(57)【要約】【課題】本発明は、医薬品などの合成原料や合成中間体として有用な光学活性２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸またはその塩を効率的に製造する方法を提供することを目的とする。【解決手段】本発明に係る光学活性２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸またはその塩の製造方法は、２，２−二置換−１，３−プロパンジオールに、酸化酵素源を作用させる工程を含むことを特徴とする。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
光学活性２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸またはその塩を製造するための方法であって、
前記光学活性２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸が下記一般式（Ｉ）で表されるものであり：
【化１】
2019030249.tif 000008
［式中、Ｒ1とＲ2は、独立して、置換されていてもよいＣ1-7アルキル基を示す。但し、Ｒ1とＲ2は互いに異なる。］
下記一般式（ＩＩ）で表される２，２−二置換−１，３−プロパンジオールに、酸化酵素源を作用させる工程を含むことを特徴とする方法。
【化２】
2019030249.tif 000009
［式中、Ｒ1とＲ2は前記と同義を示す。］
【請求項２】
前記酵素源が、ロドコッカス（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ）属およびアグロマイセス（Ａｇｒｏｍｙｃｅｓ）属からなる群より選ばれる１種または２種以上の微生物である請求項１に記載の方法。
【請求項３】
更に、２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールの存在下で前記微生物を培養する工程を含み、得られた培養微生物を前記酸化酵素源として用いる請求項２に記載の方法。
【請求項４】
前記一般式（Ｉ）で表される２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸のエナンチオマー過剰率が５０％ｅｅ以上である請求項３に記載の方法。
【請求項５】
前記酸化酵素源が、ロドコッカス  エスピー（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐ．）である請求項１〜４のいずれかに記載の方法。
【請求項６】
前記酸化酵素源が、アグロマイセス  エスピー（Ａｇｒｏｍｙｃｅｓ  ｓｐ．）である請求項１〜４のいずれかに記載の方法。
【請求項７】
前記Ｒ1がエチルである請求項１〜６のいずれかに記載の方法。
【請求項８】
前記Ｒ2がメチルである請求項１〜７のいずれかに記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、医薬品などの合成原料や合成中間体として有用な光学活性２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸またはその塩を効率的に製造する方法に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸は、医薬品の合成原料や合成中間体として重要な化合物である。特に、一般的に光学活性な化合物の合成には手間やコストがかかるため、２位の炭素が不斉炭素である２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸の光学活性体を効率的に製造する技術は有用性が高い。
【０００３】
非特許文献１には、塩化銅錯体を用いて２，２−二置換−１，３−プロパンジオールを光学活性２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸に変換する方法が記載されている。しかし、かかる方法は多段階を要する上に、ラセミ体を光学分割しているため無駄が多く、また、金属触媒を含む廃液の処理に高コストを要する。
【０００４】
一方、立体選択的な酸化反応については微生物や酵素といった酵素源を用いることが有利である（非特許文献２）。例えば、非特許文献３には２−メチル−１，３−プロパンジオールをアセトバクター属細菌により酸化する方法が記載されており、非特許文献４には２−ブチル−１，３−プロパンジオールをアセトバクター属細菌やシュードモナス属細菌で酸化する方法が記載されており、非特許文献５には２−エチル−１，３−プロパンジオールや２−イソプロピル−１，３−プロパンジオールをアセトバクター属細菌やグルコノバクター属細菌で酸化する方法が記載されている。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献１】Ｌｅｅ  Ｊｉ−Ｙｏｕｎｇら，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ａｍｅｒｉｃａｎ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｓｏｃｉｅｔｙ，１３３，１７７２（２０１１）
【非特許文献２】Ａｎｄｒｅａｓ  Ｓｃｈｍｉｄ著，Ｋａｒｌｈｅｉｎｚ  Ｄｒａｕｚら編，“Ｏｘｉｄａｔｉｏｎ  ｏｆ  ａｌｃｏｈｏｌｓ”，Ｗｉｌｅｙ−ＶＣＨ社，ｐ．１１０８−１１７０（２００２）．
【非特許文献３】Ｅｌｉｓａｂｅｔｔａ  Ｂｒｅｎｎａら，ＣｈｅｍＣａｔＣｈｅｍ，８，３７９６（２０１６）
