(57)【要約】      （修正有）【課題】白内障治療のための新たな効果的な薬剤の提供。【解決手段】間葉系幹細胞を培養して得られる培養上清成分を含む、白内障の抑制剤または治療剤。好ましくは、骨髄間葉系幹細胞または脂肪組織由来間葉系幹細胞の培養上清成分を含む、抑制剤または治療剤。好ましくは、エキソソームを含む、抑制剤または治療剤。好ましくは、点眼剤または眼軟膏剤である、抑制剤または治療剤。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
間葉系幹細胞を培養して得られる培養上清成分を含む、白内障の抑制剤または治療剤。
【請求項２】
前記間葉系幹細胞は、骨髄間葉系幹細胞または脂肪組織由来間葉系幹細胞である、請求項１に記載の白内障の抑制剤または治療剤。
【請求項３】
前記培養上清成分は、エキソソームを含む、請求項１または２に記載の白内障の抑制剤または治療剤。
【請求項４】
点眼剤または眼軟膏剤である、請求項１〜３のいずれかに記載の白内障の抑制剤または治療剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、水晶体の白濁を抑制する物質に関する。より詳しくは、間葉系幹細胞の培養上清の少なくとも一部を含む点眼剤または眼軟膏剤の形態の剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
白内障は、眼の水晶体が濁ってくる疾患である。直接の原因は、水晶体を構成するタンパク質であるクリスタリンが凝集し、水晶体の透明性が失われることにより発症する。白内障の原因として、加齢、糖尿病、紫外線等々が報告されているが、何れにしても根本的な原因は解明されておらず、一旦透明性が失われた水晶体は元のように戻すことは出来ない。このため治療方法は、少しでも白内障の進行を遅らせるための薬物治療か、濁った水晶体を超音波で砕いて取り出し（超音波水晶体乳化吸引術）、眼内レンズを入れるという治療が行われている。ところで近年、再生医療の研究が盛んとなり、幹細胞を移植する細胞移植治療により様々な疾患の治療が可能であることが明らかとなってきた。
【０００３】
間葉系幹細胞は、体性幹細胞の一種であり、間葉系の細胞、即ち、骨細胞、心筋細胞、軟骨細胞、脂肪細胞などへの分化能を有することから、骨や血管、心筋の再構築などの再生医療への応用が期待されている。こればかりでなく、間葉系幹細胞は抗炎症作用、免疫調節作用なども有することから、種々の自己免疫疾患や移植片対宿主病の治療などに、既に利用されている。更に、慢性的な肝疾患である肝硬変に対しても、肝組織の線維化を抑制し改善効果があることが報告されている。
【０００４】
こうした中、細胞移植治療において生体内に移植された間葉系幹細胞は、細胞自身の増殖や分化により組織を再生するだけではないことが分かってきた。即ち、細胞から分泌される種々のサイトカイン等の生理活性物質が持つ多様な性質が、組織の再生や疾患部位の治癒に少なからず寄与していることが明らかになってきた。
【０００５】
間葉系幹細胞をインビトロで培養した際にも、培養液中に生理活性物質が放出される。そこで、間葉系幹細胞の培養に使用した培養液を回収し、細胞から放出される物質を多く含むこの培養液を利用して、組織を再生することに成功した例が報告されている。上田らは、ラットを用いた実験で、骨髄間葉系幹細胞の培養上清が骨の再生能力を持つことを示した（非特許文献１）。この中で、骨髄間葉系幹細胞の培養上清中には、インスリン様成長因子（ＩＧＦ）や血管内皮細胞増殖因子（ＶＥＧＦ）などが多く含まれており、これらの因子が組織の再生などに関わっていることが示唆されている。
【０００６】
また、有村らは、骨髄間葉系幹細胞の培養上清が抗炎症作用を有し、腸炎の予防・治療効果を示すことを報告している（特許文献１）。
【０００７】
