(57)【要約】本発明は、中枢性タウ蛋白質を特異的に認識し、かつ、末梢性タウ蛋白質を認識しない抗体を提供する。より詳しくは、中枢組織において主たる部分を占めているタウ蛋白質のアイソフォームに特異的なエピトープとして、タウ蛋白質をコードする遺伝子のＥｘｏｎ４によりコードされるアミノ酸配列とＥｘｏｎ５によりコードされるアミノ酸配列の連結部分のアミノ酸配列を含むポリペプチドを抗原として得られる抗体を提供する。さらに、これらの抗体を用いたアルツハイマー病の検出方法及び試薬キットを提供する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
中枢性タウ蛋白質を特異的に認識し、かつ、末梢性タウ蛋白質を認識しないことを特徴とする中枢性タウ蛋白質特異的抗体。
【請求項２】
中枢性タウ蛋白質が、アルツハイマー病患者の体液において特異的に増加する蛋白質であることを特徴とする、請求項１に記載の抗体。
【請求項３】
中枢性タウ蛋白質に特異的なアミノ酸配列を含むポリペプチドを抗原として得られることを特徴とする請求項１又は２に記載の抗体。
【請求項４】
中枢性タウ蛋白質に特異的なアミノ酸配列が、タウ蛋白質をコードする遺伝子のＥｘｏｎ４によりコードされるアミノ酸配列とＥｘｏｎ５によりコードされるアミノ酸配列の連結部分のアミノ酸配列を含む配列であることを特徴とする請求項３に記載の抗体。
【請求項５】
連結部分のアミノ酸配列を含む配列が、配列表の配列番号：１に記載のアミノ酸配列のアミノ酸番号１２１〜１２８で表されるアミノ酸配列であることを特徴とする請求項４に記載の抗体。
【請求項６】
中枢性タウ蛋白質に特異的なアミノ酸配列を含むポリペプチドを抗原として動物を免疫し、得られた抗体と中枢性タウ蛋白質及び末梢性タウ蛋白質との反応性を解析し、中枢性タウ蛋白質に対して特異的な反応性を有する抗体を選択することを特徴とする中枢性タウ蛋白質特異的抗体の製造方法。
【請求項７】
タウオパチーの疑いのある個体から得られた試料中の中枢性タウ蛋白質の存在を、請求項１〜５のいずれかに記載の抗体を用いて解析することを特徴とするタウオパチーの検出方法。
【請求項８】
タウオパチーがアルツハイマー病である、請求項７に記載の方法。
【請求項９】
前記試料が、蛋白質可溶化剤の存在下で変性処理して夾雑蛋白質を除去する処理を行ったものであることを特徴とする請求項７又は８に記載の方法。
【請求項１０】
前記試料が、さらに濃縮処理を行ったものであることを特徴とする請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
試料が血液であることを特徴とする請求項７〜１０のいずれかに記載の方法。
【請求項１２】
中枢性タウ蛋白質の存在の解析が酵素免疫測定法により行われることを特徴とする請求項７〜１１のいずれかに記載の方法。
【請求項１３】
少なくとも請求項１〜５のいずれかに記載の抗体を含むことを特徴とするアルツハイマー病の検出を行うための試薬キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】  本発明は、中枢性タウ蛋白質を特異的に認識し、かつ、末梢性タウ蛋白質を認識しない抗体に関する。また、本発明は、試料中の中枢性タウ蛋白質の存在を解析することを特徴とするタウオパチーの検出方法、その中でも特にアルツハイマー病の検出方法、及び、試薬キットに関する。
【背景技術】  アルツハイマー病は初老期（４５〜６５才）に発病する進行性の痴呆であり、病的な変化として神経細胞の変質及び神経細胞数の減少による大脳皮質の萎縮が認められ、また、病理学的にはその脳内に多数の老人斑と神経原線維変化が認められる。６５才以上の老年期に発症するいわゆる自然老化による老年痴呆も、病理学的に何ら本質的な差は認められないため、アルツハイマー型老年痴呆と呼ばれている。この疾患の患者数は、高齢者人口の増加とともに増大し、社会的に重要な疾患となっている。しかし、この疾患の原因については諸説あるものの結果的には未だ不明であり、早期の解明が望まれている。
アルツハイマー病の病理変化のひとつである老人斑の主要成分は、アミロイドβプロテインであることが解明されている（Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．，１２，４６３−４９０（１９８９））。また、もうひとつの病理変化である神経原線維変化は、神経細胞内にペアード・ヘリカル・フィラメント（Ｐａｉｒｅｄ  Ｈｅｌｉｃａｌ  Ｆｉｌａｍｅｎｔ；以下、これを「ＰＨＦ」と称することがある）が蓄積してくるものであり、その構成成分のひとつとしてリン酸化タウ蛋白質が同定された（Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，９９，１８０７−１８１０（１９８６）；Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８３，４９１３−４９１７（１９８６））。
タウ蛋白質は、通常ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動で分子量４８〜６５ｋＤに数本のバンドを形成する一群の近縁蛋白質であり、微小管の形成を促進する蛋白質であるが、アルツハイマー病患者の脳中のＰＨＦに組み込まれたタウ蛋白質については、健常者の脳中のタウ蛋白質よりも異常にリン酸化されていることが、ＰＨＦに対するポリクローナル抗体（抗ｐ−ｔａｕ；Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，９９，１８０７−１８１０（１９８６））やタウ蛋白質に対するモノクローナル抗体（ｔａｕ−１；Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８３，４９１３−４９１７（１９８６））を用いて証明されている。さらに、ＰＨＦ中に組み込まれたリン酸化タウ蛋白質のリン酸化部位も決定される（特開平６−２３９８９３号公報）等、アルツハイマー病におけるタウ蛋白質の挙動の解明は進みつつある。
タウ蛋白質に関しては、既に、脳脊髄液中のタウ蛋白質濃度を測定するキット（日本国内の名称「フィノスカラーｈＴＡＵ」、欧米における名称「ＩＮＮＯＴＥＳＴ  ｈＴＡＵ  Ａｇ」；Ｉｎｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ社製）が市販され、臨床的に用いられている。また他方では、ＰＨＦ中のリン酸化タウ蛋白質のリン酸化部位に着目してアルツハイマー病を検出する方法も開発されている（Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．Ｌｅｔｔ．，２７０，９１−９４（１９９９）、Ａｎｎ．Ｎｅｕｒｏｌ．，５０，１５０−１５６（２００１））。これらの方法はいずれも試料として脳脊髄液を用いることとしており、試料採取時の患者への侵襲度の大きさが問題となっていた。そこで、患者への侵襲度の軽減や簡便さ等の面からも、脳脊髄液に限らず、血液をはじめとする種々の試料を用いても中枢性タウ蛋白質の解析が可能な、特異的かつ高感度のアルツハイマー病の検出方法が強く求められていた。
しかし、タウ蛋白質には数種のアイソフォームが存在し、脳等の中枢組織と筋肉等の末梢組織とでは、それぞれ主たる部分を占めるタウ蛋白質のアイソフォームが異なることが明らかになっている（Ｊ．Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ．，６７，１２３５−１２４４（１９９６））。例えば、末梢組織において主たる部分を占めているタウ蛋白質のアイソフォーム（以下、これを「末梢性タウ蛋白質」と称することがある）は、中枢組織において主たる部分を占めているアイソフォーム（以下、これを「中枢性タウ蛋白質」と称することがある）に比べて大きな分子量を有しており、血液試料等にはこの大きな分子量を有する末梢性タウ蛋白質が多量に含まれていることが示唆されている。
本発明者らは、血液を試料としたアルツハイマー病の検出方法を先に提案した（特開２００２−０４００２３号公報）。しかし、この方法はタウ蛋白質のアイソフォームの区別無くその全量を検出する方法であり、アルツハイマー病患者の脳で生じている中枢性タウ蛋白質の変化を特異的に解析できるものではなかった。例えば、これらの方法を用いて血液試料等を解析しようとすると、血液試料中に多量に含まれる分子量の大きな末梢性タウ蛋白質も強く反応して、中枢性タウ蛋白質の検出を妨害してしまい、十分な感度を得ることができないことがあった。
つまり、総蛋白質濃度が非常に高く夾雑物による妨害の大きい血液試料等については、微量にしか存在していない中枢組織由来のタウ蛋白質の解析が特に困難であり（Ｄｅｍｅｎｔ．Ｇｅｒｉａｔ．Ｃｏｎｇ．Ｄｉｓｏｒｄ．，１０，４４２−４４５（１９９９）；Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．Ｌｅｔｔ．，２７５，１５９−１６２（１９９９））、特異的かつ高感度のアルツハイマー病の検出方法は未だ確立されているとは言えなかった。
また、物忘れ等の自覚症状を有する軽度認知障害（Ｍｉｌｄ  Ｃｏｇｎｉｔｉｖｅ  Ｉｍｐａｉｒｍｅｎｔ：以下、これを「ＭＣＩ」と略記することがある）は、近年、アルツハイマー病の前駆症状であるとして注目されている。ＭＣＩであると判定された患者のうち、年に１０〜１５％、数年では約５０％がアルツハイマー病に移行すると言われており、ＭＣＩ患者に早期アルツハイマー病患者が含まれることが広く認識されつつある。しかし、現在ＭＣＩについては、問診や知的機能検査を中心とするＰｅｔｅｒｓｅｎ，Ｒ．Ｃ．等の基準（Ａｒｃｈ．Ｎｅｕｒｏｌ．５６：３０３−３０８，１９９９）等の診断基準に従った判定が行われており、客観的かつ明確な診断方法は確立されていない。さらには、このような従来法でＭＣＩと判定される患者群に含まれる早期アルツハイマー病患者を検出できるような方法はなく、これらの患者も含めたアルツハイマー病の明確な検出方法の確立が強く求められている。
【発明の開示】
本発明は、特異性に優れ、高感度かつ簡便なアルツハイマー病の検出方法を提供するためになされたものである。
本発明者らは、上記課題を達成するために鋭意検討を進めた結果、中枢性タウ蛋白質を特異的に認識し、かつ、末梢性タウ蛋白質を認識しない抗体を用いて解析を行えば、アルツハイマー病の検出が特異的かつ簡便に行えることを見いだした。さらに詳しくは、中枢組織において主たる部分を占めているタウ蛋白質のアイソフォームに特異的なエピトープとして、タウ蛋白質をコードする遺伝子のＥｘｏｎ４によりコードされるアミノ酸配列とＥｘｏｎ５によりコードされるアミノ酸配列の連結部分のアミノ酸配列を含むポリペプチドを抗原として得られる抗体を用いれば、中枢性タウ蛋白質を確実に解析することができ、かくして解析される中枢性タウ蛋白質の濃度は、アルツハイマー病患者から得られた試料において有意に変化していることを見いだした。本発明はこれらの知見に基づいて成し遂げられたものである。
すなわち本発明によれば、
（１）中枢性タウ蛋白質を特異的に認識し、かつ、末梢性タウ蛋白質を認識しないことを特徴とする中枢性タウ蛋白質特異的抗体、
（２）中枢性タウ蛋白質が、アルツハイマー病患者の体液において特異的に増加する蛋白質であることを特徴とする上記（１）に記載の抗体、
（３）中枢性タウ蛋白質に特異的なアミノ酸配列を含むポリペプチドを抗原として得られることを特徴とする上記（１）又は（２）に記載の抗体、
