(57)【要約】【課題】植物細胞内でキシロース修飾タンパク質を合成する。【解決手段】植物細胞内に、タンパク質キシロース転移酵素をコードする遺伝子を含むベクターを導入し、植物細胞内でタンパク質キシロース転移酵素を発現させ、タンパク質キシロース転移酵素の作用により、植物細胞内のコアタンパク質のセリン残基に対してキシロースを連結させて、キシロース修飾タンパク質を産生する。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
植物細胞においてキシロース修飾タンパク質を製造する方法であって、
植物細胞内に、タンパク質キシロース転移酵素をコードする遺伝子を含む第１のベクターを導入し、
植物細胞内で第１のベクターによりタンパク質キシロース転移酵素を発現させ、タンパク質キシロース転移酵素の作用により、植物細胞内のコアタンパク質のセリン残基に対してキシロースを連結させて、キシロース修飾タンパク質を産生することを含む方法。
【請求項２】
コアタンパク質が、セルグリシン、シンデカン、グリピカン、コラーゲン、及びアグリン、及びデコリンから選択される、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
タンパク質キシロース転移酵素が、タンパク質キシロース転移酵素１及びタンパク質キシロース転移酵素２から選択される、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
第１のベクターが、植物細胞内で一過的又は恒常的に発現される、請求項１〜３の何れか一項に記載の方法。
【請求項５】
第１のベクターが、植物細胞内で機能するプロモーター配列と、タンパク質キシロース転移酵素のアミノ酸配列をコードし、プロモーター配列に作動式に連結されたコーディング配列とを含む、請求項１〜４の何れか一項に記載の方法。
【請求項６】
第１のベクターが、植物ウイルスベクター又はＴ−ＤＮＡベクターの形態である、請求項１〜５の何れか一項に記載の方法。
【請求項７】
コアタンパク質が内因性タンパク質である、請求項１〜６の何れか一項に記載の方法。
【請求項８】
コアタンパク質が外因性タンパク質である、請求項１〜６の何れか一項に記載の方法。
【請求項９】
植物細胞内に、コアタンパク質をコードする遺伝子を含む第２のベクターを導入し、
植物細胞内で第２のベクターによりコアタンパク質を発現させる
ことを更に含む、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
第２のベクターが、植物細胞内で機能するプロモーター配列と、コアタンパク質のアミノ酸配列をコードし、プロモーター配列に作動式に連結されたコーディング配列とを含む、請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
第２のベクターが、植物ウイルスベクター又はＴ−ＤＮＡベクターの形態である、請求項９又は１０に記載の方法。
【請求項１２】
植物細胞が植物体の非単離細胞である、請求項１〜１１の何れか一項に記載の方法。
【請求項１３】
植物細胞が培養細胞である、請求項１〜１２の何れか一項に記載の方法。
【請求項１４】
コアオリゴ糖修飾タンパク質を製造する方法であって、
植物細胞内で、請求項１〜１３の何れか一項に記載の方法により、キシロース修飾タンパク質を産生し、
植物細胞内で、キシロース修飾タンパク質のキシロースに対して順にβ−１，４−ガラクトース、β−１，３−ガラクトース、及びβ−１，３−グルクロン酸を連結させて、コアオリゴ糖修飾タンパク質を産生する
ことを含む方法。
【請求項１５】
コアオリゴ糖修飾タンパク質の産生が、
植物細胞内に、キシロース残基にガラクトースを転移しうるβ−１，４−ガラクトース転移酵素をコードする遺伝子を含む第３のベクターと、ガラクトース残基にガラクトースを転移しうるβ−１，３−ガラクトース転移酵素をコードする遺伝子を含む第４のベクターと、ガラクトース残基にグルクロン酸を転移しうるβ−１，３−グルクロン酸転移酵素をコードする遺伝子を含む第５のベクターと、キシロース残基にリン酸基を転移しうる酵素をコードする遺伝子を含む第６のベクターを導入し、
植物細胞内で第３、第４、第５及び第６のベクターを発現させることにより、キシロース残基にガラクトースを転移しうるβ−１，４−ガラクトース転移酵素、ガラクトース残基にガラクトースを転移しうるβ−１，３−ガラクトース転移酵素、ガラクトース残基にグルクロン酸を転移しうるβ−１，３−グルクロン酸転移酵素、及びキシロース残基にリン酸基を転移しうる酵素を発現させ、各転移酵素の作用により、キシロース修飾タンパク質のキシロースに対して順にβ−１，４−ガラクトース、β−１，３−ガラクトース、及びβ−１，３−グルクロン酸を連結させる
ことにより行われる、請求項１４に記載の方法。
【請求項１６】
プロテオグリカンを製造する方法であって、
植物細胞内で、請求項１４又は１５に記載の方法により、コアオリゴ糖修飾タンパク質を産生し、
コアオリゴ糖修飾タンパク質のグルクロン酸末端にアミノ糖及びウロン酸を順に交互に連結させて糖鎖を形成するとともに硫酸化して、グリコサミノグリカンを形成する
ことを含む方法。
【請求項１７】
グリコサミノグリカンの形成が、
植物細胞内に、グルクロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素をコードする遺伝子を含む第７のベクターと、アミノ糖残基にウロン酸を転移しうる酵素をコードする遺伝子を含む第８のベクターと、ウロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素をコードする遺伝子を含む第９のベクターと、糖鎖のアミノ糖残基及びウロン酸残基とを硫酸化しうる酵素をコードする遺伝子を含む第１０のベクターとを導入し、
植物細胞内で第７、第８、第９、及び第１０のベクターを発現させることにより、グルクロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素、アミノ糖残基にウロン酸を転移しうる酵素、ウロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素、及び糖鎖のアミノ糖残基及びウロン酸残基を硫酸化しうる酵素を発現させ、各酵素を作用させることにより、コアオリゴ糖修飾タンパク質のグルクロン酸末端にアミノ糖及びウロン酸を順に交互に連結させて糖鎖を形成すると共に、糖鎖を硫酸化する
ことにより行われる、請求項１６に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、植物細胞においてキシロース修飾タンパク質を製造する方法、コアオリゴ糖修飾タンパク質を製造する方法、及びプロテオグリカンを製造する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
植物においてタンパク質の動物型糖鎖修飾を可能にする技術は幾つか報告されているが、その多くは、植物においてムチン型Ｏ結合型糖鎖修飾を合成するものである（非特許文献１：J. Biol. Chem., (2012), Vol.287, No.43, pp.36518-36526；非特許文献２：Front. Plant Sci., (2016), Vol.7, Art.18）。この手法は、第一段階としてＮ−アセチルガラクトサミン転移酵素を植物に導入することで、タンパク質をＮ−アセチルガラクトサミンで修飾するものである。
【０００３】
しかし、植物においてコアタンパク質を糖鎖修飾し、ヘパリンやへパラン硫酸等のプロテオグリカンを合成した例はない。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】J. Biol. Chem., (2012), Vol.287, No.43, pp.36518-36526
【非特許文献２】Front. Plant Sci., (2016), Vol.7, Art.18
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
プロテオグリカンは現在、主に鮭やブタ等の動物から採取されている。しかし、斯かる入手方法では、動物由来のウイルス等が製品に混入するおそれが否定できない上に、動物愛護の観点からも好ましくない。よって、プロテオグリカンをアニマルフリーで生産する技術が望まれている。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明者等は、プロテオグリカン合成の第一段階として、コアタンパク質のセリン残基（Ｓｅｒ）にキシロースを連結する必要がある点に着目した。その上で、植物細胞内に、タンパク質キシロース転移酵素をコードするベクターを導入して発現させ、コアタンパク質をキシロース修飾することにより、キシロース修飾タンパク質を産生することに成功した。このキシロース修飾タンパク質に対して、更に複数種の酵素を適切に組合せて、各々ベクターにより植物細胞内に導入して発現させ、更なる糖鎖修飾を行うことにより、植物細胞内でコアオリゴ糖修飾タンパク質及びプロテオグリカンを製造することが可能となることを見いだし、本発明に到達した。
【０００７】
即ち、本発明の主旨は例えば以下に存する。
［１］植物細胞においてキシロース修飾タンパク質を製造する方法であって、
植物細胞内に、タンパク質キシロース転移酵素をコードする遺伝子を含む第１のベクターを導入し、
植物細胞内で第１のベクターによりタンパク質キシロース転移酵素を発現させ、タンパク質キシロース転移酵素の作用により、植物細胞内のコアタンパク質のセリン残基に対してキシロースを連結させて、キシロース修飾タンパク質を産生することを含む方法。
［２］コアタンパク質が、セルグリシン、シンデカン、グリピカン、コラーゲン、及びアグリン、及びデコリンから選択される、［１］の方法。
［３］タンパク質キシロース転移酵素が、タンパク質キシロース転移酵素１及びタンパク質キシロース転移酵素２から選択される、［１］又は［２］の方法。
［４］第１のベクターが、植物細胞内で一過的又は恒常的に発現される、［１］〜［３］の方法。
［５］第１のベクターが、植物細胞内で機能するプロモーター配列と、タンパク質キシロース転移酵素のアミノ酸配列をコードし、プロモーター配列に作動式に連結されたコーディング配列とを含む、［１］〜［４］の方法。