【非特許文献４】Ｋｏｈｉｃｈｉ  Ｍｉｔｓｕｋｕｒａら，Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇ  ａｎｄ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，７６，６１（２００７）
【非特許文献５】Ｈｉｒｏｍｉｃｈｉ  Ｏｈｔａら，Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  Ｌｅｔｔｅｒｓ，８，１３７９（１９７９）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
上述したように、従来、２−置換−１，３−プロパンジオールを微生物により酸化して光学活性２−置換−３−ヒドロキシプロピオン酸を得る方法は開発されていた。しかし、光学活性２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸のように不斉四級炭素を有する化合物の合成は一般的にとりわけ難しいことが知られている。
以上の状況下、本発明は、医薬品などの合成原料や合成中間体として有用な光学活性２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸またはその塩を効率的に製造する方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究を重ねた。その結果、安価な２，２−二置換−１，３−プロパンジオールを酸化酵素で酸化すれば、２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸またはその塩を効率的に製造できることを見出して、本発明を完成した。
以下、本発明を示す。
【０００８】
［１］  光学活性２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸またはその塩を製造するための方法であって、
前記光学活性２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸が下記一般式（Ｉ）で表されるものであり：
【０００９】
【化１】
2019030249.tif 000002
【００１０】
［式中、Ｒ1とＲ2は、独立して、置換されていてもよいＣ1-7アルキル基を示す。但し、Ｒ1とＲ2は互いに異なる。］
下記一般式（ＩＩ）で表される２，２−二置換−１，３−プロパンジオールに、酸化酵素源を作用させる工程を含むことを特徴とする方法。
【００１１】
【化２】
2019030249.tif 000003
［式中、Ｒ1とＲ2は前記と同義を示す。］
【００１２】
［２］  前記酵素源が、ロドコッカス（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ）属およびアグロマイセス（Ａｇｒｏｍｙｃｅｓ）属からなる群より選ばれる１種または２種以上の微生物である上記［１］に記載の方法。
【００１３】
［３］  更に、２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールの存在下で前記微生物を培養する工程を含み、得られた培養微生物を前記酸化酵素源として用いる上記［２］に記載の方法。
【００１４】
［４］  前記一般式（Ｉ）で表される２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸のエナンチオマー過剰率が５０％ｅｅ以上である上記［３］に記載の方法。
【００１５】
［５］  前記酸化酵素源が、ロドコッカス  エスピー（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐ．）である上記［１］〜［４］のいずれかに記載の方法。
【００１６】
［６］  前記酸化酵素源が、アグロマイセス  エスピー（Ａｇｒｏｍｙｃｅｓ  ｓｐ．）である上記［１］〜［４］のいずれかに記載の方法。
【００１７】
［７］  前記Ｒ1がエチルである上記［１］〜［６］のいずれかに記載の方法。
【００１８】
［８］  前記Ｒ2がメチルである上記［１］〜［７］のいずれかに記載の方法。
【００１９】
［９］  上記［１］〜［８］のいずれかに記載の方法により得られた光学活性２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸またはその塩。
［１０］  上記［９］に記載の光学活性２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸またはその塩を原料とする医薬品。
【発明の効果】
【００２０】
本発明方法によれば、安価なプロキラル体の２，２−二置換−１，３−プロパンジオールを原料化合物として用いることができ、酸化酵素を用いて光学活性２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸またはその塩を簡便に製造することができる。よって本発明は、医薬品などの合成原料や合成中間体として有用な光学活性２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸またはその塩の製造方法として、産業上非常に有用である。
【発明を実施するための形態】
【００２１】
