(57)【要約】骨髄液または臍帯血から分離される単核細胞分画から調製した中胚葉幹細胞、またはＥＳ細胞を、基礎的培養液で培養すると、該中胚葉幹細胞または該ＥＳ細胞が神経幹細胞、神経細胞またはグリア細胞へ分化誘導することを見出した。さらに、上記の基礎的培養液に虚血脳抽出液を添加することにより、中胚葉幹細胞またはＥＳ細胞から神経系細胞への分化誘導が促進されることを見出した。また、上記分化誘導方法によって得られた神経系細胞は、脳梗塞モデル、痴呆モデル、脊髄損傷モデル、脱髄モデルにおいて、神経再生能力があることが判明した。また、中胚葉幹細胞において不死化遺伝子を高発現または活性化させることにより該中胚葉幹細胞を不死化させ、さらに該細胞を適当な条件下で培養することにより、神経系細胞へ分化誘導することが可能となった。本発明の方法は、神経再生医療において非常に有用である。【特許請求の範囲】
【請求項１】
脊椎動物から採取した骨髄液または臍帯血から分離される単核細胞分画に含まれる中胚葉幹細胞、またはＥＳ細胞を、基礎的培養液において、３３℃〜３８℃の条件で培養することにより、神経系細胞へ誘導する方法。
【請求項２】
以下の（ａ）および（ｂ）の工程を含む、中胚葉幹細胞を神経系細胞へ誘導する方法。
（ａ）不死化遺伝子を高発現または活性化させることにより、不死化した中胚葉幹細胞を提供する工程、
（ｂ）工程（ａ）の不死化した中胚葉幹細胞を、基礎的培養液において培養することにより、該中胚葉幹細胞を神経系細胞へ誘導する工程。
【請求項３】
不死化遺伝子を中胚葉幹細胞内に導入することにより、不死化遺伝子を高発現または活性化させる請求項２に記載の方法。
【請求項４】
不死化遺伝子をレトロウイルスベクターを用いて、中胚葉幹細胞へ導入することにより中胚葉幹細胞を不死化させる、請求項３に記載の方法。
【請求項５】
レトロウイルスベクターがｐＢａｂｅである請求項４に記載の方法。
【請求項６】
神経系細胞が遺伝子除去処理により、不死化遺伝子を除去され得るまたは除去されたものである請求項２〜５のいずれかに記載の方法。
【請求項７】
不死化遺伝子の遺伝子除去処理が、不死化遺伝子をｌｏｘＰ配列またはｌｏｘＰ様配列にはさんだ後、リコンビナーゼ処理することによりなされる請求項６に記載の方法。
【請求項８】
不死化遺伝子がテロメラーゼ遺伝子、テロメラーゼから派生する遺伝子、または、テロメラーゼの発現もしくは活性を調節する遺伝子のいずれかである請求項２〜７のいずれかに記載の方法。
【請求項９】
中胚葉幹細胞が、骨髄液、臍帯血、末梢血、皮膚、皮膚の毛根細胞、筋組織、ＥＳ細胞またはＥＳ細胞から派生する細胞のいずれかに由来する、請求項２〜８のいずれかに記載の方法。
【請求項１０】
中胚葉幹細胞が、脊椎動物から採取した骨髄液または臍帯血から分離される単核細胞分画に含まれる中胚葉幹細胞である、請求項２〜８のいずれかに記載の方法。
【請求項１１】
単核細胞分画が、脊椎動物から採取した骨髄液または臍帯血を、２０００回転で比重に応じた分離に十分な時間、溶液中にて密度勾配遠心を行い、遠心後、比重１．０７ｇ／ｍｌから１．１ｇ／ｍｌの範囲に含まれる細胞分画を回収することにより調製することができる細胞分画である、請求項１または１０に記載の方法。
【請求項１２】
中胚葉幹細胞がＳＨ２（＋），ＳＨ３（＋），ＳＨ４（＋），ＣＤ２９（＋），ＣＤ４４（＋），ＣＤ１４（−），ＣＤ３４（−），ＣＤ４５（−）の特徴を有する細胞である請求項１〜１１のいずれかにに記載の方法。
【請求項１３】
３３℃〜３８℃の条件で培養を行う、請求項２〜１２のいずれかに記載の方法。
【請求項１４】
基礎的培養液にｂＦＧＦ、ＥＧＦ、または虚血脳抽出液を加えることを特徴とする、請求項１〜１３のいずれかのいずれかに記載の方法。
【請求項１５】
神経系細胞が神経幹細胞、神経前駆細胞、神経細胞、およびグリア細胞からなる群より選択される、請求項１〜１４に記載の方法。
【請求項１６】
請求項１〜１５のいずれかに記載の方法によって得られる細胞。
【請求項１７】
請求項１６に記載の細胞を含む、神経系疾患の治療のための組成物。
【請求項１８】
神経系疾患が、中枢性および末梢性の脱髄疾患、中枢性および末梢性の変性疾患、脳卒中、脳腫瘍、高次機能障害、精神疾患、てんかん、外傷性の神経系疾患、炎症性疾患、感染性疾患、および脊髄梗塞からなる群より選択されるものである、請求項１７に記載の組成物。
【請求項１９】
請求項１６に記載の細胞、または請求項１７に記載の組成物をレシピエントに移植することを特徴とする、神経系疾患の治療方法。
【請求項２０】
神経系疾患が、中枢性および末梢性の脱髄疾患、中枢性および末梢性の変性疾患、脳卒中、脳腫瘍、高次機能障害、精神疾患、てんかん、外傷性の神経系疾患、炎症性疾患、感染性疾患、および脊髄梗塞からなる群より選択されるものである、請求項１９に記載の治療方法。
【請求項２１】
移植する細胞がレシピエントに由来している、請求項１９または２０に記載の治療方法。
【発明の詳細な説明】
技術分野
本発明は、中胚葉幹細胞またはＥＳ細胞から神経系細胞への分化誘導方法、不死化した中胚葉幹細胞から神経系細胞への分化誘導方法、およびその利用に関する。
背景技術
稀突起膠細胞（オリゴデンドログリア：ｏｌｉｇｏｄｅｎｄｒｏｃｙｔｅ）（Ａｒｃｈｅｒ，ＤＲ．ｅｔ  ａｌ．，Ｅｘｐ  Ｎｅｕｒｏｌ，１９９４，１２５，２６８−７７．、Ｂｌａｋｅｍｏｒｅ，ＷＦ．ａｎｄ  Ｃｒａｎｇ，ＡＪ．，Ｄｅｖ  Ｎｅｕｒｏｓｃｉ，１９８８，１０，１−１１．、Ｇｕｍｐｅｌ，Ｍ．ｅｔ  ａｌ．，Ａｎｎ  Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ，１９８７，４９５，７１−８５．）、またはシュワン細胞（Ｂｌａｋｅｍｏｒｅ，ＷＦ．，Ｎａｔｕｒｅ，１９７７，２６６，６８−９．、Ｂｌａｋｅｍｏｒｅ，ＷＦ．ａｎｄ  Ｃｒａｎｇ，ＡＪ．，Ｄｅｖ  Ｎｅｕｒｏｓｃｉ，１９８８，１０，１−１１．、Ｈｏｎｍｏｕ，Ｏ．ｅｔ  ａｌ．，Ｊ  Ｎｅｕｒｏｓｃｉ，１９９６，１６，３１９９−２０８．）もしくはオルファクトリーエンシーティング細胞（ｏｌｆａｃｔｏｒｙ  ｅｎｓｈｅａｔｉｎｇ  ｃｅｌｌｓ）（Ｆｒａｎｋｌｉｎ，ＲＪ．ｅｔ  ａｌ．，Ｇｌｉａ，１９９６，１７，２１７−２４．、Ｉｍａｉｚｕｍｉ，Ｔ．ｅｔ  ａｌ．，Ｊ  Ｎｅｕｒｏｓｃｉ，１９９８，１８（１６），６１７６−６１８５．、Ｋａｔｏ，Ｔ．ｅｔ  ａｌ．，Ｇｌｉａ，２０００，３０，２０９−２１８．）等の髄鞘形成細胞を移植すると、動物モデルにおいて再有髄化が誘発され、電気生理学機能を回復させることができる（Ｕｔｚｓｃｈｎｅｉｄｅｒ，ＤＡ．ｅｔ  ａｌ．，Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ＵＳＡ，１９９４，９１，５３−７．、Ｈｏｎｍｏｕ，Ｏ．ｅｔ  ａｌ．，Ｊ  Ｎｅｕｒｏｓｃｉ，１９９６，１６，３１９９−２０８．）。このような細胞を患者もしくは他人から調製して、細胞治療法に用いることも不可能ではないが、組織材料を脳または神経から採取しなければならないため問題が多い。
脳から得られる神経前駆細胞または幹細胞には、自己複製能力があり、さまざまな細胞系譜の神経細胞や膠細胞に分化することが知られている（Ｇａｇｅ，ＦＨ．ｅｔ  ａｌ．，Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ＵＳＡ，１９９５，９２，１１８７９−８３．、Ｌｏｉｓ，Ｃ．ａｎｄ  Ａｌｖａｒｅｚ−Ｂｕｙｌｌａ，Ａ．，Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ＵＳＡ，１９９３，９０，２０７４−７．、Ｍｏｒｓｈｅａｄ，ＣＭ．ｅｔ  ａｌ．，Ｎｅｕｒｏｎ，１９９４，１３，１０７１−８２．、Ｒｅｙｎｏｌｄｓ，ＢＡ．ａｎｄ  Ｗｅｉｓｓ，Ｓ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９９２，２５５，１７０７−１０．）。胎児組織から採取したヒト神経幹細胞を新生仔マウスの脳に移植すると、神経細胞と星状細胞に分化したり（Ｃｈａｌｍｅｒｓ−Ｒｅｄｍａｎ，ＲＭ．ｅｔ  ａｌ．，Ｎｅｕｒｏｓｃｉ，１９９７，７６，１１２１−８．、Ｍｏｙｅｒ，ＭＰ．ｅｔ  ａｌ．，Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ  Ｐｒｏｃ，１９９７，２９，２０４０−１．、Ｓｖｅｎｄｓｅｎ，ＣＮ．ｅｔ  ａｌ．，Ｅｘｐ  Ｎｅｕｒｏｌ，１９９７，１４８，１３５−４６．）、また再有髄化させることもできる（Ｆｌａｘ，ＪＤ．ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ，１９９８，１６，１０３３−９．）。脱髄化した齧歯類の脊髄に成人脳由来の神経前駆細胞を移植すると、再有髄化が行なわれて、インパルスの伝導を回復したことが報告されている（Ａｋｉｙａｍａ，Ｙ．ｅｔ  ａｌ．，Ｅｘｐ  Ｎｅｕｒｏｌ，２００１．）。
これらの研究は、上記細胞が、神経系疾患の修復術に利用できるかもしれないことを示唆しているため、大きな関心を引いている。（Ａｋｉｙａｍａ，Ｙ．ｅｔ  ａｌ．，Ｅｘｐ  Ｎｅｕｒｏｌ，２００１．、Ｃｈａｌｍｅｒｓ−Ｒｅｄｍａｎ，ＲＭ．ｅｔ  ａｌ．，Ｎｅｕｒｏｓｃｉ，１９９７，７６，１１２１−８．、Ｍｏｙｅｒ，ＭＰ．ｅｔ  ａｌ．，Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ  Ｐｒｏｃ，１９９７，２９，２０４０−１．、Ｓｖｅｎｄｓｅｎ，ＣＮ．ｅｔ  ａｌ．，Ｅｘｐ  Ｎｅｕｒｏｌ，１９９７，１４８，１３５−４６．、Ｙａｎｄａｖａ，ＢＤ．ｅｔ  ａｌ．，Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ＵＳＡ，１９９９，９６，７０２９−３４．）。
すでに本発明者らは、ヒト成人由来の神経細胞を、脳より抽出・培養し、セルライン化し、その機能を検討し、当該神経細胞には、自己複製機能と多分化機能が存在することを見出した（Ａｋｉｙａｍａ，Ｙ．ｅｔ  ａｌ．，Ｅｘｐ  Ｎｅｕｒｏｌ，２００１．）。すなわち、脳より得た神経細胞の前駆細胞（ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ  ｃｅｌｌ）を単一細胞展開（ｓｉｎｇｌｅ  ｃｅｌｌ  ｅｘｐａｎｓｉｏｎ）し、セルライン化したものをｉｎ  ｖｉｔｒｏの系でクローン分析を行ったところ、自己複製能（すなわち、増殖能）と、多分化能［すなわち、ニューロン（ｎｅｕｒｏｎ）、膠星状細胞（アストログリア；ａｓｔｒｏｃｙｔｅｓ）、稀突起膠細胞（オリゴデンドログリア；ｏｌｉｇｏｄｅｎｄｒｏｃｙｔｅｓ）への分化］が認められたことから、この細胞には神経幹細胞の性質があることが確認された。
実際に、この細胞をラット虚血モデル、外傷モデルを用いて移植実験を行ったところ、極めて良好な生着率、遊走、分化を示した。また、当該細胞を脊髄脱髄モデルラットへ移植したところ、機能的な髄鞘が形成されることが分かった。すなわち、脊髄脱髄モデルラットにおいて、脱髄された神経軸索が再有髄化され、神経機能が回復するものであり、当該細胞の移植治療法の効果を、組織学的、電気生理学的、行動科学的に確認した。
上記の事実から判断すれば、自己の大脳より少量の神経組織を採取して、神経幹細胞を抽出・培養し、得られた神経幹細胞を、自己の脊髄の損傷部位に移植することは、自家移植療法として、極めて応用性の高い治療法となるものと考えられる。