最近では、間葉系幹細胞から分泌される、エキソソームと呼ばれる小胞が、様々なタンパク質やＲＮＡを含み、これが間葉系幹細胞と同様の治療効果を持つことが報告されている（非特許文献２）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００８】
【特許文献１】特許第６１３２４５９号
【非特許文献】
【０００９】
【非特許文献１】Ｔｉｓｓｕｅ ＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇＰａｒｔ Ａ．２０１２；１８：１４７９−１４８９
【非特許文献２】Ｄｒｕｇ ＤｅｌｉｖｅｒｙＳｙｓｔｅｍ．２０１４；２９−２：１４１−１５１
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１０】
白内障は眼の水晶体が濁ってくる疾患で、直接の原因は水晶体を構成するタンパク質であるクリスタリンが凝集し、水晶体の透明性が失われることにより発症する。白内障の根本的な原因は解明されておらず、治療方法の一つは少しでも白内障の進行を遅らせるための薬物治療であるが、これは必ずしも効果的では無いのが実情であり、新たに効果的な薬剤開発が求められている。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
本発明者は、上記課題に対し鋭意検討を行った結果、上記課題を解決できることを見出し、本発明を完成するに至った。
即ち、本願発明の概要は以下の通りである。
１．間葉系幹細胞を培養して得られる培養上清成分を含む、白内障の抑制剤または治療剤。
２．前記間葉系幹細胞は、骨髄間葉系幹細胞または脂肪組織由来間葉系幹細胞である、１に記載の白内障の抑制剤または治療剤。
３．前記培養上清成分は、エキソソームを含む、１または２に記載の白内障の抑制剤または治療剤。
４．点眼剤または眼軟膏剤である、１〜３のいずれかに記載の白内障の抑制剤または治療剤。
【発明の効果】
【００１２】
本発明により、水晶体の混濁を防止することができるため、効果的に白内障を予防または治療することが可能となる。
【図面の簡単な説明】
【００１３】
【図１】間葉系幹細胞の培養上清の作製に用いる細胞培養容器の一例を示す模式図である。
【図２】間葉系幹細胞の培養上清の作製に用いる細胞培養装置の一例を示す模式図である。
【図３】実施例における培養上清作製のスケジュールである。
【図４】実施例で得られた培養上清を用いたラット白内障のスコア推移を示すグラフである。
【図５】実施例で得られた培養上清から調製したエキソソーム溶液を用いたラット白内障のスコア推移を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１４】
（間葉系幹細胞）
本発明において、間葉系幹細胞は、特に限定されるものではないが、骨髄間葉系幹細胞、脂肪組織由来間葉系幹細胞などが好適である。また、プライマリー細胞に限らず、遺伝子改変等によって株化／不死化された間葉系幹細胞も用いることが出来る。動物種も特に限定されず、ヒト、マウス、ラット等のいずれの動物由来のものも使用できる。
【００１５】
（間葉系幹細胞の培養上清液）
本発明において、間葉系幹細胞の培養上清とは、細胞を一定期間（数時間から数日）培養した際に、細胞に直接または半透膜などを介して間接に接触していた培養液を細胞と分離して得られるものを言う。培養液馴化培地、コンディションドメディウム（Ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄｍｅｄｉｕｍ）などと同意である。
【００１６】
（培養液）
