(57)【要約】【課題】収量が高いエルゴチオネインの製造方法を提供することを課題とする。【解決手段】システイン生産株である微生物に、システインとヘルシニンとから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒する酵素をコードするエルゴチオネイン合成遺伝子を遺伝子導入された微生物を用いることにより、高収量でエルゴチオネインを産生することが可能になった。【選択図】図５
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
システイン生産株である微生物に、システインとヘルシニンとから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒する酵素をコードする原核生物由来のエルゴチオネイン合成遺伝子を遺伝子導入された微生物を培養する工程を含む、エルゴチオネインの製造方法。
【請求項２】
前記エルゴチオネイン合成遺伝子がコードする酵素が、システインとヘルシニンとから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒する一方で、γ−グルタミルシステインとヘルシニンとからヘルシニル−γ−グルタミル−システインスルホキシドへの反応を触媒しない、請求項１に記載の製造方法。
【請求項３】
前記微生物に、ヘルシニル−γ−グルタミル−システインスルホキシドから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒するタンパク質をコードする遺伝子が導入されていない、請求項１又は２に記載の製造方法。
【請求項４】
前記エルゴチオネイン合成遺伝子が、Methylobacterium属細菌由来のｅｇｔＢ様遺伝子である、請求項１〜３のいずれか一項に記載の製造方法。
【請求項５】
前記システイン生産株である微生物が、変異型ｃｙｓＥ、変異型ｓｅｒＡ、変異型ｃｙｓＢからなる群から選ばれる少なくとも１の遺伝子を有する大腸菌である、請求項１〜４のいずれか一項に記載の製造方法。
【請求項６】
システイン生産株が、さらにｍｅｔＪ遺伝子を欠損されている、請求項１〜５のいずれか一項に記載の製造方法。
【請求項７】
前記微生物を培養する培地が、ヒスチジン添加培地である、請求項１〜６のいずれか一項に記載の製造方法。
【請求項８】
システイン生産株である微生物において、システインとヘルシニンとから、ヘルシニルシステインスルホキシドを触媒する酵素をコードする原核生物由来のエルゴチオネイン合成遺伝子を導入されたエルゴチオネイン生産能を有する微生物。
【請求項９】
前記エルゴチオネイン合成遺伝子がコードする酵素が、システインとヘルシニンとから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒する一方で、γ−グルタミルシステインとヘルシニンとからヘルシニル−γ−グルタミル−システインスルホキシドへの反応を触媒しない、請求項８に記載の微生物。
【請求項１０】
前記微生物に、ヘルシニル−γ−グルタミル−システインスルホキシドから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒するタンパク質をコードする遺伝子が導入されていない、請求項８又は９に記載の微生物。
【請求項１１】
前記エルゴチオネイン合成遺伝子が、Methylobacterium属細菌由来のｅｇｔＢ様遺伝子である、請求項８〜１０のいずれか一項に記載の微生物。
【請求項１２】
前記システイン生産株である微生物が、変異型ｃｙｓＥ、変異型ｓｅｒＡ、変異型ｃｙｓＢ、及びｙｄｅＤ遺伝子からなる群から選ばれる少なくとも１の遺伝子を有する大腸菌である、請求項１１に記載の微生物。
【請求項１３】
システインとヘルシニンとから、ヘルシニルシステインスルホキシドを触媒する酵素をコードするエルゴチオネイン合成遺伝子を導入されたエルゴチオネイン生産能を有する大腸菌。
【請求項１４】
前記エルゴチオネイン合成遺伝子がMethylobacterium属細菌由来のｅｇｔＢ様遺伝子である、請求項１３に記載の大腸菌。
【請求項１５】
さらに、ｅｇｔＤ又はｅｇｔＥ遺伝子が導入された、請求項１３又は１４に記載の大腸菌。
【請求項１６】
変異型ｓｅｒＡ遺伝子、ｙｄｅＤ遺伝子、及び変異型ｃｙｓＥ遺伝子が導入された、請求項１３〜１５のいずれか一項に記載の大腸菌。
【請求項１７】
さらにｍｅｔＪ遺伝子が欠損された、請求項１３〜１６のいずれか一項に記載の大腸菌。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、エルゴチオネイン合成微生物の創製、並びにかかるエルゴチオネイン合成微生物を用いたエルゴチオネインの製造方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
エルゴチオネインは、ライ麦角菌 (Claviceps purpurea)から単離された含硫アミノ酸として発見され、植物や動物の生体内にも存在することが見いだされている。しかしながら、植物や動物は、エルゴチオネインを合成することはできず、生体内のエルゴチオネインは、担子菌類などの微生物により合成されたエルゴチオネインに由来すると考えられている。特に担子菌類の一部のキノコ、例えばヒラタケ、シイタケ、マイタケ、エリンギなどの食用キノコにも含まれており、特にタモギタケに多く含まれていることが知られている。エルゴチオネインは、高い抗酸化性を有しており、またエラスターゼ阻害作用、チロシナーゼ阻害作用が報告されており、美白やしわ予防といった美容・食品分野で特に注目されている。また、エルゴチオネインが生体酸化防御システムに関与することが判明してきており、医療分野での応用も試みられている。
【０００３】
