(57)【要約】【課題】比較的広い範囲の浅部領域を近赤外蛍光造影で観察して、見たい局所を発見し（いわばナビゲート）、同じ位置で、今度は超音波造影で深部領域を局所的かつ高分解能で観察する。【解決手段】分散質としてのリポソーム粒子（１）及び分散媒としての生理食塩水（４）からなり、当該リポソーム粒子の直径がナノサイズ又はマイクロサイズであり、当該リポソーム粒子の内部に気体（２）を含む超音波造影剤（Ａ）及び近赤外蛍光色素（３）からなる近赤外蛍光造影剤（Ｂ）からなり、前記リポソーム粒子（１）と前記近赤外蛍光色素（３）とは結合していることを特徴とする、超音波造影及び近赤外蛍光造影の両方が可能な造影剤。【選択図】図１
2019182778.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
分散質としてのリポソーム粒子及び分散媒としての生理食塩水からなり、当該リポソーム粒子の直径がナノサイズ又はマイクロサイズであり、当該リポソーム粒子の内部に気体を含む超音波造影剤（Ａ）及び近赤外蛍光色素からなる近赤外蛍光造影剤（Ｂ）からなり、
前記リポソーム粒子と前記近赤外蛍光色素とは結合していることを特徴とする、超音波造影及び近赤外蛍光造影の両方が可能な造影剤。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、超音波造影及び近赤外蛍光造影の両方が可能な造影剤に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
超音波造影法は、生体内を進んだ超音波パルスが生体組織の変わるところ（正確には音響インピーダンスの変わるところ）で反射され、その反射波を情報処理して画像化(イメージング化)する際、反射を強調させるため、造影剤を用いる方法である。生体組織（例えば、血管やリンパ管）に造影剤を投与して反射を強調し、これまでに得られなかった新たな生体組織の画像（例えば、血管やリンパ管の分布画像）を得るのである。超音波はＸ線と違って生体組織への損傷がないか極めて少ない利点がある。
【０００３】
最近、超音波造影剤の主役である気泡（気泡は超音波を反射する）の大きさがマイクロやナノのサイズであると、超音波造影剤がサイズによって生体組織（例えば、肝臓、腎臓、膵臓、胆のう、胃、胃、十二指腸、皮膚など）の深部（具体的には皮膚表面から造影の場合は、最大深さ：数十ｍｍ、肝臓や心臓等の臓器の表面から造影する場合は、扇状の断層面となるが、最大深さ：１００ｍｍ程度）の微小血管系やリンパ管系にも届くので、注目されている（非特許文献1、２参照）。
【０００４】
他方、近赤外光造影法は、同様に生体組織に近赤外蛍光造影剤を投与し、外部から近赤外励起光を照射する。励起光を受光した造影剤は励起された後、元の基底状態に戻るとき、励起光と異なる波長の近赤外光を発光する。近赤外光は比較的厚く（具体的には最大厚さ１０ｍｍ程度）とも生体組織を透過することから、外部から照射及び反射光又は透過光の受光を行うことができる。
【０００５】
そこで、外部から近赤外光カメラを使って発光した光を外部から撮影することで生体組織の状況が低侵襲で判明することから、生体組織（患部）の病理診断法として多用されている。
【０００６】
最近、同様に生体組織（例えば、肝臓、腎臓、膵臓、胆のう、胃、胃、十二指腸、皮膚など）の血管やリンパ管に造影剤を投与して、その深部（具体的には最大深さ１０ｍｍ程度）の微小血管系やリンパ管系を撮影する近赤外光造影法が注目されている（非特許文献３、４参照）。
【０００７】
なお、非特許文献４のリポソームは、近赤外蛍光造影剤の主役である近赤外蛍光造影色素であるインドシアニングリーン（ＩＣＧ）又はアルキル鎖で標識されたＩＣＧ誘導体に結合しているリポソームであり、リポソーム内部に気体を含まないので超音波造影剤ではなく、近赤外蛍光造影剤である。リポソームは色素分子を大きくして色素をリンパ節に滞留・集積させる目的で結合している。結局、非特許文献４のリポソームは、超音波造影とは全く関係なく、本発明と全く異なる。
【０００８】
特許文献１の「蛍光色素を含有するリポソーム」も非特許文献４のリポソームと同じである。基本的には、特許文献１のリポソームも近赤外蛍光造影剤であり、超音波造影とは関係なく、本発明と全く異なる。
【０００９】
特許文献２のリポソーム複合体も、構造的にはインドシアニングリーン（ＩＣＧ）等が結合したリポソーム粒子であるが、リポソーム粒子内に薬剤を含む。この複合体に強力な近赤外線を照射してＩＣＧにそれを吸収させて発熱させることで、リポソームを破壊し、それで薬剤を放出させるのである。ドラッグデリバリーシステム（ＤＤＳ）に使う薬剤とも言える。結局、特許文献２のリポソーム複合体も、近赤外蛍光造影剤の一種であり、超音波造影とは全く関係なく、本発明と全く異なる。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１０】
【特許文献１】特開２０１７−７５９３７号公報
【特許文献２】再公表２０１３/０５１７３２
【非特許文献】
【００１１】