［６］第１のベクターが、植物ウイルスベクター又はＴ−ＤＮＡベクターの形態である、［１］〜［５］の方法。
［７］コアタンパク質が内因性タンパク質である、［１］〜［６］の方法。
［８］コアタンパク質が外因性タンパク質である、［１］〜［６］の方法。
［９］植物細胞内に、コアタンパク質をコードする遺伝子を含む第２のベクターを導入し、
植物細胞内で第２のベクターによりコアタンパク質を発現させる
ことを更に含む、［８］の方法。
［１０］第２のベクターが、植物細胞内で機能するプロモーター配列と、コアタンパク質のアミノ酸配列をコードし、プロモーター配列に作動式に連結されたコーディング配列とを含む、［９］の方法。
［１１］第２のベクターが、植物ウイルスベクター又はＴ−ＤＮＡベクターの形態である、［９］又は［１０］の方法。
［１２］植物細胞が植物体の非単離細胞である、［１］〜［１１］の方法。
［１３］植物細胞が培養細胞である、［１］〜［１２］の方法。
［１４］コアオリゴ糖修飾タンパク質を製造する方法であって、
植物細胞内で、［１］〜［１３］の方法により、キシロース修飾タンパク質を産生し、
植物細胞内で、キシロース修飾タンパク質のキシロースに対して順にβ−１，４−ガラクトース、β−１，３−ガラクトース、及びβ−１，３−グルクロン酸を連結させて、コアオリゴ糖修飾タンパク質を産生する
ことを含む方法。
［１５］コアオリゴ糖修飾タンパク質の産生が、
植物細胞内に、キシロース残基にガラクトースを転移しうるβ−１，４−ガラクトース転移酵素をコードする遺伝子を含む第３のベクターと、ガラクトース残基にガラクトースを転移しうるβ−１，３−ガラクトース転移酵素をコードする遺伝子を含む第４のベクターと、ガラクトース残基にグルクロン酸を転移しうるβ−１，３−グルクロン酸転移酵素をコードする遺伝子を含む第５のベクターと、キシロース残基にリン酸基を転移しうる酵素をコードする遺伝子を含む第６のベクターを導入し、
植物細胞内で第３、第４、第５及び第６のベクターを発現させることにより、キシロース残基にガラクトースを転移しうるβ−１，４−ガラクトース転移酵素、ガラクトース残基にガラクトースを転移しうるβ−１，３−ガラクトース転移酵素、ガラクトース残基にグルクロン酸を転移しうるβ−１，３−グルクロン酸転移酵素、及びキシロース残基にリン酸基を転移しうる酵素を発現させ、各転移酵素の作用により、キシロース修飾タンパク質のキシロースに対して順にβ−１，４−ガラクトース、β−１，３−ガラクトース、及びβ−１，３−グルクロン酸を連結させる
ことにより行われる、［１４］の方法。
［１６］プロテオグリカンを製造する方法であって、
植物細胞内で、［１４］又は［１５］の方法により、コアオリゴ糖修飾タンパク質を産生し、
コアオリゴ糖修飾タンパク質のグルクロン酸末端にアミノ糖及びウロン酸を順に交互に連結させて糖鎖を形成するとともに硫酸化して、グリコサミノグリカンを形成する
ことを含む方法。
［１７］グリコサミノグリカンの形成が、
植物細胞内に、グルクロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素をコードする遺伝子を含む第７のベクターと、アミノ糖残基にウロン酸を転移しうる酵素をコードする遺伝子を含む第８のベクターと、ウロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素をコードする遺伝子を含む第９のベクターと、糖鎖のアミノ糖残基及びウロン酸残基とを硫酸化しうる酵素をコードする遺伝子を含む第１０のベクターとを導入し、
植物細胞内で第７、第８、第９、及び第１０のベクターを発現させることにより、グルクロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素、アミノ糖残基にウロン酸を転移しうる酵素、ウロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素、及び糖鎖のアミノ糖残基及びウロン酸残基を硫酸化しうる酵素を発現させ、各酵素を作用させることにより、コアオリゴ糖修飾タンパク質のグルクロン酸末端にアミノ糖及びウロン酸を順に交互に連結させて糖鎖を形成すると共に、糖鎖を硫酸化する
ことにより行われる、［１６］の方法。
【発明の効果】
【０００８】
本発明によれば、植物細胞内でキシロース修飾タンパク質を合成し、更にはこのキシロース修飾タンパク質に基づいてコアオリゴ糖修飾タンパク質及びプロテオグリカンを製造することができる。これにより、アニマルフリーでのプロテオグリカン生産技術が可能となる。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】図１は、プロテオグリカンの構造を説明するための模式図である。
【図２】図２は、実施例におけるウエスタンブロット解析の結果を示す写真である。Ｍ：分子量マーカー、Ｗ：未処理タバコ植物体、ＸＹＬＴ２：ＸＴＬＹ２単独発現、ＳＲＧＮ：ＳＲＧＮ単独発現、ＸＹＬＴ２＋ＳＲＧＮ：ＳＲＧＮ及びＸＴＬＹ２を共発現。
【図３】図３は、実施例におけるＳＤＳ−ＰＡＧＥ解析の結果を示す写真である。Ｍ：分子量マーカー、Ｓｅｒ：ＳＲＧＮ単独発現、ＸｙｌＴ＋Ｓｅｒ：ＳＲＧＮ及びＸＴＬＹ２を共発現、Ｓｔｄ．ＨＲＰ（１μｇ）：標準タンパク質である西洋ワサビペルオキシダーゼ（１μｇ）。
【図４】図４は、実施例におけるＭＡＬＤＩ ＴＯＦ−ＭＳ解析結果の結果を示すスペクトルである。ＳＲＧＮ：ＳＲＧＮ単独発現、ＳＲＧＮ＋ＸＹＬＴ２：ＳＲＧＮ及びＸＴＬＹ２を共発現。
【図５】図５は、実施例におけるウエスタンブロット解析の結果を示す写真である。Ｍ：分子量マーカー、Ｗ：未処理タバコ植物体、Ｓ：ＳＲＧＮ単独発現、１：ＳＲＧＮ及びＸＴＬＹ２を共発現、２：ＳＲＧＮ、ＸＴＬＹ２、Ｂ４ＧＡＬＴ７を共発現、３：ＳＲＧＮ、ＸＴＬＹ２、Ｂ４ＧＡＬＴ７及びＢ３ＧＡＬＴ６を共発現、４：ＳＲＧＮ、ＸＴＬＹ２、Ｂ４ＧＡＬＴ７、Ｂ３ＧＡＬＴ６及びＢ３ＧＡＴ３を共発現、３Ｆ：ＳＲＧＮ、ＸＴＬＹ２、Ｂ４ＧＡＬＴ７、Ｂ３ＧＡＬＴ６及びＦＡＭ２０Ｂを共発現、４Ｆ：ＳＲＧＮ、ＸＴＬＹ２、Ｂ４ＧＡＬＴ７、Ｂ３ＧＡＬＴ６、Ｂ３ＧＡＴ３及びＦＡＭ２０Ｂを共発現、Ｐ：ＦＬＡＧ標識標準タンパク質。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
以下、本発明を具体的な実施の形態に即して詳細に説明する。但し、本発明は以下の実施の形態に束縛されるものではなく、本発明の趣旨を逸脱しない範囲において、任意の形態で実施することが可能である。
【００１１】
［１．概要］
プロテオグリカンは、生体成分として多様な機能性を持つ生理活性糖タンパク質である。脳や皮膚等の体全体の組織中の細胞外マトリックスや細胞表面に存在するほか、軟骨の主成分としても存在する。プロテオグリカンは、コラーゲンやヒアルロン酸と共に細胞外マトリックスを形成することにより、身体の各種組織の維持に寄与している。また、伝達物質としても機能し、細胞の分化、増殖、運動など、種々の細胞機能にも関与している。
【００１２】
プロテオグリカンは、担体となるコアタンパク質のセリン残基（Ｓｅｒ）にコアオリゴ糖が連結され、このコアオリゴ糖の末端に更にグリコサミノグリカンが連結された構造を有する（図１）。コアオリゴ糖は、コアタンパク質結合側から順にキシロース、ガラクトース、ガラクトース、及びグルクロン酸が連結された構造を有し、グルクロン酸末端にグリコサミノグリカンが連結されてなる。グリコサミノグリカンは、ヒアルロン酸を除くと高度に硫酸化された多糖体であり、アミノ糖（ガラクトサミン、グルコサミン等）とウロン酸（グルクロン酸、イズロン酸等）とが交互に連結された繰り返し構造を有する。
【００１３】
プロテオグリカンは、そのグリコサミノグリカン部分のアミノ糖及びウロン酸の種類、更には硫酸化の有無によって、概ね以下の様に分類される。なお、何れのプロテオグリカンでも、そのコアオリゴ糖の構造は共通である。
【００１４】
・ヘパラン硫酸：グリコサミノグリカン部分のアミノ糖としてＤ−グルコサミン、ウロン酸としてα−Ｌ−イズロン酸又はβ−Ｄ−グルクロン酸を有すると共に、ウロン酸の一部がＮ−硫酸化（イズロン酸）又はＯ−硫酸化（グルクロン酸）されてなる。
【００１５】
・ヘパリン：ヘパラン硫酸の一種であり、特に硫酸化の度合いが高いものをいう。
【００１６】
・コンドロイチン硫酸：グリコサミノグリカン部分のアミノ糖としてＮ−アセチル−Ｄ−ガラクトサミン、ウロン酸としてＤ−グルクロン酸を有すると共に、Ｎ−アセチル−Ｄ−ガラクトサミンの一部が硫酸化（４位又は６位）及び／又はエピ化されてなる。
【００１７】
・デルマタン硫酸：グリコサミノグリカン部分のアミノ糖としてＮ−アセチル−Ｄ−ガラクトサミン、ウロン酸としてＬ−イズロン酸を有すると共に、Ｎ−アセチル−Ｄ−ガラクトサミンの一部が硫酸化（４位又は６位）及び／又はエピ化されてなる。
【００１８】
プロテオグリカンの合成は、担体となるコアタンパク質のセリン残基（Ｓｅｒ）にキシロース、ガラクトース、ガラクトース、及びグルクロン酸を順次付加することでコアオリゴ糖を構成し、次いでこのグルクロン酸末端にアミノ糖（ガラクトサミン、グルコサミン等）及びウロン酸（グルクロン酸、イズロン酸等）を交互に連結することで行われる。
【００１９】
従って、植物細胞においてコアタンパク質を糖鎖修飾し、プロテオグリカンを合成するには、第一段階としてコアタンパク質のセリン残基（Ｓｅｒ）へのキシロース修飾を行うことが必須となる。
【００２０】
本発明では、植物細胞内に、コアタンパク質をコードするベクターと、タンパク質キシロース転移酵素をコードするベクターとを導入して発現させることにより、コアタンパク質のセリン残基（Ｓｅｒ）にキシロースを結合させ、キシロース修飾タンパク質を産生する。また、このキシロース修飾タンパク質のキシロース残基に対して、順にβ−１，４−ガラクトース、β−１，３−ガラクトース、及びβ−１，３−グルクロン酸を連結させることにより、コアオリゴ糖修飾タンパク質を製造する。更に、このコアオリゴ糖修飾タンパク質のコアオリゴ糖に対して、更にアミノ糖及びウロン酸を順に交互に連結させて糖鎖を形成するとともに硫酸化して、グリコサミノグリカンを形成することにより、植物細胞内でプロテオグリカンを製造する。