（４）中枢性タウ蛋白質に特異的なアミノ酸配列が、タウ蛋白質をコードする遺伝子のＥｘｏｎ４によりコードされるアミノ酸配列とＥｘｏｎ５によりコードされるアミノ酸配列の連結部分のアミノ酸配列を含む配列であることを特徴とする上記（３）に記載の抗体、
（５）連結部分のアミノ酸配列を含む配列が、配列表の配列番号：１に記載のアミノ酸配列のアミノ酸番号１２１〜１２８で表されるアミノ酸配列であることを特徴とする上記（４）に記載の抗体、及び
（６）中枢性タウ蛋白質に特異的なアミノ酸配列を含むポリペプチドを抗原として動物を免疫し、得られた抗体と中枢性タウ蛋白質及び末梢性タウ蛋白質との反応性を解析し、中枢性タウ蛋白質に対して特異的な反応性を有する抗体を選択することを特徴とする中枢性タウ蛋白質特異的抗体の製造方法
が提供される。
また、本発明の別の態様によれば、
（７）タウオパチーの疑いのある個体から得られた試料中の中枢性タウ蛋白質の存在を、上記（１）〜（５）のいずれかに記載の抗体を用いて解析することを特徴とするタウオパチーの検出方法、
（８）タウオパチーがアルツハイマー病である、（７）に記載の方法、
（９）前記試料が、蛋白質可溶化剤の存在下で変性処理して夾雑蛋白質を除去する処理を行ったものであることを特徴とする（７）又は（８）に記載の方法、
（１０）前記試料が、さらに濃縮処理を行ったものであることを特徴とする上記（９）に記載の方法、
（１１）試料が血液であることを特徴とする上記（７）〜（１０）のいずれかに記載の方法、及び
（１２）中枢性タウ蛋白質の存在の解析が酵素免疫測定法により行われることを特徴とする上記（７）〜（１１）のいずれかに記載の方法、
が提供される。
さらに、本発明の別の態様によれば、
（１３）少なくとも上記（１）〜（５）のいずれかに記載の抗体を含むことを特徴とするアルツハイマー病の検出を行うための試薬キットが提供される。
【図面の簡単な説明】  図１は、本発明の抗体の特異性を解析するために行ったドットブロット分析の結果を示す写真図である。作製した４種類の抗体それぞれを、ＰＶＤＦ膜にドットした８種類の抗原ポリペプチドと反応させ、発色反応により検出したものである。
図２は、本発明の抗体の中枢性タウ蛋白質に対する特異性を解析したウエスタンブロットの写真図である。図中、「ａｎｔｉ−Ｅｘｏｎ４−５」は抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）、「ａｎｔｉ−Ｅｘｏｎ４Ａ」は抗Ｅｘｏｎ４Ａ抗体、「ＨＴ７」は抗タウ蛋白質モノクローナル抗体ＨＴ７である。また、試料の「Ｍ」はヒト筋肉組織抽出液、「Ｂ」はアルツハイマー病患者の脳組織抽出液、「Ｃ」は陽性コントロールを示す。また、「ｂｉｇ  ｔａｕ（ｅｘｏｎ４Ａ＋）」は末梢性タウ蛋白質のバンド位置を、「ｔａｕ（Ｅｘｏｎ４Ａ−）」は中枢性タウ蛋白質のバンド位置を示す。
【発明を実施するための最良の形態】  以下、本発明をさらに詳細に説明する。
１．中枢性及び末梢性タウ蛋白質
本発明のタウオパチーの検出方法、その中でもアルツハイマー病の検出方法は、アルツハイマー病の疑いのある個体から得られた試料中の中枢性タウ蛋白質の存在を、中枢性タウ蛋白質を特異的に認識し、かつ、末梢性タウ蛋白質を認識しない抗体（以下、これを「中枢性タウ蛋白質特異的抗体」と称することがある）を用いて解析することを特徴としている。
本明細書において、中枢性タウ蛋白質とは、脳等の中枢組織において主たる部分を占めているタウ蛋白質のアイソフォームを意味し、例えばヒトの場合には、主に６種類のアイソフォームを含む（Ｎｅｕｒｏｎ，３，５１９−５２６（１９８９））。これらの中枢性タウ蛋白質のアイソフォームは、共通する特徴として、例えば、配列表の配列番号：１に記載のアミノ酸番号１２４（Ｇｌｎ）と１２５（Ａｌａ）の間に挿入配列を有していない。ここで、アミノ酸番号１２４と１２５の間とは、タウ蛋白質をコードする遺伝子のＥｘｏｎ４によりコードされるアミノ酸配列（配列番号：１のアミノ酸番号１０３〜１２４）とＥｘｏｎ５によりコードされるアミノ酸配列（配列番号：１のアミノ酸番号１２５〜１４３）の連結部分の配列（Ｇｌｎ  Ａｌａ）（以下、これを「Ｅｘｏｎ４−５連結部分」と称することがある）である。なお、本明細書において示す中枢性タウ蛋白質の配列（配列番号：１）は、Ｎｅｕｒｏｎ，３，５１９−５２６（１９８９）に記載されているヒト中枢組織において最長のタウ蛋白質アイソフォームの配列であり、本明細書中でのアミノ酸番号は該配列におけるアミノ酸番号を用いる。
また、末梢性タウ蛋白質とは、筋肉等の末梢組織において主たる部分を占めているタウ蛋白質のアイソフォームを意味し、具体的には、例えば、配列表の配列番号：１に記載のアミノ酸配列において、アミノ酸番号１２４と１２５の間に挿入配列を有するアイソフォームを意味する。例えばヒトの場合では、末梢性タウ蛋白質が有する前記挿入配列としては、タウ蛋白質をコードする遺伝子のＥｘｏｎ４Ａによりコードされるアミノ酸配列（配列番号：２；Ｂｉｏｃｈｅｍ．，３１，１０６２６−１０６３３（１９９２））が挙げられる。
ここで、中枢性タウ蛋白質及び末梢性タウ蛋白質は、リン酸化されたものでもリン酸化されていないものでもよく、また、それらの部分断片を含む。
アルツハイマー病患者の脳等の中枢組織では、上記中枢性タウ蛋白質が高度にリン酸化されて本来の機能を失い、そのままもしくは断片化されて遊離し、脳脊髄液に入る。脳脊髄液は、血液やリンパ液等の体液と相互に輸送がある（入門ビジュアルサイエンス「脳のしくみ」、新井康允・著、日本実業出版社）ことから、中枢性タウ蛋白質は血液やリンパ液等の体液にも流れ込むことがある。特に血液では、末梢性タウ蛋白質が多量に含まれているために、これを試料とする場合には末梢性タウ蛋白質と区別して中枢性タウ蛋白質のみを解析する必要がある。上述のとおり、中枢性タウ蛋白質及び末梢性タウ蛋白質は配列表の配列番号：１に記載のアミノ酸番号１２４と１２５の間の挿入配列の有無によって区別されるが、例えば、Ｅｘｏｎ４−５連結部分のアミノ酸配列をエピトープとする抗体を用いて区別することが好ましい。
また、上記したようなアルツハイマー病患者の中枢組織から体液へのタウ蛋白質の逸脱は、中枢組織において前記中枢性タウ蛋白質が高度にリン酸化されるような他の疾患の患者においても、類似の機序で起こり得る。そのような疾患としては、例えば、中枢組織にタウ蛋白質が蓄積して神経変性を生じるタウオパチーに分類される疾患群等が挙げられ、アルツハイマー病以外のタウオパチーの例としては、例えば、ダウン症、パーキンソン症候群、Ｐｉｃｋ病、進行性核上性麻痺（ＰＳＰ）、皮質基底核変性症（ＣＢＤ）等が挙げられる。
２．中枢性タウ蛋白質特異的抗体
本発明の抗体は、中枢性タウ蛋白質を特異的に認識し、かつ、末梢性タウ蛋白質を認識しないものであればいかなるものでも用い得るが、例えば、抗原として中枢性タウ蛋白質に特異的なアミノ酸配列からなるポリペプチド（以下、これを「抗原ポリペプチド」と称することがある）を用いて得られるもの等が挙げられる。すなわち、抗原ポリペプチドとしては、中枢性タウ蛋白質に特異的なアミノ酸配列からなるポリペプチドを用いて動物を免疫して得られる抗体が、中枢性タウ蛋白質と末梢性タウ蛋白質とを識別し得、中枢性タウ蛋白質を特異的に認識し得るものであればいかなる配列を有するものであってもよい。本発明において、中枢性タウ蛋白質に特異的なアミノ酸配列とは、中枢性タウ蛋白質のアミノ酸配列に存在し、末梢性タウ蛋白質のアミノ酸配列には存在しないアミノ酸配列をいう。
具体的には、中枢性タウ蛋白質に特異的なアミノ酸配列として、例えば、タウ蛋白質をコードする遺伝子のＥｘｏｎ４によりコードされるアミノ酸配列とＥｘｏｎ５によりコードされるアミノ酸配列の連結部分（Ｅｘｏｎ４−５連結部分）のアミノ酸配列（例えば、配列番号：１のアミノ酸番号１２４（Ｇｌｎ）と１２５（Ａｌａ））等が挙げられる。抗原ポリペプチドとして、例えば、この連結部分のアミノ酸配列（アミノ酸番号１２４（Ｇｌｎ）と１２５（Ａｌａ）のアミノ酸）を含む５アミノ酸残基以上のポリペプチドを用いることが好ましく、より好ましくは８残基以上、最も好ましくは１０残基以上のポリペプチドが用いられる。抗原ポリペプチドの長さの上限は、中枢性タウ蛋白質特異的抗体が得られるものであれば特に限定されないが、通常２０残基以下、好ましくは１５残基以下である。本発明で用いる抗原ポリペプチドの好ましい配列としては、少なくともＥｘｏｎ４−５連結部分のアミノ酸配列（Ｇｌｎ  Ａｌａ）を含み、その両端に付加される配列は特に限定されないが、配列番号：１に示すヒトタウ蛋白質の配列そのものを用いるのが好ましい。Ｅｘｏｎ４−５連結部分のアミノ酸配列の位置は特に限定されないが、該配列が中央部に位置することが好ましい。すなわち、抗原ポリペプチドとしては、連結部分のアミノ酸配列（Ｇｌｎ  Ａｌａ）の両末端に１〜８残基、好ましくは３〜６残基程度のヒトタウ蛋白質の配列そのものを有するポリペプチドを含むものが好ましい。
その好ましい配列としては、具体的には、配列表の配列番号：１に記載のアミノ酸番号１２１〜１２８で表される配列を含むポリペプチドが挙げられる。さらに、配列番号：１のアミノ酸番号１１８〜１３１で表される配列を有するポリペプチド（配列番号：３；以下、これを「ポリペプチド１１８−１３１」と称することがある）、配列番号：１のアミノ酸番号１２１〜１２８で表される配列を有するポリペプチド（配列番号：４；以下、これを「ポリペプチド１２１−１２８」と称することがある）、配列番号：１のアミノ酸番号１２１〜１２９で表される配列を有するポリペプチド（配列番号：５；以下、これを「ポリペプチド１２１−１２９」と称することがある）等がより好ましい具体的な配列として挙げられる。
本発明の抗体は、モノクローナル抗体でもポリクロナール抗体でもよいが、ポリクロナール抗体が好ましく用いられる。抗体調製の方法としては、それ自体公知の通常用いられる方法を用いることができる。例えば、ポリクローナル抗体を作製する場合には、ＢＳＡ（牛血清アルブミン）、豚甲状腺グロブリン、ＫＬＨ（キーホール・リンペット・ヘモシアニン）等の担体蛋白に、カルボジイミド、マレイミド等の適当な縮合剤を用いて前記抗原ポリペプチドを結合させ、免疫用の抗原（免疫原）を作製する。ここで、担体蛋白への抗原ポリペプチドの結合は、それ自体公知の通常用いられる方法により行えばよいが、例えばＫＬＨを担体蛋白として用いて、マレイミド化して抗原ポリペプチドを結合させる。この方法の場合には、ＫＬＨに、好ましくはＳｕｌｆｏ−ＳＭＣＣ（Ｓｕｌｆｏｓｕｃｃｉｍｉｄｙｌ  ４−（Ｎ−ｍａｌｅｉｍｉｄｏｍｅｔｈｙｌ）ｃｙｃｌｏｈｅｘａｎｅ−１−ｃａｒｂｏｘｙｌａｔｅ）等の二官能性の縮合剤を反応させてマレイミド化し、これにアミノ末端又はカルボキシル末端のうち結合を生じさせたい方の末端にシステインを付加した抗原ポリペプチドを反応させれば、チオールを介して容易に結合して免疫用の抗原を調製することができる。また、カルボジイミドを用いた場合には、ＫＬＨと抗原ポリペプチドとの脱水縮合によりペプチド結合を形成させて結合させることができる。
このように調製した免疫原を含む溶液を、必要に応じてアジュバントと混合し、マウス、ラット、ウサギ、モルモット、ヒツジ、ヤギ等の、通常抗体の製造に用いられる動物の皮下又は腹腔に２〜３週間毎に繰り返し免疫する。免疫した動物から採血し、血清を分離することによって抗血清が得られる。本発明においては、得られた抗血清を精製することなくそのまま用いることもできるが、以下の方法により精製して用いることもできる。抗体の精製方法としては、血清を熱処理して補体を失活させた後、硫酸アンモニウムを用いた塩析による方法、イオン交換クロマトグラフィー等によって、イムノグロブリン画分を精製する方法、あるいは、特定のポリペプチドを固定化したカラムを用いたアフィニティーカラムクロマトグラフィーによって精製する方法が挙げられるが、このうち、アフィニティーカラムクロマトグラフィーを用いる方法が好ましい。ここで、カラムに固定化する精製用のポリペプチド（以下、これを「精製用ポリペプチド」と称することがある）としては、用いた抗原ポリペプチドのアミノ酸配列に応じて、それと同じ配列、もしくはその一部の配列を含むポリペプチドを選択して用いればよい。
