(57)【要約】      （修正有）【課題】ＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異を有するフクチン遺伝子の異常スプライシングを正常化することにより、福山型筋ジストロフィーを治療し得るアンチセンス核酸を提供する。【解決手段】ＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異を有するフクチン遺伝子の転写段階において、特定配列の第１１１１７７位のグアニンの３’側のスプライシング供与部位および第１１５９４３位のチミンの５’側のスプライシング受容部位を用いる異常スプライシングを抑制するアンチセンス核酸であって、特定の塩基配列の第１１５９３７位〜第１１５９８１位の範囲を標的配列とし９〜２４塩基からなることを特徴とするアンチセンス核酸。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
配列番号１で示される塩基配列の第１１５９３７位〜第１１５９８１位の範囲を標的配列とし９〜２４塩基からなることを特徴とするアンチセンス核酸。
【請求項２】
配列番号６〜７０（ただし、配列番号３２、６０、６４、６５、６６および６７を除く）から選択される塩基配列からなることを特徴とする請求項１に記載のアンチセンス核酸。
【請求項３】
生理食塩水に５０ｍｇ／ｍＬ以上溶解することを特徴とする請求項１または２に記載のアンチセンス核酸。
【請求項４】
配列番号１８、１９、２６、２７、３３、３７、４３、５３、５５、５８、５９、６１、６３、６８、６９および７０から選択される塩基配列からなることを特徴とする請求項１〜３のいずれかに記載のアンチセンス核酸。
【請求項５】
投与用量６０ｍｇ／ｋｇのアンチセンス核酸をマウスに投与したときに、ＡＳＴ値、ＡＬＴ値、ＢＵＮ値およびクレアチニン値のいずれにも異常値がみられないことを特徴とする請求項１または２に記載のアンチセンス核酸。
【請求項６】
配列番号５０、５１および６２から選択される塩基配列からなることを特徴とする請求項１、２または５のいずれかに記載のアンチセンス核酸。
【請求項７】
生理食塩水に５０ｍｇ／ｍＬ以上溶解し、かつ、投与用量６０ｍｇ／ｋｇのアンチセンス核酸をマウスに投与したときに、ＡＳＴ値、ＡＬＴ値、ＢＵＮ値およびクレアチニン量のいずれにも異常値がみられないことを特徴とする請求項１または２に記載のアンチセンス核酸。
【請求項８】
アンチセンス核酸の３’末端および／または５’末端が非修飾であることを特徴とする請求項１〜７のいずれかに記載のアンチセンス核酸。
【請求項９】
アンチセンス核酸の３’末端および／または５’末端が修飾されていることを特徴とする請求項１〜７のいずれかに記載のアンチセンス核酸。
【請求項１０】
アンチセンス核酸の３’末端および／または５’末端がトリエチレングリコール（ＴＥＧ）修飾、ヘキサエチレングリコール（ＨＥＧ）修飾およびドデカエチレングリコール（ＤＯＤＥＧ）修飾からなる群から選択される１種または２種の修飾がされていることを特徴とする請求項９に記載のアンチセンス核酸。
【請求項１１】
オリゴデオキシリボヌクレオチド、オリゴリボヌクレオチド、モルホリノオリゴマーまたはこれらのキメラオリゴヌクレオチドである請求項１〜１０のいずれかに記載のアンチセンス核酸。
【請求項１２】
モルホリノオリゴマーである請求項１１に記載のアンチセンス核酸。
【請求項１３】
ホスホロジアミデートモルホリノオリゴマーである請求項１２に記載のアンチセンス核酸。
【請求項１４】
フクチン遺伝子におけるＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異に起因する疾患を治療するための医薬組成物であって、請求項１〜１３のいずれかに記載のアンチセンス核酸の１種または２種以上を有効成分として含有することを特徴とする医薬組成物。
【請求項１５】
フクチン遺伝子におけるＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異に起因する疾患が、福山型筋ジストロフィー、成人発症の拡張型心筋症、またはＷａｌｋｅｒ−Ｗａｒｂｕｒｇ症候群様の重症型先天性筋ジストロフィーである請求項１４に記載の医薬組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、福山型筋ジストロフィー治療用アンチセンス核酸に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
福山型筋ジストロフィー（Fukuyama type congenital muscular dystrophy、以下「ＦＣＭＤ」と略記する場合がある。）は日本に特有の疾患であり、先天性筋ジストロフィー、ＩＩ型滑脳症、眼奇形の３症状を示す常染色体劣性の遺伝疾患である。わが国で２番目に多い小児の筋疾患で、１０代のうちに死に至る重篤な疾患であるが、未だ治療法がない。ＦＣＭＤの疾患責任遺伝子であるフクチン遺伝子は、１９９８年にポジショナルクローニング法により同定された（非特許文献１、２参照）。ほとんどのＦＣＭＤ患者はフクチン遺伝子の３’側非翻訳領域に、動く遺伝子である約３ｋｂのＳＶＡ型レトロトランスポゾン（SVA：Sine-VNTR-Alu）の挿入変異を認める（非特許文献２参照）。この変異は約１００世代前に日本人祖先のひとりに生じたもので、日本人の８８人に１人が保因者であり、約３万の出生に１人の割合で発症することが報告されている（非特許文献３参照）。ＦＣＭＤ患者の骨格筋には細胞膜と基底膜をつなぐ糖タンパク質αジストログリカンのＯ−マンノース型糖鎖修飾に欠損があり、この糖鎖を介する細胞膜と基底膜とのあいだの結合が破綻するため重度の筋ジストロフィーが発症することが知られている（非特許文献４参照）。
【０００３】
ＦＣＭＤ以外にも、フクチン遺伝子の変異に起因して様々な病態が引き起こされることが知られている（非特許文献５参照）。これらの中で、例えば、成人発症の拡張型心筋症（非特許文献６参照）およびＷａｌｋｅｒ−Ｗａｒｂｕｒｇ症候群様の重症型先天性筋ジストロフィー（非特許文献７参照）はフクチン遺伝子におけるＳＶＡ型レトロトランスポゾン挿入変異が原因であることが報告されている。
【０００４】
本発明者らは、ＦＣＭＤがＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入により誘導されるスプライシング異常症であることを証明した（非特許文献８参照）。より詳細には、疾患責任遺伝子であるフクチン遺伝子の最終エクソン（エクソン１０）の３’側非翻訳領域に挿入されたＳＶＡ型レトロトランスポゾンの配列に存在する強力なスプライシング受容部位がエクソン１０の翻訳領域にある潜在的なスプライシング供与部位を新たに活性化すること（エクソントラッピング）が原因であることを明らかにした。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献１】Toda, T., Segawa, M., Nomura, Y. et al.: Localization of a gene for Fukuyama type congenital muscular dystrophy to chromosome 9q31-33. Nat. Genet., 5, 283-286 (1993)
【非特許文献２】Kobayashi, K., Nakahori, Y., Miyake, M. et al.: An ancient retrotransposal insertion causes Fukuyama-type congenital muscular dystrophy. Nature, 394, 388-392 (1998)
