率を掛けた値を用いている。
図７に示すように、参考例２は、１日後以降のすべてのサンプルにおいて、対比例３よりも濁度が低く、参考例２では、ユーグレナ植菌前にＦｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を浸漬したことによる効果がみられなかった。
実験例５の結果より、多孔質低温焼成体から有用物質が溶出しているのではなく、ユーグレナの増殖促進効果を得るためには、ユーグレナ培養中において、多孔質低温焼成体が培養液中に存在していることが必要であることが分かった。
【００４８】
（実験例６  培養定常期に多孔質低温焼成体を添加）
本実験例では、多孔質低温焼成体を添加せずに１週間培養して、ユーグレナの培養定常期に達した後に、多孔質低温焼成体を添加した場合、ユーグレナの増殖促進効果が得られるかどうかについて検討した。
まず、対比例１と同様に調整した培養原液に、多孔質低温焼成体を添加せずに、実験例１と同様にユーグレナを植菌し１週間培養を行った。
１週間培養を行った培養液を、対比例５の培養液とした。また、１週間培養を行った培養液に、実施例１のＦｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体２ｇを添加したものを、参考例３の培養液とした。対比例５及び参考例３を、それぞれ、更に、実験例１と同様の条件で継続して培養した。培養０日，１日，２日，３日，６日，７日後の濁度（ＯＤ６８０）を測定した。Ｎ数は、１とした。
【００４９】
結果を、図８に示す。なお、図８の実験結果において、０〜２日後，７日後のサンプルは、１０倍希釈、３，６日後のサンプルは、２０倍希釈して濁度（ＯＤ６８０）を測定し、図９のグラフ中のデータは、実測値に希釈倍率を掛けた値を用いている。
培養８日目の培養液に多孔質低温焼成体を添加した参考例３は、培養１日後以降濁度（ＯＤ６８０）が下がっており、その後、継続してユーグレナの濃度が下がっていった。この結果より、ユーグレナの増殖サイクルのうち定常期に、多孔質低温焼成体を添加しても、増殖促進効果がみられないことが分かった。
【００５０】
（実験例７  窒素源欠乏培養液への多孔質低温焼成体添加）
本実験例では、窒素源が欠乏した培養液に多孔質低温焼成体を添加すると、ユーグレナの増殖促進効果がなくなるかどうかについて検討した。
まず、実験例１の培養原液のうち、窒素源である（ＮＨ４）２ＨＰＯ４を含まないことを除いては、同じ配合からなる窒素源欠乏培養原液を調製した。この窒素源欠乏培養原液に、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体２ｇを浸漬して、参考例４の培養液を調製した。また、同じ窒素源欠乏培養原液に、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を添加しない窒素源欠乏培養原液のみのものを、対比例６の培養液とした。
次いで、参考例４及び対比例６の培養液に、実験例１と同様にユーグレナを植菌し、実験例１と同様の条件で培養した。培養０日，１日，２日，３日，７日後の濁度（ＯＤ６８０）を測定した。それぞれ、Ｎ数は、１とした。
【００５１】
結果を、図９に示す。なお、図９の実験結果において、６日後のサンプルは、２０倍希釈して濁度（ＯＤ６８０）を測定し、図７のグラフ中のデータは、実測値に希釈倍率を掛けた値を用いている。