本発明に係る光学活性２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸またはその塩の製造方法は、一般式（ＩＩ）で表される２，２−二置換−１，３−プロパンジオールに、酸化酵素源を作用させることにより、一般式（Ｉ）で表される光学活性２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸またはその塩を製造する。以下、実施形態に基づいて本発明を詳述する。
【００２２】
本開示において「Ｃ1-7アルキル基」は、炭素数１以上、７以下の直鎖状、分岐鎖状、環状の一価脂肪族炭化水素基をいう。例えば、メチル、エチル、ｎ−プロピル、ｎ−ブチル、ｎ−ペンチル、ｎ−ヘキシル、ｎ−ヘプチルである直鎖状Ｃ1-7アルキル基；イソプロピル、イソブチル、ｓ−ブチル、ｔ−ブチル、イソペンチル、イソヘキシル、イソヘプチルなどの分岐鎖状Ｃ1-7アルキル基；シクロプロピル、シクロヘキシル、シクロペンチル、シクロヘキシルなどの環状Ｃ1-7アルキル基を挙げることができる。好ましくはＣ1-6アルキル基であり、より好ましくはＣ1-4アルキル基であり、よりさらに好ましくはＣ1-2アルキル基である。また、Ｒ1およびＲ2としては、独立して、メチル、エチル、ｎ−プロピルまたはｎ−ブチルが好ましく、メチル、エチルまたはｎ−ブチルがより好ましく、メチルまたはエチルがよりさらに好ましく、エチルが特に好ましい。Ｒ2としては、メチルが特に好ましい。
【００２３】
上記Ｃ1-7アルキル基は、置換基を有していてもよい。置換基としては、ハロゲノ基、イミノ基（−ＮＨ−）、エーテル基（−Ｏ−）、スルフィド基（−Ｓ−）、アミノ基（−ＮＨ2）、水酸基、チオール基、ニトロ基、シアノ基およびカルボキシ基からなる群より選択される１種または２種以上の置換基を挙げることができる。「ハロゲノ基」としては、フルオロ基、クロロ基、ブロモ基、およびヨード基を例示することができる。置換基の数としては、置換可能であれば特に制限されないが、例えば１以上、５以下とすることができ、１以上、３以下が好ましく、１または２がより好ましく、１がよりさらに好ましい。Ｃ1-7アルキル基が２以上の置換基を有する場合、置換基は互いに同一であってもよいし異なっていてもよい。
【００２４】
原料化合物である一般式（ＩＩ）で表される２，２−二置換−１，３−プロパンジオール（以下、「プロパンジオール（ＩＩ）」と略記する）は入手容易な化合物であり、市販のものがあれば購入して用いてもよいし、或いは、当業者であれば容易に合成することができる。例えば、ナトリウムエトキシドや水素化ナトリウムなどの塩基を使えばマロン酸ジエステルの第２位からプロトンを容易に引き抜くことができ、更にハロゲン化Ｃ1-7アルカンを作用させることにより第２位をアルキル化できる。かかる反応を繰り返して得られる２，２−二置換マロン酸ジエステルを水素化ホウ素リチウム（ＬｉＢＨ4）や水素化アルミニウムリチウム（ＬｉＡｌＨ4）などの還元剤を用いて還元することにより、所望のプロパンジオール（ＩＩ）を得ることができる。
【００２５】
本発明で使用される酸化酵素源は、プロパンジオール（ＩＩ）を一般式（Ｉ）で表される光学活性２，２−二置換−３−ヒドロキシプロピオン酸（以下、「ヒドロキシプロピオン酸（Ｉ）と略記する）に変換する能力を有するものであれば特に制限されない。例えば、前記能力を有するものである限り、酸化酵素自体であってもよいし、酸化酵素の生産能を有する微生物の菌体、当該微生物の培養液、当該微生物菌体の処理物、更には当該酸化酵素をコードするＤＮＡが導入された形質転換体であってもよい。酸化酵素源は、１種のみを単独で用いてもよいし、２種類以上を組み合わせて用いてもよい。また、酸化酵素源は、繰り返し使用できるように周知の方法で固定化してもよい。
【００２６】
微生物の菌体処理物としては上記能力を有するものであれば特に限定されず、例えば、アセトンや五酸化二リンによる脱水処理またはデシケーターや扇風機を利用した乾燥によって得られる乾燥菌体、界面活性剤処理物、溶菌酵素処理物、固定化菌体または菌体を破砕した無細胞抽出標品などを挙げることができる。なお、固定化は、架橋法、物理的吸着法、包括法など、当業者に周知の方法で行なうことができる。
【００２７】
酸化酵素をコードするＤＮＡを含む形質転換体は、形質転換体の菌体自体はいうまでもなく、その処理物としてもヒドロキシプロピオン酸（Ｉ）の製造に使用することができる。ここでいう形質転換体の処理物とは、例えば、界面活性剤や有機溶媒で処理した細胞、乾燥細胞、破砕処理した細胞、細胞の粗抽出液などのほか、公知の手段でそれらを固定化したものを意味する。
【００２８】
プロパンジオール（ＩＩ）をヒドロキシプロピオン酸（Ｉ）に変換する能力を有する微生物は、例えば、以下に説明する方法によって見出だすことができる。１Ｌ当たり、グルコース４０ｇ、酵母エキス３ｇ、リン酸水素二アンモニウム６．５ｇ、リン酸二水素カリウム１ｇ、硫酸マグネシウム７水和物０．８ｇ、硫酸亜鉛７水和物６０ｍｇ、硫酸鉄７水和物９０ｍｇ、硫酸銅５水和物５ｍｇ、硫酸マンガン４水和物１０ｍｇ、および塩化ナトリウム１００ｍｇを含む液体培地（ｐＨ７）５ｍＬを試験管に入れて殺菌後、無菌的に被試験微生物を接種し、３０℃で２〜３日間振とう培養する。その後、菌体を遠心分離により集め、リン酸緩衝液０．５〜５ｍＬに懸濁し、予めプロパンジオール（ＩＩ）を０．５〜２５ｍｇ入れた試験管に加えて、２〜３日間３０℃で振とうする。この際、遠心分離により得た菌体をデシケーター中またはアセトンにより乾燥したものを用いることもできる。更に、これら微生物もしくはその処理物とプロパンジオール（ＩＩ）を反応させる際に有機溶媒を共存させてもかまわない。変換反応ののち適当な有機溶媒で抽出を行ない、抽出液を高速液体クロマトグラフィーなどにより分析し、ヒドロキシプロピオン酸（Ｉ）が検出できた場合、被試験微生物を上記能力を有する微生物として判断する。
