【事件の表示】
　特願２０００−５４７９６４「生物活性薬剤のカプセル化に関する改善」拒絶査定不服審判事件〔平成１１年１１月１８日国際公開、ＷＯ９９／５８１１２、平成１４年　５月２１日国内公表、特表２００２−５１４５９０〕について、次のとおり審決する。
【結　論】
　本件審判の請求は、成り立たない。
【理　由】
１．手続の経緯  
　本願は、１９９９年５月７日（パリ条約による優先権主張１９９８年５月１３日、英国）を国際出願日とする出願であって、平成２１年１２月２４日付けで拒絶理由が通知され、平成２２年６月２８日に意見書及び手続補正書が提出され、同年８月２５日付けで拒絶査定がなされ、これに対し同年１２月２２日に拒絶査定不服審判が請求されるとともに、同日に手続補正書が提出された。その後、平成２３年７月２８日付けで前置報告書を用いた審尋がなされたが、回答書は提出されなかった。 
　
２．本願発明 
　本件に係る発明は、平成２２年１２月２２日付けの手続補正書の特許請求の範囲の請求項１〜６に記載された事項によって特定されるとおりのものであり、その中、請求項３に係る発明は、以下のとおりである。 
   「【請求項３】　ポリマー微粒子であって、以下：
　該微粒子の投与後にレシピエントにおいて発現されるコード配列を含むＤＮＡ；およびポリマー
を含み、ここで、該ＤＮＡは該ポリマー中にカプセル化され、該微粒子は直径１０ミクロンまでのサイズであり、そして、該ポリマーは０．５ｄｌ／ｇ未満の固有粘度を持つＰＬＧを含む、ポリマー微粒子。」（以下、「本願発明」という。）
　
３．引用例　 
（１）引用例の記載事項　  
　原査定の拒絶の理由に引用された、本願の優先日前に頒布された刊行物である国際公開第９７／１７０６３号（原審における引用文献２。以下、「引用例Ａ」という。）、特表平９−５０４０２６号公報（原審における引用文献１。以下、「引用例Ｂ」という。）及び、特表平８−５１０６３９号公報（原審における引用文献３。以下、「引用例Ｃ」という。）には、それぞれ、以下の事項が記載されている。
　（なお、引用例Ａは英文であるので、引用例Ａの対応公表公報（特表２０００−５００７４４号）を参照しての訳文を示す。また、下線は当審で付した。） 
 　 
（１−１）引用例Ａの記載事項
　ａ１ （１２頁１５行〜１７頁９行）　
　「以下の実施例に記載の本発明の特定の実施態様の使用において、本発明の微粒子の調製物は、タンパク質ルシフェラーゼをコードするDNAを含む。当業者により理解されるように、広範なDNA配列および構築物が本発明における使用に適切である。特に、本発明は、当該分野において既によく知られ、そして特徴づけられている広範なプラスミドベクターを取り込んで実施され得る。代表的には、本発明で用いられるプラスミドベクターは、所望の遺伝子産物をコードするcDNAを含む。DNA配列のさらなる成分（例えば、プロモーター、レポーター遺伝子、および転写終結配列）の選択は、公知のプラスミドベクターの構築に関する通常の常識に従って当業者により行われ得る。
　本発明の組成物のための好ましい投与経路は、経口経路である。本発明の組成物は、好ましくは、高い酸レベルを有する胃を通過する際に顕著な分解を避けるように設計されるべきであることが意図される。
　
10μm未満の大きさの微粒子の取り込みがとりわけ腸のＭ細胞内で生じ、従ってこの大きさ範囲のDNA含有粒子の封入が、この腸位置での取り込みを促進するのに有利であり得ることが知られている。ポリマーの性質および特性および成分に対する他の変更は、本発明の概念内で行われ得る
　以下の図面を伴って、本発明の特定の実施態様の説明を続ける。
　　・・・　
　図２は、
実施例３の結果、すなわち、ＰＬＧカプセル化プラスミドDNA
ルシフェラーゼ特異的血清抗体の誘導
　　・・・　
実施例１　ＰＬＧ微粒子におけるプラスミドDNAのカプセル化方法
装置：   　
　　・・・  　
試薬：
１）
