(57)【要約】【課題】  単一細胞又は数個〜数十個の細胞の凝集塊で、高い生存率で多能性幹細胞を基材から剥離可能であり、未分化の多能性幹細胞を選択的に基材から剥離可能な多能性幹細胞の剥離方法を提供する。【解決手段】  基材上で培養された多能性幹細胞の剥離方法であって、下記［１］及び［２］工程を経ることを特徴とする多能性幹細胞の剥離方法。［１］キレート剤を含有し、トリプシンの含有量が０．２５ｗｔ％未満である細胞剥離液と多能性幹細胞を接触させる工程。［２］培養環境に外部刺激を加える工程。【選択図】  図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
基材上で培養された多能性幹細胞の剥離方法であって、下記［１］及び［２］工程を経ることを特徴とする多能性幹細胞の剥離方法。
［１］キレート剤を含有し、トリプシンの含有量が０．２５ｗｔ％未満である細胞剥離液と多能性幹細胞を接触させる工程。
［２］培養環境に外部刺激を加える工程。
【請求項２】
前記［１］工程が、５×１０−１０〜５×１０−１ｍｏｌ／Ｌのキレート剤の存在下で行われることを特徴とする、請求項１に記載の多能性幹細胞の剥離方法。
【請求項３】
前記キレート剤が、カルシウムイオンとキレートを形成するものであることを特徴とする、請求項１又は請求項２に記載の多能性幹細胞の剥離方法。
【請求項４】
前記［１］工程が、トリプシンの非存在下で行われることを特徴とする、請求項１〜請求項３のいずれかに記載の多能性幹細胞の剥離方法。
【請求項５】
外部刺激が、培養液への対流、基材の細胞播種面の裏面への圧力、及び基材への振動からなる群から選択される少なくとも１種類の外部刺激であることを特徴とする、請求項１〜請求項４のいずれかに記載の多能性幹細胞の剥離方法。
【請求項６】
基材が温度応答性を有するものであり、外部刺激が、基材の冷却であることを特徴とする、請求項１〜請求項５のいずれかに記載の多能性幹細胞の剥離方法。
【請求項７】
基材の少なくとも一部に細胞低接着性の領域を有することを特徴とする、請求項１〜請求項６のいずれかに記載の多能性幹細胞の剥離方法。
【請求項８】
多能性幹細胞が人工多能性幹細胞であることを特徴とする、請求項１〜請求項７のいずれかに記載の多能性幹細胞の剥離方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、単一細胞又は数個〜数十個の細胞の凝集塊で、高い生存率で多能性幹細胞を基材から剥離可能であり、未分化の多能性幹細胞を選択的に基材から剥離可能な多能性幹細胞の剥離方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
胚性幹細胞（ＥＳ細胞）や人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）などの多能性幹細胞は、生体の様々な組織に分化する能力（分化万能性）を持つ細胞であり、再生医療分野における細胞ソースとして大きな注目が寄せられている。多能性幹細胞を再生医療に応用するには、まず必要な数の多能性幹細胞を未分化状態で増殖させ、単一細胞又は数個〜数十個の細胞の凝集塊として回収することが必須である。
【０００３】
多能性幹細胞を基材から細胞を剥離させる際は、トリプシンが用いられている（例えば、特許文献１）。タンパク質分解酵素は多細胞表面にあるタンパク質を分解し、多能性幹細胞と基材間の結合および多能性幹細胞間の結合を切断する役目を担っている。しかしながら、タンパク質分解酵素は細胞の生存率に悪影響を与えることが知られており、特許文献１の方法では、剥離によって細胞の生存率が低下してしまうという問題があった。さらには、特許文献１の方法では分化した細胞と未分化の細胞のいずれも基材から剥離するため、未分化の多能性幹細胞のみを選択的に剥離回収することはできないという問題があった。
【０００４】
タンパク質分解酵素を用いることなく細胞を剥離する方法として、温度応答性を有する基材を用いる方法が知られている。例えば、特許文献２では、水に対する上限もしくは下限臨界溶解温度が０〜８０℃である温度応答性高分子が被覆された細胞培養支持体を用い、温度変化により細胞を剥離せしめ、細胞シートを回収する方法が開示されている。しかしながら特許文献２に記載の方法では、冷却に時間を要することから短時間で細胞を培養支持体から剥離することはできないという問題があった。また、特許文献２に記載の方法は、未分化の多能性幹細胞のみを選択的に剥離回収することはできず、さらには、特許文献２では細胞シートの回収を主目的としており、単一細胞又は数個〜数十個の細胞の凝集塊を得るものではない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】ＷＯ２００９／００６３９９号公報