本発明において、培養上清の製造に用いる培養液の組成等は、特に限定されない。例えば、Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ Ｍｅｄｉｕｍ（ＤＭＥＭ）、Ｍｉｎｉｍｕｍ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｍｅｄｉｕｍ Ｅａｇｌｅ， Ａｌｐｈａ Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ（αＭＥＭ）、Ｒｏｓｗｅｌｌ Ｐａｒｋ Ｍｅｍｏｒｉａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｍｅｄｉａ（ＲＰＭＩ）１６４０などを基礎培地とし、これに適宜、細胞増殖因子、ホルモン、動物血清などを添加することにより調製されたものが使用できる。
【００１７】
本発明において、用いる培養液は、場合によっては動物血清を含まないことが好ましいことがある。これは、動物血清には細胞増殖因子等の生理活性物質が豊富に含まれるため、時にはこれらの生理活性物質の存在が、培養上清を使用する際に目的の妨げとなったり、マイナスに作用する可能性があるためである。
【００１８】
本発明において、間葉系幹細胞を培養して培養上清を得るためには、半透膜を培養基材として収納した細胞培養容器を用いるのが好ましい。このような細胞培養容器は、容積効率を高くすることができるため省スペース化を図ることができるだけでなく、特定の構成を有する半透膜を用いることにより効率よく培養上清を回収することができる。
【００１９】
（半透膜）
本発明において、培養基材として用いる半透膜は、細胞を半透膜表面に保持でき、溶液や低分子の物質を透過させるような構造を有するものが好ましい。より詳しくは、培養上清成分は半透膜を透過しないが、培養液成分は半透膜を透過する構造（細孔径）を有するものが好ましい。具体的には、培養上清中の特にエキソソーム（およそ３０ｎｍ〜１５０ｎｍ）は膜透過せず、培養液成分であるγ−グロブリン（およそ８．４ｎｍ）は膜透過する特性を有する半透膜が好ましい。そうすると、半透膜は、５ｎｍ〜２０ｎｍ程度の細孔半径を有する限外ろ過膜を用いるのが好ましい。
【００２０】
本発明において、半透膜の素材は、特に限定されないが、例えば、２−ヒドロキシエチルメタクリレートやポリメチルメタクリレート等のアクリル系樹脂、セルロースアセテートや再生セルロースなどのセルロース系樹脂、ポリスルホンやポリエーテルスルホンなどのポリスルホン系樹脂、ポリ乳酸やポリヒドロキシアルカノエート等のポリエステル系樹脂、ポリエチレンやポリプロピレン等のポリオレフィン系樹脂、ポリビニルアルコール、エポキシ樹脂、ポリアクリロニトリル、ポリフッ化ビニリデン、ポリスチレン、ポリアミドなどが好適に利用できる。また、これらの誘導体が主成分であっても良い。
【００２１】
本発明において、半透膜は、前記の素材に化学的に修飾を加えたものであっても良い。例えば、親水化処理されていてもよい。親水化処理された半透膜を用いることにより、培養細胞への培養液等の液体成分の供給が容易になる。半透膜を親水化処理する方法としては、例えば、半透膜をエチレン−ビニルアルコール共重合体等の親水性高分子や、グリセリン、エタノールで処理する方法が挙げられる。また、使用する細胞に応じて、半透膜への接着向上のため、コラーゲンやフィブロネクチン等のコーティングを行っても良い。
【００２２】
本発明において、半透膜は、平膜であってもよいし中空糸膜であってもよいが、容積効率の面から中空糸膜を用いるのが好ましい。中空糸膜の場合、内径が小さすぎると培養容積が確保できないとか、培養細胞にストレスを与えることになるので１０μｍ以上が好ましい。一方、内径が大きすぎると容積効率が低下し中空糸膜培養容器のメリットを損なうことになるので２０００μｍ以下が好ましい。また、半透膜の膜厚は、培養液成分の透過性や膜強度を考慮すると、１０μｍ〜２００μｍ程度が好ましい。
【００２３】
