(57)【要約】ＣＴＬ活性、ＮＫＴ活性、ＮＫ活性の測定のための新規な方法を提供し、その測定法を使い各測定結果の検定の意味するところを分析し、ＣＴＬ活性、ＮＫＴ活性、ＮＫ活性の癌治療における各意義を見出すこと。具体的には、本発明はＣＴＬ活性、ＮＫＴ活性、ＮＫ活性の測定のための新規な方法の提供に成功し、その測定法を使い各測定結果の検定の意味するところを分析し、ＣＴＬ活性、ＮＫＴ活性、ＮＫ活性の癌治療における各意義を新規に見出し、本発明からなる新免疫療法を達成した。【特許請求の範囲】
【請求項１】
末梢血中のリンパ球について、以下の少なくとも１の測定を行う新免疫療法におけるヒトの免疫機能の測定方法；
１）ＣＤ８（＋）パーフォリン産生能、
２）ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）、
３）ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能、
４）ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）、
５）ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能。
【請求項２】
各測定の意味が以下である請求項１の測定方法；
１）ＣＤ８（＋）パーフォリン産生能の測定の意味する機能がＣＴＬ活性の測定、
２）ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の測定の意味する機能がＮＫ細胞の測定、
３）ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能の測定の意味する機能がＮＫ細胞の活性化の測定、
４）ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）の測定の意味する機能がＮＫＴ細胞の測定、
５）ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能の測定の意味する機能がＮＫＴ細胞の活性化の測定。
【請求項３】
ＣＤ８（＋）パーフォリン産生能の測定を含むＣＴＬ活性化剤のスクリーニング方法。
【請求項４】
請求項３のスクリーニング方法で得られるＣＴＬ活性化能を担持する新規β１，３グルカン。
【請求項５】
請求項３のスクリーニング方法で得られるβ１，３グルカンを含むＣＴＬ活性化剤。
【請求項６】
ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能の測定を含むＮＫ活性化剤のスクリーニング方法。
【請求項７】
請求項６のスクリーニング方法で得られるＮＫ活性化能を担持する新規α１，３グルカン。
【請求項８】
請求項６のスクリーニング方法で得られるα１，３グルカンを含むＮＫ活性化剤。
【請求項９】
請求項１のＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）、ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能、ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）、ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能を同時に測定することを特徴とする、ＮＫ細胞とＮＫＴ細胞の動態の測定法。
【請求項１０】
ＮＫ細胞とＮＫＴ細胞の活性化が、逆相関にあることによる請求項９の方法を含むＮＫ活性化剤又はＮＫＴ活性剤の分別的スクリーニング方法。
【請求項１１】
請求項１０のスクリーニング方法で得られるＮＫ活性化能又はＮＫＴ活性化能を担持する新規α１，３グルカン。
【請求項１２】
請求項１０のスクリーニング方法で得られるα１，３グルカンを含むＮＫ活性化剤又はＮＫＴ活性化剤。
【請求項１３】
請求項９の測定法による癌種とＮＫ細胞及びＮＫＴ細胞の動態との相関の検定方法。
【請求項１４】
請求項１３の検定を伴い、抗がん剤、放射線、及びステロイド治療の少なくとも１との併用で使用するα１，３グルカンを含むＮＫ細胞又はＮＫＴ細胞の活性化剤。
【請求項１５】
請求項１〜１４の何れか一に記載の情報を利用したガン患者のサンプルでのガンの検査方法。
【請求項１６】
請求項１〜１４の何れか一に記載の情報を利用したガン患者のサンプルでのガンの診断方法。
【請求項１７】
請求項１〜１４の何れか一に記載の情報を利用したガン患者のサンプルでのガンの治療方法。
【請求項１８】
請求項１〜１７の何れか一に記載の情報を自然法則を利用した媒体に担持した商業用媒体。
【請求項１９】
請求項１８の商業用媒体を利用した商業方法。
【発明の詳細な説明】
本出願は、参照によりここに援用されるところの、日本特許出願番号２００１−３１２０５１からの優先権を請求する。
技術分野
本発明は、末梢血中のリンパ球の動態に着目した新免疫療法のための新規な手段の提供に関する。より詳しくは、ＣＴＬ活性、ＮＫ活性、及びＮＫＴ活性と末梢血中のリンパ球の動態の相関性を検定することからなる新免疫療法におけるヒトの免疫機能の測定方法に関する。
背景技術
がん（ｍａｌｉｇｎａｎｔ  ｎｅｏｐｌａｓｍｓ）（ｃａｎｃｅｒ）の予防又は治療のために有用な物質の選別には、従来、がん細胞へのその直接的作用が重要視されていた。免疫賦活剤ががん治療に有用であることは認められていたが、免疫賦活剤として得られた化合物はいずれもその抗がん効果が微弱であり、免疫療法単独又は化学療法との併用治療によってもがんの十分な治療効果は達成されていない。
本発明者の医学博士、八木田は、先にがん治療における画期的な手法として、インターロイキン１２（ＩＬ−１２）を生体内で誘発する物質の有用性に着目し、椎茸菌糸体加工物がその機能を有することを発見し、新免疫療法（Ｎｏｖｅｌ  Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｙ  ｆｏｒ  ｃａｎｃｅｒ）（ＮＩＴＣ）ともいうべきがん治療法を確立した。従来ＩＬ−１２は、抗がん効果があるものの生体内にＩＬ−１２自体を直接投与した場合には副作用を生じるために患者が治療に耐えられないという事実があり、それ自体を抗がん剤として使用できなかった。しかし、八木田が報告した椎茸菌糸体加工物を含む製剤は、がんの治療において著しい治癒・延命効果を達成した。つまり八木田は、ＩＬ−１２を生体内で誘発できる有効量の椎茸菌糸体加工物を投与することにより、がんの治療目的を達成した（特開平１０−１３９６７０号公報）。
ＩＬ−１２は、ＴＮＦα→ＩＦＮＹ→ＩＬ−１２→ＣＴＬ活性というルートでキラーＴ細胞の活性化効果と増強効果をもつ。つまりＩＬ−１２の産生増強は、キラーＴ細胞の活性化と増強効果が得られるため、その結果として抗がん効果が期待される。
八木田は、ＩＬ−１２の産生増強の系とは別にＮＫＴ細胞の活性化が抗がん効果に有用であることを報告している。谷口等は、ＮＫＴ細胞が有するＶα２４Ｖβ１１という特異的なＴ細胞抗原受容体（ＴＣＲ）が認識する特異的な糖脂質抗原を発見し、この抗原が、αガラクトシルセラミドであることを報告している。更に、αガラクトシルセラミドを投与した担がんマウスでは、ＮＫＴ細胞が活性化され、がんの消失はみられないものの転移が抑制されることを証明した。
ＮＫＴ細胞には、もう一つの受容体としてＮＫ細胞抗原受容体（ＮＫＲ−Ｐ１；ナチュラルキラー受容体Ｐ１）があることは報告されている（特集  ＮＫＴ細胞の基礎と臨床：最新医学５５巻４号２０００年８１８〜８２３ページ）。ＮＫＲ−Ｐ１もＮＫＴ細胞の活性化に関与し、この活性化が抗がん効果がより優位であることを八木田は見出している。
ＮＫ細胞についても生体の抗がん作用に係わるという報告がなされているが、これまでＮＫ細胞の活性と臨床的な抗がん効果とが相関せず、ＩＬ−１２の産生誘発量とＮＫ細胞の活性とが完全な逆相関を示すことが八木田により証明されており、ヒトにおける抗がん作用についてのＮＫ細胞の関与は疑問視されていた。
