(57)【要約】      （修正有）【課題】新規なメラニン生成抑制用組成物、美白用組成物、及び発現抑制用組成物を提供。【解決手段】プリュウロクリシス・カルテレの水抽出物を含有するメラニン生成抑制用組成物、美白用組成物、及びメラニン生成に関わる遺伝子の発現抑制用組成物。【選択図】図１
2019182801.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
プリュウロクリシス・カルテレの水抽出物を含有することを特徴とするメラニン生成抑制用組成物。
【請求項２】
プリュウロクリシス・カルテレの水抽出物を含有することを特徴とする美白用組成物。
【請求項３】
チロシナーゼ遺伝子の発現を抑制する発現抑制用組成物であって、プリュウロクリシス・カルテレの水抽出物を含有することを特徴とする発現抑制用組成物。
【請求項４】
小眼球症関連転写因子の発現を抑制する発現抑制用組成物であって、プリュウロクリシス・カルテレの水抽出物を含有することを特徴とする発現抑制用組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、メラニン生成抑制用組成物、美白用組成物、及び発現抑制用組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
日焼け等による色素沈着、しみ、そばかす等の原因の一つとして、メラノサイトにおけるメラニンの過剰な生成が挙げられる。メラニンの生成を抑制する美白用組成物としては、例えば、特許文献１及び特許文献２に開示されるように、チロシンからのメラニンの生成に関与する酵素であるチロシナーゼの活性を抑制する美白用組成物や、メラニン生成に関与する遺伝子群の転写制御を担う転写因子である小眼球症関連転写因子の発現を抑制する美白用組成物が知られている。
【０００３】
また、微細綱の藻体が有する作用についての様々な研究が行われている。例えば、特許文献３には、ハプト藻綱イソクリシス目プリュウロクリシス属の藻体から得られる抽出物に、抗酸化作用があることが開示されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特開２０１１−８８８５６号公報
【特許文献２】特開２０１３−１６３６４５号公報
【特許文献３】特開２００２−６９４４３号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
本発明は、本研究者らによる鋭意研究の結果、ハプト藻綱イソクリシス目プリュウロクリシス属の藻体であるプリュウロクリシス・カルテレの水抽出物が、メラニン生成を抑制する作用、メラニン生成に関わる遺伝子の発現を抑制する作用を発揮することを新たに見出したことに基づいてなされたものである。本発明の目的は、新規なメラニン生成抑制用組成物、美白用組成物、及び発現抑制用組成物を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
上記課題を解決するメラニン生成抑制用組成物は、プリュウロクリシス・カルテレの水抽出物を含有する。
上記課題を解決する美白用組成物は、プリュウロクリシス・カルテレの水抽出物を含有する。
【０００７】
上記課題を解決する発現抑制用組成物は、チロシナーゼ遺伝子の発現を抑制する発現抑制用組成物であって、プリュウロクリシス・カルテレの水抽出物を含有する。
上記課題を解決する発現抑制用組成物は、小眼球症関連転写因子の発現を抑制する発現抑制用組成物であって、プリュウロクリシス・カルテレの水抽出物を含有する。
【発明の効果】
【０００８】
本発明によれば、新規なメラニン生成抑制用組成物、美白用組成物、及び発現抑制用組成物が提供される。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】α−ＭＳＨの刺激により促進されるメラニン生成について、試験液を投与した場合の影響を示すグラフ。