しかしながら、大脳より神経幹細胞を含んだ組織を採取することは、採取にあたって神経脱落症状が発生しないとはいえ、容易なことではない。したがって、より安全で、かつ簡便な自家移植療法を確立することは、今日の複雑な各種疾患に対する治療法の確立という点から、極めて重要なことである。これに対し、本発明者らは、ドナー細胞の獲得のために、神経幹細胞の採取技術より容易である、骨髄細胞、臍帯血細胞、または胎児肝細胞より単核細胞分画等を採取する技術を開発した（特願２００１−１６０５７９）。すなわち、本発明者らは、骨髄細胞より調製した単核細胞分画が神経系細胞への分化能を有するものであることを見出した。さらに、本発明者らは、該単核細胞分画から分離した中胚葉幹細胞を含む細胞分画、間質細胞を含む細胞分画、およびＡＣ１３３陽性細胞を含む細胞分画が神経系細胞への分化能を有することを見出した。
発明の開示
本発明は、このような状況に鑑みてなされたものであり、その目的は、中胚葉幹細胞またはＥＳ細胞から神経系細胞への分化誘導方法、中胚葉幹細胞を増殖させることで十分量の細胞を獲得し、神経幹細胞および神経系細胞へ効率的に分化誘導させる方法、該方法により得られる神経系細胞、該神経系細胞を含む神経系疾患の治療のための組成物、および該組成物を用いた神経系疾患の治療方法を提供することにある。
本発明者らは、骨髄液または臍帯血から分離される単核細胞分画に含まれる中胚葉幹細胞、またはＥＳ細胞が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて、神経系細胞への分化誘導することを新たに見出した。
具体的には、骨髄液または臍帯血から分離される単核細胞分画から調製した中胚葉幹細胞またはＥＳ細胞を、培養液１（ＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  ｍｏｄｉｆｉｅｄ  ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  ｍｅｄｉｕｍ）５０％、Ｆ−１２  ５０％、ＦＳＣ  １％、ｂＦＧＦ（Ｂａｓｉｂ  ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ）１０ｎｇ／ｍｌを連日添加、ＥＧＦ（Ｅｐｉｄｅｒｍａｌ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ）１０ｎｇ／ｍｌを連日添加）、または培養液２（ＮＰＢＭ（Ｎｅｕｒａｌ  Ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ  Ｂａｓａｌ  Ｍｅｄｉｕｍ）、２％  Ｎｅｕｒａｌ  ｓｕｒｖｉｖａｌ  ｆａｃｔｏｒｓ（Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ）、０．２％  ｈＥＧＦ（ｈｕｍａｎ  Ｅｐｉｄｅｒｍａｌ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ）、０．２％  Ｇｅｎｔａｍｉｃｉｎｅ−ａｍｐｈｏｔｅｒｉｃｉｎＢ、０．２％  ｈＦＧＦ（ｈｕｍａｎ  ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ）、ｂＦＧＦ  １０ｎｇ／ｍｌを連日添加、ＥＧＦ  １０ｎｇ／ｍｌを連日添加）において、浮遊したままの状態で、５％ＣＯ２、３７℃で培養すると、該中胚葉幹細胞または該ＥＳ細胞が神経幹細胞へ分化誘導することを見出した。
また、骨髄液または臍帯血から分離される単核細胞分画に含まれる中胚葉幹細胞、またはＥＳ細胞を、培養液１（ＤＭＥＭ  ５０％、Ｆ−１２  ５０％、ＦＳＣ  １％）若しくは培養液２（ＮＰＢＭ（Ｎｅｕｒａｌ  ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ  ｃｅｌｌ  ｂａｓａｌ  ｍｅｄｉｕｍ：Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ）、２％  Ｎｅｕｒａｌ  ｓｕｒｖｉｖａｌ  ｆａｃｔｏｒｓ（Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ）、０．２％  ｈＥＧＦ（ｈｕｍａｎ  Ｅｐｉｄｅｒｍａｌ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ）、０．２％  Ｇｅｎｔａｍｉｃｉｎｅ−ａｍｐｈｏｔｅｒｉｃｉｎＢ、０．２％  ｈＦＧＦ（ｈｕｍａｎ  ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ））において培養することにより、該中胚葉幹細胞または該ＥＳ細胞が神経細胞またはグリア細胞へ分化誘導することを見出した。
さらに、上記の培養液に虚血脳抽出液を添加することにより、中胚葉幹細胞またはＥＳ細胞から神経系細胞への分化誘導が促進されることを見出した。
また、上記分化誘導方法によって得られた神経系細胞の神経再生能力に関しては、脳梗塞モデル、痴呆モデル、脊髄損傷モデル、脱髄モデルにおいて検討を行った結果、脳から抽出・培養した神経幹細胞と同じ程度の再生能力があることが判明した。
以上の結果から、脳梗塞、痴呆、脊髄損傷、脱髄疾患等の治療に、上記分化誘導方法によって得られる神経系細胞を使用することが可能となった。また、本発明はより一般的で、広領域の脳神経損傷に対する神経移植・再生療法への応用も可能であると考えられる。すなわち、中枢神経系および末梢神経系の虚血性脳神経損傷、外傷性脳神経損傷、脳神経変性疾患、代謝性神経疾患への自家移植療法に応用可能である。
さらに、上記分化誘導方法は、中胚葉幹細胞やＥＳ細胞から神経系細胞への分化の機序を解く糸口を提供している。このような分化を規定する遺伝子が同定・解析されれば、それら遺伝子を利用して中胚葉幹細胞やＥＳ細胞を効率良く、また十分量、神経系細胞へ形質転換させることが可能となる。従って、神経組織の再生を促すための「遺伝子治療」が可能となるものと大いに期待される。
さらに本発明者らは、多量に安定して細胞を増殖させることができる神経系分化誘導方法の開発に成功した。通常、神経再生医療において中胚葉幹細胞は有用であるが、培養条件下での増殖はある程度制限される。しかし、本発明者らの研究により、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいてストローマ細胞にテロメラーゼのような不死化遺伝子を組み込んだウイルスベクターを導入すると、細胞分裂を繰り返しても細胞の増殖が継続し、細胞の寿命が飛躍的に延びるにもかかわらず、細胞形状が正常細胞と同じであることが明らかとなった。そして、本発明者らは、不死化遺伝子を中胚葉幹細胞へ導入し、該細胞を不死化することにより、該細胞を安定かつ多量に増殖させることができることに着目した。そして、さらに研究を進めた結果、不死化遺伝子を導入することにより不死化した中胚葉幹細胞を、適当な条件下で培養することにより効率的に神経幹細胞および神経系細胞へ分化誘導できることを見出した。
具体的には、不死化遺伝子であるｈＴＥＲＴ遺伝子を中胚葉幹細胞へ導入することにより不死化した中胚葉幹細胞を、脂肪細胞、軟骨芽細胞、骨芽細胞等へ分化誘導させることに成功した。さらにｈＴＥＲＴ遺伝子導入により不死化した中胚葉幹細胞を培養条件下で高率に神経幹細胞を含む神経系細胞へ分化誘導し、またこれらの細胞（中胚葉幹細胞そのもの、中胚葉幹細胞より分化誘導した神経幹細胞、中胚葉幹細胞より分化誘導した神経幹細胞を分化誘導した神経系細胞、中胚葉幹細胞より分化誘導した神経系細胞）を移植することにより、脊髄脱髄部位が修復されることを明らかにした。
また、不死化遺伝子を導入した中胚葉幹細胞を本発明の上記方法によって分化誘導された神経幹細胞および神経系細胞は、神経再生に非常に有用であるものと期待される。
ガン遺伝子等を導入して細胞を不死化した場合、細胞そのものの形質転換が生じるのに対し、本発明において不死化遺伝子を導入することにより細胞を不死化した場合には、もとの細胞の性質を保持したままであり、さらに、不死化遺伝子の導入では、十分な増殖が得られた後、該遺伝子を取り去ることも可能である。
上記の如く本発明者らは、中胚葉幹細胞から神経系細胞へ分化誘導させる効率的な新規方法を開発し、本発明を完成させた。
すなわち、本発明は、中胚葉幹細胞またはＥＳ細胞から神経系細胞への分化誘導方法、中胚葉幹細胞を不死化させ、さらに神経幹細胞を含む神経系細胞へ効率的に分化誘導する方法、該方法により得られる神経系細胞、該神経系細胞を含む神経系疾患の治療のための組成物、該組成物を用いた神経系疾患の治療方法に関し、より具体的には、
〔１〕  脊椎動物から採取した骨髄液または臍帯血から分離される単核細胞分画に含まれる中胚葉幹細胞、またはＥＳ細胞を、基礎的培養液において、３３℃〜３８℃の条件で培養することにより、神経系細胞へ誘導する方法、
〔２〕  以下の（ａ）および（ｂ）の工程を含む、中胚葉幹細胞を神経系細胞へ誘導する方法、
（ａ）不死化遺伝子を高発現または活性化させることにより、不死化した中胚葉幹細胞を提供する工程、
（ｂ）工程（ａ）の不死化した中胚葉幹細胞を、基礎的培養液において培養することにより、該中胚葉幹細胞を神経系細胞へ誘導する工程、
〔３〕  不死化遺伝子を中胚葉幹細胞内に導入することにより、不死化遺伝子を高発現または活性化させる〔２〕に記載の方法、
〔４〕  不死化遺伝子をレトロウイルスベクターを用いて、中胚葉幹細胞へ導入することにより中胚葉幹細胞を不死化させる、〔３〕に記載の方法、
〔５〕  レトロウイルスベクターがｐＢａｂｅである〔４〕に記載の方法、
〔６〕  神経系細胞が遺伝子除去処理により、不死化遺伝子を除去され得るまたは除去されたものである〔２〕〜〔５〕のいずれかに記載の方法、
〔７〕  不死化遺伝子の遺伝子除去処理が、不死化遺伝子をｌｏｘＰ配列またはｌｏｘＰ様配列にはさんだ後、リコンビナーゼ処理することによりなされる〔６〕に記載の方法、
〔８〕  不死化遺伝子がテロメラーゼ遺伝子、テロメラーゼから派生する遺伝子、または、テロメラーゼの発現もしくは活性を調節する遺伝子のいずれかである〔２〕〜〔７〕のいずれかに記載の方法、
〔９〕  中胚葉幹細胞が、骨髄液、臍帯血、末梢血、皮膚、皮膚の毛根細胞、筋組織、ＥＳ細胞またはＥＳ細胞から派生する細胞のいずれかに由来する、〔２〕〜〔８〕のいずれかに記載の方法、
〔１０〕  中胚葉幹細胞が、脊椎動物から採取した骨髄液または臍帯血から分離される単核細胞分画に含まれる中胚葉幹細胞である、〔２〕〜〔８〕のいずれかに記載の方法、
〔１１〕  単核細胞分画が、脊椎動物から採取した骨髄液または臍帯血を、２０００回転で比重に応じた分離に十分な時間、溶液中にて密度勾配遠心を行い、遠心後、比重１．０７ｇ／ｍｌから１．１ｇ／ｍｌの範囲に含まれる細胞分画を回収することにより調製することができる細胞分画である、〔１〕または〔１０〕に記載の方法、
〔１２〕  中胚葉幹細胞がＳＨ２（＋），ＳＨ３（＋），ＳＨ４（＋），ＣＤ２９（＋），ＣＤ４４（＋），ＣＤ１４（−），ＣＤ３４（−），ＣＤ４５（−）の特徴を有する細胞である〔１〕〜〔１１〕のいずれかにに記載の方法、
〔１３〕  ３３℃〜３８℃の条件で培養を行う、〔２〕〜〔１２〕のいずれかに記載の方法、
〔１４〕  基礎的培養液にｂＦＧＦ、ＥＧＦ、または虚血脳抽出液を加えることを特徴とする、〔１〕〜〔１３〕のいずれかのいずれかに記載の方法、
〔１５〕  神経系細胞が神経幹細胞、神経前駆細胞、神経細胞、およびグリア細胞からなる群より選択される、〔１〕〜〔１４〕に記載の方法、
〔１６〕  〔１〕〜〔１５〕のいずれかに記載の方法によって得られる細胞、
〔１７〕  〔１６〕に記載の細胞を含む、神経系疾患の治療のための組成物、