ポリ(ラクチド-コ-グリコリド)(ＰＬＧ)
２）
プラスミドDNA
３）ポリビニルアルコール(PVA)溶液（水中８％ w/v）。
４）無水エタノール。
５）TEN緩衝液（10mM tris pH 8.0＋１mM EDTA＋50mM NaCl）。
方法：
１）200μlプラスミドDNA溶液を250μl TENと混合し、そして150μlエタノールを撹拌しながら添加する。よく混合する。
２）この混合物を3ml ＰＬＧ溶液に添加し、そしてSilversonミキサー中で3000rpmで２分間乳化する。
３）このエマルジョンを100ml PVAに添加し、そして3000rpmで２分間乳化する。
４）２重エマルジョンを１リットルの水に添加し、そして１分間活発に撹拌する。
５）微粒子の懸濁液を遠心分離容器中に分配し、そして10,000×gavで30分間遠心分離する。
６）微粒子ペレットを25mlの水中に再懸濁し、そして大きなクリアランス(0.5mm)を有する手動ホモジナイザーでホモジナイズし、均質な懸濁液にする。200mlの水で希釈し、そして上述のように再度遠心分離する。
７）工程６を３回繰り返す。
８）微粒子ペレットを25mlの水中に上述のように再懸濁し、凍結乾燥に適した容器に移し、イソプロパノール／ドライアイス混合物中で表面を凍結し、そして48時間凍結乾燥する。
　この方法では、工程１〜３を室温で行う。DNAは、微粒子中に約25％の効率で取り込まれた。
　　・・・
実施例３
　本発明者らは、ヒトサイトメガロウイルス即時型（hCMV IE）プロモーターの転写制御下で、
昆虫タンパク質ルシフェラーゼをコードするプラスミドDNA
インビトロでトランスフェクトされた細胞におけるルシフェラーゼ活性を実証した
　本発明者らは、
実施例１のプロトコルを用いて
大きさが約２μmのＰＬＧ微粒子中に精製プラスミドDNAをカプセル化した
　
マイクロカプセル化DNA
を
マウスに投与した
ルシフェラーゼ特異的血清抗体を、DNA投与の３および６週間後にELISAにより分析した
　
図２に示すように、中程度の特異的IgGおよびIgM応答が
見られた。
経口投与したカプセル化DNAは、良好なIgG応答を惹起した
IgGおよびIgM抗体応答から、ルシフェラーゼ発現および免疫系への提示が、ＰＬＧ微粒子中にカプセル化されたプラスミドDNAの投与後に、標準的なi.m.経路で見られたより高く、かつ非カプセル化DNAの比較投与において見られたより高い効率で生じたことが示される。
　
　ａ２　図２として、筋肉内注射（i.m.）、腹腔内注射（i.p.）注射および経口でのDNA投与後３週および６週間後におけるルシフェラーゼ特異的IgG，IgM血清抗体価が示されている。（図２の記載は省略する。）
　
　ａ３　（４頁９〜１２行）　
　「一般に、本発明の微粒子は、ファゴサイトーシス（例えば、マクロファージまたは他の抗原提示細胞によるファゴサイトーシス）によってレシピエントの細胞に入ることが意図される。続いて、
微粒子本体は細胞内隙で分解し、そしてDNAが放出される
　
　ａ４　（６頁１３〜２３行）　
　「
本発明の微粒子のポリマーは
生分解性
である
ＰＬＧ
  本発明の産物は、代表的には、動物（特に、動物）におけるインビボ用途のためである。従って、微粒子のポリマーは、インビボで非毒性であり、かつ薬学的用途に適切であるべきである。
ポリマーは
レシピエントにおいてそのDNAを放出するので、生分解性
であるべきである
　
（１−２）引用例Ｂの記載事項
　ｂ１　（５頁３〜９行）　
　「
発明の要約
　・・・本発明のミクロスフェアは、抗原、アジュバント、ペプチド、ポリペプチド、ホルモン、抗生物質等といったような、あらゆる種類の活性物質を封入することができる。本発明のミクロスフェアの形成に好ましいポリマーマトリックスは、・・ポリ(Ｄ−Ｌ−ラクチド−コ−グリコリド)である。」
　
　ｂ２　（７頁１６〜２１行）　