発明の開示
本発明は前記の如き、ＣＴＬ活性、ＮＫＴ活性、ＮＫ活性の測定のための新規な方法を提供し、その測定法を使い各測定結果の検定の意味するところを分析し、ＣＴＬ活性、ＮＫＴ活性、ＮＫ活性の癌治療における各意義を見出すことによって、新免疫療法の完成を課題とする。
本発明は、ＣＴＬ活性、ＮＫＴ活性、ＮＫ活性の測定のための新規な方法の提供に成功し、その測定法を使い各測定結果の検定の意味するところを分析し、ＣＴＬ活性、ＮＫＴ活性、ＮＫ活性の癌治療における各意義を新規に見出し、本発明からなる新免疫療法を達成した。
すなわち本発明は、
１．末梢血中のリンパ球について、以下の少なくとも１の測定を行う新免疫療法におけるヒトの免疫機能の測定方法；
１）ＣＤ８（＋）パーフォリン産生能、
２）ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）、
３）ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能、
４）ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）、
５）ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能、
２．各測定の意味が以下である前項１の測定方法；
１）ＣＤ８（＋）パーフォリン産生能の測定の意味する機能がＣＴＬ活性の測定、
２）ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の測定の意味する機能がＮＫ細胞の測定、
３）ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能の測定の意味する機能がＮＫ細胞の活性化の測定、
４）ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）の測定の意味する機能がＮＫＴ細胞の測定、
５）ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能の測定の意味する機能がＮＫＴ細胞の活性化の測定、
３．ＣＤ８（＋）パーフォリン産生能の測定を含むＣＴＬ活性化剤のスクリーニング方法、
４．前項３のスクリーニング方法で得られるＣＴＬ活性化能を担持する新規β１，３グルカン、
５．前項３のスクリーニング方法で得られるβ１，３グルカンを含むＣＴＬ活性化剤。
６．ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能の測定を含むＮＫ活性化剤のスクリーニング方法、
７．前項６のスクリーニング方法で得られるＮＫ活性化能を担持する新規α１，３グルカン、
８．前項６のスクリーニング方法で得られるα１，３グルカンを含むＮＫ活性化剤、
９．前項１のＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）、ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能、ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）、ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能を同時に測定することを特徴とする、ＮＫ細胞とＮＫＴ細胞の動態の測定法、
１０．ＮＫ細胞とＮＫＴ細胞の活性化が、逆相関にあることによる前項９の方法を含むＮＫ活性化剤又はＮＫＴ活性剤の分別的スクリーニング方法、
１１．前項１０のスクリーニング方法で得られるＮＫ活性化能又はＮＫＴ活性化能を担持する新規α１，３グルカン、
１２．前項１０のスクリーニング方法で得られるα１，３グルカンを含むＮＫ活性化剤又はＮＫＴ活性化剤、
１３．前項９の測定法による癌種とＮＫ細胞及びＮＫＴ細胞の動態との相関の検定方法、
１４．前項１３の検定を伴い、前立腺癌に対して使用されるα１，３グルカンを含むＮＫ細胞活性化剤、
１５．前項１３の検定を伴い、肺癌に対して使用されるα１，３グルカンを含むＮＫ細胞活性化剤、
１６．前項１３の検定を伴い、抗がん剤、放射線、及びステロイド治療の少なくとも１との併用で使用するα１，３グルカンを含むＮＫ細胞又はＮＫＴ細部の活性化剤、
１７．前項１〜１６の何れか一に記載の情報を自然法則を利用した媒体に担持した商業用媒体、
１８．前項１７の商業用媒体を利用した商業方法、
からなる。
発明を実施するための最良の形態
以下、本発明を詳しく説明するが、本明細書中で使用されている技術的及び科学的用語は、別途定義されていない限り、本発明の属する技術分野において通常の知識を有する者により普通に理解される意味を持つ。
本発明は、臨床における結果とサイトカインの相関性を検討することにより行われた。本発明者は、新免疫療法（ＮＩＴＣ）として、進行末期がん患者に茸菌糸体由来物と血管新生阻害作用物質（サメ軟骨）を併用し、ＩＬ−１２、ＩＦＮＹ他の各種マーカーを測定した。そして癌が治癒若しくは長期間悪化しない状態にある症例では、ＣＤ８（＋）パーフォリン産生は、ＩＦＮＹ及びＩＬ−１２の産生とは強い正の相関性が存在することを見出した。この結果、ＣＤ８（＋）パーフォリン産生の測定はＣＴＬ活性ルートの評価において意義があることを見出した。但し、ＣＤ８（＋）細胞にはＣＴＬ（キラーＴ細胞）とサプレッサーＴ細胞（免疫抑制細胞）とが含まれる。すなわち、細胞表面マーカーであるＣＤ８を有する細胞としては、この２種類が知られている。現時点では、細胞表面マーカーによりこの両者を区別することは不可能である。ＣＤ８（＋）パーフォリンも同様であるが、図１から図８に示した如く、癌が治癒若しくは長期間悪化しない状態にある症例（図中ＣＲ＋ＰＲ＋及びＣＲ＋ＰＲ＋ＬＮＣ）では、Ｔｈ１サイトカインのＩＦＮＹ及びＩＬ−１２と正の相関を示し、逆に癌が進行した症例や悪化しない状態が短期間である症例（図中ＰＤ及びＳＮＣ）では、逆相関を示した。この事実は、ＣＲ、ＰＲ、及びＬＮＣの患者におけるＣＤ８（＋）パーフォリン細胞ではＣＴＬであることを意味する。逆に、ＳＮＣ及びＰＤ症例で観察されたＣＤ８（＋）パーフォリン細胞はサプレッサーＴ細胞であると考えられる。すなわち、Ｔｈ１サイトカインが抗腫瘍性を発揮している状態、具体的にはＩＦＮＹが１０ＩＵ／ｍｌ以上若しくはＩＬ−１２が７．８ｐｇ／ｍｌ以上産生されている環境にあるＣＤ８（＋）又はＣＤ８（＋）パーフォリンはＣＴＬであり、ＩＦＮＹが１０ＩＵ／ｍｌ以下若しくはＩＬ−１２が７．８ｐｇ／ｍｌ以下しか産生されない環境におけるＣＤ８（＋）又はＣＤ８（＋）パーフォリンはサプレッサーＴ細胞である。従って、ＣＴＬ活性ルートの評価においてＣＤ８（＋）又はＣＤ８（＋）パーフォリンを測定するときには、ＩＦＮＹ及び／又はＩＬ−１２を併せて測定することが重要である。
上記意義を見出したことによりＣＤ８（＋）パーフォリン産生能の測定は、有用なＣＴＬ活性化剤のスクリーニング方法に適用可能であり、このスクリーニング方法を利用すればＣＴＬ活性化能を担持するβ１，３グルカンの特定が可能であることも見出した。本発明では、β１，３グルカン構造を持つ茸菌糸体組成物製剤（例えばＩＬＸ、ＩＬＹ：（株）東西医薬研究所  いずれも商品登録）が、ＣＤ８（＋）パーフォリン産生能の活性化に有効であることを確認し、これらがＣＴＬ活性化に有効であることを再確認した。その他β１，３グルカン構造を持つ化合物は種々知られており、この既知構造とＣＤ８パーフォリン産生能の測定を組み合わせれば当業者は容易にＣＴＬ活性化剤を特定可能である。
