(57)【要約】【課題】高性能の脱細胞化担体を製造可能とする脱細胞化担体製造方法を提供する。【解決手段】  脱細胞化担体製造方法は、凍結保存工程と、解凍工程と、脱細胞化工程とを含む。凍結保存工程は、摘出された臓器又は組織を凍結保存する。解凍工程は、凍結保存工程にて凍結保存された臓器又は組織を解凍する。脱細胞化工程は、解凍工程にて解凍された臓器又は組織を脱細胞化する。ここで、脱細胞化工程は、難水溶性界面活性剤灌流工程と、親水溶性界面活性剤灌流工程とを含む。難水溶性界面活性剤灌流工程は、解凍された臓器又は組織を、難水溶性界面活性剤含有溶液で灌流する。親水溶性界面活性剤灌流工程は、難水溶性界面活性剤含有溶液により灌流された臓器又は組織を、親水溶性界面活性剤含有溶液で灌流する。【選択図】図１０
2019136011.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
摘出された臓器又は組織を凍結保存する凍結保存工程と、
前記凍結保存工程にて凍結保存された前記臓器又は前記組織を解凍する解凍工程と、
前記解凍工程にて解凍された前記臓器又は前記組織を脱細胞化する脱細胞化工程とを含み、
前記脱細胞化工程は、
解凍された前記臓器又は前記組織を難水溶性界面活性剤含有溶液で灌流する難水溶性界面活性剤灌流工程と、
前記難水溶性界面活性剤含有溶液により灌流された前記臓器又は前記組織を親水溶性界面活性剤含有溶液で灌流する親水溶性界面活性剤灌流工程とを含む
ことを特徴とする脱細胞化担体製造方法。
【請求項２】
前記凍結保存工程は、
前記臓器又は前記組織を生理食塩水で灌流して脱血する凍結時脱血工程と、
前記凍結時脱血工程にて脱血された前記臓器又は前記組織を、凍結保存溶液で灌流する凍結保存溶液灌流工程と、
前記凍結保存溶液灌流工程にて灌流された前記臓器又は前記組織を、前記凍結保存溶液で満たして膨化させる膨化工程と、
膨化された前記臓器又は前記組織に付着した余剰の前記凍結保存溶液を除去する余剰溶液除去工程と、
前記余剰溶液除去工程にて余剰の前記凍結保存溶液を除去された前記臓器又は前記組織を−２０℃以下で凍結する凍結工程とを含む
ことを特徴とする請求項１に記載の脱細胞化担体製造方法。
【請求項３】
前記凍結保存工程は、
前記凍結工程後、脱細胞化工程前の前記臓器又は前記組織を特定期間保存する期間保存工程を更に含む
ことを特徴とする請求項２に記載の脱細胞化担体製造方法。
【請求項４】
前記凍結保存溶液は、０．０１〜０．３％の過酸化水素水を含む生理食塩水であり、
前記凍結時脱血工程の生理食塩水及び／又前記凍結保存溶液は、５００〜４０００Ｕヘパリンを含んでいてもよい
ことを特徴とする請求項２又は３に記載の脱細胞化担体製造方法。
【請求項５】
前記解凍工程は、
凍結保存された前記臓器又は前記組織を低温冷蔵状態で解凍する低温冷蔵解凍工程と、
前記低温冷蔵解凍工程にて解凍された前記臓器又は前記組織を、タンパク質分解抑制剤含有の生理食塩水で灌流して脱血する解凍時脱血工程と、
前記解凍時脱血工程にて脱血された前記臓器又は前記組織の破損有無を確認する確認工程と、
前記確認工程により確認された前記臓器又は前記組織を灌流用容器に接続する接続工程とを含む
ことを特徴とする請求項１乃至４のいずれか１項に記載の脱細胞化担体製造方法。
【請求項６】
前記解凍時脱血工程は、
前記臓器又は前記組織に含まれる微小血栓を除去する血栓除去工程を含む
ことを特徴とする請求項５に記載の脱細胞化担体製造方法。
【請求項７】
前記脱細胞化工程は、
前記難水溶性界面活性剤含有溶液に含まれる難水溶性界面活性剤は、ＮＰ−４０であり、
前記親水溶性界面活性剤含有溶液に含まれる親水溶性界面活性剤は、ＳＤＳである
ことを特徴とする請求項１乃至６のいずれか１項に記載の脱細胞化担体製造方法。
【請求項８】
前記脱細胞化工程は、
前記親水溶性界面活性剤灌流工程にて灌流された前記臓器又は前記組織を洗浄後、安定化する安定化工程を含む
ことを特徴とする請求項１乃至７のいずれか１項に記載の脱細胞化担体製造方法。
【請求項９】
前記安定化工程は、
前記臓器又は前記組織を０．１〜３％ホルムアルデヒド溶液で灌流する  
ことを特徴とする請求項８に記載の脱細胞化担体製造方法。
【請求項１０】
前記臓器は、肝臓、腎臓、脾臓、心臓、肺、小腸、及び精巣を含み、
前記組織は、皮膚、尿管、及び血管を含む
ことを特徴とする請求項１乃至９のいずれか１項に記載の脱細胞化担体製造方法。
【請求項１１】
請求項１乃至１０のいずれか１項に記載の脱細胞化担体製造方法により製造される
ことを特徴とする脱細胞化担体。
【請求項１２】
３０％ショ糖液が浸漬されて凍結保存される
ことを特徴とする請求項１１に記載の脱細胞化担体。
【請求項１３】
請求項１１又は１２に記載の脱細胞化担体を生理食塩水で灌流する生理食塩水灌流工程と、
前記生理食塩水灌流工程により灌流された前記脱細胞化担体を培養液で灌流して置き換える置換工程と、
前記置換工程にて前記培養液が灌流された前記脱細胞化担体の動脈から培養細胞を注入する細胞注入工程と、
前記細胞注入工程により前記培養細胞が注入された後に灌流を停止して細胞を前記脱細胞化担体に接着させる細胞接着工程と、
前記細胞接着工程により前記細胞が接着された前記脱細胞化担体に前記培養液の灌流を再開させて培養する灌流培養工程とを含む
ことを特徴とする細胞充填方法。
【請求項１４】
前記臓器又は前記組織が小腸の場合、
動脈と門脈とを接続して灌流を行う
ことを特徴とする請求項１３に記載の細胞充填方法。
【請求項１５】
請求項１１又は１２に記載の脱細胞化担体を脱細胞化組織断片に薄層切片化する薄層切片化工程と、
前記薄層切片化工程により薄層切片化された前記脱細胞化組織断片を洗浄し、培養細胞を播種する播種工程と、
前記播種工程により前記培養細胞が播種された前記脱細胞化組織断片を培養する培養工程とを含む
ことを特徴とする細胞シート作製方法。
【請求項１６】
臓器又は組織から脱細胞化担体を製造するための脱細胞化溶液キットであって、
解凍された前記臓器又は前記組織を灌流する難水溶性界面活性剤含有溶液と、
前記難水溶性界面活性剤含有溶液により灌流された前記臓器又は前記組織を灌流する親水溶性界面活性剤含有溶液とを含む
ことを特徴とする脱細胞化溶液キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、特に脱細胞化担体製造方法、脱細胞化担体、細胞充填方法、細胞シート作製方法、及び脱細胞化溶液キットに関する。
【背景技術】
【０００２】
従来から、臓器や組織から細胞を取り除き、細胞外マトリクスからなる脱細胞化担体を製造するための脱細胞化に関する技術が開発されてきた。このような脱細胞化担体は、細胞が増殖するための足場（スキャフォールド、ｓｃａｆｆｏｌｄ）として生体への移植用に用いられたり、研究用の生体材料として用いられたりしている。
【０００３】
ここで、特許文献１を参照すると、従来の脱細胞化担体として、細胞外マトリックスが外表面を含み、血管樹を含む該細胞外マトリックスが、脱細胞化前の該細胞外マトリックスの形態を実質的に保持し、かつ該外表面が、実質的にインタクトである脱細胞化された哺乳類臓器が記載されている。
特許文献１の脱細胞化担体は、１か所もしくは複数の腔、血管、および／または管において、カニューレを該臓器に挿入することで、カニューレが挿入された臓器を作製する段階；ならびに、カニューレが挿入された該臓器に第１の細胞破壊媒体を、１か所もしくは複数のカニューレ挿入を介して灌流する段階を含む。この細胞破壊媒体は、少なくとも１種類の界面活性剤を含む。また、界面活性剤が、ＳＤＳ、ＰＥＧ、またはＴｒｉｔｏｎ  Ｘからなる群より選択される。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特開２０１５−１６４５４９号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
しかしながら、特許文献１に係る従来の脱細胞化担体は、細胞骨格及び細胞外マトリクスが脆弱になっており、筋肉による動きや腹圧等の生体内環境の影響により、脱細胞化担体は萎縮や破損していた。したがって、実際の医療への応用化が非常に困難であった。また、従来の脱細胞化担体は、臓器または組織内に走行している各脈管系、特に毛細血管など微小血管の構造が破綻しており、細胞充填後の臓器又は組織復元が困難であった。つまり、従来の脱細胞化担体は、性能が低かった。
【０００６】
本発明は、このような状況に鑑みてなされたものであり、上述の課題を解消し、硬度や柔軟性を保っている、高性能の脱細胞化担体の製造方法を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明の脱細胞化担体製造方法は、摘出された臓器又は組織を凍結保存する凍結保存工程と、前記凍結保存工程にて凍結保存された前記臓器又は前記組織を解凍する解凍工程と、前記解凍工程にて解凍された前記臓器又は前記組織を脱細胞化する脱細胞化工程とを含み、前記脱細胞化工程は、解凍された前記臓器又は前記組織を難水溶性界面活性剤含有溶液で灌流する難水溶性界面活性剤灌流工程と、前記難水溶性界面活性剤含有溶液により灌流された前記臓器又は前記組織を親水溶性界面活性剤含有溶液で灌流する親水溶性界面活性剤灌流工程とを含むことを特徴とする。
