(57)【要約】  本発明は、ＡＴＣＣ ＣＣＬ‐３４細胞株として寄託されたＭＤＣＫ細胞から誘導され、血清なしに培養が可能であり、浮遊培養が可能なＭＤＣＫ細胞株、望ましくは、腫瘍形成能が低いか全くないことを特徴とする細胞株ＭＤＣＫ Ｓｋｙ１０２３、ＭＤＣＫ Ｓｋｙ１０２３４、及びＭＤＣＫ Ｓｋｙ３８５１に関するものである。また本発明は、前記ＭＤＣＫ細胞を成長させる培養方法及び前記ＭＤＣＫ細胞を利用してワクチン用ウイルスを製造する方法に関するものである。
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
ＡＴＣＣ ＣＣＬ‐３４として寄託されたＭＤＣＫ細胞から誘導され、細胞成長のために血清を要さず、付着のための担体なしに浮遊培養が可能なＭＤＣＫ細胞株。
【請求項２】
前記ＭＤＣＫ細胞株は、腫瘍形成能が元のＭＤＣＫ細胞株に比べて低いか全くないことを特徴とする請求項１に記載のＭＤＣＫ細胞株。
【請求項３】
前記細胞株は、ＭＤＣＫ Ｓｋｙ１０２３（ＤＳＭ ＡＣＣ３１１２）、ＭＤＣＫ Ｓｋｙ１０２３４（ＤＳＭ ＡＣＣ３１１４）、またはＭＤＣＫ Ｓｋｙ３８５１（ＤＳＭ ＡＣＣ３１１３）であることを特徴とする請求項１に記載のＭＤＣＫ細胞株。
【請求項４】
請求項１から３のうち何れか１項に記載の細胞株を利用してワクチン用ウイルスを製造する方法。
【請求項５】
前記ウイルスは、インフルエンザウイルス、麻疹ウイルス、日本脳炎ウイルス、耳下腺炎ウイルス、風疹ウイルス、ポリオウイルス、ＨＳＶ‐１、ＨＳＶ‐２、狂犬病ウイルス、ＲＳウイルス、レオウイルス３型、黄熱ウイルス、パルボウイルス、コクサッキーウイルス、アデノウイルス１型ないし４７型、ラッサウイルス、ワクシニアウイルスから構成された群から選択されることを特徴とする請求項４に記載の方法。
【請求項６】
前記ウイルスは、インフルエンザウイルスであることを特徴とする請求項５に記載の方法。
【請求項７】
（ａ）請求項１から３のうち何れか１項に記載のＭＤＣＫ細胞を利用して１×１０４個ないし１×１０６個ｃｅｌｌｓ／ｍｌの接種濃度で無血清細胞培養培地を接種するステップと、
（ｂ）４０〜１００ｒｐｍの撹拌速度、６．５〜７．５のｐＨ、及び３５〜１００％の溶存酸素量（ＤＯ）からなる群から選択される１つ以上の培養条件を維持しながら前記細胞を培養するステップを含み、使い捨て生物反応器システムで前記ＭＤＣＫ細胞を５×１０６個以上ｃｅｌｌｓ／ｍｌの細胞密度に増殖させるステップと、
（ｃ）前記増殖されたＭＤＣＫ細胞をインフルエンザウイルスで感染させるステップと、
（ｄ）インフルエンザウイルスの複製を許容する条件の下で前記感染された増殖ＭＤＣＫ細胞を培養するステップと、
（ｅ）細胞培養組成物からインフルエンザウイルスを分離するステップとを含むことを特徴とする細胞培養物でインフルエンザウイルスを生産する方法。
【請求項８】
前記ステップ（ｂ）では、前記細胞培養物に新鮮な培地の追加または培地を一部除去して新鮮な培地に交換する請求項７に記載の方法。
【請求項９】
請求項７または８に記載の方法に従って製造されたウイルスまたはウイルス抗原。
【請求項１０】
（ａ）ＡＴＣＣ ＣＣＬ‐３４として寄託されたＭＤＣＫ細胞を用意するステップと、
（ｂ）前記ＭＤＣＫ細胞を無血清培地で生長するように適応させるステップと、
（ｃ）ステップ（ｂ）で適応された付着性である前記ＭＤＣＫ細胞を無血清培地の中で担体を要さずに浮遊状態で生長するように適応させたＭＤＣＫ細胞を得るステップとを含む、
細胞成長のために血清を要さずに、付着のための担体なしに浮遊培養が可能な細胞株を製造する方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、血清なしに培養可能であり、担体に付着せずに浮遊培養が可能なＭＤＣＫ新規細胞株、このような細胞株を製造する方法、及びこのような細胞株を利用してワクチン用ウイルスを製造する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