本発明では、ＮＫ細胞の意義をＮＫＴ細胞との関係から新規に確立した。その確立のために、本発明者はＮＫ細胞の新規測定法を提供した。それはＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の測定が、既知クローム・リリース法での結果との対比により、正確なＮＫ細胞の測定であることを見出した。また、ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能の測定は、ＮＫ細胞の活性化を意味しており、さらにこの活性化が特に有効なガン種は前立腺ガンであることを見出した。かくして、ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能の測定を含む方法は、ＮＫ活性化剤のスクリーニング方法として有用であり、さらに、本発明では、α１，３グルカン構造を持つニゲロオリゴ糖、フコイダン等の組成物製剤が、ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能の活性化に有効であることを確認し、これらがＮＫ細胞の活性化に有効であることを再確認した。このスクリーニング方法で得られるＮＫ活性化能を担持する新規α１，３グルカンは制ガン剤として有用であり、その他α１，３グルカン構造を持つ化合物は種々知られており、この既知構造とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能の測定を組み合わせれば当業者は容易にＮＫ活性化剤を特定可能である。
さらに本発明では、ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）、ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能、ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）、ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能を同時に測定し、ＮＫ細胞とＮＫＴ細胞の動態の測定法を実施することの意義も見出した。つまり、本発明者は、この測定を利用して分析した結果、ＮＫ細胞とＮＫＴ細胞の活性化が、両方とも前記α１，３グルカン構造を持つ化合物によって有効であることを見出した。ＮＫ細胞とＮＫＴ細胞とは共通のＮＫＲ−Ｐ１（ＣＤ１６１（＋））表面マーカーを持ち、ＮＫＲ−Ｐ１受容体を持っている。ＣＤ１６１（＋）受容体はα１，３グルカンで活性化される。従って、ＮＫ細胞とＮＫＴ細胞ともにα１，３グルカンで活性化され得る。癌患者においては、ＮＫ細胞は１〜２ヶ月で活性化しその後その活性が低下し、ＮＫＴ細胞は３〜４ヶ月で活性化する。また、ＮＫ細胞とＮＫＴ細胞の活性化は、両者において逆相関の関係、つまりＮＫ細胞が活性化するとＮＫＴ細胞は抑制され、ＮＫＴ細胞が活性化されるとＮＫ細胞が抑制されることを見出した。この結果、両系は相互に補い合いの関係にあり、がんの種類、患者適合性、例えば患者の免疫能の状態、制癌剤の投与時期、及び治療に用いるα１，３グルカン構造等によって、制がん剤は選択して利用されるべきことを見出した。本発明においては、上記測定法利用し、上記測定法を含むＮＫ活性化剤又はＮＫＴ活性剤の分別を可能とするスクリーニング方法を提供できる。本発明では、α１，３グルカン構造を持つニゲロオリゴ糖、フコイダン、及び／又はアサクサノリに代表されるスサビノリ等の組成物製剤が有用であることを確認した。かくして、このスクリーニング方法で得られるＮＫ活性化能又はＮＫＴ活性化能を担持する新規α１，３グルカンは制がん剤として有用であり、その他α１，３グルカン構造を持つ化合物は種々知られており、この既知構造とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）、ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能、ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）、ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能の測定を組み合わせれば当業者は容易にＮＫ活性化剤又はＮＫＴ活性化剤を特定可能である。なおＣＤ１６１（＋）はＮＫ細胞及びＮＫＴ細胞の共通の受容体ＮＫＲ−Ｐ１に作用することを意味する。
本発明による測定法を利用し、癌種とＮＫ細胞及びＮＫＴ細胞の動態との相関の検定をおこなったところ、ＮＫ細胞がその治癒に寄与する癌種は前立腺癌と一部の肺癌、及び一部の胃癌であり、ＮＫＴ細胞がその治癒に寄与する癌種は大部分の肺癌と一部の胃癌であることが示唆された。また、その中間型として、乳癌、及び大腸癌が分類されることが判明した。さらに、α１，３グルカンを含むＮＫ細胞活性化剤は前立腺癌と一部の肺癌、及び一部の胃癌に対して特異的に有用であり、一方、α１，３グルカンを含むＮＫＴ細胞活性化剤は大部分の肺癌と一部の胃癌に対して特異的に有用であることを確認した。
上記のように、本発明の測定法を単独であるいは組み合わせて利用することにより、癌患者における免疫能を測定し、その測定結果と癌の種類とを鑑みて、有効な治療方法及び治療に使用する医薬及び医薬組成物を選択することにより、従来よりはるかに有効な癌の治療効果が得られる。
さらに、本発明の測定法を踏まえて、ＣＴＬ、ＮＫ細胞、ＮＫＴ細胞、を識別し得る各細胞が有する特徴や各種マーカーに関連する遺伝子、例えばＣＤ３、ＣＤ８、ＣＤ１６１、パーフォリン、ＩＬ−１２、ＩＦＮＹ等の遺伝子を測定することにより、本発明の測定法と同等の結果及び効果が得られると考えられる。すなわち、これら遺伝子を測定することによる、上記本発明に係る測定方法、上記本発明に係るスクリーニング方法、及び該スクリーニング方法で得られた物質も本発明の範囲に含まれる。
本発明者は、さらに本発明による測定法を利用し、ＮＫ細胞の活性化及びＮＫＴ細胞の活性化と抗がん剤、放射線、及びステロイド治療の併用の影響を確認したところ、ＣＴＬ活性化においては重大な影響があったものが、これらＮＫ細胞及びＮＫＴ細胞の活性化には抗がん剤、放射線、及びステロイド治療の併用の影響は通常の投与法、投与量では見られないことを見出した。その結果、ＮＫ細胞活性化剤及びＮＫＴ細胞活性化剤による癌治療にあっては、抗がん剤、放射線、及びステロイド治療との併用が可能であり、より一層の制癌効果が達成される。
抗腫瘍免疫能力には２種類の免疫系が係わっており、その一つは▲１▼ＴＮＦα（腫瘍壊死因子α）→ＩＦＮＹ→ＩＬ−１２→キラーＴ細胞（ＣＴＬ）の系統（ＣＴＬ活性化）であり、他の一つは▲２▼ＮＫＴ細胞活性化系統又はＮＫ細胞活性化の系統である。これまでの新免疫療法（ＮＩＴＣ）ではこの２系統に対して同程度の治療成績が認められている。すなわち上記▲１▼ＩＬ−１２→キラーＴ細胞活性→アポトーシスの系統が活性化された結果として治療効果が得られた例と、上記▲２▼ＮＫＴ細胞活性化の系統又はＮＫ細胞活性化の系統が活性化された結果として治療効果が得られた例とが認められている。
抗がん剤、放射線、あるいはステロイド併用療法を行った場合、上記２種類の免疫系のうち、ＴＮＦα→ＩＦＮＹ→ＩＬ−１２→キラーＴ細胞の系統が著しく障害される。一方、ＮＫＴ細胞活性化の系統及びはＮＫ細胞活性化の系統は全く障害されていないことを新たに見いだした。
この現象に立脚しがん治療法を新たに組みなおすことにより、本発明の別の態様を完成した。すなわち、抗がん剤、放射線、あるいはステロイド併用療法をがん治療に組み込むときは、上記▲２▼の免疫系が強力であれば併用療法は可能であり治療効果は良好となる。しかし上記▲２▼の免疫系が弱く上記▲１▼の免疫系のみが強い場合、併用療法は失敗することが予想される。この場合は、本発明に係るＮＫＴ細胞又はＮＫ細胞の活性化物質であるα１，３糖（α１，３立体構造の糖類物質）の投与、すなわち上記▲１▼の免疫系を強化するα１，３糖の併用が必要となる。若しくは抗がん剤を投与するとき、上記▲１▼の免疫系を障害しない投与法である低濃度化学療法すなわち５ＦＵ、ＵＦＴ、ミフロール、フルツロン、ＣＤＤＰ（５μｇ〜１０μｇ）の低濃度やタキソテールあるいはタキソール、アドリアマイシン、マイトマイシン、ＣＰＴ−１１などの低濃度抗がん剤の投与法等を適用することが不可欠である。また同様に放射線療法において低容量照射の適用、ステロイド療法においても低濃度投与等を選択する必要がある。