抗原ポリペプチドと精製用ポリペプチドの組み合わせとしては、例えば、ポリペプチド１１８−１３１とポリペプチド１２１−１２８、ポリペプチド１１８−１３１とポリペプチド１１８−１３１、ポリペプチド１２１−１２８とポリペプチド１２１−１２９、ポリペプチド１２１−１２９とポリペプチド１２１−１２８等の組み合わせが挙げられ、これらの中でもポリペプチド１１８−１３１とポリペプチド１２１−１２８の組み合わせが好ましい。具体的には、まず、化学合成した抗原ポリペプチドを用い、上述の方法で免疫原を調製して、ウサギ等の動物を免疫する。該動物から、上述の方法に従って得られた抗血清を、精製用ポリペプチドを固定化したアフィニティーカラムにより精製すればよい。
最も好ましい組み合わせとして、ポリペプチド１１８−１３１を抗原ポリペプチドとし、ポリペプチド１２１−１２８を精製用ポリペプチドとしてアフィニティ精製された抗体を調製する場合を例に挙げて、本発明の抗体の調製方法をより詳細に説明する。まず、キーホール・リンペット・ヘモシアニン（ＫＬＨ）にＳｕｌｆｏ−ＳＭＣＣ（Ｓｕｌｆｏｓｕｃｃｉｍｉｄｙｌ  ４−（Ｎ−ｍａｌｅｉｍｉｄｏｍｅｔｈｙｌ）ｃｙｃｌｏｈｅｘａｎｅ−１−ｃａｒｂｏｘｙｌａｔｅ）を反応させ、適当な緩衝液等で透析を行って、マレイミド化ＫＬＨを調製する。これに、アミノ末端にシステインを付加したポリペプチド１１８−１３１を化学合成により調製して反応させた後、生理的食塩水等で透析を行って免疫原とする。これをウサギ等に繰り返し免疫して抗血清を得て、ポリペプチド１２１−１２８を固定化したアフィニティーカラムに通して吸着させ、吸着した画分を適当なｅｌｕｔｉｏｎ  ｂｕｆｆｅｒ等で溶出させれば、アフィニティ精製された本発明の抗体を得ることができる。
また、モノクローナル抗体を作製する場合には、上記と同様の方法で免疫した動物の脾臓から抗体産生細胞を採取し、常法によって、ミエローマ細胞等の培養細胞と融合させてハイブリドーマを作製（Ｋｏｅｈｌｅｒ  ａｎｄ  Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｎａｔｕｒｅ，２５６，４９５−４９７（１９７５））し、そのハイブリドーマの培養液等から目的のエピトープを認識するモノクローナル抗体を選択すればよい。
かくして得られる抗体は、いずれも上記Ｅｘｏｎ４−５連結部分のアミノ酸配列を認識する抗体であり、リン酸化の有無によらず中枢組織由来のタウ蛋白質と特異的に結合し、末梢組織由来のタウ蛋白質とは結合しない。このことは、脳等の中枢組織と、筋肉等の末梢組織の抽出物を用いて反応性を比較したり、もしくは、前記Ｅｘｏｎ４−５連結部分に挿入される挿入配列、例えば、タウ蛋白質をコードする遺伝子のＥｘｏｎ４Ａによりコードされるアミノ酸配列（配列番号：２）を有するポリペプチドとの反応性を解析すること等によって確認できる。
３．アルツハイマー病の検出を行う試料の調製
本発明において解析対象となる試料としては、アルツハイマー病の疑いのある個体から得られる血液、脳脊髄液、尿等の体液等が挙げられるが、中でも特に血液が好ましい。試料の取得は、例えば、血液の場合には、アルツハイマー病の疑いのある個体の肘静脈等から採血管等によって採血し、好ましくは遠心分離等の方法により血漿又は血清を分離することによって得られる。また、脳脊髄液を試料とする場合は、アルツハイマー病の疑いのある個体から、例えば麻酔下の腰椎穿刺によって採取し、好ましくは遠心分離することによって得られる。
また、前記したアルツハイマー病以外の中枢組織から体液への中枢性タウ蛋白質の逸脱が起こり得る疾患についても、各疾患の疑いのある個体から同様に試料を得て、これを用いることができる。例えば、ダウン症、パーキンソン症候群、Ｐｉｃｋ病、進行性核上性麻痺（ＰＳＰ）、皮質基底核変性症（ＣＢＤ）等の疑いのある個体から得られる血液、脳脊髄液、尿等の体液等を用いることができる。
取得された試料は、試料中のタウ蛋白質の変化（分解、脱リン酸化等）や、血液の凝固等を防止するために、酵素阻害剤を試料採取時又は試料採取後に加えるのが好ましい。酵素阻害剤としては、脱リン酸化酵素阻害剤として、例えば、ＥＤＴＡ、ＥＧＴＡ、オカダ酸、ピロリン酸、リン酸塩、フッ化ナトリウム、β−グリセロリン酸、及びシクロスポリンＡ等が用いられ、また蛋白質分解酵素阻害剤として、例えば、アプロチニン、アンチパイン、ペプスタチン、ロイペプチン、ＥＤＴＡ、ＥＧＴＡ、ＰＭＳＦ（フェニルメタンスルフォニルフルオリド）、ＴＬＣＫ（トリシルリシンクロロメチルケトン）等が用いられる。
脱リン酸化酵素阻害剤としては、ＥＤＴＡ、ＥＧＴＡが好ましい。また、試料へ添加する脱リン酸化酵素阻害剤の濃度は、試料中に存在する脱リン酸化酵素活性に対して阻害効果を有する濃度であれば特に制限されないが、脱リン酸化酵素阻害剤の種類よって、至適濃度の組み合わせを決定して用いればよい。例えば、ＥＤＴＡ、ＥＧＴＡの場合には、通常１〜１０００ｍＭ、好ましくは１〜１００ｍＭの範囲で用いる。蛋白質分解酵素阻害剤としては、アプロチニンが好ましい。また、試料へ添加する蛋白質分解酵素阻害剤の濃度は、試料中に存在する蛋白質分解酵素活性に対して阻害効果を有する濃度であれば特に制限されないが、例えば、アプロチニンの場合には、通常０．１μＭ〜１０００ｍＭ、好ましくは１μＭ〜１００ｍＭの範囲で用いる。
これらのうち、本発明の試料として最も好ましくは、ＥＤＴＡ及びアプロチニンが添加された採血管等を用いて採血を行い、得られた血液を遠心分離等で分離して取得した血漿が用いられる。また、脳脊髄液を試料とする場合は、ＥＤＴＡ及びアプロチニンが添加されたサンプル管等を用いて採取された脳脊髄液を、そのまま中枢性タウ蛋白質の解析に供することもできる。これらの試料は、採取後、中枢性タウ蛋白質の解析に供するまで、例えば４℃以下で保存することが好ましく、より好ましくは−２０℃以下で凍結保存するのが好ましい。
さらに、所望により、当該試料を蛋白質可溶化剤の存在下で変性処理をして夾雑蛋白質を除去（以下、これを「除蛋白」と称することがある）してから、これを試料として用いることも好ましい。特に試料として血液を用いる場合には、高濃度の夾雑蛋白質により抗原抗体反応が妨害される等の理由から、除蛋白を行うことが好ましい。少量の血液試料を用いる場合には、夾雑蛋白質による妨害が小さいために除蛋白の操作を省くことができるが、多量の血液試料を用いるために夾雑蛋白質の妨害が問題となる場合には、除蛋白の操作を行うことが好ましい。また、必要に応じてさらに濃縮を行った試料も本発明の方法の試料として用いることができる。
上述の処理方法に用いられる蛋白質可溶化剤としては、水に溶けにくい蛋白質を溶かす作用を有するものであれば特に制限されないが、具体的には、例えばグアニジンもしくはその塩、スルフヒドリル基含有剤（以下、これを「ＳＨ基含有剤」と称することがある）、尿素、及び界面活性剤等が挙げられ、これらの物質は単独又は混合して用いられる。中でも、グアニジンの塩とＳＨ基含有剤を組み合わせて用いるのが好ましい。用いられるグアニジンの塩としては、例えば、イソチオシアン酸塩、塩酸塩、及び過塩素酸塩等の各種酸塩が挙げられ、これらの中で、グアニジンイソチオシアン酸塩、グアニジン過塩素酸塩が好ましい。ＳＨ基含有剤としては、例えば、β−メルカプトエタノール、ジチオスレイトール、及びＮ−アセチルシステイン等が挙げられ、中でもβ−メルカプトエタノールが好ましい。血液試料に含まれる蛋白質可溶化剤としての好ましいグアニジンの塩とＳＨ基含有剤の組み合わせとしては、グアニジン過塩素酸塩とβ−メルカプトエタノール、グアニジンイソチオシアン酸塩とβ−メルカプトエタノールの組み合わせが挙げられる。
また、界面活性剤としては、Ｔｗｅｅｎ  ２０（ＩＣＩ  Ａｍｅｒｉｃａｓ  Ｉｎｃ．社製）、Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００（Ｒｏｈｍ＆Ｈａａｓ社製）、Ｎｏｎｉｄｅｔ  Ｐ４０（Ｓｈｅｌｌ  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｐｅｔｒｏｌｅｕｍ  Ｃｏｍｐａｎｙ  Ｌｔｄ．社製）等が挙げられる。
本発明で用いられる蛋白質可溶化剤の濃度は、下限が通常０．０１Ｍ、好ましくは０．１Ｍ、上限が１０Ｍ、好ましくは６Ｍ程度が適当である。濃度範囲は、これら下限と上限の組み合わせから選ばれるが、通常０．０１〜１０Ｍ、好ましくは０．１〜６Ｍ程度の濃度が適当である。これらの濃度範囲は一つの目安であり、具体的には、蛋白質可溶化剤の種類及びその組合せによって至適濃度を決定して用いるのが好ましい。例えば、グアニジンの塩の濃度としては、通常１ｍＭ〜６Ｍ、好ましくは０．５〜１Ｍである。ＳＨ基含有剤の濃度としては、通常１ｍＭ〜１Ｍ、好ましくは５０〜５００ｍＭである。界面活性剤の濃度としては、通常０．００１〜０．５％（ｖ／ｖ）、好ましくは０．０１〜０．２％（ｖ／ｖ）である。また、尿素の濃度は、通常２〜１０Ｍ、好ましくは５〜７Ｍである。なお、本明細書において、濃度等の数値範囲は、特に明記しない限り上記と同様に例示されている数値範囲の下限と上限のそれぞれの組み合わせの範囲であってもよい。
上記の蛋白質可溶化剤を血液試料に添加して、試料を２倍以上、好ましくは２〜１０倍に希釈した後、混合攪拌することにより、試料中の蛋白質を可溶化することができる。試料の希釈には、ＴＢＳ（１５０ｍＭ  ＮａＣｌ，２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．５））等の溶液が用いられる。
次に、かくして蛋白質を溶解させた試料溶液中の夾雑蛋白質を変性させて、試料溶液から除去する。夾雑蛋白質を変性処理する方法としては、例えば、トリクロロ酢酸、トリフルオロ酢酸、硫酸アンモニウム、尿素、有機溶媒等の蛋白質変性剤で処理する方法、界面を利用する方法、及び、加熱による方法等が単独又は組み合わせて用いられる。各々の処理条件は、試料溶液中に含まれる夾雑蛋白質が変性し、タウ蛋白質が変性しないような条件であればよい。これらの中でも、本発明においては、加熱による方法が好ましく用いられ、特に好ましくは煮沸、即ち１００℃に煮沸して加熱する方法が用いられる。また、０．２Ｍ以上の濃度のＮａＣｌの存在下で煮沸を行うことがより好ましい。煮沸（加熱）時間は、通常１〜１５分、好ましくは３〜１０分である。煮沸の方法としては、温浴が好ましい。
可溶化及び変性処理された夾雑蛋白質は、それ自体既知の通常用いられる固液分離方法、例えば、膜分離法、遠心分離法等により分離し、除蛋白を行うことができるが、遠心分離により分離を行うのが好ましい。煮沸により加熱して変性処理し、遠心分離を行った場合には、タウ蛋白質は加熱による変性を受けず、遠心分離後の上清に回収される。
