(57)【要約】【課題】遺伝的性がメスである魚類のオス化を簡便かつ低コストで誘導することができる魚類の性転換誘導方法及び魚類の性転換誘導装置、並びに簡便かつ低コストで全メス化が可能な魚類の性統御方法を提供する。【解決手段】魚類の性転換誘導方法は、孵化後の魚類に対して、性が決定されるまでに緑色光を照射する照射ステップを含む。魚類の性統御方法は、当該照射ステップと、照射ステップにおいて緑色光を照射された、性染色体で規定される性がメスである魚類が有する精子により、該魚類の未受精卵を受精させる受精ステップと、を含む。【選択図】図６
2019154367.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
孵化後の魚類に対して、性が決定されるまでに緑色光を照射する照射ステップを含む、
魚類の性転換誘導方法。
【請求項２】
前記緑色光は、
５１３〜５２３ｎｍに波長のピークを有する、
請求項１に記載の魚類の性転換誘導方法。
【請求項３】
前記魚類は、
性染色体で性が規定される魚類である、
請求項１又は２に記載の魚類の性転換誘導方法。
【請求項４】
前記魚類は、
性染色体で規定される性がメスである、
請求項３に記載の魚類の性転換誘導方法。
【請求項５】
魚類に対して緑色光を照射する光源を備える、
魚類の性転換誘導装置。
【請求項６】
孵化後の魚類に対して、性が決定されるまでに緑色光を照射する照射ステップと、
前記照射ステップにおいて前記緑色光を照射された、性染色体で規定される性がメスである魚類が有する精子により、該魚類の未受精卵を受精させる受精ステップと、
を含む、魚類の性統御方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、魚類の性転換誘導方法、魚類の性転換誘導装置及び魚類の性統御方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
商取引される魚類には、性によって商品価値が異なる魚種がある。例えば、トラフグでは、オスの精巣に価値があり、シロザケではメスの卵巣にある魚卵に価値がある。ヒラメ等では、オスとメスとで成長に差があり、成長が早いメスが養殖業者に好まれる。したがって、魚類養殖業ではオス又はメスを優先的に生産する技術が求められている。
【０００３】
既に染色体操作、遺伝子操作、早期性判別、性ホルモン投与及び環境操作といった性統御を行う技術が開発されている。しかし、染色体操作及び早期性判別は、世代をつなぐため時間がかかる。さらに遺伝子操作自体が技術的な困難さを伴う。一方、性ホルモンの投与は魚体内への残留が懸念され、消費者に対して不安を与えることがある。さらに、性ホルモンの注射での投与は煩雑で、稚魚及び小型の魚類に対する注射での投与は難しい。
【０００４】
環境操作では、難しい技術は求められず、性ホルモンの残留等による悪印象を消費者に与えることを避けられる。魚類の性分化は、遺伝的要因と環境要因とによって決定される。性分化に影響を与える環境要因として、水温、ｐＨ及び飼育密度が知られている。
【０００５】
性分化に影響を与える水温は通常の飼育温度より高温である。高い水温を維持するのにはコストがかかる。ｐＨ及び飼育密度の調整も煩雑で、特に大型の魚類であれば技術的に困難となる。
【０００６】
簡便、かつ比較的低コストで性転換を誘導する方法として光を利用する方法がある。特許文献１には、マツカワの孵化後、性が決定されるまでの間に赤色光のみを所定期間照射することにより、メス化を促進させることができることが開示されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００７】
【特許文献１】特開２００９−１２５０１２号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
上記特許文献１に開示されたメス化を促進させる性統御方法では、赤色光を照射されたすべてのマツカワがメスになるわけではない。赤色光を照射されたマツカワにおけるメスの割合は最大で５９．５％であった。
【０００９】