一般に、ワクチンの生産のためには、有精卵、マウス脳、一次細胞或いは確立細胞が使われる。このような伝統的な方法はいくつの問題を有している。例えば、有精卵を使う場合、ニワトリの飼育、ワクチン生産計画による受精卵の管理、鶏卵タンパク質由来成分の除去のための精製の難しさなどの問題がある。
細胞培養の場合、一般的に増殖因子としてウシ胎児血清を添加する。血清の場合、プリオンやウイルスによる汚染が発生し得、製品間の品質偏差があり得る。しかも、オーストラリアやニュージーランド由来の高品質血清の場合、非常に高いことから製造コストが増加する。
【０００３】
ＭＤＣＫ細胞株は、多様なウイルスが増殖可能な確立細胞株である。しかし、ＭＤＣＫ細胞株は表面に対する付着性が非常に強いことから、大量培養のためには非常に広い面積の培養容器や担体が必要であり、これには多くのコストがかかる。したがって、施設または担体にかかるコストが莫大であり、なお、担体に付着された細胞を除去するステップが必要であり、これにより細胞の損失や損傷が生じる。したがって、安価で且つ安全に動物細胞の培養を通じたワクチンを製造するためには、無血清及び浮遊培養が可能な細胞株が必要である。
【０００４】
特許文献１は、無血清培養及び担体のない浮遊培養で増殖可能なＭＤＣＫ細胞株に対して開示している。前記特許文献１は、浮遊培養への適応のために二通りの接近法を使用したが、第１接近法は、スピナーフラスコ（ｓｐｉｎｎｅｒ ｆｌａｓｋ）で直接浮遊培養を試み、この場合、細胞密度が産業化に必要なレベルである１．０×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌに逹しておらず、第２接近法の場合、ビーズ担体培養ステップを先に経ることで培養規模を拡張した後、担体不在下で増殖できる細胞株を得た。従って、細胞株を得る過程が相対的に複雑である。
【０００５】
また、元のＭＤＣＫ細胞株は腫瘍原性（ｔｕｍｏｒｉｇｅｎｉｃ）があるという多くの報告があり、このためにワクチンを生産するための細胞株として使うにあたって潜在的な腫瘍原性に対する恐れが存在する。したがって、無血清培養及び浮遊培養が可能なだけでなく、望ましくは、腫瘍形成能を著しく低めるか、非発癌性の特徴を有する細胞株の開発が必要である。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】米国登録特許第６,８２５,０３６号
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明が解決しようとする課題は、無血清培養及び浮遊培養が可能であるという長所があり、ワクチン用ウイルス増殖に使用可能な元のＭＤＣＫ細胞株に比べて腫瘍形成能が顕著に低いか全くないＭＤＣＫ細胞株を提供することである。また本発明は、前記細胞株を利用してウイルス、特にインフルエンザウイルスを生産する方法を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
関連出願の相互参照
本出願は、２０１０年９月６日出願の国際出願ＰＣＴ／ＫＲ２０１０／００６０４１、及び２０１１年８月２６日出願の韓国特許出願第１０‐２０１１‐００８５９０２号に基づく優先権を主張し、該当出願の明細書および図面に開示された内容は、すべて本出願に援用される。
【０００９】
技術的解決手段
上記課題を解決するために、本発明は、ＡＴＣＣ ＣＣＬ‐３４として寄託されたＭＤＣＫ（Ｍａｄｉｎ Ｄａｒｂｙ Ｃａｎｉｎｅ Ｋｉｄｎｅｙ）細胞から誘導され、細胞成長のために血清を要さず、付着のための担体なしに浮遊培養が可能な特定のＭＤＣＫ細胞株を提供する。
【００１０】
前記望ましい特性である無血清培養及び浮遊培養が可能なＭＤＣＫ細胞株は、以下のようなステップを経て製造できる。具体的に、Ｓ１）ＭＤＣＫ細胞株を無血清培地に適応させて無血清培養が可能な細胞株を製造し、Ｓ２）無血清培養が可能な細胞株を担体適応ステップなしに浮遊培養に適応させることで担体なしに浮遊培養が可能な細胞株を選別する方法で製造できる。
