(57)【要約】【課題】ＳＣ−β細胞及び組成物並びにその生成方法を提供すること。【解決手段】ａ）ＫＧＦ及びｂ）ＳＡＮＴ１を含み、プロテインキナーゼＣ（ＰＫＣ）アクチベータを実質的に含まない培養培地を用いる、ＰＤＸ１陽性膵臓始原細胞をＮＫＸ６．１陽性膵臓始原細胞に分化させるための方法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
ａ）ＫＧＦ及びｂ）ＳＡＮＴ１を含み、プロテインキナーゼＣ（ＰＫＣ）アクチベータを実質的に含まない培養培地を用いる、ＰＤＸ１陽性膵臓始原細胞をＮＫＸ６．１陽性膵臓始原細胞に分化させるための方法。
【請求項２】
ＰＫＣアクチベータが、ホルボール１２，１３−ジブチレート（ＰｄＢｕ）又はＴＰＢである、請求項１記載の方法。
【請求項３】
ＰＫＣアクチベータが、ＰｄＢｕである、請求項１記載の方法。
【請求項４】
ＰＫＣアクチベータが、ＴＰＢである、請求項１記載の方法。
【請求項５】
培養培地が、レチノイン酸（ＲＡ）をさらに含む、請求項１記載の方法。
【請求項６】
ａ）ＫＧＦ及びｂ）ＳＡＮＴ１を含み、ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤を実質的に含まない培養培地を用いる、ＰＤＸ１陽性膵臓始原細胞をＮＫＸ６．１陽性膵臓始原細胞に分化させるための方法。
【請求項７】
ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤が、ノギン、コーディン、ｇｒｅｍｌｉｎ、フォリスタチン及びＬＤＮ１９３１８９から選択される、請求項６記載の方法。
【請求項８】
ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤がノギンである、請求項６記載の方法。
【請求項９】
ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤がコーディンである、請求項６記載の方法。
【請求項１０】
ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤がｇｒｅｍｌｉｎである、請求項６記載の方法。
【請求項１１】
ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤がフォリスタチンである、請求項６記載の方法。
【請求項１２】
ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤がＬＤＮ１９３１８９である、請求項６記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ＳＣ−β細胞及び組成物並びにその生成方法に関する。
【０００２】
関連出願の相互参照
この出願は、２０１３年６月１１日付けで出願された米国仮出願第６１／８３３，８９８号及び２０１４年３月２８日付けで出願された米国仮出願第６１／９７２，２１２号の利益を主張する。その内容は、その全体が参照により組み込まれる。
【背景技術】
【０００３】
今日まで研究において、連続的に変化するグルコースレベルに対する応答において、適切な量のインスリンを分泌しない、異常にのみ機能するインスリン発現細胞、または、マウス宿主への移植後３ヶ月でのみ、機能性インスリン発現細胞に成熟し得る膵臓始原細胞が生成されている（Ｃｈｅｎｇ  ｅｔ．  ａｌ．，  ２０１２；Ｄ’Ａｍｏｕｒ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００５；Ｄ’Ａｍｏｕｒ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００６；Ｋｒｏｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００８；Ｎｏｓｔｒｏ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１１；Ｒｅｚａｎｉａ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２；Ｓｃｈｕｌｚ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２；Ｘｉｅ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１３）。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】Ｃｈｅｎｇ，  Ｘ．，  Ｙｉｎｇ，  Ｌ．，  Ｌｕ，  Ｌ．，  Ｇａｌｖaｏ，  Ａ．Ｍ．，  Ｍｉｌｌｓ，  Ｊ．Ａ．，  Ｌｉｎ，  Ｈ．Ｃ．，  Ｋｏｔｔｏｎ，  Ｄ．Ｎ．，  Ｓｈｅｎ，  Ｓ．Ｓ．，  Ｎｏｓｔｒｏ，  Ｍ．Ｃ．，  ｅｔ  ａｌ．  （２０１２）．  Ｓｅｌｆ−ｒｅｎｅｗｉｎｇ  ｅｎｄｏｄｅｒｍａｌ  ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ  ｌｉｎｅｓ  ｇｅｎｅｒａｔｅｄ  ｆｒｏｍ  ｈｕｍａｎ  ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ．  Ｃｅｌｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  １０，  ３７１−３８４．
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
「グルコース刺激インスリン分泌」（ＧＳＩＳ）アッセイにおける高レベルのグルコースに対する応答において、高レベルのインスリンを放出し、それを繰り返し行い得る、正常な膵島または散在した成体β細胞とは対照的に、既存の方法により生成されたｈＰＳＣ系インスリン発現細胞は、種々の濃度のグルコースの添加に対する応答において、適切にインスリンを分泌できない。したがって、正常な膵島または成熟した成体β細胞の表現型を示す、ｈＰＳＣ由来の細胞の取得方法についての必要性が存在する。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
一部の態様では、本開示は、幹細胞系β細胞（ＳＣ−β）を提供する。
【０００７】
一部の実施形態では、前記細胞は、成熟している。一部の実施形態では、前記細胞は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでのグルコース刺激インスリン分泌（ＧＳＩＳ）応答を示す。一部の実施形態では、前記細胞は、ｉｎ  ｖｉｖｏでのＧＳＩＳ応答を示す。一部の実施形態では、前記細胞は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及びｉｎ  ｖｉｖｏでのグルコース刺激インスリン分泌（ＧＳＩＳ）応答を示す。一部の実施形態では、前記細胞は、少なくとも１回のグルコースチャレンジに対して、ＧＳＩＳ応答を示す。一部の実施形態では、前記細胞は、少なくとも２回の連続的なグルコースチャレンジに対して、ＧＳＩＳ応答を示す。一部の実施形態では、前記細胞は、少なくとも３回の連続的なグルコースチャレンジに対して、ＧＳＩＳ応答を示す。一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、前記細胞をヒトまたは動物に移植した直後に観察される。一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、前記細胞をヒトまたは動物に移植した約２４時間以内に観察される。一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、前記細胞をヒトまたは動物に移植した約２週間以内に観察される。一部の実施形態では、低グルコース濃度と比較して、高グルコース濃度に対する応答において分泌されたインスリンの割合により特徴付けられる前記細胞の刺激指数は、内在性の成熟膵臓β細胞の刺激指数に類似している。一部の実施形態では、前記刺激指数は、１以上または１．１以上または１．３以上または２以上または２．３以上または２．６以上である。一部の実施形態では、前記細胞は、サイトカインに対する応答において、サイトカイン誘導性アポトーシスを示す。一部の実施形態では、前記サイトカインは、インターロイキン−１β（ＩＬ−β）、インターフェロン−γ（ＩＮＦ−γ）、腫瘍壊死因子−α（ＴＮＦ−α）及びそれらの組合せからなる群から選択される。一部の実施形態では、前記細胞からのインスリン分泌は、抗糖尿病剤に対する応答において亢進する。一部の実施形態では、前記抗糖尿病剤は、インクレチン模倣物、スルホニル尿素、メグリチニド及びそれらの組合せからなる群から選択される分泌促進物質を含む。一部の実施形態では、前記細胞は、モノホルモン性である。一部の実施形態では、前記細胞は、内在性の成熟膵臓β細胞の形態に類似する形態を示す。一部の実施形態では、前記細胞は、内在性の成熟膵臓β細胞のインスリン顆粒に類似する、電子顕微鏡観察下における封入結晶インスリン顆粒を示す。一部の実施形態では、前記細胞は、低速の複製を示す。一部の実施形態では、前記細胞は、内在性の成熟膵臓β細胞のＧＳＣＦに類似するグルコース刺激Ｃａ２＋流動（ＧＳＣＦ）を示す。一部の実施形態では、前記細胞は、少なくとも１回のグルコースチャレンジに対して、ＧＳＣＦ応答を示す。一部の実施形態では、前記細胞は、少なくとも２回のグルコースチャレンジに対して、ＧＳＣＦ応答を示す。一部の実施形態では、前記細胞は、少なくとも３回のグルコースチャレンジに対して、ＧＳＣＦ応答を示す。一部の実施形態では、前記細胞は、亢進したカルシウム流動を示す。一部の実施形態では、前記亢進したカルシウム流動は、増大した量の流入または、高グルコース濃度に対して低い流入比を含む。一部の実施形態では、前��細胞は、インスリン、Ｃ−ペプチド、ＰＤＸ１、ＭＡＦＡ、ＮＫＸ６−１、ＰＡＸ６、ニューロＤ１、グルコキナーゼ（ＧＣＫ）、ＳＬＣ２Ａ１、ＰＣＳＫ１、ＫＣＮＪ１１、ＡＢＣＣ８、ＳＬＣ３０Ａ８、ＳＮＡＰ２５、ＲＡＢ３Ａ、ＧＡＤ２、ＰＴＰＲＮ、ＮＫＸ２−２、Ｐａｘ４からなる群から選択される、内在性の成熟膵臓β細胞に固有の少なくとも１つのマーカーを発現している。一部の実施形態では、前記細胞は、ａ）ｉ）グルカゴン（ＧＣＧ）及びｉｉ）ソマトスタチン（ＳＳＴ）からなる群から選択されるホルモン、または、ｂ）ｉ）アミラーゼ及びｉｉ）カルボキシペプチダーゼＡ（ＣＰＡ１）からなる群から選択される腺細胞マーカー；ｃ）ｉ）ＧＣＧ、ｉｉ）Ａｒｘ、ｉｉｉ）Ｉｒｘ１及びＩｒｘ２からなる群から選択されるα細胞マーカー；並びに、ｄ）ｉ）ＣＦＴＲ及びｉｉ）Ｓｏｘ９からなる群から選択される管細胞マーカー、からなる群から選択される少なくとも１つのマーカーを発現していない。一部の実施形態では、前記細胞は、インスリン陽性内分泌細胞または、Ｎｋｘ６−１陽性膵臓始原細胞、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞及び多能性幹細胞からなる群から選択されるその前駆体から、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて分化されている。一部の実施形態では、前記多能性幹細胞は、胚性幹細胞及び誘導多能性幹細胞からなる群から選択される。一部の実施形態では、前記細胞はヒトである。一部の実施形態では、前記細胞は、遺伝子組み換えされていない。一部の実施形態では、前記細胞は、遺伝子組み換えされている。一部の実施形態では、前記細胞あたりに産生されるインスリンは、高グルコース濃度での３０分のインキュベートにおいて、細胞１０００個あたりに、０．５と１０μＩＵとの間である。一部の実施形態では、前記細胞あたりに産生されるインスリンは、高グルコース濃度での３０分のインキュベートにおいて、細胞１０００個あたりに、約２．５μＩＵである。一部の実施形態では、前記インキュベートは、ｅｘ  ｖｉｖｏにおいて生じる。
【０００８】
一部の態様では、本開示は、ＳＣ−β細胞を含む細胞株を提供する。一部の実施形態では、前記細胞株は、インスリンを安定的に発現している。一部の実施形態では、前記細胞は、少なくとも３０回の継代まで、明らかな形態変化をすることなく、凍結、解凍及び、約２４と４４時間との間の倍加時間で増幅されることができる。
【０００９】
一部の態様では、本開示は、細胞クラスター形成を促進する条件下において、インスリン陽性内分泌細胞を含む細胞集合を、ａ）形質転換成長因子β（ＴＧＦ−β）シグナル伝達阻害剤及びｂ）甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータを含む少なくとも２つのβ細胞成熟因子と接触させて、前記集合における少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞のＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導することを含む、インスリン陽性内分泌細胞からのＳＣ−β細胞の生成方法を提供する。
【００１０】
一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、少なくとも１回のグルコースチャレンジに対する応答を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、少なくとも２回の連続的なグルコースチャレンジに対する応答を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、少なくとも３回の連続的なグルコースチャレンジに対する応答を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞の形態は、内在性の成熟β細胞の形態に類似している。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏでのグルコース刺激インスリン分泌（ＧＳＩＳ）応答を示す。一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、前記ＳＣ−β細胞を対象に移植した直後に観察される。一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、前記ＳＣ−β細胞を対象に移植した約２４時間以内に観察される。一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、前記ＳＣ−β細胞を対象に移植した約２週間以内に観察される。一部の実施形態では、前記細胞集合を、１００ｎＭ−１００μＭの間の濃度で、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、１０μＭの濃度で、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、ＴＧＦ−βシグナル伝達経路は、ＴＧＦ−β受容体Ｉ型キナーゼシグナル伝達を含む。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、Ａｌｋ５阻害剤ＩＩを含む。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、Ａｌｋ５阻害剤ＩＩの類似体または誘導体を含む。一部の実施形態では、前記細胞集合を、０．１μＭ−１０μＭの間の濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、１μＭの濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータは、トリヨードチロニン（Ｔ３）を含む。一部の実施形態では、前記細胞集合を、場合により、プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、プロテインキナーゼ阻害剤と接触させない。一部の実施形態では、前記細胞集合を、プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、１０ｎＭ−１μＭの間の濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、１００ｎＭの濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記プロテインキナーゼ阻害剤は、スタウロスポリンを含む。一部の実施形態では、前記方法は、前記細胞集合を、少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子と接触させることを含む。一部の実施形態では、前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子は、嚢胞性繊維症膜コンダクタンス制御因子（ＣＦＴＲ）阻害剤を含む。一部の実施形態では、前記細胞集合を、１００ｎＭ−１００μＭの間の濃度で、前記ＣＦＴＲ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、１０ｎＭ−１０μＭの間の濃度で、前記ＣＦＴＲ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＣＦＴＲ阻害剤は、Ｇｌｙ−Ｈ１０１を含む。一部の実施形態では、前記少なくとも１つの更なるβ���胞成熟因子は、Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤を含む。一部の実施形態では、前記細胞集合を、１００ｎＭ−１００μＭの間の濃度で、前記Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、１０ｎＭ−１０μＭの濃度で、前記Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤は、Ｔｈｉａｍｅｔ  Ｇを含む。一部の実施形態では、前記細胞集合は、適切な培養培地中で培養される。一部の実施形態では、前記適切な培養培地は、膵島培地（ＣＭＲＬＳ）またはＣＭＲＬＳの成分を添加した、Ｃｏｎｎｏｕｇｈｔ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ  １０６６を含む。一部の実施形態では、前記ＣＭＲＬＳは、血清と共に添加される。一部の実施形態では、前記ＣＭＲＬＳは、１０％  ウシ胎児血清と共に添加される。一部の実施形態では、前記細胞クラスター形成を促進する条件は、懸濁培養を含む。一部の実施形態では、前記細胞集合は、前記細胞集合中の少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞の少なくとも１つのＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導するのに十分な期間、懸濁培養において維持される。一部の実施形態では、前記期間は、少なくとも７日を含む。一部の実施形態では、前記期間は、７日と２１日との間を含む。一部の実施形態では、前記期間は、７日と１４日との間を含む。一部の実施形態では、前記期間は、１０日と１４日との間を含む。一部の実施形態では、前記期間は、１４日を含む。一部の実施形態では、前記β細胞成熟因子は、２日に１回補充される。一部の実施形態では、前記細胞集合中の少なくとも１％の前記インスリン陽性内分泌細胞が誘導されて、ＳＣ−β細胞に成熟する。一部の実施形態では、前記集合中の少なくとも９９％の前記インスリン陽性内分泌細胞が誘導されて、ＳＣ−β細胞に成熟する。一部の実施形態では、前記集合中の得られた細胞の少なくとも３０％は、ＳＣ−β細胞を含む。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、Ｃ−ペプチド、インスリン、ＮＫＸ６−１、Ｐｄｘ１を発現しており、ＮＫＸ６−１とＣ−ペプチドとを共発現している。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞は、Ｐｄｘ１及びＮＫＸ６−１も発現している。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞は、胚性幹細胞及び誘導多能性幹細胞からなる群から選択される多能性幹細胞の集合から産生される。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、ヒト細胞を含む。一部の実施形態では、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける前記ＳＣ−β細胞の生成は、規模を拡大できる。
【００１１】
一部の態様では、本開示は、本願明細書に記載された方法に基づいて産生されたＳＣ−β細胞の単離された集合を提供する。
【００１２】
一部の態様では、本開示は、その中に封入された、ＳＣ−β細胞の単離された集合を含むマイクロカプセルを提供する。
【００１３】
一部の態様では、本開示は、本願明細書に記載された方法に基づいて産生されたＳＣ−β細胞の集合を含む組成物を提供する。
【００１４】
一部の態様では、本開示は、本願明細書に記載された方法に基づいて産生されたＳＣ−β細胞の単離された集合を含むアッセイを提供する。
【００１５】
一部の実施形態では、前記アッセイは、β細胞の増殖、β細胞の複製、β細胞の死、β細胞の機能、免疫攻撃に対するβ細胞の感受性または脱分化もしくは分化に対するβ細胞の感受性からなる群から選択される、β細胞の運命を促進または阻害する、１つ以上の候補剤を特定するのに使用するためのものである。一部の実施形態では、前記アッセイは、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体の、少なくとも１つのＳＣ−β細胞への分化を促進する、１つ以上の候補剤を特定するのに使用するためのものである。
【００１６】
一部の態様では、本開示は、本願明細書に記載された方法に基づいて産生されたＳＣ−β細胞の単離された集合を含む組成物を、対象に投与することを含む、それを必要とする対象の処置方法を提供する。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、マイクロカプセルに封入される。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、前記ＳＣ−β細胞が投与される前記同じ対象から得られた多能性幹細胞の集合から産生される。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、ｉＰＳ細胞の集合から産生され、前記ｉＰＳ細胞は、前記ＳＣ−β細胞が投与される前記同じ対象から得られた細胞から得られる。一部の実施形態では、前記対象は、糖尿病を有するか、または、糖尿病になる増大したリスクを有する。一部の実施形態では、前記糖尿病は、Ｉ型糖尿病、ＩＩ型糖尿病、１．５型糖尿病及び糖尿病前症からなる群から選択される。一部の実施形態では、前記対象は、代謝異常を有するか、または、代謝異常になる増大したリスクを有する。
【００１７】
一部の態様では、本開示は、それを必要とする対象に投与するための、請求項４１から１０２のいずれか一項に記載の方法により産生されたＳＣ−β細胞の単離された集合の使用に関する。
【００１８】
一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞の単離された集合は、マイクロカプセルに封入されて、前記対象に投与される。一部の実施形態では、前記対象は、糖尿病を有するか、または、糖尿病になる増大したリスクを有する。一部の実施形態では、前記糖尿病は、Ｉ型糖尿病、ＩＩ型糖尿病、１．５型糖尿病及び糖尿病前症からなる群から選択される。一部の実施形態では、前記対象は、代謝異常を有するか、または、代謝異常になる増大したリスクを有する。
【００１９】
一部の態様では、本開示は、ａ）Ａｌｋ５阻害剤、ｂ）トリヨードチロニン（Ｔ３）、場合により、ｃ）スタウロスポリン、及び場合により、ｄ）ＣＭＲＬＳまたはＣＭＲＬＳの成分を含む、培養培地を提供する。
【００２０】
一部の態様では、本開示は、インスリン陽性内分泌細胞のＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導するために前記培養培地を使用し、前記ＳＣ−β細胞が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏの両方でのＧＳＩＳ応答を示す、前記使用を含む。
【００２１】
一部の態様では、本開示は、細胞クラスター形成を促進する条件下において、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を含む細胞集合を、ａ）繊維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）ファミリーからの少なくとも１つの成長因子、ｂ）ソニックヘッジホッグ経路阻害剤を含む少なくとも２つのβ細胞成熟因子、及び場合により、ｃ）低濃度のレチノイン酸（ＲＡ）シグナル伝達経路アクチベータと、少なくとも５日の期間接触させて、前記集合中の少なくとも１つのＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導することを含み、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が、ＮＫＸ６−１を発現している、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞からのＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の製造方法を提供する。
【００２２】
一部の実施形態では、前記細胞集合を、１ｎｇ／ｍＬ−１００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、５０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ケラチノサイト成長因子（ＫＧＦ）を含む。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ＦＧＦ２、ＦＧＦ８Ｂ、ＦＧＦ１０及びＦＧＦ２１からなる群から選択される。一部の実施形態では、前記細胞集合を、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させない。一部の実施形態では、前記細胞集合を、０．０１μＭ−１．０μＭの間の濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、０．１μＭの濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータは、ＲＡを含む。一部の実施形態では、前記細胞集合を、０．１μＭと０．５μＭとの間の濃度で、ＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、０．２５μＭの濃度で、前記ＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＳＨＨ経路阻害剤は、Ｓａｎｔ１を含む。前記方法は、少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子に、前記細胞集合を曝すことを含む。一部の実施形態では、前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子は、ＥＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子を含む。一部の実施形態では、前記細胞集合は、２ｎｇ／ｍＬ−２００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子に曝される。一部の実施形態では、前記細胞集合は、２０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子に曝される。一部の実施形態では、前記ＥＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子は、ベタセルリン及びＥＧＦからなる群から選択される。一部の実施形態では、前記細胞集合は、適切な培養培地中で培養される。一部の実施形態では、前記細胞クラスター形成を促進する条件は、懸濁培養を含む。一部の実施形態では、前記β細胞成熟因子は、２日に１回補充される。一部の実施形態では、プロテインキナーゼＣのアクチベータは、５日の間、前記懸濁培養に添加されない。一部の実施形態では、プロテインキナーゼＣのアクチベータは、５日の前に、前記懸濁培養から除去される。一部の実施形態では、前記プロテインキナーゼＣのアクチベータは、ＰｄｂＵを含む。一部の実施形態では、ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤は、５日の間、前記懸濁培養に添加されない。一部の実施形態では、ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤は、５日の前に、前記懸濁培養から除去される。一部の実施形態では、前記ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤は、ＬＤＮ１９３１８９を含む。一部の実施形態では、前記集合中の少なくとも１０％の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞は誘導されて、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞に分化する。一部の実施形態では、前記集合中の少なくとも９５％の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞は誘導されて、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞に分化する。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞は、Ｐｄｘ１、ＮＫＸ６−１及びＦｏｘＡ２を発現している。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞は、胚性幹細胞及び誘導多能性幹細胞からなる群から選択される多能性幹細胞の集合から産生される。
【００２３】
一部の態様では、本開示は、本願明細書に記載された方法により得られたＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合を提供する。
【００２４】
一部の態様では、本開示は、その中に封入された、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合を含むマイクロカプセルを提供する。
【００２５】
一部の態様では、本開示は、本願明細書に記載された方法に基づいて産生されたＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合を含む組成物を提供する。
【００２６】
一部の態様では、本開示は、本願明細書に記載された方法に基づいて産生されたＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合を含むアッセイを提供する。
【００２７】
一部の実施形態では、前記アッセイは、少なくとも１つのＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞またはその前駆体の、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞への分化を促進する、１つ以上の候補剤を特定するのに使用するためのものである。
【００２８】
一部の態様では、本開示は、本願明細書に記載された方法に基づいて産生されたＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合を含む組成物を、対象に投与することを含む、それを必要とする対象の処置方法を提供する。
【００２９】
一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞は、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が投与される前記同じ対象から得られた多能性幹細胞の集合から産生される。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞は、マイクロカプセルに封入される。一部の実施形態では、前記対象は、糖尿病を有するか、または、糖尿病になる増大したリスクを有する。一部の実施形態では、前記糖尿病は、Ｉ型糖尿病、ＩＩ型糖尿病、１．５型糖尿病及び糖尿病前症からなる群から選択される。一部の実施形態では、前記対象は、代謝異常を有するか、または、代謝異常になる増大したリスクを有する。
【００３０】
一部の態様では、本開示は、ＳＣ−β細胞に分化させるための、請求項１１３から１４２のいずれか一項に記載の方法により産生されたＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合の使用に関する。
【００３１】
一部の態様では、本開示は、それを必要とする対象に投与するための、本願明細書に記載された方法により産生されたＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合の使用を含む。
【００３２】
一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合は、マイクロカプセルに封入されて、前記対象に投与される。一部の実施形態では、前記対象は、糖尿病を有するか、または、糖尿病になる増大したリスクを有する。一部の実施形態では、前記糖尿病は、Ｉ型糖尿病、ＩＩ型糖尿病、１．５型糖尿病及び糖尿病前症からなる群から選択される。一部の実施形態では、前記対象は、代謝異常を有するか、または、代謝異常になる増大したリスクを有する。
【００３３】
一部の態様では、本開示は、ａ）ＫＧＦ、ｂ）ＳＡＮＴ１、及び場合により、ｃ）ＲＡを含み、ＰｄｂＵ及びＬＤＮ１９３１８９を実質的に含まない、培養培地を提供する。一部の実施形態では、本開示は、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ分化を誘導するための、請求項１６０記載の培養培地の使用を含む。
【００３４】
一部の態様では、本開示は、細胞クラスター形成を促進する条件下において、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を含む細胞集合を、ａ）ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤及びｂ）甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータを含む少なくとも２つのβ細胞成熟因子と接触させて、前記集合中の少なくとも１つのＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞への分化を誘導することを含み、前記インスリン陽性膵臓始原細胞が、インスリンを発現している、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞からのインスリン陽性内分泌細胞の製造方法を提供する。一部の実施形態では、前記細胞集合を、１００ｎＭ−１００μＭの間の濃度で、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、１０μＭの間の濃度で、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、ＴＧＦ−βシグナル伝達経路は、ＴＧＦ−β受容体Ｉ型キナーゼシグナル伝達を含む。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、Ａｌｋ５阻害剤ＩＩを含む。一部の実施形態では、前記細胞集合を、０．１μＭ−１０μＭの間の濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、１μＭの濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータは、トリヨードチロニン（Ｔ３）を含む。一部の実施形態では、前記方法は、前記細胞集合を、少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子と接触させることを含む。一部の実施形態では、前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子は、γ−セクレターゼ阻害剤を含む。一部の実施形態では、前記細胞集合を、０．１μＭ−１０μＭの間の濃度で、前記γ−セクレターゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、１μＭの濃度で、前記γ−セクレターゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記γ−セクレターゼ阻害剤は、ＸＸＩを含む。一部の実施形態では、前記γ−セクレターゼ阻害剤は、ＤＡＰＴを含む。一部の実施形態では、前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子は、ＥＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子を含む。一部の実施形態では、前記細胞集合を、２ｎｇ／ｍＬ−２００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、２０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ベタセルリンを含む。一部の実施形態では、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ＥＧＦを含む。一部の実施形態では、前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子は、低濃度のレチノイン酸（ＲＡ）シグナル伝達経路アクチベータを含む。一部の実施形態では、前記細胞集合を、０．０１μＭ−１．０μＭの間の濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、０．１μＭの濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータは、ＲＡを含む。一部の実施形態では、前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子は、ソニックヘッジホッグ（ＳＨＨ）経路阻害剤を含む。一部の実施形態では、前記細胞集合を、０．１μＭと０．５μＭとの間の濃度で、前記ＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、０．２５μＭの濃度で、前記ＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＳＨＨ経路阻害剤は、Ｓａｎｔ１を含む。一部の実施形態では、前記細胞集合を、場合により、プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させない。一部の実施形態では、前記細胞集合を、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、１０ｎＭ−１μＭの間の濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、１００ｎＭの濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記プロテインキナーゼ阻害剤は、スタウロスポリンを含む。一部の実施形態では、前記方法は、前記細胞集合をグルコースに曝すことを含む。一部の実施形態では、前記細胞集合は、１ｍＭ−５０ｍＭの間の濃度で、グルコースに曝される。一部の実施形態では、前記細胞集合は、２５ｍＭの濃度で、グルコースに曝される。一部の実施形態では、前記細胞クラスター形成を促進する条件は、懸濁培養を含む。一部の実施形態では、前記細胞集合は、前記集合中の少なくとも１つの前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞のインスリン陽性内分泌細胞への分化を誘導するのに十分な期間、懸濁培養において維持される。一部の実施形態では、前記期間は、少なくとも７日である。一部の実施形態では、前記β細胞成熟因子は、前記懸濁培養に、２日に１回補充される。一部の実施形態では、前記集合中の少なくとも１５％の前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞は誘導されて、インスリン陽性内分泌細胞に分化する。一部の実施形態では、前記集合中の少なくとも９９％の前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞は誘導されて、インスリン陽性内分泌細胞に分化する。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞は、Ｐｄｘ１、ＮＫＸ６−１、ＮＫＸ２−２、Ｍａｆｂ、ｇｌｉｓ３、Ｓｕｒ１、Ｋｉｒ６．２、Ｚｎｔ８、ＳＬＣ２Ａ１、ＳＬＣ２Ａ３及び／またはインスリンを発現している。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞は、胚性幹細胞及び誘導多能性幹細胞からなる群から選択される多能性幹細胞の集合から産生される。
【００３５】
一部の態様では、本開示は、本願明細書に記載された方法に基づいて産生されたインスリン陽性内分泌細胞の単離された集合を提供する。
【００３６】
一部の態様では、本開示は、その中に封入された、インスリン陽性内分泌細胞の単離された集合を含むマイクロカプセルを提供する。一部の実施形態では、本開示は、本願明細書に記載された方法に基づいて産生されたインスリン陽性内分泌細胞の集合を含む組成物を提供する。
【００３７】
一部の態様では、本開示は、本願明細書に記載された方法に基づいて産生されたインスリン陽性内分泌細胞の単離された集合を含む組成物を、対象に投与することを含む、それを必要とする対象の処置方法を提供する。
【００３８】
一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞は、前記インスリン陽性内分泌細胞が投与される前記同じ対象から得られた多能性幹細胞の集合から産生される。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞は、マイクロカプセルに封入される。一部の実施形態では、前記対象は、糖尿病を有するか、または、糖尿病になる増大したリスクを有する。一部の実施形態では、前記糖尿病は、Ｉ型糖尿病、ＩＩ型糖尿病、１．５型糖尿病及び糖尿病前症からなる群から選択される。一部の実施形態では、前記対象は、代謝異常を有するか、または、代謝異常になる増大したリスクを有する。
【００３９】
一部の態様では、本開示は、ＳＣ−β細胞に分化させるための、本願明細書に記載された方法により産生されたインスリン陽性内分泌細胞の単離された集合の使用を含む。
【００４０】
一部の態様では、本開示は、それを必要とする対象に投与するための、本願明細書に記載された方法により産生されたインスリン陽性内分泌細胞の単離された集合の使用を含む。
【００４１】
一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞の単離された集合は、マイクロカプセルに封入されて、前記対象に投与される。一部の実施形態では、前記対象は、糖尿病を有するか、または、糖尿病になる増大したリスクを有する。一部の実施形態では、前記糖尿病は、Ｉ型糖尿病、ＩＩ型糖尿病、１．５型糖尿病及び糖尿病前症からなる群から選択される。一部の実施形態では、前記対象は、代謝異常を有するか、または、代謝異常になる増大したリスクを有する。
【００４２】
一部の態様では、本開示は、ａ）ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤、ｂ）ＴＨ経路アクチベータ並びに、ｉ）ＸＸＩ、ｉｉ）ベタセルリン、ｉｉｉ）低濃度のＲＡシグナル伝達経路アクチベータ及びｉｖ）ＳＨＨ経路阻害剤からなる群から選択される少なくとも１つのβ細胞成熟因子を含む、培養培地を提供する。
【００４３】
一部の態様では、本開示は、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞のインスリン陽性内分泌細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ分化を誘導するための請求項２２１の培養培地の使用を含む。
【００４４】
一部の態様では、本開示は、細胞クラスター形成を促進する条件下において、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ｉ）形質転換成長因子β（ＴＧＦ−β）シグナル伝達経路阻害剤、ｉｉ）甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータ、及び場合により、ｉｉｉ）プロテインキナーゼ阻害剤と接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞の、ＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導することを含み、前記ＳＣ−β細胞が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏにおいてＧＳＩＳ応答を示す、ＳＣ−β細胞の生成方法を提供する。
【００４５】
一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、（ｉ）前記ＳＣ−β細胞を対象に移植した直後；（ｉｉ）対象への移植の約２４時間以内；または、（ｉｉｉ）対象への移植の約２週間以内に観察される。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、（ｉ）少なくとも１回のグルコースチャレンジ；（ｉｉ）少なくとも２回の連続的なグルコースチャレンジ；または、（ｉｉｉ）少なくとも３回の連続的なグルコースチャレンジに対する応答を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞の形態は、内在性のβ細胞の形態に類似している。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１００ｎＭ−１００μＭの間の濃度で、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１０μＭの濃度で、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、ＴＧＦ−βシグナル伝達経路は、ＴＧＦ−β受容体Ｉ型キナーゼシグナル伝達を含む。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、Ａｌｋ５阻害剤ＩＩを含む。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、０．１μＭ−１０μＭの間の濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１μＭの濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータは、トリヨードチロニン（Ｔ３）を含む。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させない。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１０ｎＭ−１μＭの間の濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１００ｎＭの濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記プロテインキナーゼ阻害剤は、スタウロスポリンを含む。一部の実施形態では、前記方法は、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、嚢胞性繊維症膜コンダクタンス制御因子（ＣＦＴＲ）阻害剤と接触させることを含む。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１００ｎＭと１００μＭとの間の濃度で、前記ＣＦＴＲ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１０ｎＭと１０μＭとの濃度で、前記ＣＦＴＲ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＣＦＴＲ阻害剤は、Ｇｌｙ−Ｈ１０１を含む。一部の実施形態では、前記方法は、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａ��ｅ阻害剤と接触させることを含む。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１００ｎＭと１００μＭとの間の濃度で、前記Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１０ｎＭと１０μＭとの間の濃度で、前記Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤は、Ｔｈｉａｍｅｔ  Ｇを含む。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞は、適切な培養培地中で培養される。一部の実施形態では、前記適切な培養培地は、膵島培地（ＣＭＲＬＳ）またはＣＭＲＬＳの成分を添加した、Ｃｏｎｎｏｕｇｈｔ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ  １０６６を含む。一部の実施形態では、前記ＣＭＲＬＳは、血清と共に添加される。一部の実施形態では、前記ＣＭＲＬＳは、１０％  ウシ胎児血清と共に添加される。一部の実施形態では、前記細胞クラスター形成を促進する条件は、懸濁培養を含む。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞は、少なくとも一部のＰｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞の、ＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導するのに十分な期間、懸濁培養中で維持される。一部の実施形態では、前記期間は、少なくとも７日を含む。一部の実施形態では、前記期間は、７日と２１日との間を含む。一部の実施形態では、前記期間は、７日と１４日との間を含む。一部の実施形態では、前記期間は、１４日を含む。一部の実施形態では、前記懸濁培養は、２日に１回補充される。一部の実施形態では、生成された前記細胞の少なくとも３０％は、ＳＣ−β細胞を含む。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、Ｃ−ペプチド、インスリン、ＮＫＸ６−１、Ｐｄｘ１を発現しており、ＮＫＸ６−１とＣ−ペプチドとを共発現している。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、ヒト細胞を含む。一部の実施形態では、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける前記ＳＣ−β細胞の生成は、規模を拡大できる。
【００４６】
一部の実施形態では、前記インスリン陽性の内分泌細胞は、細胞クラスター形成を促進する条件下において、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、ｉ）ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤及びｉｉ）甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させて、少なくとも一部のＰｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞の、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞への分化を誘導することにより得られ、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞は、Ｐｄｘ１、ＮＫＸ６−１、ＮＫＸ２−２、Ｍａｆｂ、ｇｌｉｓ３、Ｓｕｒ１、Ｋｉｒ６．２、Ｚｎｔ８、ＳＬＣ２Ａ１、ＳＬＣ２Ａ３及び／またはインスリンを発現している。
【００４７】
一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、１００ｎＭ−１００μＭの間の濃度で、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、１０μＭの濃度で、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、ＴＧＦ−βシグナル伝達経路は、ＴＧＦ−β受容体Ｉ型キナーゼシグナル伝達を含む。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、Ａｌｋ５阻害剤ＩＩを含む。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、０．１μＭ−１０μＭの間の濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、１μＭの濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータは、トリヨードチロニン（Ｔ３）を含む。一部の実施形態では、前記方法は、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、ｉ）ＳＨＨ経路阻害剤、ｉｉ）ＲＡシグナル伝達経路アクチベータ、ｉｉｉ）γ−セクレターゼ阻害剤、ｉｖ）上皮成長因子（ＥＧＦ）ファミリーからの少なくとも１つの成長因子、及び場合により、ｖ）プロテインキナーゼ阻害剤の少なくとも１つと接触させることを含む。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、０．１μＭと０．５μＭとの間の濃度で、前記ＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、０．２５μＭの濃度で、ＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＳＨＨ経路阻害剤は、Ｓａｎｔ１を含む。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、０．０１μＭと１．０μＭとの間の濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、０．１μＭの濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータは、ＲＡを含む。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、０．１μＭ−１０μＭの間の濃度で、前記γ−セクレターゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、１μＭの濃度で、前記γ−セクレターゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記γ−セクレターゼ阻害剤は、ＸＸＩを含む。一部の実施形態では、前記γ−セクレターゼ阻害剤は、ＤＡＰＴを含む。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、２ｎｇ／ｍＬ−２００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、２０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ベタセルリンを含む。一部の実施形態では、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ＥＧＦを含む。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させない。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、１０ｎＭ−１μＭの間の濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、１００ｎＭの濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記プロテインキナーゼ阻害剤は、スタウロスポリンを含む。一部の実施形態では、前記方法は、前記細胞集合をグルコースに曝すことを含む。一部の実施形態では、前記細胞集合は、１ｍＭ−５０ｍＭの間の濃度で、グルコースに曝される。一部の実施形態では、前記細胞集合は、２５ｍＭの濃度で、グルコースに曝される。一部の実施形態では、前記細胞クラスター形成を促進する条件は、懸濁培養を含む。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞は、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞の、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞への分化を誘導するのに十分な期間、懸濁培養において維持される。一部の実施形態では、前記期間は、少なくとも７日である。一部の実施形態では、前記懸濁培養は、２日に１回補充される。一部の実施形態では、少なくとも１５％の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞は誘導されて、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞に分化する。一部の実施形態では、少なくとも９９％の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞は誘導されて、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞に分化する。
【００４８】
一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞は、細胞クラスター形成を促進する条件下において、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、ｉ）ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、ｉｉ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、及び場合により、ｉｉｉ）低濃度のＲＡシグナル伝達経路アクチベータと、５日の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＰｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞への分化を誘導することにより得られ、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞は、Ｐｄｘ１及びＮＫＸ６−１を発現している。
【００４９】
一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、１ｎｇ／ｍＬ−１００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、５０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ケラチノサイト成長因子（ＫＧＦ）を含む。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ＦＧＦ２、ＦＧＦ８Ｂ、ＦＧＦ１０及びＦＧＦ２１からなる群から選択される。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、０．１μＭと０．５μＭとの間の濃度で、前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、０．２５μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤は、Ｓａｎｔ１を含む。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、０．０１μＭ−１．０μＭの間の濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、０．１μＭの濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータは、ＲＡを含む。一部の実施形態では、前記方法は、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、ＥＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子と接触させることを含む。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、２ｎｇ／ｍＬ−２００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、２０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ベタセルリンを含む。一部の実施形態では、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ＥＧＦを含む。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞は、適切な培養培地中で培養される。一部の実施形態では、前記細胞クラスター形成を促進する条件は、懸濁培養を含む。一部の実施形態では、前記懸濁培養は、２日に１回補充される。一部の実施形態では、プロテインキナーゼＣのアクチベータは、５日の間、前記懸濁培養に添加されない。一部の実施形態では、プロテインキナーゼＣのアクチベータは、５日の前に、前記懸濁培養から除去される。一部の実施形態では、前記プロテインキナーゼＣのアクチベータは、ＰｄｂＵを含む。一部の実施形態では、ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤は、５日の間、前記懸濁培養に添加されない。一部の実施形態では、ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤は、５日の前に、前記懸濁培養から除去される。一部の実施形態では、前記ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤は、ＬＤＮ１９３１８９を含む。一部の実施形態では、前記集合中の少なくとも１０％の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞は誘導されて、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞に分化する。一部の実施形態では、少なくとも９５％の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞は誘導されて、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞に分化する。
【００５０】
一部の態様では、本開示は、ａ）集合中の多能性幹細胞を、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞に分化させること；ｂ）細胞クラスター形成を促進する条件下において、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、ｉ）ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、ｉｉ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、及び場合により、ｉｉｉ）ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと、２日に１回、５日の期間接触させて、前記集合中の少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞に分化させることであって、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が、Ｐｄｘ１及びＮＫＸ６−１を発現している前記分化；ｃ）細胞クラスター形成を促進する条件下において、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、ｉ）ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤、ｂ）ＴＨシグナル伝達経路アクチベータ、及び場合により、ｃ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、ｉｉ）ＲＡシグナル伝達経路アクチベータ、ｉｉｉ）γ−セクレターゼ阻害剤並びにｖｉ）上皮成長因子（ＥＧＦ）ファミリーからの少なくとも１つの成長因子と、２日に１回、５日と７日との間の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞のＰｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞への分化を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞に分化させることであって、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞が、Ｐｄｘ１、ＮＫＸ６−１、ＮＫＸ２−２、Ｍａｆｂ、ｇｌｉｓ３、Ｓｕｒ１、Ｋｉｒ６．２、Ｚｎｔ８、ＳＬＣ２Ａ１、ＳＬＣ２Ａ３及び／またはインスリンを発現している前記分化；並びに、ｄ）細胞クラスター形成を促進する条件下において、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ｉ）形質転換成長因子β（ＴＧＦ−β）シグナル伝達経路阻害剤、ｉｉ）甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータ、及び場合により、ｉｉｉ）プロテインキナーゼ阻害剤と、２日に１回、７日と１４日との間の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞の、ＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ＳＣ−β細胞に分化させることであって、前記ＳＣ−β細胞が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏにおけるＧＳＩＳ応答を示す前記分化を含む、多能性細胞からのＳＣ−β細胞の生成方法を提供する。
【００５１】
一部の実施形態では、本開示は、ａ）集合中の少なくとも一部の多能性細胞を、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞に分化させること；ｂ）細胞クラスター形成を促進する条件下において、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、ｉ）ＫＧＦ、ｉｉ）Ｓａｎｔ１、及び場合により、ｉｉｉ）低濃度のＲＡと、２日に１回、５日の期間接触させて、前記集合中の少なくとも１つのＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞に分化させることであって、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が、Ｐｄｘ１及びＮＫＸ６−１を発現している前記分化；ｃ）前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、ｉ）Ａｌｋ５阻害剤ＩＩ、ｉｉ）Ｔ３、及び場合により、ｉｉｉ）Ｓａｎｔ１、ｉｖ）ＲＡ、ｖ）ＸＸＩ及びｖｉ）ベタセルリンと、２日に１回、５日と７日との間の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞の、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞への分化を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞に分化させることであって、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞が、Ｐｄｘ１、ＮＫＸ６−１、ＮＫＸ２−２、Ｍａｆｂ、ｇｌｉｓ３、Ｓｕｒ１、Ｋｉｒ６．２、Ｚｎｔ８、ＳＬＣ２Ａ１、ＳＬＣ２Ａ３及び／またはインスリンを発現している前記分化；並びに、ｄ）細胞クラスター形成を促進する条件下において、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ｉ）Ａｌｋ５阻害剤ＩＩ、ｉｉ）Ｔ３、及び場合により、ｉｉｉ）スタウロスポリンと、２日に１回、７日と１４日との間の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン産生の内分泌細胞のＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ＳＣ−β細胞に分化させることであって、前記ＳＣ−β細胞が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏにおけるＧＳＩＳ応答を示す前記分化を含む、多能性細胞からのＳＣ−β細胞の生成方法を提供する。
【００５２】
一部の態様では、本開示は、多能性幹細胞からｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて分化させたＳＣ−β細胞を含む人工膵島を提供する。
【００５３】
一部の態様では、本開示は、多能性幹細胞からｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて分化させたＳＣ−β細胞を含む人工膵臓を提供する。
【００５４】
特に断らない限り、本発明の実施には、当該分野の技能の範囲内にある、細胞生物学、細胞培養、分子生物学、遺伝子組換え生物学、微生物学、組換え核酸（例えば、ＤＮＡ）技術、免疫学及びＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）の従来技術が、典型的に使用されるであろう。特定のこれらの技術の非限定的な説明は、下記刊行物：Ａｕｓｕｂｅｌ，  Ｆ．，  ｅｔ  ａｌ．，（ｅｄｓ．），  Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，  Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，  Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｓｃｉｅｎｃｅ，  ａｎｄ  Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，  ａｌｌ  Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ，  Ｎ．Ｙ．，  ｅｄｉｔｉｏｎ  ａｓ  ｏｆ  Ｄｅｃｅｍｂｅｒ  ２００８；Ｓａｍｂｒｏｏｋ，  Ｒｕｓｓｅｌｌ，  ａｎｄ  Ｓａｍｂｒｏｏｋ，  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，  ３ｒｄ  ｅｄ．，  Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ，  Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ，  ２００１；Ｈａｒｌｏｗ，  Ｅ．  ａｎｄ  Ｌａｎｅ，  Ｄ．，  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ−Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，  Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ，  Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ，  １９８８；Ｆｒｅｓｈｎｅｙ，  Ｒ．Ｉ．，「Ｃｕｌｔｕｒｅ  ｏｆ  Ａｎｉｍａｌ  Ｃｅｌｌｓ，  Ａ  Ｍａｎｕａｌ  ｏｆ  Ｂａｓｉｃ  Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ」，  ５ｔｈ  ｅｄ．，  Ｊｏｈｎ  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ，  Ｈｏｂｏｋｅｎ，  ＮＪ，  ２００５に見出される。治療剤及びヒトの疾患に関する非限定的な情報は、Ｇｏｏｄｍａｎ  ａｎｄ  Ｇｉｌｍａｎ’ｓ  Ｔｈｅ  Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｂａｓｉｓ  ｏｆ  Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ，  １１ｔｈ  Ｅｄ．，  ＭｃＧｒａｗ  Ｈｉｌｌ，  ２００５、Ｋａｔｚｕｎｇ，  Ｂ．（ｅｄ．）Ｂａｓｉｃ  ａｎｄ  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ，  ＭｃＧｒａｗ−Ｈｉｌｌ／Ａｐｐｌｅｔｏｎ  ＆  Ｌａｎｇｅ；１０ｔｈ  ｅｄ．（２００６）ｏｒ  １１ｔｈ  ｅｄｉｔｉｏｎ（Ｊｕｌｙ  ２００９）に見出される。遺伝子及び遺伝子障害に関する非限定的な情報は、ＭｃＫｕｓｉｃｋ，  Ｖ．Ａ．：Ｍｅｎｄｅｌｉａｎ  Ｉｎｈｅｒｉｔａｎｃｅ  ｉｎ  Ｍａｎ．  Ａ  Ｃａｔａｌｏｇ  ｏｆ  Ｈｕｍａｎ  Ｇｅｎｅｓ  ａｎｄ  Ｇｅｎｅｔｉｃ  Ｄｉｓｏｒｄｅｒｓ．  Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ：Ｊｏｈｎｓ  Ｈｏｐｋｉｎｓ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  Ｐｒｅｓｓ，  １９９８（１２ｔｈ  ｅｄｉｔｉｏｎ）または、より最新のオンラインデータベース：Ｏｎｌｉｎｅ  Ｍｅｎｄｅｌｉａｎ  Ｉｎｈｅｒｉｔａｎｃｅ  ｉｎ  Ｍａｎ，  ＯＭＩＭ（商標）．  ＭｃＫｕｓｉｃｋ−Ｎａｔｈａｎｓ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ  ｏｆ  Ｇｅｎｅｔｉｃ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，  Ｊｏｈｎｓ  Ｈｏｐｋｉｎｓ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ（Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ，  ＭＤ）ａｎｄ  Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｃｅｎｔｅｒ  ｆｏｒ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ，  Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｌｉｂｒａｒｙ  ｏｆ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ（Ｂｅｔｈｅｓｄａ，  ＭＤ），  ａｓ  ｏｆ  Ｍａｙ  １，  ２０１０，  Ｗｏｒｌｄ  Ｗｉｄｅ  Ｗｅｂ  ＵＲＬ：ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｏｍｉｍ／、及び、Ｏｎｌｉｎｅ  Ｍｅｎｄｅｌｉａｎ  Ｉｎｈｅｒｉｔａｎｃｅ  ｉｎ  Ａｎｉｍａｌｓ  （ＯＭＩＡ），  ａ  ｄａｔａｂａｓｅ  ｏｆ  ｇｅｎｅｓ，  ｉｎｈｅｒｉｔｅｄ  ｄｉｓｏｒｄｅｒｓ  ａｎｄ  ｔｒａｉｔｓ  ｉｎ  ａｎｉｍａｌ  ｓｐｅｃｉｅｓ  （ｏｔｈｅｒ  ｔｈａｎ  ｈｕｍａｎ  ａｎｄ  ｍｏｕｓｅ），  ａｔ  ｈｔｔｐ：／／ｏｍｉａ．ａｎｇｉｓ．ｏｒｇ．ａｕ／ｃｏｎｔａｃｔ．ｓｈｔｍｌに見出される。本願明細書において言及される全ての特許、特許出願及び他の刊行物（例えば、科学論文、本、ウェブサイト及びデータベース）は、その全体が参照により組み込まれる。本明細書と前記組み込まれた参考文献のいずれかとの間で矛盾がある場合には、本明細書（例えば、その任意の補正を含む、前記補正は、組み込まれた参考文献に基づいている場合がある。）が、コントロールするであろう。特に断らない限り、用語の標準的な技術的に受け入れられた意味が、本願明細書において使用される。種々の用語の標準的な略称が、本願明細書において使用される。
【００５５】
本特許または出願ファイルは、着色された少なくとも１つの図面を含む。カラー図面を含むこの特許または特許出願の公報のコピーは、請求及び必要な料金の支払いに基づいて、官庁により提供されるであろう。
【００５６】
即ち、本発明の要旨は、
〔１〕ａ）ＫＧＦ及びｂ）ＳＡＮＴ１を含み、プロテインキナーゼＣ（ＰＫＣ）アクチベータを実質的に含まない培養培地を用いる、ＰＤＸ１陽性膵臓始原細胞をＮＫＸ６．１陽性膵臓始原細胞に分化させるための方法、
〔２〕ＰＫＣアクチベータが、ホルボール１２，１３−ジブチレート（ＰｄＢｕ）又はＴＰＢである、〔１〕記載の方法、
〔３〕ＰＫＣアクチベータが、ＰｄＢｕである、〔１〕記載の方法、
〔４〕ＰＫＣアクチベータが、ＴＰＢである、〔１〕記載の方法、
〔５〕培養培地が、レチノイン酸（ＲＡ）をさらに含む、〔１〕記載の方法、
〔６〕ａ）ＫＧＦ及びｂ）ＳＡＮＴ１を含み、ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤を実質的に含まない培養培地を用いる、ＰＤＸ１陽性膵臓始原細胞をＮＫＸ６．１陽性膵臓始原細胞に分化させるための方法、
〔７〕ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤が、ノギン、コーディン、ｇｒｅｍｌｉｎ、フォリスタチン及びＬＤＮ１９３１８９から選択される、〔６〕記載の方法、
〔８〕ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤がノギンである、〔６〕記載の方法、
〔９〕ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤がコーディンである、〔６〕記載の方法、
〔１０〕ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤がｇｒｅｍｌｉｎである、〔６〕記載の方法、
〔１１〕ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤がフォリスタチンである、〔６〕記載の方法、
〔１２〕ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤がＬＤＮ１９３１８９である、〔６〕記載の方法
に関する。
【発明の効果】
【００５７】
本発明により、ＳＣ−β細胞及び組成物並びにその生成方法が提供され得る。
【図面の簡単な説明】
【００５８】
【図１】図１Ａ及び１Ｂは、先に公開されたコントロールの分化法と新規な直接分化法との間の比較を示す。図１Ａは、先に公開されたコントロールの分化法と比較した、ｈＰＳＣからＩＮＳ＋細胞を生成するための本開示の典型的な直接分化法を比較する模式図を示す。図１Ｂは、先に公開されたコントロールの分化法を使用して、ＯＣＴ４、ＳＯＸ１７及びＰＤＸ１でそれぞれ染色された、未分化のＨＵＥＳ８（上段）、ＤＥへの分化（中断）及びＰＰ１への分化（下段）の組織学的切片を図示する。スケールバー＝１００μｍ。
【図２】図２Ａ、２Ｂ及び２Ｃは、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて生成した幹細胞系β（ＳＣ−β）細胞が、複数回の連続的な高グルコースチャレンジに対する応答において、初代ヒトβ細胞と同様に、インスリンを分泌することを図示する。図２Ａ、２Ｂ及び２Ｃは、２、２０、２、２０、２及び２０ｍＭ  グルコースで連続的にチャレンジされた、ＳＣ−β（図２Ａ）、初代β細胞（図２Ｂ）及びＰＨ細胞（図２Ｃ）から分泌されたヒトインスリンのＥＬＩＳＡ測定を示すグラフである。連続的な低／高グルコースチャレンジ後、細胞を、３０ｍＭ  ＫＣｌで脱分極した。
【図３】図３Ａ、３Ｂ及び３Ｃは、複数回の連続的な高グルコースチャレンジに対する応答おいて、初代β細胞と同様に、インスリンを分泌する、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ系ＳＣ−β細胞の更なる生物学的反復を図示する。左側のパネルは、図２におけるのと同じである。細胞  ＳＣ−β細胞（ＳＣ−β；図３Ａ）、初代β細胞（１°β；図３Ｂ）及びＰＨ細胞（図３Ｃ）を、２、２０、２、２０、２及び２０ｍＭ  グルコース及び３０ｍＭ  ＫＣｌで連続的に負荷し、ヒトインスリンを、ＥＬＩＳＡで測定した。
【図４】図４Ａ、４Ｂ、４Ｃ、４Ｄ及び４Ｅは、複数回の連続的な高グルコースチャレンジに対する応答おいて、ＳＣ−β細胞が、初代β細胞と同様に、細胞質Ｃａ２＋を流動することを図示する。図４Ａは、Ｆｌｕｏ−４  ＡＭ染色を使用して、細胞質Ｃａ２＋の集合レベル及び１つの細胞レベルでの検出の模式図である。集合レベルでの測定を、個々のクラスター全体（模式図中の大きな赤の円で表示）において行い、インタクトなクラスター内の個々の細胞（小さな赤の円で表示）を、１つの細胞分析用に分析した。図４Ｂは、２、２０、２、２０、２及び２０ｍＭ  グルコース及び３０ｍＭ  ＫＣｌで連続的にチャレンジされた、ＳＣ−β細胞、初代β細胞及びＰＨ細胞についての、動的に規格化されたＦｌｕｏ−４蛍光強度の集合測定を示すグラフである。図４Ｃは、１つの細胞分析に使用したＦｌｕｏ−４  ＡＭ染色の蛍光画像を示す。図４Ｄは、３回（黄色）、２回（オレンジ色）、１回（青色）及び０回（赤色）のグルコースチャレンジに応答した、１つの細胞の位置を示す代表的な画像を示す。図４Ｅは、２０ｍＭ  グルコースに応答した、ＳＣ−β細胞（ｎ＝１５６）、初代β細胞（ｎ＝１１４）及びＰＨ細胞（ｎ＝１３８）の頻度のグラフによる定量化を示す。スケールバー＝１００μｍ。
【図５】図５Ａ、５Ｂ、５Ｃ、５Ｄ、５Ｅ及び５Ｆは、タンパク質及び遺伝子発現レベルにおいて、ＳＣ−βがヒトβ細胞マーカーを発現していることを図示する。図５Ａは、Ｃ−ペプチド（緑色）、ＮＫＸ６−１（赤色）及びソマトスタチン（灰色）で染色した細胞の免疫組織化学的画像を示す。図５Ｂは、Ｃ−ペプチド（緑色）及びＰＤＸ１（赤色）で染色した細胞の免疫組織化学的画像を示す。図５Ｃは、対応するＤＡＰＩ染色（青色）を伴う、Ｃ−ペプチド（緑色）及びグルカゴン（赤色）で染色した細胞の免疫組織化学的画像を示す。図５Ｄは、Ｃ−ペプチド及びＮＫＸ６−１で染色した細胞の、代表的なフローサイトメトリーのドットプロット及び集合割合を示す。図５Ｅは、ＩＮＳについて分取した、未分化ＨＵＥＳ８、ＰＨ細胞、胎児β細胞及び成体初代β細胞（Ｈｒｖａｔｉｎ  ｅｔ  ａｌ．（Ｈｒｖａｔｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，２０１４）からのデータ）、並びに、ＩＮＳ及びＮＫＸ６−１について分取したＳＣ−β細胞（ＳＣ−β）のマイクロアレイにより測定された全ての遺伝子に基づく階層クラスタリング分析を示す。図５Ｆは、全てのサンプルにわたる最も高い分散を有する、１００個の遺伝子のヒートマップを示す。ＣＰ＝Ｃ−ペプチド、ＳＳＴ＝ソマトスタチン、ＧＣＧ＝グルカゴン。スケールバー＝１００μｍ。
【図６】図６は、ＤＡＰＩ（青色）、インスリン（緑色）、Ｃ−ペプチド（赤色）で染色したＳＣ−β細胞クラスターの組織像を図示する。スケールバー＝１００μｍ。
【図７】図７Ａ、７Ｂ及び７Ｃは、ＳＣ−β細胞の更なる組織学的染色を図示する。図７Ａは、Ｃ−ペプチド（緑色）及びＩＳＬ１（赤色）での染色を図示する。図７Ｂは、Ｃ−ペプチド（緑色）及びＭＡＦＡ（赤色）での染色を図示する。図７Ｃは、Ｃ−ペプチド（緑色）及びＭＡＦＢ（赤色）での染色を図示する。スケールバー＝１００μｍ。
【図８】図８Ａ、８Ｂ及び８Ｃは、Ｃ−ペプチド及びＳＳＴ（図８Ａ）、Ｃ−ペプチド及びＧＣＧ（図８Ｂ）並びにＳＳＴ及びＧＣＧ（図８Ｃ）で染色したＳＣ−β細胞及びＰＨ細胞の、代表的なフローサイトメトリーのドットプロット及び集合割合を示す。
【図９】図９Ａ、９Ｂ及び９Ｃは、ＳＣ−β細胞顆粒が、初代ヒトβ細胞顆粒に構造的に類似することを図示する。図９Ａは、代表的な結晶化インスリン顆粒（赤色）、初期のインスリン顆粒（黄色）及び混合型の内分泌顆粒（青色）を強調表示した顆粒の電子顕微鏡画像を示す。スケールバー＝５００ｎｍ。図９Ｂは、（図９Ａ）中で強調表示した顆粒のより高い拡大画像を示す。スケールバー＝５００ｎｍ。図９Ｃは、インスリン（小さい方の５ｎｍの黒色ドット）及び／またはグルカゴン（大きい方の１５ｎｍの黒色ドット）を含む顆粒を示す、免疫金染色で標識した細胞の電子顕微鏡画像を示す。代表的な免疫金粒子を、赤色の矢印（インスリン）及び青色の矢印（グルカゴン）で強調表示する。スケールバー＝１００ｎｍ。
【図１０】図１０Ａ及び１０Ｂは、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいてｈｉＰＳＣから生成した幹細胞系β（ＳＣ−β）細胞が、複数回の連続的な高グルコースチャレンジに対する応答において、初代ヒトβ細胞と同様に、インスリンを分泌することを図示する。図１０Ａ及び１０Ｂは、２、２０、２、２０、２及び２０ｍＭ  グルコースで連続的にチャレンジされた、非糖尿病細胞（図１０Ａ）及び１型糖尿病細胞（図１０Ｂ）から生成したＳＣ−βから分泌されたヒトインスリンのＥＬＩＳＡ測定を示すグラフである。
【図１１】図１１Ａ、１１Ｂ、１１Ｃ、１１Ｄ、１１Ｅ及び１１Ｆは、複数のｈｉＰＳＣ株からのＣ−ペプチド及びＮＫＸ６−１で染色した細胞の、代表的なフローサイトメトリーのドットプロット及び集合割合を示す。図１１Ａ、１１Ｂ及び１１Ｃは、非糖尿病ｈｉＰＳＣ株からのＣ−ペプチド及びＮＫＸ６−１で染色した細胞の、代表的なフローサイトメトリーのドットプロット及び集合割合を示す。図１１Ｄ、１１Ｅ及び１１Ｆは、１型糖尿病ｈｉＰＳＣ株からのＣ−ペプチド及びＮＫＸ６−１で染色した細胞の、代表的なフローサイトメトリーのドットプロット及び集合割合を示す。
【図１２】図１２Ａ、１２Ｂ、１２Ｃ及び１２Ｄは、移植されたＳＣ−β細胞が、ｉｎ  ｖｉｖｏにおいて素早く機能することを図示する。図１２Ａは、（最後のｉｎ  ｖｉｔｒｏ工程において１週間培養された）ＳＣ−β細胞、初代ヒトβ細胞（１°β）またはＰＨ細胞を移植された、個々のマウスの血清からのヒトインスリンのＥＬＩＳＡ測定を示すグラフである。移植後２週間のマウスのグルコース注射前（白色のバー）及び同注射後３０分（黒色のバー）で、測定を行った。図１２Ｂは、移植片の存在を確認するために、Ｃ−ペプチド（緑色）及びＰＤＸ１（赤色）で染色した移植細胞（図１２Ａ）の免疫組織化学的画像を示す。図１２Ｃは、膵臓前駆細胞を移植された個々のマウスの血清からのヒトインスリンのＥＬＩＳＡ測定を示すグラフである。移植後２週間のマウスのグルコース注射前（白色のバー）及び同注射後３０分（黒色のバー）で、測定を行った。図１２Ｄは、最後のｉｎ  ｖｉｔｒｏ工程中に２週間培養したＳＣ−β細胞を移植された個々のマウスの血清からのヒトインスリンのＥＬＩＳＡ測定を示すグラフである。移植後２週間のマウスのグルコース注射後３０分（黒色のバー）で、測定を行った。ｎｄ＝未測定。スケールバー＝１００μｍ。
【図１３】図１３Ａ及び１３Ｂは、２週間前に、マウスに移植されたＳＣ−β細胞及びＰＨ細胞の更なる組織学的断片を図示する。図１３Ａは、ＤＡＰＩ（青色）、Ｃ−ペプチド（緑色）及びＧＣＧ（赤色）で染色した移植片の低拡大画像を示す。スケールバー＝２００μＭ。図１３Ｂは、Ｃ−ペプチド（緑色）及びＧＣＧ（赤色）で染色した移植片のより高い拡大画像を示す。スケールバー＝１００μＭ。
【図１４Ａ】図１４Ａ、１４Ｂ及び１４Ｃは、ＳＣ−β細胞がｉｎ  ｖｉｖｏにおいてより多くのインスリンを分泌するのを可能にする、分化の最終工程における培地の使用を説明する。図１４Ａは、分化過程の種々の工程における、種々の培地の使用を示す模式図である。図１４Ｂは、分化の最終工程において、更なる因子、例えば、Ｓａｎｔ１、ＸＸＩ及びＳＳＰをＣＭＲＬ培地に添加することで、高グルコースチャレンジと低グルコースチャレンジとの間の刺激指数により測定した場合、ＳＣ−β細胞によるより良好なグルコース刺激インスリン分泌（ＧＳＩＳ）応答が生じることを示す。図１４Ｃは、分化の最終工程において、更なる因子、例えば、Ｓａｎｔ１、ＸＸＩ及びＳＳＰをＣＭＲＬ培地に添加することで、一定量の放出されたインスリンにより測定した場合、ＳＣ−β細胞によるより良好なグルコース刺激インスリン分泌（ＧＳＩＳ）応答が生じることを示す。
【図１４Ｂ−Ｃ】図１４Ａ、１４Ｂ及び１４Ｃは、ＳＣ−β細胞がｉｎ  ｖｉｖｏにおいてより多くのインスリンを分泌するのを可能にする、分化の最終工程における培地の使用を説明する。図１４Ａは、分化過程の種々の工程における、種々の培地の使用を示す模式図である。図１４Ｂは、分化の最終工程において、更なる因子、例えば、Ｓａｎｔ１、ＸＸＩ及びＳＳＰをＣＭＲＬ培地に添加することで、高グルコースチャレンジと低グルコースチャレンジとの間の刺激指数により測定した場合、ＳＣ−β細胞によるより良好なグルコース刺激インスリン分泌（ＧＳＩＳ）応答が生じることを示す。図１４Ｃは、分化の最終工程において、更なる因子、例えば、Ｓａｎｔ１、ＸＸＩ及びＳＳＰをＣＭＲＬ培地に添加することで、一定量の放出されたインスリンにより測定した場合、ＳＣ−β細胞によるより良好なグルコース刺激インスリン分泌（ＧＳＩＳ）応答が生じることを示す。
【図１５Ａ−Ｃ】図１５Ａ、１５Ｂ、１５Ｃ、１５Ｄ、１５Ｅ、１５Ｆ、１５Ｇ、１５Ｈ及び１５Ｉは、生成したＳＣ−β細胞の生存及び品質を向上させ得る、プロトコルに対する改良を図示する。図１５Ａは、前記プロトコルの模式的説明である。図１５Ｂは、前記改良プロトコルを使用して、どれだけ多くの純粋なＮＫＸ６．１＋内分泌クラスターを生成し得るかを示す（図１５Ｂ）。図１５Ｃは、工程３−５においてＲｏｃｋ阻害剤を使用することにより、細胞生存をどの程度改善し得るかを説明する。図１５Ｄは、ニコチンアミドと共にアクチビンＡを使用することにより、どの程度、ＳＯＸ２を下方制御し、細胞生存を改善し得るかを説明する。図１５Ｅは、ＳＯＸ２及びＮＫＸ６−１が、互いに排他的であることを示す。図１５Ｆは、工程６においてスタウロスポリンを使用することにより、純粋に近い内分泌集合をどの程度生じるかを説明する。図１５Ｇは、工程６においてスタウロスポリンを使用することにより、どの程度より高い割合のＮＫＸ６−１／Ｃ−ペプチド＋細胞が生じるかを説明する。図１５Ｉは、工程５−６においてＡｌｋ５ｉ及びＴ３との組合せでＸＸＩを使用することにより、Ａｌｋ５ｉ及びＴ３のみ（図１５Ｈ）を使用するのと比較した場合、ニューロＤ＋集合をどの程度増加させるかを説明する。
【図１５Ｄ−Ｅ】図１５Ａ、１５Ｂ、１５Ｃ、１５Ｄ、１５Ｅ、１５Ｆ、１５Ｇ、１５Ｈ及び１５Ｉは、生成したＳＣ−β細胞の生存及び品質を向上させ得る、プロトコルに対する改良を図示する。図１５Ａは、前記プロトコルの模式的説明である。図１５Ｂは、前記改良プロトコルを使用して、どれだけ多くの純粋なＮＫＸ６．１＋内分泌クラスターを生成し得るかを示す（図１５Ｂ）。図１５Ｃは、工程３−５においてＲｏｃｋ阻害剤を使用することにより、細胞生存をどの程度改善し得るかを説明する。図１５Ｄは、ニコチンアミドと共にアクチビンＡを使用することにより、どの程度、ＳＯＸ２を下方制御し、細胞生存を改善し得るかを説明する。図１５Ｅは、ＳＯＸ２及びＮＫＸ６−１が、互いに排他的であることを示す。図１５Ｆは、工程６においてスタウロスポリンを使用することにより、純粋に近い内分泌集合をどの程度生じるかを説明する。図１５Ｇは、工程６においてスタウロスポリンを使用することにより、どの程度より高い割合のＮＫＸ６−１／Ｃ−ペプチド＋細胞が生じるかを説明する。図１５Ｉは、工程５−６においてＡｌｋ５ｉ及びＴ３との組合せでＸＸＩを使用することにより、Ａｌｋ５ｉ及びＴ３のみ（図１５Ｈ）を使用するのと比較した場合、ニューロＤ＋集合をどの程度増加させるかを説明する。