〔１８〕  神経系疾患が、中枢性および末梢性の脱髄疾患、中枢性および末梢性の変性疾患、脳卒中、脳腫瘍、高次機能障害、精神疾患、てんかん、外傷性の神経系疾患、炎症性疾患、感染性疾患、および脊髄梗塞からなる群より選択されるものである、〔１７〕に記載の組成物、
〔１９〕  〔１６〕に記載の細胞、または〔１７〕に記載の組成物をレシピエントに移植することを特徴とする、神経系疾患の治療方法、
〔２０〕  神経系疾患が、中枢性および末梢性の脱髄疾患、中枢性および末梢性の変性疾患、脳卒中、脳腫瘍、高次機能障害、精神疾患、てんかん、外傷性の神経系疾患、炎症性疾患、感染性疾患、および脊髄梗塞からなる群より選択されるものである、〔１９〕に記載の治療方法、
〔２１〕  移植する細胞がレシピエントに由来している、〔１９〕または〔２０〕に記載の治療方法、を提供するものである。
本発明においては、まず、脊椎動物から採取した骨髄液または臍帯血から分離される単核細胞分画に含まれる中胚葉幹細胞、またはＥＳ細胞を、基礎的培養液において、３３℃〜３８℃の条件で培養することにより、神経系細胞へ誘導する方法を提供する。
また、本発明は、不死化遺伝子を中胚葉幹細胞へ導入することにより、多量の中胚葉幹細胞を確保し、さらに神経幹細胞および神経系細胞へ効率的に分化誘導できる新規な方法を提供する。本発明の好ましい態様においては、中胚葉幹細胞において不死化遺伝子を高発現または活性化させることにより該中胚葉幹細胞を不死化させ、該細胞を培養することにより、神経系細胞へ分化誘導する。
本発明の上記方法においては、まず、不死化遺伝子を高発現または活性化させることにより、不死化した中胚葉幹細胞を提供する（工程（ａ））。
本発明において、中胚葉幹細胞とは、発生学的に中胚葉と分類される組織を構成している細胞を指し、血液細胞も含まれる。また、中胚葉幹細胞とは、自己と同じ能力を持った細胞をコピー（分裂、増殖）することができ、中胚葉の組織を構成している全ての細胞へ分化し得る能力を持った細胞を指す。中胚葉幹細胞は、例えば、ＳＨ２（＋），ＳＨ３（＋），ＳＨ４（＋），ＣＤ２９（＋），ＣＤ４４（＋），ＣＤ１４（−），ＣＤ３４（−），ＣＤ４５（−）の特徴を有する細胞であるが、これらマーカーに特に制限されない。また所謂、間葉系に関連する幹細胞も、本発明の中胚葉幹細胞に含まれる。
間葉系に関連する細胞とは、間葉系幹細胞、間葉系細胞、間葉系細胞の前駆細胞、間葉系細胞から由来する細胞のことを意味する。
間葉系幹細胞とは、例えば、骨髄、末梢血、皮膚、毛根、筋組織、子宮内膜、血液、臍帯血、更には、種々の組織の初期培養物から得ることができる幹細胞のことである。
間葉系細胞の前駆細胞とは、間葉系幹細胞から分化し、間葉系細胞への分化の途上にある細胞のことを意味する。
間葉系細胞は、間葉系幹細胞の分化により生じ、幹細胞のように多方面に分化する能力はないが、ある方向への分化能力と増殖能力を有している細胞である。正常の状態ではＧ０期に止まっているが、刺激によりＧ１期（分裂開始）に移行できる細胞である。間葉系細胞は、例えば、ストローマ細胞、ストローマ細胞の性質を有する細胞も包含している。間葉系細胞は、皮下組織、肺、肝等あらゆる臓器に存在しており、骨、軟骨、脂肪、腱、骨格筋、骨随間質と言った間葉系組織に存在している。
間葉系細胞から由来する細胞とは、（１）内皮細胞又は心筋細胞等の心血管系の細胞又は心血管系の細胞の前駆細胞、並びにこれら細胞としての性質を持つ細胞、（２）骨、軟骨、腱、又は骨格筋のいずれかの細胞、並びに骨、軟骨、腱、骨格筋、又は脂肪組織のいずれかの細胞の前駆細胞、更にはこれら細胞としての性質を持つ細胞、（３）神経系の細胞又は神経系細胞の前駆細胞、更にはこれら細胞としての性質を持つ細胞、（４）内分泌細胞又は内分泌細胞の前駆細胞、更にはこれら細胞としての性質を持つ細胞、（５）造血細胞又は造血細胞の前駆細胞、更にはこれら細胞としての性質を持つ細胞、（６）肝細胞又は肝細胞の前駆細胞、更にはこれら細胞としての性質を持つ細胞を包含している。
本発明の中胚葉幹細胞は、例えば、脊椎動物の骨髄液、臍帯血、末梢血、皮膚、皮膚の毛根細胞、筋組織、ＥＳ細胞またはＥＳ細胞から派生する細胞を起源（オリジン）として、調製することができる。例えば、皮膚からの細胞採取については、Ｙｏｕｎｇらの方法（Ｙｏｕｎｇ  ｅｔ  ａｌ．Ａｎａｔ  Ｒｅｃ，２００１，２６４（１），５１−６２，Ｃａｍｐａｇｎｌｉ  ｅｔ  ａｌ．Ｂｌｏｏｄ，２００１，９８（８），２３９６−２４０２）、筋肉からの細胞採取はＡｓａｋｕｒａらの方法（Ａｓａｋｕｒａ  Ａ  ｅｔ  ａｌ．Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ，２００１，６８（４−５），２４５−２５３）、脂肪組織からの細胞採取はＺｕｋらの方法（Ｚｕｋ  ＰＡ  ｅｔ  ａｌ．Ｔｉｓｓｕｅ  Ｅｎｇ，７（２），２１１−２２８）、また、滑膜からの細胞採取はＤｅ  Ｂａｒｉらの方法（Ｄｅ  Ｂａｒｉ  Ｃ  ｅｔ  ａｌ．Ａｒｔｈｒｉｔｉｓ  Ｒｈｅｕｍ，２００１，４４（８），１９２８−１９４２）に従って行うことができる。
本発明における脊椎動物としては、好ましくは哺乳動物（例えば、マウス、ラット、ウサギ、ブタ、イヌ、サル、ヒトなど）を指すが、特に制限されない。
本発明において使用される骨髄液は、例えば、脊椎動物（ヒトを含む）を麻酔し（局所または全身麻酔）、骨に針を刺し、シリンジで吸引することにより採取することができる。該骨としては、例えば大腿骨、胸骨、骨盤を形成している腸骨等が挙げられるが、これらに限定されない。また、出生時に臍帯に直接針を刺し、注射器で吸引して、臍帯血を採取保存しておくことは確立された技術となっている。
また、本発明におけるＥＳ細胞の調製方法としては、当業者らに周知の方法（Ｄｏｅｔｓｃｈｍａｎ  ＴＣ，ｅｔ  ａｌ．Ｊ  Ｅｍｂｒｙｏｌ  Ｅｘｐ  Ｍｏｒｐｈｏｌ，１９８５，８７，２７−４５，Ｗｉｌｌｉａｍｓ  ＲＬ  ｅｔ  ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ，１９８８，３３６，６８４−６８７）によって調製可能である。本発明においては、このようにして調製されたＥＳ細胞を、実施例に記載の条件等において、神経系細胞へ分化誘導させることが可能である。
本発明において、中胚葉幹細胞は、脊椎動物から採取した骨髄液または臍帯血を、９００ｇで比重に応じた分離に十分な時間、溶液中にて密度勾配遠心を行い、遠心後、比重１．０７ｇ／ｍｌから１．１ｇ／ｍｌの範囲に含まれる一定の比重の細胞分画を回収することにより調製することも可能である。ここで「比重に応じた分離に十分な時間」とは、密度勾配遠心のための溶液内で、細胞がその比重に応じた位置を占めるのに十分な時間を意味し、通常１０〜３０分間程度である。回収する細胞の比重は、細胞の由来する動物の種類（例えば、ヒト、ラット、マウス等）により変動しうる。密度勾配遠心のための溶液としては、Ｆｉｃｏｌ液やＰｅｒｃｏｌ液を用いることができるがこれらに制限されない。
具体例を示せば、まず、脊椎動物から採取した骨髄液（２５ｍｌ）または臍帯血を同量のＰＢＳ溶液に混合し、遠心（９００ｇで１０分間）し、沈降細胞をＰＢＳに混合して回収（細胞密度は４×１０７細胞／ｍｌ程度）することにより、血液成分を除去する。その後、そのうち５ｍｌをＰｅｒｃｏｌ液（１．０７３ｇ／ｍｌ）と混合し、遠心（９００ｇで３０分間）し、単核細胞分画を抽出する。細胞の洗浄のために、抽出した単核細胞分画を、例えば、培養液１（ＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｅａｇｌｅｓ  Ｍｅｄｉｕｍ−Ｌｏｗ  Ｇｌｕｃｏｓｅ）、１０％  ＦＢＳ（ｆｅｔａｌｂｏｖｉｎｅ  ｓｅｒｕｍ）、１％  ａｎｔｉ−ｂｉｏｔｉｃ−ａｎｔｉｍｙｃｏｔｉｃ  ｓｏｌｕｔｉｏｎ）、培養液２（ＭＳＣＢＭ（Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  Ｂａｓａｌ  Ｍｅｄｉｕｍ）、１０％  ＭＣＧＳ（Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ  Ｃｅｌｌ  Ｇｒｏｗｔｈ  Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ）、４ｍＭ  Ｌ−Ｇｌｕｔａｍｉｎｅ、１％  Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｎ−Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎ）または培養液３（ＤＭＥＭ（ｓｉｇｍａ）、１０％  ＦＢＳ（ｇｉｂｃｏ）、１％  Ｐｅｎｉｃｉｌｌｉｎ−Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｉｎ、２ｍＭ  Ｌ−Ｇｌｕｔａｍｉｎｅ（ｇｉｂｃｏ））に混合し、遠心（９００ｇで１５分間、または２０００回転で１５分間）する。次いで、遠心後の上澄みを除去し、沈降した細胞を回収し、培養する（３７℃、５％  ＣＯ２  ｉｎ  ａｉｒ）。
また、中胚葉幹細胞は、例えば、上記単核細胞分画の中から、上記ＳＨ２（＋），ＳＨ３（＋），ＳＨ４（＋），ＣＤ２９（＋），ＣＤ４４（＋），ＣＤ１４（−），ＣＤ３４（−），ＣＤ４５（−）等の細胞表面マーカーを有する細胞を、抗体を使用して選択することにより取得することができる。選択方法としては、特に制限はなく、マグネットビーズを使用する方法、または、通常のセルソーター（ＦＡＣＳ等）を使用する方法等が例示できる。
また、本発明においては、単核細胞分画（培養液の状態も含む）から中胚葉幹細胞を調製することもできる。単核細胞分画は、脊椎動物から採取した骨髄液または臍帯血を、９００ｇで比重に応じた分離に十分な時間、溶液中にて密度勾配遠心を行い、遠心後、比重１．０７ｇ／ｍｌから１．１ｇ／ｍｌの範囲に含まれる細胞分画を回収することにより調製することができる。ここで「比重に応じた分離に十分な時間」とは、密度勾配遠心のための溶液内で、細胞がその比重に応じた位置を占めるのに十分な時間を意味する。通常、１０〜３０分間程度である。回収する細胞分画の比重は、好ましくは１．０７ｇ／ｍｌから１．０８ｇ／ｍｌの範囲（例えば、１．０７７ｇ／ｍｌ）である。密度勾配遠心のための溶液としては、Ｆｉｃｏｌ液やＰｅｒｃｏｌ液を用いることができるがこれらに制限されない。
具体例を示せば、まず、脊椎動物より採取した骨髄液（５−１０μｌ）を溶液（Ｌ−１５を２ｍｌ、Ｆｉｃｏｌを３ｍｌ）に混合し、遠心（９００ｇで１５分間）し、単核細胞分画（約１ｍｌ）を抽出する。この単核細胞分画を細胞の洗浄のために培養溶液（ＮＰＢＭ  ２ｍｌ）に混合して、再度、遠心（９００ｇで１５分間）する。次いで、上澄みを除去した後、沈降した細胞を回収する。
本発明における単核細胞分画は、培養液の状態としても、下記の中胚葉幹細胞の調製に使用できる。単核細胞分画を含む培養液としては、単核細胞分画を、例えば、上記の培養液１、培養液２または培養液３中で、３７℃、５％  ＣＯ２  ｉｎ  ａｉｒの条件で培養することで調製できるが、特にこの条件に限定されない。
また、本発明における神経系細胞としては、特に制限はなく、神経幹細胞、神経前駆細胞、神経細胞、またはグリア細胞等を例示することができる。
