(57)【要約】  脊椎動物の幼体に関する高スループットなインビーボスクリーニングシステムを提供する。本システムは、液質媒体に入った脊椎動物幼体の供給源、並びにその幼体を吸入する管内装荷手段を備える。通過していく幼体を泡やデブリから弁別する検知器アセンブリを設ける。その幼体の共焦点撮像，広視野蛍光撮像双方を行える撮像手段を設ける。その幼体を光操作できるレーザを設ける。
2013520198.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
液質媒体に入った生体標本の供給源と、
その供給源から管内に生体標本を自動装荷する手段と、
撮像装置の視野内でその生体標本を自動位置決めする手段と、
その生体標本を回動させる手段と、
を備え、インビーボスクリーニングに使用される高スループットなシステム。
【請求項２】
請求項１記載のシステムであって、上記生体標本が硬骨魚であるシステム。
【請求項３】
請求項１記載のシステムであって、上記供給源が、生体標本が複数体入るリザーバを有するシステム。
【請求項４】
請求項１記載のシステムであって、上記供給源が、生体標本が複数体入るマルチウェルプレートを有するシステム。
【請求項５】
請求項３記載のシステムであって、上記供給源が、生体標本入りリザーバ及びそれに切り替わる液質媒体供給源を有するシステム。
【請求項６】
請求項４記載のシステムであって、位置決めステージによって上記マルチウェルプレート上で位置決めされる管アセンブリを備えるシステム。
【請求項７】
請求項６記載のシステムであって、上記管アセンブリが、上記マルチウェルプレートに液質媒体を注ぐ注入管と、当該マルチウェルプレートから生体標本を吸入する吸入管と、を有するシステム。
【請求項８】
請求項６記載のシステムであって、上記管アセンブリ及びマルチウェルプレートを封止する手段を備えるシステム。
【請求項９】
請求項１記載のシステムであって、１個又は複数個の光源及び１個又は複数個の光検知器を有する光透過型又は光反射型の自動検知器を備えるシステム。
【請求項１０】
請求項９記載のシステムであって、上記自動検知器が、上記生体標本を気泡、デブリ又はその双方から弁別するシステム。
【請求項１１】
請求項１記載のシステムであって、上記管の一部が、撮像装置の視野内にありガラス、水晶又は透明ポリマで形成された毛細管であるシステム。
【請求項１２】
請求項１記載のシステムであって、上記撮像装置が、自撮像装置の視野内で上記管を回動させる１個又は複数個のモータを有するシステム。
【請求項１３】
請求項１記載のシステムであって、上記撮像装置が、２個の対物レンズで同時撮像を実行するシステム。
【請求項１４】
請求項１記載のシステムであって、上記撮像装置が、共焦点撮像、二光子撮像又は広視野撮像を実行するシステム。
【請求項１５】
請求項１記載のシステムであって、上記撮像装置が、光切断、光活性化又は光励起に適したビームを発生させるレーザ光源を有するシステム。
【請求項１６】
請求項１記載のシステムであって、遺伝子スクリーニングに使用されるシステム。
【請求項１７】
請求項１記載のシステムであって、化学スクリーニングに使用されるシステム。
【請求項１８】
液質媒体に入った生体標本の供給源を準備するステップと、
その供給源から管内に生体標本を自動装荷するステップと、
撮像装置の視野内でその生体標本を自動位置決めするステップと、
その生体標本を回動させるステップと、
を有し、インビーボスクリーニングに使用される高スループットな方法。
【請求項１９】
請求項１８記載の方法であって、上記生体標本を複数個の容器に仕分けるステップを有する方法。
【請求項２０】
請求項１８記載の方法であって、上記生体標本を複数回に亘りシステム内に通すステップを有する方法。
【請求項２１】
請求項１８記載の方法であって、上記生体標本を急性影響撮像用の化合物に露出させるステップを有する方法。
【請求項２２】
請求項１８記載の方法であって、細胞のインビーボ計数に使用される高スループットな方法。
【請求項２３】
請求項１８記載の方法であって、形態変化のインビーボ計測に使用される方法。
【請求項２４】
請求項１８記載の方法であって、細胞形態の計測に使用される方法。
【請求項２５】
請求項１８記載の方法であって、細胞移動の計測に使用される方法。
【請求項２６】
請求項１８記載の方法であって、Ｃａ２＋信号の計測に使用される方法。
【請求項２７】
請求項１８記載の方法であって、レーザ光マイクロ切断を用いた細胞分解能光操作に使用される方法。
【請求項２８】
請求項１８記載の方法であって、イオンチャネルの光励起に使用される方法。
【請求項２９】
請求項１８記載の方法であって、化学物質及び蛋白質の光活性化又は光不活性化に使用される方法。
【請求項３０】
請求項１８記載の方法であって、始原細胞の増殖を増強する化学物質の再生スクリーニングに使用される方法。