   「本明細書中で使用する「ポリラクチド」および「ＰＬＧＡ」という用語は、区別なく使用され、また乳酸単独のポリマー、グリコール酸単独のポリマー、そのようなポリマーの混合物、グリコール酸および乳酸のコポリマー、そのようなコポリマーの混合物、またはそのようなポリマーおよびコポリマーの混合物を示すことを意図する。
本発明のミクロスフェアの形成に好ましいポリマーマトリックスは、ポリ(Ｄ−Ｌ−ラクチド−コ−グリコリド)である。
　
　ｂ３　（９頁６〜１４行）　
   「Ｂ．
一般的方法
　一般的に、抗原またはアジュバントの微量封入は、第３図に簡単に概要を示すプロトコルにより行われる。要約すると、まず最初に、ラクチド：グリコリドの望ましい比率(約１００：０〜０：１００重量％、さらに好ましくは約６５：３５〜３５：６５、最も好ましくは約５０：５０)および
固有粘度(通例、約０．１〜１．２dl／ｇ、好ましくは約０．２〜０．８dl／ｇ)を有するＰＬＧＡ
　
　ｂ４　（１０頁下から４〜１行）　
   「本発明の
ミクロスフェアについての分解速度は
ポリマーの分子量により部分的には決定される。様々な分子量(または固有粘度)のポリマーを混合して、望ましい分解プロフィールを得ることができる。
　
（１−３）引用例Ｃの記載事項
　ｃ１　（６頁５〜８行）
　　「この発明は、生分解性で徐放性のポリマー極微粒子内でタンパク質、抗体もしくは他の分子と接合化もしくは結合した核酸（・・・）の徐放に関する。この本発明は、遺伝的形質転換のためのカプセル化遺伝子の使用にも関する。」
　　　
　ｃ２　（１９頁下から６行〜２０頁１２行）
　　「本発明において用いる極微粒子のポリマーマトリックス材料は生体適合性で生分解性のポリマー物質でなければならない。適当なポリマーマトリックス材料としては・・・混合d,Ｌ−乳酸とグリコール酸とのコポリマー、・・・。
　ポリマーマトリックス材料の分子量はかなり重要である。この分子量（ＭＷ）は、満足すべきポリマー皮膜を形成するのに十分な値にすべきである。・・ポ
リマーの分子量は分解速度においても
重要な役割を果たす。一般に、ＭＷが大きければ大きいほど、分解速度は遅くなる
　核酸はポリマーマトリックスを通る浸出（leaching）によって極微粒子から放出される。この場合、核酸はポリマーが著しく分解する前またはポリマーの分解と同時に放出される。」　
　　
（２）引用例Ａに記載された発明 
　上記（１）で指摘した引用例Ａの記載事項ａ１の実施例３には、「昆虫タンパク質ルシフェラーゼをコードするプラスミドDNA」を使用し、実施例１のプロトコルを用いて、「大きさが約２μmのＰＬＧ微粒子中に精製プラスミドDNAをカプセル化」したことが記載されている。そして、「マイクロカプセル化DNAを、マウスに投与した」ところ、図２に示すように、「ルシフェラーゼ特異的血清抗体の誘導」が示されたことが記載されている（上記ａ１，ａ２）から、マイクロカプセル化DNAは、ルシフェラーゼ特異的血清抗体を誘起するものである。
　してみると、引用例Ａには、　 
　「昆虫タンパク質ルシフェラーゼをコードするプラスミドDNAがカプセル化された、大きさが約２μmのＰＬＧ微粒子であって、マウスへの投与後に、ルシフェラーゼ特異的血清抗体が誘導されるＰＬＧ微粒子。」 
　の発明（以下、「引用発明」という。）が記載されているものと認められる。　 
 　 
４．対比 
　そこで、本願発明と引用発明を対比する。  
　まず、引用発明の「マウス」は、本願発明の「レシピエント」に相当する。また、引用発明の「昆虫タンパク質ルシフェラーゼをコードするプラスミドDNA」は、「マウスへの投与後に、ルシフェラーゼ特異的血清抗体が誘導される」ものであって、このルシフェラーゼ特異的血清抗体が、昆虫タンパク質ルシフェラーゼをコードするDNAがマウスで発現し、昆虫タンパク質ルシフェラーゼが産生されたことに起因して生体内で誘導されたものであることは当業者に明らかである。