かくして取得される試料は、さらに必要に応じて、既知の方法に従って濃縮することによりタウ蛋白質の検出感度を上昇させることができる。濃縮の方法としては、例えば、限外濾過法、透析、ゲル濾過等により塩濃度を低下させた後、抗タウ蛋白質抗体を固定化した磁気ビーズ等を用いた免疫沈降によって特異的に濃縮する方法等が挙げられる。あるいは、固相抽出法によって濃縮することもできる。具体的には例えば、低分子量の炭化水素をシリカゲル等に固定化した一般的な抽出用固相に該試料を加え、固相にタウ蛋白質を保持させた後、洗浄によって塩等の夾雑物を除去する。次に有機溶媒もしくは水と有機溶媒との混合溶媒を流してタウ蛋白質を流出させて回収し、溶媒を除去することにより濃縮することができる。また、カラムクロマトグラフィー等によりイムノグロブリン−Ｇを除去する行程も必要に応じ行うことができる。カラムクロマトグラフィーにはＰｒｏｔｅｉｎ  Ｇ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅカラム等を用いるのが好ましい。
４．中枢性タウ蛋白質の検出方法
本発明はまた、タウオパチーの疑いのある個体から得られた試料中の中枢性タウ蛋白質の存在を、本発明の抗体を用いて解析することを特徴とするタウオパチーの検出方法に関する。タウオパチーとは、中枢組織にタウ蛋白質が蓄積して神経変性を生じる疾患であるが、例えばアルツハイマー病、ダウン症、パーキンソン症候群、Ｐｉｃｋ病、進行性核上性麻痺（ＰＳＰ）、皮質基底核変性症（ＣＢＤ）等が挙げられる。本発明の検出方法は、より好適にはアルツハイマー病の検出に用いられる。
以下、アルツハイマー病の検出を例に挙げて説明する。すなわち、アルツハイマー病の疑いのある個体から取得され、所望により蛋白質の可溶化及び夾雑蛋白質の変性処理、除蛋白、濃縮等の処理を施された試料溶液について、本発明の中枢性タウ蛋白質特異的抗体を用いて中枢性タウ蛋白質の存在を解析する。中枢性タウ蛋白質の存在の解析は、本発明の中枢性タウ蛋白質特異的抗体を用いて行われるものであれば特に限定されず、試料と中枢性タウ蛋白質特異的抗体との反応性、すなわち試料中に含まれる蛋白質と該抗体との免疫反応を、陽性コントロールと該抗体との免疫反応と比較することのできる方法であればよい。濃度既知の陽性コントロールを用いて得られる結果と、試料を用いて得られる結果を比較することにより、試料中の中枢性タウ蛋白質量を求めることができる。
本発明の抗体とアルツハイマー病の疑いのある個体から得られた試料中の蛋白質の免疫反応による解析は、生化学実験法１１「エンザイムイムノアッセイ」（Ｔｉｊｓｓｅｎ  Ｐ．著、東京化学同人）、”Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ  ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ  ＭＡＮＵＡＬ”（Ｅｄ  Ｈａｒｌｏｗ  ｅｔ  ａｌ．，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ（１９８８））等の実験書に記載のそれ自体既知の通常用いられる方法で行うことができる。具体的には、例えば、免疫ブロット法、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）等のサンドイッチ法、競合法等が挙げられる。
サンドイッチ法等により中枢性タウ蛋白質を解析する場合に、本発明の中枢性タウ蛋白質特異的抗体と組み合わせて用いる抗体としては、本発明の抗体とは異なるエピトープを認識する抗体であって、タウ蛋白質をアイソフォーム非特異的に認識する抗体（以下、これを「非特異的抗タウ蛋白質抗体」と称することがある）が好ましく用いられる。具体的には、例えば、Ｉｎｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ社より市販されている抗タウ蛋白質モノクローナル抗体ＨＴ７（タウ蛋白質のアミノ酸番号１５９−１６３に結合）、及びＢＴ２（タウ蛋白質のアミノ酸番号１９３−１９８に結合）等が挙げられる。
非特異的抗タウ蛋白質抗体は、リン酸化非特異的にタウ蛋白質を認識する抗体であることが好ましい。該抗体とアルツハイマー病に特異的なリン酸化部位がリン酸化されているタウ蛋白質を認識する抗体とを組み合わせて用いれば、さらにアルツハイマー病に特異的な変化を検出することができる。そのような抗体としては、例えば、ＷＯ９７／３４１４５号公報に記載されている抗リン酸化タウ蛋白質抗体、又は該公報の記載に準じて調製される抗タウ蛋白質抗体として、抗ＰＳ１９９、抗ＰＳ２０２、抗ＰＴ２０５、抗ＰＴ２３１、抗ＰＳ２３５、抗ＰＳ２６２、抗ＰＳ３９６、抗ＰＳ４０４、抗ＰＳ４１３、抗ＰＳ４２２、抗タウ１５４−１６８等を挙げることができる。
免疫ブロット法等により、本発明の抗体が中枢性タウ蛋白質を特異的に認識し、かつ末梢性タウ蛋白質を認識しないことを利用して中枢性タウ蛋白質の存在を解析する場合には、例えば、末梢性タウ蛋白質を特異的に認識する抗体（以下、これを「末梢性タウ蛋白質特異的抗体」と称することがある）を用いて得られる結果と比較すればさらに確実な解析を行うことができる。末梢性タウ蛋白質特異的抗体としては、例えば、タウ蛋白質をコードする遺伝子のＥｘｏｎ４Ａによりコードされるアミノ酸配列（配列番号：２）の全部もしくは一部を有するポリペプチドを抗原として得られる抗体が挙げられる。具体的には、例えば、配列表の配列番号：６に記載のアミノ酸配列のアミノ末端にシステインを導入したポリペプチドをＫＬＨに結合させた免疫原を用いて得られる抗体（以下、これを「抗Ｅｘｏｎ４Ａ抗体」と称することがある）を挙げることができる。抗体の作製方法としては、前記した中枢性タウ蛋白質特異的抗体と同様に、それ自体公知の通常用いられる方法を用いることができる。かくして作製される抗Ｅｘｏｎ４Ａ抗体は、リン酸化の有無によらず、Ｅｘｏｎ４Ａによりコードされるアミノ酸配列を挿入配列として有する末梢性タウ蛋白質と特異的に結合する。
ここで、ＥＬＩＳＡ法により試料中の中枢性タウ蛋白質の存在を解析する場合を例に挙げて、以下に説明する。
まず、本発明の中枢性タウ蛋白質特異的抗体又は非特異的抗タウ蛋白質抗体のいずれかを固相化用抗体として９６穴ＥＬＩＳＡプレートに固相化し、上記３．に記載の方法により得られる試料を加えて、試料中のタウ蛋白質を固相に結合させる。次に、結合したタウ蛋白質を検出するための検出用抗体として、非特異的抗タウ蛋白質抗体又は本発明の中枢性タウ蛋白質特異的抗体のうち、固相化した抗体と別のものを加えてインキュベートする。ここで用いられる抗体の組み合わせとしては、前記したようなものが挙げられるが、通常、目的の測定対象に対してより特異性の高い抗体、すなわちここでは中枢性タウ蛋白質特異的抗体を固相化し、特異性が低く反応性が広範な抗体、すなわちここでは非特異的抗タウ蛋白質抗体を検出用として用いることが好ましい。ただし、用いる各抗体のアフィニティ（親和性）の高さ等を鑑みて、逆にして用いることもできる。
インキュベートを行った後、洗浄液で洗浄し、検出用の抗体を認識し、かつ標識物質で標識化された抗体、例えば酵素標識抗ウサギＩｇＧ抗体等を反応させる。又は、検出用抗体にあらかじめビオチン等を結合させておき、これに酵素標識ストレプトアビジン等を反応させる。洗浄液で洗浄後、固相に結合した標識物質の活性を測定し、濃度既知の陽性コントロールを用いて得られた結果と比較することによって、試料中の中枢性タウ蛋白質量を測定することができる。
次に、解析法の他の例として、免疫ブロット法により試料中の中枢性タウ蛋白質の存在を検出する方法を例に挙げて以下に説明する。
上記３．に記載の方法により得られる試料に、適当な処理液、例えばＬａｅｍｍｌｉのサンプル処理液（０．１２５Ｍ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ６．８）、４％ＳＤＳ、２０％グリセロール、２０μｇ／ｍＬ  ＢＰＢ、０．７Ｍ  β−メルカプトエタノール）等を加えて加熱処理する。これを７〜１５％程度のポリアクリルアミドゲルでＬａｅｍｍｌｉの方法（Ｎａｔｕｒｅ，２２７，６８０−６８５（１９７０））により電気泳動し、セミドライブロッター等の通常用いられる蛋白質転写装置により、ＰＶＤＦ（Ｐｏｌｙｖｉｎｙｌｉｄｅｎ  ｄｉｆｌｕｏｒｉｄｅ）膜等の通常蛋白質の転写に用いられる膜に転写する。
得られた膜をスキムミルク等の蛋白溶液でブロッキングした後、これに、中枢性タウ蛋白質特異的抗体を反応させる。膜を洗浄して未反応の該抗体を除去した後、あらかじめ標識物質を結合させた二次抗体を反応させる。標識物質が、例えば、酵素等のそれ自体はシグナルを発する性質を有していない物質の場合には、反応後の膜を洗浄して未反応の二次抗体を除去した後、標識物質と特異的に反応してシグナルを発する基質等の物質を反応させ、該物質より発せられるシグナルを検出する。その検出結果と、濃度既知の陽性コントロールを用いて得られた結果とを比較することにより、試料中のタウ蛋白質の存在量を知ることができる。標識物質として用いられる酵素としては、アルカリフォスファターゼ、Ｈｏｒｓｅｒａｄｉｓｈ  ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ（以下、これを「ＨＲＰ」と称することがある）等が挙げられる。また、シグナルの検出方法としては、化学発光法、発色法等が挙げられ、中でも化学発光法が好ましく用いられる。
標識物質が、例えば、蛍光物質、放射性物質等のそれ自体シグナルを発する性質を有する物質の場合には、反応後の膜を洗浄して未反応の二次抗体を除去した後、標識物質より発せられるシグナルを検出し、その検出結果と濃度既知の陽性コントロールを用いて得られた結果とを比較することにより、試料中のタウ蛋白質の存在量を知ることができる。
また、このような検出において、試料等から持ち込まれる抗体による影響を除くために、抗原抗体反応ではない特異的結合能を持つ物質による反応を利用することもできる。特異的結合能を持つ物質としては、例えば、ビオチンとストレプトアビジン、ジゴキシゲニンと抗ジゴキシゲニン抗体等の組み合わせが用いられ、ビオチンとストレプトアビジンの組み合わせが特に好ましい。
本発明の検出方法において用いられる陽性コントロールとしては、本発明の中枢性タウ蛋白質特異的抗体と特異的に結合するものであればいずれのものであってもよく、例えば、配列表の配列番号：１に記載のアミノ酸番号１２４と１２５の間に挿入配列を有しないタウ蛋白質等が挙げられる。また、タウ蛋白質をコードする遺伝子のＥｘｏｎ４によりコードされるアミノ酸配列とＥｘｏｎ５によりコードされるアミノ酸配列の連結部分（Ｅｘｏｎ４−５連結部分）のアミノ酸配列を含む部分断片等でもよい。具体例としては、ヒト、ラット等の中枢組織より精製したタウ蛋白質、遺伝子組み換えによって調製したタウ蛋白質、それらの部分断片、合成されたポリペプチド等が挙げられる。
組織からのタウ蛋白質の精製方法としては、それ自体公知の通常用いられる方法を用いることができるが、例えば、脳組織からは、Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２５，４１２−４１９（１９９０）に記載の方法等に準じて行うことができる。また、遺伝子組み換えタウ蛋白質についても、それ自体公知の方法に従って調製されるが、例えば、配列番号：１に記載のアミノ酸配列の全長を有するものでも、その一部を有するものでも、本発明の抗体と特異的に結合するものであれば用い得る。その一部のアミノ酸配列としては、例えば、タウ蛋白質のアミノ末端側１−２４９（配列番号：１のアミノ酸番号１〜２４９）を有する部分断片、また該部分断片のアミノ酸番号４５−１０２に相当する挿入配列を有さない部分断片（配列番号：７；以下、これを「最短タウＮ側フラグメント」と称することがある）等、Ｅｘｏｎ４−５連結部分を含むものが好ましく用いられる。さらに、必要に応じて市販のキット（フィノスカラーｈＴＡＵ又はＩＮＮＯＴＥＳＴ  ｈＴＡＵ  Ａｇ；Ｉｎｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ社製）に含まれる標準品を用いることもできる。
