(57)【要約】【課題】ラクトバチルス株の免疫調節特性を改良する特異的な方法の提供。【解決手段】特定の培養条件の使用により、非病原性の抗炎症性細菌株の抗炎症性効果を増加させる方法を包含する、特異的な主要炭素源の培養基を用いてラクトバチルス株の免疫調節特性を改良する特異的な方法が提供される。【選択図】図１【特許請求の範囲】
【請求項１】
特異的な炭素源上で乳酸菌を培養することにより乳酸菌の免疫調節効果を増大させる方法。
【請求項２】
抗炎症性乳酸菌の抗炎症性効果を増大させることを含み、グルコース、ラクトース、フルクトース、デンプン、及び１，２−プロパンジオールからなる群から選ばれる特異的な炭素源を含む培地で該乳酸菌を培養することを含む、請求項１記載の方法。
【請求項３】
前記抗炎症性乳酸菌がラクトバチルス・ロイテリ（Lactobacillus reuteri）の抗炎症性株からなる、請求項２記載の方法。
【請求項４】
前記ラクトバチルス・ロイテリ（Lactobacillus reuteri）株がＡＴＣＣ  ＰＴＡ６４７５である、請求項３記載の方法。
【請求項５】
前記ラクトバチルス・ロイテリ（Lactobacillus reuteri）株がＡＴＣＣ  ＰＴＡ５２８９である、請求項３記載の方法。
【請求項６】
請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法により製造された製品。
【請求項７】
疾患の治療に使用するための、請求項６に記載の製品。
【請求項８】
個体における炎症の低減に使用するための、請求項６に記載の製品。
【請求項９】
患者のＴＮＦα産生を阻害するための方法であって、（ａ）グルコース、ラクトース、フルクトース、デンプン、及び１，２−プロパンジオールからなる群から選ばれる炭素源を含む培地でラクトバチルス・ロイテリ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｒｅｕｔｅｒｉ）の抗炎症性株を培養し、（ｂ）ステップ（ａ）で培養した株を患者に経口投与される製品に添加し、及び（ｃ）該製品を投与して患者の炎症を減少させることを含む、上記方法。
【請求項１０】
個体のＴＮＦα産生の阻害及び／又は炎症の減少のための製品であって、グルコース、ラクトース、フルクトース、デンプン、及び１，２−プロパンジオールからなる群から選ばれる特定の炭素源とともに抗炎症性乳酸菌株を含む、上記製品。
【請求項１１】
前記特異的な炭素源がカプセル化されている、請求項１０記載の製品。
【請求項１２】
前記抗炎症性乳酸菌株が抗炎症性ラクトバチルス・ロイテリ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｒｅｕｔｅｒｉ）株である、請求項１０又は１１記載の製品。
【請求項１３】
前記ラクトバチルス・ロイテリ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｒｅｕｔｅｒｉ）株がＡＴＣＣ  ＰＴＡ６４７５である、請求項１２記載の方法。
【請求項１４】
前記ラクトバチルス・ロイテリ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｒｅｕｔｅｒｉ）株がＡＴＣＣ  ＰＴＡ５２８９である、請求項１２記載の方法。
【請求項１５】
請求項６及び１０〜１４のいずれか一項に記載の製品を含み、任意にさらに薬学的に許容できる添加剤を含む、経口投与に適した薬剤組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は免疫調節効果、例えばラクトバチルス種（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｓｐｐ．）の特定の菌株の抗炎症性効果を、特定の培養条件の使用により増加させる方法、製品処方、製品、及びそのような細菌をホストの免疫調節目的、例えば炎症誘引剤により引き起こされた炎症の治療及び予防の目的で、使用する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
国際連合の食物及び農業組織（Ｔｈｅ  Ｆｏｏｄ  ａｎｄ  Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ  Ｏｒｇａｎｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｕｎｉｔｅｄ  Ｎａｔｉｏｎｓ）はプロバイオティクスを「適量で投与した時ホストに健康利益を与える生きている微生物」と定義している。今日では、多くの様々な細菌、例えばラクトバチルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）及びビフィドバクテリア（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉａ）の株のような乳酸産生菌がプロバイオティクスとして用いられている。
【０００３】
プレバイオティクスは「ホストの成長及び／又は活動を選択的に刺激することによりホストに好影響を与える非消化性食品成分、又はホストの健康を改良し得る限られた種類の大腸内細菌と定義されている。プレバイオティクスの標的は通常はビフィドバクテリア及びラクトバチルス類である。しかし、プレバイオティクスの選択性はいつも十分に確立されているわけではないので、有益な細菌叢だけを刺激することは達成が難しいかもしれない。プロバイオティク及びプレバイオティクアプローチの制限を緩和するためには、シンバイオティック（ｓｙｎｂｉｏｔｉｃ）の形態で両者を組み合わせることが一つの解決になり得る。
【０００４】
