(57)【要約】  多重コンパートメントナノ粒子システムが、画像化に加えて、炎症および／または疾患の診断、モニタリングおよび治療のために開示される。これらの多重コンパートメントナノ粒子システムを使用して、特異的な細胞または細胞構造を標的化することができる。さらに、これらのシステムは親水性組成物および親油性組成物の同時送達が可能である。最終的に、これらのシステムは薬物送達の時間的制御も可能にする。
2013523651.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
多重コンパートメント送達システムにより組織を画像化および処理する方法であって、
（ａ）効果的な量の多重コンパートメント送達システムを被験体に投与する工程であって、該送達システムが外側のコンパートメント内にカプセル化された１種以上の内側のコンパートメントを含み、前記１種以上の内側のコンパートメントが約１０ｎｍ〜約３００ｎｍであり、前記外側のコンパートメントが約０．５ミクロン〜約２０ミクロンであり、前記１種以上の内側のコンパートメントが第１の物理的特性を有する第１の材料をさらに含み、前記外側のコンパートメントが第１の物理的特性とは異なる第２の物理的特性を有する第２の材料を含み、前記１種以上の内側のコンパートメントが第１の薬剤をカプセル化するものである、前記工程と；
（ｂ）前記多重コンパートメント送達システムが標的の組織または細胞へ選択的に結合することを可能にする工程と；
（ｃ）治療剤を送達する工程と；
（ｄ）前記被験体中の画像化剤を検出する工程と
を含む方法。
【請求項２】
前記１種以上の内側のコンパートメントが、約１０ｎｍ〜約３０ｎｍのサイズ範囲である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記第１の薬剤が画像化剤である、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
前記第１の薬剤が、コロイド金、酸化鉄結晶および量子ドットからなる群から選択される、請求項３に記載の方法。
【請求項５】
前記第１の薬剤が、蛍光団、放射標識、Ｘ線造影剤およびポジトロン放出断層撮影法用薬剤からなる群から選択される、請求項３に記載の方法。
【請求項６】
前記第１の薬剤が蛍光団である、請求項３に記載の方法。
【請求項７】
前記第１の薬剤が治療剤である、請求項１に記載の方法。
【請求項８】
前記第１の薬剤が、化学療法剤、抗生物質、抗ウイルス剤、低分子、ｓｉＲＮＡおよびＤＮＡからなる群から選択される、請求項７に記載の方法。
【請求項９】
前記外側のコンパートメントが第２の薬剤をカプセル化する、請求項１〜８のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１０】
前記第２の薬剤が画像化剤である、請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
前記第２の薬剤が、蛍光団、放射標識、Ｘ線造影剤およびポジトロン放出断層撮影法用薬剤からなる群から選択される、請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
前記第２の薬剤が治療剤である、請求項９に記載の方法。
【請求項１３】
前記第２の薬剤が、化学療法剤、抗生物質、抗ウイルス剤、低分子、抗炎症剤、ｓｉＲＮＡおよびＤＮＡからなる群から選択される、請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
前記第１の材料がポリ（ε−カプロラクトン）である、請求項１〜１３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１５】
前記第１の材料が親水性である、請求項１〜１３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１６】
前記第１の材料が水溶性である、請求項１５に記載の方法。
【請求項１７】
前記第２の材料が疎水性である、請求項１〜１６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１８】
前記第２の材料がサフラワー油である、請求項１７に記載の方法。
【請求項１９】
前記外側のコンパートメントが外部のコンパートメント内にカプセル化される、請求項１〜１８のいずれか１項に記載の方法。
【請求項２０】
前記外部のコンパートメントが水溶性材料を含む、請求項１９に記載の方法。
【請求項２１】
標的特異的結合剤が前記外側のコンパートメントの表面に付加される、請求項１〜２０のいずれか１項に記載の方法。
【請求項２２】
前記標的特異的結合剤が、抗体およびその結合断片、ペプチド配列ならびにリガンドおよびその結合断片からなる群から選択される、請求項２１に記載の方法。
【請求項２３】
前記標的特異的結合剤がＥＧＦＲ特異的抗体である、請求項２２に記載の方法。
【請求項２４】
前記標的特異的結合剤がα−Ｖ−βＩＩＩインテグリン受容体へ結合する、請求項２３に記載の方法。
【請求項２５】
多重コンパートメント送達システムにより疾患を治療する方法であって、
（ａ）効果的な量の多重コンパートメント送達システムを被験体に投与する工程であって、該送達システムが外側のコンパートメント内にカプセル化された１種以上の内側のコンパートメントを含み、前記１種以上の内側のコンパートメントが第１の物理的特性を有する第１の材料を含み、前記外側のコンパートメントが第１の物理的特性とは異なる第２の物理的特性を有する第２の材料を含み、前記１種以上の内側のコンパートメントが約１０ｎｍ〜約３００ｎｍであり、前記外側のコンパートメントが約０．５ミクロン〜約２０ミクロンであり、前記１種以上の内側のコンパートメントが第１の治療剤をさらに含むものである、前記工程と；
（ｂ）前記多重コンパートメント送達システムが標的組織または細胞へ選択的に結合することを可能にする工程と；
（ｃ）治療剤を放出する工程と
を含む方法。
【請求項２６】
前記疾患が、アテローム性動脈硬化症、クローン病、炎症性腸疾患、関節リウマチおよび癌からなる群から選択される、請求項２５に記載の方法。
【請求項２７】
前記１種以上の内側のコンパートメントが約１０ｎｍ〜約３０ｎｍのサイズ範囲である、請求項２５に記載の方法。
【請求項２８】
前記１種以上の内側のコンパートメントまたは前記外側のコンパートメントが画像化剤をカプセル化する、請求項２５に記載の方法。
【請求項２９】
前記画像化剤が、コロイド金、酸化鉄結晶および量子ドットからなる群から選択される、請求項２８に記載の方法。
【請求項３０】
前記画像化剤が、蛍光団、放射標識、Ｘ線造影剤およびポジトロン放出断層撮影法用薬剤からなる群から選択される、請求項２８に記載の方法。
【請求項３１】
前記画像化剤が蛍光団である、請求項２８に記載の方法。
【請求項３２】
前記治療剤が、化学療法剤、抗炎症剤、脂肪酸、抗生物質、抗ウイルス剤、低分子、ｓｉＲＮＡおよびＤＮＡからなる群から選択される、請求項２５に記載の方法。
【請求項３３】
第２の治療剤をさらに含み、該第２の治療剤が、化学療法剤、抗炎症剤、脂肪酸、抗生物質、抗ウイルス剤、低分子、ｓｉＲＮＡおよびＤＮＡからなる群から選択される、請求項２５の方法。
【請求項３４】
前記外側のコンパートメントが前記第２の治療剤をカプセル化する、請求項３３に記載の方法。
【請求項３５】
前記１種以上の内側のコンパートメントが前記第２の治療剤をカプセル化する、請求項３３に記載の方法。
【請求項３６】
前記第１の材料がポリ（ε−カプロラクトン）である、請求項２５〜３５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項３７】
前記第１の材料が親水性である、請求項２５〜３５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項３８】
前記第１の材料が水溶性である、請求項３７に記載の方法。
【請求項３９】
前記第２の材料が疎水性である、請求項２５〜３８のいずれか１項に記載の方法。
【請求項４０】
前記第２の材料がサフラワー油である、請求項３９に記載の方法。
【請求項４１】
前記外側のコンパートメントが外部のコンパートメント内にカプセル化される、請求項２５〜４０のいずれか１項に記載の方法。
【請求項４２】
前記外部のコンパートメントが水溶性材料を含む、請求項４１に記載の方法。
【請求項４３】
標的特異的結合剤が前記外側のコンパートメントの表面に付加される、請求項２５〜４２のいずれか１項に記載の方法。
【請求項４４】
前記標的特異的結合剤が抗体およびその結合断片ならびにペプチド配列からなる群から選択される、請求項４３に記載の方法。
【請求項４５】
前記標的特異的結合剤がＥＧＦＲ特異的抗体である、請求項４４に記載の方法。
【請求項４６】
前記標的特異的結合剤がα−Ｖ−βＩＩＩインテグリン受容体へ結合する、請求項４８に記載の方法。
【請求項４７】
前記第１の薬剤が遺伝子コンストラクトである、請求項２５に記載の方法。
【請求項４８】
前記遺伝子コンストラクトを前記標的の組織または細胞中で発現させることをさらに含む、請求項４７に記載の方法。
【請求項４９】
前記遺伝子コンストラクトがＩＬ−１０をコードする、請求項４８に記載の方法。
【請求項５０】
前記遺伝子コンストラクトが前記標的の組織または細胞中でアポトーシスを引き起こす、請求項４８に記載の方法。
【請求項５１】
前記遺伝子コンストラクトがｓｉＲＮＡである、請求項４８に記載の方法。
【請求項５２】
前記標的細胞がマクロファージである、請求項１〜５１のいずれか１項に記載の方法。
【請求項５３】
外側の疎水性のコンパートメント内にカプセル化された１種以上の内側の水溶性コンパートメントを含み、前記外側の疎水性のコンパートメントが外部の水溶性コンパートメントによって囲まれる、多重コンパートメント送達システム。
【請求項５４】
前記１種以上の内側の水溶性コンパートメント内にカプセル化された第１の薬剤をさらに含む、請求項５３に記載の多重コンパートメント送達システム。
【請求項５５】
前記第１の薬剤が、画像化剤、診断剤、治療剤、ワクチン、タンパク質または遺伝子コンストラクトからなる群から選択される、請求項５４に記載の多重コンパートメント送達システム。
【請求項５６】
前記外側の疎水性のコンパートメント内にカプセル化された第２の薬剤をさらに含む、請求項５０〜５５のいずれか１項に記載の多重コンパートメント送達システム。
【請求項５７】
前記第２の薬剤が、画像化剤、診断剤、治療剤、ワクチン、タンパク質または遺伝子コンストラクトからなる群から選択される、請求項５３に記載の多重コンパートメント送達システム。
【請求項５８】
前記外側のコンパートメントがマイクロスフェアを形成する、請求項５３〜５７のいずれか１項に記載の多重コンパートメント送達システム。
【請求項５９】
前記マイクロスフェアが約０．５〜５００ミクロンである、請求項５８に記載の多重コンパートメント送達システム。
【請求項６０】
前記１種以上の内側の水溶性コンパートメントがナノ粒子を含む、請求項５３〜５９のいずれか１項に記載の多重コンパートメント送達システム。
【請求項６１】
前記１種以上の内側の水溶性コンパートメントが約５０ｎｍ〜約３００ｎｍである、請求項６０に記載の多重コンパートメント送達システム。
【請求項６２】
前記ナノ粒子がゼラチンまたはアルギン酸塩を含む、請求項５３〜６１のいずれか１項に記載の多重コンパートメント送達システム。
【請求項６３】
前記外側の疎水性のコンパートメントがサフラワー油を含む、請求項５３〜６２のいずれか１項に記載の多重コンパートメント送達システム。
【請求項６４】
前記外部の水溶性コンパートメントが水を含む、請求項５３〜６３のいずれか１項に記載の多重コンパートメント送達システム。
【請求項６５】
前記１種以上の内側の水溶性コンパートメントまたは前記外側の疎水性のコンパートメントの表面へ付加された、１種以上の標的特異的結合剤をさらに含む、請求項５３〜６４のいずれか１項に記載の多重コンパートメント送達システム。
【請求項６６】
前記１種以上の標的特異的結合剤が、前記外側の疎水性のコンパートメントの表面へ付加される、請求項６５に記載の多重コンパートメント送達システム。
【請求項６７】
前記１種以上の標的特異的結合剤が、前記１種以上の内側の水溶性コンパートメントおよび前記外側の疎水性のコンパートメントへ付加される、請求項６６に記載の多重コンパートメント送達システム。
【請求項６８】
前記１種以上の内側の水溶性コンパートメントへ付加された前記１種以上の標的特異的結合剤が、前記１種以上の内側のコンパートメントを細胞内局在へ方向付け、前記外側の疎水性のコンパートメントへ付加された前記１種以上の標的特異的結合剤が、マイクロスフェアを細胞へ方向付ける、請求項６７に記載の多重コンパートメント送達システム。
【請求項６９】
前記外側の疎水性のコンパートメントの表面へ付加された前記１種以上の標的特異的結合剤がタフトシンである、請求項６６〜６８のいずれか一項に記載の多重コンパートメント送達システム。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
（関連出願の相互参照）
本出願は、２０１０年３月２４日に出願された米国仮出願第６１／３１７０５２号に対する優先権の利益を主張し、その明細書はその全体を参照として本明細書に援用される。
【０００２】
（連邦政府による資金提供を受けた研究開発の記載）
本発明は、助成金Ｒ０１−ＤＫ０８０４７７を介して、Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅｓ  ｏｆ  Ｄｉａｂｅｔｅｓ，Ｄｉｇｅｓｔｉｖｅ  Ｄｉｓｅａｓｅｓ，ａｎｄ  Ｋｉｄｎｅｙ  Ｄｉｓｅａｓｅｓ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ  ｏｆ  Ｈｅａｌｔｈによる資金提供を受け、それゆえ米国政府は本発明に権利を有する。
【０００３】
この開示は医学の分野に関し、より具体的には炎症および／または疾患の診断、モニタリング、および治療のための多重コンパートメントナノ粒子システムに関する。これらのシステムは、特異的細胞タイプへの標的化、非混合性材料の共投与に加えて、ペイロード放出の時間的制御が可能である。
【背景技術】
【０００４】
マクロファージは、炎症性疾患および感染性疾患に含まれる異なる生物学的プロセスを調節する身体の重要な免疫細胞である。マクロファージは骨髄中の単核食細胞系（ＭＰＳ）から生じる。ＭＰＳ系は様々な形態の単球および組織マクロファージからなる。単球の主要な機能はファゴサイトーシスである。骨髄を出ると同時に、単球は血液中で循環し、様々な組織中で活性化されるようになる。一旦単球が血管外組織に到達すれば、マクロファージと呼ばれるより大きな食細胞へと成熟する。それらは、肝臓（クッパー細胞）、肺（肺胞マクロファージ）、脾臓、リンパ節、胸腺、腸、骨髄、脳、結合組織および漿膜腔に存在する。
【０００５】
炎症および感染と闘うために、マクロファージは休止状態から活性化状態に転換される。活性化細胞は、感染病原体および腫瘍細胞を攻撃および死滅させるように促進された能力を有する。
【０００６】
活性状態は、サイズの増加およびより多くの仮足（細胞の突出）の発達により特定される。インターフェロン−ガンマ（ＩＦＮ−γ）、腫瘍壊死因子−アルファ（ＴＮＦ−α）および顆粒球単球コロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）等のＴリンパ球から放出されるサイトカインは、マクロファージを活性化するシグナルとして作用することができる。加えて、活性シグナルは、リポポリサッカライド等の微生物産物、免疫複合体、化学伝達物質、およびフィブロネクチンを含む細胞外マトリックスタンパク質から生じ得る。
【発明の概要】
【０００７】
本開示は、疾患または病態を画像化、診断、および／または治療する方法に関する。本明細書において記載される多重コンパートメント送達システムは、画像化剤、診断剤、治療剤、ワクチン、タンパク質、遺伝子コンストラクトおよび低分子等であるが、これらに限定されない１種以上の薬剤の投与を可能にする。これらのシステムは、非混合性薬剤（すなわち疎水性薬剤および親水性薬剤）の共投与に加えて、投与された薬剤の放出に関する時間的制御を可能にする。
【０００８】
出版物、特許出願、特許、および本明細書において言及される他の参照はすべて、それらの全体を参照として援用される。矛盾が生じる場合には、定義を含めて本明細書に従うものとする。加えて、材料、方法、および実施例は、単に説明的なものであり、限定を意図したものではない。特別に定義されない限り、本明細書において使用されるすべての技術用語および科学用語は、この開示が属する技術分野の当業者によって一般に理解される意味と同じ意味を有する。本明細書において記載されるものと類似または等価である方法および材料を、本開示に記載されるシステムおよび方法の実行または試験において使用することができるが、好適な方法および材料は以下に記載される。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】エマルジョン中ナノ粒子型（ＮｉＥ）処方を使用する、接着Ｊ７７４Ａ．１マウス肺胞マクロファージにおける細胞の取り込みおよび緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）トランスフェクションの微分干渉蛍光顕微鏡画像を示した図である。取り込み研究はサフラワー油含有水中油中水型（Ｗ／Ｏ／Ｗ）多重エマルジョン中のローダミン標識ゼラチンナノ粒子で実行し、２４時間後のＧＦＰトランスフェクションはＮｉＥ中のＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡカプセル化ゼラチンナノ粒子で観察した。
【図２Ａ】本発明の多重コンパートメント送達システムのイラストによる例示の図である。処方は、より大きな固体マイクロスフェア中の固体の親水性ナノ粒子もしくは疎水性ナノ粒子（ａ）などを有するようにデザインすることができる。異なるコンストラクトの組み合わせは、ペイロードの特性およびシステムの所望の適用に基づく。
【図２Ｂ】本発明の多重コンパートメント送達システムのイラストによる例示の図である。処方は、水中油中水型多重エマルジョン中のナノ粒子（ｂ）などを有するようにデザインすることができる。異なるコンストラクトの組み合わせは、ペイロードの特性およびシステムの所望の適用に基づく。
【図２Ｃ】本発明の多重コンパートメント送達システムのイラストによる例示の図である。処方は、ゲル中のナノ粒子または油滴（ｃ）などを有するようにデザインすることができる。異なるコンストラクトの組み合わせは、ペイロードの特性およびシステムの所望の適用に基づく。
【図３Ａ】低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）がカプセル化されたタイプＢゼラチンナノ粒子およびｓｉＲＮＡを含有するマイクロスフェア中ナノ粒子型（ＮｉＭ）の走査型電子顕微鏡写真を含む、ＮｉＭ送達ベヒクルの図式的な説明を示した図である。拡大は各画像の右下隅のスケールバーによって表わされる。
【図３Ｂ】ＮｉＭ中のｓｉＲＮＡの安定性を示す定性的なアガロースゲル（４％（ｗ／ｖ））電気泳動を示した図である。
【図３Ｃ】ｓｉＲＮＡカプセル化ゼラチンナノ粒子は３００ｎｍ未満の平均直径を有し、サイズ分布は狭く、約９０±５％のカプセル化効率であった。ｓｉＲＮＡカプセル化ＮｉＭは２．４±０．９のＩＪｍの平均直径を有し、サイズ分布は狭かった。ｓｉＲＮＡのカプセル化効率はＮｉＭにおいて約５５±３％まで低下した。
【図４】マクロファージ細胞の主要な機能を示した図である。パネルＡは、表面上で特異的受容体（病原体認識受容体またはトール様受容体（ＴＬＲ））を介してマクロファージが細菌（病原体）の存在を検出し、下流シグナルのカスケードへと導き、最終的にサイトカインおよびケモカインの放出をもたらして、細菌の侵入に関して他の細胞にシグナル伝達する能力を示す。パネルＢは、これらの細胞が非特異的エンドサイトーシスまたは受容体媒介性エンドサイトーシスのいずれかを介してファゴサイトーシスし、ファゴリソソームコンパートメント中で見られるように細菌を分解する能力に着目する。分解された細菌の断片は、エキソサイトーシスと呼ばれるプロセスを介して細胞から排泄することができる。さらに、分解された抗原性ペプチド産物はクラスＩＩ  ＭＨＣ分子の支援により細胞表面で提示することができる。このプロセスはヘルパーＴ細胞とのコミュニケーションを支援する。しかしながら、ナイーブＴ細胞は活性化のために２次的なシグナルを必要とし、このシグナルは、マクロファージ上のＢ７受容体とＴ細胞上のＣＤ２８リガンド分子との間の相互作用によって提供される。活性化に際して、これらの細胞は、Ｔｈ１およびＴｈ２免疫応答の生成をさらにもたらすことができる。加えて、マクロファージは、適応的免疫応答に影響を及ぼすことができるＩＬ−６、ＩＬ−１２等のサイトカインも放出することができる。ＮＦ−κＢ＝核内因子−κＢ、ＩκＢ＝ＮＦ−κＢのインヒビターＩＬ−６＝インターロイキン−６、ＩＬ−１２＝インターロイキン−１２。
【図５】腫瘍の増殖および転移の促進における腫瘍関連マクロファージの異なる機能を示した図である。
【図６】プラスミドＤＮＡカプセル化および送達のための、タフトシンで修飾したマクロファージに標的化されたアルギン酸塩ナノ粒子の調製のための概略図である。
【図７】無処理細胞、ならびに非修飾のローダミン−デキストランカプセル化アルギン酸塩ナノ粒子、スクランブル化ペプチドで修飾したローダミン−デキストランカプセル化アルギン酸塩ナノ粒子、およびタフトシンで修飾したローダミン−デキストランカプセル化アルギン酸塩ナノ粒子で処理した細胞の時間依存的な蛍光顕微鏡画像である。画像は投与後１５、３０および６０分で撮影され、もとの４０倍の拡大であった。
【図８】対照のアルギン酸塩ナノ粒子およびタフトシンで修飾したアルギン酸塩ナノ粒子中のＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡの投与に際しての、Ｊ７７４Ａ．１マクロファージ細胞株におけるＧＦＰ発現の時間依存的定量的分析を示した図である。
【図９】対照の架橋されたアルギン酸塩ナノ粒子およびタフトシンで修飾した架橋されたアルギン酸塩ナノ粒子による、Ｊ７７４Ａ．１マクロファージにおけるマウスＩＬ−１０導入遺伝子発現の定量的分析を示した図である。４日の期間にわたりｍＩＬ−１０特異的ＥＬＩＳＡにより発現をモニターした（ｎ＝４）。
【図１０】５．０μｍ以下の直径の安定した漏洩しない多重エマルジョン小球を示すＮｉＢ（Ａ＆Ｂ）およびＭＥ（Ｃ＆Ｄ）の明視野および蛍光の顕微鏡画像である。もとの６０倍の拡大の明視野であった。Ｅ、Ｆ、ＧおよびＨにおける蛍光画像は、２時間後のＪ７７４Ａ．１マクロファージ細胞中へのＮｉＥ（Ｅ、Ｆ）およびＭＥ（Ｇ、Ｈ）の細胞取り込みを表わす。もとの４０倍の拡大であった。
【図１１】Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）（リポフェクチン）と複合体化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡ（Ａ、Ｂ）、またはＮｉＥ（Ｃ、Ｄ）、ＭＥ（Ｅ、Ｆ）およびＧＮＰ（Ｇ、Ｈ）中にカプセル化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡによる２４時間後処理の、Ｊ７７４Ａ．１細胞における、緑色蛍光タンパク質発現を示す微分干渉および蛍光顕微鏡の画像である。もとの４０倍の拡大であった。
【図１２】ＧＮＰ、ＭＥおよびＮｉＢ中にカプセル化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡに加えて、Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）と複合体化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡによる導入遺伝子発現を示すＥＬＩＳＡによる定量的緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）発現を示した図である。ＧＦＰ発現の最高レベルは、他の試験したすべてと比較して、ＮｉＥ処方で観察された。
【図１３Ａ】ｓｉＲＮＡカプセル化ナノ粒子およびＮｉＭＯＳの処方を示した図である。ａ）低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）がカプセル化されたタイプＢゼラチンナノ粒子およびｓｉＲＮＡを含有するＮｉＭＯＳの走査型電子顕微鏡写真を含むＮｉＭＯＳの図式的な説明。拡大は各画像の右下隅のスケールバーによって表わされる。
【図１３Ｂ】ｓｉＲＮＡカプセル化ナノ粒子およびＮｉＭＯＳの処方を示した図である。ｂ）ＮｉＭＯＳ中のｓｉＲＮＡの安定性を示す定性的なアガロースゲル（４％（ｗ／ｖ））電気泳動。レーン１：１０ｂｐラダー；レーン２：ネイキッドｓｉＲＮＡ；レーン３：プロテアーゼで処理したネイキッドｓｉＲＮＡ；レーン４：プロテアーゼおよびＲＮＡｓｅ  Ａで処理したネイキッドｓｉＲＮＡ；レーン５：ゼラチンナノ粒子から抽出したｓｉＲＮＡ；レーン６：ゼラチンナノ粒子から抽出し、次いで、ＲＮＡｓｅ  Ａで処理したｓｉＲＮＡ；レーン７：ＮｉＭＯＳから抽出したｓｉＲＮＡ；レーン８：ＲＮＡｓｅ  Ａで前処理したＮｉＭＯＳから抽出したｓｉＲＮＡ；レーン９：ＮｉＭＯＳから抽出し、次いでＲＮＡｓｅ  Ａで処理したｓｉＲＮＡ；レーン１０：１０ｂｐラダー；およびレーン１１：プロテアーゼでのみ処理したＮｉＭＯＳ。ｃ）ｓｉＲＮＡカプセル化ゼラチンナノ粒子は３００ｎｍ未満の平均直径を有し、サイズ分布は狭く、約９０：１：５％のカプセル化効率であった。ｓｉＲＮＡカプセル化ＮｉＭＯＳは２．４：１：０．９ｕｍの平均直径を有し、サイズ分布は狭かった。ｓｉＲＮＡのカプセル化効率はＮｉＭＯＳにおいて約５５±３％に低下した。
【図１４Ａ】デキストラン硫酸ナトリウムで誘導した急性結腸炎マウスモデルを示した図である。ａ）急性結腸炎を誘導するために３．５％（ｗ／ｗ）のデキストラン硫酸ナトリウム（ＤＳＳ）を与えた６〜８週齢メスＢａｌｂ／ｃマウスと、一般的な飲料水を与えた対照マウスの体重に比較における、パーセント体重減量。曲線本体における下落は絶食期間直後の体重測定に対応する。
【図１４Ｂ】デキストラン硫酸ナトリウムで誘導した急性結腸炎マウスモデルを示した図である。ｂ）同じマウスの群におけるｍｇ全タンパク質含有量あたりの組織ミエロペルオキシダーゼ活性。
【図１４Ｃ】デキストラン硫酸ナトリウムで誘導した急性結腸炎マウスモデルを示した図である。ｃ）各群から採取された結腸のヘマトキシリン・エオシン染色した切片の明視野画像。画像はもとの１０倍および４０倍の拡大で示される。対照群からの切片は正常で健康な結腸組織の特徴を示す。ＤＳＳ対照群からの腸組織は、有意なレベルの白血球の浸潤、異常な粘膜構造および杯細胞枯渇を示した。
【図１５Ａ】インビボのＴＮＦ−α遺伝子サイレンシングを示した図である。デキストラン硫酸塩（ＤＳＳ）で誘導した急性結腸炎マウスモデルにおける、ＮｉＭＯＳを使用するＴＮＦ−１１に対するｓｉＲＮＡの経口送達に際するマウスＴＮＦ−α発現。ａ）対照群および実験的処理群から得られた大腸のサンプルに対して実行された定量的リアルタイム−ＰＣＲ分析であり、ＮｉＭＯＳによるｓｉＲＮＡの経口投与に際してより低いｍＲＮＡの転写物を示す。値は平均±Ｓ．Ｄ．（ｎ＝３〜４）として表わされる。対照＝何もしていない、大腸炎なし；ＤＳＳ対照＝大腸炎、処理なし；ブランクのＮｉＭＯＳ＝大腸炎、ブランクのマイクロスフェア；ＴＮＦ−αＮｉＭＯＳ＝大腸炎、ＴＮＦ−α  ｓｉＲＮＡ含有マイクロスフェア；スクランブル化ＮｉＭＯＳ＝大腸炎、スクランブル化ｓｉＲＮＡ含有マイクロスフェア。
【図１５Ｂ】インビボのＴＮＦ−α遺伝子サイレンシングを示した図である。デキストラン硫酸塩（ＤＳＳ）で誘導した急性結腸炎マウスモデルにおける、ＮｉＭＯＳを使用するＴＮＦ−１１に対するｓｉＲＮＡの経口送達に際するマウスＴＮＦ−α発現。ｂ）ＥＬＩＳＡによって決定される１ＮＦ−ａのレベル。値は平均±Ｓ．Ｄ．（ｎ＝３〜４）として表わされる。対照＝何もしていない、大腸炎なし；ＤＳＳ対照＝大腸炎、処理なし；ブランクのＮｉＭＯＳ＝大腸炎、ブランクのマイクロスフェア；ＴＮＦ−αＮｉＭＯＳ＝大腸炎、ＴＮＦ−α  ｓｉＲＮＡ含有マイクロスフェア；スクランブル化ＮｉＭＯＳ＝大腸炎、スクランブル化ｓｉＲＮＡ含有マイクロスフェア。