図９の結果より、参考例４及び対比例６のいずれにおいても、濁度（ＯＤ６８０）は７日後において倍程度に増えたのみであり、ユーグレナの増殖は見られなかった。参考例４の結果より、窒素源欠乏培養液では、多孔質低温焼成体を添加してもユーグレナが増殖しないことが分かった。以上より、多孔質低温焼成体によって、培養液中に欠乏していた窒素源が補充されることはなく、多孔質低温焼成体から窒素源が溶出するわけではないことが分かった。
【００５２】
（実験例８  Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体の破砕物使用）
本実験例では、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を破砕した場合のユーグレナの増殖促進効果を検討した。
まず、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を破砕し、多孔質低温焼成体の破砕物を得た。この破砕物の粒径分布（ふるい分け法）は、２００〜５００μｍであった。
実施例１と同じ培養原液に、この破砕物２ｇを添加したものを実施例６の培養液とし、実験例１と同様の条件でユーグレナの培養を行った。培養０日，３日，４日，５日，６日，７日後の濁度（ＯＤ６８０）を測定した。それぞれ、Ｎ数は、１とした。
【００５３】
結果を、図１０に示す。なお、図１０の実験結果において、４〜６日後のサンプルは、１０倍希釈、７日後のサンプルは、２０倍希釈して濁度（ＯＤ６８０）を測定し、図１０のグラフ中のデータは、実測値に希釈倍率を掛けた値を用いている。
図１０には、対比例４の結果も合わせて示している。図１０のように、実施例６は、５日後以降において、対比例４よりも高い濁度（ＯＤ６８０）を示しており、多孔質低温焼成体は、砕いて培養原液に浸漬した場合でも、ユーグレナの増殖促進効果があることがわかった。しかし、多孔質低温焼成体を破砕せずに用いて培養を行った実施例１等よりも濁度（ＯＤ６８０）が高くなっているものではなく、多孔質低温焼成体は、砕いて表面積を大きくしたからといってさらに増殖促進効果が上がるわけではなかった。
【００５４】
（実験例９  ｐＨ７での培養）
ｐＨ３．５で培養実験を行った実験例１〜８では、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体が浸漬された培養液でユーグレナ培養を行った各実施例において、多孔質低温焼成体が浸漬されていない培養液でユーグレナ培養を行った対比例よりも、高いユーグレナの増殖促進効果が得られた。
実験例１〜８において、培養液のｐＨが３．５であったために多孔質低温焼成体が溶出した可能性が考えられたため、本実験例では、培養液のｐＨを７として培養実験を行い、ｐＨ３．５で多孔質低温焼成体が溶出していた可能性があるか、検討を行った。
【００５５】
本実験例では、実施例１，対比例１の培養液をｐＨ７に調整した培養液を実施例７，対比例７の培養液とし、ｐＨを７としたこと以外は、実験例１と同様の条件で、ユーグレナを植菌し培養を行った。培養０日，３日，４日，５日，６日，７日後の濁度（ＯＤ６８０）を測定した。それぞれ、Ｎ数は、１とした。
結果を、図１１に示す。なお、図１１の実験結果において、４〜６日後のサンプルは、１０倍希釈、７日後のサンプルは、２０倍希釈して濁度（ＯＤ６８０）を測定し、図１１のグラフ中のデータは、実測値に希釈倍率を掛けた値を用いている。
図１１のように、ｐＨ７においてもユーグレナの増殖促進効果が認められ、ｐＨ３．５における多孔質低温焼成体による増殖促進効果は、ｐＨ３．５で多孔質低温焼成体が溶出することに起因するわけではないことが示された。
【００５６】
（実験例１０  Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を添加して培養した種を次の培養に使用）