本発明の脱細胞化担体製造方法は、前記凍結保存工程は、前記臓器又は前記組織を生理食塩水で灌流して脱血する凍結時脱血工程と、前記凍結時脱血工程にて脱血された前記臓器又は前記組織を、凍結保存溶液で灌流する凍結保存溶液灌流工程と、前記凍結保存溶液灌流工程にて灌流された前記臓器又は前記組織を、前記凍結保存溶液で満たして膨化させる膨化工程と、膨化された前記臓器又は前記組織に付着した余剰の前記凍結保存溶液を除去する余剰溶液除去工程と、前記余剰溶液除去工程にて余剰の前記凍結保存溶液を除去された前記臓器又は前記組織を−２０℃以下で凍結する凍結工程とを含むことを特徴とする。
本発明の脱細胞化担体製造方法は、前記凍結保存工程は、前記凍結工程後、脱細胞化工程前の前記臓器又は前記組織を特定期間保存する期間保存工程を更に含むことを特徴とする。
本発明の脱細胞化担体製造方法は、前記凍結保存溶液は、０．０１〜０．３％の過酸化水素水を含む生理食塩水であり、前記凍結時脱血工程の生理食塩水及び／又前記凍結保存溶液は、５００〜４０００Ｕヘパリンを含んでいてもよいことを特徴とする。
本発明の脱細胞化担体製造方法は、前記解凍工程は、凍結保存された前記臓器又は前記組織を低温冷蔵状態で解凍する低温冷蔵解凍工程と、前記低温冷蔵解凍工程にて解凍された前記臓器又は前記組織を、タンパク質分解抑制剤含有の生理食塩水で灌流して脱血する解凍時脱血工程と、前記解凍時脱血工程にて脱血された前記臓器又は前記組織の破損有無を確認する確認工程と、前記確認工程により確認された前記臓器又は前記組織を灌流用容器に接続する接続工程とを含むことを特徴とする。
本発明の脱細胞化担体製造方法は、前記解凍時脱血工程は、前記臓器又は前記組織に含まれる微小血栓を除去する血栓除去工程を含むことを特徴とする。
本発明の脱細胞化担体製造方法は、前記脱細胞化工程は、前記難水溶性界面活性剤含有溶液に含まれる難水溶性界面活性剤は、ＮＰ−４０であり、前記親水溶性界面活性剤含有溶液に含まれる親水溶性界面活性剤は、ＳＤＳであることを特徴とする。
本発明の脱細胞化担体製造方法は、前記脱細胞化工程は、前記親水溶性界面活性剤灌流工程にて灌流された前記臓器又は前記組織を洗浄後、安定化する安定化工程を含むことを特徴とする。
本発明の脱細胞化担体製造方法は、前記安定化工程は、前記臓器又は前記組織を０．１〜３％ホルムアルデヒド溶液で灌流することを特徴とする。
本発明の脱細胞化担体製造方法は、前記臓器は、肝臓、腎臓、脾臓、心臓、肺、小腸、及び精巣を含み、前記組織は、皮膚、尿管、及び血管を含むことを特徴とする。
本発明の脱細胞化担体は、前記脱細胞化担体製造方法により製造されることを特徴とする。
本発明の脱細胞化担体は、３０％ショ糖液が浸漬されて凍結保存されることを特徴とする。
本発明の細胞充填方法は、前記脱細胞化担体を生理食塩水で灌流する生理食塩水灌流工程と、前記生理食塩水灌流工程により灌流された前記脱細胞化担体を培養液で灌流して置き換える置換工程と、前記置換工程にて前記培養液が灌流された前記脱細胞化担体の動脈から培養細胞を注入する細胞注入工程と、前記細胞注入工程により前記培養細胞が注入された後に灌流を停止して細胞を前記脱細胞化担体に接着させる細胞接着工程と、前記細胞接着工程により前記細胞が接着された前記脱細胞化担体に前記培養液の灌流を再開させて培養する灌流培養工程とを含むことを特徴とする。
本発明の細胞充填方法は、前記臓器又は前記組織が小腸の場合、動脈と門脈とを接続して灌流を行うことを特徴とする。
本発明の細胞シート作製方法は、前記脱細胞化担体を脱細胞化組織断片に薄層切片化する薄層切片化工程と、前記薄層切片化工程により薄層切片化された前記脱細胞化組織断片を洗浄し、培養細胞を播種する播種工程と、前記播種工程により前記培養細胞が播種された前記脱細胞化組織断片を培養する培養工程とを含むことを特徴とする。
本発明の脱細胞化溶液キットは、臓器又は組織から脱細胞化担体を製造するための脱細胞化溶液キットであって、解凍された前記臓器又は前記組織を灌流する難水溶性界面活性剤含有溶液と、前記難水溶性界面活性剤含有溶液により灌流された前記臓器又は前記組織を灌流する親水溶性界面活性剤含有溶液とを含むことを特徴とする。
【発明の効果】
【０００８】
本発明によれば、摘出された臓器又は組織を凍結保存し、凍結保存された臓器又は組織を解凍し、解凍された臓器又は組織を難水溶性界面活性剤含有溶液で灌流し、その後、親水溶性界面活性剤含有溶液で灌流することで、細胞骨格及び細胞外マトリクスの硬度や柔軟性を保つことが可能な、高性能の脱細胞化担体の製造方法を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】本発明の実施例に係る肝臓の難水溶性界面活性剤灌流工程の写真である。
【図２】本発明の実施例に係る肝臓の親水溶性界面活性剤灌流工程の写真である。
【図３】本発明の実施例に係る腎臓の親水溶性界面活性剤灌流工程の写真である。
【図４】本発明の実施例に係る脾臓の解凍時脱血工程及び親水溶性界面活性剤灌流工程の写真である。
【図５】本発明の実施例に係る心臓の親水溶性界面活性剤灌流工程の写真である。
【図６】本発明の実施例に係る肺の親水溶性界面活性剤灌流工程の写真である。
【図７Ａ】本発明の実施例に係る心臓の脱細胞化組織断片の細胞生着性を確認した写真である。
【図７Ｂ】本発明の実施例に係る腎臓の脱細胞化組織断片の細胞生着性を確認した写真である。
【図７Ｃ】本発明の実施例に係る肺の脱細胞化組織断片の細胞生着性を確認した写真である。
【図７Ｄ】本発明の実施例に係る肝臓の脱細胞化組織断片について細胞生着性を確認した写真である。
【図８Ａ】本発明の実施例に係る腎臓及び脾臓の脱細胞化担体についての電子顕微鏡写真である。
【図８Ｂ】本発明の実施例に係る心臓及び肺の脱細胞化担体についての電子顕微鏡写真である。
【図８Ｃ】本発明の実施例に係る肝臓及び小腸の脱細胞化担体についての電子顕微鏡写真である。
【図９】本発明の実施例に係る細胞外基質に関した解析（免疫染色）の写真である。
【図１０】本発明の実施例に係る脱細胞化担体（肝臓）の移植実験の写真である。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
＜実施の形態＞
近年、脱細胞化担体に関する技術報開発が行われており、国内外で様々な技術が開発されている。しかしながら、従来の脱細胞化担体製造方法は、脱細胞化完了までの時間が、例えばラットで２４〜７２時間かかっていた。また、洗浄工程を含めると更に３日から７日間の日数を必要としていた。このため、脱細胞化の期間内に細胞外マトリクスの破綻や腐敗等が進行する可能性が高かった。つまり、従来の脱細胞化担体の製造方法では、細胞骨格及び細胞外マトリクスが脆弱になっていた。よって、移植時に行う血管吻合の工程が非常に困難になっていた。
これに対して、本発明者らは鋭意実験と試験を行い、摘出された臓器又は組織を凍結保存することで、高品質の脱細胞化担体を製造しやすくなることを見いだした。更に、試行錯誤を繰り返したところ、この凍結保存された臓器又は組織を解凍し、解凍された臓器又は組織を難水溶性界面活性剤含有溶液で灌流し、その後、親水溶性界面活性剤含有溶液で灌流するようすると良いことを見いだし、発明を完成するに至った。本実施形態の脱細胞化担体製造方法により、細胞骨格及び細胞外マトリクスの硬度や柔軟性を高度に保ちつつ、血管吻合が容易となる、高性能な脱細胞化担体を製造できる。
【００１１】
以下、本発明の実施の形態に係る脱細胞化担体製造方法の構成及び効果について、具体的且つ詳細に説明する。
【００１２】
本発明の実施の形態に係る脱細胞化担体製造方法は、摘出された臓器又は組織を凍結保存する凍結保存工程と、凍結保存工程にて凍結保存された臓器又は組織を解凍する解凍工程と、解凍工程にて解凍された臓器又は組織を脱細胞化する脱細胞化工程とを含むことを特徴とする。
このように構成することで、脱細胞化担体を従来技術より短時間で製造することが可能となる。また、脱細胞化担体の細胞骨格及び細胞外マトリクスの硬度や柔軟性を高度に保つことが可能となる。よって、高品質の脱細胞化担体を製造することができる。製造された脱細胞化担体は、臓器構造を用いた高度な実験用に用いることが可能となる。また、製造された脱細胞化担体は、血管吻合が容易となり、皮膚、小腸、血管及び心臓弁等の医療用部材として、臨床応用することが可能となる。また、製造された脱細胞化担体が再生医療用材料、足場材料（ｓｃａｆｆｏｌｄ）として用いることが可能となる。
さらに、本実施形態の脱細胞化担体の製造方法で製造された脱細胞化担体は、後述するように、ｉＰＳ細胞、ＥＳ細胞等から分化誘導した機能細胞の生着及び機能発現した臓器作製を可能とすることができる。このため、再生医療分野での応用が期待できる。
【００１３】