【非特許文献１】Y,Matsumura et al., Cancer research, 1986; 46: 6378-6392
【非特許文献２】平田圭一 他，Drug Delivery System 2010; 25-5: 466-473
【非特許文献３】JT. Alander et al., International Journal of Biomedical Imaging, 2012; Article ID 940585: 26
【非特許文献４】Toyota et al., Bioorganic & Medicinal Chemistry 2014; 22: 721-727
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１２】
超音波造影法は、深部領域を局所的つまり比較的狭い範囲（体表面からの場合、幅：数十ｍｍ）を比較的高い分解能（超音波の周波数にもよるが、分解能：凡そ数百μｍ〜１ｍｍ）で見る方法であり広い範囲を見ることは困難である（短所）。逆に近赤外蛍光造影法は、浅部領域を比較的広い範囲（幅：数百ｍｍ）を高分解能（分解能：凡そ数十〜数百μｍ）でみることができるが、深部領域の観察には適用範囲が狭い（短所）。
【００１３】
そこで、本発明者らは、両者の短所を補完し、比較的広い範囲の浅部領域を近赤外蛍光造影で観察して、見たい局所を発見し（いわばナビゲート）、同じ位置で、今度は超音波造影で深部領域を局所的かつ高分解能で観察できれば、新しい診断法が可能になることを着想した。
【００１４】
この着想を実現可能にするには、両者の造影剤に工夫が必要である。何故ならば、近赤外蛍光造影剤は、拡散が比較的早く、同一領域へ超音波造影剤を注射しても見たい局所の発見が難しくなること、更に同一領域へ２種の注射が必要で、施術的な手間がかかり誤差を生じやすいこと、造影剤を２種用意することの管理および安全上のリスクが高くなることなどの問題がある。
【課題を解決するための手段】
【００１５】
本発明者らは、かかる問題を解決するため、超音波造影剤と近赤外蛍光造影剤とを結合させ１つの造影剤にすることを世界で初めて着想し、鋭意研究の結果、本発明を成すに至った。
【００１６】
超音波造影剤の中には、リポソーム（粒子）を主体とするものがある。そのような造影剤は、分散質としてのリポソーム粒子及び分散媒としての生理食塩水からなる分散体（懸濁液）であり、当該リポソーム粒子の内部に気体を含む。
【００１７】
リポソーム（粒子）は、細胞膜の脂質２層膜を模して人工的に作られたもので、リン脂質（phospholipid）の皮膜と内包物質（後述する）からなる。
【００１８】
リン脂質は、リン原子を含む親水性の部位（フォスフォコリンなど、図1では〇で示す）と疎水性の部位（アシル基、図１では＝で示す）を持つ両親媒性の分子である。リン脂質分子が水（分散媒）中で一定濃度以上であると、親水性の部位どうしで近接し、疎水性の部位どうしも近接するように自発的に会合して（寄り集まって）膜を形成し、膜は球形となることで表面積を最小化して安定化する。超音波造影用の気体が共存すると、気体は疎水性であるためにこの球の内部に取り込まれる。これが「マイクロエマルション」または「マクロエマルション」と呼ばれるものである。このときリン脂質は単層膜を形成している。
【００１９】
気体が存在しない場合には、リン脂質の膜は表と裏で２枚が近接するように安定化し、膜は二重構造となり、リポソーム粒子を形成する。リポソーム粒子の内部も親水性であることから、ここに水又は水溶液が入る。
【００２０】
超音波造影用の気体を取り込ませたリポソーム粒子の作製方法によっては、球の一部が単層膜で他部が２層膜というリポソーム粒子もできる。この場合には、単層膜で囲まれた空間に気体が閉じ込められ、残りの空間に水又は水溶液が入る。
【００２１】
このリポソームに近赤外蛍光造影剤の主体である近赤外蛍光色素をリポソーム作製時又は作製後に混合して単層膜又は２層膜（リポソーム粒子）に結合させることに成功し、本発明を成すに至った。
【００２２】
即ち、本発明は、
「分散質としてのリポソーム粒子及び分散媒としての生理食塩水からなり、当該リポソーム粒子の直径がナノサイズ又はマイクロサイズであり、当該リポソーム粒子の内部に気体を含む超音波造影剤（Ａ）及び近赤外蛍光色素からなる近赤外蛍光造影剤（Ｂ）からなり、
前記リポソーム粒子と前記近赤外蛍光色素とは結合していることを特徴とする、超音波造影及び近赤外蛍光造影の両方が可能な造影剤」
を提供する。
【００２３】
以下、本発明の超音波造影及び近赤外蛍光造影の両方が可能な造影剤を「両用造影剤」ということがある。
【００２４】
本発明の造影剤は、概して言えば、分散質としてのリポソーム粒子及び分散媒としての生理食塩水からなる懸濁液である。
【発明の効果】
【００２５】
本発明は、世界で初めて超音波造影及び近赤外蛍光造影の両方が可能な造影剤を提供する。
【００２６】