シンバイオティックはおよそ１０年前にＧｉｂｓｏｎ及びＲｏｂｅｒｆｒｏｉｄ（１９９５）により、「胃腸管（ＧＴ）における生菌栄養補助食品の生存と移植を改良することによりホストに好影響を与える、プロバイオティクスとプレバイオティクスの混合物」として定義された。プレバイオティクはプロバイオティクのための特異的な基質であり、その増殖及び／又は活動を刺激しながら、同時に生来の有益菌を増加させることができるはずである。
【０００５】
乳酸産生菌はヒトや動物の健康への有益な効果のために用いられるだけでなく、食品産業の発酵プロセスにも広く用いられている。プロバイオティクスの効率は株特異性であり、株の各々は様々なメカニズムを介してホストの健康に貢献しうる。プロバイオティクスは病原菌の増殖を防止又は阻害し、病原菌による毒性因子の産生を抑制し、又は前炎症性若しくは抗炎症性の様式で免疫応答を調節することができる。プロバイオティクな乳酸産生菌であるラクトバチルス・ロイテリ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｒｅｕｔｅｒｉ）の様々な株の使用は乳児疝痛の改善、湿疹の緩和、職業病の発現の減少、そしてＨｅｌｉｃｏｂａｃｔｅｒ  ｐｙｌｏｒｉ感染の抑制のための有望な療法である。Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉはヒトの胃腸管に生来備わっている微生物と考えられ、胃体部、胃前庭部及び回腸の粘膜上に存在している。例えば、米国特許番号第５，４３９，６７８、５，４５８，８７５、５，５３４，２５３、５，８３７，２３８、及び５，８４９，２８９参照。Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ細胞が嫌気性条件の下、グリセロールの存在下で培養しているとき、ロイテリン（β−ヒドロキシプロピオンアルデヒド）として知られる抗菌物質を産生する。
【０００６】
単球は骨髄を出発し、抹消血管を介して胃腸管の粘膜／漿膜に到達するまで運ばれる。これらの推定上のマクロファージは免疫系を調節するのに必要なシグナルの相互作用と伝達にとって重要である。例えば胃腸管においては、腸管腔内の及び腸管粘膜に付着した細菌に対して粘膜上皮のマクロファージに一定レベルの免疫応答がある。正常状態でこの応答はサイトカインシグナルの発生を引き起こし、不必要な炎症反応を制限し、抑制する。しかし、病原菌又は毒素がこれらの細胞に提示された場合、それらは防御の第一線を形成し、前炎症性サイトカインの産生量を増加させることにより応答し、これらのサイトカインは脅威が取り除かれるまで炎症反応を伝播する。片利共生的な（脅威のない）細菌との相互作用に関連したサイトカイン並びに病原菌に対する全炎症反応に関与するサイトカインの発生は、（表面抗原を含む）乳酸菌自体による、又はこれらの乳酸菌により産生された物質による介入を受ける。そして、片利共生的な微生物叢が粘膜のマクロファージと強い相互作用を有して腸内細菌叢へのバランスの取れた応答を維持し、それにより最適な健康を維持することは明らかである。
【０００７】
様々な病原菌が例えば胃腸管において炎症を引き起こし得ることが知られている。例えば胃や胃腸管におけるこのような炎症は、病原菌により産生されるような抗原性刺激に応答して上皮でマクロファージや樹状細胞によって産生されるサイトカインとして知られる細胞間シグナルタンパク質によって仲介される。上皮と、病原菌又はそれによって産生されたエンドトキシン、例えばリポ多糖（ＬＰＳ））の抗原との接触により、上皮における抗原提示細胞（樹状細胞を含む）はシグナルを生来のマクロファージに伝播し、次いでこれがいわゆるＴｈ−１型応答として応答し、ＴＮＦα、ＩＬ−１、ＩＬ−６、ＩＬ−１２を含む前炎症性サイトカインがマクロファージにより産生される。これらのサイトカインが次にナチュラルキラー細胞、Ｔ細胞、その他の細胞を刺激し、インターフェロンγ（ＩＦＮγ）を産生し、それが炎症の重要な仲介役となっている。ＩＦＮγは炎症反応と上述の反応であって細胞毒性につながる反応の段階的増大へと導く。生来のマクロファージはまた、Ｔｈ−２型応答で抗原に応答することもある。この応答はＩＦＮγにより抑制される。これらのＴｈ−２型細胞はＩＬ−４、ＩＬ−５、ＩＬ−９及びＩＬ−１０のような抗炎症性サイトカインを産生する。
【０００８】
ＩＬ−１０はＩＦＮγの産生を阻害し、従って免疫応答を下げることが知られている。Ｔｈ−１型及びＴｈ−２型細胞とそれらのそれぞれのサイトカイン産生とのバランスによって特定の抗原への炎症反応の程度が決まる。Ｔｈ−２型細胞はまた免疫系を介してイムノグロブリンの産生を刺激する。ＴＮＦαレベルの低い胃腸管における抗炎症活性は上皮細胞（腸壁内側全体）の増殖と相関性があり、従って胃腸管の病原菌や毒素によって引き起こされる悪影響の減少と相関する。
【０００９】
炎症は哺乳類の幾つかの疾患に、外的にも（例えば、皮膚や眼）、内的にも（例えば、口腔、胃腸管（ＧＩ）、膣等の様々な粘膜だけでなく、筋肉、骨間接、心血管器官及び組織（血管や脳−組織等を含む）の様々な粘膜）関与し得る。胃腸管には例えば、胃炎、潰瘍、炎症性腸疾患（ＩＢＤ）などの炎症に関連する疾患が幾つか存在する。これらの疾患は消化管の菌叢の不均衡や通常の消化管菌叢の成分に対する過剰炎症反応に結びついており、この反応は一連の異なる薬剤を用いても現在のところうまく治療できていない。そのうちの一つは胃腸管粘膜のＴＮＦαのレベルを下げるようデザインされた抗ＴＮＦα療法に基づいている。他にも炎症に関連したいくつかの疾患として、歯肉炎、膣炎、アテローム性動脈硬化症、及び身体の様々な局所の菌叢の組成に関連すると考えられる様々な癌の形態がある。
【００１０】
上述の抗ＴＮＦα療法の欠点を心に留めて鑑みれば、本発明者らがここに、規定の培地中でＬ．ｒｅｕｔｅｒｉの特定の抗炎症性株を培養するために唯一の炭素源としてショ糖をグルコースに代えるとＬＰＳ刺激マクロファージのＴＮＦα産生を有意に阻害することを示したときは肯定的な驚きがあったのである。従って、グルコースのような規定の炭素源で特定の抗炎症性ラクトバチルス株を培養すると、更に高い抗炎症特性を持ったＬ．ｒｅｕｔｅｒｉの抗炎症性株を提供する機会が得られる。
