(57)【要約】  ＰＣＳＫ９アンタゴニストを使用する方法。より具体的には、イムノアッセイを用いて生体試料中の循環ＰＣＳＫ９レベルを測定するための方法。
2013509591.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
生体試料中の循環ＰＣＳＫ９レベルを測定する方法であって、被験体から入手した生体試料でイムノアッセイを実施する段階、および前記試料中のＰＣＳＫ９のレベルを既知濃度のＰＣＳＫ９を有する標準物質と比較する段階を含み、コーティングもしくは捕捉抗体がＡＸ２１３であり、検出抗体がＡＸ１である、方法。
【請求項２】
ＡＸ２１３およびＡＸ１が全長抗体である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
ＡＸ２１３が、配列番号３を含む軽鎖可変（「ＶＬ」）配列と、配列番号７を含む重鎖可変（「ＶＨ」）配列を含み、かつ、ＡＸ１が、配列番号１５を含む軽鎖可変（「ＶＬ」）配列と、配列番号１９を含む重鎖可変（「ＶＨ」）配列を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
ＡＸ２１３が、配列番号１または配列番号１１を含む軽鎖と、配列番号９を含む重鎖を含み、ＡＸ１が、（ａ）配列番号１３または配列番号２３を含む軽鎖と（ｂ）配列番号２１を含む重鎖を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項５】
イムノアッセイを実施する段階が、（ａ）固定化された抗ＰＣＳＫ９抗体ＡＸ２１３を有する支持体に、生体試料を付着させること、（ｂ）その上に該生体試料を付着させた該支持体と、検出可能な標識を有する抗ＰＣＳＫ９抗体ＡＸ１を接触させること、および（ｃ）該標識を検出することを含む、請求項１に記載の方法。
【請求項６】
該イムノアッセイが固相イムノアッセイである、請求項１に記載の方法。
【請求項７】
該固相イムノアッセイが、解離促進ランタニド蛍光イムノアッセイ（ＤＥＬＦＩＡ）である、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
前記試料が、血液、血漿および血清からなる群から選択される、請求項１に記載の方法。
【請求項９】
該血液、血漿または血清がヒト由来である、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
推定ＰＣＳＫ９アンタゴニストと接触させた生体試料でイムノアッセイを実施する方法であって、（ａ）固定化された抗ＰＣＳＫ９抗体ＡＸ２１３を有する支持体に該生体試料を付着させる段階、（ｂ）その上に該生体試料を付着させた該支持体と、検出可能な標識を有する抗ＰＣＳＫ９抗体ＡＸ１を接触させる段階、（ｃ）該標識を検出する段階、および（ｄ）前記試料中のＰＣＳＫ９の該レベルを既知濃度のＰＣＳＫ９を有する標準物質と比較する段階を含む、方法。
【請求項１１】
ＡＸ２１３およびＡＸ１が全長抗体である、請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
ＡＸ２１３が、配列番号３を含む軽鎖可変（「ＶＬ」）配列と、配列番号７を含む重鎖可変（「ＶＨ」）配列を含み、ＡＸ１が、配列番号１５を含む軽鎖可変（「ＶＬ」）配列と、配列番号１９を含む重鎖可変（「ＶＨ」）配列を含む、請求項１０に記載の方法。
【請求項１３】
ＡＸ２１３が、配列番号１または配列番号１１を含む軽鎖と、配列番号９を含む重鎖を含み、ＡＸ１が、（ａ）配列番号１３または配列番号２３を含む軽鎖および（ｂ）配列番号２１を含む重鎖を含む、請求項１０に記載の方法。
【請求項１４】
該イムノアッセイが固相イムノアッセイである、請求項１０に記載の方法。
【請求項１５】
該固相イムノアッセイが、解離促進ランタニド蛍光イムノアッセイ（ＤＥＬＦＩＡ）である、請求項１４に記載の方法。
【請求項１６】
前記試料が、血液、血漿および血清からなる群から選択される、請求項１０に記載の方法。
【請求項１７】
該血液、血漿または血清がヒト由来である、請求項１６に記載の方法。
【請求項１８】
生体試料中の循環ＰＣＳＫ９レベルを測定するためのキットであって、
ａ）生体試料収集装置と、
ｂ）コーティングもしくは捕捉抗体および検出抗体を含む、イムノアッセイを構成する組成物と、
ｃ）該試料中のＰＣＳＫ９抗原と該イムノアッセイにおける抗体との間の反応を検出するための手段とを含み、
該コーティングもしくは捕捉抗体がＡＸ２１３であり、該検出抗体がＡＸ１である、キット。
【請求項１９】
ＡＸ２１３およびＡＸ１が全長抗体である、請求項１８に記載のキット。
【請求項２０】
ＡＸ２１３が、配列番号３を含む軽鎖可変（「ＶＬ」）配列と、配列番号７を含む重鎖可変（「ＶＨ」）配列を含み、ＡＸ１が、配列番号１５を含む軽鎖可変（「ＶＬ」）配列と、配列番号１９を含む重鎖可変（「ＶＨ」）配列を含む、請求項１９に記載の方法。
【請求項２１】
ＡＸ２１３が、配列番号１または配列番号１１を含む軽鎖と、配列番号９を含む重鎖を含み、ＡＸ１が、（ａ）配列番号１３または配列番号２３を含む軽鎖および（ｂ）配列番号２１を含む重鎖を含む、請求項２０に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【背景技術】
【０００１】
神経アポトーシス調節転換酵素１（ＮＡＲＣ−１）としても公知のプロタンパク質転換酵素スブチリシン−ケキシン９型（ＰＣＳＫ９）は、分泌性サブチラーゼファミリーの９番目のメンバーとして同定されるプロテイナーゼＫ様サブチラーゼである（Ｓｅｉｄａｈ，Ｎ．Ｇ．，ｅｔ  ａｌ．，２００３  ＰＲＯＣ  ＮＡＴＬ  ＡＣＡＤ  ＳＣＩ  ＵＳＡ  １００：９２８−９３３）。ＰＣＳＫ９は、増殖および分化の能力のある細胞、例えば肝細胞、腎臓間葉細胞、回腸、結腸上皮および胎児終脳神経（ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  ｂｒａｉｎ  ｔｅｌｅｎｃｅｐｈａｌｉｃ  ｎｅｕｒｏｎｓ）などで発現する（Ｓｅｉｄａｈ  ｅｔ  ａｌ．，２００３）。
【０００２】