本発明の造影剤は超音波造影及び近赤外蛍光造影の両方が可能な造影剤で、１度の注射で浅部領域にも深部領域にも届き、剤は分子レベルで見て比較的大きなリポソーム粒子を有するので近赤外蛍光造影時にも、拡散が遅く、時間が経っても鮮明な画像が見られる。そこで、時間をかけて見たい局所を発見し、同じ位置で、今度は超音波造影で深部領域を局所的かつ高分解能で観察できる。そのため、新しい診断法を提供することができる。
【００２７】
そのため、剤も２種用意する必要がなく、１種で良いので、１回注射することで上記の診断法を行うことができるので、施術的手間が減り、その上、剤の管理、安全性のリスクも低減できる。
【００２８】
本発明の造影剤は、リポソームの粒径でナノメートル（ｎｍ）サイズ又はマイクロメートル（μｍ）サイズの２つに大別させることができる。
【００２９】
ナノメートル（ｎｍ）サイズの場合は、組織間隙を通過しリンパ管へ吸収される。このような特徴から、皮下注射による投与からリンパ管、リンパ節へのリンパ流の可視化が可能となり、体表、臓器表面近傍におけるリンパ系の機能診断に大きく寄与することが期待される。
【００３０】
マイクロメートル（μｍ）サイズの場合は、組織間隙や血管壁を通過することができないという特性を逆に利用することで、血管特異的なイメージングが可能となる。静脈注射により投与し、各種臓器内の血管の造影に使用できる。主な用途としては、外科手術において血管位置を三次元的に把握するための手術ナビゲーション手法としての使用が期待される。また、超音波造影法では、細胞によるマクロファージの効果を利用し腫瘍をイメージングするクッパーイメージングと呼ばれる手法が使用されているが、本発明で開発する造影剤を用いることで近赤外蛍光造影でも同様のイメージングを行うことが期待される。
【００３１】
また、本発明の両用造影剤のリポソームの内部に薬剤を内包させれば、近赤外蛍光でドラッグデリバリーシステム（ＤＤＳ）の体内動態モニタリングを行うことができ、それにより両用造影剤が患部（例えば、癌）に届いたことを確認したあと、強力な超音波を照射してリポソームを破壊（超音波により励起される内部の気体の共鳴振動によりリポソームが崩壊）することにより当該薬剤を放出させ、患部（例えば、癌）だけに直接薬剤を投与することが可能となる。
【図面の簡単な説明】
【００３２】
【図１】実施例１（ナノメートルサイズ）の造影剤（リポソーム粒子）のイメージ図である。
【図２】実施例１の造影剤の粒子径分布を表すグラフである。
【図３】実施例１の造影剤の評価で使った評価装置を側面から見た概念図である。
【図４】実施例1及び比較例1を循環させたときに、近赤外蛍光観察装置を用いて上から観察撮影した流路の蛍光画像［図４（１）、（２）、（５）、（６）］と超音波画像診断装置で撮影した流路の断層画像［図４（３）、（４）、（７）、（８）］である。
【図５】（１）はブタの足の外観写真、（２）近赤外蛍光造影の画像、（３）は（１）のブタの足のリンパ節部位の外観写真、（４）は、近赤外蛍光造影の蛍光画像である。
【図６】超音波造影画像である。なお、（１）は造影剤注射前の画像である。
【図７】実施例２（マイクロメートルサイズ）の造影剤（リポソーム粒子）のイメージ図である。
【図８】（１）は図３（側面図）の簡易流路システムを上から撮影した写真であり、（２）、（３）は同システムに実施例２、比較例２及びＰＢＳ（生理食塩水）を循環させ、同システム（図３＝側面図）を上から観察撮影したときの流路の蛍光画像であり、（４）は図３（側面図）の簡易流路システムを上下方向で切断した切断面のイメージ図である。（５）、（６）は超音波画像診断装置で撮影したときの流路の断層画像で、（４）と同じ面である。
【図９】トリ胸肉に造影剤を注射する様子を示すイラストである。
【図１０】（１）はトリ胸肉の外観写真、（２）は同トリ胸肉の蛍光画像である。（３）は超音波造影による同トリ胸肉の断層画像（造影剤投与前）、（４）は超音波造影による同トリ胸肉の断層画像（造影剤投与前）である。
【図１１】光学顕微鏡を用いて観察した明視野像（写真）である。
【図１２】蛍光観察モードで取得した蛍光画像（写真）である。
【図１３】平均粒径、粒子濃度（数密度）及び粒径分布を示すグラフである。
【図１４】近赤外蛍光造影の分子式である。ＩＣＧ−Ｃ１８は、ＲがＣ１８Ｈ３７である。
【発明を実施するための形態】
【００３３】
超音波造影及び近赤外蛍光造影の両方が可能な造影剤（両用造影剤）を構成するリポソーム系超音波造影剤は、それ自体は既に知られており、リポソーム（粒子）の原料（リン脂質、ポリエチレングリコールで修飾した脂質（ＰＥＧ−脂質）など）は、容易に手に入り、また、リポソーム作製用装置も市販されている。本発明の造影剤は、分散質のリポソーム（粒子）が分散媒としての生理食塩水に分散しており、全体像は分散体（懸濁液）である。そして、当該リポソームはリン脂質（phospholipid）の皮膜と内包物質からなる。
【００３４】