エルゴチオネインの製造方法として、タモギタケなどの担子菌からの抽出、化学合成、微生物を用いた発酵が試みられている。タモギタケなどの担子菌からの抽出は、原材料の取得に時間がかかり、大量生産には適していない。大量生産には化学合成が適しているが、高価な合成試薬を用いる必要があり、また精製コストが高くなるという問題がある（特許文献１）。微生物を用いた発酵の方法として、Ｃ１化合物資化性の細菌や酵母を用いた発酵（特許文献２、非特許文献１）、さらにはエルゴチオネイン生合成遺伝子を過剰発現させた微生物を用いた発酵（特許文献３）が挙げられる。しかしながら、遺伝子導入がされていない細菌や酵母を用いた発酵では、十分な量のエルゴチオネインを得ることが難しく、エルゴチオネイン生合成遺伝子を導入した微生物を用いた発酵を行った場合であっても、２００μｇ／ｌ程度の生産量を得ることが限界であった。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特開２００６−１６０７４８号公報
【特許文献２】国際公開第２０１６／１０４４３７号
【特許文献３】国際公開第２０１７／１５０３０４号
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献１】ＰＬＯＳ  Ｏｎｅ  ２０１４  ｖｏｌ．  ９（５）  ｅ９７７７４
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明は、これまで知られているエルゴチオネインの製造方法よりも、収量が高い製造方法を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らが、エルゴチオネインの製造方法において、収量を高めることを目的として、鋭意研究を行ったところ、これまで細菌において知られていた反応経路とは異なる反応経路を利用してエルゴチオネインを製造することで、エルゴチオネインの収量が高まることを見出し、本発明を完成させた。
【０００８】
そこで、本発明は以下の発明に関する：
［１］  システイン生産株である微生物に、システインとヘルシニンとから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒する酵素をコードする原核生物由来のエルゴチオネイン合成遺伝子を遺伝子導入された微生物を培養する工程を含む、エルゴチオネインの製造方法。
［２］  前記エルゴチオネイン合成遺伝子がコードする酵素が、システインとヘルシニンとから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒する一方で、γ−グルタミルシステインとヘルシニンとからヘルシニル−γ−グルタミル−システインスルホキシドへの反応を触媒しない、項目１に記載の製造方法。
［３］  前記微生物に、ヘルシニル−γ−グルタミル−システインスルホキシドから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒するタンパク質をコードする遺伝子が導入されていない、項目１又は２に記載の製造方法。
［４］  前記エルゴチオネイン合成遺伝子が、Methylobacterium属細菌由来のｅｇｔＢ様遺伝子である、項目１〜３のいずれか一項に記載の製造方法。
［５］  前記システイン生産株である微生物が、変異型ｃｙｓＥ、変異型ｓｅｒＡ、変異型ｃｙｓＢ、及びｙｄｅＤ遺伝子からなる群から選ばれる少なくとも１の遺伝子を有する大腸菌である、項目１〜４のいずれか一項に記載の製造方法。
［６］  システイン生産株が、さらにｍｅｔＪ遺伝子を欠損されている、項目１〜５のいずれか一項に記載の製造方法。
［７］  前記微生物を培養する培地が、ヒスチジン添加培地である、項目１〜６のいずれか一項に記載の製造方法。
［８］  システイン生産株である微生物において、システインとヘルシニンとから、ヘルシニルシステインスルホキシドを触媒する酵素をコードする原核生物由来のエルゴチオネイン合成遺伝子を導入されたエルゴチオネイン生産能を有する微生物。
［９］  前記エルゴチオネイン合成遺伝子がコードする酵素が、システインとヘルシニンとから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒する一方で、γ−グルタミルシステインとヘルシニンとからヘルシニル−γ−グルタミル−システインスルホキシドへの反応を触媒しない、項目８に記載の微生物。
［１０］  前記微生物に、ヘルシニル−γ−グルタミル−システインスルホキシドから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒するタンパク質をコードする遺伝子が導入されていない、項目８又は９に記載の微生物。
［１１］  前記エルゴチオネイン合成遺伝子が、Methylobacterium属細菌由来のｅｇｔＢ様遺伝子である、項目８〜１０のいずれか一項に記載の微生物。
［１２］  前記システイン生産株である微生物が、変異型ｃｙｓＥ、変異型ｓｅｒＡ、変異型ｃｙｓＢ、及びｙｄｅＤ遺伝子からなる群から選ばれる少なくとも１の遺伝子を有する大腸菌である、項目１１に記載の微生物。
［１３］  システインとヘルシニンとから、ヘルシニルシステインスルホキシドを触媒する酵素をコードするエルゴチオネイン合成遺伝子を導入されたエルゴチオネイン生産能を有する大腸菌。
［１４］  前記エルゴチオネイン合成遺伝がMethylogacterium属細菌由来のｅｇｔＢ様遺伝子である、項目１３に記載の大腸菌。
［１５］  さらに、ｅｇｔＤ又はｅｇｔＥ遺伝子が導入された、項目１３又は１４に記載の大腸菌。
［１６］  変異型ｓｅｒＡ遺伝子、ｙｄｅＤ遺伝子、及び変異型ｃｙｓＥ遺伝子が導入された、項目１３〜１５のいずれか一項に記載の大腸菌。
［１７」  さらにmetJ遺伝子が欠損された、項目１３〜１６のいずれか一項に記載の大腸菌。
【発明の効果】
【０００９】