【図１５Ｆ−Ｇ】図１５Ａ、１５Ｂ、１５Ｃ、１５Ｄ、１５Ｅ、１５Ｆ、１５Ｇ、１５Ｈ及び１５Ｉは、生成したＳＣ−β細胞の生存及び品質を向上させ得る、プロトコルに対する改良を図示する。図１５Ａは、前記プロトコルの模式的説明である。図１５Ｂは、前記改良プロトコルを使用して、どれだけ多くの純粋なＮＫＸ６．１＋内分泌クラスターを生成し得るかを示す（図１５Ｂ）。図１５Ｃは、工程３−５においてＲｏｃｋ阻害剤を使用することにより、細胞生存をどの程度改善し得るかを説明する。図１５Ｄは、ニコチンアミドと共にアクチビンＡを使用することにより、どの程度、ＳＯＸ２を下方制御し、細胞生存を改善し得るかを説明する。図１５Ｅは、ＳＯＸ２及びＮＫＸ６−１が、互いに排他的であることを示す。図１５Ｆは、工程６においてスタウロスポリンを使用することにより、純粋に近い内分泌集合をどの程度生じるかを説明する。図１５Ｇは、工程６においてスタウロスポリンを使用することにより、どの程度より高い割合のＮＫＸ６−１／Ｃ−ペプチド＋細胞が生じるかを説明する。図１５Ｉは、工程５−６においてＡｌｋ５ｉ及びＴ３との組合せでＸＸＩを使用することにより、Ａｌｋ５ｉ及びＴ３のみ（図１５Ｈ）を使用するのと比較した場合、ニューロＤ＋集合をどの程度増加させるかを説明する。
【図１５Ｈ−Ｉ】図１５Ａ、１５Ｂ、１５Ｃ、１５Ｄ、１５Ｅ、１５Ｆ、１５Ｇ、１５Ｈ及び１５Ｉは、生成したＳＣ−β細胞の生存及び品質を向上させ得る、プロトコルに対する改良を図示する。図１５Ａは、前記プロトコルの模式的説明である。図１５Ｂは、前記改良プロトコルを使用して、どれだけ多くの純粋なＮＫＸ６．１＋内分泌クラスターを生成し得るかを示す（図１５Ｂ）。図１５Ｃは、工程３−５においてＲｏｃｋ阻害剤を使用することにより、細胞生存をどの程度改善し得るかを説明する。図１５Ｄは、ニコチンアミドと共にアクチビンＡを使用することにより、どの程度、ＳＯＸ２を下方制御し、細胞生存を改善し得るかを説明する。図１５Ｅは、ＳＯＸ２及びＮＫＸ６−１が、互いに排他的であることを示す。図１５Ｆは、工程６においてスタウロスポリンを使用することにより、純粋に近い内分泌集合をどの程度生じるかを説明する。図１５Ｇは、工程６においてスタウロスポリンを使用することにより、どの程度より高い割合のＮＫＸ６−１／Ｃ−ペプチド＋細胞が生じるかを説明する。図１５Ｉは、工程５−６においてＡｌｋ５ｉ及びＴ３との組合せでＸＸＩを使用することにより、Ａｌｋ５ｉ及びＴ３のみ（図１５Ｈ）を使用するのと比較した場合、ニューロＤ＋集合をどの程度増加させるかを説明する。
【図１６】図１６Ａ、１６Ｂ、１６Ｃ、１６Ｄ、１６Ｅ、１６Ｆ、１６Ｇ、１６Ｈ及び１６Ｉは、糖尿病治療または創薬プラットフォームとしてのＳＣ−β細胞の臨床的有用性を説明する。図１６Ａは、糖尿病の処置または機能もしくは複製を改善する薬剤のスクリーニングのための、ＳＣ−β細胞の有用性の模式図である。図１６Ｂは、試験した糖尿病剤及びその一般的な治療分類を列記した表である。図１６Ｃは、２及び２０ｍＭ  グルコースにおいて、示した薬剤で処置された、播種したＳＣ−β細胞から分泌されたヒトインスリンのＥＬＩＳＡ測定を示すグラフである。示したｐ値は、薬剤とコントロールとの間で、２０ｍＭ  グルコースにおけるインスリン値を比較する。図１６Ｄは、処理することなく、ＤＡＰＩ（青色）、Ｃ−ペプチド（緑色）及びＫｉ６７（赤色）で染色した、分散及び播種したＳＣ−β細胞の免疫蛍光画像である。図１６Ｅは、ＤＡＰＩ（青色）、Ｃ−ペプチド（緑色）及びＫｉ６７（赤色）で染色した、プロラクチンで４８時間処理し、分散及び播種したＳＣ−β細胞の免疫蛍光画像である。図１６Ｆは、Ｃ−ペプチドとＫｉ６７とを共発現している細胞の機能のグラフによる定量化を示す。＊ｐ＜０．０５。図１６Ｇは、ＳＣ−β細胞（ｎ＝６）またはＰＨ細胞（ｎ＝６）を移植したＡｋｉｔａマウスの絶食時血中グルコース測定を図示するグラフである。＊ｐ＜０．０５は、同日での２つの細胞群と比較する。図１６Ｈは、ＳＣ−β細胞またはＰＨ細胞を移植した進行性の糖尿病Ａｋｉｔａマウスからの血中グルコース測定を図示するグラフである。２週間前に移植したマウスのグルコース注射前（白色のバー）及び同注射の２０分後（黒色のバー）で、測定を行った。グルコース測定は、５５０ｍｇ／ｄＬで飽和させた。＊ｐ＜０．０５は、グルコース注射後の同じタイミングでの２つの細胞群と比較する。図１６Ｉは、グルコース注射後２０分でのＡｋｉｔａマウスの血清からのヒトインスリンのＥＬＩＳＡ測定を示すグラフである。移植後２週間において、グルコースでマウスをチャレンジした。＊ｐ＜０．０５は、前記２つの細胞群と比較する。スケールバー＝５０μｍ。
【図１７】図１７は、ＳＣ−β細胞（ｎ＝６）またはＰＨ細胞（ｎ＝６）を移植したＡｋｉｔａマウスの体重を図示するグラフである。＊ｐ＜０．０５は、１８日及び２８日時点での２つの細胞群と比較する。
【発明を実施するための形態】
【００５９】
本開示の態様は、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体（例えば、ｉＰＳ細胞、ｈＥＳＣ、成体型内胚葉細胞、原腸管細胞、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞、Ｎｇｎ３陽性内分泌始原細胞等）から、幹細胞系β（ＳＣ−β）細胞（例えば、成熟得膵臓β細胞）を生成するための組成物、方法、キット及び作用剤、並びに、それらの組成物、方法、キット及び作用剤により産生された、細胞療法、アッセイ（例えば、薬剤スクリーニング）及び種々の処置方法に使用するためのＳＣ−β細胞に関する。
【００６０】
さらに、本開示の態様は、選択マーカーを使用することなく、形態学的評価基準並びに、機能的特徴、例えば、インスリンを発現し、１回以上のグルコースチャレンジに対する応答においてインスリンを分泌し、成熟したＧＳＩＳ応答を示し、ｉｎ  ｖｉｖｏにおいて膵臓における膵島に組織化し、典型的には、直径約９−１５μｍの小型スピンドル様細胞を有する能力に基づいて検出可能な、前記ＳＣ−β細胞の特定方法に関する。
【００６１】
さらに、本開示の態様は、β細胞成熟因子の特定方法に関する。特定のβ細胞成熟因子が当該分野において公知のアッセイを使用して機能し得るかどうかを、当業者であれば認識するであろうし、または、容易に確認可能であろう。例えば、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体をＳＣ−β細胞に変換する、β細胞成熟因子の能力は、本願明細書に開示されたアッセイを使用して評価され得る。他の都合の良いアッセイは、検出可能なマーカー、例えば、ルシフェラーゼをコードする核酸配列に操作可能に連結されたβ細胞マーカー結合部位を含むレポータ構築物の転写を活性化する能力を測定することを含む。１つのアッセイには、候補となるβ細胞成熟因子が、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞を誘導して、ＳＣ−β細胞になるか、または、β細胞のマーカーを発現しているか、または、本願明細書に開示された成熟β細胞の機能的特徴を示すかどうかを決定することを含む。β細胞マーカーのこのような発現の決定は、任意の適切な方法、例えば、免疫ブロットを使用して決定され得る。このようなアッセイは、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体をＳＣ−β細胞に直接変換する作用剤の活性を特定または確認するのに、容易に採用され得る。
【００６２】
本願明細書に記載された本発明の方法に基づいて生成された、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて成熟したＳＣ−β細胞（すなわち、膵臓β細胞）は、多くの利点、例えば、それらが、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでのグルコース刺激インスリン分泌を行い、遺伝子発現及び超微細構造により、ヒト膵島β細胞に類似し、ヒトインスリンを分泌し、マウスに移植された際に高血糖を改善し、細胞療法（例えば、追加的及び／または機能性のβ細胞を必要とする対象への移植）用の新たなプラットフォーム、（例えば、インスリン産生／分泌、生存、脱分化等のための）薬剤スクリーニング、（例えば、正常なβ細胞と糖尿病のβ細胞との間の機能における差異を決定する）研究及び（例えば、膵島を復元する第１の細胞種としての前記ＳＣ−βを使用する）再生医学を提供することを説明している。
【００６３】
定義
【００６４】
便宜上、本明細書、実施例及び添付の特許請求の範囲において、本願明細書に使用される特定の用語を、ここにまとめる。特に断らない限り、本願明細書に使用される全ての技術的及び科学的用語は、この発明が属する当業者に一般的に理解されているのと同じ意味を有する。
【００６５】
「分化した細胞」の用語は、その用語が本願明細書において規定される場合、その天然型において多能性でない、任意の初代細胞を意味する。すなわち、前記「分化した細胞」の用語は、細胞分化過程において、ほとんど特定化されていない細胞種の細胞（例えば、幹細胞、例えば、誘導多能性幹細胞）から得られた、より特定化された細胞種の細胞を意味する。理論に拘束されるものではないが、一連の正常な個体発生において、多能性幹細胞は、まず、膵臓細胞を形成可能な内胚葉細胞及び他の内胚葉細胞種に分化し得る。さらに、内胚葉細胞の分化は、膵臓経路をもたらす。この場合、約９８％の前記細胞が、外分泌腺、小管またはマトリクス細胞になり、約２％が、内分泌細胞になる。初期の内分泌細胞は、膵島前駆体である。ついで、前記前駆体は、インスリン、グルカゴン、ソマトスタチンまたは膵臓ポリペプチドを分泌するインスリン産生細胞（例えば、機能性内分泌細胞）に、さらに分化し得る。内胚葉細胞は、内胚葉起源の他の細胞、例えば、肺、肝臓、腸、胸腺等にも分化し得る。
【００６６】
本願明細書で使用する場合、「体細胞」の用語は、生殖系細胞とは対照的に、臓器の本体を形成する任意の細胞を意味する。哺乳類において、生殖系細胞（「生殖体」としても公知）は、受精中に融合して、受精体と呼ばれる細胞を産生する精子と卵子である。前記受精体から、哺乳類の胚全体に発達する。哺乳類の身体における全ての他の細胞種（精子及び卵子を除く、前記細胞から、（生殖母細胞）及び未分化の幹細胞が形成される。）は、体細胞である。内臓、皮膚、骨、血液及び結合組織は全て、体細胞から構成される。一部の実施形態では、前記体細胞は、「非胚性体細胞」である。前記非胚性体細胞は、胚に存在せず、胚から得られた、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて、このような細胞の増殖を生じない体細胞を意味する。一部の実施形態では、前記体細胞は、「成体体細胞」である。前記成体体細胞は、胚以外の臓器または胎児に存在し、前記胚から得られるか、または、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいてこのような細胞の増殖を生じる細胞を意味する。特に断らない限り、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体のインスリン産生、グルコース応答性細胞への変換方法は、ｉｎ  ｖｉｖｏ及びｉｎ  ｖｉｔｒｏの両方で行われ得る（ここで、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体が対象内に存在する場合には、ｉｎ  ｖｉｖｏが実用的である。培養中に維持されている単離された、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を使用する場合、ｉｎ  ｖｉｔｒｏが実用的である。）。
【００６７】
本願明細書で使用する場合、「成体細胞」の用語は、胚性発達後の身体全体を通して見出される細胞を意味する。
【００６８】
本願明細書で使用する場合、前記「内胚葉細胞」の用語は、非常に初期の胚における３つの主な生殖細胞層の１つに由来する細胞を意味する（他の２つの生殖細胞層は、中胚葉及び外胚葉である。）。内胚葉は、前記３層の最も内側である。内胚葉細胞は分化して、まず、胚性消化管を生じ、ついで、気道及び消化管（例えば、腸）の裏打ち、肝臓並びに膵臓を生じる。
【００６９】
本願明細書で使用する場合、「内胚葉起源の細胞」の用語は、内胚葉細胞から発達または分化した、任意の細胞を意味する。例えば、内胚葉起源の細胞としては、肝臓、肺、膵臓、胸腺、消化管、胃及び甲状腺の細胞があげられる。理論に拘束されるものではないが、肝臓及び膵臓の前駆体（膵臓前駆体とも呼ばれる）は、内胚葉細胞から胚性前腸に発達する。その仕様後まもなく、肝臓及び膵臓の前駆体は、かなり異なった細胞機能及び再生能を速やかに取得する。これらの変化は、脊椎動物において非常に保存された、誘導シグナル及び遺伝子調節因子により引き出される。臓器の当該発達及び再生は、肝不全及びＩ型糖尿病の治療的処置において、肝細胞及び膵臓β細胞に対する強力な要求により刺激される。種々のモデル生物及びヒトにおける研究から、肝臓及び膵臓の細胞の分化を引き出し、種々の幹細胞種及び始原細胞種からの肝細胞及びβ細胞の分化を促進する方法のためのガイダンスを提供する、進化的に保存された誘導シグナル及び転写因子ネットワークが証明されている。
【００７０】
本願明細書で使用する場合、「成体型内胚葉」の用語は、内胚葉細胞から分化した細胞を意味する。前記細胞は、ＳＣ−β細胞（例えば、膵臓β細胞）に分化し得る。成体型内胚葉細胞は、マーカーであるＳｏｘ１７を発現している。成体型内胚葉細胞に固有の他のマーカーとしては、制限されず、ＭＩＸＬ２、ＧＡＴＡ４、ＨＮＦ３ｂ、ＧＳＣ、ＦＧＦ１７、ＶＷＦ、ＣＡＬＣＲ、ＦＯＸＱ１、ＣＸＣＲ４、サーベラス、ＯＴＸ２、グースコイドタンパク質、Ｃ−Ｋｉｔ、ＣＤ９９、ＣＭＫＯＲ１及びＣＲＩＰ１があげられる。特に、本願明細書において、成体型内胚葉細胞は、Ｓｏｘ１７を発現しており、一部の実施形態では、Ｓｏｘ１７及びＨＮＦ３Ｂを発現しており、明らかなレベルのＧＡＴＡ４、ＳＰＡＲＣ、ＡＰＦまたはＤＡＢを発現していない。成体型内胚葉細胞は、マーカーであるＰｄｘ１について陽性ではない（例えば、それらは、Ｐｄｘ１陰性である。）。成体型内胚葉細胞は、肝臓、肺、膵臓、胸腺、腸、胃及び甲状腺の細胞を含む細胞に分化する能力を有する。前記成体型内胚葉のＳｏｘ１７及び他のマーカーの発現は、当業者に公知の任意の方法、例えば、抗−Ｓｏｘ１７抗体を使用する免疫化学または定量ＲＴ−ＰＣＲにより評価され得る。
【００７１】
「膵臓内胚葉」の用語は、複数の膵臓の系統、例えば、膵臓β細胞に分化可能であるが、非膵臓の系統に分化する能力をもはや有さない、内胚葉起源の細胞を意味する。
【００７２】
本願明細書で使用する場合、「原腸管細胞」または「腸管細胞」の用語は、内胚葉細胞から分化した細胞を意味する。前記細胞は、ＳＣ−β細胞（例えば、膵臓β細胞）に分化し得る。原腸管細胞は、少なくとも１つの下記マーカー：ＨＮＦ１−β、ＨＮＦ３−βまたはＨＮＦ４−αを発現している。原腸管細胞は、肺、肝臓、膵臓、胃及び腸の細胞を含む細胞に分化する能力を有する。原腸管のＨＮＦ１−β及び他のマーカーの発現は、当業者に公知の任意の方法、例えば、抗−ＨＮＦ１−β抗体を使用する免疫化学により評価され得る。
【００７３】
「膵臓前駆体」、「膵臓内分泌前駆体」、「膵臓前駆体」または「膵臓内分泌前駆体」の用語は、本願明細書において互換的に使用され、膵臓内分泌細胞、膵臓外分泌細胞または膵臓管細胞を形成可能な、膵臓ホルモン発現細胞になり得る幹細胞を意味する。これらの細胞は、少なくとも１種類の膵臓細胞、例えば、インスリンを産生するベータ細胞；グルカゴンを産生するアルファ細胞；ソマトスタチンを産生するデルタ細胞（またはＤ細胞）及び／または、膵臓ポリペプチドを産生するＦ細胞への分化にゆだねられる。このような細胞は、少なくとも１つの下記マーカー：ＮＧＮ３、ＮＫＸ２．２、ニューロＤ、ＩＳＬ−１、Ｐａｘ４、Ｐａｘ６またはＡＲＸを発現し得る。
【００７４】
本願明細書で使用する場合、「Ｐｄｘ１陽性膵臓前駆体」の用語は、ＳＣ−β細胞、例えば、膵臓β細胞に分化する能力を有する、膵臓内胚葉（ＰＥ）細胞である細胞を意味する。Ｐｄｘ１陽性膵臓前駆体は、マーカーであるＰｄｘ１を発現している。他のマーカーとしては、制限されず、Ｃｄｃｐ１またはＰｔｆ１ａまたはＨＮＦ６またはＮＲｘ２．２があげられる。前記Ｐｄｘ１の発現は、当業者に公知の任意の方法、例えば、抗−Ｐｄｘ１抗体を使用する免疫化学または定量ＲＴ−ＰＣＲにより評価され得る。
【００７５】
本願明細書で使用する場合、「ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓前駆体」の用語は、インスリン産生細胞、例えば、膵臓β細胞に分化する能力を有する、膵臓内胚葉（ＰＥ）細胞である細胞を意味する。ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓前駆体は、マーカーであるＰｄｘ１及びＮＫＸ６−１を発現している。他のマーカーとしては、制限されず、Ｃｄｃｐ１またはＰｔｆ１ａまたはＨＮＦ６またはＮＲｘ２．２があげられる。前記ＮＫＸ６−１の発現は、当業者に公知の任意の方法、例えば、抗−ＮＫＸ６−１抗体を使用する免疫化学または定量ＲＴ−ＰＣＲにより評価され得る。
【００７６】
本願明細書で使用する場合、「Ｎｇｎ３陽性内分泌前駆体」の用語は、転写因子であるニューロゲニン−３（Ｎｇｎ３）を発現している、膵臓内分泌細胞の前駆体を意味する。始原細胞は、多能性幹細胞より分化されており、ごくわずかな細胞種に分化し得る。特に、Ｎｇｎ３陽性内分泌始原細胞は、５つの膵臓内分泌細胞種（α、β、δ、ε及びＰＰ）に分化する能力を有する。前記Ｎｇｎ３の発現は、当業者に公知の任意の方法、例えば、抗−Ｎｇｎ３抗体を使用する免疫化学または定量ＲＴ−ＰＣＲにより評価され得る。
【００７７】
「ニューロＤ」及び「ニューロＤ１」の用語は、互換的に使用され、膵臓内分泌細胞において発現されるタンパク質及びそれをコードする遺伝子を特定する。
【００７８】
「インスリン陽性β様細胞」及び「インスリン陽性内分泌細胞」の用語は、膵臓β細胞を示す少なくとも１つのマーカーを提示し、インスリンを発現しているが、内在性のβ細胞に固有のＧＳＩＳ応答を欠く細胞（例えば、膵臓内分泌細胞）を意味する。
【００７９】
インスリン陽性内分泌細胞に関する用語としての「その前駆体」は、前記前駆細体細胞を前記インスリン陽性内分泌細胞に分化させるのに適した条件下で培養された場合、インスリン陽性内分泌細胞、例えば、多能性幹細胞、成体型内胚葉細胞、原腸管細胞、膵臓始原細胞または内分泌始原細胞等に分化可能な任意の細胞を意味する。
【００８０】
「幹細胞系β細胞」、「ＳＣ−β細胞」、「機能性β細胞」、「機能性膵臓β細胞」及び「成熟ＳＣ−β細胞」の用語は、膵臓β細胞を示す少なくとも１つのマーカー（例えば、ＰＤＸ−１またはＮＫＸ６−１）提示し、インスリンを分泌し、内在性の成熟β細胞に固有のＧＳＩＳ応答を提示する細胞（例えば、膵臓β細胞）を意味する。一部の実施形態では、前記「ＳＣ−β細胞」は、成熟膵臓β細胞を含む。開始点としての任意の細胞（本発明がこの方法に限定されることを意図しない場合、例えば、胚性幹細胞、誘導多能性幹細胞、始原細胞、部分的に再プログラムされた体細胞（例えば、誘導多能性幹細胞と前記体細胞との間の中間状態に部分的に再プログラムされた体細胞及びそれが得られる体細胞）、多能性細胞、全能細胞、前述の細胞のいずれかの分化転換版等を使用し得る。）を使用して、本開示の方法が任意のインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体から、ＳＣ−β細胞を得られる場合には、前記ＳＣ−β細胞は、（例えば、直接的に）幹細胞に由来する必要がないことを理解されたい。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、複数回のグルコースチャレンジ（例えば、少なくとも１回、少なくとも２回または少なくとも３回以上の連続的なグルコースチャレンジ）に対する応答を示す。一部の実施形態では、前記応答は、複数回のグルコースチャレンジに対する内在性の膵島（例えば、ヒト膵島）の応答に類似する。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞の形態は、内在性のβ細胞の形態に類似する。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、内在性のβ細胞のＧＳＩＳ応答に類似する、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでのＧＳＩＳ応答を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、内在性のβ細胞のＧＳＩＳ応答に類似する、ｉｎ  ｖｉｖｏでのＧＳＩＳ応答を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、内在性のβ細胞のＧＳＩＳ応答に類似する、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及びｉｎ  ｖｉｖｏの両方でのＧＳＩＳ応答を示す。前記ＳＣ−β細胞のＧＳＩＳ応答は、前記ＳＣ−β細胞を宿主（例えば、ヒトまたは動物）に移植した２週間以内に観察され得る。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、分泌性顆粒内にインスリンをパッケージする。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、封入結晶インスリン顆粒を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、１より大きい刺激指数を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、１．１より大きい刺激指数を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、２より大きい刺激指数を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、サイトカインに対する応答において、サイトカイン誘導性アポトーシスを示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞からのインスリン分泌は、公知の抗糖尿病剤（例えば、分泌促進物質）に対する応答において亢進する。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、モノホルモン性である。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、他のホルモン、例えば、グルカゴン、ソマトスタチンまたは膵臓ポリペプチドを異常に共発現していない。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、低速の複製を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、グルコースに対する応答において、細胞内Ｃａ２＋を増大させる。本願明��書で使用する場合、「外分泌細胞」の用語は、外分泌腺、すなわち、管を介してその分泌を排出する腺の細胞を意味する。特定の実施形態では、外分泌細胞は、膵臓外分泌細胞を意味する。前記膵臓外分泌細胞は、小腸内に分泌される酵素を産生する膵臓細胞である。これらの酵素は、食物が消化管を通過する際に、食物を消化するのに役立つ。膵臓外分泌細胞は、ランゲルハンス膵島としても公知である。前記膵島は、２つのホルモンである、インスリン及びグルカゴンを分泌する。膵臓外分泌細胞は、複数の細胞種：（ホルモンであるグルカゴンを産生する）アルファ−２細胞；または（ホルモンであるインスリンを産生する）β細胞；及び（調節剤であるソマトスタチンを産生する）アルファ−１細胞の１つであり得る。本願明細書で使用する場合、非インスリン産生外分泌細胞は、アルファ−２細胞またはアルファ−１細胞を意味する。前記膵臓外分泌細胞の用語は、血流内に分泌されるホルモン（例えば、β細胞から産生される）インスリン、（アルファ−２細胞により産生される）グルカゴン、（デルタ細胞により産生される）ソマトスタチン及び（Ｆ細胞により産生される）膵臓ポリペプチド）を産生する膵臓細胞を意味する、「膵臓内分泌細胞」を包含することに留意されたい。
【００８１】
本願明細書で使用する場合、「インスリン産生細胞」の用語は、膵臓前駆体またはその前駆体から分化した細胞を意味する。前記細胞は、インスリンを分泌する。インスリン産生細胞は、その用語が本願明細書において記載された場合、膵臓β細胞及び、構成的または誘導性の方法において、インスリンを合成し（すなわち、インスリン遺伝子を転写し、プロインスリンｍＲＮＡを翻訳し、前記プロインスリンｍＲＮＡをインスリンタンパク質に修飾し）、発現させ（すなわち、前記インスリン遺伝子により運ばれる形質を現し）、または、分泌する（細胞外空間にインスリンを放出する）膵臓β様細胞（すなわち、インスリン陽性内分泌細胞）を含む。例えば、本発明の方法に基づいて、インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体をＳＣ−β細胞に分化させることにより産生された前記インスリン産生細胞の集合は、内在性のβ細胞に固有の膵臓β細胞またはβ様細胞（例えば、少なくとも１つまたは少なくとも２つ少なくとも２つを有する細胞）であり、内在性の成体β細胞に類似するＧＳＩＳ応答を示す。本組成物及び方法の新規性は、自然にインスリンを産生する集合における細胞（例えば、β細胞）の存在により否定されない。例えば、本願明細書に開示された方法により産生されたインスリン産生細胞の集合が、成熟膵臓β細胞またはＳＣ−β細胞を含み得ること、及び、非インスリン産生細胞（すなわち、それらがインスリンを産生または分泌しないことを除いて、β細胞様表現型の細胞）も含み得ることも考慮される。
【００８２】
本願明細書で使用する場合、「内在性のβ細胞」、「内在性の成熟膵臓β細胞」または「内在性の膵臓β細胞」の用語は、膵臓のインスリン産生細胞または膵臓β細胞（β細胞）表現型の細胞を意味する。前記膵臓β細胞の表現型は、当業者に周知であり、例えば、グルコースレベルの上昇に対する応答におけるインスリン分泌、ｃ−ペプチド、Ｐｄｘ１ポリペプチド及びＧｌｕｔ２等のマーカーの発現並びに区別できる形態学的特徴、例えば、ｉｎ  ｖｉｖｏでの膵臓における膵島への組織化を含み、典型的には、直径約９−１５μｍの小型スピンドル様細胞を有する。
【００８３】
本願明細書で使用する場合、「ＳＣ−β細胞」、「膵臓β様細胞」及び「成熟膵臓β様」の用語は、内在性の膵臓β細胞により発現されるインスリン量の少なくとも１５％、または、内在性膵臓β細胞により分泌されるインスリン量の少なくとも約２０％または少なくとも約３０％または少なくとも約４０％または少なくとも約５０％または少なくとも約６０％または少なくとも約７０％または少なくとも約８０％または少なくとも約９０％または少なくとも約１００％または１００％より多く、例えば、少なくとも約１．５倍または少なくとも約２倍または少なくとも約２．５倍または少なくとも約３倍または少なくとも約４倍または少なくとも約５倍または約５倍より多く発現するか、あるいは、内在性の膵臓β細胞の少なくとも１つまたは少なくとも２つの特徴、例えば、制限されず、グルコースに対する応答におけるインスリン分泌並びにβ細胞マーカー、例えば、ｃ−ペプチド、Ｐｄｘ１及びｇｌｕｔ−２の発現を示す、本願明細書に記載された方法により産生された細胞を意味する。一実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、不死化細胞（すなわち、培養において無限に増殖する）ではない。一実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、形質転換細胞、例えば、形質転換特性、例えば、ソフトアガーでの増殖または接触阻害が存在しないことを示す細胞ではない。
【００８４】
「β細胞マーカー」の用語は、制限されず、タンパク質、ペプチド、核酸、タンパク質及び核酸の多形、スプライス変異体、タンパク質または核酸のフラグメント、エレメント並びに、膵臓β細胞に特異的に発現されるか、または、存在する他の検体を意味する。典型的なβ細胞マーカーとしては、制限されず、膵臓及び十二指腸ホメオボックス１（Ｐｄｘ１）ポリペプチド、インスリン、ｃ−ペプチド、アミリン、Ｅ−カドヘリン、Ｈｎｆ３β、ＰＣＩ／３、Β２、Ｎｋｘ２．２、ＮＫＸ６−１、ＧＬＵＴ２、ＰＣ２、ＺｎＴ−８、Ｉｓｌｌ、Ｐａｘ６、Ｐａｘ４、ニューロＤ、Ｈｎｆｌｂ、Ｈｎｆ−６、Ｈｎｆ−３ベータ及びＭａｆＡ並びに、Ｚｈａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｄｉａｂｅｔｅｓ．  ５０（１０）：２２３１−６（２００１）に記載されたものがあげられる。一部の実施形態では、前記β細胞マーカーは、核３−細胞マーカーである。一部の実施形態では、前記β細胞マーカーは、Ｐｄｘ１またはＰＨ３である。
【００８５】
「膵臓内分泌マーカー」の用語は、制限されず、タンパク質、ペプチド、核酸、タンパク質及び核酸の多形、スプライス変異体、タンパク質または核酸のフラグメント、エレメント並びに、膵臓内分泌細胞に特異的に発現されるか、または、存在する他の検体を意味する。典型的な膵臓内分泌細胞マーカーとしては、制限されず、Ｎｇｎ−３、ニューロＤ及びＩｓｌｅｔ−１があげられる。
【００８６】
本願明細書で使用する場合、「非インスリン産生細胞」の用語は、構成的にまたは誘導により、インスリンを本質的に合成、発現または分泌しない、内胚葉起源の任意の細胞を意味する。このため、本願明細書で使用する場合、前記「非インスリン産生細胞」の用語は、膵臓β細胞を除外する。本発明の方法に使用され得る非インスリン産生細胞の例としては、膵臓非β細胞、例えば、アミラーゼ産生細胞、腺房細胞、管状腺ガン細胞株の細胞（例えば、ＣＤ１８、ＣＤ１１及びＣａｐａｎ−Ｉ細胞（Ｂｕｓｉｋ  ｅｔ  ａｌ．，  １９９７；Ｓｃｈａｆｆｅｒｔ  ｅｔ  ａｌ．  １９９７を参照のこと。））があげられる。内胚葉起源の非膵臓細胞、例えば、非膵臓幹細胞及び他の内分泌及び外分泌臓器の細胞、例えば、肝臓細胞、胸腺細胞、甲状腺細胞、腸細胞、肺細胞及び脳下垂体細胞等も使用され得る。一部の実施形態では、非インスリン産生内胚葉細胞は、哺乳類細胞、またはさらにより具体的に、ヒト細胞であり得る。哺乳類の膵臓非膵島、膵臓アミラーゼ産生細胞、膵臓腺房細胞を使用する本方法の例は、本願明細書において提供される。
【００８７】
「表現型」の用語は、実際の遺伝子型に関わらず、特定の設定の環境条件及び要因下において、細胞または生物を規定する、１つまたは数多くの総合的な生物学的特徴を意味する。
【００８８】
本願明細書で使用する場合、「多能性」の用語は、種々の条件下において、２つ以上の分化した細胞種に分化する、好ましくは、３つ全ての生殖細胞層に固有の細胞種に分化する能力を有する細胞を意味する。多能性細胞は、第一に、例えば、ヌードマウステラトーマ形成アッセイを使用して、２つ以上の細胞種、好ましくは、３つ全ての胚葉に分化する、その能力により特徴付けられる。多能性は、胚性幹（ＥＳ）細胞マーカーの発現によっても証明されるが、多能性についての好ましい試験は、３つの胚葉のいずれかの細胞に分化する能力の説明である。単にこのような細胞をクラスタリングすること自体は、それらが多能性であるとは表現しないことに、留意されるべきである。再プログラムされた多能性細胞（例えば、本願明細書においてその用語が定義されている、ｉＰＳ細胞）は、初代の親細胞に対する増殖能を失うことなく、長期にわたる継代能の特徴も有する。前記親細胞は、一般的に、培養において制限された回数のみの分割能を有する。
【００８９】
本願明細書で使用する場合、「ｉＰＳ細胞」及び「誘導多能性幹細胞」の用語は、互換的に使用され、非多能性細胞、典型的には、成体体細胞から、例えば、１つ以上の遺伝子の強制的な発現を誘導することにより、（例えば、誘導され、または、完全な回復により）人工的に得られた多能性幹細胞を意味する。
【００９０】
「始原（ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ）」細胞または「前駆体（ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ）」細胞の用語は、本願明細書において互換的に使用され、分化により生じ得る細胞に対して、より原始的な（すなわち、完全に分化した細胞より、発生経路または発達に沿った初期段階にある）細胞表現型を有する細胞を意味する。多くの場合、始原細胞も、顕著または非常に高い増殖能を有する。始原細胞は、発達経路及び細胞が発達及び分化する環境に応じて、複数の区別できる分化した細胞種または１つの分化した細胞種を生じ得る。
【００９１】
本願明細書で使用する場合、「幹細胞」の用語は、増殖可能であり、分化した娘細胞または分化可能な娘細胞を順番に生じ得る、数多くの母細胞を生成する能力を有する、より始原細胞を生じさせ得る、未分化の細胞を意味する。前記娘細胞自体は誘導されて増殖し、１つ以上の成熟細胞種に連続的に分化する子孫を産生し得るが、親の発達能を有する１つ以上の細胞を維持することもできる。前記「幹細胞」の用語は、特定の環境下において、より特定化または分化した表現型に分化する能力または可能性を有し、特定の環境下において、実質的に分化することなく増殖する能力を維持する前駆体の部分集合を意味する。一実施形態では、前記幹細胞の用語は、一般的には、胚性細胞及び組織の進行性多様性において生じる際に、多くの場合、子孫（子孫）が、分化により、例えば、完全に個々の特長を獲得することにより、種々の方向に特定化する、天然由来の母細胞を意味する。細胞分化は、多くの細胞分割を介して典型的に生じる、複雑なプロセスである。分化した細胞は、それ自体が多能性細胞等から得られる多能性細胞から得られる。これらの多能性細胞はいずれも、幹細胞であると考えられる場合があるが、細胞種の範囲はそれぞれ、かなりの変化を生じ得る。一部の分化した細胞は、より高い発達能の細胞を生じる能力も有する。このような能力は、天然由来でもよいし、または、種々の因子による処理に基づいて人工的に誘導されてもよい。多くの生物学的事例において、幹細胞も、「多能性」である。それらが、２つ以上の区別できる細胞種の子孫を産生し得るためである。ただし、この細胞種は、「幹細胞性」を必要としない。自己複製は、幹細胞の定義における他の分類的部分であり、この文書において使用される場合、必須である。理論的には、自己複製は、２つの主要な機構のいずれかにより生じ得る。幹細胞は、幹細胞の状態を維持している１つの娘と、いくつかの区別できる他の特異的機能及び表現型を現す他の娘とを伴って、非対称に分割し得る。あるいは、集合における一部の幹細胞は、２つの幹細胞に対称的に分割するため、全体として前記集合の一部の幹細胞を維持し得る。一方、前記集合における他の細胞は、分化した子孫のみを生じる。形式的には、幹細胞として開始する細胞が、分化した表現型に向かって進行するが、その場合、当業者に「脱分化」または「再プログラミング」または「レトロ分化」と多くの場合呼ばれる用語である、幹細胞の表現型に戻る、及び、同表現型を再表現する可能性ある。本願明細書で使用する場合、「多能性幹細胞」の用語は、胚性幹細胞、誘導多能性幹細胞、胎盤幹細胞等を含む。
【００９２】
細胞の個体発生について、形容詞としての「分化した」または「分化している」は、「分化した細胞」が、比較した細胞より、発達経路をさらに下がって進行している細胞であることを意味する相対的な用語である。このため、幹細胞は、系統制限前駆体細胞（例えば、中胚葉幹細胞）に分化し得る。次に、前記前駆体細胞は、前記経路をさらに下った、他の種類の前駆体細胞（例えば、心筋細胞前駆体）、ついで、最終段階の分化した細胞に分化し得る。前記最終段階の分化した細胞は、特定組織種において、特徴的な役割を果たし、更なる増殖能を維持している場合もあるし、または、同能力を維持していない場合もある。
【００９３】
「胚性幹細胞」の用語は、胚盤胞の内部細胞集団における多能性幹細胞を意味するのに使用される（米国特許第５，８４３，７８０号、同第６，２００，８０６号明細書を参照のこと。）。このような細胞は、体細胞核移植から得られる胚盤胞の内部細胞集合から同様に得ることができる（例えば、米国特許第５，９４５，５７７号、同第５，９９４，６１９号、同第６，２３５，９７０号明細書を参照のこと。）。胚性幹細胞を区別する特徴は、胚性幹細胞の表現型を規定する。したがって、胚性幹細胞の１つ以上の固有の特長を有する場合、細胞は、胚性幹細胞の表現型を有する。これにより、その細胞は、他の細胞とは区別され得る。典型的な区別できる胚性幹細胞の特長としては、制限されず、遺伝子発現プロファイル、増殖能、分化能、核型、特定の培養条件に対する応答性等があげられる。
【００９４】
「成体幹細胞」または「ＡＳＣ」の用語は、非胚性組織、例えば、胎児、若年及び成体組織から得られた、任意の多能性幹細胞を意味するのに使用される。幹細胞は、広い各種の成体組織、例えば、血液、骨、骨髄、脳、嗅上皮、皮膚、膵臓、骨格筋及び心筋から単離される。これらの幹細胞はそれぞれ、遺伝子発現、要因応答性及び培養における形態に基づいて特徴付けられ得る。典型的な成体幹細胞としては、神経幹細胞、神経冠幹細胞、中胚葉幹細胞、造血幹細胞及び膵臓幹細胞があげられる。上記されたように、幹細胞は、実質的に全ての組織に存在することが見出されてきた。したがって、本発明は、幹細胞集合が実質的に任意の動物組織から単離され得ることを理解する。
【００９５】
「膵臓」の用語は、消化酵素及びホルモンを分泌する腺器官を意味する。ヒトでは、膵臓は、長さ約７インチ（１７．８ｃｍ）及び幅１．５インチ（３．８ｃｍ）の黄色がかった臓器である。膵臓は、胃の下にあり、胃の下端（幽門）から肛門開口に延びる消化管の筋肉のホース様部分である小腸に連結されている。ほとんどの膵臓組織は、肝臓からの胆汁と共に、総管を通って十二指腸に流れる、透明な流体（膵液）を産生する細胞のブドウに似たクラスターからなる。胆汁には、腸内酵素と共に、タンパク質、炭水化物及び脂肪それぞれの消化を完了させる、３つの消化酵素：トリプターゼ、アミラーゼ及びリパーゼが含まれる。膵臓の前記酵素産生細胞の中でも分散しているものが、内分泌細胞の小さな群であり、ランゲルハンス膵島と呼ばれ、２つのホルモンであるインスリン及びグルカゴンを分泌する。膵臓の膵島は、複数種の細胞：ホルモンであるグルカゴンを産生するアルファ−２細胞；ホルモンであるインスリンを産生するβ細胞（本願明細書において、「膵臓β細胞」とも呼ばれる）；及び、調節剤であるソマトスタチンを産生するアルファ−１細胞を含む。これらのホルモンは、血流に直接分泌され、それらは互いに、血中のグルコースレベルを調節する。インスリンは、血糖レベルを低下させ、肝臓におけるグリコーゲン（保存型炭水化物）の量を増大させる。グルカゴンは、反対の作用を有する。正常に機能するインスリン分泌細胞の機能不全は、糖尿病（ｄｉａｂｅｔｅｓ）または糖尿病（ｄｉａｂｅｔｅｓ  ｍｅｌｌｉｔｕｓ）をもたらす。
【００９６】
本願明細書で使用する場合、「再プログラミング」の用語は、体細胞の分化状態に変えるまたは戻すプロセスを意味する。前記細胞は、前記再プログラミング前に、部分的または最終的のいずれかに分化されていることができる。再プログラミングは、体細胞の分化状態の多能性細胞への完全な復帰を包含する。分化のこのような完全な復帰により、誘導多能性（ｉＰＳ）細胞が産生される。本願明細書で使用する場合、再プログラミングは、細胞の分化状態の部分的な復帰、例えば、多能性状態への復帰または、多能性もしくは多分化能のいずれでもないが、分化した細胞の１つ以上の特異的特徴を失っており、それから、例えば、異なる体細胞種への分化した細胞の直接的な再プログラミングを生じる細胞である体細胞への復帰を包含する。再プログラミングは、一般的には、核酸修飾（例えば、メチル化）、クロマチン凝集、後天的変化、ゲノム刷り込み等の少なくとも一部の遺伝性パターンの変換、例えば、復帰を含む。前記変換は、接合体が成体に発生する細胞分化中に生じるものである。
【００９７】
本願明細書で使用する場合、「作用剤」の用語は、任意の化合物または物質、例えば、制限されず、小分子、核酸、ポリペプチド、ペプチド、薬剤、イオン等を意味する。「作用剤」は、任意の化学物質、実体または部分、例えば、制限されず、合成及び天然由来のタンパク質性及び非タンパク質性の実体であり得る。一部の実施形態では、作用剤は、核酸、核酸類似物、タンパク質、抗体、ペプチド、アプタマー、核酸のオリゴマー、アミノ酸または炭水化物、例えば、制限されず、タンパク質、オリゴヌクレオチド、リボザイム、ＤＮＡザイム、糖タンパク質、ｓｉＲＮＡ、リポタンパク質、アプタマー並びにそれらの修飾及び組合せである。特定の実施形態では、作用剤は、化学部分を有する小分子である。例えば、化学部分は、置換または非置換のアルキル、芳香族またはヘテロシクリル部分、例えば、マクロライド、レプトマイシン及び関連する天然物またはその類似体を含む。化合物は、所望の活性及び／または特性を有することが公知であることができ、または、種々の化合物のライブラリから選択されることができる。
【００９８】
本願明細書で使用する場合、「接触させること」（すなわち、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を、β細胞成熟因子またはβ細胞成熟因子の組合せと接触させること）の用語は、前記β細胞成熟因子と細胞とを共に、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいてインキュベートすること（例えば、培養中に前記β細胞成熟因子を細胞に添加すること）を含むことを意図する。一部の実施形態では、前記「接触させること」の用語は、対象において本質的に起こり得る本願明細書に開示された化合物への細胞のｉｎ  ｖｉｖｏにおける暴露（すなわち、自然な生理学的プロセスの結果として起こり得る暴露）を含むことを意図しない。ＳＣ−β細胞の産生に関連する実施形態におけるように、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を、β細胞成熟因子と接触させる工程は、任意の適切な方法において行われ得る。例えば、前記細胞は、接着培養または懸濁培養において処理され得る。一部の実施形態では、前記細胞は、細胞クラスター形成を促進する条件で処理される。本開示は、細胞クラスター形成を促進する任意の条件を考慮する。細胞クラスター形成を促進する条件の例としては、制限されず、低付着組織培養プレート、スピナーフラスコ、ａｇｇｒｅｗｅｌｌプレートにおける懸濁培養があげられる。一部の実施形態では、本発明者らは、クラスターが１０％  血清を含む培地において安定なままであることを観察した。一部の実施形態では、前記クラスター形成を促進する条件は、低血清培地を含む。
【００９９】
β細胞成熟因子と接触した前記細胞を、別の作用剤、例えば、成長因子もしくは他の分化剤または、前記細胞を安定化する、もしくは、前記細胞をさらに分化させる環境とも、同時または連続的に接触させ得ることが理解される。
【０１００】
同様に、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を、少なくとも１つのβ細胞成熟因子と接触させ、ついで、少なくとも別のβ細胞成熟因子と接触させ得る。一部の実施形態では、前記細胞を、少なくとも１つのβ細胞成熟因子と接触させ、前記接触が時間的に空けられる。一部の実施形態では、細胞を、少なくとも１つのβ細胞成熟因子と実質的に同時に接触させる。一部の実施形態では、前記細胞を、少なくとも２つ、少なくとも３つ、少なくとも４つ、少なくとも５つ、少なくとも６つ、少なくとも７つ、少なくとも８つ、少なくとも９つ、少なくとも１０個のβ細胞成熟因子と接触させる。
【０１０１】
本願明細書において「細胞培養培地」と呼ばれる（本願明細書において、「培養培地」または「培地」とも呼ばれる）用語は、細胞の生存性を維持し、増殖を支持する栄養を含む、細胞を培養するための培地である。前記細胞培養培地は、適切な組合せにおいて、下記のもの：塩、バッファー、アミノ酸、グルコースまたは他の糖、抗生物質、血清または血清代替品及び他の成分、例えば、ペプチド成長因子等のいずれかを含み得る。特定の細胞種に通常使用される細胞培養培地は、当業者に公知である。
【０１０２】
「細胞株」の用語は、１つの祖先細胞または祖先細胞の、規定され及び／もしくは実施的に同一の集合から典型的に得られた、主にまたは実質的に同一の細胞の集合を意味する。前記細胞株は、長期にわたる期間（例えば、数ヶ月、数年、無期限）、培養において維持されているか、または、同維持を可能であり得る。前記細胞は、前記細胞の無期限の培養寿命を付与する形質転換の同時または誘導法を受けてもよい。なお、細胞株は、当該分野において認識されるそれら全ての細胞株を含む。細胞は、変異及びあるいは後天的変化を経時的に取得することが理解されるであろう。これにより、細胞株の個々の細胞の少なくとも一部の特性は、互いに異なる場合がある。一部の実施形態では、細胞株は、本願明細書に記載されたＳＣ−β細胞を含む。
【０１０３】
「外来性」の用語は、その天然ソース以外の細胞または生物に存在する物質を意味する。例えば、「外来性核酸」または「外来性タンパク質」の用語は、生物系、例えば、細胞または生物内に人の手による方法により導入された、核酸またはタンパク質を意味する。同核酸またはタンパク質は、前記生物系には、通常見出されないか、または、より少量が見出される。物質が細胞内、または、前記物質を受け継ぐ前記細胞の祖先に導入される場合、物質は、外来性であると考えられるであろう。対照的に、「内在性」の用語は、生物系に本来備わっている物質を意味する。
【０１０４】
「発現」の用語は、ＲＮＡ及びタンパク質を産生すること、必要に応じて、タンパク質を分泌すること、例えば、該当する場合、制限されず、転写、翻訳、フォールディング、修飾及びプロセッシングを含む、細胞プロセスを意味する。「発現産物」としては、遺伝子から転写されたＲＮＡ及び遺伝子から転写されたｍＲＮＡの翻訳により得られたポリペプチドがあげられる。
【０１０５】
本願明細書で使用する場合、「遺伝子組み換えされた」または「遺伝子操作された」細胞の用語は、外来性核酸がヒトの手による方法により導入されている細胞（または、前記核酸の少なくとも一部を受け継いでいる、このような細胞の子孫）を意味する。前記核酸は、例えば、前記細胞に対して外来性である配列を含んでもよい。前記核酸は、生来の配列（すなわち、前記細胞に本来見られる配列）であるが、非天然由来の配置（例えば、異なる遺伝子からのプロモータに連結されたコード領域）または生来の配列の変形型等を含んでもよい。前記核酸の前記細胞への輸送方法は、任意の適切な技術により達成され得る。適切な技術としては、リン酸カルシウムまたは脂質媒介性トランスフェクション、エレクトロポレーション及びウイルスベクターを使用する形質導入または感染があげられる。一部の実施形態では、ポリヌクレオチドまたはその部分は、前記細胞のゲノム内に組み込まれる。前記核酸は、前記ゲノムからその後除去され、または、切除され得る。ただし、このような除去または切除は、修飾されていないが、その他の方法で同等の細胞に対して、前記細胞における検出可能な変化をもたらすという条件である。遺伝子組換えされた、の用語は、直接細胞内への修飾ＲＮＡ（例えば、合成の修飾ＲＮＡ）の導入を含むことを意図する。このような合成の修飾ＲＮＡは、エンドヌクレアーゼ及びエキソヌクレアーゼによる急速な分解を防止する修飾、及び、前記ＲＮＡに対する細胞本来の免疫またはインターフェロン応答を防止または低減させる修飾を含む。修飾としては、制限されず、例えば、（ａ）末端修飾、例えば、５’端修飾（リン酸化、脱リン酸化、接合、逆位結合等）、３’端修飾（接合、ＤＮＡヌクレオチド、逆位結合等）、（ｂ）塩基修飾、例えば、修飾塩基、安定化塩基、不安定化塩基もしくは塩基対がパートナの伸長レパートリを有する塩基もしくはコンジュゲート塩基による置換、（ｃ）糖修飾（例えば、２’位または４’位）または糖の置換、並びに、（ｄ）ヌクレオシド間リンケージ修飾、例えば、ホスホジエステル結合の修飾もしくは置換があげられる。このような修飾が翻訳と干渉する（すなわち、前記修飾を欠くのに対して翻訳の５０％以上の低下−例えば、ウサギ網状赤血球におけるｉｎ  ｖｉｔｒｏ翻訳アッセイ）限りにおいて、前記修飾は、本願明細書に記載された方法及び組成物に適切でない。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、ニューロゲニン３を発現するように遺伝子組み換えされる。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞の遺伝子組換えは、ニューロゲニン３をコードする合成の修飾ｍＲＮＡを導入することを含む。ニューロゲニン３をコードする合成の修飾ＲＮＡによるＳＣ−β細胞の遺伝子組換えは、前記細胞からのインスリン産生を増大させると考えられる。任意のインスリン産生細胞のこのような遺伝子組換えは、その細胞における遺伝子産生を増大させると期待されると予測される。
【０１０６】
一部の態様では、本開示は、インスリンの遺伝子座において、検出可能なマーカーを含むように遺伝子組み換えされたＳＣ−β細胞を提供する。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、検出可能なマーカーにより、前記インスリンの遺伝子座の両対立遺伝子を置換するように修飾される。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、前記検出可能なマーカーを前記インスリンの遺伝子座内に挿入するように遺伝子組み換えされる。これにより、前記検出可能なマーカーは、グルコースチャレンジに対する応答において、前記ＳＣ−β細胞中でインスリンと共に発現される。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、インスリンに代えて、前記インスリンの遺伝子座内に前記検出可能なマーカーを挿入するように遺伝子組み換えされる。これにより、前記検出可能なマーカーは、グルコースチャレンジに対する応答において、前記ＳＣ−β細胞中でインスリンに代えて発現される。任意の検出可能なマーカー、例えば、蛍光タンパク質（例えば、ＧＦＰ）をコードする核酸等が、前記インスリンの遺伝子座内に挿入され得ることが考慮される。このような遺伝子組み換えされたＳＣ−β細胞が、例えば、作用剤に対する応答において、前記検出可能なマーカーについてアッセイすることにより、インスリン発現及び／またはβ細胞からの分泌を刺激する作用剤を特定する、種々のスクリーニング法に使用され得ることを、当業者あれば理解するであろう。例えば、（例えば、ＧＦＰにより）両対立遺伝子においてインスリン遺伝子を置換するように遺伝子組み換えされたＳＣ−β細胞を、試験剤及び、ＧＦＰの発現がβ細胞におけるインスリン遺伝子発現を活性化する可能性がある候補剤であると考えられるため、前記ＳＣ−β細胞を蛍光させるそれらの作用剤と接触させ得る。すなわち、前記検出可能なマーカーは、このような遺伝子組み換えされたＳＣ−β細胞におけるインスリン発現用の代用マーカーとして使用され得る。
【０１０７】
本願明細書で使用する場合、「同一性」の用語は、２つ以上の核酸またはポリヌクレオチドの配列が同じである程度を意味する。所望の配列と第２の配列との間の評価ウインドウにわたる、例えば、所望の配列長にわたるパーセント同一性は、前記配列を整列させ、ギャップの導入により同一性を最大化させる同一残基を対向させる前記評価ウインドウ内の残基（ヌクレオチドまたはアミノ酸）数を決定し、前記ウインドウ内にある前記所望の配列または前記第２の配列（より長い方）の残基総数で割り、１００を掛けることにより算出され得る。特定のパーセント同一性を達成するのに必要とされる同一残基の数を算出する際に、少数は、最も近い整数に四捨五入される。パーセント同一性は、当該分野において公知の各種のコンピュータプログラムを使用して算出され得る。例えば、コンピュータプログラム、例えば、ＢＬＡＳＴ２、ＢＬＡＳＴＮ、ＢＬＡＳＴＰ、ギャップＢＬＡＳＴにより、アライメントが生成され、所望の配列間のパーセント同一性が提供される。Ｋａｒｌｉｎ  ａｎｄ  Ａｌｔｓｃｈｕｌ，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  ＳｃＬ  ＵＳＡ  ９０：５８７３−５８７７，  １９９３において改良された、Ｋａｒｌｉｎ  ａｎｄ  Ａｌｔｓｃｈｕｌのアルゴリズム（Ｋａｒｌｉｎ  ａｎｄ  Ａｌｔｓｃｈｕｌ，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ８７：２２２６４−２２６８，  １９９０）が、Ａｌｔｓｃｈｕｌ  ｅｔ  ａｌ．（Ａｌｔｓｃｈｕｌ，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ．  ＭｏＩ．  Ｂｉｏｌ．  ２１５：４０３−４１０，  １９９０）のＮＢＬＡＳＴ及びＸＢＬＡＳＴのプログラムに組み込まれている。比較目的でギャップアライメントを得るために、ギャップＢＬＡＳＴが、Ａｌｔｓｃｈｕｌ  ｅｔ  ａｌ．（Ａｌｔｓｃｈｕｌ，  ｅｔ  ａｌ．  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．  ２５：３３８９−３４０２，  １９９７）に記載されたように使用される。ＢＬＡＳＴ及びギャップＢＬＡＳＴのプログラムを使用する場合、前記各プログラムのデフォルトパラメータが使用されてもよい。ＰＡＭ２５０またはＢＬＯＳＵＭ６２マトリクスが使用されてもよい。ＢＬＡＳＴ解析を行うためのソフトウェアは、国立バイオテクノロジー情報センター（ＮＣＢＩ）から公衆に利用可能である。これらのプログラムについては、「ｎｃｂｉ．ｎｌｍ  ｎｉｈ．ｇｏｖ」のＵＲＬワールド・ワイド・ウェブアドレスを有するウェブサイトを参照のこと。具体的な実施形態では、パーセント同一性は、ＮＣＢＩにより提供されたデフォルトパラメータによるＢＬＡＳＴ２を使用して算出される。
【０１０８】
本願明細書で使用する場合、「単離された」または「部分的に精製された」の用語は、核酸またはポリヌクレオチドの場合において、その天然ソースにおいて見出された場合、前記核酸またはポリヌクレオチドと共に存在する、及び／または、分泌されたポリペプチドの場合、細胞により発現または分泌された際、前記核酸またはポリヌクレオチドと共に存在するであろう、少なくとも１つの他の成分（例えば、核酸またはポリヌクレオチド）から分離された核酸またはポリヌクレオチドを意味する。化学的に合成された核酸もしくはポリヌクレオチド、または、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ転写／翻訳を使用して合成されたものは、「単離されている」と考えられる。
【０１０９】
本願明細書で使用する場合、「単離された細胞」の用語は、それが本来見出される生物から取り出されている細胞またはこのような細胞の子孫を意味する。場合により、前記細胞は、例えば、他の細胞の存在下において、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで培養されている。場合により、前記細胞は、その後、第２の生物内に導入されるか、または、それ（または、それに由来する細胞）が単離された生物内に再導入される。
【０１１０】
本願明細書で使用する場合、細胞の単離された集合に関する「単離された集合」の用語は、細胞の混合または異種集合から取り出され、分離されている細胞集合を意味する。一部の実施形態では、単離された集合は、前記細胞が単離または濃縮される異種集合と比較して、実質的に純粋な細胞集合である。
【０１１１】
特定の細胞集合に関する「実質的に純粋」の用語は、総細胞集合を構成する細胞に関して、少なくとも約７５％、好ましくは少なくとも約８５％、より好ましくは少なくとも約９０％、及び最も好ましくは、少なくとも約９５％純粋な細胞集合を意味する。すなわち、ＳＣ−β細胞の集合に関して、「実質的に純粋」または「本質的に精製された」の用語は、約２０％以下、より好ましくは約１５％、１０％、８％、７％以下、最も好ましくは約５％、４％、３％、２％、１％以下または１％未満の、本願明細書において前記用語により規定されたＳＣ−β細胞でない細胞を含む細胞集合を意味する。一部の実施形態では、本発明は、ＳＣ−β細胞の増殖した集合が、ＳＣ−β細胞の実質的に純粋な集合である、ＳＣ−β細胞の集合の増殖方法を包含する。
【０１１２】
同様に、インスリン陽性内分泌細胞の「実質的に純粋」または「本質的に精製された」集合に関して、約２０％以下、より好ましくは約１５％、１０％、８％、７％以下、最も好ましくは約５％、４％、３％、２％、１％以下または１％未満の、本願明細書において前記用語により規定されたインスリン陽性内分泌細胞でない細胞を含む細胞集合を意味する。一部の実施形態では、本発明は、インスリン陽性内分泌細胞の増殖した集合が、インスリン陽性内分泌細胞の実質的に純粋な集合である、インスリン陽性内分泌細胞の集合の増殖方法を包含する。
【０１１３】
同様に、Ｎｇｎ３陽性内分泌前駆体の「実質的に純粋」または「本質的に精製された」集合に関して、約２０％以下、より好ましくは約１５％、１０％、８％、７％以下、最も好ましくは約５％、４％、３％、２％、１％以下または１％未満の、本願明細書において前記用語により規定されたＮｇｎ３陽性内分泌前駆体またはその子孫でない細胞を含む細胞集合を意味する。一部の実施形態では、本発明は、Ｎｇｎ３陽性内分泌前駆体の増殖した集合が、Ｎｇｎ３陽性内分泌前駆体の実質的に純粋な集合である、Ｎｇｎ３陽性内分泌前駆体の集合の増殖方法を包含する。
【０１１４】
同様に、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓前駆体の「実質的に純粋」または「本質的に精製された」集合に関して、約２０％以下、より好ましくは約１５％、１０％、８％、７％以下、最も好ましくは約５％、４％、３％、２％、１％以下または１％未満の、本願明細書において前記用語により規定されたＰｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓前駆体またはその子孫でない細胞を含む細胞集合を意味する。一部の実施形態では、本発明は、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓前駆体の増殖した集合が、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓前駆体の実質的に純粋な集合である、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓前駆体の集合の増殖方法を包含する。
【０１１５】
同様に、Ｐｄｘ１陽性膵臓前駆体の「実質的に純粋」または「本質的に精製された」集合に関して、約２０％以下、より好ましくは約１５％、１０％、８％、７％以下、最も好ましくは約５％、４％、３％、２％、１％以下または１％未満の、本願明細書において前記用語により規定されたＰｄｘ１陽性膵臓前駆体またはその子孫でない細胞を含む細胞集合を意味する。一部の実施形態では、本発明は、Ｐｄｘ１陽性膵臓前駆体の増殖した集合が、Ｐｄｘ１陽性膵臓前駆体の実質的に純粋な集合である、Ｐｄｘ１陽性膵臓前駆体の集合の増殖方法を包含する。
【０１１６】
同様に、原腸管細胞の「実質的に純粋」または「本質的に精製された」集合に関して、約２０％以下、より好ましくは約１５％、１０％、８％、７％以下、最も好ましくは約５％、４％、３％、２％、１％以下または１％未満の、本願明細書において前記用語により規定された原腸管細胞またはその子孫でない細胞を含む細胞集合を意味する。一部の実施形態では、本発明は、原腸管細胞の増殖した集合が、原腸管細胞の実質的に純粋な集合である、原腸管細胞の集合の増殖方法を包含する。
【０１１７】
同様に、成体型内胚葉細胞の「実質的に純粋」または「本質的に精製された」集合に関して、約２０％以下、より好ましくは約１５％、１０％、８％、７％以下、最も好ましくは約５％、４％、３％、２％、１％以下または１％未満の、本願明細書において前記用語により規定された成体型内胚葉細胞またはその子孫でない細胞を含む細胞集合を意味する。一部の実施形態では、本発明は、成体型内胚葉細胞の増殖した集合が、成体型内胚葉細胞の実質的に純粋な集合である、成体型内胚葉細胞の集合の増殖方法を包含する。
【０１１８】
同様に、多能性細胞の「実質的に純粋」または「本質的に精製された」集合に関して、約２０％以下、より好ましくは約１５％、１０％、８％、７％以下、最も好ましくは約５％、４％、３％、２％、１％以下または１％未満の、本願明細書において前記用語により規定された多能性細胞またはその子孫でない細胞を含む細胞集合を意味する。一部の実施形態では、本発明は、多能性細胞の増殖した集合が、多能性細胞の実質的に純粋な集合である、多能性細胞の集合の増殖方法を包含する。
【０１１９】
「濃縮すること」または「濃縮された」の用語は、本願明細書において互換的に使用され、１種類の細胞の収率（割合）が、開始時の培養物または調製物におけるその種の細胞の割合を、少なくとも１０％上回って増加していることを意味する。
【０１２０】
「複製」もしくは「自己複製」または「増殖」の用語は、本願明細書において互換的に使用され、長期間及び／または何ヶ月から何年にもわたって、同じ非特定化細胞種に分割することにより、自身を複製する幹細胞の能力を意味するのに使用される。一部の例では、増殖は、１つの細胞の２つの同一の娘細胞への繰り返しの分割による細胞の増殖を意味する。
【０１２１】
本願明細書で使用する場合、「系統」の用語は、共通する祖先を有する細胞または共通する発達運命を有する細胞を説明する。例えば、内胚葉起源のものまたは「内胚葉系統」である細胞について、これは、前記細胞が、内胚葉細胞から得られ、内胚葉系統の制限された経路、例えば、成体型内胚葉細胞を生じ、次に、前記成体型内胚葉細胞が、肝臓細胞、胸腺、膵臓、肺及び消化管に分化し得る、１つ以上の発達系統経路に沿って分化し得ることを意味する。
【０１２２】
本願明細書で使用する場合、「異種」の用語は、異なる種から得られた細胞を意味する。
【０１２３】
本願明細書で使用する場合、「マーカー」は、細胞の特徴及び／または表現型を説明するのに使用される。マーカーは、所望の特徴を含む細胞の選択に使用され得る。マーカーは、具体的な細胞に伴って変化するであろう。特定の細胞種の細胞の形態学的、機能的または生化学的（酵素的）特徴または前記細胞種により発現される分子に関わらず、マーカーは固有である。好ましくは、このようなマーカーは、タンパク質であり、より好ましくは、抗体または当該分野において利用可能な他の結合分子についてのエピトープを有する。ただし、マーカーは、細胞に見出される任意の分子、例えば、制限されず、タンパク質（ペプチド及びポリペプチド）、脂質、多糖類、核酸及びステロイドからなる場合がある。形態学的特徴または特性の例としては、制限されず、形状、サイズ及び核／細胞質比があげられる。機能的特徴または特性の例としては、制限されず、特定の基材への付着能、特定の染料の包含または排出能、特定の条件下での遊走能及び特定の系統に沿った分化能があげられる。マーカーは、当業者に利用可能な任意の方法により検出されてもよい。マーカーは、形態学的特徴が存在しなくてもよいし、または、タンパク質、脂質等が存在しなくてもよい。マーカーは、ポリペプチド及び他の形態学的特徴の有無の固有の特徴のパネルの組合せであり得る。
【０１２４】
「調整する」の用語は、当該分野におけるその使用と矛盾なく使用される、すなわち、所望のプロセス、経路または現象における定性的もしくは定量的変化、変更または修飾を生じさせるか、または、容易にすることを意味する。このような変化は、制限されず、種々の成分の相対強度もしくは活性における増大、減少もしくは変化、または、プロセス、経路もしくは現象の分岐であり得る。「調整物質」は、所望のプロセス、経路または現象における定性的もしくは定量的変化、変更または修飾を生じさせるか、または、容易にする作用剤である。
【０１２５】
本願明細書で使用する場合、「ＤＮＡ」の用語は、デオキシリボ核酸として規定される。
【０１２６】
「ポリヌクレオチド」の用語は、本願明細書において、ヌクレオシドのポリマーを示す「核酸」と互換的に使用される。典型的には、この発明のポリヌクレオチドは、ホスホジエステル結合により連結された、ＤＮＡまたはＲＮＡ（例えば、アデノシン、チミジン、グアノシン、シチジン、ウリジン、デオキシアデノシン、デオキシチミジン、デオキシグアノシン及びデオキシシチジン）において天然に見出されるヌクレオシドから構成される。ただし、前記用語は、天然由来の核酸において見出されるか否かに関わらず、化学的または生物学的に修飾された塩基、修飾骨格等を含むヌクレオシドまたはヌクレオシド類似体を含む分子を包含する。このような分子は、特定の用途に好ましい場合がある。この出願において、ポリヌクレオチドに言及される場合、ＤＮＡ、ＲＮＡの両方並びに一本鎖及び二本鎖状（及び、各一本鎖分子の相補鎖）の両方のいずれかのケースで提供されることが理解される。本願明細書で使用する場合、「ポリヌクレオチド配列」は、ポリヌクレオチド材料自体及び／または特定の核酸を生化学的に特徴付ける配列情報（すなわち、塩基についての略称として使用される文字の連続）を意味し得る。本願明細書において表現されたポリヌクレオチド配列は、特に断らない限り、５’から３’の方向に表現される。
【０１２７】
本願明細書で使用する場合、「ポリペプチド」の用語は、アミノ酸のポリマーを意味する。「タンパク質」及び「ポリペプチド」の用語は、本願明細書において互換的に使用される。ペプチドは、比較的短いポリペプチドであり、典型的には、長さが約２個と６０個の間のアミノ酸である。本願明細書において典型的に使用されるポリペプチドは、タンパク質に最も一般的に見出されるアミノ酸、例えば、２０個のＬ−アミノ酸を含む。ただし、当該分野において公知の他のアミノ酸及び／またはアミノ酸類似体が使用され得る。ポリペプチド中の１つ以上のアミノ酸は、例えば、化学的実体、例えば、炭水化物基、リン酸基、脂肪酸基、コンジュゲート用のリンカーの付加、官能化等により修飾されてもよい。それに共有的または非共有的に会合した非ポリペプチド部分を有するポリペプチドであっても、「ポリペプチド」と考えられる。典型的な修飾としては、グリコシル化及びパルミトイル化があげられる。ポリペプチドは、天然ソースから精製され、組換えＤＮＡ技術により産生され、化学的手段、例えば、従来の固相ペプチド合成等により合成されてもよい。本願明細書で使用する場合、「ポリペプチド配列」または「アミノ酸配列」の用語は、ポリペプチド材料自体及び／またはポリペプチドを生化学的に特徴付ける配列情報（すなわち、アミノ酸名についての略称として使用される文字または３文字コードの連続）を意味し得る。本願明細書において表現されたポリペプチド配列は、特に断らない限り、Ｎ−末端からＣ−末端方向に表現される。
【０１２８】
ポリペプチドへの言及における「変異体」の用語は、例えば、全長ポリペプチドに対して、少なくとも８０％、８５％、９０％、９５％、９８％または９９％同一なポリペプチドであり得る。前記変異体は、全長ポリペプチドのフラグメントであり得る。前記変異体は、天然由来のスプライス変異体であり得る。前記変異体は、前記ポリペプチドのフラグメントに対して、少なくとも８０％、８５％、９０％、９５％、９８％または９９％同一なポリペプチドであり得る。この場合、野生型の全長ポリヌクレオチドまたは所望の活性、例えば、ＳＣ−β細胞またはＳＣ−β細胞が得られるインスリン陽性内分泌細胞もしくはその前駆体の存在を検出する能力を有するそのドメインである限り、前記フラグメントは、少なくとも５０％、６０％、７０％、８０％、８５％、９０％、９５％、９８％または９９％である。一部の実施形態では、前記ドメインは、配列中の任意のアミノ酸位置で開始し、Ｃ−末端に向かって伸びる、長さが少なくとも１００、２００、３００または４００個のアミノ酸である。タンパク質の活性を除去または実質的に低下させる当該分野において公知の変異は、避けるのが好ましい。一部の実施形態では、前記変異体は、全長ポリペプチドのＮ−及び／またはＣ−末端部分を欠いている。例えば、いずれかの末端から１０、２０または５０個までのアミノ酸が欠けている。一部の実施形態では、前記ポリペプチドは、成熟（全長）ポリペプチドの配列を有する。前記成熟ポリペプチドは、１つ以上の部分、例えば、正常な細胞内タンパク質分解処理中（例えば、同時翻訳処理または翻訳後処理中）に除去されるシグナルペプチドを有しているポリペプチドを意味する。一部の実施形態では、前記タンパク質がそれを天然に発現する細胞からそれを精製すること以外で産生される場合、前記タンパク質は、キメラポリペプチドである。前記キメラポリペプチドは、２つ以上の異なる種由来の部分を含むことを意味する。一部の実施形態では、前記タンパク質がそれを天然に発現する細胞からそれを精製すること以外で産生される場合、前記タンパク質は、誘導体である。前記誘導体は、前記タンパク質が、それらの配列がタンパク質の生物学的活性を実質的に低下させない限り、前記タンパク質に関連しない更なる配列を含むことを意味する。
【０１２９】
本願明細書で使用する場合、「機能性フラグメント」の用語は、フラグメントである前記ポリペプチドよりサイズが小さいが、フラグメントである前記ポリペプチドと実質的に一致するアミノ酸配列を有するポリペプチドである。この場合、前記機能性フラグメントのポリペプチド配列は、フラグメントである前記ポリペプチドとしての、少なくとも約５０％または６０％または７０％または８０％または９０％または１００％または１００％より高い、例えば、１．５倍、２倍、３倍、４倍または４倍より高い、有効生物学的作用にある。機能性フラグメントのポリペプチドは、低下した抗原性、（転写因子におけるとしての）増大したＤＮＡ結合性または（ＲＮＡの安定性または分解を調節するのにおけるとしての）変化したＲＮＡ結合性を含み得る、更なる機能を有してもよい。
【０１３０】
「ベクター」の用語は、ＤＮＡ配列が宿主細胞内への導入用に挿入され得る、キャリアＤＮＡ分子を意味する。好ましいベクターは、それらに結合した核酸の自律複製及び／または発現を可能なものである。それらに操作可能に結合した遺伝子の発現を管理可能なベクターは、本願明細書において、「発現ベクター」と呼ばれる。このため、「発現ベクター」は、宿主細胞中において所望の遺伝子の発現に必要とされる必須調節領域を含む専用ベクターである。一部の実施形態では、前記所望の遺伝子は、前記ベクター中の別の配列に操作可能に結合している。ベクターは、ウイルスベクターまたは非ウイルスベクターであり得る。ウイルスベクターが使用されるであろう。前記ウイルスベクターは、複製欠損であることが好ましい。前記複製欠損は、例えば、複製用にコードする全てのウイルス核酸を除去することにより達成され得る。複製欠損ウイルスベクターは、その感染特性も保持し、アデノウイルスベクターを複製するのと類似する方法で細胞に入るであろう。ただし、一旦前記細胞に入ると、複製欠損ウイルスベクターは、再生または増殖しない。ベクターは、リポソーム及びナノ粒子並びにＤＮＡ分子を細胞に輸送する他の手段も包含する。
【０１３１】
「操作可能に結合している」の用語は、コード配列の発現を達成するために、コード配列の発現に必須の調節配列が、前記コード配列に対する適切な位置において、ＤＮＡ分子中に配置されることを意味する。この同じ定義は、発現ベクターにおけるコード配列及び転写制御エレメント（例えば、プロモータ、エンハンサ及び末端エレメント）の配置に適用される場合がある。前記「操作可能に結合している」の用語は、発現されるべきポリヌクレオチド配列の前に、適切な開始シグナル（例えば、ＡＴＧ）を有し、正確な読み枠を維持して、発現制御配列の制御下において前記ポリヌクレオチド配列の発現及び前記ポリヌクレオチド配列によりコードされた所望のポリペプチドの産生を可能にすることを含む。
【０１３２】
「ウイルスベクター」の用語は、細胞内への核酸構築物のキャリアとしての、ウイルスベクターまたはウイルス関連ベクターの使用を意味する。構築物は、非複製欠損のウイルスゲノム様アデノウイルス、アデノ関連ウイルス（ＡＡＶ）または単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）等、例えば、細胞への感染または形質導入用のレトロウイルス及びレンチウイルスベクターに組み込まれ、パッケージされ得る。前記ベクターは、細胞ゲノム内に組み込まれてもよいし、または、組み込まれなくてもよい。前記構築物は、必要に応じて、トランスフェクション用のウイルス配列を含んでもよい。あるいは、前記構築物は、エピソーム複製可能なベクター、例えば、ＥＰＶ及びＥＢＶベクター内に組み込まれてもよい。
【０１３３】
「調節配列」及び「プロモータ」の用語は、本願明細書において互換的に使用され、それらに操作可能に結合しているタンパク質コード配列の転写を誘導または制御する核酸配列、例えば、開始シグナル、エンハンサ及びプロモータを意味する。一部の例では、組換え遺伝子の転写は、発現が意図されている細胞種における前記組換え遺伝子の発現を制御する、プロモータ配列（または、他の転写調節配列）の制御下にある。前記組換え遺伝子は、天然由来の形態のタンパク質の転写を制御する、それらの配列と同じかまたは異なる転写調節配列の制御下にあり得る。一部の例では、前記プロモータ配列は、細胞の合成機構により認識され、または、合成機構に導入され、特定の遺伝子の転写を開始するのに必要とされる。
【０１３４】
本願明細書で使用する場合、「転写因子」の用語は、ＤＮＡ結合ドメインを使用して、ＤＮＡの特定部位に結合し、ＤＮＡからＲＮＡへの遺伝情報の移送（または転写）を制御する系の一部であるタンパク質を意味する。本願明細書で使用する場合、「増殖すること」及び「増殖」は、細胞分割による集合における細胞数の増加（増殖）を意味する。細胞増殖は、一般的には、環境、例えば、成長因子及び他の分裂促進物質への応答における、複数のシグナル形質移入経路の協調的な活性化を生じさせると理解される。細胞増殖は、細胞増殖を阻止するか、または、負に影響を及ぼす、細胞内または細胞外のシグナル及び機構の作用からの開放によっても促進される場合がある。
【０１３５】
「選択マーカー」の用語は、発現された場合、選択性の表現型、例えば、細胞傷害剤または細胞増殖抑制剤に対する耐性（例えば、抗生物質耐性）、栄養原栄養性または、特定のタンパク質を発現している細胞と発現していない細胞とを区別する基礎として使用され得る特定タンパク質の発現を細胞に付与する、遺伝子、ＲＮＡまたはタンパク質を意味する。発現が容易に検出され得るタンパク質、例えば、蛍光もしくは発光タンパク質または基質と作用して、発色、蛍光もしくは発光物質を産生する酵素（「検出可能なマーカー」）が、選択マーカーの部分集合を構成する。多能性細胞に選択的または排他的に通常発現される遺伝子に本来備わっている発現制御エレメントに結合している選択マーカーの存在は、多能性状態に再プログラムされている体細胞を特定及び選択するのを可能にする。各種の選択マーカー遺伝子、例えば、ネオマイシン耐性遺伝子（ｎｅｏ）、ピューロマイシン耐性遺伝子（ｐｕｒｏ）、グアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（ｇｐｔ）、ジヒドロ葉酸還元酵素（ＤＨＦＲ）、アデノシンジアミナーゼ（ａｄａ）、ピューロマイシン−Ｎ−アセチルトランスフェラーゼ（ＰＡＣ）、ヒグロマイシン耐性遺伝子（ｈｙｇ）、多剤耐性遺伝子（ｍｄｒ）、チミジンキナーゼ（ＴＫ）、ヒポキサンチン−グアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（ＨＰＲＴ）及びｈｉｓＤ遺伝子が使用され得る。検出可能なマーカーとしては、緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）、ブルー、サファイア、イエロー、レッド、オレンジ及びシアン蛍光タンパク質並びにこれらのいずれかの変異体があげられる。発光タンパク質、例えば、ルシフェラーゼ（例えば、ホタルまたはウミシイタケのルシフェラーゼ）も有用である。当業者に証明されるであろうように、本願明細書で使用する場合、前記「選択マーカー」の用語は、遺伝子または前記遺伝子の発現産物、例えば、コードされたタンパク質を意味し得る。
【０１３６】
一部の実施形態では、前記選択マーカーは、それを発現していないか、または、著しく低いレベルでそれを発現している細胞に対して、それを発現している細胞において、増殖及び／または生存の優位性を付与する。このような増殖及び／または生存の優位性は、前記細胞が特定の条件、すなわち、「選択条件」下に維持される場合に、典型的に生じる。効果的な選択を確保するために、細胞集合は、前記マーカーを発現していない細胞が増殖しない、及び／もしくは、生存しない、並びに、前記集合から除去される、または、その数が前記集合の非常に少ない割合のみに減少するような、条件下及び十分な期間維持され得る。前記マーカーを発現しない細胞をほとんどまたは完全に除去するための選択条件下において細胞集合を維持することにより、増殖及び／または生存の優位性を付与するマーカーを発現している細胞の選択方法は、本願明細書において、「ポジティブ選択」と呼ばれる。前記マーカーは、「ポジティブ選択に有用」であると言われる。ネガティブ選択及びネガティブ選択に有用なマーカーも、本願明細書に記載された特定の方法の対象である。このようなマーカーの発現は、前記マーカーを発現していないか、または、著しく低いレベルでそれを発現している（または、考えられる別の方法、前記マーカーを発現していない細胞は、前記マーカーを発現している細胞に対して、増殖及び／または生存の優位性を有する。）細胞に対して、前記マーカーを発現している細胞において、増殖及び／または生存の不利益を付与する。したがって、前記マーカーを発現している細胞は、十分な期間選択条件に維持された場合、細胞集合からほとんどまたは完全に除去される。
【０１３７】
本願明細書で使用する場合、「レポータ遺伝子」は、細胞内に遺伝的に導入され、前記幹細胞の表現型に追加する任意の遺伝子を包含する。この発明に開示されたレポータ遺伝子は、蛍光、発光、酵素的及び耐性遺伝子を包含し、当業者により容易に検出され得る他の遺伝子も包含することを意図する。本発明の一部の実施形態では、レポータ遺伝子は、特定の幹細胞、心血管幹細胞及びその分化した子孫の特定用マーカーとして使用される。レポータ遺伝子は、前記レポータ遺伝子の発現を測定することによりモニターされる１つ以上の条件に応じた方法で、その発現を調節する配列に遺伝的に操作可能に結合している。一部の場合には、前記レポータ遺伝子の発現は、生きた細胞において測定されてもよい。生きた細胞でのレポータ遺伝子アッセイが使用される場合、レポータ遺伝子発現は、複数の時点、例えば、２、３、４、５、６、８または１０回以上の時点でモニターされ得る。一部の場合には、生きた細胞でのレポータアッセイが使用される場合、レポータ遺伝子の発現は、少なくとも約１０分から約２４時間、例えば、２０分、１時間、２時間、３時間、４時間、５時間、６時間、７時間、８時間、９時間、１０時間、１２時間、１８時間の頻度、または、約１０分から約２４時間の間の任意の整数からの別の頻度でモニターされる。
【０１３８】
「対象」及び「個体」の用語は、本願明細書において、互換的に使用され、細胞が取得され得る、及び／または、本願明細書に記載された細胞による処置、例えば、予防的処置が提供される、動物、例えば、ヒトを意味する。特定の動物、例えば、ヒトの対象に特異的なそれらの感染、症状または疾患状態の処置について、前記対象の用語は、その特定の動物を意味する。本願明細書において互換的に使用される「非ヒト動物」及び「非ヒト哺乳類」としては、哺乳類、例えば、ラット、マウス、ウサギ、ヒツジ、ネコ、イヌ、ウシ、ブタ及び非ヒト霊長類があげられる。前記「対象」の用語は、任意の脊椎動物、例えば、制限されず、哺乳類、爬虫類、両生類及び魚類も包含する。ただし、有利に、前記対象は、哺乳類、例えば、ヒトまたは他の哺乳類、例えば、飼育哺乳類、例えば、イヌ、ネコ、ウマ等または生産哺乳類、例えば、ウシ、ヒツジ、ブタ等である。
【０１３９】
「糖尿病」及び「糖尿病」の用語は、本願明細書において、互換的に使用される。世界保健機関は、糖尿病について、絶食時の血漿グルコース濃度７．０ｍｍｏｌ／ｌ（１２６ｍｇ／ｄｌ）（全血  ６．１ｍｍｏｌ／ｌまたは１１０ｍｇ／ｄｌ）以上、または、２時間グルコースレベル１１．１ｍｍｏｌ／Ｌ以上（２００ｍｇ／ｄＬ以上）の診断値を定義している。糖尿病を示唆するまたは糖尿病の高いリスクを示す他の値としては、上昇した動脈圧１４０／９０ｍｍＨｇ以上；上昇した血漿トリグリセリド（１．７ｍｍｏｌ／Ｌ；１５０ｍｇ／ｄＬ）及び／もしくは低ＨＤＬ−コレステロール（男性について０．９ｍｍｏｌ／Ｌ、３５ｍｇ／ｄｌ未満；女性について１．０ｍｍｏｌ／Ｌ、３９ｍｇ／ｄＬ未満）；中心性肥満（男性：腹囲尻囲比  ０．９０超；女性：腹囲尻囲比  ０．８５超）並びに／または肥満度指数  ３０ｋｇ／ｍ２超；微量アルブミン尿（この場合、尿アルブミン排出速度  ２０μｇ／分以上、または、アルブミン：クレアチニン比  ３０ｍｇ／ｇ以上）があげられる。前記糖尿病の用語は、全ての型の糖尿病、例えば、Ｉ型、ＩＩ型及び１．５型を包含する。
【０１４０】
単離された細胞に適用される場合、「処置する」、「処置すること」、「処置」等の用語は、任意の種類のプロセスもしくは条件に前記細胞を供すること、または、任意の種類の層さもしくは手法を前記細胞に行うことを含む。対象に適用される場合、前記用語は、個体に対する医療的または外科的手当、ケアまたは管理を提供することを意味する。前記個体は、通常、病気であるか、もしくは、怪我をしているか、または、集団の平均的なメンバーに対して病気になるリスクが高く、このような手当、ケアまたは管理を必要とする。
【０１４１】
本願明細書で使用する場合、前記「処置すること」及び「処置」の用語は、対象が疾患の少なくとも１つの兆候の減少または前記疾患の改善、例えば、有益または所望の臨床的結果を得られるように、有効量の組成物を対象に投与することを意味する。この発明の目的で、有益または所望の臨床的結果としては、制限されず、検出可能であるか否かに関わらず、１つ以上の兆候の改善、疾患の程度の減弱、疾患の安定した（すなわち、悪化しない）状態、疾患進行の遅延もしくは鈍化、前記疾患状態の改善もしくは緩和並びに軽減（部分的または総合的を問わず）があげられる。処置することは、処置を受けない場合に予測される生存と比較して、延長した生存を意味し得る。このため、処置が、前記疾患症状を改善し得るが、前記疾患について完全に治癒しない場合があることを、当業者は理解する。本願明細書で使用する場合、前記「処置」の用語は、予防を含む。あるいは、処置は、前記疾患の進行が低下される、または、停止する場合、「有効」である。「処置」は、処置を受けない場合に予測される生存と比較して、延長した生存も意味し得る。処置を必要とする者としては、心臓症状を有すると既に診断された者、並びに、遺伝的感受性または他の要因、例えば、体重、食事及び健康によりおそらく心臓症状に発展する可能性がある者があげられる。
【０１４２】
本願明細書で使用する場合、「投与すること」、「導入すること」及び「移植すること」の用語は、所望の部位に導入された細胞の少なくとも部分的な局在もたらす方法または経路により、本発明の細胞（例えば、ＳＣ−β細胞）の対象への配置について、互換的に使用される。前記細胞、例えば、ＳＣ−β細胞（例えば、膵臓β細胞または膵臓β様細胞）は、膵臓に直接埋め込まれることができ、あるいは、前記対象における所望の位置への送達をもたらす任意の適切な経路により投与されることができる。この場合、少なくとも一部の埋め込まれた細胞または前記細胞の成分は、生きたままである。対象への投与後の前記細胞の生存期間は、数時間、例えば、２４時間の短さから数日または数年の長さであり得る。一部の例では、前記細胞は、非膵臓部位、例えば、肝臓に投与されることもでき、または、例えば、埋め込まれた細胞を埋込み位置に維持し、前記埋め込まれた細胞の移動を防止するカプセル（例えば、マイクロカプセル）において皮下にも投与されることができる。
【０１４３】
本願明細書で使用する場合、「非経口投与」及び「非経口的に投与された」の表現は、経腸及び局所投与以外の、通常注射による投与方式を意味し、制限されず、静脈内、筋肉内、動脈内、くも膜下腔内、心室内、嚢内、眼窩内、心臓内、皮内、腹腔内、経気管、皮下、表皮下、関節内、被膜下、くも膜下、髄腔内、脊椎内、胸骨内の注射及び注入があげられる。本願明細書で使用する場合、「全身性投与」、「全身に投与された」、「末梢投与」及び「末梢投与された」の表現は、心血管幹細胞及び／もしくはその子孫並びに／または化合物及び／もしくは他の材料の、中枢神経系内に直接以外の投与を意味する。したがって、それは、動物の臓器に入るため、代謝等のプロセスの対象であり、例えば、皮下投与である。
【０１４４】
「組織」の用語は、特定の専門の機能を共に行う、特定化した細胞のグループまたは層を意味する。「組織特異的」の用語は、特定の組織に由来する細胞ソースを意味する。
【０１４５】
「減少する」、「低下した」、「低下」、「減少」または「阻害する」の用語は全て、本願明細書において、統計学的に有意な量での減少を意味するのに一般的に使用される。ただし、疑義が生じるのを避けるために、「低下した」、「低下」、「減少する」または「阻害する」は、参照レベルと比較して少なくとも１０％までの減少、例えば、少なくとも約２０％または少なくとも約３０％または少なくとも約４０％または少なくとも約５０％または少なくとも６０％または少なくとも約７０％または少なくとも約８０％または少なくとも約９０％までの減少、または、１００％以下及び１００％を含む減少（すなわち、参照サンプルと比較した不存在レベル）、または、参照レベルと比較して１０−１００％の間の任意の減少を意味する。
【０１４６】
「増大した」、「増大する」もしくは「向上する」または「活性化する」の用語は全て、本願明細書において、統計学的に有意な量での増大を意味するのに一般的に使用される。何等かの疑義が生じるのを避けるために、前記「増大した」、「増大する」もしくは「向上する」または「活性化する」の用語は、参照レベルと比較して少なくとも１０％の増大、例えば、少なくとも約２０％または少なくとも約３０％または少なくとも約４０％または少なくとも約５０％または少なくとも約６０％または少なくとも約７０％または少なくとも約８０％または少なくとも約９０％の増大、または、１００％以下及び１００％を含む増大、または、参照レベルと比較して１０−１００％の間の任意の増大、または、少なくとも約２倍または少なくとも約３倍または少なくとも約４倍または少なくとも約５倍または少なくとも約１０倍の増大、または、参照レベルと比較して２倍と１０倍との間の任意の増大を意味する。
【０１４７】
「統計学的に有意」または「有意に」の用語は、統計学的有意性を意味し、一般的には、正常を下回るまたはより低い濃度の前記マーカーの２つの標準偏差（２ＳＤ）を意味する。前記用語は、差異が存在することの統計的証拠を意味する。前記用語は、帰無仮説が実際に真である場合、帰無仮説を拒絶する決定を行う確率として定義される。前記決定は、多くの場合、ｐ値を使用してなされる。
【０１４８】
本願明細書で使用する場合、「含むこと」または「含む」の用語は、本発明に必須の組成物、方法及びその各成分への言及に使用されるが、必須であるかどうかに関わらず、特定されていない構成要素の内包に開かれている。
【０１４９】
本願明細書で使用する場合、「本質的になる」の用語は、所定の実施形態に必要とされるそれらの構成要素を意味する。前記用語は、本発明のその実施形態の基本的及び新規または機能的な特徴に実質的に影響を及ぼさない、更なる構成要素の存在を容認する。
【０１５０】
「からなる」の用語は、本願明細書に記載された組成物、方法及びその各成分を意味し、実施形態のその説明に列挙されていない任意の構成要素に対して排他的である。
【０１５１】
この明細書及び添付の特許請求の範囲で使用する場合、単数形の「ａ」、「ａｎ」及び「ｔｈｅ」は、他の方法で明確に規定しない限り、複数の指示対象を含む。このため、例えば、「方法（ｔｈｅ  ｍｅｔｈｏｄ）」への言及は、１つ以上の方法及び／または本願明細書に記載された種類の工程を含み、このことは、この開示等を読むことに基づいて、当業者に明らかとなるであろう。
【０１５２】
幹細胞
【０１５３】
幹細胞は、有糸細胞分裂により自身を再生する能力を保持し、種々の範囲の特定化した細胞種に分化し得る細胞である。２つの広い種類の哺乳類幹細胞は、胚盤胞に見出される胚性幹（ＥＳ）細胞及び成体組織に見出される成体幹細胞である。発生中の胚において、幹細胞は、全ての特定化した胚性組織に分化し得る。成体の生物では、幹細胞及び始原細胞は、身体の修復系として役割を果たし、特定化した細胞を補充し、再生臓器、例えば、血液、皮膚または消化管組織の正常なターンオーバーを維持する。多能性幹細胞は、３つの胚葉のいずれかから得られた細胞に分化し得る。
【０１５４】
特定の実施形態が、ＳＣ−β細胞（例えば、成熟膵臓β細胞またはβ様細胞）またはその前駆体を産生するための幹細胞の使用に言及して、以下に記載されているが、生殖系細胞が、本願明細書に記載された例示となるプロトコルに類似するプロトコルを使用して、少なくとも１つのＳＣ−β細胞を提供するために、前記幹細胞に代えて、または、前記幹細胞と共に使用されてもよい。適切な生殖系細胞は、例えば、最後の月経期後の約８−１１週で採取されたヒト胎児材料に存在する原生殖系細胞から調製され得る。例示となる生殖系細胞の調製法は、例えば、Ｓｈａｍｂｌｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ９５：１３７２６，  １９９８及び米国特許第６，０９０，６２２号明細書に記載されている。
【０１５５】
ＥＳ細胞、例えば、事実上無限の複製能及びほとんどの細胞種に分化する可能性を有するヒト胚性幹細胞（ｈＥＳＣ）またはマウス胚性幹細胞（ｍＥＳＣ）は、原理的には、臨床治療用の分化した細胞を生成する、無限の開始材料を提供する（ｈｔｔｐ：／／ｓｔｅｍｃｅｌｌｓ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｉｎｆｏ／ｓｃｉｒｅｐｏｒｔ／２００６ｒｅｐｏｒｔ．ｈｔｍ、２００６）。ＥＳ細胞の１つの可能性のある用途は、まず、例えば、ｈＥＳＣから内胚葉、例えば、成体型内胚葉を産生し、ついでさらに、前記成体型内胚葉を少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体に分化させ、ついでさらに、ついでさらに、前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体をＳＣ−β細胞に分化させることにより、Ｉ型糖尿病の細胞置換療法用の新たな膵臓β細胞を生成することである。
【０１５６】
ｈＥＳＣは、例えば、Ｃｏｗａｎ  ｅｔ  ａｌ．（Ｎ  Ｅｎｇｌ．  Ｊ．  Ｍｅｄ．  ３５０：１３５３，  ２００４）及びＴｈｏｍｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．（Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２８２：１１４５，  １９９８）に記載され、他の霊長類由来の胚性幹細胞である、アカゲザルの幹細胞（Ｔｈｏｍｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ９２：７８４４，  １９９５）、マーモセットの幹細胞（Ｔｈｏｍｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｉｏｌ．  Ｒｅｐｒｏｄ．  ５５：２５４，  １９９６）及びヒト胚性生殖系（ｈＥＧ）細胞（Ｓｈａｍｂｌｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ９５：１３７２６，  １９９８）も、本願明細書に記載された方法に使用され得る。ｍＥＳＣは、例えば、Ｔｒｅｍｍｌ  ｅｔ  ａｌ．（Ｃｕｒｒ  Ｐｒｏｔｏｃ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．  Ｃｈａｐｔｅｒ  １：Ｕｎｉｔ  １Ｃ．４，  ２００８）に記載されている。前記幹細胞は、例えば、単分化能、全能性、多分化能、多能性であり得る。一部の例では、少なくとも１つの胚葉または３つ全ての胚葉から得られる子孫を産生可能な霊長類起源の任意の細胞が、本願明細書に開示された方法に使用され得る。
【０１５７】