また、本実施形態の脱細胞化担体製造方法にて製造された脱細胞化担体は細胞外マトリックスの消失が最小限となる。これにより、後述する実施例の免疫染色及び電子顕微鏡画像にて示すように、細部の構造を高度に維持した脱細胞化担体となる。
また、本発明で作製された脱細胞化担体は、Ｄｏｕｂｌｅ  ｓｔｒａｎｄｅｄ  ＤＮＡ（以下、「ｄｓＤＮＡ」という。）及び糖鎖構造が消失するため、抗原性がほとんどなくなる。このため、生体応用が容易となる。
【００１４】
また、従来の脱細胞化担体製造方法は「臓器特異的」であるため、脱細胞化を行う臓器や組織にプロトコル及び脱細胞化溶液を合わせる必要があった。
これに対して、本発明の実施の形態に係る脱細胞化担体製造方法は、臓器は、肝臓、腎臓、脾臓、心臓、肺、小腸、及び精巣を含み、組織は、皮膚、尿管、及び血管を含むことを特徴とする。
つまり、本実施形態の脱細胞化担体製造方法においては、掃出した臓器である肝臓、腎臓、牌臓、心臓、肺、小腸、並びに精巣、及び組織である皮膚、尿管、並びに血管等を同一組成液及び同一プロトコルにて脱細胞化が可能であり、且つ、短時間に処理可能となる。
【００１５】
また、本発明の実施の形態に係る脱細胞化担体製造方法において、凍結保存工程は、臓器又は組織を生理食塩水で灌流して脱血する凍結時脱血工程と、凍結時脱血工程にて脱血された臓器又は組織を、凍結保存溶液で灌流する凍結保存溶液灌流工程と、凍結保存溶液灌流工程にて灌流された臓器又は組織を、凍結保存溶液で満たして膨化させる膨化工程と、膨化された臓器又は組織に付着した余剰の凍結保存溶液を除去する余剰溶液除去工程と、余剰溶液除去工程にて余剰の凍結保存溶液を除去された臓器又は組織を−２０℃以下で凍結する凍結工程とを含むことを特徴とする。
このように構成し、凍結保存溶液で灌流する凍結保存溶液灌流工程で、脱血し、凍結保存溶液で灌流し、膨化させた後に臓器又は組織の凍結を行い、後の解凍工程で融解を行うことで、臓器又は組織を構成している細胞膜に微細な穴を開口させることができる。このため、細胞質内への脱細胞化液の浸透性が高まり、脱細胞化の時間短縮が可能となる。
具体的には、本実施形態の脱細胞化担体製造方法では、特許文献１に記載の従来技術と比べて脱細胞化に必要な時間が約２０％にまで短縮される。また、上述したように、対象臓器に依存せず、同一組成液で処理可能となる。
【００１６】
また、従来の脱細胞化担体製造方法では、臓器を摘出直後に脱細胞化を行っていた。つまり、摘出された臓器の保存期間に限界があった。
これに対して、本実施形態の脱細胞化担体製造方法では、凍結保存工程において、凍結工程後、脱細胞化工程前の臓器又は組織を特定期間保存する期間保存工程を更に含むことを特徴とする。
このように、脱細胞化用臓器を一旦凍結することから、臓器又は組織のストックが可能となる。この特定期間としては、数時間〜数年単位で任意に設定可能であり、霜取り加熱を行わない業務用医療用のフリーザーでは、ほぼ劣化させずに保存しておくことが可能である。つまり、脱細胞化用臓器を必要に応じて解凍し、脱細胞化担体を製造可能となる。
【００１７】
また、本発明の実施の形態に係る脱細胞化担体製造方法において、凍結保存溶液は、０．０１〜０．３重量％の過酸化水素水、５００〜４０００Ｕヘパリンを含む生理食塩水であることを特徴とする。
このように構成し、凍結保存溶液として、０．０１〜０．３重量％の過酸化水素水、５００〜４０００Ｕヘパリンを含む生理食塩水を用いることで、細胞骨格及び細胞外マトリクスに与えるダメージを最小限にしつつ、界面活性剤の浸透性を高め、細胞質除去に最適な微細穴を開口させることが可能になる。つまり、過酸化水素水を含む生理食塩水を脱細胞化工程で用い、細胞膜に微小な穴を開けることにより、各界面活性剤の流入性が向上し、核や各種構造物等の細胞質内物質の除去性が向上する。このため、上述のように、後の脱細胞化工程で、細胞骨格及び細胞外マトリクスが脱細胞化溶液に触れる時間が短くなる。よって、脱細胞化担体の製造時間の短縮が可能となる。また、アミノ酸の劣化や変性を抑制することが可能となる。
【００１８】
本発明の実施の形態に係る脱細胞化担体製造方法は、解凍工程は、凍結保存された臓器又は組織を低温冷蔵状態で解凍する低温冷蔵解凍工程と、低温冷蔵解凍工程にて解凍された臓器又は組織を、タンパク質分解抑制剤含有の生理食塩水で灌流して脱血する解凍時脱血工程と、解凍時脱血工程にて脱血された臓器又は組織の破損有無を確認する確認工程と、確認工程により確認された臓器又は組織を灌流用容器に接続する接続工程とを含むことを特徴とする。
ここで、低温冷蔵状態としては、２℃〜１０℃程度であってもよい。
このような凍結保存工程後の解凍工程により、臓器又は組織を構成している細胞膜に微細な穴から、適宜、「ドリップ」を生じさせて、細胞質を容易に除去可能となる。これにより、細胞質内に脱細胞化液の浸透性が高まり、脱細胞化の時間短縮が可能となる。よって、上述のように、脱細胞化の時間短縮ができ、細胞骨格や細胞外マトリックスのアミノ酸の劣化や変性等の抑制を可能とすることができる。
【００１９】
また、従来の脱細胞化担体製造方法では、血栓除去をする手段がなかった。このため、血流がある拍動下の状態で臓器を摘出する必要があった。
これに対して、本発明の実施の形態に係る脱細胞化担体製造方法は、解凍時脱血工程において、臓器又は組織に含まれる微小血栓を除去する血栓除去工程を含むことを特徴とする。
このように構成することで、微小血栓が形成されていても脱細胞化が可能となる。つまり、本実施形態の脱細胞化担体製造方法では、凍結工程後に解凍工程を行う凍結融解の際に、十分な灌流による脱血を行うことで、微小血栓の存在下でも脱細胞が可能となる。より具体的には、本実施形態の脱細胞化担体製造方法は、対象臓器や組織が腐敗さえしていなければ、脱細胞化担体の製造が可能となる。
【００２０】
また、本実施形態の脱細胞化担体製造方法は、脱細胞化工程は、難水溶性界面活性剤含有溶液で解凍された臓器又は組織を灌流する難水溶性界面活性剤灌流工程と、難水溶性界面活性剤含有溶液により灌流された臓器又は組織を親水溶性界面活性剤含有用液で灌流する親水溶性界面活性剤灌流工程とを含む。
ここで、本実施形態の難水溶性界面活性剤含有溶液に含まれる難水溶性界面活性剤としては、水に溶けたときイオン化しない親水基を備える界面活性剤で、水の硬度や電解質の影響を受けにくい非イオン界面活性剤を用いることが好適である。この非イオン界面活性剤としては、トリトンＸ−１００、ＮＰ−４０等のポリオキシエチレンフェニルエーテル系の界面活性剤、ＤＤＭ、ジギトニン、ツイン２０、ツイン８０等を用いることが可能である。本実施形態においては、特にＮＰ−４０を用いることが好適である。また、この際、ＮＰ−４０は、必ずしもＮＰ−４０（ｏｃｔｙｌ−ｐｈｅｎｏｘｙ−ｐｏｌｙｅｔｈｏｘｙ−ｅｔｈａｎｏｌ）そのものではなく、各種ＮＰ−４０代替品、ノニデット（ＴＭ）Ｐ−４０等を用いることが可能である。
このように構成することで、脱細胞化工程において、細胞質内の物質による濃度変化が起こりにくくなり、細胞外マトリクス等を残存させた上で、最初に細胞質内の物質を除去することが可能となる。
【００２１】
また、本実施形態の親水溶性界面活性剤含有用液に含まれる親水溶性界面活性剤としては、水に溶けたときに、疎水基のついている部分がマイナス（陰）イオンに電離するアニオン界面活性剤（陰イオン界面活性剤）を好適に用いることが可能である。本実施形態においては、アルキル硫酸エステル塩類を用いてもよい。このアルキル硫酸エステル塩としては、特に、ＳＤＳ（Ｓｏｄｉｕｍ  Ｄｏｄｅｃｙｌ  Ｓｕｌｆａｔｅ）を用いることが好適である。
このように構成することで、脱細胞化工程において、難水性界面活性剤（ＮＰ−４０）含有溶液での処理後、これを親水性界面活性剤（ＳＤＳ）含有溶液で除去することで、その後の水洗浄時聞を従来の半分に短縮することができる。つまり、特許文献１に記載の従来技術等では界面活性剤の除去に水のみを使用しているが、本実施形態のように界面括性剤を除去するために、別の界面活性剤を用いることで、洗浄時間を少なくとも５０％短縮することが可能となる。
【００２２】
また、本発明の実施の形態に係る脱細胞化溶液キットは、臓器又は組織から脱細胞化担体を製造するための脱細胞化溶液であって、解凍された臓器又は組織を灌流する難水溶性界面活性剤含有溶液と、難水溶性界面活性剤含有溶液により灌流された臓器又は組織を灌流する親水溶性界面活性剤含有溶液とを含むことを特徴とする。
このように構成し、難水溶性界面活性剤と親水溶性界面活性剤含有溶液とは、脱細胞化溶液キットとして用意しておいてもよい。また、難水溶性界面活性剤と親水溶性界面活性剤含有溶液とは、用時調製してもよい。
【００２３】
本発明の実施の形態に係る脱細胞化担体製造方法は、脱細胞化工程は、親水溶性界面活性剤灌流工程にて灌流された臓器又は組織を洗浄後、安定化する安定化工程を含むことを特徴とする。
また、この安定化工程は、親水溶性界面活性剤灌流工程にて灌流された臓器又は組織を０．１〜３％ホルムアルデヒド溶液で灌流することを特徴とする。この際、本実施形態の安定化工程で用いるホルムアルデヒド溶液は、０．５〜１％であることが特に好適である。