【特許文献２】特開２００９−１３１２７５号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明の目的は、高い細胞生存率で多能性幹細胞を基材から剥離可能であり、未分化の多能性幹細胞を選択的に基材から剥離可能な多能性幹細胞の剥離方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは以上の点を鑑み鋭意研究を重ねた結果、特定の成分からなる細胞剥離液を用い、外部刺激によって多能性幹細胞を基材から剥離することによって上記課題を解決できることを見出し、本発明を完成するに至った。
【０００８】
すなわち、本発明によれば、基材上で培養された多能性幹細胞の剥離方法であって、下記［１］及び［２］工程を経ることを特徴とする多能性幹細胞の剥離方法が提供される。
【０００９】
［１］キレート剤を含有し、トリプシンの含有量が０．２５ｗｔ％未満である細胞剥離液と多能性幹細胞を接触させる工程。
【００１０】
［２］培養環境に外部刺激を加える工程。
【発明の効果】
【００１１】
本発明によって、単一細胞又は数個〜数十個の細胞の凝集塊で、高い生存率で多能性幹細胞を基材から剥離可能であり、未分化の多能性幹細胞を選択的に基材から剥離可能な多能性幹細胞の剥離方法を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１２】
【図１】実施例１の剥離操作前後の基材表面の位相差顕微鏡像である。
【発明を実施するための形態】
【００１３】
以下、本発明を実施するための形態（以下、単に「本実施の形態」という。）について詳細に説明する。以下の本実施の形態は、本発明を説明するための例示であり、本発明を以下の内容に限定する趣旨ではない。本発明は、その趣旨の範囲内で適宜に変形して実施できる。
【００１４】
本発明において「多能性幹細胞」とは、様々な組織の細胞へと分化することが可能（分化多能性）な幹細胞を示す。多能性幹細胞の種類として特に限定はないが、例えば、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）、人工多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）、胚性生殖幹細胞（ＥＧ細胞）、生殖幹細胞（ＧＳ細胞）等を挙げることができる。再生医療への適用に好適であることからＥＳ細胞又はｉＰＳ細胞が好ましく、作製における倫理上の問題がないことからｉＰＳ細胞がさらに好ましい。また、多能性幹細胞の由来動物は特に限定されるものではないが、例えば、哺乳動物由来であることができる。哺乳動物の例には、げっ歯類（マウス、ラット等）、霊長類（サル、ヒト等）が含まれ、また実験動物であってもよく、コンパニオンアニマルであってもよい。本発明において、好ましくは霊長類由来であり、さらに好ましくはヒト由来である。
【００１５】
本発明において「未分化細胞」とは、分化多能性を維持している多能性幹細胞を示す。また、「分化細胞」とは、多能性幹細胞から特定の細胞へと分化した細胞を示す。
【００１６】
本発明の多能性幹細胞の剥離方法を適用するための、多能性幹細胞の培養方法は、基材上で培養すること以外に特に制限はなく、従前公知の多能性幹細胞の培養方法を用いることができる。本発明の剥離方法によって剥離回収した後の多能性幹細胞へのウィルス等の汚染のリスクを低減するのに好適であることから、フィーダーフリー培養された多能性幹細胞が好ましい。
本発明の多能性幹細胞の剥離方法は、下記［１］及び［２］工程を経ることを特徴とする。
【００１７】
［１］キレート剤を含有し、トリプシンの含有量が０．２５ｗｔ％未満である細胞剥離液と多能性幹細胞を接触させる工程。
【００１８】
［２］培養環境に外部刺激を加える工程。
【００１９】
以下、各工程について詳細に説明する。
【００２０】