本発明で用いる微生物では、ヘルシニル−γ−グルタミル−システインスルホキシドを経ないで、エルゴチオネインを合成することができ、高い収量でエルゴチオネインを得ることができる。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】図１は、ｅｇｔＢ遺伝子について、系統解析を行った図である。
【図２Ａ】図２Ａは、ｐＱＥ８８ｅｇｔＢのプラスミドマップを示す。
【図２Ｂ】図２Ｂは、ｐＱＥ８８ｅｇｔＢに導入されるMethylobacterium pseudosasicola、Methylobacterium brachiatum、及びMethylobacterium radiotolerans由来のｅｇｔＢ様遺伝子の配列情報を示す。
【図２Ｃ】図２Ｃは、ｐＱＥ８８ｅｇｔＢに導入されるMethylobacterium phyllostachyos、及びMethylobacterium mesophilicum由来のｅｇｔＢ様遺伝子の配列情報を示す。
【図３Ａ】図３Ａは、ｐＣｔａｃ−ＭＳ−ｅｇｔＤ−ｈｉｓＭＳ−ｅｇｔＥのプラスミドマップを示す。
【図３Ｂ】図３Ｂは、ｐＣｔａｃ−ＭＳ−ｅｇｔＤ−ｈｉｓＭＳ−ｅｇｔＥに導入されているMycobacterium smegmatis由来のｅｇｔＤ及びｅｇｔＥ遺伝子の配列情報を示す。
【図４Ａ】図４Ａは、ｐＤＥＳのプラスミドマップを示す。
【図４Ｂ】図４Ｂは、ｐＤＥＳに導入されている、ｓｅｒＡ遺伝子及びｙｄｅＤ遺伝子の配列情報を示す。
【図４Ｃ】図４Ｃは、ｐＤＥＳに導入されている、ｃｙｓＥ遺伝子の配列情報を示す。
【図５】図５は、Methylobacterium brachiatum、Methylobacterium mesophilicum、Methylobacterium phyllostachyos、Methylobacterium pseudosasicolar、及びMethylobacterium radiotoleransに由来するｅｇｔＢ様遺伝子を導入したエルゴチオネイン産生株によるエルゴチオネインの生成量を示す（図５Ａ）。比較として、Mycobacterium smegmatisのｅｇｔＡＢＣＤＥ遺伝子を導入されたエルゴチオネイン産生対照株によるエルゴチオネイン生成量も示す（図５Ｂ）。
【図６】図６は、Methylobacterium brachiatum、Methylobacterium mesophilicum、Methylobacterium phyllostachyos、Methylobacterium pseudosasicolar、及びMethylobacterium radiotoleransに由来するｅｇｔＢ様遺伝子を導入したエルゴチオネイン産生株の細胞破砕上清を用いた触媒活性を示した図である。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
本発明は、システイン生産株である微生物に、システインとヘルシニンとから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒する酵素をコードする原核生物由来のエルゴチオネイン合成遺伝子を遺伝子導入された微生物、並びに当該微生物を培養する工程を含む、エルゴチオネインの製造方法に関する。
【００１２】
本発明の微生物は、システインとヘルシニンとからヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒する酵素をコードする原核生物由来のエルゴチオネイン合成遺伝子を遺伝子導入されている。さらに好ましい態様では、本発明の微生物には、ヘルシニル−γ−グルタミル−システインスルホキシドから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒するタンパク質をコードする遺伝子が導入されていない。
【００１３】
これまで知られている、従来のエルゴチオネイン産生用微生物は、マイコバクテリウム（Mycobacteria）属、ストレプトマイシス(Streptomyces)属などの細菌から見つかったエルゴチオネイン合成遺伝子であるｅｇｔＡ、ｅｇｔＢ、ｅｇｔＣ、ｅｇｔＤ及びｅｇｔＥを全て遺伝子導入するか、またはもともとこれらの遺伝子にコードされるタンパク質の活性と同じ活性を有するタンパク質をコードする遺伝子を全部又は一部有している微生物に対し、ｅｇｔＡ、ｅｇｔＢ、ｅｇｔＣ、ｅｇｔＤ及びｅｇｔＥのうちの一部を導入することにより得られた。これらの遺伝子がコードするタンパク質が触媒する反応スキームは下記のとおりである。従来のｅｇｔＢは、ヘルシニンとγ−グルタミルシステインを基質として、ヘルシニル−γ−グルタミル−システインスルホキシドへの反応を触媒する。本発明者らは、従来の方法では、反応が多段階となること、さらにグルタチオンの前駆物質であるγ−グルタミルシステインがエルゴチオネイン産生のために使用されることに問題を見出した。また、従来はエルゴチオネイン生産株を得るために、ヒスチジン生産株を元に改変をすることが必要であった。
【化１】
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【００１４】
本発明の微生物は、下記のスキームに記載されるようにシステインとヘルシニンとを基質として、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒する酵素（ｅｇｔＢ様酵素）をコードする原核生物由来のエルゴチオネイン合成遺伝子を遺伝子導入されている。
【化２】
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これにより、上述のｅｇｔＡ、ｅｇｔＢ、ｅｇｔＣ、ｅｇｔＤ及びｅｇｔＥの遺伝子がそれぞれコードするタンパク質が触媒する上述のスキーム１の反応のうち、ｅｇｔＡ、ｅｇｔＢ及びｅｇｔＣ遺伝子がコードするタンパク質が触媒する反応に関与する遺伝子のうち、１つ、場合により２つ又は全ての遺伝子を含まない場合でも、エルゴチオネインを合成することができる。また、本発明で導入されるｅｇｔＢ様遺伝子にコードされる酵素は、システインを基質として用いることができることから、本発明ではシステイン生産株を元にして遺伝子導入を行うことが可能になった。