【非特許文献３】Watanabe, M., Kobayashi, K., Jin, F. et al.: Founder SVA retrotransposal insertion in Fukuyama-type congenital muscular dystrophy and its origin in Japanese and Northeast Asian populations. Am. J. Med. Genet. A, 138, 344-348 (2005)
【非特許文献４】Michele, D. E., Barresi, R., Kanagawa, M. et al.: Post-translational disruption of dystroglycan-ligand interactions in congenital muscular dystrophies. Nature, 418, 417-422 (2002)
【非特許文献５】OMIM No.607440, http://omim.org/entry/607440
【非特許文献６】Murakami, T., Hayashi, Y. K., Noguchi, S., et al.: Fukutin gene mutations cause dilated cardiomyopathy with minimal muscle weakness. Ann. Neurol., 60, 597-602 (2006)
【非特許文献７】Kondo-Iida, E., Kobayashi, K., Watanabe, M., et al.: Novel mutations and genotype-phenotype relationships in 107 families with Fukuyama-type congenital muscular dystrophy (FCMD). Hum. Mol. Genet., 8, 2303-2309 (1999)
【非特許文献８】Taniguchi-Ikeda, M., et al.: Pathogenic exon-trapping by SVA retrotransposon and rescue in Fukuyama muscular dystrophy. Nature, 478, 127-131 (2011)
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明は、ＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異を有するフクチン遺伝子の異常スプライシングを正常化することにより、ＦＣＭＤ等を治療し得るアンチセンス核酸を提供することを課題とする。さらに、生理食塩水に対する溶解性に優れ、安全性が高いアンチセンス核酸を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明は、上記課題を解決するために、以下の各発明を包含する。
［１］配列番号１で示される塩基配列の第１１５９３７位〜第１１５９８１位の範囲を標的配列とし９〜２４塩基からなることを特徴とするアンチセンス核酸。
［２］配列番号６〜７０から選択される塩基配列からなることを特徴とする前記［１］に記載のアンチセンス核酸。
［３］生理食塩水に５０ｍｇ／ｍＬ以上溶解することを特徴とする前記［１］または［２］に記載のアンチセンス核酸。
［４］配列番号１８、１９、２６、２７、３２、３３、３７、４３、５３、５５、５８、５９、６０、６１、６３、６４、６５、６６、６７、６８、６９および７０から選択される塩基配列からなることを特徴とする前記［１］〜［３］のいずれかに記載のアンチセンス核酸。
［５］投与用量６０ｍｇ／ｋｇのアンチセンス核酸をマウスに投与したときに、ＡＳＴ値、ＡＬＴ値、ＢＵＮ値およびクレアチニン値のいずれにも異常値がみられないことを特徴とする前記［１］または［２］に記載のアンチセンス核酸。
［６］配列番号３２、５０、５１、６０、６２、６４、６５、６６および６７から選択される塩基配列からなることを特徴とする前記［１］、［２］または［５］のいずれかに記載のアンチセンス核酸。
［７］生理食塩水に５０ｍｇ／ｍＬ以上溶解し、かつ、投与用量６０ｍｇ／ｋｇのアンチセンス核酸をマウスに投与したときに、ＡＳＴ値、ＡＬＴ値、ＢＵＮ値およびクレアチニン値のいずれにも異常値がみられないことを特徴とする前記［１］または［２］に記載のアンチセンス核酸。
［８］配列番号３２、６０、６４、６５、６６および６７から選択される塩基配列からなることを特徴とする前記［１］、［２］または［７］のいずれかに記載のアンチセンス核酸。
［９］アンチセンス核酸の３’末端および／または５’末端が非修飾であることを特徴とする前記［１］〜［８］のいずれかに記載のアンチセンス核酸。
［１０］アンチセンス核酸の３’末端および／または５’末端が修飾されていることを特徴とする前記［１］〜［８］のいずれかに記載のアンチセンス核酸。
［１１］アンチセンス核酸の３’末端および／または５’末端がトリエチレングリコール（ＴＥＧ）修飾、ヘキサエチレングリコール（ＨＥＧ）修飾およびドデカエチレングリコール（ＤＯＤＥＧ）修飾からなる群から選択される１種または２種の修飾がされていることを特徴とする前記［１０］に記載のアンチセンス核酸。
［１２］オリゴデオキシリボヌクレオチド、オリゴリボヌクレオチド、モルホリノオリゴマーまたはこれらのキメラオリゴヌクレオチドである前記［１］〜［１１］のいずれかに記載のアンチセンス核酸。
［１３］モルホリノオリゴマーである前記［１２］に記載のアンチセンス核酸。
［１４］ホスホロジアミデートモルホリノオリゴマーである前記［１３］に記載のアンチセンス核酸。
［１５］フクチン遺伝子におけるＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異に起因する疾患を治療するための医薬組成物であって、前記［１］〜［１４］のいずれかに記載のアンチセンス核酸の１種または２種以上を有効成分として含有することを特徴とする医薬組成物。
［１６］フクチン遺伝子におけるＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異に起因する疾患が、福山型筋ジストロフィー、成人発症の拡張型心筋症、またはＷａｌｋｅｒ−Ｗａｒｂｕｒｇ症候群様の重症型先天性筋ジストロフィーである前記［１５］に記載の医薬組成物。
【発明の効果】
【０００８】
本発明により、フクチン遺伝子におけるＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異に起因する疾患の治療に有効なアンチセンス核酸を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】ＦＣＭＤ患者におけるフクチンゲノム、異常スプライシング産物（異常ｍＲＮＡ）および正常スプライシング産物（正常ｍＲＮＡ）、ならびに異常ｍＲＮＡおよび正常ｍＲＮＡを検出するためのプライマーの位置を示す図である。
【図２】ＦＣＭＤ患者由来細胞にアンチセンス核酸を導入し、αジストログリカンの糖鎖回復を確認した結果を示す図である。
【図３】ＦＣＭＤモデルマウス（Ｈｐ／−）にＰＭＯ Ｎｏ．９のアンチセンス核酸を静脈内投与し、大腿四頭筋におけるαジストログリカンの糖鎖の回復および正常フクチンタンパク質の回復を確認した結果を示す図である。
【図４】ＦＣＭＤモデルマウス（Ｈｐ／−）にＰＭＯ Ｎｏ．２７のアンチセンス核酸を静脈内投与し、大腿四頭筋におけるαジストログリカンの糖鎖の回復および正常フクチンタンパク質の回復を確認した結果を示す図である。
【図５】ＦＣＭＤモデルマウス（Ｈｐ／−）にＰＭＯ Ｎｏ．３９のアンチセンス核酸またはＰＭＯ Ｎｏ．４５のアンチセンス核酸を静脈内投与し、大腿四頭筋におけるαジストログリカンの糖鎖の回復および正常フクチンタンパク質の回復を確認した結果を示す図である。