【００２１】
また、本発明は、最終的なプロテオグリカンの製造に限定されず、植物細胞内で任意のコアタンパク質のセリン残基（Ｓｅｒ）にキシロースを結合させ、キシロース修飾タンパク質を産生する種々の用途や、こうして得られたキシロース修飾タンパク質のキシロース残基に対して、更にβ−１，４−ガラクトース、β−１，３−ガラクトース、及びβ−１，３−グルクロン酸を順に連結させることにより、植物細胞内でコアオリゴ糖修飾タンパク質を産生する種々の用途に利用できる。この場合、コアタンパク質は、植物細胞に外部から導入した外因性タンパク質に限定されず、植物細胞に内在する内因性タンパク質であってもよい。
【００２２】
以下、本発明の代表的な観点として、キシロース修飾タンパク質を製造する方法、コアオリゴ糖修飾タンパク質を製造する方法、及び、プロテオグリカンを製造する方法とに着目し、各方法について具体的に説明する。
【００２３】
［２．キシロース修飾タンパク質を製造する方法］
本発明の一観点によれば、植物細胞においてキシロース修飾タンパク質を製造する方法が提供される。本方法は、以下の工程を含む。
（ａ１）植物細胞内に、タンパク質キシロース転移酵素をコードする遺伝子を含む第１のベクターを導入する。
（ａ２）植物細胞内で第１のベクターによりタンパク質キシロース転移酵素を発現させ、タンパク質キシロース転移酵素の作用により、コアタンパク質のセリン残基に対してキシロースを連結させて、キシロース修飾タンパク質を産生する。
【００２４】
更に、コアタンパク質として外因性タンパク質を用いる場合には、本方法は、更に以下の工程を含んでいてもよい。
（ｂ１）植物細胞内に、セリン残基を含むコアタンパク質をコードする遺伝子を含む第２のベクターを導入する。
（ｂ２）植物細胞内で第２のベクターによりコアタンパク質を発現させる。こうして発現されたコアタンパク質が、（ａ２）におけるキシロース修飾の対象となる。
【００２５】
後者の場合、工程（ａ１）における第１のベクターの導入は、通常は工程（ｂ１）における第２のベクターの導入と同時又はその前後に実施されると共に、工程（ａ２）におけるコアタンパク質のセリン残基のキシロース修飾は、工程（ｂ２）におけるコアタンパク質の発現に引き続いて生じることになる。
【００２６】
＜２−１．植物細胞＞
植物細胞は制限されず、第１のベクターを導入してタンパク質キシロース転移酵素を発現させることが可能であり、更にコアタンパク質が外因性タンパク質を用いる場合には、第２のベクターを導入してコアタンパク質を発現させることが可能でれば、任意の植物細胞を用いることができる。植物細胞の形態も任意であり、植物体内に存在する非単離の細胞でもよく、植物体から単離された組織培養物等の培養細胞でもよい。培養細胞の場合、分化した状態の細胞でも、脱分化を生じた細胞でも、再分化した細胞でもよい。
【００２７】
植物細胞の由来する植物の種も制限されない。植物種の例としては、これらに限定されるものではないが、例えばナス科、マメ科、アブラナ科、イネ科、キク科、ハス科、バラ科等に属する植物種が挙げられる。
【００２８】
植物種の具体例としては、タバコ、シロイヌナズナ、アルファルファ、オオムギ、インゲンマメ、カノーラ、ササゲ、綿、トウモロコシ、クローバー、ハス、レンズマメ、ルピナス、キビ、オートムギ、エンドウマメ、落花生、イネ、ライムギ、スイートクローバー、ヒマワリ、スイートピー、ダイズ、モロコシ、ライコムギ、クズイモ、ハッショウマメ、ソラマメ、コムギ、フジ、堅果植物、コヌカグサ、ネギ、キンギョソウ、オランダミツバ、ナンキンマメ、アスパラガス、ロウトウ、カラスムギ、ホウライチク、アブラナ、ブロムグラス、ルリマガリバナ、ツバキ、アサ、トウガラシ、ヒヨコマメ、ケノポジ、キクニガナ、カンキツ、コーヒーノキ、ジュズダマ、キュウリ、カボチャ、ギョウギシバ、カモガヤ、チョウセンアサガオ、ウリミバエ、ジギタリス、ヤマノイモ、アブラヤシ、オオシバ、フェスキュ、イチゴ、フクロウソウ、キスゲ、パラゴムノキ、ヒヨス、サツマイモ、レタス、ヒラマメ、ユリ、アマ、ライグラス、トマト、マヨラナ、リンゴ、マンゴー、イモノキ、ウマゴヤシ、アフリカウンラン、イガマメ、テンジクアオイ、チカラシバ、ツクバネアサガオ、エンドウ、インゲン、アワガエリ、イチゴツナギ、サクラ、キンポウゲ、ラディッシュ、スグリ、トウゴマ、キイチゴ、サトウキビ、サルメンバナ、セネシオ、セタリア、シロガラシ、ナス、ソルガム、イヌシバ、カカオ、ジャジクソウ、レイリョウコウ、ブドウ等が挙げられる。
【００２９】
中でも、組換え技術適応及び生産拡大の容易さ等の観点から、タバコ、シロイヌナズナ、アルファルファ、オオムギ、インゲンマメ、カノーラ、ササゲ、綿、トウモロコシ、クローバー、ハス、レンズマメ、ルピナス、キビ、オートムギ、エンドウマメ、落花生、イネ、ライムギ、スイートクローバー、ヒマワリ、スイートピー、ダイズ、モロコシ、ライコムギ、クズイモ、ハッショウマメ、ソラマメ、コムギ、フジ、堅果植物等が好ましい。
【００３０】
＜２−２．コアタンパク質＞
コアタンパク質は特に制限されず、少なくとも一つのセリン残基を含み、タンパク質キシロース転移酵素によりセリン残基にキシロース修飾を受け得るタンパク質であれば、その種類は任意である。例えば、植物細胞に内在する内因性タンパク質でもよいが、植物細胞に外部から導入される外因性タンパク質でもよい。植物細胞に外部から導入される外因性タンパク質の場合、第２のベクターにより植物細胞に導入して発現させることが可能であれば任意であるが、以下に挙げるプロテオグリカンのコアタンパク質の具体例の他、シンデカン、グリピカン、コラーゲン、アグリン、デコリン等が挙げられる。コアタンパク質の由来も特に限定されない。例としてはヒト、マウス、ウサギ、ウシ等が挙げられる。但し、ヒトに使用する修飾タンパク質を産生する目的の場合には、ヒト由来のコアタンパク質が好ましい。コアタンパク質の分子量も特に制限されないが、通常は５ｋＤａ以上、中でも１０ｋＤａ以上、また、通常５００ｋＤａ以下、中でも３００ｋＤａ以下の範囲が好ましい。
【００３１】
特に、プロテオグリカン製造の一工程としてキシロース修飾を行う場合、コアタンパク質としてはプロテオグリカンのコアタンパク質が好ましい。具体例としては、セルグリシン、グリピカン、シンデカン、アグリカン、バーシカン、ニューロカン、ブレビカン、デコリン、ビグリカン、パールカン、コラーゲン等が挙げられる。中でも、分子量が小さく組換え技術適応が容易という理由から、セルグリシン、グリピカン、シンデカン、コラーゲン等が好ましく、セルグリシン、シンデカン、コラーゲン等が特に好ましい。
【００３２】
なお、ヒトセルグリシン遺伝子の塩基配列（配列番号１）及びこれに対応するヒトセルグリシンタンパク質のアミノ酸配列（配列番号２）は、米国国立生物工学情報センター（National Center for Biotechnology Information：ＮＣＢＩ）に、それぞれ登録番号（Accession Number）ＮＭ＿００２７２７及びＮＰ＿００２７１８として登録されている。また、ヒトコラーゲン タイプＸＶＩＩＩ遺伝子の塩基配列（配列番号３）及びこれに対応するヒトコラーゲン タイプＸＶＩＩＩタンパク質のアミノ酸配列（配列番号４）は、ＮＣＢＩにそれぞれ登録番号ＮＭ＿０３０５８２及びＮＰ＿０８５０５９として登録されている。
【００３３】
なお、前記の各種のコアタンパク質に対して１又は２以上の変異を有し、且つ少なくとも一つのセリン残基を維持しているタンパク質も、一定以上のアミノ酸配列同一性を有する限りにおいて、元のタンパク質と同様の作用や活性を維持している蓋然性が高いことから、コアタンパク質として利用可能である。具体的には、前記の各種のコアタンパク質に対して、少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９６％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、少なくとも９９％同一であり、且つ少なくとも一つのセリン残基を維持しているタンパク質も、コアタンパク質として好ましく利用できる。
【００３４】
なお、２つのアミノ酸配列間の配列同一性は、EMBOSSパッケージ（EMBOSS: The European Molecular Biology Open Software Suite, Rice et al., 2000, Trends Genet. 16: 276-277）（好ましくはバージョン５．００又はそれ以降）のNeedleプログラムにより、Needleman-Wunschアルゴリズムを使用して決定される（Needleman and Wunsch, 1970, J. Mol. Biol. 48: 443-453）。
【００３５】
＜２−３．タンパク質キシロース転移酵素＞
タンパク質キシロース転移酵素も特に制限されず、コアタンパク質及びウリジン５’−二リン酸（ＵＤＰ）−キシロースの存在下において、コアタンパク質が有するセリン残基に対するキシロースの付加反応を触媒し得る酵素であれば、その種類は任意である。具体例としては、ヒトタンパク質キシロース転移酵素１、ヒトタンパク質キシロース転移酵素２等が挙げられる。中でも、分子量が小さく組換え技術適応が容易という理由から、タンパク質キシロース転移酵素２が好ましい。タンパク質キシロース転移酵素の由来も特に限定されないが、ヒトに使用される修飾タンパク質を産生する目的の場合には、ヒト由来のタンパク質キシロース転移酵素が好ましい。
【００３６】
なお、ヒトタンパク質キシロース転移酵素１遺伝子の塩基配列（配列番号５）及びこれに対応するヒトタンパク質キシロース転移酵素１のアミノ酸配列（配列番号６）は、ＮＣＢＩにそれぞれ登録番号ＮＭ＿０２２１６６及びＮＰ＿０７１４４９として登録されている。また、ヒトタンパク質キシロース転移酵素２遺伝子の塩基配列（配列番号７）及びこれに対応するヒトタンパク質キシロース転移酵素２のアミノ酸配列（配列番号８）は、ＮＣＢＩにそれぞれ登録番号ＮＭ＿０２２１６７及びＮＰ＿０７１４５０として登録されている。
【００３７】