ヒトＰＣＳＫ９の遺伝子は、既に配列決定され、６９２アミノ酸タンパク質をコードする１２個のエキソンを含む、約２２ｋｂの長さであることが見出された（ＮＰ＿７７７５９６．２）。ＰＣＳＫ９は、ＰＣＴ公報国際公開第０１／３１００７号、同第０１／５７０８１号、同第０２／１４３５８号、同第０１／９８４６８号、同第０２／１０２９９３号、同第０２／１０２９９４号、同第０２／４６３８３号、同第０２／９０５２６号、同第０１／７７１３７号、および同第０１／３４７６８号、米国特許出願公開第２００４／０００９５５３号および同第２００３／０１１９０３８号、ならびに欧州特許出願公開第１４４０９８１号、同第１０６７１８２号、および同第１４７１１５２号を含む、いくつかの特許公報において開示され、および／または特許請求されている。
【０００３】
ＰＣＳＫ９は、コレステロール生合成または取り込みにおいて特異的役割を有するが、コレステロールホメオスタシスに関与してきた。コレステロール摂食ラットの研究において、マックスウェルらは、ＰＣＳＫ９が、コレステロール生合成に関与するその他の遺伝子と同様の様式で下方制御されることを見出した（Ｍａｘｗｅｌｌ  ｅｔ  ａｌ．，２００３  Ｊ．ＬＩＰＩＤ  ＲＥＳ．４４：２１０９−２１１９）。ＰＣＳＫ９の発現は、ステロール調節エレメント結合タンパク質（ＳＲＥＢＰ）により調節されたが、これはコレステロール代謝に関与するその他の遺伝子においても見られることである（Ｍａｘｗｅｌｌ  ｅｔ  ａｌ．，２００３）。
【０００４】
その上、ＰＣＳＫ９発現は、薬物のコレステロール低下作用に起因する様式で、スタチンにより上方制御される（Ｄｕｂｕｃ  ｅｔ  ａｌ．，２００４  ＡＲＴＥＲＩＯＳＣＬＥＲ．ＴＨＲＯＭＢ．ＶＡＳＣ．ＢＩＯＬ．２４：１４５４−１４５９）。ＰＣＳＫ９のアデノウイルス発現は、循環低比重リポタンパク質（ＬＤＬ）の注目すべき時間依存的増加をもたらすことが示され（Ｂｅｎｊａｎｎｅｔ  ｅｔ  ａｌ．，２００４  Ｊ．ＢＩＯＬ．ＣＨＥＭ．２７９：４８８６５−４８８７５）、ＰＣＳＫ９遺伝子欠失マウスは、肝臓ＬＤＬ受容体（ＬＤＬＲ）のレベルを増加させ、血漿からより迅速にＬＤＬを排除する（Ｒａｓｈｉｄ  ｅｔ  ａｌ．，２００５  ＰＲＯＣ．ＮＡＴＬ．ＡＣＡＤ．ＳＣＩ．ＵＳＡ  １０２：５３７４−５３７９）。一過性にＰＣＳＫ９をトランスフェクトしたＨｅｐＧ２細胞由来培養液は、トランスフェクトされていないＨｅｐＧ２細胞に移した場合に、細胞表面ＬＤＬＲおよびＬＤＬの内部移行の量を低下させる（Ｃａｍｅｒｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００６  ＨＵＭＡＮ  ＭＯＬ．ＧＥＮＥＴ．１５：１５５１−１５５８）。さらに、ＨｅｐＧ２細胞の培養液に添加した精製ＰＣＳＫ９は、用量および時間依存的な様式で細胞表面ＬＤＬＲの数を低下させる作用を有することが実証された（Ｌａｇａｃｅ  ｅｔ  ａｌ，２００６  Ｊ．ＣＬＩＮ．ＩＮＶＥＳＴ．１１６：２９９５−３００５）。
【０００５】
また、遺伝子ＰＣＳＫ９中のいくつかの変異も、早発性心血管不全を導き得る血漿中の低比重リポタンパク質（「ＬＤＬ」）粒子の著しい上昇を特徴とする遺伝性代謝障害である、常染色体優勢高コレステロール血症（ＡＤＨ）に関連していると決定付けられた（例えば、Ａｂｉｆａｄｅｌ  ｅｔ  ａｌ．，２００３  ＮＡＴＵＲＥ  ＧＥＮＥＴＩＣＳ  ３４：１５４−１５６、Ｔｉｍｍｓ  ｅｔ  ａｌ．，２００４  ＨＵＭ．ＧＥＮＥＴ．１１４：３４９−３５３、Ｌｅｒｅｎ，２００４  ＣＬＩＮ．ＧＥＮＥＴ．６５：４１９−４２２）。
【０００６】
従って、ＰＣＳＫ９は、ＬＤＬ産生の調節に役割を果たす。ＰＣＳＫ９の発現または上方制御は、ＬＤＬコレステロールの血漿レベルの増加に関連し、ＰＣＳＫ９の発現の抑制または欠如は、低ＬＤＬコレステロール血漿レベルに関連する。意義深いことに、ＰＣＳＫ９の配列多様性に関連してＬＤＬコレステロールのレベルが低いことにより、冠動脈心疾患に対する保護が与えられる（Ｃｏｈｅｎ，ｅｔ  ａｌ．，２００６  Ｎ．ＥＮＧＬ．Ｊ．ＭＥＤ．３５４：１２６４−１２７２）。
【０００７】
臨床試験データは、ＬＤＬコレステロールレベルの低下が冠動脈イベントの比率に関連することを実証した（Ｌａｗ  ｅｔ  ａｌ．，２００３  ＢＭＪ  ３２６：１４２３−１４２７）。血漿ＬＤＬコレステロールレベルの中程度の生涯にわたる低下は、非脂質関連心血管危険因子の高い有病率を持つ集団においてさえも、冠動脈イベントの発生率の実質的な低下と実質的に相関していることが示された（Ｃｏｈｅｎ  ｅｔ  ａｌ，２００６，前掲）。従って、ＬＤＬコレステロールレベルをうまく制御することから得られる利益は大きい。
【０００８】
従って、ＰＣＳＫ９を心血管疾患の治療のための標的としてさらに調査することが望ましい。ＰＣＳＫ９アンタゴニストとして有用な抗体は、既に同定されており、治療薬としての有用性を有する。そのような調査の裏付けとして、ＰＣＳＫ９アンタゴニスト、例えば抗体などに曝露された生体試料中の循環ＰＣＳＫ９のレベルを測定するための方法を有することが有用である。
【０００９】
心血管疾患の治療において効果的な化合物および／または薬剤の追求を支援するために、新規なＰＣＳＫ９アンタゴニストを同定することができることはさらに望ましい。そのため、例えば、推定ＰＣＳＫ９アンタゴニストの有効性を評価することなどのそのような目的のために、生体試料において循環ＰＣＳＫ９のレベルを測定するための方法が望ましい。
【００１０】
その上、生体試料において循環ＰＣＳＫ９のレベルを検定するためのキットを提供することが役立つ。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１１】
【特許文献１】国際公開第０１／３１００７号
【特許文献２】国際公開第０１／５７０８１号
【特許文献３】国際公開第０２／１４３５８号
【特許文献４】国際公開第０１／９８４６８号
【特許文献５】国際公開第０２／１０２９９３号
【特許文献６】国際公開第０２／１０２９９４号
【特許文献７】国際公開第０２／４６３８３号
【特許文献８】国際公開第０２／９０５２６号
【特許文献９】国際公開第０１／７７１３７号
【特許文献１０】国際公開第０１／３４７６８号
【特許文献１１】米国特許出願公開第２００４／０００９５５３号
【特許文献１２】米国特許出願公開第２００３／０１１９０３８号
【特許文献１３】欧州特許出願公開第１４４０９８１号
【特許文献１４】欧州特許出願公開第１０６７１８２号