　してみると、引用発明のＰＬＧ微粒子に含まれる、「昆虫タンパク質ルシフェラーゼをコードするプラスミドDNA」は、本願発明の「微粒子の投与後にレシピエントにおいて発現されるコード配列を含むＤＮＡ」に相当する。
　さらに、引用発明のＰＬＧ微粒子は、「大きさが約２μm」であるから、本願発明の「直径１０ミクロンまでのサイズ」に相当する。 
 　 　 
　したがって、本願発明と引用発明は、 
　「ポリマー微粒子であって、以下：
　該微粒子の投与後にレシピエントにおいて発現されるコード配列を含むＤＮＡ；およびポリマーを含み、
　該ＤＮＡは該ポリマー中にカプセル化され、該微粒子は直径１０ミクロンまでのサイズであり、該ポリマーはＰＬＧを含む、ポリマー微粒子。」　　
　で一致し、下記の点で相違する。 
 　 
＜相違点＞ 
　ポリマー微粒子のポリマーに含まれるＰＬＧが、本願発明では、「０．５ｄｌ／ｇ未満の固有粘度を持つ」と特定されているのに対し、引用発明では、この特定がなされていない点。 
  　 
５．判断 
　上記の相違点について検討する。 
　
（１）まず、本願発明において、ＰＬＧポリマーを「０．５ｄｌ／ｇ未満の固有粘度を持つ」ものと特定する点についての技術的意義に関し、本願明細書には以下の記載がある。（下線は、当審による。）
　
　「【００４７】
　
本発明の１つの局面において、直径１０ミクロンまでのサイズであり
ポリマーは０．５ｄｌ／ｇ未満の固有の粘度のＰＬＧである
【００４８】
　
このことは、この微粒子がレシピエントの内部で一度分解され、そして抗原提示細胞によって取り込まれ得るが、それは有意な割合のＤＮＡが分解される前であるという利点を与える。
【００４９】
　
微粒子の大部分が細胞によって取り込まれ、そしてインターナライズされた場合に、カプセル化されたＤＮＡの最大量が放出される放出プロフィールを得ることが好ましい
有意なＤＮＡ放出が、微粒子が動物の胃を通して腸内への通過後に起こる。次いで、そこで微粒子はＰｅｙｅｒパッチのＭ細胞によって取り込まれ、次いで、ここで微粒子は分解し、カプセル化されたＤＮＡを放出する
【００５０】
　上記で、
低いｉ．ｖ．（代表的には低分子量）のＰＬＧの使用が、より迅速な粒子の分解および粒子の内容物の放出によって
改善された免疫を与え得るか
ｉ．ｖ．の範囲（従って、分子量の範囲）を有する微粒子を含む組成物が使用された場合
有利な免疫効果を産生するということが利点であり得る
【００５１】
　本発明の特定の実施態様において、
微粒子についての放出プロフィールは、ｉ．ｖ．および／またはポリマーの分子量分布を調整することによって操作され得る
より低いｉ．ｖ．ポリマーの割合がより大きいほど、より迅速にＤＮＡが放出される。
所望の放出プロフィールを示す本発明の微粒子は産生される
【００５２】
　
好ましくは、ｉ．ｖ．は、０．１〜０．４ｄｌ／ｇの範囲である。本発明の特定の実施態様において、この範囲内のｉ．ｖ．を有するＰＬＧからなるポリマー殻を有する微粒子が、良好なＤＮＡ放出プロフィールおよび保持された良好な粒子構造を示す
　　・・・
【０１０３】
　（実施例９）
　（
ポリマーの固有粘度を変更することによる、ＰＬＧ微粒子の放出プロフィールの改変
　実施例８の手順は、以下のＰＬＧ調製物を用いて以下の通りであった：　
　（ａ）
０．１９ｄｌ／ｇの固有粘度
　（ｂ）
０．３９ｄｌ／ｇの固有粘度
　（ｃ）
０．１９ｄｌ／ｇおよび０．３９ｄｌ／ｇの固有粘度のＰＬＧの５０：５０（重量による）の混合
　（ｄ）
０．１９ｄｌ／ｇおよび０．３９ｄｌ／ｇの固有粘度のＰＬＧの７５：２５（重量による）の混合
　主に１ミクロン〜１０ミクロンのサイズの微粒子を得て、そしてこの粒子からのＤＮＡの放出のプロフィールを測定し、そして図５に図示する。」
　