本発明の多能性幹細胞の剥離方法における［１］工程は、多能性幹細胞と細胞剥離液を接触させる。多能性幹細胞と細胞剥離液を接触させることによって、多能性幹細胞の細胞−細胞間結合を乖離させ、多能性幹細胞を単一細胞又は数個〜数十個の細胞の凝集塊とすることができる。また、［１］工程によって、未分化細胞の基材からの剥離を促進し、［２］工程における選択剥離の選択性を高めることができる。［１］工程を行わない場合、高い生存率又は選択性で多能性幹細胞を剥離することができない。
【００２１】
本発明の多能性幹細胞の剥離方法は、キレート剤を含有する細胞剥離液を用いる。キレート剤を含有する細胞剥離液を用いることによって、多能性幹細胞を単一細胞又は数個〜数十個の細胞の凝集塊として剥離することができ、また、細胞の生存率を高めることができる。キレート剤を含有しない場合、高い細胞生存率を維持しつつ単一細胞又は数個〜数十個の細胞の凝集塊で多能性幹細胞を剥離することができない。また、キレート剤を含有する細胞剥離液を用いることによって、後述する未分化細胞の選択剥離の際、高い選択性で未分化細胞を剥離することができる。ここで、本発明における選択剥離の「選択性」とは、剥離した細胞に含まれる未分化細胞の割合を示す。
【００２２】
［１］工程は、細胞を単一細胞又は数個〜数十個の細胞の凝集塊とするのに好適であり、また、細胞の生存率及び選択剥離の選択制を高めるのに好適であることから、５×１０−１０〜５×１０−１ｍｏｌ／Ｌのキレート剤の存在下で行われることが好ましく、５×１０−６〜１×１０−１ｍｏｌ／Ｌがさらに好ましく、５×１０−４〜５×１０−２ｍｏｌ／Ｌが特に好ましく、１×１０−３〜５×１０−２ｍｏｌ／Ｌが最も好ましい。
【００２３】
前記キレート剤としては、キレート剤であること以外に特に限定はないが、例えば、エチレンジアミン四酢酸、エチレンジアミン、エチレンジアミンテトラメチレンホスホン酸、グリコールエーテルジアミン四酢酸、ニトリロトリ酢酸、ジエチレントリアミン五酢酸、Ｎ−（２−ヒドロキシエチル）エチレンジアミン−Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−三酢酸、トリエチレンテトラミン−Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’’，Ｎ’’’，Ｎ’’’−六酢酸、１，３−プロパンジアミン−Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−四酢酸、１，３−ジアミノ−２−プロパノール−Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−四酢酸、Ｎ−（２−ヒドロキシエチル）イミノ二酢酸、Ｎ，Ｎ−ジ（２−ヒドロキシエチル）グリシン、グリコールエーテルジアミン四酢酸、ジカルボキシメチルグルタミン酸、エチレンジアミン−Ｎ，Ｎ’−ジコハク酸、２，３−ジヒドロキシ安息香酸、イミノ二酢酸、エチドロン酸、クエン酸、ムギネ酸、ビピリジン、ポルフィリン、フェナントロリン、ポルフィリン、クラウンエーテル、サイクレン、１８−クラウン−６、デフェロキサミン、ドータオクトレオテート、ニコチアナミン、ジメルカプロール、シデロホア等を挙げることができる。細胞を単一細胞又は数個〜数十個の細胞の凝集塊とするのに好適であり、また、細胞の生存率及び選択剥離の選択制を高めるのに好適であることから、１〜４価の金属イオンとキレートを形成するキレート剤が好ましく、２価の金属イオンとキレートを形成するキレート剤がさらに好ましく、カルシウムイオンとキレートを形成するキレート剤が特に好ましく、エチレンジアミン四酢酸が最も好ましい。
【００２４】
本発明の多能性幹細胞の剥離方法は、トリプシンの含有量が０．２５ｗｔ％未満の細胞剥離液を用いる。トリプシンの含有量が０．２５ｗｔ％未満であることにより、剥離後の多能性幹細胞の生存率を高めることができ、また、未分化の多能性幹細胞を選択剥離することができる。トリプシンの含有量が０．２５ｗｔ％以上の場合、多能性幹細胞の生存率が低下するとともに、未分化の多能性幹細胞を選択剥離することができない。多能性幹細胞の生存率及び選択剥離の選択制を高めるのに好適であることから、トリプシンの含有量が０．０５ｗｔ％未満であることがさらに好ましく、０．００５ｗｔ％未満が特に好ましく、トリプシンを含有しないすなわち、前記［１］工程が、トリプシンの非存在下で行われることが最も好ましい。ここで、本発明において「トリプシン」とは、膵臓から分泌されるタンパク質分解酵素の「ＥＣ．３．４．２１．４」、又は該タンパク質分解酵素と同等の特性を有する分解酵素を示す。市販品としては例えば、Ｔｒｙｐｓｉｎ（商標）、ＴｒｙｐＬＥ（商標）ＳＥＬＥＣＴ、ＴｒｙｐＬＥ（商標）ＥＸＰＲＥＳ（いずれもサーモフィッシャー社製）等を挙げることができる。