陽性コントロールとして用いるタウ蛋白質あるいはペプチドは、例えば、凍結乾燥粉末として保存したり、適当な緩衝液等に溶解し、小分けして凍結保存することが好ましい。例えば、該粉末１ｍｇを１００μＬのＴＢＳＴ（１５０ｍＭ  ＮａＣｌ、０．０５％  Ｔｗｅｅｎ  ２０を含有する２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．５））に溶解し、１０〜２０μＬずつ小分けして凍結保存することができる。
このようにして、アルツハイマー病の疑いのある個体について、該個体から得られた試料中の中枢性タウ蛋白質の量を測定し、健常者から得られる試料中の該蛋白質の量と比較して有意に多い場合に、その個体はアルツハイマー病であると判定することができる。また、健常者から得られる試料において測定された中枢性タウ蛋白質の量と、アルツハイマー病の疑いのある個体から得られた試料中の該蛋白質の量とに差がない場合、その個体はアルツハイマー病ではないと判定することができる。このような比較は、比較に用いるそれぞれの個体から得られる同種の試料を用いて行うことが好ましい。
アルツハイマー病の疑いのある個体から得られた試料中の中枢性タウ蛋白質の量と、健常者から得られる試料中の該蛋白質の量との比較において、健常者から得られる試料中の該蛋白質の量としては、あらかじめ複数の試料を用いて測定を行って得られた平均値を用いてもよい。このような平均値は、試料を得た個体の年齢を加味した値であることが望ましい。ここで、「有意に多い」とは、例えば、アルツハイマー病の疑いのある個体から得られた試料中に含まれる中枢性タウ蛋白質の量が、健常者から得られる試料中に含まれる該タウ蛋白質の量に比較して、例えば２倍以上である場合に、その個体はアルツハイマー病であると判定される。また、標準偏差等を求めて、統計学的解析により有意差があるか否かを判定してもよい。
また、例えば、アルツハイマー病の疑いのある個体から得られる試料と、健常者から得られる試料のそれぞれに含まれる中枢性タウ蛋白質の量の平均的な数値が得られている場合には、判定のための閾値を設定し、測定した試料にこの値を超える量の中枢性タウ蛋白質が含まれていた場合には、その個体はアルツハイマー病であると判定することができる。このような閾値は、試料を得た個体の年齢を加味して設定されることが望ましい。さらに、同一の年齢群の健常者から得られる試料の中枢性タウ蛋白質の量が検出限界以下であり、アルツハイマー病の疑いのある個体から得られた試料中に中枢性タウ蛋白質が検出された場合に、その個体はアルツハイマー病であると判定することができる。
また、同様にして、前記したようなアルツハイマー病以外の各種疾患についても、検出された中枢性タウ蛋白質の量に基づいて判定を行うことができる。
５．試薬キット
本発明の試薬キットは、少なくとも、中枢性タウ蛋白質特異的抗体を含み、通常の免疫反応を利用したキットに準じた構成によって提供される。さらに任意の要素として、洗浄液、検出用標識化抗体、蛋白質可溶化剤を含有する前処理液、陽性コントロール、希釈液、蛋白質変性剤、濃縮用器具又は試薬等を含む。
具体的には、例えば、ＥＬＩＳＡ法に適用されるキットの場合、少なくとも、本発明の中枢性タウ蛋白質特異的抗体を含み、さらに、固相化抗タウ蛋白質抗体、標識化抗ＩｇＧ抗体を含み、任意の要素として蛋白質可溶化剤を含有する前処理液等を含む。また、競合法に適用されるキットの場合には、標識化タウ蛋白質、中枢性タウ蛋白質特異的抗体等を含み、任意の要素として蛋白質可溶化剤を含有する前処理液等を含む。ラテックスを用いたサンドイッチ法に適用されるキットの場合には、少なくとも、中枢性タウ蛋白質特異的抗体又は抗タウ蛋白質抗体が固相化された磁性ラテックスを含み、標識化された検出用抗体を含み、任意の要素として蛋白質可溶化剤等を含む。ラテックスを用いた競合法に適用されるキットの場合、少なくとも、中枢性タウ蛋白質特異的抗体が固相化された磁性ラテックス、標識化タウ蛋白質を含み、任意の要素として蛋白質可溶化剤を含む前処理液を含む。
このような試薬キットを用いることにより、本発明のアルツハイマー病の検出方法をより迅速、簡便に行うことができる。
【実施例】  以下、実施例により本発明を説明するが、本発明はこれらの実施例により何ら限定されるものではない。
なお、下記の実施例において、「ＴＢＳ」は、１５０ｍＭ  ＮａＣｌを含有する２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．５）、「ＴＢＳＴ」は０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０を含有するＴＢＳである。
また、下記の実施例において調製した中枢性タウ蛋白質特異的抗体については、特に明記しない限り、ポリペプチド１１８−１３１を抗原としポリペプチド１２１−１２８によりアフィニティ精製された抗体を「抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）」、ポリペプチド１１８−１３１を抗原としポリペプチド１１８−１３１によりアフィニティ精製された抗体を「抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１１８−１３１精製）」、ポリペプチド１２１−１２８を抗原としポリペプチド１２１−１２９によりアフィニティ精製された抗体を「抗Ｅｘｏｎ４−５（１２１−１２８）抗体（１２１−１２９精製）」、ポリペプチド１２１−１２９を抗原としポリペプチド１２１−１２８によりアフィニティ精製された抗体を「抗Ｅｘｏｎ４−５（１２１−１２９）抗体（１２１−１２８精製）」と表記する。さらに、抗タウ蛋白質モノクローナル抗体ＨＴ７（タウ蛋白質のアミノ酸番号１５９−１６３に結合）は、Ｉｎｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ社から購入して用いた。
実施例１．抗体の調製及び評価
中枢性タウ蛋白質特異的抗体は、ＷＯ９７／３４１４５号公報の記載に準じて次の通り調製した。抗原ポリペプチドとして、ポリペプチド１１８−１３１（配列番号：３）、１２１−１２８（配列番号：４）、１２１−１２９（配列番号：５）の３種を用いた。得られた抗血清は、それぞれ特定の精製ポリペプチドを固定化したアフィニティーカラムを用いて精製して、各抗体の特異性をドットブロット分析によって確認した。
（１）抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体
ポリペプチド１１８−１３１（配列番号：３）のアミノ末端にシステインを付加したものを抗原ポリペプチドとして化学合成し、キーホール・リンペットのヘモシアニン（ＫＬＨ）に結合させ、ウサギに繰り返し免疫することで抗血清を得た。具体的には、まず、ＫＬＨ（凍結乾燥品；Ｐｉｅｒｃｅ社製）３５ｍｇを７ｍＬの純水に溶解して緩衝液（８３ｍＭリン酸緩衝液、０．９Ｍ  ＮａＣｌ（ｐＨ７．２））とし、これにＳｕｌｆｏ−ＳＭＣＣ（Ｓｕｌｆｏｓｕｃｃｉｍｉｄｙｌ  ４−（Ｎ−ｍａｌｅｉｍｉｄｏｍｅｔｈｙｌ）ｃｙｃｌｏｈｅｘａｎｅ−１−ｃａｒｂｏｘｙｌａｔｅ；Ｐｉｅｒｃｅ社製）４３．７５ｍｇをＤＭＳＯ（ｄｉｍｅｔｈｙｌｓｕｌｆｏｘｉｄｅ）０．４ｍＬに溶解したものを加えた。室温（２５℃）で１時間反応させ、１００ｍＭ  ＥＤＴＡ、０．９Ｍ  ＮａＣｌを含有する８３ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）に４℃で一晩透析して未反応及び分解した試薬を除去することにより、マレイミド化ＫＬＨを調製した。次に、透析内液（マレイミド化ＫＬＨ）に抗原ポリペプチド（ポリペプチド１１８−１３１のアミノ末端にシステインを付加したポリペプチド）１６．２ｍｇを加えて室温（２５℃）にて１時間反応させた。これを生理的食塩水にて、４℃、一晩透析した後、生理的食塩水で１７．５ｍＬに調整して免疫用の抗原（免疫原）とした。
得られた免疫原をウサギに繰り返し免疫して抗血清を得て、これを２種類の精製用ポリペプチド（ポリペプチド１２１−１２８、及び、ポリペプチド１１８−１３１のアミノ末端にシステインを付加したもの）がそれぞれ固定化されたカラムに通して吸着させ、吸着した画分をＰｉｅｒｃｅ社のｇｅｎｔｌｅ  ｅｌｕｔｉｏｎ  ｂｕｆｆｅｒで溶出することで、アフィニティ精製された中枢性タウ蛋白質特異抗体（抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）、及び、抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１１８−１３１精製））を得た。得られた抗体の特異性の確認は、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）及び後述するドットブロット分析によって、各抗原ペプチドや陽性コントロールへの結合を確認することにより行った。
ＥＬＩＳＡは、抗タウ蛋白質モノクローナル抗体ＨＴ７（Ｉｎｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ社製）を固定化した９６穴プレートに、Ｂｒａｉｎ  Ｒｅｓ．，７３７，１１９−１３２（１９９６）に記載の方法に準じて調製した組換え最短タウＮ側フラグメント（配列番号：７）を加えてインキュベーションした後、洗浄した。次に、上記のようにして得られた２種類の抗体をそれぞれ加えてインキュベーションした後、洗浄した。さらに、ＨＲＰ標識抗ウサギＩｇＧ抗体（山羊）を二次抗体として反応させた後、洗浄した。固相のＨＲＰ活性を測定した結果、組換最短タウＮ側半分の濃度に応じて酵素活性（ＨＲＰ活性）が増加したことによって、得られた２種の抗体がいずれも組換最短タウＮ側半分と結合することを確認した。
（２）抗Ｅｘｏｎ４−５（１２１−１２８）抗体
ポリペプチド１２１−１２８（配列番号：４）を化学合成し、抗体の調製に用いた。まず、豚甲状腺グロブリン（凍結乾燥品；Ｓｉｇｍａ社製）３９ｍｇを４ｍＬの純水に溶解し、これに合成したポリペプチド１２１−１２８を１．４ｍｇ加え、０．１規定水酸化ナトリウムを適当量加えてｐＨ６．５に合わせた。これにさらに水溶性カルボジイミド塩酸塩７６．７ｍｇを加えて、４℃で一晩反応させた。生理的食塩水にて、４℃で一晩透析した後、生理的食塩水で１９．５ｍＬとして免疫用の抗原（免疫原）を得た。これをウサギに繰り返し免疫して、得られた抗血清を、ポリペプチド１２１−１２９（配列番号：５）にアミノ末端にシステインを付加したポリペプチドを固定化したカラムに通して吸着させ、吸着された画分をＰｉｅｒｃｅ社のｇｅｎｔｌｅ  ｅｌｕｔｉｏｎ  ｂｕｆｆｅｒで溶出して、アフィニティ精製された抗体（抗Ｅｘｏｎ４−５（１２１−１２８）抗体（１２１−１２９精製））を得た。得られた抗体の特異性は、後述するドットブロット分析によって確認した。
（３）抗Ｅｘｏｎ４−５（１２１−１２９）抗体
ポリペプチド１２１−１２９（配列番号：５）のアミノ末端にシステインを付加したポリペプチドを化学合成し、これをマレイミド活性化ＫＬＨ（凍結乾燥品；Ｐｉｅｒｃｅ社製）２０ｍｇを４ｍＬの純水に溶解して調製した溶液（８３ｍＭリン酸緩衝液、０．９Ｍ  ＮａＣｌ、０．１Ｍ  ＥＤＴＡ（ｐＨ７．２））に６．５ｍｇ加えた。室温（２５℃）で１時間反応させ、４℃で一晩さらに反応させた後、生理的食塩水にて、４℃、一晩透析した。生理的食塩水で１０ｍＬに調整して免疫用の抗原（免疫原）とした。これをウサギに繰り返し免疫して得られた抗血清を、ポリペプチド１２１−１２８（配列番号：４）を固定化したカラムに通して吸着させ、吸着された画分をＰｉｅｒｃｅ社のｇｅｎｔｌｅ  ｅｌｕｔｉｏｎ  ｂｕｆｆｅｒで溶出して、アフィニティ精製された抗体（抗Ｅｘｏｎ４−５（１２１−１２９）抗体（１２１−１２８精製））を得た。得られた抗体の特異性は、後述するドットブロット分析によって確認した。
