(57)【要約】本発明は、少なくとも以下の工程を含む、低分子標的核酸を含む標的核酸を試料から単離するための方法に関する：ａ）上記試料をカラムを通過させることにより、上記カラムに含まれる核酸結合固相に対して、低分子標的核酸を含む標的核酸の少なくとも一部を結合させる工程、ｂ）上記標的核酸を上記固相に結合させたまま、上記核酸結合固相上で酵素処理および／または化学処理を行う工程、ｃ）工程ｂ）の上記処理の間に上記固相から遊離した上記低分子標的核酸の少なくとも一部をフロースルーとして回収する工程、ｄ）含まれる上記低分子標的核酸を、上記核酸を結合する固相に結合させるために、回収溶液と混合された小さい標的核酸を含む上記フロースルーを、上記核酸を結合する固相と接触させる工程、ｅ）必要に応じて溶離を行う工程。【特許請求の範囲】
【請求項１】
低分子標的核酸を含む標的核酸を試料から単離する方法であって、少なくとも以下の工程：
ａ）該試料をカラムを通過させることにより、該カラムに含まれる核酸結合固相に対して、低分子標的核酸を含む該標的核酸の少なくとも一部を結合させる工程、
ｂ）該標的核酸を該核酸結合固相に結合させたまま、該固相上で酵素処理および／または化学処理を行う工程、
ｃ）工程ｂ）の該処理の間に該固相から遊離した該低分子標的核酸の少なくとも一部をフロースルーとして回収する工程、
ｄ）含まれる低分子標的核酸を核酸結合固相に結合させるために、回収溶液と混合した該低分子標的核酸を含む該フロースルーを該核酸結合固相と接触させる工程、
ｅ）必要に応じて溶離を行う工程
を含む、方法。
【請求項２】
工程ａ）で使用される核酸結合固相がメンブレンである、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
工程ｃ）において、回収溶液が前記カラムを通過させられ、低分子標的核酸と前記回収溶液を含む前記フロースルーが回収され、そして、好ましくは、該フロースルーに含まれる低分子標的核酸を、工程ａ）で使用された前記核酸結合固相に対して再度結合させるために、工程ｄ）で使用される、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
低分子標的核酸を含む標的核酸を試料から単離する方法であって、少なくとも以下の工程：
ａ）核酸結合メンブレンに該試料を通過させることにより、該メンブレンに対して、低分子標的核酸を含む該標的核酸の少なくとも一部を結合させる工程、
ｂ）該標的核酸を該メンブレンに結合させたまま、該メンブレン上に水溶液を含ませる処理を行う工程、
ｃ）回収溶液を該メンブレンを通過させて、低分子標的核酸を含むフロースルーを回収する工程、
ｄ）含まれる該低分子標的核酸を工程ａ）の該メンブレンに再度結合させるために、該フロースルーを該メンブレンに通過させる工程、
ｅ）必要に応じて、該メンブレンから該低分子核酸を含む該標的核酸を溶離させる工程
を含む、方法。
【請求項５】
水溶液の使用を含み、そしてヌクレアーゼ消化工程、タンパク質消化工程、リパーゼ消化工程、および標的核酸の修飾工程からなる群より選択される酵素処理および／または化学処理が工程ｂ）において行われる、請求項１〜４の１つ以上に記載の方法。
【請求項６】
工程ｂ）において行われる処理に、前記核酸結合固相からの前記標的核酸、特に、前記低分子標的核酸の少なくとも部分的な遊離を生じる条件が含まれる、請求項１〜５の１つ以上に記載の方法。
【請求項７】
請求項１〜６の１つ以上に記載の方法であって、前記回収溶液が以下の特徴：
ａ）低分子核酸を工程ｄ）で使用される前記核酸結合固相に結合させるのに適している条件を提供する；
ｂ）工程ａ）で使用される低分子核酸を結合させるための結合条件よりも強い該結合条件を提供する；
ｃ）工程ｄ）で使用される前記核酸結合固相に低分子ＤＮＡを結合させるのに適している条件を提供する；
ｄ）工程ｄ）で使用される前記核酸結合固相に低分子ＲＮＡを結合させるのに適している条件を提供する；
ｅ）少なくとも１種類のカオトロピック剤および／または少なくとも１種類のアルコールを含む；ならびに／あるいは
ｆ）少なくとも１種類のカオトロピック剤を０．１〜６Ｍ、好ましくは０．５〜６Ｍの濃度で含み、そして／またはエタノールおよびイソプロパノールからなる群より選択される少なくとも１種類のアルコールを少なくとも５０％ｖ／ｖの濃度で含む、
のうちの１つ以上を有し
ならびに／あるいは、
以下の特徴：
ａ）工程ｄ）で使用される前記核酸結合固相に低分子核酸を結合させるのに適している；
ｂ）工程ａ）で使用される低分子核酸の結合のための結合条件よりも強い該結合条件を提供する；
ｃ）工程ｄ）で使用される前記核酸結合固相に低分子ＲＮＡを結合させるのに適している；
ｄ）工程ｄ）で使用される前記核酸結合固相に低分子ＤＮＡを結合させるのに適している；
ｇ）少なくとも１種類のカオトロピック剤および／または少なくとも１種類のアルコールを含む；および／または
ｈ）少なくとも１種類のカオトロピック剤を０．１〜６Ｍ、好ましくは、０．５〜６Ｍの濃度で含み、そして／またはエタノールおよびイソプロパノールからなる群より選択される少なくとも１種類のアルコールを、少なくとも５０％ｖ／ｖの濃度で含む、
のうちの１つ以上を有する結合条件が工程ｄ）において使用される、方法。
【請求項８】
前記標的核酸がＲＮＡである場合には、工程ｂ）においてＤＮａｓｅ消化が行われ、あるいは、前記標的核酸がＤＮＡである場合には、ＲＮａｓｅ消化が行われる、請求項１〜７の１つ以上に記載の方法。
【請求項９】
工程ａ）において、以下の特徴の１つ以上を有している条件下で結合が行われる、請求項１〜８の１つ以上に記載の方法：
ａ）該条件は、全核酸を前記核酸結合固相に結合させるのに適している；
ｂ）該条件は、低分子ＲＮＡを含む全ＲＮＡを前記核酸結合固相に結合させるのに適している；
ｃ）該条件は、低分子ＤＮＡを含む全ＤＮＡを前記核酸結合固相に結合させのに適している；および／または
ｄ）結合が、少なくとも１種類のカオトロピック剤および／または少なくとも１種類のアルコールの存在下で起こる。
【請求項１０】
前記試料が、工程ａ）の前または工程ａ）の間に溶解させられるかあるいは処理される、請求項１〜９の１つ以上に記載の方法。
【請求項１１】
前記試料に低分子核酸および／または分解した核酸が含まれる、工程１〜１０の１つ以上に記載の方法。
【請求項１２】
前記試料が、細胞、臨床試料、体液、組織、血液、血液生成物、植物、細菌、ウイルス、真菌、ヒトおよび動物試料材料、環境試料、単離された核酸、溶解物、溶離物、固定された試料、架橋された試料、およびＦＦＰＥ試料から選択される、ならびに／あるいは、これらからなる群より選択される試料に由来する、請求項１〜１１の１つ以上に記載の方法。
【請求項１３】
メンブレン上での処理の間に核酸結合メンブレンから遊離した回収された低分子核酸を再度結合させるための、低分子核酸を該メンブレンに結合させることができる回収溶液の使用。
【請求項１４】
前記低分子核酸の少なくとも一部が、前記メンブレンから遊離した後に該メンブレンの下に存在する、請求項１３に記載の使用。
【請求項１５】
前記回収溶液が請求項７で定義した特徴の１つ以上を有している、請求項１３または１４に記載の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、試料から低分子標的核酸を含む標的核酸を単離するための方法に関し、特に、試料から高収量で低分子標的核酸を効率よく単離するための手段を提供する。
【背景技術】
【０００２】
様々な組織、体液、および生物由来の１０００もしくは５００ヌクレオチド程度またはそれ未満の低分子核酸の研究は、非常に関心がもたれている分野であり、将来も依然として関心がもたれることは疑いがない。低分子核酸には、具体的に、低分子ＲＮＡ（例えば、とりわけｍｉｃｒｏ  ＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）および低分子干渉ＲＮＡ分子（これらはいずれも、遺伝子の発現に対して強力な作用を有し得る））が含まれるが、これに限定されるわけではない。さらに、ｍＲＮＡおよびｒＲＮＡプロセシングに関与している他の低分子核ＲＮＡおよび低分子核小体ＲＮＡ（例えば、ｓｎＲＮＡおよびｓｎｏＲＮＡ）、さらには低分子ＤＮＡ分子にもまた関心がある。さらに、それぞれの保存によりＤＮＡおよび／またはＲＮＡの完全性が損なわれ得るため、１０００もしくは５００ヌクレオチドまたはそれ未満の長さを有している核酸が、例えば、ホルマリン固定され、パラフィンに包埋された試料（ＦＦＰＥ試料）のような特定の試料に分解産物として含まれることが多い。
【０００３】
個別の低分子核酸に関心が高まりつつあるが、標準的な単離手順は、低分子核酸の単離を容易にするために、そして特に、低分子核酸の収量を改善するために改良されている。ＤＮＡまたはＲＮＡを単離するための標準法として使用される既知のプロトコールとしてのこの単離手順は、低分子核酸が標準的な方法を使用する単離プロセスの間に効率よく捕捉されない場合が多く、溶離してしまうため、低分子核酸の単離については通常は理想的ではない。したがって、標準的な手順を使用して試料から単離された標的核酸には、低分子核酸が結合しないか、または核酸単離手順の間に消失してしまうかのいずれかの理由により、通常は、十分な量の低分子標的核酸は含まれず、よって、満足できる収量が得られない。したがって、単独または（例えば、全ＲＮＡもしくは全ＤＮＡのような）単離された全標的核酸の一部としてのいずれかの低分子標的核酸の効率的な単離のための改良された技術が必要である。
【０００４】
低分子核酸の単離のために最適化された方法は、フェノール／クロロホルム抽出と、段階的なアルコール分画に頼る場合が多い。１つの実施形態にしたがうと、ＲＮＡが水相中で濃縮され、その後に続いて、例えば、少なくとも１種類のアルコールを添加し、ＲＮＡをメンブレンに結合させることにより、ＲＮＡがこれから単離される。ここでは、単離された全ＲＮＡ中の低分子ＲＮＡを効率よく捕捉することもまた重要である。
【０００５】
さらに、カオトロピック剤、高濃度のアルコール、および、例えば、シリカメンブレンのような核酸結合メンブレン（ｎｕｃｌｅｉｃ  ａｃｉｄ  ｂｉｎｄｉｎｇ  ｍｅｍｂｒａｎｅ）を含む核酸を結合するカラムの使用を含む、低分子ＲＮＡのような低分子核酸を単離するための方法が開発されている。それぞれの低分子ＲＮＡが試料中に含まれる場合には、これらのプロトコールを用いて単離された全ＲＮＡに低分子ＲＮＡが含まれる。メンブレンによる単離プロトコールはそれぞれ、様々な試料から単独または全標的核酸の一部としてのいずれかで低分子核酸を単離するために特に適している。
【０００６】
しかし、核酸を結合させるためにカラムによる固相（例えば、カラムに含まれる核酸結合メンブレン）を使用する多くの核酸単離手順には、１種類以上の水溶液を含む１回以上の処理工程が含まれ、その間、標的核酸は核酸を結合する相に結合させられたままである（例えば、「メンブレン上での（ｏｎ−ｍｅｍｂｒａｎｅ）」または「オンカラム（ｏｎ−ｃｏｌｕｍｎ）」処理工程とも呼ばれる）。核酸を核酸結合固相（ｎｕｃｌｅｉｃ  ａｃｉｄ  ｂｉｎｄｉｎｇ  ｓｏｌｉｄ  ｐｈａｓｅ）に結合させたまま行われるそれぞれの処理工程の例には、例えば、タンパク質消化工程およびＤＮａｓｅ処理またはＲＮａｓｅ処理のようなヌクレアーゼ消化工程が含まれるが、これらに限定されるわけではない。上記処理は、結合した標的核酸の少なくとも一部、および特に、低分子標的核酸を、上記処理工程の間に核酸結合固相から遊離させる作用を有するので、それぞれの処理工程の実行により、標的核酸の収量が減少し、特に、低分子標的核酸の収量が減少することが明らかになっている。したがって、その後の洗浄または処理工程での遊離した核酸の消失を防ぐためには、例えば、遊離した可能性がある標的核酸の核酸を結合する相に対する結合を回復させるための処理が行われた後に、適切な結合条件を回復させるカオトロピック溶液（例えば、カオトロピック洗浄溶液）を用いることが、先行技術において知られている。それぞれの回復工程は、例えば、特許文献１に記載されており、また、多くの市販されている核酸単離キットにおいても使用されている。
【０００７】
しかし、遊離した可能性がある標的核酸の核酸結合固相への結合を回復させるためのそれぞれの回復工程を行っても、低分子標的核酸が最終的には単離プロセスの間に消失することが明らかになった。これは、核酸を結合させるためにカラムによる固相を使用して核酸を単離する場合、例えば、核酸結合メンブレンを含むカラムを使用する場合に特にそのとおりである。したがって、単離された標的核酸中の低分子核酸の収量を増大させるためにはなおも改良が必要である。
【０００８】
したがって、本発明の目的は、低分子標的核酸の収量が増大した、低分子標的核酸を含むかまたは低分子核酸から構成され得る少なくとも１種類の標的核酸を単離するための方法を提供することである。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００９】
【特許文献１】国際公開第９８／５９０７６号