このように構成し、親水溶性界面活性剤灌流工程の灌流後に０．１〜３％ホルムアルデヒド溶液を、０．５〜２時間灌流することにより、細胞骨格及び細胞外マトリクスの性質を維持しつつ、製造された脱細胞化担体の硬度を担保することができる。これにより、移植時における血管吻合の作業が容易になる。結果として、下記で説明するように、脱細胞化担体を細胞充填する足場材料として用いたり、再生医療用材料として用いたりするスキャフォールド治療への適用がしやすくなる。
なお、過酸化水素水を含む生理食塩水を、脱細胞化工程で用いてもよい。この場合も、細胞膜に微小な穴を開けることにより、各界面活性剤の流入性や細胞質内物の除去性が向上し、脱細胞化担体作製時間の短縮が可能となる。
【００２４】
また、本発明の実施の形態に係る細胞充填方法は、脱細胞化担体を生理食塩水で灌流後に培養液で灌流する生理食塩水灌流工程と、灌流工程により灌流された脱細胞化担体を置き換える置換工程と、置換工程にて培養液が灌流された脱細胞化担体の動脈から培養細胞を注入する細胞注入工程と、細胞注入工程により培養細胞が注入された後に灌流を停止して細胞を脱細胞化担体に接着させる細胞接着工程と、細胞接着工程により細胞が接着された脱細胞化担体に培養液の灌流を再開させて培養する灌流培養工程とを含むことを特徴とする。
このように構成することで、ｉＰＳ細胞、ＥＳ細胞、又はその他の幹細胞（以下、「ｉＰＳ細胞等」という。）から分化誘導された機能細胞、初代継体細胞等の培養細胞を脱細胞化担体に充填することができる。また、後述する実施例で示すように、細胞を充填した脱細胞化担体は、充填された培養細胞が移植後も生着可能となる。これは、上述したように、本実施形態の脱細胞化担体は抗原性が限りなく「０」であり、且つ、細胞外マトリックスの消失が少ないためであると考えられる。このため、本実施形態の細胞を充填した脱細胞化担体を、慢性的に問題視されている移植用臓器の不足を解決するために用いることが機体できる。
また、上述の安定化工程により脱細胞化担体の硬度が担保されることで、充填された培養細胞が生着した臓器としてより機能しやすくなる。
【００２５】
また、本発明の実施の形態に係る細胞充填方法は、主に脊椎動物を対象としている。この脊椎動物は特に限定されるものではなく、例えば、ヒト、家畜動物種、野生動物を含む。ここで、本実施形態の細胞充填方法は、実験的に、少なくともブタ、ラット、マウスの各臓器の脱細胞化に成功している。このため、本発明の実施の形態に係る脱細胞化担体製造方法は、ヒトの治療の他に、動物の治療、家畜の治療、異種間移植等の対象とすることができる。また、ペット産業においても適用可能となる。
【００２６】
また、本発明の実施の形態に係る細胞充填方法は、臓器又は組織が小腸の場合、動脈と門脈とを接続して灌流を行うことを特徴とする。
このように構成することで、細胞を充填した脱細胞化担体を機能する小腸として使用し、移植する可能性を高めることができる。これは、本実施形態の脱細胞化担体は、後述する実施例で示すように、小腸の絨毛部分及び筋層部分の構造を高度に残しているため、小腸の構造に合わせた配置で培養細胞が充填されるためである。
このため、ｉＰＳ細胞等から分化誘導して各種器官を再生する技術により、絨毛部分及び筋層部分に分化された細胞の混合物を灌流して、絨毛部分及び筋層部分で別々に定着させることが期待できる。
【００２７】
また、本発明の実施の形態に係る細胞シート作製方法は、脱細胞化担体を脱細胞化組織断片に薄層切片化する薄層切片化工程と、薄層切片化工程により薄層切片化された脱細胞化組織断片を洗浄し、培養細胞を播種する播種工程と、播種工程により培養細胞が播種された脱細胞化組織断片を培養する培養工程とを含むことを特徴とする。
ここで、この薄層切片の厚みは０．１〜５ｍｍ程度であることが好適である。また、培養細胞は、０．５〜１０×１０5個程度の細胞を、複数回繰り返して播種してもよい。
このように構成し、本実施形態で製造された脱細胞化担体の１ｍｍ厚の薄層切片に細胞を播種した結果、従来技術より非常に短く、培養開始３０分〜１時間に細胞接着していることを、予備実験で確認している。これは、脱細胞化の処理時間の短縮によって細胞骨格や細胞外マトリックスのアミノ酸の劣化や変性等の抑制を可能とした結果、得られた脱細胞化担体シートに播種した細胞が従来よりも短時間で細胞接着したものと考えられる。
この細胞接着した脱細胞化担体を細胞シートとして用いることが可能となる。つまり、ｉＰＳ細胞やＥＳ細胞から分化誘導した機能細胞の正着及び機能発現した臓器の作成が可能となる。
なお、これらの細胞シートは、培養細胞を播種した後、一晩（オーバーナイト）程度インキュベートしてから用いてもよい。
【００２８】
また、本発明の実施の形態に係る脱細胞化担体は、脱細胞化担体製造方法により製造されることを特徴とする。
このように構成した脱細胞化担体は、上述のように、細胞接着に優れ、又、細胞を充填した脱細胞化臓器は移植後も充填細胞が生着可能となる。すなわち、脱細胞化担体として高品質である。
【００２９】
また、本実施形態の脱細胞化担体は、３０％ショ糖液が浸漬されて凍結保存されることを特徴とする。
このように構成することで、本実施形態の脱細胞化担体は容易に凍結保存することが可能となる。また、本実施形態の脱細胞化担体の品質を保ちつつ、特殊な方法を用いずに使用可能状態とすることができる。このため、脱細胞化担体の応用が容易となる。
【００３０】
なお、上述した各工程は、同時並行的に実行可能な工程を含んでいてもよく、工程の前後が一部変更されてもよく、当業者により本発明の趣旨を逸脱しない範囲での最適化が行われてもよい。
【００３１】
また、本発明の実施の形態に係る脱細胞化担体製造方法は、他の組成物を用いた工程等と併用することも可能である。
【００３２】
また、本発明の実施の形態において、脱細胞化担体を治療用に用いた場合、疾患が改善又は軽減される期間は特に限定されないが、一時的な改善又は軽減であってもよいし、一定期間の改善又は軽減であってもよい。
【実施例】
【００３３】
以下で、本発明の実施の形態に係る脱細胞化担体製造方法について、実験を基にして、実施例としてさらに具体的に説明する。しかしながら、この実施例は一例にすぎず、これに限定されるものではない。
【００３４】
〔試薬〕
本実施例で使用した試薬及び製造元を以下に記載する：
ＮＰ−４０  Ｓｕｂｓｔｉｔｕｔｅ（和光純薬工業株式会社製）、１０％ＳＤＳ溶液（和光純薬工業株式会社製）、生理食塩液（大塚製薬工場株式会社製、以下、「生食」という。）、ヘパリンナトリウム（ニプロ株式会社製）、過酸化水素（和光純薬工業株式会社製）、注射用水（大塚製薬工場株式会社製）、抗生物質−抗真菌剤混合溶液（Ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃ−Ａｎｔｉｍｙｃｏｔｉｃ，１００Ｘ、Ｇｉｂｃｏ社製）、ＭＥＭａｌｐｈａ（Ｇｉｂｃｏ社製）、ＦＢＳ（Ｆｅｔａｌ  Ｂｏｖｉｎｅ  Ｓｅｒｕｍ、Ｇｉｂｃｏ社製）、ＰＢＳ（ＴａＫａＲａＢｉｏ社製）、タンパク質分解抑制剤（ＰｒｏｔｅｏＧｕａｒｄ  ＥＤＴＡ−Ｆｒｅｅ  Ｐｒｏｔｅａｓｅ  Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ  Ｃｏｃｔａｉｌ、Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社製）、セファメジンナトリウム注射液（アステラス製薬株式会社社製）、スクロース（和光純薬工業株式会社社製）、１０％中性緩衝ホルマリン又はホルムアルデヒド（和光純薬工業株式会社製）。
【００３５】
〔器具〕
ガーゼ、ステンレス製クリップ、モスキート鉗子、鑷子、及び剪刀を手術器具等として用いた。これらの手術器具等は、使用前にオートクレーブで１２１℃１５分処理の滅菌処理した。
タッパ（処置用）及び密閉式パックの器具等は、使用前にＥＯＧ滅菌した。
【００３６】
以下の器具等は、滅菌済みの購入品を用いた：汎用吸入用カテーテル、アスピレーター、コネクティングチューブ、ポリプロピレン製ディスポーザブルシリンジ、注射針（２６Ｇ）、６ウェルプレート。
【００３７】
〔試薬の調製〕
本実施例では、脱細胞化工程における難水溶性界面活性剤灌流工程にて、難水溶性界面活性剤として、ＮＰ−４０を用いた。本実施例において、このＮＰ−４０を用いた難水溶性界面活性剤含有溶液を、以下「Ａ液」という。具体的には、本実施例では、注射用水又は精製水１９８０ｍＬにＮＰ−４０  Ｓｕｂｓｔｉｔｕｔｅを２０ｍＬ加え、泡立たないように溶解することで、Ａ液として用いた。
また、脱細胞化工程における親水溶性界面活性剤灌流工程にて、親水溶性界面活性剤として、ＳＤＳを用いた。本実施例において、このＳＤＳを用いた親水溶性界面活性剤含有溶液を、以下、「Ｂ液」という。具体的には、本実施例では、注射用水又は精製水１８００ｍＬに１０％ＳＤＳ溶液を２００ｍＬ加え、１％ＳＤＳ溶液となるよう泡立たないように溶解して、Ｂ液として用いた。
また、その他の溶液については、試薬のマニュアルに記載の容量に従って調製した。
【００３８】