従って抗がん剤、放射線、あるいはステロイド療法を行う場合は、これらの療法を施される対象の各種免疫能力の測定は不可欠であり、その測定結果を踏まえて上記▲２▼の免疫系が強力な場合はこれを温存するべくＮＫＴ細胞又はＮＫ細胞の活性化能を有する物質すなわちα１，３立体構造を有する糖類物質の投与が必要であり、上記▲２▼の系統の免疫力が減弱している場合はさらにα１，３立体構造を有する糖類物質の大量投与あるいは直接体内投与、例えば注射による投与が必要となる。また上記▲１▼の系統の免疫能力のみが作用している場合は、上記▲１▼の免疫系を障害しない程度の抗がん剤投与すなわち低濃度投与若しくは抗がん剤投与による上記▲１▼免疫系をすみやかに立ち上げる方法をこうじるべく上記▲１▼免疫系の強化すなわちＩＬ−１２誘導物質の大量投与が必要となる。
以上のような情報は、ガン患者から摘出したサンプルにおいて、各ガン作用に対応するマーカーを測定し、その測定値をガンの組織別及び／又は組織型別に分析し、もって、各ガンの組織別及び／又は組織型別に処方を選択することを特徴とするガンの検査方法、診断方法、及び治療方法を提供した。
またこれらの情報は、自然法則を利用した媒体に担持すれば商業用媒体となり、またその商業用媒体は有用な商業方法を提供する。
α１，３立体構造の糖類物質としては、例えば、ニゲロオリゴ糖（ＴＳＯ）、フコイダン、硫酸オリゴ糖等が挙げられる。
ニゲロオリゴ糖は、３−Ｏ−α−Ｄ−グルコピラノシル−Ｄ−グルコースを構成単位として含有する糖類である。代表的なものとしては、ニゲロース、ニゲロシルグルコース、ニゲロシルマルトース等が挙げられる。
また、市販されているニゲロオリゴ糖としては、ニゲロオリゴ糖液糖（販売者・武田食品工業株式会社）が挙げられるが、これが含有する主なニゲロオリゴ糖は▲１▼ニゲロース  α−Ｄ−Ｇｌｃｐ−（１，３）−Ｄ−Ｇｌｃ  ▲２▼ニゲロシルグルコース  α−Ｄ−Ｇｌｃｐ−（１，３）−α−Ｄ−Ｇｌｃｐ−（１，４）−Ｄ−Ｇｌｃ  ▲３▼ニゲロシルマルトース  α−Ｄ−Ｇｌｃｐ−（１，３）−α−Ｄ−Ｇｌｃｐ−（１，４）−α−Ｄ−Ｇｌｃｐ−（１，４）−Ｄ−Ｇｌｃ（なお、Ｇｌｃはグルコース、ｐはピラノースの略号である）である。
フコイダンは、狭義ではフコースの２乃至６分子に硫酸１分子が結合した硫酸化フコース含有多糖類であり、これにキシロースあるいはウロン酸を含有したフコイダン様多糖体を食品レベルで「フコイダン」と称している。フコイダンは、例えばコンブを破砕し、チップ化し、水溶液成分を抽出した後、抽出残渣を遠心分離により除去し、ヨードや塩化ナトリウム等の低分子物質を限外ろ過により除去して凍結乾燥化して製剤化される。
フコイダンとしては、褐藻類由来フコイダン、例えばガゴメコンブ由来のフコイダン、及びオキナワモズク由来フコイダン等が例示される。ガゴメコンブ等の褐藻類コンブ科由来のフコイダンには少なくとも３種類のフコイダン、Ｆ−フコイダン（α−Ｌ−フコースのポリマー）、Ｕ−フコイダン（β−Ｄ−グルクロン酸とα−Ｄ−マンノースを主鎖とし、側鎖にα−Ｌ−フコースをもつ）、Ｇ−フコイダン（β−Ｄ−ガラクトースを主鎖とし、側鎖にα−Ｌ−フコースをもつ）、が存在しており、いずれのフコイダンもフコースが硫酸化されている。
硫酸オリゴ糖としては、例えば株式会社白子製のスサビノリ（Ｐｏｒｙｐｈｙｒａ  Ｙｅｚａｅｎｓｉｓ）由来の抽出物があげられる。該抽出物の主成分はα１，３結合のガラクタン硫酸のオリゴ糖とα１，３結合及びβ１，４結合よりなるガラクタン硫酸のオリゴ糖である。
本発明のＣＴＬ活性化剤、ＮＫ活性化剤、ＮＫＴ活性化剤は、本発明の測定法を伴い、その適用法を選別することで肺癌（肺扁平上皮癌、肺腺癌、小細胞肺癌）、胸腺腫、甲状腺癌、前立腺癌、腎癌、膀胱癌、結腸癌、直腸癌、食道癌、盲腸癌、尿管癌、乳癌、子宮頸癌、脳腫瘍、舌癌、咽頭癌、鼻腔癌、喉頭癌、胃癌、肝癌、胆管癌、精巣癌、卵巣癌、子宮体癌、転移性骨癌、悪性黒色腫、骨肉腫、悪性リンパ腫、形質細胞腫、脂肪肉腫等の治療に有効であるが、これらのがんに限定されない。
本発明に係るＣＴＬ活性化剤（ＩＬ−１２産生誘導剤、ＩＮＦＹ産生誘導剤）、ＮＫ活性化剤、ＮＫＴ活性化剤は、本発明の測定法による結果を指標として、その活性化を誘導または増強し、さらに活性化を維持できる処方にて用いられる。すなわち、指標をもとに、その活性化を誘導または増強し、さらに活性化を維持できる投与量、ならびに投与期間を選択して用いられる。具体的には、その投与量は、ＮＫ活性化剤又はＮＫＴ活性化剤であるα−１，３グルカン構造を持つ化合物は１ｇ〜４０ｇ／日程度、好ましくは５ｇ〜２０ｇ／日程度で、ＣＴＬ活性化剤（ＩＬ−１２産生誘導剤、ＩＮＦＹ産生誘導剤）であるβ−１，３グルカン構造を持つ化合物は１ｇ〜１０ｇ／日程度、好ましくは３ｇ〜６ｇ／日程度である。また、投与期間は一般的には１０日間〜２４ヶ月間、投与頻度は１〜３回／日で、好ましくは連日投与である。当該ＣＴＬ活性化剤、ＮＫ活性化剤、ＮＫＴ活性化剤は、好適には経口摂取される。無論、投与量を減少させ、これらを非経口に耐え得る品質に調製することで、非経口摂取（静脈内又は筋肉内投与などを含む）も可能である。
細胞及び各マーカーの測定方法を以下に例示する。
（ＮＫＴ細胞の測定）（ＮＫ細胞の測定）（ＣＤ８の測定）
ＮＫＲ−Ｐ１を有するＮＫＴ細胞の測定は、ＮＫＴ細胞の細胞表面に特異的に存在する細胞表面抗原（ＣＤ３及びＣＤ１６１）の測定により行うことができる。具体的には、末梢血中のリンパ球について、ＣＤ３が陽性でかつＣＤ１６１が陽性（ＣＤ３＋ＣＤ１６１＋）の細胞を検定する。つまり、ＮＫＴ細胞の細胞表面抗原であるＣＤ３及びＣＤ１６１を、モノクローナル抗体を用いてフローサイトメトリーを使用するＴｗｏ  Ｃｏｌｏｒ検査により測定する。ここでＮＫＴ細胞が活性化されているとは、リンパ球の中で（ＣＤ３＋ＣＤ１６１＋）ＮＫＴ細胞の割合が１０％以上、より好ましくは１６％以上であることをいう。ＮＫＴ細胞活性化能とは、ＮＫＴ細胞の割合を１０％以上、より好ましくは１６％以上に増加せしめる機能、又はある物質を投与する前のＮＫＴ細胞の割合より更に増強せしめる機能を意味する。
同様に（ＣＤ３−ＣＤ１６１＋）とはＣＤ３が陰性でかつＣＤ１６１が陽性の細胞を検定することである。この方法が本発明ではＮＫ細胞の測定に有用であることを確認した。
さらにＣＤ８＋とはＣＤ８が陽性の細胞を検定することである。この方法が本発明ではＣＴＬ活性の測定に有用であることを確認した。
実施例ではがん患者の血液を用いて、血中細胞について細胞表面抗原であるＣＤ３、ＣＤ１６１、ＣＤ８について陽性・陰性で区別し、各細胞の割合を、フローサイトメトリーを用いたＴｗｏ  Ｃｏｌｏｒ検査により常法通り測定した。このときＣＤ３、ＣＤ１６１、ＣＤ８に対するモノクローナル抗体は、それぞれコールター社製製又はベクトンディッキンソン社製ものを使用した。
（パーフォリン産生細胞の測定）
末梢血中のリンパ球について、細胞表面抗原であるＣＤ３、ＣＤ８、ＣＤ１６１のうち２者とパーフォリンについてフローサイトメトリーを用いたＴｈｒｅｅ  Ｃｏｌｏｒ検査により常法通り測定する。具体的には、採取した血液に固定液を加えて細胞を固定し、膜透過液を添加後抗パーフォリン抗体（Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ社製）を添加して反応させ、さらにＰＲＥ−Ｃｙ５標識二次抗体（ＤＡＫＯ社性）を添加して反応させ、ついで抗ＣＤ３−ＰＥ（Ｃｏｕｌｔｅｒ  ６６０４６２７）抗体及び抗ＣＤ１６１−ＦＩＴＣ（Ｂ−Ｄ）抗体を添加して反応させ、その後フローサイトメトリーで測定する。このパーフォリン産生が有意であることが、ＮＫ細胞又はＮＫＴ細胞の各活性化されていることを意味する。図中での略語はＰＥＲＦと表示した。