特定の例では、ＥＳ細胞は、例えば、Ｃｏｗａｎ  ｅｔ  ａｌ．（Ｎ  Ｅｎｇｌ．  Ｊ．  Ｍｅｄ．  ３５０：１３５３，  ２００４）及び米国特許第５，８４３，７８０号明細書並びに、Ｔｈｏｍｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ９２：７８４４，  １９９５に記載されているように単離され得る。例えば、ｈＥＳＣ細胞は、Ｔｈｏｍｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．（米国特許第６，２００，８０６号明細書；Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２８２：１１４５，  １９９８；Ｃｕｒｒ．  Ｔｏｐ．  Ｄｅｖ．  Ｂｉｏｌ．  ３８：１３３  ｆｆ．，  １９９８）及び、Ｒｅｕｂｉｎｏｆｆ  ｅｔ  ａｌ，  Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈ．  １８：３９９，  ２０００に記載された技術を使用して、ヒト胚盤胞細胞から調製され得る。ｈＥＳＣに同等の細胞種としては、その多能性誘導体、例えば、ＷＯ０１／５１６１０（Ｂｒｅｓａｇｅｎ）に概説された原外胚葉様（ＥＰＬ）細胞等があげられる。ｈＥＳＣは、ヒト着床前胚からも得ることができる。あるいは、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ受精（ＩＶＦ）胚が使用されることができ、または、１つの細胞のヒト胚は、胚盤胞段階に増殖されることができる（Ｂｏｎｇｓｏ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｈｕｍ  Ｒｅｐｒｏｄ  ４：７０６，  １９８９）。胚は、Ｇ１．２及びＧ２．２培地中で前記胚盤胞段階に培養される（Ｇａｒｄｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｆｅｒｔｉｌ．  Ｓｔｅｒｉｌ．  ６９：８４，  １９９８）。透明帯は、プロナーゼ（Ｓｉｇｍａ）に対する簡易な暴露により、発生した胚盤胞から除去される。内部細胞集団は、免疫手術により単離され得る。前記免疫手術では、胚盤胞は、１：５０希釈のウサギ抗−ヒト脾臓細胞抗血清に３０分間曝され、ついで、ＤＭＥＭ中で３回、５分間洗浄され、１：５希釈のモルモット補体（Ｇｉｂｃｏ）に、３分間曝される（Ｓｏｌｔｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ７２：５０９９，  １９７５）。さらに、ＤＭＥＭ中で２回洗浄した後、溶解した栄養外胚葉細胞は、穏やかなピペッティングによりインタクトな内部細胞集団（ＩＣＭ）から除去される。前記ＩＣＭは、ｍＥＦフィーダ層上に播種される。９日から１５日後、内部細胞集団由来の増殖は、１ｍＭ  ＥＤＴＡを含む、カルシウム及びマグネシウムを含まないリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）に対する暴露により、ディスパーゼまたはトリプシンに対する暴露により、または、マイクロピペットによる機械的分離のいずれかにより、塊に分離され、ついで、新たな培地中でｍＥＦ上に再度播種され得る。未分化の形態を有する増殖コロニーは、マイクロピペットにより個々に選択され、機械的に塊に分離され、再度播種され得る。ＥＳ様形態は、明らかに高い核／細胞質比及び顕著な核を有する、小型のコロニーとして特徴付けられる。ついで、得られたｈＥＳＣは、１−２週間毎に、例えば、簡易なトリプシン化、ダルベッコＰＢＳ（２ｍＭ  ＥＤＴＡ含有）への暴露、ＩＶ型コラゲナーゼ（約２００Ｕ／ｍＬ；Ｇｉｂｃｏ）への暴露により、または、マイクロピペットによる個々のコロニーの選択により、ルーチンに分割される。一部の例では、約５０個から１００個の細胞の塊サイズが最適である。ｍＥＳＣ細胞は、例えば、Ｃ��ｎｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．（Ｃｕｒｒ．  Ｐｒｏｔ．  ｉｎ  Ｍｏｌ．  Ｂｉｏｌ．  Ｕｎｉｔ  ２３．４，  ２００３）に記載された技術を使用して調製され得る。
【０１５８】
胚性幹細胞は、霊長類種のメンバーの胚盤胞から単離され得る（米国特許第５，８４３，７８０号明細書；Ｔｈｏｍｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ９２：７８４４，  １９９５）。ヒト胚性幹（ｈＥＳ）細胞は、Ｔｈｏｍｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ（米国特許第６，２００，８０６号明細書；Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２８２：１１４５，  １９９８；Ｃｕｒｒ．  Ｔｏｐ．  Ｄｅｖ．  Ｂｉｏｌ．  ３８：１３３  ｆｆ．，  １９９８）及びＲｅｕｂｉｎｏｆｆ  ｅｔ  ａｌ，  Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈ．  １８：３９９，  ２０００に記載された技術を使用して、ヒト胚盤胞細胞から調製され得る。ｈＥＳ細胞に同等の細胞種としては、その多能性誘導体、例えば、ＷＯ０１／５１６１０（Ｂｒｅｓａｇｅｎ）に概説された原外胚葉様（ＥＰＬ）細胞等があげられる。
【０１５９】
あるいは、一部の実施形態では、ｈＥＳ細胞は、ヒト着床前胚から得ることができる。あるいは、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ受精（ＩＶＦ）胚が使用されることができ、または、１つの細胞のヒト胚は、胚盤胞段階に増殖されることができる（Ｂｏｎｇｓｏ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｈｕｍ  Ｒｅｐｒｏｄ  ４：７０６，  １９８９）。胚は、Ｇ１．２及びＧ２．２培地中で前記胚盤胞段階に培養される（Ｇａｒｄｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｆｅｒｔｉｌ．  Ｓｔｅｒｉｌ．  ６９：８４，  １９９８）。透明帯は、プロナーゼ（Ｓｉｇｍａ）に対する簡易な暴露により、発生した胚盤胞から除去される。内部細胞集団は、免疫手術により単離される。前記免疫手術では、胚盤胞は、１：５０希釈のウサギ抗−ヒト脾臓細胞抗血清に３０分間曝され、ついで、ＤＭＥＭ中で３回、５分間洗浄され、１：５希釈のモルモット補体（Ｇｉｂｃｏ）に、３分間曝される（Ｓｏｌｔｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ７２：５０９９，  １９７５）。さらに、ＤＭＥＭ中で２回洗浄した後、溶解した栄養外胚葉細胞は、穏やかなピペッティングによりインタクトな内部細胞集団（ＩＣＭ）から除去される。前記ＩＣＭは、ｍＥＦフィーダ層上に播種される。
【０１６０】
９日から１５日後、内部細胞集団由来の増殖は、１ｍＭ  ＥＤＴＡを含む、カルシウム及びマグネシウムを含まないリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）に対する暴露により、ディスパーゼまたはトリプシンに対する暴露により、または、マイクロピペットによる機械的分離のいずれかにより、塊に分離され、ついで、新たな培地中でｍＥＦ上に再度播種される。未分化の形態を有する増殖コロニーは、マイクロピペットにより個々に選択され、機械的に塊に分離され、再度播種される。ＥＳ様形態は、明らかに高い核／細胞比及び顕著な核を有する、小型のコロニーとして特徴付けられる。ついで、得られたＥＳ細胞は、１−２週間毎に、例えば、簡易なトリプシン化、ダルベッコＰＢＳ（２ｍＭ  ＥＤＴＡ含有）への暴露、ＩＶ型コラゲナーゼ（約２００Ｕ／ｍＬ；Ｇｉｂｃｏ）への暴露により、または、マイクロピペットによる個々のコロニーの選択により、ルーチンに分割され得る。約５０個から１００個の細胞の塊サイズが最適である。
【０１６１】
一部の実施形態では、ヒト胚性生殖系（ｈＥＧ）細胞は、本願明細書に開示された方法に使用されて、原内胚葉細胞に分化させ得る多能性幹細胞である。ｈＥＧ細胞は、最後の月経期後の約８−１１週で採取されたヒト胎児材料に存在する原生殖系細胞から調製して使用され得る。適切な調製法は、Ｓｈａｍｂｌｏｔｔ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ９５：１３７２６，  １９９８及び米国特許第６，０９０，６２２号明細書に記載されている。同文献は、参照によりその全体が本願明細書により組み込まれる。
【０１６２】
簡潔に、生殖隆起を処理して、脱凝集した細胞を形成する。ＥＧ増殖培地は、ＤＭＥＭであり、ＤＭＥＭは、４５００ｍｇ／Ｌ  Ｄ−グルコース、２２００ｍｇ／Ｌ  ｍＭ  ＮａＨＣＯ３；１５％  ＥＳ級ウシ胎児血清（ＢＲＬ）；２ｍＭ  グルタミン（ＢＲＬ）；１ｍＭ  ピルビン酸ナトリウム（ＢＲＬ）；１０００−２０００Ｕ／ｍＬ  ヒト組換え白血病抑制因子（ＬＩＦ、Ｇｅｎｚｙｍｅ）；１−２ｎｇ／ｍＬ  ヒト組換えｂＦＧＦ（Ｇｅｎｚｙｍｅ）；及び、１０μＭ  フォースコリン（１０％  ＤＭＳＯ中）を含む。ＬＩＦ、ｂＦＧＦまたはフォースコリンを含まない改良ＥＧ増殖培地中で３日間培養し、５０００ラッドのγ−照射により不活性化した、フィーダ細胞（例えば、ＳＴＯ細胞、ＡＴＣＣ  Ｎｏ．ＣＲＬ１５０３）の部分コンフルエント層を含む９６ウェル組織培養プレートを準備する。約０．２ｍＬの原生殖系細胞（ＰＧＣ）懸濁液を、各ウェルに添加する。最初の継代を、ＥＧ増殖培地中で７−１０日後に行い、各ウェルを、照射されたＳＴＯマウス繊維芽細胞で予め準備した２４ウェル培養皿の１つのウェルに移す。前記細胞を、ＥＧ細胞と一致する細胞形態が観察されるまで、典型的には、７−３０日または１−４回の継代まで、毎日培地を交換して培養する。
【０１６３】
特定の例では、前記幹細胞は、本願明細書に記載された方法に基づいて、少なくとも１つのβ細胞成熟因子に曝される前は、未分化であり得る（例えば、特定の系統にゆだねられていない細胞）。一方、他の例では、本願明細書に記載された少なくとも１つのβ細胞成熟因子への暴露前に、前記幹細胞を１つ以上の中間細胞種に分化させるのが望ましい場合がある。例えば、前記幹細胞は、それらを胚または成体起源の分化した細胞と区別するのに使用され得る、未分化細胞の形態学的、生物学的または物理的特徴を示す場合がある。一部の例では、未分化細胞は、高い核／細胞質比及び顕著な核を有する細胞のコロニーにおける、二次元の顕微鏡視野において明らかである場合がある。前記幹細胞はそれ自体でもよく（例えば、任意の未分化細胞が実質的に存在しない）、または、分化した細胞の存在下で使用されてもよい。特定の例では、前記幹細胞は、前記幹細胞が増殖及び場合により分化するように、適切な栄養及び場合により他の細胞の存在下で培養されてもよい。例えば、胚性繊維芽細胞または繊維芽細胞様細胞が、前記幹細胞の増殖を支援するために、前記培養中に存在してもよい。前記繊維芽細胞は、幹細胞増殖の１つの段階中に存在してもよいが、全ての段階に必要なわけではない。例えば、前記繊維芽細胞は、初期の培養段階で幹細胞培養に添加され、１つ以上のその後の培養段階では、前記幹細胞に添加されなくてもよい。
【０１６４】
本発明の全ての態様に使用される幹細胞は、任意の種類の組織（例えば、胚性組織、例えば、胎児もしくは前胎児組織または成体組織）から得られた任意の細胞であり得る。この場合、幹細胞は、種々の細胞種の子孫、例えば、３つの胚葉（内胚葉、中胚葉及び外胚葉）の少なくとも１つの全ての誘導体を産生する適切な条件下において可能となる特徴を有する。これらの細胞種は、確立された細胞株の形態で提供されてもよいし、または、それらは、初代胚性組織から直接得てもよく、分化に直ちに使用されてもよい。ＮＩＨのヒト胚性幹細胞レジストリに列記された細胞、例えば、ｈＥＳＢＧＮ−０１、ｈＥＳＢＧＮ−０２、ｈＥＳＢＧＮ−０３、ｈＥＳＢＧＮ−０４（ＢｒｅｓａＧｅｎ，  Ｉｎｃ．）；ＨＥＳ−１、ＨＥＳ−２、ＨＥＳ−３、ＨＥＳ−４、ＨＥＳ−５、ＨＥＳ−６（ＥＳ  Ｃｅｌｌ  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ）；Ｍｉｚ−ｈＥＳ１（ＭｉｚＭｅｄｉ  Ｈｏｓｐｉｔａｌ−Ｓｅｏｕｌ  Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ）；ＨＳＦ−１、ＨＳＦ−６（Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  ｏｆ  Ｃａｌｉｆｏｒｎｉａ  ａｔ  Ｓａｎ  Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ）；及びＨ１、Ｈ７、Ｈ９、Ｈ１３、Ｈ１４（Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ  Ａｌｕｍｎｉ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ（ＷｉＣｅｌｌ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ））が含まれる。一部の実施形態では、成熟インスリン陽性細胞への化学的に誘導された分化に使用されるヒト幹細胞または多能性幹細胞のソースは、ヒト胚を破壊することを含まなかった。
【０１６５】
別の実施形態では、前記幹細胞は、組織、例えば、固体組織から単離され得る。一部の実施形態では、前記組織は、皮膚、脂肪組織（例えば、脂肪組織）、筋肉組織、心臓または心臓組織である。他の実施形態では、前記組織は、例えば、制限されず、臍帯血、胎盤、骨髄または軟骨である。
【０１６６】
所望の幹細胞としては、Ｔｈｏｍｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．（１９９８）Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２８２：１１４５に記載されたヒト胚性幹（ｈＥＳ）細胞；他の霊長類由来の胚性幹細胞、例えば、アカゲザルの幹細胞（Ｔｈｏｍｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．（１９９５）Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ９２：７８４４）、マーモセットの幹細胞（Ｔｈｏｍｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．（１９９６）Ｂｉｏｌ．  Ｒｅｐｒｏｄ．  ５５：２５４）；及びヒト胚性生殖系（ｈＥＧ）細胞（Ｓｈａｍｂｌｏｆｔ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ９５：１３７２６，  １９９８）により例示された、種々の種類の胚性細胞もあげられる。系統関連幹細胞、例えば、中胚葉幹細胞及び他の初期心原性細胞も対象である（Ｒｅｙｅｓ  ｅｔ  ａｌ．（２００１）Ｂｌｏｏｄ  ９８：２６１５−２６２５；Ｅｉｓｅｎｂｅｒｇ  ＆  Ｂａｄｅｒ（１９９６）Ｃｉｒｃ  Ｒｅｓ．  ７８（２）：２０５−１６等を参照のこと。）。前記幹細胞は、任意の哺乳類種、例えば、ヒト、ウマ、ウシ、ブタ、イヌ、ネコ、げっ歯類、例えば、マウス、ラット、ハムスター、霊長類等から得られてもよい。一部の実施形態では、ヒト胚は、本願明細書に開示された方法及び組成物に使用される多能性細胞のソースのために破壊されなかった。
【０１６７】
ＥＳ細胞は、それらが特定の分化系統にゆだねられていない時点では、未分化であると考えられる。このような細胞は、それらを胚または成体起源の分化した細胞から区別する形態学的特徴を提示する。未分化ＥＳ細胞は、当業者に容易に認識され、典型的には、明らかに高い核／細胞質比及び顕著な核を有する細胞コロニーにおける、２次元の顕微鏡視野において明らかである。未分化ＥＳ細胞は、未分化細胞の存在を検出するマーカーとして使用され得る遺伝子を発現している。そのポリペプチド産物は、ネガティブ選択用のマーカーとして使用され得る。例えば、米国特許出願公開第２００３／０２２４４１１号明細書；Ｂｈａｔｔａｃｈａｒｙａ（２００４）Ｂｌｏｏｄ  １０３（８）：２９５６−６４；及び上記Ｔｈｏｍｓｏｎ（１９９８）を参照のこと。それぞれは、参照により本願明細書に組み込まれる。ヒトＥＳ細胞株は、未分化の非ヒト霊長類ＥＳ細胞及びステージ特異的胚性抗原（ＳＳＥＡ）−３、ＳＳＥＡ−４、ＴＲＡ−１−６０、ＴＲＡ−１−８１及びアルカリホスファターゼを含むヒトＥＣ細胞を特徴付ける、細胞表面マーカーを発現している。ｇｌｏｂｏシリーズ糖脂質ＧＬ７は、ＳＳＥＡ−４エピトープを有し、ｇｌｏｂｏシリーズ糖脂質ＧｂＳにシアル酸を添加することにより形成される。前記ｇｌｏｂｏシリーズ糖脂質ＧｂＳは、ＳＳＥＡ−３エピトープを有する。このため、ＧＬ７は、ＳＳＥＡ−３及びＳＳＥＡ−４の両方に対する抗体と反応する。前記未分化ヒトＥＳ細胞株は、ＳＳＥＡ−１で染色しないが、分化した細胞は、ＳＳＥＡ−Ｉで強力に染色される。ｈＥＳ細胞の未分化状態での増殖方法は、ＷＯ９９／２０７４１、ＷＯ０１／５１６１６及びＷＯ０３／０２０９２０に記載されている。
【０１６８】
内皮、筋肉及び／または神経の幹細胞の適切なソースからの細胞の混合物は、哺乳類のドナーから当該分野において公知の方法により回収され得る。適切なソースは、造血微小環境である。例えば、好ましくは、動態化した（すなわち、動員された）循環末梢血液が、対象から取り出される。あるいは、骨髄が、自家移植を受けている哺乳類、例えば、ヒト患者から取得されてもよい。一部の実施形態では、幹細胞は、例えば、米国特許第７，３９０，４８４号及び同第７，４２９，４８８号明細書に開示された、ＣｙｔｏｒｉからのＣＥＬＵＴＩＯＮ（商標）ＳＹＳＴＥＭを使用して、対象の脂肪組織から取得され得る。同特許は、参照によりその全体が本願明細書に組み込まれる。
【０１６９】
一部の実施形態では、ヒト臍帯血細胞（ＨＵＣＢＣ）が、本願明細書に開示された方法に有用である。ヒトＵＢＣ細胞は、造血系及び間葉系始原細胞の豊富なソースとして認識されている（Ｂｒｏｘｍｅｙｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，  １９９２  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ８９：４１０９−４１１３）。以前は、臍帯血及び胎盤血は、小児の誕生時に通常廃棄される廃棄物と考えられていた。臍帯血細胞は、移植可能な幹細胞及び始原細胞のソースとして、及び、悪性疾患（すなわち、急性リンパ球性白血病、急性骨髄性白血病、慢性骨髄性白血病、骨髄異形成症候群及び神経芽細胞腫）及び非悪性疾患、例えば、ファンコニー貧血及び再生不良性貧血の処置用の骨髄再構築性細胞のソースとして使用される（Ｋｏｈｌｉ−Ｋｕｍａｒ  ｅｔ  ａｌ．，  １９９３  Ｂｒ．  Ｊ．  Ｈａｅｍａｔｏｌ．  ８５：４１９−４２２；Ｗａｇｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，  １９９２  Ｂｌｏｏｄ  ７９；１８７４−１８８１；Ｌｕ  ｅｔ  ａｌ．，  １９９６  Ｃｒｉｔ．  Ｒｅｖ．  Ｏｎｃｏｌ．  Ｈｅｍａｔｏｌ  ２２：６１−７８；Ｌｕ  ｅｔ  ａｌ．，  １９９５  Ｃｅｌｌ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ  ４：４９３−５０３）。ＨＵＣＢＣの別の利点は、胎児細胞に非常に類似する、これらの細胞の未熟な免疫性である。前記未熟な免疫性は、宿主による拒絶に対するリスクを顕著に低下させている（Ｔａｙｌｏｒ  ＆  Ｂｒｙｓｏｎ，  １９８５Ｊ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  １３４：１４９３−１４９７）。ヒト臍帯血は、組織培養において増殖され得る、中胚葉及び造血始原細胞並びに内皮細胞前駆体を含む（Ｂｒｏｘｍｅｙｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，  １９９２  Ｐｒｏｃ．  Ｎａｔｌ．  Ａｃａｄ．  Ｓｃｉ．  ＵＳＡ  ８９：４１０９−４１１３；Ｋｏｈｌｉ−Ｋｕｍａｒ  ｅｔ  ａｌ．，  １９９３  Ｂｒ．  Ｊ．  Ｈａｅｍａｔｏｌ．  ８５：４１９−４２２；Ｗａｇｎｅｒ  ｅｔ  ａｌ．，  １９９２  Ｂｌｏｏｄ  ７９；１８７４−１８８１；Ｌｕ  ｅｔ  ａｌ．，  １９９６  Ｃｒｉｔ．  Ｒｅｖ．  Ｏｎｃｏｌ．  Ｈｅｍａｔｏｌ  ２２：６１−７８；Ｌｕ  ｅｔ  ａｌ．，  １９９５  Ｃｅｌｌ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ  ４：４９３−５０３；Ｔａｙｌｏｒ  ＆  Ｂｒｙｓｏｎ，  １９８５Ｊ．  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  １３４：１４９３−１４９７；Ｂｒｏｘｍｅｙｅｒ，  １９９５  Ｔｒａｎｓｆｕｓｉｏｎ  ３５：６９４−７０２；Ｃｈｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００１  Ｓｔｒｏｋｅ  ３２：２６８２−２６８８；Ｎｉｅｄａ  ｅｔ  ａｌ．，  １９９７  Ｂｒ．  Ｊ．  Ｈａｅｍａｔｏｌｏｇｙ  ９８：７７５−７７７；Ｅｒｉｃｅｓ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０００  Ｂｒ．  Ｊ．  Ｈａｅｍａｔｏｌｏｇｙ  １０９：２３５−２４２）。臍帯血中の造血始原細胞の総量は、骨髄と同じか、または、上回る。さらに、非常に増殖性の造血細胞が、ＨＵＣＢＣ中に骨髄より８倍多く、造血マーカー、例えば、ＣＤ１４、ＣＤ３４及びＣＤ４５を発現している（Ｓａｎｃｈｅｚ−Ｒａｍｏｓ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００１  Ｅｘｐ．  Ｎｅｕｒ．  １７１：１０９−１１５；Ｂｉｃｋｎｅｓｅ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００２  Ｃｅｌｌ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ  １１：２６１−２６４；Ｌｕ  ｅｔ  ａｌ．，  １９９３  Ｊ．  Ｅｘｐ  Ｍｅｄ．  １���８：２０８９−２０９６）。
【０１７０】
別の実施形態では、多能性細胞は、造血微小環境、例えば、好ましくは、哺乳類の末梢血の単核画分からの循環末梢血、臍帯血、骨髄、胎児肝臓または卵黄嚢における細胞である。前記幹細胞、特に、神経幹細胞は、中枢神経系、例えば、髄膜からも得ることができる。
【０１７１】
別の実施形態では、多能性細胞は、胚様体に存在する。前記胚様体は、簡易なプロテアーゼ消化によりＥＳ細胞を収集し、未分化のヒトＥＳＣの小さな塊が懸濁培養中で増殖するのを可能にすることにより形成される。分化は、順化培地の回収により誘導される。得られた胚様体は、半固体基材上に播種される。分化した細胞の形成は、約７日から約４週間後に観察される場合がある。幹細胞のｉｎ  ｖｉｔｒｏ培養からの生きた分化中の細胞は、部分的に分離した胚様体または細胞凝集を提供する類似する構造体により選択される。所望の細胞を含む凝集体は、前記凝集体における細胞接触に対して細胞を実質的に維持する方法を使用して、表現型の特性について選択される。
【０１７２】
別の実施形態では、前記幹細胞は、再プログラムされた幹細胞、例えば、体細胞または分化した細胞から得られた幹細胞であり得る。このような実施形態では、脱分化した幹細胞は、例えば、制限されず、新生細胞、腫瘍細胞及びガン細胞、あるいは、誘導再プログラム細胞、例えば、誘導多能性幹細胞またはｉＰＳ細胞であり得る。
【０１７３】
クローニング及び細胞培養
【０１７４】
本願明細書に記載された技術に使用され得る分子遺伝学及び遺伝子工学についての例示となる方法は、例えば、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，（Ｓａｍｂｒｏｏｋ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ）；Ｇｅｎｅ  Ｔｒａｎｓｆｅｒ  Ｖｅｃｔｏｒｓ  ｆｏｒ  Ｍａｍｍａｌｉａｎ  Ｃｅｌｌｓ（Ｍｉｌｌｅｒ  ＆  Ｃａｌｏｓ  ｅｄｓ．）；及びＣｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ（Ｆ．  Ｍ．  Ａｕｓｕｂｅｌ  ｅｔ  ａｌ．  ｅｄｓ．，  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ）の最新版に見出され得る。細胞生物学、タンパク質化学及び抗体技術は、例えば、Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｓｃｉｅｎｃｅ（Ｊ．  Ｅ．  Ｃｏｌｌｉｇａｎ  ｅｔ  ａｌ．  ｅｄｓ．，  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ）；Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌｏｇｙ（Ｊ．  Ｓ．  Ｂｏｎｉｆａｃｉｎｏ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ）及びＣｕｒｒｅｎｔ  ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（Ｊ．  Ｅ．  Ｃｏｌｌｉｇａｎ  ｅｔ  ａｌ．  ｅｄｓ．，  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ．）に見出され得る。遺伝子操作用の例示となる試薬、クローニングベクター及びキットは、例えば、ＢｉｏＲａｄ、Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、ＣｌｏｎＴｅｃｈ及びＳｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ  Ｃｏ．から市販されている場合ある。
【０１７５】
適切な細胞培養法は、例えば、Ｃｕｌｔｕｒｅ  ｏｆ  Ａｎｉｍａｌ  Ｃｅｌｌｓ：Ａ  Ｍａｎｕａｌ  ｏｆ  Ｂａｓｉｃ  Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ（Ｒ．  Ｉ．  Ｆｒｅｓｈｎｅｙ  ｅｄ．，  Ｗｉｌｅｙ  ＆  Ｓｏｎｓ）；Ｇｅｎｅｒａｌ  Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ  ｏｆ  Ｃｅｌｌ  Ｃｕｌｔｕｒｅ（Ｍ．  Ａ．  Ｈａｒｒｉｓｏｎ  ＆  Ｉ．  Ｆ．  Ｒａｅ，  Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ  Ｕｎｉｖ．  Ｐｒｅｓｓ）及びＥｍｂｒｙｏｎｉｃ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ：Ｍｅｔｈｏｄｓ  ａｎｄ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ（Ｋ．  Ｔｕｒｋｓｅｎ  ｅｄ．，  Ｈｕｍａｎａ  Ｐｒｅｓｓ）の最新版に一般的に記載されている細胞培養法に見出され得る。適切な組織培養サプライ及び試薬は、例えば、Ｇｉｂｃｏ／ＢＲＬ、Ｎａｌｇｅｎｅ−Ｎｕｎｃ  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ、Ｓｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｃｏ．及びＩＣＮ  Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌｓから市販されている。
【０１７６】
多能性幹細胞は、分化を促進することなく、増殖を促進する培養条件を使用して、当業者により培養中において連続的に増殖され得る。典型的な血清含有ＥＳ培地は、８０％  ＤＭＥＭ（例えば、Ｋｎｏｃｋ−Ｏｕｔ  ＤＭＥＭ、Ｇｉｂｃｏ）、２０％  所定の牛胎児血清（ＦＢＳ、Ｈｙｃｌｏｎｅ）または血清代替品（ＷＯ９８／３０６７９）、１％  非必須アミノ酸、１ｍＭ  Ｌ−グルタミン及び０．１ｍＭ  β−メルカプトエタノールで構成される。使用直前に、ヒトｂＦＧＦが、４ｎｇ／ｍＬに添加される（ＷＯ９９／２０７４１、Ｇｅｒｏｎ  Ｃｏｒｐ．）。伝統的に、ＥＳ細胞は、フィーダ細胞、典型的には、胚性または胎児組織から得られた繊維芽細胞の層上で培養される。
【０１７７】
Ｇｅｒｏｎの科学者は、多能性ＳＣが、フィーダ細胞なしでも、未分化状態で維持され得ることを見出した。フィーダフリー培養のための環境としては、適切な細胞基材、特に、細胞外マトリクス、例えば、マトリゲル（登録商標）またはラミニンがあげられる。典型的には、酵素消化により、細胞が完全に分散される前に停止させる（例えば、コラゲナーゼＩＶで約５分）。ついで、約１０個から２，０００個の細胞の塊が、さらに分散されることなく、前記基材上に直接播種される。
【０１７８】
フィーダフリー培養は、分化することなく細胞の増殖を支持する因子を含む栄養培地により支持される。このような因子は、このような因子を分泌する細胞、例えば、照射された（約４，０００ラッド）初代マウス胚性繊維芽細胞、テロメル化されたマウス繊維芽細胞またはｐＰＳ細胞から得られた繊維芽細胞様細胞と前記培地を培養することにより、前記培地中に導入されてもよい。培地は、血清フリー培地、例えば、２０％  血清代替品及び４ｎｇ／ｍＬ  ｂＦＧＦを添加したＫＯ  ＤＭＥＭ中に、約５−６×１０４個／ｃｍ−２の密度で、フィーダを播種することにより順化され得る。１−２日間で馴化された培地に、さらに、ｂＦＧＦが添加され、多能性ＳＣ培養を１−２日間支持するのに使用される。フィーダフリー培養法の特徴は、国際公開第０１／５１６１６号パンフレット；及びＸｕ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｎａｔ．  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．  １９：９７１，  ２００１において、さらに検討されている。
【０１７９】
顕微鏡観察下において、ＥＳ細胞は、高い核／細胞質比、顕著な核及び、ほとんど識別できない細胞間結合による小型のコロニーについて現れる。霊長類のＥＳ細胞は、ステージ特異的胚性抗原（ＳＳＥＡ）３及び４並びにＴｒａ−１−６０及びＴｒａ−１−８１と指定された抗体を使用して検出可能なマーカーを発現している（Ｔｈｏｍｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２８２：１１４５，  １９９８）。マウスＥＳ細胞は、ＳＳＥＡ−１についてのポジティブコントロールとして、並びに、ＳＳＥＡ−４、Ｔｒａ−１−６０及びＴｒａ−１−８１についてのネガティブコントロールとして使用され得る。ＳＳＥＡ−４は、ヒト胎児性ガン（ｈＥＣ）細胞に一貫して存在する。多能性ＳＣのｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける分化は、ＳＳＥＡ−４、Ｔｒａ−１−６０及びＴｒａ−１−８１の発現の損失及びＳＳＥＡ−１の増大した発現をもたらす。ＳＳＥＡ−１の増大した発現は、未分化のｈＥＧ細胞にも見出される。
【０１８０】
幹細胞系β細胞（ＳＣ−β）
【０１８１】
一部の態様では、本開示は、幹細胞系β細胞（ＳＣ−β）を提供する。本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞は、天然のβ細胞の多くの識別特性を共有するが、特定の態様（例えば、遺伝子発現プロファイル）において異なる。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、非天然である。本願明細書で使用する場合、「非天然」は、前記ＳＣ−β細胞が、特定の態様において、天然に存在するβ細胞、すなわち、天然のβ細胞とかなり異なることを意味する。ただし、これらの顕著な差は、典型的には、特定の機能的差異を示す前記ＳＣ−β細胞をもたらし得る、構造的特徴に関係するが、例えば、ＳＣ−β細胞の遺伝子発現パターンは、天然のβ細胞と異なると理解されるべきである。前記ＳＣ−β細胞は、天然のβ細胞に類似する方法で挙動するが、天然のβ細胞と比較して、特定の機能が変化している（例えば、改善されている）場合がある。例えば、図２Ｅに示されたように、天然のβ細胞の頻度と比較して、ＳＣ−β細胞は、より高い頻度で、２０ｍＭ  グルコースに応答する。ＳＣ−β細胞と天然のβ細胞との間の差異は、本願明細書に開示されたデータに基づいて、当業者に明らかであろう。
【０１８２】
本開示のＳＣ−β細胞は、正常なβ細胞の機能に重要なβ細胞の多くの特徴的特性を共有する。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでのグルコース刺激インスリン分泌（ＧＳＩＳ）応答を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、ｉｎ  ｖｉｖｏでのＧＳＩＳ応答を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及びｉｎ  ｖｉｖｏでのＧＳＩＳ応答を示す。一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、内在性の成熟膵臓β細胞のＧＳＩＳ応答に類似する。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、少なくとも１回のグルコースチャレンジに対して、ＧＳＩＳ応答を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、少なくとも２回の連続的なグルコースチャレンジに対して、ＧＳＩＳ応答を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、少なくとも３回の連続的なグルコースチャレンジに対して、ＧＳＩＳ応答を示す。一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、複数回のグルコースチャレンジに対して、内在性のヒト膵島のＧＳＩＳ応答に類似する。一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、前記細胞をヒトまたは動物に移植した直後に観察される。一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、前記細胞をヒトまたは動物に移植した約２４時間以内に観察される。一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、前記細胞をヒトまたは動物に移植した約１週間以内に観察される。一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、前記細胞をヒトまたは動物に移植した約２週間以内に観察される。一部の実施形態では、低グルコース濃度と比較して、高グルコース濃度に対する応答において分泌されたインスリンの割合により特徴付けられる前記細胞の刺激指数は、内在性の成熟膵臓β細胞の刺激指数に類似している。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、１より大きい刺激指数を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、１以上の刺激指数を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、１．１より大きい刺激指数を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、１．１以上の刺激指数を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、２より大きい刺激指数を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、２以上の刺激指数を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、少なくとも２．１、２．２、２．３、２．４、２．５、２．６、２．７、２．８、２．９、３．０、３．１、３．２、３．３、３．４、３．５、３．６、３．７、３．８、３．９、４．０、４．１、４．２、４．３、４．４、４．５、４．６、４．７、４．８、４．９または５．０以上の刺激指数を示す。
【０１８３】
一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、サイトカインに対する応答において、サイトカイン誘導性アポトーシスを示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、インターロイキン−１β（ＩＬ−β）、インターフェロン−γ（ＩＮＦ−γ）、腫瘍壊死因子−α（ＴＮＦ−α）及びそれらの組合せからなる群から選択されるサイトカインに対する応答において、サイトカイン誘導性アポトーシスを示す。
【０１８４】
一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞からのインスリン分泌は、公知の抗糖尿病剤（例えば、ｅｘ  ｖｉｖｏもしくはｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいてβ細胞に作用する抗糖尿病剤及び／または一般的にｉｎ  ｖｉｖｏにおける抗糖尿病剤）に対する応答において亢進する。本開示は、任意の公知の抗糖尿病剤を考慮する。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞からのインスリン分泌は、分泌促進物質に対する応答において亢進する。一部の実施形態では、前記分泌促進物質は、インクレチン模倣物、スルホニル尿素、メグリチニド及びそれらの組合せからなる群から選択される。
【０１８５】
一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、モノホルモン性である。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、内在性の成熟膵臓β細胞の形態に類似する形態を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、結晶インスリン顆粒を封入する。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、内在性の成熟膵臓β細胞のインスリン顆粒に類似する、電子顕微鏡観察下における封入結晶インスリン顆粒を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、低速の複製を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、低速の複製を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、低速であるが、プロラクチンによる処理に対する応答において、Ｃ−ペプチド及びＫｉ６７で染色することにより測定した場合、向上した速度の複製を示す。
【０１８６】
一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、グルコースに対する応答において、細胞内Ｃａ２＋を増大させる。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、内在性の成熟膵臓β細胞のＧＳＣＦに類似するグルコース刺激Ｃａ２＋流動（ＧＳＣＦ）を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、複数回のグルコースチャレンジに対する内在性の成熟膵臓β細胞の前記ＧＳＣＦに類似する方法で、少なくとも３回の連続的なグルコースチャレンジに対するＧＳＣＦ応答を示す。
【０１８７】
一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、インスリン、Ｃ−ペプチド、ＰＤＸ１、ＭＡＦＡ、ＮＫＸ６−１、ＰＡＸ６、ニューロＤ１、グルコキナーゼ（ＧＣＫ）、ＳＬＣ２Ａ１、ＰＣＳＫ１、ＫＣＮＪ１１、ＡＢＣＣ８、ＳＬＣ３０Ａ８、ＳＮＡＰ２５、ＲＡＢ３Ａ、ＧＡＤ２及びＰＴＰＲＮからなる群から選択される、内在性の成熟膵臓β細胞に固有の少なくとも１つのマーカーを発現している。
【０１８８】
一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、ａ）ｉ）グルカゴン（ＧＣＧ）及びｉｉ）ソマトスタチン（ＳＳＴ）からなる群から選択されるホルモン；ｂ）ｉ）アミラーゼ及びｉｉ）カルボキシペプチダーゼＡ（ＣＰＡ１）からなる群から選択される腺細胞マーカー、ｃ）ｉ）ＧＣＧ、Ａｒｘ、Ｉｒｘ１及びＩｒｘ２からなる群から選択されるα細胞マーカー；ｄ）ｉ）ＣＦＴＲ及びｉｉ）Ｓｏｘ９からなる群から選択される管細胞マーカー、からなる群から選択される少なくとも１つのマーカー（例えば、内在性の成熟膵臓β細胞により発現されないマーカー）を発現していない。
【０１８９】
前記ＳＣ−β細胞は、本発明が、前記ＳＣ−β細胞が得られる開始細胞により限定されることを意図しない場合、任意の開始細胞からｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて分化される。典型的な開始細胞としては、制限されず、インスリン陽性内分泌細胞またはその任意の前駆体、例えば、Ｎｋｘ６−１陽性膵臓始原細胞、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞並びに多能性幹細胞、胚性幹細胞及び誘導多能性幹細胞があげられる。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、再プログラムされた細胞、部分的に再プログラムされた細胞（すなわち、誘導多能性細胞とそれが得られる体細胞との間の中間状態で存在するような、部分的に再プログラムされた、体細胞、例えば、繊維芽細胞）、分化転換された細胞から、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて分化される。一部の実施形態では、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞は、インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体から、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて分化され得る。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、Ｎｋｘ６−１陽性膵臓始原細胞、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞及び多能性幹細胞からなる群から選択される前駆体から、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて分化される。一部の実施形態では、前記多能性幹細胞は、胚性幹細胞及び誘導多能性幹細胞からなる群から選択される。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞または前記ＳＣ−β細胞が得られる前記多能性幹細胞は、ヒトである。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、ヒトである。
【０１９０】
一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、遺伝子組み換えされていない。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、細胞の遺伝子組換えの不存在下において、天然のβ細胞と共通して共有する特徴を取得する。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、遺伝子組み換えされている。
【０１９１】
一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞あたりに産生されるインスリンは、高グルコース濃度での３０分の（例えば、ｅｘ  ｖｉｖｏでの）インキュベートにおいて、細胞１０００個あたりに、少なくとも０．５μＩＵである。
【０１９２】
一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞あたりに産生されるインスリンは、高グルコース濃度での３０分のインキュベートにおいて、細胞１０００個あたりに、少なくとも１、少なくとも２、少なくとも３、少なくとも４、少なくとも５、少なくとも６、少なくとも７、少なくとも８または少なくとも９μＩＵである。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞あたりに産生されるインスリンは、高グルコース濃度での３０分のインキュベートにおいて、細胞１０００個あたりに、０．５μＩＵと１０μＩＵとの間である。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞あたりに産生されるインスリンは、高グルコース濃度での３０分のインキュベートにおいて、細胞１０００個あたりに、約２．５μＩＵである。
【０１９３】
一部の態様では、本開示は、本願明細書に記載されたＳＣ−β細胞を含む細胞株を提供する。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、インスリンを安定的に発現している。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、少なくとも３０回の継代まで、明らかな形態変化をすることなく、凍結、解凍及び、２４と４４時間との倍加時間で増幅されることができる。
【０１９４】
ＳＣ−β細胞の生成
【０１９５】
本開示の態様は、ＳＣ−β細胞（例えば、膵臓β細胞）を生成することに関する。一般的には、少なくとも１つの前記ＳＣ−β細胞またはその前駆体、例えば、本願明細書に開示された方法に基づいて産生される膵臓前駆体は、種々の細胞の混合物または組合せ、例えば、Ｐｄｘ１陽性膵臓前駆体、Ｐｄｘ１とＮＫＸ６−１とを共発現している膵臓前駆体、Ｎｇｎ３陽性内分泌始原細胞、インスリン陽性内分泌細胞（例えば、β様細胞）及びインスリン陽性内分泌細胞及び／または他の多能性細胞もしくは幹細胞等の細胞の混合物を含み得る。
【０１９６】
前記少なくとも１つのＳＣ−β細胞またはその前駆体は、幹細胞または多能性細胞を、所望の段階の分化に分化させる、任意の適切な培養プロトコルに基づいて産生され得る。一部の実施形態では、前記少なくとも１つのＳＣ−β細胞またはその前駆体は、前記少なくとも１つの多能性細胞を、前記少なくとも１つのＳＣ−β細胞またはその前駆体に分化させるのに適した期間及び条件下において、少なくとも１つの多能性細胞を培養することにより産生される。
【０１９７】
一部の実施形態では、前記少なくとも１つのＳＣ−β細胞またはその前駆体は、ＳＣ−β細胞またはその前駆体の実質的に純粋な集合である。一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞またはその前駆体の集合は、多能性細胞または分化した細胞の混合物を含む。一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞またはその前駆体の集合は、胚性幹細胞または多能性細胞もしくはｉＰＳ細胞を実質的に含まないか、または、欠いている。
【０１９８】
一部の実施形態では、体細胞、例えば、繊維芽細胞は、対象から、例えば、組織生検、例えば、皮膚生検等として単離され、更なる分化のための誘導多能性幹細胞に再プログラムされて、本願明細書に記載された組成物及び方法において使用するための、少なくとも１つの前記ＳＣ−β細胞またはその前駆体を産生し得る。一部の実施形態では、体細胞、例えば、繊維芽細胞は、当業者に公知の方法により、培養中で維持され、一部の実施形態では、本願明細書に開示された方法により、ＳＣ−β細胞に変換される前に増殖される。
【０１９９】
一部の実施形態では、前記少なくとも１つのＳＣ−β細胞またはその前駆体は、当業者に公知の方法により、培養中で維持され、一部の実施形態では、本願明細書に開示された方法によりＳＣ−β細胞に変換される前に増殖される。
【０２００】
さらに、少なくとも１つのＳＣ−β細胞またはその前駆体、例えば、膵臓前駆体は、任意の哺乳類種由来であり得る。非限定的な例としては、マウス、ウシ、サル、ブタ、ウマ、ウシまたはヒトの細胞があげられる。明確かつ単純にするために、本願明細書における方法の説明は、哺乳類の少なくとも１つのＳＣ−β細胞またはその前駆体を意味するが、本願明細書に記載された方法は全て、他の細胞種の少なくとも１つのＳＣ−β細胞またはその前駆体に容易に適用され得る。一部の実施形態では、前記少なくとも１つのＳＣ−β細胞またはその前駆体は、ヒト個体から得られる。
【０２０１】
多能性幹細胞の成体型内胚葉細胞への分化の誘導
【０２０２】
本開示の態様は、成体型内胚葉細胞を含む。本願明細書において有用な成体型内胚葉細胞は、任意のソースから得ることができ、または、任意の適切なプロトコルに基づいて生成されることができる。一部の態様では、多能性幹細胞、例えば、ｉＰＳＣまたはｈＥＳＣは、内胚葉細胞に分化される。一部の態様では、前記内胚葉細胞は、原腸管細胞、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞、Ｎｇｎ３陽性内分泌始原細胞またはインスリン陽性内分泌細胞にさらに分化され、続けて、ＳＣ−β細胞に誘導または成熟される。
【０２０３】
一部の実施形態では、前記幹細胞は、新たな基材上に播種されてもよいし、または、前記培地が交換されて、分化を阻害する細胞外マトリクスまたは可溶性因子を除去してもよい。これは、「直接分化法」と呼ばれる場合があり、国際公開第０１／５１６１６号パンフレット及び米国特許出願公開第２００２／００１９０４６号明細書に一般的な用語として記載されている。同特許は、参照によりその全体が本願明細書に組み込まれる。残留したフィーダ細胞により引き起こされる分化過程における可能性のある複雑性を避けるために、幹細胞のフィーダフリー培養で開始する前記直接分化法が通常好ましい。別のアプローチは、未分化の幹細胞を懸濁培養に入れることである。前記懸濁培養は、多くの場合、それらを、分化した細胞の凝集体及び未分化細胞の凝集体を形成させるであろう。例えば、幹細胞は、簡易なコラゲナーゼ消化により収集され、クラスターに分離され、非接着細胞培養プレートにおいて継代され得る。前記凝集体は、数日毎に栄養を供給され、ついで、適切な期間、典型的には、４−８日後に収集され得る。条件に応じて、凝集は、一般的には、実質的な頻度の内胚葉細胞を含む細胞種の異種集合を形成することにより開始する。ついで、前記凝集体は、分散され、分化過程の次の段階のために、ラミニンまたはフィブロネクチン等の基材上に、再度播種されるか、または、例えば、非接着プレート及び適切な培地を使用して、懸濁培養中で継代され得る。
【０２０４】
直接分化または凝集体における分化は、適切なマーカー、例えば、米国特許第７，３２６，５７２号明細書に列記されたものを使用して、内胚葉細胞の存在についてモニターされ得る。一部の好ましい実施形態では、分化は、Ｓｏｘ１７等のマーカーを使用して、内胚葉細胞の存在についてモニターされ得る。十分な割合の内胚葉が得られると、細胞は、再度播種され、または、他の方法で操作されて、分化の別の段階を開始し得る。特定の状況において、細胞が微小集団クラスター（例えば、５０個から５，０００個の細胞）に維持される場合、細胞の分化または維持が向上され得る。本開示で考慮される分化の更なる段階は、図１に示される。
【０２０５】
一部の実施形態では、成体型内胚葉細胞は、多能性幹細胞を、米国特許第８，５０７，２７４号明細書（「‘２７４特許」）に記載された式（Ｉ）の化合物と接触させること（例えば、培養すること）により産生される。同特許は、参照により本願明細書に組み込まれる。前記‘２７４特許に記載された式（Ｉ）の化合物は、細胞透過性小分子であり、シグナル伝達経路、遺伝子発現または代謝を調節することにより、細胞プロセスを調節することができ、幹細胞の分化プロトコルに効果的に使用されている。小分子は、高品質及び純粋に合成され、都合よく供給または除去されることができ、治療用途に有用な大きな可能性を提供する。高スループットスクリーニングが、ＥＳ細胞の自己再生（Ｃｈｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００６；Ｄｅｓｂｏｒｄｅｓ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００８）、マウスＥＳ細胞（Ｗｕ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００４）または神経始原細胞（Ｄｉａｍａｎｄｉｓ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００７）の心原性仕様及び特定細胞種、特に、神経及び筋肉の細胞の誘導（Ｄｉｎｇ  ａｎｄ  Ｓｃｈｕｌｔｚ，  ２００４に概説）を支持し得る新規な小分子を特定するのに行われている。前記‘２７４特許からの式（Ｉ）の化合物は、多能性幹細胞を成体型内胚葉細胞に分化させるのに使用され得るのが期待される。
【０２０６】
一部の実施形態では、前記‘２７４特許からの式（Ｉ）の化合物は、
【０２０７】
【化１】
2019141072.tif 000002
【０２０８】
式（Ｉ）を含む。
【０２０９】
式中、
【０２１０】
Ｒ１及びＲ２は、独立して、Ｈ、アルキル、アルケニル、アルキニル、アリール、ヘテロアリール、シクリルまたはシクリルであり、それぞれ、場合により、置換されていることができ、及び／または、骨格中において、１つ以上のＯ、Ｎ、Ｓ、Ｓ（Ｏ）及びＣ（Ｏ）で中断されていることができ；
【０２１１】
Ｒ３及びＲ４は、独立して、Ｈ、ハロゲン、アルキル、アルケニル、アルキニル、アルコキシ、アリール、ヘテロアリール、シクリルまたはシクリルであり、それぞれ、場合により、置換されていることができ、または、Ｒ３及びＲ４は、それらが付着している炭素とまとまって、ヘテロシクリルの場合により置換されているシクリルを形成し；及び、
【０２１２】
Ｌは、Ｃ１−Ｃ１０アルキレニル、Ｃ２−１０アルケニレニルまたはＣ２−１０アルキニレニルであり、それぞれ、場合により、置換されていることができ、及び／または、骨格中において、１つ以上のＯ、Ｎ、Ｓ、Ｓ（Ｏ）及びＣ（Ｏ）で中断されていることができる。
【０２１３】
一部の実施形態では、前記‘２７４特許からの式（Ｉ）の化合物は、以下のＩＤＥ１を含む。
【０２１４】
【化２】
2019141072.tif 000003
【０２１５】
一部の実施形態では、前記‘２７４特許からの式（Ｉ）の化合物は、以下のＩＤＥ２を含む。
【０２１６】
【化３】
2019141072.tif 000004
【０２１７】
前記‘２７４特許には、次に、得られた成体型内胚葉細胞の特定を確認するための方法、及び、成体型内胚葉を単離、分取、増殖及び更なる分化をするための方法が記載されている。前記成体型内胚葉は全て、当業者に理解されるであろうように、本願明細書に記載された組成物及び方法に使用され得る。
【０２１８】
一部の実施形態では、集合中の少なくとも一部の多能性細胞を、成体型内胚葉細胞に分化させることにより、例えば、多能性細胞の集合を、ｉ）ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの少なくとも１つの成長因子及びｉｉ）ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータと接触させて、少なくとも一部の前記多能性細胞の成体型内胚葉細胞への分化を誘導することにより、成体型内胚葉細胞を得ることができる。この場合、前記成体型内胚葉細胞は、成体型内胚葉に固有の少なくとも１つのマーカーを発現している。
【０２１９】
本開示は、前記多能性幹細胞を誘導して、成体型内胚葉細胞に分化させる前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの任意の成長因子（例えば、単独で、または、ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータとの組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、アクチビンＡを含む。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、成長分化因子８（ＧＤＦ８）を含む。
【０２２０】
本開示は、前記多能性幹細胞を誘導して、成体型内胚葉細胞に分化させる任意のＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータ（例えば、単独で、または、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの成長因子との組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータは、ＣＨＩＲ９９０２１を含む。一部の実施形態では、前記ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータは、Ｗｎｔ３ａ組換えタンパク質を含む。
【０２２１】
使用される作用剤（例えば、成長因子）の濃度が変化し得ることを、当業者であれば理解するであろう。一部の実施形態では、前記多能性細胞を、１０ｎｇ／ｍＬ−１０００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記多能性細胞を、１００ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記多能性細胞を、２０ｎｇ／ｍＬ、３０ｎｇ／ｍＬ、４０ｎｇ／ｍＬ、５０ｎｇ／ｍＬ、６０ｎｇ／ｍＬ、７０ｎｇ／ｍＬ、８０ｎｇ／ｍＬまたは９０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、９１ｎｇ／ｍＬ、９２ｎｇ／ｍＬ、９３ｎｇ／ｍＬ、９４ｎｇ／ｍＬ、９５ｎｇ／ｍＬ、９６ｎｇ／ｍＬ、９７ｎｇ／ｍＬ、９８ｎｇ／ｍＬまたは９９ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記多能性細胞を、１１０ｎｇ／ｍＬ、１２０ｎｇ／ｍＬ、１３０ｎｇ／ｍＬ、１４０ｎｇ／ｍＬ、１５０ｎｇ／ｍＬ、１６０ｎｇ／ｍＬ、１７０ｎｇ／ｍＬ、１８０ｎｇ／ｍＬまたは１９０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記多能性細胞を、１０１ｎｇ／ｍＬ、１０２ｎｇ／ｍＬ、１０３ｎｇ／ｍＬ、１０４ｎｇ／ｍＬ、１０５ｎｇ／ｍＬ、１０６ｎｇ／ｍＬ、１０７ｎｇ／ｍＬ、１０８ｎｇ／ｍＬまたは１０９ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。
【０２２２】
一部の実施形態では、前記多能性細胞を、１．４μｇ／ｍＬ−１４０μｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記多能性細胞を、１４μｇ／ｍＬの濃度で、前記ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記多能性細胞を、２μｇ／ｍＬ、３μｇ／ｍＬ、４μｇ／ｍＬ、５μｇ／ｍＬ、６μｇ／ｍＬ、７μｇ／ｍＬ、８μｇ／ｍＬ、９μｇ／ｍＬ、１０μｇ／ｍＬ、１１μｇ／ｍＬ、１２μｇ／ｍＬまたは１３μｇ／ｍＬの濃度で、前記ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記多能性細胞を、１５μｇ／ｍＬ、１６μｇ／ｍＬ、１７μｇ／ｍＬ、１８μｇ／ｍＬ、１９μｇ／ｍＬ、２０μｇ／ｍＬ、２１μｇ／ｍＬ、２２μｇ／ｍＬ、２３μｇ／ｍＬ、２４μｇ／ｍＬ、２５μｇ／ｍＬ、２６μｇ／ｍＬ、２７μｇ／ｍＬ、２８μｇ／ｍＬ、２９μｇ／ｍＬまたは３０μｇ／ｍＬの濃度で、前記ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記多能性細胞を、１３．１μｇ／ｍＬ、１３．２μｇ／ｍＬ、１３．３μｇ／ｍＬ、１３．４μｇ／ｍＬ、１３．５μｇ／ｍＬ、１３．６μｇ／ｍＬ、１３．７μｇ／ｍＬ、１３．８μｇ／ｍＬまたは１３．９μｇ／ｍＬの濃度で、前記ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記多能性細胞を、１４．１μｇ／ｍＬ、１４．２μｇ／ｍＬ、１４．３μｇ／ｍＬ、１４．４μｇ／ｍＬ、１４．５μｇ／ｍＬ、１４．６μｇ／ｍＬ、１４．７μｇ／ｍＬ、１４．８μｇ／ｍＬまたは１４．９μｇ／ｍＬの濃度で、前記ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。
【０２２３】
一般的には、前記多能性細胞は、少なくとも一部の前記多能性細胞の成体型内胚葉細胞への分化を誘導するのに十分な期間、適切な培養培地中で維持される（例えば、懸濁培養）。典型的に適切な培養培地は、以下の表１に示される。
【０２２４】
【表１】
2019141072.tif 000005
【０２２５】
一部の実施形態では、多能性細胞を成体型内胚葉細胞に分化させるのに適した培養培地は、Ｓ１培地を含む。
【０２２６】
一部の実施形態では、前記多能性細胞を接触させることは、懸濁培養中で達成される。一部の実施形態では、前記懸濁培養は、スピナーフラスコ中で維持される。一部の実施形態では、前記期間は、３日である。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子及びＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータは、前記懸濁培養に初日に添加される。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、前記懸濁培養中に２日目に補充される。一部の実施形態では、前記ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータは、前記懸濁培養中に２日目に補充されない。一部の実施形態では、前記ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータは、前記懸濁培養から２日目に除去される。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、前記懸濁培養中に２日目に補充され、前記ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータは、２日目に、前記懸濁培養から除去されるか、または、前記懸濁培養中に補充されない。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子または前記ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータのいずれも、前記懸濁培養中に３日目に補充されない。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子及び前記ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータは両方とも、前記懸濁培養から３日目に除去される。
【０２２７】
前記方法は、細胞集合中の少なくとも１つの多能性細胞の成体型内胚葉細胞への分化を誘導可能である。一般的には、任意の多能性細胞が、本願明細書に記載された方法を使用して、成体型内胚葉細胞に分化され得る。一部の実施形態では、前記多能性細胞は、誘導多能性幹細胞を含む。一部の実施形態では、前記多能性細胞は、胚性幹細胞を含む。一部の実施形態では、前記多能性細胞は、ヒト細胞を含む。
【０２２８】
一部の実施形態では、集合中の少なくとも一部の多能性細胞を成体型内胚葉細胞に分化させることは、多能性細胞の集合を、ｉ）アクチビンＡ及びｉｉ）ＣＨＩＲ９９０２１と接触させて、前記集合中の少なくとも一部の多能性細胞の成体型内胚葉細胞への分化を誘導する方法により達成される。この場合、前記成体型内胚葉細胞は、成体型内胚葉に固有の少なくとも１つのマーカーを発現している。
【０２２９】
成体型内胚葉細胞を産生するための他の方法は、当該分野において公知であり、例えば、米国特許出願公開第２００６／０００３４４６号（Ｇ．  Ｋｅｌｌｅｒ，  ｅｔ  ａｌ．）；同第２００６／０００３３１３号（Ｋ．  Ｄ’Ａｍｏｕｒ，  ｅｔ  ａｌ．，）、同第２００５／０１５８８５３号（Ｋ．  Ｄ’Ａｍｏｕｒ，  ｅｔ  ａｌ．，）及び同第２００５／０２６０７４９号明細書（Ｊｏｎ  Ｏｄｏｒｉｃｏ，  ｅｔ  ａｌ．，）で説明された方法があげられる。同特許の関連部分は、参照により本願明細書に組み込まれる。
【０２３０】
一部の実施形態では、本願明細書に開示された方法により産生された成体型内胚葉細胞は、Ｎｏｄａｌ、Ｔｍｐｒｓｓ２、Ｔｍｅｍ３０ｂ、Ｓｔ１４、Ｓｐｉｎｋ３、Ｓｈ３ｇｌ２、Ｒｉｐｋ４、Ｒａｂ１５、Ｎｐｎｔ、Ｃｌｉｃ６、Ｃｌｄｎ８、Ｃａｃｎａ１ｂ、Ｂｎｉｐｌ、Ａｎｘａ４、Ｅｍｂ、ＦｏｘＡ１、Ｓｏｘ１７及びＲｂｍ３５ａからなる群から選択される少なくとも１つのマーカーを発現している。この場合、前記少なくとも１つのマーカーの発現は、それが得られる前記多能性細胞に対して、前記成体型内胚葉細胞中において、統計学的に有意な量で上方制御される。一部の実施形態では、本願明細書に開示された方法により産生された成体型内胚葉細胞は、Ｇａｔａ４、ＳＰＡＲＣ、ＡＦＰ及びＤａｂ２からなる群から選択される少なくとも１つのマーカーを、それが得られる前記多能性細胞に対して、統計学的に有意な量で発現していない。一部の実施形態では、本願明細書に開示された方法により産生された成体型内胚葉細胞は、Ｚｉｃｌ、Ｐａｘ６、Ｆｌｋ１及びＣＤ３１からなる群から選択される少なくとも１つのマーカーを、それが得られる前記多能性細胞に対して、統計学的に有意な量で発現していない。
【０２３１】
一部の実施形態では、本願明細書に開示された方法により産生された成体型内胚葉細胞は、それが得られる前記多能性細胞に対して、統計学的に有意な量で、より高いレベルのＳｍａｄ２のリン酸化を有する。一部の実施形態では、本願明細書に開示された方法により産生された成体型内胚葉細胞は、ｉｎ  ｖｉｖｏにおいて、消化管を形成する能力を有する。一部の実施形態では、本願明細書に開示された方法により産生された成体型内胚葉細胞は、腸細胞に固有の形態を有する細胞に分化し得る。この場合、腸細胞に固有の形態を有する細胞は、ＦｏｘＡ２及び／またはクラウディン６を発現している。一部の実施形態では、本願明細書に開示された方法により産生された成体型内胚葉細胞は、内胚葉起源の細胞にさらに分化され得る。
【０２３２】
一部の実施形態では、多能性細胞の集合は、任意の分化前、または、分化の第１段階中に、少なくとも１つのβ細胞成熟因子の存在下において培養される。任意の多能性幹細胞、例えば、ヒト多能性幹細胞もしくはヒトｉＰＳ細胞または本願明細書に記載された多能性幹細胞のいずれかまたは他の適切な多能性幹細胞を使用し得る。一部の実施形態では、本願明細書に記載されたβ細胞成熟因子は、多能性幹細胞の集合の培養培地中に存在することができ、または、前記多能性幹細胞の集合の増殖（例えば、複製または増殖）中に、ボーラスで、または、周期的に添加されてもよい。特定の例では、多能性幹細胞の集合は、任意の分化前に、少なくとも１つのβ細胞成熟因子に曝され得る。他の例では、多能性幹細胞の集合は、分化の第１段階中に、少なくとも１つのβ細胞成熟因子に曝されてもよい。
【０２３３】
成体型内胚葉細胞の原腸管細胞への分化の誘導
【０２３４】
本開示の態様は、原腸管細胞を含む。本願明細書において有用な原腸管細胞は、任意のソースから得られ、または、任意の適切なプロトコルに基づいて生成され得る。一部の態様では、成体型内胚葉細胞は、原腸管細胞に分化される。一部の態様では、前記原腸管細胞は、例えば、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞、Ｎｇｎ３陽性内分泌始原細胞、インスリン陽性内分泌細胞にさらに分化され、続けて、ＳＣ−β細胞に誘導または成熟する。
【０２３５】
一部の実施形態では、集合中の少なくとも一部の成体型内胚葉細胞を、原腸管細胞に分化させることにより、例えば、成体型内胚葉細胞を、繊維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）ファミリーからの少なくとも１つの成長因子と接触させて、少なくとも一部の前記成体型内胚葉細胞の原腸管細胞への分化を誘導することにより、原腸管細胞を得ることができる。この場合、前記原腸管細胞は、原腸管細胞に固有の少なくとも１つのマーカーを発現している。
【０２３６】
本開示は、成体型内胚葉細胞を誘導して、原腸管細胞に分化させる前記ＦＧＦファミリーからの任意の成長因子（例えば、単独で、または、他の因子との組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ケラチノサイト成長因子（ＫＧＦ）を含む。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ＦＧＦ２を含む。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ＦＧＦ８Ｂを含む。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ＦＧＦ１０を含む。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ＦＧＦ２１を含む。
【０２３７】
使用される成長因子の濃度が変化し得ることを、当業者であれば理解するであろう。一部の実施形態では、前記成体型内胚葉細胞を、５ｎｇ／ｍＬ−５００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記成体型内胚葉細胞を、１０ｎｇ／ｍＬ、１５ｎｇ／ｍＬ、２０ｎｇ／ｍＬ、２５ｎｇ／ｍＬ、３０ｎｇ／ｍＬ、３５ｎｇ／ｍＬまたは４０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記成体型内胚葉細胞を、６０ｎｇ／ｍＬ、６５ｎｇ／ｍＬ、７０ｎｇ／ｍＬ、７５ｎｇ／ｍＬ、８０ｎｇ／ｍＬ、８５ｎｇ／ｍＬ、９０ｎｇ／ｍＬ、９５ｎｇ／ｍＬまたは１００ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記成体型内胚葉細胞を、４１ｎｇ／ｍＬ、４２ｎｇ／ｍＬ、４３ｎｇ／ｍＬ、４４ｎｇ／ｍＬ、４５ｎｇ／ｍＬ、４６ｎｇ／ｍＬ、４７ｎｇ／ｍＬ、４８ｎｇ／ｍＬまたは４９ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記成体型内胚葉細胞を、５１ｎｇ／ｍＬ、５２ｎｇ／ｍＬ、５３ｎｇ／ｍＬ、５４ｎｇ／ｍＬ、５５ｎｇ／ｍＬ、５６ｎｇ／ｍＬ、５７ｎｇ／ｍＬ、５８ｎｇ／ｍＬまたは５９ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記成体型内胚葉細胞を、５０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。
【０２３８】
一部の実施形態では、前記成体型内胚葉細胞は、適切な培養培地中で培養される。
【０２３９】
一般的には、前記成体型内胚葉細胞は、少なくとも一部の前記成体型内胚葉細胞の原腸管細胞への分化を誘導するのに十分な期間、適切な培養培地中で維持される（例えば、懸濁培養）。典型的に適切な培養培地は、以下の表２に示される。
【０２４０】
【表２】
2019141072.tif 000006
【０２４１】
一部の実施形態では、成体型内胚葉細胞を原腸管細胞に分化させるのに適した培養培地は、Ｓ２培地を含む。
【０２４２】
一部の実施形態では、前記成体型内胚葉細胞を接触させることは、懸濁培養中で達成される。一部の実施形態では、前記懸濁培養は、スピナーフラスコ中で維持される。一部の実施形態では、前記期間は、２日と５日との間である。一部の実施形態では、前記期間は、３日である。一部の実施形態では、前記懸濁培養は、２日１回補充される。
【０２４３】
一部の実施形態では、集合中の少なくとも一部の前記成体型内胚葉細胞を原腸管細胞に分化させることにより、例えば、前記成体型内胚葉細胞をＫＧＦと接触させて、少なくとも一部の前記成体型内胚葉細胞の原腸管細胞への分化を誘導することにより、成体型内胚葉細胞を得ることができる。この場合、前記原腸管細胞は、成体型内胚葉に固有の少なくとも１つのマーカーを発現している。
【０２４４】
原腸管細胞のＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞への分化の誘導
【０２４５】
本開示の態様は、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を含む。本願明細書において有用なＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞は、任意のソースから得られ、または、任意の適切なプロトコルに基づいて生成され得る。一部の態様では、原腸管細胞は、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞に分化される。一部の態様では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞は、例えば、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞、Ｎｇｎ３陽性内分泌始原細胞、インスリン陽性内分泌細胞にさらに分化され、続けて、ＳＣ−β細胞に誘導または成熟する。
【０２４６】
一部の態様では、集合中の少なくとも一部の原腸管細胞を、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞に分化させることにより、例えば、原腸管細胞を、ｉ）少なくとも１つの骨形態形成タンパク質（ＢＭＰ）シグナル伝達経路阻害剤、ｉｉ）ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、ｉｉｉ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、ｉｖ）少なくとも１つのレチノイン酸（ＲＡ）シグナル伝達経路アクチベータ；及びｖ）少なくとも１つのプロテインキナーゼＣアクチベータと接触させて、少なくとも一部の前記原腸管細胞のＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導することにより、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を得ることができる。この場合、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞は、Ｐｄｘ１を発現している。
【０２４７】
本開示は、原腸管細胞を誘導して、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞に分化させる、任意のＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤（例えば、単独で、または、ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、少なくとも１つのレチノイン酸シグナル伝達経路アクチベータ及び少なくとも１つのプロテインキナーゼＣアクチベータとの任意の組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤は、ＬＤＮ１９３１８９を含む。
【０２４８】
本開示は、原腸管細胞を誘導して、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞に分化させる、前記ＦＧＦファミリーからの任意の成長因子（例えば、単独で、または、少なくとも１つのＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤、少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、少なくとも１つのレチノイン酸シグナル伝達経路アクチベータ及び少なくとも１つのプロテインキナーゼＣアクチベータとの任意の組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ケラチノサイト成長因子（ＫＧＦ）を含む。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ＦＧＦ２、ＦＧＦ８Ｂ、ＦＧＦ１０及びＦＧＦ２１からなる群から選択される。
【０２４９】
本開示は、原腸管細胞を誘導して、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞に分化させる、任意のＳＨＨ経路阻害剤（例えば、単独で、または、少なくとも１つのＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤、ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、少なくとも１つのレチノイン酸シグナル伝達経路アクチベータ及び少なくとも１つのプロテインキナーゼＣアクチベータとの任意の組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記ＳＨＨ経路阻害剤は、Ｓａｎｔ１を含む。
【０２５０】
本開示は、原腸管細胞を誘導して、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞に分化させる、任意のＲＡシグナル伝達経路アクチベータ（例えば、単独で、または、少なくとも１つのＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤、ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤及び少なくとも１つのプロテインキナーゼＣアクチベータとの任意の組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータは、レチノイン酸を含む。
【０２５１】
本開示は、原腸管細胞を誘導して、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞に分化させる、任意のＰＫＣアクチベータ（例えば、単独で、または、少なくとも１つのＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤、ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤及び少なくとも１つのＲＡシグナル伝達経路アクチベータとの任意の組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記ＰＫＣアクチベータは、ＰｄｂＵを含む。一部の実施形態では、前記ＰＫＣアクチベータは、ＴＰＢを含む。
【０２５２】
使用される作用剤（例えば、成長因子）の濃度が変化し得ることを、当業者であれば理解するであろう。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、２０ｎＭ−２０００ｎＭの間の濃度で、前記ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、３０４０ｎＭ、５０ｎＭ、６０ｎＭ、７０ｎＭ、８０ｎＭ、９０ｎＭ、１００ｎＭ、１１０ｎＭ、１２０ｎＭ、１３０ｎＭ、１４０ｎＭ、１５０ｎＭ、１６０ｎＭ、１７０ｎＭ、１８０ｎＭまたは１９０ｎＭの濃度で、前記ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、１９１ｎＭ、１９２ｎＭ、１９３ｎＭ、１９４ｎＭ、１９５ｎＭ、１９６ｎＭ、１９７ｎＭ、１９８ｎＭまたは１９９ｎＭの濃度で、前記ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、３００ｎＭ、４００ｎＭ、５００ｎＭ、６００ｎＭ、７００ｎＭ、８００ｎＭ、９００ｎＭ、１０００ｎＭ、１１００ｎＭ、１２００ｎＭ、１３００ｎＭ、１４００ｎＭ、１５００ｎＭ、１６００ｎＭ、１７００ｎＭ、１８００ｎＭまたは１９００ｎＭの濃度で、前記ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、２１０ｎＭ、２２０ｎＭ、２３０ｎＭ、２４０ｎＭ、２５０ｎＭ、２６０ｎＭ、２７０ｎＭ、２８０ｎＭまたは２９０ｎＭの濃度で、前記ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、２００ｎＭの濃度で、前記ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。
【０２５３】
一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、５ｎｇ／ｍＬ−５００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、１０ｎｇ／ｍＬ、１５ｎｇ／ｍＬ、２０ｎｇ／ｍＬ、２５ｎｇ／ｍＬ、３０ｎｇ／ｍＬ、３５ｎｇ／ｍＬまたは４０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、６０ｎｇ／ｍＬ、６５ｎｇ／ｍＬ、７０ｎｇ／ｍＬ、７５ｎｇ／ｍＬ、８０ｎｇ／ｍＬ、８５ｎｇ／ｍＬ、９０ｎｇ／ｍＬ、９５ｎｇ／ｍＬまたは１００ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、４１ｎｇ／ｍＬ、４２ｎｇ／ｍＬ、４３ｎｇ／ｍＬ、４４ｎｇ／ｍＬ、４５ｎｇ／ｍＬ、４６ｎｇ／ｍＬ、４７ｎｇ／ｍＬ、４８ｎｇ／ｍＬまたは４９ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、５１ｎｇ／ｍＬ、５２ｎｇ／ｍＬ、５３ｎｇ／ｍＬ、５４ｎｇ／ｍＬ、５５ｎｇ／ｍＬ、５６ｎｇ／ｍＬ、５７ｎｇ／ｍＬ、５８ｎｇ／ｍＬまたは５９ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、５０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。
【０２５４】
一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、０．１μＭと０．５μＭとの間の濃度で、前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、０．１１μＭ、０．１２μＭ、０．１３μＭ、０．１４μＭ、０．１５μＭ、０．１６μＭ、０．１７μＭ、０．１８μＭ、０．１９μＭ、０．２μＭ、０．２１μＭ、０．２２μＭ、０．２３μＭまたは０．２４μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、０．２６μＭ、０．２７μＭ、０．２８μＭ、０．２９μＭ、０．３０μＭ、０．３１μＭ、０．３２μＭ、０．３３μＭ、０．３４μＭ、０．３５μＭ、０．３６μＭ、０．３７μＭ、０．３８μＭ、０．３９μＭ、０．４０μＭ、０．４１μＭ、０．４２μＭ、０．４３μＭ、０．４４μＭ、０．４５μＭ、０．４６μＭ、０．４７μＭ、０．４８μＭ、０．４９μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、０．２５μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。
【０２５５】
一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、０．０１μＭ−１．０μＭの間の濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、０．０２μＭ、０．０３μＭ、０．０４μＭ、０．０５μＭ、０．０６μＭ、０．０７μＭ、０．０８μＭまたは０．０９μＭの濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、０．２０μＭ、０．３０μＭ、０．４０μＭ、０．０５μＭ、０．６０μＭ、０．７０μＭ、０．８０μＭまたは０．９０μＭの濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、０．１μＭの濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。
【０２５６】
一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、５０ｎＭ−５０００ｎＭの間の濃度で、ＰＫＣアクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、１００ｎＭ、１５０ｎＭ、２００ｎＭ、２５０ｎＭ、３００ｎＭ、３５０ｎＭ、４００ｎＭ、４５０ｎＭ、４６０ｎＭ、４７０ｎＭ、４８０ｎＭまたは４９０ｎＭの濃度で、前記ＰＫＣアクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、４９１ｎＭ、４９２ｎＭ、４９３ｎＭ、４９４ｎＭ、４９５ｎＭ、４９６ｎＭ、４９７ｎＭ、４９８ｎＭまたは４９９ｎＭの濃度で、前記ＰＫＣアクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、６００ｎＭ、７００ｎＭ、８００ｎＭ、９００ｎＭ、１０００ｎＭ、１１００ｎＭ、１２００ｎＭ、１３００ｎＭ、１４００ｎＭ、１５００ｎＭ、１６００ｎＭ、１７００ｎＭ、１８００ｎＭ、１９００ｎＭまたは２０００ｎＭの濃度で、前記ＰＫＣアクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、５０１ｎＭ、５０２ｎＭ、５０３ｎＭ、５０４ｎＭ、５０５ｎＭ、５０６ｎＭ、５０７ｎＭ、５０８ｎＭまたは５０９ｎＭ、５１０ｎＭ、５２０ｎＭ、５３０ｎＭ、５４０ｎＭ、５５０ｎＭ、５６０ｎＭ、５７０ｎＭ、５８０ｎＭまたは５９０ｎＭの濃度で、前記ＰＫＣアクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記原腸管細胞を、５００ｎＭの濃度で、前記ＰＫＣアクチベータと接触させる。
【０２５７】
一般的には、前記原腸管細胞は、少なくとも一部の前記原腸管細胞のＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導するのに十分な期間、適切な培養培地中で維持される（例えば、懸濁培養）。典型的に適切な培養培地は、以下の表３に示される。
【０２５８】
【表３】
2019141072.tif 000007
【０２５９】
一部の実施形態では、Ｓ３培地が、原腸管細胞を膵臓始原細胞に分化させるのに適した培養培地として使用され得る。
【０２６０】
一部の実施形態では、前記原腸管細胞を接触させることは、懸濁培養中で達成される。一部の実施形態では、前記懸濁培養は、スピナーフラスコ中で維持される。一部の実施形態では、前記期間は、少なくとも２日である。一部の実施形態では、前記懸濁培養は、毎日補充される。
【０２６１】
一部の実施形態では、集合中の少なくとも一部の前記原腸管細胞をＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞に分化させることにより、例えば、前記原腸管細胞を、ｉ）ＬＤＮ１９３１８９、ｉｉ）ＫＧＦ、ｉｉｉ）Ｓａｎｔ１；ｉｖ）ＲＡ及びｉｖ）ＰｄｂＵと接触させて、少なくとも一部の前記原腸管細胞のＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導することにより、原腸管細胞を得ることができる。この場合、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞は、Ｐｄｘ１を発現している。
【０２６２】
Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＮＫＸ６−１＋膵臓始原細胞への分化の誘導
【０２６３】
本開示の態様は、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を含む。本願明細書において有用なＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞は、任意のソースから得られ、または、任意の適切なプロトコルに基づいて生成され得る。一部の態様では、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞は、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞に分化される。一部の態様では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞は、例えば、Ｎｇｎ３陽性内分泌始原細胞またはインスリン陽性内分泌細胞にさらに分化され、続けて、ＳＣ−β細胞に誘導または成熟する。
【０２６４】
一部の態様では、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞からのＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の製造方法は、（例えば、細胞クラスター形成を促進する条件下で）Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を含む細胞集合を、ａ）繊維芽脂肪成長因子（ＦＧＦ）ファミリーからの少なくとも１つの成長因子、ｂ）ソニックヘッジホッグ経路阻害剤を含む少なくとも２つのβ細胞成熟因子、及び場合により、ｃ）低濃度のレチノイン酸（ＲＡ）シグナル伝達経路アクチベータと、少なくとも５日の期間接触させて、前記集合中の少なくとも１つのＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導することを含み、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞は、ＮＫＸ６−１を発現している。
【０２６５】
一部の実施形態では、細胞クラスター形成を促進する条件下で、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、ｉ）ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、ｉｉ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、及び場合により、ｉｉｉ）低濃度のＲＡシグナル伝達経路アクチベータと、５日の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞の、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞への分化を誘導することにより、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を得ることができる。この場合、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞は、Ｐｄｘ１及びＮＫＸ６−１を発現している。
【０２６６】
一部の実施形態では、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、ｉ）ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、ｉｉ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤及びｉｉｉ）ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞の、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞への分化を誘導することにより、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を得ることができる。この場合、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞は、Ｐｄｘ１及びＮＫＸ６−１を発現している。
【０２６７】
一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞は、多能性細胞の集合から産生される。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞は、ｉＰＳ細胞の集合から産生される。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞は、ＥＳＣ細胞の集合から産生される。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞は、成体型内胚葉細胞の集合から産生される。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞は、原腸管細胞の集合から産生される。
【０２６８】
本開示は、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を誘導して、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞に分化させる、ＦＧＦファミリーからの任意の成長因子（例えば、単独で、または、少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、または場合により、少なくとも１つのレチノイン酸シグナル伝達経路アクチベータとの任意の組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ケラチノサイト成長因子（ＫＧＦ）を含む。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子は、ＦＧＦ２、ＦＧＦ８Ｂ、ＦＧＦ１０及びＦＧＦ２１からなる群から選択される。
【０２６９】
本開示は、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を誘導して、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞に分化させる、任意のＳＨＨ経路阻害剤（例えば、単独で、または、ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子または少なくとも１つのレチノイン酸シグナル伝達経路アクチベータとの任意の組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記ＳＨＨ経路阻害剤は、Ｓａｎｔ１を含む。