＜脱細胞化担体製造の処理例＞
以下、本実施例に係る脱細胞化担体製造方法の各工程における処理の詳細について説明する。
【００３９】
〔凍結保存工程〕
まず、本実施例における、摘出された臓器又は組織を凍結保存する凍結保存工程について説明する。
本実施例の凍結保存工程では、以下の例で示すように、凍結時脱血工程、凍結保存溶液灌流工程、膨化工程、余剰溶液除去工程、及び凍結工程を実行した。
【００４０】
（凍結時脱血工程）
本実施例の凍結時脱血工程では、灌流固定用カテーテルを留置し、臓器又は組織をヘパリン加生理食塩液（２０００Ｕｎｉｔ（Ｕ）／５００ｍＬ、以下、「ヘパリン生食」という。）で灌流して脱血した。
【００４１】
このため、まず、臓器又は組織に灌流固定用カテーテルを留置した。具体的には、臓器又は組織の血管を露出剥離し、メジャーで当該血管外径を測定した。次に、血管の外径に適したカテーテルを選択した。このカテーテルとしては、血管外形に対応して、輸血用延長チューブ若しくはＩＶＨカテーテルを選択した。この血管外径と、使用したカテーテルと、縫合糸とは、下記のように選択した：
血管外径              カテーテル                縫合糸
＞４．０ｍｍ、左心耳    輸血用延長チューブ        ３−０絹糸
３．０〜４．０ｍｍ    輸血用延長チューブ        ３−０絹糸
２．０〜２．９ｍｍ    １４ＧＩＶＨカテーテル    ４−０ナイロン糸
１．５〜２．０ｍｍ    １６ＧＩＶＨカテーテル    ４−０ナイロン糸
１．０〜１．４ｍｍ    １８ＧＩＶＨカテーテル    ５−０ナイロン糸
【００４２】
次に、選択したカテーテルに三方活栓と２０ｍＬシリンジ（テルモ株式会社）を取り付け、ヘパリン生食で満たし、臓器又は組織のエア抜きをした。次に、カテーテルを、三方活栓連結部から４０ｃｍの位置で切断した。次に、血管中枢側を結紮縫合した。次に、血管中枢側にメッツェンで切り込みを入れ、カテーテルを挿入した。次に、ブルドッグ鉗子で、血管とカテーテルを簡易固定した。そして、カテーテル挿入部位の２ヵ所及びカテーテルの１箇所で、結紮固定した。
【００４３】
次に、実際に、臓器又は組織への脱血のための灌流を行った。
具体的には、各臓器又は組織の動脈及び静脈にカテーテルを約１ｃｍ挿入、留置した。この上で、ヘパリン生食を動脈側カテーテルから２００ｍＬ以上ポンピング注入し、静脈側カテーテルから血液が排出されることを確認した。白く色が抜けてきていることを確認した。
【００４４】
（凍結保存溶液灌流工程）
次に、凍結保存溶液灌流工程では、上述の凍結時脱血工程にて脱血された臓器又は組織を、凍結保存溶液で灌流した。
本実施例の凍結保存溶液は、生理食塩水に０．１％過酸化水素に調整した液を用いた。また、静脈側の三方活栓を閉にし、凍結保存溶液を動脈側より注入した。
【００４５】
（膨化工程）
膨化工程では、凍結保存溶液で灌流した凍結保存溶液灌流工程にて灌流された臓器又は組織を、凍結保存溶液で満たして膨化させた。
具体的には、凍結保存溶液が注入されて臓器又は組織内が膨化（全体的に張った状態）になったことを確認し、動脈側の三方活栓を閉にした。
【００４６】
（余剰溶液除去工程）
余剰溶液除去工程では、膨化された臓器又は組織に付着した余剰の凍結保存溶液を除去した。
具体的には、臓器又は組織の表面に付着した余剰水分をペーパータオルで除去した。
【００４７】
（凍結工程）
凍結工程では、余剰溶液除去工程にて余剰の凍結保存溶液を除去された臓器又は組織を−２０℃以下で凍結した。
具体的には、ジップロック等の容器内に臓器又は組織を移し、−２０℃又は−８０℃にて凍結保管した。
【００４８】
〔解凍工程及び脱細胞化工程〕
ここで、体重１０ｋｇ前後の実験用豚から摘出された肝臓、腎臓、心臓、脾臓、肺のそれぞれについて、上述の凍結保存工程を経て、解凍工程及び脱細胞化工程を実行した例について下記で説明する。
なお、下記の臓器の各灌流時間は目安であり、目視による確認を優先した。
【００４９】
［肝臓］
（低温冷蔵解凍工程）
凍結保存された臓器を低温冷蔵状態で解凍した。具体的には、凍結された臓器を２４±１時間、４℃で解凍した。臓器が完全に解凍していることを確認した。
【００５０】
（解凍時脱血工程、確認工程、接続工程）
次に、低温冷蔵解凍工程にて解凍された臓器を、タンパク質分解抑制剤含有の生理食塩水で灌流して脱血した。
具体的には、まず、肝臓に生食をかけて、付着、残存している血餅等を洗い落とした。
次に、門脈カテーテル及び肝動脈カテーテルから、ディスポーザブルシリンジを用いて、生食（各５０ｍＬ×５）を注入し、抵抗や漏れがなく、肝静脈から排出されることを確認した。最初のポンピングでは抵抗を感じたものの、この時点で無理に押し込むと血管や皮膜が破裂する可能性があるので注意した。次第に抵抗がなくなり、スムーズに生食をポンピング注入できることを確認した。
次に、門脈カテーテルの三方活栓に自動灌流装置の注入チューブを接続し、更に門脈カテーテルの三方活栓と肝動脈カテーテルの三方活栓を、コネクターで結合した。
タンパク質分解抑制剤をマニュアル記載容量含有させた生食（以下、「含タンパク質分解抑制剤生食」という。）を調製し、滅菌パックに２０００ｍＬを入れ、滅菌ガーゼを上部に取り付けた。肝臓が１ｃｍ程生食に浸かるようにガーゼに乗せた。この際、臓器が液面に浸りすぎると、浮遊して灌流液中で動いてしまうので注意した。また、臓器全体がガーゼに乗っているよう注意した。また、肝動脈、門脈共に血管が肝門部から出て、折れ曲がっていないことを確認した。
次に、肝臓を１０℃の冷蔵庫又は１０℃の環境下に移動した。ここで、４℃に設定した場合、後の工程で灌流液が析出してくる可能性があるので注意した。また、室温だと自己融解によるタンパク分解酵素産生により、脱細胞化担体の構築傷害が起こる可能性があるので避けた。
次に、肝動脈の三方活栓を閉鎖し、門脈のみ三方活栓を開放にして、自動灌流装置を用いて含タンパク質分解抑制剤生食を６０〜８０ｍＬ／分で１５分灌流した。
次に、門脈の三方活栓を閉鎖し、肝動脈のみ三方活栓を開放にして、自動灌流装置を用いて含タンパク質分解抑制剤生食を６０〜８０ｍＬ／分で１５分灌流した。
次に、門脈及び肝動脈の三方活栓を両方開放にし、自動灌流装置を用いて含タンパク質分解抑制剤生食を８０ｍＬ／分で３０分×２回灌流した。生食が赤く濁った場合、再度１５分灌流した。
つまり、このように生食が赤く濁らなくなるまで灌流することで、解凍時脱血工程における血栓除去工程として、臓器又は組織から微小血栓を除去することが可能であった。これは以下の他の臓器でも同様である。
【００５１】
最終的な確認工程として、解凍時脱血工程にて脱血された肝臓の破損有無を確認した。この際、亀裂又は穿孔が生じた臓器又は組織は、脱細胞化担体製造から除外した。
なお、この確認工程は、他の臓器でも同様の処理を行った。
【００５２】
（難水溶性界面活性剤灌流工程）
ここで、自動灌流装置を停止し、Ａ液に置換した。そして、自動灌流装置を用いてＡ液を肝動脈及び門脈の順に６０ｍＬ／分で１５〜３０分灌流し、その後両方開放にし、８０〜１２０ｍＬ／分で２０分×３回灌流した。この際、Ａ液に置換した直後は２０ｍＬ／分で様子をみながら灌流し、灌流液がスムーズに流れることを確認し、徐々に６０ｍＬ／分に上げていった。
図１（ａ）（ｂ）によると、灌流後しばらくしたと血管周囲が半透明状に変化してきた。ここで、図１（ａ）は灌流直後、図１（ｂ）は３回目の灌流の際の写真を示す。
図１（ｃ）によると、その後、肝臓の辺縁部も少し半透明状に変化してくることを確認した。
【００５３】
（親水溶性界面活性剤灌流工程）
その後、自動灌流装置を停止し、Ｂ液に置換した。そして、自動灌流装置を用いてＢ液を肝動脈及び門脈の順に６０ｍＬ／分で１５〜３０分灌流し、その後両方開放にし、８０〜１２０ｍＬ／分で２０分×６回灌流した。この際、Ｂ液に交換した直後は難水溶性界面活性剤灌流工程と同様に２０ｍＬ／分で様子をみながら灌流し、灌流液がスムーズに流れることを確認し、徐々に６０ｍＬ／分に上げていった。
図２（ａ）（ｂ）によると、Ｂ液の初回灌流では、劇的に肝臓が透明になってくるため、灌流後、液がすぐ濁ってくる。図２（ａ）は初回灌流の前、図２（ｂ）は初回灌流後の写真を示す。
図２（ｃ）によると、この灌流完了後に、完全に肝臓が半透明状の脱細胞化組織になっていることを確認した。
【００５４】
次に、灌流装置を一時的に外し、別途用意したＢ液で肝動脈カテーテル及び門脈から５００ｍＬ×３回灌流した。３回目の灌流液の一部を回収し、吸光度計を用いてｄｓＤＮＡを測定し、０．５ｎｇ／μＬ以下であることを確認した。この値を超える場合は、自動灌流装置を用いてＢ液を８０〜１２０ｍＬ／分で３０分追加実行し、再度同様の濃度測定を行った。また、Ｂ液の総灌流時間が６時間を越える場合は、この濃度測定を除外した。
次に、Ｂ液を全て吸引し、精製水（注射用水）に置換した。具体的には、自動灌流装置を用いて精製水を肝動脈及び門脈の順に６０ｍＬ／分で１５〜３０分灌流し、その後両方開放にし、８０〜１２０ｍＬ／分で１５分×８回、３０分×６回、その後は（１２０分×４回／日）×６日間灌流した。この際、脱細胞化臓器の中心部分は微細な網目構造となっているため、洗浄灌流には回数だけでなく十分な時間をかけた。