【図２】通常時のメラニン生成について、試験液を投与した場合の影響を示すグラフ。
【図３】α−ＭＳＨの刺激により促進されるチロシナーゼ遺伝子の発現について、試験液を投与した場合の影響を示すグラフ。
【図４】α−ＭＳＨの刺激により促進される小眼球症関連転写因子の発現について、試験液を投与した場合の影響を示すグラフ。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
以下、本発明の一実施形態を説明する。
本実施形態の組成物（以下、本組成物と記載する。）は、プリュウロクリシス・カルテレの水抽出物を有効成分として含有する。
【００１１】
プリュウロクリシス・カルテレ（Pleurochrysis carterae）は、ハプト藻綱(Haptophceae)イソクリシス目(Isochrysidales)プリュウロクリシス属(Pleurochrysis)に属する藻体である。プリュウロクリシス・カルテレ（以下、上記藻体と記載する。）は、天然に自生する藻体であってもよいし、人工的に培養した藻体であってもよい。なお、安定供給が可能である点や品質保持が容易である点から、人工的に培養した藻体を用いることが工業的に好適である。
【００１２】
本組成物に含有される上記水抽出物は、上記藻体を原料として抽出処理を行うことにより得ることができる。
原料としての上記藻体は、採取したままの状態、採取後に破砕処理した状態、採取後に乾燥処理した状態、又は採取後に破砕処理及び乾燥処理した状態のいずれであってもよい。抽出処理時における効率化の観点から、上記藻体を破砕したものを原料として用いることが好ましい。
【００１３】
抽出処理では、抽出溶媒として水を用いる。抽出方法としては、例えば、冷水抽出、温水抽出、熱水抽出、及び蒸気抽出等の公知の抽出方法のいずれの方法も用いることができるが、抽出効率の観点から温水抽出や熱水抽出を用いることが好ましい。具体的な方法としては、抽出溶媒中に原料である藻体を所定時間、浸漬させた後、固液分離操作を行うことにより抽出液（水抽出物）と残渣とに分離する。そして、必要に応じて得られた抽出液（水抽出物）の濃縮を行う。
【００１４】
なお、抽出溶媒中における原料の濃度や抽出温度は適宜、設定することができる。更に、抽出効率を高めるために、抽出時に攪拌処理、加圧処理、及び超音波処理等の処理を行ってもよい。また、抽出溶媒中には、水以外の溶媒や添加剤が少量含有されていてもよい。添加剤としては、例えば、有機塩、無機塩、緩衝剤、及び乳化剤等が挙げられる。また、固液分離処理の方法としては、ろ過や遠心分離等の公知の分離法を用いることができる。また、上記抽出処理は同一の原料に対して一回のみ行なってもよいし、複数回繰り返して行なってもよい。
【００１５】
次に、本組成物の作用について説明する。
本組成物を摂取することにより、メラニンの生成が抑制される。したがって、本組成物は、メラニン生成の抑制作用の発揮を目的としたメラニン生成抑制用組成物、及びメラニン生成の抑制に基づく美白作用の発揮を目的とした美白用組成物として適用することができる。
【００１６】
また、本組成物を摂取することにより、チロシンからのメラニン生成に関与する酵素であるチロシナーゼの遺伝子の発現が抑制される。したがって、本組成物は、チロシナーゼ遺伝子の発現の抑制作用の発揮を目的とした発現抑制用組成物として適用することができる。さらに、当該発現抑制用組成物は、チロシナーゼ遺伝子の発現を抑制する作用に基づいてチロシナーゼの発現を抑制するチロシナーゼ発現抑制用組成物として適用することもできる。
【００１７】
また、本組成物を摂取することにより、メラニン生成に関与する遺伝子群の転写制御を担う転写因子である小眼球症関連転写因子（Ｍｉｔｆ：Microphthalmia-associated transcription factor）の発現が抑制される。したがって、本組成物は、小眼球症関連転写因子の発現の抑制作用の発揮を目的とした発現抑制用組成物として適用することができる。