【請求項３１】
請求項１８記載の方法であって、腫瘍化細胞のインビーボ増殖を標的とした阻害物質に関する腫瘍スクリーニングに使用される方法。
【請求項３２】
請求項１８記載の方法であって、変性疾患のモデルにおける細胞死を阻止又は抑制する保護物質に関するスクリーニングに使用される方法。
【請求項３３】
請求項１８記載の方法であって、毒性スクリーニングに使用される方法。
【請求項３４】
請求項１８記載の方法であって、発達及び器官形成に関する遺伝子及び化学スクリーニングに使用される方法。
【請求項３５】
請求項１８記載の方法であって、神経突起の分岐、成長、接続性、棘突起密度等、神経細胞の形態に関するスクリーニングに使用される方法。
【請求項３６】
請求項１８記載の方法であって、幹細胞移動に関するスクリーニングに使用される方法。
【請求項３７】
請求項１８記載の方法であって、循環器系の機能及び疾患に関するスクリーニングに使用される方法。
【請求項３８】
請求項２７記載の方法であって、微細損傷を経た個別組織の再生増強スクリーニングに使用される方法。
【請求項３９】
請求項２７記載の方法であって、個別細胞切断後の機能補償スクリーニングに使用される方法。
【請求項４０】
請求項１８記載の方法であって、細胞系列及び細胞分化に関するスクリーニングに使用される方法。
【請求項４１】
請求項２記載のシステムであって、上記硬骨魚がゼブラフィッシュであるシステム。
【請求項４２】
請求項１記載のシステムであって、上記生体標本が遺伝子導入生物であるシステム。
【請求項４３】
液質媒体に入った脊椎動物幼体の供給源と、
その幼体を管内に吸入する手段と、
通過していく幼体を泡、デブリ又はその双方から弁別する手段と、
その幼体を回動させる手段と、
その幼体を撮像する手段と、
を備え、脊椎動物の幼体を自動的にインビーボスクリーニングするシステム。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本願は、この参照を以て本願に包含されるところの２０１０年２月２６日付米国特許出願第１２／７１３２６３号に基づく優先権主張を伴う出願である。
【０００２】
本発明はスクリーニング用の高スループットなプラットフォーム、特にゼブラフィッシュ稚魚、その他の硬骨魚等、生体標本を対象としたインビーボ(in vivo)な（生体内での）遺伝子スクリーニング及び化学スクリーニングを行える高スループットなプラットフォームに関する。
【背景技術】
【０００３】
ゼブラフィッシュ(zebrafish：Danio Rerio)モデルをはじめとする小動物モデルは、組織の発達、神経の退化及び再生、幹細胞の増殖及び移動（migration）、循環器系、免疫系、内分泌系及び神経系の疾患、伝染病の進行、発生学、癌の進行、薬物の組織特異性及び毒性等、生体外（インビトロ：in vitro)で再現できない大規模且つ複雑なプロセスの研究に役立っている。ゼブラフィッシュが広く用いられるに至ったのは、体が小さい、透明である、水棲である、養殖が簡単である等、望ましい属性が幾つかあるためであり、人間が罹る疾病のうち幾つかについてはゼブラフィッシュによるモデルが既に開発されている（非特許文献１〜１１；以下、文献番号を挙げて参照する諸文献については、その参照を以て本願に包含されるものとする）。疾病に対する効能に関しゼブラフィッシュモデルに従い化学物質ライブラリをスクリーニングすることで発見された鉛化合物は、哺乳動物・ゼブラフィッシュ間の薬物能保存性が高いことから薬品開発に役立っている（非特許文献１２及び１３）。様々な変異系統に対し様々な遺伝子操作、例えば遺伝子の過剰発現、ノックダウン、発現抑制等を施せることから、ゼブラフィッシュモデルは、遺伝子研究や新規化合物の標的細胞識別において強力なモデルとして役立っている（非特許文献１、１４及び１５）。大きな利点があることから、実験的研究におけるゼブラフィッシュモデルの利用は、ここ二十年に亘り指数的に増えてきている（非特許文献１）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】米国特許出願公開第２００７／０２０７４５０号明細書（Ａ１）
【特許文献２】米国特許出願公開第２００４／００９２００２号明細書（Ａ１）
【特許文献３】国際公開第２００９／０７９４７４号パンフレット（Ａ１）
【特許文献４】欧州特許出願公開第１４７９７５９号明細書（Ａ２）
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献１】Zon, L.I.,Peterson, R.T.,"In vivo drug discovery in the zebrafish." Nat Rev Drug Discovery 4(1), 35-44 (2005).