皮膜を構成するリン脂質としては、例えば、ホスファチジルコリン(ＤＳＰＣ) 、ジミリストイル−ホスファチジルエタノールアミン(ＤＭＰＥ)、ジパルミトイルホスファチジルエタノールアミン(ＤＰＰＥ)、ジオレイルホスファチジルエタノールアミン(ＤＯＰＥ)、ジステアロイルホスファチジルエタノールアミン(ＤＳＰＥ)、ジアラキドイルホスファチジルエタノールアミン(ＤＡＰＥ)又はジリノレイルホスファチジルエタノールアミン(ＤＬＰＥ)等のホスファチジルエタノールアミン；ジラウロイル−ホスファチジルコリン(ＤＬＰＣ)、ジミリストイル−ホスファチジルコリン(ＤＭＰＣ)、ジパルミトイル−ホスファチジルコリン(ＤＰＰＣ)、ジアラキドイル−ホスファチジルコリン(ＤＡＰＣ)、ジオレイル−ホスファチジルコリン(ＤＯＰＣ)等のホスファチジルコリン；ジミリストイルホスファチジルセリン(ＤＭＰＳ)、ジアラキドイルホスファチジルセリン(ＤＡＰＳ)、ジパルミトイルホスファチジルセリン(ＤＰＰＳ)、ジステアロイルホスファチジルセリン(ＤＳＰＳ)、ジオレイルホスファチジルセリン(ＤＯＰＳ)等のホスファチジルセリン；ジパルミトイルホスファチジン酸(ＤＰＰＡ)、ジミリストイルホスファチジン酸(ＤＭＰＡ)、ジステアロイルホスファチジン酸(ＤＳＰＡ)、ジアラキドイルホスファチジン酸(ＤＡＰＡ)及びそのアルカリ金属塩等のホファチジン酸誘導体；ジミリストイルホスファチジルグリセロール(ＤＭＰＧ)及びそのアルカリ金属塩、ジパルミトイルホスファチジルグリセロール(ＤＰＰＧ)及びそのアルカリ金属塩、ジステアロイルホスファチジルグリセロール(ＤＳＰＧ)及びそのアルカリ金属塩、ジオレイル−ホスファチジルグリセロール(ＤＯＰＧ)等のホスファチジルグリセロール；ジラウロイルホスファチジルイノシトール(ＤＬＰＩ)、ジアラキドイルホスファチジルイノシトール(ＤＡＰＩ)、ジミリストイルホスファチジルイノシトール(ＤＭＰＩ)、ジパルミトイルホスファチジルイノシトール(ＤＰＰＩ)、ジステアロイルホスファチジルイノシトール(ＤＳＰＩ)、ジオレイルホスファチジルイノシトール(ＤＯＰＩ)等のホスファチジルイノシトール、カルジオリピン、スフィンゴミエリン脂質などが挙げられ、親水性を増すためのＰＥＧ-脂質として、“ＤＳＰＥ”をポリエチレングリコールで修飾した１，２−ジステアロイル-ｓｎ−グリセロ−３−ホスホエタノールアミン−Ｎ−［シアヌル（ポロエチレングリコール）−２０００（1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-[cyanur(polyethylene glycol)-2000、略称“ＤＳＰＥ-ＰＥＧ２０００”）、ステアリルＰＥＧ、パルミトイルＰＥＧ、オレイン酸ＰＥＧ、ミリスチルＰＥＧ、ラウロイルＰＥＧ等(ＰＥＧの後に続く数字はＰＥＧ部位の分子量を示す）が挙げられる。ＰＥＧの分子量は５００〜１２０００が好ましい。ＤＳＰＥ―ＰＥＧ例えばＤＳＰＥ−ＰＥＧ２０００、ＤＳＰＥ−ＰＥＧ３０００、ＤＳＰＥ−ＰＥＧ５０００が好ましい。なかでもＤＳＰＥ−ＰＥＧ２０００が特に好ましい。
【００３５】
次に内包物質について説明する。リポソーム粒子に内包させる気体としては、空気、酸素、二酸化炭素、フッ化硫黄ガス、パーフルオロ炭化水素ガスなどが挙げられる。パーフルオロ炭化水素ガスとして例えば、パーフルオロメタン、パーフルオロエタン、パーフルオロプロパン、パーフルオロブタン、パーフルオロペンタン、パーフルオロヘキサン、パーフルオロヘプタン、パーフルオロオクタン、などを挙げることができる。
【００３６】
気体を内包させる方法としては、当該気体が充満した容器内にリポソーム粒子を入れて超音波処理などを行うことによって、当該気体が内包されたバブルリポソームを調製することができる。
【００３７】
他方、近赤外蛍光造影剤の主体である近赤外蛍光色素としては、インドシアニングリーン（ＩＣＧ）、フタロシアニン、スクアリリウム、クロコニウムやそれらの誘導体（ＩＣＧ-Ｃ１８）が挙げられる。
【００３８】
近赤外蛍光色素の励起光の波長としては、通常、６００ｎｍ以上であり、好ましくは６５０ｎｍ以上であり、より好ましくは６６５ｎｍ以上であり、さらに好ましくは６８０ｎｍ以上であり、特に好ましくは７００ｎｍ以上であり、最も好ましくは７２０ｎｍ以上である。そして、蛍光波長としては、励起光の波長より５０ ｎｍ以上、特に１００〜２００ｎｍ長いものが好ましい。
【００３９】
本発明の両用造影剤の組成は、必須成分としては、上述のリポソーム粒子、気体及び近赤外蛍光色素並びに分散媒としての生理食塩水であるが、それら成分のほかに例えば、ｐＨ調整剤、エチルアルコール等の有機溶媒、粘度調整剤、界面活性剤、安定化剤、抗酸化剤、キレート剤、着色料などを微量又は適量含んでいてもよい。
【００４０】
また、組成割合であるが、リポソームを構成するリン脂質の重量を１とすると、近赤外蛍光色素は、例えば、０．００１〜０．１  特に０．００２〜０．００５であることがより好ましい。なお、リポソーム粒子がマイクロメートルサイズの場合は、リン脂質が飽和脂肪酸型リン脂質と不飽和脂肪酸型リン脂質との混合物であることが好ましく、その場合、飽和脂肪酸型リン脂質：不飽和脂肪酸型リン脂質の比は、重量比で１：５〜５：１が好ましく、１：１が最も好ましい。
【００４１】
また、リポソーム粒子に内包させる気体の量は、リポソームを構成するリン脂質の重量を１とすると、気体は、例えば、０．１〜１０  特に０．５〜１であることがより好ましい。