【００１８】
本組成物からなるメラニン生成抑制用組成物、美白用組成物、及び発現抑制用組成物はそれぞれ、飲食品、医薬品、医薬部外品、化粧品等の各分野に適用することができる。
飲食品としては、例えば、各種飲料類（果汁又は野菜汁入り飲料、清涼飲料、ミネラル飲料、スポーツドリンク、茶類飲料、コーヒー、炭酸飲料、牛乳やヨーグルト等の乳製品等）、ゼリー状食品（ゼリー、寒天、ゼリー状飲料等）、カプセル（ソフトカプセル、ハードカプセル）、各種菓子類が挙げられる。飲食品には、ペクチンやカラギーナンなどのゲル化剤、グルコース、ショ糖、果糖、乳糖、ステビア、アスパルテーム、糖アルコール等の糖類・甘味料、香料等の食品添加剤、植物性油脂及び動物性油脂等の油脂等を適宜含有させることができる。また、飲食品の用途としては、特に限定されず、いわゆる一般食品、健康食品、機能性食品、栄養補助食品、サプリメント、特定保健用食品、機能性表示食品、病者用食品として適用することができる。
【００１９】
医薬品、医薬部外品、化粧品として使用する場合の投与方法は特に限定されるものではない。具体的な投与方法としては、例えば、服用（経口摂取）による投与、血管内投与、経腸投与、経皮投与、腹腔内投与が挙げられる。また、医薬品、医薬部外品、化粧品として使用する場合の剤形は特に限定されるものではない。具体的な剤形としては、例えば、散剤、粉剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤、丸剤、坐剤、液剤、注射剤が挙げられる。また、添加剤として、例えば、賦形剤、基剤、乳化剤、溶剤、安定剤等を含有してもよい。
【００２０】
次に、上記実施形態の効果について説明する。
（１）メラニン生成抑制用組成物は、プリュウロクリシス・カルテレの水抽出物を含有する。
【００２１】
上記構成によれば、メラニンの生成を抑制する効果が得られる。
（２）美白用組成物は、プリュウロクリシス・カルテレの水抽出物を含有する。
上記構成によれば、メラニンの生成が抑制されることにより、肌の美白効果が得られる。
【００２２】
（３）チロシナーゼ遺伝子の発現を抑制する発現抑制用組成物は、プリュウロクリシス・カルテレの水抽出物を含有する。
上記構成によれば、チロシナーゼ遺伝子の発現を抑制する効果が得られる。
【００２３】
（４）小眼球症関連転写因子の発現を抑制する発現抑制用組成物は、プリュウロクリシス・カルテレの水抽出物を含有する。
上記構成によれば、小眼球症関連転写因子の発現を抑制する効果が得られる。
【００２４】
なお、本実施形態は、以下のように変更して実施することができる。本実施形態及び以下の変更例は、技術的に矛盾しない範囲で互いに組み合わせて実施することができる。
・メラニン生成抑制用組成物、美白用組成物、及び発現抑制用組成物は、それぞれの目的とする作用を損なわない範囲において、他の成分を含有していてもよい。
【００２５】
・メラニン生成抑制用組成物、美白用組成物、及び発現抑制用組成物の摂取量及び摂取期間は、特に限定されず、摂取者の身体機能の状態、年齢、性別、及びその他の条件を考慮し、適宜、決定される。
【００２６】
・メラニン生成抑制用組成物、美白用組成物、及び発現抑制用組成物は、ヒトを対象として適用することができるのみならず、家畜等の飼養動物に対する飼料、薬剤等に適用してもよい。
【００２７】
次に、上記実施形態及び変更例から把握できる技術的思想について記載する。
（イ）プリュウロクリシス・カルテレの熱水抽出物を含有するメラニン生成抑制用組成物、美白用組成物、又は発現抑制用組成物。
【００２８】
（ロ）プリュウロクリシス・カルテレを水抽出する工程を有するメラニン生成抑制用組成物、美白用組成物、及び発現抑制用組成物の製造方法。
【実施例】
【００２９】
以下に試験例を挙げ、上記実施形態をさらに具体的に説明する。なお、本発明はこれらに限定されるものではない。
＜試験液の調製＞