【図６】（Ａ）は、５’−末端トリエチレングリコール（ＴＥＧ）修飾用樹脂の合成スキームを示し、（Ｂ）は、３’−末端結合用トリエチレングリコール（ＴＥＧ）誘導体の合成スキームを示し、（Ｃ）は、３’−末端結合用ヘキサエチレングリコール（ＨＥＧ）誘導体（化合物６）および３’−末端結合用ドデカエチレングリコール（ＤＯＤＥＧ）誘導体（化合物７）の構造を示し、（Ｄ）は、スペーサー化合物の構造を示し、（Ｅ）は、スペーサーの構造を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
〔アンチセンス核酸〕
本発明は、ＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異を有するフクチン遺伝子の転写段階において、配列番号１の第１１１１７７位のグアニンの３’側のスプライシング供与部位および第１１５９４３位のチミンの５’側のスプライシング受容部位を用いる異常スプライシングを抑制するアンチセンス核酸を提供する。
【００１１】
配列番号１で示される塩基配列は、フクチン遺伝子のゲノム配列（GenBank ACCESSION: AB038490）にＳＶＡ型レトロトランスポゾン配列（GenBank ACCESSION: AB185332）が挿入された挿入変異型フクチン遺伝子のゲノム配列であり、第１１５６６９位〜第１１８７３０位がＳＶＡ型レトロトランスポゾン配列である。挿入変異型フクチン遺伝子では、エクソントラッピングにより、配列番号１の第１１１１７７位のグアニンの３’側、つまり第１１１１７７位のグアニンと第１１１１７８位のグアニンの間が新たなスプライシング供与部位となり、第１１５９４３位のチミンの５’側、つまり第１１５９４２位のグアニンと第１１５９４３位のチミンの間が新たなスプライシング受容部位となる。換言すれば、挿入変異型フクチン遺伝子では、配列番号１の第１１１１７８位のグアニンから第１１５９４２位のグアニンをイントロンと認識し、第１１５９４３位のチミンから第１２０１９１位のグアニンをエクソンと認識する異常スプライシングが生じる。それゆえ、第１１１１７７位のグアニンの３’側のスプライシング供与部位および第１１５９４３位のチミンの５’側のスプライシング受容部位を用いる異常スプライシングを抑制すれば異常フクチンｍＲＮＡの発現量が減少し、同時に正常スプライシングに基づく正常フクチンｍＲＮＡの発現が回復し、正常フクチンタンパク質の生成が回復する。
異常フクチンｍＲＮＡの塩基配列を配列番号２に、異常フクチンタンパク質のアミノ酸配列を配列番号３に、正常フクチンｍＲＮＡの塩基配列を配列番号４に、正常フクチンタンパク質のアミノ酸配列を配列番号５にそれぞれ示す。
【００１２】
本発明のアンチセンス核酸は、挿入変異型フクチン遺伝子（配列番号１）の転写段階において、一次転写産物であるプレｍＲＮＡの上記異常スプライシングを抑制し、正常スプライシングに基づいて正常フクチンｍＲＮＡを発現させ、正常フクチンタンパク質の生成を回復させることができるものであればよい。このような効果を奏するアンチセンス核酸としては、異常スプライシングに用いられるスプライシング受容部位の周辺配列を標的配列とするものが好ましく、配列番号１で示される塩基配列の第１１５９３７位〜第１１５９８１位の範囲を標的配列とするものがより好ましい。
【００１３】
本発明のアンチセンス核酸は、標的配列（挿入変異型フクチン遺伝子のプレｍＲＮＡの塩基配列）に相補的な配列を含むものであるが、完全に相補的であることを要するものではなく、標的配列とハイブリッドを形成できる限りにおいてミスマッチを含むものであってもよい。相補的な配列部分はアンチセンス核酸の長さ（塩基数）の５０％以上、より好ましくは６０％以上、さらに好ましくは７０％以上、さらに好ましくは８０％以上、さらに好ましくは９０％以上、さらに好ましくは９５％以上、さらに好ましくは９８％以上、さらに好ましくは９９％以上、最も好ましくは１００％である。
【００１４】
本発明のアンチセンス核酸の長さは特に限定されないが、２４塩基以下であることが好ましく、２３塩基以下であることがより好ましく、２２塩基以下であることがさらに好ましい。下限は９塩基以上であることが好ましく、１０塩基以上であることがより好ましい。本発明のアンチセンス核酸の長さは、９〜２４塩基であることが好ましい。
【００１５】
異常フクチンｍＲＮＡの発現が抑制されていること、および正常フクチンｍＲＮＡの発現が回復していることは、例えば、ＦＣＭＤ患者由来の細胞に本発明のアンチセンス核酸を導入し、当該細胞を試料として定量ＲＴ−ＰＣＲ等の公知のｍＲＮＡ測定方法を用いることにより確認することができる。また、正常フクチンタンパク質の生成が回復していることは、例えば、ＦＣＭＤ患者由来の細胞に本発明のアンチセンス核酸を導入し、当該細胞を試料としてＥＬＩＳＡやウエスタンブロッティング等の公知のタンパク質測定法を用いることにより確認することができる。なお、正常フクチンタンパク質の発現量は正常なスプライシングにより生成される正常フクチンｍＲＮＡの発現量に相関するので、正常フクチンｍＲＮＡの発現量を測定することにより、間接的に正常フクチンタンパク質の生成が回復していることを評価できる。
【００１６】
正常フクチン遺伝子と挿入変異フクチン遺伝子とのヘテロ接合体（保因者）は、全フクチンタンパク質発現量の５０％が正常フクチンタンパク質であるが、筋機能および脳に異常は見られず、αジストログリカン糖鎖量も健常人と変わらない。したがって、正常ｍＲＮＡを５０％回復させることができるアンチセンス核酸は、ＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異に起因する疾患を治療することができると考えられる。本発明者らは、ＦＣＭＤ患者由来の筋芽細胞（ＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異ホモ接合体）を用いてアンチセンス核酸のスクリーニングを行った結果、表１に示す６５種類の塩基配列からなるアンチセンス核酸が正常フクチンｍＲＮＡを５０％以上回復させた。
【００１７】
【表１】
2019162111.tif 000002
【００１８】
本発明のアンチセンス核酸は、表１に示された配列番号６〜７０から選択される塩基配列からなるアンチセンス核酸であることが好ましい。また、表１に示した配列番号６〜７０のいずれかで示される塩基配列において、標的配列とハイブリッドを形成できる限りいくつかの塩基が欠失、置換または付加された配列からなるアンチセンス核酸であってもよい。欠失、置換または付加される塩基数は、１〜５個が好ましく、より好ましくは１〜４個、さらに好ましくは１〜３個、さらに好ましくは１または２個である。なお、表１に示された各アンチセンス核酸の標的配列は、各アンチセンス核酸の相補配列である。
【００１９】
本発明のアンチセンス核酸は、さらに、生理食塩水に対する溶解性が高いことが好ましい。生理食塩水に対する溶解性が低いアンチセンス核酸は、製剤保存時に析出して使用できなくなる危険性や、塩を含む輸液を利用した際に析出し、使用できなくなる危険性を有する。また、析出しやすい薬剤は投与時に毒性を示すことも報告されている（Bulletin of Osaka University of Pharmaceutical Sciences 1 (2007)91-99）。したがって、生理食塩水に対する溶解性が高いアンチセンス核酸は、医薬の有効成分として非常に利用価値が高い。
【００２０】
生理食塩水に対する溶解性は、２０ｍｇ／ｍＬ以上であることが好ましく、３０ｍｇ／ｍＬ以上であることがより好ましく、４０ｍｇ／ｍＬ以上であることがさらに好ましく、５０ｍｇ／ｍＬ以上であることが特に好ましい。アンチセンス核酸の生理食塩水に対する溶解性は、アンチセンス核酸を目的の濃度で生理食塩水に溶解し、一定時間後に沈殿の有無を確認することにより、評価することができる。