【図１６Ａ】胃腸管におけるサイトカインおよびケモカインのプロファイルである。継続的なデキストランナトリウム硫酸塩（ＤＳＳ）曝露下での動物に対するＮｉＭＯＳ（ブランクまたはカプセル化したＴＮＦ−α  ｓｉＲＮＡ、スクランブル化ｓｉＲＮＡ）の３用量の投与に際して、サイトカイン発現プロファイルを、化学発光ＥＬＩＳＡ  Ｑ−Ｐｌｅｘ（商標）Ｍｏｕｓｅ  Ｃｙｔｏｋｉｎｅ  Ｓｃｒｅｅｎ（Ｑｕａｎｓｙｓ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｌｏｇａｎ、ＵＴ）の使用により決定した。大腸におけるａ）インターロイキン１α（ＩＬ−１α）の濃度を示す。炎症誘発性サイトカインのレベルは、両方の時刻ポイントで、炎症を起こした組織と比較して、健康な対照群において低い。炎症誘発性サイトカインの最高濃度は、ブランクのＮｉＭＯＳまたはスクランブル化ｓｉＲＮＡ含有ＮｉＭＯＳで処理した動物において観察された。ＴＮＦ−αサイレンシングｓｉＲＮＡを投与した群においてレベルは最低であった。対照群および急性ＤＳＳ大腸炎の誘導をともなう処理群マウスの結腸組織における炎症誘発性ケモカインのプロファイル。値は平均±Ｓ．Ｄ．として表現された（ｎ＝４）。
【図１６Ｂ】胃腸管におけるサイトカインおよびケモカインのプロファイルである。継続的なデキストランナトリウム硫酸塩（ＤＳＳ）曝露下での動物に対するＮｉＭＯＳ（ブランクまたはカプセル化したＴＮＦ−α  ｓｉＲＮＡ、スクランブル化ｓｉＲＮＡ）の３用量の投与に際して、サイトカイン発現プロファイルを、化学発光ＥＬＩＳＡ  Ｑ−Ｐｌｅｘ（商標）Ｍｏｕｓｅ  Ｃｙｔｏｋｉｎｅ  Ｓｃｒｅｅｎ（Ｑｕａｎｓｙｓ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｌｏｇａｎ、ＵＴ）の使用により決定した。大腸におけるｂ）インターロイキンＩβ（ＩＬ−１β）の濃度を示す。炎症誘発性サイトカインのレベルは、両方の時刻ポイントで、炎症を起こした組織と比較して、健康な対照群において低い。炎症誘発性サイトカインの最高濃度は、ブランクのＮｉＭＯＳまたはスクランブル化ｓｉＲＮＡ含有ＮｉＭＯＳで処理した動物において観察された。ＴＮＦ−αサイレンシングｓｉＲＮＡを投与した群においてレベルは最低であった。対照群および急性ＤＳＳ大腸炎の誘導をともなう処理群マウスの結腸組織における炎症誘発性ケモカインのプロファイル。値は平均±Ｓ．Ｄ．として表現された（ｎ＝４）。
【図１６Ｃ】胃腸管におけるサイトカインおよびケモカインのプロファイルである。継続的なデキストランナトリウム硫酸塩（ＤＳＳ）曝露下での動物に対するＮｉＭＯＳ（ブランクまたはカプセル化したＴＮＦ−α  ｓｉＲＮＡ、スクランブル化ｓｉＲＮＡ）の３用量の投与に際して、サイトカイン発現プロファイルを、化学発光ＥＬＩＳＡ  Ｑ−Ｐｌｅｘ（商標）Ｍｏｕｓｅ  Ｃｙｔｏｋｉｎｅ  Ｓｃｒｅｅｎ（Ｑｕａｎｓｙｓ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｌｏｇａｎ、ＵＴ）の使用により決定した。大腸におけるｃ）インターロイキン２（ＩＬ−２）の濃度を示す。炎症誘発性サイトカインのレベルは、両方の時刻ポイントで、炎症を起こした組織と比較して、健康な対照群において低い。炎症誘発性サイトカインの最高濃度は、ブランクのＮｉＭＯＳまたはスクランブル化ｓｉＲＮＡ含有ＮｉＭＯＳで処理した動物において観察された。ＴＮＦ−αサイレンシングｓｉＲＮＡを投与した群においてレベルは最低であった。対照群および急性ＤＳＳ大腸炎の誘導をともなう処理群マウスの結腸組織における炎症誘発性ケモカインのプロファイル。値は平均±Ｓ．Ｄ．として表現された（ｎ＝４）。
【図１６Ｄ】胃腸管におけるサイトカインおよびケモカインのプロファイルである。継続的なデキストランナトリウム硫酸塩（ＤＳＳ）曝露下での動物に対するＮｉＭＯＳ（ブランクまたはカプセル化したＴＮＦ−α  ｓｉＲＮＡ、スクランブル化ｓｉＲＮＡ）の３用量の投与に際して、サイトカイン発現プロファイルを、化学発光ＥＬＩＳＡ  Ｑ−Ｐｌｅｘ（商標）Ｍｏｕｓｅ  Ｃｙｔｏｋｉｎｅ  Ｓｃｒｅｅｎ（Ｑｕａｎｓｙｓ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｌｏｇａｎ、ＵＴ）の使用により決定した。大腸におけるｄ）インターフェロンガンマ（ＩＦＮ−γ）の濃度を示す。炎症誘発性サイトカインのレベルは、両方の時刻ポイントで、炎症を起こした組織と比較して、健康な対照群において低い。炎症誘発性サイトカインの最高濃度は、ブランクのＮｉＭＯＳまたはスクランブル化ｓｉＲＮＡ含有ＮｉＭＯＳで処理した動物において観察された。ＴＮＦ−αサイレンシングｓｉＲＮＡを投与した群においてレベルは最低であった。対照群および急性ＤＳＳ大腸炎の誘導をともなう処理群マウスの結腸組織における炎症誘発性ケモカインのプロファイル。値は平均±Ｓ．Ｄ．として表現された（ｎ＝４）。
【図１６Ｅ】胃腸管におけるサイトカインおよびケモカインのプロファイルである。継続的なデキストランナトリウム硫酸塩（ＤＳＳ）曝露下での動物に対するＮｉＭＯＳ（ブランクまたはカプセル化したＴＮＦ−α  ｓｉＲＮＡ、スクランブル化ｓｉＲＮＡ）の３用量の投与に際して、サイトカイン発現プロファイルを、化学発光ＥＬＩＳＡ  Ｑ−Ｐｌｅｘ（商標）Ｍｏｕｓｅ  Ｃｙｔｏｋｉｎｅ  Ｓｃｒｅｅｎ（Ｑｕａｎｓｙｓ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｌｏｇａｎ、ＵＴ）の使用により決定した。大腸におけるｅ）インターロイキン５（ＩＬ−５）の濃度を示す。炎症誘発性サイトカインのレベルは、両方の時刻ポイントで、炎症を起こした組織と比較して、健康な対照群において低い。炎症誘発性サイトカインの最高濃度は、ブランクのＮｉＭＯＳまたはスクランブル化ｓｉＲＮＡ含有ＮｉＭＯＳで処理した動物において観察された。ＴＮＦ−αサイレンシングｓｉＲＮＡを投与した群においてレベルは最低であった。対照群および急性ＤＳＳ大腸炎の誘導をともなう処理群マウスの結腸組織における炎症誘発性ケモカインのプロファイル。値は平均±Ｓ．Ｄ．として表現された（ｎ＝４）。
【図１６Ｆ】胃腸管におけるサイトカインおよびケモカインのプロファイルである。継続的なデキストランナトリウム硫酸塩（ＤＳＳ）曝露下での動物に対するＮｉＭＯＳ（ブランクまたはカプセル化したＴＮＦ−α  ｓｉＲＮＡ、スクランブル化ｓｉＲＮＡ）の３用量の投与に際して、サイトカイン発現プロファイルを、化学発光ＥＬＩＳＡ  Ｑ−Ｐｌｅｘ（商標）Ｍｏｕｓｅ  Ｃｙｔｏｋｉｎｅ  Ｓｃｒｅｅｎ（Ｑｕａｎｓｙｓ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｌｏｇａｎ、ＵＴ）の使用により決定した。大腸におけるｆ）インターロイキン６（ＩＬ−６）の濃度を示す。炎症誘発性サイトカインのレベルは、両方の時刻ポイントで、炎症を起こした組織と比較して、健康な対照群において低い。炎症誘発性サイトカインの最高濃度は、ブランクのＮｉＭＯＳまたはスクランブル化ｓｉＲＮＡ含有ＮｉＭＯＳで処理した動物において観察された。ＴＮＦ−αサイレンシングｓｉＲＮＡを投与した群においてレベルは最低であった。対照群および急性ＤＳＳ大腸炎の誘導をともなう処理群マウスの結腸組織における炎症誘発性ケモカインのプロファイル。値は平均±Ｓ．Ｄ．として表現された（ｎ＝４）。
【図１６Ｇ】胃腸管におけるサイトカインおよびケモカインのプロファイルである。継続的なデキストランナトリウム硫酸塩（ＤＳＳ）曝露下での動物に対するＮｉＭＯＳ（ブランクまたはカプセル化したＴＮＦ−α  ｓｉＲＮＡ、スクランブル化ｓｉＲＮＡ）の３用量の投与に際して、サイトカイン発現プロファイルを、化学発光ＥＬＩＳＡ  Ｑ−Ｐｌｅｘ（商標）Ｍｏｕｓｅ  Ｃｙｔｏｋｉｎｅ  Ｓｃｒｅｅｎ（Ｑｕａｎｓｙｓ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｌｏｇａｎ、ＵＴ）の使用により決定した。大腸におけるｇ）インターロイキン１２  ｐ７０（ＩＬ−１２  ｐ７０）の濃度を示す。炎症誘発性サイトカインのレベルは、両方の時刻ポイントで、炎症を起こした組織と比較して、健康な対照群において低い。炎症誘発性サイトカインの最高濃度は、ブランクのＮｉＭＯＳまたはスクランブル化ｓｉＲＮＡ含有ＮｉＭＯＳで処理した動物において観察された。ＴＮＦ−αサイレンシングｓｉＲＮＡを投与した群においてレベルは最低であった。対照群および急性ＤＳＳ大腸炎の誘導をともなう処理群マウスの結腸組織における炎症誘発性ケモカインのプロファイル。値は平均±Ｓ．Ｄ．として表現された（ｎ＝４）。
【図１６Ｈ】胃腸管におけるサイトカインおよびケモカインのプロファイルである。継続的なデキストランナトリウム硫酸塩（ＤＳＳ）曝露下での動物に対するＮｉＭＯＳ（ブランクまたはカプセル化したＴＮＦ−α  ｓｉＲＮＡ、スクランブル化ｓｉＲＮＡ）の３用量の投与に際して、サイトカイン発現プロファイルを、化学発光ＥＬＩＳＡ  Ｑ−Ｐｌｅｘ（商標）Ｍｏｕｓｅ  Ｃｙｔｏｋｉｎｅ  Ｓｃｒｅｅｎ（Ｑｕａｎｓｙｓ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｌｏｇａｎ、ＵＴ）の使用により決定した。大腸におけるｈ）インターロイキン７（ＩＬ−７）の濃度を示す。炎症誘発性サイトカインのレベルは、両方の時刻ポイントで、炎症を起こした組織と比較して、健康な対照群において低い。炎症誘発性サイトカインの最高濃度は、ブランクのＮｉＭＯＳまたはスクランブル化ｓｉＲＮＡ含有ＮｉＭＯＳで処理した動物において観察された。ＴＮＦ−αサイレンシングｓｉＲＮＡを投与した群においてレベルは最低であった。対照群および急性ＤＳＳ大腸炎の誘導をともなう処理群マウスの結腸組織における炎症誘発性ケモカインのプロファイル。値は平均±Ｓ．Ｄ．として表現された（ｎ＝４）。
【図１６Ｉ】胃腸管におけるサイトカインおよびケモカインのプロファイルである。継続的なデキストランナトリウム硫酸塩（ＤＳＳ）曝露下での動物に対するＮｉＭＯＳ（ブランクまたはカプセル化したＴＮＦ−α  ｓｉＲＮＡ、スクランブル化ｓｉＲＮＡ）の３用量の投与に際して、サイトカイン発現プロファイルを、化学発光ＥＬＩＳＡ  Ｑ−Ｐｌｅｘ（商標）Ｍｏｕｓｅ  Ｃｙｔｏｋｉｎｅ  Ｓｃｒｅｅｎ（Ｑｕａｎｓｙｓ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｌｏｇａｎ、ＵＴ）の使用により決定した。対照群および急性ＤＳＳ大腸炎の誘導をともなう処理群マウスの結腸組織における炎症誘発性ケモカインのプロファイル。（ｉ）投与後３日目すなわち研究１０日目のケモカインレベル。顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭＣＳＦ）；単球走化性タンパク質−Ｉ（ＭＣＰ−Ｉ）；単球炎症性タンパク質Ｉアルファ（ＭＩＰ−１α）。値は平均±Ｓ．Ｄ．として表現された（ｎ＝４）。
【図１６Ｊ】胃腸管におけるサイトカインおよびケモカインのプロファイルである。継続的なデキストランナトリウム硫酸塩（ＤＳＳ）曝露下での動物に対するＮｉＭＯＳ（ブランクまたはカプセル化したＴＮＦ−α  ｓｉＲＮＡ、スクランブル化ｓｉＲＮＡ）の３用量の投与に際して、サイトカイン発現プロファイルを、化学発光ＥＬＩＳＡ  Ｑ−Ｐｌｅｘ（商標）Ｍｏｕｓｅ  Ｃｙｔｏｋｉｎｅ  Ｓｃｒｅｅｎ（Ｑｕａｎｓｙｓ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｌｏｇａｎ、ＵＴ）の使用により決定した。対照群および急性ＤＳＳ大腸炎の誘導をともなう処理群マウスの結腸組織における炎症誘発性ケモカインのプロファイル。（ｋ）研究１４日目のタンパク質濃度。顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭＣＳＦ）；単球走化性タンパク質−Ｉ（ＭＣＰ−Ｉ）；単球炎症性タンパク質Ｉアルファ（ＭＩＰ−１α）。値は平均±Ｓ．Ｄ．として表現された（ｎ＝４）。
【図１７】結腸組織の組織病理学の評価を示した図である。染色した結腸の切片の画像を投与後の日数の各群から採取した。研究の１０日目および１４日目で得られた組織凍結切片の画像は、もとのサイズの１０倍および４０倍の拡大で示される。対照群からの切片は正常で健康な結腸組織を示す。デキストラン硫酸ナトリウム（ＤＳＳ）対照群、ブランクのＮｉＭＯＳで処理した群に加えて、ＮｉＭＯＳカプセル化したスクランブル化ＴＮＦ−αｓｉＲＮＡ配列で処理した群からの腸組織は、有意なレベルの白血球の浸潤、異常な粘膜構造およびある程度の杯細胞枯渇を示した。ＴＮＦ−αサイレンシングＮｉＭＯＳを投与した群からの組織は健康な組織非常に類似した組織構造を示した。
【図１８Ａ】治療有効性の肉眼的評価を示した図である。ａ）急性結腸炎モデルの発達のためのＤＳＳに対する継続的な曝露に際してのＢａｌｂ／ｃマウスの体重のパーセント変化。ｓｉＲＮＡ含有ＮｉＭＯＳおよびブランクのＮｉＭＯＳを研究の３、５および７日目に投与した。矢印は、ＮｉＭＯＳの経口投与の時刻ポイントを示す。値は平均±Ｓ．Ｄ．として表現される（ｎ＝４〜８）。
【図１８Ｂ】治療有効性の肉眼的評価を示した図である。ｂ）結腸長の測定。値は平均±Ｓ．Ｄ．として表現される（ｎ＝４〜８）。
【図１８Ｃ】治療有効性の肉眼的評価を示した図である。ｃ）各サンプルの全タンパク質含有量に対して正規化した大腸における組織ミエロペルオキシダーゼ活性。レベルは、研究の１０および１４日目（投与後の３および７日目）のサンプルから得られた濃度を表わす。値は平均±Ｓ．Ｄ．として表現される（ｎ＝４〜８）。
【図１９】５．０μｍ以下の直径の安定した漏洩しない多重エマルジョン小球を示すＮｉＥ（Ａ＆Ｂ）およびＭＥ（Ｃ＆Ｄ）の明視野および蛍光の顕微鏡画像である。もとの６０倍の拡大であった。
【図２０】アガロースゲル電気泳動によりＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡ安定性を決定した図である。
【図２１】図（Ａ、Ｂ）、（Ｃ、Ｄ）および（Ｅ、Ｆ）における明視野および蛍光画像は、それぞれ６０分、９０分および１２０分の時刻ポイントでのＪ７７４Ａ．１細胞による、ＭＥ処方を含むローダミンデキストランの細胞取り込みを示す。図（Ｇ、Ｈ）、（Ｉ、Ｊ）および（Ｋ、Ｌ）における明視野および蛍光画像は、それぞれ６０分、９０分および１２０分の時刻ポイントでのＪ７７４Ａ．１細胞による、ＮｉＥ処方を含むローダミンデキストラン（７００００ＭＷ）の細胞取り込みを示す。もとの４０倍の拡大であった。
【図２２】ＮｉＥ、ＭＥまたはＧＮＰのいずれかの処方による処理後３０分、２時間および６時間の時刻ポイントでの、Ｊ７７４Ａ．１細胞内のＤＮＡ（緑色）、ＧＮＰ（赤色）および核（青色）の局在を示す蛍光顕微鏡画像を示した図である。もとの６０倍の拡大であった。
【図２３Ａ】定性的な遺伝子トランスフェクションを蛍光顕微鏡により評価した図である。（ａ）Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）と複合体化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡ（Ａ、Ｂ）、またはＮｉＥ（Ｃ、Ｄ）、ＭＥ（Ｅ、Ｆ）およびＧＮＰ（Ｇ、Ｈ）中にカプセル化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡによるＪ７７４Ａ．１細胞の処理後２４時間における緑色蛍光タンパク質発現を示す微分干渉および蛍光顕微鏡の画像。もとの４０倍の拡大であった。
【図２３Ｂ】定性的な遺伝子トランスフェクションを蛍光顕微鏡により評価した図である。（ｂ）Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）と複合体化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡ（Ａ、Ｂ）、またはＮｉＥ（Ｃ、Ｄ）、ＭＥ（Ｅ、Ｆ）およびＧＮＰ（Ｇ、Ｈ）中にカプセル化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡによるＪ７７４Ａ．１細胞の処理後４８時間における緑色蛍光タンパク質発現を示す微分干渉および蛍光顕微鏡の画像。もとの４０倍の拡大であった。
【図２３Ｃ】定性的な遺伝子トランスフェクションを蛍光顕微鏡により評価した図である。（ｃ）Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）と複合体化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡ（Ａ、Ｂ）、またはＮｉＥ（Ｃ、Ｄ）、ＭＥ（Ｅ、Ｆ）およびＧＮＰ（Ｇ、Ｈ）中にカプセル化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡによるＪ７７４Ａ．１細胞の処理後７２時間における緑色蛍光タンパク質発現を示す微分干渉および蛍光顕微鏡の画像。もとの４０倍の拡大であった。
【図２３Ｄ】定性的な遺伝子トランスフェクションを蛍光顕微鏡により評価した図である。（ｄ）Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）と複合体化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡ（Ａ、Ｂ）、またはＮｉＥ（Ｃ、Ｄ）、ＭＥ（Ｅ、Ｆ）およびＧＮＰ（Ｇ、Ｈ）中にカプセル化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡによるＪ７７４Ａ．１細胞の処理後９６時間における緑色蛍光タンパク質発現を示す微分干渉および蛍光顕微鏡の画像。もとの４０倍の拡大であった。
【図２３Ｅ】定性的な遺伝子トランスフェクションを蛍光顕微鏡により評価した図である。（ｅ）Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）と複合体化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡ（Ａ、Ｂ）、またはＮｉＥ（Ｃ、Ｄ）、ＭＥ（Ｅ、Ｆ）およびＧＮＰ（Ｇ、Ｈ）中にカプセル化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡによるＪ７７４Ａ．１細胞の処理後１２０時間における緑色蛍光タンパク質発現を示す微分干渉および蛍光顕微鏡の画像。もとの４０倍の拡大であった。
【図２３Ｆ】定性的な遺伝子トランスフェクションを蛍光顕微鏡により評価した図である。（ｆ）Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）と複合体化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡ（Ａ、Ｂ）、またはＮｉＥ（Ｃ、Ｄ）、ＭＥ（Ｅ、Ｆ）およびＧＮＰ（Ｇ、Ｈ）中にカプセル化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡによるＪ７７４Ａ．１細胞の処理後１４４時間における緑色蛍光タンパク質発現を示す微分干渉および蛍光顕微鏡の画像。もとの４０倍の拡大であった。
【図２４】ＧＮＰ、ＭＥおよびＮｉＥ中にカプセル化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡに加えて、Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）と複合体化されたＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡによる導入遺伝子発現を示すＥＬＩＳＡによる定量的緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）発現。ＧＦＰ発現の最高レベルは、他の試験したすべてと比較して、ＮｉＥ処方で観察された。
【図２５】（Ａ）約３．７キロ塩基対の完全な形のプラスミドを示すアガロースゲル電気泳動（レーン２）。レーン４は、プラスミドベクター中のＩＬ−１０導入遺伝子のサイズと関連したサイズの約５００ｂｐのＤＮＡ断片の存在を示す。（Ｂ）ｍＩＬ−１０プラスミドコンストラクト。
【図２６】Ｊ７７４Ａ．１細胞におけるＲＴ−ＰＣＲによる定性的なＩＬ−１０  ｍＲＮＡ発現。ＮｉＥ処方は、他の試験したすべてと比較して、より高いｍＩＬ−１０導入遺伝子転写産物発現を示した。
【図２７】ＧＮＰ、ＭＥおよびＮｉＥ中にカプセル化されたＩＬ−１０プラスミドＤＮＡに加えて、Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）と複合体化されたｍＩＬ−１０プラスミドＤＮＡによる導入遺伝子発現を示す、ＥＬＩＳＡによる定量的ＩＬ−１０タンパク質発現。ｍＩＬ１０発現の最高レベルは、他の試験したすべてと比較して、ＮｉＥ処方で観察された。
【図２８】ＬＰＳ刺激後の２４時間および４８時間の時刻ポイントの、無処理細胞（レーン３）、またはネイキッドプラスミド（レーン４）、Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）と複合体化されたｍＩＬ１０プラスミド（レーン５）、ＮｉＥ中のｍＩＬ１０プラスミド（レーン６）、ＭＥ中のｍＩＬ１０プラスミド（レーン７）もしくはＧＮＰ中のｍＩＬ１０プラスミド（レーン８）で処理した細胞における、ＴＮＦαおよびＩＬ１βｍＲＮＡについてのＲＴ−ＰＣＲ分析を示した図である。
【図２９】無処理Ｊ７７４Ａ．１細胞、またはｍＩＬ−１０を含有するＮｉＥ、ＭＥ、ＧＮＰ、Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）もしくはネイキッドｍＩＬ−１０プラスミドによりトランスフェクションしたＪ７７４Ａ．１細胞のいずれかにおける、ＩＬ−１０トランスフェクション媒介性のＴＮＦαの抑制を示す、ＥＬＩＳＡによる定量的ＴＮＦαタンパク質発現を示した図である。
【図３０】無処理Ｊ７７４Ａ．１細胞、またはｍＩＬ−１０を含有するＮｉＥ、ＭＥ、ＧＮＰ、ＬｉｐｏｆｅｃｔｉｎもしくはネイキッドｍＩＬ−１０プラスミドで処理したＪ７７４Ａ．１細胞のいずれかにおける、ＩＬ−１０トランスフェクション媒介性のＩＬ１βの抑制を示す、ＥＬＩＳＡによる定量的ＩＬ１βタンパク質発現を示した図である。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
（詳細な説明）
本開示は、経口経路、鼻腔経路、吸入経路、注入経路または当業者に公知の他の経路による身体中の投与に際して、造影剤、薬物、遺伝子、低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）、およびワクチン接種用分子のマクロファージへの安全で効果的な送達のための組成物に部分的に関する。
【００１１】
１．多重コンパートメント送達システム
本開示は、外側の疎水性コンパートメント内にカプセル化された１種以上の内側の水溶性コンパートメントを含み、外側の疎水性コンパートメントが外部の水溶性コンパートメントによって囲まれる、多重コンパートメント送達システムに関する。システムのいくつかの実施形態において、第１の薬剤は１種以上の内側の水溶性コンパートメント内にカプセル化される。他の実施形態において、第１の薬剤は、画像化剤、診断剤、治療剤、ワクチン、タンパク質、または遺伝子コンストラクトからなる群から選択される。さらに他の実施形態において、第２の薬剤は外側の疎水性コンパートメント内にカプセル化される。カプセル化とは、材料中に溶解されること、材料と結び付くこと（薬剤またはナノ粒子が表面上に存在し得ることを意味する）、材料内にあること、またはコンパートメントを構成する材料によって囲まれることを含むように本明細書において定義される。第２の薬剤は、画像化剤、診断剤、治療剤、ワクチン、タンパク質、または遺伝子コンストラクトからなる群から選択することができる。
【００１２】
本明細書において開示される多重コンパートメント送達システムは、マイクロスフェアを形成する外側のコンパートメントも含むことができる。マイクロスフェアを産生する方法は、当該技術分野において公知であり、単一エマルジョン法および溶媒置換法を含む（例えば、Ｆｕｒｔａｄｏ  Ｍｏｓｑｕｅｉｒａ  ｅｔ  ａｌ．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ  Ｓｐｅｃｉａｌ  Ｉｓｓｕｅ：１９９９  Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｃｏｎｆｅｒｅｎｃｅ（２０００）８９（５）：６１４−６２６からの論文；Ｒｏｓｃａ  ｅｔ  ａｌ．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  Ｒｅｌｅａｓｅ（２００４）９９（２）：２７１−２８０を参照されたい）。マイクロスフェアは約０．５〜５００ミクロンのサイズであり得る。いくつかの実施形態において、内側の水溶性コンパートメントは約５０ｎｍ〜約３００ｎｍである。さらに他の実施形態において、内側の水溶性コンパートメントはナノ粒子を含む。別の実施形態において、ナノ粒子はゼラチンまたはアルギン酸塩を含む。
【００１３】
多重コンパートメント送達システムのさらに他の実施形態において、外側の疎水性コンパートメントはサフラワー油を含む。いくつかの実施形態において、１種以上の標的特異的結合剤は外側の疎水性コンパートメントの表面に付加される。いくつかの実施形態において、外側の疎水性コンパートメントの表面に付加される１種以上の標的特異的結合剤は、タフトシンである。粒子または担体に結合剤を付加する方法は、当該技術分野において公知である（例えば、Ｍａｇａｄａｌａ  ｅｔ  ａｌ．ＡＡＰＳ  Ｊ．（２００８）１０（４）：５６５−５７６を参照されたい）。
【００１４】
いくつかの実施形態において、外部の水溶性コンパートメントは水を含む。他の実施形態において、多重コンパートメント送達システムは、内側の水溶性コンパートメントまたは外側の疎水性のコンパートメントの表面に付加された１種以上の標的特異的結合剤をさらに含む。さらに他の実施形態において、１種以上の標的特異的結合剤は、内側の水溶性コンパートメントおよび外側の疎水性コンパートメントに付加される。さらなる実施形態は、内側の水溶性コンパートメントに付加されて内側のコンパートメントを細胞内局在へ方向付ける１種以上の標的特異的結合剤、および外側の疎水性コンパートメントに付加されてマイクロスフェアを細胞へ方向付ける１種以上の標的特異的結合剤をさらに含む。
【００１５】
本明細書において開示される送達ベヒクルは、以下の２つの利点の与える複数のコンパートメント（多重コンパートメント）を有するようにデザインされる。（１）非混合性（例えば難溶性）、不安定性、または時間的に制御された放出および送達の要望に起因する、コンパートメントの各々中のペイロードを隔離する能力；および（２）所望の生物学的標的部位へペイロードの効果的な送達を与えるために、異なる組織、細胞および細胞内のバリアを乗り越える能力。これは、遺伝子、オリゴヌクレオチドおよびｓｉＲＮＡ等の核酸ベースの治療剤については特に重要である。
【００１６】
図１中に図示されるように、多重コンパートメント送達システムは、ペイロード（例えば疎水性ｖｓ親水性）、身体における送達部位、意図される適用（例えば薬物ｖｓワクチン）、および対象となる疾患の要求を満たすようにデザインされる。
【００１７】
本明細書において開示される多重コンパートメント送達ベヒクルはマイクロスフェア中ナノ粒子型であり得る（図３）。マイクロスフェア中ナノ粒子型は外側のコンパートメント（すなわちマイクロスフェア）を有することができる。特定の実施形態において、マイクロスフェアは「固体」である。本明細書において使用される時、「固体」という用語は、構造的に硬く、変形に対して耐性のある物質を意味する。かかるマイクロスフェアは、ポリ（ε−カプロラクトン）（ＰＣＬ）、ポリ（Ｄ，Ｌ−ラクチド−コ−グリコリド）（ＰＬＧＡ）、およびポリメチルメタクリレート等の材料からなる。マイクロスフェアは約５００ナノメートル〜約１．５ミクロンであり得る。
【００１８】
特定の実施形態において、マイクロスフェアは、内側のコンパートメントを形成する固体ナノ粒子をカプセル化する。ナノ粒子はマイクロスフェアとは異なる材料からなり得る。例えば、親水性材料からなるナノ粒子は疎水性材料からなるマイクロスフェア内にカプセル化される。特定の実施形態において、疎水性ナノ粒子は親水性マイクロスフェア内にカプセル化される。疎水性マイクロスフェアは、サフラワー油もしくは他の生物学的適合性のある油等の油、ワックスまたはポリ（ε−カプロラクトン）、ポリ（Ｄ，Ｌ−ラクチド−コ−グリコリド）（ＰＬＧＡ）、およびポリメチルメタクリレート（ＰＣＬ）等の疎水性分子からなり得る。かかるナノ材料はＰｈｏｓｐｈｏｒｅｘ  Ｉｎｃ．（Ｆａｌｌ  Ｒｉｖｅｒ、ＭＡ）から得ることができる。さらに、ナノ粒子を作製する方法は当該技術分野において公知である（例えば、Ｙａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，Ｉｎｔ．Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ（２００６）３２４（２）：１８５−１９０）；Ｇｏｕ  ｅｔ  ａｌ．，Ｉｎｔ．Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ（２００９）３７５（１−２）：１７０−１７６を参照されたい）。本明細書において開示されるすべての実施形態において、ナノ粒子は、約２０ナノメートル（「ｎｍ」）〜約３００ナノメートル；約２０ｎｍ〜約３０ｎｍ；約３０ｎｍ〜約４０ｎｍ；約４０ｎｍ〜約５０ｎｍ；５０ｎｍ〜約１００ｎｍ；約１００ｎｍ〜約１５０ｎｍ；約１５０ｎｍ〜約２００ｎｍ；約２００ｎｍ〜約２５０ｎｍ；および約２５０〜約３００ｎｍであり得る。