【００１１】
本発明から理解できるように、細菌が増殖するための炭素源を修飾することにより、前炎症性細菌株もまたその免疫調節の特性を修飾することができる。
【００１２】
上述のように、抗炎症活性はすでに様々な乳酸菌と関連している。例えば、ＵＳ７，１０５，３３６Ｂ２は、ＴＮＦα活性についてマウスマクロファージアッセイを用いて、哺乳類のＨ．ｐｙｌｏｒｉ感染に関連した胃腸管炎症を減少させる能力に関して選択したラクトバチルス株を記載している。Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉの抗炎症活性に言及したもう一つの特許出願はＵＳ２００８／０２５４０１１Ａ１であり、これはＢＳＨ活性を増加し、その結果血清ＬＤＬコレステロールを減少させ、同時に心血管疾患の治療のために前炎症性サイトカインＴＮＦαレベルを減少させる能力に関して選択した乳酸菌の株を記載している。
【００１３】
ＵＳ２００６／０２３３７７５Ａ１は腸疾患のような炎症を低減する能力に関して選択した乳酸菌の株の選択を記載している。しかし、上述の発明のいずれもＴＮＦα産生の減少のために炭素源の選択に着目したものではない。
【００１４】
Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｓｐｐ．の他の様々な活性を様々な糖の選択によって制御することは既に当業界では知られている。例えば、Ａｖｉｌａら（２００９）は活性がグルコースの添加により下方制御されたことからα−Ｌ−ラムノシダーゼの調整には培養条件が重要であることを示した。
【００１５】
グルコースとショ糖での培養の様子はＡｒｓｋｏｌｄら（２００８）によって研究されている。糖源を選択することにより明らかにＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ  ＡＴＣＣ５５７３０の培養性能に影響を与えることが示された。ショ糖での培養は高い増殖速度と適度なバイオマス収率をもたらし、一方グルコースでの培養は最大の比増殖速度と低いＡＴＰレベルをもたらした。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１６】
しかしこれまで、培養基中の特定の炭素源がＴＮＦα産生を制御できることを示した者はなかった。それ故、本発明の一つの目的は、例えばホストにおけるＴＮＦα産生の低下によって見られるように、Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉの既に抗炎症性の株の抗炎症効果を増大させることである。本発明のさらなる目的は、該株を含む製品を提供することであり、これはヒトへの投与のための炎症誘発剤により誘発された炎症の治療又は予防のための薬剤、並びに該株が増殖する馴化培地及びそのタンパク質含有抽出物も包含する。
【００１７】
本発明の他の目的は、シンバイオティック製品を得るために、特定の炭素源とともに該株を含む製品を提供することである。本発明の更なる目的は、乳酸菌の抗炎症性株で既にコロニー形成された個体による消費用の糖のような特定の炭素源を提供することである。
【００１８】
他の目的及び効果は以下の開示及び添付の特許請求の範囲によりさらに十分に明らかになるであろう。
【課題を解決するための手段】
【００１９】
本発明はここに特定の炭素源を加えた培養基を用いて乳酸菌株の免疫調節特性を改良するための具体的方法を提供するものであり、これには特定の培養条件を使用することにより非病原性の抗炎症性菌株の抗炎症性効果を増大させる方法も包含される。
【００２０】
本発明の主要な目的は、特定の培養条件を使用することにより乳酸菌の特定の菌株の、哺乳類における免疫調節効果を増大させることである。
【００２１】
培養基中の炭素源の選択によりＬ．ｒｅｕｔｅｒｉの抗炎症性株の抗炎症性効果を増大させることももう一つの目的である。
【００２２】
本発明の他の目的は、培養基中に主要炭素源としてグルコース、ラクトース、フルクトース、デンプン、１，２−プロパンジオール、又はフルクトオリゴ糖のようなプレバイオティックとともに、抗炎症性Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ株の抗炎症性効果を、ＴＮＦ−α産生の低下が見られる哺乳類において、増大させることである。
【００２３】
本発明の更なる目的は、該株を含む製品を提供することである。
【００２４】
本発明の更なる目的は、シンバイオティック製品を得るために、該株を特定の炭素源と共に含む製品を提供することである。
【００２５】
本発明の他の目的は、Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉの抗炎症性株で既にコロニー形成された個体による消費用のプレバイオティックのような、胃腸管で消化されないように特定の炭素源を提供することである。
【００２６】
従って本発明は、乳酸菌を特定の炭素源で培養することにより乳酸菌の免疫調節効果を増大させる方法を提供する。一つの態様では、その方法は抗炎症性乳酸菌の抗炎症性効果を増大させることを含み、グルコース、ラクトース、フルクトース、デンプン、及び１，２−プロパンジオールからなる群から選ばれる特定の炭素源を含む培地で乳酸菌を培養することを含む。好ましい態様では、特定の炭素源を含む培地で培養された抗炎症性乳酸菌は、Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｒｅｕｔｅｒｉの抗炎症性株からなる。より好ましくは、Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ株はＡＴＣＣ  ＰＴＡ６４７５又はＡＴＣＣ  ＰＴＡ５２８９である。