【００１５】
本発明の別の態様では、本発明の微生物は、ｅｇｔＣ遺伝子がコードするタンパク質の活性を有するタンパク質、すなわちヘルシニル−γ−グルタミル−システインスルホキシドから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒するタンパク質をコードする遺伝子が導入されていなくてもよい。
【００１６】
本発明のさらなる態様では、本発明の微生物は、ｅｇｔＡ遺伝子がコードするタンパク質の活性を有するタンパク質、すなわちグルタミン酸とシステインとから、γ−グルタミルシステインへの反応を触媒するタンパク質をコードする遺伝子が導入されていなくてもよい。
【００１７】
本発明のさらに異なる態様では、本発明の微生物は、ｅｇｔＢ遺伝子がコードするタンパク質の活性を有するタンパク質、すなわちγ−グルタミルシステインとヘルシニンとから、ヘルシニル−γ−グルタミル−システイン−スルホキシドへの反応を触媒するタンパク質をコードする遺伝子が導入されていなくてもよい。本明細書において、遺伝子が導入されていないとは、内在的に含まれる同遺伝子が含まれないことを意図するものではない。
【００１８】
システインとヘルシニンとからヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒する酵素をコードするエルゴチオネイン合成遺伝子としては、任意の微生物由来の遺伝子であってもよい。一例として、そのような合成遺伝子は、Methylobacterium属細菌、Microcystis属のシアノバクテリア、担子菌類、アカパンカビや酵母などからも得ることができる。なかでも、大腸菌に遺伝子導入する観点から、原核生物由来の遺伝子が好ましく、さらに好ましくはシアノバクテリア以外の原核生物由来の遺伝子である。そのような原核生物として、特にMethylobacterium属細菌を挙げることができ、例えばMethylobacterium pseudosasicola、Methylobacterium brachiatum、Methylobacterium radiotolerans、Methylobacterium phyllostachyos、Methylobacterium mesophilicum、Methylobacterium oryzae、Methylobacterium aquaticum、Methylobacterium extorquensなどの細菌由来のエルゴチオネイン合成遺伝子を使用することができる。システインとヘルシニンとからヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒する酵素をコードするエルゴチオネイン合成遺伝子を、これまで知られているγ−グルタミルシステインとヘルシニンとからヘルシニル−γ−グルタミルシステインスルホキシドへの反応を触媒とするエルゴチオネイン合成遺伝子であるｅｇｔＢと区別するため、ヘルシニル−γ−グルタミル−システイン−スルホキシド非産生ｅｇｔＢ様遺伝子ということができ、本明細書中では、ヘルシニル−γ−グルタミル−システイン−スルホキシド非産生ｅｇｔＢ様遺伝子を単にｅｇｔＢ様遺伝子と呼ぶものとする。一例としてMethylobacterium pseudosasicola由来のｅｇｔＢ様遺伝子がコードするタンパク質として、配列番号２のアミノ酸配列からなるタンパク質、Methylobacterium brachiatum由来のｅｇｔＢ様遺伝子がコードするタンパク質として、配列番号４のアミノ酸配列からなるタンパク質、Methylobacterium radiotolerans由来のｅｇｔＢ様遺伝子がコードするタンパク質として、配列番号６のアミノ酸配列からなるタンパク質、Methylobacterium phyllostachyos由来のｅｇｔＢ様遺伝子がコードするタンパク質として、配列番号８のアミノ酸配列からなるタンパク質、及びMethylobacterium mesophilicum由来のｅｇｔＢ様遺伝子がコードするタンパク質として、配列番号１０のアミノ酸配列からなるタンパク質が挙げられる。
【００１９】
本発明の別の態様では、ｅｇｔＢ様遺伝子がコードするタンパク質には、ｅｇｔＢ様タンパク質と同様の活性、すなわちシステインとヘルシニンとから、ヘルシニルシステイン−スルホキシドへの反応の触媒活性を維持する限りにおいてアミノ酸変異が加わった変異タンパク質を含みうる。変異タンパク質は、配列番号２、４、６、８、及び１０からなる群から選ばれる少なくとも１のアミノ酸配列に対し、１又は数個のアミノ酸の付加、欠失、及び／又は置換を含みうる。さらに、別の態様では、変異タンパク質は、配列番号２、４、６、８、及び１０からなる群から選ばれる少なくとも１のアミノ酸配列に対し、少なくとも３０％、好ましくは少なくとも４０％、より好ましくは少なくとも５０％、さらにより好ましくは少なくとも６０％、さらにより好ましくは少なくとも７０％、さらにより好ましくは少なくとも８０％、さらにより好ましくは少なくとも９０％、さらにより好ましくは少なくとも９５％、さらにより好ましくは少なくとも９７％、さらにより好ましくは少なくとも９８％の同一性を有するアミノ酸配列からなるタンパク質である。
【００２０】