本発明者らは、表１に示したアンチセンス核酸のうち、２２種類の塩基配列からなるアンチセンス核酸は生理食塩水に対する溶解性が５０ｍｇ／ｍＬ以上であることを見出した。具体的には、配列番号１８、１９、２６、２７、３２、３３、３７、４３、５３、５５、５８、５９、６０、６１、６３、６４、６５、６６、６７、６８、６９および７０である。したがって、本発明のアンチセンス核酸としては、配列番号１８、１９、２６、２７、３２、３３、３７、４３、５３、５５、５８、５９、６０、６１、６３、６４、６５、６６、６７、６８、６９および７０から選択される塩基配列からなるアンチセンス核酸が特に好ましい。
【００２１】
また、安全性の高いアンチセンス核酸が医薬の有効成分として好ましいことは言うまでもない。安全性は、例えば、アンチセンス核酸投与後の血中アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（ＡＳＴ）値、アラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）値、尿素窒素（ＢＵＮ）値およびクレアチニン値を指標にして評価することができる。具体的には、例えば、健常マウスにアンチセンス核酸を投与した後、血中ＡＳＴ値、ＡＬＴ値、ＢＵＮ値およびクレアチニン値を測定し、対照群（溶媒投与または無処置）の測定値と比較して１．３倍を超える上昇が見られた場合に異常値と判断することができる。本発明においては、５％グルコース水溶液を用いてアンチセンス核酸溶液を調製し、Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ雄性６週齢マウスに６０ｍｇ／ｋｇの用量で尾静脈内投与した翌日に採血して血中ＡＳＴ値、ＡＬＴ値、ＢＵＮ値およびクレアチニン値を測定し、対照群（溶媒投与または無処置）の測定値と比較して１．３倍を超える上昇が見られた場合に異常値と判断し、いずれの値にも異常値がみられない場合に安全性が高い配列であると判定することができる。
本発明者らは、表１に示したアンチセンス核酸のうち、９種類の塩基配列からなるアンチセンス核酸は非常に安全性の高い配列であることを見出した。具体的には、配列番号３２、５０、５１、６０、６２、６４、６５、６６および６７である。したがって、本発明のアンチセンス核酸としては、配列番号３２、５０、５１、６０、６２、６４、６５、６６および６７から選択される塩基配列からなるアンチセンス核酸が特に好ましい。
【００２２】
本発明のアンチセンス核酸は、ＤＮＡ鎖、ＲＮＡ鎖、ＤＮＡとＲＮＡの混合鎖のいずれからなるものでもよい。すなわち、本発明のアンチセンス核酸は、オリゴデオキシリボヌクレオチド、オリゴリボヌクレオチドまたはデオキシリボヌクレオチドとリボヌクレオチドのキメラオリゴヌクレオチドであることが好ましい。また、本発明のアンチセンス核酸は、ヌクレオチド類似体またはスペーサーを含むものであってもよい。アンチセンス核酸は、ヌクレアーゼ耐性を増加させ、および／または標的配列に対する親和性を増加させるように修飾されることが好ましい。好ましいヌクレオチド類似体は、例えば、モルホリノ骨格、カルバメート骨格、シロキサン骨格、スルフィド骨格、スルホキシド骨格、スルホン骨格、ホルムアセチル骨格、チオホルムアセチル骨格、メチレンホルムアセチル骨格、リボアセチル骨格、アルケン含有骨格、スルホメート骨格、スルホネート骨格、スルホンアミド骨格、メチレンイミノ骨格、メチレンヒドラジノ骨格、アミド骨格などの修飾骨格を含む。モルホリノオリゴマーは、ＤＮＡのデオキシリボース糖が六員環に置き換えられ、ホスホジエステル結合がホスホロジアミデート結合に置き換えられた無電荷の骨格を有する修飾オリゴヌクレオチドである。モルホリノオリゴマーは酵素分解耐性に優れていることから、本発明のアンチセンス核酸としてより好ましい。
【００２３】
さらに好ましいヌクレオチド類似体は、モルホリノヌクレオチド誘導体であり、隣接モルホリノ環の間の陰イオン性ホスホジエステル結合が、非イオン性ホスホロジアミデート結合に置き換えられたホスホロジアミデートモルホリノオリゴマー（phosphorodiamidate morpholino oligomer、以下「ＰＭＯ」と記す）である。
【００２４】
さらに、ヌクレオチド類似体は、ホスホジエステル結合中の非架橋酸素の１つの置換を含むことが好ましい。この修飾により、ヌクレアーゼ分解に対する重要な耐性が加えられる。好ましいヌクレオチド類似体は、ホスホロチオエート、キラルなホスホロチオエート、ホスホロジチオエート、ホスホトリエステル、アミノアルキルホスホトリエステル、Ｈ−ホスホネート、例えば３’−アルキレンホスホネート、５’−アルキレンホスホネート、キラルなホスホネートを含むエチルおよび他のアルキルホスホネート、ホスフィネート、例えば３’−アミノホスホルアミデートおよびアミノアルキルホスホルアミデートを含むホスホルアミデート、チオノホスホルアミデート、チオノアルキルホスホネート、チオノアルキルホスホトリエステル、セレノホスフェートまたはボラノホスフェートを含む。
【００２５】
さらに、ヌクレオチド類似体は、−ＯＨ；−Ｆ；１つまたは複数のヘテロ原子が間に存在してもよい、置換または非置換の、直鎖状または分岐状の低級（Ｃ１〜Ｃ１０）アルキル、アルケニル、アルキニル、アルカリル、アリルまたはアラルキル；Ｏ−、Ｓ−またはＮ−アルキル；Ｏ−、Ｓ−またはＮ−アルケニル；Ｏ−、Ｓ−またはＮ−アルキニル；Ｏ−、Ｓ−またはＮ−アリル；Ｏ−アルキル−Ｏ−アルキル、−メトキシ、−アミノプロポキシ；−メトキシエトキシ；−ジメチルアミノオキシエトキシ；−ジメチルアミノエトキシエトキシなどの、２’、３’および／または５’位で一または二置換される１つまたは複数の糖部分を含むことが好ましい。糖部分は、ピラノースもしくはその誘導体、またはデオキシピラノースもしくはその誘導体、好ましくはリボースもしくはその誘導体、またはデオキシリボースもしくはその誘導体であってよい。好ましい誘導体化された糖部分は、ロックト核酸（ＬＮＡ）を含み、２’炭素原子が糖環の３’または４’炭素原子に連結し、それによって二環式糖部分を形成する。好ましいＬＮＡは、２’−Ｏ，４’−Ｃ−エチレン架橋核酸を含む（Morita et al., 2001, Nucleic Acid Res Supplement No.1:241−242）。これらの置換により、ヌクレオチド類似体または同等物に、ＲＮａｓｅＨおよびヌクレアーゼ耐性が与えられ、標的ＲＮＡに対する親和性が増加する。
【００２６】
本発明のアンチセンス核酸に含まれてもよいスペーサーは、アンチセンス核酸を構成する残基と残基の間に存在することで核酸配列の規則的な並びの間にスペース（空間）を与える化合物である。スペーサーは標的配列に対して相補的でなく、標的配列に結合しない。
【００２７】
さらにまた、本発明のアンチセンス核酸は、５’末端および／または３’末端が修飾されていてもよい。かかる修飾は、トリエチレングリコール（ＴＥＧ）修飾、ヘキサエチレングリコール（ＨＥＧ）修飾、ドデカエチレングリコール（ＤＯＤＥＧ）修飾を含む。
【００２８】
本発明のアンチセンス核酸は、公知の核酸合成方法を用いて製造することができる。公知の方法としては、例えば、国際公開公報WO2009/064471または国際公開公報WO2013/100190に記載の方法を用いることができる。
【００２９】
〔医薬組成物〕
本発明は、フクチン遺伝子におけるＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異に起因する疾患を治療するための医薬組成物を提供する。本発明の医薬組成物は、上記本発明のアンチセンス核酸の１種または２種以上を有効成分として含有する。本発明のアンチセンス核酸は、挿入変異型フクチン遺伝子（配列番号１）の第１１１１７７位のグアニンの３’側のスプライシング供与部位および第１１５９４３位のチミンの５’側のスプライシング受容部位を用いる異常スプライシングを抑制し、正常スプライシングに基づく正常フクチンｍＲＮＡの発現を回復させ、正常フクチンタンパク質の生成を回復させることにより、フクチン遺伝子におけるＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異に起因する疾患を治療することができる。