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明は、カラムによる、核酸結合固相を用いる場合には、例えば、核酸を、核酸結合固相に結合させたまま酵素処理を行った後に、回復（ｒｅｓｔｏｒａｔｉｏｎ）バッファまたは結合を促進する洗浄バッファを用いることでは、上記処理の間に遊離した低分子標的核酸を再度捕捉し、これにより満足できる収量で単離するためには不十分であるという研究結果に基づく。続いて、これを、核酸結合メンブレンを固相として使用する好ましい実施形態に基づいて説明する。理論に束縛されずに、メンブレン上での処理の間に遊離した低分子標的核酸の少なくとも一部はメンブレンの下、および／またはメンブレンの孔のはるか下方に存在すると推定される。それぞれの「漏れた（ｅｓｃａｐｅｄ）」低分子標的核酸は、これらがメンブレンの核酸を結合する領域と接触せず、したがってその後の処理工程で消失するため、回復バッファ（または結合を促進する洗浄バッファ）を用いることによっても効率よく再度結合させることができない。同様の問題は、カラムによる、他の核酸結合固相を使用する場合、特に、核酸結合固相だけが、カラム中に例えば薄層を形成する場合に生じる。本発明は、これらの「漏れた」低分子標的核酸を回収すること、およびこれらを核酸結合固相に結合させることを教示する。この結果、これらの「漏れた」低分子標的核酸（これらは先行技術の方法を実施する場合には失われる）もまた、標的核酸の単離プロセスにおいて効率よく捕捉することができ、これにより、単離された標的核酸における低分子標的核酸の収量が増大する。したがって、本発明による方法により、改善された収量での低分子標的核酸の単離が可能となり、これにより、先行技術で公知である方法を上回るかなりの利点が得られる。
【００１１】
したがって、第１の態様によっては、試料から低分子標的核酸を含む少なくとも１種類の標的核酸を単離するための方法が提供され、上記方法には少なくとも以下の工程が含まれる：
ａ）試料をカラムを通過させることにより、上記カラムに含まれる核酸結合固相に、低分子標的核酸を含む標的核酸の少なくとも一部を結合させる工程、
ｂ）上記標的核酸を上記核酸結合に結合させたまま、該固相上で酵素処理および／または化学処理を行う工程、
ｃ）工程ｂ）の上記処理の間に上記固相から遊離した上記低分子標的核酸の少なくとも一部をフロースルーとして回収する工程、
ｄ）含まれる低分子標的核酸を核酸結合固相に結合させるために、回収溶液と混合した上記低分子標的核酸を含む上記フロースルーを上記核酸結合固相と接触させる工程、
ｅ）必要に応じて溶離を行う工程。
【００１２】
１つの態様によると、試料から低分子標的核酸を含む少なくとも１種類の標的核酸を単離するための方法が提供され、上記方法には少なくとも以下の工程が含まれる：
ａ）試料を核酸結合メンブレンを通過させることにより、上記メンブレンに、低分子標的核酸を含む標的核酸の少なくとも一部を結合させる工程、
ｂ）標的核酸を上記メンブレンに結合させたまま、メンブレン上に水溶液を含ませる（ｉｎｖｏｌｖｉｎｇ）処理を行う工程、
ｃ）回収溶液を上記メンブレンを通過させて、低分子標的核酸を含むフロースルーを回収する工程、
ｄ）含まれる上記低分子標的核酸を上記メンブレンに再度結合させるために、上記フロースルーを、工程ａ）の上記メンブレンを通過させる工程、
ｅ）必要に応じて、上記メンブレンから低分子核酸を含む標的核酸を溶離させる工程。
【００１３】
さらに、本発明は、核酸結合固相に低分子核酸が結合させられたまま先に行われた処理の間に上記固相から遊離した、好ましくはフロースルーとして回収された上記核酸を再度結合させるための、上記核酸結合固相（カラムに含まれる）に低分子核酸を結合させることができる回収溶液の使用に関する。
【００１４】
さらに、本発明は、以下を含む本発明による方法を実施するためのキットに関する：
ａ）核酸結合固相（好ましくは、カラムに含まれるメンブレン）；
ｂ）カオトロピック剤とアルコールとを含む、低分子標的核酸を含む標的核酸を、上記核酸結合固相に結合させるための結合バッファ；
ｃ）０．５Ｍから飽和限界までの濃度のカオトロピック剤と少なくとも５０％の濃度のアルコールを含む回収（ｒｅｃｏｖｅｒｙ）溶液；および
ｄ）本発明による方法を実施するための指示。
【００１５】
本出願の他の目的、特徴、利点、および態様は、以下の記載と添付の特許請求の範囲から当業者に明らかとなる。しかし、以下の記載、添付の特許請求の範囲、および具体的な実施例は、本出願の好ましい実施形態を示しているものの、例示する目的だけのために提供されると理解されるものとする。開示される本発明の趣旨および範囲内での様々な変更および改良は、以下を読むことにより当業者に容易に明らかとなる。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】図１〜３は、Ａｇｉｌｅｎｔ  Ｂｉｏ  Ａｎａｌｙｚｅｒを使用して腎臓組織から単離したＲＮＡのサイズ分布を示す。「＋」は本発明による方法を使用して単離したＲＮＡを示し、「−」は対照標準法を使用して単離したＲＮＡを示す。低分子ＲＮＡの画分に矢印で印をつける。
【図２】図１〜３は、Ａｇｉｌｅｎｔ  Ｂｉｏ  Ａｎａｌｙｚｅｒを使用して腎臓組織から単離したＲＮＡのサイズ分布を示す。「＋」は本発明による方法を使用して単離したＲＮＡを示し、「−」は対照標準法を使用して単離したＲＮＡを示す。低分子ＲＮＡの画分に矢印で印をつける。
【図３】図１〜３は、Ａｇｉｌｅｎｔ  Ｂｉｏ  Ａｎａｌｙｚｅｒを使用して腎臓組織から単離したＲＮＡのサイズ分布を示す。「＋」は本発明による方法を使用して単離したＲＮＡを示し、「−」は対照標準法を使用して単離したＲＮＡを示す。低分子ＲＮＡの画分に矢印で印をつける。
【図４】図４は、様々な回収溶液を使用した本発明による方法または対照標準法を実施したＲＮＡの単離後のｍｉＲ１６検出アッセイの結果を示す。ここでは、個別の回収溶液は使用していない。図から明らかであるように、Ｃｔ値は、本発明による回収溶液を用いた場合にはかなり低くなり、これは、低分子ＲＮＡの単離の改善を明らかに示している。
【図５】図５は、５種類のキットを用いて精製したＲＮＡをロードしたアガロースゲルの写真を示す（実施例７を参照のこと）。右側の矢印は低分子ＲＮＡに印をつけている。
【図６】図６は、Ｃｊｕｎ  ｍＲＮＡを用いたリアルタイムＰＣＲの結果を示している図である（実施例７を参照のこと）。ＲＮＡは、３種類のラット組織：１．肝臓（２カ月間包埋した）、２．腎臓（１９カ月間包埋した）、および３．肺（８カ月間包埋した）由来のＦＦＰＥ試料から精製した。
【図７】図７は、ｍｉＲ  ２９ａを用いたｍｉｃｒｏＲＮＡ分析の結果を示している図である（実施例７を参照のこと）。
【図８】図８ａおよび図８ｂは、様々な供給業者によるキットを用いて精製したＤＮＡのリアルタイムＰＣＲ分析の結果を示す（実施例７を参照のこと）。ＤＮＡは、３種類のラット組織：１．肝臓（２カ月間包埋した）、２．腎臓（１９カ月間包埋した）、および３．肺（８カ月間包埋した）由来のＦＦＰＥ試料から精製した。図８ａでは全ての試料について同じ鋳型容積を使用し、図８ｂでは同じ鋳型濃度を使用した。
【図９】図９ａと図９ｂの図は、Ｍａｄｈ７  ＲＮＡを分析するためのリアルタイムＰＣＲ実験の結果を示す（実施例７を参照のこと）。ＲＮＡは、３種類のラット組織：１．肝臓（２カ月間包埋した）、２．腎臓（１９カ月間包埋した）、および３．肺（８カ月間包埋した）由来のＦＦＰＥ試料から精製した。図９ａでは全ての試料について同じ鋳型容積を使用し、図９ｂでは同じ鋳型濃度を使用した。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
（発明の詳細な説明）
目ざましいことに、少なくとも以下の工程が行われると、試料から低分子標的核酸を含む少なくとも１種類の標的核酸を単離するための方法において低分子標的核酸の収量をかなり増大させることができることが明らかになった：
ａ）試料をカラムを通過させることにより、上記カラムに含まれる核酸結合固相に対して、低分子標的核酸を含む標的核酸の少なくとも一部を結合させる工程、
ｂ）上記核酸結合固相に上記標的核酸を結合させたまま、上記固相上で酵素処理および／または化学処理を行う工程、
ｃ）工程ｂ）の上記処理の間に上記固相から遊離した上記低分子標的核酸の少なくとも一部をフロースルーとして回収する工程、
ｄ）含まれる低分子標的核酸を核酸結合固相に結合させるために、回収溶液と混合した上記低分子標的核酸を含む上記フロースルーを上記核酸結合固相と接触させる工程、
ｅ）必要に応じて溶離を行う工程。
【００１８】
本発明による方法の個々の工程は以下でさらに詳細に説明される。
【００１９】
工程ａ）では、試料がカラムを通過させられると、試料に含まれる低分子標的核酸を含む標的核酸が、上記カラムに含まれる核酸結合固相に結合する。核酸結合メンブレンが固相として使用されることが好ましい。核酸結合固相（例えば、メンブレン）に対して低分子標的核酸を含む標的核酸を結合させるための適切な結合条件は先行技術で公知であり、以下にもさらに詳細に記載される。結合条件は、単離しようとする標的核酸（例えば、ＲＮＡまたはＤＮＡ、あるいは両方）にも依存する。高い収量での低分子標的核酸を含む標的核酸の単離を可能にするためには、核酸結合固相に対する低分子標的核酸を含む標的核酸の強い、したがって効率的な結合を可能にする結合条件が使用されることが好ましい。工程ａ）において適切な結合条件に到達させるために、試料を、所望される結合条件を確立する結合バッファのような適切な結合溶液と混合することができる。一般に、溶解が必要な試料が処理される場合には、工程ａ）は試料の最初の溶解の後に行われる。さらに、例えば、溶解液を澄明にするため、非標的核酸もしくは他の混入物質を取り除くため、標的核酸を濃縮するため、および／または標的核酸を事前に精製するために、工程ａ）の前に他の前処理工程を行うこともできる。これらの場合では、それぞれ前処理された試料または処理された試料が、工程ａ）において試料としてカラムを通過させられ、少なくとも、低分子標的核酸を含む標的核酸が核酸結合固相に結合する。化学溶解溶液が溶解に使用される場合は、上記溶解溶液はまた、適切な結合条件を確立するためにも役立ち得る。
【００２０】
工程ｂ）では、低分子標的核酸を含む標的核酸が固相に結合させられたまま、酵素処理および／または化学処理が上記固相上で行われる（例えば、メンブレンが核酸結合固相として使用される場合のメンブレン上での処理）。それぞれの処理は一般に、核酸単離手順の間に行われ、これには、ヌクレアーゼ消化工程（例えば、ＤＮａｓｅまたはＲＮａｓｅ処理）、タンパク質消化工程（例えば、結合工程ａ）の間に、例えば膜に結合したタンパク質混入物質を分解するためのタンパク質分解酵素での処理（例えば、参考として本明細書中に組み入れられたＷＯ２００９／０１６１１０を参照のこと））、リパーゼ処理、および標的核酸の改変工程からなる群より選択される処理が含まれるが、これらに限定されるわけではない。それぞれの処理には通常、所望される処理を可能にするか、またはその実行を促進する組成を有している１種類以上の水溶液の使用が含まれる。しかし、上記水溶液（単数または複数）は通常、標的核酸（特に、低分子標的核酸）の上記核酸結合固相に対する結合を可能にするかまたは促進する組成を有していない。酵素を活性であるようにすることができる条件が確立されなければならないので、これは、例えば、メンブレン上でのまたはオンカラム酵素処理を行う場合に特に適用される。したがって、工程ｂ）で行われる酵素処理および／または化学処理には通常、核酸結合固相からの低分子標的核酸の少なくとも部分的な遊離を生じる条件が含まれる。したがって、工程ｂ）で行われる処理の間に上記水溶液を添加することにより、核酸結合固相に対して工程ａ）で結合させられた標的核酸の部分的な遊離が生じる。標的核酸が小さければ小さいほど、工程ｂ）で行われる処理の間に、核酸結合固相から上記標的核酸が完全に解離するリスクが高くなる。上記で議論したように、それぞれ遊離した標的核酸（通常はサイズが小さい）は、メンブレン（それぞれ、カラムに含まれる核酸結合固相）の上、中、または下に存在し得る。遊離した標的核酸が、例えば、メンブレンの下またはメンブレンの孔のはるか下方に存在する場合は、これらは、回復溶液（ｒｅｓｔｏｒａｔｉｏｎ  ｓｏｌｕｔｉｏｎ）を用いることによっても、また、結合を促進する洗浄バッファを使用することによっても、効率よく再度捕捉することができない。したがって、これらは、先行技術による方法の場合と同様に、試料のさらなる処理の間に消失する。
【００２１】
適切な結合条件を回復させることによっても再度結合させることができないそれぞれ「漏れた」低分子標的核酸を捕捉し、それにより単離するために、本発明は、核酸結合固相から「漏れた」低分子標的核酸を工程ｃ）において取り出す（ｒｅｍｏｖｅ）ことを教示する。したがって、工程ｃ）では、上記工程ｂ）の処理の間に核酸結合固相から遊離した低分子標的核酸の少なくとも一部がフロースルーとして回収される。好ましくは、「漏れた」低分子標的核酸の大部分または全てがそれぞれ回収される。上記回収工程ｃ）を実行することは、実施例によっても明らかにされるように、単離された標的核酸中の低分子標的核酸の収量がかなり増えるので、不可欠である。もちろん、これにより、工程ｂ）の間に遊離した可能性のあるより大きな標的核酸も効率よく回収することができる。しかし、上記で議論したように、この問題は、より大きな標的核酸が通常は、より低分子標的核酸よりも核酸結合固相に対して強く結合するので、より大きな標的核酸を用いる場合には起こる頻度が少ない。しかし、これらが遊離しても、これらはまた、本発明による方法により効率よく再度捕捉される。
【００２２】