なお、前記の各種のタンパク質キシロース転移酵素に対して１又は２以上の変異を有するタンパク質も、一定以上のアミノ酸配列同一性を有する限りにおいて、元のタンパク質キシロース転移酵素と同様の作用や活性を維持している蓋然性が高いことから、タンパク質キシロース転移酵素として利用可能である。具体的には、前記の各種のタンパク質に対して少なくとも７０％、少なくとも７５％、少なくとも８０％、少なくとも８５％、少なくとも９０％、少なくとも９５％、少なくとも９６％、少なくとも９７％、少なくとも９８％、少なくとも９９％同一であるタンパク質も、タンパク質キシロース転移酵素として好ましく利用できる。
【００３８】
＜２−４．第１及び第２のベクター＞
本発明では、植物細胞内でタンパク質キシロース転移酵素を発現させるために、タンパク質キシロース転移酵素をコードする遺伝子を有する第１のベクターを使用する。
【００３９】
また、コアタンパク質として外因性タンパク質を用いる場合は、植物細胞内でコアタンパク質を発現させるために、前述の第１のベクターに加えて、外因性タンパク質をコードする遺伝子を有する第２のベクターを用いる。
【００４０】
第１及び第２のベクターの構成は任意であるが、通常は、植物細胞内で機能するプロモーター配列と、発現対象となる酵素（第１のベクターの場合はタンパク質キシロース転移酵素、第２のベクターの場合はコアタンパク質）のアミノ酸配列をコードし、且つプロモーター配列に作動式に連結されたコーディング配列とを含む。これらのプロモーター配列及びコーディング配列に加えて、ターミネーター配列や転写調節因子等、他の任意の配列を有していてもよい。
【００４１】
プロモーター配列は、対象となる植物細胞内で機能し、コーディング配列の転写を開始させることが可能な配列であれば、その種類は制限されない。例としては、植物ウイルスに由来するプロモーター、例えばカリフラワーモザイクウイルス（ＣａＭＶ）の３５Ｓ プロモーター（Odell et al., (1985), Nature, 313:810-812）、キャッサバモザイクウイルスプロモーター、ゴマノハグサモザイクウイルスプロモーター、バドナウイルス（Badnavirus）プロモーター、ストロベリーベインバインディングウイルス（ＳＶＢＶ）のプロモーター、ミラビリス（Mirabilis）モザイクウイルスプロモーター（ＭＭＶ）等や、その他のプロモーター、例えばルビスコ（Rubisco）プロモーター、アクチンプロモーター、ユビキチンプロモーター、アグロバクテリウム由来ｎｏｓプロモーター等が挙げられる。中でも、カリフラワーモザイクウイルス（ＣａＭＶ）の３５Ｓ プロモーター等が好ましい。
【００４２】
コーディング配列としては、発現対象遺伝子（第１のベクターの場合はタンパク質キシロース転移酵素遺伝子、第２のベクターの場合はコアタンパク質遺伝子）の塩基配列に応じて、適切な配列を選択すればよい。
【００４３】
ターミネーター配列は、上述の通り任意選択要素である。但し、外来遺伝子のコーディング配列の転写を確実に停止させ、所望の機能的なタンパク質を発現させる観点からは、第１及び第２のベクターはターミネーター配列を有することが好ましい。ターミネーター配列は、外来遺伝子のコーディング配列の転写を停止させることが可能な配列であれば、その種類は制限されない。例としては、ＣａＭＶ ３５Ｓ ターミネーター、ヒートショックプロテイン（ｈｓｐ）ターミネーター、アグロバクテリウム由来ｎｏｓターミネーター等が挙げられる。
【００４４】
また、前記のプロモーター配列及び任意配列であるターミネーター配列は、発現対象遺伝子であるコアタンパク質遺伝子又はタンパク質キシロース転移酵素遺伝子を発現させることが可能となるように、コーディング配列と作動式に連結される。即ち、これらのプロモーター配列、コーディング配列、及び任意配列であるターミネーター配列は、植物細胞内で自律的に発現可能な発現カセットを構成する。
【００４５】
第１及び第２のベクターは、その機能を実質的に妨げない限りにおいて、更に他の配列を有していてもよい。その他の配列の例としては、これらに限定されるものではないが翻訳増幅配列、転写調節因子、５’非翻訳領域等が挙げられる。翻訳増幅配列の例としては、これらに限定されるものではないが、タバコモザイクウィルス（ＴＭＶ）ゲノムの ５’−ＵＴＲ オメガ配列等が挙げられる。５’非翻訳領域の例としては、これらに限定されるものではないが、シロイヌナズナ由来アルコール脱水素酵素５’非翻訳領域等が挙げられる。
【００４６】
第１及び第２のベクターの形態も任意である。直鎖状の形態であっても環状の形態であってもよい。但し、環状の形態、例えばプラスミドの形態であることが好ましい。ベクターの具体的な態様の例としては、植物ウイルスベクター、Ｔ−ＤＮＡベクター等が挙げられる。
【００４７】
植物ウイルスベクター法は、例えば植物ＲＮＡウイルスベクターの場合、目的遺伝子を挿入した植物ウイルスゲノムのｃＤＮＡを試験管内転写し、得られたＲＮＡをベクターとして植物に接種して感染させ、ウイルス自身の増殖能及び全身移行能を利用して、発現対象遺伝子を植物に発現させる手法である。植物ウイルスベクターの例としては、カリフラワーモザイクウイルス（ＣａＭＶ）、キュウリモザイクウイルス（ＣＭＶ）ベクター（米国特許出願第２００７／０１４３８７７号明細書）、タバコモザイクウィルス（ＴＭＶ）ベクター（Takamatsu et al., EMBO J., (1987), 6(2):307-11）、ジャガイモＸウイルス（ＰＶＸ）ベクター（Baulcombe et al., Plant J., (1995), 7:1045-1053）等が挙げられる。同様に、植物ＤＮＡウイルスベクターを用いることも可能である。
【００４８】
Ｔ−ＤＮＡベクター（Ｔ−ＤＮＡバイナリープラスミドベクター）法は、アグロバクテリウムのＴ−ＤＮＡ配列を利用した手法であり、一過性発現及び恒常性発現の双方に利用できる。具体的に、アグロバクテリウム（Agrobacterium）は、グラム陰性菌に属する土壌細菌であるリゾビウム属（Rhizobium）のうち、植物に対する病原性を有するものの総称であり、例としては根頭癌腫病に関連するアグロバクテリウム・ツメファシエンス（Agrobacterium tumefacients）が挙げられる。アグロバクテリウムは、Ｔｉプラスミドという巨大プラスミドを有する。ＴｉプラスミドはＴ−ＤＮＡ（transfer DNA）配列と呼ばれる領域を有し、当該領域に相当するＤＮＡ断片が植物細胞に移動し、ランダム導入によって植物ゲノムに組み込まれるという性質を有する。Ｔ−ＤＮＡ配列は、右境界配列（right border sequence：以降適宜「ＲＢ配列」、或いは単に「ＲＢ」と表記する。）と左境界配列（left border sequence：以降適宜「ＬＢ配列」、或いは単に「ＬＢ」と表記する。）とを両端に有し、ＲＢ配列とＬＢ配列との間に、植物ホルモン生合成遺伝子及びオパイン生合成遺伝子を有する。ＲＢ配列及びＬＢ配列は、植物ゲノムへの組み込みに関与しているほか、植物細胞への感染や、ＲＢ配列とＬＢ配列との間に介在する遺伝子の植物細胞内での発現にも関与していることが知られている。但し、Ｔｉプラスミドは植物の形質転換には不要な配列を含むため、巨大であり操作性が悪い。よって現在では、Ｔｉプラスミドを改変した２種のプラスミド、即ち、バイナリープラスミドとヘルパープラスミドとを組み合わせたＴ−ＤＮＡバイナリー系によって、植物の形質転換による外来遺伝子の導入を行うことが主流である。
【００４９】
バイナリープラスミドは、Ｔ−ＤＮＡ領域から植物の形質転換に不要な領域（例えば上記の植物ホルモン生合成遺伝子やオパイン生合成遺伝子等の領域）を除去した配列と、アグロバクテリウム及び他の微生物（例えば大腸菌等）の双方で機能し得る複製開始点と、選択可能な遺伝子マーカーとを組み込むことにより、アグロバクテリウムと他の微生物との双方で複製可能としたシャトルベクターである。バイナリープラスミドは、Ｔ−ＤＮＡ配列の全体ではなく、通常はＴ−ＤＮＡ配列由来のＲＢ配列及びＬＢ配列（並びにその近傍領域）を有し、更に任意選択として、除去された植物ホルモン生合成遺伝子及びオパイン生合成遺伝子等の遺伝子の発現を調節していたｎｏｓプロモーター及びｎｏｓターミネーターを、ＲＢ配列とＬＢ配列との間に有する。植物に導入すべき外来遺伝子は、ＲＢ配列とＬＢ配列との間に、且つ、任意選択として前記のｎｏｓプロモーター及びｎｏｓターミネーターの制御下に配置される。一般に「Ｔ−ＤＮＡベクター」とは、通常はこのバイナリープラスミドを指す。なお、アグロバクテリウム由来のｎｏｓプロモーター及び／又はターミネーターの代わりに、前述した他の任意のプロモーター及び／又はターミネーター、例えばカリフラワーモザイクウイルス（ＣａＭＶ）の３５Ｓ プロモーター及び／又はターミネーター等を使用してもよい。
【００５０】
第１及び第２のベクターをＴ−ＤＮＡベクター（Ｔ−ＤＮＡバイナリープラスミドベクター）とした場合、斯かるＴ−ＤＮＡベクターは、アグロバクテリウム由来のＴ−ＤＮＡベクターで形質転換したアグロバクテリウムに導入することにより使用する。バイナリープラスミドベクターを導入したアグロバクテリウムは、恒常的発現法及び一過性発現法いずれにも使用可能である。例えば一過性発現法においては、アグロバクテリウムの培養液を、物理的手法（シリンジ等による注入や減圧等による浸透などの手法）で植物組織内に導入し、植物に感染させることにより、目的遺伝子を植物に一過性発現させる（Grimsley et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, (1986), 83(10):3282-6）。また、恒常的発現においては、アグロバクテリウムを感染させた植物組織断片を培養することにより、目的遺伝子を恒常的に発現する再分化個体を得ることが可能である。
【００５１】
第１及び第２のベクターは、植物細胞の細胞質内に蓄積させて一過的に発現させてもよく、植物ゲノム内に組み込んで恒常的に発現させてもよい。例えば、第１及び第２のベクターをＴ−ＤＮＡベクター（Ｔ−ＤＮＡバイナリープラスミドベクター）とした場合、植物ゲノム内に組み込むには、ゲノム組み込みに必要な配列、例えばアグロバクテリウムのＴｉプラスミド由来のｖｉｒ領域を、バイナリーベクター内に挿入するか、ｖｉｒ領域を有するヘルパープラスミドを併用する。
【００５２】
第１及び第２のベクターは、必要に応じて、他のヘルパープラスミドと併用してもよい。他のヘルパープラスミドの例としては、例えば前述のｖｉｒ領域を有するヘルパープラスミド等が挙げられる。