【００２５】
前記［１］工程の多能性幹細胞と細胞剥離液との接触時間としては特に限定はないが、多能性幹細胞を単一細胞又は数個〜数十個の細胞の凝集塊とし、また、細胞の生存率及び選択剥離の選択性を高めるのに好適であることから、１秒〜１時間が好ましく、１０秒〜３０分間がさらに好ましく、１分〜２０分間が特に好ましく、５分〜１５分間が最も好ましい。
【００２６】
前記［１］工程における細胞剥離液の温度としては特に限定はないが、細胞の生存率を高めるのに好適であることから、０〜４０℃が好ましく、０〜３５℃がさらに好ましく、５〜３５℃が特に好ましく、１０〜３０℃が最も好ましい。
【００２７】
前記［１］工程の後、必要に応じて細胞剥離液の除去や培地への置換を行ってもよい。培地としては特に制限はないが、多能性幹細胞の未分化性を維持させるのに好適であることから、例えば、多能性幹細胞の未分化性を維持するための因子として知られている、インスリン、トランスフェリン、セレニウム、アスコルビン酸、炭酸水素ナトリウム、塩基性線維芽細胞増殖因子、トランスフォーミング増殖因子β（ＴＧＦβ）、ＣＣＬ２、アクチビン、２−メルカプトメタノールのうち１つ以上を添加した培地を好適に用いることが好ましく、インスリン、トランスフェリン、セレニウム、アスコルビン酸、炭酸水素ナトリウム、塩基性線維芽細胞増殖因子、トランスフォーミング増殖因子β（ＴＧＦβ）を含有する培地がさらに好ましく、塩基性線維芽細胞増殖因子を添加した培地が特に好ましい。
【００２８】
前記塩基性線維芽細胞増殖因子を添加した培地の種類に特に制限はないが、例えば、市販品としては、ＤＭＥＭ（シグマアルドリッチ社製）、Ｈａｍ’ｓ  Ｆ１２（シグマアルドリッチ社製）、Ｄ−ＭＥＭ／Ｈａｍ’ｓ  Ｆ１２（シグマアルドリッチ社製）、Ｐｒｉｍａｔｅ  ＥＳ  Ｃｅｌｌ  Ｍｅｄｉｕｍ（ＲＥＰＲＯＣＥＬＬ社製）、ＳｔｅｍＦｉｔ  ＡＫ０２Ｎ（味の素社製）、ＳｔｅｍＦｉｔ  ＡＫ０３（味の素社製）、ｍＴｅＳＲ１（ＳＴＥＭＣＥＬＬ  ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＩＥＳ社製）、ＴｅＳＲ−Ｅ８（ＳＴＥＭＣＥＬＬ  ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＩＥＳ社製）、ＲｅｐｒｏＮａｉｖｅ（ＲＥＰＲＯＣＥＬＬ社製）、ＲｅｐｒｏＸＦ（ＲＥＰＲＯＣＥＬＬ社製）、ＲｅｐｒｏＦＦ（ＲＥＰＲＯＣＥＬＬ社製）、ＲｅｐｒｏＦＦ２（ＲＥＰＲＯＣＥＬＬ社製）、ＮｕｔｒｉＳｔｅｍ（バイオロジカルインタストリーズ社製）、ｉＳＴＥＭ（タカラバイオ社製）、ＧＳ２−Ｍ（タカラバイオ社製）、ｈＰＳＣ  Ｇｒｏｗｔｈ  Ｍｅｄｉｕｍ  ＤＸＦ（ＰｒｏｍｏＣｅｌｌ社製）等を挙げることができる。多能性幹細胞の未分化状態を維持するのに好適であることから、Ｐｒｉｍａｔｅ  ＥＳ  Ｃｅｌｌ  Ｍｅｄｉｕｍ（ＲＥＰＲＯＣＥＬＬ社製）、ＳｔｅｍＦｉｔ  ＡＫ０２Ｎ（味の素社製）又はＳｔｅｍＦｉｔ  ＡＫ０３（味の素社製）が好ましく、ＳｔｅｍＦｉｔ  ＡＫ０２Ｎ（味の素社製）又はＳｔｅｍＦｉｔ  ＡＫ０３（味の素社製）がさらに好ましく、ＳｔｅｍＦｉｔ  ＡＫ０２Ｎ（味の素社製）が特に好ましい。
【００２９】
前記［１］工程及び［２］工程において、細胞の生存率を高めるのに好適であることから、必要に応じてＲｈｏ結合キナーゼ阻害剤を添加してもよい。特にヒトの多能性幹細胞を用いる場合であって、Ｒｈｏ結合キナーゼ阻害剤としては、例えば、（Ｒ）−（＋）−ｔｒａｎｓ−Ｎ−（４−ｐｙｒｉｄｙｌ）−４−（１−ａｍｉｎｏｅｔｈｙｌ）−ｃｙｃｌｏｈｅｘａｎｅｃａｒｂｏｘａｍｉｄｅ・２ＨＣｌ・Ｈ２Ｏ（和光純薬社製Ｙ−２７６３２）、１−（５−Ｉｓｏｑｕｉｎｏｌｉｎｅｓｕｌｆｏｎｙｌ）ｈｏｍｏｐｉｐｅｒａｚｉｎｅ  Ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ（和光純薬社製ＨＡ１０７７）を用いることができる。培地に添加されるＲｈｏ結合キナーゼ阻害剤の濃度としては、ヒトの多能性幹細胞の生存維持に有効な範囲であってヒトの多能性幹細胞の未分化状態に影響を与えない範囲であり、１×１０−６〜５×１０−５ｍｏｌ／Ｌが好ましく、３×１０−６〜２×１０−５ｍｏｌ／Ｌがさらに好ましく、８×１０−６〜１．２×１０−５ｍｏｌ／Ｌが特に好ましい。  