【特許文献１５】欧州特許出願公開第１４７１１５２号
【非特許文献】
【００１２】
【非特許文献１】Ｓｅｉｄａｈ，Ｎ．Ｇ．，ｅｔ  ａｌ．，２００３  ＰＲＯＣ  ＮＡＴＬ  ＡＣＡＤ  ＳＣＩ  ＵＳＡ  １００：９２８−９３３
【非特許文献２】Ｍａｘｗｅｌｌ  ｅｔ  ａｌ．，２００３  Ｊ．ＬＩＰＩＤ  ＲＥＳ．４４：２１０９−２１１９
【非特許文献３】Ｄｕｂｕｃ  ｅｔ  ａｌ．，２００４  ＡＲＴＥＲＩＯＳＣＬＥＲ．ＴＨＲＯＭＢ．ＶＡＳＣ．ＢＩＯＬ．２４：１４５４−１４５９
【非特許文献４】Ｂｅｎｊａｎｎｅｔ  ｅｔ  ａｌ．，２００４  Ｊ．ＢＩＯＬ．ＣＨＥＭ．２７９：４８８６５−４８８７５
【非特許文献５】Ｒａｓｈｉｄ  ｅｔ  ａｌ．，２００５  ＰＲＯＣ．ＮＡＴＬ．ＡＣＡＤ．ＳＣＩ．ＵＳＡ  １０２：５３７４−５３７９
【非特許文献６】Ｃａｍｅｒｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，２００６  ＨＵＭＡＮ  ＭＯＬ．ＧＥＮＥＴ．１５：１５５１−１５５８
【非特許文献７】Ｌａｇａｃｅ  ｅｔ  ａｌ，２００６  Ｊ．ＣＬＩＮ．ＩＮＶＥＳＴ．１１６：２９９５−３００５
【非特許文献８】Ａｂｉｆａｄｅｌ  ｅｔ  ａｌ．，２００３  ＮＡＴＵＲＥ  ＧＥＮＥＴＩＣＳ  ３４：１５４−１５６
【非特許文献９】Ｔｉｍｍｓ  ｅｔ  ａｌ．，２００４  ＨＵＭ．ＧＥＮＥＴ．１１４：３４９−３５３
【非特許文献１０】Ｌｅｒｅｎ，２００４  ＣＬＩＮ．ＧＥＮＥＴ．６５：４１９−４２２
【非特許文献１１】Ｃｏｈｅｎ，ｅｔ  ａｌ．，２００６  Ｎ．ＥＮＧＬ．Ｊ．ＭＥＤ．３５４：１２６４−１２７２
【非特許文献１２】Ｌａｗ  ｅｔ  ａｌ．，２００３  ＢＭＪ  ３２６：１４２３−１４２７
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【００１３】
本発明は、生体試料において循環ＰＣＳＫ９のレベルを測定する方法に関する。前記方法は、被験体から入手した生体試料でイムノアッセイを実施する段階および前記試料中のＰＣＳＫ９のレベルを既知濃度のＰＣＳＫ９を有する標準物質と比較する段階を含む。
【００１４】
本発明はさらに、推定ＰＣＳＫ９アンタゴニストと接触させた生体試料でイムノアッセイを実施する段階、および前記試料中のＰＣＳＫ９のレベルを既知濃度のＰＣＳＫ９を有する標準物質と比較する段階を含む、新規なＰＣＳＫ９アンタゴニストを同定する方法に関する。
【００１５】
本発明のさらなる態様は、生体試料において循環ＰＣＳＫ９のレベルを測定するためのキットに関し、この際、前記キットは、
ａ）生体試料収集装置、
ｂ）コーティングもしくは捕捉抗体および検出抗体を含む、イムノアッセイを構成する組成物、および
ｃ）試料中のＰＣＳＫ９抗原とイムノアッセイにおける抗体との間の反応を検出するための手段
を含む。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１Ａ】ランタニドキレート遅延時間およびストークスシフトを説明する図である。
【図１Ｂ】ランタニドキレート遅延時間およびストークスシフトを説明する図である。
【図２】アッセイバッファーに希釈した組換えヒトＰＣＳＫ９標準曲線を説明する図である。曲線の範囲は、１０．２６ｎＭ〜０．００５ｎＭである。
【図３】３週間の間の３つの異なる日に示された、６名の正常な健常ボランティアの生物学的多様性を説明する図である。濃度はｎＭで示されている。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
本発明は、被験体から得た生体試料でイムノアッセイを実施する段階、および前記試料中のＰＣＳＫ９のレベルを既知濃度のＰＣＳＫ９を有する標準物質と比較する段階を含む、生体試料において循環ＰＣＳＫ９レベルを測定する方法に関する。本アッセイは、ヒトＰＣＳＫ９を測定するために特に有用である。
【００１８】
イムノアッセイは、分析物に特異的に結合する抗体を利用する分析法または方法論である。イムノアッセイは、分析物を単離、標的化、または定量化するために、少なくとも１つの特定の抗体の特異的結合特性を用いることを特徴とする。
【００１９】
特定の実施形態では、イムノアッセイは、（ａ）それに結合した固定化結合抗ＰＣＳＫ９抗体ＡＸ２１３を有する支持体の上に試料を付着させる段階、（ｂ）その上に該生体試料を付着させた該支持体と、検出可能な標識を有する抗ＰＣＳＫ９抗体ＡＸ１を接触させる段階、および（ｃ）標識を検出する段階を含む。
【００２０】
ＰＣＳＫ９とは、文献に定義されているように、分泌性サブチラーゼファミリーの９番目のメンバーとして同定されるプロテイナーゼＫ様サブチラーゼである（Ｓｅｉｄａｈ，Ｎ．Ｇ．，ｅｔ  ａｌ．，２００３  ＰＲＯＣ  ＮＡＴＬ  ＡＣＡＤ  ＳＣＩ  ＵＳＡ  １００：９２８−９３３）、神経アポトーシス調節転換酵素１（ＮＡＲＣ−１）としても公知のプロタンパク質転換酵素スブチリシン−ケキシン９型（ＰＣＳＫ９）をさし、特に指定のない限り、可溶性形態と不溶性形態の両方を含む。この用語は、適切な文脈中でその抗原成分かまたは遺伝子座のいずれかをさし得る。
【００２１】
ＡＸ２１３は、配列番号３を含む軽鎖可変（「ＶＬ」）配列と、配列番号７を含む重鎖可変（「ＶＨ」）配列を含む抗体分子である。特定の実施形態では、ＡＸ２１３は、全長抗体分子である。特定の実施形態では、ＡＸ２１３はＩｇＧ抗体分子であり、特定の実施形態では、ＩｇＧ２である。特定の実施形態では、ＡＸ２１３は、（ａ）配列番号１または配列番号１１を含む軽鎖および（ｂ）配列番号９を含む重鎖を含む。
【００２２】
ＡＸ１は、配列番号１５を含む軽鎖可変（「ＶＬ」）配列と、配列番号１９を含む重鎖可変（「ＶＨ」）配列を含む抗体分子である。特定の実施形態では、ＡＸ１は、全長抗体分子であり、特定の実施形態では、ＡＸ２１３は、ＩｇＧ抗体分子であり、特定の実施形態では、ＩｇＧ２である。特定の実施形態では、ＡＸ２１３は、（ａ）配列番号１３または配列番号２３を含む軽鎖および（ｂ）配列番号２１を含む重鎖を含む。
【００２３】