本発明において細胞の不死化とは、通常、細胞は一定回数の分裂を繰り返すと増殖が停止するのに対し、細胞がこのような回数の分裂を繰り返した後もなお、増殖するようになった細胞のことを意味する。つまり、本発明における不死化遺伝子とは、このような回数の分裂を繰り返した後もなお、細胞分裂を継続させる働きを司る遺伝子を意味する。このような遺伝子としては、例えば、テロメラーゼ遺伝子、テロメラーゼから派生する遺伝子、または、テロメラーゼの発現もしくは活性を調節する遺伝子（例えば、ｍｙｃ遺伝子がテロメラーゼ活性を高めると言われている）等を挙げることができるが、これらに特に制限されない。本発明においては、特にヒトテロメラーゼ遺伝子（ｈＴＥＲＴ）を好適に用いることができる。
本発明において、不死化遺伝子を高発現または活性化させる方法としては、例えば、不死化遺伝子を中胚葉幹細胞内に導入する方法が挙げられるが、この方法に特に限定されない。不死化遺伝子の中胚葉幹細胞への導入方法としては、公知の種々の方法を用いることができる。例えば、不死化遺伝子をプラスミドベクターに組み込み、当該ベクターをカルシウム一リン酸の存在下で中胚葉幹細胞に導入して、形質転換する方法、あるいは不死化遺伝子をリポソームの様なベシクルとともに、中胚葉幹細胞に接触させ導入する方法、更に、不死化遺伝子の存在下でエレクトロポレーションにより中胚葉幹細胞へ導入する方法、あるいは不死化遺伝子を各種ウイルスベクターに組み込み、中胚葉幹細胞に感染させて導入する方法などを用いることができる。ウイルスベクターを用いる導入方法としては、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルスを用いる方法があり、レトロウイルスベクターとしては、ＭｏＭＬＶウイルスを用いる方法などがある。本発明においては、ｐＢａｂｅベクターを好適に用いることができる。
本発明においては、上記の方法により中胚葉幹細胞を不死化させる工程は必ずしも含まなくてもよく、予め上記の方法等により不死化した中胚葉幹細胞を使用して、下記の工程（ｂ）へ供することができる。
本発明の方法においては、上記工程（ａ）に次いで、不死化した中胚葉幹細胞を、基礎的培養液において培養することにより、該中胚葉幹細胞を神経系細胞へ誘導する（工程（ｂ））。
本工程における好ましい態様においては、不死化した中胚葉幹細胞を、基礎的培養液において培養することにより、該中胚葉幹細胞を神経幹細胞へ誘導する。
本発明の好ましい態様においては、上記中胚葉幹細胞または上記ＥＳ細胞を、基礎的培養液において、３３℃〜３８℃の条件で培養する。
本発明における基礎的培養液としては、細胞培養に使用される通常の培養液であれば特に制限はないが、好ましくは、ＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  ｍｏｄｉｆｉｅｄ  ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  ｍｅｄｉｕｍ）またはＮＰＢＭ（Ｎｅｕｒａｌ  ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ  ｃｅｌｌ  ｂａｓａｌ  ｍｅｄｉｕｍ：Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ）である。上記基礎的培養液のその他の成分としては、特に制限はないが、好ましくは、Ｆ−１２、ＦＣＳ、Ｎｅｕｒａｌ  ｓｕｒｖｉｖａｌ  ｆａｃｔｏｒｓ（Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ）等が挙げられる。これらの培養液中の濃度としては、例えば、Ｆ−１２は５０％、ＦＣＳは１％である。また、培養液におけるＣＯ２濃度は好ましくは５％であるが、特に制限されない。
また、本発明の好ましい態様としては、上記基礎的培養液に、ｂＦＧＦ（Ｂａｓｉｃ  ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ）またはＥＧＦ（Ｅｐｉｄｅｒｍａｌ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ）を添加する。この場合、これらは単独で添加しても、両方添加してもよい。上記ｂＦＧＦまたはＥＧＦの濃度としては、１ｎｇ／ｍｌ〜１００ｎｇ／ｍｌが挙げられるが、好ましくは、１０ｎｇ／ｍｌである。添加時期や添加方法としては、特に制限はないが、好ましくは、上記中胚葉幹細胞を該基礎的培養液で培養しながら、連日添加する方法が挙げられる。また、中胚葉幹細胞を神経幹細胞へ分化誘導を行う際には、上記基礎的培養液にｂＦＧＦおよびＥＧＦを添加することが好ましい。
本発明においては、上記基礎的培養液およびその他の成分を含む該基礎的培養液に、虚血脳抽出液を加えることで、上記中胚葉幹細胞から上記神経幹細胞を含む神経系細胞への誘導を促進することが可能である。通常、虚血脳組織からの抽出物を添加しない状態では、神経幹細胞への分化に１週間以上必要であるが、添加するとわずか数日で誘導が可能であり、しかも誘導高率も非常に高くなる。本発明においては、このような神経幹細胞を含む神経系細胞への誘導促進方法もまた提供する。
本発明における虚血脳抽出液としては、例えば、脊椎動物の虚血脳の粉砕液を遠心分離することで調製することが可能である。具体的には、全脳虚血モデル動物（ラット等）より全脳を摘出し、作製した小切片をＮＰＢＭ（神経幹細胞用培養液）に加え、ホモジェナイザーにて機械的に粉砕する。次いで、３００ｇで５分間、または８００ｒｐｍで５分間遠心し、上澄みを集め、メンブレンフィルターにて細胞成分を除去することで虚血脳抽出液を調製することができるが、この方法に限定されない。該全脳虚血モデル動物としては、動物をネンブタールで麻酔後、生理食塩水にて潅流することで作製することが可能である。このようにして得られた虚血脳抽出液を、上記基礎的培養液およびその他の成分を含む該基礎的培養液に添加する。添加時期としては、特に制限はない。
本発明においては、上記の条件により、上記中胚葉幹細胞または上記ＥＳ細胞を培養することで、神経系細胞へ誘導する。該神経系細胞としては、具体的には、神経幹細胞、神経前駆細胞、神経細胞、またはグリア細胞等を例示することができる。
また、本発明における培養の温度条件としては、３３℃〜３８℃であるが、好ましくは、３７℃である。
その他の培養条件には、特に制限はない。細胞は、浮遊した状態（Ｎｅｕｒｏｓｐｈｅｒｅ状態）であっても、培養容器に付着した状態であってもよい。該培養容器としては、例えば、ノンコーティングディッシュ（ｎｏｎ−ｃｏａｔｉｎｇ  ｄｉｓｈ）等が挙げられる。
また、本発明の方法により分化誘導された神経系細胞は、不死化遺伝子を除去することにより、安全性が向上するものと考えられる。本発明においては、既に確立した技術により、細胞に導入した不死化遺伝子を除去することも可能である。例えば、不死化遺伝子をｌｏｘＰ配列またはｌｏｘＰ様配列に挟まれるように構成しておくことにより、Ｃｒｅリコンビナーゼなどのリコンビナーゼ処理を行い、不死化遺伝子を特異的に除去することが可能である。
また本発明においては、上記中胚葉幹細胞の培養液を新しい培養液（ＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  ｍｏｄｉｆｉｅｄ  ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  ｍｅｄｉｕｍ）５０％、Ｆ−１２  ５０％、ＦＳＣ  １％）若しくは培養液２（ＮＰＢＭ（Ｎｅｕｒａｌ  ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ  ｃｅｌｌ  ｂａｓａｌ  ｍｅｄｉｕｍ：Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ）、２％  Ｎｅｕｒａｌ  ｓｕｒｖｉｖａｌ  ｆａｃｔｏｒｓ（Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ）、０．２％  Ｇｅｎｔａｍｙｃｉｎｅ−ａｍｐｈｏｔｅｒｉｃｉｎＢ、１０ｎｇ／ｍｌ  ｈＦＧＦ）に変えて、数日〜４週間程度培養することにより、中胚葉幹細胞から直接的に（神経幹細胞への転換をせずに）神経細胞やグリア細胞へ分化誘導させることが可能である。このように中胚葉幹細胞から直接的に神経細胞やグリア細胞へ分化誘導させる方法も本発明に含まれる。
本発明は、本発明の上記方法によって取得される細胞を提供する。該細胞とは神経系細胞であり、例えば、神経幹細胞、神経前駆細胞、神経細胞、またはグリア細胞等が挙げられるが、これらに制限されない。
本発明は、また、上記方法によって得られる細胞を含む神経系疾患の治療のための組成物を提供する。本発明の細胞はそのまま移植に用いることも可能であるが、移植による治療効率を向上させるために、種々の薬剤を添加した、あるいは遺伝子導入した組成物として、移植することも考えられる。
本発明の組成物の調製においては、例えば、▲１▼本発明の細胞の増殖率を向上させる、または神経系細胞へのさらなる分化を促進する物質の添加、あるいはこのような効果を有する遺伝子の導入、▲２▼本発明の細胞の損傷神経組織内での生存率を向上させる物質の添加、あるいはこのような効果を有する遺伝子の導入、▲３▼本発明の細胞が、損傷神経組織から受ける悪影響を阻止する物質の添加、あるいはこのような効果を有する遺伝子の導入、▲４▼ドナー細胞の寿命を延長させる物質の添加、あるいはこのような効果を有する遺伝子の導入、▲５▼細胞周期を調節する物質の添加、あるいはこのような効果を有する遺伝子の導入、▲６▼免疫反応の抑制を目的とした物質の添加、あるいはこのような効果を有する遺伝子の導入、▲７▼エネルギー代謝を活発にする物質の添加、あるいはこのような効果を有する遺伝子の導入、▲８▼ドナー細胞のホスト組織内での遊走能を向上させる物質、あるいはこのような効果を有する遺伝子の導入、▲９▼血流を向上させる物質、あるいはこのような効果を有する遺伝子の導入（血管
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添加（対象疾患としては、例えば、脳腫瘍、中枢性および末梢性の脱髄疾患、中枢性および末梢性の変性疾患、脳卒中（脳梗塞、脳出血、クモ膜下出血を含む）、脳腫瘍、痴呆を含む高次機能障害、精神疾患、てんかん、外傷性の神経系疾患（頭部外傷、脳挫傷、脊髄損傷を含む）、炎症性疾患、感染性疾患、など）、あるいはこのような効果を有する遺伝子の導入、を行うことが挙げられるが、これらに制限されるものではない。
本発明の細胞および組成物は、レシピエントに移植することで、神経系疾患の治療に用いることができる。治療の対象となる神経系疾患としては、例えば、中枢性および末梢性の脱髄疾患、中枢性および末梢性の変性疾患、脳卒中（脳梗塞、脳出血、クモ膜下出血を含む）、脳腫瘍、痴呆を含む高次機能障害、精神疾患、てんかん、外傷性の神経系疾患（頭部外傷、脳挫傷、脊髄損傷を含む）、炎症性疾患、感染性疾患（例えばヤコブ病など）、並びに脊髄梗塞が挙げられるが、これらに制限されない。
本発明によれば、レシピエント由来の、例えば、骨髄液、臍帯血、末梢血、皮膚、筋組織、脂肪組織、滑膜、毛根から分離して得た細胞をドナー細胞として移植することができる（自家移植療法）。このことは、移植による拒絶反応の危険性も少なく、免疫抑制剤を併用しなければならない困難性がない点で好ましい。自家移植療法が困難な場合には、他人または他の医療用動物由来の細胞を利用することも可能である。
