(57)【要約】      （修正有）【課題】細胞の成熟老化促進剤及び神経変性疾患治療剤のスクリーニング方法の提供。【解決手段】早老症である毛細血管拡張運動失調症の原因遺伝子（ＡＴＭ）を阻害する特定の化合物を有効成分とする細胞の成熟老化促進剤、前記化合物を含有する培地で神経細胞を培養することを特徴とする細胞の成熟老化促進方法、および、被験物質及び前記化合物を含有する培地で神経細胞を培養することを特徴とする神経細胞変性疾患治療薬のスクリーニング方法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
ＫＵ−６００１９を有効成分とする細胞の成熟老化促進剤。
【請求項２】
細胞が、神経細胞又は線維芽細胞である請求項１記載の熟成老化促進剤。
【請求項３】
多能性幹細胞が、多能性幹細胞由来の細胞である請求項１又は２記載の成熟老化促進剤。
【請求項４】
ＫＵ−６００１９を含有する培地で神経細胞を培養することを特徴とする細胞の成熟老化促進方法。
【請求項５】
細胞が、神経細胞又は線維芽細胞である請求項４記載の成熟老化促進方法。
【請求項６】
細胞が、多能性幹細胞由来の細胞である請求項４又は５記載の成熟老化促進方法。
【請求項７】
被験物質及びＫＵ−６００１９を含有する培地で神経細胞を培養することを特徴とする神経細胞変性疾患治療薬のスクリーニング方法。
【請求項８】
神経細胞が、多能性幹細胞由来の神経細胞である請求項７記載のスクリーニング方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、細胞の成熟老化促進剤及び神経変性疾患治療剤のスクリーニング方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
筋委縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、パーキンソン病、アルツハイマー病等の遅発性神経変性疾患は、中枢神経の中の特定の神経細胞群が死んでゆく疾患であり、まだ原因は明らかになっていない。これらの神経変性疾患の治療薬を開発するにはモデルの研究が必要である。
【０００３】
また、汎用性の高い研究用培養細胞として、線維芽細胞が挙げられる。このような細胞を用いて生体内の老化機序の研究を行うためには、細胞を速やかに老化誘導する技術が重要である。
【０００４】
患者ｉＰＳ細胞から分化誘導した神経系の細胞を用いた神経変性疾患モデル研究において、誘導された神経系細胞の成熟には比較的長い培養期間を要し、７０〜１００日間といった長期間の培養を行ったとしても、ヒトでその発症まで数十年を要する疾患特異的な表現型（異常タンパク質の凝集など）は観察することが難しいことが多い。この課題を解決するために、外部からの遺伝子導入（早老症遺伝子；ｐｒｏｇｅｒｉｎ）（非特許文献１）やテロメア合成酵素の阻害（非特許文献２）といった方法を用いてｉＰＳ細胞由来神経細胞の老化を促進する技術が報告されてきた。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献１】Ｃｅｌｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ．２０１３
【非特許文献２】Ｃｅｌｌ  Ｓｔｅｍ  Ｒｅｐｏｒｔｓ．２０１６
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