【００２７】
本発明はまた、上記方法により製造された製品を提供する。一つの態様では、その製品は疾病の治療に使用するためのものであり、例えば個体における炎症の低減に使用するためのものである。
【００２８】
本発明は更に、患者のＴＮＦα産生を阻害するための方法であって、（ａ）グルコース、ラクトース、フルクトース、デンプン、及び１，２−プロパンジオールからなる群から選ばれる炭素源を含む培地でラクトバチルス・ロイテリ（Lactobacillus reuteri）の抗炎症性株を培養し、（ｂ）ステップ（ａ）で培養した株を患者に経口投与するための製品に添加し、及び（ｃ）該製品を投与して患者の炎症を低減することを含む、上記方法を提供する。
【００２９】
本発明は更に、個体のＴＮＦα産生の阻害及び／又は炎症の低減のための製品であって、グルコース、ラクトース、フルクトース、デンプン、及び１，２−プロパンジオールからなる群から選ばれる特定の炭素源とともに抗炎症性乳酸菌株を含む、上記製品を提供することである。
【００３０】
一つの態様では、該特定の炭素源はカプセル化されている。
【００３１】
その製品において、抗炎症性乳酸菌株は好ましくは抗炎症性Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｒｅｕｔｅｒｉ株であり、より好ましくはＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｒｅｕｔｅｒｉ株はＡＴＣＣ  ＰＴＡ６４７５又はＡＴＣＣ  ＰＴＡ５２８９である。
【００３２】
本発明はまた、上記の製品を含み、任意にさらに薬学的に許容できる添加剤を含む、経口投与に適した薬剤組成物を提供する。
【００３３】
本発明の他の目的及び効果は読者に明らかになるであろうし、これらの目的及び効果は本発明の範囲内に入ることを意図されている。
【図面の簡単な説明】
【００３４】
【図１】唯一の炭素源として様々な糖で培養したＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ  ＡＴＣＣ５２８９の馴化培地がＴＮＦ−α阻害にどのように影響を与えるかを示すグラフ。
【図２】グルコースをショ糖で置き換えた場合（ＬＤＭＩＩＩ培地）にＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ馴化培地がＴＮＦ−α産生をどのように増加させるかを示すグラフ。
【図３】様々な炭素源で培養したＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ  ＤＳＭ１７９３８及びＡＴＣＣ  ＰＴＡ６４７５の馴化培地がＴＮＦ−α阻害にどのように影響を与えるかを示すグラフ。
【図４】Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉと共に様々な炭素源がＴＮＦα産生を阻害することができるかどうかを示す表である。（＋）はＴＮＦα産生の阻害を示す。
【発明を実施するための形態】
【００３５】
ラクトバチルス・ロイテリ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｒｅｕｔｅｒｉ）はヒト及び動物の消化管に天然に宿るヘテロ発酵型の乳酸菌種である。特定のプロバイオティックなＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ株はヒトＴＮＦα産生を強く抑制するが、他のプロバイオティックなＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ株はヒトＴＮＦα産生を増大させる。
【００３６】
様々な炭素源で培養したＬ．ｒｅｕｔｅｒｉの抗炎症性株がＴＮＦα産生に如何に影響を与えるかを示すために、Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ（ＡＴＣＣ５２８９）を唯一の炭素源として様々な糖とともに特定の培地中で後期静止期にまで嫌気的に培養した。驚くべきことに、炭素源としてグルコースで培養するとショ糖で培養した場合に比べてＴＮＦαの産生が有意に減少したのである。結果を図１に示す。
【００３７】
Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉの様々な株の培養基中のグルコースとショ糖がＴＮＦα産生に如何に影響を与えるかを同定するために研究を行った。ＴＮＦ阻害性（ＡＴＣＣ  ＰＴＡ６４７５及びＡＴＣＣ  ＰＴＡ５２８９）であるか、又はＴＮＦ刺激性（ＡＴＣＣ５５７３０及びＣＦ４８３Ａ）であることが既に知られているＬ．ｒｅｕｔｅｒｉの株を唯一の炭素源としてグルコース又はショ糖とともに特定の培地中で後期静止期（２４〜２８時間）にまで嫌気的に培養した。これらの結果は、例えばＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ  ＡＴＣＣ  ＰＴＡ−６４７５株及びＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ  ＡＴＣＣ  ＰＴＡ−５２８９株で主要炭素としてショ糖を用いて培養すると、グルコースでの培養に比べて、ヒト細胞においてＬＰＳ刺激ＴＮＦαの産生を有意に増加させた（図２）。
【００３８】
図２に示す結果はまた、例えば培養基によりＬ．ｒｅｕｔｅｒｉの前炎症性株に影響を与える、即ち該株をより炎症性にする可能性があるという概念を想起させる。炎症性の増大は特定の疾患状態、例えば癌やアレルギーの防止において有用でありうる。
【００３９】