【００４２】
リポソーム粒子の粒径（直径）は、ナノメートル又はマイクロメートルサイズであることが本発明では必須であり、前者の場合、数十〜数百ｎｍ特に５０〜２００ｎｍが好ましく、後者の場合、０．８〜２０μｍ特に１〜５μｍが好ましい。
【００４３】
粒子径により、本発明の造影剤の用途が異なり、ナノサイズの場合はリンパ系（リンパ管、リンパ節）のイメージング（造影、撮影、観察）に、マイクロサイズの場合は、各種臓器の微細血管のイメージング（造影、撮影、観察）などに使われる。
【００４４】
分散媒としての生理食塩水としては、体液とほぼ等張の塩化ナトリウムの水溶液（食塩水）であるが、生理食塩水には、適宜、ｐＨ調整剤、エチルアルコール等の有機溶媒、粘度調整剤、界面活性剤、安定化剤、抗酸化剤、キレート剤、着色料、ブドウ糖水溶液などが微量又は適量含まれていても良い。
【００４５】
リポソーム粒子に内包させる気体のほか、薬剤例えば制癌剤、抗炎症薬、副腎皮質ホルモン剤、抗ウィルス薬、抗生物質、抗結核薬、各種分子標的治療薬（抗ＶＥＧＦ抗体、抗ＥＧＦＲ２抗体）、抗血栓薬などを内包させても良い。
【００４６】
薬剤を内包させることで、本発明の造影剤をＤＤＳにも使用することができる。正確な位置に近赤外蛍光造影法で導き、それからその深部にある病変部分（局所）に到達したことを超音波造影法で認識した後、外部からの刺激例えば強力な超音波を照射してリポソーム粒子を破壊することにより当該薬剤を放出させことが可能となる。
【００４７】
本発明の両用造影剤を作製する方法は、リポソーム系超音波造影剤を作製する前（原料準備段階）か、作製後に、近赤外蛍光色素を添加すれば良い。リポソーム作製用装置も市販されており、作製は難しいことではない。
【００４８】
本発明の両用造影剤は、全体像としては、図１や図７に示すように、リポソームが分散媒としての生理食塩水に分散しており、分散体（懸濁液）である。そのリポソームに色素が結合していることが本発明の特徴である。この結合は化学結合でなくとも、イオン結合、水素結合、疎水結合、タンパク質―基質結合、タンパク質−糖鎖結合などでも良い。
【実施例】
【００４９】
実施例１
（１）両用造影剤（略称“蛍光ナノバブル”）の作製
まず、ホスファチジルコリン(ＤＳＰＣ) を２２．８５ ｍｇ、ＤＳＰＥ-ＰＥＧ２０００を３．４８ｍｇ、ＩＣＧ―Ｃ１８を ０．７０ｍｇを計量し、これらをスクリュー管に入れた。いずれも粉末形状である。なお、ＤＳＰＥ-ＰＥＧ２０００とは、「1,2-distearoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-[cyanur(polyethylene glycol)-2000]」のことである。
【００５０】
次に、溶解のために、クロロホルム及びメタノールを体積比４ : １となるように混合して混合溶媒を作製し、この混合溶媒５ｍｌを上記スクリュー管に加え、中の粉末を溶解させ、溶液とした。
【００５１】
この溶液の入った上記スクリュー管をボルテックスミキサーGENIE-2品番G560（米国サイエンティフィックインダストリーズ社の商品）にセットし、撹拌(強度１０)を行い、完全に溶解させた時点で、スクリュー管のネジ式のフタを外した後、アルミホイルによりスクリュー管の開口部を覆った。そして、アルミホイルに針で揮発口を開け、スクリュー管をポリデシケーター(３００型、アズワン株式会社の商品)に入れ、真空ポンプ(Ｎ８１０ＦＴ.１８、株式会社ケー・エヌ・エフ・ジャパンの商品)を用いて、３００分間、有機溶媒の揮発を行った。
【００５２】
有機溶媒が完全に揮発し、スクリュー管の底部に薄膜が生じたことを確認した後、スクリュー管をポリデシケーターから取り出し、次いで、ＰＢＳ溶液（リン酸緩衝生理食塩水）が薄膜を剥がさないように注意しながらＰＢＳ溶液を５ｍｌ加え、そして、９０℃に設定した恒温槽内に５時間静置した。
静置が完了後、スクリュー管に優しく振動を加え内部を撹拌することで薄膜の膨潤を行った。
【００５３】
こうして得られた懸濁液を粒径調整用ガスタイトシリンジホルダーセット（リポソーム作製用装置Mini-Extruder Set、米国アバンティポーラリピッド社Avanti Polar Lipids, Inc. の商品）を用いて４００ｎｍのメンブレンフィルターに通し、粒径整形を行った。
【００５４】
粒径整形を行った溶液を「１０ｍｌバイアル瓶」に４ｍｌ充填し、ゴムキャップで栓をした後、アルミキャップをかけ、完全に締め切った。
【００５５】
その後、ルアーロックシリンジ（注射器）を使ってバイアル瓶内に気体としての空気を１５ｍｌだけ加圧して入れた。
【００５６】
加圧が終わり次第、脱気水を満たした超音波槽にバイアル瓶を入れ、５分間超音波を照射した。
【００５７】
こうして、リポソーム平均粒径（直径）４９．４ｎｍの両用造影剤（略称“蛍光ナノバブル”）を得た。
【００５８】
この“蛍光ナノバブル”のイメージを図１に示す。図１において、符号１はリポソーム粒子を、符号２はリポソーム粒子に内包された気体を、符号３は色素を、符号４はＰＢＳ溶液（リン酸緩衝生理食塩水）を示す。