プリュウロクリシス・カルテレをフラスコ内で培養した。３０００ｒｐｍ、１５分間の遠心分離処理によりフラスコ内のコロニーを採取して、その後すぐに凍結乾燥させることにより藻体の乾燥粉体を得た。得られた乾燥粉体（３０ｇ）に水（１０００ｍＬ）を加えて、９０℃にて６０分間攪拌した。冷却後、１００００ｒｐｍ、１５分間の遠心分離処理と、ガラス繊維ろ紙（GA-100）を用いたろ過処理により得られた液を減圧濃縮して２００ｍＬの濃縮液を得、これを試験液とした。濃縮液の固形分濃度は７８ｍｇ／ｍＬであった。なお、試験液は使用まで−２０℃で保存した。
【００３０】
＜培地の調製＞
ダルベッコ変法イーグル培地（ＤＭＥＭ：シグマアルドリッチ社製Ｄ６０４６）に、熱不活化ウシ胎児血清を最終濃度５％、ペニシリンを最終濃度５０ｕｎｉｔｓ／ｍＬ、ストレプトマイシンを最終濃度５０μｇ／ｍＬとなるように添加し、これを後述する試験に用いる培地とした。
【００３１】
＜試験１＞
α−ＭＳＨ（メラノサイト刺激ホルモン）の刺激により促進されるメラニン生成について、試験液を投与した場合の影響を評価した。なお、α−ＭＳＨは、細胞内ｃＡＭＰ濃度を上昇させるとともに、チロシナーゼ遺伝子及び小眼球症関連転写因子の発現を促進させ、最終的にメラニン生成を強く促進させる生理活性物質である。
【００３２】
通常時のメラニン生成能が低いＢ１６Ｆ１細胞（マウス由来メラノーマ培養細胞）を、５．０×１０４ｃｅｌｌｓ／６０φｄｉｓｈとなるように播種し、上記培地を用いて、３７℃、５％ＣＯ２の条件下にて２４時間、培養した。その後、培地を交換して、α−ＭＳＨを最終濃度０，１０ｎＭとなるように培地に添加するとともに、試験液を０，１０，２０μＬ／ｍＬとなるように培地に添加し、３７℃、５％ＣＯ２の条件下にて９６時間、培養した後、培地を除去し、トリプシン／ＥＤＴＡで細胞を処理することにより細胞懸濁液を得た。細胞懸濁液を採取しFuchs-Rosenthal細胞計算盤で細胞数を計測した。
【００３３】
次に、細胞懸濁液に対して、１０００ｒｐｍ、５分間の遠心分離処理を行い、ＰＢＳで再懸濁した後、さらに１０００ｒｐｍ、５分間の遠心分離処理を行うことにより、細胞ペレットを得た。１×１０６ｃｅｌｌｓあたり１００μＬとなるように２ＭＮａＯＨを細胞ペレットに注ぎこみ、１００℃の湯浴上で２０分間の処理を行った。メラニンが完全に溶解したことを確認し、４０５ｎｍにおける吸光度を測定した。
【００３４】
合成メラニンから作成した検量線を用いて、１細胞あたりのメラニン含有量を求めた。その結果を図１のグラフに示す。図１のグラフから、試験液（P.carterae）を投与することによって、α−ＭＳＨの刺激により促進されたメラニン生成が顕著に抑制されることが分かる。
【００３５】
＜試験２＞
外部刺激に因らない通常時のメラニン生成について、試験液を投与した場合の影響を評価した。
【００３６】
通常時のメラニン生成能が高いＢ１６Ｆ１０細胞（マウス由来メラノーマ培養細胞）を、５．０×１０４ｃｅｌｌｓ／６０φｄｉｓｈとなるように播種し、上記培地を用いて、３７℃、５％ＣＯ２の条件下にて２４時間、培養した。その後、培地を交換して、試験液を０，２０μＬ／ｍＬとなるように培地に添加し、３７℃、５％ＣＯ２の条件下にて１２０時間、培養した後、培地を除去し、トリプシン／ＥＤＴＡで細胞を処理することにより細胞懸濁液を得た。細胞懸濁液を採取しFuchs-Rosenthal細胞計算盤で細胞数を計測した。
【００３７】
次に、細胞懸濁液に対して、１０００ｒｐｍ、５分間の遠心分離処理を行い、ＰＢＳで再懸濁した後、さらに１０００ｒｐｍ、５分間の遠心分離処理を行うことにより、細胞ペレットを得た。１×１０６ｃｅｌｌｓあたり４００μＬとなるように２ＭＮａＯＨを細胞ペレットに注ぎこみ、１００℃の湯浴上で２０分間の処理を行った。メラニンが完全に溶解したことを確認し、４０５ｎｍにおける吸光度を測定した。
【００３８】