他の炭素源の効果も研究した。Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ（ＡＴＣＣ  ＰＴＡ６４７５、ＤＳＭ１７９３８）をグルコース、１，２−プロパンジオール又はデンプンを唯一の炭素源とする規定の培地で嫌気性条件化で後期静止期まで培養した。これらの結果から、ＤＳＭ１７９３８は唯一の炭素源として１，２−プロパンジオール又はデンプンで培養するとＴＮＦ阻害性になり、ＡＴＣＣ  ＰＴＡ６４７５は３種類のすべての炭素源について同様の結果を示したことを示している（図３）。
【００４０】
さらにこのＴＮＦ阻害効果の増大は、Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉが唯一の炭素源としてラクトースやフルクトースで規定した培地で培養した時も観察された（データとしては示さず）。
【００４１】
グルコース、ラクトース、フルクトース、デンプン又は１，２−プロパンジオールで規定された培地で培養し、ＴＮＦα産生を減少させることのできるＬ．ｒｅｕｔｅｒｉの株は、ＡＴＣＣ  ＰＴＡ６４７５、ＡＴＣＣ  ＰＴＡ５２８９、ＡＴＣＣ  ４６５９、ＪＣＭ１１１２、及びＤＳＭ２００１６を包含しているが、これらに限定されるものではない。Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉにＴＮＦα産生を減少させるように影響を与える炭素源のリストは図４に示すことができる。
【００４２】
ＴＮＦα産生を減少させることができる株又は馴化培地を含む製品は、シンバイオティック製品を得るために、凍結乾燥後に例えばグルコースのような特定の炭素源で栄養補充することができる。
【００４３】
乳酸菌と一緒にＴＮＦα産生を減少させることができる炭素源は好ましくは、グルコース、ラクトース、フルクトース、デンプン、１，２−プロパンジオール、又は異なる重合度を有するフルクトオリゴ糖（例えば、Ｓｙｎｅｒｇｙ １（登録商標）（フルクトオリゴ糖とイヌリン、Ｏｒａｆｔｉの混合物）のようなプレバイオティックであるが、これらに限定されない。
【００４４】
製品は好ましくは錠剤又はカプセルに製剤化されるが、これらに限定されない。
【００４５】
炭素源は胃腸管では消化されないように製品中に一体化される。例えば、グルコースは錠剤又はカプセルに一体化される前に、選択されたＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ株とともに、当業界で知られるようにマイクロカプセルに別々にカプセル化することができる。
【００４６】
カプセル化されたグルコースのような特定の炭素源は抗炎症性株、例えばＬ．ｒｅｕｔｅｒｉで既にコロニー形成されていることが知られている個体によって消費される。
【００４７】
当業者にとって多くの修飾や変更が容易になされるので、本発明を示され記載されたままの構成や操作に限定することを望むものではなく、従ってあらゆる適切な修飾や等価物は本発明の範囲に再分類され、また範囲内に入るものである。
【実施例】
【００４８】
実施例１
様々な糖源で培養したＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ  ＡＴＣＣ５２８９を含む馴化培地はＴＮＦα阻害に影響を与える
【００４９】
ＴＨＰ−１細胞を馴化培地（ＣＭ）と一緒にＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ  ＡＴＣＣ５２８９の培養からインキュベートした。馴化培地は、唯一の炭素源として一つの特定の糖で栄養補給したＬＤＭＩＩＩ（Ｓ．Ｊｏｎｅｓ及びＪ．Ｖｅｒｓａｌｏｖｉｃ，ＢＭＣ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．２００９；９：３５）で培養したＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ  ＡＴＣＣ５２８９の２４時間培養物からの無細胞上清である。ＴＨＰ−１細胞は対照培地又はＥ．ｃｏｌｉ由来のＬＰＳ（通常の炎症反応においてＴＮＦαの発生へと導く）又はＰＣＫで３．５時間のインキュベーションの間、刺激し、その後で細胞を取り除き、上清を当業界で知られるＥＬＩＳＡ法を用いてＴＮＦαレベルについてアッセイした。
【００５０】
材料と方法
主要な試薬、菌株及び哺乳類細胞系
Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ株をｄｅＭａｎ、Ｒｏｇｏｓａ，Ｓｈａｒｐｅ（ＭＲＳ；Ｄｉｆｃｏ，Ｆｒａｎｋｌｉｎ  Ｌａｋｅｓ，ＮＪ）又はＬＤＭＩＩＩ（ｐＨ６．５）で、ＬＤＭ培地組成については単一糖源（以下の使用糖源のリスト参照）で培養した。１０％ＣＯ２、１０％Ｈ２及び８０％Ｎ２の混合物を供給した嫌気性のチェンバー（１０２５嫌気システム、Ｆｏｒｍａ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ，Ｗａｌｔｈａｍ，ＭＡ）をラクトバチルスの嫌気性培養に用いた。
【００５１】
バイオガイア社（Ｂｉｏｇａｉａ  ＡＢ，Ｒａｌｅｉｇｈ，ＮＣ）はＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ株ＡＴＣＣ  ＰＴＡ５２８９を提供した。ＴＨＰ−１細胞（ＡＴＣＣ  ＴＩＢ−２０２）を１０％ウシ胎児血清（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ）を補給したＲＰＭＩ１６４０で３７℃、５％ＣＯ２で維持した。すべての化学試薬は特に断りのない限り、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ（Ｓｔ  Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）から得たものである。バイオフィルム及び組織培養実験のためにポリスチレン９６穴又は２４穴のプレートをＣｏｒｎｉｎｇ社（Ｃｏｒｎｉｎｇ、ＮＹ）から得た。ポリビニリデンフルオリド膜のフィルター（０．２２ｍｍ孔径）（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ，Ｂｅｄｆｏｒｄ，ＭＡ）を滅菌に用いた。