しかしながら、これらの方法は遺伝子導入に際して特異的な技術が必要であり簡便では無く、その効果もそれほど強くないために細胞の老化を微弱にしか促進させることができない。
従って、本発明の課題は、種々の細胞の成熟老化を促進する薬剤、及びその薬剤を用いる神経変性疾患治療薬のスクリーニング方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
そこで本発明者は、神経細胞又は線維芽細胞の培養系を用いて、細胞の成熟老化を促進させる低分子化合物を探索したところ、ＫＵ−６００１９が極めて強力な細胞成熟老化促進作用を有することを見出した。さらに、ＫＵ−６００１９を含有する培地でパーキンソン病患者のｉＰＳ細胞由来神経細胞を培養すれば、神経細胞におけるパーキンソン病表現型が培養７日で検出されることから、この培養系は神経変性疾患治療薬のスクリーニングモデルとして有用であることを見出し、本発明を完成した。
【０００８】
すなわち、本発明は、次の発明〔１〕〜〔８〕を提供するものである。
【０００９】
〔１〕ＫＵ−６００１９を有効成分とする細胞の成熟老化促進剤。
〔２〕細胞が、神経細胞又は線維芽細胞である〔１〕記載の成熟老化促進剤。
〔３〕細胞が、多能性幹細胞由来の細胞である〔１〕又は〔２〕記載の成熟老化促進剤。
〔４〕ＫＵ−６００１９を含有する培地で細胞を培養することを特徴とする細胞の成熟老化促進方法。
〔５〕細胞が、神経細胞又は線維芽細胞である〔４〕記載の成熟老化促進方法。
〔６〕細胞が、多能性幹細胞由来の細胞である〔４〕又は〔５〕記載の成熟老化促進方法。
〔７〕被験物質及びＫＵ−６００１９を含有する培地で神経細胞を培養することを特徴とする神経変性疾患治療薬のスクリーニング方法。
〔８〕神経細胞が、多能性幹細胞由来の神経細胞である〔７〕記載のスクリーニング方法。
【発明の効果】
【００１０】
本発明の細胞の成熟老化促進剤を用いれば、ｉＰＳ細胞に代表される多能性幹細胞から分化誘導された神経細胞や線維芽細胞が極めて短期間で成熟老化する。また、神経変性疾患患者由来のｉＰＳ細胞を、本発明の成熟老化促進剤を含有する培地で培養すれば、極めて短期間で神経変性疾患の表現型が検出されるため、この培養系を用いれば神経変性疾患治療剤のスクリーニングが可能となる。線維芽細胞に作用させて老化させると、従来よりも短期間で老化した細胞を得ることができるため、老化研究を効率的に行うことが出来る。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】成熟神経細胞の蛍光レポータ（ＧＦＰ−Ｓｙｎａｐｓｉｎ）の蛍光強度を示す。ＤＭＳＯは、ジメチルスルホキシド、ＫＵ６００１９はＫＵ−６００１９、ＡＣＭはアストロサイトコンディション培地を示す。
【図２】成熟神経細胞の蛍光レポータ（ＧＦＰ−Ｓｙｎａｐｓｉｎ）の蛍光強度を示す。ＤＭＳＯ、ＫＵ−６００１９は図１と同じ。
【図３】実施例２の培養条件及びスケジュールを示す。ＦＧＦ２：２０ｎｇ／μＬ、ＳＢ４３１５４２（ＳＢ）：２μＭ、Ｐｕｒｍｏｒｐｈａｍｉｎｅ（ＰＭ）：２μＭ、ＣＨＩＲ９９０２１（ＣＨＩＲ）：３μＭ。ＤＡＰＴ：１０μＭ、ＧＤＮＦ：２０ｎｇ／μＬ、ＴＧＦβ：１ｎｇ／μＬ、アスコルビン酸（ＡＡ）：０．２ｍＭ、ｄｂｃＡＭＰ（ｃＡＭＰ）：０．５ｍＭ。
【図４】ｂIII ｔｕｂｕｌｉｎ（緑）とＮｅｓｔｉｎ（赤）抗体を用いた共免疫染色結果を示す。
【図５】Ｎｅｓｔｉｎ陽性細胞面積の定量結果を示す。
【図６】チロシン水酸化酵素（ＴＨ）陽性細胞の定量結果を示す。