【００１９】
本明細書において開示される多重コンパートメント送達システムは２つを超える別のコンパートメントを有することができる（図２ｂおよび２ｃ）。例えば、多重コンパートメント送達システムは３つのコンパートメントを含むことができる。特定の実施形態において、ナノ粒子は固体で親水性である。ナノ粒子は、外側の疎水性コンパートメントを形成する疎水性マイクロスフェア中にカプセル化することができる。疎水性マイクロスフェアは、サフラワー油もしくは他の生物学的適合性のある油等の油、ワックスまたはポリ（ε−カプロラクトン）、ポリ（Ｄ，Ｌ−ラクチド−コ−グリコリド）（ＰＬＧＡ）、およびポリメチルメタクリレート（ＰＣＬ）等の疎水性分子からなることができる。かかるマイクロスフェアはＳｐｈｅｒｏｔｅｃｈ，Ｉｎｃ．（Ｌａｋｅ  Ｆｏｒｅｓｔ、ＩＬ）から商業的に得ることができる。マイクロスフェアを作製する方法も当該技術分野において公知である（例えばＢａｒｂａｔｏ  ｅｔ  ａｌ．Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ（２００１）２２（１１）：１３７１−８；Ｌｕｃｉａｎｉ  ｅｔ  ａｌ．Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ（２００８）２９（３６）：４８００−７を参照されたい）。この構造は、マイクロスフェアをカプセル化する第３のコンパートメントを有することができる。このコンパートメントは１つのコンパートメントである。（図２ｂおよび２ｃ）。例えばマイクロスフェアはゼラチン等のゲルによって囲むことができる。マイクロスフェアは水によって囲むことができる。
【００２０】
送達システムを細胞または組織へ標的化する標的特異的結合剤によって、本開示の多重コンパートメント送達システムを修飾することもできる。標的特異的結合剤の例は、抗体、Ｆａｂ断片および他の抗体結合断片、リガンド、ペプチド、低分子ならびにペプチド模倣物化合物である。具体的な実施形態において、標的特異的結合剤はタフトシンである。他の実施形態において、標的特異的結合剤はアルギニン−グリシン−アスパラギン酸塩（「ＲＧＤ」）トリペプチドである。特定の実施形態において、多重コンパートメント送達システムは、外側のコンパートメントの表面上に官能基化された特異的ペプチドを使用して、マクロファージへ標的化される。例えば、多重コンパートメント送達システムの外側のコンパートメントは、標的特異的結合剤をその表面に付加させることができる。
【００２１】
加えて、多重コンパートメント送達システムは治療剤または画像化剤をカプセル化する。かかる薬剤は、内側のコンパートメント、外側のコンパートメントまたは両方の内にカプセル化することができる。特定の実施形態において、薬剤は炎症誘発特性または抗炎症特性を増進して（例えば炎症誘発および免疫アジュバント応答のための卵アルブミンまたは抗炎症応答のためのオメガ−３脂肪酸含有する油）、システムの治療効果をさらに促進することができる。薬剤は、化学療法剤、放射性同位体、抗生物質、ペプチド、ワクチン、低分子、タンパク質および抗体療法剤等の治療剤であり得る。加えて、治療剤は遺伝子療法のために使用される核酸であり得る。特定の実施形態において、治療剤はＤＮＡ分子である。薬剤は特異的組織における遺伝子のサイレンシングのために送達されるｓｉＲＮＡ分子であり得る。
【００２２】
本明細書において開示される多重コンパートメント送達システムの多くの利点の１つは、コンパートメント化送達システムを利用するということであり、これを使用してペイロードが対象となる標的に到達するまで、分解されやすいペイロードをシールドすることができる。マクロファージ（好ましい標的細胞）はリゾソーム内に多量のヌクレアーゼを含み、これらの開示されたシステムの保護なしでは、細胞に送達されたＤＮＡペイロードが分解される可能性が高いので、このことは遺伝子療法の成功にとって重要である。
【００２３】
２．多重コンパートメント送達システムを使用する方法
いくつかの実施形態において、本明細書において開示される多重コンパートメント送達システムにより組織を画像化および処理する方法は、（ａ）効果的な量の多重コンパートメント送達システムを被験体に対して投与する工程であって、送達システムが外側のコンパートメント内にカプセル化された１種以上の内側のコンパートメントを含み、１種以上の内側のコンパートメントが約１０ｎｍ〜約３００ｎｍであり、外側のコンパートメントが約０．５ミクロン〜約２０ミクロンであり、１種以上の内側のコンパートメントが第１の物理的特性を有する第１の材料をさらに含み、外側のコンパートメントが第１の物理的特性とは異なる第２の物理的特性を有する第２の材料を含み、１種以上の内側のコンパートメントが第１の薬剤をカプセル化するものである、前記工程と；（ｂ）多重コンパートメント送達システムが標的の組織または細胞へ選択的に結合することを可能にする工程と；（ｃ）治療剤を送達する工程と、（ｄ）被験体中の画像化剤を検出する工程とを含む。
【００２４】
本方法のいくつかの実施形態において、内側のコンパートメントは約１０ｎｍ〜約３０ｎｍのサイズ範囲である。他の実施形態において、第１の薬剤は画像化剤である。さらに他の実施形態において、第１の薬剤は、コロイド金、酸化鉄結晶、量子ドット、蛍光団、放射標識、Ｘ線造影剤およびポジトロン放出断層撮影法用薬剤である。
【００２５】
さらに他の実施形態において、第１の薬剤は治療剤である。本開示のいくつかの態様において、第１の薬剤は、化学療法剤、抗生物質、抗ウイルス剤、低分子、ｓｉＲＮＡおよびＤＮＡからなる群から選択される。
【００２６】
いくつかの実施形態において、外側のコンパートメントは第２の薬剤をカプセル化する。いくつかの態様において、第２の薬剤は画像化剤である。この画像化剤は、蛍光団、放射標識、Ｘ線造影剤およびポジトロン放出断層撮影法用薬剤からなる群から選択することができる。他の態様において、第２の薬剤は治療剤である。送達ベヒクルの外側のコンパートメントまたは内側のコンパートメントは１種以上の画像化剤をカプセル化することができる。本明細書において使用される時、「カプセル化する」という用語は、ポリマー担体内に封入するかまたはポリマー担体と結び付くことを意味する。カプセル化は、ポリマー担体の表面でのまたはポリマー担体内での分子または化合物の結び付きを含むことができる。かかる画像化剤は、蛍光団、放射標識、Ｘ線造影剤、ラマン分光法用薬剤およびポジトロン放出断層撮影法用薬剤を含む。蛍光団の例は、ローダミン、フルオレセイン、イソチオシアネート、フィコエリトリン、フィコシアニン、フルオレサミンおよび金属キレートを含む。放射標識の例は，3Ｈ、123Ｉ、125Ｉ、131Ｉ、32Ｐ、35Ｓ、14Ｃ、51Ｃｒ、36Ｃｌ、57Ｃｏ、55Ｆｅ、59Ｆｅ、90Ｙ、99ｍＴｃ（テクネチウム９９の準安定な異性体）および75Ｓｅを含む。さらに、Ｘ線造影剤は、ディアトリゾエート（Ｈｙｐａｑｕｅ  ５０）、メトリゾアート（Ｉｓｏｐａｑｕｅ  ３７０）、イオキサグラート（Ｈｅｘａｂｒｉｘ）、イオパミドール（Ｉｓｏｖｕｅ  ３７０）、イオヘキソール（Ｏｍｎｉｐａｑｕｅ  ３５０）、イオキシラン（Ｏｘｉｌａｎ  ３５０）、イオプロミド（Ｕｌｔｒａｖｉｓｔ  ３７０）およびイオジキサノール（Ｖｉｓｉｐａｑｕｅ  ３２０）を含む。他の薬剤は、２，２，６，６−テトラメチルピペリジン−１−オキシル（ＴＥＭＰＯ）基、ＤＩＤ蛍光色素アナログ、および全重水素化したアルキルホスホニウム基またはアリールホスホニウム基を含む。粒子内の画像化剤をカプセル化する方法は当該技術分野において公知である。例えば、溶媒置換法は核酸および低分子およびペプチドのカプセル化へ使用されている。（例えばＯｓｔｅｒ  ｅｔ  ａｌ．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  Ｒｅｌｅａｓｅ（２００６）１１１（３）：３７１−３８１；Ｒｉｂｅｉｒｏ  ｅｔ  ａｌ．Ｆｏｏｄ  Ｈｙｄｒｏｃｏｌｌｏｉｄｓ  ２２（１）：１２−１７を参照されたい）。
【００２７】
さらに他の態様において、第２の薬剤は、化学療法剤、抗生物質、抗ウイルス剤、低分子、抗炎症剤、ｓｉＲＮＡおよびＤＮＡからなる群から選択される。
【００２８】
いくつかの実施形態において、第１の材料はポリ（ε−カプロラクトン）である。他の実施形態において、第１の材料は親水性である。さらに他の実施形態において、第１の材料は水溶性である。さらに他のものにおいて、第２の材料は疎水性である。いくつかの態様において、第２の材料はサフラワー油である。
【００２９】
さらに他の実施形態において、外側のコンパートメントは外部のコンパートメント内にカプセル化される。開示のいくつかの態様において、外部のコンパートメントは水溶性材料を含む。
【００３０】
いくつかの実施形態において、標的特異的結合剤は外側のコンパートメントの表面に付加される。いくつかの態様において、標的特異的結合剤は、抗体およびその結合断片、ペプチド配列ならびにリガンドおよびその結合断片からなる群から選択される。さらに他の態様において、標的特異的結合剤はＥＧＦＲ特異的抗体である。他の態様において、標的特異的結合剤はα−Ｖ−βＩＩＩインテグリン受容体へ結合する。
【００３１】
有機ポリマーの誘導体化を実行してそれらの表面で選択された反応基を曝露することができる（例えばＴｏｗｎｓｅｎｄ，Ｓ．Ａ，ｅｔ  ａｌ．Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ（２００７）２８（３４）：５１７６−５１８４；Ｗｅｉｓｓ，Ｂ．，ｅｔ  ａｌ．Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ（２００７）１８（４）：１０８７−１０９４；ａｎｄ  Ｇｉｎｄｙ，Ｍ．Ｅ．，ｅｔ  ａｌ．ＰＭＳＥ  Ｐｒｅｐｒｉｎｔｓ（２００６）９５：９８９−９９０を参照されたい）。さらに、ポリマーへ標的特異的結合剤（タンパク質、ペプチド、抗体および低分子等）を付加することは当該技術分野において公知である（例えば米国特許第７０２２，３３６号；Ｂｕｍｇａｒｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．Ｊ  Ｃｏｎｔｒｏｌ  Ｒｅｌｅａｓｅ（２００９）１３７（２）：９０−７；Ｓｙ  ｅｔ  ａｌ．Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ（２０１０）３１（１８）：４９８７−９４；Ｂａｌｍａｙｏｒ  ｅｔ  ａｌ．Ｊ．Ｒ．Ｓｏｃ．Ｉｎｔｅｒｆａｃｅ（２０１１）１０．１０９８／ｒｓｉｆ．２０１０．０５３１を参照されたい）。標的特異的結合剤は、標的を結合する低分子、リガンド、ペプチド（例えばアルギニン−グリシン−アスパラギン酸塩（「ＲＧＤ」）トリペプチド）、タンパク質、抗体、Ｆａｂ断片、Ｆ（ａｂ’）２断片およびペプチド模倣物化合物であり得る。例示的な標的は、受容体（例えばα−Ｖ−βＩＩＩインテグリン受容体およびＥＧＦＲ受容体）、リン脂質、糖タンパク質およびタンパク質を含む。
【００３２】
本開示は、多重コンパートメント送達システムにより疾患を治療する方法であって、（ａ）効果的な量の多重コンパートメント送達システムを被験体に対して投与する工程であって、送達システムが外側のコンパートメント内にカプセル化された１種以上の内側のコンパートメントを含み、１種以上の内側のコンパートメントが第１の物理的特性を有する第１の材料を含み、外側のコンパートメントが第１の物理的特性とは異なる第２の物理的特性を有する第２の材料を含み、１種以上の内側のコンパートメントが約１０ｎｍ〜約３００ｎｍであり、外側のコンパートメントが約０．５ミクロン〜約２０ミクロンであり、１種以上の内側のコンパートメントが第１の治療剤をさらに含むものである、前記工程と；（ｂ）多重コンパートメント送達システムが標的組織または細胞へ選択的に結合することを可能にする工程と；（ｃ）治療剤を放出する工程とを含む方法も教示する。
【００３３】
いくつかの実施形態において、疾患は、アテローム性動脈硬化症、クローン病、炎症性腸疾患、関節リウマチおよび癌からなる群から選択される。いくつかの実施形態において、１種以上の内側のコンパートメントは、約１０ｎｍ〜約３０ｎｍのサイズ範囲である。さらに他の実施形態において、１種以上の内側のコンパートメントまたは外側のコンパートメントは画像化剤をカプセル化する。いくつかの態様において、画像化剤は、コロイド金、酸化鉄結晶、量子ドット、蛍光団、放射標識、Ｘ線造影剤およびポジトロン放出断層撮影法用薬剤からなる群から選択される。
【００３４】
いくつかの実施形態において、治療剤は、化学療法剤、抗炎症剤、脂肪酸、抗生物質、抗ウイルス剤、低分子、ｓｉＲＮＡおよびＤＮＡからなる群から選択される。さらに他の実施形態において、方法は第２の治療剤を含み、第２の治療剤は、化学療法剤、抗炎症剤、脂肪酸、抗生物質、抗ウイルス剤、低分子、ｓｉＲＮＡおよびＤＮＡからなる群から選択される。いくつかの態様において、第２の治療剤は外側のコンパートメントによってカプセル化される。さらに他の態様において、第２の治療剤は内側のコンパートメントによってカプセル化される。
【００３５】
本開示の他の実施形態において、第１の材料はポリ（ε−カプロラクトン）である。さらに他の実施形態において、第１の材料は親水性である。いくつかの態様において、第１の材料は水溶性である。さらに他の実施形態において、第２の材料は疎水性である。いくつかの態様において、第２の材料はサフラワー油である。
【００３６】
特定の実施形態において、外側のコンパートメントは外部のコンパートメント内にカプセル化される。外部のコンパートメントは水溶性材料を含むことができる。いくつかの実施形態において、標的特異的結合剤は外側のコンパートメントの表面に付加される。いくつかの態様において、標的特異的結合剤は、抗体およびその結合断片ならびにペプチド配列からなる群から選択される。さらに他の態様において、標的特異的結合剤はＥＧＦＲ特異的抗体である。さらに他の態様において、標的特異的結合剤はα−Ｖ−βＩＩＩインテグリン受容体へ結合する。
【００３７】
いくつかの実施形態において、第１の薬剤は遺伝子コンストラクトである。いくつかの実施形態において、方法は標的の組織または細胞中で遺伝子コンストラクトを発現することをさらに含む。いくつかの態様において、遺伝子コンストラクトはＩＬ−１０をコードする。他の態様において、遺伝子コンストラクトは、標的の組織または細胞におけるアポトーシスを引き起こす。さらに他の態様において、遺伝子コンストラクトはｓｉＲＮＡである。本開示の好ましい実施形態において、標的細胞はマクロファージである。
【００３８】
インターロイキン１０（ＩＬ−１０）発現プラスミドＤＮＡは、ＰＣＬマイクロスフェア中にカプセル化されたゼラチンナノ粒子により処方された。同じ送達ベヒクルを使用して本明細書において開示されるシステムを経口的に投与し、炎症性腸疾患の治療において腫瘍壊死因子−α（ＴＮＦ−α）の発現のサイレンシングを行う。ＮｉＭＯＳのイラストならびにｓｉＲＮＡカプセル化ゼラチンナノ粒子およびマイクロスフェアの走査型電子顕微鏡写真を、図３Ａ中に示す。溶媒置換法を使用して、２７９．２±３．２ｎｍの平均径を持つｓｉＲＮＡをカプセル化した球形ゼラチンナノ粒子を産生した（例えばＯｓｔｅｒ  ｅｔ  ａｌ．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  Ｒｅｌｅａｓｅ（２００６）１１１（３）：３７１−３８１；Ｒｉｂｅｉｒｏ  ｅｔ  ａｌ．Ｆｏｏｄ  Ｈｙｄｒｏｃｏｌｌｏｉｄｓ  ２２（１）：１２−１７を参照されたい）。胃腸通過の間のｐＨおよび酵素による分解からの追加の保護のために、ナノ粒子をＰＣＬマイクロスフェア中でさらにカプセル化してＮｉＭＯＳを生成した。これらはかなり一様な形状およびサイズであり、比較的平滑な表面形態を持ち、ブランクのマイクロ粒子およびｓｉＲＮＡをカプセル化するマイクロ粒子についてそれぞれ２．４μｍ〜３．２μｍの範囲の直径であった（図３Ｃ）。
【００３９】
ｓｉＲＮＡが製造プロセスの間に影響を受けないこと、および分解酵素の存在下において粒子がこのペイロードを効率的に保護できることを保証するために、抽出したｓｉＲＮＡの安定性をアガロースゲル電気泳動によって評価した。カプセル化はｓｉＲＮＡの構造またはサイズに影響を与えない（図３Ｂ）。例えば、ゼラチンナノ粒子（レーン５）およびＮｉＭＯＳ（レーン７および８）からのｓｉＲＮＡは、対照ｓｉＲＮＡ（レーン２）と同じサイズを有していた。さらに、プロテアーゼ添加はｓｉＲＮＡに対する有害作用を有していなかった（レーン３）。加えて、ＮｉＭＯＳはペイロードに対する保護的効果を有するようであった。これはレーン７におけるバンドによって実証された。ＮｉＭＯＳをＲＮＡｓｅ  Ａに曝露し、続いて酵素を不活性化しｓｉＲＮＡを抽出したところ、対照相当物と同じサイズを持つ断片が示された。しかしながら、ゼラチンナノ粒子から放出されたｓｉＲＮＡは、プロテアーゼおよびＲＮＡｓｅに曝露された場合完全に分解された（レーン６、９）。ＮｉＭＯＳのプロテアーゼ単独への曝露はｓｉＲＮＡを遊離しなかった（バンドなし；レーン１１）。カプセル化されたｓｉＲＮＡの定量化により、ゼラチンナノ粒子において９０．２±５．４％のローディング効率であることが明らかになった。ＮｉＭＯＳ中の最終的なｓｉＲＮＡローディング効率は添加されたｓｉＲＮＡの５５．２±２．８％であると測定された。
【００４０】
３．医薬処方
かかる化合物の毒性および治療有効性は、例えばＬＤ50（集団の５０％への致死用量）およびＥＤ50（集団の５０％における治療法上効果的な用量）の決定のための、細胞培養または実験動物における標準的な医薬手技によって決定することができる。毒性と治療法上の効果との間の用量比は治療指数であり、比ＬＤ50／ＥＤ50として表現できる。大きな治療的誘導を示す化合物が好ましい。毒性副作用を示す化合物を使用することができるが、非感染細胞に対する可能性のある損傷を最小限にし、そしてそれによって副作用を低下させるために、かかる化合物を影響を受けた組織部位へ標的化する送達システムをデザインするように注意するべきである。
【００４１】
細胞培養アッセイおよび動物研究から得られたデータは、ヒトで使用される投薬量の範囲の処方において使用することができる。かかる化合物の投薬量は、好ましくは、毒性がほとんどまたはまったくないＥＤ50を含む血中濃度の範囲内にある。投薬量は、用いられる投薬形態および利用される投与経路に依存してこの範囲内で変動し得る。本明細書において記載された方法において使用される任意の化合物について、治療法上効果的な用量は最初に細胞培養アッセイから推定できる。細胞培養において決定されるようなＩＣ50（すなわち症状の最大阻害の半分を達成する試験化合物の濃度）を含む循環血漿濃度範囲を達成するように、動物モデルにおいて用量を処方することができる。かかる情報を使用してより正確にヒトにおいて有用な用量を決定することができる。血漿中のレベルは、例えば高速液体クロマトグラフィーによって測定することができる。
【００４２】
開示されたシステムおよび方法に従う使用のための医薬組成物は、１種以上の生理学的に許容される担体または賦形剤を使用する従来の様式で処方することができる。したがって、化合物およびそれらの生理学的に許容される塩および溶媒和物は、例えば注入、吸入または隔離（口または鼻のいずれかを介して）による投与、または経口投与、頬腔投与、非経口投与もしくは直腸投与のために処方することができる。
【００４３】
かかる治療法にのために、化合物は、全身投与および局所投与または局在投与を含む投与の様々なロードのために処方することができる。技法および処方は、概してＲｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、Ｍｅａｄｅ  Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ  Ｃｏ．、Ｅａｓｔｏｎ、Ｐａ中に見出すことができる。全身投与のためには、筋肉内、静脈内、腹腔内、および皮下を含む注入が好ましい。注入のために、化合物は液体溶液中で、好ましくはハンクス液またはリンゲル液等の生理的に適合性のある緩衝液中で処方することができる。加えて、化合物は固体形態で処方され、使用の直前に再溶解または懸濁することができる。凍結乾燥形態も含まれる。
【００４４】
経口投与のために、医薬組成物は、例えば結合剤（例えばあらかじめゼラチン状にしたトウモロコシデンプン、ポリビニルピロリドンまたはヒドロキシプロピルメチルセルロース）；充填剤（例えばラクトース、微結晶性セルロースまたはリン酸水素カルシウム）；潤滑剤（例えばステアリン酸マグネシウム、タルクまたはシリカ）；崩壊剤（例えばジャガイモデンプンまたはデンプングリコール酸ナトリウム）；または湿潤剤（例えばラウリル硫酸ナトリウム）等の薬学的に許容される賦形剤により従来の手段によって調製された錠剤またはカプセルの形態をとることができる。錠剤は当該技術分野において周知の方法によってコートすることができる。経口投与のための液体調製物は、例えば溶液、シロップまたは懸濁物の形態をとることができるか、または使用前に構成のための乾燥製品として水または他の好適なベヒクルと共に提供することができる。かかる液体調製物は、懸濁化剤（例えばソルビトールシロップ、セルロース誘導体または水素添加食用脂）；エマルジョン化剤（例えばレシチンまたはアラビアゴム）；非水溶性ベヒクル（例えばアチオンドオイル（ａｔｉｏｎｄ  ｏｉｌ）、油状エステル、エチルアルコールまたは分留植物油）；および防腐剤（例えばメチル−ｐ−オキシ安息香酸エステルもしくはプロピル−ｐ−オキシ安息香酸エステルまたはソルビン酸）等の薬学的に許容される添加物により従来の手段によって調製することができる。調製物は、緩衝塩、着香剤、着色剤および甘味剤も必要に応じて含むことができる。
【００４５】
本明細書において開示される多重コンパートメントシステムの実施形態は、被験体に対する経口送達のためにデザインすることができる。例えば、多重コンパートメント送達システムは固体アルギン酸塩および／またはゼラチンナノ粒子を含むことができる。親水性ナノ粒子は、ポリ（ε−カプロラクトン）（ＰＣＬ）またはポリ（Ｄ，Ｌ−ラクチド−コ−グリコリド）（ＰＬＧＡ）等の疎水性材料を含むマイクロスフェア中にカプセル化することができる。図３は、これらの多重コンパートメント送達システムの走査電子顕微鏡画像を示す。
【００４６】
経口投与のための調製物は、活性化合物の制御放出を生ずるように好適に処方することができる。頬腔投与のために、組成物は従来の様式で処方された錠剤またはロゼンジの形態をとることができる。吸入による投与のために、本開示に記載の使用のための化合物は、好適な噴射剤（例えばジクロロジフルオロメタン、トリクロロフルオロメタン、ジクロロテトラフルオロエタン、二酸化炭素または他の好適なガス）の使用により、加圧パックまたは噴霧器からエアゾルスプレー体裁の形態で都合よく送達される。加圧エアロゾルの場合において、投薬単位は、測定された量を送達する弁を提供することによって決定できる。吸入器または通気器における使用のための、例えばゼラチンのカプセルおよびカートリッジは、化合物、およびラクトースまたはデンプン等の好適な粉末基剤の粉末混合物を含んで処方することができる。
【００４７】
化合物は、注入による（例えばボーラス注入または継続的な点滴による）非経口投与のために処方することができる。注入のための処方は、単位投薬量形態で（例えばアンプルまたは多重用量容器中で）添加された防腐剤と共に提供することができる。組成物は、油性または水溶性ベヒクル中の懸濁物、溶液またはエマルジョンとしてかかる形態をとり、懸濁化剤、安定化剤および／または分散剤等の処方剤を含むことができる。あるいは、活性成分は、好適なベヒクル（例えば滅菌されたパイロジェン不含有水）による使用前構成のための粉末形態であり得る。
【００４８】
化合物は、例えばカカオバターまたは他のグリセリド等の従来の坐剤基剤を含む坐剤または停留浣腸剤等の直腸用組成物中にも処方することができる。
【００４９】
先に記載された処方に加えて、化合物もデポー調製物として処方することができる。かかる長時間作用性処方は、移植（例えば皮下または筋肉内）または筋肉内注入によって投与することができる。したがって、例えば、化合物は、好適なポリマー材料もしくは疎水性材料（例えば許容可能な油中のエマルジョンとして）またはイオン交換樹脂と共に、または難溶性誘導体として（例えば難溶性塩として）処方することができる。他の好適な送達システムは、延長された期間にわたって薬物の局所的非侵襲性送達の可能性を提供するマイクロスフェアを含む。この技術は、炎症または虚血を引き起こさずに、冠動脈カテーテルを介して、例えば心臓または他の臓器の任意の選択された部分の中へ注入できる前毛細血管サイズのマイクロスフェアを利用する。投与された治療剤は、これらのマイクロスフェアから徐々に放出され、囲まれた組織細胞（例えば内皮細胞）によって取り込まれる。
【００５０】
全身投与は経粘膜手段または経皮手段によることもできる。経粘膜投与または経皮投与のために、浸透すべきバリアに適切な浸透剤を処方中に使用することができる。かかる浸透剤は、当該技術分野において一般的に公知であり、例えば胆汁酸塩およびフシジン酸誘導体の経粘膜投与のためのものを含む。加えて、透過を促進するために界面活性剤を使用することができる。経粘膜投与は鼻内スプレーを介するかまたは坐剤を使用することができる。局所投与のために、オリゴマーは当該技術分野において一般的に公知であるような軟膏、膏薬、ゲルまたはクリームの中に処方することができる。洗浄溶液は局所的に使用して傷害または炎症を治療し、治癒を加速することができる。
【００５１】
臨床設定において、本開示における多重コンパートメント送達システムは、複数の方法（その各々は当該技術分野においてよく知られている）のいずれかによって患者へと導入することができる。例えば、多重コンパートメント送達システムは、例えば静脈注入によって全身的に導入することができる。
【００５２】
細胞外バリアおよび細胞内バリアからの核酸の保護の促進は問題である。この問題に取り組むために、核酸がカプセル化された固体ナノ粒子（水中油中水型（Ｗ／Ｏ／Ｗ）多重エマルジョンの最も内側の水相中にさらに包まれる）をデザインし、エマルジョン中ナノ粒子型（ＮｉＥ）多重コンパートメント送達システムを開発した。
【００５３】
４．マクロファージに標的化された送達
マクロファージがトロイの木馬ベクターとして挙動するというアイディアは、微生物（細菌およびウイルス等）が単球およびマクロファージを使用して、増殖し免疫監視システムから隠れるという知識から生ずる。特にＨＩＶ−１の進行の場合において、疾患進行、病理発生および潜伏貯蔵所形成におけるマクロファージの役割を示す証拠が増加している。他のレトロウイルスおよびレンチウイルスのように、ＨＩＶ−１は単球／マクロファージ系列の細胞等の非分裂細胞に感染し複製する能力を有するが、ＣＤ４＋Ｔリンパ球がＨＩＶウイルスの一次標的であると思われる。ウイルスはサイトカイン産生プロファイルに影響することによってマクロファージに影響を与え、これは慢性炎症および広範囲な組織損傷をもたらし得る。興味深いことには、感染マクロファージはウイルスの毒性効果に対して耐性があると考えられ、したがってＨＩＶウイルスへトロイの木馬として働く。
【００５４】
本開示で記載される方法およびシステムは、病態および疾患の画像化、診断、および治療を含む様々な目的のために使用することができる。さらに、多重コンパートメント送達システムは、遺伝子療法、遺伝子サイレンシング、癌治療およびワクチン接種のために利用することができる。本明細書において記載されるシステムおよび方法は、任意の組織または細胞のタイプへ標的化され得る。１つのかかるタイプの細胞はマクロファージである。
【００５５】
マクロファージに標的化された送達のためのナノ粒子システム
過去２０年間にわたる医学的診断および治療法のためのナノテクノロジーの適用の進歩により、特定の細胞／組織／臓器のための送達システムの特異性を促進するためにナノ粒子の表面を修飾する能力は、本明細書において開示される方法の実施に活用できる程度まで開発されている。
【００５６】
マクロファージの過剰活性または低活性は、悪性腫瘍の増殖および播種、敗血症、関節リウマチ中の慢性炎症、リソソーム蓄積症、アテローム性動脈硬化症、ならびにＨＩＶ／ＡＩＤＳおよび結核を含む主要な感染を含むが、これらに限定されない病理学的病態の開始および／または進行をもたらし得る。
【００５７】
標的化には、受動的標的化または能動的標的化の２つのアプローチがある。受動的標的化は、病理生理学的条件ならびに解剖学的経路の活用による薬物の蓄積または薬物担体ナノシステムを指す。例えば、１００ｎｍ未満のナノ粒子システムは容易にオプソニン化され、網状内皮系（ＲＥＳ）によって循環から除去され、肝臓および脾臓中のマクロファージによって分解される。したがって、ＲＥＳ中に局在する非修飾ナノ粒子の傾向は、ペイロードをマクロファージへ受動的に送達する方法として活用されてきた。ナノ粒子は、促透過および保持の促進（ＥＰＲ）効果に起因して、炎症を起こした部位で受動的に蓄積することが観察されている。これらの部位でのマクロファージの存在は、これらの細胞を受動的に標的化する機会を示す。