工程ｄ）では、回収溶液（および必要に応じてさらなる溶液／化学物質）と混合された低分子標的核酸を含む上記フロースルーが上記固相と接触させられ、含まれる低分子標的核酸が核酸結合固相に結合させられる。低分子標的核酸を本発明による回収溶液と混合することにより、回収された低分子標的核酸の固相への結合を可能にする結合条件が確立される。低分子標的核酸を結合させるために工程ｄ）で使用される核酸結合固相は、工程ａ）で使用されるものと同じ核酸結合固相であることが好ましい。この実施形態では、回収溶液と混合された低分子標的核酸を含むフロースルーが、工程ａ）で使用された核酸結合固相に再度アプライされ、これにより、低分子標的核酸が上記固相に再度結合させられ、この低分子標的核酸が工程ｂ）で遊離しなかった標的核酸と一緒にされる。上記で議論したように、メンブレンが核酸結合固相として工程ａ）において使用されることが好ましい。しかし、工程ｄ）において、例えば、磁性シリカ粒子、カラムによる種々の核酸結合固相、または工程ａ）で使用されたメンブレンと同じタイプのメンブレンのような種々の核酸結合固相を使用することもまた、本発明の範囲に含まれる。工程ｄ）で行われた「漏れた」低分子標的核酸のこの回収により、低分子標的核酸の喪失をかなり減少させることができ、これにより、単離された標的核酸における低分子標的核酸の収量を増大させる。
【００２３】
任意選択の工程ｅ）では、１回以上の溶離工程が行われる。あるいは、または加えて、標的核酸はまた、意図される下流での用途、標的核酸のそれぞれ意図される使用に応じて、固相に結合させられたまま処理される場合もある。溶離工程を行うことが所望される場合は、溶離は、例えば、従来の溶離溶液（例えば、水、溶離バッファ、低塩バッファ、および特に、生物学的バッファ）を使用して行うことができる。意図される下流での用途を妨害しない溶離溶液が使用されることが好ましい。しかし、所望される場合には、例えば、加熱のような他の溶離手段によって、標的核酸を遊離させ、これにより溶離させることもまた、本発明の範囲である。工程ａ）で使用された核酸結合固相とは異なる固相が工程ｄ）で使用される場合に、工程ａ）で使用された固相から標的核酸を溶離させ、そして工程ｄ）で使用された固相に結合した低分子標的核酸を別に溶離させ、それぞれの溶離液を合わせることは、本発明の範囲内である。溶離工程を行う前に固相を合わせることもまた本発明の範囲内である。さらに、全ての標的核酸を、核酸を結合する相から効率よく遊離することを確実にするために、溶離工程を繰り返し行うこともまた本発明の範囲内である。
【００２４】
実施例により示されるように、先行技術とは対照的に、本発明による方法ではさらに、カラムによる核酸単離手順を使用する場合には、工程ｃ）と工程ｄ）が行われ、単離された標的核酸における低分子標的核酸の収量がかなり増える。
【００２５】
「漏れた」低分子標的核酸を捕捉し、これにより単離するために工程ｃ）と工程ｄ）とを実行するにはいくつかの選択肢がある。いくつかの限定ではない実施形態を以下にさらに詳細に記載する。
【００２６】
１つの実施形態にしたがうと、工程ｃ）では、低分子核酸を工程ａ）で使用された核酸結合固相に結合させるのに適する条件を確立する回収溶液が、カラムを通過させられて、「漏れた」低分子標的核酸を含むフロースルーが回収される。回収溶液とすでに混合されている（そして、必要に応じて、さらなる成分と混合することができる）上記フロースルーが、工程ｄ）において、工程ａ）で使用されたものと同じ核酸結合固相にアプライされる。これにより、フロースルーに含まれる「漏れた」低分子標的核酸が、工程ａ）で使用された固相に結合させられる（そしてこれに対しては、工程ｂ）で行われたメンブレン上での処理の間に遊離しなかった標的核酸がなおも結合したままである）。この実施形態にはいくつかの利点があるので好ましい。第１に、回収溶液を、上記カラムを通過させることにより、そしてしたがって含まれる核酸結合固相を通過させることにより、核酸結合固相への低分子核酸の結合に適している条件を確立し、それぞれ再度確立する。これにより、工程ｂ）の処理の間に少なくとも部分的に遊離したが、なおも固相に再度結合させることができる標的核酸（特に、低分子標的核酸）を、上記固相に対して、効率よく再度結合させることが確実となる。なぜなら、回収溶液により適切な結合条件が再度確立されるからである。第２に、適切な結合条件を再度確立することによっては固相に再度結合させることができない「漏れた」低分子標的核酸が効率よく取り出され、したがって、回収溶液にフロースルーとして回収される。第３に、「漏れた」低分子標的核酸を回収するために工程ｃ）において回収溶液を直接使用することには、低分子標的核酸を含む標的核酸を結合させるため工程ａ）で使用された固相に「漏れた」低分子標的核酸を再度結合させるための適切な結合条件を提供する溶液中に、低分子標的核酸が直接提供されるという利点がある。これにより、「漏れた」低分子標的核酸を、上記固相に結合したままの標的核酸と再度一緒にすることができ、これにより、全ての標的核酸をその後の調製工程において一緒に処理することができる。
【００２７】
漏れた標的核酸を回収するためのさらなる実施形態によると、工程ｂ）で行われる酵素処理および／または化学処理に水溶液の使用が含まれ、「漏れた」低分子標的核酸は、低分子標的核酸と工程ｂ）での処理に使用された水溶液とを含むフロースルーを回収することにより確保される。この実施形態では、回収溶液を、工程ｃ）で回収された後にフロースルーに添加することができ、（必要に応じてさらなる添加物と混合された）得られた混合物が、工程ｄ）において、核酸結合固相（上に記載したように、工程ａ）で使用された、核酸結合固相であることが好ましい）と接触させられる。
【００２８】
１つの実施形態にしたがうと、水溶液（例えば、反応バッファ、水、または溶離バッファ）が、核酸結合固相（メンブレンが好ましい）を含むカラムにアプライされ、カラムを通過させられる。その後、遊離した低分子標的核酸が上記水溶液中に回収される。所望される場合は、それぞれ回収された低分子標的核酸の酵素処理および／または化学処理を行うことができ、回収された低分子標的核酸に対してさらなる組成物／物質を添加することもまた本発明の範囲内である。さらに、工程ａ）で使用された固相になおも結合したままである標的核酸の酵素処理および／または化学処理を行うことができる。この実施形態には、事前に溶離させられた、回収された低分子標的核酸とは別に、結合した（通常はより大きい）標的核酸の処理が可能であるという点で利点がある。
【００２９】
１つの態様によると、試料から低分子標的核酸を含む標的核酸を単離するための方法が提供され、上記方法には少なくとも以下の工程が含まれる：
ａ）核酸結合メンブレンに試料を通過させることにより、上記メンブレンに対して、低分子標的核酸を含む標的核酸の少なくとも一部を結合させる工程、
ｂ）標的核酸をメンブレンに結合させたまま、上記メンブレン上に水溶液を含ませる処理を行う工程、
ｃ）上記メンブレンに回収溶液を通過させて、低分子標的核酸を含むフロースルーを回収する工程、
ｄ）含まれる上記低分子標的核酸を上記メンブレンに再度結合させるために、上記フロースルーを、工程ａ）の上記メンブレンを通過させる工程、
ｅ）必要に応じて、上記メンブレンから低分子核酸を含む標的核酸を溶離させる工程であって、好ましくは、低分子標的核酸を含む標的核酸がこのメンブレンから溶離させられる、工程。
【００３０】
任意の適切な方法を、低分子標的核酸の少なくとも一部をフロースルーとして回収するために工程ｃ）において使用することができる。カラムによる核酸単離手順を実施する際に利用される適切な回収方法としては、遠心分離工程を行うこと、低分子標的核酸（上記のように回収溶液または水溶液中に含まれることが好ましい）に圧をかけるおよび／またはそれを吸引するために、カラムに含まれる核酸結合固相を介していずれかの方向に陽圧または負圧をかけること（この場合、上記固相がメンブレンであることが好ましい）が挙げられるが、これらに限定されるわけではない。
【００３１】
「漏れた」低分子標的核酸を再度結合させるために使用される回収溶液は、低分子核酸を工程ｄ）で使用される核酸結合固相に結合させるのに適している条件をそれぞれ確立するものでなければならない。この回収溶液は、１種類以上の溶液および／または成分を混合することによっても得ることができる。この回収溶液は、低分子核酸を含む全核酸を、工程ｄ）で使用される核酸結合固相に結合させるのに適している条件を提供することができる。特定の標的核酸を単離しようとする場合は、回収溶液は、所望される標的核酸のタイプ（例えば、低分子ＲＮＡを含む全ＲＮＡ）を工程ｄ）で使用される核酸結合固相に結合させるために好ましい適切な条件を提供し得る。これはまた、ＤＮＡが所望される標的核酸である場合には、低分子ＤＮＡを含むＤＮＡ（例えば、全ＤＮＡ、ゲノムＤＮＡ、断片化されたＤＮＡ、および／またはプラスミドＤＮＡのような低分子量ＤＮＡ）を工程ｄ）で使用された核酸結合固相に結合させるのに適している条件も提供し得る。回収溶液および／または回収溶液の混合物と、工程ｃ）で回収されたフロースルーとにより提供される結合条件は、低分子標的核酸を含む標的核酸を、カラムに含まれる核酸結合固相に結合させるために工程ａ）で使用される条件と同じであってよく、また類似していてもよい。しかし、工程ｄ）で使用される回収溶液それぞれの結合条件は、工程ａ）で使用される結合条件よりも強いことが好ましい。
【００３２】
１種類以上の溶液または化学作用物質（ｃｈｅｍｉｃａｌ  ａｇｅｎｔ）を混合することによっても得ることができる回収溶液に、少なくとも１種類のカオトロピック剤および／または少なくとも１種類のアルコールが含まれることが好ましい。
【００３３】
任意のカオトロピック剤は、例えば、限定的ではないが、一次構造を完全な状態で残したまま、タンパク質または核酸の二次、三次、または四次構造を変化させることにより、タンパク質または核酸において無秩序（ｄｉｓｏｒｄｅｒ）を引き起こす目的のために使用することができる。好ましくは、カオトロピック剤は、塩酸グアニジン、チオシアン酸グアニジン、イソチオシアン酸グアニジン、チオシアン酸ナトリウム、ヨウ化ナトリウム、過塩素酸ナトリウム、トリクロロ酢酸ナトリウム、トリフルオロ酢酸ナトリウム、および尿素からなる群より選択される。カオトロピック塩が使用されることが好ましい。具体的には、塩酸グアニジンおよび／またはチオシアン酸グアニジンをカオトロピック剤として使用することができる。
【００３４】
工程ｄ）で使用される回収溶液中および／または結合混合物中の少なくとも１種類のカオトロピック剤の濃度は、０．０５Ｍから飽和限界までの範囲にあり得る。好ましい濃度範囲は、使用されるカオトロピック剤に応じて、約０．１Ｍ〜６Ｍ、約０．２Ｍ〜４Ｍ、約０．５〜３Ｍの範囲にあり、約０．８〜２Ｍの範囲にあることが好ましい。
【００３５】
さらに、回収された低分子標的核酸を核酸結合固相に結合させるために工程ｄ）で使用される回収溶液および／または結合混合物には、少なくとも１種類のアルコールが含まれ得る。アルコールとして、短鎖の分岐アルコールまたは非分岐アルコール（１〜５個の炭素原子を持つことが好ましい）を使用することが好ましい。例は、メタノール、エタノール、プロパノール、イソプロパノール、およびブタノールである。アルコールの混合物もまた使用することができる。アルコールは好ましくは、イソプロパノールおよびエタノールから選択され、標的核酸としてＲＮＡを単離する場合には、イソプロパノールが特によく適している。１つの実施形態にしたがうと、本発明による方法には、核酸を結合させるためのフェノールおよび／またはクロロホルムの使用は含まれない。しかし、フェノールとクロロホルムは、例えば、標的核酸（特に、ＲＮＡ）を含む水相を得るための、例えば、試料の調製および／または試料の溶解に使用することができる。例えば、上記水相はまた、工程ａ）において試料として使用することができ、これは、実施例においてもまた明らかにされるように、メンブレンに対して標的核酸を結合させるためにアルコールと混合されることが好ましい。
【００３６】
工程ｄ）において使用される回収溶液および／または結合混合物には、１０％ｖ／ｖ〜９０％ｖ／ｖの濃度のアルコールを含めることができる。低分子標的核酸を含む標的核酸を単離するためには、≧３０％ｖ／ｖ、≧４０％ｖ／ｖ、≧５０％ｖ／ｖ、好ましくは、≧６０％ｖ／ｖ、≧７０％のアルコール濃度を使用することが有利である。好ましくは、アルコール濃度は、約３０％ｖ／ｖ〜９０％ｖ／ｖ、または約４０％ｖ／ｖ〜８５％ｖ／ｖの範囲、より好ましくは、約６０％ｖ／ｖ〜８０％ｖ／ｖの範囲にある。
【００３７】
工程ａ）においては、結合は、工程ｄ）について上に記載した条件と同じまたは類似する条件下で行うことができる。したがって、工程ａ）で使用される結合条件は以下の特徴の１つ以上を有し得る：
ａ）条件が、低分子核酸を含む全核酸をカラムに含まれる核酸結合固相に結合させるために適している；
ｂ）条件が、低分子ＲＮＡを含む全ＲＮＡをカラムに含まれる核酸結合固相に結合させるために適している；
ｃ）条件が、低分子ＤＮＡを含むＤＮＡをカラムに含まれる核酸結合固相に結合させるために適している；
ｄ）結合が、少なくとも１種類のカオトロピック剤と少なくとも１種類のアルコールの存在下で起こる；
ｅ）結合が、塩酸グアニジン、チオシアン酸グアニジン、イソチオシアン酸グアニジン、チオシアン酸ナトリウム、ヨウ化ナトリウム、過塩素酸ナトリウム、トリクロロ酢酸ナトリウム、トリフルオロ酢酸ナトリウム（ｓｏｄｉｕｍ  ｔｒｉｆｌｕｒｏａｃｅｔａｔｅ）、および尿素からなる群より選択される少なくとも１種類のカオトロピック剤の存在下で起こる；
ｆ）結合が、０．１Ｍから飽和限界濃度まで、好ましくは、０．５〜６Ｍ、より好ましくは、０．５〜４Ｍより選択される濃度で結合混合物中に含まれる少なくとも１種類のカオトロピック剤の存在下で起こる；および／または
ｇ）結合が、結合工程ｄ）について上に記載したアルコールからなる群より選択される少なくとも１種類のアルコールの存在下で起こる。
【００３８】