【図７】ＫＵ−６００１９添加時におけるｉＰＳ細胞由来神経細胞のＮＡＤ+の濃度変化を示す。
【図８】ＫＵ−６００１９添加時におけるｉＰＳ細胞由来ドーパミンニューロン（ＤＡＮ）の老化の表現型の確認結果を示す。（Ａ−Ｃ）ＫＵ−６００１９添加・非添加時におけるＤＡＮの核膜構造への影響。ＬａｍｉｎＢ１（緑）、ＴＨ（赤）。（Ｄ−Ｅ）ＫＵ−６００１９添加・非添加時におけるＤＡＮ内のＤＮＡ損傷の観察。γＨ２ＡＸ（緑）、ＴＨ（赤）。
【図９】パーキンソン病−ｉＰＳＣｓへの応用結果を示す（ＰＡＲＫ４−ｉＰＳＣｓ由来ＤＡＮ培養におけるＴＨ陽性細胞数の測定）。
【図１０】ＫＵ６００１９添加によるヒト線維芽細胞の老化特異的な核膜異常の発生を示す。
【図１１】ＫＵ６００１９添加によるヒト線維芽細胞の老化特異的マーカーＳＡ−Ｇａｌの増加を示す。
【図１２】ＫＵ６００１９添加によるＳＨＳＹ５細胞の老化細胞促進を示す。
【図１３】ＫＵ６００１９、ＫＵ５５９３３及びＮＵ７４４１による神経細胞成熟促進効果（実施例１と同じ方法）を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
本発明の細胞の成熟促進剤の有効成分は、ＫＵ−６００１９である。
【００１３】
ＫＵ−６００１９は、下記式（１）で表される化合物である。
【００１４】
【化１】
2019180403.tif 000002
【００１５】
ＫＵ−６００１９はＡＴＭ阻害剤であることが知られており、ＡＴＭは、早老症である毛細血管拡張運動失調症の原因遺伝子である。近年の報告では、ＡＴＭ欠損マウスやＡＴＭ欠損の線虫では、細胞内のＮＡＤ+が低下することで神経細胞死が誘導され、寿命を短くすることが報告されている（Ｃｅｌｌ  Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ．２０１６）。しかし、ＫＵ−６００１９による神経細胞の成熟老化促進効果は、培養７日程度で生じることから、ＡＴＭ阻害作用だけでは説明できない。
また、本発明のような優れた成熟老化促進効果は、他のＡＴＭ阻害剤であるＫＵ５５９３３やＤＮＡ−ＰＫ阻害剤であるＮＵ７４４１では得られないことから、ＫＵ−６００１９に特異的である。
【００１６】
本発明において成熟老化促進となる細胞としては、培養可能な細胞であればよいが、神経細胞、線維芽細胞、Ｈｅｌａ細胞（ヒト子宮頸癌由来の細胞）、ＳＨＳＹ５（ヒト神経芽細胞腫）細胞が好ましい。
本発明の神経細胞は、神経細胞の種類は問わないが、神経変性疾患に関与している神経細胞であるのが好ましい。例えば、ドパミン作動性ニューロンを用いれば、パーキンソン病、認知機能が低下する神経変性疾患のスクリーニングが可能である。
また、本発明の線維芽細胞は、通常の線維芽細胞であればよく、入手のし易さから皮膚由来の線維芽細胞が好ましい。
【００１７】
本発明において成熟老化促進の対象となる細胞は、多能性幹細胞由来の細胞であるのが好ましい。ここで多能性幹細胞としては、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）、ｎｔＥＳ細胞及びｉＰＳ細胞が挙げられるが、ｉＰＳ細胞がより好ましい。ｉＰＳ細胞のうち、ヒトｉＰＳ細胞が好ましい。細胞変性疾患治療剤のスクリーニングに用いるｉＰＳ細胞としては、細胞変性疾患患者由来のｉＰＳ細胞が好ましい。
【００１８】