（４）ドットブロット分析による抗体の評価
上記（１）〜（３）で調製した４種の抗体について、ドットブロット分析による特異性の評価を行った。
まず、ＰＶＤＦ膜に、組換え最短タウＮ側フラグメント及び各種ポリペプチドのＤＭＳＯ溶液（１０ｐｍｏｌ／０．５μＬ）を抗原としてドットした。用いた抗原は、組換え最短タウＮ側フラグメント、化学合成したポリペプチド２４−３６（配列番号：８）、ポリペプチド１１８−１３１（配列番号：３）のアミノ末端にシステインを付加したもの、ポリペプチド１２１−１２８（配列番号：４）、ポリペプチド１２１−１２９（配列番号：５）のアミノ末端にシステインを付加したもの、タウ蛋白質のＥｘｏｎ４Ａによりコードされるアミノ酸配列の部分配列を有するポリペプチド（配列番号：６）、ポリペプチド１３４−１４４（配列番号：９）のアミノ末端にチロシンを付加したもの、ポリペプチド１５４−１５６（アミノ酸配列；Ｐｒｏ−Ａｒｇ−Ｇｌｙ）のアミノ末端にシステインを付加したものの８種類である。
膜を風乾後、５％スキムミルクを含むＴＢＳ  １０ｍＬで１時間ブロッキングしてから、膜をＴＢＳＴ  ２０ｍＬで５回洗浄した。得られた膜に、上記（１）〜（３）で調製した抗体を５％スキムミルクを含むＴＢＳＴ  ５ｍＬに５００ｎｇ／ｍＬになるように溶解して加えて、湿箱中で４℃、一晩反応させた。用いた抗体は、抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）、抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１１８−１３１精製）、抗Ｅｘｏｎ４−５（１２１−１２８）抗体（１２１−１２９精製）、及び抗Ｅｘｏｎ４−５（１２１−１２９）抗体（１２１−１２８精製）の４種類である。
反応後の膜をＴＢＳＴ２０ｍＬで５回洗浄し、５％スキムミルクを含むＴＢＳＴ  １０ｍＬにアルカリフォスファターゼ標識抗ウサギＩｇＧ抗体溶液（シンプルステインＭＡＸ−ＡＰ；ニチレイ社製）を０．２５ｍＬ加えて、湿箱中で１時間室温で反応させた。膜をＴＢＳＴ  ２０ｍＬで５回洗浄して未反応の標識抗体を除去した。さらに膜をＴＢＳ  ２０ｍＬで２回洗った後、湿箱中に膜を入れ、アルカリフォスファターゼ基質用緩衝液（１００ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ９．５）、１００ｍＭ  ＮａＣｌ、５ｍＭ  ＭｇＣｌ２）１０ｍＬに浸漬した。これに、基質として、ＮＢＴ溶液（５０ｍｇ／ｍＬ  ｎｉｔｒｏ  ｂｌｕｅ  ｔｅｔｒａｚｏｌｉｕｍ／７０％  ｄｉｍｅｔｈｙｌｆｏｌｍａｍｉｄｅ溶液；Ｐｒｏｍｅｇａ社製）６６μＬを加えて混合し、さらにＢＣＩＰ溶液（５０ｍｇ／ｍＬ  ５−ｂｒｏｍｏ−４−ｃｈｌｏｒｏ−３−ｉｎｄｏｌｙｌ−ｐｈｏｓｐｈａｔｅ／７０％  ｄｉｍｅｔｈｙｌｆｏｌｍａｍｉｄｅ溶液；Ｐｒｏｍｅｇａ社製）３３μＬを加えて混合した。室温で３０分間反応させた後、膜をＴＢＳＴ  ２０ｍＬで３回洗浄して未反応の基質を除去した。その結果、図１に示したように各抗体の特異性が確認された。
ここで、図１から明らかなように、抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）が組み換えタウ蛋白質と最も強く反応していた。Ｅｘｏｎ４−５連結部分に対する特異性がより高いと考えられた抗Ｅｘｏｎ４−５（１２１−１２８）抗体（１２１−１２９精製）は、組み換えタウ蛋白質との反応性が低かった。一方、抗Ｅｘｏｎ４−５（１２１−１２９）抗体（１２１−１２８精製）は、抗原ペプチドよりも組み換えタウ蛋白質との反応性が高く、有望な抗体と考えられた。以下の検討においては、組み換えタウ蛋白質と最も良く反応した抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）を用いることとした。
実施例２．ヒト脳脊髄液中の中枢性タウ蛋白質のＥＬＩＳＡによる検出
上記実施例１．で選択した抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）を用いて、脳脊髄液を試料とし、酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）による解析を行った。また、Ｉｎｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ社から市販されているタウ蛋白質測定キット（フィノスカラーｈＴＡＵ又はＩＮＮＯＴＥＳＴ  ｈＴＡＵ  Ａｇ）を用いて測定を行い、本発明の抗体を用いた方法と比較した。
（１）ヒト脳脊髄液（Ｃｅｒｅｂｒｏｓｐｉｎａｌ  Ｆｌｕｉｄ；ＣＳＦ）の取得
試料となる脳脊髄液としては、アルツハイマー病（ＡＤ）の疑いのある個体、及び、痴呆ではない神経疾患（コントロール；ＣＴＬ）の個体から、インフォームドコンセントの後に麻酔下の腰椎穿刺によって採取されたものを、遠心分離を行って上清を用いた。
（２）抗ヒトタウ蛋白質抗体の固相化
９６穴ＥＬＩＳＡプレートに、抗ヒトタウ蛋白質モノクローナル抗体ＨＴ７の０．１Ｍ炭酸ナトリウム緩衝溶液（ｐＨ９．０）を各ウェルに０．１ｍＬずつ加え、湿潤箱中で４℃、３時間インキュベートして固相化した。溶液を除去した後、０．１Ｍ炭酸ナトリウム緩衝液で洗浄し、１％ＢＳＡ、１％スキムミルク、０．５％ゼラチンを含むＰＢＳ（１０ｍＭリン酸ナトリウム、１５０ｍＭ  ＮａＣｌ（ｐＨ７．４））溶液を０．２ｍＬ加えて、４℃で２時間ブロッキングした。プレートは、洗浄液（２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、０．０５％Ｔｗｅｅｎ  ２０）で洗浄後、直ちに用いた。すぐに使わない場合にはさらに純水で洗浄し、真空乾燥してラミネート袋に入れ、４℃に保存した。
（３）本発明の抗体を用いたＥＬＩＳＡによる脳脊髄液中の中枢性タウ蛋白質の測定
ＷＯ９７／３４１４５号公報に記載の方法に準じて、次の通り中枢性タウ蛋白質を測定し、市販のタウ蛋白質測定キット（Ｉｎｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ社製：日本国内の名称「フィノスカラーｈＴＡＵ」、欧米における名称「ＩＮＮＯＴＥＳＴ  ｈＴＡＵ  Ａｇ」）を用いて測定したタウ蛋白質の濃度と比較した。
タウ蛋白質のアミノ酸番号１−２４９をコードする遺伝子のうち、アミノ酸番号４５−１０２で表される挿入配列を含まない部分を大腸菌に組み込んで得られた遺伝子組換え最短タウＮ側フラグメント（配列番号：７）を市販のタウ蛋白質測定キット（Ｉｎｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ社製：日本国内の名称「フィノスカラーｈＴＡＵ」、欧米における名称「ＩＮＮＯＴＥＳＴ  ｈＴＡＵ  Ａｇ」）によって測定し、値付けをした。この最短タウＮ側フラグメントを陽性コントロールとし、アッセイ緩衝液（０．１％ＢＳＡ、１ｍＭ  ＥＤＴＡ、１ｍＭ  ＥＧＴＡ、２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、０．１５Ｍ  ＮａＣｌ、０．０５％  Ｔｗｅｅｎ  ２０）で各種濃度に希釈して、各濃度の溶液５０μＬずつを上記（２）で調製したＥＬＩＳＡプレートのウェルに加えた。また、上記（１）で得られた脳脊髄液を、同様にそれぞれ５０μＬずつＥＬＩＳＡプレートのウェルに加えた。次いで、濃度既知の陽性コントロール又はヒト脳脊髄液が入った各ウェルに、上記実施例１．で調製した抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）を、１００ｎｇ／ｍＬ（１％正常山羊血清、１％正常マウス血清含有アッセイ緩衝液）の濃度で５０μＬ加え、プレートシーラーでシールし、振り混ぜながら、４℃で一晩インキュベートした。
プレートを洗浄液（２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、０．１５Ｍ  ＮａＣｌ、０．０５％  Ｔｗｅｅｎ  ２０）で洗浄後、ペルオキシダーゼ標識抗ウサギＩｇＧ抗体溶液（シンプルステインＭＡＸ−ＰＯ；ニチレイ社製）を１％正常山羊血清、５％スキムミルク、１％正常マウス血清含有のアッセイ緩衝溶液で希釈し、各ウェルに１００μＬずつ加えて、プレートシーラーでシールし、振り混ぜながら、さらに４℃で１時間インキュベートした。再び上記洗浄液で洗浄後、ＴＭＢ（３，３’，５，５’−Ｔｅｔｒａｍｅｔｈｙｌ  Ｂｅｎｚｉｄｉｎｅ）２．６４ｍｇを秤取し、ＤＭＳＯ  ０．１ｍＬに溶解してから０．１Ｍクエン酸緩衝液（ｐＨ４．４）１０ｍＬに加え、これに３０％過酸化水素水を３．３μＬ添加して基質溶液を調製し、この基質溶液を各ウェルに０．１ｍＬずつ加えて、固相に結合したＨＲＰと室温で３０〜４０分間反応させて発色させた。１規定硫酸０．１ｍＬずつを加えて反応を停止させ、プレートリーダーで４５０ｎｍの吸光度を測定して、中枢性タウ蛋白質の濃度を求めた。
（４）市販キットを用いた脳脊髄液中のタウ蛋白質の測定
次に、市販されているタウ蛋白質測定キット（Ｉｎｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ社製：日本国内の名称「フィノスカラーｈＴＡＵ」、欧米における名称「ＩＮＮＯＴＥＳＴ  ｈＴＡＵ  Ａｇ」）を用いて測定を行った。上記（３）で使用したものと同一のサンプル各２５μＬを使用し、手順は全てキットに収載の方法に従ってタウ蛋白質濃度を測定した。
（５）測定結果の解析
上記（３）及び（４）で得られた結果を解析し、表１に示した。
2004016655.tif 000002
2004016655.tif 000003
表１から明らかなように、抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）は、アルツハイマー病（ＡＤ）の疑いのある個体と、痴呆ではない神経疾患（コントロール；ＣＴＬ）の個体から得た試料とを明確に識別することができた。その測定結果は市販キットと一致していたが、中枢性タウ蛋白質を検出する感度は該キットに比べて非常に高いことがわかった。これらのことから、本発明の抗体は、アルツハイマー病の検出に非常に有用であることが示された。
実施例３．ヒト脳及び筋肉組織中の中枢性タウ蛋白質のＥＬＩＳＡによる検出
（１）試料の調製
脳組織の試料としては、アルツハイマー病患者の剖検時に得られた脳組織（東京都老人医療センター・嶋田裕之博士から１９９０年に分与された）から、ＷＯ９７／３４１４５号公報に記載の方法（Ｈ．Ｋｓｉｅｚａｋ−Ｒｅｄｉｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２５，４１２−４１９，４２０−４３０（１９９０）に記載の方法に準じた方法）に従ってタウ蛋白質の抽出及び精製を行ったものを用いた。筋肉組織の試料としては、市販のヒト筋肉組織抽出物（Ｃａｔ  Ｎｏ．＃７８０４−１；ＣＬＯＮＴＥＣＨ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．製）を用いた。