その後、最終灌流液（精製水）を採取し、吸光度計を用いてｄｓＤＮＡを測定し、ｄｓＤＮＡが０．０ｎｇ／μＬ（検出限界以下）であることを確認し、更にＰＣＲによる細胞残存の有無を確認した。
【００５５】
［腎臓］
（低温冷蔵解凍工程）
凍結保存された臓器を２４±１時間、４℃で解凍した。臓器が完全に解凍していることを確認してから、以下の処理を行った。
【００５６】
（解凍時脱血工程、確認工程、接続工程）
次に、腎臓に生食をかけて、付着、残存している血餅等を洗い落とした。
次に、腎動脈カテーテルから、ディスポーザブルシリンジを用いて、生食（５０ｍＬ×３）を注入し、抵抗や漏れがなく、肝静脈から排出されることを確認した。最初のポンピングでは抵抗を感じたものの、この時点で無理に押し込むと血管や皮膜が破裂する可能性があるので注意した。次第に抵抗がなくなり、スムーズに生食をポンピング注入できることを確認した。
次に、腎動脈カテーテルの三方活栓に自動灌流装置の注入チューブを接続した。
次に、含タンパク質分解抑制剤生食２０００ｍＬを滅菌パックに入れ、滅菌ガーゼを上部に取り付けた。腎臓が１ｃｍ程生食に浸かるようにガーゼに乗せた。液面に浸りすぎると、浮遊して灌流液中で動いてしまうので注意した。臓器全体がガーゼに乗っているよう注意した。腎動静脈共に血管が腎門部から出て、折れ曲がっていないことを確認した。
次に、腎臓を１０℃の冷蔵庫又は１０℃の環境下に移動した。ここで、４℃に設定すると、後の工程で灌流液が析出してくる可能性があるので注意した。また、室温だと細胞化担体の構築傷害が起こる可能性があるので避けた。
次に、腎動脈の三方活栓を開放にして、自動灌流装置を用いて含タンパク質分解抑制剤生食を４０〜６０ｍＬ／分で１５分×２回灌流した。生食が赤く濁るようなら、再度１５分灌流した。
【００５７】
（難水溶性界面活性剤灌流工程）
最終的な確認工程の後、自動灌流装置を停止し、Ａ液に置換した。そして、自動灌流装置を用いてＡ液を４０〜６０ｍＬ／分で２０分×３回灌流した。Ａ液に置換した直後は２０ｍＬ／分で様子をみながら灌流し、灌流液がスムーズに流れることを確認し、徐々に６０ｍＬ／分に上げていった。灌流後しばらくしたと血管周囲が半透明状に変化してきた。その後、腎臓全体が少し半透明状に変化してくることを確認した。
【００５８】
（親水溶性界面活性剤灌流工程）
次に、自動灌流装置を停止し、Ｂ液に置換した。そして、自動灌流装置を用いてＢ液を６０ｍＬ／分で２０分×６回灌流した。Ｂ液に交換した直後は２０ｍＬ／分で様子をみながら灌流し、灌流液がスムーズに流れることを確認し、徐々に６０ｍＬ／分に上げていった。
図３（ａ）によると、Ｂ液の初回灌流では、劇的に腎臓が透明になってくるため、灌流後、液がすぐ濁ってきた。
図３（ｂ）によると、６回灌流後に、完全に腎臓が半透明状の脱細胞化組織になっていることを確認した。
【００５９】
次に、灌流装置を一時的に外し、別途用意したＢ液で腎動脈カテーテルから５０ｍＬ×３回灌流した。３回目の灌流液の一部を回収し、吸光度計を用いてｄｓＤＮＡを測定し、０．５ｎｇ／μＬ以下であることを確認した。この値を超える場合は、自動灌流装置を用いてＢ液を４０〜６０ｍＬ／分で１５分追加灌流し、再度同様の濃度測定を行った。また、Ｂ液の総灌流時間が６時間を越える場合は、この濃度判定は行わなかった。
次に、Ｂ液を全て吸引し、精製水（注射用水）に置換した。そして、自動灌流装置を用いて精製水を４０〜６０ｍＬ／分で１５分×８回、３０分×６回、その後は（１２０分×４回／日）×６日間灌流した。この際、脱細胞化臓器の中心部分は微細な網目構造となっているため、洗浄灌流には回数だけでなく十分な時間をかけた。
その後、最終灌流液（精製水）を採取し、吸光度計を用いてｄｓＤＮＡを測定し、ｄｓＤＮＡが０．０ｎｇ／μＬ（検出限界以下）であることを確認し、更にＰＣＲによる細胞残存の有無を確認した。
【００６０】
［脾臓］
（低温冷蔵解凍工程）
凍結臓器を２４±１時間、４℃で解凍した。必ず臓器が完全に解凍していることを確認してから、以下の処理を行った。
【００６１】
（解凍時脱血工程、確認工程、接続工程）
次に、脾臓に生食をかけて、付着、残存している血餅等を洗い落とした。
次に、脾動脈カテーテルから、ディスポーザブルシリンジを用いて、生食（５０ｍＬ×６）を注入し、抵抗や漏れがなく、脾静脈から排出されることを確認した。最初のポンピングでは抵抗を感じるが、この時点で無理に押し込むと血管や皮膜が破裂する可能性があるので注意した。特に脾動脈カテーテルは他の臓器に比べ細い可能性があるので、圧でカテーテルが抜けてしまわないよう注意した。次第に抵抗がなくなり、スムーズに生食をポンピング注入できることを確認した。
次に、脾動脈カテーテルの三方活栓に自動灌流装置の注入チューブを接続した。
次に、含タンパク質分解抑制剤生食を滅菌パックに２０００ｍＬ入れ、滅菌ガーゼを上部に取り付けた。脾臓が１ｃｍ程生食に浸かるようにガーゼに乗せた。液面に浸りすぎると、浮遊して灌流液中で動いてしまうので注意した。臓器全体がガーゼに乗っているよう注意した。脾動静脈共に血管が脾門部から出て、折れ曲がっていないことを確認した。
次に、脾臓を１０℃の冷蔵庫又は１０℃の環境下に移動した。ここで、４℃に設定すると、後の工程で灌流液が析出してくる可能性があるので注意した。また、室温だと脱細胞化担体の構築傷害が起こる可能性があるので避けた。
次に、脾動脈の三方活栓を開放にして、自動灌流装置を用いて含タンパク質分解抑制剤生食を４０〜６０ｍＬ／分で１５分×５回灌流した。生食が赤く濁るようなら、再度１５分灌流した。脾臓の辺縁には血液が残存しがちであった。抜けが悪い場合は、軽く手でもむと脱血しやすい傾向があった。脱血出来ていない状況で次の工程へ進むと灌流時間が長時間になり、微細構造が保たれない可能性があるため注意した。
図４（ａ）によると、脾臓全体が脱血されてピンク色になるまでしっかりと生食で灌流した。
【００６２】
（難水溶性界面活性剤灌流工程）
最終的な確認工程の後、自動灌流装置を停止し、Ａ液に置換した。そして、自動灌流装置を用いてＡ液を４０〜６０ｍＬ／分で２０分×３回灌流した。Ａ液に置換した直後は２０ｍＬ／分で様子をみながら灌流し、灌流液がスムーズに流れることを確認し、徐々に６０ｍＬ／分に上げていった。灌流後しばらくすると、脾臓全体が半透明状に変化してきた。その後、脾臓全体が少し半透明状に変化してくることを確認した。
【００６３】
（親水溶性界面活性剤灌流工程）
次に、自動灌流装置を停止し、Ｂ液に置換した。そして、自動灌流装置を用いてＢ液を６０ｍＬ／分で２０分×６回灌流した。Ｂ液に交換した直後は２０ｍＬ／分で様子をみながら灌流し、灌流液がスムーズに流れることを確認し、徐々に６０ｍＬ／分に上げていった。
図４（ｂ）によると、Ｂ液の初回灌流では、劇的に腎臓が透明になってくるため、灌流後、液がすぐ濁ってきた。
図４（ｃ）によると、６回灌流後に、完全に脾臓が半透明状の脱細胞化組織になっていることを確認した。
【００６４】
次に、灌流装置を一時的に外し、別途用意したＢ液で脾動脈カテーテルから５００ｍＬ×３回灌流した。３回目の灌流液の一部を回収し、吸光度計を用いてｄｓＤＮＡを測定し、０．５ｎｇ／μＬ以下であることを確認した。この値を超える場合は、自動灌流装置を用いてＢ液を４０〜６０ｍＬ／分で１５分追加灌流し、再度同様の濃度測定を行った。Ｂ液の総灌流時間が６時間を越える場合は、この濃度判定は行わなかった。
次に、Ｂ液を全て吸引し、精製水（注射用水）に置換した。そして、自動灌流装置を用いて精製水を４０〜６０ｍＬ／分で１５分×８回、３０分×６回、その後は（１２０分×４回／日）×６日間灌流した。この際、脱細胞化臓器の中心部分は微細な網目構造となっているため、洗浄灌流には回数だけでなく十分な時間をかけた。
その後、最終灌流液（精製水）を採取し、吸光度計を用いてｄｓＤＮＡを測定し、ｄｓＤＮＡが０．０ｎｇ／μＬ（検出限界以下）であることを確認し、更にＰＣＲによる細胞残存の有無を確認した。
【００６５】
［心臓］
（低温冷蔵解凍工程）
凍結臓器を２４±１時間、４℃で解凍した。必ず臓器が完全に解凍していることを確認してから、以下の処理を行った。
【００６６】
（解凍時脱血工程、確認工程、接続工程）
次に、心臓に生食をかけて、付着、残存している血餅等を洗い落とした。
次に、大動脈カテーテルから、ディスポーザブルシリンジを用いて、生食（５０ｍＬ×６）を注入し、抵抗や漏れがなく、肺動脈から排出されることを確認した。最初のポンピングでは抵抗を感じるが、この時点で無理に押し込むと心耳が破裂する可能性があるので注意した。左心耳、右心耳ともに、ポンピングによって膨張した。また、この時点で冠状動脈内の血液が流れて心臓全体が灌流できていることを確認した。
次に、大動脈カテーテルの三方活栓に自動灌流装置の注入チューブを接続した。