【非特許文献２】Amatruda, J.F., Shepard, J.L., Stern, H.M., Zon, L.I., "Zebrafish as a cancer model system." Cancer Cell 1(3), 229-231 (2002).
【非特許文献３】Rubinstein, A.L., Zebrafish: "from disease modeling to drug discovery." Curr Opin Drug Discov Devel., 6(2), 218-223 (2003).
【非特許文献４】Kokel, D., Peterson, R.T., "Chemobehavioural phenomics and behaviour-based psychiatric drug discovery in the zebrafish." Brief Funct Genomic Proteomic., 7(6), 483-490 (2008).
【非特許文献５】Langheinrich, U.,"Zebrafish: a new model on the pharmaceutical catwalk." Bioessays 25(9), 904-912 (2003).
【非特許文献６】Barros, T.P., Alderton, W.K., Reynolds, H.M., Roach, A.G., Berghmans, S., "Zebrafish: an emerging technology for in vivo pharmacological assessment to identify potential safety liabilities in early drug discovery." Br J Pharmacol., 154(7), 1400-1413 (2008).
【非特許文献７】den Hertog, J., "Chemical genetics: Drug screens in Zebrafish." Biosci Rep., 25(5-6), 289-297 (2005).
【非特許文献８】Lee, J.W., Na, D.S., Kang, J.Y., Lee, S.H., Ju, B.K.,"Differentiation of mouse p19 embryonic carcinoma stem cells injected into an empty zebrafish egg chorion in a microfluidic device." Biosci Biotechnol Biochem., 70(6), 1325-1330 (2006).
【非特許文献９】Buckley et al., "Zebrafish myelination: a transparent model for remyelination?." Disease Models & Mechanisms 1, 221-228 (2008).
【非特許文献１０】McGrath, P., Li, C.,"Zebrafish: a predictive model for assessing drug-induced toxicity." Drug Discovery Today 13(9-10), 394-401 (2008).
【非特許文献１１】Wen et al., "Visualization of monoaminergic neurons and neurotoxicity of MPTP in live transgenic zebrafish." Developmental Biology 314, 84-92 (2007).
【非特許文献１２】King, A., "Researchers find their Nemo." Cell 139(5), 843-846, (2009).
【非特許文献１３】Shin, J.T., Fishman, M.C., "From Zebrafish to human: modular medical models." Anna.Rev.Genomics.Hum.Genet, 3, 311-340 (2002).
【非特許文献１４】Lieschke, G.J., Currie, P.D., "Animal models of human disease: zebrafish swim into view." Nature Genetics 8, 353-367 (2007).
【非特許文献１５】Patton, E.E., Zon.L.I., "The art and design of genetic screens: zebrafish," Nature Genetics 2, 956-966 (2001).
【非特許文献１６】Karlsson, J,.Hofsten, J.V., Olsson, P.E., "Generating Transparent Zebrafish: A Refined Method to Improve Detection of Gene Expression During Embryonic Development", Marine Biotech., 3, 522-527 (2001).
【非特許文献１７】Zottoli, S.J., Faber, D.S., "The Mauthner Cell: What Has it Taught us?." The Neuroscientist 6(1), 26-38 (2000).