（既存のＮＫ細胞活性の測定法）
既知の方法は、クロームリリーズ法である（５１Ｃｒで標識された標的細胞（Ｋ−５６２）にエフェクター細胞（ＮＫ細胞）を加えて培養し、標識細胞障害により遊離した５１ＣＲを測定することによって活性値を算出する）（Ｍｅｄ  Ｔｅｃｈｎｏｌ  ２１（７）５７４〜５８０（１９９３））。
（サイトカインを測定するための試料の調製）
まず、血液より単核球画分を分離調製する。ヘパリン加末梢血をリン酸緩衝生理食塩水（Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ  Ｂｕｆｆｅｒｅｄ  Ｓａｌｉｎｅ）（ＰＢＳ）で２倍に希釈して混和した後、Ｆｉｃｏｌｌ−Ｃｏｎｒａｙ液（比重１．０７７）上に重層し、４００Ｇで２０分間遠沈後、単核球画分を採取する。洗浄後、１０％牛胎児血清（ＦＢＳ）を加えたＲＰＭＩ−１６４０培地を加え、細胞数を１×１０６個となるように調製する。得られた細胞浮遊液２００μｌにフィトヘマグルチニン（Ｐｈｙｔｏｈｅｍａｇｇｌｕｔｉｎｉｎ）（ＤＩＦＣＯ社製）を２０μｇ／ｍｌの濃度となるように加え、９６穴マイクロプレートにて５％ＣＯ２存在下、３７℃で２４時間培養し、該培養した細胞溶液中のサイトカインを測定する試料とする。
（ＩＬ−１２の測定）
ＩＬ−１２量の測定は自体公知の臨床、生化学的検査を利用できるが、Ｒ＆Ｄ  ＳＹＳＴＥＭＳ社やＭＢＬ社より入手することのできる酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）による測定キットが使用される。ここではＲ＆Ｄ  ＳＹＳＴＥＭＳ社の測定キットを用いた。実際には９６穴マイクロプレートの各穴に測定用希釈液Ａｓｓａｙ  Ｄｉｌｕｅｎｔ  ＲＤ１Ｆを５０μｌ、標準液（ｓｔａｎｄａｒｄ）又は実施例１で調製した試料を２００μｌずつ分注した後、室温にて静置して２時間反応させた。その後、西洋わさびパーオキシダーゼ（ｈｏｒｓｅ  ｒａｄｉｓｈ  ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ）（ＨＲＰ）標識抗ＩＬ−１２抗体を２００μｌずつ分注し２時間室温で静置した。各穴の反応液を除去し３回洗浄後、発色基質溶液を２００μｌずつ分注し、２０分間室温静置後、酵素反応停止溶液を５０μｌずつ分注した。５５０ｎｍを対照として４５０ｎｍにおける各穴の吸光度をＥｍａｘ（和光純薬株式会社製）にて測定した。ＩＬ−１２量は、ｐｇ／ｍｌとして表される。ここでＩＬ−１２産生誘発能とは、末梢血単核球画分が刺激により産生するＩＬ−１２量を、７．８ｐｇ／ｍｌ以上に増強せしめる機能、又はある物質を投与する前のＩＬ−１２産生量より増強せしめる機能を意味する。
（ＩＦＮＹの測定）
ＩＦＮＹの測定は、ＢｉｏＳｏｕｒｃｅ  Ｅｕｒｏｐｅ  Ｓ．社のＩＦＮＹ  ＥＡＳＩＡキットを用いて、酵素免疫測定法（ＥＩＡ法）で測定した。実際には９６穴マイクロプレートの各穴に標準液（ｓｔａｎｄａｒｄ）又は上記調製した試料を２倍希釈したものを５０μｌずつ分注し、ＨＲＰ標識抗ＩＦＮ−Ｙ抗体を５０μｌずつ分注し更に振盪しながら２時間室温で反応させた。各穴の反応液を除去し３回洗浄後、発色基質溶液を２００μｌずつ分注し、振盪しながら１５分間室温で反応させ、酵素反応停止溶液を５０μｌずつ分注した。６３０ｎｍを対照として４５０ｎｍ及び４９０ｎｍにおける各穴の吸光度をＥｍａｘ（和光純薬株式会社製）にて測定した。ＩＦＮＹ量は、ＩＵ／ｍｌとして表される。
実施例
以下に、実施例を用いて本発明を具体的に説明するが、本発明は本実施例に限定されるものではない。
実施例１
患者には、ＩＬＸ（（株）東西医薬研究所）、サメ軟骨（セイシン企業）、及びα１，３構造をもつ糖類（ニゲロオリゴ糖）が、各推奨処方により投与された。図中ＣＲ、ＰＲ、ＬＮＣ、ＳＮＣ、ＮＣ、ＰＤは癌治療における通常の分類の意味により使用した。図１〜８は、１０３症例におけるＩＬ−１２産生誘発量（ｐｇ／ｍｌ）（縦軸）とＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の細胞率（％）（横軸）の関係を示す。図１の全体、図５のＳＮＣ、図６のＮＣ、図７のＰＤ、図８の初診では両者に相関は全くみとめられなかったが、図２（ＣＲ＋ＰＲ）、図３（ＣＲ＋ＰＲ＋ＬＮＣ）、図４（ＬＮＣ）の治療有効例では両者に相関が確認された。図９〜１６は、１０３症例におけるＩＮＦＹ産生誘発量（ＩＵ／ｍｌ）（縦軸）とＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の細胞率（％）（横軸）の関係を示す。図９の全体、図１３のＳＮＣ、図１４のＮＣ、図１５のＰＤ、図１６の初診では両者に相関は全くみとめられなかったが、図１０（ＣＲ＋ＰＲ）、図１１（ＣＲ＋ＰＲ＋ＬＮＣ）、図１２（ＬＮＣ）の治療有効例では両者に相関が確認された。この結果、ＩＬ−１２誘発産生及びＩＮＦＹ産生誘発は、ＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の測定系と同義であり、ひいてはＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の測定はＣＴＬ活性化測定を意味していることを証明した。
実施例２
実施例１と同様の処置患者群（９８症例）でＮＫ活性測定法（従来法）と本発明のＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）測定の意義を検討した。図１７〜２６はＮＫ細胞活性（％）とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）（％）の関係、図２７〜３２はＮＫ活性（％）とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）Ｐ（＋）〔Ｐ（＋）はパーフォリン産生の意味〕（％）の関係を示す。この結果、従来法によるＮＫ活性測定は、ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）及びＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の測定系と同義であり、ひいてはＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の測定はＮＫ活性化測定を意味していることを証明した。
実施例３
実施例１と同様の処置患者群（１４８症例）で、特にα１，３構造化合物としてニゲロオリゴ糖（ＴＯＧ）を推奨処置で投与した症例について、ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）を測定し、ＴＯＧ投与開始前後の比較及び有効例と無効例での比較をおこなった。図３３は、ＣＲ＋ＰＲ症例の有効例で、ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）が高値を示すことを示した。つまり、α１，３構造の糖類はＮＫ細胞の活性化を達成することを見出した。
実施例４