本発明において、間葉系幹細胞の培養上清を製造する方法は、特に制限なく、例えば、中空糸膜を細胞培養基材として用い、中空糸膜の内腔側または外腔側で間葉系幹細胞を培養すればよい。例えば、間葉系幹細胞を培養液等に縣濁した細胞懸濁液を中空糸膜の内腔に充填し、培養液を中空糸膜の内腔側および外腔側に連続的または間欠的に灌流させる等して間葉系幹細胞の培養を行う。なお、間欠的な灌流とは、培養液の流れを一時的に止めたり進めたりする工程を繰り返すことを指す。ここで、流れを止めたり進めたりする間隔は特に制限されず、等間隔でも不規則でもよい。培養液は、細胞に必要な養分や酸素などを供給したり、逆に老廃物を排出する役割を有する。このようにして、一定期間培養を行った後の中空糸膜内腔側の培養液を回収すれば、間葉系幹細胞の培養上清液を得ることができる。
【００２４】
（細胞培養容器）
本発明において、間葉系幹細胞の培養上清の製造に用いる細胞培養容器は、４つの開口部を有する筒状容器に数本〜数万本の中空糸膜を収納し、中空糸膜の両端を筒状容器に液密に接着固定することにより作製することができる。このような細胞培養容器は、単位容積あたりの培養面積を非常に大きくすることができ、また培養操作を簡便化することができるため、効率よく細胞培養を実施することが出来る。
【００２５】
このような細胞培養容器の構成は特に限定されないが、例えば図１に示すように、４つの開口部（エンドポートおよびサイドポート）を有する筒状容器に中空糸膜が適宜必要な本数束ねられて収納されている形態が挙げられる。具体的には、細胞培養容器１において、複数の中空糸膜３は、両端において各中空糸膜の内腔と外腔を分離した状態で、かつ中空糸膜の中空部を閉塞しないようにシール材（例えば、ポリウレタン系ポッティング剤）８により筒状容器２端部に接着固定されている。すなわち、前記４つの開口部のうち、２つのエンドポート６ａおよび６ｂは、中空糸膜３の内腔（中空部）５と連通している。一方、前記開口部のうち、２つのサイドポート７ａおよび７ｂは、前記筒状容器２の内側であって、かつ前記中空糸膜の外側である空間（外腔側）４と連通しており、前記サイドポート７ａまたは７ｂの一方から導入された培養液などが外腔側４を通ってもう一方のサイドポート７ｂまたは７ａから導出されるように構成されている。
【００２６】
（細胞培養装置）
図２は、中空糸膜型細胞培養容器を用いる細胞培養装置の一例を示している。細胞培養容器１の中空糸膜内腔５に連通するエンドポート６ａには、導入口４０から間葉系幹細胞を含む細胞懸濁液を導入、送液するための流路および培養液貯留容器９から細胞培養液を送液するための流路が接続されている。また、細胞懸濁液と細胞培養液の流路を切替えられるように流路の途中にバルブ２０が設けられている。また、前記細胞培養容器１の中空糸膜内腔５に連通するエンドポート６ｂには、培養後の培養上清を排出するための流路が接続されており、流路の途中には流量調整用のバルブ２１および送液ポンプ３１、培養上清回収容器１１または排出口５０への流路を切替えるためのバルブ２２が設けられている。一方、細胞培養容器１の中空糸膜外腔４に連通するサイドポート７ａには、培養液貯留容器８から中空糸膜外腔４に培養液を送液するための流路が接続されている。また、中空糸膜外腔４に連通するサイドポート７ｂには、培養液を排出するための流路が接続されており、流路の途中には送液ポンプ３０が設けられており、排出された培養液を回収するための回収容器１０に接続されている。なお、本発明において、少なくとも培養液貯留容器８、９および流路、細胞培養容器１はＣＯ２インキュベーター内に設置されていることが好ましい。
【００２７】
（培養上清の製造）
間葉系幹細胞を培養する場合、細胞培養容器の中空糸膜内腔に細胞懸濁液を導入して間葉系幹細胞を中空糸膜表面に播種した後、中空糸膜内腔と外腔の両方に細胞培養液を流すことにより培養環境を整えながら間葉系幹細胞を培養する。すると、間葉系幹細胞は、培養液中に種々の分泌物（タンパク質、サイトカイン、エキソソーム）を放出するので、細胞培養液とともにこれらの分泌物を回収する。
【００２８】