遺伝的性がメス、すなわち性染色体がＸＸ型であるにも関わらず精巣を有する偽オスが得られれば、偽オスとメスとを交配することで、次世代がすべてメスとなる全メス化が実現できる。したがって、遺伝的性がメスである魚類のオス化を簡便かつ低コストで誘導することができる技術が求められている。
【００１０】
本発明は、上記実情に鑑みてなされたものであり、遺伝的性がメスである魚類のオス化を簡便かつ低コストで誘導することができる魚類の性転換誘導方法及び魚類の性転換誘導装置、並びに簡便かつ低コストで全メス化が可能な魚類の性統御方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
本発明の第１の観点に係る魚類の性転換誘導方法は、
孵化後の魚類に対して、性が決定されるまでに緑色光を照射する照射ステップを含む。
【００１２】
この場合、前記緑色光は、
５１３〜５２３ｎｍに波長のピークを有する、
こととしてもよい。
【００１３】
また、前記魚類は、
性染色体で性が規定される魚類である、
こととしてもよい。
【００１４】
また、前記魚類は、
性染色体で規定される性がメスである、
こととしてもよい。
【００１５】
本発明の第２の観点に係る魚類の性転換誘導装置は、
魚類に対して緑色光を照射する光源を備える。
【００１６】
本発明の第３の観点に係る魚類の性統御方法は、
孵化後の魚類に対して、性が決定されるまでに緑色光を照射する照射ステップと、
前記照射ステップにおいて前記緑色光を照射された、性染色体で規定される性がメスである魚類が有する精子により、該魚類の未受精卵を受精させる受精ステップと、
を含む。
【発明の効果】
【００１７】
本発明によれば、遺伝的性がメスである魚類のオス化を簡便かつ低コストで誘導することができる。さらに、簡便かつ低コストで全メス化が可能になる。
【図面の簡単な説明】
【００１８】
【図１】実施の形態１に係る性転換誘導装置の構成を示す概略図である。
【図２】実施例１で用いた白色光及び緑色光の波長及び放射照度を示す図である。
【図３】実施例１における白色光試験区で飼育したメダカを対象とするＰＣＲ（Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  Ｃｈａｉｎ  Ｒｅａｃｔｉｏｎ）の結果を示す図である。
【図４】実施例１における緑色光試験区で飼育したメダカを対象とするＰＣＲの結果を示す図である。
【図５】実施例１における白色光試験区で飼育したメダカを組織観察によって評価した結果を示す図である。
【図６】実施例１における緑色光試験区で飼育したメダカを組織観察によって評価した結果を示す図である。
【図７】実施例２に係る偽オスの精子の形態を示す図である。
【図８】偽オスの精子及び鰭から抽出したゲノムＤＮＡを対象とするＰＣＲの結果を示す図である。
【図９】Ｆ１世代から抽出したゲノムＤＮＡを対象とするＰＣＲの結果を示す図である。
【図１０】Ｆ１個体の生殖腺の組織切片を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１９】
本発明に係る実施の形態について図面を参照しながら説明する。なお、本発明は下記の実施の形態によって限定されるものではない。
【００２０】
（実施の形態１）
本実施の形態に係る魚類の性転換誘導方法は、孵化後の魚類に対して、性が決定されるまでに緑色光を照射する照射ステップを含む。孵化直後から又は孵化後２４時間以内の稚魚に緑色光を照射するのが好ましい。「性が決定される」とは、具体的には、性分化の結果、精巣又は卵巣を有することをいう。以下では、精巣又は卵巣を有することで判別される性を「表現型の性」とする。
【００２１】
表現型の性は、生殖腺の組織を観察することで判別できる。精巣を有する場合、表現型の性はオスである。卵巣を有する場合、表現型の性はメスである。性が決定されるまでの期間は魚種によって様々であるため、緑色光を照射する期間は魚種に応じて適宜設定すればよい。緑色光を照射する期間は、例えば、１〜４週間、１か月、２か月、３か月、４か月又は６か月である。
【００２２】