本発明の多能性幹細胞の未分化維持培養方法における［２］工程は、培養環境に外部刺激を加え、前記［１］工程において細胞剥離液を接触させた多能性幹細胞を剥離する。本発明において「培養環境」とは、基材、細胞、培養液等からなる細胞の培養を行う空間を示す。ここで、本発明において「培養液」とは、多能性幹細胞及び基材が浸漬している培地等の液体を示す。また、本発明において「外部刺激」とは、超音波や振動等の力学的刺激、光や電気、磁気等の電磁気学的刺激、加温や冷却等の熱力学的刺激を示し、酵素反応等の生物反応によるものを除く。
【００３０】
前記［２］工程では、高い生存率及び選択剥離の選択性で多能性幹細胞を剥離させるのに好適であることから、前記外部刺激としては、培養液への対流、基材の細胞播種面の裏面への圧力、及び基材への振動からなる群から選択される少なくとも１種類の外部刺激であることが好ましい。培養液へ対流を生じさせる方法としては特に限定はないが、例えば、培養液をピペッティングすることやポンプ、撹拌翼を用いる等の方法により、機械的に液体内部に強制対流を発生させる方法の他、培養液を入れている容器に物理的な振動を加える方法、温度差を与えることによりマランゴニ対流等の自然対流を発生させる方法を挙げることが出来る。基材の細胞播種面の裏面に圧力を加える方法としては、多能性幹細胞の存在する面とは逆側の面に、ポンプなどにより圧力を加える方法を挙げることができる。基材への振動を与える方法としては、定常波発生器等の振動発生装置を基材に接触させる方法を挙げることができる。ここで、本発明において「細胞播種面」とは、細胞が存在する基材面を示す。
【００３１】
本発明において、高い生存率及び選択剥離の選択性で多能性幹細胞を剥離させるのに好適であることから、温度応答性を有する基材を用い、前記［２］工程の外部刺激が、基材の冷却である多能性幹細胞の剥離方法を好適に用いることができる。ここで本発明において基材が「温度応答性を有する」とは、温度変化によって基材の性質が変化することを示し、例えば、温度変化によって基材の親水／疎水性が変化することを挙げることができる。温度応答性を有する基材を用い、前記［２］工程において冷却を行うことによって、基材の温度応答によって多能性幹細胞を高い生存率及び選択剥離の選択性で多能性幹細胞を剥離することができる。
【００３２】
前記温度応答性を有する基材としては、水に対する下限臨界溶解温度（ＬＣＳＴ）が０℃〜５０℃の範囲にある温度応答性高分子による層を表面に有する基材を挙げることができ、
剥離後の多能性幹細胞の生存率を高めるのに好適であることから、ＬＣＳＴが０℃〜５０℃の範囲にあることが好ましく、５℃〜３５℃がさらに好ましく、１０℃〜２５℃が特に好ましく、１５℃〜２５℃が最も好ましい。
【００３３】
前記温度応答性高分子を構成する単量体単位としては特に制限はないが、例えば、アクリルアミド、メタクリルアミド等の（メタ）アクリルアミド化合物；Ｎ，Ｎ−ジエチルアクリルアミド、Ｎ−エチルアクリルアミド、Ｎ−ｎ−プロピルアクリルアミド、Ｎ−ｎ−プロピルメタクリルアミド、Ｎ−イソプロピルアクリルアミド、Ｎ−イソプロピルメタクリルアミド、Ｎ−シクロプロピルアクリルアミド、Ｎ−シクロプロピルメタクリルアミド、Ｎ−エトキシエチルアクリルアミド、Ｎ−エトキシエチルメタクリルアミド、Ｎ−テトラヒドロフルフリルアクリルアミド、Ｎ−テトラヒドロフルフリルメタクリルアミド等のＮ  アルキル置換（メタ）アクリルアミド誘導体；Ｎ，Ｎ−ジメチル（メタ）アクリルアミド、Ｎ，Ｎ−エチルメチルアクリルアミド、Ｎ，Ｎ−ジエチルアクリルアミド等のＮ，Ｎ−ジアルキル置換（メタ）アクリルアミド誘導体；１−（１−オキソ−２−プロペニル）−ピロリジン、１−（１−オキソ−２−プロペニル）−ピペリジン、４−（１−オキソ−２−プロペニル）−モルホリン、１−（１−オキソ−２−メチル−２−プロペニル）−ピロリジン、１−（１−オキソ−２−メチル−２−プロペニル）−  ピペリジン、４−（１−オキソ−２−メチル−２−プロペニル）−モルホリン等の環状基を有する（メタ）アクリルアミド誘導体；メチルビニルエーテル等のビニルエーテルを挙げることができ、ブＬＣＳＴを０〜５０℃とするのに好適であることから、Ｎ，Ｎ−ジエチルアクリルアミド、Ｎ−ｎ−プロピルアクリルアミド、Ｎ−イソプロピルアクリルアミド、Ｎ−ｎ−プロピルメタクリルアミド、Ｎ−エトキシエチルアクリルアミド、Ｎ−テトラヒドロフルフリルアクリルアミド、Ｎ−テトラヒドロフルフリルメタクリルアミドが好ましく、Ｎ，Ｎ−ジエチルアクリルアミド、Ｎ−イソプロピルアクリルアミドがさらに好ましく、Ｎ−イソプロピルアクリルアミドが特に好ましい。