抗体分子、例えば、無傷の免疫グロブリンとして、または、例えば様々なペプチダーゼでの消化により精製される、いくつかの十分に特徴付けられた断片として存在することができる。認識される免疫グロブリン遺伝子には、κ、λ、α、γ、δ、εおよびμ定常領域遺伝子、ならびに無数の免疫グロブリン可変領域遺伝子が含まれる。軽鎖は、γ、μ、α、δ、またはεに分類され、それは順にそれぞれ免疫グロブリンクラス、ＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤおよびＩｇＥを定義する。「全」抗体または「全長」抗体は、多くの場合、ジスルフィド結合により相互に接続した２つの重（Ｈ）鎖および２つの軽（Ｌ）鎖を含むタンパク質をさし、（１）重鎖に関して、可変領域（本明細書において「ＶＨ」と省略する）および、３つのドメイン、ＣＨ１、ＣＨ２、およびＣＨ３を含む重鎖定常領域、ならびに（２）軽鎖に関して、軽鎖可変領域（本明細書において「ＶＬ」と省略する）および、１つのドメイン、ＣＬを含む軽鎖定常領域を含む。ペプシンは、抗体をヒンジ領域のジスルフィド結合の下で消化して、それ自体がジスルフィド結合によりＶＨ−ＣＨ１に結合した軽鎖であるＦａｂの二量体である、Ｆ（ａｂ）’２を生成する。Ｆ（ａｂ）’２は、温和な条件下で還元されて、ヒンジ領域のジスルフィド結合を切断し、それによりＦ（ａｂ）’２二量体をＦａｂ’モノマーに変換することができる。Ｆａｂ’モノマーは、本質的に、ヒンジ領域の一部が切断されたＦａｂである。無傷の抗体の消化に関して様々な抗体フラグメントが定義されているが、当業者は、かかるＦａｂ’断片は、化学的にまたは組換えＤＮＡ方法論を利用することにより新規に合成することができることを理解するであろう。よって、本明細書において用いられる抗体という用語には、全抗体の修飾により生成された抗体フラグメントまたは組換えＤＮＡ方法論を用いて新規に合成された抗体フラグメントのどちらも含まれる。
【００２４】
特定の実施形態では、ＡＸ２１３およびＡＸ１抗体分子は、独立に、使用前に単離される。「単離された」とは、本明細書において、それらを天然に見出されるものとは異なる形態にする特性をさす。この違いは、例えば、それらが天然に見出されるものとは異なる純度であることであってもよいし、それらが天然に見出されるものとは異なる構造であるかまたはその一部を形成することであってもよい。天然に見出されない構造には、例えば、組換えヒト免疫グロブリン構造が含まれる。天然に見出されない構造のその他の例は、その他の細胞物質を実質的に含まない抗体分子である。
【００２５】
検出可能な標識とは、本明細書において、抗体分子の中に組み込まれるかまたは抗体分子に取り付けられる別の分子または作用薬をさす。一実施形態では、標識は、検出可能なマーカー、例えば、放射標識されたアミノ酸、あるいは、標識されたアビジンにより検出することのできる、ビオチニル部分のポリペプチドへのアタッチメント（ａｔｔａｃｈｍｅｎｔ）（例えば、光学的または比色分析的方法により検出することのできる蛍光マーカーまたは酵素活性を含有するストレプトアビジン）である。ポリペプチドおよび糖タンパク質を標識する様々な方法が当技術分野で公知であり、それらを使用することができる。ポリペプチドに対する標識の例としては、限定されるものではないが、以下の、放射性同位元素または放射性核種（例えば、３Ｈ、１４Ｃ、１５Ｎ、３５Ｓ、９０Ｙ、９９Ｔｃ、１１１Ｉｎ、１２５Ｉ、１３１Ｉ）、蛍光標識（例えば、ＦＩＴＣ、ローダミン、ランタニドリン）、酵素標識（例えば、西洋ワサビペルオキシダーゼ、β−ガラクトシダーゼ、ルシフェラーゼ、アルカリホスファターゼ）、化学発光マーカー、ビオチニル基、二次レポーターに認識される所定のポリペプチドエピトープ（例えば、ロイシンジッパー対配列、二次抗体の結合部位、金属結合ドメイン、エピトープタグ）、ガドリニウムキレートなどの磁性剤（ｍａｇｎｅｔｉｃ  ａｇｅｎｔｓ）、百日咳毒素などの毒素、タキソール、サイトカラシンＢ、グラミシジンＤ、臭化エチジウム、エメチン、マイトマイシン、エトポシド、テノポシド、ビンクリスチン、ビンブラスチン、コルヒチン、ドキソルビシン、ダウノルビシン、ジヒドロキシアントラシンジオン（ｄｉｈｙｄｒｏｘｙ  ａｎｔｈｒａｃｉｎ  ｄｉｏｎｅ）、ミトキサントロン、ミトラマイシン、アクチノマイシンＤ、１−デヒドロテストステロン、グルココルチコイド、プロカイン、テトラカイン、リドカイン、プロプラノロール、およびピューロマイシン、ならびにそれらの類似体または同族体が挙げられる。一部の実施形態では、潜在的な立体障害を減少させるために様々な長さのスペーサーアームで標識を結合させる。
【００２６】
本発明の特定の実施形態では、イムノアッセイは、固相イムノアッセイである。特定の実施形態では、固相イムノアッセイは、解離促進ランタニド蛍光イムノアッセイ（ＤＥＬＦＩＡ）である。しかし、当業者にとって十分精通したものとなるどんな溶液系もしくは固相イムノアッセイを使用することも、本発明の範囲内である。そのようなアッセイとしては、限定されることなく、磁性ビーズを酵素の代わりに標識として使用するアッセイ、ＥＬＩＳＡ、放射性同位元素、または蛍光部分（蛍光イムノアッセイ）が挙げられる。
【００２７】
生体試料は、血液、血漿および血清からなる群から選択される。特定の実施形態では、血液、血漿および血清は、限定されるものではないが、ヒトを含む哺乳類被験体に由来する。
【００２８】
本発明はさらに、推定ＰＣＳＫ９アンタゴニストの存在下でＰＣＳＫ９を測定するための方法に関する。前記方法は、推定ＰＣＳＫ９アンタゴニストに接触させた生体試料でイムノアッセイを実施する段階および前記試料中のＰＣＳＫ９のレベルを既知濃度のＰＣＳＫ９を有する標準物質と比較する段階を含む。特定の実施形態では、本方法は、（ａ）生体試料を固定化された抗ＰＣＳＫ９抗体ＡＸ２１３を有する支持体の上に付着させること、（ｂ）その上に該生体試料を付着させた該支持体を、検出可能な標識を有する抗ＰＣＳＫ９抗体ＡＸ１と接触させること、（ｃ）標識を検出すること、および（ｄ）前記試料中のＰＣＳＫ９のレベルを既知濃度のＰＣＳＫ９を有する標準物質と比較することを含む。好ましい実施形態では、イムノアッセイは、固相イムノアッセイである。より好ましい実施形態では、固相イムノアッセイは、解離促進ランタニド蛍光イムノアッセイ（ＤＥＬＦＩＡ）である。
【００２９】