さらに詳しくは、（ａ）ＡＴＣＣ ＣＣＬ‐３４として寄託されたＭＤＣＫ細胞を用意するステップと、（ｂ）前記ＭＤＣＫ細胞を、化学的に定義された無血清培地で生長するように適応させるステップと、（ｃ）ステップ（ｂ）で適応された付着性である前記ＭＤＣＫ細胞を、化学的に定義された無血清培地の中で担体適応ステップを経ずに浮遊培養適応を誘導することで担体なしに浮遊状態で生長するように適応させたＭＤＣＫ細胞を製造する方法、及び、このような方法を通じて得られた無血清培養及び浮遊培養が可能なＭＤＣＫ細胞株を提供する。
【００１１】
望ましくは、前記方法を通じて新規で確立された無血清培養及び浮遊培養が可能なＭＤＣＫ細胞株は、ＭＤＣＫ Ｓｋｙ１０２３（ＤＳＭ ＡＣＣ３１１２）、ＭＤＣＫ Ｓｋｙ１０２３４（ＤＳＭ ＡＣＣ３１１４）、及びＭＤＣＫ Ｓｋｙ３８５１（ＤＳＭ ＡＣＣ３１１３）であり、Ｂｒａｕｎｓｃｈｗｅｉｇ、Ｇｅｒｍａｎｙに所在する寄託機関であるＤＳＭＺ（Ｄｅｕｔｓｃｈｅ Ｓａｍｍｌｕｎｇ ｖｏｎ Ｍｉｋｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｅｎ ｕｎｄ Ｚｅｌｌｋｕｌｔｕｒｅｎ）に２０１１年１月２７日付でそれぞれの寄託番号で寄託した。
【００１２】
本発明において、「無血清培地」という用語は、血清が実質的に添加されていない、本発明による確立細胞株が培養可能な培地を意味し、「実質的に添加されていない」という用語は、血清を０．５（ｖ／ｖ）％以下含むことを意味し、望ましくは、０．１（ｖ／ｖ）％以下、さらに望ましくは、０．０１（ｖ／ｖ）％以下、最も望ましくは、全く含まないことを意味する。
【００１３】
特許文献１は、二通りの接近法を使用して無血清培地でＭＤＣＫ細胞株の浮遊培養を試みた。第１接近法は、スピナーフラスコで直接浮遊培養を試み、この場合、細胞密度が産業化に必要なレベルである１.０×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌに逹しなかった。第２接近法の場合、担体培養ステップを経た後、担体不在下で増殖できる細胞株を得た。
【００１４】
しかし、本発明では、担体適応ステップを経ずにスピナーフラスコで直接培養を試みて無血清培地で浮遊培養が可能な新規細胞株を確立した。また、特許文献１で確立されたＢ‐７０２細胞株の場合、約１週間内に１．０×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌに逹したが、本発明で確立された細胞株の場合、約３日内に１．０×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌ以上に達しているので、増殖能が遥かに優れている。
【００１５】
既存に知られたＭＤＣＫ細胞株の場合、腫瘍原性に対する多くの報告がある。しかし、本発明では、既存のＭＤＣＫ細胞株に比べて腫瘍形成能が顕著に減少するか、腫瘍形成能が全く観察されない細胞株を確立した。具体的に、細胞株、細胞破砕物、及び細胞ＤＮＡを利用したヌードマウスにおける腫瘍形成能の確認試験結果、本発明で新規で確立されたＭＤＣＫ細胞株は、既存ＭＤＣＫ細胞株に比べて腫瘍形成能が低いか全くないと示され、このような検証を通じてワクチン生産に使用可能な安全性に優れた細胞株、さらに望ましくは、無血清及び浮遊培養が可能なＭＤＣＫ細胞株が確立できた。
【００１６】
また本発明は、本発明による細胞株を利用してワクチン用ウイルスを製造する方法を提供する。本発明による細胞株を利用して増殖可能なウイルスは、例えば、インフルエンザウイルス、麻疹ウイルス、日本脳炎ウイルス、耳下腺炎ウイルス、風疹ウイルス、ポリオウイルス、ＨＳＶ‐１、ＨＳＶ‐２、狂犬病ウイルス、ＲＳウイルス、レオウイルス３型、黄熱ウイルス、パルボウイルス、コクサッキーウイルス、アデノウイルス１型ないし４７型、ラッサウイルス、ワクシニアウイルスなどがあり、本発明による細胞株は、このようなウイルスのうちインフルエンザウイルスの生産にさらに適合している。
【００１７】