照射ステップでは、魚類に対して間欠的に緑色光を照射してもよい。例えば、一定時間の明期と一定時間の暗期とを繰り返す明暗周期下で魚類を飼育する場合、緑色光は、明期に照射してもよい。
【００２３】
魚類に照射する緑色光の波長は、４９５〜５７０ｎｍである。好ましくは、緑色光は５１３〜５２３ｎｍに波長のピークを有する。好適には、緑色光は５１８ｎｍに波長のピークを有する。緑色光の放射照度は、任意であるが、例えば、０．５〜１００、０．５〜５０又は１〜１０Ｗ／ｍ２である。
【００２４】
上記の魚類は、好ましくは性染色体で性が規定される魚類である。性染色体で性が規定される魚類は、メスの性染色体がＸＸ型でオスの性染色体がＸＹ型であるオスヘテロ型の魚類であってもよいし、メスの性染色体がＺＷ型でオスの性染色体がＺＺ型であるメスヘテロ型の魚類であってもよい。性染色体で規定される性を、遺伝的性という。遺伝的性は、例えば、性決定遺伝子の有無で判別できる。性決定遺伝子の有無は、ゲノムＤＮＡの塩基配列決定、好ましくは、ＰＣＲによって決定できる。
【００２５】
下記実施例に示すように、当該性転換誘導方法によれば、遺伝的性がメスである個体が、精巣を有する偽オスに誘導される。一方、遺伝的性がオスである個体に関しては性転換が誘導されない。よって、緑色光が照射される魚類は、遺伝的性がメスであることが好ましい。
【００２６】
緑色光が照射される魚類としては、例えば、魚卵に価値がある魚類が好ましい。当該魚類としては、サケ（Ｏｎｃｏｒｈｙｎｃｈｕｓ  ｋｅｔａ）、ベニザケ（Ｏｎｃｏｒｈｙｎｃｈｕｓ  ｎｅｒｋａ）、ギンザケ（Ｏｎｃｏｒｈｙｎｃｈｕｓ  ｋｉｓｕｔｃｈ）、カラフトマス（Ｏｎｃｏｒｈｙｎｃｈｕｓ  ｇｏｒｂｕｓｃｈａ）、サクラマス（Ｏｎｃｏｒｈｙｎｃｈｕｓ  ｍａｓｏｕ）、マスノスケ（Ｏｎｃｏｒｈｙｎｃｈｕｓ  ｔｓｈａｗｙｔｓｃｈａ）、ニジマス（Ｏｎｃｏｒｈｙｎｃｈｕｓ  ｍｙｋｉｓｓ）、イトウ（Ｈｕｃｈｏ  ｐｅｒｒｙｉ）、イワナ（Ｓａｌｖｅｌｉｎｕｓ  ｌｅｕｃｏｍａｅｎｉｓ）及びタイセイヨウサケ（Ｓａｌｍｏ  ｓａｌａｒ）等のサケ科（Ｓａｌｍｏｎｉｄａｅ）の魚類の他、チョウザメ（Ａｃｉｐｅｎｓｅｒｉｄａｅ  ｂｏｎａｐａｒｔｅ）及びシシャモ（Ｓｐｉｒｉｎｃｈｕｓ  ｌａｎｃｅｏｌａｔｕｓ）等が挙げられる。
【００２７】
また、魚類としては、ヒラメ（Ｐａｒａｌｉｃｈｔｈｙｓ  ｏｌｉｖａｃｅｕｓ）及びイシガレイ（Ｂａｓｉｌｅｗｓｋｙ）等の異体類が好ましい。異体類では、メスの成長がオスよりも早いため、全メス化できれば効率の良い養殖が可能となる。
【００２８】
ここで、本実施の形態に係る魚類の性転換誘導方法に好適な魚類の性転換誘導装置１００について説明する。図１は、性転換誘導装置１００の構成を示す図である。性転換誘導装置１００は、水槽１と、光源２とを備える。
【００２９】
水槽１は、水又は海水等の飼育水とともに魚類を保持する。水槽１は、魚類を飼育できるものであれば形状等は特に限定されない。
【００３０】
光源２は、水槽１の上に設置される。光源２は、魚類に対して上記の緑色光を照射する。光源２は、緑色光を発光するものであれば特に限定されないが、好ましくは緑色発光ダイオードである。
【００３１】
水槽１内には、送気のためのエアストーン３が設置される。エアストーン３は、チューブを介して送気装置と接続している。エアストーン３は、チューブを介して送られる空気を、水槽１内で放出する。エアストーン３が放出する空気によって、水槽１内の飼育水の酸素量が適切に維持される。
【００３２】
水槽１内には、排水装置４が配設される。排水装置４は、サイフォン式で水槽１内の飼育水を水槽１の外部に適宜排出する。排水装置４によって、水槽１内の水位が所定の高さに維持される。
【００３３】
水槽１には、外部に設置された水槽５から飼育水が供給される。水槽５には、ヒーター６と、ポンプ７が配置される。水槽５には飼育水が貯められる。水槽５内の飼育水は、ヒーター６によって水槽１で飼育される魚類に適した温度に維持される。水槽５内の飼育水は、ポンプ７によってチューブを介して水槽１に送られる。
【００３４】
以上詳細に説明したように、本実施の形態に係る魚類の性転換誘導方法によれば、簡便で低コストである緑色光の照射によって魚類のオスへの性転換を誘導することができる。