本発明において神経変性疾患とは、中枢神経の中の特定の神経細胞群が徐々に障害を受け脱落してしまう疾患である。例えば、筋委縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、パーキンソン病、アルツハイマー病、進行性核上性麻痺（ＰＳＰ）、ハンチレトン病、多系統萎縮症、脊髄小脳変性症（ＳＣＤ）等が挙げられる。
【００１９】
本発明において、細胞の成熟老化を促進するには、細胞をＫＵ−６００１９を含有する培地で培養する。
【００２０】
培地中のＫＵ−６００１９の濃度は、成熟老化を促進する点から、０．１μＭ〜５０μＭが好ましく、０．５μＭ〜１０μＭがより好ましい。
【００２１】
また、培養に用いる培地は、用いる細胞の分化過程によって相違するが、基礎培地としては、ＫＢＭ  Ｎｅｕｒａｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ（ＫＯＨＪＩＮ  ＢＩＯ）が用いられる。幹細胞から神経細胞の生成までは、基礎培地に線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ２）、ＴＧＦ-βＩ型レセプター阻害剤（ＳＢ４３１５４２等）、ＲＯＣＫ阻害剤（Ｙ２７６３２等）、Ｓｏｎｉｃ  Ｈｅｄｇｅ  Ｈｏｇ経路アゴニスト（Ｐｕｒｍｏｒｐｈａｍｉｎｅ等）、ＧＳＫβ阻害剤（ＣＨＩＲ９９０２１等）等を添加して培養するのが好ましい。
線維芽細胞成長因子の培地中の濃度は、１０〜４０ｎｇ／μＬが好ましく、２０ｎｇ／μＬがより好ましい。また、ＳＢ４３１５４２の培地中の濃度は、１〜５μＭが好ましく、２μＭがより好ましい。Ｙ２７６３２の培地中の濃度は、１〜５０μＭが好ましく、１０μＭがより好ましい。Ｐｕｒｍｏｒｐｈａｍｉｎｅの培地中の濃度は、１〜５μＭが好ましく、２μＭがより好ましい。ＣＨＩＲ９９０２１の培地中の濃度は、１〜８μＭが好ましく、３μＭがより好ましい。
幹細胞から神経細胞の生成までの培養条件は、５％ＣＯ２、４％Ｏ２、３５〜４０℃で行うことがより好ましい。
【００２２】
また、神経細胞から神経細胞への分化誘導、成熟老化までは、基礎培地に、γセクレターゼ阻害剤（例えばＤＡＰＴ）、グリア細胞株由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）、脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）、トランスフォーミング増殖因子（ＴＧＦβ）、ｄｂｃＡＭＰ、アスコルビン酸（ＡＡ）等を添加して培養するのが好ましい。
ここで、培地中のＤＡＰＴの濃度は、１〜５０μＭが好ましく、１０μＭがより好ましい。培地中のＧＤＮＦの濃度は、１０〜５０ｎｇ／μＬが好ましく、２０ｎｇ／μＬがより好ましい。培地中のＢＤＮＦの濃度は、１０〜５０ｎｇ／μＬが好ましく、２０ｎｇ／μＬがより好ましい。培地中のＴＧＦβの濃度は、０．２〜５ｎｇ／μＬが好ましく、１ｎｇ／μＬがより好ましい。培地中のｄｂｃＡＭＰの濃度は、０．１〜３ｍＭが好ましく、０．５ｍＭがより好ましい。ＡＡの培地中の濃度は、０．１〜１ｍＭが好ましく、０．２ｍＭがより好ましい。
神経細胞の成熟老化促進の際の培養条件は、５％ＣＯ２、４％Ｏ２、３５〜４０℃で行うことがより好ましい。線維芽細胞の成熟老化促進の際の培養条件は、５％ＣＯ２、３５〜４０℃で行うことがより好ましい。
【００２３】