【００５３】
第１及び第２のベクターは、当業者に周知の各種の遺伝子組み換え技術を適宜組み合わせて用いることにより、容易に作製することが可能である。
【００５４】
＜２−５．植物へのベクターの導入・遺伝子の発現＞
本発明によれば、前記工程（ａ１）において、タンパク質キシロース転移酵素をコードする遺伝子を有する前述の第１のベクターを植物細胞に導入し、前記工程（ａ２）において、植物細胞内でタンパク質キシロース転移酵素を発現させることにより、コアタンパク質のセリン残基及び植物細胞内に存在するＵＤＰ−キシロースに対してタンパク質キシロース転移酵素が作用し、セリン残基に対してキシロースを結合させ、キシロース修飾タンパク質を産生することが出来る。
【００５５】
また、コアタンパク質として外因性タンパク質を用いる場合は、前述の第１のベクターに加えて、前記工程（ｂ１）において、外因性タンパク質をコードする遺伝子を有する前述の第２のベクターを植物細胞に導入することにより、前記工程（ｂ２）において、植物細胞内でコアタンパク質を発現させると共に、コアタンパク質のセリン残基に対してタンパク質キシロース転移酵素の作用によりキシロースを結合させ、外因性タンパク質をコアタンパク質とするキシロース修飾タンパク質を産生することが出来る。
【００５６】
この場合、前述のように、工程（ａ１）における第１のベクターの導入は、通常は工程（ｂ１）における第２のベクターの導入と同時又はその前後に実施されると共に、工程（ａ２）におけるコアタンパク質のセリン残基のキシロース修飾は、工程（ｂ２）におけるコアタンパク質の発現に引き続いて生じることになる。
【００５７】
第１及び第２のベクターを植物細胞に導入する手法は限定されず、ベクターの構成に応じた任意の手法を用いることが出来る。
【００５８】
例えば、第１及び第２のベクターを前記のようにＴ−ＤＮＡ（バイナリープラスミド）ベクターとして構成し、一過性発現させる場合には、これらのベクターを各々含む溶液を調製し、当該溶液を各種の物理的手法、例えば注入や浸透等の手法で、植物組織内に導入することが好ましい。
【００５９】
第１及び第２のベクターを各々含む溶液の調製は、例えば、第１及び第２のベクターを各々導入したアグロバクテリウム等の微生物を培養し、得られた培養物（例えば一晩培養物等）を用いることができる。通常、一晩培養は波長６００ｎｍの光学密度（ＯＤ６００）が３〜３．５単位に達する。これを、アグロバクテリウム浸潤処理の前ＯＤ６００＝０．２〜０．８になるように懸濁する。これらの菌体溶液を各々単独で使用する場合は、ＯＤ６００＝０．２〜０．６値の懸濁液に調製する。複数の菌体溶液を混合して使用する場合には、各々の菌体を等量ずつ混合して、最終の懸濁液の菌体量をＯＤ６００＝０．３〜１．２値に調製する。
【００６０】
第１及び第２のベクターを各々含むアグロバクテリウム溶液を注入により対象植物に導入する場合、例えばシリンジ等を用いて、当該溶液を対象植物に強制的に注射することにより行う。第１及び第２のベクターを各々含む溶液を浸透により対象植物に導入する場合は、当該溶液を対象植物と接触させた上で、例えば真空デシケーター等を用いて減圧条件とし、当該溶液を対象植物に強制的に浸透させることにより行う。
【００６１】
以上の手法を用いて、第１及び第２のベクターを対象植物の全体又は一部の組織に導入することにより、導入された第１及び第２のベクターが高い効率で植物細胞の細胞質内に導入され、各々が有するコアタンパク質及びタンパク質キシロース転移酵素を一過的に発現することが可能となる。
【００６２】
なお、以上説明したように、第１及び第２のベクターを個別のベクターとして構築してもよいが、第１及び第２のベクターを単一のベクターとして構成することももちろん可能である。この場合、発現対象となる酵素（タンパク質キシロース転移酵素及びコアタンパク質）のアミノ酸配列を各々コードするコーディング配列と、当該コーディング配列の発現を調節する調節配列（即ちプロモーター配列と、任意により設けられるターミネーター配列や転写調節因子等の他の配列）を、単一のベクター内に配置する。これらのうち、コーディング配列以外の配列要素（プロモーター配列、ターミネーター配列、転写調節因子等）については、コーディング配列毎に個別に設けてもよいが、複数のコーディング配列について共通化してもよい。
【００６３】
［３．コアオリゴ糖修飾タンパク質を製造する方法］
本発明の一観点によれば、植物細胞においてコアオリゴ糖修飾タンパク質を製造する方法が提供される。本方法は、以下の工程を含む。
（Ｉ）植物細胞内で、前述のキシロース修飾タンパク質を製造する方法により、キシロース修飾タンパク質を産生する工程。
（II）植物細胞内で、キシロース修飾タンパク質のキシロースに対して順にガラクトース、ガラクトース、及びグルクロン酸を連結させて、コアオリゴ糖修飾タンパク質を産生する工程。
【００６４】
前記工程（Ｉ）におけるキシロース修飾タンパク質の産生における条件及び手順については、前記［２．キシロース修飾タンパク質を製造する方法］で説明した通りである。
【００６５】
前記工程（II）におけるコアオリゴ糖修飾タンパク質の産生は、以下の工程により実施することが好ましい。
（ｃ１）植物細胞内に、キシロース残基にガラクトースを転移しうるガラクトース転移酵素をコードする遺伝子を含む第３のベクターと、ガラクトース残基にガラクトースを転移しうるガラクトース転移酵素をコードする遺伝子を含む第４のベクターと、ガラクトース残基にグルクロン酸を転移しうるグルクロン酸転移酵素をコードする遺伝子を含む第５のベクターと、キシロース残基にリン酸基を転移しうる酵素をコードする遺伝子を含む第６のベクターを導入する工程。
（ｃ２）植物細胞内で第３、第４、第５及び第６のベクターを発現させることにより、キシロース残基にガラクトースを転移しうるガラクトース転移酵素、ガラクトース残基にガラクトースを転移しうるガラクトース転移酵素、ガラクトース残基にグルクロン酸を転移しうるグルクロン酸転移酵素、及びキシロース残基にリン酸基を転移しうる酵素を発現させ、各転移酵素の作用により、キシロース修飾タンパク質のキシロース残基に対して順にガラクトース、ガラクトース、及びグルクロン酸を連結させる工程。
【００６６】
キシロース残基にガラクトースを転移しうるガラクトース転移酵素は特に制限されず、キシロース修飾タンパク質及びＵＤＰ−ガラクトースの存在下において、キシロース残基に対するガラクトースの付加反応を触媒し得る酵素であれば、その種類は任意である。具体例としては、β−１，４−ガラクトース転移酵素が挙げられる。
【００６７】
ガラクトース残基にガラクトースを転移しうるガラクトース転移酵素は特に制限されず、ガラクトース修飾タンパク質及びＵＤＰ−ガラクトースの存在下において、ガラクトース残基に対するガラクトースの付加反応を触媒し得る酵素であれば、その種類は任意である。具体例としては、β−１，３−ガラクトース転移酵素等が挙げられる。
【００６８】
ガラクトース残基にグルクロン酸を転移しうるグルクロン酸転移酵素は特に制限されず、ガラクトース修飾タンパク質及びＵＤＰ−グルクロン酸の存在下において、ガラクトース残基に対するグルクロン酸の付加反応を触媒し得る酵素であれば、その種類は任意である。具体例としては、β−１，３−グルクロン酸転移酵素等が挙げられる。
【００６９】
キシロース残基にリン酸基を転移しうる酵素は特に制限されず、キシロース修飾タンパク質もしくはガラクトース―キシロース修飾タンパク質及びアデノシン三リン酸の存在下において、キシロース残基に対するリン酸の付加反応を触媒し得る酵素であれば、その種類は任意である。具体例としては、グリコサミノグリカンキシロースリン酸化酵素等が挙げられる。
【００７０】
これらの転移酵素の由来も特に限定されないが、ヒトに使用される修飾タンパク質を産生する目的の場合には、ヒト由来の転移酵素が好ましい。
【００７１】
なお、ヒトβ−１，４−ガラクトース転移酵素１遺伝子の塩基配列（配列番号９）及びこれに対応するヒトβ−１，４−ガラクトース転移酵素１のアミノ酸配列（配列番号１０）は、ＮＣＢＩにそれぞれ登録番号ＮＭ＿００７２５５及びＮＰ＿００９１８６として登録されている。また、ヒトβ−１，３−ガラクトース転移酵素遺伝子の塩基配列（配列番号１１）及びこれに対応するヒトβ−１，３−ガラクトース転移酵素のアミノ酸配列（配列番号１２）は、ＮＣＢＩにそれぞれ登録番号NM_080605及びNP_542172として登録されている。また、ヒトβ−１，３−グルクロン酸転移酵素遺伝子の塩基配列（配列番号１３）及びこれに対応するヒトβ−１，３−グルクロン酸転移酵素のアミノ酸配列（配列番号１４）は、ＮＣＢＩにそれぞれ登録番号ＮＭ＿０１２２００及びＮＰ＿０３６３３２として登録されている。また、ヒトグリコサミノグリカンキシロースリン酸化酵素遺伝子の塩基配列（配列番号１５）及びこれに対応するヒトグリコサミノグリカンキシロースリン酸化酵素のアミノ酸配列（配列番号１６）は、ＮＣＢＩにそれぞれ登録番号ＮＭ＿０１４８６４及びＮＰ＿０５５６７９として登録されている。
【００７２】
これらの転移酵素をコードする遺伝子を含む第３、第４、第５及び第６のベクターの構成、形態、製法等の詳細については、前記の第１及び第２のベクターについて説明した構成、形態、製法等の詳細を適用することができる。
【００７３】
これら第３、第４、第５及び第６のベクターを用いて、ガラクトース転移酵素、ガラクトース転移酵素、グルクロン酸転移酵素、及びグリコサミノグリカンキシロースリン酸化酵素を植物細胞内に導入して発現させ、キシロース修飾タンパク質のキシロース残基並びに植物細胞内に存在するＵＤＰ−ガラクトース、ＵＤＰ−グルクロン酸及びアデノシン三リン酸に対して作用させることにより、キシロース修飾タンパク質のキシロース残基に順にβ−１，４−ガラクトース、β−１，３−ガラクトース、及びβ−１，３−グルクロン酸を連結し、コアオリゴ糖修飾タンパク質を産生することができる。
【００７４】