【００３５】
また、緑色光が照射される魚類は、遺伝的性がメスであってもよいこととした。これにより、遺伝的性がオスである個体と遺伝的性がメスである個体とが水槽１に混在している場合よりも、水槽１で飼育された魚類において性転換が誘導される個体の割合を大きくすることができる。
【００３６】
なお、照射ステップでは、緑色光のみが魚類に照射されてもよい。この場合、性転換誘導装置１００を遮光された暗室の内側又は外部から光が入射しない箱内に配置すればよい。
【００３７】
（実施の形態２）
本実施の形態に係る魚類の性統御方法は、上記実施の形態１における照射ステップに加えて、受精ステップを含む。受精ステップでは、照射ステップにおいて緑色光を照射された、遺伝的性がメスである魚類が有する精子により、該魚類の未受精卵を受精させる。
【００３８】
魚類がヒラメ等のオスヘテロ型の場合、偽オスの性染色体はＸＸ型であるため、偽オスの精子にはＹ染色体は含まれず、Ｘ染色体が含まれる。したがって、偽オスの個体とメスである個体とを交配することで、上述のように次世代（Ｆ１世代）がすべてメスになる。魚類がイシガレイ等のメスヘテロ型の場合、当該性転換誘導方法によって得られる偽オスの性染色体はＺＷ型である。このため、偽オスの個体とメスである個体とを交配することで、性染色体がＷＷ型である超メスがＦ１世代に得られる。さらに、得られた超メスとオスである個体とを交配することで、Ｆ２世代をすべてメスにすることができる。
【００３９】
受精ステップでは、偽オスの個体とメスの個体とを同じ水槽等で飼育することで自然に交配させればよい。また、受精ステップでは、メスから回収した未受精卵を偽オスから回収した精子に暴露することで人工的に受精させてもよい。
【００４０】
以上詳細に説明したように、本実施の形態に係る魚類の性統御方法によれば、上記実施の形態１における照射ステップで得られる偽オスの精子を用いて未受精卵を受精させるので、簡便かつ低コストで、オスヘテロ型の魚類のＦ１世代及びメスヘテロ型の魚類のＦ２世代をより確実に全メス化することができる。
【００４１】
なお、魚類がオスヘテロ型の場合、例えば、精子凍結技術を用いることで、必要な時に偽オスの精子を用いてＦ１世代を全メス化することができる。さらに、精子の選別技術を利用することでＦ１世代を全オス化することもできるため、魚種に応じてオス又はメスのどちらの性でも優占生産が可能になる。
【００４２】
なお、魚類がメスヘテロ型の場合、当該魚類の性統御方法は、照射ステップ及び受精ステップ（第１の受精ステップ）に加え、第１の受精ステップで得られた受精卵から孵化した超メスの未受精卵を、遺伝的性がオスである魚類が有する精子により受精させる第２の受精ステップを含むのが好ましい。この場合、当該性統御方法は、第１の受精ステップの後かつ第２の受精ステップの前に、第１の受精ステップで得られた受精卵から孵化した魚類の中から超メスを選抜する選抜ステップをさらに含んでもよい。
【００４３】
また、メスヘテロ型の魚類の性統御方法は、照射ステップの後かつ第１の受精ステップの前に、精子の選別技術により、遺伝的性がメスである魚類が有する精子の中からＷ染色体を含む精子を選別する選別ステップをさらに含んでもよい。こうすることで超メスを効率よく得ることができる。
【実施例】
【００４４】
以下の実施例により、本発明をさらに具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。
【００４５】
（実施例１）
本実施例では、個体差を少なくするために近交系ＨｄＲｒ−II１系統のメダカ（Ｏｒｙｚｉａｓ  ｌａｔｉｐｅｓ）を用いた。ＨｄＲｒ−II１系統では、体色を決定する遺伝子が性染色体上にあるため、体色と性とが対応している。オスの体色は黄色で、メスの体色は白色である。本実験に使用した親メダカＨｄＲｒ−II１系統は、ナショナルバイオリソースプロジェクトより入手した。
【００４６】