本発明のさらに別の態様では、ｅｇｔＢ様遺伝子には、ｅｇｔＢ様タンパク質と同様の活性、すなわちシステインとヘルシニンとから、ヘルシニルシステイン−スルホキシドへの反応の触媒活性を維持する限りにおいて、変異が加わった変異遺伝子を含みうる。変異遺伝子は、配列番号１、３、５、７、及び９からなる群から選ばれる少なくとも１の塩基配列に対し、１又は数個のヌクレオチドの付加、欠失、及び／又は置換を含みうる。さらに、別の態様では、変異遺伝子は、配列番号１、３、５、７、及び９からなる群から選ばれる少なくとも１のアミノ酸配列に対し、少なくとも３０％、好ましくは少なくとも４０％、より好ましくは少なくとも５０％、さらにより好ましくは少なくとも６０％、さらにより好ましくは少なくとも７０％、さらにより好ましくは少なくとも８０％、さらにより好ましくは少なくとも９０％、さらにより好ましくは少なくとも９５％、さらにより好ましくは少なくとも９７％、さらにより好ましくは少なくとも９８％の同一性を有する塩基配列からなる遺伝子である。
【００２１】
本発明にかかる微生物は、γ−グルタミルシステインとヘルシニンとから、ヘルシニル−γ−グルタミル−システイン−スルホキシドへの反応を触媒するタンパク質をコードする遺伝子、すなわちｅｇｔＢ遺伝子が導入されていない場合、ヘルシニル−γ−グルタミル−システイン−スルホキシドを産生しないか、産生したとしてもその量はわずかである。したがって、本発明の微生物は、ヘルシニル−γ−グルタミル−システイン−スルホキシド非生産性微生物ということもできる。ヘルシニル−γ−グルタミル−システイン−スルホキシド非生産性微生物は、当該微生物の触媒活性を測定することにより決定することができる。具体的には、当該微生物の細胞破砕上清に対し、反応基質であるシステイン及び／又はγ‐グルタミルシステインを添加し、反応生成物を検出することにより、触媒活性を決定することができる。反応基質を添加後に、ヘルシニル−γ−グルタミル−システイン−スルホキシドが存在しない場合に、ヘルシニル−γ−グルタミル−システイン−スルホキシド非生産性微生物と決定することができる。本発明のエルゴチオネイン産生株では、反応基質を添加後に、ヘルシニル−γ−グルタミル−システイン−スルホキシドが存在しない一方で、ヘルシニルシステインスルホキシドが検出される。
【００２２】
さらに別の態様では、ヘルシニル−γ−グルタミル−システイン−スルホキシド非生産性微生物は、培養物中におけるヘルシニル−γ−グルタミル−システイン−スルホキシドの含有量を測定することにより決定することができる。培養物中におけるヘルシニル−γ−グルタミル−システイン−スルホキシドの含有量は、株式会社Anatechのサルファーインデックスの受託解析により決定することができる。ヘルシニル−γ−グルタミル−システイン−スルホキシド非生産性微生物は、ヘルシニル−γ−グルタミル−システイン−スルホキシドを検出限界以下でしか含まないことが好ましいが、場合により５０μｇ／ｍｌ以下、一例として５μｇ／ｍｌ以下であればよい。
【００２３】
システイン及びヒスチジンは、ともにエルゴチオネイン合成のための原材料となることから、本発明にかかる微生物は、ヒスチジン又はシステインのいずれか、または両方の産生が向上された生産株であることが好ましい。さらに、別の態様では、ヒスチジン又はシステインのいずれか一方、又は両方を培地に添加することもできる。システインとヘルシニンを基質とするｅｇｔＢ様遺伝子を導入する観点から、システイン生産株を用いることが好ましい。システイン生産株とは、野生株または親株よりも多い量の目的のアミノ酸を生産し、蓄積することができる細菌を意味する。システイン生産株は、変異法や組換えＤＮＡ技術を利用して、目的のアミノ酸の生産能を有するように改変したものであってもよい。
【００２４】
システイン生産株としては、野生株に比べてシステイン産生が高まっていれば任意の株であってよく、本技術分野に既知の任意の方法により製造することができる。例えば、栄養要求性変異株、アナログ耐性株又は代謝制御変異株の取得や、Ｌ−システインの生合成系酵素の発現が増強された組換え株の創製等、従来、コリネ型細菌又はエシェリヒア属細菌等の育種に採用されてきた方法を適用することができる（アミノ酸発酵、（株）学会出版センター、1986年5月30日初版発行、第77-100頁参照）。ここで、システイン生産菌の育種において、付与される栄養要求性、アナログ耐性、代謝制御変異等の性質は、単独でもよく、２種又は３種以上であってもよい。また、発現が増強されるシステイン生合成系酵素も、単独であっても、２種又は３種以上であってもよい。さらに、栄養要求性、アナログ耐性、代謝制御変異等の性質の付与と、生合成系酵素の増強が組み合わされてもよい。
【００２５】
システイン生産能を有する栄養要求性変異株、システインのアナログ耐性株、又は代謝制御変異株を取得するには、親株又は野生株を通常の変異処理、すなわちＸ線や紫外線の照射、またはＮ−メチル−Ｎ’−ニトロ−Ｎ−ニトロソグアニジン（ＮＴＧ）もしくはエチルメタンスルフォネート（ＥＭＳ）等の変異剤処理などによって処理し、得られた変異株の中から、栄養要求性、アナログ耐性、又は代謝制御変異を示し、かつL-アミノ酸生産能を有するものを選択することによって得ることができる。
【００２６】
システイン生産能を増強するような改変が行われた具体的な例としては、フィードバック阻害耐性のセリンアセチルトランスフェラーゼ（ＳＡＴ）をコードする複数種のｃｙｓＥアレルで形質転換された形質転換体（米国特許第６，２１８，１６８号）、細胞に毒性の物質を排出するのに適したタンパク質をコードする過剰発現遺伝子を有するE. coli W3110（米国特許第５，９７２，６６３号）、システインデスルフヒドラーゼ活性が低下したE. coli株（特開平１１−１５５５７１号公報）、ｃｙｓＢ遺伝子によりコードされるシステインレギュロンの正の転写制御因子の活性が上昇した形質転換体（ＷＯ０１／２７３０７）、セリンによるフィードバック阻害を受けないホスホグリセレートデヒドロゲナーゼをコードする変異型ｓｅｒＡ遺伝子の形質転換体などのエシェリヒア属に属する株が挙げられるが、これらに限定されない。また、トランスポーターであるｙｄｅＤ遺伝子を形質転換された形質転換体も挙げられる。さらに、システイン生産能を増強させるために、ｇｌｐＥタンパク質、ｙｅｅＤタンパク質、ｐｓｐＥタンパク質、ｓｓｅＡタンパク質、ｙｃｅＡタンパク質、及びｓｉｒＡタンパク質からなる群より選択される少なくとも１種のタンパク質（以下、「チオ硫酸経路活性化タンパク質」と示すこともある）が過剰発現するように改変されてもよい。