【００２９】
本発明に使用し得る微生物としては、プロパンジオール（ＩＩ）をヒドロキシプロピオン酸（Ｉ）に変換する能力を有する微生物であればいずれも使用し得るが、好ましくは、ロドコッカス（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ）属、および／または、アグロマイセス（Ａｇｒｏｍｙｃｅｓ）属に属する微生物が挙げられる。より好ましくは、Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐ．、Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｅｒｙｔｈｒｏｐｏｌｉｓ、Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｒｈｏｄｏｃｈｒｏｕｓ、Ａｇｒｏｍｙｃｅｓ  ｓｐ．が挙げられ、さらに好ましくは、Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐ．ＮＣＩＭＢ１１２１５株、Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐ．ＮＣＩＭＢ１１２１６株、Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｅｒｙｔｈｒｏｐｏｌｉｓ  ＮＣＩＭＢ１１１４８株、Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｒｈｏｄｏｃｈｒｏｕｓ  Ｊ１株、Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐ．２Ｎ株、Ａｇｒｏｍｙｃｅｓ  ｓｐ．Ｅ２株が挙げられる。
【００３０】
これら微生物は一般に、入手または購入が容易な保存株から得ることができるが、自然界から分離することもできる。なお、これらの微生物に変異を生じさせて、より本反応に有利な性質を有する菌株を得ることもできる。微生物の入手先としては、ＮＣＩＭＢ  Ｌｔｄ（Ａｂｅｒｄｅｅｎ，英国）、独立行政法人製品評価技術基盤機構  バイオテクノロジーセンター  生物資源利用促進課（千葉県木更津市）などが挙げられる。
【００３１】
上記微生物を誘導物質の存在下で培養し、得られた培養微生物やその処理物などを酸化酵素源として用いてもよい。かかる培養微生物は、酸化酵素が誘導されて上記能力が高められている可能性があることから好ましい。
【００３２】
微生物の培養には、通常これらの微生物が資化しうる栄養源を含む培地であれば制限無く使用し得る。例えば、炭素源、窒素源、栄養源などを適宜配合した培地を用いることができる。炭素源としては、例えば、グルコース、シュークロース、マルトース等の糖類；乳酸、酢酸、クエン酸、プロピオン酸などの有機酸類；エタノール、グリセリン等のアルコール類；パラフィン等の炭化水素類；大豆油、菜種油などの油脂類；またはこれらの混合物を挙げることができる。窒素源としては、例えば、硫酸アンモニウム、リン酸アンモニウム、尿素、酵母エキス、肉エキス、ペプトン、コーンスチープリカー等を挙げることができる。栄養源としては、無機塩やビタミン類などを挙げることができる。
【００３３】
プロパンジオール（ＩＩ）をヒドロキシプロピオン酸（Ｉ）に変換する酸化酵素は、培養時に誘導物質を添加することで誘導することができる。誘導物質としては、上記作用を示す物質であればいずれも用いることができるが、例えば、好ましい誘導物質としては、プロパンジオール（ＩＩ）に加え、一般式（ＩＩ）においてＲ1＝Ｒ2のプロパンジオール（ＩＩ’）を挙げることができる。より具体的には、２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノール、２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロパノール、２，２−ジメチル−３−ヒドロキシプロパノール、２−メチル−３−ヒドロキシプロパノール、２−ブチル−３−ヒドロキシプロパノール、３−ヒドロキシプロパノール、２−アミノ−２−メチル−３−ヒドロキシプロパノール 、グリセロールが挙げられる。より好ましくは、２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノール、２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロパノールが挙げられ、さらに好ましくは、２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールが挙げられる。本発明者らによる実験的知見によれば、２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールは酸化酵素の誘導物質として特に優れており、アキラルな２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールにより誘導された酸化酵素であっても、プロパンジオール（ＩＩ）をエナンチオ選択的に酸化することができる。
【００３４】
培養液に誘導物質を添加する場合、誘導物質の濃度は適宜調整すればよいが、例えば、０．０１質量％以上、１０質量％以下とすることができる。当該濃度としては、０．０５質量％以上が好ましく、０．１質量％以上がより好ましく、また、５質量％以下が好ましく、３質量％以下がより好ましく、１質量％以下がよりさらに好ましく、０．５質量％以下が特に好ましい。