【非特許文献１８】Bhatt D.H., Otto S.J.,Depoister B., Fetcho J.R., "Cyclic AMP-induced repair of zebrafish spinal circuits." Science 305(5681), 254-258 (2004).
【非特許文献１９】Hutchinson T.H.,Williams T.D., "Culturing of fathead minnow larvae for aquatic toxicity testing: an observational note," Environ.Toxico.l Chem.13, 665-669 (1993).
【非特許文献２０】HENRIKSEN, G.H.,et al., "Laser-assited patch clamping : a methodology," Pflueger Archiv : European Journal of Physiology,Springer Verlag, Berlin, DE, vol.433, 1January 1997, pages 823-841.
【非特許文献２１】WENHUI H WANG ET AL., "High-Throughput Automated Injection of Individual Biological Cells," IEEE Transactions on Automation Science and Engineering, IEEE Service Center, New York, NY, vol.6, no.2, 1 April 2009, pages 209-219.
【非特許文献２２】FUNFAK, A., et al., "Micro fluid segement technique for screening and development studies on Danio rerio embryos," Lab Chip, (2007) Vol.7, pgs.1132-1138
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
幾つかの企業・研究機関では、９６ウェルプレート内で養殖されたゼブラフィッシュ稚魚の遺伝子スクリーニングや化学スクリーニングが実施されている（非特許文献１、２、４及び１２）。しかしながら、ゼブラフィッシュがほとんど人手（マニュアル）で扱われるため、大規模スクリーニングを行うにしても、一般に一週間当たり数千化合物が限界である。また、サブ細胞分解能で分析するには、撮像乃至操作対象標本の狙いとする部位（注目領域）に対し光学的にアクセスする必要があるが、その手前に眼、心臓等の器官があると、明瞭なアクセス結果が得られないことが多い。卵黄等の器官は顕著な自家蛍光を呈するし、皮膚着色によって注目領域が隠されることもある。そのため、注目領域を撮像するには、多くの場合、適正になるようゼブラフィッシュの向きを調整してやる必要がある。従来も、寒天等の粘着性媒体内に埋め込む手法やピンセットで手動回動させる手法で、標本の向きを適正化する処置が執られてきたが、これらの処置は速度や信頼性が低く高スループットでのスクリーニングに適さない。更に、一旦固定されたら標本の向きを敏速に変えられないことが、様々な角度から組織を撮像する上で支障となっている。なお、標本の向きを適正化することやサブ細胞分解能での撮像が必要とな分析の例としては、脳、眼、心臓、膵臓、腎臓、肝臓等を形成する組織内での幹細胞の増殖及び移動、初期腫瘍増殖、神経細胞変成、神経突起再生等のインビーボモニタリングが挙げられる。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
ここに、本発明の一実施形態に係るシステムは、インビーボスクリーニングに使用される高スループットなシステムであって、液質媒体に入った生体標本の供給源と、その供給源から管内に生体標本を自動装荷（ロード：ｌｏａｄ）する手段と、撮像装置の視野内でその生体標本を自動位置決めする手段と、を備える。生体標本としては胚や水棲動物例えば硬骨魚を使用するのが望ましい。なかでも望ましい硬骨魚はゼブラフィッシュ稚魚である。また、生体標本の管内通過を検知する自動検知器を設けるのが望ましい。