　また、本願の図５に、実施例９の（ａ）０．１９ｄｌ／ｇの固有粘度のＰＬＧ、（ｂ）０．３９ｄｌ／ｇの固有粘度のＰＬＧ、（ｃ）０．１９ｄｌ／ｇおよび０．３９ｄｌ／ｇの固有粘度のＰＬＧの５０：５０混合物、（ｄ）０．１９ｄｌ／ｇおよび０．３９ｄｌ／ｇの固有粘度のＰＬＧの７５：２５混合物を使用したＰＬＧ微粒子からのＤＮＡ放出プロフィールが示されており、図５から、より低い固有粘度（０．１９ｄｌ／ｇ）のＰＬＧの微粒子からの放出がより高い固有粘度（０．３９ｄｌ／ｇ）のＰＬＧの微粒子よりも速いこと、混合物の場合もより低い固有粘度（０．１９ｄｌ／ｇ）のＰＬＧの割合が高いものがより放出速度が速いこと、が読み取れる。
　
　以上、本願明細書及び図面の記載によれば、本願発明のポリマー微粒子は、レシピエントの腸のパイエル板（Ｐｅｙｅｒパッチ）のＭ細胞により取り込まれ、内部で分解され、そして、抗原提示細胞によって取り込まれ得るが、それが有意な割合のＤＮＡが分解される前に行われるという利点を有するものであり、ＰＬＧポリマーを「０．５ｄｌ／ｇ未満の固有粘度を持つ」、より低い固有粘度（ｉ．ｖ．）のポリマーを含む微粒子とすることで、この固有粘度を超えるポリマーを使用する場合よりも、より速くポリマーが分解され、より迅速にＤＮＡが放出されるような放出プロフィールを有する微粒子とすることができるという技術的意義を有すると認められる。（さらには、そのことにより免疫効果における利点も得られる。）
　
（２）一方、引用例Ａには、微粒子のポリマーは、レシピエントにおいてそのDNAを放出するので、生分解性であるべきであること（記載事項ａ４）、１０μm未満の大きさの微粒子の取り込みがとりわけ腸のＭ細胞内で生じ、この大きさ範囲のDNA含有粒子の封入が腸位置での取り込みに有利であること（同ａ１）、及び、微粒子はファゴサイトーシスによってレシピエントの細胞に入り、続いて、微粒子本体が細胞内隙で分解し、DNAが放出されること（同ａ３）が記載されているから、引用発明のポリマー（ＰＬＧ）微粒子も、本願発明と同様に、腸部位で細胞内に取り込まれ、微粒子のＰＬＧが分解されてＤＮＡが放出され得るものである。
　また、引用例Ａには、微粒子を構成するポリマーの性質および特性の変更が行われ得ることも記載されている（同ａ１）。
　
　ところで、引用例Ａと同様、生体に活性物質を投与するために使用されるミクロスフェア（微粒子）であって、好ましくはＰＬＧ（ポリ（Ｄ−Ｌ−ラクチド−コ−グリコリド））ポリマー微粒子であるものを開示する引用例Ｂ（記載事項ｂ１，ｂ２）には、微粒子を構成するポリマーの固有粘度は、通例、約０．１〜１．２dl／ｇ、好ましくは約０．２〜０．８dl／ｇであること（同ｂ３）、及び、微粒子の分解速度は、ポリマーの分子量により部分的に決定され、様々な分子量(または固有粘度)のポリマーを混合して、望ましい分解プロフィールを得ることができることが記載されているから（同ｂ４）、引用例Ｂには、ＰＬＧポリマーの固有粘度に着目して、微粒子の分解プロフィールを調整することが示されているといえる。
　ここで、微粒子を構成するポリマーの固有粘度が微粒子の分解プロフィールに与える影響については、ポリマーの分子量に関し引用例Ｂに「様々な分子量(または固有粘度)」（同ｂ４）と記載され、また、本願明細書にも「本発明における使用のために適切なポリマーの分子量分布は、固有の粘度（ｉ．ｖ．）によって引用される。このｉ．ｖ．は、・・・分子量分布に相関することが公知である。」（【００４６】）と記載されるように、一般に、ポリマーの分子量と固有粘度には正の相関関係にあることが知られているところ、引用例Ａと同様のカプセル化遺伝子（ＤＮＡ）に関するものであって、カプセルを構成する生分解性ポリマーマトリックス材料としてＰＬＧ（混合d,Ｌ−乳酸とグリコール酸とのコポリマー）も記載する引用例Ｃに、ポリマーの分解速度にポリマーマトリックス材料の分子量がかなり重要であること及び、一般に分子量が大きいほど分解速度は遅くなることが記載されており（記載事項ｃ１，ｃ２）、当該記載からは、逆に、ポリマーの分子量が小さいほど、ポリマーの生体内での分解速度が速くなることも理解できるから、引用例Ｃを参酌すれば、当業者は、ポリマーの分子量が小さい程、すなわち、ポリマーの固有粘度が小さいほど、ポリマーの生体内での分解速度が速くなることが理解できる。