また本発明者らは、細胞移植をいつ試行すると、どのくらいの治療効果が得られるかについて検討を行い、超急性期の移植治療（数時間以内）が最高で、次に、急性期（数日後）、そして慢性期（数週間後）の順に治療効果があることが示された。従って、超急性期の移植治療が望ましいものと考えられることから、あらかじめ細胞を採取、培養、遺伝子導入、増殖、分化誘導、保存しておくことは非常に有用である。つまり、あらかじめレシピエントから細胞を採取し、本発明の方法により不死化遺伝子を導入し、次いで培養することにより分化誘導させた神経系細胞を、移植に備えて適宜保存しておくことも好適に実施される。保存しておく細胞の種類としては、下記の状態が考えられる。当業者においては、治療する疾患に応じて適宜適切な状態の細胞を選択することができる。
１：採取したそのままの状態（ｃｒｕｄｅ  ｆｒａｃｔｉｏｎ）、２：ある程度精製した状態、３：精製した細胞を、培養して増やした状態、４：精製した細胞を、不死化して増やした状態、５：神経幹細胞へ分化誘導した状態、６：神経系細胞へ分化した状態）。また、骨髄バンクや臍帯血バンクなどに保存された細胞を、移植に使用することも可能である。細胞は冷凍保存したものであってもよい。
さらに本発明は、中胚葉幹細胞（不死化したものを含む）をそのままレシピエントに対して移植を行うことにより、神経組織へ移行した該中胚葉幹細胞は神経系細胞へと分化し、機能的な再建が見られることを明らかにした。従って、中胚葉幹細胞を直接レシピエントへ投与（移植）し、レシピエント体内において該細胞を神経系細胞へ分化誘導させる方法も本発明の一つの態様として、本発明に包含される。この場合の投与方法は、特に制限されず、例えば、局所投与、静脈内投与、動脈内投与、脳脊髄液内投与（例えば、腰椎穿刺や脳室内投与）などを挙げることができる。
患者への細胞の移植は、例えば、移植する細胞を、人工脳脊髄液や生理食塩水などを用いて浮遊させた状態で注射器に溜め、手術により損傷した神経組織を露出し、この損傷部位に注射針で直接注入することにより行うことができる。本発明の細胞は、遊走能が高いため、神経系組織内を移動することができる。従って、損傷部位の近傍へ移植してもよい。また、脳脊髄液中への注入でも効果が期待できる。この場合、通常の腰椎突刺で細胞を注入することができるため、患者の手術の必要はなく、局所麻酔のみで済むため、病室で患者を処置できる点で好適である。さらに、動脈内や静脈内への注入でも効果が期待できる。従って、通常の輸血の要領での移植が可能となり、病棟での移植操作が可能である点で好適である。
また、本発明の細胞は、その遊走能の高さから、遺伝子の運び屋（ベクター）として利用することも考えられる。例えば、脳腫瘍、中枢性および末梢性の脱髄疾患、中枢性および末梢性の変性疾患、脳卒中（脳梗塞、脳出血、クモ膜下出血を含む）、脳腫瘍、痴呆を含む高次機能障害、精神疾患、てんかん、外傷性の神経系疾患（頭部外傷、脳挫傷、脊髄損傷を含む）、炎症性疾患、感染性疾患（例えばヤコブ病など）などの各種神経疾患に対する遺伝子治療用ベクターとしての利用が期待される。
発明を実施するための最良の形態
以下、本発明を実施例により、さらに具体的に説明するが本発明はこれら実施例に制限されるものではない。
［実施例１］  単核細胞分画および中胚葉幹細胞の調製
（１）単核細胞分画および該単核細胞分画の培養液
マウス（およびヒト）から採取した細胞サンプルを、Ｆｉｃｏｌ  ３ｍｌを含有するＬ−１５培地（２ｍｌ）中に希釈して、遠心分離（２，０００ｒｐｍ、１５分間）した。単核球画分から細胞を集め、２ｍｌの無血清培地（前駆神経細胞維持培地（Ｎｅｕｒａｌ  Ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ  ｃｅｌｌ  Ｍａｉｎｔｅｎａｎｃｅ  Ｍｅｄｉｕｍ）：ＮＰＭＭ）中に懸濁し、さらに遠心分離（２，０００ｒｐｍ、１５分間）して、上澄みを除去し、沈降した細胞を回収した。この細胞を再びＮＰＭＭに懸濁し、単核細胞分画を調製した。
また、単核細胞分画を、培養液１（ＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｅａｇｌｅｓ  Ｍｅｄｉｕｍ−Ｌｏｗ  Ｇｌｕｃｏｓｅ）１０％  ＦＢＳ（ｆｅｔａｌ  ｂｏｖｉｎｅ  ｓｅｒｕｍ）、１％  ａｎｔｉ−ｂｉｏｔｉｃ−ａｎｔｉｍｙｃｏｔｉｃ  ｓｏｌｕｔｉｏｎ）、培養液２、培養液３中で、３７℃、５％  ＣＯ２の条件で培養し、該単核細胞分画の培養液を調製した。
（２）中胚葉幹細胞
上記（１）に記載の方法で調製した単核細胞分画、または該単核細胞分画の培養液から、ＳＨ２（＋）、ＳＨ３（＋）、ＳＨ４（＋）、ＣＤ２９（＋）、ＣＤ４４（＋）、ＣＤ１４（−）、ＣＤ３４（−）、ＣＤ４５（−）等の特徴を有する細胞を、抗体を使用して抽出した。選別方法は、マグネットビーズを使用する方法、または、通常のセルソーター（ＦＡＣＳ等）を使用する方法を用いた。
［実施例２］  中胚葉幹細胞から神経系細胞への分化誘導
（１）中胚葉幹細胞から神経幹細胞への誘導
まず、洗浄を行い、次いで、培養溶液から細胞を、酵素処理（試薬（０．０５％  ｔｒｙｐｓｉｎ、０．０２％  ＥＤＴＡ）、室温、５分間）によってはがし、等量の培養液を加え、数回ピペッティングし、単一細胞までバラバラにした。次いで、６００回転で５分間遠心した。沈殿した細胞をピペットで吸い上げた。次いで、新しい培養液１（ＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  ｍｏｄｉｆｉｅｄ  ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  ｍｅｄｉｕｍ）５０％、Ｆ−１２  ５０％、ＦＳＣ  １％、Ｂａｓｉｂ  ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ（ｂＦＧＦ）１０ｎｇ／ｍｌを連日添加、Ｅｐｉｄｅｒｍａｌ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ（ＥＧＦ）１０ｎｇ／ｍｌを連日添加）または培養液２（ＮＰＢＭ（Ｎｅｕｒａｌ  ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ  ｃｅｌｌ  ｂａｓａｌ  ｍｅｄｉｕｍ：Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ）、２％  Ｎｅｕｒａｌ  ｓｕｒｖｉｖａｌ  ｆａｃｔｏｒｓ（Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ）、０．２％  ｈＥＧＦ（ｈｕｍａｎ  Ｅｐｉｄｅｒｍａｌ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ）、０．２％  Ｇｅｎｔａｍｉｃｉｎｅ−ａｍｐｈｏｔｅｒｉｃｉｎＢ、０．２％  ｈＦＧＦ（ｈｕｍａｎ  ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ）、Ｂａｓｉｂ  ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ（ｂＦＧＦ）１０ｎｇ／ｍｌを連日添加、Ｅｐｉｄｅｒｍａｌ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ（ＥＧＦ）１０ｎｇ／ｍｌを連日添加）、培養容器（ｏｎ−ｔｒｅａｔｅｄ  ｐｏｌｙｓｔｙｒｅｎｅ  ｄｉｓｈ）において、浮遊したままの状態で、５％ＣＯ２、３７℃で培養を継続した。
（２）中胚葉幹細胞から神経細胞やグリア細胞への誘導
培養している中胚葉幹細胞の培養液を、新しい培養液（ＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  ｍｏｄｉｆｉｅｄ  ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  ｍｅｄｉｕｍ）５０％、Ｆ−１２  ５０％、ＦＳＣ  １％）若しくは培養液２（ＮＰＢＭ（Ｎｅｕｒａｌ  ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ  ｃｅｌｌ  ｂａｓａｌ  ｍｅｄｉｕｍ：Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ）、２％  Ｎｅｕｒａｌ  ｓｕｒｖｉｖａｌ  ｆａｃｔｏｒｓ（Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ）、０．２％  ｈＥＧＦ（ｈｕｍａｎ  Ｅｐｉｄｅｒｍａｌ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ）、０．２％  Ｇｅｎｔａｍｉｃｉｎｅ−ａｍｐｈｏｔｅｒｉｃｉｎＢ、０．２％  ｈＦＧＦ）に変えて、約４週間程度培養する方法によって、中胚葉幹細胞から直接的に（神経幹細胞への転換をせずに）神経細胞やグリア細胞へ分化誘導させることにも成功した。
上記（１）および（２）の方法による中胚葉幹細胞から神経系細胞への分化誘導の確認は、中胚葉系細胞のマーカーであるＳＨ２やＳＨ３が消え（神経幹細胞のマーカーであるｎｅｓｔｉｎはもともと陰性）、その代わり、神経幹細胞のマーカーであるｎｅｓｔｉｎが陽性となることで行った（図１）。
中胚葉幹細胞から神経系細胞への分化誘導により、培養細胞は形態的にも変化した。具体的には、単一細胞だった細胞がニューロスフィア（ｎｅｕｒｏｓｐｈｅｒｅ）を形成した（図１）。また、この神経幹細胞から、神経細胞（ＮＳＥ陽性）やグリア細胞（ＧＦＡＰ陽性）が分化してくることも確認した（図２）。
［実施例３］  虚血脳抽出液を用いた、中胚葉幹細胞から神経系細胞への分化誘導の促進
脳に虚血ストレスを負荷し、虚血脳の抽出液を、培養中胚葉幹細胞へ添加することで、中胚葉幹細胞が神経幹細胞へ高率で分化することを見出した。この方法によると、培養中胚葉幹細胞が神経幹細胞へ、わずか数日間で高率に誘導できることが分かった。
（１）虚血脳抽出液の作製
まず、ラットをネンブタールで深麻酔後、前腹壁から前胸部を切開し、心臓および上行大動脈を露出する。心尖部を切開し左心室から上行大動脈にチューブを挿入する。次に右心耳に切開を入れ、チューブより生理食塩水を３分間灌流させ、十分な全身の脱血を行った。潅流後、４〜５時間そのまま放置し、全脳虚血モデルとした。次いで、上記の全脳虚血モデルラットより大脳、中脳を摘出し、尖刀にて１〜２ｍｍ程度の小切片にした。作製した小切片をＮＰＭＭに加え、ホモジェナイザーにて機械的に粉砕し、混濁液を作製した。次いで、混濁液を遠心管に移し、８００ｒｐｍ、５分間遠心分離を行い、上澄みを集めた。０．２２μｍのメンブレンフィルターにて細胞成分を除去し、虚血脳抽出液とした。
（２）培養中胚葉幹細胞（ＭＳＣ）の神経幹細胞への分化誘導
ＭＳＣ細胞を１００ｍｍ  ｎｏｎ−ｃｏａｔｉｎｇ  ｄｉｓｈ（ＩＷＡＫＩ）、ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｉｎｇ  ｍｅｄｉｕｍ（３種類：別記）、３７℃  ５％ＣＯ２の条件にて培養を継続した。９０％  ｃｏｎｆｌｕｅｎｔで、パスツールピペットで培養液を吸い取り、Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  ＰＢＳで３回リンスした。０．０５％  Ｔｒｙｐｓｉｎ、０．０２％  ＥＤＴＡ  ｉｎ  ＰＢＳを２ｍｌ加え、細胞がはがれるまで３７℃で２〜５分間インキュベートした。ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｉｎｇ  ｍｅｄｉｕｍを２ｍｌ加え、Ｔｒｙｐｓｉｎの反応をとめた。上清および剥がれた細胞をパスツールピペットにて、遠心管に集め、数回ピペティングした後、１０００ｒｐｍ５分間で遠心分離を行った。上清を捨て、ＮＰＭＭを加え再懸濁した。３７℃に温めておいた５０％ＮＰＭＭ、５０％虚血脳抽出液培地にまき、３７℃、５％ＣＯ２の条件下、１００ｍｍ  ｎｏｎ−ｃｏａｔｉｎｇ  ｄｉｓｈ（ＩＷＡＫＩ）で浮遊培養した。ｂＦＧＦ  １０ｎｇ／ｍｌおよびＥＧＦ  １０ｎｇ／ｍｌを連日添加した。