【００３４】
前記温度応答性高分子による層の膜厚としては特に制限はないが、多能性幹細胞の剥離性を高めるのに好適であることから、１〜１０００ｎｍが好ましく、３０〜５００ｎｍがさらに好ましく、３０〜１００ｎｍが特に好ましく、４０〜６０ｎｍが最も好ましい。
【００３５】
前記温度応答性高分子による層の形成方法としては特に制限はないが、温度応答性高分子を基材に強固に固定化するのに好適であることから、温度応答性高分子の単量体単位を基材上で電子線重合する方法、熱又は光反応性の温度応答性高分子を用いて熱または光により基材に固定化する方法、温度応答性高分子の単量体単位とその他の単量体単位との共重合体を用いる方法を好適に用いることができる。
【００３６】
前記温度応答性高分子の単量体単位とその他の単量体単位との共重合体を用いる方法においては、共重合体を強固に基材に固定化させるのに好適であることから、少なくとも水に不溶の高分子の単量体単位を含むことが好ましい。また、温度応答性高分子のＬＣＳＴの制御に好適であることから、共重合体の構造としてはブロック共重合体であることが好ましい。
【００３７】
前記水に不溶の高分子の単量体単位としては特に制限はないが、例えば、スチレン、２−ヒドロキシフェニルアクリレート、２−ヒドロキシフェニルメタクリレート、３−ヒドロキシフェニルアクリレート、３−ヒドロキシフェニルメタクリレート、４−ヒドロキシフェニルアクリレート、４−ヒドロキシフェニルメタクリレート、Ｎ−（２−ヒドロキシフェニル）アクリルアミド、Ｎ−（２−ヒドロキシフェニル）メタクリルアミド、Ｎ−（３−ヒドロキシフェニル）アクリルアミド、Ｎ−（３−ヒドロキシフェニル）メタクリルアミド、Ｎ−（４−ヒドロキシフェニル）アクリルアミド、Ｎ−（４−ヒドロキシフェニル）メタクリルアミド、ｎ−ブチルアクリレート、ｎ−ブチルメタクリレート、イソブチルアクリレート、イソブチルメタクリレート、ｔ−ブチルアクリレート、ｔ−ブチルメタクリレート、ｎ−ヘキシルアクリレート、ｎ−ヘキシルメタクリレート、ｎ−オクチルアクリレート、ｎ−オクチルメタクリレート、ｎ−デシルアクリレート、ｎ−デシルメタクリレート、ｎ−ドデシルアクリレート、ｎ−ドデシルメタクリレート、ｎ−テトラデシルアクリレート、ｎ−テトラデシルメタクリレートを挙げることができる。
【００３８】
前記共重合体における温度応答性高分子の構成単位比率は、ＬＣＳＴの応答を高める観点から、５ｍｏｌ％以上が好ましく、２０ｍｏｌ％以上がさらに好ましく、３０ｍｏｌ％以上が特に好ましく、４０ｍｏｌ％以上が最も好ましい。また、共重合体を基材へ強固に固定化するのに好適であることから、温度応答性高分子の構成単位比率が９５ｍｏｌ％以下であることが好ましく、９０ｍｏｌ％以下であることがさらに好ましく、８５ｍｏｌ％以下であることが特に好ましく、８０ｍｏｌ％以下であることが最も好ましい。
【００３９】
前記温度応答性高分子の分子量としては特に制限はないが、温度応答性高分子による層の強度を高めるのに好適であることから、数平均分子量で１０００〜１００万であることが好ましく、２０００〜５０万であることがさらに好ましく、５０００〜３０万であることが特に好ましく、１万〜２０万であることが最も好ましい。
【００４０】
本発明において、多能性幹細胞の生存率を高め、また、選択剥離の選択性を高めるのに好適であることから、基材の少なくとも一部に細胞低接着性の領域を有する基材を好適に用いることができる。細胞低接着性の領域を有する基材としては特に限定はないが、例えば、基材の材質の少なくとも一部が細胞低接着性の材質であるもの、基材の表面の少なくとも一部に細胞低接着性のコーティングが施されているもの、基材が多孔質であるもの等を挙げることができる。また、本発明において細胞低接着性の材質やコーティングとは、該材質又はコーティング上でのラミニンの吸着量が、表面処理ポリスチレン上での値よりも小さな成分であることを示す。ラミニン吸着量は下記試験により求めることができる。
［ラミニン吸着量試験］
リン酸緩衝生理食塩水１ｍＬに対して０．５ｍｇ／ｍＬの濃度のラミニン５１１−Ｅ８フラグメント溶液を２．５μＬ添加した溶液を、基材の単位面積当たりの量で０．２ｍＬ／ｃｍ２滴下し、３７℃で２４時間静置した時のラミニン５１１−Ｅ８フラグメントの吸着量。