【００５８】
これらの部位でのマクロファージの存在は、薬物／遺伝子送達目的のために成功して活用されている（例えばＧｒｉｆｆｉｔｈｓ  ｅｔ  ａｌ．Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐｙ（２０００）７：２５５−２６２；Ｂｕｒｋｅ  ｅｔ  ａｌ．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｌｅｕｋｏｃｙｔｅ  Ｂｉｏｌｏｇｙ（２００２）７２：４１７−４２８を参照されたい）。加えて、粒子の疎水性、サイズ、表面電荷および形状特徴も、マクロファージの特異的送達の促進に活用される。例えば、ポリスチレンにより作製されたもの等の高度に疎水性のナノ粒子は、親水性ナノ粒子と比較して、マクロファージにおいて効率的に内部移行される。
【００５９】
能動的標的化アプローチは、身体中の特定の細胞タイプ、組織または臓器の認識および相互作用のための選択的親和性を有する薬剤（例えばリガンド、抗体、ペプチド）によるシステムの表面修飾に基づく。能動的標的化の現象は細胞の原形質膜上の様々な受容体および脂質成分の存在の利用による達成することができる。マクロファージは本明細書において開示されるシステムのための好ましい細胞タイプである。これらの受容体は、特異的細胞上で独特に発現されてもよいか、または正常細胞と比較して異常細胞上で差異的により高い発現を示してもよい。以下の表１は、マクロファージの表面上に存在し、これらの細胞を能動的に標的化するために利用できる、異なる受容体の基本性質のいくつかを簡潔に記載する。これらの異なる受容体は公知の遺伝子療法技法を使用して、ダウンレギュレートまたはアップレギュレートすることができる。加えて、かかる受容体は、多重コンパートメント送達システムのための標的として使用することができる。かかるシステムは、内側のコンパートメントまたは外側のコンパートメントの表面へ付加された標的特異的結合剤を有することができる。標的特異的結合剤は、受容体のためのリガンド、受容体へ結合するペプチド模倣物化合物、または受容体へ結合可能な低分子であり得る。
【表１】
2013523651.tif 000003
【００６０】
多重コンパートメント送達システムは特定の実施形態において疎水性である。多重エマルジョン小球は疎水性であるので、経口投与に際してパイエル板を介して腸のマクロファージによって容易に内部移行される。さらに、これらの多重コンパートメント送達システムを作製する場合、それらは、マクロファージによって優先的に取り込まれるサイズで生成することができる。一旦マクロファージによってこれらの細胞が内部移行されたならば、移動し、全身循環を通して身体の異なる部分中にトランスフェクションされたタンパク質を送達することができる。あるいは、この方法は、活性化マクロファージにおける重要な遺伝子のサイレンシングを行って、疾患の効果的な疾患治療のために炎症誘発状態または抗炎症状態を所望に応じて促進することができる。さらに、マクロファージおよび効果的な細胞内輸送による取り込みは、ペプチド、タンパク質、抗原として弱毒化された微生物を使用するワクチン接種に加えて、トランスフェクションならびに適切なヒトおよび細胞の免疫反応の産生を必要とする、ＤＮＡおよびＲＮＡベースのワクチンのための機会も提供する。
【００６１】
低分子および生物学的療法剤の送達のための標的化システム
ＨＩＶ／ＡＩＤＳ、炎症関連疾患、癌および感染性疾患等の様々な疾患におけるマクロファージ細胞の役割から、マクロファージは好ましい医薬用標的となる。例えば、マクロファージは様々な微生物をファゴサイトーシスし死滅させることが公知であるが、分子生物学の分野における進歩により、これらの病原体の多くが主としてファゴサイトーシスの回避またはリソソーム耐性の発達によってマクロファージ中に定着するための巧妙な手段を発達させたことが、立証されている。
【００６２】
かかる疾患のために入手可能な薬物は、副作用および可溶性の問題に悩まされる。それゆえ、ナノ粒子ベースの薬物送達システムは、毒性の低下およびマクロファージへの標的化能力の促進によって、かかる薬物の治療指数を改善することができる。マクロファージの標的化のための低分子薬物を含むナノプラットフォームシステムの例については、表２を参照されたい。
【表２】
2013523651.tif 000004
【００６３】
本明細書において開示されるいくつかの実施形態において、本明細書において開示される多重コンパートメント送達ベヒクルを取り込んだマクロファージを使用して、腫瘍または炎症の部位等の身体内の標的部位へ該ベヒクルによって送達されるペイロードを運ぶことができる。ペイロードは、ステロイドを含むがこれらに限定されない抗炎症治療剤、低分子薬物（すなわちビスホスホネート）、脂肪酸および抗酸化剤に加えて、化学療法剤、抗生物質、ペプチド、ワクチン、低分子、タンパク質および抗体療法剤等であるが、これらに限定されない治療的処理であり得る。本方法論はさらに広範囲にわたる抗炎症性の疾患または病態を治療することができる。本明細書において使用される時、「炎症性疾患」または「炎症性病態」は、当該技術分野において公知であるような炎症性またはアレルギー性のプロセスによって特徴づけられる、任意の疾患、病態、特色、遺伝子型または表現型を意味し、それらは炎症、急性炎症、慢性炎症、呼吸器疾患、アテローム性動脈硬化症、再狭窄、喘息、アレルギー性鼻炎、アトピー性皮膚炎、敗血症性ショック、関節リウマチ、炎症性大腸疾患、骨盤内炎症性疾患、疼痛、眼炎症性疾患、腹腔疾患、リー症候群、グリセロールキナーゼ欠損症、家族性好酸球増加症（ＦＥ）、常染色体劣性痙性失調症、喉頭炎症性疾患；結核、慢性胆嚢炎、気管支拡張症、珪肺症および他の塵肺症、ならびに細胞または組織における疾患関連遺伝子発現の修飾に対して、単独でまたは他の療法と組み合わせて応答できる、他の炎症性の疾患、病態、特色、遺伝子型または表現型等である。さらに他の実施形態において、本明細書において開示される多重コンパートメント送達システムを使用して、標的細胞に治療的処理のペイロードを送達し、そこで低分子薬物は標的細胞においてアポトーシスを誘導する。
【００６４】
治療用遺伝子送達または遺伝子サイレンシング等の生物学的療法は、マクロファージを標的化し活用するようにデザインすることができる。いくつかの実施形態において、治療用遺伝子は細胞へと移行させることができ、次いで、それは「誘導ミサイル」として使用できる。
【００６５】
マクロファージは様々な生物学的産物を分泌することができる（下記の表３を参照されたい）。分泌されている産物に依存して、このプロセスが抑えられないままならば、慢性炎症の特徴である組織損傷および線維化をもたらし得る。マクロファージは様々な生体分子の分泌に加えて複数のプロセスを行うことが可能なので、炎症、癌、クローン病、炎症性大腸疾患およびアテローム性動脈硬化症を含むが、これらに限定されない様々な疾患および病態の治療のための遺伝子療法のための理想的な標的である。
表３
活性化マクロファージから選択した機能および分泌性生体分子
【表３】
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【００６６】
表３に列挙された標的は、所望の結果に依存して、アップレギュレートまたはダウンレギュレートすることができる。例えば、抗炎症性サイトカインの発現の増加は、本出願において開示される多重コンパートメント送達システムを使用して、遺伝子コンストラクトの細胞への送達によって達成することができる。これはマクロファージの炎症性応答の減少をもたらすだろう。本開示の特定の実施形態において、アップレギュレートされる抗炎症性サイトカインはＩＬ−１０である。
【００６７】
分泌性生体分子の発現を減少させるために、ｓｉＲＮＡは、本出願において開示された多重コンパートメント送達システムを使用して、細胞に投与することができる。別の実施形態において、本開示の、ダウンレギュレーションまたはサイレンシングが行われる炎症性サイトカインはＴＮＦ−αである。
【００６８】
画像化のためにマクロファージに標的化されたナノシステム
ナノメートルスケールでの原子の配置および間隔は、ユニークな物理的および化学的特性を材料に与える。コロイド金、酸化鉄結晶および量子ドット等の粒子は、１〜３０ｎｍのサイズ範囲である無機ナノ粒子のいくつかの例のである。かかるナノ粒子を作製する方法は当該技術分野において公知である（例えばＬｕｎａ  Ｍａｒｔｉｎｅｚ  ｅｔ  ａｌ．Ｍａｔｅｒ．Ｓｃｉ．Ｆｏｒｕｍ：Ａｄｖ．Ｅｌｅｃ．Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐ．Ｎａｎｏｍａｔ．（２０１０）６４４：５１−５５；Ｇａｒｄｅａ−Ｔｏｒｒｅｓｄｅｙ  ｅｔ  ａｌ．Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ（１９９９）１（３）：３９７−４０４；Ｚｈｏｕ  ｅｔ  ａｌ．Ｃｈｅｍ．Ｍａｔｅｒ．（１９９９）１１（９）：２３１０−２３１２を参照されたい）。これらの粒子は、核磁気共鳴映像法（ＭＲＩ）、ポジトロン放出断層撮影法（ＰＥＴ）およびコンピューター断層撮影法（ＣＴ）等の多重形式非侵襲的画像化技法のための画像化／造影促進剤として働く能力について調査されてきた。さらに粒子サイズが小さいことに加えて、血液循環半減期が長く、表面修飾の機会があるので、シグナルの強度および特異性の改良が可能であり、そのことからこれらの粒子を非常に好ましい診断促進剤または造影促進剤になる。
【００６９】
マクロファージは、炎症、アテローム性動脈硬化症および関節リウマチ等の疾患における好適な画像化標的である。これは、これらの細胞が豊富に存在し、炎症および血管新生をもたらす複数の機能に関与するからである。それゆえ、かかる病態におけるマクロファージの役割のモニターは、疾患の進行に対する価値ある洞察を提供できる。
【００７０】
マクロファージ細胞に標的化するようにデザインしたナノ粒子は、ヒト大動脈粥状硬化症の検出および特徴評価を改善する可能性を有する。ナノ粒子の有効性が造影剤およびマクロファージの標的化としてインビボの動物モデルにおいて実証される具体的な実施例は、本開示の実施例において論じられるだろう。以下の表４は、マクロファージの標的化に使用した好適な画像化剤を含むナノプラットフォームシステムの選択例を検討し、アテローム性動脈硬化症および関節リウマチの疾患モデルの治療におけるかかるシステムの利点を実証した。
【表４】
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【００７１】
生物学的療法剤の送達
古典的活性化状態は細胞内病原体の殺傷および癌抵抗性によって特徴づけられ、インターフェロン−γ（ＩＦＮ−γ）によって単独でまたはリポポリサッカライド（ＬＰＳ）等の微生物産物または腫瘍壊死因子α（ＴＮＦ−α）等のサイトカインと併用して誘導することができる。古典的経路経由のマクロファージの活性化は、高い抗原提示能力、ＩＬ−１２、ＩＬ−２３一酸化窒素（ＮＯ）および活性酸素種の高産生によって特徴づけられる。
【００７２】
代替の状態は、ＩＬ−４およびＩＬ−１３等のサイトカインによって誘導することができ、抗炎症性応答および傷害消散を主としてもたらす。さらに、代替の活性化ステージは、ＩＬ−１０、ＩＬ−１ｒａサイトカイン、マンノースおよびスカベンジャー受容体の増加、アルギナーゼ産生、ならびに誘導型一酸化窒素合成酵素の産生の減少によって特徴づけられる。以下の図４は、先天性免疫応答に加えて適応的免疫応答の媒介におけるマクロファージの中心的な役割にハイライトを当てたものである。
【００７３】
腫瘍壊死因子（ＴＮＦ−α）を含むがこれらに限定されない炎症性サイトカインの発現は、ｓｉＲＮＡ（低分子干渉ＲＮＡ）アプローチを使用して、ダウンレギュレーション／サイレンシングすることができる。本明細書において開示されるシステムおよび方法の他の実施形態は、ＩＬ−１０等の抗炎症性サイトカインタンパク質をコードするプラスミド遺伝子をマクロファージに送達することによって炎症を治療すること、およびそれをＴＮＦ−αのサイレンシング効果と比較することを含む。
【００７４】
表５は、マクロファージによって分泌される炎症性メディエーターのいくつかを記載する。所望の効果に依存して、本明細書において記載される方法を使用して、疾患状態を制御するためにこれらのメディエーターの任意の１つの発現を修飾することができる。
表５．マクロファージによって分泌される炎症性メディエーター
【表５】
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ＧＭ−ＣＳＦ＝顆粒球マクロファージコロニー刺激因子；ＩＬ＝インターロイキン；ＬＴＢ4＝ロイコトリエンＢ4；ＬＴＣ4＝ロイコトリエンＣ4；ＬＴＤ4＝ロイコトリエンＤ4；ＭＣＰ＝単球走化性タンパク質；ＭＩＰ＝マクロファージ炎症性タンパク質；ＰＧＤ2＝プロスタグランジンＤ2；ＰＧＥ2＝プロスタグランジンＥ2；ＰＧＦ2＝プロスタグランジンＦ2；ＲＡＮＴＥＳ＝ｒｅｇｕｌａｔｅｄ  ｏｎ  ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  ｎｏｒｍａｌ  Ｔ  ｃｅｌｌ  ｅｘｐｒｅｓｓｅｄ  ａｎｄ  ｓｅｃｒｅｔｅｄ；ＴＮＦ−α＝腫瘍壊死因子α。
【００７５】
ＩＬ−１０は、Ｔ細胞、Ｂ細胞、抗原提示細胞、肥満細胞および顆粒球によって産生され、その中でマクロファージはＩＬ−１０の主要産生細胞である。ＩＬ−１０は異なる細胞タイプに対する作用によって免疫調節において重要な役割を果たす（表６を参照されたい）。ＩＬ−１０に曝露された場合、単球およびマクロファージは可溶性免疫メディエーターを合成および放出し、炎症の消散を引き起こし、組織修復を支援する。これらのメディエーターはＩＬ−１ＲＡおよび可溶性ＴＮＦ−α受容体を含む。加えて、ＩＬ−１０は、ＩＬ−１β、ＩＬ−６、Ｇ−ＣＳＦ、ＧＭ−ＣＳＦおよびＴＮＦαを含む抗炎症性サイトカインの放出を阻害する。
【００７６】
炎症によりマクロファージが動員され、それは炎症を増加させて、最終的には組織破壊を引き起こし得る。本開示は、炎症性カスケードを停止し、炎症の制御および消散を可能にするために、炎症を修飾する方法を記載する。例えば、特定の実施形態において、抗炎症性サイトカインＩＬ−１０は開示された多重コンパートメント送達ベヒクルを使用して、マクロファージへ送達される。一旦マクロファージ内に入ったならば、ＩＬ−１０は細胞によって発現され、それによってマクロファージによって引き起こされた炎症性応答を減少させる。他の実施形態において、ｓｉＲＮＡはマクロファージによって分泌される炎症性タンパク質の発現を停止するためにマクロファージへ送達される。異なる免疫細胞タイプに対するＩＬ−１０の効果の要約は表６に示される。
表６．異なる免疫細胞タイプに対するＩＬ−１０の効果。
【表６】
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【００７７】
別の実施形態において、ＩＬ−１０遺伝子コンストラクトは本明細書において開示される多重コンパートメント送達システムを利用して投与される。一旦多重コンパートメント送達システムが投与されたならば、標的の組織または細胞に選択的に結合し、細胞の中へそのペイロードを送達することを可能にする。特定の実施形態は、ナノ粒子中にＩＬ−１０遺伝子コンストラクトをカプセル化することをさらに含む。いくつかの態様において、ナノ粒子は、細胞内の細胞内小器官を標的化するようにデザインされる。特定の態様において、細胞内小器官は核である。他の実施形態において、多重コンパートメント送達システムは、診断剤、画像化剤、または治療剤からなる群から選択される第２の薬剤を含む。
【００７８】
遺伝子療法戦略
タンパク質をコードする遺伝子が発現される場合、遺伝子療法は、身体の特異的細胞への遺伝子の送達を含む。結果として生じる所望のタンパク質の高濃度は治療または疾病予防をもたらすに違いない。最初は、遺伝子療法は遺伝性疾患のみに限定され、その場合異常遺伝子または欠損遺伝子の送達が行われ、欠損遺伝子の機能を補充する。しかしながら、遺伝子療法は、細胞機能を修飾できるタンパク質をコードする遺伝子の補足によって非遺伝性疾患の治療のためにも使用することができる。
【００７９】
細胞の中への遺伝子の送達と続いて行われる治療用タンパク質の発現のための異なるアプローチは、標的組織の中への直接的注入を介する遺伝子の送達、ウイルスベクターを介する遺伝子送達、および非ウイルスベクターを介する遺伝子送達である。
【００８０】
本明細書において開示される組成物および方法を使用して病変組織および細胞に対して遺伝子療法を実行することができる。「遺伝子」、または「標的遺伝子」によって、ＲＮＡをコードする核酸（例えばポリペプチドをコードする構造遺伝子を含むが、これらに限定されない核酸配列）が意味される。遺伝子または標的遺伝子は、機能的ＲＮＡ（ｆＲＮＡ），または低分子一時的ＲＮＡ（ｓｔＲＮＡ），マイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）、低分子核内ＲＮＡ（ｓｎＲＮＡ）、小型干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）、低分子仁ＲＮＡ（ｓｎＲＮＡ）、リボソームＲＮＡ（ｒＲＮＡ）、転移ＲＮＡ（ｔＲＮＡ）およびその前駆体ＲＮＡ）等の非コードＲＮＡ（ｎｃＲＮＡ））もコードすることができる。標的遺伝子を含む細胞は、任意の生物（例えば植物、動物、原生動物、ウイルス、細菌、または真菌）から得ることができるか、またはそれらの中に含まれ得る。植物の非限定例は単子葉植物、双子葉植物または裸子植物を含む。動物の非限定例は脊椎動物または無脊椎動物を含む。真菌の非限定例はカビまたは酵母を含む。総説については例えばＳｎｙｄｅｒ  ａｎｄ  Ｇｅｒｓｔｅｉｎ，２００３，Ｓｃｉｅｎｃｅ，３００，２５８−２６０を参照されたい。
【００８１】
自動化法を使用して１００ヌクレオチドを超える長さ核酸の合成は困難であり、かかる分子の治療コストは法外に高い。本発明において、低分子核酸モチーフ（「低分子」は、１００ヌクレオチド以下の長さ、８０ヌクレオチド以下の長さおよび５０ヌクレオチド以下の長さの核酸モチーフを指す；例えば個別のｓｉＮＡオリゴヌクレオチド配列またはタンデムで合成されたｓｉＮＡ配列）は、外来性送達のために好ましくは使用される。これらの分子の単純構造は、核酸がタンパク質および／またはＲＮＡ構造の標的化領域に侵入する能力を増加させる。本発明の例示的な分子は化学的に合成され、他のものは同様に合成することができる。
【００８２】
オリゴヌクレオチド（例えば特定の修飾されたオリゴヌクレオチドまたはリボヌクレオチドを欠損するオリゴヌクレオチドの部分）は、例えばＣａｒｕｔｈｅｒｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２，Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ  ２１１，３−１９、Ｔｈｏｍｐｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．、国際出願ＰＣＴ公開第ＷＯ９９／５４４５９号、Ｗｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２３，２６７７−２６８４、Ｗｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｍｏｌ．Ｂｉｏ．，７４，５９、Ｂｒｅｎｎａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９８，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ  Ｂｉｏｅｎｇ．，６１，３３−４５、およびＢｒｅｎｎａｎ、米国特許第６００１，３１１号中に記載されるように、当該技術分野において公知のプロトコルを使用して合成される。これらの参照文献はすべて参照として本明細書に援用される。
【００８３】
オリゴヌクレオチドの合成は、５’末端でのジメトキシトリチルおよび３’末端でのホスホアミダイト等の一般的な核酸の保護基およびカップリング基を利用する。非限定実施例において、小規模合成は３９４  Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．合成装置上で、０．２μｍｏｌスケールプロトコルを使用して、２’−Ｏ−メチル化ヌクレオチドのための２．５分のカップリング工程および２’−デオキシヌクレオチドまたは２’−デオキシ−２’−フルオロヌクレオチドのための４５秒のカップリング工程で行なわれる。あるいは、０．２μｍｏｌスケールでの合成は、Ｐｒｏｔｏｇｅｎｅ（Ｐａｌｏ  Ａｌｔｏ、Ｃａｌｉｆ．）によって製造された装置等の９６ウェルプレート合成装置上でサイクルを最小限に修飾して実行することができる。３３倍の過剰量の２’−Ｏ−メチルホスホアミダイト（６０μＬの０．１１Ｍ＝６．６μｍｏｌ）および１０５倍の過剰量のＳ−エチルテトラゾール（６０μＬの０．２５Ｍ＝１５μｍｏｌ）は、ポリマーに結合した５’ヒドロキシルに対する２’−Ｏ−メチル残基の各カップリングサイクルにおいて使用することができる。２２倍の過剰量のデオキシホスホアミダイト（４０μＬの０．１１Ｍ＝４．４μｍｏｌ）および７０倍の過剰量のＳ−エチルテトラゾール（４０μＬの０．２５Ｍ＝１０μｍｏｌ）は、ポリマーに結合した５’ヒドロキシルに対するデオキシ残基の各カップリングサイクルにおいて使用することができる。３９４  Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．合成装置上での平均カップリング収率（トリチル画分の比色定量化によって決定された）は、典型的には９７．５〜９９％である。３９４  Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．合成装置のための他のオリゴヌクレオチド合成試薬は、以下を含む。脱トリチル化溶液は塩化メチレン中の３％のＴＣＡ（ＡＢＩ）であり；キャップ付加はＴＨＦ（ＡＢＩ）中の１６％のＮ−メチルイミダゾールおよびＴＨＦ（ＡＢＩ）中の１０％の無水酢酸／１０％  ２，６−ルチジンにより実行され；酸化溶液は１６．９ｍＭ  Ｉ．ｓｕｂ．２、４９ｍＭピリジン、ＴＨＦ（ＰｅｒＳｅｐｔｉｖｅ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．）中の９％の水である。Ｂｕｒｄｉｃｋ  ＆  Ｊａｃｋｓｏｎ合成グレードのアセトニトリルを試薬ビンから直接使用する。Ｓ−エチルテトラゾール溶液（アセトニトリル中で０．２５Ｍ）はＡｍｅｒｉｃａｎ  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ，Ｉｎｃ．から得られた固体から作製される。あるいは、ホスホロチオエート結合の導入のために、Ｂｅａｕｃａｇｅ試薬（３Ｈ−１，２−ベンゾジチオール−３−オン１，１−ジオキシド、アセトニトリル中で０．０５Ｍ）を使用する。
【００８４】
本発明の特定のｓｉＮＡ分子を含むＲＮＡのために使用する合成の方法は、Ｕｓｍａｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９８７，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１０９，７８４５；Ｓｃａｒｉｎｇｅ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，１８，５４３３；ａｎｄ  Ｗｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９５，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２３，２６７７−２６８４  Ｗｉｎｃｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｍｏｌ．Ｂｉｏ．，７４，５９中で記載されるような手技に従い、５’末端でのジメトキシトリチルおよび３’末端でのホスホアミダイト等の一般的な核酸の保護基およびカップリング基を利用する。非限定実施例において、小規模合成は３９４  Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．合成装置上で、０．２μｍｏｌスケールプロトコルを使用して、アルキルシリルで保護したヌクレオチドのための７．５分のカップリング工程および２’−Ｏメチル化したヌクレオチドのための２．５分カップリング工程で行われる。
【００８５】
あるいは、０．２μｍｏｌスケールでの合成は、Ｐｒｏｔｏｇｅｎｅ（Ｐａｌｏ  Ａｌｔｏ、Ｃａｌｉｆ．）によって製造された装置等の９６ウェルプレート合成装置上でサイクルを最小限に修飾して行うことができる。３３倍の過剰量の２’−Ｏ−メチルホスホアミダイト（６０μＬの０．１１Ｍ＝６．６μｍｏｌ）および７５倍の過剰量のＳ−エチルテトラゾール（６０μＬの０．２５Ｍ＝１５μｍｏｌ）は、ポリマーに結合した５’ヒドロキシルに対する２’−Ｏ−メチル残基の各カップリングサイクルにおいて使用することができる。６６倍の過剰量のアルキルシリル（リボ）で保護したホスホアミダイト（１２０μＬの０．１１Ｍ＝１３．２μｍｏｌ）および１５０倍の過剰量のＳ−エチルテトラゾール（１２０μＬの０．２５Ｍ＝３０μｍｏｌ）は、ポリマーに結合した５’ヒドロキシルに対するリボ残基の各カップリングサイクルにおいて使用することができる。３９４  Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．合成装置上での平均カップリング収率（トリチル画分の比色定量化によって決定された）は、典型的には９７．５〜９９％である。３９４  Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．合成装置のための他のオリゴヌクレオチド合成試薬は、以下を含む。脱トリチル化溶液は塩化メチレン中で３％のＴＣＡ（ＡＢＩ）であり；キャップ付加はＴＨＦ（ＡＢＩ）中の１６％のＮ−メチルイミダゾールおよびＴＨＦ（ＡＢＩ）中の１０％の無水酢酸／１０％  ２，６−ルチジンにより実行され；酸化溶液は１６．９ｍＭ  Ｉ．ｓｕｂ．２、４９ｍＭピリジン、ＴＨＦ（ＰｅｒＳｅｐｔｉｖｅ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．）中の９％の水である。Ｂｕｒｄｉｃｋ  ＆  Ｊａｃｋｓｏｎ合成グレードのアセトニトリルを試薬ビンから直接使用する。Ｓ−エチルテトラゾール溶液（アセトニトリル中で０．２５Ｍ）は、Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ，Ｉｎｃ．から得られた固体から作製される。あるいは、ホスホロチオエート結合の導入のために、Ｂｅａｕｃａｇｅ試薬（３Ｈ−１，２−ベンゾジチオール−３−オン１，１−ジオキシド、アセトニトリル中で０．０５Ｍ）を使用する。
【００８６】
様々なサイトカインに標的化されたタンパク質および遺伝子による治療法は、最近探究されている。可溶性ＴＮＦ受容体分子、ＩＦＮ−γＲ−ＩｇＧ融合物分子およびＩＬ−１２受容体アンタゴニスト等の炎症誘発性サイトカインのアンタゴニストは炎症性応答の正常化において有用であることが見出されている。可溶性ＴＮＦ受容体（エタネルセプト）、抗ＴＮＦ抗体（インフリキシマブ）、ＩＬ−１受容体アンタゴニスト（ＩＬ−１Ｒａ）等のタンパク質療法は効果的であること見出されたが、これらは、非常に短いタンパク質半減期のために繰り返し高用量の注入／点滴を必要とした。タンパク質療法の他の制限は注入後の治療用タンパク質の高い全身的な濃度に起因する。これは身体中の標的部位以外の部位で治療用タンパク質分子の所望されない副作用をもたらし得る。全身循環におけるタンパク質のレベルと比較した場合に、治療用タンパク質をコードする遺伝子が標的細胞中で発現されて高いタンパク質のレベルをもたらすならば、これらの制限は克服することができる。
【００８７】
本開示の多重コンパートメント送達システムは遺伝子療法アプローチの特異性を改善する。標的化遺伝子療法のより高い特異性に起因して、本明細書において開示される方法は全身性副作用の低下をもたらす。さらに、細胞の内側に送達されたプラスミドＤＮＡの単一コピーが延長された期間にわたって複数の発現サイクルを行うことができるので、遺伝子療法が使用される場合、治療用タンパク質の反復投与は必要ではない。これは投薬頻度の減少を可能にする。
【００８８】
効果的な遺伝子送達システムは分解からＤＮＡを保護し、網状内皮系によるそれらのクリアランスを阻害するだろう。さらに、遺伝子送達システムはエンドソームエスケープによってサイトゾルの中へそのペイロードを放出し、ＤＮＡの核への侵入を促進し、延長された期間の間で高レベル遺伝子トランスフェクションを引き起こす。
【００８９】