市販されている３１．５×１８．５×２４．４ｃｍで約１２Ｌの水槽をメダカの飼育に用いた。光源には緑色光、白色光、赤色光又は青色光を照射するＬＥＤ（緑色光：ＬＢ１５２６Ｇ、白色光：ＬＤＡ６Ｎ−Ｇ、赤色光：ＬＢ１５２６Ｒ、青色光：ＬＢ１５２６Ｂ、すべてビームテック社製）を用いた。図２に示すように、白色光は４５０ｎｍ及び５８２ｎｍにピークを持つ連続した光波長を有する。緑色光の波長は５１８ｎｍにピークを有する。なお、赤色光の波長は６３３ｎｍにピークを有する。青色光の波長は４６５ｎｍにピークを有する。
【００４７】
各光源から照射される光の波長のピークのおける放射照度は１Ｗ／ｍ２とした。明暗周期は、明期１４時間及び暗期１０時間とした。明期にのみ光源から光を照射した。すべての光源間で、光強度に有意な差はなかった。水温は約２６℃とした。メダカには、配合飼料（メダカのエサ、キョーリン社製）とアルテミア（ブラインシュリンプエッグス−９０、北村社製）とを１日３回給餌した。
【００４８】
親メダカから採卵した卵を２６℃のインキュベーターで保温し孵化後２４時間以内の稚魚を各色の試験区に収容した。約３か月飼育し、遺伝的性と表現型の性とを判別した。
【００４９】
遺伝的性を示す体色は、色素顆粒によって決まる。色素顆粒は、孵化前より観察できる。本実施例では、より明瞭に判定できる約２か月飼育した個体の体色を、オス及びメスの判定に用いた。遺伝的性がメスの場合、体色は白色である。遺伝的性がオスの場合、体色は緋色である。本実施例では、二次性徴が出現する期間まで飼育した個体を解析に用いた。
【００５０】
遺伝的性を判別するために、ｄｍｙプライマーを用いたＰＣＲによって性決定遺伝子の有無を決定した。メダカの鰭を５ｍｍほど裁断し、ｍｏｕｓｅ  ｔａｉｌ  ｂｕｆｆｅｒ（１００ｍＭ  Ｔｒｉｓ−Ｃｌ、５ｍＭ  ＥＤＴＡ、２００ｍＭ  ＮａＣｌ、０．２％ＳＤＳ及び１μＬ  Ｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ  Ｋ）を５００μＬ入れたエッペンチューブ内に鰭を入れ、ブロックインキュベータ上で５５℃に維持し、一晩おいて溶かした。その後、１３０００×ｇで１０分遠心し、上澄みを新しいエッペンチューブに移した。イソプロパノールを５００μＬ入れ、ゲノムＤＮＡを沈殿させ、１３０００×ｇで５分遠心し、ゲノムＤＮＡを回収した。続いて、７０％エタノールで洗浄した後、１０〜２０μＬのＲＮＡａｓｅ  ｆｒｅｅ  ｗａｔｅｒで希釈した。ｄｍｙプライマーにおけるフォワードプライマー及びリバースプライマーの塩基配列を、それぞれ配列番号１及び配列番号２に示す。
【００５１】
ｄｍｙプライマーを用いたＰＣＲによって、遺伝的性がオスの場合、ｄｍｙ遺伝子及びＤｍｒｔ１遺伝子がそれぞれ９００ｂｐ及び１３００ｂｐのバンドとして検出される。遺伝的性がメスの場合、Ｄｍｒｔ１遺伝子のみが１３００ｂｐのバンドとして検出される。ＰＣＲでは、９６℃で予備加熱を行い、９４℃で２分間、９４℃で１０秒、６０℃で３０秒、７２℃で１分を４０サイクル行い、最後に７２℃で７分の伸長反応を行った。酵素としては、ＢＩＯＬＩＮＥ社のＢｉｏｔａｑを使用した。
【００５２】
表現型の性を判別するために生殖腺の組織切片を作成した。メダカから生殖腺を採取し、浸透機の上で一晩、飽和ピクリン酸、ホルマリン及び酢酸を１５：５：１の比率で混合したブアン氏液にて固定した。その後、７０％、８０％、９０％、１００％のエタノールに順次浸け、脱水した。続いて、キシレンに３時間浸けて透徹を行い、パラフィンに包埋した。包埋後にトリミングを行い、ミクロトーム（ＨＭ  ３１５Ｓ、ＭＩＣＲＯＭ  ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  ＧｍｂＨ社製）を用いて４から６μｍの厚さに薄切し、ヘマトキシリン・エオシン染色を行い、観察した。
【００５３】
（結果）
図３及び図４は、それぞれ白色光試験区及び緑色光試験区で飼育したメダカを対象とするｄｍｙプライマーを用いたゲノムＰＣＲの結果を示す。双方の試験区において、体色が白色であるメダカではＤｍｒｔ１遺伝子のバンドのみが検出され、体色が緋色であるメダカではＤｍｒｔ１遺伝子及びｄｍｙ遺伝子の２つのバンドが検出された。よって、緑色光試験区であってもＰＣＲで判別される遺伝的性は、体色が示す遺伝的性と一致した。