【０００８】
使用する生体標本がゼブラフィッシュ稚魚である場合、上掲の供給源としてはリザーバやマルチウェルプレートを使用することができる。リザーバとしては稚魚リザーバ及び液質媒体リザーバを設けるのが望ましく、マルチウェルプレートとしては、ｘｙ位置決めステージ上に座す形態で９６ウェルプレートを設けるのが望ましい。また、自動検知器としては、発光ダイオード（ＬＥＤ）を２個、高速フォトダイオードを１個備える透過型又は反射型の自動検知器を設けるのが望ましい。撮像装置としては、生体標本を回動させる手段を備えるもの、例えば稚魚を毛細管内に受け容れその毛細管を回動させる一対のステッパモータを備えるものを設けるのが望ましい。その毛細管としては、ガラス又はテフロン（登録商標）製のものを使用するのが望ましい。
【０００９】
撮像装置には、共焦点撮像用の水浸漬型２０倍対物レンズ、明視野撮像用の上下反転型１０倍対物レンズ、冷却電子増倍（ＥＭ）−ＣＣＤカメラ、並びにレーザ例えばフェムト秒レーザを設けるのが望ましい。フェムト秒レーザであれば、その動作次第で、顕微手術、光切断、光活性化等に適したビームを発生させることができる。そうしたシステムは、遺伝子乃至化学スクリーニングの実行に役立つものである。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】ａ及びｂは本発明の一実施形態による遺伝子スクリーニング及び化学スクリーニングの手順を示す模式図である。
【図２】ａ〜ｄは本発明の一実施形態に係るゼブラフィッシュスクリーニングプラットフォームの模式図である。
【図３】ａ及びｂはゼブラフィッシュの向き調整、撮像、フェムト秒レーザ顕微手術及び再生について説明するための顕微鏡写真である。
【図４】ａ〜ｃは動物疾患の定量評価について説明する図である。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
ゼブラフィッシュに対するスクリーニングのスループットを劇的に高め且つ難度を劇的に下げるため、発明者は、ゼブラフィッシュ稚魚をより迅速に操作できるプラットフォームを開発した。以下、ゼブラフィッシュ稚魚を例に本発明のシステムについて説明する。その他の硬骨魚、その他の水棲動物、胚等を用いることも可能であり、ゼブラフィッシュ稚魚に限らず様々な生体標本が対象になりうる点をご理解頂きたい。図１に、遺伝子，化学両スクリーニングを実行可能な自動システムの例を示す。遺伝子スクリーニングの場合、リザーバから撮像用プラットフォームへと稚魚の変異体を装荷し、撮像が済んだ変異体を適宜マルチウェルプレート内に移すことで表現型に従いソートする。化学スクリーニングの場合、リザーバから撮像用プラットフォームへと稚魚を装荷し、個体数の計数や光操作（例．レーザ顕微手術）を実行し、供試物質入りのマルチウェルプレート内にその標本を吐出してその物質内で養殖し、そして撮像用プラットフォームに返送して表現型をチェックする。
【００１２】
本システムで実行可能な遺伝子乃至化学スクリーニングの例としては、始原（profenitor）細胞増殖プロモータを探し組織再生を図るための化学スクリーニング、例えば肝臓、腎臓、膵臓、骨格筋、毛嚢、中枢神経系、抹消神経系等の組織に関するそれがある。別の例としては、腫瘍化細胞（tumorigenic）増殖を標的とする阻害物質に関するインビーボなスクリーニングがある。更に別の例としては、パーキンソン病、アルツハイマー病、ハンチントン病等、変性疾患のモデルで生じる細胞の発達不全や死を顕著に抑制又は阻止する保護物質に関するスクリーニングがある。組織に対する薬物の生物学的毒性を評価するためのスクリーニング、例えば肝臓、腎臓、膵臓、心臓、有毛細胞、中枢神経系の神経細胞、末梢神経系の神経細胞等に関するそれもある。系列トレーサたる蛍光レポータ蛋白質の光活性化を通じ諸細胞系列の分化・増殖や器官形成を調べる遺伝子及び化学スクリーニングも本システムで実行することができる。
【００１３】