【００４１】
ここで、ラミニン５１１−Ｅ８フラグメントの吸着量の算出方法については特に制限はないが、例えば、ＨｉＬｙｔｅ  ＦｌｕｏｒＴＭ  ６４７  Ｌａｂｅｌｉｎｇ  Ｋｉｔ−ＮＨ２（同仁化学研究所製）を用いて蛍光標識したラミニン５１１−Ｅ８フラグメントを用い、吸着前後のラミニン５１１−Ｅ８フラグメントの溶液中の濃度差を蛍光測定によって求める方法を挙げることができる。また、ラミニン５１１−Ｅ８フラグメントは、市販品としては例えばｉＭａｔｒｉｘ−５１１（ニッピ社製）を用いることができる。
【００４２】
前記細胞低接着性のコーティングの被覆量としては特に制限はないが、多能性幹細胞の剥離性を高めるのに好適であることから、０．１〜３０μｇ／ｃｍ２であることが好ましく、１〜２０μｇ／ｃｍ２がさらに好ましく、３〜１５μｇ／ｃｍ２が特に好ましく、３．５〜７μｇ／ｃｍ２が最も好ましい。
【００４３】
本発明の剥離方法で剥離した細胞は、直径１０００μｍ以上の凝集塊が存在しないことが好ましく、直径５００μｍ以上の凝集塊が存在しないことがさらに好ましく、直径１００μ以上の凝集塊が存在しないことが特に好ましく、直径５０μｍ以上の凝集塊が存在しないことが最も好ましい。
【００４４】
本発明の剥離方法で剥離した細胞の生存率としては、８０％以上が好ましく、８５％以上がさらに好ましく、９０％以上が特に好ましく、９５％以上が最も好ましい。
【００４５】
本発明の剥離方法で剥離した際の選択剥離の選択性としては、剥離した分化細胞の割合が８０％以下であることが好ましく、５０％以下がさらに好ましく、２０％以下が特に好ましく、
１０％以下が最も好ましい。ここで、剥離した分化細胞の割合は、剥離前の分化細胞の数又は分化細胞のコロニー数と、剥離後に基材上に残存する分化細胞数又は分化細胞のコロニー数から算出することができる。
【実施例】
【００４６】
以下、本発明を実施するための形態を挙げて本発明について詳細に説明する。なお、断りのない限り、試薬は市販品を用いた。
［実施例１］
基材としてポリスチレンディッシュ（コーニング社製）を用い、ヒトｉＰＳ細胞２０１Ｂ７株を１３００個／ｃｍ２の密度で播種し、３７℃、ＣＯ２濃度５％の環境下で培養した。培地はＳｔｅｍＦｉｔＡＫ０２Ｎ（味の素製）を用いた。また、細胞播種から２４時間後までは、前記培地にＹ−２７６３２（和光純薬製）（濃度１０μＭ）とｉＭａｔｒｉｘ−５１１溶液（ニッピ製）（培地に対して２．５μＬ／ｍＬ）を添加し培養した。
【００４７】
細胞播種から２４時間後、９６時間後、１４４時間後に、位相差顕微鏡で細胞の様子を観察し、いずれの場合においても細胞接着ならびに増殖を確認し、新しい培地に交換を行った。細胞播種から１４４時間後の培地交換の後、細胞はコロニー状で基材に存在していることを確認した。
【００４８】
培地を除去してリン酸緩衝生理食塩水で洗浄後、リン酸緩衝生理食塩水にエチレンジアミン四酢酸を５×１０−３ｍｏｌ／Ｌの濃度となるように加えた細胞剥離液をディッシュ内に加え、２５℃で５分間処理した。細胞剥離液を除去してＹ−２７６３２を添加した培地をディッシュ内に加えた後、ピペッティングを行うことで対流を発生させた。未分化の細胞が選択的に剥離し、単一細胞として回収できた。細胞の生存率は９８．２％であった。剥離した分化細胞の割合は２．５％であった。直径５０μｍ以上の凝集塊は存在しなかった。
［実施例２］
エチレンジアミン四酢酸の濃度が２．５×１０−４ｍｏｌ／Ｌの細胞剥離液を用い、その他は実施例１と同様にして細胞を剥離した。未分化の細胞が選択的に剥離し、単一細胞として回収できた。細胞の生存率は９３．２％であった。剥離した分化細胞の割合は７．６％であった。直径５０μｍ以上の凝集塊は存在しなかった。
［実施例３］
エチレンジアミン四酢酸の濃度が５×１０−６ｍｏｌ／Ｌの細胞剥離液を用い、その他は実施例１と同様にして細胞を剥離した。未分化の細胞が選択的に剥離し、単一細胞として回収できた。細胞の生存率は８９．７％であった。剥離した分化細胞の割合は６．６％であった。直径５０μｍ以上の凝集塊は存在しなかった。
［実施例４］
エチレンジアミン四酢酸の濃度が５×１０−２ｍｏｌ／Ｌの細胞剥離液を用い、その他は実施例１と同様にして細胞を剥離した。未分化の細胞が選択的に剥離し、単一細胞として回収できた。細胞の生存率は９４．８％であった。剥離した分化細胞の割合は８．３％であった。直径５０μｍ以上の凝集塊は存在しなかった。