本明細書において開示される多重コンパートメントシステムはポリマーを含むことができる。特定の実施形態において、ポリマーは化学的に修飾することができる。例えば、陽イオン性ポリマーの化学的修飾を実行することができる。ポリ（Ｌ−リジン）の場合において、正に荷電した粒子の凝集はポリ（Ｌ−リジン）の水溶解度の増加によって減少させることができる。これは、ポリ（Ｌ−リジン）のεアミノ基へのデキストランの付着によって達成することができる。ＰＥＩの場合において、水溶解度は、ＰＥＩのアミノ基とＰＥＧの共有結合のカップリングによって増加させることができる。さらに、ＰＥＧによるポリ（Ｌ−リジン）の修飾が培養における細胞に対するその細胞毒性効果を減少できることが見出された。
【００９０】
特定の実施形態において、非縮合ポリマーは非静電的相互作用によってＤＮＡをカプセル化することができる。これらのポリマーは中性電荷またはわずかな負電荷のいずれかを保持し、これは外来性ヌクレアーゼからのＤＮＡの保護を支援する。正電荷の非存在は、ポリマーと負に荷電したＤＮＡとの間の静電的相互作用を阻害し、ＤＮＡのカプセル化をさらに実行可能にする。さらに、ＤＮＡがポリマーマトリックス内にカプセル化されるので、エンドサイトーシスを阻害し得るＤＮＡペイロードと細胞膜との間の反発作用は制限される。さらに、正電荷の非存在は、単核食細胞系による非縮合ポリマー送達ベヒクルの認識を制限し、したがって送達ベヒクルの早期のクリアランスを制限する。加えて、ポリマー上の非陽イオン性電荷は、急性炎症性応答を引き起こす単核食細胞系による先天性免疫系の活性化の可能性も回避する。
【００９１】
ＰＥＧ、ポリ（エチレンオキシド）（ＰＥＯ）、ポリ（Ｄ，Ｌ−ラクチド−コ−グリコリド）（ＰＬＧＡ）、ポロキサマーブロックコポリマー、ゼラチンおよびセルロース誘導体のようなＤＮＡをカプセル化するポリマーは、今までに研究され、様々な研究において顕著な遺伝子トランスフェクション効率を示している。ＰＥＧおよびＰＥＯは、ＤＮＡのヌクレオチド塩基およびリン酸基とポリマーマトリックスの分子との間の水素結合を用いてＤＮＡカプセル化を引き起こす。ＰＥＯベースのコポリマーであるポロキサマー（Ｐｌｕｒｏｎｉｃｓ（登録商標））もＤＮＡカプセル化のために使用されている。
【００９２】
遺伝子トランスフェクションのためのタイプのＢのゼラチンベースのナノ粒子ベクターは、効果的な全身的送達および局所的送達、細胞内トラフィッキング、ならびに様々な局所的および全身的研究において発現を示した（例えばＭａｇａｄａｌａ  ｅｔ  ａｌ．ＡＡＰＳ  Ｊ．（２００８）１０（４）：５６５−５７６を参照されたい）。タイプＢゼラチンから処方されたナノ粒子は、生体適合性、生物分解性、高ＤＮＡローディング能力、高遺伝子トランスフェクション効率、非特異的エンドサイトーシスまたは受容体媒介性エンドサイトーシスによる高い細胞による取り込みのような複数の長所を有する。タイプＢゼラチン（アルカリ加水分解による得られる）は４．８〜５の間の等電点を有する。中性のｐＨで、タイプＢゼラチンはその表面上に正味の負電荷を有しており、したがってタイプＢゼラチンおよびＤＮＡは電荷非依存性様式で相互作用し、ＤＮＡは、ゼラチンバイオポリマーのマトリックスのようなヒドロゲル中で物理的にトラップされる。ゼラチンのこれらの特性のために、ゼラチンは、効果的で安全な非ウイルス性遺伝子トランスフェクションベクターとして使用するために選択されるポリマーとなる。
【００９３】
エマルジョン中ナノ粒子型（ＮｉＥ）処方
昨今の薬物送達産業が直面する最大の課題の１つは、ペプチド、タンパク質および核酸ベースの生物学的分子等の生物学的分子の経口投与を介する送達である。薬物の経口投与は、投与の容易性、投薬量調節および頻度の容易性、ならびに治療法の全費用の減少等の長所を有する。核酸のような生体分子の経口送達を成功させるために、送達ベヒクルは、生体分子の細胞取り込みのための胃腸管の吸収粘膜でペイロードを放出してその治療効果を示すまで、胃腸管の生理的環境からのカプセル化ペイロードへの保護を提供できるようにデザインされるべきである。
【００９４】
局所性疾患および全身性疾患の遺伝子療法について、胃腸管における遺伝子トランスフェクションの成功は、コードされたタンパク質の産生をトランスフェクションの局所的部位で引き起こすことができるだけではなく、合成タンパク質の放出を全身循環においても引き起こすことができる。胃腸管は、ＤＮＡワクチンの送達の標的として利用することもでき、そこでは、コードされたタンパク質抗原は、局所的および全身的な免疫応答の発生を引き起こすことができる。腸における水中油中水型多重エマルジョンを介する治療用タンパク質およびペプチド抗原のような低分子の制御放出の成功は、複数の研究グループによって報告されているが、遺伝子送達ベヒクルとしての多重エマルジョンシステムの利用による、効果的な遺伝子の送達およびトランスフェクションを確認している研究はわずかしかない。
【００９５】
タンパク質送達については成功することが証明されているが、遺伝子送達の場合において、ＤＮＡは腸のヌクレアーゼから保護されるだけでなく、効果的な遺伝子トランスフェクションを引き起こすために標的細胞の核に到達することも必要であるので、ＤＮＡ保護の促進が必須である。この問題に取り組むために、ＤＮＡにナノ粒子内のカプセル化によって追加の保護を提供することができ、次いでそれは多重エマルジョンの最も内側の水相中にカプセル化することができる。この様式で、カプセル化された遺伝子への保護促進および制御放出特性を提供することができる、多重コンパートメントＤＮＡ送達ベヒクルを処方することができる。プラスミドをカプセル化したナノ粒子を含む多重エマルジョン小球は、小腸におけるパイエル板のＭ細胞による取り込み前に、またはパイエル板内に存在する食細胞による貪食後にそれらのペイロードを放出することができる。多重エマルジョン小球が疎水性であるので、それらは他の細胞タイプに加えて腸のマクロファージによっても容易に内部移行される。一旦マクロファージによって内部移行されたならば、これらの細胞は移動し、全身循環を通して身体の異なる部分においてタンパク質を送達することができる。
【００９６】
本明細書において記載された送達システムは、エマルジョンシステムにおいてより大きなＤＮＡペイロードのローディングを可能にするナノ粒子内のＤＮＡのカプセル化を含む。これは、ＤＮＡがナノ粒子内に保護され、したがって多重エマルジョンの調製プロセスの間に起こる高剪断性の均質化工程に耐えることができるからである。ゼラチンナノ粒子を使用する遺伝子トランスフェクション研究から得られた結果に基づいて、水中油中水型（Ｗ／Ｏ／Ｗ）多重エマルジョンシステムの最も内側の相中でのナノ粒子のカプセル化によるさらなる保護と共にこれらのナノ粒子を提供することができるならば、制御され促進された遺伝子の送達およびトランスフェクションをインビトロおよびインビボの両方で達成できると考えられた。
【００９７】
本開示は以下の実施例によってさらに説明される。実施例は説明の目的のためにのみ提供される。それらは開示の範囲または内容を限定するものとして決して解釈されるべきではない。
【００９８】
多重コンパートメント送達システムの使用の他の方法
癌治療法
癌は細胞増殖の迅速で制御されない進行として定義される。腫瘍細胞は、血管新生、転移および免疫抑制等の一連のプロセスを行うことによって、この増殖を達成する。腫瘍関連マクロファージ（ＴＡＭ）は、腫瘍が上述のプロセスを行うことを支援することによって腫瘍生存において顕著な役割を果たすと考えられる。
【００９９】
乳癌、前立腺癌、結腸癌、子宮頸癌における多量のＴＡＭと予後不良との間の密接な関連性の証拠は、既に確立されている。典型的なシナリオにおいて、腫瘍は、コロニー刺激因子−１（ＣＳＦ−１）、ケモカイン（ＣＣＬ２、３、４、５および８）、血管内皮細胞増殖因子（ＶＥＧＦ）等の様々な化学誘引物質を分泌する。結果として、血流中の単球は腫瘍組織へ誘引され、そこで単球は分化し、常在性マクロファージの役割を努める。加えて、健康な組織から得たマクロファージと比較すると、これらの細胞は別の表現型を有するようである。
【０１００】
ＴＡＭは、分化関連マクロファージ抗原、カルボキシペプチダーゼＭおよびＣＤ５１の低発現、インターロイキン（ＩＬ−１）およびＩＬ−６の高い構成的発現、ならびにＴＮＦ−αの低発現によって特徴づけられる。マクロファージが極性化したタイプＩＩまたはＭ２マクロファージへと発生するように、ＩＬ−４、６、１０、ＴＧＦ−β１およびＰＧＥ２等の腫瘍由来のサイトカイン、ケモカインならびにプロテアーゼはマクロファージに作用すると考えられている。結果として、健康な組織とは違って、マクロファージの抗腫瘍活性は腫瘍微小環境において損なわれる。加えて、腫瘍微小環境中の低酸素が、ＰＧＥ２およびＩＬ−１０の分泌の促進による腫瘍細胞へのＴＡＭの細胞毒性活性を減少させることに寄与できることも報告されている。したがって、分化に際して、常在性マクロファージが特異的機能を実行するように、腫瘍細胞によって訓練または形作られるようである。上述のプロセスにおけるＴＡＭの役割は図５中に要約される。
【０１０１】
ＴＡＭが死滅させられるならば、転移性腫瘍の増殖が阻害されることは当該技術分野において公知である。侵襲性癌および／または転移癌においてでさえ、腫瘍増殖および疾患進行を劇的に減速させることが示された。本明細書において記載されたシステムおよび方法は、これらのマクロファージの特異的標的化を可能にし、これらの細胞へのアポトーシス剤の効果的な送達のために使用することができる。さらに、腫瘍の同時画像化を可能にする他の薬剤を多重システム送達ベヒクル中に含むことができ、それによって疾患を治療しながら、疾患を同時にモニタリングすることを可能にする。
【０１０２】
本開示において先に記載されるように、本明細書において開示されるシステムおよび方法は、マクロファージの標的化のために提供される。これは、化学療法剤または局所放射線療法のための放射性分子等の治療剤の投与を可能にする。さらに、当業者は本明細書において記載された多重コンパートメント送達システムを使用して、本開示によって遺伝子療法を施すことができる。遺伝子コンストラクトを使用して、腫瘍細胞を攻撃するようにＴＡＭを再教育すること、マクロファージの一部上の様々な生体分子分泌をアップレギュレートまたはダウンレギュレートすることに加えて、ペイロードを腫瘍部位へ送達することができる。これらの態様はこの開示の全体にわたって記載された。
【０１０３】
身体内のナノ粒子分布は、より長い循環時間をもたらすそれらの比較的小さなサイズおよび腫瘍の特徴を利用するそれらの能力等の様々なパラメータに基づく。
【実施例】
【０１０４】
実施例１
Ｗ／Ｏ／Ｗシステムの処方および使用
Ｗ／Ｏ／Ｗ多重エマルジョンは、三相（外側の水相によって包まれた油小球中に含まれる内側の水溶性液滴）からなる三相性のシステムである。Ｗ／Ｏ／Ｗ多重エマルジョンは２工程のエマルジョン化によって処方された。オメガ−３多価不飽和脂肪酸およびオメガ−６多価不飽和脂肪酸に富むサフラワー油（Ｊｅｄｗａｒｄｓ，Ｉｎｃ．、Ｑｕｉｎｃｙ、ＭＡ）を、エマルジョンの油相のために使用した。サフラワー油は高レベルのトコフェロールを含み、炎症誘発性サイトカインの腫瘍壊死因子アルファおよびインターロイキン１−ベータのレベルに対して負の効果があることは報告されている。トコフェロールは酸化防止活性を発揮することが示されており、活性酸素種によって媒介される急性炎症に対する保護を提供し得る（１０）。第１の工程は、油溶性界面活性剤Ｓｐａｎ（登録商標）８０を使用するＷ／Ｏ一次エマルジョンの処方からなっていた。ネイキッドプラスミド（ＭＥ）またはゼラチンナノ粒子中にカプセル化されたプラスミド（ＮｉＥ）を、一次エマルジョンの水相中に取り込んで５０μｇ／ｍｌの最終濃度の多重エマルジョンを生じた。カプセル化されたネイキッドプラスミドＤＮＡによる安定した一次Ｗ／Ｏエマルジョン、またはＤＮＡがカプセル化されたナノ粒子による分散として安定した一次Ｗ／Ｏエマルジョンを、ＳｉｌｖｅｒｓｏｎホモジナイザーＬ４ＲＴを９０００ｒｐｍの速度で１５分間使用して形成した。一次エマルジョン分散物を、水溶性界面活性剤Ｔｗｅｅｎ（登録商標）８０からなる追加の水相と混合し、処方を４０００ｒｐｍで４分間のホモジナイゼーションによって調製した。この工程の間に４０００ｒｐｍを越えるまで速度を増加させることは、多重エマルジョン小球の破壊をもたらした。
【０１０５】
約２０００００の細胞をアルコール滅菌したガラスカバースリップを含む６ウェルプレートの各ウェル中にプレーティングし、対照および試験の処方による処理前に１２時間接着させた。内側の水相中に可溶化された０．００２５％（ｗ／ｖ）のローダミン−デキストランを含む多重エマルジョン、またはゼラチン粒子中でカプセル化された０．００２５％（ｗ／ｖ）のローダミンデキストランを含み、その粒子を次いでＷ／Ｏ／Ｗエマルジョンの内部水相へ添加した多重エマルジョンのいずれかを細胞に与えた。ブランクの水相またはブランクのゼラチンナノ粒子により調製された多重エマルジョンを、対照として使用した。対照および試験の処方によるインキュベーションの６０分、９０分および１２０分後に、細胞を滅菌リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ、ｐＨ７．４）で洗浄し、カバーグラスをウェルから除去し、清浄なスライドグラス上にマウントした。
【０１０６】
図１（上部）中の顕微鏡画像は、ローダミン−デキストランを含有するＷ／Ｏ／ＷエマルジョンおよびＮｉＥ処方が、マウス肺胞マクロファージＪ７７４Ａ．１細胞中に迅速に内部移行したことを示す。時刻が進むにつれて、蛍光強度の増加が観察され、１２０分の曝露後に最大になった。加えて、図１（下部）中の顕微鏡画像は、ＮｉＥ処方で処理した細胞において最高の遺伝子トランスフェクションが観察され、ＭＥ処方およびＧＮＰ処方が続くことを示す。最大の緑色蛍光はＮｉＥ処方で処理した細胞において観察され、それは処理後２４時間で開始し、２、３および４日目でレベルは維持され、続いて５および６日目で衰退した。これらの結果は、ＮｉＥ処方が遺伝子トランスフェクションにおいては、ＭＥ処方またはＧＮＰ処方と比較してより良好だったことを示し、これはＮｉＥ処方が、処方の間（処方１ｍｌあたりのプラスミドＤＮＡのより高いローディング効率をもたらす）に加えて、エンドソーム／リソソームのコンパートメントにおけるプラスミドＤＮＡの細胞内輸送の間に、プラスミドＤＮＡのより良い保護を提供するためである。
【０１０７】
実施例２
マクロファージに標的化された非縮合のタフトシンで修飾したアルギン酸塩ナノ粒子
要約
マクロファージに標的化されたタフトシンで修飾した架橋アルギン酸塩ナノ粒子が、局所的および全身的な抗炎症性遺伝子療法のために開発された。強化緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）およびインターロイキン１０（ＩＬ−１０）の両方を発現するプラスミドＤＮＡを、非縮合アルギン酸塩マトリックス中に物理的にカプセル化した。アルギン酸塩ナノ粒子は、効率的にプラスミドをカプセル化し、ＤＮＡｓｅ分解に対して保護することができた。さらに、タフトシンで修飾したナノ粒子はＪ７７４Ａ．１マクロファージ細胞中に効率的に内部移行され、インキュベーションの１時間以内に飽和した。ＧＦＰ発現プラスミドＤＮＡおよびＩＬ−１０発現プラスミドＤＮＡによる導入遺伝子発現の定量的および定性的な分析の両方から、タフトシンで修飾したナノ粒子は他のシステム（スクランブル化ペプチドで修飾したナノ粒子およびＬｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）（陽イオン性脂質ベースのトランスフェクション試薬）を含む）のいずれかよりも有意に高い効率を有することが示された。
序論
【０１０８】
導入遺伝子発現を使用する治療用タンパク質の局所的産生は、抗体のようなタンパク質の反復全身投与よりも副作用が少なく、治療法にわたってより高い制御を与える。ウイルス性遺伝子および非ウイルス性遺伝子の送達システムは抗炎症性遺伝子療法のために調べられているが、この実験的戦略を臨床的に実行可能な治療的アプローチへと移すことができるように、安全で効果的なシステムを開発するチャレンジがなされてきた。
【０１０９】
本明細書において、ＩＬ−１０発現プラスミドＤＮＡのための新規の安全で効果的な非ウイルス性遺伝子送達システム、ならびに局所的および全身的な抗炎症性療法のためのトランスフェクションの開発が記載される。ＩＬ−１０の臨床的有意性は、炎症性腸疾患、アテローム性動脈硬化症および関節リウマチを含むが、これらに限定されない炎症関連疾患に適用されている。マクロファージにおけるＩＬ−１０の発現は、かかる疾患モデルに関連する炎症性応答の終了または少なくとも有意な低下をもたらすだろう。
【０１１０】
負に荷電したＤＮＡと静電複合体を形成する陽イオン性の脂質およびポリマーとは異なり、アルギン酸塩担体はナノ粒子の調製のための生体適合性非縮合ポリマーとして選択され、表面はマクロファージ選択的な取り込みのためにタフトシンにより修飾された。
【０１１１】
抗炎症治療法のための遺伝子送達システム
ＧＦＰ発現プラスミドＤＮＡまたはＩＬ−１０発現プラスミドＤＮＡ（４００μｇ）を、中間粘度のアルギン酸塩ポリマー（０．１％ｗ／ｖ）の水溶液と混合して、１時間撹拌した。次いで、プラスミドＤＮＡを含有するアルギン酸塩溶液を、塩化カルシウム（９ｍＭ）の滴下添加によって架橋した。次いで、粒子を１ｍｇ／ｍｌのタフトシンペプチド溶液で表面修飾して、マクロファージ上の特異的受容体を標的化した（図６）。対照およびペプチドで修飾したナノ粒子処方は、粒子サイズ、表面電荷、表面形態およびＤＮＡローディング効率について特徴づけられた。カプセル化されたＤＮＡの安定性をアガロースゲル電気泳動によって査定した。粒子の毒性をＪ７７４Ａ．１マクロファージ細胞株においてＭＴＳアッセイによって評価した。時間依存性細胞取り込み研究を、ローダミンで標識したデキストラン色素をナノ粒子中にカプセル化することによって実行し、フローサイトメトリーおよび蛍光顕微鏡検によって査定した。ＧＦＰの定量的および定性的な導入遺伝子発現を、投与後１２、２４、４８、７２および９６時間で蛍光顕微鏡およびＥＬＩＳＡによってそれぞれ査定した。ＩＬ−１０トランスフェクションは、ＲＴ−ＰＣＲおよびＲ＆Ｄ  ＳｙｓｔｅｍｓからのＱｕａｎｔｉｋｉｎｅ（登録商標）ＥＬＩＳＡキットによって測定した。
【０１１２】
粒子特徴評価の研究から、形成されたＤＮＡをロードした架橋アルギン酸塩ナノ粒子は球形の形状であり、約３００ｎｍ〜４００ｎｍの平均径を備えていることが示された。平均では、非修飾処方およびペプチドで修飾した処方の表面電荷は、それぞれ−４７．７ｍＶおよび＋１９．７ｍＶであり、それはナノ粒子の表面上のペプチドコンジュゲーションの成功も示した。両方のＧＦＰ発現プラスミドＤＮＡおよびＩＬ−１０発現プラスミドＤＮＡは約５８％の効率で至適にカプセル化され、安定性研究により処方プロセスの間にＤＮＡは完全な形のままであることが確認された。
【０１１３】
非修飾ナノ粒子またはスクランブル化ペプチド配列で修飾したものと比較して、タフトシンで修飾した処方がより高い取り込みをもたらすはずであるという仮説を証明するために、Ｊ７７４Ａ．１マクロファージ細胞株において時間依存性ナノ粒子取り込みを実行した。粒子取り込みの結果は、フローサイトメトリーおよび蛍光顕微鏡によって、それぞれ定量的および定性的に評価された（図７）。これらの研究は実際、他のすべての対照と比較して、Ｊ７７４Ａ．１マクロファージにおける粒子取り込みがタフトシンで修飾した処方でより高かいことを示した。さらに、標的化された処方による高い粒子取り込みは、早期の時間ポイントで（すなわち１５分、３０分および６０分で）観察された。
【０１１４】
ＧＦＰ発現プラスミドＤＮＡおよびＩＬ−１０発現プラスミドＤＮＡを使用する導入遺伝子発現の定量的および定性的な研究を実行した。ＧＦＰ特異的ＥＬＩＳＡの結果（図８）は、タンパク質発現が、Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）等の陽性対照およびスクランブル化ペプチド配列を含む他の対照と比較して、タフトシンで修飾したナノ粒子で処理した細胞において有意により高かいことを示した（ｐ＜０．０１；ｎ＝３）。蛍光顕微鏡による定性的なＧＦＰ発現解析により、タフトシンで修飾したナノ粒子がより高いトランスフェクション効率を示すことも確認された。さらに、投薬後４日を超える期間にわたり、タンパク質発現を観察することができた。
【０１１５】
Ｊ７７４Ａ．１マクロファージ細胞株におけるＩＬ−１０導入遺伝子発現を検討したところ、結果はＧＦＰ発現について観察されたものに非常に類似していた（図９）。
【０１１６】
実施例３
マクロファージにおける遺伝子送達およびトランスフェクションのためのエマルジョン中ナノ粒子型処方のインビトロ評価
要約
治療上活性のあるタンパク質の持続的産生をもたらす、特異的細胞の中へトランスフェクション可能な遺伝子送達ベヒクルは、疾患治療のために非常に効果的な戦略として働くことができる。この研究において、固体エマルジョン中ナノ粒子型（ＮｉＥ）処方を開発し、接着肺胞マクロファージにおける遺伝子送達およびトランスフェクションについてインビトロで評価した。強化緑色蛍光タンパク質を発現するレポータープラスミド（ＥＧＦＰ−Ｎ１）をゼラチンナノ粒子（ＧＮＰ）中にカプセル化し、それをサフラワー油含有Ｗ／Ｏ／Ｗ多重エマルジョンの内側の水相中にさらにカプセル化した。
【０１１７】
この研究の結果は、Ｗ／Ｏ／Ｗ多重エマルジョン（ＭＥ）の水相中に溶解したＤＮＡ、ＧＮＰ中にカプセル化されたＤＮＡ、またはＤＮＡがＬｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）（陽イオン性脂質ベースのトランスフェクション試薬）と複合体化された場合等の対照処方と比較して、ＮｉＥ処方が、肺胞マクロファージにおけるＥＧＦＰ−Ｎ１のトランスフェクションにおいてより効果的であることを示す。
【０１１８】
序論
遺伝子療法は、異なる急性疾患状態および慢性疾患状態の治療のための特異的細胞の中への治療法の遺伝子の送達、続いて転写および生物学的に活性のあるタンパク質への翻訳を含む。ヒトゲノムの解読および生物学的操作における最近の発展で、非常に多数の治療用遺伝子配列が公知である。これらの遺伝子配列は、身体中の特異的細胞内で所望のタンパク質の産生のために使用することができる（１）。この目的を達成するために、特異的細胞の中への遺伝子を効率的に送達できる送達ベヒクルの開発は有用である。ウイルスベクターは高い遺伝子トランスフェクション効率を有するが、それらの臨床用途は、細胞毒性、免疫原性および送達された遺伝子の染色体組込みのために限定されている。
【０１１９】
マクロファージに向けて標的化された非ウイルス性遺伝子送達システムは、急性および慢性的な炎症性疾患を制御するユニークな方法を提供する。この研究において、ＮｉＥは、特に粘膜投与後の、遺伝子送達およびトランスフェクションのための新規のマクロファージに標的化されたシステムとして開発された。かかる多重コンパートメント送達システムは、より高い安定性または時間制御された送達のために、内側のコンパートメントおよび外側のコンパートメント中に異なるタイプの治療用ペイロードまたは画像化ペイロードをカプセル化する方法も提供する。本開示は、マウス接着肺胞マクロファージＪ７７４．Ａ１細胞におけるＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡを使用するインビトロ遺伝子トランスフェクション実験から得られた結果を提供する。
【０１２０】
実験方法
タイプＢ  ＧＮＰは先に記載されるようにエタノール水溶媒置換方法によって調製した（３）。粒子サイズおよび電荷はＭａｌｖｅｒｎ  Ｚｅｔａｓｉｚｅｒ（登録商標）を使用して決定した。Ｗ／Ｏ／Ｗ多重エマルジョンはＳｉｌｖｅｒｓｏｎ  ｈｏｍｏｇｅｎｉｚｅｒ（登録商標）Ｌ４ＲＴを使用して、２工程のエマルジョン化プロセスによって処方された（５）。細胞の取り込み研究のために、ローダミン標識したデキストラン（水溶性蛍光団）を、ＭＥの内部水相中に取り込むか、またはＧＮＰ中にカプセル化して次いでそれらを内側の水相中に取り込んだ。細胞の取り込み研究は対照および処理されたＪ７７Ａ．１細胞の蛍光顕微鏡による画像化によって実行した。遺伝子トランスフェクション研究のために、ＥＧＦＰ−Ｎ１をＧＮＰ中にカプセル化し、次いでそれらをＭＥの内側の水相中に取り込んだ。異なる処方におけるＥＧＦＰ−Ｎ１ローディングはＰｉｃｏＧｒｅｅｎ（登録商標）ｄｓＤＮＡ試薬を使用して評価した。異なる処方におけるＥＧＦＰ−Ｎ１安定性はアガロースゲル電気泳動の使用によって特徴づけられた。ＥＧＦＰ−Ｎ１の異なるカプセル化処方で処理した細胞およびＬｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）と複合体化されたＥＧＦＰ−Ｎ１で処理した細胞を、蛍光顕微鏡により定性的に、および緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）特異的酵素結合抗体免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）により定量的に導入遺伝子発現について検査した。
【０１２１】
結果および考察
ブランクのＧＮＰおよびＥＧＦＰ−Ｎ１をロードしたＧＮＰは、それぞれ１６４．３ｎｍおよび１６６．０ｎｍの平均粒子サイズを有していた。ブランクのゼラチンナノ粒子およびＥＧＦＰ−Ｎ１をロードしたゼラチンナノ粒子の表面電荷は、それぞれ−１０．７ｍＶおよび−１１．２ｍＶであることが見出された。ＭＥおよびＮｉＥは５μｍ以下の小球サイズを有し、内側の水相からの内容物の漏洩の兆候なかった（図１０）。ＧＮＰ、ＭＥおよびＮｉＥにおけるＥＧＦＰ−Ｎ１のローディング効率は、それぞれ９９％、５４％および７０％であることが見出された。すべての３つの処方からのアガロースゲル電気泳動の結果は４．７ｋｂのサイズで単一バンドを示し、それは純粋なＥＧＦＰ−Ｎ１のサイズに類似していた。これらの結果は、プラスミドが処方の加工条件によって負の影響を受けないことを示した。細胞の取り込み研究から、ＭＥ処方およびＮｉＥ処方の迅速な取り込みと処理後２時間内の飽和が示された（図１０）。
【０１２２】
定性的な緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）発現を蛍光顕微鏡によって評価した。ＥＧＦＰ−Ｎ１をロードしたＧＮＰ、ＭＥ、ＮｉＥ、およびＬｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）と複合体化されたＥＧＦＰ−Ｎ１で処理した細胞について、画像を得た。最大の緑色蛍光はＮｉＥで処理したＪ７７４Ａ．１マクロファージ細胞で観察され、他の処方で処理したものが続いた（図１１）。
【０１２３】
Ｊ７７４Ａ．１マクロファージにおける定量的ＧＦＰ発現解析は特異的ＥＬＩＳＡを使用して決定された。トランスフェクション効率は、全細胞タンパク質の１ミリグラムあたり産生されたＧＦＰのナノグラムとして報告された。ＥＬＩＳＡ結果は、図１２中に図示されるように、Ｊ７７４Ａ．１細胞によるこのインビトロシステムにおける他の処方と比較して、ＮｉＥ処方が最も高いトランスフェクション効率を有することを示す。
【０１２４】
記述
この研究の結果は、サフラワー油含有Ｗ／Ｏ／Ｗ多重エマルジョン中に固体ゼラチンナノ粒子を効果的にカプセル化できることを示す。このＮｉＥシステムはマクロファージにおいて遺伝子トランスフェクションのために使用することができ、経口投与後の粘膜トランスフェクションに有益であると証明することができる。
【０１２５】
実施例４
ＮｉＭＯＳによる経口ＴＮＦ−α遺伝子サイレンシング
要約
この実施例は、経口ＲＮＡ干渉療法によるＴＮＦ−αのダウンレギュレーションを評価した。対照（スクランブル化配列）またはＴＮＦ−α特異的低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）をタイプＢゼラチンナノ粒子中にカプセル化し、ポリ（ε−カプロラクトン）（ＰＣＬ）マイクロスフェア中にさらにトラップして、マイクロスフェア中ナノ粒子型経口システム（ＮｉＭＯＳ）を形成した。デキストラン硫酸ナトリウム（ＤＳＳ）誘導性急性結腸炎モデルの確認に際して、マウスを、複数の処理群（処理なし、ブランクのＮｉＭＯＳ、スクランブルｓｉＲＮＡを持つＮｉＭＯＳ、またはＴＮＦ−αサイレンシングｓｉＲＮＡを持つＮｉＭＯＳを経口投与によって投与される）へと分けた。成功した遺伝子サイレンシングは、ＴＮＦ−αの結腸レベルの低下、他の炎症誘発性サイトカイン（ＩＬ−１α、ＩＬ−１β、ＩＦＮ−γ）およびケモカイン（ＭＣＰ−１）の発現の抑制、体重の増加、ならびに組織ミエロペルオキシダーゼ活性の減少をもたらした。この研究の結果は、急性結腸炎モデルにおいて実証されるような炎症性大腸疾患の治療のためのＮｉＭＯＳベースの経口ＴＮＦ−α遺伝子サイレンシングシステムの臨床的有用性を確立する。
【０１２６】
序論