本システムには、ありふれたマルチウェルプレートを用いゼブラフィッシュ稚魚を大量に捌き育てる(incubationg)機能の重要性に鑑み、稚魚を自動装荷する手段や、個々のウェル内にその稚魚を自動返送する手段が設けられている。リザーバから稚魚を装荷する手段も設けられている。自動装荷後、その稚魚は光学的な撮像装置の視野内で位置決めされ、その装置による高速共焦点撮像や、操作装置による光操作に供される。標本をオンザフライ的に再配置、回動させるようにしているので、フェニルチオ尿素（ＰＴＵ）処置等、手動操作及び侵襲的薬物を用いた皮膚着色抑制処理を不要にすることもできる。稚魚の向きが能動制御されるので、必要な作動距離が短い高数値開口（ＮＡ）対物レンズを使用すること、ひいては集光量を増やし、背景蛍光を抑え、また手前にある組織による散光・吸光を減らすことができる。本システムによれば、大規模なスクリーニングをサブ細胞分解能で実行することができる。
【００１４】
図２ａに、液質媒体リザーバ１０及び稚魚リザーバ１２を制御する流体弁１４，１６、稚魚リザーバ１２内に泡を注入して撹拌させるバブルミキサ１８、並びに図示しないシリンジポンプの働きで稚魚が吸入される管２０を示す。２個ある弁１４，１６はコンピュータ制御下にあり、稚魚が管２０内に入ると作動する。これにより、流体供給源が稚魚リザーバ１２から液質媒体リザーバ１０へと自動的に切り替わるので、複数匹の稚魚が同時に装荷されることを防ぐことができる。
【００１５】
図２ｂに、稚魚入りのマルチウェルプレート２１及びそれを支持するｘｙ位置決めステージを示す。ｘｙ位置決めステージは、指定されたウェルが空気圧式ピストンの直下に来るよう両者間の位置決めを実行する二軸ステージである。その空気圧式ピストンは、直径１．０ｍｍの装荷管と直径０．２ｍｍの補給管を併せ２本あるシリコン管の端点を、そのウェル内の空間へと下降させる。シリコーンラバー塊２２は、そのウェル内を減圧できるようウェルの開口部を封止する。装荷管は稚魚を吸い込む管、補給管は損逸分の液質媒体を補給する管であり、稚魚の吸入と液質媒体の補給は同時に実行される。
【００１６】
図２ｃに、稚魚リザーバ１２又はマルチウェルプレート２１内セルを出たゼブラフィッシュ稚魚が送られる検知部を示す。これは、リザーバ１２又はプレート２１内セルから管２０に稚魚が入ったことを自動認識する自動検知器であり、管２０の周りに配された２個のＬＥＤ２４，２６及び光検知器（ＰＤ）２８を備えている。ＬＥＤ２６は、発した光が稚魚を透過しＰＤ２８で受けるように配置されている。ＬＥＤ２４は、発した光が散乱を経てＰＤ２８に届くようにずらして配置されている。システム側では、こうして得られる透過信号と散乱信号を同時にモニタし、通過していく稚魚を気泡や残骸（デブリ：debris）から弁別する。検知部によるサンプリングのレートは、素早く移動していく稚魚を確実に認識できるレート、具体的には２ｋＨｚに設定されている。
【００１７】
図２ｄに、検知部を経た稚魚が送られる撮像装置を示す。同図では、稚魚３０が、内径＝約８００μｍのテフロン（登録商標）製毛細管３２内で撮像装置の視野に捉えられている。毛細管３２の屈折率は、画像歪が生じないよう水のそれと一致させてある。毛細管３２をガラス製にすることも可能である。
【００１８】
図２ｄに示した撮像装置は、直立，反転の２ポートを有する光学的な顕微撮像システムを構成している。直立ポート側のレンズ３４は共焦点撮像が可能な水浸漬型の２０倍対物レンズ（ＮＡ＝１．０）であり、反転ポート側のレンズ３６は明視野撮像が可能な気中型の１０倍対物レンズである。直立ポート側の顕微鏡には、ビデオフレームレートで共焦点蛍光撮像を行えるよう、冷却ＥＭ−ＣＣＤカメラ３８を伴う高速スピンディスク共焦点ヘッドが付設されている。反転ポート側の顕微鏡には、稚魚３０の検知及び位置決めのため別のＣＣＤカメラ４０が付設されている。フェムト秒レーザ４２で生じるビームは、顕微手術、光切断、光活性化又は光励起に適するビームであり、ダイクロイックフィルタを介し上側の光路に送出された後、２０倍の対物レンズ３４によって標本表面に合焦される。２個あるステッパモータ４４，４６は、毛細管３２が捻られないよう、ひいては稚魚３０の正確な位置がわかるよう、精密な制御の許で互いに逆方向に回動する。
【００１９】