［実施例４］  神経再生能の評価
上記分化誘導方法によって得られた神経系細胞の神経再生能力に関しては、脳梗塞モデル（図３）、痴呆モデル（図３）、脊髄損傷モデル（図４）、脱髄モデル（図５）での検討の結果、脳から抽出・培養した神経幹細胞と同じ程度の再生能力があることが判明した。
［実施例５］  ＥＳ細胞から神経系細胞への分化誘導
マウスＥＳ細胞を１００ｍｍ  ｇｅｌａｔｉｎ−ｃｏａｔｉｎｇ  ｄｉｓｈ（ＩＷＡＫＩ）、ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｉｎｇ  ｍｅｄｉｕｍ  ２０ｍｌ（ＤＭＥＭ、１０％ＦＣＳ、１００μＭ  ２−メルカプトエタノール、１０００  ＵＮＩＴｓ／ｍｌ  ＥＳＧＲＯ（ＣＨＥＭＩＣＯＮ））、３７℃  ５％ＣＯ２の条件にて培養を継続した。９０％  ｃｏｎｆｌｕｅｎｔで、パスツールピペットで培養液を吸い取り、ＰＢＳで３回リンスした。０．２５％  Ｔｒｙｐｓｉｎ、０．０３％  ＥＤＴＡ  ｉｎ  ＰＢＳを２ｍｌ加え、細胞がはがれるまで３７℃で２〜５分間インキュベートした。ＦＣＳを４００μｌ加え、Ｔｒｙｐｓｉｎの反応をとめた。上清および剥がれた細胞をパスツールピペットにて、遠心管に集め、数回ピペティングした後、１０００ｒｐｍ  ５分間で遠心分離を行った。上清を捨て、ＮＰＭＭを加え再懸濁した。３７℃に温めておいた５０％ＮＰＭＭ、５０％虚血脳抽出液培地にまき、３７℃、５％ＣＯ２の条件下、１００ｍｍ  ｎｏｎ−ｃｏａｔｉｎｇ  ｄｉｓｈ（ＩＷＡＫＩ）で浮遊培養した。ｂＦＧＦ  １０ｎｇ／ｍｌおよびＥＧＦ  １０ｎｇ／ｍｌを連日添加した。
［実施例６］細胞へのｈＴＥＲＴ遺伝子の導入
以下に、ストローマ細胞（ｓｔｒｏｍａｌ  ｃｅｌｌ）へｈＴＥＲＴ遺伝子を導入することにより、該細胞を不死化させる方法を示す。
１．初代ストローマ細胞の採取
健康成人男性の腸骨より得られた骨髄液１０ｍｌから単核球分離し、１晩培養後にフラスコに付着した細胞をストローマ細胞として利用した。
２．ストローマ細胞に導入する遺伝子として、ヒトテロメラーゼの触媒活性サブユニット（ｈＴＥＲＴ）をコードする遺伝子を用いた。ｈＴＥＲＴの配列は、例えば、Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２７７，ｐ．９５５−９５９に記載されている。更に、細胞の癌化に関連する遺伝子として知られている、公知のｒａｓ遺伝子、ＳＶ４０Ｔ遺伝子についてもストローマ細胞に導入した。
３．ストローマ細胞への遺伝子導入に用いるベクター（図７）ｐＢＡＢＥ−ｈｙｇｒｏ−ｈＴＥＲＴ（Ｄｒ．Ｒｏｂｅｒｔ  Ａ  Ｗｅｉｎｂｅｒｇより供与）は、ｐＢＡＢＥ−ｈｙｇｒｏ−ｈＴＥＲＴはＰｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ｖｏｌ９５，ｐ１４７２３−１４７２８中に記載されているとおり、ｐＣＩ−Ｎｅｏ−ｈＴＥＲＴ−ＨＡよりＰＣＲにて得たｈＴＥＲＴ  ＥｃｏＲＶ−ＳａｌＩ  ｆｒａｇｍｅｎｔをｐＢＡＢＥ−ｈｙｇｒｏにｃｌｏｎｉｎｇしたものである。ｐＢＡＢＥ−ｐｕｒｏ−ｒａｓＶ１２（Ｄｒ．Ｓｃｏｔｔ  Ｗ  Ｌｏｗｅから供与）は、Ｃｅｌｌ，８８，５９３−６０２，１９９７に記載の方法で調製された。ｐＭＦＧ−ｔｓＴ−ＩＲＥＳ−ｎｅｏはＭＦＧ−ｔｓＴ（ｐＺＩＰｔｓＵ１９｛Ｄｒ．Ｒ．ＭｃＫａｙから頂いたもの｝よりｃｌｏｎｉｎｇしてＭＦＧベクターに組み込んだもの｛Ｌａｂ．Ｉｎｖｅｓｔ．７８，１４６７−１４６８，１９９８｝）にＩＲＥＳ−ｎｅｏ（ｐＲｘ−ｈＣＤ２５−ｉｒｅｓ−ｎｅｏ｛Ｈｕｍａｎ  ｇｅｎｅ  ｔｈｅｒａｐｙ  ９，１９８３−１９９３，１９９８｝から切り出した）のＢａｍＨＩ  ｆｒａｇｍｅｎｔをｃｌｏｎｉｎｇして作成した。
４．レトロウイルス産生細胞の作製とそれによるウイルスの感染は「別冊実験医学ザ・プロトコールシリーズ  遺伝子導入＆発現解析実験法（斉藤  泉  菅野  純夫  編  羊土社）」に準じておこなった（Ｐ５８−６２）。
具体的には、ＢＯＳＣ２３パッケージング細胞（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９０：８３９２−８３９６，１９９３）を用いて、次のように、ΨＣＲＩＰパッケージング細胞（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９０：３５３９−３５４３，１９９３）を作成した。
４−１．組み換えレトロウイルスベクター産生細胞の作製
（ｉ）ＢＯＳＣ２３細胞を１０ｃｍ  ｄｉｓｈにトランスフェクションの１８〜２４時間前に５．５ｘ１０６個播いた。
（ｉｉ）１５μｇのＤＮＡ（レトロウイルスベクター）にＯＰＴＩ−ＭＥＭ（Ｇｉｂｃｏ／ＢＲＬ）を８００μｌ静かに加え、攪拌しＡ液を調製した。
（ｉｉｉ）滅菌されたチューブにＯＰＴＩ−ＭＥＭを７５０μｌ採り、ＬＩＰＯＦＥＣＴＡＭＩＮＥ（２ｍｇ／ｍｌ  Ｇｉｂｃｏ／ＢＲＬ）を５０μｌ加えてゆっくり混ぜＢ液を調製した。
（ｉｖ）Ａ液を静かにＢ液に混ぜＣ液を調整し、室温で３０〜４５分放置した。
（ｖ）ＢＯＳＣ２３細胞を抗生剤、ＦＢＳを除いた３７℃の培地で１度洗った。
（ｖｉ）Ｃ液（１．６ｍｌ）を静かにＢＯＳＣ２３細胞に加えた。
（ｖｉｉ）更に、２．４ｍｌのＯＰＴＩ−ＭＥＭを加えた。
（ｖｉｉｉ）５時間、５％ＣＯ２下でインキュベートした。
（ｉｘ）４ｍｌの２０％胎児ウシ血清を含むＤＭＥＭを加え、１晩インキュベートした。
（ｘ）１０％胎児ウシ血清を含む３７℃の培地に換え、同時にパッケージング細胞であるΨＣＲＩＰを１０ｃｍ  ｄｉｓｈに１〜２ｘ１０６個播いた。
（ｘｉ）２４時間後、ＢＯＳＣ２３細胞の培地を０．４５または０．２０μｍのシリンジフィルターで濾過し、ΨＣＲＩＰの培地を５ｍｌの濾過した培地に交換した。同時にポリブレン（Ｈｅｘａｄｉｍｅｔｈｒｉｎｅ  Ｂｒｏｍｉｄｅ，ＳＩＧＭＡ  Ｈ−９２６８）を８μｇ／ｍｌになるように加えた。
（ｘｉｉ）４〜２４時間培養後、５ｍｌの培地を加え、さらに一晩培養した。
（ｘｉｉｉ）薬剤選択を行い、レトロウイルスを産生するΨＣＲＩＰ細胞が作成される。
次に、上記３種のベクターを別々に、レトロウイルス産生細胞（ψＣＲＩＰ／Ｐ１３１）で増殖させ、ストローマ細胞には次のようにトランスフェクション（ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ）された（図８）。
まず、トランスフェクションを行う前日に、ストローマ細胞を５ｘ１０４ｃｅｌｌ／１０ｃｍ  ｄｉｓｈとなるように播きなおし、レトロウイルスを産生するψＣＲＩＰ／Ｐ１３１の培地を１０％ウシ血清含有ＤＭＥＭから１２．５％非働化ウマ血清１２．５％非働化胎児ウシ血清／２−Ｍｅｒｃａｐｔｏｅｔｈａｎｏｌ／ｈｙｄｒｏｃｏｒｔｉｓｏｎｅ含有α−ＭＥＭの培地に代えて培養する。当日に培養上清を０．２０μｍフィルターで濾過してポリブレン（ｐｏｌｙｂｒｅｎｅ）を最終濃度８μｇ／ｍｌになるように加えた。次に上清に産生された組み換えレトロウイルスベクターをストローマ細胞（ｓｔｒｏｍａｌ  ｃｅｌｌ）に感染させた。４時間後培養上清を新しい培地に換えてさらに２日間培養した。その後、ｐＢＡＢＥ−ｈｙｇｒｏ−ｈＴＥＲＴはハイグロマイシン１００μｇ／ｍｌで５日間、ｐＢＡＢＥ−ｐｕｒｏ−ｒａｓＶ１２はピューロマイシン１μｇ／ｍｌで５日間，ｐＭＦＧ−ｔｓＴ−ＩＲＥＳ−ｎｅｏはＧ４１８  １ｍｇ／ｍｌで５日間それぞれ薬剤選択を行った。
感染には、３種類のレトロウイルスベクターを、（１）コントロール、（２）ｐＢＡＢＥ−ｈｙｇｒｏ−ｈＴＥＲＴベクターのみ、（３）ｐＭＦＧ−ｔｓＴ−ＩＲＥＳ−ｎｅｏベクターのみ、（４）ｐＢＡＢＥ−ｐｕｒｏ−ｒａｓ−Ｖ１２ベクターのみ、（５）ｐＭＦＧ−ｔｓＴ−ＩＲＥＳ−ｎｅｏ／ｐＢＡＢＥ−ｈｙｇｒｏ−ｈＴＥＲＴ２種のベクター、（６）ｐＢＡＢＥ−ｐｕｒｏ−ｒａｓ−Ｖ１２／ｐＢＡＢＥ−ｈｙｇｒｏ−ｈＴＥＲＴ２種のベクター、（７）ｐＭＦＧ−ｔｓＴ−ＩＲＥＳ−ｎｅｏ／ｐＢＡＢＥ−ｐｕｒｏ−ｒａｓ−Ｖ１２の２種のベクター、（８）ｐＢＡＢＥ−ｐｕｒｏ−ｒａｓ−Ｖ１２／ｐＭＦＧ−ｔｓＴ−ＩＲＥＳ−ｎｅｏ／ｐＢＡＢＥ−ｈｙｇｒｏ−ｈＴＥＲＴの３種のベクター、で感染させた。
なおこれらのウイルスおよび細胞は、発明者らが保管しており、特許後いつでも分譲できる状態にある。
［実施例７］間葉系幹細胞の分化能
骨、軟骨、筋肉等へ分化する能力と、自己複製能を合せもつ間葉系幹細胞（ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ）の分化や血液幹細胞の支持能を検討した。
健康成人の腸骨より骨髄穿刺を行い、比重遠心法により単核球を採取、１０％非働化胎児ウシ血清含有ＤＭＥＭにて一晩培養。翌日より付着細胞（ａｄｈｅｒｅｎｔ  ｃｅｌｌ）を培養する。２週後にＴ−Ｅ（トリプシン−ＥＤＴＡ）にて細胞を回収したものを初代間葉系幹細胞とし凍結保存した。その後ｈＴＥＲＴ遺伝子を実施例１と同様に導入した。次に、初代間葉系幹細胞とｈＴＥＲＴ遺伝子の導入された不死化間葉系幹細胞との増殖曲線を比較した。結果を図９に示す。図９より明らかなように、初代間葉系幹細胞は４２日世代数１７（ＰＤ＝１７）で細胞分裂の停止（ｃｒｉｓｉｓ）が起こったが、不死化間葉系幹細胞は２７０日世代数５４（ＰＤ＝５４）経過した現在でも、分裂速度が遅くなることなく継代培養が可能であったことから、安定したセルライン（ｃｅｌｌ  ｌｉｎｅ）を樹立したしたものと考えられる。
次に作製した間葉系幹細胞（ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ）が多分化能を保持しているかを検討した。
（１）まず、１μＭデキサメサゾン（ｄｅｘａｍｅｔｈａｚｏｎｅ）、６０μＭインドメタシン（ｉｎｄｏｍｅｔｈａｃｉｎｅ）、０．５μＭ  ３−イソブチル−１−メチルキサンチン（ｉｓｏｂｕｔｙｌｍｅｔｈｙｌｘａｎｔｈｉｎｅ）、５μｇ／ｍｌ  インシュリン（ｉｎｓｕｌｉｎ）を用いて、脂肪細胞への分化を誘導した。約１週間の培養後Ｏｉｌ  Ｒｅｄ  Ｏ染色で染色された（図１０；赤いのが脂肪滴）。
（２）次に、１μＭデキサメサゾン（ｄｅｘａｍｅｔｈａｚｏｎｅ）、５０μｇ／ｍｌ  アスコルビン酸−２−リン酸（ａｓｃｏｒｂａｔｅ−２−ｐｈｏｓｐｈａｔｅ）、６．２５μｇ／ｍｌ  インシュリン（ｉｎｓｕｌｉｎ）、６．２５μｇ／ｍｌ  トランスフェリン（ｔｒａｎｓｆｅｒｒｉｎ）、５．３５μｇ／ｍｌ  セレン酸（ｓｅｌｅｎｉｃ  ａｃｉｄ）、１．２５ｍｇ／ｍｌ  リノレン酸（ｌｉｎｏｌｅｉｃ  ａｃｉｄ）、１０ｎｇ／ｍｌ  ＴＧＦ−βを用いて、軟骨分化を誘導した。２−３週間の培養で、Ａｌｃｉａｎ  ｂｌｕｅで染色された。染色（凍結切片）軟骨基質内のコンドロイチンが青く染まる（図１１）。
（３）更に、１μＭデキサメサゾン（ｄｅｘａｍｅｔｈａｚｏｎｅ）、５０μＭ  アスコルビン酸−２−リン酸（ａｓｃｏｒｂａｔｅ−２−ｐｈｏｓｐｈａｔｅ）、１０ｍＭ  β−グリセロフォスフィト（β−ｇｌｙｃｅｒｏｐｈｏｓｐｈａｔｅ）で、骨分化を誘導した。２−３  ｗｅｅｋｓの培養で、ｖｏｎ  Ｋｏｓｓａ染色で染色された（ミネラルの沈着）。結果を図１２に示す。
［実施例８］  中胚葉幹細胞から神経系細胞への分化誘導
（１）中胚葉幹細胞から神経幹細胞への誘導
上記実施例と同様の方法によってｈＴＥＲＴ遺伝子を導入することにより不死化された中胚葉幹細胞である間葉系幹細胞（ＭＳＣ）を使用して以下の実験に供した。