抗ＰＣＳＫ９固定化抗体ＡＸ２１３は、特定の実施形態において、プレート（特定の実施形態では、黒色高結合アッセイプレート（ｂｌａｃｋ  ｈｉｇｈ  ｂｉｎｄｉｎｇ  ａｓｓａｙ  ｐｌａｔｅｓ））に一晩コーティングされる。特定の実施形態では、黒色高結合アッセイプレートは、１００〜５００ｎｇ／ウェルのＡＸ２１３抗体で４℃にて一晩コーティングされる。
【００３０】
生体試料は、血液、血漿および血清からなる群から選択される。特定の実施形態では、血液、血漿および血清は、限定されるものではないが、ヒトを含む哺乳類被験体に由来する。
【００３１】
特定の実施形態では、１０〜５０ｎｇ／ウェルのビオチン化ＡＸ１ＩｇＧを抗原の検出に使用する。
【００３２】
用語「アンタゴニスト」またはその誘導体（例えば、「拮抗すること」）の使用は、対象分子または作用薬が、ＰＣＳＫ９の機能に拮抗する、対立する、対抗する、阻害する、中和する、または削減することができるという事実をさす。特定の実施形態では、アンタゴニストは、ＰＣＳＫ９の機能または活性を少なくとも１０％、または少なくとも２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、または９５％低下させる。本明細書においてＰＣＳＫ９機能またはＰＣＳＫ９活性への言及は、ＰＣＳＫ９により動かされる、ＰＣＳＫ９の求める、あるいはＰＣＳＫ９により悪化または強化されるあらゆる機能または活性をさす。
【００３３】
本発明はさらに、
ａ）生体試料収集装置、
ｂ）コーティングもしくは捕捉抗体および検出抗体を含む、イムノアッセイを構成する組成物、および
ｃ）試料中のＰＣＳＫ９抗原とイムノアッセイにおける抗体との間の反応を検出するための手段
を含む、生体試料中の循環ＰＣＳＫ９レベルを測定するためのキットに関し、この際、コーティングもしくは捕捉抗体は、ＡＸ２１３であり、検出抗体は、ＡＸ１である。
【００３４】
特定の実施形態では、キットは、支持体上に固定化されているＡＸ２１３抗体を含む。
【００３５】
キットは、一般に、キットの内容物の使用目的を示す標識を含むが、必ずしも含まなくてもよい。キットと関連して、標識という用語は、キットに供給されるかまたはキットに含まれるか、またあるいはキットに添付される、あらゆる記述または記録された材料を含む。
【００３６】
下の実施例は、本発明をこれに限定することなく説明するために提供される。以下の頭字語のリストを実施例に用いる。
ＢＳＡ：ウシ血清アルブミン
ｄｄＨ２Ｏ  二重蒸留水
ＥＤＴＡ：エチレンジアミン四酢酸
ＩＰＴＧ：イソプロピル−β−ｄ−チオガラクトピラノシド
ＰＢＳ：リン酸緩衝生理食塩水
ＰＢＳＴまたはＰＢＳ−Ｔ：Ｔｗｅｅｎを含有するリン酸緩衝生理食塩水
ＴＢＳ−Ｔ：Ｔｗｅｅｎを含有するトリス緩衝生理食塩水
【実施例１】
【００３７】
ＰＣＳＫ９アンタゴニストＡＸ２１３およびＡＸ１
このアッセイで使用されるＰＣＳＫ９アンタゴニストは、抗体ＡＸ２１３およびＡＸ１である。ＡＸ２１３およびＡＸ１は、２００９年１０月３０日出願の、同時係属出願第６１／２５６，７３２号および同第６１／２５６，７２０号に開示され、これらはその全文が本明細書に援用される。
【００３８】
ＰＣＳＫ９タンパク質に対するＰＤＬ１ファージライブラリーパンニング：ＡＸ１およびＡＸ２１３を、ＶＨ３／Ｖκ３およびＶＨ３／Ｖκ１  ＰＤＬ１  Ａｂｍａｘｉｓ合成ヒトＦａｂライブラリーをヒトＰＣＳＫ９に対してパンニングすることにより同定した。抗原タンパク質ＰＣＳＫ９を、Ｍａｘｉｓｏｒｐウェルストリップ（ｗｅｌｌ  ｓｔｒｉｐｅ）（Ｎｕｎｃ−Ｉｍｍｕｎｏ  Ｍｏｄｕｌｅｓ）の上に、１〜１０μｇ／ｍｌの濃度で一晩４℃にてコーティングした。複数ウェルの抗原を各々のライブラリーに調製した。ＰＢＳ中５％のミルクを用いて、コーティングしたウェルを室温で１〜２時間ブロッキングした。ＰＢＳで洗浄した後、１００μｌのファージライブラリー溶液／ウェル（通常２％ミルク−ＰＢＳ中１〜５×１０１２）を、４つの平行なウェルに添加し、予定した時間の長さの間（通常１〜２時間）、インキュベートした。ＰＢＳＴおよびＰＢＳで数回洗浄した後、結合したファージを、新しく調製したｄｄＨ２Ｏ中１．４％トリエチルアミンでウェルから溶出し（室温にて１０分のインキュベーション）、その直後に５０μｌの１Ｍトリス−ＨＣｌ（ｐＨ６．８）を添加することにより中和した。
【００３９】
溶出し、濃縮されたファージプールを、次の段階によってさらに増幅させた。最初に、ＴＧ１細胞を３７℃で１時間、溶出したファージに感染させた後、一晩培養のために２％グルコースおよび１００μｇ／ｍｌカルベニシリンを含む２ＹＴ寒天プレートにプレートアウトした。このようにして、濃縮したファージミドライブラリーを持つＴＧ１細胞をプレートから回収し、ヘルパーファージＧＭＣＴに１時間感染させた。次に、Ｆａｂ−ディスプレイファージを、２２℃の２ｘＹＴ／カルベニシリン／カナマイシン中で一晩増殖させることにより、ライブラリーファージミドとＧＭＣＴヘルパーファージゲノムの両方を持つＴＧ１細胞から作成した。ＰＥＧ／ＮａＣｌで沈殿させ、ＰＢＳに再懸濁させることにより、一晩培養物上清からファージミド粒子を精製した。ＰＥＧ沈殿を１回繰り返した。ファージ濃度はＯＤ２６８測定により決定した。
【００４０】
増幅した第１ラウンドのファージで、上記のようなパンニングプロセスを、ＰＣＳＫ９結合ファージをさらに濃縮するために２回繰り返した。第３ラウンドのパンニングから溶出したファージを用いてＴＧ１細胞を感染させた。第３ラウンドのパンニングからのファージミドを持つＴＧ１細胞を、Ｆａｂ  ＥＬＩＳＡスクリーニングアッセイのために２ＹＴ寒天プレートから選び取った。
【００４１】
ＰＣＳＫ９結合剤のためのＦａｂ  ＥＬＩＳＡスクリーニング：第３ラウンドのパンニングから１０，０００を上回るクローンを、Ｍｅｇａｐｉｘ  Ｐｉｃｋｉｎｇ  Ｒｏｂｏｔ（Ｇｅｎｅｔｉｘ）により選び取り、４５０ｒｐｍで振盪しながら３０℃で一晩培養するための、６０μｌの２ＹＴ／２％グルコース／カルベニシリンを含む３８４ウェルプレートに接種した。各々のウェルから約１〜３μｌの一晩培養物を、５０μｌ／ウェルの２ＹＴ／０．１％グルコース／カルベニシリンを含む新しいプレートに移すことにより、複製プレートを作成した。複製プレートを、３０℃のシェーカー内で６時間インキュベートした後、１０μｌ／ウェルのＩＰＴＧを１ｍＭの終濃度となるように添加した。２２℃で一晩培養した後、ＩＰＴＧ誘導プレート中の可溶性Ｆａｂを、リゾチームを各々のウェルに添加することにより遊離させた。