本実験例では、Ｆｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を添加して培養した培養液を種として、多孔質低温焼成体を除去した状態で、次の培養を行った場合における多孔質低温焼成体の増殖促進効果を確認した。
本実験例では、実施例１，対比例１と同様の培養液に、実験例１と同様の条件でユーグレナを植菌し、１週間培養を行った。実施例１の１週間培養品と、対比例１の１週間培養品とを、それぞれ、ＯＤ６８０＝０．１の濃度で新たな培地に植菌して培養を開始したものを参考例５，対比例８の培養液とした。なお、新たな培地に植菌した参考例５，対比例８の培養液には、多孔質低温焼成体を添加しなかった。
培養０日，３日，４日，５日，６日，７日後の濁度（ＯＤ６８０）を測定した。それぞれ、Ｎ数は、１とした。
【００５７】
結果を、図１２に示す。なお、図１２の実験結果において、４〜６日後のサンプルは、１０倍希釈、７日後のサンプルは、２０倍希釈して濁度（ＯＤ６８０）を測定し、図１２のグラフ中のデータは、実測値に希釈倍率を掛けた値を用いている。
図１２の参考例５のように、多孔質低温焼成体を添加して培養した培養液を種として、次の培養を多孔質低温焼成体なしの状態で行なっても、ユーグレナの増殖促進効果は認められなかった。
多孔質低温焼成体によるユーグレナの増殖促進効果が得られている培養液から、多孔質低温焼成体を除去すると、ユーグレナの増殖促進効果が失われることが分かった。
多孔質低温焼成体によって増殖促進されたユーグレナは、多孔質低温焼成体を含まない新たな培地に植菌したときまで、高い増殖速度を維持できるものではないことが分かった。
従って、培養中に、培養液中に多孔質低温焼成体が存在していなければ、多孔質低温焼成体によるユーグレナの増殖促進効果が得られないことが分かった。
【００５８】
（実験例１１  明期及び暗期を設定した培養実験）
実験例１〜１０では、試験管での多孔質低温焼成体を添加したユーグレナ培養実験において、増殖促進効果が大きいものでは、初期濃度ＯＤ＝０．１の場合で終濃度ＯＤ＝８程度まで達していた。本実験では、ビーカースケールにスケールアップすると共に、定期的な明期及び暗期を設定して、多孔質低温焼成体によるユーグレナの増殖促進効果を確認した。
本実験例では、実験例１と同様のＣＭ培地を初発ｐＨ３．０に調製し、アクリル培養槽（１０ｃｍ×１０ｃｍ×２７ｃｍ）に、水深２０ｃｍ、液量が約２Ｌになるように入れ、培養原液とした。アクリル培養槽の側面は、アルミフォイルで遮光した。
【００５９】
次いで、この培養原液に、実施例１と同様のＦｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体を１０ｇ添加し、浸漬して、実施例８の培養液を調製した。また、培養原液に多孔質低温焼成体を添加しないものを、対比例９の培養液とした。
実施例８の培養液では、培養原液量に対する多孔質低温焼成体の重さの比率が、５．０×１０−４ｇ／ｍｌ、培養原液量に対するＦｅ２Ｏ３の重さの比率が、１．２×１０−５ｇ／ｍｌであった。
【００６０】
実施例８及び対比例９の培養液に、それぞれ、Euglena gracilis Ｚ株（八重山株）、初期濃度ＯＤ６８０＝０．１となるように添加し、培養を行った。このとき、メタルハライドランプ（アイ  クリーンエース，岩崎電気社製）を用いて、毎日、明期８時間，暗期１６時間を設定した。明期では、メタルハライドランプの条件は、１８ＭＪ／（ｍ２・ｄ）、光量約９００μｍｏｌ・ｍ−２・ｓ−１とした。