【００５２】
ＬＤＭＩＩＩ培地に使用した糖源
・Ｄ−グルコース（Ｇ８２７０，＞９９．５％グルコース，Ｓｉｇｍａ）
・ショ糖（Ｓ９３７８，９９．９％ショ糖，Ｓｉｇｍａ）
・Ｄ−ガラクトース（Ｇ０７５０，＞９９％ガラクトース，Ｓｉｇｍａ）
・ラフィノース（Ｒ０２６０，＞９８％ラフィノース，Ｓｉｇｍａ）
・フルクトオリゴ糖、ラフチローズ（Ｒａｆｔｉｌｏｓｅ）、（Ｏｒａｆｔｉ（登録商標）Ｐ９５、平均重合度＝１１、９２％フルクトオリゴ糖、８％グルコース、フルクトース及びショ糖、Ｂｅｎｅｏ  Ｏｒａｆｔｉ）
・フルクトオリゴ糖とイヌリンの１：１混合物（Ｏｒａｆｔｉ（登録商標）Ｓｙｎｅｒｇｙ１、９２％フルクトオリゴ糖及びイヌリン、８％グルコース、フルクトース及びショ糖、Ｂｅｎｅｏ  Ｏｒａｆｔｉ）
【００５３】
免疫修飾実験のためのＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ培養物由来の無細胞上清の調製
免疫修飾実験のために、単一炭素源のＬＤＭＩＩＩの１０ｍＬをＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ培養物とともにインキュベートし（ＭＤＳブロスで一晩１６〜１８時間培養）、ＯＤ６００＝０．１に調整した。次いで細菌を嫌気性条件下３７℃で２４時間インキュベートした。最終的なＯＤ６００を測定し、異なる糖源での増殖偏差の可能性を考慮して、ＬＤＭをすべての試料について同じＯＤになるまで希釈した。細胞をペレット化し（４０００ｘｇ、室温、１０分）、捨てた。上清をフィルターで滅菌した（０．２２μｍ孔径）。アリコートを真空乾燥し、ＲＰＭＩを用いて元の体積にまで再懸濁した。
【００５４】
ＴＮＦ阻害実験
先に記載されているように（Ｌｉｎら、２００８）、Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉの浮遊細胞（５％ｖ／ｖ）及びＥ．ｃｏｌｉ  Ｏ１２７：Ｂ８  ＬＰＳ（１００ｎｇ／ｍＬ）の無細胞上清をヒトＴＨＰ−１細胞（およそ５ｘ１０４細胞）に加えた。プレートを３７℃、５％ＣＯ２で３．５時間インキュベートし、ＴＨＰ−１細胞をペレット化し（１５００ｘｇ、５分、４℃）、単球細胞上清中のＴＮＦ量を定量的ＥＬＩＳＡ（Ｒ＆Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓ、Ｍｉｎｎｅａｐｏｌｉｓ，ＭＮ）により定量した。ＲＰＭＩと培地（Ｍｅｄｉａ）はともに対照として用いた（典型的にはＲＰＭＩ９５％、Ｍｅｄｉａ＝ＬＤＭ５％）。
【００５５】
結果
１）Ｓｙｎｅｒｇｙ１（ＢＥＮＥＯ−Ｏｒａｆｔｉ  Ｉｎｃ．２７４０  Ｒｏｕｔｅ  １０  Ｗｅｓｔ  Ｍｏｒｒｉｓ  Ｐｌａｉｎｓ，ＮＪ０７９５０，ＵＳＡ）；２）グルコース；３）ラフチローズ；４）ガラクトース；５）ラフィノース；及び６）ショ糖の存在下でＴＨＰ−１細胞にＬＰＳを添加したところ、３．５時間のインキュベーション時間の間、それぞれ、１）ＴＮＦα  １４５．３ｐｇ／ｍｌ、２）ＴＮＦα  １０４．３ｐｇ／ｍｌ、３）ＴＮＦα  ２０４．３ｐｇ／ｍｌ、４）ＴＮＦα  ２６０ｐｇ／ｍｌ、５）ＴＮＦα  ５１７．８ｐｇ／ｍｌ、及び６）ＴＮＦα  ３４７．９ｐｇ／ｍｌの生成を見た。ＣＭ添加について対照として作用する培養基（ＲＰＭＩ及びＬＤＭ）の添加により、それぞれ３９６ｐｇ／ｍｌと３５２ｐｇ／ｍｌのＴＮＦαの生成を見た。この結果は、唯一の炭素源としてのグルコース及び／又はＳｙｎｅｒｇｙ１は、ＲＰＭＩ及びＬＤＭ対照と比較してＴＮＦα産生を５０％超阻害したことを示している。これは株をショ糖又はラフィノースで培養した時には見られなかったことである。その結果を図１に示す。株のないＬＤＭ＋各糖のみも試みて、糖がＴＮＦ応答の変化の直接の原因ではないことを確認した（結果は示さず）。
【００５６】
実施例２
ＴＮＦ阻害性（ＡＴＣＣ  ＰＴＡ６４７５及びＡＴＣＣ  ＰＴＡ５２８９）又はＴＮＦ刺激性（ＡＴＣＣ  ５５７３０及びＣＦ４８３Ａ）であることが既に知られ、異なる糖源でＬ．ｒｅｕｔｅｒｉの株を培養した馴化培地はＴＮＦα阻害に影響を与える
【００５７】
ＴＨＰ−１細胞を、グルコースで培養した選択されたＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ株、Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ  ＡＴＣＣ  ＰＴＡ−６４７５、Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ  ＡＴＣＣ  ＰＴＡ−５２８９、Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ  ＡＴＣＣ５５７３０及びＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ株ＣＦ４８−３Ａ、並びにショ糖で培養した同じ株（複数）の培養由来の馴化培地（ＣＭ）と一緒にインキュベートした。ＴＨＰ−１細胞を３．５時間インキュベーションの間、対照培地（ＬＤＭＩＩＩ）又はＥ．ｃｏｌｉ由来ＬＰＳで刺激し、その後細胞を除去し、上清をＥＬＩＳＡ法を用いてＴＮＦαレベルについてアッセイした。グルコースをショ糖で置き換えたＬＤＭＩＩＩを対照として使用した。
材料と方法は実施例１と同じにした。
【００５８】
結果