【０２７０】
本開示は、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を誘導して、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞に分化させる、任意のＲＡシグナル伝達経路アクチベータ（例えば、単独で、または、ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子及び少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤との任意の組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータは、レチノイン酸を含む。
【０２７１】
一部の実施形態では、前記方法は、前記細胞集合（例えば、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞）を、少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子と接触させることを含む。一部の実施形態では、前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子は、ＥＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子を含む。一部の実施形態では、前記方法は、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、ＥＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子と接触させることを含む。本開示は、（例えば、ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、及び場合により、少なくとも１つのＲＡシグナル伝達経路アクチベータとの任意の組合せと共に）Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞への分化を促進する前記ＥＧＦファミリーからの任意の成長因子の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ベタセルリンを含む。一部の実施形態では、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ＥＧＦを含む。
【０２７２】
使用される作用剤（例えば、成長因子）の濃度が変化し得ることを、当業者であれば理解するであろう。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、１ｎｇ／ｍＬ−１００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、５ｎｇ／ｍＬ、１０ｎｇ／ｍＬ、１５ｎｇ／ｍＬ、２０ｎｇ／ｍＬ、２５ｎｇ／ｍＬ、３０ｎｇ／ｍＬ、３５ｎｇ／ｍＬまたは４０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、６０ｎｇ／ｍＬ、６５ｎｇ／ｍＬ、７０ｎｇ／ｍＬ、７５ｎｇ／ｍＬ、８０ｎｇ／ｍＬ、８５ｎｇ／ｍＬ、９０ｎｇ／ｍＬ、９５ｎｇ／ｍＬまたは１００ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、４１ｎｇ／ｍＬ、４２ｎｇ／ｍＬ、４３ｎｇ／ｍＬ、４４ｎｇ／ｍＬ、４５ｎｇ／ｍＬ、４６ｎｇ／ｍＬ、４７ｎｇ／ｍＬ、４８ｎｇ／ｍＬまたは４９ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、５１ｎｇ／ｍＬ、５２ｎｇ／ｍＬ、５３ｎｇ／ｍＬ、５４ｎｇ／ｍＬ、５５ｎｇ／ｍＬ、５６ｎｇ／ｍＬ、５７ｎｇ／ｍＬ、５８ｎｇ／ｍＬまたは５９ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、５０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。
【０２７３】
一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、０．１μＭと０．５μＭとの間の濃度で、前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、０．１１μＭ、０．１２μＭ、０．１３μＭ、０．１４μＭ、０．１５μＭ、０．１６μＭ、０．１７μＭ、０．１８μＭ、０．１９μＭ、０．２μＭ、０．２１μＭ、０．２２μＭ、０．２３μＭまたは０．２４μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、０．２６μＭ、０．２７μＭ、０．２８μＭ、０．２９μＭ、０．３０μＭ、０．３１μＭ、０．３２μＭ、０．３３μＭ、０．３４μＭ、０．３５μＭ、０．３６μＭ、０．３７μＭ、０．３８μＭ、０．３９μＭ、０．４０μＭ、０．４１μＭ、０．４２μＭ、０．４３μＭ、０．４４μＭ、０．４５μＭ、０．４６μＭ、０．４７μＭ、０．４８μＭ、０．４９μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、０．２５μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。
【０２７４】
一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、０．０１μＭ−１．０μＭの間の濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、０．０２μＭ、０．０３μＭ、０．０４μＭ、０．０５μＭ、０．０６μＭ、０．０７μＭ、０．０８μＭまたは０．０９μＭの濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、０．２０μＭ、０．３０μＭ、０．４０μＭ、０．０５μＭ、０．６０μＭ、０．７０μＭ、０．８０μＭまたは０．９０μＭの濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、０．１μＭの濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。
【０２７５】
一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、２ｎｇ／ｍＬ−２００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、３ｎｇ／ｍＬ、４ｎｇ／ｍＬ、５ｎｇ／ｍＬ、６ｎｇ／ｍＬ、７ｎｇ／ｍＬ、８ｎｇ／ｍＬ、９ｎｇ／ｍＬ、１０ｎｇ／ｍＬ、１１ｎｇ／ｍＬ、１２ｎｇ／ｍＬ、１３ｎｇ／ｍＬ、１４ｎｇ／ｍＬ、１６ｎｇ／ｍＬ、１７ｎｇ／ｍＬ、１８ｎｇ／ｍＬまたは１９ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、３０ｎｇ／ｍＬ、３５ｎｇ／ｍＬ、４０ｎｇ／ｍＬ、４５ｎｇ／ｍＬ、５０ｎｇ／ｍＬ、５５ｎｇ／ｍＬ、６０ｎｇ／ｍＬ、６５ｎｇ／ｍＬ、７０ｎｇ／ｍＬ、７５ｎｇ／ｍＬ、８０ｎｇ／ｍＬ、８５ｎｇ／ｍＬ、９０ｎｇ／ｍＬ、９５ｎｇ／ｍＬまたは１００ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、２１ｎｇ／ｍＬ、２２ｎｇ／ｍＬ、２３ｎｇ／ｍＬ、２４ｎｇ／ｍＬ、２５ｎｇ／ｍＬ、２６ｎｇ／ｍＬ、２７ｎｇ／ｍＬ、２８ｎｇ／ｍＬまたは２９ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、２０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。
【０２７６】
一般的には、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞は、前記集合中の少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞の、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞への分化を誘導するのに十分な期間、適切な培養培地中で維持される。典型的に適切な培養培地は、上記表３に示される。一部の実施形態では、細胞クラスター形成を促進する条件は、懸濁培養を含む。一部の実施形態では、前記懸濁培養は、スピナーフラスコ中で維持される。一部の実施形態では、前記期間は、少なくとも５日である。一部の実施形態では、前記懸濁培養は、２日１回補充される。一部の実施形態では、前記β細胞成熟因子は、２日１回補充される。
【０２７７】
一部の実施形態では、プロテインキナーゼＣのアクチベータは、前記懸濁培養に５日の間添加されない。一部の実施形態では、プロテインキナーゼＣのアクチベータは、前記懸濁培養から５日の前に除去される。一部の実施形態では、前記プロテインキナーゼＣのアクチベータは、ＰｄｂＵを含む。一部の実施形態では、ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤は、前記懸濁培養に５日の間添加されない。一部の実施形態では、ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤は、前記懸濁培養から５日の前に除去される。一部の実施形態では、前記ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤は、ＬＤＮ１９３１８９を含む。
【０２７８】
一部の実施形態では、前記集合中の少なくとも１０％の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞が誘導されて、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞に分化する。一部の実施形態では、少なくとも９５％の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞が誘導されて、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞に分化する。
【０２７９】
一般的には、任意のＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞は、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞に分化し得る。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞は、Ｐｄｘ１、ＮＫＸ６−１及び／またはＦｏｘＡ２を発現している。
【０２８０】
一部の実施形態では、細胞クラスター形成を促進する条件下で、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、ｉ）ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、ｉｉ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、及び場合により、ｉｉｉ）低濃度のＲＡシグナル伝達経路アクチベータと、５日の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞の、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞への分化を誘導することにより、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を得ることができる。この場合、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞は、Ｐｄｘ１及びＮＫＸ６−１を発現している。
【０２８１】
一部の実施形態では、細胞クラスター形成を促進する条件下で、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、ｉ）ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、ｉｉ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、及び場合により、ｉｉｉ）ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと、２日１回、５日の期間接触させて、前記集合中の少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞に分化させることにより、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を得ることができる。この場合、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞は、Ｐｄｘ１及びＮＫＸ６−１を発現している。
【０２８２】
一部の実施形態では、集合中の少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞に分化させることにより、例えば、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、ｉ）ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、ｉｉ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、及び場合により、ｉｉｉ）ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させて、前記集合中の少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導することにより、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を得ることができる。この場合、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞は、Ｐｄｘ１及びＮＫＸ６−１を発現している。
【０２８３】
ＮＫＸ６−１＋膵臓始原細胞のインスリン＋内分泌細胞への分化の誘導
【０２８４】
本開示の態様は、インスリン陽性内分泌細胞を含む。本願明細書において有用なインスリン陽性内分泌細胞は、任意のソースから得られ、または、任意の適切なプロトコルに基づいて産生され得る。一部の態様では、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞は、インスリン陽性内分泌細胞に分化される。一部の態様では、前記インスリン陽性内分泌細胞は、例えば、ＳＣ−β細胞への誘導または成熟によりさらに分化される。
【０２８５】
一部の態様では、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞からのインスリン陽性内分泌細胞の製造方法は、（例えば、細胞クラスター形成を促進する条件下で）ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を含む細胞集合を、ａ）ＴＧＦ−βシグナル伝達阻害剤及びｂ）甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータを含む少なくとも２つのβ細胞成熟因子と接触させて、前記集合中の少なくとも１つのＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞のインスリン陽性内分泌細胞への分化を誘導することを含む。この場合、前記インスリン膵臓始原細胞は、インスリンを発現している。
【０２８６】
本開示は、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の分化を誘導して、インスリン陽性内分泌細胞に分化させる、任意のＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤（例えば、単独で、または、他のβ細胞成熟因子、例えば、甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータとの組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、ＴＧＦ−βシグナル伝達経路は、ＴＧＦ−β受容体Ｉ型キナーゼシグナル伝達を含む。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、Ａｌｋ５阻害剤ＩＩを含む。
【０２８７】
本開示は、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の分化を誘導して、インスリン陽性内分泌細胞に分化させる、任意の甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータ（例えば、単独で、または、他のβ細胞成熟因子、例えば、ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤との組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータは、トリヨードチロニン（Ｔ３）を含む。
【０２８８】
一部の実施形態では、前記方法は、前記細胞集合（例えば、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞）を、少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子と接触させることを含む。一部の実施形態では、前記方法は、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、ｉ）ＳＨＨ経路阻害剤、ｉｉ）ＲＡシグナル伝達経路アクチベータ、ｉｉｉ）γ−セクレターゼ阻害剤、ｉｖ）上皮成長因子（ＥＧＦ）ファミリーからの少なくとも１つの成長因子、及び場合により、ｖ）プロテインキナーゼ阻害剤の、少なくとも１つと接触させることを含む。
【０２８９】
一部の実施形態では、前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子は、γ−セクレターゼ阻害剤を含む。本開示は、集合中のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞のインスリン陽性内分泌細胞への分化を誘導可能な任意のγ−セクレターゼ阻害剤（例えば、単独で、または、ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤及び／または甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータのいずれかとの組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記γ−セクレターゼ阻害剤は、ＸＸＩを含む。一部の実施形態では、前記γ−セクレターゼ阻害剤は、ＤＡＰＴを含む。
【０２９０】
一部の実施形態では、前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子は、ＥＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子を含む。本開示は、集合中のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞のインスリン陽性内分泌細胞への分化を誘導可能な、ＥＧＦファミリーからの任意の成長因子（例えば、単独で、または、ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤及び／または甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータのいずれかとの組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ベタセルリンを含む。一部の実施形態では、前記ＥＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子は、ＥＧＦを含む。
【０２９１】
一部の実施形態では、前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子は、低濃度のレチノイン酸（ＲＡ）シグナル伝達経路アクチベータを含む。本開示は、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の分化を誘導して、インスリン陽性内分泌細胞に分化させる、任意のＲＡシグナル伝達経路アクチベータ（例えば、単独で、または、ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤及び／または甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータのいずれかとの組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータは、ＲＡを含む。
【０２９２】
一部の実施形態では、前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子は、ソニックヘッジホッグ（ＳＨＨ）経路阻害剤を含む。本開示は、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の分化を誘導して、インスリン陽性内分泌細胞に分化させる、任意のＳＨＨ経路阻害剤（例えば、単独で、または、ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤及び／または甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータのいずれかとの組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記ＳＨＨ経路阻害剤は、Ｓａｎｔ１を含む。
【０２９３】
一部の実施形態では、細胞集合（例えば、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞）は、グルコースに曝される。
【０２９４】
一部の実施形態では、前記細胞集合を、場合により、プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記細胞集合を、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させない。一部の実施形態では、前記細胞集合を、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。本開示は、集合中のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞のインスリン陽性内分泌細胞への分化を誘導可能な、任意のプロテインキナーゼ阻害剤（例えば、単独で、または、ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤及び／または甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータのいずれかとの組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記プロテインキナーゼ阻害剤は、スタウロスポリンを含む。
【０２９５】
一部の実施形態では、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、ｉ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、ｉｉ）ＲＡシグナル伝達経路アクチベータ、ｉｉｉ）γ−セクレターゼ阻害剤、ｉｖ）ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤、ｖ）ＴＨシグナル伝達経路アクチベータ及びｖｉ）上皮成長因子（ＥＧＦ）ファミリーからの少なくとも１つの成長因子と接触させて、少なくとも一部のＰｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞の、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性内分泌細胞への分化を誘導することにより、インスリン陽性内分泌細胞を得ることができる。この場合、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性内分泌細胞は、Ｐｄｘ１、ＮＫＸ６−１、ＮＫＸ２−２、Ｍａｆｂ、ｇｌｉｓ３、Ｓｕｒ１、Ｋｉｒ６．２、Ｚｎｔ８、ＳＬＣ２Ａ１、ＳＬＣ２Ａ３及び／またはインスリンを発現している。
【０２９６】
使用される作用剤（例えば、成長因子）の濃度が変化し得ることを、当業者であれば理解するであろう。
【０２９７】
一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、１００ｎＭ−１００μＭの間の濃度で、前記少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、１０μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、１００ｎＭ、２００ｎＭ、３００ｎＭ、４００ｎＭ、５００ｎＭ、６００ｎＭ、７００ｎＭ、８００ｎＭまたは９００ｎＭの濃度で、前記少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、２μＭ、３μＭ、４μＭ、５μＭ、６μＭ、７μＭ、８μＭまたは９μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、９．１μＭ、９．２μＭ、９．３μＭ、９．４μＭ、９．５μＭ、９．６μＭ、９．７μＭ、９．８μＭまたは９．９μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、１１μＭ、１２μＭ、１３μＭ、１４μＭ、１５μＭ、１６μＭ、１７μＭ、１８μＭまたは１９μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、１０．１μＭ、１０．２μＭ、１０．３μＭ、１０．４μＭ、１０．５μＭ、１０．６μＭ、１０．７μＭ、１０．８μＭまたは１０．９μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。
【０２９８】
一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、０．１μＭ−１０μＭの間の濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、１μＭの濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、０．２μＭ、０．３μＭ、０．４μＭ、０．５μＭ、０．６μＭ、０．７μＭ、０．８μＭまたは０．９μＭの濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、１．１μＭ、１．２μＭ、１．３μＭ、１．４μＭ、１．５μＭ、１．６μＭ、１．７μＭ、１．８μＭまたは１．９μＭの濃度で、前記γ甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、２μＭ、３μＭ、４μＭ、５μＭ、６μＭ、７μＭ、８μＭまたは９μＭの濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。
【０２９９】
一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、０．１μＭ−１０μＭの間の濃度で、前記γ−セクレターゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、１μＭの濃度で、前記γ−セクレターゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、０．２μＭ、０．３μＭ、０．４μＭ、０．５μＭ、０．６μＭ、０．７μＭ、０．８μＭまたは０．９μＭの濃度で、前記γ−セクレターゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、１．１μＭ、１．２μＭ、１．３μＭ、１．４μＭ、１．５μＭ、１．６μＭ、１．７μＭ、１．８μＭまたは１．９μＭの濃度で、前記γ−セクレターゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、２μＭ、３μＭ、４μＭ、５μＭ、６μＭ、７μＭ、８μＭまたは９μＭの濃度で、前記γ−セクレターゼ阻害剤と接触させる。
【０３００】
一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、２ｎｇ／ｍＬ−２００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、３ｎｇ／ｍＬ、４ｎｇ／ｍＬ、５ｎｇ／ｍＬ、６ｎｇ／ｍＬ、７ｎｇ／ｍＬ、８ｎｇ／ｍＬ、９ｎｇ／ｍＬ、１０ｎｇ／ｍＬ、１１ｎｇ／ｍＬ、１２ｎｇ／ｍＬ、１３ｎｇ／ｍＬ、１４ｎｇ／ｍＬ、１６ｎｇ／ｍＬ、１７ｎｇ／ｍＬ、１８ｎｇ／ｍＬまたは１９ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、３０ｎｇ／ｍＬ、３５ｎｇ／ｍＬ、４０ｎｇ／ｍＬ、４５ｎｇ／ｍＬ、５０ｎｇ／ｍＬ、５５ｎｇ／ｍＬ、６０ｎｇ／ｍＬ、６５ｎｇ／ｍＬ、７０ｎｇ／ｍＬ、７５ｎｇ／ｍＬ、８０ｎｇ／ｍＬ、８５ｎｇ／ｍＬ、９０ｎｇ／ｍＬ、９５ｎｇ／ｍＬまたは１００ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、２１ｎｇ／ｍＬ、２２ｎｇ／ｍＬ、２３ｎｇ／ｍＬ、２４ｎｇ／ｍＬ、２５ｎｇ／ｍＬ、２６ｎｇ／ｍＬ、２７ｎｇ／ｍＬ、２８ｎｇ／ｍＬまたは２９ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、２０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる。
【０３０１】
一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、０．０１μＭ−１．０μＭの間の濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、０．０２μＭ、０．０３μＭ、０．０４μＭ、０．０５μＭ、０．０６μＭ、０．０７μＭ、０．０８μＭまたは０．０９μＭの濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、０．２０μＭ、０．３０μＭ、０．４０μＭ、０．０５μＭ、０．６０μＭ、０．７０μＭ、０．８０μＭまたは０．９０μＭの濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、０．１μＭの濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。
【０３０２】
一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、０．０１μＭ−１．０μＭの間の濃度で、低濃度のＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、０．０２μＭ、０．０３μＭ、０．０４μＭ、０．０５μＭ、０．０６μＭ、０．０７μＭ、０．０８μＭまたは０．０９μＭの濃度で、低濃度の前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、０．２０μＭ、０．３０μＭ、０．４０μＭ、０．０５μＭ、０．６０μＭ、０．７０μＭ、０．８０μＭまたは０．９０μＭの濃度で、前記低濃度のＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、０．１μＭの濃度で、低濃度の前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。
【０３０３】
一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、０．１μＭと０．５μＭとの間の濃度で、前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、０．１１μＭ、０．１２μＭ、０．１３μＭ、０．１４μＭ、０．１５μＭ、０．１６μＭ、０．１７μＭ、０．１８μＭ、０．１９μＭ、０．２μＭ、０．２１μＭ、０．２２μＭ、０．２３μＭまたは０．２４μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、０．２６μＭ、０．２７μＭ、０．２８μＭ、０．２９μＭ、０．３０μＭ、０．３１μＭ、０．３２μＭ、０．３３μＭ、０．３４μＭ、０．３５μＭ、０．３６μＭ、０．３７μＭ、０．３８μＭ、０．３９μＭ、０．４０μＭ、０．４１μＭ、０．４２μＭ、０．４３μＭ、０．４４μＭ、０．４５μＭ、０．４６μＭ、０．４７μＭ、０．４８μＭ、０．４９μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、０．２５μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤と接触させる。
【０３０４】
一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、１０ｎＭ−１μＭの間の濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、１００ｎＭの濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、２０ｎＭ、３０ｎＭ、４０ｎＭ、５０ｎＭ、６０ｎＭ、７０ｎＭ、８０ｎＭまたは９０ｎＭの濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、１１０ｎＭ、１２０ｎＭ、１３０ｎＭ、１４０ｎＭ、１５０ｎＭ、１６０ｎＭ、１７０ｎＭ、１８０ｎＭまたは１９０ｎＭの濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、２００ｎＭ、３００ｎＭ、４００ｎＭ、５００ｎＭ、６００ｎＭ、７００ｎＭ、８００ｎＭまたは９００ｎＭの濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。
【０３０５】
一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、１ｍＭ−５０ｍＭの間の濃度で、グルコースと接触させる。一部の実施形態では、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を、２５ｍＭの間の濃度で、グルコースと接触させる。
【０３０６】
一部の実施形態では、細胞クラスター形成を促進する条件下において、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、ｉ）ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤，ｂ）甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータ、及び場合により、ｃ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、ｉｉ）ＲＡシグナル伝達経路アクチベータ、ｉｉｉ）γ−セクレターゼ阻害剤及びｖｉ）上皮成長因子（ＥＧＦ）ファミリーからの少なくとも１つの成長因子と、２日１回、５日と７日の間の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞の、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞への分化を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞に分化させることにより、前記インスリン陽性内分泌細胞を得ることができる。この場合、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞は、Ｐｄｘ１、ＮＫＸ６−１、ＮＫＸ２−２、Ｍａｆｂ、ｇｌｉｓ３、Ｓｕｒ１、Ｋｉｒ６．２、Ｚｎｔ８、ＳＬＣ２Ａ１、ＳＬＣ２Ａ３及び／またはインスリンを発現している。
【０３０７】
一部の実施形態では、例えば、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、ｉ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、ｉｉ）ＲＡシグナル伝達経路アクチベータ、ｉｉｉ）γ−セクレターゼ阻害剤、ｖｉ）ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤、ｖ）ＴＨシグナル伝達経路アクチベータ及び上皮成長因子（ＥＧＦ）ファミリーからの少なくとも１つの成長因子と接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞の、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞への分化を誘導することで、集合中の少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞に分化させることにより、前記インスリン陽性内分泌細胞を得ることができる。この場合、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１、インスリン陽性の内分泌細胞は、Ｐｄｘ１、ＮＫＸ６−１、ＮＫＸ２−２、Ｍａｆｂ、ｇｌｉｓ３、Ｓｕｒ１、Ｋｉｒ６．２、Ｚｎｔ８、ＳＬＣ２Ａ１、ＳＬＣ２Ａ３及び／またはインスリンを発現している。
【０３０８】
一般的には、前記細胞集合は、前記集合中の少なくとも１つの前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞のインスリン陽性内分泌細胞への分化を誘導するのに十分な期間、適切な培養培地中で維持される。典型的な培養培地は、表４に示される。
【０３０９】
【表４】
2019141072.tif 000008
【０３１０】
一部の実施形態では、ＢＥ５培地は、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞をインスリン陽性内分泌細胞に分化させるのに適した培養培地として使用され得る。一部の実施形態では、適切な培養培地は、表５に示される。
【０３１１】
一部の実施形態では、細胞クラスター形成を促進する条件は、懸濁培養を含む。一部の実施形態では、前記期間は、Ｃ−ペプチドとＮｋｘ６−１とを共発現している細胞の数を最大化させるのに十分な期間を含む。一部の実施形態では、前記期間は、少なくとも５日である。一部の実施形態では、前記期間は、５日と７日との間である。一部の実施形態では、前記期間は、少なくとも７日である。一部の実施形態では、前記懸濁培養は、毎日補充される（例えば、β細胞成熟因子を含む）。一部の実施形態では、５日と７日との間の期間により、Ｃ−ペプチドとＮｋｘ６−１とを共発現している細胞の数が最大化される。
【０３１２】
一部の実施形態では、前記集合中の少なくとも１５％の前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が誘導されて、インスリン陽性内分泌細胞に分化する。
【０３１３】
一部の実施形態では、前記集合中の少なくとも９９％の前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が誘導されて、インスリン陽性内分泌細胞に分化する。
【０３１４】
インスリン＋内分泌細胞のＳＣ−β細胞への成熟の誘導
【０３１５】
本開示の態様は、ＳＣ−β細胞を含む。本願明細書において有用なＳＣ−β細胞は、任意のソースから得られ、または、任意の適切なプロトコルに基づいて生成され得る。一部の態様では、インスリン陽性内分泌細胞は誘導されて、ＳＣ−β細胞に成熟する。
【０３１６】
一部の態様では、本開示は、インスリン陽性内分泌細胞からの、成熟したグルコース応答性β細胞の生成方法を提供する。前記方法は、（例えば、細胞クラスター形成を促進する条件下で）インスリン陽性内分泌細胞を含む細胞集合を、ａ）形質転換成長因子β（ＴＧＦ−β）シグナル伝達阻害剤、ｂ）甲状腺ホルモン（ＴＨ）シグナル伝達経路アクチベータを含む少なくとも２つのβ細胞成熟因子と接触させて、前記集合中の少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞のＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導することを含む。
【０３１７】
本開示の態様は、形状及び機能において、内在性の成熟β細胞と類似するが、それにも関わらず、天然のβ細胞と区別されるＳＣ−β細胞を生成することを含む。前記ＳＣ−β細胞は、少なくとも１回のグルコースチャレンジに対する応答を示し得る。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、少なくとも２回の連続的なグルコースチャレンジに対する応答を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、少なくとも３回の連続的なグルコースチャレンジに対する応答を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、複数回のグルコースチャレンジに対する内在性のヒト膵島の応答に類似する、複数回の（例えば、連続的な）グルコースチャレンジに対する応答を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、２回の連続的なグルコースチャレンジに対する応答において、インスリンを放出または分泌可能である。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、３回の連続的なグルコースチャレンジに対する応答において、インスリンを放出または分泌可能である。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、４回の連続的なグルコースチャレンジに対する応答において、インスリンを放出または分泌可能である。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、５回の連続的なグルコースチャレンジに対する応答において、インスリンを放出または分泌可能である。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、絶え間なく連続するグルコースチャレンジに対する応答において、インスリンを放出または分泌する。一部の実施形態では、細胞は、本願明細書における実施例に記載されたように、それらが細胞内Ｃａ２＋を繰り返し増大させるかどうかを決定することにより、それらが連続的なグルコースチャレンジに応答するかどうかを決定するために、アッセイされ得る。
【０３１８】
一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞の形態は、内在性のβ細胞の形態に類似する。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでのグルコース刺激インスリン分泌（ＧＳＩＳ）応答を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、ｉｎ  ｖｉｖｏでのＧＳＩＳ応答を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏでのＧＳＩＳ応答を示す。一部の実施形態では、前記ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｔｒｏでのＧＳＩＳ応答は、内在性の成熟β細胞のＧＳＩＳ応答に類似する。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、内在性のβ細胞のＧＳＩＳ応答に類似するｉｎ  ｖｉｔｒｏでの（ＧＳＩＳ）応答を示す。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、内在性のβ細胞のＧＳＩＳ応答に類似するｉｎ  ｖｉｖｏでのＧＳＩＳ応答を示す。前記ＧＳＩＳ応答は、ヒトまたは動物の対象に移植した直後に観察される場合がある。一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、前記ＳＣ−β細胞をヒトまたは動物の対象に移植した２週間以内に観察される。一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、前記ＳＣ−β細胞をヒトまたは動物の対象に移植した２週間以内に観察される。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞のＧＳＩＳ応答は、前記ＳＣ−β細胞をヒトまたは動物の対象に移植した、３週間、４週間、５週間、６週間、７週間、８週間、９週間、１０週間、１１週間、１２週間、１３週間、１４週間、１５週間、１６週間、１７週間、１８週間、６ヶ月、７ヶ月、８ヶ月、９ヶ月、１０ヶ月、１１ヶ月までに、または、１年以上までに観察される。
【０３１９】
一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、成熟した内在性の膵臓β細胞の少なくとも１つのマーカーを提示する。典型的なマーカーとしては、制限されず、Ｐｄｘ１、ＨＮＦ６、Ｐｔｆ１ａ、Ｓｏｘ９、ＦｏｘＡ２、Ｎｋｘ２．２、Ｎｇｎ３及びＮＫＸ６−１があげられる。一部の実施形態では、ＨＮＦ６、Ｐｔｆ１ａ、Ｓｏｘ９、ＦｏｘＡ２、Ｎｋｘ２．２、Ｎｇｎ３及びＮＫＸ６−１からなる群から選択される前記マーカーの発現は、前記ＳＣ−β細胞が得られる前記多能性幹細胞（例えば、胚性幹細胞または誘導多能性細胞）に対して、前記ＳＣ−β細胞中で、統計学的に有意な量で上方制御される。
【０３２０】
本開示は、インスリン陽性内分泌細胞を誘導して、ＳＣ−β細胞に分化及び／または成熟させる、任意のＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤（例えば、単独で、または、少なくとも１つの甲状腺ホルモン（ＴＨ）シグナル伝達経路アクチベータ、または場合により、プロテインキナーゼ阻害剤との任意の組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、ＴＧＦ−βシグナル伝達経路は、ＴＧＦ−β受容体Ｉ型キナーゼシグナル伝達を含む。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、Ａｌｋ５阻害剤ＩＩを含む。
【０３２１】
本開示は、インスリン陽性内分泌細胞を誘導して、ＳＣ−β細胞に分化及び／または成熟させる、任意の甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータ（例えば、単独で、または、少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤、または場合により、プロテインキナーゼ阻害剤との任意の組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータは、Ｔ３を含む。
【０３２２】
一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の細胞を、場合により、プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させない。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。本開示は、インスリン陽性内分泌細胞を誘導して、ＳＣ−β細胞に分化及び／または成熟させる、任意のプロテインキナーゼ阻害剤（例えば、単独で、または、少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤及び／または甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータとの任意の組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記プロテインキナーゼ阻害剤は、スタウロスポリンを含む。
【０３２３】
一部の実施形態では、前記方法は、前記細胞集合（例えば、インスリン陽性内分泌細胞）を、少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子と接触させることを含む。
【０３２４】
一部の実施形態では、前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子は、嚢胞性繊維症膜コンダクタンス制御因子（ＣＦＴＲ）阻害剤を含む。一部の実施形態では、前記方法は、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ＣＦＴＲ阻害剤と接触させることを含む。本開示は、インスリン陽性内分泌細胞を誘導して、ＳＣ−β細胞に分化及び／または成熟させる、任意のＣＦＴＲ阻害剤（例えば、単独で、または、少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤及び／または甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータ、及び場合により、プロテインキナーゼ阻害剤との任意の組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記ＣＦＴＲ阻害剤は、Ｇｌｙ−Ｈ１０１を含む。
【０３２５】
一部の実施形態では、前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子は、Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤を含む。一部の実施形態では、前記方法は、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤と接触させることを含む。本開示は、インスリン陽性内分泌細胞を誘導して、ＳＣ−β細胞に分化及び／または成熟させる、任意のＯ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ（例えば、単独で、または、少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤及び／または甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータ、及び場合により、プロテインキナーゼ阻害剤との任意の組合せで）の使用を考慮する。一部の実施形態では、前記Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤は、Ｔｈｉａｍｅｔ  Ｇを含む。
【０３２６】
使用される作用剤（例えば、成長因子）の濃度が変化し得ることを、当業者であれば理解するであろう。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞を、１００ｎＭ−１００μＭの間の濃度で、前記少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞を、１０μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞を、２００ｎＭ、３００ｎＭ、４００ｎＭ、５００ｎＭ、６００ｎＭ、７００ｎＭ、８００ｎＭまたは９００ｎＭの濃度で、前記少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞を、２μＭ、３μＭ、４μＭ、５μＭ、６μＭ、７μＭ、８μＭまたは９μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞を、９．１μＭ、９．２μＭ、９．３μＭ、９．４μＭ、９．５μＭ、９．６μＭ、９．７μＭ、９．８μＭまたは９．９μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞を、１１μＭ、１２μＭ、１３μＭ、１４μＭ、１５μＭ、１６μＭ、１７μＭ、１８μＭまたは１９μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞を、１０．１μＭ、１０．２μＭ、１０．３μＭ、１０．４μＭ、１０．５μＭ、１０．６μＭ、１０．７μＭ、１０．８μＭまたは１０．９μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる。
【０３２７】
一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞を、０．１μＭ−１０μＭの間の濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞を、１μＭの濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞を、０．２μＭ、０．３μＭ、０．４μＭ、０．５μＭ、０．６μＭ、０．７μＭ、０．８μＭまたは０．９μＭの濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞を、１．１μＭ、１．２μＭ、１．３μＭ、１．４μＭ、１．５μＭ、１．６μＭ、１．７μＭ、１．８μＭまたは１．９μＭの濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞を、２μＭ、３μＭ、４μＭ、５μＭ、６μＭ、７μＭ、８μＭまたは９μＭの濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる。
【０３２８】
一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞を、１０ｎＭ−１μＭの間の濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞を、１００ｎＭの間の濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞を、２０ｎＭ、３０ｎＭ、４０ｎＭ、５０ｎＭ、６０ｎＭ、７０ｎＭ、８０ｎＭまたは９０ｎＭの濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞を、１１０ｎＭ、１２０ｎＭ、１３０ｎＭ、１４０ｎＭ、１５０ｎＭ、１６０ｎＭ、１７０ｎＭ、１８０ｎＭまたは１９０ｎＭの濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞を、２００ｎＭ、３００ｎＭ、４００ｎＭ、５００ｎＭ、６００ｎＭ、７００ｎＭ、８００ｎＭまたは９００ｎＭの濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる。
【０３２９】
一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１００ｎＭ−１００μＭの間の濃度で、前記ＣＦＴＲ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１０ｎＭ−１０μＭの間の濃度で、前記ＣＦＴＲ阻害剤と接触させる。
【０３３０】
一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１００ｎＭ−１００μＭの間の濃度で、前記Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤と接触させる。一部の実施形態では、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１０ｎＭ−１０μＭの間の濃度で、前記Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤と接触させる。
【０３３１】
一部の実施形態では、細胞クラスター形成を促進する条件下において、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ｉ）形質転換成長因子β（ＴＧＦ−β）シグナル伝達経路阻害剤、ｉｉ）甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータ、及び場合により、ｉｉｉ）プロテインキナーゼ阻害剤と、２日に１回、７日と１４日との間の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞の、ＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ＳＣ−β細胞に分化させることにより、ＳＣ−β細胞を得ることができる。この場合、前記ＳＣ−β細胞は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏの両方におけるＧＳＩＳ応答を示す。一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、内在性のβ細胞のＧＳＩＳ応答に類似する。
【０３３２】
一部の実施形態では、例えば、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ｉ）形質転換成長因子β（ＴＧＦ−β）シグナル伝達経路阻害剤、ｉｉ）甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータ、及び場合により、ｉｉｉ）プロテインキナーゼ阻害剤と接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン産生の内分泌細胞の、ＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導することで、集合中の少なくとも一部のＰｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ＳＣ−β細胞に分化させることにより、ＳＣ−β細胞を得ることができる。この場合、前記ＳＣ−β細胞は、内在性のβ細胞のＧＳＩＳ応答に類似する、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏの両方におけるＧＳＩＳ応答を示す。
【０３３３】
一部の態様では、本開示は、細胞クラスター形成を促進する条件下において、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ｉ）形質転換成長因子β（ＴＧＦ−β）シグナル伝達経路阻害剤、ｉｉ）甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータ、及び場合により、ｉｉｉ）プロテインキナーゼ阻害剤と接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞の、ＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導することを含み、前記ＳＣ−β細胞が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏの両方におけるＧＳＩＳ応答を示す、ＳＣ−β細胞の生成方法を提供する。一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、内在性のβ細胞のＧＳＩＳ応答に類似する。
【０３３４】
一部の態様では、本開示は、ａ）集合中の多能性幹細胞を、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞に分化させること；ｂ）細胞クラスター形成を促進する条件下において、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、ｉ）ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、ｉｉ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、及び場合により、ｉｉｉ）ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと、２日に１回、５日の期間接触させて、前記集合中の少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞に分化させることであって、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が、Ｐｄｘ１及びＮＫＸ６−１を発現している前記分化；ｃ）細胞クラスター形成を促進する条件下において、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、ｉ）ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤、ｂ）ＴＨシグナル伝達経路アクチベータ、及び場合により、ｃ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、ｉｉ）ＲＡシグナル伝達経路アクチベータ、ｉｉｉ）γ−セクレターゼ阻害剤並びにｖｉ）上皮成長因子（ＥＧＦ）ファミリーからの少なくとも１つの成長因子と、２日に１回、５日と７日との間の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞の、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞への分化を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞に分化させることであって、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞が、Ｐｄｘ１、ＮＫＸ６−１、ＮＫＸ２−２、Ｍａｆｂ、ｇｌｉｓ３、Ｓｕｒ１、Ｋｉｒ６．２、Ｚｎｔ８、ＳＬＣ２Ａ１、ＳＬＣ２Ａ３及び／またはインスリンを発現している前記分化；並びに、ｄ）細胞クラスター形成を促進する条件下において、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ｉ）形質転換成長因子β（ＴＧＦ−β）シグナル伝達経路阻害剤、ｉｉ）甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータ、及び場合により、ｉｉｉ）プロテインキナーゼ阻害剤と、２日に１回、７日と１４日との間の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞の、ＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ＳＣ−β細胞に分化させることであって、前記ＳＣ−β細胞が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏにおけるＧＳＩＳ応答を示す前記分化を含む、多能性細胞からのＳＣ−β細胞の生成方法を提供する。一部の実施形態では、ＧＳＩＳ応答は、内在性のβ細胞のＧＳＩＳ応答に類似する。
【０３３５】
一部の態様では、本開示は、ａ）集合中の少なくとも一部の多能性細胞を、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞に分化させること；ｂ）細胞クラスター形成を促進する条件下において、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、ｉ）ＫＧＦ、ｉｉ）Ｓａｎｔ１、及び場合により、ｉｉｉ）低濃度のＲＡと、２日に１回、５日の期間接触させて、前記集合中の少なくとも１つの前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞に分化させることであって、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が、Ｐｄｘ１及びＮＫＸ６−１を発現している前記分化；ｃ）前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、ｉ）Ａｌｋ５阻害剤ＩＩ、ｉｉ）Ｔ３、及び場合により、ｉｉｉ）Ｓａｎｔ１、ｉｖ）ＲＡ、ｖ）ＸＸＩ及びｖｉ）ベタセルリンと、２日に１回、５日と７日との間の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞の、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞への分化を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞に分化させることであって、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞が、Ｐｄｘ１、ＮＫＸ６−１、ＮＫＸ２−２、Ｍａｆｂ、ｇｌｉｓ３、Ｓｕｒ１、Ｋｉｒ６．２、Ｚｎｔ８、ＳＬＣ２Ａ１、ＳＬＣ２Ａ３及び／またはインスリンを発現している前記分化；並びに、ｄ）細胞クラスター形成を促進する条件下において、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ｉ）Ａｌｋ５阻害剤ＩＩ、ｉｉ）Ｔ３、及び場合により、ｉｉｉ）スタウロスポリンと、２日に１回、７日と１４日との間の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞の、ＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ＳＣ−β細胞に分化させることであって、前記ＳＣ−β細胞が、内在性のβ細胞のＧＳＩＳ応答に類似する、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏにおけるＧＳＩＳ応答を示す前記分化を含む、多能性細胞からのＳＣ−β細胞の生成方法を提供する。
【０３３６】
一般的には、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞は、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性のＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導するのに十分な期間、適切な培養培地中で維持される。典型的に適切な培養培地は、上記表４及び以下の表５に示される。
【０３３７】
【表５】
2019141072.tif 000009
【０３３８】
一部の実施形態では、前記適切な培養培地は、膵島培地（ＣＭＲＬＳ）添加した、Ｃｏｎｎｏｕｇｈｔ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ  １０６６を含む。一部の実施形態では、前記適切な培養培地は、ＣＭＲＬＳの成分（補充亜鉛）を含む。一部の実施形態では、前記適切な培養培地は、表３に示される。一部の実施形態では、前記ＣＭＲＬＳは、血清（例えば、ヒト）と共に添加される。一部の実施形態では、前記ＣＭＲＬＳは、血清代替品（例えば、ＫＯＳＲ）と共に添加される。一部の実施形態では、前記ＣＭＲＬＳは、ウシ胎児血清と共に添加される。一部の実施形態では、前記ＣＭＲＬＳは、１０％  ウシ胎児血清と共に添加される。一部の実施形態では、インスリン陽性内分泌細胞をＳＣ−β細胞に分化させるのに適した培養培地は、Ｓ３培地を含む。一部の実施形態では、細胞クラスター形成を促進する条件は、懸濁培養を含む。一部の実施形態では、前記期間は、少なくとも７日を含む。一部の実施形態では、前記期間は、７日と２１日との間を含む。一部の実施形態では、前記期間は、７日と１４日との間を含む。一部の実施形態では、前記期間は、１０日と１４日との間を含む。一部の実施形態では、前記期間は、１４日を含む。一部の実施形態では、前記懸濁培養は、２日に１回補充される（例えば、前記β細胞成熟因子を含む）。
【０３３９】
一部の実施形態では、少なくとも１％、少なくとも２％、少なくとも３％、少なくとも４％、少なくとも５％、少なくとも６％、少なくとも７％、少なくとも８％、少なくとも９％、少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞が誘導されて、ＳＣ−β細胞に成熟する。一部の実施形態では、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９９％の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞が誘導されて、ＳＣ−β細胞に成熟する。一部の実施形態では、生成された細胞の少なくとも３０％が、ＳＣ−β細胞を含む。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、Ｃ−ペプチド、インスリン、ＮＫＸ６−１、Ｐｄｘ１を発現しており、ＮＫＸ６−１とＣ−ペプチドとを共発現している。
【０３４０】
一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、ヒト細胞を含む。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞のｉｎ  ｖｉｔｒｏでの生成は、規模を拡大できる。
【０３４１】
細胞の単離された集合
【０３４２】
本開示の態様は、本願明細書に記載された方法に基づいて産生された細胞の単離された集合に関する。一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合は、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を、本願明細書に記載された少なくとも１つのβ細胞成熟因子と接触させることにより産生される。一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合は、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を、本願明細書に記載された少なくとも２つのβ細胞成熟因子と接触させることにより産生される。一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合は、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を、本願明細書に記載された少なくとも３つのβ細胞成熟因子と接触させることにより産生される。一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合は、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を、本願明細書に記載された少なくとも４つのβ細胞成熟因子と接触させることにより産生される。一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合は、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を、本願明細書に記載された少なくとも５つのβ細胞成熟因子と接触させることにより産生される。一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合は、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を、少なくとも６つ、少なくとも７つ、少なくとも８つ、少なくとも９つまたは少なくとも１０個の、本願明細書に記載されたβ細胞成熟因子と接触させることにより産生される。
【０３４３】
一部の態様では、本開示は、成体型内胚葉細胞の単離された集合を提供する。例えば、多能性細胞の集合を、ｉ）ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの少なくとも１つの成長因子及びｉｉ）Ｗｎｔシグナル伝達経路アクチベータと接触させて、前記集合中の少なくとも一部の前記多能性細胞の成体型内胚葉細胞への分化を誘導する方法で、集合中の少なくとも一部の多能性細胞を、成体型内胚葉細胞に分化させることにより、成体型内胚葉細胞の単離された集合を得ることができる。この場合、前記成体型内胚葉細胞は、成体型内胚葉に固有の少なくとも１つのマーカーを発現している。
【０３４４】
一部の態様では、本開示は、原腸管細胞の単離された集合を提供する。例えば、前記成体型内胚葉細胞を、繊維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）からの少なくとも１つの成長因子と接触させて、少なくとも一部の前記成体型内胚葉細胞の原腸管細胞への分化を誘導する方法で、集合中の少なくとも一部の成体型内胚葉細胞を、原腸管細胞に分化させることにより、原腸管細胞の単離された集合を得ることができる。この場合、前記原腸管細胞は、成体型内胚葉に固有の少なくとも１つのマーカーを発現している。
【０３４５】
一部の態様では、本開示は、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞の単離された集合を提供する。例えば、前記原腸管細胞を、ｉ）少なくとも１つの骨形態形成タンパク質（ＢＭＰ）シグナル伝達経路阻害剤、ｉｉ）ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、ｉｉｉ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、ｉｖ）少なくとも１つのレチノイン酸（ＲＡ）シグナル伝達経路アクチベータ；及びｖ）少なくとも１つのプロテインキナーゼＣアクチベータと接触させて、少なくとも一部の前記原腸管細胞のＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導する方法で、集合中の少なくとも一部の原腸管細胞を、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞に分化させることにより、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞の単離された集合を得ることができる。この場合、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞は、Ｐｄｘ１を発現している。
【０３４６】
一部の態様では、本開示は、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合を提供する。例えば、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、ｉ）ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、ｉｉ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、及び場合により、ｉｉｉ）ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させて、前記集合中の少なくとも１つのＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導する方法で、集合中の少なくとも一部のＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞に分化させることにより、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合を得ることができる。この場合、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞は、Ｐｄｘ１及びＮＫＸ６−１を発現している。
【０３４７】
一部の態様では、本開示は、インスリン陽性内分泌細胞の単離された集合を提供する。例えば、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、ｉ）ＴＧＦ−βシグナル伝達阻害剤、ｉｉ）ＴＨシグナル伝達経路アクチベータ、及び場合により、ｉ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、ｉｉ）ＲＡシグナル伝達経路アクチベータ、ｉｉｉ）γ−セクレターゼ阻害剤、ｉｖ）及びｖｉ）上皮成長因子（ＥＧＦ）ファミリーからの少なくとも１つの成長因子からなる群から選択される、少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子と接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞の、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１、インスリン陽性の内分泌細胞への分化を誘導する方法で、集合中の少なくとも一部のＰｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞に分化させることにより、インスリン陽性内分泌細胞の単離された集合を得ることができる。この場合、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１、インスリン陽性の内分泌細胞は、Ｐｄｘ１、ＮＫＸ６−１、ＮＫＸ２−２、Ｍａｆｂ、ｇｌｉｓ３、Ｓｕｒ１、Ｋｉｒ６．２、Ｚｎｔ８、ＳＬＣ２Ａ１、ＳＬＣ２Ａ３及び／またはインスリンを発現している。
【０３４８】
一部の態様では、本開示は、ＳＣ−β細胞の単離された集合を提供する。例えば、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ｉ）形質転換成長因子β（ＴＧＦ−β）シグナル伝達阻害剤、ｉｉ）甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータ、及び場合により、ｉｉｉ）プロテインキナーゼ阻害剤と接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞の、ＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導する方法で、集合中の少なくとも一部のＰｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ＳＣ−β細胞に分化させることにより、ＳＣ−β細胞の単離された集合を得ることができる。この場合、前記ＳＣ−β細胞は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏでのＧＳＩＳ応答を示す。一部の実施形態では、前記ＧＳＩＳ応答は、内在性のβ細胞のＧＳＩＳ応答に類似する。
【０３４９】
本開示の態様は、本願明細書に記載された細胞（例えば、ＳＣ−β細胞）の単離された集合を含むマイクロカプセルを含む。マイクロカプセルは、当該分野において周知である。マイクロカプセルの適切な例は、文献（例えば、Ｊａｈａｎｓｏｕｚ  ｅｔ  ａｌ．，「Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ  ｏｆ  β−Ｃｅｌｌ  Ｒｅｐｌａｃｅｍｅｎｔ  Ｔｈｅｒａｐｙ  ｉｎ  Ｄｉａｂｅｔｅｓ  Ｍｅｌｌｉｔｕｓ：Ｉｓｌｅｔ  Ｃｅｌｌ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ」Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ  ２０１１；Ｖｏｌｕｍｅ  ２０１１，  Ａｒｔｉｃｌｅ  ＩＤ  ２４７９５９；Ｏｒｉｖｅ  ｅｔ  ａｌ．，「Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｃｅｌｌ  ｅｎｃａｐｓｕｌａｔｉｏｎ  ｆｏｒ  ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  ｄｅｌｉｖｅｒｙ  ｏｆ  ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ  ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ」，  Ａｄｖａｎｃｅｄ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｒｅｖｉｅｗｓ（２０１３），  ｈｔｔｐ：／／ｄｘ．ｄｏｉ．ｏｒｇ／１０．１０１６／ｊ．ａｄｄｒ．２０１３．０７．００９；Ｈｅｒｎａｎｄｅｚ  ｅｔ  ａｌ．，「Ｍｉｃｒｏｃａｐｓｕｌｅｓ  ａｎｄ  ｍｉｃｒｏｃａｒｒｉｅｒｓ  ｆｏｒ  ｉｎ  ｓｉｔｕ  ｃｅｌｌ  ｄｅｌｉｖｅｒｙ」，  Ａｄｖａｎｃｅｄ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｒｅｖｉｅｗｓ  ２０１０；６２：７１１−７３０；Ｍｕｒｕａ  ｅｔ  ａｌ．，  「Ｃｅｌｌ  ｍｉｃｒｏｅｎｃａｐｓｕｌａｔｉｏｎ  ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ：  Ｔｏｗａｒｄｓ  ｃｌｉｎｉｃａｌ  ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ」，  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  Ｒｅｌｅａｓｅ  ２００８；１３２：７６−８３；及び、Ｚａｎｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，「Ｔｈｅ  ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  ｅｎｃａｐｓｕｌａｔｅｄ  ｃｅｌｌ  ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ  ａｓ  ｔｈｅｒａｐｉｅｓ  ｆｏｒ  ｎｅｕｒｏｌｏｇｉｃａｌ  ａｎｄ  ｓｅｎｓｏｒｙ  ｄｉｓｅａｓｅｓ」，  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  Ｒｅｌｅａｓｅ  ２０１２；１６０：３−１３）に記載されている。マイクロカプセルは、各種の方法で製剤化され得る。典型的なマイクロカプセルは、外側のアルギン酸塩膜により覆われた、ポリカチオン層に囲まれたアルギン酸塩コアを含む。前記ポリカチオン膜は、半透過性膜を形成する。前記半透過性膜は、安定性及び生体適合性を付与する。ポリカチオンの例としては、制限されず、ポリ−Ｌ−リジン、ポリ−Ｌ−オルニチン、キトサン、ラクトース修飾キトサン及び光重合性生体材料があげられる。一部の実施形態では、前記アルギン酸塩コアは、例えば、ＲＧＤ配列（アルギニン、グリシン、アスパラギン酸）を有するオリゴペプチドに共有結合しているアルギン酸塩コアを含む足場を生じるように修飾される。一部の実施形態では、前記アルギン酸塩コアは、例えば、向上した安定性の化学酵素的に改変されたアルギン酸塩を有する共有的に強化されたマイクロカプセルを生じるように修飾される。一部の実施形態では、前記アルギン酸塩コアは、例えば、アクリレート官能性リン脂質のｉｎ  ｓｉｔｕ重合により構築させた膜類似物フィルムを生じるように修飾される。一部の実施形態では、マイクロカプセルは、エピメラーゼを使用して酵素的に修飾されたアルギン酸塩から構成される��一部の実施形態では、マイクロカプセルは、前記マイクロカプセル膜の隣接する層間に共有結合を含む。一部の実施形態では、前記マイクロカプセルは、フェノール部分と結合しているアルギン酸塩を含むサブシーブサイズカプセルを含む。一部の実施形態では、前記マイクロカプセルは、アルギン酸塩−アガロースを含む足場を含む。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、アルギン酸塩内に封入される前に、ＰＥＧで修飾される。一部の実施形態では、細胞、例えば、ＳＣ−β細胞の単離された集合は、光反応性リポソーム及びアルギン酸塩に封入される。前記マイクロカプセルに使用される前記アルギン酸塩は、他の適切な生体材料、例えば、制限されず、ＰＥＧ、キトサン、ＰＥＳ中空繊維、コラーゲン、ヒアルロン酸、ＲＧＤを含むデキストラン、ＥＨＤ及びＰＥＧＤＡ、ＰＭＢＶ及びＰＶＡ、ＰＧＳＡＳ、アガロース、ゼラチンを含むアガロース、ＰＬＧＡ及びこれらの多層の実施形態と置き換えられ得る。
【０３５０】
一部の実施形態では、本願明細書に記載された方法に基づいて産生された細胞集合を含む組成物は、膵臓膵島細胞の１つ以上の内分泌ポリペプチドを産生するように設計された機械的装置における機能性コンポーネントとしても使用され得る。その最も単純な形態では、前記装置は、細胞集合の通過を防止して、それらを前記装置に維持するが、前記細胞集合により分泌されたインスリン、グルカゴンまたはソマトスタチンを通過させる半透過膜の後ろに、（例えば、インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体の集合から産生された）膵臓ベータ細胞の集合を含む。これは、典型的には、分化を阻害する細胞相互作用を可能にする細胞クラスターの状態において、マイクロカプセル化された膵臓ベータ細胞の集合を含む。例えば、米国特許第４，３９１，９０９号明細書には、インスリンサイズのタンパク質を透過するが、１００，０００ｍｏｌ．ｗｔを超える分子を透過しないように架橋されている、３，０００ｍｏｌ．ｗｔより大きい多糖類ポリマーで構成された楕円形状の半透過膜に封入された膵島細胞が記載されている。米国特許第６，０２３，００９号明細書には、アガロース及びアガロペクチンから形成された半透過膜に封入された膵島細胞が記載されている。この性質のマイクロカプセルは、糖尿病患者の身体腔内に投与されるのに採用され、組織適合性の問題または細菌に対する感受性を低下させる特定の利益を有すると考えられる。
【０３５１】
本願明細書に記載された方法に基づいて、インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体から産生された膵臓ベータ細胞の集合を含み、糖尿病患者への埋込み用または体外治療用のいずれかに使用するための、より精巧な装置も考慮される。米国特許第４，３７８，０１６号明細書には、体外セグメント、皮下セグメント及び、ホルモン産生細胞を収容する取り替え可能なエンベロープを含む人工的な内分泌腺が記載されている。米国特許第５，６７４，２８９号明細書には、半透過膜により、周囲の組織に対して開かれた１つ以上の血管新生化チャンバに対して分離された、膵島チャンバを有するバイオ人工膵臓が記載されている。有用な装置は、典型的には、膵島細胞を収容するように採用されたチャンバ、及び、前記膵島細胞からの分泌タンパク質を回収し、例えば、循環グルコースレベルの前記膵島細胞へのシグナル伝達帰還を可能にする場合もある、半透過膜により前記膵島細胞から分離されたチャンバを有する。
【０３５２】
本開示の態様は、本願明細書に記載された細胞（例えば、ＳＣ−β細胞）の単離された集合を含むアッセイを含む。一部の実施形態では、前記アッセイは、β細胞の増殖、β細胞の複製、β細胞の死、β細胞の機能、免疫攻撃に対するβ細胞の感受性または脱分化もしくは分化に対するβ細胞の感受性からなる群から選択される、β細胞の運命を促進または阻害する、１つ以上の候補剤を特定するのに使用され得る。一部の実施形態では、前記アッセイは、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への分化を促進する、１つ以上の候補剤を特定するのに使用され得る。一部の実施形態では、前記アッセイは、β細胞を刺激して、インスリンを産生させるか、または、インスリンの産生もしくは分泌を増大させる、１つ以上の候補剤を特定するのに使用され得る。
【０３５３】
本開示は、本願明細書に記載された方法に基づいて、ＳＣ−β細胞が、疾患（例えば、糖尿病、肥満またはβ細胞関連障害）を患う個体から抽出または単離された細胞から得られたｉＰＳ細胞から生成され、それらのＳＣ−β細胞が、疾患を有していない健常な個体由来の正常なβ細胞と比較されて、（例えば、後天的及び／または遺伝的な）疾患用のマーカーとして有用であり得る、前記ＳＣ−β細胞と正常なβ細胞との間の差異を特定する方法を考慮する。一部の実施形態では、β細胞は、糖尿病の個体から得られ、正常なβ細胞と比較され、ついで、前記β細胞は、ｉＰＳ細胞に再プログラムされる。前記ｉＰＳ細胞は、（例えば、前糖尿病性）マーカーを特定するために、前記糖尿病の個体から得られたβ細胞には存在するが、前記正常なβ細胞には存在しない遺伝的及び／または後天的マーカーについて分析される。一部の実施形態では、糖尿病患者から得られた前記ｉＰＳ細胞及び／またはＳＣ−β細胞は、作用剤（例えば、糖尿病の表現型に関与する遺伝子を調節可能な作用剤）をスクリーニングするのに使用される。
【０３５４】
インスリン陽性内分泌細胞のＳＣ−β細胞への分化方法
【０３５５】
本願明細書に記載された方法を使用して、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体の変換によりＳＣ−β細胞を生成することは、数多くの利点を有する。まず、本開示の方法は、自家ＳＣ−β細胞の生成を可能にするものである。前記自家ＳＣ−β細胞は、個体に特異的であり、個体と遺伝的に一致する。一般的には、自家細胞は、おそらく、非自家細胞より、免疫拒絶に対する対象にほとんどならない。前記細胞は、個体からの体細胞（例えば、繊維芽細胞）を誘導多能性状態に再プログラムし、ついで、前記多能性細胞を培養して、少なくとも一部の前記多能性細胞を、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体に分化させ、続けて、前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を、前記個体内に移植し、これにより、前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体が、ｉｎ  ｖｉｖｏにおいて、ＳＣ−β細胞に成熟するか、または、前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞のＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導することにより、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体、例えば、膵臓前駆体から得られる。
【０３５６】
一部の実施形態では、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体が得られる対象は、哺乳類の対象、例えば、ヒトの対象である。一部の実施形態では、前記対象は、β細胞障害を患う。一部の実施形態では、前記対象は、糖尿病を患う。一部の実施形態では、前記対象は、糖尿病前症を患う。このような実施形態では、前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、本願明細書に記載された方法により、ｅｘ  ｖｉｖｏにおいて、ＳＣ−β細胞に分化され、ついで、前記細胞が収集された前記対象に、前記β細胞障害（例えば、糖尿病）について前記対象を処置する方法で投与され得る。
【０３５７】
一部の実施形態では、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、対象内（ｉｎ  ｖｉｖｏ）に配置され、本願明細書に記載された方法により、ｉｎ  ｖｉｖｏにおいてＳＣ−β細胞になるように変換される。一部の実施形態では、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｖｏにおける変換は、少なくとも１つ、少なくとも２つ、少なくとも３つ、少なくとも４つ、少なくとも５つ、少なくとも６つ以上の、本願明細書に記載されたβ細胞成熟因子を含む組成物を、対象に投与することにより達成され得る。一部の実施形態では、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｖｏにおける変換は、少なくとも１つ、少なくとも２つ、少なくとも３つ、少なくとも４つ、少なくとも５つ、少なくとも６つの、本願明細書に記載されたβ細胞成熟因子を含む組成物を、対象に投与することにより達成され得る。
【０３５８】