【００２７】
本発明の製造方法に使用する腸内細菌科に属する細菌は、Ｏ−アセチルセリンスルフヒドリラーゼＢの活性が低下するように改変されていてもよい。このような改変株は、培地の炭素源がグルコースである場合と、グリセロールである場合で、システイン生産能が大きく異なる。したがって、培地の炭素源を変えることにより、簡便にシステイン生産能を調節することができる。
【００２８】
Ｏ−アセチルセリンスルフヒドリラーゼＢは、腸内細菌科に属する細菌において、システイン生合成経路の１つであるチオ硫酸経路中で働く酵素であり、Ｏ−アセチルセリンとチオ硫酸塩を基質としてＳ−スルホシステイン（システイン前駆体）を合成する活性を有する酵素である。この限りにおいて、Ｏ−アセチルセリンスルフヒドリラーゼＢは特に限定されない。具体的には、例えば、大腸菌の場合は、大腸菌ｃｙｓ  Ｍ遺伝子から発現するタンパク質が挙げられる。
【００２９】
ヒスチジン生産株としては、ヒスチジンアンモニアリアーゼ活性を低下又は消失させるか、又はヒスチジンアンモニアリアーゼ遺伝子発現を低下又は消失させた微生物が挙げられる。
【００３０】
システインとヘルシニンとから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒する酵素をコードするエルゴチオネイン合成遺伝子を遺伝子導入された微生物であって、ヘルシニル−γ−グルタミル−システインスルホキシドから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒するタンパク質をコードする遺伝子が含まれない微生物の取得方法としては、エルゴチオネイン合成遺伝子を有さない細菌に対し、ｅｇｔＢ様遺伝子を遺伝子導入することにより得られてもよい。更なる別の態様では、かかる微生物の取得方法は、エルゴチオネイン合成遺伝子をもともと有する微生物において、ｅｇｔＢ様遺伝子を遺伝子導入するとともに、ｅｇｔＣ遺伝子をノックアウトすることが挙げられる。
【００３１】
エルゴチオネイン合成遺伝子を有さない微生物に対し、ｅｇｔＢ様遺伝子を遺伝子導入する際には、さらにｅｇｔＤ及びｅｇｔＥ遺伝子を同時に又は逐次遺伝子導入することが好ましい。ｅｇｔＤ及びｅｇｔＥ遺伝子は、ｅｇｔＢ様遺伝子の由来元の生物種と同一の生物種由来の遺伝子であってもよいし、異なる生物種由来の遺伝子であってもよい。一例として、Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｓｍｅｇｍａｔｉｓ由来のｅｇｔＤ及びｅｇｔＥ遺伝子を用いることができる。
【００３２】
ｅｇｔＢ様遺伝子がコードする酵素は、ヘルシニンとシステインから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒する一方で、γ−グルタミルシステインとヘルシニンとからヘルシニル−γ−グルタミル−システインスルホキシドへの反応を触媒しない。大腸菌において、γ−グルタミルシステインは、グルタチオン産生の基質である。グルタチオンは、抗酸化物質であり、細胞における酸化ストレスの軽減に寄与する。一般に、発酵培養においては、遺伝子導入をされた細菌は、培養中に強いストレスに晒されることから、連続培養が困難となる。したがって、γ−グルタミルシステインを基質とする酵素であるｅｇｔＢを用いずに、ｅｇｔＢ様遺伝子を用いることによって、大腸菌内におけるγ−グルタミルシステインに対する競合が生じないため、酸化ストレスに対する抵抗性の点で好ましい。それによりγ−グルタミルシステインを基質とする酵素であるｅｇｔＢ遺伝子を導入した微生物に比較し、長期の連続培養を可能にしうる。
【００３３】
本発明において使用される微生物は、任意の種類のものであってよく、一例として腸内細菌、放線菌、子嚢菌、担子菌など任意の微生物を使用することができる。腸内細菌としては、エシェリヒア属、エンテロバクター属、パントエア属、クレブシエラ属、セラチア属、エルビニア属、サルモネラ属、モルガネラ属などが挙げられてもよい。放線菌としては、ストレプトマイセス属、アクチイノマイセス属、マイコバクテリウム属、コリネバクテリウム属などの微生物が用いられてもよい。発酵生産量を高める観点で、腸内細菌として大腸菌（エシェリヒア・コリ（E.coli)）を使用することが好ましい。酵母としては、サッカロマイシス属、シゾサッカロマイセス属、カンジダ属、アスペルギルス属、ペニシリウム属、ノイロスポラ属が挙げられてもよい。
【００３４】
本発明において、遺伝子導入は、導入される微生物の種類に応じて、本技術分野において一般的に使用される任意の方法を用いて行われる。プロモーター配列の下流に、発現可能な様式でエルゴチオネイン合成遺伝子を組み込んだ発現ベクターを微生物に導入することで、遺伝子の導入が可能となる。
【００３５】
培地は、炭素源、窒素源、硫黄源、無機イオン及び必要に応じその他の有機成分を含有する培地を用いることができる。使用する微生物の種類に応じて、本技術分野において一般的に用いられる任意に選択することができる。大腸菌を用いる場合、一例としてＬＢ培地、Ｍ９培地、ＳＭ１培地などの培地を用いることができる。また、導入遺伝子の発現させるために、導入したプラスミドの種類に応じてＩＰＴＧなどの誘導物質が添加される。さらに本発明の好ましい態様では、ヒスチジン添加された培地を用いることが好ましい。ヒスチジン添加培地は、ヒスチジンを５ｍＭ以上、好ましくは１２０ｍＭ以上、さらに好ましくは２４０ｍＭ以上含み、毒性の観点から１０Ｍ以下、好ましくは１Ｍ以下、さらに好ましくは０．５Ｍ以下含む。さらに本発明の好ましい態様では、メチオニンが添加されてもよい。メチオニン添加培地は、メチオニンを１０ｍＭ以上、好ましくは３５０ｍＭ以上、さらに好ましくは７００ｍＭ以上含み、毒性の観点から１０Ｍ以下、好ましくは１Ｍ以下、さらに好ましくは０．５Ｍ以下含む。システイン産生が低い大腸菌を用いる場合、さらにシスチンを添加してもよく、シスチン添加培地は、シスチンを２．５ｍＭ以上、好ましくは６０ｍＭ以上、さらに好ましくは１２０ｍＭ以上含み、毒性の観点から５００ｍＭ以下、好ましくは２５０ｍＭ以下含む。