【００５９】
また、この“蛍光ナノバブル”について、粒度測定装置（品番 Nanotrac UPA-UT151、マイクロトラック・ベル株式会社の商品）で測定したリポソーム粒子の体積分布を図２に示す。
【００６０】
（２）比較例１
比較例１は、ＩＣＧ―Ｃ１８が結合していないナノバブル（懸濁液）である。ＩＣＧ−Ｃ１８が結合されていない点を除けば、実施例１の両用造影剤（略称“蛍光ナノバブル”）と作製方法は同じである。リポソーム粒子の平均粒径（直径）は２０５．２ｎｍでリポソーム粒子に内包された気体は空気である。
【００６１】
（３）評価
(イ)ファントム実験
図３（側面図）に示すような小型水槽に流路を組み合わせた簡易流路システムを構築した。流路は図３では１本しか見えないが奥行き方向にもう１本ある。流路は中空のシリコンチューブ（直径φ＝２ mm）である。それぞれの流路内に実施例１の蛍光ナノバブルと比較例１のナノバブル（懸濁液）を循環させ、図３では「近赤外蛍光プローブ」と記す近赤外蛍光観察装置（品番HyperEye Medical Systems II、瑞穂医科工業株式会社の商品）と同じく「超音波プローブ」と記す超音波画像診断装置（品番Aplio500、東芝メディカルシステムズ社の商品）を使用してそれぞれ撮影した。この結果を図４に示す。
【００６２】
図４は、実施例1及び比較例1を循環させたときに、上記近赤外蛍光観察装置を用いて上から観察撮影した流路の蛍光画像［図４（１）、（２）、（５）、（６）］と上記超音波画像診断装置で撮影した流路の断層画像［図４（３）、（４）、（７）、（８）］である。
【００６３】
図４（１）、（３）、（５）、（７）は循環開始直後に、（２）、（４）、（６）、（８）は循環開始から１５又は１９時間経過後に撮影した画像である。（１）と（５）の比較からＩＣＧ―Ｃ１８が結合していない比較例１では流路が蛍光しておらず、実施例１では流路が蛍光し、実施例１が近赤外蛍光観察用造影剤として機能していることが分かる。また、（３）と（７）の比較から、比較例１と実施例１の両者において超音波造影剤が存在する流路内が高輝度部位として観察（造影）されていることが確認できる。ＩＣＧ―Ｃ１８が結合した実施例1の超音波造影剤としての機能は、ＩＣＧ―Ｃ１８が結合していない比較例１と比べても遜色ないことが分かる。（５）と（６）及び（７）と（８）の比較から、実施例１は循環後10時間以上経過しても両用造影剤としての機能を保持していることがわかる。
【００６４】
(ロ)動物実験
図５の（１）に示す動物実験用のブタの足に、in vivoで実施例１の蛍光ナノバブルを皮下注射した。これにより、蛍光ナノバブルは自然とリンパ管を介してリンパ節に流入する。
【００６５】
そこで、上記近赤外蛍光観察装置を使って撮影したので、得られた蛍光画像を図５の（２）に示す。この蛍光画像（２）で強く白く三角形状に見えるところが注射部位であり、該当部位から線状に述べる高輝度部位がリンパ管である。
【００６６】
また、リンパ節が存在する部位を撮影したので、この外観写真を図５の（３）、近赤外蛍光画像を（４）に示す。複数の線状のリンパ管がリンパ節に流入していることが確認できる。このように実施例１の蛍光ナノバブルの空間分布（つまりは、リンパ管の分布）を蛍光部位として明瞭に観察でき、生体組織中においても近赤外蛍光観察用造影剤としての機能に問題がないことを確認した。
【００６７】
リンパ節が存在する部位の体表から、リンパ管を介して実施例1の蛍光ナノバブルがリンパ節に流入する瞬間を上記超音波画像診断装置で観察し、図６（２）に示す超音波画像を得た。なお、予め、実施例１の蛍光ナノバブルを皮下注射する前にも同様の撮影を行ったので、その撮影画像を図６（１）に示す。リンパ節など低エコー強度部位においては、実施例１の体内動態をリアルタイムで確認できることを確かめた。
【００６８】
以上、近赤外蛍光造影の蛍光画像（図５）と超音波造影の画像（図６）から、次のことが分かる。近赤外蛍光造影では、リンパ管の広範囲での走行（マクロな走行）を、超音波造影では、リンパ節の局所的な（ミクロな）内部構造を知ることができる。つまり、本発明の蛍光ナノバブルは、同じ部位について一度の造影剤注射でマルチスケールの観察を可能にする。
【００６９】
実施例２
（１）両用造影剤（略称“蛍光マイクロバブル”）の作製
ホスファチジルコリン(ＤＳＰＣ) を１５ｍｇ、卵黄レシチンを７．６ｍｇ、ＩＣＧ−Ｃ１８を０．７０ｍｇ計量し、ミル容器に移した。
【００７０】
このミル容器を液体窒素に浸し凍結を行った。このミル容器を今度はミキサーミルにセットし容器内の凍結物の粉砕を行った。粉砕条件は「２０ frequency／sec」で２分間である。
【００７１】
そして、再度上記の凍結と粉砕を１回繰り返した。
【００７２】
こうして粉砕したものをビーカーに移し、そのビーカーに５ｍｌのＰＢＳ溶液を注ぎ入れ、マグネチックスターラー（４００ｒｐｍ）を用いて撹拌混合し、溶液（リン脂質溶液）を作製した。
【００７３】