また、さらなる添加剤を工程ａ）および／または工程ｄ）の結合混合物において使用することもできる。例えば、試料の溶解、タンパク質の分解をサポートする、および／または結合混合物中の標的核酸を保護する添加剤を使用することができる。例として、キレート剤、阻害剤、界面活性剤、緩衝剤、安定剤、アルカリ剤、ヌクレアーゼ阻害剤、およびβ−メルカプトエタノール、特に、ＥＤＴＡ、ＥＧＴＡ、塩（例えば、塩化ナトリウム、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、ＬｉＣｌ）、または、核酸の結合および／もしくは沈殿を促進する他の物質が挙げられるが、これらに限定されるわけではない。それぞれの添加剤は、例えば、回収溶液および／または結合溶液に含めることができるが、これらを別々に添加することもできる。さらに、生物学的バッファを、工程ａ）および／または工程ｄ）での結合の間に使用することができ、したがって、これもまた回収溶液に含めることができる。それぞれのバッファの例として、ＨＥＰＥＳ、ＭＥＳ、ＭＯＰＳ、ＴＲＩＳ、クエン酸ナトリウム、酢酸ナトリウム、およびＢＩＳ−ＴＲＩＳ  Ｐｒｏｐａｎｅが挙げられるが、これらに限定されるわけではない。
【００３９】
工程ａ）および／または工程ｄ）での結合の際に使用されるｐＨ値は、好ましくは、ＲＮＡについては、４〜１１の範囲にあり、好ましくは約５〜８の範囲、最も好ましくは、６〜７．５の範囲にある。ＤＮＡについては、ｐＨ値は、好ましくは、約５〜１１の範囲内にあり、最も好ましくは、約６〜１０の範囲にある。標的核酸として両方のタイプの核酸が単離される場合は、ｐＨは約６〜８の範囲内にあることが好ましい。回収溶液に、上に記載した範囲でｐＨを緩衝するバッファが含まれることが好ましい。１つの実施形態にしたがうと、回収溶液のｐＨは、約ｐＨ５〜１１の範囲内に、好ましくは、約５．５〜８の範囲にあり、回収溶液は約５〜７．５または約７の範囲にｐＨを有することが最も好ましい。それぞれのｐＨ値は、標的核酸としてＲＮＡを単離するために特に適している。
【００４０】
１つの実施形態にしたがうと、１回以上の洗浄工程が、標的核酸が固相に結合させられたまま、工程ａ）と工程ｂ）との間、および／または工程ｄ）の後に行われる。この目的のためには、一般的な洗浄溶液を使用することができる。核酸結合固相からの低分子標的核酸を含む標的核酸の遊離を生じない洗浄溶液を使用することが推奨される。１つの実施形態にしたがうと、洗浄に使用される溶液には、少なくとも１種類のカオトロピック剤、少なくとも１種類のアルコール、および／または少なくとも１種類の緩衝成分が含まれる。これには界面活性剤もまた含めることができる。洗浄溶液中で使用することができるカオトロピック剤としては、塩酸グアニジン、チオシアン酸グアニジン、イソチオシアン酸グアニジン、およびヨウ化ナトリウムが挙げられるが、これらに限定されるわけではない。さらに、トリクロロ酢酸塩、過塩素酸塩、およびトリフルオロ酢酸塩からなる群より選択されるカオトロピックアニオンを含むカオトロピック塩を使用することができる。それぞれのカオトロピック塩の例は、過塩素酸ナトリウム、トリクロロ酢酸ナトリウム、およびトリフルオロ酢酸ナトリウムのようなアルカリ塩である。アルコールとしては、短鎖の分岐アルコールまたは非分岐アルコール（１〜５個の炭素原子を持つことが好ましい）を洗浄のために、洗浄溶液においてそれぞれ、使用することができる。例は、メタノール、エタノール、プロパノール、イソプロパノール、およびブタノールである。イソプロパノールおよび／またはエタノールが使用されることが好ましい。
【００４１】
１つの実施形態にしたがうと、洗浄溶液には、少なくとも３０％のアルコールと少なくとも０．５Ｍのカオトロピック塩、好ましくは、少なくとも２Ｍのカオトロピック塩が含まれる。さらに、洗浄溶液に界面活性剤を含めることができる。イオン性および／または非イオン性界面活性剤が界面活性剤として使用されることが好ましい。非イオン性界面活性剤は、少なくとも０．１％の濃度で使用されることが好ましい。それぞれの洗浄溶液は、例えば、ＲＮＡの洗浄に適している。
【００４２】
上に記載した洗浄溶液の代わりに、または上に記載した洗浄溶液に加えて（好ましくは、続けて）使用することができるさらなる適切な洗浄溶液には、アルコールおよび生物学的バッファが含まれる。適切なアルコールおよび生物学的バッファは上に記載されている。好ましくはイソプロパノールまたはエタノールが、最も好ましくはエタノールが、２回目の洗浄工程に使用される。好ましくは、エタノールは少なくとも３０％ｖ／ｖの濃度で、好ましくは、少なくとも５０％ｖ／ｖの濃度で使用される。生物学的バッファは、およそ７〜８のｐＨのＴｒｉｓであることが好ましい。しかし、クエン酸ナトリウムのような他のバッファもまた、そして他のｐＨ値もまた、単離される標的核酸および処理される試料に応じて使用することができる。
【００４３】
上に記載した洗浄溶液の代わりに、または上に記載した洗浄溶液に加えて（好ましくは、続けて）使用することができるさらなる適切な洗浄溶液にはまた、１種類以上のアルコールと、必要に応じてバッファが含まれる。適切なアルコールおよび生物学的バッファは上に記載されている。好ましくはイソプロパノールまたはエタノールが、最も好ましくはエタノールが、代替の洗浄工程に使用される。好ましくは、エタノールは、少なくとも５０％ｖ／ｖの濃度で、好ましくは、少なくとも７０％以上の濃度で使用される。
【００４４】
用語「試料」は、本明細書中では広い意味で使用され、核酸を含む様々な供給源および組成物を含むように意図される。試料は生物学的試料であり得るが、この用語には、例えば、さらに濃縮されるおよび／またはさらに精製されると推定されるすでに精製された核酸を含む（例えば、ＰＣＲ産物または組成物のような）核酸を含む、他の、例えば、人工的な試料も含まれる。例示的な試料としては、全血；血液生成物；赤血球；白血球；バフィーコート；スワブ（口腔スワブ、咽喉スワブ、膣スワブ、尿道スワブ、子宮頸スワブ、咽喉スワブ、直腸スワブ、病巣スワブ、膿瘍スワブ、および鼻咽頭スワブなどを含むがこれらに限定されるわけではない）；尿；痰；唾液；精液；リンパ液；羊水；脳脊髄液；腹膜滲出液；胸水；嚢胞由来の流体；滑液；硝子体液；房水；滑液包の流体（ｂｕｒｓａ  ｆｌｕｉｄ）；洗眼液；眼吸引液；血漿；血清；肺洗浄液；肺吸引液；ヒトを含む動物の組織または植物組織（肝臓、脾臓、腎臓、肺、腸、脳、心臓、筋肉、膵臓）、細胞培養物、ならびに、上記試料から、または試料上もしくは試料中に存在する可能性がある任意の細胞および微生物およびウイルスから得られた溶解物、抽出物、あるいは材料および画分などを含むがこれらに限定されるわけではない）が挙げられるが、これらに限定されるわけではない。核酸を含む臨床状況または法医学の状況から得られた材料もまた、用語「試料」の意図される意味に含まれる。試料は、ヒト、動物、植物、細菌、または真菌由来の生物学的試料であることが好ましい。試料は、細胞、組織、細菌、ウイルス、ならびに、体液、例えば、血液、血液生成物（例えば、バフィーコート、血漿、および血清）、尿、液（ｌｉｑｕｏｒ）、痰、便、ＣＳＦおよび精子、上皮スワブ、生検、骨髄試料および組織試料（好ましくは、肺、腎臓、または肝臓のような臓器組織試料）からなる群より選択されることが好ましい。さらに、当業者は、上記の例示的な試料のいずれかから得られた溶解物、抽出物、または処理された材料もしくは一部もまた、用語「試料」の範囲に含まれることを理解する。これには具体的には、例えば、ＲＮＡのような核酸が水相中に濃縮されるフェノール／クロロホルム抽出の間に、精製された核酸をさらに精製および／または濃縮などをしようとする場合にそうであるように、例えば、特定のタイプの標的核酸が富化された、試料溶解物、澄明にされた溶解物、事前に抽出された試料の一部が含まれるが、これらに限定されるわけではない。用語「試料」にはまた、処理された試料（例えば、保存された試料、固定された試料、および／または安定化させられた試料）も含まれる。同様に、架橋固定剤（ｆｉｘａｔｉｖｅ，ｃｒｏｓｓ−ｌｉｎｋｉｎｇ）、ならびに非架橋性固定剤を使用することができる（限定的ではない市販されているものの例として、ＰＡＸｇｅｎｅ  Ｔｉｓｓｕｅ  Ｆｉｘａｔｉｖｅまたはカルノワ溶液が挙げられる）。試料を安定化させるために使用することができる市販されている安定剤の例としては、ＲＮＡｌａｔｅｒ、Ａｌｌｐｒｏｔｅｃｔ  Ｔｉｓｓｕｅ、ＲＮＡｐｒｏｔｅｃｔ  Ｃｅｌｌ、ＲＮＡｐｒｏｔｅｃｔ  Ｓａｌｉｖａ、ＲＮＡｐｒｏｔｅｃｔ  Ｂａｃｔｅｒｉａ、ＰＡＸｇｅｎｅ  ��ｌｏｏｄ  ＲＮＡ、ＰＡＸｇｅｎｅ  Ｂｌｏｏｄ  ＤＮＡ、ＰＡＸｇｅｎｅ  Ｂｏｎｅ  Ｍａｒｒｏｗ  ＲＮＡ、およびＱＩＡｓａｆｅが挙げられるが、これらに限定されるわけではない。
【００４５】
具体的に、本発明による方法は、例えば、分解したＲＮＡまたは分解したＤＮＡのような分解した核酸または損なわれた核酸を含む試料から標的核酸を単離するのに有用である。そのような試料の限定的ではない例として、保存されている細胞含有試料（例えば、ホルマリン固定され、パラフィンに包埋された試料（ＦＦＰＥ試料）、または例えば、グルタルアルデヒドのような架橋固定剤（ｃｒｏｓｓ−ｌｉｎｋｉｎｇ  ｆｉｘａｔｉｖｅ）で処理された他の試料が挙げられる。例えば、腫瘍由来の生検試料は通常、ＤＮＡおよび／またはＲＮＡの完全性を損なう可能性があるＦＦＰＥによる外科的手法後に保存される。それぞれの分解した核酸は、多くの場合は小さいサイズを有しており、したがって、低分子核酸である。本開示する方法は、低分子標的核酸からなるか、または低分子標的核酸を含む標的核酸を単離するのに有利に使用することができる。例えば、試料は、非コードＲＮＡ（例えば、ｓｎｏＲＮＡもしくはｍｉＲＮＡ）または低分子ＤＮＡのような低分子核酸を含む試料であり得る。さらに、標的核酸は、修飾された核酸または分解した核酸からなる場合も、また、それらを含む場合もある。修飾または分解は、例えば、防腐剤（単数または複数）での処理が原因であり得る。
【００４６】
用語「核酸」は、本明細書中で使用される場合は、特に、通常はサブユニット間のホスホジエステル結合により（場合によっては、ホスホロチオエート、メチルホスホネートなどにより）共有結合させられたリボヌクレオシドおよび／またはデオキシリボヌクレオシドを含むポリマーを意味する。核酸には、ｇＤＮＡ；環状ＤＮＡ；低分子量ＤＮＡ、プラスミドＤＮＡ；循環ＤＮＡ（ｃｉｒｃｕｌａｔｉｎｇ  ＤＮＡ）；ｈｎＲＮＡ；ｍＲＮＡ；非コードＲＮＡ（ｎｃＲＮＡ）（ｒＲＮＡ、ｔＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ（ｍｉｃｒｏ  ＲＮＡ）、ｓｉＲＮＡ（低分子干渉ＲＮＡ）、ｓｎｏＲＮＡ（低分子核小体ＲＮＡ）、ｓｎＲＮＡ（低分子核ＲＮＡ）、およびｓｔＲＮＡ（一過性低分子ＲＮＡ（ｓｍａｌｌ  ｔｅｍｐｏｒａｌ  ＲＮＡ））を含むが、これらに限定されるわけではない）；断片化されたかまたは分解した核酸；ＰＮＡ；ミトコンドリアまたはクロロプラストのような細胞内小器官から得られた核酸；ならびに、生物学的試料中に存在し得る微生物、寄生生物、またはＤＮＡウイルスもしくはＲＮＡウイルスから得られた核酸が含まれるが、これらに限定されるわけではない。合成の核酸配列（生物学的試料に加えられるかまたは「スパイクされる」ヌクレオチドアナログを含む場合も、含まない場合もある）もまた本発明の範囲に含まれる。
【００４７】
用語「低分子核酸（ｓｍａｌｌ  ｎｕｃｌｅｉｃ  ａｃｉｄ）」および「低分子核酸（ｓｍａｌｌ  ｎｕｃｌｅｉｃ  ａｃｉｄｓ）」は、具体的に、１０００ヌクレオチド未満、７５０ヌクレオチド未満、５００ヌクレオチド未満、４００ヌクレオチド未満、３００ヌクレオチド未満、２５０ヌクレオチド未満、２００ヌクレオチド未満、１００ヌクレオチド未満、または７０ヌクレオチド未満の長さを有している核酸を意味し、これには、ｍｉＲＮＡ、ｓｉＲＮＡおよび他の短い（ｓｈｏｒｔ）干渉核酸、ｓｎｏＲＮＡ、ｓｎＲＮＡ、ｔＲＮＡ、ｐｉＲＮＡ、ｔｎＲＮＡ、低分子ｒＲＮＡ、ｈｎＲＮＡ、循環核酸、ゲノムＤＮＡまたはＲＮＡの断片、分解した核酸、リボザイム、ウイルスＲＮＡまたはウイルスＤＮＡ、感染起源の（ｉｎｆｅｃｔｉｏｓ  ｏｒｉｇｉｎ）核酸、増幅産物、修飾された核酸、プラスミド核酸または細胞小器官の核酸、ならびにオリゴヌクレオチドのような人工的な核酸が含まれるが、これらに限定されるわけではない。
【００４８】
本発明による方法は、少なくとも１種類の標的核酸を単離するための方法に関する。用語「標的核酸（ｔａｒｇｅｔ  ｎｕｃｌｅｉｃ  ａｃｉｄ）」および「標的核酸（ｔａｒｇｅｔ  ｎｕｃｌｅｉｃ  ａｃｉｄｓ）」は、同義語として本明細書中で使用される。本発明の方法にしたがって処理することができる試料の記載される例から明らかとなるように、試料には、２以上のタイプの核酸が含まれ得る。意図される使用に応じて、試料から全てのタイプの核酸（例えば、ＤＮＡとＲＮＡ（もう一度言うが、これらのいずれもが用語標的核酸（単数または複数）に含まれる）を、または特定のタイプ（単数または複数）の核酸だけ（例えば、ＤＮＡではなくＲＮＡだけ、またはその逆）を、あるいは、ＲＮＡとＤＮＡを並行して（すなわち、１つの試料から、しかし互いに別々に）単離することが望ましい場合がある。これらの変種（ｖａｒｉａｎｔ）の全てが本発明の範囲に含まれる。用語「低分子標的核酸（ｓｍａｌｌ  ｔａｒｇｅｔ  ｎｕｃｌｅｉｃ  ａｃｉｄ）」または「低分子標的核酸（ｓｍａｌｌ  ｔａｒｇｅｔ  ｎｕｃｌｅｉｃ  ａｃｉｄｓ）」（これらの用語も同義語として使用される）は、具体的に、所望されるタイプの標的の低分子核酸（例えば、低分子ＲＮＡまたは低分子ＤＮＡ、あるいは低分子ＲＮＡと低分子ＤＮＡの両方）を意味する。さらに、表現「低分子標的核酸を含む標的核酸」は、（例えば、全ＲＮＡまたは全ＤＮＡのような）低分子標的核酸の一部を含む標的核酸だけを意味するのではなく、低分子標的核酸からなり、したがってより大きな核酸を含まない標的核酸もまた意味し、これも包含する。