実施例１と同様の処置患者群（９８症例）でＮＫ細胞活性〔従来法又は本発明のＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）測定〕とＮＫＴ細胞活性〔ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）〕の意義を検討した。図３４〜３９はＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）〔横軸：ＮＫ細胞活性〕（％）とＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）〔縦軸：ＮＫＴ細胞活性〕（％）の関係を示し、いずれも逆の相関を示す。図４０〜４５は、従来法〔縦軸：ＮＫ細胞活性〕（％）とＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）Ｐ（＋）〔Ｐ（＋）はパーフォリン産生の意味〕〔横軸：活性化ＮＫＴ細胞〕の関係を示し、いずれも逆の相関を示す。図４６〜５１はＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）Ｐ（＋）〔Ｐ（＋）はパーフォリン産生の意味〕〔横軸：活性化ＮＫ細胞〕（％）とＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）Ｐ（＋）〔〔横軸：活性化ＮＫＴ細胞〕（％）の関係を示し、いずれも逆の相関を示す。
実施例５
実施例１と同様の処置患者群（１４８症例）で、癌の種類とＮＫＴ細胞又はＮＫ細胞の寄与の関係を多変量解析による偏回帰係数を求める手法により、各細胞の寄与と癌種の関係を分析した。その結果、前立腺癌では、ＮＫＴ細胞〔ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）〕の偏回帰係数がマイナス傾向であり、一方ＮＫ細胞〔ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）〕の偏回帰係数がプラス傾向であった。このことは、前立腺癌では、ＮＫ細胞の寄与が高く、ＮＫ細胞を指針にしてその活性化を図ることが有効な癌治療法であることを示唆した。同様に、肺癌では、ＮＫ細胞〔ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）〕の偏回帰係数がプラス傾向であり、ＮＫＴ細胞を指針にしてその活性化を図ることが有効な癌治療法であることを示唆した。
実施例６
実施例１と同様の処置患者群（２６症例）で、ステロイド治療（６例）、放射線治療（７例）、抗がん剤治療（１３例）を追加した後（約１ヵ月後）での各指標、ＮＫ細胞〔ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）〕、ＮＫＴ細胞〔ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）〕、ＩＮＦＹ誘発産生量、ＩＬ−１２誘発産生量を測定し、いずれの症例でもＮＫ細胞〔ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）〕、ＮＫＴ細胞〔ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）〕には影響なく、ＩＮＦＹ誘発産生量、ＩＬ−１２誘発産生量には有意の抑制効果が働くことを確認した（図５２〜５５）。
産業上の利用可能性
以上の実験及び実施例によれば、本発明のＮＫ細胞の活性化の測定法は従来のクローム・リリーズ法よりもより正確な結果が得られること、ＣＴＬ活性の新規な測定法を提供したこと、ＮＫ細胞はα１，３グルカンで活性化できること、ＮＫ細胞活性化とＮＫＴ細胞活性化は逆相関を示し個々に制がん系としての意義のあること、ガンの種類とＮＫ細胞活性化及びＮＫＴ細胞活性化には特異性のあること、ＮＫ細胞活性化及びＮＫＴ細胞活性化は抗がん剤、放射線、ステロイド治療で影響されないことを見出し、癌治療における画期的な成果を達成した。
【図面の簡単な説明】
【図１】ＩＬ−１２誘発産生とＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の相関を示す全症例（１０３例）の図である。
【図２】ＩＬ−１２誘発産生とＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＣＲ＋ＰＲ症例（２３例）の図である。
【図３】ＩＬ−１２誘発産生とＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＣＲ＋ＰＲ＋ＬＮＣ症例（３１例）の図である。
【図４】ＩＬ−１２誘発産生とＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＬＮＣ症例（１０例）の図である。
【図５】ＩＬ−１２誘発産生とＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＳＮＣ症例（３１例）の図である。
【図６】ＩＬ−１２誘発産生とＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＮＣ症例（４１例）の図である。
【図７】ＩＬ−１２誘発産生とＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＰＤ症例（１０例）の図である。
【図８】ＩＬ−１２誘発産生とＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の相関を示す初診症例（２６例）の図である。
【図９】ＩＮＦＹ誘発産生とＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の相関を示す全症例（１０３例）の図である。
【図１０】ＩＮＦＹ誘発産生とＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＣＲ＋ＰＲ症例（２６例）の図である。
【図１１】ＩＮＦＹ誘発産生とＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＣＲ＋ＰＲ＋ＬＮＣ症例（３６例）の図である。
【図１２】ＩＮＦＹ誘発産生ＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＬＮＣ症例（１０例）の図である。
【図１３】ＩＮＦＹ誘発産生とＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＳＮＣ症例（３１例）の図である。
【図１４】ＩＮＦＹ誘発産生とＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＮＣ症例（４１例）の図である。
【図１５】ＩＮＦＹ誘発産生とＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＰＤ症例（１０例）の図である。
【図１６】ＩＮＦＹ誘発産生とＣＤ８（＋）パーフォリン（＋）の相関を示す初診症例（２６例）の図である。
【図１７】従来法によるＮＫ細胞活性とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の相関を示す全症例（９８例）の図である。
【図１８】従来法によるＮＫ細胞活性とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の相関を示すＣＲ症例（７例）の図である。
【図１９】従来法によるＮＫ細胞活性とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の相関を示すＰＲ症例（６例）の図である。
【図２０】従来法によるＮＫ細胞活性とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の相関を示すＣＲ＋ＰＲ症例（１３例）の図である。
【図２１】従来法によるＮＫ細胞活性とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の相関を示すＬＮＣ症例（１５例）の図である。
【図２２】従来法によるＮＫ細胞活性とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の相関を示すＳＮＣ症例（１３例）の図である。