このリン脂質溶液にＰＢＳ溶液を更に５ｍｌ、ＤＳＰＥ-ＰＥＧ２０００を１０ｍｇ加え、マグネチックスターラー（４００ｒｐｍ）で６時間攪拌し，リン脂質混合分散液（リポソーム粒子を含む分散液）を作製した。
【００７４】
次いで、この分散液をシリンジ（注射器）で吸い取り、更に空気を「分散液：空気の容量比が２：１」にシリンジ内に入れ、そのシリンジを手で激しく振ることにより、分散液と空気を攪拌し、これにより、バブル分散液を作製した。
【００７５】
最後に、このバブル分散液を超音波ホモジナイザーで攪拌することにより、粒径整形を行い、こうして、リポソーム平均粒径（直径）：２．４μｍ（＝半径１．２μｍ×２）、リポソーム粒子濃度：５．５３ × １０４ 個／ｍｍ３の両用造影剤（略称“蛍光マイクロバブル”）を得た。
【００７６】
この“蛍光マイクロバブル”のイメージを図７に示す。
【００７７】
（２）比較例２
比較例２は、ＩＣＧ―Ｃ１８が結合していないリポソーム粒子（懸濁液）である。ＩＣＧ−Ｃ１８が結合していない点を除けば、実施例２の両用造影剤（略称“蛍光マイクロバブル”）と作製方法は同じである。この造影剤の主体はリポソーム懸濁液であり、分散質はリポソーム粒子、分散媒はＰＢＳ溶液である。このリポソーム粒子の平均粒径（直径）は２．２μｍ（半径１．１μｍ×２）であり、リポソーム濃度は６．６５×１０４個／ｍｍ３である。リポソーム粒子に内包された気体は空気である。
【００７８】
図１１は、（１）実施例２の造影剤及び（２）比較例２のリポソーム粒子（懸濁液）を、それぞれ１００倍対物レンズ（品番UPlansApo、オリンパス株式会社の商品）を接続した光学顕微鏡（品番BX51、Olympus社の商品）を用いて観察した明視野像（写真）である。実施例２及び比較例２のリポソーム粒子が球形であることが分かる。
【００７９】
上記光学顕微鏡には、通常の明視野観察に加えて、近赤外蛍光観察も可能とするべく、落射蛍光システム、キセノン光源（品番 U-LH75XEAPO、オリンパス株式会社の商品）及び超高感度EMCCDカメラ（品番 iXons3、ANDOR TECHNOLOGY社の製品）が付加されており、ソフトウェア上で明視野観察（可視光観察モード）と蛍光観察（蛍光観察モード）を切り替えることができる。つまり、同一対象物の明視野と近赤外蛍光の顕微鏡画像を取得できる。
【００８０】
図１２は、蛍光観察モードで取得した蛍光画像（写真）である。（１）実施例２の写真は球形のものが明るく映っており、それに対し（２）比較例２の写真は何も写っておらず真っ黒である。図１２（２）の写真では、同一観測（蛍光撮影）条件（励起光強度やゲインなどの設定）で撮影しているが、蛍光画像は確認されない。
【００８１】
図１２の（１）、（２）の比較から、リポソーム粒子のリン脂質膜にＩＣＧ-Ｃ１８が結合していることが確認できる。なお、図１２の（１）＜２次元写真＞を良く見ると、輪帯状に明るく光っているが、輪帯内部では光っていない。これは顕微鏡システムの被写界深度、つまり２次元写真に対し奥行き方向の観察範囲に限界があり、輪帯内部におけるリン脂質膜表面部分のＩＣＧ−Ｃ１８の蛍光が観察されていないためである。
明視野観察画像（図１１）と近赤外蛍光画像（図１２）で僅かにリポソーム粒子の位置が異なるが、これは観察時にリポソーム粒子が動いたためである。
【００８２】
（３）上記平均粒径、粒子濃度及び粒径分布の測定
実施例２の“蛍光マイクロバブル”と比較例２（リポソーム懸濁液）について、粒子の平均粒径、粒子濃度（数密度）及び粒径分布を測定した。各２０μｌ用意し、血球計算盤（トーマ盤、品番2-5552-31、アズワン株式会社の商品）に注入し、光学顕微鏡により観察した。所定体積内の粒子の数と半径を計測し、その後、計算することで、平均粒径、粒子濃度（数密度）及び粒径分布を求めた。この結果を図１３に示す。
実施例２の“蛍光マイクロバブル”の粒子濃度（数密度）、平均粒径（半径）±標準偏差は、５．５３×１０4／ｍｍ３、１．２±０．４９μｍであり、比較例２のそれは、６．６５×１０4／ｍｍ３、１．１±０．５３μｍであり、ほぼ等しい。
【００８３】
（４）評価
(イ)ファントム実験
実施例１で用いた簡易流路システム（図３参照）を使用した。２本の流路（直径φ＝２ｍｍ）にそれぞれ実施例２の“マイクロバブル”と比較例２を循環させ、近赤外蛍光観察装置（品番HyperEye Medical Systems II、瑞穂医科工業株式会社の商品）と超音波画像診断装置（Aplio500、東芝メディカルシステムズ社の商品）を使用してそれぞれ撮影した。この結果を図８に示す。
【００８４】
図８は、実施例２、比較例２及びＰＢＳ（生理食塩水）を、前者２つは第１実験で同時に後者ＰＢＳは第２実験で、流路内を循環させ、上記近赤外蛍光観察装置を用いて簡易流路システム（図３＝側面図）の上から観察撮影したときの流路の蛍光画像［（２）、（３）］と超音波画像診断装置で撮影したときの流路の断層画像［（５）、（６）］である。なお、図８（２）〜（３）から、ＩＣＧ−Ｃ１８を結合又は含有していない比較例２及びＰＢＳ（生理食塩水）は、流路が全く映って（蛍光して）おらず、それに対し実施例２は流路が映って（蛍光して）おり、実施例２が近赤外蛍光観察用造影剤として機能していることがわかる。