【００３６】
培養条件や培養時間は、使用する培養装置や目的とするエルゴチオネイン産生量に応じて当業者が任意に選択することができる。一例として、好気的条件下で、数時間〜数週間にわたり培養をおこなってもよい。培養温度は、菌株に応じて、適宜選択することができ、一例として２５℃〜４０℃の間で選択することができる。大腸菌を培養する観点からは、３７℃が好ましい。培養中ｐＨは５〜８に制御することが好ましい。
【００３７】
本発明において、ｍｅｔＪとは、大腸菌のメチオニンリプレッサー遺伝子を指す。ｍｅｔＪは、Ｓ−アデノシルメチオニンとの組み合わせにより、メチオニンレギュロンの発現及びＳ−アデノシルメチオニン合成に関わる酵素の発現を抑制する。したがって、ｍｅｔＪ遺伝子の欠損（ΔｍｅｔＪ）により、メチオニンリプレッサーにより抑制されるメチオニンレギュロンの発現が亢進する。メチオニンリプレッサー遺伝子を欠損させることで、エルゴチオネイン生産を高めることができる。ｍｅｔＪ遺伝子の欠損は任意の方法で行われてよいが、例えばBiochem. J. (2006) 396, 227-234の方法を用いて欠損させることができる。
【００３８】
本発明のエルゴチオネイン製造方法は、微生物を培養する工程に加えて、さらに得られた培養物の上清及び／又は菌体から、通常の方法にしたがってエルゴチオネインを精製する工程を含んでもよい。
【００３９】
本明細書において言及される全ての文献はその全体が引用により本明細書に取り込まれる。
【００４０】
以下に説明する本発明の実施例は例示のみを目的とし、本発明の技術的範囲を限定するものではない。本発明の技術的範囲は特許請求の範囲の記載によってのみ限定される。本発明の趣旨を逸脱しないことを条件として、本発明の変更、例えば、本発明の構成要件の追加、削除及び置換を行うことができる。
【実施例】
【００４１】
系統樹解析
M. pseudosasicolaのｅｇｔＢのアミノ酸配列をクエリーとして、ＫＥＧＧデータベースで、代表的な生物種ゲノムにおいて、ＢｌａｓｔＰサーチ（代表的な生物種）を行い、相同性遺伝子配列群を取得した。これらの配列群をClustalXでマルチプルアラインメントを実施し、系統樹を作成（Dendroscope）した（図１）。各遺伝子名は、KEGG gene ID （始めの三文字が生物種（KEGG organisms参照）を表す）。本発明にかかるMethylobacterium属が有するｅｇｔＢ様遺伝子は、エルゴチオネイン生合成経路を有することが既知であるMycobacterium smegmatisのｅｇｔＢ遺伝子及び新規のエルゴチオネイン生合成経路を有することが見いだされたMicrocystis aeruginosaのｅｇｔＢ遺伝子とは、系統樹解析において全く異なる群に属することが分かった。したがって、本発明のシステインとヘルシニンとから、ヘルシニルシステインスルホキシドへの反応を触媒する酵素をコードするエルゴチオネイン合成遺伝子とは、系統樹上でシアノバクテリアであるMicrocystis aeruginosaが属する系統とは異なる系統であり、かつ既知のエルゴチオネイン生合成経路を有するMycobacterium smegmatisが属する系統とも、異なる系統である。
【００４２】
ｅｇｔＢ様遺伝子のクローニング
ＮＢＲＣ（NITE Biological Resource Center）から分譲されたMethylobacterium pseudosasicola（ＮＢＲＣ番号：105203）、Methylobacterium brachiatum（ＮＢＲＣ番号：103629）、Methylobacterium radiotolerans（ＮＢＲＣ番号：15690）、Methylobacterium phyllostachyos（ＮＢＲＣ番号：105206）、及びMethylobacterium mesophilicum（ＮＢＲＣ番号：15688）からｅｇｔＢ様遺伝子をそれぞれ増幅し、J.Agric. Food Chem、2018、66, 1191-1196で用いられたｐＱＥ−１ａにクローニングし、ｅｇｔＢ様タンパク質発現プラスミド（ｐＱＥ８８ｅｇｔＢ）を調製した。調製したｐＱＥ８８ｅｇｔＢのプラスミドマップを図２Ａに示す。ｐＱＥ８８ｅｇｔＢのプラスミドに導入されたMethylobacterium pseudosasicola、Methylobacterium brachiatum、及びMethylobacterium radiotolerans由来のｅｇｔＢ様遺伝子の配列情報、並びにMethylobacterium phyllostachyos、及びMethylobacterium mesophilicum由来のｅｇｔＢ様遺伝子の配列情報をそれぞれ図２Ｂ及びＣ示す。
【００４３】
ｅｇｔB様遺伝子のアミノ酸配列及び核酸配列は下記の通りであった：
【表１】
2019149972.tif 000005
【００４４】
ｅｇｔＡ〜ｅｇｔＥ遺伝子のクローニング
J.Agric. Food Chem、2018、66, 1191-1196で用いられたｐＣＦ１ｓ−ＭｓＤに、同文献で使用したMycobacterium smegmatis（ＪＣＭ６３８６）のｅｇｔＥ遺伝子を導入し、ｐＣｔａｃ−ＭＳ−ｅｇｔＤ−ｈｉｓＭＳ−ｅｇｔＥプラスミドを調製した。調製したｐＣｔａｃ−ＭＳ−ｅｇｔＤ−ｈｉｓＭＳ−ｅｇｔＥのプラスミドマップを図３Ａに示す。ｐＣｔａｃ−ＭＳ−ｅｇｔＤ−ｈｉｓＭＳ−ｅｇｔＥのプラスミドに導入されたｅｇｔＤ及びｅｇｔＥの配列を、図３Ｂに示す。