【００３０】
フクチン遺伝子におけるＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異に起因する疾患としては、例えば、ＦＣＭＤ、成人発症の拡張型心筋症（非特許文献６参照）Ｗａｌｋｅｒ−Ｗａｒｂｕｒｇ症候群様の重症型先天性筋ジストロフィー（非特許文献７参照）等が挙げられるが、これらに限定されない。本発明の医薬組成物の適用対象となる疾患には、将来、フクチン遺伝子におけるＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異が原因であることが明らかとなる疾患も含まれる。好ましくはＦＣＭＤである。
【００３１】
本発明の医薬組成物は、１種のアンチセンス核酸を有効成分とするものでもよく、２種以上のアンチセンス核酸を有効成分とするものでもよい。２種以上のアンチセンス核酸の組み合わせは特に限定されないが、単独で使用するより効果が増強される組み合わせを適宜選択して有効成分とすることが好ましい。
【００３２】
本発明の医薬組成物は、上記本発明のアンチセンス核酸を有効成分とし、薬学的に許容される担体または添加剤を適宜配合して製剤化することができる。具体的には錠剤、被覆錠剤、丸剤、散剤、顆粒剤、カプセル剤、液剤、懸濁剤、乳剤等の経口剤；注射剤、輸液、坐剤、軟膏、パッチ剤等の非経口剤とすることができる。好ましくは、非経口剤である。注射剤は凍結乾燥製剤としてもよい。担体または添加剤の配合割合については、医薬品分野において通常採用されている範囲に基づいて適宜設定すればよい。配合できる担体または添加剤は特に制限されないが、例えば、水、生理食塩水、その他の水性溶媒、水性または油性基剤等の各種担体、賦形剤、結合剤、ｐＨ調整剤、崩壊剤、吸収促進剤、滑沢剤、着色剤、矯味剤、香料等の各種添加剤が挙げられる。
【００３３】
錠剤、カプセル剤などに混和することができる添加剤としては、例えば、ゼラチン、コーンスターチ、トラガント、アラビアゴムのような結合剤、結晶性セルロースのような賦形剤、コーンスターチ、ゼラチン、アルギン酸などのような膨化剤、ステアリン酸マグネシウムのような潤滑剤、ショ糖、乳糖またはサッカリンのような甘味剤、ペパーミント、アカモノ油またはチェリーのような香味剤などが用いられる。調剤単位形態がカプセルである場合には、上記タイプの材料にさらに油脂のような液状担体を含有することができる。注射のための無菌組成物は通常の製剤業務（例えば有効成分を注射用水、天然植物油等の溶媒に溶解または懸濁させる等）に従って調製することができる。注射用の水性液としては、例えば、生理食塩水、ブドウ糖やその他の補助薬を含む等張液（例えば、Ｄ−ソルビトール、Ｄ−マンニトール、スクロース、塩化ナトリウムなど）などが用いられ、適当な溶解補助剤、例えば、アルコール（例、エタノール）、ポリアルコール（例、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール）、非イオン性界面活性剤（例、ポリソルベート８０ＴＭ、ＨＣＯ−５０）などと併用してもよい。油性液としては、例えば、ゴマ油、大豆油などが用いられ、溶解補助剤である安息香酸ベンジル、ベンジルアルコールなどと併用してもよい。また、緩衝剤（例えば、リン酸塩緩衝液、酢酸ナトリウム緩衝液）、無痛化剤（例えば、塩化ベンザルコニウム、塩酸プロカインなど）、安定剤（例えば、ヒト血清アルブミン、ポリエチレングリコールなど）、保存剤（例えば、ベンジルアルコール、フェノールなど）、酸化防止剤などと配合してもよい。さらに、凍結乾燥製剤としてもよい。
【００３４】
本発明の医薬組成物は、フクチン遺伝子におけるＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異に起因する疾患を発症しているヒトに対して投与することができる。投与経路は特に限定されないが、非経口投与が好ましい。非経口投与は、静脈内投与等の全身性投与、筋肉内投与、経皮投与、経粘膜投与等の局所投与のいずれであってもよい。また、本発明の医薬組成物の有効成分であるアンチセンス核酸は、非ウイルスベクターまたはウイルスベクターの形態で投与することができる。さらに、リポソームを用いてアンチセンス核酸を導入する方法（リポソーム法、ＨＶＪ−リポソーム法、カチオニックリポソーム法、リポフェクション法、リポフェクトアミン法など）、マイクロインジェクション法、遺伝子銃（Ｇｅｎｅ Ｇｕｎ）でキャリア（金属粒子）とともにアンチセンス核酸を細胞に移入する方法、超音波導入法等を併用して投与する方法などを利用することができる。
【００３５】
本発明の医薬組成物の用量は、含有するアンチセンス核酸の種類、剤形、投与経路、患者の年齢や体重によって異なるが、注射剤の形で投与する場合、１日当たり約０．０１ｍｇ〜６０ｇ程度、好ましくは約０．１ｍｇ〜２４ｇ程度、より好ましくは約０．１ｍｇ〜６ｇ程度を投与することができる。投与間隔は１日１回〜数回、または１日〜２週間の間隔を設定することができる。
【００３６】
さらに本発明には以下の発明が含まれる。
（ｉ）フクチン遺伝子におけるＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異に起因する疾患の治療方法であって、当該疾患患者に対して、上記本発明のアンチセンス核酸の有効量を投与することを特徴とする治療方法。
（ｉｉ）フクチン遺伝子におけるＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異に起因する疾患の治療薬を製造するための、上記本発明のアンチセンス核酸の使用。
（ｉｉｉ）フクチン遺伝子におけるＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異に起因する疾患の治療に使用するための、上記本発明のアンチセンス核酸。
【実施例】
【００３７】
以下、実施例により本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
【００３８】
〔実施例１：末端非修飾型アンチセンス核酸の合成〕
国際公開公報WO2013/100190に記載の方法に従い、表２のＰＭＯ Ｎｏ．１〜５８、６０〜６６に示す各種ホスホロジアミデートモルホリノオリゴマー（ＰＭＯ）を合成した。
【００３９】
【表２】
2019162111.tif 000003
【００４０】
〔実施例２：ＰＭＯ Ｎｏ．５９の合成〕
工程１  スペーサー化合物の合成
３−（メチルアミノ）プロパン−１−オール（２ｇ，２２．４４ｍｍｏｌ）、トリエチルアミン（３３．６５ｍｍｏｌ）をジメチルホルムアミド（２０ｍＬ）に溶解し、氷冷下トリフェニルメチルクロリド（２６．９２ｍｍｏｌ）を加え室温で３時間撹拌した。再度氷冷し、水（４０ｍｌ）を加えて１０分撹拌した後、酢酸エチルで抽出した。有機層を白濁のまま水洗し、エバポレーターにて濃縮後、再度酢酸エチル（５０ｍｌ）希釈して不溶物をろ過して除いた。ろ液を濃縮してそのままシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製した。得られた３−［メチル（トリチル）アミノ］プロパン−１−オール（４．８ｇ，１４ｍｍｏｌ）をテトラヒドロフラン（４０ｍＬ）に溶解し氷冷下１−メチルイミダゾール（３６ｍｍｏｌ）、Ｎ−エチルモルホリン（１４ｍｍｏｌ）、Ｎ，Ｎ−ジメチルホスホルアミドジクロリデート（２９ｍｍｏｌ）を加え室温で３時間撹拌した。酢酸エチルと１Ｍりん酸二水素ナトリウム水溶液にて分液操作を行い、有機層を飽和食塩水にて洗浄、硫酸ナトリウムで乾燥後、減圧濃縮した。シリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、図６（Ｄ）に示すスペーサー化合物８（４．６ｇ）を得た。