図２ｄに示した撮像装置の視野内に稚魚が入ると、コンピュータ制御下にある図示しないシリンジポンプを用い、その稚魚の毛細管３２内粗位置決めが自動実行される。毛細管３２の屈折率が水のそれに一致していて画像歪が生じないので、高速なＥＭ−ＣＣＤカメラで得られる画像に基づき相応の自動画像処理アルゴリズムを実行することで、稚魚の視野内進入を検知すること及びその直後にシリンジポンプを停止させることができる。シリンジポンプで稚魚を粗位置決めした後は、本件技術分野で従来から知られている自動画像処理手法に従い、三軸位置決めステージで毛細管３２のアセンブリを移動させることで、稚魚の頭部がカメラ視野の中央に来るよう両者間の位置決めを実行する。
【００２０】
生体標本の向きは、一対のステッパモータ４４，４６による毛細管３２の回動でオンザフライ的（休みなく）に調整される。モータ４４，４６は、そのシャフトが相対向するよう共通の支持構造上に配置されている。モータ４４，４６は、図示しないコンピュータに接続されたマイクロステップコントローラによって、ステップ幅＝０．２°刻み、角速度＝１８０°／ｓで動作するよう制御される。モータ４４，４６、毛細管アセンブリ、並びに上側の対物レンズが浸漬される貯水撮像チャンバが、３軸駆動型の位置決めステージ上に実装されているので、顕微鏡の視野内における稚魚の位置及び向きを１μｍ未満の精度で任意に設定することができる。この撮像装置では、また、広視野蛍光撮像と高速・高分解能でのスピンディスク共焦点顕微撮像とを同時に実行することができる。撮像システム装置に二光子撮像機能を持たせることもできる。
【００２１】
図３ａに、稚魚の向きを幾通りかの角度に亘り変えつつ共焦点撮像を行いマウスナー神経細胞の軸索（神経繊維）と正中線（midline）との交差を捉えた例を示す（非特許文献１７）。正中線交差を視認できるのは後脳から見た場合のみであり（図中の０°）、他の角度でははっきりと見えていない（図中の１５°及び４５°）。スケールバーの長さは１５０μｍである。
【００２２】
本システムには、フェムト秒レーザ４２を用いサブ細胞精度で励振する機能も備わっている。従って、そのレーザ４２を精密自動位置決め及び向き調整機能と併用することで、蛍光レポータ及びイオンチャネルの局所活性化、化合物のアンケージング、レーザ顕微手術等の光操作を実行することができる。図３ｂに、レーザ顕微手術による加傷及びその後の神経細胞再生に関する研究での本システムの用例を示す。ゼブラフィッシュは高い再生能力を有しているので、それによるモデルは、再生機構の解明や再生を促す化学物質のスクリーニングに適した強力なモデルとなりうる。しかし、外科用メスでゼブラフィッシュに加傷する在来の分析手法は低速且つ侵襲的であるため、再生に関し高い信頼性で大規模な研究を行うことができない（非特許文献１８）。これに対し、発明者が線虫の一種(C.elegans)での神経細胞再生に関し以前示した研究結果からわかるように（非特許文献１３）、画像上で側神経細胞軸索繊維束が胴体沿いに張り出して見えるよう稚魚を横向きにし、近赤外フェムト秒レーザパルス（図３ｂ中の白矢印）を合焦させるようにすれば、レーザ光による精密な軸索切断を実現することができる。近赤外波長では組織の透明度が高いけれども、極短レーザパルスの焦点で光子の非線形吸収が生じるので、その周囲の組織に傷を負わせることなく、１μｍの精度で軸索を切断することができる。更に、本システムでは、こうした手術が高スループットで半自動的に実行される。この手順では、まず、グラフィカルユーザインタフェース上でのクリック操作を通じ、ユーザによって細胞体が指定される。次いで、所与アルゴリズムに従い、その細胞体から軸索沿いの切断対象点までの距離が推定される。更に、その点を含む軸索沿い領域を、位置決めステージによってレーザ４２の焦点まで自動的に移動させる。そして、電気光学的レーザシャッタを開きレーザ４２のパルスを自動送出させることで、その顕微手術が実行される。また、図３ｂには軸索切断から１８時間及び２４時間が経過し再成長した軸索繊維も示されている。軸索繊維の切断位置は体部から８５０μｍの位置、切断に使用されたレーザパルスは波長＝７８０ｎｍ、持続時間＝１００ｆｓ、パルスエネルギ＝１５ｎＪ、繰返しレート＝８０ＭＨｚ、パルストレイン長＝１０ｍｓの極短パルス、合焦に使用されたレンズはＮＡ＝１．０の２０倍対物レンズである。スケールバーの長さは７５μｍである。