ＣＯ２を、通気濃度１５％、通気流量５０ｍｌ／ｍｉｎで、通気時間２４時間／日（連続通気）で通気しながら、６ｃｍの撹拌子を用いて撹拌した。水温は、明期において３１℃、暗期において２７℃であった。
培養０日,１日，２日，３日，６日，７日，８日，９日，１０日の明期終期と、培養０日，１日，２日，５日，６日，７日，８日，９日の暗期終期において、実施例８及び対比例９を濾過してユーグレナを回収した。乾燥重量を測定し、培養液中の藻体濃度（単位体積当たりの藻体乾燥重量）を算出した。また、実施例８及び対比例９の濁度（ＯＤ６８０）を測定した。
結果を、図１３に示す。図１３では、グラフ上端の黒塗りの時間帯が、暗期、それ以外の時間帯が、明期を、示している。
【００６１】
図１３のように、培養６日目までは増殖に大きな差は認められなかったが、８日目以降、多孔質低温焼成体添加区である実施例８において、明期に高い増殖を示し、１０日目時点で、対比例９との間で、藻体濃度に約１．２倍の差が認められた。
本実験例では、屋内ビーカー実験でも、多孔質低温焼成体の添加によって、ユーグレナの増殖が促進されることが確認できた。
また、多孔質低温焼成体添加区である実施例８の８日目の明期における藻体濃度の増加量が大きく、その影響により、実施例８と対比例９との間で濃度差が生じたようにもみえる。
【００６２】
また、本実験例における細胞数の増殖曲線及び細胞体積の変化を、それぞれ、図１４，図１５に示す。
細胞数及び細胞体積は、粒子計数分析装置（ＣＤＡ−１０００，シスメックス株式会社製）を用いて測定したものである。
図１４の結果より、多孔質低温焼成体添加区である実施例８と対照区である対比例９との間で、細胞数は、培養２日目から差がつき始め、６日目には、実施例８の細胞数は、対比例９の細胞数の約１．４倍になっていた。
一方、図１５に示すように、細胞の体積には、実施例８と対比例９との間で差がみられなかった。
【００６３】
また、実施例８及び対比例９の細胞数の夜間減少量及び夜間減少率を、図１６，図１７に示す。
ここで、夜間減少量は、各サンプリング日の暗期終期の藻体濃度（ｇ／ｍ３），同日の明期終期の藻体濃度（ｇ／ｍ３）を用いて、次の式より求めたものである。
つまり、
夜間減少量（ｇ／Ｌ）
＝（暗期終期の藻体濃度（ｇ／ｍ３）−明期終期の藻体濃度（ｇ／ｍ３））×１０００
である。
また、夜間減少率は、次の式より求めたものである。
つまり、
夜間減少率（％）＝暗期における藻体濃度の減少量／明期における藻体濃度の増加量
＝−{暗期終期の藻体濃度（ｇ／ｍ３）−同日の明期終期の藻体濃度（ｇ／ｍ３）}／{同日の明期終期の藻体濃度（ｇ／ｍ３）−前日の明期終期の藻体濃度（ｇ／ｍ３）}×１０００
である。
【００６４】
図１６に示すように、実施例８及び対比例９のいずれにおいても、夜間減少量の絶対値は、培養日数が多くなるに従って、大きくなっていた。
また、図１７に示すように、培養２日目〜７日目までは、多孔質低温焼成体添加区である実施例８の夜間減少率が、対照区である対比例９よりも高かったが、実施例８の培養８日目、９日目の夜間減少率は、対比例９より低かった。
夜間減少率は、明期における藻体濃度の増加量に対する暗期における藻体濃度の減少量の比率であり、暗期における藻体濃度の減少量が小さいほど、及び、明期における藻体濃度の増加量が大きいほど、夜間減少率が小さい値に近付く。
図１７と併せて図１３を検討すると、実施例８は、暗期における藻体濃度の減少が小さいというよりも、むしろ、明期における藻体濃度の増加が大きかった。
【００６５】
（実験例１２  Ｆｅ２Ｏ３焼成体の例）