【００８５】
また、図８（６）から、実施例２と比較例２は、造影剤が存在する流路が超音波造影の高輝度部位として観察造影されていることが分かる。それに対し（５）に示されるようにＰＢＳ（生理食塩水）では流路（正確には流路の内部）が超音波造影の低輝度部位として観察造影されていることが分かる。但し、流路の壁は高輝度部位として観察されている。
【００８６】
この結果、ＩＣＧ−Ｃ１８が結合した実施例２は、超音波造影剤としての機能はＩＣＧ−Ｃ１８が結合していない比較例２と比べて同等であることがわかる。
【００８７】
(ロ)動物実験
（ａ）食肉用のトリ胸肉を用意し、図９に示すように、これの深さ１ｍｍ、５ｍｍ、１５ｍｍの位置に注射器で実施例２の造影剤を注入し、表面から超音波造影撮影及び近赤外蛍光造影撮影を行った。前者は、近赤外蛍光観察装置（品番HyperEye Medical Systems II、瑞穂医科工業株式会社の商品）を用い、後者は超音波画像診断装置（品番Aplio500、東芝メディカルシステムズ社の商品）を用いた。
【００８８】
この結果を図１０に示す。図１０（１）は造影剤投与後にデジタルカメラでトリ胸肉の外から観察撮影したトリ胸肉の外観写真であり、図１０（２）は上記近赤外蛍光観察装置でトリ胸肉の外から撮影取得した蛍光画像である。表面から１ｍｍ、５ｍｍの深さに実施例２を投与した部位では投与部位が明るく蛍光していることが分かるが、１５ｍｍの深さに投与した部位では明確な蛍光は観察されなかった。生体組織の表面から１０ｍｍより浅い部位では、実施例２が近赤外蛍光観察用造影剤として機能することを確認した。これは通常のＩＣＧと同程度の性能である。
【００８９】
図１０（３）は、造影剤投与前に超音波診断装置（品番Aplio500、東芝メディカルシステムズ社の商品）で観察したトリ胸肉の断層画像である。注射器先端を表面から１５〜１７ｍｍ深部の位置に明るい線状の構造体として視認できる。表面から１７〜２０ｍｍの深度に存在する明るい部位はトリ胸肉と土台の境界である。図１０（４）は、造影剤投与後に同一部位を同一機器を用いて観察した断層画像である。造影剤投与前に確認された注射器先端を中心として明るさが増していることが分かり、本実施例の造影剤“蛍光マイクロバブル”が超音波造影剤として機能することを確認した。
【００９０】
なお、開腹下のブタ肝臓を対象に動脈又は門脈に直接に実施例２の造影剤を注入し、肝臓表面から内部脈管構造を観察することも可能である。
【００９１】
以上、説明した通り、本発明の両用造影剤は、生体組織に注入した場合、それ自体は深く注入されるので、近赤外蛍光造影では生体組織の深さ１０ｍｍ程度まで、超音波造影では生体組織の深さ３０ｍｍ程度まで撮影（観察）可能である。
【００９２】
従って、深さ１０ｍｍ程度までは近赤外蛍光造影と超音波造影の両方で重複して観察可能であり、深さ１０ｍｍ程度〜３０ｍｍ程度の間は超音波造影のみで観察可能となる。重複して観察可能な領域（深さ１０ｍｍ程度まで）では、広範囲観察の得意な近赤外蛍光造影で見たい個所（患部）を特定し、その個所（患部）について、今度は高分解能の超音波造影で見ると言う便利なことが可能となる。この場合、従来の近赤外蛍光造影剤は分子が小さいことから組織内で拡散し易く滞留時間が短いので困るが、本発明の両用造影剤は、近赤外蛍光造影剤部分がリポソーム粒子に結合しているので大きく、そのため、滞留時間が長い利点を持つ。なお、滞留時間はナノバブルに比べマイクロバブルが長い。
【産業上の利用可能性】
【００９３】
本発明の超音波造影及び近赤外蛍光造影の両方が可能な造影剤は、生体組織（例えば、肝臓、腎臓、膵臓、胆のう、胃、胃、十二指腸、皮膚など）の深部（具体的には深さ０〜数十ｍｍ）の微小血管系やリンパ管系にも届くので、それらの分布状況をマクロ、ミクロなマルチスケールで撮影し、画像を得ることができる。そのため、生体組織（患部）の病理診断、研究などに利用可能である。よって、試薬業、製薬業、病院、大学、研究所などにおいて利用可能性がある。
【符号の説明】
【００９４】
１・・・・リポソーム粒子
２・・・・気体
３・・・・色素
４・・・・生理食塩水（ＰＢＳ）
【図１】
2019182778.tif 000003
【図２】
2019182778.tif 000004
【図３】
2019182778.tif 000005
【図４】
2019182778.tif 000006
【図５】
2019182778.tif 000007
【図６】
2019182778.tif 000008
【図７】
2019182778.tif 000009
【図８】
2019182778.tif 000010
【図９】
2019182778.tif 000011
【図１０】
2019182778.tif 000012
【図１１】
2019182778.tif 000013
【図１２】
2019182778.tif 000014
【図１３】
2019182778.tif 000015
【図１４】
2019182778.tif 000016