【００２３】
撮像や操作が済んだ稚魚は、装荷とは逆の手順によってマルチウェルプレート内に吐出され、そこで更に養殖される。吐出される媒体の体積は１０μＬより高い精度になるよう水力学的に制御される。図４ａに示すように、装荷から位置決め、回動及びサブ細胞分解能共焦点撮像を経て稚魚吐出に至るサイクル全体で費やされる時間は１６秒未満である。これに対し、同様の分析を手動実行すると、約１０分がかかるにもかかわらずかなり高い確率で失敗する。
【００２４】
ゼブラフィッシュ稚魚は繊細であり、その卵黄はとりわけ扱いが難しい。発明者は、できるだけ稚魚を傷つけにくいシステムを実現するため、様々な手法及び流速について検討した。その結果、稚魚が最もひどく傷つくのは、稚魚リザーバ１２やマルチウェルプレート２１から管２０内へと高速吸引された場合であることが判明した。反面、吸引速度を十分に高くしないと、スループットが許容水準まで高まらない。そこで、本システムでは、稚魚が傷つく機会が減るよう流速の初期値を低く抑えた上で、最初の稚魚が装荷管に入ってからその稚魚が検知部（図２ｃ参照）で検知されるまでは、流速を４２μｌ／ｓ２の一定加速度で増加させるようにしている。但し、３３０μｌ／ｓを流速の上限とする。管内にいる限りは、こうした高速でも稚魚に傷が付く恐れがない。稚魚が毛細管３２内に入ったことが検知されたら、カメラ３８による稚魚の自動認識を行えるよう、相応の制御ソフトウェアに従い吸引速度を８３μｌ／ｓへと自動低下させる。図４ｂに、本システムを用い３通りの吸引速度で稚魚４５０匹をスクリーニングした結果を示す。ここに示したのは、３６時間経過後の健康状態を、その稚魚の平常時心拍数、形態、並びに接触及び光刺激に対する反射的な反応を目視確認、評価した結果である。流速の初期値が最高のケース（３３０μｌ／ｓ）では、稚魚の２．０％に形態異常が発生した。形態異常の判別は、脊柱前湾奇形、脊柱後湾奇形、脊柱湾曲症及び頭蓋顔面奇形に係る条件に従い行った（非特許文献１９）。操作後の発達遅延は、浮き袋発現までに要した時間をモニタすることで計測した。図４ｃに示すように、本システムで操作された稚魚の発達と、（流速が最高のものを含め）比較対象となる稚魚の発達との間に顕著な差はない（Ｐ＝０．９４）。更に、若干低い装荷速度で本システムを作動させるようにすれば（１サイクルにかける時間を１秒長くすれば）、本システムの影響で生存率が低下することもなくなる。
【００２５】
このように、発明者が開発したのは、細胞分解能撮像や生体標本操作（手術等）が可能な高スループットプラットフォームであり、神経細胞再生をはじめとする複雑なインビーボ分析を高いスループットで実行することができる。本プラットフォームは、順逆双方の遺伝子スクリーニングに加え化学スクリーニングにも使用することができる。本プラットフォームでは、生体標本の自動装荷元及び自動吐出先を、ゼブラフィッシュの大規模養殖等に必須なマルチウェルプレートにすることができる。生体標本の向きを１°制御でオンザフライ制御する構成にすれば、従来の高スループットスクリーニング技術ではアクセスできなかった深部構造及び表層構造を可視化、操作することが可能となる。生体標本の装荷から位置決め、向き調整、撮像及びレーザ光マイクロ操作を経て吐出に至る全プロセスを１８秒以内で終えること、即ち既存手法に対しおよそ二桁以上改善することも可能である。本システムについては、媒体中に気泡、デブリ等の偽像源が存在している許でも非侵襲的且つ確実に作動することが、数百体の生体標本を対象にしたスクリーニングを通じ判明している。このように、本プラットフォームによれば、脊椎動物を対象とした高度な分析におけるスループットを顕著に高めることができる。
【００２６】
なお、本件技術分野で習熟を積まれた方々（いわゆる当業者）が本発明に改良及び変形を施せること、並びにそうした改良及び変形を経たものも本発明の技術的範囲に包含されることに留意されたい。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【国際調査報告】
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