本実験例では、Ｆｅ（III）を含有する固体材料として、実験例１〜１１で用いた多孔質低温焼成体とは異なる実施例であるＦｅ２Ｏ３焼成体について、ユーグレナの増殖促進効果を確認した。
まず、実験例１と同様のＣＭ培地（初発ｐＨ３．５）からなる培養原液を、実験例１と同じガラス製試験管に調製した。
次いで、このガラス製試験管に調製した培養原液に、実施例１と同様のＦｅ（III）を含有する多孔質低温焼成体２ｇを添加し、浸漬したものを、実施例９の培養液とした。
【００６６】
ガラス製試験管に調製した別の培養原液に、Ｆｅ２Ｏ３焼成体２ｇを添加し、浸漬したものを、実施例１０の培養液として調製した。
実施例１０のＦｅ２Ｏ３焼成体は、Ｆｅ２Ｏ３（製品名MR-320A，森下弁柄工業社製）９００ｇと粘土（製品名クニピア，クニミネ工業社製）１００ｇを配合して、モルタルミキサーを用いて混合し、直径５ｍｍの丸玉状に成形後、８５０℃で１２時間焼成することにより作製したものである。
更に、ガラス製試験管に別途調製した実験例１と同様の培養原液を、対比例１０の培養液とした。つまり、対比例１０の培養液は、培養原液だけで、何も浸漬していないものとした。
【００６７】
実施例９，１０及び対比例１０の培養液に、それぞれ、Euglena gracilis Ｚ株（八重山株）を、初期濃度ＯＤ６８０＝０．１となるように添加して、ユーグレナの培養を行った。このとき、ＣＯ２を、通気濃度１５％、通気流量０．１ｖｖｍで通気しながら撹拌した。光条件は、蛍光灯を用いた２４時間照射、水温は、２９℃の一定温度とした。培養０日〜８日後の濁度（ＯＤ６８０）を測定した。実施例９，１０のＮ数は３、対比例１０のＮ数は１とした。
結果を、図１８に示す。なお、図１８の実験結果において、３日後のサンプルは２倍希釈、４日後のサンプルは４倍希釈、５日後のサンプルは、１０倍希釈、６〜８日後のサンプルは、２０倍希釈して濁度（ＯＤ６８０）を測定し、図１８のグラフ中のデータは、実測値に希釈倍率を掛けた値を用いている。
Ｆｅ２Ｏ３焼成体添加区である実施例１０は、多孔質低温焼成体添加区である実施例９と同じような増殖を示した。
多孔質低温焼成体添加区である実施例９、Ｆｅ２Ｏ３焼成体添加区である実施例１０は、いずれも対比例１０より高い終濃度を示し、３日目以降の増殖速度も高かった。
【００６８】
また、実施例９，１０及び対比例１０の８日培養後のサンプルについて、粒子計数分析装置（ＣＤＡ−１０００，シスメックス株式会社製）を用いて、粒子径のヒストグラム及び粒子濃度の測定を行った。
その結果、図１９に示すように、対照区である対比例１０については、粒子径ヒストグラムにおいて、６〜１０μｍの位置及び１０〜２０μｍの位置に、二つのピークが見られたのに対し、多孔質低温焼成体添加区である実施例９及びＦｅ２Ｏ３焼成体添加区である実施例１０では、１０〜２０μｍの位置のピークが一つ見られたのみであった。
対比例１０の粒子径６〜１０μｍのピークの細胞を回収し、顕微鏡で確認したところ、粒子径６〜１０μｍのピークの細胞には、死細胞が多く含まれており、粒子径６〜１０μｍのピークが死細胞のピークであることが分かった。
以上より、実施例９の多孔質低温焼成体及び実施例１０のＦｅ２Ｏ３焼成体は、培養中におけるユーグレナの死細胞の抑制に効果があることが分かった。
【００６９】
また、培養終了時において、多孔質低温焼成体添加区である実施例９は、綺麗な緑色をしていた。それに対し、対比例１０は、茶色くなっており、茶色味を帯びた緑色であった。
また、Ｆｅ２Ｏ３焼成体添加区である実施例１０は、赤くなっていた。但し、図１９に示すように、実施例１０の細胞数は、実施例９及び対比例１０と比べて多目であり、赤い色を呈していても、細胞数には影響がなかった。