なお、以上説明したように、第３、第４、第５及び第６のベクターを個別のベクターとして構築してもよいが、第３、第４、第５及び第６のベクターのうち任意の２種以上を単一のベクターとして構成することももちろん可能である。この場合、発現対象となる酵素（ガラクトース転移酵素、ガラクトース転移酵素、グルクロン酸転移酵素、及びグリコサミノグリカンキシロースリン酸化酵素）のアミノ酸配列を各々コードするコーディング配列と、当該コーディング配列の発現を調節する調節配列（即ちプロモーター配列と、任意により設けられるターミネーター配列や転写調節因子等の他の配列）を、単一のベクター内に配置する。これらのうち、コーディング配列以外の配列要素（プロモーター配列、ターミネーター配列、転写調節因子等）については、コーディング配列毎に個別に設けてもよいが、複数のコーディング配列について共通化してもよい。
【００７５】
［４．プロテオグリカンを製造する方法］
本発明の一観点によれば、植物細胞においてプロテオグリカンを製造する方法が提供される。本方法は、以下の工程を含む。
（Ｉ）植物細胞内で、前述のキシロース修飾タンパク質を製造する方法により、キシロース修飾タンパク質を産生する工程。
（II）植物細胞内で、キシロース修飾タンパク質のキシロースに対して順にガラクトース、ガラクトース、及びグルクロン酸を連結させて、コアオリゴ糖修飾タンパク質を産生する工程。
（III）植物細胞内で、コアオリゴ糖修飾タンパク質のグルクロン酸末端にアミノ糖及びウロン酸を順に交互に連結させて糖鎖を形成するとともに硫酸化して、グリコサミノグリカンを形成し、プロテオグリカンを産生する工程。
【００７６】
前記工程（Ｉ）におけるキシロース修飾タンパク質の産生における条件及び手順、並びに、前記工程（II）におけるコアオリゴ糖修飾タンパク質の産生は、それぞれ前記［２．キシロース修飾タンパク質を製造する方法］及び［３．コアオリゴ糖修飾タンパク質を製造する方法］で説明した通りである。
【００７７】
前記工程（III）におけるプロテオグリカンの産生は、以下の工程により実施することが好ましい。
（ｄ１）植物細胞内に、グルクロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素をコードする遺伝子を含む第７のベクターと、アミノ糖残基にウロン酸を転移しうる酵素をコードする遺伝子を含む第８のベクターと、ウロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素をコードする遺伝子を含む第９のベクターと、糖鎖のアミノ糖残基及びウロン酸残基とを硫酸化しうる酵素をコードする遺伝子を含む第１０のベクターとを導入する工程。
（ｄ２）植物細胞内で第７、第８、第９、及び第１０のベクターを発現させることにより、グルクロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素、アミノ糖残基にウロン酸を転移しうる酵素、ウロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素、及び糖鎖のアミノ糖残基及びウロン酸残基を硫酸化しうる酵素を発現させ、各酵素を作用させることにより、コアオリゴ糖修飾タンパク質のグルクロン酸末端にアミノ糖及びウロン酸を順に交互に連結させて糖鎖を形成すると共に、糖鎖を硫酸化することにより、グリコサミノグリカンを形成する工程。
【００７８】
グルクロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素をコードする遺伝子は特に制限されず、コアオリゴ糖修飾タンパク質及びＵＤＰ−アミノ糖の存在下において、グルクロン酸残基に対するアミノ糖の付加反応を触媒し得る酵素であれば、その種類は任意である。なお、前述のように、グリコサミノグリカンを形成するアミノ糖としてはガラクトサミン、グルコサミン等が挙げられる。よって、グルクロン酸残基にこれらのアミノ糖を適切に連結できる転移酵素を選択することが好ましい。斯かる転移酵素の例としては、Exostosin-like 3 等が挙げられる。
【００７９】
アミノ糖残基にウロン酸を転移しうる酵素をコードする遺伝子は特に制限されず、アミノ糖残基を有する糖鎖修飾コアオリゴ糖修飾タンパク質及びＵＤＰ−ウロン酸の存在下において、アミノ糖残基に対するウロン酸の付加反応を触媒し得る酵素であれば、その種類は任意である。なお、前述のように、グリコサミノグリカンを形成するウロン酸としてはグルクロン酸、イズロン酸等が挙げられる。よって、アミノ糖残基にこれらのウロン酸を適切に連結できる転移酵素を選択することが好ましい。斯かる転移酵素の例としては、Exostosin-1、Exostosin-2等が挙げられる。
【００８０】
ウロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素をコードする遺伝子は特に制限されず、ウロン酸残基を有する糖鎖修飾コアオリゴ糖修飾タンパク質及びＵＤＰ−アミノ糖の存在下において、ウロン酸残基に対するアミノ糖の付加反応を触媒し得る酵素であれば、その種類は任意である。なお、前述のように、グリコサミノグリカンを形成するアミノ糖としてはガラクトサミン、グルコサミン等が挙げられる。よって、ウロン酸残基にこれらのアミノ糖を適切に連結できる転移酵素を選択することが好ましい。斯かる転移酵素の例としては、Exostosin-1、Exostosin-2、Exostosin-like 1等が挙げられる。
【００８１】
形成された糖鎖のアミノ糖残基及びウロン酸残基を硫酸化しうる酵素をコードする遺伝子は特に制限されず、糖鎖修飾コアオリゴ糖修飾タンパク質の存在下において、アミノ糖残基及びウロン酸残基の硫酸化反応を触媒し得る酵素であれば、その種類は任意である。なお、前述のように、グリコサミノグリカンを形成するアミノ糖としてはガラクトサミン、グルコサミン等が挙げられ、ウロン酸としてはグルクロン酸、イズロン酸等が挙げられる。よって、これらのアミノ糖及びウロン酸を適切に硫酸化できる酵素を選択することが好ましい。適切な硫酸化酵素の例としては、へパラン硫酸２−Ｏ−硫酸化酵素、へパラン硫酸６−Ｏ−硫酸化酵素、コンドロイチン硫酸４−Ｏ−硫酸化酵素、コンドロイチン硫酸６−Ｏ−硫酸化酵素等が挙げられる。
【００８２】
これらの酵素の由来も特に限定されないが、ヒトに使用される修飾タンパク質を産生する目的の場合には、ヒト由来の酵素が好ましい。
【００８３】
なお、コアオリゴ糖末端グルクロン酸残基にＮ−アセチルグルコサミンを転移しうる酵素の例であるExostosin-like 3遺伝子の塩基配列（配列番号１７）及びExostosin-like 3のアミノ酸配列（配列番号１８）は、ＮＣＢＩにそれぞれ登録番号ＮＭ＿００１４４０及びＮＰ＿００１４３１として登録されている。また、グリコサミノグリカンを伸長する糖転移酵素（アミノ糖残基にウロン酸等を転移しうる酵素、ウロン酸等にアミノ糖を転移しうる酵素）の例であるExostosin-1遺伝子の塩基配列（配列番号１９）及びExostosin-1のアミノ酸配列（配列番号２０）は、ＮＣＢＩにそれぞれ登録番号ＮＭ＿０００１２７及びＮＰ＿０００１１８として登録されており、別の例であるExostosin-2遺伝子の塩基配列（配列番号２１）及びExostosin-2のアミノ酸配列（配列番号２２）は、ＮＣＢＩにそれぞれ登録番号ＮＭ＿０００４０１及びＮＰ＿０００３９２として登録されている。また、糖鎖を硫酸化しうる酵素の例であるへパラン硫酸−６−Ｏ−硫酸化酵素遺伝子の塩基配列（配列番号２３）及びへパラン硫酸−６−Ｏ−硫酸化酵素のアミノ酸配列（配列番号２４）は、ＮＣＢＩにそれぞれ登録番号ＮＭ＿００４８０７及びＮＰ＿００４７９８として登録されており、別の例であるへパラン硫酸−２−Ｏ−硫酸化酵素遺伝子の塩基配列（配列番号２５）及びへパラン硫酸−２−Ｏ−硫酸化酵素のアミノ酸配列（配列番号２６）は、ＮＣＢＩにそれぞれ登録番号ＮＭ＿０１２２６２及びＮＰ＿０３６３９４として登録されており、更に別の例であるへパラン硫酸グルコサミン−３−Ｏ−硫酸化酵素遺伝子の塩基配列（配列番号２７）及びへパラン硫酸グルコサミン−３−Ｏ−硫酸化酵素のアミノ酸配列（配列番号２８）は、ＮＣＢＩにそれぞれ登録番号ＮＭ＿００６０４２及びＮＰ＿００６０３３として登録されており、更に別の例であるへパラン硫酸Ｎ脱アセチル化／Ｎ硫酸化酵素遺伝子の塩基配列（配列番号２９）及びへパラン硫酸Ｎ脱アセチル化／Ｎ硫酸化酵素のアミノ酸配列（配列番号３０）は、ＮＣＢＩにそれぞれ登録番号ＮＭ＿００１５４３及びＮＰ＿００１５３４として登録されている。
【００８４】
これらの酵素をコードする遺伝子を含む第７、第８、第９及び第１０のベクターの構成、形態、製法等の詳細については、前記の第１及び第２のベクターについて説明した構成、形態、製法等の詳細を適用することができる。
【００８５】
これら第７、第８、第９及び第１０のベクターを用いて、グルクロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素、アミノ糖残基にウロン酸を転移しうる酵素、ウロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素、及び糖鎖のアミノ糖残基及びウロン酸残基を硫酸化しうる酵素を発現させ、各酵素を植物細胞内のコアオリゴ糖修飾タンパク質並びにアミノ糖及びウロン酸に作用させることにより、コアオリゴ糖修飾タンパク質のグルクロン酸末端にアミノ糖及びウロン酸を順に交互に連結させて糖鎖を形成すると共に硫酸化し、グリコサミノグリカンを形成するコアオリゴ糖修飾タンパク質を産生することができる。
【００８６】
なお、以上説明したように、第７、第８、第９及び第１０のベクターを個別のベクターとして構築してもよいが、第７、第８、第９及び第１０のベクターのうち任意の２種以上を単一のベクターとして構成することももちろん可能である。この場合、発現対象となる酵素（グルクロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素、アミノ糖残基にウロン酸を転移しうる酵素、ウロン酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素、及び糖鎖のアミノ糖残基及びウロン酸残基を硫酸化しうる酵素）のアミノ酸配列を各々コードするコーディング配列と、当該コーディング配列の発現を調節する調節配列（即ちプロモーター配列と、任意により設けられるターミネーター配列や転写調節因子等の他の配列）を、単一のベクター内に配置する。これらのうち、コーディング配列以外の配列要素（プロモーター配列、ターミネーター配列、転写調節因子等）については、コーディング配列毎に個別に設けてもよいが、複数のコーディング配列について共通化してもよい。