ＫＵ−６００１９を添加した培地を用いれば、幹細胞、例えば神経細胞凝集塊（ニューロスフェア）から神経細胞までの分化は、７日〜１７日で十分である。また、ＫＵ−６００１９を添加した培地を用いれば、神経細胞から神経細胞の成熟老化までの分化は７日〜１７日で十分である。なお、幹細胞から神経細胞への分化は、Ｎｅｓｔｉｎの減少、ドパミン作動性ニューロン（ＤＡＮ）の特異的マーカーであるチロシン水酸化酵素陽性細胞の定量により確認できる。また、神経細胞の成熟老化は、例えばＬａｍｉｎＢの崩壊、過度なＤＮＡ損傷により確認できる。
【００２４】
本発明の神経変性疾患治療剤のスクリーニング方法は、被験物質及びＫＵ−６００１９を含有する培地で、神経細胞を培養することにより実施できる。培地及び培養条件は、前記神経細胞の成熟老化促進方法と同様である。被験物質を所定量添加して培養すればよい。
被験物質を添加した場合の神経細胞の成熟老化度合と、被験物質を添加しなかった場合のそれとを対比すれば、被験物質による神経細胞の老化抑制作用が評価できる。
【実施例】
【００２５】
次に実施例を挙げて本発明を更に詳細に説明する。
【００２６】
実施例１
神経細胞の分化成熟を促進させる低分子化合物のスクリーニングを市販の阻害剤ライブラリーを用いて下記の手順で行い、ヒトｉＰＳ細胞から誘導した神経細胞の成熟を促進する化合物ＫＵ−６００１９を同定した。
（１）ｉＰＳ細胞より神経幹細胞を含む神経細胞塊（Ｎｅｕｒｏｓｐｈｅｒｅ）を浮遊培養にて作製し、６回継代を行い、神経へと分化させた。レンチウイルスベクターを用いて成熟神経細胞特異的な蛍光レポーター（ＧＦＰ−Ｓｙｎａｐｓｉｎ）を導入した。その後、接着培養に切り替え神経分化用培地に低分子化合物ライブラリー（Ｓｉｇｍａ  Ａｌｄｒｉｃｈ）を各１０μＭ添加し１７日間培養を行った（図１−Ａ参照）。ＧＦＰ−Ｓｙｎａｐｓｉｎの蛍光強度は、イメージングサイトメータ（Ｉｎ  ｃｅｌｌ  ａｎａｌｙｚｅｒ）を用いて定量を行った。神経分化を促進させるアストロサイトコンディション培地（ＡＣＭ）をコントロールとして、蛍光強度がより近い値を示す化合物を選別した（図１、図２）。
【００２７】
（２）選別した化合物中で最も高い蛍光強度を示した化合物は、ＤＮＡ修復機構の制御因子であるＡＴＭの阻害剤であるＫＵ−６００１９であった。
【００２８】
実施例２
ＫＵ−６００１９の神経分化成熟に対する影響を確認するために以下の実験を行った。
（１）ヒトｉＰＳ細胞からドパミン神経細胞への神経分化を行う際に神経分化培地にＫＵ−６００１９を１、５、１０μＭ加え１０日間培養を行い、未分化神経系のマーカーであるＮｅｓｔｉｎを発現する細胞を定量し分化効率を評価した（図３に培養条件を示す）。その結果、Ｎｅｓｔｉｎ陽性細胞の量はＫＵ−６００１９の濃度依存的に減少した（図４、図５）。このことから、ＫＵ−６００１９神経幹細胞から神経細胞への分化を促進する効果があることが示唆された。
【００２９】
（２）（１）と同様の手法により分化させたドパミン作動性ニューロン（ＤＡＮ）の量を比較するため、成熟したＤＡＮの特異的なマーカーであるチロシン水酸化酵素（ＴＨ）陽性細胞の定量を行った（図６）。その結果、培養途中の７日目ではＫＵ−６００１９濃度依存的にＤＡＮが増加していることから、ＤＡＮの分化効率を上昇させていることが示唆された。
さらに１０日目まで培養を継続すると全ての前駆細胞がＤＡＮに分化するためこの差が消失する。
【００３０】
ＫＵ−６００１９がヒトｉＰＳ細胞からの分化において老化を促進している可能性があると考え、以下の実験を行った。
【００３１】
（３）（２）と同様の方法を用いてＤＡＮの分化誘導を行い、１０日目後に回収し、比色法を用いて細胞内のＮＡＤ+濃度を測定した（図７）。その結果ＫＵ−６００１９濃度依存的に細胞内のＮＡＤ+濃度が低下した。このことから、ＫＵ−６００１９が細胞老化を促進していることが示唆された。