炎症性腸疾患（ＩＢＤ）は２つの主要な表現型（クローン病および潰瘍性大腸炎）により表わされる慢性の再発病態であり、胃腸管の炎症を含む。その病因は今もなお未知であるが、遺伝的素因、環境条件、生活様式、微生物因子および免疫学的因子の複雑な相互作用が、ＩＢＤをもたらす主要な態様のいくつかとして同定されている（１、２）。従来の治療は、疾患の範囲および重症度を含む患者の臨床状態に依存して、抗炎症薬および免疫抑制性薬からなる（３）。いくつかの医薬物は急性事態の炎症に対抗する効果的な方策であるが、毒性、依存性および高再発率のために寛解の維持には効果がない。他の治療選択肢は炎症を起こした腸組織の外科切除であるが、患者は多くの精神的ストレスおよび肉体的苦悩を経験しなければならない。現在の治療選択肢に関連した有効性および安全性には制限があるために、粘膜炎症性経路の選択的な遮断を含む新規の生物学的療法の開発は、ＩＢＤにおけるより効果的な治療選択肢の可能性を提供する。
【０１２７】
腫瘍壊死因子アルファ（ＴＮＦ−α）はＩＢＤの炎症の媒介において中心的な役割を果たす（５）。全身的な抗ＴＮＦ−αは伝統的療法に対して抵抗性のある患者においてうまく機能しているが、日和見感染、治療法の有効性の低下と共に起こる抗ＴＮＦ−αに対する抗体産生、および点滴反応の出現の増加を含む深刻な禁忌および副作用が報告されている（６、８、９）。胃腸管は、経口および直腸の投与経路を介して大きな表面積があり、炎症の管腔部位へ接近できるので、遺伝子療法の理想的な標的を提供する。
【０１２８】
ＲＮＡ干渉療法は通常２０〜２５ヌクレオチドからなる小型干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）を利用し、ＲＮＡ干渉を介する遺伝子サイレンシング機構に関与し、そこでｓｉＲＮＡは特異的遺伝子（例えば疾患において発現されたもの）の発現を最終的に遮断することができる。したがって、ｓｉＲＮＡの適用は疾患を克服するために代替の治療方針を提供する。現在、遺伝子サイレンシングにおいて最も大きなハードルは、依然として細胞質および血漿中でのｓｉＲＮＡの迅速な分解に起因する送達および安定性である。この目的のために、ウイルスベクター、ナノ粒子１８、ポリマーベースのベヒクルまたはリポソーム小胞を含む様々なシステムを含む、カプセル化および送達の機構が使用されている。
【０１２９】
本明細書において開示されるのは、ＰＣＬシェル中に包まれるレポーターおよび治療用タンパク質を発現するプラスミドＤＮＡをカプセル化するゼラチンナノ粒子を使用する、多重コンパートメントのマイクロスフェア中ナノ粒子型システム（ＮｉＭＯＳ）の開発であり、げっ歯類モデルにおいてトランスフェクションの成功が示される。本明細書において、対照（スクランブル化ＴＮＦ−α）はゼラチンナノ粒子中にカプセル化された（ＮｉＭＯＳの形成）。ＴＮＦ−α特異的ｓｉＲＮＡもゼラチンナノ粒子中にカプセル化された。これはＤＳＳ誘導性急性結腸炎マウスモデルにおける投与によって、ＩＢＤにおけるＴＮＦ−α遺伝子サイレンシングの経口送達の可能性を評価するために行った。
【０１３０】
材料
２２５ブルーム強度のタイプＢゼラチン（分子量４００００〜５００００、１００ｇのタンパク質あたり１００〜１１５ｍＭの遊離カルボン酸、４．７〜５．２のｐＩ）およびポリ（ビニルアルコール）（ＰＶＡ）（加水分解度８６．７〜８８．７％、分子量〜６７０００）は、Ｓｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏｍｐａｎｙ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）から得た。ポリ（ε−カプロラクトン）（ＰＣＬ）（ゲル透過クロマトグラフィーによって分子量１００００〜２００００と検証される）はＰｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｉｎｃ．（Ｗａｒｒｉｎｇｔｏｎ、ＰＡ）から購入した。試薬グレードのジクロロメタン、ヘマトキシリン・エオジンはＦｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ（ピッツバーグ、ＰＡ）から購入した。試薬グレードの無水アルコールはＡｃｒｏｓ  Ｏｒｇａｎｉｃｓ（Ｐａｒｓｉｐａｎｎｙ、ＮＪ）から得た。カプセル化有効性研究およびゲル電気泳動のために、６．９単位／ｍｇの活性のウシ膵臓のプロテアーゼはＳｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏｍｐａｎｙ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）から得た。脱塩しアニーリングしたｓｉＲＮＡｓはＤｈａｒｍａｃｏｎ（Ｌａｆａｙｅｔｔｅ、ＣＯ）から得た。配列は以下のとおりであった。ＴＮＦ−α  ｓｉＲＮＡ、５’ＧＡＣＡＡＣＣＡＡＣＵＡＧＵＧＧＵＧＣｄＴｄＴ３’；スクランブル化ｓｉＲＮＡ、５’ＧＡＣＡＡＣＣＡＧＧＧＣＧＵＧＧＵＧＣｄＴｄＴ３’１４。センス配列のみを示す。動物研究のために、デキストランナトリウム硫酸塩（ＤＳＳ）（分子量３６０００〜５００００）はＭＰ  Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌｓ  Ｕｎｉｔｅｄ  Ｓｔａｔｅｓ（Ｓｏｌｏｎ、ＯＨ）から購入した。他のすべての試薬および化学物質は分析グレードであった。水溶液は全て脱イオン化された蒸留水（Ｎａｎｏｐｕｒｅ  ＩＩ、Ｂａｒｎｓｔｅａｄ／Ｔｈｅｒｍｏｌｙｎｅ、Ｄｕｂｕｑｕｅ、ＩＡ）中で調製した。Ｂａｌｂ／ｃマウスはＣｈａｒｌｅｓ  Ｒｉｖｅｒ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ、ＭＡ）から購入した。ＲＮＡｓｅ  ＡおよびＳｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔ  ＩＩＩはＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎ（Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）から得た。
【０１３１】
方法
ｓｉＲＮＡをカプセル化するゼラチンナノ粒子およびＮｉＭＯＳの処方
先に記載したように、ゼラチンナノ粒子を調製した。簡潔には、ｓｉＲＮＡｓをｐＨ７．００のゼラチン水溶液と混合し、室温で１０分間プレインキュベーションし、続いて非溶剤としてのエタノールの補助によりｓｉＲＮＡ含有ゼラチン溶液またはブランクのゼラチン溶液の制御された沈殿を行った。最終的なブレンドにおいて、エタノール対水の体積比は６５：３５で一定に保たれた。もたらされたナノ粒子を３２０００ｒｐｍで４５分間遠心分離し、脱イオン水で洗浄し、凍結乾燥した。
【０１３２】
本明細書において記載されるように、マイクロスフェア中ナノ粒子型経口送達システム（ＮｉＭＯＳ）は、「ダブルエマルジョン様」技法の利用によって製造された。
【０１３３】
ｓｉＲＮＡをカプセル化するゼラチンナノ粒子およびＮｉＭＯＳの特徴づけ
粒子サイズ分析
新たに調製したナノ粒子処方は、９０°散乱角でＭａｌｖｅｒｎ  Ｚｅｔａｓｉｚｅｒ  Ｎａｎｏ  ＺＳ  ９０装置（Ｗｅｓｔｂｏｒｏｕｇｈ、ＭＡ）を使用して、液滴の平均粒径について特徴づけられた。ＮｉＭＯＳは、Ｂｅｃｋｍａｎ  Ｃｏｕｌｔｅｒ（Ｆｕｌｌｅｒｔｏｎ、ＣＡ）からのＭｕｌｔｉｓｉｚｅｒ（商標）３を使用して、粒子サイズおよびサイズ分布について特徴づけられた。粒子サイズの測定はすべて室温で実行した。
【０１３４】
走査電子顕微鏡（ＳＥＭ）
凍結乾燥したブランクのゼラチンナノ粒子またはロードしたゼラチンナノ粒子およびＮｉＭＯＳを、アルミニウムスタブ上にマウントし、金−パラジウムでスパッタコートして、表面のチャージを最小限にした。このように調製したサンプルを、Ｈｉｔａｃｈｉ  Ｓ−４８００（Ｐｌｅａｓａｎｔｏｎ、ＣＡ）電界放射型走査電子顕微鏡によるそれらの表面形態に従って、評価した。
【０１３５】
ゼラチンナノ粒子およびＮｉＭＯＳ中のｓｉＲＮＡローディングの決定
上で論じたように、ｓｉＲＮＡをロードしたゼラチンナノ粒子およびＮｉＭＯＳを調製した。これらの処方におけるｓｉＲＮＡのカプセル化効率は、透明な溶液が得られるまで、０．２ｍｇ／ｍｌのプロテアーゼを含むリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ、ｐＨ７．４）中で既知の量のサンプルを３７℃で溶解することによって決定された。放出されたｓｉＲＮＡは、メーカーのプロトコルに従ってＰｉｃｏＧｒｅｅｎ（登録商標）アッセイ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）を使用して定量した。Ｐｅｒｋｉｎ  Ｅｌｍｅｒ  ＬＳ５０Ｂ分光光度計（Ｎｏｒｗａｌｋ、ＣＴ）を使用して、４８５ｎｍの励起波長および５２０ｎｍの放射波長で、ＰｉｃｏＧｒｅｅｎ（登録商標）結合ｓｉＲＮＡに比例する蛍光強度を測定した。ＦＬＷＩＮＬＡＢ（登録商標）ソフトウェアを結果のデータの処理および分析のために使用した。
【０１３６】
先に記載されたようにＮｉＭＯＳ中のｓｉＲＮＡローディングの評価を実行した（２３）。簡潔には、既知の量の先に記載されたサンプルを既知の量のジクロロメタンへ添加してＰＣＬマトリックスを溶解し、ゼラチンナノ粒子を放出させた。この有機ＰＣＬ−ジクロロメタン混合物へ等量の蒸留脱イオン水を添加して、有機溶液からナノ粒子を分離した。有機相から水相を注意深く分離した後に、ゼラチンナノ粒子に上記と同じ手技を行い、ＰｉｃｏＧｒｅｅｎ（登録商標）定量分析を使用してＮｉＭＯＳ中の最終的なｓｉＲＮＡローディング効率を測定した。
【０１３７】
ｓｉＲＮＡ安定性
ＮｉＭＯＳのゼラチンナノ粒子の製造プロセスがｓｉＲＮＡの完全性に影響を与えなかったことを確認するために、カプセル化されたｓｉＲＮＡの安定性をアガロースゲル電気泳動によって査定した。加えて、ＲＮＡｓｅ  Ａの存在下におけるペイロードの完全性を決定した。ＮｉＭＯＳを含むｓｉＲＮＡのサンプルを３７℃で２０分間ＲＮＡｓｅ  Ａで処理し、続いて酵素を不活性化し、上で論じられるものと同じ様式で抽出したゼラチンマトリックスのプロテアーゼ消化によって、ロードしたナノ粒子からｓｉＲＮＡを抽出した。マイクロスフェアおよびナノ粒子からのｓｉＲＮＡ放出後に、サンプルを４％（ｗ／ｖ）の前染色されたＥ−ｇｅｌ（商標）システムのウェルへ添加し、対照としての１０ｂｐラダー、ネイキッドｓｉＲＮＡ、プロテアーゼで処理したネイキッドｓｉＲＮＡ、ならびにプロテアーゼおよびＲＮＡｓｅ  Ａで処理したネイキッドｓｉＲＮＡに対して泳動した。７０Ｖで４５分の泳動後に、画像を紫外線下で記録および加工した。
【０１３８】
実験動物
含まれる動物研究はすべて、Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ  Ａｎｉｍａｌ  Ｃａｒｅ  ａｎｄ  Ｕｓｅ  Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ  ａｔ  Ｎｏｒｔｈｅａｓｔｅｒｎ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ（Ｂｏｓｔｏｎ、ＭＡ）によって承認された実験的プロトコルに従って実行された。メスＢａｌｂ／ｃマウス（６〜８週間、約１８〜２０ｇ）を、Ｃｈａｒｌｅｓ  Ｒｉｖｅｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ、ＭＡ）から購入した。１ケージあたり４匹のマウスの群へ動物を無作為に割り当て、研究の開始前に１０日間順応させた。マウスをそれぞれ２２℃の温度および２６％の湿度と１２時間の明暗サイクルで制御された室の中に収容し、経口強制投与の準備をするために一晩絶食させる場合以外は、水および標準的なペレットを自由に与えた。
【０１３９】
デキストランナトリウム硫酸塩（ＤＳ）を使用する急性結腸炎の誘導
動物を１０群（ｎ＝４）へ無作為に割り当てた。研究期間の間の飲料水中への３．５％（ｗ／ｗ）デキストランナトリウム硫酸塩（ＤＳＳ）の添加によって、急性結腸炎をマウスにおいて誘導し、一方１つの対照群（ｎ＝８）は研究の経過を通じて一般的な水道水を与えた。ＤＳＳ溶液を毎日のベースで新たに調製し、マウスの健康状態については毎日モニターした。急性疾患モデルは、体重減少、便の硬さ、直腸出血、組織学の評価によって確認した。研究の１０および１４日目で、ＣＯ2吸入、続いて頸椎脱臼によって動物を屠殺し、以下に記載されるように組織を加工した。
【０１４０】
ＤＳＳ大腸炎を誘導したＢａｌｂ／ｃマウスにおける経口ｓｉＲＮＡ投与
研究の２、４および６日目で、すべての対照を含む各群のマウスを一晩絶食させ、続いてブランクのＮｉＭＯＳ（ｓｉＲＮＡを含まない粒子）または１匹の動物あたり７５０ｐｍｏｌのｓｉＲＮＡ（ＴＮＦα配列またはＴＮＦαスクランブル化配列）を含むマイクロ粒子を、食道の中へ挿入した先端を丸めた供給針を使用する経口強制投与によって、１群あたりＮｉＭＯＳ処方を最大３用量添加する処理を行った。追加の対照群は、ＤＳＳ曝露の経過の全体にわたって経口処理を受けない動物（ＤＳＳ対照）からなった。
【０１４１】
投与後３および７日目（それぞれ１０および１４日目）の所定の時間ポイントで、時間ポイントおよび群あたり４匹の動物をＣＯ2吸入、続いて頸椎脱臼を使用して屠殺した。安楽死後に、大腸を外科的に摘出して組織切片の組織学的分析のためにＰＢＳで慎重に洗浄し、Ｍｕｌｔｉｐｌｅｘ  ＥＬＩＳＡおよびリアルタイムＰＣＲによってそれぞれサイトカインおよびマウスＴＮＦα−ｍＲＮＡレベルを決定した。
【０１４２】
結腸組織からのＲＮＡの単離および定量的ポリメラーゼ連鎖反応
大腸から得た組織サンプルを、ＲＮＡｌａｔｅｒ（登録商標）（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ  Ｉｎｃ．、Ｆｏｓｔｅｒ  Ｃｉｔｙ、ＣＡ）中で４℃で２日間保存して十分な時間で組織に浸透させ、続いて過剰な液体を除去し、加工まで組織を−７０℃で保存した。ＲＮＡは、ＲＮＡｑｕｅｏｕｓ（登録商標）−４ＰＣＲキット（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ  Ｉｎｃ．、Ｆｏｓｔｅｒ  Ｃｉｔｙ、ＣＡ）中に供給されるグアニジンイソチオシアネート法を使用して、メーカーのプロトコルに従って、組織サンプルから単離した。上記の組織サンプルから単離したＲＮＡは、ＮａｎｏＤｒｏｐ  １０００（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  Ｉｎｃ．、Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ、ＤＥ）ＵＶ−可視光線分光光度計の使用によって定量した。
【０１４３】
単離したｍＲＮＡからの逆転写によるｃＤＮＡの合成
全ＲＮＡ濃度の決定後に、サンプルはさらなる使用まで−７０℃で保存した。メーカーによって推奨されるように、定量的ＰＣＲのためのＳｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔ  ＩＩＩ  Ｆｉｒｓｔ−Ｓｔｒａｎｄ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  ＳｕｐｅｒＭｉｘ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）を使用して、ｃＤＮＡをＲＮＡから合成した。ＲＮＡサンプルの逆転写の調製は氷上でおよびメーカーの推奨に従って実行された。ＵＶ分光光度法によって決定された１μｇのＲＮＡに対応する体積を合成プロセスのために使用した。ｃＤＮＡを含むサンプルを１００μｌの最終的な体積へ希釈し、さらなる使用まで−２０℃で保存した。
【０１４４】
ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）によるｃＤＮＡの定量的分析
定量的リアルタイムＰＣＲを大腸組織から得たｃＤＮＡサンプル上で実行して、ｍＲＮＡ転写物のレベルを決定した。Ｌ３２リボソームタンパク質を発現するＬ３２遺伝子を対照として使用した。前希釈したｃＤＮＡを、マウスＴＮＦ−αまたはＬ３２コンストラクトを検出する０．２μＭのプライマーペアおよびＳＹＢＲ（登録商標）Ｇｒｅｅｎ  ＰＣＲマスターミックスと混合し、バーコードを備えたＡＢＩ  Ｐｒｉｓｍ（商標）９６ウェル光学反応プレート（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ、Ｆｏｓｔｅｒ  Ｃｉｔｙ、ＣＡ）の中へピペットで移した。使用したプライマーの配列は以下のとおりであった。（１）マウスＬ３２  ５’ＡＧＣＡＡＣＡＡＧＡＡＡＡＣＣＡＡＧＣＡＣＡＴ３’  および５’ＴＴＧＡＣＡＴＴＧＴＧＧＡＣＣＡＧＧＡＡＣＴ３’、（２）マウスＴＮＦ−α  ５’ＣＡＴＧＡＧＣＡＣＡＧＡＡＡＧＣＡＴＧＡＴＣ３’および５’ＣＣＴＴＣＴＣＣＡＧＣＴＧＧＡＡＧＡＣＴ３’。定量的ＰＣＲ反応をＡｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓからの７３００  Ｒｅａｌ−Ｔｉｍｅ  ＰＣＲ  Ｓｙｓｔｅｍにおいて実行し、４０サイクルの９５℃１５秒間；１分間６０℃のサイクルプログラムを使用した。ＰＣＲ反応から得られた結果を比較Ｃｔ分析によって分析して、サンプル中のマウスＴＮＦ−αｃＤＮＡの相対的量を決定した。
【０１４５】
ＥＬＩＳＡによる組織マウスサイトカイン発現レベルの決定
続いて行なわれるＥＬＩＳＡおよびミエロペルオキシダーゼ活性の測定のために、全大腸のサンプルを、プロティナーゼ阻害剤を補足した溶解緩衝液（１Ｍトリス、ｐＨ７．４；０．５Ｍ  ＥＤＴＡ、ｐＨ８．０；５Ｍ  ＮａＣｌ、１０％（ｗ／ｖ）Ｂｒｉｊ、１０％（ｖ／ｖ）Ｔｗｅｅｎ  ２０）中で氷上でホモジナイズして、組織サンプルからタンパク質を抽出した。タンパク質を含む上清を１３０００ｇの遠心分離によって４℃で３０分間分離し、分析まで−７０℃で保存した。Ｑｕａｎｓｙｓ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ（Ｌｏｇａｎ、ＵＴ）から得たＱ−Ｐｌｅｘ（商標）Ｍｏｕｓｅ  Ｃｙｔｏｋｉｎｅ  Ｓｃｒｅｅｎ  ＥＬＩＳＡを使用して、大腸炎を誘導したＢａｌｂ／ｃマウスの大腸において、一連の炎症誘発性サイトカインおよび抗炎症性サイトカイン（ＴＮＦ−α、ＩＬ−１α、ＩＬ−１β、ＩＬ−２、ＩＦＮ−γ、ＩＬ−５、ＩＬ−６、ＩＬ−１２ｐ７０、ＩＬ−１７、ＭＩＰ−１α、ＭＣＰ−１およびＧＭＣＳＦ）の濃度の変化を、メーカーのプロトコルに従って測定した。各サンプルの発光強度を測定し各サイトカインの濃度をＱ−Ｖｉｅｗ（商標）ソフトウェア（Ｑｕａｎｓｙｓ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を使用して、５パラメータ曲線のフィッティングで分析した。マルチプレックスＥＬＩＳＡから得られたサイトカイン濃度を、ビシンコニン酸アッセイ（Ｐｉｅｒｃｅ、Ｒｏｃｋｆｏｒｄ、ＩＬ）によって決定される個々のサンプルの全タンパク質含有量に対して正規化した。値は、各サンプルの全タンパク質含有量の１ｍｇあたりの発現されたマウスサイトカインのピコグラム（ｐｇ）またはフェムトグラム（ｆｇ）として表現し、４匹のマウスの平均±Ｓ．Ｄ．を表わす。
【０１４６】
ヘマトキシリン・エオシン染色による組織切片の組織学的分析
組織サンプルは、ヘマトキシリン・エオジン調査染色の光学顕微鏡法の使用によって、粘膜構造の変化、細胞浸潤、炎症、表在筋肥厚、腺窩膿瘍の存在、杯細胞枯渇、水腫の兆候、表面の上皮細胞過形成および上皮再生の兆候について評価された（２５、３５）。これらの値を使用して、処理群および対照群における粘膜損傷および修復の程度を査定する。非炎症／炎症の結腸の末端領域から採取された組織サンプルを１０％のホルマリン溶液中で少なくとも２日間４℃で保存して組織を固定した。その後に、サンプルをＰＢＳで洗浄して過剰なホルマリン溶液を取り除き、次いで凍結による損傷からの保護を目的として３０％（ｗ／ｗ）スクロース溶液へ２日間移して、続いて行なわれる組織の凍結切片の作成のために調製した。７μｍ厚の組織切片をメーカーによって供給されたプロトコルに従ってヘマトキシリン・エオジンで染色し、続いて明視野顕微鏡（Ｏｌｙｍｐｕｓ  ＢＸ５１ＴＲＦ、Ｏｌｙｍｐｕｓ  Ａｍｅｒｉｃａ、Ｃｅｎｔｅｒ  Ｖａｌｌｅｙ、ＰＡ）を使用して画像化した。
【０１４７】
組織ミエロペルオキシダーゼ活性の決定
組織ミエロペルオキシダーゼ活性はＣｅｌｌ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ．（Ｍｏｕｎｔａｉｎ  Ｖｉｅｗ、ＣＡ）から購入したＦｌｕｏｒｏＭＰＯキットで検出した。この調製において、組織サンプルを、氷上のヘキサデシルトリメチルアンモニウムブロミド緩衝液（５０ｍＭリン酸緩衝液中で０．５％）中でミンスおよびホモジナイズした。ホモジネートを超音波で処理し、凍結融解サイクルを行い、１００００ｒｐｍで３分間遠心分離した。特定の既知の量の組織溶解物上清を、Ｈ2Ｏ2、非蛍光検出試薬および１×アッセイ緩衝液を含む検出混合物と合わせた。検出試薬は過酸化水素およびＭＰＯの存在下において酸化されて蛍光アナログを産生し、それを５３０ｎｍの励起波長および５９０ｎｍの放射波長で測定した。報告された値をサンプルの全タンパク質含有量のｍｇに対して正規化した。
【０１４８】
統計解析
示されたデータはすべて、平均±標準偏差（Ｓ．Ｄ．）として表わされる。対照群と処理群との間の統計的な差はスチューデントのｔ検定を使用して決定した。
【０１４９】
結果
経口ＴＮＦ−ｃｃ遺伝子サイレンシングのためのＮｉＭＯＳ
ＮｉＭＯＳのイラストおよびｓｉＲＮＡカプセル化ゼラチンナノ粒子およびマイクロスフェアの走査型電子顕微鏡写真を図１３Ａ中で示す。溶媒置換方法を使用して、２７９．２ｎｍ±３．２ｎｍの平均径を備えたｓｉＲＮＡをカプセル化する球形ゼラチンナノ粒子が産生された。胃腸通過の間のｐＨおよび酵素による分解からの追加の保護のために、ナノ粒子をＰＣＬマイクロスフェア中でさらにカプセル化してＮｉＭＯＳを生成した。これらは、比較的平滑な表面形態を備えたかなり一様な形状およびサイズであり、ブランクのカプセル化マイクロ粒子およびｓｉＲＮＡカプセル化マイクロ粒子についてそれぞれ２．４μｍから３．２μｍの範囲の直径であった（図１３Ｃ）。
【０１５０】
ｓｉＲＮＡが製造プロセスの間の影響を受けないこと、および粒子が分解酵素の存在下においてこのペイロードを効率的に保護できることを確認するために、抽出したｓｉＲＮＡの安定性をアガロースゲル電気泳動によって評価した。これらの研究に基づいて、カプセル化はｓｉＲＮＡの構造またはサイズに影響を与えるとは考えられない（図１３Ｂ）。例えば、ゼラチンナノ粒子（レーン５）およびＮｉＭＯＳ（レーン７および８）からのｓｉＲＮＡは、対照ｓｉＲＮＡ（レーン２）と同じサイズを有していた。さらにプロテアーゼ添加はｓｉＲＮＡに対する有害作用を有していなかった（レーン３）。加えて、ＮｉＭＯＳはペイロードに対する保護的効果を有すると考えられる。これはレーン７中のバンドによって実証された。ＮｉＭＯＳをＲＮＡｓｅ  Ａへ曝露し、続いて酵素の不活性化およびｓｉＲＮＡの抽出を行うと、対照相当物と同じサイズの断片が示された。しかしながら、プロテアーゼおよびＲＮＡｓｅへ曝露された場合、ゼラチンナノ粒子から放出されたｓｉＲＮＡは完全に分解された（レーン６、９）。プロテアーゼへのＮｉＭＯＳの曝露は単独でｓｉＲＮＡを遊離しなかった（バンドなし；レーン１１）。カプセル化されたｓｉＲＮＡの定量化により、ゼラチンナノ粒子におけるローディング効率が９０．２±５．４％であることが明らかになった。ＮｉＭＯＳにおける最終的なｓｉＲＮＡローディング効率は、添加されたｓｉＲＮＡの５５．２±２．８％であると測定された。
【０１５１】
急性ＤＳＳ誘導性大腸炎モデル
飲料水におけるＤＳＳ投与５日後に、マウスは、体重減少（図１４Ａ）、下痢、直腸出血、およびミエロペルオキシダーゼ値の上昇によって証明されるような炎症の兆候（図１４Ｂ）、有意な程度の白血球浸潤、および杯細胞枯渇を含む異常な粘膜構造（図１４Ｃ）を含む、ＩＢＤの典型的な病徴を示した。
【０１５２】
ＴＮＦ−α遺伝子サイレンシング
定量的リアルタイムＰＣＲ（ｑＰＣＲ）分析を実行して、研究１０日目および１４日目でｍＲＮＡのレベルでマウスＴＮＦ−αの発現を査定する（図１５Ａ）。１０日目に、ＴＮＦ−α  ｍＲＮＡ転写物はＴＮＦ−αｓｉＲＮＡカプセル化ＮｉＭＯＳを投与した処理群において最低だった。この時間ポイントで、最高値はブランクのＮｉＭＯＳを投与された対照群において観察された。１４日目で、ブランクのＮｉＭＯＳ、スクランブル化ＮｉＭＯＳ、またはＴＮＦ−αＮｉＭＯＳを投与した動物のＴＮＦ−αｍＲＮＡのレベルにおいて、有意な差は観察されなかった。
【０１５３】
さらに、マウスＴＮＦ−αタンパク質レベルを商業的に入手可能なＥＬＩＳＡを使用して決定した（図１５Ｂ）。全体として、ＴＮＦ−α  ＮｉＭＯＳを投与した群は、両方の時間ポイントで最低の発現レベルであり、１４日目でおよその３倍の減少であった。１０および１４日目でタンパク質濃度はＤＳＳ対照群において最も高かった。ここで、ＴＮＦ−α  ＮｉＭＯＳで処理した動物において測定されたレベルと比較して、およそ５倍の増加が観察された。
【０１５４】
炎症誘発性サイトカインおよびケモカインのプロファイル
ＮｉＭＯＳの３用量の経口投与に際して、炎症誘発性サイトカインおよびケモカインの発現プロファイルを、ＥＬＩＳＡによって測定した（図１６）。全体として、炎症誘発性サイトカインはＤＳＳへ曝露されなかった健康な群（対照）において最低であった。それゆえ、大腸炎は誘導されず、炎症の特徴は示されなかった。インターロイキン（ＩＬ）−１αおよびＩＬ−１βの発現はＤＳＳ対照群において１０日目でアップレギュレートされ、それぞれ１３５および５７ｐｇ／ｍｇ全タンパク質の値に到達した（図１６Ａ、１６Ｂ）。濃度の有意な減少は１４日目で観察されなかった。他のすべてのＮｉＭＯＳ群において、１０日目でＩＬ−１αについてブランクのＮｉＭＯＳ処理群と比較した場合、２分の１未満の発現レベルが検出された。しかしながら、１４日目で、ＩＬ−１αおよびＩＬ−１βの濃度は他のすべての大腸炎群とは対照的に、ＴＮＦ−α  ＮｉＭＯＳ群において最低であり、残りの群とは重要な差はなかったが、ＤＳＳ対照と比較して、５および３倍を超えるダウンレギュレーションを示した。研究において試験されたすべての大腸炎を有する動物のうちで、１０日目で、ＩＬ−１、ＩＦＮ−γ、ＩＬ−５、ＩＬ−６、ＩＬ−１２  ｐ７０およびＩＬ−１７（図１６Ｃ〜１６Ｈ）の最低の濃度は、スクランブルＮｉＭＯＳ群において測定され、一方ＩＬ−１２ｐ７０レベルはＴＮＦ−αＮｉＭＯＳ群において最も高かった。ＤＳＳ対照は残りのサイトカインについて最も高い発現レベルであった。ＩＬ−１  αおよびβにおいて観察されるように、上で言及された炎症誘発性サイトカインのレベルは、１４日目で、大腸炎対照群および処理群よりもＴＮＦ−αＮｉＭＯＳマウスにおいて有意に低かった。研究１０日目で、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭＣＳＦ）および単球炎症性タンパク質（ＭＩＰ）−１αのレベルは、３つのＮｉＭＯＳ群すべてにおいて有意な変動を示さなかった。レベルはそれぞれ約１．８ｐｇ／ｍｇおよび１３ｐｇ／ｍｇ全タンパク質であり、一方残りの大腸炎群はこれらの値の約２．５倍の濃度に達した（図１６Ｉ）。ＧＭＣＳＦの正常な濃度は０．６５ｐｇ／ｍｇ全タンパク質と測定されたが、ＭＩＰ−１α値はアッセイの検出限界以下であったことに注目すべきである。図１６Ｋは、１４日目で両方のケモカインがすべての大腸炎群に対してＴＮＦ−αＮｉＭＯＳ群において有意に減少し、１ｍｇ全タンパク質あたり０．４５ｐｇ  ＧＭＣＳＦおよび４．５ｐｇ  ＭＩＰ−１αの値に到達したことを示す。これは、それぞれ、大腸炎群と比較して、ケモカインの１０倍および６倍以上の減少と同等であり、ブランクのＮｉＭＯＳおよびスクランブル化ＮｉＭＯＳと比較して、６倍および３倍の減少である。ブランクのＮｉＭＯＳおよびスクランブル化ＮｉＭＯＳは、これらの２つのケモカインについて同レベルを示し、ｍｇ全タンパク質あたり約２．７ｐｇ  ＧＭＣＳＦおよび１３ｐｇ  ＭＩＰ−１αの値であった。類似した結果は１４日目で単球走化性タンパク質（ＭＣＰ）−１について観察された。
【０１５５】
結腸組織の組織病理学
ヘマトキシリン・エオシン染色した大腸からの凍結切片を、急性結腸炎の誘導およびＴＮＦ−α  ＮｉＭＯＳによる炎症の治療に際して組織学的レベルで起こる変化について評価した（図１７）。対照群からの組織は炎症または健康な組織形態の破壊の兆候を持たない正常な結腸組織学を有しており、残りのサンプルに対する比較のためのベースラインとして供給された。これとは対照的に、ＤＳＳ対照、ブランクのＮｉＭＯＳを投与した群およびスクランブル化ＮｉＭＯＳを投与した群からの腸組織は、細胞浸潤、杯細胞枯渇および先に記載されるような不規則な粘膜構造を含む、炎症の明らかな兆候を示し、それは研究が進んでも実質的に軽減されなかった。一方、ＴＮＦ−αＮｉＭＯＳ群からの組織は炎症のレベルのかなりの減少を示し、上皮再生の兆候を示し、健康なベースライン組織と類似する形態的組織構造を示した。