　   
　してみると、引用発明において、ＰＬＧポリマー微粒子の分解プロフィールに着目し、引用例Ｂに記載される固有粘度０．２〜０．８dl／ｇの範囲内で、より迅速なＰＬＧの分解及びＤＮＡの放出が期待できる、より低い固有粘度範囲のポリマー、例えば、０．５ｄｌ／ｇ未満といった固有粘度のＰＬＧポリマーを採用することは、当業者が容易になし得ることである。 
　　
（３）さらに、０．５ｄｌ／ｇ未満といったより固有粘度の低いＰＬＧポリマーを採用することで、これより高い固有粘度のＰＬＧを採用する場合に比べてＤＮＡのより迅速な放出がなされることは、当業者が引用例Ａ〜Ｃの記載から予測し得る効果にすぎないし、本願明細書の記載を検討しても、ＰＬＧポリマーの固有粘度を０．５ｄｌ／ｇ未満とする数値限定に格別の臨界的意義があるとも解されないから、本願発明の効果は格別とはいえない。 　 　 　　
（４）請求人は、平成２３年２月２５日付けの手続補正書（方式）において、甲第４号証（「Inherent Viscosity vs.Molecular Weight」と称する文書）を示し、「固有粘度は、・・分子量と直接的に相関しません。それゆえ、分子量範囲は、本願発明の固有粘度のポリマーの使用の示唆を提供し得ません。」（手続補正書（方式）の８頁２４〜２７行）と主張し、また、「引用文献３（審決における引用例Ｃ）は、「
一般に
ポリマーの分解に対して、分子量よりも大きな（そして複雑かつ非線形の）影響を有する多くの要因
　しかしながら、まず、甲第４号証には、「ＩＶ（固有粘度）およびＭＷ（分子量）との間の経験的相関である。」と記載されているところ（１頁目下から２〜３行）、同号証に示される相関図では、ポリマー毎の個別の相関図は一致しないにせよ、いずれも分子量と固有粘度に正の相関関係があることが見て取れ、同種のポリマーでは、分子量が大きくなると固有粘度も高くなるという一般的に知られる経験的相関関係と一致しており、相関関係がないことは示されていない。
　そして、上述のとおり、ポリマーの分子量または固有粘度は微粒子の分解速度の決定要因の一つであり、また、固有粘度の異なる複数のポリマーを混合して、望ましい分解プロフィールとなるように調整することも本願優先日前から知られている（上記ｂ４）のであるから、分解速度を制御する要因が複数存在するとしても、引用発明のポリマー微粒子に含まれるＰＬＧポリマーを、固有粘度の観点から調整することの阻害要因にはならない。
　また、引用例Ｃの記載から、ポリマーの分子量と分解速度との関係については、ポリマーの分子量が小さい程（すなわち、固有粘度が小さい程）、ポリマーの生体内での分解速度が速くなることが理解できることは（２）で指摘したとおりであるし、この点は、例えば、引用例Ｂの、「ミクロスフェアのフラグメンテーションを引き起こすのに必要とされるポリマー主鎖中の切断数は、ポリマー分子量に左右される。」（６頁５〜７行）なる記載や、引用例Ｂの図２から、同じラクチドとグリコリドの相対比においては、与えられた分子量が増加するにつれて分解が完了するまでのハーフタイムが長くなることが読み取れる点とも合致する。
  したがって、請求人の主張は採用できない。
 　 　
　よって、本願発明は、本願優先日前に頒布された刊行物である引用例Ａ〜Ｃに記載された発明に基づいて、当業者が容易に発明をすることができたものである。　  
 　 
６．むすび 
 以上のとおりであるから、本願請求項３に係る発明は、特許法第２９条第２項の規定によって、特許を受けることができないものである。 
 それ故、本願は、その余の請求項について論及するまでもなく拒絶すべきものである。  　　 
 よって、結論のとおり審決する。