【００４９】
試料は、結合工程ａ）を実行する前に処理することができる。例えば、試料中に含まれる核酸を遊離させるために、試料を破壊するおよび／または溶解させることができる。使用する手法は単離しようとする試料標的核酸に依存し、これには、試料の破壊、それぞれ溶解を達成するための、機械的破壊、化学的粉砕、タンパク質分解酵素、界面活性剤などの添加が含まれるが、これらに限定されるわけではない。溶解物は、結合工程ａ）を実行する前に澄明にすることができ、または別の方法で処理することもできる。適切な溶解／破壊方法と溶解バッファは先行技術において公知であり、したがって、本明細書中に記載する必要はない。さらに、例えば、非標的核酸または他の望ましくない成分を取り除くための１回以上の除去のようなさらなる処理工程を行うことができ、そして／あるいは、工程ａ）での、カラムによる核酸結合固相への標的核酸の結合の前に、試料中に含まれる核酸または他の生体分子が修飾される場合もある。
【００５０】
さらに、包埋された試料のような特別な試料が本発明の方法にしたがって処理される場合は、包埋マトリックスから（例えば、パラフィンから）核酸および／または試料を遊離させるための工程が含まれることが好ましい。さらに、固定され、架橋された試料のような特別な試料が本発明の方法にしたがって処理される場合は、固定された試料から核酸をまた遊離させるための、したがって、例えば、固定工程により生じた修飾を逆転させる（ｒｅｖｅｒｓｅ）ため（特に、架橋をはずすため）の工程が含まれることが好ましい。例えば、さらなる工程（例えば、加熱工程）を、例えば、ＦＦＰＥ試料の場合にそうであるように、試料中に含まれる核酸が、例えば架橋されている場合に行うことができる。その結果を達成するため、およびそれから標的核酸を単離することができる試料を得るための適切な方法と処理工程は先行技術において公知であり、例えば、ＥＰ  １０  ００１  ９９５．９、ＰＣＴ／ＥＰ２０１１／０００９２０、およびＷＯ２００７／０６８７６４（参考として本明細書中に組み入れられる）にも記載されている。
【００５１】
１つの実施形態にしたがうと、試料には、少なくとも１種類の非標的核酸と少なくとも１種類の標的核酸が含まれる。１つの実施形態にしたがうと、本発明による方法には、非標的核酸の少なくとも一部を取り除く工程が含まれる。例えば、非標的核酸は、固相に対して適切な条件下で非標的核酸の少なくとも一部を結合させること、その後、固相に結合した非標的核酸を、標的核酸を含有している残りの試料から分離することにより、取り除くことができる。これは、例えば、主に非標的核酸を固相に結合させる条件下で適切な固相を加えることにより達成することができる。標的核酸から非標的核酸を選択的に取り除くための適切な方法は、例えば、ＥＰ  ０  ８８０  ５３７およびＷＯ９５／２１８４９（言及したことにより本明細書中に組み入れられたこととなる）に記載されている。他の方法としては、例えば、水相中でＲＮＡを濃縮して、その後に、その水相を使用、好ましくはアルコールと混合して、工程ａ）においてメンブレンに対してＲＮＡを結合させるための、例えば、フェノール／クロロホルム抽出が挙げられる。ＦＦＰＥ試料のような固定された試料から標的核酸（またはＲＮＡとＤＮＡを並行して）単離する場合には、ＲＮＡからＤＮＡを分離するのに特に有用である、非標的核酸から標的核酸を分離するのに適している他の方法が、ＥＰ  １０  ００１  ９９５．９およびＰＣＴ／ＥＰ２０１１／０００９２０（参考として本明細書中に組み入れられる）に記載されている。
【００５２】
ＲＮＡ（だけ）を標的核酸として単離しようとする場合は、非標的核酸は通常はＤＮＡである。この実施形態では、ＤＮＡ混入物質を取り除き、それぞれ減らすために、工程ｂ）においてＤＮａｓｅ消化が行われることが好ましい。さらに、ＤＮＡを標的核酸として単離しようとする場合は、ＲＮＡ混入物質を取り除き、それぞれ減らすために、工程ｂ）としてＲＮａｓｅ消化を行うことができる。核酸結合固相としてメンブレンが使用される場合は、それぞれのメンブレン上での処理により、相当量の標的核酸、特に、低分子標的核酸の遊離が生じる。上記および実施例に記載するように、他の非標的核酸もまた並行して単離することができる。
【００５３】
１つの実施形態にしたがうと、試料には、少なくとも１種類の標的核酸と、例えば、タンパク質、脂質、炭水化物、または代謝産物のような少なくとも１種類の非標的生体分子が含まれる。１つの実施形態にしたがうと、本発明による方法には、非標的生体分子の少なくとも一部を取り除く工程が含まれる。例えば、非標的生体分子は、適切な条件下で非標的生体分子の少なくとも一部を固相に対して結合させ、その後、固相に結合した非標的生体分子を、標的核酸を含有している残りの試料から分離することにより取り除くことができる。これは、例えば、主に非標的生体分子を固相に結合させる条件下で適切な固相を添加することにより達成され得る。標的核酸を非標的生体分子から分離するのに適している他の方法としては、化学反応または酵素反応による非標的生体分子の除去（これは、例えば、工程ｂ）の間にメンブレン上で行うこともできる）が挙げられる（例えば、ＤＥ  １０  ２００７  ０３５  ２５０を参照のこと）。
【００５４】
適切なＤＮａｓｅおよびＲＮａｓｅ酵素、ならびに例えば、非標的生体分子に影響を及ぼす他の酵素、さらには、工程ｂ）においてそれぞれの酵素処理を行うために使用することができるバッファおよび溶液は先行技術において公知であり、したがって詳細に記載する必要はない。
【００５５】
本発明には、工程ａ）での、カラムに含まれる核酸結合固相の使用が含まれる。用語「カラム」は、本明細書中で使用される場合は特に、少なくとも２つの開口部を有している容器を表わす。それによって、溶液および／または試料は、上記カラムを通過させることができる。用語「カラム」は、容器の形状に関するいかなる制限をも具体的に意味するものではなく、容器は、例えば、円形であっても、また角があってもよく、円筒形が好ましい。しかし、特に、マルチカラムを使用する場合には、他の形状もまた使用することができる。このカラムには核酸結合固相が含まれる。上記カラムに含まれる上記固相は、カラムにアプライされると、溶液、それぞれの試料を通過させることができなければならない。これは、例えば、カラムに遠心力がかけられる場合には、溶液および／または試料を、遠心力の方向にカラム内を通過させることができることを意味する。上記で議論したように、それぞれのカラムによる核酸単離手順が使用される場合は、試料は通常、例えば、遠心分離または減圧により促進されてカラムを通過させられ、核酸が、上記通過の間に、含まれる核酸固相に結合する。カラムは単層形式（ｓｉｎｇｌｅ  ｆｏｒｍａｔ）でも、また多層形式（ｍｕｌｔｉ−ｆｏｒｍａｔ）でも使用することができる。マルチウェルプレートと類似する形式を持ち、メンブレンのような核酸結合固相を含むそのようなマルチカラムは先行技術において周知である。カラムはスピンカラムであることが好ましい。
【００５６】
核酸結合固相としては、カラムによる核酸単離手順において通常利用される任意の固相を使用することができる。好ましくは、核酸結合メンブレン、ひいては、核酸を結合することができるメンブレンが、工程ａ）において使用される。適切なメンブレンとしては、親水性メンブレン、疎水性メンブレン、およびイオン交換により核酸結合メンブレンが挙げられるが、これらに限定されるわけではない。例として、シリカメンブレン、ガラス繊維メンブレン、ナイロンメンブレン、セルロースメンブレン（例えば、ニトロセルロースメンブレン、改変セルロースメンブレン（例えば、アセチルセルロースメンブレンまたはヒドロキシセルロースメンブレン））、紙メンブレン（特に、改変された紙）が挙げられるが、これらに限定されるわけではない。メンブレンは多孔性であることが好ましい。さらに、シリカを含むかまたはシリカからなるメンブレンを使用することが好ましい。カラムに含まれるさらなる一般的な核酸結合固相は、核酸を結合する粒子（例えば、シリカ粒子）を充填したもの、または核酸を結合する材料の層（例えば、シリカゲル）である。例えば、シリカ粒子は、不活性フィルターまたはメンブレン上に１つの層として並べることができ、これにより、核酸結合固相を形成させることができる。標的核酸の喪失、特に、低分子標的核酸の喪失に関する上記の問題は、核酸結合固相が薄ければ薄いほどより顕著である。これは、カラムに含まれる核酸結合固相の薄層（核酸結合メンブレンと類似する）が、遊離した低分子標的核酸がすぐに漏れ得るリスクを高め、これにより、核酸単離手順の間に失われてしまうことが原因である。上記のように、本発明は、その問題の解決を提供し、これにより、低分子標的核酸を含む標的核酸を高い収量で単離することを可能にする。したがって、１つの実施形態にしたがうと、カラムに含まれる核酸結合固相は、その幅と同等またはそれよりも小さい全体の高さを有する。例えば、核酸結合固相は、核酸を結合する材料の１つの層および／または、メンブレンもしくはフィルター上に小さい層として重ねられる、核酸を結合する粒子（好ましくは、シリカ粒子）の充填物である、それぞれの層からなり得る。適切な核酸を結合する材料および粒子は、以下に詳細に記載される。
【００５７】
カラムに含まれる核酸結合固相を通っての試料の通過を楽にするためには、例えば、遠心分離または圧力差を生じる装置（これは、例えば、カラム（それぞれ核酸結合固相）を介して試料に圧力をかけるか、または減圧することにより、核酸結合固相を介して試料を吸引する）の使用のような適切な手段を使用することができる。それぞれの手段は先行技術において周知であり、よって、本明細書中でさらに記載する必要はない。
【００５８】
工程ｄ）において使用され得る核酸結合固相としては、核酸（特に、低分子標的核酸）を結合することができるあらゆる材料を使用することができ、これには、適切な条件下で核酸を結合することができる様々な材料が含まれる。工程ｄ）で使用される上記固相は必ずしもカラムによるものである必要はないが、それでもなお、取り扱いを容易にするためにはこれが好ましい。本発明と組み合わせて使用することができる例示的な固相として、シリカ粒子、二酸化ケイ素、珪藻土、ガラス、アルキルシリカ、ケイ酸アルミニウム、およびホウケイ酸塩を含むがこれらに限定されないシリカを含有している化合物；ニトロセルロース；ジアゾ化された紙（ｄｉａｚｏｔｉｚｅｄ  ｐａｐｅｒ）；ヒドロキシアパタイト（ヒドロキシルアパタイトとも呼ばれる）；ナイロン；金属酸化物；ジルコニア；アルミナ；ポリマー支持体、ジエチルアミノエチル誘導体化支持体およびトリエチルアミノエチル誘導体化支持体、および疎水性クロマトグラフィー樹脂（例えば、フェニルセファロースまたはオクチルセファロース）などが挙げられるが、これらに限定されるわけではない。固相という用語は、その形態またはデザインに関するいかなる限定をも暗に意図するように意図されるものではない。したがって、固相という用語には、多孔性であるかまたは非多孔性である；透過性であるかまたは不透過性である適切な材料が包含され、これには、メンブレン、フィルター、シート、粒子、磁性粒子、ビーズ、ゲル、粉末、および繊維などが含まれるが、これらに限定されるわけではない。１つの実施形態にしたがうと、例えば、工程ｄ）で使用されるシリカ固相または工程ａ）で使用される核酸結合固相のような固相の表面は修飾されておらず、例えば、官能基で修飾されていない。上記のように、核酸結合メンブレンが工程ｄ）において使用されることが好ましい。上記メンブレンは、工程ａ）において使用される核酸結合メンブレンについて上に記載したものと同じ特徴を有し得る。工程ａ）で使用されたものと同じ核酸結合メンブレンが、「漏れた」低分子標的核酸を工程ｄ）において上記メンブレンに再度結合させるために使用されることが特に好ましい。
【００５９】
本明細書中に記載される工程以外のさらなる中間工程を行うこともまた、本発明の範囲に含まれる。しかし、特定の実施形態にしたがうと、本明細書中に記載される工程以外のさらなる工程は行われない。
【００６０】
さらに、本発明は、メンブレン上での処理の間に上記核酸結合メンブレンから遊離した、回収された低分子核酸を再度結合させるための、メンブレンに対して低分子核酸を結合させることができる回収溶液の使用に関する。上記で議論したように、核酸は、例えば、メンブレンの下に落ちた低分子核酸もまた確実に効率よく回収され、したがって、回収する（ｒｅｃｏｖｅｒ）ことを確実にするために、フロースルーとして回収されることが好ましい。低分子標的核酸の遊離を生じる回収溶液および条件の詳細は上に記載されており、上記開示を参照されたい。
【００６１】
さらに、本発明は、以下を含む本発明による方法を実施するためのキットに関する：
ａ）核酸結合固相（好ましくは、カラムに含まれるメンブレン）；
ｂ）カオトロピック剤とアルコールとを含む、低分子標的核酸を含む標的核酸を、上記核酸結合固相に結合させるための結合バッファ；
ｃ）０．１Ｍから飽和限界まで、好ましくは、０．５Ｍから飽和限界までの濃度のカオトロピック剤、および／または少なくとも５０％の濃度のアルコールを含む回収溶液；ならびに、
ｄ）本発明による方法を実施するための指示。
【００６２】
回収溶液、核酸結合固相（メンブレンであることが好ましい）、および結合バッファ、ならびに付随する利点の詳細は上に記載されており、上記開示を参照されたい。
【実施例】
【００６３】
（実施例１：本発明の方法または対照標準法による低分子核酸の単離）