【０１５６】
治療有効性
大腸炎を誘導したマウスの体重の変化を、様々な処理の投与後に対照と比較して評価した（図１８）。２、４および６日目で、胃および胃腸管の他の部分中の食品が処方の投与に際して投薬および分析を妨害することが公知であるので、すべての群からのマウスは一貫性のために一晩絶食させた。翌朝マウスに、ブランクのＮｉＭＯＳ、ＴＮＦ−αＮｉＭＯＳまたはスクランブル化ＮｉＭＯＳを経口投与した。絶食はすべての群において約１０％の体重喪失を引き起こしたので（図１８Ａ）、体重の正常化が起こるようにするために一日おきにマウスに投与した。対照群における体重は最終投与後に安定化し、研究の開始時の体重よりも約５％高いところで横ばいになった。ＤＳＳ対照、ブランクのＮｉＭＯＳおよびスクランブル化ＮｉＭＯＳの動物についての体重減少は、最終経口投与後に速やかに起こり、それぞれの値は１４日目で、もとの体重の１９％、２６％、および１８％の減少であった。すべての大腸炎群のうち、約８％の最も少ない体重喪失がＴＮＦ−α  ＮｉＭＯＳ群において観察された。さらに、この群において全般的な外観は健康なマウスに非常に近く、先に記述された残りの大腸炎マウス（多数の動物における急性結腸炎と関連する古典的特徴を示す）とは対照的に、大腸炎の重症の病徴はなかった。
【０１５７】
結腸長を査定し、図１４Ｂ中に報告した。対照マウスは約８．８ｃｍの結腸長を有していた。結腸長の有意な低下はＤＳＳ大腸炎の誘導に際して観察され、約６ｃｍの値であった。ブランクのＮｉＭＯＳおよびスクランブル化配列ｓｉＲＮＡ  ＮｉＭＯＳで処理したマウスも大腸炎対照と同等の結腸の短縮を示した。ＴＮＦ−α  ＮｉＭＯＳ群については、約８ｃｍへの結腸長の増加が観察され、それは残りの大腸炎群と比較してベースラインに近かった。
【０１５８】
加えて、ミエロペルオキシダーゼの活性を、活性化された好中球の浸潤に基づく炎症の指標マーカーとして測定した（図１８Ｃ、１４Ｃ）。約４ｍＵおよび３ｍＵ／ｍｇ全タンパク質が、１０日目および１４でＤＳＳ大腸炎の誘導に際してマウスにおいてそれぞれ検出され、それはブランクのＮｉＭＯＳおよびスクランブル化ＮｉＭＯＳで処理した動物の組織において観察された活性と同等であった。ＴＮＦ−α  ＮｉＭＯＳ群におけるＭＰＯ活性は両方の時間ポイントでより低く、それぞれ３．４および３．１ｍＵ／ｍｇ全タンパク質の値に達していた。１４日目では、この値は他の大腸炎マウスにおいて検出された活性と比較して有意に減少していなかったが、それは健康な対照群のベースライン値よりもわずかに低かった。１４日目で、より高い程度の炎症が、わずかに低い浸潤と共に、ＤＳＳ対照、ブランクのＮｉＭＯＳ群およびスクランブル化ＮｉＭＯＳ群において観察されることが見出された。
【０１５９】
結果要約
本開示は、ｓｉＲＮＡの経口投与を介する局所治療を可能にする生体分解性ポリマーのナノ微粒子およびマイクロ微粒子システムの安全性とＲＮＡ干渉のプラスの面を組み合わせる局所的ＩＢＤ治療を使用する。このオプションは、局所療法に起因してより低用量／より少数の用量であること、および全身投与と関連する薬剤の相対的希釈がないこと、より少ない副作用、ならびにより高い有効性を含む複数の長所を提供することができる。
【０１６０】
本明細書において開示されるのは、他の疾患タイプおよびモデルへ適用可能な、新規の生体分解性および生体適合性ポリマーベースのシステムである。ＴＮＦ−αをコードするｓｉＲＮＡは成功してカプセル化され、続いてＤＳＳ誘導性大腸炎マウスへの経口投与を行い、炎症に関与するＲＮＡサイレンシングの効率および実行可能性を評価した。この疾患モデルは最も高頻度で使用されるげっ歯類ＩＢＤモデルの１つであるので選択された。動物の飲料水中のＤＳＳを自由に供給することは、疾患の予測可能な開始および経過、ならびに死亡率のより低いリスクを提供する。
【０１６１】
経口ｓｉＲＮＡ送達の課題の中には、胃および腸内酵素によるペイロードの最小分解と腸における粒子の最大の滞留時間を保証することがある。これは、標的細胞との十分な相互作用を可能にし、サイトゾル中での効果的なサイレンシングのための細胞の取り込みおよびエンドソーム放出を支援する。この目的に対して、最も内側のナノ粒子相中で親水性に対して不安定なペイロードを運ぶＮｉＭＯＳを開発した。かかるシステムは、外側層の制御された分解によってペイロードの経時的な放出が可能である。
【０１６２】
このプラットフォームはプラスミドＤＮＡの効率的なカプセル化を示し、細胞内取り込みおよび核輸送を可能にするが、遺伝子トランスフェクションのために安全で効果的であり、ｓｉＲＮＡのカプセル化に容易に適合させることができる。さらに、タイプＢゼラチンは物理的にｐＤＮＡおよびｓｉＲＮＡをトラップし細胞内輸送の間にペイロードを保護することができるので、タイプＢゼラチンをナノ粒子処方のために選択したが；他のより一般的なシステムは表面吸着または静電複合体形成に依存してｓｉＲＮＡを運ぶ。
【０１６３】
結果は、ＮｉＭＯＳが、ＰＣＬマイクロスフェアの内部のナノ粒子内にカプセル化されたｓｉＲＮＡを、胃腸バリアおよびタンパク質分解酵素による分解から効果的に保護できることを示し；放出は腸の炎症の部位で起こると予想される。さらに、５μｍ未満のサイズを備えたマイクロスフェアは、一旦ＰＣＬマトリックス、エンドサイトーシスを可能にする胃管において豊富に存在するリパーゼによって分解されれば、腸細胞およびこれらの部位の他の細胞へのゼラチンナノ粒子の送達によって、腸における局在を促進する。それゆえ、これはｓｉＲＮＡカプセル化および送達のための効果的なシステムである。
【０１６４】
ＴＮＦ−αＮｉＭＯＳ群において、両方の時間ポイントのリアルタイムＰＣＲの分析は非常に低いレベルのマウスＴＮＦ−αを示し、それは１０日目で健康な対照マウスにおいて観察されたレベルに類似していた。これはＮｉＭＯＳのサイレンシング効果に帰着され、残りの大腸炎を有する群では観察されなかった。１４日目ですべてのＮｉＭＯＳ群においてＴＮＦ−αｍＲＮＡの発現が相対的に減少しているのは、大腸炎の誘導に起因する代償性反応をもたらす炎症誘発性サイトカインおよび抗炎症性サイトカインの複雑な相互作用におそらく帰着させることができる。ＥＬＩＳＡ結果はリアルタイムＰＣＲ分析と良好な相関性があった。残りの大腸炎を有する群と比較して、ＴＮＦ−αＮｉＭＯＳ動物において、両方の時間ポイントでのＴＮＦ−αおよび１４日目での大部分のサイトカインでより低いレベルが観察され、経口投与およびＲＮＡサイレンシングのためのＴＮＦ−αｓｉＲＮＡ  ＮｉＭＯＳの高い能力を明瞭に示すが、炎症誘発性サイトカインレベルの上昇はブランクのＮｉＭＯＳ群およびスクランブル化において検出された。ＴＮＦ−αのダウンレギュレーションに起因する多くのサイトカインのより低い発現は、疾患部位で炎症の軽減をもたらすことができた。これは、体重減少度の軽減、および非常に少数の異常しかない再生の兆候を示す結腸組織形態においても反映されていた。しかしながら、３回のＮｉＭＯＳ用量すべての投与の直後では、サイトカインのダウンレギュレーションは、ＴＮＦ−α群において同じほどには顕著ではなく、残りのＮｉＭＯＳで処理した対照マウスと比較して、発現レベルはわずかに高かった。この効果はＴＮＦ−α  ｓｉＲＮＡの特異性に帰着させることができ、それはＴＮＦ−αのサイレンシングをもたらし、短時間後に他のマーカーに対して即時効果はなかった。さらに、この群においてサイレンシングに起因するＴＮＦ−αのより低発現は、他の炎症誘発性サイトカインのダウンレギュレーションに先行した。さらに、１４日目で、疾患部位で細胞浸潤を調節し、したがって直接炎症反応に寄与するマーカーであるＧＭＣＳＦおよびＭＩＰ−１αおよびＭＣＰ−１等の特定のケモカインにおける発現減少が見られた。例えば、ＭＩＰ−１αの全身投与はマウスモデルにおいて大腸炎をかなり悪化させることが示されている。したがって、ＴＮＦ−α  ＮｉＭＯＳ群において観察されるようなＭＩＰ−１αの発現レベルの低下は、疾患の重症度の減少を示し、ＴＮＦ−αサイレンシング処理の治療有効性を示唆する。
【０１６５】
実施例５
非ウイルス性遺伝子送達システム
多重エマルジョンの最も内側の相中にカプセル化された場合、ゼラチン（非縮合ポリマー）は効果的な遺伝子トランスフェクションを引き起こすことができる。緑色蛍光タンパク質発現プラスミドＤＮＡ（ＥＧＦＰ−Ｎ１）トランスフェクション効率の評価を、マウス接着肺胞マクロファージＪ７７Ａ．１で行った。
【０１６６】
１．ゼラチンエマルジョン中ナノ粒子型（ＮｉＥ）処方の調製および特徴づけ
ゼラチンナノ粒子の調製および特徴づけ：ゼラチンナノ粒子（ＧＮＰ）を溶媒置換法によって調製した。簡潔には、１００ｍｇのタイプＢゼラチンブルーム強度２２５（Ｓｉｇｍａ  Ａｌｄｒｉｃｈ）を、１０ｍｌの水中に３７℃で溶解した。この工程後に、０．２ＭのＮａＯＨ溶液を使用して、ｐＨを７に調節した。逆溶媒としてエタノールを使用して、水溶液からゼラチン粒子を沈殿させた。エタノール水の最終的な比を４：１へ最適化した。ゼラチン溶液への添加前に、逆溶媒効果を促進するためにエタノール溶液の温度を−４０℃に下げた。
【０１６７】
強化緑色蛍光タンパク質（ＥＧＦＰ）発現プラスミドＤＮＡ（ＥＧＦＰ−Ｎ１）を、可溶化したゼラチンのうちの１％ｗ／ｗの濃度で添加した。あるいは、細胞取り込み研究のために、ローダミンコンジュゲートデキストラン（分子量７０ｋＤａ）を、物理的カプセル化のためのｐＨ調整後に、ゼラチンのうちの０．５％ｗ／ｗの最終濃度でゼラチン溶液へ添加した。沈殿させた粒子は、Ｂｅｃｋｍａｎ超遠心分離機を使用して、３５０００ｒｐｍで４５分間遠心分離した。ナノ粒子ペレットを回収し、液体窒素中に急速凍結し、脱イオン水で洗浄し、２４時間凍結乾燥して、乾燥粉末を得た。
【０１６８】
エマルジョン中ナノ粒子型（ＮｉＥ）処方の処方：水中油中水型（Ｗ／Ｏ／Ｗ）多重エマルジョンは、三相（外側の水相によって包まれた油小球中に含まれる内側の水溶性液滴）からなる三相性のシステムである。Ｗ／Ｏ／Ｗ多重エマルジョンは２工程のエマルジョン化方法によって処方された。オメガ−３多価不飽和脂肪酸およびオメガ−６多価不飽和脂肪酸中に富む超純粋サフラワー油（Ｊｅｄｗａｒｄｓ，Ｉｎｃ．、Ｑｕｉｎｃｙ、ＭＡ）を、エマルジョンの油相のために使用した。サフラワー油は高レベルのトコフェロールを含み、炎症誘発性サイトカインの腫瘍壊死因子アルファおよびインターロイキン１ベータのレベルに対して負の効果があることは報告されている。さらに、トコフェロールは酸化防止活性を発揮することが示されており、活性酸素種によって媒介される急性炎症に対する保護を提供し得る。
【０１６９】
第１の工程は、油溶性界面活性剤（Ｓｐａｎ（登録商標）８０）を使用するＷ／Ｏ一次エマルジョンの処方からなっていた。ネイキッドプラスミド（ＭＥ）またはゼラチンナノ粒子（ＮｉＥ）中にカプセル化されたプラスミドを、一次エマルジョンの水相中に取り込み、５０μｇ／ｍｌの最終濃度のＷ／Ｏ／Ｗ多重エマルジョンとした。最適化した処方における適切な量の各成分は表７中にリストされる。
【０１７０】
カプセル化されたネイキッドプラスミドＤＮＡによる安定した一次Ｗ／Ｏエマルジョン、またはＤＮＡがカプセル化されたナノ粒子による分散として安定した一次Ｗ／Ｏエマルジョンを、ＳｉｌｖｅｒｓｏｎホモジナイザーＬ４ＲＴを９０００ｒｐｍの速度で１５分間使用して形成した。一次エマルジョンの分散物を、水溶性界面活性剤Ｔｗｅｅｎ（登録商標）８０からなる追加の水相と混合した。処方を４０００ｒｐｍで４分間ホモジナイゼーションによって調製した。この工程において４０００ｒｐｍを越えるまで速度を増加させることは、多重エマルジョン小球の破壊をもたらした。
表７：最適化した一次エマルジョンおよび多重エマルジョンまたは分散処方の組成物
【表７】
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【０１７１】
対照およびプラスミドＤＮＡがカプセル化されたナノ粒子のサイズおよび表面電荷（ζ電位）値は、超遠心前または超遠心後にＭａｌｖｅｒｎのＺｅｔａｓｉｚｅｒ（登録商標）を使用して測定した。表８中に示される結果は、粒子サイズが直径１６０ｎｍ〜１７０ｎｍの範囲であり、ζ電位値が負であったことを示す。タイプＢゼラチンの等電点が４．５〜５．５の範囲であるので、形成されたナノ粒子はｐＨ７．４で正味の負電荷を有するだろう。プラスミドＤＮＡは、正に荷電した脂質およびポリマーによる静電的縮合とは対照的に、タイプＢゼラチンバイオポリマーのヒドロゲルタイプマトリックス中に物理的にカプセル化される。
表８．ブランクのタイプＢゼラチンナノ粒子およびプラスミドＤＮＡがカプセル化されたタイプＢゼラチンナノ粒子の粒子サイズおよび表面電荷値
【表８】
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＊平均±標準偏差（ｎ＝３）
【０１７２】
エマルジョン中ナノ粒子型（ＮｉＥ）の三相性システムの安定性を、加速遠心分離および異なる条件下での相分離の評価を使用して評価した。多重エマルジョンまたはＮｉＥを４０００ｒｐｍで１時間遠心分離した場合、顕微鏡による評価で観察される相分離はなかった。加えて、溶脱および放出に対する水性溶媒中での１０００倍までの希釈の効果を、Ｗ／Ｏ一次エマルジョンの中への直接投与またはナノ粒子カプセル化に際しての投与のいずれか場合について、ローダミン標識デキストランの蛍光顕微鏡検査法によって検査した。
【０１７３】
予備的な安定性研究の結果は、Ｗ／Ｏ／Ｗ処方およびＮｉＥ処方の両方は、保存に際しておよび加速遠心分離サイクル後でさえ相分離しないことを示した。加えて、図１９中に示されるように、内側の水相中の内面化したローダミン−デキストラン、またはゼラチンナノ粒子中にカプセル化された場合は、４℃で７日間のインキュベーション後でさえ外部水相中のそれらの内容物を放出しなかった。
【０１７４】
２．プラスミドＤＮＡカプセル化および安定性研究
プラスミドＤＮＡローディング研究：ＮｉＥ、ＭＥおよびＧＮＰ処方におけるｐＥＧＦＰ−Ｎ１のローディング効率を、Ｑｕａｎｔ−ｉＴ（商標）ＰｉｃｏＧｒｅｅｎ（登録商標）ｄｓＤＮＡ試薬（ＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎおよびＣａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）の使用によって評価した。ＰｉｃｏＧｒｅｅｎ（登録商標）ｄｓＤＮＡ試薬は、二本鎖ＤＮＡの定量化のために非常に感受性の高い蛍光染色法である。この目的のために、ＮｉＥおよびＭＥに、多重エマルジョンの内部相中に５０μｇ／ｍｌの最終的な濃度でｐＥＧＦＰ−Ｎ１をロードした。ＧＮＰにｐＥＧＦＰ−Ｎ１の１％ｗ／ｗをロードし、そのうちの４０ｍｇは多重エマルジョンの内部相中に取り込まれた。凍結乾燥したＧＮＰからのカプセル化されたｐＥＧＦＰ−Ｎ１の抽出は、１ｍｌのＰＢＳ（０．２ｍｇ／ｍｌのプロテアーゼを含む）により１ｍｇのゼラチン粒子を３７℃で３０分間インキュベーションすることによって行なわれた。ＭＥ処方については、ｐＥＧＦＰ−Ｎ１を、最初に体積の１／１０の５Ｍ  ＮａＣｌの添加によりエマルジョンを不安定にすること、続いて２００００ｒｐｍで３０分間遠心分離することによって抽出した。
【０１７５】
このプロセス後に、油および水の層は、２つの別の層へ分離されるようになった。油性層の廃棄後に、水層をＰＢＳで２μｇ／ｍｌの濃度へ２００倍希釈した。この希釈溶液の１０μｌをＤＮＡローディングの評価のために使用した。ＮｉＥの場合において、１ｍｌのエマルジョンを５Ｍ  ＮａＣｌの１００μｌにより脱安定化し、２００００ｒｐｍで３０分間遠心分離した。得られたＧＮＰペレットを、粒子からのＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡの放出のために５ｍｌのプロテアーゼ緩衝液により３７℃で３０分間処理した。ブランクのゼラチン粒子およびブランクの内側の水相とのエマルジョンまたは内側の水相中のブランクのゼラチン粒子は、プラスミドをロードした処方と同じ抽出処理を実行した後、対照として使用された。
【０１７６】
検量曲線を得るために、ＰＢＳ中の異なる既知の基準濃度のＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡを調製した。１００μｌのＰｉｃｏＧｒｅｅｎ（登録商標）アッセイ試薬を９６ウェルプレートのウェルへ添加し、続いて、規準溶液、サンプル溶液または対照溶液のいずれかを１００μｌ添加した。９６ウェルプレートを遮光して室温で５分間インキュベーションし、次いで、蛍光強度を、ＫＣ４ソフトウェアと共にＢｉｏ−Ｔｅｋ（Ｗｉｎｏｏｓｋｉ、ＶＴ）Ｓｙｎｅｒｇｙ（登録商標）ＨＴマイクロプレートリーダーを使用して、４８０ｎｍの励起波長および５２０の放射波長で測定した。
【０１７７】
ＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡの安定性：ゲルリタデーションアッセイを実行してＮｉＥ、ＭＥおよびＧＮＰ中にカプセル化されたプラスミドＤＮＡの安定性を評価し、処方のプロセスの間のプラスミドＤＮＡの物理的および化学的な安定性を確認した。この目的のために、Ｅ−Ｇｅｌ（登録商標）１．２％をＳＹＢＲ  Ｓａｆｅ（商標）（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）と共に使用した。ＳＹＢＲ  ＳａｆｅによるＤＮＡ染色は、変異および染色体変化を引き起こし得るエチジウムブロマイドと比較して、より安全であるという長所を有する。アガロースゲル電気泳動は、負に荷電したＤＮＡがゲルを介して正極に移動する、電場の影響下でのアガロースゲルを介するＤＮＡの移動を意味する。このプロセスにおいて、より大きなサイズのＤＮＡ断片は、より小さなサイズのＤＮＡ断片と比較して、アガロースゲルを介してより遅く移動する。ＤＮＡがゲルを介して移動するにつれて、ＤＮＡのサイズ依存性の分離を時間と共にもたらす。電気泳動のプロセス後に形成されたバンドは、青色光ＵＶトランスルミネセンス下で可視化することができる。
【０１７８】
エマルジョン化のプロセスの間に、プラスミドＤＮＡが断片へと破壊されていれば、複数のバンドがアガロースゲル上で観察されるだろう。あるいは、プラスミドＤＮＡが処方プロセスの間にスーパーコイル化形態で安定していれば、プラスミドＤＮＡの単一バンドが観察されるだろう。プラスミドＤＮＡのサイズを決定するために、スーパーコイルＤＮＡラダー（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）を使用した。この研究下では、ｐＥＧＦＰ−Ｎ１を含む３つの処方（ＮｉＥ、ＭＥおよびＧＮＰ）を、プラスミドＥＧＦＰ−Ｎ１安定性について試験した。上で言及されるように、ＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡをＮｉＥ、ＭＥおよびＧＮＰ処方から抽出し、１．２％のＥ−Ｇｅｌカセット（登録商標）（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）の１ウェルあたり２０μｌのローディング緩衝液中に１００ｎｇの濃度でロードした。
【０１７９】
ＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡローディング効率は、最初に添加したプラスミドと比較して、ロードしたプラスミドのパーセンテージとして計算された。表９中に示す結果は、保護のないネイキッドプラスミドがＭＥの内部相中に存在するＭＥ処方と比較して、プラスミドがＮｉＥ処方においてＧＮＰ中のカプセル化による保護される場合、プラスミドローディング効率が増加したことを示す。後に、ブランクのエマルジョン処方の個別の群に、エマルジョン化プロセスの両方の工程の完了後にＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡを最終的に添加した。次いで、類似のプラスミド抽出手技を実行した。これらの実験から、アッセイされたプラスミドの量は最終的に添加されたものの９９．１６％±０．３５であることが見出された。この結果から、プラスミドローディング効率の減少は高剪断ホモジナイゼーションプロセスのためであり得ることを示された。
表９：タイプＢゼラチン粒子中およびエマルジョン中ナノ粒子型処方中のプラスミドＤＮＡカプセル化効率
【表９】
2013523651.tif 000011
＊  平均±Ｓ．Ｅ（ｎ＝３）
【０１８０】
プラスミドＤＮＡ安定性についての分析のためにアガロースゲル電気泳動を使用した。図２０中に図示されるように、４．７ｋｂサイズのｐＥＧＦＰ−Ｎ１の単一バンドが３処方すべてについて観察され、ＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡは処方プロセスの全体にわたってその安定性を保持することを示す。対照処方をロードしたウェルはバンドを示さなかった。
【０１８１】
３．細胞の取り込みおよび細胞内トラフィッキング研究
細胞培養条件：ウシ胎仔血清およびペニシリン／ストレプトマイシン抗生物質を補足したダルベッコ変法イーグル培地（ＤＭＥＭ）を使用して、接着マウス肺胞マクロファージＪ７７４Ａ．１細胞（ＡＴＴＣ、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、ＭＤ）をＴ７５培養フラスコ中で培養した。細胞は所望の密度に到達するまで分裂させた。細胞カウントは、血球計数スライド上に２０μｌの細胞懸濁物混合物を置くことによって推定した。細胞生存率研究はトリパンブルー色素排除アッセイを使用して実行した。
【０１８２】
細胞の取り込みおよび局在研究：マクロファージ中のＮｉＥおよびＭＥの取り込みならびに細胞内局在を評価するために、ローダミン−デキストラン（分子量７０ｋＤａ）を、多重エマルジョンへと処方する前に、一次Ｗ／Ｏエマルジョンの内部水相中またはゼラチンナノ粒子中にカプセル化した。両方の処方において取り込まれたローダミン−デキストランの最終的な濃度は、０．００２５％（ｗ／ｖ）であった。ＮｉＥの場合において、０．５％（ｗ／ｗ）のローダミン−デキストランがカプセル化されたゼラチン粒子の４０ｍｇを、多重エマルジョンの内部相へ添加し、一方ＭＥ処方の場合においてローダミンデキストランの２５ｍｇ／ｍｌの溶液の８μｌを多重エマルジョンの内部相へ取り込ませた。
【０１８３】
約２０００００の細胞をアルコール滅菌したガラスカバースリップを含む６ウェルプレートの各ウェル中にプレーティングし、対照および試験の処方による処理前に１２時間接着させた。内側の水相中に可溶化された０．００２５％（ｗ／ｖ）のローダミン−デキストランを含む多重エマルジョン、またはゼラチン粒子中にカプセル化された０．００２５％（ｗ／ｖ）のローダミン−デキストランを含み、その粒子を次いでＷ／Ｏ／Ｗエマルジョンの内部水相へ添加した多重エマルジョンのいずれかを細胞にを与えた。ブランクの水相またはブランクのゼラチンナノ粒子により調製された多重エマルジョンを、対照として使用した。対照および試験の処方によるインキュベーションの６０分、９０分および１２０分後に、細胞を滅菌リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ、ｐＨ７．４）で洗浄し、カバーグラスをウェルから除去し、清浄なスライドグラス上にマウントした。サンプルは、ＢｉｏＱｕａｎｔ画像解析システムを装備したＯｌｙｍｐｕｓ蛍光顕微鏡により観察した。
【０１８４】
細胞内ＤＮＡトラフィッキング研究：プラスミドＥＧＦＰ−Ｎ１を含有するＮｉＥ処方の細胞の取り込みならびに細胞内輸送を理解するために、ＤＮＡトラフィッキング研究を実行した。この目的に向けて、０．５％ｗ／ｗの濃度でＧＮＰへ共有結合された蛍光色素ローダミンＢイソチオシアネート（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）を使用してＮｉＥを標識し、その結果ＮｉＥにおいて０．００２５％ｗ／ｖの最終的な色素濃度をもたらされた。ＤＮＡはＰｉｃｏＧｒｅｅｎ（登録商標）試薬（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）を使用して標識した。細胞の核はＨｏｅｃｈｓｔ（登録商標）３３２４５色素（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）を使用して染色した。約２０００００のＪ７７４Ａ．１マクロファージ細胞を６ウェルプレート中にプレーティングし、蛍光標識したＮｉＥ処方で処理した。１、２、４および６時間のＮｉＥ処方による細胞のインキュベーション後に、青色、赤色および緑色の蛍光の可視化のために４６０／５０ｎｍ、５１５／３０ｎｍおよび５６０／５５ｎｍの励起／放射波長の水銀アークランプを有するＮｉｋｏｎ  Ｅｃｌｉｐｓｅ（登録商標）ＴＥ  ２００顕微鏡を使用して、画像を得た。ＮｉＥ、プラスミドＥＧＦＰ−Ｎ１および細胞の核によって発光される異なる蛍光シグナルに基づいて、細胞の核に対するＮｉＥおよびプラスミドＥＧＦＰ−Ｎ１の局在を可視化した。類似の研究を、ローダミンをコンジュゲートしたＧＮＰ単独、および多重エマルジョンの最も内側の水相中に溶解されたローダミン標識デキストラン（分子量７００００）を含むＭＥを使用して実行した。
【０１８５】
図２１中の顕微鏡画像は、ローダミン−デキストランを含有するＷ／Ｏ／ＷエマルジョンおよびＮｉＥ処方がマウス肺胞マクロファージＪ７７４Ａ．１細胞中に迅速に内部移行されたことを示す。時間が進むにつれて、蛍光強度の増加は観察され、それは曝露の１２０分後に最大になった。
【０１８６】
異なる処方の細胞核内へのＤＮＡの送達能力を査定するために、ＤＮＡトラフィッキング研究も実行した。これらの研究の結果を図２２中に示す。ＧＮＰ、ＭＥおよびＮｉＥの細胞内部移行は、処方処理後３０分の時間ポイントで開始することが観察された。最初の３０分の時間ポイントでは、粒子は細胞核からさらに離れていた。異なる処方による処理後２および４時間の時間ポイントから開始して、粒子と核との間の距離が減少し、緑色および青色の共局在も観察された。これは、ＧＮＰ、ＭＥまたはＮｉＥ処方を介して送達されたＤＮＡが、処方のインキュベーションの２〜４時間以内に細胞の核コンパートメントに到達できることを示した。時間にともなう処方の細胞内取り込みの増加と共に、時間にともなうＤＮＡの核共局在の増加も観察され、細胞核に向けて周囲から粒子が移動することを示す。６時間のタイムポイントで、赤色は核膜腔の付近に局在し、一方大部分の緑色は青色と共局在した。これらの結果はＧＮＰ、ＭＥおよびＮｉＥが細胞の核コンパートメント内にＤＮＡを送達できたことを示す。
【０１８７】
４．レポーターＧＦＰ遺伝子導入研究
定性的な遺伝子導入研究：上記の処方がマウス肺胞マクロファージ細胞株において遺伝子トランスフェクションを引き起こすことができたかを決定するために、遺伝子トランスフェクション研究を実行した。この目的のために、プラスミドＥＧＦＰ−Ｎ１（強化緑色蛍光タンパク質（ＥＧＦＰ）を発現するレポータープラスミド）を使用した。ＮｉＥ、ＭＥおよびＧＮＰ処方について遺伝子導入研究を実行した。ＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡがＮｉＥおよびＭＥの中へ５０μｇ／ｍｌの最終的な濃度で取り込まれた。ＮｉＥの場合において、１％（ｗ／ｗ）のＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドをロードした４０ｍｇのゼラチン粒子を、Ｗ／Ｏ／Ｗ多重エマルジョンの内側の水相へ添加し、一方ＭＥの場合において、４００μｌの１ｍｇ／ｍｌのＥＧＦＰ−Ｎ１の溶液が多重エマルジョンの最も内側の水相中に取り込まれた。Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）（商業的に入手可能な正に荷電した脂質トランスフェクション試薬）によるＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡのトランスフェクションを、陽性対照として使用した。ブランクの処方で処理した細胞を陰性対照として使用した。アルコール滅菌したカバーグラスを６ウェルプレートの各ウェル中に置いた。約２０００００の接着肺胞マクロファージ細胞を、１０％  ＦＢＳおよび５％ペニシリン−ストレプトマイシンにより修飾したＤＭＥＭを使用して、６ウェルプレートの各ウェル中に接種し、１２時間にわたりカバーグラスに接着させた。この期間後に、細胞による処方の十分な取り込みを可能にするために、血清含有培地を、無血清培地を含む処方で置換し、続いて３７℃で６時間インキュベーションした。６時間後に、処方を含有する培地を、１０％  ＦＢＳおよび５％ペニシリン−ストレプトマイシン抗生物質により修飾したＤＭＥＭで置換した。サンプルを、処理後１日目日〜６日目でＢｉｏＱｕａｎｔ画像解析システムを装備したＯｌｙｍｐｕｓ蛍光顕微鏡により観察した。
【０１８８】