これらの試料を用いて、上記実施例２と同様にして酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ）による測定を行うこととした。
（２）抗ヒトタウ蛋白質抗体の固相化
実施例２（２）と同様にして、９６穴ＥＬＩＳＡプレートに抗ヒトタウ蛋白質モノクローナル抗体ＨＴ７を固相化した。
（３）本発明の抗体を用いたＥＬＩＳＡによる脳及び筋肉組織中の中枢性タウ蛋白質の測定
実施例２（３）と同様にして、次の通り中枢性タウ蛋白質を測定し、Ｉｎｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ社製タウ蛋白質測定キットを用いて測定した結果と比較した。
陽性コントロールとしては、上記実施例２（３）において値付けされた遺伝子組換え最短タウＮ側フラグメント（配列番号：７）を用いた。値付けされた最短タウＮ側フラグメントを、アッセイ緩衝液（０．１％ＢＳＡ、１ｍＭ  ＥＤＴＡ、１ｍＭ  ＥＧＴＡ、２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、０．１５Ｍ  ＮａＣｌ、０．０５％  Ｔｗｅｅｎ２０）で各種濃度に希釈して希釈系列を調製し、５０μＬずつ上記（２）で調製したＥＬＩＳＡプレートのウェルに加えた。また、上記（１）において調製した脳及び筋肉組織抽出液についてもそれぞれアッセイ緩衝液にて系列希釈し、同様に５０μＬずつＥＬＩＳＡプレートのウェルに加えた。
試料として、濃度既知の陽性コントロール又は組織抽出液のいずれかが入った各ウェルに、抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）（１００ｎｇ／ｍＬ；１％正常山羊血清、１％正常マウス血清含有アッセイ緩衝液中）を５０μＬずつ加え、プレートシーラーでシールし、振り混ぜながら、４℃で１晩インキュベートした。反応後、洗浄液（２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、０．１５Ｍ  ＮａＣｌ、０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０）で洗浄し、ペルオキシダーゼ標識抗ウサギＩｇＧ抗体（シンプルステインＭＡＸ−ＰＯ；ニチレイ社製）を前記アッセイ緩衝液で希釈したものを各１００μＬ加えて、プレートシーラーでシールし、振り混ぜながら、４℃で１時間インキュベートした。
洗浄液で洗浄後、ＴＭＢ（３，３’，５，５’−Ｔｅｔｒａｍｅｔｈｙｌ  Ｂｅｎｚｉｄｉｎｅ）２．６４ｍｇを秤取し、ＤＭＳＯ（Ｄｉｍｅｔｈｙｌ  ｓｕｌｆｏｘｉｄｅ）０．１ｍＬに溶解後、０．１Ｍクエン酸緩衝液（ｐＨ４．４）１０ｍＬに加え、３０％過酸化水素水を３．３μＬ添加して基質溶液を調製したものを０．１ｍＬずつ加えて、固相に結合したＨＲＰと室温で３０〜４０分間反応させて発色させた。１規定硫酸０．１ｍＬを加えて反応を停止させ、プレートリーダーで４５０ｎｍの吸光度を測定して、中枢性タウ蛋白質の濃度を求めた。
（４）市販のキットを用いた脳及び筋肉組織中のタウ蛋白質の測定
上記（１）において調製した試料について、市販のタウ蛋白質測定キット（Ｉｎｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ社製：日本国内の名称「フィノスカラーｈＴＡＵ」、欧米における名称「ＩＮＮＯＴＥＳＴ  ｈＴＡＵ  Ａｇ」）を用いてタウ蛋白質濃度を測定した。試料は各２５μＬ使用し、キット収載の方法に従って測定した。
（５）測定結果の解析
上記（３）及び（４）の結果を解析し、表２に示した。
2004016655.tif 000004
表２から明らかなように、本発明の抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）を用いた測定法は、タウ蛋白質への反応性は従来の市販キットと同程度であるのに対し、中枢性タウ蛋白質との非常に強い反応を示した。中枢性タウ蛋白質に対する反応性は従来のキットの１０倍以上であった。この結果から、本発明の抗体が筋肉や血液等の末梢組織中に含まれる末梢性タウ蛋白質には反応せず、これらの妨害を受けずに、中枢性タウ蛋白質を特異的に高感度で検出できることが示された。
実施例４．ヒト脳及び筋肉組織中の中枢性タウ蛋白質の免疫ブロットによる検出
（１）抗体の調製
抗タウ蛋白質モノクローナル抗体ＨＴ７は、Ｉｎｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ社から購入して用いた。抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）は、上記実施例１．で調製したものを用いた。
末梢性タウ蛋白質を特異的に認識する抗体（末梢性タウ蛋白質特異的抗体）として、タウ蛋白質をコードする遺伝子のＥｘｏｎ４Ａによりコードされるアミノ酸配列の一部を有するポリペプチドを抗原として得られる抗体を、ＷＯ９７／３４１４５号公報の記載に準じて次の通り調製した。
タウ蛋白質をコードする遺伝子のＥｘｏｎ４Ａによりコードされるアミノ酸配列の部分配列（配列番号：６）のアミノ末端にシステインを導入した配列を有するポリペプチドを化学合成し、これを抗原ポリペプチドとしてキーホール・リンペットのヘモシアニン（ＫＬＨ）に結合させ、免疫原を調製した。まず、マレイミド化ＫＬＨ（凍結乾燥品；Ｐｉｅｒｃｅ社製）１．５ｍｇを０．１５ｍＬの純水に溶解し（５０ｍＭリン酸緩衝液、０．１５Ｍ  ＮａＣｌ、１００ｍＭ  ＥＤＴＡ（ｐＨ７．２））、上記ポリペプチド３．０ｍｇを加えて室温（２５℃）にて２時間反応させた。これを生理的食塩水にて、４℃、一晩透析した後、生理的食塩水で１．０ｍＬに調製して免疫用の抗原（免疫原）とした。得られた免疫原をウサギに繰り返し免疫して得られた抗血清を、上記抗原ポリペプチドを固定化したカラムに通して吸着させ、吸着された画分をＰｉｅｒｃｅ社製のｇｅｎｔｌｅ  ｅｌｕｔｉｏｎ  ｂｕｆｆｅｒで溶出することで、アフィニティ精製された抗体（以下、これを「抗Ｅｘｏｎ４Ａ抗体」と称することがある）を得た。
この抗Ｅｘｏｎ４Ａ抗体の特異性は、上記実施例１．の（４）で抗Ｅｘｏｎ４−５抗体の評価を行ったのと同様にして、各種合成ペプチドに対する反応性をドットブロットによって解析し、前記抗原ポリペプチドに対して特異的に反応することを確認した。
（２）試料の調製
試料としては、実施例３の（１）と同じアルツハイマー病患者由来の脳組織抽出物、及び、市販のヒト筋肉組織抽出物を用いた。陽性コントロールとしては、Ｇｏｅｄｅｒｔ博士（ＭＲＣ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  ｏｆ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，ＵＫ）から分与された遺伝子組換えタウ蛋白質（配列番号：１）を用いた。
（３）免疫ブロット法による解析
上記（２）で調製した各組織抽出物及び陽性コントロールを、９％ポリアクリルアミドゲルにアプライしてＬａｅｍｍｌｉの方法（Ｎａｔｕｒｅ，２２７，６８０−６８５（１９７０））により電気泳動し、セミドライブロッターによりＰＶＤＦ膜に転写した。このようなＰＶＤＦ膜を３枚調製し、次の通り、抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）、抗Ｅｘｏｎ４Ａ抗体（ウサギ）、及び、抗タウ蛋白質モノクローナル抗体ＨＴ７による免疫ブロットを行った。
５％スキムミルクを含むＴＢＳ  ２０ｍＬをブロッキング液として、得られたＰＶＤＦ膜を１時間ブロッキングした。次に、このブロッキング液に抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）は５４０ｎｇ／ｍＬ、抗Ｅｘｏｎ４Ａ抗体は１，３００ｎｇ／ｍＬ、抗タウ蛋白質モノクローナル抗体ＨＴ７は２，０００ｎｇ／ｍＬとなるようにそれぞれ添加し、各１５ｍＬをそれぞれ１枚の膜に加えて、湿箱中で一晩４℃で反応させた。反応後、膜をＴＢＳＴ  ２０ｍＬで１０分間３回洗浄して未反応の抗体を除去した。
５％スキムミルクを含むＴＢＳ  １５ｍＬに、アルカリフォスファターゼ標識二次抗体として、抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）と抗Ｅｘｏｎ４Ａ抗体に対しては抗ウサギＩｇＧ抗体液（シンプルステインＭＡＸ−ＡＰ；ニチレイ社製）を０．７５ｍＬ、抗タウ蛋白質モノクローナル抗体ＨＴ７に対しては抗マウスＩｇＧ抗体液（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）を３μＬ加えて、湿箱中で１時間室温で反応させた。反応後、膜をＴＢＳＴ  ２０ｍＬで１０分間３回洗浄して、未反応の二次抗体を除去した。
再び湿箱中に膜を入れ、それぞれアルカリフォスファターゼ基質用緩衝液（１００ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ９．５），１００ｍＭ  ＮａＣｌ，５ｍＭ  ＭｇＣｌ２）１５ｍＬに浸漬した。これに、基質として、ＮＢＴ溶液（５０ｍｇ／ｍＬ  ｎｉｔｒｏ  ｂｌｕｅ  ｔｅｔｒａｚｏｌｉｕｍ／７０％  ｄｉｍｅｔｈｙｌｆｏｌｍａｍｉｄｅ溶液；Ｐｒｏｍｅｇａ社製）１００μＬを加えて混合し、さらにＢＣＩＰ溶液（５０ｍｇ／ｍＬ  ５−ｂｒｏｍｏ−４−ｃｈｌｏｒｏ−３−ｉｎｄｏｌｙｌ−ｐｈｏｓｐｈａｔｅ／７０％  ｄｉｍｅｔｈｙｌｆｏｌｍａｍｉｄｅ溶液；Ｐｒｏｍｅｇａ社製）５０μＬを加えて混合した。室温で３０分間反応させた後、膜をＴＢＳＴ  ２０ｍＬで１０分間３回洗浄して未反応の基質を除去した。
結果を図２に示す。図２において、Ｍレーンはヒト筋肉組織抽出液、ＢレーンはＡＤ患者脳組織抽出液、Ｃレーンは陽性コントロールとしての遺伝子組換えタウ蛋白質（中枢性タウ蛋白質）を電気泳動したものである。
免疫ブロットの結果、ヒト筋肉組織抽出液中にはＥｘｏｎ４Ａによりコードされるアミノ酸配列を挿入配列として有する分子量１１０ｋＤの末梢性タウ蛋白質（図中、「ｂｉｇ  ｔａｕ（ｅｘｏｎ４Ａ＋）」と示す）及びその断片が存在し、それらは抗Ｅｘｏｎ４Ａ抗体及び抗タウ蛋白質モノクローナル抗体ＨＴ７により検出されるが、脳組織抽出液中には殆ど存在しないことが確認された。一方、抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）はヒト筋肉抽出液とは一切反応せず、ヒト脳組織抽出液及び陽性コントロールに含まれる、分子量４８〜６５ｋＤの中枢性タウ蛋白質（図中、「ｔａｕ（Ｅｘｏｎ４Ａ−）」と示す）とその重合物及び断片とのみ特異的に反応することが確認された。
これらの結果から明らかなように、本発明の抗体は、脳等の中枢組織由来の中枢性タウ蛋白質と筋肉等の末梢組織由来の末梢性タウ蛋白質を明確に識別することができる。よって、従来は大きな分子量を有する末梢性タウ蛋白質の妨害を受けて高い特異性を得ることができなかった血液や筋肉等の末梢組織由来の試料を用いても、特異的に高感度で中枢性タウ蛋白質を検出することができることが示唆された。
実施例５．ヒト血液中の中枢性タウ蛋白質のＥＬＩＳＡによる検出
上記実施例４．において、本発明の抗体が、脳等の中枢組織由来の中枢性タウ蛋白質と筋肉等の末梢組織由来の末梢性タウ蛋白質を明確に識別できることが示されたので、該抗体を用いて、末梢性タウ蛋白質を多量に含むヒト血液中の中枢性タウ蛋白質の検出を行った。
（１）試料の調製