次に、含タンパク質分解抑制剤生食を滅菌パックに２０００ｍＬ入れ、滅菌ガーゼを上部に取り付けた。心臓が１ｃｍ程生食に浸かるようにガーゼに乗せた。液面に浸りすぎると、浮遊して灌流液中で動いてしまうので注意した。また、臓器全体がガーゼに乗っているよう注意した。
次に、心臓を１０℃の冷蔵庫又は１０℃の環境下に移動した。４℃に設定すると、後の工程で灌流液が析出してくる可能性があるので注意した。また、室温だと脱細胞化担体の構築傷害の可能性があるので避けた。
次に、大動脈の三方活栓を開放にして、自動灌流装置を用いて含タンパク質分解抑制剤生食を４０〜６０ｍＬ／分で１５分×５回灌流した。生食が赤く濁るようなら、再度１５分灌流した。
【００６７】
（難水溶性界面活性剤灌流工程）
最終的な確認工程の後、自動灌流装置を停止し、Ａ液に置換した。そして、自動灌流装置を用いてＡ液を４０〜６０ｍＬ／分で２０分×３回灌流した。Ａ液に置換した直後は２０ｍＬ／分で様子をみながら灌流し、灌流液がスムーズに流れることを確認し、徐々に６０ｍＬ／分に上げていった。灌流後しばらくしたと血管周囲が半透明状に変化してきた。その後、心臓全体が少し半透明状に変化してくることを確認した。
【００６８】
（親水溶性界面活性剤灌流工程）
次に、自動灌流装置を停止し、Ｂ液に置換した。そして、自動灌流装置を用いてＢ液を６０ｍＬ／分で２０分×６回灌流した。Ｂ液に交換した直後は２０ｍＬ／分で様子をみながら灌流し、灌流液がスムーズに流れることを確認し、徐々に６０ｍＬ／分に上げていった。
図５（ａ）によると、Ｂ液の初回灌流では、劇的に心臓が透明になってくるため、灌流後、液がすぐ濁ってきた。
図５（ｂ）によると、６回灌流後に、完全に心臓が半透明状の脱細胞化組織になっていることを確認した。
【００６９】
次に、灌流装置を一時的に外し、別途用意したＢ液で大動脈カテーテルから５０ｍＬ×３回灌流した。３回目の灌流液の一部を回収し、吸光度計を用いてｄｓＤＮＡを測定し、０．５ｎｇ／μＬ以下であることを確認した。この値を超える場合は、自動灌流装置を用いてＢ液を４０〜６０ｍＬ／分で１５分追加灌流し、再度同様の濃度測定を行った。Ｂ液の総灌流時間が６時間を越える場合は、この濃度判定は行わなかった。
次に、Ｂ液を全て吸引し、精製水（注射用水）に置換した。そして、自動灌流装置を用いて精製水を４０〜６０ｍＬ／分で１５分×８回、３０分×６回、その後は（１２０分×４回／日）×６日間灌流した。この際、脱細胞化臓器の中心部分は微細な網目構造となっているため、洗浄灌流には回数だけでなく十分な時間をかけた。
その後、最終灌流液（精製水）を採取し、吸光度計を用いてｄｓＤＮＡを測定し、ｄｓＤＮＡが０．０ｎｇ／μＬ（検出限界以下）であることを確認し、更にＰＣＲによる細胞残存の有無を確認した。
【００７０】
［肺］
（低温冷蔵解凍工程）
凍結臓器を２４±１時間、４℃で解凍した。必ず臓器が完全に解凍していることを確認してから、以下の処理を行った。また、気管の辺縁を鉗子で摘み、完全に閉鎖した。
【００７１】
（解凍時脱血工程、確認工程、接続工程）
次に、肺に生食をかけて、付着、残存している血餅等を洗い落とした。
次に、肺動脈カテーテルから、ディスポーザブルシリンジを用いて、生食（５０ｍＬ×１０〜２０）を注入し、抵抗や漏れがなく、肺静脈から排出されることを確認した。最初のポンピングでは抵抗を感じるが、この時点で無理に押し込むと肺胞が破裂する可能性があるので注意した。また、肺全体がピンク色に脱血、灌流できていることを確認した。
次に、肺動脈カテーテルの三方活栓に自動灌流装置の注入チューブを接続した。
次に、含タンパク質分解抑制剤生食を滅菌パックに２０００ｍＬ入れ、滅菌ガーゼを上部に取り付けた。肺が１ｃｍ程生食に浸かるようにガーゼに乗せた。液面に浸りすぎると、浮遊して灌流液中で動いてしまうので注意した。臓器全体がガーゼに乗っているよう注意した。
次に、肺を１０℃の冷蔵庫又は１０℃の環境下に移動した。４℃に設定すると、後の工程で灌流液が析出してくる可能性があるので注意した。また、室温だと脱細胞化担体の構築傷害の可能性があるので避けた。
次に、肺動脈の三方活栓を開放にして、自動灌流装置を用いて含タンパク質分解抑制剤生食を４０〜６０ｍＬ／分で１５分×５回灌流した。生食が赤く濁るようなら、再度１５分灌流した。
【００７２】
（難水溶性界面活性剤灌流工程）
最終的な確認工程の後、自動灌流装置を停止し、Ａ液に置換した。そして、自動灌流装置を用いてＡ液を４０〜６０ｍＬ／分で２０分×３回灌流した。Ａ液に置換した直後は２０ｍＬ／分で様子をみながら灌流し、灌流液がスムーズに流れることを確認し、徐々に６０ｍＬ／分に上げていった。灌流後しばらくすると、肺全体が半透明状に変化してくることを確認した。
【００７３】
（親水溶性界面活性剤灌流工程）
次に、自動灌流装置を停止し、Ｂ液に置換した。自動灌流装置を用いてＢ液を６０ｍＬ／分で２０分×６回灌流した。Ｂ液に交換した直後は２０ｍＬ／分で様子をみながら灌流し、灌流液がスムーズに流れることを確認し、徐々に６０ｍＬ／分に上げていった。
図６（ａ）によると、Ｂ液の初回灌流では、劇的に肺が透明になってくるため、灌流後、液がすぐ濁ってくる。
図６（ｂ）によると、６回灌流後に、完全に心臓が半透明状の脱細胞化組織になっていることを確認した。
【００７４】
次に、灌流装置を一時的に外し、別途用意したＢ液で肺動脈カテーテルから５００ｍＬ×３回灌流した。３回目の灌流液の一部を回収し、吸光度計を用いてｄｓＤＮＡを測定し、０．５ｎｇ／μＬ以下であることを確認した。この値を超える場合は、自動灌流装置を用いてＢ液を４０〜６０ｍＬ／分で１５分追加灌流し、再度同様の濃度測定を行った。Ｂ液の総灌流時間が６時間を越える場合は、この濃度判定は行わなかった。
次に、Ｂ液を全て吸引し、精製水（注射用水）に置換した。そして、自動灌流装置を用いて精製水を４０〜６０ｍＬ／分で１５分×８回、３０分×６回、その後は（１２０分×４回／日）×６日間灌流した。脱細胞化臓器の中心部分は微細な網目構造となっているため、洗浄灌流には回数だけでなく十分な時間をかけた。
その後、最終灌流液（精製水）を採取し、吸光度計を用いてｄｓＤＮＡを測定し、ｄｓＤＮＡが０．０ｎｇ／μＬ（検出限界以下）であることを確認し、更にＰＣＲによる細胞残存の有無を確認した。
【００７５】
＜脱細胞化担体の凍結保存方法＞
ここで、脱細胞化担体化された臓器又は組織の凍結保存方法について説明する。
まず、３０％ショ糖液（ＰＢＳ）を調製した。
そして、上述の脱細胞化担体製造方法で製造された脱細胞化担体に接続された自動灌流装置を停止し、精製水を全て吸引し、３０％ショ糖液に置換した。自動灌流装置を用いて３０％ショ糖液を６０〜１００ｍＬ／分で１５分×３回灌流した。
次に、自動灌流装置を停止し、三方活栓を閉鎖した。臓器は張りすぎていない状態にした。そして、３０％ショ糖液を満たした滅菌パックに、臓器を移動した。臓器が完全にショ糖液に浸かるように液面にガーゼを乗せた。
次に、保管庫（設定温度：４℃）で３時間、浸漬させた。その後、脱細胞化臓器を密閉式パックに入れ、冷凍保管庫（設定温度：−８０℃）で凍結保管した。
【００７６】
＜凍結保存された脱細胞化担体の解凍、使用前の処理方法＞
ここで、上述の脱細胞化担体の凍結保存方法で凍結保存された脱細胞化臓器又は組織を解凍して使用する際の処理について説明する。
まず、２４±１時間、４℃で解凍した。臓器に凍結によるひび割れが無いことを確認した。そして、上述の自動灌流装置を再接続した。そして、ショ糖液を精製水に置換した。自動灌流装置を用いて精製水を６０〜１００ｍＬ／分で１５分×１０回灌流した。次に、精製水を生食に置換した。自動灌流装置を用いて生食を６０〜１００ｍＬ／分で１５分×５回灌流した。目的に応じて、培養液等の最終置換液を１９８０ｍＬに対し、抗生物質−抗真菌剤混合溶液を２０ｍＬ添加し、更にセファメジン１アンプルを加えた調製液を調製した。最終的に、精製水を調製液に置換し、８０ｍＬ／分で３０分×２回灌流した。
【００７７】
＜凍結保存せずに脱細胞化担体を安定化する安定化方法＞
（安定化工程）
ここで、本実施例において、脱細胞化担体化された臓器又は組織を安定化する安定化工程の具体例について説明する。本実施例では、脱細胞化担体を０．５％ホルムアルデヒド溶液により固定保存するホルムアルデヒド固定保存方法について説明する。この例では、凍結保存を行わず冷蔵保存する例について説明する。
まず、０．５％ホルムアルデヒド溶液（ホルマリン）を調製した。そして、上述の脱細胞化担体製造方法で製造された脱細胞化担体に接続された自動灌流装置を停止し、精製水を全て吸引し、０．５％ホルムアルデヒド溶液に置換した。
次に、自動灌流装置を用いて０．５％ホルムアルデヒド溶液を６０〜１００ｍＬ／分で１５分×３回灌流した。そして、自動灌流装置を停止し、三方活栓を閉鎖した。臓器は張りすぎていない状態にした。ここで、臓器が凹んでいたり張りすぎていたりする状態で処理すると、その形状のまま固定されてしまうので十分気をつけた。
次に、０．５％ホルムアルデヒド溶液を満たした滅菌パックに、臓器を移動した。臓器が完全に０．５％ホルムアルデヒド溶液に浸かるように液面にガーゼを乗せた。
次に、脱細胞化臓器を密閉式パックに入れ、冷蔵保管庫（設定温度：４℃）で保管した。