【００３２】
実施例３
細胞老化の普遍的なモデルとして、過度なＤＮＡ損傷やそれに伴う核膜構造が崩壊することが知られている。Ｐｒｏｇｅｒｉｎを導入した老化モデルの研究では、細胞老化を促進させたＤＡＮではＬａｍｉｎＢ（核膜タンパク質）の崩壊や過度なＤＮＡ損傷（γＨ２ＡＸの蓄積）が起きることを報告している（Ｃｅｌｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ．２０１３）。これを踏まえ、ＫＵ−６００１９添加における老化モデルにおいても同様のことが引き起こされるかを検証した。
（１）実施例２（２）と同様の方法を用いてヒトｉＰＳ細胞からＤＡＮの分化誘導を行い、７日目にＬａｍｉｎＢ２抗体を用いた免疫染色を行った（図８−Ａ−Ｃ）。その結果、ＫＵ−６００１９添加時にＬａｍｉｎＢ１の構造が崩壊していることを見出した。このことから、ＫＵ−６００１９の作用によってヒトｉＰＳ細胞由来のニューロンの老化が促進していることが示唆された。
【００３３】
（２）実施例２（２）と同様の方法を用いてヒトｉＰＳ細胞からＤＡＮの分化誘導を行い、７日目にγＨ２ＡＸ（Ｓｅｒ１３９）抗体を用いた免疫染色を行った（図８−Ｄ−Ｆ）。その結果、ＫＵ−６００１９添加時に核内にγＨ２ＡＸが蓄積していることを見出した。このことから、ＫＵ−６００１９によって老化モデル特有の過度なＤＮＡ損傷が引き起こされていることが示唆された。
【００３４】
実施例４
ＫＵ−６００１９はヒトｉＰＳ細胞からの神経分化・細胞老化を促進させるため、ＫＵ−６００１９を従来の培養方法に追加することによって、パーキンソン病−ｉＰＳ細胞から分化誘導したＤＡＮにおける表現型検出に要する培養期間を短縮できるかを検証した。遺伝性パーキンソン病の中でも比較的高年層（５０代以降）で発症する典型的なことがＰＡＲＫ４（α−ｓｙｎｕｃｌｅｉｎ重複）患者から樹立したｉＰＳ細胞を用いて、ＫＵ−６００１９添加・非添加時における表現型検出までの培養期間を比較した。
（１）実施例２（２）と同様の手法を用いてＰＡＲＫ４−ｉＰＳ細胞由来ＤＡＮの分化誘導を行った後、７日目・１０日目にＴＨ抗体を用いてＤＡＮの細胞脱落を解析した。その結果、培養７日目の時点では正常対照細胞と比べて添加・非添加ともに有意な脱落の増加は見られなかった。さらに培養を継続し培養１０日目ではＰＡＲＫ４−ｉＰＳ細胞におけるＫＵ−６００１９非添加群では７日目同様に有意な脱落が見られなかったものの、ＫＵ−６００１９添加群では正常対照細胞と比べて脱落した細胞が有意に増加したことが確認できた（図９）。
【００３５】
以上の結果から、ＫＵ−６００１９を培地に添加するとｉＰＳ細胞由来神経細胞の老化が促進され、従来の培養期間で検出が困難であった遅発性表現型を短期間で検出することが可能となる。
【００３６】
実施例５
（ＫＵ６００１９添加によるヒト線維芽細胞の老化特異的な核膜異常の観察）
若年者由来線維芽細胞にＫＵ６００１９を作用させると、老化特異的な核膜異常（ＬａｍｉｎＢ１の減少）が観察され、高齢者由来線維芽細胞と同等の老化表現型を示した（ＬａｍｉｎＢ１（緑）、Ｌａｍｉｎ  Ａ／Ｃ（赤））（図１０Ａ）。若年者由来線維芽細胞における正常核膜構造を示す細胞の比率はＫＵ６００１９の作用で減少した（ｍｅａｎ±ＳＥＭ，ｎ＝６，＊ｐ＜０．０１．）（図１０Ｂ）。