【００３５】
微生物の培養は通常一般の条件により行なうことができ、例えば、ｐＨ４．０〜９．５、温度範囲２０℃〜４５℃の範囲で、好気的に１０〜９６時間培養するのが好ましい。
【００３６】
酸化酵素源として酸化酵素自体を用いる場合は、酸化酵素を生産する微生物の培養液から常法により精製すればよい。勿論、かかる培養液には上述したように誘導物質を添加してもよい。酸化酵素は、遺伝子工学的手法により酸化酵素を製造してもよい。また、酸化酵素が微生物の菌体内に蓄積する場合、微生物の菌体、乾燥菌体などの菌体処理物などを酸化酵素源として用いることができる。培養液中の成分が反応に悪影響を与える場合には、培養液を遠心分離や濾過などにより分離して得られる菌体または菌体処理物を使用することもできる。微生物が酸化酵素を菌体外へ放出する場合、微生物の培養液、培養液の濃縮物や乾燥物などを酸化酵素源として用いることができる。或いは、微生物を含む培養液自体を酸化酵素源として用いてもよい。
【００３７】
本発明では、プロパンジオール（ＩＩ）に酸化酵素源を作用させることによりプロパンジオール（ＩＩ）の一方のヒドロキシメチル基を酸化し、ヒドロキシプロピオン酸（Ｉ）を得る。
【００３８】
上記酸化反応のための溶媒としては、酸化酵素が働くものであればいずれも使用できるが、一般的には水や水系の緩衝液を用いる。但し、プロパンジオール（ＩＩ）が水や水系の緩衝液のみに溶解し難い場合には、酸化酵素の活性が維持される範囲で、メタノール、エタノール、イソプロパノールなどの水混和性有機溶媒を少量添加してもよい。
【００３９】
上記酸化反応の反応液におけるプロパンジオール（ＩＩ）の濃度は、適宜調整すればよいが、例えば、０．０１ｗ／ｖ％以上、５０ｗ／ｖ％以下とすることができ、好ましくは０．１ｗ／ｖ％以上、３０ｗ／ｖ％以下である。プロパンジオール（ＩＩ）は、反応の初期に一括して添加してもよく、反応の進行にあわせて分割して添加してもよい。酸化酵素源については、酸化酵素源の形態により適切な使用量が異なるため、予備実験などにより適宜決定すればよい。
【００４０】
具体的な反応条件は、適宜決定および調整すればよい。例えば反応温度は、通常１０℃以上、６０℃以下とすることができ、好ましくは２０℃以上、４０℃以下である。反応液ｐＨは、使用する酸化酵素源が酸化活性を発揮できる範囲で適宜決定すればよいが、例えば、２．５以上、９以下とすることができ、好ましくは５以上、９以下である。反応は通常、振とうまたは通気攪拌しながら行う。反応時間は、基質濃度、酸化酵素源の量、その他の反応条件により適宜決定される。通常、２時間以上、１６８時間以下で反応が終了するように各条件を設定することが好ましい。
【００４１】
本発明に係るプロパンジオール（ＩＩ）からヒドロキシプロピオン酸（Ｉ）への酸化反応では、一般的にアルコールから一旦アルデヒドが生成され、更に酸化されることによりカルボン酸が生成する。本発明によりプロパンジオール（ＩＩ）からヒドロキシプロピオン酸（Ｉ）を得ることができるが、反応条件を適宜調整することにより、反応中間体であるアルデヒドを取得することができる可能性がある。
【００４２】
反応終了後、目的化合物であるヒドロキシプロピオン酸（Ｉ）またはその塩は、常法により反応液から精製すればよい。例えば、反応液から直接、或いは菌体などの固形分を分離後、酢酸エチル、トルエン、ｔ−ブチルメチルエーテル、ヘキサンなどの溶媒で抽出し、脱水後、蒸留やシリカゲルカラムクロマトグラフィー等により精製すれば高純度のヒドロキシプロピオン酸（Ｉ）またはその塩を容易に得ることができる。
【００４３】
なお、得られる化合物がヒドロキシプロピオン酸（Ｉ）であるか或いはその塩であるかは、反応液に存在するカチオンの種類や精製条件などにより依存する。ヒドロキシプロピオン酸（Ｉ）の塩としては、例えば、リチウム塩、ナトリウム塩、カリウム塩などのアルカリ金属塩；マグネシウム塩；カルシウム塩、ストロンチウム塩、バリウム塩などのアルカリ土類金属塩などを挙げることができる。
【００４４】
本発明では酸化酵素を用いるため、プロキラル体であるプロパンジオール（ＩＩ）から光学純度の高いヒドロキシプロピオン酸（Ｉ）が得られる可能性がある。ヒドロキシプロピオン酸（Ｉ）の何れのエナンチオマーが得られるかや、その光学純度は、使用する酸化酵素源により調整することが可能である。なお、本開示において「光学活性」とは、一方のエナンチオマーのみが選択的に得られ、エナンチオマー過剰率が１００％ｅｅである場合のみをいうのではなく、一方のエナンチオマーが他方に対して過剰であればよいことを意味する。得られるヒドロキシプロピオン酸（Ｉ）の光学純度としては、エナンチオマー過剰率で３０％ｅｅ以上、５０％ｅｅ以上または７０％ｅｅ以上が好ましく、８０％ｅｅ以上、９０％ｅｅ以上または９５％ｅｅ以上がより好ましく、９８％ｅｅ以上、９９％ｅｅ以上または９９．５％ｅｅ以上がより更に好ましい。
【実施例】
【００４５】
以下、実施例により本発明をさらに詳しく説明するが、本発明はこれらの実施例になんら限定されるものではない。
【００４６】
実施例１：  ロドコッカス（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ）属細菌による反応
（１）２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールの酸化反応