試料となる血液としては、アルツハイマー病（ＡＤ）の疑いのある個体、及び健康なボランティアの個体（コントロール）から、インフォームドコンセントの後、肘静脈から採血し、血漿を分離後、−４０℃で保存されたものを用いた。アルツハイマー病の疑いのある個体から得られた血液は、スクリップス・ラボラトリーズ・ジャパン株式会社より購入した。
（２）抗ヒトタウ蛋白質抗体の固相化
９６穴ＥＬＩＳＡプレート（蛍光／発光測定用）に、抗ヒトタウ蛋白質モノクローナル抗体ＨＴ７の０．１Ｍ炭酸ナトリウム緩衝溶液（ｐＨ９．０）を各ウェルに０．１ｍＬずつ加え、湿潤箱中で４℃、３時間インキュベートして固相化した。溶液を除去した後、０．１Ｍ炭酸ナトリウム緩衝液で洗浄し、１％ＢＳＡ、１％スキムミルクを含むＰＢＳ（１０ｍＭリン酸ナトリウム、１５０ｍＭ  ＮａＣｌ（ｐＨ７．４））溶液を０．２ｍＬ加えて、４℃で２時間ブロッキングした。プレートは、洗浄液（２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、０．０５％Ｔｗｅｅｎ  ２０）で洗浄後、直ちに用いた。すぐに使わない場合にはさらに純水で洗浄し、真空乾燥してラミネート袋に入れ、４℃に保存した。
（３）本発明の抗体を用いたＥＬＩＳＡによる血液中の中枢性タウ蛋白質の測定
ＷＯ９７／３４１４５号公報に記載の方法に準じて、次の通りヒト血液中の中枢性タウ蛋白質を測定した。
まず、上記（２）で調製したＥＬＩＳＡプレートの各ウェルに抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）（１００ｎｇ／ｍＬ；５％スキムミルク、１％正常山羊血清、１％正常マウス血清を含有するアッセイ緩衝液（０．１％ＢＳＡ、１ｍＭ  ＥＤＴＡ、１ｍＭ  ＥＧＴＡ、２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、０．１５Ｍ  ＮａＣｌ、０．０５％  Ｔｗｅｅｎ２０）中）を７５μＬずつ加えた。この各ウェルに、上記（１）において調製した血液試料を２５μＬずつ加えた。また、別のウェルには、陽性コントロールとして上記実施例２（３）で市販のタウ蛋白質測定キット（Ｉｎｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ社製：日本国内の名称「フィノスカラーｈＴＡＵ」、欧米における名称「ＩＮＮＯＴＥＳＴ  ｈＴＡＵ  Ａｇ」）を用いて測定して値付けをされた遺伝子組換え最短タウＮ側フラグメント（配列番号：７）を、アッセイ緩衝液で各種濃度に希釈して希釈系列を調製して２５μＬずつ加えた。これをプレートシーラーでシールし、振り混ぜながら、４℃で１晩インキュベートした。
反応後、洗浄液（２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、０．１５Ｍ  ＮａＣｌ、０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０）で洗浄し、アルカリフォスファターゼ標識抗ウサギＩｇＧ抗体（シンプルステインＭＡＸ−ＡＰ；ニチレイ社製）を前記５％スキムミルク、１％正常山羊血清、１％正常マウス血清を含有するアッセイ緩衝液（０．１％ＢＳＡ、１ｍＭ  ＥＤＴＡ、１ｍＭ  ＥＧＴＡ、２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、０．１５Ｍ  ＮａＣｌ、０．０５％  Ｔｗｅｅｎ２０）で希釈したものを各１００μＬ加えて、再度プレートシーラーでシールし、振り混ぜながら、４℃で１時間インキュベートした。
洗浄液で洗浄後、アプライドバイオシステム社製の発光基質液「ＣＤＰ−ｓｔａｒＴＭ」（Ｄｉｓｏｄｉｕｍ  ２−ｃｈｌｏｒｏ−５−（４−ｍｅｔｏｘｙｓｐｉｒｏ［１，２−ｄｉｏｘｅｔａｎｅ−３，２’−（５’−ｃｈｌｏｒｏ）−ｔｒｉｃｙｃｌｏ［３．３．１．１３，７］ｄｅｃａｎ］−４−ｙｌ）−１−ｐｈｅｎｙｌ  ｐｈｏｓｐｈａｔｅ）を各ウェルに０．１ｍＬずつ加えて、固相に結合したアルカリフォスファターゼと室温で４０〜５０分間反応させて発光させた。発光プレートリーダー（ＬＵＭＩＮＵＳ  ＣＴ９０００：ＤＩＡ−ＩＡＴＲＯＮ社製）で発光強度を測定して、中枢性タウ蛋白質の濃度を求めた。
（４）測定結果の解析
上記（３）で得られた結果を解析し、表３に示した。
2004016655.tif 000005
表３から明らかなように、本発明の中枢性タウ蛋白質特異的抗体を用いれば、従来末梢性タウ蛋白質が多量に含まれるために中枢性タウ蛋白質の検出が困難であったヒト血液を用いても、中枢性タウ蛋白質の存在を解析することができ、アルツハイマー病の検出を行うことができることが示された。
実施例６．ヒト血液中の中枢性タウ蛋白質のＥＬＩＳＡによる検出
上記実施例５．において、本発明の抗体が、ヒト血液を用いても中枢性タウ蛋白質の存在を解析することができ、アルツハイマー病の検出を行うことができることが示された。そこでさらに、該抗体を用いて、従来法でアルツハイマー病又はＭＣＩと判定される患者群について血液を試料とする解析を行った。
従来法でＭＣＩであると判定された患者のうち、年に１０〜１５％、数年では約５０％がアルツハイマー病に移行すると言われており、ＭＣＩ患者には早期アルツハイマー病患者が含まれることが広く認識されつつある。このような患者群を本法の対象とすることにより、従来法では判定が困難な早期アルツハイマー病を本法により検出できる可能性について検討した。
（１）試料の調製
試料となる血液としては、アルツハイマー病（ＡＤ）の疑いのある個体、ＭＣＩの疑いのある個体、及び健康なボランティアの個体（コントロール）から、インフォームドコンセントを得た後に採取されたものを用いた。肘静脈から採血を行い、血漿を分離後、−４０℃で保存されたものを用いた。
アルツハイマー病の診断は、「精神疾患の診断・統計マニュアル、第４版、テキスト改訂版（ＤＳＭ−ＩＶ−ＴＲ）」（Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｐｓｙｃｈｉａｔｒｉｃ  Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ刊、２０００年）、ＭＣＩの診断は、Ｐｅｔｅｒｓｅｎ，Ｒ．Ｃ．等の基準（Ａｒｃｈ．Ｎｅｕｒｏｌ．５６：３０３−３０８，１９９９）に基づいて行った。
（２）抗ヒトタウ蛋白質抗体の固相化
９６穴ＥＬＩＳＡプレート（蛍光／発光測定用）に、抗ヒトタウ蛋白質モノクローナル抗体ＨＴ７の０．１Ｍ炭酸ナトリウム緩衝溶液（ｐＨ９．０）を各ウェルに０．１ｍＬずつ加え、湿潤箱中で４℃、３時間インキュベートして固相化した。溶液を除去した後、０．１Ｍ炭酸ナトリウム緩衝液で洗浄し、１％ＢＳＡ、１％スキムミルクを含むＰＢＳ（１０ｍＭリン酸ナトリウム、１５０ｍＭ  ＮａＣｌ（ｐＨ７．４））溶液を０．２ｍＬ加えて、４℃で２時間ブロッキングした。プレートは、洗浄液（２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０）で洗浄後、直ちに用いた。すぐに使わない場合にはさらに純水で洗浄し、真空乾燥してラミネート袋に入れ、４℃に保存した。
（３）本発明の抗体を用いたＥＬＩＳＡによる血液中の中枢性タウ蛋白質の測定
ＷＯ９７／３４１４５号公報に記載の方法に準じて、次の通りヒト血液中の中枢性タウ蛋白質を測定した。
まず、上記（２）で調製したＥＬＩＳＡプレートの各ウェルに抗Ｅｘｏｎ４−５（１１８−１３１）抗体（１２１−１２８精製）（５０ｎｇ／ｍＬ；１％正常山羊血清、１％正常マウス血清を含有するアッセイ緩衝液（０．１％ＢＳＡ、１ｍＭ  ＥＤＴＡ、１ｍＭ  ＥＧＴＡ、２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、０．１５Ｍ  ＮａＣｌ、０．０５％  Ｔｗｅｅｎ２０）中）を８０μＬずつ加えた。この各ウェルに、上記（１）において調製した血液試料を２０μＬずつ加えた。また、別のウェルには、陽性コントロールとして上記実施例２（３）で市販のタウ蛋白質測定キット（Ｉｎｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ社製：日本国内の名称「フィノスカラーｈＴＡＵ」、欧米における名称「ＩＮＮＯＴＥＳＴ  ｈＴＡＵ  Ａｇ」）を用いて測定して値付けをされた遺伝子組換え最短タウＮ側フラグメント（配列番号：７）を、アッセイ緩衝液で各種濃度に希釈して希釈系列を調製して２０μＬずつ加えた。これをプレートシーラーでシールし、振り混ぜながら、４℃で１晩インキュベートした。
反応後、洗浄液（２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、０．１５Ｍ  ＮａＣｌ、０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０）で洗浄し、アルカリフォスファターゼ標識抗ウサギＩｇＧ抗体（シンプルステインＭＡＸ−ＡＰ；ニチレイ社製）を前記５％スキムミルク、１％正常山羊血清、１％正常マウス血清、１ｍＭ  ＭｇＣｌ２を含有する緩衝液（０．１％ＢＳＡ、２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）、０．１５Ｍ  ＮａＣｌ、０．０５％  Ｔｗｅｅｎ２０）で希釈したものを各１００μＬ加えて、再度プレートシーラーでシールし、振り混ぜながら、４℃で１時間インキュベートした。
洗浄液で洗浄後、アプライドバイオシステム社製の発光基質液「ＣＤＰ−ｓｔａｒＴＭ」（Ｄｉｓｏｄｉｕｍ  ２−ｃｈｌｏｒｏ−５−（４−ｍｅｔｏｘｙｓｐｉｒｏ｛１，２−ｄｉｏｘｅｔａｎｅ−３，２’−（５’−ｃｈｌｏｒｏ）−ｔｒｉｃｙｃｌｏ［３．３．１．１３，７］ｄｅｃａｎ｝−４−ｙｌ）−１−ｐｈｅｎｙｌ  ｐｈｏｓｐｈａｔｅ）を各ウェルに０．１ｍＬずつ加えて、固相に結合したアルカリフォスファターゼと３０℃で３０〜５０分間反応させて発光させた。発光プレートリーダー（ＬＵＭＩＮＵＳ  ＣＴ９０００：ＤＩＡ−ＩＡＴＲＯＮ社製）で発光強度を測定して、中枢性タウ蛋白質の濃度を求めた。
（４）測定結果の解析
上記（３）で得られた結果を解析し、表４に示した。
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表４から明らかなように、本発明の中枢性タウ蛋白質特異的抗体を用いれば、従来法ではＭＣＩと判定される患者群についてもヒト血液を試料とした中枢性タウ蛋白質の存在の解析を行えることが示された。また、少量の試料を用いて、前処理の必要なく解析が行えること、及び化学発光法を用いることによりさらに高い感度が達成されることが確認された。すなわち、本発明の抗体および検出方法の感度の高さが確認された。
【産業上の利用の可能性】
本発明の抗体を用いれば、血液等の末梢組織由来の試料を用いても、特異的に中枢性タウ蛋白質を解析することができる。これにより、患者への侵襲度の大きい脳脊髄液等を採取することなく、より簡便に高感度でアルツハイマー病の検出を行うことができ、治療方針の決定、治療効果の判定、及び介護基準決定等の補助手段になる。
【配列表】
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【図１】
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【図２】
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【国際調査報告】
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