【００８７】
なお、以上説明した方法は、更に別の工程を有していてもよい。斯かる工程の例としては、グリコサミノグリカンに含まれるグルクロン酸をイズロン酸に変換しうる工程等が挙げられる。斯かる工程も、上記の各工程と同様に、例えばグルクロン酸をイズロン酸に変換する酵素をコードする遺伝子を含むベクターを植物細胞内に導入し、植物細胞内で斯かるベクターを発現させることにより、グルクロン酸をイズロン酸に変換しうる酵素を発現させることにより、実現することができる。なお、グルクロン酸をイズロン酸に変換しうる酵素の例としては、グルクロン酸−５−エピメラーゼが挙げられる。グルクロン酸−５−エピメラーゼ遺伝子の塩基配列（配列番号３１）及びグルクロン酸−５−エピメラーゼのアミノ酸配列（配列番号３２）は、ＮＣＢＩにそれぞれ登録番号ＮＭ＿０１５５５４及びＮＰ＿０５６３６９として登録されている。ベクターの構成は、前記第１〜第１０のベクターの場合と同様である。
【００８８】
［５．小括］
以上説明した本発明の方法には、本発明の趣旨を逸脱しない限りにおいて、任意の変更を加えてもよい。
例えば、前記の各酵素及び各遺伝子としてそれぞれ１種類の酵素及び遺伝子のみを用いてもよいが、それぞれ複数種類の酵素及び遺伝子を使用してもよい。この場合、それぞれ複数種類の遺伝子を担持する複数種類のベクターを使用することにより、それぞれ複数種類の酵素を発現させればよい。
【００８９】
なお、以上説明した各種ベクターのうち任意の２種以上を単一のベクターとして構成することももちろん可能である。この場合、発現対象となる酵素のアミノ酸配列を各々コードするコーディング配列と、当該コーディング配列の発現を調節する調節配列（即ちプロモーター配列と、任意により設けられるターミネーター配列や転写調節因子等の他の配列）を、単一のベクター内に配置する。これらのうち、コーディング配列以外の配列要素（プロモーター配列、ターミネーター配列、転写調節因子等）については、コーディング配列毎に個別に設けてもよいが、複数のコーディング配列について共通化してもよい。
【００９０】
以上説明したとおり、本発明によれば、植物細胞内でキシロース修飾タンパク質を合成し、更にはこのキシロース修飾タンパク質に基づいて、コアオリゴ糖修飾タンパク質及びプロテオグリカンを製造することができる。これにより、アニマルフリーでのキシロース修飾タンパク質、コアオリゴ糖修飾タンパク質、及びプロテオグリカン生産技術が可能となる。
【００９１】
前述の通り、植物においてムチン型Ｏ結合型糖鎖修飾を合成する技術は、非特許文献１（J. Biol. Chem., (2012), Vol.287, No.43, pp.36518-36526）や非特許文献２（Front. Plant Sci., (2016), Vol.7, Art.18）で報告されてきた。しかし、その糖鎖構造は極めて単純であり、コアオリゴ糖修飾タンパク質やプロテオグリカンのように、複雑な糖鎖構造を有する糖修飾タンパク質に対して、同様のアプローチを適用することはできないと考えられてきた。それに対して本発明では、コアタンパク質のセリン残基にキシロースを連結したキシロース修飾タンパク質の植物細胞による合成に初めて成功したのみならず、更に多数の酵素（各種の糖転移酵素に加え、リン酸転移酵素、ウロン酸転移酵素、硫酸化酵素）を適切に組合せて、各々ベクターにより植物細胞内に導入して発現させることにより、複雑な糖鎖構造を有するコアオリゴ糖修飾タンパク質を植物細胞内で製造することに初めて成功し、更にはより複雑な糖鎖構造を有するプロテオグリカンの植物細胞内合成についてもその道筋を示した。こうした複雑な糖鎖修飾を植物細胞内で人為的に実現した本発明の知見は、前記の非特許文献１及び２等の記載事項からは想定しうるものではなく、極めて驚くべき知見である。
【００９２】
なお、以上説明した本発明の方法を応用して、プロテオグリカン以外の種々の糖タンパク質を植物細胞内で合成することも可能である。例えば、コアタンパク質にアミノ糖とガラクトースとが交互に連結された硫酸化糖鎖が連結されてなるケタラン硫酸は、植物細胞内に、コアタンパク質内の所望のアミノ酸残基にアミノ糖を転移しうる酵素をコードする遺伝子と、アミノ糖残基にガラクトースを転移する酵素をコードしうる遺伝子と、ガラクトース残基にアミノ糖を転移する酵素をコードしうる遺伝子と、糖鎖を形成するアミノ糖残基及びガラクトース残基を硫酸化しうる遺伝子とを、各々ベクターを用いて導入させて発現させることにより、実現することが可能である。
【実施例】
【００９３】
以下、実施例を挙げて本発明を更に詳細に説明する。但し、本発明は以下の実施例にも束縛されるものではなく、本発明の趣旨を逸脱しない範囲において、任意の形態で実施することが可能である。
【００９４】
［１．ヒトＳＲＧＮ発現用ベクターの調製］
プロテオグリカンのコアタンパク質の一種であるヒトセルグリシン（Serglycin：ＳＲＧＮ）の発現用ベクターを、以下の手順により調製した。
【００９５】
＜１ａ．ヒトＳＲＧＮ遺伝子の単離＞
ヒトＳＲＧＮ遺伝子（ＮＣＢＩ登録番号ＮＭ＿００２７２７：配列番号１）を、以下の手順により単離した。
【００９６】
まず、ヒト肝臓細胞ｃＤＮＡライブラリー（ORIGENE Technologies）を鋳型として、配列番号３３及び配列番号３４の塩基配列をそれぞれ有するプライマーＳＲ−Ｆ及びＳＲ−Ｒの対を用いてＰＣＲを実施することにより、ＳＲＧＮ遺伝子を増幅した。
【００９７】
次に、増幅されたＳＲＧＮ遺伝子のＤＮＡ断片を、クローニングベクターｐＴＡ２（東洋紡）にクローニングした後、ＤＮＡ配列の解析を行った。得られたベクターをｐＴＡ２：ＳＲＧＮとする。
【００９８】
＜１ｂ．ヒトＳＲＧＮ遺伝子の植物発現用バイナリーベクターへの導入＞
前記のｐＴＡ２：ＳＲＧＮを鋳型とし、配列番号３５及び配列番号３６の塩基配列をそれぞれ有するプライマーＳＲ−Ｆ（Ｎ）及びＳＲ−Ｒ（Ｓ）ＦＬの対を用いてＰＣＲを実施することにより、ＳＲＧＮ遺伝子の３’末端にＦＬＡＧタグ配列をコードするＤＮＡ配列及び制限酵素ＮｄｅＩ認識配列を、３’末端に制限酵素ＳａｌＩ認識配列をそれぞれ付加した。
合成したＤＮＡ断片を、ギブソンアッセンブリー（ニューイングランドバイオラボ）を用い、制限酵素ＮｄｅＩ及びＳａｌＩ（タカラバイオ）により処理した植物発現用バイナリーベクターｐＲＩ２０１−ＡＮ（タカラバイオ）へと挿入した。得られたプラスミドベクターをｐＲＩ：ＳＲＧＮとする。
【００９９】
＜１ｃ．ヒトＳＲＧＮ遺伝子発現用アグロバクテリウムの作製＞
前記のプラスミドベクターｐＲＩ：ＳＲＧＮを用いて、アグロバクテリウムＬＢＡ４４０４株の形質転換を実施した。
【０１００】
具体的には、プラスミドベクターｐＲＩ：ＳＲＧＮを、１．５ｍｌプラスチックチューブ中のアグロバクテリウムＬＢＡ４４０４株菌体液１００μｌに加え、液体窒素により凍結処理した。凍結後、チューブを３７℃水浴中にて５分間保温し、菌体液を融解した。融解された菌体液にＹＥＰ液体培地を１ｍｌ加えた後、２８℃水浴中でゆっくり振盪しながら２時間保温した。保温終了後、カナマイシンを含むＹＥＰ寒天培地に菌体液を塗布し、２８℃で２日間培養した。ＹＥＰ寒天培地上に形成されたコロニーの一部を抗生物質（カナマイシン、ストレプトマイシン、及びリファンピシン）を含むＹＥＰ液体培地に接種し、２８℃で１日間培養することにより、ヒトＳＲＧＮ発現用アグロバクテリウムの菌体培養液を得た。得られた菌体培養液は、保存のためのグリセロールを加え、−８０℃冷凍庫に保管し、その後の実験に用いた。
【０１０１】
［２．ヒトＸＴＬＹ２発現用ベクターの調製］
＜２ａ．ヒトＸＴＬＹ２遺伝子の単離＞
ヒトタンパク質キシロース転移酵素２（Xylosyltransferase 2：ＸＴＬＹ２）遺伝子（ＮＣＢＩ登録番号ＮＭ＿０２２１６７：配列番号７）を、以下の手順により単離した。
【０１０２】
まず、ヒト肝臓細胞ｃＤＮＡライブラリー（ORIGENE Technologies）を鋳型として、配列番号３７及び配列番号３８の塩基配列をそれぞれ有するプライマーＸＴ２−Ｆ及びＸＴ２−Ｒの対を用いてＰＣＲを実施することにより、ＸＴＬＹ２遺伝子を増幅した。
【０１０３】
次に、増幅されたＸＴＬＹ２遺伝子のＤＮＡ断片を、クローニングベクターｐＴＡ２（東洋紡）にクローニングした後、ＤＮＡ配列の解析を行った。得られたベクターをｐＴＡ２：ＸＴＬＹ２とする。
【０１０４】
＜２ｂ．ヒトＸＴＬＹ２遺伝子の植物発現用バイナリーベクターへの導入＞
前記のｐＴＡ２：ＸＴＬＹ２を鋳型とし、配列番号３９及び配列番号４０の塩基配列をそれぞれ有するプライマーＸＴ２−Ｆ（Ｎ）及びＸ−ｍ−Ｒの対を用いてＰＣＲを実施することにより、ＸＴＬＹ２遺伝子の５’末端に制限酵素ＮｄｅＩ認識配列を、３’末端にｃ−Ｍｙｃタグ配列をコードしたＤＮＡ配列をそれぞれ付加した。更に、配列番号３９及び配列番号４１の塩基配列をそれぞれ有するプライマーＸＴ２−Ｆ（Ｎ）及びｍ−Ｓ−Ｒの対を用いてＰＣＲを実施することにより、ＸＴＬＹ２遺伝子の３’末端に制限酵素ＳａｌＩ認識配列を付加した。
【０１０５】
合成したＤＮＡ断片を、ギブソンアッセンブリー（ニューイングランドバイオラボ）を用い、制限酵素ＮｄｅＩ及びＳａｌＩ（タカラバイオ）により処理した植物発現用バイナリーベクターｐＲＩ２０１−ＡＮ（タカラバイオ）へと挿入した。得られたプラスミドベクターをｐＲＩ：ＸＴＬＹ２とする。
【０１０６】
＜２ｃ．ヒトＸＴＬＹ２遺伝子発現用アグロバクテリウムの作製＞
前記のプラスミドベクターｐＲＩ：ＸＴＬＹ２を用いて、アグロバクテリウムＬＢＡ４４０４株の形質転換を実施した。
【０１０７】
具体的には、プラスミドベクターｐＲＩ：ＸＴＬＹ２を、１．５ｍｌプラスチックチューブ中のアグロバクテリウムＬＢＡ４４０４株菌体液１００μｌに加え、液体窒素により凍結処理した。凍結後、チューブを３７℃水浴中にて５分間保温し、菌体液を融解した。融解された菌体液にＹＥＰ液体培地を１ｍｌ加えた後、２８℃水浴中でゆっくり振盪しながら２時間保温した。保温終了後、カナマイシンを含むＹＥＰ寒天培地に菌体液を塗布し、２８℃で２日間培養した。ＹＥＰ寒天培地上に形成されたコロニーの一部を抗生物質（カナマイシン、ストレプトマイシン、及びリファンピシン）を含むＹＥＰ液体培地に接種し、２８℃で１日間培養することにより、ヒトＸＴＬＹ２発現用アグロバクテリウムの菌体培養液を得た。得られた菌体培養液は、保存のためのグリセロールを加え、−８０℃冷凍庫に保管し、その後の実験に用いた。