【００４５】
また、対照として、Mycobacterium smegmatisから、ｅｇｔＡＢＣＤＥ遺伝子を増幅し、ｐＣＦ１ｓプラスミドに組み込み、ｐＣｔａｃ-ＭＳ−ｅｇｔＡＢＣＤＥプラスミドを調製した。
【００４６】
ＪｐＤＥＳプラスミド調製
ｐＤＥＳプラスミドは、ｐＡＣＹＣ１８４プラスミド（株ニッポンジーン）に、４１０番目のアミノ酸（トレオニン）が終始コドンに変換されるように変異したｓｅｒＡ遺伝子、ｙｄｅＤ遺伝子、及び１６７番目のアミノ酸（トレオニン）がアラニンに変換されるように変異したｃｙｓＥ遺伝子が、ＯｍｐＡプロモーターの制御下に挿入された構造を有する。変異型ｓｅｒＡ遺伝子及び変異型ｃｙｓＥにより、フィードバック阻害が軽減され、ｙｄｅD遺伝子によりシステインの細胞外への排出が促進される。したがって、ｐＤＥＳプラスミドを大腸菌に導入することにより、システイン高生産株を得ることができる。調製したｐＤＥＳのプラスミドマップを図４Ａに示す。ｐＤＥＳに導入されている、ｓｅｒＡ遺伝子及びｙｄｅＤ遺伝子の配列情報、並びにｃｙｓＥ遺伝子の配列情報を図４Ｂ及びＣに示す。
【００４７】
エルゴチオネイン産生株の製造
ｐＱＥｅｇｔＢプラスミドとしては、Methylobacterium pseudosasicola、Methylobacterium brachiatum、Methylobacterium radiotolerans、Methylobacterium phyllostachyos、及びMethylobacterium mesophilicumに由来するｅｇｔＢ様遺伝子がそれぞれ導入されたプラスミドを用い、さらにｐＣｔａｃ−ＭＳ−ｅｇｔＤ−ｈｉｓＭＳ−ｅｇｔＥプラスミド、及びｐＤＥＳプラスミドをそれぞれΔｍｅｔＪ大腸菌に導入し、エルゴチオネイン産生株を製造した。ΔｍｅｔＪ大腸菌は、野生株ＢＷ２５１１３株において、ファーストクロスオーバー法を用いてｍｅｔＪ遺伝子欠損させることで作成した。さらに対照として、ＭＳ−ｅｇｔＡＢＣＤＥ−ｐＤＥＳプラスミド及びｐＤＥＳプラスミドを導入したエルゴチオネイン産生対照株を製造した。
【００４８】
エルゴチオネインの製造
３％グルコースを添加したＳＭ１培地（ＣａＣＯ3添加：下記表参照）中で、エルゴチオネイン産生株を２４時間培養し、前培養液を得た。前培養液をＯＤ５６２＝０．１となるように、同ＳＭ１培地に添加し、３０℃、２００ｒｐｍで本培養を開始した。６時間の培養後、０．１ｍＭのＩＰＴＧを誘導物質として添加し、また基質として１０ｍＭチオ硫酸ナトリウム、５ｍMヒスチジン、６ｍＭメチオニンを添加し、さらに培養を行った。培養後、９６時間、１２０時間、１４４時間、１６８時間及び１９２時間で、培養物を取得し、培養物中に含まれるエルゴチオネインの測定を下記の通り行った。
【表２】
2019149972.tif 000006
【００４９】
エルゴチオネインの量の測定
培養物中のエルゴチオネインの量を、受託分析（Ａｎａｔｅｃｈ社）に供し測定した。Methylobacterium pseudosasicola、Methylobacterium brachiatum、Methylobacterium radiotolerans、Methylobacterium phyllostachyos、及びMethylobacterium mesophilicumに由来するｅｇｔＢが導入されたエルゴチオネイン産生株と、Mycobacterium smegmatis由来のｅｇｔＡＢＣＤＥが導入されたエルゴチオネイン産生対照株との産生量を比較した図を図５に示した。対照株では、１４４時間以降の培養にて増殖がみられなかった。そこで、対照株については１４４時間でのエルゴチオネインの産生量と、エルゴチオネイン産生株の１９２時間での産生量を比較した。
【表３】
2019149972.tif 000007
【００５０】
培養物の触媒活性の測定
Methylobacterium pseudosasicola、Methylobacterium brachiatum、Methylobacterium radiotolerans、Methylobacterium phyllostachyos、及びMethylobacterium mesophilicumに由来するｅｇｔＢが導入されたエルゴチオネイン産生株と、ネガティブコントロールとして大量発現遺伝子を導入されていない大腸菌株の培養物について遠心により、細胞を収集した。収集した細胞に対してソニケーション処理を行い、細胞破砕上清を得た。下記の表に記載の触媒反応測定液を細胞破砕上清（１ｍｇ（ｐｒｏｔｅｉｎ）／ｍｌ）に混合し、３０℃で２時間インキュベートした。反応基質種として、システイン又はγ−グルタミルシステインとを含む反応液の生成物種をＬＣ−ＥＳＩ−ＭＳで解析した。結果を図６に示す。
【表４】
2019149972.tif 000008
【図１】
2019149972.tif 000009
【図２Ａ】
2019149972.tif 000010
【図２Ｂ】
2019149972.tif 000011
【図２Ｃ】
2019149972.tif 000012
【図３Ａ】
2019149972.tif 000013
【図３Ｂ】
2019149972.tif 000014
【図４Ａ】
2019149972.tif 000015
【図４Ｂ】
2019149972.tif 000016
【図４Ｃ】
2019149972.tif 000017
【図５】
2019149972.tif 000018
【図６】
2019149972.tif 000019
【配列表】
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