【００４２】
上記実験から作成された可溶性Ｆａｂの抗原結合活性を検出するため、５μｇ／ｍｌ抗原を一晩コーティングすることにより抗原プレートを作成した。ミルク−ＰＢＳでブロッキングし、ＰＢＳＴで洗浄した後、ＩＰＴＧ誘導プレートから１５〜２０μｌのＦａｂ試料を抗原プレートに移し、１〜２時間室温にてインキュベートした。プレートをＰＢＳ−Ｔで５回洗浄し、１時間のインキュベーションのために５％  ＭＰＢＳ中１：２０００希釈ヤギ抗ヒトκ−ＨＲＰ（ＳｏｕｔｈｅｒｎＢｉｏｔｅｃｈ社カタログ番号２０６０−０５）または１：１０，０００希釈ヤギ抗ヒトＦａｂ−ＨＲＰを添加した。結合しなかったＨＲＰコンジュゲートをＰＢＳＴで洗い流した後、基質溶液ＱｕａｎｔａＢｌｕ  ＷＳ（Ｐｉｅｒｃｅ１５１６９）を、次に各々ウェルに添加し、５〜１５分間インキュベートした。励起波長３３０ｎｍおよび発光検出波長４１０ｎｍを用いることにより、各々のウェルの相対蛍光単位（ＲＦＵ）を測定してＦａｂ結合活性を決定した。
【００４３】
ＥＬＩＳＡの結果は、個々のＰＤＬ１サン−ライブラリー（ｓｕｎ−ｌｉｂｒａｒｉｅｓ）の第３ラウンドのパンニングからの３０〜８０％のクローンが、抗原ＰＣＳＫ９と結合することを示した。陽性クローンを、次にＤＮＡ塩基配列決定に送った。
【００４４】
配列は、次のように示される。
ＡＸ２１３
ＡＸ２１３全長軽鎖タンパク質［配列番号１］
2013509591.tif 000003
ＡＸ２１３全長軽鎖核酸［配列番号２］
2013509591.tif 000004
2013509591.tif 000005
ＡＸ２１３−ＶＬ［配列番号３］、ＣＤＲに下線
2013509591.tif 000006
ＡＸ２１３−ＶＬ［配列番号４］
2013509591.tif 000007
ＡＸ２１３  ＦＤ鎖（Ｆａｂ用）タンパク質［配列番号５］
2013509591.tif 000008
ＡＸ２１３  ＦＤ鎖（Ｆａｂ用）核酸［配列番号６］
2013509591.tif 000009
ＡＸ２１３−ＶＨ［配列番号７］、ＣＤＲに下線
2013509591.tif 000010
ＡＸ２１３−ＶＨ［配列番号８］
2013509591.tif 000011
ＡＸ２１３  ＩＧＧ２重鎖タンパク質［配列番号９］
2013509591.tif 000012
ＡＸ２１３  ＩＧＧ２重鎖核酸［配列番号１０］
2013509591.tif 000013
2013509591.tif 000014
ＡＸ２１３全長軽鎖タンパク質［配列番号１１］
2013509591.tif 000015
ＩＧＧ２核酸と対になったＡＸ２１３  ＩＧＧ軽鎖［配列番号１２］
2013509591.tif 000016
ＡＸ１
ＡＸ１全長軽鎖タンパク質［配列番号１３］
2013509591.tif 000017
ＡＸ１全長軽鎖核酸［配列番号１４］
2013509591.tif 000018
ＡＸ１−ＶＬ［配列番号１５］、ＣＤＲに下線
2013509591.tif 000019
ＡＸ１−ＶＬ［配列番号１６］
2013509591.tif 000020
ＡＸ１  ＦＤ鎖（Ｆａｂ用）タンパク質［配列番号１７］
2013509591.tif 000021
ＡＸ１  ＦＤ鎖（Ｆａｂ用）核酸［配列番号１８］
2013509591.tif 000022
2013509591.tif 000023
ＡＸ１−ＶＨ［配列番号１９］、ＣＤＲに下線
2013509591.tif 000024
ＡＸ１−ＶＨ［配列番号２０］
2013509591.tif 000025
ＡＸ１  ＩＧＧ２重鎖タンパク質［配列番号２１］
2013509591.tif 000026
ＡＸ１  ＩＧＧ２重鎖核酸［配列番号２２］
2013509591.tif 000027
2013509591.tif 000028
ＡＸ１全長軽鎖タンパク質［配列番号２３］
2013509591.tif 000029
ＩＧＧ２核酸と対になったＡＸ１  ＩＧＧ軽鎖［配列番号２４］
2013509591.tif 000030
ＴＧ１細胞からのＦａｂタンパク質の発現および精製：２ＹＴ／２％グルコース／カルベニシリン１００μｇ／ｍｌ中の個々のクローンに対して５０ｍｌの一晩培養物を、３７℃シェーカーインキュベーターで増殖させた。第２日目、７５０ｍＬ〜１Ｌの２ＹＴ／０．１％グルコース／１００ｕｇ／ｍＬカルベニシリンを、５〜１０ｍｌの一晩培養物を移すことによって各々のクローンに接種した。培養物を、３０℃にて振盪しながら約３〜４時間、ＯＤ６００が約１となるまで増殖させた。終濃度が０．１〜０．５ｍＭに達するようにＩＰＴＧを培養物に添加した。２２℃で一晩ＩＰＴＧ誘導した後、細胞ペレットを、１０，０００ｒｐｍで１０〜１５分間の遠心分離により収集して、周辺質調製に進んだ。
【００４５】
可溶性Ｆａｂは、細胞周辺質から抽出した。周辺質調製は、次の通り実施した。ＴＧＩペレットを、２０ｍＬの予冷したＰＰＢバッファー（２０％スクロース＋２ｍＭ  ＥＤＴＡ＋３０ｍＭトリス、ｐＨ＝８）に再懸濁し、氷上で１時間インキュベートした。可溶性Ｆａｂを含む上清を遠心分離により収集した。その後、細胞ペレットをさらに２０ｍＬの予冷した５ｍＭ硫酸マグネシウムに再懸濁し、氷上で１時間インキュベートした。さらなるＦａｂ精製のために２つの上清を合わせた。
【００４６】
周辺質抽出物由来の可溶性Ｆａｂを、ＨｉＴｒａｐタンパク質Ｇ  ＨＰカラム（ＧＥヘルスケア）を用いて精製した。カラムを最初に平衡バッファー（ＰＢＳまたはトリス、ｐＨ７．３）で平衡化した。周辺質調製物由来の上清を、１ｍｌまたは５ｍＬタンパク質Ｇカラム（ＨｉＴｒａｐ、ＧＥヘルスケア）に装入した。１０カラム容積（ＣＶ）の平衡バッファーで洗浄した後、Ｆａｂタンパク質を８ＣＶの溶出バッファー（０．３Ｍ酢酸、ｐＨ３）で溶出した。溶出画分を回収し、０．５容積の１Ｍトリス、ｐＨ９バッファーで中和した。Ｆａｂ試料を、１０ｋＤ分子量カットオフのＡｍｉｃｏｎ遠心濾過機を用いてＰＢＳに緩衝液交換した。精製したＦａｂの品質を、サイズ排除ＨＰＬＣ（ＳＥ−ＨＰＬＣ）を用いて分析した。また、精製したＦａｂをＥＬＩＳＡアッセイおよびＢｉａｃｏｒｅアッセイ（下）にも使用した。全体に、Ｆａｂ収量の概要は、約１〜２ｍｇ／Ｌで変動性が高く、１ｍｇ／Ｌ未満から１０ｍｇ／Ｌを優に上回る。全てのＦａｂは、ＳＥ−ＨＰＬＣで単一の主ピークを示す。ＥＬＩＳＡアッセイの結果により、全てのＦａｂがヒトＰＣＳＫ９抗原に結合していることが確認された。