【００４１】
工程２  ＰＭＯ Ｎｏ．５９の合成
国際公開公報WO2013/100190に記載の方法に従い、ＰＭＯ Ｎｏ．５９を合成した。
なお、ＰＭＯ Ｎｏ．５９は、図６（Ｅ）に示すスペーサー９の５’末端側に塩基配列がＣＴＣＧからなるＰＭＯが結合し、配列番号７１の塩基配列からなるＰＭＯがスペーサーの３’末端側に結合したアンチセンス核酸である。
ＰＭＯ  Ｎｏ．５９に含まれるスペーサーは、工程１で得られたスペーサー化合物を用いて導入した。
ＰＭＯ  Ｎｏ．５９：  ＣＴＣＧ−（スペーサー）−ＣＡＴＣＡＧＡＧＧＧＡＧＡＣＣ
ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ  計算値：６４６６．２８
測定値：６４６５．２３
【００４２】
〔実施例３：５’末端エチレングリコール修飾体ＰＭＯ Ｎｏ．７０の合成〕
工程１  Ｎ−トリチルピペラジンの合成
ピペラジン（１５０ｇ，１７４１ｍｍｏｌ）をトルエン（６５０ｍＬ）／メタノール（１３０ｍＬ）混合液に溶解し、氷冷下［クロロ（ジフェニル）メチル］ベンゼン（４８．５ｇ，１７４ｍｍｏｌ）のトルエン（２４４ｍＬ）溶液を滴下して加え、室温で終夜撹拌した。反応液を水洗し、トルエン層をコハク酸（２２．８ｇ，１９３ｍｍｏｌ）／水（３００ｍＬ）溶液に添加し氷冷下撹拌した。析出した結晶をろ取し、アセトンで洗浄後、５０℃にて減圧乾燥し、Ｎ−トリチルピペラジン／コハク酸塩７１．７ｇを得た。得られた化合物（５０ｇ，６４．５ｍｍｏｌ）をジクロロメタンに溶解し、炭酸カリウム（３２２．６ｍｍｏｌ）水溶液で洗浄した。ジクロロメタン層を水洗、硫酸ナトリウムで乾燥後、減圧乾固し、図６（Ａ）に示す標記化合物１（４０ｇ）を得た。
【００４３】
工程２  ４−オキソ−４−［２−［２−［２−（４−トリチルピペラジン−１−カルボニル）オキシエチル］エトキシ］エトキシ］ブタン酸の合成
トリエチレングリコール（３７０．０３ｍｍｏｌ）をピリジン（５００ｍＬ）に溶解し、氷冷下１，１’−カルボニルジイミダゾール（２０ｇ，１２３．３４ｍｍｏｌ）を加え、室温で３０分、４０℃で２時間撹拌した。次いで、工程１で得た化合物１（４０ｇ，１２１．８ｍｍｏｌ）を加え、６０℃で４時間撹拌した。反応液を減圧濃縮して酢酸エチルと１Ｍリン酸二水素ナトリウム水溶液で分液操作を行い、有機層を飽和食塩水で洗浄、硫酸ナトリウムで乾燥後、減圧濃縮した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製し、図６（Ａ）に示す化合物２（４３．３ｇ）を得た。得られた化合物２と４−ジメチルアミノピリジン（１２７．８ｍｍｏｌ）をジクロロメタン（５００ｍＬ）に溶解し無水コハク酸（１２７．８ｍｍｏｌ）を加えて室温で１時間撹拌した。反応液を１Ｍリン酸二水素ナトリウム水溶液で分液し、有機層を飽和食塩水で洗浄、硫酸ナトリウムで乾燥後、減圧濃縮し図６（Ａ）に示す標記化合物３（５１．６ｇ）を得た。
【００４４】
工程３  ５’−末端トリエチレングリコール修飾用樹脂の合成
工程２で得た化合物３（４３．５０ｍｍｏｌ）、アミノメチルポリスチレン樹脂（２１．７５ｍｍｏｌ）、４−ジメチルアミノピリジン（５４．３８ｍｍｏｌ）、１−（３−ジメチルアミノプロピル）−３−エチルカルボジイミドヒドロクロリド（２１７．５ｍｍｏｌ）をフィルター付きナスフラスコに入れ、ピリジン（４２０ｍＬ）、次いでトリエチルアミン（２６８．６ｍｍｏｌ）を加え室温で３日間振とうした。反応液をろ過し、ピリジン、メタノール、ジクロロメタンで順次洗浄後、１５分減圧乾燥をした。テトラヒドロフラン（３１２ｍＬ）、２，６−ルチジン（７７．５ｍＬ）、無水酢酸（６５ｍＬ）を加えて室温で３時間振とうした。フィルターろ過後、ピリジン、メタノール、ジクロロメタンで順次洗浄し、減圧乾燥後に図６（Ａ）に示す標記樹脂（化合物４）を得た（ローディング：３１０μｍｏｌ／ｇ）。
【００４５】
工程４  ＰＭＯ Ｎｏ．７０の合成
工程３で得た樹脂（化合物４）を用い、国際公開公報WO2013/100190に記載の方法に従い５’末端エチレングリコール修飾体ＰＭＯ Ｎｏ．７０を合成した。
ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ  計算値：６９９４．４７
測定値：６９９４．７９
【００４６】
〔実施例４：５’末端エチレングリコール修飾体ＰＭＯ Ｎｏ．６８の合成〕
実施例３と同様の方法にて５’末端エチレングリコール修飾体ＰＭＯ Ｎｏ．６８を合成した。
ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ  計算値：６０３４．１４
測定値：６０３４．７４
【００４７】
〔実施例５：３’末端エチレングリコール修飾体ＰＭＯ Ｎｏ．６９の合成〕
工程１  トリエチレングリコール（ＴＥＧ）誘導体  ２−［２−［２−［ビス（４−メトキシフェニル）（フェニル）メトキシ］エトキシ］エトキシ］エチルジメチルホスホルアミドクロリデートの合成
トリエチレングリコール（５０ｇ，３３２．９６ｍｍｏｌ）をピリジン（１００ｍＬ，１２３６ｍｍｏｌ）に加え、アルゴン雰囲気下ジメトキシトリチルクロリド（３８ｇ，１１２．２ｍｍｏｌ）を少しずつ加えて数時間攪拌した。エバポレーターにてピリジンを減圧留去後、濃縮残渣をジクロロメタンに溶解し、水を加え分液操作を行った。有機層を回収し硫酸マグネシウムにて乾燥した。エバポレーターにてジクロロメタンを減圧留去し、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製し、２−［２−［２−［ビス（４−メトキシフェニル）−フェニル−メトキシ］エトキシ］エトキシ］エタノール（３５ｇ）を得た。得られた化合物（６ｇ，１３．２５ｍｍｏｌ）をテトラヒドロフラン（６０ｍＬ）に溶解し、氷冷下１−メチルイミダゾール（３３．１４６ｍｍｌ）、Ｎ−エチルモルホリン（１３．２５ｍｍｏｌ）、Ｎ，Ｎ−ジメチルホスホルアミドジクロリデート（２６．５１ｍｍｏｌ）をこの順で加えた。室温で２時間撹拌し、１Ｍリン酸二水素ナトリウム水溶液でクエンチ後、酢酸エチルにて抽出した。有機層を飽和食塩水で洗浄、硫酸マグネシウムにて乾燥後、エバポレーターで濃縮した。残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製し、図６（Ｂ）に示す標記誘導体（化合物５）６．１ｇを得た。
【００４８】
工程２  ＰＭＯ Ｎｏ．６９の合成
ＰＭＯ Ｎｏ．２７（３８．３８μｍｏｌ）を１５ｍＬファルコンチューブに入れ、ジメチルスルホキシド（１．２ｍＬ）に溶解させた。これに工程１で得た化合物５（５５ｍｇ，９５．１μｍｏｌ）、トリエチルアミン（５５μＬ，３９４．６μｍｏｌ）のＴＨＦ（２２０μＬ）混合溶液を加え、水浴４０℃で２時間反応させた。氷冷後、反応液を２０ｍＭトリエチルアミン−酢酸緩衝液／アセトニトリル（４／１、１８ｍＬ）で希釈し、逆相カラム精製（ＬｉＣｈｒｏｐｒｅｐ＿ＲＰ１８）を行い濃縮した。得られた残渣を２０％アセトニトリル水溶液に溶解し、０．１Ｍ塩酸水溶液を加えた。ｐＨ試験紙でｐＨが２になったことを確認後１時間静置した。反応液に１Ｍ水酸化ナトリウム水溶液を加えて中和し、ｐＨ試験紙でｐＨが７になったことを確認した。反応液をメンブレンフィルター（ＰＶＤＦ，０．２２μｍ）でろ過した。逆相カラム（ＹＭＣ＿ＧＥＬ＿ＴＭＳ＿ＨＧ）で脱塩および精製を行い、凍結乾燥後、３’末端エチレングリコール修飾体ＰＭＯ Ｎｏ．６９（２３７．６ｍｇ）を得た。
ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ  計算値：６８８２．４０
測定値：６８８２．１０
【００４９】
〔実施例６：３’末端エチレングリコール修飾体ＰＭＯ Ｎｏ．６７の合成〕
実施例５と同様の方法にて３’末端エチレングリコール修飾体ＰＭＯ Ｎｏ．６７を合成した。ただし、工程２のＰＭＯとしてＰＭＯ Ｎｏ．３９を使用した。
ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ  計算値：５９２２．０８
測定値：５９２２．２５
【００５０】
〔実施例７：３’末端エチレングリコール修飾体ＰＭＯ Ｎｏ．７１の合成〕
工程１  ヘキサエチレングリコール（ＨＥＧ）誘導体の合成
ヘキサエチレングリコールを原料として、実施例５の工程１と同様の方法で図６（Ｃ）に示す標記誘導体（化合物６）を合成した。
【００５１】
工程２  ＰＭＯ Ｎｏ．７１の合成
実施例５と同様の方法にて３’末端エチレングリコール修飾体ＰＭＯ Ｎｏ．７１を合成した。ただし、工程２のエチレングリコール誘導体として、化合物５に代えて工程１で得た化合物６を用いた。
ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ  計算値：７０１４．４９
測定値：７０１４．９８
【００５２】
〔実施例８：３’末端エチレングリコール修飾体ＰＭＯ Ｎｏ．７３の合成〕
実施例５と同様の方法にて３’末端エチレングリコール修飾体ＰＭＯ Ｎｏ．７３を合成した。ただし、工程２のＰＭＯとしてＰＭＯ Ｎｏ．６６を使用した。
ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ  計算値：６６５９．３７
測定値：６６５９．８５
【００５３】
〔実施例９：３’末端エチレングリコール修飾体ＰＭＯ Ｎｏ．７２の合成〕
工程１  ドデカエチレングリコール（ＤＯＤＥＧ）誘導体の合成
ドデカエチレングリコールを原料として、実施例５の工程１と同様の方法で図６（Ｃ）に示す標記誘導体（化合物７）を合成した。
【００５４】
工程２  ＰＭＯ Ｎｏ．７２の合成
実施例５と同様の方法にて標記化合物を合成した。ただし、工程２のエチレングリコール誘導体として、化合物５に換えて工程１で得た化合物７を用いた。
ＥＳＩ−ＴＯＦ−ＭＳ  計算値：７２７８．６４
測定値：７２７９．００
【００５５】
実施例３〜９において合成したＰＭＯ末端修飾体を表３に示す。
【表３】
2019162111.tif 000004
【００５６】
〔実施例１０：ＦＣＭＤ治療用アンチセンス核酸のスクリーニング〕
（１）使用細胞
ＦＣＭＤ患者筋芽細胞（ＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異ホモ接合体）を用いた。この細胞は、神戸大学大学院医学研究科の医学倫理審査委員会の承認を受けて使用した。
（２）アンチセンス核酸
実施例１〜９で合成したＰＭＯ Ｎｏ．１〜７３を試験物質としてスクリーニングに供した。
【００５７】
（３）実験方法
ＦＣＭＤ患者筋芽細胞を増殖培地（20% Fetal bovine serum (FBS, Invitrogen)、2.5 ng/mL basic fibroblast growth factor（SIGMA）、0.5% Antibiotic Antimycotic Solution (100×), Stabilized (SIGMA)含有Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM)- high glucose(SIGMA)）で継代培養し、１ｃｍ２当たり３０，０００細胞になるように細胞培養ディッシュに播種して１日培養した。
翌日、分化培地（2% FBS含有DMEM-high glucose）に交換し、３μＭとなるようＰＭＯを添加した。陰性対照にはランダム化配列またはジストロフィン遺伝子を標的としたＰＭＯを用いた。培地１ｍＬ当たり６μＬのＥｎｄｏ−Ｐｏｒｔｅｒ（Gene-Tools）を用いてトランスフェクションを行った。２日後、ＲＮｅａｓｙ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ（Qiagen）によりトータルＲＮＡを回収した。トータルＲＮＡからＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ ＲＴ−ＰＣＲ Ｋｉｔ（タカラバイオ）を用いて、ランダムプライマーによりｃＤＮＡ合成を行った。得られたｃＤＮＡを鋳型として異常スプライシングによる異常フクチンｍＲＮＡおよび正常スプライシングによる正常フクチンｍＲＮＡをＰＣＲにより検出した。各ｍＲＮＡを検出するためのプライマーの位置を図１に示した。ＰＣＲの条件は（９４℃３０秒、６５℃３０秒、７２℃６０秒）×３２サイクルとし、反応終了後４℃に冷却した。ＰＣＲ反応サンプル１μＬを用いて、Ａｇｉｌｅｎｔ ＤＮＡ １０００ ｋｉｔ（Agilent Technologies）および２１００ Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒ（Agilent Technologies）によりＰＣＲ増幅断片のサイズと濃度の測定を行った。２１９ｂｐ付近に検出される正常スプライシングに由来するバンドの定量値［Ａ］（nmol/L）および２６５ｂｐ付近に検出される異常スプライシングに由来するバンドの定量値［Ｂ］（nmol/L）から正常スプライシング率を以下の計算式で算出した。
正常スプライシング率＝［Ａ］／（［Ａ］＋［Ｂ］）
【００５８】
（４）ＦＣＭＤ治療用アンチセンス核酸の選択条件
正常フクチンとＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異ヘテロ接合体（保因者）は筋機能および脳に異常は見られず、αジストログリカン糖鎖量も健常人と変わらない。すなわち、正常ｍＲＮＡを５０％回復させることができればＦＣＭＤが治療可能であると考えられる。そこで、核酸濃度３μＭでトランスフェクションしたＦＣＭＤ患者筋芽細胞において５０％以上に正常スプライシングが回復できることを本スクリーニングにおけるＦＣＭＤ治療用アンチセンス核酸の選択条件とした。
【００５９】
（５）結果
スクリーニングの結果、表２および表３に示した７３種のアンチセンス核酸は、核酸濃度３μＭにおいて５０％以上に正常スプライシングを回復した。これら７３種のアンチセンス核酸は、いずれもＳＶＡ挿入フクチン遺伝子の異常スプライシングに用いられるスプライシング受容部位の周辺配列を標的配列とするアンチセンス核酸である。具体的には、ＳＶＡ挿入フクチン遺伝子の塩基配列（配列番号１）の第１１５９３７位〜第１１５９８１位の範囲を標的配列とするものである。
【００６０】
〔実施例１１：ＦＣＭＤ患者細胞におけるαジストログリカンの糖鎖回復〕
（１）実験材料および方法
実施例１と同じＦＣＭＤ患者筋芽細胞（ＳＶＡ型レトロトランスポゾンの挿入変異ホモ接合体）を用いた。増殖培地（実施例１０参照）で継代培養した細胞に対して、Ｎｕｃｌｅｏｆｅｃｔｏｒ（Lonza）を用いて電気穿孔法によりＰＭＯを導入し、分化培地（実施例１０参照）で培養した。ＰＭＯとしてＰＭＯ Ｎｏ．１、９、２７、３９および４５の５種類のＰＭＯを用いた。陰性対照にはジストロフィン遺伝子を標的としたＰＭＯを用いた。
【００６１】
ＰＭＯ導入から５日後に、ＰＢＳ（−）で細胞を１回洗浄し、細胞容量の１０倍量の１％ Ｔｒｉｔｏｎ ＴＢＳを加えてスクレーパーで回収した。４℃で１時間混和して細胞を溶解し、遠心後の上清を細胞抽出液とした。細胞抽出液１５μＬを抗αジストログリカンラットモノクローナル抗体、抗糖鎖修飾αジストログリカンマウスモノクローナル抗体ＩＩＨ６、抗βジストログリカンマウスモノクローナル抗体８Ｄ５を用いたウエスタンブロット分析に供した。ウエスタンブロット分析は、文献(Kanagawa, M. et al. residual laminin-binding acivity and enhanced dystroglycan glycosylated by LARGE in novel model mice to dystroglycanopathy. Hum. Mol. Genet. 18, 621-31(2009))の記載に従って実施した。