［実施例５］
ピペッティングを行う代わりに基材を振動させ、その他は実施例１と同様にして細胞を剥離した。未分化の細胞が選択的に剥離し、単一細胞又は数個〜数十個の細胞凝集塊として回収できた。細胞の生存率は９４．６％であった。剥離した分化細胞の割合は６．２％であった。直径５０μｍ以上の凝集塊は存在しなかった。
［実施例６］
基材として温度応答性高分子をコーティングした基材を用い、ピペッティングを行う代わりに基材を冷却し、その他は実施例１と同様にして細胞を剥離した。未分化の細胞が選択的に剥離し、単一細胞又は数個〜数十個の細胞凝集塊として回収できた。細胞の生存率は９６．８％であった。剥離した分化細胞の割合は５．０％であった。直径５０μｍ以上の凝集塊は存在しなかった。
【００４９】
なお、温度応答性高分子の合成及びコーティングは以下の方法で行った。
【００５０】
試験管に、４−シアノ−４−［（ドデシルスルファニルチオカルボニル）スルファニル］ペンタノイックアシッド０．４０ｇ（０．１ｍｍｏｌ）、ｎ−ブチルメタクリレート７．１１ｇ（５０ｍｍｏｌ）、アゾビス（イソブチロニトリル）３３ｍｇ（０．２ｍｍｏｌ）を加え、１，４−ジオキサン５０ｍＬに溶解した。窒素バブリングにより３０分脱気を行った後、７０℃で２４時間反応させた。反応終了後、反応溶媒をロータリーエバポレーターにて減圧留去し、反応溶液を濃縮した。濃縮液をメタノール２５０ｍＬに注ぎ、析出した黄色油状物質を回収して減圧乾燥し、ｎ−ブチルメタクリレート重合体を得た。
【００５１】
試験管に、前記ｎ−ブチルメタクリレート重合体０．９ｇ（０．３ｍｍｏｌ）、Ｎ−イソプロピルアクリルアミド８．１４ｇ（７２ｍｍｏｌ）、アゾビスイソブチロニトリル５ｍｇ（０．０３ｍｍｏｌ）を加え、１，４−ジオキサン１５ｍＬに溶解させた。窒素バブリングにより３０分脱気を行った後、６５℃で１７時間反応させた。反応終了後、反応溶媒をアセトンで希釈し、ヘキサン５００ｍＬに注ぎ、析出した淡黄色固体を回収して減圧乾燥し、Ｎ−イソプロピルアクリルアミドとｎ−ブチルメタクリレートの共重合体を得た。
【００５２】
ポリスチレンディッシュ上にＮ−イソプロピルアクリルアミドとｎ−ブチルメタクリレートの共重合体の１ｗｔ％エタノール溶液を２０００ｒｐｍでスピンコートし、温度応答性高分子を被覆した。
【００５３】
温度応答性高分子のＬＣＳＴは３２℃、構成単位比率はｎ−ブチルメタクリレート４ｍｏｌ％、Ｎ−イソプロピルアクリルアミド９６ｍｏｌ％、分子量はＭｎ７万であった。ポリスチレンディッシュ上への温度応答性高分子の被覆の膜厚は４０ｎｍであった。
［実施例７］
基材として温度応答性高分子をコーティングした基材を用い、基材を冷却した後にピペッティングを行い、その他は実施例６と同様にして細胞を剥離した。未分化の細胞が選択的に剥離し、単一細胞として回収できた。細胞の生存率は９５．４％であった。剥離した分化細胞の割合は７．２％であった。直径５０μｍ以上の凝集塊は存在しなかった。
［実施例８］
基材として孔径０．４μｍ（細孔密度１．９×１０１０個／ｍ２）の円柱状の細孔を有するポリエチレンテレフタレート膜（コーニング社製Ｆａｌｃｏｎカルチャーインサート）を用い、その他は実施例１と同様にして細胞を剥離した。未分化の細胞が選択的に剥離し、単一細胞として回収できた。細胞の生存率は９０．２％であった。剥離した分化細胞の割合は２．２％であった。直径５０μｍ以上の凝集塊は存在しなかった。
［比較例１］
エチレンジアミン四酢酸を含有しないリン酸緩衝生理食塩水を細胞剥離液として用い、その他は実施例１と同様にして細胞の剥離を行った。細胞は剥離しなかった。
［比較例２］
エチレンジアミン四酢酸の濃度が２．５×１０−４ｍｏｌ／Ｌ、トリプシンの濃度が０．５ｗｔ％の細胞剥離液を用い、その他は実施例１と同様にして細胞を剥離した。全ての細胞が剥離した。細胞の生存率は７９．８％であった。剥離した分化細胞の割合は１００％であった。
［比較例３］
細胞剥離液をディッシュ内に添加せず、その他は実施例１と同様にして細胞の剥離を行った。細胞は剥離しなかった。
［比較例４］
ピペッティングを行わず、ピペッティングに要する時間と同じ時間だけ室温で静置し、その他は実施例１と同様にして細胞の剥離を行った。細胞は剥離しなかった。
【図１】
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