蒸留水１．０Ｌに、ポリペプトン５．０ｇ，肉エキス５．０ｇ，塩化ナトリウム２．０ｇ，酵母抽出物３．０ｇ，２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノール３．０ｇを混合し、培地（ｐＨ７．０）を調整した。ロドコッカス  エスピー（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐ．）２Ｎ株を、上記培地４０ｍＬが入った振とうフラスコを用い、２８℃、１２０ｒｐｍで２．５日間培養した。遠心分離した菌体を０．１５Ｍ塩化ナトリウム水溶液で洗浄したのち、４ｍＬに懸濁したものを菌体懸濁液とした。
終濃度で６０ｍＭの２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノール、１００ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ８．０）、２５ｖ／ｖ％菌体懸濁液を含む反応液４ｍＬを調製し、５０ｍＬ容サンプル瓶中、３０℃、１２０ｒｐｍで７２時間反応させた。反応液を下記条件のＨＰＬＣで分析したところ、９３．３％の変換率で２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロピオン酸が生成していることが確認された。
カラム：  ＹＭＣ−Ｔｒｉａｒｔ  Ｃ１８
溶媒：  ５０ｍＭ  ＮａＨ2ＰＯ4／Ｈ3ＰＯ4（ｐＨ２．８）：アセトニトリル＝４：１
流速：  １．０ｍＬ／ｍｉｎ
検出波長：  ２１０ｎｍ
【００４７】
（２）２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロパノールの酸化反応
２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールの代わりに２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロパノールを用いた以外は上記（１）と同様に反応を行った。その結果、４７．０％の変換率で６４．７％ｅｅの（Ｒ）−２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロピオン酸が生成していることが確認された。
【００４８】
（３）２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロパノールの酸化反応
ロドコッカス  エスピー２Ｎ株の代わりに、ロドコッカス  エスピー（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐ．）ＮＣＩＭＢ  １１２１５株、ロドコッカス  エスピー（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐ．）ＮＣＩＭＢ  １１２１６株、またはロドコッカス  エリスロポリス（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｅｒｙｔｈｒｏｐｏｌｉｓ）ＮＣＩＭＢ  １１１４８株を用いて上記（２）と同様に試験したところ、上記のジオールに対して２Ｎ株と同様の立体選択的な酸化活性が認められた。
【００４９】
実施例２：  アグロマイセス（Ａｇｒｏｍｙｃｅｓ）属細菌による反応
蒸留水１．０Ｌに、グルコース１０．０ｇ，ペプトン１０．０ｇ，塩化ナトリウム６．０ｇ，カゼインペプトン２．０ｇ，酵母抽出物２．０ｇ，２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノール２．０ｇを混合し、培地（ｐＨ７．５）を調製した。アグロマイセス  エスピー（Ａｇｒｏｍｙｃｅｓ  ｓｐ．）Ｅ２株を、上記培地４０ｍＬが入った振とうフラスコを用い、２８℃、１２０ｒｐｍで２日間培養した。遠心分離した菌体を０．１５Ｍ塩化ナトリウム水溶液で洗浄したのち４ｍＬに懸濁したものを菌体懸濁液とした。
終濃度で１０ｍＭの２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロパノール、１００ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．０）、２５ｖ／ｖ％菌体懸濁液を含む反応液４ｍＬを調製し、３０ｍＬ容サンプル瓶中、３５℃、１２０ｒｐｍで７２時間反応させた。反応液を上記実施例１（１）と同様の条件で分析したところ、６２．５％の変換率で３２．５％ｅｅの（Ｓ）−２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロピオン酸が生成していることが確認された。
【００５０】
実施例３：  ロドコッカス（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ）属細菌およびアグロマイセス（Ａｇｒｏｍｙｃｅｓ）属細菌の誘導物質による反応性向上
上記実施例１（１）および実施例２において、培地に２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールを添加しなかった以外は同様にして菌体懸濁液を調製し、得られた菌体懸濁液を用いて反応を行ったが、２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールおよび２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロパノールは酸化されなかった。よって、上記実施例１および実施例２において２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールおよび２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロパノールを酸化した酵素は、何れも誘導酵素であると考えられた。