【００６２】
（２）実験結果
結果を図２に示した。図２中、α−ＤＧはαジストログリカン、β−ＤＧはβジストログリカン、ＨＳＭＭはヒト骨格筋筋芽細胞、ＲＤはヒト胎児横紋筋肉腫を表す。上段が抗αジストログリカンラットモノクローナル抗体を用いた結果、中段が抗糖鎖修飾αジストログリカンマウスモノクローナル抗体ＩＩＨ６を用いた結果、下段が抗βジストログリカンマウスモノクローナル抗体８Ｄ５を用いた結果である。
ＦＣＭＤ患者細胞はαジストログリカンの糖鎖が欠損しており、αジストログリカンは低分子量の位置に検出された（図２のｗａｔｅｒ参照）。一方、ＰＭＯを導入したＦＣＭＤ患者細胞では、いずれのＰＭＯを導入した場合でも濃度依存的にαジストログリカンの糖鎖が回復していることが確認できた。陰性対照のジストロフィン遺伝子を標的としたＰＭＯを導入したＦＣＭＤ患者細胞では、αジストログリカンの糖鎖が回復しなかった。
【００６３】
〔実施例１２：ＦＣＭＤモデルマウスを用いた薬効評価〕
（１）使用動物
全ての動物実験は神戸大学大学院医学研究科の実験動物倫理審査委員会の承認を受けた。ＦＣＭＤノックインマウスおよびその命名については文献（Kanagawa, M. et al. residual laminin-binding acivity and enhanced dystroglycan glycosylated by LARGE in novel model mice to dystroglycanopathy. Hum. Mol. Genet. 18, 621-31(2009)）に記載されている。フクチン遺伝子の正常ヒトエクソン１０およびＳＶＡ挿入ヒトエクソン１０を有するトランスジェニックアレルをそれぞれＨｎおよびＨｐと命名した。Ｈｐ／ＨｐはＳＶＡ挿入ヒトエクソン１０アレルのホモ接合体であり、Ｈｎ／Ｈｎは正常ヒトエクソン１０アレルのホモ接合体であり、Ｈｐ／−はＳＶＡ挿入ヒトエクソン１０アレルとマウスフクチン遺伝子ノックアウトアレルの複合ヘテロ接合体である。実験に用いたマウスは８〜１４週齢である。
【００６４】
（２）アンチセンス核酸投与
ＰＭＯとしてＰＭＯ Ｎｏ．９、２７、３９および４５の４種類のＰＭＯを用いた。
Ｈｐ／−マウスにカルジオトキシン１０μＭ（SIGMA）を経皮的に前脛骨筋肉内（0.4nmol）、腓腹筋（2nmol）および大腿四頭筋（1nmol）の３か所に投与した。ＰＭＯの投与用量毎に２匹のマウスを用いた。カルジオトキシン投与日を０日目とし、３日目に５％マンニトールに溶解したＰＭＯ（20, 60, 200mg/kg）を尾静脈内投与した。２３日目にマウスを安楽死させ、フクチンタンパク質、αジストログリカン糖鎖を解析するために各組織を回収した。
【００６５】
（３）フクチンタンパク質の検出
抗フクチンウサギポリクローナル抗体ＲＹ２１３は、ペプチドCLKIESKDPRLDGIDS（配列番号７２）を認識し、抗フクチンヤギポリクローナル抗体１０６Ｇ２はＮ末端の疎水性ドメインを欠失している全長フクチンを認識する。フクチンは、筋組織１５〜３０ｍｇから１０倍量の溶解バッファー（1% Nonidet P-40, 0.5% deoxycholate, 0.1% SDS, 20mM Tris-HCl および150mM NaCl）を用いて得た組織溶解液から１０６Ｇ２を用いた免疫沈降法により検出し、続いてアフィニティー精製したＲＹ２１３を用いるウエスタンブロット分析に供した。
【００６６】
（４）ジストログリカンの検出
筋組織に１０倍量の溶解バッファー（1% Triton TBS）を加えて組織溶解液を得た。溶解液９μＬを、実施例２と同じ３種類の抗体（抗αジストログリカンラットモノクローナル抗体、抗糖鎖修飾αジストログリカンマウスモノクローナル抗体ＩＩＨ６、抗βジストログリカンマウスモノクローナル抗体８Ｄ５）を用いたウエスタンブロット分析に供した。
【００６７】
（５）実験結果
ＰＭＯ Ｎｏ．９のアンチセンス核酸の結果を図３に、ＰＭＯ Ｎｏ．２７のアンチセンス核酸の結果を図４に、ＰＭＯ Ｎｏ．３９のアンチセンス核酸の結果およびＰＭＯ Ｎｏ．４５のアンチセンス核酸の結果を図５にそれぞれ示した。いずれも大腿四頭筋におけるジストログリカンおよびフクチンタンパク質の結果である。図３、図４および図５から明らかなように、４種類のアンチセンス核酸のいずれを投与した場合においても、アンチセンス核酸の濃度依存的にαジストログリカンの糖鎖および正常フクチンタンパク質が回復していることが確認できた。
【００６８】
〔実施例１３：アンチセンス核酸の生理食塩水に対する溶解性〕
（１）実験方法
ＰＭＯ５．０ｍｇの入った２．２ｍＬサンプル瓶（透明）に注射用水８０．０μＬを加え、超音波とボルテックスを使って溶解させた後、５倍濃度生理食塩水２０．０μＬを加え、ボルテックスを使って撹拌し５０ｍｇ／ｍＬの生理食塩水溶液とした。室温で２４時間放置し、沈殿が生じないものを溶解性が高い配列と評価した。
【００６９】
（２）評価結果
ＰＭＯ Ｎｏ．１３、１４、２１、２２、２７、２８、３２、３８、４８、５０、５３〜５６、５８〜６６、６９〜７３は、生理食塩水に対して５０ｍｇ／ｍＬ以上の溶解性を示した。生理食塩水に対する溶解性の高いこれら２８種類のＰＭＯは、医薬として利用価値が高いアンチセンス核酸であると考えられた。
【００７０】
〔実施例１４：アンチセンス核酸の安全性評価〕
（１）実験方法
ＰＭＯを５％グルコース水溶液に溶解し、Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ雄性６週齢マウスの尾静脈内へ投与した。翌日、マウスより血清を回収し、血中アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（ＡＳＴ）値、アラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）値、尿素窒素量（ＢＵＮ）値およびクレアチニン値を測定した。媒体として使用した５％グルコース水溶液のみを投与したマウスもしくは無処置マウスの測定値を正常値とし、正常値の１．３倍を超える上昇が見られた場合、異常値と判定した。６０ｍｇ／ｋｇ以下の用量においてＡＳＴ値、ＡＬＴ値、ＢＵＮ値およびクレアチニン値のいずれにも異常値がみられない場合、安全性が高いアンチセンス核酸であると判定した。
【００７１】
（２）評価結果
ＰＭＯ Ｎｏ．２７、４５、４６、７１、５５、５７、６０、６１、６２、６６、７３について、６０ｍｇ／ｋｇ以下の用量においてＡＳＴ値、ＡＬＴ値、ＢＵＮ値およびクレアチニン値のいずれにも異常値がみられず、安全性が高いアンチセンス核酸であることを確認した。
【００７２】
なお本発明は上述した各実施形態および実施例に限定されるものではなく、請求項に示した範囲で種々の変更が可能であり、異なる実施形態にそれぞれ開示された技術的手段を適宜組み合わせて得られる実施形態についても本発明の技術的範囲に含まれる。また、本明細書中に記載された学術文献および特許文献の全てが、本明細書中において参考として援用される。
【図１】
2019162111.tif 000005
【図２】
2019162111.tif 000006
【図３】
2019162111.tif 000007
【図４】
2019162111.tif 000008
【図５】
2019162111.tif 000009
【図６】
2019162111.tif 000010
【配列表】
2019162111000001.app