図２を参照して、培養上清の製造について説明する。導入口４０より細胞懸濁液を送液し、中空糸膜内腔５に細胞懸濁液を充填する。細胞懸濁液が充填された後、バルブ２０を閉の状態とする。中空糸膜内腔５に細胞懸濁液を充填した後、一定時間静置して中空糸膜表面に細胞を接着させる。一定時間静置後、培養液貯留容器９、中空糸膜内腔５、排出口５０が連通するようにバルブ２０、２１、２２を切替え、ポンプ３０および３１を起動して細胞培養容器の中空糸膜内腔５と中空糸膜外腔４の両方に細胞培養液を流す。このとき、培養液の流量は、細胞増殖度合いや環境に応じて調整することが好ましい。また、少なくとも細胞培養容器、培養液貯留容器およびそれらを繋ぐ流路は、温度およびＣＯ２濃度の制御機構を備えたインキュベータ内に設置する。数日間、培養を行った後、培養液貯留容器９の培養液を培養上清回収用の培養液に交換する。培養上清回収用の培養液に交換した後、バルブ２２を切替え、培養上清回収容器１１に培養上清を回収する。
【００２９】
培養液、特に中空糸膜内腔５を流れる培養液の流速は、細胞増殖度合いや環境に応じて、調整することが好ましい。細胞増殖度合いを調べる方法は、特に限定されないが、培養液中のグルコースや乳酸塩の濃度等の測定結果をもとに行うことが出来る。
【００３０】
本発明において、培養上清は、前記回収した培養液から間葉系幹細胞を除去したものを意味するが、かかる培養上清から例えば、残存培地成分（培養前の培養液の成分のうち、培養後の培養液中に残存している成分）、培養液の水分などの本発明における水晶体組織の硬化防止または治療に寄与しない成分の少なくとも一部をさらに除去したものも、本発明における間葉系幹細胞の培養上清に含まれる。また、回収した培養液（培養上清）より抽出したエキソソームを含む懸濁液も本発明の範疇である。
【００３１】
また、培養上清には、配合により好ましくない相互作用を生じない限り、他の活性成分、例えば、抗アレルギー又は抗ヒスタミン成分、充血除去成分、局所麻酔薬成分、ビタミン成分（ビタミンＡ、Ｂ群、Ｃ）、アミノ酸成分（例：バリン、ロイシン、イソロイシン、セリン、スレオニン、メチオニン、プロリン、フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン、アスパラギン酸、グルタミン酸、リジン、ヒスチジン、シトルリン、オルニチン、シスチン、タウリン、グリシン）などをさらに含有していてもよい。そのような他の活性成分としては、公知の各種薬剤を適宜使用することができる。また、他の活性成分は、本発明の剤とは別個に製剤化し、同一対象に対して、同時又は時間差をおいて、また、同一経路又は別経路で投与してもよい。
【実施例】
【００３２】
（半透膜の平均細孔半径の測定）
純水で充分に湿潤状態にした中空糸膜数十本を約５ｍｍにカットし、ろ紙で余分な水分を取り除き、密閉パンにつめ、ＤＳＣ（示差走査熱量計  Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ社製ＤＳＣ−７）で融解曲線を測定する。測定は、−４５℃〜１５℃の範囲を昇温速度２．５℃／ｍｉｎで実施する。細孔に存在する水は基材の影響を受けて凝固点降下し、自由水（０℃付近で融解）とは異なるところ（自由水よりも低い温度領域）でピークを示す。凝固点降下している部分のピークとベースラインとで囲まれる領域の融解熱量（ΔＨｐ）を求め、水の単位重量あたりの融解熱量（ΔＨｍ）から細孔水量（Ｗｐ）を算出する。ＤＳＣ測定したサンプルを絶乾し、蒸発した水分の重量（全水分量  Ｗｔ）を求める。これらの値からＶｐ（細孔体積空孔率）を次式によって算出する。
Ｗｐ＝ΔＨｐ／ΔＨｍ
Ｖｐ（％）＝Ｗｐ／（Ｗｔ＋Ｍｐ／ρｐ）×１００
Ｍｐ：ポリマー重量
ρｐ：ポリマー比重
上記のようにして得られた融解曲線から、凝固点降下した方のピークのピークトップを読み取り、細孔中の水の毛管凝縮による凝固点（氷点）降下度から次式を用いて簡易的に細孔半径（ｒ）を算出することができる。
ｒ（ｎｍ）＝氷点降下度（℃）／１６４×１０
【００３３】
（内径、外径、膜厚の測定）