まず、不死化された細胞を洗浄し、次いで、培養溶液から細胞を、酵素処理（試薬（０．０５％  ｔｒｙｐｓｉｎ、０．０２％  ＥＤＴＡ）、室温、５分間）によってはがし、等量の培養液を加え、数回ピペッティングし、単一細胞までバラバラにした。次いで、９００ｇで５分間遠心した。沈殿した細胞をピペットで吸い上げた。次いで、新しい培養液１（ＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  ｍｏｄｉｆｉｅｄ  ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  ｍｅｄｉｕｍ）５０％、Ｆ−１２  ５０％、ＦＣＳ  １％、Ｂａｓｉｃ  ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ（ｂＦＧＦ）１０ｎｇ／ｍｌを連日添加、Ｅｐｉｄｅｒｍａｌ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ（ＥＧＦ）１０ｎｇ／ｍｌを連日添加）または培養液２（ＮＰＢＭ（Ｎｅｕｒａｌ  ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ  ｃｅｌｌ  ｂａｓａｌ  ｍｅｄｉｕｍ：Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ）、２％  Ｎｅｕｒａｌ  ｓｕｒｖｉｖａｌ  ｆａｃｔｏｒｓ（Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ）、１０ｎｇ／ｍｌ  ｈＥＧＦ（ｈｕｍａｎ  Ｅｐｉｄｅｒｍａｌ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ）、０．２％  Ｇｅｎｔａｍｙｃｉｎｅ−ａｍｐｈｏｔｅｒｉｃｉｎＢ、１０ｎｇ／ｍｌ  ｈＦＧＦ（ｈｕｍａｎ  ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ）、Ｂａｓｉｃ  ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ（ｂＦＧＦ）１０ｎｇ／ｍｌを連日添加、Ｅｐｉｄｅｒｍａｌ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ（ＥＧＦ）１０ｎｇ／ｍｌを連日添加）、培養容器（ｏｎ−ｔｒｅａｔｅｄ  ｐｏｌｙｓｔｙｒｅｎｅ  ｄｉｓｈ）において、浮遊したままの状態で、５％  ＣＯ２、３７℃で培養を継続した。
この方法による中胚葉幹細胞から神経幹細胞への分化誘導の確認は、中胚葉系細胞のマーカーであるＳＨ２やＳＨ３が消え（神経幹細胞のマーカーであるｎｅｓｔｉｎはもともと陰性）、その代わり、神経幹細胞のマーカーであるｎｅｓｔｉｎが陽性となることで行った（図１３）。
中胚葉幹細胞から神経幹細胞への分化誘導により、培養細胞は形態的にも変化した。具体的には、単一細胞だった細胞がニューロスフィア（ｎｅｕｒｏｓｐｈｅｒｅ）を形成した（図７）。また、この神経幹細胞から、神経細胞（ＮＳＥ陽性）やグリア細胞（ＧＦＡＰ陽性）が分化してくることも確認した（図１４）。
（２）中胚葉幹細胞から神経細胞やグリア細胞への誘導〔１〕
培養している上記の中胚葉幹細胞の培養液を、新しい培養液（ＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  ｍｏｄｉｆｉｅｄ  ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  ｍｅｄｉｕｍ）５０％、Ｆ−１２  ５０％、ＦＳＣ  １％）若しくは培養液２（ＮＰＢＭ（Ｎｅｕｒａｌ  ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ  ｃｅｌｌ  ｂａｓａｌ  ｍｅｄｉｕｍ：Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ）、２％  Ｎｅｕｒａｌ  ｓｕｒｖｉｖａｌ  ｆａｃｔｏｒｓ（Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ）、１０ｎｇ／ｍｌ  ｈＥＧＦ（ｈｕｍａｎ  Ｅｐｉｄｅｒｍａｌ  ｇｒｏｗｔｈ  ｆａｃｔｏｒ）、０．２％  Ｇｅｎｔａｍｙｃｉｎｅ−ａｍｐｈｏｔｅｒｉｃｉｎＢ、１０ｎｇ／ｍｌ  ｈＦＧＦ）に変えて、約４週間程度培養する方法によって、中胚葉幹細胞から直接的に（神経幹細胞への転換をせずに）神経細胞やグリア細胞へ分化誘導させることに成功した。
（３）中胚葉幹細胞から神経細胞やグリア細胞への誘導〔２〕
中胚葉幹細胞から神経系細胞への分化誘導は、以下のようにして行うことも可能である。神経誘導については過去の文献に準じて行った（ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ  ｒｅｓｅａｒｃｈ  ６１：３６４−３７０，２０００）。まずＭＳＣ  ＫＹ  ｈＴＥＲＴの細胞数調製を行った。具体的には、１０ｃｍ  ｄｉｓｈであらかじめ培養し、７０−８０％コンフルエントの時点で、上清を吸引、ＰＢＳ  ５ｍｌで洗浄後、Ｔｒｙｐｓｉｎ−ＥＤＴＡ  １ｍｌを加えて、細胞を回収した。２１０ｇ，１０分の遠心で細胞をペレットにして、２ｘ１０４ｃｅｌｌ／１ｍｌ  １０％胎児ウシ血清含有ＤＭＥＭになるように、細胞濃度を調製した。６ウエルプレートに２ｍｌずつ（４ｘ１０４ｃｅｌｌ）播き、２４時間後に１０％胎児ウシ血清含有ＤＭＥＭを除き、１ｍＭの２−ＭＥを含んだ１０％胎児ウシ血清含有ＤＭＥＭ  ２ｍｌに培地を替えた（前誘導）。さらに２４時間後に血清を除いて以下の３種の神経誘導を行った。
▲１▼１ｍＭの２−ＭＥを含んだＤＭＥＭ  ２ｍｌ、▲２▼１０ｍＭの２−ＭＥを含んだＤＭＥＭ  ２ｍｌ、▲３▼２００μＭのｂｕｔｈｙｌａｔｅｄ  ｈｙｄｒｏｘｙａｎｉｓｏｌｅ（ＢＨＡ，Ｓｉｇｍａ）と２％ｄｉｍｅｔｈｙｌｓｕｌｆｏｘｉｄｅ（ＤＭＳＯ，ＮＡＣＡＬＡＩ）を含んだＤＭＥＭ  ２ｍｌ。以上の培地で２４時間誘導後形態観察を行った。
その結果、▲１▼平らな細胞質を持ったＭＳＣ  ＫＹ  ｈＴＥＲＴは細胞質が退縮し、２極あるいは多極を有しながら隣接する細胞と連絡を取り合うような形態を示した。▲２▼▲３▼ほぼ同様の形態をもつ細胞が▲１▼に比べ、多く見られた。このような形態変化は過去の文献と同様な所見を呈しており、さらなる解析として、神経のマーカーの免疫染色を行った。抗体はＧｌｉａｌ  ｆｉｂｒｉｌｌａｒｙ  ａｃｉｄｉｃ  ｐｒｏｔｅｉｎ（ＧＦＡＰ，Ｃａｐｐｅｌ），Ｍｙｅｌｉｎ  ｂａｓｉｃ  ｐｒｏｔｅｉｎ（ＭＢＰ，Ｃｈｅｍｉｃｏｎ），Ｎｅｕｒｏｎ  ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｅｎｏｌａｓｅ（ＮＳＥ，ＡＲＰの３種類で、それぞれ原液の５０倍、２００倍、２００倍希釈して使用した。また免疫染色にはＶｅｃｔａｓｔａｉｎ  Ｅｌｉｔｅ  ＡＢＣ  ｋｉｔ（ＶＥＣＴＯＲ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）と、さらに基質としてＤＡＢ基質キット（ＶＥＣＴＯＲ  ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ）を用いた。固定は２％パラホルムアルデヒド、内在性ペルオキシダーゼ阻害薬として０．３％過酸化水素を用いた。なお神経誘導は前述通りとして、免疫染色も誘導２４時間後に行った。
［実施例９］  神経再生能の評価
上記分化誘導方法によって得られた神経系細胞の神経再生能力に関しては、脳梗塞モデル、痴呆モデル、脊髄損傷モデル、脱髄モデルでの検討の結果、脳から抽出・培養した神経幹細胞と同じ程度の再生能力があることが判明した（図１５）。
［実施例１０］  ニューロスフィア（Ｎｅｕｒｏｓｐｈｅｒｅ）様細胞の神経細胞分化
上記実施例と同様の方法によって、ｈＴＥＲＴ遺伝子を導入することにより不死化された中胚葉幹細胞である間葉系幹細胞（ＭＳＣ−ｈＴＥＲＴ）、同じくｈＴＥＲＴ遺伝子を導入したストローマ細胞（Ｓｔｒｏｍａ−ｈＴＥＲＴ）、ＰＤＦ細胞、Ｈｅｌａ細胞、ＨｅｐＧ２の各細胞を浮遊後、Ｎｅｕｒａｌ  Ｐｒｏｇｅｎｉｔｅｒ  ｂａｓａｌ  ｍｅｄｉｕｍ／Ｎｏｎ−ｔｒｅａｔｅｄ  Ｄｉｓｈで培養した。４８時間後に細胞の形態を観察したところ、ＭＳＣ−ｈＴＥＲＴ細胞、Ｓｔｒｏｍａ−ｈＴＥＲＴ細胞、ＰＤＦ細胞がスフィア様を呈していた（図１６）。
また、上記各細胞を本発明の方法で神経幹細胞へ分化誘導後、すなわち、浮遊させた状態でＮｅｕｒａｌ  Ｐｒｏｇｅｎｉｔｅｒ  ｂａｓａｌ  ｍｅｄｉｕｍ／Ｎｏｎ−ｔｒｅａｔｅｄ  Ｄｉｓｈで、１日、２日、５日間培養後、ｔｏｔａｌ  ＲＮＡを調製し、ＲＴ−ＰＣＲにてｎｅｓｔｉｎの発現を観察した。
１０％  ＦＢＳ含有ＤＭＥＭで培養をそのまま継続したものを対照とした。この方法による中胚葉幹細胞から幹細胞への分化誘導の確認は、実施例８記載のように、神経幹細胞のマーカーであるｎｅｓｔｉｎが陽性となることで行った。
その結果、ＭＳＣ−ｈＴＥＲＴ、ＭＳＣ、Ｓｔｒｏｍａ−ｈＴＥＲＴ、ＰＤＦの２日間および５日間培養細胞のレーンに、ｎｅｓｔｉｎの発現が観察された（図１７）。
［実施例１１］神経細胞への分化、ニューロスフィア形成
実施例１０で使用した各細胞を、５ｘ１０４個／ウェルになるように、１０％  ＦＢＳ含有ＤＭＥＭ  ６ウェルに播いた。一晩培養後、１０％  ＦＢＳ含有ＤＭＥＭに１ｍＭ  β−ＭＥを添加した培地に交換し、更に一晩培養した。次いで、２％  ＤＭＳＯ／２００μＭ  ｂｕｔｙｌａｔｅｄ  ｈｙｄｒｏｘｙａｎｉｓｏｌｅ（ＢＨＡ）を含んだＤＭＥＭ培地に交換し誘導を行った。４日後に細胞を回収し、ｔｏｔａｌ  ＲＮＡを抽出し、ＲＴ−ＰＣＲを行った。
また上記各細胞を、ＮＰＢＭ（ＦＧＦ（２０ｎｇ／ｍｌ）およびＥＧＦ（２０ｎｇ／ｍｌ））培地を用いたノンコートディッシュ容器に５ｘ１０５個／１０ｃｍディッシュとなるように播き、ニューロスフィアを形成させた。４日後に細胞を回収し、各細胞を１ｘ１０５個／ウェル（ｐｏｌｙ−Ｄ−ｌｙｓｉｎｅ／ｌａｍｉｎｉｎｅ  ｃｏａｔｅｄ  ６ウェル）ＮＰＢＭ（ＦＧＦ，ＥＧＦ（−））に播いた。１０日後に細胞を回収し、ｔｏｔａｌ  ＲＮＡを調整し、ＲＴ−ＰＣＲを行った。
試料中のｃＤＮＡ濃度の差を補正するため、補正用内部標準としてグリセルアルデヒド３リン酸脱水素酵素（ＧＡＰＤＨ）遺伝子について同様の解析を行った。
その結果、ＭＳＣ−ｈＴＥＲＴから誘導した神経細胞（図１８レーン６；ＢＨＡ，ＤＭＳＯ）、およびＭＳＣ−ｈＴＥＲＴから神経幹細胞を経由して神経細胞へと分化誘導した細胞において（図１８レーン１３；ＮＰＢＭ（−）ＰＤＬ／ｌａｍｉｎｉｎ）ＮＦ−Ｍの発現が特に強く見られた。
［実施例１２］Ｎｅｓｔｉｎの発現
ＭＳＣ−ｈＴＥＲＴにＮｅｓｔｉｎが陽性になると、ＥＧＦＰが発現するベクターを遺伝子導入し、細胞株を作成した。ｉｎ  ｖｉｔｒｏにて神経幹細胞への分化誘導を行い、共焦点レーザー顕微鏡によって細胞を観察したところ、Ｎｅｓｔｉｎ陽性のＭＳＣ−ｈＴＥＲＴは、緑色の蛍光を発することが確認された（図１９）。
さらに、ＲＴ−ＰＣＲによってもＮｅｓｔｉｎの発現が確認された（図２０）。
産業上の利用の可能性
本発明によって、中胚葉幹細胞またはＥＳ細胞から神経系細胞への分化誘導方法、中胚葉幹細胞を増殖させることで十分量の細胞を獲得し、さらに、神経幹細胞および神経系細胞へ効率的に分化誘導させる新規な方法、該方法により得られる神経系細胞、該神経系細胞を含む神経系疾患の治療のための組成物、および該組成物を用いた神経系疾患の治療方法が提供された。