また、実施例９，１０及び対比例１０の培養後の藻体を回収して乾燥させ、元素分析を行った結果を、表１に示す。
【００７０】
【表１】
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【００７１】
表１の結果より、多孔質低温焼成体添加区である実施例９とＦｅ２Ｏ３焼成体添加区である実施例１０では、窒素含有率が低かった。
この結果より、多孔質低温焼成体又はＦｅ２Ｏ３焼成体を添加した本明細書中の各実験例において、培地中の窒素源が少なくなった培養後期に増殖が伸びたのは、窒素の利用効率が向上したためと考えられる。
【００７２】
（実験例１３  Ｆｅ（II）によるユーグレナ増殖促進効果の確認）
実験例１〜１２において、Ｆｅ（III）を含有する固体材料である実験例１〜１２の多孔質低温焼成体及び実験例１２のＦｅ２Ｏ３焼成体の添加がユーグレナの増殖促進効果を示すことを確認したのに対し、本実験例では、Ｆｅ（II）も、同様の増殖促進効果があるのかを確認する実験を行った。
実験例１のＣＭ培地に、ＦｅＳＯ４・７Ｈ２Ｏを実験例１の３倍量の９ｍｌ／Ｌ添加したもの、実験例１の１０倍量の３０ｍｌ／Ｌ添加したものを、それぞれ、対比例１１，１２の培養液とした。
また、実験例１の対比例１の培養液と同様の培養液を、対比例１３の培養液とした。
【００７３】
対比例１１，１２及び対比例１３の培養液に、それぞれ、実験例１と同様の条件でユーグレナを植菌し、培養を行った。
結果を、図２０に示す。図２０に示すように、Ｆｅ（II）の添加量を増やしても、ユーグレナの増殖促進効果は認められなかった。
【００７４】
（実験例１４  Ｆｅ２Ｏ３焼成体の配合及び焼成温度の検討）
実験例１２において、ユーグレナ増殖促進効果が認められたＦｅ２Ｏ３焼成体について、本実験例では、その配合及び焼成温度を検討する実験を行った。
Ｆｅ２Ｏ３（製品名  MR-320A，森下弁柄工業社製）と粘土（製品名  クニピア，クニミネ工業社製）を、７５:２５の割合，５０：５０の割合，２５：７５の割合でそれぞれ配合（いずれも重量比）して、モルタルミキサーを用いて混合し、直径５ｍｍの丸玉状に成形後、８００℃で１２時間焼成したものを、それぞれ、実施例１１，１２，１３のＦｅ２Ｏ３焼成体とした。
また、同様のＦｅ２Ｏ３と粘土を、７５:２５の割合，５０：５０の割合，２５：７５の割合でそれぞれ配合（いずれも重量比）して、モルタルミキサーを用いて混合し、直径５ｍｍの丸玉状に成形後、１０００℃で１０時間焼成したものを、それぞれ、実施例１４，１５，１６のＦｅ２Ｏ３焼成体とした。
【００７５】
実験例１と同様の培養原液に、実施例１１〜１６のＦｅ２Ｏ３焼成体を２ｇ浸漬し、実験例１と同様にユーグレナを植菌し、培養を行った。
また、実験例１と同様の培養原液に、実施例１と同様の多孔質低温焼成体を２ｇ浸漬したものを、実施例１７の培養液として、実験例１と同様にユーグレナを植菌し、培養を行った。
実験例１と同様の培養原液を対比例１４の培養液とし、対比例１と同様の条件でユーグレナを植菌、培養を行った。
実施例１１〜１３，１７及び対比例１４の培養０日，１日，２日，５日，６日，７日後の濁度（ＯＤ６８０）を測定した結果を、図２１に示す。また、実施例１４〜１６，１７及び対比例１４の培養０日，１日，４日，５日，６日，７日後の濁度（ＯＤ６８０）を測定した結果を、図２２に示す。
【００７６】
実施例１１〜１６のＦｅ２Ｏ３焼成体及び実施例１７の多孔質低温焼成体は、いずれも、培養原液のみ（添加なし）の対比例１４よりも、ユーグレナの増殖が良かった。