ラットの腎臓由来のＦＦＰＥ試料（この試料は、固定および包埋後、室温で２カ月間保存した）とラットの肺由来のＦＦＰＥ試料（この試料は、固定および包埋後、室温で２７カ月間保存した）を使用した。Ｍｉｃｒｏｔｏｍを使用して、１０μｍの厚みを有している切片を得た。１つの試料あたり１つの切片を使用した。全ての試料を２回処理した。得られたＦＦＰＥ切片からのその後のＲＮＡの単離のために、ＲＮｅａｓｙ  ＦＦＰＥキット（ＱＩＡＧＥＮ）およびＱＩＡａｍｐ  ＦＦＰＥキット（ＱＩＡＧＥＮ）の成分を使用した。
【００６４】
試料を１ｍｌのヘプタンの中で１時間インキュベートして、上記試料からパラフィンを取り除いた。５０μｌのメタノールを添加し、混合し、試料を遠心分離し、上清を回収し、そして試料を室温で５分間乾燥させた。
【００６５】
このそれぞれ由来するパラフィン除去した試料のペレットを１５０μｌのプロテイナーゼＫ消化バッファ（バッファＰＫＤ、ＱＩＡＧＥＮ）と混合し、さらに、１０μｌのプロテイナーゼＫ溶液（＞６００ｍＡＵ／ｍｌ）と混合した。この混合物を、５６℃で１５分間、１４００ｒｐｍで振盪させながらインキュベートした。試料を氷上で３分間冷却し、３０分間遠心分離して、溶解しなかった成分を取り除いた。ＤＮＡを含有しているペレットを廃棄し（上記ＤＮＡを含有しているペレットは、所望される場合には、必要に応じてＤＮＡを単離するために使用することができる）、含まれるＲＮＡを標的核酸として単離するために上清を回収した。使用した試料材料に原因があるばらつきを排除するために、回収した上清を合わせ、混合し、１５０μｌのアリコートに分けた。
【００６６】
続いて、これらのアリコートを８０℃で１５分間インキュベートして、（ＦＦＰＥの保存により生じた）ＲＮＡ中の架橋を取り除いた。その後、３００μｌのカオトロピック溶解バッファ（バッファＲＬＴ、ＱＩＡＧＥＮ）を添加し、得られた混合物を１０５０μｌのエタノールと混合した。得られた混合物をシリカメンブレン（ＲＮｅａｓｙ  ＭｉｎＥｌｕｔｅ  Ｃｏｌｕｍｎ、ＱＩＡＧＥＮ）にアプライし、１００００ｒｐｍで１５秒間の遠心分離によりこのメンブレンに通過させた。標的核酸を結合させたこのメンブレンを、カオトロピック剤とエタノールとを含む洗浄バッファ（ＲＷＴ、ＱＩＡＧＥＮ）をメンブレンに通過させることにより洗浄した。その後、１０μｌのＤＮＡｓｅ  Ｉと７０μｌのＤＮＡｓｅ反応バッファ（バッファＲＤＤ、ＱＩＡＧＥＮ）とを含む８０μｌの混合物をこのメンブレンにアプライし、室温で１５分間インキュベートして、残っているゲノムＤＮＡを取り除いた。
【００６７】
先行技術において公知であるような対照標準法にしたがってＲＮＡを単離するために、メンブレン上でのＤＮＡｓｅ消化を行った後に、再び、カオトロピック剤とエタノールとを含む洗浄バッファ（バッファＲＷＴ、ＱＩＡＧＥＮ）を添加して、ＤＮａｓｅ反応溶液を除去した。洗浄バッファＲＷＴは、含まれるカオトロピック剤とアルコールに起因して、メンブレンに対するＲＮＡの結合を促進する。その後、このメンブレンを、アルコールを含む洗浄バッファ（ＲＰＥ、ＱＩＡＧＥＮ）５００μｌを２回添加し、メンブレンに通過させることにより洗浄した。メンブレンを１４０００ｒｐｍで５分間の遠心分離により乾燥させた。ＲＮＡを、３０μｌの水をアプライし、１分間のインキュベーション工程を行った後に遠心分離により溶離させた。
【００６８】
本発明による方法にしたがってＲＮＡを単離するために、メンブレン上でのＤＮａｓｅ消化を行った後、メンブレンに、１〜１．５ＭのＧＴＣ、７５％のイソプロパノール、クエン酸ナトリウムを含む回収溶液（ｐＨ７）をアプライし、遠心分離によってメンブレンを通過させた。フロースルーを回収し、再びアプライし、そして遠心分離によりメンブレンを通過させた。これにより、メンブレン上でのＤＮａｓｅ消化の間にメンブレンから遊離した、特に、低分子標的核酸をメンブレンに再度結合させ、これにより回収する。その後、アルコールを含む洗浄バッファ（ＲＰＥ、ＱＩＡＧＥＮ）５００μｌを２回添加し、メンブレンに通過させることにより、メンブレンを洗浄した。このメンブレンを１４０００ｒｐｍで５分間の遠心分離工程により乾燥させた。ＲＮＡを、３０μｌの水をアプライし、１分間のインキュベーション工程を行った後に遠心分離により溶離させた。
【００６９】
腎臓組織から単離したＲＮＡのサイズ分布を、本発明による方法により達成された改良を実証するためにＡｇｉｌｅｎｔ  Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒを使用して分析した。同量のＲＮＡ（ｎｇ量）をアプライした（ＯＤ測定法により決定した）。結果を図１に示す。ここでは、「＋」は本発明による方法を使用して単離したＲＮＡを示し、「−」は対照標準法を使用して単離したＲＮＡを示す。図から明らかであるように、本発明の方法にしたがって必須の回収と再アプライの工程ｃ）および工程ｄ）を行うことにより、単離されたＲＮＡにおける低分子標的ＲＮＡのかなりの増加が生じる。これは、本発明による方法にしたがって単離されたＲＮＡにおいて検出することができる、低分子ＲＮＡの範囲内にあるかなり濃いバンドにより導くことができる（これらのバンドを図１において矢印で示す）。したがって、低分子ＲＮＡの量は、対照標準法と比較して本発明による方法を用いて単離したＲＮＡの中ではかなり増加した。対照標準法を用いて単離したＲＮＡには低分子ＲＮＡは少量しか含まれておらず、したがって、より大きなＲＮＡ分子を、アプライした量のＲＮＡの中で検出することができる。したがって、この実施例は、本発明による方法により、単離されたＲＮＡにおける低分子ＲＮＡの収量がかなり増えることを示している。誤解を避けるために、本発明による方法または対照標準法を実施する場合には、より大きなＲＮＡ分子の全量は基本的に同じであることを強調し、これは、より大きなｍＲＮＡのアンプリコンを検出するＲＴ−ＰＣＲにより確認したとおりであった。
【００７０】
単離したＲＮＡをまた、特定の低分子ＲＮＡの収量に対する本発明による方法の有利な効果を分析するために、定量的リアルタイムＲＴ−ＰＣＲを使用して分析した。
【００７１】
この目的のために、単離したＲＮＡを、製造業者の指示にしたがってＡＢＩ  ＴａｑＭａｎ（登録商標）ＭｉｃｒｏＲＮＡアッセイ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を使用したｍｉｃｒｏ−ＲＮＡ  ｍｉＲ２９ａおよびｍｉｃｒｏ−ＲＮＡ  ｍｉＲ３０ｂのアンプリコンの決定に使用した。２０ｎｇのＲＮＡを、ＴａｑＭａｎ（登録商標）ＭｉｃｒｏＲＮＡ逆転写キットと対応するプライマーｈａｓ−ｍｉＲ３０ａおよびｈａｓ−ｍｉＲ２９ｂ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を製造業者の指示にしたがって使用して、逆転写反応において使用した。上記システムを使用したｍｉＲＮＡアンプリコンの増幅を、リアルタイム増幅システム（ＡＢＩ  ＰＲＩＳＭ  ７９００ＨＴ  Ｓｅｑｕｅｎｃｅ  Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  Ｓｙｓｔｅｍ，Ｃｏｍｐａｎｙ  ＡＢＩ）において、２μｌのｃＤＮＡ（１：２０の希釈率）を使用して行った。測定したｃｔ値の平均値（２連のものから導いた）を決定した。それを表１にまとめる。
【００７２】
【表１】
2013539366.tif 000002
結果は、本発明による方法を使用することにより、対照標準法により得られた対応する試料から得られたｃｔ値よりもかなり低いｃｔ値が生じることを示している。本発明による方法を用いて達成されたより低いｃｔ値は、それぞれ単離されたＲＮＡに多量の検出されたｍｉＲＮＡが含まれるという事実に起因する。これは、本発明の方法により単離したＲＮＡに、対照標準法を用いて単離したＲＮＡよりも多くの低分子核酸が含まれていることを示している。本発明による方法は、低分子標的核酸の収量が増えるため、生物学的試料からの低分子核酸の単離をかなり改善する。参考例が示すように、（先行技術において行われるような）遊離した可能性がある標的核酸の、メンブレンに対する結合を促進する、カオトロピック剤とエタノールとを含む洗浄バッファの単なる添加は、低分子標的核酸を効率よく再度捕捉するためには不十分である。上記で論られたように、遊離した低分子標的核酸がメンブレンの核酸を結合する表面から漏れ、したがって先行技術による方法によってはこれらを再度捕捉できないという事実がその原因である可能性が最も高い。
【００７３】
（実施例２：回収溶液中での様々な濃度のカオトロピック剤の使用）
この実施例ではラットの腎臓のＦＦＰＥ試料を使用した。ＦＦＰＥ試料は、固定および包埋後、室温でおよそ２カ月間保存した。１０μｍの厚みの切片を、Ｍｉｃｒｏｔｏｍを使用して上記ＦＦＰＥ試料から得た。１つの試料について１枚の切片を使用した。全ての試料を２回処理した。それぞれのＦＦＰＥ切片からのその後のＲＮＡの単離のために、ＲＮｅａｓｙ  ＦＦＰＥキット（ＱＩＡＧＥＮ）およびＱＩＡａｍｐ  ＦＦＰＥキット（ＱＩＡＧＥＮ）の成分を使用した。
【００７４】
本発明の方法および対照標準法によるＲＮＡの単離を実施例１に記載したとおりに行った。メンブレン上でのＤＮＡｓｅ消化を行った後に「漏れた」低分子ＲＮＡを再度結合させるために、３種類の異なる組成を回収溶液として使用した。試験した回収溶液には、７０％のエタノール、クエン酸ナトリウム（ｐＨ７）と以下を含めた：
Ａ）１．１６ＭのＧＴＣ
Ｂ）１．５ＭのＧＴＣ
Ｃ）１．８ＭのＧＴＣ。
【００７５】
腎臓試料から単離したＲＮＡのサイズ分布をＡｇｉｌｅｎｔ  Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒを使用して分析した。図１に示した結果と同様に、対照標準法を用いて単離した全ＲＮＡ中の低分子ＲＮＡの割合が、本発明による方法を用いて単離したＲＮＡ中よりもかなり低いことが再び明らかになった。したがって、本発明による方法により単離したＲＮＡには、低分子ＲＮＡがより高い収量で含まれていた。図２によっても明らかに示されるように、全ての試験した回収溶液Ａ）〜Ｃ）が、低分子標的核酸を効率よく再度捕捉するのに適しており、ここで、対照標準法「−」では低分子ＲＮＡは少量しか得られなかった。
【００７６】
低分子ＲＮＡの単離に対する試験した様々な回収溶液の効果を分析するために、ＲＮＡを、実施例１に記載したように定量的リアルタイムＲＴ−ＰＣＲを実行することにより分析した。この目的のために、単離したＲＮＡを、製造業者の指示にしたがってＡＢＩ  ＴａｑＭａｎ（登録商標）ＭｉｃｒｏＲＮＡアッセイ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を使用したｍｉｃｒｏ  ＲＮＡ  ｍｉＲ２９ａおよびｍｉｃｒｏ  ＲＮＡ  ｍｉＲ１６ｂのアンプリコンの検出に使用した。
【００７７】
測定したｃｔ値の平均値（２連のものより導いた）を決定した。それを表２にまとめる。
【００７８】
【表２】
2013539366.tif 000003
結果は、対照標準法により単離したＲＮＡと比較して本発明の方法により単離したＲＮＡを使用した場合には、ｃｔ値がかなり低いことを示している。これは、本発明による方法が、単離したＲＮＡ中の低分子ＲＮＡの収量をかなり増大させるという事実に起因する。結果が示しているように、様々な濃度のカオトロピック剤を回収溶液において使用することができ、成功している。
【００７９】
（実施例３：回収溶液における様々なアルコールと様々なアルコール濃度の適合性）
この実施例では、ラットの腎臓由来のＦＦＰＥ試料（この試料は固定および包埋後、室温で２カ月間保存した）とラットの肺由来のＦＦＰＥ試料（この試料は固定後、室温でおよそ２７カ月間保存した）を使用した。１０μｍの厚みを持つ切片を、Ｍｉｃｒｏｔｏｍを使用して得た。１つの試料について１枚の切片を使用した。全ての試料を２回処理した。ＦＦＰＥ切片からのその後のＲＮＡの単離には、ＲＮｅａｓｙ  ＦＦＰＥキット（ＱＩＡＧＥＮ）およびＱＩＡａｍｐ  ＦＦＰＥキット（ＱＩＡＧＥＮ）の成分を使用した。
【００８０】
本発明による方法または対照標準法を使用したＲＮＡの単離は、実施例１に記載したとおりに行った。メンブレン上でのＤＮＡｓｅ処理を行った後に「漏れた」低分子ＲＮＡを捕捉するために、４種類の異なる組成を持つ回収溶液を試験した。回収溶液には、１．５ＭのＧＴＣ、クエン酸ナトリウム（ｐＨ７）と以下を含めた：
Ａ）７０％のエタノール
Ｂ）７５％のエタノール
Ｃ）７０％のイソプロパノール
Ｄ）７５％のイソプロパノール。
【００８１】
腎臓組織から単離したＲＮＡのサイズ分布をＡｇｉｌｅｎｔ  Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒを使用して分析した。図１および図２に示す結果と同様に、本発明による方法を使用した場合には、単離した全ＲＮＡ中の低分子ＲＮＡの割合（ｐｏｒｔｉｏｎ）がかなり増大することが明らかになった（図３を参照のこと）。全ての試験した回収溶液は、低分子ＲＮＡを効率よく再度捕捉することについて基本的に等しく有効であり、ここで、対照標準法「−」では低分子ＲＮＡは少量しか得られなかった。
【００８２】
特定の低分子ＲＮＡの単離に対する様々な回収溶液の効果を分析するために、単離したＲＮＡを実施例１に記載した定量的リアルタイムＲＴ−ＰＣＲ法を使用して分析した。単離したＲＮＡを、製造業者の指示にしたがってＡＢＩ  ＴａｑＭａｎ（登録商標）ＭｉｃｒｏＲＮＡアッセイ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を使用することによるｍｉｃｒｏ−ＲＮＡ  ｍｉＲ２９ａのアンプリコンの決定に使用した。
【００８３】
測定したｃｔ値の平均値（２連のものより導いた）を決定した。それを表３にまとめる。
【００８４】
【表３】