【００５４】
図５は、白色光試験区で飼育したメダカの表現型の性を組織観察によって評価した結果を示す。遺伝的性がメスである個体は、すべて卵巣を有していた。一方、遺伝的性がオスである個体は、すべて精巣を有していた。よって、白色光試験区で飼育したメダカでは、遺伝的性が表現型の性と一致し、性転換は誘導されなかった。なお、赤色光及び青色光の試験区でも同様に遺伝的性が表現型の性と一致し、性転換は誘導されなかった。
【００５５】
図６は、緑色光試験区で飼育したメダカの表現型の性を組織観察によって評価した結果を示す。遺伝的性がメスである個体の２７％が精巣を有していた。一方、遺伝的性がオスである個体は、すべて精巣を有していた。よって、緑色光試験区で飼育したメダカでは、遺伝的性がメスである個体のみの性転換が誘導されることが示された。
【００５６】
（実施例２）
実施例１で得られたメスからオスに性転換された個体（偽オス）の精子を、ヒメダカの卵子に人工受精させることで、当該精子が機能的であるか否かを確認した。人工授精には、人工精漿を用いた。人工精漿は、ＮａＣｌ  ６５０ｍｇ、ＫＣｌ  ４０ｍｇ、ＣａＣｌ２  １１．３ｍｇ、ＭｇＳＯ４・７Ｈ２Ｏ  １５ｍｇに対して、蒸留水を１００ｍＬまでメスアップしたものである。偽オスの腹部から圧出した精子を回収した。また、未受精卵は、人工精漿中にてメスを解剖することで得た。初めにホールスライドグラスに未受精卵を乗せ、人工精漿を卵が空気中に露出しない程度に減らした。そして、精子をピペットマンで採集し、ピペッティングによって未受精卵に吹きかけた。その後、メチレンブルーを少量入れ２６℃のインキュベーターを用いて孵化まで加温した。
【００５７】
（結果）
図７は、偽オスから回収した精子の外観を示す。精子の形態に異常は認められなかった。図８は、偽オスから回収した精子のゲノムＤＮＡ及び偽オスの鰭から抽出したゲノムＤＮＡを対象とするｄｍｙプライマーを用いたゲノムＰＣＲの結果を示す。精子及び鰭のゲノムＤＮＡには、Ｄｍｒｔ１遺伝子のみのバンドが検出され、ｄｍｙ遺伝子のバンドは検出されなかった。
【００５８】
図９は、Ｆ１世代である受精卵又は孵化した仔魚から抽出したゲノムＤＮＡを対象とするｄｍｙプライマーを用いたゲノムＰＣＲの結果を示す。Ｆ１世代からはｄｍｙ遺伝子のバンドは検出されなかった。よって、Ｆ１個体の遺伝的性はすべてメスであることが示された。
【００５９】
Ｆ１個体の生殖腺の組織切片を図１０に示す。Ｆ１個体は、卵原細胞と未熟な卵母細胞とを有していた。ゲノムＰＣＲの結果と合わせると、Ｆ１個体は、遺伝的性も表現型の性もメスであった。すなわち、偽オスはＸ染色体を有する精子のみを産生したことが示された。
【００６０】
上述した実施の形態は、本発明を説明するためのものであり、本発明の範囲を限定するものではない。すなわち、本発明の範囲は、実施の形態ではなく、特許請求の範囲によって示される。そして、特許請求の範囲内及びそれと同等の発明の意義の範囲内で施される様々な変形が、本発明の範囲内とみなされる。
【産業上の利用可能性】
【００６１】
本発明は、魚類の養殖に好適である。
【符号の説明】
【００６２】
１、５  水槽
２  光源
３  エアストーン
４  排水装置
６  ヒーター
７  ポンプ
１００  性転換誘導装置
【図１】
2019154367.tif 000003
【図２】
2019154367.tif 000004
【図３】
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【図４】
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【図５】
2019154367.tif 000007
【図６】
2019154367.tif 000008
【図７】
2019154367.tif 000009
【図８】
2019154367.tif 000010
【図９】
2019154367.tif 000011
【図１０】
2019154367.tif 000012
【配列表】
2019154367000001.app