【００５１】
実施例４：  ロドコッカス（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ）属細菌の誘導物質による反応性向上
上記実施例１（１）において、ロドコッカス  エスピー（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐ．）２Ｎ株を培養する培地に、３．０ｇの２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールの代わりに種々のジオールを終濃度が０．３ｗ／ｖ％になるように加えて培養すること以外は同様にして菌体懸濁液を調製した。つぎに、終濃度０．１３ｗ／ｖの２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノール、１００ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ８．０）、２５ｖ／ｖ％菌体懸濁液を含む反応液４ｍＬを調製し、５０ｍＬ容サンプル瓶を用いて３０℃、１２０ｒｐｍで２４時間反応させた。反応後、生成した２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロピオン酸を定量して酸化活性を調べた。酸化酵素の誘導物質として２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールを用いたときの活性を１００％とし、誘導物質として他のジオールを用いた場合の相対活性を表１に示す。
【００５２】
【表１】
2019030249.tif 000004
【００５３】
表１に示す結果の通り、２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールが最も効果的な酸化酵素誘導物質として作用した。
【００５４】
実施例５：  アグロマイセス（Ａｇｒｏｍｙｃｅｓ）属細菌の誘導物質による反応性向上
上記実施例２において、アグロマイセス  エスピー（Ａｇｒｏｍｙｃｅｓ  ｓｐ．）Ｅ２株を培養する培地に、２．０ｇの２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールの代わりに種々のジオールを終濃度が０．２ｗ／ｖ％になるように加えて培養すること以外は同様にして菌体懸濁液を調製した。つぎに、終濃度０．１３ｗ／ｖの２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノール、１００ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．０）、２５ｖ／ｖ％菌体懸濁液を含む反応液４ｍＬを調製し、５０ｍＬ容サンプル瓶を用いて３５℃、１２０ｒｐｍで６５時間反応させた。反応後、生成した２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロピオン酸を定量して酸化活性を調べた。酸化酵素の誘導物質として２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールを用いたときの活性を１００％とし、誘導物質として他のジオールを用いた場合の相対活性を表２に示す。
【００５５】
【表２】
2019030249.tif 000005
【００５６】
表２に示す結果の通り、ロドコッカス属細菌の場合にも、２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールが最も効果的な誘導物質として作用した。
【００５７】
実施例６：  ロドコッカス（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ）属細菌の基質特異性
上記実施例１（１）において、２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールに変えて濃度１０ｍＭの種々のジオールを用いて菌体反応を行った。２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールを用いたときの活性を１００％とした相対活性を表３に示す。
【００５８】
【表３】
2019030249.tif 000006
【００５９】
表３に示す結果の通り、２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールにより誘導された酸化酵素であっても、他の１，３−ジオール化合物に対して酸化活性を示すことが証明された。
【００６０】
実施例７：  アグロマイセス（Ａｇｒｏｍｙｃｅｓ）属細菌の基質特異性
上記実施例１（１）において、２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロパノールに変えて濃度１０ｍＭの種々のジオールを用いて菌体反応を行った。２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロパノールを用いたときの活性を１００％とした相対活性を表４に示す。
【００６１】
【表４】
2019030249.tif 000007
【００６２】
表４に示す結果の通り、２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールにより誘導された酸化酵素であっても、他の１，３−ジオール化合物に対して酸化活性を示すことが証明された。