３ｍｍφの孔を空けた２ｍｍ厚のＳＵＳ小板を用い、孔に適量の湿潤中空糸膜を詰めてカットすることで、中空糸膜の断面を露出させたサンプルホルダーを作成した。これをＮｉｋｏｎ製顕微鏡（ＥＣＬＩＰＳＥ ＬＶ１００）のステージに設置した後、Ｎｉｋｏｎ製 画像処理装置（ＤＩＧＩＴＡＬ ＳＩＧＨＴ ＤＳ−Ｕ２）およびＣＣＤカメラ（ＤＳ−Ｒｉ１）を起動させた。画像解析ソフトとしてＮＩＳ Ｅｌｅｍｅｎｔ Ｄ３．００ ＳＰ６を用い、画面に映る中空糸膜断面の外径および内径を、該解析ソフトの計測機能を用いて測定することで中空糸膜の外径および内径を算出した。
【００３４】
（中空糸膜１の作製）
ポリエーテルスルホン（ＢＡＳＦ社製Ｕｌｔｒａｓｏｎ（登録商標）６０２０Ｐ）２６．５ｗｔ％、ビニルピロリドン／酢酸ビニル共重合体（ＢＡＳＦ社製Ｌｕｖｉｔｅｃ（登録商標）ＶＡ６４）１ｗｔ％、Ｎ−メチル−２−ピロリドン（ＮＭＰ、三菱化学社製）３９．９ｗｔ％、トリエチレングリコール（ＴＥＧ、三井化学社製）３２．６ｗｔ％を５５℃で混合、溶解し均一な溶液を得た。得られた製膜溶液を二重管ノズルの環状部から、中心部から芯液としてＮＭＰ４２．７５ｗｔ％、ＴＥＧ５２．２５ｗｔ％、ＲＯ水５ｗｔ％の混合液を吐出し、エアギャップを経て、ＮＭＰ２７ｗｔ％、ＴＥＧ３３ｗｔ％、ＲＯ水４０ｗｔ％の混合液からなる外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。この際、ノズル温度は５０℃、外部凝固液の温度は３０℃に設定した。凝固浴から引き出した後に５５℃の水洗槽を走行させて洗浄を実施し、巻取り機で巻き取った。巻き取った中空糸膜は、本数１００本、長さ３０ｃｍの中空糸膜束とし、８５℃のＲＯ水に直立状態で浸漬して洗浄処理を行った。その後、４０℃の温水を入れた高圧蒸気滅菌機に水没させ、１４０℃×２０ｍｉｎの条件で高圧熱水処理を行った。その後、庫内温度３５℃でマイクロ波乾燥を行った。前記高圧熱水処理及びマイクロ波乾燥を３回繰り返し、中空糸膜１を作製した。得られた中空糸膜１の内径は２３０μｍ、外径は３１０μｍ、膜厚は４０μｍであった。また、平均細孔半径は５ｎｍであった。
【００３５】
（中空糸膜２の作製）
セルローストリアセテート（ダイセル化学社製）１８ｗｔ％、ＮＭＰ５７．４ｗｔ％、ＴＥＧ２４．６ｗｔ％を混合、溶解し製膜溶液を得た。得られた製膜溶液を二重管ノズルの環状部から、芯液として流動パラフィンを中心部から吐出し、エアギャップを経て、ＮＭＰ１４ｗｔ％、ＴＥＧ６ｗｔ％、ＲＯ水８０ｗｔ％の混合液からなる外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。この際、ノズル温度は１０５℃、外部凝固液の温度は４０℃に設定した。凝固浴から引き出した後に３０℃の水洗槽を走行させて洗浄を実施し、５０℃、６０ｗｔ％のグリセリン浴を通過させ、乾燥して巻取り機に巻き取った。得られた中空糸膜２の内径は２４０μｍ、外径は２７６μｍ、膜厚は１８μｍであった。また、平均細孔径は１８ｎｍであった。
【００３６】
（中空糸膜３の作製）
セルローストリアセテート（ダイセル化学社製）１９．５ｗｔ％、ＮＭＰ５７．７５ｗｔ％、ＴＥＧ２４．７５ｗｔ％を混合、溶解し製膜溶液を得た。得られた製膜溶液を二重管ノズルの環状部から、芯液として流動パラフィンを中心部から吐出し、エアギャップを経て、ＮＭＰ１４ｗｔ％、ＴＥＧ６ｗｔ％、ＲＯ水８０ｗｔ％の混合液からなる外部凝固液を満たした凝固浴に導いた。この際、ノズル温度は１０５℃、外部凝固液の温度は４０℃に設定した。凝固浴から引き出した後に３０℃の水洗槽を走行させて洗浄を実施し、５０℃、６０ｗｔ％のグリセリン浴を通過させ、乾燥して巻取り機に巻き取った。得られた中空糸膜３の内径は２５０μｍ、外径は３００μｍ、膜厚は２５μｍであった。また、平均細孔径は１１ｎｍであった。
【００３７】
［実施例１］