【００７８】
＜脱細胞化担体の細胞残留度の測定＞
脱細胞化担体化された臓器又は組織の品質確認について、下記の項目について確認した。
この確認は、ヒト（自己）由来細胞（初代継代細胞）、組織加工医薬品等の品質及び安全性の確保に関した指針に対応して実行した。ｄｓＤＮＡ；凍結乾燥重量１ｇあたり、５０ｎｇ以下であることを確認。ＤＮＡ  ｆｒａｇｍｅｎｔ  ｌｅｎｇｔｈ；２００ｂｐ以下であることを確認。ＨＥ  ｏｒ  ＤＡＰ  Ｉ：核染されないこと、残存細胞がないことをｍｉｃｒｏで確認。超微細構造、電子顕微鏡：微細構造が保たれていること、細胞が残存していないことを確認。微生物学的検査（無菌試験）：脱細胞化臓器の一部を採取し、無菌であることを確認した。マイコプラズマ否定試験：脱細胞化臓器の一部を採取し、マイコプラズマが存在しないことを確認した。エンドトキシン試験：脱細胞化臓器の一部を採取し、エンドトキシンが含まれていないことを確認した。
【００７９】
＜脱細胞化担体の細胞充填方法による細胞生着性確認の実験例１＞
上述の脱細胞化担体の凍結保存方法で凍結保存、又はホルムアルデヒド固定保存方法で保存した脱細胞化担体について、生体外（ｉｎ  ｖｉｔｒｏ）で細胞充填を行って細胞生着性確認した。この実験例１の処理について、以下で説明する。
【００８０】
（薄層切片化工程）
脱細胞化担体を準備し、自動灌流装置を用いて精製水を４０〜６０ｍＬ／分で２０分×１０回灌流した。
また、この時点で、充填したい細胞を準備した。本実施例では、１〜５×１０5個のＨｅｐＧ２細胞を用意した。
また、脱細胞化担体を１０ｍｍ×１０ｍｍ×２ｍｍのブロック片（脱細胞化組織断片）に切り出した。
【００８１】
（播種工程）
薄層切片化工程により薄層切片化された脱細胞化組織断片を、精製水で再度５分×６回洗浄した。
次に、滅菌ＰＢＳ１８０ｍＬに抗生物質−抗真菌剤混合溶液を２０ｍＬ（通常の５倍濃度）で、１０分×４回洗浄した。
また、培地に脱細胞化組織断片を配置した。
また、２〜５倍濃度抗生物質−抗真菌剤混合溶液＋１０％ＦＢＳ付加ＭＥＭ（以下、「付加ＭＥＭ」という。）を調製した。
滅菌した鑷子で脱細胞化組織断片の隅を摘み、２６Ｇの注射針を取り付けたディスポーザブルシリンジを用いて、１〜５×１０5／ｍＬの細胞を、四方からＴｏｔａｌ  １ｍＬ注入した。
【００８２】
（培養工程）
付加ＭＥＭ２ｍＬを、培養細胞が播種された脱細胞化組織断片に注入した。
その後、一晩（Ｏｖｅｒｎｉｇｈｔ）、３７℃インキュベーションした。
そして、実体顕微鏡下で細胞生着性を確認した。
また、１日１回培地洗浄及び交換した。
また、培養７２時間後、実体顕微鏡下で細胞の生着性を確認した。
【００８３】
図７Ａは、心臓の脱細胞化組織断片について、実体顕微鏡下で生着性を確認した例を示す。この結果によれば、心臓の脱細胞化担体の構造に対応して、播種された細胞の膨化が認められた。
図７Ｂは、腎臓の脱細胞化組織断片について、実体顕微鏡下で生着性を確認した例を示す。この結果によれば、腎臓の脱細胞化担体の構造に対応して、播種された細胞はやや小型であった。
図７Ｃは、肺の脱細胞化組織断片について、実体顕微鏡下で生着性を確認した例を示す。この結果によれば、肺の脱細胞化担体の構造に対応して、播種された細胞が平坦な層状に定着していた。
【００８４】
＜脱細胞化担体の細胞充填方法による細胞生着性確認の実験例２＞
また、脱細胞化担体について、臓器の種類によっては、細胞液を脱細胞化担体に滴下することで、生体外（ｉｎ  ｖｉｔｒｏ）の細胞生着性確認した。この実験例２の処理について、以下に説明する。
【００８５】
（薄層切片化工程）
まず、脱細胞化担体を２０ｍｍ×２０ｍｍ×１ｍｍの脱細胞化組織断片に切り出した。
そして、脱細胞化組織断片を６ウェルプレートのウェル内に配置した。
【００８６】
（播種工程）
次に、各ウェルに５×１０5／ｍＬの細胞液１ｍＬを徐々に滴下、横に漏れ出た細胞液を吸引し再度滴下×３回行った。
次に、６ウェルプレートを、１５分、３７度インキュベーションした。
これらの播種工程の処理を３回繰り返した。
【００８７】
（培養工程）
播種工程により培養細胞が播種された脱細胞化組織断片に、付加ＭＥＭ  ２ｍＬを滴下した。
その後、Ｏｖｅｒｎｉｇｈｔ、３７℃でインキュベーションした。
そして、実体顕微鏡下で細胞生着性を確認した。
また、１日１回培地洗浄及び交換した。
また、培養７２時間後、実体顕微鏡下で細胞の生着性を確認した。
【００８８】
図７Ｄは、肝臓の脱細胞化組織断片について、実体顕微鏡下で生着性を確認した例を示す。この結果によれば、肝臓の脱細胞化担体の構造に対応して、肝小葉のように規則的な配置で生着された細胞が散見された。
【００８９】
ここで、上述の実験例２においては、その後、培養液を回収し、脱細胞化組織断片を生食で軽く洗浄した。
次に、脱細胞化組織断片を４％ＰＦＡ溶液又は１０％中性緩衝ホルマリン溶液に５分×２回浸漬した。
次に、脱細胞化組織断片の病理組織学的検査を実行し、ＨＥ染色及び抗ＨＬＡ免疫組織化学染色によって、最終的に、細胞生着性を確認した。
【００９０】
＜電子顕微鏡解析＞
各脱細胞化担体を受託業者に送付し、電子顕微鏡画像を得た。
図８Ａは腎臓及び脾臓、図８Ｂは心臓及び肺、図８Ｃは肝臓及び小腸の電子顕微鏡画像である。各図において、腎臓、脾臓、心臓肺、及び肝臓の電子顕微鏡画像では、左図の拡大画像を右図に示す。また、小腸においては、左図は絨毛部分の電子顕微鏡画像を示し、右図は筋層部分の電子顕微鏡画像を示す。
これらの各電子顕微鏡写真は、より、細胞骨格を含む臓器構築に沿った細胞外基質が非常に高度に残存していることを示していた。
【００９１】
＜細胞外基質に関した解析（免疫染色）＞
次に、各脱細胞化担体を薄層切片にし、市販されている各抗体及びキット（タカラバイオ社製）を用いてＤＡＢ（３，３'‐ジアミノベンジジン四塩酸塩）染色を行った。
図９によると、Ｈ＆Ｅ（ヘマトキシリンとエオシンの二重染色）の画像より、細胞核が消失していることが確認できた。また、Ｓｉｒｉｕｓ  ｒｅｄ、Ｃｏｌｌａｇｅｎ  ＩＶ染色により、細胞質の消失と細胞膜の残存とが確認された。また、Ｆｉｂｒｏｎｅｃｔｉｎ、Ｌａｍｉｎｉｎの染色により、細胞膜上に残存している各細胞外基質を調べた結果、細胞外基質の構成要因に従って、ＤＡＢ染色の濃淡が確認された。
【００９２】
＜脱細胞化担体（肝臓）の移植実験＞
肝臓について本実施例の脱細胞化方法による処理を行った脱細胞化担体（細胞未充填）をブタ体内に移植し、担体内部に血液が充填されることを確認した。自治医科大学構内に併設されている先端医療技術開発センターにて実行した。
【００９３】
図１０（ａ）〜（ｃ）によると、心臓拍動下にてＡＰＯＬＴ法にて移植した脱細胞化肝臓に門脈から血管造影剤を投与し、Ｃ−ａｒｍ（放射線画像診断装置）で造影画像を得た。図１０（ａ）は施術の写真、図１０（ｂ）（ｃ）は造影の写真である。結果として、細胞未充填の担体でも細部に渡り、血管構造が維持されていることが判明した。このことは、毛細血管のような脆弱な構造体であっても、本実施例の脱細胞化方法で処理された脱細胞化担体は、高度に細胞骨格等を維持していることを示していた。
図１０（ｄ）、（ｅ）では、移植した脱細胞化肝臓を切片化して赤血球の箇所を確認した。これによると、肝臓の特徴的な構造である肝小葉構造が血液（赤血球）のみで示された。この事実も、本実施例の脱細胞化担体は、細胞骨格等を高度に維持していることを示している。
【００９４】
なお、上記実施の形態の構成及び動作は例であって、本発明の趣旨を逸脱しない範囲で適宜変更して実行したことができることは言うまでもない。
【産業上の利用可能性】
【００９５】
本発明によれば、各種実験、先端医療に応用可能な脱細胞化担体を製造可能となるため、産業上利用可能である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７Ａ】
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【図７Ｂ】
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【図７Ｃ】
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【図７Ｄ】
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【図８Ａ】
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【図８Ｂ】
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【図８Ｃ】
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【図９】
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【図１０】
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