【図２３】従来法によるＮＫ細胞活性とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の相関を示すＮＣ症例（２８例）の図である。
【図２４】従来法によるＮＫ細胞活性とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の相関を示すＣＲ＋ＰＲ＋ＬＮＣ症例（２８例）の図である。
【図２５】従来法によるＮＫ細胞活性とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の相関を示すＰＤ症例（２４例）の図である。
【図２６】従来法によるＮＫ細胞活性とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の相関を示す初診症例（３３例）の図である。
【図２７】従来法によるＮＫ細胞活性とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示す全症例（９８例）の図である。
【図２８】従来法によるＮＫ細胞活性とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＣＲ＋ＰＲ症例（１３例）の図である。
【図２９】従来法によるＮＫ細胞活性とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＣＲ＋ＰＲ＋ＬＮＣ症例（２８例）の図である。
【図３０】従来法によるＮＫ細胞活性とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＮＣ症例（２８例）の図である。
【図３１】従来法によるＮＫ細胞活性とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＰＤ症例（２４例）の図である。
【図３２】従来法によるＮＫ細胞活性とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示す初診症例（３３例）の図である。
【図３３】ＴＯＧ投与症例におけるとＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の変動を示す図である。全症例（１４８例）、ＣＲ＋ＰＲ症例（４５例）、ＰＤ症例（６０例）を各示す。
【図３４】ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の相関を示す全症例（９８例）の図である。
【図３５】ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の相関を示すＣＲ＋ＰＲ症例（１３例）の図である。
【図３６】ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の相関を示すＣＲ＋ＰＲ＋ＬＮＣ症例（２８例）の図である。
【図３７】ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の相関を示すＮＣ症例（２８例）の図である。
【図３８】ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の相関を示すＰＤ症例（２４例）の図である。
【図３９】ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の相関を示す初診症例（３３例）の図である。
【図４０】従来法によるＮＫ細胞活性測定とＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示す全症例（９８例）の図である。
【図４１】従来法によるＮＫ細胞活性測定とＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＣＲ＋ＰＲ症例（１３例）の図である。
【図４２】従来法によるＮＫ細胞活性測定とＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＣＲ＋ＰＲ＋ＬＮＣ症例（２８例）の図である。
【図４３】従来法によるＮＫ細胞活性測定とＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＮＣ症例（２８例）の図である。
【図４４】従来法によるＮＫ細胞活性測定とＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＰＤ症例（２４例）の図である。
【図４５】従来法によるＮＫ細胞活性測定とＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示す初診症例（３３例）の図である。
【図４６】ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示す全症例（９８例）の図である。
【図４７】ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＣＲ＋ＰＲ症例（１３例）の図である。
【図４８】ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＣＲ＋ＰＲ＋ＬＮＣ症例（２８例）の図である。
【図４９】ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＮＣ症例（２８例）の図である。
【図５０】ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示すＰＤ症例（２４例）の図である。
【図５１】ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）とＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン（＋）の相関を示す初診症例（３３例）の図である。
【図５２】抗がん剤、放射線及びステロイドによる免疫能への影響として、ＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）（２３例）の推移を示す図である。
【図５３】抗がん剤、放射線及びステロイドによる免疫能への影響として、ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）（２３例）の推移を示す図である。
【図５４】抗がん剤、放射線及びステロイドによる免疫能への影響として、ＩＮＦＹ誘発産生量（２６例）の推移を示す図である。
【図５５】抗がん剤、放射線及びステロイドによる免疫能への影響として、ＩＬ−１２誘発産生量（２６例）の推移を示す図である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
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【図２２】
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【図２３】
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【図２４】
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【図２５】
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【図２６】
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【図２７】
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【図２８】
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【図２９】