内表面に予めコラーゲン（新田ゼラチン）をコートした中空糸膜１を用いて図１に示す細胞培養容器を作製した。また、得られた細胞培養容器を用いて図２に示す細胞培養装置を構成し、ＣＯ２インキュベーター内に設置し、本実験を行った。ヒト骨髄間葉系幹細胞（ＣＥＬＬ  ＡＰＰＬＩＣＡＴＩＯＮＳ  Ｉｎｃ．）を培養液に懸濁した溶液を中空糸膜内腔に注入（播種細胞数は、５．０×１０＾５ｃｅｌｌｓ／モジュール）した。このとき、細胞培養容器内の総培養面積（中空糸膜の内径基準の膜面積）は１０８ｃｍ２であることから細胞播種密度は、約４６３０ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２と計算された。培養液は、培養開始（細胞播種）から９６時間後までは、１０％ウシ胎児血清（ライフテクノロジーズ）を添加したＤＭＥＭＧｌｕｔａＭＡＸ（ライフテクノロジーズ）を用い、培養上清を採取する９６時間以降は、ＭＦ−ｍｅｄｉｕｍ（間葉系幹細胞増殖培地、東洋紡）を用いた。
【００３８】
図３に、培養上清作製のスケジュールを示す。細胞播種（培養開始）から７日間（１６８時間後）の培養を実施した。この間、中空糸内腔を流れる培養液の流速（線速度）は、細胞播種を行ってから９６時間後までは、平均０．０６６ｍｍ／ｍｉｎ、９６時間後から１４４時間後までは、平均０．２０ｍｍ／ｍｉｎ、１４４時間後から１６８時間後までは、平均０．３３ｍｍ／ｍｉｎとした。一方、中空糸外腔を流れる培養液の速度は、培養開始から終了まで、３．４ｍｍ／ｍｉｎとした。細胞培養上清は、培養開始９６時間後から１６８時間後までの７２時間分を回収した。これと同様の中空糸モジュール培養を更に一系統実施し、培養上清を得た。得られた培養上清の量は、合計で約１８ｍｌであった。培養上清は回収後ただちに分注し、使用まで−８０℃に凍結保存した。尚、流速については、中空糸膜内腔、外腔それぞれから流出する流量を流量計を設置して測定し、中空糸膜内腔容積および中空糸膜外腔容積をもとに算出した。培養から１６８時間後に細胞をトリプシンで消化、剥離回収し、細胞数をカウントした結果、１．３×１０＾７個／モジュールの細胞が回収され、増殖率は２６倍であった。
【００３９】
［実施例２］
中空糸膜２を用いた以外は、実施例１と同様にして細胞培養実験を行った。なお、細胞培養容器内の総培養面積（中空糸膜の内径基準の膜面積）は１１３ｃｍ２であることから、細胞播種密度は約４４２５ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２と計算された。
培養から１６８時間後に細胞をトリプシンで消化、剥離回収し、細胞数をカウントした結果、１．１×１０＾７個の細胞が回収され、増殖率は２２倍であった。
【００４０】
［実施例３］
中空糸膜３を用いた以外は、実施例１と同様にして細胞培養実験を行った。なお、細胞培養容器内の総培養面積（中空糸膜の内径基準の膜面積）は１１８ｃｍ２であることから、細胞播種密度は約４２３７ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２と計算された。
培養から１６８時間後に細胞をトリプシンで消化、剥離回収し、細胞数をカウントした結果、１．５×１０＾７個の細胞が回収され、増殖率は３０倍であった。
【００４１】
［実施例４］
４枚のコラーゲンコートシャーレ（培養面積５５ｃｍ２、旭テクノガラス）にヒト骨髄間葉系幹細胞（ＣＥＬＬＡＰＰＬＩＣＡＴＩＯＮＳ Ｉｎｃ．）を細胞播種密度が約５１００ｃｅｌｌｓ／ｃｍ２となるよう播種した。培養液は、実施例１と同様に、細胞を播種してから９６時間までは、１０％ウシ胎児血清（ライフテクノロジーズ）を添加したＤＭＥＭＧｌｕｔａＭＡＸ（ライフテクノロジーズ）を用い、９６時間以降はＭＦ−ｍｅｄｉｕｍ（間葉系幹細胞増殖培地、東洋紡）に培地を交換して培養した。
【００４２】
図３に、培養上清作製のスケジュールを示す。培養開始４８時間後、および９６時間後に、培養液交換を実施した。その後、培養液交換をせず、培養開始から１６８時間で１００％コンフルエントに達したところで培養を終了した。この最後の培地交換から培養終了までの７２時間の培養を行った培養液を培養上清として回収した。培養上清の量は、計２０．０ｍＬであった。培養上清は回収後ただちに分注し、使用まで−８０℃に凍結保存した。培養から１６８時間後に細胞をトリプシンで消化、剥離回収し、細胞数をカウントした結果、２．８×１０＾６個／シャーレの細胞が回収され、増殖率は約１０倍であった。