2013539366.tif 000004
ここでもまた、結果は、本発明による方法を使用することにより、より低いｃｔ値から導くことができるように、単離したＲＮＡ中の低分子ＲＮＡの収量がかなり増えることを示している。様々なアルコールとアルコール濃度とを回収溶液中で使用することができる。
【００８５】
（実施例４：固定されていない試料からの本発明の方法または対照標準法による低分子核酸の単離）
ラットの肺の組織試料（この試料は切除後、ＲＮＡｌａｔｅｒ中、−８０℃で保存した）を、カオトロピック剤を含む溶解バッファを使用したＲＮＡの単離に使用した。全ての試料を２回処理した。その後のＲＮＡの単離のために、ＲＮｅａｓｙキット（ＱＩＡＧＥＮ）およびｍｉＲＮｅａｓｙキット（ＱＩＡＧＥＮ）の成分を使用した。
【００８６】
（フェノール−クロロホルムによる溶解）
それぞれ１０ｍｇのラットの肺を、１つの５ｍｍスチールビーズ（ｓｔｅａｌ  ｂｅａｄ）を含む７００μｌのフェノールベースの溶解バッファ（バッファＱＩＡｚｏｌ、ＱＩＡＧＥＮ）中で、ビーズミル（ＴｉｓｓｕｅＬｙｚｅｒ、ＱＩＡＧＥＮ）を使用して２５Ｈｚで５分間、ホモジナイズした。その後、試料を室温で５分間インキュベートし、その後、１４０μｌのクロロホルムを添加した。室温で２分間のインキュベーション後、溶解物を４℃にて、１２０００×ｇで１５分間遠心分離した。上相を取り出し、５２５μｌのエタノールと混合した。得られた混合物をシリカメンブレン（ＲＮｅａｓｙ  Ｍｉｎｉ  Ｃｏｌｕｍｎ、ＱＩＡＧＥＮ）にアプライし、１３０００ｒｐｍで１５秒間の遠心分離によりメンブレンを通過させた。標的核酸を結合させたメンブレンを、カオトロピック剤とエタノールとを含む洗浄バッファ（ＲＷＴ、ＱＩＡＧＥＮ）をこのメンブレンを通過させることにより洗浄した。
【００８７】
（カオトロピック剤による溶解）
それぞれ１０ｍｇのラットの肺を、１つの５ｍｍスチールビーズを含む３５０μｌの溶解バッファ（β−メルカプトエタノールを含むバッファＲＬＴ、ＱＩＡＧＥＮ）中で、ビーズミル（ＴｉｓｓｕｅＬｙｚｅｒ、ＱＩＡＧＥＮ）を使用して２５Ｈｚで５分間、ホモジナイズした。その後、試料を１４０００ｒｐｍで４分間遠心分離し、上清を５２５μｌのエタノールと混合した。得られた混合物をシリカメンブレン（ＲＮｅａｓｙ  Ｍｉｎｉ  Ｃｏｌｕｍｎ、ＱＩＡＧＥＮ）にアプライし、１００００ｒｐｍで１５秒間の遠心分離によりメンブレンを通過させた。
【００８８】
標的核酸を結合させたこのメンブレンを、カオトロピック剤とエタノールとを含む洗浄バッファ（ＲＷＴ、ＱＩＡＧＥＮ）をこのメンブレンを通過させることにより洗浄した。
（全ての試料のさらなる処理）
１０μｌのＤＮＡｓｅ  Ｉと７０μｌのＤＮＡｓｅ反応バッファ（バッファＲＤＤ、ＱＩＡＧＥＮ）とを含有している８０μｌの混合物をメンブレンにアプライし、室温で１５分間インキュベートして、残っているゲノムＤＮＡを取り除いた。
【００８９】
対照標準法にしたがって、または本発明による方法にしたがってＲＮＡを単離するために、全てのさらなる工程を実施例１に記載したとおりに行った。５０μｌの水（フェノールによる溶解）または４０μｌの水（カオトロピック剤による溶解）をアプライし、１分間のインキュベーション工程を行った後、ＲＮＡを遠心分離により２回溶離させた。
【００９０】
（溶離液の分析）
単離したＲＮＡを、実施例１に記載した定量的リアルタイムＲＴ−ＰＣＲ法を使用して分析した。単離したＲＮＡを、製造業者の指示にしたがってＡＢＩ  ＴａｑＭａｎ（登録商標）ＭｉｃｒｏＲＮＡアッセイ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を使用することによるｍｉｃｒｏ−ＲＮＡ  ｍｉＲ２９ａのアンプリコンの決定に使用した。
【００９１】
測定したｃｔ値の平均値（２連のものより導いた）を決定した、それを表４にまとめる。
【００９２】
【表４】
2013539366.tif 000005
ここでもまた、結果は、より低いｃｔ値から導くことができるように、本発明による方法を使用することにより、固定されていない試料においてもまた、単離したＲＮＡ中の低分子ＲＮＡの収量がかなり増えることを示している。
【００９３】
（実施例５：本発明による方法を使用した低分子ＤＮＡの単離）
ＤＮＡ試料として、１０ｂｐのＤＮＡ−ラダーと５０ｂｐのＤＮＡ−ラダーを使用した。その後の単離のために、ＱＩＡａｍｐ  ＭｉｎＥｌｕｔｅキット（ＱＩＡＧＥＮ）の成分を使用した。２μｇの１０ｂｐのＤＮＡ−ラダーと５μｇの５０ｂｐのＤＮＡ−ラダーを１８０μｌの溶解バッファ（バッファＡＴＬ、ＱＩＡＧＥＮ）と混合した。対照標準法（ＤＮＡのメンブレン上での処理を行ったか、もしくは行わなかったかのいずれか）または本発明による方法を使用して、上記混合物からＤＮＡを精製した。
【００９４】
メンブレン上での処理を行わなかった対照標準法（試料（ａ））については、溶解液−ＤＮＡ混合物を４μｌのＲＮＡ（１００ｍｇ／ｍｌ）と混合し、室温で２分間インキュベートした。続いて、カオトロピック剤（バッファＡＬ、ＱＩＡＧＥＮ）と２００μｌのエタノールとを含む２００μｌの結合バッファを添加した。得られた混合物をシリカメンブレン（ＱＩＡａｍｐ  ＭｉｎＥｌｕｔｅカラム、ＱＩＡＧＥＮ）にアプライし、遠心分離（１分間、８０００ｒｐｍ）によってシリカメンブレンを通過させた。メンブレンを、アルコールとカオトロピック剤を含有している５００μｌの洗浄バッファ（ＡＷ１、ＱＩＡＧＥＮ）、およびアルコールを含有している５００μｌの洗浄バッファ（ＡＷ２）をこのメンブレンを通過させることにより洗浄した。このメンブレンを遠心分離（１分間、１４０００ｒｐｍ）により乾燥させた。溶離バッファ（３０μｌ、ＡＴＥ、ＱＩＡＧＥＮ）をアプライし、１分間インキュベーションした後、遠心分離によりＤＮＡを溶離させた。
【００９５】
ＤＮＡのメンブレン上での処理を行った対照標準法（試料ｂ、ｃ、ｅ、ｆ）および本発明による方法（試料ｄ、ｇ）では、溶解バッファとＤＮＡ試料とを含む混合物を、カオトロピック剤を含む２００μｌの結合バッファ（バッファＡＬ、ＱＩＡＧＥＮ）、および２００μｌのエタノールと混合した。得られた混合物をシリカメンブレン（ＱＩＡａｍｐ  ＭｉｎＥｌｕｔｅカラム、ＱＩＡＧＥＮ）にアプライし、遠心分離（１分間、８０００ｒｐｍ）によりシリカメンブレンを通過させた。
【００９６】
その後、ＤＮＡをこのメンブレンに結合させたまま、様々なメンブレン上での処理を行った。いくつかの試料はＲＮａｓｅで処理し（試料ｂ、ｃ、ｄ）、他の試料はプロテアーゼで処理した（試料ｅ、ｆ、ｇ）。
【００９７】
４μｌのＲＮａｓｅ  Ａ（１００ｍｇ／ｍｌ）と７６μｌのＲＮａｓｅ反応バッファ（バッファＲＤＤ、ＱＩＡＧＥＮ）とからなる８０μｌのＲＮａｓｅ混合物をメンブレンにアプライし、室温で５分間インキュベートして、メンブレン上でのＲＮａｓｅ処理を行なった。
【００９８】
２０μｌのプロテイナーゼＫ（＞６００ｍＡＵ／ｍｌ）と６０μｌのプロテアーゼ反応バッファ（バッファＲＤＤ、ＱＩＡＧＥＮ）とからなる８０μｌのプロテアーゼ混合物をメンブレンにアプライし、５６℃で１５分間インキュベートして、メンブレン上でのプロテアーゼ処理を行なった。
【００９９】
対照標準法により処理した試料（試料ｂ、ｃ、ｅ、ｆ）については、カオトロピック剤とエタノールとを含む５００μｌのバッファ（バッファＡＷ１、ＱＩＡＧＥＮ（試料ｂ、ｅ）またはバッファＲＷＴ、ＱＩＡＧＥＮ（試料ｃ、ｆ））と、アルコールを含む５００μｌの洗浄バッファＡＷ２（ＱＩＡＧＥＮ）を、このメンブレンを通過させた。このメンブレンを遠心分離（１分間、１４０００ｒｐｍ）により乾燥させた。ＤＮＡを、溶離バッファ（３０μｌ、ＡＴＥ、ＱＩＡＧＥＮ）をアプライし、１分間インキュベーションした後に、遠心分離により溶離させた。
【０１００】
本発明による方法により処理した試料（試料ｄおよびｇ）については、回収溶液（１〜１．５ＭのＧＴＣ、７５％のイソプロパノール、クエン酸ナトリウム（ｐＨ７）を含む）をメンブレンにアプライし、遠心分離によってこのメンブレンを通過させた。フロースルーを再びメンブレンにアプライし、遠心分離によってこのメンブレンを通過させて、漏れた低分子ＤＮＡ分子を再度結合させた。その後、メンブレンを、アルコールを含む５００μｌの洗浄バッファ（ＡＷ２）をこのメンブレンを通過させることにより洗浄した。このメンブレンを遠心分離（１分間、１４０００ｒｐｍ）により乾燥させた。溶離バッファ（３０μｌのＡＴＥ、ＱＩＡＧＥＮ）をアプライし、１分間インキュベーションした後に、遠心分離によりＤＮＡを溶離させた。
【０１０１】
実施例５で試験した様々な方法により単離したＤＮＡの収量を２６０ｎｍで決定した。表５は２連の平均値を示す。
【０１０２】
【表５】
2013539366.tif 000006
表５から明らかであるように、本発明による方法により、メンブレン上での処理が行なわれる核酸の単離方法において低分子ＤＮＡの収量がかなり増える。
【０１０３】
（実施例６：回収溶液における様々なカオトロピック剤と様々なバッファの適合性）
ラットの肺の組織試料（この試料は切除後、ＲＮＡｌａｔｅｒ中、−８０℃で保存した）を、カオトロピック剤を含む溶解バッファを使用するＲＮＡの単離に使用した。その後のＲＮＡの単離のために、ＲＮｅａｓｙキット（ＱＩＡＧＥＮ）およびｍｉＲＮｅａｓｙキット（ＱＩＡＧＥＮ）の成分を使用した。
【０１０４】
溶解物のプールをラットの肺組織から調製して、様々な回収溶液の比較のための均質な出発材料を提供した。３５０μｌの溶解バッファ（β−メルカプトエタノールを含むバッファＲＬＴ、ＱＩＡＧＥＮ）を１０ｍｇの各組織に添加し、この材料をロータースターターホモジナイザー（ｒｏｔｏｒ  ｓｔａｔｏｒ  ｈｏｍｏｇｅｎｉｚｅｒ）を使用してホモジナイズした。ホモジナイズした後、溶解物のプールを３５０μｌの溶解物のアリコートに分け、その後の全てのＲＮＡ精製に使用した。この溶解物を５２５μｌの９６〜１００％のエタノールと混合し、シリカメンブレン（ＲＮｅａｓｙ  Ｍｉｎｉ  Ｃｏｌｕｍｎ、ＱＩＡＧＥＮ）にアプライし、１００００ｒｐｍで１５秒間の遠心分離によりメンブレンを通過させた。
【０１０５】
再結合を行わなかった対照標準（ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ）の場合（図４のｒｅｆ（対照標準）を参照のこと）、標的核酸を結合させたメンブレンを、カオトロピック剤とエタノールとを含む洗浄バッファ（ＲＷＴ、ＱＩＡＧＥＮ）をメンブレンを通過させることにより洗浄した。１０μｌのＤＮＡｓｅ  Ｉと７０μｌのＤＮＡｓｅ反応バッファ（バッファＲＤＤ、ＱＩＡＧＥＮ）とを含有している８０μｌの混合物をメンブレンにアプライし、室温で１５分間インキュベートして、残っているゲノムＤＮＡを取り除いた。その後、メンブレンを、カオトロピック剤とエタノールとを含む洗浄バッファ（ＲＷＴ、ＱＩＡＧＥＮ）をこのメンブレンを通過させることによって再度洗浄した。その後、メンブレンを、アルコールを含む洗浄バッファ（ＲＰＥ、ＱＩＡＧＥＮ）５００μｌを２回添加し、このメンブレンを通過させることにより洗浄した。このメンブレンを、１４０００ｒｐｍで３分間の遠心分離により乾燥させた。４０μｌの水をアプライし、１分間のインキュベーション工程を行った後、ＲＮＡを、遠心分離により２回溶離させた。
【０１０６】
本発明の方法によるＲＮＡの単離のために、標的核酸を結合させたこのメンブレンを、カオトロピック剤、バッファ成分、およびイソプロパノールを様々な組成で含む回収溶液（表６）をこのメンブレンを通過させることにより洗浄した。フロースルーは廃棄した。１０μｌのＤＮＡｓｅ  Ｉと７０μｌのＤＮＡｓｅ反応バッファ（バッファＲＤＤ、ＱＩＡＧＥＮ）とを含有している８０μｌの混合物をメンブレンにアプライし、室温で１５分間インキュベートして、残っているゲノムＤＮＡを取り除いた。オンカラムＤＮＡｓｅ消化工程を行った後、同じタイプの回収溶液をメンブレンにアプライし、遠心分離によりこのメンブレンを通過させた。フロースルーを回収し、再度アプライし、遠心分離によりこのメンブレンを通過させた。これにより、メンブレン上でのＤＮａｓｅ消化の間にメンブレンから遊離した、特に、低分子標的核酸をメンブレンに再び結合させ、これにより回収する。その後、ＲＮＡを、対照標準法について上に記載したとおりに、メンブレンから溶離させた（全ての試料を２回処理した）。
【０１０７】
【表６】
2013539366.tif 000007
単離したＲＮＡを、実施例１に記載した定量的リアルタイムＲＴ−ＰＣＲ法を使用して分析した。単離したＲＮＡを、製造業者の指示にしたがってｍｉＳｃｒｉｐｔ  Ｓｙｓｔｅｍ（ＱＩＡＧＥＮ）を使用することによるｍｉｃｒｏ−ＲＮＡ  ｍｉＲ１６のアンプリコンの決定に使用した。
【０１０８】
測定したｃｔ値の平均値（２連のものより導いた）を決定し、図４に示す。ここでもまた、結果は、より低いｃｔ値から導くことができるように、本発明による方法を使用することにより、単離したＲＮＡ中の低分子ＲＮＡの収量がかなり増えることを示している。様々なカオトロピック剤と様々なバッファ成分を回収溶液において使用することができる。
【０１０９】
（実施例７：本発明による方法または先行技術のプロトコールによる方法を使用したＲＮＡおよびＤＮＡの単離）
ラットの肝臓由来のＦＦＰＥ試料（試料は固定およびパラフィン包埋後、室温でおよそ２カ月間保存した）、ラットの腎臓由来のＦＦＰＥ試料（対応させて、およそ１９カ月間保存および包埋した）、およびラットの肺由来のＦＦＰＥ試料（対応させて、およそ８カ月間保存および包埋した）を使用した。１０μｍサイズの厚みを有している組織切片を、ミクロトームにかけることにより得た。１つの試料について２枚の切片を使用した。全ての試料を３連で処理した。その後のＲＮＡおよびＤＮＡの単離のために、ＲＮｅａｓｙ  ＦＦＰＥキット（ＱＩＡＧＥＮ）およびＡｌｌｐｒｅｐ  ＤＮＡ  ＲＮＡ  ＦＦＰＥキット（ＱＩＡＧＥＮ）の成分を、本発明の方法を使用する際に利用した。