一部の実施形態では、接触させることは、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を、前記１つ以上のβ細胞成熟因子培養培地中で維持することより行われてもよい。一部の実施形態では、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、遺伝子操作され得る。一部の実施形態では、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、本願明細書に開示された１つ以上のβ細胞マーカーを発現する、例えば、膵臓及び十二指腸ホメオボックス１（Ｐｄｘ１）ポリペプチド、インスリン、ｃ−ペプチド、アミリン、Ｅ−カドヘリン、Ｈｎｆ３β、ＰＣＩ／３、Β２、Ｎｋｘ２．２、ＮＫＸ６−１、ＧＬＵＴ２、ＰＣ２、ＺｎＴ−８またはそれらに実質的に同等のアミノ酸配列、または、それらの機能性フラグメントもしくは機能性変異体から選択された、少なくとも１つのポリペプチドを発現するように遺伝子操作され得る。
【０３５９】
前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ条件下で維持される場合、従来の組織培養条件及び方法を使用することができ、同条件及び方法は、当業者に公知である。種々の細胞の単離及び培養方法は、当業者の能力の十分範囲内である。
【０３６０】
本開示の方法では、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、一般的には、標準的な条件の温度、ｐＨ及び他の環境条件、例えば、５−１０％  Ｃ０２を含む雰囲気における３７℃での組織培養プレートの接着細胞等において培養され得る。前記細胞及び／または前記培養培地は、本願明細書に記載されたＳＣ−β細胞への変換を達成するように適切に修飾される。特定の実施形態では、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体、例えば、膵臓前駆体は、細胞外マトリクスの１つ以上の特徴に類似する、または、１つ以上の細胞外マトリクスもしくは基底膜成分を含む材料上、または、同材料の存在下において培養され得る。一部の実施形態では、マトリゲル（商標）が使用される。他の材料としては、タンパク質またはその混合物、例えば、ゼラチン、コラーゲン、フィブロネクチン等があげられる。本発明の特定の実施形態では、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、細胞のフィーダ層の存在下において培養され得る。このような細胞は、例えば、マウスまたはヒト起源のものであり得る。それらは、照射され、化学不活性化剤、例えば、マイトマイシンｃによる処理により化学的に不活性化され、または、必要に応じてその増殖を阻害する他の方法で処理されることもできる。他の実施形態では、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、フィーダ細胞なしに培養される。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、細胞クラスター形成を促進する条件下において培養される。本願明細書で使用する場合、「細胞クラスター形成を促進する条件」は、前記細胞のＳＣ−β細胞への分化中に、細胞のクラスター形成を刺激する任意の条件を意味する。一部の実施形態では、細胞クラスター形成を促進する条件は、懸濁培養を含む。Ｂｏｒｅｔｔｉ及びＧｏｏｃｈ（Ｔｉｓｓｕｅ  Ｅｎｇ．  ２００６  Ａｐｒ；１２（４）：９３９−４８）により、最少接着条件（低血清培地、低接着基材）での培養が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける成体の膵管上皮細胞のベータ細胞への分化転換において、細胞クラスター形成を刺激したことが報告されている。したがって、理論に拘束されるものではないが、一部の実施形態では、細胞クラスター形成を促進する条件は、接着条件、例えば、低血清培地、低接着基材を最少に含む。
【０３６１】
特定の例では、前記β細胞成熟因子は、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を、有効量の、本願明細書に記載されたβ細胞成熟因子に曝し、または、同β細胞成熟因子と接触させることにより、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体の分化を誘導して、前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を、少なくとも１つのＳＣ−β細胞（例えば、成熟膵臓β細胞）に分化させるのに使用され得る。
【０３６２】
したがって、本願明細書には、本願明細書に記載された方法により調製された細胞及び組成物が含まれる。前記β細胞成熟因子の正確な量及び種類は、前記インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体の数、所望の分化段階及び行われた先の分化段階の回数に応じて変化し得る。
【０３６３】
特定の例では、β細胞成熟因子は、有効量で存在する。本願明細書で使用する場合、「有効量」は、インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体の集合中の少なくとも１０％または少なくとも２０％または少なくとも３０％の前記細胞の、ＳＣ−β細胞への分化のために存在するべき化合物の量を意味する。
【０３６４】
更なる例では、β細胞成熟因子は、前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体の培養培地に存在し得る。あるいは、前記β細胞成熟因子は、増殖の一部の段階中に、前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体に添加されてもよい。
【０３６５】
ＳＣ−β細胞の存在の確認及び特定
【０３６６】
本願明細書に記載された少なくとも１つのβ細胞成熟因子に対する暴露による、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体の分化の誘導により産生されたＳＣ−β細胞、例えば、成熟膵臓β細胞の存在を確認する、当業者に一般的な任意の手段を使用し得る。
【０３６７】
一部の実施形態では、β細胞マーカー、例えば、化学的に誘導されたＳＣ−β細胞の存在は、内在性のβ細胞を示す１つ以上のマーカーの有無を検出することにより行われ得る。一部の実施形態では、前記方法は、成熟β細胞のマーカーの陽性発現（例えば、存在）を検出することを含み得る。一部の実施形態では、前記マーカーは、試薬、例えば、ＮＫＸ６−１及びＣ−ペプチドの検出用試薬を使用して検出され得る。特に、本願明細書におけるＳＣ−β細胞は、ＮＫＸ６−１及びＣ−ペプチドを発現しており、未成熟なβ細胞を示すである他のマーカー（例えば、ＭａｆＢ）を顕著なレベルで発現していない。マーカー用の試薬は、例えば、前記マーカーに対する抗体、または、ＲＴ−ＰＣＲもしくはＰＣＲ反応、例えば、半定量もしくは定量ＲＴ−ＰＣＲもしくはＰＣＲ反応用のプライマーであり得る。このようなマーカーは、ＳＣ−β細胞が産生されているかどうかを評価するのに使用され得る。前記抗体または他の検出試薬は、検出に使用するための標識、例えば、放射線、蛍光（例えば、ＧＦＰ）または発色標識に結合し得る。前記検出試薬がプライマーである場合、乾燥調製物、例えば、凍結乾燥された調製物または溶液で供給され得る。
【０３６８】
少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への進行は、成熟β細胞に固有のマーカーの発現を決定することによりモニターされ得る。一部の方法において、特定のマーカーの発現は、前記マーカーの有無を検出することにより決定される。あるいは、前記特定のマーカーの発現は、前記マーカーが細胞培養物または細胞集合の細胞に存在するレベルを測定することにより決定され得る。特定の方法では、ＳＣ−β細胞に固有のマーカーの発現、及び、前記インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体、例えば、前記インスリン陽性内分泌細胞が得られる多能性幹細胞もしくは膵臓始原細胞に固有のマーカーの顕著な発現の欠落が決定される。
【０３６９】
インスリン陽性内分泌細胞からのＳＣ−β細胞（例えば、成熟膵臓β細胞）の産生をモニターすることに関して記載されたように、定量または半定量技術、例えば、ブロット転写法及び免疫細胞化学法は、当業者に一般的に公知の方法を使用して、マーカー発現を測定するのに使用され得る。あるいは、マーカー発現は、当該分野において通常公知の方法による定量ＰＣＲ等の技術の使用により、正確に定量され得る。さらに、ポリペプチドレベルにおいて、膵臓膵島ホルモン発現細胞のマーカーの多くが、分泌タンパク質であることが理解されるであろう。なお、細胞外マーカー含量を測定するための技術、例えば、ＥＬＩＳＡが使用されてもよい。
【０３７０】
ＳＣ−β細胞は、前記ＳＣ−β細胞が誘導される前記多能性幹細胞に固有のマーカーの下方制御によっても特徴付けられ得る。例えば、多能性幹細胞から得られたＳＣ−β細胞は、前記ＳＣ−β細胞が得られる前記多能性幹細胞における発現に対して、成熟において、前記多能性幹細胞のマーカーである、アルカリホスファターゼ（ＡＰ）、ＮＡＮＯＧ、ＯＣＴ−４、ＳＯＸ−２、ＳＳＥＡ４、ＴＲＡ−１−６０またはＴＲＡ−１−８１の統計学的に有意な下方制御により特徴付けられ得る。多能性幹細胞により発現される他のマーカーとしては、制限されず、アルカリホスファターゼ（ＡＰ）；ＡＢＣＧ２；ステージ特異的胚性抗原−１（ＳＳＥＡ−１）；ＳＳＥＡ−３；ＳＳＥＡ−４；ＴＲＡ−１−６０；ＴＲＡ−１−８１；Ｔｒａ−２−４９／６Ｅ；ＥＲａｓ／ＥＣＡＴＳ、Ｅ−カドヘリン；βＩＩＩ−チューブリン；α−平滑筋アクチン（α−ＳＭＡ）；繊維芽細胞成長因子４（Ｆｇｆ４）、Ｃｒｉｐｔｏ、Ｄａｘ１；ジンクフィンガータンパク質２９６（Ｚｆｐ２９６）；Ｎ−アセチルトランスフェラーゼ−１（Ｎａｔ１）；ＥＳ細胞関連転写１（ＥＣＡＴ１）；ＥＳＧ１／ＤＰＰＡＳ／ＥＣＡＴ２；ＥＣＡＴ３；ＥＣＡＴ６；ＥＣＡＴ７；ＥＣＡＴ８；ＥＣＡＴ９；ＥＣＡＴ１０；ＥＣＡＴ１５−１；ＥＣＡＴ１５−２；Ｆｔｈ１１７；Ｓａ１１４；未分化胚性細胞転写因子（Ｕｔｆ１）；Ｒｅｘ１；ｐ５３；Ｇ３ＰＤＨ；テロメラーゼ、例えば、ＴＥＲＴ；サイレントＸ染色体遺伝子；Ｄｎｍｔ３ａ；Ｄｎｍｔ３ｂ；ＴＲＩＭ２８；Ｆ−ｂｏｘ含有タンパク質１５（Ｆｂｘ１５）；Ｎａｎｏｇ／ＥＣＡＴ４；Ｏｃｔ３／４；Ｓｏｘ２；Ｋｌｆ４；ｃ−Ｍｙｃ；Ｅｓｒｒｂ；ＴＤＧＦ１；ＧＡＢＲＢ３；Ｚｆｐ４２、ＦｏｘＤ３；ＧＤＦ３；ＣＹＰ２５Ａ１；発生多能性関連２（ＤＰＰＡ２）；Ｔ細胞リンパ腫ブレークポイント１（Ｔｃｌ１）；ＤＰＰＡ３／Ｓｔｅｌｌａ；ＤＰＰＡ４；Ｄｎｍｔ３Ｌ；Ｓｏｘ１５；Ｓｔａｔ３；Ｇｒｂ２；ＳＶ４０大型Ｔ抗原；ＨＰＶ１６  Ｅ６；ＨＰＶ１６  Ｅ７、β−カテニン及びＢｍｉ１並びに、多能性についての他の一般的なマーカー等があげられる。これらの少なくとも１つ以上は、前記ＳＣ−β細胞が得られる前記多能性幹細胞と比較して、成熟において、統計学的に有意な量で下方制御される。
【０３７１】
本発明は、本願明細書において成熟β細胞マーカーとして列記されたそれらのマーカーに限定されず、本発明は、細胞表面マーカー、抗原及び他の遺伝子産物、例えば、ＥＳＴ、ＲＮＡ（例えば、マイクロＲＮＡ及びアンチセンスＲＮＡ）、ＤＮＡ（例えば、遺伝子及びｃＤＮＡ）並びにそれらの一部等のマーカーも包含する。
【０３７２】
ＳＣ−β細胞の濃縮、単離及び精製
【０３７３】
本発明の別の態様は、細胞の異種集合、例えば、ＳＣ−β細胞及び、前記ＳＣ−β細胞が得られるインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を含む細胞の混合集合からの、ＳＣ−β細胞の集合の単離に関する。上記方法のいずれかにより産生されたＳＣ−β細胞の集合は、前記ＳＣ−β細胞が得られるインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体に存在せず、前記ＳＣ−β細胞に存在する任意の細胞表面マーカーを使用することにより、濃縮、単離及び／または精製され得る。このような細胞表面マーカーは、ＳＣ−β細胞に特異的な親和性タグとも呼ばれる。ＳＣ−β細胞に特異的な親和性タグの例は、ＳＣ−β細胞の細胞表面に存在するが、他の細胞種（例えば、インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体）に実質的に存在しないマーカー分子、例えば、ポリペプチドに特異的な、抗体、リガンドまたは他の結合剤である。一部の方法では、ＳＣ−β細胞（例えば、ヒトＳＣ−β細胞）上の細胞表面抗原に結合する抗体が、本願明細書に記載された方法により産生された、（例えば、本願明細書に記載された少なくとも１つのβ細胞成熟因子と接触させることにより）化学的に誘導されたＳＣ−β細胞の濃縮、単離または精製のための親和性タグとして使用される。このような抗体は、公知であり、市販されている。
【０３７４】
ＳＣ−β細胞の濃縮、単離及び／または精製用の抗体を使用するための方法を、当業者であれば容易に理解するであろう。例えば、一部の実施形態では、抗体等の試薬は、ＳＣ−β細胞を含む細胞集合とインキュベートされる。この場合、前記細胞集合は、細胞間及び基材との接着を減少させるように処理されている。ついで、前記細胞集合は、洗浄、遠心分離及び再懸濁される。一部の実施形態では、前記抗体が標識により予め標識されている場合、細胞懸濁液は、一次抗体に結合可能な二次抗体、例えば、ＦＩＴＣコンジュゲート抗体とインキュベートされる。ついで、前記ＳＣ−β細胞は、洗浄、遠心分離及び、バッファー中で再懸濁される。ついで、前記ＳＣ−β細胞の懸濁液は、蛍光活性化細胞ソータ（ＦＡＣＳ）を使用して、分析及び分取される。抗体が結合した、蛍光を発する再プログラムされた細胞は、結合していない、蛍光していない細胞（例えば、未成熟なインスリン産生細胞）から分離して収集される。これにより、前記細胞懸濁液中に存在する他の細胞、インスリン陽性内分泌細胞もしくはその前駆体または未成熟なインスリン産生細胞（例えば、他の分化した細胞種）からの、ＳＣ−β細胞の単離がもたらされる。
【０３７５】
本願明細書に記載された方法の別の実施形態では、ＳＣ−β細胞を含む単離された細胞組成物は、別の親和性に基づく方法を使用することにより、または、ＳＣ−β細胞に特異的な同じもしくは異なるマーカーを使用する分取の更なるラウンドにより、さらに精製され得る。例えば、一部の実施形態では、まず、ＦＡＣＳ分取が、ＮＫＸ６−１を単独で、または、Ｃ−ペプチドの発現と共にのいずれかで、あるいは、前記細胞集合中でそれらのマーカーの１つを発現していない細胞（例えば、ネガティブ細胞）からの本願明細書に開示されたβ細胞マーカーと共に発現しているＳＣ−β細胞を単離するのに使用される。第２のＦＡＣソーティング、例えば、前記第１のソートとは異なるマーカーについて陽性の細胞を単離するＦＡＣＳを使用して、再度陽性細胞を分取することにより、前記細胞集合が再プログラムされた細胞に濃縮される。
【０３７６】
別の実施形態では、ＦＡＣＳソーティングは、ほとんどのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体に存在するが、ＳＣ−β細胞に存在しないマーカーについてのネガティブ分取により、細胞を分離するのに使用される。
【０３７７】
本願明細書に記載された方法の一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞は、抗体を使用することなく、蛍光標識され、ついで、蛍光活性化細胞ソータ（ＦＡＣＳ）を使用することにより、非標識細胞から単離される。このような実施形態では、ＧＦＰ、ＹＦＰをコードする核酸、または、発現可能な蛍光マーカー遺伝子をコードする別の核酸、例えば、ルシフェラーゼをコードする遺伝子が、上記された方法を使用して再プログラムされた細胞を標識するのに使用される。例えば、一部の実施形態では、まず、ＧＦＰをコードする核酸またはその生物学的に活性なフラグメントの少なくとも１つのコピーが、ＳＣ−β細胞に化学的に誘導される、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞内の、ＳＣ−β細胞中に表れるプロモータ、例えば、インスリンプロモータの下流に、導入される。これにより、ＧＦＰ遺伝子産物またはその生物学的に活性なフラグメントの発現が、前記インスリンプロモータの制御下にあることになる。
【０３７８】
直前に記載された手法に加えて、化学的に誘導されたＳＣ−β細胞は、細胞単離用の他の技術によっても単離され得る。さらに、ＳＣ−β細胞は、前記ＳＣ−β細胞の選択的生存または選択的増殖を促進する増殖条件において、連続的な継代培養法により、濃縮または単離されることもできる。このような方法は、当業者に公知であり、例えば、インスリン、ＴＧＦ−ベータファミリーのメンバー、例えば、アクチビンＡ、ＴＧＦ−ベータ１、２及び３、骨形態形成タンパク質（ＢＭＰ−２、−３、−４、−５、−６、−７、−１１、−１２及びー１３）、繊維芽細胞成長因子−１及び−２、血小板由来成長因子−ＡＡ及び−ＢＢ、血小板リッチ血漿、インスリン様成長因子（ＩＧＦ−Ｉ、ＩＩ）、成長分化因子（ＧＤＦ−５、−６、−７、−８、−１０、−１１、−１５）、血管内皮細胞由来成長因子（ＶＥＧＦ）、肝細胞成長因子（ＨＧＦ）、プレイオトロフィン、エンドセリン、上皮成長因子（ＥＧＦ）、ベタセルリン等の作用剤の使用を含み得る。他の医薬化合物としては、例えば、ニコチンアミド、グルカゴン様ペプチド−Ｉ（ＧＬＰ−１）及びＩＩ、ＧＬＰ−１及び２ミメティボディ、エキセンディン−４、レチノイン酸、副甲状腺ホルモンをあげることができる。
【０３７９】
本願明細書に記載された方法を使用して、ＳＣ−β細胞の濃縮、単離及び／または精製された集合が、（本願明細書に記載された方法により多能性幹細胞から分化された）インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体から、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて産生され得る。一部の実施形態では、好ましい濃縮、単離及び／または精製法は、ヒトインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体からの、ヒトＳＣ−β細胞のｉｎ  ｖｉｔｒｏ産生に関する。前記ヒトインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、ヒト多能性幹細胞またはヒト誘導多能性幹（ｉＰＳ）細胞から分化される。このような実施形態では、ＳＣ−β細胞が、ｉＰＳ細胞から先に得られた、成体型内胚葉細胞から先に得られた、インスリン陽性内分泌細胞から分化される場合、前記ＳＣ−β細胞は、前記ｉＰＳ細胞を生成するのに取得された細胞の対象に対して自家であり得る。
【０３８０】
本願明細書に記載された方法を使用して、ＳＣ−β細胞の単離された細胞集合は、前記インスリン陽性内分泌細胞または前駆体の集合の前記化学的誘導前の細胞集合と比較して、ＳＣ−β細胞含量において、少なくとも約２倍から約１０００倍に濃縮される。一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞は、インスリン陽性内分泌細胞または前駆体の集合の前記化学的誘導前の集合と比較して、少なくとも約５倍から約５００倍で濃縮され得る。他の実施形態では、ＳＣ−β細胞は、インスリン陽性内分泌細胞または前駆体の集合の前記化学的誘導前の集合と比較して、少なくとも約１０倍から約２００倍に濃縮され得る。さらに他の実施形態では、ＳＣ−β細胞は、インスリン陽性内分泌細胞または前駆体の集合の前記化学的誘導前の集合と比較して、少なくとも約２０倍から約１００倍に濃縮され得る。さらに他の実施形態では、ＳＣ−β細胞は、インスリン陽性内分泌細胞または前駆体の集合の前記化学的誘導前の集合と比較して、少なくとも約４０倍から約８０倍に濃縮され得る。特定の実施形態では、ＳＣ−β細胞は、インスリン陽性内分泌細胞または前駆体の集合の前記化学的誘導前の集合と比較して、少なくとも約２倍から約２０倍に濃縮され得る。
【０３８１】
ＳＣ−β細胞を含む組成物
【０３８２】
本発明の一部の実施形態は、ＳＣ−β細胞を含む、細胞組成物、例えば、細胞培養物または細胞集合に関する。この場合、前記ＳＣ−β細胞は、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体から得られる。一部の実施形態では、前記細胞組成物は、インスリン陽性内分泌細胞を含む。一部の実施形態では、前記細胞組成物は、ＮＫＸ６−１膵臓始原細胞を含む。一部の実施形態では、前記細胞組成物は、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を含む。一部の実施形態では、前記細胞組成物は、原腸管細胞を含む。一部の実施形態では、前記細胞組成物は、成体型内胚葉細胞を含む。
【０３８３】
特定の実施形態に基づいて、前記化学的に誘導されたＳＣ−β細胞は、哺乳類の細胞である。好ましい実施形態では、このようなＳＣ−β細胞は、ヒトＳＣ−β細胞である。一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞は、成体型内胚葉細胞、例えば、ヒト成体型内胚葉細胞から得られる。特定の実施形態に基づいて、前記化学的に誘導されたＰｄｘ１陽性膵臓前駆体は、哺乳類の細胞である。好ましい実施形態では、このようなＰｄｘ１陽性膵臓前駆体は、ヒトＰｄｘ１陽性膵臓前駆体である。
【０３８４】
本発明の他の実施形態は、本願明細書に開示された方法により産生されたＳＣ−β細胞を含む、組成物、例えば、単離された細胞集合または細胞培養物に関する。一部の実施形態では、本発明は、本願明細書に開示された方法により産生された、化学的に誘導されたＳＣ−β細胞を含む、組成物、例えば、単離された細胞集合または細胞培養物に関する。このような実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、前記ＳＣ−β細胞集合中の総細胞の、約９０％未満、約８５％未満、約８０％未満、約７５％未満、約７０％未満、約６５％未満、約６０％未満、約５５％未満、約５０％未満、約４５％未満、約４０％未満、約３５％未満、約３０％未満、約２５％未満、約２０％未満、約１５％未満、約１２％未満、約１０％未満、約８％未満、約６％未満、約５％未満、約４％未満、約３％未満、約２％未満または約１％未満を構成する。一部の実施形態では、前記組成物は、前記細胞集合中の総細胞の約９０％より多くを構成するＳＣ−β細胞の集合を含む。例えば、前記細胞集合中の総細胞の、少なくとも約９５％または少なくとも９６％または少なくとも９７％または少なくとも９８％または少なくとも約９９％または少なくとも約１００％が、ＳＣ−β細胞である。
【０３８５】
本発明の特定の他の実施形態は、ＳＣ−β細胞と、前記ＳＣ−β細胞が得られるインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体との組合せを含む、組成物、例えば、単離された細胞集合または細胞培養物に関する。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞が得られる前記インスリン陽性内分泌細胞は、前記単離された細胞集合または培養物中の総細胞の、約２５％未満、約２０％未満、約１５％未満、約１０％未満、約５％未満、約４％未満、約３％未満、約２％未満または約１％未満を構成する。
【０３８６】
本発明の更なる実施形態は、主要な細胞種として、化学的誘導されたＳＣ−β細胞を含む、本願明細書に記載された方法により産生された組成物、例えば、単離された細胞集合または細胞培養物に関する。一部の実施形態では、本願明細書に記載された方法及びプロセスにより、少なくとも約９９％、少なくとも約９８％、少なくとも約９７％、少なくとも約９６％、少なくとも約９５％、少なくとも約９４％、少なくとも約９３％、少なくとも約９２％、少なくとも約９１％、少なくとも約９０％、少なくとも約８９％、少なくとも約８８％、少なくとも約８７％、少なくとも約８６％、少なくとも約８５％、少なくとも約８４％、少なくとも約８３％、少なくとも約８２％、少なくとも約８１％、少なくとも約８０％、少なくとも約７９％、少なくとも約７８％、少なくとも約７７％、少なくとも約７６％、少なくとも約７５％、少なくとも約７４％、少なくとも約７３％、少なくとも約７２％、少なくとも約７１％、少なくとも約７０％、少なくとも約６９％、少なくとも約６８％、少なくとも約６７％、少なくとも約６６％、少なくとも約６５％、少なくとも約６４％、少なくとも約６３％、少なくとも約６２％、少なくとも約６１％、少なくとも約６０％、少なくとも約５９％、少なくとも約５８％、少なくとも約５７％、少なくとも約５６％、少なくとも約５５％、少なくとも約５４％、少なくとも約５３％、少なくとも約５２％、少なくとも約５１％または少なくとも約５０％のＳＣ−β細胞を含む、単離された細胞培養物及び／または細胞集合を産生される。
【０３８７】
別の実施形態では、細胞（または細胞培養物）の単離された細胞集合または組成物は、ヒトＳＣ−β細胞を含む。他の実施形態では、本願明細書に記載された方法及びプロセスにより、少なくとも約５０％、少なくとも約４５％、少なくとも約４０％、少なくとも約３５％、少なくとも約３０％、少なくとも約２５％、少なくとも約２４％、少なくとも約２３％、少なくとも約２２％、少なくとも約２１％、少なくとも約２０％、少なくとも約１９％、少なくとも約１８％、少なくとも約１７％、少なくとも約１６％、少なくとも約１５％、少なくとも約１４％、少なくとも約１３％、少なくとも約１２％、少なくとも約１１％、少なくとも約１０％、少なくとも約９％、少なくとも約８％、少なくとも約７％、少なくとも約６％、少なくとも約５％、少なくとも約４％、少なくとも約３％、少なくとも約２％または少なくとも約１％のＳＣ−βを含む単離された細胞集合が産生され得る。好ましい実施形態では、単離された細胞集合は、ヒトＳＣ−β細胞を含み得る。一部の実施形態では、前記細胞培養物または集合中のＳＣ−β細胞の割合は、前記培養物中に残存しているフィーダ細胞に関わらず算出される。
【０３８８】
本発明のさらに他の実施形態は、ＳＣ−β細胞と、それらに分化されるインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体との混合物を含む、組成物、例えば、単離された細胞集合または細胞培養物に関する。例えば、約９５個のインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体毎に、少なくとも約５個のＳＣ−β細胞を含む、細胞培養物または細胞集合が産生され得る。他の実施形態では、約５個のインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体毎に、少なくとも約９５個のＳＣ−β細胞を含む、細胞培養物または細胞集合が産生され得る。さらに、インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体に対する、他の割合のＳＣ−β細胞を含む細胞培養物または細胞集合が考慮される。例えば、約１，０００，０００個または少なくとも１００，０００個または少なくとも１０，０００個または少なくとも１，０００個または５００個または少なくとも２５０個または少なくとも１００個または少なくとも１０個のインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体毎に、少なくとも約１つのＳＣ−β細胞を含む組成物が産生され得る。
【０３８９】
本発明の更なる実施形態は、内在性のβ細胞の少なくとも１つの特徴を提示する、ヒト細胞、例えば、ヒトＳＣ−β細胞を含む、組成物、例えば、細胞培養物または細胞集合に関する。
【０３９０】
本発明の好ましい実施形態は、ＳＣ−β細胞の細胞培養物及び／または細胞集合は、非組換え細胞であるヒトＳＣ−β細胞を含む。このような実施形態では、前記細胞培養物及び／または細胞集合は、組換えヒトＳＣ−β細胞を欠いているか、または、実質的に含まない。
【０３９１】
β細胞成熟因子
【０３９２】
本開示の態様は、インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を、β細胞成熟因子と接触させて、例えば、ＳＣ−β細胞（例えば、成熟膵臓β細胞）への前記インスリン陽性内分泌細胞の成熟またはその前駆体の分化を誘導することを含む。前記「β細胞成熟因子」の用語は、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への変換を促進または同変換に関与する作用剤を意味する。一部の実施形態では、前記β細胞成熟因子は、例えば、本願明細書に記載された方法に基づいて、多能性細胞（例えば、ｉＰＳＣまたはｈＥＳＣ）の成体型内胚葉細胞への分化を誘導する。一部の実施形態では、前記β細胞成熟因子は、例えば、本願明細書に記載された方法に基づいて、成体型内胚葉細胞の原腸管細胞への分化を誘導する。一部の実施形態では、前記β細胞成熟因子は、例えば、本願明細書に記載された方法に基づいて、原腸管細胞のＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導する。一部の実施形態では、前記β細胞成熟因子は、例えば、本願明細書に記載された方法に基づいて、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導する。一部の実施形態では、前記β細胞成熟因子は、例えば、本願明細書に記載された方法に基づいて、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞のインスリン陽性分泌細胞への分化を誘導する。一部の実施形態では、前記β細胞成熟因子は、例えば、本願明細書に記載された方法に基づいて、インスリン陽性分泌細胞のＳＣ−β細胞への成熟を誘導する。
【０３９３】
一般的には、本願明細書に記載された少なくとも１つのβ細胞成熟因子は、単独で、または、他のβ細胞成熟因子との組合せで使用されて、本願明細書に開示された方法に基づいてＳＣ−β細胞を生成し得る。一部の実施形態では、少なくとも２つ、少なくとも３つ、少なくとも４つ、少なくとも５つ、少なくとも６つ、少なくとも７つ、少なくとも８つ、少なくとも９つまたは少なくとも１０個の、本願明細書に記載されたβ細胞成熟因子が、ＳＣ−β細胞の生成方法に使用される。
【０３９４】
形質転換成長因子β（ＴＧＦ−β）スーパーファミリー
【０３９５】
本開示の態様は、β細胞成熟因子としての形質転換成長因子β（ＴＧＦ−β）スーパーファミリーからの成長因子の使用に関する。前記「ＴＧＦ−βスーパーファミリー」は、公知のＴＧＦβファミリーメンバーの構造的及び機能的特徴を有するタンパク質を意味する。前記ＴＧＦβファミリーのタンパク質は、構造的及び機能的な観点の両方から十分特徴付けられる。前記ＴＧＦβシリーズのタンパク質としては、インヒビン（例えば、インヒビンＡ及びインヒビンＢ）、アクチビン（例えば、アクチビンＡ、アクチビンＢ及びアクチビンＡＢ）、ＭＩＳ（Ｍuｌｌｅｒｉａｎ阻害性物質）、ＢＭＰ（骨形態形成タンパク質）、ｄｐｐ（デカペンタプレジック）、Ｖｇ−１、ＭＮＳＦ（モノクローナル非特異的抑制因子）等があげられる。このファミリーのタンパク質の活性は、種々の細胞質における特定の受容体への特異的な結合性に基づいている。このファミリーのメンバーは、特にＣ−末端において、配列同一性の領域を共有する。前記領域は、その機能に関連する。前記ＴＧＦβファミリーは、１００個より多くの区別できるタンパク質を含み、全てが、アミノ酸配列同一性の少なくとも１つの領域を共有する。前記ファミリーのメンバーとしては、制限されず、そのＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号により特定された下記タンパク質があげられる。Ｐ０７９９５，  Ｐ１８３３１，  Ｐ０８４７６，  Ｑ０４９９８，  Ｐ０３９７０，  Ｐ４３０３２，  Ｐ５５１０２，  Ｐ２７０９２，  Ｐ４２９１７，  Ｐ０９５２９，  Ｐ２７０９３，  Ｐ０４０８８，  Ｑ０４９９９，  Ｐ１７４９１，  Ｐ５５１０４，  Ｑ９ＷＵＫ５，  Ｐ５５１０３，  Ｏ８８９５９，  Ｏ０８７１７，  Ｐ５８１６６，  Ｏ６１６４３，  Ｐ３５６２１，  Ｐ０９５３４，  Ｐ４８９７０，  Ｑ９ＮＲ２３，  Ｐ２５７０３，  Ｐ３０８８４，  Ｐ１２６４３，  Ｐ４９００１，  Ｐ２１２７４，  Ｏ４６５６４，  Ｏ１９００６，  Ｐ２２００４，  Ｐ２０７２２，  Ｑ０４９０６，  Ｑ０７１０４，  Ｐ３０８８６，  Ｐ１８０７５，  Ｐ２３３５９，  Ｐ２２００３，  Ｐ３４８２１，  Ｐ４９００３，  Ｑ９０７５１，  Ｐ２１２７５，  Ｑ０６８２６，  Ｐ３０８８５，  Ｐ３４８２０，  Ｑ２９６０７，  Ｐ１２６４４，  Ｑ９０７５２，  Ｏ４６５７６，  Ｐ２７５３９，  Ｐ４８９６９，  Ｑ２６９７４，  Ｐ０７７１３，  Ｐ９１７０６，  Ｐ９１６９９，  Ｐ２７０９１，  Ｏ４２２２２，  Ｑ２４７３５，  Ｐ２０８６３，  Ｏ１８８２８，  Ｐ５５１０６，  Ｑ９ＰＴＱ２，  Ｏ１４７９３，  Ｏ０８６８９，  Ｏ４２２２１，  Ｏ１８８３０，  Ｏ１８８３１，  Ｏ１８８３６，  Ｏ３５３１２，  Ｏ４２２２０，  Ｐ４３０２６，  Ｐ４３０２７，  Ｐ４３０２９，  Ｏ９５３９０，  Ｑ９Ｒ２２９，  Ｏ９３４４９，  Ｑ９Ｚ１Ｗ４，  Ｑ９ＢＤＷ８，  Ｐ４３０２８，  Ｑ７Ｚ４Ｐ５，  Ｐ５０４１４，  Ｐ１７２４６，  Ｐ５４８３１，  Ｐ０４２０２，  Ｐ０１１３７，  Ｐ０９５３３，  Ｐ１８３４１，  Ｏ１９０１１，  Ｑ９Ｚ１Ｙ６，  Ｐ０７２００，  Ｑ９Ｚ２１７，  Ｏ９５３９３，  Ｐ５５１０５，  Ｐ３０３７１，  Ｑ９ＭＺＥ２，  Ｑ０７２５８，  Ｑ９６Ｓ４２，  Ｐ９７７３７，  ＡＡＡ９７４１５．１，  ＮＰ−７７６７８８．１，  ＮＰ−０５８８２４���１，  ＥＡＬ２４００１．１，  １Ｓ４Ｙ，  ＮＰ−００１００９８５６．１，  ＮＰ−０３２４０６．１，  ＮＰ−９９９１９３．１，  ＸＰ−５１９０６３．１，  ＡＡＧ１７２６０．１，  ＣＡＡ４０８０６．１，  ＮＰ−００１００９４５８．１，  ＡＡＱ５５８０８．１，  ＡＡＫ４０３４１．１，  ＡＡＰ３３０１９．１，  ＡＡＫ２１２６５．１，  ＡＡＣ５９７３８．１，  ＣＡＩ４６００３．１，  Ｂ４０９０５，  ＡＡＱ５５８１１．１，  ＡＡＫ４０３４２．１，  ＸＰ−５４０３６４．１，  Ｐ５５１０２，  ＡＡＱ５５８１０．１，  ＮＰ−９９０７２７．１，  ＣＡＡ５１１６３．１，  ＡＡＤ５０４４８．１，  ＪＣ４８６２，  ＰＮ０５０４，  ＢＡＢ１７６００．１，  ＡＡＨ５６７４２．１，  ＢＡＢ１７５９６．１，  ＣＡＧ０６１８３．１，  ＣＡＧ０５３３９．１，  ＢＡＢ１７６０１．１，  ＣＡＢ４３０９１．１，  Ａ３６１９２，  ＡＡＡ４９１６２．１，  ＡＡＴ４２２００．１，  ＮＰ−７８９８２２．１，  ＡＡＡ５９４５１．１，  ＡＡＡ５９１６９．１，  ＸＰ−５４１０００．１，  ＮＰ−９９０５３７．１，  ＮＰ−００２１８４．１，  ＡＡＣ１４１８７．１，  ＡＡＰ８３３１９．１，  ＡＡＡ５９１７０．１，  ＢＡＢ１６９７３．１，  ＡＡＭ６６７６６．１，  ＷＦＰＧＢＢ，  １２０１２７８Ｃ，  ＡＡＨ３００２９．１，  ＣＡＡ４９３２６．１，  ＸＰ−３４４１３１．１，  ＡＡＨ４８８４５．１，  ＸＰ−１４８９６６．３，  Ｉ４８２３５，  Ｂ４１３９８，  ＡＡＨ７７８５７．１，  ＡＡＢ２６８６３．１，  １７０６３２７Ａ，  ＢＡＡ８３８０４．１，  ＮＰ−５７１１４３．１，  ＣＡＧ００８５８．１，  ＢＡＢ１７５９９．１，  ＢＡＢ１７６０２．１，  ＡＡＢ６１４６８．１，  ＰＮ０５０５，  ＰＮ０５０６，  ＣＡＢ４３０９２．１，  ＢＡＢ１７５９８．１，  ＢＡＡ２２５７０．１，  ＢＡＢ１６９７２．１，  ＢＡＣ８１６７２．１，  ＢＡＡ１２６９４．１，  ＢＡＡ０８４９４．１，  Ｂ３６１９２，  Ｃ３６１９２，  ＢＡＢ１６９７１．１，  ＮＰ−０３４６９５．１，  ＡＡＡ４９１６０．１，  ＣＡＡ６２３４７．１，  ＡＡＡ４９１６１．１，  ＡＡＤ３０１３２．１，  ＣＡＡ５８２９０．１，  ＮＰ−００５５２９．１，  ＸＰ−５２２４４３．１，  ＡＡＭ２７４４８．１，  ＸＰ−５３８２４７．１，  ＡＡＤ３０１３３．１，  ＡＡＣ３６７４１．１，  ＡＡＨ１０４０４．１，  ＮＰ−０３２４０８．１，  ＡＡＮ０３６８２．１，  ＸＰ−５０９１６１．１，  ＡＡＣ３２３１１．１，  ＮＰ−６５１９４２．２，  ＡＡＬ５１００５．１，  ＡＡＣ３９０８３．１，  ＡＡＨ８５５４７．１，  ＮＰ−５７１０２３．１，  ＣＡＦ９４１１３．１，  ＥＡＬ２９２４７．１，  ＡＡＷ３０００７．１，  ＡＡＨ９０２３２．１，  Ａ２９６１９，  ＮＰ−００１００７９０５．１，  ＡＡＨ７３５０８．１，  ＡＡＤ０２２０１．１，  ＮＰ−９９９７９３．１，  ＮＰ−９９０５４２．１，  ＡＡＦ１９８４１．１，  ＡＡＣ９７４８８．１，  ＡＡＣ６００３８．１，  ＮＰ  ９８９１９７．１，  ＮＰ−５７１４３４．１，  ＥＡＬ４１２２９．１，  ＡＡＴ０７３０２．１，  ＣＡＩ１９４７２．１，  ＮＰ−０３１５８２．１，  ＡＡＡ４０５４８．１���  ＸＰ−５３５８８０．１，  ＮＰ−０３７２３９．１，  ＡＡＴ７２００７．１，  ＸＰ−４１８９５６．１，  ＣＡＡ４１６３４．１，  ＢＡＣ３０８６４．１，  ＣＡＡ３８８５０．１，  ＣＡＢ８１６５７．２，  ＣＡＡ４５０１８．１，  ＣＡＡ４５０１９．１，  ＢＡＣ２８２４７．１，  ＮＰ−０３１５８１．１，  ＮＰ−９９０４７９．１，  ＮＰ−９９９８２０．１，  ＡＡＢ２７３３５．１，  Ｓ４５３５５，  ＣＡＢ８２００７．１，  ＸＰ−５３４３５１．１，  ＮＰ−０５８８７４．１，  ＮＰ−０３１５７９．１，  １ＲＥＷ，  ＡＡＢ９６７８５．１，  ＡＡＢ４６３６７．１，  ＣＡＡ０５０３３．１，  ＢＡＡ８９０１２．１，  １ＥＳ７，  ＡＡＰ２０８７０．１，  ＢＡＣ２４０８７．１，  ＡＡＧ０９７８４．１，  ＢＡＣ０６３５２．１，  ＡＡＱ８９２３４．１，  ＡＡＭ２７０００．１，  ＡＡＨ３０９５９．１，  ＣＡＧ０１４９１．１，  ＮＰ−５７１４３５．１，  １ＲＥＵ，  ＡＡＣ６０２８６．１，  ＢＡＡ２４４０６．１，  Ａ３６１９３，  ＡＡＨ５５９５９．１，  ＡＡＨ５４６４７．１，  ＡＡＨ９０６８９．１，  ＣＡＧ０９４２２．１，  ＢＡＤ１６７４３．１，  ＮＰ−０３２１３４．１，  ＸＰ−５３２１７９．１，  ＡＡＢ２４８７６．１，  ＡＡＨ５７７０２．１，  ＡＡＡ８２６１６．１，  ＣＡＡ４０２２２．１，  ＣＡＢ９０２７３．２，  ＸＰ−３４２５９２．１，  ＸＰ−５３４８９６．１，  ＸＰ−５３４４６２．１，  １ＬＸＩ，  ＸＰ−４１７４９６．１，  ＡＡＦ３４１７９．１，  ＡＡＬ７３１８８．１，  ＣＡＦ９６２６６．１，  ＡＡＢ３４２２６．１，  ＡＡＢ３３８４６．１，  ＡＡＴ１２４１５．１，  ＡＡＯ３３８１９．１，  ＡＡＴ７２００８．１，  ＡＡＤ３８４０２．１，  ＢＡＢ６８３９６．１，  ＣＡＡ４５０２１．１，  ＡＡＢ２７３３７．１，  ＡＡＰ６９９１７．１，  ＡＡＴ１２４１６．１，  ＮＰ−５７１３９６．１，  ＣＡＡ５３５１３．１，  ＡＡＯ３３８２０．１，  ＡＡＡ４８５６８．１，  ＢＡＣ０２６０５．１，  ＢＡＣ０２６０４．１，  ＢＡＣ０２６０３．１，  ＢＡＣ０２６０２．１，  ＢＡＣ０２６０１．１，  ＢＡＣ０２５９９．１，  ＢＡＣ０２５９８．１，  ＢＡＣ０２５９７．１，  ＢＡＣ０２５９５．１，  ＢＡＣ０２５９３．１，  ＢＡＣ０２５９２．１，  ＢＡＣ０２５９０．１，  ＡＡＤ２８０３９．１，  ＡＡＰ７４５６０．１，  ＡＡＢ９４７８６．１，  ＮＰ−００１４８３．２，  ＸＰ−５２８１９５．１，  ＮＰ−５７１４１７．１，  ＮＰ−００１００１５５７．１，  ＡＡＨ４３２２２．１，  ＡＡＭ３３１４３．１，  ＣＡＧ１０３８１．１，  ＢＡＡ３１１３２．１，  ＥＡＬ３９６８０．１，  ＥＡＡ１２４８２．２，  Ｐ３４８２０，  ＡＡＰ８８９７２．１，  ＡＡＰ７４５５９．１，  ＣＡＩ１６４１８．１，  ＡＡＤ３０５３８．１，  ＸＰ−３４５５０２．１，  ＮＰ−０３８５５４．１，  ＣＡＧ０４０８９．１，  ＣＡＤ６０９３６．２，  ＮＰ−０３１５８４．１，  Ｂ５５４５２，  ＡＡＣ６０２８５．１，  ＢＡＡ０６４１０．１，  ＡＡＨ５２８４６．１，  ＮＰ−０３１５８０．１，  ＮＰ−０３６９５９．１，  ＣＡＡ４５８３６．１，  ＣＡＡ４５０２０．１，  Ｑ２９６０７，  ＡＡＢ２７３３６．１，  ＸＰ−５４７８１７．１，  ＡＡＴ１２４１４．１，  ＡＡＭ５４０４９．１，  ＡＡＨ７８９０１．１，  ＡＡＯ２５７４５．１，  ＮＰ−５７０９１２．１，  ＸＰ−３９２１９４．１，  ＡＡＤ２０８２９．１，  ＡＡＣ９７１１３．１，  ＡＡＣ６１６９４．１，  ＡＡＨ６０３４０．１，  ＡＡＲ９７９０６．１，  ＢＡＡ３２２２７．１，  ＢＡＢ６８３９５．１，  ＢＡＣ０２８９５．１，  ＡＡＷ５１４５１．１，  ＡＡＦ８２１８８．１，  ＸＰ−５４４１８９．１，  ＮＰ−９９０５６８．１，  ＢＡＣ８０２１１．１，  ＡＡＷ８２６２０．１，  ＡＡＦ９９５９７．１，  ＮＰ−５７１０６２．１，  ＣＡＣ４４１７９．１，  ＡＡＢ９７４６７．１，  ＡＡＴ９９３０３．１，  ＡＡＤ２８０３８．１，  ＡＡＨ５２１６８．１，  ＮＰ−００１００４１２２．１，  ＣＡＡ７２７３３．１，  ＮＰ−０３２１３３．２，  ＸＰ−３９４２５２．１，  ＸＰ−２２４７３３．２，  ＪＨ０８０１，  ＡＡＰ９７７２１．１，  ＮＰ−９８９６６９．１，  Ｓ４３２９６，  Ｐ４３０２９，  Ａ５５４５２，  ＡＡＨ３２４９５．１，  ＸＰ−５４２９７４．１，  ＮＰ−０３２１３５．１，  ＡＡＫ３０８４２．１，  ＡＡＫ２７７９４．１，  ＢＡＣ３０８４７．１，  ＥＡＡ１２０６４．２，  ＡＡＰ９７７２０．１，  ＸＰ−５２５７０４．１，  ＡＡＴ０７３０１．１，  ＢＡＤ０７０１４．１，  ＣＡＦ９４３５６．１，  ＡＡＲ２７５８１．１，  ＡＡＧ１３４００．１，  ＡＡＣ６０１２７．１，  ＣＡＦ９２０５５．１，  ＸＰ−５４０１０３．１，  ＡＡＯ２０８９５．１，  ＣＡＦ９７４４７．１，  ＡＡＳ０１７６４．１，  ＢＡＤ０８３１９．１，  ＣＡＡ１０２６８．１，  ＮＰ−９９８１４０．１，  ＡＡＲ０３８２４．１，  ＡＡＳ４８４０５．１，  ＡＡＳ４８４０３．１，  ＡＡＫ５３５４５．１，  ＡＡＫ８４６６６．１，  ＸＰ−３９５４２０．１，  ＡＡＫ５６９４１．１，  ＡＡＣ４７５５５．１，  ＡＡＲ８８２５５．１，  ＥＡＬ３３０３６．１，  ＡＡＷ４７７４０．１，  ＡＡＷ２９４４２．１，  
ＮＰ−７２２８１３．１，  ＡＡＲ０８９０１．１，  ＡＡＯ１５４２０．２，  ＣＡＣ５９７００．１，  ＡＡＬ２６８８６．１，  ＡＡＫ７１７０８．１，  ＡＡＫ７１７０７．１，  ＣＡＣ５１４２７．２，  ＡＡＫ６７９８４．１，  ＡＡＫ６７９８３．１，  ＡＡＫ２８７０６．１，  Ｐ０７７１３，  Ｐ９１７０６，  Ｐ９１６９９，  ＣＡＧ０２４５０．１，  ＡＡＣ４７５５２．１，  ＮＰ−００５８０２．１，  ＸＰ−３４３１４９．１，  ＡＷ３４０５５．１，  ＸＰ−５３８２２１．１，  ＡＡＲ２７５８０．１，  ＸＰ−１２５９３５．３，  ＡＡＦ２１６３３．１，  ＡＡＦ２１６３０．１，  ＡＡＤ０５２６７．１，  Ｑ９Ｚ１Ｗ４，  ＮＰ−０３１５８５．２，  ＮＰ−５７１０９４．１，  ＣＡＤ４３４３９．１，  ＣＡＦ９９２１７．１，  ＣＡＢ６３５８４．１，  ＮＰ−７２２８４０．１，  ＣＡＥ４６４０７．１，  ＸＰ−４１７６６７．１，  ＢＡＣ５３９８９．１，  ＢＡＢ１９６５９．１，  ＡＡＭ４６９２２．１，  ＡＡＡ８１１６９．１，  ＡＡＫ２８７０７．１，  ＡＡＬ０５９４３．１，  ＡＡＢ１７５７３．１，  ＣＡＨ２５４４３．１，  ＣＡＧ１０２６９．１，  ＢＡＤ１６７３１．１，  ＥＡＡ００２７６．２，  ＡＡＴ０７３２０．１，  ＡＡＴ０７３００．１，  ＡＡＮ１５０３７．１，  ＣＡＨ２５４４２．１，  ＡＡＫ０８１５２．２，  ２００９３８８Ａ，  ＡＡＲ１２１６１．１，  ＣＡＧ０１９６１．１，  ＣＡＢ６３６５６．１，  ＣＡＤ６７７１４．１，  ＣＡＦ９４１６２．１，  ＮＰ−４７７３４０．１，  ＥＡＬ２４７９２．１，  ＮＰ−００１００９４２８．１，  ＡＡＢ８６６８６．１，  ＡＡＴ４０５７２．１，  ＡＡＴ４０５７１．１，  ＡＡＴ４０５６９．１，  ＮＰ−０３３８８６．１，  ＡＡＢ４９９８５．１，  ＡＡＧ３９２６６．１，  Ｑ２６９７４，  ＡＡＣ７７４６１．１，  ＡＡＣ４７２６２．１，  ＢＡＣ０５５０９．１，  ＮＰ−０５５２９７．１，  ＸＰ−５４６１４６．１，  ＸＰ−５２５７７２．１，  ＮＰ−０６０５２５．２，  ＡＡＨ３３５８５．１，  ＡＡＨ６９０８０．１，  ＣＡＧ１２７５１．１，  ＡＡＨ７４７５７．２，  ＮＰ−０３４９６４．１，  ＮＰ−０３８６３９．１，  Ｏ４２２２１，  ＡＡＦ０２７７３．１，  ＮＰ−０６２０２４．１，  ＡＡＲ１８２４４．１，  ＡＡＲ１４３４３．１，  ＸＰ−２２８２８５．２，  ＡＡＴ４０５７３．１，  ＡＡＴ９４４５６．１，  ＡＡＬ３５２７８．１，  ＡＡＬ３５２７７．１，  ＡＡＬ１７６４０．１，  ＡＡＣ０８０３５．１，  ＡＡＢ８６６９２．１，  ＣＡＢ４０８４４．１，  ＢＡＣ３８６３７．１，  ＢＡＢ１６０４６．１，  ＡＡＮ６３５２２．１，  ＮＰ−５７１０４１．１，  ＡＡＢ０４９８６．２，  ＡＡＣ２６７９１．１，  ＡＡＢ９５２５４．１，  ＢＡＡ１１８３５．１，  ＡＡＲ１８２４６．１，  ＸＰ−５３８５２８．１，  ＢＡＡ３１８５３．１，  ＡＡＫ１８０００．１，  ＸＰ−４２０５４０．１，  ＡＡＬ３５２７６．１，  ＡＡＱ９８６０２．１，  ＣＡＥ７１９４４．１，  ＡＡＷ５０５８５．１，  ＡＡＶ６３９８２．１，  ＡＡＷ２９９４１．１，  ＡＡＮ８７８９０．１，  ＡＡＴ４０５６８．１，  ＣＡＤ５７７３０．１，  ＡＡＢ８１５０８．１，  ＡＡＳ００５３４．１，  ＡＡＣ５９７３６．１，  ＢＡＢ７９４９８．１，  ＡＡＡ９７３９２．１，  ＡＡＰ８５５２６．１，  ＮＰ−９９９６００．２，  ＮＰ−８７８２９３．１，  ＢＡＣ８２６２９．１，  ＣＡＣ６０２６８．１，  ＣＡＧ０４９１９．１，  ＡＡＮ１０１２３．１，  ＣＡＡ０７７０７．１  ＡＡＫ２０９１２．１，  ＡＡＲ８８２５４．１，  ＣＡＣ３４６２９．１，  ＡＡＬ３５２７５．１，  ＡＡＤ４６９９７．１，  ＡＡＮ０３８４２．１，  ＮＰ−５７１９５１．２，  ＣＡＣ５０８８１．１，  ＡＡＬ９９３６７．１，  ＡＡＬ４９５０２．１，  ＡＡＢ７１８３９．１，  ＡＡＢ６５４１５．１，  ＮＰ−６２４３５９．１，  ＮＰ−９９０１５３．１，  ＡＡＦ７８０６９．１，  ＡＡＫ４９７９０．１，  ＮＰ−９１９３６７．２，  ＮＰ−００１１９２．１，  ＸＰ−５４４９４８．１，  ＡＡＱ１８０１３．１，  ＡＡＶ３８７３９．１，  ＮＰ−８５１２９８．１，  ＣＡＡ６７６８５．１，  ＡＡＴ６７１７１．１，  ＡＡＴ３７５０２．１，  ＡＡＤ２７８０４．１，  ＡＡＮ７６６６５．１，  ＢＡＣ１１９０９．１，  ＸＰ−４２１６４８．１，  ＣＡＢ６３７０４．１，  ＮＰ−０３７３０６．１，  Ａ５５７０６，  ＡＡＦ０２７８０．１，  ＣＡＧ０９６２３．１，  ＮＰ−０６７５８９．１，  ＮＰ−０３５７０７．１，  ＡＡＶ３０５４７．１，  ＡＡＰ４９８１７．１，  ＢＡＣ７７４０７．１，  ＡＡＬ８７１９９．１，  ＣＡＧ０７１７２．１，  Ｂ３６１９３，  ＣＡＡ３３０２４．１，  ＮＰ−００１００９４００．１，  ＡＡＰ３６５３８．１，  ＸＰ−５１２６８７．１，  ＸＰ−５１００８０．１，  ＡＡＨ０５５１３．１，  １ＫＴＺ，  ＡＡＨ１４６９０．１，  ＡＡＡ３１５２６．１．
【０３９６】
少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への分化を誘導可能な、ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの任意の成長因子が、単独で、または、１つ以上の他のβ細胞成熟因子との組合せでのいずれかで、本願明細書に記載された方法、組成物及びキットに使用され得ることが考慮される。
【０３９７】
前記ＴＧＦ−βからの前記成長因子は、天然から得ることができ、または、組換え体であることができる。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記成長因子は、アクチビンＡを含む。前記「アクチビンＡ」の用語は、アクチビンＡのフラグメント及び誘導体を含む。典型的なアクチビンＡの配列は、米国特許出願公開第２００９／０１５５２１８号明細書（「２１８公報」）に、配列番号１として開示されている。アクチビンＡの他の非限定的な例は、前記‘２１８公報の配列番号２−１６に提供される。アクチビンＡをコードする核酸の非限定的な例は、前記‘２１８公報の配列番号３３−３４に提供される。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記成長因子は、前記‘２１８公報の配列番号１に対して、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％または少なくとも９９％以上同一なアミノ酸配列を有するポリペプチドを含む。
【０３９８】
一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記成長因子は、成長分化因子８（ＧＤＦ８）を含む。前記「ＧＤＦ８」の用語は、ＧＤＦ８のフラグメント及び誘導体を含む。前記ＧＤＦ８ポリペプチドの配列は、当業者に利用可能である。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記成長因子は、ヒトＧＤＦ８ポリペプチド配列（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション  ＥＡＸ１０８８０）に対して、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％または少なくとも９９％以上同一なアミノ酸配列を有するポリペプチドを含む。
【０３９９】
一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記成長因子は、ＧＤＦ８に密接に関連する成長因子、例えば、成長分化因子１１（ＧＤＦ１１）を含む。前記ＧＤＦ１１のポリペプチド配列は、当業者に利用可能である。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記成長因子は、ヒトＧＤＦ１１のポリペプチド配列（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション  ＡＡＦ２１６３０）に対して、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％または少なくとも９９％以上同一なアミノ酸配列を有するポリペプチドを含む。
【０４００】
特定の実施形態では、本願明細書に開示された方法、組成物及びキットは、ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの少なくとも１つの成長因子を除外する。
【０４０１】
一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子に類似する作用剤により置き換えられ得る。前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子に類似する典型的な作用剤としては、制限されず、ＩＤＥ１及びＩＤＥ２があげられる。
【０４０２】
ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤
【０４０３】
本開示の態様は、β細胞成熟因子としてのＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤の使用に関する。少なくとも１つのインスリン産生内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への分化を誘導可能な、任意のＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤が、単独で、または、１つ以上の他のβ細胞成熟因子との組合せでのいずれかで、本願明細書に記載された方法、組成物及びキットに使用され得ることが考慮される。特定の実施形態では、本願明細書に開示された方法、組成物及びキットは、ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤を除外する。
【０４０４】
一部の実施形態では、ＴＧＦ−βシグナル伝達経路は、ＴＧＦ−β受容体Ｉ型キナーゼ（ＴＧＦ−βＲＩ）シグナル伝達を含む。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、Ａｌｋ５阻害剤ＩＩ（ＣＡＳ  ４４６８５９−３３−２、ＴＧＦ−Β  ＲＩキナーゼのＡＴＰ競合阻害剤、ＲｅｐＳｏｘとしても公知、ＩＵＰＡＣ名：２−［５−（６−メチルピリジン−２−イル）−１Ｈ−ピラゾール−４−イル］−１，５−ナフチリジン）を含む。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、Ａｌｋ５阻害剤ＩＩの類似体または誘導体である。
【０４０５】
一部の実施形態では、前記Ａｌｋ５阻害剤ＩＩの類似体または誘導体は、米国特許出願公開第２０１２／００２１５１９号明細書に記載された式Ｉの化合物である。同特許は、その全体が参照により本願明細書に組み込まれる。
【０４０６】
一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、米国特許出願公開第２０１０／０２６７７３１号明細書に記載されたＴＧＦ−β受容体阻害剤である。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、米国特許出願公開第２００９／０１８６０７６号及び同第２００７／０１４２３７６号明細書に記載されたＡＬＫ５阻害剤を含む。
【０４０７】
一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、Ａ８３−０１である。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、Ａ８３−０１でない。一部の実施形態では、本願明細書に記載された組成物及び方法は、Ａ８３−０１を除外する。
【０４０８】
一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＳＢ４３１５４２である。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＳＢ４３１５４２でない。一部の実施形態では、本願明細書に記載された組成物及び方法は、ＳＢ４３１５４２を除外する。
【０４０９】
一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、Ｄ４４７６である。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、Ｄ４４７６でない。一部の実施形態では、本願明細書に記載された組成物及び方法は、Ｄ４４７６を除外する。
【０４１０】
一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＧＷ７８８３８８である。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＧＷ７８８３８８でない。一部の実施形態では、本願明細書に記載された組成物及び方法は、ＧＷ７８８３８８を除外する。
【０４１１】
一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＬＹ３６４９４７である。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＬＹ３６４９４７でない。一部の実施形態では、本願明細書に記載された組成物及び方法は、ＬＹ３６４９４７を除外する。
【０４１２】
一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＬＹ５８０２７６である。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＬＹ５８０２７６でない。一部の実施形態では、本願明細書に記載された組成物及び方法は、ＬＹ５８０２７６を除外する。
【０４１３】
一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＳＢ５２５３３４である。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＳＢ５２５３３４でない。一部の実施形態では、本願明細書に記載された組成物及び方法は、ＳＢ５２５３３４を除外する。
【０４１４】
一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＳＢ５０５１２４である。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＳＢ５０５１２４でない。一部の実施形態では、本願明細書に記載された組成物及び方法は、ＳＢ５０５１２４を除外する。
【０４１５】
一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＳＤ２０８である。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＳＤ２０８でない。一部の実施形態では、本願明細書に記載された組成物及び方法は、ＳＤ２０８を除外する。
【０４１６】
一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＧＷ６６０４である。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＧＷ６６０４でない。一部の実施形態では、本願明細書に記載された組成物及び方法は、ＧＷ６６０４を除外する。
【０４１７】
一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＧＷ７８８３８８である。一部の実施形態では、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤は、ＧＷ７８８３８８でない。一部の実施形態では、本願明細書に記載された組成物及び方法は、ＧＷ７８８３８８を除外する。
【０４１８】
上記された化合物の選択から、下記のものを種々のソースから得ることができる。Ｓｉｇｍａ，  Ｐ．Ｏ．  Ｂｏｘ  １４５０８，  Ｓｔ．  Ｌｏｕｉｓ，  Ｍｏ．，  ６３１７８−９９１６から入手できる、ＬＹ−３６４９４７、ＳＢ−５２５３３４、ＳＤ−２０８及びＳＢ−５０５１２４；Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ（ＥＭＤ  Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ，  Ｉｎｃ．），  ４８０  Ｓ．  Ｄｅｍｏｃｒａｔ  Ｒｏａｄ，  Ｇｉｂｂｓｔｏｗｎ，  Ｎ．Ｊ．，  ０８０２７から入手できる、６１６４５２及び６１６４５３；ＧｌａｘｏＳｍｉｔｈＫｌｉｎｅ，  ９８０  Ｇｒｅａｔ  Ｗｅｓｔ  Ｒｏａｄ，  Ｂｒｅｎｔｆｏｒｄ，  Ｍｉｄｄｌｅｓｅｘ，  ＴＷ８  ９ＧＳ，  Ｕｎｉｔｅｄ  Ｋｉｎｇｄｏｍから入手できる、ＧＷ７８８３８８及びＧＷ６６０４；Ｌｉｌｌｙ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，  Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ，  Ｉｎｄ．  ４６２８５から入手できる、ＬＹ５８０２７６；並びに、Ｂｉｏｇｅｎ  Ｉｄｅｃ，  Ｐ．Ｏ．  Ｂｏｘ  １４６２７，  ５０００  Ｄａｖｉｓ  Ｄｒｉｖｅ，  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｔｒｉａｎｇｌｅ  Ｐａｒｋ，  Ｎ．Ｃ．，  ２７７０９−４６２７から入手できる、ＳＭ１６。
【０４１９】
ＷＮＴシグナル伝達経路
【０４２０】
本開示の態様は、β細胞成熟因子としてのＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータの使用に関する。少なくとも１つのインスリン産生内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への分化を誘導可能な、任意のＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータが、単独で、または、１つ以上の他のβ細胞成熟因子との組合せでのいずれかで、本願明細書に記載された方法、組成物及びキットに使用され得ることが考慮される。
【０４２１】
一部の実施形態では、前記ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータは、ＣＨＩＲ９９０２１を含む。一部の実施形態では、前記ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータは、ＣＨＩＲ９９０２１の誘導体、例えば、ＣＨＩＲ９９０２１の塩、例えば、ＣＨＩＲ９９０２１の三塩酸塩、塩酸塩を含む。一部の実施形態では、前記ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータは、Ｗｎｔ３ａ組換えタンパク質を含む。一部の実施形態では、前記ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータは、グリコーゲン合成酵素キナーゼ３（ＧＳＫ３）阻害剤を含む。典型的なＧＳＫ３阻害剤としては、制限されず、３Ｆ８、Ａ１０７０７２２、ＡＲ−Ａ０１４４１８、ＢＩＯ、ＢＩＯ−アセトキシム、ＦＲＡＴｉｄｅ、１０Ｚ−Ｈｙｍｅｎｉａｌｄｉｓｉｎｅ、インジルビン−３’オキシム、ケンパウロン、Ｌ８０３、Ｌ８０３−ｍｔｓ、炭酸リチウム、ＮＳＣ６９３８６８、ＳＢ２１６７６３、ＳＢ４１５２８６、ＴＣ−Ｇ２４、ＴＣＳ２００２、ＴＣＳ２１３１１、ＴＷＳ１１９及びこれらのいずれかの類似体または誘導体があげられる。特定の実施形態では、本願明細書に開示された方法、組成物及びキットは、ＷＮＴシグナル伝達経路アクチベータを除外する。
【０４２２】
繊維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）ファミリー
【０４２３】
本開示の態様は、β細胞成熟因子としてのＦＧＦファミリーからの成長因子の使用に関する。少なくとも１つのインスリン産生内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への分化を誘導可能な、ＦＧＦファミリーからの任意の成長因子が、単独で、または、１つ以上の他のβ細胞成熟因子との組合せでのいずれかで、本願明細書に記載された方法、組成物及びキットに使用され得ることが考慮される。特定の実施形態では、本願明細書に開示された方法、組成物及びキットは、ＦＧＦファミリーからの成長因子を除外する。
【０４２４】
一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ケラチノサイト成長因子（ＫＧＦ）を含む。前記ＫＧＦのポリペプチド配列は、当業者に利用可能である。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記成長因子は、ヒトＫＧＦのポリペプチド配列（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション  ＡＡＢ２１４３１）に対して、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％または少なくとも９９％以上同一なアミノ酸配列を有するポリペプチドを含む。
【０４２５】
一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ＦＧＦ２を含む。前記ＦＧＦ２のポリペプチド配列は、当業者に利用可能である。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記成長因子は、ヒトＦＧＦ２のポリペプチド配列（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション  ＮＰ＿００１９９７）に対して、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％または少なくとも９９％以上同一なアミノ酸配列を有するポリペプチドを含む。
【０４２６】
一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ＦＧＦ８Ｂを含む。前記ＦＧＦ８Ｂのポリペプチド配列は、当業者に利用可能である。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記成長因子は、ヒトＦＧＦ８Ｂのポリペプチド配列（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション  ＡＡＢ４０９５４）に対して、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％または少なくとも９９％以上同一なアミノ酸配列を有するポリペプチドを含む。
【０４２７】
一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ＦＧＦ１０を含む。前記ＦＧＦ１０のポリペプチド配列は、当業者に利用可能である。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記成長因子は、ヒトＦＧＦ１０のポリペプチド配列（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション  ＣＡＧ４６４８９）に対して、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％または少なくとも９９％以上同一なアミノ酸配列を有するポリペプチドを含む。
【０４２８】
一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ＦＧＦ２１を含む。前記ＦＧＦ２１のポリペプチド配列は、当業者に利用可能である。一部の実施形態では、前記ＦＧＦファミリーからの前記成長因子は、ヒトＦＧＦ２１のポリペプチド配列（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション  ＡＡＱ８９４４４．１）に対して、少なくとも３０％、少なくとも４０％、少なくとも５０％、少なくとも６０％、少なくとも７０％、少なくとも８０％、少なくとも９０％、少なくとも９５％または少なくとも９９％以上同一なアミノ酸配列を有するポリペプチドを含む。
【０４２９】
骨形態形成タンパク質（ＢＭＰ）シグナル伝達経路阻害剤
【０４３０】
本開示の態様は、β細胞成熟因子としてのＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤の使用に関する。ＢＭＰシグナル伝達ファミリーは、前記ＴＧＦ−βスーパーファミリーの種々の部分集合である（Ｓｅｂａｌｄ  ｅｔ  ａｌ．  Ｂｉｏｌ．  Ｃｈｅｍ．  ３８５：６９７−７１０，  ２００４）。２０個を超える公知のＢＭＰリガンドが、３つの区別できるＩＩ型（ＢＭＰＲＩＩ、ＡｃｔＲＩＩａ及びＡｃｔＲＩＩｂ）並びに、少なくとも３つのＩ型（ＡＬＫ２、ＡＬＫ３及びＡＬＫ６）の受容体により認識される。二量体リガンドは、二量体ヘテロマーの構築を促進し、構成的に活性なＩＩ型受容体セリン／スレオニンキナーゼがＩ型受容体セリン／スレオニンキナーゼをリン酸化するのを可能にする。活性化されたＩ型受容体は、ＢＭＰ応答性（ＢＲ−）ＳＭＡＤエフェクタ（ＳＭＡＤ１、５及び８）をリン酸化して、ＴＧＦシグナル伝達も促進する、ＳＭＡＤ４、ｃｏ−ＳＭＡＤとの複合体において、核内移行を促進する。さらに、ＢＭＰシグナルは、ＳＭＡＤ依存法で、細胞内エフェクタ、例えば、ＭＡＰＫ  ｐ３８を活性化し得る（Ｎｏｈｅ  ｅｔ  ａｌ．  Ｃｅｌｌ  Ｓｉｇｎａｌ  １６：２９１−２９９，  ２００４）。可溶性ＢＭＰアンタゴニスト、例えば、ノギン、コーディン、ｇｒｅｍｌｉｎ及びフォリスタチンは、リガンド隔離により、ＢＭＰシグナル伝達を制限する。
【０４３１】
少なくとも１つのインスリン産生内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への分化を誘導可能な、任意のＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤が、単独で、または、１つ以上の他のβ細胞成熟因子との組合せでのいずれかで、本願明細書に記載された方法、組成物及びキットに使用され得ることが考慮される。本願明細書に記載された任意の態様における特定の実施形態では、本願明細書に開示された方法、組成物及びキットは、ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤を除外する。
【０４３２】
一部の実施形態では、前記ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤は、ＬＤＮ１９３１８９（ＬＤＮ１９３１８９、１０６２３６８−２４−４、ＬＤＮ−１９３１８９、ＤＭ３１８９、ＤＭ−３１８９としても公知、ＩＵＰＡＣ名：４−［６−（４−ピペラジン−１−イルフェニル）ピラゾロ［１，５−ａ］ピリミジン−３−イル］キノロン）を含む。
【０４３３】
一部の実施形態では、前記ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤は、ＬＤＮ１９３１８９の類似体もしくは誘導体、例えば、塩、水和物、溶媒和物、エステル、または、ＬＤＮ１９３１８９のプロドラッグを含む。一部の実施形態では、ＬＤＮ１９３１８９の誘導体（例えば、塩）は、ＬＤＮ１９３１８９の塩酸塩を含む。
【０４３４】
一部の実施形態では、前記ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤は、米国特許出願公開第２０１１／００５３９３０号明細書からの式Ｉの化合物を含む。
【０４３５】
ソニックヘッジホッグ（ＳＨＨ）シグナル伝達経路
【０４３６】
本開示の態様は、β細胞成熟因子としてのＳＨＨシグナル伝達経路阻害剤の使用に関する。少なくとも１つのインスリン産生内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への分化を誘導可能な、任意のＳＨＨシグナル伝達経路阻害剤が、単独で、または、１つ以上の他のβ細胞成熟因子との組合せでのいずれかで、本願明細書に記載された方法、組成物及びキットに使用され得ることが考慮される。
【０４３７】
一部の実施形態では、前記ＳＨＨシグナル伝達経路阻害剤は、Ｓａｎｔ１を含む。一部の実施形態では、前記ＳＨＨシグナル伝達経路阻害剤は、ＳＡＮＴ２を含む。一部の実施形態では、前記ＳＨＨシグナル伝達経路阻害剤は、ＳＡＮＴ３を含む。一部の実施形態では、前記ＳＨＨシグナル伝達経路阻害剤は、ＳＡＮＴ４を含む。一部の実施形態では、前記ＳＨＨシグナル伝達経路阻害剤は、Ｃｕｒ６１４１４を含む。一部の実施形態では、前記ＳＨＨシグナル伝達経路阻害剤は、フォースコリンを含む。一部の実施形態では、前記ＳＨＨシグナル伝達経路阻害剤は、トマチジンを含む。一部の実施形態では、前記ＳＨＨシグナル伝達経路阻害剤は、ＡＹ９９４４を含む。一部の実施形態では、前記ＳＨＨシグナル伝達経路阻害剤は、トリパラノールを含む。一部の実施形態では、前記ＳＨＨシグナル伝達経路阻害剤は、（米国特許出願公開第２００４／００６０５６８号明細書に開示された）化合物Ａまたは化合物Ｂを含む。一部の実施形態では、前記ＳＨＨシグナル伝達経路阻害剤は、米国特許出願公開第２００６／０２７６３９１号明細書に開示された、ヘッジホッグシグナル伝達経路を遮断するステロイド系アルカロイド（例えば、シクロパミンまたはその誘導体）を含む。特定の実施形態では、本願明細書に開示された方法、組成物及びキットは、ＳＨＨシグナル伝達経路阻害剤を除外する。
【０４３８】
レチノイン酸シグナル伝達経路
【０４３９】
本開示の態様は、β細胞成熟因子としてのレチノイン酸シグナル伝達の調節剤の使用に関する。少なくとも１つのインスリン産生内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への分化を、単独あるいは１つまたは複数の他のβ細胞変異体要素と一緒かのいずれかで誘導可能な、レチノイン酸シグナル伝達の任意の調節剤が、本願明細書に記載された方法、組成物及びキットに使用され得ることが考慮される。
【０４４０】
一部の実施形態では、前記レチノイン酸シグナル伝達の調節剤は、レチノイン酸シグナル伝達のアクチベータを含む。一部の実施形態では、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータは、レチノイン酸を含む。一部の実施形態では、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータは、レチノイン酸受容体アゴニストを含む。典型的なレチノイン酸受容体アゴニストとしては、制限されず、ＣＤ１５３０、ＡＭ５８０、ＴＴＮＰＢ、ＣＤ４３７、Ｃｈ５５、ＢＭＳ９６１、ＡＣ２６１０６６、ＡＣ５５６４９、ＡＭ８０、ＢＭＳ７５３、タザロテン、アダパレン及びＣＤ２３１４があげられる。
【０４４１】
一部の実施形態では、前記レチノイン酸シグナル伝達の調節剤は、前記レチノイン酸シグナル伝達の阻害剤を含む。一部の実施形態では、前記レチノイン酸シグナル伝達経路阻害剤は、ＤＥＡＢ（ＩＵＰＡＣ名：２−［２−（ジエチルアミノ）エトキシ］−３−プロップ−２−エニルベンズアルデヒド）を含む。一部の実施形態では、前記レチノイン酸シグナル伝達経路阻害剤は、ＤＥＡＢの類似体または誘導体を含む。
【０４４２】
一部の実施形態では、前記レチノイン酸シグナル伝達経路阻害剤は、レチノイン酸受容体アンタゴニストを含む。一部の実施形態では、前記レチノイン酸受容体アンタゴニストは、（Ｅ）−４−［２−（５，６−ジヒドロ−５，５−ジメチル−８−フェニル−２−ナフタレニル）エテニル］安息香酸、（Ｅ）−４−［［（５，６−ジヒドロ−５，５−ジメチル−８−フェニルエチニル）−２−ナフタレニル］エテニル］安息香酸、（Ｅ）−４−［２−［５，６−ジヒドロ−５，５−ジメチル−８−（２−ナフタレニル）−２−ナフタレニル］エテニル］−安息香酸及び（Ｅ）−４−［２−［５，６−ジヒドロ−５，５−ジメチル−８−（４−メトキシフェニル）−２−ナフタレニル］エテニル］安息香酸を含む。一部の実施形態では、前記レチノイン酸受容体アンタゴニストは、ＢＭＳ１９５６１４（ＣＡＳ＃  ２５３３１０−４２−８）、ＥＲ５０８９１（ＣＡＳ＃  １８７４００−８５−７）、ＢＭＳ４９３（ＣＡＳ＃  １７０３５５−７８−９）、ＣＤ２６６５（ＣＡＳ＃  １７０３５５−７８−９）、ＬＥ１３５（ＣＡＳ＃  １５５８７７−８３−１）、ＢＭＳ４５３（ＣＡＳ＃  １６６９７７−４３−１）またはＭＭ１１２５３（ＣＡＳ＃  ３４５９５２−４４−５）を含む。
【０４４３】
特定の実施形態では、本願明細書に開示された方法、組成物及びキットは、レチノイン酸シグナル伝達の調節剤を除外する。特定の実施形態では、本願明細書に開示された方法、組成物及びキットは、レチノイン酸シグナル伝達経路アクチベータを除外する。特定の実施形態では、本願明細書に開示された方法、組成物及びキットは、レチノイン酸シグナル伝達経路阻害剤を除外する。
【０４４４】
プロテインキナーゼＣ
【０４４５】
本開示の態様は、β細胞成熟因子としてのプロテインキナーゼＣアクチベータの使用に関する。プロテインキナーゼＣは、プロテインキナーゼ酵素の最も大きなファミリーの１つであり、各種のアイソフォームから構成される。従来のアイソフォームとしては、βＩ、βＩＩ、γがあげられる；新規なアイソフォームとしては、δ、ε、η、Θがあげられる；異型のアイソフォームとしては、ξ及びι／λがあげられる。ＰＫＣ酵素は、主に細胞質に存在するが、活性化された際に膜に移行する。細胞質では、ＰＫＣは、他のキナーゼまたは自己リン酸化によりリン酸化されている。活性化されるためには、一部のＰＫＣアイソフォーム（例えば、ＰＫＣ−ε）は、ジアシルグリセロール（「ＤＡＧ」）結合部位またはホスファチジルセリン（「ＰＳ」）結合部位に結合する分子が必要である。他のものは、任意の二次結合メッセンジャを全く必要とせずに活性化され得る。前記ＤＡＧ部位に結合するＰＫＣアクチベータとしては、制限されず、ブリオスタチン、ピコログ、ホルボールエステル、アプリシアトキシン及びグニジマクリンがあげられる。前記ＰＳ部位に結合するＰＫＣアクチベータとしては、制限されず、多不飽和脂肪酸及びその誘導体があげられる。少なくとも１つのインスリン産生内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への分化を誘導可能な、任意のプロテインキナーゼＣアクチベータが、単独で、または、１つ以上の他のβ細胞成熟因子との組合せでのいずれかで、本願明細書に記載された方法、組成物及びキットに使用され得ることが考慮される。
【０４４６】
一部の実施形態では、前記ＰＫＣアクチベータは、ＰｄｂＵを含む。一部の実施形態では、前記ＰＫＣアクチベータは、ＴＰＢを含む。一部の実施形態では、前記ＰＫＣアクチベータは、シクロプロパン化多不飽和脂肪酸、シクロプロパン化単不飽和脂肪酸、シクロプロパン化多不飽和脂肪アルコール、シクロプロパン化単不飽和脂肪アルコール、シクロプロパン化多不飽和脂肪酸エステル、シクロプロパン化単不飽和脂肪酸エステル、シクロプロパン化多不飽和脂肪酸硫酸塩、シクロプロパン化単不飽和脂肪酸硫酸塩、シクロプロパン化多不飽和脂肪酸リン酸塩、シクロプロパン化単不飽和脂肪酸硫酸塩、マクロ環状ラクトン、ＤＡＧ誘導体、イソプレノイド、オクチリドラクタムＶ、グニジマクリン、イリパリダル、インゲノール、ナフタレンスルホンアミド、ジアシルグリセロールキナーゼ阻害剤、繊維芽細胞成長因子１８（ＦＧＦ−１８）、インスリン成長因子、国際公開第２０１３／０７１２８２号パンフレットに記載されたホルモン及び成長因子アクチベータを含む。一部の実施形態では、前記ブリオスタチンは、ブリオスタチン−１、ブリオスタチン−２、ブリオスタチン−３、ブリオスタチン−４、ブリオスタチン−５、ブリオスタチン−６、ブリオスタチン−７、ブリオスタチン−８、ブリオスタチン−９、ブリオスタチン−１０、ブリオスタチン−１１、ブリオスタチン−１２、ブリオスタチン−１３、ブリオスタチン−１４、ブリオスタチン−１５、ブリオスタチン−１６、ブリオスタチン−１７またはブリオスタチン−１８を含む。特定の実施形態では、本願明細書に開示された方法、組成物及びキットは、プロテインキナーゼＣアクチベータを除外する。
【０４４７】
γ−セクレターゼ阻害剤
【０４４８】
本開示の態様は、β細胞成熟因子としてのγ−セクレターゼ阻害剤の使用に関する。少なくとも１つのインスリン産生内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への分化を誘導可能な、任意のγ−セクレターゼ阻害剤が、単独で、または、１つ以上の他のβ細胞成熟因子との組合せでのいずれかで、本願明細書に記載された方法、組成物及びキットに使用され得ることが考慮される。数多くのγ−セクレターゼ阻害剤が公知である。一部の実施形態では、前記γ−セクレターゼ阻害剤は、ＸＸＩを含む。一部の実施形態では、前記γ−セクレターゼ阻害剤は、ＤＡＰＴを含む。更なる典型的なγ−セクレターゼ阻害剤としては、制限されず、米国特許第７，０４９，２９６号、同第８，４８１，４９９号、同第８，５０１，８１３号明細書及び国際公開第２０１３／０５２７００号パンフレットに記載されたγ−セクレターゼ阻害剤があげられる。特定の実施形態では、本願明細書に開示された方法、組成物及びキットは、γ−セクレターゼ阻害剤を除外する。
【０４４９】
甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータ
【０４５０】
本開示の態様は、β細胞成熟因子としての甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータの使用に関する。少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への分化を誘導可能な、任意の甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータが、単独で、または、１つ以上の他のβ細胞成熟因子との組合せでのいずれかで、本願明細書に記載された方法、組成物及びキットに使用され得ることが考慮される。本願明細書に記載された任意の態様における特定の実施形態では、本願明細書に開示された方法、組成物及びキットは、甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータを除外する。本願明細書に記載された任意の態様における特定の実施形態では、本願明細書に開示された方法、組成物及びキットは、本願明細書に記載されたＴ３またはＴ３の類似体を除外する。
【０４５１】
一部の実施形態では、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータは、トリヨードチロニン（Ｔ３）を含む。一部の実施形態では、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータは、Ｔ３の類似体または誘導体を含む。Ｔ３の典型的な類似体としては、制限されず、選択的及び非選択的甲状腺模倣物、ＴＲβ選択的アゴニスト−ＧＣ−１、ＧＣ−２４、４−ヒドロキシ−ＰＣＢ１０６、ＭＢ０７８１１、ＭＢ０７３４４、３，５−ジヨードチロプロパン酸（ＤＩＴＰＡ）；選択的ＴＲ−βアゴニスト  ＧＣ−１；３−ヨードチロナミン（Ｔ（１）ＡＭ）及び３，３’，５−トリヨードチロ酢酸（Ｔｒｉａｃ）（ホルモンであるチロキシン（Ｔ４）の生体活性代謝産物）；ＫＢ−２１１５及びＫＢ−１４１；チロナミン；ＳＫＦ  Ｌ−９４９０１；ＤＩＢＩＴ；３’−ＡＣ−Ｔ２；（チロキシン［Ｔ４］及びトリヨードチロニン［Ｔ３］のアラニン鎖における酸化的脱アミノ化及び脱カルボキシル化による）テトラヨードチロ酢酸（Ｔｅｔｒａｃ）及びトリヨードチロ酢酸（Ｔｒｉａｃ）、（Ｔ４及びＴ３の脱ヨード化による）３，３’，５’−トリヨードチロニン（ｒＴ３）、（Ｔ４、Ｔ３及びｒＴ３の脱ヨード化による）３，３’−ジヨードチロニン（３，３’−Ｔ２）及び３，５−ジヨードチロニン（Ｔ２）並びに（Ｔ４及びＴ３の脱ヨード化及びアミノ酸の脱カルボキシル化による）３−ヨードチロナミン（Ｔ１ＡＭ）及びチロナミン（Ｔ０ＡＭ）並びに、ＴＨの構造類似体、例えば、３，５，３’−トリヨードチロプロパン酸（Ｔｒｉｐｒｏｐ）、３，５−ジブロモ−３−ピリダジノン−１−チロニン（Ｌ−９４０９０１）、Ｎ−［３，５−ジメチル−４−（４’−ヒドロキシ−３’−イソプロピルフェノキシ）−フェニル］−オキシム酸（ＣＧＳ２３４２５）、３，５−ジメチル−４−［（４’−ヒドロキシ−３’−イソプロピルベンジル）−フェノキシ］酢酸（ＧＣ−１）、３，５−ジクロロ−４−［（４−ヒドロキシ−３−イソプロピルフェノキシ）フェニル］酢酸（ＫＢ−１４１）及び３，５−ジヨードチロプロパン酸（ＤＩＴＰＡ）があげられる。
【０４５２】
一部の実施形態では、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータは、Ｔ３のプロドラッグまたはプロホルモン、例えば、Ｔ４甲状腺ホルモン（例えば、チロキシンまたは、Ｌ−３，５，３’，５’−テトラヨードチロニン）を含む。
【０４５３】
一部の実施形態では、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータは、米国特許第７，１６３，９１８号明細書に記載されたヨードチロニン組成物である。
【０４５４】
上皮成長因子（ＥＧＦ）ファミリー
【０４５５】
本開示の態様は、β細胞成熟因子としてのＥＧＦファミリーからの成長因子の使用に関する。少なくとも１つのインスリン産生内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への分化を誘導可能な、ＥＧＦファミリーからの任意の成長因子が、単独で、または、１つ以上の他のβ細胞成熟因子との組合せでのいずれかで、本願明細書に記載された方法、組成物及びキットに使用され得ることが考慮される。一部の実施形態では、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、ベタセルリンを含む。一部の実施形態では、ＥＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子は、ＥＧＦを含む。上皮成長因子（ＥＧＦ）は、大型の一体化膜タンパク質前駆体からタンパク質分解的に開裂される、５３個のアミノ酸のサイトカインである。一部の実施形態では、前記ＥＧＦファミリーからの前記成長因子は、米国特許第７．０８４，２４６号明細書に開示されたヒト野生型ＥＧＦポリペプチド配列に対して、少なくとも９０％のアミノ酸同一性を有する変異型ＥＧＦポリペプチド、例えば、単離された上皮成長因子ポリペプチドを含む。一部の実施形態では、前記ＥＧＦファミリーからの前記成長因子は、米国特許第８，２４７，５３１号明細書に開示された、ＥＧＦ受容体に結合し、同受容体を刺激する操作されたＥＧＦ変異体を含む。一部の実施形態では、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子は、前記ＥＧＦファミリーにおけるシグナル伝達経路を活性化する作用剤により置き換えられる。一部の実施形態では、前記ＥＧＦファミリーからの前記成長因子は、ＥＧＦを模倣する化合物を含む。特定の実施形態では、本願明細書に開示された方法、組成物及びキットは、ＥＧＦファミリーからの成長因子を除外する。
【０４５６】
プロテインキナーゼ阻害剤
【０４５７】
本開示の態様は、β細胞成熟因子としてのプロテインキナーゼ阻害剤の使用に関する。少なくとも１つのインスリン産生内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への分化を誘導可能な、任意のプロテインキナーゼ阻害剤が、単独で、または、他のβ細胞成熟因子との組合せでのいずれかで、本願明細書に記載された方法、組成物及びキットに使用され得ることが考慮される。
【０４５８】
一部の実施形態では、前記プロテインキナーゼ阻害剤は、スタウロスポリンを含む。一部の実施形態では、前記プロテインキナーゼ阻害剤は、スタウロスポリンの類似体を含む。スタウロスポリンの典型的な類似体としては、制限されず、Ｒｏ−３１−８２２０、ビスインドリルマレイミド（Ｂｉｓ）化合物、１０’−｛５’’−［（メトキシカルボニル）アミノ］−２’’−メチル｝−フェニルアミノカルボニルスタウロスポリン、スタラログ（例えば、Ｌｏｐｅｚ  ｅｔ  ａｌ．，「Ｓｔａｕｒｏｓｐｏｒｉｎｅ−ｄｅｒｉｖｅｄ  ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ  ｂｒｏａｄｅｎ  ｔｈｅ  ｓｃｏｐｅ  ｏｆ  ａｎａｌｏｇ−ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ  ｋｉｎａｓｅ  ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ」，  Ｊ．  Ａｍ．  Ｃｈｅｍ．  Ｓｏｃ．  ２０１３；１３５（４８）：１８１５３−１８１５９を参照のこと。）及びｃｇｐ４１２５１があげられる。
【０４５９】
一部の実施形態では、前記プロテインキナーゼ阻害剤は、ＰＫＣβ阻害剤である。一部の実施形態では、前記プロテインキナーゼ阻害剤は、下記構造を有するＰＫＣβ阻害剤または下記化合物の誘導体、類似体もしくは変異体である。
【化４】
2019141072.tif 000010
【０４６０】
一部の実施形態では、前記ＰＫＣβ阻害剤は、下記構造を有するＧＳＫ−２化合物または下記化合物の誘導体、類似体もしくは変異体である。
【化５】
2019141072.tif 000011
【０４６１】
一部の実施形態では、前記ＰＫＣ阻害剤は、ビスインドリルマレイミドである。典型的なビスインドリルマレイミドとしては、制限されず、ビスインドリルマレイミドＩ、ビスインドリルマレイミドＩＩ、ビスインドリルマレイミドＩＩＩ、塩酸塩または誘導体、類似体もしくは変異体があげられる。一部の実施形態では、それらの誘導体または変異体または類似体は、
【化６】
2019141072.tif 000012
から選択される化合物から選択される化合物の類似体の誘導体または変異体から選択される。
【０４６２】
一部の実施形態では、前記ＰＫＣ阻害剤は、シュードヒペリシンまたは下記化合物の誘導体、類似体もしくは変異体である。
【化７】
2019141072.tif 000013
【０４６３】
一部の実施形態では、前記ＰＫＣ阻害剤は、インドルビン−３−モノオキシム、５−インドまたは下記化合物の誘導体、類似体もしくは変異体である。
【化８】
2019141072.tif 000014
【０４６４】
特定の実施形態では、本願明細書に開示された方法、組成物及びキットは、プロテインキナーゼ阻害剤を除外する。
【０４６５】
嚢胞性繊維症膜コンダクタンス制御因子（ＣＦＴＲ）阻害剤
【０４６６】
本開示の態様は、β細胞成熟因子としてのＣＦＴＲ阻害剤の使用に関する。少なくとも１つのインスリン産生内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への分化を誘導可能な、任意のＣＦＴＲ阻害剤が、単独で、または、１つ以上の他のβ細胞成熟因子との組合せでのいずれかで、本願明細書に記載された方法、組成物及びキットに使用され得ることが考慮される。
【０４６７】
本願明細書において有用な数多くのＣＦＴＲ阻害剤が、当業者に利用可能である。典型的なＣＦＴＲ阻害剤としては、制限されず、米国特許出願公開第２００７／００７８１１１号明細書に開示された、ＬＰＡ２受容体アゴニストであるＣＦＴＲ阻害剤、米国特許第７，８８８，３３２号明細書に開示された、ヒドラジン含有ＣＦＴＲ阻害剤、及び、国際公開第２００８／１２１８７７号パンフレットに開示されたＣＦＴＲ阻害剤、米国特許出願公開第２００８／０２６９２０６号明細書に開示されたＣＦＴＲ阻害剤化合物があげられる。一部の実施形態では、前記ＣＦＴＲ阻害剤は、グリシン・ヒドラジン空隙閉鎖ＣＦＴＲ阻害剤を含む。一部の実施形態では、前記ＣＦＴＲ阻害剤は、Ｇｌｙ−Ｈ１０１を含む。一部の実施形態では、前記ＣＦＴＲ阻害剤は、Ｇｌｙ−Ｈ１０１の誘導体または類似体を含む（例えば、Ｍｕａｎｐｒａｓａｔ  ｅｔ  ａｌ．，「Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ  ｏｆ  Ｇｌｙｃｉｉｎｅ  Ｈｙｄｒａｚｉｄｅ  Ｐｏｒｅ−ｏｃｃｌｕｄｉｎｇ  ＣＦＴＲ  Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ」，  Ｊ．  Ｇｅｎ．  ＰＨｙｓｉｏｌ  ２００４；１２４（２）：１２５−１３７を参照のこと。）。特定の実施形態では、本願明細書に開示された方法、組成物及びキットは、ＣＦＴＲ阻害剤を除外する。
【０４６８】
Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤
【０４６９】
本開示の態様は、β細胞成熟因子としてのＯ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤の使用に関する。少なくとも１つのインスリン産生内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への分化を誘導可能な、任意のＯ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤が、単独で、または、１つ以上の他のβ細胞成熟因子との組合せでのいずれかで、本願明細書に記載された方法、組成物及びキットに使用され得ることが考慮される。本願明細書において有用な数多くのＯ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤が、当業者に利用可能である。典型的なＯ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤としては、制限されず、透過性グリコシダーゼ阻害剤（例えば、国際公開第２０１３／１６９５７６号及び同第２０１３／１６６６５４号パンフレットを参照のこと。）及び選択的グリコシダーゼ阻害剤（例えば、国際公開第２０１３／００００８４号及び同第２０１３／００００８５号パンフレットを参照のこと。）があげられる。一部の実施形態では、前記Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤は、Ｔｈｉａｍｅｔ  Ｇを含む。特定の実施形態では、本願明細書に開示された方法、組成物及びキットは、Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤を除外する。