さらに具体的に、本発明は、（ａ）本発明によるＭＤＣＫ細胞を利用して約１×１０４個ないし約１×１０６個ｃｅｌｌｓ／ｍｌの接種濃度で無血清細胞培養培地を接種するステップと、（ｂ）約４０〜１００ｒｐｍの撹拌速度、約６．５〜７．５のｐＨ、及び約３５〜１００％の溶存酸素量（ＤＯ）からなる群から選択される１つ以上の培養条件を維持しながら前記細胞を培養するステップを含み、使い捨て生物反応器システムで前記ＭＤＣＫ細胞を約５×１０６個以上ｃｅｌｌｓ／ｍｌの細胞密度に増殖させるステップと、（ｃ）前記増殖されたＭＤＣＫ細胞をインフルエンザウイルスで感染させるステップと、（ｄ）インフルエンザウイルスの複製を許容する条件の下で前記感染された増殖ＭＤＣＫ細胞を培養するステップと、（ｅ）細胞培養組成物からインフルエンザウイルスを分離するステップとを含むことを特徴とする細胞培養物でインフルエンザウイルスを生産する方法を提供し、望ましくは、本発明のこのような方法は、前記ステップ（ｂ）では、前記細胞培養物に新鮮な培地の追加または培地を一部除去して新鮮な培地に交換するステップをさらに含む。
【００１８】
また本発明は、本発明による方法に従って製造されたウイルスまたはウイルス抗原を提供し、このようなウイルス抗原を含む免疫原性薬学組成物を提供する。
【発明の効果】
【００１９】
本発明は、無血清培養及び浮遊培養が可能であり、腫瘍形成能が低いか全くないという長所のある、ウイルス増殖に効率的に使用可能な新規ＭＤＣＫ細胞株を提供する。また本発明は、このような細胞株を利用してウイルス、特にインフルエンザウイルスを生産する方法を提供する。
【図面の簡単な説明】
【００２０】
本明細書に添付される下記の図面は本発明の望ましい実施例を例示するものであって、発明の詳細な説明とともに本発明の技術思想をさらに理解させる役割を果たすものであるため、本発明はそのような図面に記載された事項にのみ限定されて解釈されてはいけない。
【図１】本発明によるＭＤＣＫ細胞株をスピナーフラスコで浮遊培養した結果であって、継代による細胞濃度の増加形態を示している。
【図２】インフルエンザウイルスの代表的な精製工程の流れ図である。
【図３】本発明のＭＤＣＫ細胞株で増殖されたウイルス精製試料を用いた動物実験血清のＨＩ試験結果である。
【発明を実施するための形態】
【００２１】
以下、本発明の理解を助けるために実施例などを挙げて詳しく説明する。しかし、本発明による実施例は多様な形態に変形され得、本発明の範囲が下記実施例に限定されると解釈されてはいけない。本発明の実施例は当業界で平均的な知識を持つ者に本発明をより完全に説明するために提供されるのである。
【００２２】
〈実施例１〉無血清浮遊培養によるＭＤＣＫ細胞株の用意
ＭＤＣＫ細胞株ＣＣＬ‐３４は、ＡＴＣＣから分譲を受けた。Ｔ‐２５フラスコ内の１０％血清を含むＥＭＥＭ培地で培養温度３７℃、５％ ＣＯ２の条件で培養した。前記細胞を拡張した後、前記培地に無血清培地を５０％含む培地に培養し、細胞の異常可否を確認した。細胞の成長に異常がない場合、無血清培地を７５％含む培地で培養し、前記方法を繰り返して１００％の無血清培地に適応された細胞株を確保した。無血清培養に使われた培地は、例えばＥＸ‐ＣＥＬＬ ＭＤＣＫ（Ｓｉｇｍａ）、ＵｌｔｒａＭＤＣＫ（Ｌｏｎｚａ）、ＶＰ‐ＳＦＭ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）などが挙げられる。
【００２３】
無血清培地に適応された細胞株をＴ‐フラスコで十分拡張した後、スピナーフラスコ（Ｃｏｒｎｉｎｇ）で浮遊培養適応を始めた。撹拌速度は４０〜８０ｒｐｍであり、培養温度３７℃、５％ ＣＯ２の条件で培養した。培養培地のｐＨが低くなるか、細胞が一定レベル以上に成長した場合、培地交換をするか、継代培養をした。３〜６ヶ月の浮遊培養適応を経た後の細胞濃度が２×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌ以上となった。細胞の生存率は９５％以上であり、単一細胞で浮遊培養されることを確認した。浮遊培養に使われた培地は、例えばＥＸ‐ＣＥＬＬ ３０２ ＣＨＯ（Ｓｉｇｍａ）、ＵｌｔｒａＣＨＯ（Ｌｏｎｚａ）、ＳＭＩＦ‐６（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）などが挙げられる。前記方法によって無血清培養及び浮遊培養が可能なＭＤＣＫ細胞株３種を確保し、それぞれＭＤＣＫ Ｓｋｙ１０２３、ＭＤＣＫ Ｓｋｙ１０２３４、及びＭＤＣＫ Ｓｋｙ３８５１と命名した。