合成メラニンから作成した検量線を用いて、１細胞あたりのメラニン含有量を求めた。その結果を図２のグラフに示す。図２のグラフから、通常時のメラニン生成についても、試験液（P.carterae）を投与することによって顕著に抑制されることが分かる。
【００３９】
＜試験３＞
α−ＭＳＨの刺激により促進されるチロシナーゼ遺伝子及び小眼球症関連転写因子の発現について、試験液を投与した場合の影響を評価した。
【００４０】
Ｂ１６Ｆ１細胞を、１×１０５ｃｅｌｌｓ／６０φｄｉｓｈとなるように播種し、上記培地を用いて、３７℃、５％ＣＯ２の条件下にて２４時間、培養した。その後、培地を交換して、α−ＭＳＨを最終濃度０，２０ｎＭとなるように培地に添加するとともに、試験液を０，２０μＬ／ｍＬとなるように培地に添加し、３７℃、５％ＣＯ２の条件下にて７２時間、培養した。なお、２４時間ごとに、培地の交換と、０，２０μＬ／ｍＬとなるように試験液の添加を行った。
【００４１】
その後、培地を除去し、ＲＮＡ抽出試薬（ニッポンジーン社製ＩＳＯＧＥＮ２）を用いて細胞を溶解し、全ＲＮＡを抽出した。そして、ＲＴ−ＰＣＲ用キット（タカラバイオ社製RNA PCR kit (AMV) Ver.3.0）を用いてｃＤＮＡを作成した。得られたｃＤＮＡ、プライマー、ＰＣＲ試薬（Life Technologies社製Power UP SYBR Green Master Mix）を混合し、リアルタイムＰＣＲ法により、チロシナーゼのｍＲＮＡ発現量、小眼球症関連転写因子のｍＲＮＡ発現量、及び内部標準としてのＧＡＰＤＨのｍＲＮＡ発現量を測定した。
【００４２】
なお、リアルタイムＰＣＲ反応には、リアルタイムＰＣＲシステム（Applied Biosystems社製7500 fast real-time PCR system）を用いた。リアルタイムＰＣＲ反応の反応条件は、９５℃で１０秒、６０℃で３０秒を１サイクルとして、計４０サイクルとした。用いたプライマーの配列は以下のとおりである。
【００４３】
［チロシナーゼ］
Upstream：5′-TTG CCA CTT CAT GTC ATC ATA GAA TAT T-3′
Downstream：5′- TTT ATC AAA GGT GTG ACT GCT ATA CAA AT-3′
［小眼球症関連転写因子］
Upstream：5′-CGC CTG ATC TGG TGA ATC G-3′
Downstream：5′-CCT GGC TGC AGT TCT CAA GAA-3′
［ＧＡＰＤＨ］
Upstream：5′-CGT CCC GTA GAC AAA ATG GT-3′
Downstream：5′-TTG ATG GCA ACA ATC TCC AC-3′
測定されたチロシナーゼ遺伝子のｍＲＮＡ発現量をＧＡＰＤＨのｍＲＮＡ発現量で補正するとともに、α−ＭＳＨを添加し、試験液を添加していない場合のチロシナーゼ遺伝子のｍＲＮＡ発現量の補正値を「１」としたチロシナーゼ遺伝子のｍＲＮＡ発現レベルを求めた。その結果を図３のグラフに示す。
【００４４】
同様に、測定された小眼球症関連転写因子のｍＲＮＡ発現量をＧＡＰＤＨのｍＲＮＡ発現量で補正するとともに、α−ＭＳＨを添加し、試験液を添加していない場合の小眼球症関連転写因子のｍＲＮＡ発現量の補正値を「１」とした小眼球症関連転写因子のｍＲＮＡ発現レベルを求めた。その結果を図４のグラフに示す。
【００４５】
図３のグラフから、試験液（P.carterae）を投与することによって、α−ＭＳＨの刺激により促進されたチロシナーゼ遺伝子の発現が顕著に抑制されることが分かる。
図４にグラフから、試験液（P.carterae）を投与することによって、α−ＭＳＨの刺激により促進された小眼球症関連転写因子（Ｍｉｔｆ）の発現が、α−ＭＳＨによる刺激をしていないレベルまで顕著に抑制されることが分かる。
【図１】
2019182801.tif 000003
【図２】
2019182801.tif 000004
【図３】
2019182801.tif 000005
【図４】
2019182801.tif 000006