【０４７０】
混合組成物
【０４７１】
本発明の別の態様は、インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体と、例えば、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体がＳＣ−β細胞になる分化を誘導する少なくとも１つのβ細胞成熟因子との混合物に関する。
【０４７２】
本発明の別の態様は、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体（例えば、ＳＣ−β細胞に分化させるためのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体の集合）と、少なくとも１つのβ細胞成熟因子とを含む反応混合物等の組成物に関する。あるいは、本発明は、（ｉ）インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体の集合のＳＣ−β細胞への分化の化学的誘導により産生されたＳＣ−β細胞の集合と、（ｉｉ）少なくとも１つのβ細胞成熟因子とを含む反応混合物に関する。
【０４７３】
一部の実施形態では、前記反応混合物に添加された前記少なくとも１つのβ細胞成熟因子の濃度は、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体が、本願明細書に記載されたＳＣ−β細胞に分化するのを誘導するのに十分な用量である。
【０４７４】
一部の実施形態では、前記組成物は、約２５ｎＭから１０μＭの間または約２５ｎＭから５０ｎＭまたは約５０ｎＭから１００ｎＭまたは約１００ｎＭから２００ｎＭまたは約２００ｎＭから約５００ｎＭまたは約５００ｎＭから約１μＭまたは約１μＭから２μＭまたは約２μＭから５μＭまたは約５μＭから１０μＭの間の濃度の、少なくとも１つのβ細胞成熟因子を含む。
【０４７５】
一部の実施形態では、組成物または混合物は、少なくとも約５ｎＭ、少なくとも約７ｎＭ、少なくとも約１０ｎＭ、少なくとも約１２ｎＭ、少なくとも約１５ｎＭ、少なくとも約１７ｎＭ、少なくとも約２０ｎＭ、少なくとも約２５ｎＭ、少なくとも約３０ｎＭ、少なくとも約３５ｎＭ、少なくとも約４０ｎＭ、少なくとも約４５ｎＭ、少なくとも約５０ｎＭ、少なくとも約１００ｎＭまたは少なくとも約２００ｎＭまたは少なくとも約３００ｎＭまたは少なくとも約４００ｎＭまたは少なくとも約５００ｎＭまたは５００ｎＭを超える濃度、または、１０−５００ｎＭの間の任意の整数または５−５０ｎＭの間の任意の整数または５０−１００ｎＭの間の任意の整数または１００ｎＭ−２００ｎＭの間の任意の整数または２００ｎＭ−５００ｎＭの間の任意の整数の濃度の、少なくとも１つのβ細胞成熟因子を含む。一部の実施形態では、組成物または混合物は、少なくとも約０．１μＭまたは少なくとも約０．２μＭまたは少なくとも約０．３μＭまたは少なくとも約０．４μＭまたは少なくとも約０．５μＭまたは少なくとも約１μＭ、少なくとも約１．５μＭ、少なくとも約２μＭ、少なくとも約２．５μＭ、少なくとも約３μＭ、少なくとも約３．５μＭ、少なくとも約４μＭ、少なくとも約４．５μＭ、少なくとも約５μＭ、少なくとも約６μＭ、少なくとも約７μＭ、少なくとも約８μＭ、少なくとも約９μＭまたは少なくとも約１０μＭまたは１０μＭを超える濃度、または、０．１−０．５μＭの間の任意の整数または約０．５−１０μＭの間の任意の整数または０．１−１０μＭの間の任意の整数または０．５−５μＭの間の任意の整数または５μＭ−１０μＭの間の任意の整数の濃度の、少なくとも１つのβ細胞成熟因子を含む。
【０４７６】
組成物及びキット
【０４７７】
本願明細書において、本願明細書に記載された細胞（例えば、ＳＣ−β細胞または成熟膵臓β細胞）を含む組成物が記載される。一部の実施形態では、前記組成物は、本願明細書に記載されたβ細胞成熟因子及び／または細胞培養培地も含む。本願明細書において、本願明細書に記載された化合物を含む組成物（例えば、本願明細書に記載された１つ以上の化合物を含む細胞培養培地）も記載される。本願明細書において、キットが記載される。
【０４７８】
本発明の別の態様は、本願明細書に開示された方法を実施し、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞または成熟膵臓β細胞を調製するためのキットに関する。一態様では、キットは、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体と、本願明細書に記載された少なくとも１つのβ細胞成熟因子とを含み、場合により、前記キットは、さらに、本願明細書に記載された方法を使用して、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を、ＳＣ−β細胞の集合に変換するための説明書を含み得る。一部の実施形態では、前記キットは、少なくとも２つのβ細胞成熟因子を含む。一部の実施形態では、前記キットは、少なくとも３つのβ細胞成熟因子を含む。一部の実施形態では、前記キットは、少なくとも４つのβ細胞成熟因子を含む。一部の実施形態では、前記キットは、少なくとも５つのβ細胞成熟因子を含む。一部の実施形態では、前記キットは、少なくとも６つのβ細胞成熟因子を含む。一部の実施形態では、前記キットは、少なくとも７つのβ細胞成熟因子を含む。一部の実施形態では、前記キットは、少なくとも８つのβ細胞成熟因子を含む。一部の実施形態では、前記キットは、少なくとも９つのβ細胞成熟因子を含む。一部の実施形態では、前記キットは、少なくとも１０個のβ細胞成熟因子を含む。一部の実施形態では、前記キットは、多能性細胞を成体型内胚葉細胞に分化させるためのβ細胞成熟因子を含む。一部の実施形態では、前記キットは、成体型内胚葉細胞を原腸管細胞に分化させるためのβ細胞成熟因子を含む。一部の実施形態では、前記キットは、原腸管細胞をＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞に分化させるためのβ細胞成熟因子を含む。一部の実施形態では、前記キットは、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞をインスリン陽性内分泌細胞に分化させるためのβ細胞成熟因子を含む。前記キットは、インスリン陽性内分泌細胞をＳＣ−β細胞に分化させるためのβ細胞成熟因子を含む。
【０４７９】
一部の実施形態では、前記キットは、例えば、多能性細胞を成体型内胚葉細胞に分化させる、成体型内胚葉細胞を原腸管細胞に分化させる、原腸管細胞をＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞に分化させる、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞をインスリン陽性内分泌細胞に分化させる、及び、インスリン陽性内分泌細胞をＳＣ−β細胞に分化させるためのβ細胞成熟因子の任意の組合せを含む。
【０４８０】
一実施形態では、前記キットは、例えば、前記多能性幹細胞を、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体に分化させ、その後、ＳＣ−β細胞に分化させるのを化学的に誘導する、式（Ｉ）の化合物の有効性または能力を評価またはモニターするための、ポジティブコントロールとして使用される目的で、多能性幹細胞を含み得る。したがって、前記キットは、コントロールの多能性幹細胞の集合（ポジティブコントロール）、及び、所望の多能性幹細胞（例えば、ユーザの好ましい多能性幹細胞、例えば、ｉＰＳ細胞）の集合の、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞もしくはその前駆体またはＳＣ−β細胞への分化を誘導するのに十分な量の少なくとも１つのβ細胞成熟因子を含み得る。
【０４８１】
一部の実施形態では、前記キット中の化合物は、防水性または気密性容器中に提供され得る。一部の実施形態では、前記容器は、前記キットの他のコンポーネントを実質的に含まない。前記化合物は、２つ以上の容器に供給され得る。例えば、前記化合物は、多能性幹細胞を成体型内胚葉細胞に誘導し、その後に、インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体に誘導し、その後に、ＳＣ−β細胞に誘導する、所定数の反応、例えば、１、２、３回以上の別々の反応に十分な試薬を有する容器中に供給され得る。β細胞成熟因子は、任意の状態、例えば、液体、乾燥または凍結乾燥の状態で提供され得る。本願明細書に記載された化合物（例えば、β細胞成熟因子）は、実質的に純粋であり、及び／または、無菌であるのが好ましい。本願明細書に記載された化合物が溶液で提供される場合、前記溶液は、好ましくは、水溶液であり、無菌の水溶液が好ましい。本願明細書に記載された化合物が乾燥状態で提供される場合、一般的には、再構成は、適切な溶媒の添加による。前記溶媒、例えば、滅菌水またはバッファーが、場合により、前記キットに提供され得る。
【０４８２】
一部の実施形態では、前記キットは、さらに場合により、情報材料を含む。前記情報材料は、本願明細書に記載された方法及び／または本願明細書に記載された方法についての本願明細書に記載された化合物の使用に関する、記述的な説明、マーケッティング及び他の材料であり得る。
【０４８３】
前記キットの情報材料は、その説明または情報材料に限定されない。一実施形態では、前記情報材料は、前記化合物の製造、前記化合物の分子量、濃度、有効期限、バッチまたは製造場所の情報等についての情報を含み得る。一実施形態では、前記情報材料は、前記化合物の投与方法に関する。さらに、前記キットの情報材料は、その形式に限定されない。多くの場合、前記情報材料、例えば、説明書は、印刷物、例えば、印刷文書、図及び／または写真、例えば、ラベルまたは印刷されたシートで提供される。ただし、前記情報材料は、他の形式、点字、コンピュータ読み取り可能な材料、ビデオ記録またはオーディオ記録でも提供され得る。別の実施形態では、前記キットの情報材料は、コンタクト情報、例えば、実アドレス、ｅメールアドレス、ウェブサイトまたは電話番号である。この場合、前記キットのユーザは、本願明細書に記載された化合物、及び／または、本願明細書に記載された方法におけるその使用についての重要な情報を得ることができる。当然、前記情報材料は、任意の組合せの形式で提供されることもできる。
【０４８４】
一実施形態では、前記情報材料は、本願明細書に記載された化合物（例えば、β細胞成熟因子）を、本願明細書に記載された方法を行うのに適した方法、例えば、適切な用量、投与形態または投与方式（例えば、本願明細書に記載された用量、投与形態または投与方式）で、（ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける細胞またはｉｎ  ｖｉｖｏにおける細胞に）投与するための説明書を含み得る。別の実施形態では、前記情報材料は、本願明細書に記載された化合物を、適切な対象、例えば、ヒト、例えば、本願明細書に記載された障害を有するか、または、同障害のリスクにあるヒト、または、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける細胞に投与するための説明書を含み得る。
【０４８５】
本願明細書に記載された化合物に加えて、前記キットの組成物は、他の成分、例えば、溶媒またはバッファー、安定剤、保存剤、香味料（例えば、苦味アンタゴニストまたは甘味料）、芳香剤または化粧成分、及び／または、例えば、（例えば、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて）多能性幹細胞を誘導するための、または、本願明細書に記載された症状もしくは障害を処置するための更なる作用剤を含み得る。あるいは、前記他の成分は、前記キットに含まれるが、本願明細書に記載された化合物とは異なる組成物または容器に存在し得る。このような実施形態では、前記キットは、本願明細書に記載された化合物と、前記他の成分とを混合するための、または、本願明細書に記載された化合物を、前記他の成分と共に使用するための説明書、例えば、投与前に前記２つの作用剤を混合することについての説明書を含み得る。
【０４８６】
本願明細書に記載されたβ細胞成熟因子は、任意の状態、例えば、液体、乾燥または凍結乾燥の状態で提供され得る。本願明細書に記載された化合物は、実質的に純粋であり、及び／または、無菌であるのが好ましい。本願明細書に記載された化合物が溶液で提供される場合、前記溶液は、好ましくは、水溶液であり、無菌の水溶液が好ましい。本願明細書に記載された化合物が乾燥状態で提供される場合、一般的には、再構成は、適切な溶媒の添加による。前記溶媒、例えば、滅菌水またはバッファーが、場合により、前記キットに提供され得る。
【０４８７】
前記キットは、本願明細書に記載された少なくとも１つのβ細胞成熟因子を含む組成物用の１つ以上の溶液を含む。一部の実施形態では、前記キットは、前記組成物及び情報材料用の、別々の容器（例えば、前記２つの作用剤用の２つの別々の容器）、デバイダまたは区画を含む。例えば、前記組成物は、ボトル、バイアルまたはシリンジに収容されることができ、前記情報材料は、プラスチック製のスリーブまたはパケットに収容されることができる。他の実施形態では、前記キットの別々の構成要素は、１つの分割できない容器内に収容される。例えば、前記組成物は、前記情報材料がラベルの形式でそれに貼り付けられている、ボトル、バイアルまたはシリンジに収容される。一部の実施形態では、前記キットは、複数（例えば、パック）の個々の容器を含み、それぞれに、本願明細書に記載された化合物の１つ以上の単回投与形態（例えば、本願明細書に記載された投与形態）が収容される。例えば、前記キットは、複数のシリンジ、アンプル、ホイルパケットまたはブリスターパックを含み、それぞれに、本願明細書に記載された化合物の単回投与形態が収容される。前記キットの容器は、気密性、防水性（例えば、湿気または蒸気の変化に対して不透過性）及び／または遮光性であり得る。
【０４８８】
前記キットは、場合により、前記組成物の投与に適した装置、例えば、シリンジ、吸入器、ピペット、鉗子、計量スプーン、滴ビン（例えば、点眼器）、スワブ（例えば、コットンスワブまたは木製スワブ）または任意のこのような送達装置を含む。好ましい実施形態では、前記装置は、医療用埋込み装置であり、例えば、外科的挿入用にパッケージされている。
【０４８９】
前記キットは、ＳＣ−β細胞用のマーカー、例えば、本願明細書に記載されたマーカーの検出用コンポーネント、例えば、陽性のＳＣ−β細胞の検出用の試薬も含み得る。または、一部の実施形態では、前記キットは、ＳＣ−β細胞のネガティング選択の目的のためのＳＣ−β細胞のネガティブマーカーの検出用、または、これらのネガティブマーカーを発現していない細胞（例えば、ＳＣ−β細胞）の特定用の試薬も含み得る。前記試薬は、例えば、前記マーカーに対する抗体、または、ＲＴ−ＰＣＲもしくはＰＣＲ反応、例えば、半定量もしくは定量ＲＴ−ＰＣＲもしくはＰＣＲ反応用のプライマーであり得る。このようなマーカーは、ｉＰＳ細胞が産生されているかどうかを評価するのに使用され得る。前記検出試薬が抗体である場合、乾燥調製物、例えば、凍結乾燥された調製物または溶液の状態で供給され得る。前記抗体または他の検出試薬は、検出に使用するための標識、例えば、放射線、蛍光（例えば、ＧＦＰ）または発色標識に結合していることができる。前記検出試薬がプライマーである場合、乾燥調製物、例えば、凍結乾燥された調製物または溶液の状態で供給され得る。
【０４９０】
前記ＳＣ−β細胞の核型の分析を行うのが望ましい場合がある。したがって、前記キットは、核型決定用のコンポーネント、例えば、プローブ、染料、基質、酵素、抗体または細胞から核型を調製するのに有用な他の試薬を含み得る。
【０４９１】
前記キットは、例えば、陽性細胞種コントロールとして使用するための、同じ種類のインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体から得られたＳＣ−β細胞、例えば、成熟膵臓β細胞を含み得る。
【０４９２】
前記キットは、前記キットに含まれる２つ以上の前記コンポーネントを使用するための情報材料、例えば、説明書も含み得る。
【０４９３】
前記情報材料は、本願明細書に記載された方法及び／または本願明細書に記載された方法に基づいて多能性幹細胞を分化させるための本願明細書に記載された化合物の使用に関する、記述的な説明、マーケッティング及び他の材料であり得る。一実施形態では、前記情報材料は、前記化合物の製造、前記化合物の分子量、濃度、有効期限、バッチまたは製造場所の情報等についての情報を含み得る。一実施形態では、前記情報材料は、本願明細書に記載された少なくとも１つのβ細胞成熟因子の存在下において、インスリン陽性内分泌細胞の集合を培養するための方法に関する。
【０４９４】
細胞の投与方法
【０４９５】
一実施形態では、本願明細書に記載された細胞、例えば、ＳＣ−β細胞の集合は移植可能であり、例えば、ＳＣ−β細胞の集合は、対象に投与され得る。一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合を投与される前記対象は、（例えば、自家細胞療法用の）ＳＣ−β細胞に分化させるのに使用される多能性幹細胞が得られたのと同じ対象である。一部の実施形態では、前記対象は、異なる対象である。一部の実施形態では、糖尿病、例えば、Ｉ型糖尿病を患う対象または正常な対象である。例えば、移植用の細胞（例えば、ＳＣ−β細胞の集合を含む組成物）は、臓器移植等の移植に適した形態であり得る。
【０４９６】
前記方法は、前記細胞を、それを必要とする対象、例えば、哺乳類の対象、例えば、ヒトの対象に投与することを、さらに含み得る。前記細胞のソースは、哺乳類、好ましくは、ヒトであり得る。前記細胞のソースまたはレシピエントは、非ヒトの対象、例えば、動物モデルであることもできる。前記「哺乳類」の用語は、マウス、ラット、ウシ、ヒツジ、ブタ、ウサギ、ヤギ、ウマ、サル、イヌ、ネコ、及び好ましくは、ヒトを含む生物を含む。同様に、移植可能な細胞は、これらの生物、例えば、非ヒトのトランスジェニック生物のいずれかから得ることができる。一実施形態では、前記移植可能な細胞は、遺伝子組み換えされており、例えば、前記細胞は、外来性の遺伝子を含むか、または、内在性の遺伝子を不活性化もしくは変化させるように遺伝子組み換えされている。
【０４９７】
ＳＣ−β細胞の集合を含む組成物は、埋込み可能な装置を使用して、対象に投与され得る。埋込み可能な装置及び関連する技術は、当該分野において公知であり、送達システムとして有用である。この場合、本願明細書に示された化合物または組成物の連続的または持続性放出の送達が望ましい。さらに、前記埋込み可能な装置の送達システムは、標的特異的部位（例えば、局所部位または臓器）への化合物または組成物の送達に有用である。Ｎｅｇｒｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ，  ２２（６）：５６３（２００１）。別の送達方法による持続性放出技術も、この発明に使用され得る。例えば、ポリマー技術、徐放性技術及び封入技術に基づく持続性放出配合（例えば、ポリマー、リポソーム）も、本願明細書に示された化合物及び組成物の送達に使用され得る。
【０４９８】
インスリン産生、グルコース応答性細胞の集合を含む薬学的組成物
【０４９９】
対象に投与するために、本願明細書に開示された方法により産生された細胞集合、例えば、（少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞を少なくとも１つのβ細胞成熟因子（例えば、任意の１つ、２つ、３つ、４つ、５つ以上の、本願明細書に記載されたβ細胞成熟因子）と接触させることにより産生された）ＳＣ−β細胞の集合が、例えば、薬学的に許容され得る組成物において、対象に投与され得る。これらの薬学的に許容され得る組成物は、１つ以上の薬学的に許容され得るキャリア（添加剤）及び／または希釈剤と共に配合された、治療的に有効量の上記されたＳＣ−β細胞の集合を含む。
【０５００】
以下に詳細に記載されるように、本発明の薬学的組成物は、固体または液体の状態での投与、例えば、下記：（１）経口投与、例えば、水薬（水溶液もしくは非水性溶液または懸濁液）、ロゼンジ、糖衣錠、カプセル、丸剤、錠剤（例えば、頬、舌下及び全身での吸収を目的としたもの）ボーラス、粉末、顆粒、舌への塗布用のペースト；（２）非経口投与、例えば、無菌の溶液もしくは懸濁液または徐放性配合としての、例えば、皮下、筋肉内、静脈内または硬膜外注射による；（３）局所塗布、例えば、クリーム、軟膏または持続放出パッチまたは皮膚に塗布されるスプレー；（４）膣内または直腸内、例えば、ペッサリー、クリームまたは泡；（５）舌下；（６）眼；（７）経皮；（８）経粘膜；または（９）経鼻に採用されたもの用に専用に配合され得る。さらに、化合物は、患者に埋め込まれることができ、または、薬剤送達システムを使用して注射されることができる。例えば、Ｕｒｑｕｈａｒｔ，  ｅｔ  ａｌ．，  Ａｎｎ．  Ｒｅｖ．  Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．  Ｔｏｘｉｃｏｌ．  ２４：１９９−２３６（１９８４）；Ｌｅｗｉｓ，  ｅｄ．「Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  Ｒｅｌｅａｓｅ  ｏｆ  Ｐｅｓｔｉｃｉｄｅｓ  ａｎｄ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ」（Ｐｌｅｎｕｍ  Ｐｒｅｓｓ，  Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，  １９８１）；米国特許第３，７７３，９１９号；及び同第３５  ３，２７０，９６０号明細書を参照のこと。
【０５０１】
本願明細書で使用する場合、前記「薬学的に許容され得る」の用語は、通常の医療的判断の範囲内にあり、合理的な利益／リスク比に相応の、過剰な毒性、刺激、アレルギー応答または他の問題もしくは合併症なしに、ヒト及び動物の組織と接触させて使用するのに適した、それらの化合物、材料、組成物及び／または投与形態を意味する。
【０５０２】
本願明細書で使用する場合、「薬学的に許容され得るキャリア」の用語は、１つの臓器または身体の一部から別の臓器または身体の部分に、目的の化合物を運搬または輸送するのに関与する、薬学的に許容され得る材料、組成物または媒体、例えば、液体または固体の充填材、希釈剤、賦形剤、製造助剤（例えば、潤滑剤、タルクマグネシウム、カルシウムもしくは亜鉛のステアリン酸塩またはステアリン酸）または溶媒封入材料を意味する。各キャリアは、前記配合の他の成分と適合性であり、患者に対して傷害性でないという意味で、「許容可能」であるべきである。薬学的に許容され得るキャリアとして役立ち得る材料のいくつかの例としては、（１）糖、例えば、ラクトース、グルコース及びスクロース；（２）デンプン、例えば、トウモロコシデンプン及びジャガイモデンプン；（３）セルロース及びその誘導体、例えば、ナトリウムカルボキシメチルセルロース、メチルセルロース、エチルセルロース、微結晶セルロース及び酢酸セルロース；（４）粉末状のトラガント；（５）麦芽；（６）ゼラチン；（７）潤滑剤、例えば、ステアリン酸マグネシウム、ラウリル硫酸ナトリウム及びタルク；（８）賦形剤、例えば、ココアバター及び坐剤ワックス；（９）オイル、例えば、ピーナッツ油、綿実油、ベニバナ油、ゴマ油、オリーブ油、トウモロコシ油及びダイズ油；（１０）グリコール、例えば、プロピレングリコール；（１１）ポリオール、例えば、グリセリン、ソルビトール、マンニトール及びポリエチレングリコール（ＰＥＧ）；（１２）エステル、例えば、オレイン酸エチル及びラウリル酸エチル；（１３）アガー；（１４）緩衝剤、例えば、水酸化マグネシウム及び水酸化アルミニウム；（１５）アルギン酸；（１６）発熱原を含まない水；（１７）等張性生理食塩水；（１８）リンゲル液；（１９）エチルアルコール；（２０）ｐＨ緩衝液；（２１）ポリエステル、ポリカーボネート及び／またはポリ酸無水物；（２２）充填材、例えば、ポリペプチド及びアミノ酸；（２３）血清成分、例えば、血清アルブミン、ＨＤＬ及びＬＤＬ；（２２）Ｃ２−Ｃ１２アルコール、例えば、エタノール；並びに（２３）薬学的配合に使用される他の非毒性の適合性物質があげられる。湿潤剤、着色剤、剥離剤、コーティング剤、甘味料、着香剤、芳香剤、保存剤及び抗酸化剤も、前記配合に存在し得る。前記用語、例えば、「賦形剤」、「キャリア」、「薬学的に許容され得るキャリア」等は、本願明細書において互換的に使用される。
【０５０３】
細胞集合に関して本願明細書で使用する場合、「治療的に有効量」の表現は、任意の医療的処置に適用可能な合理的な利益／リスク比において、動物中の細胞の少なくとも部分集合において、所望の治療的効果をいくらか生じさせるのに有効な、細胞集合中の関連する細胞、例えば、ＳＣ−β細胞もしくは成熟膵臓β細胞、または、本発明のＳＣ−β細胞を含む組成物の量を意味する。例えば、１型、１．５型または２型の糖尿病の少なくとも１つの兆候、例えば、グリコシル化ヘモグロビンレベル、絶食時血中グルコースレベル、低インスリン血症等における、統計学的に有意な測定可能な変化を生じさせるのに十分な量のＳＣ−β細胞の集合が、対象に投与される。治療的に有効量の決定は、当業者の能力の範囲内で十分である。一般的には、治療的に有効量は、対象の既往歴、年齢、症状、性別並びに対象における臨床症状の重症度及び種類、並びに、他の薬学的に活性な作用剤の投与により変化し得る。
【０５０４】
本願明細書で使用する場合、「投与する」の用語は、所望の効果が生じるように、所望の部位に、前記組成物の少なくとも部分的な配置をもたらす方法または経路により、対象への組成物の配置を意味する。本願明細書に記載された化合物または組成物は、当該分野において公知の任意の適切な経路、例えば、制限されず、経口または非経口の経路、例えば、静脈内、筋肉内、皮下、経皮、気道（エアロゾル）、肺、鼻、直腸及び局所（例えば、頬及び舌下）の投与で投与され得る。
【０５０５】
投与の典型的な方式としては、制限されず、注射、注入、点眼、吸入または経口摂取があげられる。「注射」としては、制限されず、静脈内、筋肉内、動脈内、髄腔内、心室内、嚢内、眼窩内、心臓内、皮内、腹腔内、経気管、皮下、表皮下、関節内、被膜下、くも膜下、髄腔内、脳脊髄内及びストランド内の注射及び注入があげられる。好ましい実施形態では、前記組成物は、静脈内注入または注射により投与される。
【０５０６】
疾患または障害の「処置」、「予防」または「改善」は、このような疾患または障害の開始を遅延または予防すること、このような疾患または障害に関連する症状の進行、深刻化または悪化、進行または重症化を、反転、緩和、改善、防止、遅延または停止させることを意味する。一実施形態では、前記疾患または障害の兆候は、少なくとも５％、少なくとも１０％、少なくとも２０％、少なくとも３０％、少なくとも４０％または少なくとも５０％で緩和される。
【０５０７】
糖尿病の処置は、標準的な医療的方法により決定される。糖尿病処置の目標は、可能な限り安全に、糖レベルを低下させて、正常に近づけることである。共通して設定される目標は、食前に、１デシリットルあたりに８０−１２０ミリグラム（ｍｇ／ｄｌ）であり、就寝時に、１００−１４０ｍｇ／ｄｌである。特定の内科医は、他の要因、例えば、多くの場合、患者が低血糖反応をどの程度有するかに応じて、患者に対して異なる目標を設定する場合がある。有用な医療的試験としては、血糖レベルを決定するための患者の血液及び尿における試験、グリコシル化ヘモグロビンレベル（ＨｂＡ１ｃ；過去２−３ヶ月にわたる平均血中グルコースレベルの測定、正常範囲は、４−６％である。）についての試験、コレステロール及び脂肪レベルについての試験並びに尿タンパク質レベルについての試験があげられる。このような試験は、当業者に公知の標準的な試験である（例えば、Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｄｉａｂｅｔｅｓ  Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ、１９９８を参照のこと。）。連続的な処置プログラムは、そのプログラムにおいて、糖尿病に関する合併症、例えば、目の疾患、腎臓疾患または神経疾患を患者がほとんど患っていないことによっても決定され得る。
【０５０８】
対象における糖尿病の開始を遅延させることは、少なくとも１週間、少なくとも２週間、少なくとも１ヶ月、少なくとも２ヶ月、少なくとも６ヶ月、少なくとも１年、少なくとも２年、少なくとも５年、少なくとも１０年、少なくとも２０年、少なくとも３０年、少なくとも４０年以上の間、及び、前記対象の寿命全体を含み得る間、糖尿病の少なくとも１つの兆候、例えば、高血糖、低インスリン血症、糖尿病性網膜症、糖尿病性神経症、失明、記憶喪失、腎不全、心血管疾患（例えば、冠動脈疾患、末梢動脈疾患、脳血管疾患、アテローム硬化症及び高血圧）、神経症、自律神経機能不全、高血糖性高浸透圧昏睡またはそれらの組合せの開始の遅延を意味する。
【０５０９】
特定の実施形態では、前記対象は、哺乳類、例えば、霊長類、例えば、ヒトである。前記「患者」及び「対象」の用語は、本願明細書において互換的に使用される。好ましくは、前記対象は、哺乳類である。前記哺乳類は、ヒト、非ヒト霊長類、マウス、ラット、イヌ、ネコ、ウマまたはウシであり得るが、これらの例に限定されない。ヒト以外の哺乳類は、１型糖尿病、２型糖尿病または糖尿病前症の動物モデルを提供する対象として有利に使用され得る。さらに、本願明細書に記載された方法は、家畜動物及び／またはペットを処置するのに使用され得る。対象は、オスまたはメスであり得る。対象は、糖尿病（例えば、１型または２型）、糖尿病に関連する１つ以上の合併症または糖尿病前症の症状を患うか、または、有すると予め診断または特定されている者、及び場合により、前記糖尿病、前記糖尿病に関連する１つ以上の合併症または前記糖尿病前症の症状の処置を予め受ける必要がなかった者であり得る。対象は、糖尿病または糖尿病前症を患っていない者であることもできる。対象は、糖尿病、糖尿病に関連する１つ以上の合併症または糖尿病前症の症状を患っていると診断または特定されているが、糖尿病、糖尿病に関連する１つ以上の合併症または糖尿病前症の症状についての１つ以上の処置を受けた結果として、公知の糖尿病リスク要因における改善を示す者であることもできる。あるいは、対象は、糖尿病、糖尿病に関連する１つ以上の合併症または糖尿病前症の症状を有すると予め診断されていない者であることもできる。例えば、対象は、糖尿病、糖尿病に関連する合併症または糖尿病前症の症状についての１つ以上のリスク要因を示す者、または、糖尿病リスク要因を示さない対象、または、糖尿病、１つ以上の糖尿病関連の合併症または糖尿病前症の症状について無症候である対象であることもできる。対象は、糖尿病または糖尿病前症を患うか、または、糖尿病または糖尿病前症になるリスクにある者であることもできる。対象は、本願明細書に記載された、糖尿病に関連する１つ以上の合併症または糖尿病前症の症状を有すると診断または特定された者であることもできる。あるいは、対象は、糖尿病に関連する１つ以上の合併症または糖尿病前症の症状を有すると予め診断または特定されていない者であることができる。
【０５１０】
本願明細書で使用する場合、「ＳＣ−β細胞を必要とする対象」の表現は、糖尿病（例えば、１型、１．５型または２型）、糖尿病に関連する１つ以上の合併症または糖尿病前症の症状を患うもしくは有すると診断または特定され、糖尿病（例えば、１型、１．５型または２型）、糖尿病に関連する１つ以上の合併症または糖尿病前症の症状になるリスクにあると診断または特定された対象を意味する。
【０５１１】
ＳＣ−β細胞の集合を必要とする対象は、糖尿病の診断に使用される任意の方法を使用して特定され得る。例えば、１型糖尿病は、グリコシル化ヘモグロビン（Ａ１Ｃ）試験、ランダム血中グルコース試験及び／または絶食時血中グルコース試験を使用して診断され得る。糖尿病診断用のパラメータは、当該分野において公知であり、多大な努力を必要とすることなく、当業者に利用可能である。
【０５１２】
一部の実施形態では、本発明の方法は、さらに、更なるＳＣ−β細胞を必要とすると特定された対象を選択することを含む。ＳＣ−β細胞の集合を必要とする対象は、示された兆候、例えば、１型、１．５型または２型糖尿病の兆候に基づいて選択され得る。糖尿病の典型的な兆候としては、制限されず、多渇（多飲症）、頻尿（多尿症）、過度の空腹（過食症）、過度の疲労、体重減少、高血糖、低レベルのインスリン、高血糖（例えば、２５０ｍｇ超、３００ｍｇ超の糖レベル）、尿中に存在するケトンの存在、疲労、乾燥肌及び／もしくは痒み肌、視力障害、切り傷もしくは傷の回復鈍化、通常より易感染、足の冷え及び刺痛、糖尿病性網膜症、糖尿病性神経症、失明、記憶喪失、腎不全、心血管疾患（例えば、冠動脈疾患、末梢動脈疾患、脳血管疾患、アテローム硬化症及び高血圧）神経症、自律神経機能不全、高血糖性高浸透圧昏睡並びにそれらの組合せがあげられる。
【０５１３】
一部の実施形態では、対象に投与するためのＳＣ−β細胞の集合を含む組成物は、さらに、薬学的に活性な薬剤、例えば、糖尿病の処置について及び／または抗高血糖活性を有することについて当該分野において公知のそれらの薬剤、例えば、ジペプチジルペプチダーゼ４（ＤＤＰ−４）の阻害剤（例えば、アログリプチン、リナグリプチン、サキサグリプチン、シタグリプチン、ビルダグリプチン及びベルベリン）、ビグアニド（例えば、メトホルミン、ブホルミン及びフェンホルミン）、ペルオキシソーム増殖因子活性化受容体（ＰＰＡＲ）調節剤、例えば、チアゾリジンジオン（ＴＺＤ）（例えば、ピオグリタゾン、リボグリタゾン、ロシグリタゾン及びトログリタゾン）、二重ＰＰＡＲアゴニスト（例えば、アレグリタザール、ムラグリタザール及びてさぐりタザール）、スルホニル尿素（例えば、アセトヘキサミド、カルブタミド、クロルプロパミド、グリクラジド、トルブタミド、トラザミド、グリベンクラミド（グリブリド）、グリピジド、グリキドン、グリコピラミド及びグリメピリド）、メグリチニド（「グリニド」）（例えば、ナテグリニド、レパグリニド及びミチグリニド）、グルカゴン様ペプチド−１（ＧＬＰ−１）及び類似体（例えば、エキセンディン−４、エキセナチド、リラグルチド、アルビグルチド）、インスリン及びインスリン類似体（例えば、インスリンリスプロ、インスリンアスパルト、インスリングルリシン、インスリングラルギン、インスリンデテミル、エクスベラ及びＮＰＨインスリン）、アルファ−グルコシダーゼ阻害剤（例えば、アカルボース、ミグリトール及びボグリボース）、アミリン類似体（例えば、プラムリンチド）、ナトリウム依存性グルコース共輸送体Ｔ２（ＳＧＬＴ  Ｔ２）阻害剤（例えば、ダプグリフロジン、レモグリフロジン及びセルグリフロジン）並びに他のもの（例えば、ベンフオレックス及びトルレスタット）を含み得る。
【０５１４】
１型糖尿病では、β細胞は、継続的な自己免疫応答により、不必要に破壊される。このため、この自己免疫応答は、このような自己免疫応答を阻害または遮断する化合物の使用により弱められ得る。一部の実施形態では、対象に投与するためのＳＣ−β細胞の集合を含む組成物は、さらに、免疫応答調節剤である薬学的に活性な薬剤を含む。本願明細書で使用する場合、前記「免疫応答調節剤」の用語は、対象における自己免疫応答を阻害する化合物（例えば、小分子、抗体、ペプチド、核酸または遺伝子治療試薬）を意味する。理論に拘束されるものではないが、免疫応答調節剤は、炎症性サイトカイン（例えば、ＩＬ−１２、ＩＬ−２３またはＩＬ−２７）またはＳＴＡＴ−４の活性、活性化または発現を阻害することにより、自己免疫応答を阻害する。典型的な自己免疫応答調節剤としては、制限されず、米国特許第６，７７４，１３０号明細書に記載されたリソフィリン（ＬＳＦ）並びにＬＳＦ類似体及び誘導体からなる群のメンバーがあげられる。同特許の内容は、その全体が参照により本願明細書に組み込まれる。
【０５１５】
ＳＣ−β細胞を含む組成物は、薬学的に活性な薬剤またはそれを含む組成物の投与と、同時または異なるタイミングで対象に投与され得る。異なるタイミングで投与される場合、対象に投与するためのＳＣ−β細胞の集合及び／または薬学的に活性な薬剤を含む前記組成物は、他方の投与の５分、１０分、２０分、６０分、２時間、３時間、４時間、８時間、１２時間、２４時間以内に投与され得る。ＳＣ−β細胞の集合含む組成物及び薬学的に活性な薬剤を含む組成物が、異なる薬学的組成物において投与される場合、投与経路は異なり得る。一部の実施形態では、対象は、ＳＣ−β細胞を含む組成物を投与される。他の実施形態では、対象は、薬学的に活性な薬剤を含む組成物を投与される。別の実施形態では、対象は、薬学的に活性な薬剤と混合された、ＳＣ−β細胞の集合を含む組成物を投与される。別の実施形態では、対象は、ＳＣ−β細胞の集合を含む組成物及び薬学的に活性な薬剤を含む組成物を投与される。この場合、投与は、実質的に同時または互いに連続的であり得る。
【０５１６】
ＳＣ−β細胞の集合を含む組成物の投与の毒性及び治療的有効性は、例えば、ＬＤ５０（集合の５０％に対する致死量）及びＥＤ５０（集合の５０％において治療的に有効な用量）を決定するための、細胞培養または実験動物における標準的な薬学的手順により決定され得る。大きな治療指数を示すＳＣ−β細胞の集合を含む組成物が好ましい。
【０５１７】
ＳＣ−β細胞の集合を含む組成物の量は、複数の十分確立された動物モデルを使用して試験され得る。
【０５１８】
非肥満の糖尿病（ＮＯＤ）マウスは、数週齢で現れるインスリン炎をもたらす遺伝子欠損を有する（Ｙｏｓｈｉｄａ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｒｅｖ．  Ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｅｔ．  ２：１４０，  ２０００）。６０−９０％のメスは、２０−３０週で臨床的糖尿病に進行する。免疫関連病理は、ヒトのＩ型糖尿病における病理に類似すると考えられる。Ｉ型糖尿病の他のモデルは、遺伝子導入及びノックアウト変異を有するマウスである（Ｗｏｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｉｍｍｕｎｏｌ．  Ｒｅｖ．  １６９：９３，  １９９９）。近年、自発性Ｉ型糖尿病用のラットモデルが、Ｌｅｎｚｅｎ  ｅｔ  ａｌ．により報告されている（Ｄｉａｂｅｔｏｌｏｇｉａ  ４４：１１８９，  ２００１）。高血糖は、ストレプトゾトシンの１回の腹腔内注射により（Ｓｏｒｉａ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｄｉａｂｅｔｅｓ  ４９：１５７，  ２０００）、または、ストレプトゾトシンの連続的な低用量により（Ｉｔｏ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｅｎｖｉｒｏｎ．  Ｔｏｘｉｃｏｌ．  Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．  ９：７１，  ２００１）、マウスにおいて（５００ｍｇ  グルコース／ｄＬ超）誘導されることもできる。埋め込まれた膵島細胞の有効性を試験するために、前記マウスは、正常レベル（２００ｍｇ／ｄＬ未満）へのグルコースの回復ついてモニターされる。
【０５１９】
より大型の動物は、慢性高血糖の症状を追跡するのに良好なモデルを提供する。イヌは、膵臓を除去することにより（Ｊ．  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ．  １５８：４９，  ２００１）、または、ガラクトースを与えられることにより（Ｋａｄｏｒ  ｅｔ  ａｌ．，  Ａｒｃｈ．  Ｏｐｔｈａｌｍｏｌ．  １１３：３５２，  １９９５）、インスリン依存性を与えられ得る。ケースホンド犬におけるＩ型糖尿病の遺伝モデルも存在する（Ａｍ．  Ｊ．  Ｐａｔｈｏｌ．  １０５：１９４，  １９８１）。イヌモデルについての初期の研究（Ｂａｎｔｉｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｃａｎ．  Ｍｅｄ．  Ａｓｓｏｃ．  Ｊ．  ２２：１４１，  １９２２）は、１９２５年２月にストックホルムへの長い海洋旅行をしたカナダ人夫婦によりもたらされた。
【０５２０】
実例として、パイロット研究は、下記動物：ａ）非糖尿病ヌード（Ｔ細胞欠損）マウス；ｂ）ストレプトゾトシン処理により糖尿病性を付与されたヌードマウス；及びｃ）部分的な膵臓切除による膵島再生プロセスにあるヌードマウス内に、ＳＣ−β細胞の集合を埋め込むことにより行われ得る。移植された細胞数は、肝臓または膵臓における、腎被膜下に埋め込まれた、約１０００−２０００個の正常なヒトβ細胞に相当する。非糖尿病マウスについては、エンドポイントにおいて、移植片の生存（組織学的試験）並びに生化学的分析、ＲＩＡ、ＥＬＩＳＡ及び免疫組織化学によるインスリン産生の決定を評価し得る。ストレプトゾトシン処理された動物及び部分的に膵臓切除された動物は、生存、代謝調節（血中グルコース）及び体重増についても評価され得る。
【０５２１】
一部の実施形態では、細胞培養アッセイ及び動物試験から得られたデータは、ヒトにおいて使用するための範囲を公式化するのに使用され得る。このような化合物の用量は、好ましくは、ほとんど毒性を有さないか、または、毒性を有さないＥＤ５０を含む、循環濃度の範囲内にある。前記用量は、使用される投与形態及び採用される投与経路に応じて、この範囲内で変動し得る。
【０５２２】
治療的に有効量の、ＳＣ−β細胞の集合を含む組成物は、細胞培養アッセイから最初に推定されることもできる。用量は、血漿中の循環性グルコースへの応答に適した濃度でのインスリン分泌を達成する、ｉｎ  ｖｉｖｏでの動物モデルにおいて公式化され得る。あるいは、任意の特定の用量の効果が、適切なバイオアッセイによりモニターされ得る。
【０５２３】
処置の持続期間及び頻度に関して、前記処置が治療的利益を提供している時を決定し、用量を増大または減少させるかどうか、投与頻度を増加または減少させるかどうか、処置を中断するかどうか、処置を再開するかどうか、または、処置計画に他の変更を加えるかどうかを決定するために、対象をモニターするのは、当業者にとって典型的なことである。投与スケジュールは、数多くの臨床的要因、例えば、ポリペプチドに対する対象の感受性に応じて、１週間１回から毎日に変動し得る。望ましい用量は、一度に投与されることができ、または、部分用量、例えば、２−４回の部分用量に分割され、一定期間にわたって、例えば、日による適切な間隔または他の適切なスケジュールで投与されることができる。このような部分用量は、単位投与形態として投与され得る。一部の実施形態では、投与は、長期、例えば、週または月の期間にわたって、毎日１回以上の投与である。投与スケジュールの例は、１週間、２週間、３週間、４週間、１ヶ月、２ヶ月、３ヶ月、４ヶ月、５ヶ月または６ヶ月以上にわたって、毎日、１日２回、１日３回、１日４回以上の投与である。
【０５２４】
本発明の別の態様では、前記方法は、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の単離された集合の使用を提供する。本発明の一実施形態では、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の単離された集合は、薬学的組成物の製造、処置を必要とする対象、例えば、糖尿病を有するか、または、糖尿病になるリスクにある対象、例えば、制限されず、先天的及び後天的糖尿病を有する対象への移植における使用に使用され得る。一実施形態では、ＳＣ−β細胞の単離された集合は、遺伝子組み換えされていてもよい。別の態様では、前記対象は、糖尿病及び／または代謝異常を有するか、または、糖尿病及び／または代謝異常のリスクにあり得る。一部の実施形態では、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の単離された集合は、自家及び／または同種であり得る。一部の実施形態では、前記対象は、哺乳類である。他の実施形態では、前記哺乳類は、ヒトである。
【０５２５】
本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の単離された集合の使用は、既存の方法を越えた利点を提供する。前記ＳＣ−β細胞の集合は、ＳＣ−β細胞の単離された集合を投与される対象から取得または収集された、幹細胞、例えば、ｉＰＳ細胞から得られたインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体から分化され得るためである。当業者に一般的に公知の方法により、幹細胞からインスリン陽性内分泌細胞に分化され、ついで、本願明細書に記載された方法により、対象への移植用の膵臓β様細胞または膵臓β細胞の特徴を有する細胞、特に、他の系から得られた細胞のリスク及び限界を有さない成熟膵臓β様細胞の実質的に純粋な集合にさらに分化され得る、ＳＣ−β細胞の再生可能なソースを提供するのは非常に有益である。
【０５２６】
別の実施形態では、ＳＣ−β細胞の単離された集合（例えば、成熟膵臓β細胞またはβ様細胞）は、インスリン産生細胞、例えば、膵臓β細胞または膵臓β様細胞への分化のための特性、または、内胚葉起源の細胞の膵臓β細胞への発達の経路を研究するためのモデルとして使用され得る。
【０５２７】
一部の実施形態では、前記インスリン陽性内分泌細胞またはＳＣ−β細胞は、マーカーが発現または分泌される際に、発現されるプロモータに操作可能に結合しているマーカー、例えば、インスリンプロモータに操作可能に結合し得るマーカーを含むように、遺伝子組み換えされてもよい。これにより、前記インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体が、インスリンを発現及び分泌するＳＣ−β細胞に分化する際、前記マーカーが発現される。一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合は、膵島β細胞または膵臓β様細胞に分化する細胞の分化経路を研究するためのモデルとして使用され得る。
【０５２８】
他の実施形態では、前記インスリン産生、グルコース応答性の細胞は、膵臓における、並びに、糖尿病及び代謝異常の進行における膵島β細胞の役割を研究するためのモデルとして使用され得る。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、正常な対象または（例えば、早期発症インスリン依存型糖尿病（ＮＩＤＤＭ）及び４型の若年発症成人型糖尿病（ＭＯＤＹ４）をもたらす遺伝子であるＰｄｘ１における）変異及び／もしくは多形を有する対象由来であり得る。前記ＳＣ−β細胞は、Ｐｄｘ１における変異または多形を有する糖尿病の対象を処置するのに使用され得る、小分子及び他の治療剤を特定するのに使用され得る。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、糖尿病を有する対象の治療的処置において、対象に投与される前に、前記Ｐｄｘ１遺伝子における多形を訂正するように遺伝子組み換えされていてもよい。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、変異及び／または多形を有するように遺伝子組み換えされていてもよい。
【０５２９】
本発明の一実施形態は、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合を含む有効量の組成物を、糖尿病及び／または代謝異常を有する対象に投与することを含む、対象における糖尿病または代謝異常の処置方法に関する。更なる実施形態では、本発明は、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合を含む組成物を、糖尿病を有するか、または、糖尿病になる増大したリスクを有する対象に、上昇した血中グルコースレベルに対する応答においてインスリンを産生するのに十分有効な量で投与することを含む、糖尿病の処置方法を提供する。
【０５３０】
上記方法の一実施形態では、前記対象は、ヒトであり、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合は、ヒト細胞である。一部の実施形態では、本発明は、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合が、対象の膵臓に直接投与されるか、または、全身に投与されることを考慮する。一部の実施形態では、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合は、対象中の任意の適切な位置に、例えば、血管または肝臓、または、投与された前記ＳＣ−β細胞の集合が対象における上昇したグルコースレベルに対する応答においてインスリンを分泌し得る任意の適切な部位にカプセル状で投与され得る。
【０５３１】
本発明は、遺伝子欠損、物理的傷害、環境的損傷または調整、悪病、肥満及び、当業者に一般的に公知の他の糖尿病のリスク要因の結果として生じた、糖尿病または代謝異常を有する対象の処置方法も対象にする。ＳＣ−β細胞の集合を含む組成物を投与された対象の処置の有効性は、臨床的に許容された基準及び試験によりモニターされ得る。前記評準及び試験としては、例えば、（ｉ）糖化ヘモグロビン（Ａ１Ｃ）試験（前記試験は、赤血球中の酸素運搬タンパク質であるヘモグロビンに付着した血糖の割合を測定することにより、過去２から３ヶ月についての対象の平均血糖レベルを示す。血糖レベルが高いほど、より多くのヘモグロビンに糖が付着している。２回の別々の試験において、６．５パーセント以上のＡ１Ｃレベルは、対象が糖尿病を有することを示す。６−６．５％の試験値は、対象が糖尿病前症を有することを示唆する。）、（ｉｉ）ランダム血糖試験（血液サンプルが対象からランダムなタイミングで採取されるであろう。１デシリットルあたりに２００ミリグラム（ｍｇ／ｄＬ）−１リットルあたりに１１．１ミリモル（ｍｍｏｌ／Ｌ）以上のランダム血糖レベルは、対象が糖尿病を有することを示す。）、（ｉｉｉ）絶食時血糖試験（血液サンプルが、一晩絶食した後の対象から採取される。７０と９９ｍｇ／ｄＬ（３．９と５．５ｍｍｏｌ／Ｌ）の間の絶食時血糖レベルは、正常である。対象の前記絶食時血糖レベルが、２回の別々の試験において１２６ｍｇ／ｄＬ（７ｍｍｏｌ／Ｌ）以上である場合、前記対象は、糖尿病を有する。１００から１２５ｍｇ／ｄＬ（５．６から６．９ｍｍｏｌ／Ｌ）の血糖レベルは、対象が糖尿病前症を有することを示す。）、（ｉｖ）経口グルコース負荷試験（血液サンプルは、対象が、少なくとも８時間または一晩絶食し、糖液を摂取した後について採取されるであろう。血糖レベルは、２時間後に測定されるであろう。１４０ｍｇ／ｄＬ（７．８ｍｍｏｌ／Ｌ）未満の血糖レベルは、正常である。１４０から１９９ｍｇ／ｄＬ（７．８から１１ｍｍｏｌ／Ｌ）の血糖レベルは、糖尿病前症と考えられる。これは、耐糖能異常（ＩＧＴ）と呼ばれる場合がある。２００ｍｇ／ｄＬ（１１．１ｍｍｏｌ／Ｌ）以上の血糖レベルは、糖尿病を示し得る。）があげられる。
【０５３２】
一部の実施形態では、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合の、それを必要とする対象への投与の効果は、改善した運動耐性または他のクオリティオブライフ測定及び低下した死亡率に関連する。ＳＣ−β細胞の集合による細胞療法の効果は、手術後数日から数週間の経過にわたって証明され得る。ただし、有益な効果は、手術後数時間の早さで観察される場合があり、数年間持続する場合がある。一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合による細胞療法の効果は、手術後２週間以内に生じる。
【０５３３】
一部の実施形態では、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合は、このような処置を必要とするヒト患者または他の対象における組織の再構成または再生に使用されてもよい。一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合の組成物は、それらを意図した組織部位に移植または移動させ、機能的に失われた領域を再構成または再生するのを可能にする方法で投与され得る。膵臓または代替的な所望の位置においてβ細胞の集合を再構成可能な細胞を投与するのに採用された、専用の装置が利用可能である。したがって、前記ＳＣ−β細胞は、注射によりレシピエントの対象の膵臓に投与されてもよいし、または、筋肉内注射により投与されてもよい。
【０５３４】
一部の実施形態では、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合を含む組成物は、臨床治療、調査、開発及び商業目的における各種の用途を有する。治療目的で、例えば、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合は、任意の認知される必要性、例えば、代謝機能の先天異常、疾患状態（例えば、糖尿病）の影響または著しい傷害（すなわち、膵臓に対する障害または膵島β細胞に対する損失もしくは傷害）の結果のために、血中グルコースレベルにおける上昇に対する応答において、インスリン産生を亢進させるのに投与され得る。一部の実施形態では、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合は、傷を負ったまたは他の方法で不健康な組織に対する機能を回復させるのに役立つだけでなく、傷を負った組織の再モデル化を促進するのに、対象に投与される。
【０５３５】
治療的投与のための細胞組成物の適切性を決定するために、前記ＳＣ−β細胞の集合は、まず、適切な動物モデルにおいて試験され得る。あるレベルにおいて、細胞は、ｉｎ  ｖｉｖｏにおける生存するその能力及びその表現型を維持するその能力を評価される。ＳＣ−β細胞を含む細胞組成物は、免疫不全動物（例えば、ヌードマウスまたは化学的にまたは放射線により免疫不全にされた動物）に投与され得る。再成長期間後に、組織が回収され、投与された細胞またはその子孫が未だに存在しているかどうかが評価される。
【０５３６】
これは、検出可能な標識（例えば、緑色蛍光タンパク質またはβ−ガラクトシダーゼ）を発現している；予備標識されている（例えば、ＢｒｄＵまたは［３Ｈ］チミジン）細胞を投与することにより、または、（例えば、ヒト特異的抗体を使用して）構成的細胞マーカーのその後の検出により行われ得る。投与された前記ＳＣ−β細胞の集合の存在及び表現型は、ヒト特異的抗体を使用した免疫組織化学法もしくはＥＬＩＳＡにより、または、公開された配列データに基づいて、ヒトのポリヌクレオチドを特異的に増幅させる、プライマー及びハイブリダイゼーション条件を使用したＲＴ−ＰＣＲ分析により評価され得る。
【０５３７】
米国特許第６，１８７，９９１号明細書（同特許は、参照により本願明細書に組み込まれる。）に開示された糖尿病を試験するための数多くの動物モデル、並びに、げっ歯類モデル；ＮＯＤ（非肥満マウス）、ＢＢ＿ＤＢマウス、ＫＤＰラット及びＴＣＲマウス並びに、Ｒｅｅｓ  ｅｔ  ａｌ，  Ｄｉａｂｅｔ  Ｍｅｄ．  ２００５  Ａｐｒｉｌ；２２（４）：３５９−７０；Ｓｒｉｎｉｖａｓａｎ  Ｋ，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｉｎｄｉａｎ  Ｊ  Ｍｅｄ．  Ｒｅｓ．  ２００７  Ｍａｒｃｈ；１２５（３）：４５１−７；Ｃｈａｔｚｉｇｅｏｒｇｉｏｕ  Ａ，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｉｎ  Ｖｉｖｏ．  ２００９  Ｍａｒｃｈ−Ａｐｒｉｌ；  ２３（２）：２４５−５８（同文献は、参照により本願明細書に組み込まれる。）に記載された糖尿病の他の動物モデルが、このような試験に利用可能であり、当該分野において公知である。
【０５３８】
一部の実施形態では、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合は、任意の生理学的に許容され得る賦形剤において投与されてもよい。この場合、前記ＳＣ−β細胞は、複製、増殖及び／または移植に適した部位にたどり着き得る。一部の実施形態では、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合は、注射、カテーテル等により導入され得る。一部の実施形態では、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合は、液体窒素の温度で凍結されることができ、長期間保存されることができ、解凍時に使用可能である。凍結される場合、ＳＣ−β細胞の集合は、通常、１０％  ＤＭＳＯ、５０％  ＦＣＳ、４０％  ＲＰＭＩ１６４０培地に保存されるであろう。解凍されると、前記細胞は、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の培養に関連する成長因子及び／またはフィーダ細胞の使用により増殖され得る。
【０５３９】
一部の実施形態では、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合は、ヒトへの投与用に十分無菌条件下で調整された等張性賦形剤を含む薬学的組成物の形態で供給され得る。医薬品の一般原則について、読み手は、Ｃｅｌｌ  Ｔｈｅｒａｐｙ：Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ，  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐｙ，  ａｎｄ  Ｃｅｌｌｕｌａｒ  Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｙ，  ｂｙ  Ｇ．  Ｍｏｒｓｔｙｎ  ＆  Ｗ．  Ｓｈｅｒｉｄａｎ  ｅｄｓ，  Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  Ｐｒｅｓｓ，  １９９６；及び、Ｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  Ｔｈｅｒａｐｙ，  Ｅ．  Ｄ．  Ｂａｌｌ，  Ｊ．  Ｌｉｓｔｅｒ  ＆  Ｐ．  Ｌａｗ，  Ｃｈｕｒｃｈｉｌｌ  Ｌｉｖｉｎｇｓｔｏｎｅ，  ２０００に言及される。本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合を含む組成物における、細胞賦形剤及び任意の付随的要素の選択は、投与に使用される経路及び装置に基づいて採用されるであろう。一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合を含む組成物は、前記ＳＣ−β細胞の移植または機能的な移動を容易にする、１つ以上の他の成分も含むことができ、または、同成分を伴うこともできる。適切な成分としては、前記ＳＣ−β細胞または補完的細胞種、特に内皮細胞の付着を支持または促進するマトリクスタンパク質があげられる。別の実施形態では、前記組成物は、吸収性または生分解性のマトリクス足場を含んでもよい。
【０５４０】
一部の実施形態では、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合は、インスリン産生細胞、例えば、膵臓β細胞に有用な遺伝子、例えば、個体における遺伝子欠損の修復、選択マーカー等、または、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌またはその前駆体から分化された非インスリン産生細胞に対する選択に有用な遺伝子、もしくは、埋め込まれたＳＣ−β細胞の選択的自殺に有用な遺伝子を導入するために、遺伝子組み換えされてもよい。一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合は、生存の向上、増殖の制御等のために、遺伝子組み換えされていることもできる。一部の実施形態では、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合は、適切なベクターによるトランスフェクションもしくは形質移入、相同組換えまたは他の適切な技術により遺伝子組み換えされ得る。これにより、それらは、所望の遺伝子を発現する。一実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合は、テロメラーゼ触媒性成分（ＴＥＲＴ）をコードする遺伝子により、内在性プロモータ下において生じるのを超えるテロメラーゼ発現を増大させる異種プロモータ下において、典型的にトランスフェクションされる（国際公開第９８／１４５９２号パンフレットを参照のこと。同公報は、参照により本願明細書に組み込まれる。）。他の実施形態では、より高い純度のＳＣ−β細胞の集合を提供する選択マーカーが導入される。一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合は、８−１６時間期にわたって、ベクター含有上清を使用して、遺伝子組み換えされ、ついで、増殖培地に１−２日間変更される。遺伝子組み換えされたＳＣ−β細胞は、薬剤選択剤、例えば、ピューロマイシン、Ｇ４１８またはブラスチシジンを使用して選択され、ついで、再度培養され得る。
【０５４１】
遺伝子治療は、遺伝子産物を置き換え、組織の再生を促進し、疾患を処置し、または、対象への埋め込み後の前記細胞の生存を改善する（すなわち、拒絶を防止する）ためのいずれかで、細胞を修飾するのに使用され得る。
【０５４２】
別の実施形態では、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合は、組織再生に関与する、または、投与部位への治療的遺伝子を送達する、その能力を向上させるためにも遺伝子組み換えされ得る。ベクターは、所望の遺伝子について公知のコード配列を使用して設計される。前記遺伝子は、分化した細胞種において、ｐａｎ−ｓｐｅｃｉｆｉｃまたは特異的に活性のいずれかにおけるプロモータに操作可能に結合される。特に所望のものは、１つ以上の種々の種類の成長因子、例えば、ソマトスタチン、グルカゴン及び他の因子を発現するように遺伝子組み換えされている細胞である。
【０５４３】
本願明細書に開示された目的のＳＣ−β細胞内に外来性遺伝子を輸送するのに有用な多くのベクターが利用可能である。前記ベクターは、エピソームでもよく、例えば、プラスミド、ウイルス系ベクター、例えば、サイトメガロウイルス、アデノウイルス等でもよいし、または、相同組換えまたはランダムインテグレーション、例えば、ウイルス系ベクター、例えば、ＭＭＬＶ、ＨＩＶ−１、ＡＬＶ等により目的細胞のゲノム内に組み込まれてもよい。一部の実施形態では、レトロウイルスと適切なパッケージング細胞株との組合せも、用途を見出し得る。この場合、カプシドタンパク質は、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞に感染するのに機能するであろう。通常、ＳＣ−β細胞及びウイルスは、培養培地中で、少なくとも２４時間培養されるであろう。一部の実施形態では、ついで、前記ＳＣ−β細胞は、前記培養培地中で、短い間隔、一部の用途では、例えば、２４−７３時間または少なくとも２週間増殖されてもよく、分析前に５週間以上増殖されてもよい。一般的に使用されるレトロウイルスベクターは、「欠陥がある」、すなわち、増殖性感染に必要とされるウイルスタンパク質を産生できない。前記ベクターの複製は、前記パッケージング細胞株における増殖を必要とする。
【０５４４】
前記レトロウイルスの宿主細胞特異性は、エンベロープタンパク質であるｅｎｖ（ｐ１２０）により決定される。前記エンベロープタンパク質は、前記パッケージング細胞株により提供される。エンベロープタンパク質には、少なくとも３種類、エコトロピック、アンホトロピック及びゼノトロピックが存在する。エコトロピックエンベロープタンパク質でパッケージされたレトロウイルス、例えば、ＭＭＬＶは、大部分のマウス及びラットの細胞種に感染可能である。エコトロピックパッケージング細胞株としては、ＢＯＳＣ２３があげられる（Ｐｅａｒ  ｅｔ  ａｌ．  （１９９３）  Ｐ．Ｎ．Ａ．Ｓ．  ９０：８３９２−８３９６）。アンホトロピックエンベロープタンパク質、例えば、４０７０Ａを有するレトロウイルス（上記Ｄａｎｏｓ  ｅｔ  ａｌ）は、大部分の哺乳類細胞種、例えば、ヒト、イヌ及びマウスに感染可能である。アンホトロピックパッケージング細胞株としては、ＰＡｌ２（Ｍｉｌｌｅｒ  ｅｔ  ａｌ．（１９８５）Ｍｏｌ．  Ｃｅｌｌ．  Ｂｉｏｌ．  ５：４３１−４３７）；ＰＡ３１７（Ｍｉｌｌｅｒ  ｅｔ  ａｌ．（１９８６）Ｍｏｌ．  Ｃｅｌｌ．  Ｂｉｏｌ．  ６：２８９５−２９０２）；ＧＲＩＰ（Ｄａｎｏｓ  ｅｔ  ａｌ．（１９８８）ＰＮＡＳ  ８５：６４６０−６４６４）があげられる。ゼノトロピックエンベロープタンパク質、例えば、ＡＫＲ  ｅｎｖでパッケージされたレトロウイルスは、マウスを除く大部分の哺乳類細胞種に感染可能である。一部の実施形態では、前記ベクターは、例えば、リコンビナーゼ系、例えば、Ｃｒｅ／Ｌｏｘを使用して、後に除去されるべき遺伝子、または、例えば、選択毒性、例えば、ヘルペスウイルスＴＫ、Ｂｃ１−Ｘｓ等を可能にする遺伝子を含むことにより壊されたそれらを発現する細胞を含んでもよい。
【０５４５】
適切な誘導性プロモータは、所望の目的細胞種、トランスフェクションされた細胞またはその子孫のいずれかにおいて活性化される。転写活性により、転写は、前記目的の細胞における基底レベルを上回って、少なくとも約１００倍で、より一般的には、少なくとも約１０００倍で向上されるであろうことが意図される。種々のプロモータが、種々の細胞種において誘導されることが公知である。
【０５４６】
本発明の一態様では、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合は、全身的または目的の解剖学的部位への投与に適している。ＳＣ−β細胞の集合は、例えば、対象の膵臓内もしくは膵臓付近に移植されることができ、または、全身的に投与され、例えば、制限されず、動脈内もしくは静脈内に投与されてもよい。別の実施形態では、本発明のＳＣ−β細胞の集合は、膵臓または分泌系に埋め込まれるのに適切であろう種々の方法、例えば、制限されず、非経口、例えば、静脈内及び動脈内投与、髄腔内投与、心室内投与、実質内投与、頭蓋内、嚢内、線条体内及び黒質内の投与で投与され得る。場合により、ＳＣ−β細胞の集合は、免疫抑制剤との組合せで投与される。
【０５４７】
一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合は、ＳＣ−β細胞の集合は、患者個体の臨床症状、投与の部位及び方法、投与スケジュール、患者の年齢、性別、体重並びに医療従事者に公知の他の要因を考慮して、医療の品質管理に関する基準に基づいて投与及び投薬され得る。このため、本願明細書での目的について、薬学的に「有効な量」は、当該分野において公知なように、このような考慮により決定される。前記量は、改善、例えば、制限されず、改善した生存率、より急速な回復、または、当業者による適切な測定として選択された場合、兆候及び他の兆候の改善もしくは除去を達成するのに有効でなければならない。ＳＣ−β細胞の集合は、下記場所：診療所、病院、救急部門、病棟、集中治療室、手術室、カテーテル法室、放射線室で、対象に投与され得る。
【０５４８】
他の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合は、後の埋め込み／注入のために保存される。ＳＣ−β細胞の集合は、２つ以上のアリコートまたはユニットに分割されてもよい。これにより、一部のＳＣ−β細胞の集合は、後の適用に保持され、一部は、前記対象に直ちに適用される。米国特許出願公開第２００３００５４３３１号明細書及び国際公開第０３０２４２１５号パンフレットに開示されたように、細胞バンクにおける全部または一部の前記細胞の中程度から長期間の保存も、本発明の範囲内である。同特許は、その全体が参照により組み込まれる。処理の最後に、濃縮された細胞は、当業者に公知の任意の手段によりレシピエント内に配置するための送達装置、例えば、シリンジ内に充填され得る。
【０５４９】
一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合は、単独で、または、他の細胞、組織、組織断片、成長因子、例えば、ＶＥＧＦ及び他の公知の血管新生もしくは血管原性の成長因子、生物学的に活性もしくは不活性な化合物、吸収性プラスチック足場または、前記集合の送達、有効性、耐容性もしくは機能を向上させることを意図した他の添加剤との組合せで適用され得る。一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合は、構造的または治療的目的を引き出すために、細胞の機能を変化、向上または追加するように、ＤＮＡの挿入または細胞培養中での置換により修飾されることもできる。例えば、幹細胞についての遺伝子輸送技術は、（Ｍｏｒｉｚｏｎｏ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００３；Ｍｏｓｃａ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０００）に開示されたように、当業者に公知であり、ウイルストランスフェクション技術、及びより具体的には、（Ｗａｌｔｈｅｒ  ａｎｄ  Ｓｔｅｉｎ，  ２０００）及び（Ａｔｈａｎａｓｏｐｏｕｌｏｓ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０００）に開示されたアデノ関連ウイルス遺伝子輸送技術をあげることができる。非ウイルス系技術も、（Ｍｕｒａｒｎａｔｓｕ  ｅｔ  ａｌ．，  １９９８）に開示されたように行われてもよい。
【０５５０】
別の態様では、一部の実施形態において、ＳＣ−β細胞の集合は、血管新生促進性成長因子をコードする遺伝子と組み合わせられ得る。抗アポトーシス因子または作用剤をコードする遺伝子も適用され得る。前記遺伝子（または、遺伝子の組合せ）の追加は、当該分野において公知の任意の技術、例えば、制限されず、アデノウイルス形質移入である、「遺伝子銃」、リポソーム媒介性形質移入及びレトロウイルスまたはレンチウイルス媒介性遺伝子移入、プラスミドアデノ関連ウイルスによることができる。細胞は、形質移入が継続または開始し得るように、経時的に前記細胞に対して遺伝子を放出及び／または提示可能な遺伝子送達媒体を有するキャリア材料と共に、埋め込まれ得る。特に、前記細胞及び／または前記細胞を含む組織が、前記細胞及び／または組織が得られた患者以外の患者に投与される場合、１つ以上の免疫抑制剤が、前記細胞及び／または組織を受けている患者に投与されて、移植拒絶を減少させ、好ましくは、防止してもよい。本願明細書で使用する場合、前記「免疫抑制薬または作用剤」の用語は、正常な免疫機能を阻害または妨害する、医薬品を含むことを意図する。本願明細書に開示された方法に適した免疫抑制剤の例としては、Ｔ細胞／Ｂ細胞の同時刺激経路を阻害する薬剤、例えば、米国特許出願公開第２００２／０１８２２１１号明細書に開示された、ＣＴＬＡ４及びＢ７経路を介したＴ細胞とＢ細胞との結合を妨害する薬剤があげられる。同公報は、参照により本願明細書に組み込まれる。一実施形態では、免疫抑制剤は、シクロスポリンＡである。他の例としては、ミオフェニレートモフェチル、ラパマイシン及び抗−胸腺細胞グロブリンがあげられる。一実施形態では、前記免疫抑制薬は、少なくとも１つの他の治療剤と共に投与される。前記免疫抑制薬は、投与経路に適合した形式で投与され、所望の治療効果を達成するのに十分な用量で対象に投与される。別の実施形態では、前記免疫抑制薬は、本発明の心血管幹細胞に対する耐容性を誘導するのに十分な期間、一時的に投与される。
【０５５１】
有効量のＳＣ−β細胞の集合を含む薬学的組成物も、本発明により考慮される。これらの組成物は、場合により、薬学的に許容され得るキャリア、添加剤または賦形剤との組合せで、有効数のＳＣ−β細胞を含む。本発明の特定の態様では、ＳＣ−β細胞の集合は、移植を必要とする対象に、滅菌生理食塩水において投与される。本発明の他の態様では、ＳＣ−β細胞の集合は、Ｈａｎｋｓ平衡化食塩水（ＨＢＳＳ）またはＩｓｏｌｙｔｅ  Ｓ、ｐＨ７．４において投与される。他のアプローチ、例えば、血清を含まない細胞培地の使用も使用され得る。一実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合は、血漿またはウシ胎児血清及びＤＭＳＯにおいて投与される。前記対象へのＳＣ−β細胞の集合の全身性投与は、特定の兆候において好ましい場合がある。一方、病気及び／または傷害の組織の部位または近くへの直接的な投与が、他の兆候において好ましい場合がある。
【０５５２】
一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合は、場合により、所望の目的、例えば、対象への投与前のＳＣ−β細胞の集合の再構成または解凍（凍結されている場合）について記載された説明書と共に、適切な容器に梱包され得る。
【０５５３】
一実施形態では、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の単離された集合は、分化剤と共に投与される。一実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、対象内への投与のために、前記分化剤と組み合わせられる。別の実施形態では、前記細胞は、前記分化剤とは別々に、前記対象に投与される。場合により、前記細胞が前記分化剤とは別々に投与される場合、前記細胞と前記分化剤との投与において、時間的な分離が存在する。前記時間的分離は、時間にして約１分未満から時間にして約数時間または数日の範囲であり得る。最適なタイミング及び投与順の決定は、当業者により容易かつルーチンに決定される。
【０５５４】
糖尿病の診断
【０５５５】
１型糖尿病は、膵臓のインスリン産生β細胞の破壊をもたらす自己免疫疾患である。インスリンの欠損は、腎臓閾値（多くは約１９０−２００ｍｇ／ｄｌ）を上回って尿に表れ始める絶食時血中グルコースの増大を引き起こす（非糖尿病の人間では、約７０−１２０ｍｇ／ｄＬ）。世界保健機関は、糖尿病について、絶食時の血漿グルコース濃度７．０ｍｍｏｌ／ｌ（１２６ｍｇ／ｄｌ）（全血  ６．１ｍｍｏｌ／ｌまたは１１０ｍｇ／ｄｌ）以上、または、２時間グルコースレベル１１．１ｍｍｏｌ／Ｌ以上（２００ｍｇ／ｄＬ以上）の診断値を定義している。
【０５５６】
１型糖尿病は、各種の診断試験を使用して診断され得る。前記試験としては、制限されず、下記：（１）糖化ヘモグロビン（Ａ１Ｃ）試験、（２）ランダム血中グルコース試験及び／または（３）絶食時血中グルコース試験があげられる。
【０５５７】
前記糖化ヘモグロビン（Ａ１Ｃ）試験は、過去２から３ヶ月にわたる、対象の平均血中グルコースレベルを反映する血液試験である。前記試験は、ヘモグロビンに付着した血中グルコースの割合を測定する。前記割合は、血中グルコースレベルと相関する（前記血中グルコースレベルが高いほど、より多くのヘモグロビンが糖化されている。）。２回の別々の試験において、６．５％以上のＡ１Ｃレベルは、糖尿病を示す。６と６．５％との間の結果は、糖尿病前症と考えられる。前記糖尿病前症は、糖尿病になる高いリスクを示す。
【０５５８】
前記ランダム血中グルコース試験は、糖尿病を有すると疑われた対象から、ランダムなタイミングで血液サンプルを取得することを含む。血中グルコース値は、１デシリットルあたりのミリグラム（ｍｇ／ｄＬ）または１リットルあたりのミリモル（ｍｍｏｌ／Ｌ）で表現され得る。２００ｍｇ／ｄＬ（１１．１ｍｍｏｌ／Ｌ）以上のランダム血中グルコースレベルは、特に、糖尿病の兆候及び症候、例えば、頻尿及び多渇のいずれかと組み合わせられた場合、対象がおそらく糖尿病を有することを示す。
【０５５９】
前記絶食時血中グルコース試験について、血液サンプルが、一晩絶食した後に取得される。１００ｍｇ／ｄＬ（５．６ｍｍｏｌ／Ｌ）未満の絶食時血中グルコースレベルは、正常と考えられる。１００から１２５ｍｇ／ｄＬ（５．６から６．９ｍｍｏｌ／Ｌ）の絶食時血中グルコースレベルは、糖尿病前症と考えられる。一方、２回の別々の試験において１２６ｍｇ／ｄＬ（７ｍｍｏｌ／Ｌ）以上のレベルは、糖尿病を示す。
【０５６０】
１型糖尿病は、Ｃ−ペプチドアッセイを使用して、２型糖尿病と区別することもできる。前記アッセイは、内在性のインスリン産生の測定である。（グルタミン酸脱炭酸酵素、インスリノーマ関連ペプチド−２またはインスリンに対する）抗−膵島抗体の存在、または、グルコース耐性試験により決定されるインスリン抵抗性の欠落も、１型を示す。多くの２型糖尿病が内部的にインスリンを産生し続け、全てがある程度のインスリン抵抗性を有するためである。
【０５６１】
ＧＡＤ６５抗体についての試験が、免疫系が１型糖尿病の病因に関与しているのが明らかであるために、１型と２型との糖尿病の間を区別するための改善された試験として提案されている。
【０５６２】
一部の実施形態では、本発明は、本願明細書に開示された方法により産生されたＳＣ−β細胞の集合を、このような治療を必要とする対象における膵臓機能を保存するのに使用するための組成物を提供する。必要に応じて、膵臓の内分泌（インスリン、グルカゴンまたはソマトスタチン）の不十分な産生または分泌を正確に制御できないことに関する任意の症状が、この発明に基づいて調製された細胞（例えば、ＳＣ−β細胞の集合）による処置に考慮され得る。特に対象となるものは、Ｉ型（インスリン依存性）糖尿病の処置である。
【０５６３】
外来性インスリンの投与における確立された長期依存性及び許容可能なリスクプロファイルに基づく処置を必要とする対象が選択され得る。前記対象は、体重１ｋｇあたりに、約１０，０００個のＳＣ−β細胞または同等の細胞を受容する。前記細胞が自家でない場合、同種ミスマッチを克服するために、前記対象は、手術前に、免疫抑制剤、例えば、ＦＫ５０６及びラパマイシン（経口）及びダクリズマブ（静脈内）で処置され得る。ＳＣ−β細胞の集合を含む組成物は、門脈中にカテーテルにより注入され得る。ついで、前記対象は、肝機能を決定する、腹部超音波及び血液試験に供され得る。日量のインスリン要求を追跡し、前記対象は、必要に応じて、２回目の移植を提供される。追跡モニタリングとしては、薬剤レベル、免疫機能、全体的な健康状態及び、患者がインスリン独立性のままであるかどうかについての頻繁な血液試験があげられる。
【０５６４】
糖尿病患者の管理に対する一般的なアプローチは、標準的な教科書、例えば、ｔｈｅ  Ｔｅｘｔｂｏｏｋ  ｏｆ  Ｉｎｔｅｒｎａｌ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，  ３ｒｄ  Ｅｄｉｔｉｏｎ，  ｂｙ  Ｗ．  Ｎ．  Ｋｅｌｌｅｙ  ｅｄ．，  Ｌｉｐｐｉｎｃｏｔｔ−Ｒａｖｅｎ，  １９９７；並びに、専門の参考文献、例えば、Ｄｉａｂｅｔｅｓ  Ｍｅｌｌｉｔｕｓ：Ａ  Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ  ａｎｄ  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｔｅｘｔ  ２ｎｄ  Ｅｄｉｔｉｏｎ，  ｂｙ  Ｄ．  Ｌｅｒｏｉｔｈ  ｅｄ．，  Ｌｉｐｐｉｎｃｏｔｔ  Ｗｉｌｌｉａｍｓ  ＆  Ｗｉｌｋｉｎｓ  ２０００；Ｄｉａｂｅｔｅｓ（Ａｔｌａｓ  ｏｆ  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ  Ｖｏｌ．  ２）ｂｙ  Ｃ．  Ｒ．  Ｋａｈｎ  ｅｔ  ａｌ．  ｅｄｓ．，  Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  １９９９；及び、Ｍｅｄｉｃａｌ  Ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ  ｏｆ  Ｔｙｐｅ  １  Ｄｉａｂｅｔｅｓ  ３ｒｄ  Ｅｄｉｔｉｏｎ，  ＭｃＧｒａｗ  Ｈｉｌｌ  １９９８に提供される。Ｉ型糖尿病の処置についての膵島細胞の使用は、Ｃｅｌｌｕｌａｒ  Ｉｎｔｅｒ−Ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ  ｉｎ  ｔｈｅ  Ｐａｎｃｒｅａｓ：Ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ  ｆｏｒ  Ｉｓｌｅｔ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ，  ｂｙ  Ｌ．  Ｒｏｓｅｎｂｅｒｇ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｃｈａｐｍａｎ  ＆  Ｈａｌｌ  １９９９；及び、Ｆｅｔａｌ  Ｉｓｌｅｔ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ，  ｂｙ  Ｃ．  Ｍ．  Ｐｅｔｅｒｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．  ｅｄｓ．，  Ｋｌｕｗｅｒ  １９９５において、長く検討されている。
【０５６５】
通常、対象の選択、投与方式及びＳＣ−β細胞の集合の投与量についての最終的な責任は、管理医師の責任である。商業的配布の目的で、本願明細書に開示されたＳＣ−β細胞の集合は、典型的には、ヒトへの投与用に十分な無菌条件下で調整された等張性賦形剤を含む薬学的組成物の形式で供給される。この発明は、その製造、配布または使用中の任意のタイミングで存在するＳＣ−β細胞の集合のセットを含む。前記ＳＣ−β細胞の集合のセットは、この開示に記載され、成体型内胚葉細胞のＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞になる分化、及び例えば、インスリン産生細胞、例えば、成熟膵臓β細胞または成熟膵臓β様細胞（前記用語は、本願明細書において定義されている。）へのその後の分化に、制限されず例示された、２つ以上の細胞集合の任意の組合せを含む。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞の集合を含む細胞組成物は、他の細胞種、例えば、場合により、同じゲノムを共有する他の分化した細胞種との組合せで投与され（例えば、対象内に埋め込まれ）得る。前記セット中の各細胞種は、まとめて、または、同じ施設または同じ実体もしくはビジネス関係を共有する異なる実体の管理下において異なる場所において、別々の容器に梱包され得る。
【０５６６】
細胞組成物の医薬品における一般原理について、読み手は、Ｃｅｌｌ  Ｔｈｅｒａｐｙ：Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ，  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐｙ，  ａｎｄ  Ｃｅｌｌｕｌａｒ  Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｙ，  ｂｙ  Ｇ．  Ｍｏｒｓｔｙｎ  ＆  Ｗ．  Ｓｈｅｒｉｄａｎ  ｅｄｓ，  Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  Ｐｒｅｓｓ，  １９９６に言及される。前記組成物は、場合により、所望の目的、例えば、糖尿病の処置について記載された説明書と共に、適切な容器に梱包される。
【０５６７】
一部の実施形態では、ＳＣ−β細胞の集合を含む組成物は、膵臓膵島細胞の１つ以上の内分泌ポリペプチドを産生するように設計された機械的装置の機能コンポーネントとしても使用され得る。その最も単純な形態では、前記装置は、前記細胞集合の通過を防止し、それらを前記装置に保持するが、前記細胞集合により分泌されたインスリン、グルカゴンまたはソマトスタチンの通過を許容する、半透過性膜の内側にＳＣ−β細胞の集合を収容する。これには、典型的には、脱分化を防止する細胞の相互作用を許容する、細胞クラスターの形態でマイクロカプセル化されたＳＣ−β細胞の集合が含まれる。例えば、米国特許第４，３９１，９０９号明細書には、インスリンサイズのタンパク質を透過するが、１００，０００ｍｏｌ．ｗｔを超える分子を透過しないように架橋している、３，０００ｍｏｌ．ｗｔより大きい多糖類ポリマーで構成された楕円形状の半透過膜に封入された膵島細胞が記載されている。米国特許第６，０２３，００９号明細書には、アガロース及びアガロペクチンから形成された半透過膜に封入された膵島細胞が記載されている。この性質のマイクロカプセルは、糖尿病患者の身体腔内に投与されるのに採用され、組織適合性の問題または細菌に対する感受性を低下させる特定の利益を有すると考えられる。
【０５６８】
ＳＣ−β細胞の集合を含み、糖尿病患者への埋込み用または体外治療用のいずれかに使用するための、より精巧な装置も考慮される。米国特許第４，３７８，０１６号明細書には、体外セグメント、皮下セグメント及び、ホルモン産生細胞を収容する取り替え可能なエンベロープを含む人工的な内分泌腺が記載されている。米国特許第５，６７４，２８９号明細書には、半透過膜により、周囲の組織に対して開かれた１つ以上の血管新生化チャンバに対して分離された、膵島チャンバを有するバイオ人工膵臓が記載されている。有用な装置は、典型的には、膵島細胞を収容するように採用されたチャンバ、及び、前記膵島細胞からの分泌タンパク質を回収し、例えば、循環グルコースレベルの前記膵島細胞へのシグナル伝達帰還を可能にする場合もある、半透過膜により前記膵島細胞から分離されたチャンバを有する。
【０５６９】
ＳＣ−β細胞または膵臓β細胞の産生を増大させるβ細胞成熟因子の特定方法
【０５７０】
本願明細書において、ＳＣ−β細胞（例えば、膵臓β細胞）の産生を増大させるβ細胞成熟因子または薬剤の特定方法が記載される。特定の例では、高含量及び／または高スループットのスクリーニング法が提供される。前記方法は、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を、少なくとも１つの化合物（例えば、ライブラリ化合物または本願明細書に記載された化合物）に曝すこと、及び、前記化合物が前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体からＳＣ−β細胞、例えば、成熟膵臓β細胞の産生を増大させるかを決定することを含む。細胞は、本願明細書に記載された１つ以上のマーカーを使用して、ＳＣ−β細胞（例えば、成熟膵臓β細胞）と特定され得る。一部の例では、前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、前記ライブラリへの暴露前に分化されてもよい。他の例では、２つ以上の化合物が、前記スクリーニングアッセイにおいて、個々にまたはまとめてのいずれかで使用されてもよい。更なる例では、前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、マルチウェルプレートに入れられてもよく、ライブラリ化合物が、前記マルチウェルプレートの種々のウェルに、前記ライブラリの種々のメンバーを入れることによりスクリーニングされてもよい。ライブラリのこのようなスクリーニングにより、前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体から、ＳＣ−β細胞、例えば、成熟膵臓β細胞を生成可能な化合物が素早く特定され得る。
【０５７１】
一部の実施形態では、前記方法は、さらに、前記ＳＣ−β細胞、例えば、膵臓β細胞の集合を単離することを含む（例えば、この場合、少なくとも５％、１０％、１５％、２０％、２５％、３０％、３５％、５０％、７５％以上の対象細胞種）。
【０５７２】
一部の実施形態では、前記方法は、さらに、本願明細書に開示された方法により産生されたＳＣ−β細胞を、対象（例えば、糖尿病、例えば、Ｉ型、ＩＩ型または１．５型の糖尿病を有する対象）内に埋め込むことを含む。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、対象から得られた幹細胞から得られる。一部の実施形態では、前記ＳＣ−β細胞は、対象とは異なるドナー、例えば、対象の親類からの幹細胞から得られる。
【０５７３】
一態様では、本発明は、本願明細書に記載された方法により調製されたＳＣ−β細胞、例えば、成熟膵臓β細胞を特徴とする。別の態様では、本発明は、本願明細書に記載された方法により調製されたＳＣ−β細胞を含む組成物を特徴とする。
【０５７４】
別の態様では、本発明は、インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体；本願明細書に記載された少なくとも１つのβ細胞成熟因子；並びに、前記インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体及び前記少なくとも１つのβ細胞成熟因子を使用して、ＳＣ−β細胞（例えば、成熟膵臓β細胞）を産生するための説明書を含むキットを特徴とする。一部の実施形態では、前記キットは、さらに、成熟β細胞についてのマーカー、例えば、本願明細書に記載されたマーカーの検出用コンポーネント、例えば、β細胞成熟のマーカーの検出用試薬、例えば、前記マーカーに対する抗体；並びに、コントロールとして使用するための成熟膵臓β細胞を含む。
【０５７５】
一部の実施形態では、前記キットは、さらに、内胚葉細胞、例えば、成体型内胚葉細胞を、第２細胞種の細胞、例えば、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体に分化させるコンポーネント；並びに、本願明細書に記載された内胚葉細胞（例えば、前記成体型内胚葉細胞）及び前記コンポーネントを使用して、前記第２種の細胞、例えば、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を産生するための説明書を含む。一部の実施形態では、前記キットは、さらに、前記第２細胞種の細胞についてのマーカー、例えば、本願明細書に記載されたマーカーの検出用コンポーネント、例えば、Ｐｄｘ１の検出用試薬、例えば、前記マーカーに対する抗体；並びに、例えば、コントロールとして使用するための、前記第２細胞種の細胞、例えば、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を含む。
【０５７６】
一態様では、本発明は、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を提供すること、及び、少なくとも１つのβ細胞成熟因子への前記幹細胞の暴露に基づいて、前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体をＳＣ−β細胞（例えば、成熟膵臓β細胞）に分化させる、少なくとも１つのβ細胞成熟因子（例えば、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０個以上の、本願明細書に記載されたβ細胞成熟因子）を提供することを含む、インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体のＳＣ−β細胞への分化の促進方法を特徴とする。一部の実施形態では、前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、哺乳類由来である。一部の実施形態では、前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、マウスまたはヒト由来である。一部の実施形態では、前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、胚性幹細胞（例えば、哺乳類の胚性幹細胞、例えば、マウスまたはヒトの胚性幹細胞）を培養して得られる。一部の実施形態では、前記少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、誘導多能性幹細胞（例えば、哺乳類のｉＰｓ細胞、例えば、マウスまたはヒトのｉＰｓ細胞）を培養して得られる。
【０５７７】
一部の実施形態では、複数のインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、例えば、前記複数のインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体を、少なくとも１つ、少なくとも２つ、少なくとも３つ以上の、本願明細書に記載されたβ細胞成熟因子と接触させることにより、複数の成熟膵臓β細胞またはＳＣ−β細胞に分化される。
【０５７８】
一部の実施形態では、前記複数のインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、前記β細胞成熟因子に、約１、２、３、４、６、８、１０、１２、１４、１６日以上の間、曝される。一部の実施形態では、前記複数のインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、約２５ｎＭ、５０ｎＭ、１００ｎＭ、１５０ｎＭ、２００ｎＭ、２５０ｎＭ、４００ｎＭ、５００ｎＭ、６００ｎＭ、７００ｎＭ、８００ｎＭ、１μＭ、２μＭ、３μＭ、４μＭ、５μＭまたは１０μＭの濃度で、前記β細胞成熟因子に曝される。一部の実施形態では、前記複数のインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体は、約２５０ｎＭ、４００ｎＭ、５００ｎＭ、６００ｎＭ、７００ｎＭ、８００ｎＭの濃度で、前記β細胞成熟因子に曝される。一部の実施形態では、約２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％または９０％を超える前記インスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体が、前記成熟膵臓β細胞またはＳＣ−β細胞に分化される。