【００２４】
〈実施例２〉細胞株の増殖性の評価
無血清培養ＭＤＣＫ細胞株を、以下の表１の条件の下で培養し、その増殖性を評価した。対照群としては、１０％血清を含む培地で成長するＭＤＣＫ細胞（ＡＴＣＣ ＣＣＬ‐３４）を使用した。
【００２５】
【表１】
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培養開始当時の細胞濃度は、約１．０×１０５ｃｅｌｌｓ／ｍｌであり、継代条件は、細胞濃度が約１×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌに達したとき、或いは、培養してから３日ないし４日経過後に継代培養を行い、開始細胞濃度は、再び１×１０５ｃｅｌｌｓ／ｍｌに調整した。
【００２６】
本発明で作られた無血清ＭＤＣＫ細胞株は、血清培地で成長したＭＤＣＫ細胞株と比べたとき、同等なレベルの細胞成長率を見せた。
【００２７】
〈実施例３〉細胞株の増殖形態及び継代安定性の評価
無血清培養及び浮遊培養に適応された細胞株３種に対して、スピナーフラスコで連続的に培養し、細胞増殖形態及び継代による安定性を確認した。培養開始細胞濃度は約４×１０５ｃｅｌｌｓ／ｍｌにし、培養してから約３日ないし４日経過後の細胞濃度は約２×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌ以上まで到逹した。培養条件は以下のようである。その結果を図１に示した。
【００２８】
開始細胞濃度：４×１０５ｃｅｌｌｓ／ｍｌ
培養規模：５０ｍｌ スピナーフラスコ
スピナーの回転数：６０ｒｐｍ
培養条件：３７℃、５％ ＣＯ２、湿潤下
継代条件：培養してから３〜４日経過後
〈実施例４〉ウイルス増殖評価
本発明の前記ＭＤＣＫ細胞を用いて浮遊培養条件でウイルスを増殖させた。本実験に使用されたウイルスは２０１０／２０１１年のインフルエンザワクチン株であり、培養条件は以下のようである。
【００２９】
細胞濃度：２×１０６ｃｅｌｌｓ／ｍｌ
培養規模：１０００ｍｌ スピナーフラスコ
スピナーの回転数：６０ｒｐｍ
培養条件：３４℃、５％ ＣＯ２、湿潤下
培養期間：３日
通常、インフルエンザウイルスを培養するとき、３７℃よりは３４℃でよく増殖されると知られており、これを実験を通じて確認した。また、細胞株を用いたウイルスの培養時、感染のためにトリプシンを培養培地に含ませた。インフルエンザウイルスの力価測定は、血球凝集反応アッセイ（ｈｅｍａｇｇｌｕｔｉｎａｔｉｏｎ ａｓｓａｙ）を施して測定した。３日間培養後、ほとんどの細胞が死滅し、培養上澄液を回収してウイルス力価を測定した。測定結果を下記表２に示した。表２に示すように、ほとんど１０２４以上のＨＡ力価を示した。このようなウイルスの増殖は、発育中の鶏卵または１０％血清で培養されたＭＤＣＫ細胞に似たレベルであった。従って、本発明のＭＤＣＫ細胞株を用いて無血清及び浮遊培養の状態でウイルスを効率的に製造できることが判明された。
【００３０】
【表２】
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〈実施例５〉増殖されたウイルスの抗体形成能の確認
本発明の前記ＭＤＣＫ細胞で増殖されたインフルエンザウイルスの抗体形成能を確認するために、培養液からウイルスを精製した後マウスに接種して抗体値を確認した。精製工程の流れ図を図２に示し、大枠の精製工程は以下のようである。
まず、ウイルス培養液を遠心分離して細胞残存物を除去し、０．４５μｍサイズのフィルターを利用して濾過した。３００ｋＤａ ｃｕｔ‐ｏｆｆサイズの限外濾過フィルターを利用して濃縮した後、ホルマリンでウイルスを不活化した。その後、ウイルス培養液を、ショ糖密度勾配を利用した超遠心分離を利用してウイルスを分離し、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ‐１００を処理してウイルスを粉碎した後、限外濾過を通じて濃縮及び洗浄剤を除去し、０．２μｍサイズのフィルターで除菌及び濾過することでワクチン原液を獲得した。