高齢者（５１歳）から採取した線維芽細胞では、若年者（１８歳）から採取したヒト線維芽細胞を比較した場合、老化特異的な核膜異常として核膜マーカーであるＬａｍｉｎＢ１の減少が認められる。若年者由来線維芽細胞にＫＵ６００１９を７２時間添加した場合、ＬａｍｉｎＢ１の減少が認められ、老化特異的な表現型である核膜崩壊が観察された（図１０）。
【００３７】
実施例６
（ＫＵ６００１９添加によるヒト線維芽細胞の老化特異的マーカーＳＡ−Ｇａｌの増加）
若年者由来線維芽細胞にＫＵ６００１９を作用させると、老化特異的なマーカーであるＳＡ−Ｇａｌ（Ｓｅｎｅｓｃｅｎｃｅ  ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｇａｌａｃｔｏｓｉｄａｓｅ）陽性細胞が高齢者由来線維芽細胞と同等まで増加し、老化が促進した（赤：ＳＡ−Ｇａｌ青：核染色）（図１１Ａ）。ＳＡ−Ｇａｌ強度も同様に増加していた（ｍｅａｎ±ＳＥＭ，ｎ＝６，＊ｐ＜０．０１．）（図１１Ｂ）。
すなわち、高齢者由来線維芽細胞では、若年者由来線維芽細胞と比較して、老化特異的なマーカーであるＳＡ−Ｇａｌ（Ｓｅｎｅｓｃｅｎｃｅ  ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｇａｌａｃｔｏｓｉｄａｓｅ）陽性細胞が増加しているが、ＫＵ６００１９を処理した若年者由来線維芽細胞では、ＳＡ−Ｇａｌ陽性細胞が高齢者由来線維芽細胞と同等まで増加した（図１１）。
【００３８】
実施例７
（ＫＵ６００１９添加によるＳＨＳＹ５細胞の老化細胞促進）
ヒト神経芽細胞腫由来の培養細胞株であるＳＨＳＹ５細胞にＫＵ６００１９を作用させると、老化特異的な核膜異常を引き起こした。（緑：ＬａｍｉｎＢ１  赤：ＬａｍｉｎＡ／Ｃ  青：核染色）（図１２Ａ）。ＬａｍｉｎＢ１（ＬＭＮＢ１）ｍＲＮＡの減少（図１２Ｂ）、老化マーカーであるｐ１６ｍＲＮＡの増加（図１２Ｃ）、老化マーカーであるｐ２１ｍＲＮＡの減少、をｑＰＣＲで検出した（ｍｅａｎ±ＳＥＭ，ｎ＝４，＊ｐ＜０．０１．）（図１２Ｄ）。
すなわち、ＳＨＳＹ５（ヒト神経系の不死化細胞株）においても、ＫＵ６００１９を添加することにより、核膜の崩壊が観察された。また、核膜を構成するＬａｍｉｎＢ１（ＬＭＮＢ１）ｍＲＮＡの発現も低下していたことから、細胞老化が促進されていることが確認された。不死化細胞の老化研究で用いられる老化関連遺伝子であるｐ１６・ｐ２１のｍＲＮＡ発現に関しては、有意に上昇していることを確認した（図１２）。
【００３９】
これらの結果から、ＫＵ６００１９の老化促進作用は、ｉＰＳ細胞由来ニューロンだけでなく、それを含めた培養細胞全般に対して有効であることが示された。
【００４０】
実施例８
ＫＵ６００１９と類似の機能を有する化合物が同様の効果を有するか検証した。
実施例１と同様にしてヒトＩＰＳ細胞由来ニューロンにＫＵ６００１９（ＡＴＭ阻害剤）・ＫＵ５５９３３（ＡＴＭ阻害剤）・ＮＵ７４４１（ＤＮＡ−ＰＫ（ＡＴＭに類似した機能を持つ、ＤＮＡ修復に関連する因子）阻害剤）を作用させると、ＫＵ６００１９を添加した細胞だけが成熟を促進していることを確認した（図１３）。この結果から細胞成熟促進・老化誘導作用はＡＴＭ阻害剤および類似の薬剤の中でもＫＵ６００１９のみが有していると推測される。
【図１】
2019180403.tif 000003
【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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