【００４３】
［実験１］
（白内障モデルラットの準備）
２型糖尿病で白内障を発症するモデルラット、ＳＤＪ／Ｊｃｌラット（日本クレア）のオスを１５週齢で入手し、馴化の後、２０週齢より実験に供した。実験は、各群５匹とし、計３群で実施した。
【００４４】
（培養上清のラットへの投与）
各実施例にて回収した培養上清および細胞に接触していない新しい培養液（ＭＦ−ｍｅｄｉｕｍ、東洋紡）を、それぞれＳＤＪ／Ｊｃｌラットの両眼へ点眼投与した（各群５匹）。即ち、各培養上清および培養液を、マイクロピペットを使用してラットの片目あたり１０μＬずつ点眼（投与）した。点眼は１日１回実施し、ラットが２０週齢から４０週齢になるまでの２０週間、毎日実施した。
【００４５】
［実験２］
（培養上清からのエキソソーム抽出）
実施例で得られた各培養上清からエキソソームを抽出した。エキソソームの抽出には、ＭａｇＣａｐｔｕｒｅ ＴＭＥｘｏｓｏｍｅ ＩｓｏｌａｔｉｏｎＫｉｔ ＰＳ（和光純薬工業、型番：２９３−７７６０１）を用いた。それぞれ、得られたエキソソームは、元の培養上清と等量のリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）に懸濁して用いた。また、細胞と接触させていない新しい培養液（ＭＦ−ｍｅｄｉｕｍ、東洋紡）からも同様にエキソソームの抽出操作を行ったものを対照群への投与用として準備した。
【００４６】
（抽出したエキソソーム成分のラットへの投与）
前記調製したエキソソームを含むＰＢＳ（対照群を含む３種類）溶液を、マイクロピペットを使用してラットの片目あたり１０μＬずつ点眼（投与）した。点眼は１日１回、ラットが２０週齢から４０週齢になるまでの２０週間、毎日実施した。
【００４７】
［実験３］
（水晶体濁度の観察およびスコア化）
前記実験１および２において、培養上清またはエキソソームの投与中、週に１回、ラットの両眼に１％硫酸アトロピンを点眼して散瞳させた状態で水晶体の観察を行った。観察時には、ジエチルエーテルで吸入麻酔をかけ、検眼鏡（ウェルチ・アレン製）等で濁度や濁りの発生部位等を詳細に観察し、表１に示す分類の通りスコア化した。
【００４８】
【表１】
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【００４９】
観察により得られたスコアの推移を図４および図５に示す。図４は、実験１で得られた培養上清をラットに点眼（投与）した結果を示している。一方、図５は、実験２で得られたエキソソーム抽出液をラットに点眼（投与）した結果を示している。本発明の間葉系幹細胞の培養上清または培養上清から抽出されたエキソソームを含む溶液は、白内障モデルラットを用いた実験において水晶体の濁りを抑制する効果があることが示された。
【産業上の利用可能性】
【００５０】
水晶体の濁りが発生することにより白内障が発症するが、本発明の間葉系幹細胞培養上清またはエキソソームを含む溶液からなる点眼剤を点眼することにより、水晶体の濁りを抑制し、効果的に白内障を予防または治療することが可能となる。
【符号の説明】
【００５１】
１    細胞培養容器
２    容器
３    半透膜（中空糸膜）
４    中空糸膜外腔
５    中空糸膜内腔
６ａ、６ｂ    エンドポート
７ａ、７ｂ    サイドポート
８、９    培養液貯留容器
１０    回収容器
１１    培養上清回収容器
２０、２１、２２    バルブ
３０、３１    送液ポンプ
４０    導入口
５０    排出口
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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