【０５７９】
一部の態様では、本開示は、本願明細書に記載されたＳＣ−β細胞を使用して構築された人工膵島を提供する。一部の態様では、人工膵島は、例えば、本願明細書に記載された方法に基づいて、多能性幹細胞から、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ分化された１つ以上のＳＣ−β細胞を含む。
【０５８０】
一部の態様では、本開示は、多能性幹細胞から、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ分化されたＳＣ−β細胞を含む人工膵臓を提供する。
【０５８１】
前述の発明を実施するための形態及び下記実施例は、単に例示であり、本発明の範囲を限定すると解釈されるものではないことが理解される。開示された実施形態に対する種々の変更及び修飾は、当業者に明らかであろうし、本開示の精神及び範囲から逸脱することなくなされ得る。さらに、特定された全ての特許、特許出願及び刊行物は、例えば、本開示に関連して使用されるであろうこのような刊行物に記載された方法論を説明及び開示する目的で、参照により本願明細書に明確に組み込まれる。これらの刊行物は、本出願の出願日前におけるその開示についてのみ提供される。この関連において、本発明者らが、従来の発明または任意の他の理由により、先立つこのような開示に権限を与えないとの容認と解釈されるべきでない。これらの文書の内容に関するデータまたは代表例に関する全ての記述は、本出願人に利用可能な情報を基礎づけており、これらの文書のデータまたは内容の正確性に関する任意の容認と解釈されない。
【実施例】
【０５８２】
実施例
【０５８３】
実施例１−機能性膵臓β細胞のｉｎ  ｖｉｔｒｏ生成
【０５８４】
概要
【０５８５】
幹細胞からのインスリン産生膵臓β細胞のｉｎ  ｖｉｔｒｏ生成は、糖尿病における創薬及び細胞移植治療のための前例のない細胞ソースを提供するであろう。ただし、ヒト多能性幹細胞（ｈＰＳＣ）から以前生成されたインスリン産生細胞は、本物のβ細胞の多くの特徴、例えば、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏにおける機能を欠いている。本願明細書に記載された研究は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいてｈＰＳＣからＳＣ−β細胞を生成する、規模を拡大可能な典型的な分化プロトコルを説明する。驚くべきことに、かつ、予想外に、これらのＳＣ−β細胞は、複数回の連続的なグルコースチャレンジ、Ｃａ２＋流動に対する応答において、成体β細胞に匹敵する量のインスリンを分泌し、β細胞に見出されるマーカーを発現し、インスリンを分泌顆粒内にパッケージする。概念の証明として、ＳＣ−β細胞は、公知の糖尿病剤及びｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける増殖性刺激にも応答する。さらに、前記ＳＣ−β細胞は、移植直後に、マウス血清中において、高レベルのヒトインスリンを分泌し、これらの細胞移植により、糖尿病マウスにおける高血糖が、直ちに改善される。本願明細書に記載された研究により、糖尿病の処置及びｉｎ  ｖｉｔｒｏでのβ細胞研究及び薬剤スクリーニングのための幹細胞系β細胞（すなわち、ＳＣ−β細胞）の使用における主要な進歩が提供される。
【０５８６】
下記研究から、本願明細書に記載された方法に基づいて産生されたＳＣ−β細胞の複数の利点が説明される。例えば、前記ＳＣ−β細胞は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでのグルコース刺激インスリン分泌を行い、遺伝子発現及び超微細構造によりヒト膵島β細胞に類似し、ヒトインスリンを分泌し、マウスに移植された場合、高血糖を改善し、細胞療法（例えば、追加的及び／または機能性β細胞を必要とする対象への移植）、（例えば、インスリン産生／分泌、生存、脱分化等のための）薬剤スクリーニング、研究（例えば、正常なβ細胞と糖尿病のβ細胞との間の機能における差異の決定）及び、再生医学（例えば、膵島再構成における第１細胞種としての前記ＳＣ−β細胞の使用）の新規なプラットフォームを提供する。
【０５８７】
序論
【０５８８】
ヒト多能性幹細胞（ｈＰＳＣ）の発見は、疾患の処置または薬剤スクリーニングのために、いつか細胞及び組織が再生され、細胞及び組織を置き換え得る可能性にドアを開いた。過去１０年における研究は、他の方法では取得が困難であったであろう細胞、例えば、ニューロンまたは心筋細胞を生成する戦略の開発を通してその目標に近い分野を活動していた（Ｋｒｉｋｓ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１１；Ｓｈｉｂａ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２）。これらの細胞は、動物モデルにも移植されており、一部の例では、幹細胞系心筋細胞による不整脈の抑制（Ｓｈｉｂａ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２）、オリゴデンドロサイト始原細胞による脊椎損傷後の運動回復（Ｋｅｉｒｓｔｅａｄ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００５）または盲目のげっ歯類モデルへの網膜上皮細胞の移植後の視力改善（Ｌｕ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００９）等の有益な作用を伴って、宿主内に移植可能である。
【０５８９】
幹細胞系組織により処置可能な場合がある最も早く進行する疾患の１つは、糖尿病である。国際糖尿病基金に基づけば、世界中で３億人を超える人々が、糖尿病を患っている。１型糖尿病では、膵臓の膵島において、β細胞の自己免疫破壊を生じている。一方、より一般的な２型糖尿病では、末梢組織のインスリン抵抗性及びβ細胞の機能不全を生じている。これらの患者、特に、１型糖尿病を患っている者は、新規な機能性β細胞の移植により治癒する可能性がある。死後硬直したヒトの膵島の移植は、この戦略により、５年以上の間、患者がインスリン独立性になり得ることを説明しているが、このアプローチは、ドナーであるヒト膵島の不足により非常に限定的である（Ｂｅｌｌｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２）。幹細胞由来のヒトβ細胞の限りない供給の登場は、この治療を何百万の新たな患者に広げ得る。β細胞は、生成される必要があるのが１つの細胞種のみであり、それらの細胞を免疫保護装置（例えば、本願明細書に記載されたマイクロカプセル）内において、身体のどこかに配置することができるとして、または、血管へのアクセスを有する材料として、再生医療についての理想的な試験症例である。
【０５９０】
β細胞の機能及び増殖を改善し得る新規な薬剤を特定する薬学的スクリーニングも、死後硬直した膵島の限定的な供給、死亡例におけるバリエーションによる高い変動性、ドナーの遺伝的バックグラウンド及びその単離における他の要因により妨げられる。このため、ＳＣ−β細胞の一致した均一な供給は、糖尿病用の独特で価値ある創薬プラットフォームを提供し得る。
【０５９１】
今日の研究により、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて、ｈＰＳＣからβ細胞株を生成することに向かう相当な進歩がなされている。現在、成体型内胚葉及びその後の膵臓前駆体は、高い効率で分化され得る（Ｋｒｏｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００８；Ｄ’Ａｍｏｕｒ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００６；Ｄ’Ａｍｏｕｒ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００５；Ｒｅｚａｎｉａ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２）。重要なことに、これらの細胞は、さらに、げっ歯類への移植後３から４ヶ月以内に、機能性β細胞に分化し得る（Ｋｒｏｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００８；Ｒｅｚａｎｉａ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２）。このことは、十分な時間及び適切な刺激が提供されれば、β細胞に発達する発達可能性を含むことを示している。運悪く、前記細胞がｉｎ  ｖｉｖｏにおいて受ける数ヶ月の長い過程は、ブラックボックスのままである。この過程がヒト患者において機能するであろうかは不明である。他の研究は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいてヒト膵臓前駆体からインスリン産生細胞を生成することに焦点が当てられてきた。しかしながら、今日生成されている細胞は、本物のβ細胞ではない。これらの細胞は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでのグルコース刺激インスリン分泌を行えず、適切なβ細胞マーカー、例えば、ＮＫＸ６−１もしくはＰＤＸ１を発現できず、他のホルモン、例えば、グルカゴンを異常に共発現してしまい、ｉｎ  ｖｉｖｏにおける移植後に機能できず、または、これらの異常な特徴の組合せを示す、のいずれかである（Ｄ’Ａｍｏｕｒ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００６；Ｃｈｅｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２；Ｎａｒａｙａｎａｎ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１３；Ｘｉｅ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１３；Ｎｏｓｔｒｏ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１１）。
【０５９２】
本願明細書に記載された研究は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて、ｈＰＳＣからの機能性ヒトβ細胞の実質的に限りない、規模を拡大可能な産生のための戦略を提供する。３次元細胞培養系における組合せにおいて、シグナル伝達経路の連続的な調節を使用することにより、重要なβ細胞マーカーを共発現しており、β細胞の超微細構造特性を示す、モノホルモン性のインスリン産生細胞（ＳＣ−β細胞）が生成され得る。さらに、これらの細胞は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及びｉｎ  ｖｉｖｏの両方において、ヒト膵島の機能を模倣する。最後に、前記細胞は、糖尿病用のｉｎ  ｖｉｔｒｏでの薬剤スクリーニング及びｉｎ  ｖｉｖｏでの移植治療の二重の目的で、その有用性の概念における証明を説明する。
【０５９３】
結果
【０５９４】
ｈＰＳＣからのグルコース知覚性インスリン分泌β細胞のｉｎ  ｖｉｔｒｏ生成
【０５９５】
ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいてｈＰＳＣから機能性β細胞を生成するための典型的な方法を、図１Ａに概説する。多量のβ細胞を産生するために、１０８個を超えるｈＰＳＣ及び後の分化した細胞種を生成し得る、規模を拡大できる懸濁系培養システムを使用した（Ｓｃｈｕｌｚ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２）。先の刊行物（Ｓｃｈｕｌｚ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２；Ｒｅｚａｎｉａ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２）から採用したプロトコルを使用して、直径約１００−２００μｍのＨＵＥＳ８ヒト胚性幹細胞のクラスターを、高純度の成体型内胚葉に誘導し（９５％超のＳｏｘ１７＋）、その後、初期膵臓前駆体に誘導した（９０％超のＰＤＸ１＋）（図１Ｂ）。次に、高レベルのＮＫＸ６−１＋／ＰＤＸ１＋を共発現している膵臓前駆体クラスター（６０％超のＮＫＸ６−１＋／ＰＤＸ１＋細胞）を生成する、ＦＧＦファミリーメンバーであるＫＧＦ、ヘッジホッグ阻害剤であるＳａｎｔ１及び低濃度のレチノイン酸との培養における、延長した時間を使用する方法を特定した（図１Ａ）。これらの膵臓前駆体のマウスへの移植により、ｉｎ  ｖｉｖｏにおいて３−４ヶ月後に、機能性β細胞を生じることが報告されている（Ｒｅｚａｎｉａ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２）。これを、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける機能性β細胞のこの生成を再現するプロトコルを開発するための開始点として使用した。
【０５９６】
ついで、先に公開されたプロトコル（コントロールの分化）または新たに開発したプロトコール（新規な分化）のいずれかを使用して、ＮＫＸ６−１＋／ＰＤＸ１＋膵臓始原細胞を、Ｃ−ペプチド発現内分泌細胞に分化させた。前記コントロールの分化プロトコルにより、数ヶ月の経過にわたって、モノホルモン性のＩＮＳ＋及びＩＮＳ＋／ＧＣＧ＋またはＩＮＳ＋／ＳＳＴ＋のポリホルモン性（ＰＨ）細胞であった細胞を産生した。専門用語であるＰＨを、この細胞集合を意味するのに使用した。一方、前記新規な分化プロトコルは、ヘッジホッグシグナル伝達経路阻害、レチノイン酸シグナル伝達、ガンマ−セレクターゼ阻害、ＴＧＦβシグナル伝達阻害、ＥＧＦシグナル伝達、甲状腺ホルモンシグナル伝達及び膵島培地であるＣＭＲＬ１０６６を含む、２−３週間の特有の一連の培養工程を含んだ（Ｎｏｓｔｒｏ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１１；Ｒｅｚａｎｉａ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２；Ｔｈｏｗｆｅｅｑｕ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００７；Ａｇｕａｙｏ−Ｍａｚｚｕｃａｔｏ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１３；Ｄ’Ａｍｏｕｒ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００６）。この新規な分化プロトコルにより産生されたＣ−ペプチド＋細胞は、初代成体β（１°β）細胞と類似すると仮定された。なお、前記Ｃ−ペプチド＋細胞は、幹細胞−β（ＳＣ−β）細胞（すなわち、ＳＣ−β細胞）を意味する。
【０５９７】
β細胞の重要な機能的特徴は、グルコース刺激インスリン分泌（ＧＳＩＳ）を繰り返し行うその能力である。ほぼ全ての既存の直接分化プロトコルは、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおけるＧＳＩＳを行えないｈＰＳＣ由来のインスリン発現細胞を生成する（Ｄ’Ａｍｏｕｒ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００６）。１回のグルコースチャレンジに対する応答においていくらかインスリンを分泌し得る細胞を調製し得る、内皮前駆体株を開始集合として使用する、１つのプロトコルが報告されている（Ｃｈｅｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２）。対照的に、本願明細書に記載された方法を使用して生成されたＳＣ−β細胞は、少なくとも３回の連続的な高グルコースチャレンジに対して応答し得る。これらの細胞は、初代成体β細胞に類似するパターンで、高レベルのインスリンを分泌した。一方、前記コントロールプロトコルからのＰＨ細胞は、グルコースに対して応答できなかった（図２Ａ−２Ｃ及び図３Ａ−２Ｃ）。低グルコース（２ｍＭ）に対して高グルコース（２０ｍＭ）で分泌されたインスリンの割合により算出される刺激指数は、初代成体β細胞と比較してＳＣ−β細胞について同様であり、それぞれ、２．３±０．９及び２．３±１．４であった。さらに、ＳＣ−β細胞及び初代成体β細胞の両方が応答しなかった高グルコースチャレンジが、小さな割合で存在した。さらに、ＳＣ−β細胞による２０ｍＭ  グルコースに対する応答において、細胞１個あたりに分泌されたインスリン量は、初代成体β細胞により分泌された量と区別できず、それぞれ、２．６±１．６及び２．５±１．２μＩＵ／１０３個であった。まとめると、このデータから、前記新規な分化プロトコルを使用して生成したＳＣ−β細胞のｉｎ  ｖｉｔｒｏ機能は、その本物の初代成体β細胞の対照に非常に類似する。
【０５９８】
前記新規な分化プロトコルを使用して生成したＳＣ−β細胞のｉｎ  ｖｉｔｒｏ機能を、細胞内Ｃａ２＋の変化を測定することにより、その後確認した。β細胞は、グルコースレベルの変化を、カルシウムのシグナル伝達により知覚する。グルコースレベルの上昇は、インスリン放出の引き金を担う、カルシウムイオンの流入を引き起こす膜の脱分化をもたらす（Ｍｏｈａｍｍｅｄ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００９）。このため、細胞クラスターにおけるカルシウム流入を、蛍光性のカルシウムインジケータ染料であるＦｌｕｏ−４ＡＭで染色し、蛍光顕微鏡法を使用して、リアルタイムにモニターした（図４Ａ）。この方法により、集合及び１つの細胞の両レベルでのカルシウム流動の分析が可能となり、ＳＣ−β細胞及び初代成体β細胞の両方が、類似する方法において、細胞内Ｃａ２＋を繰り返し増大させることより、連続的なグルコースチャレンジに応答したことが示された。前記応答は、正常なＧＳＩＳと一致する。一方、前記コントロールの分化プロトコルにより生成したＰＨ細胞は、その異常なＧＳＩＳと一致する異常なカルシウム応答を示した（図４Ｂ）。１つの細胞分析を行った場合、個々のＳＣ−β細胞及び初代成体β細胞のほとんどが、カルシウムの流動により、２−３回の連続的なグルコースチャレンジに応答した。一方、ＰＨ細胞はほとんど、１回もチャレンジに応答しなかった（図４Ｃ−４Ｅ）。げっ歯類のβ細胞と異なり、ヒトβ細胞は、高グルコースに対する応答において、ある程度同期不全を示すことが公知である（Ｒｕｔｔｅｒ  ａｎｄ  Ｈｏｄｓｏｎ，  ２０１３）。これらのデータから、前記ＳＣ−βクラスター内の集合全体及び個々の細胞が、単離された膵島内のβ細胞と同様に機能することが示され、さらに、前記新規な分化プロトコルを使用して生成された前記ＳＣ−β細胞が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて機能するとの結論を支持することが示される。
【０５９９】
初代ヒトβ細胞に類似する、ｈＰＳＣ由来の幹細胞系β細胞
【０６００】
ＳＣ−β細胞が初代成体β細胞と同様にｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて機能することを観察した後、ついで、前記２つの細胞集合を、タンパク質発現、遺伝子発現及び超微細構造により分析した。大部分の先に報告されたｈＰＳＣ系インスリン産生細胞とは異なり、これらのＳＣ−β細胞は、正常なβ細胞マーカーであるＰＤＸ１及びＮＫＸ６−１の両方を発現している（図５Ａ及び５Ｂ）。非β細胞ホルモンが稀に観察されたが、ＮＫＸ６−１／Ｃ−ペプチド共陽性細胞とは共局在していない（図５Ｃ）。ＳＣ−β細胞は、インスリン及びＣ−ペプチドの両方について陽性に染色される。Ｃ−ペプチドは、プロインスリン処理の化学量論量の副産物である。このことは、前記インスリン染色が、細胞内在性のインスリン産生に由来すること（図６）、及び、ＩＳＬ１、ＭＡＦＡ及びＭＡＦＢで染色されること（図７Ａ−７Ｃ）を示す。フローサイトメトリーにより定量から、本願明細書に記載された方法が、死後硬直したヒト膵島において見出されるのと同様の割合で、４０％  ＮＫＸ６−１／Ｃ−ペプチドを産生し得ることが証明される（図５Ｄ）。さらに、総Ｃ−ペプチド＋細胞の８％のみが、グルカゴンを共発現しており、４％が、ソマトスタチンを共発現している（図８Ａ−８Ｃ）。ある研究では、ほとんどがモノホルモン性細胞であることが先に報告されているが、それらの細胞は、重要なβ細胞特定マーカーであるＮＫＸ６−１を発現し、または、ｉｎ  ｖｉｖｏにおいて機能することが示されなかった（Ｃｈｅｎｇ  ２０１２）。近年の研究では、より高いレベルのＮＫＸ６−１を生成する直接的な分化プロトコルにより、膵臓前駆体移植についてのより良好な移植結果がもたらされることが示されている（Ｒｅｚａｎｉａ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１３）。さらに、順化ノックアウト研究では、ＮＫＸ６−１発現が成体マウスの膵島におけるβ細胞機能に必須であることが示されている。このことは、我々の細胞におけるこれらの因子の共発現が、その機能性を説明するのに役立つ場合があることを示唆している（Ｔａｙｌｏｒ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１３）。
【０６０１】
複数の重要なβ細胞マーカーの改善されたタンパク質発現により、これらの細胞の転写ネットワークが、ヒトの膵島β細胞の転写ネットワークとより良好に一致することが示された。近年の研究では、先のプロトコルにより生成されたＩＮＳ＋ＰＨ細胞が成体の膵島ＩＮＳ＋β細胞と類似しないことが証明されている（Ｈｒｖａｔｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１４；Ｘｉｅ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１３）。先に公開されたプロトコルにより生成された、分取したＩＮＳ＋細胞のマイクロアレイ分析から、それらは、同じ方法により分取した機能性の成体ヒトβ細胞よりむしろ、胎児β細胞とクラスター形成したことが示された。
【０６０２】
本開示のＳＣ−β細胞と成体ヒト膵島とを比較するために、同じ方法を使用して、ＩＮＳ＋／ＮＫＸ６−１＋細胞を分取し、マイクロアレイにより全体的な遺伝子発現分析を行った。先に公開された幹細胞系ＩＮＳ＋ＰＨ細胞とは異なり、本願明細書に記載されたＳＣ−β細胞は、胎児β細胞またはＩＮＳ＋ＰＨ細胞より、ヒト成体β細胞と密にクラスター形成した（図５Ｅ）。さらに、これらのデータから、標準的なβ細胞遺伝子、例えば、ＰＤＸ１、ＭＮＸ１及びＮＫＸ２−２の発現が、先のＩＮＳ＋ＰＨ細胞より、ＳＣ−β細胞と成体ヒトβ細胞との間で類似したことが示された。データセットにおいて上位１００個の最も差動的に発現された遺伝子の分析から、ＳＣ−β細胞及び成体ヒトβ細胞が、先のＰＨまたは胎児β細胞より、互いに類似したことが示された（図５Ｆ）。ＳＣ−β細胞とヒト成体β細胞との間に差異が残っている。この差異は、分化の後段階中に、培養培地の組成に対する更なる小さな変更により改善され得る。
【０６０３】
ＳＣ−β細胞の遺伝子及びタンパク質の発現パターンが初代ヒトβ細胞の発現パターンと類似するため、ＳＣ−β細胞も、本物のβ細胞がするのと同様に、適切な分泌顆粒内にそのインスリンタンパク質をパッケージしているであろうことが仮定された。β細胞は、最初ハローを有する淡い灰色であり、さらに、明るいハローを有する暗い結晶化多角形顆粒に成熟する分泌顆粒内に、インスリンをパッケージする（図９Ａ）。幹細胞から生成されたＩＮＳ＋細胞の先の研究では、これらの細胞がポリホルモン性で、アルファ様顆粒のみを有することが証明された。前記顆粒は、暗いハローを有する区別できる丸い顆粒である（Ｄ’Ａｍｏｕｒ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００６；Ｋｒｏｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００８）。これらの結果、異常なポリホルモン性及びアルファ様顆粒のみを有し、あるとしても、β細胞顆粒をほとんど有さないＩＮＳ＋細胞を産生した前記コントロールプロトコルについて要約された（図９Ａ）。一方、本願明細書に記載された方法では、プロトタイプのβ細胞顆粒内にインスリンタンパク質をパッケージ及び結晶化したＳＣ−β細胞が生成される（図９Ａ）。インスリン顆粒の進行及び成熟、結晶化インスリン顆粒の両方が、初代ヒトβ細胞とＳＣ−β細胞との両方において観察された（図９Ｂ）。これらの顆粒におけるタンパク質含量物を確認するために、免疫金標識を、インスリン及びグルカゴンに対する粒子により行った。一方、前記ＰＨ細胞顆粒は、異常にインスリン及びグルカゴンの両タンパク質を含んでいた。初代ヒトβ細胞及びＳＣ−β細胞の顆粒は、インスリンのみを含んでいた（図９Ｃ）。このため、ＳＣ−β細胞の超微細構造は、成体ヒトβ細胞の同構造に類似する。
【０６０４】
ｈｉＰＳＣからのグルコース知覚性インスリン分泌β細胞のｉｎ  ｖｉｔｒｏ生成
【０６０５】
上記されたように、ｈＰＳＣから機能性β細胞を発達させるのに使用した前記新規な分化プロトコルを、さらに、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて、ｈｉＰＳＣ株から機能性β細胞を生成するのに使用した。非糖尿病または１型糖尿病患者のいずれかから増殖させた皮膚繊維芽細胞を使用して、Ｈａｒｖａｒｄ  ｉＰＳＣ  Ｃｏｒｅにおいて、前記ｈｉＰＳＣ株を生成した。胚から生成されたｈＰＳＣとは対照的に、前記ｈｉＰＳＣ株を、ヒト組織から生成した。前記ヒト組織は、機能性β細胞が疾患を有する患者、すなわち、１型糖尿病を有する患者から直接発達され得ることを示す。
【０６０６】
得られたβ細胞を、グルコースチャレンジに供して、グルコース刺激インスリン分泌（ＧＳＩＳ）を繰り返し行うその能力を決定した。本願明細書に記載された方法を使用して生成された複数のβ細胞が、少なくとも３回の連続的な高グルコースチャレンジに対して応答し得ることが見出された（図１０Ａ−１０Ｂ）。この特定の実験では、非糖尿病細胞株（１０１３−３ＦＡ）から得られたｈｉＰＳＣ−β細胞を、１型糖尿病細胞株（１０３１ＳｅＶＡ）から得られたｈｉＰＳＣ−β細胞と比較した。高グルコース（２０ｍＭ）と低グルコース（２ｍＭ）とで分泌されたインスリン比により算出される刺激指数は、前記１型糖尿病細胞株から得られたβ細胞と比較して、前記非糖尿病細胞株から得られたβ細胞についてより高かった。さらに、２ｍＭまたは２０ｍＭ  グルコースチャレンジのいずれに対する反応でも、細胞あたりに分泌されたインスリン量は、前記非糖尿病細胞株から得られたβ細胞についてよりも、前記１型糖尿病細胞株から得られたβ細胞について多かった。まとめると、これらのデータから、１型糖尿病細胞株から得られたｈｉＰＳＣ−β細胞のｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける機能は、非糖尿病細胞の対照に類似することが示唆される。
【０６０７】
ｈｉＰＳＣ−β細胞がｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいてグルコースに対して応答性であることを観察した後に、次に、本発明者らは、非糖尿病と１型糖尿病との細胞集合が、タンパク質発現、遺伝子発現及び超微細構造により、どの程度類似するかを分析した。３種類の非糖尿病細胞株と３種類の１型糖尿病細胞株とを、ＮＫＸ６−１／Ｃ−ペプチドの発現を決定するのに使用した。ｈＰＳＣの場合、これらのｈｉＰＳＣ−β細胞は、正常なβ細胞マーカーであるＰＤＸ１及びＮＫＸ６−１の両方を発現していた（図１１Ａ−１１Ｆ）。フローサイトメトリーによる定量から、本願明細書に記載された方法が、死後硬直したヒト膵島に見出された割合と同様に、約４０％のＮＫＸ６−１／Ｃ−ペプチドを産生し得ることが証明される（図５Ｄ）。
【０６０８】
移植後の幹細胞系β細胞のｉｎ  ｖｉｖｏにおける機能
【０６０９】
これまで記載されたデータは、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける機能性ヒトβ細胞の生成と一致している。ｉｎ  ｖｉｖｏにおいて機能するその能力をさらに試験するために、これらの細胞を、免疫不全状態のマウスの腎被膜下に移植した（図１２Ａ−１２Ｄ及び表Ｓ１）。
【表Ｓ１】
2019141072.tif 000015
【０６１０】
成体ヒト膵島を移植する場合、ヒトインスリンは、これらのマウスの血清中において２週間以内に検出可能である。逆に、先に公開された膵臓前駆体をマウスに移植した場合、移植後２週間でインスリンは検出されない（Ｋｒｏｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００８；Ｓｃｈｕｌｚ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２；Ｒｅｚａｎｉａ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２）。前記細胞が３−４ヶ月の長さを必要とする代わりに、ｉｎ  ｖｉｖｏにおける成熟期がほとんど理解されていない。一方、ヒト膵島と同様に、ＳＣ−β細胞は、移植後２週間以内に、グルコースチャレンジに対する応答において、宿主の血流中に高レベルのインスリンを分泌する（図１２Ａ）。コントロールとして、先に公開されたプロトコルを使用した生成されたＰＨ細胞も移植し、これらの細胞は、ｉｎ  ｖｉｖｏでのグルコースに対する応答において、明らかなレベルのインスリンを分泌しなかったことが見出された（図１２Ａ）。さらに、生成された膵臓前駆体が、先に公開されたように、２週間以内にｉｎ  ｖｉｖｏにおいて、明らかなインスリンを産生できないことも確認された（図１２Ｃ）。
【０６１１】
本物のβ細胞でない一部のインスリン産生細胞は、応答性β細胞よりもむしろ、インスリンペレットのように機能して、動物の血流中に未制御な方法において、インスリンを分泌し得る。ＳＣ−β細胞が高レベルのインスリンを分泌するだけでなく、マウスの血流中におけるヒトインスリン量を、機能的に応答性の方法で分泌するかどうかを試験するために、急性グルコースチャレンジの前後両方で測定した。ヒト膵島移植及びＳＣ−β細胞移植の両方について、１２匹の試験したマウスのうち９匹が、移植後２週間で、ｉｎ  ｖｉｖｏにおける機能的なグルコース刺激インスリン分泌を示した（図１２Ａ）。
【０６１２】
最後のｉｎ  ｖｉｖｏでのＧＳＩＳチャレンジを行った後、これらの動物を犠牲にし、移植した腎臓を、分析用に取り出した。これらの腎臓の組織切片から、前記腎被膜下にヒト細胞の大きな移植片の存在が証明された。これらの移植片の免疫蛍光染色から、ＳＣ−β細胞及びヒト膵島移植片の両方が、高レベルのインスリン産生細胞を含んでいたことが示された（図１２Ｂ）。それらのＩＮＳ＋細胞は、機能性β細胞について期待されたのと同様に、標準的なβ細胞転写因子であるＰＤＸ１も共発現していた。インスリン及びグルカゴン染色分析から、前記ＳＣ−β細胞が移植後にモノホルモン性を維持していたことがさらに証明された（図１３Ａ−１３Ｂ）。免疫蛍光及びフローサイトメトリー分析により観察されたように、ＧＣＧ＋細胞の小さい集合も、このプロトコルにおいて生成されている（図７及び図１０）。それらの細胞は、移植後のｉｎ  ｖｉｖｏにおいても観察される（図１３）。
【０６１３】
特にＡｌｋ５阻害剤及びＴ３ホルモンを含むＣＭＲＬ培地を添加した培地を、最後の分化工程に使用した場合、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでのインスリン分泌が経時的に増大したことが、さらに観察された。このため、ＳＣ−β細胞を、さらに１週間（この最後の工程の培地において１週間に代えて２週間）、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて培養し、それらが、ｉｎ  ｖｉｖｏにおいてインスリンをより分泌するであろうかどうかが見えるかも観察した。これらの熟成した細胞を移植した後、予想外に、同じ数のより若い移植されたＳＣ−β細胞より、１０倍高いレベルのインスリンが観察された（図１２Ｄ）。このため、ヒトＳＣ−β細胞によりｉｎ  ｖｉｖｏにおいて達成可能なレベルのインスリン機能は、ヒト膵島の移植により達成されたレベルと同様であった。まとめると、これらの移植データから、提供された死後硬直した膵島の変動性及び限られた供給、または、移植された幹細胞系膵臓前駆体からのほとんど理解されておらず、ほとんど制御できないｉｎ  ｖｉｖｏ成熟期に頼らずに、ＳＣ−β細胞は、細胞移植のための代替的な臨床的選択肢を提供し得ることが示唆される。
【０６１４】
培養培地
【０６１５】
少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞のＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導するために、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、適切な培養培地に十分な期間維持する。本発明では、上記したように、Ａｌｋ５阻害剤及びＴ３ホルモンを含むＣＭＲＬ培地を使用することにより、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで培養されたＳＣ−β細胞が、ｉｎ  ｖｉｖｏにおいてより多くのインスリンを分泌するのを可能にしたことが見出された。一方、分化の最後の工程（ステージ６）（図１４Ａ）において、前記ＣＭＲＬ培地に更なる因子を添加することにより、高グルコースチャレンジと低グルコースチャレンジとの間の刺激指数または放出されたインスリン量のいずれかにより測定した場合、ＳＣ−β細胞による、より良好なグルコース刺激インスリン分泌（ＧＳＩＳ）応答を生じることも見出された。このような更なる因子としては、制限されず、Ｓａｎｔ１、ＸＸＩ及びＳＳＰをあげることができる。高グルコース（１５ｍＭ）と低グルコース（２．５ｍＭ）とで分泌されたインスリン比により算出した場合、前記刺激指数は、ＣＭＲＬ培地のみ、Ａｌｋ５阻害剤及びＴ３ホルモンを含むＣＭＲＬ培地またはＡｌｋ５阻害剤及びＴ３ホルモンを含むＳ３培地中で維持されたそれらのＳＣ−β細胞より、Ａｌｋ５阻害剤及びＴ３ホルモン及びＳａｎｔ１、ＸＸＩまたはＳＳＰのいずれかを含むＣＭＲＬ培地中で維持されたＳＣ−β細胞について高かった（図１４Ｂ）。さらに、分泌されたインスリン量は、ＣＭＲＬ培地のみ、Ａｌｋ５阻害剤及びＴ３ホルモンを含むＣＭＲＬ培地またはＡｌｋ５阻害剤及びＴ３ホルモンを含むＳ３培地中で維持されたそれらのＳＣ−β細胞より、Ａｌｋ５阻害剤、Ｔ３ホルモン及びＳａｎｔ１、ＸＸＩまたはＳＳＰのいずれかを含むＣＭＲＬ培地中で維持されたＳＣ−β細胞について多かった（図１４Ｃ）。まとめると、これらのデータから、最後の分化工程に重要なＣＭＲＬ培地中でＳＣ−β細胞を維持して、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞の、ＳＣ−β細胞への成熟を誘導することだけでなく、前記ＣＭＲＬ培地への特定の因子、例えば、Ｓａｎｔ１、ＸＸＩまたはＳＳＰの更なる添加が、前記細胞のグルコース刺激インスリン分泌（ＧＳＩＳ）を向上させるであろうことも示唆される。
【０６１６】
細胞の生存及び機能の向上
【０６１７】
幹細胞分野についての１つの課題は、薬剤スクリーニング、疾患のモデリングまたは治療的使用に有用であり得る、十分な量のＳＣ−β細胞を生成することである。例えば、ｈＥＳ細胞は、培養するのが技術的に困難であり、細胞剥離及び解離に基づいてアポトーシスを受けやすく、特に完全な解離後に大規模な細胞死を受け、低いクローニング効率を有する（Ｗａｔａｎａｂｅ，  Ｋ．  ｅｔ  ａｌ．，  Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  ２５，  ６８１−６８６（２００７））。結果として、得られた生きたＳＣ−β細胞の量は少ない場合がある。図１５Ａに示した方法における工程３と６との間のプロトコルを改良することにより、治療的に有用であり得るより多くのＳＣ−β細胞をもたらす、より純粋なＮＫＸ６．１＋内分泌クラスターを生成し得る（図１５Ｂ）。
【０６１８】
例えば、工程３−５において、細胞生存を、ｒｈｏ関連プロテインキナーゼ阻害剤またはＲｏｃｋ阻害剤を添加することにより改善し得る。Ｒｏｃｋ阻害剤の添加は、解離誘導性アポトーシスを防止するため、そのクローニング効率を向上させることにより、ＥＳ細胞の生存を向上させると考えられる（Ｗａｔａｎａｂｅ  ｅｔ  ａｌ）。Ｒｏｃｋ阻害剤の例としては、制限されず、Ｙ−２７６３２、Ｆａｓｕｄｉｌ／ＨＡ１０７７及びＨ−１１５２があげられる。本発明では、Ｒｏｃｋ阻害剤で前記細胞を処理することにより、細胞生存が改善されるのが示された（図１５Ｃ）。
【０６１９】
Ｒｏｃｋｉ阻害剤で前記細胞を処理することに加えて、工程３−４における細胞を、アクチビンＡを単独で、または、ニコチンアミドとの組合せで処理し得る。アクチビンＡ及びニコチンアミドは両方とも、細胞生存を改善するのが示されている。それらが細胞生存を改善する１つの方法は、多能性幹細胞についてのマーカーであるＳＯＸ２を、約８１％から約４７％下方制御することによる（図１５Ｄ）。ＳＯＸ２及びＮＫＸ６−１が相互に排他的であるため（図１５Ｅ）、ＳＯＸ２の下方制御は、成熟膵臓β細胞についてのマーカーであるＮＫＸ６−１の上方制御をもたらす。
【０６２０】
工程５−６において、スタウロスポリンで細胞を処理することにより、細胞生存を、さらに向上させ得る。スタウロスポリンは、神経細胞、グリア及び幹細胞様ニューロスフェア分化のアクチベータであることが公知であり、アポトーシスを誘導するとも考えられている（Ｓｃｈｕｍａｃｈｅｒ，  ｅｔ  ａｌ．，  Ｍｏｌ．  Ｃｅｌｌ．  Ｎｅｕｒｏｓｃｉ．  ２００３；２３（４）：６６９−６８０）。本発明において、前記スタウロスポリンの添加により、膵臓内分泌細胞マーカーであるクロモグラニンＡの割合を向上させること（図１５Ｆ）、及び、ＮＫＸ６−１、Ｃ−ペプチド＋細胞の割合を向上させること（図１５Ｇ）により、純粋に近い内分泌集合がもたらされる。
【０６２１】
最後に、β細胞成熟を改善する、ＸＸＩ、γ−セクレターゼ阻害剤との組合せで、Ａｌｋ５ｉ、Ｔ３を含む培養培地で細胞を処理することにより、細胞生存を、さらに向上させ得る。図１５Ｈ及び１５Ｉに示したように、工程５及び６における前記培地へのＸＸＩの添加は、ニューロＤ１＋集合を増加させ得る。
【０６２２】
まとめると、これらのデータから、前記プロセス全体を通した種々の段階において、前記細胞に特定の化合物を添加することが、細胞生存を改善するのに重要であり、治療的に有用なＳＣ−β細胞に分化し得る細胞集合を濃縮するのにも重要であることが示唆される。
【０６２３】
トランスレーショナル生物学についてのＳＣ−β細胞の有用性
【０６２４】
幹細胞分野についての主な課題は、薬剤スクリーニング、疾患モデリングまたは治療的使用に有用な、その正常に発達した対照に十分近い分化した細胞種を生成することである。本願明細書で検討された新規な分化プロトコルを使用して生成されたＳＣ−β細胞は、初代ヒトβ細胞に類似する方法で、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及びｉｎ  ｖｉｖｏの両方において機能するとみなされる。したがって、これらの細胞は、トランスレーショナル医療に有用であり得ることが仮定される（図１６Ａ）。
【０６２５】
２型糖尿病を処置するための最も一般的な治療戦略の１つは、経口抗糖尿病剤の投与である。これらの医薬品の多くは、β細胞に直接作用して、インスリン分泌を増大させる。例えば、スルホニル尿素の薬剤は、カリウムチャネルを遮断することにより、内在性インスリンの分泌を増大させる（Ｍｏｄｉ，  ２００７）。β細胞における現在の薬剤スクリーニングは、げっ歯類膵島、形質転換細胞株または、非常に変動性で限られた供給の死後硬直したヒト膵島に限られている。げっ歯類の代謝がヒトの代謝と部分的にしか類似しないことを考えれば、分析用のヒトβ細胞の信頼性のある一致した供給は、非常に価値があるであろう。ここで、本発明者らは、ＳＣ−β細胞をｉｎ  ｖｉｔｒｏでの治療的スクリーニングに使用し得るかどうかを研究した。
【０６２６】
まず、本発明者らは、ＳＣ−β細胞が、複数の異なる分類からの既存の抗糖尿病剤に応答し得るかどうかを試験した（図１６Ｂ）。ＬＹ２６０８２０４は、臨床試験中のグルコキナーゼアクチベータである。一方、リラグルチド、トルブタミド及びナテグリニドはそれぞれ、ＧＬＰ−１アゴニスト及び分泌促進物質（スルホニル尿素及びメグリチニド）の例である。これらは、臨床的に使用されている（Ｍａｔｓｃｈｉｎｓｋｙ，  ２００９；Ｍｏｄｉ，  ２００７；Ｖｅｔｅｒｅ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１４）。実際に、ＳＣ−β細胞は、グルコースチャレンジ後のｉｎ  ｖｉｔｒｏでのインスリン分泌を増大させることにより、これらの薬剤による処置に対して応答する傾向を示した（図１６Ｃ）。これらのデータは、ＳＣ−β細胞が将来の薬剤スクリーニングついての新規なプラットフォームを提供し得る、概念の最初の証明を提供する。
【０６２７】
次に、本発明者らは、ＳＣ−β細胞がβ細胞複製をモデル化し得るかどうかを試験した。患者のβ細胞集合が増大することは、β細胞あたりに産生されるインスリン量を増大させる必要なく、合計でより多くのインスリンを産生することにより、血糖コントロールを改善し得る。今日、げっ歯類または細胞株モデルにおいてβ細胞複製を促進させている薬剤がヒトβ細胞に転用されているものはほとんどない。β細胞複製のホルモンコントロールは、ヒトの妊娠における膵島集合の研究、及びプロラクチン処理を使用するげっ歯類の研究から示唆されている（Ｐａｒｓｏｎｓ  ｅｔ  ａｌ．，  １９９２；Ｌａｂｒｉｏｌａ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００７；Ｂｒｅｌｊｅ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００４）。本発明者らは、プロラクチンによる処理により、ＳＣ−β細胞集合におけるβ細胞複製が増大され得るかどうかを試験した。プロラクチンと共にＳＣ−β細胞を培養した後に、Ｃ−ペプチド及び増殖マーカーであるＫｉ６７について、細胞を染色及び固定した（図１６Ｄ及び１６Ｅ）。初代ヒトβ細胞も同様にした。Ｋｉ６７＋増殖性ＳＣ−β細胞のベースライン数は、非常に少なかった（０．２０±０．０８％  Ｋｉ６７＋／Ｃ−ペプチド＋）（図１６Ｆ）。未処理及びプロラクチン処理細胞の定量から、プロラクチンの下流に、増大した増殖が向かう傾向が証明された（０．３９±０．０８％  Ｋｉ６７＋／Ｃ−ペプチド＋）。このことは、ＳＣ−β細胞が、複製スクリーニングにおいて、増殖刺激に応答可能である場合があることを示唆している（図１６Ｆ）。
【０６２８】
最後に、本発明者らは、ＳＣ−β細胞が、糖尿病を処置するための細胞療法として直接有用であり得るかどうかを試験した。２型糖尿病とは異なり、新たな医薬品によるβ細胞の機能またはβ細胞の複製を向上させることは、膵臓β細胞が自己免疫攻撃により壊される１型糖尿病を有する患者には、おそらくほとんど治療的利益がない。これらの患者は、Ｅｄｍｏｎｔｏｎ移植プロトコルによる、ドナー同種膵島により、失われたβ細胞を置き換えることにより、効果的に処置され得る（Ｓｈａｐｉｒｏ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００６）。
【０６２９】
この種の重篤な糖尿病の１つの有用なモデルは、Ａｋｉｔａマウスである。Ａｋｉｔａマウスは、インスリン遺伝子中に、タンパク質のミスフォールド、完全かつ不可逆的なβ細胞不全及び、進行的により重篤な高血糖をもたらす変異を有する。Ａｋｉｔａマウスは、腎被膜へのマウスまたはヒト膵島の移植により、正常血糖に回復され得る（Ｐｅａｒｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００８）。したがって、本願明細書に記載された方法に基づいて生成されたＳＣ−β細胞を、それらが、糖尿病性高血糖を制御するのにも機能し得るかを見る試験をした。その結果から、先のプロトコルのＰＨ  ＩＮＳ＋細胞ではなく、ＳＣ−β細胞の、若いＡｋｉｔａマウスへの移植は、これらの動物において観察された進行的に悪化する高血糖を急速に反転させたことが示された（図１６Ｇ）。ＳＣ−β細胞を移植されたマウスの絶食時血中グルコース測定は、平均２００ｍｇ／ｄｌ未満であった。一方、コントロールのＰＨ細胞を移植されたマウスは、移植されていないＡｋｉｔａマウスについて観察されたのと同様に（Ｐｅａｒｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００８）、４００ｍｇ／ｄｌを上回る進行的により高い血中グルコースレベルを示した（図１６Ｇ）。予測された通り、ヒトインスリンレベルは、ＳＣ−β細胞を移植された動物で高く、ＰＨ細胞を移植されたコントロール動物ではほとんど検出できなかった（図１６Ｈ）。ＳＣ−β細胞を移植された前記マウスは、コントロールマウスより良好な体重維持も示した。このことは、インスリン機能が正常化したことを示す（図１７）。このため、ＳＣ−β細胞は、ほぼ移植直後から、糖尿病マウスモデルにおいて、インスリンを分泌可能であり、進行性の高血糖を停止及び反転可能である。
【０６３０】
議論
【０６３１】
本願明細書に記載された研究から、機能性ヒトβ細胞が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて、ｈＰＳＣ及びｈｉＰＳＣから直接生成され得ることが証明される。まとめると、本願明細書に記載されたデータから、これらの細胞（すなわち、ＳＣ−β細胞）は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び移植後のｉｎ  ｖｉｖｏの両方において、初代ヒトβ細胞と同様に機能する。本願明細書に記載された方法に基づいて生成されたＳＣ−β細胞は、β細胞研究及び治療についての複数の新たな機会を提供する。提供される死後硬直した膵島の限られた供給、患者の特徴または単離によるサンプル間の高い変動性及びごく少量のヒトβ細胞のｉｎ  ｖｉｔｒｏ複製のために、今日におけるヒトβ細胞の供給は厳しく制限されている。この制限は、患者のための移植の選択肢並びに高いスループットの薬剤スクリーニング及び疾患モデリングを制限してきた。１名の６８ｋｇ（１５０ｌｂ）の患者には、膵島移植により１型糖尿病を効果的に解決するために、おおまかに３億４０００万−７億４８００万個の移植用の膵島細胞が必要である（ＭｃＣａｌｌ  ａｎｄ  Ｓｈａｐｉｒｏ，  ２０１２）。本願明細書に記載された戦略は、数億から数十億個のＳＣ−β細胞を一度に増殖させるのを、単独の研究室で実施させるのに、効果的で、非常に規模を拡大できるのの両方である。糖尿病についての先に記載された幹細胞系治療と比較した、ＳＣ−β細胞の主な臨床的利点は、これらの細胞が、ｉｎ  ｖｉｖｏにおける更なる分化の、予測できない可能性がある「ブラックボックス」の期間を必要としない、細胞療法のための最初の機会を提供することである。
【０６３２】
初代ヒトβ細胞とは異なり、ＳＣ−β細胞は、任意の所望の遺伝的バックグラウンドの細胞からも生成され得る。現在、糖尿病または他のメタボリックシンドロームを有する患者からのｉＰＳ細胞を得ることができ、同ｉＰＳ細胞を、疾患モデリング及びβ細胞の機能またはストレスもしくは免疫攻撃に対する感受性の研究のために、ＳＣ−β細胞に分化させ得る。ＴＡＬＥＮ及びＣＲＩＳＰＲ等の技術が、ＥＳまたはｉＰＳ細胞のゲノム編集を可能にし、ゲノムワイド関連研究（ＧＷＡＳ）等の遺伝子解析により特定された変異体を包含及び試験する。同様に、現在、β細胞の薬剤応答は、変異体または非変異体のβ細胞の遺伝的に一致したペアの間で比較され得る（Ｄｉｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１３）。β細胞の機能または薬理遺伝学用の新規な生体マーカーの特定及び試験も、これらの技術の組合せにより可能である。このため、ＳＣ−β細胞は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ創薬並びに代謝及び糖尿病における特徴決定についての、新規な、ヒト特異的プラットフォームを提供する。
【０６３３】
ＳＣ−β細胞の生成は、膵島及び膵臓臓器の将来の生成に向けた、潜在的に有用な一歩も提供する。幹細胞系膵臓細胞の培養中の膵臓のニッチ細胞、例えば、間葉細胞または内皮細胞を包含させることが、有益である場合がある（Ｓｎｅｄｄｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２；Ｌａｍｍｅｒｔ  ｅｔ  ａｌ．，  ２００１）。他の証拠から、アルファ及びデルタ細胞の存在が、正常なβ細胞の機能を正確に調節するのに重要である場合があることが示唆されている（Ｒｏｄｒｉｇｕｅｚ−Ｄｉａｚ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１１）。さらに、膵臓臓器の再生医療は、注意深く特定化された機構において、機能性の内分泌組織及び管組織の包含を潜在的に必要とするであろう。前記ＳＣ−β細胞の生成は、幹細胞生物学を利用することで、臨床的影響を前進させる一歩を提供する。
【０６３４】
実験手順
【０６３５】
細胞培養
【０６３６】
３７℃、５％  ＣＯ２及び１００％  湿度のインキュベータ中の、７０ｒｐｍの回転速度に設定された９−ポジション攪拌プレート上に置かれた、５００ｍｌの攪拌フラスコ（Ｃｏｒｎｉｎｇ、ＶＷＲ；８９０８９−８１４）において、ｈＰＳＣ株を、ｍＴＥＳＲ１（ＳｔｅｍＣｅｌｌ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ  Ｉｎｃ．；０５８５０）中で、未分化で維持した。ＨＵＥＳ８株を、使用した初代株とした。細胞を、Ａｃｃｕｔａｓｅで分散させ、１０μＭ  Ｙ２７６３２（Ａｂｃａｍ；ａｂ１２０１２９）を含むｍＴＥＳＲ中に５０万個／ｍｌで、単独の細胞として播種した。ｍＴＥＳＲ１培地を、４８時間後に交換した（Ｙ２７６３２を含まない）。培地変更の２４時間後に、培養物を分割して、クラスター直径サイズ３００μｍ未満を維持した。病原体、核型について、及び、多能性マーカーの維持のために、培養物を定期的に試験した。
【０６３７】
直接的分化に使用した典型的な培地は、下記の通りである。
【０６３８】
Ｓ１培地：ＭＣＤＢ１３１（Ｃｅｌｌｇｒｏ；  １５−１００−ＣＶ）＋８ｍＭ  Ｄ−（＋）−グルコース（Ｓｉｇｍａ；Ｇ７５２８）＋２．４６ｇ／Ｌ  ＮａＨＣＯ３（Ｓｉｇｍａ；Ｓ３８１７）＋２％  ＦＡＦ−ＢＳＡ（Ｐｒｏｌｉａｎｔ；６８７００）＋ＩＴＳ−Ｘ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ；５１５０００５６）  １：５０．０００＋２ｍＭ  Ｇｌｕｔａｍａｘ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ；３５０５００７９）＋０．２５ｍＭ  ビタミンＣ（Ｓｉｇｍａ  Ａｌｄｒｉｃｈ；Ａ４５４４）＋１％  Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ（Ｃｅｌｌｇｒｏ；３０−００２−ＣＩ）。
【０６３９】
Ｓ２培地：ＭＣＤＢ１３１＋８ｍＭ  Ｄ−グルコース＋１．２３ｇ／Ｌ  ＮａＨＣＯ３＋２％  ＦＡＦ−ＢＳＡ＋ＩＴＳ−Ｘ  １：５０．０００＋２ｍＭｌ  Ｇｌｕｔａｍａｘ＋０．２５ｍＭ  ビタミンＣ＋１％  Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ。
【０６４０】
Ｓ３培地：ＭＣＤＢ１３１＋８ｍＭ  Ｄ−グルコース＋１．２３ｇ／Ｌ  ＮａＨＣＯ３＋２％  ＦＡＦ−ＢＳＡ＋ＩＴＳ−Ｘ  １：２００＋２ｍＭｌ  Ｇｌｕｔａｍａｘ＋０．２５ｍＭ  ビタミンＣ＋１％  Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ
【０６４１】
ＢＥ５培地：ＭＣＤＢ１３１＋２０ｍＭ  Ｄ−グルコース＋１．７５４ｇ／Ｌ  ＮａＨＣＯ３＋２％  ＦＡＦ−ＢＳＡ＋ＩＴＳ−Ｘ  １：２００＋２ｍＭ  Ｇｌｕｔａｍａｘ＋０．２５ｍＭ  ビタミンＣ＋１％  Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ＋ヘパリン  １０μｇ／ｍｌ（Ｓｉｇｍａ；Ｈ３１４９）。
【０６４２】
ＣＭＲＬＳ：添加済みＣＭＲＬ１０６６（Ｍｅｄｉａｔｅｃｈ；９９−６０３−ＣＶ）＋１０％  ＦＢＳ（ＨｙＣｌｏｎｅ（商標）、ＶＷＲ；１６７７７）＋１％  Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ。
【０６４３】
全ての培地を、０．２２μｍのボトルトップフィルタ（Ｃｏｒｎｉｎｇ）を通して、ろ過滅菌した。全ての下記培地交換について、小分子及び成長因子を、弱光フード中で、培地交換直前に基本培地に添加した。
【０６４４】
ＳＣ−β細胞分化を開始するために、細胞を、５０万個／ｍｌで播種し、分化を、４８時間後に開始した。培地交換は、下記の通りである。
【０６４５】
１日目：Ｓ１＋１００ｎｇ／ｍｌ  アクチビンＡ（Ｒ＆Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓ；３３８−ＡＣ）＋３μＭ  Ｃｈｉｒ９９０２１（Ｓｔｅｍｇｅｎｔ；０４−０００４−１０））。
【０６４６】
２日目：Ｓ１＋１００ｎｇ／ｍｌ  アクチビンＡ。４、６日目：Ｓ２＋５０ｎｇ／ｍｌ  ＫＧＦ（Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ；ＡＦ−１００−１９））。
【０６４７】
７、８日目：Ｓ３＋５０ｎｇ／ｍｌ  ＫＧＦ＋０．２５μＭ  Ｓａｎｔ１（Ｓｉｇｍａ；Ｓ４５７２）＋２μＭ  レチノイン酸（ＲＡ）（Ｓｉｇｍａ；Ｒ２６２５）＋２００ｎＭ  ＬＤＮ１９３１８９（７日目のみ）（Ｓｉｇｍａ；ＳＭＬ０５５９）＋５００ｎＭ  ＰｄＢＵ（ＥＭＤ  Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ；５２４３９０））。
【０６４８】
９、１１、１３日目：Ｓ３＋５０ｎｇ／ｍｌ  ＫＧＦ＋０．２５μＭ  Ｓａｎｔ１＋１００ｎＭ  ＲＡ。
【０６４９】
１４、１６日目：ＢＥ５＋０．２５μＭ  Ｓａｎｔ１＋５０ｎＭ  ＲＡ＋１μＭ  ＸＸＩ（ＥＭＤ  Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ；５６５７９０）＋１０μＭ  Ａｌｋ５ｉ  ＩＩ（Ａｘｘｏｒａ；ＡＬＸ−２７０−４４５）＋１μＭ  Ｌ−３，３’，５−トリヨードチロニン（Ｔ３）（ＥＭＤ  Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ；６４２４５）＋２０ｎｇ／ｍｌ  ベタセルリン（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ；５０９３２３４５））。
【０６５０】
１８、２０日目：ＢＥ５＋２５ｎＭ  ＲＡ＋１μＭ  ＸＸＩ＋１０μＭ  Ａｌｋ５ｉ  ＩＩ＋１μＭ  Ｔ３＋２０ｎｇ／ｍｌ  ベタセルリン。
【０６５１】
２１−３５日目（２日置きに培地交換）：ＣＭＲＬＳ＋１０μＭ  Ａｌｋ５ｉ  ＩＩ＋１μＭ  Ｔ３。２８日目と３２日目の間の後にｉｎ  ｖｉｔｒｏアッセイにより、細胞を試験した。特に断らない限り、細胞を、２８日目に移植した。
【０６５２】
あるいは、２１−３５日目：ＣＭＲＬＳ＋１０μＭ  Ａｌｋ５ｉ  ＩＩ＋１μＭ  Ｔ３＋Ｓａｎｔ１。
【０６５３】
あるいは、２１−３５日目：ＣＭＲＬＳ＋１０μＭ  Ａｌｋ５ｉ  ＩＩ＋１μＭ  Ｔ３＋ＸＸＩ。
【０６５４】
あるいは、２１−３５日目：ＣＭＲＬＳ＋１０μＭ  Ａｌｋ５ｉ  ＩＩ＋１μＭ  Ｔ３＋ＳＳＰ。
【０６５５】
先の刊行物に類似するＰＨプロトコル細胞の生成のために、同じ分化プロトコルを、１４日目まで使用した。１４日目及び１６日目において、Ｓ３＋１μＭ  Ａｌｋ５ｉ  ＩＩ、２００ｎＭ  ＬＤＮ１９３１８９及び１００ｎＭ  ＲＡを、細胞に与えた（Ｒｅｚａｎｉａ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１２）。１８日目以降において、２日に１回、Ｓ３＋１００ｎＭ  ＲＡを、細胞に与えた。実験分析まで、細胞を、この培地中で維持した。細胞を、培養物中で維持し、時間の影響を制御するために、前記ＳＣ−β細胞と同じ分化培地中で、同じ日数後に試験した。
【０６５６】
フローサイトメトリー
【０６５７】
１５ｍｌのファルコンチューブにおいて、３７℃で１０−３０分間、ＴｒｙｐＬＥ  Ｅｘｐｒｅｓｓ中でのインキュベートにより、細胞を、単独の細胞懸濁液に分散させた。ステージ５において開始して、クラスターを、単独の細胞に十分解離させる。Ｐ１０００による穏やかな上下のピペッティングにより混合することに基づいて、クラスターが単独細胞に解離するまで、ＴｒｙｐＬＥ  Ｅｘｐｒｅｓｓで、クラスターをインキュベートするものとする。ＴｒｙｐＬＥ  Ｅｘｐｒｅｓｓを、３−４倍の培地でクエンチし、細胞を、１０００ｒｐｍで５分間遠心沈殿させた。細胞を、ＰＢＳ中で２回洗浄し、１．７ｍｌのＳａｆｅ  ｓｅａｌマイクロ遠沈管（Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ  Ｉｎｃ．；１１５１０）に移した。１００万−１０００万個／チューブであるかを確認し、下記において０．５−１ｍｌ容量で使用する。４％  パラホルムアルデヒド（ＰＦＡ）（Ｅｌｅｃｔｒｏｎ  Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ  Ｓｃｉｅｎｃ  Ｎｍ；１５７１０）中に、細胞を再懸濁させ、３０分間氷上でインキュベートした。ついで、細胞を、ＰＢＳ中で３回洗浄し、続けて、ブロッキングバッファー（ＰＢＳ＋０．１％  ＴｒｉｔｏｎＸ１００（ＶＷＲ；ＥＭ−９４００）＋５％  ロバ血清（Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈ；０１７−０００−１２１）において、１時間氷上でインキュベートした。固定後、細胞は、遠心分離により抵抗性である。以後、全ての遠心分離を、３０００ｇで３分間行うように固定した。ついで、一次抗体を含むブロッキングバッファーに、細胞を再懸濁させ、４℃で一晩インキュベートした。
【０６５８】
一次抗体を、特に断らない限り、１：３００で使用した。ヤギ抗−ヒトＰＤＸ−１／ＩＰＦ１（Ｒ＆Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓ；ＡＦ２４１９）、マウス抗−ＮＫＸ６−１（Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  ｏｆ  Ｉｏｗａ，  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ  Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ  Ｂａｎｋ；Ｆ５５Ａ１２−上清）（１：１００）、ウサギ抗−クロモグラニンＡ（Ａｂｃａｍ；ａｂ１５１６０）、ラット抗−インスリン（ｐｒｏ−）／Ｃ−ペプチド（Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ  Ｓｔｕｄｉｅｓ  Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ  Ｂａｎｋ  ａｔ  ｔｈｅ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  ｏｆ  Ｉｏｗａ；ＧＮ−ＩＤ４）（グルカゴン及びソマトスタチンの要添加）。細胞を、ブロッキングバッファー中で２回洗浄し、ついで、２次抗体を含むブロキングバッファー中で、（光から保護して）２時間氷上でインキュベートした。Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８、６４７（Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）またはＰＥ（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ；ＮＣ９７７４２５２）にコンジュゲートしている二次抗体を使用して、一次抗体を可視化した。ついで、細胞を、分取バッファー（ＰＢＳ＋０．５％  ＢＳＡ（Ｓｉｇｍａ；  Ａ８４１２））中で３回洗浄し、最後に、５００−７００μｌの分取バッファーに再懸濁させ、４０μｍのナイロンメッシュを通して、ＦＡＣＳチューブ（ＢＤ  Ｆａｌｃｏｎ；３５２２３５）内にろ過し、ＬＳＲ−ＩＩ  ＦＡＣＳ機（ＢＤ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を使用して、少なくとも３０，０００イベントの記録で分析した。ＦｌｏｗＪｏソフトウェアを使用して、結果の分析を行った。
【０６５９】
免疫蛍光
【０６６０】
細胞を分散させ、９６ウェルプレート上に播種した。１日の培養後、細胞を、ＰＢＳ中で洗浄し、４％  ＰＦＡにおいて、ＲＴで２０分間固定した。続けて、ＰＢＳ中で３回洗浄し、細胞を、ＰＢＳ＋０．１％  Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００＋５％  ロバ血清において、ＲＴで１時間ブロッキングした。全ての一次抗体インキュベートを、１：５００希釈におけるブロッキング液において、４℃で一晩行った。ヤギ抗−ヒトＰＤＸ−１／ＩＰＦ１、マウス抗−ＮＫＸ６−１、ウサギ抗−クロモグラニンＡ、ラット抗−インスリン（ｐｒｏ−）／Ｃ−ペプチド、Ｋｉ６７。翌日、細胞を、ＰＢＳ中で２回洗浄し、続けて、１：５００希釈において、ＲＴで１時間、（光から保護して）二次抗体とインキュベートした。Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８、５９４または６４７（Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）にコンジュゲートしている二次抗体を使用して、一次抗体を可視化した。続けて、ＰＢＳ中で３回洗浄し、全ての核を、ＤＡＰＩ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ；Ｄ１３０６）で染色することにより可視化した。Ｏｌｙｍｐｕｓ  ＩＸ５１顕微鏡またはＺｅｉｓｓ  ＬＳＣ  ７００共焦点顕微鏡を使用して、代表的な画像を撮影した。アレイスキャンセロミクスハイコンテンツスクリーニングシステムを使用して、目的の細胞種の割合を定量した。ここでは、３０個の画像を、ウェルあたりに取得し、定量した。抗体染色により標識された細胞及び（ＤＡＰＩ核染色に基づく）総細胞数を定量化して、目的細胞種の割合を得た。
【０６６１】
免疫組織化学
【０６６２】
細胞クラスターまたは膵島を、４％  ＰＦＡにおけるＲＴで１時間の浸漬により固定した。ついで、サンプルを、ＰＢＳで３回洗浄し、Ｈｉｓｔｏｇｅｌ（商標）に包埋し、組織学的分析用に切片化した。ついで、Ｈｉｓｔｏｃｌｅａｒ（Ｔｈｅｒｍｏｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ；Ｃ７８−２−Ｇ）を使用して、１０μｍの切片を、脱パラフィン化に供し、再水和させた。抗原回復のために、スライドを、０．１Ｍ  ＥＤＴＡ（Ａｍｂｉｏｎ；ＡＭ９２６１）に浮かべ、圧力鍋（Ｐｒｏｔｅｏｇｅｎｉｘ；２１００  Ｒｅｔｒｉｅｖｅｒ）に、２時間入れた。ついで、ＰＢＳ＋０．１％  Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００＋５％  ロバ血清を使用して、スライドを、ＲＴで１時間ブロッキングし、続けて、一次抗体を含むブロッキング液において、４℃で一晩インキュベートした。下記一次抗体を、特に断らない限り、１：１００で使用した。ヤギ抗−ヒトＰＤＸ−１／ＩＰＦ１、マウス抗−ＮＫＸ６−１、ウサギ抗−クロモグラニンＡ、ラット抗−インスリン（ｐｒｏ−）／Ｃ−ペプチド、グルカゴン、ソマトスタチン。翌日、細胞を、ＰＢＳ中で２回洗浄し、続けて、ＲＴで２時間、（光から保護して）二次抗体とインキュベートした。Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８または５９４にコンジュゲートしている二次抗体を使用して、一次抗体を可視化した。続けて、ＰＢＳで洗浄し、組織学的スライドを、ＤＡＰＩを含むＶｅｃｔａｓｈｉｅｌｄ封入剤（Ｖｅｃｔｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ；Ｈ−１２００）に封入し、カバーガラスでカバーし、ネイルポリッシュで密封した。Ｏｌｙｍｐｕｓ  ＩＸ５１顕微鏡またはＺｅｉｓｓ  ＬＳＭ  ５１０もしくは７１０共焦点顕微鏡を使用して、代表的な画像を撮影した。
【０６６３】
グルコース刺激インスリン分泌
【０６６４】
Ｋｒｅｂｓバッファー（Ｋｒｂ）：１２８ｍＭ  ＮａＣｌ、５ｍＭ  ＫＣｌ、２．７ｍＭ  ＣａＣｌ２、１．２ｍＭ  ＭｇＣｌ２、１ｍＭ  Ｎａ２ＨＰＯ４、１．２ｍＭ  ＫＨ２ＰＯ４、５ｍＭ  ＮａＨＣＯ３、１０ｍＭ  ＨＥＰＥＳ（Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ；１５６３００８０）、０．１％  ＢＳＡ（Ｐｒｏｌｉａｎｔ；６８７００）を含むＤｉ  Ｈ２Ｏ。溶液を、インキュベータ中で３７℃に平衡化した。１ｍｌ容量を、下記プロトコルに使用した。約５０万個のクラスターとしての細胞を、オートクレーブ済みの１．７ｍＬのＳａｆｅ  ｓｅａｌマイクロ遠沈管に移し、Ｋｒｂ中で２回洗浄した。ついで、クラスターを、２ｍＭ  グルコースを含むＫｒｂ中で、インキュベータにおいて２時間、予備インキュベートして、残留するインスリンを除去した。全てのインキュベートについて、チューブのフタを開けたままにし、空気交換可能なフタで覆うのに、注意する価値がある。クラスターを、Ｋｒｂ中で２回洗浄し、ついで、２ｍＭ  グルコースを含むＫｒｂ中で、正確に３０分間インキュベートした。２００μｌの上清を、インキュベート後に回収した（低グルコースサンプル）。クラスターを、Ｋｒｂ中で２回洗浄し、ついで、２０ｍＭ  グルコースを含むＫｒｂ中で、正確に３０分間インキュベートした。２００μｌの上清を、インキュベート後に回収した（高グルコースサンプル）。低及び高グルコースでのチャレンジを、さらに２回繰り返した（合計、３対のチャレンジ）。最後に、クラスターを、Ｋｒｂ中で２回洗浄し、ついで、２ｍＭ  グルコース＋３０ｍＭ  ＫＣｌを含むＫｒｂ中で、正確に３０分間インキュベートした。２００μｌの上清を、インキュベート後に回収した（ＫＣｌ分極チャレンジサンプル）。前記ＫＣｌチャレンジ後、Ｔｒｙｐｌｅを使用して、クラスターを分散させ、Ｖｉａｃｅｌｌ（製造メーカー）によりカウントして、インスリン分泌量を細胞数で規格化した。
【０６６５】
ついで、ヒト超感度インスリンＥＬＩＳＡ（ＡＬＰＣＯ  Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ；８０−ＩＮＳＨＵＵ−Ｅ０１．１）を使用して、分泌されたインスリンを含む上清サンプルを処理した。ＦＬＵＯｓｔａｒ光学分光計（ＢＭＧ  ｌａｎｔｅｃｈ）により、４５０ｎｍにおいて、サンプルを測定した。前記ＥＬＩＳＡが同じ日に行えなかった場合、サンプルを、−８０℃で保存した。ＥＬＩＳＡの範囲内のインスリン濃度を得るために、ＰＢＳ中に、１：１００と１：２００との間でサンプルを希釈するので、通常十分であった。
【０６６６】
電子顕微鏡観察
【０６６７】
０．１Ｍ  カコジル酸ナトリウムバッファー（ｐＨ７．４）中に１．２５％  ＰＦＡ、２．５％  グルタルアルデヒド及び０．０３％  ピクリン三を含む混合物を使用して、ＲＴで少なくとも２時間、細胞クラスターを固定した。ついで、細胞クラスターを、０．１Ｍ  カコジル酸塩バッファー中で洗浄し、１％  四酸化オスミウム（ＯｓＯ４）及び１．５％  フェロシアン化カリウム（ＫＦｅＣＮ６）を使用して、ＲＴで少なくとも２時間後固定し、０．１Ｍ  カコジル酸塩バッファー中で洗浄し、１％  四酸化オスミウム（ＯｓＯ４）／１．５％  フェロシアン化カリウム（ＫＦｅＣＮ６）を使用して、１時間後固定し、水中で３回洗浄し、１％  酢酸ウラニル水溶液中で１時間染色し、続けて、水中で２回洗浄し、その後、アルコール勾配において、脱水した（各１０分；５０％、７０％、９０％、２ｘ１０分  １００％）。ついで、前記サンプルを、プロピレンオキシド中で、１時間インキュベートし、プロピレンオキシドとＴＡＡＢ  Ｅｐｏｎ（Ｍａｒｉｖａｃ  Ｃａｎａｄａ  Ｉｎｃ．  Ｓｔ．  Ｌａｕｒｅｎｔ，  Ｃａｎａｄａ）との１：１混合物に浸透させた。翌日、前記サンプルを、ＴＡＡＢ  Ｅｐｏｎに包埋させ、６０℃で４８時間重合させた。極薄切片（約６０ｎｍ）を、Ｒｅｉｃｈｅｒｔ  Ｕｌｔｒａｃｕｔ−Ｓミクロトームにおいて切り出し、銅の格子上に載せ、０．２％  クエン酸鉛で染色し、ＪＥＯＬ  １２００ＥＸ透過型電子顕微鏡またはＴｅｃｎａｉＧ２  Ｓｐｉｒｉｔ  ＢｉｏＴＷＩＮで調べた。ＡＭＴ  ２ｋ  ＣＣＤカメラを使用して、画像を記録し、ＩｍａｇｅＪソフトウェアを使用して分析した。
【０６６８】
ＳＣＩＤ−ベージュへの移植試験
【０６６９】
５００万個のクラスターとしてのｈＰＳＣ系細胞を、ＲＰＭＩ１６４０培地（Ｌｉｆｅ  ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ；１１８７５−０９３）に再懸濁させ、２００μＬの容量で、ＰＣＲチューブにアリコートし、カテーテル内に充填する前に、５から１０分間氷上で維持した。細胞充填の準備のために、１ｍＬのシリンジに連結された、注入設定  ２３Ｇ×３／４’’の各カテーテル（Ｔｅｒｕｍｏ；ＳＢ＊Ｓ２３ＢＬ）を、１ｍｌの、５％  ＦＢＳ血清（Ｃｏｒｎｉｎｇ；３５−０１１−ＣＶ）添加ＲＰＭＩ培地で洗浄し、ついで、０．６ｍｌの血清無添加ＲＰＭＩ培地を充填した。クラスターを、カテーテルニードルの先端から充填し、カテーテルチューブの底及び前記ニードルの上部に、室温で５分間、重力により垂直に沈降させて入れた。細胞調製工程中に、免疫不全（ＳＣＩＤ／ベージュ）マウス（月齢不明？）を、アベルチン  １．２５％（２５０ｍｇ／ｋｇ；０．５ｍｌ／２５ｇ  １．２５％  アベルチン／体重）で麻酔した。左心室の術部を剃り、ベタジン及びアルコールで消毒した。約１ｃｍの切れ目を作り、腎臓を露出させた。腎被膜下にカテーテルニードルを挿入し、５００万個の細胞相当のクラスターを含む約１００μｌ容量を注入することにより、クラスターを、腎被膜下に注入した。ＰＤＳ吸収性縫合糸（ＰＯＬＹ−ＤＯＸ；２０１６−０６）で腹腔を閉じ、手術用クリップ（Ｋｅｎｔ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  Ｃｏｒｐ；ＩＮＳ７５０３４６−２）で皮膚を閉じた。手術／回復期の間、ｍｉｃｒｏ−ｔｅｍｐ循環ポンプ及びブランケット（〜３７℃）に、マウスを乗せて、麻酔後のマウスの素早い回復を手助けし、５ｍｇ／ｋｇ用量のカルプロフェンを、手術直後及び最初の投与後２４時間で与えた。移植にかかった平均時間は、マウスあたりに約３分であった。傷口のクリップを、手術後１４日で除去し、前記マウスを、週に２回モニターした。
【０６７０】
手術から２週間の回復後、グルコース耐性試験（ＧＴＴ）を行うことにより、ヒトインスリンの存在及び移植細胞のグルコース応答性を評価した。前記マウスを１６時間一晩絶食させた後、２ｇ  Ｄ−（＋）−グルコース／１ｋｇ  体重のＩＰ注射により、ＧＴＴを行い、ランセット（Ｆｅａｔｈｅｒ；２０１７−０１）を使用して、顔の血管穿刺により、注射前後に採血した。その後、ヒトインスリンＥＬＩＳＡキット（ＡＬＰＣＯ  Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ；８０−ＩＮＳＨＵＵ−Ｅ０１．１）を使用して、ヒトインスリンを定量した。前記ＳＣＩＤマウスから、移植片を切り出し、４％  ＰＦＡ（Ｅｌｅｃｔｒｏｎ  Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ  Ｓｃｉｅｎｃ  Ｎｍ；１５７１０）中で固定し、パラフィンに包埋し、組織学的分析用に切片化した。
【０６７１】
カルシウム画像化
【０６７２】
約１０から２０個のｈＰＳＣ系クラスターを、マトリゲルでコートした９６ウェルプレートに播種し、３７℃、５％  ＣＯ２及び１００％  湿度のインキュベータにおいて、２４時間付着させた。２．５ｍＭ  グルコースを添加した、予め温めた（３７℃）Ｋｒｅｂｓバッファーで、クラスターを洗浄し、ついで、２．５ｍＭ  グルコース  Ｋｒｂバッファー中で、５０μＭ  Ｃａ２＋−知覚性蛍光プローブであるＦｌｕｏ４−ＡＭ（Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ；Ｆ１４２１７）と、３７℃のインキュベータにおいて４５分間インキュベートした。２．５ｍＭ  グルコース  Ｋｒｂバッファーで、クラスターを洗浄し、ついで、さらに、３７℃のインキュベータにおいて、さらに１５分間インキュベートした。ついで、種々のウェルにおける複数のバッチのクラスターの高解像時系列画像を取得するために、ＡｘｉｏＺｏｏｍ  Ｖ１６顕微鏡（Ｃａｒｌ  Ｚｅｉｓｓ）に、クラスターをすぐに載せた。Ｆｌｕｏ−４を、４８８ｎｍで励起した。その放射を、４９０と５６０ｎｍの間で記録した。時系列画像を、１７秒毎に、８０倍拡大の単独細胞解像において取得した。１０個までのウェルを、１つの画像において画像化した。画像化中のグルコースチャレンジの進行及び刺激時間は、下記の通りである。Ｋｒｂ中の２ｍＭ  グルコースの５分刺激、続けて、Ｋｒｂバッファー中の２０ｍＭ  グルコースの５分刺激により、画像化を開始した。これらの低グルコース刺激、ついで、高グルコース刺激を、もう２回繰り返した。ついで、Ｋｒｂバッファー中の３０ｍＭ  ＫＣｌの５分刺激により、画像化を終了した。画像化時間の合計は、３５分であった。前記刺激の合間は、画像化を停止し、２ｍＭ  グルコース  Ｋｒｂバッファーで、クラスターを洗浄し、ついで、次のグルコース  Ｋｒｂバッファーを添加した。一連の画像化にわたる前記クラスターの移動を補正するＳｔａｃｋＲｅｇ及び画像化全体を通して前記細胞の蛍光強度を測定するＲＯＩマネジャを適用することにより、Ｉｍａｇｅｊ／Ｆｉｊｉを使用して、３５分の画像化中の蛍光強度変化を、単独細胞解像において分析した。ＶｉｒｔｕａｌＤｕｂを使用して、５分クリップの７回全ての刺激を、１つの動画にし、データ共有のためにｙｏｕｔｕｂｅに公開した。
【０６７３】
細胞内フローサイトメトリー及び遺伝子発現分析
【０６７４】
Ｈｒｖａｔｉｎ  ｅｔ  ａｌ．，  ２０１４に記載されたように、ＭＡＲＩＳを行った。単独細胞懸濁液において、細胞を収集し、４％  ＰＦＡにおいて、氷上で固定し、ＲＮａｓｉｎを含むバッファー中で、一次抗体、ついで、二次抗体とインキュベートした。ついで、ＦＡＣＳにより、細胞を分取して、サンプルあたりに少なくとも１００，０００個の細胞を得た。その後、ＲＮＡ単離前に、サンプルを、消化バッファー中において、５０℃で３時間インキュベートした。Ｎａｎｏｄｒｏｐ  １０００を使用して、ＲＮＡ濃度を定量した。少なくとも１００ｎｇのトータルＲＮＡからの逆転写により、二本鎖ｃＤＮＡを生成した。ついで、ビオチン標識ヌクレオチドによる一晩のｉｎ  ｖｉｔｒｏ転写により、増幅されたｍＲＮＡ（ｃＲＮＡ）を生成し、３０℃での真空遠心分離により濃縮した。ｔｈｅ  Ｗｈｏｌｅ−Ｇｅｎｏｍｅ  Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  Ｄｉｒｅｃｔ  Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎキット（Ｉｌｌｕｍｉｎａ）を使用して、サンプルあたりに少なくとも７５０ｎｇのｃＲＮＡを、ヒトＨＴ−１２  Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ＢｅａｄＣｈｉｐｓ（Ｉｌｌｕｍｉｎａ）にハイブリダイズさせた。Ｉｌｌｕｍｉｎａ  Ｂｅａｄｓｔａｔｉｏｎ  ５００上で、クリップをスキャンした。バックグラウンドの差引き及びランク不変正規化により、未処理データを調節した。倍変化を算出する前に、２０のオフセットを、全てのプローブセットの平均に追加して、ネガティブなシグナルを削除した。平均シグナル間の差異についてのｐ−値を、ＧｅｎｏｍｅＳｔｕｄｉｏにおいて、ｔ−検定により算出し、Ｉｌｌｕｍｉｎａ専用の偽陽性率（ＦＤＲ）モデルとの組合せでのＢｅｎｊａｍｉｎｉ−Ｈｏｃｈｂｅｒｇ法により、多重仮説検定について補正した。
【０６７５】
参考文献
Ａｇｕａｙｏ−Ｍａｚｚｕｃａｔｏ，  Ｃ．，  Ｚａｖａｃｋｉ，  Ａ．Ｍ．，  Ｍａｒｉｎｅｌａｒｅｎａ，  Ａ．，  Ｈｏｌｌｉｓｔｅｒ−Ｌｏｃｋ，  Ｊ．，  Ｋｈａｔｔａｂｉ，  Ｉ．Ｅ．，  Ｍａｒｓｉｌｉ，  Ａ．，  Ｗｅｉｒ，  Ｇ．Ｃ．，  Ｓｈａｒｍａ，  Ａ．，  Ｌａｒｓｅｎ，  Ｐ．Ｒ．，  ａｎｄ  Ｂｏｎｎｅｒ−Ｗｅｉｒ，  Ｓ．  （２０１３）．  Ｔｈｙｒｏｉｄ  Ｈｏｒｍｏｎｅ  Ｐｒｏｍｏｔｅｓ  Ｐｏｓｔｎａｔａｌ  Ｒａｔ  Ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  β−Ｃｅｌｌ  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ａｎｄ  Ｇｌｕｃｏｓｅ−Ｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅ  Ｉｎｓｕｌｉｎ  Ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ  Ｔｈｒｏｕｇｈ  ＭＡＦＡ．  Ｄｉａｂｅｔｅｓ  ６２，  １５６９−５８０．  
Ｂｅｌｌｉｎ，  Ｍ．Ｄ．，  Ｂａｒｔｏｎ，  Ｆ．Ｂ．，  Ｈｅｉｔｍａｎ，  Ａ．，  Ｈａｒｍｏｎ，  Ｊ．，  Ｂａｌａｍｕｒｕｇａｎ，  Ａ．Ｎ．，  Ｋａｎｄａｓｗａｍｙ，  Ｒ．，  Ｓｕｔｈｅｒｌａｎｄ，  Ｄ．Ｅ．，  Ａｌｅｊａｎｄｒｏ，  Ｒ．，  ａｎｄ  Ｈｅｒｉｎｇ，  Ｂ．Ｊ．  （２０１２）．  Ｐｏｔｅｎｔ  Ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｙ  Ｐｒｏｍｏｔｅｓ  Ｌｏｎｇ−Ｔｅｒｍ  Ｉｎｓｕｌｉｎ  Ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｃｅ  Ａｆｔｅｒ  Ｉｓｌｅｔ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ  ｉｎ  Ｔｙｐｅ  １  Ｄｉａｂｅｔｅｓ．  Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ  １２，  １５７６−５８３．  
Ｂｒｅｌｊｅ，  Ｔ．Ｃ．，  Ｓｔｏｕｔ，  Ｌ．Ｅ．，  Ｂｈａｇｒｏｏ，  Ｎ．Ｖ．，  ａｎｄ  Ｓｏｒｅｎｓｏｎ，  Ｒ．Ｌ．  （２００４）．  Ｄｉｓｔｉｎｃｔｉｖｅ  ｒｏｌｅｓ  ｆｏｒ  ｐｒｏｌａｃｔｉｎ  ａｎｄ  ｇｒｏｗｔｈ  ｈｏｒｍｏｎｅ  ｉｎ  ｔｈｅ  ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｓｉｇｎａｌ  ｔｒａｎｓｄｕｃｅｒ  ａｎｄ  ａｃｔｉｖａｔｏｒ  ｏｆ  ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ  ５  ｉｎ  ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  ｉｓｌｅｔｓ  ｏｆ  ｌａｎｇｅｒｈａｎｓ．  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ  １４５，  ４１６２−１７５．
Ｃｈｅｎｇ，  Ｘ．，  Ｙｉｎｇ，  Ｌ．，  Ｌｕ，  Ｌ．，  Ｇａｌｖaｏ，  Ａ．Ｍ．，  Ｍｉｌｌｓ，  Ｊ．Ａ．，  Ｌｉｎ，  Ｈ．Ｃ．，  Ｋｏｔｔｏｎ，  Ｄ．Ｎ．，  Ｓｈｅｎ，  Ｓ．Ｓ．，  Ｎｏｓｔｒｏ，  Ｍ．Ｃ．，  ｅｔ  ａｌ．  （２０１２）．  Ｓｅｌｆ−ｒｅｎｅｗｉｎｇ  ｅｎｄｏｄｅｒｍａｌ  ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ  ｌｉｎｅｓ  ｇｅｎｅｒａｔｅｄ  ｆｒｏｍ  ｈｕｍａｎ  ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ．  Ｃｅｌｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  １０，  ３７１−３８４．
Ｄ’Ａｍｏｕｒ，  Ｋ．Ａ．，  Ａｇｕｌｎｉｃｋ，  Ａ．Ｄ．，  Ｅｌｉａｚｅｒ，  Ｓ．，  Ｋｅｌｌｙ，  Ｏ．Ｇ．，  Ｋｒｏｏｎ，  Ｅ．，  ａｎｄ  Ｂａｅｔｇｅ，  Ｅ．Ｅ．  （２００５）．  Ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  ｔｏ  ｄｅｆｉｎｉｔｉｖｅ  ｅｎｄｏｄｅｒｍ．  Ｎａｔ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ  ２３，  １５３４−５４１．
Ｄ’Ａｍｏｕｒ，  Ｋ．Ａ．，  Ｂａｎｇ，  Ａ．Ｇ．，  Ｅｌｉａｚｅｒ，  Ｓ．，  Ｋｅｌｌｙ，  Ｏ．Ｇ．，  Ａｇｕｌｎｉｃｋ，  Ａ．Ｄ．，  Ｓｍａｒｔ，  Ｎ．Ｇ．，  Ｍｏｏｒｍａｎ，  Ｍ．Ａ．，  Ｋｒｏｏｎ，  Ｅ．，  Ｃａｒｐｅｎｔｅｒ，  Ｍ．Ｋ．，  ａｎｄ  Ｂａｅｔｇｅ，  Ｅ．Ｅ．  （２００６）．  Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  ｈｏｒｍｏｎｅ−−ｅｘｐｒｅｓｓｉｎｇ  ｅｎｄｏｃｒｉｎｅ  ｃｅｌｌｓ  ｆｒｏｍ  ｈｕｍａｎ  ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ．  Ｎａｔ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ  ２４，  １３９２−１４０１．
Ｄｉｎｇ，  Ｑ．，  Ｌｅｅ，  Ｙ．−Ｋ．，  Ｓｃｈａｅｆｅｒ，  Ｅ．Ｋ．，  Ｐｅｔｅｒｓ，  Ｄ．，  Ｖｅｒｅｓ，  Ａ．，  Ｋｉｍ，  Ｋ．，  Ｋｕｐｅｒｗａｓｓｅｒ，  Ｎ．，  Ｍｏｔｏｌａ，  Ｄ．，  Ｍｅｉｓｓｎｅｒ，  Ｔ．，  ｅｔ  ａｌ．  （２０１３）．  Ａ  ＴＡＬＥＮ  Ｇｅｎｏｍｅ−Ｅｄｉｔｉｎｇ  Ｓｙｓｔｅｍ  ｆｏｒ  Ｇｅｎｅｒａｔｉｎｇ  Ｈｕｍａｎ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ−Ｂａｓｅｄ  Ｄｉｓｅａｓｅ  Ｍｏｄｅｌｓ．  Ｃｅｌｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  １２，  ２３８−２５１．
Ｈｒｖａｔｉｎ，  Ｓ．，  Ｏ’Ｄｏｎｎｅｌｌ，  Ｃ．Ｗ．，  Ｄｅｎｇ，  Ｆ．，  Ｍｉｌｌｍａｎ，  Ｊ．Ｒ．，  Ｐａｇｌｉｕｃａ，  Ｆ．Ｗ．，  ＤｉＩｏｒｉｏ，  Ｐ．，  Ｒｅｚａｎｉａ，  Ａ．，  Ｇｉｆｆｏｒｄ，  Ｄ．Ｋ．，  ａｎｄ  Ｍｅｌｔｏｎ，  Ｄ．Ａ．  （２０１４）．  Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｅｄ  ｈｕｍａｎ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  ｒｅｓｅｍｂｌｅ  ｆｅｔａｌ，  ｎｏｔ  ａｄｕｌｔ，  β  ｃｅｌｌｓ．  Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  Ｕ  Ｓ  Ａ  ，  ２０１４００７０９．
Ｋｅｉｒｓｔｅａｄ，  Ｈ．Ｓ．，  Ｎｉｓｔｏｒ，  Ｇ．，  Ｂｅｒｎａｌ，  Ｇ．，  Ｔｏｔｏｉｕ，  Ｍ．，  Ｃｌｏｕｔｉｅｒ，  Ｆ．，  Ｓｈａｒｐ，  Ｋ．，  ａｎｄ  Ｓｔｅｗａｒｄ，  Ｏ．  （２００５）．  Ｈｕｍａｎ  ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ−ｄｅｒｉｖｅｄ  ｏｌｉｇｏｄｅｎｄｒｏｃｙｔｅ  ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ  ｃｅｌｌ  ｔｒａｎｓｐｌａｎｔｓ  ｒｅｍｙｅｌｉｎａｔｅ  ａｎｄ  ｒｅｓｔｏｒｅ  ｌｏｃｏｍｏｔｉｏｎ  ａｆｔｅｒ  ｓｐｉｎａｌ  ｃｏｒｄ  ｉｎｊｕｒｙ．  Ｔｈｅ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ  ２５，  ４６９４−４７０５．
Ｋｒｉｋｓ，  Ｓ．，  Ｓｈｉｍ，  Ｊ．−Ｗ．，  Ｐｉａｏ，  Ｊ．，  Ｇａｎａｔ，  Ｙ．Ｍ．，  Ｗａｋｅｍａｎ，  Ｄ．Ｒ．，  Ｘｉｅ，  Ｚ．，  Ｃａｒｒｉｌｌｏ−Ｒｅｉｄ，  Ｌ．，  Ａｕｙｅｕｎｇ，  Ｇ．，  Ａｎｔｏｎａｃｃｉ，  Ｃ．，  ａｎｄ  Ｂｕｃｈ，  Ａ．  （２０１１）．  Ｄｏｐａｍｉｎｅ  ｎｅｕｒｏｎｓ  ｄｅｒｉｖｅｄ  ｆｒｏｍ  ｈｕｍａｎ  ＥＳ  ｃｅｌｌｓ  ｅｆｆｉｃｉｅｎｔｌｙ  ｅｎｇｒａｆｔ  ｉｎ  ａｎｉｍａｌ  ｍｏｄｅｌｓ  ｏｆ  Ｐａｒｋｉｎｓｏｎ／’ｓ  ｄｉｓｅａｓｅ．  Ｎａｔｕｒｅ  ４８０，  ５４７−５５１．
Ｋｒｏｏｎ，  Ｅ．，  Ｍａｒｔｉｎｓｏｎ，  Ｌ．Ａ．，  Ｋａｄｏｙａ，  Ｋ．，  Ｂａｎｇ，  Ａ．Ｇ．，  Ｋｅｌｌｙ，  Ｏ．Ｇ．，  Ｅｌｉａｚｅｒ，  Ｓ．，  Ｙｏｕｎｇ，  Ｈ．，  Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ，  Ｍ．，  Ｓｍａｒｔ，  Ｎ．Ｇ．，  ｅｔ  ａｌ．  （２００８）．  Ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  ｅｎｄｏｄｅｒｍ  ｄｅｒｉｖｅｄ  ｆｒｏｍ  ｈｕｍａｎ  ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  ｇｅｎｅｒａｔｅｓ  ｇｌｕｃｏｓｅ−ｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅ  ｉｎｓｕｌｉｎ−ｓｅｃｒｅｔｉｎｇ  ｃｅｌｌｓ  ｉｎ  ｖｉｖｏ．  Ｎａｔ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ  ２６，  ４４３−４５２．
Ｌａｂｒｉｏｌａ，  Ｌ．，  Ｍｏｎｔｏｒ，  Ｗ．Ｒ．，  Ｋｒｏｇｈ，  Ｋ．，  Ｌｏｊｕｄｉｃｅ，  Ｆ．Ｈ．，  Ｇｅｎｚｉｎｉ，  Ｔ．，  Ｇｏｌｄｂｅｒｇ，  Ａ．Ｃ．，  Ｅｌｉａｓｃｈｅｗｉｔｚ，  Ｆ．Ｇ．，  ａｎｄ  Ｓｏｇａｙａｒ，  Ｍ．Ｃ．  （２００７）．  Ｂｅｎｅｆｉｃｉａｌ  ｅｆｆｅｃｔｓ  ｏｆ  ｐｒｏｌａｃｔｉｎ  ａｎｄ  ｌａｍｉｎｉｎ  ｏｎ  ｈｕｍａｎ  ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  ｉｓｌｅｔ−ｃｅｌｌ  ｃｕｌｔｕｒｅｓ．  Ｍｏｌ  Ｃｅｌｌ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ  ２６３，  １２０−１３３．
Ｌａｍｍｅｒｔ，  Ｅ．，  Ｃｌｅａｖｅｒ，  Ｏ．，  ａｎｄ  Ｍｅｌｔｏｎ，  Ｄ．  （２００１）．  Ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ｂｙ  ｓｉｇｎａｌｓ  ｆｒｏｍ  ｂｌｏｏｄ  ｖｅｓｓｅｌｓ．  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２９４，  ５６４−６７．
Ｌｕ，  Ｂ．，  Ｍａｌｃｕｉｔ，  Ｃ．，  Ｗａｎｇ，  Ｓ．，  Ｇｉｒｍａｎ，  Ｓ．，  Ｆｒａｎｃｉｓ，  Ｐ．，  Ｌｅｍｉｅｕｘ，  Ｌ．，  Ｌａｎｚａ，  Ｒ．，  ａｎｄ  Ｌｕｎｄ，  Ｒ．  （２００９）．  Ｌｏｎｇ−ｔｅｒｍ  ｓａｆｅｔｙ  ａｎｄ  ｆｕｎｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ＲＰＥ  ｆｒｏｍ  ｈｕｍａｎ  ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ  ｉｎ  ｐｒｅｃｌｉｎｉｃａｌ  ｍｏｄｅｌｓ  ｏｆ  ｍａｃｕｌａｒ  ｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ．  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ  ２７，  ２１２６−１３５．
Ｍａｔｓｃｈｉｎｓｋｙ，  Ｆ．Ｍ．  （２００９）．  Ａｓｓｅｓｓｉｎｇ  ｔｈｅ  ｐｏｔｅｎｔｉａｌ  ｏｆ  ｇｌｕｃｏｋｉｎａｓｅ  ａｃｔｉｖａｔｏｒｓ  ｉｎ  ｄｉａｂｅｔｅｓ  ｔｈｅｒａｐｙ．  Ｎａｔｕｒｅ  Ｒｅｖｉｅｗｓ  Ｄｒｕｇ  Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ  ８，  ３９９−４１６．
ＭｃＣａｌｌ，  Ｍ．，  ａｎｄ  Ｓｈａｐｉｒｏ，  Ａ．Ｍ．Ｊ．  （２０１２）．  Ｕｐｄａｔｅ  ｏｎ  Ｉｓｌｅｔ  Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ．  Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂ  Ｐｅｒｓｐｅｃｔ  Ｍｅｄ  ２，  ａ００７８２３．
Ｍｏｄｉ，  Ｐ．  （２００７）．  Ｄｉａｂｅｔｅｓ  ｂｅｙｏｎｄ  ｉｎｓｕｌｉｎ：  ｒｅｖｉｅｗ  ｏｆ  ｎｅｗ  ｄｒｕｇｓ  ｆｏｒ  ｔｒｅａｔｍｅｎｔ  ｏｆ  ｄｉａｂｅｔｅｓ  ｍｅｌｌｉｔｕｓ．  Ｃｕｒｒ  Ｄｒｕｇ  Ｄｉｓｃｏｖ  Ｔｅｃｈｎｏｌ  ４，  ３９−４７．
Ｍｏｈａｍｍｅｄ，  Ｊ．Ｓ．，  Ｗａｎｇ，  Ｙ．，  Ｈａｒｖａｔ，  Ｔ．Ａ．，  Ｏｂｅｒｈｏｌｚｅｒ，  Ｊ．，  ａｎｄ  Ｅｄｄｉｎｇｔｏｎ，  Ｄ．Ｔ．  （２００９）．  Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ  ｄｅｖｉｃｅ  ｆｏｒ  ｍｕｌｔｉｍｏｄａｌ  ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  ｉｓｌｅｔｓ．  Ｌａｂ  Ｃｈｉｐ  ９，  ９７−１０６．
Ｎａｒａｙａｎａｎ，  Ｋ．，  Ｌｉｍ，  Ｖ．Ｙ．，  Ｓｈｅｎ，  Ｊ．，  Ｔａｎ，  Ｚ．Ｗ．，  Ｒａｊｅｎｄｒａｎ，  Ｄ．，  Ｌｕｏ，  Ｓ．Ｃ．，  Ｇａｏ，  Ｓ．，  Ｗａｎ，  Ｃ．Ａ．，  ａｎｄ  Ｙｉｎｇ，  Ｊ．  （２０１３）．  Ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ  ｍａｔｒｉｘ−ｍｅｄｉａｔｅｄ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ：  Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ｔｏ  ｉｎｓｕｌｉｎ−ｓｅｃｒｅｔｉｎｇ  ｂｅｔａ  ｃｅｌｌｓ．  Ｔｉｓｓｕｅ  Ｅｎｇ  Ｐａｒｔ  Ａ  ２０，  ４２４−４３３．
Ｎｏｓｔｒｏ，  Ｍ．Ｃ．，  Ｓａｒａｎｇｉ，  Ｆ．，  Ｏｇａｗａ，  Ｓ．，  Ｈｏｌｔｚｉｎｇｅｒ，  Ａ．，  Ｃｏｒｎｅｏ，  Ｂ．，  Ｌｉ，  Ｘ．，  Ｍｉｃａｌｌｅｆ，  Ｓ．Ｊ．，  Ｐａｒｋ，  Ｉ．Ｈ．，  Ｂａｓｆｏｒｄ，  Ｃ．，  ｅｔ  ａｌ．  （２０１１）．  Ｓｔａｇｅ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｓｉｇｎａｌｉｎｇ  ｔｈｒｏｕｇｈ  ＴＧＦ｛ｂｅｔａ｝  ｆａｍｉｌｙ  ｍｅｍｂｅｒｓ  ａｎｄ  ＷＮＴ  ｒｅｇｕｌａｔｅｓ  ｐａｔｔｅｒｎｉｎｇ  ａｎｄ  ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  ｓｐｅｃｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ．  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  １３８，  ８６１−８７１．