通常のヒト培養中胚葉幹細胞は、培養条件下での増殖がある程度、制限されてしまうのに対し、本発明におけるｈＴＥＲＴ遺伝子を導入した中胚葉幹細胞は、非常に多量に安定して増やすことが可能であり、しかも、ガン遺伝子等を導入して不安定化した際に見られる細胞そのものの形質転換は認められず、もとの細胞の性質を保持したままの不死化を実現できる。また、十分な増殖が得られた後、ｈＴＥＲＴ遺伝子を取り去ることも可能である。
本発明の方法は、中枢性および末梢性の脱髄疾患、中枢性および末梢性の変性疾患、脳卒中（脳梗塞、脳出血、クモ膜下出血を含む）、脳腫瘍、痴呆を含む高次機能障害、精神疾患、てんかん、外傷性の神経系疾患（頭部外傷、脳挫傷、脊髄損傷を含む）、炎症性疾患、感染性疾患（例えばヤコブ病など）、並びに脊髄梗塞などの各種神経疾患の治療に大きく貢献するものである。また、本発明はより一般的で、広領域の脳神経損傷に対する神経移植・再生療法への応用も可能であると考えられる。すなわち、中枢性および末梢性の脱髄疾患、中枢性および末梢性の変性疾患、脳卒中（脳梗塞、脳出血、クモ膜下出血を含む）、脳腫瘍、痴呆を含む高次機能障害、精神疾患、てんかん、外傷性の神経系疾患（頭部外傷、脳挫傷、脊髄損傷を含む）、炎症性疾患、感染性疾患（例えばヤコブ病など）、並びに脊髄梗塞への自家移植療法に応用可能である。
さらに、本発明の分化誘導方法は、中胚葉幹細胞から神経系細胞への分化の機序を解く糸口を提供している。このような分化を規定する遺伝子が同定・解析されれば、それら遺伝子を利用して中胚葉幹細胞を効率良く、また十分量、神経系細胞へ形質転換させることが可能となる。従って、神経組織の再生を促すための「遺伝子治療」が可能になるものと大いに期待される。
また、本発明の方法は、創薬のための機能検査、毒性検査、ｃＤＮＡクローニングへの応用が期待される。神経に働く治療薬の創薬のための機能検査や毒性検査、ヒト由来の神経系細胞の機能を修飾するような新規ｃＤＮＡを探索するときなど、細胞を用いたアッセイ系には、通常、多数の神経細胞を必要とするが、ヒト神経細胞の充分な供給は従来極めて困難であった。また、マウスなどの細胞から不死化細胞株を得ることは従来から比較的簡単ではあったが、ヒト以外の動物細胞とヒト神経細胞との種による差異（ｓｐｅｃｉｅｓ  ｓｐｅｃｉｆｉｃｉｔｙ）は高い場合が多く、動物細胞や動物個体を用いる実験結果では、ヒト細胞の代替としてヒトに適用することが困難な場合が多かった。当発明の方法と細胞を用いれば、すべての実験を遂行するに充分なだけのヒト神経系細胞を、容易に大量に調製することが可能であり、しかも本来のヒト神経細胞の性質や機能を保持した状態で調製することができる。創薬のための機能検査、毒性検査、ｃＤＮＡクローニングへの応用において、従来は、量的に制限されるために不可能であった方法に関して、飛躍的な技術革新が期待できる。
例えば、これまで、化合物（薬）の機能検査や毒性検査はラットなどの実験動物へ投与することで行われてきたが、ラットでの実験結果がヒトには当てはまらないことが多々あり、ヒトの試料を用いた実験が切望されてきた。その中でも特に、ヒトの神経系細胞の入手は非常に困難であるので、十分量のヒトの神経系細胞を入手できれば、ヒト神経系細胞を用いた機能検査や毒性検査が容易となり、創薬に非常に有用となる。われわれの不死化ヒトＭＣＳで多量の細胞を獲得し、それを本発明の方法で神経系細胞へと誘導することにより、多量のヒト神経系細胞を獲得することができる。
さらに、本発明においては中胚葉細胞から神経系細胞へと誘導する技術を呈示しているが、この際、変化する遺伝子をクローニングすることで、増殖・分化を制御する遺伝子の同定が期待できる。また、同研究においては、多量の細胞が必要であるが、本発明の方法により不死化したヒトＭＣＳを多量に入手できるので、遺伝子クローニングも施行しやすい、などの利点がある。
【図面の簡単な説明】
図１は、培養中胚葉幹細胞を示す写真である。中胚葉系細胞のマーカーであるＳＨ３を発現してはいるが（Ａ）、神経幹細胞のマーカーであるｎｅｓｔｉｎは陰性である（Ｂ）。培養条件下での分化誘導後、形態学的にも神経幹細胞様に変化し、また、中胚葉系細胞のマーカーであるＳＨ３が陰性化し（Ｃ）、神経幹細胞のマーカーであるｎｅｓｔｉｎは陽性となる（Ｄ）。スケールバーは、Ａ，Ｂでは１０μｍを示し、Ｃ，Ｄでは２００μｍを示す。
図２は、中胚葉幹細胞を培養条件下で神経幹細胞へ分化誘導し、さらに続けて分化誘導すると、神経細胞（Ａ，Ｄ）、アストロサイト（Ｂ，Ｅ）、オリゴデンドロサイト（Ｃ，Ｆ）へと分化することを示す写真である。ＤはＮＳＥ（ｎｅｕｒｏｎ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｅｎｏｌａｓｅ）、ＥはＧＦＡＰ（ｇｌｉａｌ  ｆｉｂｒｉｌｌａｒｙ  ａｃｉｄｉｃ  ｐｒｏｔｅｉｎ）、ＦはＧａｌＣ（ｇａｌａｃｔｏｃｅｒｅｂｒｏｓｉｄｅ）で免疫染色した写真である。スケールバーは２５μｍを示す。
図３は、移植細胞が脳梗塞巣を修復したことを示す写真である。中胚葉幹細胞を培養条件下で神経幹細胞へ分化誘導したドナー細胞はＬａｃＺ遺伝子（大腸菌βガラクトしデースを発現する）で遺伝的にマークしてあり、基質のＸ−ｇａｌで処理すると反応し青色を発色する。したがって、ドナー細胞をホスト脳組織内で追跡することが可能である。ラット脳梗塞モデル（中大脳動脈一時閉塞モデルで、大脳基底核、側頭葉、海馬等が脳梗塞に陥る）にＬａｃＺ遺伝子でマークしたドナー細胞を移植した結果、脳梗塞に陥った大脳基底核、側頭葉、海馬等に生着し、組織修復を行った。
図４は、移植細胞が脊髄損傷部位を修復したことを示す写真である。ラット脊髄損傷モデル（第一胸髄レベルで横断したモデル）にＬａｃＺ遺伝子でマークしたドナー細胞を移植した結果、ドナー細胞は損傷を受けた部位ばかりか、脳（Ａ）、頚髄（Ｂ）、腰髄（Ｃ）のへも遊走し、組織修復を行った。Ｄ，Ｅ，ＦはＡ，Ｂ，Ｃを高倍率で観察した写真である。Ａ，Ｂ，Ｃ，Ｄ，Ｅ，Ｆにおけるスケールバーは、Ａ，Ｂ，Ｃでは２００μｍを示し、Ｄ，Ｅ，Ｆでは１０μｍを示す。
図５は、移植細胞が脊髄脱髄部位を修復したことを示す写真である。Ａは、成人中胚葉幹細胞由来より誘導した神経幹細胞を成熟ラット脊髄脱髄領域へ移植後、再有髄化を示す写真である。Ｂは再有髄化軸索を高倍率で観察した写真である。Ａ，Ｂ，Ｃ，Ｄ，Ｅ，Ｆにおけるスケールバーは、Ａ，Ｂ，Ｃでは２５０μｍを示し、Ｄ，Ｅ，Ｆでは１０μｍを示す。
図６は、ＥＳ細胞から誘導した神経幹細胞で、ｎｅｓｔｉｎ陽性のニューロスフィア（ｎｅｕｒｏｓｐｈｅｒｅ）の写真である。
図７は、ストローマ細胞への遺伝子導入に用いるベクターの構成を示す図である。
図８は、ストローマ細胞へのトランスフェクションを模式的に示す図である。
図９は、中胚葉幹細胞（初代培養：ｐｒｉｍａｒｙ  ｃｕｌｔｕｒｅ）と、ｈＴＥＲＴ導入により不死化した中胚葉幹細胞の細胞分裂世代数を示す図である。
図１０は、ｈＴＥＲＴ導入により不死化した中胚葉幹細胞（Ａ）と、不死化した中胚葉幹細胞から分化誘導された脂肪細胞（Ｂ：Ｏｉｌ  Ｒｅｄ  Ｏ染色）を示す写真である。
図１１は、ｈＴＥＲＴ導入により不死化した中胚葉幹細胞（Ａ）と、不死化した中胚葉幹細胞から分化誘導された軟骨芽細胞（Ｂ：Ａｌｃｉａｎ  ｂｌｕｅ染色）を示す写真である。染色（凍結切片）軟骨基質内のコンドロイチンが青く染まる。
図１２は、ｈＴＥＲＴ導入により不死化した中胚葉幹細胞（Ａ）と、不死化した中胚葉幹細胞から分化誘導された骨芽細胞（Ｂ：ｖｏｎ  Ｋｏｓｓａ染色；ミネラルの沈着）を示す写真である。
図１３は、ｈＴＥＲＴ導入により不死化した中胚葉幹細胞から分化誘導したネスチン陽性の神経幹細胞を示す写真である。スケールバーは、１００μｍを示す。
図１４は、ｈＴＥＲＴ導入により不死化した中胚葉幹細胞から分化誘導した神経幹細胞から更に分化誘導したＮＳＥ陽性の神経細胞（Ａ）とＧＦＡＰ陽性のグリア細胞（Ｂ）を示す写真である。スケールバーは、Ａでは２０μｍを示し、Ｂでは１０μｍを示す。
図１５は、ｈＴＥＲＴ導入により不死化した中胚葉幹細胞を移植することにより、脊髄脱髄部位が修復されたことを示す写真である。Ａは、ｈＴＥＲＴ遺伝子が導入された中胚葉幹細胞を成熟ラット脊髄脱髄領域へ移植後、再有髄化したことを示す写真である。Ｂは、再有髄化軸索を高倍率で観察した写真である。スケールバーは、Ａでは２５０μｍを示し、Ｂでは１０μｍを示す。
図１６は、各細胞を本発明方法によって神経幹細胞へ分化誘導を試みた結果を示す写真である。各細胞を浮遊させ、Ｎｅｕｒａｌ  Ｐｒｏｇｅｎｉｔｅｒ  Ｂａｓａｌ  ｍｅｄｉｕｍ／Ｎｏｎ−ｔｒｅａｔｅｄ  Ｄｉｓｈで培養し、４８時間後に観察したところ、各細胞とも浮遊状態での生存が可能であったが、ＭＳＣ−ｈＴＥＲＴ、Ｓｔｒｏｍａ−ｈＴＥＲＴ、ＰＤＦのみがｎｅｕｒｏｓｐｈｅｒｅ様を呈した。
図１７は、各細胞を本発明方法によって神経幹細胞へ分化誘導を試みた後、ｔｏｔａｌ  ＲＮＡを調整し、ＲＴ−ＰＣＲにてＮｅｓｔｉｎの発現を確認した写真である。レーンＡは、ＤＭＥＭ−１０％ＦＢＳ：ｃｕｌｔｕｒｅ  ｄｉｓｈ、ＢはＮＰＢＭ：Ｎｏｎ−ｔｒｅａｔｅｄ−Ｄｉｓｈ／１ｄａｙ、ＣはＮＰＢＭ：Ｎｏｎ−ｔｒｅａｔｅｄ  Ｄｉｓｈ／２ｄａｙ、ＤはＮＰＢＭ：Ｎｏｎ−ｔｒｅａｔｅｄ  Ｄｉｓｈ／５ｄａｙである。ＮＰＢＭは、Ｎｅｕｒａｌ  Ｐｒｏｇｅｎｉｔｅｒ  ｂａｓａｌ  ｍｅｄｉｕｍを指す。
図１８は、ＭＳＣから誘導した神経幹細胞が神経細胞へ分化した様子をＲＴ−ＰＣＲで確認した写真である。上段はＧＡＰＤＨ（ＧＡＰＤＨをｉｎｔｅｒｎａｌ  ｃｏｎｔｒｏｌとして使用）で補正した結果、下段はニューロフィラメント（ＮＦ）のサブユニットであるＮＦ−Ｍによる結果を示す。レーン１はＤＤＷ、２は神経幹細胞（Ｎｅｕｒａｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ）、３はＭＳＣ−ｈＴＥＲＴ、４はＳｔｒｏｍａ−ｈＴＥＲＴ、５はＰＤＦ−ｈＴＥＲＴ、６はＭＳＣ−ｈＴＥＲＴ  ＢＨＡ，ＤＭＳＯ、７はＳｔｒｏｍａ−ｈＴＥＲＴ  ＢＨＡ，ＤＭＳＯ、８はＰＤＦ−ｈＴＥＲＴ  ＢＨＡ，ＤＭＳＯ、９はＭＳＣ−ｈＴＥＲＴ  ＮＰＢＭ（−）、１０はＳｔｒｏｍａ−ｈＴＥＲＴ  ＮＰＢＭ（−）、１１はＰＤＦ−ｈＴＥＲＴ  ＮＰＢＭ（−）、１２はＮＳＣ  ＮＰＢＭ（−）ＰＤＬ／ｌａｍｉｎｉｎ、１３はＭＳＣ−ｈＴＥＲＴ  ＮＰＢＭ（−）ＰＤＬ／ｌａｍｉｎｉｎ、１４はＳｔｒｏｍａ−ｈＴＥＲＴ  ＮＰＢＭ（−）ＰＤＬ／ｌａｍｉｎｉｎ、１５はＰＤＦ−ｈＴＥＲＴ  ＮＰＢＭ（−）ＰＤＬ／ｌａｍｉｎｉｎを指す。
図１９は、ＭＳＣ−ｈＴＥＲＴにＮｅｓｔｉｎがＰｏｓｉｔｉｖｅになると、ＥＧＦＰが発現するベクターを遺伝子導入し、本発明の方法で神経幹細胞への分化誘導した結果を示す写真である。共焦点レーザー顕微鏡による観察では、ＭＳＣ−ｈＴＥＲＴは神経幹細胞への分化誘導前には発現していなかったＥＧＦＧが、誘導後はＥＧＦＰを強発現するようになることが観察された。
図２０は、ＲＴ−ＰＣＲにてＭＳＣ−ｈＴＥＲＴのＮｅｓｔｉｎ発現を確認した写真である。レーン１；ＭＳＣ−ｈＴＥＲＴにＮｅｓｔｉｎエンハンサー／プロモーターＥＧＦＰを導入した細胞、レーン２；ＭＳＣ−ｈＴＥＲＴにＮｅｓｔｉｎエンハンサー／プロモーターＥＧＦＰを導入し神経幹細胞へ分化誘導した細胞。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【国際調査報告】
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