【００６３】
実施例８：  ロドコッカス（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ）属細菌の酵素活性
上記実施例１（１）と同様にロドコッカス  エスピー（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐ．）２Ｎ株を培養して得られた菌体を、終濃度で１ｍＭジチオスレイトールを含む５０ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．０）に懸濁し、超音波破砕機を用いて破砕した。破砕液を１２０００ｒｐｍ、４℃で３０分間遠心分離し、上清を無細胞抽出液として得た。１０ｍＭ  ２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロパノール、１００ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ８．０）、無細胞抽出液２５ｖ／ｖ％（ｖ／ｖ）、１ｍＭ  ＮＡＤ+を含む反応液で、８ｍＬ容ガラス試験管を用いて３０℃、１２０ｒｐｍで２４時間酵素反応を行った。反応後の反応液を上記実施例１と同様にＨＰＬＣで分析し、２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロピオン酸の生成を確認した。
【００６４】
実施例９：  アグロマイセス（Ａｇｒｏｍｙｃｅｓ）属細菌の基質特異性
上記実施例２と同様にアグロマイセス  エスピー（Ａｇｒｏｍｙｃｅｓ  ｓｐ．）Ｅ２株を培養して得られた菌体を、終濃度で１ｍＭジチオスレイトールを含む５０ｍＭリン酸カリウム緩衝液に懸濁し、超音波破砕機を用いて破砕した。破砕液を１２０００ｒｐｍ、４℃で３０分間遠心分離し、上清を無細胞抽出液として得た。１０ｍＭ  ２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロパノール、１００ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．０）、無細胞抽出液２５ｖ／ｖ％、１ｍＭ  ＮＡＤ+を含む反応液で、８ｍＬ容ガラス試験管を用いて３０℃、１２０ｒｐｍで２４時間反応を行った。反応液を実施例１と同様にＨＰＬＣで分析し、２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロピオン酸の生成を確認した。
【００６５】
実施例１０：  反応生成物の単離と構造確認
上記実施例１（１）および実施例２と同様に培養して得られた菌体を用いて、１００ｍＭ  ２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロパノールを含む反応液５０ｍＬで３０℃、９６時間振とうして菌体反応を行ったのち、反応液上清に２Ｎ塩酸を添加してｐＨを３．０に調整した。ジエチルエーテルで生成物を抽出したのち、有機層を濃縮し、濃縮物に１Ｍ水酸化ナトリウム水溶液を加えて溶解して中性の水溶液を得た。その水溶液を減圧乾燥し、ジエチルエーテルで洗浄して白色固体を得た。得られた白色固体をＮＭＲで分析し、２，２−ジエチル−３−ヒドロキシプロピオン酸のナトリウム塩と同定した。
1Ｈ  ＮＭＲ（６００ＭＨｚ，Ｄ2Ｏ）：δ（ｐｐｍ）  ０．５９（３Ｈ×２，ｔ，Ｊ＝７．２Ｈｚ），１．２９（３Ｈ×２，ｑ，Ｊ＝７．７Ｈｚ），３．４７（２Ｈ，ｓ）
13Ｃ  ＮＭＲ（１５０ＭＨｚ，Ｄ2Ｏ）：δ（ｐｐｍ）  ８．２３，２６．２４，５２．５６，６１．４４，１８４．３４
【００６６】
実施例１１：  反応生成物の単離と構造確認
上記実施例１（１）および実施例２と同様に培養して得られた菌体を用いて、２０ｍＭ  ２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロパノールを含む反応液４０ｍＬで３０℃、２０時間振とうして菌体反応を行ったのち、反応液上清に６Ｎ塩酸を添加してｐＨを３．０に調整した。ジエチルエーテルで生成物を抽出したのち、有機層を濃縮した。シリカゲルカラムクロマトグラフィーを行い、ＴＬＣ分析でカルボン酸を検出した画分を集めて濃縮した。ＮＭＲを用いて構造解析した結果、反応生成物を２−エチル−２−メチル−３−ヒドロキシプロピオン酸と同定した。
1Ｈ  ＮＭＲ（６００ＭＨｚ，ＣＤＣｌ3）：δ（ｐｐｍ）  ０．９２（３Ｈ，ｔ，Ｊ＝１４．１Ｈｚ），１．２５（３Ｈ，ｓ），１．６８（２Ｈ，ｄｑ，Ｊ＝１２．０Ｈｚ），３．５５（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝１８．０Ｈｚ），３．７３（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝１８．０Ｈｚ）
13Ｃ  ＮＭＲ（１５０ＭＨｚ，ＣＤＣｌ3）：δ（ｐｐｍ）  ８．５３，１８．９０，２８．３５，４７．７６，６７．６５，１８１．１７
【００６７】
実施例１２：  アルデヒド中間体の検出
ロドコッカス  エスピー（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ  ｓｐ．）２Ｎ株およびアグロマイセス  エスピー（Ａｇｒｏｍｙｃｅｓ  ｓｐ．）Ｅ２株を用いた菌体反応後の反応液を酢酸エチルで抽出し、酸性条件下で２，４−ジニトロフェニルヒドラジンを加えて反応させた。反応液を分取用ＴＬＣに付し、単離された化合物をＮＭＲで分析することによりヒドラゾンと同定した。よって、反応中間体としてアルデヒド体ができていることを確認した。