【０１１０】
あるいは、先行技術であるキットのプロトコールに基づく方法を比較のために使用した。様々な供給業者による以下のキットを使用した：
−  ＦＦＰＥ  ＲＮＡ／ＤＮＡ  Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ  Ｋｉｔ（ＮＯＲＧＥＮ）
−  ＲｅｃｏｖｅｒＡｌｌ（商標）Ｔｏｔａｌ  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ  Ｋｉｔ  Ｏｐｔｉｍｉｚｅｄ  ｆｏｒ  ＦＦＰＥ  Ｓａｍｐｌｅｓ（Ａｍｂｉｏｎ）
−  ＱｕｉｃｋＥｘｔｒａｃｔ（商標）ＦＦＰＥ  ＲＮＡ  Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ  Ｋｉｔ（ＥＰＩＣＥＮＴＲＥ）
−  ＲＮＡ  ａｎｄ  ＤＮＡ  Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ  ｆｒｏｍ  ＦＦＰＥ  Ｓａｍｐｌｅｓ（Ｍａｃｈｅｒｅｙ−Ｎａｇｅｌ）。
【０１１１】
（本発明による方法）
試料を、１ｍｌのキシロールとともに１０秒間ボルテックスすることにより混合し、遠心分離して（２分間、２０，０００ｒｐｍ）、上記試料からパラフィンを取り除いた。上清を完全に取り除いた。その後、試料に１ｍｌの９６％エタノールを補充し、１０秒間ボルテックスすることにより混合し、上記のように遠心分離した。上清を完全に取り除き、試料ペレットを３７℃で１０分間乾燥させた。
【０１１２】
これらのパラフィン除去した試料ペレットを１５０μｌのプロテイナーゼＫ消化バッファ（バッファＰＫＤ、ＱＩＡＧＥＮ）および１０μｌのプロテイナーゼＫ溶液（＞６００ｍＡＵ／ｍｌ）と混合した。この混合物を５６℃で１５分間、４５０ｒｐｍの一定速度で振盪させながらインキュベートした。試料を氷上で３分間冷却し、２０，０００ｇで１５分間、室温で遠心分離した。ＤＮＡを含有しているペレットを、ＤＮＡを単離するために使用し、含まれるＲＮＡを単離するために上清を回収した。
【０１１３】
続いて、これらのＲＮＡを含む上清を、サーモミキサー（ｔｈｅｒｍｏｍｉｘｅｒ）上で４５０ｒｐｍ、８０℃で１５分間インキュベートした。その後、いずれの場合にも３２０μｌのカオトロピック溶解バッファ（バッファＲＬＴ、ＱＩＡＧＥＮ）を添加し、得られた混合物に１１２０μｌの９６％エタノールを加えた。試薬をピペッティングにより混合し、７００μｌをシリカメンブレン（ＲＮｅａｓｙ  ＭｉｎＥｌｕｔｅ  Ｃｏｌｕｍｎ、ＱＩＡＧＥＮ）にアプライした。試料を１０，０００ｒｐｍで１５秒間の遠心分離によりメンブレンを通過させ、フロースルーは廃棄した。これに基づいて、残りの試料をメンブレンにアプライした。標的核酸を結合させたこのメンブレンを、５Ｍ  ＧＴＣ（＋２５ｍＭのクエン酸Ｎａ）が１でイソプロパノールが３の割合からなる３５０μｌの回収溶液（以後、回収溶液と呼ぶ）をこのメンブレンを通過させる（１０，０００ｒｐｍで１５秒間の遠心分離）ことにより洗浄した。その後、１０μｌのＤＮＡｓｅ  Ｉと７０μｌのＤＮＡｓｅ反応バッファ（バッファＲＤＤ、ＱＩＡＧＥＮ）とを含む混合物をメンブレンにアプライし、室温で１５分間インキュベートした。
【０１１４】
このメンブレン上でのＤＮａｓｅ消化を行った後、５００μｌのこの回収溶液をメンブレンにアプライし、遠心分離（１５秒間、１０，０００ｒｐｍ）によりメンブレンを通過させた。上記のように、フロースルーを回収し、メンブレンに再度アプライし、遠心分離によりメンブレンを通過させた。これにより、メンブレン上でのＤＮａｓｅ消化の間にメンブレンから遊離した、特に、低分子標的核酸をメンブレンに再度結合させ、これによって回収した。続いて、メンブレンを、アルコールを含む洗浄バッファ（ＲＰＥ、ＱＩＡＧＥＮ）５００μｌを添加し、上記のように遠心分離によってメンブレンを通過させることによって、２回洗浄した。このメンブレンを、１４，０００ｒｐｍで５分間の遠心分離工程により乾燥させた。全ＲＮＡを、３０μｌのＲＮＡｓｅを含まない水を加え、１分間インキュベーションした後、フルスピードで１分間の遠心分離により溶離させた。
【０１１５】
ＤＮＡの単離のために、１８０μｌのバッファＡＴＬ（ＱＩＡＧＥＮ）と４０μｌのプロテイナーゼＫを各試料ペレットに添加した。ボルテックスした後、試料を５６℃で１時間、一定速度で振盪させながらインキュベートした。その後、試料を９０℃で２時間、振盪させずにインキュベートした。４μｌのＲＮａｓｅ  Ａ（１００ｍｇ／ｍｌ）をこの混合物に添加し、混合し、そして室温で２分間インキュベートした。試料に２００μｌのバッファＡＬ（ＱＩＡＧＥＮ）を加え、混合した。２００μｌの９６％エタノールを添加し、直ちに混合した。この混合物をＱＩＡａｍｐ  ＭｉｎＥｌｕｔｅカラムにアプライし、８，０００ｇで１分間遠心分離した。フロースルーは廃棄した。試料に７００μｌのバッファＡＷ１（ＱＩＡＧＥＮ）を加え、８，０００ｇで１分間遠心分離した。フロースルーは廃棄した。試料に７００μｌのバッファＡＷ２（ＱＩＡＧＥＮ）を加え、上記のように遠心分離した。フロースルーは廃棄した。試料に７００μｌの９６％エタノールを加え、上記のように遠心分離した。フロースルーは廃棄した。メンブレンを乾燥させるために、カラムを、蓋をあけた状態で１４，０００ｒｐｍで５分間遠心分離した。３０μｌのバッファＡＴＥ（ＱＩＡＧＥＮ）をカラムのメンブレン上に直接ピペッティングし、続いて、室温でのインキュベーションと、８０００ｇで１分間の遠心分離を行った。３０μｌの溶離液を、さらなる処理まで、−２０℃で保存した。
（先行技術のプロトコールに基づく方法）
ＦＦＰＥ  ＲＮＡ／ＤＮＡ  Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ  Ｋｉｔ（ＮＯＲＧＥＮ）を、製造業者の指示にしたがって全ＲＮＡおよびＤＮＡの単離に使用した。試料を、ＲＮＡおよびＤＮＡそれぞれについて、５０℃でおよそ２時間および２４時間、プロテイナーゼＫとともにインキュベートし、試料を完全に溶解させた。ＲＮＡの場合に限り、結合溶液１ｍｌあたり１０μｌのβ−メルカプトエタノールを添加した。さらなるＤＮＡ消化を、１０単位のＤＮａｓｅ  Ｉ（ＱＩＡＧＥＮ）を用いて行った。対応するインキュベーションバッファ中のＤＮａｓｅをカラムに加え、続いて遠心分離した後、フロースルーを再度アプライし、１５分間インキュベートした。
【０１１６】
ＲｅｃｏｖｅｒＡｌｌ（商標）Ｔｏｔａｌ  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ  Ｋｉｔ  Ｏｐｔｉｍｉｚｅｄ  ｆｏｒ  ＦＦＰＥ  Ｓａｍｐｌｅｓ（Ａｍｂｉｏｎ）、ＱｕｉｃｋＥｘｔｒａｃｔ（商標）ｔｈｅ  ＦＦＰＥ  ＲＮＡ  Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ  Ｋｉｔ（ＥＰＩＣＥＮＴＲＥ）、およびキットＲＮＡ  ａｎｄ  ＤＮＡ  Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ  ｆｒｏｍ  ＦＦＰＥ  Ｓａｍｐｌｅｓ（Ｍａｃｈｅｒｅｙ−Ｎａｇｅｌ）を、製造業者の指示にしたがって、ＤＮＡ消化を含む全ＲＮＡおよびＤＮＡの単離に利用した。
【０１１７】
その後、様々なプロトコールにより単離した核酸を、とりわけ、質、量、単離されたＲＮＡ中のＤＮＡ混入物質、特に、単離した低分子核酸の収量に関して分析した。結果を図５〜９に示す。
【０１１８】
これらの結果は、本発明による方法により、同じ試料からＤＮＡおよびＲＮＡを並行して、しかし別々に単離することができることを示している。ここでは、ＲＮＡおよびＤＮＡの単離には、合計でおよそ６時間を要する。したがって、これを１日の作業時間のうちに行うことができる。単離された核酸の質は高かった。単離したＲＮＡ中のＤＮＡ混入物質は、先行技術の方法と比較するとはるかに少なく、単離した低分子ＲＮＡの収量はかなり多かった。
【０１１９】
Ｅｐｉｃｅｎｔｒｅプロトコールは非常に迅速であり（ＲＮＡおよびＤＮＡについて合計でおよそ１：１０時間）、単純である。しかし、得られる「溶離液」は乳汁状、帯黄色であり、濁っていた。さらに、単離したＲＮＡの質は満足できるものではなく、低分子核酸の含量は非常に低かった。Ｍａｃｈｅｒｙ−Ｎａｇｅｌプロトコールによっては、同じ試料からＤＮＡとＲＮＡを並行して単離することができる。しかし、単離したＲＮＡは、より分解されており、本発明による方法と比較すると、この実施例７で調べたＲＮＡについて、リアルタイムＰＣＲの高いｃｔ値を生じた。このプロトコールを使用する場合には、ＲＮＡおよびＤＮＡの単離には、合計でおよそ８：３０時間を要する。ＮＯＲＧＥＮプロトコールは、非常に時間がかかり（試験した形式では、ＲＮＡについてはおよそ５：２０時間、ＤＮＡについてはおよそ２６時間）、これは、非常に長いプロテイナーゼＫ消化工程（それぞれ、およそ２時間および２４時間）により生じる。さらに、結果は、単離したＲＮＡ中のＤＮＡ混入物質がやや多いことを示している。さらに、低分子ＲＮＡの収量はかなり少なかった。Ａｍｂｉｏｎプロトコールは、ＤＮＡの回収に１６時間のプロテアーゼ消化工程が必要であるので非常に時間がかかり、これは、日常的に行われる研究室での作業の流れと矛盾する。さらに、単離されたＲＮＡ中のＤＮＡ混入物質は本発明による方法を用いた場合よりも多く、低分子ＲＮＡの含量は少なかった。
（ＭｉｃｒｏＲＮＡの分析）
様々な組織から単離したＲＮＡのサイズ分布を、本発明による方法により達成された改善を明らかにするためにＡｇｉｌｅｎｔ  Ｂｉｏａｎａｌｙｓｅｒを使用して分析した。同量のＲＮＡ（ｎｇ量）をアプライした（ＯＤ測定法により決定した）。肺組織試料（３連で処理した）についての結果を図５に示す。図から明らかであるように、本発明による方法を実行することにより、先行技術のキットプロトコールによる方法と比較して、単離したＲＮＡにおいて低分子標的ＲＮＡの高く、かつ信頼できる収量が得られた。これは、低分子ＲＮＡの範囲にあるバンドから導くことができる。これらのバンドを、図５において矢印で印をつける。
【０１２０】
さらに、本発明による方法により、優れて最高純度の単離されたＲＮＡが得られたことを強調しなければならない。図６は、単離したＲＮＡの逆転写（ＲＴ）を行った（＋）および単離したＲＮＡの逆転写（ＲＴ）を行わなかった（−）リアルタイムＰＣＲによりそれぞれ定量化したｃｊｕｎ  ｍＲＮＡを用いて得られた結果を示す。調べた全ての組織について、得られたｃｔ値の差（Δ）は、本発明による方法の場合に、優れて最高の値を示し（ＱＩＡＧＥＮ）、これは、ゲノムＤＮＡを含む混入物質が最も少ないことを示している。
【０１２１】
単離したＲＮＡについて、特定の低分子ＲＮＡの収量に対する本発明による方法の有利な効果を分析するために、定量的リアルタイムＲＴ−ＰＣＲを行った。この目的のために、２０ｎｇの各単離した全ＲＮＡを、実施例１に記載した手順およびデバイスにしたがって、ｍｉｃｒｏＲＮＡ  ｍｉＲ２９ａのアンプリコンを検出するために使用した。測定したｃｔ値の平均値（３連のものから導いた）を決定した。その結果を図７に示す。これらの結果は、本発明による方法を使用することにより、先行技術のキットプロトコールに基づく方法により得られた、試料のｃｔ値よりもかなり低いｃｔ値がもたらされることを示している。本発明による方法を用いて達成されたこれらのより低いｃｔ値は、対応する単離された全ＲＮＡに多量のｍｉｃｒｏＲＮＡ  ｍｉＲ２９ａが含まれることに帰因する。ここでもまた、これらの結果は、本発明の方法により単離された全ＲＮＡがより多くの低分子核酸を含むこと、すなわち、生物学的試料由来の低分子核酸の収量が増えることを示している。先行技術のキットプロトコールに基づく方法は、本発明による方法よりも低分子標的核酸を再度結合させることにおいて効率が低い。
【０１２２】
単離したＤＮＡについて定量的リアルタイムＰＣＲを行った。プリオン７８ｂｐについて、測定したｃｔ値の平均値（３連のものから導いた）を決定した。それを、使用した等容積および等濃度のＤＮＡ試料それぞれについて図８ａおよびｂにまとめる。プリオン７８ｂｐについてのｃｔ値は本発明による方法を使用する場合はかなりより低い。
【０１２３】
単離したＲＮＡについて、さらに定量的リアルタイムＲＴ−ＰＣＲを行った。Ｍａｄｈ７について、測定したｃｔ値の平均値（３連のものから導いた）を決定した。それを、使用した等容積および等濃度のＲＮＡ試料それぞれについて図９ａおよびｂにまとめる。Ｍａｄｈ７についてのｃｔ値は本発明による方法を使用する場合はかなりより低い。
【図１】
2013539366.tif 000008
【図２】
2013539366.tif 000009
【図３】
2013539366.tif 000010
【図４】
2013539366.tif 000011
【図６】
2013539366.tif 000012
【図９ａ】
2013539366.tif 000013
【図９ｂ】
2013539366.tif 000014
【図５】
2013539366.tif 000015
【図７】
2013539366.tif 000016
【図８】
2013539366.tif 000017
【国際調査報告】
2013539366.tif 000018
2013539366.tif 000019
2013539366.tif 000020