Ｐａｒｓｏｎｓ，  Ｊ．Ａ．，  Ｂｒｅｌｊｅ，  Ｔ．Ｃ．，  ａｎｄ  Ｓｏｒｅｎｓｏｎ，  Ｒ．Ｌ．  （１９９２）．  Ａｄａｐｔａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｉｓｌｅｔｓ  ｏｆ  Ｌａｎｇｅｒｈａｎｓ  ｔｏ  ｐｒｅｇｎａｎｃｙ：  ｉｎｃｒｅａｓｅｄ  ｉｓｌｅｔ  ｃｅｌｌ  ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｉｎｓｕｌｉｎ  ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ  ｃｏｒｒｅｌａｔｅｓ  ｗｉｔｈ  ｔｈｅ  ｏｎｓｅｔ  ｏｆ  ｐｌａｃｅｎｔａｌ  ｌａｃｔｏｇｅｎ  ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ．  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ  １３０，  １４５９−４６６．
Ｐｅａｒｓｏｎ，  Ｔ．，  Ｇｒｅｉｎｅｒ，  Ｄ．Ｌ．，  ａｎｄ  Ｓｈｕｌｔｚ，  Ｌ．Ｄ．  （２００８）．  Ｃｒｅａｔｉｏｎ  ｏｆ  “ｈｕｍａｎｉｚｅｄ”  ｍｉｃｅ  ｔｏ  ｓｔｕｄｙ  ｈｕｍａｎ  ｉｍｍｕｎｉｔｙ．  Ｃｕｒｒ  Ｐｒｏｔｏｃ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  Ｃｈａｐｔｅｒ  １５，  Ｕｎｉｔ  １５．２１．
Ｒｅｚａｎｉａ，  Ａ．，  Ｂｒｕｉｎ，  Ｊ．Ｅ．，  Ｒｉｅｄｅｌ，  Ｍ．Ｊ．，  Ｍｏｊｉｂｉａｎ，  Ｍ．，  Ａｓａｄｉ，  Ａ．，  Ｘｕ，  Ｊ．，  Ｇａｕｖｉｎ，  Ｒ．，  Ｎａｒａｙａｎ，  Ｋ．，  Ｋａｒａｎｕ，  Ｆ．，  ｅｔ  ａｌ．  （２０１２）．  Ｍａｔｕｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｈｕｍａｎ  Ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ−Ｄｅｒｉｖｅｄ  Ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  Ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒｓ  Ｉｎｔｏ  Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ  Ｉｓｌｅｔｓ  Ｃａｐａｂｌｅ  ｏｆ  Ｔｒｅａｔｉｎｇ  Ｐｒｅ−ｅｘｉｓｔｉｎｇ  Ｄｉａｂｅｔｅｓ  ｉｎ  Ｍｉｃｅ．  Ｄｉａｂｅｔｅｓ  ６１，  ２０１６−０２９．
Ｒｅｚａｎｉａ，  Ａ．，  Ｂｒｕｉｎ，  Ｊ．Ｅ．，  Ｘｕ，  Ｊ．，  Ｎａｒａｙａｎ，  Ｋ．，  Ｆｏｘ，  Ｊ．Ｋ．，  Ｏ’Ｎｅｉｌ，  Ｊ．Ｊ．，  ａｎｄ  Ｋｉｅｆｆｅｒ，  Ｔ．Ｊ．  （２０１３）．  Ｅｎｒｉｃｈｍｅｎｔ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ−ｄｅｒｉｖｅｄ  ＮＫＸ６−１−ｅｘｐｒｅｓｓｉｎｇ  ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ  ｃｅｌｌｓ  ａｃｃｅｌｅｒａｔｅｓ  ｔｈｅ  ｍａｔｕｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｉｎｓｕｌｉｎ−ｓｅｃｒｅｔｉｎｇ  ｃｅｌｌｓ  ｉｎ  ｖｉｖｏ．  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ  ３１，  ２４３２−４４２．
Ｒｏｄｒｉｇｕｅｚ−Ｄｉａｚ，  Ｒ．，  Ｄａｎｄｏ，  Ｒ．，  Ｊａｃｑｕｅｓ−Ｓｉｌｖａ，  Ｍ．Ｃ．，  Ｆａｃｈａｄｏ，  Ａ．，  Ｍｏｌｉｎａ，  Ｊ．，  Ａｂｄｕｌｒｅｄａ，  Ｍ．Ｈ．，  Ｒｉｃｏｒｄｉ，  Ｃ．，  Ｒｏｐｅｒ，  Ｓ．Ｄ．，  Ｂｅｒｇｇｒｅｎ，  Ｐ．Ｏ．，  ａｎｄ  Ｃａｉｃｅｄｏ，  Ａ．  （２０１１）．  Ａｌｐｈａ  ｃｅｌｌｓ  ｓｅｃｒｅｔｅ  ａｃｅｔｙｌｃｈｏｌｉｎｅ  ａｓ  ａ  ｎｏｎ−ｎｅｕｒｏｎａｌ  ｐａｒａｃｒｉｎｅ  ｓｉｇｎａｌ  ｐｒｉｍｉｎｇ  ｂｅｔａ  ｃｅｌｌ  ｆｕｎｃｔｉｏｎ  ｉｎ  ｈｕｍａｎｓ．  Ｎａｔ  Ｍｅｄ  １７，  ８８８−８９２．
Ｒｕｔｔｅｒ，  Ｇ．Ａ．，  ａｎｄ  Ｈｏｄｓｏｎ，  Ｄ．Ｊ．  （２０１３）．  Ｍｉｎｉｒｅｖｉｅｗ：  Ｉｎｔｒａｉｓｌｅｔ  Ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｉｎｓｕｌｉｎ  Ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ  ｉｎ  Ｈｕｍａｎｓ．  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ  ２７，  １９８４−９９５．
Ｓｃｈｕｌｚ，  Ｔ．Ｃ．，  Ｌｙｎｎ，  Ｆ．Ｃ．，  Ｙｏｕｎｇ，  Ｈ．Ｙ．，  Ａｇｕｌｎｉｃｋ，  Ａ．Ｄ．，  Ｂａｂｉｎ，  Ｍ．Ｊ．，  Ｂａｅｔｇｅ，  Ｅ．Ｅ．，  Ｂａｎｇ，  Ａ．Ｇ．，  Ｂｈｏｕｍｉｋ，  Ａ．，  Ｃｅｐａ，  Ｉ．，  ｅｔ  ａｌ．  （２０１２）．  Ａ  Ｓｃａｌａｂｌｅ  Ｓｙｓｔｅｍ  ｆｏｒ  Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ  Ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  Ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒｓ  ｆｒｏｍ  Ｈｕｍａｎ  Ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ．  ＰＬｏＳ  ＯＮＥ  ７，  ｅ３７００４．
Ｓｈａｐｉｒｏ，  Ａ．Ｍ．，  Ｒｉｃｏｒｄｉ，  Ｃ．，  Ｈｅｒｉｎｇ，  Ｂ．Ｊ．，  Ａｕｃｈｉｎｃｌｏｓｓ，  Ｈ．，  Ｌｉｎｄｂｌａｄ，  Ｒ．，  Ｒｏｂｅｒｔｓｏｎ，  Ｒ．Ｐ．，  Ｓｅｃｃｈｉ，  Ａ．，  Ｂｒｅｎｄｅｌ，  Ｍ．Ｄ．，  Ｂｅｒｎｅｙ，  Ｔ．，  ｅｔ  ａｌ．  （２００６）．  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  ｔｒｉａｌ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｅｄｍｏｎｔｏｎ  ｐｒｏｔｏｃｏｌ  ｆｏｒ  ｉｓｌｅｔ  ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ．  Ｎ  Ｅｎｇｌ  Ｊ  Ｍｅｄ  ３５５，  １３１８−３３０．
Ｓｈｉｂａ，  Ｙ．，  Ｆｅｒｎａｎｄｅｓ，  Ｓ．，  Ｚｈｕ，  Ｗ．Ｚ．，  Ｆｉｌｉｃｅ，  Ｄ．，  Ｍｕｓｋｈｅｌｉ，  Ｖ．，  Ｋｉｍ，  Ｊ．，  Ｐａｌｐａｎｔ，  Ｎ．Ｊ．，  Ｇａｎｔｚ，  Ｊ．，  Ｍｏｙｅｓ，  Ｋ．Ｗ．，  ａｎｄ  Ｒｅｉｎｅｃｋｅ，  Ｈ．  （２０１２）．  Ｈｕｍａｎ  ＥＳ−ｃｅｌｌ−ｄｅｒｉｖｅｄ  ｃａｒｄｉｏｍｙｏｃｙｔｅｓ  ｅｌｅｃｔｒｉｃａｌｌｙ  ｃｏｕｐｌｅ  ａｎｄ  ｓｕｐｐｒｅｓｓ  ａｒｒｈｙｔｈｍｉａｓ  ｉｎ  ｉｎｊｕｒｅｄ  ｈｅａｒｔｓ．  Ｎａｔｕｒｅ  ４８９，  ３２２−２５．
Ｓｎｅｄｄｏｎ，  Ｊ．Ｂ．，  Ｂｏｒｏｗｉａｋ，  Ｍ．，  ａｎｄ  Ｍｅｌｔｏｎ，  Ｄ．Ａ．  （２０１２）．  Ｓｅｌｆ−ｒｅｎｅｗａｌ  ｏｆ  ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ−ｓｔｅｍ−ｃｅｌｌ−ｄｅｒｉｖｅｄ  ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒｓ  ｂｙ  ｏｒｇａｎ−ｍａｔｃｈｅｄ  ｍｅｓｅｎｃｈｙｍｅ．  Ｎａｔｕｒｅ  ４９１，  ７６５−６８．
Ｔａｙｌｏｒ，  Ｂ．Ｌ．，  Ｌｉｕ，  Ｆ．Ｆ．，  ａｎｄ  Ｓａｎｄｅｒ，  Ｍ．  （２０１３）．  ＮＫＸ６−１  Ｉｓ  Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ  ｆｏｒ  Ｍａｉｎｔａｉｎｉｎｇ  ｔｈｅ  Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ  Ｓｔａｔｅ  ｏｆ  Ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  Ｂｅｔａ  Ｃｅｌｌｓ．  Ｃｅｌｌ  Ｒｅｐ  ４，  １２６２−２７５．
Ｔｈｏｗｆｅｅｑｕ，  Ｓ．，  Ｒａｌｐｈｓ，  Ｋ．Ｌ．，  Ｙｕ，  Ｗ．−，  Ｓｌａｃｋ，  Ｊ．Ｍ．Ｗ．，  ａｎｄ  Ｔｏｓｈ，  Ｄ．  （２００７）．  Ｂｅｔａｃｅｌｌｕｌｉｎ  ｉｎｈｉｂｉｔｓ  ａｍｙｌａｓｅ  ａｎｄ  ｇｌｕｃａｇｏｎ  ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｐｒｏｍｏｔｅｓ  ｂｅｔａ  ｃｅｌｌ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ｉｎ  ｍｏｕｓｅ  ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  ｐａｎｃｒｅａｓ．  Ｄｉａｂｅｔｏｌｏｇｉａ  ５０，  １６８８−６９７．
Ｖｅｔｅｒｅ，  Ａ．，  Ｃｈｏｕｄｈａｒｙ，  Ａ．，  Ｂｕｒｎｓ，  Ｓ．Ｍ．，  ａｎｄ  Ｗａｇｎｅｒ，  Ｂ．Ｋ．  （２０１４）．  Ｔａｒｇｅｔｉｎｇ  ｔｈｅ  ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  β−ｃｅｌｌ  ｔｏ  ｔｒｅａｔ  ｄｉａｂｅｔｅｓ．  Ｎａｔｕｒｅ  Ｒｅｖｉｅｗｓ  Ｄｒｕｇ  Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ  
Ｘｉｅ，  Ｒ．，  Ｅｖｅｒｅｔｔ，  Ｌ．Ｊ．，  Ｌｉｍ，  Ｈ．Ｗ．，  Ｐａｔｅｌ，  Ｎ．Ａ．，  Ｓｃｈｕｇ，  Ｊ．，  Ｋｒｏｏｎ，  Ｅ．，  Ｋｅｌｌｙ，  Ｏ．Ｇ．，  Ｗａｎｇ，  Ａ．，  Ｄ’Ａｍｏｕｒ，  Ｋ．Ａ．，  ｅｔ  ａｌ．  （２０１３）．  Ｄｙｎａｍｉｃ  Ｃｈｒｏｍａｔｉｎ  Ｒｅｍｏｄｅｌｉｎｇ  Ｍｅｄｉａｔｅｄ  ｂｙ  Ｐｏｌｙｃｏｍｂ  Ｐｒｏｔｅｉｎｓ  Ｏｒｃｈｅｓｔｒａｔｅｓ  Ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｈｕｍａｎ  Ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌｓ．  Ｃｅｌｌ  Ｓｔｅｍ  Ｃｅｌｌ  １２，  ２２４−２３７．
【０６７６】
（項目１）
幹細胞系β細胞（ＳＣ−β）。
（項目２）
前記細胞が、成熟している、項目１記載の細胞。
（項目３）
前記細胞が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏでのグルコース刺激インスリン分泌（ＧＳＩＳ）応答を示す、項目１または２記載の細胞。
（項目４）
前記細胞が、ｉｎ  ｖｉｖｏでのＧＳＩＳ応答を示す、項目１から３のいずれか一項に記載の細胞。
（項目５）
前記細胞が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及びｉｎ  ｖｉｖｏでのグルコース刺激インスリン分泌（ＧＳＩＳ）応答を示す、項目１から４のいずれか一項に記載の細胞。
（項目６）
前記細胞が、少なくとも１回のグルコースチャレンジに対して、ＧＳＩＳ応答を示す、項目１から５のいずれか一項に記載の細胞。
（項目７）
前記細胞が、少なくとも２回の連続的なグルコースチャレンジに対して、ＧＳＩＳ応答を示す、項目１から６のいずれか一項に記載の細胞。
（項目８）
前記細胞が、少なくとも３回の連続的なグルコースチャレンジに対して、ＧＳＩＳ応答を示す、項目１から７のいずれか一項に記載の細胞。
（項目９）
前記ＧＳＩＳ応答が、前記細胞をヒトまたは動物に移植した直後に観察される、項目１から８のいずれか一項に記載の細胞。
（項目１０）
前記ＧＳＩＳ応答が、前記細胞をヒトまたは動物に移植した約２４時間以内に観察される、項目１から９のいずれか一項に記載の細胞。
（項目１１）
前記ＧＳＩＳ応答が、前記細胞をヒトまたは動物に移植した約２週間以内に観察される、項目１から１０のいずれか一項に記載の細胞。
（項目１２）
低グルコース濃度と比較して、高グルコース濃度に対する応答において分泌されたインスリンの割合により特徴付けられる前記細胞の刺激指数が、内在性の成熟膵臓β細胞の刺激指数に類似している、項目１から１１のいずれか一項に記載の細胞。
（項目１３）
前記刺激指数が、１以上または１．１以上または１．３以上または２以上または２．３以上または２．６以上である、項目１から１２のいずれか一項に記載の細胞。
（項目１４）
前記細胞が、サイトカインに対する応答において、サイトカイン誘導性アポトーシスを示す、項目１から１３のいずれか一項に記載の細胞。
（項目１５）
前記サイトカインが、インターロイキン−１β（ＩＬ−β）、インターフェロン−γ（ＩＮＦ−γ）、腫瘍壊死因子−α（ＴＮＦ−α）及びそれらの組合せからなる群から選択される、項目１から１４のいずれか一項に記載の細胞。
（項目１６）
前記細胞からのインスリン分泌が、抗糖尿病剤に対する応答において亢進する、項目１から１５のいずれか一項に記載の細胞。
（項目１７）
前記抗糖尿病剤が、インクレチン模倣物、スルホニル尿素、メグリチニド及びそれらの組合せからなる群から選択される分泌促進物質を含む、項目１６記載の細胞。
（項目１８）
前記細胞が、モノホルモン性である、項目１から１７のいずれか一項に記載の細胞。
（項目１９）
前記細胞が、内在性の成熟膵臓β細胞に類似する形態を示す、項目１から１８のいずれか一項に記載の細胞。
（項目２０）
前記細胞が、内在性の成熟膵臓β細胞のインスリン顆粒に類似する、電子顕微鏡観察下における封入結晶インスリン顆粒を示す、項目１から１９のいずれか一項に記載の細胞。
（項目２１）
前記細胞が、低速の複製を示す、項目１から２０のいずれか一項に記載の細胞。
（項目２２）
前記細胞が、内在性の成熟膵臓β細胞のＧＳＣＦに類似するグルコース刺激Ｃａ２＋流動（ＧＳＣＦ）を示す、項目１から２１のいずれか一項に記載の細胞。
（項目２３）
前記細胞が、少なくとも１回のグルコースチャレンジに対して、ＧＳＣＦ応答を示す、項目１から２２のいずれか一項に記載の細胞。
（項目２４）
前記細胞が、少なくとも２回のグルコースチャレンジに対して、ＧＳＣＦ応答を示す、項目１から２３のいずれか一項に記載の細胞。
（項目２５）
前記細胞が、少なくとも３回のグルコースチャレンジに対して、ＧＳＣＦ応答を示す、項目１から２４のいずれか一項に記載の細胞。
（項目２６）
前記細胞が、亢進したカルシウム流動を示す、項目１から２５のいずれか一項に記載の細胞。
（項目２７）
前記亢進したカルシウム流動が、増大した量の流入または、高グルコース濃度に対して低い流入比を含む、項目２６記載の細胞。
（項目２８）
前記細胞が、インスリン、Ｃ−ペプチド、ＰＤＸ１、ＭＡＦＡ、ＮＫＸ６−１、ＰＡＸ６、ニューロＤ１、グルコキナーゼ（ＧＣＫ）、ＳＬＣ２Ａ１、ＰＣＳＫ１、ＫＣＮＪ１１、ＡＢＣＣ８、ＳＬＣ３０Ａ８、ＳＮＡＰ２５、ＲＡＢ３Ａ、ＧＡＤ２、ＰＴＰＲＮ、ＮＫＸ２−２、Ｐａｘ４からなる群から選択される、内在性の成熟膵臓β細胞に固有の少なくとも１つのマーカーを発現している、項目１から２７のいずれか一項に記載の細胞。
（項目２９）
前記細胞が、
ａ）ｉ）グルカゴン（ＧＣＧ）及び
ｉｉ）ソマトスタチン（ＳＳＴ）からなる群から選択されるホルモン；または、
ｂ）ｉ）アミラーゼ及び
ｉｉ）カルボキシペプチダーゼＡ（ＣＰＡ１）からなる群から選択される腺細胞マーカー；
ｃ）ｉ）ＧＣＧ、
ｉｉ）Ａｒｘ、
ｉｉｉ）Ｉｒｘ１及びＩＲからなる群から選択されるα細胞マーカー；並びに、
ｄ）ｉ）ＣＦＴＲ及び
ｉｉ）Ｓｏｘ９からなる群から選択される管細胞マーカー、からなる群から選択される少なくとも１つのマーカーを発現していない、項目１から２８のいずれか一項に記載の細胞。
（項目３０）
前記細胞が、インスリン陽性内分泌細胞または、Ｎｋｘ６−１陽性膵臓始原細胞、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞及び多能性幹細胞からなる群から選択されるその前駆体から、ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて分化されている、項目１から２９のいずれか一項に記載の細胞。
（項目３１）
前記多能性幹細胞が、胚性幹細胞及び誘導多能性幹細胞からなる群から選択される、項目３０記載の細胞。
（項目３２）
前記細胞がヒトである、項目１から３１のいずれか一項に記載の細胞。
（項目３３）
前記細胞が、遺伝子組み換えされていない、項目１から３２のいずれか一項に記載の細胞。
（項目３４）
前記細胞が、遺伝子組み換えされている、項目１から３３のいずれか一項に記載の細胞。
（項目３５）
前記細胞あたりに産生されるインスリンが、高グルコース濃度での３０分のインキュベートにおいて、細胞１０００個あたりに、０．５と１０μＩＵとの間である、項目１から３４のいずれか一項に記載の細胞。
（項目３６）
前記細胞あたりに産生されるインスリンが、高グルコース濃度での３０分のインキュベートにおいて、細胞１０００個あたりに、約２．５μＩＵである、項目１から３５のいずれか一項に記載の細胞。
（項目３７）
前記インキュベートが、ｅｘ  ｖｉｖｏにおいて生じる、項目３５または３６記載の細胞。
（項目３８）
項目１から３７のいずれか一項に記載の細胞を含む細胞株。
（項目３９）
前記細胞株が、インスリンを安定的に発現している、項目３８記載の細胞株。
（項目４０）
前記細胞が、少なくとも３０回の継代まで、明らかな形態変化をすることなく、凍結、解凍及び、約２４と４４時間との間の倍加時間で増幅されることができる、項目３８または３９記載の細胞株。
（項目４１）
細胞クラスター形成を促進する条件下において、インスリン陽性内分泌細胞を含む細胞集合を、ａ）形質転換成長因子β（ＴＧＦ−β）シグナル伝達阻害剤及びｂ）甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータを含む少なくとも２つのβ細胞成熟因子と接触させて、前記集合中の少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞のＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導することを含む、
インスリン陽性内分泌細胞からのＳＣ−β細胞の生成方法。
（項目４２）
前記ＳＣ−β細胞が、少なくとも１回のグルコースチャレンジに対する応答を示す、項目４１記載の方法。
（項目４３）
前記ＳＣ−β細胞が、少なくとも２回の連続的なグルコースチャレンジに対する応答を示す、項目４１または４２記載の方法。
（項目４４）
前記ＳＣ−β細胞が、少なくとも３回の連続的なグルコースチャレンジに対する応答を示す、項目４１から４３のいずれか一項に記載の方法。
（項目４５）
前記ＳＣ−β細胞の形態が、内在性の成熟β細胞の形態に類似している、項目４１から４４のいずれか一項に記載の方法。
（項目４６）
前記ＳＣ−β細胞が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏでのグルコース刺激インスリン分泌（ＧＳＩＳ）応答を示す、項目４１から４５のいずれか一項に記載の方法。
（項目４７）
前記ＧＳＩＳ応答が、前記ＳＣ−β細胞を対象に移植した直後に観察される、項目４１から４６のいずれか一項に記載の方法。
（項目４８）
前記ＧＳＩＳ応答が、前記ＳＣ−β細胞を対象に移植した約２４時間以内に観察される、項目４１から４７のいずれか一項に記載の方法。
（項目４９）
前記ＧＳＩＳ応答が、前記ＳＣ−β細胞を対象に移植した約２週間以内に観察される、項目４１から４８のいずれか一項に記載の方法。
（項目５０）
前記細胞集合を、１００ｎＭ−１００μＭの間の濃度で、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる、項目４１から４９のいずれか一項に記載の方法。
（項目５１）
前記細胞集合を、１０μＭの濃度で、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる、項目４１から５０のいずれか一項に記載の方法。
（項目５２）
ＴＧＦ−βシグナル伝達経路が、ＴＧＦ−β受容体Ｉ型キナーゼシグナル伝達を含む、項目４１から５１のいずれか一項に記載の方法。
（項目５３）
前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤が、Ａｌｋ５阻害剤ＩＩを含む、項目４１から５２のいずれか一項に記載の方法。
（項目５４）
前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤が、Ａｌｋ５阻害剤ＩＩの類似体または誘導体を含む、項目４１から５３のいずれか一項に記載の方法。
（項目５５）
前記細胞集合を、０．１μＭ−１０μＭの間の濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる、項目４１から５４のいずれか一項に記載の方法。
（項目５６）
前記細胞集合を、１μＭの濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる、項目４１から５５のいずれか一項に記載の方法。
（項目５７）
前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータが、トリヨードチロニン（Ｔ３）を含む、項目４１から５６のいずれか一項に記載の方法。
（項目５８）
前記細胞集合を、場合により、プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる、項目４１から５７のいずれか一項に記載の方法。
（項目５９）
前記細胞集合を、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させない、項目５８記載の方法。
（項目６０）
前記細胞集合を、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる、項目５８記載の方法。
（項目６１）
前記細胞集合を、１０ｎＭ−１μＭの間の濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる、項目６０記載の方法。
（項目６２）
前記細胞集合を、１００ｎＭの濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる、項目６０または６１記載の方法。
（項目６３）
前記プロテインキナーゼ阻害剤が、スタウロスポリンを含む、項目６０から６２のいずれか一項に記載の方法。
（項目６４）
さらに、前記細胞集合を、少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子と接触させることを含む、項目４１から６３のいずれか一項に記載の方法。
（項目６５）
前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子が、嚢胞性繊維症膜コンダクタンス制御因子（ＣＦＴＲ）阻害剤を含む、項目６４記載の方法。
（項目６６）
前記細胞集合を、１００ｎＭ−１００μＭの間の濃度で、前記ＣＦＴＲ阻害剤と接触させる、項目６４または６５記載の方法。
（項目６７）
前記細胞集合を、１０ｎＭ−１０μＭの濃度で、前記ＣＦＴＲ阻害剤と接触させる、項目６４から６６のいずれか一項に記載の方法。
（項目６８）
前記ＣＦＴＲ阻害剤が、Ｇｌｙ−Ｈ１０１を含む、項目６４から６７のいずれか一項に記載の方法。
（項目６９）
前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子が、Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤を含む、項目６４から６８のいずれか一項に記載の方法。
（項目７０）
前記細胞集合を、１００ｎＭ−１００μＭの間の濃度で、前記Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤と接触させる、項目６９記載の方法。
（項目７１）
前記細胞集合を、１０ｎＭ−１０μＭの間の濃度で、前記Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤と接触させる、項目６９または７０記載の方法。
（項目７２）
前記Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤が、Ｔｈｉａｍｅｔ  Ｇを含む、項目４１から７１のいずれか一項に記載の方法。
（項目７３）
前記細胞集合が、適切な培養培地中で培養される、項目４１から７２のいずれか一項に記載の方法。
（項目７４）
前記適切な培養培地が、膵島培地（ＣＭＲＬＳ）またはＣＭＲＬＳの成分を添加した、Ｃｏｎｎｏｕｇｈｔ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ  １０６６を含む、項目７３記載の方法。
（項目７５）
前記ＣＭＲＬＳが、血清と共に添加される、項目７４記載の方法。
（項目７６）
前記ＣＭＲＬＳが、１０％  ウシ胎児血清と共に添加される、項目７４または７５記載の方法。
（項目７７）
前記細胞クラスター形成を促進する条件が、懸濁培養を含む、項目４１から７６のいずれか一項に記載の方法。
（項目７８）
前記細胞集合が、前記細胞集合中の少なくとも１つの前記インスリン陽性内分泌細胞の少なくとも１つのＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導するのに十分な期間、懸濁培養において維持される、項目４１から７７のいずれか一項に記載の方法。
（項目７９）
前記期間が、少なくとも７日を含む、項目７８記載の方法。
（項目８０）
前記期間が、７日と２１日との間を含む、項目７８または７９記載の方法。
（項目８１）
前記期間が、７日と１４日との間を含む、項目７８から６０のいずれか一項に記載の方法。
（項目８２）
前記期間が、１０日と１４日との間を含む、項目７８から８１のいずれか一項に記載の方法。
（項目８３）
前記期間が、１４日を含む、項目７８から８２のいずれか一項に記載の方法。
（項目８４）
前記β細胞成熟因子が、２日に１回補充される、項目７９から８３のいずれか一項に記載の方法。
（項目８５）
前記細胞集合中の少なくとも１％の前記インスリン陽性内分泌細胞が誘導されて、ＳＣ−β細胞に成熟する、項目４１から８４のいずれか一項に記載の方法。
（項目８６）
前記細胞集合中の少なくとも９９％の前記インスリン陽性内分泌細胞が誘導されて、ＳＣ−β細胞に成熟する、項目４１から８５のいずれか一項に記載の方法。
（項目８７）
前記集合中の得られた細胞の少なくとも３０％が、ＳＣ−β細胞を含む、項目４１から８６のいずれか一項に記載の方法。
（項目８８）
前記ＳＣ−β細胞が、Ｃ−ペプチド、インスリン、ＮＫＸ６−１、Ｐｄｘ１を発現しており、ＮＫＸ６−１とＣ−ペプチドとを共発現している、項目４１から８７のいずれか一項に記載の方法。
（項目８９）
前記インスリン陽性内分泌細胞が、Ｐｄｘ１及びＮＫＸ６−１も発現している、項目４１から８８のいずれか一項に記載の方法。
（項目９０）
前記インスリン陽性内分泌細胞が、胚性幹細胞及び誘導多能性幹細胞からなる群から選択される多能性幹細胞の集合から産生される、項目４１から８９のいずれか一項に記載の方法。
（項目９１）
前記ＳＣ−β細胞が、ヒト細胞を含む、項目４１から９０のいずれか一項に記載の方法。
（項目９２）
ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける前記ＳＣ−β細胞の生成が、規模を拡大できる、項目４１から９１のいずれか一項に記載の方法。
（項目９３）
項目４１から９２のいずれか一項に記載の方法に基づいて産生されたＳＣ−β細胞の単離された集合。
（項目９４）
その中に封入された、項目９３記載のＳＣ−β細胞の単離された集合を含むマイクロカプセル。
（項目９５）
項目４１から９２のいずれか一項に記載の方法に基づいて産生されたＳＣ−β細胞の集合を含む組成物。
（項目９６）
項目４１から９２のいずれか一項に記載の方法に基づいて産生されたＳＣ−β細胞の単離された集合を含むアッセイ。
（項目９７）
β細胞の増殖、β細胞の複製、β細胞の死、β細胞の機能、免疫攻撃に対するβ細胞の感受性または脱分化もしくは分化に対するβ細胞の感受性からなる群から選択される、β細胞の運命を促進または阻害する、１つ以上の候補剤を特定するのに使用するための、項目９６記載のアッセイ。
（項目９８）
少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞またはその前駆体の、少なくとも１つのＳＣ−β細胞への分化を促進する、１つ以上の候補剤を特定するのに使用するための、項目９６記載のアッセイ。
（項目９９）
項目４１から９２のいずれか一項に記載の方法に基づいて産生されたＳＣ−β細胞の単離された集合を含む組成物を、対象に投与することを含む、
それを必要とする対象の処置方法。
（項目１００）
前記ＳＣ−β細胞が、マイクロカプセルに封入される、項目９９記載の方法。
（項目１０１）
前記ＳＣ−β細胞が、前記ＳＣ−β細胞が投与される前記同じ対象から得られた多能性幹細胞の集合から産生される、項目９９または１００記載の方法。
（項目１０２）
前記ＳＣ−β細胞が、ｉＰＳ細胞の集合から産生され、前記ｉＰＳ細胞が、前記ＳＣ−β細胞が投与される前記同じ対象から得られた細胞から得られる、項目９９から１０１のいずれか一項に記載の方法。
（項目１０３）
前記対象が、糖尿病を有するか、または、糖尿病になる増大したリスクを有する、項目９９から１０２のいずれか一項に記載の方法。
（項目１０４）
前記糖尿病が、Ｉ型糖尿病、ＩＩ型糖尿病、１．５型糖尿病及び糖尿病前症からなる群から選択される、項目１０３記載の方法。
（項目１０５）
前記対象が、代謝異常を有するか、または、代謝異常になる増大したリスクを有する、項目９９から１０２のいずれか一項に記載の方法。
（項目１０６）
それを必要とする対象に投与するための、項目４１から１０２のいずれか一項に記載の方法により産生されたＳＣ−β細胞の単離された集合の使用。
（項目１０７）
前記ＳＣ−β細胞の単離された集合が、マイクロカプセルに封入されて、前記対象に投与される、項目１０６記載の使用。
（項目１０８）
前記対象が、糖尿病を有するか、または、糖尿病になる増大したリスクを有する、項目１０６または１０７記載の使用。
（項目１０９）
前記糖尿病が、Ｉ型糖尿病、ＩＩ型糖尿病、１．５型糖尿病及び糖尿病前症からなる群から選択される、項目１０６から１０８のいずれか一項に記載の使用。
（項目１１０）
前記対象が、代謝異常を有するか、または、代謝異常になる増大したリスクを有する、項目１０６または１０７記載の使用。
（項目１１１）
ａ）Ａｌｋ５阻害剤、ｂ）トリヨードチロニン（Ｔ３）、場合により、ｃ）スタウロスポリン、及び場合により、ｄ）ＣＭＲＬＳを含む、
培養培地。
（項目１１２）
インスリン陽性内分泌細胞のＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導するために項目１１１記載の培養培地を使用し、前記ＳＣ−β細胞が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏの両方でのＧＳＩＳ応答を示す、前記使用。
（項目１１３）
細胞クラスター形成を促進する条件下において、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を含む細胞集合を、ａ）繊維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）ファミリーからの少なくとも１つの成長因子、ｂ）ソニックヘッジホッグ経路阻害剤を含む少なくとも２つのβ細胞成熟因子、及び場合により、ｃ）低濃度のレチノイン酸（ＲＡ）シグナル伝達経路アクチベータと、少なくとも５日の期間接触させて、前記集合中の少なくとも１つのＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導することを含み、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が、ＮＫＸ６−１を発現している、
Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞からのＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の製造方法。
（項目１１４）
前記細胞集合を、１ｎｇ／ｍＬ−１００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる、項目１１３記載の方法。
（項目１１５）
前記細胞集合を、５０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる、項目１１３または１１４記載の方法。
（項目１１６）
前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子が、ケラチノサイト成長因子（ＫＧＦ）を含む、項目１１３から１１５のいずれか一項に記載の方法。
（項目１１７）
前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子が、ＦＧＦ２、ＦＧＦ８Ｂ、ＦＧＦ１０及びＦＧＦ２１からなる群から選択される、項目１１３から１１６のいずれか一項に記載の方法。
（項目１１８）
前記細胞集合を、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させない、項目１１３から１１７のいずれか一項に記載の方法。
（項目１１９）
前記細胞集合を、０．０１μＭ−１．０μＭの間の濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる、項目１１３から１１７のいずれか一項に記載の方法。
（項目１２０）
前記細胞集合を、０．１μＭの濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる、項目１１３から１１７のいずれか一項に記載の方法。
（項目１２１）
前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータが、ＲＡを含む、項目１１３から１２０のいずれか一項に記載の方法。
（項目１２２）
前記細胞集合を、０．１μＭと０．５μＭとの間の濃度で、ＳＨＨ経路阻害剤と接触させる、項目１１３から１２１のいずれか一項に記載の方法。
（項目１２３）
前記細胞集合を、０．２５μＭの濃度で、前記ＳＨＨ経路阻害剤と接触させる、項目１１３から１２２のいずれか一項に記載の方法。
（項目１２４）
前記ＳＨＨ経路阻害剤が、Ｓａｎｔ１を含む、項目１１３から１２３のいずれか一項に記載の方法。
（項目１２５）
さらに、少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子に、前記細胞集合を曝すことを含む、項目１１３から１２４のいずれか一項に記載の方法。
（項目１２６）
前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子が、ＥＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子を含む、項目１２５記載の方法。
（項目１２７）
前記細胞集合が、２ｎｇ／ｍＬ−２００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子に曝される、項目１２６記載の方法。
（項目１２８）
前記細胞集合が、２０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子に曝される、項目１２６または１２７記載の方法。
（項目１２９）
前記ＥＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子が、ベタセルリン及びＥＧＦからなる群から選択される、項目１２６から１２８のいずれか一項に記載の方法。
（項目１３０）
前記細胞集合が、適切な培養培地中で培養される、項目１１３から１２９のいずれか一項に記載の方法。
（項目１３１）
前記細胞クラスター形成を促進する条件が、懸濁培養を含む、項目１１３から１３０のいずれか一項に記載の方法。
（項目１３２）
前記β細胞成熟因子が、２日に１回補充される、項目１１３から１３１のいずれか一項に記載の方法。
（項目１３３）
プロテインキナーゼＣのアクチベータが、５日の間、前記懸濁培養に添加されない、項目１１３から１３２のいずれか一項に記載の方法。
（項目１３４）
プロテインキナーゼＣのアクチベータが、５日の前に、前記懸濁培養から除去される、項目１１３から１３２のいずれか一項に記載の方法。
（項目１３５）
前記プロテインキナーゼＣのアクチベータが、ＰｄｂＵを含む、項目１１３または１３４記載の方法。
（項目１３６）
ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤が、５日の間、前記懸濁培養に添加されない、項目１１３から１３５のいずれか一項に記載の方法。
（項目１３７）
ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤が、５日の前に、前記懸濁培養から除去される、項目１１３から１３５のいずれか一項に記載の方法。
（項目１３８）
前記ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤が、ＬＤＮ１９３１８９を含む、項目１３６または１３７記載の方法。
（項目１３９）
前記集合中の少なくとも１０％の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞が誘導されて、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞に分化する、項目１１３から１３８のいずれか一項に記載の方法。
（項目１４０）
前記集合中の少なくとも９５％の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞が誘導されて、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞に分化する、項目１１３から１３９のいずれか一項に記載の方法。
（項目１４１）
前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が、Ｐｄｘ１、ＮＫＸ６−１及びＦｏｘＡ２を発現している、項目１１３から１４０のいずれか一項に記載の方法。
（項目１４２）
前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞が、胚性幹細胞及び誘導多能性幹細胞からなる群から選択される多能性幹細胞の集合から産生される、項目１１３から１４１のいずれか一項に記載の方法。
（項目１４３）
項目１１３から１４２のいずれか一項に記載の方法により得られたＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合。
（項目１４４）
その中に封入された、項目１４３記載のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合を含むマイクロカプセル。
（項目１４５）
項目１１３から１４２のいずれか一項に記載の方法に基づいて産生されたＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合を含む組成物。
（項目１４６）
項目１１３から１４２のいずれか一項に記載の方法に基づいて産生されたＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合を含むアッセイ。
（項目１４７）
少なくとも１つのＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞またはその前駆体の、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞への分化を促進する、１つ以上の候補剤を特定するのに使用するための、項目１４６記載のアッセイ。
（項目１４８）
項目１１３から１４２のいずれか一項に記載の方法に基づいて産生されたＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合を含む組成物を、対象に投与することを含む、
それを必要とする対象の処置方法。
（項目１４９）
前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が投与される前記同じ対象から得られた多能性幹細胞の集合から産生される、項目１４８記載の方法。
（項目１５０）
前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が、マイクロカプセルに封入される、項目１４８または１４９記載の方法。
（項目１５１）
前記対象が、糖尿病を有するか、または、糖尿病になる増大したリスクを有する、項目１４８から１５０のいずれか一項に記載の方法。
（項目１５２）
前記糖尿病が、Ｉ型糖尿病、ＩＩ型糖尿病、１．５型糖尿病及び糖尿病前症からなる群から選択される、項目１５１記載の方法。
（項目１５３）
前記対象が、代謝異常を有するか、または、代謝異常になる増大したリスクを有する、項目１４８から１５０のいずれか一項に記載の方法。
（項目１５４）
ＳＣ−β細胞に分化させるための、項目１１３から１４２のいずれか一項に記載の方法により産生されたＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合の使用。
（項目１５５）
それを必要とする対象に投与するための、項目１１３から１４２のいずれか一項に記載の方法により産生されたＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合の使用。
（項目１５６）
前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の単離された集合が、マイクロカプセルに封入されて、前記対象に投与される、項目１５５記載の使用。
（項目１５７）
前記対象が、糖尿病を有するか、または、糖尿病になる増大したリスクを有する、項目１５５または１５６記載の使用。
（項目１５８）
前記糖尿病が、Ｉ型糖尿病、ＩＩ型糖尿病、１．５型糖尿病及び糖尿病前症からなる群から選択される、項目１５７記載の使用。
（項目１５９）
前記対象が、代謝異常を有するか、または、代謝異常になる増大したリスクを有する、項目１５５または１５６記載の使用。
（項目１６０）
ａ）ＫＧＦ、ｂ）ＳＡＮＴ１、及び場合により、ｃ）ＲＡを含み、ＰｄｂＵ及びＬＤＮ１９３１８９を実質的に含まない、
培養培地。
（項目１６１）
Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ分化を誘導するための、項目１６０記載の培養培地の使用。
（項目１６２）
細胞クラスター形成を促進する条件下において、ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞を含む細胞集合を、ａ）ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤及びｂ）甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータを含む少なくとも２つのβ細胞成熟因子と接触させて、前記集合中の少なくとも１つのＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞の、少なくとも１つのインスリン陽性内分泌細胞への分化を誘導することを含み、前記インスリン陽性膵臓始原細胞が、インスリンを発現している、
ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞からのインスリン陽性内分泌細胞の製造方法。
（項目１６３）
前記細胞集合を、１μＭ−１００μＭの間の濃度で、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる、項目１６２記載の方法。
（項目１６４）
前記細胞集合を、１０μＭの間の濃度で、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる、項目１６２または１６３記載の方法。
（項目１６５）
ＴＧＦ−βシグナル伝達経路が、ＴＧＦ−β受容体Ｉ型キナーゼシグナル伝達を含む、項目１６２から１６４のいずれか一項に記載の方法。
（項目１６６）
前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤が、Ａｌｋ５阻害剤ＩＩを含む、項目１６２から１６５のいずれか一項に記載の方法。
（項目１６７）
前記細胞集合を、０．１μＭ−１０μＭの間の濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる、項目１６２から１６６のいずれか一項に記載の方法。
（項目１６８）
前記細胞集合を、１μＭの濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる、項目１６２から１６７のいずれか一項に記載の方法。
（項目１６９）
前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータが、トリヨードチロニン（Ｔ３）を含む、項目１６２から１６８のいずれか一項に記載の方法。
（項目１７０）
さらに、前記細胞集合を、少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子と接触させることを含む、項目１６２から１６９のいずれか一項に記載の方法。
（項目１７１）
前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子が、γ−セクレターゼ阻害剤を含む、項目１７０記載の方法。
（項目１７２）
前記細胞集合を、０．１μＭ−１０μＭの間の濃度で、前記γ−セクレターゼ阻害剤と接触させる、項目１７１記載の方法。
（項目１７３）
前記細胞集合を、１μＭの濃度で、前記γ−セクレターゼ阻害剤と接触させる、項目１７１または１７２記載の方法。
（項目１７４）
前記γ−セクレターゼ阻害剤が、ＸＸＩを含む、項目１７１から１７３のいずれか一項に記載の方法。
（項目１７５）
前記γ−セクレターゼ阻害剤が、ＤＡＰＴを含む、項目１７１から１７４のいずれか一項に記載の方法。
（項目１７６）
前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子が、ＥＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子を含む、項目１７０から１７５のいずれか一項に記載の方法。
（項目１７７）
前記細胞集合を、２ｎｇ／ｍＬ−２００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる、項目１７６記載の方法。
（項目１７８）
前記細胞集合を、２０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子と接触させる、項目１７６または１７７記載の方法。
（項目１７９）
前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子が、ベタセルリンを含む、項目１７６から１７８のいずれか一項に記載の方法。
（項目１８０）
前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子が、ＥＧＦを含む、項目１７６から１７８のいずれか一項に記載の方法。
（項目１８１）
前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子が、低濃度のレチノイン酸（ＲＡ）シグナル伝達経路アクチベータを含む、項目１７０から１８０のいずれか一項に記載の方法。
（項目１８２）
前記細胞集合を、０．０１μＭ−１．０μＭの間の濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる、項目１８１記載の方法。
（項目１８３）
前記細胞集合を、０．１μＭの濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる、項目１８１または１８２記載の方法。
（項目１８４）
前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータが、ＲＡを含む、項目１８１から１８３のいずれか一項に記載の方法。
（項目１８５）
前記少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子が、ソニックヘッジホッグ（ＳＨＨ）経路阻害剤を含む、項目１７０から１８４のいずれか一項に記載の方法。
（項目１８６）
前記細胞集合を、０．１μＭと０．５μＭとの間の濃度で、前記ＳＨＨ経路阻害剤と接触させる、項目１８５記載の方法。
（項目１８７）
前記細胞集合を、０．２５μＭの濃度で、前記ＳＨＨ経路阻害剤と接触させる、項目１８５または１８６記載の方法。
（項目１８８）
前記ＳＨＨ経路阻害剤が、Ｓａｎｔ１を含む、項目１８５から１８７のいずれか一項に記載の方法。
（項目１８９）
前記細胞集合を、場合により、プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる、項目１６２から１８８のいずれか一項に記載の方法。
（項目１９０）
前記細胞集合を、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させない、項目１８９記載の方法。
（項目１９１）
前記細胞集合を、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる、項目１８９記載の方法。
（項目１９２）
前記細胞集合を、１０ｎＭ−１μＭの間の濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる、項目１９１記載の方法。
（項目１９３）
前記細胞集合を、１００ｎＭの濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる、項目１９１または１９２記載の方法。
（項目１９４）
前記プロテインキナーゼ阻害剤が、スタウロスポリンを含む、項目１９１から１９３のいずれか一項に記載の方法。
（項目１９５）
さらに、前記細胞集合をグルコースに曝すことを含む、項目１６２から１９４のいずれか一項に記載の方法。
（項目１９６）
前記細胞集合が、１ｍＭ−５０ｍＭの間の濃度で、グルコースに曝される、項目１９５記載の方法。
（項目１９７）
前記細胞集合が、２５ｍＭの濃度で、グルコースに曝される、項目１９５または１９６記載の方法。
（項目１９８）
前記細胞クラスター形成を促進する条件が、懸濁培養を含む、項目１９２から１９７のいずれか一項に記載の方法。
（項目１９９）
前記細胞集合が、前記集合中の少なくとも１つのＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞のインスリン陽性内分泌細胞への分化を誘導するのに十分な期間、懸濁培養において維持される、項目１９２から１９８のいずれか一項に記載の方法。
（項目２００）
前記期間が、少なくとも７日である、項目１９９記載の方法。
（項目２０１）
前記β細胞成熟因子が、前記懸濁培養に、２日に１回補充される、項目１９９または２００記載の方法。
（項目２０２）
前記集合中の少なくとも１５％の前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が誘導されて、インスリン陽性内分泌細胞に分化する、項目１６２から２０１のいずれか一項に記載の方法。
（項目２０３）
前記集合中の少なくとも９９％の前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が誘導されて、インスリン陽性内分泌細胞に分化する、項目１６２から２０２のいずれか一項に記載の方法。
（項目２０４）
前記インスリン陽性内分泌細胞が、Ｐｄｘ１、ＮＫＸ６−１、ＮＫＸ２−２、Ｍａｆｂ、ｇｌｉｓ３、Ｓｕｒ１、Ｋｉｒ６．２、Ｚｎｔ８、ＳＬＣ２Ａ１、ＳＬＣ２Ａ３及び／またはインスリンを発現している、項目１６２から２０３のいずれか一項に記載の方法。
（項目２０５）
前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が、胚性幹細胞及び誘導多能性幹細胞からなる群から選択される多能性幹細胞の集合から産生される、項目１６２から２０４のいずれか一項に記載の方法。
（項目２０６）
項目１６２から２０５のいずれか一項に記載の方法に基づいて産生されたインスリン陽性内分泌細胞の単離された集合。
（項目２０７）
その中に封入された、項目２０６記載のインスリン陽性内分泌細胞の単離された集合を含むマイクロカプセル。
（項目２０８）
項目１６２から２０５のいずれか一項に記載の方法に基づいて産生されたインスリン陽性内分泌細胞の集合を含む組成物。
（項目２０９）
項目１６２から２０５のいずれか一項に記載の方法に基づいて産生されたインスリン陽性内分泌細胞の単離された集合を含む組成物を、対象に投与することを含む、
それを必要とする対象の処置方法。
（項目２１０）
前記インスリン陽性内分泌細胞が、前記インスリン陽性内分泌細胞が投与される前記同じ対象から得られた多能性幹細胞の集合から産生される、項目２０９記載の方法。
（項目２１１）
前記インスリン陽性内分泌細胞が、マイクロカプセルに封入される、項目２０９または２１０記載の方法。
（項目２１２）
前記対象が、糖尿病を有するか、または、糖尿病になる増大したリスクを有する、項目２０９から２１１のいずれか一項に記載の方法。
（項目２１３）
前記糖尿病が、Ｉ型糖尿病、ＩＩ型糖尿病、１．５型糖尿病及び糖尿病前症からなる群から選択される、項目２１２記載の方法。
（項目２１４）
前記対象が、代謝異常を有するか、または、代謝異常になる増大したリスクを有する、項目２０９から２１１のいずれか一項に記載の方法。
（項目２１５）
ＳＣ−β細胞に分化させるための、項目１６２から２０５のいずれか一項に記載の方法により産生されたインスリン陽性内分泌細胞の単離された集合の使用。
（項目２１６）
それを必要とする対象に投与するための、項目１６２から２０５のいずれか一項に記載の方法により産生されたインスリン陽性内分泌細胞の単離された集合の使用。
（項目２１７）
前記インスリン陽性内分泌細胞の単離された集合が、マイクロカプセルに封入されて、前記対象に投与される、項目２１６記載の使用。
（項目２１８）
前記対象が、糖尿病を有するか、または、糖尿病になる増大したリスクを有する、項目２１６または２１７記載の使用。
（項目２１９）
前記糖尿病が、Ｉ型糖尿病、ＩＩ型糖尿病、１．５型糖尿病及び糖尿病前症からなる群から選択される、項目２１８記載の使用。
（項目２２０）
前記対象が、代謝異常を有するか、または、代謝異常になる増大したリスクを有する、項目２１６または２１７記載の使用。
（項目２２１）
ａ）ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤、ｂ）ＴＨ経路アクチベータ並びに、ｉ）ＸＸＩ、ｉｉ）ベタセルリン、ｉｉｉ）低濃度のＲＡシグナル伝達経路アクチベータ及びｉｖ）ＳＨＨ経路阻害剤からなる群から選択される少なくとも１つの更なるβ細胞成熟因子を含む、
培養培地。
（項目２２２）
ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞のインスリン陽性内分泌細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ分化を誘導するための項目２２１記載の培養培地の使用。
（項目２２３）
細胞クラスター形成を促進する条件下において、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ｉ）形質転換成長因子β（ＴＧＦ−β）シグナル伝達経路阻害剤、ｉｉ）甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータ、及び場合により、ｉｉｉ）プロテインキナーゼ阻害剤と接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞の、ＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導することを含み、前記ＳＣ−β細胞が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏにおいてＧＳＩＳ応答を示す、
ＳＣ−β細胞の生成方法。
（項目２２４）
前記ＧＳＩＳ応答が、（ｉ）前記ＳＣ−β細胞を対象に移植した直後；（ｉｉ）対象への移植の約２４時間以内；または、（ｉｉｉ）対象への移植の約２週間以内に観察される、項目２２３記載の方法。
（項目２２５）
前記ＳＣ−β細胞が、（ｉ）少なくとも１回のグルコースチャレンジ；（ｉｉ）少なくとも２回の連続的なグルコースチャレンジ；または、（ｉｉｉ）少なくとも３回の連続的なグルコースチャレンジに対する応答を示す、項目２２３または２２４記載の方法。
（項目２２６）
前記ＳＣ−β細胞の形態が、内在性のβ細胞の形態に類似している、項目２２３から２２５のいずれか一項に記載の方法。
（項目２２７）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１００ｎＭ−１００μＭの間の濃度で、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる、項目２２３から２２６のいずれか一項に記載の方法。
（項目２２８）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１０μＭの濃度で、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる、項目２２３から２２７のいずれか一項に記載の方法。
（項目２２９）
ＴＧＦ−βシグナル伝達経路が、ＴＧＦ−β受容体Ｉ型キナーゼシグナル伝達を含む、項目２２３から２２８のいずれか一項に記載の方法。
（項目２３０）
前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤が、Ａｌｋ５阻害剤ＩＩを含む、項目２２３から２２９のいずれか一項に記載の方法。
（項目２３１）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、０．１μＭ−１０μＭの間の濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる、項目２２３から２３０のいずれか一項に記載の方法。
（項目２３２）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１μＭの濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる、項目２２３から２３１のいずれか一項に記載の方法。
（項目２３３）
前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータが、トリヨードチロニン（Ｔ３）を含む、項目２２３から２３２のいずれか一項に記載の方法。
（項目２３４）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させない、項目２２３から２３３のいずれか一項に記載の方法。
（項目２３５）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる、項目２２３から２３３のいずれか一項に記載の方法。
（項目２３６）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１０ｎＭ−１μＭの間の濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる、項目２３５記載の方法。
（項目２３７）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１００ｎＭの濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる、項目２３５または２３６記載の方法。
（項目２３８）
前記プロテインキナーゼ阻害剤が、スタウロスポリンを含む、項目２３５から２３７のいずれか一項に記載の方法。
（項目２３９）
さらに、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、嚢胞性繊維症膜コンダクタンス制御因子（ＣＦＴＲ）阻害剤と接触させることを含む、項目２２３から２３８のいずれか一項に記載の方法。
（項目２４０）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１００ｎＭと１００μＭとの間の濃度で、前記ＣＦＴＲ阻害剤と接触させる、項目２３９記載の方法。
（項目２４１）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１０ｎＭと１０ｕＭとの濃度で、前記ＣＦＴＲ阻害剤と接触させる、項目２３９または２４０記載の方法。
（項目２４２）
前記ＣＦＴＲ阻害剤が、Ｇｌｙ−Ｈ１０１を含む、項目２３９から２２１のいずれか一項に記載の方法。
（項目２４３）
さらに、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤と接触させることを含む、項目２２３から２４２のいずれか一項に記載の方法。
（項目２４４）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１００ｎＭと１００μＭとの間の濃度で、前記Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤と接触させる、項目２４３記載の方法。
（項目２４５）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、１０ｎＭと１０ｕＭとの間の濃度で、前記Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤と接触させる、項目２４３または２４４記載の方法。
（項目２４６）
前記Ｏ−ＧｌｃＮＡｃａｓｅ阻害剤が、Ｔｈｉａｍｅｔ  Ｇを含む、項目２４４から２４５記載の方法。
（項目２４７）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞が、適切な培養培地中で培養される、項目２２３から２４６のいずれか一項に記載の方法。
（項目２４８）
前記適切な培養培地が、膵島培地（ＣＭＲＬＳ）またはＣＭＲＬＳの成分を添加した、Ｃｏｎｎｏｕｇｈｔ  Ｍｅｄｉｃａｌ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ  １０６６を含む、項目２４７記載の方法。
（項目２４９）
前記ＣＭＲＬＳが、血清と共に添加される、項目２４８記載の方法。
（項目２５０）
前記ＣＭＲＬＳが、１０％  ウシ胎児血清と共に添加される、項目２２８または２２９記載の方法。
（項目２５１）
さらに、Ｓａｎｔ１を含む、項目７４−７６及び２４８−２５０のいずれか一項に記載の方法。
（項目２５２）
さらに、ＸＸＩを含む、項目７４−７６及び２４８−２５１のいずれか一項に記載の方法。
（項目２５３）
さらに、ＳＳＰを含む、項目７４−７６及び２４８−２５２のいずれか一項に記載の方法。
（項目２５４）
前記細胞クラスター形成を促進する条件が、懸濁培養を含む、項目２２３から２５３のいずれか一項に記載の方法。
（項目２５５）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞が、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞のＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導するのに十分な期間、懸濁培養中で維持される、項目２２３から２５４のいずれか一項に記載の方法。
（項目２５６）
前記期間が、少なくとも７日を含む、項目２５５記載の方法。
（項目２５７）
前記期間が、７日と２１日との間を含む、項目２５５または２５６記載の方法。
（項目２５８）
前記期間が、７日と１４日との間を含む、項目２５５から２５７のいずれか一項に記載の方法。
（項目２５９）
前記期間が、１４日を含む、項目２５５から２５８のいずれか一項に記載の方法。
（項目２６０）
前記懸濁培養が、２日に１回補充される、項目２５５から２５９のいずれか一項に記載の方法。
（項目２６１）
生成された前記細胞の少なくとも３０％が、ＳＣ−β細胞を含む、項目２２３から２６０のいずれか一項に記載の方法。
（項目２６２）
前記ＳＣ−β細胞が、Ｃ−ペプチド、インスリン、ＮＫＸ６−１、Ｐｄｘ１を発現しており、ＮＫＸ６−１とＣ−ペプチドとを共発現している、項目２０３から２６１のいずれか一項に記載の方法。
（項目２６３）
前記ＳＣ−β細胞が、ヒト細胞を含む、項目２２３から２６２のいずれか一項に記載の方法。
（項目２６４）
ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおける前記ＳＣ−β細胞の生成が、規模を拡大できる、項目２２３から２６３のいずれか一項に記載の方法。
（項目２６５）
前記インスリン陽性の内分泌細胞が、細胞クラスター形成を促進する条件下において、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、ｉ）ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤及びｉｉ）甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞の、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞への分化を誘導することにより得られ、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞が、Ｐｄｘ１、ＮＫＸ６−１、ＮＫＸ２−２、Ｍａｆｂ、ｇｌｉｓ３、Ｓｕｒ１、Ｋｉｒ６．２、Ｚｎｔ８、ＳＬＣ２Ａ１、ＳＬＣ２Ａ３及び／またはインスリンを発現している、項目２２３から２６４のいずれか一項に記載の方法。
（項目２６６）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、１００ｎＭ−１００μＭの間の濃度で、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる、項目２６５記載の方法。
（項目２６７）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、１０μＭの濃度で、前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤と接触させる、項目２６５または２６６記載の方法。
（項目２６８）
ＴＧＦ−βシグナル伝達経路が、ＴＧＦ−β受容体Ｉ型キナーゼシグナル伝達を含む、項目２６５から２６７のいずれか一項に記載の方法。
（項目２６９）
前記ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤が、Ａｌｋ５阻害剤ＩＩを含む、項目２６５から２６８のいずれか一項に記載の方法。
（項目２７０）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、０．１μＭ−１０μＭの間の濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる、項目２６５から２６９のいずれか一項に記載の方法。
（項目２７１）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、１μＭの濃度で、前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータと接触させる、項目２６５から２７０のいずれか一項に記載の方法。
（項目２７２）
前記甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータが、トリヨードチロニン（Ｔ３）を含む、項目２６５から２７１のいずれか一項に記載の方法。
（項目２７３）
さらに、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、ｉ）ＳＨＨ経路阻害剤、ｉｉ）ＲＡシグナル伝達経路アクチベータ、ｉｉｉ）γ−セクレターゼ阻害剤、ｉｖ）上皮成長因子（ＥＧＦ）ファミリーからの少なくとも１つの成長因子、及び場合により、ｖ）プロテインキナーゼ阻害剤の、少なくとも１つと接触させることを含む、項目２６５から２７２のいずれか一項に記載の方法。
（項目２７４）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、０．１μＭと０．５μＭとの間の濃度で、前記ＳＨＨ経路阻害剤と接触させる、項目２７３記載の方法。
（項目２７５）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、０．２５μＭの濃度で、ＳＨＨ経路阻害剤と接触させる、項目２７３または２７４記載の方法。
（項目２７６）
前記ＳＨＨ経路阻害剤が、Ｓａｎｔ１を含む、項目２７３から２７５のいずれか一項に記載の方法。
（項目２７７）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、０．０１μＭ−１．０μＭの間の濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる、項目２７３から２７６のいずれか一項に記載の方法。
（項目２７８）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、０．１μＭの濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる、項目２７３から２７７のいずれか一項に記載の方法。
（項目２７９）
前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータが、ＲＡを含む、項目２７３から２７８のいずれか一項に記載の方法。
（項目２８０）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、０．１μＭ−１０μＭの間の濃度で、前記γ−セクレターゼ阻害剤と接触させる、項目２７３から２７９のいずれか一項に記載の方法。
（項目２８１）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、１μＭの濃度で、前記γ−セクレターゼ阻害剤と接触させる、項目２７３から２８０のいずれか一項に記載の方法。
（項目２８２）
前記γ−セクレターゼ阻害剤が、ＸＸＩを含む、項目２７３から２８１のいずれか一項に記載の方法。
（項目２８３）
前記γ−セクレターゼ阻害剤が、ＤＡＰＴを含む、項目２７３から２８２のいずれか一項に記載の方法。
（項目２８４）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、２ｎｇ／ｍＬ−２００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる、項目２７３から２８３のいずれか一項に記載の方法。
（項目２８５）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、２０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる、項目２７３から２８４のいずれか一項に記載の方法。
（項目２８６）
前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子が、ベタセルリンを含む、項目２７３から２８５のいずれか一項に記載の方法。
（項目２８７）
前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子が、ＥＧＦを含む、項目２７３から２８６のいずれか一項に記載の方法。
（項目２８８）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、プロテインキナーゼ阻害剤と接触させない、項目２７３から２８７のいずれか一項に記載の方法。
（項目２８９）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる、項目２７３から２８８のいずれか一項に記載の方法。
（項目２９０）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、１０ｎＭ−１μＭの間の濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる、項目２８９記載の方法。
（項目２９１）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、１００ｎＭの濃度で、前記プロテインキナーゼ阻害剤と接触させる、項目２８９または２９０記載の方法。
（項目２９２）
前記プロテインキナーゼ阻害剤が、スタウロスポリンを含む、項目２８９から２９１のいずれか一項に記載の方法。
（項目２９３）
さらに、前記細胞集合をグルコースに曝すことを含む、項目２６５から２９２のいずれか一項に記載の方法。
（項目２９４）
前記細胞集合が、１ｍＭ−５０ｍＭの間の濃度で、グルコースに曝される、項目２９３記載の方法。
（項目２９５）
前記細胞集合が、２５ｍＭの濃度で、グルコースに曝される、項目２９３または２９４記載の方法。
（項目２９６）
細胞クラスター形成を促進する条件が、懸濁培養を含む、項目２６５から２９６のいずれか一項に記載の方法。
（項目２９７）
前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞が、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞の、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞への分化を誘導するのに十分な期間、懸濁培養において維持される、項目２６５から２９６のいずれか一項に記載の方法。
（項目２９８）
前記期間が、少なくとも７日である、項目２９７記載の方法。
（項目２９９）
前記懸濁培養が、２日に１回補充される、項目２９７または２９８記載の方法。
（項目３００）
少なくとも１５％の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞が誘導されて、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞に分化する、項目２６５から２９９のいずれか一項に記載の方法。
（項目３０１）
少なくとも９９％の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞が誘導されて、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞に分化する、項目２６５から３００のいずれか一項に記載の方法。
（項目３０２）
細胞クラスター形成を促進する条件下において、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、ｉ）ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、ｉｉ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、及び場合により、ｉｉｉ）低濃度のＲＡシグナル伝達経路アクチベータと、５日の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞の、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞への分化を誘導することにより得られ、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞が、Ｐｄｘ１及びＮＫＸ６−１を発現している、項目２６５から３０１のいずれか一項に記載の方法。
（項目３０３）
前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、１ｎｇ／ｍＬ−１００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる、項目３０２記載の方法。
（項目３０４）
前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、５０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる、項目３０２または３０３記載の方法。
（項目３０５）
前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子が、ケラチノサイト成長因子（ＫＧＦ）を含む、項目３０２から３０４のいずれか一項に記載の方法。
（項目３０６）
前記ＦＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子が、ＦＧＦ２、ＦＧＦ８Ｂ、ＦＧＦ１０及びＦＧＦ２１からなる群から選択される、項目３０２から３０５のいずれか一項に記載の方法。
（項目３０７）
前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、０．１μＭと０．５μＭとの間の濃度で、前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤と接触させる、項目３０２から３０６のいずれか一項に記載の方法。
（項目３０８）
前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、０．２５μＭの濃度で、前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤と接触させる、項目３０２から３０７のいずれか一項に記載の方法。
（項目３０９）
前記少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤が、Ｓａｎｔ１を含む、項目３０２から３０８のいずれか一項に記載の方法。
（項目３１０）
前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、０．０１μＭ−１．０μＭの間の濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる、項目３０２から３０９のいずれか一項に記載の方法。
（項目３１１）
前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、０．１μＭの濃度で、前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと接触させる、項目３０２から３１０のいずれか一項に記載の方法。
（項目３１２）
前記ＲＡシグナル伝達経路アクチベータが、ＲＡを含む、項目３０２から３１１のいずれか一項に記載の方法。
（項目３１３）
さらに、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、ＥＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子と接触させることを含む、項目３０２から３１２のいずれか一項に記載の方法。
（項目３１４）
前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、２ｎｇ／ｍＬ−２００ｎｇ／ｍＬの間の濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる、項目３１３記載の方法。
（項目３１５）
前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、２０ｎｇ／ｍＬの濃度で、前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子と接触させる、項目３１３または３１４記載の方法。
（項目３１６）
前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子が、ベタセルリンを含む、項目３１３から３１５のいずれか一項に記載の方法。
（項目３１７）
前記ＥＧＦファミリーからの前記少なくとも１つの成長因子が、ＥＧＦを含む、項目３１３から３１６のいずれか一項に記載の方法。
（項目３１８）
前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞が、適切な培養培地中で培養される、項目３０２から３１７のいずれか一項に記載の方法。
（項目３１９）
前記細胞クラスター形成を促進する条件が、懸濁培養を含む、項目３０２から３１８のいずれか一項に記載の方法。
（項目３２０）
前記懸濁培養が、２日に１回補充される、項目３１９記載の方法。
（項目３２１）
プロテインキナーゼＣのアクチベータが、５日の間、前記懸濁培養に添加されない、項目３０２から３２０のいずれか一項に記載の方法。
（項目３２２）
プロテインキナーゼＣのアクチベータが、５日の前に、前記懸濁培養から除去される、項目３０２から３２１のいずれか一項に記載の方法。
（項目３２３）
前記プロテインキナーゼＣのアクチベータが、ＰｄｂＵを含む、項目３２１または３２２記載の方法。
（項目３２４）
ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤が、５日の間、前記懸濁培養に添加されない、項目３０２から３２３のいずれか一項に記載の方法。
（項目３２５）
ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤が、５日の前に、前記懸濁培養から除去される、項目３０２から３２４のいずれか一項に記載の方法。
（項目３２６）
前記ＢＭＰシグナル伝達経路阻害剤が、ＬＤＮ１９３１８９を含む、項目３２４または３２５記載の方法。
（項目３２７）
前記集合中の少なくとも１０％の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞が誘導されて、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞に分化する、項目３０２から３２５のいずれか一項に記載の方法。
（項目３２８）
少なくとも９５％の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞が誘導されて、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞に分化する、項目３０２から３２７のいずれか一項に記載の方法。
（項目３２９）
ａ）集合中の多能性幹細胞を、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞に分化させること；
ｂ）細胞クラスター形成を促進する条件下において、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、ｉ）ＦＧＦファミリーからの少なくとも１つの成長因子、ｉｉ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、及び場合により、ｉｉｉ）ＲＡシグナル伝達経路アクチベータと、２日に１回、５日の期間接触させて、前記集合中の少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞に分化させることであって、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が、Ｐｄｘ１及びＮＫＸ６−１を発現している前記分化；
ｃ）細胞クラスター形成を促進する条件下において、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、ｉ）ＴＧＦ−βシグナル伝達経路阻害剤、ｂ）ＴＨシグナル伝達経路アクチベータ、及び場合により、ｃ）少なくとも１つのＳＨＨ経路阻害剤、ｉｉ）ＲＡシグナル伝達経路アクチベータ、ｉｉｉ）γ−セクレターゼ阻害剤並びにｖｉ）上皮成長因子（ＥＧＦ）ファミリーからの少なくとも１つの成長因子と、２日に１回、５日と７日との間の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞の、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞への分化を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞に分化させることであって、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞が、Ｐｄｘ１、ＮＫＸ６−１、ＮＫＸ２−２、Ｍａｆｂ、ｇｌｉｓ３、Ｓｕｒ１、Ｋｉｒ６．２、Ｚｎｔ８、ＳＬＣ２Ａ１、ＳＬＣ２Ａ３及び／またはインスリンを発現している前記分化；並びに、
ｄ）細胞クラスター形成を促進する条件下において、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ｉ）形質転換成長因子β（ＴＧＦ−β）シグナル伝達経路阻害剤、ｉｉ）甲状腺ホルモンシグナル伝達経路アクチベータ、及び場合により、ｉｉｉ）プロテインキナーゼ阻害剤と、２日に１回、７日と１４日との間の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞の、ＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ＳＣ−β細胞に分化させることであって、前記ＳＣ−β細胞が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏにおけるＧＳＩＳ応答を示す前記分化を含む、
多能性細胞からのＳＣ−β細胞の生成方法。
（項目３３０）
ａ）集合中の少なくとも一部の多能性細胞を、Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞に分化させること；
ｂ）細胞クラスター形成を促進する条件下において、前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、ｉ）ＫＧＦ、ｉｉ）Ｓａｎｔ１、及び場合により、ｉｉｉ）低濃度のＲＡと、２日に１回、５日の期間接触させて、前記集合中の少なくとも１つのＰｄｘ１陽性膵臓始原細胞のＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞への分化を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性膵臓始原細胞を、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞に分化させることであって、前記ＮＫＸ６−１陽性膵臓始原細胞が、Ｐｄｘ１及びＮＫＸ６−１を発現している前記分化；
ｃ）前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、ｉ）Ａｌｋ５阻害剤ＩＩ、ｉｉ）Ｔ３、及び場合により、ｉｉｉ）Ｓａｎｔ１、ｉｖ）ＲＡ、ｖ）ＸＸＩ及びｖｉ）ベタセルリンと、２日に１回、５日と７日との間の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞の、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞への分化を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性の膵臓始原細胞を、Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞に分化させることであって、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞が、Ｐｄｘ１、ＮＫＸ６−１、ＮＫＸ２−２、Ｍａｆｂ、ｇｌｉｓ３、Ｓｕｒ１、Ｋｉｒ６．２、Ｚｎｔ８、ＳＬＣ２Ａ１、ＳＬＣ２Ａ３及び／またはインスリンを発現している前記分化；並びに、
ｄ）細胞クラスター形成を促進する条件下において、前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ｉ）Ａｌｋ５阻害剤ＩＩ、ｉｉ）Ｔ３、及び場合により、ｉｉｉ）スタウロスポリンと、２日に１回、７日と１４日との間の期間接触させて、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞の、ＳＣ−β細胞へのｉｎ  ｖｉｔｒｏ成熟を誘導する方法により、少なくとも一部の前記Ｐｄｘ１陽性、ＮＫＸ６−１陽性、インスリン陽性の内分泌細胞を、ＳＣ−β細胞に分化させることであって、前記ＳＣ−β細胞が、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ及び／またはｉｎ  ｖｉｖｏでのＧＳＩＳ応答を示す前記分化を含む、
多能性細胞からのＳＣ−β細胞の生成方法。
（項目３３１）
さらに、Ｒｏｃｋ阻害剤の存在下において、幹細胞を培養することを含み、前記培養が、前記細胞の生存率及び／または分化効率を改善する、項目３２９から３３０のいずれか一項に記載の方法。
（項目３３２）
さらに、アクチビンＡの存在下において、幹細胞を培養することを含み、前記培養が、前記細胞の生存率及び／または分化効率を改善する、項目３２９から３３１のいずれか一項に記載の方法。
（項目３３３）
さらに、ニコチンアミドの存在下において、幹細胞を培養することを含み、前記培養が、前記細胞の生存率、分化効率を改善し、及び／または、ＳＯＸ２発現を下方制御する、項目３２９から３３３のいずれか一項に記載の方法。
（項目３３４）
さらに、スタウロスポリンの存在下において、幹細胞を培養することを含み、前記培養が、純粋に近い内分泌集合を生成し、及び／または、ＮＫＸ６−１／Ｃ−ペプチド＋細胞を増加させる、項目３２９から３３４のいずれか一項に記載の方法。
（項目３３５）
さらに、Ａｌｋ５ｉ及びＴ３との組合せでのＸＸＩの存在下において、幹細胞を培養することを含み、前記培養が、ＮＫＸ６−１＋内分泌細胞を増加させる、項目３２９から３３５のいずれか一項に記載の方法。
（項目３３６）
さらに、Ａｌｋ５ｉ及びＴ３との組合せでのγ−セクレターゼ阻害剤の存在下において、幹細胞を培養することを含み、前記培養が、ＮＫＸ６−１＋内分泌細胞を増加させる、項目３２９から３３６のいずれか一項に記載の方法。
（項目３３７）
多能性幹細胞からｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて分化させたＳＣ−β細胞を含む人工膵島。
（項目３３８）
多能性幹細胞からｉｎ  ｖｉｔｒｏにおいて分化させたＳＣ−β細胞を含む人工膵臓。
【図１】
2019141072.tif 000016
【図２】
2019141072.tif 000017
【図３】
2019141072.tif 000018
【図４】
2019141072.tif 000019
【図５】
2019141072.tif 000020
【図６】
2019141072.tif 000021
【図７】
2019141072.tif 000022
【図８】
2019141072.tif 000023
【図９】
2019141072.tif 000024
【図１０】
2019141072.tif 000025
【図１１】
2019141072.tif 000026
【図１２】
2019141072.tif 000027
【図１３】
2019141072.tif 000028
【図１４Ａ】
2019141072.tif 000029
【図１４Ｂ−Ｃ】
2019141072.tif 000030
【図１５Ａ−Ｃ】
2019141072.tif 000031
【図１５Ｄ−Ｅ】
2019141072.tif 000032
【図１５Ｆ−Ｇ】
2019141072.tif 000033
【図１５Ｈ−Ｉ】
2019141072.tif 000034
【図１６】
2019141072.tif 000035
【図１７】
2019141072.tif 000036