【０１０８】
［３．植物体におけるヒトＳＲＧＮの発現及びヒトＸＴＬＹ２によるキシロース修飾］
＜３ａ．ヒトＳＲＧＮの植物体における一過性発現＞
前記のＳＲＧＮ及びＸＴＬＹ２発現用アグロバクテリウムの各菌体培養液を解凍し、抗生物質（カナマイシン、ストレプトマイシン、及びリファンピシン）を含むＹＥＰ液体培地に播種し、２８℃で１晩振盪培養した。その後、遠心分離により菌体を集菌し、１０ｍＭ ＭＥＳ緩衝液（ｐＨ５．７、１０ｍＭ塩化マグネシウム、１５０μＭアセトシリンゴンを含む）に懸濁し、菌体濃度ＯＤ６００＝０．５に調整した。
【０１０９】
得られた菌体濃度調整済みのＳＲＧＮ及びＸＴＬＹ２発現用の各菌体培養液を用いて、ニコチアナ・ベンサミアナ（Nicotiana benthamiana）へのバキュームインフィルトレーションを行った。これらのＳＲＧＮ及びＸＴＬＹ２発現用の菌体培養液を各々単独で、或いは両菌体培養液を等量ずつ混合して、実験に用いた。インフィルトレーション後のＮ．ベンサミアナ植物体は、グロースチャンバー内で育成した（２３℃、１６時間明期、８時間暗期）。育成した植物体より葉試料を取得し、後の実験に供した。
【０１１０】
＜３ｂ．植物発現ヒトＳＲＧＮのウエスタンブロットによる発現解析＞
前記の葉試料を氷冷下磨砕し、磨砕物を５０ｍＭトリス−塩酸緩衝液（ｐＨ７．５、０．１％ Ｔｗｅｅｎ２０、プロテアーゼ阻害剤を含む）に懸濁した。懸濁液を遠心分離（１６，０００ｒｐｍ、１０分、４℃）後、遠心上清をウエスタンブロット解析に供した。得られたウエスタンブロット解析結果を示す写真を図２に示す。図２から明らかなように、ＳＲＧＮを単独で発現させた場合と、ＳＲＧＮ及びＸＴＬＹ２を共発現させた場合とでは、ＳＲＧＮの分子量に違いが認められ、後者の分子量の方が大きかった。このことから、ＳＲＧＮはＸＴＬＹ２と共発現させた場合に、何らかの修飾を受けることが分かる。
【０１１１】
＜３ｃ．植物発現ヒトＳＲＧＮのＳＤＳ−ＰＡＧＥによる分離及びＭＡＬＤＩ ＴＯＦ−ＭＳによる質量分析＞
前記の葉試料を氷冷下磨砕し、磨砕物を５０ｍＭトリス−塩酸緩衝液（ｐＨ７．５、１５０ｍＭ塩化ナトリウム、０．１％ Ｔｗｅｅｎ２０、プロテアーゼ阻害剤を含む）に懸濁した。懸濁液を遠心分離（１６，０００ｒｐｍ、１０分、４℃）後、遠心上清から抗ＦＬＡＧ Ｍ２抗体磁性ビーズ（シグマアルドリッチ）を用いてＳＲＧＮを精製した。得られたＳＲＧＮをドデシル硫酸ナトリウム−ポリアクリルアミド電気泳動（Sodium Dodecyl Sulfate-Poly-Acrylamide Gel Electrophoresis：ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）で分離した後、ゲルをクマジー染色に供した。得られたＳＤＳ−ＰＡＧＥ解析結果を示す写真を図３に示す。
【０１１２】
前記のＳＤＳ−ＰＡＧＥゲルから、ＳＲＧＮを含むバンドを切り出し、トリプシン処理に供した後、得られたペプチドについてマトリックス支援レーザー脱離イオン化法（Matrix Assisted Laser Desorption/Ionization：ＭＡＬＤＩ ＴＯＦ−ＭＳ）による質量分析を行った。得られたＭＡＬＤＩ ＴＯＦ−ＭＳ解析結果を示すスペクトルを図４に示す。図４に示す通り、ＳＲＧＮ単独発現の場合では、修飾を受けていないペプチドのみ検出された。一方、ＳＲＧＮ及びＸＴＬＹ２を共発現させた場合は、質量数が約１３２（キシロースが付加した際の質量数）ずつ異なるペプチドが９種類検出された。ＳＲＧＮにはキシロース修飾を受けると推定されるセリン残基が８か所存在するので、セリン残基が不均一にキシロース修飾されたことが示唆される。
【０１１３】
以上の結果から、植物細胞に導入したヒトＸＴＬＹ２遺伝子が機能し、植物細胞中でタンパク質にキシロースを結合できることが明らかとなった。
【０１１４】
［４．キシロース修飾ヒトＳＲＧＮの更なる修飾］
ニコチアナ・ベンサミアナ（Nicotiana benthamiana）にコドン最適化したヒトβ−１，４−ガラクトース転移酵素（beta-1,4-galactosyltransferase 7：Ｂ４ＧＡＬＴ７）（ＮＣＢＩ登録番号ＮＭ＿００７２５５）、ヒトβ−１，３−ガラクトース転移酵素（beta-1,3-galactosyltransferase 6：Ｂ３ＧＡＬＴ６）（ＮＣＢＩ登録番号ＮＭ＿０８０６０５）、及びヒトβ−１，３−グルクロン酸転移酵素（Galactosylgalactosylxylosylprotein 3-beta-glucuronosyltransferase 3：Ｂ３ＧＡＴ３）（ＮＣＢＩ登録番号ＮＭ＿０１２２００）の各遺伝子を、人工合成遺伝子として得た。ヒトグリコサミノグリカンキシロースリン酸化酵素（Glycosaminoglycan xylosylkinase：ＦＡＭ２０Ｂ）（ＮＣＢＩ登録番号ＮＭ＿０１４８６４）についてはヒト肝臓細胞ｃＤＮＡライブラリー（ORIGENE Technologies）を鋳型として、配列番号４２及び配列番号４３の塩基配列をそれぞれ有するプライマーＦＡＢ−Ｆ及びＦＡＢ−Ｒの対を用いてＰＣＲを実施することにより、ＦＡＭ２０Ｂ遺伝子を増幅した。増幅されたＦＡＭ２０Ｂ遺伝子を鋳型として、配列番号４４及び配列番号４５の塩基配列をそれぞれ有するプライマーＦＡＢ−ＦＧ及びＦＡＢ−ＲＧの対を用いて、それぞれＰＣＲにより増幅した。
【０１１５】
前記の各遺伝子を鋳型とし、Ｂ４ＧＡＬＴ７遺伝子については、配列番号４６及び配列番号４７の塩基配列をそれぞれ有するプライマーＢ４Ｇ７−Ｆ及びＢ４Ｇ７−Ｒの対を用いて、Ｂ３ＧＡＬＴ６遺伝子については、配列番号４８及び配列番号４９の塩基配列をそれぞれ有するプライマーＢ３Ｇ６−Ｆ及びＢ３Ｇ６−Ｒの対を用いて、Ｂ３ＧＡＴ３遺伝子については、配列番号５０及び配列番号５１の塩基配列をそれぞれ有するプライマーＢ３Ｇ３−Ｆ及びＢ３Ｇ３−Ｒの対を用いて、それぞれＰＣＲにより増幅した。
【０１１６】
合成したＤＮＡ断片を、ギブソンアッセンブリー（ニューイングランドバイオラボ）を用い、制限酵素ＮｄｅＩ及びＳａｌＩ（タカラバイオ）により処理した植物発現用バイナリーベクターｐＲＩ２０１−ＡＮ（タカラバイオ）へと挿入した。得られたプラスミドベクターをそれぞれｐＲＩ：Ｂ４ＧＡＬＴ７、ｐＲＩ：Ｂ３ＧＡＬＴ６、ｐＲＩ：Ｂ３ＧＡＴ３、及びｐＲＩ：ＦＡＭ２０Ｂとする。
【０１１７】
前項と同様に、各プラスミドベクターを用いてアグロバクテリウムＬＢＡ４４０４株の形質転換を実施し、各遺伝子発現のためのアグロバクテリウムを得た。各アグロバクテリウムを用いてニコチアナ・ベンサミアナ（Nicotiana benthamiana）における一過性発現試験を実施し、セルグリシンに対する糖鎖伸長作用について確認した。
【０１１８】
一例として図５に、セルグリシンに対するヒトタンパク質キシロース転移酵素２、ヒトβ−１，４−ガラクトース転移酵素、ヒトβ−１，３−ガラクトース転移酵素、ヒトβ−１，３−グルクロン酸転移酵素による糖鎖伸長効果を解析した結果を示す。図５から明らかなように、ＳＲＧＮを単独で発現させた場合（図中「Ｓ」）と、ＳＲＧＮ及びＸＴＬＹ２を共発現させた場合（図中「１」）と、ＳＲＧＮ、ＸＴＬＹ２及びＢ４ＧＡＬＴ７を共発現させた場合（図中「２」）とを比較すると、ＳＲＧＮの分子量に違いが認められ、後の方ほど分子量が大きかった。このことから、ＳＲＧＮ及びＸＴＬＹ２を共発現させた場合（図中「１」）と比較して、更にＢ４ＧＡＬＴ７を共発現させた場合（図中「２」）には、更に何らかの修飾を受けることが分かる。ここで、Ｂ４ＧＡＬＴ７はβ−１，４−ガラクトース転移酵素であることから、ＳＲＧＮ及びＸＴＬＹ２によりキシロース修飾を受けたＳＲＧＮのキシロース残基に、更にガラクトースがβ−１，４付加されたものと考えられる。
【０１１９】
一方、ＳＲＧＮ、ＸＴＬＹ２、Ｂ４ＧＡＬＴ７及びＢ３ＧＡＬＴ６を共発現させた場合（図中「３」）とＳＲＧＮ、ＸＴＬＹ２、Ｂ４ＧＡＬＴ７、Ｂ３ＧＡＬＴ６及びＢ３ＧＡＴ３を共発現させた場合（図中「４」）とを比較すると、セルグリシンの泳動度は図中「２」と変化が無かったことから、糖鎖が伸長していないと考えられた。しかし、ＦＡＭ２０Ｂと共発現させるとＳＲＧＮの分子量に違いが認められるようになり、後の方ほど分子量が大きかった（図中「３Ｆ」及び「４Ｆ」）。Ｂ３ＧＡＬＴ６はキシロース残基がリン酸化されたキシロース−ガラクトース構造に対してガラクトースを転移することが報告されていることから（Biochem J., (2009), 421:157-162）、ＦＡＭ２０Ｂによりセルグリシンを修飾するキシロース−ガラクトース構造のキシロース残基に対してリン酸化が生じ、結果としてＢ３ＧＡＬＴ６及びＢ３ＧＡＴ３による糖鎖伸長が生じたと考えられる。このことから、糖転移酵素に加えＦＡＭ２０Ｂを共発現させることで、コアオリゴ糖の合成が可能であることが明らかとなった。
【０１２０】
このように、ＳＲＧＮ、ＸＴＬＹ２及びＢ４ＧＡＬＴ７に加えて、更にＢ３ＧＡＬＴ６、Ｂ３ＧＡＴ３及びＦＡＭ２０Ｂを共発現させると、ＳＲＧＮの分子量の増大が生じる。従って、コアタンパク質であるＳＲＧＮのセリン残基にキシロース、ガラクトース、ガラクトース、及びグルクロン酸がこの順に連結され、プロテオグリカンの元となるコアオリゴ糖修飾タンパク質が形成されることが分かる。更に、このプロテオグリカンに周知の手法でアミノ糖及びウロン酸を順に交互に連結させてグリコサミノグリカンを形成すれば、プロテオグリカンを産生することができる。
【産業上の利用可能性】
【０１２１】
本発明によれば、キシロース修飾タンパク質やコアオリゴ糖修飾タンパク質、更にはプロテオグリカンを植物細胞によりアニマルフリーで生産することが可能となる。従って、本発明は、医薬・農学等のタンパク質生産分野において高い有用性を有する。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【配列表】
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