結果（図２参照）は、２種の抗炎症性株Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ  ＡＴＣＣ  ＰＴＡ−６４７５及びＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ  ＡＴＣＣ  ＰＴＡ−５２３９のＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ馴化培地が、ＬＤＭＩＩＩにおいてグルコースをショ糖で置き換えると、ＴＮＦα産生を増加させることを示している。
【００５９】
実施例３
唯一の炭素源としてグルコースで培養したＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ  ＡＴＣＣ  ＰＴＡ−５２８９の馴化培地の処方
【００６０】
実施例１の方法を用いて、効率的にＴＮＦαを減少させる一つの株由来の馴化培地を選択した。この実施例では、唯一の炭素源としてグルコースで培養したＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ  ＡＴＣＣ  ＰＴＡ−５２８９由来の培地を選択した。この培地は、ｄｅ  Ｍａｎ，Ｒｏｇｏｓａ，Ｓｈａｒｐｅ（ＭＲＳ）（Ｄｉｆｃｏ，Ｓｐａｒｋ，ＭＤ）で株を培養する ことにより、より大きなスケールで生産した。ラクトバチルスの終夜培養物を１．０のＯＤ６００にまで希釈し（約１０９細胞／ｍｌ）、さらに１：１０に希釈し、更に２４時間培養した。細菌細胞のない馴化培地を４℃で１０分間８５００ｒｐｍで遠心分離により収集した。馴化培地を細胞ペレットから分離し、次いで０．２２μｍ孔フィルターユニット（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ，Ｂｅｄｆｏｒｄ，Ｍａｓｓ．）で濾過した。馴化培地を次いで凍結乾燥し、標準的な方法を用いて処方して錠剤を作った。
【００６１】
実施例４
凍結乾燥Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉＡＴＣＣ  ＰＴＡ−５２８９粉末の標準法による処方（凍結乾燥後グルコースで補充）
【００６２】
発酵培地組成
デキストロース一水和物  ６０ｇ／ｌ
酵母抽出液  ＫＡＶ  ２０ｇ／ｌ
ペプトン型ＰＳ（ブタ起源）２０ｇ／ｌ
クエン酸水素二アンモニウム  ５ｇ／ｌ
酢酸ナトリウム（ｘ３Ｈ２Ｏ）  ４．７ｇ／ｌ
リン酸水素二カリウム  ２ｇ／ｌ
Ｔｗｅｅｎ８０  ０．５ｇ／ｌ
シリビオン（Ｓｉｌｉｂｉｏｎｅ）（制泡）  ０．１４ｇ／ｌ
硫酸マグネシウム  ０．１０ｇ／ｌ
硫酸マンガン  ０．０３ｇ／ｌ
硫酸亜鉛七水和物  ０．０１ｇ／ｌ
水  適量
【００６３】
遠心分離媒体
Ｐｅｐｔｏｎ  Ｏ−２４  Ｏｒｔｈａｎａ（ブタ起源）
【００６４】
抗凍結剤
ラクトース（ウシ起源）  ３３％
ゼラチン加水分解物（ウシ起源）  ２２％
グルタミン酸ナトリウム  ２２％
マルトデキストリン  １１％
アスコルビン酸  １１％
【００６５】
凍結乾燥乳酸菌粉末の製造工程
１．２０ｍｌの培地をワーキングセルバンクのバイアルから凍結乾燥乳酸菌粉末の０．６ｍｌとともにインキュベートする。発酵はボトルの中で３７℃で１８〜２０時間、攪拌やｐＨ調整をすることなく、即ち静止状態で行う。
２．１リットルのフラスコ２本の培地をリットルあたり９ｍｌの細胞スラリーでインキュベートする。発酵は３７℃で２０〜２２時間、攪拌やｐＨ調整をすることなく、即ち静止状態で行う。
３．工程２で得られた１リットルの細胞スラリー２つを６００リットルの容器に接種する。発酵は３７℃で１３時間、攪拌やｐＨ調整とともに行う。発酵の開始時のｐＨは６．５である。ｐＨが５．４を下回ると２０％水酸化ナトリウム溶液を用いてｐＨ調整を開始する。ｐＨ調整はｐＨ５．５に設定する。
４．４回目と最終の発酵工程を、工程３で得た接種物を用いて１５０００リットルの容器で行う。発酵は３７℃で９〜１２時間、攪拌やｐＨ調整とともに行う。発酵の開始時のｐＨは６．５である。ｐＨが５．４を下回ると２０％水酸化ナトリウム溶液を用いてｐＨ調整を開始する。ｐＨ調整はｐＨ５．５に設定する。発酵は培養物が静止相に到達すると終了し、これは水酸化ナトリウム溶液の添加が減少することによって知ることができる。およそ９３０リットルの水酸化ナトリウム溶液を、発酵の間に１０２００リットルの培地と６００リットルの接種物に添加する。
【００６６】
５．最終発酵で得られた細胞スラリーを１０℃で二度Ａｌｆａ  Ｌａｖａｌから連続遠心で分離する。最初の遠心分離の後、細胞スラリーの体積をおよそ１１７３０リットルから１２００リットルに減じる。この体積を３０００リットル容器中で１２００リットルのペプトン（Ｐｅｐｔｏｎ  Ｏ−２４、Ｏｒｔｈａｎａ）溶液で洗浄し、抗凍結剤と混合する前に再び分離する。ペプトンでの洗浄工程は凍結乾燥プロセスでの凍結点降下を防止するために行う。
６．二度目の遠心分離の後、細胞スラリーの体積を４９５リットルに減じる。この体積を１５６ｋｇの抗凍結剤溶液と混合し、およそ６５０リットルの細胞スラリーとする。
７．細胞スラリーを１０００リットルの容器にポンプで汲み上げる。次いで容器を凍結乾燥プラントに移す。
８．凍結乾燥プラントで、正確に２リットルの細胞スラリーを凍結乾燥機内の各プレートに注ぐ。凍結乾燥機の最大キャパシティは６００リットルであり、過剰な細胞スラリ体積はすべて廃棄する。
９．Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｒｅｕｔｅｒｉの細胞スラリーは１８％の乾燥物含量を有し、４〜５日間凍結乾燥する。
１０．凍結乾燥プロセスの間、プロセス中の圧力は０．１７６ｍｂａｒと０．４２ｍｂａｒの間である。真空ポンプは圧力が０．４２ｍｂａｒに到達したときに開始する。ＰＲＴ（加圧試験）を用いてプロセスが終了した時を決定する。もしＰＲＴ又は圧力の増加が１２０秒後に０．０２ｍｂａｒ未満であれば、プロセスは停止する。