８００℃及び１０００℃の焼成温度２条件、Ｆｅ２Ｏ３と粘土との混合比率３条件の計６条件の焼成体を添加して培養した結果、終濃度はいずれもほぼ同じであり、増殖促進効果に差はなかった。
【００７７】
Ｆｅ２Ｏ３焼成体は、陶器状のものとして構成されるが、焼成温度が低いほど、また、Ｆｅ２Ｏ３の配合量が多いほど、Ｆｅ２Ｏ３焼成体を浸漬した培養液が赤くなってしまう傾向にあった。そのため、ユーグレナの増殖促進のために培養液に浸漬する目的を考慮すると、培養液が赤くなりにくい等の物理的扱いやすさから、Ｆｅ２Ｏ３／粘土＝２５：７５（重量比）で、１０００℃焼成品である実施例１６のＦｅ２Ｏ３焼成体が好適であった。
【００７８】
（実験例１５  Ｆｅ２Ｏ３焼成体の添加量検討）
本実験例では、Ｆｅ２Ｏ３焼成体の添加量を把握するため、添加量を変えて増殖促進効果を比較した。
本実験例では、まず、Ｆｅ２Ｏ３と粘土を、２５：７５の割合（重量比）でそれぞれ配合して、モルタルミキサーを用いて混合し、直径５ｍｍの丸玉状に成形後、１０００℃で１０時間焼成したＦｅ２Ｏ３焼成体を作製した。
実験例１と同様の培養原液に、このＦｅ２Ｏ３焼成体０．０１ｇ，０．１ｇ，０．３ｇ，２ｇを添加して浸漬したものを、それぞれ、実施例１８，１９，２０，２１の培養液とした。実施例１８〜２１の培養液は、ｐＨを３．５に調製した。
実施例１８〜２１の培養液では、培養原液量に対する多孔質低温焼成体の重さの比率が、それぞれ、２．０×１０−４ｇ／ｍｌ、２．０×１０−３ｇ／ｍｌ、６．０×１０−３ｇ／ｍｌ、０．０４ｇ／ｍｌであった。
また、実施例１８〜２１の培養液では、培養原液量に対するＦｅ２Ｏ３の重さの比率が、それぞれ、５．０×１０−５ｇ／ｍｌ、５．０×１０−４ｇ／ｍｌ、１．５×１０−３ｇ／ｍｌ、０．０１ｇ／ｍｌであった。
また、実験例１と同様の培養原液に、このＦｅ２Ｏ３焼成体２ｇを添加して浸漬し、ｐＨを２．５に調製したものを、実施例２２の培養液とした。
実施例１８〜２２の培養液に、実験例１と同様にユーグレナを植菌し、培養を行った。
また、実験例１と同様の培養原液を対比例１５の培養液とし、対比例１と同様の条件でユーグレナを植菌、培養を行った。
実施例１８〜２２及び対比例１５の培養０日，１日，４日，５日，６日，７日後の濁度（ＯＤ６８０）を測定した結果を、図２３に示す。
【００７９】
図２３に示すように、ｐＨ３．５の実施例１８〜２１及び対比例１５を比べると、ユーグレナの終濃度は、実施例２１（Ｆｅ２Ｏ３焼成体２ｇ）＞実施例２０（Ｆｅ２Ｏ３焼成体０．３ｇ）＞実施例１９（Ｆｅ２Ｏ３焼成体０．１ｇ）＞実施例１８（Ｆｅ２Ｏ３焼成体０．０１ｇ）≒対比例１５（Ｆｅ２Ｏ３焼成体０ｇ）であり、添加量が多いほどユーグレナの終濃度も高くなっていた。
また、培養４日目の濃度はｐＨ３．５よりｐＨ２．５の培養液の方が高く、ｐＨを下げることで増殖速度を高める効果がある可能性が示唆された。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図２０】
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【図２１】
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【図２２】
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【図２３】
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【図１９】
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