【００４７】
糖鎖改変型（Ｇｌｙｃｏｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ）ピキア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ  Ｐａｓｔｏｒｉｓ）由来の抗ＰＣＳＫ９モノクローナル抗体の精製：末端ガラクトースをその複合体Ｎ結合グリカンで移動させる能力のある、糖鎖を改変した（ｇｌｙｃｏ−ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ）ピキア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ  ｐａｓｔｏｒｉｓ）ＧＦＩ５．０宿主ＹＧＬＹ８３１６で発現した抗ＰＣＳＫ９モノクローナル抗体。抗ＰＣＳＫ９重鎖および軽鎖をコドン最適化し、サッカロミセス・セレビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）α接合因子プレ配列を分泌シグナル配列として用いる、メタノール密接（ｔｉｇｈｔｌｙ）誘導性プロモーターＡＯＸ１下で発現させた。この抗体を産生する糖鎖改変型ピキア株を、ＹＧＬＹ１８５１３と名付けた。ＹＧＬＹ１８５１３からの抗ＰＣＳＫ９抗体を、ＧＥヘルスケア製ＭａｂＳｅｌｅｃｔ（商標）培地（カタログ番号１７−５１９９−０１）を用いるアフィニティークロマトグラフィーにより、無細胞上清培地から捕捉した。無細胞上清を、３カラム容積の２０ｍＭトリス−ＨＣｌ  ｐＨ７．０で流速５．０ｍＬ／分で前平衡化した、Ｍａｂｓｅｌｅｃｔカラム（ＸＫ１６／２０、１．６ｃｍ×１０．０ｃｍ）に装入した。カラムを３カラム容積の２０ｍＭトリス−ＨＣｌ  ｐＨ７．０で洗浄し、それに続いて１Ｍ  ＮａＣｌを含有する２０ｍＭトリス−ＨＣｌ  ｐＨ７．０を含む５カラム容積の洗液で洗浄して宿主細胞タンパク質を除去した。抗ＰＣＳＫ９抗体を、５カラム容積の１００ｍＭグリシン、１００ｍＭアルギニンｐＨ３．０で溶出し、１Ｍトリス−ＨＣｌ  ｐＨ８．０で直ちに中和した。抗体はピキアでよく発現した。
【００４８】
ＧＥヘルスケア製Ｓｏｕｒｃｅ３０Ｓ樹脂（カタログ番号１７−１２７３−０２）を用いる強陽イオン交換クロマトグラフィーを、第２段階の精製に使用してクリップ種（ｃｌｉｐｐｅｄ  ｓｐｅｃｉｅｓ）および凝集体を除去した。抗ＰＣＳＫ９抗体のＭａｂｓｅｌｅｃｔプールを、２５ｍＭ酢酸ナトリウムｐＨ５．０で５倍希釈し、３カラム容積の２５ｍＭ酢酸ナトリウムｐＨ５．０で前平衡化したＳｏｕｒｃｅ３０Ｓカラムに装入した。装入後、カラムを３カラム容積の２５ｍＭ酢酸ナトリウムｐＨ５．０で洗浄し、２５ｍＭ酢酸ナトリウムｐＨ５．０中１００ｍＭ〜１５０ｍＭ塩化ナトリウムに及ぶ、１０カラム容積にわたる直線勾配を展開させることにより溶出を実施した。良好な集められた抗ＰＣＳＫ９抗体を含有する画分を一緒にプールした。抗ＰＣＳＫ９抗体を含んでいたＳｏｕｒｃｅ３０Ｓプール画分を、６％スクロース、１００ｍＭアルギニン、１００ｍＭヒスチジンｐＨ６．０（ＨｙＣｌｏｎｅ（登録商標）カタログ番号ＲＲ１０８０４．０２）を含有する調剤バッファーに緩衝液交換し、０．２μｍ  ＰＥＳ（ポリエーテルスルホン）膜フィルタを用いて滅菌濾過し、放出するまで４℃にて貯蔵した。
【実施例２】
【００４９】
ヒトＥＤＴＡ血漿中のＰＣＳＫ９の測定
このアッセイは、解離促進ランタニド蛍光イムノアッセイ（ＤＥＬＦＩＡ）時間分解蛍光測定（ＴＲＦ）法を用いる。ＤＥＬＦＩＡ  ＴＲＦアッセイは、長い蛍光減衰時間および大きいストークスシフトを可能にするランタニドキレート標識の蛍光特性に依存する。図１Ａ〜Ｂを参照されたい。長い蛍光減衰時間は、バックグラウンド蛍光が鎮まった後に使用者が蛍光を測定することを可能にし、通常試料に伴うバックグラウンド発光を効果的に低減させる。その上、このアッセイは長いストークスシフト（３６０ｎＭ励起／６２０ｎＭ発光）を有し、ピークおよびピークショルダーに干渉することなく、クリーンなピーク蛍光検出を可能にする。ＤＥＬＦＩＡ  ＴＲＦのこれらの特徴は、バックグラウンド発光を、測定感度の増加を可能にするレベルまで効果的に低減する。
【００５０】
このアッセイは、高結合性Ｃｏｓｔａｒプレートの表面への捕捉抗体の直接吸着に依存する。試料、標準物質、および対照をウェルに添加し、それに続いて二次抗体を添加し、免疫反応の後、ランタニド標識をエンハンスメント溶液中の複合体から解離する。遊離ランタニド（Ｅｕ３＋、ユウロピウム）は、エンハンスメント溶液の成分と新しい高蛍光性の安定したキレートを急速に形成する。分析には、プレートをＢｉｏｔｅｋ  Ｓｙｎｅｒｇｙ  ２機器に装入し、３６０ｎｍの波長で励起させ、６２０ｎｍで発光を読み取る。このアッセイは、ヒト血漿中のＰＣＳＫ９の濃度を定量的に測定する。
【００５１】
装置：Ｂｉｏｔｅｋ  Ｓｙｎｅｒｇｙ２プレートリーダー（励起フィルタ−３６０±４０ｎＭ、発光フィルタ−６２０±４０ｎＭ）；アソーティッド・ピペッター；ボルテックスミキサー；プレートシェーカー；バイオヒット・マルチチャンネル・ピペッター（１２００μＬ）；ベックマン・コールターＢｉｏｍｅｋ  ＦＸ；Ｂｏｅｋｅｌ  Ｊｉｔｔｅｒｂｕｇモデル１３００００
供給元：マイクロプレート接着膜（ＵＳＡ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃカタログ番号２９２０−００００）；１．５ｍＬマイクロチューブ（エッペンドルフ、カタログ番号０２２３６３２０４）；黒色高結合アッセイプレート（Ｃｏｓｔａｒ３２９５番）；ピペット用チップ；血漿収集のためのＥＤＴＡバキュテイナチューブ（ＢＤ、カタログ番号３６６６４３）