【００６７】
凍結乾燥Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｒｅｕｔｅｒｉを次いでグルコースで補充し、標準的な方法を用いて、例えば実施例６に記載したように処方して錠剤又はカプセルを作った。
【００６８】
実施例５
凍結乾燥Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ  ＡＴＣＣ  ＰＴＡ−５２８９の唯一の炭素源としてショ糖との処方
【００６９】
これは、発酵の間デキストロースの代わりに唯一の炭素源としてショ糖を用いた以外は実施例４に記載されたようにして行った。
【００７０】
凍結乾燥Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉを次いで、標準的な方法を用いて、例えば実施例６に記載したように処方して錠剤又はカプセルを作った（ただしグルコースの添加は行わなかった、段落４）。
【００７１】
実施例６
選択された株を含む製品の製造
【００７２】
この実施例では、錠剤に株を添加するために、Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ（ＡＴＣＣ  ＰＴＡ−５２８９）を一般的に優れた抗炎症特性とＴＮＦ−阻害特性に基づいて選択する。Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ株を、実施例４から読めるように工業的にＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓを培養するために標準的な方法を用いて、培養し、凍結乾燥する。
【００７３】
カプセル化したグルコースを含めた後に、選択した株を含む錠剤を製造するプロセスの一例の工程を行う（ただし、当業界で知られているような添加剤、充填剤、香味料、カプセル剤、潤滑剤、アンチケーキング剤、甘味料、及び錠剤製品の他の成分を製品の効果に影響を与えることなしに用いてもよい。）。
【００７４】
１  融解。容器内でＳＯＦＴＩＳＡＮ（登録商標）１５４（ＳＡＳＯＬ  ＧＭＢＭ，Ｂａｄ  Ｈｏｍｂｕｒｇ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を融解し、７０℃に加熱し、結晶構造を完全に破壊する。次いで５２〜５５℃に冷却する（凝固点のすぐ上）。
２  顆粒。Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｒｅｕｔｅｒｉ凍結乾燥粉末をＤｉｏｓｎａ高剪断力混合機／造粒機、又はその等価物に移す。およそ１分の間に、融解したＳＯＦＴＩＳＡＮ（登録商標）１５４をＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ  ｒｅｕｔｅｒｉ粉末にゆっくりと添加する。添加の間はチョッパーを用いる。
３  湿潤篩い分け。造粒後ただちに、顆粒をＴｏｒｎａｄｏミルを用いて１ｍｍ篩網に通す。篩い分けされた顆粒をＰＶＣコートアルミホイルからなるアルポウチに包み、乾燥ポウチとともにヒートシーラーで密封してポウチを形成し、混合するまで冷蔵保存する。顆粒のバッチを２つの錠剤バッチに分ける。
【００７５】
４  当業界で知られている標準的なマイクロカプセル化方法を用いてカプセル化されたカプセル化Ｄ−グルコース（Ｇ２８７０、＞９９．５％グルコース、Ｓｉｇｍａ）を添加する。糖の量はＬ．ｒｅｕｔｅｒｉの添加粉末の全ＣＦＵに依存し、標準的なレベルは細菌の１ｘ１０８の全ＣＦＵ当たり１グラムの糖であってもよいが、下は０．１グラム又は０．０１グラム、上は１０グラム、更には１００グラムの糖まで変化してもよい。
５  混合。全内容物を混合機で均一ブレンドになるまで混合する。
６  圧縮。最終的なブレンドを回転錠剤プレスのホッパーに移し、Ｋｉｌｉａｎコンプレッサーで７６５ｍｇの全重量で錠剤を圧縮する。
７  バルクパッケージング。錠剤をモレキュラーシーブの乾燥ポウチと一緒にアルバッグ（ａｌｕ−ｂａｇｓ）にパックする。アルパックをプラスチックバケツに入れ、最終パッケージの前に少なくとも一週間冷所に保存する。
【００７６】
ＳＯＦＴＩＳＡＮ（登録商標）、加水分解ヤシ油の使用によりＬａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ細胞を脂肪の中にカプセル化し、環境的に保護することが可能になる。
【００７７】
上述のように、本発明の製品は錠剤以外の形態であってもよく、当業界で知られているような基本的な製品を調製する標準的な方法を、選択したＬ．ｒｅｕｔｅｒｉ培養物を含む本発明の製品を調製するために有益に用いることができる。
【００７８】
実施例７
大腸炎に罹患した女性患者を実施例４で製造した製品で治療する。患者は朝と夜、一日に二度処置を受ける。
【００７９】
２週間後、大腸の炎症は有意に減少する。Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉ治療を中止すると、状態は元に戻るが、Ｌ．ｒｅｕｔｅｒｉの定期的な投与により抑制される。
【００８０】
本発明を具体的な実施例により記載したが、多くの変更、修飾及び態様が可能であり、従ってすべてのそのような変更、修飾及び態様は本発明の精神と範囲の内にあるとみなされるべきである。
【図２】
2013518573.tif 000002
【図１】
2013518573.tif 000003
【図３】
2013518573.tif 000004
【図４】
2013518573.tif 000005
【国際調査報告】
2013518573.tif 000006
2013518573.tif 000007