【００３１】
効力を確認するための動物実験は、本発明のＭＤＣＫ細胞株であるＭＤＣＫ Ｓｋｙ１０２３、ＭＤＣＫ Ｓｋｙ１０２３４、及びＭＤＣＫ Ｓｋｙ３８５１の３つの細胞株を利用して増殖されたＡ／Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ／０７／２００９（Ｈ１Ｎ１）ウイルス株の精製原液を使用し、対照群としては、０８／０９年度（ＩＶＲ‐１４８、ＮＹＭＣ Ｘ‐１７５Ｃ、Ｂ／Ｆｌｏｒｉｄａ／４／２００６）のインフルエンザワクチンを使用した。試験群は総６群にし、一つの試料当たりにマウス５匹ずつ接種し、抗体値は５匹の血清を合わせてＨＩ試験（Ｈｅｍａｇｇｌｕｔｉｎａｔｉｏｎ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ｔｅｓｔ）を施して測定した。
【００３２】
試料をマウスに注射する前に、毛細管を利用して眼窩静脈叢から０週次血清を得るために採血した。採血後、マウスの後足にそれぞれ１００μｌずつ総２００μｌをＩＭ経路で注射し、２週後、２週次血清を得るために眼窩静脈叢から同一の方法で採血し、０週次に注射した試料を同量で再接種してブースティングさせた。２週後、４週次血清を得るために眼窩静脈叢から採血した。
【００３３】
ＨＩ試験を施すために、以下のような方法で血清を処理した。マウスから採血して合わせた血清から３０μｌずつ別途で血清を取ってＲＤＥ ９０μｌを入れ、３７℃で１８時間以上放置した。ＲＤＥを不活化させるために５６℃で３０分以上放置した。次いで、０．８５％の生理食塩水１２０μｌを入れ、ニワトリ赤血球を総量の１／２０体積である１５μｌずつ入れよく浮遊させた後４℃で１時間放置し、このとき３０分おきに沈んだ血球を再浮遊させた。その後、１２００ｒｐｍで１０分間遠心分離した後血清のみを別途分離し、このように得られた血清でＨＩ試験を施して抗体値を測定した。その測定結果を表３に示した。すべての実験群でＨＩ力価が４０以上と測定された。すなわち、本発明のＭＤＣＫ細胞から培養されたウイルスを、既存のワクチンのように動物に注射したとき、ウイルスに対する抗体が形成されることが確認できた。この結果から、本発明のＭＤＣＫ細胞株がウイルスワクチンの製造に使用可能であることが確認できる。
【００３４】
【表３】
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〈実施例６〉細胞株に対するヌードマウスにおける腫瘍形成能の確認
本発明のＭＤＣＫ Ｓｋｙ１０２３及びＭＤＣＫ Ｓｋｙ３８５１細胞株に対する腫瘍形成能を評価するために、細胞株及び細胞来由物質をヌードマウスの皮下に移植した後、１２週間にわたって腫瘍の形成を観察した。試験動物としては、ＢＡＬＢ／ｃ‐ｎｕ／ｎｕ系統のマウスを使った。接種サンプルは、細胞（細胞数１０１、１０３、１０５、及び１０７）、細胞溶解物（細胞数１０５及び１０７）、細胞ＤＮＡ（細胞数１０５及び１０７）であり、各群当たり５〜１０匹ずつ接種した。実験結果は、表４に示し、本発明のＭＤＣＫ Ｓｋｙ１０２３及びＭＤＣＫ Ｓｋｙ３８５１細胞株の場合、内部対照群である元のＭＤＣＫ（ＡＴＣＣ）細胞株に比べて、腫瘍形成能が低いか全くないと確認された。
【００３５】
【表４】
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【図１】
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【図２】
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【図３】
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【国際調査報告】
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