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【図３０】
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【図３１】
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【図３２】
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【図３３】
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【図３４】
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【図３５】
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【図３６】
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【図３７】
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【図３８】
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【図３９】
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【図４０】
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【図４１】
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【図４２】
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【図４３】
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【図４４】
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【図４５】
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【図４６】
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【図４７】
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【図４８】
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【図４９】
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【図５０】
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【図５１】
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【図５２】
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【図５３】
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【図５４】
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【図５５】
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【手続補正書】
【提出日】平成15年6月27日(2003.6.27)
【手続補正１】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
末梢血中のリンパ球について、ＮＫ細胞の活性化の測定を意味する機能であるＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能及び／又はＮＫＴ細胞の活性化の測定を意味する機能であるＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能の測定を行う新免疫療法におけるヒトの免疫機能の測定方法。
【請求項２】
請求項１の免疫機能の測定方法において、さらに以下の少なくとも１つの測定を行う新免疫療法におけるヒトの免疫機能の測定方法。
１）ＣＴＬ活性の測定を意味する機能であるＣＤ８（＋）パーフォリン産生能の測定、
２）ＮＫ細胞の測定を意味する機能であるＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）の測定、
３）ＮＫＴ細胞の測定を意味する機能であるＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）の測定。
【請求項３】
ＣＤ８（＋）パーフォリン産生能の測定並びにＩＮＦＹ産生誘発量及び／又はＩＬ−１２産生誘発量を測定することを含むＣＴＬ活性化剤のスクリーニング方法。
【請求項４】
請求項３のスクリーニング方法で得られるＣＴＬ活性化能を担持する新規β１，３グルカン。
【請求項５】
請求項３のスクリーニング方法で得られるβ１，３グルカンを含むＣＴＬ活性化剤。
【請求項６】
ＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能の測定を含むＮＫ活性化剤のスクリーニング方法。
【請求項７】
請求項６のスクリーニング方法で得られるＮＫ活性化能を担持する新規α１，３グルカン。
【請求項８】
請求項６のスクリーニング方法で得られるα１，３グルカンを含むＮＫ活性化剤。
【請求項９】
ＮＫ細胞の測定を意味する機能であるＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）、ＮＫ細胞の活性化の測定を意味する機能であるＣＤ３（−）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能、ＮＫＴ細胞の測定を意味する機能であるＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）、ＮＫＴ細胞の活性化の測定を意味する機能であるＣＤ３（＋）ＣＤ１６１（＋）パーフォリン産生能を同時に測定することを特徴とする、ＮＫ細胞とＮＫＴ細胞の動態の測定法。
【請求項１０】
ＮＫ細胞とＮＫＴ細胞の活性化が、逆相関にあることによる請求項９の方法を含むＮＫ活性化剤又はＮＫＴ活性剤の分別的スクリーニング方法。
【請求項１１】
請求項１０のスクリーニング方法で得られるＮＫ活性化能又はＮＫＴ活性化能を担持する新規α１，３グルカン。
【請求項１２】
請求項１０のスクリーニング方法で得られるα１，３グルカンを含むＮＫ活性化剤又はＮＫＴ活性化剤。
【請求項１３】
請求項９の測定法による癌種とＮＫ細胞及びＮＫＴ細胞の動態との相関の検定方法。
【請求項１４】
請求項１３の検定を伴い、抗がん剤、放射線、及びステロイド治療の少なくとも１との併用で使用するα１，３グルカンを含むＮＫ細胞又はＮＫＴ細胞の活性化剤。
【請求項１５】
請求項１〜１４の何れか一に記載の情報を利用したガン患者のサンプルでのガンの検査方法。
【請求項１６】
請求項１〜１４の何れか一に記載の情報を利用したガン患者のサンプルでのガンの診断方法。
【請求項１７】
請求項１〜１４の何れか一に記載の情報を利用したガン患者のサンプルでのガンの治療方法。
【請求項１８】
請求項１〜１７の何れか一に記載の情報を自然法則を利用した媒体に担持した商業用媒体。
【請求項１９】
請求項１８の商業用媒体を利用した商業方法。
【国際調査報告】
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