定量的遺伝子導入研究：上述の実験によって得られた結果をさらに確認するために、定量的遺伝子トランスフェクション研究を実行した。この目的のために、３０００００の接着肺胞マクロファージ細胞をＴ２５フラスコ中に接種した。接種１２時間後、ＮｉＥ、ＭＥ、またはＧＮＰのいずれかで上で言及したＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡを含有する処方により、細胞を処理した。１つの細胞の群を、ＥＧＦＰ−Ｎ１と複合体化された正に荷電した脂質Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）で処理し、陽性対照とした。加えて、ブランクの処方で処理した細胞を陰性対照とした。無血清ＤＭＥＭ中で６時間異なる処方により細胞を処理した後に、２４、４８、７２、９６、１２０および１４４時間にわたって３７℃で細胞をインキュベーションした。
【０１８９】
各時間ポイントの完了後に、全細胞質タンパク質を４００μｌの細胞溶解緩衝液を使用する細胞溶解によって４℃で抽出した。タンパク質レベルの定量化のために使用するまで、サンプルを−８０℃で保存した。Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  ＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃによるＢＣＡ（登録商標）（ビスシンコニン酸）タンパク質分析を、全タンパク質濃度の評価のために使用した。ＢＣＡアッセイは、Ｃｕ2+イオンとのアミノ酸残基の反応を含み、そしてそれはビウレット反応によるＣｕ1+イオンの形成をもたらす。上述の反応において形成されたＣｕ1+イオンはビスシンコニン酸と反応し、５６２ｎｍで直線状の吸光度を示す可溶性の紫色の複合体の形成をもたらす。異なる濃度のアルブミンの規準を使用して検量曲線をプロットし、各サンプルから全タンパク質濃度の評価のために使用した。全タンパク質濃度の評価後に、緑色蛍光タンパク質特異的ＥＬＩＳＡを実行した。サンドイッチＥＬＩＳＡのためのＥＬＩＳＡプレートを調製した。
【０１９０】
この目的に向けて、一次抗ＥＧＦＰモノクローナル抗体（Ｎｏｖｕｓ  Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓ、Ｌｉｔｔｌｅｔｏｎ、ＣＯ）を、１：４０００希釈で、各ウェルの底面への抗体の付着のために各ウェルへ添加した。室温での２時間のインキュベーション後に、ウェルをＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ８０で４〜５回洗浄して未結合の抗体を取り除いた。次いで非特異的結合部位をｓｔａｒｌｉｎｇ  ｓｕｐｅｒｂｌｏｃｋ（Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｍｉｌｗａｕｋｅｅ、ＷＩ）の使用によってブロッキングした。ウェルをＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ（登録商標）８０で４〜５回洗浄した。次いで、１００μｌのＧＦＰタンパク質の既知の基準濃度または細胞溶解後に得られた１００μｌの細胞上清を各ウェルへ添加し、続いて４℃で一晩インキュベーションした。次いで、任意の未結合のタンパク質を取り除くために、すべてのウェルをＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ８０で４〜５回洗浄し、次いでアルカリフォスファターゼ酵素（Ｎｏｖｕｓ  Ｂｉｏｌｏｇｉｃｓ、Ｌｉｔｔｌｅｔｏｎ、ＣＯ）を付加したウサギポリクローナル抗ＥＧＦＰ二次抗体を、各ウェル中に添加した。室温での２時間のインキュベーション後に、未結合の二次抗体分子を取り除くために、ウェルをＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ８０で再び４〜５回洗浄した。この最終的な洗浄工程後に、すべてのウェルをアルカリ性リン酸塩基質により３０分間インキュベーションした。０．５ＮのＮａＯＨの添加によって反応を停止し、次いでＫＣ４ソフトウェアと共にＢｉｏ−Ｔｅｋ（登録商標）Ｓｙｎｅｒｇｙ  ＨＴプレートリーダーを使用して４０８ｎｍで吸光度を読み取った。サンプル中のＥＧＦＰの濃度を基準検量曲線から計算した。トランスフェクション効率は、全タンパク質の１ミリグラムあたりに存在するＥＧＦＰのナノグラムとして計算した。
【０１９１】
定性的導入遺伝子発現解析：蛍光顕微鏡をＥＧＦＰ−Ｎ１遺伝子トランスフェクションの定性的な決定のために使用した。図２３（ｆ）中の顕微鏡画像は、ＮｉＥ処方で処理した細胞において最高の遺伝子トランスフェクションが観察され、ＭＥ処方およびＧＮＰの処方が続くことを示す。最大の緑色蛍光はＮｉＥ処方で処理した細胞において観察され、それは処理後２４時間で開始し、２、３および４日目でレベルは維持され、続いて５および６日目で衰退した。これらの結果は、ＮｉＥ処方が遺伝子トランスフェクションにおいては、ＭＥ処方またはＧＮＰ処方と比較してより良好だったことを示し、これはＮｉＥ処方が、処方の間（処方１ｍｌあたりのプラスミドＤＮＡのより高いローディング効率をもたらす）に加えて、エンドソーム／リソソームのコンパートメントにおけるプラスミドＤＮＡの細胞内輸送の間に、プラスミドＤＮＡのより良い保護を提供するためである。
【０１９２】
５．治療用ＩＬ−１０遺伝子導入研究
形質転換した大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）からのｍＩＬ−１０プラスミドＤＮＡの増幅、精製および単離：ｍＩＬ−１０プラスミドを形質転換した大腸菌をＩｎｖｉｖｏｇｅｎ（Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ）から得た。液体寒天ブロスは、Ｓｉｇｍａ  Ａｌｄｒｉｃｈ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）から得られた３５ｇのＬＢ寒天粉末を１Ｌの脱イオン水中に溶解することによって調製され、１２１℃で１５分間オートクレーブ滅菌することによって滅菌された。凍結乾燥大腸菌細菌ディスクを液体ブロス寒天培地中に懸濁した。次いで細菌懸濁液を固形寒天プレート上にストリークし、細菌コロニーの増殖のために３７℃で１２時間インキュベーションした。１２時間後に、滅菌接種ループを使用して単一コロニーを取り、形質転換大腸菌の選択のために１０μｇ／ｍｌアンピシリン含有液体寒天ブロス培養培地へ移した。大腸菌を含有する培養フラスコは、温度調節インキュベーターシェーカー上で３７℃で１６時間インキュベーションした。この工程の後に、プラスミドＤＮＡの抽出、精製および単離をＱｉａｇｅｎプラスミドメガキットを使用して実行した。プラスミドＤＮＡ抽出物の純度はＡ２６０／Ａ２８０値の測定によって分析した。ＤＮＡ濃度の定量化はＰｉｃｏＧｒｅｅｎ（登録商標）アッセイ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）を使用して行った。抽出したプラスミドｍＩＬ−１０のサイズの決定のために、アガロースゲル電気泳動は、未消化のプラスミドまたはＮｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  Ｂｉｏｌａｂｓ（Ｉｐｓｗｉｃｈ、ＭＡ）から得られたＮｈｅＩおよびＮｃｏＩ制限酵素で消化したプラスミドのいずれかにより実行した。
【０１９３】
ｍＩＬ−１０  ｍＲＮＡ発現についてのＲＴ−ＰＣＲ分析：逆転写酵素ポリメラーゼ連鎖反応はｍＲＮＡのレベルで遺伝子発現を同定するための技法である。ｍＲＮＡのレベルでＩＬ−１０発現を定性的に分析するために、２０００００のＪ７７４Ａ．１細胞を、ＮｉＥ、ＭＥ、ＧＮＰ、Ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）またはネイキッドＩＬ−１０プラスミドにより６、１２および２４時間インキュベーションした。各時間ポイントの完了後に、全細胞のＲＮＡをＨｉｇｈ  Ｐｕｒｅ  ＲＮＡ  Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ  Ｋｉｔ（Ｒｏｃｈｅ、Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ、ＩＮ）を使用してキットプロトコルに従って細胞から抽出した。単離したＲＮＡの定量化はＮａｎｏＤｒｏｐ（登録商標）２０００ｃ装置（Ｔｈｅｒｍｏ−Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ、ＤＥ）を使用して実行した。単離したＲＮＡ画分を、Ｏｎｅ  Ｓｔｅｐ  ＲＴ−ＰＣＲキット（Ｑｉａｇｅｎ、Ｖａｌｅｎｃｉａ、ＣＡ）を使用し、ＩＬ−１０およびβ−アクチンについての選択的なプライマーを使用して、キットのメーカープロトコルに従って、最終的なＰＣＲ産物に転換した。ＩＬ−１０  ｍＲＮＡのｃＤＮＡへの転換のために使用したフォワードプライマーおよびリバースプライマーの配列は、それぞれ５’−ＣＣＡＧＣＣＴＴＡＴＣＧＧＡＡＡＴＧＡ−３’および５’−ＴＣＴＣＡＣＣＣＡＧＧＧＡＡＴＴＣＡＡＡ−３’であった。β−アクチンｍＲＮＡのｃＤＮＡへの転換のために使用したフォワードプライマーおよびリバースプライマーの配列は、それぞれ５’−ＧＴＴＡＣＣＡＡＣＴＧＧＧＡＣＧＡＣＡ−３’および５’−ＴＧＧＣＣＡＴＣＴＣＣＴＧＣＴＣＧＡＡ−３’であった。各反応のために添加した鋳型ＲＮＡの量は１μｇであった。ｃＤＮＡ増幅のためのＰＣＲサイクラー設定を表１０中に示す。最終的なＰＣＲ産物を１．２％アガロースＥ−ｇｅｌｓ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、ＣＡ）で泳動し、ｃＤＮＡバンドの可視化のためにＫｏｄａｋ  ＵＶ／ＮＩＲ画像ステーションを使用した。
表１０：ＲＴ−ＰＣＲ実験のためのＰＣＲサイクラー設定
【表１０】
2013523651.tif 000012
【０１９４】
ＥＬＩＳＡによる定量的ｍＩＬ−１０トランスフェクション研究：ネイキッドプラスミドｍＩＬ−１０、ＮｉＥ、ＭＥまたはＧＮＰによって引き起こされたｍＩＬ−１０遺伝子発現の定量的分析のために、ｍＩＬ−１０特異的ＥＬＩＳＡを実行した。この目的に向けて、２０００００のＪ７７４Ａ．１細胞を６ウェルプレートの異なるウェル中にプレーティングした。細胞接着後、細胞を無血清ＤＭＥＭ培地中でｍＩＬ−１０含有処方で６時間処理した。６時間後、細胞培養培地を、１０％  ＦＢＳを含有する新鮮なＤＭＥＭ培地で完全に置換した。細胞培養上清を、１２時間、２４時間、４８時間、７２時間および９６時間の時間ポイントで回収し、−８０℃で保存した。
【０１９５】
ｍＩＬ−１０タンパク質ための呈色サンドイッチＥＬＩＳＡプレートをＲ＆Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓ（Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ、ＭＮ）から購入した。ＥＬＩＳＡアッセイをキットプロトコルに従って実行した。簡潔には、５０μｌのアッセイ希釈液および５０μｌの基準、サンプルまたは対照を、異なるウェルへ添加した。緩やかな混合後に、プレートをプレートシーラーにより覆い、２時間インキュベーションした。２時間後に、溶液を各ウェルから吸引し、ウェルを１×洗浄緩衝液で５回洗浄した。この工程後に、ホースラディッシュペルオキシダーゼをコンジュゲートした１００μｌの二次抗体を各ウェルへ添加し、２時間インキュベーションした。２時間後に、再び各ウェルから内容物を吸引し、ウェルを１×洗浄緩衝液で５回洗浄した。この工程後に、過酸化水素およびテトラメチルベンジジンを含有する１００μｌの基質溶液を各ウェルの中へ添加し、遮光して３０分間インキュベーションした。３０分の終わりで、希塩酸を含有する停止溶液を添加し、ＫＣ４ソフトウェアを使用し、ＢｉｏＴｅｋ  Ｓｙｎｅｒｇｙ  ＨＴ（Ｗｉｎｏｏｓｋｉ、ＶＴ）プレートリーダーを使用して、５４０ｎｍの補正波長と共に４５０ｎｍの吸光度を読み取った。
【０１９６】
定量的導入遺伝子発現研究：ＥＧＦＰ−Ｎ１遺伝子トランスフェクションの定量的評価はＥＧＦＰ−Ｎ１  ＥＬＩＳＡを使用して実行した。図２４中に示される結果は、ＮｉＥ処方が遺伝子トランスフェクションにおいて最も効果的であり、ＭＥ処方およびＧＮＰ処方が続くことを示す。ＮｉＥはトランスフェクション後２４時間で遺伝子トランスフェクションの最高レベルを示し、４日目までレベルを維持し、続いて５および６日目で衰退した。
【０１９７】
６．ＩＬ−１０遺伝子トランスフェクション媒介性の炎症誘発性サイトカインの抑制
ＩＬ−１０遺伝子トランスフェクション媒介性のＴＮＦαおよびＩＬ１β等の炎症誘発性サイトカインの抑制を評価するために、ＬＰＳ刺激研究を実行した。この目的に向けて、２０００００のＪ７７４Ａ．１細胞を６ウェルプレートの異なるウェル中にプレーティングした。細胞接着後、細胞を無血清ＤＭＥＭ培地中でｍＩＬ−１０含有処方で６時間処理した。６時間後、細胞培養培地を、１０％  ＦＢＳを含有する新鮮なＤＭＥＭ培地で完全に置換した。細胞培養上清を、１２時間、２４時間および４８時間の時間ポイントで回収した。各時間ポイントの６時間前に、リポポリサッカライド（ＬＰＳ）を、各ウェル中で１００ｎｇ／ｍｌの最終的な濃度で各ウェルへ添加した。各時間ポイントでのＴＮＦαおよびＩＬ１βｍＲＮＡのレベルの検出のためにＲＴ  ＰＣＲ分析を使用した。Ｒ＆Ｄ  ｓｙｓｔｅｍｓ（Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ、ＭＮ）から得られたＴＮＦαおよびＩＬ１β特異的ＥＬＩＳＡアッセイプレートを、各時間ポイントでの細胞培養上清中のＴＮＦαおよびＩＬ１βタンパク質レベルの検出のために使用した。
【０１９８】
各時間ポイントの完了後に、全細胞のＲＮＡをＨｉｇｈ  Ｐｕｒｅ  ＲＮＡ  Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ  Ｋｉｔ（Ｒｏｃｈｅ、ドイツ）を使用して、キットプロトコルに従って細胞から抽出した。単離したＲＮＡの定量化はＮａｎｏＤｒｏｐ（登録商標）２０００ｃ装置（Ｔｈｅｒｍｏ−Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、Ｄｅｌａｗａｒｅ）を使用して実行した。単離したＲＮＡ画分は、Ｏｎｅ  Ｓｔｅｐ  ＲＴ−ＰＣＲキット（Ｑｉａｇｅｎ、Ｖａｌｅｎｃｉａ、ＣＡ）を使用し、ＴＮＦαおよびＩＬ１βについての選択的なプライマーおよびβ−アクチンを使用して、キットのメーカープロトコルに従って、最終的なＰＣＲ産物に転換した。ＴＮＦαのｃＤＮＡへのｍＲＮＡの転換のために使用したフォワードプライマーおよびリバースプライマー配列は、それぞれ５’−ＣＡＴＧＡＧＣＡＣＡＧＡＡＡＧＣＡＴＧＡＴＣ−３’および５’−ＣＣＴＴＣＴＣＣＡＧＣＴＧＧＡＡＧＡＣＴ−３’であった。ＩＬ−１βのｃＤＮＡへのｍＲＮＡの転換のために使用したフォワードプライマーおよびリバースプライマー配列は、それぞれ５’−ＧＧＣＴＧＣＴＴＣＣＡＡＡＣＣＴＴＴＧＡ−３’および５’−ＧＣＴＣＡＴＡＴＧＧＧＴＣＣＧＡＣＡＧＣ−３’であった。各反応のために添加した鋳型ＲＮＡの量は１μｇであった。ｃＤＮＡ増幅のためのＰＣＲサイクラー設定を表１０中に示す。最終的なＰＣＲ産物を１．２％アガロースＥ−ｇｅｌｓ（登録商標）（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）で泳動し、ｃＤＮＡバンドの可視化のためにＫｏｄａｋ  ＵＶ／ＮＩＲ画像ステーションを使用した。
【０１９９】
ＴＮＦαおよびＩＬ１βのＥＬＩＳＡ分析：ＥＬＩＳＡアッセイをキットプロトコルに従って実行した。簡潔には、５０μｌのアッセイ希釈液および５０μｌの基準、サンプルまたは対照を、両方のプレート中の異なるウェルへ添加した。緩やかな混合後に、プレートをプレートシーラーにより覆い、２時間インキュベーションした。２時間後に、溶液を各ウェルから吸引し、ウェルを１×洗浄緩衝液で５回洗浄した。この工程後に、ホースラディッシュペルオキシダーゼをコンジュゲートした１００μｌの二次抗体を各ウェルへ添加し、２時間インキュベーションした。２時間後に、再び各ウェルから内容物を吸引し、ウェルを１×洗浄緩衝液で５回洗浄した。この工程後に、過酸化水素およびテトラメチルベンジジンを含有する１００μｌの基質溶液を各ウェルの中へ添加し、遮光して３０分間インキュベーションした。３０分の終わりで、希塩酸を含有する１００μｌの停止溶液を両方のプレートへ添加し、ＫＣ４ソフトウェアを使用し、ＢｉｏＴｅｋ  Ｓｙｎｅｒｇｙ  ＨＴプレートリーダーを使用して、５４０ｎｍの補正波長と共に４５０ｎｍの吸光度を読み取った。
【０２００】
形質転換された大腸菌からのｍＩＬ−１０プラスミドＤＮＡの単離：プラスミド抽出物の純度の決定のために、Ａ２６０／Ａ２８０比を決定した。すべての抽出物についてのＡ２６０／２８０値は１．９〜２．０のウィンドウ内にあり、プラスミド抽出物が少しもまたはごくわずかしかタンパク質混入物を含有しないことを示した。さらに、プラスミド抽出物を１．２％アガロースＥ−ｇｅｌｓ（登録商標）で泳動した場合、約３．７キロ塩基対のサイズの完全な形のＤＮＡバンドが観察された。抽出したプラスミド中のＩＬ−１０導入遺伝子の存在を決定するために、プラスミド抽出物を２つの制限酵素ＮｈｅＩおよびＮｃｏＩで消化した。消化したプラスミドを１．２％アガロースＥ−ｇｅｌで泳動した場合、ＩＬ−１０形質転換大腸菌の供給業者によって記載されるように（図２５）、ＩＬ−１０導入遺伝子のサイズと相関した約５００ｂｐｓのバンドが観察された。これらの結果は、ｍＩＬ−１０プラスミドが、安定した形態のタンパク質またはゲノム核酸不純物がないように単離および精製されたことを示す。
【０２０１】
ｍＩＬ−１０  ｍＲＮＡ発現のためのＲＴ−ＰＣＲ分析：ＩＬ−１０  ＲＴ−ＰＣＲから得られた結果は、異なる時間ポイントで、ＩＬ−１０  ｍＲＮＡはＮｉＥ処方で処理した細胞において最高の発現であり、ＭＥ処方およびＧＮＰ処方が続くことを示す。Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ（標準的なトランスフェクション試薬）と比較して、ＮｉＥはより高いＩＬ−１０  ｍＲＮＡ発現を示した。結果を図２６中に示す。
【０２０２】
ＥＬＩＳＡによる定量的ｍＩＬ−１０遺伝子導入研究：ｍＩＬ−１０  ＥＬＩＳＡから得られた結果は、ＩＬ−１０  ＲＴ−ＰＣＲ実験（ＮｉＥ処方が最高の遺伝子トランスフェクション効率を示し、ＭＥおよびＧＮＰが続く）と相関していた。ＥＬＩＳＡ結果を図２７中に図示する。
【０２０３】
ＴＮＦαおよびＩＬ１βのＲＴ−ＰＣＲ分析：ＬＰＳ誘導性の炎症誘発性サイトカインの発現および放出は、ＲＴ−ＰＣＲ分析を使用して評価した。１２時間および４８時間の時間ポイントの終わりで、ＩＬ−１０の遺伝子含有処方で前処理した細胞におけるＴＮＦαおよびＩＬ１βのレベルは、無処理細胞と比較してより低かった。試験された異なる処方の中で、ｍＩＬ−１０遺伝子トランスフェクションにおいて最も効果的なＮｉＥ処方はＴＮＦαおよびＩＬ１βの遺伝子転写を最高に抑制し、ＭＥ処方およびＧＮＰ処方が続くことを示した。この研究の結果を図２８中に示す。
【０２０４】
ＥＬＩＳＡによるＴＮＦαおよびＩＬ１βの発現解析：ＴＮＦαおよびＩＬ１βについてのＥＬＩＳＡを、ＩＬ−１０をトランスフェクションしたＪ７７４Ａ．１細胞に対するＬＰＳ刺激後の異なる時間ポイントでの細胞培養上清中のこれらのサイトカインのレベルを定量するために実行した。結果（図２９および３０）は、ＮｉＥで処理した細胞においてＴＮＦαおよびＩＬ１βの両方を最高に抑制し、ＭＥ処方およびＧＮＰ処方が続くことを示した。これらの結果は、ＴＮＦαおよびＩＬ１β等の炎症誘発性サイトカインの発現を抑制できる場合には、ＮｉＥを介して送達されたＩＬ−１０プラスミドが治療活性を有することを示す。
【０２０５】
この研究の結果は、Ｗ／Ｏ／Ｗ多重エマルジョンの最も内側の水相中にＤＮＡ含有固体ゼラチンナノ粒子をカプセル化してＮｉＥ処方を形成できることを示す。ＥＧＦＰ−Ｎ１プラスミドＤＮＡまたはｍＩＬ−１０プラスミドＤＮＡをロードしたＮｉＥ処方は、Ｊ７７４Ａ．１のマウス接着肺胞マクロファージ細胞株において持続的遺伝子トランスフェクションを生ずることができた。さらに、ＥＧＦＰ−Ｎ１またはｍＩＬ−１０がＭＥまたはＧＮＰ中にカプセル化されたプラスミド、またはＬｉｐｏｆｅｃｔｉｎ（登録商標）（陽イオン性脂質ベースのトランスフェクション試薬）と複合体化されたプラスミドと比較して、ＥＧＦＰ−Ｎ１またはｍＩＬ−１０がＮｉＥ中にカプセル化されたたプラスミドは、優れた遺伝子トランスフェクション効率を有することが見出された。さらに、ＮｉＥを介して送達されたｍＩＬ−１０は、ＬＰＳで刺激されたＪ７７４Ａ．１細胞において、炎症誘発性サイトカインＴＮＦαおよびＩＬ１βのレベルをダウンレギュレートできたことが確認された。
【０２０６】
同等物
当業者は、単なるルーチンの実験作業を使用するだけで、本明細書において特に記載された特定の実施形態に対する多数の同等物を認識または確認することができよう。かかる同等物は、以下の請求項の範囲内に包含されることが意図される。
【０２０７】
参考文献
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【図２Ｂ】
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【図２Ｃ】
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【図３Ｃ】
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【図５】
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【図６】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３Ｂ】
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【図１４Ａ】
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【図１４Ｂ】
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【図１５Ａ】
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【図１５Ｂ】
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【図１６Ａ】
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【図１６Ｂ】
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【図１６Ｃ】
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【図１６Ｅ】
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【図１６Ｇ】
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【図１６Ｈ】
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【図１６Ｉ】
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【図１６Ｋ】
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【図１８Ａ】
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【図１８Ｂ】
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【図１８Ｃ】
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【図１９Ａ】
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【図１９Ｂ】
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【図１９Ｃ】
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【図１９Ｄ】
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【図２１Ａ】
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【図２１Ｂ】
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【図２１Ｃ】
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【図２１Ｄ】
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【図２１Ｅ】
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【図２１Ｆ】
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【図２１Ｇ】
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【図２１Ｈ】
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【図２１Ｉ】
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【図２１Ｊ】
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【図２１Ｋ】
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【図２１Ｌ】
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【図２３Ａ】
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【図２３Ｂ】
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【図２３Ｃ】
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【図２３Ｄ】
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【図２３Ｅ】
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【図２３Ｆ】
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【図２４】
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【図２７】
2013523651.tif 000065
【図２９】
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【図３０】
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【図１】
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【図３Ａ】
2013523651.tif 000069
【図３Ｂ】
2013523651.tif 000070
【図４】
2013523651.tif 000071
【図７】
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【図１３Ａ】
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【図１４Ｃ】
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【図１７】
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【図２０】
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【図２２】
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【図２５】
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【図２６】
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【図２８】
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【国際調査報告】
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