試薬：（１）ＤＥＬＦＩＡ成分（パーキンエルマー）［ストレプトアビジン／ユウロピウム（１００μｇ／ｍＬ）、４℃にて貯蔵（カタログ番号１２４４−３６０）；ＤＥＬＦＩＡアッセイバッファー、４℃にて貯蔵（カタログ番号１２４４−１１１）；ＤＥＬＦＩＡエンハンス、４℃にて貯蔵（カタログ番号１２４４−１０５）］、（２）抗体［ＡＸ２１３（ヒトＰＣＳＫ９に対するモノクローナルＡｂ）捕捉抗体、４℃にて貯蔵、およびＡＸ１（ヒトＰＣＳＫ９に対するモノクローナルＡｂ）ビオチン化二次抗体、４℃にて貯蔵］、（３）ヘテロ親和性ブロッキング試薬１（ＨＢＲ１、精製）、Ｓｃａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、カタログ番号３ＫＣ５３３約２０ｍｇ／ｍＬ、（４）１０％Ｔｗｅｅｎ−２０室温貯蔵（バイオ・ラッド、カタログ番号１６１−０７８１）、（５）ＭＳＤブロッカーＡ：４℃にて貯蔵（メソスケールディスカバリー、カタログ番号Ｒ９３ＡＡ−１）、（６）ＴＢＳ−Ｔ洗浄バッファー（シグマ、カタログ番号Ｔ−９０３９）［１包を１リットルＭｉｌｌｉ−Ｑ等級の水に混合、終濃度：１０００ｍＬ中５０ｍＭトリス緩衝生理食塩水、０．０５％Ｔｗｅｅｎ−２０、室温貯蔵］、（７）１Ｘリン酸緩衝生理食塩水溶液（Ｆｌｕｋａ、カタログ番号７９３８３）［５．０ｍＬ  １０Ｘ  ＰＢＳを４５ｍＬのＭｉｌｌｉ−Ｑ等級の水に希釈、終濃度：１Ｘ］、（８）コーティング溶液［使用直前に次の通り調製：５．００μＬのＡＸ２１３（ストック＝１０．０５ｍｇ／ｍＬ）を５９９５μｌの１Ｘ  ＰＢＳに入れる、コート溶液は８．３７５μｇ／ｍＬ  ＡＸ２１３］、（９）ブロッキング溶液［実験当日に次の通り調製：９００ｍｇのＭＳＤブロッカーＡ（ＢＳＡ）を３０．０ｍＬのＴＢＳ−Ｔ洗浄バッファーに入れる、終濃度：３％］、（１０）アッセイバッファー（ＡＢ）［実験当日に下の表１中の通り調製］：
【００５２】
【表１】
2013509591.tif 000031
（１１）１％ＢＳＡ［実験当日に次の通り調製：４．０ｍＬのブロッキング溶液をピペットで８．０ｍＬ  ＴＢＳ−Ｔ洗浄バッファーに入れる］、（１２）ビオチン化二次抗体溶液［使用直前に次の通り調製：５．５μＬ  ＡＸ１  Ａｂ（ストック＝１．０ｍｇ／ｍＬ）を５４９４．５μＬ  １％ＢＳＡに入れる、終濃度：１．０μｇ／Ｍｌ］、ならびに（１２）Ｓｔｒｅｐ−Ｅｕ溶液［使用直前に調製し、光から保護、８．０μＬ  Ｓｔｒｅｐ−Ｅｕ（ストック＝１００μｇ／ｍＬ）を７９９２μＬ  ＤＥＬＦＩＡアッセイバッファーに入れる、終濃度：０．１００μｇ／ｍＬ］。
【００５３】
検量用試料曲線の作製：ＰＣＳＫ９のマスターストック濃度は、１．３２ｍｇ／ｍＬである。３０μｇ／ｍＬのストックを、マスターストックからのアッセイバッファーでの１：４４希釈を用いて調製した。
【００５４】
【表２】
2013509591.tif 000032
Ｂｉｏｍｅｋ  ＦＸ手順：スパン−８ヘッドの全ての検量線を、ＰＣＳＫ９について特異的に作成した。全てのロボットピペッティング機能は、スパン−８ヘッドを用いて実施した。プログラムは、３つの部分に分けられる：（１）試料希釈：１４０μＬのアッセイバッファーを、ポリプロピレン希釈プレートの各々のウェルに添加した。２０μＬの各々のＱＣおよび臨床試料を、アッセイバッファー含有するウェルに添加した。（２）試料添加：希釈プレート中の各々のＱＣおよび臨床試料を、３回混合した。５０μＬの各々のＱＣおよび臨床試料を、Ｃｏｓｔａｒアッセイプレートに二連で添加した。また、標準添加：５０μＬの各々の検量用試料を、Ｃｏｓｔａｒアッセイプレートに二連で添加した。
【００５５】
Ｂｉｏｔｅｋ  Ｓｙｎｅｒｇｙ  ２の設定：プレートを、最も低い設定で５分間振盪した後、読み出した。励起および発光、それぞれ３６０ｎｍ（４０ｎｍ範囲）および６２０ｎｍ（４０ｎｍ範囲）。遅延時間は２５０μ秒であり、総計数時間は１０００μ秒である。
【００５６】
アッセイ手順：（１）プレートのコーティング：ウェル当たり６０μＬのコーティング溶液を添加し、４℃にて一晩静置し、プレーテッドシーラー（ｐｌａｔｅｄ  ｓｅａｌｅｒ）で密封した。（２）プレートのブロッキング：プレートを洗浄せずに、ウェル当たり１５０μＬのブロッキング溶液を添加し、室温にて１時間振盪しながらインキュベートした。Ｊｉｔｔｅｒｂｕｇのスイッチを入れ、温度を３７℃に設定した。（３）組換えＰＣＳＫ９曲線：６．０μＬの３０μｇ／ｍＬストックを、２１９．０μＬアッセイバッファーに添加し、７５μＬの検量用試料を用いて１５０μＬのアッセイバッファーに３倍連続希釈した。（４）試料および検量用試料の添加：ブロッキングの後、段階１に記載されるようにプレートを洗浄し、Ｂｉｏｍｅｋ  ＦＸで動かした。プログラムは、試料およびＱＣをアッセイバッファー中１：８に希釈した。検量用試料（標準物質）は希釈しなかった。ウェル当たりの最終容積は５０μＬであった。次に、プレートをＪｉｔｔｅｒｂｕｇ中で１時間３７℃にて振盪しながらインキュベートした。（５）抗体の検出：５０μＬのビオチン化二次抗体溶液を各々のウェルに添加した。抗体の終濃度は、１．０μｇ／ｍＬであった。プレートを室温にて１時間振盪しながらインキュベートした。（６）Ｓｔｒｅｐ−Ｅｕ：７５μＬのＳｔｒｅｐ−Ｅｕ溶液を各々のウェルに添加した。Ｓｔｒｅｐ−Ｒｕの濃度は０．１０μｇ／ｍＬであった。プレートを室温にて２０分間振盪しながらインキュベートした。（７）エンハンス溶液：１００μＬのＤＥＬＦＩＡエンハンス溶液を各々のウェルに添加し、プレートを黒色の蓋で覆い、Ｂｉｏｔｅｋ  Ｓｙｎｅｒｇｙ２プレートリーダーで読んだ。（８）プレートの読み取り：ＤＥＬＦＩＡプログラムを実施した。プレートを５分振盪させた後、３６０ｎｍの励起および６２０ｎｍの発光で読み取った。
【００５７】
計算：全ての計算は、Ｇｅｎ５ソフトウェアを用いて完了した。未知物質の濃度を、ＰＣＳＫ９のｎＭで表される検量用試料曲線から導いた。
【００５８】
結果：図２は、アッセイバッファーに希釈した組換えヒトＰＣＳＫ９標準曲線を説明する。曲線の範囲は、１０．２６ｎＭ〜０．００５ｎＭである。図３は、３週間の間の３つの異なる日に示された、６名の正常な健常ボランティアの生物学的多様性を説明する。濃度はｎＭで示されている。
【図１Ａ】
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【図１Ｂ】
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【図２】
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【図３】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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